(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
癌関連の抗腫瘍性自己抗体を検出する方法であって、
このような自己抗体の存在について試験する試料を免疫アッセイ試薬と接触させること、および
前記免疫アッセイ試薬と前記試料中に存在する任意の癌関連の抗腫瘍性自己抗体との特異的結合によって形成された複合体の存在を検出すること
を含む免疫アッセイであり、
前記免疫アッセイ試薬が、１人もしくは複数の癌患者の、腫瘍が存在するもしくは存在していた、または腫瘍が関連しているもしくは関連していた体腔由来の体液から調製した腫瘍マーカータンパク質を含み、前記腫瘍マーカータンパク質が癌関連の抗腫瘍性自己抗体と選択的反応性を示し、
前記自己抗体が正常対照個体と比較して癌患者において上昇したレベルで存在する、方法。
【請求項２】
それぞれが異なる腫瘍マーカータンパク質または同一の腫瘍マーカータンパク質の２種以上のエピトープに免疫学的に特異的な、２種以上の自己抗体の存在を検出および／または定量的に測定するために免疫アッセイを行うことを含み、
前記免疫アッセイを、試薬の少なくとも１種が１人もしくは複数の癌患者の体腔由来の体液から調製した腫瘍マーカータンパク質を含む、２種以上の免疫アッセイ試薬のパネルを用いて実施する、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記免疫アッセイを用いて試験する前記試料が前記患者から採取した体液の試料であり、
正常対照個体と比較して自己抗体のレベルが上昇していることは、前記個体が癌に罹患しているまたは癌を発生中であることの指標として捉えられる、
患者において癌を検出するための請求項１または請求項２に記載の方法。
【請求項４】
前記免疫アッセイを用いて試験する前記試料が前記患者から採取した体液の試料であり、
正常対照と比較して自己抗体のレベルが上昇していることは、前記患者において癌が存在することの指標として捉えられる、
患者において癌または他の新生物性疾患の進行を監視するための請求項１または請求項２に記載の方法。
【請求項５】
前記免疫アッセイを用いて試験する前記試料が前記対象から採取した体液の試料であり、
正常対照個体と比較して自己抗体のレベルが上昇していることは、前記対象における初期の新生物性または初期の発癌性変化の指標として捉えられる、
無症候性対象において初期の新生物性または初期の発癌性変化を検出するための請求項１または請求項２に記載の方法。
【請求項６】
前記免疫アッセイを用いて試験する前記試料が前記対象から採取した体液の試料であり、
正常対照個体と比較して対象の自己抗体のレベルが上昇していることは、癌を発生する危険性があると同定される、
癌を発症する危険性が高い対象を同定するための無症候性ヒト対象の集団のスクリーニングのための請求項１または請求項２に記載の方法。
【請求項７】
前記免疫アッセイを用いて試験する前記試料が前記患者から採取した体液の試料であり、
治療後に自己抗体のレベルが低下していることは、前記患者が前記治療に肯定的に応答したことの指標として捉えられる、
癌患者の抗癌治療に対する応答を監視するための請求項１または請求項２に記載の方法。
【請求項８】
患者が存在する癌の量を低減させるために抗癌治療を受けており、
前記免疫アッセイを用いて試験する前記試料が前記患者から採取した体液の試料であり、
正常対照と比較して前記患者の自己抗体のレベルが上昇していることは、疾患が再発したことの指標として捉えられる、
既に癌に罹患していると診断されたことがある患者において再発性疾患を検出するための請求項１または請求項２に記載の方法。
【請求項９】
前記免疫アッセイを、異なる腫瘍マーカータンパク質のそれぞれに対する前記患者の免疫応答の相対強度を決定するためにそれぞれが前記異なる腫瘍マーカータンパク質に対応する２種以上の免疫アッセイ試薬のパネルを用いて実施し、
前記患者において最も強力な１つまたは複数の免疫応答を誘発させると同定された１種または複数種の腫瘍マーカータンパク質を選択して前記患者で使用する抗癌ワクチンの基盤を形成する、
特定の患者で使用する抗癌ワクチンの選択のための請求項２に記載の方法。
【請求項１０】
腫瘍マーカータンパク質もしくはその抗原性断片または前記腫瘍マーカータンパク質を発現する核酸配列を含む免疫原性調製物を患者に投与することを含むワクチン接種手順が、前記患者において前記腫瘍マーカータンパク質に対する癌関連の抗体の誘発に成功したかどうかを決定する方法であって、
前記患者の体液の試料を免疫アッセイ試薬と接触させること、および
前記免疫アッセイ試薬と前記試料中に存在する任意の癌関連の抗体との特異的結合によって形成された複合体の存在を検出することを含む免疫アッセイであり、
前記免疫アッセイ試薬が１人もしくは複数の癌患者の、腫瘍が存在するもしくは存在していた、または腫瘍が関連しているもしくは関連していた体腔から調製した腫瘍マーカータンパク質の試料を含み、
前記腫瘍マーカータンパク質が癌関連の抗腫瘍抗体と選択的反応性を示し、
前記抗体が正常対照個体と比較して前記患者において上昇したレベルで存在することが、前記ワクチン接種手順の成功を示す、方法。
【請求項１１】
前記体腔由来の体液が腹水、胸水、漿液腫、水瘤または創傷ドレナージ液である、請求項１〜１０のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１２】
前記腫瘍マーカータンパク質がＭＵＣ１、ＭＵＣ１６またはｃ−ｍｙｃから選択される、請求項１１に記載の方法。
【請求項１３】
前記腫瘍マーカータンパク質がｃ−ｅｒｂＢ２、ｐ５３、ｒａｓ、ＢＲＣＡ１、ＢＲＣＡ２、ＡＰＣ、ＰＳＡ、ＣＥＡ、およびＣＡ１９．９から選択される、請求項１〜１１のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１４】
癌関連の抗腫瘍性自己抗体と選択的反応性を示し、前記自己抗体が正常対照個体と比較して癌患者において上昇したレベルで存在する、免疫アッセイ試薬の製造における、１人もしくは複数の癌患者の、腫瘍が存在するもしくは存在していた、または腫瘍が関連しているもしくは関連していた体腔由来の体液から調製した腫瘍マーカータンパク質の使用。
【発明の詳細な説明】
【発明の分野】
【０００１】
本発明は、腫瘍マーカータンパク質および１人または複数の癌患者の体液からのその調製に関する。前記体液は、自然に存在するまたは癌もしくは癌の医療行為の結果生じる、体腔に集まったものである。例示的な体液は、腹水、胸水、漿液腫、水瘤および創傷ドレナージ液である。本発明はまた、癌に罹患している患者から採取した排泄物からの腫瘍マーカータンパク質の調製にも関する。
【０００２】
前記腫瘍マーカータンパク質は、循環腫瘍マーカーまたは腫瘍細胞表面もしくは細胞内に発現されるマーカーに対する自己抗体を検出することあるいは定量的に測定することを含む癌の検出方法、および様々な研究用途に有用である。本発明は、このような使用も目的とする。
【発明の背景】
【０００３】
患者における癌の発生および進行は、一般に患者の体液中におけるマーカーの存在に関連していることが判明しており、これらの「腫瘍マーカー」は癌の生物学の様々な側面を反映している（Ｆａｔｅｈ−Ｍａｇｈａｄａｍ，Ａ．＆Ｓｔｅｉｌｂｅｒ，Ｐ．  （１９９３）  Ｓｅｎｓｉｂｌｅ  ｕｓｅ  ｏｆ  ｔｕｍｏｕｒ  ｍａｒｋｅｒｓ．、Ｖｅｒｌａｇ  ＧＭＢＨ出版、ＩＳＢＮ３−９２６７２５−０７−９参照）。腫瘍マーカーは、多くの場合「正常」細胞によって発現される野生型タンパク質の改変型であることが判明しており、この改変は一次アミノ酸配列の変化、二次、三次もしくは四次構造の変化、または翻訳後修飾の変化、たとえば異常なグリコシル化であり得る。さらに、遺伝子増幅または異常な転写調節の結果である可能性のある、腫瘍細胞においてアップレギュレーションまたは過剰発現されている野生型タンパク質も、腫瘍マーカーとなり得る。
【０００４】
体液中に存在する腫瘍マーカーの確立されたアッセイは、腫瘍塊を反映する腫瘍マーカーの検出に焦点を置いている傾向にあり、したがって、疾患プロセスの後期、たとえば転移性疾患の診断において貴重である。これらのマーカーのうち最も幅広く使用されているものには、いずれも主に全身病の負荷および治療後の再発の指標として有用であった癌胎児性抗原（ＣＥＡ）およびＣＡ１５．３と呼ばれる糖タンパク質が含まれる（Ｍｏｌｉｎａ，Ｒ．、Ｚａｎｏｎ，Ｇ．、Ｆｉｌｅｌｌａ，Ｘ．他、Ｕｓｅ  ｏｆ  ｓｅｒｉａｌ  ｃａｒｃｉｎｏｅｍｂｒｙｏｎｉｃ  ａｎｔｉｇｅｎ  ａｎｄ  ＣＡ１５．３  ａｓｓａｙｓ  ｉｎ  ｄｅｔｅｃｔｉｎｇ  ｒｅｌａｐｓｅｓ  ｉｎ  ｂｒｅａｓｔ  ｃａｎｃｅｒ  ｐａｔｉｅｎｓ．、（１９９５）、Ｂｒｅａｓｔ  Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ  Ｔｒｅａｔ、３６：４１〜４８）。これらのマーカーは、疾患の初期、たとえば早期検出または無症候性患者のスクリーニングにおいては使用が限定されている。このようにして、疾患プロセスの初期において診断を支援するのに有用な体液中に存在する腫瘍マーカーの探索中に、本発明者らは、腫瘍塊自体に依存しないマーカーを同定することを試みた。
