(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
（１）核酸の漸進的加ピロリン酸分解により単一ヌクレオシド三リン酸のストリームを生成するステップと；
（２）ポリメラーゼとリガーゼの存在下で、少なくとも１つの前記単一ヌクレオシド三リン酸を、（ａ）検出不能状態にある特徴的な１つまたは複数のフルオロフォアで標識した、捕捉される前記単一ヌクレオシド三リン酸に対し相補的な単一ヌクレオチド捕捉領域を含み、前記捕捉領域には第２オリゴヌクレオチドおよび第３オリゴヌクレオチドに対し相補的な領域が隣接する、第１一本鎖オリゴヌクレオチドと、（ｂ）前記第１オリゴヌクレオチドの相補的領域にハイブリダイズすることが可能な、第２一本鎖オリゴヌクレオチドおよび第３一本鎖オリゴヌクレオチドとを含む対応プローブシステムと反応させることにより、少なくとも１つの実質的に二本鎖のオリゴヌクレオチド使用済みプローブを生成するステップと；
（３）前記使用済みプローブを、二本鎖エキソヌクレアーゼ活性を有する酵素で消化して、検出可能状態の１つまたは複数のフルオロフォアと、少なくとも部分的に前記第１オリゴヌクレオチドの配列相補体である一本鎖第４オリゴヌクレオチドとを生成するステップと；
（４）前記第４オリゴヌクレオチドを別の第１オリゴヌクレオチドと反応させて、前記使用済みプローブに対応する、実質的に二本鎖のオリゴヌクレオチド生成物を生成するステップと；
（５）ステップ（３）とステップ（４）を周期的に繰り返すステップと；
（６）ステップ（３）の各反復において解放される前記特徴的な１つまたは複数のフルオロフォアを検出するステップとを含むことを特徴とする、核酸を配列決定する方法。
【請求項２】
前記第２オリゴヌクレオチドの5’末端と、前記第３オリゴヌクレオチドの3’末端がリンカー領域により連結されていることを特徴とする、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記リンカー領域はオリゴヌクレオチド領域を含むことを特徴とする、請求項２に記載の方法。
【請求項４】
生成された前記第４オリゴヌクレオチドは閉ループを含むことを特徴とする、請求項２または３に記載の方法。
【請求項５】
前記１つまたは複数のフルオロフォアは、前記第１オリゴヌクレオチドにおいてその5’末端と前記捕捉領域の間に位置することを特徴とする、請求項１に記載の方法。
【請求項６】
前記第２オリゴヌクレオチドは、（ａ）前記捕捉領域の3’側の隣接領域にハイブリダイズし、（ｂ）前記側の領域よりも長いことを特徴とする、請求項１に記載の方法。
【請求項７】
前記第３オリゴヌクレオチドの3’末端はエキソヌクレアーゼ分解に対し抵抗性のある要素を含むことを特徴とする、請求項１に記載の方法。
【請求項８】
前記第１オリゴヌクレオチドの3’末端と、前記第２オリゴヌクレオチドの対応領域の間に少なくとも１つのヌクレオチド塩基ミスマッチがあることを特徴とする、請求項１に記載の方法。
【請求項９】
前記フルオロフォアは、少なくとも１つのクエンチャの存在により前記第１オリゴヌクレオチドにおいて検出不能とされていることを特徴とする、請求項１に記載の方法。
【請求項１０】
前記１つまたは複数のフルオロフォアを解放した後、前記第４オリゴヌクレオチドに付着した残留オリゴヌクレオチド断片をすべて取り除き、新しい第２オリゴヌクレオチドおよび第３オリゴヌクレオチドをアニールできるようにする、ステップ（３）の温度を循環させることを特徴とする、請求項１に記載の方法。
【請求項１１】
前記プローブシステムは、異なる捕捉領域と特徴的な１つまたは複数のフルオロフォアとをそれぞれ備える複数の第１オリゴヌクレオチドタイプを含むことを特徴とする、請求項１に記載の方法。
【請求項１２】
最大４つの異なるオリゴヌクレオチドプローブシステムの組を用い、各組の前記第１オリゴヌクレオチドは、天然に発生するＤＮＡまたはＲＮＡの特徴的なヌクレオチド塩基の１つに対し選択的な捕捉領域と、異なる１つまたは複数のフルオロフォアとを有することを特徴とする、請求項１１に記載の方法。
【請求項１３】
ステップ（１）は各単一ヌクレオシド三リン酸を対応するマイクロ液滴中に含める工程をさらに含み、ステップ（２）〜（６）は各マイクロ液滴において実行されることを特徴とする、請求項１に記載の方法。
【請求項１４】
ステップ（６）を各マイクロ液滴に適用することにより得られる結果は、前記核酸配列に特徴的なデータのストリームに組み込まれることを特徴とする、請求項１３に記載の方法。
【請求項１５】
（ａ）検出不能状態にある１つまたは複数のフルオロフォアで標識した第１一本鎖オリゴヌクレオチドと、（ｂ）単一ヌクレオチド捕捉領域のいずれかの側に並置された、前記第１オリゴヌクレオチド上の相補的な3’側隣接領域および5’側隣接領域にそれぞれハイブリダイズすることが可能な、第２非標識一本鎖オリゴヌクレオチドおよび第３非標識一本鎖オリゴヌクレオチドとを含むことを特徴とする、多成分生物学的プローブシステム。
【請求項１６】
前記第２オリゴヌクレオチドの5’末端と、前記第３オリゴヌクレオチドの3’末端はリンカー領域により連結されていることを特徴とする、請求項１５に記載の生物学的プローブシステム。
【請求項１７】
前記リンカー領域はオリゴヌクレオチド領域を含むことを特徴とする、請求項１６に記載の生物学的プローブシステム。
【請求項１８】
前記フルオロフォアは、前記第１オリゴヌクレオチドの5’側隣接領域に位置することを特徴とする、請求項１５〜１７のいずれか一項に記載の生物学的プローブシステム。
【請求項１９】
