(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
生体内分解性高分子を二層以上積層することにより構成される人工硬膜であって、少なくともその一層は基材層であり、当該基材層は、乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体からなり、当該共重合体の構成モル分率が６０〜８５：３〜１５：１０〜３０モル％であって、かつ、共重合体の平均連鎖長が下記式（１）〜（３）を満たすことを特徴とする人工硬膜。
２＜Ｌ（ＬＡ）＜〔ＬＡ％／（ＬＡ％＋ＧＡ％＋ＣＬ％）〕×Ｘ×０．０５８ （１）
１＜Ｌ（ＧＡ）＜〔ＧＡ％／（ＬＡ％＋ＧＡ％＋ＣＬ％）〕×Ｘ×０．５８ （２）
１＜Ｌ（ＣＬ）＜〔ＣＬ％／（ＬＡ％＋ＧＡ％＋ＣＬ％）〕×Ｘ×０．５８ （３）
（式中、Ｌ（ＬＡ）は乳酸ユニットの平均連鎖長を、Ｌ（ＧＡ）はグリコール酸ユニットの平均連鎖長を、Ｌ（ＣＬ）はカプロラクトンユニットの平均連鎖長を示す。更に、ＬＡ％は共重合体中の乳酸モル分率を、ＧＡ％は共重合体中のグリコール酸モル分率を、ＣＬ％は共重合体中のカプロラクトンモル分率をそれぞれ示し、Ｘは共重合体の重合度を示す。）
【請求項２】
前記共重合体中の金属含有量が６０ｐｐｍ以下である請求項１記載の人工硬膜。
【請求項３】
前記共重合体中のモノマー含量が、乳酸、グリコール酸及びε−カプロラクトンのモノマー総量として４０ｐｐｍ以下である請求項１又は２に記載の人工硬膜。
【請求項４】
生体脳硬膜と縫合した際に於ける脳圧が２０ｍｍＨｇ以下の場合に於いて、縫合部からの液の漏れが５ｍｌ／ｍｉｎ以下である請求項１ないし３のいずれか１項に記載の人工硬膜。
【請求項５】
前記基材層の片面又は両面に親水性高分子の層を積層し、当該層を脳表面との癒着を防止する機能を有する積材層とした請求項１ないし４のいずれか１項に記載の人工硬膜。
【請求項６】
前記積材層を構成する親水性高分子が、水膨潤性高分子である請求項１ないし５のいずれか１項に記載の人工硬膜。
【請求項７】
生体内分解性高分子を、溶融成形により、二層以上積層することにより構成される人工硬膜であって、
少なくとも基材層であるその一層は、乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体からなり、当該共重合体の構成モル分率が６０〜８５：３〜１５：１０〜３０モル％であって、かつ、共重合体の平均連鎖長が下記式（１）〜（３）を満たすものであり、
かつ共重合体中の金属含有量が６０ｐｐｍ以下、かつ共重合体中のモノマー含量が、乳酸、グリコール酸及びε−カプロラクトンのモノマー総量として４０ｐｐｍ以下であることを特徴とする人工硬膜。
２＜Ｌ（ＬＡ）＜〔ＬＡ％／（ＬＡ％＋ＧＡ％＋ＣＬ％）〕×Ｘ×０．０５８ （１）
１＜Ｌ（ＧＡ）＜〔ＧＡ％／（ＬＡ％＋ＧＡ％＋ＣＬ％）〕×Ｘ×０．５８ （２）
１＜Ｌ（ＣＬ）＜〔ＣＬ％／（ＬＡ％＋ＧＡ％＋ＣＬ％）〕×Ｘ×０．５８ （３）
（式中、Ｌ（ＬＡ）は乳酸ユニットの平均連鎖長を、Ｌ（ＧＡ）はグリコール酸ユニットの平均連鎖長を、Ｌ（ＣＬ）はカプロラクトンユニットの平均連鎖長を示す。更に、ＬＡ％は共重合体中の乳酸モル分率を、ＧＡ％は共重合体中のグリコール酸モル分率を、ＣＬ％は共重合体中のカプロラクトンモル分率をそれぞれ示し、Ｘは共重合体の重合度を示す。）
【請求項８】
基材層を有する人工硬膜の製造方法であって、
（１）構成モル分率が６０〜９４：３〜２０：３〜３７モル％の割合で乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体の重合を行う工程、
（２）（１）の共重合体に、乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体を構成する各モノマー混合物を添加して、最終生成物の構成モル分率が、乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトンとして６０〜８５：３〜１５：１０〜３０モル％であって、かつ共重合体の平均連鎖長が下記式（１）〜（３）を満たす共重合体を得る工程、及び
（３）以上の（１）及び（２）の工程による共重合体により前記基材層を製造することを特徴とする人工硬膜の製造方法。
２＜Ｌ（ＬＡ）＜〔ＬＡ％／（ＬＡ％＋ＧＡ％＋ＣＬ％）〕×Ｘ×０．０５８ （１）
１＜Ｌ（ＧＡ）＜〔ＧＡ％／（ＬＡ％＋ＧＡ％＋ＣＬ％）〕×Ｘ×０．５８ （２）
１＜Ｌ（ＣＬ）＜〔ＣＬ％／（ＬＡ％＋ＧＡ％＋ＣＬ％）〕×Ｘ×０．５８ （３）
（式中、Ｌ（ＬＡ）は乳酸ユニットの平均連鎖長を、Ｌ（ＧＡ）はグリコール酸ユニットの平均連鎖長を、Ｌ（ＣＬ）はカプロラクトンユニットの平均連鎖長を示す。更に、ＬＡ％は共重合体中の乳酸モル分率を、ＧＡ％は共重合体中のグリコール酸モル分率を、ＣＬ％は共重合体中のカプロラクトンモル分率をそれぞれ示し、Ｘは共重合体の重合度を示す。）
【請求項９】
請求項８において製造した基材層の片面又は両面に親水性高分子を積層させることにより脳表面との癒着を防止する機能を付与した積材層を形成することを特徴とする人工硬膜の製造方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
本発明は、脳外科分野における硬膜欠損の補填に用いる人工硬膜及びその製造方法に関する。
【背景技術】
硬膜は脳と頭蓋骨との間に介在し、脳の保護、脳脊髄液の保護等の機能を担う膜である。脳外科における開頭手術においては、必ず硬膜を切開することになるが、これにより生じた硬膜の欠損あるいは収縮は、これを補填する必要がある。従来はこの補填に、ヒト乾燥硬膜が使用されてきたが、この移植は、クロイツフェルト・ヤコブ病（ＣＪＤ）感染の原因となる恐れがあるとし、１９９７年厚生省により使用が禁止された。
ヒト乾燥硬膜に代わる人工硬膜として延伸したフッ素系樹脂（ポリテトラフルオロエチレン）やシリコーン樹脂を素材とする人工硬膜も開発されている。しかしながら、これら人工硬膜を形成するプラスチックス材料は、通常生体内非分解性高分子物質であるため、体内に永続的に残留し、周辺組織へ慢性的に刺激を与えることから、肉芽組織の肥大化、皮膜内出血の原因となると報告されている。
また、コラーゲンやゼラチンを主材料とする人工硬膜の作製も試みられたが縫合強度の不足、硬膜再生まで必要とされる膜強度を保持できない等の問題がある。
本出願人は、特開２００３−１９９８１７号において、生体内分解性合成高分子二層以上積層することからなる人工硬膜を提案した。当該積層体の少なくとも一層は、人工硬膜針穴から脳脊髄液の漏れを防止するための「漏水防止層」である。しかしながら、当該人工硬膜の形態としては、前記「漏水防止層」に、さらに性能の異なる二つの層（弾性層と形状維持層）を積層するため、量産化するのに製造工程が煩雑となり、コスト高になるという問題があった。