【０００５】
「正常」細胞によって発現される野生型タンパク質と対応する腫瘍マーカータンパク質との差により、一部の場合では、腫瘍マーカータンパク質が個体の免疫系に「非自己」として認識されることにつながり、したがってその個体において免疫応答が誘発され得る。これは、腫瘍マーカータンパク質に対して免疫学的に特異的な自己抗体の産生をもたらす液性（すなわちＢ細胞媒介性）免疫応答であり得る。自己抗体とは、抗原が実際にはその個体由来であるにもかかわらずその個体の免疫系が外来性であると認識する抗原に向けられた、天然に存在する抗体である。これは、循環遊離自己抗体として、または自己抗体とその標的腫瘍マーカータンパク質とが結合したものからなる循環免疫複合体の形で、循環中に存在し得る。
【０００６】
体液中の腫瘍マーカータンパク質の直接の測定または検出の代替として、自己抗体の産生に関して腫瘍マーカータンパク質の存在に対する個体の免疫応答を測定するためにアッセイを開発し得る。このようなアッセイは、本質的に、腫瘍マーカータンパク質の存在の間接的な検出を構成する。免疫応答の性質のため、自己抗体は非常に僅かな量の循環腫瘍マーカータンパク質によって誘発され得る可能性が高く、その結果、腫瘍マーカーに対する免疫応答の検出に依存する間接的な方法は体液中の腫瘍マーカーを直接測定する方法よりも感度が高くなる。したがって、自己抗体の産生に基づくアッセイ方法は、疾患プロセスの初期において、および場合によっては無症候性患者のスクリーニングに関連して、たとえば無症候性個体の集団の中から疾患を発生する「危険性のある」個体を同定するためのスクリーニングにおいて特に貴重となり得る。さらに、これらは再発性疾患の早期検出に有用であり得る。
【０００７】
血清自己抗体を誘発することが観察されている腫瘍マーカータンパク質には、７０ｋｄの熱ショックタンパク質（ｈｓｐ７０）に結合するその能力によって定義することができる、米国特許第５，６５２，１１５号に記載されている突然変異体ｐ５３タンパク質の特定のクラスが含まれる。ｐ５３自己抗体は、多くの様々な良性および悪性状態にある患者（米国特許第５，６５２，１１５号に記載）で検出することができるが、それぞれの場合で、患者のうちの小集団にしか存在しない。たとえば、乳癌患者の血清中のｐ５３タンパク質に対する自己抗体を検出するためのＥＬＩＳＡアッセイを利用した１つの研究では、患者の２６％および対照対象の１．３％でｐ５３自己抗体が産生されたことが報告されている（Ｍｕｄｅｎｄａ，Ｂ．、Ｇｒｅｅｎ，Ｊ．Ａ．、Ｇｒｅｅｎ，Ｂ．他、Ｔｈｅ  ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ  ｂｅｔｗｅｅｎ  ｓｅｒｕｍ  ｐ５３  ａｕｔｏａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ  ａｎｄ  ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓ  ｏｆ  ｈｕｍａｎ  ｂｒｅａｓｔ  ｃａｎｃｅｒ、（１９９４）、Ｂｒ  Ｊ  Ｃａｎｃｅｒ、６９：４４４５〜４４４９）。血清自己抗体を誘発させることが知られている第２の腫瘍マーカータンパク質は、上皮ムチンＭＵＣ１である（Ｈｉｎｏｄａ，Ｙ．他、（１９９３）、Ｉｍｍｕｎｏｌ  Ｌｅｔｔ．、３５：１６３〜１６８；Ｋｏｔｅｒａ，Ｙ．他、（１９９４）、Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．５４：２８５６〜２８６０）。
【０００８】
国際公開公報ＷＯ９９／５８９７８号は、２種以上の異なる腫瘍マーカーに対する個体の免疫応答の評価に基づいた、癌の検出／診断に使用する方法を記載している。これらの方法は、一般に、個体から採取した体液の試料を、それぞれが個別の腫瘍マーカータンパク質由来である２種以上の異なる腫瘍マーカー抗原のパネルと接触させ、腫瘍マーカータンパク質に免疫学的に特異的な循環自己抗体に結合した腫瘍マーカー抗原の複合体の形成を検出することを含む。このような循環自己抗体の存在を、癌の存在の指標とする。
【０００９】
循環自己抗体の検出に基づいた癌の検出方法は、多くの場合、循環自己抗体と反応性がある「免疫アッセイ試薬」を利用する免疫アッセイである。典型的には、このようなアッセイで使用する「試薬」は、組換え腫瘍マーカータンパク質（細菌、昆虫、酵母もしくは哺乳動物細胞内で発現される）または化学合成腫瘍マーカー抗原を含み、これは実質的に完全な腫瘍マーカータンパク質、もしくは短いペプチド抗原などのその断片を含み得る。抗腫瘍自己抗体を検出するための免疫アッセイ試薬の基盤として使用する他の潜在的な腫瘍関連タンパク質源には、培養腫瘍細胞（およびその増殖に使用した使用済み培地）、腫瘍組織、および腫瘍症を有する個体由来の血清が含まれる。これらの源のほとんどが、以下に記載するように顕著な欠点を有する。
【００１０】
培養腫瘍細胞（およびその使用済み培地）では、発現されたタンパク質の量は、回収時の増殖相に応じて変化し、量および質にばらつきが生じる可能性がある。さらに、所望のタンパク質は一般に低濃度で存在し、したがって、十分な量のタンパク質を精製するには時間がかかる。さらに、新生物の増殖中に異種性となる可能性が高い腫瘍中の細胞ストックとは異なり、細胞ストックはクローン性となり、これによりタンパク質にばらつきが生じる（特にグリコシル化の程度）。
【００１１】
細菌細胞内で発現される組換えタンパク質はグリコシル化されておらず、したがって、これらは自然にグリコシル化されたタンパク質とは顕著に異なる。さらに、組換えによって発現させたタンパク質のリフォールディングは妥当でないかもしれず、これにより自己抗体の認識に正しくないコンホメーションが与えられる。
【００１２】
腫瘍組織は通常、少量でしか入手可能でなく、それからタンパク質を精製することは困難かつ時間がかかる。
【００１３】
血清試料は通常、少量でしか入手可能でなく、したがって、十分な量のタンパク質を精製することは困難である。
【００１４】
本発明者らは、今回、腹水、胸水、漿液腫、水瘤または創傷ドレナージ液などの、腫瘍が存在する、または腫瘍が関連しているもしくは関連していた体腔由来の体液、あるいは排泄物由来の体液から精製した腫瘍マーカー抗原の、自己抗体免疫アッセイの「試薬」としての使用によって得られる顕著な利点を決定した。具体的には、本発明者らは、上記の定義した体腔由来の体液から精製した腫瘍マーカー抗原を含む試薬を使用することにより、感度の上昇が生じ（「正常」体液由来の試薬を使用した場合と比べて）、より「臨床的に関連のある」結果がもたらされることを観察した。また、このような体液をアッセイ試薬源として使用するにより得られる顕著な実用上の利点も存在する。
【発明の概要】
【００１５】
第１態様では、本発明は、癌関連の抗腫瘍性自己抗体を検出する方法であって、このような自己抗体の存在について試験する試料を免疫アッセイ試薬と接触させること、および免疫アッセイ試薬と試料中に存在する任意の癌関連の抗腫瘍性自己抗体との特異的結合によって形成された複合体の存在を検出することを含む免疫アッセイであり、免疫アッセイ試薬が、１人もしくは複数の癌患者の、腫瘍が存在するもしくは存在していた、または腫瘍が関連しているもしくは関連していた体腔由来の体液から調製した腫瘍マーカータンパク質、および／あるいは１人または複数の癌患者の排泄物から調製した腫瘍マーカータンパク質を含み、前記腫瘍マーカータンパク質が癌関連の抗腫瘍性自己抗体と選択的反応性を示す方法に関する。
【００１６】
第２態様では、本発明は、癌関連の抗腫瘍性自己抗体と選択的反応性を示す免疫アッセイ試薬の製造における、１人もしくは複数の癌患者の、腫瘍が存在するもしくは存在していた、または腫瘍が関連しているもしくは関連していた体腔由来の体液から調製した腫瘍マーカータンパク質、および／あるいは１人または複数の癌患者の排泄物から調製した腫瘍マーカータンパク質の使用に関する。
【００１７】
第３態様では、本発明は、腫瘍マーカータンパク質を調製する方法であって、前記腫瘍マーカータンパク質を体液から単離することを含み、前記体液が、
（ｉ）腫瘍が存在するもしくは存在していた、または腫瘍が関連しているもしくは関連していた体腔から採取したものであり、かつ
（ｉｉ）前記体液が２人以上の癌患者のプールした体液試料を表す
方法に関する。
【００１８】
第４態様では、本発明は、腫瘍マーカータンパク質を調製する方法であって、前記腫瘍マーカータンパク質を排泄物から単離することを含み、
（ｉ）前記排泄物またはその任意の成分が腫瘍または腫瘍細胞と接触したことがあり、かつ
（ｉｉ）前記排泄物が２人以上の癌患者のプールした排泄物試料を表す
方法に関する。
