(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
配列番号２９で表されるアミノ酸配列を有し、メチオニンによるフィードバック阻害に対する耐性及びホモセリンＯ−スクシニルトランスフェラ−ゼ活性を有する、ポリペプチドを発現する、Ｏ−スクシニルホモセリンを生産するエシェリキア属微生物を含有する、Ｏ−スクシニルホモセリンを生産するための組成物。
【請求項２】
前記エシェリキア属微生物が、大腸菌である、請求項１に記載の組成物。
【請求項３】
配列番号２９で表されるアミノ酸配列を有し、メチオニンによるフィードバック阻害に対する耐性およびホモセリンＯ−スクシニルトランスフェラーゼ活性を有する、ポリペプチドを発現する、Ｏ−スクシニルホモセリンを生産するエシェリキア属微生物であって、シスタチオニンγ−シンターゼをコードする前記ｍｅｔＢ遺伝子がさらに欠損または弱化されている、エシェリキア属微生物。
【請求項４】
配列番号２９で表されるアミノ酸配列を有し、メチオニンによるフィードバック阻害に対する耐性およびホモセリンＯ−スクシニルトランスフェラーゼ活性を有する、ポリペプチドを発現する、Ｏ−スクシニルホモセリンを生産するエシェリキア属微生物であって、ホモセリンキナーゼをコードする前記ｔｈｒＢ遺伝子及びホモセリンＯ−スクシニルトランスフェラ−ゼをコードする前記ｍｅｔＡ遺伝子がさらに欠損または弱化されている、エシェリキア属微生物。
【請求項５】
配列番号２９で表されるアミノ酸配列を有し、メチオニンによるフィードバック阻害に対する耐性およびホモセリンＯ−スクシニルトランスフェラーゼ活性を有する、ポリペプチドを発現する、Ｏ−スクシニルホモセリンを生産するエシェリキア属微生物であって、ホスホエノールピルビン酸カルボキシラーゼ、アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ及びアスパラギン酸セミアルデヒドデヒドロゲナーゼがさらに強化されている、エシェリキア属微生物。
【請求項６】
（ａ）配列番号２９で示されるアミノ酸配列を有し、メチオニンによるフィードバック阻害に対する耐性およびホモセリンＯ−スクシニルトランスフェラーゼ活性を有する、ポリペプチドを発現する、Ｏ−スクシニルホモセリンを生産するエシェリキア属微生物を培地で培養する工程；及び
（ｂ）前記微生物または培地からＯ−スクシニルホモセリンを得る工程を含む、Ｏ−スクシニルホモセリンの生産方法。
【請求項７】
前記エシェリキア属微生物が、大腸菌である、請求項６に記載の方法。
【請求項８】
シスタチオニンγ−シンターゼをコードする前記ｍｅｔＢ遺伝子がさらに欠損または弱化されている、請求項６または７に記載の方法。
【請求項９】
ホモセリンキナーゼを前記ｔｈｒＢ遺伝子およびホモセリンＯ−スクシニルトランスフェラーゼをコードする前記ｍｅｔＡ遺伝子が、さらに欠損または弱化されている、請求項６〜８のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１０】
ホスホエノールピルビン酸カルボキシラーゼ、アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ、およびアスパラギン酸セミアルデヒドデヒドロゲナーゼが、さらに強化されている、請求項６〜９のいずれか一個に記載の方法。
【請求項１１】
Ｏ−スクシニルホモセリンを生産するためのＯ−スクシニルホモセリンを生産するエシェリキア属微生物の使用であって、前記微生物が、メチオニンによるフィードバック阻害に対する耐性およびホモセリンＯ−スクシニルトランスフェラーゼ活性を有するポリペプチドを発現し、前記ポリペプチドが配列番号２９で表されるアミノ酸配列を有する、使用。
【請求項１２】
前記エシェリキア属微生物が大腸菌である、請求項１１に記載の使用。
【請求項１３】
シスタチオニンγ−シンターゼをコードする前記ｍｅｔＢ遺伝子が、さらに欠損または弱化されている、請求項１１または１２に記載の使用。
【請求項１４】
ホモセリンキナーゼをコードする前記ｔｈｒＢ遺伝子及びホモセリンＯスクシニルトランスフェラーゼをコードする前記ｍｅｔＡ遺伝子が、さらに欠損または弱化されている、請求項１１〜１３のいずれか一項に記載の使用。
【請求項１５】
ホスホエノールピルビン酸カルボキシラーゼ、アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ、およびアスパラギン酸セミアルデヒドデヒドロゲナーゼがさらに強化されている、請求項１１〜１４のいずれか一項に記載の使用。
【請求項１６】
ホモセリンスクシニルトランスフェラーゼとしての単離されたペプチドの使用であって、前記ペプチドが配列番号２９のアミノ酸配列を有する、使用。
【請求項１７】
請求項１６に記載のポリペプチドをコードする単離されたポリヌクレオチドの使用であって、前記ポリヌクレオチドが配列番号３６のヌクレオチド配列を有する、使用。
【請求項１８】
メチオニンを生産する方法であって、
（ａ）配列番号２９で表されるアミノ酸配列を有し、メチオニンによるフィードバック阻害に対する耐性およびホモセリンＯ−スクシニルトランスフェラーゼ活性を有する、ポリペプチドを発現する、Ｏ−スクシニルホモセリンを生産するエシェリキア属微生物を培地で培養する工程、
（ｂ）前記微生物または前記培地からＯ−スクシニルホモセリンを得る工程、ならびに
（ｃ）前記Ｏ−スクシニルホモセリンからメチオニンを生産する工程
を含む、方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、メチオニンによるフィードバック阻害に対する耐性及びホモセリンＯ−スクシニルトランスフェラ−ゼ活性を有する分離されたポリペプチド、前記ポリペプチドを発現するＯ−スクシニルホモセリン生産微生物及びこれを用いてＯ−スクシニルホモセリンを生産する方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
自然界に存在する大部分の微生物は、メチオニンを生合成するためにＯ−スクシニルホモセリン（O-succinyl homoserine）またはＯ−アセチルホモセリン（O-acetyl homoserine）を中間体として用いることが知られている。一般的に、Ｏ−スクシニルホモセリンは、ホモセリン（Homoserine）にスクシニルＣｏＡ（Succinyl-coA）のスクシニルグループ（Succinyl group）を結合させるＯ−スクシニルトランスフェラ-ゼ（homoserine O-succinyltransferase、MetA）により生産され、Ｏ−アセチルホモセリンは、ホモセリン（homoserine）にアセチルＣｏＡ（acetyl-coA）のアセチルグループ（acetyl group）を結合させるホモセリンO-アセチルトランスフェラ-ゼ（homoserine O-acetyltransferase、MetX）により生産される。即ち、中間体のうち、Ｏ−スクシニルホモセリンの生産において、ｍｅｔＡは生産菌株の開発に非常に重要な遺伝子の一つである。一方、ＭｅｔＸはＭｅｔＡとは異なり、フィードバック阻害を受けず、酵素の安定性も高いことが知られている。
【０００３】
Ｏ−スクシニルホモセリンは、メチオニン生合成経路でシスタチオニンγ−シンターゼ（cystathionine gamma synthase）をコードするｍｅｔＢ遺伝子欠損菌株を用いて生成することができる。しかし、Ｏ−スクシニルホモセリン生産菌株は、Ｌ−メチオニン要求性を示す。このような理由から、培地に添加されたメチオニンによりホモセリンＯ−スクシニルトランスフェラ−ゼがフィードバック阻害（feedback inhibition）を受けて活性が抑制され、最終的には、高濃度のＯ−スクシニルホモセリンを得ることができなくなる。
