(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
細胞内での酵素の存在を検出し、および／またはその活性を測定するための方法であって、
ａ）細胞を含む試料を、酵素活性蛍光基質であるフルオレセイン  ジ−β−Ｄ−ガラクトピラノシドと膜輸送可能分子であるＳＵＰＥＲＦＥＣＴ（登録商標）とのイオン結合型複合体を含む組成物に接触させる工程と、
ｂ）前記試料からの蛍光を検出する工程とを含み、蛍光の存在が細胞中の酵素の存在を示唆し、蛍光の強度が細胞内での酵素の活性または発現を示す、方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本明細書は、２００１年９月１９日に出願された、米国仮出願明細書番号第６０／３２３，０７７号の優先権を請求する。この仮出願明細書のすべてが、本明細書で、参考文献にて組み込まれている。
【０００２】
本発明は、一般的に、細胞の脂質膜を介した、低分子量酵素基質の輸送に関し、とりわけ、蛍光酵素基質の細胞内輸送に関する。
【背景技術】
【０００３】
酵素発現および／または酵素調節のような、酵素活性を測定する分子内アッセイを実行することが、工業分野の一般的な目標である。酵素活性は、細胞経路の直接の構成成分（例えば、特定の病原による、酵素の過剰発現）、または細胞機能のレポーター（例えば、関連した細胞事象を測定するための、酵素のレポーター遺伝子発現）でありうる。細胞内アッセイを実施するために、細胞膜を効率的に通過する、酵素活性化が改善された、非細胞毒性基質が望ましい。より高い検出感度、広くダイナミックな範囲の検出感度幅、およびハイスループットスクリーニング適用、ならびに他の生物学的および診断的アッセイフォーマットでの適合のための、非分解方法への細胞のローディングの簡便さも望まれる。上述の観点において、β−ガラクトシダーゼ、エステラーゼ、プロテアーゼ、ホスファターゼおよびオキシダーゼなどのような、種々の酵素を検出するために、トランスポーターと複合化することによって蛍光酵素基質の細胞内への輸送を容易にする方法および組成物が必要とされている。
【０００４】
細胞内工程をモニタするため、または改変するために、小分子および巨大分子を、生細胞内に輸送するための多くの技術が開発されてきた。これらの方法の多くは、３つのカテゴリーに分けられる。直接輸送方法、担体に媒介される輸送および一過性細胞膜浸透輸送である。例えば、Ｓｔｅｐｈｅｎｓ  ｅｔ  ａｌ．，「Ｔｈｅ  Ｍａｎｙ  Ｗａｙｓ  ｔｏ  Ｃｒｏｓｓ  ｔｈｅ  Ｐｌａｓｍａ  Ｍｅｍｂｒａｎｅ」、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，９８：８，４２９５−４２９８（２００１）を参照のこと。これらの方法のそれぞれに、利点と不都合がある。もっとも広く使用されている直接輸送方法は、接着細胞内へ基質を注入するために、小さなチップ（０．５ｍｍ）を備えるガラスマイクロピイペットを使用する、ガラスキャピラリーマイクロインジェクションである。マイクロインジェクションは１００％にまで輸送効率および細胞生存率を上げることができる。しかしながら、マイクロインジェクションには熟練した技術が必要であり、処理量が少なく（例えば、実験あたり、１００〜２００個の細胞）、接着型細胞に限定される。第二の輸送方法には、細胞膜に穴を開けるために、界面活性剤、毒素、ＵＶレーザー光、または電気的パルスを用いる、細胞膜の浸透が含まれる。一旦細胞膜が浸透すると、基質は、受動的拡散によって、人工的な穴を通り、細胞膜を横切って移動することができる。このアプローチは、熟練した手作業による技術がひつようなものではなく、ハイスループットアッセイに適合可能である。しかしながら、この浸透方法の欠点には、＜５０％の細胞生存性、不可逆的浸潤、および対象の細胞機能を妨害することが含まれる。例えば、細胞のエレクトロポレーションには、細胞周期の進行、細胞接着およびシグナル伝達プロセスを乱す細胞懸濁が必要である。
【０００５】
第三の型の輸送は、（「カーゴ（ｃａｒｇｏ）」として表される）基質を細胞内に導入するための担体として細胞浸透分子を利用する。担体は、カーゴに共有結合もしくは融合するか、またはカーゴと複合化して、ピギーバック様式で、細胞内に基質を運ぶことができる。結合または融合担体の例には、ペネトラチン、ＶＰ２２タンパク質（単純ヘルペス
ウイルス１）、およびＴＡＴタンパク質（ＨＩＶ−１）が含まれる。より一般的なアプローチにより、ＤＯＴＭＡ、ＤＯＴＡＰ、およびＤＯＳＰＡのようなカチオン脂質を用いて、巨大分子（例えばＤＮＡ、ＲＮＡまたはタンパク質）が導入される。細胞浸透方法と同様に、担体に媒介される輸送は、最小限の熟練した技術を要し、簡単にハイスループットアッセイに適合できる。しかしながら、導入効率はしばしば３０％以下であり、細胞型によって変化しうる。さらに、リポソーム輸送は、脂質代謝のような細胞機能を、非常に混乱させる。現存する方法のいずれもが、望まれる輸送特性：容易であること、高い輸送効率、高い細胞生存性、細胞型を問わない一般的実用性、および自動化が容易であることを完全に提供するものではない。
【０００６】
もっとも使用された担体に媒介される輸送方法の１つは、ポリカチオン巨大分子を用いた細胞のＤＮＡトランスフェクションである。種々の天然および合成ポリマーは、ＤＮＡのポリアニオン性リン酸骨格と複合体形成して、脂質二重膜を通る電荷が中性の複合体の輸送を容易にする能力が示されている。ポリカチオン担体分子の例には、スペルマジン、ポリリジン、ポリエチレンイミン、「スターバースト（Ｓｔａｒｂｕｒｓｔ）」ＰＡＭＡＭデンドリマー、およびＰＶＰＥおよびＰＶＰＥＣのようなポリビニルピリジニウム塩が含まれる。これらの担体分子は、種々のレベルの細胞毒性およびトランスフェクション効率を持つ。とりわけ、デンドリマーが、より高い輸送効率で、より低い細胞毒性効果を示し、したがって、（例えば、キアゲン（Ｑｉａｇｅｎ）Ｎ．Ｖ．の登録商標である、「ＳＵＰＥＲＦＥＣＴ」および「ＰＯＬＹＦＥＣＴ」活性化ポリアミンデンドリマーのような）市販されているＤＮＡトランスフェクション薬剤が開発されてきた。これらの物質は、リポソーム担体処方物のかわりとして使用することができる。例えば、Ｈａｅｎｓｌｅｒ
