(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
デオキシイノシン特異的な核酸切断活性を示し、かつ該特異的な核酸切断活性に含まれないエンドヌクレアーゼVの非特異的な核酸切断活性を示さない、変異型の基質特異的エンドヌクレアーゼVであって、
サーモトガ・マリチマ由来である配列番号１１に記載のアミノ酸配列を有する野生型エンドヌクレアーゼVのアミノ酸配列における、（ａ）８０位のアミノ酸がアラニン、グリシン、ロイシン、イソロイシン、バリン、フェニルアラニン、メチオニンのいずれかである他のアミノ酸Ｘ1に変異されており、かつ（ｂ）１０５位のアミノ酸がアラニン、グリシン、アスパラギン、グルタミン、セリン、トレオニン、ヒスチジンのいずれかである他のアミノ酸Ｘ2に変異されており、
該変異により、同一の反応条件下で該野生型エンドヌクレアーゼVが示す該非特異的な核酸切断活性を示さない、基質特異的エンドヌクレアーゼV。
【請求項２】
アミノ酸Ｘ1およびＸ2がともにアラニンであることを特徴とする請求項１に記載の基質特異的エンドヌクレアーゼV。
【請求項３】
耐熱性を有することを特徴とする請求項１または２に記載の基質特異的エンドヌクレアーゼV。
【請求項４】
配列番号１のアミノ酸配列を有することを特徴とする請求項１〜３のいずれか１項に記載の基質特異的エンドヌクレアーゼV。
【請求項５】
請求項１〜４のいずれか１項に記載の基質特異的エンドヌクレアーゼVをコードすることを特徴とする基質特異的エンドヌクレアーゼV遺伝子。
【請求項６】
基質特異的エンドヌクレアーゼV遺伝子が、配列番号２の塩基配列を含むことを特徴とする請求項５に記載の基質特異的エンドヌクレアーゼV遺伝子。
【請求項７】
請求項５または６に記載の基質特異的エンドヌクレアーゼV遺伝子をベクターＤＮＡに挿入したことを特徴とする組換え体ＤＮＡ。
【請求項８】
請求項７記載の組換え体ＤＮＡを含む形質転換体または形質導入体。
【請求項９】
請求項８記載の形質転換体または形質導入体を培地に培養し、培養物から基質特異的エンドヌクレアーゼVを採取することを特徴とする基質特異的エンドヌクレアーゼVの製造法。
【請求項１０】
請求項１〜４のいずれか１項に記載の基質特異的エンドヌクレアーゼVを用いる核酸の切断方法。
【請求項１１】
請求項１〜４のいずれか１項に記載の基質特異的エンドヌクレアーゼVを少なくとも含有する核酸または遺伝子の検査または改変用試薬キット。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、非特異的な核酸切断活性を示さず、かつ特異的な活性を有する変異型エンドヌクレアーゼV、当該エンドヌクレアーゼVをコードする遺伝子、当該遺伝子を含む組換え体DNA、当該組換え体DNAを含む形質転換体または形質導入体、および当該エンドヌクレアーゼVの製造方法に関する。また本発明は、当該エンドヌクレアーゼVを用いる核酸の切断方法、および当該エンドヌクレアーゼVを含む核酸または遺伝子の検査または改変用の試薬キットに関する。
【背景技術】
【０００２】
エンドヌクレアーゼV [EC 3.1.21.7] は、デオキシイノシン 3' エンドヌクレアーゼとも呼ばれ、DNA鎖中のデオキシイノシンの塩基（ヒポキサンチン）を認識し、その近傍のホスホジエステル結合（主には認識塩基の3'側の第2番目のホスホジエステル結合）を加水分解する酵素である。また本酵素はこのデオキシイノシン特異的な切断活性に加えて、DNA鎖中のデオキシウリジンの塩基（ウラシル）、APサイト（apurinic/apyrimidinic site または abasic site）、塩基のミスマッチ、塩基の挿入／欠損、フラップ構造、偽Y構造（pseudo-Y structure）などを含む広く多様なDNA構造を認識してDNA鎖を切断する活性も有している。さらに本酵素は、非特異的な核酸切断活性も有している。エンドヌクレアーゼVあるいはそれをコードする遺伝子は、多くの生物種において見出され、あるいは単離されており、特に Escherichia coli および Thermotoga maritima 由来のものについては、その性質が比較的良く調べられている（非特許文献 1〜11）。
これらのエンドヌクレアーゼVの酵素活性は、核酸分子の分析、検出、分解、合成、改変などを含む様々な検査技術や、診断技術、遺伝子工学技術に利用することが可能である（例えば非特許文献12〜16 および特許文献1〜12）。
【０００３】
しかしながらエンドヌクレアーゼVは、前述のように特異的活性だけでなく、非特異的な核酸切断活性も有している。この非特異的切断活性は、これを例えばDNA鎖のランダムニッキングに用いるような場合（例えば特許文献7）を除けば、本酵素の特異的活性を利用するほとんどの用途において好ましからざる結果を招く原因となっていた。よってエンドヌクレアーゼVの非特異的な核酸切断活性が、本酵素の産業上の利用における一つの主要な障害となっていた。
このような問題を克服する方法として、例えば、エンドヌクレアーゼVによって非特異的に切断されたDNA鎖を、リガーゼを用いて再結合させる方法が開示されている（例えば非特許文献13〜15, および特許文献9）。
【０００４】
しかしながら、エンドヌクレアーゼVが非特異的な核酸切断活性を有しているという問題点それ自体を本質的に解決する手段については、これまで一切報告されていない。
【特許文献１】国際公開第2004／003232号パンフレット
【特許文献２】国際公開第02／36821号パンフレット
【特許文献３】国際公開第2004／067765号パンフレット
【特許文献４】国際公開第2004／067726号パンフレット
【特許文献５】国際公開第2004／022701号パンフレット
【特許文献６】国際公開第03／080645号パンフレット
【特許文献７】国際公開第2004／046383号パンフレット
【特許文献８】国際公開第99／42595号パンフレット
【特許文献９】国際公開第02／44335号パンフレット
【特許文献１０】米国特許出願公開2005／136417号明細書
【特許文献１１】米国特許出願公開2005／123956号明細書
【特許文献１２】国際公開第2004／015105号パンフレット
【非特許文献１】Yao M, Hatahet Z, Melamede RJ, Kow YW : Purification and characterization of a novel deoxyinosine-specific enzyme, deoxyinosine 3' endonuclease, from Escherichia coli. J Biol Chem, 269, 16260-8 (1994).
【非特許文献２】Yao M, Kow YW : Strand-specific cleavage of mismatch-containing DNA by deoxyinosine 3'-endonuclease from Escherichia coli. J Biol Chem, 269, 31390-6 (1994).
【非特許文献３】Yao M, Kow YW : Interaction of deoxyinosine 3'-endonuclease from Escherichia coli with DNA containing deoxyinosine. J Biol Chem, 270, 28609-16 (1995).
【非特許文献４】Yao M, Kow YW : Cleavage of insertion/deletion mismatches, flap and pseudo-Y DNA structures by deoxyinosine 3'-endonuclease from Escherichia coli. J Biol Chem, 271, 30672-6 (1996).