【０００４】
したがって、従来の多くの特許は、フィードバック調節システムからｍｅｔＡのフィードバック阻害を解除する研究に集中していた。しかし、ｍｅｔＡによりコードされるホモセリンＯ−スクシニルトランスフェラ−ゼは、野生型タンパク質自体でも安定性が低く、フィードバック解除のために変異を導入すると、不安定性がより増大するという問題を抱えている。高い生産能を有するＯ−スクシニルホモセリン生産菌株の開発のためにはｍｅｔＡ遺伝子のフィードバック阻害が除去され、酵素の安定性を確保する必要がある。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００５】
【特許文献１】韓国登録特許番号第０６２００９２号公報
【特許文献２】国際特許ＷＯ０５／０７５６２５号公報
【特許文献３】国際公開特許ＷＯ２００８１２７２４０号公報
【非特許文献】
【０００６】
【非特許文献１】Karlin及びAltschul, Pro. Natl. Acad. Sci. USA, 90, 5873（1993）
【非特許文献２】Methods Enzymol., 183, 63（1990）
【非特許文献３】「Biochemical Engineering」by James M. Lee, Prentice-Hall International Editions, pp 138-176
【非特許文献４】「Manual of Methods for General Bacteriology」by the AmericanSociety for Bacteriology、Washington DC、米国、1981年
【非特許文献５】PNAS（2000）vol97：P6640-6645
【非特許文献６】J Bacteriol.1997 Jul; 179（13）：4426-8
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
前述したｍｅｔＡのフィードバック阻害現象と不安定性の問題を解決するために、本発明者らはメチオニンによるフィードバック阻害を受けず、酵素の安定性が確保されたホモセリンＯ−スクシニルトランスフェラ−ゼを見出すために鋭意努力した結果、そのような活性を有する新規な酵素を探索した。このように探索した候補遺伝子を選別し、これをエシェリキア属微生物に導入してフラスコ培養した結果、Ｏ−スクシニルホモセリンが生成されることを確認した。このように選別された遺伝子は、ホモセリンＯ−スクシニルトランスフェラ−ゼ活性を有し、メチオニンに対するフィードバック阻害に耐性を有することを確認し、本発明を完成した。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
本発明は、以下を提供する。
［１］配列番号２９で表されるアミノ酸配列を有し、メチオニンによるフィードバック阻害に対する耐性（resistance to feedback inhibition）及びホモセリンＯ−スクシニルトランスフェラ−ゼ（Homoserine Succinyltransferase）活性を有する分離されたポリペプチド。
［２］上記［１］のポリペプチドをコードする配列番号３６の塩基配列を有する分離されたポリヌクレオチド。
［３］配列番号２９で表されるアミノ酸配列を有し、メチオニンによるフィードバック阻害に対する耐性（feedback resistant）及びホモセリンＯ−スクシニルトランスフェラ−ゼ（Homoserine Succinyltransferase）活性を有するポリペプチドを発現する、Ｏ−スクシニルホモセリンを生産するエシェリキア属微生物。
［４］上記エシェリキア属微生物は、大腸菌（Escherichia coli）であることを特徴とする、上記［３］に記載のエシェリキア属微生物。
［５］シスタチオニンγ−シンターゼ（cystathionine gamma synthase）をコードするｍｅｔＢ遺伝子がさらに欠損または弱化された、上記［３］に記載のエシェリキア属微生物。
［６］ホモセリンキナーゼ（homoserine kinase）をコードするｔｈｒＢ遺伝子及びホモセリンＯ−スクシニルトランスフェラ−ゼ（homoserine O-succinyltransferase）をコードするｍｅｔＡ遺伝子がさらに欠損または弱化された、上記［３］に記載のエシェリキア属微生物。
［７］上記微生物は、ホスホエノールピルビン酸カルボキシラーゼ（phosphoenolpyruvate carboxylase）、アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ（aspartate aminotransferase）及びアスパラギン酸セミアルデヒドデヒドロゲナーゼ（aspartate-semialdehyde dehydrogenase）がさらに強化された、上記［３］に記載のエシェリキア属微生物。
［８］（ａ）上記［３］〜［７］のいずれか一項の微生物を培地で培養する段階；及び
（ｂ）上記微生物または培地からＯ−スクシニルホモセリンを得る段階を含む、Ｏ−スクシニルホモセリンの生産方法。
本発明は、メチオニンによるフィードバック阻害に耐性及びホモセリンＯ−スクシニルトランスフェラ−ゼ活性を有する、分離された新規なポリペプチドを提供することを目的とする。
【０００９】
本発明は、また、前記分離された新規なポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを提供することを目的とする。
【００１０】
本発明は、また、前記分離された新規なポリペプチドを発現するＯ−スクシニルホモセリン生産微生物を提供することを目的とする。
【００１１】
本発明は、また、前記微生物を用いてＯ−スクシニルホモセリンを生産する方法を提供することを目的とする。
【発明の効果】
【００１２】
本発明の分離された新規なメチオニンに対するフィードバック阻害に耐性を有し、ホモセリンＯ−スクシニルトランスフェラ−ゼ活性を有するポリペプチドを含むＯ−スクシニルホモセリン生産微生物は、メチオニンに対するフィードバック阻害に耐性を有し、高収率でＯ−スクシニルホモセリンを生産することができるため、これを前駆体とするＬ−メチオニンを高収率で生産するのに有用に用いられる。
【発明を実施するための形態】
【００１３】
前記目的を達成するための一つの様態として、本発明は、メチオニンによるフィードバック阻害に耐性を有し（feedback resistant）、ホモセリンＯ−スクシニルトランスフェラ-ゼ（Homoserine O-Succinyltransferase）活性を有する分離された新規なポリペプチドを提供する。
【００１４】
本発明における用語「ホモセリンO-スクシニルトランスフェラ-ゼ活性（activity of homoserine O-succinyltransferase）」とは、メチオニン生合成の過程でホモセリン（Homoserine）をO-スクシニルホモセリン（O-succinyl homoserine）に転換する活性を意味する。
【００１５】
本発明における用語 「フィードバック阻害（feedback inhibition）」とは、メチオニン生合成においてメチオニンがホモセリンＯ−スクシニルトランスフェラ−ゼの酵素活性を抑制することを意味する。
