(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
皮膚においてＯＲＡＩ３タンパク質又はＯｒａｉ３遺伝子の機能抑制剤を含む、皮膚細胞賦活剤であって、前記ＯＲＡＩ３タンパク質又はＯｒａｉ３遺伝子の機能抑制剤が、ＯＲＡＩ３タンパク質に特異的に結合する機能中和抗体、並びにＯｒａｉ３の発現を特異的に阻害するＲＮＡｉ誘導性核酸、アンチセンス核酸、リボザイム、及びそれらの発現ベクターからなる群から選択される１種以上である、皮膚細胞賦活剤。
【請求項２】
前記皮膚細胞賦活剤が、皮膚バリア機能亢進剤又は創傷治癒促進剤である、請求項１に記載の皮膚細胞賦活剤。
【請求項３】
皮膚培養細胞に候補薬剤を添加する工程、
候補薬剤添加後の皮膚培養細胞のＯｒａｉ３の遺伝子発現を直接的又は間接的に測定する工程、及び
候補薬剤添加前の皮膚培養細胞における遺伝子発現と比較する工程
を含む、皮膚細胞賦活剤のスクリーニング方法。
【請求項４】
前記Ｏｒａｉ３の遺伝子発現を直接的に測定する工程が、Ｏｒａｉ３のｍＲＮＡ量又はＯＲＡＩ３のタンパク質量を測定する方法である、請求項３に記載の皮膚細胞賦活剤のスクリーニング方法。
【請求項５】
前記Ｏｒａｉ３の遺伝子発現を間接的に測定する工程が、以下の：
皮膚培養細胞に刺激適用前後の細胞内Ｃａ2+濃度を計測する工程、及び
細胞内Ｃａ2+濃度がピーク値と定常値との中間値を超えてから該中間値に戻るまでの時間、又は所定時間経過後の細胞内Ｃａ2+濃度の値をＯｒａｉ３の遺伝子発現と関連づける工程
を含む、請求項３に記載の皮膚細胞賦活剤のスクリーニング方法。
【請求項６】
前記皮膚細胞賦活剤が、皮膚バリア機能亢進剤又は創傷治癒促進剤である、請求項３〜５のいずれか一項に記載の皮膚細胞賦活剤のスクリーニング方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、Ｏｒａｉ３遺伝子発現抑制剤又はＯＲＡＩ３タンパク質の機能抑制剤を含む、皮膚細胞賦活剤に関する。さらに別の態様では、Ｏｒａｉ３遺伝子発現を指標とした皮膚細胞賦活剤のスクリーニング方法にも関する。
【背景技術】
【０００２】
皮膚は、加齢、日光（紫外線）暴露、食習慣、ストレス等の影響を受けて、種々の老化現象が引き起こされる。皮膚の老化現象としては、例えば、シミ、そばかす、肝斑等の色素沈着をはじめ、くすみ、乾燥、シワ等が挙げられる。皮膚老化現象は、皮膚の表皮、真皮、及び皮下組織の各組織において、別々に又は連関して生じるが、最外層に存在する表皮や、シワや色素沈着に関与する真皮の老化現象が特に問題とされる。表皮では、老化現象として角層の層数が増加する一方で、皮膚のバリア機能が低下することが知られており、それにより乾燥状態を呈するようになる（非特許文献１及び２）。それにより、肌荒れや乾燥肌などの肌のトラブルが生じるようになり、また肌理や柔軟性が失われることにより美容の点でも問題となる。真皮では、加齢などの内的因子や、紫外線、活性酸素などの外的因子によって、結合組織や弾性繊維が減少又は変性して皮膚が本来維持している収縮性、柔軟性、保湿性などの機能が衰え、シワやたるみの発生、張りや弾力性の低下等さまざまな肌のトラブルが生じる。
【０００３】
皮膚の老化現象の進行を遅延させ、可能であれば逆行させるための研究がなされており、例えば、抗酸化物質を除去する物質や弾性繊維の産生を促進する物質の探索が行われている（特許文献１及び２）。美容製品の開発のために、このようなマクロレベルでの研究が行われているが、細胞レベルでの老化現象については未だに十分に解明されていない。
【０００４】
一方で、カルシウムチャネルの一種としてＯｒａｉファミリーが知られている。Ｏｒａｉファミリーのカルシウムチャネルは、他のカルシウムチャネルとは異なり、４回膜貫通型の膜タンパク質である。Ｏｒａｉ１は、小胞体のＣａ2+貯蔵が枯渇した際に活性化するＣａ2+放出活性型Ｃａ2+（ＣＲＡＣ）チャネルの構成分子として、小胞体内のＣａ2+枯渇を感知するタンパク質として同定されたＳＴＩＭ１に続き、ＲＮＡｉ技術を用いた研究により特定された。Ｏｒａｉ１は、細胞膜に存在することが示されている。Ｏｒａｉ１の発見後すぐにヒトのホモログ遺伝子としてＯｒａｉ２及びＯｒａｉ３が発見され、進化学的にＯｒａｉ３は、哺乳動物への分化の際に出現した最も新しいホモログ遺伝子であることが明らかにされた。したがって、Ｏｒａｉ３は哺乳動物の環境適応に応じた新たな生物学的機能を有することを予測されているが、その機能についてはいまだ不明なままであった（非特許文献３）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００５】
【特許文献１】特許第５４６８９０６号公報
【特許文献２】特許第４８４２１０５号公報
【非特許文献】
【０００６】
【非特許文献１】The Journal of Clinical Investigation (1995) Vol. 95, 1995, 2281-2290
【非特許文献２】Journal of Geriatric Dermatology (1993) Vol.1, 111-120
【非特許文献３】Journal of Physiology (2012) Vol.590, Part2, 241-257
【非特許文献４】Gerontolgy (2013) No.59, 159-164
【非特許文献５】Journal of Investigative Dermatology (2003) Vol. 121, 1557-1558
【非特許文献６】Journal of Investigative Dermatology（2002）Vol.119, 1128-1136
【非特許文献７】Journal of Investigative Dermatology (2001) Vol. 116, No.1, 50-56
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
本発明は、皮膚における細胞レベルでの老化に関わる機構を特定すると共に、皮膚細胞を賦活化できる薬剤を開発することを目的とする。さらに、細胞における老化に関わる機構を特定し、それにより細胞老化の進行を遅らせるか、又は逆行させることができる物質のスクリーニング方法を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