【００１９】
第５態様では、本発明は、上述の方法を用いて調製した、実質的に免疫グロブリンを含まない腫瘍マーカータンパク質調製物、ならびに前記調製物を含むキットおよび試薬に関する。
【発明の詳細な説明】
【００２０】
第１態様では、本発明は、「癌関連の」抗腫瘍性自己抗体を検出する方法に関する。
【００２１】
用語「癌関連の」抗腫瘍性自己抗体とは、癌の病状に特徴的であり、癌の病状で優先的に発現している腫瘍マーカータンパク質型上に存在するエピトープに向けられた自己抗体をいう。
【００２２】
本発明の方法は、１種または複数種の腫瘍マーカータンパク質に免疫学的に特異的な自己抗体を検出および／または定量的に測定するための免疫アッセイを含み、免疫アッセイで使用する「免疫アッセイ試薬」が、１人もしくは複数の癌患者の、腫瘍が存在するもしくは存在していた、または腫瘍が関連しているもしくは関連していた体腔由来の体液から調製した腫瘍マーカータンパク質、および／あるいは１人または複数の癌患者の排泄物から調製した腫瘍マーカータンパク質を含むことを特徴とする。一般に、排泄物は癌が存在する器官を通るはずであり、ここで排泄物が前記癌と接触する、または排泄物が身体の他の場所で癌と接触した１つもしくは複数の成分を含むこととなる。具体的な例は、胆嚢内で癌と接触し得るが糞便中に現れる胆汁である。
【００２３】
免疫アッセイ試薬は、癌関連の抗腫瘍性自己抗体と「選択的反応性」を示す。本明細書中で使用する「選択的反応性」とは、腫瘍マーカータンパク質が、任意の抗体、または正常な、すなわち腫瘍を有さない状態で存在する同じ抗原に対して作製された自己抗体と比較して、腫瘍関連抗原に対する自己抗体に対してより高い親和性を有することを意味する。
【００２４】
用語「体腔」には、自然に存在する腔または空間であれ、つぶれた腔もしくは以前の腔を含めた、疾患または医療行為の結果生じる腔であれ、任意の体腔が含まれる。体液は、腫瘍が存在するもしくは存在していた、または腫瘍が関連しているもしくは関連していた腔または空間由来である。好ましくは、「体腔由来の体液」は、腫瘍誘発性の体液である、すなわち、体液は疾患プロセス、たとえば腫瘍細胞の存在に応答して、またはその結果として産生された体液である。体液の例は、腹水、胸水、漿液腫、水瘤および創傷ドレナージ液である。
【００２５】
不確かさを避けるために、「体腔由来の体液」には、全血液や血清などの全身循環由来の体液は含まれない。
【００２６】
用語「排泄物」には、とりわけ、尿、糞便、および精液が含まれる。
【００２７】
たとえばＥＬＩＳＡ、ラジオイムノアッセイなどの免疫アッセイの一般的特徴は当業者に周知である（Ｉｍｍｕｎｏａｓｓａｙ、Ｅ．ＤｉａｍａｎｄｉｓおよびＴ．Ｃｈｒｉｓｔｏｐｏｕｌｕｓ、Ａｃａｄｅｍｉｃ  Ｐｒｅｓｓ，Ｉｎｃ．、カリフォルニア州サンディエゴ、１９９６参照）。特定の免疫学的特異性を有する抗体（たとえば、所定の腫瘍マーカータンパク質と免疫学的反応性を有する自己抗体）を検出するための免疫アッセイは、一般に、試験下の抗体と特異的な免疫学的反応性を示す試薬の使用を必要とする。アッセイの形態次第では、この試薬を固体担体上に固定することができる。抗体の存在について試験する試料を試薬と接触させ、必要な免疫学的反応性の抗体が試料中に存在する場合は、これらは試薬と免疫学的に反応して自己抗体−試薬の複合体を形成し、次いでこれを検出するまたは定量的に測定し得る。
【００２８】
「免疫アッセイ試薬」の基盤として使用する腫瘍マーカータンパク質の適切な試料は、１人または複数の癌患者の体腔由来の体液および／あるいは１人または複数の癌患者の排泄物由来の体液から、当分野で一般的に知られているものなどの標準のタンパク質精製技術を用いて単離し得る。たとえば、腫瘍マーカータンパク質を、アフィニティークロマトグラフィーによって、腫瘍マーカータンパク質に免疫学的に特異的な適切な抗体（または抗体断片）を用いて単離し得る。本発明者らは、添付の実施例にて、いくつかの様々な腫瘍マーカータンパク質を、アフィニティークロマトグラフィーに基づいた精製方法を用いて精製し得ることを示した。任意の他の腫瘍マーカータンパク質に用いられる類似の精製方法を適切な抗体または抗体断片を使用して用いることができることは、当業者に明らかであろう。
【００２９】
体腔および／または排泄物由来の体液の出発物質を１人または複数の癌患者から採取する。本文脈では、用語「癌患者」には、以前に癌に罹患していると診断されたことがある個体が含まれる。体液／排泄物は、単一の患者から採取してもよく、または２人以上の患者の試料を一緒にプールしてもよい。試料は、同一または異なる種類の癌の、同一または異なる段階に罹患している２人以上の患者からプールし得る。試料はまた、単一または複数の患者の異なる種類の体液または排泄物からもプールし得る。有利には、特定の種類の癌に罹患している癌患者（もしくは複数の患者）から採取した体液および／または排泄物から調製した免疫アッセイ試薬を用いて、他の個体において同種類の癌の診断を支援し得る。
【００３０】
一実施形態では、体液／排泄物を採取する「癌患者」は、後にアッセイ試薬を用いて試験することを意図する患者と同一であり得る。たとえば、癌を診断された患者から調製した試薬のストックを、後日、同じ患者の免疫状態を評価するために、たとえば疾患の進行を監視するためおよび／またはその患者における抗癌治療の経過の有効性を評価するために使用し得る。
【００３１】
「免疫アッセイ試薬」または「腫瘍マーカー調製物」は、腫瘍マーカータンパク質の実質的に全体、たとえば実質的に体液／排泄物から単離したままの腫瘍マーカータンパク質を含んでいるか、または腫瘍マーカータンパク質の断片を含んでいてよい。免疫アッセイ試薬として有効となるには、このような「断片」はすべて、試薬を用いて試験することが望まれる（自己）抗体との免疫学的反応性を保持していなければならない。適切な断片は、たとえば、単離した腫瘍マーカータンパク質の化学的または酵素的切断によって調製し得る。
【００３２】
使用する免疫アッセイの詳細な性質次第では、「試薬」または「腫瘍マーカータンパク質調製物」は、腫瘍マーカータンパク質に天然に存在しないある種の望ましい特徴を与える１つまたは複数のさらなる分子に連結した、腫瘍マーカータンパク質またはその断片を含み得る。たとえば、腫瘍マーカータンパク質を、蛍光標識、提色標識、発光標識、放射標識または金コロイドなどの重金属等の表示標識とコンジュゲートさせ得る。
【００３３】
本明細書中に記載した方法によって調製した腫瘍マーカータンパク質は、ビーズまたはマルチウェルプレートのプレートの表面などの固体担体上で使用するために固定することもできる。固定化は、吸収または共有結合によるものであり得る。
【００３４】
腫瘍マーカータンパク質（またはこのようなタンパク質を含むアッセイ試薬）は、たとえばアフィニティークロマトグラフィーによる単離の後、汚染免疫グロブリンを特異的に除去するためにタンパク質調製物を処理するおかげで、好ましくは実質的に免疫グロブリンを含まない。
【００３５】
１人または複数の癌患者から採取した体腔体液および／または排泄物から単離した腫瘍マーカータンパク質（もしくはその断片）を含む免疫アッセイ試薬の使用は、癌の臨床検出（診断、疾患の再発または疾患の進行の監視などを含む）において、組換えによって発現させたまたは化学合成のポリペプチドなどの他の試薬の使用を超える顕著な利点を提供する。
【００３６】
癌患者から単離した腫瘍マーカータンパク質の詳細な特徴が腫瘍マーカータンパク質を単離した原料物質（たとえば組織または体液）に応じて変化するかもしれないことは予想され得る。たとえば、尿から単離したタンパク質の特徴は全血液や血清から単離したタンパク質と異なるかもしれず、これらもまた、腹水や胸水から単離したタンパク質とは異なるかもしれない。立ち代って、このことは腫瘍マーカータンパク質のアッセイ試薬としての利用性に影響を与え得る。
【００３７】
実際、驚くべきことに、本発明者らは、癌患者の体腔由来の体液または排泄物、特に腹水、胸水、漿液腫もしくは創傷ドレナージ液から単離した腫瘍マーカータンパク質から調製した試薬が、一般に、「正常」個体から単離した同等のタンパク質に基づいた試薬よりも癌関連の自己抗体に対する特異性が高いことを観察した。癌関連の自己抗体に対するこの特異性の増大は、癌患者の体腔由来の体液または排泄物から調製した試薬の使用に基づいた免疫アッセイにより、癌に対する免疫応答の検出において、より「臨床的に関連のある」結果が生じることを意味する。
【００３８】
