(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
隔膜形成開始因子タンパク質が不活性化されたことを特徴とするＬ−リジン生産能が向上したコリネ型微生物であって、前記隔膜形成開始因子タンパク質は、糸状温度感受性Ｂ（ＦｔｓＢ）タンパク質である、微生物。
【請求項２】
前記隔膜形成開始因子タンパク質は、配列番号１のアミノ酸配列を有することを特徴とする請求項１に記載の微生物。
【請求項３】
前記コリネ型微生物はコリネバクテリウムグルタミクム（Ｃ．glutamicum）であることを特徴とする請求項１に記載の微生物。
【請求項４】
請求項１に記載の微生物を培養し、培養物内にＬ−リジンを生産する段階と、
培養物からＬ−リジンを回収する段階とを含むことを特徴とするＬ−リジンを生産する方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、Ｌ−リジンの生産能が向上したコリネバクテリウム属微生物、及びそれを利用したＬ−リジンを生産する方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
コリネバクテリウム（Corynebacterium）属微生物は、Ｌ−アミノ酸生産に多用されて射るグラム陽性の微生物である。Ｌ−アミノ酸、特に、Ｌ−リジンは、動物飼料、ヒト医薬品及び化粧品の産業に使用されており、コリネバクテリウム菌株を利用した発酵によって生成されている。
【０００３】
コリネバクテリウム菌株を利用したＬ−アミノ酸の製造方法を改善するために、多くの試みが行われている。そのうち、組み換えＤＮＡ技術を利用して、特定遺伝子を破壊させたり減衰発現させたりすることによってＬ−アミノ酸を生産するコリネバクテリウム菌株を改良する研究があった。また、それぞれのＬ−アミノ酸生合成に係わる遺伝子を増幅させ、Ｌ−アミノ酸生成に及ぶ効果を研究し、Ｌ−アミノ酸生産コリネバクテリウム菌株を改良する研究も多く行われてきた。また、他のバクテリア由来の外来遺伝子を導入する場合もある。
【０００４】
しかし、前記従来方法によっても、依然としてＬ−リジンの生産能が向上した菌株は、変わりなく要求されている。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
本発明の一様相は、Ｌ−リジン生産能が向上したコリネ型微生物を提供するものである。
【０００６】
本発明の他の様相は、前記微生物を利用したＬ−リジンを生産する方法を提供するものである。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明の一様相は、隔膜形成開始因子（septum formation initiator）タンパク質が不活性化された、Ｌ−リジン生産能が向上したコリネ型微生物を提供するものである。
【発明の効果】
【０００８】
本発明による隔膜形成開始因子タンパク質をコーディングする遺伝子が不活性化された微生物によれば、前記微生物のＬ−リジン生産能力を向上させることができる。
【０００９】
本発明によるＬ−リジンを生産する方法によれば、Ｌ−リジンを高い生産性で生産することができる。
【発明を実施するための形態】
【００１０】
本明細書において、用語「隔膜形成開始因子（septum formation initiator）」は、コリネ型微生物の細胞分裂過程において形成される細胞内部を区分する膜状構造物、すなわち、隔膜の形成を開始するのに必要な因子を指す。従って、細胞分裂は、前記隔膜形成開始因子の存在下で行われる。隔膜形成開始因子の存在下で、隔膜は、細胞中央近傍の周辺部で陥入され、細胞質を二つに分けることができる。その後、細胞外膜の合成が伴い、細胞分裂が起こる。前記隔膜形成開始因子タンパク質は、表１及び２に表示されたタンパク質のうち一つでもある。