また、これまでに提案されている生体内分解性合成高分子からなる人工硬膜は、生体親相性が高きに過ぎ、脳表面との癒着が懸念され、特に外傷性脳損傷などの場合、出血が激しく癒着する危険性がとくに高いという大きな問題があった。また、先の外傷性脳損傷の場合、再開頭を行う頻度が高いが、もし、脳表面と人工硬膜が癒着した場合は、開頭手技が困難になるというは大きな問題がある。
また、特許第３４５３６４８号には、生体に悪影響を及ぼす金属含量を減少したラクチドとグリコリドからなる共重合体が記載されており、その用途には人工硬膜があることが述べられている。しかしながら、この様なラクチドとグリコリドとの共重合体では、本発明が目的とするような脳脊髄液の漏れを効率的に防止する性能を有した人工硬膜を得ることができない。
以上のように、現在では、必ずしも性能的に、また、製造プロセス的にも充分とはいえない人工硬膜しか提案されていない状況にある。
かくして、本発明の目的は、上記した公知技術における問題を解決することであり、例えば上記特開２００３−１９９８１７号に記載の人工硬膜においては「漏水防止層」に、さらに性能の異なる二つの層（弾性層と形状維持層）を積層しなければならないこと、及び、これらを量産化するのに製造工程が煩雑となり、コスト高になること、また、延伸フッ素樹脂やシリコーン樹脂を素材とする人工硬膜における、針穴からの脳脊髄液の漏れを皆無にするのが困難な点を解決することである。
また、従来、人工硬膜を製造する代表的な方法に溶融成形法があるが、分解性ポリマーである乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体は、重合に使用する金属触媒が残存することにより、溶融成形中に熱分解により物性が劣化するという問題がある。
これにより人工硬膜が、自家硬膜が再生するまでの期間、脳脊髄液漏れを抑制することが困難となる。
本発明者らは、以上の課題を解決するために鋭意検討を重ねた結果、従来の人工硬膜がかつて成しえなかった製造工程の簡略化即ち、積層するシートの構成数を減らし、かつ、（ａ）人工硬膜に要求される機能である液漏れが無いこと、特に問題となる縫合糸周囲の針穴からの液漏れが無いこと、（ｂ）生体硬膜に近い柔らかさを有すること、（ｃ）組織の修復に伴い分解吸収されること、ｄ）脳表面との癒着がないこと、（ｅ）縫合張力に耐えうること、及び（ｆ）溶融成形時の物性劣化がないこと等、人工硬膜に要求される全ての性能を具備した人工硬膜の発明に到達した。
【発明の開示】
本発明によれば、以下の人工硬膜の発明が提供される。
〔１〕 生体内分解性高分子を二層以上積層することにより構成される人工硬膜であって、少なくともその一層は基材層であり、当該基材層は、乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体からなり、当該共重合体の構成モル分率が６０〜８５：３〜１５：１０〜３０モル％であって、かつ、共重合体の平均連鎖長が下記式（１）〜（３）を満たすことを特徴とする人工硬膜。
２＜Ｌ（ＬＡ）＜〔ＬＡ％／（ＬＡ％＋ＧＡ％＋ＣＬ％））×Ｘ×０．０５８ （１）
１＜Ｌ（ＧＡ）＜〔ＧＡ％／（ＬＡ％＋ＧＡ％＋ＣＬ％）〕×Ｘ×０．５８ （２）
１＜Ｌ（ＣＬ）＜〔ＣＬ％／（ＬＡ％＋ＧＡ％＋ＣＬ％）〕×Ｘ×０．５８ （３）
（式中、Ｌ（ＬＡ）は乳酸ユニットの平均連鎖長を、Ｌ（ＧＡ）はグリコール酸ユニットの平均連鎖長を、Ｌ（ＣＬ）はカプロラクトンユニットの平均連鎖長を示す。更に、ＬＡ％は共重合体中の乳酸モル分率を、ＧＡ％は共重合体中のグリコール酸モル分率を、ＣＬ％は共重合体中のカプロラクトンモル分率をそれぞれ示し、Ｘは共重合体の重合度を示す。）
〔２〕 前記共重合体中の金属含有量が６０ｐｐｍ以下である〔１〕に記載の人工硬膜。
〔３〕 前記共重合体中のモノマー含量が、乳酸、グリコール酸及びε−カプロラクトンのモノマー総量として４０ｐｐｍ以下である〔１〕又は〔２〕に記載の人工硬膜。
〔４〕 生体脳硬膜と縫合した際に於ける脳圧が２０ｍｍＨｇ以下の場合に於いて、縫合部からの液の漏れが５ｍｌ／ｍｉｎ以下である〔１〕ないし〔３〕のいずれかに記載の人工硬膜。
〔５〕 前記基材層の片面又は両面に親水性高分子の層を積層し、当該層を脳表面との癒着を防止する機能を有する積材層とした〔１〕ないし〔４〕のいずれかに記載の人工硬膜。
〔６〕 前記積材層を構成する親水性高分子が、水膨潤性高分子である〔１〕ないし〔５〕のいずれかに記載の人工硬膜。
〔７〕生体内分解性高分子を、溶融成形により、二層以上積層することにより構成される人工硬膜であって、
少なくとも基材層であるその一層は、乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体からなり、当該共重合体の構成モル分率が６０〜８５：３〜１５：１０〜３０モル％であって、かつ、共重合体の平均連鎖長が下記式（１）〜（３）を満たすものであり、
かつ共重合体中の金属含有量が６０ｐｐｍ以下、かつ共重合体中のモノマー含量が、乳酸、グリコール酸及びε−カプロラクトンのモノマー総量として４０ｐｐｍ以下であることを特徴とする人工硬膜。
２＜Ｌ（ＬＡ）＜〔ＬＡ％／（ＬＡ％＋ＧＡ％＋ＣＬ％）〕×Ｘ×０．０５８ （１）
１＜Ｌ（ＧＡ）＜〔ＧＡ％／（ＬＡ％＋ＧＡ％＋ＣＬ％）〕×Ｘ×０．５８ （２）
１＜Ｌ（ＣＬ）＜〔ＣＬ％／（ＬＡ％＋ＧＡ％＋ＣＬ％）〕×Ｘ×０．５８ （３）
（式中、Ｌ（ＬＡ）は乳酸ユニットの平均連鎖長を、Ｌ（ＧＡ）はグリコール酸ユニットの平均連鎖長を、Ｌ（ＣＬ）はカプロラクトンユニットの平均連鎖長を示す。更に、ＬＡ％は共重合体中の乳酸モル分率を、ＧＡ％は共重合体中のグリコール酸モル分率を、ＣＬ％は共重合体中のカプロラクトンモル分率をそれぞれ示し、Ｘは共重合体の重合度を示す。）
また本発明によれば、以下の人工硬膜の製造方法に関する発明が提供される。
〔８〕基材層を有する人工硬膜の製造方法であって、
（１）構成モル分率が６０〜９４：３〜２０：３〜３７モル％の割合で乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体の重合を行う工程、
（２）（１）の共重合体に、乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体を構成する各モノマー混合物を添加して、最終生成物の構成モル分率が、乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトンとして６０〜８５：３〜１５：１０〜３０モル％であって、かつ共重合体の平均連鎖長が下記式（１）〜（３）を満たす共重合体を得る工程、及び
（３）以上の（１）及び（２）の工程による共重合体により前記基材層を製造することを特徴とする人工硬膜の製造方法。
２＜Ｌ（ＬＡ）＜〔ＬＡ％／（ＬＡ％＋ＧＡ％＋ＣＬ％）〕×Ｘ×０．０５８ （１）
１＜Ｌ（ＧＡ）＜〔ＧＡ％／（ＬＡ％＋ＧＡ％＋ＣＬ％）〕×Ｘ×０．５８ （２）
１＜Ｌ（ＣＬ）＜〔ＣＬ％／（ＬＡ％＋ＧＡ％＋ＣＬ％）〕×Ｘ×０．５８ （３）