本発明以前は、癌患者の体腔由来の体液または排泄物から調製した抗原を含む試薬がどのように自己抗体の免疫学的検出用の試薬として機能するかは不明確であった。具体的には、このような抗原が癌関連の自己抗体に対してより高い特異性を示すかどうかが不明であった。このような源由来の抗原が、癌関連の自己抗体を検出するその能力に関して血液もしくは血清から調製した抗原と同様にまたはそれより良好に機能するかどうかが予測できなかった。腫瘍マーカータンパク質が体腔由来の体液中に存在し得ることは知られていたが、これらの体腔中の抗原が分解される可能性の方が一般的に高い。立ち代って、このことは、これらが血清由来の抗原ほど良好に自己抗体を検出できないかもしれないことを意味する。さらに、腔由来の体液および排泄物由来の抗原が血清由来の抗原と免疫学的に類似しているかどうかを確実に結論づけることができなかった。したがって、癌患者の腔由来の体液および排泄物から調製した抗原が免疫アッセイ試薬ほど良好に機能するという観察は驚くべきであった。
【００３９】
本発明者らは、腹水、胸水、漿液腫または創傷ドレナージ液などの癌患者の体腔由来の体液から調製した試薬の使用において観察された特異性の向上は、患者の体腔内のこのような体液の起源によるものであると主張する。主要な器官と接触している腫瘍が存在していることにより体腔を起源とする体液がより多くの腫瘍マーカータンパク質の「癌関連の」型を拾い得ると主張されており、実際これは、癌の病状に関連しており、より少ない対応する「正常」タンパク質が含まれる。免疫応答（すなわち自己抗体の産生）の発生を引き起こすのは一般に「腫瘍」マーカータンパク質とその「正常」な対応物との差であるので、本発明者らは、癌患者から単離した腫瘍マーカーの使用に基づいた試薬が同等の「正常」タンパク質よりも癌の自己抗体に対して特異性が高いと仮定する。添付の実施例で示すように、このことは実際に、腹水、胸水または漿液腫から単離した腫瘍マーカー抗原の場合にそうである。
【００４０】
腫瘍マーカータンパク質源として腹水、胸水、漿液腫、水瘤または創傷ドレナージ液を使用することに関連するさらなる実用上の利点が存在する。これらの体液は、治療戦略の一部として患者から比較的大容量で容易に取り出し得る。これ以外の方法では廃棄されるこの材料は、有用なアッセイ試薬の貴重な源である。
【００４１】
腹水、胸水、漿液腫、水瘤または創傷ドレナージ液などの体液が大容量で産生されると考えると、このような体液中の腫瘍マーカータンパク質の濃度が、このような体液を抗原の実用的な源として使用することを可能にするのに十分に高いかどうかが懸念された。このような体液では、血液または血清と比較して腫瘍マーカータンパク質の濃度がより薄いことが当然予測される。驚くべきことに、本発明者らは、このような体液中の腫瘍マーカータンパク質の濃度が実際には血清よりも有意に高いことを観察した。したがって、このような体液から腫瘍マーカータンパク質を回収する際の収率に関して相当な利点が得られる。
【００４２】
さらに、２人以上の患者の体腔体液試料または排泄物をプールすることによってさらなる顕著な利点が得られることも、本発明者らによって観察されている。タンパク質の収率を増加させる以外に、この産物は個体試料由来のマーカータンパク質と少なくとも同等に良好な検出率を与え、同時に、バッチ間でその特徴がより一貫している。したがって、抗原の親和性が毎回十分であることに頼ることができる。
【００４３】
特定の実施形態では、本発明の方法は、それぞれが異なる腫瘍マーカータンパク質または同一の腫瘍マーカータンパク質上の異なるエピトープに対する特異性を有する２種類以上の自己抗体を（同時に）検出する免疫アッセイを含み得る。これらの方法は、典型的には、それぞれの試薬が異なる腫瘍マーカータンパク質を含む２種以上のアッセイ試薬のパネルの使用を含む。本明細書中で以降「パネルアッセイ」と呼ぶことがあるこれらの方法では、腫瘍または他の発癌性／新生物性の変化に対する個体の全体的な免疫応答を監視するために２種以上の試薬のパネルを利用する。したがって、これらの方法では、どの腫瘍マーカーが自己抗体の産生を生じる免疫応答を誘発させるかを示す、所定の個体における免疫応答の「プロフィール」を検出する。２種以上の異なる腫瘍マーカーに対する自己抗体の産生を監視するための２種以上の試薬のパネルの使用は、一般に単一のマーカーに対する自己抗体の検出よりも感度が高く、誤った陰性結果の頻度がはるかに低い。
【００４４】
本発明の方法は循環遊離自己抗体の検出に好ましいが、当業者には理解されるように、たとえば標識した腫瘍マーカーの競合的使用によって、免疫複合体中に存在する自己抗体の検出に適応させ得る。
【００４５】
好ましい応用では、本発明の方法は、ヒト対象または患者において癌関連の抗腫瘍性自己抗体の存在を検出するために使用し、最も好ましくは対象／患者から採取した体液の試料で実施するｉｎ  ｖｉｔｒｏ免疫アッセイの形をとる。このようなｉｎ  ｖｉｔｒｏ免疫アッセイは非侵襲性であり、患者における自己抗体産生のプロフィールを構築するために必要と考えられるだけの回数、「危険性のある」個体のスクリーニングにおいてなど疾患の発症前に、または疾患が経過する間中、繰り返すことができる（本方法の好ましい応用に関連して以下に詳述する）。自己抗体の存在について免疫アッセイによって試験する物質に関して本明細書中で使用する用語「体液」には、とりわけ、血漿、血清、全血、尿、汗、リンパ液、糞便、脳脊髄液、腹水、胸水、精液、痰または乳頭吸引液が含まれる。使用する体液の種類は、関与する癌の種類およびアッセイを使用する臨床の状況に応じて変化し得る。一般に、血清または血漿の試料でアッセイを行うことが好ましい。
【００４６】
前述のように、癌関連の自己抗体を検出／定量するために使用する「免疫アッセイ」は、当分野で知られている標準の技術に従って実施し得る。最も好ましい実施形態では、免疫アッセイはＥＬＩＳＡであり得る。ＥＬＩＳＡは当分野において一般的によく知られている。典型的な「サンドイッチ」ＥＬＩＳＡでは、試験下の自己抗体に対して特異性を有する試薬を固体表面（たとえば標準のマイクロタイターアッセイプレートのウェル、またはマイクロビーズの表面）上に固定し、自己抗体の存在について試験する体液の試料を固定した試薬と接触させる。試料中に存在する所望の特異性の任意の自己抗体が、固定した試薬に結合する。その後、任意の適切な方法を用いて、結合した自己抗体／試薬の複合体を検出し得る。好ましい一実施形態では、ヒト免疫グロブリンの１つまたは複数のクラスに共通のエピトープを特異的に認識する、標識した二次抗ヒト免疫グロブリン抗体を、自己抗体／試薬の複合体の検出に使用する。典型的には、二次抗体は抗ＩｇＧまたは抗ＩｇＭである。二次抗体は通常、検出可能なマーカー、典型的にはたとえばペルオキシダーゼやアルカリホスファターゼなどの酵素マーカーで標識し、これにより、検出可能な産物、たとえば提色、化学発光または蛍光産物を生じる酵素の基質を加えることによって、定量的な検出が可能となる。当分野で知られている他の種類の検出可能な標識を使用してもよく、同等の効果が得られる。
【００４７】
ＥＬＩＳＡは、目的が試料中に自己抗体が存在するか存在しないかを決定するだけである定性的形式で行うか、または試料中に存在する自己抗体の量の測定を提供する定量的形式で行い得る。定量的アッセイでは、試験下の自己抗体と類似の特異性を有する既知の濃度の抗体を含む一連の標準試料から得られたシグナルを測定することによって（アッセイで使用するものと同じ検出反応を使用する）検量線を作成し得る。その後、試験下の試料中に存在する自己抗体の量を検量線から内挿し得る。
【００４８】
パネルアッセイは、２種以上のアッセイ試薬のそれぞれをマルチウェルアッセイプレートの別々のウェル内に入れるマルチウェル形式で行うか、あるいは、２種以上のアッセイ試薬を単一の容器内に入れるシングルポット形式で行い得る。
【００４９】
本発明の方法は、本質的にすべての腫瘍マーカータンパク質に対する自己抗体を検出するための使用に適用させ得る。適切な「アッセイ試薬」は癌患者の体腔由来の体液および／または排泄物から調製し得る。具体的には、本方法を、上皮成長因子受容体関連タンパク質ｃ−ｅｒｂＢ２（Ｄｓｏｕｚａ，Ｂ．他、（１９９３）、Ｏｎｃｏｇｅｎｅ．、８：１７９７〜１８０６）、糖タンパク質ＭＵＣ１（Ｂａｔｒａ，Ｓ．Ｋ．他、（１９９２）、Ｉｎｔ．Ｊ．Ｐａｎｃｒｅａｔｏｌｏｇｙ．、１２：２７１〜２８３）ならびにシグナル伝達／細胞周期調節タンパク質Ｍｙｃ（Ｂｌａｃｋｗｏｏｄ，Ｅ．Ｍ．他、（１９９４）、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ  ｏｆ  ｔｈｅ  Ｃｅｌｌ、５：５９７〜６０９）、ｐ５３（Ｍａｔｌａｓｈｅｗｓｋｉ，Ｇ．他、（１９８４）、ＥＭＢＯ  Ｊ．、３：３２５７〜３２６２；Ｗｏｌｆ，Ｄ．他、（１９８５）、Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．、５：１８８７〜１８９３）およびｒａｓ（またはＲａｓ）（Ｃａｐｅｌｌａ，Ｇ．他、（１９９１）、Ｅｎｖｉｒｏｎ  Ｈｅａｌｔｈ  Ｐｅｒｓｐｅｃｔｉｖｅｓ．、９３：１２５〜１３１）、ならびにＢＲＣＡ１（Ｓｃｕｌｌｙ，Ｒ．他、（１９９７）、ＰＮＡＳ、９４：５６０５〜１０）、ＢＲＣＡ２（Ｓｈａｒａｎ，Ｓ．Ｋ．他、（１９９７）、Ｎａｔｕｒｅ．、３８６：８０４〜８１０）、ＡＰＣ（Ｓｕ，Ｌ．Ｋ．他、（１９９３）、Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．、５３：２７２８〜２７３１；Ｍｕｎｅｍｉｔｓｕ，Ｓ．他、（１９９５）、ＰＮＡＳ、９２：３０４６〜５０）、ＣＡ１２５（Ｎｏｕｗｅｎ，Ｅ．Ｊ．他、（１９９０）、Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ．、４５：１９２〜８）、ＰＳＡ（Ｒｏｓｅｎｂｅｒｇ，Ｒ．Ｓ．他、（１９９８）、Ｂｉｏｃｈｅｍ  Ｂｉｏｐｈｙｓ  Ｒｅｓ  Ｃｏｍｍｕｎ．、２４８：９３５〜９３９）、癌胎児性抗原ＣＥＡ（Ｄｕｆｆｙ，Ｍ．Ｊ．、（２００１）、Ｃｌｉｎ  Ｃｈｅｍ、４月、４７（４）：６２４〜３０）、およびＣＡ１９．９（Ｈａｇａ，Ｙ．他、（１９８９）、Ｃｌｉｎ  Ｂｉｏｃｈｅｍ、（１９８９）１０月、２２（５）：３６３〜８）に対する自己抗体を検出／測定するように適用させ得る。しかし、本発明はこれらの具体的な腫瘍マーカーに対する自己抗体の検出に限定されることを意図しない。