【非特許文献５】Yao M, Kow YW : Further characterization of Escherichia coli endonuclease V. Mechanism of recognition for deoxyinosine, deoxyuridine, and base mismatches in DNA. J Biol Chem, 272, 30774-9 (1997).
【非特許文献６】Zvonimir Siljkovic : Crystal structure of the DNA repair enzyme endonuclease V from Thermotoga maritima. Master's Thesis, Purdue University, Thesis 46615 MS (2000).
【非特許文献７】Huang J, Lu J, Barany F, Cao W : Multiple cleavage activities of endonuclease V from Thermotoga maritima: recognition and strand nicking mechanism. Biochemistry, 40, 8738-48. (2001).
【非特許文献８】Huang J, Lu J, Barany F, Cao W : Mutational analysis of endonuclease V from Thermotoga maritima. Biochemistry, 41, 8342-50 (2002).
【非特許文献９】Liu J, He B, Qing H, Kow YW : A deoxyinosine specific endonuclease from hyperthermophile, Archaeoglobus fulgidus: a homolog of Escherichia coli endonuclease V. Mutat Res, 461, 169-77 (2000).
【非特許文献１０】Hitchcock TM, Gao H, Cao W : Cleavage of deoxyoxanosine-containing oligodeoxyribonucleotides by bacterial endonuclease V. Nucleic Acids Res, 32, 4071-80 (2004).
【非特許文献１１】Feng H, Klutz AM, Cao W : Active Site Plasticity of Endonuclease V from Salmonella typhimurium. Biochemistry, 44, 675-83 (2005)
【非特許文献１２】Van Ness J, Van Ness LK, Galas DJ : Isothermal reactions for the amplification of oligonucleotides. Proc Natl Acad Sci USA, 100, 4504-9 (2003).
【非特許文献１３】Huang J, Kirk B, Favis R, Soussi T, Paty P, Cao W, Barany F : An endonuclease/ligase based mutation scanning method especially suited for analysis of neoplastic tissue. Oncogene, 21, 1909-21 (2002).
【非特許文献１４】Favis R, Huang J, Gerry NP, Culliford A, Paty P, Soussi T, Barany F : Harmonized microarray/mutation scanning analysis of TP53 mutations in undissected colorectal tumors. Hum Mutat, 24, 63-75 (2004).
【非特許文献１５】Pincas H, Pingle MR, Huang J, Lao K, Paty PB, Friedman AM, Barany F : High sensitivity EndoV mutation scanning through real-time ligase proofreading. Nucleic Acids Res. 32, e148 (2004).
【非特許文献１６】Miyazaki K : Random DNA fragmentation with endonuclease V: application to DNA shuffling. Nucleic Acids Res, 30, e139 (2002).
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
本発明者らは、エンドヌクレアーゼVが非特異的な核酸切断活性を有しているという問題点それ自体を本質的に解決することを主たる課題とした。より詳しくは、本発明者らは、非特異的な核酸切断活性を示さず、かつ特異的な活性を有する新規な変異型エンドヌクレアーゼVを得ることを主たる課題とした。
【０００６】
これまでにEscherichia coli および Thermotoga maritima を含むいくつかの生物種について、エンドヌクレアーゼVをコードする遺伝子が単離・同定され、また野生型エンドヌクレアーゼVのアミノ酸配列も明らかにされている。しかしこれらの野生型エンドヌクレアーゼVのアミノ酸配列にどのような変異を加えれば、当該酵素の特異的な活性は残したまま、非特異的な核酸切断活性を低下あるいは除去することができるのかについては、全く分かっていなかった。
Thermotoga maritimaエンドヌクレアーゼV（Tma EndoV）の結晶構造がSiljkovicによって明らかにされ（例えば非特許文献6）、それによってTma EndoV の触媒機構や基質DNAとの相互作用について示唆に富む情報が与えられた。しかしながらここではTma EndoVと基質DNAの複合体の構造は明らかにされておらず、Tma EndoVの基質認識に関わるアミノ酸についての決定的な証拠は示されていない。さらに、エンドヌクレアーゼVの非特異的な核酸切断活性に関わる知見は何ら得られていなかった。
【０００７】
複数の生物種由来のエンドヌクレアーゼVのアミノ酸配列を互いに比較することで、種間で保存性の高いアミノ酸配列が明らかになり、それによって酵素活性に重要な役割を果たすと考えられるアミノ酸配列部分をある程度推定することはできる。Huangらは野生型Tma EndoVのそのようなアミノ酸配列のいずれか１ヶ所のアミノ酸に変異を加えた変異型Tma EndoVをいくつか作製し、その性質を調べた（例えば非特許文献8）。その結果、野生型エンドヌクレアーゼVの特異的な基質切断活性を完全にあるいは部分的に欠損したいくつかの変異型Tma EndoVを得ている。しかしながら本発明者らが課題とする、非特異的な核酸切断活性を示さず、かつ特異的な活性を有する変異型エンドヌクレアーゼVを得るための知見は得られていなかった。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
