(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
（１Ｓ，２Ｓ）−ノルプソイドエフェドリンの製造方法において、
第１の反応段階で、ベンズアルデヒドと、式（１）
【化１】
0006427176.tif 000005
のアセチル供与体（ここで、Ｒ＝ＨまたはＣＯＯＨを表わす）とを、アセトバクター・パストゥリアヌス（Ａｃｅｔｏｂａｃｔｅｒ  ｐａｓｔｅｕｒｉａｎｕｓ）からの（Ｓ）−選択的リアーゼＡｐＰＤＣ−Ｅ４６９Ｇを用いて反応させて、式（２）および（３）
【化２】
0006427176.tif 000006
のエナンチオマー混合物にし、
第２の段階で、式（３）の化合物と、アミン供与体とを、（Ｓ）−選択的トランスアミナーゼを用いて反応させて、（１Ｓ，２Ｓ）−ノルプソイドエフェドリンにする
ことを特徴とする、
製造方法。
【請求項２】
補因子としてマグネシウム塩並びにチアミン二リン酸を使用する
ことを特徴とする、
請求項１に記載の方法。
【請求項３】
段階１を、５から９までのｐＨ値で実施する
ことを特徴とする、
請求項１または２に記載の方法。
【請求項４】
第１の反応段階の生成物としての式（２）
【化３】
0006427176.tif 000007
の化合物を、ベンズアルデヒドリアーゼを用いて反応させて、ベンズアルデヒドおよびアセトアルデヒドにする
ことを特徴とする、
請求項１〜３のいずれか一つに記載の方法。
【請求項５】
アセチル供与体を過剰に添加する
ことを特徴とする、
請求項１〜４のいずれか一つに記載の方法。
【請求項６】
式（３）
【化４】
0006427176.tif 000008
の中間体を分離する
ことを特徴とする、
請求項１〜５のいずれか一つに記載の方法。
【請求項７】
第２の段階で、式（３）
【化５】
0006427176.tif 000009
の化合物を、クロモバクテリウム、アルカリゲンス・デニトリフィカンス、アルトロバクター・シトレウス、バチルス・メガテリウム、シュードモナス・フルオレッセンス、ビブリオ・フルリアリスまたはカウロバクター・クレセントゥスからの（Ｓ）−選択的トランスアミナーゼを用いて反応させる
ことを特徴とする、
請求項１〜６のいずれか一つに記載の方法。
【請求項８】
（Ｓ）−選択的トランスアミナーゼとしてＣＶ２０２５を使用する
ことを特徴とする、
請求項７に記載の方法。
【請求項９】
第２の段階で、アミン供与体として、メチルベンジルアミン、ベンジルアミン、イソプロピルアミン、Ｌ−アラニン、（±）−１−メチル−３フェニルプロピルアミンまたは（±）−１−アミノインダンの群からの成分を使用する
ことを特徴とする、
請求項１〜８のいずれか一つに記載の方法。
【請求項１０】
段階２で、補因子としてピリドキサール−５’−リン酸を使用する
ことを特徴とする、
請求項１〜９のいずれか一つに記載の方法。
【請求項１１】
段階２を、６から１１までのｐＨ値で実施する
ことを特徴とする、
請求項１〜１０のいずれか一つに記載の方法。
【請求項１２】
段階１および／または２において、精製されかつ凍結乾燥された酵素を使用する
ことを特徴とする、
請求項１〜１１のいずれか一つに記載の方法。
【請求項１３】
段階１および／または２をｉｎ  ｖｉｖｏで行う
ことを特徴とする、