ｅｔ  ａｌ．，「Ｐｏｌｙａｍｉｄｏａｍｉｎｅ  Ｃａｓｃａｄｅ  Ｐｏｌｙｍｅｒｓ
Ｍｅｄｉａｔｅ  Ｅｆｆｉｃｉｅｎｔ  Ｔｒａｎｓｆｅｃｔｉｏｎ  ｏｆ  Ｃｅｌｌｓ
ｉｎ  Ｃｕｌｔｕｒｅ」」、Ｂｉｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ  Ｃｈｅｍ．，４，３７２−３７９（１９９３）、Ｂｏｕｓｓｉｆ  ｅｔ  ａｌ．，「Ａ  Ｖｅｒｓａｔｉｌｅ  Ｖｅｃｔｏｒ  ｆｏｒ  Ｇｅｎｅ  ａｎｄ  Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ  Ｔｒａｎｓｆｅｒ  ｉｎｔｏ  Ｃｅｌｌｓ  ｉｎ  Ｃｕｌｔｕｒｅ  ａｎｄ  ｉｎ  Ｖｉｖｏ：  Ｐｏｌｙｅｔｈｙｌｅｎｅｉｍｉｎｅ」、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，９２．７２９７−７３０１（１９９５）、Ｋａｂａｎｏｖ  ｅｔ  ａｌ．，「ＤＮＡ  Ｃｏｍｐｌｅｘｅｓ  ｗｉｔｈ  Ｐｏｌｙｃａｔｉｏｎｓ  ｆｏｒ  ｔｈｅ  Ｄｅｌｉｖｅｒｙ  ｏｆ  Ｇｅｎｅｔｉｃ  Ｍａｔｅｒｉａｌ  ｉｎｔｏ  Ｃｅｌｌｓ．」、Ｂｉｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ  Ｃｈｅｍ．，６，７−２０（１９９５）、Ｔａｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，「Ｉｎ  Ｖｉｔｒｏ  Ｇｅｎｅ  Ｄｅｌｉｖｅｒｙ  ｂｙ  Ｄｅｇｒａｄｅｄ  Ｐｏｌｙａｍｉｄｏａｍｉｎｅ  Ｄｅｎｄｒｉｍｅｒｓ」、Ｂｉｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ  Ｃｈｅｍ．，７，７０３−７１４（１９９６）、Ｋｕｋｏｗｓｋａ−Ｋａｔａｌｌｏ  ｅｔ  ａｌ．，「Ｅｆｆｉｃｉｅｎｔ  Ｔｒａｎｓｆｅｒ  ｏｆ  Ｇｅｎｅｔｉｃ  Ｍａｔｅｒｉａｌ
ｉｎｔｏ  Ｍａｍｍａｌｉａｎ  Ｃｅｌｌｓ  Ｕｓｉｎｇ  Ｓｔａｒｂｕｒｓｔ  Ｐｏｌｙａｍｉｄｏａｍｉｎｅ  Ｄｅｎｄｒｉｍｅｒｓ」、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，９３：４８９１−４９０２（１９９６）を参照のこと。
【０００７】
ＤＮＡプラスミドのような巨大分子基質を細胞内に輸送するために、ポリカチオン性輸送巨大分子が使用されてきた。１つ〜複数のアニオン基を持つ小分子量分子の輸送のいくつかの例は、文献中で明らかにされている。例えば、Ｐｒｅｓｔｗｉｃｈ  ｅｔ  ａｌ．は、担体として、ポリアミノデンドリマーおよびＩＩＩ−Ｓ型ヒストンを用いた、膜不浸透性ホスファチジルイノシトールポリリン酸およびイノシトールポリリン酸の、哺乳動物、植物、酵母、細菌および原生動物細胞内への輸送を記述している。Ｐｒｅｓｔｗｉｃｈ
ｅｔ  ａｌ．，「Ｉｎｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ  Ｄｅｌｉｖｅｒｙ  ｏｆ  Ｐｈｏｓｐｈｏｉｎｏｓｉｔｉｄｅｓ  ａｎｄ  Ｉｎｏｓｉｔｏｌ  Ｐｈｏｓｐｈａｔｅｓ  Ｕｓｉｎｇ  Ｐｏｌｙａｍｉｎｅ  Ｃａｒｒｉｅｒｓ．」、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓ
ｃｉ．ＵＳＡ，９７：１１２８６−１１２９１（２０００）を参照のこと。アニオン性脂質が、蛍光顕微鏡による視覚化のために、蛍光タグ化された。同様のアプローチが、赤血球内へ複合体としてアニオン性リン脂質を輸送するために、低分子量トリス（アミノエチル）アミンのアミドおよびスルホンアミド誘導体を用いて記述された。Ｂｏｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，「Ｆａｃｉｌｉｔａｔｅｄ  Ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｃｈｏｌｉｎｅ  Ｆｌｉｐ−Ｆｌｏｐ  Ａｃｒｏｓｓ  Ｅｒｙｔｈｒｏｃｙｔｅ  Ｍｅｍｂｒａｎｅｓ  Ｕｓｉｎｇ  Ｌｏｗ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｗｅｉｇｈｔ  Ｓｙｎｔｈｅｔｉｃ  Ｔｒａｎｓｌｏｃａｓｅｓ．」、Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．，１２３，６２２１−６２２６（２００１）。輸送により、複合化を介してリン脂質のヘッド基(headgroup)極性が減少し、リン脂質の細胞膜を通した分散が促進される。細胞外のジラウロイルホスファチジルコリン（ＤＬＰＣ）のトリス（アミドエチル）アミン−およびトリス（スルホンアミドエチル）アミンに媒介される輸送は、（細胞ＤＬＰＣ取り込みによって誘導される）ウニ状赤血球形態が初期ディスコサイト形状へ戻る。合成トランスポーターはまた、細胞内へ、蛍光ホスファチジルコリンプローブ（ＰＣ−ＮＢＤ）を運ぶ。
【０００８】
米国特許第５，３３８，５３２号、第５，５２７，５２４号および第５，７１４，１６６号は、種々の物質と結合したデンドリマー（例えば、濃スターポリマー類またはスターバーストポリマー類）を開示している。これらの物質には、薬物、毒素、金属イオン、放射性核種、シグナル産出物、シグナル反射物、キレート金属、シグナル吸収物、抗体、ホルモン、生物学的応答改変物、診断オパシファイアー、蛍光部分およびスカベンジャー物質が含まれる。複合物、複合物を含む組成物を調製するための工程、および複合物を使用する方法もまた、上記参考文献にて開示されている。
