(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
以下の工程を含む相補的な塩基配列で構成される２本鎖の鋳型核酸の特定の領域を構成する塩基配列が１本鎖上に複数連結された核酸の合成方法。
ａ）２本鎖からなる鋳型核酸と任意のプライマーを、この任意のプライマーを起点とする相補鎖合成が可能な条件下で鎖置換を伴う相補鎖合成反応を触媒するＤＮＡポリメラーゼとともに前記２本鎖核酸とインキュベートすることによって、標的鋳型核酸における第２のプライマーがアニールすべき領域を塩基対結合が可能な状態とする工程、
ｂ）工程ａ）において塩基対結合が可能となった領域に第２のプライマーをアニールさせ、これを起点とする相補鎖合成反応を行う工程；ここで第２のプライマーはその３'末端において前記特定の領域を構成する一方の鎖の３'側を規定する領域に対してアニールし、かつ第２のプライマーの５'末端には、このプライマーを起点とする相補鎖合成反応生成物の任意の領域に対して相補的な塩基配列を備えるものである、
ｃ）工程ｂ）で合成された第２のプライマーの伸長生成物における第１のプライマーがアニールすべき領域を、第２のプライマーの伸長生成物の鋳型における第２のプライマーがアニールした領域よりも３'側を起点とする第４のプライマーの相補鎖合成反応による置換によって塩基対結合が可能な状態とする工程；ここで第１のプライマーはその３'末端において前記第２のプライマーを起点とする伸長生成物における前記特定の領域の３'側を規定する領域に対してアニールし、かつ第１のプライマーの５'末端には、このプライマーを起点とする相補鎖合成反応生成物の任意の領域に対して相補的な塩基配列を備えるものである、
ｄ）工程ｃ）において塩基対結合が可能となった領域に第１のプライマーをアニールさせ、これを起点とする相補鎖合成を行う工程、
ｅ）工程ｄ）で合成された第1のプライマーの伸長生成物を、第１のプライマーの伸長生成物の鋳型における第１のプライマーがアニールした領域よりも３'側を起点とする第３のプライマーの相補鎖合成反応による置換によって１本鎖とする工程、および
ｆ）工程ｅ）によって１本鎖となった第１のプライマーの伸長生成物の３'末端を自身にアニールさせることによって自身を鋳型とする相補鎖合成を行い、前記特定の領域を構成する塩基配列が１本鎖上に複数連結された核酸を得る工程。
【請求項２】
工程ａ）を融解温度調整剤の存在下で行う、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
融解温度調整剤が、ベタイン、プロリン、ジメチルスルホキシド、およびトリメチルアミンＮ−オキシドからなる群から選択される少なくとも１つの化合物である、請求項２に記載の方法。
【請求項４】
工程ａ）における任意のプライマーが第１のプライマーである、請求項１に記載の方法。
【請求項５】
更に次の工程を含む、請求項１に記載の方法。
１）工程ｆ）で３'末端の自身へのアニールによって形成されるループ領域に第２のプライマーをアニールさせてそれを起点とする相補鎖合成を行う工程、
２）工程１）の相補鎖合成反応によって自身の３'末端からの伸長生成物を置換し、その３'末端を塩基対結合が可能とする工程、
３）工程２）によって塩基対結合が可能となった３'末端を起点とし自身を鋳型とする相補鎖合成反応を行うことによって、工程１）でループ領域を起点として合成された相補鎖を置換して１本鎖の核酸を生成する工程、および
４）工程１）−３）を繰り返して目的とする核酸を増幅する工程。
【請求項６】
更に次の工程を含む、請求項５に記載の方法。
５）工程３）によって生成する１本鎖の核酸の３'末端を自身にアニールさせて相補鎖合成反応を行う工程、
６）３'末端の自身へのアニールによって形成されるループ領域に第１のプライマーをアニールさせてそれを起点とする相補鎖合成を行う工程、
７）工程６）の相補鎖合成反応によって自身の３'末端からの伸長生成物を置換し、その３'末端を塩基対結合が可能とする工程、
８）工程７）によって塩基対結合が可能となった３'末端を起点とし自身を鋳型とする相補鎖合成反応を行うことによって、工程６）でループ領域を起点として合成された相補鎖を置換して１本鎖の核酸を生成する工程、および
９）工程６）−８）を繰り返して目的とする核酸を増幅する工程。
【請求項７】
請求項６に記載の増幅方法を行い、増幅反応生成物が生じたかどうかを観察することにより試料中の標的塩基配列を検出する方法。
【請求項８】
核酸の検出剤存在下で請求項６に記載の方法を行い、検出剤のシグナル変化に基づいて増幅反応生成物が生じたかどうかを観察する、請求項７に記載の方法。
【請求項９】
請求項７に記載の検出方法によって変異を検出する方法であって、増幅対象である塩基配列における変異が、増幅方法を構成する相補鎖合成の起点となる少なくとも１つの３'末端において、相補鎖合成を妨げるものである方法。
【請求項１０】
次の要素を、第１のプライマーを起点とする相補鎖合成が可能な条件下でインキュベートする工程からなる、相補的な塩基配列で構成される２本鎖の鋳型核酸の特定の領域を構成する塩基配列が１本鎖上に複数連結された核酸を増幅する方法。
・増幅すべき特定の領域を含む２本鎖からなる標的鋳型核酸、
・鎖置換を伴う相補鎖合成反応を触媒するＤＮＡポリメラーゼ、
・第１のプライマー；ここで第１のプライマーはその３'末端において前記特定の領域を構成する一方の鎖の３'側を規定する領域に対してアニールし、かつ第１のプライマーの５'末端には、このプライマーを起点とする相補鎖合成反応生成物の任意の領域に対して相補的な塩基配列を備える、
・第２のプライマー；ここで第２のプライマーはその３'末端において前記特定の領域を構成する一方の鎖の３'側を規定する領域に対してアニールし、かつ第２のプライマーの５'末端には、このプライマーを起点とする相補鎖合成反応生成物の任意の領域に対して相補的な塩基配列を備える、
・第３のプライマー；ここで第３のプライマーは、鋳型における第１のプライマーがアニールすべき領域の３'側を起点とする相補鎖合成反応の起点となる、
・第４のプライマー；ここで第４のプライマーは、鋳型における第２のプライマーがアニールすべき領域の３'側を起点とする相補鎖合成反応の起点となる、および
・ヌクレオチド基質。
【請求項１１】
融解温度調整剤の存在下でインキュベートする、請求項１０に記載の方法。
【請求項１２】
融解温度調整剤が、ベタイン、プロリン、ジメチルスルホキシド、およびトリメチルアミンＮ−オキシドからなる群から選択される少なくとも１つの化合物である、請求項１１に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
技術分野
本発明は、２本鎖の状態にある核酸を鋳型として、鋳型に対して相補的な塩基配列で構成される核酸を合成する方法に関する。
【０００２】
背景技術
PCR(Polymerase Chain Reaction)法による鋳型依存的な核酸の合成方法は、近年の生命科学分野における研究の大きな推進力となった。PCR法は、少量の核酸を鋳型として、鋳型に対して相補的な塩基配列で構成される核酸の指数関数的な増幅を可能とした。いまやPCR法は、遺伝子のクローニングや検出のための道具として、広く普及している。PCR法では、目的とする塩基配列の両端に対して相補的な塩基配列からなる１組のプライマーが用いられる。一方のプライマーによってもたらされる伸長生成物には、他方のプライマーがアニールするように設計される。こうして、互いの伸長生成物へのアニールと相補鎖合成が繰り返し行われる合成反応が進み、指数関数的な増幅が達成される。
【０００３】
PCR法では、何らかの形で核酸を１本鎖として鋳型とし、これにプライマーをアニールさせる工程が必要である。鋳型依存型のDNAポリメラーゼが複製開始点としてプライマーを必要とするので、プライマーのアニールのために鋳型を１本鎖とする工程はPCR法においては必須と考えられていた。鋳型となる２本鎖核酸を１本鎖とする工程は、一般に変性(denature)と呼ばれている。変性は、実際には加熱によって行われるのが一般的である。DNAポリメラーゼを始めとする、核酸の合成に必要な反応成分はいずれも耐熱性であることから、反応に必要な成分を全て加えた上で、反応液を加熱すれば変性と、それに続く相補鎖合成反応を行うことができる。しかし、このような加熱処理工程を含む従来の方法には以下に述べるような問題点が指摘されている。
【０００４】
まず、PCR法は、２本鎖核酸の変性とプライマーのアニールを１サイクルごと繰り返さなければならない。そのために、温度制御のための特別な機構が必要である。たとえば、PCR法に伴う反応生成物の増加をモニタリングするための方法が開発されているが、この方法は汎用の分析装置では実施できず、専用の装置を用意しなければならなかった。反応をモニタリングするための機構に加えて、更にPCR法を実施するための温度制御機構が必要となるためである。したがって、一定の温度で全ての反応を実施することが可能な核酸の合成方法が実現できれば、反応のモニタリングも汎用の分析装置で手軽に行える可能性がある。このような簡便な手法がもしも実現できるとすれば、装置の問題のみならず、なによりも実験操作を簡略化できる。しかしそのような反応原理は、知られていない。
【０００５】
次に、PCR法の反応特異性は、プライマーの特異的なアニールに依存する。１本鎖核酸に対するプライマーのアニールは、融解温度に近い高温では十分な特異性を期待できる。しかし、温度が十分に高くない場合には、非特異的なアニーリングとそれによってもたらされる非特異的な相補鎖合成反応がしばしば観察される。PCR法においては、複雑な温度変化を伴うため、非特異的な反応を生じやすい温度条件にさらされてしまう可能性が常に伴う。これがPCR法における、非特異的な反応の原因の一つになっていることが指摘されている。
【０００６】
温度条件による非特異反応の問題点を解決するための方法もいくつか提案された。たとえば、一定温度以下ではDNAポリメラーゼが働けないようにする方法が実用化されている。このような方法としては、具体的には、温度感受性のDNAポリメラーゼ阻害物質、DNAポリメラーゼに対する抗体、あるいはDNAポリメラーゼの変異体等の利用が報告されている。また、反応液を高温で溶解する隔壁で区画しておき、十分な温度になったときに初めて反応に必要な成分を混合する方法も公知である。いずれにせよPCR法では、複雑な温度変化を伴う反応であるために、非特異反応を防ぐためには特殊な成分の使用が求められる。
【０００７】
検出対象配列を鋳型として相補的な配列を持つDNAを増幅する方法には、SDA法(Strand Displacement Amplification)[Pro.N.A.S.,89,392-396;1992][NucleicAcid.Res.,20,1691-1696;1992]と呼ばれる方法も知られている。SDA法は、ある塩基配列の3'側に相補的なプライマーを合成起点として相補鎖合成を行うときに、5'側に２本鎖の領域が有るとその２本鎖を置換しながら相補鎖の合成を行う特殊なDNAポリメラーゼを利用する方法である。なお以下本明細書において単に5'側、あるいは3'側と表現するときには、いずれも鋳型となっている方の鎖における方向を意味している。5'側の２本鎖部分が新たに合成された相補鎖によって置換(displacement)されることからSDA法と呼ばれている。
【０００８】
SDA法では、プライマーとしてアニールさせた配列に予め制限酵素認識配列を挿入しておくことによって、PCR法においては必須となっている温度変化工程の省略を実現できる。すなわち、制限酵素によってもたらされるニックが相補鎖合成の起点となる3'-OH基を与え、そこから鎖置換合成を行うことによって先に合成された相補鎖が１本鎖として遊離して次の相補鎖合成の鋳型として再利用される。このようにSDA法はPCR法で必須となっていた複雑な温度制御を不要とした。
【０００９】
しかし温度制御が不要とはいえ、２本鎖の核酸を鋳型とする場合には、プライマーをアニールさせるための１本鎖を生成するために加熱処理が必要となる。またSDA法では鎖置換型のDNAポリメラーゼに加え、必ずニックをもたらす制限酵素を組み合わせる必要がある。必要な酵素が増えるということは、コストアップの要因である。また、用いる制限酵素によって２本鎖の切断ではなくニックの導入（すなわち一方の鎖だけの切断）を行うために、一方の鎖には酵素消化に耐性を持つように合成の際の基質としてαチオdNTPのようなdNTP誘導体を利用しなければならない。このため、SDAによる増幅産物は天然の核酸とは異なった構造となり、制限酵素による切断や、増幅産物の遺伝子クローニングへの応用といった利用は制限される。またこの点においてもコストアップの要因を伴っているといえる。
【００１０】
複雑な温度制御を不要とする核酸の増幅方法として、NASBA(Nucleic Acid Sequence-based Amplification、TMA/Transcription Mediated Amplification法とも呼ばれる)が公知である。NASBAは、標的RNAを鋳型としてT7プロモーターを付加したプローブでDNAポリメラーゼによるDNA合成を行い、これを更に第２のプローブで２本鎖とし、生成する２本鎖DNAを鋳型としてT7 RNAポリメラーゼによる転写を行わせて多量のRNAを増幅する反応系である(Nature,350,91-92,1991)。NASBAにおけるT7 RNAポリメラーゼによる転写反応は等温で進行する。しかしNASBAはRNAを鋳型とする反応であり、２本鎖の核酸に応用することはできない。２本鎖の核酸を１本鎖とすれば同様の反応を構成することもできるが、そのためにはPCRと同じような複雑な温度制御が必要である。更に、逆転写酵素、RNaseH、DNAポリメラーゼ、そしてT7 RNAポリメラーゼといった複数の酵素の組み合わせが必須となることから、SDAと同様にコストの面では不利である。このように公知の核酸増幅反応においては、複雑な温度制御の問題点、あるいは複数の酵素が必要となることといった課題が残されている。