（式中、Ｌ（ＬＡ）は乳酸ユニットの平均連鎖長を、Ｌ（ＧＡ）はグリコール酸ユニットの平均連鎖長を、Ｌ（ＣＬ）はカプロラクトンユニットの平均連鎖長を示す。更に、ＬＡ％は共重合体中の乳酸モル分率を、ＧＡ％は共重合体中のグリコール酸モル分率を、ＣＬ％は共重合体中のカプロラクトンモル分率をそれぞれ示し、Ｘは共重合体の重合度を示す。）
〔９〕 〔８〕において製造した基材層の片面又は両面に親水性高分子を積層させることにより脳表面との癒着を防止する機能を付与した積材層を形成することを特徴とする人工硬膜の製造方法。
【図面の簡単な説明】
第１図は、本発明の人工硬膜１の層構成の一例を示す説明図であって、基材層２の片面に、積材層３を積層した例を示す。
第２図は、本発明の人工硬膜の他の層構成の例を示す説明図であって、基材層２の両面に、積材層３を積層した例を示す。
第３図は、本発明の人工硬膜のさらに他の層構成の例を示す説明図であって、基材層２の両面に、複数の積材層、３ａ、３ｂを積層した例を示す。
【発明を実施するための最良の形態】
以下、本発明を実施するための最良の形態を詳細に説明する。
（人工硬膜の内容）
本発明の人工硬膜は、生体内分解性高分子を二層以上積層することにより構成されるものであって、少なくともその一層は基材層であり、当該基材層は、乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体からなり、当該共重合体の構成モル分率が６０〜８５：３〜１５：１０〜３０モル％であって、かつ、共重合体の平均連鎖長が下記式（１）〜（３）を満たすものである。
２＜Ｌ（ＬＡ）＜〔ＬＡ％／（ＬＡ％＋ＧＡ％＋ＣＬ％）〕×Ｘ×０．０５８ （１）
１＜Ｌ（ＧＡ）＜〔ＧＡ％／（ＬＡ％＋ＧＡ％＋ＣＬ％）〕×Ｘ×０．５８ （２）
１＜Ｌ（ＣＬ）＜〔ＣＬ％／（ＬＡ％＋ＧＡ％＋ＣＬ％）〕×Ｘ×０．５８ （３）
（式中、Ｌ（ＬＡ）は乳酸ユニットの平均連鎖長を、Ｌ（ＧＡ）はグリコール酸ユニットの平均連鎖長を、Ｌ（ＣＬ）はカプロラクトンユニットの平均連鎖長を示す。更に、ＬＡ％は共重合体中の乳酸モル分率を、ＧＡ％は共重合体中のグリコール酸モル分率を、ＣＬ％は共重合体中のカプロラクトンモル分率をそれぞれ示し、Ｘは共重合体の重合度を示す。）
（基材層）
本発明の人工硬膜は、生体内分解性高分子を二層以上積層することにより構成されるが、基材層は、少なくともその一層を構成し、人工硬膜としての必要な強度を保持し硬膜としての形態を保持する基材としての層（Ｓｕｂｓｔｒａｔｅ Ｌａｙｅｒ）である。基材層は、生体内において加水分解あるいは酵素的作用を受けて分解される生体内分解性高分子から構成されるものであって、本発明においては、特に上記特定の乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトンの共重合体が使用される。
基材層は、より具体的には、形態保持層であるとともに、縫合時に脳硬膜との密着性を上げること、生体硬膜と縫合時に当該針穴からの脳髄液の漏出を防止すること、及び生体内で分解される際に、当該形状を長期間維持することを目的とするための層である。
この目的には、上記の乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトンの共重合体（以下「乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体」又は単に「共重合体」又は「生体内分解性高分子」という。）の使用が最も適するものである。またその構成モル分率は、乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトンとして６０〜８５：３〜１５：１０〜３０モル％であることが必要である。
例えば、乳酸とグリコール酸を合わせたモル分率が９０％を超えるようにあまり高くなると、基材層が固くなりすぎて、その結果、人工硬膜全体が硬くなる。このように過度に硬くなった人工硬膜は、脳表面を傷つける可能性があり好ましくない。また、人工硬膜を自家硬膜と縫合した際、縫合部の自家硬膜との密着性が乏しくなり望ましくない。
一方また、グリコール酸のモル分率が１５％を超えるようにあまり高くなると、人工硬膜全体の生体内での形状維持期間が短くなるため、本来の硬膜が再生するまでの期間、形状を維持することが困難となるため好ましくない。
また、ε−カプロラクトンのモル分率が３０％を超えるようにあまり高くなれば、膜全体が柔軟となりすぎ、縫合時の張力に耐えることができないため好ましくない。
（平均連鎖長）
本発明においては、基材層を構成する生体内分解性高分子のセグメントユニットは、下記式（１）〜（３）で規定する「平均連鎖長」の条件を満たすことが必要である。
２＜Ｌ（ＬＡ）＜〔ＬＡ％／（ＬＡ％＋ＧＡ％＋ＣＬ％）〕×Ｘ×０．０５８ （１）
１＜Ｌ（ＧＡ）＜〔ＧＡ％／（ＬＡ％＋ＧＡ％＋ＣＬ％）〕×Ｘ×０．５８ （２）
１＜Ｌ（ＣＬ）＜〔ＣＬ％／（ＬＡ％＋ＧＡ％＋ＣＬ％）〕×Ｘ×０．５８ （３）
（式中、Ｌ（ＬＡ）は乳酸ユニットの平均連鎖長を、Ｌ（ＧＡ）はグリコール酸ユニットの平均連鎖長を、Ｌ（ＣＬ）はカプロラクトンユニットの平均連鎖長を示す。更に、ＬＡ％は共重合体中の乳酸モル分率を、ＧＡ％は共重合体中のグリコール酸モル分率を、ＣＬ％は共重合体中のカプロラクトンモル分率をそれぞれ示し、Ｘは共重合体の重合度を示す。）
本発明の人工硬膜を構成する生体内分解性高分子は、上記したその平均連鎖長が、乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体が前記のような構成モル分率の範囲であることと相俟って、当該共重合体からなるシートが、人工硬膜に要求される生体に近い柔らかさ及び針穴より脳脊髄液の漏れを生じないような針穴を収縮させるゴム的物性を達成するために必要な条件である。
従って、本発明で使用する共重合体は、この式（１）〜（３）のすべてを充足することが必要であり、もし、当該共重合体が当該式（１）〜（３）のいずれかに適合しない場合は、もはやその共重合体は、本発明の人工硬膜に好ましくなく使用することはできない。
（金属含有量等）
また、基材層を構成する生体内分解性高分子中の金属含有量は、６０ｐｐｍ以下、好ましくは３０ｐｐｍ以下であることが望ましい。なお、当該金属含有量とは、主に当該生体内分解性高分子の重合に際し使用する重合触媒から由来する金属であって、例えばスズ、亜鉛等の金属をいうが、特にこれに限定されるものではない。
共重合体の金属含有量が６０ｐｐｍを超える量の金属の共存下で、人工硬膜製造のための溶融成形を行うと、熱分解が過剰に生じて分子量が低下し、人工硬膜の強度が不足する場合があり好ましくない。更に、熱分解による生成物である低分子量体が多量に生成されるため、人工硬膜を生体内に埋殖した場合、低分子量体の分解反応が加速され、自家硬膜が再生するまでの期間、脳脊髄液漏れの防止が困難となるおそれがある。更には、人工硬膜の保存安定性も低下するという問題も生じる。
