(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
検体中のフィブリノーゲン・フィブリン分解産物（ＦＤＰ）の免疫学的測定法であって、ＦＤＰのＤ分画、ＤＤ分画、又はＤ分画もしくはＤＤ分画を保持する分画とは反応するが、フィブリノーゲン及びＦＤＰのＥ分画とは反応しない、少なくとも２種類のモノクローナル抗体を担持したそれぞれの不溶性担体の使用量比を、該少なくとも２種類のモノクローナル抗体による該Ｄ分画、該ＤＤ分画、又は該Ｄ分画もしくはＤＤ分画を保持する分画に対する反応性の差を補正するように調整することを特徴とする免疫学的測定法。
【請求項２】
２種類のモノクローナル抗体をそれぞれ担持した不溶性担体が使用され、該担体の使用量比が１：２０〜２０：１である請求項１に記載の方法。
【請求項３】
免疫学的測定法が、免疫凝集法である請求項１又は２に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、認識部位の反応性の異なる多様性を有する被測定物質の簡便、迅速かつ正確な免疫学的測定法に関する。
【０００２】
【従来の技術】
近年、臨床検査の分野において、被測定物質に対して特異的に結合し得る物質を不溶性担体に結合させ、これによって被測定物質を補足し、検体中に存在する被測定物質の有無の確認（定性）、又は定量する方法が一般的に使われている。なかでも、抗原・抗体による免疫反応を利用した方法は多くの検査薬に用いられており、その手法としては、ＲＩＡ（ラジオイムノアッセイ）、ＣＬＥＩＡ（化学発光酵素免疫測定法）、ＥＬＩＳＡ（酵素免疫測定法）、ＴＩＡ（免疫比濁法）、ＬＴＩＡ（ラテックス免疫比濁法）などといった方法が挙げられる。
【０００３】
この内、ＬＴＩＡは被測定物質と特異的に結合する物質を担持させた不溶性担体と被測定物質とを混合することにより被測定物質を介した不溶性担体の架橋（凝集）が起こり、その結果生じる濁りを光学的に測定することで、被測定物質の有無の確認（定性）、又は定量する方法である。
【０００４】
ＬＴＩＡにおいて、抗原を被測定物質とする場合、抗原上にある複数のエピトープに対して、それぞれに結合する抗体の種類の多い方が、より抗原を介した抗体担持不溶性担体の架橋が形成され易く、凝集の起こりやすさという観点からは、同抗原に対し反応する複数の抗体の混合物であるポリクローナル抗体の方が好ましいと考えられる。しかしながら、ポリクローナル抗体は動物の個体差や採血の時期などにより品質が変動し易いといった問題を持っており、試薬の安定的製造といった面では不安定になり易い。
【０００５】
これに対し、モノクローナル抗体は品質の一定した抗体を大量生産することができ、品質管理上取扱い易いといった特徴をもっている為、試薬の安定的製造を可能にする。そこで、特許第１９０２０５４号に開示されるように、同一抗原上に存在しつつも異なるエピトープをそれぞれに認識する複数のモノクローナル抗体を混合して担持させるか、又はそれぞれに不溶性担体に担持させることにより、該抗原と効率よく反応させる方法が提案されている。
【０００６】
しかしながら、全てのモノクローナル抗体を同一平均粒径の不溶性担体に担持させる方法では、抗体の持つ、抗原に対する親和性の差異や抗体を担持する不溶性担体による立体障害に起因して、抗体と抗原（被測定物質）との間の反応（抗原抗体反応）が阻害され、正確に定量できない場合がある。
【０００７】
