(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
フォンヴィルブランド因子分解酵素を定量することを特徴とする、血栓形成傾向の程度又は急性若しくは慢性骨髄性白血病、急性前骨髄球性白血病、全身性エリトマトーデス、肺塞栓、脳硬塞、肝中心静脈閉塞症、急性リンパ球性白血病、血栓性微小血管障害、溶血性尿毒症症候群、及び深部静脈血栓症からなる群から選択される血栓症の検出方法。
【請求項２】
シャント造設をくり返した慢性透析患者における血栓形成傾向の程度を検出する、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
健常人と比較して、フォンヴィルブランド因子分解酵素濃度の低下を指標とする、請求項１又は２に記載の方法。
【請求項４】
フォンヴィルブランド因子分解酵素の定量を、フォンヴィルブランド因子分解酵素に特異的に結合する抗体又はその断片を使用する免疫学的手法により行う、請求項１〜３のいずれか一項に記載の方法。
【請求項５】
請求項１〜４のいずれか一項に記載の検出方法に用いるキットであって、フォンヴィルブランド因子分解酵素に特異的に結合する抗体又はその断片を含むことを特徴とする、血栓形成傾向の程度又は急性若しくは慢性骨髄性白血病、急性前骨髄球性白血病、全身性エリトマトーデス、肺塞栓、脳硬塞、肝中心静脈閉塞症、急性リンパ球性白血病、血栓性微小血管障害、溶血性尿毒症症候群、及び深部静脈血栓症からなる群から選択される血栓症の検出用キット。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、フォンヴィルブランド因子分解酵素の測定による血栓形成傾向の程度又は血栓症の検出方法及び検出用キットに関する。本発明では、例えば、フォンヴィルブランド因子分解酵素に対するモノクローナル抗体及び／又はポリクローナル抗体を用いる免疫測定法を利用することができる。
【背景技術】
【０００２】
生体内において血管壁の傷害により内皮下組織が露出すると、血流中を流れる血小板が速やかに粘着する。この粘着には血漿中ヒトフォンヴィルブランド因子（von Willebrand factor；以下、「vWF」と略記する）が必要とされ、これが引き金となり血小板凝集、細胞内顆粒放出といった一連の血小板活性化過程の後に血栓が形成され、止血が行われる。通常ｖＷＦは分子量２０，０００ｋＤａ以上の巨大分子として血管内皮より血中へ分泌され、そこでメタロプロテアーゼであるｖＷＦ分解酵素により切断され、５００〜２０，０００ｋＤａのマルチマーとして血中を循環する。疾患時（閉塞などにより高ずり応力が生じた場合）においては、ｖＷＦの立体構造の変化が起き伸展した構造をとる。この伸展したｖＷＦは血小板凝集能が高いことが知られている。一方で、この伸展したｖＷＦはｖＷＦ分解酵素による分解を受けやすい。しかし、何らかの理由でこの酵素活性が低下している場合、通常認められないような巨大ｖＷＦ分子が過剰に血中に存在し、血小板とより効果的に結合することにより、血管内で血小板の凝集を促進し、微小循環に血栓を形成すると考えられている。このような血小板を主体とする血栓形成は生理的な止血機構に必要不可欠であるが、一方で血栓は心筋梗塞、脳梗塞、脳血栓といった血栓性疾患を引き起こし、社会の高齢化とともに死亡原因の上位を占める深刻な問題となっている。【０００３】
ｖＷＦ分解酵素は非常に重篤な致死率の高い血栓性血小板減少性紫斑病（thrombotic thrombocytopenic purpura；以下、「TTP」と略記する）の発症に関与すること、急性で散発性ＴＴＰではｖＷＦ分解酵素活性を阻害する自己抗体が産生されていること、および家族性ＴＴＰではｖＷＦ分解酵素活性は失活していることが明らかにされていた。しかしｖＷＦ分解酵素自身の同定は１９９６年に一部分が精製されたのみで（非特許文献１）、全容については２００１年になるまで成功しなかった。インビトロ（in
vitro）では１．５ｍｏｌ／Ｌ尿素／５ｍｍｏｌ／Ｌトリス緩衝液（ｐＨ８．０）存在下でないと酵素活性を示さないため長い間物質を同定することが困難であった。近年、血漿ｖＷＦ分解酵素の精製の成功（非特許文献２及び３）、またｃＤＮＡクローニングが行われ、遺伝子はＡＤＡＭＴＳ（a
disintegrin like and metalloprotease with thrombospondin
type 1 motif）ファミリーに属し、ＡＤＡＭＴＳ１３と命名された（非特許文献４及び５）。また同時期に家族性ＴＴＰにおいて、ｖＷＦ分解酵素の遺伝子；ＡＤＡＭＴＳ１３に変異があるためｖＷＦ分解酵素活性が著しく低下していることが明らかとなった（非特許文献６）。【０００４】
