(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
高剪断条件下で起こる血小板の凝集及び接着を分離するための組成物であって、有効量の選択的PI3-キナーゼβ阻害薬を含んでなり、当該選択的PI3-キナーゼβ阻害薬が、
(±)-7-メチル-2-モルホリン-4-イル-9-(1-フェニルアミノエチル)-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-221)；
8-1-(フェニルアミノ)エチル-6-メチル-2-(4-ピリジニル)-4H-1-ベンゾピラン-4-オン(TGX-286)；および
8-(1-(2-アミノフェニルアミノ)エチル-2-(4-ピリジニル)-4H-ベンゾピラン-1-オン(KN327)
からなる群から選択される前記組成物。
【請求項２】
抗血栓のための組成物であって、有効量の選択的PI3-キナーゼβ阻害薬を含んでなり、当該選択的PI3-キナーゼβ阻害薬が、
(±)-7-メチル-2-モルホリン-4-イル-9-(1-フェニルアミノエチル)-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-221)；
8-1-(フェニルアミノ)エチル-6-メチル-2-(4-ピリジニル)-4H-1-ベンゾピラン-4-オン(TGX-286)；および
8-(1-(2-アミノフェニルアミノ)エチル-2-(4-ピリジニル)-4H-ベンゾピラン-1-オン(KN327)
からなる群から選択される前記組成物。
【請求項３】
(±)-7-メチル-2-モルホリン-4-イル-9-(1-フェニルアミノエチル)-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-221)；
8-1-(フェニルアミノ)エチル-6-メチル-2-(4-ピリジニル)-4H-1-ベンゾピラン-4-オン(TGX-286)；および
8-(1-(2-アミノフェニルアミノ)エチル-2-(4-ピリジニル)-4H-ベンゾピラン-1-オン(KN327)
からなる群から選択される化合物。
【請求項４】
ホスホイノシチド3-キナーゼを阻害するため、心血管疾患を予防若しくは治療するため、癌を予防若しくは治療するため、又は白血球機能障害に関連する疾患を予防若しくは治療するための組成物であって、有効量の8-1-(フェニルアミノ)エチル-6-メチル-2-(4-ピリジニル)-4H-1-ベンゾピラン-4-オン(TGX-286)；および8-(1-(2-アミノフェニルアミノ)エチル-2-(4-ピリジニル)-4H-ベンゾピラン-1-オン(KN327)からなる群から選択される化合物を含み、前記白血球機能障害に関連する疾患が急性及び／又は慢性の炎症性疾患である、前記組成物。
【請求項５】
ホスホイノシチド3-キナーゼを阻害するため、又は心血管疾患を予防若しくは治療するための組成物であって、有効量の(±)-7-メチル-2-モルホリン-4-イル-9-(1-フェニルアミノエチル)-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-221)を含む、前記組成物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、概して、新規抗血栓療法及び該新規療法に有用な化合物に関する。より詳細には、本発明は、ホスホイノシチド(PI)3−キナーゼβの選択的阻害薬、該選択的阻害薬の抗血栓療法における使用、及び、化合物が有するPI3-キナーゼβの選択的阻害活性を検出することによる新規抗血栓療法に有用な化合物のスクリーニング方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
血小板は、止血の過程において根本的な役割を果たす特殊化した粘着細胞である。通常の状態では、血小板は、血管内皮に接着することはなく、また、血管内皮細胞によって活性化されることもない。しかしながら、血管内皮が損傷を受けたり、又は、プラークが破裂したりすると、流れている血液が、コラーゲン、フィブロネクチン及びフォンウィルブラント因子(vWF)などのようなさまざまな血栓形成性因子に接触することとなる。循環する血小板は、これら血栓形成性因子の受容体を有している。血管が損傷を受けると、血小板は、糖タンパク質GP Ib受容体を介して、プラークが破裂した部位の特定の内皮下接着性タンパク質(例えば、フォンウィルブラント因子(vWF))に結合し(血小板接着)、活性化されて(血小板活性化)、アデノシン二リン酸(ADP)、トロンビン、セロトニン及び血管収縮性トロンボキサンA2(TxA2)などの多くの物質を産生する。活性化されたADP受容体が、次に、血小板の表面にあるGP IIb/IIIa受容体を活性化する。これらの受容体が、血小板を互いに連結させるフィブリノーゲン架橋の部位となり(血小板凝集)、その後、血栓が形成される。
【０００３】
従って、進行したアテローム斑が突然破裂するか又は進行したアテローム斑に突然裂け目ができると、異常に大きな血小板接着応答が起こり、これにより、一般に、血管閉塞性の血小板血栓が形成される。これらの血栓が冠状動脈循環又は脳循環内に形成されると、それぞれ、急性心筋梗塞及び卒中が引き起こされるが、この急性心筋梗塞と卒中は、合わせて、工業化した世界における死亡の主要な原因となっている。さらにまた、血小板血栓が形成されると、不安定狭心症、突然死、一過性脳虚血発作、一過性黒内障、並びに、手足及び内臓の急性虚血などの別の多くの臨床状態が引き起こされる。破裂したプラークが血栓を形成する可能性を増大させる一因となる多くの要因には、(1)プラーク内の接着性基体の高い反応性；(2)損傷部位における組織因子の存在；及び、(3)アテローム血栓が形成される過程により血管管腔が狭くなることが原因となって起こる高剪断の間接的な血小板の活性化作用などがある。
【０００４】
既存の抗血栓療法は、主として、血栓が形成される過程における1つ以上の重要な段階を標的にしている。即ち、血栓症を緩和するために、抗凝血薬及び抗血小板薬がしばしば使用される。血液の凝固は、多くの場合、1種以上のクマリン誘導体(例えば、ワルファリン及びジクマロールなど)若しくは荷電ポリマー(例えば、ヘパリン、ヒルジン又はヒルログなど)などの適切な抗凝血薬を投与するか、又は、抗血小板薬(例えば、アスピリン、クロピドグレル、チクロピジン、ジピリジモール(dipyridimole)、又は、何種類かあるGPIIb/IIIa受容体拮抗薬の内に1種など)を用いることにより、最小限度に抑えることができるか又は除去することができる。しかしながら、抗凝血薬及び血小板阻害薬は、出血、再閉塞、「ホワイトクロット(white-clot)」症候群、刺激状態、先天的欠損症、血小板減少症及び肝機能障害などのような副作用が原因で、重大な制限を受ける。さらに、抗凝血薬及び血小板阻害薬を長期投与すると、特に、生命にかかわる病気又は出血のリスクが増大し得る。
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
従って、既存の抗血栓療法の上記欠点を回避するために、病理学的な血栓の形成にとって欠くことのできないプロセスを正常な止血を妨げることなく選択的に標的とする新規な抗血栓療法を開発することが求められている。
【０００６】
病理学的な血栓形成を促進する上で、流動学的な障害(高剪断及び乱流)が主要な役割を果たしている。従って、上記のような方策の一つは、血小板における機械感覚要素を標的とすることにより、高剪断応力が有する血小板活性化作用を弱めることであろう。しかしながら、本発明以前は、止血も含めて、剪断により惹起される血小板の活性化にとって重要なシグナルイベントは、同定されていない。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
従って、本発明の目的は、高剪断条件下で起こる血小板の凝集及び接着を分離させる方法を提供することであり、ここで、該方法は、そのような血小板の凝集及び接着を分離させることが必要な患者に有効量の選択的PI3-キナーゼ阻害薬を投与することを含んでなる。
【０００８】
本発明のさらなる目的は、抗血栓方法を提供することであり、ここで、該方法は、抗血栓が必要な患者に有効量の選択的PI3-キナーゼβ阻害薬を投与することを含んでなる。該方法によれば、剪断により惹起される血小板の活性化にとって重要なPI3-キナーゼβを標的とすることにより、正常な止血に悪影響を与えることなく、血栓の形成を特異的に阻害することができる。従って、本発明には、出血時間が長くなるなどの正常な止血を破壊することに起因する副作用が伴わない。
【０００９】
従って、本発明の別の目的は、剪断により惹起される血小板の活性化を阻害する方法を提供することであり、ここで、該方法は、そのような血小板の活性化を阻害することが必要な患者に有効量の選択的PI3-キナーゼβ阻害薬を投与することを含んでなる。さらにまた、冠状動脈閉塞、心臓発作、急性冠動脈症候群、急性心筋梗塞、再狭窄、アテローム性動脈硬化症及び不安定狭心症などのような心血管疾患を予防又は治療する方法を提供することも本発明の目的であり、ここで、該方法は、そのような心血管疾患を予防又は治療することが必要な患者に有効量の選択的PI3-キナーゼβ阻害薬を投与することによる。この方法では、選択的PI3-キナーゼβ阻害薬を使用することにより、出血時間が長くなるなどの正常な止血を破壊することに起因する副作用を回避することが可能である。
【００１０】
本発明の方法では、単離したPI3-キナーゼのイソ型に候補化合物を接触させること及び各イソ型に対する該化合物の阻害効果を検出することを含むアプローチ(ここで、各イソ型に対する該化合物の検出された効果を比較することにより、該化合物は、選択的PI3-キナーゼβ阻害薬として決定される)により同定される選択的PI3-キナーゼβ阻害薬を使用するのが好ましい。
【００１１】
従って、本発明の別の目的は、選択的PI3-キナーゼβについてのスクリーニング方法を提供することであり、ここで、該方法は、単離したPI3-キナーゼのイソ型に候補化合物を接触させること及び各イソ型に対する該化合物の阻害効果を検出することを含んでなるが、その際、各イソ型に対する該化合物の検出された効果を比較することにより、該化合物は、選択的PI3-キナーゼβ阻害薬として決定される。
【００１２】
好ましくは、該選択的PI3-キナーゼβ阻害薬は、生化学的なアッセイにおいて、別のタイプＩ PI3-キナーゼのイソ型に比較して、PI3-キナーゼβの阻害について、少なくとも約10倍以上の選択性、より好ましくは、20倍以上の選択性、さらに好ましくは、30倍以上の選択性を有する。そのような別のタイプＩ PI3-キナーゼには、PI3-キナーゼα、PI3-キナーゼγ及びPI3-キナーゼδなどがある。
【００１３】
本発明の別の目的は、抗血栓が必要な患者に有効量の選択的PI3-キナーゼβ阻害薬を投与することを含んでなる抗血栓のための方法に関し、但し、該阻害薬は、式(II)：
【化１】
0004646626.tif 000002
【００１４】
[式中、
Rは、H、OH、F、Cl、Br、I、C1-C6アルキル、アリール、又は、(CH2)n-アリールであり；
R1は、H、OH、F、Cl、Br、I、C1-C6アルキル、C3-C6シクロアルキル、CH=CH-アリール、C≡C-アリール、(CHR3)n-アリール、NR3-C1-C6アルキル、NR3-シクロアルキル、NR3-(CHR3)n-アリール、(CHR3)n-NR3-アルキル、(CHR3)n-NR3-シクロアルキル、(CHR3)n-O-アリール、(CHR3)n-O-アルキル、(CHR3)n-O-シクロアルキル、O-(CHR3)n-アリール、S-(CHR3)n-アリール、又は、CO-アリールであり、その際、nは、0、1又は2であり、アルキル、シクロアルキル又はアリールは、場合により、F、Cl、Br、I、CN、CO2H、CO2R3、NO2、CF3、置換されているか若しくは置換されていないC1-C6アルキル、置換されているか若しくは置換されていないシクロアルキル、置換されているか若しくは置換されていないアリール、OCF3、OR3、OSO2-アリール、置換されているか若しくは置換されていないアミン、NHCOR3、NHSO2R3、CONHR3又はSO2NHR3で置換されていてもよく；
R3は、Hであるか、又は、置換されているか若しくは置換されていないC1-C6アルキル、置換されているか若しくは置換されていないアリールである]
で表される化合物（但し、式(II)の化合物が、
9-(3-ピリジニルメチル)オキシ-2-モルホリニル-4H-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-140)；
7-メチル-9-フェニルアミノメチル-2-モルホリニル-4H-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-183)；
8-(4-メチルフェニル)2-(4-モルホリニル)-4(1H)-キノリノン(TGX-113)；
8-(4-フルオロフェノキシ)-2-(4-モルホリニル)-4(1H)-キノリノン(TGX-121)；
2-モルホリニル-8-(フェニルメチル)-4H-1-ベンゾピラン-4-オン(TGX-90)；
2-(4-モルホリニル)-8-(4-フルオロ-2-メチルフェニル)オキシ-4H-1-ベンゾピラン-4-オン(TGX-184)；
9-[[(2-クロロフェニル)-メチル]アミノ-7-メチル-2-(4-モルホリニル)-4H-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-167)；
9-[[(2-メトキシフェニル)-メチル]アミノ]-7-メチル-2-(4-モルホリニル)-4H-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-137)；
7-メチル-2-(4-モルホリニル)-9-[(フェニルメチル)アミノ]-4H-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-126)；
9-[[(4-フルオロ-2-メチルフェニル)アミノ]-7-メチル-2-(4-モルホリニル)-4H-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-170)；
7-メチル-2-(4-モルホリニル)-9-[[(1R)-1-フェニルエチル]アミノ]-4H-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-123)；
7-メチル-2-(4-モルホリニル)-9-[(2-ピリジニルメチル)アミノ]-4H-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-161)；
9-[[(4-クロロフェニル)メチル]アミノ]-7-メチル-2-(4-モルホリニル)-4H-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-108)；
2-(4-モルホリニル)-9-(フェニルメチル)-4H-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-040)；
7-メチル-9-(N-メチル-N-フェニル)アミノメチル-2-(4-モルホリニル)-4H-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-195)；
2-(4-モルホリニル)-8-(フェニルメチル)オキシ-4H-1-ベンゾピラン-4-オン(TGX-102)；
2-(4-モルホリニル)-8-(フェニルメチル)アミノ-4H-1-ベンゾピラン-4-オン(TGX-204)；
2-(4-モルホリニル)-8-フェニルアミノ-4H-1-ベンゾピラン-4-オン(TGX-324)；
8-(3-クロロフェニル)オキシ-2-(4-モルホリニル)-4H-1-ベンゾピラン-4-オン(TGX-259)；
8-(3-メチルフェニル)-2-(4-モルホリニル)-4(1H)-キノリノン(TGX-127)；
8-(2-フルオロフェニル)-2-(4-モルホリニル)-4(1H)-キノリノン(TGX-143)；
及び、
(±)-7-メチル-2-モルホリン-4-イル-9-[1-(3-ピリジニルアミノ)エチル]-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(KN-304)；
からなる群から選択される場合を除く）ではない。
【００１５】
本発明の別の目的において、該抗血栓方法は、式(I)：
【化２】
0004646626.tif 000003
【００１６】
[式中、
Rは、H、分枝鎖若しくは直鎖のC1-C6アルキル、又は、アリール若しくは(CH2)n-アリールであり；
R1は、H、OH、OCH3、OCF3、F、Cl、CF3、分枝鎖若しくは直鎖のC1-C6アルキル、又は、アリール若しくは(CH2)n-アリールであり；
R2は、R又はSの立体配置にある、H、分枝鎖若しくは直鎖のC1-C6アルキル、又は、アリール若しくは(CH2)n-アリールであり；
R3は、1つ以上の、H、F、Cl、Br、I、CN、CO2H、CO2R、NO2、CF3、置換されているか若しくは置換されていないC1-C6アルキル、置換されているか若しくは置換されていないシクロアルキル、置換されているか若しくは置換されていないアリール、OCH3、OCH2F、OCHF2、OCF3、OR、OSO2-アリール、置換されているか若しくは置換されていないアミン、NHCOR、NHSO2R、CONHR、又は、SO2NHRであり；
Xは、C又はNであり；
Yは、N又はOである]
で表される選択的PI3-キナーゼβ阻害薬を投与することを含む。
【００１７】
本発明のさらに別の目的において、該抗血栓方法は、式(III)：
【化３】
0004646626.tif 000004
【００１８】
[式中、
X及びYは、それぞれ、C及びOであるか、又は、それぞれ、C及びNHであるか、又は、両方とも、Nであり；
Rは、H、OH、OCH3、OCF3、F、Cl、Br、I、C1-C6アルキル、アリール、又は、(CH2)n-アリールであり；
R1、R2及びR3は、独立して、H、OH、F、Cl、Br、I、C1-C6アルキル、C3-C6シクロアルキル、CH=CH-アリール、C≡C-アリール、(CHR'3)n-アリール、NR'3-C1-C6アルキル、NR'3-シクロアルキル、NR'3-(CHR'3)n-アリール、(CHR'3)n-NR'3-アリール、(CHR'3)n-NR'3-アルキル、(CHR'3)n-NR'3-シクロアルキル、(CHR'3)n-O-アリール、(CHR'3)n-O-アルキル、(CHR'3)n-O-シクロアルキル、O-(CHR'3)n-アリール、S-(CHR'3)n-アリール、又は、CO-アリールであり、その際、nは、0、1又は2であり、アルキル、シクロアルキル又はアリールは、場合により、F、Cl、Br、I、CN、CO2H、CO2R'3、NO2、CF3、置換されているか若しくは置換されていないC1-C6アルキル、置換されているか若しくは置換されていないシクロアルキル、置換されているか若しくは置換されていないアリール、OCF3、OR'3、OSO2-アリール、置換されているか若しくは置換されていないアミン、NHCOR'3、NHSO2R'3、CONHR'3又はSO2NHR'3で置換されていてもよく；
R'3は、Hであるか、又は、置換されているか若しくは置換されていないC1-C6アルキル、置換されているか若しくは置換されていないアリールである]
で表される選択的PI3-キナーゼβ阻害薬を投与することを含む。
【００１９】
本発明の目的は、下記式(III)：
【化４】
0004646626.tif 000005
【００２０】
[式中、
X及びYは、それぞれ、C及びOであるか、又は、それぞれ、C及びNHであるか、又は、両方とも、Nであり；
Rは、H、OH、OCH3、OCF3、F、Cl、Br、I、C1-C6アルキル、アリール、又は、(CH2)n-アリールであり；