基材層を構成する生体内分解性高分子中のモノマー含量は、乳酸、グリコール酸及びε−カプロラクトンのモノマー総量として４０ｐｐｍ以下であることが必要である。モノマー総量が４０ｐｐｍを超えると生体内分解性高分子の保存安定性が低下するばかりでなく、強度が低下して生体内での形状維持が困難になる。更に、４０ｐｐｍを超える量のモノマーの存在下で人工硬膜製造のための溶融成形を行うと、熱分解が過剰に生じて更に人工硬膜の強度が低下する原因となる。
（膜厚）
本発明の人工硬膜は、上記生体内分解性高分子の二層以上のフィルム状シートとして成形するが、その膜厚は成形温度、成形圧力により容易に制御可能である。人工硬膜が薄すぎる場合、その強度が足りず脳脊髄液の漏れを発生させる可能性があり、逆に厚すぎると人工硬膜の剛性が高くなりすぎ脳表面を傷つける可能性があるため好ましくない。従って、人工硬膜の総膜厚は、３０〜１０００μｍであることが好ましい。なお、基材層の膜厚は２５〜９９０μｍ、好ましくは５０〜５００μｍ程度であり、それぞれの積材層の膜厚は５〜５００μｍ、好ましくは５〜２００μｍ程度である。
（積層構造）
本発明の人工硬膜は、生体内分解性高分子からなる上記基材層の片面又は両面に、親水性高分子の層を積層し、当該層を、脳表面との癒着を防止する機能を有する積材層として構成し、二層以上の積層体（積層シート）としたものである。
当該人工硬膜の層構成を図面に基づき、さらに説明する。
第１図は、本発明の人工硬膜１の層構成の一例を示す説明図であって、基材層２の片面に、積材層３を積層した例であり、第２図は、本発明の人工硬膜の他の層構成であって、基材層２の両面に、積材層３を積層した例であり、第３図は、本発明の人工硬膜のさらに他の層構成の例を示す説明図であって、基材層２の両面に、複数の積材層、３ａ、３ｂを積層した例を示す。
ここで積材層３とは、親水性高分子からなる層であって、更なる脳脊髄液の漏れ防止機能を付与する層である。
本発明の人工硬膜は、このように、少なくとも第１図に例示するように、二層構造の人工硬膜１、又は第２図に例示するように三層構造の人工硬膜１Ａ、さらに又は第３図に例示するように四層構造の人工硬膜１Ｂとして、基材層と積材層から構成することにより、基材層２で基本的に奏される脳脊髄液の漏れ防止機能を、積材層で更に強化するものである。なお、四層を超えるさらに多層構造とすることも可能である。
基材層２の片面又は両面に積層させる積材層３である親水性高分子は、生体内分解性の親水性高分子であればいかなるものでもよいが、生体組織との密着性等を鑑みれば生体親和性の高い親水性高分子が好ましい。このようにして、当該人工硬膜が自家硬膜と密着することにより、密着面からの脳脊髄液の漏れを極力抑制することが可能となる。また、当該親水性高分子は、水膨潤性高分子である、ヒアルロン酸、カルボキシメチルセルロース、メチルセルロース、ハイドロキシプロピルセルロース、アルギン酸、またはこれらの共重合体などが最も好ましい。しかしながら、親水性高分子であるならば、如何なるものでもよく、先の特開２００３−１９９８１７号に記載のゲル状のグリコール酸／ε−カプロラクトンの共重合体も使用可能である。その他、コラーゲン、アテロコラーゲン（コラーゲンをプロテアーゼ処理して水溶性としてもの）、ゼラチン等を主成分とする酵素分解性の生体吸収性高分子であってもよい。
なお、第３図に示すように、積材層３は、単層ではなく、二層以上の複層構造（３ａ、３ｂ、３ｃ、・・・、３ｎ）としてもよい。例えば、積材層としてグリコール酸／ε−カプロラクトの層３ａを一層形成し、さらにその上にヒアルロン酸やカルボキシルメチルセルロースの層３ｂを形成してもよい。
（重合方法）
本発明の人工硬膜は、生体内分解性高分子を以下のごとき２段階重合により得る工程、及び重合された当該高分子を基材層とする工程、により製造される。
すなわち、当該基材層を有する人工硬膜は、
（１）構成モル分率が６０〜９８：３〜２０：３〜４０モル％の割合で乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体の重合を行う工程、
（２）（１）の共重合体に、乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体を構成する各モノマー混合物を添加して、最終生成物の構成モル分率が、乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトンとして６０〜８５：３〜１５：１０〜３０モル％となる共重合体を得る工程、及び
（３）以上の（１）及び（２）の工程による共重合体により前記基材層を形成することにより製造されるものである。
ここで、当該乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体の重合方法の一例を挙げれば、一段階目として、温度計、窒素導入管、排気口を備えた反応容器に、乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトンの構成モル分率が６０〜９８：３〜２０：３〜４０モル％となるようにラクチド、グリコリド、ε−カプロラクトンを投入する。これに触媒として、オクタン酸スズ、塩化スズ、ジラウリン酸ジブチルスズ、アルミニウムイソプロポキシド、チタニウムテトライソプロポキシド、ジエチル亜鉛等を０．０００５〜０．００５質量％の範囲で加え、当該触媒存在下で加熱して１００〜２５０℃で開環重合を行い、共重合体を得る。
引き続き二段階目として、この共重合体に最終生成物の構成モル分率が、乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトンとして６０〜８５：３〜１５：１０〜３０モル％となるように、当該重合系に、ラクチド、グリコリド、ε−カプロラクトンの各モノマー混合物を添加し、１００〜２５０℃で開環重合を行うものである。
このようにして、二段階で共重合体を製造することにより、当該共重合体の各モノマーユニットの平均連鎖長を、本発明で規定する式（１）〜（３）を充足するように制御することが可能となる。
なお、一段階目の重合における乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体は、特に限定するものではなく、一般的な重合方法により製造するものであればいずれの方法によるものであってもよい。例えば、上記した開環重合の代わりに、乳酸、グリコール酸、ε−カプロラクトンを減圧下で直接脱水重縮合することにより共重合体を得る方法であってもよい。また開環重合では、モノマー原料を溶融状態下で重合させることも可能であるが、当該モノマーを溶解する溶媒中で重合を行うこともできる。
なお、開環重合や脱水重縮合等に使用するラクチドまたは乳酸のモノマーは、Ｄ体、Ｌ体、ＤＬ体のいずれであってもよいし、これらを混合して使用してもよい。