請求項１〜１２のいずれか一つに記載の方法。
【請求項１４】
産生株としてＥ．ｃｏｌｉを使用する
ことを特徴とする、
請求項１３に記載の方法。
【請求項１５】
リアーゼおよび／またはトランスアミナーゼをコードする遺伝子が、ベクター中にライゲートされている
ことを特徴とする、
請求項１３または１４に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、カチンの製造方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
カチン（（１Ｓ，２Ｓ）−ノルプソイドエフェドリン）は、チャット灌木（Ｋａｔｈｓｔｒａｕｃｈｅｓ）の葉から得ることができ、食欲減退剤としてしばしば使用される。カチンは、自律神経系を刺激する交感神経様の機能に基づき、心血管作用剤（Ｈｅｒｚｋｒｅｉｓｌａｕｆｍｉｔｔｅｌ）として用いられる。
【０００３】
合成製造に関しては、従来技術により、種々の方法が公知である。
【０００４】
刊行物、Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｏｒｇａｎｉｃ  Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  ２０１２、５４５４〜５４６０ページ中のＨｙｅｏｎ−Ｋｙｕ  Ｌｅｅ他による「Ｓｔｅｒｅｏｓｅｌｅｃｔｉｖｅ  Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ  ｏｆ  Ｎｏｒｅｐｈｅｄｒｉｎｅ  ａｎｄ  Ｎｏｒｐｓｅｕｄｏｅｐｈｅｄｒｉｎｅ  ｂｙ  Ｕｓｉｎｇ  Ａｓｙｍｍｅｔｒｉｃ  Ｔｒａｎｓｆｅｒ  Ｈｙｄｒｏｇｅｎａｔｉｏｎ  Ａｃｃｏｍｐａｎｉｅｄ  ｂｙ  Ｄｙｎａｍｉｃ  Ｋｉｎｅｔｉｃ  Ｒｅｓｏｌｕｔｉｏｎ」（非特許文献１）では、７段階合成が公知である。
【０００５】
刊行物、Ｊ．  Ｏｒｇ．  Ｃｈｅｍ．  １９９６、６１、６１８３〜６１８８からのＧｗｏｎ−ＩＩ  Ｈｗａｎｇ  ｅｔ他による「Ｅｆｆｉｃｉｅｎｔ  Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ  ｏｆ  Ｅｐｈｅｄｒａ  Ａｌｋａｌｏｉｄ  Ａｎａｌｏｇｏｕｓ  Ｕｓｉｎｇ  ａｎ  Ｅｎａｎｔｉｏｍｅｒｉｃａｌｌｙ  Ｐｕｒｅ  Ｎ−［（Ｒ）−（＋）−α−Ｍｅｔｈｙｌｂｅｎｚｙｌ］ａｚｉｒｉｄｉｎｅ−２−ｃａｒｂｏｘａｌｄｅｈｙｄｅ」（非特許文献２）は、エナンチオマーとして純粋な（ｅｎａｎｔｉｏｍｅｒｅｎｒｅｉｎｅｍ）基質に由来し、非常に高価である、エナンチオマー過剰率の高いカチンの製造方法を明らかにしている。
【０００６】
例えば刊行物、マサアキ・ニシムラ他による「Ａｓｙｍｅｔｒｉｃ  Ｎ１  Ｕｎｉｔ  Ｔｒａｎｓｆｅｒ  ｔｏ  Ｏｌｅｆｉｎｓ  ｗｉｔｈ  ａ  Ｃｈｉｒａｌ  Ｎｉｔｒｉｄｏｍａｎｇａｎｅｓｅ  Ｃｏｍｐｌｅｘ：  Ｎｏｖｅｌ  Ｓｔｅｒｅｏｓｅｌｅｃｔｉｖｅ  Ｐａｔｈｗａｙｓ  ｔｏ  Ａｚｉｒｉｄｉｎｅｓ  ｏｒ  Ｏｘａｚｏｌｉｎｅｓ」（非特許文献３）に記載されるような他の方法は、カチンを副生物として形成する方法を明らかにしている。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００７】