前記第１オリゴヌクレオチドはまた、１つまたは複数のクエンチャを含むことを特徴とする、請求項１５〜１８のいずれか一項に記載の生物学的プローブシステム。
【請求項２０】
前記第２オリゴヌクレオチドは、前記第１オリゴヌクレオチドの3’側隣接領域より長いことを特徴とする、請求項１５〜１９のいずれか一項に記載の生物学的プローブシステム。
【請求項２１】
前記第３オリゴヌクレオチドは、その3’末端においてエキソヌクレアーゼ分解に対し抵抗性のある要素を含むことを特徴とする、請求項１５〜２０のいずれか一項に記載の生物学的プローブシステム。
【請求項２２】
前記第１オリゴヌクレオチドの3’末端のヌクレオチドは、前記第２オリゴヌクレオチドの対応するヌクレオチドとのミスマッチであることを特徴とする、請求項１５〜２１のいずれか一項に記載の生物学的プローブシステム。
【請求項２３】
前記捕捉領域に特徴的な前記ヌクレオチド塩基が異なっている、１〜４つの異なる第１オリゴヌクレオチドタイプと、使用される前記フルオロフォアとを含むことを特徴とする、請求項１５〜２２のいずれか一項に記載の生物学的プローブシステム。
【請求項２４】
マイクロ液滴中に含まれていることを特徴とする、請求項１５〜２３のいずれか一項に記載の生物学的プローブシステム。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ＤＮＡまたはＲＮＡの配列決定で用いるのに得に適する、単一ヌクレオチドを検出し、特徴付ける方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
遺伝物質の次世代配列決定は、ますます高速化する配列決定装置の市場参入に伴って配列決定の単価が下落しているように、概して生物科学、特に医学において、すでに顕著な影響を与えている。
【０００３】
当社の以前の出願である国際公開第２０１４／０５３８５３号、同２０１４／０５３８５４号、同第２０１４／１６７３２３号、同第２０１４／１６７３２４号、および同第２０１４／１１１７２３号において、当社は、それぞれ一つずつマイクロ液滴ストリーム中の対応する液滴に捕捉され得る単一ヌクレオチドの順序づけられたストリーム、好適には単一デオキシリボヌクレオシド三リン酸のストリームを生成するためのポリヌクレオチド分析物の漸進的消化を含む、新しい配列決定法を記載した。その後、各液滴を化学的および／または酵素学的に操作して、それがもともと含んでいた特定の単一ヌクレオチドを明らかにすることが可能である。一実施形態において、これらの化学的および／または酵素学的操作は、分析物を構成する単一ヌクレオチドタイプの１つを選択的に捕捉可能であるようにそれぞれ適合させた、１つまたは複数の二成分オリゴヌクレオチドプローブタイプの使用を含む方法を含む。典型的には、このようなプローブタイプのそれぞれにおいて、２つのオリゴヌクレオチド成分の１つは特徴的なフルオロフォアを含み、プローブが未使用の状態では、蛍光を発するというこれらのフルオロフォアの機能は近くにあるクエンチャの存在によって、または自己消光によって消光したままである。使用時にプローブはその対応する単一ヌクレオチドを捕捉しているが、その場合は、それが次のエキソヌクレオリシス（exonucleolysis）の影響を受けやすくなることにより、フルオロフォアをクエンチャから遊離させ、および／または、互いに自由に蛍光を発することができるようにする。この方法により、各液滴に存在する元の単一ヌクレオチドを分光学的方法により間接的に特定することが可能である。
【０００４】
Fanらは、Nature Reviews Genetics 7(8) 632-644 (2006)において、遺伝子型決定、コピー数測定、ヘテロ接合度の消失の配列決定および検出、アレル特異的発現、ならびにメチル化のための、平行性の高いゲノムアッセイを可能にした方法およびプラットフォームの発展についての一般的なレビューを提供する。このレビューの図２ａは、分析物の一塩基多型（ＳＮＰ）の部位の上流および下流にアニールすることにより、ＳＮＰの相補体であるヌクレオチドで後から埋めて解放後に増幅し得る完全な環状プローブを形成するためのギャップを残す、3’末端および5’末端を有する環状化可能プローブの使用を図式的に示す。しかしながら当社の方法と異なり、充填プロセス中に捕捉されるヌクレオチドは分析物自体から直接得られない。
【０００５】
国際公開第０３／０８０８６１号は、解放時にヌクレオチドに直接付着するヌクレオチド特異的反応ラベルの存在下で、核酸分析物を漸進的加ピロリン酸分解に供すプロセスを公開する。これは当社の用いる方法と全く異なるだけでなく、実際には、標識ヌクレオチドをその後調査する際に測定される蛍光シグナルが弱すぎて、関連する背景雑音を上回る、信頼性の高い特定ができない可能性があるだろう。
【０００６】
最後に、国際公開第９４／１８２１８号は、分析物を漸進的エキソヌクレオリシスに供して単一ヌクレオチド二リン酸または単一ヌクレオチド一リン酸のストリームを生成し、これを次に蛍光増強マトリックスに組み入れてから検出するというＤＮＡ配列決定法を教示する。これは当社が記載するものと全く異なるアプローチであるだけでなく、またしても生成されるシグナルがすべて弱すぎて、信頼性をもって検出および特定することができない可能性が認められる。
【発明の概要】
【０００７】