本発明者らが、上記課題を解決すべく鋭意研究を行ったところ、老化にともない、外部刺激に対する表皮細胞内におけるＣａ2+応答からの回復が遅くなるとの知見を初めて得た。この知見に基づき、Ｃａ2+応答からの回復を遅くする原因の追究を行ったところ、Ｃａ2+チャネルの一種であるＯｒａｉ３をノックダウンすることにより、Ｃａ2+応答からの回復が早くなったことを見出した。Ｃａ2+応答からの回復の早さが、細胞の若返りに関与するとの予測の元、創傷治癒モデルであるスクラッチアッセイにＯｒａｉ３ノックダウン細胞を供したところ、驚くべきことに細胞増殖速度が速まり、創傷治癒能力が高まることを発見し、本発明に至った。
【０００９】
したがって、本発明は以下のものに関する：
［１］  皮膚においてＯＲＡＩ３タンパク質又はＯｒａｉ３遺伝子の機能抑制剤を含む、皮膚細胞賦活剤。
［２］  ＯＲＡＩ３タンパク質又はＯｒａｉ３遺伝子の機能抑制剤が、ＯＲＡＩ３特異的抗体、並びにＯｒａｉ３の発現を特異的に阻害するＲＮＡｉ誘導性核酸、アンチセンス核酸、リボザイム、及びそれらの発現ベクターからなる群から選択される１種以上である、項目１に記載の皮膚細胞賦活剤。
［３］  前記皮膚細胞賦活剤が、皮膚バリア機能亢進剤又は創傷治癒促進剤である、項目１又は２に記載の皮膚細胞賦活剤。
［４］  培養細胞に候補薬剤を添加する工程、
候補薬剤添加後の培養細胞のＯｒａｉ３の遺伝子発現を直接的又は間接的に測定する工程、及び
候補薬剤添加前の培養細胞における遺伝子発現と比較する工程
を含む、細胞賦活剤のスクリーニング方法。
［５］  前記Ｏｒａｉ３の遺伝子発現を直接的に測定する工程が、Ｏｒａｉ３のｍＲＮＡ量又はＯＲＡＩ３のタンパク質量を測定する方法である、項目４に記載の細胞賦活剤のスクリーニング方法。
［６］  前記Ｏｒａｉ３の遺伝子発現を間接的に測定する工程が、以下の：
培養細胞に圧力刺激適用前後の細胞内Ｃａ2+濃度を計測する工程、及び
細胞内Ｃａ2+濃度がピーク値と定常値との中間値を超えてから該中間値に戻るまでの時間（半値幅）、又は所定時間経過後の細胞内Ｃａ2+濃度の値をＯｒａｉ３の遺伝子発現と関連づける工程
を含む、項目４に記載の方法細胞賦活剤のスクリーニング方法。
［７］  前記皮細胞賦活剤が、皮膚バリア機能亢進剤又は創傷治癒促進剤である、項目４〜６のいずれか一項に記載の皮膚細胞賦活剤のスクリーニング方法。
［８］  皮膚培養細胞又は３次元皮膚培養シートに、Ｏｒａｉ３遺伝子発現抑制剤又はＯｒａｉ３タンパク質の機能抑制剤を添加する工程を含む、培養皮膚シートの製造方法。
［９］  ＯＲＡＩ３タンパク質又はＯｒａｉ３遺伝子の機能抑制剤が、ＯＲＡＩ３特異的抗体、並びにＯｒａｉ３の発現を特異的に阻害するＲＮＡｉ誘導性核酸、アンチセンス核酸、リボザイム、及びそれらの発現ベクターからなる群から選択される１種以上である、項目８に記載の培養皮膚シートの製造方法。
［１０］  培養細胞に、Ｏｒａｉ３遺伝子発現抑制剤又はＯｒａｉ３タンパク質の機能抑制剤を添加する工程を含む、培養細胞の増殖方法。
［１１］  培養細胞に刺激を与える工程をさらに含む項目１０に記載の培養細胞の増殖方法。
［１２］  ＯＲＡＩ３タンパク質又はＯｒａｉ３遺伝子の機能抑制剤を投与することを含む、皮膚細胞賦活方法。
［１３］  ＯＲＡＩ３タンパク質又はＯｒａｉ３遺伝子の機能抑制剤が、ＯＲＡＩ３特異的抗体、並びにＯｒａｉ３の発現を特異的に阻害するＲＮＡｉ誘導性核酸、アンチセンス核酸、リボザイム、及びそれらの発現ベクターからなる群から選択される１種以上である、項目１２に記載の皮膚細胞賦活方法。
［１４］  ＯＲＡＩ３タンパク質又はＯｒａｉ３遺伝子の機能抑制剤を投与することを含む、美容方法。
［１５］  ＯＲＡＩ３タンパク質又はＯｒａｉ３遺伝子の機能抑制剤が、ＯＲＡＩ３特異的抗体、並びにＯｒａｉ３の発現を特異的に阻害するＲＮＡｉ誘導性核酸、アンチセンス核酸、リボザイム、及びそれらの発現ベクターからなる群から選択される１種以上である、項目１４に記載の美容方法。
［１６］  ＯＲＡＩ３タンパク質又はＯｒａｉ３遺伝子の機能抑制剤を投与することを含む、創傷治療方法。
［１７］  ＯＲＡＩ３タンパク質又はＯｒａｉ３遺伝子の機能抑制剤が、ＯＲＡＩ３特異的抗体、並びにＯｒａｉ３の発現を特異的に阻害するＲＮＡｉ誘導性核酸、アンチセンス核酸、リボザイム、及びそれらの発現ベクターからなる群から選択される１種以上である、項目１６に記載の創傷治療方法。
［１８］  皮膚抗老化のための医薬又は化粧品の製造のための、ＯＲＡＩ３タンパク質又はＯｒａｉ３遺伝子の機能抑制剤の使用。
［１９］  ＯＲＡＩ３タンパク質又はＯｒａｉ３遺伝子の機能抑制剤が、ＯＲＡＩ３特異的抗体、並びにＯｒａｉ３の発現を特異的に阻害するＲＮＡｉ誘導性核酸、アンチセンス核酸、リボザイム、及びそれらの発現ベクターからなる群から選択される１種以上である、項目１８に記載の使用。
【発明の効果】
【００１０】
Ｏｒａｉ３遺伝子発現や、Ｏｒａｉ３タンパク質の機能を抑制することにより、皮膚バリア機能の亢進又は創傷治癒能力の促進を含む細胞賦活効果を発揮することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１１】
【図１】図１Ａは、２４歳又は６３歳の健常人から取得された細胞（表皮ケラチノサイト）における水圧負荷後の細胞内Ｃａ2+濃度の変化を示す連続写真を示す。図１Ｂ及び図１Ｃは、２４歳の健常人（図１Ｂ）及び６３歳の健常人（図１Ｃ）から取得された細胞における細胞内Ｃａ2+濃度の変化を示したグラフである。図１Ｄは、細胞内Ｃａ2+濃度がピーク値と定常値との中間値を超えてから該中間値に戻るまでの時間（半値幅）と、細胞の提供者の年齢との相関を示すグラフである。
【図２】図２Ａは、細胞の提供者の年齢と、Ｏｒａｉ３のｍＲＮＡレベルとの相関を示すグラフである。図２Ｂは、水圧適用後に細胞内Ｃａ2+濃度がピーク値と定常値との中間値を超えてから該中間値に戻るまでの時間（半値幅）と、Ｏｒａｉ３のｍＲＮＡレベルとの相関を示すグラフである。
【図３】図３は、ケラチノサイトへのＯｒａｉ３のｓｉＲＮＡの導入により、Ｏｒａｉ３の遺伝子発現が抑制されたことを示す図である。図３Ａは、ｍＲＮＡ量の変化を示し、図３Ｂは、タンパク質量の変化を示す。
