(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
下記の一般式(IA)又は(IB)：
【化１】
0004695811.tif 000014
〔式中、R1は下記の式(A)：
【化２】
0004695811.tif 000015
（式中、X1及びX2は2-ピリジルメチル基を示し、mは0を示し、nは1を示し、X4は水素原子を示す）で表される基を示し；R2は水素原子を示し；R3及びR4はそれぞれ独立に水素原子又はハロゲン原子を示し；R5及びR6はそれぞれ独立に水素原子、アルキルカルボニル基、又はアルキルカルボニルオキシメチル基を示し、R7は水素原子又はアルキル基を示す〕で表される化合物又はその塩。
【請求項２】
下記の一般式(II)：
【化３】
0004695811.tif 000016
（式中、R13及びR14はそれぞれ独立に水素原子又はハロゲン原子を示し：R17は水素原子又はアルキル基を示し；R18は水素原子を示す）で表される化合物又はその塩。
【請求項３】
R17が水素原子である請求項２に記載の化合物又はその塩。
【請求項４】
R13及びR14がともに水素原子であるか、あるいはR13及びR14がともに塩素原子である請求項２又は３に記載の化合物又はその塩。
【請求項５】
請求項１ないし４のいずれか１項に記載の化合物又はそれらの塩を含む亜鉛蛍光プローブ。
【請求項６】
請求項１ないし４のいずれか１項に記載の化合物又はそれらの塩と亜鉛イオンとから形成される亜鉛錯体。
【請求項７】
亜鉛イオンの測定方法であって、請求項１ないし４のいずれか１項に記載の化合物又はそれらの塩を亜鉛蛍光プローブとして用いる方法。
【請求項８】
亜鉛イオンの測定方法であって、下記の工程：
(a)請求項１ないし４のいずれか１項に記載の化合物又はそれらの塩と亜鉛イオンとを反応させる工程、及び
(b)上記工程で生成した亜鉛錯体の蛍光強度を測定する工程
を含む方法。
【発明の詳細な説明】
技術分野
本発明は、亜鉛イオンを特異的に捕捉して蛍光を発する亜鉛蛍光プローブに関するものである。
背景技術
亜鉛はヒトの体内において鉄に次いで含量の多い必須金属元素であり、細胞内のほとんどの亜鉛イオンは蛋白質と強固に結合して、蛋白質の構造保持や機能発現に関与している。また、細胞内にごく微量存在するフリーの亜鉛イオン（通常はμＭレベル以下である）の生理的役割についても、種々の報告がある。特に、細胞死の一つであるアポトーシスには亜鉛イオンが深く関わっていると考えられており、アルツハイマー病の老人斑の形成を促進しているなどの報告もある。
従来、組織内の亜鉛イオンを測定するために、亜鉛イオンを特異的に捕捉して錯体を形成し、錯体形成に伴って蛍光を発する化合物（亜鉛蛍光プローブ）が用いられている。亜鉛蛍光プローブとして、例えば、ＴＳＱ（Ｒｅｙｅｓ，Ｊ．Ｇ．，ｅｔ  ａｌ．，Ｂｉｏｌ．Ｒｅｓ．，２７，４９，１９９４）、Ｚｉｎｑｕｉｎ  ｅｔｈｙｌ  ｅｓｔｅｒ（Ｔｓｕｄａ，Ｍ．ｅｔ  ａｌ．，Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．，１７，６６７８，１９９７）、Ｄａｎｓｙｌａｍｉｎｏｅｔｈｙｌｃｙｃｌｅｎ（Ｋｏｉｋｅ，Ｔ．ｅｔ  ａｌ．，Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．，１１８，１２６８６，１９９６）、Ｎｅｗｐｏｒｔ  Ｇｒｅｅｎ（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｐｒｏｂｅ社のカタログである″Ｈａｎｄｂｏｏｋ  ｏｆ  Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ  Ｐｒｏｂｅｓ  ａｎｄ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ″６ｔｈ  Ｅｄｉｔｉｏｎ  ｂｙ  Ｒｉｃｈａｒｄ  Ｐ．Ｈａｕｇｌａｎｄ  ｐｐ．５３１−５４０）などが実用化されている。
0004695811.tif 000002
しかしながら、ＴＳＱ、Ｚｉｎｑｕｉｎ、又はＤａｎｓｙｌａｍｉｎｏｅｔｈｙｌｃｙｃｌｅｎを用いた測定では、短波長領域の励起光を用いる必要があるために（それぞれ、励起波長が３６７ｎｍ、３６８ｎｍ、及び３２３ｎｍである。）、これらの亜鉛蛍光ブローブを生体系の測定に用いた場合には、短波長による励起が細胞傷害を引き起こす可能性があり（細胞工学，１７，ｐｐ．５８４−５９５，１９９８）、また、測定の際に細胞系自身が有する自家蛍光（ＮＡＤＨやフラビン類が発する蛍光）による影響を受けやすいという問題がある。さらに、Ｄａｎｓｙｌａｍｉｎｏｅｔｈｙｌｃｙｃｌｅｎは測定時に試薬が存在する環境の違い、すなわち溶媒の種類、あるいは細胞外、細胞内もしくは細胞膜などにおける水溶性、脂溶性などの環境の違いにより蛍光強度が大きく変化するという欠点を有しており（蛋白質・核酸・酵素、増刊号，４２，ｐｐ．１７１−１７６，１９９７）、ＴＳＱは脂溶性が高いために細胞全体に均一に分布させることが困難であるという問題も有している。Ｎｅｗｐｏｒｔ  Ｇｒｅｅｎは長波長の励起光で測定を行なえるものの、亜鉛イオンとのアフィニティーが低く、実用的な測定感度を有していないという問題がある。従って、細胞障害を引き起こすことなく、高感度に亜鉛イオンを測定できる亜鉛蛍光プローブの開発が求められている。
発明の開示
本発明の課題は、高感度な亜鉛蛍光プローブとして利用可能な化合物又はその塩を提供することにある。より具体的には、亜鉛イオンを特異的に捕捉することができ、捕捉後の錯体の蛍光強度に優れ、長波長の励起光で蛍光測定を行なうことができる亜鉛蛍光プローブとして利用可能な化合物を提供することが本発明の課題である。また、本発明の別な課題は、上記の特徴を有する化合物を含む亜鉛蛍光プローブ、及び該亜鉛蛍光プローブを用いた亜鉛イオンの測定方法を提供することにある。
本発明者らは上記の課題を解決すべく鋭意研究を行った結果、環状アミン又はポリアミンを置換基として有する化合物が亜鉛イオンに対して高い特異性を有しており、亜鉛イオンを捕捉して、長波長領域の励起光で強い蛍光を発する錯体を形成することを見出した（特願平１１−４０３２５号）。本発明者らはさらに研究を重ね、下記の一般式（Ｉ）で表される化合物が極めて速やかに亜鉛と錯体を形成し、強い蛍光を発することを見出した。また、下記の一般式（Ｉ）で表される化合物を亜鉛蛍光プローブとして用いると生体内の亜鉛イオンと瞬時に反応して蛍光性の錯体を形成するので、生体内の亜鉛を極めて正確かつ高感度に測定できることを見出した。本発明はこれらの知見を基にして完成されたものである。
すなわち、本発明は、下記の一般式（ＩＡ）又は（ＩＢ）：
0004695811.tif 000003
〔式中、Ｒ１及びＲ２はそれぞれ独立に水素原子又は下記の式（Ａ）：
0004695811.tif 000004