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００９】
種々の物理的および生物学的方法が、細胞内へ、膜不浸透性外来分子を導入するために使用されてきたが、上記の方法のいずれも、酵素活性蛍光基質複合体の、細胞膜を通した輸送は開示していない。さらに、上記の方法のいずれも、続く１または複数の固定細胞構成成分の分析のために、固定化細胞内に蛍光基質複合体を輸送することは開示していない。
【００１０】
以上の観点より、細胞の脂質膜を通した蛍光基質の輸送を促進するための方法および組成物が必要とされている。
【課題を解決するための手段】
【００１１】
本発明の第一の局面にしたがって、酵素活性蛍光基質と担体分子の複合体を含む蛍光基質輸送系が提供される。この蛍光基質輸送系は、ポリリジン、ヒストン、スペルミジン、ポリアミドアミンデンドリマー類、ポリエチレンイミン、ポリエチレンイミンデンドリマー類、ポリビニルピリジニウム塩およびポリグアニジンペプトイドでありうる。
【００１２】
本発明の第二の局面にしたがって、細胞内での酵素の存在を検出するための方法が提供される。本発明のこの局面にしたがった方法には、細胞を含む試料を、酵素によって開裂可能な基を含む酵素活性蛍光基質および担体分子の複合体を含む組成物に接触させるステップ、および前記試料からの蛍光を検出するステップが含まれる。蛍光の存在は細胞内での酵素の存在を示し、蛍光の強度は細胞内での酵素の活性または発現を示す。
【００１３】
本発明の第三の局面にしたがって、担体分子上の逆の電荷を有しているイオン性基とのイオン性電荷相互作用によって複合化可能な少なくとも１つのイオン性基を含む、蛍光基質が提供される。蛍光基質は、イオン置換基を持つフルオレセイン  ジ−β−Ｄ−ガラクトピラノシド（ＦＤＧ）、イオン置換基を持つ４−メチルウンベリフェリル  β−Ｄ−ガ
ラクトピラノシド（ＭＵＧ）、イオン置換基を持つ、レゾルフィン  β−Ｄ−ガラクトピラノシドおよびイオン置換基を持つ、９Ｈ−（１，３−ジクロロ−９，９−ジメチルアクリジン−２−オン−７−イル）β−Ｄ−ガラクトピラノシド（ＤＤＡＯガラクトシド）でありうる。蛍光基質は、一般式Ｉまたは一般式ＩＩによって表されるような構造を持ちうる。
【００１４】
【化１】
0004658474.tif 000002
【００１５】
式中、Ｙは、アニオンまたはポリアニオン基を表し、Ｘが酵素開裂可能基を表す。
【００１６】
本発明は、添付の図面を参照してさらに理解される。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１７】
細胞内へ輸送可能な酵素活性化蛍光基質を提供することが、本発明の目的である。本発明の膜輸送可能蛍光基質は、酵素活性化可能蛍光基質と輸送可能分子との間で形成されるイオン性複合体である。本発明の蛍光基質は、酵素活性および／または発現の細胞内アッセイにおいて使用可能である。
【００１８】
本発明は、細胞の脂質膜を通した、低分子量酵素基質の輸送に関する。本発明の酵素基質は、酵素の活性化の際に蛍光を増加させる非蛍光基質である。基質の細胞取り込みにより、標的酵素のアップレギュレーションまたはダウンレギュレーションの検出が可能になるか、あるいはレポーター遺伝子の形式で発現した酵素活性の検出が可能になる。詳細には、細胞内に一旦入ると、酵素的変化を起こしやすい基の細胞内ハイドロラーゼによる酵素開裂、または発生中の蛍光基質の酵素的変化を起こしやすい基の細胞内酸化による酵素酸化により、蛍光が増加する。
【００１９】
本発明の酵素活性化蛍光基質は、細胞を分解することなしに、細胞膜を介して輸送可能であり、したがって、細胞内アッセイおよびハイスループット細胞内スクリーニング形式で化学的もしくは生物学的基質の存在を検出すること、または活性を測定することに有用である。
【００２０】
上記に示したように、本発明の蛍光酵素基質には、蛍光レポーター分子または１〜多数のイオン性部位を含むコアが含まれる。蛍光コアに担持されるイオン性部位により、前記コアが、トランスポーターまたは担体分子において、相当するイオン性部位と複合体形成することが可能になる。得られた複合体は、細胞膜を通って輸送され得る。
【００２１】
本発明の好ましい実施形態において、担体分子は、ポリカチオン性キャリア（すなわち、複数のカチオン性部位を持つ担体）である。本発明のさらに好ましい実施形態では、担体が、複数のアミノ官能基を持つポリアミノデンドリマーであり、そこで、１または複数のアミノ基が、水素付加され、カチオン性となる。
【００２２】
本発明の酵素基質の蛍光コアは、本技術分野で公知の任意の蛍光部分であり得る。例えば、蛍光コアは、フルオレセイン、ローダミン、４−メチルウンベリフェリル、９Ｈ−（１，３−ジクロロ−９，９−ジメチルアクリジン−２−オン−７−イル）（ＤＤＡＯ）またはレソルフィンでありうる。上記リストは、限定の意味はなく、他の蛍光コアも使用可能である。
【００２３】
本発明の蛍光酵素基質は、逆の電荷を有しているトランスポーター分子と複合体形成するためのアニオン性またはカチオン性置換基を有する。例えば、フルオレセイン  ジ−β−Ｄ−ガラクトピラノシド（ＦＤＧ）は、２つの開裂可能なモノサッカライド基を持つ。基質は、低濃度で受動的に細胞内に拡散するので、１つのサッカライド基の開裂が、ラクトンを、カルボン酸に開裂し、弱く蛍光発色する、フルオレセイン  モノ−β−Ｄ−ガラクトピラノシド（ＦＭＧ）を形成する。カルボン酸は、（細胞からおよび細胞内への両方の）細胞膜を介した輸送のための、ポリカチオン性担体とより効率的に複合体形成するカルボキシレートアニオンを形成する。ポリカチオン性担体はＦＭＧを細胞内へ入れるので、細胞内β−ガラクトシダーゼが第二のガラクトシドを開裂させ、強く蛍光発色するフルオレセインアニオンを放出する。