【図４】図４Ａは、高齢者（６３歳）から取得したケラチノサイトにおいて、Ｏｒａｉ３の遺伝子発現を抑制した場合に、水圧刺激により誘導されたＣａ2+応答において若返りの効果を示すグラフである。図４Ｂは、図４Ａのグラフから算出された、細胞内Ｃａ2+濃度がピーク値と定常値との中間値を超えてから該中間値に戻るまでの時間（半値幅）を、６回の平均で示したグラフである。
【図５】図５Ａは、健常ヒト皮膚の凍結切片におけるＯｒａｉ３の局在を示す写真である。図５Ｂは、陰性対照を示す。
【図６】図６は、増殖期の培養ケラチノサイトと、分化誘導された培養ケラチノサイトにおけるＯｒａｉ３の遺伝子発現量を示すグラフである。
【図７】図７Ａは、Ｏｒａｉ３をノックダウンされた培養ケラチノサイトに対するスクラッチアッセイの結果を示す写真である。図７Ｂは、スクラッチ後７時間における創傷治癒効果を示すグラフである。
【発明を実施するための形態】
【００１２】
本発明は、ＯＲＡＩ３タンパク質又はＯｒａｉ３遺伝子の機能抑制剤を含む皮膚細胞賦活剤に関する。本発明では、ＯＲＡＩ３のアミノ酸配列は、例えば配列番号１として公知である。Ｏｒａｉ３遺伝子のヌクレオチド配列は、オープンリーディングフレーム  （ＯＲＦ）として配列番号２が知られ、また転写されるｍＲＮＡの配列として配列番号３が知られ、ゲノム配列も公知である（ENSG00000175938）。ＯＲＡＩ３のアミノ酸及びヌクレオチド配列はともに、ＧｅｎＢａｎｋにAccession number Nm_152288として登録されている。本発明においては、ＯＲＡＩ３又はＯｒａｉ３遺伝子として、ＯＲＡＩ３又はＯｒａｉ３遺伝子の変異体、例えば、突然変異、多型、選択的スプライシング、縮重などに基づいた変異体も含まれるものとする。具体的には、本発明におけるＯＲＡＩ３は、配列番号１に示されるアミノ酸配列、或いは該アミノ酸配列において１もしくは数個のアミノ酸の欠失、置換又は付加を含むアミノ酸配列、を含むタンパク質であってもよい。或いは、本発明におけるＯＲＡＩ３は、配列番号１に示されるアミノ酸配列と９０％以上、好ましくは９５％以上、より好ましくは９７％以上、さらに好ましくは９８％以上、最も好ましくは９９％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含み、かつＯＲＡＩ３と同等のin vivo機能を有する変異体も包含する。また、本発明におけるＯｒａｉ３遺伝子は、配列番号１のアミノ酸配列によってコードされるヌクレオチド配列、より具体的には配列番号２に示されるヌクレオチド配列と９０％以上、好ましくは９５％以上、より好ましくは９７％以上、さらに好ましくは９８％以上、最も好ましくは９９％以上の同一性を有するヌクレオチド配列を含み、かつ翻訳後にＯＲＡＩ３と同等のin vivo機能を有する変異体も包含する。
【００１３】
ＯＲＡＩ３はカルシウムチャネルであるが、驚くべきことに、ＯＲＡＩ３をノックダウンすることにより、刺激を受けた表皮ケラチノサイトのＣａ2+応答からの回復が早くなったこと、さらには皮膚創傷治癒能力が向上することが本発明者らにより見出された。刺激を受けたケラチノサイトのＣａ2+応答からの回復にかかる時間は、加齢とともに長くなることも、本発明者らにより見出されている。また創傷治癒能力についても加齢とともに減少することが知られている（非特許文献４）。したがって、ノックダウンによりＯｒａｉ３の遺伝子発現を抑制するか、又はＯＲＡＩ３の機能を抑制することにより、細胞賦活化を可能にし、さらには老化した細胞の若返りを可能にすると考えられる。したがって、ＯＲＡＩ３タンパク質又はＯｒａｉ３遺伝子の機能を抑制できる物質は、細胞、好ましくは皮膚細胞、特に表皮細胞の細胞賦活剤として使用することができる。また本発明の細胞賦活剤は、皮膚に対する抗老化剤、老化逆行剤、又は若返り剤として使用することができる。このような物質は、in vivo だけでなく、ex vivo やin vitroで用いられてもよい。また、ＯＲＡＩ３タンパク質又はＯｒａｉ３遺伝子の機能を抑制する物質は、創傷治癒能力を向上することから、創傷治癒促進剤とすることができる。
【００１４】
また、表皮内のＣａ2+濃度勾配が、加齢に伴い減少することが示されており（非特許文献５）、表皮内Ｃａ2+濃度勾配が、表皮の角層への分化形成を調節していると報告されている（非特許文献６）。また加齢に伴い、角層の層数が増加するものの、皮膚バリア機能が弱まり、乾燥状態を呈することが知られている（非特許文献２）。これらの従来技術と、本発明者らにより明らかにされた知見とを組み合わせると、加齢に伴い減少する表皮におけるＣａ2+濃度勾配は、皮膚老化に関与するＯｒａｉ３遺伝子の働きによって生じるものと考えられる。したがって、ＯＲＡＩ３タンパク質又はＯｒａｉ３遺伝子の機能を抑制する物質は、表皮内Ｃａ2+濃度勾配に影響を与え、それにより角層形成を適切に保つことができるようになると考えられる。これにより、ＯＲＡＩ３タンパク質又はＯｒａｉ３遺伝子の機能を抑制する物質は、皮膚バリア機能の向上に関わることができ、皮膚バリア機能亢進剤として使用することが可能となる。
【００１５】
本発明におけるＯＲＡＩ３タンパク質又はＯｒａｉ３遺伝子の機能抑制剤を含む細胞賦活とは、皮膚、特に表皮細胞における細胞の活性を高めることをいい、抗老化や若返りの効果を含んでいてもよい。賦活効果の例として、細胞の増殖性、刺激応答性、温度変化や化学物質によるストレスへの耐性等の向上が挙げられる。本発明の細胞賦活剤は、特に創傷や火傷などの外部刺激に応答して、細胞増殖性を高めることができることから、細胞賦活には、創傷又は火傷治癒の向上が含まれる。また、細胞を賦活することにより、皮膚バリア機能の亢進や、肌理やシワといった皮膚状態の改善、表皮ターンオーバーの促進による美白やくすみの改善（具体的には、メラニン色素を取り込んだ表皮細胞の排出促進）などの効果が発揮されうる。
【００１６】
Ｏｒａｉ３遺伝子の機能抑制剤とは、Ｏｒａｉ３の遺伝子発現を抑制できる物質であれば任意の物質であってよく、Ｏｒａｉ３遺伝子発現抑制剤と呼ばれてもよい。Ｏｒａｉ３遺伝子発現抑制剤の例として、Ｏｒａｉ３の遺伝子発現を特異的に阻害するＲＮＡｉ誘導性核酸、アンチセンス核酸、リボザイム、及びそれらの発現ベクターが挙げられる。Ｏｒａｉ３遺伝子の機能抑制は、ｍＲＮＡ量又はタンパク質量として表され、対照と比較して統計学的に低値を示せば、Ｏｒａｉ３遺伝子の機能が抑制されたということができる。機能抑制を示す場合、これらの発現量は、好ましくは対照に対して８０％以下、さらに好ましくは５０％以下、特に好ましくは２０％以下の発現量である。