（式中、Ｘ１、Ｘ２、Ｘ３、及びＸ４はそれぞれ独立に水素原子、アルキル基、２−ピリジルメチル基、又はアミノ基の保護基を示し、ｍ及びｎはそれぞれ独立に０又は１を示す）で表される基を示すが、Ｒ１及びＲ２が同時に水素原子であることはなく；Ｒ３及びＲ４はそれぞれ独立に水素原子又はハロゲン原子を示し；Ｒ５及びＲ６はそれぞれ独立に水素原子、アルキルカルボニル基、又はアルキルカルボニルオキシメチル基を示し、Ｒ７は水素原子又はアルキル基を示す〕で表される化合物又はその塩が提供される。
上記の発明の好ましい態様として、下記の一般式（ＩＩ）：
0004695811.tif 000005
（式中、Ｒ１３及びＲ１４はそれぞれ独立に水素原子又はハロゲン原子を示し：Ｒ１７は水素原子又はアルキル基を示し；Ｒ１８は水素原子又はアミノ基の保護基を示す）で表される化合物又はその塩を提供するものである。この発明の好ましい態様によれば、Ｒ１７及びＲ１８が水素原子である上記化合物又はその塩が提供され、さらに好ましい態様によれば、ベンゼン環上の置換アミノ基が−ＣＯＯＲ１７で表される基に対してメタ位又はパラ位に結合する化合物又はその塩が提供される。
また、下記の一般式（ＩＩＩＡ）又は（ＩＩＩＢ）：
0004695811.tif 000006
〔式中、Ｒ２１及びＲ２２はそれぞれ独立に水素原子又は下記の式（Ｂ）：
0004695811.tif 000007
（式中、Ｘ１１、Ｘ１２、Ｘ１３、及びＸ１４はそれぞれ独立に水素原子、アルキル基、２−ピリジルメチル基、又はアミノ基の保護基を示し、ｐ及びｑはそれぞれ独立に０又は１を示す）で表される基を示すが、Ｒ２１及びＲ２２が同時に水素原子であることはなく；Ｙは−ＣＯ−ＮＨ−又は−ＮＨ−ＣＯ−を示し；Ｒ２３及びＲ２４はそれぞれ独立に水素原子又はハロゲン原子を示し；Ｒ２５及びＲ２６はそれぞれ独立に水素原子、アルキルカルボニル基、又はアルキルカルボニルオキシメチル基を示し；Ｒ２７は水素原子又はアルキル基を示す〕で表される化合物又はその塩が本発明により提供される。この発明の好ましい態様によれば、ベンゼン環上のＹが−ＣＯＯＲ２７で表される基（ラクトン環を形成する場合には対応するカルボニル基）に対してメタ位に結合する化合物が提供される。
別の観点からは、本発明により、上記一般式（Ｉ）、一般式（ＩＩ）、又は一般式（ＩＩＩ）で表される化合物（ただしアミノ基の保護基が導入された化合物を除く）又はそれらの塩を含む亜鉛蛍光プローブ；及び上記一般式（Ｉ）、一般式（ＩＩ）、又は一般式（ＩＩＩ）で表される化合物（ただしアミノ基の保護基が導入された化合物を除く）又はそれらの塩と亜鉛イオンとから形成される亜鉛錯体が提供される。この亜鉛蛍光プローブは、組織や細胞内の亜鉛イオンを測定するために用いることができる。
さらに別の観点からは、本発明により、亜鉛イオンの測定方法であって、上記一般式（Ｉ）、一般式（ＩＩ）、又は一般式（ＩＩＩ）で表される化合物（ただしアミノ基の保護基が導入された化合物を除く）又はそれらの塩を亜鉛蛍光プローブとして用いる方法；亜鉛イオンの測定方法であって、下記の工程：（ａ）上記一般式（Ｉ）、一般式（ＩＩ）、又は一般式（ＩＩＩ）で表される化合物（ただしアミノ基の保護基が導入された化合物を除く）又はそれらの塩と亜鉛イオンとを反応させる工程、及び（ｂ）上記工程で生成した亜鉛錯体の蛍光強度を測定する工程を含む方法；並びに、上記一般式（Ｉ）、一般式（ＩＩ）、又は一般式（ＩＩＩ）で表される化合物（ただしアミノ基の保護基が導入された化合物を除く）又はそれらの塩の亜鉛蛍光プローブとしての使用が提供される。
上記一般式（Ｉ）、一般式（ＩＩ）、又は一般式（ＩＩＩ）で表される化合物（ただしアミノ基の保護基が導入された化合物に限る）は、上記の亜鉛蛍光プローブの製造のための製造中間体として有用である。
発明を実施するための最良の形態
日本国特許出願第２０００−５０８６９号明細書の開示を全て参照として本明細書の開示に含める。
本明細書において、「アルキル基」又はアルキル部分を含む置換基（例えばアルキルカルボニル基又はアルキルカルボニルオキシメチル基など）のアルキル部分は、例えば、炭素数１〜１２個、好ましくは炭素数１〜６個、好ましくは炭素数１〜４個の直鎖、分枝鎖、環状、又はそれらの組み合わせからなるアルキル基を意味している。より具体的には、アルキル基として低級アルキル基（炭素数１〜６個のアルキル基）が好ましい。低級アルキル基としては、例えば、メチル基、エチル基、ｎ−プロピル基、イソプロピル基、シクロプロピル基、ｎ−ブチル基、ｓｅｃ−ブチル基、イソブチル基、ｔｅｒｔ−ブチル基、シクロプロピルメチル基、ｎ−ペンチル基、ｎ−ヘキシル基などを挙げることができる。本明細書においてハロゲン原子という場合には、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、又はヨウ素原子のいずれでもよく、好ましくはフッ素原子、塩素原子、又は臭素原子である。
アミノ基の保護基の種類は特に限定されないが、例えば、ｐ−ニトロベンゼンスルホン酸基、トリフルオロアセチル基、トリアルキルシリル基などを適宜利用できる。アミノ基の保護基については、例えば、プロテクティブ・グループス・イン・オーガニック・シンセシス（Ｐｒｏｔｅｃｔｉｖｅ  Ｇｒｏｕｐｓ  ｉｎ  Ｏｒｇａｎｉｃ  Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ）、グリーン（Ｔ．Ｗ．Ｇｒｅｅｎｅ）著、ジョン・ワイリー・アンド・サンズ・インコーポレイテッド（Ｊｏｈｎ  Ｗｉｌｅｙ  ＆  Ｓｏｎｓ，Ｉｎｃ．）（１９８１年）などを参照することができる。
上記一般式（ＩＡ）及び（ＩＢ）において、ベンゼン環上に置換するＲ１及びＲ２の位置は特に限定されない。Ｒ２が水素原子である場合には、Ｒ１が−ＣＯＯＲ７で表される基（ラクトン環を形成する場合には対応するカルボニル基）に対してメタ位又はパラ位に結合することが好ましい。一般式（ＩＩ）におけるベンゼン環上の置換アミノ基の位置は特に限定されないが、好ましくは、−ＣＯＯＲ１７で表される基に対してメタ位又はパラ位である。一般式（ＩＩＩＡ）及び（ＩＩＩＢ）において、ベンゼン環上に置換するＹの位置は特に限定されないが、Ｙが−ＣＯＯＲ２７で表される基（ラクトン環を形成する場合には対応するカルボニル基）に対してメタ位に結合することが好ましい。
上記一般式（ＩＡ）及び（ＩＢ）で表される化合物において、Ｒ１及びＲ２のいずれか一方が水素原子であり、他方が式（Ａ）で表される基であることが好ましい。式（Ａ）で表される基において、Ｘ１ないしＸ４、好ましくはＸ１及びＸ２して２−ピリジルメチル基が好ましい。上記一般式（ＩＡ）及び（ＩＢ）で表される化合物において、ｍが０であり、ｎが１であり、かつＸ４が水素原子であることが好ましく、この場合にＸ１及びＸ２がともに２−ピリジルメチル基であることが好ましい。Ｒ５及びＲ６としては水素原子が好ましく、イメージングの用途ではＲ５及びＲ６がアセチル基又はアセトキシメチル基であることが好ましい。Ｒ３及びＲ４がともに水素原子であるか、ともに塩素原子であることが好ましい。Ｒ７は水素原子であることが好ましい。
上記一般式（ＩＩ）で表される化合物において、Ｒ１３及びＲ１４がともに水素原子であるか、ともに塩素原子であることが好ましい。Ｒ１７及びＲ１８が水素原子であることが好ましい。