ｖＷＦ分解酵素の活性測定法は、従来より、ＳＤＳ−アガロース電気泳動及びオートラジオグラフィー又はウェスタンブロット法を組み合わせたｖＷＦ巨大マルチマーの検出法が用いられてきた（非特許文献１）。しかし、本法の測定にはプロテアーゼフリーのｖＷＦを用意しなければならないこと、測定に３日を要すること、研究室により結果が異なるなど煩雑な工程を含んでおり、日常の臨床検査としては普及するに至っていない。
また近年、ｖＷＦ分解酵素によるフォンヴィルブランド因子の分解部位であるＡ２ドメインの部分領域を遺伝子組換えにより大腸菌で発現させ、この組換えタンパク質と患者検体を一定時間混合し、その後ＳＤＳ電気泳動とウェスタンブロット法を組み合わせて、検体中のｖＷＦ分解酵素によるＡ２ドメインの分解産物の検出によるｖＷＦ分解酵素の活性測定法が考案された（非特許文献７）。しかし、本法もまた組換えタンパク質の作製や電気泳動などの煩雑な工程を含むため一般の検査室での使用には難しいところがある。【０００５】
また、明らかな原因や基礎疾患がなく、免疫学的機序を介した血小板破壊の亢進により血小板減少をきたす疾患は特発性血小板減少性紫斑病（idiopathic thrombocytopenic purpura；ITP）と呼ばれ、その多くは血小板に対する自己抗体により誘発された自己免疫疾患と考えられている。ＩＴＰ患者の抗血小板抗体により認識される抗原としては、主として血小板膜タンパク質であるＧＰIIｂ−IIIａが同定されており、このタンパク質に対する特異抗体の検出法が数多く考案された。その中でもＧＰIIｂ−IIIａに対するモノクローナル抗体を用いた抗原キャプチャーアッセイ（antigen
capture assay）が広く利用されている。この方法は、特異性が高く偽陽性が少ないことが知られているが、使用可能とされているモノクローナル抗体のほとんどが市販されていないこと、血小板の採取から溶解等の煩雑な操作が必要となるので、簡便なキットの開発及び標準化が必要である。【０００６】
【非特許文献１】エム・フルラン（M.Furlan）ら，「ブラッド（Blood）」,（米国），１９９６年，第８７巻，ｐ．４２２３−４２３４
【非特許文献２】エイチ・ゲリットッセン(H. Gerritsen)ら，「ブラッド（Blood）」,（米国），２００１年，第９８巻，ｐ．１６５４−６１
【非特許文献３】ケー・フジカワ（K. Fujikawa）ら，「ブラッド（Blood）」,（米国），２００１年，第９８巻，ｐ．１６６２−６
【非特許文献４】エックス・チェン（X. Zheng）ら，「ザ・ジャーナル・オブ・バイオロジカル・ケミストリー（The Journal of Biological Chemistry）」，（米国），２００１年，第２７６巻，ｐ．４１０５９−６３
【非特許文献５】ケー・ソエジマ（K. Soejima）ら，「ザ・ジャーナル・オブ・バイオケミストリー（The Journal of Biochemistry）」，２００１年，第１３０巻，ｐ．４７５−８０
【非特許文献６】ジー・ジー・レビー（G. G. Levy）ら，「ネイチャー（Nature）」，（英国），２００１年，第４１３巻，ｐ．４８８−４９４
【非特許文献７】ケー・コカメ（K.Kokame）ら，「ブラッド（Blood）」，（米国），２００４年，第１０３巻，ｐ．６０７−６１２
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
前記のように、血小板凝集が関与した血栓症の原因および血栓症を簡便に、より確実に検出する方法は、いまだなく、かかる検出法の確立が要望されている。
従って、本発明の目的は前記斯界で要望されている血小板凝集が関与した血栓症の血栓形成傾向の検出法を確立することにある。これにより、救命率の上昇又はより病態に沿った治療方針の決定など、これまでにない血栓症の治療を目指した診断法となると考えられる。本発明者らは、前記目的より鋭意研究を重ねた結果、ｖＷＦ分解酵素に対するモノクローナル抗体又はポリクローナル抗体を応用した酵素免疫測定法により、血栓症患者の血漿中におけるｖＷＦ分解酵素の濃度が健常人と比べて顕著に低下していることを見いだし、ここに本発明を完成するに至った。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
前記課題は、本発明による、フォンヴィルブランド因子分解酵素を定量することを特徴とする、血栓形成傾向の程度又は血栓症の検出方法により解決することができる。
本発明の検出方法の好ましい態様によれば、前記血栓症が、急性若しくは慢性骨髄性白血病、急性前骨髄球性白血病、全身性エリトマトーデス、肺塞栓、脳硬塞、肝中心静脈閉塞症、急性リンパ球性白血病、血栓性微小血管障害、血栓性血小板減少性紫斑病、溶血性尿毒症症候群、又は深部静脈血栓症である。
また、本発明の検出方法の別の好ましい態様によれば、シャント建設をくり返した慢性透析患者における血栓形成傾向の程度を検出する。【０００９】