【００２４】
代替として、トランスポーター分子へ複合体形成するための置換基をもたない蛍光レポーター分子を、アニオン性またはカチオン性置換基を有している基質を提供するように改変することができる。本発明にしたがって改変可能である適切な蛍光基質には、限定はしないが、ジ−β−Ｄ−ガラクトピラノシド（ＦＤＧ）、４−メチルウンベリフェリル  β−Ｄ−ガラクトピラノシド（ＭＵＧ）、レゾルフィン  β−Ｄ−ガラクトピラノシドおよび９Ｈ−（１，３−ジクロロ−９，９−ジメチルアクリジン−２−オン−７−イル）β−Ｄ−ガラクトピラノシド（ＤＤＡＯガラクトシド）が含まれる。上記の蛍光基質は、酵素の活性化の際に、例えば、β−ガラクトシダーゼのような酵素が基質のガラクトースを開裂させると、蛍光性となりうる。
【００２５】
酵素活性化蛍光の別の態様は、第一の酵素（例えば、細胞内エステラーゼ）が、エステルを開裂し、細胞内オキシダーゼに対して不安定な中間体非蛍光化合物を放出する、二重酵素活性化である。細胞内オキシダーゼは続いて、白色蛍光団を蛍光基質に酸化する。本発明にしたがって改変することができる二重酵素活性化基質の例には、エステラーゼがエステル基を開裂させてオキシダーゼによる細胞内酸化のための還元非蛍光基質を放出する、ジヒドロフルオレセインエステル類およびジヒドロローダミンエステル類が含まれる。
【００２６】
本発明はまた、膜輸送可能蛍光基質を調製する方法を提供する。例えば、膜輸送基質と蛍光基質の複合体を調製する工程には、膜輸送基質を、適切な電荷を有している蛍光基質に接触させ、分子内イオン電荷連結により互いに結合した多重分子部分を生じることが含まれる。
【００２７】
輸送分子は、蛍光基質の複合体形成のために複数のカチオン性またはアニオン性部位を持ちうる。細胞内での輸送分子に関して種々の基質が知られており、本発明の担体分子として使用することができる。このような物質の例には、ポリリジン、ポリアミドアミンデンドリマー類（例えば、ＰＡＭＡＭまたはスターバーストデンドリマー類）、ポリエチレンイミン、ポリエチレンイミンデンドリマー類（また、ＤＡＢ−Ａｍデンドリマー類として知られている）、ポリビニルピリジニウム塩（例えば、ＰＶＰＥおよびＰＶＰＥＣ）、ポリグアニジンペプトイド類、トリス（アミノエチル）アミド類、トリス（アミノエチル）スルホンアミド類、スペルマジン、ヒストン類、アミジニウム塩、ポリ（２−アミノエチルプロピレンホスフェート）およびボロン酸が含まれる。さらに、キアゲン（Ｑｉａｇｅｎ）Ｎ．Ｖ．の登録商標で承認されている「ＳＵＰＷＥＦＥＣＴ」および「ＰＯＬＹＦＥＣＴ」のような、電荷を有している（例えばプロトン化）アミノ基もまた、本発明の輸送分子として使用することができる。一般的に、本発明にしたがって、任意のアミノ末端デンドリマーを担体分子として使用することができる。
【００２８】
本発明の好ましい実施形態において、担体分子は、デンドリマーポリカチオンである。デンドリマーポリカチオンは、コア分子上または指定されたイニシエーター上に形成された三次元の高次構造を有するオリゴマーおよび／またはポリマー化合物である。これらのデンドリマー類は、オリゴマーおよび／またはポリマーを加える反復応答配列によって合成可能である。本発明の好ましい実施形態によれば、デンドリマーの外表面は正に荷電させられ、蛍光基質上のアニオン性部位との複合体形成のための部位が提供される。
【００２９】
別の好ましい実施形態においては、担体分子は、生物分解可能ポリアミンである。そのような担体の例は、ポリ（２−アミノエチルプロピレンホスフェート）である（Ｗａｎｇ
ｅｔ  ａｌ．，「Ａ  Ｎｏｖｅｌ  Ｂｉｏｄｅｇｒａｄａｂｌｅ  Ｇｅｎｅ  Ｃａｒｒｉｅｒ  Ｂａｓｅｄ  ｏｎ  Ｐｏｌｙｐｈｏｓｐｈｏｅｓｔｅｒ」Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．ＡＳＡＰ  ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎ、２００１年９月）。非細胞毒性小分子ユニットに分解される生物分解可能担体の利点は、あらゆる細胞毒性をさらに低下させることである。
【００３０】
ポリカチオン性デンドリマーは、公知の方法によって調製可能である。種々の方法が、例えば第ＰＣＴ／ＵＳ８３／０２０５２号、および米国特許第４，５０７，４６６号、第４，５５８，１２０号、第４，５６８，７３７号、第４，５８７，３２９号、第４，６３１，３３７号、第４，６９４，０６４号、第４，７１３，９７５号、第４，７３７，５５０号、第４，８７１，７７９号および第４，８５７，５９９号にて開示されている。
【００３１】
一般的に、本発明の輸送分子として使用されるデンドリマー上の末端基は、正電荷を捕獲可能であるべきである。そのような基の例は、アゾール類、一級、二級、三級および四級脂肪族および芳香族アミン、ピリジン、ピリミジン、ピラジン、グアニジンおよびそれらの組み合わせである。さらに、デンドリマー上の末端カチオン基が、好ましくはデンドリマーに共有結合する。好ましい末端カチオン基は、アミン基およびグアニジニウム基である。しかしながら、他もまた使用することができる。本発明の、デンドリマーポリカチオンは、アニオン性蛍光基質と非共有的に（例えばイオン的に）結合可能である。これにより、一旦細胞内に輸送されると、複合体の解離が容易になる。
【００３２】
ヒストン、ポリリジンおよびポリアミノデンドリマーのような電荷を有している膜輸送基質とイオン性複合体を形成することができる蛍光基質を合成することが、本発明のさらなる目的である。本発明の酵素活性化蛍光基質は、複数の電荷を有している膜輸送可能基質へと複合体形成するために使用することができる、種々の電荷を有している基を持ちうる。例えば、蛍光基質は、１または複数のアニオン性の電荷を有している基を持ちうる。これらのアニオン基には、例えば、リン酸、ホスホン酸、カルボン酸、硫酸、スルホン酸