【００１１】
更に、公知の核酸合成方法における温度制御の問題点の解決を目的として、特殊な条件下でプライマーを起点とする相補鎖合成を実施する方法が試みられた（特表平11-509406;WO97/00330）。この方法は、相補的な塩基配列を持った核酸のハイブリダイゼーションが動的平衡(kinetics)の上に成立することを利用している。すなわちこの先行技術文献においては、完全な変性条件以下の温度においても、プライマーを起点とする相補鎖合成反応が一定の確率で発生する場合があるとされている。ここで完全な変性条件とは、２本鎖の鋳型核酸の大部分が１本鎖となる条件を意味する。
【００１２】
この報告においては、２本鎖の鋳型核酸にプライマーと鎖置換型のDNAポリメラーゼを加えて温度を上げていくと、確かに鋳型核酸の変性条件に満たない温度条件下における相補鎖の合成が観察されている。しかし温度変化を行わない条件下での相補鎖合成反応は、温度変化をともなう一般的な条件でPCR法を実施した場合に比べると、著しく効率が悪い。実際、本発明者らの追試によれば、確かに反応が起きていることは確認できる。しかしこの方法によって得られる反応生成物の量は、核酸の合成方法としては、実用化できるレベルには満たないものであった。
【００１３】
以上のように、反応の特異性や効率を犠牲にすることなく、温度変化を省略可能な核酸を合成することができる反応は、いまだに報告されていない。
【００１４】
発明の開示
本発明の課題は、２本鎖核酸を鋳型とする核酸の合成方法において、合成効率、操作性、あるいは特異性などを犠牲にすることなく、温度変化を不要とすることである。より具体的には、２本鎖核酸を鋳型として、プライマーやDNAポリメラーゼのような反応成分と一定の温度でインキュベートすることによって反応を行わせることができる、新たな合成方法を提供することが本発明の課題である。更に本発明は、この合成方法を利用して効率よく核酸を増幅する方法の提供を課題とする。
【００１５】
本発明者らは、２本鎖核酸を鋳型として、温度変化無しで相補鎖合成を行わせるために、プライマーを起点とする相補鎖合成反応を一定の温度条件下で開始することができないか検討を重ねた。２本鎖核酸とプライマーとの動的平衡に基づく公知の相補鎖の合成方法（特表平11-509406;WO97/00330）は、確かに温度変化を伴わないという条件を満たすものではあった。しかし先に述べたように、この方法によって実用的な合成効率を達成することは困難であった。そこで本発明者らは、特異性を犠牲にすることなく、動的平衡に基づく相補鎖合成を効率的に進めるために、等温反応に基づく核酸の合成反応との組み合わせを試みた。その結果、公知の方法では達成することができない高度な増幅効率を達成できることを見出し本発明を完成した。すなわち本発明は、次の核酸合成方法、並びにこの方法に基づく核酸の増幅方法に関する。
【００１６】
〔１〕次の工程を含む２本鎖核酸を鋳型とする核酸の合成方法。
ａ）２本鎖からなる鋳型核酸と任意のプライマーを、この任意のプライマーを起点とする相補鎖合成が可能な条件下で鎖置換を伴う相補鎖合成反応を触媒するDNAポリメラーゼとともに前記２本鎖核酸とインキュベートすることによって、標的鋳型核酸における等温で鋳型核酸を増幅することができるプライマーがアニールすべき領域を塩基対結合が可能な状態とする工程、
ｂ）工程ａ）において塩基対結合が可能な状態となった領域に、等温で鋳型核酸を増幅することができるプライマーをアニールさせる工程、および
ｃ）前記プライマーを合成起点として相補鎖合成を行う工程。
〔２〕工程ａ）を融解温度調整剤の存在下で行う〔１〕に記載の方法。
〔３〕融解温度調整剤が、ベタイン、プロリン、ジメチルスルホキシド、およびトリメチルアミンN-オキシドからなる群から選択される少なくとも１つの化合物である〔２〕に記載の方法。
【００１７】
〔４〕以下の工程を含む相補的な塩基配列で構成される２本鎖の鋳型核酸の特定の領域を構成する塩基配列が１本鎖上に複数連結された核酸の合成方法。
ａ）２本鎖からなる鋳型核酸と任意のプライマーを、この任意のプライマーを起点とする相補鎖合成が可能な条件下で鎖置換を伴う相補鎖合成反応を触媒するDNAポリメラーゼとともに前記２本鎖核酸とインキュベートすることによって、標的鋳型核酸における第２のプライマーがアニールすべき領域を塩基対結合が可能な状態とする工程、
ｂ）工程ａ）において塩基対結合が可能となった領域に第２のプライマーをアニールさせ、これを起点とする相補鎖合成反応を行う工程；ここで第２のプライマーはその3'末端において前記特定の領域を構成する一方の鎖の3'側を規定する領域に対してアニールし、かつ第２のプライマーの5'末端には、このプライマーを起点とする相補鎖合成反応生成物の任意の領域に対して相補的な塩基配列を備えるものである、
ｃ）工程ｂ）で合成された第２のプライマーの伸長産物における第１のプライマーがアニールすべき領域を塩基対結合が可能な状態とする工程；ここで第１のプライマーはその3'末端において前記第２のプライマーを起点とする伸長産物における前記特定の領域の3'側を規定する領域に対してアニールする、
ｄ）工程ｃ）において塩基対結合が可能となった領域に第１のプライマーをアニールさせ、これを起点とする相補鎖合成を行う工程、および
ｅ）工程ｄ）によって合成された第１のプライマーの伸長生成物の3'末端を自身にアニールさせることによって自身を鋳型とする相補鎖合成を行い、前記特定の領域を構成する塩基配列が１本鎖上に複数連結された核酸を得る工程。
【００１８】
〔５〕工程ａ）における任意のプライマーが第１のプライマーである〔４〕に記載の方法。
〔６〕工程ｃ）が、鋳型における第２のプライマーの3'側を起点とする第４のプライマーの相補鎖合成反応による置換によって行われる〔４〕に記載の方法。
〔７〕工程ｅ）が、鋳型における第１のプライマーがアニールすべき領域の3'側を起点とする第３のプライマーの相補鎖合成反応による置換によって第１のプライマーの伸長生成物を１本鎖とする工程を含む〔４〕に記載の方法。
〔８〕第１のプライマーが、その5'末端に、このプライマーを起点とする相補鎖合成反応生成物の任意の領域に対して相補的な塩基配列を備えるものである〔４〕に記載の方法。
【００１９】
〔９〕以下の工程を含む、相補的な塩基配列で構成される２本鎖の鋳型核酸の特定の領域を構成する塩基配列が１本鎖上に複数連結された核酸を増幅する方法。
１）〔７〕に記載の方法によって生成された第１のプライマーの伸長生成物の3'末端を自身にアニールさせ、これを起点とする相補鎖合成反応を行う工程、
２）3'末端の自身へのアニールによって形成されるループ領域に第２のプライマー、または第１のプライマーをアニールさせてそれを起点とする相補鎖合成を行う工程、
３）工程２）の相補鎖合成反応によって自身の3'末端からの伸長生成物を置換し、その3'末端を塩基対結合が可能とする工程、
４）工程３）によって塩基対結合が可能となった3'末端を起点とし自身を鋳型とする相補鎖合成反応を行うことによって、工程２）でループ領域を起点として合成された相補鎖を置換して１本鎖の核酸を生成する工程、および
５）工程２）−４）を繰り返して目的とする核酸を増幅する工程。
【００２０】
〔１０〕更に次の工程を含む、〔９〕に記載の方法。
６）工程４）によって生成する１本鎖の核酸の3'末端を自身にアニールさせて相補鎖合成反応を行う工程、
７）3'末端の自身へのアニールによって形成されるループ領域に第２のプライマー、または第１のプライマーをアニールさせてそれを起点とする相補鎖合成を行う工程、
８）工程７）の相補鎖合成反応によって自身の3'末端からの伸長生成物を置換し、その3'末端を塩基対結合が可能とする工程、
９）工程８）によって塩基対結合が可能となった3'末端を起点とし自身を鋳型とする相補鎖合成反応を行うことによって、工程７）でループ領域を起点として合成された相補鎖を置換して１本鎖の核酸を生成する工程、および
１０）工程７）−９）を繰り返して目的とする核酸を増幅する工程。
〔１１〕〔１０〕に記載の増幅方法を行い、増幅反応生成物が生じたかどうかを観察することにより試料中の標的塩基配列を検出する方法。
〔１２〕核酸の検出剤存在下で〔１０〕に記載の方法を行い、検出剤のシグナル変化に基づいて増幅反応生成物が生じたかどうかを観察する〔１１〕に記載の方法。
〔１３〕〔１１〕に記載の検出方法によって変異を検出する方法であって、増幅対象である塩基配列における変異が、増幅方法を構成する相補鎖合成の起点となる少なくとも１つの3'末端において、相補鎖合成を妨げるものである方法。
【００２１】
〔１４〕次の要素を、第１のプライマーを起点とする相補鎖合成が可能な条件下でインキュベートする工程からなる、相補的な塩基配列で構成される２本鎖の鋳型核酸の特定の領域を構成する塩基配列が１本鎖上に複数連結された核酸を増幅する方法。
・増幅すべき特定の領域を含む２本鎖からなる標的鋳型核酸、
・鎖置換を伴う相補鎖合成反応を触媒するDNAポリメラーゼ、
・第１のプライマー；ここで第１のプライマーはその3'末端において前記特定の領域を構成する一方の鎖の3'側を規定する領域に対してアニール、かつ第１のプライマーの5'末端には、このプライマーを起点とする相補鎖合成反応生成物の任意の領域に対して相補的な塩基配列を備える、
・第２のプライマー；ここで第２のプライマーはその3'末端において前記特定の領域を構成する一方の鎖の3'側を規定する領域に対してアニール、かつ第２のプライマーの5'末端には、このプライマーを起点とする相補鎖合成反応生成物の任意の領域に対して相補的な塩基配列を備える、
・ヌクレオチド基質。
【００２２】
〔１５〕更に付加的に次の要素を存在させる〔１４〕に記載の方法。
・第３のプライマー；ここで第３のプライマーは、鋳型における第１のプライマーがアニールすべき領域の3'側を起点とする相補鎖合成反応の起点となる、および
・第４のプライマー；ここで第４のプライマーは、鋳型における第２のプライマーがアニールすべき領域の3'側を起点とする相補鎖合成反応の起点となる。
〔１６〕融解温度調整剤の存在下でインキュベートする〔１４〕に記載の方法。
〔１７〕融解温度調整剤が、ベタイン、プロリン、ジメチルスルホキシド、およびトリメチルアミンN-オキシドからなる群から選択される少なくとも１つの化合物である〔１６〕に記載の方法。
〔１８〕２本鎖からなる鋳型核酸、任意のプライマー、および等温で鋳型核酸を増幅することができるプライマーを、この任意のプライマーを起点とする相補鎖合成が可能な条件下で鎖置換を伴う相補鎖合成反応を触媒するDNAポリメラーゼとともにインキュベートする工程を含む、標的鋳型核酸における等温で鋳型核酸を増幅する反応を開始するプライマーがアニールすべき領域を塩基対結合が可能な状態とする方法。
【００２３】
本発明では等温で鋳型核酸を増幅することができるプライマーを用いる。等温で核酸を増幅することができるプライマーとは、そのプライマーがアニールすべき領域において塩基対結合が可能な状態にある核酸を鋳型として、温度変化サイクル無しで核酸の増幅を行う方法のためのプライマーを意味する。すなわち本発明のプライマーには、温度変化サイクルを必要としない核酸増幅反応用のプライマーを用いる。本発明のプライマーは、等温で核酸増幅反応を開始するプライマーであれば、特に限定されない。したがって、温度変化サイクルが必要な反応に使用できるかどうかに関わらず、等温で行われる核酸増幅反応を開始するプライマーは本発明のプライマーに含まれる。一方、PCR用のプライマーを利用して等温での増幅を試みた報告があることを先に述べた。しかしこの試みは、実用的なレベルの増幅を達成できないことから、PCR用のプライマーは等温で行われる核酸増幅反応を開始するプライマーとは言えない。特に、温度変化工程を必要とせず、しかも連続的な相補鎖合成が可能な方法を利用することにより、鋳型核酸の増幅を行うことができる。このような方法に用いられるプライマーは、本発明のプライマーとして望ましい。
【００２４】
好ましい核酸の増幅方法としては、以下に述べるような、3'末端領域を自身にアニールさせて自身を鋳型とする相補鎖合成反応を繰り返す反応原理（LAMP法）を示すことができる。その他、公知の核酸増幅反応であるSDA法を用いることもできる。本発明において、ある領域において塩基対結合が可能であることとは、その領域が相補鎖を伴っていない状態にあることを意味する。したがって、２本鎖核酸が１本鎖の状態に変性された状態のみならず、２本鎖の核酸が部分的に１本鎖となっている状態も含まれる。
【００２５】
また本発明において、核酸とは、DNA、またはRNA、あるいはそれらのキメラ分子であることができる。核酸は、天然のものであることもできるし、人工的に合成されたものであることもできる。また部分的に、あるいは全体が完全に人工的な構造からなるヌクレオチド誘導体であっても、それが塩基対結合を形成しうるものであるかぎり本発明の核酸に含まれる。このような分子としては、たとえばホスホチオエート結合によってバックボーンが形成されているポリヌクレオチド誘導体などを示すことができる。本発明における核酸の構成塩基数は、制限されない。核酸は、用語ポリヌクレオチドと同義である。一方本発明におけるオリゴヌクレオチドとは、ポリヌクレオチドの中でも特に構成塩基数が少ないものを示す用語として用いる。一般にオリゴヌクレオチドは、２〜１００、より一般的には、２〜５０程度の塩基数のポリヌクレオチドを指してオリゴヌクレオチドと呼ぶが、これらの数値には限定されない。