上記一般式（ＩＩＩＡ）及び（ＩＩＩＢ）で表される化合物において、Ｒ２１及びＲ２２のいずれか一方が水素原子であり、他方が式（Ｂ）で表される基であることが好ましい。式（Ｂ）で表される基において、Ｘ１１ないしＸ１４、好ましくはＸ１１及びＸ１２して２−ピリジルメチル基が好ましい。上記一般式（ＩＩＩＡ）及び（ＩＩＩＢ）で表される化合物において、ｐが０であり、ｑが１であり、かつＸ１４が水素原子であることが好ましく、この場合にＸ１１及びＸ１２がともに２−ピリジルメチル基であることが好ましい。Ｒ２３及びＲ２４がともに水素原子であるか、ともに塩素原子であることが好ましい。Ｒ２５及びＲ２６としては水素原子が好ましく、またイメージングの用途ではＲ２５及びＲ２６がアセチル基又はアセトキシメチル基であることが好ましい。Ｒ２７が水素原子であることが好ましい。
上記一般式（Ｉ）ないし（ＩＩＩ）で表される本発明の化合物は酸付加塩又は塩基付加塩として存在することができる。酸付加塩としては、例えば、塩酸塩、硫酸塩、硝酸塩などの鉱酸塩、又はメタンスルホン酸塩、ｐ−トルエンスルホン酸塩、シュウ酸塩、クエン酸塩、酒石酸塩などの有機酸塩などを挙げることができ、塩基付加塩としては、ナトリウム塩、カリウム塩、カルシウム塩、マグネシウム塩などの金属塩、アンモニウム塩、又はトリエチルアミン塩などの有機アミン塩などを挙げることができる。これらのほか、グリシンなどのアミノ酸との塩を形成する場合もある。本発明の化合物又はその塩は水和物又は溶媒和物として存在する場合もあるが、これらの物質はいずれも本発明の範囲に包含される。
上記一般式（ＩＡ）、（ＩＢ）、（ＩＩ）、（ＩＩＩＡ）、及び（ＩＩＩＢ）で表される本発明の化合物は、置換基の種類により、１個又は２個以上の不斉炭素を有する場合があるが、１個又は２個以上の不斉炭素に基づく光学活性体や２個以上の不斉炭素に基づくジアステレオ異性体などの立体異性体のほか、立体異性体の任意の混合物、ラセミ体などは、いずれも本発明の範囲に包含される。また、Ｒ７、Ｒ１７、又はＲ２７が水素原子の場合にはカルボキシル基がラクトンを形成する場合もあるが、本発明の範囲にはこのような構造異性体も包含される。なお、一般式（ＩＡ）においてＲ５が水素原子である化合物と一般式（ＩＢ）においてＲ７が水素原子である化合物は互変異性体に相当しており、一般式（ＩＩＩＡ）においてＲ２５が水素原子である化合物と一般式（ＩＩＩＢ）においてＲ２７が水素原子である化合物は互変異性体に相当している。このような互変異性体の存在は当業者に容易に理解され、本発明の範囲にはいずれの互変異性体も包含されることを理解すべきである。
本発明の化合物の代表的化合物の製造方法を下記のスキームに示す。また、本明細書の実施例には、このスキームに記載した製造方法がより詳細かつ具体的に示されている。従って、当業者は、これらの説明を基にして反応原料、反応条件、及び反応試薬などを適宜選択し、必要に応じてこれらの方法に修飾や改変を加えることによって、上記一般式で表される本発明の化合物をいずれも製造することができる。なお、原料化合物として用いることができる４−アミノフルオレセイン、５−アミノフルオレセイン、及び６−アミノフルオレセインは、例えば、亀谷哲治著、有機合成化学ＩＸ、南江堂、２１５頁（１９７７年）等に準じて製造できる。
0004695811.tif 000008
0004695811.tif 000009
0004695811.tif 000010
0004695811.tif 000011
一般式（ＩＩＩ）の化合物は、例えば下記スキームの方法により、反応試薬及び反応原料として市販の化合物などを用いて製造することができる。
0004695811.tif 000012
上記一般式（Ｉ）、一般式（ＩＩ）、及び一般式（ＩＩＩ）で表される本発明の化合物（アミノ基の保護基を有する化合物を除く）又はその塩は、亜鉛蛍光プローブとして有用である。上記一般式（Ｉ）、一般式（ＩＩ）、又は一般式（ＩＩＩ）で表される本発明の化合物又はその塩は、それ自体は強い蛍光を発する性質を有していないが、亜鉛イオンを捕捉して亜鉛錯体を形成すると、強い蛍光を発するようになる。上記化合物又はその塩は亜鉛イオンを特異的に捕捉することができ、極めて錯体形成が速やかであるという特徴を有している。また、形成された亜鉛錯体は、生体組織や細胞に障害を生じない長波長領域の励起光によって強い蛍光を発するという特徴がある。従って、上記一般式（Ｉ）、一般式（ＩＩ）、又は一般式（ＩＩＩ）で表される本発明の化合物又はその塩は、生細胞や生組織中の亜鉛イオンを生理条件下で測定するための亜鉛蛍光プローブとして極めて有用である。なお、本明細書において用いられる「測定」という用語については、定量及び定性を含めて最も広義に解釈すべきものである。
本発明の亜鉛蛍光プローブの使用方法は特に限定されず、従来公知の亜鉛プローブと同様に用いることが可能である。通常は、生理食塩水や緩衝液などの水性媒体、又はエタノール、アセトン、エチレングリコール、ジメチルスルホキシド、ジメチルホルムアミドなどの水混合性の有機溶媒と水性媒体との混合物などに上記一般式（Ｉ）で表される化合物及びその塩からなる群から選ばれる一の物質を溶解し、細胞や組織を含む適切な緩衝液中にこの溶液を添加して、蛍光スペクトルを測定すればよい。
例えば、上記スキーム中の化合物６及び化合物１２の亜鉛錯体は、それぞれ励起波長が４９１ｎｍ及び４９２ｎｍ、蛍光波長が５１３ｎｍ及び５１４ｎｍであり、１〜１０μＭ程度の濃度で用いた場合に１０μＭ以下の濃度の亜鉛イオンを測定することが可能である。なお、本発明の亜鉛蛍光プローブを適切な添加物と組み合わせて組成物の形態で用いてもよい。例えば、緩衝剤、溶解補助剤、ｐＨ調節剤などの添加物と組み合わせることができる。
また、例えば化合物２２は細胞膜を容易に透過することができる程度の脂溶性を有しており、細胞膜を透過した後に細胞質内に存在するエステラーゼによって加水分解され化合物１２を与える。化合物１２はその水溶性により細胞膜を透過することが困難なため、細胞内に長時間とどまることができる。従って、化合物２２は個々の細胞の内部に存在する亜鉛イオンの測定のために極めて有用である。
実施例
以下、本発明を実施例によりさらに具体的に説明するが、本発明の範囲は下記の実施例に限定されることはない。実施例中の化合物番号は、上記のスキーム中の化合物番号に対応している。
例１：化合物６の合成
４−アミノフルオレセイン（１）２．５ｇ（７．２ｍｍｏｌ）を５０ｍｌのジメチルホルムアミドに溶かした溶液に、炭酸セシウム５．２ｇ（１６ｍｍｏｌ）を加えた。続いて、この溶液に無水ピバロイル酸３．１ｍｌ（１５ｍｍｏｌ）を加え、室温で１時間撹拌した。反応液を桐山漏斗で濾過し、ジメチルホルムアミドを減圧下留去した後、シリカゲルカラムで精製し、化合物２（３．６ｇ）を得た。白色固体。収率９７％。
１Ｈ−ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３，３００ＭＨｚ）：７．１９（ｍ，１Ｈ），７．０２（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝２．４），６．９３−６．９４（ｍ，２Ｈ），６．８８（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝８．７），６．７７（ｄｄ，２Ｈ，Ｊ＝８．７，２．４），４，０６（ｂｒ，２Ｈ），１．３４（ｓ，１８Ｈ）