本発明者らは、鋭意検討した結果、非特異的な核酸切断活性を示さず、かつ特異的な活性を有する変異型エンドヌクレアーゼVが、上記課題を解決しうることを見出した。より詳しくは、野生型エンドヌクレアーゼVのアミノ酸配列における特定の２ヶ所のアミノ酸を別のアミノ酸に変換することにより、非特異的な核酸切断活性を示さず、かつ特異的な活性を有する変異型エンドヌクレアーゼVが得られ、当該変異型エンドヌクレアーゼVが上記課題を解決しうることを見出した。
【０００９】
すなわち、本願は以下の発明を提供するものである。
＜１＞
非特異的な核酸切断活性を示さず、かつ特異的な核酸切断活性を示す、変異型の特異的エンドヌクレアーゼV。
＜２＞
特異的な核酸切断活性が、デオキシイノシン特異的な核酸切断活性である上記＜１＞記載の特異的エンドヌクレアーゼV。
＜３＞
野生型エンドヌクレアーゼVのアミノ酸配列における（ａ）８０位のアミノ酸またはサーモトガ・マリチマ(Thermotoga maritima) エンドヌクレアーゼVの８０位と同等位置のアミノ酸が他のアミノ酸Ｘ1に変異されており、かつ（ｂ）１０５位のアミノ酸またはサーモトガ・マリチマ エンドヌクレアーゼVの１０５位と同等位置のアミノ酸が他のアミノ酸Ｘ2に変異されていること、を特徴とする上記＜１＞または＜２＞に記載の特異的エンドヌクレアーゼV。
＜４＞
アミノ酸Ｘ1がアラニン、グリシン、ロイシン、イソロイシン、バリン、フェニルアラニン、メチオニンのいずれかであり、かつアミノ酸Ｘ2がアラニン、グリシン、アスパラギン、グルタミン、セリン、トレオニン、ヒスチジンのいずれかであること、を特徴とする上記＜３＞記載の特異的エンドヌクレアーゼV。
＜５＞
アミノ酸Ｘ1およびＸ2がともにアラニンであることを特徴とする上記＜３＞記載の特異的エンドヌクレアーゼV。
＜６＞
野生型エンドヌクレアーゼVが好熱性細菌または好熱性古細菌由来であることを特徴とする上記＜３＞〜＜５＞のいずれかに記載の特異的エンドヌクレアーゼV。
＜７＞
野生型エンドヌクレアーゼVがサーモトガ・マリチマ由来であることを特徴とする上記＜３＞〜＜６＞のいずれかに記載の特異的エンドヌクレアーゼV。
＜８＞
野生型エンドヌクレアーゼVが配列番号１１に記載のアミノ酸配列を有することを特徴とする上記＜３＞〜＜７＞に記載の特異的エンドヌクレアーゼV。
＜９＞  耐熱性を有することを特徴とする上記＜１＞〜＜８＞のいずれかに記載の特異的エンドヌクレアーゼV。
＜１０＞
配列番号１のアミノ酸配列を有することを特徴とする上記＜１＞〜＜５＞のいずれかに記載の特異的エンドヌクレアーゼV。
＜１１＞
上記＜１＞〜＜１０＞のいずれかに記載のエンドヌクレアーゼVをコードすることを特徴とする特異的エンドヌクレアーゼV遺伝子。
＜１２＞
特異的エンドヌクレアーゼV遺伝子が、配列番号２の塩基配列を含むことを特徴とする上記＜１１＞に記載の特異的エンドヌクレアーゼV遺伝子。
＜１３＞
上記＜１１＞または＜１２＞記載の特異的エンドヌクレアーゼV遺伝子をベクターＤＮＡに挿入したことを特徴とする組換え体ＤＮＡ。
＜１４＞
上記＜１３＞記載の組換え体ＤＮＡを含む形質転換体または形質導入体。
＜１５＞
上記＜１４＞記載の形質転換体または形質導入体を培地に培養し、培養物から特異的エンドヌクレアーゼVを採取することを特徴とする特異的エンドヌクレアーゼVの製造法。
＜１６＞
上記＜１＞〜＜１０＞のいずれかに記載の特異的エンドヌクレアーゼVを用いる核酸の切断方法。
＜１７＞
上記＜１＞〜＜１０＞のいずれかに記載の特異的エンドヌクレアーゼVを少なくとも含有する核酸または遺伝子の検査または改変用試薬キット。
【発明の効果】
【００１０】
本発明により、非特異的な核酸切断活性を示さず、かつ特異的な活性を有する変異型エンドヌクレアーゼV、当該エンドヌクレアーゼVをコードする遺伝子、当該遺伝子を含む組換え体DNA、当該組換え体DNAを含む形質転換体または形質導入体、および当該エンドヌクレアーゼVの製造方法が提供される。また本発明により、当該エンドヌクレアーゼVを用いる核酸の切断方法、および当該エンドヌクレアーゼVを含む核酸または遺伝子の検査または改変用の試薬キットが提供される。本発明の変異型の特異的エンドヌクレアーゼVは、核酸分子の分析、検出、分解、合成、改変などを含む様々な検査技術や、診断技術、遺伝子工学技術に利用することが可能である。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１１】
以下に本発明を詳細に説明する。
本発明において「エンドヌクレアーゼV」とは、国際生化学分子生物学連合 (IUBMB) の酵素命名法において酵素番号EC 3.1.21.7 として分類される酵素を指す。本酵素はデオキシイノシン 3' エンドヌクレアーゼと呼ばれることもある。また本酵素は過去の分類において、EC 3.1.22.3 あるいはEC 3.1.−.− と記されていたこともある。なお、バクテリオファージT4由来のDNA修復酵素であるT4エンドヌクレアーゼVは、偶然にも類似した名前で呼ばれるが、これはE.C.3.1.25.1に分類される酵素であり、本発明で記述するエンドヌクレアーゼVとは別の酵素である。
【００１２】
本発明におけるエンドヌクレアーゼVの「特異的な核酸切断活性」とは、核酸分子に含まれる特定のヌクレオチドや塩基あるいは特定の構造、例えばデオキシイノシンまたはその塩基（ヒポキサンチン）、デオキシウリジンまたはその塩基（ウラシル）、APサイト（apurinic/apyrimidinic site または abasic site）、塩基のミスマッチ、塩基の挿入／欠損、フラップ構造、偽Y構造（pseudo-Y structure）、あるいは天然のDNA中に見られる無傷の塩基（アデニン、チミン、グアニン、シトシン）のいずれかの誘導体またはその誘導体を含むヌクレオチド残基など、を当該酵素が認識し、その認識部位近傍のホスホジエステル結合を切断する活性を指す。またこれらの活性の全てを必ず含むことを限定して指すものではなく、これらの活性の中の1以上の活性を必ず含むことを指す。また例えば、エンドヌクレアーゼVの「デオキシイノシン特異的な核酸切断活性」と言う場合は、前記の特異的な核酸切断活性の中の、デオキシイノシンまたはその塩基（ヒポキサンチン）に対する当該酵素の特異的な認識を伴う核酸切断活性を指す。
【００１３】
本発明におけるエンドヌクレアーゼVの「非特異的な核酸切断活性」とは、前述の特異的な核酸切断活性に含まれない、当該酵素の核酸切断活性を指す。例えばDNA鎖のランダムニッキング活性などがこれに含まれる。
本発明において、酵素が「活性を示す」とは、ある特定のまたはある特定の範囲内の反応組成および反応条件の下で酵素が作用しうることを指す。これには至適な反応組成および反応条件の下において酵素が作用しうることも含まれる。
本発明において、酵素が「活性を示さない」とは、酵素に完全に活性が無いことのみに限定されるものではなく、活性が検出されないこと、あるいは実質的に無視できるほど活性が小さいことも含まれる。
【００１４】
本発明の変異型の特異的エンドヌクレアーゼVをコードする遺伝子を得る好ましい方法の一つは、野生型エンドヌクレアーゼV遺伝子およびその組換え体DNAを入手し、その配列に変異を加えることである。
本発明の特異的エンドヌクレアーゼV遺伝子を得るために用いる野生型エンドヌクレアーゼV遺伝子は、どのような生物あるいはウイルス由来のものでもよく、例えば細菌由来のものや古細菌由来のものが選択でき、例えばEscherichia coli、Salmonella typhimurium, Thermotoga maritima, Thermus thermophilus, Thermoplasma acidophilum, Thermoplasma volcanium, Aeropyrum pernix, Pyrococcus abyssi, Pyrococcus horikoshii, Sulfolobus tokodaii, Archaeoglobus fulgidus 由来のものなどが選択でき、本願においては好熱性細菌または好熱性古細菌由来のものがより好ましく、Thermotoga maritima由来のものが特に好ましい。