【非特許文献１】Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｏｒｇａｎｉｃ  Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  ２０１２、５４５４〜５４６０ページ中のＨｙｅｏｎ−Ｋｙｕ  Ｌｅｅ他による「Ｓｔｅｒｅｏｓｅｌｅｃｔｉｖｅ  Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ  ｏｆ  Ｎｏｒｅｐｈｅｄｒｉｎｅ  ａｎｄ  Ｎｏｒｐｓｅｕｄｏｅｐｈｅｄｒｉｎｅ  ｂｙ  Ｕｓｉｎｇ  Ａｓｙｍｍｅｔｒｉｃ  Ｔｒａｎｓｆｅｒ  Ｈｙｄｒｏｇｅｎａｔｉｏｎ  Ａｃｃｏｍｐａｎｉｅｄ  ｂｙ  Ｄｙｎａｍｉｃ  Ｋｉｎｅｔｉｃ  Ｒｅｓｏｌｕｔｉｏｎ」
【非特許文献２】Ｊ．  Ｏｒｇ．  Ｃｈｅｍ．  １９９６、６１、６１８３〜６１８８からのＧｗｏｎ−ＩＩ  Ｈｗａｎｇ  ｅｔ他による「Ｅｆｆｉｃｉｅｎｔ  Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ  ｏｆ  Ｅｐｈｅｄｒａ  Ａｌｋａｌｏｉｄ  Ａｎａｌｏｇｏｕｓ  Ｕｓｉｎｇ  ａｎ  Ｅｎａｎｔｉｏｍｅｒｉｃａｌｌｙ  Ｐｕｒｅ  Ｎ−［（Ｒ）−（＋）−α−Ｍｅｔｈｙｌｂｅｎｚｙｌ］ａｚｉｒｉｄｉｎｅ−２−ｃａｒｂｏｘａｌｄｅｈｙｄｅ」
【非特許文献３】マサアキ・ニシムラ他による「Ａｓｙｍｅｔｒｉｃ  Ｎ１  Ｕｎｉｔ  Ｔｒａｎｓｆｅｒ  ｔｏ  Ｏｌｅｆｉｎｓ  ｗｉｔｈ  ａ  Ｃｈｉｒａｌ  Ｎｉｔｒｉｄｏｍａｎｇａｎｅｓｅ  Ｃｏｍｐｌｅｘ：  Ｎｏｖｅｌ  Ｓｔｅｒｅｏｓｅｌｅｃｔｉｖｅ  Ｐａｔｈｗａｙｓ  ｔｏ  Ａｚｉｒｉｄｉｎｅｓ  ｏｒ  Ｏｘａｚｏｌｉｎｅｓ」
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
従って、本発明の課題は、従来技術の欠点を克服し、少ない反応段階で行い、安価であり、高いエナンチオマー純度およびジアステレオマー純度並びに高い収率をもたらし、かつできるだけ少ない後処理段階を必要とする、カチンの簡単な製造方法を提供することである。この方法は、より大きな規模へ容易に移行されうるべきである。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
この課題は、本発明により、請求項１の上位概念から出発して、請求項１の特徴部に記載された特徴によって解決される。
【００１０】
本発明方法を用いて、＞９９％のエナンチオマー純度および７０％のジアステレオマー純度を有するカチンを、９７％までの有利な形態で製造することができる。これは９０％の変換率を達成しうる。その際、市販で得られる原料を使用することができる。この方法は、数少ない後処理段階で済み、容易にスケールアップでき、かつワンポット反応として実施することができる。
【００１１】
本発明の有利な更なる形態は、従属請求項に記載されている。
【００１２】
次に、本発明を、その一般式で記載する。
【００１３】