この問題を解決すべく、平均粒径の異なる不溶性担体に抗体をそれぞれに結合した複数の抗体担持不溶性担体を、組み合わせて使用する方法（特許第２５８８１７４号、特開平１０−１２３１３７号）が開示され、起こり得る立体障害や抗体の抗原に対する親和性の違いに起因すると考えられる抗原との反応性の差異を補正する方法が開示されている。しかしながら、抗体を不溶性担体に担持させた場合、不溶性担体に担持された抗体が担持される以前の親和性を保持しているとは限らず、これによって新たに反応性の差異を生じる可能性が考えられる。
【０００８】
【発明が解決しようとする課題】
しかしながら、これら従来の方法では、フィブリノーゲン・フィブリン分解産物（ＦＤＰ）、コラーゲン分解産物等の被測定物質自体に多様性が存在する場合には、正確な測定値が得られないという問題があった。
従って、本発明の目的は、多様性のある被測定物質を正確に測定できる免疫学的測定法を提供することにある。
【０００９】
【課題を解決するための手段】
そこで本発明者らは、ＦＤＰ、コラーゲン分解産物のような複数の分子種を含み多様性を示す抗原が正確に測定できない原因について検討したところ、抗原間における２以上の認識部位の反応性が、抗原のもつ多様性をもととした立体障害や抗原−抗体間の反応性の差異に起因して生じているためであることが判明した。そして、この反応性の差を補正するように各認識部位に特異的な抗体を担持したそれぞれの不溶性担体の使用量を調整すれば、抗原の多様性が補正され、当該抗原が正確に測定できることを見出し、本発明を完成した。
【００１０】
すなわち、本発明は検体中の各被測定物質が少なくとも２以上の認識部位を有し、被測定物質間における当該２以上の認識部位の反応性が異なる性質を有する被測定物質の免疫学的測定法であって、当該２以上の認識部位に特異的に結合する物質を担持したそれぞれの不溶性担体の使用量を、当該２以上の認識部位の反応性の差を補正するように調整することを特徴とする免疫学的測定法を提供するものである。
また、本発明は検体中の各被測定物質が少なくとも２以上の認識部位を有し、被測定物質間における当該２以上の認識部位の反応性が異なる性質を有する被測定物質の免疫学的測定用試薬であって、当該２以上の認識部位に特異的に結合する物質を担持したそれぞれの不溶性担体の使用量が、当該２以上の認識部位の反応性の差を補正するように調整されているものであることを特徴とする免疫学的測定用試薬を提供するものである。
【００１１】
【発明の実施の形態】
本発明の測定対象は、少なくとも２以上の認識部位を有し、被測定物質間における当該２以上の認識部位の反応性が異なる性質を有する被測定物質であるが、このような性質を有する抗原が好ましい。ここで認識部位とは、抗原認識部位をいう。このような抗原としては、例えばフィブリノーゲン・フィブリン分解産物（ＦＤＰ）又は４型コラーゲン（IV−Ｃ）等のコラーゲン分解産物、カルシノエンブリオニックアンチジェン（ＣＥＡ）、α−フェトプロテイン（ＡＦＰ）、プロステートスペシフィックアンチジエン（ＰＳＡ）などを挙げることができる。
このうち、ＦＤＰ、コラーゲン分解産物がより好ましく、特にＦＤＰが好ましい。
【００１２】
ＦＤＰは凝固線溶の指標として用いられ、血液中にてフィブリノーゲン、又はフィブリンがプラスミン等によって消化され産生される分子の総称である。プラスミンによる消化の際、フィブリノーゲンからはＤ分画、Ｅ分画、Ｙ分画、Ｘ分画などが、一方、フィブリンからはＤＤ分画、ＤＤ／Ｅ分画、或いはこれらを含む複数の高分子分画が産出され、検体中にはこれらが混在する形で存在するため、ＦＤＰは多様性を示す。