【００１５】
これらの遺伝子等は既に公知の方法によって調製される。例えばEscherichia coli 由来の野生型エンドヌクレアーゼV遺伝子は、例えば非特許文献5に記載の方法で調製することができる。例えばThermotoga maritima由来の野生型エンドヌクレアーゼV遺伝子は、例えば非特許文献7および特許文献8に記載の方法で調製することができる。例えばArchaeoglobus fulgidus由来の野生型エンドヌクレアーゼV遺伝子は、例えば非特許文献9に記載の方法で調製することができる。例えばSalmonella typhimurium由来の野生型エンドヌクレアーゼV遺伝子は、例えば非特許文献11に記載の方法で調製することができる。ここに例示された以外の野生型エンドヌクレアーゼVも、当業者は既知の一般的な生化学的および遺伝子工学的方法を用いて調製することができる。
また、生物由来材料から野生型エンドヌクレアーゼV遺伝子を調製する方法の他に、確定した野生型エンドヌクレアーゼVの塩基配列情報を基に、有機合成法や酵素合成法、あるいはそれらを適宜組み合わせた方法により、直接的に所望する野生型エンドヌクレアーゼV遺伝子を合成することもできる。
【００１６】
本発明において、「サーモトガ・マリチマ エンドヌクレアーゼVの80位と同等位置のアミノ酸」および「サーモトガ・マリチマ エンドヌクレアーゼVの105位と同等位置のアミノ酸」とは、確定したエンドヌクレアーゼVのアミノ酸配列を、サーモトガ・マリチマ エンドヌクレアーゼVのアミノ酸配列（例えばGenBank Accession AAD36927）と比較した場合に、サーモトガ・マリチマ エンドヌクレアーゼVの80位および105位のアミノ酸に対応するアミノ酸を意味するものである。
【００１７】
当該アミノ酸の位置は、各々のエンドヌクレアーゼVのアミノ酸配列と、サーモトガ・マリチマ エンドヌクレアーゼVのアミノ酸配列の相同性を比較することによって容易に求められる。これには、例えば既製のソフトウェア（例えばGENETYX（ソフトウェア開発社製））などのアミノ酸配列相同性解析機能などを使用することができる。当該80位と同等位置のアミノ酸としては例えばチロシンが、105位と同等位置のアミノ酸としては例えばアスパラギン酸が挙げられるが、これらに限定されるものではない。
例えば、Escherichia coli エンドヌクレアーゼVのアミノ酸配列（GenBank Accession AAC76972）においては、75位のチロシンおよび100位のアスパラギン酸が当該位置のアミノ酸である。
例えば、Salmonella typhimuriumエンドヌクレアーゼVのアミノ酸配列（GenBank Accession AAL22996）においては、73位のチロシンおよび98位のアスパラギン酸が当該位置のアミノ酸である。
例えば、Thermus thermophilusエンドヌクレアーゼVのアミノ酸配列（GenBank Accession BAD71170）においては、80位のチロシンおよび105位のグルタミン酸が当該位置のアミノ酸である。
例えば、Thermoplasma acidophilum エンドヌクレアーゼVのアミノ酸配列（GenBank Accession CAC11602）においては、183位のチロシンおよび204位のアスパラギン酸が当該位置のアミノ酸である。
例えば、Thermoplasma volcaniumエンドヌクレアーゼVのアミノ酸配列（GenBank Accession NP_111300）においては、178位のチロシンおよび199位のトレオニンが当該位置のアミノ酸である。
例えば、Aeropyrum pernix エンドヌクレアーゼVのアミノ酸配列（GenBank Accession NP_147286）においては、43位のチロシンおよび68位のアスパラギン酸が当該位置のアミノ酸である。
例えば、Pyrococcus abyssi エンドヌクレアーゼVのアミノ酸配列（GenBank Accession NP_127057）においては、67位のチロシンおよび90位のアスパラギン酸が当該位置のアミノ酸である。
例えば、Pyrococcus horikoshii エンドヌクレアーゼVのアミノ酸配列（GenBank Accession O58394）においては、67位のチロシンおよび90位のアスパラギン酸が当該位置のアミノ酸である。
例えば、Sulfolobus tokodaii エンドヌクレアーゼVのアミノ酸配列（GenBank Accession Q974T1）においては、70位のチロシンおよび93位のアスパラギン酸が当該位置のアミノ酸である。
例えば、Magnetospirillum magnetotacticumエンドヌクレアーゼVのアミノ酸配列（GenBank Accession ZP_00051831）においては、81位のチロシンおよび106位のアスパラギン酸が当該位置のアミノ酸である。
【００１８】
これらの当該位置のアミノ酸に変異を与える場合、置換後のアミノ酸はどのようなアミノ酸であってもよい。野生型エンドヌクレアーゼVのアミノ酸配列における80位のアミノ酸またはサーモトガ・マリチマ エンドヌクレアーゼVの80位と同等位置のアミノ酸と置換されるアミノ酸Ｘ1は、アラニン、グリシン、ロイシン、イソロイシン、バリン、フェニルアラニン、メチオニン等が好ましい例として挙げられ、また1つの好ましい例としてアラニンが挙げられる。野生型エンドヌクレアーゼVのアミノ酸配列における105位のアミノ酸またはサーモトガ・マリチマ エンドヌクレアーゼVの105位と同等位置のアミノ酸と置換されるアミノ酸Ｘ2は、アラニン、グリシン、アスパラギン、グルタミン、セリン、トレオニン、ヒスチジン等が好ましい例として挙げられ、また1つの好ましい例としてアラニンが挙げられる。
【００１９】
野生型エンドヌクレアーゼVの遺伝子中の、所望位置のアミノ酸をコードするコドンに変異を加え、本発明の特異的エンドヌクレアーゼVの遺伝子を得る方法は、既知のいくつかの方法の中から当業者が適宜選択できる。そのような方法として例えば、ホスホロチオエート法（Eckstein法）[例えば Taylor JW, Schmidt W, Cosstick R, Okruszek A, Eckstein F (1985) Nucleic Acids Res, 13, 8749-64, および Taylor JW, Ott J, Eckstein F (1985) Nucleic Acids Res, 13, 8765-85]、ギャップ二本鎖法（Kramer法）[例えば Kramer W, Drutsa V, Jansen HW, Kramer B, Pflugfelder M, Fritz HJ (1984) Nucleic Acids Res, 12, 9441-56, および Kramer W, Fritz HJ (1987) Methods Enzymol, 154, 350-67]、およびKunkel 法 [例えばKunkel TA. (1985) Proc Natl Acad Sci USA, 82, 488-92, および Kunkel TA, Roberts JD, Zakour RA (1987) Methods Enzymol, 154, 367-82] などが挙げられる。また例えば、非特許文献8に記載の方法や、本発明の実施例にて開示される方法などを用いることができる。