当社はついに、以前の特許出願で記載した方法の改善版を開発したが、これは、各単一ヌクレオチドに以前得たよりも自由な、多くのフルオロフォアを生じさせることにより、はるかに容易に背景雑音を上回る関連蛍光シグナルの検出を行うことができるという利点を有する。結果として、該方法を用いる任意の配列決定装置の感度は大きく改善され、大きい核酸分子（例えばヒトＤＮＡ断片）を正確に配列決定するのにかかる時間はかなり短縮され得る。さらに、検出に必要な計器はより単純になり、そのため製造がより安価になる。
【図面の簡単な説明】
【０００８】
【図１】反応混合物のｄＮＴＰ成分の存在下および非存在下における、経時的な蛍光強度の増加をモニタリングした結果のグラフである。
【図２】マイクロ流体配列決定装置の概略断面図である。
【発明を実施するための形態】
【０００９】
したがって、本発明の第１態様により、（１）核酸の漸進的加ピロリン酸分解により単一ヌクレオシド三リン酸のストリームを生成するステップと；（２）ポリメラーゼとリガーゼの存在下で、少なくとも１つの前記単一ヌクレオシド三リン酸を、（ａ）検出不能状態にある特徴的な検出可能要素で標識した第１一本鎖オリゴヌクレオチドと、（ｂ）前記第１オリゴヌクレオチドの相補的領域にハイブリダイズすることが可能な、第２一本鎖オリゴヌクレオチドおよび第３一本鎖オリゴヌクレオチドとを含む、対応するプローブシステムと反応させることにより、少なくとも１つの実質的に二本鎖のオリゴヌクレオチド使用済みプローブを生成するステップと；（３）前記使用済みプローブを、二本鎖エキソヌクレアーゼ活性を有する酵素で消化して、検出可能状態の検出可能要素と、少なくとも部分的に前記第１オリゴヌクレオチドの配列相補体である一本鎖第４オリゴヌクレオチドとを生成するステップと；（４）前記第４オリゴヌクレオチドを別の第１オリゴヌクレオチドと反応させて、前記使用済みプローブに対応する、実質的に二本鎖のオリゴヌクレオチド生成物を生成するステップと；（５）ステップ（３）とステップ（４）を周期的に繰り返すステップと；（６）ステップ（３）の各反復において解放される前記特徴的な検出可能要素を検出するステップとを含むことを特徴とする、核酸を配列決定する方法を提供する。
【００１０】
本発明の方法のステップ（１）は、加ピロリン酸分解により核酸分析物から単一ヌクレオシド三リン酸のストリームを生成する工程を含む。このステップで用いる分析物は、適切には二本鎖ポリヌクレオチドであり、その長さは原則的には無制限とすることができ、ヒトゲノム断片中に見られる最大数百万のヌクレオチド塩基を含む。しかしながら、典型的には、ポリヌクレオチドは少なくとも５０、好適には少なくとも１５０のヌクレオチド対長であり、適切には、それは５００より長く、１０００より長く、多くの場合は数千ヌクレオチド対長であろう。分析物自体は、適切には、自然発生の（例えば、植物、動物、細菌、またはウイルスに由来する）ＲＮＡまたはＤＮＡであるが、本方法は、合成的に生成したＲＮＡもしくはＤＮＡを、または、天然では通常発生しないヌクレオチド塩基、つまり、アデニン、チミン、グアニン、シトシンおよびウラシル以外のヌクレオチド塩基で全体的または部分的に構成される他の核酸を配列決定するためにも用いることが可能である。このようなヌクレオチド塩基の例としては、4-アセチルシチジン、5-(カルボキシヒドロキシメチル)ウリジン、2-O-メチルシチジン、5-カルボキシメチルアミノメチル-2-チオウリジン、5-カルボキシメチルアミノ-メチルウリジン、ジヒドロウリジン、2-O-メチルシュードウリジン、2-O-メチルグアノシン、イノシン、N6-イソペンチルアデノシン、1-メチルアデノシン、1-メチルシュードウリジン、1-メチルグアノシン、1-メチルリノシン、2,2-ジメチルグアノシン、2-メチルアデノシン、2-メチルグアノシン、3-メチルシチジン、5-メチルシチジン、N6-メチルアデノシン、7-メチルグアノシン、5-メチルアミノメチルウリジン、5-メトキシアミノメチル-2-チオウリジン、5-メトキシウリジン、5-メトキシカルボニルメチル-2-チオウリジン、5-メトキシカルボニルメチルウリジン、2-メチルチオ-N6-イソペンテニルアデノシン、ウリジン-5-オキシ酢酸-メチルエステル、ウリジン-5-オキシ酢酸、ウィブトキソシン、ウィブトシン、シュードウリジン、キューオシン、2-チオシチジン、5-メチル-2-チオウリジン、2-チオウリジン、4-チオウリジン、5-メチルウリジン、2-O-メチル-5-メチルウリジン、および2-O-メチルウリジンが挙げられる。ＤＮＡの場合、生成される単一ヌクレオシド三リン酸はデオキシリボヌクレオシド三リン酸であるが、ＲＮＡの場合、それはリボヌクレオシド三リン酸である。
【００１１】
本発明の一実施形態において、ステップ（１）は分析物を基板に付着させる第１サブステップを含む。典型的には、基板は、マイクロ流体表面、マイクロビーズ、または、例えばガラスもしくは非分解性ポリマーからなる透過膜を備える。好適には、基板はさらに、分析物を収容するよう適合した表面を備える。分析物をこうした表面に付着させることができる多くの方法があり、原則的にはそのいずれもこのサブステップで用いることが可能である。例えば、１つの方法は、ガラス表面をエポキシシラン、アミノヒドロカルビルシランまたはメルカプトシランなどの官能性シランでプライミングすることを含む。こうして生成した反応性部位は、次に、末端アミン、スクシニル基、またはチオール基を含むように改変した分析物の誘導体で処理することが可能である。
【００１２】
ステップ（１）の一実施形態では、分析物を加ピロリン酸分解して、その順序が分析物の配列の順序に対応する単一ヌクレオシド三リン酸のストリームを生成する。加ピロリン酸分解は、ポリメラーゼを含む反応媒体の存在下で、２０〜９０℃の範囲内の温度で実行することができる。好適にはこれは、単一デオキシヌクレオシド三リン酸が遊離する際に反応ゾーンから連続して離れるように、連続フローの条件下で実行する。最も好適には、酵素および他の典型的な添加物を含む水性緩衝媒体を、分析物が結合した表面に連続的に流すことにより加ピロリン酸分解を実行する。