本発明の意味における（Ｓ）−選択的酵素とは、（Ｓ）−配置生成物をもたらす酵素である。
【００１４】
第１の反応段階で、ベンズアルデヒドと、式（１）
【００１５】
【化１】
0006427176.tif 000002
のアセチル供与体とを、（Ｓ）−選択的リアーゼを用いて、ｉｎ  ｖｉｔｒｏで反応させて、式（２）および（３）
【００１６】
【化２】
0006427176.tif 000003
の化合物のエナンチオマー混合物にするが、式中、略語ＰＡＣはフェニルアセチルカルビノールを表わす。
【００１７】
ここで、式（１）のアセチル供与体として、Ｒ＝Ｈであるアセトアルデヒド、またはＲ＝ＣＯＯＨであるピルビン酸が挙げられる。
【００１８】
この反応経路を、図１に例示する。
【００１９】
リアーゼとして、例えば、アセトバクター（Ａｃｅｔｏｂａｃｔｅｒ）、特にアセトバクター・パストゥリアヌス（Ａｃｅｔｏｂａｃｔｅｒ  ｐａｓｔｅｕｒｉａｎｕｓ）からの（Ｓ）−選択的リアーゼ、特に変種ＡｐＰＤＣ−Ｅ４６９Ｇが挙げられる。
【００２０】
好ましくは、精製されかつ凍結乾燥された酵素を使用する。凍結乾燥は、酵素が安定であり、かつ高い酵素濃度を使用できるという利点があり、その上、精製酵素は、明らかにより高い光学純度、すなわち生成物のより高いエナンチオマーおよびジアステレオマー過剰率をもたらす。
【００２１】
更に、変換率を上げる、（Ｓ）−選択的リアーゼのための補因子を使用することができる。
【００２２】
例えば、補因子として、例えば硫酸マグネシウムまたは塩化マグネシウムとしてのマグネシウムイオンを、チアミン二リン酸と共に使用することができる。
【００２３】
補因子として硫酸マグネシウムおよびチアミン二リン酸を使用する場合に、硫酸マグネシウムに関しては１〜５ｍＭ、好ましくは２．５ｍＭ、およびチアミン二リン酸に関しては５〜３００μＭ、好ましくは１００μＭの濃度範囲が有利である。
【００２４】
反応は、５から８まで、好ましくは６から７．５までのｐＨ値で実施することができる。
【００２５】
このために、例えばリン酸カリウム−緩衝剤を使用することができる。しかしながら、ＨＥＰＥＳ、ＭＯＰＳ、ＴＥＡまたはＴＲＩＳ−ＨＣｌのような緩衝剤も考慮に値する。
【００２６】
有利な温度範囲は室温であるが、反応を２０℃から３０℃の間、特に２５℃で良好に実施することができる。
【００２７】
反応を、好ましくは大気圧で実施する。
【００２８】
代替的に、酵素反応をｉｎ  ｖｉｖｏで行うことができる。触媒としての酵素を低コストに製造することができるという利点がある。
【００２９】
このために、産生生物（Ｐｒｏｄｕｋｔｉｏｎｓｏｒｇａｎｉｓｍｅｎ）としてＥ．ｃｏｌｉ細菌を使用することができる。
【００３０】
その際に、第１の段階でリアーゼをコードする遺伝子を、ベクター中にライゲートする（ｌｉｇｉｅｒｔ）ことができる。
【００３１】
好ましくは、Ｅ．ｃｏｌｉ株は、組換型であり、かつ（Ｓ）−選択的リアーゼのための遺伝子を保有するプラスミドを含有する。
【００３２】
好ましくは、プラスミドは、上記リアーゼのための遺伝子を含んでいてよい。
【００３３】
プラスミドとして、例えば、相応するリアーゼ遺伝子を含むｐＥＴ２２ｂまたはｐＫＫ２３３基準体（Ｇｒｕｎｄｋｏｅｒｐｅｒ）を使用することができる。
【００３４】