【００１７】
ＯＲＡＩ３タンパク質の機能抑制剤としては、ＯＲＡＩ３のタンパク質、好ましくは複数のＯＲＡＩ３により形成されるＣａ2+チャネルの機能を抑制可能な物質であれば任意の物質であってよく、例えばＯＲＡＩ３の抗体、特に機能中和抗体が挙げられる。ＯＲＡＩ３タンパク質は、Ｃａ2+チャネルとしての機能することから、ＯＲＡＩ３タンパク質の機能抑制は、Ｃａ2+の挙動により測定することができる。特にＯＲＡＩ３は、皮膚細胞において、刺激によるＣａ2+応答を持続させるように働くことから、Ｃａ２＋の量を経時的に計測し、Ｃａ2+応答後の細胞内Ｃａ2+濃度がピーク値と定常値との中間値を超えてから該中間値に戻るまでの時間（半値幅）、又は所定時間、例えば（１分、２分、又は３分）経過後の細胞内Ｃａ2+濃度の値を測定し、このような値が対照と比較して、統計学的に低値を示せば、ＯＲＡＩ３タンパク質の機能が抑制されたということができる。機能抑制を示す場合、これらの値は、好ましくは対照に対して８０％以下、さらに好ましくは６０％以下、特に好ましくは４０％以下である。
【００１８】
本発明で用いられるＲＮＡｉ誘導性核酸は、細胞内に導入されることにより、ＲＮＡ干渉を誘導し得るポリヌクレオチドをいい、通常、１９〜３０ヌクレオチド、好ましくは１９〜２５ヌクレオチド、より好ましくは１９〜２３ヌクレオチドを含むＲＮＡ、ＤＮＡ、又はＲＮＡとＤＮＡのキメラ分子であってよく、任意の修飾が施されていてもよい。ＲＮＡｉ干渉は、ｍＲＮＡに対して生じてもよいし、プロセッシング前の転写直後のＲＮＡ、すなわちエキソン、イントロン、３’非翻訳領域、及び５’非翻訳領域を含むヌクレオチド配列のＲＮＡであってもよい。本発明で使用可能なＲＮＡｉ法は、（１）短い二重鎖ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）を細胞内に直接導入するか、（２）ｓｈｏｒｔ−ｈａｉｒｐｉｎ型  ＲＮＡ（ｓｈＲＮＡ）を各種発現ベクターに組み込み、そのベクターを細胞内に導入するか、或いは（３）対立方向に並ぶ２個のプロモーターを持つベクターに、ｓｉＲＮＡに対応する短い二重鎖ＤＮＡをプロモーター間に挿入してｓｉＲＮＡを発現させるベクターを作製し、細胞内に導入する、などの手法によりＲＮＡｉを誘導させてもよい。ＲＮＡｉ核酸は、ＯＲＡＩ３のＲＮＡの切断又はその機能抑制を可能にするｓｉＲＮＡ、ｓｈＲＮＡ又はｍｉＲＮＡを含んでもよく、これらのＲＮＡｉ核酸は、リポソームなどを用いて直接導入されてもよいし、これらのＲＮＡｉ核酸を誘導する発現ベクターを用いて導入されてもよい。
【００１９】
本発明で用いられるＯｒａｉ３に対するｓｉＲＮＡは、ｓｉＲＮＡの標的となるＯｒａｉ３配列に基づいて、周知の化学合成技術を用いて合成することができる。例えば、固相ホスホアミダイト法などのＤＮＡ合成技術を利用したＤＮＡ（／ＲＮＡ）自動合成装置を使用して化学的に合成するか、或いは、ｓｉＲＮＡ関連の受託合成会社（例えばＬｉｆｅ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社など）に委託して合成することも可能である。本発明の実施形態によれば、本発明のｓｉＲＮＡは、その前駆体であるｓｈｏｒｔ−ｈａｉｒｐｉｎ型二本鎖ＲＮＡ（ｓｈＲＮＡ）から、細胞内ＲＮａｓｅであるダイサー（Ｄｉｃｅｒ）によるプロセシングを介して誘導されてもよい。本発明において、使用されるｓｉＲＮＡは、配列番号２又はその相補配列に由来の連続する１９〜３０ヌクレオチド、好ましくは１９〜２５ヌクレオチド、より好ましくは１９〜２３ヌクレオチドを含むＤＮＡに対応するＲＮＡである。このようなＲＮＡは、５’又は３’末端に１又は数個、例えば２の付加配列（ttやuu）などが追加されてもよく、それにより細胞内で分解を妨げ、安定性を高めることができる。例えば、以下の配列をＯｒａｉ３のｓｉＲＮＡとして使用することができるが以下のものに限定されることを意図するものではなく、下記の配列に相補する配列を用いてもよい：
５’−GCUACAAGCAGGAACUAGA−３’  （配列番号４）
５’−GCACCUCUUUGCACUCAUG−３’  （配列番号５）
５’−GAAGUUGUCCUGGUUGGUU−３’  （配列番号６）
５’−GUGGCUACCUCCCUUAGUC−３’  （配列番号７）
５’−CAUCCACAACCUCAACUCUtt−３’  （配列番号８）
５’−GCUACAAGCAGGAACUAGAtt−３’  （配列番号９）
５’−GGUUGGUUGGGUCAAGUUUtt−３’  （配列番号１０）
５’−GCUGUGAGCAACAUCCACAtt−３’  （配列番号１１）
５’−UUGAAGCUGUGAGCAACAU−３’  （配列番号１２）
５’−GGGUCAAGUUUGUGCCCAU−３’  （配列番号１３）
５’−GCUACAAGCAGGAACUAGA−３’  （配列番号１４）
５’−GCACCUCUUUGCACUCAUG−３’  （配列番号１５）
５’−GAAGUUGUCCUGGUUGGUU−３’  （配列番号１６）
５’−GUGGCUACCUCCCUUAGUC−３’  （配列番号１７）
５’−UUGAAGCUGUGAGCAACAUtt−３’  （配列番号１８）
５’−CACCAGUGGCUACCUCCCUUAtt−３’  （配列番号１９）
５’−TCCUUAGCCCUUGAAAUACAAtt−３’  （配列番号２０）
５’−CUGCCCUGGGCACCUUUCU−３’  （配列番号２１）
５’−GCAACAUCCACAACCUCAA−３’  （配列番号２２）
このうち、ＯＲＡＩ３のｓｉＲＮＡとして、Ｏｒａｉ３の遺伝子抑制が確認された観点から、配列番号４〜１０からなる群から選ばれる１以上が用いることが好ましく、特に配列番号４及び/又は９のものが好ましい。
【００２０】