【００１３】
一実施形態では、用いられる酵素は、分析物の漸進的3’-5’加ピロリン酸分解を生じさせて、高い忠実度および適切な反応速度でヌクレオシド三リン酸のストリームを生成することが可能なものである。好適には、この分解速度は可能な限り早く、一実施形態では一秒あたり１〜５０ヌクレオシド三リン酸の範囲内である。ポリヌクレオチドの分解に適用されるような加ピロリン酸分解反応についてのさらなる情報は、例えばJ. Biol. Chem. 244 (1969) pp. 3019-3028を参照することが可能である。適切には、加ピロリン酸分解は、ピロリン酸アニオンおよびマグネシウムカチオンを、好適にはミリモル濃度でさらに含む媒体の存在下で実行される。
【００１４】
本発明の方法のステップ（２）では、ストリーム中の少なくとも１つの単一ヌクレオシド三リン酸、好適には単一ヌクレオシド三リン酸のそれぞれを、ポリメラーゼとリガーゼの存在下でプローブシステムと反応させて、実質的に二本鎖の使用済みプローブを生成する。好適にはこのステップを実行する前に、単一ヌクレオシド三リン酸を含むステップ（１）の生成物をピロホスファターゼで処理して、残留ピロリン酸をすべて加水分解しリン酸アニオンにする。
【００１５】
このステップで用いられるポリメラーゼは、適切には、反応条件下でエキソヌクレアーゼ活性もエンドヌクレアーゼ活性も本質的には示さないものからなる群から選択される。有利に用いることが可能なポリメラーゼの例としては、限定されるわけではないが、大腸菌（例えばクレノウ断片ポリメラーゼ）、テルムス・アクウァーティクス（Thermus aquaticus）（例えば、Taq Pol）、バチルス・ステアロテルモフィルス（Bacillus stearothermophilus）、バチルス・カルドベロックス（Bacillus caldovelox）、およびバチルス・カルドテナックス（Bacillus caldotenax）などの細菌から得られる原核生物pol 1型酵素または酵素誘導体が挙げられる。任意の適切なリガーゼを原則的にはこのステップで用いることが可能である。
【００１６】
ステップ（２）で用いるプローブシステムは、３つの成分を含み、それは、（ａ）検出不能状態にある特徴的な検出可能要素で標識した第１一本鎖オリゴヌクレオチドと、（ｂ）前記第１オリゴヌクレオチドの相補的領域にハイブリダイズすることが可能な、第２非標識一本鎖オリゴヌクレオチドおよび第３非標識一本鎖オリゴヌクレオチドである。一実施形態では、第２オリゴヌクレオチドおよび第３オリゴヌクレオチドは別個の実体である一方、別の実施形態では、それらはリンカー領域により互いに連結している。この後者の場合、一実施形態では、リンカー領域は第２オリゴヌクレオチドと第３オリゴヌクレオチドの末端を、好適には、第２オリゴヌクレオチドの5’末端と第３オリゴヌクレオチドの3’末端を、連結する。リンカー領域は、原則的には任意の二価基とすることが可能であるが、都合のいいことには、別の一本鎖または二本鎖のオリゴヌクレオチド断片である。一実施形態において、リンカー領域は、第１オリゴヌクレオチドに実質的にハイブリダイズすることができない。
【００１７】
第１オリゴヌクレオチド、第２オリゴヌクレオチド、および第３オリゴヌクレオチドは、ステップ（２）において、第２オリゴヌクレオチドおよび第３オリゴヌクレオチドがそれぞれ、検出されるヌクレオシド三リン酸が有する塩基に対し相補的なヌクレオチド塩基を有する単一ヌクレオチドを含む捕捉領域のいずれかの側に並置される、第１オリゴヌクレオチドの3’側隣接領域と5’側隣接領域にハイブリダイズすることが可能であるように選択される。これは三成分プローブシステムを、その特定のヌクレオシド三リン酸に対する選択性が高いものにする。したがって、例えば、分析物がＤＮＡに由来し、第１オリゴヌクレオチド、第２オリゴヌクレオチド、および第３オリゴヌクレオチドがデオキシリボヌクレオチドである場合、捕捉領域は、それが含むヌクレオチドがチミン塩基を有する場合、デオキシアデノシン三リン酸に対し選択性が高いだろう。本発明の有用な一実施形態では、ステップ（２）を、複数のプローブシステムタイプ、例えば、それぞれが、求める種々の異なるヌクレオチド塩基およびそれに付着した異なる検出可能要素に特徴的な異なる捕捉領域を有する第１オリゴヌクレオチドを含む、１つ、２つ、３つ、または４つのプローブシステムタイプの存在下で実行することができる。
【００１８】
典型的には、第１オリゴヌクレオチドは最大で１５０ヌクレオチド長、好適には２０〜１００の間のヌクレオチドである。一実施形態では、第２オリゴヌクレオチドは、最大で１０、好適には１〜５のヌクレオチドの差で、第１オリゴヌクレオチドの相補的な3’側隣接領域よりも長い。別の実施形態では、この時点でヌクレオシド三リン酸がポリメラーゼにより捕捉されるのを防ぐため、第１オリゴヌクレオチドの3’末端と、第２オリゴヌクレオチドのそれに対向するヌクレオチドの間に単一ヌクレオチドミスマッチがある。さらに別の実施形態では、第３オリゴヌクレオチドの3’末端は、ステップ（３）で生成される第４オリゴヌクレオチド自体が実質的に消化されないことを確実にするために、エキソヌクレアーゼ分解に対し抵抗性のある要素を含む。これは、例えば、その特定の末端に、またはその近くに、１つまたは複数のホスホロチオエート連結、グアニン四重鎖（G-Quadruplex）、ホウ素化ヌクレオチド、inverted dtもしくはddt、C3スペーサ、またはホスフェート基を組み込むことにより達成することが可能である。