【００１６】
本発明においてポリペプチドは、ホモセリンＯ−スクシニルトランスフェラ−ゼ活性を有する配列番号２９のアミノ酸配列を有し、メチオニンフィードバック阻害に耐性を有することを特徴とする。本発明で提示したホモセリンＯ−スクシニルトランスフェラ−ゼ活性及びメチオニンに対するフィードバック阻害に耐性を有する限り、前記ポリペプチドのアミノ酸配列に対して８０％以上、具体的には９０％以上、より具体的には９５％以上、特に具体的には９７％以上の相同性を有するポリペプチドも本発明に含まれる。前記アミノ酸配列に対する相同性は、例えば、文献によるアルゴリズムBLAST(参照：非特許文献１)やPearsonによるFASTA(参照：非特許文献２)を用いて決定することができる。このようなアルゴリズムBLASTに基づいて、BLASTNやBLASTXと呼ばれるプログラムが開発されている(参考：www.ncbi.nlm.nih.gov) 。
【００１７】
本発明のもう一つの態様は、前記ポリペプチドをコードする分離されたポリヌクレオチドを提供する。
【００１８】
前記ポリペプチドは、具体的には、配列番号３６のポリヌクレオチド配列によりコードすることができ、コドンの縮退性により、これと８０％以上、具体的には９０％以上、より具体的には９５％以上、特に具体的には、９７％以上の相同性を有するポリヌクレオチドも本発明に含まれる。しかし、本発明がこれに限定されるものではない。
【００１９】
また、本発明の別の態様は、前記ポリヌクレオチドが作動可能に含まれているベクターを提供する。
【００２０】
本発明における用語「ベクター」とは、適当な宿主内で目的タンパク質を発現させるべく、適切な調節配列に作動可能に連結された前記目的タンパク質を暗号化するポリヌクレオチドの塩基配列を含有するＤＮＡ産物を意味する。前記調節配列は、転写を開始することのできるプロモーター、そのような転写を調節するための任意のオペレーター配列、適当なｍＲＮＡリボソーム結合部位をコードする配列、及び転写及び翻訳の終結を調節する配列を含む。ベクターは、適切な宿主内に形質転換された後、宿主ゲノムとは無関係に複製または機能することができ、ゲノムそのものに組み込むことができる 。
【００２１】
本発明において用いられるベクターは、宿主中で複製可能なものであれば特に限定されず、当業界で知られている任意のベクターを利用することができる。
【００２２】
本発明のもう一つの態様は、メチオニンに対するフィードバック阻害に対する耐性（feedback resistant）を有し、ホモセリンＯ−スクシニルトランスフェラ-ゼ（Homoserine Succinyltransferase）活性を有するポリペプチドを発現する、Ｏ−スクシニルホモセリン（O-succinyl homoserine）を生産する微生物を提供する。
【００２３】
本発明における用語「Ｏ−スクシニルホモセリン（Ｏ−ｓｕｃｃｉｎｙｌ  ｈｏｍｏｓｅｒｉｎｅ）を生産する微生物」とは、Ｏ−スクシニルホモセリンを生産し、細胞内外で蓄積することのできる微生物であってもよい。
【００２４】
前記Ｏ-スクシニルホモセリンを生産する微生物には、原核及び真核微生物菌株を含む。例えば、Ｏ-スクシニルホモセリンを生産するエシェリキア（Escherichia）属、エルウイニア（Erwinia）属、セラチア（Serratia）属、プロビデンシア（Providencia）属、コリネバクテリウム（Corynebacterium）属及びブレビバクテリウム（Brevibacterium）属に属する微生物菌株が含まれるが、これに限定されない。具体的には、エシェリキア（Escherichia）属に属する微生物菌株、例えばエシェリキア大腸菌（Escherichia coli）を用いてもよい。
【００２５】
前記Ｏ−スクシニルホモセリンを生産する微生物は、Ｌ−リジン、Ｌ−トレオニンまたはＬ−イソロイシン生産菌株を用いて製造することもできる。具体的には、Ｌ−トレオニン生産菌株を用いて製造することができる。Ｌ−トレオニン生産菌株は、Ｌ−トレオニン及びＯ−スクシニルホモセリンの前駆体であるホモセリンまでの合成が既に円滑に行われる菌株であるため、これを活用して、大量のメチオニン前駆体、即ち、Ｏ−スクシニルホモセリンを合成することができる。
【００２６】
本発明において、前記ポリペプチドの発現は、前記ポリペプチドをコードする遺伝子を作動可能に含まれている組み換えベクターで形質転換されるか、または前記ポリペプチドを暗号化するポリヌクレオチドを染色体内に挿入することによって達成できるが、特にこれに限定されるものではない。
【００２７】
本発明における用語「形質転換」とは、目的タンパク質を暗号化するポリヌクレオチドを含むベクターを宿主細胞内に導入して宿主細胞内で前記ポリヌクレオチドが暗号化するタンパク質を発現することができるようにすることを意味する。導入されたポリヌクレオチドは、宿主細胞内での発現さえ行われれば、宿主細胞の染色体に挿入されて位置するか、または染色体外に位置することができる。前記ポリヌクレオチドは、宿主細胞内に導入されて発現することができるものであれば、如何なる形で導入されても構わない。例えば、前記ポリヌクレオチドは、それ自体で発現されるのに必要なすべての要素を含むポリヌクレオチド構造体である発現カセット（expression cassette）の形で宿主細胞に導入することができる。前記発現カセットは、通常、前記遺伝子のオープンリーディングフレーム（open reading frame、以下「ＯＲＦ」と略称する）に作動可能に連結されているプロモーター、転写終結シグナル、リボソーム結合部位、及び翻訳終結シグナルを含む。本発明で使用されるプロモーターは、宿主細胞内で目的タンパク質を暗号化するポリヌクレオチドの転写を高い頻度で開始するものであれば、特に限定されず、当業界で知られている任意のプロモーターを利用することができる。具体的には、Ｔ７プロモーター、ｔｒｃプロモーター、ｔａｃプロモーター、ＣＪ１プロモーター（特許文献１）などを用いることができる。
【００２８】
本発明の具体的な実施態様において、前記微生物は、シスタチオニンγ−シンターゼ（cystathionine gamma synthase）をコードするｍｅｔＢ遺伝子をさらに欠損または弱化させることができる。
【００２９】
本発明の具体的な実施態様において、前記微生物は、ホモセリンキナーゼ（homoserine kinase）をコードするｔｈｒＢ遺伝子及びホモセリンＯ−スクシニルトランスフェラ−ゼ（homoserine O-succinyltransferase）をコードするｍｅｔＡ遺伝子をさらにより一層欠損または弱化させることができる。
【００３０】
また、本発明の具体的な実施形態として、ホスホエノールピルビン酸カルボキシラーゼ（phosphoenolpyruvate carboxylase）、アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ（aspartate aminotransferase）及びアスパラギン酸セミアルデヒドデヒドロゲナーゼ（aspartate-semialdehyde dehydrogenase）をさらに強化させるエシェリキア属微生物であってもよい。
【００３１】
本発明において、前記遺伝子の配列は、米国生物工学情報センター（ＮＣＢＩ）のようなデータベースから得られる。
【００３２】
本発明における用語「欠損（deletion）」とは、目的遺伝子の開始コドンに該当する塩基配列から終止コドンまでの塩基配列領域、あるいはその調節部位の塩基配列のうち一部あるいは全部を、染色体の内部から除去した形を意味する。