【００１１】
【表１】
0006263641.tif 000002
【００１２】
【表２】
0006263641.tif 000003
【００１３】
隔膜形成開始因子は、糸状温度感受性（Ｆｔｓ：filamentous temperature sensitive）タンパク質を含んでもよい。前記糸状温度感受性タンパク質は、divisiom形成に関与するタンパク質であり、微生物の細胞分裂過程において、必要なものである。糸状温度感受性タンパク質は、ＦｔｓＢ、ＦｔｓＡ、ＦｔｓＺ、ＦｔｓＥＸ、ＦｔｓＫ、ＦｔｓＱ、ＦｔｓＷ、ＦｔｓＩ、またはそれらの組み合わせを含んでもよいが、望ましくは、ＦｔｓＢである。ＦｔｓＢは、配列番号１のアミノ酸配列、またはそれと７０％相同性、望ましくは、８０％相同性、さらに望ましくは、９０％相同性、最も望ましくは、９５％相同性を有するアミノ酸配列を有するものでもある。前記用語「相同性」は、２つのアミノ酸配列間の同一性を示すものであり、点数（score）、同一性（identity）、類似度（similarity）などの媒介変数（parameter）を計算するＢＬＡＳＴ ２．０を利用する、当業者に周知の方法によって決定される。
【００１４】
糸状温度感受性タンパク質をコーディングする遺伝子は、ｆｔｓＡ、ｆｔｓＢ、ｆｔｓＺ、ｆｔｓＥＸ、ｆｔｓＫ、ｆｔｓＱ、ｆｔｓＷ、ｆｔｓＩ、またはそれらの組み合わせをコーディングする核酸でもある。
【００１５】
前記ｆｔｓＢ遺伝子は、コリネ型微生物の細胞分裂に関与する遺伝子であり、ｆｔｓＺ、ｆｔｓＥＸ、ｆｔｓＫ、ＦｔｓＱ、ｆｔｓＷ及びクラスＢＨＭＷ−ＰＢＰｓと共に、divisomeを形成することができる。前記ｆｔｓＢ遺伝子は、配列番号１のアミノ酸配列をコーディングする核酸でもある。前記ｆｔｓＢ遺伝子は、例えば、ＮＣＢＩ許可番号ＮＣｇ１０９３６遺伝子でもある。用語「ＮＣＢＩ許可番号ＮＣｇ１０９３６遺伝子」とは、コリネバクテリウムグルタミクム菌株由来の配列番号２のヌクレオチド配列を有するものだけではなく、コリネバクテリウム属に属する微生物に存在する遺伝子であって、前記ＮＣＢＩ許可番号ＮＣｇ１０９３６遺伝子産物と実質的に同一産物を発現する遺伝子をいう。本発明において、「実質的に同一」とは、ＮＣＢＩ許可番号ＮＣｇ１０９３６遺伝子産物と同一種類の活性及び調節のメカニズムを有するものをいう。
【００１６】
本明細書において、用語「不活性化（inactivation）」は、細胞または酵素が、比較可能な同一種の細胞、またはその本来の酵素において測定される活性レベルを示さないことを意味する。前記比較可能な同一種の細胞は、組み換えまたは変形のような操作が行われていない細胞でもある。前記微生物において、隔膜形成開始因子タンパク質の不活性化は、隔膜形成開始因子をコーディングするポリペプチドの活性が除去されたということを意味する。また、前記微生物は、Ｌ−リジンを生産するのに十分なほどに、隔膜形成開始因子タンパク質の活性が不活性化されている。
【００１７】