ＦＤＰは上記したような複数の分子種の混在物であり、ＬＴＩＡなどによる免疫学的測定を行う際、不溶性担体に担持されている抗体、特にそれがモノクローナル抗体である場合には、モノクローナル抗体のＦＤＰの分子種毎に対する親和性が異なることに起因して、反応性に差異を生じることになり、分子種の混在比が変化すれば測定値に差異を生じてしまうことがあることが判明した。
例えば、ＦＤＰを構成する分子種のうち、プラスミン消化の最終産物であるＤ分画上のエピトープを認識するモノクローナル抗体を不溶性担体に担持した試薬を用いた場合、抗体が不溶性担体に担持されることで、この不溶性担体担持モノクローナル抗体のＤ分画に対する親和性自体が変化しなくても、Ｄ分画上のエピトープに対する反応性が、ＤＤ分画、ＤＤ／Ｅ分画、Ｘ分画、Ｙ分画などといった、Ｄ分画を含むがＤ分画単独ではない分子中にあるＤ分画上のエピトープに対する反応性と大きく異なってしまうため、同じ分子数のＤ分画が存在していても、同一の濃度として測定できないといった現象が起こる。
【００１３】
そこで、本発明測定法の１例としてＦＤＰを測定する場合、少なくとも２種類以上の抗Ｄ分画−モノクローナル抗体担持不溶性担体を用い、使用するモノクローナル抗体担持不溶性担体の使用量を変えることによって、各分子種への反応性を調整し、これによりＦＤＰの量を、より簡便、迅速、正確に定量することが可能となる。
【００１４】
本発明で使用される被測定物質の２以上の認識部位に特異的に結合する物質としては、当該２以上の認識部位に特異的に結合する抗体が好ましい。かかる抗体のうち、ポリクローナル抗体は特定の抗原上に存在する複数のエピトープのうち特定のエピトープと特異的に結合する複数の抗体を含む２種類以上の異なるポリクローナル抗体である。ポリクローナル抗体は被測定物質を適当な動物、例えばマウス、ラット、ウサギ、ヤギ、ヒツジ、ウマ、ウシなどの動物に、それ自体公知の手法によって免疫し、得ることができる。一方、モノクローナル抗体は、特定の抗原に対して特異的に結合する２種類以上の異なるモノクローナル抗体である。モノクローナル抗体は、細胞融合技術分野において、それ自体公知の手法を適宜に選択し、またそれらを組み合わせてモノクローナル抗体産生融合細胞株を形成し、該細胞株を利用して取得することができる。モノクローナル抗体は市販品として入手することも可能であり、本発明方法に利用できる。
【００１５】
本発明で使用する不溶性担体としては従来より免疫学的凝集反応及び免疫学的凝集阻止反応において一般的に用いられている微粒子の担体を使用することができる。このような不溶性担体としては、工業的に大量生産可能な有機系微粒子が好ましいが、これに限定されるものではない。工業的に大量生産可能な有機系微粒子としては、例えば、スチレン、塩化ビニル、アクリロニトリル、酢酸ビニル、アクリル酸エステル、メタクリル酸エステルなどビニル系モノマーの単独重合体及び／又は共重合体、スチレン−ブタジエン共重合体、メチルメタクリレート−ブタジエン共重合体などのブタジエン系共重合体などの微粒子、及び官能基としてカルボキシル基、第１級アミノ基、又はカルボキサミド基（-CONH2）、水酸基、アルデヒド基などを有し、かつ基体が前記有機系微粒子からなる反応性有機系微粒子などが挙げられる。抗体の吸着性に優れており、かつ生物学的活性を長期間安定に保持できるなどの理由から、特にポリスチレン系のラテックス粒子が好ましい。
【００１６】
その他、動物の赤血球や細菌の細胞等の生物学的粒子、金属コロイド、ベントナイト、コロジオン、コレステロール結晶、シリカ、カオリン、炭素末など非生物学的粒子が挙げられる。
【００１７】