【００２６】
本発明において標的塩基配列とは、合成すべき核酸の塩基配列を意味する。すなわち、本発明において合成を目的とする核酸を構成する塩基配列が、標的塩基配列である。また本発明の核酸の合成方法に基づいて、核酸の増幅を行う場合には、増幅すべき核酸を構成する塩基配列が標的塩基配列である。一般に核酸の塩基配列は、5'側から3'側に向けてセンス鎖の塩基配列を記載する。本発明における標的塩基配列とは、センス鎖の塩基配列に加えて、その相補鎖、すなわちアンチセンス鎖の塩基配列も含む。すなわち、用語「標的塩基配列」とは、合成すべき塩基配列、およびその相補鎖の少なくともいずれかを意味する用語として用いる。
【００２７】
本発明の核酸の合成方法は、２本鎖核酸を鋳型として用いる。本発明において2本鎖核酸とは、少なくとも相補鎖合成の合成起点となるプライマーに相補的な塩基配列からなる領域において、既にその相補鎖がハイブリダイズしている状態にある核酸を言う。したがって、標的塩基配列が部分的に2本鎖の状態にない場合でも、本発明における2本鎖核酸に含まれる。また本発明の2本鎖核酸は、ダイマーのみならず、前記条件を満たす限り2以上の1本鎖核酸が相互にハイブリダイズした状態であることもできる。更に、分子内に相補的な塩基配列を含む1本鎖のポリヌクレオチドによって構成されるヘアピンループであることもできる。２本鎖核酸としては、たとえばcDNAやゲノムDNA、DNA-RNAハイブリッド等を示すことができる。あるいはこれらのDNAを各種のベクターに挿入したものを本発明の２本鎖核酸として用いることもできる。本発明の２本鎖核酸は、精製されていても良いし、未精製であることもできる。また、細胞内に存在する状態(in situ)で、本発明の方法を適用することもできる。細胞内の２本鎖核酸を鋳型とすることによって、ゲノムのin situ解析が可能となる。
【００２８】
本発明においてcDNAを鋳型として用いる場合、cDNAを合成する工程と、本発明に基づく核酸の合成方法とを、同一の条件下で実施することができる。RNAを鋳型としてcDNAの第１鎖を合成すると、DNA-RNAハイブリッドによる２本鎖核酸が完成する。この２本鎖核酸を本発明における鋳型として、核酸の合成方法を実施することができる。本発明の核酸の合成方法に用いるDNAポリメラーゼが、逆転写酵素活性を備えるものであれば、単一の酵素を用い、同一の条件下で核酸の合成を行うことができる。たとえばBca DNAポリメラーゼは、鎖置換活性を有し、逆転写酵素活性を併せ持つDNAポリメラーゼである。なお、第２鎖を合成したうえで完全な２本鎖cDNAとした後に、本発明による核酸の合成方法を適用しうることは言うまでも無い。
【００２９】
本発明の核酸の合成には、鎖置換を伴う相補鎖合成反応を触媒するポリメラーゼが利用される。本発明において鎖置換を伴う相補鎖合成反応とは、次のような反応を言う。すなわち、プライマーを合成起点とする相補鎖合成反応の鋳型に他のポリヌクレオチドが既にハイブリダイズして２本鎖構造となっているときに、そのポリヌクレオチドを鋳型から分離しながら相補鎖合成が進行する反応を、鎖置換を伴う相補鎖合成反応と言う。このとき、分離されるポリヌクレオチドは、通常、そのホスホジエステル結合が維持される。したがって、相補鎖合成が行われた長さに相当する長さを有し、塩基対結合が可能な状態のポリヌクレオチドが生成されることになる。
【００３０】
鎖置換を伴う相補鎖合成反応を触媒するポリメラーゼとしては、SDAなどに用いられたDNAポリメラーゼと同様のものが用いられる。すなわち、ある塩基配列の3'側に相補的なプライマーを合成起点として相補鎖合成を行うときに、5'側に２本鎖の領域が有るとその２本鎖を置換しながら相補鎖の合成を行う特殊なポリメラーゼが公知である。本発明においては、更に相補鎖合成に必要な基質が添加される。
【００３１】
本発明においては、２本鎖核酸に任意のプライマーを加え、このプライマーを起点とする相補鎖合成反応が達成できる条件のもとでインキュベートされる。本発明の任意のプライマーとは、等温で進行する核酸の増幅反応用のプライマーがアニールすべき領域を塩基対結合可能な状態とするために用いられる。したがって、任意のプライマーは、鋳型となる２本鎖核酸の、増幅反応用プライマーがアニールすべき核酸鎖に対して、その相補鎖を鋳型として相補鎖合成を開始することができるものである必要がある。更に、本発明における任意のプライマーを合成起点とする相補鎖合成は、増幅反応用のプライマーがアニールすべき領域に向かって進行するような位置関係にあるべきである。言いかえれば、増幅反応用プライマーを起点とする相補鎖合成反応において鋳型として機能する領域の、任意の領域において合成起点を与えるものであることができる。任意のプライマーは、この条件を満たす限り、任意の領域に相補的な塩基配列からなることができる。たとえば、増幅反応用プライマーのセットの一方を、任意のプライマーとして用いることもできる。このような態様は反応に必要な成分を少なくすることから、本発明における望ましい態様の一つである。
【００３２】
任意のプライマーを起点とする相補鎖合成で２本鎖核酸の一方の鎖を置換し、増幅反応用のプライマーによる塩基対結合が可能な状態とすることができる。この条件を採用したことによって、本発明の最大の特徴である温度変化の不要な合成反応が実現できた。任意のプライマーによる２本鎖の状態にある核酸を鋳型とする相補鎖合成反応が達成できる条件とは、実際には次の複数の工程を同じ条件下で進めることができる条件ということができる。
i) ２本鎖の状態にある鋳型核酸に対して任意のプライマーが合成起点を与える
ii) 前記合成起点を利用して相補鎖合成反応が進む
【００３３】
プライマーは少なくともそれがアニールすべき領域が１本鎖でなければ合成起点を与えることはできないと考えられていた。そのため従来は、２本鎖の核酸を鋳型とする場合には、プライマーのアニールに先立って必ず変性によって１本鎖とする工程が実施されてきた。しかし必ずしも完全な１本鎖としなくとも、何らかの手段によって２本鎖が不安定化される条件のもとで、プライマーとインキュベートすることにより、合成起点を与えることができる。２本鎖が不安定化される条件としては、たとえば融解温度（以下、Tmと省略する）近くにまで加温する方法を示すことができる。あるいは、更にTm調整剤を存在させることも有効である。
【００３４】
一連の反応は、酵素反応に好適なpHを与える緩衝剤、酵素の触媒活性の維持やアニールのために必要な塩類、酵素の保護剤、更には必要に応じて融解温度(Tm)の調整剤等の共存下で行う。緩衝剤としては、Tris-HCl等の中性から弱アルカリ性に緩衝作用を持つものが用いられる。pHは使用するDNAポリメラーゼに応じて調整する。塩類としてはKCl、NaCl、あるいは(NH4)2SO4等が、酵素の活性維持と核酸の融解温度(Tm)調整のために適宜添加される。酵素の保護剤としては、ウシ血清アルブミンや糖類が利用される。
【００３５】
更に融解温度(Tm)の調整剤には、ベタイン、プロリン、ジメチルスルホキシド（以下、DMSOと省略する）、ホルムアミド、ジメチルスルホキシド、あるいはトリメチルアミンN-オキシド(TMANO)が一般に利用される。融解温度(Tm)の調整剤を利用することによって、前記オリゴヌクレオチドのアニールを限られた温度条件の下で調整することができる。更にベタイン(N,N,N,-trimethylglycine)やテトラアルキルアンモニウム塩は、そのisostabilize作用によって鎖置換効率の向上にも有効である。ベタインは、反応液中0.2〜3.0 M、好ましくは0.5〜1.5 M程度の添加により、本発明の核酸増幅反応の促進作用を期待できる。これらの融解温度の調整剤は、融解温度を下げる方向に作用するので、塩濃度や反応温度等のその他の反応条件を考慮して、適切なストリンジェンシーと反応性を与える条件を経験的に設定する。
【００３６】
Tm調整剤を利用することにより、酵素反応に好適な温度条件を容易に設定することができる。Tmはプライマーと標的塩基配列の関係によって変動する。したがって、酵素活性を維持できる条件と、本発明の条件を満たすインキュベーションの条件とが一致するように、Tm調整剤の使用量を調整することが望ましい。本発明の開示に基づいて、プライマーの塩基配列に応じて適切なTm調整剤の使用量を設定することは、当業者にとって自明である。たとえば、アニールする塩基配列の長さとそのGC含量、塩濃度、およびTm調整剤の濃度に基づいて、Tmを算出することができる。
【００３７】
このような条件下における２本鎖の核酸に対するプライマーのアニールは、おそらく不安定であると推測される。しかし鎖置換を伴う相補鎖合成反応を触媒するポリメラーゼとともにインキュベートすることにより、不安定ながらプライマーを合成起点として相補鎖が合成される。相補鎖合成の進行にともなって、合成された相補鎖と鋳型核酸とのハイブリダイズは次第に安定化されることになる。以下に示すようなDNAポリメラーゼは、２本鎖からなる鋳型核酸に対してプライマーを合成起点として、相補鎖の合成を触媒することができる。
【００３８】
本発明による核酸の合成方法を支えているのは、鎖置換を伴う相補鎖合成反応を触媒するDNAポリメラーゼである。この種のDNAポリメラーゼには、以下のようなものが知られている。また、これらの酵素の各種変異体についても、それが配列依存型の相補鎖合成活性と鎖置換活性を有する限り、本発明に利用することができる。ここで言う変異体とは、酵素の必要とする触媒活性をもたらす構造のみを取り出したもの、あるいはアミノ酸の変異等によって触媒活性、安定性、あるいは耐熱性を改変したもの等を示すことができる。
【００３９】
Bst DNAポリメラーゼ
Bca(exo-)DNAポリメラーゼ
DNA ポリメラーゼＩのクレノウ・フラグメント
Vent DNAポリメラーゼ
Vent(Exo-)DNAポリメラーゼ（Vent DNAポリメラーゼからエクソヌクレアーゼ活性を除いたもの）
DeepVent DNAポリメラーゼ
DeepVent(Exo-)DNAポリメラーゼ（DeepVent DNAポリメラーゼからエクソヌクレアーゼ活性を除いたもの）
Φ29ファージDNAポリメラーゼ
MS-2ファージDNAポリメラーゼ
Z-Taq DNAポリメラーゼ（宝酒造）
KOD DNAポリメラーゼ（東洋紡績）
【００４０】
これらの酵素の中でもBst DNAポリメラーゼやBca(exo-)DNAポリメラーゼは、ある程度の耐熱性を持ち、触媒活性も高いことから特に望ましい酵素である。本発明は２本鎖の状態にある核酸に対して、プライマーを合成起点とする工程と、相補鎖合成反応とを同一条件下で行う。このような反応は、しばしばある程度の加温を必要とすることから、酵素が耐熱性であることは望ましい条件の一つである。耐熱性の酵素を用いることにより、幅広い反応条件に対応することができる。
【００４１】
たとえばVent(Exo-)DNAポリメラーゼは、鎖置換活性と共に高度な耐熱性を備えた酵素である。ところでDNAポリメラーゼによる鎖置換を伴う相補鎖合成反応は、１本鎖結合タンパク質(single strand binding protein)の添加によって促進されることが知られている(Paul M.Lizardi et al, Nature Genetics 19, 225-232, July,1998)。この作用を本発明に応用し、１本鎖結合タンパク質を添加することによって相補鎖合成の促進効果を期待することができる。Vent(Exo-)DNAポリメラーゼに対しては、１本鎖結合タンパク質としてT4 gene 32が有効である。
【００４２】
なお3'-5'エクソヌクレアーゼ活性を持たないDNAポリメラーゼには、相補鎖合成が鋳型の5'末端に達した部分で停止せず、１塩基突出させた状態まで合成を進める現象が知られている。本発明では、相補鎖合成が末端に至ったときの3'末端の配列が次の相補鎖合成の開始につながるため、このような現象は望ましくない。しかし、DNAポリメラーゼによる3'末端への塩基の付加は、高い確率でAとなる。したがって、dATPが誤って１塩基付加しても問題とならないように、3'末端からの合成がAで開始するように配列を選択すれば良い。また、相補鎖合成時に3'末端がたとえ突出してしまっても、これを消化してblunt endとする3'→5'エクソヌクレアーゼ活性を利用することもできる。たとえば、天然型のVent DNAポリメラーゼはこの活性を持つことから、Vent(Exo-)DNAポリメラーゼと混合して利用することにより、この問題を回避することができる。
【００４３】
これらのDNAポリメラーゼに対して、PCRなどで一般に用いられているTaqポリメラーゼ等のDNAポリメラーゼは、通常の条件では鎖置換作用は実質的に見られない。しかし、この種のDNAポリメラーゼであっても、鎖置換が可能な条件を与えることができる場合には、本発明に利用することができる。
【００４４】
２本鎖核酸が不安定化する条件下で、プライマーをインキュベートすることによって相補鎖が合成される現象は、既に報告されている（特表平11-509406;WO97/00330）。しかし報告された条件では、実際にはごくわずかな量の合成生成物しか期待できない。２本鎖核酸の不安定化を利用してプライマーを合成起点として相補鎖合成を行うことは、原理的には可能であるが、１本鎖の核酸を鋳型とする反応ほど効率的な反応を期待できないのである。PCR法のような温度変化を必要とする相補鎖合成反応との組み合わせにおいては、２本鎖の不安定化を利用した相補鎖合成反応の効率が全ての相補鎖合成反応に影響するので、実用的な反応効率を達成することは困難である。このことが公知の方法における不十分な増幅効率の原因となっていた。
【００４５】
