(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
試料中の分析物の電気化学的検出法であって、
ａ）試料中の検出すべき所望の分析物を結合することができるレセプターを固定化または吸着した導電性ポリマーコーティングを有する検出電極を得、
ｂ）該所望の分析物が該固定化または吸着レセプターに結合するように試料を含む被検溶液と検出電極を接触させ、
ｃ）固定化または吸着レセプターと結合する部位から空間的に離れた部位で該分析物と結合することができる、荷電標識と結合した第二レセプターを含む溶液と検出電極を接触させ、
ｄ）処理した検出電極と参照電極の両方を電解液中に浸漬したときの、それらの間の電位差をモニターし、
ｅ）一定ｐＨにおける電解液のイオン強度の変化に伴う検出電極と参照電極間の電位差をモニターする工程を含む方法。
【請求項２】
試料中の分析物の電気化学的検出法であって、
ａ）レセプター試料中の検出すべき所望の分析物と結合することができるレセプターを固定化または吸着した導電性ポリマーコーティングを有する検出電極を得、
ｂ）該分析物が該固定化または吸着レセプターに結合するように試料を含む被検溶液と検出電極を接触させ、
ｃ）該固定化または吸着レセプターと結合することができる、荷電標識と結合した競合分子を含む溶液と検出電極を接触させ、
ｄ）処理した検出電極と参照電極の両方を電解液中に浸漬したときの、それらの間の電位差をモニターし、
ｅ）一定ｐＨにおける電解液のイオン強度の変化に伴う検出電極と参照電極間の電位差をモニターする工程を含む方法。
【請求項３】
荷電標識が以下の特性を有する請求項１または２に記載の方法：
（ｉ）パートｄ）の電解液のｐＨで正味の荷電を保持し、
（ii）この荷電の大きさが一定ｐＨでの電解液のイオン強度の変化に応じて変化する。
【請求項４】
荷電標識が3.33564 x 10-10クーロン(1静電単位)より大きい電解液のｐＨで正味の荷電を有する請求項１または２に記載の方法。
【請求項５】
荷電標識がフェロセン（ferrocene）、ラテックスミクロスフェア、または金である請求項３または４記載の方法。
【請求項６】
検出電極を、荷電標識と結合した第二レセプターまたは競合分子を添加した被検溶液と接触させることにより工程（ｂ）および（ｃ）を同時に行う請求項１〜５のいずれかに記載の方法。
【請求項７】
試料中の分析物の電気化学的検出法であって、
ａ）レセプター試料中の検出すべき所望の分析物と結合することができるレセプターを固定化または吸着した導電性ポリマーコーティングを有する検出電極を得、
ｂ）該分析物が該固定化または吸着レセプターと結合するように試料を含む被検溶液と検出電極を接触させ、
ｃ）固定化または吸着レセプターと結合する部位から空間的に離れた部位で該分析物と結合することができる、酵素と結合した第二レセプターを含む溶液と検出電極を接触させ、
ｄ）処理した検出電極と参照電極の両方を電解液中に浸漬したときの、それらの間の電位差をモニターし、
ｅ）該酵素の基質を含む電解液に曝露した後の検出電極と参照電極間の電位差をモニターする工程を含む、
該酵素が、該酵素と基質の反応により生成される生成物が検出電極と参照電極間の電位差に影響を及ぼす酵素である方法。
【請求項８】
試料中の分析物の電気化学的検出法であって、
ａ）レセプター試料中の検出すべき所望の分析物を結合することができるレセプターを固定化または吸着した導電性ポリマーコーティングを有する検出電極を得、
ｂ）該所望の分析物が該固定化または吸着レセプターに結合するように試料を含む被検溶液と検出電極を接触させ、
ｃ）該固定化または吸着レセプターと結合することができる、酵素と結合した競合分子を含む溶液と検出電極を接触させ、
ｄ）処理した検出電極と参照電極の両方を電解液中に浸漬したときの、それらの間の電位差をモニターし、
ｅ）該酵素の基質を含む電解液に曝露した後の検出電極と参照電極間の電位差をモニターする工程を含む、
該酵素が、該酵素と基質の反応により生成される生成物が検出電極と参照電極間の電位差に影響を及ぼす酵素である方法。
【請求項９】
該酵素が、検出電極と参照電極間の電位差に対して検出可能な効果を持たない基質を、検出電極と参照電極間の電位差に直接または間接的に影響を及ぼすことができる生成物に変換することができる請求項７または８記載の方法。
【請求項１０】
該酵素がパーオキシダーゼである請求項９記載の方法。
【請求項１１】
該導電性ポリマー膜の酸化還元組成に間接的に影響を及ぼすことができる生成物がパート（ｅ）の電解液のｐＨを変化させる請求項９記載の方法。
【請求項１２】
該酵素がウレアーゼである請求項１１記載の方法。
【請求項１３】
該酵素が、検出電極と参照電極間の電位差に対する検出可能な効果を持たない基質を、第二酵素の基質である生成物に変換することができる請求項７または８記載の方法であって、第二酵素の作用により検出電極と参照電極間の電位差に直接または間接的に影響を及ぼす第二生成物が生じる方法。
【請求項１４】
該酵素が、検出電極と参照電極間の電位差に直接影響する基質を、検出電極と参照電極間の電位差に対する検出可能な効果を持たない生成物に変換することができる請求項７または８記載の方法。
【請求項１５】
該検出電極を、酵素標識と結合した第二レセプターまたは競合分子を加えた被検溶液と接触させることにより工程（ｂ）および（ｃ）が同時に行われる請求項７〜１４のいずれかに記載の方法。
【請求項１６】
レセプター分子が、細菌、植物もしくは動物細胞の断片、タンパク質（ハプテン）と結合した化合物、レクチン、糖タンパク質、または炭水化物、モノクローナル抗体、ポリクローナル抗体、抗体断片、抗体擬似物、キメラ抗体ウイルス溶解物、組換えタンパク質、合成ペプチド、ホルモン、ホルモンレセプター、一本鎖核酸、低分子である請求項１〜１５のいずれかに記載の方法。
【請求項１７】
該検出電極の導電性ポリマーコーティングにドーパントアニオンが添加されている請求項１〜１６のいずれかに記載の方法。
【請求項１８】
該ドーパントアニオンがドデシルサルフェートまたはデキストランサルフェートである請求項１７記載の方法。
【請求項１９】
該検出電極がその導電性ポリマーコーティングに固定化されるか吸着されたアダプター分子を含み、検出すべき分析物と結合することができるレセプターが該アダプター分子と結合する請求項１〜１８のいずれかに記載の方法。
【請求項２０】
導電性ポリマー層に固定化されるか吸着されたアダプター分子を有する検出電極を、荷電標識または酵素と結合した第二レセプターまたは競合分子およびレセプターを加えた被検溶液と接触させることにより検出電極とレセプターを接触させる工程とともに、工程（ｂ）および（ｃ）を同時に行う請求項１９記載の方法。
【請求項２１】
検出すべき分析物と結合することができるレセプターがビオチン化されており、アダプター分子がアビジンまたはストレプトアビジンであり、該レセプターが、ビオチン／アビジンまたはビオチン／ストレプトアビジン結合相互作用により該アダプター分子と結合する、請求項１９または２０に記載の方法。
【請求項２２】
検出すべき分析物と結合することができるレセプターが、抗体であり、アダプター分子がプロテインＡまたはプロテインＧであり、該抗体がプロテインＡ／抗体またはプロテインＧ／抗体結合相互作用により該アダプター分子と結合する、請求項１９または２０に記載の方法。
【請求項２３】
検出すべき分析物と結合することができるレセプターが、糖部分を含んでおり、アダプター分子がレクチンであり、該レセプターがレクチン／糖結合相互作用により該アダプター分子と結合する、請求項１９または２０に記載の方法。
【請求項２４】
検出すべき分析物と結合することができるレセプターが、ＦＩＴＣで標識されており、アダプター分子が抗ＦＩＴＣ抗体であり、該レセプターがＦＩＴＣ／抗ＦＩＴＣ結合相互作用により該アダプター分子と結合する、請求項１９または２０に記載の方法。
【請求項２５】
全血、血清、リンパ液、尿、唾液、脳脊髄液、および精液からなる群から選ばれる生物学的液体を被検溶液として用いる請求項１〜２４のいずれかに記載の方法。
【請求項２６】
少なくとも工程（ｄ）および（ｅ）が測定用フロースルーセル中で行われる請求項１〜２５のいずれかに記載の方法。
【請求項２７】
導電性ポリマーコーティングに固定化されたアダプター分子を有する検出電極を得る工程が、
ａ）導電性ポリマーのモノマー単位とアダプター分子を含む電気化学的重合溶液を調製し、
ｂ）導電性電極を該電気化学的重合溶液に浸漬し、
ｃ）該電極と電気化学的重合溶液間の、少なくとも１完全周期で適用する周期的電位を適用して該溶液からポリマーを電気化学的に合成することにより電極をコートする工程、を含む方法を用いて該電極を製造することを含む、請求項１９〜２６のいずれかに記載の方法。
【請求項２８】
導電性ポリマーコーティングに吸着したアダプター分子を有する検出電極を得る工程が、
ａ）導電性ポリマーのモノマー単位を含む電気化学的重合溶液を調製し、
ｂ）導電性電極を該電気化学的重合溶液に浸漬し、
ｃ）該電極と電気化学的重合溶液間の、少なくとも１完全周期で適用する周期的電位を適用して該溶液からポリマーを電気化学的に合成することにより電極をコートし、
ｄ）該アダプター分子が該電極をコーティングする導電性ポリマー上に吸着するようなアダプター分子を含む溶液と、該コートされた電極を接触させる工程を含む方法を用いて該電極を製造することを含む、請求項１９〜２６のいずれかに記載の方法。
【請求項２９】
導電性ポリマーのモノマー単位がアニリン、チオフェン、フラン、またはピロールである請求項２７または２８に記載の方法。
【請求項３０】
周期的電位がノコギリ歯の形をしている請求項２７〜２９のいずれかに記載の方法。
【請求項３１】
周期的電位が少なくとも２周期で適用される請求項２７〜３０のいずれかに記載の方法。
【請求項３２】
周期的電位が、参照電極に対して＋２ボルトに等しいかまたはそれ以下の、電極に適用される最高値を有する請求項２７〜３１のいずれかに記載の方法。
【請求項３３】
試料中の分析物の電気化学的検出法であって、
（ａ）導電性ポリマーに固定化または吸着したアビジンまたはストレプトアビジン分子を含む導電性ポリマー層でコートした導電性電極を含む検出電極を得、ここで、該アビジンまたはストレプトアビジン分子は、ビオチン／アビジンまたはビオチン／ストレプトアビジン結合相互作用により、検出すべき分析物を結合することができるレセプター分子と結合する、
（ｂ）該所望の分析物が該固定化または吸着レセプター分子と結合するように試料を含む被検溶液と検出電極を接触させ、
（ｃ）検出電極と参照電極の両方を電解液に浸漬したときの参照電極に対する検出電極電位をモニターし、
（ｄ）一定ｐＨでの電解液のイオン強度または組成の変化に伴う参照電極に対する検出電極電位差をモニターする工程を含む方法。
【請求項３４】
検出すべき分析物が核酸であり、レセプター分子がオリゴヌクレオチドである請求項３３記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
本発明は、分析物の電気化学的検出法、および電気化学的検出法に用いる検出電極に関する。
バイオセンサーを用いる、生物学的液体中の分析物、例えば、種々の抗原、抗体、ＤＮＡ分子などの電気化学的分析は、機器分析の最も有望で魅力的な方法の一つである。この分野における興味の持続と多数の刊行物は、この方法の多くの基本的利点、すなわち、高感受性、簡単さ、および比較的簡単で費用のかからない装置の使用により説明づけられる。
【０００２】
分析物の存在に伴う化学信号を測定可能な電気信号に変換する、電導性ポリマーフィルム、例えばポリピロールまたはポリチオフェンの使用に基づくバイオセンサー用具の構築は当該分野で知られている（[1]および[2]参照）。
ＥＰ−Ａ−０１９３１５４には、電気化学的検出に用いる、ポリピロールまたはポリチオフェンフィルムでコートした電極が記載されている。試験すべき分析物と相補的なバイオレセプターは、重合後の電導性ポリマーフィルム表面上に吸着する。ＷＯ８９／１１６４９には、電気化学的アッセイに用いる重合（高分子）電極の別の製造方法が記載されている。この方法では、所望の結合特異性を有するバイオレセプター分子は、重合中に電導性ポリマーフィルムに組み込まれる。各該アッセイにＥＰ−Ａ−０１９３１５４およびＷＯ８９／１１６４９に記載の方法を用いるには、試験すべき分析物と特異的に結合することができる固定化バイオレセプターを有する種々の分析物用電極を合成する必要がある。
【０００３】
本出願人の公開された出願ＰＣＴ／ＧＢ９８／００５４８には、試験する分析物と特異的に結合する固定化バイオレセプター分子を含む電導性ポリマー層でさらにコートされた金属性電位差測定電極を含む電気化学的検出電極を用いる電気化学的分析の電位差測定法が記載されている。分析物の存在は、固定化バイオレセプターに分析物が結合した時の検出電極表面の荷電変化により示される。分析物検出法は、最初、固定（一定）ｐＨのワーキング緩衝溶液に浸漬した測定用具で一緒に接続した検出電極と参照電極を含む電気化学的セルを組み立てることにより実施される。検出電極と参照電極間の電位差のベース値を記録し、次いで、検出電極および参照電極を、ワーキング緩衝液と同じｐＨの、分析物を含むと思われるより高いイオン強度の溶液と接触させ、再度電位差を記録する。検出電極および参照電極を最終的に不純物を含まないワーキング緩衝液に移し、再度電位を記録する。分析物存在下で一定ｐＨにおける緩衝液のイオン強度の変化から生じる検出電極と参照電極間の電気差の変化は、分析物の濃度に比例する。
【０００４】
参考文献［１３、１４、１５、１６］および［３］に示すように、バイオレセプターを含むポリマーフィルムを有する検出電極の、周囲溶液のイオン強度の段階的変化に対する反応（電位変化の量および速度）は（いわゆる「イオン−ステップ」法）、大部分、ポリマーフィルムの荷電により決定される。ポリマーフィルムが作られている物質を除き、ポリマーフィルムの荷電は、それと結合するレセプター分子の荷電により決定される。特異的分析物とのアフィニティ（親和性）反応の結果としてレセプターの荷電が変化するならば、検出電極の反応も検出電極と被検液との接触後に行われるイオン−ステップ法の結果変化するであろう。大多数の分析物が両向性（amphoteric）の性質を持つため、レセプターの荷電は溶液のｐＨに依存し、したがって、該荷電はイオン−ステップ法時の溶液のｐＨを一定に維持するのに非常に重要である。
【０００５】
このように、検出電極と被検液の接触前および後に行われるイオン−ステップ法に対する検出電極の反応の変化を測定することに基づく、先に記載の方法では、被検液中の、検出電極と結合するレセプターに特異的な分析物の存在を検出することができる。理想的な場合では、膜中のレセプターの荷電の変動、従って検出電極反応の変化は、検出電極に結合したレセプターに特異的な分析物の、被検液中濃度に正比例する。しかしながら、実際の条件では、同じ分析物の荷電はかなり変動し得るため、定量的に矛盾した結果が生じる。さらに、レセプターの荷電の変化が常にアフィニティ反応を伴うわけではない。これは、通常、小さいかまたは非荷電の抗原を試験する時に生じる［１４］。