【００３３】
本願における用語「弱化（weakening）」とは、微生物菌株において相応するポリヌクレオチドによりコードされる１つ以上の酵素に対する細胞内活性を除去または減少させることを意味するが、例えば、遺伝子の発現調節配列及び５’−ＵＴＲ部位の塩基配列を変形させることにより、タンパク質の発現を弱化させたり、開始コドンの交換、該遺伝子のＯＲＦ部位に突然変異を導入することにより、タンパク質の活性を弱化させることができる。
【００３４】
本願における用語「強化（enhancing）」とは、相応するポリヌクレオチドによりコードされる酵素の細胞内活性の増加をいう。酵素の細胞内活性の増進は、遺伝子の過剰発現により、またはポリヌクレオチド配列自体の変異導入により行うことができる。
【００３５】
前記ポリヌクレオチドの過剰発現は、発現調節配列の置換または突然変異による変形、開始コドンの交換、前記ポリヌクレオチドをさらに染色体に挿入すること、またはベクターを通じて導入することによるコピー数の増加、またはその組み合わせによるものであってもよい。
【００３６】
前記発現調節配列は、それと作動可能に連結されたポリヌクレオチドの発現を調節する配列であり、例えば、プロモーター、ターミネーター、エンハンサー、サイレンサー、シャイン・ダルガノ（Shine-Dalgarno）配列などが含まれる。前記開始コドンは、ＴＴＧまたはＧＴＧからなる開始コドンをＡＴＧで置換することにより、当該遺伝子の酵素活性を増加させたり、その反対に交換して弱化させることができる。前記ポリヌクレオチドは、染色体内の特定の位置に挿入されることにより、コピー数が増加したものであってもよい。前記特定の位置は、例えば、トランスポゾンまたはインタージェニック（intergenic）部位などを含むことができる。また、前記ポリヌクレオチドは、発現ベクター内に挿入され、その発現ベクターを宿主細胞内に導入することにより、コピー数が増加したものであってもよい。
【００３７】
本発明のもう一つの態様は、前記微生物を培地で培養してＯ−スクシニルホモセリンを生産する段階及び前記微生物または培地からＯ−スクシニルホモセリンを得る段階を含む、Ｏ−スクシニルホモセリンの生産方法を提供する。
【００３８】
前記製造されたＯ−スクシニルホモセリン生産菌株の培養過程は、当業界で知られている適当な培地と培養条件に応じて行うことができる。このような培養過程は、当業者であれば、選択された菌株に応じて容易に調整して用いることができる。前記培養方法の例には、回分式、連続式及び流加式培養が含まれるが、これに限定されるものではない。このような多様な培養方法は、例えば、非特許文献３に開示されている。
【００３９】
培養に使用される培地は、特定の菌株の要求条件を適切に満足させるものでなければならない。様々な微生物の培地は、例えば、非特許文献４に開示されている。前記培地は、様々な炭素源、窒素源、及び微量元素成分を含む。使用される炭素源の例には、グルコース、ショ糖、乳糖、果糖（fructose）、マルトース、澱粉、セルロースのような炭水化物、大豆油、ひまわり油、ヒマシ油、ココナッツ油のような脂肪、パルミチン酸、ステアリン酸、リノール酸のような脂肪酸、グリセロール及びエタノールのようなアルコール、酢酸のような有機酸が含まれる。これらの炭素源は、単独または組み合わせて使用することができる。使用することのできる窒素源の例には、ペプトン、酵母エキス、肉汁、麦芽エキス、トウモロコシ浸漬液（ＣＳＬ）、及び大豆ミールのような有機窒素源、及び尿素、硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、リン酸アンモニウム、炭酸アンモニウム及び硝酸アンモニウムのような無機窒素源が含まれる。これらの窒素源は、単独または組み合わせて使用することができる。前記培地にはリン源として、リン酸二水素カリウム、リン酸水素二カリウム、及び相応するナトリウム−含有塩が含まれてもよい。また、硫酸マグネシウムまたは硫酸鉄のような金属塩を含むことができる。この他、アミノ酸、ビタミン、及び適切な前駆体などが含まれてもよい。これらの培地や前駆体は、培養物に回分式または連続式で添加することができる。
【００４０】
また、培養中に水酸化アンモニウム、水酸化カリウム、アンモニア、リン酸及び硫酸のような化合物を培養物に適切な方法で添加して培養物のｐＨを調整することができる。また、培養中に脂肪酸ポリグリコールエステルのような消泡剤を用いて気泡生成を抑制することができる。また、培養物の好気状態を維持するために、培養物内に酸素または酸素−含有気体（例えば、空気）を注入する。培養物の温度は、通常２０℃〜４５℃、具体的には、２５℃〜４０℃である。培養期間は、所望のＯ−スクシニルホモセリンの生成量が得られるまで継続することができ、具体的には１０〜１６０時間である。
【００４１】
本発明の方法で生産したＯ−スクシニルホモセリンは、シスタチオニンγ−シンターゼ（cystathionine gamma synthase）またはＯ−スクシニルホモセリンスルフヒドリラーゼ（O-succinylhomoserine sulfhydrylase）によりメチオニンに転換することができる。また、本発明の方法で製造したＯ−スクシニル−Ｌ−ホモセリンとＣＨ３ＳＨを反応させることによって、Ｌ−メチオニン以外にもコハク酸を別途の生産工程を行うことなく副産物として得ることができる。
【００４２】
本発明のもう一つの態様は、配列番号２９で表されるアミノ酸配列を有し、メチオニンによるフィードバック耐性（feedback resistant）及びホモセリンＯ−スクシニルトランスフェラ−ゼ（Homoserine Succinyltransferase）活性を有するポリペプチドのＯ−スクシニルホモセリン生産用途に関する。本発明において、分離された新規な前記ポリペプチドがメチオニンに対するフィードバック阻害に耐性を有し、高収率でＯ−スクシニルホモセリンを生産することができることを究明したところ、前記ポリペプチドは、Ｏ−スクシニルホモセリン生産用途として用いることができる。
【００４３】
以下、実施例を挙げて本発明をさらに詳しく説明する。これらの実施例は、単に本発明を例示するためのものであり、本発明の範囲がこれらの実施例により制限されるものではない。
【実施例】
【００４４】
実施例１：トレオニン生産菌株ベースの親菌株の作製
（１）ｍｅｔＢ遺伝子欠損
ｍｅｔＸ遺伝子の基質特異性及び活性を把握するためにホモセリンを蓄積し、生産されたアシルホモセリン（acyl homoserine）の利用性が欠損した菌株を作製した。前記菌株の作製は、特許文献２に記載されているトレオニン生産菌株であるＦＴＲ２５３３（ＫＣＣＭ  １０５４１）菌株をベースにした。
【００４５】
前記トレオニン生産菌株であるＦＴＲ２５３３（ＫＣＣＭ  １０５４１）菌株からシスタチオニン・シンターゼをコードするｍｅｔＢ遺伝子を欠損させるために、ＦＲＴ  ｏｎｅ  ｓｔｅｐ  ＰＣＲ  ｄｅｌｅｔｉｏｎ法方を行った（非特許文献５）。配列番号１及び配列番号２のプライマーを用いてｐＫＤ３ベクター（非特許文献５）を鋳型としてＰＣＲ反応により欠損カセットを構成した。ＰＣＲ条件は、変性９４℃で３０秒間；  アニーリング５５℃で３０秒間のアニーリング及び重合反応７２℃で１分間を３０回繰り返した。
【００４６】
<配列番号1>
5'ttactctggt gcctgacatt tcaccgacaa agcccaggga acttcatcac gtgtaggctg gagctgcttc 3'