一方本発明は、２本鎖核酸の不安定化に基づく相補鎖合成反応を、もともと等温で進行する核酸増幅反応のためのプライマーがアニールすべき領域を供給することに応用したことによって、２本鎖の不安定化に基づく相補鎖合成の効率の低さを補うことができるという新規な知見に基づいている。本発明においては、等温で進行する核酸増幅反応を利用しているので、プライマーがアニールする領域において塩基対結合が可能な状態を作り出すことさえできれば、以降の反応は２本鎖の不安定化を必要としない相補鎖合成反応が進行する。そのため、２本鎖の不安定化に基づく相補鎖合成反応の効率の低さの影響を最小限度にすることが可能となる。両者の組み合わせによって、初めて実用的な水準の合成効率が達成された。言い換えれば、２本鎖の不安定化に基づく相補鎖の合成反応は、等温で進行する核酸増幅反応用のプライマーがアニールすべき領域を供給するための反応として有用である。逆に、温度サイクルを必要とする核酸増幅反応に応用することは困難である。
【００４６】
本発明における等温で核酸の増幅が可能な方法としては、たとえば3'末端領域を自身にアニールさせて自身を鋳型とする相補鎖合成反応を用いるのが望ましい。つまり温度変化を必要としないという本発明の最大の特徴は、特に次のようなプライマーを用いる場合に有用である。このような特殊な構造のプライマーに基づく核酸の増幅方法は、本発明者によって考え出された方法である。以下、この方法をLAMP法(Loop-mediated isothermal amplification)と記載する。LAMP法は、鋳型ポリヌクレオチドに自身の3'末端をアニールさせて相補鎖合成の起点とするとともに、このとき形成されるループにアニールするプライマーを組み合わせることによって等温での相補鎖合成反応を可能とした。しかし２本鎖の鋳型に対して適用するときに、変性工程を不要とすることは本発明によってもたらされた新規な知見である。
【００４７】
すなわち本発明は、本発明に基づく核酸の合成方法であって、等温で核酸を増幅することができるプライマーが、少なくとも以下の２つの領域Ｘ２およびＸ１ｃとで構成され、Ｘ２の5'側にＸ１ｃが連結されたオリゴヌクレオチドである核酸の合成方法に関する。
【００４８】
ここでＸ２は、特定の塩基配列を持つ核酸の任意の領域Ｘ２ｃに相補的な塩基配列を持つ領域と定義される。
またＸ１ｃは、特定の塩基配列を持つ核酸における領域Ｘ２ｃの5'側に位置する任意の領域と実質的に同じ塩基配列を持つ領域と定義される。
【００４９】
このプライマーを以下の説明において第１のプライマー、および第２のプライマーとして利用する。第１のプライマーと第２のプライマーは、互いに一方を起点として合成された伸長生成物に対して、他方のプライマーがアニールし相補鎖合成反応の起点とすることができる。このような核酸の合成方法によってもたらされるプライマーを合成起点とする合成産物は、後に述べるような核酸の増幅方法を可能とする。すなわち本発明は、次の工程を含む相補的な塩基配列で構成される２本鎖の鋳型核酸の特定の領域を構成する塩基配列が１本鎖上に複数連結された核酸の合成方法に関する。本発明において、ある塩基配列１に対して相補的な塩基配列２が同一の鎖上に少なくとも１つ存在するとき、１本鎖上に複数の相補的な塩基配列を含むと言う。
【００５０】
ａ）２本鎖からなる鋳型核酸と任意のプライマーを、この任意のプライマーを起点とする相補鎖合成が可能な条件下で鎖置換を伴う相補鎖合成反応を触媒するDNAポリメラーゼとともに前記２本鎖核酸とインキュベートすることによって、標的鋳型核酸における等温で鋳型核酸を増幅することができるプライマーがアニールすべき領域を塩基対結合が可能な状態とする工程、
ｂ）工程ａ）において塩基対結合が可能となった領域に第２のプライマーをアニールさせ、これを起点とする相補鎖合成反応を行う工程；ここで第２のプライマーはその3'末端において前記特定の領域を構成する一方の鎖の3'側を規定する領域に対してアニールし、かつ第２のプライマーの5'末端には、このプライマーを起点とする相補鎖合成反応生成物の任意の領域に対して相補的な塩基配列を備えるものである、
ｃ）工程ｂ）で合成された第２のプライマーの伸長産物における第１のプライマーがアニールすべき領域を塩基対結合が可能な状態とする工程、
ｄ）工程ｃ）において塩基対結合が可能となった領域に第１のプライマーをアニールさせ、これを起点とする相補鎖合成を行う工程；ここで第１のプライマーはその3'末端において前記第２のプライマーを起点とする伸長産物における前記特定の領域の3'側を規定する領域に対してアニールする、
ｅ）工程ｄ）によって合成された第１のプライマーの伸長生成物の3'末端を自身にアニールさせることによって、自身を鋳型とする相補鎖合成を行い、前記特定の領域を構成する塩基配列が１本鎖上に複数連結された核酸を得る工程。
【００５１】
上記反応のうち、工程ａ）のみが２本鎖核酸の不安定化によって達成される反応である。この工程によってアニールすべき領域を得た増幅反応用のプライマー（すなわち第２のプライマー）による伸長生成物は、以降の反応の鋳型として利用される。なお、増幅反応用のプライマーに限らず、本発明における相補鎖合成には、鎖置換を伴う相補鎖合成反応を触媒するDNAポリメラーゼが用いられることから、プライマーのアニールさえ達成されれば、相補鎖合成反応の進行方向に位置する２本鎖構造は、反応を妨げない。
【００５２】
更に、本発明において、この工程以降で進行する反応は、もともと等温で進行する反応であることから、もはや効率の悪い２本鎖核酸の不安定化による相補鎖合成には依存しない。すなわち、工程ａ）におけるプライマーを合成起点とする相補鎖合成によって、以降の等温で進行する核酸の増幅反応が開始されるのである。
【００５３】
ところで、等温で進行する核酸の増幅反応が開始した後も、反応系に存在する標的塩基配列に対するプライマーは、常に２本鎖核酸の不安定化に基づく相補鎖合成を開始する可能性がある。このような反応が起きる可能性は否定できないし、もしも反応が生じれば全体の反応効率の向上に貢献することは言うまでも無い。しかし、いったん開始した増幅反応の過程で付随的に生じる、２本鎖核酸の不安定化に基づく相補鎖合成反応は、本発明による核酸の増幅反応の必須の条件ではない。
【００５４】
上記反応の工程ｃ）を行うには、アウタープライマーの利用が有利である。本発明において、アウタープライマーとは、標的塩基配列に対してアニールしているプライマー（アウタープライマーに対して、これをインナープライマーと呼ぶ）に向かって進行する相補鎖合成反応の起点を与えるプライマーである。したがってアウタープライマーがアニールするのは、インナープライマーから見れば5'側（鋳型における3'側）の領域となる。アウタープライマーは、プライマーとして機能する塩基配列を少なくともその3'側に備えるオリゴヌクレオチドを用いることができる。この例においては、第１のプライマーと第２のプライマーがインナープライマーに相当する。
【００５５】
一方インナープライマーは、鋳型となる２本鎖核酸の、合成すべき領域の塩基配列に相補的な塩基配列を3'末端に含んでなる。インナープライマーは通常２つのプライマーのセットとして用いられる。しかしもしも合成すべき領域が同じ塩基配列を繰り返し含む場合には、２つのプライマーは同じ塩基配列からなるものであることもできる。一方のインナープライマーは、他方のインナープライマーからの伸長生成物に対してアニールすることができるように設計される。増幅すべき領域の少なくとも両端の塩基配列が明らかである場合に、プライマーとして用いる塩基配列を設定する方法は公知である。
【００５６】
インナープライマーは、3'側が標的塩基配列にアニールし得るものであれば、その5'側に任意の配列を付加しておくことができる。インナープライマーの5'側に任意の塩基配列を付加することができることによって、本発明の核酸の合成方法に基づいて多くのバリエーションを実現できる。その具体的な例を後に述べる。
【００５７】
本発明におけるインナープライマーは、ネストさせることもできる。すなわち、第１の標的塩基配列に対してアニールすることができる第１のインナープライマーのセットに対して、更に第２の標的塩基配列に対してアニールすることができる第２のインナープライマーのセットを組み合わせることができる。この組み合わせにおいて、第２の標的塩基配列とは、第１の標的塩基配列をその内部に含んでなる塩基配列である。インナープライマーをネストさせる場合には、アウタープライマーは第２のインナープライマーに対して、その5'側（鋳型における3'側）にアニールできるように設定する。
【００５８】
インナープライマーが通常２つのプライマーの組み合わせで構成されるのに対して、アウタープライマーは、任意の数であることができる。本発明において、一般的なアウタープライマーは、各インナープライマーがアニールしている領域に向かって進行する相補鎖合成反応の起点を与える２つのアウタープライマーからなる。しかし、いずれかのインナープライマーに対してのみ、アウタープライマーを配置する場合でも、本発明の方法を実施することができる。あるいは、１つのインナープライマーに対して、複数のアウタープライマーを組み合わせることもできる。いずれにせよ、インナープライマーがアニールしている領域に向かって進行する相補鎖合成を伴う場合に、インナープライマーを合成起点とする相補鎖合成反応の生成物を効率良く生じさせることが可能となる。
【００５９】
本発明におけるアウタープライマーからの相補鎖合成は、インナープライマーを合成起点とする相補鎖合成よりも後に開始されるように設計する。そのための最も単純な方法はインナープライマーの濃度をアウタープライマーの濃度よりも高くすることである。具体的には、通常２〜５０倍、望ましくは４〜１０倍の濃度差でプライマーを用いることにより、インナープライマーからの相補鎖合成を優先的に行わせることができる。またアウタープライマーの融解温度(Tm)をインナープライマーのTmより低くなるように設定することによって相補鎖合成反応のタイミングをコントロールすることもできる。融解温度(Tm)は、他の条件が一定であればアニールする相補鎖の長さと塩基対結合を構成する塩基の組み合わせによって理論的に算出することができる。したがって当業者は、本明細書の開示に基づいて望ましい条件を容易に導くことができる。
【００６０】
更にアウタープライマーのアニールのタイミングを調整するために、コンティギュアス・スタッキング(contiguous stacking)と呼ばれる現象を応用することもできる。コンティギュアス・スタッキングとは、単独ではアニールすることができないオリゴヌクレオチドが２本鎖部分に隣接することによってアニールが可能となる現象である(Chiara Borghesi-Nicoletti et.al. Bio Techniques 12,474-477(1992))。つまり、アウタープライマーをインナープライマーに隣接させ、しかもアウタープライマー単独ではインキュベーションの条件下ではアニールできないように設計しておくのである。こうすれば、インナープライマーがアニールしたときに初めてアウタープライマーのアニールが可能となるので、必然的にインナープライマーのアニールが優先されることになる。この原理に基づいて、一連の反応にプライマーとして必要なオリゴヌクレオチドの塩基配列を設定した例が実施例に記載されている。
【００６１】
以下の説明では仮に一方のインナープライマーにおけるＸ２およびＸ１ｃをＦ２およびＦ１ｃ、他方のインナープライマーにおけるＸ２およびＸ１ｃをＲ２およびＲ１ｃとする。そして説明に用いるインナープライマーを、仮にＦＡおよびＲＡと名づける。ＦＡとＲＡは、そのいずれかが本発明の第１のプライマーであり、他方が第２のプライマーとして機能する。ＦＡとＲＡを構成する領域は、以下のとおりである。
Ｘ２    Ｘ１ｃ
ＦＡ    Ｆ２    Ｆ１ｃ
ＲＡ    Ｒ２    Ｒ１ｃ
【００６２】
本発明の核酸の増幅方法においては、前記工程Ａ）〜Ｃ）を経て3'末端に同一鎖上の一部Ｆ１ｃにアニールすることができる領域Ｆ１を備え、この領域Ｆ１が同一鎖上のＦ１ｃにアニールすることによって、塩基対結合が可能な領域Ｆ２ｃを含むループを形成することができる核酸を生成することが重要である。次の構造を持ったインナープライマーを利用した本発明に基づく核酸の合成反応によってその構造を与えることができる。この反応の詳細については、先に述べたとおりである。
【００６３】
すなわち本発明の核酸の増幅反応に用いるインナープライマーとは、少なくとも前記２つの領域Ｘ２およびＸ１ｃとで構成され、Ｘ２の5'側にＸ１ｃが連結されたオリゴヌクレオチドからなる。
【００６４】
ここで、本発明におけるインナープライマーの構造を決定する特定の塩基配列を持つ核酸とは、本発明におけるインナープライマーをプライマーとして利用するときに、その鋳型となる核酸を意味する。本発明の合成方法に基づいて核酸の増幅を行う場合には、特定の塩基配列を持つ核酸とは、増幅対象、あるいは増幅対象から誘導された２本鎖の核酸である。特定の塩基配列を持つ２本鎖の核酸は、少なくともその一部の塩基配列が明らかとなっている、あるいは推測が可能な状態にある核酸を意味する。塩基配列を明らかにすべき部分とは、前記領域Ｘ２ｃおよびその5'側に位置する領域Ｘ１ｃである。この２つの領域は、連続する場合、そして離れて存在する場合とを想定することができる。両者の相対的な位置関係により、生成物である核酸が自己アニールしたときに形成されるループ部分の状態が決定される。また、生成物である核酸が分子間のアニールではなく自己アニールを優先的に行うためには、両者の距離が不必要に離れないほうが望ましい。したがって、両者の位置関係は、通常0-500塩基分の距離を介して連続するようにするのが望ましい。ただし、後に述べる自己アニールによるループの形成において、両者があまりにも接近している場合には望ましい状態のループの形成を行うには不利となるケースも予想される。ループにおいては、新たなオリゴヌクレオチドのアニールと、それを合成起点とする鎖置換を伴う相補鎖合成反応がスムーズに開始できる構造が求められる。したがってより望ましくは、領域Ｘ２ｃおよびその5'側に位置する領域Ｘ１ｃとの距離が、０〜１００塩基、さらに望ましくは１０〜７０塩基となるように設計する。なおこの数値はＸ１ｃとＸ２を含まない長さを示している。ループ部分を構成する塩基数は、更にＸ２に相当する領域を加えた長さとなる。