ＭＳ（ＦＡＢ）：５１６（Ｍ＋＋１）
ｍ．ｐ．２０６−２０８℃（メタノールから再結晶）
化合物２（１．０ｇ，２．０ｍｍｏｌ）をピリジン１５ｍｌに溶かし、４−ニトロベンゼンスルホニルクロリド１．２ｇ（５．３ｍｍｏｌ）を加えた後、室温で６時間撹拌した。ピリジンを減圧下留去し、残渣を酢酸エチル２５ｍｌに溶かした。この酢酸エチル溶液を２Ｎ塩酸、飽和食塩水で洗浄後、硫酸ナトリウムで乾燥した。酢酸エチルを減圧下留去した後、シリカゲルカラムにより精製し、化合物３（１．２ｇ）を得た。白色固体。収率８８％。
１Ｈ−ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３，３００ＭＨｚ）：
８．３３（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝９．０），８．０５（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝９．０），７．６９（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝２．２），７．４５（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝８．２，２．２），７．０７（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝８．２），７．０６−７．０４（ｍ，２Ｈ），６．７７−６．７４（ｍ，４Ｈ），１．３６（ｓ，１８Ｈ）
ＭＳ（ＦＡＢ）：７０１（Ｍ＋＋１）
ｍ．ｐ．２４５−２４７℃（酢酸エチル＋ｎ−ヘキサンから再結晶）
化合物３（０．９７ｇ，１．４ｍｍｏｌ）を２５ｍｌのジメチルホルムアミドに溶かした溶液に、炭酸セシウム０．４８ｇ（１．５ｍｍｏｌ）、１，２−ジブロモエタン１．３ｍｌ（１４ｍｍｏｌ）を加え、６０℃で２０時間撹拌した。ジメチルホルムアミドを減圧下留去し、酢酸エチル５０ｍｌに溶かした。この酢酸エチル溶液を、水、飽和食塩水で洗浄後、硫酸ナトリウムで乾燥した。酢酸エチルを減圧下留去した後、シリカゲルカラムにより精製し、化合物４（０．７８ｇ）を得た。白色固体。収率７０％。
１Ｈ−ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３，３００ＭＨｚ）：
８．３８（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝９．０），７．８６（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝９．０），７．７６（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝２．０），７．４５（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝８．０，２．０），７．１７（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝８．０），７．０８（ｍ，２Ｈ），６．８５−６．８４（ｍ，４Ｈ），４．０１（ｔ，２Ｈ，Ｊ＝６．８），３．４５（ｔ，２Ｈ，Ｊ＝６．８），１．３７（ｓ，１８Ｈ）
ＭＳ（ＦＡＢ）：８０７，８０９（Ｍ＋＋１）
ｍ．ｐ．２８０−２８１℃（アセトニトリルから再結晶）
化合物４（０．１０ｇ，０．１３ｍｍｏｌ）をアセトニトリル４ｍｌに懸濁させ、ヨウ化カリウム５５ｍｇ（０．３３ｍｍｏｌ）、炭酸カリウム４３ｍｇ（０．３１ｍｍｏｌ）、２，２’−ジピコリルアミン７８ｍｇ（０．３９ｍｍｏｌ）を加えて１４時間還流した。アセトニトリルを減圧下留去した後、２Ｎ炭酸ナトリウム水溶液に溶かし、塩化メチレンで抽出した。塩化メチレン層を飽和食塩水で洗浄後、硫酸ナトリウムで乾燥した。塩化メチレンを減圧下留去し、シリカゲルカラムにより精製して、化合物５（８０ｍｇ）を得た。淡黄色オイル。収率６９％。
１Ｈ−ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３，３００ＭＨｚ）：
８．４７−８．４５（ｍ，２Ｈ），８．３２（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝９．０），７．７７（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝９．０），７．６９−７．６１（ｍ，３Ｈ），７．６１（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝７．９），７．２７−７．２３（ｍ，１Ｈ），７．１４（ｍ，２Ｈ），７．０７（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝２．２），６．９９（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝８．０），６．８２（ｄｄ，２Ｈ，Ｊ＝８．６，２．２），６．７２（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝８．６），３．８２（ｓ，４Ｈ），３．８２（ｍ，２Ｈ），２．７２（ｔ，２Ｈ，Ｊ＝６．４），１．３７（ｓ，１８Ｈ）
ＭＳ（ＦＡＢ）：９２６（Ｍ＋＋１）
化合物５（３４ｍｇ，３７μｍｏｌ）を４ｍｌのジメチルホルムアミドに溶かした溶液に、炭酸カリウム２６ｍｇ（０．１９ｍｍｏｌ）、チオフェノール１２μｌ（０．１２ｍｍｏｌ）を加え、室温で３時間撹拌した。水酸化カリウム７０ｍｇ（１．２ｍｍｏｌ）を１ｍｌのメタノールと１ｍｌの水に溶かした溶液を反応混合物に加え、室温で２０時間撹拌した。この混合物に２Ｎ塩酸２ｍｌを加えた後、溶媒を減圧下留去した。エタノール１０ｍｌに懸濁させて濾過した後に、エタノールを減圧下留去した。残渣を逆相ＨＰＬＣで精製し、化合物６（１５ｍｇ）を得た。褐色固体。収率７０％。
１Ｈ−ＮＭＲ（ＣＤ３ＯＤ，３００ＭＨｚ）：
８．６１−８．５９（ｍ，２Ｈ），８．０４−７．９８（ｍ，２Ｈ），７．６３（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝７．９），７．５１−７．４６（ｍ，２Ｈ），７．１４（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝２．０），７．０２（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝９．０），６．９５−６．８７（ｍ，４Ｈ），６．７９（ｄｄ，２Ｈ，Ｊ＝９．０，２．４），４．４６（ｓ，４Ｈ），３．５０（ｔ，２Ｈ，Ｊ＝６．０），３．２５（ｍ，２Ｈ）
ＭＳ（ＦＡＢ）：５７３（Ｍ＋＋１）
例２：化合物１２の合成