【００５０】
本発明のアッセイ方法は、様々な異なる臨床状況で使用し得る。具体的には、本方法を、癌の検出もしくは診断、患者における癌もしくは他の新生物性疾患の進行の監視、無症候性ヒト対象における初期の新生物性の変化もしくは初期の発癌性の変化の検出、癌を発生する危険性が高い対象を同定するための無症候性ヒト対象の集団のスクリーニング、抗癌治療に対する癌患者の応答の監視、以前に癌に罹患していると診断されたことがあり、存在する癌の量を低減させるために抗癌治療を受けた患者における再発性疾患の検出、または特定の患者で使用する抗癌ワクチンの選択において使用し得る。
【００５１】
本発明者らは、一般に癌関連の自己抗体のレベルが病状と正の相関を示すことを観察した（その内容が本明細書中に参考として組み込まれている国際公開公報ＷＯ９９／５８９７９号参照）。したがって、本発明の方法を臨床用途で使用する場合、適切な対照と比較した場合に抗腫瘍マーカー自己抗体のレベルが上昇していることは、癌の病状の指標として捉えられる。
【００５２】
たとえば、免疫アッセイを癌の診断で使用する場合、「正常」対照個体と比較して自己抗体のレベルが上昇していることは、個体が癌に罹患していることの指標として捉えられる。「正常」対照個体は、好ましくは年齢の一致した、臨床、イメージングおよび／または生化学的基準に基づいた癌の診断をまったく有さない対照である。
【００５３】
免疫アッセイを患者における癌または他の新生物性疾患の進行の監視で使用する場合、「正常対照」と比較して自己抗体のレベルが上昇していることは、患者において癌が存在することの指標として捉えられる。「正常対照」とは、好ましくは年齢の一致した、臨床、イメージングおよび／または生化学的基準に基づいた癌の診断をまったく有さない対照個体中に存在する自己抗体のレベルであり得る。あるいは、「正常対照」は試験下の特定の患者のために確立した「基準」レベルであり得る。「基準」レベルは、たとえば、最初の癌の診断または再発性の癌の診断がなされた際に存在する自己抗体のレベルであり得る。基準レベルを超える増加はすべて、患者に存在する癌の量が増加したことの指標として捉えられ、一方、基準より低い低減はすべて、患者に存在する癌の量が低減したことの指標として捉えられる。また、「基準」値は、たとえば、新しい治療を開始する前のレベルであり得る。自己抗体のレベルの変化は、治療の有効性の指標として捉えられる。治療に対する正の応答を示す「変化」の方向（すなわち増加または低減）は、治療の詳細な性質に依存する。任意の治療について、正の結果を示す自己抗体レベルの「変化」の方向を容易に決定し得る。これは、たとえば自己抗体レベルを、治療に対する応答の他の臨床指標または生化学的指標と比較して監視することによって行う。
【００５４】
免疫アッセイを、癌を発生する危険性が高い対象を同定するための無症候性ヒト対象の集団のスクリーニングに使用する場合、「正常」対照個体と比較して自己抗体のレベルが上昇している個体は、癌を発生する「危険性のある」にあると同定される。「正常」対照個体は、好ましくは、癌を発生する素因をまったく有さない、または癌を発生する危険性の有意な上昇がまったくみられないと同定された、年齢の一致した対照である。これの例外は、年齢自体が主要な危険因子である場合かもしれない。
【００５５】
免疫アッセイを抗癌治療に対する癌患者の応答の監視に使用する場合、治療後に自己抗体のレベルが低下していることは、患者が治療に正に応答したことの指標として捉えられる。治療を開始する前に取得した自己抗体の基準レベルは、治療が自己抗体レベルの「低下」をもたらすかどうかを決定するための比較目的で使用し得る。
【００５６】
免疫アッセイを再発性疾患の検出に使用する場合、「正常対照」と比較して患者の自己抗体のレベルが上昇していることは、疾患が再発したことの指標として捉えられる。「正常対照」は、好ましくは年齢の一致した、臨床、イメージングおよび／または生化学的基準に基づいた癌の診断をまったく有さない対照個体中に存在する自己抗体のレベルであり得る。あるいは、「正常対照」は試験下の特定の患者のために確立した「基準」レベルであり得る。「基準」レベルは、たとえば、臨床、イメージングおよび／または生化学的基準に基づいた疾患の寛解期の間に存在する自己抗体のレベルであり得る。
【００５７】
本発明のアッセイ方法は、多くの異なる種類の癌、たとえば乳癌、膀胱癌、大腸癌、前立腺癌および卵巣癌の検出に応用し得る。アッセイは、既存のスクリーニングおよび調査方法を補い得る。たとえば、原発性乳癌の場合、自己抗体の免疫アッセイを使用して、Ｘ線撮影では疑わしく見えない、マンモグラム上の小さな病変で生検を行うこと、または乳房イメージングを行うもしくは予定よりも早くイメージングを繰り返すことを、臨床家に警告することができる。診療室では、本発明のアッセイ方法は、その成功が作業者に依存する可能性がある現在のイメージング技術（すなわちマンモグラフィーおよび超音波）よりも客観的かつ再現性があることが予想される。
【００５８】
「パネルアッセイ」は、特定の臨床用途を考慮してあつらえ得る。少なくともｐ５３およびｃ−ｅｒｂＢ２に対する自己抗体を検出するための試薬のパネルは、多くの種類の癌に特に有用であり、検出する特定の癌、または検出する特定の癌のある時期との関連が知られている他のマーカーを任意選択で追加することができる。たとえば、乳癌には、パネルはＭＵＣ１、ｃ−ｍｙｃ、ＢＲＣＡ１、ＢＲＣＡ２およびＰＳＡのうち少なくとも一つを含み得、膀胱癌には、パネルは任意選択でＭＵＣ１およびｃ−ｍｙｃのうち少なくとも一つを含み得、大腸癌にはｒａｓおよびＡＰＣのうち少なくとも一つを、前立腺癌にはＰＳＡ、ＢＲＣＡ１およびＢＲＣＡ２のうち少なくとも一つを、または卵巣癌にはＢＲＣＡ１、ＢＲＣＡ２およびＣＡ１２５のうち少なくとも一つを含み得る。ｐ５３またはｃ−ｅｒｂＢ２が必ずしも必須ではない他の好ましい実施形態が存在する。たとえば、乳癌の場合、適切なパネルを以下から選択することができる。
ｐ５３およびＭＵＣ１と、任意選択でｃ−ｅｒｂＢ２、ｃ−ｍｙｃ、ＢＲＣＡ１、ＢＲＣＡ２およびＰＳＡのうち少なくとも一つ；
ｐ５３およびｃ−ｍｙｃと、任意選択でｃ−ｅｒｂＢ２、ＭＵＣ１、ＢＲＣＡ１、ＢＲＣＡ２およびＰＳＡのうち少なくとも一つ；
ｐ５３およびＢＲＣＡ１と、任意選択でｃ−ｅｒＢ２、ＭＵＣ１、ｃ−ｍｙｃ、ＢＲＣＡ２およびＰＳＡのうち少なくとも一つ；
ｐ５３およびＢＲＣＡ２と、任意選択でｃ−ｅｒｂＢ２、ＭＵＣ１、ｃ−ｍｙｃ、ＢＲＣＡ１およびＰＳＡのうち少なくとも一つ；
ｃ−ｅｒｂＢ２およびＭＵＣ１と、任意選択でｐ５３、ｃ−ｍｙｃ、ＢＲＣＡ１、ＢＲＣＡ２およびＰＳＡのうち少なくとも一つ；
ｃ−ｅｒｂＢ２およびｃ−ｍｙｃと、任意選択でｐ５３、ＭＵＣ１、ＢＲＣＡ１、ＢＲＣＡ２およびＰＳＡのうち少なくとも一つ；
ｃ−ｅｒｂＢ２およびＢＲＣＡ１と、任意選択でｐ５３、ＭＵＣ１、ｃ−ｍｙｃ、ＢＲＣＡ２およびＰＳＡのうち少なくとも一つ；
ｃ−ｅｒｂＢ２およびＢＲＣＡ２と、任意選択でｐ５３、ＭＵＣ１、ｃ−ｍｙｃ、ＢＲＣＡ１およびＰＳＡのうち少なくとも一つ。
【００５９】
大腸癌の場合、適切なパネルを以下から選択することができる。
ｐ５３およびｒａｓと、任意選択でｃ−ｅｒｂＢ２およびＡＰＣのうち少なくとも一つ；
ｐ５３およびＡＰＣと、任意選択でｃ−ｅｒｂＢ２およびＲａｓのうち少なくとも一つ；
ＲａｓおよびＡＰＣと、任意選択でｐ５３およびｃ−ｅｒｂＢ２のうち少なくとも一つ。
このようなパネルは、ＣＥＡまたはＣＡ１９−９も含み得る。
【００６０】
前立腺癌の場合、適切なパネルをたとえば以下から選択することができる。
ｐ５３およびＰＳＡと、任意選択でＢＲＣＡ１、ＢＲＣＡ２およびｃ−ｅｒｂＢ２のうち少なくとも一つ；
ｃ−ｅｒｂＢ２およびＰＳＡと、任意選択でｐ５３、ＢＲＣＡ１およびＢＲＣＡ２のうち少なくとも一つ。
【００６１】
卵巣癌の場合、適切なパネルをたとえば以下から選択することができる。
ｐ５３およびＣＡ１２５と、任意選択でｃ−ｅｒｂＢ２、ＢＲＣＡ１およびＢＲＣＡ２のうち少なくとも一つ；