まとめると、先行技術文献に記載の、電導性ポリマー電極の使用に基づく電気化学的検出法の欠点には、検出電極の製造法が産業化になじみにくく複雑であること、得られる検出電極の特性の矛盾、検出電極を性能を失わずに保存する能力に限界があることが含まれる。さらに、電気化学的検出のための先に記載のプロトコール、特に、ＰＣＴ／ＧＢ９８／００５４８に記載の方法は、小さい非荷電の分子、または等電点が検出電極表面に固定化されたレセプターの等電点に近い分子を検出するための使用は限られている。
【０００６】
本発明は、小さい非荷電の分子を分析できることにより応用範囲が広く、上記方法に固有の欠点をほぼ持たず、厳密な定量結果をもたらし、該電極の製造法を産業的製造法によりなじむようにし、分析の生産性を増し、再現性を改善することにより得られる結果の信頼性を増大させる試料中の分析物の電気化学的分析法を提供する。
すなわち、最初の局面において、本発明は、アビジン、ストレプトアビジン、抗ＦＩＴＣ抗体、および電導性ポリマーに固定化または吸着した、少なくとも１種類のレセプター分子と結合することができる分子からなる群から選ばれるアダプター分子を含む電導性ポリマーでコートされた電導性電極を含む、分析物の電気化学的分析法に用いる検出電極を提供する。
【０００７】
検出電極を用いる電気化学的分析法に固有の重要な問題の１つは、検出電極上に固定されたレセプターの天然の性質を一定期間にわたり保持する問題である。この分野で比較的進歩が見られているのは、限られた数の酵素検出電極についてのみである［７］。文献［８、９、１０］で知られた精製レセプターを用いる電気化学的検出電極の大部分については、その有効な貯蔵期限が全く記載されていない。固定化レセプターの天然の性質の保持は、抗体をレセプターとして用いる場合に特に重要であるが、これはそれらに固有の高度の構造的変動性があるためである。
これに対して、抗体や他の生体分子は濃縮溶液の形で保存すると非常に長期にわたってその有用な特性を保持することが知られており、したがって、実用的特性を失わずに検出電極を長期貯蔵する問題は、電気化学的検出法の使用前または実施中にレセプターを急速に固定化することにより克服することができよう。
【０００８】
この問題は、電導性ポリマーに固定化または吸着するいわゆるアダプター分子を用いることにより本宣誓発明（本発明）において解決される。アダプター分子の目的は、試験する分析物に特異的なレセプター分子を検出電極表面と結合することである。以下に述べるように、アダプター分子を用いることにより、検出電極の製造工程を一時的に分けることができる。すなわち、固定化／吸着アダプター分子を含む電極を製造し、それらを長期間貯蔵し、次いで電気化学的分析前または分析中に電極上に特異的レセプターを固定するのに便利である。適切なアダプター分子を選ぶことにより、全範囲の種々のレセプター分子と結合することができるアダプター分子を含む「普遍的」検出電極を製造することも可能である。試験する分析物の特異性は、単に、適切な特異性のアダプター分子のレセプターとの結合により「普遍的」検出電極に付与される。したがって、もはや電気沈殿工程中に所望の特異性のレセプターを組み込む必要はない。
【０００９】
タンパク質アビジンおよびストレプトアビジンは、アダプター分子として用いるのに好ましい。生卵から得られたタンパク質であるアビジンは、それぞれ補助因子ビオチン１分子と結合することができる１つの部位を有する、４つの同じペプチドサブユニットからなる。ビオチン（ビタミンＨ）はすべての生体中に極微量存在する酵素の補助因子であり、主としてタンパク質やポリペプチドに結合してみいだされる。アビジンまたはストレプトアビジン（ある種の細菌培養、例えば、Streptomyces abiationから単離されたアビジン）分子との結合反応を開始し、この反応中に実質的に解離しない（解離定数〜１０-15Mol/l「ビオチン−アビジン」複合体を形成するビオチン分子の能力はよく知られている［１１、１２］。
【００１０】
本発明の著者が行った研究は、電導性ポリマーフィルムに固定化したアビジンおよびストレプトアビジンは長期間にわたりその天然の特性を保持し（少なくとも１年、おそらくそれ以上）、この期間を通してビオチンコンジュゲートレセプターと結合させるのに用いることができることを示した。広範囲の種々の分子にビオチンをコンジュゲートさせることができる技術は当該分野でよく知られている。すなわち、固定化アビジンまたはストレプトアビジンを含む検出電極は、適切なビオチン化レセプターを結合させるだけで簡単に該分析物に対して特異的にすることができる。
アビジンおよびストレプトアビジンは好ましいアダプター分子であるが、別のアダプター分子、特に少なくとも１種類のレセプター分子と特異的に結合することができる分子を用いることも本発明の範囲内である。この別のアダプター分子群に含まれるのはプロテインＡ、プロテインＧ、およびレクチンである。これらの分子はすべて、少なくとも１種類のレセプター分子と結合する能力を共有し、このことはそれらがある種のレセプター分子の各メンバーに存在する共通結合部位モチーフと特異的に結合することができることを意味する（結合相互関係に関する解離定数は１０-8Mol/l以下である）。例として、プロテインＡ（Staphylococcus aureusから単離するか、または組換えＤＮＡ技術により得られた４２ｋＤのポリペプチド）は、免疫グロブリン、特に、広範囲の哺乳動物種由来のＩｇＧのＦｃ領域と結合し、プロテインＧ（ＩｇＧ ＦｃレセプタータイプIII、Bjorck,L.およびKronvall,G., J.Immunol., 133, 969(1984)参照）も、広範囲の哺乳動物種由来のＩｇＧ分子のＦｃ領域と結合する。レクチンは糖タンパク質や炭水化物に存在してよい糖部分と結合するタンパク質である。レクチンの各タイプは、該糖部分に対する特異性を持つため、ある範囲の糖タンパク質や正しい糖部分を保持する複雑な炭水化物と結合することができよう。
【００１１】
さらなる態様において、抗ＦＩＴＣ抗体をアダプター分子として用いることができる。この態様では、分析物に対する検出電極の特異性は、適切な特異性のＦＩＴＣ標識レセプターを抗ＦＩＴＣ抗体と結合させることによりもたらすことができる。
電導性ポリマーフィルム中／上にアダプター分子を用いることによっても、アダプター分子による電導性ポリマーの遊離表面のブロッキングと結びついた、検出電極と接触中の被検溶液成分の非特異的相互作用を減らすことにより電気化学的分析中に得られる結果の信頼性がかなり改善される。アダプター分子の使用も、例えば、さらなる表面ブロッキング手順の必要性を除去することにより、検出電極の製造方法の技術的効率を増大させる。
本発明の電位差測定検出電極は、製造に費用がかからず、便宜上、１回の電気化学的検出実験や一連の検出実験に使用して捨てることを意図した、ディスポーザブル形式で製造することができる。さらに本発明は、電気化学的検出に必要な検出電極と参照電極の両方を含む電極アセンブリーを提供する。以下で述べるように、適切な参照電極には銀／塩化銀およびカロメル（塩化水銀）電極が含まれる。該電極アセンブリーは、検出電極と参照電極を接続するための電気的接点を備えた、安価な物質から製造された覆いまたはホルダーを含むディスポーザブルユニットとして提供するのが好都合である。
本発明の検出電極は、限定されるものではないが、抗原の二重抗体サンドイッチアッセイ、抗体の二重抗原サンドイッチアッセイ、抗原の競合アッセイ、抗体の競合アッセイ、ヒト抗体検出用の血清学的アッセイ（例えば、標識抗ヒト抗体を用いるRubella IgG抗体）、およびＩｇＭアッセイ（例えば、IgM−Rubella抗体）を含む広範囲の電気化学的分析法に用いることができる。
【００１２】
第二の局面において、本発明は、アビジン、ストレプトアビジン、および電導性ポリマーに固定化した少なくとも１種類のレセプター分子と結合することができる分子からなる群から選ばれるアダプター分子を含む電導性ポリマー層でコートされた電導性電極を含む、分析物の電気化学的検出法に用いる検出電極の製造方法であって、
ａ）電導性ポリマーのモノマー単位とアダプター分子を含む電気化学的重合溶液を調製し、
ｂ）コートする電極を該電気化学的重合溶液に浸漬し、
ｃ）該電極と電気化学的重合溶液間の周期的電位を適用して該溶液からポリマーを電気化学的に合成することにより電極をコートする（ここで、周期的電位は少なくとも１完全周期を適用する）工程を含む方法を提供する。
さらに本発明は、アビジン、ストレプトアビジン、および電導性ポリマーに吸着した少なくとも１種類のレセプター分子と結合することができる分子からなる群から選ばれるアダプター分子を含む電導性ポリマー層でコートされた電導性電極を含む、分析物の電気化学的検出法に用いる検出電極の製造方法であって、
ａ）電導性ポリマーのモノマー単位を含む電気化学的重合溶液を調製し、
ｂ）コートする電極を該電気化学的重合溶液に浸漬し、
ｃ）該電極と電気化学的重合溶液間の周期的電位を適用して該溶液からポリマーを電気化学的に合成することにより電極をコートし（ここで、周期的電位は少なくとも１完全周期で適用する）、
ｄ）該アダプター分子が該電極をコーティングする電導性ポリマー上に吸着するようなアダプター分子を含む溶液と、該コートされた電極を接触させる工程を含む方法を提供する。
【００１３】
本発明の方法によれば、電導性ポリマーフィルムは、モノマー溶液からの電気化学的合成により電導性電極表面に沈殿する。電導性電極は、水性媒質中で安定な金属または金属に準ずる電導性を有する標準的電位差測定用電極であることが好ましい。本明細書中の実施例に示すように、電導性ポリマーフィルムの電気的沈殿は、モノマー、極性溶媒、およびバックグラウンドの電解質を含む溶液を用いて行われる。ピロール、チオフェン、フラン、またはアニリンが好ましいモノマーである。極性溶媒として用いるには脱イオン水が好ましい。
当業者によく知られているように、電導性ポリマーは、該ポリマーの構造および／または電導特性を修飾するために、電気化学的合成段階で添加（dope）されることが多い。典型的ドーパント（dopant）アニオンは、重合工程中に組み込まれ、ポリマーの基本骨格（バックボーン）の正の荷電を中和する、サルフェート（ＳＯ４２−）である。サルフェートはイオン交換により容易に放出されないので、ポリマー構造を維持するのを助ける。本発明において、電極の感度を増大させるには、該ポリマー周囲の溶液によるイオン交換について最大能力を有するドーパントアニオンを用いることが好ましい。これは、電気化学的重合溶液の調整時にバックグラウンドの電解質として、アニオンが大イオン半径を有する塩を用いることにより達成される。アニオンが大イオン半径を有する適切な塩には、ドデシル硫酸ナトリウムおよびデキストラン硫酸ナトリウムが含まれる。電気化学的重合溶液中のこれら塩の濃度は試験の種類に応じて０．００５〜０．０５Ｍの範囲内で変動する。
【００１４】
多くの論文［４、５］が報告しているように、溶液に浸漬した電導性(導電性)ポリマーについてイオン平衡が達成される速度およびイオン交換が生じる容易さは、本質的に、電気沈殿段階で導入されるドーパントアニオンのサイズに依存し、ドーパントアニオンのイオン半径がより大きければ、より急速なイオン交換が生じ、より急速に平衡状態に達する。これは、溶液のイオン組成の変動に応じた「金属電極−電導性ポリマー」の電位が変化する速度と値に直接結びついている［６］。
電導性ポリマー膜は、いずれも検出電極表面へのレセプターの結合と、緩衝溶液組成の変動に対して検出電極を敏感にするのを助ける二重の機能を果たす。特に、電導性ポリマーの酸化還元組成に影響を及ぼす緩衝溶液の組成変化は、検出電極の定常状態における電位に、対応する変化を生じる。
【００１５】
アダプター分子は、アダプター分子を電気化学的重合溶液に加えることにより電気化学的合成段階で電導性ポリマーフィルムに固定化されても、電気化学的重合後に電導性ポリマーフィルム表面に吸着してもよい。前者の場合は、アダプター分子の溶液を電気沈殿工程の直前に電気沈殿用溶液に加えてよい。完成した溶液の貯蔵時間が３０分以内である場合、沈殿工程は最適に行われる。特定の試験の種類に応じて、溶液中のアダプター分子濃度は５．００〜１００．００μｇ／ｍｌの範囲で変動してよい。アダプター分子含有溶液からの電導性ポリマーの電気沈殿工程は本明細書中の実施例に記載している。電気沈殿工程が完結したら、得られた検出電極を、脱イオン水および０．０１Ｍリン酸緩衝生理食塩溶液で連続してリンスし、次いで、試験の種類に応じて、微生物増殖阻害剤や殺菌剤（例えばゲンタマイシン）を含む特別な貯蔵用緩衝溶液に入れるか、室温で無塵空気中で乾燥してよい。
【００１６】
電気沈殿工程完結後にアダプター分子が吸着されるべきである場合は、以下のプロトコールを用いてよい（本発明はこの特定の方法の使用に何ら限定されるものではないことを述べておくが）。検出電極を最初脱イオン水でリンスし、新たに調製した０．０２Ｍ炭酸緩衝溶液に入れ、これを１５−６０分間保つ。次に、溶液を満たした容器に検出電極を浸漬するか、または検出電極表面に溶液を１滴のせることにより、検出電極を濃度１．００〜５０．００μｇ／ｍｌのアダプター分子を含む、新たに調製した０．０２Ｍ炭酸緩衝溶液と接触させる。検出電極を、典型的には＋４℃で１〜２４時間、アダプター分子の溶液とインキュベートする。インキュベーション後、検出電極を脱イオン水でリンスし、０．１Ｍリン酸緩衝生理食塩水溶液中に１〜４時間置く。試験の種類に応じて、次いで検出電極を微生物増殖阻害剤または殺菌剤を含む特別な貯蔵緩衝液中に置くか、または室温で無塵空気で乾燥する。
【００１７】
アダプター分子がアビジンまたはストレプトアビジンである場合は、検出電極を製造するための上記本発明方法は、所望により、さらにビオチンと結合した特異的レセプターが、ビオチン／アビジンまたはビオチン／ストレプトアビジン結合相互作用により電極の電導性ポリマーコーティングに固定化または吸着したアビジンまたはストレプトアビジン分子と結合するように、該ビオチン化レセプターを含む溶液と該コートされた電極を接触させる工程を含んでいてよい。
本発明の著者および他の研究者［１２］がともに行った研究は、最適条件下でレセプターをビオチン化すると、ビオチン化していないものに比べて特性（アフィニティ、貯蔵品質など）が変化しないことを示した。
ビオチン化として当業者に知られた方法である、ビオチンと対応するレセプターのコンジュゲーション（結合）は、知られた手順の１つ（例えば［１２］に記載のような）を用いて行うことができる。さらに、多くの既製品の、特異性の異なるビオチン化抗体が市販されている（例えば、抗ヒトＩｇＧまたは抗ヒトＩｇＡビオチン標識ヤギ抗体（Calbiochem-Novabiochem, USA）。
【００１８】
ビオチン化レセプターを用いる大きな利点の１つは、検出電極と、結合したアビジンまたはストレプトアビジンと対応するビオチン化レセプターの間の反応を生じさせることにより検出電極の特異性を変化させることができることである。先に記載したように、アビジン／ストレプトアビジンが結合した検出電極は事実上「普遍的検出電極」であり、試験する所望の分子に対する特異性は適切なビオチン化レセプターの結合により付与される。試験する分析物に特異的な、アビジンまたはストレプトアビジンが結合した検出電極を製造するには、検出電極上に結合したアビジンまたはストレプトアビジンとビオチン化レセプター間で反応を行うが、このためには、溶液を満たした溶液に検出電極を浸漬するか、または検出電極表面に溶液を滴下することにより、検出電極を室温で後者の溶液と接触させる（溶液中のビオチン化レセプター濃度は一般に０．１〜１００μｇ／ｍｌであり、接触時間は３〜１５分間である）。