しかしながら、得られた乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体にモノマーやオリゴマーが存在すると、これを生体内で使用した際に、生体の組織反応及び分解が異常に促進され、マクロファージの吸収分解以上に分解切片が生成するため、組織傷害性を生ずる原因となり好ましくない。
また、当該共重合体を、これらモノマーあるいはオリゴマーの共存下で溶融成形を行うと、熱分解が過剰に生じるため強度が低下して人工硬膜として必要な生体内での形状維持性能が低下するため望ましくない。従って、再沈殿法等の方法を繰り返すことにより、共重合体中のモノマー含量を実質的に不存在とすることが好ましく、具体的には４０ｐｐｍ以下、好ましくは３０ｐｐｍ以下になるまで精製して使用するのが好ましい。
また、前述のような二段階の重合によって得られる乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体の数平均分子量は、１００，０００〜５００，０００の範囲である。
本発明において、特に重要なことは、得られる共重合体の平均連鎖長が、前述の式（１）〜（３）で規定された条件を満たすことであって、例え数平均分子量が上記の範囲内であっても、当該平均連鎖長が本発明で規定する条件を満たさない限り、本発明の目的とする優れた特性を有する人工硬膜を得ることができない。
（人工硬膜の製造）
本発明の人工硬膜を構成する基材層２は、それ自身公知の一般的なフィルム又はシートを形成するプラスチック成形方法のいずれかの方法によって形成すればよい。
基材層２の作製方法の一例を挙げると、上記の方法によって得られた、乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体からなる人工硬膜用共重合体材料をクロロホルムなどの溶媒に溶解し、当該重合体の溶液を、適当な基体上に塗布し、風乾後離形することによりフィルム又はシート状に加工することができる。また、当該共重合体の粉末を加熱下に溶融しプレス成形してもよい。さらに当該共重合体を加熱溶融しＴダイにより押出成形してフィルムまたはシートとすることもできる。
また、基材層２に積層させる親水性高分子の積材層３の積層方法も、当該基材層２に対して積材層を密着して配置できる方法であればどのような方法であってもよいが、例えば当該親水性高分子の加熱溶着、当該親水性高分子溶液への当該基材層フィルム又はシートディッピング（浸漬）によるコーティング、当該親水性高分子溶液の基材層への塗布やキャスティング、当該親水性高分子のフィルム又はシートの基材層への接着剤等による接着等の手段が挙げられる。
さらには、多層ダイを使用する、多層押出し成形機により、乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体と親水性高分子をそれぞれのダイから溶融押出して基材層２と積材層３からなる多層フィルム又は多層シートを一挙に形成することも可能である。同様にして多層熱ラミネーション、多層接着ラミネーションにより多層フィルム等を形成してもよい。
（発明の効果）
本発明の人工硬膜は、特開２００３−１９９８１７号に記載の人工硬膜のように「漏水防止層」に、さらに性能の異なる二つの層（弾性層と形状維持層）を積層しなくても、（１）針穴の肥大が小さく液漏れを生じず、また、（２）溶融成形によって製造される人工硬膜であっても、生体内で約３ヶ月以上強度を維持すると推定され、これは自家硬膜の再生期間より若干長く最適である。
【実施例】
以下実施例を挙げてさらに本発明を詳細に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。なお、特に断らない限り％は全て質量％を示す。
〔実施例１〕
（１）グリコール酸（試薬、東京化成社製）を撹拌下、約１８０℃で脱水重縮合させて得たオリゴマーを、２５０℃で減圧蒸留することによりグリコリドを得た。
排気口と温度計を備えた反応容器に、重合の一段階目として、Ｌ−ラクチド（試薬、アルドリッチ社製）２０２ｇと、上記グリコリド１０ｇと、ε−カプロラクトン（試薬、東京化成社製）３８ｇ及び触媒としてオクタン酸スズ（試薬、シグマ社製）０．０１ｇを加え、真空ポンプを用いて反応容器内を１×１０-3ｍｍＨｇまで減圧し、１５０℃で２４時間重合を行った。
（２）次に、重合の二段階目として、最終生成物の構成モル分率が、乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトンとして６７：８：２５モル％となるように、Ｌ−ラクチド６４ｇ、グリコリド１８ｇ、及びε−カプロラクトン１６８ｇを添加し、更に１５０℃で２４時間重合を行った。
反応後に得られた共重合体をクロロホルムに溶解し、メタノール中で析出させることにより精製処理を行い、本発明の人工硬膜に使用する乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体を得た。
（３）このようにして得られた乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体の数平均分子量をＧＰＣにより測定した結果、２８，０００であり、その組成（モル分率）を1Ｈ−ＮＭＲの測定から求めた結果、乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトンのモル分率は６７：８：２５モル％であった。
また13Ｃ−ＮＭＲの測定から共重合体の平均連鎖長を求めた結果、Ｌ（ＬＡ）＝７．４、Ｌ（ＧＡ）＝５．１、Ｌ（ＣＬ）＝１．２であった。また、式（１）〜（３）における平均連鎖長は、２＜Ｌ（ＬＡ）＜１３３、１＜Ｌ（ＧＡ）＜１５９、１＜Ｌ（ＣＬ）＜４９７となり、平均連鎖長はいずれも式（１）〜（３）で規定される範囲内であった。
また、このようにして得られた乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体中の金属含量として、スズはＳｎとして１６ｐｐｍ、モノマー含量は乳酸、グリコール酸及びε−カプロラクトンの総量として２０ｐｐｍであった。
（４）得られた乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体を基材層とする第１図に示す層構成の人工硬膜を形成した。すなわち、当該共重合体の粉末を１６０℃、３０ｋｇ／ｃｍ2にてプレス成形し、１０℃の冷却プレス機にて冷却し、ゴム弾性形状維持性を有する厚さ２００μｍのフィルム状シートの基材層２を得た。得られたシート基材層２の片側に、親水性膨潤性高分子であるヒアルロン酸（試薬、和光純薬社製）のキャストフィルムを積層して積材層３とし、厚さ３００μｍの二層からなる人工硬膜１を得た。
〔実施例２〕
（１）グリコール酸（試薬、東京化成社製）を撹拌下、約１８０℃で脱水重縮合させて得たオリゴマーを、２５０℃で減圧蒸留することによりグリコリドを得た。