【００６５】
なお本発明に用いるプライマーを構成する塩基配列の特徴付けのために用いられる同一、あるいは相補的という用語は、いずれも完全に同一、あるいは完全に相補的であることを意味しない。すなわち、ある配列と同一とは、ある配列に対してアニールすることができる塩基配列に対して相補的な配列をも含むことができる。他方、相補的とは、ストリンジェントな条件下でアニールすることができ、相補鎖合成の起点を提供することができる配列を意味する。本発明において、同一とは、塩基配列の相同性が、例えば９０％以上、通常９５％以上、より好ましくは９８％以上であることを言う。また相補的とは、相補配列と同一の塩基配列を意味する。すなわち、相補配列に対して、塩基配列の相同性が、例えば９０％以上、通常９５％以上、より好ましくは９８％以上であるときに相補的と言うことができる。なお、相補的な塩基配列は、それが相補鎖合成の起点として機能するときに、その3'末端の少なくとも１塩基が、相補配列完全に一致することが望ましい。
【００６６】
上記特定の塩基配列を持つ核酸に対して本発明におけるインナープライマーを構成する領域Ｘ２およびＸ１ｃは、通常は重複することなく連続して配置される。あるいはもしも両者の塩基配列に共通の部分があるのであれば、部分的に両者を重ねて配置することもできる。Ｘ２はプライマーとして機能する必要があることから、常に3'末端となるようにしなければならない。一方Ｘ１ｃは、後に述べるように、これを鋳型として合成された相補鎖の3'末端にプライマーとしての機能を与える必要があることから、5'末端に配置する。このオリゴヌクレオチドを合成起点として得られる相補鎖は、次のステップにおいては逆向きからの相補鎖合成の鋳型となり、最終的には本発明によるインナープライマー部分も鋳型として相補鎖に写し取られる。写し取られることによって生じる3'末端は塩基配列Ｘ１を備えており、同一鎖上のＸ１ｃにアニールするとともに、ループを形成する。
【００６７】
本発明におけるインナープライマーとは、標的塩基配列と相補的な塩基対結合を形成できること、そしてその3'末端において相補鎖合成の起点となる-OH基を与えること、の２つの条件を満たすものを意味する。したがって、そのバックボーンは必ずしもホスホジエステル結合によるものに限定されない。たとえばホスホチオエート体からなるものであることもできる。また、塩基は、相補的な塩基対結合を可能とするものであれば良い。天然の状態では、一般にはACTGおよびUの５種類となるが、たとえばブロモデオキシウリジン(bromodeoxyuridine)といった類似体であることもできる。本発明に用いるオリゴヌクレオチドは、合成の起点となるのみならず、相補鎖合成の鋳型としても機能するものであることが望ましい。
【００６８】
本発明におけるインナープライマーは、以下に述べる各種の核酸合成反応において、与えられた環境の下で必要な特異性を維持しながら相補鎖との塩基対結合を行うことができる程度の鎖長を持つ。具体的には、5-200塩基、より望ましくは10-50塩基とする。配列依存的な核酸合成反応を触媒する公知のポリメラーゼが認識するプライマーの鎖長が、最低5塩基前後であることから、アニールする部分の鎖長はそれ以上である必要がある。加えて、塩基配列としての特異性を期待するためには、確率的に10塩基以上の長さを利用するのが望ましい。一方、あまりにも長い塩基配列は化学合成によって調製することが困難となることから、前記のような鎖長が望ましい範囲として例示される。なお、ここで例示した鎖長はあくまでも相補鎖とアニールする部分の鎖長である。本発明によるインナープライマーは、少なくとも２つの領域Ｘ２およびＸ１ｃからなっている。したがって、ここに例示する鎖長は、インナープライマーを構成する各領域の鎖長と理解するべきである。
【００６９】
更に、本発明におけるインナープライマーは、公知の標識物質によって標識することができる。標識物質としては、ジゴキシンやビオチンのような結合性リガンド、酵素、蛍光物質や発光物質、あるいは放射性同位元素などを示すことができる。あるいは、インナープライマーを構成する塩基を蛍光性のアナログに置換する技術(WO95/05391, Proc.Natl.Acad.Sci.USA,91,6644-6648,1994)も公知である。
【００７０】
この他本発明におけるインナープライマーは、それ自身を固相に結合させておくこともできる。あるいは、インナープライマーの任意の部分をビオチンのような結合性のリガンドで標識しておき、これを固相化アビジンのような結合パートナーによって間接的に固相化することもできる。固相化したインナープライマーを合成開始点とする場合には、核酸の合成反応生成物が固相に捕捉されることから、分離が容易となる。分離された生成物に対して、核酸特異的な指示薬や、あるいは更に標識プローブをハイブリダイズさせることによって、検出を行うこともできる。あるいは、任意の制限酵素で消化することによって、目的とする核酸の断片を回収することもできる。
【００７１】
本発明において用いられる鋳型という用語は、相補鎖合成の鋳型となる側の核酸を意味する。鋳型に相補的な塩基配列を持つ相補鎖は、鋳型に対応する鎖としての意味を持つが、両者の関係はあくまでも相対的なものに過ぎない。すなわち、相補鎖として合成された鎖は、再び鋳型として機能することができる。つまり、相補鎖は鋳型になることができる。
【００７２】
本発明におけるインナープライマーは前記２つの領域のみならず、更に付加的な領域を含むことができる。すなわちＸ２とＸ１ｃとがそれぞれ3'末端と5'末端に配置される一方、両者の間に任意の配列を介在させることが可能である。それは、たとえば制限酵素認識配列、RNAポリメラーゼが認識するプロモーター、あるいはリボザイムをコードするDNA等であることができる。制限酵素認識配列とすることにより、本発明の合成産物である１本鎖上に複数の相補的な塩基配列が連結された核酸を同じ長さを持った２本鎖核酸に切りそろえることができるようになる。RNAポリメラーゼが認識するプロモーター配列を配置すれば、本発明の合成生成物を鋳型として更にRNAへの転写が行われる。このときに、更にリボザイムをコードするDNAを配置すれば、転写生成物を自身で切断する系が実現する。なお、これらの付随的な塩基配列はいずれも２本鎖となった場合に機能するものである。したがって、本発明による１本鎖の核酸がループを形成しているときには、これらの配列は機能しない。核酸の伸長が進み、ループを含まない状態で相補的な塩基配列を持つ鎖とアニールした状態になったときにはじめて機能する。
【００７３】
本発明におけるインナープライマーに対して、合成された領域の転写を可能とする方向でプロモーターを組み合わせた場合、同じ塩基配列を繰り返す本発明に基づく反応生成物は、高度に効率的な転写系を実現する。これを適当な発現系と組み合わせることによって、タンパク質への翻訳も可能である。すなわち、細菌や動物細胞内で、あるいはin vitroでの転写とタンパク質への翻訳に利用することができる。
【００７４】
本発明に用いる各種のプライマーは、化学的に合成することができる。あるいは天然の核酸を制限酵素などによって切断し、上記のような塩基配列で構成されるように改変する、あるいは連結することも可能である。
【００７５】
前記インナープライマーＦＡおよびＲＡを利用し、鎖置換活性を持ったDNAポリメラーゼと組み合わせて２本鎖の核酸を増幅する反応について、基本的な原理を図１−図４に基づいて以下に説明する。この例においては、インナープライマーであるＦＡおよびＲＡが増幅用プライマーのセットを構成しており、更にＲＡは本発明における任意のプライマーとして作用する。
【００７６】
上記任意のプライマー（図１-(1)におけるＲＡ）は、まず鋳型となる２本鎖核酸におけるＸ２ｃ（Ｒ２ｃに相当）にアニールし相補鎖合成の起点となる。このとき２本鎖核酸は不安定化する条件下に置かれており、２本鎖の核酸に対してプライマーが直接相補鎖合成反応の起点として機能する。図１-(2)においてはＲＡを起点として合成された相補鎖が、鋳型となった２本鎖核酸の一方の鎖を置換し、増幅反応用プライマーであるＦＡがアニールする領域Ｆ２ｃが塩基対結合が可能な状態となっている（図１-(2)）。
【００７７】
得られた塩基対結合が可能となった領域Ｆ２ｃに対してＦＡをアニールさせて相補鎖合成を行う。この例においては、更にＦＡの5'側（鋳型における3'側）から相補鎖合成を開始するアウタープライマーＦ３がアニールする（図２-(4)）。アウタープライマーは、各インナープライマーの5'側（鋳型における3'側）からの相補鎖合成を開始するように設計されており、しかもインナープライマーよりもTmが高い上に低濃度で用いるので、常にインナープライマーよりも低い確率で相補鎖合成を開始する。アウタープライマーＦ３を起点とする相補鎖合成の結果、インナープライマーＦＡを起点として伸長した合成生成物が置換されて１本鎖となる（図２-(5)）。この１本鎖を鋳型として、ＲＡ、およびＲＡに対するアウタープライマーＲ３が更にアニールと相補鎖合成を開始する（図３-(6)）。その結果として生成するＲＡからの伸長生成物は、その3'末端Ｆ１を自身に対してアニールすることができる構造を備える（図３-(8)）。なお図３-(6)においては5'末端が自身にアニールしている。しかし5'末端は相補鎖合成の起点とならないことから、この構造では増幅反応を開始することはできない。図３-(6)に対する相補鎖を合成し、更にその3'末端において自身にアニールすることができる構造（図３-(8)）が実現して初めて、増幅反応がスタートする。ここまでの反応は、言わば、本発明を構成する増幅反応の準備段階と言える。
【００７８】
続いて、本発明によって達成される核酸の増幅反応について、引き続き図面に基づいて具体的に説明する。自身にアニールした3'末端Ｆ１（図３-(8)）は、相補鎖合成の起点となることができる。このとき3'末端へのアニールはＦ１／Ｆ１ｃ間で生じるので、同じくＦ１ｃを持つＦＡと競合する可能性がある。しかし現実には、同一鎖の隣接する領域に存在する相補的な塩基配列Ｆ１／Ｆ１ｃは、優先的にアニールする。したがって、自身を鋳型とする相補鎖合成反応が優先的に始まる。この反応によって、複数の標的塩基配列が１本鎖上に連結された核酸が合成される。更に、3'末端Ｆ１の自身へのアニールによって形成されたループ領域には、インナープライマーＦＡがアニールすることができるＦ２ｃが存在しており、ここにＦＡがアニールして相補鎖合成反応が始まる（図３-(8)）。ループにアニールしたＦＡからの相補鎖合成反応は、先に自身を鋳型として3'末端から開始した相補鎖合成反応の生成物を置換し、その3'末端を再び自身にアニール可能な状態とする（図４-(9)）。この後は、3'末端を起点とする自身を鋳型とする相補鎖合成反応と、ループ部分を起点とするインナープライマーＦＡ、またはインナープライマーＲＡを起点とする相補鎖合成反応が交互に起きる。こうして、自身を鋳型として3'末端が繰り返し伸長する反応と、ループ部分からの新たなプライマーによる伸長とが繰り返し生じて、核酸の増幅反応が成立する。
【００７９】
一方、自分自身を鋳型として伸長を継続する１本鎖の核酸に対して、そのループ部分にアニールするオリゴヌクレオチドを合成起点として相補鎖合成される核酸に注目すると、ここでも１本鎖上に複数の相補的な塩基配列が連結された核酸の合成が進行している。すなわち、ループ部分からの相補鎖合成は、たとえば図４−(9)においては、Ｒ１に達した時点で完了する。そして、この核酸の合成によって置換された3'末端を起点として相補鎖合成が始まる（図４−(9)）。すると、やがてその反応はかつて合成起点であったループ部分に達して再び置換が始まる。こうしてループ部分から合成を開始した核酸も置換され、その結果同一鎖上にアニールすることができる3'末端Ｒ１を得る（図４−(11)）。この3'末端Ｒ１は同一鎖のＲ１ｃにアニールして相補鎖合成を開始する。さて、この反応のＦとＲを読みかえれば、図３−(8)で起きている反応と同じである。したがって図４−(11)に示す構造は、自身の伸長と新たな核酸の生成を継続する新しい核酸として機能することができる。
【００８０】
以上のように、この方法においては、１つの核酸の伸長に伴って、これとは別に伸長を開始する新たな核酸を供給しつづける反応が進行する。更に核酸の伸長に伴って、末端のみならず、同一鎖上に複数のループ形成配列がもたらされる。これらのループ形成配列は、鎖置換合成反応により塩基対形成可能な状態となると、インナープライマーがアニールし、新たな核酸の生成反応の起点となる。末端のみならず鎖の途中からの合成反応も組み合わされることにより、さらに効率のよい増幅反応が達成されるのである。以上のようにLAMP法を応用することによって、伸長とそれに伴う新たな核酸の生成が起きる。更にLAMP法においては、この新たに生成した核酸自身が伸長し、それに付随する更に新たな核酸の生成をもたらす。一連の反応は、理論的には永久に継続し、きわめて効率的な核酸の増幅を達成することができる。しかも本発明の方法は、すべての反応を等温条件のもとで行うことができる。
【００８１】