<配列番号2>
5'ttaccccttg tttgcagccc ggaagccatt ttccaggtcg gcaattaaat catatgaata tcctccttag 3'
【００４７】
その結果、得られたＰＣＲ産物を１．０％のアガロースゲルで電気泳動した後、１．２ｋｂｐの大きさのバンドからＤＮＡを精製した。回収したＤＮＡ切片はｐＫＤ４６ベクター（非特許文献５）を予め形質転換させたＦＴＲ２５３３菌株にエレクトロポレーションした。
【００４８】
前記エレクトロポレーションのためにｐＫＤ４６に形質転換したＦＴＲ２５３３菌株は、１００μｇ／Ｌのアンピシリン（ampicillin）と５ｍＭのアラビノース（L-arabinose）が含まれたＬＢ培地を用い、ＯＤ６００が０．６に到達するまで３０℃で培養した。滅菌蒸留水で２回、１０％のグリセロールで１回洗浄して使用した。エレクトロポレーションは２５００Ｖで加えた。
【００４９】
回収した菌株を２５μｇ／Ｌのクロラムフェニコール（chloramphenicol）を含むＬＢ平板培地に塗抹して３７℃で一晩培養した後、耐性を示す菌株を選別した。選別された菌株は、菌株を鋳型とし、同一のプライマーを用いて、同様の条件でＰＣＲを行った後、１．０％のアガロースゲル上で遺伝子の大きさが１．２Ｋｂで観察されることを確認することにより、ｍｅｔＢ遺伝子の欠損を確認した。確認された菌株は、再びｐＣＰ２０ベクター（非特許文献５）で形質転換させてＬＢ培地で培養し、再び同様の条件のＰＣＲを行って１．０％のアガロースゲル上で遺伝子の大きさが１５０ｂｐに小さくなった最終的なｍｅｔＢ遺伝子欠損菌株を作製し、クロラムフェニコールマーカーが除去されたことを確認した。作製された菌株をＣＪＭＡ１と命名した。
【００５０】
（２）ｔｈｒＢ遺伝子の欠損
前記作製したＣＪＭＡ１菌株でホモセリンキナーゼをコードするｔｈｒＢ遺伝子を欠損させるために、ｍｅｔＢ遺伝子欠損時と同様のＦＲＴ  ｏｎｅ  ｓｔｅｐ  ＰＣＲ  ｄｅｌｅｔｉｏｎ方法を用いた。
【００５１】
ｔｈｒＢ欠損カセットを作製するためにｐＫＤ４ベクター（非特許文献５）を鋳型とし、配列番号３、４のプライマーを用いて、 変性９４℃で３０秒間；アニーリング５５℃で３０秒間；延長７２℃で１分間の条件でＰＣＲ反応を３０回行った。
【００５２】
<配列番号3>
aaagaatatg ccgatcggtt cgggcttagg ctccagtgcc tgttcggtgg gtgtaggctg gagctgcttc
<配列番号4>
agacaaccga catcgctttc aacattggcg accggagccg ggaaggcaaa catatgaata tcctccttag
【００５３】
その結果、得られたＰＣＲ産物を１．０％のアガロースゲルで電気泳動した後、１．６  ｋｂｐの大きさのバンドからＤＮＡを精製した。回収したＤＮＡ切片をｐＫＤ４６ベクターで予め形質転換させたＣＪＭＡ１菌株にエレクトロポレーションした。回収した菌株を５０μｇ／Ｌのカナマイシンを含むＬＢ平板培地に塗抹して３７℃で一晩培養した後、耐性を示す菌株を選別した。
【００５４】
選別された菌株は、菌株を直接鋳型とし、配列番号３、４のプライマーを用いて、同様の条件でＰＣＲを行った後、１．０％のアガロースゲル上で遺伝子の大きさが１．６Ｋｂと確認された菌株を選別することにより、ｔｈｒＢ遺伝子の欠損を確認した。確認した菌株は、再びｐＣＰ２０ベクターで形質転換させ、ＬＢ培地で培養し、再び同様の条件のＰＣＲにより１．０％のアガロースゲル上で遺伝子の大きさが１５０ｂｐに小さくなった最終的なｔｈｒＢ遺伝子欠損菌株を作製し、カナマイシンマーカーが削除されたことを確認した。作製された菌株は、ＣＪＭＡ２菌株と命名した。
【００５５】
（３）ｍｅｔＡ遺伝子の欠損
前記ＣＪＭＡ２菌株でクロモバクテリウム・ビオラセウム由来のｍｅｔＸ遺伝子の基質特異性及び活性を確認するために、ＦＴＲ２５３３（ＫＣＣＭ  １０５４１）菌株にｍｅｔＢ及びｔｈｒＢ遺伝子を欠損させたＣＪＭＡ２菌株をベースに、染色体上の本来ｍｅｔＡ遺伝子を欠損させた。
【００５６】
ｍｅｔＡ遺伝子を欠損させるためにＦＲＴ  ｏｎｅ  ｓｔｅｐ  ＰＣＲ  ｄｅｌｅｔｉｏｎ方法を使用した。ｍｅｔＡ遺伝子欠損カセットを作製するためにｐＫＤ３ベクター（非特許文献５）を鋳型とし、配列番号５、６のプライマーを用いて、９４℃で３０秒間の変性； ５５℃で３０秒間のアニーリング； ７２℃で１分間の延長をしてＰＣＲを３０回行った。
【００５７】
<配列番号5>
caatttcttg cgtgaagaaa acgtctttgt gatgacaact tctcgtgcgt gtgtaggctg gagctgcttc
<配列番号6>
aatccagcgt tggattcatg tgccgtagat cgtatggcgt gatctggtag catatgaata tcctccttag
【００５８】
その結果、得られたＰＣＲ産物を１．０％のアガロースゲルで電気泳動した後、１．２ｋｂｐの大きさのバンドからＤＮＡを精製した。回収したＤＮＡ切片をｐＫＤ４６ベクターで予め形質転換させたＣＪＭＡ２菌株にエレクトロポレーションした。回収した菌株をクロラムフェニコールを含むＬＢ平板培地に塗抹して３７℃で一晩培養した後、耐性を示す菌株を選別した。
【００５９】
選別した菌株は、菌株を直接鋳型とし、配列番号５、６のプライマーを用いて、同様の条件でＰＣＲを行った後、１．０％のアガロースゲル上で遺伝子の大きさが１．１Ｋｂに変化することを確認することにより、ｍｅｔＡ遺伝子の欠損を確認した。確認された菌株を再びｐＣＰ２０ベクターで形質転換させ、ＬＢ培地で培養し、再び同様の条件のＰＣＲにより１．０％のアガロースゲル上で遺伝子の大きさが１００ｂｐに小さくなった最終的なｍｅｔＡ遺伝子欠損菌株を作製し、クロラムフェニコールマーカーが削除されたことを確認した。作製された菌株をＣＪＭ２と命名した。
【００６０】
ＣＪＭ２は菌株内にホモセリンが過量蓄積され、導入されるプラスミドのｍｅｔＸ基質特異性によりＯ−アセチルホモセリンまたはＯ−スクシニルホモセリンを生産することのできる菌株である。
【００６１】
実施例２：新規なＯ−スクシニルトランスフェラ−ゼ活性を有するポリペプチドの選別
ｍｅｔＡ遺伝子のフィードバック調節の解除及び安定性を確保するために、ＫＥＧＧ  ｗｅｂｓｉｔｅ（//www.genome.jp/kegg/）でｍｅｔＸと命名された１０種の相同体（Orthologue）を選別してｐＣＬ１９２０＿ＰＣＪ１ベクターにクローニングした。前記１０種のベクターを用いて、前記実施例１で作製されたＣＪＭ２に形質転換した。
【００６２】
このように獲得された１０種の菌株を下記実施例５−（２）で言及されたフラスコ培養方法でフラスコの評価を行った。ＣＪＭ２はホモセリンが蓄積される菌株でｐＣＬ１９２０に導入された遺伝子がホモセリンスクシニルトランスフェラ−ゼである場合、最終産物としてＯ−スクシニルホモセリンが獲得され、ホモセリンアセチルトランスフェラ−ゼが導入された場合は、最終産物としてＯ−アセチルホモセリンが獲得される。前記特性を用いて評価された１０種の中からｍｅｔＸ遺伝子でありながら、ホモセリンスクシニルトランスフェラ−ゼをコードする遺伝子を確保した。これは、Ｏ−スクシニルホモセリンを高収率で生産可能にする特性を有するクロモバクテリウム・ビオラセウム（Chromobacterium Violaceum）由来のｍｅｔＸ遺伝子であるが（アミノ酸配列番号２９、塩基配列番号３６）、既存に報告されたことのない新規な活性であることを本発明者らが確認した。
【００６３】