本発明で使用する不溶性担体の平均粒径は、不溶性担体上の抗体と、測定対象となる抗原物質の抗原抗体反応より引き起こされる凝集反応の結果、生じた凝集塊が肉眼又は光学的に検出できるに充分な大きさを呈するものであればよい。特に平均粒径が０．０５〜１０．０μｍの範囲にある不溶性担体（好ましくはラテックス粒子）の使用が好ましい。
【００１８】
上記不溶性担体の表面にモノクローナル抗体を担持させる手法は種々知られており、本発明において適宜利用できる。例えば、このような感作方法として不溶性担体表面にモノクローナル抗体を物理的に吸着させる手法や、官能基を有する不溶性担体表面に、既知の方法である物理結合法や化学結合法により、モノクローナル抗体を効率的に感作する方法が挙げられる。
【００１９】
本発明の特徴である複数の抗体担持不溶性担体の使用量比は、各認識部位間の反応性の差を補正できる比であればよく、測定対象である抗原、用いる抗体担持不溶性担体において異なる。当該使用量比は、抗体担持不溶性担体が特定された時点で、予め予備測定を行って決定するのが好ましい。より具体的な使用量比は、１：１００〜１００：１、特に１：２０〜２０：１が好ましい。
【００２０】
抗体を担持させた抗体不溶性担体と、抗原との反応は、抗原抗体反応及びそれに伴う凝集反応であり、該反応が起こり得る条件であれば、その反応条件は特に限定されないが、反応温度は、特に２５〜３７℃の範囲の恒温であることが望ましい。反応時間についても特に限定はないが、１０秒〜３０分間が好ましい。
【００２１】
反応液としては、抗原抗体反応が起こり得る溶液であればどのようなものでもよいが、リン酸緩衝液、グリシン緩衝液、トリス塩酸緩衝液、グッド緩衝液等が好ましい。反応液のpHは、好ましくは５．５〜８．５の範囲で用いるのがよい。
上記反応液に、安定剤としてウシ血清アルブミン、ショ糖、感度を高める効果が期待されるポリエチレングリコール、デキストランなどの水溶性多糖類、防腐剤としてアジ化ナトリウム、及び塩濃度調整の為に塩化ナトリウム等の添加剤を適宜溶解させてもよい。
【００２２】
本発明の免疫学的測定法としてはＬＴＩＡに代表される免疫凝集法が挙げられる。ここで不溶性担体の凝集の程度を測定する方法は、特に限定されない。例えば、凝集を定性的ないし半定量的に測定する場合には、既知の試料の濁度の程度との比較から、上記結合物の凝集の程度を目視によって判定することも可能である。該凝集を定量的に測定する場合、簡便性及び精度の点からは、例えば光学的に測定することが望ましい。
凝集の光学的測定法としては、公知の方法が利用可能である。より具体的には、例えば、いわゆる比濁法（凝集塊の形成を濁度の増加としてとらえる）、粒度分布による測定法（凝集塊の形成を粒度分布ないしは平均粒径の変化としてとらえる）、積分球濁度法（凝集塊の形成による前方散乱光の変化を積分球を用いて測定し、透過光強度との比を比較する）などの種々の方式が利用可能である。
【００２３】
これらのそれぞれの測定法について、速度試験（レートアッセイ：異なる時点で少なくとも２つの測定値を得て、これらの時点間における該測定値の増加分（すなわち増加速度）に基づき凝集の程度を求める）や終点試験（エンドポイントアッセイ：ある時点（通常は、反応の終点と考えられる時点）で１つの測定値を得て、この測定値に基づき凝集の程度を求める）などが利用可能である。
【００２４】
【実施例】
次に実施例を挙げて本発明を詳細に説明するが、本発明は何らこれに限定されるものではない。
【００２５】
実施例及び比較例で用いた試薬及び材料は以下の通りである。
＜試薬及び材料＞