前記不活性化は、組み換え方法によって引き起こされたものでもある。前記組み換え方法は、相同組み換え（homologous recombination）を含んでもよい。前記相同組み換え方法は、前記遺伝子の一部配列を含むベクターを、前記微生物に形質転換し、選別マーカー産物の存在下で培養する場合、前記遺伝子の一部配列と、前記微生物内の内在的遺伝子と相同組み換えを起こすことができる。ベクターは、配列番号４のＮＣＢＩ許可番号ＮＣｇ１０９３６遺伝子断片を含むｐＤＺ−ｆｔｓＢ、または配列番号６のＮＣＢＩ許可番号ＮＣｇ１０９３６遺伝子断片を含むｐＤＺ−ｆｔｓＢＷ１４０＊ベクターでもある。前記相同組み換えによって、前記微生物内の前記内在的遺伝子が組み換えられ、組み換えられた遺伝子のうち、前記マーカーを含む組み換え体だけが、選別マーカーによって選別される。前記相同組み換え方法によって、内在的ＮＣＢＩ許可番号ＮＣｇ１０９３６遺伝子が不活性化されたコリネバクテリウム属微生物を得ることができる。
【００１８】
前記微生物において、タンパク質活性の不活性化は、遺伝子の塩基、ヌクレオシド、ヌクレオチド、またはそれらの組み合わせの欠失、置換、付加、逆転、またはそれらの組み合わせによって引き起こされたものでもある。具体的には、前記タンパク質活性の不活性化方法は、例えば、遺伝子ノックアウッ接近法、アンチセンス技術またはＲＮＡｉ技術を利用することができる。また、各遺伝子の初期コピーを欠失させたり、突然変異体に初期コピーを置換させたり、弱いプローモーターから初期コピーを発現させたりする方法を含んでもよい。また、前記タンパク質をコーディングする遺伝子のプローモーターを置換したり、ランダムに、または標的突然変異誘発法によって突然変異を導入したり、前記遺伝子を破壊またはノックアウトさせたりすることができる。また、不安定化要素を、ｍＲＮＡに導入したり、または遺伝子変形を導入したりして、ＲＮＡのリボゾーム結合部位（ＲＢＳ）を変異させる方法を含んでもよい。
【００１９】
遺伝子の不活性化がＮＣＢＩ許可番号ＮＣｇ１０９３６遺伝子の一部分と、選別マーカーを含むベクターとをコリネバクテリウム属微生物に形質転換させ、抗生物質の存在下で培養して選別することによって達成される。
【００２０】
前記選別マーカーは、ベクターに形質転換された細胞を選別するために具現されたものでもある。前記選別マーカーは、薬物耐性、栄養要求性、細胞毒性剤に対する耐性、または表面タンパク質の発現のような選択可能表現型を付与するマーカーでもある。
【００２１】
コリネ型微生物は、コリネバクテリウムグルタミクム（Ｃ．glutamicum）、コリネバクテリウムアンモニアゲネス（Ｃ．ammoniagenes）、コリネバクテリウムシュードツベルクローシス（Ｃ．pseudotuberculosis）、コリネバクテリウムエフィシエンス（Ｃ．efficiens）、コリネバクテリウムシュードジェニタリウム（Ｃ．pseudogenitalium）、コリネバクテリウムジェニタリウム（Ｃ．genitalium）、コリネバクテリウムアコレンス（Ｃ．accolens）、コリネバクテリウムアミコラツム（Ｃ．amycolatum）、コリネバクテリウムマツルショッティ（Ｃ．matruchotii）、コリネバクテリウムカゼイ（Ｃ．casei）、コリネバクテリウムリボピロフラバム（Ｃ．lipophiloflavum）、コリネバクテリウムツベルロステアリクム（Ｃ．tuberculostearicum）、コリネバクテリウムジェイケイウム（Ｃ．jeikeium）、コリネバクテリウムパウロメタボルム（Ｃ．paurometabolum）、及びそれらの野生型から製造されたＬ−リジン生産変異体からなる群から選択される。望ましくは、コリネバクテリウムグルタミクムでもある。前記コリネバクテリウムグルタミクムは、受託番号ＫＣＣＭ１１０１６Ｐ，ＫＣＣＭ１０７７０Ｐ，ＫＣＣＭ１１３４７ＰまたはＣＪ３Ｐである。
【００２２】