本発明の組成物の有効成分として、アンチセンス核酸が使用されてもよい。このアンチセンス核酸は、配列番号２のヌクレオチド配列を含むＯｒａｉ３遺伝子に対応するｍＲＮＡの配列、又はその部分配列に相補的な配列を含むＲＮＡか又はＤＮＡのいずれかである。前記部分配列は、Ｏｒａｉ３遺伝子又はｍＲＮＡの配列において連続する約３０以上、５０以上、７０以上、１００以上、１５０以上、２００以上又は２５０以上から全長以下、例えば５０〜１５０のヌクレオチドからなる配列を含むことができる。この配列は、アンチセンス核酸としての機能が妨げられない範囲で、１又は複数のヌクレオチドの置換、付加、又は欠失が含まれても良いし、ヌクレオチドアナログが用いられてもよい。アンチセンス核酸のヌクレオチドは、天然のヌクレオチドに加えて、ハロゲン（フッ素、塩素、臭素又はヨウ素）、メチル、カルボキシメチル又はチオ基などの基を有する修飾ヌクレオチドを含むことができる。アンチセンス核酸は、周知のＤＮＡ／ＲＮＡ合成技術又はＤＮＡ組換え技術を用いて合成することができる。ＤＮＡ組換え技術によって合成する場合、配列番号２の配列を含むベクターＤＮＡを鋳型にして、増幅しようとする配列を挟み込むプライマーを用いてポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）を行って標的配列を増幅し、必要に応じてベクター中にクローニングして、アンチセンスＤＮＡを生成することができる。或いは、このようにして得られた増幅標的配列を有するＤＮＡをベクターに挿入し、該ベクターを真核又は原核細胞に導入し、その転写系を利用してアンチセンスＲＮＡを得ることができる。ベクターは、上に記載のウイルスベクター、プラスミドベクターを使用することができる。
【００２１】
本発明のＯｒａｉ３遺伝子の機能抑制剤として、リボザイムも使用することができる。リボザイムとは、核酸を切断する酵素活性を有するＲＮＡのことを指し、酵素活性を有する配列の両側に、切断したい配列に相補的な配列を配置することにより、所望の位置でＲＮＡを切断することができる。一方で、近年の研究により、当該酵素活性部位の塩基配列を有するオリゴＤＮＡも同様に核酸切断活性を有することが明らかになっているので、本明細書では配列特異的な核酸切断活性を有する限りＤＮＡをも包含する概念として用いる。具体的には、リボザイムは、Ｏｒａｉ３遺伝子をコードするｍＲＮＡまたは初期転写産物中の配列を特異的に切断することができる。リボザイムとして最も汎用性の高いものとしては、ウイロイドやウイルソイド等の感染性ＲＮＡに見られるセルフスプライシングＲＮＡがあり、ハンマーヘッド型やヘアピン型等が知られている。ハンマーヘッド型は約４０塩基程度で酵素活性を発揮し、ハンマーヘッド構造をとる部分に隣接する両端の数塩基ずつ（合わせて約１０塩基程度）を、ｍＲＮＡの所望の切断部位の前後の配列と相補的な配列にすることにより、標的ｍＲＮＡのみを特異的に切断することが可能である。さらに、リボザイムを、それをコードするＤＮＡを含む発現ベクターの形態で使用する場合には、転写産物の細胞質への移行を促進するために、ｔＲＮＡを改変した配列をさらに連結したハイブリッドリボザイムとすることもできる（Nucleic Acids Res., 29(13): 2780-2788 (2001)）。
【００２２】
Ｏｒａｉ３遺伝子の機能抑制剤は、細胞内で発現可能なベクターの形態で使用することができる。使用される発現ベクターは、Ｏｒａｉ３遺伝子のｓｉＲＮＡ、アンチセンス核酸、リボザイムをコードするポリヌクレオチド、および当該ポリヌクレオチドに機能可能に連結されたプロモーターを含む。前記プロモーターは、細胞内で、制御下にある発現対象の転写を可能にするものであれば任意のものを使用することができ、例えば、ｐｏｌＩＩＩプロモーター（例、ｔＲＮＡプロモーター、Ｕ６プロモーター、Ｈ１プロモーター）、哺乳動物用プロモーター（例、ＣＭＶプロモーター、ＣＡＧプロモーター、ＳＶ４０プロモーター）などが用いられる。本発明の発現ベクターはさらに、選択マーカー遺伝子（テトラサイクリン、アンピシリン、カナマイシン、ハイグロマイシン、ホスフィノスリシン等の薬剤に対する抵抗性を付与する遺伝子、栄養要求性変異を相補する遺伝子等）をさらに含んでいてもよい。
【００２３】
本発明の発現ベクターのバックボーン（backbone）としては、ヒト等の哺乳動物細胞中
で制御下の発現対象を転写可能であれば特に制限されないが、例えば、プラスミドベクター、ウイルスベクターが挙げられる。哺乳動物への投与に好適なベクターとしては、レトロウイルス、アデノウイルス、アデノ随伴ウイルス、ヘルペスウイルス、ワクシニアウイルス、ポックスウイルス、ポリオウイルス、シンドビスウイルス、センダイウイルス等のウイルスベクターが挙げられる。なかでも、レトロウイルス、アデノウイルス、アデノ随伴ウイルス、ワクシニアウイルス由来のウイルスベクターが好ましい。
【００２４】
ＯＲＡＩ３タンパク質の機能抑制剤としては、ＯＲＡＩ３タンパク質の機能を抑制できれば任意の物質であってもよい。例えば、ＯＲＡＩ３タンパク質に対する抗体又はそのフラグメントであってもよい。本発明の抗体は、例えばＯＲＡＩ３の膜外領域の配列をエピトープとして用いて、スクリーニングすることにより取得することができる。本発明において抗体という語は、最も広い意味で使用するものとし、所望の特異的結合性が示される限り、モノクローナル抗体、ポリクローナル抗体、抗体変異体、人工抗体が含まれるものとする。本発明における抗体は、マウス抗体、ヒト抗体、ラット抗体、ウサギ抗体、ヤギ抗体、ラクダ抗体など、任意の動物由来の抗体であってもよい。また、本発明における抗体は、抗体変異体のように、例えば、アミノ酸配列の一部を置換した改変抗体、各種分子を結合させた抗体修飾物、抗体フラグメント、低分子抗体などいかなる抗体であってもよい。さらにこれらの抗体に対してアフィニティマチュレーションを行った抗体も挙げられる。これらの抗体は全て公知の方法を用いれば製造することができる。
【００２５】
ポリクローナル抗体は、本発明にかかるエピトープを用いて、哺乳動物、例えばウサギ、ニワトリ、マウス、ラット、ヒツジなどに定法に従い免疫することにより生成することができる。ＯＲＡＩ３に対するポリクローナル抗体の生成は、例えばCurrent Protocols in Immunology, Wiley and Sons Inc.のＣｈａｐｔｅｒ  ９の記載に従うことで生成することができる。また、別の態様では、ＯＲＡＩ３を用いて哺乳動物を免疫し、生成した抗体群に対して、ＯＲＡＩ３又はそのエピトープペプチドを用いてスクリーニングすることにより、本発明のＯＲＡＩ３に結合するポリクローナル抗体を生成することができる。
【００２６】