R1、R2及びR3は、独立して、H、OH、F、Cl、Br、I、C1-C6アルキル、C3-C6シクロアルキル、CH=CH-アリール、C≡C-アリール、(CHR'3)n-アリール、NR'3-C1-C6アルキル、NR'3-シクロアルキル、NR'3-(CHR'3)n-アリール、(CHR'3)n-NR'3-アリール、(CHR'3)n-NR'3-アルキル、(CHR'3)n-NR'3-シクロアルキル、(CHR'3)n-O-アリール、(CHR'3)n-O-アルキル、(CHR'3)n-O-シクロアルキル、O-(CHR'3)n-アリール、S-(CHR'3)n-アリール、又は、CO-アリールであり、その際、nは、0、1又は2であり、アルキル、シクロアルキル又はアリールは、場合により、F、Cl、Br、I、CN、CO2H、CO2R'3、NO2、CF3、置換されているか若しくは置換されていないC1-C6アルキル、置換されているか若しくは置換されていないシクロアルキル、置換されているか若しくは置換されていないアリール、OCF3、OR'3、OSO2-アリール、置換されているか若しくは置換されていないアミン、NHCOR'3、NHSO2R'3、CONHR'3又はSO2NHR'3で置換されていてもよく；
R'3は、Hであるか、又は、置換されているか若しくは置換されていないC1-C6アルキル、置換されているか若しくは置換されていないアリールである]
で表される新規化合物に関する。
【００２１】
本発明の別の目的において、該抗血栓法は、式(I)[式中、Rは、H、分枝鎖若しくは直鎖のC1-C6アルキル、又は、アリールであり；
R1は、H、OH、OCH3、OCF3、F、Cl、CF3、又は、分枝鎖若しくは直鎖のC1-C6アルキルであり；
R2は、R又はSの立体配置にある、H、分枝鎖若しくは直鎖のC1-C6アルキル、又は、アリールであり；
R3は、1つ以上の、H、F、Cl、Br、CN、CO2H、CO2R、NO2、CF3、分枝鎖若しくは直鎖のC1-C6アルキル、置換されているか若しくは置換されていないシクロアルキル、置換されているか若しくは置換されていないアリール、OCH3、OCH2F、OCHF2、OCF3、OR、置換されているか若しくは置換されていないアミン、NHCOR、NHSO2R、CONHR、又は、SO2NHRであり；
Xは、C又はNであり；及び、Yは、N又はOである]で表される2-モルホリノ置換誘導体を投与することを含む。
【００２２】
本発明の別の目的において、該抗血栓法は：
(±)-7-メチル-9-{[メチル(フェニル)アミノ]メチル}-2-モルホリン-4-イル-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-195)；
(±)-7-メチル-2-モルホリン-4-イル-9-(1-フェニルアミノエチル)-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-221)；
(±)-7-メチル-2-モルホリン-4-イル-9-[1-(4-フルオロフェニルアミノ)エチル]-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-224)；
(±)-9-[1-(3,4-ジフルオロフェニルアミノ)エチル]-7-メチル-2-モルホリン-4-イル-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-237)；
(±)-9-[1-(2,5-ジフルオロフェニルアミノ)エチル]-7-メチル-2-モルホリン-4-イル-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-238)；
(±)-9-[1-(3,5-ジフルオロフェニルアミノ)エチル]-7-メチル-2-モルホリン-4-イル-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-239)；
(±)-9-[1-(4-フルオロ-2-メチルフェニルアミノ)エチル]-7-メチル-2-モルホリン-4-イル-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-240)；
(±)-9-[1-(4-クロロフェニルアミノ)エチル]-7-メチル-2-モルホリン-4-イル-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-243)；
(±)-9-[1-(3,4-ジクロロフェニルアミノ)エチル]-7-メチル-2-モルホリン-4-イル-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-244)；
(±)-9-[1-(3-フルオロフェニルアミノ)エチル]-7-メチル-2-モルホリン-4-イル-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-247)；
(±)-9-[1-(3-クロロフェニルアミノ)エチル]-7-メチル-2-モルホリン-4-イル-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-248)；
(±)-7-メチル-2-モルホリン-4-イル-9-[1-(2-チアゾリルアミノ)エチル]-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-261)；
(±)-7-メチル-9-[1-(3-メチルフェニルアミノ)エチル]-2-モルホリン-4-イル-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-262)；
(±)-7-メチル-2-モルホリン-4-イル-9-[1-(3-トリフルオロメチルフェニルアミノ)エチル]-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-264)；
(±)-7-メチル-2-モルホリン-4-イル-9-[1-(2-ピリジニルアミノ)エチル]-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-295)；
(±)-2-({1-[7-メチル-2-(モルホリン-4-イル)-4-オキソ-ピリド[1,2-a]ピリミジン-9-イル]エチル}アミノ)安息香酸(KN-309)；
(±)メチル2-({1-[7-メチル-2-(モルホリン-4-イル)-4-オキソ-ピリド[1,2-a]ピリミジン-9-イル]エチル}アミノ)ベンゾエート(KN-321)；
(±)-2-({1-[7-メチル-2-(モルホリン-4-イル)-4-オキソ-ピリド[1,2-a]ピリミジン-9-イル]エチル}アミノ)ベンゾニトリル(KN-320)；
(±)-7-メチル-2-(モルホリン-4-イル)-9-(1-{[2-(2H-テトラゾール-5-イル)フェニル]アミノ}エチル)-ピリド[1,2-a]ピリミド-4-オン(KN-325)；
及び、
(±)-2-(4-モルホリニル)-8-[1-(フェニルアミノ)エチル]-4H-1-ベンゾピラン-4-オン(TGX-280)；
からなる群から選択されるPI3-キナーゼ阻害薬を投与することを含む。
【００２３】
本発明の目的は、式(III)で表される化合物を提供することであり、その際、R1は、CH3、C2H5、
【化５】
0004646626.tif 000006
0004646626.tif 000007
0004646626.tif 000008
0004646626.tif 000009
0004646626.tif 000010
【００２４】
からなる群から選択される。
【００２５】
式中のRがメチルであり、且つ、R1が
【化６】
0004646626.tif 000011
【００２６】
である、式(III)の特定の化合物も意図されている。
【００２７】
式中のRがメチルであり、且つ、R1が
【化７】
0004646626.tif 000012
【００２８】
である、式(III)の特定の化合物も意図されている。
【００２９】
式中のRがメチルであり、且つ、R1が
【化８】
0004646626.tif 000013
【００３０】
である、式(III)の特定の化合物も意図されている。
【００３１】
式中のRがHであり、且つ、R1が
【化９】
0004646626.tif 000014
【００３２】
である、式(III)の特定の化合物も意図されている。
【００３３】
式中のRがHであり、且つ、R1が
【化１０】
0004646626.tif 000015
【００３４】
である、式(III)の特定の化合物も意図されている。
【００３５】
さらにまた、本発明は、患者のホスホイノシチド3−キナーゼを阻害する方法も意図しており、ここで、該方法は、患者においてホスホイノシチド3−キナーゼを阻害するのに有効な量の式(III)の化合物を患者に投与することを含む。
【００３６】
さらにまた、本発明は、心血管疾患を予防又は治療する方法も意図しており、ここで、該方法は、そのような予防又は治療が必要な患者に有効量の式(III)の化合物を投与することを含む。
【００３７】
さらにまた、本発明は、呼吸器疾患を予防又は治療する方法も意図しており、ここで、該方法は、そのような予防又は治療が必要な患者に有効量の式(III)の化合物を投与することを含む。
【００３８】
さらにまた、本発明は、癌を予防又は治療する方法も意図しており、ここで、該方法は、そのような予防又は治療が必要な患者に有効量の式(III)の化合物を投与することを含む。
【００３９】
さらにまた、本発明は、白血球機能障害に関連する疾患を予防又は治療する方法も意図しており、ここで、該方法は、そのような予防又は治療が必要な患者に有効量の式(III)の化合物を投与することを含む。
【００４０】
本発明の方法の一目的は、下記阻害薬：
【化１１】
0004646626.tif 000016
【００４１】
を投与することを含む。
【００４２】
本発明の方法の一目的は、6-メチル-8-[1-(フェニルアミノ)エチル]-2-(4-ピリジニル)-4H-ベンゾピラン-4-オンを投与することを含む。
【００４３】
本発明の方法の一目的は、6-メチル-8-{1-[(2-アミノフェニル)アミノ]エチル}-2-(4-ピリジニル)-4H-ベンゾピラン-4-オンを投与することを含む。
【００４４】
本発明は、さらにまた：
(±)-7-メチル-2-モルホリン-4-イル-9-(1-フェニルアミノエチル)-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン；
(±)-2-({1-[7-メチル-2-(モルホリン-4-イル)-4-オキソ-ピリド[1,2-a]ピリミジン-9-イル]エチル}アミノ)安息香酸；
(±)-2-({1-[7-メチル-2-(モルホリン-4-イル)-4-オキソ-ピリド[1,2-a]ピリミジン-9-イル]エチル}アミノ)ベンゾニトリル；
(±)メチル2-({1-[7-メチル-2-(モルホリン-4-イル)-4-オキソ-ピリド[1,2-a]ピリミジン-9-イル]エチル}アミノ)ベンゾエート；
及び
(±)-7-メチル-2-(モルホリン-4-イル)-9-(1-{[2-(2H-テトラゾール--イル)フェニル]アミノ}エチル)-ピリド[1,2-a]ピリミド-4-オン；
からなる群から選択される新規化合物にも関する。
【００４５】
従って、本発明のさらに別の目的は、PI3-キナーゼβを阻害する方法を提供することであり、ここで、該方法は、患者においてPI3-キナーゼβを阻害するのに有効な量の式(I)で表される1種の化合物を患者に投与することを含んでなる。
【００４６】
図面の説明
図(1A)〜図(1E)は、LY294002又はWortmanninでPI3-キナーゼを阻害することにより、加速された剪断に対する血小板の反応が除去されることを実証するための試験の結果を表している。インビトロ流動条件下接着アッセイ(flow based adhesion assay)を用いることにより、(細胞質ゾルカルシウムフラックスをモニタリングすることにより)固定したフォンウィルブラント因子(vWf)上での血小板の接着動力学と活性化を同時に分析することが可能となる。簡潔に言えば、単離した血小板をvWf(100μg/mL)でコーティングしたマイクロキャピラリーチューブを通して潅流し、共焦点顕微鏡により細胞質ゾルカルシウムフラックスの分析をリアルタイムで行う。
【００４７】
図(1A)は、さまざまな血流条件下において不可逆的な接着を形成するvWfと相互作用している血小板の割合をグラフにより示している。グラフ(i)においては、単離した血小板を、vWfマトリックス上で、一定の剪断速度(600，1800、又は，10,000.s-1)で潅流し、グラフ(ii)では、単離した血小板をvWfマトリックス上に静置し、次いで、10,000.s-2の剪断速度勾配(↑Δγ)で加速した。
【００４８】
図(1B)は、固定したvWfの表面における個々の血小板の挙動を示している。グラフは、細胞質ゾルカルシウムフラックス(Δ[Ca2+]c)プロフィール及びそれに付随して時間(秒)に対する個々の血小板の変位(μm)を表している。単離した血小板をvWfの表面上に静置した後、1秒間隔で、剪断速度を加速した(↑Δγ)。矢印(↓)は、剪断を加えた時点を表している：  持続的，血小板は振動型のΔ[Ca2+]cを受け、接着は固定されたままである；  一時的，血小板は、Δ[Ca2+]cの急上昇を受け、接着は一時的に固定された状態にある；  回転，血小板は最少のΔ[Ca2+]cを示し、vWf表面上を急速に移動する。
【００４９】
図(1C)は、ビヒクル(DMSO <0.25% v/v)、0.5U/mLのアピラーゼ、1mMのアスピリン、又は、25μMのLY294002による前処理を行った後の、持続的、一時的又は回転の挙動を示すvWf接着血小板の割合をグラフにより示している。
【００５０】
図(1D)は、GPIb/V/IX結合のモデュレーターであるリストセチン(1mg/mL)で処理した後の、固定されたvWfの表面におけるGPIb/V/IX依存性Δ[Ca2+]cを示す代表的な単独の血小板のレコードを示している。血小板は、アッセイを行う前に、インテグリンαIIbβ3拮抗薬であるアグラスタット(200nM)で10分間処理した：  静的状態，血小板は、vWfでコーティングしてあるカバーガラスの表面上に、剪断なしで37℃で10分間静置した。10分経過した時点で、1.5分間、Δ[Ca2+]cをモニタリングした；  コンスタントγ，血小板を、vWfマトリックス上で、1800.s-1の一定の剪断速度で潅流した；  ↑Δγ(0-10,000.s-1)，固定したvWfの表面上に血小板を静置した後、γを、1秒間隔で、10,000.s-1まで漸進的に増大させた。矢印(↓)は、剪断を加えた時点を表している；  ＋LY294002，20μMのPI3-キナーゼ阻害薬LY294002で10分間前処理しておいた血小板に↑Δγを適用した。
【００５１】
図(1E)は、1秒又は60秒の時間間隔で↑Δγに応答して高周波Δ[Ca2+]cを示すGPIb/V/IX接着血小板の割合を示している。
【００５２】
新規PI3-キナーゼβイソ型選択的阻害薬のキャラクタリゼーション
図(2A)は、単離したPI3-キナーゼイソ型を用いて行ったTGX 221の選択性を示している。ここで、活性は、PI3-キナーゼの産物であるホスファチジルイノシトール3-リン酸(PtdIns(3)P)の生成により測定する。上段のパネルは、薄層クロマトグラフィーを使用して行ったPtdIns(3)Pの生成の検出、並びに、p110αイソ型及びp110βイソ型における、TGX-221による用量応答性阻害を示している。折れ線グラフは、血小板PI3-キナーゼの主要な3種類のイソ型であるp110α、p110β及びp110γのTGX-221による阻害の用量反応曲線を表している。
【００５３】
TGX-221の機能解析
図(3A)は、円錐平板粘度計内で剪断(5000秒-1，2分間)により活性化させた後の、血小板内における脂質生成に対するTGX-221による用量応答性阻害を表す棒グラフを示している。該円錐平板装置に適用した後、血小板のサンプルを吸引し、単独の血小板の総数をSysmex KN-21N ヘマトロジーアナライザーを用いて解析した。
【００５４】
図(3B)は、未処理(対照)サンプルに対する、TGX-221の種々の濃度における単独血小板総数の比例的増加を示す棒グラフを表している。
【００５５】
インタクトな血小板における脂質産物PtdIns(4,5)P2とPtdIns(3,4)P2の測定は、最初にHPLCにより脂質を単離し、次いで、確定しているPtdIns(4,5)P2標準及びPtdIns(3,4)P2標準を用いて脂質のピークを同定することにより行った。脂質を積分し、適用した総脂質に対して規格化し、未処理(対照)サンプルのフラクションとして表した。
【００５６】
TGX-221でPI3-キナーゼを阻害することにより、加速された剪断に対する血小板の反応が除去されることの実証
図(4A)は、0.5μMのTGX-221による前処理が、1秒間隔で10,000.s-1までの剪断速度勾配(↑Δγ)に付した後に持続的挙動、一時的挙動又は回転挙動(上記)を示すvWf接着血小板の割合に及ぼす影響を実証しているポピュレーション解析の棒グラフを示している。
【００５７】
図(4B)は、vWfの表面におけるGPIb/V/IX依存性Δ[Ca2+]cを示す代表的な単独の血小板のレコードを示している。上記のように；  コンスタントγ，血小板を、1800.s-1の一定の剪断速度に付した；  ↑Δγ(10,000.s-2)，血小板を加速された剪断に付した；  ↑Δγ(10,000.s-2)＋TGX-221(0.5μM)，0.5μMのTGX-221で10分間前処理した血小板に↑Δγを適用した。
【００５８】
図(4C)は、生理学的作動薬で刺激した後の、P-セレクチンの表面発現及びインテグリンαIIbβ3活性化のレベル(PAC-1結合により求めた)を説明するFACS解析を示している：  対照，血小板を、タイロードバッファー＋1mM CaCl2/MgCl2に再懸濁させた(作動薬による処理なし)；  DMSO，血小板を0.25%のDMSO(ビヒクル)で前処理した後、作動薬で刺激した；  TGX-221，血小板を0.5mMのTGX-221で10分間前処理した後、作動薬で刺激した。作動薬：トロンビン，1U/mL；ADP，12.5mM；U46619，1μM；可溶性コラーゲン 10μg/mL。
【００５９】
TGX-221のインビトロ抗血栓活性
図(5A)は、Foltsモデルにおける、ペントバルビトンで麻酔をかけたラット(A)及びウサギ(B)での薬物投与前(a；-30-0分)及び薬物投与後(b〜d；それぞれ、1-30分、31-60分、及び、61-90分)の30分間当たりの頸動脈血流の周期的流量減少(CFR)が認められた平均個体数に対するビヒクル(プロピレングリコール)又はTGX-221の影響を示している。CFRは、薬物投与前の30分間及び薬物投与後の90分間モニタリングした。n：動物の数。標準偏差(error bars)は、±1SEMである。
【００６０】
図(5B)は、電解質モデルにおける、ペントバルビトンで麻酔をかけたラットでの電解質による傷害(7mAの電流4分間(時間  -4-0分)血流量0；0分で動脈鉗子を除去)を受けた後の頸動脈血流量(体重100g当たりのmL/分)に対するビヒクル(プロピレングリコール)又はTGX-221の影響を示している。処理は、-9分(即ち、電流を与える5分前)に静脈内ボーラス投与として行った。標準偏差は、反復測定ANOVAから得た平均SEMである。図(5B)の挿入図は、麻酔をかけたラットでの電解質による傷害を受けた後の頸動脈血流容積(刺激期間の終了後60分間にわたる血流量曲線の下の面積)に対する上記処理の影響を示している。標準偏差は、±1SEMである。
【００６１】
図(5C)は、それぞれ、TGX-221、TGX-221＋ヘパリン、アスピリン、クロピドグレル、クロピドグレル＋ヘパリン、クロピドグレル＋ヘパリン＋TGX-221、アスピリン＋ヘパリン、及び、アスピリン＋ヘパリン＋TGX-221で処理した、ハロタンで麻酔をかけたラットにおけるラット尾部の出血時間の比較を示している。
【００６２】
図(6A)及び図(6B)は、ROS応答に対する種々の濃度のTGX-286の影響を示している。
【００６３】
図(7)は、エラスターゼの放出に対する種々の濃度のTGX-286の影響を示している。
【発明を実施するための最良の形態】
【００６４】