化合物２の合成と同様にして、５−アミノフルオレセイン（７）３．５ｇ（１０ｍｍｏｌ）から、化合物８（４．４ｇ）を得た。白色固体。収率８４％。
１Ｈ−ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３，３００ＭＨｚ）：
７．７７（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．９），７．０１（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝２．０），６．９５（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝８．６），６．８０−６．７５（ｍ，３Ｈ），６．２２（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝１．７），４．２１（ｂｒ，２Ｈ），１．３６（ｓ，１８Ｈ）
ＭＳ（ＦＡＢ）：５１６（Ｍ＋＋１）
ｍ．ｐ．１６１−１６３℃（メタノールから再結晶）
化合物８（３．６ｇ，６．９ｍｍｏｌ）から化合物３の合成法と同様にして化合物９（４．１ｇ）を得た。白色固体。収率８４％。
１Ｈ−ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３，３００ＭＨｚ）：
８．６１（ｂｒ，１Ｈ），８．２０（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝９．０），７．８８（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝８．３），７．８１（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝９．０），７．３３−７．２９（ｍ，１Ｈ），７．０５（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝２．２），６．８４（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝１．８），６．７４（ｄｄ，２Ｈ，Ｊ＝８．６，２．２），６．６９（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝８．６），１．３８（ｓ，１８Ｈ）
ＭＳ（ＦＡＢ）：７０１（Ｍ＋＋１）
ｍ．ｐ．１８９−１９１℃（酢酸エチル＋ｎ−ヘキサンから再結晶）
化合物９（０．５１ｇ，０．７３ｍｍｏｌ）から化合物４の合成法と同様にして化合物１０（０．３５ｇ）を得た。白色固体。収率６０％。
１Ｈ−ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３，３００ＭＨｚ）：
８．１１（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝９．０），８．１０−８．０９（ｍ，１Ｈ），７．７１（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝８．２，１．８），７．５６（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝９．０），７．０２（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝２．２），６．８６（ｄｄ，２Ｈ，Ｊ＝８．６，２．２），６．７９（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝８．６），６．４３（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝１．８），３．８５（ｔ，２Ｈ，Ｊ＝６．６），３．４０（ｔ，２Ｈ，Ｊ＝６．６），１．３８（ｓ，１８Ｈ）
ＭＳ（ＦＡＢ）：８０７，８０９（Ｍ＋＋１）
ｍ．ｐ．２６８−２６９℃（アセトニトリルから再結晶）
化合物１０（０．３１ｇ，０．３８ｍｍｏｌ）から化合物５の合成法と同様にして化合物１１（０．２７ｇ）を得た。淡黄色固体。収率７５％。
１Ｈ−ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３，３００ＭＨｚ）：
８．４５−８．４２（ｍ，２Ｈ），８．０６（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝９．０），７．９６（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝８．３），７．６４−７．５９（ｍ，２Ｈ），７．５２（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝９．０），７．５３−７．５０（ｍ，１Ｈ），７．３３（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝７．７），７．１７（ｍ，２Ｈ），７．００（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝２．２），６．７８（ｄｄ，２Ｈ，Ｊ＝８．６，２．２），６．６４（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝８．６），６．４８（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝１．３），３．７１（ｓ，４Ｈ），３．６７（ｔ，２Ｈ，Ｊ＝６．２），２．６７（ｔ，２Ｈ，Ｊ＝６．２），１．３７（ｓ，１８Ｈ）
ＭＳ（ＦＡＢ）：９２６（Ｍ＋＋１）
ｍ．ｐ．１４６−１４８℃（メタノールから再結晶）
化合物１１（２０ｍｇ，２２μｍｏｌ）から化合物６の合成法と同様にして化合物１２（６．６ｍｇ）を得た。褐色固体。収率５３％。
１Ｈ−ＮＭＲ（ＣＤ３ＯＤ，３００ＭＨｚ）：
８．４４−８．４２（ｍ，２Ｈ），７．９４−７．８８（ｍ，２Ｈ），７．６０（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝８．４），７．４９（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝７．９），７．４５−７．４１（ｍ，２Ｈ），６．７１（ｂｒ，１Ｈ），６．６５（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝２．４），６．６１（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝８．８），６．５１（ｄｄ，２Ｈ，Ｊ＝８．８，２．４），６．０２（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝１．８），４．３０（ｓ，４Ｈ），３．２８（ｔ，２Ｈ，Ｊ＝６．０），３．０３（ｔ，２Ｈ，Ｊ＝６．０）
ＭＳ（ＦＡＢ）：５７３（Ｍ＋＋１）
例３
化合物１５の合成