実施例３：プラスミドの作製
３−１．野生型Ｅ．ｃｏｌｉ由来のｍｅｔＡ遺伝子を発現するプラスミドの作製
米国生物資源センター（American Type Culture Collection）から購入した大腸菌Ｗ３１１０菌株（寄託番号ＡＴＣＣ９６３７）の染色体を鋳型とし、配列番号７及び配列番号８のプライマーを用いてＰＣＲを行うことにより、ホモセリンＯ−スクシニルトランスファーラーゼをコードするｍｅｔＡ遺伝子を増幅した。
【００６４】
ＰＣＲに使用したプライマーは、アメリカ国立衛生研究所のジーンバンク（NIH Gene Bank）に登録されているＮＣ＿０００９１３の大腸菌染色体塩基配列をベースに作製し、配列番号７及び配列番号８のプライマーは、それぞれ制限酵素ＥｃｏＲＶ部位及びＨｉｎｄＩＩＩ部位を有している。
【００６５】
<配列番号7> 
5 'AATTGATATCATGCCGATTCGTGTGCCGG 3'
<配列番号8>
5 'AATTAAGCTTTTAATCCAGCGTTGGATTCATGTG 3'
【００６６】
ＰＣＲ条件は、９４℃で３分間変性した後、９４℃で３０秒間の変性、５６℃で３０秒間のアニーリング、６８℃で２分間の重合を３０回繰り返した後、６８℃で１０分間重合反応を行った。
【００６７】
このように獲得したＰＣＲ産物及びＣＪ１プロモーター（特許文献１）を含むｐＣＬ１９２０プラスミドにそれぞれＥｃｏＲＶ及びＨｉｎｄＩＩＩ制限酵素を処理してクローニングした。クローニングされたプラスミドを用いて大腸菌ＤＨ５αを形質転換した後、スペクチノマイシン（spectinomycin）５０μｇ／ｍｌを含むＬＢプレートで形質転換された大腸菌ＤＨ５αを選別してプラスミドを獲得した。獲得したプラスミドをｐＣＬ＿Ｐｃｊ１＿ｍｅｔＡ（ｗｔ）と命名した。
【００６８】
３−２．フィードバック耐性（Feedback-resistance）を有するｍｅｔＡ遺伝子を発現するプラスミドの作製
前記実施例３−１で作製されたｐＣＬ＿Ｐｃｊ１＿ｍｅｔＡ（ｗｔ）プラスミドを鋳型とし、部位特異的突然変異キット（site directed mutagenesis kit; Stratagene、米国）を用いて、メチオニンに対するフィードバック耐性を有するｍｅｔＡ遺伝子（ｍｅｔＡ  ＃１１）を作製した。
【００６９】
具体的には、特許文献３に開示された内容により、配列番号９と配列番号１０を用いてＯ−スクシニルホモセリンの２９番のアミノ酸をセリンからプロリンに（Ｓ２９Ｐ）、配列番号１１と配列番号１２を用いて１１４番のアミノ酸をグルタミン酸からグリシンに（Ｅ１１４Ｇ）、配列番号１３と配列番号１４を用いて１４０番のアミノ酸をフェニルアラニンからセリンに置換（Ｆ１４０Ｓ）した。この時、使用したプライマー配列は下記の通りである。
【００７０】
<配列番号9> 
5' ATGACAACTTCTCGTGCGCCTGGTCAGGAAATTCG 3'
<配列番号10>
5' CGAATTTCCTGACCAGGCGCACGAGAAGTTGTCAT 3'
<配列番号11>
5' CGCCGCTGGGCCTGGTGGGGTTTAATGATGTCGCT 3'
<配列番号12>
5' AGCGACATCATTAAACCCCACCAGGCCCAGCGGCG 3'
<配列番号13>
5' CACGTCACCTCGACGCTGAGTGTCTGCTGGGCGGT 3'
<配列番号14>
5' ACCGCCCAGCAGACACTCAGCGTCGAGGTGACGTG 3'
【００７１】
それぞれの前記変異を順次導入し、３種の変異を全て導入したｍｅｔＡ（＃１１）遺伝子を含有したプラスミドを作製した後、ｐＣＬ＿Ｐｃｊ１＿ｍｅｔＡ＃１１と命名した。
【００７２】
３−３．デイノコッカス・ラディオデュランス由来のｍｅｔＸ遺伝子を発現するプラスミドの作製
米国生物資源センターから購入したデイノコッカス・ラディオデュランス（Deinococcus radiodurans ;寄託番号ＡＴＣＣ  ＢＡＡ−８１６Ｄ）の染色体を鋳型とし、配列番号１５、及び配列番号１６のプライマーを用いてＰＣＲを行うことにより、ホモセリンＯ−アセチルトランスフェラーゼをコードするｍｅｔＸ遺伝子を増幅した。
【００７３】
ＰＣＲに使用したプライマーは、アメリカ国立衛生研究所のジーンバンクに登録されているＡＥ０００５１３の染色体塩基配列をベースに作製し、配列番号１５、及び配列番号１６のプライマーは、それぞれ制限酵素ＥｃｏＲＶ部位及びＨｉｎｄＩＩＩ部位を有している。
【００７４】
<配列番号15>
5' AATTGATATCATGACCGCCGTGCTCGC 3'
<配列番号16> 
5' AATTAAGCTTTCAACTCCTGAGAAACGCCCC 3'
【００７５】
ＰＣＲ条件は、９４℃で３分間変性した後、９４℃で３０秒間の変性、５６℃で３０秒間のアニーリング、６８℃で５分間の重合を３０回繰り返した後、６８℃で７分間重合反応を行った。
【００７６】
このように獲得したＰＣＲ産物及びＣＪ１プロモーター（特許文献１）を含むｐＣＬ１９２０プラスミドにそれぞれＥｃｏＲＶ及びＨｉｎｄＩＩＩ制限酵素を処理してクローニングした。クローニングされたプラスミドを用いて大腸菌ＤＨ５αを形質転換した後、スペクチノマイシン（spectinomycin）５０μｇ／ｍｌを含むＬＢプレートで形質転換した大腸菌ＤＨ５αを選別してプラスミドを獲得した。獲得したプラスミドをｐＣＬ＿Ｐｃｊ１＿ｄｒａ  ｍｅｔＸと命名した。
【００７７】
３−４．クロモバクテリウム・ビオラセウム由来のｍｅｔＸ遺伝子を発現するプラスミドの作製
米国生物資源センターから購入したクロモバクテリウム・ビオラセウム（Chromobacterium Violaceum）菌株（寄託番号ＡＴＣＣ１２４７２）の染色体を鋳型とし、配列番号１７、及び配列番号１８のプライマーを用いてＰＣＲを行ってクロモバクテリウム・ビオラセウム由来のｍｅｔＸ遺伝子を増幅した。
【００７８】
ＰＣＲに用いたプライマーは、アメリカ国立衛生研究所のジーンバンクに登録されているＮＣ＿００５０８５のクロモバクテリウム・ビオラセウム染色体の塩基配列をベースに作製し、配列番号１７、及び配列番号１８のプライマーは、それぞれ制限酵素ＥｃｏＲＶ部位及びＨｉｎｄＩＩＩ部位を有している。
【００７９】
<配列番号17> 
5' aatt gatatc ATGACCGACACCAACTGTTCGG 3'
<配列番号18>
5' aatt aagctt TCATGCGTTCACCTCCTTGGC 3'
【００８０】
ＰＣＲ条件は、９４℃で３分間変性した後、９４℃で３０秒間の変性、５６℃で３０秒間のアニーリング、６８℃で２分間の重合を３０回繰り返した後、６８℃で１０分間重合反応を行った。
【００８１】
このように獲得したＰＣＲ産物及びＣＪ１プロモーター（特許文献１）を含むｐＣＬ１９２０プラスミドにそれぞれＥｃｏＲＶ及びＨｉｎｄＩＩＩ制限酵素を処理してクローニングした。クローニングしたプラスミドを用いて大腸菌ＤＨ５αを形質転換した後、スペクチノマイシン（spectinomycin）５０μｇ／ｍｌを含むＬＢプレートで形質転換した大腸菌ＤＨ５αを選別してプラスミドを獲得した。獲得したプラスミドをｐＣＬ＿Ｐｃｊ１＿ｃｖｉ  ｍｅｔＸと命名した。
【００８２】
３−５．生合成遺伝子の強化用２ｃｏｐｙ菌株作製のためのプラスミド
（１）ｐｐｃ遺伝子挿入用ｐＳＧ７６ｃベクターの作製
本実施例では、ホスホエノールピルビン酸カルボキシラーゼ（phosphoenolpyruvate carboxylase）をコードするｐｐｃ遺伝子を含むＥ．ｃｏｌｉの染色体ＤＮＡを挿入用ベクターであるｐＳＧ７６ｃ−２ｐｐｃを作製した。