2種類の主要な血小板接着受容体であるGPIb/V/IX(「GPIb」)及びインテグリンαIIbβ3は、流動学的な障害(高剪断及び剪断の急激な加速)の条件下における血小板の活性化に関連する特有の機械感覚機能を有している。本発明者らは、両方の受容体を介したシグナル伝達が、剪断速度の急激な加速(↑Δγ)により調節されることを見いだした。ここで、剪断速度の急激な加速は、PI3-キナーゼ依存性シグナル伝達プロセスを介して血小板を活性化させる。
【００６５】
従って、本発明者らは、高剪断条件下で血小板の活性化を調節している重要なシグナル伝達機構を明らかにした。その結果、本発明者らは、病理学的な血流条件下で血小板の活性化を惹起する要素として、PI3-キナーゼβを同定した。特定の血小板接着受容体をブロックする既存の抗血小板療法は、病理学的な血小板活性化と正常な止血における血小板活性化を区別しない。従って、PI3-キナーゼβを選択的に阻害することにより、生理学的な作動因子により惹起される血小板の活性化に悪影響を与えることなく、剪断速度の病理学的な増加により惹起される血小板の活性化を防止することが可能であるという本発明者らの発見は、抗血栓療法のための新規化合物を包含する、抗血栓療法に対する新規で特異的なアプローチを提供する。
【００６６】
図(1A)に示されているように、剪断環境により血小板の活性化及び血小板のvWfへの接着が調節される。定常状態の剪断に付されている血小板とは対照的に、剪断速度の加速(↑Δγ)に付された場合、血小板がさらに活性化され、接着接触を維持する。細胞質ゾルカルシウムフラックスをモニタリングすることにより血小板の活性化についてより綿密な試験を行った結果、↑Δγが、GPIbとインテグリンαIIbβ3のカルシウムシグナル伝達に対して異なった補足的な作用を有していることが明らかになった。インテグリンαIIbβ3カルシウムシグナル伝達の場合は、↑Δγによりカルシウムシグナルの急激なオンセットが惹起され、そのカルシウムシグナルは、vWfに堅く接着したままでいることができる血小板内に特異的に維持されていた。この剪断により調節されるインテグリンαIIbβ3カルシウムシグナルは、内因性の血小板作動因子(ADP及びTXA2)とは独立して生じたが、PI3-キナーゼには完全に依存していた(図(1B)及び図(1C))。↑Δγにより新規なGPIbカルシウムシグナルが誘導されたが、これは、文献(Nesbit et al., 2002, J. Biol. Chem., 277：2965.)において既に認識されているGPIbカルシウム濃度変化(calcium transient)とは異なるものである(図(1D))。↑ΔγGPIbカルシウムシグナルの決定的な3つの特徴には、(1)γの加速速度に厳密に依存すること(図(1E))；(2)カルシウム応答の頻度の増加(図(1D))；及び、(3)PI3-キナーゼ阻害薬に対する感受性(図(1D))などがある。
【００６７】
GPIbとインテグリンαIIbβ3のカルシウムシグナル伝達が両方ともPI3-キナーゼに依存するので、PI3-キナーゼを阻害することにより、剪断速度の急激な加速(↑Δγ)により誘発されるGPIbとインテグリンαIIbβ3のカルシウムシグナルは排除される。
【００６８】
LY294002又はWortmannin(下記参照)のような構造的に関連のないPI3-キナーゼ阻害薬の、剪断により惹起される血小板の凝集を防止する能力についての初期の研究により、剪断により惹起される血小板の活性化のための、PI3-キナーゼに関する重要な機械感覚シグナル伝達機能が示唆された。しかしながら、これらの化合物はPI3-キナーゼの種々のイソ型を区別しないので、剪断に依存する血小板の活性化にPI3-キナーゼのどの特定のイソ型(1種又は複数種)が関与しているかについては、依然としてはっきりしないままであった。
【化１２】
0004646626.tif 000017
【００６９】
PI3-キナーゼβを選択的に阻害する本発明の例示的な化合物を以下に示す。
【化１３】
0004646626.tif 000018
【００７０】
式(I)で表される2-モルホリノ置換誘導体は、以下のように定義される。
【化１４】
0004646626.tif 000019
【００７１】
上記式中、
Xは、C又はNであり；
Yは、N又はOであり；
Rは、H、分枝鎖若しくは直鎖のC1-C6アルキル、又は、アリール若しくは(CH2)n-アリールであり；
R1は、H、OH、OCH3、OCF3、F、Cl、CF3、分枝鎖若しくは直鎖のC1-C6アルキル、又は、アリール若しくは(CH2)n-アリールであり；
R2は、R又はSの立体配置にある、H、分枝鎖若しくは直鎖のC1-C6アルキル、又は、アリール若しくは(CH2)n-アリールであり；
R3は、1つ以上の、H、F、Cl、Br、I、CN、CO2H、CO2R、NO2、CF3、置換されているか若しくは置換されていないC1-C6アルキル、置換されているか若しくは置換されていないシクロアルキル、置換されているか若しくは置換されていないアリール、OCH3、OCH2F、OCHF2、OCF3、OR、OSO2-アリール、置換されているか若しくは置換されていないアミン、NHCOR、NHSO2R、CONHR、又は、SO2NHRである。
【００７２】
PI3-キナーゼβ活性の阻害薬としての式(I)の化合物に加えて、PI3-キナーゼβを選択的に阻害する式(III)の新規化合物が以下のように定義される。
【化１５】
0004646626.tif 000020
【００７３】
上記式中、
X及びYは、それぞれ、C及びOであるか、又は、それぞれ、C及びNHであるか、又は、両方とも、Nであり；
Rは、H、OH、OCH3、OCF3、F、Cl、Br、I、C1-C6アルキル、アリール、又は、(CH2)n-アリールであり；
R1、R2及びR3は、独立して、H、OH、F、Cl、Br、I、C1-C6アルキル、C3-C6シクロアルキル、CH=CH-アリール、C≡C-アリール、(CHR'3)n-アリール、NR'3-C1-C6アルキル、NR'3-シクロアルキル、NR'3-(CHR'3)n-アリール、(CHR'3)n-NR'3-アリール、(CHR'3)n-NR'3-アルキル、(CHR'3)n-NR'3-シクロアルキル、(CHR'3)n-O-アリール、(CHR'3)n-O-アルキル、(CHR'3)n-O-シクロアルキル、O-(CHR'3)n-アリール、S-(CHR'3)n-アリール、又は、CO-アリールであり、その際、nは、0、1又は2であり、アルキル、シクロアルキル又はアリールは、場合により、F、Cl、Br、I、CN、CO2H、CO2R'3、NO2、CF3、置換されているか若しくは置換されていないC1-C6アルキル、置換されているか若しくは置換されていないシクロアルキル、置換されているか若しくは置換されていないアリール、OCF3、OR'3、OSO2-アリール、置換されているか若しくは置換されていないアミン、NHCOR'3、NHSO2R'3、CONHR'3又はSO2NHR'3で置換されていてもよく；
及び、
R'3は、Hであるか、又は、置換されているか若しくは置換されていないC1-C6アルキル、置換されているか若しくは置換されていないアリールである。
【００７４】
本発明の方法について有用な好ましい化合物には、式(I)[式中、Rは、H、分枝鎖若しくは直鎖のC1-C6アルキル、又は、アリールであり；
R1は、H、OH、OCH3、OCF3、F、Cl、CF3、又は、分枝鎖若しくは直鎖のC1-C6アルキルであり；
R2は、R又はSの立体配置にある、H、分枝鎖若しくは直鎖のC1-C6アルキル、又は、アリールであり；
R3は、1つ以上の、H、F、Cl、Br、CN、CO2H、CO2R、NO2、CF3、分枝鎖若しくは直鎖のC1-C6アルキル、置換されているか若しくは置換されていないシクロアルキル、置換されているか若しくは置換されていないアリール、OCH3、OCH2F、OCHF2、OCF3、OR、置換されているか若しくは置換されていないアミン、NHCOR、NHSO2R、CONHR、又は、SO2NHRであり；
Xは、C又はNであり；及び、Yは、N又はOである]で表される2-モルホリノ置換ピリドピリミジン誘導体が包含される。
【００７５】
式(I)で表される特定の阻害薬の例としては：
(±)-7-メチル-9-{[メチル(フェニル)アミノ]メチル}-2-モルホリン-4-イル-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-195)；
(±)-7-メチル-2-モルホリン-4-イル-9-(1-フェニルアミノエチル)-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-221)；
(±)-9-[1-(3,5-ジフルオロフェニルアミノ)エチル]-7-メチル-2-モルホリン-4-イル-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-239)；
(±)-9-[1-(4-クロロフェニルアミノ)エチル]-7-メチル-2-モルホリン-4-イル-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-243)；
(±)-9-[1-(3,4-ジクロロフェニルアミノ)エチル]-7-メチル-2-モルホリン-4-イル-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-244)；
(±)-9-[1-(3-クロロフェニルアミノ)エチル]-7-メチル-2-モルホリン-4-イル-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-248)；
(±)-7-メチル-9-[1-(3-メチルフェニルアミノ)エチル]-2-モルホリン-4-イル-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-262)；
(±)-7-メチル-2-モルホリン-4-イル-9-[1-(3-トリフルオロメチルフェニルアミノ)エチル]-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-264)；
及び
(±)-7-メチル-2-モルホリン-4-イル-9-[1-(2-ピリジニルアミノ)エチル]-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(TGX-295)；
などを挙げることができる。
【００７６】
本明細書に関連して、用語「アルキル」は、直鎖又は分枝鎖の飽和脂肪族炭化水素基を意味する。好ましくは、該アルキル基は、1〜6個の炭素を有し、その例としては、メチル、エチル、プロピル、イソプロピル、ブチル、イソブチル、s-ブチル、t-ブチル、ペンチル、i-ペンチル及びヘキシルなどがある。該アルキル基は、場合により、以下のものから選択される1つ以上の基で置換されていてもよい：ハロゲン、例えば、F、Cl、Br又はI；CN；CO2R3；NO2；CF3；置換されているか若しくは置換されていないC1-C6アルキル；置換されているか若しくは置換されていないC3-C6シクロアルキル；置換されているか若しくは置換されていないアリール；OCF3；OR3；置換されているか若しくは置換されていないアミン；NHCOR3；NHSO2R3；CONHR3；又は、SO2NHR3(ここで、R3は、H、置換されているか若しくは置換されていないC1-C6アルキル、置換されているか若しくは置換されていないアリールである)。
【００７７】
用語「シクロアルキル」は、非ヘテロ環式環(即ち、炭素環式環)又はヘテロ環式環を意味する。この点に関して、非ヘテロ環式環の例は、置換されているか若しくは置換されていないシクロプロパン、シクロブタン、シクロペンタン、シクロヘキサン、シクロヘキサジオン、シクロペンタンジオン及びキノンなどである。適するヘテロシクロアルキル基には、置換されているか若しくは置換されていないピロリジン、ピペリジン、ピペラジン、2-ピペリドン、アザシクロヘキサン-2-オン及びモルホリン基などがある。該シクロアルキル基は、場合により、1つ以上の位置に置いて、ハロゲン、例えば、F、Cl、Br若しくはI；CN；CO2R3；NO2；CF3；置換されているか若しくは置換されていないC1-C6アルキル；置換されているか若しくは置換されていないC3-C6シクロアルキル；置換されているか若しくは置換されていないアリール；OCF3；OR3；置換されているか若しくは置換されていないアミン；NHCOR3；NHSO2R3；CONHR3；又は、SO2NHR3(ここで、R3は、H、置換されているか若しくは置換されていないC1-C6アルキル、置換されているか若しくは置換されていないアリールである）により置換されていてもよい。
【００７８】
用語「アリール」は、芳香環又はヘテロ芳香環を意味する。アリール基の例は、ピロリジン、チオフェン、ピロール、ピラゾール、イミダゾール、1,2,3-トリアゾール、1,2,4-トリアゾール、オキサゾール、イソオキサゾール、チアゾール、イソチアゾール、フラン、1,2,3-オキサジアゾール、1,2,4-オキサジアゾール、1,2,5-オキサジアゾール、1,3,4-オキサジアゾール、1,2,3,4-オキサトリアゾール、1,2,3,5-オキサトリアゾール、1,2,3-チアジアゾール、1,2,4-チアジアゾール、1,2,5-チアジアゾール、1,3,4-チアジアゾール、1,2,3,4-チアトリアゾール、1,2,3,5-チアトリアゾール、テトラゾール、ベンゼン、ピリジン、ピリダジン、ピリミジン、ピラジン、トリアジン、インデン、ナフタレン、インドール、イソインドール、インドリジン、ベンゾフラン、ベンゾチオフェン、インダゾール、ベンゾイミダゾール、ベンゾチアゾール、プリン、キノリジン、キノリン、イソキノリン、シンノリン、フタラジン、キナゾリン、キノキサリン、ナフチリジン、プテリジン、フルオレン、カルバゾール、カルボリン、アクリジン、フェナジン及びアントラセンである。該アリール基は、場合により、1つ以上の位置に置いて、ハロゲン、例えば、F、Cl、Br若しくはI；CN；CO2R3；NO2；CF3；置換されているか若しくは置換されていないC1-C6アルキル；置換されているか若しくは置換されていないC3-C6シクロアルキル；置換されているか若しくは置換されていないアリール；OCF3；OR3；置換されているか若しくは置換されていないアミン；NHCOR3；NHSO2R3；CONHR3；又は、SO2NHR3(ここで、R3は、H、置換されているか若しくは置換されていないC1-C6アルキル、置換されているか若しくは置換されていないアリールである)により置換されていてもよい。
【００７９】
本明細書において使用されている用語「選択的PI3-キナーゼβ阻害薬」は、PI3-キナーゼファミリーの別のイソ型に比較して、PI3-キナーゼβを、少なくとも約10倍以上、好ましくは、20倍以上、さらに好ましくは、30倍以上効果的に阻害する化合物を意味する。「選択的PI3-キナーゼβ阻害薬」化合物は、LY294002又はWortmanninのような慣習的に且つ一般的にPI3-キナーゼ阻害薬として指定される化合物よりも、PI3-キナーゼβに対して選択性が高いものと理解される。本発明の方法においては、PI3-キナーゼβの発現又は活性を選択的に阻害する任意のタイプの化合物を選択的PI3-キナーゼβ阻害薬として使用することが可能である。
【００８０】
本発明のピリジンで置換されている化合物は、高剪断血流条件下において血小板の接着過程を調節する脂質シグナル伝達酵素PI3-キナーゼを阻害することが分かっており、従って、本発明のピリジンで置換されている化合物は、抗血栓活性を示すこと、及び、以下で詳細に述べられている別の薬理学的特性を示すことが分かっている。PI3-キナーゼは、ホスファチジルイノシトール-3-リン酸(PI(3)P)、ホスファチジルイノシトール-3,4-二リン酸(PI(3,4)P2)及びホスファチジルイノシトール-3,4,5-三リン酸(PI(3,4,5)P3)などの3-リン酸化PI二次メッセンジャーを生成させる。これらの二次メッセンジャーは、グルコース輸送、アポトーシスの防止、小胞輸送、細胞増殖及び細胞骨格再編成などのさまざまな細胞内現象を調節するものと考えられている。
【００８１】
病態生理学的に関連した血流条件下での血小板の接着に対するPI3-キナーゼ阻害薬の作用に関する公表された報告は存在しない。それにもかかわらず、PI3-キナーゼが、血小板の接着の調節において、特に、生理学的な血流の条件下における血小板の接着の調節において、重要な役割を果たしていることが見いだされた。従って、本発明の化合物で血小板を処理することにより、PI3-キナーゼのリン酸化脂質産物(PI(3)P、PI(3,4)P2、及び、PI(3,4,5)P3)の形成が阻害され、それにより、血流条件下における血小板のvWfマトリックスへの接着が著しく低減される。この血小板の接着の低減は、異常な血小板拡散及び血栓形成に関連する。剪断に依存する血小板の接着及び活性化は動脈血栓の形成において重要であるので、PI3-キナーゼは、一般に、心血管疾患における治療的介入のための重要な標的である。
【００８２】
さらにまた、PI3-キナーゼの上記阻害薬は、さまざまな別の疾患状態における潜在的な治療用途も有する。例えば、PI3-キナーゼは、血管樹の平滑筋の増殖、即ち、血管平滑筋細胞の増殖において重要な役割を果たしており(Thyberg, 1998, European Journal of Cell Biology 76(1)：33-42)、また、肺における平滑筋(気道平滑筋細胞)の増殖において重要な役割を果たしている(Krymskaya et al., 1999, American Journal of Physiology 277：65-78)。血管平滑筋細胞の過度の増殖は、アテローム斑の形成及び侵襲性の血管の処置の後で起こる新内膜の過形成の進行において重要な役割を果たしている(Scwartz et al., 1984, Progress in Cardiovascular Disease 26：355-372; Clowes et al., 1978, Laboratory Investigations 39：141-150)。さらに、気道平滑筋細胞が過度に増殖すると、慢性気管支炎及び喘息の状態においてCOPDが発症する。従って、PI3-キナーゼの阻害薬は、血管の再狭窄、アテローム性動脈硬化症及びCOPDを予防するために使用し得る。
【００８３】
PI3-キナーゼは、腫瘍細胞の調節においても重要な役割を果たしており、また、腫瘍細胞がアポトーシス増殖する傾向を有することにおいても重要な役割を果たしている(Sellers et al., 1999, The Journal of Clinical Investigation 104：1655-1661)。さらに、脂質ホスファターゼPTENによるPI3-キナーゼ脂質産物(PI(3,4,5)P3及びPI(3,4)P2)の制御されない調節は、ヒトの多くの種類の悪性腫瘍の進行において重要な役割を果たしている(Leevers et al., 1999, Current Opinion in Cell Biology 11：219-225)。従って、PI3-キナーゼの阻害薬を用いて、ヒトの腫瘍を治療し得る。
【００８４】
PI3-キナーゼは、白血球の機能においても重要な役割を果たしており(Fuller et al., 1999, The Journal of Immunology 162(11)：6337-6340；Eder et al., 1998, The Journal of Biological Chemistry 273(43)：28025-31)、また、リンパ球の機能においても重要な役割を果たしている(Vicente-Manzanares et al., 1999, The Journal of Immunology 163(7)：4001-4012)。例えば、炎症を起こしている内皮への白血球の接着には、PI3-キナーゼ依存性シグナル伝達プロセスによる内因性白血球インテグリンの活性化が関与している。さらに、好中球における急激な活性酸素発生(oxidative burst)(Nishioka et al., 1998, FEBS Letters 441(1)：63-66)及び細胞骨格再編成(Kirsch et al., 1999, Proceedings National Academy of Sciences USA 96(11)：6211-6216)には、PI3-キナーゼシグナル伝達が関与しているように見える。従って、PI3-キナーゼの阻害薬は、炎症部位における白血球の接着及び活性化を低減するのに有用であり得る。従って、PI3-キナーゼの阻害薬を用いて、急性及び／又は慢性の炎症性疾患を治療し得る。PI3-キナーゼは、リンパ球の増殖及び活性化においても重要な役割を果たしている(Fruman et al., 1999, Science 283(5400)：393-397)。自己免疫疾患においてリンパ球が重要な役割を果たしていることを考慮すると、PI3-キナーゼの阻害薬を用いてそのような疾患を治療し得る。