産生生物は、式（２）および（３）の所望の生成物を、水溶液中へ分泌する。
【００３５】
本発明方法の有利な実施形態において、式（２）
【００３６】
【化３】
0006427176.tif 000004
の不所望な化合物を、ベンズアルデヒドリアーゼを用いて反応させて、ベンズアルデヒドおよびアセトアルデヒドにする。
【００３７】
この反応式を、図２に示す。
【００３８】
これには、式（２）の不所望な副生物を分解し、かつ生じるベンズアルデヒドおよびアセトアルデヒドを過程へと戻し、かつ式（３）の所望の生成物の収率を高めるという利点がある。式３の（Ｓ）−ＰＡＣのエナンチオマー過剰率は、合計＞９７％まで上昇しうる。この段階での使用したＰＡＣの総量に対する収率は、９５％である。
【００３９】
式（２）の化合物の反応の際に、アセチル供与体を、反応過程で、過剰に添加することは有利であり、そうすると、式（３）の所望の中間化合物への更なる反応のために、十分なアセチル供与体を使用することができる。このことは、特に、例えばアセトアルデヒドのような揮発性のアセチル供与体の場合に有利である。例えば、ベンジルアルデヒドに対しては１０倍過剰のアセチル供与体を使用することができる。
【００４０】
中間体は、好ましくは分離される。このために、シリカゲルを用いたカラムクロマトグラフィーを、溶離液（Ｔｒｅｎｎｆｌｕｅｓｓｉｇｋｅｉｔ）として石油エーテル：酢酸エチル（９０：１０）を適用して、使用することができる。
【００４１】
第２の反応段階で、こうして得られた式（３）の化合物と、アミン供与体とを、（Ｓ）−選択的トランスアミナーゼを用いて反応させて、最終生成物カチン（（１Ｓ，２Ｓ）−ノルプソイドエフェドリン）にする。この反応を図３に図示する。
【００４２】
化学的還元的アミノ化である第２の反応段階のために、基質を反応させかつ（Ｓ）−選択的である、トランスアミナーゼを使用することができる。トランスアミナーゼは、クロモバクテリウム（Ｃｈｒｏｍｏｂａｋｔｅｒｉｕｍ）、例えばクロモバクテリウム・ビオラセウム（Ｃｈｒｏｍｏｂａｋｔｅｒｉｕｍ  ｖｉｏｌａｃａｅｕｍ）、好ましくはＣＶ２０２５からのものであってよい。更に、アルカリゲンス・デニトリフィカンス（Ａｌｃａｌｉｇｅｎｓ  ｄｅｎｉｔｒｉｆｉｃａｎｓ）、アルスロバクター・シトレウス（Ａｒｔｈｒｏｂａｃｔｅｒ  ｃｉｔｒｅｕｓ）、バチルス・メガテリウム（Ｂａｃｉｌｌｕｓ  ｍｅｇａｔｅｒｉｕｍ）、  シュードモナス・フルオレッセンス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ  ｆｌｕｏｒｅｓｚｅｎｓ）、ビブリオ・フルリアリス（Ｖｉｂｒｉｏ  ｆｌｕｒｉａｌｉｓ）またはカウロバクター・クレセントゥス（Ｃａｕｌｏｂａｃｔｅｒ  ｃｒｅｓｃｅｎｔｕｓ）からのトランスアミナーゼを使用することができる。
【００４３】
好ましくは、精製されかつ凍結乾燥された酵素を使用する。凍結乾燥は、酵素が安定であり、かつ高い酵素濃度を使用できるという利点があり、その上、精製酵素は、明らかにより高い光学純度、すなわち生成物のより高いエナンチオマーおよびジアステレオマー過剰率をもたらす。
【００４４】