４−ニトロフタル酸無水物（１３）１６ｇ（８４ｍｍｏｌ）と４−クロロレゾルシノール（１４）２４ｇ（０．１７ｍｏｌ）を２５０ｍｌのメタンスルホン酸に溶かし、アルゴン下、８０度で６０時間撹拌した。室温まで冷却後、氷水１．４Ｌに少しずつ加えた。析出した固体を濾取して、化合物１５を３７ｇ得た。収率定量。
化合物１６の合成
化合物（１５）２０ｇ（４５ｍｍｏｌ）を水７００ｍｌに懸濁させ、硫化ナトリウム９水和物５４ｇ（０．２３ｍｏｌ）と、水硫化ナトリウムｎ水和物（水硫化ナトリウムが約７０％）２０ｇ（０．２５ｍｏｌ）を加えて、アルゴン下で２０時間還流した。室温まで冷却した後に、塩酸を加えてｐＨを３〜４にした。析出した固体を濾取して、化合物（１６）を１９ｇ得た。収率定量。
化合物１７の合成
化合物（１６）４．４ｇ（１１ｍｍｏｌ）から化合物（２）の合成法と同様にして化合物（１７）３．９ｇを得た。収率６２％。
ＭＳ（ＦＡＢ）：５８４，５８６，５８８（Ｍ＋＋１）
化合物１８及び１８’の合成
化合物（１７）３．８ｇ（６．５ｍｍｏｌ）から化合物（３）の合成法と同様にして化合物（１８）を１．９ｇ、化合物（１８’）を１．８ｇ得た。収率：化合物（１８）３８％、化合物（１８’）３５％。
化合物（１８）：
１Ｈ−ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３，３００ＭＨｚ）：８．３８（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝８．７），８．０７（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝８．７），７．７２（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝２．１），７．４８（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝８．１，２．１），７．１２（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝８．１），７．１１（ｓ，２Ｈ），６．７７（ｓ，２Ｈ），１．４０（ｓ，１８Ｈ）ＭＳ（ＦＡＢ）：７６９，７７１，７７３（Ｍ＋＋１）
化合物（１８’）：
１Ｈ−ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３，３００ＭＨｚ）：８．２６（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝８．６），７．９３（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝８．４），７．８４（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝８．６），７．２７（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝８．４，２．０），７．１３（ｓ，２Ｈ），６．９９（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝２．０），６．７５（ｓ，２Ｈ），１．４２（ｓ，１８Ｈ）ＭＳ（ＦＡＢ）：７６９，７７１，７７３（Ｍ＋＋１）
化合物１９の合成
化合物（１８）１．５ｇ（２．０ｍｍｏｌ）から化合物（４）の合成法と同様にして化合物（１９）を１．２ｇ得た。収率６６％。
１Ｈ−ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３，３００ＭＨｚ）：８．３９（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝９．０），７．８５（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝９．０），７．７９（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝２．０），７．５１（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝８．２，２．０），７．１８（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝８．２），７．１４（ｓ，２Ｈ），６．８９（ｓ，２Ｈ），４．０６（ｔ，２Ｈ，Ｊ＝６．８），３．５０（ｔ，２Ｈ，Ｊ＝６．８），１．４０（ｓ，１８Ｈ）
ＭＳ（ＦＡＢ）：８７５，８７７，８７９，８８１（Ｍ＋＋１）
化合物１９’の合成
化合物（１８’）１．５ｇ（２．０ｍｍｏｌ）から化合物（４）の合成法と同様にして化合物（１９’）を０．７０ｇ得た。収率４０％。
１Ｈ−ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３，３００ＭＨｚ）：８．１９（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝９．０），８．１３（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝８．３），７．７０（ｂｒｄ，１Ｈ），７．６２（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝９．０），７．１１（ｓ，２Ｈ），６．８４（ｓ，２Ｈ），６．６３（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝１．８），３．９４（ｔ，２Ｈ，Ｊ＝６．４），３．４６（ｔ，２Ｈ，Ｊ＝６．４），１．４１（ｓ，１８Ｈ）
ＭＳ（ＦＡＢ）：８７５，８７７，８７９，８８１（Ｍ＋＋１）
化合物２０の合成
化合物（１９）１．０ｇ（１．１ｍｍｏｌ）から化合物（５）の合成法と同様にして化合物（２０）を０．５６ｇ得た。収率４９％。
１Ｈ−ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３，３００ＭＨｚ）：８．５０−８．４７（ｍ，２Ｈ），８．３３（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝８．７），７．７６（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝８．７），７．７０−７．６０（ｍ，３Ｈ），７．４６（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝７．９），７．３２（ｂｒｄ，１Ｈ，Ｊ＝８．３），７．１６−７．１２（ｍ，２Ｈ），７．１４（ｓ，２Ｈ），７．００（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝８．３），６．７９（ｓ，２Ｈ），３．８７（ｔ，２Ｈ，Ｊ＝６．０），３．８３（ｓ，４Ｈ），２．７６（ｔ，２Ｈ，Ｊ＝６．０），１．４１（ｓ，１８Ｈ）
ＭＳ（ＦＡＢ）：９９４，９９６，９９８（Ｍ＋＋１）
化合物２０’の合成
化合物（１９’）０．２０ｇ（０．２３ｍｍｏｌ）から化合物（５）の合成法と同様にして化合物（２０’）を７５ｍｇ得た。収率３３％。