【００８５】
酵素活性の阻害薬としての化合物の相対的効力は、例えば、各化合物が該活性を予め定められた程度まで阻害する濃度を測定し、次いで、結果を比較することにより、確定することができる。典型的には、好ましい測定は、生化学的なアッセイにおいて、該活性の50%を阻害する濃度、即ち、50%阻害濃度(即ち、「IC50」)を求めることである。IC50は、当技術分野で知られている慣習的な技術を用いて決定することができる。
【００８６】
本発明により、血小板内のPI3-キナーゼβが、剪断により惹起される血小板の活性化及び閉塞性血栓の形成に関連する重要な機械感覚機能を有していることが確認された。GPIb及びインテグリンαIIbβ3を介した機械的刺激に対する細胞応答(mechano-transduction)へのPI3-キナーゼβ阻害薬TGX-221の効果を解析することにより、両方の受容体を介して↑Δγにより惹起されたカルシウムフラックスにとってPI3-キナーゼβが必要不可欠であることが示された(図(4A)及び図(4B))。カルシウムフラックスに対するTGX-221の作用は、γに依存しないGPIbカルシウムシグナル伝達は阻害しなかったので、剪断選択的であった(図(4B))。さらに、トロンビン、コラーゲン及びADPにより惹起される別の血小板活性化応答(例えば、インテグリンαIIbβ3活性化(PAC-1結合)及びα-顆粒分泌(P-セレクチン発現)など)は、TGX-221の影響を受けなかった(図(4C))。
【００８７】
PI3-キナーゼβのシグナル伝達機能は、主要な2種類の血小板接着受容体であるGPIb及びインテグリンαIIbβ3の下流に作用して、流動学的な障害の条件下で細胞質ゾルカルシウムフラックスと血小板の活性化を促進する。これらの受容体の機械感覚機能に起因して、PI3-キナーゼβを阻害すると、止血に必要とされる血小板の正常な機能的反応を妨害することなく、閉塞性の血栓の形成が排除される。
【００８８】
本発明化合物の潜在的な抗血栓能力を調べるために、2種類の異なった血栓症モデルを用いた：ラット及びウサギにおける修正Foltsモデル(Folts et al., 1991, Circulation, IV-3-IV-14)及びラットにおける電解質傷害頸動脈モデル(Bush et al., 1990, Faseb J., 4：3087)。2mg/kgの本発明化合物(例えば、TGX-221)を実験動物に注入することにより、両方のモデルにおいて、閉塞性血栓の形成は完全に防止されたが(図(5A)及び図(5B))、傷害期間の終了後の60分間にわたり、頸動脈の血流容積は維持された(図(5B)挿入図)。さらに、TGX-221は、Foltsモデルの試験と電解質モデルの試験の両方において、傷害を受けた頸動脈内の基準動脈圧、基準心拍数又は基準血流に対して影響を与えなかった(データは示していない)。重要なのは、TGX-221による処理が、尾部若しくは耳の出血時間で評価した場合に、これらの動物における正常な止血に対して悪影響を与えなかったということ、又は、ヘパリン、アスピリン若しくはクロピドグレルのような別の抗凝血薬と組み合わせて投与したときに、そのような別の抗凝血薬により引き起こされる出血を長引かせなかったということである(図(5C))。
【００８９】
本明細書において概説した本発明により、剪断により惹起される血小板の活性化及び閉塞性血栓の形成に関連した、血小板内にあるPI3-キナーゼβに関する主要な機械感覚機能が明らかにされる。PI3-キナーゼβ阻害薬であるTGX-221が、止血に関連する血小板の正常な機能的応答を妨害することなく、閉塞性血栓の形成を阻害するということが実証されたことにより、この新規脂質キナーゼ阻害薬が抗血栓療法のための重要な新しい薬物であるということは明白である。
【００９０】
疾患状態を予防又は治療するための本発明の方法において、有利には、有効量の1種の本発明化合物を1回用量の形態で投与する。好ましい実施形態において、該1回用量は、好ましくは、錠剤(例えば、経口投与、舌下投与、及び、口腔内投与用に製剤された錠剤)、カプセル剤(例えば、粉末製剤、液体製剤、又は、制御放出製剤を含んでいるカプセル剤)、静脈内投与用製剤、鼻腔内投与用製剤、筋肉注射用の製剤、シロップ剤、坐剤、エーロゾル剤、バッカル剤、経皮投与用製剤又は膣坐剤の形態である。好ましくは、該1回用量は、約5〜約500mgの該化合物を含んでおり、さらに好ましくは、約25〜約300mgの該化合物を含んでいる。
【００９１】
本発明の別の態様は、1種以上の製薬上許容される担体及び/又は希釈剤と一緒に本発明のピリジン置換化合物を含有する医薬組成物に関する。以下において、用語「活性成分」は、本発明のいずれかのピリジン置換化合物又はその製薬上許容される塩、溶媒和物若しくは機能的な誘導体であり得る。
【００９２】
本発明の医薬組成物の投与は、任意の都合のよい方法で行う。用量は、例えば、経口、静脈内、腹腔内、筋肉内、皮下、皮内若しくは坐剤の経路によるか、又は、植込み(例えば、徐放性分子の使用)により、毎日、週1回、月1回、又は、別の適切な時間間隔で投与する。該活性化合物を錠剤の形態で投与する場合、該錠剤は、結合剤、例えば、トラガカントゴム、トウモロコシデンプン又はゼラチンなど；崩壊剤、例えば、アルギン酸など；及び、滑沢剤、例えば、ステアリン酸マグネシウムなどを含有する。
【００９３】
注射可能な用途に適する医薬組成物には、無菌の水溶液若しくは水分散液、及び、無菌の注射可能な溶液若しくは分散液を必要に応じて調製するための無菌の粉末などがあり、又は、クリームの形態若しくは局所適用に適する別の形態である。該担体は、例えば水、エタノール、ポリオール(例えば、グリセロール、プロピレングリコール及び液状ポリエチレングリコールなど)、それらの適切な混合物、及び、植物油などを含んでいる、分散媒又は溶媒であることができる。例えば、レシチンのようなコーティングを用いることにより、及び、分散剤の場合には所要の粒径を維持することにより、及び、界面活性剤を使用することにより、適切な流動性を維持させる。微生物による汚染は、さまざまな抗菌剤及び抗真菌剤、例えば、パラベン類、クロロブタノール、フェノール、ソルビン酸及びチメロサールなどにより防止することができる。等張化剤、例えば、糖又は塩化ナトリウムなどを含有させるのが好ましい場合がある。吸収を遅延させる作用物質、例えば、モノステアリン酸アルミニウム及びゼラチンなどを組成物中で使用することにより、注射可能な組成物の吸収時間を長くすることが可能である。
【００９４】
無菌の注射可能な溶液は、上記で挙げたさまざまな別の成分を含んでいる適切な溶媒に所要量の該活性化合物を組入れた後、濾過滅菌に付すことにより調製する。一般に、分散液は、基本的な分散媒と1種以上の上記成分を含んでいる無菌のビヒクルに滅菌した種々の活性化合物を組み入れることにより調製する。無菌の注射可能溶液を調製するための無菌の粉末の場合、好ましい調製方法は、活性化合物と任意の追加的な所望の成分の予め滅菌濾過してある溶液からそれらの粉末を生じる真空乾燥及び凍結乾燥である。
【００９５】
該医薬組成物は、例えば不活性希釈剤若しくは同化可能な食用の担体と一緒に経口投与するか、又は、硬質ゼラチンカプセル若しくは軟質ゼラチンカプセルの中に封入するか、又は、圧縮して錠剤とするか、又は、直接食物と混合する。経口投与の場合、該活性化合物は賦形剤と混合し、摂取可能な錠剤、バッカル錠剤、トローチ剤、カプセル剤、エリキシル剤、懸濁液剤、シロップ剤及びカシェ剤などの形態で使用する。そのような組成物及び調製物は、少なくとも1重量%の活性化合物を含有する。該組成物及び調製物の百分率は変えることが可能であり、構成単位の重量の約5〜約80%であり得る。そのような治療上有用な組成物中の活性化合物の量は、適切な投与量が得られるような量である。
【００９６】
さらにまた、錠剤、トローチ剤、丸剤及びカプセル剤などは、結合剤、例えば、ゴム、アラビアゴム、トウモロコシデンプン又はゼラチンなど；賦形剤、例えば、リン酸二カルシウムなど；崩壊剤、例えば、トウモロコシデンプン、ジャガイモデンプン及びアルギン酸など；滑沢剤、例えば、ステアリン酸マグネシウムなど；及び、甘味剤、例えば、ショ糖(乳糖又はサッカリンを加えてもよい)、又は、矯味矯臭剤、例えば、ペパーミント、ウインターグリーン油若しくはサクランボの香味料なども含有し得る。投与単位形態がカプセルである場合、それは、上記タイプの物質に加えて、液体担体を含有し得る。コーティングとして、又は、投与単位の物理的形態を修飾するために、さまざまな別の物質を存在させてもよい。例えば、錠剤、丸剤又はカプセル剤は、セラック、糖、又はその両方によりコーティングし得る。シロップ剤又はエリキシル剤は、該活性化合物、甘味剤としてのショ糖、保存剤としてのメチルパラベン及びプロピルパラベン、色素、並びに、矯味矯臭剤(例えば、サクランボ風味又はオレンジ風味など)を含有し得る。もちろん、任意の投与単位形態の調製において使用するどの物質も、製薬的に純粋であり且つ使用する量では実質的に無毒であるべきである。さらに、該活性化合物は、徐放性の調製物及び製剤中に組み入れてもよい。
【実施例】
【００９７】
以下の実施例を参照することにより、本発明についてさらに記述する。該実施例は、例証のみを目的として記載されている。これらの実施例に含まれているどのような記載も、本発明の総体的な範囲を制限するものと解釈されるべきではない。
【００９８】
合成実施例
実施例１：  (±)-7-メチル-2-モルホリン-4-イル-9-(1-フェニルアミノエチル)-ピリド[1,2-a]-ピリミジン-4-オン(TGX-221：R1=CH3，R2=CH3，R3=H)の合成
【化１６】
0004646626.tif 000021
【００９９】
化合物２：  2-アミノ-3-ブロモ-5-メチルピリジン(1)(45g, 0.24mol)をジクロロメタン(500mL)に溶解させた溶液に、氷冷温度で、マロニルジクロリド(25mL, 0.25mol)を添加した。この混合物を、次いで、周囲温度で48時間撹拌した。沈澱した薄黄色の固体を濾過により集め、ジクロロメタン(3×100mL)で洗浄し、減圧下に乾燥させて、生成物２(52.5g)を得た。濾液を減圧下に濃縮した。得られた残渣をH2Oに懸濁させ、1時間撹拌した。得られた溶液を濾過し、濾液を固体のNaHCO3で中和して、未反応の2-アミノ-3-ブロモ-5-メチルピリジン(6g)を得た。未精製の化合物２をそれ以上精製することなく、次の合成ステップに付した。
【０１００】
1H-NMR(300MHz, DMSO-d6)δ 8.72(s, 1H), 8.28(s, 1H), 5.50(s, 1H), 2.33(s, 3H)。
【０１０１】
化合物３：  ジクロロメタン(300mL)中の化合物２(12.75g, 0.05mol)の懸濁液に、トリエチルアミン(14mL, 0.1mol)を添加した後、氷冷温度で、メタンスルホニルクロリド(5.42mL, 0.07mol)を添加した。得られた反応混合物を、次いで、室温で0.5時間撹拌した。モルホリン(13mL, 0.15mol)を添加した後、反応混合物を還流温度で24時間撹拌した。この混合物を減圧下に濃縮し、H2O(300mL)で希釈することにより、淡黄色の沈澱物が生じた。この固体を濾過し、減圧下に乾燥させ、ケトン３(6.8g, HPLCによる純度 >80%)であることを確認した。この生成物３をそれ以上精製することなく次の反応に付した。
【０１０２】
1H-NMR(300MHz, CDCl3)δ 8.69(s, 1H), 7.84(s, 1H), 5.58(s, 1H), 3.80(m, 4H), 3.70(m, 4H), 2.32(s, 3H)。
【０１０３】
化合物４：  臭化物３(35mmol)をDMF(70mL)に溶解させた溶液に、N,N-ジイソプロピルエチルアミン(18mL)、ブチルビニルエーテル(13mL)及びジクロロ1,1'-ビス(ジフェニルホスフィノ)フェロセンパラジウム(II)(1.09g, 1.5mmol)を添加した。得られた懸濁液(これは、20分後に均質になった)を、次いで、120℃で16時間撹拌した。反応混合物を冷却し、氷令した1MのHCl溶液(200mL)中に注ぎ入れ、1時間撹拌した。得られた溶液をジクロロメタンで抽出し、有機層を水で洗浄し、Na2SO4で脱水した(* 溶液がエマルションになるので、水性NaClでの洗浄は避けた)。減圧下に濃縮した後、暗色の残渣をカラムクロマトグラフィー(シリカゲル, 3:1 酢酸エチル, 石油エーテル)により精製して、淡黄色の固体を得た。
【０１０４】
1H-NMR(300MHz, CDCl3)δ 8.86(s, 1H), 7.84(s, 1H), 5.63(s, 1H), 3.79(m, 4H), 3.62(m, 4H), 2.77(s, 3H), 2.36(s, 3H)。
【０１０５】
TGX 221：  トルエン(10mL)中のケトン４(1mmol)の懸濁液に、アニリン(3mmol)を添加し、4時間還流した。この反応混合物を徐々に冷却し、氷冷温度で、ホウ水素化ナトリウム(1mmol)を添加した。次いで、この反応混合物を室温でさらに1時間撹拌した。得られた溶液をジクロロメタン(30mL)で希釈し、有機層を水で洗浄し、ブラインで洗浄し、Na2SO4で脱水した。減圧下に濃縮した後、残渣をカラムクロマトグラフィー(シリカゲル, 3:1 酢酸エチル, 石油エーテル)により精製して、淡黄色の固体を得た(収率 >60%)。
【０１０６】
1H-NMR(300MHz, CDCl3)δ 8.65(s, 1H), 7.58(s, 1H), (7.11 br t, 2H), 6.68(t, J=7.5Hz, 1H), 6.46(br t, 2H), 5.66(s, 1H), 5.12(m, 1H), 4.24(br s, -NH, 1H), 3.80(m, 4H), 3.68(m, 4H), 2.26(s, 3H), 1.57(d, J=6.7Hz, 3H)。
【０１０７】
実施例２：  ピリジン置換ベンゾピラノン誘導体の調製
Cushman and Nagarathnam, 1990, Tetrahedron Letters 31：6497 を適合させた以下の一般手順により、8-(置換)-2-(4-ピリジニル)-4H-1-ベンゾピラン-4-オンを調製した。簡潔に述べれば、さまざまな前駆物質の2-ヒドロキシアセトフェノン誘導体(1)をイソニコチン酸のメチルエステル及び誘導体で処理した後、脱水環化に付して、ピリジン置換生成物(3)を生成させた。次いで、さまざまなカップリング反応により、R1に特定の置換基を導入した。
【化１７】
0004646626.tif 000022
【０１０８】
アセトフェノン(R)上の置換には、ブロモ置換基、ヒドロキシ置換基、アセトアミド置換基、メトキシメチル置換基、メチル置換基、エチル置換基、メトキシ置換基、トリフルオロメタンスルホニルオキシ置換基及びアセチル置換基などがあるが、これらに限定されない。イソニコチン酸エステル(R')上の置換には、クロロ置換基、メチル置換基及びアミノ置換基などがあるが、これらに限定されない。上記縮合反応のための試薬には、テトラヒドロフラン又はN,N-ジメチルホルムアミドのような溶媒中のナトリウムメトキシド、カリウムブトキシド、1,8-ジアザビシクロ[2.2.2]ウンデカン、水素化ナトリウム又はリチウムビス(トリメチルシリル)アミドの使用などがある。脱水環化は、エタノール中の硫酸、メタノール中の塩酸、DMF中の1,8-ジアザビシクロ[2.2.2]ウンデセン、又は、ジクロロメタン中のトリフルオロメタンスルホン酸無水物のような試薬の混合物を用いて行うことができる。
【０１０９】
生成物(3)のさらなる反応としては、R(ここで、Rは、ハライド又はトリフルオロメタンスルホニルオキシである)におけるパラジウム触媒クロスカップリング反応による生成物(ここで、Rは、アリール、アリールアミノ、アルキルアミノ又はアセチルである)の生成などを挙げることができる。Rがアセチル官能基である場合、さらなる反応としては、還元又は還元的アミノ化による生成物(ここで、Rは、ヒドロキシエチル又はアミノエチルである)の生成などを挙げることができる。Rがメトキシアルキル官能基又はヒドロキシアルキル官能基である場合、さらなる反応により、生成物(ここで、Rはブロモアルキルである)を生成させることができる。Rがブロモアルキルである場合、さらなる反応により、生成物(ここで、Rは、アリールアミノアルキル又はアリールオキシアルキルである)を生成させることができる。Rがヒドロキシである場合、さらなる反応により、生成物(ここで、Rは、アリールオキシ又はアルキルオキシである)を生成させることができる。Rがアミノである場合、さらなる反応により、生成物(ここで、Rは、アリールアミノ又はアルキルアミノである)を生成させることができる。
【０１１０】
以下の実施例により本発明をさらに説明する。
【０１１１】
中間体の調製
実施例２ａ：  6-メチル-8-アセチル-2-(4-ピリジニル)-4H-1-ベンゾピラン-4-オン
【化１８】
0004646626.tif 000023
【０１１２】
3'-アセチル-2'-ヒドロキシ-5'-メチルアセトフェノン
ジクロロメタン(100mL)中の2-ヒドロキシ-5-メチルアセトフェノン(15g, 0.1mol)の混合物を、トリエチルアミン(13.9mL)、ジメチルアミノピリジン(1.22g)及び無水酢酸(9.5mL)で処理し、室温で一晩撹拌した。次いで、この混合物を水(300mL)に注ぎ入れ、ジクロロメタン(3×60mL)で抽出した。抽出物を合して飽和水性NaHCO3で洗浄し、脱水し(Na2SO4)、溶媒を除去して、無色の油状物(19.5g)を得た。
【０１１３】
この生成物を0℃のジクロロメタン(200mL)に溶解させ、塩化アルミニウム(19.5g)で処理し、室温で5日間撹拌した。この溶液を氷(50g)及び2N 塩酸(50mL)で処理し、室温で1時間撹拌した。ジクロロメタン層を分離し、水層をジクロロメタン(2×60mL)で抽出した。抽出物を合して飽和水性NaClで洗浄し、脱水し(Na2SO4)、溶媒を除去して、粗物質を得た。この生成物をカラムクロマトグラフィー(ガソリン中の0-25%酢酸エチル)により精製して、黄色/緑色の固体(11.4g)を得た。
【０１１４】
8-アセチル-6-メチル-2-(4-ピリジニル)-4H-1-ベンゾピラン-4-オン
3'-アセチル-2'-ヒドロキシ-5'-メチルアセトフェノン(3.0g, 15.6mmol)を無水THF(100mL)に溶解させた溶液に、窒素雰囲気下、-78℃で、リチウムビス(トリメチルシリル)アミド(THF中1.0M, 50mL, 50mmol)を添加し、得られた混合物を0℃で1時間撹拌した。この混合物を-78℃まで冷却し、イソニコチン酸メチル(2.14mL, 15.6mmol)を添加した。反応混合物を室温まで昇温させ、撹拌を一晩続けた。混合物を1N 塩酸溶液(200mL)中に注ぎ入れ、減圧下にTHFを除去した。この混合物を1N 水性水酸化ナトリウムで中和し、次いで、濾過した。フィルターケーキを高真空下で一晩乾燥させた。
【０１１５】
得られた固体(3.0g)を酢酸(40mL)で処理した後、濃硫酸(2mL)で処理し、80℃で3時間加熱した。混合物が冷えた時点で、その混合物を水(100mL)で希釈し、1N 水性水酸化ナトリウムで中和した。沈澱物を濾過し、水で洗浄し、高真空下に乾燥させた。得られた粗生成物をカラムクロマトグラフィー(酢酸エチル中の0-20%の勾配のメタノールで溶離)により精製して、黄褐色の固体を得た。