アミン供与体として、例えば（Ｓ）−アルファ−メチルベンジルアミン、ベンジルアミン、イソプロピルアミン、Ｌ−アラニン、（±）−１−メチル−３−フェニルプロピルアミン、（±）−１−アミノインダンを使用することができる。
【００４５】
補因子として、ピリドキサール−５’−リン酸を使用することができる。
【００４６】
好ましくは、ピリドキサール−５’−リン酸の濃度は、１００〜２００μＭの間である。
【００４７】
反応を、水性媒体中で、６から１１までのｐＨ値、好ましくはｐＨ７．５から８．５までのｐＨ値で実施することができる。
【００４８】
このために、ＨＥＰＥＳ、リン酸カリウム、ＭＯＰＳ、ＴＥＡまたはＴＲＩＳ−ＨＣｌのような適当な緩衝剤を使用することができる。
【００４９】
有利な温度範囲は、２５℃であるが、反応を２０℃〜３０℃の範囲で良好に実施することができる。
【００５０】
好ましくは、反応を大気圧で実施する。
【００５１】
代替的に、（Ｓ）−選択的トランスアミナーゼを用いる酵素反応をｉｎ  ｖｉｖｏで行うことができる。
【００５２】
このために、産生生物としてＥ．ｃｏｌｉ細菌を使用することができる。
【００５３】
その際に、トランスアミナーゼをコードする遺伝子を、ベクター中にライゲートすることができる。
【００５４】
好ましくは、Ｅ．ｃｏｌｉ株は、組換型であり、かつ（Ｓ）−選択的トランスアミナーゼのための遺伝子を保有するプラスミドを含有する。
【００５５】
好ましくは、プラスミドは、上記トランスアミナーゼのための遺伝子を含んでいてよい。
【００５６】
プラスミドとして、例えば、相応するトランスアミナーゼ遺伝子を含むｐＥＴ２９ａまたはｐＫＫ２３３基準体を使用することができる。
【００５７】
産生生物は、式（３）の所望の生成物を、水溶液中へ分泌する。
【００５８】
本発明方法において、ｉｎ  ｖｉｖｏでの反応は、第１もしくは第２の反応段階のためだけ、または、反応段階１および２双方のためのどちらかに実施することができる。残りの条件は、それぞれの段階に関して、ｉｎ  ｖｉｔｒｏでの酵素反応と同様に選択することができる。
【図面の簡単な説明】
【００５９】
【図１】図１は、リアーゼ−反応の反応式を示す。
【図２】図２は、ベンズアルデヒドリアーゼを用いて反応させて、ベンズアルデヒドおよびアセトアルデヒドにする反応式を示す。
【図３】図３は、（Ｓ）−選択的トランスアミナーゼを用いて反応させて、最終生成物カチン（（１Ｓ，２Ｓ）−ノルプソイドエフェドリン）を生成する反応式を示す。
【図４】図４は、図１および３からの段階の要約を示す。
【発明を実施するための形態】
【００６０】
図４は、図１および３からの段階の要約を示す。
【００６１】
例：
２段階合成を、第１の段階における生物アセトバクター・パストゥリアヌスからの（Ｓ）−選択的リアーゼＡｐＰＤＣ−Ｅ４６９Ｇと、第２の段階における生物クロモバクテリウム・ビオラセウムからの（Ｓ）−選択的トランスアミナーゼＣＶ２０２５との組み合わせで首尾よく実施した。第１の段階で、アセトアルデヒドを直接ベンズアルデヒドと結合させるか、もしくはピルビン酸をアセトアルデヒドへ脱炭酸後にベンズアルデヒドと結合させて、約７０％のエナンチオマー純度を有する（Ｓ）−ＰＡＣにする。後処理後の収率は９５％、ｅｅは約７０％であった。第２の反応段階での変換率は、９５％であった。まとめると、双方の反応段階を通して、ｅｅ＞９９％およびｄｅ約７０％の光学純度を有するカチンへの全変換率は約９０％を達成することができた。