レセプター分子は別の分子（分析物）と特異的に結合することができるあらゆる分子であり得る。適切なレセプターの種類には、モノクローナルおよびポリクローナル抗体、キメラ抗体、抗原認識能を保持している抗体断片（例えば、ＦａｂおよびＦａｂ２断片）、組換えタンパク質およびその断片、合成ペプチド、抗原、一本鎖ＤＮＡ、ＲＮＡまたはＰＮＡ分子、ホルモン、ホルモンレセプター、酵素、化合物などが含まれる。
【００１９】
上記のように、当該分野で知られた、電位差測定用検出電極を用いる電気化学的検出法は、小さい非荷電の抗原の検出に使用するには限界がある。この問題を克服し、厳密な定量結果を得るために、荷電標識と結合した第二レセプターまたは競合分子を用いてよい。
したがって、さらなる局面において、本発明は、試料中の分析物の電気化学的検出法であって、
ａ）試料中の検出すべき所望の分析物を結合することができるレセプターを固定化または吸着した電導性ポリマーコーティングを有する検出電極を得、
ｂ）該所望の分析物が該固定化または吸着レセプターと結合するように試料を含む被検溶液に検出電極を浸漬し、
ｃ）固定化または吸着レセプターと結合する部位から空間的に離れた部位で該分析物と結合することができる、荷電標識と結合した第二レセプターを含む溶液と検出電極を接触させ、
ｄ）処理した検出電極と参照電極の両方を電解液中に浸漬したときの、それらの間の電位差をモニターし、
ｅ）一定ｐＨにおける電解液のイオン強度の変化に伴う検出電極と参照電極間の電位差をモニターする工程を含む方法を提供する。
上記方法のアフィニティ反応工程は、同業者によく知られた標準的サンドイッチ法に等しい。分析のサンドイッチ形式は、試験に用いるレセプターおよび標識第二レセプターが抗原上の空間的に異なる種々のエピトープと結合する抗体である多価抗原の検出に特に有用である。該サンドイッチ形式は、抗原が空間的に分離した２またはそれ以上の同じエピトープを保持する場合にも用い得る。この後者の場合、試験に用いるレセプターおよび標識第二レセプターは同じ特異性の抗体であってよい。
【００２０】
競合アッセイ形式で電気化学的分析を行うことも本発明の範囲内である。したがって、本発明は、試料中の分析物の電気化学的検出法であって、
ａ）レセプター試料中の検出すべき所望の分析物と結合することができるレセプターを固定化または吸着した電導性ポリマーコーティングを有する検出電極を得、
ｂ）該所望の分析物が該固定化または吸着レセプターと結合するように試料を含む被検溶液に検出電極を浸漬し、
ｃ）該固定化または吸着レセプターと結合することができる、荷電標識と結合した競合分子を含む溶液と検出電極を接触させ、
ｄ）電解液中に浸漬したときの、処理した検出電極と参照電極の間の電位差をモニターし、
ｅ）一定ｐＨにおける電解液のイオン強度の変化に伴う検出電極と参照電極間の電位差をモニターする工程を含む方法も提供する。
【００２１】
この競合電気化学的アッセイにおいて、競合分子は、標識分析物、または固定化／吸着レセプター上の同じ分析物結合部位と結合することができる、標識された、分析物の構造的類似体であるかもしれない（図５Ｂおよび図７Ｂ参照）。低分子の分析物（例えば、本明細書中の実施例に記載のジゴキシン）の検出には、標識分析物を競合分子として用いるのが特に好ましい。あるいはまた、競合分子は固定化／吸着レセプターの異なる部位に結合してよい。例えば、固定化レセプターが抗体である場合は、抗免疫グロブリン抗体（好ましくはＦａｂ特異的）、または適切な特異性の抗イディオタイプ抗体であるかも知れない（図５Ａおよび図７Ａ参照）。
【００２２】
本出願の図５Ａ、５Ｂ、７Ａ、および７Ｂを参照して当業者が容易に理解するであろうように、競合検出法は、通常、検出電極表面に過剰のレセプター部位があることに依存する。分析物と結合しないレセプターは競合分子と結合するのに利用されよう。レセプター部位の総数が一定のままであるとすると、結合競合分子の量は、存在する分析物の量と反比例するであろう。
分析物の濃度と結びついた化学的信号を測定可能な電気信号に変換するには、第二レセプターまたは競合分子と結合する荷電標識は以下の特性を有するあらゆる荷電標識であり得る。（ｉ）パートｄ）の電解液のｐＨで正味の荷電を保持し、（ii）この荷電の大きさが一定ｐＨでの電解液のイオン強度の変化に応じて変化する。
好ましい荷電標識は、高度に荷電されており、１静電単位（ｅ）より大きいパート（ｄ）の電解質のｐＨで正味の荷電を有する。適切な荷電標識には、金、フェロセン、およびラテックスミクロスフェアが含まれる。荷電標識の荷電の大きさは、工程（ｄ）および（ｅ）間のイオン強度のステップ変化が検出電極と参照電極間の検出可能な電位差の変化を生じるように検出電極上の電導性ポリマーコーティングの酸化還元組成に影響を与える。荷電標識は、レセプター／分析物／第二レセプター複合体（サンドイッチアッセイ）、またはレセプター／競合分子複合体（競合アッセイ）の形成において電導性ポリマーに極めて接近するのみである。すなわち、荷電標識を用いることにより、正しい定量結果を得ることができ、小さな非荷電の分析物を試験する能力に関して、試験可能な分析物の範囲がかなり広がる。
【００２３】
ラテックスミクロスフェアは、第二レセプターまたは競合分子と結合した、好ましい荷電標識である。ラテックスミクロスフェアを用いるコンジュゲーションは、例えば［１７］または［１８］に記載の、知られた技術の１つ用いるか、またはラテックスミクロスフェアと抗体をコンジュゲーションさせるための特殊な市販キット、例えば、「Carbodiimide Kit for Carboxylated Beads」（Polysciences Inc., USA）を用い、製造業者が提供するプロトコールに従って行うことができよう。ある種の既製のラテックスコンジュゲートは、専門の製造業者（例えば、Polysciences Inc., USA）から市販されている。
荷電標識を用いる代わりに、分析物濃度に関連する化学信号を測定可能な電気信号に変換するために、酵素標識と結合した第二レセプターまたは競合分子を用いる上記方法と同等の電気化学的検出法を実施することもできる。
【００２４】
したがって、本発明は、さらに試料中の分析物の電気化学的検出法であって、
ａ）レセプター試料中の検出すべき所望の分析物と結合することができるレセプターを固定化または吸着した電導性ポリマーコーティングを有する検出電極を得、
ｂ）該分析物が該固定化または吸着レセプターと結合するように試料を含む被検溶液に検出電極を浸漬し、
ｃ）固定化または吸着レセプターと結合する部位から空間的に離れた部位で該分析物と結合することができる、酵素と結合した第二レセプターを含む溶液と検出電極を接触させ、
ｄ）処理した検出電極と参照電極の両方を電解液中に浸漬したときの、それらの間の電位差をモニターし、
ｅ）該酵素の基質を含む電解液に曝露した後の検出電極と参照電極間の電位差をモニターする工程を含む方法を提供する。
【００２５】
ａ）レセプター試料中の検出すべき所望の分析物を結合することができるレセプターを固定化または吸着した電導性ポリマーコーティングを有する検出電極を得、
ｂ）該所望の分析物が該固定化または吸着レセプターに結合するように試料を含む被検溶液に検出電極を浸漬し、
ｃ）該固定化または吸着レセプターと結合することができる、酵素と結合した競合分子を含む溶液と検出電極を接触させ、
ｄ）処理した検出電極と参照電極の両方を電解液中に浸漬したときの、それらの間の電位差をモニターし、
ｅ）該酵素の基質を含む電解液に曝露した後の検出電極と参照電極間の電位差をモニターする工程を含む、対応する競合電気化学的検出法も本発明の範囲内である。
【００２６】
上記方法のある態様において、第二レセプターまたは競合分子と結合した酵素は、検出電極の電導性ポリマーコーティングの酸化還元組成に直接影響を及ぼす基質を、電導性ポリマーコーティングの酸化還元組成に対する検出可能な効果を持たない生成物に変換することができる。
別の態様において、第二レセプターまたは競合分子と結合した酵素は、検出電極の電導性ポリマーコーティングの酸化還元組成に対する検出可能な効果を持たない基質を、電導性ポリマーコーティングの酸化還元組成に直接または間接的に影響を及ぼすことができる生成物に変換することができる。そのような酵素の例はホースラディッシュパーオキシダーゼである。酵素反応の生成物が電導性ポリマーの酸化還元組成に間接的影響を及ぼし得る１つの方法は、電解液のｐＨを変化させることである（この態様において、電解液のｐＨは緩衝されない）。そのような生成物を生じる酵素の例はウレアーゼである。
さらなる態様において、第二レセプターまたは競合分子と結合した酵素は、検出電極の電導性ポリマーコーティングの酸化還元組成に対する検出可能な効果を持たない生成物を、第二酵素の基質である生成物に変換することができる（ここで、第二酵素の作用により電導性ポリマーの酸化還元組成に直接または間接的に影響を及ぼす第二生成物が生じる）。
【００２７】
すべての態様において、コンジュゲート酵素は、レセプター／分析物／第二レセプター複合体（サンドイッチアッセイ）の形成、またはレセプター／競合分子複合体（競合アッセイ）の形成により電導性ポリマーに極めて接近する。
第二レセプターまたは競合分子と酵素標識のコンジュゲーションは当該分野で知られたあらゆる技術により行ってよい（例えば、［１９］参照）。広く利用可能な、種々の酵素標識と種々の特異性のレセプターとのコンジュゲートの市販調製物も使用できる。
上記電気化学的検出法はすべて、別の分子（分析物）と特異的に結合することができるあらゆる種類のレセプターを用いて行うことができる。適切なレセプターには、モノクローナルおよびポリクローナル抗体、キメラ抗体、抗原認識能を保持する抗体断片（例えば、ＦａｂおよびＦａｂ２断片）、組換えタンパク質およびその断片、合成ペプチド、抗原、一本鎖ＤＮＡ、ＲＮＡもしくはＰＮＡ分子、ホルモン、ホルモンレセプター、酵素、化合物などが含まれる。
第二レセプターまたは競合分子が荷電または酵素標識とコンジュゲートするかどうかに関わらず、本発明の検出法すべての感度は「連続（逐次）」形式のアフィニティ反応（すなわち、工程（ａ）〜（ｃ））を行うことにより達成される。これは、試験する分析物が多価抗原である場合に特にそうである（すなわち、サンドイッチアッセイ）。該連続形式では、レセプターが結合した検出電極を、最初、分析物の存在を試験する試料を含む被検溶液と接触させる。本明細書で用いている用語「試料」には、その範囲内に、全血、血清、血漿、尿、リンパ液、能脊髄液、または精液、周囲（環境）の液体、食品および飲料品産業で使用または生産される物質、またはそれらのあらゆる希釈物もしくは抽出物が含まれる。試料には固体物質の溶液もしくは抽出物も含まれてよい。試験溶液用に用いる容器は、マイクロタイタープレートのウェル、微量遠心チューブ、または適切な大きさの他のあらゆる容器であってよい。試験溶液の容量は、検出電極の幾何学的大きさに応じて一般に５〜２００μｌであろう。検出電極と被検溶液の接触時間は、連続的に攪拌するか攪拌せずに、典型的には１５〜４０℃で３〜３０分間である。
【００２８】
被検溶液と接触後、検出電極を標識第二抗レセプターの溶液を含む溶液に移す。用いる容器と溶液の容量は検出電極と被検溶液の接触に用いるものと同様である。溶液中の標識第二レセプターまたは標識競合分子の濃度は、試験に必要な感度に応じて典型的には１〜１００μｇ／ｍｌである。連続的に攪拌するか攪拌せずに、１５〜４０℃で３〜３０分間接触させる。
「連続」形式に代わるものとして、検出電極を適切な標識第二レセプターまたは標識競合分子を加えた被検溶液と約５〜６０分間の接触時間で接触させることにより行程（ｂ）および（ｃ）を同時に行うことにより、実質的に全試験時間を減らし、試験手順を簡略化することができる。被検溶液に加える標識第二レセプターまたは標識競合分子の濃度は、その種類、特異的特性、および試験に必要な感度に応じて、典型的には１〜１００μｇ／ｍｌである。
得られる結果をゆがめることになる、試験する生物学的液体成分と検出電極の間に生じうる非特異的相互作用や、標識第二レセプターまたは標識競合分子の検出電極表面への非特異的吸着を排除するために、種々のブロッキング剤を標識第二レセプターまたは標識競合分子の溶液に加えてよい。適切なブロッキング剤には、ウシ血清アルブミン（０．５〜５重量％）、希正常ヒトまたは動物血清（５〜１０容量％）、ゼラチン（１０〜５０容量％）などが含まれる。そうすることにより検出電極のあらゆる遊離表面が同時にブロッキングされ、標識第二レセプターまたは標識競合分子と検出電極の相互作用が達成される。
【００２９】
本発明の検出法のすべてにおいて、固定化／吸着アダプター分子を含む電極を用いることができる。特に、ビオチン／アビジン、ビオチン／ストレプトアビジン、プロテインＡ／抗体、プロテインＧ／抗体、ＦＩＴＣ／抗ＦＩＴＣまたはレクチン／糖結合相互作用によりレセプター分子を検出電極表面に結合させてよい。
アダプター分子を含む「普遍的」検出電極を用いることにより「ワン−ポット」形式で検出方法を実施することができる。この態様において、アフィニティ反応は、相互作用する分子間の接触を最大にし、感度を最大にし、試験時間を最小にする均質な溶液中で行われる。この場合、レセプター溶液と標識第二レセプターまたは標識競合分子の溶液は、同時または連続的に、単一反応溶液中の分析物を含む懸濁試料を含む被検溶液に加えられる。被検溶液中のレセプターおよび標識第二レセプターまたは標識競合分子の濃度は、典型的にはそれぞれ０．１〜１００μｇ／ｍｌおよび１−１００μｇ／ｍｌである。次に、結合反応が生じるように、被検溶液を連続的に混合するか混合せずに１５〜４０℃で５〜６０分間インキュベートする。次いで、適切なアダプター分子を含む検出電極を、被検溶液を含む溶液に浸漬するか、または検出電極表面に被検溶液を１滴おくことにより被検溶液と接触させる。検出電極と被検溶液の接触時間は、典型的には１５〜４０℃で３〜３０分間である。次に、検出電極に結合した分析物の量を、第二レセプターまたは競合分子が荷電標識または酵素標識のいずれで標識されているかに応じて、「イオン−ステップ」法を用いるかまたは適切な酵素基質を加えることにより測定する。
【００３０】
アフィニティ反応行程が完結したら、電気化学的測定用セルを、測定器でつなげた検出電極および参照電極を電解質溶液（本明細書ではワーキング溶液とも呼ぶ）と接触させることにより組み立て、測定装置を用いて一定時間の参照電極に対する検出電極電位を記録する。市販の適切な大きさの参照電極や本発明を実施するために設計された電極も参照電極として用いてよい。測定器は、標準的電位差測定器またはポテンシオスタット（potentiostat）である。本発明を実施するために設計され、カスタムソフトウエアで制御されるＰＣ適合電子測定器も用いることができる。
検出電極と参照電極を接続するための電気的接点を備え、ケーブルまたは他の手段で測定器と接続した特殊なホルダーにより検出電極および参照電極を測定器と好都合に繋ぐことができる。測定システムの全体の大きさを小型化することができる、測定器と一体になったホルダーも使用できよう。