【０１１６】
ES-MS：280.36(M+H)。
【０１１７】
同様の方法により：
2,3-ジヒドロキシアセトフェノンから、8-ヒドロキシ-2-(4-ピリジニル)-4H-1-ベンゾピラン-4-オンを調製した；  ES-MS：240.2(M+H)；
3-ブロモ-5-メチル-2-ヒドロキシアセトフェノンから、8-ブロモ-6-メチル-2-(4-ピリジニル)-4H-1-ベンゾピラン-4-オンを調製した；  ES-MS：316.2, 318.2(M+H)；
2,4-ジヒドロキシアセトフェノンから、7-ヒドロキシ-2-(4-ピリジニル)-4H-1-ベンゾピラン-4-オンを調製した；  ES-MS：240.15(M+H)；
3-アセチルアミノ-2-ヒドロキシアセトフェノンから、8-アセチルアミノ-2-(4-ピリジニル)-4H-1-ベンゾピラン-4-オンを調製した；  ES-MS：281.2(M+H)；
3-アセチルアミノ-2-ヒドロキシアセトフェノンから、8-アミノ-2-(4-ピリジニル)-4H-1-ベンゾピラン-4-オンを調製した；  ES-MS：239.2(M+H)；
8-アセチル-6-メチル-2-(2-クロロ-6-メチル-4-ピリジニル)-4H-1-ベンゾピラン-4-オンを調製した；  ES-MS：328.12, 330.12(M+H)；
8-アセチル-6-メチル-2-(2-アミノ-4-ピリジニル)-4H-1-ベンゾピラン-4-オンを調製した；  ES-MS：295.5(M+H)；
6-メチル-8-アセチル-2-(3-ピリジニル)-4H-1-ベンゾピラン-4-オンを調製した；  ES-MS：280.3(M+H)；
及び、
6-メトキシ-8-メトキシメチル-2-(3-ピリジニル)-4H-1-ベンゾピラン-4-オンを調製した；  ES-MS：316.2(M+H)。
【０１１８】
実施例２ｂ：  ブロモ-クロモンのヘックカップリング
8-アセチル-6-メチル-2-(4-ピリジニル)-4H-1-ベンゾピラン-4-オン(別法)
【化１９】
0004646626.tif 000024
【０１１９】
6-メチル-8-(アセチル)-2-(4-ピリジニル)-4H-1-ベンゾピラン-4-オン
DMF(5mL)中の、8-ブロモ-2-(4-ピリジニル)-6-メチル-4H-1-ベンゾピラン-4-オン(0.12g, 0.36mmol)、n-ブチルビニルエーテル(0.047mL, 0.36mmol)及びトリエチルアミン(0.050mL, 0.36mmol)の混合物をN2でパージした後、PdCl2(dppf)(27mg, 0.036mmol)で処理した。この混合物を一晩90℃に加熱した。この混合物を室温まで冷却し、1N 水性HCl(30mL)で処理し、一晩撹拌を続けた。混合物を、次いで、水(50mL)で希釈し、凍結乾燥した。残渣を、C8-HPLCカラムを通して溶離させ、生成物をオフホワイトの固体(2.5mg)として単離した。生成物は、上記で記載したものと同一であった。
【０１２０】
実施例２ｃ：  アセチルクロモンの還元：8-(1-ヒドロキシエチル)-2-(4-ピリジニル)-6-メチル-4H-1-ベンゾピラン-4-オン
メタノール(100mL)中の8-アセチル-6-メチル-2-(4-ピリジニル)-4H-1-ベンゾピラン-4-オン(4.6g, 16.5mmol)の混合物を、ホウ水素化ナトリウム(1.22g, 33mmol)で処理し、一晩加熱還流した。混合物が冷えた時点で、水(2mL)を添加し、得られた溶液を減圧下にほぼ乾固に近い状態まで濃縮した。水(100mL)を添加した。沈澱物が形成されたが、それを濾過して、黄褐色/橙色の固体(4.0g)を得た。
【０１２１】
実施例２ｄ：  アルコールの臭素化：8-(1-ブロモエチル)-2-(4-ピリジニル)-6-メチル-4H-1-ベンゾピラン-4-オン
氷酢酸(45mL)中の8-(1-ヒドロキシエチル)-2-(4-ピリジニル)-6-メチル-4H-1-ベンゾピラン-4-オン(4.0g)の混合物を48%水性臭化水素酸(34mL)で処理し、80℃で一晩加熱した。混合物が冷えた時点で、その混合物を氷冷水中に注ぎ入れ、50%水酸化ナトリウムで中和し、ジクロロメタン(3×40mL)で抽出した。抽出物を合して脱水し、溶媒を除去した。残渣を、酢酸エチル中の0-10%メタノールで溶離させるシリカカラムのクロマトグラフィーに付して、黄褐色の固体(1.1g)を得た。
【０１２２】
ESI-MS：344.1, 346.1(M+H)(別法として、この生成物は、アルコールをジクロロメタン中のPBr3で処理することにより得ることができる)。
【０１２３】
実施例２ｅ：  アルコールのメシル化：8-(1-メタンスルホニルオキシエチル)-2-(4-ピリジニル)-6-メチル-4H-1-ベンゾピラン-4-オン
ジクロロメタン(100mL)中の8-(1-ヒドロキシエチル)-2-(4-ピリジニル)-6-メチル-4H-1-ベンゾピラン-4-オン(2.4g)の混合物を氷浴内に置き、それを、トリエチルアミン(1.3mL)で処理した後、メタンスルホニルクロリド(0.67mL)で処理し、0℃で30分間撹拌した。次いで、得られた溶液を0.1N HCl(水性)(2×30mL)で洗浄し、脱水し(Na2SO4)、溶媒を除去して、油性の褐色の固体を得た。これは、それ以上精製しなかった。
【０１２４】
実施例２ｆ：  6-メチル-8-ブロモメチル-2-(4-ピリジニル)-4H-ベンゾピラン-1-オンの合成：6-メチル-8-ブロモメチル-2-(4-ピリジニル)-4H-ベンゾピラン-1-オン
【化２０】
0004646626.tif 000025
【０１２５】
2'-ヒドロキシ-5'-メチル-3'-メトキシメチルアセトフェノン
2'-ヒドロキシ-5'-メチルアセトフェノン(1.0g, 6.7mmol)の混合物をパラホルムアルデヒド(0.18g)及び濃塩酸(5mL)で処理し、得られた混合物を60℃で一晩加熱した。混合物が冷えた時点で、その混合物をトルエン(3×30mL)で抽出し、抽出物を合して脱水し(Na2SO4)、溶媒を除去して、黄色の油状物を得た。その油状物をメタノール(30mL)で処理し、1時間加熱還流した。得られた溶液が冷えた時点で、その溶液をほぼ乾固に近い状態まで蒸発させ、残渣を、石油エーテル中の0-10%酢酸エチルで溶離させるシリカカラムのクロマトグラフィーに付した。精製された生成物を白色の粉末(0.76g)として得た。
【０１２６】
8-ブロモメチル-6-メチル-2-(4-ピリジニル)-4H-ベンゾピラン-1-オン
アセトフェノン(0.76g, 3.9mmol)をTHF(30mL)に溶解させた溶液に、-78℃で、リチウムビス(トリメチルシリル)アミド(THF中1.0M, 11.8mL, 11.8mmol)を添加した。得られた混合物を0℃で1時間撹拌し、-78℃に冷却し、イソニコチン酸メチル(0.53mL, 3.9mmol)を添加した。この反応混合物を室温まで昇温させ、一晩撹拌を続けた。混合物を1N 塩酸溶液(200mL)中に注ぎ入れ、減圧下にTHFを除去した。混合物を1N 水性水酸化ナトリウムで中和した後、濾過した。フィルターケーキを高真空下で一晩乾燥させた。
【０１２７】
残渣を酢酸(6mL)で処理した後、臭化水素酸(水中48%, 6mL)で処理し、得られた混合物を80℃で一晩加熱した。混合物が冷えた時点で、2N 水酸化ナトリウム溶液を用いて、その混合物をpH5とした。生じた沈澱物を濾過し、減圧下に乾燥させた。残渣を、酢酸エチル中の0-5%メタノールで溶離させるシリカカラムのクロマトグラフィーに付した。生成物を、オフホワイトの固体(310mg)として単離した。
【０１２８】
LC-MS：332, 334(M+H)。
【０１２９】
実施例２ｇ：  8-トリフルオロメタンスルホニルオキシ-2-(4-ピリジニル)-4H-1-ベンゾピラン-4-オン
アセトニトリル(2mL)中の8-ヒドロキシ-2-(4-ピリジニル)-4H-1-ベンゾピラン-4-オン(10mg)の混合物に、ジイソプロピルエチルアミン(20uL)を添加した後、N-フェニルトリフリミド(20mg)を添加した。得られた混合物を室温で2時間撹拌し、シリカゲルに吸着させ、溶離液として酢酸エチルを使用してシリカカラムを通して溶離させて、標題化合物を黄褐色の固体(10mg)として得た。
【０１３０】
ESI-MS：372.1(M+H)。
【０１３１】
実施例２ｈ：  ケトンの還元的アミノ化：8-1-(フェニルアミノ)エチル-6-メチル-2-(4-ピリジニル)-4H-1-ベンゾピラン-4-オン(TGX-286)
メタノール(30mL)中の8-アセチル-6-メチル-2-(4-ピリジニル)-4H-1-ベンゾピラン-4-オン(0.28g)の懸濁液に、氷酢酸(2.5mL)、アニリン(2.5mL)及びシアノホウ水素化ナトリウム(62mg)を添加し、得られた混合物を70℃で一晩加熱した。混合物が冷えた時点で、その混合物をシリカゲルに吸着させ、酢酸エチル中の0-10%の勾配のメタノールで溶離させるカラムクロマトグラフィーにより精製して、黄褐色の固体(200mg)を得た。
【０１３２】
1H-NMR(CDCl3, 300MHz)：δ 1.65(d, 3H, J=1.2Hz), 2.39(s, 3H), 5.186(m, 1H), 6.51(d, 2H, J=7.8Hz), 6.69(t, 1H, J=7.5Hz), 6.94(s, 1H), 7.11(t, J=8.1Hz), 7.65(d, 1H, J=1.8Hz), 7.73(d, 2H, J=6Hz), 7.90(s, 1H), 8.80(d, 2H, J=6Hz)。
【０１３３】
ES-MS：357.3(M+H), 264.3。
【０１３４】
同様の方法により：
8-1-(4-フルオロ-2-メチルフェニルアミノ)エチル-6-メチル-2-(4-ピリジニル)-4H-1-ベンゾピラン-4-オン(KN-303)；ES-MS：389.3(M+H)；
8-1-(フェニルアミノ)エチル-6-メチル-2-(3-ピリジニル)-4H-1-ベンゾピラン-4-オン(KN-305)；ES-MS 357.3(M+H)；
8-1-(6-メチルピリジン-2-イルアミノ)エチル-6-メチル-2-(4-ピリジニル)-4H-1-ベンゾピラン-4-オン(KN-310)；ES-MS：372.3(M+H)；
8-1-(3-トリフルオロメチルフェニルアミノ)エチル-6-メチル-2-(4-ピリジニル)-4H-1-ベンゾピラン-4-オン(KN-322)；ES-MS：425.0(M+H)；
及び、
8-1-(フェニルアミノ)エチル-6-メチル-2-(2-クロロ-6-メチル-4-ピリジニル)-4H-1-ベンゾピラン-4-オン(KN-340)；ES-MS：405.44, 407.42(M+H)；
も調製した。
【０１３５】
実施例２ｉ：  ブロモアルキル置換クロモンとフェノール又はアニリンの反応：6-メチル-8-フェニルアミノメチル-2-(4-ピリジニル)-4H-ベンゾピラン-1-オン(KN-312)
アセトニトリル(5mL)中の8-ブロモメチル-6-メチル-2-(4-ピリジニル)-4H-ベンゾピラン-1-オン(48mg, 0.15mmol)の混合物をアニリン(48uL, 0.52mmol)で処理し、得られた混合物を70℃で4時間加熱した。混合物が冷えた時点で、その混合物を固体の炭酸カリウム(60mg)で処理し、シリカゲル(1.0g)に吸着させ、溶媒を除去した。残渣をシリカゲルカラムに適用し、酢酸エチル中の0-5%メタノールを用いて生成物を溶離させた。生成物を黄色の粉末(25mg)として単離した。
【０１３６】
1H-NMR(CDCl3, 300MHz)：δ 2.41(s, 3H), 4.19(s, 1H), 4.71(s, 2H), 6.68(d, 2H, J=8.4Hz), 6.77(t, 1H, J=7.2Hz), 6.9(s, 1H), 7.21(t, 2H, 7.5Hz), 7.59(s, 1H), 7.67(d, 2H, 4.8Hz), 7.91(s, 1H), 8.74(s, 2H)。
【０１３７】
LC-MS：343.08(M+H), 249.98。
【０１３８】
同様の方法により：
6-メチル-8-フェノキシメチル-2-(4-ピリジニル)-4H-ベンゾピラン-1-オン(KN-313)；ES-MS 344.1；
6-メチル-8-(2-ピリジニル)アミノメチル-2-(4-ピリジニル)-4H-ベンゾピラン-1-オン(KN-315)；ES-MS：344.1；
6-メチル-8-1-(フェノキシ)エチル-2-(4-ピリジニル)-4H-ベンゾピラン-1-オン(KN-317)；ES-MS 358.1；
6-メチル-8-(2-カルボキシ)フェニルアミノメチル-2-(4-ピリジニル)-4H-ベンゾピラン-1-オン(KN-323)；ES-MS 387.04(M+H)；
6-メチル-8-(2-アセトアミド)フェニルアミノメチル-2-(4-ピリジニル)-4H-ベンゾピラン-1-オン(KN-326)；ES-MS：413.9(M+H)；
及び、
6-メチル-8-[1-(2-カルボキシ)フェニルアミノ]エチル-2-(4-ピリジニル)-4H-ベンゾピラン-1-オン(KN-334)；ES-MS：401.4；
を調製した。
【０１３９】
実施例２ｊ：  8-(1-(2-アミノフェニルアミノ)エチル-2-(4-ピリジニル)-4H-ベンゾピラン-1-オン(KN327)
アセトニトリル(50mL)中の8-(1-メタンスルホニルオキシ)エチル-6-メチル-2-(4-ピリジニル)-4H-ベンゾピラン-1-オン(2.4g)の混合物を炭酸カリウム(2.4g)及びモノ-Bocフェニレンジアミン(2.7g)で処理し、得られた混合物を70℃で一晩加熱した。混合物が冷めた時点で、その混合物をジクロロメタンで処理し、シリカゲルに吸着させた。溶媒を除去し、残渣をシリカゲルカラムに適用し、酢酸エチル中の0-5%メタノールを用いて生成物を溶離させた。生成物を黄色の油状物(0.9g)として単離した。
【０１４０】
ES-MS：472.3(M+H)。
【０１４１】
ジクロロメタン(12mL)中の8-(1-(Boc-2-アミノフェニルアミノ)エチル-2-(4-ピリジニル)-4H-ベンゾピラン-1-オン(0.9g)をトリフルオロ酢酸(8mL)で処理し、得られた混合物を室温で1時間撹拌した。その混合物をジクロロメタン(30mL)で希釈し、水(30mL)で抽出した後、1N 水性塩酸(30mL)で抽出した。水性抽出物を合し、水酸化ナトリウム水溶液で中和し、ジクロロメタン(3×50mL)で抽出した。次いで、有機抽出物を合して、0.3N 水性塩酸(2×50mL)で再抽出した。次いで、水性抽出物を合して凍結乾燥により乾固させて、赤褐色の固体(0.61g)を得た。
【０１４２】
ES-MS：372.3。
【０１４３】
同様の方法により：
6-メチル-8-1-(2-トリフルオロメチル-ベンゾイミダゾール-1-イル)-エチル-2-(4-ピリジニル)-4H-ベンゾピラン-1-オン(KN-328)；ES-MS：450(M+H)；
を調製した。
【０１４４】
実施例２ｋ：  8-ベンジルオキシ-2-(4-ピリジニル)-4H-ベンゾピラン-1-オン(KN-335)
アセトニトリル中の8-ヒドロキシ-2-(4-ピリジニル)-4H-ベンゾピラン-1-オン(52mg)及び無水炭酸カリウム(117mg)の混合物を臭化ベンジルで処理し、一晩加熱還流した。混合物が冷えた時点で、その混合物をジクロロメタンで処理し、シリカゲルに吸着させ、シリカクロマトグラフィーカラムに適用した。酢酸エチル中の0-4%メタノールで生成物を溶離させた。所望の生成物を褐色の固体(17mg)として単離した。
【０１４５】
ES-MS：330.2(M+H)。
【０１４６】
同様の方法により：
7-ベンジルオキシ-2-(4-ピリジニル)-4H-ベンゾピラン-1-オン(KN-342)；ES-MS：330.5(M+H)；
を調製した。
【０１４７】
実施例２ｌ：  8-ベンジルアミノ-2-(4-ピリジニル)-4H-ベンゾピラン-1-オン(KN-336)
メタノール(5mL)中の8-アミノ-2-(4-ピリジニル)-4H-ベンゾピラン-1-オン(16mg)、ベンズアルデヒド(40μL)及び酢酸(20μL)の混合物をシアノホウ水素化ナトリウム(5mg)で処理し、70℃で一晩加熱した。得られた溶液が冷えた時点で、その溶液をシリカゲルに吸着させ、酢酸エチル中の0-5%の勾配のメタノールを使用してシリカに通すクロマトグラフィーに付した。所望の生成物を黄色の固体として単離した。
【０１４８】
ES-MS：329.3(M+H)。
【０１４９】
実施例２ｍ：  8-フェニルアミノ-2-(4-ピリジニル)-4H-ベンゾピラン-1-オン(KN-341)
ジクロロメタン(5mL)中の8-アミノ-2-(4-ピリジニル)-4H-ベンゾピラン-1-オン(20mg)、フェニルボロン酸(30mg, 0.25mmol)及びトリエチルアミン(70uL, 0.5mmol)の混合物を酢酸第二銅(45mg, 0.25mmol)で処理し、得られた混合物を室温で一晩撹拌した。次いで、この混合物をシリカに吸着させ、シリカカラムに適用し、酢酸エチル中の0-5%メタノールで溶離させた。所望の化合物を黄色の固体(4mg)として得た。
【０１５０】
ES-MS：315.5(M+H)。
【０１５１】
同様の方法により：
8-(3-フルオロフェニルアミノ)-2-(4-ピリジニル)-4H-ベンゾピラン-1-オン(KN-351)；ES-MS：333.3(M+H)；
を調製した。
【０１５２】
実施例２ｎ：  8-フェニル-6-メチル-2-(4-ピリジニル)-4H-ベンゾピラン-1-オン(TGX-258)
ジオキサン(6mL)中の8-ブロモ-6-メチル-2-(4-ピリジニル)-4H-ベンゾピラン-1-オン(0.1g, 0.32mmol)、リン酸カリウム(0.2g, 0.95mmol)、フェニルボロン酸(0.042g, 0.35mmol)及びPdCl2(dppf)(7.8mg, 0.009mmol)の窒素でパージした混合物を一晩加熱還流した。混合物が冷えた時点で、その混合物を濾過し、濾液を濃縮乾固させた。残渣を、溶離剤として0.1%水性TFA中の0-60%アセトニトリルを使用してC8 HPLCカラムに通すクロマトグラフィーに付した。精製されたフラクションを合して、黄色の粉末(53.4mg)を得た。
【０１５３】
1H-NMR(CDCl3, 300MHz)：δ 2.53(s, 3H), 7.03(s, 1H), 7.55(m, 6H), 7.80(d, J=5.7Hz, 2H), 8.04(s, 1H), 8.80(d, J=5.7Hz, 2H)。
【０１５４】
ES-MS：314.3(M+H)。
【０１５５】
実施例２ｏ：  6-メチル-8-ブロモ-3-ヒドロキシ-2-(4-ピリジニル)-4H-ベンゾピラン-1-オンの合成
【化２１】
0004646626.tif 000026
【０１５６】
エタノール(10mL)中の3'-ブロモ-2'-ヒドロキシ-5'-メチルアセトフェノン(1.15g)及びピリジン-4-カルボキシアルデヒド(0.54g)の混合物に、50%水酸化ナトリウム溶液を滴下して加えた。得られた混合物を室温で4時間撹拌した。この混合物を氷令した氷酢酸で処理してpHを5.5とすることにより沈澱物が生じた。その沈澱物を濾過して、カルコン中間体を黄色の固体(0.85g)として得た。
【０１５７】
得られたカルコン(0.132g)を0℃のメタノール(2.3mL)中に入れ、それを、2N 水酸化ナトリウム(2.1mL)で処理した後、30%(v/v)過酸化水素溶液(189μL)で処理した。得られた混合物を4℃で一晩撹拌した。その混合物を2N 硫酸を用いて中和することにより、沈澱物が形成された。その沈澱物を濾過して、黄褐色の固体を得た。
【０１５８】
ES-MS：332.0, 334.0(M+H)。
【０１５９】
実施例３：  ピリジン置換キノロン誘導体の調製
以下に示す一般的な方法により、本発明のピリジン置換キノロン化合物を調製した。
【化２２】
0004646626.tif 000027
【０１６０】
試薬：i. p-トルエンスルホン酸，トルエン，還流；  ii. Ph2O，加熱
【０１６１】
i.  エステル中間体(化合物３)の合成