・抗ＦＤＰモノクローナル抗体：抗ＦＤＰモノクローナル抗体(Clone No.03202, 03204、第一化学薬品社製：特公平4-61639号)を用いた。
・ラテックス：平均粒径０．２μｍのポリスチレン粒子を含むラテックス（いずれも固形分１０％（Ｗ／Ｖ）、積水化学社製）
・抗体担持ラテックス調製用緩衝液：２０mM Tris-HCl pH８．０を用いた。
・ブロッキング用緩衝液：２％ＢＳＡ in ２０mM Tris-HCl pH８．０を用いた。
・検体希釈用緩衝液（Ｒ１液）：０．１５％ＢＳＡ、０．１５Ｍ  ＮａＣｌ in ３０mM Tris-HCl pH８．５を用いた。
・ＦＤＰ：１０mg／mLとなるように調製した精製フィブリノーゲン溶液(in ２０mM Tris-HCl pH８．０)に１Ｍ  ＣａＣｌ2溶液、１０Ｕ／mL凝固第XIII因子、２５０Ｕ／mLトロンビンを順次添加し、３７℃で６０分間インキュベートしてフィブリン塊を形成し、ここに１．６ＩＵ／mLプラスミンを添加して得られる消化産物をもととし、ＦＤＰの蛋白質濃度が５０μｇ／mLとなるように、検体希釈用緩衝液で希釈したものをＦＤＰとした。尚、ＦＤＰの蛋白質濃度は「既存試薬キット：Ｂｉｏ−ＲＡＤ  ＤＣ  protein assay kit」を用いて求めた。
・Ｄ分画：フィブリノーゲンのプラスミン消化産物より、精製したものをもととし、Ｄ分画の蛋白質濃度が３８μｇ／mLとなるように、検体希釈用緩衝液で希釈したものを用いた。尚、Ｄ分画の蛋白質濃度は「既存試薬キット：Ｂｉｏ−ＲＡＤ  ＤＣ  protein assay kit」を用いて求めた。
【００２６】
実施例１
１）ＦＤＰ測定用試薬の調製
ポリスチレンラテックス１容に抗体担持ラテックス調製用緩衝液１容を添加・混合した。一方、抗体：Clone No.03202（又は03204）を濃度１mg／mLとなるよう抗体担持ラテックス調製用緩衝液にて希釈調製した。
上記希釈ポリスチレンラテックス１容を攪拌しながら上記抗体１容を添加・混合し、更に攪拌した。その後、ブロッキング用緩衝液２容を追加添加し、攪拌を続けた。その後、これを回収し、03202抗体担持ラテックス原料（又は03204抗体担持ラテックス原料）とした。
【００２７】
２）ＦＤＰ、並びにＤ分画の測定
ＦＤＰ、並びにＤ分画は、それぞれ検体希釈用緩衝液で１／２、１／４、１／８倍希釈し、これらを生化学分析装置日立７１７０形（日立製作所社製）を用いて測定した。上記１）で得られた03202抗体担持ラテックス原料（03202-Lx）と03204抗体担持ラテックス原料（03204-Lx）を１：１２の比率で混合し、それを更に抗体担持ラテックス調製用緩衝液にて１／５希釈したものを試薬２（Ｒ２液）として測定に用いた。濃度換算はＦＤＰをキャリブレーターとして用い、換算した。
【００２８】
測定条件は以下の通りである。
検体容量：６μｌ
検体希釈用緩衝液（Ｒ１液）：１００μｌ
試薬２（Ｒ２液）：１００μｌ
測定波長：５７０／８００nm
測光ポイント：１９−３４
【００２９】
比較例１（ラテックス原料を１：１の比率で混合した試薬を用いたＦＤＰの測定）
実施例１でＲ２液を調製する際、03202抗体担持ラテックス原料と03204抗体担持ラテックス原料を１：１の比率で混合し、それを更にラテックス希釈用緩衝液にて希釈したものを試薬２（Ｒ２液）とし、他の点はＦＤＰ測定用試薬の調製を含め、実施例１と同様の操作を行い、ＦＤＰ、並びにＤ分画を測定した。
【００３０】
比較例２（ラテックス原料を１：２の比率で混合した試薬を用いたＦＤＰの測定）