本発明の抗体のうちモノクローナル抗体は、単一クローンの抗体集団の抗体のことをいう。モノクローナル抗体には、キメラ抗体、ヒト化抗体、ヒト抗体、バイスペシフィック抗体、抗体のペプチド模倣体、改変抗体、人工抗体並びにそれらのコンジュゲート抗体及びフラグメントが含まれるものとする。ＯＲＡＩ３に対するモノクローナル抗体は、マウス抗体、ヒト抗体、ラット抗体、ウサギ抗体、ヤギ抗体、ラクダ抗体など、任意の動物由来の抗体であってもよい。また、本発明におけるＯＲＡＩ３に対するモノクローナル抗体は、抗体変異体のように、例えば、アミノ酸配列等の一部を改変した改変抗体、各種分子を結合させた抗体修飾物、抗体フラグメント、低分子抗体などいかなる抗体であってもよい。本発明のモノクローナル抗体はハイブリドーマ法、ファージディスプレイ法、及び遺伝子工学的手法など、任意の公知の手法を用いて生成することができる。
【００２７】
本発明では、ヒトに対する異種抗原性を低下させること等を目的として、例えば、キメラ抗体、ヒト化抗体、バイスペシフィック抗体、抗体をペプチド模倣物により置換した抗体のペプチド模倣体、改変抗体、人工抗体、及びこれらの抗体とのコンジュゲート抗体も使用することができるし、これらの抗体は、既知の方法を用いて製造することができる。
【００２８】
本発明に使用する抗体は、例えば、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）等の非ペプチド性ポリマー、放射性物質、トキシン等の各種分子と結合したコンジュゲート抗体でもよい。このようなコンジュゲート抗体は、得られた抗体に化学的な修飾を施すことによって得ることができる。なお、化学的修飾方法はこの分野においてすでに確立されている。本発明における抗体にはこれらのコンジュゲート抗体も包含される（D.J.King., Applications and Engineering of Monoclonal antibodies., 1998 T.J. International Ltd, Monoclonal Antibody-Based Therapy of Cancer., 1998 Marcel Dekker Inc; Chari et al., Cancer Res., 1992 Vol152:127; Liu et al., Proc Natl Acad Sci USA., 1996 Vol 93:8681）。
【００２９】
本発明では、上記のような全抗体とは別に、ＯＲＡＩ３のエピトープ結合性を有し、Ｃａ2+活性を発揮する限り、抗体のフラグメントやその修飾物であってよい。例えば、抗体のフラグメントとしては、Ｆａｂフラグメント、Ｆｖフラグメント、Ｆ（ａｂ’）2フラグメント、Ｆａｂ’フラグメント、又はＨ鎖とＬ鎖のＦｖを適当なリンカーで連結させたシングルチェインＦｖ（ｓｃＦｖ）が挙げられる。
【００３０】
抗体製造のための産生系は、in vitro又はin vivoの産生系のいずれかを利用することができる。in vitroの産生系としては、真核細胞、例えば動物細胞、植物細胞、又は真菌細胞を使用する産生系や原核細胞、例えば大腸菌、枯草菌などの細菌細胞を使用する産生系が挙げられる。使用される動物細胞としては、哺乳動物細胞、例えばＣＨＯ、ＣＯＳ、ミエローマ、ＢＨＫ、ＨｅＬａ、Ｖｅｒｏといった一般に使用される細胞、昆虫細胞、植物細胞などが用いられてもよい。in vivoの産生系としては、動物を使用する産生系や植物を使用する産生系が挙げられる。動物を使用する場合、例えば哺乳類動物、昆虫を用いる産生系などがある。哺乳類動物としては、例えばヤギ、ブタ、ヒツジ、マウス、ウシなどを用いることができる（Vicki Glaser, SPECTRUM Biotechnology Applications, 1993）。また、昆虫としては、例えばカイコを用いることができる。植物を使用する場合、例えばタバコを用いることができる。
【００３１】
得られた抗体は、均一になるまで精製することができる。抗体の分離、精製は通常のタンパク質で使用されている分離、精製方法を使用すればよい。例えばアフィニティークロマトグラフィー等のクロマトグラフィーカラム、フィルター、限外濾過、塩析、透析、ＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳動、等電点電気泳動等を適宜選択、組み合わせれば、抗体を分離、精製することができる（Antibodies: A Laboratory Manual. Ed Harlow and David Lane, Cold Spring Harbor Laboratory, 1988）が、これらに限定されるものではない。アフィニティークロマトグラフィーに用いるカラムとしては、プロテインＡカラム、プロテインＧカラムが挙げられる。プロテインＡを結合させる担体resinとして、例えばHyper D（Pall Corporation），  POROS(Life Technologies)，  Sepharose F. F.（GE Healthcare）等が挙げられる。
【００３２】
本発明の皮膚細胞賦活剤、皮膚バリア機能亢進剤又は皮膚創傷治癒促進剤は、医薬品、医薬部外品、又は化粧品に配合することができる。配合される化粧品としては、皮膚に適用できるものであれば任意の製品であってよく、例えば、化粧水、美容液、乳液、クリーム、パックなどが挙げられる。一方、医薬品、医薬部外品に配合される場合、皮膚細胞賦活剤、皮膚バリア機能亢進剤又は皮膚創傷治癒促進剤は、任意の剤型で調製されてもよいが、いずれも皮膚、特に表皮に存在する細胞に作用させることから、皮膚外用剤として調製されることが好ましい。このような医薬組成物には、さらに賦形剤、ｐＨ調整剤、基剤、保存剤など、公知の補助剤が含まれてもよい。医薬組成物や、化粧用組成物に配合される場合、配合される活性成分の用量は、実験を通じて適宜決定することができる。
【００３３】
さらに別の態様では、本発明は、ＯＲＡＩ３タンパク質又はＯｒａｉ３遺伝子の機能抑制剤を投与することを含む美容方法に関する。皮膚においてＯＲＡＩ３タンパク質又はＯｒａｉ３遺伝子の機能抑制剤は、皮膚に直接適用することにより経皮的に投与することができる。
【００３４】
本発明で実施されるスクラッチアッセイは、皮膚細胞が有する創傷治癒能力を調べることができる（非特許文献7）。具体的に、スクラッチアッセイは、培養された皮膚細胞に対し、針やピペットなどで、スクラッチを形成させ、スクラッチを修復する速度を測定する方法である。理論に束縛されることを意図するものではないが、培養状態の細胞にスクラッチを形成させると、スクラッチの境界に存在する細胞は、スクラッチの刺激によりＣａ2+流入が生じ、スクラッチを修復するためのシグナル伝達が生じると考えられる。老化した細胞では、ＯＲＡＩ３の働きにより、かかるシグナルが上手く伝わらない結果、スクラッチの修復に時間がかかると考えられる。