リン酸生理食塩水、トリス−ＨＣｌ、カーボネート、ビカーボネート、アセテート、ボレート（borate）などの水性緩衝溶液をワーキング溶液として用いる。電気化学的セル中のワーキング溶液の容量は、検出電極の幾何学的大きさに応じて典型的には５０〜５０００μｌである。緩衝溶液の容器は、吸着特性が最小限の物質でできた、あらゆる適切な大きさの容器、例えば標準的マイクロタイタープレートであってよい。本発明の別の態様は、緩衝溶液をペリスタルティック（peristaltic）ポンプや他の手段で送り込むことができる、検出電極および参照電極の一体化ホルダーと連結して使用可能な低容量（＜１ｃｍ３）のフロースルーセルを用いる変形（バリアント）である。
【００３１】
参照電極電位に対する検出電極電位を、電位差測定装置またはポテンシオスタットに接続したチャートレコーダーを用いるか、またはＰＣ適合電子計測器を用いる特別なプログラムにより一定時間記録する。後者の場合は、該プログラムでは、予め決定した時間間隔（典型的には３〜５秒毎に合計１０〜１００秒間）で参照電極電位に対する検出電極電位を評価し、座標「検出電極信号−時間」上に点の形で結果を表示する。参照電極電位に対する検出電極電位の記録を記録することにより、検出電極のバックグラウンド電位値Ｖ１を測定し、検出電極のバックグラウンド電位ドリフト（γ）を評価する（これは、最小二乗法を用いて得られる「検出電極信号−時間」曲線の直線化により計算される）。
第二レセプターまたは競合分子を荷電標識と結合させる場合は、一定ｐＨの電解質溶液のイオン強度を変化させることにより（いわゆる「イオン−ステップ」法）検出電極に結合した分析物の量を評価する。
イオン−ステップ法では、検出電極および参照電極を備えたホルダーを最初のワーキング溶液からイオン強度が異なる同じ組成の第二ワーキング溶液に移すか、または検出電極および参照電極を浸漬したワーキング溶液にイオン強度の異なる（高いかまたは低い）緩衝溶液を直接加えることにより、電解質溶液のイオン強度を変更（上方または下方に）してよい。フロースルーセルを用いる場合は、異なるイオン強度の緩衝溶液を用いて該セルから最初のワーキング溶液を追い出すことにより電解質溶液のイオン強度を変更することができる。
【００３２】
種々のイオン強度を有するワーキング溶液は、種々の濃度の塩、例えばＫＣｌ、Ｎａ２ＳＯ４などを加えることにより達成される（それらは、溶液に加えたときに完全に解離し、溶液のｐＨを偏らせないことから用いられる）。ワーキング溶液の塩濃度は０．０１〜０．１Ｍである。
第二レセプターまたは競合分子を酵素と結合する場合は、「イオン−ステップ」法を行う必要はない。そのかわり、ワーキング溶液の組成はその酵素に適した基質を加えることにより変更される。このために、検出電極および参照電極を備えたホルダーを最初のワーキング溶液を含む容器からワーキング溶液および基質を含む容器に移すか、または基質溶液を検出電極および参照電極を浸漬した最初のワーキング溶液に直接加えることができる。フロースルーセルを用いる場合は、基質を含むワーキング溶液を用いてセルから最初のワーキング溶液を追い出すことによりワーキング溶液の組成を変更することができる。
【００３３】
用いてよい基質には、ＡＢＴＳ（｛２，２’−アジノ−ビス−［３−エチルベンズチアゾリン−６−スルホン酸］｝）、ＴＭＢ（３，３，５，５’−テトラエチルベンジジン）、ＤＡＢ（３，３’ジアミノベンジジン）（ここで、酵素標識はパーオキシダーゼである）、尿素（ここで、酵素標識はウレアーゼである）、ｐ−ＮＰＰ（ｐ−ニトロフェニルホスフェート）、ＢＣＩＰ（５−ブロモ−４−クロロ−３−インドリルホスフェート）（ここで、酵素標識はアルカリホスファターゼである）が含まれる。
【００３４】
ワーキング溶液のイオン強度の段階的変化または酵素基質の添加に応じた参照電極電位に対する検出電極電位の変動を測定器を用いて一定時間記録する。さらに、電位差測定装置またはポテンシオスタットに接続したチャートレコーダーを用いるか、またはＰＣ適合電子計測器を用いる特別なプログラムにより記録を行う。後者の場合には、該プログラムでは、予め決定した時間間隔（典型的には３〜５秒毎）で参照電極電位に対する検出電極電位を評価し、座標「検出電極信号−時間」上に点の形で結果を表示する。個々の試験の種類に応じて、参照電極電位に対する検出電極電位の変動を記録するの要する時間は３０秒間から６００秒間の間で変動する。
緩衝溶液のイオン強度が変化する場合は、参照電極電位に対する検出電極電位の変動について得られる曲線は、通常、放物線の形を取り、電導性ポリマーフィルムの総荷電（導電点）により調節される、緩衝溶液のイオン強度変化に対する検出電極の反応を示す。
【００３５】
分析をサンドイッチアッセイとして行う場合、該ポリマーフィルムの総荷電の変動は、試験する分析物の量に正比例する。しかしながら、分析を競合アッセイとして行う場合、該ポリマーフィルムの総荷電の変動は、試験する分析物の量に反比例する。
該方法のこの段階が完結したら、参照電極電位に対する検出電極電位の最終値Ｖ２を測定する。次に、参照電極電位に対する検出電極電位の変化について以下の定量的特性を計算することができる。
１．参照電極電位に対する検出電極電位の変化について得られた曲線により示された面積（積分）：
【数１】
0004774150.tif 000002
［式中、Ｔ２−Ｔ１＝参照電極に対する電位またはバックグラウンド電位ドリフトを記録するための総時間、ｆ２−「検出電極電位（ミリボルト）対時間」の曲線、t−電流記録時間、および
２．検出電極のバックグラウンドと最終電位の差（ミリボルト）：
δ＝Ｖ２−Ｖ１
ワーキング溶液の組成またはイオン強度の変化に応じた検出電極電位変動の定量的特性に基づいて、被検溶液中の標的分析物の定量的含有量を測定する。
【００３６】
上記のごとく得られたγ、Ｓ２、および／またはδの値を用い、被検溶液中の標的分析物量の測定に基づいて、ゼロラインのドリフトγを考慮する値を再計算し、Ｓ２γおよび／またはδγ値を得ることができる。訂正値Ｓ２γおよびδγを、「分析結果対標的分析物量」の較正曲線と比較してよい。当業者が容易にわかるであろうように、既知の標的分析物量を含む、一定範囲の被検溶液を用い、上記方法と同様の方法で較正曲線を構築するためのデータを得ることができる。
さらなる局面において、本発明は、試料中の分析物の電気化学的検出法であって、
（ａ）電導性ポリマーに固定化または吸着したアビジンまたはストレプトアビジンを含む電導性ポリマー層でコートした電導性電極を含む検出電極を得（ここで、該アビジンまたはストレプトアビジン分子は、ビオチン／アビジンまたはビオチン／ストレプトアビジン結合相互作用により、検出すべき分析物を結合することができるレセプター分子と結合する）、
（ｂ）該所望の分析物が該固定化または吸着レセプター分子と結合するように試料を含む被検溶液と検出電極を接触させ、
（ｃ）検出電極と参照電極の両方を電解液に浸漬したときの参照電極に対する検出電極電位をモニターし、
（ｄ）一定ｐＨでの電解液のイオン強度または組成の変化に伴う参照電極に対する検出電極電位差をモニターする工程を含む方法を提供する。
【００３７】
本電気化学的検出法は、標的分析物のレセプターに対する結合が、別個の荷電または酵素標識を必要とせずに測定できるような十分大きな検出電極表面の荷電変化を生じる場合に有用である。特に、この方法は核酸の電気化学的検出に有用である。検出電極表面に結合した核酸プローブ（例えばオリゴヌクレオチド）に対する標的核酸のハイブリダイゼーションは、「イオン−ステップ」法により検出できるような十分大きな荷電変化により達成される。すなわち、荷電標識と結合した第二レセプターまたは標的分子を用いる必要はない。特異的核酸を含むと思われる物質（例えば生物学的液体）は、通常、検出法にかける前に増幅工程（例えばＰＣＲ）にかけてよい。したがって、増幅法にかけた試料について特異的核酸の電気化学的検出法を行うことも本発明の範囲内である。
さらに本発明は、以下の実施例（限定のためではない）およびそのおもな実施段階を示す添付図を参照して理解されよう。
【００３８】
実施例で用いた試薬、物質、および装置は以下の通りであった。
試薬および物質：
ピロール（＞９８％）はMerckから購入し、使用前に減圧蒸留により２回精製し、次いで＋４℃、Ｎ２下にて不透明容器中で貯蔵した。
以下の試薬はすべてSigma Chemical Co.(USA)から購入した：
水酸化カリウム（KOH）、ACS試薬）、水酸化ナトリウム（NaOH、ACS試薬）、アジ化ナトリウム（Sigma Ultra）、硫酸セリウム(IV)（ACS試薬）、塩化カリウム（Sigma Ultra）、トリス［ヒドロキシメチル］アミノメタン（Sigma Ultra）、ドデシル硫酸ナトリウム（SDS、＞９９％）、デキストラン硫酸ナトリウム（mol.wt.〜８０００）、イソプロピルアルコール（ACS試薬）、アセトン、塩化水素酸（ACS試薬）、塩素酸（ACS試薬）、Ｎ，Ｎ−ジメチルホルムアミド（ACS試薬）、グリシン緩衝溶液０．２Ｍ）、「トリス緩衝生理食塩水錠」、「リン酸緩衝生理食塩水錠」、o-フェニレンジアミン・２塩酸錠」、ウシ血清アルブミン(RIA級、分画Ｖ)、凍結ウシ血清、ストレプトアビジン（Streptomyces abidinii由来）、ＮＨＳ−ｄ−ビオチン、ジメチルスルホシキド（DMSO、ACS試薬）、
ビオチン−Ｘ−Ｘ−ＮＨＳ、ウシアルブミンに対するウサギポリクローナル抗体、マウスＩｇＧに対するヤギポリクローナル抗体とウレアーゼのコンジュゲート、ジコキシン、マウスモノクローナル抗ジコキシンクローンＤＩ−２２ビオチンコンジュゲート、パーオキシダーゼ（１００単位／ｍｇ固体）、ディスポーザブル透析バッグ（MWCO 1,000）、特記しない限り、リン酸緩衝生理食塩水溶液（ＰＢＳ）はｐＨ７．４を用いた。
【００３９】
Ｂ型肝炎表面抗原に対するマウスモノクローナル抗体（ＨＢｓＡｇ）（５．７ｍｇ／ｍｌ、０．０１％アジ化ナトリウムを含むリン酸緩衝生理食塩水溶液中）、マウスＩｇＧに対するヒツジポリクローナル抗体（１０．０ｍｇ／ｍｌ、０．０１％アジ化ナトリウムを含むリン酸緩衝生理食塩水溶液中）、およびＨＢｓＡｇに対するマウスモノクローナル抗体とパーオキシダーゼのコンジュゲート（２．５ｍｇ／ｍｌ、０．０１％アジ化ナトリウムを含むリン酸緩衝生理食塩水溶液中）は、Sorbent-Service Ltd.（Russia）から購入した。
凍結乾燥インスリン（ウシ、〜２０ＩＵ／ｍｇ）、およびインスリンに対するモノクローナル抗体（１．２ｍｇ／ｍｌ、リン酸緩衝生理食塩水溶液中）はRussian Academy of Medical Sciences付属のCardiology Research Centreのメンバーより寄付。
ニックトランスレーションによりビオチン化した二本鎖ＤＮＡプローブ（長さ〜１ｋｂ）の凍結乾燥調製物［２０］、ビオチン化ＤＮＡプローブと相補的な二本鎖ＤＮＡの凍結乾燥調製物、ビオチン化ＤＮＡプローブと相補的でない二本鎖ＤＮＡの凍結乾燥調製物、サケ精液由来ＤＮＡの凍結乾燥調製物、およびＤＮＡハイブリダイゼーション用緩衝溶液は、すべてMinistry of Health付属のScientific Research Institute of Biophysicsのメンバーより寄付。
【００４０】
Polybead（登録商標）Sulphate Microspheres (2.5% Solids-Latex、０．２μｍ)はPolysciences Inc.から購入した。
Lavsan（登録商標）フィルム（〜５００μｍ厚）はVladimir Chemical Plant(Russia)から購入。
真空中に分散したクロミウム標的およびフォトレジスト<<ＦＰ−３８３>>は、NIIPIK Institute（Russia）から購入。
脱イオン水（試薬級、抵抗＞１８ＭΩ）は、Millipore Milli-RO/Milli-Q Systemを用いて得た。
プラチナ線、厚さ〜０．５ｍｍ。
Ｂ型肝炎表面抗原の第二英国ワーキング標準品（HbsAg濃度、０．５０ｉＵ／ｍｌ）、North London Blood Transfusion Centre, UKより寄付。
HBsAg陽性ヒト血清試料、North London Blood Transfusion Centre, UKより寄付。
【００４１】
装置：
ＵＶＮ真空沈殿（deposition）ユニット（Russia）。
<<ＰＮＦ−６Ｔｓ>>フォトレジスト適用ユニット（Russia）。
自家製フォト−テンプレート（WO96/02001の図１、図３または図４に示す電極デザインをもたらすフォト−テンプレートが適している）。
自家製Soxhlet装置。
ＥＵ１８乾燥加熱キャビネット（Jouan,France）。
<<ＰＩ−５０．１>>標準積分器（integrator）と２座標(twin-coordinate)レコーダー付きポテンシオスタット−ガルバノスタット（galbanstat）。
２チャンネルレコーダー２２１０（LKB-Pribori, Sweden）。
標準コンビネーション電極付きチェックメートｐＨメーター(Mettler, Switzerland)。
自家製Ａｇ／ＡｇＣｌセミミクロ参照電極；直径〜２．５ｍｍ、飽和ＫＣｌ溶液充填。
Ａｇ／ＡｇＣｌ参照電極Ｎ°４７６３７０（Corning）。
増幅器とアナログ−デジタル変換器を含む、目的に合わせて設計したＰＣ適合測定器；注文（カスタム）ソフトウエアで制御。
目的に合わせて設計した検出電極および参照電極ホルダー。
【００４２】
（実施例）
実施例１．
ＨＢｓＡｇ測定法：競合アッセイ；試料−希釈標本；受容体（レセプター）−ビオチン化したモノクローナルマウス抗−ＨＢｓＡｇ；競合分子−標識化したヒツジポリクローナル抗−マウスＩｇＧ；電荷標識−ラテックス。
【００４３】
１．１．  電極物質は、６０×４８ｍｍのラブサン（Ｌａｖｓａｎ）フィルムから製造し、次いで熱イソプロパノール蒸気中で洗浄し、熱イソプロパノール蒸気中で乾燥した。マグネトロン析出によって、該物質にクロム層（０.０５μｍ）を塗布した。遠心分離によって、そのクロム層にフォトレジストを塗布し、＋８０℃で２０分間乾燥した。パターン化した感光基板を通した紫外線を用いて、フォトレジスト層を露光させた。フォトレジスト層をＫＯＨ溶液中で現像し、次いで＋１００℃で２０分間乾燥した。硫酸第２セリウム中でエッチングすることによって、クロムパターンを得た。ジメチルホルムアミドを用いて、フォトレジストを除き、続いてイソプロパノール蒸気中ですすぎ、乾燥した。塩化金（ＩＩＩ）溶液からガルバニ析出によって、クロムパターンに金層（０.５０μｍ）を塗布し、続いてイソプロパノール中ですすぎ、乾燥した。
【００４４】
１．２．  その結果得られた電極を、２〜５％のＫＯＨ溶液中で３０分間かけて２回洗浄し、次いで脱イオン水ですすぎ、アセトン中で５分間、２回洗浄し、次いで室温で２０分間、風乾した。次いで、その電極をフッ素プラスチックホルダーに装着し、ソックスレット容器（Ｓｏｘｈｌｅｔ  ｖｅｓｓｅｌ）中に置き、熱イソプロピルアルコール中で０.５〜２時間洗浄した。次いで、電極を完備したホルダーをソックスレット容器から取りだし、電極をイソプロピルアルコール蒸気中で乾燥した。これらの操作が完結後、その電極を封したガラス容器中に置いた。
【００４５】
１．３．  塩化ナトリウム（８.０ｇ）、トリス(ヒドロキシメチル)アミノメタン（１２.２ｇ）、塩化カリウム（０.２ｇ）およびアジ化ナトリウム（０.１ｇ）を脱イオン水（１Ｌ）に溶解することによって、検出電極用の保存液を調製した。
【００４６】