本明細書において、用語「コリネ型微生物」は、Ｌ−リジン生成能を有するコリネバクテリウム（Corynebacterium）属微生物でもある。前記微生物は、例えば、Ｌ−リジン生成能を有するコリネバクテリウム属微生物において、隔膜形成開始因子タンパク質をコーディングする遺伝子を不活性化させるように、突然変異を導入させてＬ−リジン生産能が向上したものでもある。前記「Ｌ−リジン生成能を有する」は、前記微生物が培地で培養される場合、培地内に、Ｌ−リジンを生産して分泌する能力を有することを意味する。前記微生物は、野生型または親菌株より大量に培養培地にＬ−リジンを生産して蓄積させることができる微生物でもある。
【００２３】
一具体例による隔膜形成開始因子タンパク質をコーディングする遺伝子が不活性化されたコリネ型微生物は、糸状温度感受性タンパク質のうち一つであるＦｔｓＢの活性が不活性され、前記コリネ型微生物の細胞分裂が阻害される一方、相対的にＬ−リジン生産能が向上する。
【００２４】
他の様相は、本発明の微生物を培養し、培養物中でＬ−リジンを生産する段階と、培養物からＬ−リジンを回収する段階と、を含む、Ｌ−リジンを生産する方法を提供する。前記微生物については、前述の通りである。
【００２５】
前記微生物の培養は、当業界に知られた適当な培地及び培養条件によって行われる。かような培養過程は、選択される微生物によって、容易に調整して使用することができる。前記培養方法は、回分式、連続式及び流加式の培養からなる群から選択される一つ以上の培養を含んでもよい。
【００２６】
前記培養に使用される培地は、特定微生物の要求条件を満足させることができる培地でもある。前記培地は、炭素源、窒素源、微量元素成分、及びそれらの組み合わせからなる群から選択される培地でもある。
【００２７】
前記炭素源は、炭水化物、脂肪、脂肪酸、アルコール、有機酸、及びそれらの組み合わせからなる群から選択される炭素源でもある。前記炭水化物は、ブドウ糖、ショ糖、乳糖、果糖、マルトース、澱粉、セルロース、及びそれらの組み合わせでもある。前記脂肪は、大豆油、ひまわり油、ヒマシ油、ココナツオイル、及びそれらの組み合わせでもある。前記脂肪酸は、パルミチン酸、ステアリン酸、リノール酸、またはそれらの組み合わせでもある。前記アルコールは、グリセロールまたはエタノールでもある。前記有機酸は、酢酸を含んでもよい。
【００２８】
前記窒素源は、有機窒素源、無機窒素源、またはそれらの組み合わせを含んでもよい。前記有機窒素源は、ペプトン、酵母抽出物、肉汁、麦芽抽出物、トウモロコシ浸漬液（ＣＳＬ）、大豆ミール、及びそれらの組み合わせからなる群から選択される。前記無機窒素源は、尿素、硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、リン酸アンモニウム、炭酸アンモニウム、硝酸アンモニウム、及びそれらの組み合わせからなる群から選択される。
【００２９】
前記培地は、リン、金属塩、アミノ酸、ビタミン、前駆体、及びそれらの組み合わせからなる群から選択されるものを含んでもよい。前記リンの供給源は、リン酸二水素カリウム、リン酸水素二カリウム、またはそれらに相応するナトリウム含有塩を含んでもよい。前記金属塩は、硫酸マグネシウムまたは硫酸鉄でもある。
【００３０】
前記培地、またはそれをなす個別成分は、回分式、連続式または流加式の培養で添加される。
【００３１】