【００３５】
本発明の別の態様では、本発明は、Ｏｒａｉ３の遺伝子発現を指標とした細胞賦活剤のスクリーニング方法に関する。Ｏｒａｉ３の遺伝子発現は、皮膚老化の指標となることから、皮膚培養細胞、特に表皮培養細胞において、Ｏｒａｉ３の遺伝子発現を低減させる物質は、皮膚老化を抑制又は逆行できる細胞賦活効果を有する薬剤として選択することができる。したがって、このような細胞賦活剤のスクリーニング方法は、例えば以下の工程：
培養細胞に候補薬剤を添加する工程、
候補薬剤添加後の培養細胞のＯｒａｉ３の遺伝子発現を直接又は間接的に測定する工程、及び
候補薬剤添加前の培養細胞における遺伝子発現と比較する工程
を含むことができる。候補薬剤を添加する工程の後に、所定期間培養する工程が含まれてもよい。こうして細胞賦活剤として選択された薬剤は、皮膚バリア機能亢進剤又は創傷治癒促進剤でもあり、また皮膚細胞の老化抑制若しくは逆行剤、若返り剤ということもできる。候補薬物添加前の培養細胞における遺伝子発現は、候補薬剤の添加工程前に取得された培養細胞サンプルから計測する工程により測定されてもよいし、使用する培養細胞系で予め遺伝子発現を計測しておいてもよい。遺伝子発現の直接的測定は、ノーザンブロットや、リアルタイムＰＣＲの手法により、転写されたｍＲＮＡを測定することにより行われてもよいし、ウエスタンブロットや、蛍光免疫化学的の手法により、翻訳されたタンパク質量を測定することにより行われてもよい。一方でＯｒａｉ３遺伝子は、刺激により生じた細胞のＣａ2+応答を持続させるように機能することから、Ｃａ2+応答の持続性を表す指標を用いることにより、遺伝子発現を間接的に測定することが可能となる。Ｃａ2+応答の持続性を表す指標としては、Ｃａ2+応答後の細胞内Ｃａ2+濃度が、ピーク値と定常値との中間値を超えてから該中間値に戻るまでの時間（半値幅）、又は所定時間経過後の細胞内Ｃａ2+濃度の値を使用することができる。したがって、遺伝子発現の間接的な測定を用いたスクリーニング方法として、
培養細胞に候補薬剤を添加する工程、
候補薬剤添加後の培養細胞において、刺激の適用前後の細胞内Ｃａ2+濃度を計測する工程、及び
細胞内Ｃａ2+濃度がピーク値と定常値との中間値を超えてから該中間値に戻るまでの時間（半値幅）、又は所定時間経過後の細胞内Ｃａ2+濃度の値を指標とし、候補薬剤添加前の培養細胞における当該値と比較する工程
を含む方法が挙げられる。
これらのスクリーニングにおいて使用される候補薬剤は、任意の化粧品素材ライブラリーや、医薬品化合物ライブラリーなどの物質であってよい。細胞に適用する刺激は、Ｃａ2+応答を惹起できれば任意の刺激であってよく、機械刺激、圧力刺激、例えば水圧刺激、薬剤刺激、電気刺激であってもよい。
【００３６】
本発明の皮膚細胞賦活剤は、皮膚細胞の若返り効果を与えることができる。したがって、皮膚に対し直接適用することもできるし、またin vitroやex vivoの実験において、皮膚培養細胞の培養時に添加することにより、細胞増殖を高めることができる。さらに別の態様では、成人の皮膚から取得した皮膚サンプルから取得された細胞を培養して、自家移植用の培養皮膚シートを製造する際に、かかる本発明の皮膚細胞賦活剤を用いることができる。
【実施例】
【００３７】
実施例１：細胞培養
細胞は、様々な年齢の健常ドナー（女性１４人）の皮膚から調製された表皮由来ケラチノサイトを用い、Ｅｐｉｌｉｆｅ−ＫＧ２培地（クラボウ製）で培養した。これをコラーゲンコートしたガラス底付きの直径３５ｍｍディッシュに播種してカルシウムイメージング実験に用いた。
【００３８】
実施例２：水圧負荷とカルシウムイメージング
ヒト表皮由来ケラチノサイトを５μＭ  ｆｕｒａ−２ＡＭ（カルシウム指示薬）を含む培地中で３７℃４５分間培養後、緩衝液で洗浄し、蛍光倒立顕微鏡にセットした。先端を細くしたガラスキャピラリー内に緩衝液を入れ、マイクロインジェクター（Ｆｅｍｔｏｊｅｔ，  Ｅｐｐｅｎｄｏｒｆ社製）に接続し、キャピラリーの先端（外径３０ミクロン）を単一細胞の真上に斜め約４５度の角度に水流が噴出されるようセットし、１００ヘクトパスカルの圧力を１秒間吹きかけることにより水圧を１つの細胞に適用した。水圧の適用前後の細胞において、Ｆｕｒａ２蛍光画像（Ｆ３４０，  Ｆ３８０）を２秒おきにＯＲＣＡ−Ｒ２  ＣＣＤカメラ（浜松ホトニクス製）で撮影した。蛍光画像の代表例を図１Ａに示した。画像解析ソフト（アクアコスモス、浜松ホトニクス製）を用いて、水圧を受けた１個の細胞の細胞質部分のＦｕｒａ２の蛍光強度比（Ｆ３４０／Ｆ３８０）を計算し、代表例として、Ｂ：２４歳、Ｃ：６３歳から取得した細胞における水圧負荷後のＣａ2+濃度の変化をグラフにあらわした（図１ＢおよびＣ）。水圧刺激により誘導されたＣａ2+応答のグラフから、細胞内Ｃａ2+濃度がピーク値と定常値との中間値を超えてから該中間値に戻るまでの時間（半値幅）、及び２分経過後の細胞内Ｃａ2+濃度の値を算出した。図１Ｄは、半値幅とドナー年齢との相関を示すグラフであり（N=11、P<0.05、ピアソンの積率相関係数（R）＝０．８５４）、加齢により半値幅が増加することが示された。これにより、老化にともない刺激後のＣａ2+応答において、Ｃａ2+流入後の戻りが遅くなることが示された。
【００３９】
実施例３：ＲＴ−ＰＣＲ
ＥＺ１  ＲＮＡ  ｃｅｌｌ  ｍｉｎｉ  ｋｉｔ  （Ｑｉａｇｅｎ製）を用いて細胞からトータルＲＮＡを抽出し、逆転写酵素を用いてＲＮＡからｃＤＮＡを合成した。ｍＲＮＡの定量は、ＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒ  ４８０とユニバーサルプローブ（ロシュ・ダイアグノスティクス製）を用いたリアルタイム定量ＰＣＲにより行った。以下の表に記載のプライマーとユニバーサルプローブを使用した。
【表１】
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【００４０】