、フェノレート、ボロン酸および炭酸塩が含まれうる。これらのアニオン性の電荷を有している基は、ヒストン、スペルミジン、ポリリジンおよびポリアミドアミン（ＰＡＭＡＭ）デンドリマー、ポリエチレンイミン（ＰＥＩ）デンドリマー、グアニジニウムペプトイド、アミジニウム塩、ポリ（２−アミノエチルプロピレンホスフェート、トリス（アミノエチル）アミド、トリス（アミノエチル）スルホンアミドおよびボロン酸上の（例えば、陽子を有しているポリアミノ基のような）カチオン性の電荷を有している基と、イオン電荷相互作用を介して複合体形成することができる。
【００３３】
本発明の複数の電荷を有している（例えばポリカチオン性）膜輸送可能基質へと複合体形成することができるアニオン基を有している酵素活性化蛍光基質の例を、添付図にて示している。
【００３４】
図１Ａおよび１Ｂは、本発明のアニオン基を持つ２つの蛍光基質の一般式を示している。図１Ａおよび１Ｂ中の置換基Ｙは、アニオンまたはポリアニオン基を示している。好適なアニオン基の特定の例には、ＣＯＯＨ、ＣＯＯ-、ＳＯ3-、ＯＳＯ3-、ＰＯ32-、ＯＰＯ32-、ＣＯＮＨＯＨ、ＣＯＮＨＯ-およびポリ（マレイン酸）が含まれる。図１Ａおよび１Ｂ中の置換基Ｘは、β−ガラクトシド、β−グルコシド、エステルまたはリン酸基のような、酵素開裂可能基を表している。酵素開裂可能基Ｘはまた、Ｘが負電荷を持つリン酸またはグルクロニドである場合に、基Ｙと複合体形成するアニオンとして機能する。
【００３５】
図２は、本発明のアニオン基を持つＦＡＭ−β−Ｄ−ガラクトシド−ビス−スルホ−ｄＲＡＺの一般式を示している。図２からみられるように、この蛍光基質は、４つのアニオン基、２つのＳＯ3-基および２つのＣＯＯ-基を持っている。また、適切な条件下で、カルボキシレートアニオンを形成することができるＣＯＯＨ基も存在する。
【００３６】
図３は、本発明のアニオン基を持つＦＡＭ−ジ−Ｂ−Ｄ−ガラクトシド−ビス−スルホ−ｄＲＡＺ基質の一般式を示している。図３から見られるように、この蛍光基質は、４つのアニオン基、２つのＳＯ3-電荷基および１つのＣＯＯ-基を持っている。また、図３の蛍光基質はまた、適切な条件下で、カルボキシレートアニオンを形成することができるＣＯＯＨ基も持つ。
【００３７】
図４は、本発明のアニオン基を持つ４−メチルウンベリフェリルβ−Ｄ−ガラクトピラノシド（ＭＵＧ）基質の一般式を示している。図４の置換基Ｙは、ＣＯＯＨ、ＣＯＯ-、ＳＯ3-、ＯＳＯ3-、ＰＯ32-、ＯＰＯ32-、ＣＯＮＨＯＨ、ＣＯＮＨＯ-およびポリ（マレイン酸）が含まれうるアニオン基またはポリアニオン基を表している。図４のＺは、Ｃｌ、Ｆ、ＨまたはＳＯ3-を表し、ｎは、０〜１０の整数である。
【００３８】
図５は、本発明のアニオン基を持つ９Ｈ−（１，３−ジクロロ−９，９−ジメチルアクリジン−２−オン−７−イル）β−Ｄ−ガラクトピラノシド（ＤＤＡＯ）基質の一般式を示している。図５における置換基Ｙは、ＣＯＯＨ、ＣＯＯ-、ＳＯ3-、ＯＳＯ3-、ＰＯ32-、ＯＰＯ32-、ＣＯＮＨＯＨ、ＣＯＮＨＯ-およびポリ（マレイン酸）が含まれうる、アニオンまたはポリアニオン基を表している。図５におけるＺは、Ｃｌ、Ｆ、ＨまたはＳＯ3-を表し、ｎは、０〜１０の整数である。
【００３９】
図６は、本発明のウンベリフェロンに基づいた、アニオン性蛍光酵素基質の第１の実施形態を示している。
【００４０】
図７は、本発明のウンベリフェロンに基づいた、アニオン性蛍光酵素基質の第２の実施形態を示している。図６および７中の置換基Ｚは、Ｃｌ、Ｆ、ＨまたはＳＯ3-であり得、ｎは、０〜１０の整数であり得る。
【００４１】
図２〜７中の置換基Ｘは、β−ガラクトシド、β−グルコシド、エステルまたはリン酸基のような、酵素開裂可能基を表している。図４、５、６および７中の置換基Ｙは、ＣＯＯＨ、ＣＯＯ-、ＳＯ3-、ＯＳＯ3-、ＰＯ32-、ＯＰＯ32-、ＣＯＮＨＯＨ、ＣＯＮＨＯ-およびポリ（マレイン酸）が含まれうる、アニオンまたはポリアニオン基を表している。
【００４２】
図８は、５−カルボキシフルオレセインからの細胞内アニオン性ＦＤＧの合成を示している。合成の第一段階において、マスクしたアニオン基を、５−カルボキシフルオレセインの５位のＣＯＯＨ基とカップリングさせる。カップリングは、５−カルボキシフルオレセインを、室温にてＤＮＦ中の１当量（ＥｔＯ2Ｃ）ＣＨ2ＣＨ（ＮＨ）ＣＨ2（ＣＯ2Ｅｔ）および１．３当量のカップリング剤と反応させることで実施することができる。代替として、５−カルボキシフルオレセインから誘導した５−Ｎ−ヒドロキシスクシンイミドエステルを、室温にて、ＤＭＦ中の、１当量（ＥｔＯ2Ｃ）ＣＨ2ＣＨ（ＮＨ）ＣＨ2（ＣＯ2Ｅｔ）、トリエチルアミンとカップリングさせることができる。合成の第二段階では、糖を、合成の第一段階の産物とカップリングさせる。カップリングは、例えば、室温にて、無水ベンゼン中の２．５当量のＡｇ2ＣＯ3、２．５当量のシム（ｓｙｍ）−コリジン、および２．５当量の２，３，４，６−テトラ−Ｏ−アセチル−α−Ｄ−ガラクトシルブロマイドと反応させることによって実施することができる。合成の第三段階では、酢酸糖とエチルエステルを、例えば、室温にて無水溶媒中のＮａＯＭｅ／ＭｅＯＨにより鹸化し、続いて酸で中和することができる。
【００４３】
図９は、フルオレセインアミンからの細胞内アニオン性ＦＤＧの合成を示している。合成の第一段階においては、フルオレセインアミンを、（例えば、２．２当量のＢｒＣＨ2ＣＯ2Ｅｔおよび熱を使用して）、マスクされたアニオン基でジアルキル化することができる。合成の第二段階で、糖を、例えば、室温にて、無水ベンゼン中の２．５当量のＡｇ2ＣＯ3、２．５当量のシム−コリジン、２．５当量の２，３，４，６−テトラ−Ｏ−アセチル−α−Ｄ−ガラクトシルブロマイドと反応させることによって、第一の合成段階の産物にカップリングさせることができる。合成の第三段階では、酢酸糖およびエチルエステルを、（例えば、室温にて無水溶媒中のＮａＯＭｅ／ＭｅＯＨにより）鹸化し、続いて酸で中和することができる。