前記培養方法において、培養物のｐＨを調整することができる。前記ｐＨの調整は、前記培養物に、水酸化アンモニウム、水酸化カリウム、アンモニア、リン酸または硫酸を添加して行われる。また、前記培養方法は、気泡生成抑剤を含んでもよい。前記気泡生成抑剤は、消泡剤の使用を介して行われる。前記消泡剤は、脂肪酸ポリグリコールエステルを含んでもよい。また、前記培養方法は、培養物内へのガス注入を含んでもよい。前記ガスは、培養物の好気状態を維持するためのいなかるガス含んでもよい。前記ガスは、酸素または酸素含有ガスでもある。前記酸素含有ガスは、空気を含む。前記培養において、培養物の温度は、２０ないし４５℃、例えば、２２ないし４２℃、または２５ないし４０℃である。培養期間は、所望のＬ−リジンの生成量を獲得するまで持続する。
【００３２】
本発明の方法において、培養は、バッチ工程、注入バッチ及び反復注入バッチ工程のような連続式または回分式によって行われる。かような培養は、方法は当業界に周知されており、任意の方法が使用されもする。Ｌ−アミノ酸は、陰イオン交換クロマトグラフィ、及び後続として、ニンヒドリン誘導体化によって分離されて分析される。
【００３３】
以下、本発明について、下記の実施例によって詳細に説明する。ただし、下記実施例は、本発明を例示するものであるのみ、本発明の内容が下記実施例によって限定されるものではない。
【実施例】
【００３４】
実施例１：欠損によるｆｔｓＢ遺伝子不活性化組み換えベクター作製
米国国立保健院の遺伝子銀行（ＮＩＨGenbank）に報告された塩基配列に基づいて、ｆｔｓＢ遺伝子のヌクレオチド配列を確保した（配列番号２）。ｆｔｓＢの開放解読ツール（open reading frame）が内部的に消失した遺伝子断片を作るために、前記配列番号２を基に、それぞれプライマー０９３６Ｆ１，０９３６９Ｒ１，０９３６Ｆ２及び０９３６Ｒ２を作製した、それぞれを配列番号７ないし１０と示した。
【００３５】
ｆｔｓＢ遺伝子欠損による不活性化組み換えベクターを作製するために、ｐＤＺベクター（韓国登録特許０９２４０６５号参照）を使用し、その後、前述のように不活性化されるように作製された、ｆｔｓＢ遺伝子の変形された配列を有する核酸分子を、前記ｐＤＺベクターのマルチクローニングサイト部位に挿入させ、配列番号４の核酸配列を含むベクターｐＤＺ−ΔｆｔｓＢベクターを製造した。前記配列番号４の核酸配列は、配列番号３のアミノ酸配列を有するアミノ酸をコーディングする。
【００３６】
コリネバクテリウムグルタミクムＡＴＣＣ １３０３２ゲノムＤＮＡをテンプレートにして、プライマー０９３６Ｆ１−０９３６Ｒ１と０９３６Ｆ２−０９３６Ｒ２とを使用してＰＣＲを行った。重合酵素は、ＰｆｕＵｌｔｒａＴＭ高信頼ＤＮＡポリメラーゼ（stratagene）を使用し、ＰＣＲ条件は、変性９６℃、３０秒；アニーリング５３℃、３０秒；及び重合反応７２℃、２分を３０回反復した。
【００３７】
その結果、７４ｂｐと９５ｂｐとのｆｔｓＢ遺伝子部位を含んだ遺伝子２対である、ｆｔｓＢ−Ａ及びｆｔｓＢ−Ｂを得た。増幅された産物は、Infusion cloning kit（Invitrogen）を使用してｐＤＺベクターに接合し、ｐＤＺ−ΔｆｔｓＢベクターを作製した。ｐＤＺ−ΔｆｔｓＢは、１３５ｂｐ ｆｔｓＢのＸｂａＩ両末端を含むものであり、ｆｔｓＢの内部的遺伝子４０８ｂｐが消失した断片を含む。
【００３８】
実施例２：終結コドン変異導入によるｆｔｓＢ遺伝子不活性化組み換えベクター作製
終結コドン変異導入によるｆｔｓＢ遺伝子不活性化組み換えベクターを作製するために、前記ｐＤＺベクターを使用し、ｆｔｓＢ遺伝子開放解読ツールにおいて１４０番目のアミノ酸であるトリプトファン対応コドンを終結コドンで置換させるためのプライマーを作製した。０９３６Ｆ１と０９３６Ｒ３とを対にするプライマーと、０９３６Ｆ３と０９３６Ｒ２とを対にするプライマーとを使用し、実施例１と同一方法のＰＣＲで増幅してｐＤＺベクターに接合し、ベクターｐＤＺ−ｆｔｓＢ Ｗ１４０＊を作製した。前記０９３６Ｆ３及び０９３６Ｒ３のプライマー配列は、配列番号１１及び１２とそれぞれ示した。前記作製ベクターに接合されたｆｔｓ遺伝子のアミノ酸は、配列番号５の配列を有し、核酸は、配列番号６のヌクレオチド配列を有する。