排気口と温度計を備えた反応容器に、重合の一段階目として、Ｌ−ラクチド（試薬、アルドリッチ社製）１１１ｇと、上記グリコリド７ｇと、及びε−カプロラクトン（試薬、東京化成社製）８２ｇ及び触媒としてオクタン酸スズ（試薬、シグマ社製）０．０１ｇを加え、真空ポンプを用いて反応容器内を１×１０-3ｍｍＨｇまで減圧し、１８０℃で２４時間重合を行った。
（２）次に、重合の二段階目として、最終生成物の構成モル分率が、乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトンとして７５：７：１８モル％となるように、Ｌ−ラクチド２００ｇ、グリコリド１８ｇ、ε−カプロラクトン８２ｇを添加し、更に１８０℃で２４時間重合を行った。反応後に得られた共重合体をクロロホルムに溶解し、メタノール中で析出させることにより精製処理を行い、本発明の人工硬膜に使用する乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体を得た。
（３）このようにして得られた乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体の数平均分子量をＧＰＣにより測定した結果、３５０，０００であり、その組成（モル分率）を1Ｈ−ＮＭＲの測定から求めた結果、乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトンのモル分率は７５：７：１８モル％であった。
また、13Ｃ−ＮＭＲの測定から共重合体の平均連鎖長を求めた結果、Ｌ（ＬＡ）＝６．３、Ｌ（ＧＡ）＝４．６、Ｌ（ＣＬ）＝１．９であった。また、式（１）〜（３）における平均連鎖長は、２＜Ｌ（ＬＡ）＜１９３、１＜Ｌ（ＧＡ）＜１８０、１＜Ｌ（ＣＬ）＜４６４となり、平均連鎖長はいずれも式（１）〜（３）規定の範囲内であった。
また、このようにして得られた乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体中の金属含量として、スズはＳｎとして２０ｐｐｍ、モノマー含量は乳酸、グリコール酸及びε−カプロラクトンの総量として１８ｐｐｍであった。
（４）得られた乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体を基材層とする、第３図に示すような層構成の人工硬膜を形成した。すなわち、上記共重合体の粉末を２００℃、３０ｋｇ／ｃｍ2にてプレス成形し、１０℃の冷却プレス機にて冷却し、ゴム弾性形状維持性を有する厚さ２００μｍのフィルム状シートの基材層２を得た。
更に、ゲル状の生分解性高分子であるグリコール酸／ε−カプロラクトンの共重合体（数平均分子量６８，０００）を熱溶着により片面に積層させ積材層３ａを形成させ、更に両面にヒアルロン酸（試薬、和光純薬社製）を、両面にコーティングして積材層３ｂ、３ｂとし、厚さ３５０μｍの四層からなる人工硬膜を得た。
なお、上記積材層３ａの形成に使用したグリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体は以下の方法で合成したものである。
排気口と温度計を備えた反応容器に、前記方法により得たグリコリド４３ｇと、ε−カプロラクトン（試薬、東京化成社製）１５８ｇ及び触媒としてオクタン酸スズ（試薬、シグマ社製）０．０１ｇを加え、真空ポンプを用いて反応容器内を１×１０-3ｍｍＨｇまで減圧し、１６０℃で２４時間重合を行った。反応後に得られた共重合体をクロロホルムに溶解し、メタノール中で析出させることにより精製処理を行い、グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体を得た。このようにして得られたグリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体の数平均分子量をＧＰＣにより測定した結果、６８，０００であり、その組成（モル分率）を1Ｈ−ＮＭＲの測定から求めた結果、グリコール酸／ε−カプロラクトンのモル分率は４０：６０モル％であった。
〔実施例３〕
（１）グリコール酸（試薬、東京化成社製）を撹拌下、約１８０℃で脱水重縮合させて得たオリゴマーを、２５０℃で減圧蒸留することによりグリコリドを得た。
排気口と温度計を備えた反応容器に、重合の一段階目として、Ｌ−ラクチド（試薬、アルドリッチ社製）３２８ｇと、グリコリド１０ｇと、及びε−カプロラクトン（試薬、東京化成社製）１１２ｇ及び触媒としてジエチル亜鉛（試薬、関東化学社製）０．０１ｇを加え、真空ポンプを用いて反応容器内を１×１０-3ｍｍＨｇまで減圧し、１４５℃で２４時間重合を行った。
（２）次に、重合の二段階目として、最終生成物の構成モル分率が、乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトンとして８０：５：１５モル％となるように、Ｌ−ラクチド１０ｇ、グリコリド８ｇ、ε−カプロラクトン３２ｇを添加し、更に１８０℃で２４時間重合を行った。
反応後に得られた共重合体をクロロホルムに溶解し、メタノール中で析出させることにより精製処理を行い、本発明の人工硬膜に使用する乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体を得た。
（３）このようにして得られた乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体の数平均分子量をＧＰＣにより測定した結果、１８０，０００であり、その組成（モル分率）を1Ｈ−ＮＭＲの測定から求めた結果、乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトンのモル分率は８０：５：１５モル％であった。
また13Ｃ−ＮＭＲの測定から共重合体の平均連鎖長を求めた結果、はＬ（ＬＡ）＝５．９、Ｌ（ＧＡ）＝４．８、Ｌ（ＣＬ）＝１．６であった。また、式（１）〜（３）における平均連鎖長は、２＜Ｌ（ＬＡ）＜１０７、１＜Ｌ（ＧＡ）＜６７、１＜Ｌ（ＣＬ）＜２０１となり、平均連鎖長はいずれも式（１）〜（３）で規定している範囲内であった。
また、このようにして得られた乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体中の金属含量として、亜鉛はＺｎとして３０ｐｐｍ、モノマー含量は乳酸、グリコール酸及びε−カプロラクトンの総量として２６ｐｐｍであった。
（４）得られた乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体からなる基材層を有する第２図で示される層構成の人工硬膜１Ａを作成した。すなわち上記共重合体の粉末を１８０℃、３０ｋｇ／ｃｍ2にてプレス成形し、１０℃の冷却プレス機にて冷却し、ゴム弾性形状維持性を有する厚さ２００μｍのフィルム状シートの基材層２を得た。更に、得られたフィルム状シートの両面に水膨潤性高分子であるアルギン酸（試薬、和光純薬社製）のキャストフィルムを積材層３として配置し、厚さ４００μｍの三層からなる人工硬膜（１Ａ）を得た。