このとき蓄積する反応生成物は、Ｆ１−Ｒ１間の塩基配列とその相補配列が複数連結された構造を持つ。ただし繰り返し単位となっている配列の両端には、Ｆ２−Ｆ１（Ｆ２ｃ−Ｆ１ｃ）、またはＲ２−Ｒ１（Ｒ２ｃ−Ｒ１ｃ）の塩基配列で構成される領域が連続している。たとえば図４−(10)では、5'側から（Ｒ２−Ｆ２ｃ）−（Ｆ１−Ｒ２ｃ）−（Ｒ１−Ｆ１ｃ）−（Ｆ２−Ｒ２ｃ）という順序で連結された状態となる。これは、本発明に基づく増幅反応が、インナープライマーを合成起点としてＦ２（またはＲ２）から開始し、続いて自身の3'末端を合成起点とするＦ１（またはＲ１）からの相補鎖合成反応によって伸長するという原理のもとに進行しているためである。
【００８２】
さて、ここでは最も望ましい態様としてループ部分にアニールするオリゴヌクレオチドにインナープライマーＦＡ、およびＲＡを用いた。しかし本発明による核酸の増幅反応は、これらの限られた構造を持ったオリゴヌクレオチドのみならず、ループからの相補鎖合成を開始できるオリゴヌクレオチドを利用しさえすれば実施することができる。つまり、伸長を続ける3'末端はループからの相補鎖合成によって置換されさえすれば、再びループ部分を与える。ループ部分から開始する相補鎖合成は、常に１本鎖上に複数の相補的な塩基配列が連結された核酸を鋳型としていることから、本発明で目的としている核酸の合成が可能なことは明らかである。ただし、ここで合成される核酸は、置換後にループを形成して相補鎖合成は行うものの、以降のループを形成するための3'末端を持たないため、新たな鋳型としては機能できなくなる。したがって、ＦＡ、あるいはＲＡによって合成を開始した核酸と違って指数的な増幅は期待できない。このような理由から、ＦＡやＲＡのような構造を持ったインナープライマーは、本発明に基づく高度に効率的な核酸の合成に有用なのである。
【００８３】
一連の反応は、鋳型となる２本鎖の核酸に対して、以下の成分を加え、インナープライマーとアウタープライマーのアニールおよび、これらのプライマーを起点とする相補鎖合成反応が達成できる条件下でインキュベートするだけで進行する。インキュベートの条件に付いては先に述べたとおりである。したがって、本発明においては、鋳型となる２本鎖核酸の変性に必要な温度よりも低い温度条件下で以下の要素をインキュベートすることによって鋳型核酸の増幅反応が達成される。このとき、鋳型核酸の変性工程は不要である。なお、ここで言う２本鎖核酸の変性に必要な温度とは、急冷の後に鋳型核酸を１本鎖の状態とすることができる温度を言う。
・４種類のオリゴヌクレオチド：
ＦＡ、
ＲＡ、
アウタープライマーＦ３、
およびアウタープライマーＲ３、
・鎖置換を伴う相補鎖合成反応を触媒するDNAポリメラーゼ、
・DNAポリメラーゼの基質となるヌクレオチド
【００８４】
さて、反応原理の説明において述べたように、インナープライマーとして前記ＦＡ、およびＲＡを用いる場合には、本発明による２本鎖核酸を鋳型とする核酸の合成方法は、試料に由来する核酸を鋳型とする反応において必要となる。ＦＡ、およびＲＡのような特定の構造を持つインナープライマーを本発明による核酸の合成方法を適用した場合、生じる生成物の３’末端は自身にアニールして自身を鋳型とする相補鎖合成の合成起点となる。また前記生成物の3'末端が自身にアニールすることによって構成されるループ部分にも新たなプライマーがアニールし、合成起点となって鎖置換を伴った相補鎖合成反応が進行する。これらの反応は、本発明による２本鎖核酸を鋳型とする核酸の合成方法には依存することなく進行する。
【００８５】
すなわち、インナープライマーとしてＦＡおよびＲＡを用いる場合には、本発明に基づく２本鎖核酸を鋳型とする核酸の合成反応は初期の反応を構成する。したがって、インナープライマーとアウタープライマーのアニールおよび、これらのプライマーを起点とする相補鎖合成反応が達成できる条件が必要となるのは、初期の反応で、以降の反応のためにより適切な条件を与えることもできる。もっとも、そのために温度の変化を必要とする場合には、２本鎖核酸の変性工程を省略できると言う本発明の特徴を十分に生かすことができない。したがって、初期の反応のみならず、全ての反応を本発明に好適な条件で実施することが好ましい。
【００８６】
本発明においてインナープライマーとしてＦＡ、およびＲＡを用いるときは、一連の反応が常に複数の領域の位置関係を維持した状態でなければ進行しないことが重要な特徴である。この特徴によって、非特異的な相補鎖合成に伴う非特異的な合成反応が効果的に防止できるのである。すなわち、たとえ何らかの非特異的な反応が起きたとしても、その生成物が以降の増幅工程に対して出発材料となる可能性を低く押さえることにつながるのである。またより多くの領域によって反応の進行が制御されているということは、類似した塩基配列の厳密な識別を可能とする検出系を自由に構成できる可能性をもたらす。
【００８７】
この特徴を遺伝子変異の検出に利用することができる。本発明におけるアウタープライマーを用いる態様においては、アウタープライマー２種、およびインナープライマー２種の合計４種のプライマーが用いられている。そして４種のオリゴヌクレオチドに含まれる６領域を構成する塩基配列と標的塩基配列が設計通りでなければ、本発明を構成する相補鎖合成反応のいずれかが阻害される。特に、相補鎖合成の起点となる各オリゴヌクレオチドの3'末端付近、および相補配列が合成起点となるＸ１ｃ領域の5'末端付近の塩基配列は相補鎖合成にとって重要である。そこで、これらの相補鎖合成のために重要な塩基配列を検出すべき変異に対応するように設計すれば、本発明による合成反応生成物を観察することによって、塩基の欠失や挿入といった変異の有無、あるいはSNPsのような遺伝子多型を分析することができる。
【００８８】
より具体的には、変異や多型が予想される塩基が、相補鎖合成の起点となるオリゴヌクレオチドの3'末端付近、または新たに合成された相補鎖が合成起点となる場合には、相補鎖合成の鋳型として作用する側の5'末端付近に相当するように設計するのである。相補鎖の合成起点となる3'末端や、その付近にミスマッチが存在すると核酸の相補鎖合成反応は著しく阻害される。LAMP法においては、反応初期の生成物における末端構造が繰り返し反応を行わなければ高度な増幅反応に結びつかない。したがって、たとえ誤った合成が行われたとしても、増幅反応を構成する相補鎖合成がいずれかの段階で妨げられるのでミスマッチを含んだままでは高度な増幅は起きない。結果的にミスマッチが増幅反応を効果的に抑制し、最終的には正確な結果をもたらすことになる。つまりLAMP法を利用した核酸の増幅反応は、より完成度の高い塩基配列のチェック機構を備えていると言うことができる。これらの特徴は、たとえば単純に２つの領域で増幅反応を行っているPCR法などでは期待しにくい利点である。
【００８９】
更に本発明に用いるオリゴヌクレオチドを特徴付ける領域Ｘ１ｃは、相補配列が合成されてはじめて合成起点となり、この相補配列が、新たに合成された同一鎖内の配列Ｘ１にアニールすることにより、自己を鋳型とする合成反応が進行する。このため、たとえ先行技術でしばしば重要な問題となるいわゆるプライマーダイマーを生成しても、本オリゴヌクレオチドはループを形成しない。したがって、プライマーダイマーに起因する非特異的な増幅は原理的に生じ得ず、反応の特異性向上に貢献している。
【００９０】
インナープライマーＦＡに対して、アウタープライマーのTmを（アウタープライマーＦ３：Ｆ３ｃ）≦（Ｆ２ｃ／Ｆ２）となるように設計することにより、核酸の増幅を効率的に行うことができる。ＦＡを構成する各領域については、（Ｆ１ｃ／Ｆ１）間のアニールが（Ｆ２ｃ／Ｆ２）よりも優先的におきるようにデザインするのが望ましい。デザインに当たっては、Tmや構成塩基等を考慮する。更に、Ｆ１ｃ／Ｆ１間のアニールが分子内の反応なので優先的に進む可能性が高いことも考慮する。同様の条件は、ＦＡの伸長生成物にアニールするＲＡの設計においても考慮すべきであることは言うまでもない。このような関係とすることにより、確率的に理想的な反応条件を達成することができる。
【００９１】
本発明においては核酸の合成(synthesis)と増幅(amplification)という用語を用いる。本発明における核酸の合成とは、合成起点となったオリゴヌクレオチドからの核酸の伸長を意味する。合成に加えて、更に他の核酸の生成と、この生成された核酸の伸長反応とが連続して起きるとき、一連の反応を総合して増幅という。
【００９２】
さて、インナープライマーとしてＦＡ、およびＲＡを用いることにより、3'末端に同一鎖上の一部Ｆ１ｃにアニールすることができる領域Ｆ１を備え、この領域Ｆ１が同一鎖上のＦ１ｃにアニールすることによって、塩基対結合が可能な領域Ｆ２ｃを含むループを形成することができる１本鎖核酸が生成される。この１本鎖核酸は、以降の核酸増幅反応において重要な出発物質として機能する。このような１本鎖核酸は、次のような原理に基づいて供給することもできる。すなわち、インナープライマーとして予め次のような構造を持ったプライマーに基づいて相補鎖合成を進めるのである。
5'-［プライマー内に位置する領域Ｘ１ｃにアニールする領域Ｘ１］−［塩基対結合が可能な状態にあるループ形成配列］−［領域Ｘ１ｃ］−［鋳型に相補的な配列を持つ領域］-3'
鋳型に相補的な配列を持つ領域には、Ｆ１に相補的な塩基配列（プライマーＦＡ）およびＲ１ｃに相補的な塩基配列（プライマーＲＡ）の２種類を用意する。なお、このとき合成すべき核酸を構成する塩基配列は、領域Ｆ１から領域Ｒ１ｃにいたる塩基配列と、この塩基配列に相補的な塩基配列を持つ領域Ｒ１から領域Ｆ１ｃにいたる塩基配列とを含むものである。一方、プライマー内部でアニールすることができるＸ１ｃとＸ１は、任意の配列とすることができる。ただしプライマーＦＡとＲＡの間では、領域Ｘ１ｃ／Ｘ１の配列を異なるものとするのが望ましい。
【００９３】
まず、鋳型となる２本鎖核酸の領域Ｆ２を任意のプライマーによって塩基対結合が可能な状態とする。そして塩基対結合が可能になったＦ２にプライマーＦＡをアニールさせ、相補鎖合成を行う。このとき、任意のプライマーにはＲＡを用いることができる。次いで合成された相補鎖の領域Ｒ２ｃを塩基対結合が可能な状態とし、ここに一方のプライマーをアニールさせて相補鎖合成の起点とする。このとき合成される相補鎖の3'末端は、最初に合成された鎖の5'末端部分を構成するプライマーＦＡに相補的な塩基配列を持つので、3'末端には領域X１を持ち、これが同一鎖上の領域X１ｃにアニールするとともにループを形成する。こうして、前記本発明による特徴的な3'末端構造が提供され、以降の反応は最も望ましい態様として示した先の反応系そのものとなる。なおこのときループ部分にアニールするオリゴヌクレオチドは、3'末端にループ内に存在する領域X２ｃに相補的な領域X２を持ち、5'末端には領域X１を持つものとする。先の反応系ではプライマーＦＡとＲＡを使って鋳型核酸に相補的な鎖を合成することによって核酸の3'末端にループ構造をもたらした。この方法は、短いプライマーで効果的に本発明に特徴的な末端構造を提供する。一方、本態様においては、プライマーとしてはじめからループを構成する塩基配列全体を提供しており、より長いプライマーの合成が必要となる。
【００９４】
この他、たとえばSDAやNASBAのような公知の核酸増幅方法に対しても本発明の原理を適用することができる。SDAの原理を本発明に応用するには、SDA用のプライマーのセット、鎖置換を伴う相補鎖合成反応を触媒するDNAポリメラーゼ、制限酵素、および相補鎖合成に必要な基質（ヌクレアーゼ耐性とするためのチオ化ヌクレオチドを含む）を、鋳型となる２本鎖核酸とともに、前記本発明のための条件下でインキュベートする。SDA用プライマーのいずれかが、２本鎖の不安定化によって相補鎖合成を開始すれば、置換された鋳型核酸において、他方のプライマーがアニールすべき領域が塩基対結合が可能な状態となる。そしてプライマーのアニールと鋳型核酸に対する相補鎖合成が行われる。
【００９５】
次にこのプライマーに対するアウタープライマーのアニールと相補鎖合成が起き、先にSDA用プライマーから合成された相補鎖が置換されて１本鎖の核酸を生じる。なお前記任意のプライマーによる相補鎖合成は、鋳型核酸における5'側方向に進行する。したがって、SDA用プライマーがアニールすべき領域のみならず、アウタープライマーがアニールすべき領域も塩基対結合が可能な状態となる。この１本鎖核酸を鋳型として他方のプライマーから合成される相補鎖はヌクレアーゼ耐性である。したがって、制限酵素認識部位に対する制限酵素の作用はプライマー側にのみに作用し、ニックが生じる。このニックを合成起点として、相補鎖合成と置換とが繰り返し行われ増幅が達成される。更に、このとき置換によって生成する１本鎖核酸にもSDA用プライマーがアニールして相補鎖の合成が行われる。
【００９６】
このとき鋳型となる核酸はヌクレアーゼ耐性であるが、SDA用プライマーはヌクレアーゼ耐性ではないので、やはり制限酵素によるニックが生じる。その結果、置換された１本鎖核酸においても、核酸の増幅反応が達成される。したがって、この状態でインキュベートを続けることによって、SDA用プライマーによって規定される領域の塩基配列からなる２本鎖のDNAが次々と合成される結果、核酸の増幅が達成される。SDA法の原理は既に公知であるが、２本鎖の不安定化に基づく核酸の合成反応を利用して、反応を開始させることによって、２本鎖核酸の変性工程を省くことが可能となることは、本発明によってもたらされた新規な知見である。
【００９７】
また本発明に基づいてNASBA法を実施するには、NASBA用プライマーが鎖置換を伴う相補鎖合成反応を触媒するDNAポリメラーゼとRNAポリメラーゼと組み合わせて用いられる。NASBA用プライマーは、プロモーター配列を付加した第１プライマーと、このプライマーを起点として合成された相補鎖に対してアニールする第２プライマーとで構成される。