【００３９】
実施例３：ｆｔｓＢ遺伝子不活性化変異株の作製
前記実施例１，２で作製した組み換えベクターを、それぞれ電気パルス法を利用して、Ｌ−リジン生産菌株であるコリネバクテリウムグルタミクムＫＣＣＭ１１０１６Ｐ（旧寄託番号ＫＦＣＣ１０８８１、韓国登録特許０１５９８１２号、韓国登録特許０３９７３２２号参照）に形質転換させた（Appl. Microbiol. Biotechnol. (1999)52: 541-545による形質転換法を利用）。カナマイシン（kanamycin）２５ｍｇ／Ｌを含んだ選別培地において、染色体上の同遺伝子と、相同性によって、挿入された菌株を選別した。ベクターの、首尾よく行われた染色体挿入は、Ｘ−ｇａｌ（５−ブロモ−４−クロロ−３−インドリル−β−Ｄ−ガルラクトシド）を含んだ固体培地で、青色を示すか否かということを確認することによって可能であった。一次染色体挿入された菌株を、栄養培地で振盪培養（３０℃、８時間）した後、それぞれ１０−４から１０−１０まで希釈し、Ｘ−ｇａｌを含んでいる固体培地に塗抹した。ほとんどのコロニーが青色を示すのに反し、低い比率で示される白色のコロニーを選別することにより、二次交差（crossover）によって、ｆｔｓＢ遺伝子が不活性化された菌株をそれぞれ選別した。
【００４０】
欠損によるｆｔｓＢ遺伝子不活性化変異株を選別するために、遺伝子特異的プライマー対である配列番号７及び配列番号１０の０９３６Ｆ１−０９３６Ｒ２を、プライマーで使用してＰＣＲを行った。目的部位に対する塩基配列分析を介して最終確認し、欠損によるｆｔｓＢ遺伝子欠損による不活性化変異株ＫＣＣＭ１１０１６Ｐ−ΔｆｔｓＢを作製した。終結コドン変異導入によるｆｔｓＢ遺伝子不活性化変異株を選別するために、配列番号７及び配列番号１０の０９３６Ｆ１−０９３６Ｒ２を対にするプライマーを使用してＰＣＲを行った。目的部位に対する塩基配列分析を介して最終確認し、終結コドン変異導入によるｆｔｓＢ遺伝子不活性化変異株ＫＣＣＭ１１０１６Ｐ−ｆｔｓＢＷ１４０＊を作製した。
【００４１】
コリネバクテリウムグルタミクムに属する他の菌株での効果も確認するために、やはり前記のような方法で、ＫＣＣＭ１０７７０Ｐ（韓国登録特許０９２４０６５号参照）、ＫＣＣＭ１１３４７Ｐ（韓国登録特許１９９４−０００１３０７参照）及びＣＪ３Ｐ（Binder et al., Genome Biology 2012, 13: R40）を親菌株にし、それぞれｆｔｓＢ遺伝子が欠損された菌株と、終結コドンが導入された菌株ＫＣＣＭ１０７７０Ｐ−ΔｆｔｓＢ，ＫＣＣＭ１１０１６Ｐ−ｆｔｓＢＷ１４０＊，ＫＣＣＭ１１３４７Ｐ−ΔｆｔｓＢ，ＫＣＣＭ１１３４７Ｐ−ｆｔｓＢＷ１４０＊，ＣＪ３Ｐ−ΔｆｔｓＢ，ＣＪ３Ｐ−ｆｔｓＢＷ１４０＊を作製した。
【００４２】
実施例４：ｆｔｓＢ遺伝子不活性化菌株でのリジン生産
実施例３で作製されたＬ−リジン生産菌株であるコリネバクテリウムグルタミクムＫＣＣＭ１１０１６Ｐ−ｆｔｓＢ，ＫＣＣＭ１１０１６Ｐ−ｆｔｓＢＷ１４０＊，ＫＣＣＭ１０７７０Ｐ−ｆｔｓＢ，ＫＣＣＭ１０７７０Ｐ−ｆｔｓＢＷ１４０＊，ＫＣＣＭ１１３４７Ｐ−ｆｔｓＢ，ＫＣＣＭ１１３４７Ｐ−ｆｔｓＢＷ１４０，ＣＪ３Ｐ−ｆｔｓＢ及びＣＪ３Ｐ−ｆｔｓＢＷ１４０＊を、Ｌ−リジン生産のために、下記のような方法で培養した。