１．４．  ＨＢｓＡｇのマウスモノクローナル抗体を、以下の通りビオチン化した。
【００４７】
２０トリスで緩衝化した生理食塩水の錠剤およびアジ化ナトリウム（０.１５ｇ）を脱イオン水（１.５０Ｌ）に溶解することによって、アジ化ナトリウムを含有する０.０１Ｍ  トリスで緩衝化した生理食塩水（ｐＨ  ８.０）を調製した。
【００４８】
ＮＨＳ−ｄ−ビオチン（１.０ｍｇ）をＤＭＳＯ（１ｍＬ）に溶解した。
【００４９】
購入したＨＢＳＡｇのマウスモノクローナル抗体（５.７ｍｇ／ｍＬ、１７６μＬ）を、０.０１Ｍ  リン酸塩で緩衝化した生理食塩水（８２４μＬ）を含むミクロチューブに加えた。
【００５０】
その得られた溶液に、ＮＨＳ−ｄ−ビオチンのＤＭＳＯ溶液（５０μＬ）を加えた。
【００５１】
その混合物を含むミクロチューブをサーモミキサーに入れ、絶えず混合しながら、＋２２℃の温度で４時間保った。
【００５２】
次いで、その混合物を、５００倍の過剰量のアジ化ナトリウムを含有するトリスで緩衝化した生理食塩水（０.０１Ｍ）を用いて４℃で終夜透析した。
【００５３】
得られたビオチン化抗体の溶液を少量のアリコート（〜１０μＬ）毎に分け、＋４℃で保存した。
【００５４】
１．５．  マウスＩｇＧのヒツジポリクローナル抗体を、以下の通りラテックスミクロフェアと接合した。
【００５５】
０.２Ｍ  グリシン緩衝液（５００ｍＬ）を脱イオン水（５００ｍＬ）に加え、得られた混合物に塩化ナトリウム（８.５ｇ）およびアジ化ナトリウム（０.１ｇ）を溶解し、０.１Ｍ  ＮａＯＨ溶液を用いてｐＨを８.２に調節することによって、アジ化ナトリウムを含有するグリシンで緩衝化した生理食塩水（ｐＨ  ８.２）を調製した。
【００５６】
購入したマウスＩｇＧのヒツジポリクローナル抗体（１０ｍｇ／ｍＬ、６０μＬ）を、グリシンで緩衝化した生理食塩水（９４０μＬ）を含むミクロチューブに加えた（標識化する前に、ポリクローナル抗体をアフィニティー精製することが好ましい）。
【００５７】
ポリベッド（登録商標）スルフェートミクロフェアの懸濁液（２.５％、２００μＬ）を得られた溶液に加えた。
【００５８】
その混合物を含むミクロチューブをサーモミキサーに入れ、絶えず混合しながら、３７±１℃の温度で３０分間保った。
【００５９】
次いで、その混合物を含むミクロチューブを室温まで冷却し、それにウシ血清アルブミン（０.０１ｇ）を加えた。
【００６０】
得られた標識化抗体の溶液を少量（〜５μＬ）のアリコート毎に分け、＋４℃で保存した。
【００６１】
１．６．  重合する前に、モノマー（例えば、ピロール）を標準水冷装置中で常圧下、１３５〜１４０℃で蒸留し、封した不透明な容器中でＮ２下、−２０℃〜−５℃で保存した。電気化学的重合の溶液中でのモノマー濃度は、試験の種類に応じて０.３〜１.０Ｍの範囲内で変わる。
【００６２】
本実施例において、ピロールの電気化学的重合用の溶液を、以下の通り調製した。
【００６３】
新たに蒸留したピロール（２.５ｍＬ）およびＳＤＳ（０.０２ｇ）を脱イオン水（２０.０ｍＬ）に溶解した。
【００６４】
リン酸塩で緩衝化した生理食塩水の錠剤を脱イオン水（２００ｍＬ）に溶解し、ストレプトアビジン（４.０ｍｇ）をＰＢＳ（２ｍＬ）に溶解した。
【００６５】
ピロールおよびＳＤＳの溶液に、ストレプトアビジンのＰＢＳ溶液（１ｍＬ）を加えた。
【００６６】
最終的な溶液を回転式ミキサー中に入れ、１０分間混合した。
【００６７】
１．７．  電析プロセスは、３電極の電気化学的セル（例えば、作用電極、参照電極および補助（対）電極を含む）中で行われる。作用電極は、上記の通り製造した金属の電位差電極であり、補助電極は金または白金のワイヤーの１片であり、参照電極は銀／塩化銀電極である。
【００６８】
析出は、作用電極に連続して掃引電圧をかけたポテンシオスタットを用いて行う。高分子フィルムの所望の厚さおよび性質に応じて、電位掃引下限、電位掃引上限、電圧掃引速度および掃引の周期数は変化し、典型的にはそれぞれ、−５００ｍＶ〜＋８００ｍＶ、＋１０００ｍＶ〜＋２０００ｍＶ（Ａｇ／ＡｇＣｌ参照電極に対する相対値）、２５〜２００ｍＶ／秒および３〜３０である。
【００６９】
本実施例において、以下の通り、電着によってストレプトアビジンが結合した電極上のポリピロールフィルムを得た。
【００７０】
電気化学的重合の溶液（２００μＬ）を、ミクロタイタープレートのウェルに入れた。
【００７１】
ポテンシオスタットにつないだ電極、白金ワイヤーおよび半微量参照電極をそのウェルに浸した。
【００７２】
参照電極に対する電位の周期的な掃引は、掃引速度を１５０ｍｖ／分で、＋８００〜＋１８００ｍＶの範囲とした。
【００７３】
ポリピロールフィルムの形成プロセスは、ポテンシオスタットの対応する出力につないだ対座標チャート記録計を用いる電圧−電流曲線について、およびポテンシオスタットの対応する出力につないだ積分器およびチャート記録計を用いる電極を通過する総電気量について追跡した。析出方法全般にわたって、最初に作用電極を通過する電気量と、次の周期のものとが１５％より多く違わないことを確認するためにチェックを行った。
【００７４】
ポリピロールフィルムが特定の厚さに達すれば（電位掃引周期数−８；電極を通過する総電気量−７５０ｍＣ）、そのプロセスを停止した。
【００７５】
１．８．  ストレプトアビジンが結合したポリピロールフィルムでコーティングされた検出電極をウェルから取り出し、脱イオン水、続いて０.０１Ｍ  リン酸塩で緩衝化した生理食塩水（ｐＨ  ７.４）ですすぎ、保存液（３００μＬ）を入れたミクロチューブ中に置き、このものを＋４℃で保存した。
【００７６】
１．９．  検出電極の必要な電気量を得るために、工程１．７から１．８を繰り返した。
【００７７】
１．１０．  別々のミクロチューブ中で、Ｂ型肝炎表面抗原用第２英国ワーキング標準液（Second British Working Standard for Hepatitis B Surface Antigen）の１００、５０、２５および２０μＬに、ウシ血清をそれぞれ１００、１５０、１７５および１８０μＬを加えて、希釈倍数が２、４、８および１６で、予め解凍したウシ血清中でＢ型肝炎表面抗原用第２英国ワーキング標準液を希釈することによって、ＨＢｓＡｇ濃度が既知の試料群（２００μＬ）を製造した。純粋なウシ血清は、ＨＢｓＡｇ含有量が０である試料を得るために使用した。
【００７８】
１．１１．  ビオチン化したＨＢｓＡｇのマウスモノクローナル抗体の適当な力価溶液（０.２ｍＬ）を、０.０１Ｍ  リン酸塩で緩衝化した生理食塩水（１９.８ｍＬ）に加え、回転式振とう器中で十分に撹拌し、次いでアリコート（２００μＬ）毎にミクロチューブ中に分配した。
【００７９】
１．１２．  標識化した（ラテックス接合した）マウスＩｇＧのヒツジポリクローナル抗体の適当な力価溶液（０.１ｍＬ）を、０.０１Ｍ  リン酸塩で緩衝化した生理食塩水（１９.９ｍＬ）に加え、回転式ミキサー中で十分に混合し、次いでアリコート（２００μＬ）毎にミクロチューブ中に分配した。
【００８０】
１．１３．  作用緩衝液Ｎ°１を以下の通り調製した。
【００８１】
リン酸塩で緩衝化した生理食塩水の錠剤を、脱イオン水（２００ｍＬ）に溶解した。
【００８２】
ウシ血清アルブミン（２ｇ）およびＫＣｌ（０.３７ｇ）を、得られた溶液に溶解した。
【００８３】
１．１４．  リン酸塩で緩衝化した生理食塩水の錠剤を脱イオン水（２００ｍＬ）に溶解することによって、作用緩衝液Ｎ°２を調製した。
【００８４】
１．１５．  ストレプトアビジンが結合したポリピロールフィルムでコーティングされた検出電極の適当な数を保存緩衝液から取り出し、各々を、ビオチン化したＨＢｓＡｇのマウスモノクローナル抗体溶液を含む１ミクロチューブ（工程１．１１由来）中に置き、室温で１０分間インキュベートした。
【００８５】
１．１６．  １．１５の完結後、ビオチン化した抗体溶液を含むミクロチューブから検出電極を取り出し、各々を、ＨＢｓＡｇ濃度が既知の試料を含む１ミクロチューブ（工程１．１０由来）中に置き；次いで、検出電極を入れたミクロチューブをサーモミキサー中に置き、絶えず撹拌しながら、３７±１℃の温度で１５分間保った。
【００８６】
１．１７．  １．１６の完結後、試料を含むミクロチューブから検出電極を取り出し、ラテックスを接合させたマウスＩｇＧのヒツジポリクローナル抗体を含むミクロチューブ（工程１．１２由来）中に置き、次いで回転振とう器に置き、絶えず撹拌しながら、室温で５分間保った。
【００８７】
１．１８．  １．１７の完結後、そのミクロチューブから検出電極を取り出し、０.０１Ｍ  リン酸塩で緩衝化した生理食塩水中で３〜５秒間すすぎ、各々を作用緩衝液Ｎ°１で十分に満たしたミクロタイタープレート中に置いた。
【００８８】
１．１９．  ＰＣベースの測定装置につないだホルダーの電気接触子に、検出電極および参照電極をつなぎ、その検出電極および参照電極が溶液に浸るように、作用緩衝液Ｎ°１で十分に満たしたミクロタイタープレートの上方にそのホルダーを設置した。
【００８９】
１．２０．  特注のソフトウェアを始動させ、参照電極電位に対する検出電極電位（ミリボルト単位）を記録するために、３０秒間使用した。
【００９０】
１．２１．  １．２０の完結後、１，１９に記載の方法と同様にして、作用緩衝液Ｎ°２で十分に満たしたミクロタイタープレートの上方に、そのホルダーを設置した。
【００９１】
１．２２．  参照電極電位に対する検出電極電位（ミリボルト単位）の変化を記録するために、特注のソフトウェアを１００秒間、使用した。
【００９２】
１．２３．  特注のソフトウェアを用いて、バックグラウンドと検出電極の最終電位間の電位差δ（ミリボルト単位）を算出した。
【００９３】
１．２４．  １，１９−１．２１に記載の操作を、工程１．１０で製造したＨＢｓＡｇの濃度が既知の試料を用いて順番に繰り返した。
【００９４】
１．２５．  工程１．２４で得られた結果に基づいて、曲線「試料中のＨＢｓＡｇ濃度に対するδ」（図１０）をプロットするために、外注ソフトウェアを使用し、検出電極システムの絶対感度の閾値下限をこの曲線から決定した。
【００９５】
実施例２
ＨＢｓＡｇ測定法：競合アッセイ；試料−希釈標本；受容体−ビオチン化したモノクローナルマウス抗−ＨＢｓＡｇ；競合分子−標識化したヒツジポリクローナル抗−マウスＩｇＧ；電荷標識−ラテックス。
【００９６】
２．１．  １．１−１．５に記載の方法を行った。
【００９７】
２．２．  ピロールの電気化学的重合用の溶液を、以下の通り調製した。
【００９８】
新たに蒸留したピロール（２.５ｍＬ）およびＳＤＳ（０.０５ｇ）を、脱イオン水（２０.０ｍＬ）に溶解した。
【００９９】
２．３．  以下の通り、ポリピロールフィルムを電着によって得た。
【０１００】
電気化学的重合の溶液（２００μＬ）をミクロタイタープレートのウェルに入れた。
【０１０１】
ポテンシオスタットにつないだ電極、白金ワイヤーおよび半微量参照電極をウェルに浸した。
【０１０２】
参照電極に対する電位の周期的な掃引は、掃引速度を１００ｍＶ／秒で、＋８００〜＋２２００ｍＶの範囲をかけた。
【０１０３】
ポリピロールフィルムの製造プロセスは、ポテンシオスタットの対応する出力につないだＸ−Ｙチャート記録計を用いる電圧−電極曲線について、およびポテンシオスタットの対応する出力につないだ積分器およびチャート記録計を用いる電極を通過する総電気量について追跡した。
【０１０４】
特定の厚さのポリピロールフィルムに達すれば（電位掃引周期数−６；電極を通過する総電気量−７５０ｍＣ）、そのプロセスを停止した。
【０１０５】
２．４．  ポリピロールフィルムでコーティングされた検出電極をウェルから取り出し、脱イオン水、続いて０.０１Ｍ  リン酸塩で緩衝化した生理食塩水（ｐＨ  ７.４）ですすぎ、保存液（３００μＬ）を入れたミクロチューブ中に置き、これを＋４℃で保存した。
【０１０６】
２．５．  検出電極の必要な電気量を得るために、２．１〜２．４に記載の方法を繰り返した。
【０１０７】
２．６．  リン酸塩で緩衝化した生理食塩水の錠剤を脱イオン水（２００ｍＬ）に溶解し、得られた溶液にストレプトアビジン（１.０ｍｇ）を溶解することによって、ストレプトアビジン溶液を調製した。
【０１０８】
２．７．  ストレプトアビジンは、以下の通り検出電極を覆っているポリピロールフィルムの表面に結合した。
【０１０９】
ストレプトアビジン溶液は、アリコート（２００μＬ）毎にミクロチューブ中に分配した。
【０１１０】
ポリピロールフィルムでコーティングされている検出電極を保存緩衝液から取り出し、各々を、ストレプトアビジン溶液を入れたミクロチューブ中に置き、＋４℃で１８時間インキュベートした。
【０１１１】
ストレプトアビジン溶液を含むミクロチューブから検出電極を取り出し、０.０１Ｍ  リン酸塩で緩衝化した生理食塩水で洗浄し、各々を保存緩衝液に入れ、次いで＋４℃で保存した。
【０１１２】
２．８．  ＨＢｓＡｇ濃度が既知の試料群を、１．１０に記載の通り調製した。
【０１１３】
２．９．  ビオチン化したＨＢｓＡｇのマウスモノクローナル抗体の適当な力価溶液（０.１ｍＬ）を、０.０１Ｍ  リン酸塩で緩衝化した生理食塩水（１９.９ｍＬ）に加え、回転振とう機中で十分に混合し、次いでアリコート（２００μＬ）毎にミクロチューブ中に分配した。
【０１１４】
２．１０．  標識化した（ラテックス接合した）マウスＩｇＧのヒツジポリクローナル抗体の適当な力価溶液（０.１ｍｌ）を０.０１Ｍ  リン酸塩で緩衝化した生理食塩水（１９.９ｍＬ）に加え、回転式ミクサー中で十分に混合し、次いでアリコート（２００μＬ）毎にミクロチューブ中に分配した。
【０１１５】
２．１１．  作用緩衝液Ｎ°１は、１．１３に記載の通り調製した。
【０１１６】
２．１２．  作用緩衝液Ｎ°２は、１．１４に記載の通り調製した。
【０１１７】
２．１３．  ストレプトアビジンが結合したポリピロールフィルムでコーティングされた検出電極を保存緩衝液から取り出し、各々を、ビオチン化したＨＢｓＡｇのマウスモノクローナル抗体溶液を含むミクロチューブ（工程２．９由来）中に置き、室温で１０分間インキュベートした。
【０１１８】
２．１４．  ２．１３の完結後、ビオチン化抗体の溶液を含むミクロチューブから検出電極を取り出し、各々を、ＨＢｓＡｇ濃度が既知の試料を含む１ミクロチューブ（工程２．８由来）中に置き、次いで、その検出電極を入れたミクロチューブをサーモミキサー中に置き、絶えず混合しながら、３７±１℃で１５分間保った。
【０１１９】
２．１５．  ２．１４の完結後、試料を含むミクロチューブから検出電極を取り出し、ラテックスを接合させたマウスＩｇＧのヒツジポリクローナル抗体溶液を含むミクロチューブ（工程２．１０）中に置き、次いで回転式振とう機中に置き、絶えず混合しながら、室温で５分間保った。
【０１２０】
２．１６．  ２．１５の完結後、ミクロチューブから検出電極を取り出し、０.０１Ｍ  リン酸塩で緩衝化した生理食塩水中で３〜５秒間すすぎ、各々を作用緩衝液Ｎ°１で十分に満たしたミクロタイタープレート中に置いた。
【０１２１】
２．１７．  ＰＣベースの測定装置につないだホルダーの電気接触子に、検出電極および参照電極をつなぎ、その検出電極および参照電極が溶液に浸るように、作用緩衝液Ｎ°１で十分に満たしたミクロタイタープレートウェルの上方にそのホルダーを設置した。
【０１２２】