【００１９】
第１オリゴヌクレオチドが独自のタイプの検出可能要素で多数標識されていることと、これらの検出可能要素が、プローブシステムが未使用状態にある場合は実質的に検出不能であるということが、第１オリゴヌクレオチドの特徴である。適切には、これらの検出可能要素は、光学事象が起きた後検出されるように適合させたものである。好適な一実施形態では、検出可能要素はフルオロフォアを含み、各未使用第１オリゴヌクレオチドは、前記フルオロフォアが検出されるように設計された波長において本質的に非蛍光性である。したがって、フルオロフォアは、電磁スペクトルの広範部分にわたって一般的な低レベルの背景蛍光を示し得るが、典型的には、蛍光の強度が最大である１つまたは少数の特異的波長または波長包絡線があろう。フルオロフォアが特徴的に検出される１つまたは複数のこれらの最大では、蛍光は本質的には発生すべきではない。本発明の文脈では、「本質的に非蛍光性」という用語または同等の語は、関連する特徴的な波長または波長包絡線において第１オリゴヌクレオチドに付着した全フルオロフォアの蛍光の強度が、同等数の遊離フルオロフォアの蛍光の対応する強度の２５％未満；好適には１０％未満；より好適には１％未満；もっとも好適には０．１％未満であることを意味する。
【００２０】
原則的には、第１オリゴヌクレオチドの未使用状態においてフルオロフォアが本質的に非蛍光性であるようにするために、いかなる方法も用いることが可能である。１つのアプローチは、クエンチャを、それに近接して追加で付着させることである。別のアプローチは、多数のフルオロフォアを互いに近接して第１オリゴヌクレオチドに付着させる場合、前段落に記載した基準をクエンチャの必要なしに達成することができるほど十分に互いを消光する傾向があるという観察に基づくものである。本発明のこの文脈では、フルオロフォア間またはフルオロフォアとクエンチャとの間の「近接」を構成するものは、用いられる特定のフルオロフォアおよびクエンチャ、ならびに場合によっては第１オリゴヌクレオチドの構造的特徴に左右されよう。したがって、この用語は、種々の要素の任意の特定の構造的配置よりはむしろ求められる結果を参照して解釈されることを意図している。しかしながら、例を提供することのみを目的として、隣接するフルオロフォアまたは隣接するフルオロフォアおよびクエンチャが、特徴的なフェルスター距離に対応する距離（典型的には５ｎｍ未満）だけ離れる場合、十分な消光が概して達成されることが指摘される。
【００２１】
適切には、第１オリゴヌクレオチドは、少なくとも１つの、好適には最大２０個のフルオロフォアで標識する。最大の利点を得るため、第１オリゴヌクレオチドは、少なくとも２つの、好適には少なくとも３つのフルオロフォアで標識することが好ましい。従って、本明細書では、これらの最大および最小の任意の変更から構成される範囲を具体的に想定する。クエンチャを用いる場合、第１オリゴヌクレオチドは最大で２０個、好適には最大で１０個、最も好適には最大で５個のフルオロフォアで標識することが同様に好ましい。
【００２２】
フルオロフォアそのものに関し、それらは原則的には、限定されるわけではないが、キサンテン部分、例えばフルオレセイン、ローダミンおよびフルオレセインイソチオシアネート、ローダミンＢ等といったそれらの誘導体；クマリン部分（例えばヒドロキシ−、メチル−およびアミノクマリン）、ならびにＣｙ２、Ｃｙ３、Ｃｙ５およびＣｙ７などのシアニン部分を含む、当技術分野において従来用いられてきたもののいずれかから選択することが可能である。具体例としては、以下の通例用いられる染料：Ａｌｅｘａ染料、シアニン染料、Ａｔｔｏ Ｔｅｃ染料、およびローダミン染料に由来するフルオロフォアが挙げられる。例としてはまた、Ａｔｔｏ ６３３（ＡＴＴＯ−ＴＥＣ ＧｍｂＨ）、テキサスレッド（商標）、Ａｔｔｏ ７４０（ＡＴＴＯ−ＴＥＣ ＧｍｂＨ）、ローズベンガル、Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ（商標）７５０ Ｃ５−マレイミド（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）、Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ（商標）５３２ Ｃ２−マレイミド（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）ならびにローダミンレッドＣ２−マレイミドおよびローダミングリーン、またＱｕａｓａｒ ５７０などのホスホラミダイト染料が挙げられる。あるいは、量子ドットまたはＬＩ−ＣＯＲ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓにより供給されるような近赤外染料を用いることが可能である。フルオロフォアは、典型的には、当技術分野において知られる化学的方法を用いて、ヌクレオチド塩基を介して第１オリゴヌクレオチドに付着させる。
【００２３】
適切なクエンチャには、フェルスター共鳴エネルギー移動（ＦＲＥＴ）メカニズムにより機能するものが含まれる。上記フルオロフォアと関連して用いることが可能である、商業的に利用可能なクエンチャの例としては、限定されるわけではないが、ＤＤＱ−１、Ｄａｂｃｙｌ、Ｅｃｌｉｐｓｅ、Ｉｏｗａ Ｂｌａｃｋ ＦＱ、Ｉｏｗａ Ｂｌａｃｋ ＲＱ、ＩＲ Ｄｙｅ−ＱＣ１、ＢＨＱ−１、ＢＨＱ−２、ＢＨＱ−３、ＱＳＹ−７、およびＱＳＹ−２１が挙げられる。