【００２０】
本発明の変異型エンドヌクレアーゼVをコードする遺伝子を得るための好ましい方法として、上述の遺伝子改変法の他に、有機合成法や酵素合成法、あるいはそれらを適宜組み合わせた方法により、所望の変異型エンドヌクレアーゼV遺伝子を合成することもできる。
【００２１】
本発明の変異型エンドヌクレアーゼVを得る好ましい方法の一つは、上述のごとくして得られた本発明の変異型エンドヌクレアーゼV遺伝子を、組換え体DNAとして含む形質転換体または形質導入体を常法により作製し、その形質転換体または形質導入体を常法により培地に培養し、培養物から特異的エンドヌクレアーゼVを採取することである。
【００２２】
かような方法において、変異型エンドヌクレアーゼV遺伝子を、バクテリオファージ、コスミド、または原核細胞もしくは真核細胞の形質転換に用いられるプラスミド等のベクターに組み込み、各々の組換えベクターに対応する宿主を常法により、形質転換・形質導入をすることができる。
【００２３】
本発明の組換え体DNAは、適当なベクターに本発明の遺伝子を連結（挿入）することにより得ることができる。本発明の遺伝子を挿入するベクターは、宿主中で複製可能なものであれば特に限定されず、例えば、プラスミド DNA、ファージ DNA等が挙げられる。プラスミド DNAとしては、大腸菌由来のプラスミド（例えばpBR322, pBR325, pUC8, pUC9, pUC118, pUC119, pET (Novagen社製), pGEX (Amersham Biosciences社製), pQE (QIAGEN社製) , pMAL (New England Biolabs社製) 等）、枯草菌由来のプラスミド（例えばpUB110、 pTP5等）、酵母由来のプラスミド（例えばYEp13, YEp24, YCp50等）などが挙げられ、ファージDNAとしてはλファージ等が挙げられる。さらに、レトロウイルス又はワクシニアウイルスなどの動物ウイルス、バキュロウイルスなどの昆虫ウイルスベクターを用いることもできる。
【００２４】
ベクターに本発明の遺伝子を挿入するには、例えば、精製された本発明の遺伝子を含むDNAを適当な制限酵素で切断し、適当なベクター DNAの制限酵素部位またはマルチクローニングサイトに挿入してベクターに連結する方法などが採用される。ベクターには、プロモーター、本発明の遺伝子のほか、所望によりエンハンサーなどのシスエレメント、スプライシングシグナル、ポリA付加シグナル、選択マーカー、リボソーム結合配列（SD配列）などを連結することができる。選択マーカーの例としては、ジヒドロ葉酸還元酵素遺伝子、アンピシリン耐性遺伝子、ネオマイシン耐性遺伝子等が挙げられる。本発明の遺伝子には、後で本発明の変異型エンドヌクレアーゼVの精製や検出を容易にするために、あるいは発現した変異型エンドヌクレアーゼVが細胞内で不溶化してしまうのを防ぐために、GSTタグやヒスチジンタグなどのタグ配列等をコードする配列を付加してもよい [例えばTerpe K (2003) Appl Microbiol Biotechnol, 60, 523-533]。
【００２５】
本発明の形質転換体・形質導入体は、本発明の組換えベクターを、目的遺伝子が発現し得るように宿主中に導入することにより得ることができる。ここで用いる宿主としては、本発明の遺伝子を発現できるものであれば特に限定されるものではない。例えば、エッシェリヒア属（Escherichia coli等）、シュードモナス属（Pseudomonas putida 等）、バチルス属（Bacillus subtilis等）、リゾビウム属（Rhizobium meliloti等）などに属する細菌が挙げられ、Saccharomyces cerevisiae、Schizosaccharomyces pombe等の酵母が挙げられ、COS細胞、CHO細胞等の動物細胞が挙げられ、またあるいはヨトウガ細胞（Sf9、Sf21等）やカイコ細胞（BmN4等）などの昆虫細胞が挙げられる。
【００２６】
大腸菌等の細菌を宿主とする場合は、組換えベクターが該細菌中で自律複製可能であると同時に、プロモーター、リボゾーム結合配列、本発明の遺伝子、転写終結配列により構成されていることが好ましい。また、プロモーターを制御する遺伝子が含まれていてもよい。宿主大腸菌としては、例えば Escherichia coli K12, DH1, BL21(DE3) などが挙げられる。プロモーターとしては、大腸菌等の宿主中で発現できるものであればいずれを用いてもよいが、例えばtrpプロモーター、lacプロモーター、T7プロモーター、PLプロモーター、PRプロモーター、tacプロモーターなどの、大腸菌やファージに由来するプロモーターなどを用いることができる。
【００２７】
かようにして本発明の形質転換体・形質導入体が得られたならば、その培養物から本発明の変異型の特異的エンドヌクレアーゼVを採取するには、当業者が通常行う酵素採取手段を用いることができる。本発明の変異型エンドヌクレアーゼVが菌体内あるいは細胞内に生産される場合には、菌体あるいは細胞を破砕することにより当該酵素を抽出できる。例えば、常法により菌体を、超音波破砕処理、磨砕処理などするか、あるいはリゾチーム等の溶菌酵素を用いて本発明の酵素を抽出するか、またはトルエン等の存在下で振盪もしくは放置して自己消化を行なわせ本発明の酵素を菌体外に排出させるなどの方法でこれを行うことができる。
【００２８】
本発明の変異型エンドヌクレアーゼVが耐熱性である場合には、熱処理によっても好適にこれを行うことができる。基となる野生型エンドヌクレアーゼVが耐熱性酵素である場合には、そのアミノ酸配列を基に作製した本発明の変異型エンドヌクレアーゼVも通常はそれと同じかまたはほぼ同程度の耐熱性を有する。本発明の変異型エンドヌクレアーゼVが菌体外あるいは細胞外に生産される場合には、培養液をそのまま当該酵素を含む溶液として得てもよい。
本発明において酵素が「耐熱性」を有するとは、酵素が活性を示す至適温度が常温域（20〜40℃）よりも高い温度であることを指し、例えば酵素が活性を示す至適温度が中高温域（45〜65℃）、高温域（60〜80℃）、あるいは超高温域（80℃以上または90℃以上）の温度であることを指す。
【００２９】
前記のごとくして得られた本発明の変異型エンドヌクレアーゼVを含む調製物から、さらに本発明の変異型エンドヌクレアーゼVを精製し、精製酵素標品を得る場合には、当業者がタンパク質の単離精製に用いる一般的な生化学的方法、例えば硫酸アンモニウム沈殿、ゲルクロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー等を単独あるいは適宜組み合わせて用いることにより、前記酵素溶液から本発明の変異型エンドヌクレアーゼVを単離精製することができる。
【００３０】
本発明の変異型エンドヌクレアーゼV に、GSTタグやヒスチジンタグなどのタグ配列等を付加して発現させた場合、このような付加配列は、当該酵素の精製途中あるいは精製後に、当業者が通常行う適当な酵素処理等によって取り除いてもよいし、付加配列によって本発明の変異型エンドヌクレアーゼVの特徴、すなわち特異的活性を有しかつ非特異的な核酸切断活性を示さないこと、が損なわれない場合はそのままでもよい。