２．１８．  特注のソフトウェアを始動させ、参照電極電位に対する検出電極電位（ミリボルト単位）を記録するのに、３０秒間使用した。
【０１２３】
２．１９．  ２．１８の完結後、２．１７に記載と同様な方法で、作用緩衝液Ｎ°２で十分に満たしたミクロタイターウェルプレートの上方に、そのホルダーを設置した。
【０１２４】
２．２０．  参照電極に対する検出電極電位の変化（ミリボルト単位）を記録するために、特注のソフトウェアを１００秒間使用した。
【０１２５】
２．２１．  特注のソフトウェアを用いて、バックグラウンドと検出電極の最終電位間の電位差（δ）（ミリボルト単位）を算出した。
【０１２６】
２．２２．  工程２．８で製造した濃度が既知の試料を用いて、２．１７〜２．１０に記載の操作を順番に繰り返した。
【０１２７】
２．２３．  工程２．２２で得られた結果に基づいて、検量曲線「試料中のＨＢｓＡｇ濃度に対するδ」をプロットするために、外注ソフトウェアを使用した。
【０１２８】
２．２４．  希釈倍数が１０、１００、１０００、５０００および１００００の試料群を製造するために、ＨＢｓＡｇ陽性血清の多数の試料（ＨＢｓＡｇ濃度が未知のものを含む）を、予め解凍したウシ血清中で各々逐次希釈した。各希釈液のアリコート（２００μＬ）を別々のミクロチューブに入れた。
【０１２９】
２．２５．  各希釈液中のＨＢｓＡｇ濃度を測定するために、工程２．１３〜２．２１に記載の方法を用い、これらの結果および工程２．２３で得られた検量曲線を、元の（希釈していない）血清試料中でのＨＢｓＡｇ濃度を算出するのに使用した（図１１）。
【０１３０】
実施例３．
抗−アルブミン抗体測定法：競合アッセイ；試料−アルブミンに対するウサギポリクローナル抗体；受容体−ビオチン化したウシ血清アルブミン；競合分子−標識化したアルブミンのウサギポリクローナル抗体；電荷標識−ラテックス。
【０１３１】
３．１．  １．１〜１．３に記載の方法を行った。
【０１３２】
３．２．  １．４に記載の通り、ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）をビオチン化した。得られたビオチン化ＢＳＡ溶液を、少量のアリコート（〜１０μＬ）毎に分け、＋４℃で保存した。
【０１３３】
３．３．  １．５に記載の方法に従って、ウシアルブミンのウサギポリクローナル抗体をラテックスミクロフェアと接合した。得られた標識化抗体の溶液を少量のアリコート（〜５μＬ）毎に分け、＋４℃で保存した。
【０１３４】
３．４．  ２．２．に記載の通り、ピロールの電気化学的重合用の溶液を調製した。
【０１３５】
３．５．  ２．３．に記載の通り、電着によってポリピロールフィルムを得た。
【０１３６】
３．６．  ポロピロールフィルム中でコーティングされた検出電極をウェルから取り出し、脱イオン水、続いて０.０１Ｍ  リン酸塩で緩衝化した生理食塩水（ｐＨ  ７.４）ですすぎ、保存液（３００μＬ）を入れたミクロチューブ中に置き、これを＋４℃で保存した。
【０１３７】
３．７．  検出電極の必要な電気量を得るために、３．１〜３．６に記載の方法を繰り返した。
【０１３８】
３．８．  ２．６に記載の通り、ストレプトアビジン溶液を調製した。
【０１３９】
３．９．  ２．７に記載の通り、ストレプトアビジンは、検出電極を覆っているポリピロールフィルムの表面に結合した。
【０１４０】
３．１０．  濃度が既知で非標識のウシアルブミンのウサギポリクローナル抗体の試料群を、以下の通り調製した。
【０１４１】
購入したウシアルブミンのウサギポリクローナル抗体の試料を、５００倍過剰量の０.０１Ｍ  リン酸塩で緩衝化した生理食塩水を用いて＋４℃で終夜透析した。
【０１４２】
得られた０.０１Ｍ  リン酸塩で緩衝化した生理食塩水中のウシアルブミンのウサギポリクローナル抗体の溶液を、１０，２０、５０、１００、１０００および５０００の希釈倍数で０.０１Ｍ  リン酸塩で緩衝化した生理食塩水を用いて逐次希釈した。
【０１４３】
各々の希釈試料のアリコート（２００μＬ）を、別々のミクルチューブに入れた。
【０１４４】
３．１１．  適当に希釈したビオチン化ＢＳＡの溶液（０.８ｍＬ）を、０.０１Ｍ  リン酸塩で緩衝化した生理食塩水（１９.２ｍＬ）に加え、回転振とう機中で十分に混合し、次いでアリコート（２００μＬ）毎にミクロチューブ中に分配した。
【０１４５】
３．１２．  標識化した（上記の通り、ラテックスで接合した）ウシアルブミンのウサギポリクローナル抗体の適当な力価溶液（０.１ｍＬ）を、０.０１Ｍ  リン酸塩で緩衝化した生理食塩水（１９.９ｍＬ）に加え、回転式ミキサー中で十分に混合し、次いでアリコート（２００μＬ）毎にミクロチューブ中に分配した。
【０１４６】
３．１３．  作用緩衝液Ｎ°１は、以下の通り調製した。
【０１４７】
リン酸塩で緩衝化した生理食塩水の錠剤を、脱イオン水（２００ｍＬ）に溶解した。
【０１４８】
得られた溶液に、ＫＣｌ（０.３７ｇ）を溶解した。
【０１４９】
３．１４．  １．１４に記載の通り、作用緩衝液Ｎ°２を調製した。
【０１５０】
３．１５．  ストレプトアビジンが結合したポリピロールフィルムでコーティングされた検出電極を保存緩衝液から取り出し、各々を、ビオチン化ＢＳＡの溶液を含む１ミクロチューブ（工程３．１１由来）中に置き、室温で２５分間インキュベートした。
【０１５１】
３．１６．  ３．１５の完結後、ビオチン化ＢＳＡの溶液を含むミクロチューブから検出電極を取り出し、各々を、濃度が既知で非標識のウシアルブミンのウサギポリクローナル抗体試料を含む１ミクロチューブ（工程３．１０由来）中に置き、次いで検出電極を入れたミクロチューブをサーモミキサー中に置き、絶えず混合しながら、３７±１℃の温度で２５分間保った。
【０１５２】
３．１７．  ３．１６の完結後、試料を含むミクロチューブから検出電極を取り出し、このものをラテックスを接合したウシアルブミンのウサギポリクローナル抗体溶液を含むミクロチューブ（工程３．１２由来）に移し、次いで回転振とう機中に置き、絶えず混合しながら室温で１０分間保った。
【０１５３】
３．１８．  ３．１７の完結後、ミクロチューブから検出電極を取り出し、０.０１Ｍ  リン酸塩で緩衝化した生理食塩水中で３〜５秒間すすぎ、各々を、作用緩衝液Ｎ°１で十分に満たしたミクロタイタープレート中に置いた。
【０１５４】
３．１９．  ＰＣベースの測定装置につないだホルダーの電気接触子に検出電極および参照電極をつなぎ、その検出電極および参照電極が溶液に浸るように、参照緩衝液Ｎ°１で十分に満たしたミクロタイタープレートの上方にそのホルダーを設置した。
【０１５５】
３．２０．  特注のソフトウェアを始動させ、参照電位に対する検出電極電位（ミリボルト単位）を記録するために、１００秒間使用した。
【０１５６】
３．２１．  ３．２０の完結後、３．１９に記載の方法と同様な方法で、作用緩衝液Ｎ°２で十分に満たしたミクロタイタープレートの上方に、ホルダーを設置した。
【０１５７】
３．２２．  参照電極電位に対する検出電極電位（ミリボルト単位）の変化を記録するために、特注のソフトウェアを２００秒間使用した。
【０１５８】
３．２３．  特注のソフトウェアを用いて、作用電極電位に対する検出電極電位の変化についての曲線が示す領域（積分）Ｓ２を算出した。
【０１５９】
３.２４．  工程３．１０で製造した濃度が既知で非標識のウシアルブミンのウサギポリクローナル抗体の試料を用いて、３．１９〜３．２３に記載の操作を順番に繰り返した。
【０１６０】
３．２５．  工程３．２４で得られた結果に基づいて、検量線「試料中の標識化したウシアルブミンのウサギポリクローナル抗体の濃度に対するＳ２」をプロットするために、特注のソフトウェアを使用した。
【０１６１】
実施例４．
ＨＢｓＡｇ測定法；サンドイッチアッセイ；試料−ＨＢｓＡｇ濃度が既知である試料；受容体−ビオチン化したＨＢｓＡｇのマウスモノクローナル抗体；標識化したＨＢｓＡｇのマウスモノクローナル抗体；標識−ペルオキシダーゼ。
【０１６２】
４．１．  １．１〜１．４に記載の方法を行った。
【０１６３】
４．２．  ２．２．に記載の通り、ピロールの電気化学的重合用の溶液を調製した。
【０１６４】
４．３．  ２．３に記載の通り、電着によってポリピロールフィルムを得た。
【０１６５】
４．４．  ポリピロールフィルムでコーティングされた検出電極をウェルから取り出し、脱イオン水、続いて０.０１Ｍ  リン酸塩で緩衝化した生理食塩水（ｐＨ  ７.４）ですすぎ、保存液（３００μＬ）を入れたミクロチューブ中に置き、このものを＋４℃で保存した。
【０１６６】
４．５．  検出電極の必要な電気量を得るために、４．１〜４．４に記載の方法を繰り返した。
【０１６７】
４．６．  ストレプトアビジン溶液を、２．６に記載の通り調製した。
【０１６８】
４．７．  ２．７に記載の通り、ストレプトアビジンは、検出電極を覆っているポリピロールフィルムの表面に結合した。
【０１６９】
４．８．  ＨＢｓＡｇ濃度が既知である試料群を、１．１０に記載の通り製造した。
【０１７０】
４．９．  ビオチン化したＨＢｓＡｇのマウスモノクローナル抗体の適当な力価溶液（０.２ｍＬ）を、０.０１Ｍ  リン酸塩で緩衝化した生理食塩水（１９.８ｍＬ）に加え、回転振とう機中で十分に混合し、次いでアリコート（２００μＬ）毎に、ミクロチューブ中に分配した。
【０１７１】
４．１０．  予め解凍したウシ血清（５ｍＬ）を０.０１Ｍ  リン酸塩で緩衝化した生理食塩水（１５ｍＬ）に加え、得られた溶液（１９.６ｍＬ）に、購入したペルオキシダーゼを接合したＨＢｓＡｇのマウスモノクローナル抗体の適当な力価溶液（０.４ｍＬ）を加え、次いで回転振とう機中で十分に混合し、アリコート（２００μＬ）毎にミクロチューブ中に分配した。
【０１７２】
４．１１．  リン酸塩で緩衝化した生理食塩水の錠剤を脱イオン水（２００ｍＬ）に溶解することによって、作用緩衝液Ｎ°１を調製した。
【０１７３】
４．１２．  作用緩衝液Ｎ°２を、以下の通り調製した。
【０１７４】
ｏ−フェニレンジアミン・二塩酸塩の錠剤および尿素過酸化水素化物／緩衝液の錠剤を、脱イオン水（２０ｍＬ）に溶解した。
【０１７５】
得られた溶液（０.１ｍＬ）を、０.０１Ｍ  リン酸塩で緩衝化した生理食塩水（１９.９ｍＬ）に加え、回転振とう機中で十分に混合し、次いで回転式ガラス容器中に置き、試験開始まで＋４℃で保存した。
【０１７６】
４．１３．  ストレプトアビジンが結合したポリピロールフィルムでコーティングされた検出電極を保存緩衝液から取り出し、各々を、ビオチン化したＨＢｓＡｇのマウスモノクローナル抗体溶液（２００μＬ）を含むミクロチューブ（工程４．９由来）中に置き、室温で５分間インキュベートした。
【０１７７】
４．１４．  ４．１３の完結後、ビオチン化抗体の溶液を含むミクロチューブから検出電極を取り出し、ＨＢｓＡｇ濃度が既知の試料を含むミクロチューブ（工程４．８由来）中に置き、次いでその検出電極を入れたミクロチューブをサーモミキサー中に置き、絶えず混合しながら、３７±１℃の温度で１０分間保った。
【０１７８】
４．１５．  ４．１４の完結後、試料を含むミクロチューブから検出電極を取り出し、ペルオキシダーゼを接合させたＨＢｓＡｇのマウスモノクローナル抗体溶液を含むミクロチューブ（工程４．１０由来）中に置き、次いでこれを回転振とう機中に入れ、絶えず混合しながら、室温で５分間保った。
【０１７９】
４．１６．  ４．１５の完結後、ミクロチューブから検出電極を取り出し、０.０１Ｍ  リン酸塩で緩衝化した生理食塩水中で３〜５秒間すすぎ、各々を、作用緩衝液Ｎ°１で十分に満たしたミクロタイタープレート中に置いた。
【０１８０】
４．１７．  ＰＣベースの測定装置につないだホルダーの電気接触子に検出電極および参照電極をつなぎ、その検出電極および参照電極が溶液に浸るように、作用緩衝液Ｎ°１で十分に満たしたミクロタイタープレートの上方に、ホルダーを設置した。
【０１８１】
４．１８．  特注のソフトウェアを始動させ、参照電極電位に対する検出電極電位（単位ミクロボルト）を記録するために、５０秒間使用した。
【０１８２】
４．１９．  ４．１８の完結後、４．１７に記載の方法と同様な方法で、作用緩衝液Ｎ°２で十分に満たしたミクロタイタープレートの上方に、ホルダーを設置した。
【０１８３】
４．２０．  参照電極電位に対する検出電極電位（ミリボルト単位）の変化を記録するために、特注のソフトウェアを１００秒間使用した。
【０１８４】
４．２１．  特注のソフトウェアを用いて、バックグラウンドと検出電極の最終電位間の電位差（δ）（ミリボルト単位）を算出した。
【０１８５】
４．２２．  工程４．８で製造したＨＢｓＡｇ濃度が既知の試料を用いて、４．１７〜４．２１に記載の操作を順番に繰り返した。
【０１８６】
４．２３．  工程４．２２で得られた結果に基づいて、検量曲線「試料中のＨＢｓＡｇ濃度に対するδ」をプロットするために、特注のソフトウェアを使用した。
【０１８７】
４．２４．  ２．２４に記載の通り、希釈した血清試料群を製造した。
【０１８８】
４．２５．  ４．２４で製造した各々の希釈試料中でのＨＢｓＡｇ濃度を測定するために、工程４．１３〜４．２１に記載の方法を使用し、これらの結果および工程４．２３で得られた検量曲線を、元の（希釈していない）血清試料中でのＨｂｓＡｇ濃度を算出するために使用した。
【０１８９】
実施例５
ＨＢｓＡｇ測定；サンドイッチ試験；試料−既知のＨＢｓＡｇ濃度を有する試料；受容体−ＨＢｓＡｇに対するビオチン化マウスモノクローナル抗体；ＨＢｓＡｇに対する標識化したマウスモノクローナル抗体；標識−パーオキシダーゼ；”逐次試験”
【０１９０】
５．１．  １．１−１．４に記載の方法を行った。
５．２．  ２．２に記載のように、ピロールの電気化学的重合のための溶液を調製した。
５．３．  ２．３に記載のように、ポリピロールのフイルムを電気化学的電析により形成した。
５．４．  ポリピロールのフイルムを被覆した検出電極をウエルから除去し、脱イオン水、次に０．０１Ｍリン酸緩衝生理食塩水溶液（ｐＨ７．４）で濯ぎ、３００μｌの貯蔵溶液を有するマイクロチューブに入れ、＋４℃で貯蔵した。
５．５．  必要量の検出電極を得るため、５．１−５．４に記載の方法を繰り返した。
５．６．  ストレプトアビジンの溶液を２．６に記載のように調製した。
５．７．  ストレプトアビジンを２．６に記載のように検出電極を被覆するポリピロールのフイルムの表面に結合させた。
【０１９１】
５．８．  既知のＨＢｓＡｇ濃度を有する一連の試料を１．１０に記載のように調製した。
５．９．  ＨＢｓＡｇに対するビオチン化マウスモノクローナル抗体の溶液０．５ｍｌを０．０１Ｍリン酸塩で緩衝化した食塩溶液１９．５ｍｌに添加し、ロータリーシェイカーで十分攪拌し、２００μｌのアリコートでマイクロチューブに分配した。
【０１９２】
５．１０．  パーオキシダーゼで標識したＨＢｓＡｇに対するマウスモノクローナル抗体の溶液１．７ｍｌを、０．０１Ｍリン酸塩で緩衝化した食塩溶液１８．３ｍｌに添加し、オービタルミキサーで十分攪拌し、２００μｌのアリコートでマイクロチューブに分配した。
５．１１．  ワーキング緩衝液ＮＯ１を４．１１に記載のように調製した。
５．１２．  ワーキング緩衝液ＮＯ２を４．１２に記載のように調製した。