実施例１でＲ２液を調製する際、03202抗体担持ラテックス原料と03204抗体担持ラテックス原料を１：２の比率で混合し、それを更にラテックス希釈用緩衝液にて希釈したものを試薬２（Ｒ２液）とし、他の点はＦＤＰ測定用試薬の調製を含め、実施例１と同様の操作を行い、ＦＤＰ、並びにＤ分画を測定した。
【００３１】
比較例３（ラテックス原料を１：４の比率で混合した試薬を用いたＦＤＰの測定）
実施例１でＲ２液を調製する際、03202抗体担持ラテックス原料と03204抗体担持ラテックス原料を１：４の比率で混合し、それを更にラテックス希釈用緩衝液にて希釈したものを試薬２（Ｒ２液）とし、他の点はＦＤＰ測定用試薬の調製を含め、実施例１と同様の操作を行い、ＦＤＰ、並びにＤ分画を測定した。
【００３２】
比較例４（ラテックス原料を１：８の比率で混合した試薬を用いたＦＤＰの測定）
実施例１でＲ２液を調製する際、03202抗体担持ラテックス原料と03204抗体担持ラテックス原料を１：８の比率で混合し、それを更にラテックス希釈用緩衝液にて希釈したものを試薬２（Ｒ２液）とし、他の点はＦＤＰ測定用試薬の調製を含め、実施例１と同様の操作を行い、ＦＤＰ、並びにＤ分画を測定した。
【００３３】
試験結果
実施例１、及び比較例１、２、３、４で測定した値（反応曲線）を図５、１、２、３、４に示した。
図１は比較例１の結果を示す。比較例１はＦＤＰ及びＤ分画の希釈サンプルを03202-Lx：03204-Lx=１：１で調製した試薬（Ｒ２液）を用いて測定しており、図１に示したごとく、両者の反応曲線は乖離した。
【００３４】
図５は実施例１の結果を示す。実施例１はＦＤＰ及びＤ分画の希釈サンプルを03202-Lx：03204-Lx=１：１２で調製した試薬（Ｒ２液）を用いて測定しており、図５に示したごとく、両者の反応曲線は一致し、同一の測定値を得ることができた。
【００３５】
図２、３、４は比較例２、３、４の結果を示す。比較例２、３、４はＦＤＰ及びＤ分画の希釈サンプルを03202-Lx：03204-Lx=１：２、１：４、１：８で調製した試薬（Ｒ２液）を用いて測定しており、図２、３、４に示したごとく、両者の反応曲線は依然乖離しているものの、03202-Lxと03204-Lxの混合比が１：１２に近づくにつれて（03204-Lxの使用量比が高くなるにつれて）測定値が一致してくることがわかる。
【００３６】
以上の結果から、ＬＴＩＡにてＦＤＰを測定する際、本発明によって、構成分子であるＤ分画の反応性の差異を補正することができ、理論上測定されるべき濃度としての値を得ることができた。
【００３７】
【発明の効果】
本発明では、多様性を有する被測定物質、例えば抗原の免疫学的測定法において、抗原間と抗体との反応性を、抗体担持不溶性担体の使用量比の変動により調整することによって、多様性を示す抗原を測定する際に見られる分子種間の反応性の差異を補正し、抗原をより正確に定量できる。
【図面の簡単な説明】
【図１】抗体担持不溶性担体の混合比が１：１の場合の反応曲線を示す図である。
【図２】抗体担持不溶性担体の混合比が１：２の場合の反応曲線を示す図である。
【図３】抗体担持不溶性担体の混合比が１：４の場合の反応曲線を示す図である。
【図４】抗体担持不溶性担体の混合比が１：８の場合の反応曲線を示す図である。
【図５】抗体担持不溶性担体の混合比が１：１２の場合の反応曲線を示す図である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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