〔比較例１〕
（１）排気口と温度計を備えた反応容器に、Ｌ−ラクチド（試薬、アルドリッチ社製）２６３ｇと、グリコリド（実施例１と同条件で製造）４２ｇと、ε−カプロラクトン（試薬、東京化成社製）１９４ｇ、及び触媒としてオクタン酸スズ（試薬、シグマ社製）０．０１ｇを加え、真空ポンプを用いて反応容器内を１×１０-3ｍｍＨｇまで減圧し、１９０℃で２４時間重合を行った。反応後、生成物をクロロホルムに溶解し、メタノール中で析出させることにより精製処理を行い、乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体を得た。
（２）このようにして得られた乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体の数平均分子量をＧＰＣにより測定した結果、２２０，０００であり、その組成（モル分率）を1Ｈ−ＮＭＲの測定から求めた結果、乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトンのモル分率は、６５：１５：２０モル％であった。
また、13Ｃ−ＮＭＲの測定から共重合体の平均連鎖長を求めた結果、Ｌ（ＬＡ）＝１．８、Ｌ（ＧＡ）＝１．２、Ｌ（ＣＬ）＝０．８であった。また、式（１）〜（３）における平均連鎖長は、２＜Ｌ（ＬＡ）＜１０６、１＜Ｌ（ＧＡ）＜２４４、１＜Ｌ（ＣＬ）＜３２６となり、Ｌ（ＬＡ）及びＬ（ＣＬ）は式で規定する下限値以下であった。
（３）第１図に示される層構成に準じて人工硬膜を形成した。すなわち、ここで得られた共重合体粉末を２００℃、３０ｋｇ／ｃｍ2にてプレス成形し、１０℃の冷却プレス機にて冷却し、ゴム弾性形状維持性を有する厚さ２００μｍのフィルム状シートの基材層２を得た。更に、実施例１と同じく親水性膨潤性高分子であるヒアルロン酸を積材層３として、基材層２の片面に配置し、厚さ３００μｍの二層からなる人工硬膜１を得た。
〔比較例２〕
（１）排気口と温度計を備えた反応容器に、Ｌ−ラクチド３２２ｇおよび触媒としてオクタン酸スズ０．０１ｇを加え、真空ポンプを用いて反応容器内を１×１０-3ｍｍＨｇまで減圧し、１６０℃で８時間重合を行った。次いで、ε−カプロラクトン１５６ｇを反応容器内に添加し、１９０℃で１０時間重合を行った。更に、グリコリド２２ｇを添加して２１０℃に加熱して２４時間重合を行った。反応後、生成物をクロロホルムに溶解し、メタノール中で析出させることにより精製処理を行い、乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体を得た。
（２）このようにして得られた乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体の数平均分子量をＧＰＣにより測定した結果、２００，０００であり、その組成（モル分率）を1Ｈ−ＮＭＲの測定から求めた結果、乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトンのモル分率は、７５：７：１８モル％であった。
また、13Ｃ−ＮＭＲの測定から共重合体の平均連鎖長を求めた結果、Ｌ（ＬＡ）＝１８３０、Ｌ（ＧＡ）＝１２０、Ｌ（ＣＬ）＝４８０であった。また、式（１）〜（３）における平均連鎖長は、２＜Ｌ（ＬＡ）＜１１０、１＜Ｌ（ＧＡ）＜１０３、１＜Ｌ（ＣＬ）＜２６６となり、平均連鎖長はいずれも式（１）〜（３）で規定する上限を越えていた。
（３）得られた共重合体により、第１図の層構成に準じて人工硬膜１作成した。すなわちこの共重合体粉末を２００℃、３０ｋｇ／ｃｍ2にてプレス成形し、１０℃の冷却プレス機にて冷却し、ゴム弾性形状維持性を有する厚さ２００μｍのフィルム状シートの基材層２を得た。更に、実施例２と同じくゲル状の生分解性高分子である、グリコール酸／ε−カプロラクトンの共重合体（数平均分子量６８，０００）を熱溶着により積材層３として積層させ、厚さ３５０μｍの二層からなる人工硬膜１を得た。
なお、積材層３として使用したグリコール酸／カプロラクトン共重合体は、実施例２と同様の方法で合成した。
〔比較例３〕
（１）排気口と温度計を備えた反応容器に、重合の一段階目として、Ｌ−ラクチド１３０ｇとグリコリド２ｇとε−カプロラクトン５０ｇおよび触媒としてオクタン酸スズ０．０１ｇを加え、真空ポンプを用いて反応容器内を１×１０-3ｍｍＨｇまで減圧し、１５０℃で２４時間重合を行った。
（２）次に、重合の二段階目として、最終生成物の構成モル分率が、乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトンとして４０：５：５５モル％となるように、Ｌ−ラクチド４ｇ、グリコリド１０ｇ、ε−カプロラクトン３０４ｇを添加し、更に１５０℃で２４時間重合を行った。反応後に得られた共重合体をクロロホルムに溶解し、メタノール中で析出させることにより精製処理を行い、乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体を得た。
（３）このようにして得られた乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体の数平均分子量をＧＰＣにより測定した結果、２９０，０００であり、その組成（モル分率）を1Ｈ−ＮＭＲの測定から求めた結果、乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトンのモル分率は、４０：５：５５モル％であった。
また、13Ｃ−ＮＭＲの測定から共重合体の平均連鎖長を求めた結果、Ｌ（ＬＡ）＝５．６、Ｌ（ＧＡ）＝１．２、Ｌ（ＣＬ）＝３．８であった。また、式（１）〜（３）における平均連鎖長は、２＜Ｌ（ＬＡ）＜７１、１＜Ｌ（ＧＡ）＜８９、１＜Ｌ（ＣＬ）＜９８０となり、平均連鎖長はいずれも式（１）〜（３）で規定する範囲内であった。
（４）得られた共重合体を基材層とする人工硬膜を第１図の層構成に準じて作成した。当該共重合体の粉末を１６０℃、３０ｋｇ／ｃｍ2にてプレス成形し、１０℃の冷却プレス機にて冷却し、ゴム弾性形状維持性を有する厚さ２００μｍのフィルム状シートの基材層２を得た。更に、実施例１と同じ方法で親水性膨潤性高分子であるヒアルロン酸を積材層３として配置して、厚さ３００μｍの二層からなる人工硬膜１を得た。
〔実施例４〕
（１）グリコール酸（試薬、東京化成社製）を撹拌下、約１８０℃で脱水重縮合させて得たオリゴマーを、２５０℃で減圧蒸留することによりグリコリドを得た。
排気口と温度計を備えた反応容器に、重合の一段階目として、Ｌ−乳酸（試薬、シグマ社製）３ｇと、グリコール酸（試薬、東京化成社製）２ｇと、ε−カプロラクトン（試薬、東京化成社製）５５ｇ及び触媒としてオクタン酸スズ、（試薬、シグマ社製）０．０１ｇを加え、減圧下、１８０℃で２４時間重合を行った。