５．１３．  結合したストレプトアビジンを有するポリピロールのフイルムを被覆した検出電極を貯蔵緩衝剤溶液から除去し、それぞれをＨＢｓＡｇに対するビオチン化マウスモノクローナル抗体（工程５．９からの）の溶液を有するマイクロチューブに入れ、５分間室温でインキュベートした。
５．１４．  工程５．１３と同時に、購入した、ＨＢｓＡｇに対するパーオキシダーゼで標識したマウスモノクローナル抗体の適切にタイターした（titered）溶液を既知のＨＢｓＡｇ濃度を有する各試料（工程５．８からの）に添加し、試料から最初に１０μｌを除去し；次にマイクロチューブ及び試料を３７±１℃で５−１０分間サーモミキサー中に置いた。
【０１９３】
５．１５．  ５．１３−５．１４を完了したら、検出電極をビオチン化抗体の溶液を含むマイクロチューブから除き、既知のＨＢｓＡｇ濃度を有する試料（工程５．１４からの）を含むマイクロチューブ中に置き、次に３７±１℃で１５分間サーモミキサー中に保ち、連続的に攪拌した。
５．１６．  ５．１６を完了したら、検出電極をマイクロチューブから取り除き、０．０１Ｍリン酸塩で緩衝化した食塩溶液で３−５秒間濯ぎ、それぞれをワーキング緩衝液ＮＯ１を満たしたマイクロタイタープレートウエルに置いた。
５．１７．  検出電極及び参照電極をＰＣをベースにする測定装置に結合したホルダーの電気接触に結合し、ホルダーをワーキング緩衝液ＮＯ１を満たしたマイクロタイタープレートウエル上に置き、検出電極及び参照電極が溶液中に浸るようにした。
【０１９４】
５．１８．  カスタムソフトウエアを開始させ、５０秒にわたって参照電極電位に対する検出電極電位をミリボルトで記録するのに用いた。
５．１９．  ５．１８を完了したら、５．１７に記載したのと同様の方法で、ホルダーをワーキング緩衝液ＮＯ２を満たしたマイクロタイタープレートウエル上に置いた。
５．２０．  カスタムソフトウエアを用い、２００秒にわたって参照電極電位に対する検出電極電位のミリボルトの変化を記録した。
【０１９５】
５．２１．  カスタムソフトウエアを用い、検出電極電位変化  対  参照電極電位の曲線により示される面積（積分）Ｓ２を計算した。
５．２２．  ５．１７−５．２１に記載の操作を、工程５．８で調製した既知のＨＢｓＡｇ濃度を有する試料を用いて順に繰り返した。
５．２３．  工程５．２２で得られた結果に基づいて、カスタムソフトウエアを用いて、キャリブレーション曲線「Ｓ２  対  試料中のＨＢｓＡｇ濃度」をプロットした。
５．２４．  一連の希釈した血清試料を２．２４に記載のように調製した。
５．２５．  工程５．１３−５．２１に記載の方法を用いて、５．２４で調製した希釈した各試料中のＨＢｓＡｇ濃度を測定し、これらの結果を工程５．２３で得られたキャリブレーション（較正）曲線と共に用いて血清のもとの（希釈しない）試料中のＨＢｓＡｇ濃度を計算した。
【０１９６】
実施例６
ＨＢｓＡｇ測定；サンドイッチ試験；試料−既知のＨＢｓＡｇ濃度を有する試料；受容体−ＨＢｓＡｇに対するビオチン化マウスモノクローナル抗体；ＨＢｓＡｇに対する標識化マウスモノクローナル抗体；標識−パーオキシダーゼ；”ワンポット試験”
【０１９７】
６．１．  １．１−１．４に記載の方法を行った。
６．２．  ２．２に記載のように、ピロールの電気化学的重合のための溶液を調製した。
６．３．  ２．３に記載のように、ポリピロールのフイルムを電気化学的電析により形成した。
６．４．  ポリピロールのフイルムでコートした検出電極をウエルから除去し、脱イオン水、次に０．０１Ｍリン酸緩衝生理食塩水溶液（ｐＨ７．４）で濯ぎ、３００μｌの貯蔵溶液を有するマイクロチューブに入れ、＋４℃で貯蔵した。
６．５．  必要量の検出電極を得るため、６．１−６．４に記載の方法を繰り返した。
【０１９８】
６．６．  ストレプトアビジンの溶液を２．６に記載のように調製した。
６．７．  ストレプトアビジンを２．７に記載のように検出電極を被覆するポリピロールのフイルムの表面に結合させた。
６．８．  既知のＨＢｓＡｇ濃度を有する一連の試料を１．１０に記載のように調製した。
６．９．  ＨＢｓＡｇに対するビオチン化マウスモノクローナル抗体の適切にタイターした溶液２．５ｍｌを、０．０１Ｍリン酸塩で緩衝化した食塩溶液１７．５ｍｌに添加し、ロータリーシェイカーで十分攪拌し、次に２００μｌのアリコートでマイクロチューブに分配した。
６．１０．  ＨＢｓＡｇに対するパーオキシダーゼで標識したマウスモノクローナル抗体の溶液１．７ｍｌを０．０１Ｍリン酸塩で緩衝化した食塩溶液１８．３ｍｌに添加し、ロータリーシェカーで十分攪拌し、２００μｌのアリコートでマイクロチューブに分配した。
６．１１．  ワーキング緩衝剤ＮＯ１を４．１１に記載のように調製した。
６．１２．  ワーキング緩衝剤ＮＯ２を４．１２に記載のように調製した。
【０１９９】
６．１３．  ＨＢｓＡｇに対するビオチン化マウスモノクローナル抗体の溶液１０μｌ（工程６．９からの）及びＨＢｓＡｇに対するパーオキシダーゼで標識したマウスモノクローナル抗体１０μｌを既知のＨＢｓＡｇ濃度の各試料に添加し、先ずその試料から２０μｌを徐去し、；次にマイクロチューブ及び試料をサーモミキサーに置き、３７±１℃で１０分間インキュベートし、連続的に混合した。
６．１４．  ６．１３が完了したら、結合したストレプトアビジンを有するポリピロールのフイルムを被覆した検出電極を貯蔵緩衝剤溶液から除去し、既知のＨＢｓＡｇ濃度を有する試料（工程６．１３からの）を含むマイクロチューブに入れ、次に３７  １℃で５分間サーモミキサー中に保ち、連続的に攪拌した。
６．１５．  ６．１４が完了したら、検出電極をマイクロチューブから除き、０．０１Ｍリン酸塩で緩衝化した食塩溶液で３−５秒間濯ぎ、それぞれをワーキング緩衝液ＮＯ１を満たしたマイクロタイタープレートウエルに置いた。
【０２００】
６．１６．  検出電極及び参照電極をＰＣをベースにする測定装置に結合したホルダーの電気接触に連結し、ホルダーをワーキング緩衝液ＮＯ１を満たしたマイクロタイタープレートウエル上に置き、検出電極及び参照電極が溶液中に浸るようにした。
６．１７．  カスタムソフトウエアを開始させ、１００秒にわたって参照電極電位に対する検出電極電位をミリボルトで記録するのに用いた。
６．１８．  ６．１７を完了したら、６．１６に記載したのと類似の方法で、ホルダーをワーキング緩衝剤ＮＯ２を満たしたマイクロタイタープレートウエル上に置いた。
６．１９．  カスタムソフトウエアを用い、２００秒にわたって参照電極電位に対する検出電極電位のミリボルトの変化を記録した。
【０２０１】
６．２０．  カスタムソフトウエアを用い、検出電極電位変化  対参照電極電位の曲線により示される面積（積分）Ｓ２を計算した。
６．２１．  ６．１６−６．２０に記載の操作を、工程６．８で調製した既知のＨＢｓＡｇ濃度を有する試料を用いて順に繰り返した。
６．２２．  ６．２１で得られた結果に基づいて、カスタムソフトウエアを用いて、キャリブレーション曲線「Ｓ２−試料中のＨＢｓＡｇ濃度」をプロットした。
６．２３．  一連の希釈した血清試料を２．２４に記載のように調製した。
６．２４．  工程６．１３−６．２１に記載の方法を用いて、６．２３で調製した希釈した各試料中のＨＢｓＡｇ濃度を測定し、これらの結果を工程６．２２で得られたキャリブレーション曲線と共に用いて血清のもとの（希釈しない）試料中のＨＢｓＡｇ濃度を計算した。
【０２０２】
実施例７
インスリン測定；競合試験；試料−既知のインスリン濃度を有する試料；受容体−インスリンに対するビオチン化マウスモノクローナル抗体；競合分子−標識ポリクローナルヤギ抗マウスＩｇＧ抗体；標識−ウレアーゼ”
【０２０３】
７．１．  １．１−１．３に記載の方法を行った。
７．２．  インスリンに対するマウスモノクローナル抗体のビオチン化を１．４に記載のように行なった。インスリンに対するビオチン化マウスモノクローナル抗体の得られた溶液を少容量のアリコート（約１０μｌ）に分け、＋４℃で貯蔵した。
７．３．  ２．２に記載のようにして、ピロールの電気化学的重合のための溶液を調製した。
７．４．  ２．３に記載のようにして、ポリピロールのフイルムを電気化学的電析により形成した。
【０２０４】
７．５．  ポリピロールのフイルムでコートした検出電極をウエルから除去し、脱イオン水、次に０．０１Ｍリン酸緩衝生理食塩水溶液（ｐＨ７．４）で濯ぎ、３００μｌの貯蔵溶液を有するマイクロチューブに入れ、＋４℃で貯蔵した。
７．６．  必要量の検出電極を得るため、７．４−７．５に記載の方法を繰り返した。
７．７．  ストレプトアビジンの溶液を２．６に記載のように調製した。
７．８．  ストレプトアビジンを２．７に記載のように検出電極を被覆するポリピロールのフイルムの表面に結合した。
【０２０５】
７．９．  既知のインスリン濃度を有する一連の試料を次のように調製した：
１．１２ｇの塩化カリウム及び１．０ｇのウシ血清アルブミンを１００ｍｌの脱イオン水に溶解した；
１００μｇの凍結乾燥したインスリンを得られた溶液２００μｌに溶解した；
得られたインスリン溶液を、希釈倍率１０、２０、５０、１００、１０００、及び１０,０００倍で、塩化カリウム及びウシ血清アルブミンを含む脱イオン水で希釈した；
希釈した各試料の２００μｌアリコートを別のマイクロチューブに入れた。
７．１０．  インスリンに対するビオチン化マウスモノクローナル抗体の適切にタイターした溶液２．５ｍｌを０．０１Ｍリン酸塩で緩衝化した食塩溶液１９．２ｍｌに添加し、ロータリーシェイカーで十分攪拌し、次にマイクロチューブに２００μｌアリコートした。
７．１１．  マウスＩｇＧに対する購入したウレアーゼをコンジュゲートしたヤギポリクローナル抗体０．０２ｍｌを、０．０１Ｍリン酸塩で緩衝化した食塩溶液１９．９８ｍｌに添加し、ロータリーシェイカーで十分攪拌し、次にマイクロチューブに２００μｌアリコートした。
【０２０６】
７．１２．  ワーキング緩衝液ＮＯ１を、２．４４ｇの塩化カリウムを２００ｍｌの脱イオン水に溶解することによって調製した。
７．１３．  ワーキング緩衝液ＮＯ２を、２０ｍｌのワーキング緩衝液ＮＯ１中に０．０１２ｇの尿素を溶解することによって調製した。
７．１４．  結合したストレプトアビジンを有するポリピロールのフイルムでコートした検出電極を貯蔵溶液から除去し、インスリンに対するビオチン化マウスモノクローナル抗体の溶液（工程７．１０からの）を有するマイクロチューブに入れ、１０分間インキュベートした。
【０２０７】
７．１５．  ７．１４が完了したら、検出電極をビオチン化抗体の溶液を有するマイクロチューブから除去し、既知のインスリン濃度の試料（工程７．９からの）を含むマイクロチューブ中に置き、３７±１℃で１５分間保持し、連続的に混合した。
７．１６．  ７．１５が完了したら、検出電極を試料を含むマイクロチューブから除去し、マウスＩｇＧに対するウレアーゼをコンジュゲートしたヤギポリクローナル抗体の溶液（工程７．１１からの）を含むマイクロチューブ中に置き、次にロータリーシェーカーに置き、室温で１０分間保持し、連続的に攪拌した。
７．１７．  ７．１６が完了したら、検出電極をマイクロチューブから除去し、塩化カリウム及びウシ血清アルブミンを有する脱イオン水で３−５秒濯ぎ、それぞれをワーキング緩衝液ＮＯ１を満たしたマイクロタイタープレートウエルエルに置いた。
７．１８．  検出電極及び参照電極をＰＣをベースにする測定装置に結合したホルダーの電気接触に連結し、ホルダーをワーキング緩衝液ＮＯ１を満たしたマイクロタイタープレートウエル上に置き、検出電極及び参照電極が溶液中に浸るようにした。
【０２０８】
７．１９．  カスタムソフトウエアを開始させ、２００秒にわたって参照電極電位に対する検出電極電位をミリボルトで記録するのに用いた。
７．２０．  ７．１９を完了したら、７．１８に記載したのと類似の方法で、ホルダーをワーキング緩衝液ＮＯ２を満たしたマイクロタイタープレートウエル上に置いた。
７．２１．  カスタムソフトウエアを用い、４００秒にわたって参照電極電位  対  検出電極電位のミリボルトの変化を記録した。
７．２２．  カスタムソフトウエアを用い、検出電極電位変化に対する参照電極電位の曲線により示される面積（積分）Ｓ２を計算した。
７．２３．  ７．１８−７．２２に記載の操作を、工程７．９で調製した既知のインスリン濃度を有する試料を用いて順に繰り返した。
７．２４．  ７．２３で得られた結果に基づいて、カスタムソフトウエアを用いて、キャリブレーション曲線「Ｓ２  対  試料中のインスリン濃度」をプロットした。
【０２０９】
実施例８
核酸ハイブリダイゼーション
８．１．  １．１−１．３に記載の方法を行なった。
８．２．  ２．２に記載のようにして、ピロールの電気化学的重合用の溶液を調製した。
８．３．  ２．３に記載のようにして、ポリピロールのフイルムを電気化学的電析により形成した。
８．４．  ポリピロールのフイルムでコートした検出電極をウエルから除去し、脱イオン水、次に０．０１Ｍリン酸緩衝生理食塩水溶液（ｐＨ７．４）で濯ぎ、３００μｌの貯蔵溶液を有するマイクロチューブに入れ、＋４℃で貯蔵した。
【０２１０】
８．５．  必要量の検出電極を得るため、８．３−８．４に記載の方法を繰り返した。
８．６．  ２００ｍｌの脱イオン水にリン酸緩衝生理食塩水錠を溶解し、得られた溶液にストレプトアビジンを溶解することによってストレプトアビジンの溶液を調製した。
８．７．  ストレプトアビジンを以下のようにして検出電極を被覆するポリピロールのフイルムの表面に結合させた：
ストレプトアビジン溶液をマイクロチューブに２００μｌのアリコートで分配した；
ポリピロールのフイルムで被覆した検出電極を貯蔵溶液から除去し、それぞれをストレプトアビジン溶液を含むマイクロチューブ中に置き、２４時間＋４℃でインキュベートした；
検出電極をストレプトアビジン溶液を含むマイクロチューブから除去し、０．０１Ｍリン酸緩衝生理食塩水溶液、及び、０．０１％アジ化ナトリウム、及び０．１５Ｍ塩化カリウムを含む脱イオン水で２度濯ぎ、各検出電極を貯蔵溶液中に置き、＋４℃で貯蔵した。
【０２１１】
８．８．  ビオチン化１本鎖ＤＮＡプローブの溶液を以下のように調製した：
１ｍｇのビオチン化１本鎖ＤＮＡプローブ（長さ約１ｋｂ）の凍結乾燥物を１ｍｌの脱イオン水に溶解し、得られた溶液をマイクロチューブに入れた；
ＤＮＡプローブ溶液を含むマイクロチューブを水浴に置き、５−８分＋１００℃でインキュベートした；
ＤＮＡプローブ溶液を含むマイクロチューブを氷を有する容器中に移し、急速に０℃まで冷却した；
ＤＮＡプローブ溶液を含むマイクロチューブを次にフリーザーに移し、−２０℃で貯蔵した。
８．９．  ビオチン化ＤＮＡプローブに相補的な１本鎖ＤＮＡの溶液を以下のように調製した：
ビオチン化ＤＮＡプローブに相補的な２本鎖ＤＮＡの凍結乾燥物１０ｍｇを脱イオン水１ｍｌに溶解し、得られた溶液をマイクロチューブに入れた；
ＤＮＡ溶液を有するマイクロチューブを水浴中に置き、＋１００℃で５−８分インキュベートした；
ＤＮＡ溶液を有するマイクロチューブを氷を含む容器に移し、０℃まで急速に冷却した；
ＤＮＡ溶液を有するマイクロチューブを次にフリーザーに移し、−２０℃で凍結保存した。
【０２１２】
８．１０．  ビオチン化ＤＮＡプローブに非相補的な１本鎖ＤＮＡの溶液を８．９に記載のように調製した。
８．１１．  ワーキング緩衝液ＮＯ１を、以下のように調製した：