【００４４】
図１０は、２’，７’−ビス（２−カルボキシルエチル）−５−（および−６）−カルボキシフルオレセインからの、細胞内アニオン性ＦＤＧの合成を示している。合成の第一段階においては、（例えば、還流下ＨＣｌ／ＭｅＯＨで）ＣＯＯＨ基をエステル化することができる。合成の第二段階では、糖を、室温にて、無水ベンゼン中の２．５当量のＡｇ2ＣＯ3、２．５当量のシム−コリジン、２．５当量の２，３，４，６−テトラ−Ｏ−アセチル−α−Ｄ−ガラクトシルブロマイドと反応させることによって、糖を鹸化することができる。合成の第三段階では、酢酸糖およびエチルエステルを、例えば、室温にて無水溶媒中のＮａＯＭｅ／ＭｅＯＨで鹸化し、続いて酸で中和することができる。
【００４５】
図１１は、５−（４，６−ジクロロトリアジニル）アミノフルオレセインからの細胞内アニオン性ＦＤＧの合成を示している。合成の第一段階では、ジクロロトリアジンを、ヒンダードアミンを使用して、（例えば、２．２当量のＮＨ2ＣＨ2ＣＯ2ＥｔまたはＮＨ2ＣＨ（ＣＨ2ＣＨＯ2Ｅｔ）2を用いて）、マスクされたアニオン基と反応させることでビスアミン化する。合成の第二段階では、糖を、例えば、室温にて、無水ベンゼン中の２．５当量のＡｇ2ＣＯ3、２．５当量のシム−コリジン、２．５当量の２，３，４，６−テトラ−Ｏ−アセチル−α−Ｄ−ガラクトシルブロマイドを用いることによって、上記の反応産物にカップリングさせることができる。合成の第三段階では、酢酸糖およびエチルエステルを、（例えば、室温にて無水溶媒中のＮａＯＭｅ／ＭｅＯＨを用いて）鹸化し、続いて酸で中和することができる。図１１において、置換基Ａは、−ＣＨ2ＣＯ2Ｈまたは−ＣＨ
（ＣＨ2ＣＯ2Ｈ）2でありうる。
【００４６】
図１２は、ウンベリフェロン  ３−カルボン酸またはウンベリフェロン−４−酢酸からの、細胞内アニオンウンベリフェロン−ガラクトシドの合成を示している。図１２の合成の第一段階においては、マスクされたアニオン基を、例えば室温にて、ＤＭＦ中の、１当量（ＥｔＯ2Ｃ）ＣＨ2ＣＨ（ＮＨ）ＣＨ2（ＣＯ2Ｅｔ）、１．３当量のカップリング剤（例えば、ＥＤＣまたはＤＣＣ）と反応させて、ＣＯＯＨ基にカップリングさせることができる。あるいは、５−Ｎ−ヒドロキシスクシンイミドエステルを合成し、例えば、室温にてＤＭＦ中の１当量（ＥｔＯ2Ｃ）ＣＨ2ＣＨ（ＮＨ）ＣＨ2（ＣＯ2Ｅｔ）、トリエチルアミンとカップリングさせることができる。合成の第二段階では、糖を、室温にて、無水ＣＨ3ＣＮ中の１．２当量のＡｇ2ＣＯ3、１．２当量のシム−コリジン、１．２当量の２，３，４，６−テトラ−Ｏ−アセチル−α−Ｄ−ガラクトシルブロマイドを用いて、上記の反応産物にカップリングさせることができる。合成の第三段階では、酢酸糖およびエチルエステルを、（例えば、室温にて無水溶媒中のＮａＯＭｅ／ＭｅＯＨを用いて）鹸化し、続いて酸で中和することができる。
【００４７】
図１３は、フルオレセインアミン（ＩＩ）からの細胞内アニオン性ＦＤＧの合成を示している。図１３の合成の第一段階においては、ホスホン酸（６−クロロ−１，３，５−トリアジン−２，４−ジイル）ビス−、テトラシアノエチルエステル（Ｉ）を、室温にて、ＭｅＯＨまたはトルエン中で、フルオレセインアミン（ＩＩ）とカップリングさせる。合成の第二段階では、糖を、Ｓｃｈｍｉｄｔ  Ｉｍｉｄａｔｅ手順により（例えば、０℃にてＣＨ2Ｃｌ2中、ＢＦ3−ＯＥｔ2、２．２当量、２，３，４，６−テトラ−Ｏ−アセチル−Ｄ−ガラクトシルイミデートを使用して）、反応産物にカップリングすることができる。合成の第三段階においては、酢酸糖を鹸化し、ホスホン酸塩を（例えば、室温にて、無水溶媒中のＮａＯＭｅ／ＭｅＯＨで）脱保護し、続いて酸で中和することができる。
【００４８】
アニオン性の電荷を有している基を図に示しているが、蛍光基質上の電荷を有している基もまた、アンモニウム、ホスホニウムまたはスルホニウムのような、電荷を有している基を持つカチオンであり得る。例えば、蛍光基質上の１または複数のカチオン性の電荷を有している基は、膜輸送可能基質上のアニオン性の電荷を有している基とのイオン電荷相互作用により複合体形成することができる。ポリアニオン担体は、ＣＯＯ-、ＳＯ3-、ＯＳＯ3-、ＰＯ32-、ＯＰＯ32-、およびＣＯＮＨＯ-のような多数のアニオン基を持ちうる。そのような膜輸送可能複合体の例は、モノマー、ポリマーまたはデンドリマーボロン酸の、蛍光基質との結合であり得、ここで蛍光基質は、アニオンポリマーボロン酸へと複合体形成するために、少なくとも１つのモノサッカライド置換基（例えばβ−ガラクトシド、β−グルクロノシド、またはβ−マンノシド）を持つ。文献上の例はまた、輸送が、外見上はアニオン（ボロン酸）機構により発生するとが記載されているが、中性の電荷を有しているボロン酸のモノサッカライドとの複合体形成の輸送も報告されている。例えば、Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．，１１６，８８９５−８９０１（１９９４）、Ｃｈｅｍ．Ｃｏｍｍｕｎ．，７０５−７０６（１９９６）、Ｗｅｓｔｍａｒｋ  ｅｔ  ａｌ．，「Ｓｅｌｅｃｔｉｖｅ  Ｍｏｎｏｓａｃｃｈａｒｉｄｅ  Ｔｒａｎｓｐｏｒｔ  ｔｈｒｏｕｇｈ  Ｌｉｐｉｄ  Ｂｉｌａｙｅｒｓ  Ｕｓｉｎｇ  Ｂｏｒｏｎｉｃ  Ａｃｉｄ  Ｃａｒｒｉｅｒｓ」、Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．，１１８．１１０９３−１１１００（１９９６）を参照のこと。ボロン酸担体複合体の第二の例は、Ｙがヒドロキサム酸基（ＣＯＮＨＯＨ）である、蛍光基質とのポリボロン酸の結合であり得る。ボロン酸およびヒドロキサム酸に関するｐＫａ’が７．５〜１０．５の範囲であるので、ボロン酸／ヒドロキサム酸複合体系には、（基質カーゴ上のカチオン置換基Ｙがヒドロキサム酸である）ポリボロン酸担体または（基質カーゴ上のカチオン置換基Ｙがボロン酸である）ポリヒドロキサム酸担体のいずれかが含まれうる。