【００３１】
野生型のThermotoga maritimaエンドヌクレアーゼVを組換え体として得る方法が、例えば非特許文献7にて開示されていることから、当業者は例えば当該文献記載の方法に準じた方法において、野生型エンドヌクレアーゼV遺伝子の代わりに本発明の変異型エンドヌクレアーゼV遺伝子を用いることによって、本発明の変異型エンドヌクレアーゼVを得ることができる。また本発明の変異型エンドヌクレアーゼVを得る好ましい方法の1つの例として、本発明の実施例にて開示される方法やこれに準じた方法を用いることもできる。
【００３２】
本発明の耐熱性を有する特異的エンドヌクレアーゼVは、上述の本発明の特異的エンドヌクレアーゼVの提供方法において、基となる野生型エンドヌクレアーゼVとして耐熱性を有する野生型エンドヌクレアーゼVを選択することによって提供される。
【００３３】
このようにして、所望する本発明の変異型の特異的エンドヌクレアーゼVを得ることができ、また本発明の変異型の特異的エンドヌクレアーゼVの製造法が提供される。
【００３４】
本発明の変異型の特異的エンドヌクレアーゼVを用いることで、当該酵素を用いた核酸の切断方法が提供される。例えば、非特許文献12〜16、および特許文献1〜6, 8〜12に開示された野生型エンドヌクレアーゼVを用いる方法またはこれらに準じた方法において、野生型エンドヌクレアーゼVに代わって本発明の特異的エンドヌクレアーゼVを用いることができる。また本発明の核酸の切断方法は、これらの例に限定されるものではなく、エンドヌクレアーゼVの特異的活性を利用しようとする核酸の切断方法であれば、本発明の特異的エンドヌクレアーゼVを用いることでこれを行うことができる。本発明の核酸の切断方法は、エンドヌクレアーゼVの特異的活性を利用しようとする場合で、非特異的な核酸切断活性が好ましからざる結果を招く原因となる場合において、特に好適に用いることができる。
【００３５】
本発明の特異的エンドヌクレアーゼVを用いる核酸の切断方法では、その反応組成および反応条件として、例えば、基となった野生型エンドヌクレアーゼVの好適な反応組成および反応条件と同じかまたはほぼ同じものを好適に用いることができる。これらの反応組成および反応条件は、例えば非特許文献1〜5、7〜16に開示されており、また例えば特許文献1〜12に開示されている。また当業者は必要に応じて、これらの開示された反応組成および反応条件を改変し、または新たに、より好適な反応組成および反応条件を決めることができる。
【００３６】
本発明の核酸の切断方法では、特異的な核酸の切断活性として、エンドヌクレアーゼVが有する特異的な核酸の切断活性のいずれを用いてもよいが、デオキシイノシン特異的な核酸切断活性が特に好ましく用いられる。
【００３７】
本発明の核酸の切断方法において、本発明の変異型エンドヌクレアーゼVが有するデオキシイノシン特異的な核酸切断活性を、デオキシウリジン特異的な核酸切断活性の代わりとして用いることもできる。例えばDNA中のある位置に存在するデオキシウリジンを認識して当該DNA鎖を切断する方法は、DNA中のある位置に存在するデオキシイノシンを認識して当該DNA鎖を切断する方法で代用することができる。そのような場合、例えば、切断される基質DNA中にデオキシウリジンの代わりにデオキシイノシンが存在するように、当該基質を調製すればよい。そのような基質は、既知の化学的DNA合成法によって調製できる。またそのような基質は、既知の酵素学的方法によっても調製できる。例えば、DNAポリメラーゼ活性によって鋳型依存的にDNA鎖が合成される場合、ある種の条件下では、dUTPはdTTPの代わりに、またdITPはdGTPの代わりに、それぞれ新生DNA鎖中に取り込まれることが知られている。これを利用して、DNA中の所望する位置にデオキシウリジンを存在させる代わりに、DNA中の所望する位置に存在するデオキシイノシンを存在させることができる。また例えば、デオキシウリジンが存在するかどうか分からないあるいは存在すると推定されるDNAを、デオキシウリジン特異的な核酸切断反応に供して、その切断の有無や切断パターンに基づいて核酸を検出または分析する方法は、デオキシイノシンが存在するかどうか分からないあるいは存在すると推定されるDNAを、デオキシイノシン特異的な核酸切断反応に供して、その切断の有無や切断パターンに基づいて核酸を検出または分析する方法で代用することができる。
【００３８】
かようにして本発明の特異的エンドヌクレアーゼVまたは本発明の特異的エンドヌクレアーゼVを用いる核酸の切断方法が提供されたならば、特異的エンドヌクレアーゼVを少なくとも含有する核酸または遺伝子の検査または改変用試薬キットが提供される。
【００３９】
本発明のキットは、本発明の特異的エンドヌクレアーゼVを構成要素として少なくとも含むものである。さらに、本発明のキットには、使用者が本発明の特異的エンドヌクレアーゼVを用いる核酸の切断方法を実施しやすいように、当該酵素のためのあらかじめ調製された反応液、あるいは当該反応液を調製する基となる緩衝液、基質または基質溶液、エンドヌクレアーゼV以外の1以上の別の酵素、当該別酵素のためのあらかじめ調製された反応液、あるいは当該別酵素のための反応液を調製する基となる緩衝液、当該別酵素のための基質または基質溶液、およびマグネシウムイオンなどの金属イオンの供給物質などを必要に応じて構成要素に含めてもよい。これらの構成要素は、使用者が使いやすいように、本発明の方法が好ましく実施できる濃度あるいは当該濃度の一定倍の濃度（例えば当該濃度の10倍の濃度）の溶液として提供してもよい。またこれらの構成要素は、使用者が使いやすいように、1回あるいは複数回の反応に使用する量を、1つの容器中に存在させて提供してもよい。
【００４０】
また本発明の特異的エンドヌクレアーゼVを用いる核酸の切断方法を行うための手順や、その実施例などを記録した媒体なども、必要に応じて本発明のキットの構成要素に含めてもよい。
【００４１】
本発明のキットの好ましい形態の1つは、本発明の特異的エンドヌクレアーゼVを用いる核酸の切断方法を行うために必要とされる物質の全て、あるいは一部を除く全てを構成要素として含むものである。
【実施例】
【００４２】
以下に実施例を挙げて、本発明を更に詳しく説明する。なお本発明は下記の実施例に限定されるものではない。
【００４３】
＜野生型エンドヌクレアーゼ遺伝子Ｖの作製＞
サーモトガ・マリチマATCC 43589株を、理化学研究所微生物系統保存施設（Japan Collection of Microorganisms, JCM）より購入した（JCM No. 10099）。このサーモトガ・マリチマを、所定の培地を用い、嫌気条件下にて、80℃で48時間静置培養した。その培養液20 mlを13,000×gで、5分間遠心分離し、沈殿した菌体を1 mlの超純水に懸濁した。懸濁液を超音波破砕処理した後、13,000×gで、5分間遠心分離し上清を回収した。このようにして、サーモトガ・マリチマの染色体DNAが含まれる破砕上清液を取得した。
【００４４】
次に以下の手順に示すPCRにより、サーモトガ・マリチマのエンドヌクレアーゼV遺伝子を増幅した。サーモトガ・マリチマの破砕上清液1 μlを、鋳型として反応液（全量50 μl）に添加した。DNAポリメラーゼとして、KOD plus（TOYOBO社製）1.0ユニットを反応液に添加した。反応緩衝液として、KOD plus製品に添付の10倍濃度の緩衝液(10 x KOD−PCR buffer)を5 μl添加した。プライマーとして、配列番号3および配列番号4で表されるオリゴヌクレオチドを、それぞれ終濃度0.3 μMとなるように反応液に添加した。dNTPは終濃度が各0.2 mM、そしてMgSO4は終濃度が1 mMとなるようにそれぞれ反応液に添加した。