【００８３】
アメリカ国立衛生研究所の遺伝子銀行（NIH GenBank）を根拠にしてｐｐｃ遺伝子の塩基配列情報（ＮＣＢＩ登録番号ｇｉ：８９１１００７４）を確保し、これに基づいてｐｐｃ遺伝子の−２００部分からｐｐｃ  ＯＲＦを含有し、制限酵素ＥｃｏＲＩ部位とＳａｃＩ部位を含有しているプライマー（配列番号１９、配列番号２０）と制限酵素ＳａｃＩ部位とＫｐｎＩ部位を含有しているプライマー（配列番号２１、配列番号２２）を合成した。
【００８４】
<配列番号19> 
5' gccggaattc tgtcggatgc gatacttgcg c 3'
<配列番号20> 
5' gaaggagctc agaaaaccct cgcgcaaaag 3'
<配列番号21> 
5' gccggagctc tgtcggatgc gatacttgcg c 3'
<配列番号22> 
5' gaagggtacc agaaaaccct cgcgcaaaag 3'
【００８５】
大腸菌Ｗ３１１０の染色体ＤＮＡを鋳型とし、前記配列番号１９、２０と配列番号２１、２２のプライマーを用いてＰＣＲを行った。重合酵素はＰｆｕＵｌｔｒａＴＭ高−信頼ＤＮＡポリメラーゼ（Stratagene）を使用し、ＰＣＲ条件は、９４℃で３分間変性した後、９４℃で３０秒間の変性、５６℃で３０秒間のアニーリング、６８℃で５分間の重合を３０回繰り返した後、６８℃で７分間重合反応を行った。その結果、ＥｃｏＲＩとＳａｃＩそしてＳａｃＩとＫｐｎＩ制限酵素認識部位を含有した約３．１ｋｂの増幅されたｐｐｃ遺伝子を獲得した。
【００８６】
前記ＰＣＲによって獲得したｐｐｃ遺伝子の末端に制限酵素ＥｃｏＲＩとＳａｃＩそしてＳａｃＩとＫｐｎＩを処理し、制限酵素ＥｃｏＲＩ、ＫｐｎＩで処理したｐＳＧ７６ｃ（非特許文献６）ベクターに接合（ligation）することにより最終的に２コピー（ｃｏｐｙ）のｐｐｃ遺伝子がクローニングされたｐＳＧ７６ｃ−２ｐｐｃ組み換えベクターを作製した。
【００８７】
（２）ａｓｐＣ挿入用ｐＳＧ７６ｃベクターの作製
本実施例では、アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ（aspartate aminotransferase）をコードするａｓｐＣ遺伝子を含むＥ．ｃｏｌｉの染色体ＤＮＡを挿入用ベクターであるｐＳＧ７６ｃ−２ａｓｐＣを作製した。
【００８８】
アメリカ国立衛生研究所の遺伝子銀行を根拠にａｓｐＣ遺伝子の塩基配列情報（ＮＣＢＩ登録番号ｇｉ：８５６７４２７４）を確保し、これに基づいてａｓｐＣ遺伝子の−２００部分からａｓｐＣ  ＯＲＦを含有し、制限酵素ＳａｃＩを含有しているプライマー（配列番号２３、配列番号２４）を合成した。
【００８９】
<配列番号23> 
5' tccgagctca taagcgtagc gcatcaggca 3'
<配列番号24> 
5' tccgagctcg tccacctatg ttgactacat 3'
【００９０】
大腸菌Ｗ３１１０の染色体ＤＮＡを鋳型とし、前記配列番号２３、２４のオリゴヌクレオチドをプライマーとしてＰＣＲを行った。重合酵素はＰｆｕＵｌｔｒａＴＭ高−信頼ＤＮＡポリメラーゼ（Stratagene）を使用し、ＰＣＲ条件は、９４℃で３分間変性した後、９４℃で３０秒間の変性、５６℃で３０秒間のアニーリング、６８℃で２分間の重合を３０回繰り返した後、６８℃で７分間重合反応を行った。その結果、ＢａｍＨＩ制限酵素の認識部位を含有した約１．５ｋｂの増幅されたａｓｐＣ遺伝子を獲得した。
【００９１】
前記ＰＣＲを行って獲得したａｓｐＣ遺伝子の末端に制限酵素ＢａｍＨＩを処理し、制限酵素ＢａｍＨＩで処理されたｐＳＧ７６ｃベクターに接合することにより、最終的に２ｃｏｐｙのａｓｐＣ遺伝子がクローニングされたｐＳＧ７６ｃ−２ａｓｐＣ組み換えベクターを作製した。
【００９２】
（３）ａｓｄ挿入用ｐＳＧ７６ｃベクターの作製
本実施例では、アスパラギン酸セミアルデヒドデヒドロゲナーゼ（aspartate-semialdehyde dehydrogenase）をコードするａｓｄ遺伝子を含むＥ．ｃｏｌｉの染色体ＤＮＡを挿入用ベクターであるｐＳＧ７６ｃ−２ａｓｄを作製した。
【００９３】
アメリカ国立衛生研究所の遺伝子銀行を根拠にａｓｄ遺伝子の塩基配列情報（ＮＣＢＩ登録番号ｇｉ：８９１１０５７８）を確保し、これに基づいてａｓｄ遺伝子の−２００部分からａｓｄ  ＯＲＦを含有し、制限酵素ＥｃｏＲＩ、ＸｂａＩを含有しているプライマー（配列番号２５、配列番号２６）とＸｂａＩとＥｃｏＲＩを含有しているプライマー（配列番号２７、配列番号２８）を合成した。
【００９４】
<配列番号25> 
5' ccggaattcc caggagagca ataagca 3'
<配列番号26> 
5' ctagtctaga tgctctattt aactcccg 3'
<配列番号27> 
5' ctagtctaga ccaggagagc aataagca 3'
<配列番号28> 
5' ccggaattct gctctattta actcccg 3'
【００９５】
大腸菌Ｗ３１１０の染色体ＤＮＡを鋳型とし、前記配列番号２５、２６と配列番号２７、２８のオリゴヌクレオチドをプライマーとしてＰＣＲを行った。重合酵素はＰｆｕＵｌｔｒａＴＭ高−信頼ＤＮＡポリメラーゼ（Stratagene）を使用し、ＰＣＲ条件は、 ９６℃で３０秒間の変性；５０℃で３０秒間のアニーリング；及び６８℃で２分間の重合反応を３０回繰り返した。その結果、ＥｃｏＲＩ、ＸｂａＩそしてＸｂａＩ、ＥｃｏＲＩ制限酵素認識部位を含有した約１．５ｋｂの増幅されたａｓｄ遺伝子を獲得した。
【００９６】
前記ＰＣＲを行って獲得したａｓｄ遺伝子の末端に含まれた制限酵素ＥｃｏＲＩそしてＸｂａＩを処理し、制限酵素ＥｃｏＲＩで処理されたｐＳＧ７６ｃベクターに接合することにより、最終的に２ｃｏｐｙのａｓｄ遺伝子がクローニングされたｐＳＧ７６ｃ−２ａｓｄ組換えベクターを作製した。
【００９７】
実施例４：野生型ベース親菌株の作製
（１）ｐｐｃ、ａｓｐＣ、ａｓｄ遺伝子強化
前記実施例３−５で作製したｐＳＧ７６ｃ−２ｐｐｃ、ｐＳＧ７６ｃ−２ａｓｐＣ、ｐＳＧ７６ｃ−２ａｓｄベクターを用いて、米国生物資源センター から購入した大腸菌Ｗ３１１０菌株（寄託番号ＡＴＣＣ９６３７）に形質転換して、ＬＢ−Ｃｍ（酵母エキス１０ｇ／Ｌ、ＮａＣｌ ５ｇ／Ｌ、Ｔｒｙｐｔｏｎｅ １０ｇ／Ｌ、クロラムフェニコール ２５μｇ／Ｌ、寒天 １５ｇ／Ｌ）プレート培地に塗抹した後、クロラムフェニコール耐性を有するコロニーを選抜した。選別された形質転換体は、ｐＳＧ７６ｃ−２ｐｐｃベクターが誘電体のｐｐｃの部分に一次で挿入された菌株である。
【００９８】
確保された２ｃｏｐｙのｐｐｃ遺伝子が挿入された菌株は、ｐＳＧ７６ｃベクター内に存在するＩ−ＳｃｅＩの部分を切断する制限酵素Ｉ−ＳｃｅＩを発現するベクターであるｐＳＴ７６−ＡｓｃｅＰを形質転換し、ＬＢ−Ａｐ（酵母エキス１０ｇ／Ｌ、ＮａＣｌ ５ｇ／Ｌ、Ｔｒｙｐｔｏｎｅ １０ｇ／Ｌ、アンピシリン １００μｇ／Ｌ、寒天１５ｇ／Ｌ）プレート培地に塗抹し、３０℃で生長する菌株を選別した。
【００９９】
このように成長した菌株は、ｐｐｃ遺伝子が２ｃｏｐｙに増幅されたり、最初の１  ｃｏｐｙに戻ることができるが、配列番号３０、配列番号３１のプライマーを用いてＰＣＲを行い、１％のアガロースゲル上で遺伝子の大きさが６．５ｋｂと大きくなった２ｃｏｐｙ  ｐｐｃ菌株を選別した。前記過程を経ると、ｐｐｃ遺伝子がさらに挿入され、ｐＳＧ７６ｃベクターが削除されるようになる。