【００９８】
まず２本鎖の鋳型核酸に対して任意のプライマーによる相補鎖合成を行い、第１のNASBA用プライマーがアニールすべき領域を塩基対結合が可能な状態とする。続いて第１のNASBA用プライマーを起点として合成された相補鎖を、アウタープライマーによって置換することにより１本鎖とする。得られた１本鎖に第２のNASBA用プライマーをアニールさせて２本鎖とすれば、第１のNASBA用プライマーに付加したプロモーター領域が２本鎖として完成する。２本鎖となったプロモーター領域によってRNAポリメラーゼによる転写反応が開始され、標的塩基配列を鋳型とするRNA合成が行われる。
【００９９】
本発明による核酸の合成方法、あるいは増幅方法に必要な各種の試薬類は、あらかじめパッケージングしてキットとして供給することができる。具体的には、本発明のために、インナープライマーおよびアウタープライマーとして必要な各種のオリゴヌクレオチド、相補鎖合成の基質となるdNTP、鎖置換をともなって相補鎖合成を行うDNAポリメラーゼ、酵素反応に好適な条件を与える緩衝液、更に必要に応じて合成反応生成物の検出のために必要な試薬類で構成されるキットが提供される。特に、本発明の望ましい態様においては、反応途中で試薬の添加が不要なことから、１回の反応に必要な試薬を反応容器に分注した状態で供給することにより、サンプルの添加のみで反応を開始できる状態とすることができる。発光シグナルや蛍光シグナルを利用して、反応生成物の検出を反応容器のままで行えるようなシステムとすれば、反応後の容器の開封を全面的に廃止することができる。これは、コンタミネーションの防止上、たいへん望ましいことである。
【０１００】
なお本明細書において引用された全ての先行技術文献は、参照として本明細書に組み入れられる。
【０１０１】
図面の簡単な説明
図１は、本発明の望ましい態様の反応原理の一部(1)-(2)を示す模式図である。
図２は、本発明の望ましい態様の反応原理の一部(3)-(5)を示す模式図である。
図３は、本発明の望ましい態様の反応原理の一部(6)-(8)を示す模式図である。
図４は、本発明の望ましい態様の反応原理の一部(9)-(11)を示す模式図である。
図５は、HBV、HCV、PSA遺伝子配列の増幅反応後の電気泳動ゲル写真である。
図６は、Betaineの有無での増幅反応後の電気泳動ゲル写真である。
図７は、プロリン、DMSO存在下での増幅反応後の電気泳動ゲル写真である。
図８は、本発明による核酸の増幅方法に及ぼす、アウタープライマーの影響を観察した結果を示すグラフである。縦軸は蛍光強度を、横軸は反応時間を示す。
【０１０２】
発明を実施するための最良の形態
以下、実施例に基づいて本発明を更に具体的に説明する。
〔実施例１〕  HBV、HCV、PSA遺伝子配列の増幅
HBV、HCV、およびPSA遺伝子の部分配列をそれぞれプラスミドに組み込んだDNA（２本鎖）を鋳型として、本発明による核酸の合成方法を試みた。実験に使用したプライマーは、Inner F、Inner R、Outer F、そしてOuter Rの4種類である。Outer FとOuter Rは、それぞれInner FとInner Rを合成起点として得られた第１の核酸を置換するためのアウタープライマーである。
【０１０３】
Inner F（あるいはInner R）のアニールが優先的に起こるようにこれらのプライマー濃度を高く設定した。プラスミドに組みこまれたHBV、HCV、およびPSAに由来する本実施例の鋳型配列を、各々配列番号：１、配列番号：２、配列番号：３に示した。さらに、各々の鋳型を増幅するのに用いたプライマーの配列(Inner F、Inner R、Outer F、Outer R)を以下に示す。
・HBV：
Inner F（配列番号：４）:
5'- GATAAAACGCCGCAGACACATCCTTCCAACCTCTTGTCCTCCAA -3’
Inner R（配列番号：５）:
5'- CCTGCTGCTATGCCTCATCTTCTTTGACAAACGGGCAACATACCTT -3’
Outer F（配列番号：６）: 5'- CAAAATTCGCAGTCCCCAAC -3’
Outer R:（配列番号：７）5'- GGTGGTTGATGTTCCTGGA -3’
・HCV：
Inner F（配列番号：８）:
5'- GAGTGGGTTTATCCAAGAAAGGACTTTAGCCATAGTGGTCTGCGGA -3’
Inner R（配列番号：９）:
5'- CTAGCCGAGTAGCGTTGGGTTGCTTTGCACTCGCAAGCACCCTATC -3’
Outer F（配列番号：１０）: 5'- GCAGAAAGCGTCTAGCCATGG -3’
Outer R（配列番号：１１）: 5'- CTAGCCGAGTAGCGTTGGGTTGC -3’
・PSA：
Inner F（配列番号：１２）:
5'- TGTTCCTGATGCAGTGGGCAGCTTTAGTCTGCGGCGGTGTTCTG -3’
Inner R（配列番号：１３）:
5'- TGCTGGGTCGGCACAGCCTGAAGCTGACCTGAAATACCTGGCCTG -3’
Outer F（配列番号：１４）: 5'- TGCTTGTGGCCTCTCGTG -3’
Outer R（配列番号：１５）: 5'- GGGTGTGTGAAGCTGTG -3’
【０１０４】
また、プライマーの構造的な特徴を以下にまとめた。
Inner F：
プライマー      5'側の領域  ／  3'側の領域
Inner F    Inner Fによる合成相補鎖の領域F1cと同じ
／鋳型DNAの領域F2cに相補
Inner R    Inner Rによる合成相補鎖の領域R1cと同じ
／Inner Fによる合成相補鎖の領域R2cに相補
Outer F    鋳型DNAの領域F2cの3'側に隣接するF3cに相補
Outer R    Inner Fによる合成相補鎖の領域R2cの3'側に隣接するR3cに相補
【０１０５】
このようなプライマーによって、個々の遺伝子の部分配列を組み込んだ領域F1cからR1cにいたる領域とその相補的な塩基配列とが、F2cを含むループ形成配列を挟んで1本鎖上で複数連結した核酸が合成される。これらのプライマーによる本発明による核酸の合成方法のための反応液組成を以下に示す。
・反応液組成（25μL中）
20 mM Tris-HCl pH 8.8
10 mM KCl
10 mM (NH4)2SO4
4 mM MgSO4
1 M Betaine
0.1% Triton X-100
0.4 mM dNTP
8 U Bst DNA ポリメラーゼ (NEW ENGLAND BioLabs)
プライマー：
1600 nM Inner F
1600 nM Inner R
400 nM Outer F
400 nM Outer R
鋳型：
1 x 10-20 mol HBV DNA
1 x 10-17mol HCV DNA
1 x 10-22mol PSA DNA
鋳型には熱変性をしないものを用意した。反応液を65℃で１時間反応させた。
【０１０６】
反応の確認：上記反応液の5μLに5μLのloading bufferを添加し、2%アガロースゲル（0.5% TBE)を使って、0.5時間、100 Vで電気泳動した。分子サイズマーカーとして、φX174 Hae IIIを使用した。泳動後のゲルをエチジウムブロマイド（以下、EtBrと省略する）で染色して核酸を確認した。結果は図５に示すとおりである。各レーンは次のサンプルに対応している。
レーン1：φX174 Hae III
レーン2：DNA (+), PSA
レーン3：DNA (-), PSA
レーン4：DNA (+), HBV
レーン5：DNA (-), HBV
レーン6：DNA (+), HCV
レーン7：DNA (-), HCV
実験の結果、HBV、HCV、およびPSAいずれのDNAを鋳型に用いた場合でも、本発明のインナープライマーによる増幅生成物に特徴的なラダーが観察された。インナープライマーにアウタープライマーを組み合わせることにより、２本鎖核酸を鋳型として等温条件下で核酸の合成が可能であることが確認された。
【０１０７】
〔実施例２〕ベタイン存在下での増幅
HCV遺伝子の部分配列をプラスミドに組み込んだDNA(1 x 10-17 mol)を鋳型として、本発明による核酸の合成方法を試みた。実験に使用したプライマーは、Inner F、Inner R、Outer F、そしてOuter Rの4種類である。このとき、上記、反応液組成中のBetaineを含まない反応液も同時に作成した。
鋳型は熱変性をしないものを用意した。反応液を65℃で1および2時間反応させた。
【０１０８】
反応の確認：上記反応液の5μLに5μLのloading bufferを添加し、2%アガロースゲル（0.5% TBE)を使って、0.5時間、100 Vで電気泳動した。分子サイズマーカーとして、φX174 Hae IIIを使用した。泳動後のゲルをEtBrで染色して核酸を確認した。結果は図６に示すとおりである。各レーンは次のサンプルに対応している。
レーン1：φX174 Hae III
レーン2：DNA (-), Betaine (-), 1h
レーン3：DNA (+), Betaine (-), 1h
レーン4：DNA (-), Betaine (+), 1h
レーン5：DNA (+), Betaine (+), 1h
レーン6：φX174 Hae III
レーン7：DNA (-), Betaine (-), 2h
レーン8：DNA (+), Betaine (-), 2h
実験の結果、反応時間1時間では、ベタイン存在下でのみ増幅が見られた。一方、反応時間を2時間に延ばした場合、ベタイン非存在下でも増幅が見られた。すなわち、一般的な反応系においても増幅が見られることが確認できた。
【０１０９】
〔実施例３〕プロリン、またはDMSO存在下での増幅
HCV遺伝子の部分配列をプラスミドに組み込んだDNA (1 x 10-17 mol) を鋳型として、本発明による核酸の合成方法を試みた。実験に使用したプライマーは、Inner F、Inner R、Outer F、およびOuter Rの4種類である。
ベタインのかわりに、プロリンあるいはDMSOを終濃度が1%あるいは5%になるように反応液に加えた。その他の反応液組成は上記と同じである。
鋳型は熱変性をしないものを用意し、反応液を65℃で2時間反応させた。
【０１１０】
反応の確認：上記反応液の5μLに5μLのloading bufferを添加し、2%アガロースゲル（0.5% TBE）を使って、0.5時間、100 Vで電気泳動した。分子サイズマーカーとして、φX174 Hae IIIを使用した。泳動後のゲルをEtBrで染色して核酸を確認した。結果は図７に示すとおりである。各レーンは次のサンプルに対応している。
レーン1：φX174 Hae III
レーン2：proline (+)
レーン3：DMSO (+)
レーン4：Betaine (-)
ベタインと同様な効果（融解温度低下作用）を持つプロリンあるいはDMSOを用いて増幅反応を行った結果、プロリンあるいはDMSOを使用しても増幅反応が進むことを確認できた。
【０１１１】
〔実施例４〕アウタープライマーの影響
直鎖上のDNAであるlambda DNA（配列番号：１６、1 x 105 molecule）を標的塩基配列として、本発明による核酸の合成方法を試みた。実験に使用したプライマーは、Inner F、Inner R、Outer F、そしてOuter Rの４種類である。このうち、Outer F、Outer Rプライマーを除いた反応も同時に行った。いずれの反応系にも終濃度0.25μg/mlになるようにエチジウムブロマイド(EtBr)を加えた。
ターゲットには熱変性しないものを用意し、反応液を65℃で1.5時間反応させて、ABI 7700（パーキンエルマ-製）を用いて経時的に蛍光強度の変化を観察した。EtBrは２本鎖核酸特異的な蛍光染色剤である。したがって、核酸の増幅によって生成する２本鎖核酸の量に応じて傾向強度が増強する。
【０１１２】
測定結果を図８に示す。アウタープライマーを除いた反応系では増幅速度が遅くなっていることがわかった。
lambda DNAプライマーの塩基配列
Inner F（配列番号：１７）:
CAGCCAGCCGCAGCACGTTCGCTCATAGGAGATATGGTAGAGCCGC
Inner R（配列番号：１８）:
GAGAGAATTTGTACCACCTCCCACCGGGCACATAGCAGTCCTAGGGACAGT
Outer F（配列番号：１９）:
GGCTTGGCTCTGCTAACACGTT
Outer R（配列番号：２０）:
GGACGTTTGTAATGTCCGCTCC
【０１１３】
産業上の利用の可能性
本発明によって、反応の特異性や効率を犠牲にすることなく、温度変化を省略可能な核酸の合成方法が提供された。本発明は２本鎖核酸を鋳型として用いるのにもかかわらず、変性のための温度変化を必要としない。そのため、特殊な温度制御機構を備えた装置を用いることなく、核酸の合成を実施することができる。また温度サイクルを不要とする本発明によれば、温度変化に起因する非特異反応を防ぐ効果が期待できる。
【０１１４】
本発明による核酸の合成方法は、プライマーを合成起点とするあらゆる原理の核酸合成方法に応用することができる。特に、もともと温度変化工程を必要としない原理に基づいた核酸の合成反応との組み合わせにより、より高度な合成効率を達成することができる。たとえば実施例に示したような、自身の一部に3'末端領域がアニールすることができる構造を備えた増幅生成物を与える核酸の増幅方法は、本発明との組み合わせにより操作性と特異性に優れた核酸の増幅方法となる。この組み合わせにおいては、鋳型となる２本鎖核酸を、プライマーとDNAポリメラーゼとともに所定の温度でインキュベートするのみで、高度な増幅が達成できる。本発明によって、高度な特異性と高い増幅効率を維持しつつ、しかも温度変化の不要な核酸の増幅方法が可能となった。