使用した細胞の提供者の年齢と、Ｏｒａｉ３のｍＲＮＡレベルとをグラフにプロットして示した（図２Ａ）。さらに、実施例２で測定した各細胞における水圧適用刺激後の半値幅と、Ｏｒａｉ３のｍＲＮＡレベルとをグラフにプロットして示した（図２Ｂ）。加齢に伴い、Ｏｒａｉ３の発現が増えることが相関性をもって示された（Ｎ＝１４、Ｐ＜０．０５）。さらに水圧刺激により誘導されたＣａ2+応答後に細胞内Ｃａ2+濃度がピーク値と定常値との中間値を超えてから該中間値に戻るまでの時間（半値幅）が、Ｏｒａｉ３の遺伝子発現と相関することが示された（Ｎ＝１４、Ｐ＜０．０５）。
【００４１】
実施例４：ｓｉＲＮＡによるＯａｒｉ３遺伝子のノックダウンによる細胞賦活効果の確認
ｓｉＲＮＡによるＯｒａｉ３遺伝子のノックダウン
ｓｉＲＮＡによるノックダウン実験には、増殖期（５０−８０％コンフルエント）の細胞にｓｉＲＮＡをトランスフェクション試薬（Lipofectamine RNAiMAX、Life Technologies社製）と混合して培地中に添加し、終濃度が５ｎＭになるようにして１２−２４時間培養した。用いたＯｒａｉ３−ｓｉＲＮＡの配列は、以下の表１に示す。配列番号４〜７のｓｉＲＮＡは、Dhermacon社製であり、配列番号８〜１０のｓｉＲＮＡは、Ambion社（現在はLife Technologies社）製である。ｓｉＲＮＡのコントロール実験には、非特異的配列のｓｉＲＮＡ（negative control siRNA、Dhermacon製（カタログ番号：D-001810-10-05）またはＡｍｂｉｏｎ製（カタログ番号４３９０８４３））を用いた。
【表２】
0006366415.tif 000003
【００４２】
Ｏｒａｉ３のｓｉＲＮＡを導入し、２４時間後にＲＮＡ抽出し、実施例３のＲＴ−ＰＣＲの手法により、Ｏｒａｉ３のｍＲＮＡ量を定量した。Ｏｒａｉ３−ｓｉＲＮＡにより、陰性対照−ｓｉＲＮＡに比べてＯｒａｉ３のｍＲＮＡ量が約１０％にまで減少した（図３Ａ）。
【００４３】
免疫沈降とウエスタンブロット
ｓｉＲＮＡを導入して２日後に、下記の手法により、細胞からタンパク質を抽出し、Ｏｒａｉ３抗体で免疫沈降後、ウエスタンブロットを行った。ｓｉＲＮＡを導入して２日後に細胞を抽出溶液（１５０ｍＭ  ＮａＣｌ，５０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，ｐＨ７．５，  １％Ｎｏｎｉｄｅｔ  Ｐ−４０，０．３ｍＭ  ＰＭＳＦ，１μｇ／ｍｌ  ｐｅｐｓｔａｔｉｎ  Ａ，１０μｇ／ｍｌ  ｌｅｕｐｅｐｔｉｎ）中で破砕し、その遠心上清を回収してタンパク定量し、３００μｇ分の総タンパク質を１回の反応に用いた。これをＯｒａｉ３抗体（ＳＡＢ３５００１２１，  Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ製）およびプロテインＧビーズと反応させ、免疫沈降したタンパク質（ビーズに結合したタンパク質）をＳＤＳ−ＰＡＧＥ（１０％ゲル）で分離し、ＰＶＤＦ膜に転写した。これを別のＯｒａｉ３抗体（ＨＰＡ０１５０２２，  Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ製）と反応させ、発光法により、バンドをＸ線フィルムで検出した。これにより３１ｋｄのＯｒａｉ３のバンドを検出した。Ｏｒａｉ３−ｓｉＲＮＡにより、陰性対照に比べてＯｒａｉ３タンパク質量が約５０％にまで減少したことが示された（図３Ｂ）。
【００４４】
水圧負荷とカルシウムイメージング
高齢者（６３歳）から取得したケラチノサイトに、上記のＯｒａｉ３のｓｉＲＮＡ又は対照ｓｉＲＮＡを導入した細胞において、実施例２の水圧適用とカルシウムイメージングを行い、水圧刺激により誘導されたＣａ2+応答のグラフを取得した（図４Ａ）。細胞内Ｃａ2+濃度がピーク値と定常値との中間値を超えてから該中間値に戻るまでの時間（半値幅）を、６回の平均で示した（図４Ｂ）。Ｏｒａｉ３の遺伝子ノックダウンにより、Ｃａ2+応答の戻りが早くなり、若い被験者から取得した細胞におけるＣａ2+応答のグラフに類似した（図１Ｂ）。また、図１Ｄにより、加齢と相関することが示された半値幅も低下することが示された。これにより、Ｏｒａｉ３の機能を抑制することにより、細胞の若返りの効果がみられた。
【００４５】
実施例５：Ｏｒａｉ３の皮膚における局在と、分化誘導によるＯｒａｉ３の増加の確認
免疫組織染色
健常ヒト皮膚の凍結切片を作成し、１００％メタノールで固定後、Ｏｒａｉ３抗体（ＡＣＣ−０６５，  Ａｌｏｍｏｎｅ  Ｌａｂｓ社製）と反応させ、さらにＡｌｅｘａ５９４−二次抗体と反応させたのち、蛍光顕微鏡とＣＣＤカメラで画像撮影をした（図５）。図５Ａは、Ｏｒａｉ３抗体を使用し、図５ＢはＯｒａｉ３抗体を添加していない陰性対照である。Ｏｒａｉ３が、表皮に局在し、特に分化が進むにつれて発現が増加することが示された。
【００４６】
培養細胞の分化誘導
培養ケラチノサイトの密度が１００％コンフルエントになったときに、培地中のカルシウム濃度を１．８ｍＭ  にすることによって分化を誘導し、４０−４８時間培養した。次に、６ウエルプレートに細胞を播種し、細胞の増殖期または分化期（分化誘導から２日後）に細胞を回収し、実施例３の手法と同様にしてＯｒａｉ３の発現量を調べた（図６）。表皮細胞の分化に伴いＯｒａｉ３の発現が増加することが示された。
【００４７】
実施例６：スクラッチアッセイ
培養ケラチノサイトを６ウエルプレートに播種し、実施例４にしたがって、Ｏｒａｉ３のｓｉＲＮＡ又は対照ｓｉＲＮＡをトランスフェクションし、Ｏｒａｉ３の遺伝子をノックダウンした。ノックダウンされた細胞をさらに培養を続け１００％コンフルエントになったらピペットチップ（Ｐ１０００）で各ウエルの中央を直線状にひっかいて細胞をはがし、１本のスクラッチ（傷）をつくった。培地を交換して培養を続け、数時間おきにスクラッチ部分の細胞の位相差像の撮影を行った。スクラッチ直後と、７時間後の写真を図７Ａに示した。この画像からスクラッチした部分に細胞が移動・増殖して傷を修復した面積をＩｍａｇｅＪ画像解析ソフトにより定量し、図７Ｂに示した。Ｏｒａｉ３の機能を抑制することにより、スクラッチアッセイにおいて細胞増殖が促進された。このことは、Ｏｒａｉ３の機能抑制が、創傷治癒効果又は細胞賦活効果を有することを示す。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【配列表】
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