（２）次に、重合の二段階目として、最終生成物の構成モル分率が、乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトンとして７２：８：２０モル％となるように、Ｌ−ラクチド（試薬、アルドリッチ社製）２７８ｇ、上記のグリコリド１８ｇ、ε−カプロラクトン（試薬、東京化成社製）１２０ｇを添加し、更に１５０℃で２４時間重合を行った。反応後に得られた共重合体をクロロホルムに溶解し、メタノール中で析出させることにより精製処理を行い、本発明の人工硬膜に使用する乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体を得た。
（３）このようにして得られた乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体の数平均分子量をＧＰＣにより測定した結果、１２０，０００であり、その組成（モル分率）を1Ｈ−ＮＭＲの測定から求めた結果、乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトンのモル分率は７２：８：２０モル％であった。
また、13Ｃ−ＮＭＲの測定から共重合体の平均連鎖長を求めた結果、Ｌ（ＬＡ）＝４．８、Ｌ（ＧＡ）＝１．２、Ｌ（ＣＬ）＝２．８であった。また、式（１）〜（３）での平均連鎖長は、２＜Ｌ（ＬＡ）＜６４、１＜Ｌ（ＧＡ）＜７０、１＜Ｌ（ＣＬ）＜１７６となり、平均連鎖長はいずれも式（１）〜（３）で規定する範囲内であった。
また、このようにして得られた乳酸／グリコール酸／ε−カプロラクトン共重合体中の金属含量として、スズはＳｎとして２０ｐｐｍ、モノマー含量は乳酸、グリコール酸及びε−カプロラクトンの総量として１６ｐｐｍであった。
〈性能評価試験〉
前記実施例１から３と比較例１から３に記載した人工硬膜を用いて、以下の各性能評価試験を行った。
物性評価試験
各試験数ｎは５とし、その平均を求めた。
（１）１０％引っ張り抵抗
各人工硬膜を６．３５ｍｍ×６４ｍｍに切断し、３７℃の恒温条件でチャック間距離２０ｍｍ、引張速度１０ｍｍ／ｍｉｎで引張試験（島津製作所社製、引っ張り試験機使用）を行い、１０％伸びた時点の引っ張り抵抗を記録した。
（２）剛軟度
各人工硬膜を６．３５ｍｍ×６４ｍｍに切断し、ＪＩＳ−Ｌ１０９６と同様の方法で剛軟度試験を行った。なお、試験の際の試験片長さは４０ｍｍとした。
（３）永久伸び
各人工硬膜を６．３５ｍｍ×６４ｍｍに切断し、３７℃の恒温条件でチャック間距離２０ｍｍ、引張速度１０ｍｍ／ｍｉｎで１００％延伸し、これをチャックから取り外し、３７℃の恒温条件にて１時間保存した後の延伸した部位の伸び率を計測した。
分解性評価試験
それぞれの人工硬膜をそれぞれ６．３５ｍｍ×６４ｍｍに切断した分解性試験片を、生理食塩液に浸漬し、これらを３７℃に保温した。これを４週後、８週後、及び１２週後に取り出し、引張り強度試験を行った。引っ張り試験は、試験片をチャック間１０ｍｍ、引っ張り速度５０ｍｍ／ｍｉｎの条件にて実施した。
水漏れ試験
それぞれの人工硬膜を用いて脳髄液の漏れの防止機能を評価した。それぞれ縦５０ｍｍ、横２５ｍｍの人工硬膜と、ブタから採取した生体脳硬膜を重なり幅５ｍｍ、縫合間隔２ｍｍになるように縫合糸（エチコン社製、バイクリル縫合糸）によって連続縫合し、５０ｍｍ四方の試験片を作製した。この試験片を４７ｍｍインラインフィルターホルダー（ＭＩＬＬＩＰＯＲＥ社製）にセットし、インラインフィルターホルダーの上口部に３７℃の生理食塩水バッグをセットして、２０ｍｍＨｇ及び６０ｍｍＨｇに加圧し、下口部から出る生理食塩水を回収し、１分間に縫合部より漏れ出す水の量を測定した。試験数ｎは５で行い、測定結果よりその平均を求めた。
平均連鎖長の測定
それぞれの基材層に用いた生体分解性ポリマーの平均連鎖長は、ポリマーを13Ｃ−ＮＭＲの測定に供し、測定結果を基に以下の式で求め、結果を表１に示した。
乳酸ユニットの平均連鎖長
Ｌ（ＬＡ）＝（ＬＬＬ＋ＬＬＣ＋ＣＬＬ＋ＬＬＧ＋ＧＬＬ）／｛（ＬＬＣ＋ＣＬＬ）／２＋（ＬＬＧ＋ＧＬＬ）／２｝
グリコール酸ユニットの平均連鎖長
Ｌ（ＧＡ）＝（ＧＧＧ＋ＧＧＬ＋ＬＧＧ）／（ＧＧＬ＋ＬＧＧ）／２
カプロラクトンユニットの平均連鎖長
Ｌ（ＣＬ）＝（ＣＣＣ＋ＣＣＬ＋ＬＣＣ＋ＬＣＬ）／（ＬＣＣ＋ＬＣＬ）／２
なお、ここでＬＬＬ，ＬＬＣ，ＣＬＬ，ＬＬＧ，ＧＬＬは乳酸ユニットのカルボニル炭素の積分値であり、ＧＧＧ，ＧＧＬ，ＬＧＧはグリコール酸ユニットのカルボニル炭素の積分値であり、ＣＣＣ，ＣＣＬ，ＬＣＣ，ＬＣＬはカプロラクトンユニットのカルボニル炭素の積分値である。
実施例、比較例における組成を表１にまとめて示した。
【表１】
0004772669.tif 000002
〈評価試験結果〉
評価試験結果を表２〜４にまとめて示した。
【表２】
0004772669.tif 000003
表２の結果より、実施例１から３は、比較例１から３よりも永久伸びが小さく、縫合時に生じた針穴の肥大を最小限に抑えることが可能であり、脳脊髄液の漏れを防止することが可能であることを容易に推定できる。
【表３】
0004772669.tif 000004
表３の結果より実施例１から３は比較例１から３と比較して水漏れがほとんどないことがわかる。
【表４】
0004772669.tif 000005
表４の結果より実施例１から３は、比較例１及び３よりも２ヶ月以上の強度維持性能に優れていることがわかる。さらに比較例２はほとんど強度の低下がなく、長期間体内に残存することが予想され好ましくない。
〔動物実験〕
実施例１及び比較例２で用いた人工硬膜を使用し、ウサギ頭部への埋植試験を行った。
（試験方法）
ウサギ頭蓋骨の両側頭部に、８ｍｍ×１４ｍｍ程度の長方形の穿孔を行い、自家硬膜を８ｍｍ×１０ｍｍ程度摘出した。その後、当該欠損部を９ｍｍ×１５ｍｍ大の人工硬膜で覆った。その際、出血した血液は可能な限り取り除かず、出血した脳表面に直接人工硬膜を設置した。埋植３ヵ月後に再解頭し、人工硬膜と脳表面の癒着状態を確認した。この試験を２０例行い、実施例１及び比較例２の人工硬膜の癒着発生率を比較した。結果を表５に示す。
【表５】
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表５の結果より、明らかに実施例１の人工硬膜は比較例２の人工硬膜より癒着の発生率が低いことがわかる。
【産業上の利用可能性】
本発明の人工硬膜は、基本的には基材層と積材層とからなるもので、例えば従来の人工硬膜のように、漏水防止層に、さらに性能の異なる二つの層（弾性層と形状維持層）を積層しなくても、針穴の肥大が小さく液漏れを生じることがなく、また、溶融成形によって製造される人工硬膜であっても、生体内で、自家硬膜の再生期間より若干長い、約３ヶ月以上強度を維持すると推定されるもので、その産業上の利用可能性は、非常に大きい。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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