【００４３】
下記の種培地２５ｍｌを含む２５０ｍｌコナーワッフルフラスコに、コリネバクテリウムグルタミクム親菌株、並びにＫＣＣＭ１１０１６Ｐ−ｆｔｓＢ、ＫＣＣＭ１１０１６Ｐ−ｆｔｓＢＷ１４０＊、ＫＣＣＭ１０７７０Ｐ−ｆｔｓＢ、ＫＣＣＭ１０７７０Ｐ−ｆｔｓＢＷ１４０＊、ＫＣＣＭ１１３４７Ｐ−ｆｔｓＢ、ＫＣＣＭ１１３４７Ｐ−ｆｔｓＢＷ１４０＊、ＣＪ３Ｐ−ｆｔｓＢ及びＣＪ３Ｐ−ｆｔｓＢＷ１４０＊をそれぞれ接種し、３０℃で２０時間２００ｒｐｍで振盪培養した。その後、下記の生産培地２４ｍｌを含む２５０ｍｌコナーワッフルフラスコに、前記培養された１ｍｌの種培養液をそれぞれ接種し、３０℃で１２０時間、２００ｒｐｍで振盪培養した。前記種培地と生産培地との組成は、それぞれ下記のようである。
【００４４】
種培地（ｐＨ７．０）
原糖２０ｇ、ペプトン１０ｇ、酵母抽出物５ｇ、尿素１．５ｇ、ＫＨ２ＰＯ４４ｇ、Ｋ２ＨＰＯ４ ８ｇ、ＭｇＳＯ４・７Ｈ２Ｏ ０．５ｇ、ビオチン１００μｇ、チアミンＨＣｌ １，０００μｇ、カルシウム−パントテン酸２，０００μｇ、ニコチンアミド２，０００μｇ（蒸溜水１リットル基準）
生産培地（ｐＨ７．０）
ブドウ糖１００ｇ、（ＮＨ４）２ＳＯ４４０ｇ、大豆タンパク質２．５ｇ、トウモロコシ浸漬固形粉（corn steep solids）５ｇ、尿素３ｇ、ＫＨ２ＰＯ４１ｇ、ＭｇＳＯ４・７Ｈ２Ｏ ０．５ｇ、ビオチン１００μｇ、チアミン塩酸塩１，０００μｇ、カルシウム−パントテン酸２，０００μｇ、ニコチンアミド３，０００μｇ、ＣａＣＯ３３０ｇ（蒸溜水１リットル基準）。
【００４５】
培養終了後、ＨＰＬＣを利用した方法によって、Ｌ−リジンの生産量を測定した。コリネバクテリウムグルタミクム親菌株、並びにＫＣＣＭ１１０１６Ｐ−ｆｔｓＢ、ＫＣＣＭ１１０１６Ｐ−ｆｔｓＢＷ１４０＊、ＫＣＣＭ１０７７０Ｐ−ｆｔｓＢ、ＫＣＣＭ１０７７０Ｐ−ｆｔｓＢＷ１４０＊、ＫＣＣＭ１１３４７Ｐ−ｆｔｓＢ、ＫＣＣＭ１１３４７Ｐ−ｆｔｓＢＷ１４０、ＣＪ３Ｐ−ｆｔｓＢ及びＣＪ３Ｐ−ｆｔｓＢＷ１４０＊に係わる培養液中のＬ−リジン濃度は、表３の通りである。表３の結果は、反復実験を行った平均値である。
【００４６】
【表３】
0006263641.tif 000004
【００４７】
表３から分かるように、親菌株ＫＣＣＭ１１０１６ＰからｆｔｓＢ遺伝子が欠損されるか、あるいは終結コドンが導入された場合、いずれもリジン生産が同一に約４％ずつ増加した。かような結果は、ｆｔｓＢ遺伝子自体の構造的変化によるものではなく、隔膜形成開始因子であるＦｔｓＢタンパク質の欠損によって、リジン濃度が上昇したことを意味する。さらに、他の種類の親菌株であるＫＣＣＭ１０７７０Ｐ、ＫＣＣＭ１１３４７Ｐ及びＣＪ３Ｐにおいても、ＦｔｓＢが不活性化された菌株が、野生型ＦｔｓＢ活性を有した親菌株対比で、平均リジン濃度が約４％上昇した。一方、菌体量は、ＦｔｓＢ不活性化された菌株が、親菌株対比で５％低下するということが分かった。前述の結果は、リジン生産菌株の細胞分裂を抑制して菌体量を制御することにより、リジン生成能を向上させることができるということを意味する。ＫＣＣＭ１１０１６Ｐ−ｆｔｓＢＷ１４０＊（ＣＡ０１−２２７４）を２０１３年９月２７日に、韓国微生物保存センター（大韓民国ソウル西大門区弘済１洞ユーリムビル）に寄託番号ＫＣＣＭ１１４５４Ｐで寄託した。
【００４８】
寄託機関名：韓国微生物保存センター（国外）
受託番号：ＫＣＣＭ１１４５４Ｐ
受託日：２０１３０９２７
0006263641.tif 000005
【受託番号】
【００４９】
ＫＣＣＭ１１４５４Ｐ
【配列表】
0006263641000001.app