１Ｈ−ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３，３００ＭＨｚ）：８．４３−８．４１（ｍ，２Ｈ），８．１７（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝９．０），７．９７（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝８．３），７．６３−７．５７（ｍ，２Ｈ），７．５６（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝９．０），７．４９（ｂｒｄ，１Ｈ，Ｊ＝８．３），７．３１（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝７．７），７．１６−７．１２（ｍ，２Ｈ），７．０８（ｓ，２Ｈ），６．７９（ｓ，２Ｈ），６．７２（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝１．１），３．７４（ｔ，２Ｈ，Ｊ＝６．２），３．７１（ｓ，４Ｈ），２．７４（ｔ，２Ｈ，Ｊ＝６．２），１．４０（ｓ，１８Ｈ）
ＭＳ（ＦＡＢ）：９９４，９９６，９９８（Ｍ＋＋１）
化合物２１の合成
化合物（２０）０．２６ｇ（０．２６ｍｍｏｌ）から化合物（６）の合成法と同様にして化合物（２１）を９８ｍｇ得た。収率３５％。
１Ｈ−ＮＭＲ（ＣＤ３ＯＤ，３００ＭＨｚ）：８．５６（ｂｒｄ，２Ｈ，Ｊ＝４．８），７．９８−７．９１（ｍ，２Ｈ），７．５７（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝７．９），７．４６−７．４１（ｍ，２Ｈ），６．９４−６．８１（ｍ，３Ｈ），６．７３（ｓ，２Ｈ），６．５６（ｓ，２Ｈ），４．４８（ｓ，４Ｈ），３．５０（ｔ，２Ｈ，Ｊ＝５．５），３．２９（ｔ，２Ｈ，Ｊ＝５．５）
ＭＳ（ＦＡＢ）：６４１，６４３，６４５（Ｍ＋＋１）
化合物２１’の合成
化合物（２０’）０．２０ｇ（０．２０ｍｍｏｌ）から化合物（６）の合成法と同様にして化合物（２１’）を５８ｍｇ得た。収率２６％。
１Ｈ−ＮＭＲ（ＣＤ３ＯＤ，３００ＭＨｚ）：８．４５−８．４３（ｍ，２Ｈ），７．９３−７．８８（ｍ，２Ｈ），７．５８（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝８．６），７．５０（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝７．９），７．４５−７．４１（ｍ，２Ｈ），６．７２（ｓ，２Ｈ），６．７３−６．８８（ｍ，１Ｈ），６．５８（ｓ，２Ｈ），６．０１（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝１．８），４．３０（ｓ，４Ｈ），３．２７（ｔ，２Ｈ，Ｊ＝５．７），３．０６（ｔ，２Ｈ，Ｊ＝５．７）
ＭＳ（ＦＡＢ）：６４１，６４３，６４５（Ｍ＋＋１）
化合物２２の合成
化合物（１２）１４０ｍｇ（０．１３ｍｍｏｌ）をアセトニトリル１０ｍｌに懸濁し、炭酸セシウム０．１９ｇ（０．３０ｍｍｏｌ）を加えた後、無水酢酸２８μｌを少しずつ加えた。室温で１時間撹拌した後、反応液を濾過した。溶媒を減圧下留去した後、シリカゲルカラムで精製して化合物（２２）７９ｍｇを得た。収率９４％。
１Ｈ−ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３，３００ＭＨｚ）：８．５１−８．４９（ｍ，２Ｈ），７．７３（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝８．４），７．６０−７．５４（ｍ，２Ｈ），７．３１（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝７．７），７．１５−７．１１（ｍ，２Ｈ），７．０５（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝２．２），６．９６（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝８．６），６．８０（ｄｄ，２Ｈ，Ｊ＝２．２，８．６），６．７７−６．７４（ｍ，１Ｈ），６．４８（ｂｒ，１Ｈ），６．０２（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝１．７），３．８６（ｓ，４Ｈ），３．０６（ｂｒ，２Ｈ），２．８２（ｔ，２Ｈ，Ｊ＝５．１），２．３１（ｓ，６Ｈ）
例４
上記例１で得た化合物６及び例２で得た化合物１２を用いて、亜鉛イオンに対する選択性を評価した。種々の金属イオン（５μＭ又は５ｍＭ）を含む１００ｍＭ  ＨＥＰＥＳ緩衝液（ｐＨ７．５）中に５μＭの化合物６又は化合物１２を加え、化合物６については励起波長４９１ｎｍ、蛍光波長５１３ｎｍとし、化合物１２については励起波長４９２ｎｍ、蛍光波長５１４ｎｍとして蛍光強度を測定した。結果を第１図（化合物６）及び第２図（化合物１２）に示す。また、種々の金属イオン（１μＭ又は５ｍＭ）を含む１００ｍＭＨＥＰＥＳ緩衝液（ｐＨ７．５）中に１μＭの化合物２１を加え、励起波長５０５ｎｍ、蛍光波長５２２ｎｍとして蛍光強度を測定した。結果を第３図に示す。
図中、縦軸の蛍光強度は、金属イオンを加えていないときの蛍光強度を１として、各金属イオンを加えたときの蛍光強度を数値で示したものである。本発明の化合物６及び化合物１２が亜鉛イオンに対して極めて高い選択性を有しており、生体内に多量に存在するナトリウムイオン、カリウムイオン、カルシウムイオン、マグネシウムイオンが高濃度（５ｍＭ）に存在する条件下でも全く蛍光強度が増加しないことが明らかである。また、これらの金属イオンが亜鉛イオンによる蛍光強度の増大に影響を与えないことも明らかである。
化合物２１は、亜鉛に高い選択性を示した。特に、生体内に豊富に存在する金属イオンであるナトリウム、カリウム、カルシウム、マグネシウムは５ｍＭの高濃度で加えても蛍光強度はほとんど増大しない。またこれらの金属イオンは、亜鉛による蛍光強度の増大に影響を与えなかった。
例５
５μＭの化合物６、化合物１２、又はＡＣＦ−１（特願平１１−４０３２５号の実施例１に化合物（２０）として記載された環状ポリアミン部分を有する化合物）を含む１００ｍＭＨＥＰＥＳ（ｐＨ７．５）中に亜鉛イオン（最終濃度５μＭ、５０μＭ）を加え、蛍光強度を測定した。化合物６については励起波長４９１ｎｍ、蛍光波長５１３ｎｍとし、化合物１２については励起波長４９２ｎｍ、蛍光波長５１４ｎｍとし、ＡＣＦ−１については励起波長４９５ｎｍ、蛍光波長５１５ｎｍとして蛍光強度を測定した。結果を第４図に示す。図中、縦軸は相対蛍光強度を示す。この結果から明らかなように、ＡＣＦ−１では蛍光強度が瞬時に増大しないが、本発明の化合物６及び化合物１２では蛍光強度が瞬時に増大した。従って、本発明の化合物を用いると亜鉛を極めて短時間に検出することができ、亜鉛の速い濃度変化を検出することも可能である。
0004695811.tif 000013
例６