リン酸緩衝生理食塩水錠剤を２００ｍｌの脱イオン水に溶解した；
２ｇのウシ血清アルブミン、０．３７ｇの塩化カリウム、及び０．１２ｇのクエン酸ナトリウムを得られた溶液に溶解した。
８．１２．  ワーキング緩衝液ＮＯ２を、以下のように調製した：
リン酸緩衝生理食塩水錠剤を２００ｍｌの脱イオン水に溶解した；
２ｇのウシ血清アルブミン、１ｇのデキストラン硫酸ナトリウムを得られた溶液に溶解した。
８．１３．  結合したストレプトアビジンを有するポリピロールのフイルムで被覆した検出電極を、０．０１％アジ化ナトリウム及び０．１５Ｍ塩化カリウムを含む脱イオン水から除去し、前もって解凍し、室温まで暖めた１本鎖ＤＮＡプローブの溶液２０μｌを各検出電極の表面をワーキングに適用した。
８．１４．  ８．１３が完了したら、検出電極をヒュミディティチャンバーに入れ、＋４４℃で６０分インキュベートした。
【０２１３】
８．１５．  ８．１４が完了したら、検出電極をヒュミディティチャンバーから出し、それぞれをＤＮＡハイブリダイゼーション用の最初の緩衝剤溶液２００μｌを含むマイクロチューブに入れ、＋４℃で短時間保持した。（ＤＮＡハイブリダイゼーション緩衝液は当業者に公知のいずれの標準的なハイブリダイゼーション緩衝液でもよい、Sambrook, J., Fritsch, E. F. and Maniatis, T. (1989) Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 2nd Edition, Cold Spring Harbor laboratory Press, Cold Spring Harbor, NY, USA 参照）
【０２１４】
８．１６．  ビオチン化ＤＮＡプローブに相補的な１本鎖ＤＮＡを含む試料を以下のように調製した:
サケの精子からの凍結乾燥したＤＮＡ１０ｍｇをＤＮＡハイブリダイゼーション用の最初の緩衝剤溶液１０ｍｌに溶解した；
前もって解凍し、室温まで暖めたビオチン化ＤＮＡプローブに相補的な１本鎖ＤＮＡの溶液１０μｌを得られた溶液０．９９ｍｌに添加した；
得られた溶液をロータリーシェーカーで十分攪拌し、２００μｌのアリコートでマイクロチューブに分配した。
８．１７．  ビオチン化ＤＮＡプローブに非相補的な１本鎖ＤＮＡを含む試料を以下のように調製した：
サケの精子からの凍結乾燥したＤＮＡ１０ｍｇをＤＮＡハイブリダイゼーション用の最初の緩衝剤溶液１０ｍｌに溶解した；
前もって解凍し、室温まで暖めたビオチン化ＤＮＡプローブに非相補的な１本鎖ＤＮＡの溶液１００μｌを得られた溶液０．９ｍｌに添加した；
得られた溶液をロータリーシェーカーで十分攪拌し、２００μｌのアリコートでマイクロチューブに分配した。
８．１８．  固定化ビオチン化１本鎖ＤＮＡプローブを有する検出電極の半分をＤＮＡハイブリダイゼーション用の最初の緩衝剤溶液を含むマイクロチューブから除去し、ビオチン化ＤＮＡプローブに相補的なＤＮＡを含む試料を有するマイクロチューブ中に置き；検出電極を含むマイクロチューブを次にサーモミキサーに置き、連続的に攪拌しながら＋４２℃で１２０分保った。
【０２１５】
８．１９．  ８．１８が終わったら、検出電極をマイクロチューブから除去し、ワーキング緩衝液ＮＯ１で３−５秒濯ぎ、それぞれをワーキング緩衝液ＮＯ１を満たしたマイクロタイタープレートウエルエルのウエルに置いた。
８．２０．  検出電極及び参照電極をＰＣをベースにする測定装置に連結したホルダーの電気接触に連結し、ホルダーをワーキング緩衝液ＮＯ１を満たしたマイクロタイタープレートウエル上に置き、検出電極及び参照電極が溶液中に浸るようにした。
８．２１．  カスタムソフトウエアを開始させ、２００秒にわたって参照電極電位に対する検出電極電位をミリボルトで記録するのに用いた。
８．２２．  ８．２１が完了したら、８．２０に記載されたのと類似の方法で、ホルダーをワーキング緩衝剤ＮＯ２を満たしたマイクロタイタープレートウエル上に置いた。
【０２１６】
８．２３．  カスタムソフトウエアを用い、６００秒にわたって参照電極電位に対する検出電極電位のミリボルトの変化を記録した。
８．２４．  カスタムソフトウエアを用い、バックグランド及び最終電位間のミリボルト差（δ）を計算した。
８．２５．  ８．２０−８．２４に記載の操作を、工程４．８で調製したビオチン化ＤＮＡプローブに相補的なＤＮＡを含む試料を用いて順に繰り返した。
８．２６．  固定化ビオチン化１本鎖ＤＮＡプローブを有する検出電極の他の半分をＤＮＡハイブリダイゼーション用の最初の緩衝剤溶液を含むマイクロチューブから除去し、ＤＮＡプローブに非相補的なＤＮＡを含む試料を有するマイクロチューブ中に置き；検出電極を含むマイクロチューブを次にサーモミキサーに置き、連続的に攪拌しながら＋４２℃で１２０分保った。
８．２７．  ８．１９−８．２５に記載の方法を、ビオチン化ＤＮＡプローブに非相補的なＤＮＡを含む試料を用いて繰り返した。
８．２８．  ８．１９−８．２６で得られた結果に基づいて、カスタムソフトウエアを用い、ビオチン化ＤＮＡプローブに相補的な、及び非相補的なＤＮＡの試料について得られたδ値の統計的な分布曲線をプロットした。
【０２１７】
実施例９
ジゴキシン測定；競合的試験；試料−既知のジゴキシン濃度を有する試料；受容体−ジゴキシンに対するビオチン化マウスモノクローナル抗体；競合分子−標識したジゴキシン；標識−パーオキシダーゼ。
【０２１８】
９．１．  １．１−１．４に記載の方法を行なった。
９．２．  ２．２に記載のようにして、ピロールの電気化学的重合用の溶液を調製した。
９．３．  ２．３に記載のようにして、ポリピロールのフイルムを電気化学的電析により形成した。
９．４．  ポリピロールのフイルムでコートした検出電極をウエルから除去し、脱イオン水、次に０．０１Ｍリン酸緩衝生理食塩水溶液（ｐＨ７．４）で濯ぎ、３００μｌの貯蔵溶液を有するマイクロチューブに入れ、＋４℃で貯蔵した。
【０２１９】
９．５．  必要数の検出電極を得るため、９．１−９．４に記載の方法を繰り返した。
９．６．  ２．６に記載のようにしてストレプトアビジンの溶液を調製した。
９．７．  ストレプトアビジンを２．７に記載のようにして検出電極を被覆するポリピロールのフイルムの表面に結合させた。
９．８．  既知のジゴキシン濃度を有する一連の試料を以下のように調製した：
２５０ｍｌのエタノールを７５０ｍｌの脱イオン水に添加した；
２５０ｍｇのジゴキシンを得られたエタノール溶液１０００ｍｌに溶解した；
リン酸緩衝生理食塩水錠剤及び１０．０ｇのウシ血清アルブミンを２００ｍｌの脱イオン水に溶解した；
得られたジゴキシン溶液をウシ血清アルブミンを有するＰＢＳ溶液で２５０、２５００、２５０００、５００００、１２５０００、２５００００及び５０００００倍の希釈倍率で順次希釈した；
希釈した試料のそれぞれの２００μｌアリコートを別々のマイクロチューブに入れた。
【０２２０】
９．９．  ジゴキシンに対するビオチンをコンジュゲートしたマウスモノクローナル抗体の溶液２０μｌを０．０１Ｍリン酸塩緩衝溶液（ｐＨ７．４）１９．９８ｍｌに添加し、ロータリーシェイカーで十分混合し、次にマイクロチューブに２００μｌアリコートした。
９．１０．  ジゴキシンを前記したプロトコールに従ってパーオキシダーゼとコンジュゲートさせた。[２１]を参照。パーオキシダーゼで標識したジゴキシンの得られた溶液(最終濃度約０．１ｍｇ／ｍｌ)を希釈割合１０倍で０．０１Ｍリン酸塩食塩緩衝液（ｐＨ７．４）で希釈し、少量（１０μｌ）のアリコートに分割し、４℃で貯蔵した。
９．１１．  ワーキング緩衝液ＮＯ１を、４．１１に記載のようにして調製した。
９．１２．  ワーキング緩衝液ＮＯ２を、４．１２に記載のようにして調製した。
９．１３．  結合したストレプトアビジンを有するポリピロールのフイルムで被覆した検出電極を貯蔵緩衝剤溶液から除去し、それぞれをジゴキシンに対するビオチンをコンジュゲートしたマウスモノクローナル抗体の溶液を含むマイクロチューブ中に置き、室温で１０分間インキュベートした。
【０２２１】
９．１４．  ９．１３と同時にパーオキシダーゼで標識したジゴキシン（工程９．１０からの）の溶液２μｌを既知ジゴキシン濃度を有する試料（工程９．８からの）のそれぞれに添加し、最初に試料から２μｌを除去した。
９．１５．  工程９．１３及び９．１４が完了したら、検出電極をパーオキシダーゼで標識した、及び標識しないジゴキシン（工程９．１４からの）を含む試験管に移し；その試験管及び検出電極をサーモミキサーに置き、１０分間３７±１℃で保持し、連続的に攪拌した。
９．１６．  工程９．１５が完了したら、検出電極をマイクロチューブから除去し、０．０１Ｍ  ＰＢＳで３−５秒間濯ぎ、それぞれをワーキング緩衝液ＮＯ１を満たしたマイクロタイタープレートウエルに置いた。
【０２２２】
９．１７．  検出電極及び参照電極をＰＣをベースにする測定装置に結合したホルダーの電気接触に連結し、ホルダーをワーキング緩衝液ＮＯ１を満たしたマイクロタイタープレートウエル上に置き、検出電極及び参照電極を溶液中に浸すようにした。
９．１８．  カスタムソフトウエアを開始させ、３０秒にわたって参照電極電位に対する検出電極電位をミリボルトで記録するのに用いた。
９．１９．  ９．１８を完了したら、９．１７に記載されたのと類似の方法で、ホルダーをワーキング緩衝液ＮＯ２を満たしたマイクロタイタープレートウエル上に置いた。
９．２０．  カスタムソフトウエアを用い、１００秒にわたって参照電極電位に対する検出電極電位のミリボルトの変化を記録した。
９．２１．  カスタムソフトウエアを用い、検出電極電位変化  対  参照電極電位の曲線により示される面積（積分）Ｓ２を計算した。
９．２２．  工程９．８で製造した既知のジゴキシン濃度を有する試料を用いて９．１７−９．２１に記載の操作を順に繰り返した。
９．２３．  工程９．２２で得られた結果に基づいてカスタムソフトウエアを用いキャリブレーション曲線「Ｓ２  対  試料中ののジゴキシン濃度」をプロットした。
【０２２３】
文献
【表１】
0004774150.tif 000003
【表２】
0004774150.tif 000004
【表３】
0004774150.tif 000005
【図面の簡単な説明】
【図１Ａ】  ポリマー層に固定化したアビジンまたはストレプトアビジン分子（３）を含む電導性ポリマー層（２）でコートした電位差測定電極（１）を含む検出電極を模式的に示す図である。
【図１Ｂ】  ポリマー層上に吸着したアビジンまたはストレプトアビジン分子（３）を含む電導性ポリマー層（２）でコートした電位差測定電極（１）を含む検出電極を模式的に示す図である。
【図２Ａ】  ポリマー層に固定化したアビジンまたはストレプトアビジンと、ビオチン（５）と結合した抗体（４）の結合反応により、検出電極を分析物（この場合、抗原は中〜高分子量の物質）に特異的にする方法を示す図である。
【図２Ｂ】  ポリマー層に固定化したアビジンまたはストレプトアビジンと、ビオチン（５）と結合した抗原（６）の結合反応により、検出電極を試験する分析物（この場合は抗体）に特異的にする方法を示す図である。
【図２Ｃ】  ポリマー層に固定化したアビジンまたはストレプトアビジンと、ビオチン（５）と結合したＤＮＡプローブ（７）の結合反応により、検出電極を分析物（この場合はＤＮＡ分子）に特異的にする方法を示す図である。
【図３Ａ】  検出電極に固定化したビオチン化抗体に特異的な抗原（６）を含む被検溶液と接触した検出電極の配置を示す図である。
【図３Ｂ】  検出電極に固定化したビオチン化抗原に特異的な抗体（４）を含む被検溶液と接触した検出電極の配置を示す図である。
【図３Ｃ】  検出電極に固定化したビオチン化ＤＮＡプローブに特異的なＤＮＡ分子（８）を含む被検溶液と接触した検出電極の配置を示す図である。
【図４Ａ】  試験する抗原に特異的な、荷電標識（１０）と結合した第二レセプター（９）の溶液と接触する検出電極の配置（例えば、自己抗体が荷電標識と結合した抗アイソタイプ抗体を用いて測定される血清学的アッセイ形式）を示す図である。
【図４Ｂ】  試験する抗原に特異的な、荷電標識（１０）と結合した第二レセプター（１１）の溶液と接触する検出電極の配置（サンドイッチアッセイ形式、この場合、第二レセプターは抗アイソタイプ抗体である）を示す図である。
【図５Ａ】  ビオチン化抗体に特異的な、荷電標識（１０）と結合した競合分子（１２）の溶液と接触した検出電極の配置（競合アッセイ形式）を示す図である。
【図５Ｂ】  ビオチン化抗原に特異的な、荷電標識（１０）と結合した競合分子（１３）の溶液と接触した検出電極の配置（競合アッセイ形式）を示す図である。
【図６Ａ】  試験する抗原に特異的な、酵素（１４）と結合した第二レセプター（９）の溶液と接触した検出電極の配置（サンドイッチアッセイ形式）を示す図である。
【図６Ｂ】  試験する抗体に特異的な、酵素（１４）と結合した第二レセプター（１１）の溶液と接触した検出電極の配置（例えば、自己抗体が酵素と結合した抗アイソタイプ抗体を用いて測定される血清学的アッセイ形式）を示す図である。
【図７Ａ】  ビオチン化抗体に特異的な、酵素（１４）と結合した競合分子（１２）の溶液と接触した検出電極の配置（競合アッセイ形式）を示す図である。
【図７Ｂ】  ビオチン化抗体に特異的な、酵素（１４）と結合した競合分子（１３）の溶液と接触した検出電極の配置（競合アッセイ形式）を示す図である。
【図８Ａ】  ビオチン化レセプター溶液[図８Ａ１]、被検溶液[図８Ａ２]、および標識第二レセプター溶液[図８Ａ３]と接触する検出電極の連続的配置、次いで、参照電極電位に対する検出電極電位の測定を含む「連続」形式の電気化学的分析工程を示す図である。
【図８Ｂ】  最初に、検出電極をビオチン化レセプター溶液と接触させ[図８Ｂ１]、次いで検出電極を、標識第二レセプター溶液を加えた被検溶液と接触させ[図８Ｂ２]、次いで参照電極電位に対する検出電極電位を測定する[図８Ｂ３]電気化学的分析工程を示す図である。
【図８Ｃ】  ビオチン化レセプターおよび標識第二レセプターの溶液を被検溶液に加え[図８Ｃ１]、次いで検出電極を被検溶液と接触させ[図８Ｃ２]、次いで参照電極電位に対する検出電極電位を測定する[図８Ｃ３] 電気化学的分析工程を示す図である。
【図９】  検出電極をいかなる分析物も含まない被検溶液とインキュベーションした後（曲線１）、および検出電極をビオチン化レセプターに特異的な分析物を含む被検溶液とインキュベーションした後（曲線２）の、ワーキング溶液のイオン強度または組成の段階的変化に対する検出電極電位の変動曲線の典型的な形を示す図である（座標「ミリボルト−時間」）。
【図１０】  血清試料中のＨＢｓＡｇ濃度対参照電極に対する測定された検出電極のバックグラウンド電位と最終電位の差（ミリボルト）の較正曲線を示す図である。
【図１１】  ＨＢｓＡｇ陽性血清の希釈対参照電極に対する測定された検出電極のバックグラウンド電気と最終電位の差（ミリボルト）の較正曲線を示す図である。
【図１】
0004774150.tif 000006
【図２】
0004774150.tif 000007
【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
0004774150.tif 000015
【図１１】
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