【００４９】
電荷を有している蛍光基質（類）および電荷を有している膜輸送基質が混合されている場合は、得られる膜輸送可能複合体は、イオン電荷相互作用によって互いに結合される。結果として、続く細胞内酵素アッセイのための全体として中性の電荷を有している多分子種の細胞取り込みが促進されうる。
【００５０】
酵素活性または発現を検出するための細胞内アッセイにおいて本発明の基質を使用する能力により、生物学的および診断的分析に関する一般ツールとしての広範囲の利用が約束される。例えば、ｌａｃＺによってコードされる細菌β−ガラクトシダーゼ、およびホタルルシフェラーゼは、細胞内の真核生物プロモーターの転写活性について広く使用されているレポーターである。β−ガラクトシダーゼの細胞内検出は、β−ガラクトシダーゼ相補技術を用いてタンパク質−タンパク質相互作用を正確に示すことができ、これは、その内容が本明細書中に参考文献として組み込まれている同時係属中の明細書番号第０９／６５４，４９９号に開示されている。蛍光酵素基質はまた、細胞に基づくハイスループットスクリーニング、例えば、ＧＰＣＲｓのような細胞表面レセプターへのアゴニスト／アンタゴニストリガンド結合において有用性がありうる。酵素活性における変動がまた、適用症を診断するための病理学的状態を同定することができる。本発明の膜輸送可能蛍光基質は、グルコシダーゼ、ホスファターゼ、プロテアーゼ、スルファターゼおよびエステラーゼのようなハイドロラーゼによって活性化することができる。
【００５１】
細胞内基質の先行技術での使用は、有害であるか、または非効率的な細胞のローディング方法、毒性基質および不適切な検出感度によって制限されてきた。本発明は、ａ）検出感度を増加させ、動的な検出範囲を増加させるための、酵素活性化蛍光基質、ｂ）効率的で、非分解性細胞のローディングのための膜輸送可能基質を提供することによって、そのような欠点を解決する。
【００５２】
多くの公知の細胞のローディング方法は細胞膜に対して破壊的であり、および／または非効率的であり、したがって、ｉｎ  ｖｉｔｒｏでの使用には非効率的である。多量をローディングする手順には、アセトキシメチルエステルローディング、ＡＴＰ−誘導浸潤、カチオンリポソーム輸送、エレクトロポレーション、高浸透圧ショックおよびスクレープローディング（ｓｃｒａｐｅ  ｌｏａｄｉｎｇ）が含まれる。マイクロインジェクションおよびパッチピペット潅流のような、単一細胞ローディング手順は、ハイスループット分析には適合しない。
【００５３】
基質を導入する好ましい方法は、細胞内部および／または非細胞実質（ｓｕｂｃｅｌｌｕｌａｒ  ｅｎｔｉｔｙ）へのトランスポーター複合体を介した細胞膜を通した基質の輸送による。例えば、細胞内で酵素を検出するために本発明を使用する場合には、細胞を、検出される酵素によって開裂されうる基を有しえいる蛍光気質／トランスポーター複合体と接触させることができる。一旦蛍光気質複合体が、細胞内へ脂質膜を通じて輸送されると、この蛍光の増加が酵素の存在の指標として検出される。蛍光教祖の測定によって、細胞内での酵素の発現および／または活性を測定することができる。
【００５４】
例えば、細胞内で酵素を検出するために本発明の基質を使用する場合は、細胞を基質／トランスポーター複合体に接触させる。ここでは、基質は、検出される酵素によって開裂可能である基を持つ。一旦、基質複合体を、細胞内へ脂質膜を通して輸送されるとれば、細胞内酵素は基質の酵素開裂基を開裂させて、蛍光分子を形成することができる。得られる蛍光を検出することができ、これは酵素の存在の指標である。蛍光の強度を測定することによって、細胞内での酵素の発現および／または活性を測定することができる。
【００５５】
本発明の蛍光基質は、細胞膜内に基質が埋め込まれている脂肪親和性基質を持つことができ、したがって、細胞内で基質をつなぐことができる。本発明の蛍光基質はまた、クロ
ロメチル置換基を持ちうる。これらのクロロメチル置換基は、細胞内グルタチオンと反応させることができ、細胞内に残る傾向にあるトリペプチド基質類似体を形成することができる。しかしながら、つながれた基質はより細胞毒性でありうる。
【００５６】
第一の実験を、Ｐｓｉ−２−ＢＡＧ−α細胞内のβ−ガラクトシダーゼのＦＤＧ検出に対する複合体形成の作用を測定するために行った。第一に、ＦＤＧ検出を、トランスポーターまたはそれに複合体形成した担体なしに（受動的なローディング）、ＦＤＧを用いて測定した。この測定値を、ＦＤＧと、活性化ポリアミノデンドリマー（例えば、キアゲン（Ｑｉａｇｅｎ）Ｎ．Ｖ．の登録商標である、「ＳＵＰＥＲＦＥＣＴ」）の複合体を使用した測定と比較した。
【００５７】
受動的なローディングの試験のために、２つの細胞バイアルを調製した。第一に、Ｏｐｔｉ−ＭＥＭ中の２５０μｌの０．６ｍＭ  ＦＤＧ中に懸濁させた、それぞれ３３０，０００個のｐｓｉ−２−ＢＡＧ−α細胞を含む２つのバイアルを調製した。細胞の第一のバイアルは４℃にて２時間インキュベートし、第二の細胞バイアルは３７℃にて２時間インキュベートした。
【００５８】
ポリアミノデンドリマー複合体に関して、二つの細胞バイアルを、以下の様式で調製した。第一に、それぞれ、ポリカチオン担体として、２５μｌの「ＳＵＰＥＲＦＥＣＴ」を含むＯｐｔｉ−ＭＥＭ中、２５０μｌの０．６ｍＭ  ＦＤＧ中に懸濁させた、３３０，０００個のｐｓｉ−２−ＢＡＧ−α細胞を含む二つのバイアルを調製した。第一の細胞バイアルは４℃にて２時間インキュベートし、第二の細胞バイアルは３７℃にて２時間インキュベートした。