５μＭの化合物６、化合物１２、ＡＣＦ−１、又はＮｅｗｐｏｒｔ  Ｇｒｅｅｎ（Ｈａｎｄｂｏｏｋ  ｏｆ  Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ  Ｐｒｏｂｅｓ  ａｎｄ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ，６ｔｈ  Ｅｄｉｔｉｏｎ  ｂｙ  Ｒｉｃｈａｒｄ  Ｐ．Ｈａｕｇｌａｎｄ，ｐｐ．５３１−５４０）を含む１００ｍＭ  ＨＥＰＥＳ緩衝液（ｐＨ７．５）中に種々の濃度の亜鉛イオンを加えたときの蛍光強度の変化を測定した。化合物６については励起波長４９１ｎｍ、蛍光波長５１３ｎｍとし、化合物１２については励起波長４９２ｎｍ、蛍光波長５１４ｎｍとし、ＡＣＦ−１については励起波長４９５ｎｍ、蛍光波長５１５ｎｍとし、Ｎｅｗｐｏｒｔ  Ｇｒｅｅｎについては励起波長５０５ｎｍ、蛍光波長５３０ｎｍとして蛍光強度を測定した。結果を第５図に示す。図中、縦軸の蛍光強度は、金属イオンを加えていないときの蛍光強度を１として、各濃度の亜鉛イオンを加えたときの蛍光強度を数値で示したものである。本発明の化合物６及び化合物１２は高い測定感度を示した。特に、化合物１２の測定感度は非常に高く、キレーター部分と発蛍光部分との組み合わせが最適であることが証明された。
例７
ｐＨの変化に対する化合物１２及び化合物２１とそれらの亜鉛錯体の蛍光強度の変化を調べた。化合物１２については励起波長４９２ｎｍ、蛍光波長５１４ｎｍとし、化合物２１については励起波長５０５ｎｍ、蛍光波長５２２ｎｍとして蛍光強度を測定した。結果を第６図に示す。
緩衝液は以下のものを用いた。
１００  ｍＭ  Ｃｌ２ＣＨＣＯＯＨ−Ｃｌ２ＣＨＣＯＯＮａ緩衝液（ｐＨ  ２．０）
１００  ｍＭ  ＣｌＣＨ２ＣＯＯＨ−ＣｌＣＨ２ＣＯＯＮａ緩衝液（ｐＨ  ３．０）
１００  ｍＭ  ＡｃＯＨ−ＡｃＯＮａ緩衝液（ｐＨ  ４．０，４．５，５．０）
１００  ｍＭ  ＭＥＳ緩衝液（ｐＨ  ５．５，６．０，６．５）
１００  ｍＭ  ＨＥＰＥＳ緩衝液（ｐＨ  ７．０，７．５，８．０）
１００  ｍＭ  ＣＨＥＳ緩衝液（ｐＨ  ８．５）
化合物２１は化合物１２と比べて細胞内のｐＨである７．４付近で蛍光強度が安定であり、細胞内のｐＨ変化の影響を受けにくいプローブであることがわかる。
例８
ラットの海馬スライスを用いて虚血刺激による蛍光強度の変化を調べた。
ラットの海馬スライスに１０μＭの化合物２２を加えてインキュベーションした後に、１０分間（図中２分〜１２分）虚血刺激して蛍光像の時間変化を見た。結果を第７図に示す。
海馬スライスの作製には以下のような組成のリンゲル液を用いた。
（１）リンゲル液
組成：１２４ｍＭ  ＮａＣｌ、１．２５ｍＭ  ＮａＨ２ＰＯ４、２．５ｍＭ  ＫＣｌ、２ｍＭ  ＣａＣｌ２、２６ｍＭ  ＮａＨＣＯ３、１ｍＭ  ＭｇＣｌ２、１０ｍＭグルコース
（２）虚血用リンゲル液
組成：１２４ｍＭ  ＮａＣｌ、１．２５ｍＭ  ＮａＨ２ＰＯ４、２．５ｍＭ  ＫＣｌ、２ｍＭ  ＣａＣｌ２、２６ｍＭ  ＮａＨＣＯ３、１ｍＭ  ＭｇＣｌ２、１０ｍＭ  ２−デオキシグルコース
（３）コリン−リンゲル液
組成：１２４ｍＭ  コリン、１．２５ｍＭ  ＮａＨ２ＰＯ４、２．５ｍＭ  ＫＣｌ、０．５ｍＭ  ＣａＣｌ２、２６ｍＭ  ＮａＨＣＯ３、２．５ｍＭ  ＭｇＣｌ２、１０ｍＭ  グルコース
スライスの調製及び測定に使うリンゲル液は常に、９５％  Ｏ２／５％  ＣＯ２をバブルしておいた。
ウィスター・ラット（２００−２５０ｇ、雄）をエーテルで麻酔した。断頭した後、全脳を素早く摘出し、氷冷したコリン−リンゲル液に入れて１０分間置いた。氷冷したコリン−リンゲル液と、シャーベット状にしたコリン−リンゲル液を敷きつめたシャーレ上で左右半球を切り分けた後、間脳を取り除きスパーテルで海馬を取り出した。海馬を寒天の上に載せて、ピンを使って固定し、ロータリースライサーで３００μｍの幅に切った。３０℃にあたためたリンゲル液にスライスした海馬を入れて、３０分から１時間置いた。室温で、リンゲル液中にスライスした海馬を使用するまでいれておいた。
次に、化合物２２をＤＭＳＯに溶かした１０ｍＭ溶液を、リンゲル液で１０μＭに希釈した。この溶液に海馬スライスを入れて遮光し室温で１．５時間インキュベーションした。別のリンゲル液に移し替えて３０分から１時間３０分程度洗浄した後に、チャンバーに移して測定した。チャンバー内は、温度が常に３３−３４℃になるように暖めたリンゲル液を循環させておいた（流速２−３ｍｌ／分）。測定は、倒立顕微鏡（オリンパスＩＸ−７０）で行った（対物レンズ：４倍、二色性ミラー：５０５ｎｍ）。
虚血刺激は、チャンバー内を循環させているリンゲル液を以下の要領で交換することにより行った。
リンゲル液（９５％  Ｏ２＋５％  ＣＯ２をバブル）：２分（図表中０１  ００．００から０２  ００．００）−−−−＞虚血用リンゲル液（９５％  Ｎ２＋５％  ＣＯ２をバブル）：１０分（図表中０３  ００．００から１２  ００．００）−−−−＞リンゲル液（９５％  Ｏ２＋５％  ＣＯ２をバブル）：４分（図表中１３  ００．００から１６  ００．００）
その結果、虚血刺激により細胞死が起こっていることが報告されているＣＡ１領域で、虚血刺激開始約３分後から蛍光強度が増大することがわかった。
さらに、第８図に示すように、虚血刺激後、ＣＡ１領域（図中１，２，３）で特に大きく蛍光強度が増大した。ＣＡ３領域（図中４）、歯状回（図中６，７）でも蛍光強度が増大した。グラフの縦軸は、測定開始時（０．００ｓｅｃ）での蛍光強度を１．００として表している。
産業上の利用可能性
本発明の化合物は亜鉛測定のための蛍光プローブとして有用である。特に、本発明の化合物は極めて短時間に亜鉛との錯体を形成することができるという特徴があり、測定感度も極めて高いので、生体内における亜鉛イオンの素早い濃度変化を正確に測定するための試薬として極めて有用である。
【図面の簡単な説明】
第１図は、本発明の亜鉛蛍光プローブ（化合物６）が亜鉛イオンに対して優れた選択性を有していることを示す。
第２図は、本発明の亜鉛蛍光プローブ（化合物１２）が亜鉛イオンに対して優れた選択性を有していることを示す。
第３図は、本発明の亜鉛蛍光プローブ（化合物２１）が亜鉛イオンに対して優れた選択性を有していることを示す。
第４図は、本発明の亜鉛蛍光プローブ（化合物６及び化合物１２）の蛍光強度の時間変化を環状ポリアミン部分を有するＡＣＦ−１と比較した結果を示す。
第５図は、本発明の亜鉛蛍光プローブ（化合物６及び化合物１２）の蛍光強度と亜鉛イオン濃度との関係を示す。
第６図は、ｐＨの変化に対する化合物１２及び化合物２１とそれらの亜鉛錯体の蛍光強度の変化を示す。
第７図は、ラットの海馬スライスを用いて虚血刺激による蛍光強度の変化を調べた結果を示す。
第８図は、ラットの海馬スライスを用いて虚血刺激による蛍光強度の変化を領域別に調べた結果を示す。
【図１】
0004695811.tif 000017
【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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