【０１００】
前記のような方法でｐＳＧ７６ｃ−２ａｓｐＣ、ｐＳＧ７６ｃ−２ａｓｄベクターを用いて順番にｗ３１１０菌株にｐｐｃ、ａｓｄ、ａｓｐＣが２ｃｏｐｙに増幅された菌株を作製した。この過程でａｓｐＣ  ２ｃｏｐｙ作製は、配列番号３２、配列番号３３でＰＣＲを行い、１％のアガロースゲル上で遺伝子の大きさが３．２ｋｂに大きくなったことにより確認でき、ａｓｄ  ２ｃｏｐｙの制作は、配列番号３４、配列番号３５でＰＣＲを行い、１％のアガロースゲル上で遺伝子の大きさが３．２ｋｂに大きくなったことにより確認することができた。このように作製された菌株をＣＪＷ２と命名した。
【０１０１】
<配列番号30> 
CTGGCTCAATTAATCAGGCTC
<配列番号31> 
CGAGGGTGTTAGAACAGAAGT
<配列番号32> 
TGGTGAACTACTTTGAAGTGG
<配列番号33> 
TGCGGCACGAGCGCCTTATCC
<配列番号34> 
GCTCGTAGGCTAAGAAATGCC
<配列番号35> 
CAGGTAAGGCTGTGAATACTC
【０１０２】
（２）ｍｅｔＢ、ｔｈｒＢ及びｍｅｔＡ遺伝子の欠損
前記方法で作製されたＣＪＷ２菌株を用いて前記実施例３−１と同様の方法でｍｅｔＢ、ｔｈｒＢ及びｍｅｔＡ遺伝子が欠損した菌株を作製し、ＣＪＷ２Ｈと命名した。ＣＪＷ２Ｈは菌株内にホモセリンが過量で蓄積され、導入されるプラスミドのｍｅｔＸ基質特異性によりＯ−アセチルホモセリンまたはＯ−スクシニルホモセリンを生産することができる菌株である。
【０１０３】
実施例５：実験菌株の作製
（１）菌株の作製
前記実施例１−（３）及び４−（２）で作製された大腸菌ＣＪＭ２とＣＪＷ２Ｈ菌株をコンピテントセル（competent cell）として作製し、コンピテントセルに電気穿孔方法（electroporation）で、実施例３−１、３−２、３−３、３−４で作製されたｐＣＬ＿Ｐｃｊ１＿ｍｅｔＡ（ｗｔ）、ｐＣＬ＿Ｐｃｊ１＿ｍｅｔＡ＃１１、ｐＣＬ＿Ｐｃｊ１＿ｄｒａ  ｍｅｔＸ、ｐＣＬ＿Ｐｃｊ１＿ｃｖｉ  ｍｅｔＸの４種のプラスミドをそれぞれ導入した。
【０１０４】
（２）フラスコ培養実験
その後、４種のプラスミドが導入されたそれぞれの菌株が生産するメチオニン前駆体の種類と生産量を比較するためにフラスコのテストを行った。フラスコのテストは、それぞれの菌株をＬＢプレートでストリーキング（streaking）し、３１℃の培養器に１６時間培養した後、単一コロニーをＬＢ培地３ｍｌに接種した後、２００ｒｐｍ／３１℃の培養器で１６時間培養することにより行った。
【０１０５】
２５０ｍｌのフラスコに、下記表１のメチオニン前駆体生産培地２５ｍｌを入れ、先に培養した培養液を５００μｌずつ投入した。その後、フラスコを２００ｒｐｍ／３１℃の培養器で４０時間培養した後、ＨＰＬＣを用い、それぞれのプラスミドが導入された菌株から得られるメチオニン前駆体の種類及び量を比較し、その結果を下記表２及び表３に示した。
【０１０６】
【表１】
0006388935.tif 000002
【０１０７】
【表２】
0006388935.tif 000003
【０１０８】
【表３】
0006388935.tif 000004
【０１０９】
その結果、前記表２及び表３によると、Ｅ．ｃｏｌｉ野生型ｍｅｔＡ遺伝子及びフィードバック阻害に耐性を有するｍｅｔＡ＃１１遺伝子をそれぞれ含む菌株であるＣＪＭ２  ｐＣＬ＿Ｐｃｊ１＿ｍｅｔＡ（ｗｔ）、ＣＪＭ２  ｐＣＬ＿Ｐｃｊ１＿ｍｅｔＡ＃１１、ＣＪＷ２Ｈ  ｐＣＬ＿Ｐｃｊ１＿ｍｅｔＡ（ｗｔ）及びＣＪＷ２Ｈ  ｐＣＬ＿Ｐｃｊ１＿ｍｅｔＡ＃１１によってはＯ−スクシニルホモセリンが生産され、それぞれのデイノコッカス・ラディオデュランス由来のｍｅｔＸ遺伝子を含む菌株であるＣＪＭ２  ｐＣＬ＿Ｐｃｊ１＿ｄｒａ  ｍｅｔＸ及びＣＪＷ２Ｈ  ｐＣＬ＿Ｐｃｊ１＿ｄｒａ  ｍｅｔＸによってはＯ−アセチルホモセリンが生産されたことが分かった。
【０１１０】
クロモバクテリウム・ビオラセウム由来のｍｅｔＸ遺伝子の場合は、ｍｅｔＡ遺伝子に比べて、他のｍｅｔＸ相同遺伝子（orthologues）と高い相同性（homology）を有するが、基質特異性の面では、一般的に報告されたｍｅｔＸ遺伝子とは異なり、スクシニルホモセリンを生産するホモセリンスクシニルトランスフェラ−ゼであることが分かる。
【０１１１】
また、Ｅ．ｃｏｌｉ野生型ｍｅｔＡ（ｗｔ）遺伝子が導入された場合は、培地に添加される０．３ｇ／Ｌのメチオニンによるフィードバック阻害現象によりＯ−スクシニルホモセリンが約１ｇ／Ｌ程度生成される現象を示すが、クロモバクテリウム・ビオラ
セウム由来のｍｅｔＸ遺伝子が導入された場合は、遺伝子変異の導入なしに野生型そのものでも、培地に添加されたメチオニンによるフィードバック阻害現象を起こさずにＯ−スクシニルホモセリンが生産されることが分かった。
【０１１２】
ｐＣＬ＿Ｐｃｊ１＿ｃｖｉ  ｍｅｔＸが導入されたＣＪＭ２菌株（ＣＪＭ２  ｐＣＬ＿Ｐｃｊ１＿ｃｖｉ  ｍｅｔＸ）を２０１３年０６月２０日付で韓国ソウル特別市西大門区弘済１洞３６１−２２１番地に所在するブダペスト条約下の国際寄託機関である韓国種菌協会付設韓国微生物保存センターに受託番号ＫＣＣＭ１１４３３Ｐとして寄託した。
【０１１３】
（３）大型発酵槽培養実験
ＣＪＭ２  ｐＣＬ＿Ｐｃｊ１＿ｃｖｉ  ｍｅｔＸ及びＣＪＷ２Ｈ  ｐＣＬ＿Ｐｃｊ１＿ｃｖｉ  ｍｅｔＸ菌株を用いてメチオニン前駆体であるＯ−スクシニルホモセリンを大量生産するために５Ｌの発酵槽培養を行った。
【０１１４】
スペクチノマイシン抗生剤が含有された平板ＬＢ培地にＣＪＭ２  ｐＣＬ＿Ｐｃｊ１＿ｃｖｉ  ｍｅｔＸ及びＣＪＷ２Ｈ  ｐＣＬ＿Ｐｃｊ１＿ｃｖｉ  ｍｅｔＸ菌株を接種して３１℃で一晩培養した。その後、単一のコロニーをスペクチノマイシンが含まれた１０ｍｌのＬＢ培地に接種した後、３１℃で５時間培養し、この培養液２ｍｌを再び２００ｍｌのシード（Ｓｅｅｄ）培地を含む１０００ｍｌの三角フラスコに接種した。そして、再び３１℃、２００ｒｐｍで３〜１０時間培養した後、シード培養液２５５ｍｌを５Ｌの発酵槽の主培地１．７Ｌに接種して流加式培養（Ｆｅｄ  ｂａｔｃｈ）発酵法でシード培地を１．３Ｌ消費させて５０〜１００時間培養した。
【０１１５】
培養過程で使用した詳細な培地成分を下記表４に示す。このように培養した発酵液からＯ−スクシニルホモセリンの濃度をＨＰＬＣで分析し、その結果を下記表５に示した。
【０１１６】
【表４】
0006388935.tif 000005
【０１１７】
【表５】
0006388935.tif 000006
【０１１８】
前記表５に示したように、トレオニン生産菌株を親菌株にしてクロモバクテリウム・ビオラセウム由来のｍｅｔＸ遺伝子が導入された菌株であるＣＪＭ２  ｐＣＬ＿Ｐｃｊ１＿ｃｖｉ  ｍｅｔＸは、高レベルでＯ−スクシニルホモセリンを蓄積することが分かった。
【０１１９】
以上の説明から、本発明が属する技術分野の当業者は、本発明がその技術的思想や必須の特徴を変更することなく他の具体的な形で実施されうることを理解できるであろう。これに関連し 、以上で記述した実施例は、すべての面において例示的なものであり、限定的なものではないことを理解しなければならない。本発明の範囲は前記詳細な説明よりは、後述する特許請求の範囲の意味及び範囲、そしてその等価概念から導き出されるすべての変更または変形された形態が本発明の範囲に含まれるものと解釈されるべきである。
【０１２０】
0006388935.tif 000007
【配列表】
0006388935000001.app