ｃ−ｅｒｂＢ２およびＣＡ１２５と、任意選択でｐ５３、ＢＲＣＡ１およびＢＲＣＡ２のうち少なくとも一つ。
【００６２】
さらなる実施形態では、本発明の免疫アッセイ方法を、特定の患者で使用する抗癌ワクチンの選択で使用し得る。この実施形態では、異なる腫瘍マーカータンパク質のそれぞれに対する患者の免疫応答の相対強度を決定するために、患者から採取した体液の試料を、それぞれが異なる腫瘍マーカータンパク質に対応する２種以上の免疫アッセイ試薬のパネルを用いて試験する。所定の１種または複数種の腫瘍マーカータンパク質に対する「免疫応答の強度」は、免疫アッセイを用いて検出されるその腫瘍マーカータンパク質に特異的な癌関連の自己抗体の存在および／または量によって示される。自己抗体を定量する場合は、癌関連の自己抗体のレベルが高いほど免疫応答が強力である。その後、患者において最も強力な１つまたは複数の免疫応答（すなわち最も高い自己抗体のレベル）を誘発させると同定された１種または複数種の腫瘍マーカータンパク質を選択して、患者で使用する抗癌ワクチンの基盤を形成する。
【００６３】
さらなる実施形態では、本発明は特定の腫瘍マーカータンパク質に基づいた抗癌ワクチンを用いた対象のワクチン接種が液性免疫応答（すなわち前記腫瘍マーカータンパク質に対する抗体）の誘発に成功したかどうかを監視する方法を提供する。この方法は、癌関連の抗腫瘍性自己抗体を測定するために使用する免疫アッセイ方法（すなわち癌患者から採取した体腔体液または排泄物から精製した腫瘍マーカータンパク質に基づいた免疫アッセイ試薬の使用）と同じ方法に基づいており、唯一の差は、アッセイで測定するものが自己抗体の応答ではなく抗体の応答であることである。
【００６４】
本実施形態では、以前に抗癌ワクチン（たとえば関連する腫瘍マーカータンパク質もしくはその抗原性断片を含む免疫原性調製物、または前記関連する腫瘍マーカータンパク質をコードしている核酸を含むワクチン）で処置したことがある患者から採取した体液の試料を免疫アッセイ試薬と接触させ、免疫アッセイ試薬と試料中に存在する癌関連の抗体との特異的結合によって形成された複合体を検出する。ここでも、免疫アッセイ試薬は、１人もしくは複数の癌患者の本明細書中で定義した体腔由来の前記体液から調製した腫瘍マーカータンパク質の試料、および／または１人もしくは複数の癌患者の排泄物から調製した腫瘍マーカータンパク質の試料を含む。
【００６５】
癌などの検出における臨床用途に加えて、本発明の方法は、癌関連の抗腫瘍性自己抗体の存在について試験することが所望される任意の用途で使用し得る。たとえば、本発明の方法は、研究室において研究ツールとしての用途をもち得る。
【００６６】
本発明によって提供される腫瘍マーカータンパク質調製物は、本発明のアッセイ方法で使用する免疫アッセイ試薬（の成分）として有利に使用される。しかし、腫瘍マーカータンパク質調製物の有用性はこのような使用に限定されない。たとえば、これらも研究室において研究ツールとしての用途をもち得る。さらに、腫瘍マーカータンパク質が治療剤としての有用性をもつことが可能である。本明細書中で定義する体液によって提供された大量のタンパク質が利用可能なことにより、特定の腫瘍マーカータンパク質の治療剤としての有効性を決定するための、ヒトまたは非ヒト動物におけるｉｎ  ｖｉｔｒｏまたはｉｎ  ｖｉｖｏの前臨床および臨床試験が可能となる。このような試験方法は、本明細書中に記載した様々な腫瘍マーカータンパク質のそれぞれかつすべてに適用される。
【００６７】
本発明の腫瘍マーカー調製物の別の有用性は、癌の存在または癌の危険性の診断試験の開発と併せて使用する較正用物質としてであり、この試験は、患者の臨床試料中の任意の特定の腫瘍マーカータンパク質の存在および／またはレベルを決定することに基づく。本発明の腫瘍マーカータンパク質調製物を、このような試験用の検量線を構築するために使用することができる。具体的には、本発明のこの態様には、以下が含まれる。
【００６８】
臨床試料中の所定の腫瘍マーカータンパク質を測定または検出するためのアッセイを較正する方法であって、
ａ）それぞれが前記所定の腫瘍マーカータンパク質を含み、それぞれが他の前記試料のそれぞれとは異なる腫瘍マーカータンパク質の濃度を有する、本発明の方法に従って調製した腫瘍マーカータンパク質の試料を少なくとも２つ調製するステップと、
ｂ）  ｉ）分光測定もしくは分光光度方法、および／または
ｉｉ）前記腫瘍マーカータンパク質に対する抗体試薬
を用いて、前記試料それぞれの前記腫瘍マーカータンパク質の濃度の定量的測定を実施するステップと、
ｃ）ステップ（ｂ）で得られた測定値に基づいて腫瘍マーカータンパク質の濃度の検量線を構築するステップと
を含む方法。
【００６９】
このような検量線は、本明細書中に記載した特異的腫瘍マーカータンパク質の任意のものまたはすべてについて構築し得る。
【００７０】
本発明は、添付の図と共に、以下の実験実施例を参照してさらに理解されるであろう。
【００７１】
（実施例１）  ＭＵＣ１抗原を精製する一般的なプロトコル
モノクローナル抗ＭＵＣ１抗体Ｂ５５（ＮＣＲＣ１１、Ｘｏｍａ  Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎとしても知られる）をＣＮＢｒ−セファロースビーズとコンジュゲートさせる。Ｂ５５の代わりに他の抗ＭＵＣ１モノクローナル抗体でもよい。
【００７２】
腫瘍誘発体液（たとえば胸水、腹水、漿液腫または創傷ドレナージ液）をリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）で１／１０に希釈し、０．４５μｍで濾過する。
【００７３】
希釈した体液を抗ＭＵＣ１セファロースビーズ（２５ｍｌの希釈した体液に対して、１ｍｌの充填した体積のビーズ）と共に、終夜４℃で回転させながらインキュベートするか（「バッチ」法）、または抗ＭＵＣ１セファロースビーズを含む充填したカラムで再循環させる（「カラム」法）。
【００７４】
「バッチ」法
ビーズを遠心分離によって充填し、上清を除去する。
ビーズを５〜１０ｍｌのＰＢＳに再懸濁させ、１０分間回転させ、その後、遠心分離によって充填して上清を除去する。５回（またはＡ２８０ｎｍ〜０になるまで）繰り返す。
ビーズを５ｍｌの１００ｍＭ  ＤＥＡ、ｐＨ１１に再懸濁させ、室温で１０分間回転させる。
ビーズを遠心分離によって充填して上清を除去し、ｐＨ７のトリス緩衝液を加えることによってｐＨを７に調節し、最低２４時間の間ＰＢＳに対して透析する（１００ＤＥＡ画分）。
ビーズを５ｍｌのＰＢＳに再懸濁させ、１０分間回転させ、その後、ビーズを遠心分離によって充填して上清を除去し、ｐＨ７のトリス緩衝液を加えることによってｐＨを７に調節し、最低２４時間の間ＰＢＳに対して透析する（ＤＥＡ後画分）。
この２つの画分をプールして−２０℃で保存する前に、各画分のＭＵＣ１の含有量を、たとえばモノクローナル抗ＭＵＣ１抗体Ｃ５９５（Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｃａｍｐａｉｇｎ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、英国から入手可能）（詳細は実施例５を参照）またはＢ５５を用いて、ＥＬＩＳＡによって確認する。
【００７５】
「カラム」法
カラムを５倍カラム容積のＰＢＳで、または溶出液の読取値がＡ２８０ｎｍで約０になるまで洗浄する。
１倍カラム容積の１００  ｍＭ  ＤＥＡ、ｐＨ１１を流し、次いで５倍カラム容積のＰＢＳを流す。
ＤＥＡを流す時点からＰＢＳを流す時点まで溶出液画分を回収する（２ｍｌ）。
画分を終夜ＰＢＳに対して透析する。
画分を、たとえばモノクローナル抗ＭＵＣ１抗体Ｃ５９５またはＢ５５を用いて、ＥＬＩＳＡによってＭＵＣ１の含有量についてアッセイし、ＭＵＣ１の陽性画分をプールして−２０℃で保存する。
汚染免疫グロブリンを除去するために、ＭＵＣ１のプールした画分を５０ｍＭまでのジチオスレイトール（ＤＴＴ）と共に３０分間インキュベートし、その後、ヨードアセトアミド（７５ｍＭまで）と共にインキュベートした後、Ｓ３００カラムでゲル濾過を行う。
ＭＵＣ１およびヒト免疫グロブリン（Ｉｇ）含有量について、生じる画分（５ｍｌ）をＥＬＩＳＡによってアッセイする。
ＭＵＣ１含有画分（ヒトＩｇで汚染されていない）をプールし、−２０℃で保存する。
【００７６】
（実施例２ａ）  ＭＵＣ１６抗原（以前はＣＡ１２５として知られている）を精製する一般的なプロトコル
１体積（たとえば５０ｍｌ）の飽和硫酸アンモニウムを、１体積（たとえば５０ｍｌ）の腫瘍誘発体液（たとえば胸水、腹水、漿液腫または創傷ドレナージ液）に加え、終夜４℃でインキュベートした。
生じた沈殿物を遠心分離（標準のベンチトップ遠心分離機で、３５００ｒｐｍで３０分間）によって回収し、１／２体積のＰＢＳ中に再懸濁させる。
ＰＢＳを溶出緩衝液として用いて、この再懸濁をＳ３００カラム（２．５×１００ｃｍ）のゲル濾過クロマトグラフィーに供する。