トルエン(30mL)中のβ-オキソ-4-ピリジンプロパン酸エチル(化合物１, 4.35mmol)[Lesher et al., 1984, J. Heterocycl. Chem. 21(6)：1849]、アニリン(化合物２, 3.35mmol)及びp-トルエンスルホン酸(0.54mmol)を還流温度で18時間加熱し、共沸により水を除去した。減圧下に溶媒を蒸発させて、黄色の未精製油状物を得た。この油状物を、溶離剤として石油エーテル/酢酸エチル(1:1)を使用するフラッシュクロマトグラフィーにより精製した後、エステル中間体(化合物３, 70〜80%)を得た。
【０１６２】
ii.  キノロン(化合物４)の合成
エステル中間体(化合物３)(2.58mmol)をジフェニルエーテル(3mL)で20分間還流し、室温まで冷却し、石油エーテルで処理して、クリーム色の固体を得た。その沈澱物を濾過し、石油エーテルで数回洗浄し、溶離剤として酢酸エチル/メタノール(9:1)を使用するフラッシュクロマトグラフィーにより精製して、所要のキノロン化合物４(60〜70%)を得た。
【０１６３】
8-フェノキシ-2-(4-ピリジニル)-4(1H)-キノリノン(KN-319)
エステル中間体(化合物３, ここで、RはOPhである)をその場で環化し、トルエン中で還流して(ステップi)、キノロン(化合物４)を得た：1H-NMR(400MHz, CDCl3)：δ 6.64(d, J=1.9Hz, 1H), 7.06(dd, J=8.0, 1.1Hz, 1H), 7.15(dd, J=7.7, 0.7Hz, 2H), 7.20-7.31(m, 2H), 7.44(td, J=7.7, 0.7Hz, 2H), 7.57(dd, J=5.0, 1.4Hz, 2H), 8.06(dd, J=8.0, 1.1Hz, 1H), 8.80(d, J=5.0Hz, 2H), 8.88(br.s, NH)；MS-ES m/e 315(M+H)。
【０１６４】
8-ブロモ-2-(4-ピリジニル)-4(1H)-キノリノン(KN-343)
エステル中間体(化合物３, ここで、RはBrである)：1H-NMR(300MHz, CDCl3)δ 1.33(t, J=7.1Hz, 3H), 4.25(q, J=7.1Hz, 2H), 5.17(s, 1H), 6.31(dd, J=7.7, 1.6Hz, 1H), 6.81(td, J=7.7, 1.6Hz, 1H), 6.89(td, J=7.7, 1.6Hz, 1H), 7.21(d, J=5.2Hz, 2H), 7.54(dd, J=7.7, 1.6Hz, 1H), 8.56(d, J=5.2Hz, 2H), 10.16(br.s, NH)；MS-ES m/e 347(M+H)。
【０１６５】
キノロン(化合物４)：1H-NMR(400MHz, (CD3)2SO)δ 7.45(t, J=7.9Hz, 1H), 7.49(s, 1H), 8.12(d, J=5.2Hz, 2H), 8.14(dd, J=7.9, 1.3Hz, 1H), 8.19(dd, J=7.9, 1.3Hz, 1H), 8.78(d, J=5.2Hz, 2H), 12.02(br.s, NH)；MS-ES m/e 301(M+H)。
【０１６６】
KN-343は、さまざまな別のピリジン置換キノロン類似体の合成における中間体である。
【０１６７】
8-(4-フルオロ-2-メチルフェノキシ)-2-(4-ピリジニル)-4(1H)-キノリノン(KN-337)
エステル中間体(化合物３, ここで, Rは4-フルオロ-2-メチルフェノキシである)：1H-NMR(400MHz, CDCl3)：δ 1.29(t, J=7.1Hz, 3H), 2.26(s, 3H), 4.20(q, J=7.1Hz, 2H), 5.07(s, 1H), 6.41(dd, J=7.7, 1.9Hz, 1H), 6.56(dd, J=7.7, 1.9Hz, 1H), 6.69(td, J=7.7, 1.9Hz, 1H), 7.76(dd, J=8.9, 5.0Hz, 1H), 6.81-6.86(m, 2H), 6.97(dd, J=8.9, 3.1Hz, 1H), 7.27(dd, J=4.5, 1.5Hz, 2H), 8.57(dd, J=4.5, 1.5Hz, 2H), 10.25(s, NH)；MS-ES m/e 393(M+H)。
【０１６８】
キノロン(化合物４)：1H-NMR(400MHz, CDCl3)：δ 2.23(s, 3H), 6.67(d, J=2.1Hz, 1H), 6.76(dd, J=8.1, 1.0Hz, 1H), 6.98(td, J=8.2, 2.8Hz, 1H), 7.03-7.07(m, 2H), 7.20(t, J=8.1Hz, 1H), 7.62(dd, J=4.5, 1.6Hz, 2H), 8.02(dd, J=8.1, 1.0Hz, 1H), 8.84(dd, J=4.5, 1.6Hz, 2H), 8.86(s, NH)；MS-ES m/e 347(M+H)。
【０１６９】
8-メトキシ-2-(4-ピリジニル)-4(1H)-キノリノン(KN-344)
エステル中間体(化合物３, ここで、RはOMeである)をその場で環化し、トルエン中で還流して(ステップi)、キノロン(化合物４)を得た：1H-NMR(400MHz, (CD3)2SO)δ 3.99(s, 3H), 6.66(s, 1H), 7.25(dd, J=7.9, 1.3Hz, 1H), 7.32(t, J=7.9Hz, 1H), 7.70(dd, J=7.9, 1.3Hz, 1H), 7.82(dd, J=4.4, 1.7Hz, 2H), 8.72(dd, J=4.4, 1.7Hz, 2H)；MS-ES m/e 253(M+H)。
【０１７０】
KN-344は、さまざまな別のピリジン置換キノロン類似体の合成における重要な中間体である。
【０１７１】
8-フェニル-2-(4-ピリジニル)-4(1H)-キノリノン(KN-345)
エステル中間体(化合物３, ここで、Rはフェニルである)をその場で環化し、トルエン中で還流して(ステップi)、キノロン(化合物４)を得た：1H-NMR(400MHz, CDCl3)δ 6.65(d, J=2.0Hz, 1H), 7.38(dd, J=4.5, 1.7Hz, 2H), 7.46(td, J=8.1, 1.6Hz, 1H), 7.52-7.56(m, 3H), 7.58-7.63(m, 2H), 8.42(dd, J=8.1, 1.6Hz, 2H), 8.75(dd, J=4.5, 1.7Hz, 2H)；MS-ES m/e 299(M+H)。
【０１７２】
8-ベンジル-2-(4-ピリジニル)-4(1H)-キノリノン(KN-346)
エステル中間体(化合物３, ここで、Rはベンジルである)をその場で環化し、トルエン中で還流して(ステップi)、キノロン(化合物４)を得た：1H-NMR(400MHz, CDCl3)δ 4.34(s, 2H), 6.52(s, 1H), 7.27-7.33(m, 3H), 7.37-7.44(m, 4H), 7.63(d, J=6.9Hz, 2H), 8.35(d, J=8.3Hz, 1H), 8.67(br.s, 2H)；MS-ES m/e 313(M+H)。
【０１７３】
8-ニトロ-2-(4-ピリジニル)-4(1H)-キノリノン(KN-352)
エステル中間体(化合物３, ここで、Rはニトロ基である)を、それ以上精製することなく、未精製のままでキノロン(化合物４)の合成に使用した：1H-NMR(400MHz, CDCl3)δ 6.77(d, J=2Hz, 1H), 7.51(t, J=7.9Hz, 1H), 7.65(dd, J=4.5, 1.7Hz, 2H), 8.72(dd, J=7.9, 1.6Hz, 1H), 8.80(ddd, J=7.9, 1.6, 0.6Hz, 1H), 8.89(dd, J=4.5, 1.7Hz, 2H)；MS-ES m/e 268(M+H)。
【０１７４】
8-アミノ-2-(4-ピリジニル)-4(1H)-キノリノン(KN-353)
エタノール中でPd/Cを用いて8-ニトロ-2-(4-ピリジニル)-4(1H)-キノリノン(KN-352)を水素化することにより、標題化合物を得た：MS-ES m/e 238(M+H)。
【０１７５】
8-ナフチル-2-(4-ピリジニル)-4(1H)-キノリノン(KN-350)
エステル中間体(化合物３, ここで、Rはナフトキシである)：1H-NMR(400MHz, CDCl3)：δ 1.23(t, J=7.1Hz, 3H), 4.13(q, J=7.1Hz, 2H), 5.01(d, J=1.6Hz, 1H), 6.56(dd, J=7.8, 1.6Hz, 1H), 6.77-6.82(m, 3H), 6.88(td, J=7.8, 1.6Hz, 1H), 7.27(dd, J=4.5, 1.6Hz, 2H), 7.37(t, J=8.1Hz, 1H), 7.50-7.54(m, 2H), 7.62(d, J=8.1Hz, 1H), 7.85-7.89(m, 1H), 8.18-8.21(m, 1H), 8.57(dd, J=4.5, 1.6Hz, 2H), 10.24(s, NH)；MS-ES m/e 410(M+H)。
【０１７６】
キノロン(化合物４)：1H-NMR(400MHz, CDCl3)：δ 6.69(d, J=2.1Hz, 1H), 6.97(dd, J=7.6, 1.2Hz, 1H), 7.16(dd, J=7.6, 1.2Hz, 1H), 7.21(t, J=8.1Hz, 1H), 7.48(t, J=7.9Hz, 1H), 7.52-7.55(m, 2H), 7.59(td, J=7.6, 1.2Hz, 1H), 7.78(d, J=8.1Hz, 1H), 7.96(d, J=7.9Hz, 1H), 8.07(d, J=7.9Hz, 1H), 8.08(d, J=8.1Hz, 1H), 8.79(dd, J=4.5, 1.6Hz, 2H), 8.94(br.s, NH)；MS-ES m/e 365(M+H)。
【０１７７】
実施例４：  ピリジン置換ピリドピリミジノン誘導体の調製
実施例４ａ
一般的な実験手順：  アミン(3.00mmol)とγ-オキソ-4-ピリジンプロパン酸エチル(3.00mmol)の混合物を、180〜200℃で20〜45分間加熱した。得られた粗物質を、次いで、カラムクロマトグラフィー(SiO2, EtOAc)により精製して、所要のピリミジンを得た。反応収率は、10〜20%であった。
【化２３】
0004646626.tif 000028
【０１７８】
9-メチル-2-(4-ピリジニル)-4H-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(KN-347)
1H-NMR(CDCl3, 200MHz)δ 2.75(s, 3H), 7.03(s, 1H), 7.15(t, J=6.97Hz, 1H), 7.69-7.73(bd, J=6.91Hz, 1H), 8.12-8.15(bd, J=6.05Hz, 2H), 8.82-8.84(bd, J=4.73Hz, 2H), 9.01-9.05(bd, J=7.40Hz, 1H)；LCMS m/z 238(M++H)。
【０１７９】
9-ベンジル-2-(4-ピリジニル)-4H-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(KN-349)
【化２４】
0004646626.tif 000029
【０１８０】
1H-NMR(CDCl3, 300MHz)δ 4.50(s, 2H), 7.03(s, 1H), 7.16(t, J=7.03Hz, 1H), 7.28-7.39(m, 5H), 7.56-7.58(m, 1H), 8.21(bs, 2H), 8.83(bs, 2H), 9.02-9.05(m, 1H)；LCMS m/z 314(M++H)。
【０１８１】
9-フェニル-2-(4-ピリジニル)-4H-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(KN-348)
【化２５】
0004646626.tif 000030
【０１８２】
1H-NMR(CDCl3, 300MHz)δ 2.50(d, J=1.07Hz, 3H), 7.00(s, 1H), 7.48-7.56(m, 4H), 7.71-7.75(m, 4H), 7.90(bs, 2H), 8.96(m, 1H)；LCMS m/z 314(M++H)。
【０１８３】
9-ブロモ-2-(4-ピリジニル)-4H-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン
【化２６】
0004646626.tif 000031
【０１８４】
1H-NMR(DMSO, 300MHz)δ 2.42(m, 3H), 7.23(s, 1H), 8.19(dd, J=4.48, 1.66Hz, 2H), 8.40(d, J=1.95Hz, 1H), 8.77(dd, J=4.56, 1.65Hz, 2H), 8.83(m, 1H)；LCMS m/z 316(M+)。
【０１８５】
実施例４ｂ：  9-(2-フェネチル)アミノ-2-(4-ピリジニル)-4H-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(KN-316)
【化２７】
0004646626.tif 000032
【０１８６】
THF中のブロモ誘導体１(324mg, 1mmol)、(R)-(+)-α-メチルベンジルアミン２(122mg, 1mmol)、カリウムt-ブトキシド(225mg, 2mmol)及びPdCl2(dppf)(35mg, 0.05mmol)の混合物を窒素雰囲気下、還流温度で20時間撹拌した。反応混合物を冷却し、酢酸エチルで希釈した。有機層を水で洗浄し、ブラインで洗浄し、Na2SO4で脱水した。酢酸エチル層を減圧下に濃縮し、残渣を、カラムクロマトグラフィー(シリカゲル, 酢酸エチル)に付して、所要の生成物３を得た。
【０１８７】
1H-NMR(300MHz, CDCl3)δ 8.78(br s, 2H), 8.21(s, 1H), 7.92(d, J=5.9Hz, 2H), 7.4-7.26(m, 5H), 6.90(s, 1H), 6.50(d, J=5.5Hz, 1H, -NH), 6.27(s, 1H), 4.60(m, 1H), 2.23(s, 3H), 1.71(d, J=6.9Hz, 3H)；MS(m/z)=357.13(m+1)。
【０１８８】
実施例４ｃ：  9-ブロモ-2-(4-ピリジニル)-4H-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オンの別法による合成
【化２８】
0004646626.tif 000033
【０１８９】
イソニコチン酸エチル(5.0mL, 25.91mmol)及び4-アセチルモルホリン(3.0mL, 25.91mmol)をTHF(25mL)に溶解させた溶液を、リチウムビス(トリメチルシリル)アミド(7.0g, 41.83mmol)をTHF(25mL)に溶解させた溶液で処理した。得られた溶液を周囲温度で24時間撹拌した。その溶液を濾過し、エーテル(3×50mL)で洗浄した。濾液を水(100mL)に溶解させ、氷酢酸を用いて酸性化し、CH2Cl2(3×30mL)で抽出し、脱水し(Na2SO4)、濾過し、蒸発乾固させた。粗反応混合物をカラムクロマトグラフィー(SiO2, 酢酸エチル)により精製して、化合物５を薄黄色の粘性油状物として得たが、これは、静置することで固化(3.6g, 59%)した。
【０１９０】
1H-NMR(CDCl3, 300MHz)ケトンとエノールエーテルを一緒にしたNMR δ 3.47-3.57(bm, 8H), 3.95 及び 5.77(s, 1H), 7.44 及び 7.61(dd, J=4.43, 1.62Hz, 2H), 8.49(bd, J=5.93Hz), 8.64(dd, J=4.44, 1.62Hz)2H；LCMS m/z 235(M++H)。
【０１９１】
トルエン(50mL)中の2-アミノ-3-ブロモ-5-メチルピリジン(1.00g, 4.30mmol)、化合物５(1.20g, 6.40mmol)及びp-トルエンスルホン酸一水和物(203.0mg, 1.07mmol)の混合物を4日間還流した。減圧下にトルエンを除去し、得られた粗反応混合物をカラムクロマトグラフィー(SiO2, 酢酸エチル)により精製して、化合物５を黄色の沈澱物(0.66g, 65%)として得た。
【０１９２】
実施例４ｄ：
【化２９】
0004646626.tif 000034
【０１９３】
9-ブロモ-2-(4-ピリジニル)-4H-ピリド[1,2-a]ピリミジン-4-オン(１, 232.1mg, 0.73mmol)、ブチルビニルエーテル(0.19mL, 1.08mmol)、炭酸カリウム(149.2g, 1.49mmol)及びPd(OAc)2(4.8mg, 21.6μmol)を乾燥DMF(6mL)に溶解させた溶液を、窒素雰囲気下、90〜100℃で2時間撹拌した。この溶液を、該混合物が酸性(〜pH4)になるまで、1M HClで処理した。得られた溶液を、周囲温度で3時間撹拌した。反応物を水(10mL)で希釈し、NaHCO3を用いて中和し、水層をCH2Cl2(3×15mL)で抽出した。有機抽出物を合して水(3×15mL)で洗浄し、脱水し(Na2SO4)、濾過し、濃縮乾固させて、褐色の沈澱物を得た。この固体を、エーテルを用いて摩砕し、濾過し、さらにエーテル(3×15ml)で洗浄し、風乾して、所望のケトン６を黄色の沈澱物(61.4mg, 30%)として得た。
【０１９４】
1H-NMR(CDCl3, 300MHz)δ 2.50(d, J=3.29Hz, 3H), 2.93(s, 3H), 7.03(s, 1H), 8.03(d, J=2.18Hz, 1H), 8.16(bd, J=6.37Hz, 2H), 8.83(bs, 2H), 9.03(m, 1H)；LCMS m/z 280(M++H)。
【０１９５】
生物学的実施例
実施例１：  PI3-キナーゼβの選択性
タイプI PI3-キナーゼファミリーの別のメンバー又は関連する別のキナーゼファミリーの酵素と比較して、タイプIa PI3-キナーゼβの活性を選択的に阻害するTGX-221の能力について、インビトロ酵素アッセイを用いて試験した。
【０１９６】
PI3-キナーゼαイソ型、βイソ型若しくはδイソ型又はPI4-キナーゼに対するTGX-221の阻害活性について試験するために、洗浄した血小板を1×溶解バッファー(10mM Tris, pH7.6, 10mM PMSF, 5mM EDTA, 2mM ベンズアミジン, 0.1% Triton X-100)で溶解させ、全細胞溶解物を5分間15,000×gの遠心に付すことにより、不純物を除去した。各免疫沈降のために、1mgの溶解物を、抗-p110α(1μg)、抗-p110β(1μg)、抗-p110δ(1μg)又は抗-PI4 キナーゼ抗体(2〜5μg)、及び、タンパク質Aビーズの50%スラリー(50μL)と一緒に、4℃で一晩インキュベーションした。PI3-キナーゼアッセイのために、タンパク質Aビーズ-免疫複合体を溶解バッファーで2回洗浄し、1×PI3-キナーゼアッセイバッファー(20mM Hepes, pH7.2, 5mM MgCl2, 0.25mM EDTA)で2回さらに洗浄した後、40μLのPI3-キナーゼ基質(ホスファチジルイノシトール(PtdIns))、10μLのATPミックス(0.5μLのγ32P-ATP＋0.5μLの10mM ATP)、10μLの10×キナーゼバッファー、15μLのMilliQ H2O及び1μLのTGX-221(0〜10μM)と一緒に、免疫沈降した25μLのp110αイソ型又はβイソ型を室温で60分間インキュベーションした。PI4 キナーゼアッセイのために、タンパク質Aビーズ-免疫複合体を同様に溶解バッファーで2回洗浄した後、1×PI4 キナーゼアッセイバッファー(20mM Hepes, pH7.5, 10mM MgCl2, 0.3% Triton X-100)で2回洗浄し、上記で記載したように、他のアッセイ成分を添加した。100μLの1M HCl、200μLのクロロホルム/メタノール(1:1)及び500μLの2M KClを添加することにより全ての反応を終結させ、2分間15,000×gの遠心に付すことにより脂質を抽出した。PI3又はPI4 キナーゼの脂質産物であるPtdIns(3)P及びPtdIns(4)Pの産生について、TLC分析により確認した。次いで、TLCプレートから脂質のスポットを除去し、放射能のレベルを定量して、PtdIns(3)P/P