【００２４】
一実施形態では、第２オリゴヌクレオチドおよび第３オリゴヌクレオチドは、検出可能要素で標識しない。
【００２５】
ステップ（２）は、適切には、２０〜８０℃の範囲の温度で、ストリーム中の各単一ヌクレオチド三リン酸を、上記の１つまたは複数のプローブシステムと接触させることにより実行される。
【００２６】
本発明の方法のステップ（２）の生成物は、上記のように、実質的に二本鎖の使用済みプローブであり、その構成鎖はそれぞれ、第１オリゴヌクレオチド、および、5’-3’方向で読んだ場合、第２オリゴヌクレオチド、次に単一ヌクレオシド三リン酸に由来するヌクレオチド、最後に第３オリゴヌクレオチドを含む相補的第４オリゴヌクレオチドである。第２オリゴヌクレオチドおよび第３オリゴヌクレオチドがリンカー領域により互いに予め結合していた場合、第４オリゴヌクレオチドはエキソヌクレオリシスに対し抵抗性の高い閉ループ鎖を含むだろうことが容易に分かるだろう。
【００２７】
ステップ（３）では、使用済みプローブを、３０〜１００℃の範囲の温度で酵素を用いて処理する。このステップでは、検出可能要素を互いに分離し、それにより該要素を消光しないようにして検出可能にするプロセスにおいて、第１オリゴヌクレオチドに由来する使用済みプローブの鎖を消化してその構成ヌクレオチド（デオキシリボヌクレオシド一リン酸または場合によりリボヌクレオシド一リン酸）にする。従って、検出可能要素が、第１オリゴヌクレオチドにおいて消光して未検出状態にあるフルオロフォアである場合、ステップ（３）はフルオロフォアを互いに、および任意のクエンチャから遊離させ、それによりそれを蛍光させるだろう。消化プロセスが起きると、観察者はそのため、単一ヌクレオチドのカスケードが生成された際に蛍光シグナルの急速な成長を目にする。この蛍光の特徴はひいては、関連するプローブシステムにより元々捕捉されていた単一ヌクレオシド三リン酸の特性を間接的に反映する。
【００２８】
ステップ（３）で用いることが可能な酵素としては、3’-5’エキソヌクレアーゼ活性を示すエキソヌクレアーゼまたはポリメラーゼが挙げられる。このクラスの酵素としては、Ｑ５、Ｑ５ホットスタート、Ｐｈｕｓｉｏｎ、Ｐｈｕｓｉｏｎ ＨＳ、Ｐｈｕｓｉｏｎ ＩＩ、Ｐｈｕｓｉｏｎ ＩＩ ＨＳ、Ｄｎａｓｅ Ｉ（ＲＮａｓｅフリー）、Ｅｘｏｎｕｃｌｅａｓｅ ＩまたはＩＩＩ（例えばＥ.ｃｏｌｉ）、Ｅｘｏｎｕｃｌｅａｓｅ Ｔ、Ｅｘｏｎｕｃｌｅａｓｅ Ｖ（ＲｅｃＢＣＤ）、Ｌａｍｂｄａ Ｅｘｏｎｕｃｌｅａｓｅ、Ｍｉｃｒｏｃｏｃｃａｌ Ｎｕｃｌｅａｓｅ、Ｍｕｎｇ Ｂｅａｎ Ｎｕｃｌｅａｓｅ、Ｎｕｃｌｅａｓｅ ＢＡＬ−３１、ＲｅｃＪｆ、Ｔ５ Ｅｘｏｎｕｃｌｅａｓｅ、およびＴ７ Ｅｘｏｎｕｃｌｅａｓｅが挙げられる。
【００２９】
一実施形態では、ステップ（３）の終わりで、第１オリゴヌクレオチドから残された残留オリゴヌクレオチド断片すべてを第４オリゴヌクレオチドから取り除き、新しい第２オリゴヌクレオチドおよび第３オリゴヌクレオチドをアニールできるようにするため、反応混合物を比較的高い温度と比較的低い温度の間で循環させる。
【００３０】
ステップ（４）では、一本鎖形態でここでは存在する第４オリゴヌクレオチドを、別の第１オリゴヌクレオチド分子にハイブリダイズさせることにより、使用済みプローブに対応する、つまり、使用済みプローブと同一の化学的構造および物理的構造を有する新しい実質的に二本鎖のオリゴヌクレオチド生成物を生成する。この生成物はその後ステップ（３）の繰り返しにおいて消化することにより、検出可能状態にある検出可能要素をさらに解放し、第４オリゴヌクレオチドを再び再生する。その後、ステップ（５）に従い、ステップ（３）およびステップ（４）を周期的に継続して、原則的には、実質的に全ての第１オリゴヌクレオチドが消費されるまで、遊離した検出可能要素からのシグナル、例えば蛍光シグナルをさらに高める。結果として、観察者は、以前得られたよりもはるかに優れた蛍光シグナルの強化を見て取る。
【００３１】
その後、ステップ（６）では、ステップ（３）のいくつかの反復において遊離した検出可能要素を検出し、単一ヌクレオシド三リン酸に付着したヌクレオチド塩基の性質を求める。本発明の方法を、ステップ（１）で生成したストリーム中の全ての単一ヌクレオシド三リン酸について体系的に実行することにより、元の核酸分析物の配列に特徴的なデータを生成し、分析することが可能である。このステップを行う方法は当技術分野で周知であり、例えば、蛍光は、種々のフルオロフォアの特徴的な蛍光波長または波長包絡線に合わせた光検出器または同等の装置を用いて検出することができる。これは次に、既知のアルゴリズムを用いたコンピュータで処理および分析することが可能な、特徴的な電気シグナルを光検出器に生成させる。一実施形態では、ステップ（５）とステップ（６）の間で一定期間の経過を許容し、検出可能状態にある検出可能要素の数が最大となるようにする。
【００３２】