画分（５または１０ｍｌ）を回収し、たとえばＩＣＮの抗ＣＡ１２５または抗ＭＵＣ１６抗体ＶＫ８（Ｍｅｍｏｒｉａｌ  Ｓｌｏａｎｅ  Ｋｅｔｔｅｒｉｎｇ、ニューヨーク）を用いて、ＥＬＩＳＡによってＭＵＣ１６についてアッセイし、ＭＵＣ１６の陽性画分をプールして−２０℃で保存する。
汚染免疫グロブリンを除去するために、ＭＵＣ１６のプールをＮａＳＣＮ（１．５Ｍまで）と共に１０分間、ＤＴＴ（５０ｍＭまで）と共に３０分間、次いでヨードアセトアミド（７５ｍＭまで）と共に３０分間インキュベートし、その後、たとえばＳ３００またはＳｕｐｅｒｄｅｘ（商標）７５カラムでゲル濾過を行う。
ＭＵＣ１６およびヒト免疫グロブリン（Ｉｇ）含有量について、生じた画分（５ｍｌ）をＥＬＩＳＡによってアッセイする。
ＭＵＣ１６含有画分（ヒトＩｇで汚染されていない）をプールし、−２０℃で保存する。
【００７７】
（実施例２ｂ）  Ｉｇ後破壊ゲル濾過クロマトグラフィー
上述の様式で調製した試料で、Ｉｇ後破壊ゲル濾過からの画分を、抗ＭＵＣ１６抗体ＶＫ８を用いてＭＵＣ１６について、および抗ヒトＩｇを用いてヒトＩｇについてアッセイした。結果を図１に示す。明らかに示されているように、実質的に免疫グロブリンを含まない２つのＭＵＣ１６ピークが溶出されている。
【００７８】
（実施例３）  ｃ−ｍｙｃ抗原の精製
以下以外は、ＭＵＣ１の精製方法（実施例１）に従う。
モノクローナル抗ｃ−ｍｙｃ抗体９Ｅ１０（ＡＴＣＣ）を使用する（または同等の抗ｃ−ｍｙｃ抗体）。
ゲル濾過をＳｕｐｅｒｄｅｘ（商標）７５カラムで行う。
【００７９】
電気泳動およびウエスタンブロット
ＭＵＣ１、ＭＵＣ１６およびｃ−ｍｙｃ画分の純度を、ＢｉｏＲａｄ（商標）Ｍｉｎｉ  Ｐｒｏｔｅａｎ  ＩＩＩ（商標）システムおよびＤｒｙＢｌｏｔ（商標）システムを使用して、標準のプロトコルに従って、変性ポリアクリルアミドゲル電気泳動およびウエスタンブロットによって評価する。
銀染色によってｃ−ｍｙｃのタンパク質パターンがゲル上に現された（図２）。モノクローナル抗体９Ｅ１０を用いてｃ−ｍｙｃのウエスタンブロットをイムノプロービングした（図３）。それぞれの場合で、ｃ−ｍｙｃならびに免疫グロブリン重鎖および軽鎖を同定する。
【００８０】
（実施例４）  標準の自己抗体アッセイ
ＰＢＳで適切に希釈した腫瘍抗原（たとえば実施例１〜３に従って調製されるＭＵＣ１、ＭＵＣ１６またはｃ−ｍｙｃ）を標準の９６ウェルマイクロタイタープレートに１ウェルあたり５０μｌ入れ、終夜空気乾燥させた。
残留塩の結晶を除去するためにプレートをＰＢＳ／Ｔｗｅｅｎ（商標）で１回洗浄する。
プレートを０．１％カゼインまたは１％ＢＳＡのＰＢＳ溶液で６０分間ブロックする。
プレートをＰＢＳ／Ｔｗｅｅｎ（商標）で３回洗浄する。
血清（ＰＢＳ／０．１％カゼインで１／１００に希釈した）を３つ組（１ウェルあたり５０μｌ）で入れ、モノクローナル抗体対照も入れる。
６０分間室温で、振盪しながらインキュベートする。
プレートをＰＢＳ／Ｔｗｅｅｎ（商標）で４回洗浄する。
西洋ワサビペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）−コンジュゲート抗Ｉｇ抗体（Ｄａｋｏ）を、各ウェル（１ウェルあたり５０μｌ）に、抗ヒトには１／８０００の希釈率で、抗マウスには１／１０００の希釈率で加える。
６０分間室温で、振盪しながらインキュベートする。
プレートをＰＢＳ／Ｔｗｅｅｎ（商標）で４回洗浄する。
１ウェルあたり５０μｌのＴＭＢ（テトラメチルベンザジン）を加え、１０分間の間Ａ６５０ｎｍで動力学的に読み取った。
【００８１】
実験データ
実施例４に記載の方法を使用して、ＭＵＣ１およびＭＵＣ１６に対する癌関連の自己抗体を、本明細書中に記載した様々な源から単離したＭＵＣ１およびＭＵＣ１６を用いて、様々な血清中で測定した。得られた結果を図４〜６に示す。
【００８２】
図４は、様々な体液、すなわち尿（「正常」個体由来）、癌患者由来の胸水および進行乳癌患者由来の血清（ＡＢＣ血清）から単離したＭＵＣ１に対する患者の血清自己抗体の反応性の比較を示す図である。試験した患者血清は、本人は乳癌の徴候をまったく示さないが乳癌の家族歴（すなわち１人または複数の親戚が若い年齢で乳癌に罹患した）を有する個体由来または原発性乳癌に罹患している個体由来であった。
【００８３】
尿（正常）、胸水またはＡＢＣ血清から単離したＭＵＣ１を抗原として利用して、標準の自己抗体ＥＬＩＳＡを上述のように行った。データは、ＭＵＣ１抗原のそれぞれに対してＤＦ３抗ＭＵＣ１モノクローナル抗体（血清試料と対比）を使用した内部対照反応で規格化した。
【００８４】
図から見受けられるように、正常尿（ｎＭＵＣ１）由来のＭＵＣ１は、その反応性が胸水（ＰＥ）またはＡＢＣ血清由来のＭＵＣ１に比べて一貫して低かった。さらに、ＰＥ由来のＭＵＣ１は、癌関連のＭＵＣ１自己抗体に対する反応性についてＡＢＣに罹患している患者の血清から単離したＭＵＣ１と類似しており、したがって、同様の診断値であった。
【００８５】
図５は、試験したすべての血清試料が正常個体（乳癌も乳癌の家族歴もない）についてであったこと以外は図４と同一の演習の結果を示す図である。図から見られるように、３つの異なる抗原に対する血清の反応性に有意な差は存在しない。
【００８６】
図６は、卵巣腫瘤（手術前）に罹患している患者の血清由来のＭＵＣ１６癌関連の自己抗体の、正常個体の血清および乳癌の患者の腹水から単離したＭＵＣ１６（ＣＡ１２５）に対する反応性を示す図である。抗原は実施例２と同様に調製し、自己抗体は実施例４に記載のＥＬＩＳＡアッセイを用いて検出した。
【００８７】
図から見られるように、「正常」ＭＵＣ１６と比較して、腹水由来のＭＵＣ１６抗原で癌関連のＭＵＣ１６自己抗体の反応性が大きく増強していることが見られる。したがって、この実験結果では癌関連の自己抗体を検出するための抗原源としての腹水の有用性が確認された。
【００８８】
（実施例５）  腹水、胸水、漿液腫および創傷ドレナージ液中の癌関連のＭＵＣ１レベルの測定
癌に罹患している患者の血清中に見つかるＭＵＣ１レベルを、それぞれの場合で血清試料を採取した患者と同じ患者中の腹水、胸水、創傷ドレナージ液または漿液腫中に見つかるレベルと比較した。試料中のＭＵＣ１を以下のプロトコルに従って定量した。
【００８９】
捕捉ＭＵＣ１  ＥＬＩＳＡプロトコル
１ウェルあたり５０μｌの抗体溶液をマイクロタイタープレートの３つ組のウェルに分配し（通常１μｇ  ｍｌ−１のＣ５９５（ＩｇＧ）および適切な陰性対照）、室温で振盪しながら１時間インキュベートし、タンパク質をプレートに吸着させる。
プレートをＰＢＳ／Ｔｗｅｅｎで、１ウェルあたり２５０μｌを用いて４回洗浄する。
１％のＢＳＡを１ウェルあたり１００μｌ使用してプレートをブロックし、室温で振盪しながら１時間インキュベートする。
プレートをＰＢＳ／Ｔｗｅｅｎで、１ウェルあたり２５０μｌを用いて４回洗浄する。
１ウェルあたり５０μｌの試験する体液（ＰＢＳで１／１０に希釈）を入れ、室温で振盪しながら１時間インキュベートする。
プレートをＰＢＳ／Ｔｗｅｅｎで、１ウェルあたり２５０μｌを用いて４回洗浄する。
１ウェルあたり５０μｌのビオチン標識したＣ５９５（１μｇ／ｍｌ）を加え、室温で振盪しながら１時間インキュベートする。
プレートをＰＢＳ／Ｔｗｅｅｎで、１ウェルあたり２５０μｌを用いて４回洗浄する。
１ウェルあたり５０μｌのエキストラアビジンペルオキシダイスを１／１０００の希釈率で加え、室温で振盪しながら１時間インキュベートする。
プレートをＰＢＳ／Ｔｗｅｅｎで、１ウェルあたり２５０μｌを用いて４回洗浄する。
１ウェルあたり５０μｌのＴＭＢ基質を加え、６５０ｎｍで１０分間動的に読み取った。
【００９０】
結果を図７および８に示す。
【００９１】
データから容易に分かるように、癌関連のＭＵＣ１抗原の血清レベルは腹水、胸水、漿液腫または創傷ドレナージ液のいずれで見つかるレベルよりも有意に低かった。したがって、これらの体腔体液から腫瘍マーカー抗原を回収することは、収率に関して相当な利益が得られる。
【００９２】
（実施例６）  漿液腫由来の癌関連のＭＵＣ１に対して精製したヒト抗ＭＵＣ１抗体の反応性
患者Ｍの漿液腫由来のヒト抗体を、イムノアフィニティークロマトグラフィーで、同じ癌患者Ｍの漿液腫液由来のＭＵＣ１に対して精製した。その後、精製した抗体をＢＳＡにコンジュゲートしたＭＵＣ１タンパク質コアペプチドならびに癌の診断の２年間に採取した患者Ｍの尿および癌の診断後に採取した患者Ｍの漿液腫由来のＭＵＣ１に対して試験した。漿液腫からの抗体の精製は、以下のプロトコルに従って実施した。
【００９３】
ヒト抗ＭＵＣ１抗体の精製
ヒト抗ＭＵＣ１自己抗体の精製は、アフィニティークロマトグラフィーによって行った。
ＰＢＳ、ｐＨ７．６で１０倍に希釈した漿液腫液を、（製造者の指示に従って）Ｐｔ−ＭＵＣ１に結合させたＣＮＢｒセファロース（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）からなるカラムの形式でアフィニティーマトリックスに載せ、０．５ｍｌ／分で終夜４℃で再循環させた。