【０１１５】
本発明に基づく核酸の合成方法は、温度変化が不要となったことによって反応のモニタリングが容易となる。すなわちこの反応の進行をモニタリングするには、一定の温度を与えるインキュベーション機構と、光学的な読取機構を備える装置が用いられる。このような機構は、汎用の光学的分析装置が備えている一般的な機構である。したがって、本発明に基づく核酸の増幅方法は、汎用の分析装置によるモニタリングが可能である。
【０１１６】
以上のように、本発明による核酸の合成方法は、PCR法等の公知の方法の問題点である複雑な温度制御を完全に不要とし、実験操作を著しく簡略化する。また本発明は、温度制御のための特殊な装置を必要としない、汎用性に優れる核酸の増幅方法を実現する。更に本発明においては、温度変化に起因する非特異的な反応を防止することができる。
【０１１７】
【配列表】
SEQUENCE LISTING
<110> Eiken Chemical Co., Ltd.
<120> Method for synthesis of nucleic acid using double
strand nucleic acid as template.
<130> P01-1015
<140> JP 2001-575171
<141> 2001-03-30
<150> JP 2000-111939
<151> 2000-04-07
<160> 20
<170> PatentIn Ver. 2.0
<210> 1
<211> 198
<212> DNA
<213> Hepatitis B virus
<400> 1
caaaattcgc agtccccaac ctccaatcac tcaccaacct cttgtcctcc aatttgtcct 60
ggctatcgct ggatgtgtct gcggcgtttt atcatattcc tcttcatcct gctgctatgc 120
ctcatcttct tgttggttct tctggactac caaggtatgt tgcccgtttg tcctctactt 180
ccaggaacat caaccacc                                               198
<210> 2
<211> 279
<212> DNA
<213> Hepatitis C virus
<400> 2
gcagaaagcg tctagccatg gcgttagtat gagtgtcgta cagcctccag gcccccccct 60
cccgggagag ccatagtggt ctgcggaacc ggtgagtaca ccggaattac cggaaagact 120
gggtcctttc ttggataaac ccactctatg tccggtcatt tgggcgtgcc cccgcaagac 180
tgctagccga gtagcgttgg gttgcgaaag gccttgtggt actgcctgat agggtgcttg 240
cgagtgcccc gggaggtctc gtagaccgtg catcatgag                        279
<210> 3
<211> 178
<212> DNA
<213> Homo sapiens
<400> 3
tgcttgtggc ctctcgtggc agggcagtct gcggcggtgt tctggtgcac ccccagtggg 60
tcctcacagc tgcccactgc atcaggaaca aaagcgtgat cttgctgggt cggcacagcc 120
tgtttcatcc tgaagacaca ggccaggtat ttcaggtcag ccacagcttc acacaccc   178
<210> 4
<211> 44
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Description of Artificial Sequence:Artificially
Synthesized Primer Sequence
<400> 4
gataaaacgc cgcagacaca tccttccaac ctcttgtcct ccaa                  44
<210> 5
<211> 46
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Description of Artificial Sequence:Artificially
Synthesized Primer Sequence
<400> 5
cctgctgcta tgcctcatct tctttgacaa acgggcaaca tacctt                46
<210> 6
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Description of Artificial Sequence:Artificially
Synthesized Primer Sequence
<400> 6
caaaattcgc agtccccaac                                             20
<210> 7
<211> 19
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Description of Artificial Sequence:Artificially
Synthesized Primer Sequence
<400> 7
ggtggttgat gttcctgga                                              19
<210> 8
<211> 46
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Description of Artificial Sequence:Artificially
Synthesized Primer Sequence
<400> 8
gagtgggttt atccaagaaa ggactttagc catagtggtc tgcgga                46
<210> 9
<211> 46
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Description of Artificial Sequence:Artificially
Synthesized Primer Sequence
<400> 9
ctagccgagt agcgttgggt tgctttgcac tcgcaagcac cctatc                46
<210> 10
<211> 21
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Description of Artificial Sequence:Artificially
Synthesized Primer Sequence
<400> 10
gcagaaagcg tctagccatg g                                           21
<210> 11
<211> 23
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Description of Artificial Sequence:Artificially
Synthesized Primer Sequence
<400> 11
ctagccgagt agcgttgggt tgc                                         23
<210> 12
<211> 44
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Description of Artificial Sequence:Artificially
Synthesized Primer Sequence
<400> 12
tgttcctgat gcagtgggca gctttagtct gcggcggtgt tctg                  44
<210> 13
<211> 45
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Description of Artificial Sequence:Artificially
Synthesized Primer Sequence
<400> 13
tgctgggtcg gcacagcctg aagctgacct gaaatacctg gcctg                 45
<210> 14
<211> 18
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Description of Artificial Sequence:Artificially
Synthesized Primer Sequence
<400> 14
tgcttgtggc ctctcgtg                                               18
<210> 15
<211> 17
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Description of Artificial Sequence:Artificially
Synthesized Primer Sequence
<400> 15
gggtgtgtga agctgtg                                                17
<210> 16
<211> 245
<212> DNA
<213> Bacteriophage lambda
<400> 16
ggcttggctc tgctaacacg ttgctcatag gagatatggt agagccgcag acacgtcgta 60
tgcaggaacg tgctgcggct ggctggtgaa cttccgatag tgcgggtgtt gaatgatttc 120
cagttgctac cgattttaca tattttttgc atgagagaat ttgtaccacc tcccaccgac 180
catctatgac tgtacgccac tgtccctagg actgctatgt gccggagcgg acattacaaa 240
cgtcc                                                             245
<210> 17
<211> 46
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Description of Artificial Sequence:Artificially
Synthesized Primer Sequence
<400> 17
cagccagccg cagcacgttc gctcatagga gatatggtag agccgc                46
<210> 18
<211> 51
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Description of Artificial Sequence:Artificially
Synthesized Primer Sequence
<400> 18
gagagaattt gtaccacctc ccaccgggca catagcagtc ctagggacag t          51
<210> 19
<211> 22
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Description of Artificial Sequence:Artificially
Synthesized Primer Sequence
<400> 19
ggcttggctc tgctaacacg tt                                          22
<210> 20
<211> 22
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Description of Artificial Sequence:Artificially
Synthesized Primer Sequence
<400> 20
ggacgtttgt aatgtccgct cc                                          22
【図１】
0004726381.tif 000002
【図２】
0004726381.tif 000003
【図３】
0004726381.tif 000004
【図４】
0004726381.tif 000005
【図５】
0004726381.tif 000006
【図６】
0004726381.tif 000007
【図７】
0004726381.tif 000008
【図８】
0004726381.tif 000009