tdIns(4)Pの産生のレベルを正確に決定した。
【０１９７】
PI3-キナーゼγイソ型を阻害するTGX-221の能力について試験するために、0.5μgのp110γ組換えタンパク質を、10μLの10×キナーゼバッファー(2.5mM EDTA, 200mM HEPES, 50mM MgCl2 pH7.2), 30μLのMilliQ H2O, 40μLのPI(150μg/mL), 10μLのATPミックス(0.5μLのγ32P-ATP＋0.5μLの10mM ATP)及び1μLのTGX-221(0〜10μM)と一緒に、室温で20分間インキュベーションした。PI3-キナーゼの別のイソ型のアッセイに関して上記で記載したようにして、反応を終結させ、脂質産物について分析した。
【０１９８】
別のチロシンキナーゼ及びSer/Thr キナーゼに対するTGX-221の阻害活性については、MDS Pharma Services(Panlabs, Taiwan)が行った。
【０１９９】
TGX-221は、PI3-キナーゼβに対して5nMのIC50を示し、血小板内の別の主要な2種類のタイプI PI3-キナーゼイソ型(PI3-キナーゼα及びPI3-キナーゼγ)と比較して、100倍を超える選択性を示した。
【表１】
0004646626.tif 000035
【０２００】
TGX-221は、広範なタンパク質キナーゼと比較して、PI3-キナーゼβに対して1000倍を超える選択性を示した。この結果は、図(2D)に示されている。TGX-221は、PI4 キナーゼに対して最低の阻害効果を示した(図(2D))。TGX-221は、また、インビボにおいて、通常のホスホイノシチド、PtdIns、PtdIns(4)P(データは示されていない)及びPtdIns(4,5)P2の細胞レベルを変えることなく(図(3A))、PI3-キナーゼによる脂質の生成をインビボで選択的に阻害した(図(3A))。
【０２０１】
被験化合物の各々についての阻害濃度を以下の表に挙げる。
【表２】
0004646626.tif 000036
【０２０２】
実施例２：  剪断により惹起される血小板の凝集についての試験
PI3-キナーゼ脂質産物の産生を阻害するTGX-221の能力及び病理学的なレベルの剪断により惹起される血小板の凝集を阻害するTGX-221の能力について、特注のコーンプレート装置を用いて試験した。
【０２０３】
このアッセイのために、抗凝血薬[1容積の抗凝血薬(90mM クエン酸ナトリウム, 7mM クエン酸, pH4.6, 140mM デキストロース及び70mM テオフィリン)に対して6容積の血液]の存在下に全血を採集し、血小板を単離して、Baezinger及びMajerusの方法(1974)を修正した方法を用いて洗浄した。簡潔に述べると、全血を30分間200×gの遠心に付すことにより、多血小板血漿(PRP)を得た。次いで、PRPを10分間2,000×gの遠心に付すことにより、血小板をペレット化した。得られた血小板のペレットを、血小板洗浄バッファー(PWB)[4.3mM K2HPO4, 4.3mM Na2HPO4, 24.3mM NaH2PO4, pH6.5, 113mM NaCl, 5.5mM グルコース, 0.5%ウシ血清アルブミン(BSA)及び10mMテオフィリン]に再懸濁させた。次いで、血小板を、血小板活性化阻害薬(テオフィリン(10mM))を含んでいるリン酸非含有タイロードバッファーで2回洗浄した後、0.3mCi/mLの無機32Pを用いて、37℃で2時間標識化した。取り込まれなかった32Pは、テオフィリン(10mM)の存在下、血小板をリン酸非含有タイロードバッファーで2回洗浄した後、1mMのカルシウムを含んでいるテオフィリン非含有タイロードバッファーに再懸濁させることにより除去した。放射能標識された血小板を、増大する濃度のTGX-221(0-500nM)と一緒に、37℃で30分間インキュベーションした。vWf(10μg/mL)を添加し、その後すぐに、血小板を5000s-1の病理学的な剪断速度に2分間付した。次いで、Stephens et al.(1997, Cell, 89：105-114)に従って、血小板を溶解させ、抽出し、HPLC分析により分離させた。市販されているPtdIns(3,4)P2標準及びPtdIns(4,5)P2標準と一緒に溶出する脂質のピークを積分し、適用した総脂質に対して規格化し、対照サンプルのフラクションとして表した。
【０２０４】
病理学的な剪断速度により惹起される血小板の凝集に対するTGX-221の効果を試験するために、1mMのカルシウムを含んでいるタイロードバッファーに懸濁させた洗浄済み血小板(350×109)を、増大する濃度のTGX-221(0-1μM)と一緒に、37℃で10分間インキュベーションした。vWf(10μg/mL)を添加し、その後すぐに、血小板を5000s-1の病理学的な剪断速度に5分間付した。血小板のサンプルを吸引し、SysmexTM KN-21N Hematology Analyzerを使用して、組み込まれなかった単独の血小板の数を分析することにより、血小板の凝集のレベルを測定した。全てのデータを対照実験に対して規格化し、対照サンプルに対する相対的な増加として表した。TGX-221は、3-リン酸化脂質の阻害に匹敵する濃度範囲(IC50=0.05-0.1μM)において、剪断により惹起される血小板の凝集を効果的に阻害した(図(3B))。
【０２０５】
実施例３：  FACS分析
FACS分析により、インテグリン活性化及び血小板活性化に対するTGX-221の効果を測定した。1mM CaCl2/1mM MgCl2を含んでいるタイロードバッファーに懸濁させた洗浄済み血小板を、1μg/mLの抗-Pセレクチン又は1μg/mLのPAC-1抗体及びビヒクル単独又は0.5μMのTGX-221と一緒に、37℃de10分間インキュベーションした。次いで、トロンビン(1U/mL)、ADP(12.5mM)、U46619(1μM)又はコラーゲン(10μg/mL)を用いて血小板を室温で20分間刺激した後、2%パラホルムアルデヒドを用いて、室温で45分間固定化した。固定化した血小板をタイロードバッファーで2回洗浄し、1μg/mLのFITC複合抗マウスF(ab)2'抗体と一緒に室温で15分間インキュベーションし、タイロードバッファーで2回洗浄し、500μLの最終容積でタイロードバッファーに再懸濁させ、FACSにより分析した。
【０２０６】
実施例４：  インビトロ流動試験
流動条件下接着アッセイ(flow-based adhesion assay)を用いて、血小板カルシウムフラックスに対するTGX-221の効果について試験した。PWBに懸濁させた洗浄済み血小板(1.5×109)を、カルシウム指示色素、Oregon Green 488 BAPTA-1, AM(1μM)及びFura Red, AM(1.25μM)と一緒に37℃で30分間インキュベーションした。血小板をPWBで2回洗浄した後、1mMのカルシウムを含んでいるタイロードバッファーに再懸濁させた。血小板を、ビヒクル単独、TGX-221(0.5μM)、LY294002(20μM)、アスピリン(1mM)、アピラーゼ(0.5U/mL)又は Aggrastat(200nM)と一緒に10分間インキュベーションした後、静止接着アッセイ又は流動条件下接着アッセイを行った。
【０２０７】
静止接着アッセイ(static adhesion assay)のために、vWfでコーティングしたカバーガラスの表面上に、血小板を37℃で30分間静置した。流動アッセイ(flow assay)のために、血小板を、vWfでコーティングしたマイクロキャピラリーチューブ上に600s-1、1800s-1若しくは10,000s-1の一定の剪断速度で潅流するか、又は、vWfでコーティングしたマイクロキャピラリーチューブの表面上に静置した後、1秒間隔で10,000s-1の剪断の勾配で加速した。個々の血小板におけるリアルタイムの血小板カルシウムフラックスを、それぞれ、静止アッセイ又は流動条件下アッセイについて、30分間のインキュベーション期間にわたり1秒間隔でモニタリングするか、又は、0.586秒間隔で最大175秒間モニタリングした。
【０２０８】
実施例５：  修正Foltsモデルにおけるアッセイ
麻酔をかけたラット及びウサギにおける修正Foltsモデルを用いて、TGX-221のインビボ抗血栓活性を評価した。試験は、オーストラリアのNational Health & Medical Research Councilのガイドラインに従い、University of Melbourne Animal Ethics Committeeの承認を得た。スプラーク-トーレーラット(260〜400g)においては、ナトリウムペントバルビトン(Nembutal；60mg/kg i.p.；Merial Australia Pty. Ltd., Sydney, NSW, Australia)を用いて麻酔をかけ、ニュージーランドホワイトラビット(2〜3kg)においては、ペントバルビトン(15mg/kg i.v.)とフェンタニール(6μg/kg i.v.；David Bull Laboratories, Mulgrave, VIC, Australia)を用いて麻酔をかけた。動物には、酸素を補足した室内の空気を機械的に供給した(Ugo Basile ventilator, Comerio, VA、Italy)。試験期間を通して体温を維持させた。動脈圧は、圧力変換器(Model 1050.1, AD Instruments, Sydney, NSW)に接続した大腿動脈カテーテルを介してを測定した。それぞれの(対照及び被験)頸動脈の周囲に、血流プローブ(ラット 1mm i.d., ウサギ 2.5mm i.d.；流量計 T206, Transonic Systems Inc., Ithaca, NY, USA)を配置した。全てのパラメータは、PowerLab データ収集システム(8SP；AD Instruments)で記録した。後続の狭窄のために、流動プローブから遠い部位で、1本の動脈の周囲を絹製縫合糸で緩く縛った。クレキサン(ラット 0.24mg/kg, ウサギ 1mg/kg；エノキサパリンナトリウム；Aventis Australia Pty. Ltd., Sydney, NSW, Australia)を静脈内投与してから5分後に、試験を開始した。縫合糸を引き締めて狭窄を生じさせ、それにより、頸動脈の血流量が50%減少した。次いで、縫合糸のうえから動脈を鉗子で5回挟んで締め付けることにより、動脈の狭窄下にある部位の内皮を除去した。頸動脈の血流量を、0mL/分(これは、狭窄部位に凝血塊が形成されたことを示す)になるまでモニタリングした。1分後、狭窄部位を軽くたたいたが、これは、凝血塊の塞栓形成と血流の回復をもたらす。再度、頸動脈流を0mL/分になるまでモニタリングし、その時間を記録した。薬物を投与する前に、これらの周期的流量減少(CFR)を30分間観察した。30分後、ビヒクルとしての0.25mL/kgのプロピレングリコール、又は、2mg/kgのTGX-221を、静脈内ボーラスとして投与し、さらに90分間にわたり血流量を継続的に測定した。この期間の間に、CFRが止まないか、又は、一定期間止んだ後で復帰した場合、(血管を軽くたたくことにより)凝血塊を機械的に塞栓形成させてその都度血流量をゼロとし、CFRを回復させる。TGX-221は、ラット(n=8)及びウサギ(n=9)の100%において、閉塞性血栓の形成を直ちに根絶した(図(5A))。
【０２０９】
実施例６：  電解質モデルにおけるアッセイ
電気的に分離するために、左の頸動脈流動プローブから遠い部位の血管の下にパラフィンフィルムを挿入した。鉤の形状を有する白金電極上に動脈を配置し、その後、電極から遠い部位を締め付けて血流を遮断し、Grass SD9 刺激器に接続した定電流ユニット(Model CCU1, Grass Instruments, Quincy, MA, USA)を用いて、7mAの電流を4分間加えた。この4分の期間が経過した後、すぐに、動脈を締め付けから解放した。刺激が終わってから60分間、血流をモニタリングした。血栓の形成は、血流量が低下してゼロになることにより明示された。ラットの電解質傷害頸動脈モデル(Bush & Shebuski, 1990)を用いた試験において、ビヒクルで処理されたラット(n=10)では90%の割合で閉塞したのに比較して、傷害を誘発する5分前にTGX-221(PG中, 2mg/kg)を注入することにより、閉塞性血栓の形成が完全に防止され(n=6)(図(5B))、傷害を受けた期間の後の60分間にわたり頸動脈の血流容積が維持された(図(5B)挿入図)。TGX-221は、Foltsモデルの試験と電解質モデルの試験の両方において、傷害を受けなかった頸動脈内の基準動脈圧、基準心拍数又は基準血流に対して影響を与えなかった。
【０２１０】
実施例７：  ラットにおける尾部出血試験
酸素を補足してある室内の空気に含ませたハロタンを用いて、ラットに麻酔をかけた。薬物の投与15分前(-15)、並びに、薬物の投与5分後及び30分後に、尾部出血時間を測定した。アスピリン及びクロピドグレルによる前処理を含んでいる試験のために、尾部出血時間は、-25時間に最初の胃管栄養を与える前にも測定した。各時点において、尾部に、長さ5mmで深さ1mmの切り傷をつけ、出血が止まるまで(= 出血時間)、30秒ごとに出血をモニタリングした。
【０２１１】
図(5C)に示したラットの試験により、TGX-221は、最低治療濃度の20倍を超えて投与した場合にも、出血時間を増大させなかった。TGX-221(20mg/kg i.v.)を単独で投与するか又はヘパリン(100U/kg i.v.)と一緒に投与した場合に、ラットの尾部の出血時間が影響を受けなかったということは、重要である(図(5C))。クロピドグレル(10mg/kg p.o.)＋ヘパリン(100U/kg i.v.)と組み合わせても、又は、アスピリン(200mg/kg p.o.)＋ヘパリン(100U/kg i.v.)と組み合わせても、TGX-221(2mg/kg i.v.)は、これらの薬剤により引き起こされた出血時間の長期化を、悪化させなかった(図(5C))。また、TGX-221(2mg/kg i.v.)は、クロピドグレル又はアスピリンのいずれかと組み合わせて投与した場合にも、出血時間に悪影響を与えなかった。
【０２１２】
実施例８：  インビトロPI3-キナーゼアッセイ
インビトロPI3-キナーゼアッセイを用いて、PI3-キナーゼ活性に対するピリジン置換化合物の影響について確認した。このアッセイは、ヒトの血小板から免疫沈降させたPI3-キナーゼを酵素として使用し、PIを基質として使用することにより実施した。PI3-キナーゼ活性は、既に記述されているように(Susa et al., 1992, The Journal of Biological Chemistry 267(32)：22951-22956)、[32P]がPIに酵素的に取り込まれてPI([32P]-3)Pを形成するのを測定することにより定量した。
【０２１３】
洗浄したヒト血小板を、Triton X-100溶解バッファー(10mM Tris, pH7.4, 1% Triton X-100, 2mM EDTA, 1mM PMSF)中で、30分間溶解させた。細胞溶解物を10分間15,000×gの遠心に付すことにより、Triton X-100に不溶性のフラクションを除去した。500μgの細胞溶解物を、PI3-キナーゼのp85/110形態に対する1μgのウサギ抗-ラット抗体及び30μLの50%タンパク質A-セファロースビースと4℃で2時間混合することにより、PI3-キナーゼを免疫沈降させた。該ビーズを15,000×gで5秒間ペレット化し、氷冷したTriton X-100溶解バッファーで3回洗浄した後、PI3-キナーゼアッセイバッファー(20mM HEPES, pH7.4, 1mM EGTA, 5mM MgCl2)で4回洗浄することにより、タンパク質A-セファロースに結合したPI3-キナーゼを単離した。
【０２１４】
CHCl3中に保存したPIをN2下で乾燥させ、330μg/mLの最終濃度で脂質バッファー(50mM HEPES, pH7.2, 1mM EDTA)中に再懸濁させ、氷上で6分間超音波処理した。免疫沈降させたPI3-キナーゼを、20分間、40μLのPI、10μLのATP(1mM)及び32P-r-ATP(0.5μCi, 1μCi/nmol)、及び、10μLの10×キナーゼバッファーと、水で調製した100μLの最終アッセイ容積で混合することにより、PI([32P]-3)Pを生成させた。TGXをPI3-キナーゼと一緒に5分間プレインキュベーションした後、ATPを添加した。100μLの1N HClを用いて反応を終結させ、PI([32P]-3)P産物を200μLのクロロホルム：メタノール(1:1)及び500μLの2M KClを用いて抽出した。クロロホルム相中のPI([32P]-3)Pを、CHCl3：MeOH：HAC：H2O(43:38:5:7)(v:v:v:v)を含む溶媒系を用いる薄層クロマトグラフィーにより分割し、オートラジオグラフィーにより可視化した。次いで、PI([32P]-3)PのスポットをTLCプレートから除去し、1mLのメチルアミン：ブタノール：メタノール(42:9:47)(v:v:v)を用いて、53℃で4時間、脱アシル化し、液体シンチレーションカウンター(LKB 1209 RackBETA)を用いて定量した。
【０２１５】
実施例９：  流動条件下における再構成アッセイ(flow-based reconstitution assay)
流動条件下接着アッセイ(flow-based adhesion assay)を用いて、血小板の接着に対するTGX-286の効果について試験した。洗浄した血小板を、10nM、25nM若しくは50nMのTGX-286、又は対照バッファー(0.1% DMSO)で、37℃で30分間前処理した後、50%のヘマトクリット値で赤血球細胞と一緒に再構成させた。血小板と、再構成させた赤血球細胞を、vWfでコーティングしたガラス製マイクロスライドを通して、1800s-1の剪断速度で1分間潅流させた。1800s-1で10分間洗浄することにより、未接着の細胞を除去し、接着した血小板の数を測定し、平均±SEMで表した。血小板を10nM、25nM及び50nMのTGX-286で前処理した場合に、血小板の接着が51%、67％及び86%低減したので、TGX-286は、血小板の接着能力を、用量依存的に阻害した。
【０２１６】
実施例１０：  CD9-抗体により惹起された、多血小板血漿の血小板凝集
抗体CD9によって惹起された血小板の凝集に対するTGX286及びKN327の阻害効果について、多血小板血漿(PRP)で試験した。PRPの懸濁液を、20〜100nMのTGX286又は対照バッファー(0.1% DMSO)と一緒にインキュベーションし、該抗体のアリコートで処理した。撹拌下における凝集について、4チャンネル凝集検出計で10分間モニタリングした。凝集のレベルを、サンプル細胞を通した光透過率の変化として測定した。PRPの凝集を50%阻害する被験化合物の濃度として、IC50濃度を求めた。
【０２１７】
全血流動アッセイ
洗浄した血小板により形成される血栓は小さくて再現性に乏しいので、血小板血栓の形成に対するTGX-286の阻害効果について、全血流動アッセイを用いて試験した。凝固を阻止した全血を、50nM、100nM若しくは200nMのTGX-286、又は、対照バッファー(0.1% DMSO)と一緒に、適度に振動させながら30分間インキュベーションした後、vWfでコーティングしたガラス製マイクロスライドを通して、1800s-1の剪断速度で2分間潅流させた。1800s-1で10分間洗浄することにより、未接着の血小板を除去し、接着した赤血球を1%シュウ酸アンモニウムで溶解させた。血栓形成のレベルは、分光光度法で全細胞溶解物中の血小板 LDH(U/L)レベルを測定することにより、間接的に定量した。全血を2分間潅流させた後、マイクロスライドの表面上に、多血小板血栓(platelet-rich thrombi)が観察された。TGX-286で前処理した場合、血小板がvWfマトリックス上で血栓を形成する能力が、用量依存的に阻害された。全血を、50nM、100nM及び200nMのTGX-286で前処理したことにより、対照と比較して、血栓の形成が、25%、53%及び80%減少した。