特に好適な一実施形態では、本発明の方法を、少なくとも一部が単一ヌクレオシド三リン酸を含むマイクロ液滴のストリームにおいて、好適には順序づけられたストリームにおいて、全体的または部分的に実行する。このような方法は、例えば、ステップ（１）において生成したヌクレオシド三リン酸を、一つずつ、順序を保存するのに役立つ炭化水素油またはシリコーン油などの非混和性担体溶媒中に維持した対応する水性マイクロ液滴ストリームに挿入することにより開始することができる。有利なことに、これは、例えば反応媒体を適切な寸法のマイクロ液滴ヘッドから溶媒の流動ストリームに出現させることで加ピロリン酸分解反応ゾーンのマイクロ液滴ダウンストリームを直接生成することにより、達成することが可能である。あるいは、ステップ（１）による反応媒体の小アリコットを、溶媒に懸濁した既存の水性マイクロ液滴のストリームに、定期的および継続的に注入することが可能である。この後者のアプローチを採用した場合、各マイクロ液滴はすでに、ステップ（２）およびステップ（５）を行うために必要な酵素および任意の他の試薬（例えば緩衝液）とともに、プローブシステムの種々の成分を含み得る。さらに別のアプローチでは、前者の実施形態で作ったマイクロ液滴をこのような既存のマイクロ液滴ストリームと実質的に合体させて、同様の結果を得ることも可能である。これらのマイクロ液滴法では、ステップ（６）は好適には、各マイクロ液滴を調査して、遊離した検出可能要素と、ひいては元々含まれていたヌクレオシド三リン酸の性質とを特定する工程を含む。
【００３３】
所与のマイクロ液滴が１超のヌクレオシド三リン酸を含むリスクを避けるため、各充填マイクロ液滴を１〜２０個、好適には２〜１０個の空のマイクロ液滴により離されるような割合で、各ヌクレオシド三リン酸をステップ（１）で解放することが好ましい。その後、溶媒中の充填マイクロ液滴および非充填マイクロ液滴のストリームを、液滴が離散状態に維持され、互いに合体する機会を持たないような割合および方法で、流路、好適にはマイクロ流体流路に沿って流す。好適には、用いるマイクロ流体は１００ミクロン未満、好適には５０ミクロン未満、より好適には２０ミクロン未満、さらにより好適には１５ミクロン未満の有限直径を有する。その全ての直径のうち最も好適なのは、２〜２０ミクロンの範囲内である。一実施形態では、全システムを通過するマイクロ液滴の流速は、１秒あたり５０〜３０００マイクロ液滴、好適には１００〜２０００マイクロ液滴の範囲内である。
【００３４】
本発明の第２態様に従い、（ａ）検出不能状態にある１つまたは複数のフルオロフォアで標識した第１一本鎖オリゴヌクレオチドと、（ｂ）単一ヌクレオチド捕捉領域のいずれかの側に並置される、第１オリゴヌクレオチド上の相補的な3’側隣接領域および5’側隣接領域にそれぞれハイブリダイズすることが可能な、第２非標識一本鎖オリゴヌクレオチドおよび第３非標識一本鎖オリゴヌクレオチドとを含み、前記第２オリゴヌクレオチドの長さは3’側隣接領域より少なくとも１ヌクレオチド分長いことを特徴とする、プローブシステムを提供する。
【００３５】
本発明のこの態様の第１実施形態では、第２オリゴヌクレオチドと第３オリゴヌクレオチドはリンカー領域により、典型的には一本鎖または二本鎖のオリゴヌクレオチド領域により連結される。別の実施形態では、第１オリゴヌクレオチドの3’末端のヌクレオチドは、第２オリゴヌクレオチドの対応するヌクレオチドとのミスマッチである。さらに別の実施形態では、第３オリゴヌクレオチドは、その3’末端において、エキソヌクレアーゼ分解に対し抵抗性のある要素を含む。本発明の別の実施形態では、フルオロフォアは、クエンチャも含み得る第１オリゴヌクレオチドの5’隣接領域に位置する。
【００３６】
上記の方法およびプローブシステムを用いて配列決定装置に利益をもたらすことが可能であり、このような装置は本発明の範囲内にあるとみなす。
【００３７】
ここで、その種々の態様における本発明を、以下の例を参照に説明しよう。
【実施例】
【００３８】
（実施例１）
プローブシステムの調製および使用
以下のヌクレオチド配列を有する一本鎖第１オリゴヌクレオチド１を調製した：
5’TCGTGCCTCATCGAACATGACGAGGXXQXXGGTTTGTGGT3’
（ここで、Ａ、Ｃ、Ｇ、およびＴは、ＤＮＡの特徴的な関連ヌクレオチド塩基を有するヌクレオチドを表す；Ｘは、従来のアミン付着化学作用を用いてＡｔｔｏ ６５５染料で標識したデオキシチミジンヌクレオチド（Ｔ）を表し、Ｑは、ＢＨＱ−２クエンチャで標識したデオキシチミジンヌクレオチドを表す）。それはさらに、デオキシヌクレオチド三リン酸（ｄＮＴＰ）の混合物中のデオキシチミジン三リン酸ヌクレオチド（ｄＴＴＰ）を捕捉することに対し選択的な捕捉領域（Ａヌクレオチド）を含む）。
【００３９】
（１）単一の塩基ミスマッチを有する、第１オリゴヌクレオチドの3’末端に対し相補的な配列を有する第２オリゴヌクレオチド領域と；（２）第１オリゴヌクレオチドの5’末端に対し相補的な配列を有する第３オリゴヌクレオチド領域と；（３）７６塩基対一本鎖リンカー領域とを含む、別の一本鎖オリゴヌクレオチド２も調製した。それは以下のヌクレオチド配列を有した：
5’PCATGTTCGATGAGGCACGATAGATGTACGCTTTGACATACGCTTTGACAATACTTGAGCAGTCGGCAGATATAGGATGTTGCAAGCTCCGTGAGTCCCACAAACCAAAAACCTCG3’
（ここで、加えてＰは5’ホスフェート基を表す）。
【００４０】
プローブシステムを含む反応混合物を次に調製した。それは、以下の処方に由来するものに対応する構成物を有した：
５６μＬの５ｘ緩衝液ｐＨ７．５
２８μＬのオリゴヌクレオチド１、１００ｎＭ
２８μＬのオリゴヌクレオチド２、１０ｎＭ
２．８μＬのｄＮＴＰ混合物（ｄＴＴＰを含む）、１０ｎＭ 
０．４ＵのＰｈｕｓｉｏｎ ＩＩホットスタートポリメラーゼ（エキソヌクレアーゼ）
１．６ＵのＢｓｔ Ｌａｒｇｅ Ｆｒａｇｍｅｎｔ ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ
２０ＵのＥ. ｃｏｌｉリガーゼ