【００６２】
反応条件：
段階１（リアーゼ−反応、図１）
ベンズアルデヒド４０ｍＭ、ピルビン酸４００ｍＭ、硫酸マグネシウム２．５ｍＭ、チアミン二リン酸１００μｍ、ＡｐＰＤＣ−Ｅ４６９Ｇ（精製凍結乾燥酵素）０．５ｍｇ／ｍＬ、リン酸カリウム−緩衝剤１００ｍＭ、２５℃、反応時間４８ｈ。引き続き、生成物（（Ｓ）−ＰＡＣ）の抽出およびカラムクロマトグラフィー精製を行った。収率は９５％であった。代替的に、反応を、ピルビン酸の代わりにアセトアルデヒドを用いて、および／または精製酵素の代わりに酵素ＡｐＰＤＣ−Ｅ４６９Ｇが過剰発現されて存在する全細胞を用いて、実施することもできる。
【００６３】
段階２（トランスアミナーゼ反応、図３）
（Ｓ）−ＰＡＣ１０ｍＭ、（Ｓ）−アルファ−メチルベンジルアミン１０ｍＭ、精製酵素１ｍｇ／ｍｌ、２５℃、ピリドキサール−５’−リン酸０．１ｍＭを有するＨＥＰＥＳ１００ｍＭ、ｐＨ７．５、反応時間２４ｈ。変換率は９５％であった。反応を、代替的に、（Ｓ）−選択的トランスアミナーゼが過剰発現されて存在する凍結乾燥された全細胞を用いて、触媒作用することもできる。
【００６４】
リアーゼ反応後の付加的段階により、中間体（（Ｓ）−ＰＡＣ）のエナンチオマー純度を任意に高めることができる。精製された（Ｓ）−ＰＡＣ（ｅｅ約７０％）に、ピルビン酸、ＡｐＰＤＣ−Ｅ４６９Ｇおよび生物シュードモナス・フルオレッセンスからのベンズアルデヒドリアーゼを添加する。ベンズアルデヒドリアーゼは、ベンズアルデヒドおよびアセトアルデヒドへの（Ｒ）−ＰＡＣの選択的分割反応を触媒作用する。生じるベンズアルデヒドは、反応段階１に相応して基質として、酵素ＡｐＰＤＣ−Ｅ４６９Ｇにより逐次触媒作用される、ベンズアルデヒドおよびピルビン酸から（Ｓ）−ＰＡＣへの炭素連結反応（Ｃａｒｂｏｌｉｇａｔｉｏｎｓｒｅａｋｔｉｏｎ）のために、使用される。ベンズアルデヒドリアーゼもＡｐＰＤＣ−Ｅ４６９Ｇも反応バッチ中に存在している場合、生成物のｅｅはｅｅ＞９７％（Ｓ）ＰＡＣまで高められうる。この段階での使用したＰＡＣの総量に対する収率は、＞９１％である。
【００６５】
図２における（Ｓ）−ＰＡＣのエナンチオマー純度の上昇：
ａ）（Ｓ）−ＰＡＣ（ｅｅ約７０％）１１．２ｍＭ、ピルビン酸２００ｍＭ、ＡｐＰＤＣ−Ｅ４６９Ｇ２．１ｍｇ／ｍＬ、ＢＡＬ（ベンズアルデヒドリアーゼ）２ｍｇ／ｍＬ、硫酸マグネシウム２．５ｍＭ、チアミン二リン酸１００μＭ、リン酸カリウム−緩衝剤１００μＭ、２５℃、反応時間４８ｈ。収率：９１．６％、ｅｅ（（Ｓ）−ＰＡＣ）＝９７．４％。
【００６６】
ｂ）（Ｓ）−ＰＡＣ（ｅｅ約７０％）２０．７ｍＭ、ピルビン酸３００ｍＭ、ＡｐＰＤＣ−Ｅ４６９Ｇ２．１ｍｇ／ｍＬ、ＢＡＬ（ベンズアルデヒドリアーゼ）２ｍｇ／ｍＬ、硫酸マグネシウム２．５ｍＭ、チアミン二リン酸１００μＭ、リン酸カリウム−緩衝剤１００μＭ、２５℃、反応時間４８ｈ。収率：９３．７％、ｅｅ（（Ｓ）−ＰＡＣ）＝９６．７％。
【図１】
0006427176.tif 000010
【図２】
0006427176.tif 000011
【図３】
0006427176.tif 000012
【図４】
0006427176.tif 000013