【０２１８】
実施例１１：  内頸動脈閉塞症の動物モデル
TGX-286の阻害効果について、Foltsら(1982, Circulation 65：248-255)の充分に確立した動脈血栓症動物モデルで試験した。このモデルを用いて、挫傷とその後の動脈狭窄に応答したインビボにおける凝固時間に対する抗血栓薬の効果について評価する。
【０２１９】
麻酔をかけたラットの頸動脈を解剖し、その頸動脈の周囲に電磁血流プローブ(electromagnetic flow probe)を配置して、血流量を測定する。その血流プローブの近位において、動脈をシリコーンの管で覆われている手術用鉗子で締めることにより、血管壁に、血管内膜と血管中膜の損傷を引き起こさせる。結紮糸又は適切な内径を有するプラスチック製シリンダで動脈の周囲を締めて、動脈の直径を70%縮小させる。
【０２２０】
損傷を受け狭窄した血管の領域において血小板が集まり、徐々に閉塞性の血小板血栓を形成していく。これは、血流量の減少として観察される。血栓の形成に伴い血圧が上昇し、それによって、血栓が分裂して、狭窄部位から離れたところに塞栓を形成する。その血栓が自然発生的に塞栓を形成しない場合、狭窄部位を適度に揺り動かして、血栓を遊離させる。これにより、血流が急激に回復する。血小板は、再度、損傷を受け狭窄した動脈血管の領域に集まり、血栓-塞栓形成パターンを繰り返す。血小板が介在するこの急性の血栓 形成と、それに続く塞栓形成により、血流における周期的流量減少(CFR)が起こる。ラットにおいて規則正しいCFRがひとたび生じた後で、抗血栓化合物又はビヒクル対照を頸静脈に投与する。
【０２２１】
2.5mg/kg及び4mg/kgの投与量で、TGX-286又はKN327を頸静脈に投与し、血流量の安定化を記録した。TGX-286、及び、14.0mg/kgのKN327は、処理した動物の80%を10分以内に基準状態に戻した。このことは、これらの化合物が、冠状動脈閉塞の治療において有用性を有していることを示している。
【０２２２】
実施例１２：  流動条件下の血小板血栓形成に対するTGX-286及びKN-327の効果
クエン酸処理した全血を、50nM、100nM若しくは200nMのTGX-286若しくはKN-327、又は対照バッファー (0.1% DMSO)で、37℃で10分間前処理した。血液を、フォンウィルブラント因子-(vWf)でコーティングしたマイクロキャピラリーチューブを通して、600s-1で2分間潅流した。バッファーを600s-1で2分間潅流することにより接着しなかった細胞を除去し、接着した全ての赤血球を、1%シュウ酸アンモニウムで処理することにより溶解させた。次いで、1% Triton X-100を加えることにより、接着した血小板を溶解させ、分光光度法により乳酸脱水素酵素(LDH)のレベル(U/L)を分析した。全血を、50nM、100nM及び200nMのTGX-286で前処理することにより、対照に比較して血栓の形成が低減した。
【０２２３】
実施例１３：  イソ型選択的インビトロPI3K酵素アッセイ
第一次選抜としてインビトロ酵素アッセイを行って、薬物としての候補イソ型の親和性及び特異性を決定した。p110α(sc-7174)イソ型及びp110β(sc-603)イソ型の特定の領域を認識する、Santa Cruz Biotechnologyから入手した抗体を用いて、血小板溶解物から、PI3Kのαイソ型及びβイソ型を免疫沈降させた。γイソ型は、Kinacia laboratoriesにおいて、組換えタンパク質として生成させた。δイソ型は、δイソ型特異的抗体(sc-7176)を用いて同様の方法によりTHP-1細胞から免疫沈降させた。ホスファチジルイノシトールと32Pを使用する標準的なリン酸化アッセイを用いて、阻害薬の存在下又は非存在下での免疫沈降における酵素活性を測定した。酵素活性は、IC50値を確定するために、阻害薬の特定の濃度範囲にわたって測定した。
【０２２４】
PI3-キナーゼ阻害薬であるLY294002(8-フェニル-2-(4-モルホリニル)-4H-ベンゾピラン-4-オン, Sigma #L9908)のPI3Kの種々のイソ型に対するIC50は、既に報告されている値と一致した(0.5〜1.5μM)。
【０２２５】
実施例１４：  好中球ROS応答
人血からの白血球の調製
保存薬を含んでいない3mLの全血を、50mL容の円錐管内に入れた。血液ニューテーター(haematology nutator)上で、48mLの赤血球溶解液を25℃で10分間反転により静かに混合した後、卓上遠心機(table top centrifuge)で、25℃、350×gで、10分間遠心分離した。白血球を多く含んでいるペレットを、10%w/vのゼラチンを補足したリン酸緩衝化生理食塩水(PBS-gel)に再懸濁させ、上記のように遠心に付した。白血球のペレットをハンクス平衡塩類溶液(HBSS)で1回洗浄し、最終的な細胞数2x106/mLで再懸濁させ、直ちに使用した。
【０２２６】
好中球からのROS産生の測定
活性酸素種(ROS)の発生は、好中球が活性化されたことの特徴の1つである。好中球によるROSの産生は、多くの種類のケモカイン及びサイトカインによって増強される。走化性ペプチドfmlpによる刺激に続くROSの産生に対するPI3K阻害薬TGX-286の効果を測定した。ROSの産生は、Robinsonらの方法(pp 9.7.5-9.7.9 in Curr. Protocols in Cytometry(1997))に修正を加えた蛍光活性化細胞解析分離法(FACS)で細胞内ジヒドロローダミン123(DHR)の酸化をモニタリングすることにより測定した。細胞1mL当たり2μLの50mM DHR(最終 50mM)を白血球の懸濁液にバルクで加え、37℃で12分間インキュベーションした。500μLアリコートのDHRを加えた細胞を、5μLの100μM fmlp使用溶液を用いて37℃で20分間刺激した後、氷上でクエンチした。フローサイトメーターは、488nmで励起して使用可能な状態とし、DHR発光のための520±20nmの帯域フィルターを使用した。刺激を受けていない対象サンプルを用いて好中球の数を確認し、ゲートで制御し、また、抗-CD14免疫染色により確認した。これらのゲート制御した好中球を用いて、蛍光の基準データを較正した。刺激を受けた細胞のサンプルを分析し、各サンプルからの5000個のゲート制御した好中球について、線状の緑色蛍光(linear green fluorescence)(DHR)をモニタリングした。ROSの相対量を測定するために、対照サンプルから得た値を、全ての値から減じ、fmlp単独のサンプル(阻害薬なし)から得た値に対して規格化した。
【０２２７】
実施例１５：  好中球エラスターゼ放出
人血からの好中球の調製
健康なボランテアから得たヘパリン処理した血液のアリコート(24mL)を、Histopaque-119(登録商標)及びHistopaque-1077(登録商標)(Sigma)の12mLのクッションの上に層状に重ね、卓上遠心機で、25℃、700×gで30分間遠心分離した。Histopaque-119クッションのすぐ上にある好中球を多く含むバンドを集めてHBSSで洗浄した。残った赤血球は、0.2%のNaClを用いて低張溶解(hypotonic lysis)することにより除去した。好中球調製物をHBSSで2回洗浄し、直ちに使用した。
【０２２８】
好中球エラスターゼエキソサイトーシスの測定
活性化された好中球は、特定の範囲の刺激に対して、炎症に際して組織及び細胞外マトリックスの破壊を引き起こす数種類のプロテアーゼを放出することにより応答する。プロテアーゼ放出の指標として、好中球エラスターゼエキソサイトーシスに対するTGX-286の効果を測定した。エラスターゼエキソサイトーシスは、下記の通りに、Cieslaらの方法(The Journal of Trauma, 48(3)：388-395(2000))を修正することにより定量した。好中球エラスターゼ放出は、特異的なエラスターゼ基質AAPV-pNAを開裂することにより測定した。単離した好中球(6.25×105細胞)を37℃で5分間プレインキュベーションした後、0.1μMのfmlpで20分間刺激した。次いで、細胞懸濁液を5分間400×gの遠心に付し、生じた上清を吸引し、保持した。エラスターゼ放出は、0.17mMのNaCl及び33.3mMのヒドロキシエチレンピペラジンエタンスルホン酸中の0.33mMの特異的エラスターゼ発色基質AAPV-pNAを含んでいる96-ウェルマイクロプレートの個々のウェルに100μLの無細胞上清を添加することにより評価した。ブランクウェルには、エラスターゼ阻害薬AAPV-CK(0.17mM)も含ませた。総反応容積は150μLであり、各試験は、別個のAAPV-CKブランクを使用して、二反復で行った。96-ウェルプレートを37℃で60分間インキュベーションし、405nmでの吸光度を測定した。エラスターゼの相対量を測定するために、対照サンプルから得た値を、全ての値から減じ、fmlp単独のサンプル(阻害薬なし)から得た値に対して規格化した。
【０２２９】
実施例１６：  細胞増殖アッセイ
TGX-286の増殖抑制活性は、U937(単球)細胞系で測定した。該化合物の細胞毒性活性は、細胞数を数えることにより4日間にわたりモニタリングし、代謝活性の比色定量アッセイを用いて細胞の生存力を測定した。
【０２３０】
各生物学的活性における被験化合物についての阻害濃度(nM)は、下記表(II)に記載されている。
【表３】
0004646626.tif 000037
【表４】
0004646626.tif 000038
【０２３１】
製剤実施例
実施例１：  ピリジン置換化合物含有している医薬組成物の調製及び投与
本発明の好ましい数種類の医薬製剤について、以下に記載する。
【０２３２】
経口投与用錠剤
下記表(IV)に、経口投与用の錠剤の成分が挙げてある。錠剤Ａ、錠剤Ｂ及び錠剤Ｃは、表(IV)に挙げてある最初の6種類の成分をポビドンと一緒に湿式造粒した後、ステアリン酸マグネシウムを添加し、次いで、打錠することにより調製する。
【表５】
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【０２３３】
舌下投与用錠剤
下記表(V)に、舌下投与用の2種類の錠剤の成分が挙げてある。錠剤Ａ及び錠剤Ｂは、表(V)に挙げてある最初の6種類の成分をポビドンと一緒に湿式造粒した後、ステアリン酸マグネシウムを添加し、次いで、打錠することにより調製する。
【表６】
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【０２３４】
口腔内投与用錠剤
口腔内投与用の錠剤は、下記表(VI)に挙げてある成分を混合した後、混合された成分を直接打錠することにより調製する。
【表７】
0004646626.tif 000041
【０２３５】
粉末充填カプセル製剤
下記表(VII)に、2種類の粉末充填カプセル製剤の成分が挙げてある。カプセルＡ及びカプセルＢは、成分を混合し、得られた混合物を2つの部分からなる硬質ゼラチンカプセルに充填することにより調製する。
【表８】
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【０２３６】
液体充填カプセル製剤
下記表(VIII)に、2種類の液体充填カプセル製剤の成分が挙げてある。カプセルＡは、マクロゴール4000BPを融解させ、融解したマクロゴール4000BP中に活性成分を分散させ、それを2つの部分からなる硬質ゼラチンカプセルに充填することにより調製する。カプセルＢは、活性成分をレシチンとラッカセイ油の中に分散させ、得られた分散液を弾性のある軟質ゼラチンカプセルに充填することにより調製し得る。
【表９】
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【０２３７】
制御放出カプセル製剤
制御放出のためのカプセル製剤は、下記表(IX)に挙げてある最初の4種類の成分を混合して押出し、押出し物を球状化し(spheronizing)、乾燥させることにより調製する。乾燥したペレットに、制御放出膜としてのエチルセルロースでコーティングする。得られたペレットを、2つの部分からなる硬質ゼラチンカプセルに充填する。
【表１０】
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【０２３８】
静脈内投与用製剤
下記表(X)に挙げてある成分を含んでいる静脈内投与用の製剤は、活性成分をクエン酸緩衝液中に入れ、次いで、得られた溶液のpHを塩酸を用いてpH7に調節することにより調節する。得られた溶液の容積を所定の容積とし、次いで、微小孔フィルターで濾過して無菌のガラス製水薬瓶の中に入れ、充填後、密封し、オーバーシールを施す。
【表１１】
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【０２３９】
鼻腔内投与用製剤
下記表(XI)に挙げてある成分を含んでいる鼻腔内投与用の製剤は、活性成分をヒドロキシ安息香酸の混合物中に入れ、次いで、得られた溶液のpHをクエン酸緩衝液中の塩酸を用いてpH7に調節することにより調節する。得られた溶液の容積を所定の容積とし、次いで、微小孔フィルターで濾過して無菌のガラス製水薬瓶の中に入れ、充填後、密封し、オーバーシールを施す。
【表１２】
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【０２４０】
筋肉内注射用製剤
下記表(XII)に挙げてある成分を含んでいる筋肉内注射用の製剤は、活性成分をグリコフロール(glycofurol)に溶解させることにより調製する。次いで、ベンジルアルコールを加えて溶解させ、水を加えて最終容積を3mLとする。次いで、得られた混合物を、微小孔フィルターで濾過して無菌のガラス製水薬瓶の中に入れ、充填後、密封し、オーバーシールを施す。
【表１３】
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【０２４１】
シロップ製剤
下記表(XIII)に挙げてある成分を含んでいるシロップ製剤は、安息香酸ナトリウムを純水の一部に溶解させ、次いで、ソルビトール溶液を加えることにより調製する。次いで、活性成分を加え、溶解させる。次いで、得られた溶液をグリセロールと混合し、純水を用いて所要の容積とする。
【表１４】
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【０２４２】
坐剤
下記表(XIV)に挙げてある成分を含んでいる坐剤は、蒸気ジャケットのついた皿で最大温度45℃で、Witepsolの5分の1を融解させることにより調製する。次いで、活性成分を200μmの篩にかけ、切削ヘッドの付いたSilverson混合機を用いて、均質な分散液が得られるまで先に融解させた基剤と混合する。得られた混合物の温度を45℃に維持しながら、残りのWitepsol H15を分散液に添加し、その際、分散液を撹拌して、確実に均質な混合物が得られるようにする。次いで、懸濁液の全体を撹拌しながら250μmのステンレススチール製スクリーンに通し、40℃に冷却する。得られた混合物の2.0gのアリコートを、38〜40℃の温度で、適切なプラスチック金型(plasticmold)に充填する。得られた坐剤を室温まで冷却する。
【表１５】
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【０２４３】
エーロゾル製剤
下記表(XV)に挙げてある成分を含んでいるエーロゾル製剤は、活性化合物をエタノールと混合し、注射用蒸留水を加えることにより調製する。次いで、得られた溶液を、Propellant 22の一部に添加し、-30℃に冷却し、充填装置に移す。次いで、所要量をステンレススチール製の容器に入れ、残りの噴射剤で希釈する。次いで、容器にバルブユニットを取り付ける。
【表１６】
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【０２４４】
膣坐剤
膣坐剤は、下記表(XVI)に挙げてある成分を直接混合することにより調製する。得られた混合物を圧縮することにより、膣坐剤を調製する。
【表１７】
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【図面の簡単な説明】
【０２４５】
【図１】図１Ａは、さまざまな血流条件下において不可逆的な接着を形成するvWfと相互作用している血小板の割合をグラフにより示す図である。図１Ｂは、固定したvWfの表面における個々の血小板の挙動を示す図である。図１Ｃは、ビヒクル(DMSO <0.25% v/v)、0.5U/mLのアピラーゼ、1mMのアスピリン、又は、25μMのLY294002による前処理を行った後の、持続的、一時的又は回転の挙動を示すvWf接着血小板の割合をグラフにより示す図である。図１Ｄは、GPIb/V/IX結合のモデュレーターであるリストセチン(1mg/mL)で処理した後の、固定されたvWfの表面におけるGPIb/V/IX依存性Δ[Ca2+]cを示す代表的な単独の血小板のレコードを示す図である。図１Ｅは、1秒又は60秒の時間間隔で↑Δγに応答して高周波Δ[Ca2+]cを示すGPIb/V/IX接着血小板の割合を示す図である。
【図２】図２Ａは、単離したPI3-キナーゼイソ型を用いて行ったTGX 221の選択性を示す図である。
【図３】図３Ａは、円錐平板粘度計内で剪断(5000秒-1，2分間)により活性化させた後の、血小板内における脂質生成に対するTGX-221による用量応答性阻害を表す棒グラフを示す図である。図３Ｂは、未処理(対照)サンプルに対する、TGX-221の種々の濃度における単独血小板総数の比例的増加を示す棒グラフを示す図である。
【図４】図４Ａは、0.5μMのTGX-221による前処理が、1秒間隔で10,000.s-1までの剪断速度勾配(↑Δγ)に付した後に持続的挙動、一時的挙動又は回転挙動(上記)を示すvWf接着血小板の割合に及ぼす影響を実証しているポピュレーション解析の棒グラフを示す図である。図４Ｂは、vWfの表面におけるGPIb/V/IX依存性Δ[Ca2+]cを示す代表的な単独の血小板のレコードを示す図である。図４Ｃは、生理学的作動薬で刺激した後の、P-セレクチンの表面発現及びインテグリンαIIbβ3活性化のレベル(PAC-1結合により求めた)を説明するFACS解析を示す図である。
【図５】図５Ａは、Foltsモデルにおける、ペントバルビトンで麻酔をかけたラット(A)及びウサギ(B)での薬物投与前(a；-30-0分)及び薬物投与後(b〜d；それぞれ、1-30分、31-60分、及び、61-90分)の30分間当たりの頸動脈血流の周期的流量減少(CFR)が認められた平均個体数に対するビヒクル(プロピレングリコール)又はTGX-221の影響を示す図である。図５Ｂは、電解質モデルにおける、ペントバルビトンで麻酔をかけたラットでの電解質による傷害(7mAの電流4分間(時間  -4-0分)血流量0；0分で動脈鉗子を除去)を受けた後の頸動脈血流量(体重100g当たりのmL/分)に対するビヒクル(プロピレングリコール)又はTGX-221の影響を示す図である。図５Ｃは、それぞれ、TGX-221、TGX-221＋ヘパリン、アスピリン、クロピドグレル、クロピドグレル＋ヘパリン、クロピドグレル＋ヘパリン＋TGX-221、アスピリン＋ヘパリン、及び、アスピリン＋ヘパリン＋TGX-221で処理した、ハロタンで麻酔をかけたラットにおけるラット尾部の出血時間の比較を示す図である。
【図６】図６Ａは、ROS応答に対する種々の濃度のTGX-286の影響を示す図である。図６Ｂは、ROS応答に対する種々の濃度のTGX-286の影響を示す図である。
【図７】図７は、エラスターゼの放出に対する種々の濃度のTGX-286の影響を示す図である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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