４Ｕの熱安定性無機ピロホスファターゼ
２８０μＬまでの水。
ここで、５ｘ緩衝液は以下の混合物を含んだ：
２００μＬのＴｒｉｚｍａ（登録商標）塩酸塩、１Ｍ、ｐＨ７．５
１３．７５μＬの ＭｇＣｌ２水溶液、１Ｍ
２．５μＬのジチオトレイトール、１Ｍ
５０μＬのＴｒｉｔｏｎ（登録商標）Ｘ−１００界面活性剤（１０％）
２０μＬのニコチンアミドアデニンジヌクレオチド、１００μＭ
１６６．６７μＬのＫＣｌ
１ｍＬまでの水。
【００４１】
ｄＴＴＰの捕捉と、オリゴヌクレオチド２をオリゴヌクレオチド１にライゲーションすることによる閉ループ使用済みプローブの形成を、混合物を３７℃で５０分間、その後温度後７０℃まで上げてさらに５０分間インキュベーションすることにより実行した。反応混合物を次に６３３ｎｍのヘリウムネオンレーザー線で照光し、結果として生じるＡｔｔｏ ６５５染料の特徴的な蛍光を、エキソヌクレオリシスおよび使用済みプローブの再生のサイクルを開始した際にカメラを用いて検出した。
【００４２】
反応混合物のｄＮＴＰ成分の存在下および非存在下における、経時的な蛍光強度の増加をモニタリングし、その結果を図１にグラフを使って示した、これより、プローブシステムがｄＴＴＰを効率的に捕捉し、本発明のプロセスの周期性が蛍光シグナルの急速な増加を引き起こすことが見て取れる。それに反し、ｄＮＴＰが存在しない比較実験では、オリゴヌクレオチド１のＡｔｔｏ ６５５染料は蛍光を著しく示すことはなかった。
【００４３】
（実施例２）
プローブシステムを用いた液滴マイクロ流体法
図２は、それぞれが単一ヌクレオチド塩基を含むマイクロ液滴を上記のタイプのプローブシステムを用いた反応に供する、マイクロ流体配列決定装置を図式的に示す。
【００４４】
ヒトＤＮＡに由来する１００個のヌクレオチド塩基ポリヌクレオチド分析物を漸進的に加ピロリン酸分解することにより得られる単一ヌクレオチド三リン酸のストリームを含む水性媒体１を、ＰＤＭＳポリマーからなる直径１０ミクロンのマイクロ流体チューブに流した。加ピロリン酸分解反応自体は、Taq Polと、それぞれ１リットル当たり２ミリモル濃度のピロリン酸ナトリウムおよび塩化マグネシウムを含む溶液とを含む７２℃の水性緩衝（ｐＨ７．５）反応媒体を、分析物をスクシニル架橋により予め付着させたガラスマイクロビーズに通すことにより行われる。マイクロビーズのダウンストリームである１中の単一ヌクレオチドの順序は分析物の配列に対応する。１が液滴ヘッド２から第１チャンバ３に現れ、ここで非混和性軽質シリコーン油４の１つまたは複数のストリームと接触する。これらのストリームの速度は、乱流混合を回避し、各直径が約８ミクロンの、油中に懸濁させた水性球状液滴５を生成するように選択する。典型的には、割合は隣接する充填液滴の間に１０個の空の液滴があるように調整される。５のストリームを次に、同一直径の第２マイクロ流体チューブに沿って、５ミクロンの水性球状液滴７も第２液滴ヘッド８により供給される第２チャンバ６に前進させる。液滴５および液滴７を順次合体させて、直径が約９ミクロンの肥大した水性液滴９を形成する。７はそれぞれ、５のそれぞれに存在する残留ピロリン酸アニオンをすべて破壊するピロホスファターゼを含む。
【００４５】
９のストリームを次に、マイクロ流体チューブを介して同じ割合で第３チャンバ１０に前進させ、そこでこれらの液滴は、対応する液滴ヘッド１２を通して同様に供給される５ミクロンの水性球状液滴１１の第３ストリームと接触する。９のそれぞれがチャンバ６とチャンバ１０の間を移動するのにかかる時間は、約２分である。
【００４６】
液滴９および液滴１１を次に、１０において合体させて、液滴１３（直径約１０ミクロン）を生成する。１１のそれぞれは中温性リガーゼと、3’-5’二本鎖エキソヌクレアーゼ活性を示す好熱性ポリメラーゼと、実施例１に記載したものと同様の、一本鎖オリゴヌクレオチドの４つの対を含むプローブシステムとを含む。各第１オリゴヌクレオチドは４０ヌクレオチド長であり、ＤＮＡの特徴的な４つのヌクレオチド塩基タイプ（つまり、Ａ、Ｔ、Ｇ、およびＣ）に特徴的な異なる第２０ヌクレオチド（5’末端から測定）を有する。各第１オリゴヌクレオチドも互いに近い多数のフルオロフォアとクエンチャで標識し、その結果、それらが結合した状態では本質的には非蛍光性で、解放された際に、由来源である第１オリゴヌクレオチドに特徴的な波長で蛍光を発するようにする。４つの異なる第２オリゴヌクレオチドはそれぞれ１１５ヌクレオチド塩基長であり、その２つの末端において第１オリゴヌクレオチドの第２０塩基に隣接する領域に対し相補的な異なる終端配列を有し、共通の７６塩基対リンカー領域を有する。
【００４７】
このように形成した合体マイクロ液滴１３のストリームを次に、３７℃で３０分間、続いて７０℃で３０分間インキュベーションした。この時間の終わりに１３を検出システム１４に移す。
【００４８】
検出システム（図示せず）は典型的に、各液滴をレーザーからの入射光で調査する検出窓を備える。この光の作用は次に、各液滴中の解放フルオロフォアを、もともと捕捉分子に組み込まれていた単一ヌクレオチド塩基に特徴的な方法で蛍光させる（または、液滴がもともと空だった場合は本質的に一切蛍光しない）。この蛍光の存在または非存在を次に、上記４つのフルオロフォアの４つの特徴的な波長で検出する。このように、液滴を順に調査して、元のポリヌクレオチド分析物中のヌクレオチド塩基の配列を実際に読み出すことが可能である。
【図１】
0006433575.tif 000002
【図２】
0006433575.tif 000003
【配列表】
0006433575000001.app