漿液腫液を適用させた後、カラムを１５ｍｌのＰＢＳで洗浄し（Ａ２８０ｎｍの読取値が０に戻ることを確実にする）、１０ｍｌの３Ｍ  ＮａＳＣＮを１ｍ／分で用いて抗体を溶出させた。
全体を通して１ｍｌの画分を回収し、ＰＢＳに対して透析することによって脱塩し、ＥＬＩＳＡによって抗体の存在について試験した。
陽性の画分をプールし、抗体の純度を確認し（ＰＡＧＥによる）、抗体の濃度を決定した。
上記で同定した３つのＭＵＣ１抗原に対する精製した抗体のアッセイを、以下のプロトコルに従って実施した。
【００９４】
ＭＵＣ１  ＥＬＩＳＡプロトコル
１ウェルあたり５０μｌのＭＵＣ１抗原溶液をマイクロタイタープレートの３つ組のウェルに分配し、室温で終夜乾燥する。
プレートをＰＢＳ／Ｔｗｅｅｎで、１ウェルあたり２５０μｌを用いて２回洗浄する。
１％のＢＳＡを１ウェルあたり１００μｌ使用してプレートをブロックし、室温で振盪しながら１時間インキュベートする。
プレートをＰＢＳ／Ｔｗｅｅｎで、１ウェルあたり２５０μｌを用いて２回洗浄する。
１ウェルあたり５０μｌの精製した抗体溶液を１μｇ／ｍｌで加え、室温で振盪しながら１時間インキュベートする。
プレートをＰＢＳ／Ｔｗｅｅｎで、１ウェルあたり２５０μｌを用いて４回洗浄する。
製造者の指示に従って新しく希釈した１ウェルあたり５０μｌのα−ヒトＩｇ  ＨＲＰ（ＤＡＫＯ）を加え、室温で振盪しながら１時間インキュベートする。
プレートをＰＢＳ／Ｔｗｅｅｎで、１ウェルあたり２５０μｌを用いて４回洗浄する。
１ウェルあたり５０μｌのＴＭＢ基質を加え、６５０ｎｍで１０分間動的に読み取る。
【００９５】
結果を図９に示す。
【００９６】
ＭＵＣ１ペプチドに対する抗体の反応性は無視できるほどであった。正常なＭＵＣ１に対する抗体の反応性は、患者Ｍの漿液腫由来のＭＵＣ１に対して見られるものよりも相当低かった。この結果から、正常なＭＵＣ１分子は、その免疫認識に関して癌に罹患している個体由来の漿液腫液で見つかるものとは実質的に異なることが推論することができる。
【００９７】
（実施例７）  プールした腹水および胸水から精製したＭＵＣ１に対する血清の反応性
ＭＵＣ１を、実施例１に記載のプロトコルを用いて進行乳癌に罹患している患者のプールした腹水およびプールした胸水から精製し、原発性乳癌に罹患している患者由来の血清に対するその反応性を、実施例４に記載のように測定した。プールした体液由来の抗原を、それぞれの場合でそれぞれＡＢＣに罹患している患者の腹水または胸水の３つの個別の試料から単離した抗原と比較した。結果を図１０および１１に示す。
【００９８】
腹水および胸水のどちらの場合でも、プールした体液由来のＭＵＣ１の反応性は個体試料から単離したものと同様に良好であった。さらに、個体由来の試料の使用には反応性に広い範囲のばらつきが存在するが、プールした試料は産物のより大きな一貫性をもたらすので、反応性がプールした試料のバッチ間で有意にばらつくとは考えられない。
【００９９】
（実施例８）  ＭＵＣ１を用いた検量線
胸水から単離したＭＵＣ１の段階希釈液を調製した。これらのＭＵＣ１の濃度は、ヒト血清を使用しない以外は実施例４に示した方法によって測定した。検出は、マウスＢ５５抗体、次いでＤａｋｏ抗マウスＨＲＰによって行い、動的な読取りではなく終点を読み取った。
【０１００】
結果を図１２に示し、これにより本発明に従って調製した腫瘍マーカータンパク質の較正用物質としての有用性が確認される。
【０１０１】
腫瘍マーカータンパク質に対する抗体の源
以下にアフィニティークロマトグラフィーによる腫瘍マーカータンパク質の精製に使用し得る抗体の源を示す。アフィニティークロマトグラフィーは、（ＭＵＣ１に関して）実施例１に記載した一般的な方法に従って、適切な改変を用いて行い得る。関連するマーカータンパク質に特異的な他の抗体も使用し得ることが理解されよう。
【０１０２】
癌胎児性抗原（ＣＥＡ）：
１１１６ＮＳ−３ｄ、ＡＴＣＣ番号ＣＲＬ−８０１９、ＣＥＡに対するモノクローナル抗体産生Ｂリンパ球ハイブリドーマ；Ｔ８４．６６Ａ３．１Ａ．１Ｆ２、ＡＴＣＣ番号ＨＢ−８７４７、ＣＥＡに対するモノクローナル抗体産生Ｂリンパ球ハイブリドーマ。
【０１０３】
Ｐ５３：
Ｓｅｒｏｔｅｃ  Ｌｔｄ、Ｋｉｄｌｉｎｇｔｏｎ、オックスフォードＯＸ５  １ＪＥ、英国、から市販されているウサギ抗ヒトｐ５３ポリクローナル。
Ｓｉｇｍａから市販されているモノクローナル抗ｐ５３、クローンＢＰ５３−１２。
【０１０４】
ＣＡ１９−９：
Ｓｅｒｏｔｅｃ  Ｌｔｄ、Ｋｉｄｌｉｎｇｔｏｎ、オックスフォードＯＸ５  １ＪＥ、英国、から市販されているマウス抗ヒトＣＡ１９−９モノクローナル、クローン１１１６−ＮＳ−１９−９タイプ、ＩｇＧ１。
【０１０５】
Ｈ−ｒａｓ  ｐ２１：
Ｓａｎｔａ  Ｃｒｕｚ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｉｎｃ．、サンタクルーズ、カリフォルニア州、米国、から市販されているウサギポリクローナルＩｇＧ。
【０１０６】
ＢＲＣＡ１：
Ｓａｎｔａ  Ｃｒｕｚ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｉｎｃ．、サンタクルーズ、カリフォルニア州、米国、から市販されているウサギポリクローナルＩｇＧ。
【０１０７】
ＢＲＣＡ２：
Ｓａｎｔａ  Ｃｒｕｚ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｉｎｃ．、サンタクルーズ、カリフォルニア州、米国、から市販されているヤギポリクローナルＩｇＧ。
【０１０８】
ＡＰＣ：
Ｓａｎｔａ  Ｃｒｕｚ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｉｎｃ．、サンタクルーズ、カリフォルニア州、米国、から市販されているウサギポリクローナルＩｇＧ。
【０１０９】
ＰＳＡ：
Ｓａｎｔａ  Ｃｒｕｚ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｉｎｃ．、サンタクルーズ、カリフォルニア州、米国、から市販されているマウスモノクローナルＩｇＧ。
【図面の簡単な説明】
【０１１０】
【図１】腹水由来のＭＵＣ１６（ＣＡ１２５）調製物の、Ｉｇ後破壊ゲル濾過クロマトグラムを示す図である。
【図２】イムノアフィニティークロマトグラフィー後の、腹水由来のｃ−ｍｙｃ精製物の銀染色したゲルを示す図である。
【図３】イムノアフィニティークロマトグラフィー後の、腹水由来のｃ−ｍｙｃ精製物のイムノプロービングしたブロットを示す図である。
【図４】様々な体液、すなわち尿（「正常」個体由来）、癌患者由来の胸水および進行乳癌患者由来の血清（ＡＢＣ血清）から単離したＭＵＣ１に対する、患者の血清（本人は乳癌の徴候をまったく示さないが乳癌の家族歴を有する患者、および原発性乳癌に罹患している患者）自己抗体の反応性の比較を示す図である。
【図５】様々な体液、すなわち尿のＭＵＣ１（正常）、癌患者および進行乳癌患者（ＡＢＣ血清）由来の胸水由来のＭＵＣ１に対する、正常個体由来の血清中の自己抗体の反応性を示す図である。
【図６】腹水由来の正常ＭＵＣ１６（ＣＡ１２５）および腫瘍関連ＭＵＣ１６に対する、卵巣腫瘤に罹患している手術前の患者由来の血清試料中の自己抗体の反応性を示す図である。
【図７】血清、胸水および腹水中の癌関連のＭＵＣ１の濃度を示す図である。
【図８】血清、創傷ドレナージ液および漿液腫中の癌関連のＭＵＣ１の濃度を示す図である。
【図９】癌の診断の２年間に採取した患者Ｍの精製した尿のＭＵＣ１、患者Ｍの漿液腫由来のＭＵＣ１、癌の診断後およびＭＵＣ１タンパク質核ペプチドとコンジュゲートしたウシ血清アルブミンに対する、癌に罹患している患者Ｍの漿液腫由来の精製した自己抗体の反応性を示す図である。
【図１０】プールした腹水から精製したＭＵＣ１および癌患者の個々の腹水試料から精製したＭＵＣ１に対する、血清自己抗体の反応性を示す図である。
【図１１】プールした胸水から精製したＭＵＣ１および癌患者の個々の胸水試料から精製したＭＵＣ１に対する、血清自己抗体の反応性の反応性を示す図である。
【図１２】胸水由来のＭＵＣ１から作成した検量線を示す図である。
【図１】
0004759267.tif 000002
【図２】
0004759267.tif 000003
【図３】
0004759267.tif 000004
【図４】
0004759267.tif 000005
【図５】
0004759267.tif 000006
【図６】
0004759267.tif 000007
【図７】
0004759267.tif 000008
【図８】
0004759267.tif 000009
【図９】
0004759267.tif 000010
【図１０】
0004759267.tif 000011
【図１１】
0004759267.tif 000012
【図１２】
0004759267.tif 000013