サーマルサイクラーは、GeneAmp PCR System 9600（Perkin Elmer 社製）を使用し、94℃で2 分間の熱処理を1回、続いて94℃で15秒間、57℃で30秒間、68℃で1分間の温度サイクルを35回繰り返した。PCR増幅産物を、QIAquick PCR Purification Kit（キアゲン社製）を用いて精製し、超純水50 μlで溶出した。精製操作の手順は、当該精製キットに付属の仕様書に従った。
【００４５】
得られた増幅産物を常法に従って、His−tag配列を有する大腸菌組換えタンパク質発現用ベクターpET16b（Novogen社製）へ挿入した。得られた組換え体DNA（以下pET16TmaEVと呼ぶ）中のエンドヌクレアーゼV遺伝子の塩基配列をDNAシーケンサーによって解読し、その配列が、既知のサーモトガ・マリチマ エンドヌクレアーゼV遺伝子の塩基配列（GenBank Accession AE001823）と一致することを確認した。以上のようにして野生型エンドヌクレアーゼV遺伝子を作製した。
【００４６】
＜変異型エンドヌクレアーゼ遺伝子Ｖの作製＞
まず野生型エンドヌクレアーゼVのアミノ酸配列の80位に位置するチロシンをコードする塩基配列を、アラニンをコードする塩基配列に置換（Y80A変異）したエンドヌクレアーゼV遺伝子を作製した。Quikchange II Site Directed Mutagenesis Kit （Stratagene社製）を用いて、目的の塩基配列に部位特異的変異を導入した。当該キットは、Dpn Iが有するメチル化DNAを消化する性質を利用したものである。反応液の全量を51 μｌとし、鋳型として実施例１で作製したpET16TmaEVを50 ng用いた。反応液組成および操作手順は、前記のキットに付属の仕様書に準じた。Y80A変異導入用プライマーとして、配列番号5および配列番号6で表されるオリゴヌクレオチドを用いた。このようにしてY80A変異を導入した変異型エンドヌクレアーゼV遺伝子を含む組換え体DNA（以下pET16TmaEVM1と呼ぶ）を得た。
【００４７】
次に、同様な方法により、pET16TmaEVM1にコードされた変異型エンドヌクレアーゼVのアミノ酸配列の105位に位置するアスパラギン酸をコードする塩基配列を、アラニンをコードする塩基配列に置換（D105A変異）した。D105A変異導入用プライマーとして、配列番号7および配列番号8で表されるオリゴヌクレオチドを用いた。これによって、Y80AとD105Aの2ヶ所の変異が導入された変異型エンドヌクレアーゼV遺伝子を有する組換え体DNA（以下、pET16TmaEVM2と呼ぶ）を得た。pET16TmaEVM2中のエンドヌクレアーゼV遺伝子の塩基配列をDNAシーケンサーによって解読し、目的とする塩基の置換が存在することを確認した。また変異を加えた部分以外の塩基配列は、既知のサーモトガ・マリチマ エンドヌクレアーゼV遺伝子の塩基配列（GenBank Accession AE001823）と一致した。以上のようにして変異型エンドヌクレアーゼVの遺伝子を作製した。
【００４８】
＜野生型および変異型エンドヌクレアーゼVの発現と精製＞
大腸菌組換えタンパク質発現系を利用し、以下の手順で野生型エンドヌクレアーゼVおよび変異型エンドヌクレアーゼVを発現した。まず、実施例１で作製したpET16TmaEVまたは 実施例２で作製したpET16TmaEVM2を用いて、宿主大腸菌株BL21（DE3）（Novogen社製）を常法によって形質転換した。得られた形質転換体を、アンピシリン（終濃度50 μg/ml）を含むLB培地8 ml（ペプトン10 g/l、酵母エキス5 g/l、NaCl 10 g/l）に接種し、培地のOD600が0.6になるまで37℃で振とう培養を行った。続いて、その培養液を、アンピシリン（終濃度50 μg/ml）を含むLB培地800 mlに接種し、培地のOD600が0.6になるまで37℃で振とう培養を行った。その後、イソプロピル−β−チオガラクトピラノシドを終濃度が1 mMとなるように培養液に添加することによって目的タンパク質の発現を誘導し、30℃で5時間振とう培養を行った。その培養液を13,000×gで10分間遠心分離した。沈殿した菌体を、プロテアーゼ阻害剤カクテル（Sigma社製）を含む緩衝液 [ 20 mM HEPES (pH7.4), 1 mM EDTA (pH8.0), 0.1 mM DTT, 50 mM NaCl] 30 mlに懸濁した。当該懸濁液30 mlを超音波破砕処理した後、13,000×gで10分間遠心分離し上清を回収した。得られた上清を75℃で15分間熱処理を行うことによって、上清中に含まれる大腸菌由来のタンパク質を変性させた。
【００４９】
その熱処理液を13,000×gで10分間遠心分離し、上清を回収した。得られた上清を孔径0.2 μmのフィルターでろ過した後、His−tag融合タンパク質精製用カラムHisTrap HP（Amersham Biosciences社製）を用いて、野生型エンドヌクレアーゼVまたは変異型エンドヌクレアーセVを精製した。このとき緩衝液として、真空脱気した緩衝液A [ 50 mM HEPES (pH7.4), 1 mM EDTA (pH8.0), 0.1 mM DTT, 50 mM NaCl, 20 mM imidazole ] および緩衝液B[ 50 mM HEPES (pH7.4), 1 mM EDTA (pH8.0), 0.1 mM DTT, 50 mM NaCl, 500 mM imidazole ]を用いて、ステップワイズ溶出を行った。得られた溶出画分についてSDS−PAGEを行い、予測分子量に一致する単一のタンパク質バンドが観測されることを確認した。以上のようにして野生型エンドヌクレアーゼVおよび変異型エンドヌクレアーゼVをそれぞれ得た。 
【００５０】
＜基質DNAの合成＞
エンドヌクレアーゼVの核酸切断活性を評価するために用いる基質DNAを、以下のようにして合成した。大腸菌のDNAをPCRによって増幅し、その際、増幅産物中にある割合でデオキシイノシンが取り込まれるようにした。PCRの反応液の容量は100 μlとし、鋳型として大腸菌（JCM No. 1649株）2×104  cfu（colony forming unit）の染色体DNAを添加した。PCRのプライマーとして、配列番号9および配列番号10で表されるオリゴヌクレオチドを、それぞれ終濃度が0.2 mMとなるように反応液に添加した。これらのオリゴヌクレオチドは、大腸菌mal遺伝子領域（GenBank Accession J01648）を標的とし、585 bp のDNA断片を増幅するプライマーセットである。DNAポリメラーゼとして、TaKaRa Taq（タカラバイオ社製）5ユニットを添加した。PCR反応の緩衝液は、DNAポリメラーゼ製品に付属のものを使用した。基質として、dATP, dTTP, dGTP, およびdCTPをそれぞれ終濃度0.2 mMとなるように反応液に添加した。更に、dITPを終濃度が0.02 mMまたは0.2 mMとなるように、反応液に添加した。サーマルサイクラーは、GeneAmp PCR System 9600（Perkin Elmer 社製）を使用し、94℃で30秒間、63℃で30秒間、72℃で30秒間の温度サイクルを30回繰り返した。