【００５９】
インキュベーションの後、上記４つの細胞懸濁液の２０μｌの３個の試料（受動／４℃、受動／３７℃、「ＳＵＰＥＲＦＥＣＴ」／４℃、「ＳＵＰＥＲＦＥＣＴ」／３７℃）を、９６ウェルプレートに加えた。
【００６０】
９６ウェルプレートを、励起フィルター４８５／２０、放射フィルター５３０／２５で、Ｃｙｔｏｆｌｕｏｒ４０００上で読み取った。データを、３つの平均として分析した。
【００６１】
【表１】
0004658474.tif 000003
【００６２】
上記データは、ＦＤＧのＳｕｐｅｒｆｅｃｔアシストローディングを用いると、蛍光シグナルが、１０倍またはそれ以上増加したことを示しており、このことは、有意に高い量のＦＤＧ基質が、β−ガラクトシダーゼ開裂が起こる細胞内に輸送されたことを示している。
【００６３】
第二実験を、ＦＲＡＰ／ＦＫＢＰ１２（ＢＩ４）細胞におけるラパマイシン誘導β−ガラクトシダーゼ相補物のＦＤＧ検出に対する蛍光基質複合体形成の作用を測定するために行った。細胞は、ＦＲＡＰおよびＦＫＢＰ１２タンパク質に融合された不活性なβ−ガラクトシダーゼ断片を含み、これはラパマイシンでのＦＲＡＰおよびＦＫＢＰ１２相互作用
の誘導の際に、β−ガラクトシダーゼ活性の相補性（復元）を生じる。
【００６４】
９６ウェルプレートに、ウェルあたり、１０，０００細胞にて、ＦＲＡＰ／ＦＫＢＰＩ２細胞をプレートした。半分の細胞をラパマイシンとともに一晩インキュベートし、β−ガラクトシダーゼ相補を誘導した。次の日、細胞をＯｐｔｉ−ＭＥＭで洗浄した。細胞の半分を、Ｏｐｔｉ−ＭＥＭ中の、２５４μｌの０．６ｍＭ  ＦＤＧ（フルオレセイン−ジ−β−Ｄ−ガラクトシド）とともに、３７℃にて９０分間インキュベートした。残りの細胞を、担体として「ＳＵＰＥＲＦＥＣＴ」（Ｏｐｔｉ−ＭＥＭ中２４０μｌの０．６ｍＭ
ＦＤＧ中の１４μｌの「ＳＵＰＥＲＦＥＣＴ」）を含む０．６ｍＭ  ＦＤＧとともに、３７℃にて９０分間インキュベートした。
【００６５】
９６−ウェルプレートを、励起フィルター４８５／２０、放射フィルター５３０／２５で、Ｃｙｔｏｆｌｕｏｒ４０００上で読み取った。データを、３つの平均として分析した。
【００６６】
【表２】
0004658474.tif 000004
【００６７】
上記データは、ＦＤＧの「ＳＵＰＥＲＦＥＣＴ」アシストローディングを用いると、蛍光シグナル対ノイズ比（Ｓ／Ｎ）が、誘導細胞でおよそ３７であることを示している。これを、ＦＤＧの非複合化または受動的なローディング（「ＳＵＰＥＲＦＥＣＴ」なし）で検出された誘導細胞に関する約２のＳ／Ｎと比較する。上記のデータは、有意に多い量のＦＤＧ基質が、ラパマイシン−誘導β−ガラクトシダーゼ発現の細胞内検出に関して、「ＳＵＰＥＲＦＥＣＴ」とともに細胞内へ誘導されたことを示唆している。
【００６８】
以上より、本発明の特定の実施形態が例示の目的のために本明細書に記載されているが、種々の改変が、本発明の精神および目的から逸脱することなく実施されうることが理解されるであろう。
【図面の簡単な説明】
【００６９】
【図１Ａ】本発明の第１の実施形態にしたがったアニオン置換基を持つ、蛍光基質の一般式を示す。
【図１Ｂ】本発明の第２の実施形態にしたがったアニオン置換基を持つ、蛍光基質の一般式を示す。
【図２】本発明のアニオン置換基を持つＦＡＭ−β−Ｄ−ガラクトシド−ビス−スルホ−ｄＲＡＺ基質の一般式を示す。
【図３】本発明のアニオン置換基を持つＦＡＭ−ジ−β−Ｄ−ガラクトシド−ビス−スルホ−ｄＲＡＺ基質の一般式を示す。
【図４】本発明のアニオン置換基を持つ、４−メチルウンベリフェリルβ−Ｄ−ガラクトピラノシド（ＭＵＧ）基質を示す。
【図５】本発明のアニオン置換基を持つ、９Ｈ−（１，３−ジクロロ−９，９−ジメチルアクリジン−２−オン−７−イル）β−Ｄ−ガラクトピラノシド（ＤＤＡＯ）基質を示す。
【図６】本発明のウンベリフェロンに基づいたアニオン性蛍光酵素基質の第一の実施形態を示す。
【図７】本発明のウンベリフェロンに基づいたアニオン性蛍光酵素基質の第一の実施形態を示す。
【図８】５−カルボキシフルオレセインからの細胞内アニオン性ＦＤＧの合成を示す。
【図９】５−アミノフルオレセインからの細胞内アニオン性ＦＤＧの合成を示す。
【図１０】２’，７’−ビス（２−カルボキシエチル）−５−（および−６）−カルボキシフルオレセインの合成を示す。
【図１１】５−（４，６−ジクロロトリアジニル）アミノフルオレセインからの細胞内アニオン性ＦＤＧの合成を示す。
【図１２】ウンベリフェロン−３−カルボン酸またはウンベリフェロン−４−酢酸からの、細胞内アニオンウンベリフェロン−ガラクトシドの合成を示す。
【図１３】リン酸（６−クロロ−１，３，５−トリアジン−２，４−ジイル）ビス−テトラシアノエチルエステルからの細胞内アニオン性ＦＤＧの合成を示す。
【図１Ａ】
0004658474.tif 000005
【図１Ｂ】
0004658474.tif 000006
【図２】
0004658474.tif 000007
【図３】
0004658474.tif 000008
【図４】
0004658474.tif 000009
【図５】
0004658474.tif 000010
【図６】
0004658474.tif 000011
【図７】
0004658474.tif 000012
【図８】
0004658474.tif 000013
【図９】
0004658474.tif 000014
【図１０】
0004658474.tif 000015
【図１１】
0004658474.tif 000016
【図１２】
0004658474.tif 000017
【図１３】
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