別に、dITPを添加しない反応液を調整し、同様な方法でPCRを行った。得られたそれぞれのPCR増幅産物を、QIAquick PCR Purification Kit（キアゲン社製）を用いて精製し、超純水70 μlで溶出させた。精製操作の手順は、当該キットに付属の仕様書に従った。溶出液の波長260 nmの吸光度を測定することによって、溶出液中に含まれるPCR増幅産物の核酸濃度を測定した。このようにして、デオキシイノシンを含まないPCR増幅産物（以下基質S−Nと呼ぶ）を55.0 ng/μl、0.02 mM dITP存在下で増幅した産物（以下基質S−I1と呼ぶ）を52.5 ng/μl、0.2 mM dITP存在下で増幅した産物（以下基質S−I2と呼ぶ）を32.5 ng/μl、それぞれ得た。これらの産物は、アガロースゲル電気泳動において予測DNA断片長（585 bp）に一致する単一のバンドを示すことを確認した。最後に、それぞれの溶出液の核酸濃度を32.5 ng/μlに調整した。以上のようにして、エンドヌクレアーゼVの3種の基質DNA（S−N、S−I1、およびSI−2）を作製した。
【００５１】
＜比較例１  野生型エンドヌクレアーゼVの核酸切断活性＞
各種の基質DNA（S−N、S−I1、およびSI−2）を用いて、上記のように作製した野生型エンドヌクレアーゼVの核酸切断活性を調査した。反応緩衝液の組成は、10 mM HEPES (pH7.4)、5 mM MgCl2、1 mM DTTとした。エンドヌクレアーゼVおよび基質DNAは、終濃度がそれぞれ1.9 μMおよび11 nMとなるように反応液に添加した。別に、酵素を添加しないサンプルを陰性コントロールとして調製した。調製した反応液を、65℃で2時間保温し、所定の時間（10分、30分および1時間）が経過した時点でサンプリングを行った。反応終了後、それぞれの反応液10 μlについて、1.5％アガロースゲル電気泳動を行い、エチジウムブロマイドによって染色した後、UV照射下で基質DNAバンドの有無および濃淡を比較した。その電気泳動像を図１に示した。
【００５２】
図１のレーン1およびレーン17は、100 bp DNAラダーマーカーである。基質S−Nを使用した場合の、酵素なしの場合、反応時間10分、30分、1時間、および2時間のサンプルは、それぞれレーン2, 5, 8, 11, および14である。基質S−I1を使用した場合の、酵素なしの場合、反応時間10分、30分、1時間、および2時間のサンプルは、それぞれレーン3, 6, 9, 12, および15である。基質S−I2を使用した場合の、酵素なしの場合、反応時間10分、30分、1時間、および2時間のサンプルは、それぞれレーン4, 7, 10, 13, および16である。
【００５３】
この結果を見ると、デオキシイノシンを含む基質DNA（S−I1およびS−I2）の反応時間10分におけるバンド（レーン6および7）は、酵素を作用させない場合のバンド（レーン3および4）と比較して、明らかに酵素の核酸切断活性によって分解が進んでいる。また、基質S−I1（レーン6）に比べて、より多くのデオキシイノシンを含む基質S−I2（レーン7）の方が、より分解が進んでいる。
基質S−I1においては、反応時間が10分、30分、および1時間（それぞれレーン 6, 9, および12）と経過するに従い、基質分解によってバンドが薄くなり、2時間後（レーン15）には完全にバンドが消失した。基質S−I2においては、反応時間10分（レーン7）でほぼ完全にバンドが消失しており、それ以降（レーン10, 13, 16）においてもバンドは観測されない。このように、野生型エンドヌクレアーゼVのデオキシイノシン含有DNAを切断する活性が示された。
一方、デオキシイノシンを含まない基質DNA（S−N）においても、酵素を作用させない場合のバンド（レーン2）と比較して、反応時間が10分、30分、および1時間（レーン5, 8, および11）と経過するに従って、分解のために徐々にバンドが薄くなった。反応2時間後（レーン14）には、基質の分解によってバンドはほぼ完全に消失した。このことから、野生型エンドヌクレアーゼVは、非特異的な核酸切断活性も有していることが示された。
以上のことから、野生型エンドヌクレアーゼVにはデオキシイノシン含有基質DNAを切断するのみならず、非特異的なDNA切断活性も有することが確認された。
【００５４】
＜実施例１  変異型エンドヌクレアーゼVの核酸切断活性＞
3種の基質DNA（S−N、S−I1、およびSI−2）を用いて、上記のように作製した変異型エンドヌクレアーゼVの核酸切断活性を評価した。反応液組成および反応条件は、比較例1と同様な条件で行った。反応終了後、それぞれの反応液10 μlについて、1.5％アガロースゲル電気泳動を行い、エチジウムブロマイドによって染色した後、UV照射下で基質DNAのバンドの有無および濃淡を比較した。その電気泳動像を図２に示した。
【００５５】
図２のレーン1およびレーン17は、100 bp DNAラダーマーカーである。基質S−Nを使用した場合の、酵素なしの場合、反応時間10分、30分、1時間、および2時間のサンプルは、それぞれレーン2, 5, 8, 11, および14である。基質S−I1を使用した場合の、酵素なしの場合、反応時間10分、30分、1時間、および2時間のサンプルは、それぞれレーン3, 6, 9, 12, および15である。基質S−I2を使用した場合の、酵素なしの場合、反応時間10分、30分、1時間、および2時間のサンプルは、それぞれレーン4, 7, 10, 13, および16である。
【００５６】
この結果、デオキシイノシン含有基質（S−I1）は、時間の経過に伴い、酵素の核酸切断活性によって分解が進行し、2時間後（レーン15）のバンドは、酵素を作用させない場合のバンド（レーン3）に比べて明らかに薄いバンドを示した。また、より多くのデオキシイノシンを含む基質（S−I2）においてはさらに速い分解を示した。S−I2の反応時間10分のバンド（レーン7）は、酵素を作用させない場合のバンド（レーン4）と比較して明らかに薄く、さらに反応時間30分以降（レーン10, 13, および16）には完全にバンドが消失した。このように、変異型エンドヌクレアーゼVがデオキシイノシン含有DNAを切断する活性を有することが示された。
一方、デオキシイノシンを含まない基質DNA（S−N）においては、反応時間が10分、30分、1時間、2時間（レーン5, 8, 11, および14）と経過しても、酵素を作用させない場合のバンド（レーン2）と比べて変化はなかった。このことから変異型エンドヌクレアーゼVは非特異的な核酸切断活性を示さないことが実証された。
以上のことから、作製した変異型エンドヌクレアーゼVが、野生型エンドヌクレアーゼVには見られる非特異的な核酸切断活性を示さず、かつデオキシイノシン特異的な核酸切断活性を有する特異的エンドヌクレアーゼVであることが示された。さらに、当該変異型エンドヌクレアーゼVが、野生型エンドヌクレアーゼVと同様な反応組成および反応条件の下で酵素活性を示すことが明らかになった。加えて、当該変異型エンドヌクレアーゼVが、野生型エンドヌクレアーゼVと同様な耐熱性を示すことが確認された。
【図面の簡単な説明】
【００５７】
【図１】野生型エンドヌクレアーゼVの核酸切断活性を示す図である。
【図２】変異型エンドヌクレアーゼVの核酸切断活性を示す図である。
【図１】
0004822801.tif 000002
【図２】
0004822801.tif 000003
【配列表】
0004822801000001.app