本発明の検出方法の好ましい態様によれば、健常人と比較して、フォンヴィルブランド因子分解酵素濃度の低下を指標とする。
また、本発明の検出方法の更に好ましい態様によれば、フォンヴィルブランド因子分解酵素の定量を、フォンヴィルブランド因子分解酵素に特異的に結合する抗体又はその断片を使用する免疫学的手法により行う。【００１０】
本発明は、フォンヴィルブランド因子分解酵素に特異的に結合する抗体又はその断片を含むことを特徴とする、血栓形成傾向の程度又は血栓症の検出用キットに関する。
なお、本明細書における用語「分析」（例えば、自己抗体の分析）には、分析対象物質（例えば、自己抗体）の存在の有無を判定する「検出」と、分析対象物質の量を定量的又は半定量的に決定する「測定」とが含まれる。
【発明の効果】
【００１１】
本発明は、例えば、肺塞栓や脳血栓、及び白血病などで代表される血栓症患者の血栓性の程度の検出を可能としたものであり、その臨床的価値は非常に高い。本発明方法によれば、簡便性、迅速性、及び特異性に優れた血栓傾向の程度又は血栓症の診断が可能となる。
特に、ｖＷＦ分解酵素の定量に免疫学的手法を用いる場合、現行の電気泳動による活性測定法では、測定に３日を要し、またその判定も測定者や測定に使用する試薬等により変動するのに対して、測定時間も３〜４時間であり、かつ再現性よく測定することができる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１２】
［１］本発明の検出方法
本発明の検出方法では、フォンヴィルブランド因子分解酵素（ｖＷＦ分解酵素）の濃度を定量し、健常人のｖＷＦ分解酵素濃度と比較することにより、血栓形成傾向の程度を評価することができ、また、血栓症の有無を判定することができる。
本明細書において「フォンヴィルブランド因子分解酵素」とは、フォンヴィルブランド因子（ｖＷＦ）のＡ２ドメインに存在するチロシン（８４２）とメチオニン（８４３）を特異的に切断し、ＡＤＡＭＴＳ１３とも称されるメタロプロテアーゼである。【００１３】
後述する実施例２に示すように、血小板凝集が関与した血栓症患者では、健常人と比較して、体液試料中に含まれているｖＷＦ分解酵素の濃度が統計学的に有意に低下している。従って、本発明の検出方法では、ｖＷＦ分解酵素の濃度を定量し、健常人のｖＷＦ分解酵素濃度と比較して低い場合には、血栓症であると判定することができる。【００１４】
前記血栓症としては、例えば、急性骨髄性白血病（acute myeloid leukemia；AML）、慢性骨髄性白血病（chronic myeloid leukemia；CML）、急性前骨髄球性白血病（acute
promyelocytic leukemia；APL）、全身性エリトマトーデス（systemic lupus erythematosus；SLE）、肺塞栓、脳硬塞、肝中心静脈閉塞症（veno-occlusive
disease；VOD）、急性リンパ球性白血病（acute lymphocytic leukemia；ALL）、血栓性微小血管障害（thrombotic microangiopathy；TMA）、又は深部静脈血栓症（deep
vein thrombosis;DVT）等を挙げることができる。前記血栓性微小血管障害（TMA）の代表的な疾患としては、血栓性血小板減少性紫斑病（thrombotic
thrombocytopenic purpura；TTP）や溶血性尿毒症症候群（hemolytic uremic syndrome；HUS）などが含まれる。【００１５】
ＴＴＰは、（１）血小板減少、（２）細小血管障害性溶血性貧血、（３）腎機能障害、（４）発熱、及び（５）動揺性精神神経障害の５大特徴が認められる重篤疾患である。一方、ＨＵＳは、（１）血小板減少、（２）細小血管障害性溶血性貧血、及び（３）腎機能障害の３主徴からなる重篤疾患である。病像の類似性からＴＴＰとＨＵＳは共に、ＴＭＡとして共通の病態と考えられており、臨床診断上、前記（５）動揺性精神神経障害の有無と、腎障害の重篤の有無とにより、ＴＴＰとＨＵＳの鑑別が行われている。また、近年、ｖＷＦ分解酵素活性とそのインヒビター力価の測定法が確立され、それによっても鑑別可能である。【００１６】
また、後述する実施例３に示すように、シャント再建をくり返している患者ではシャント再建を行ったことがない患者にくらべ、ｖＷＦ分解酵素量が有意に低下しており、シャント再建をくり返す患者では血栓形成傾向が強いことと相関していた。また、透析開始２時間後では、透析後に比べ有意にｖＷＦ分解酵素量が低下しており、透析中に血栓性を示し、シャントがつまりやすくなるという臨床観察に一致していた。これらの結果は、ｖＷＦ分解酵素量の低下と、血栓形成傾向の上昇との間に相関関係があることを示している。従って、本発明の検出方法では、ｖＷＦ分解酵素の濃度を定量し、健常人のｖＷＦ分解酵素濃度と比較して低い場合には、血栓形成傾向が強いと判定することができる。【００１７】
本明細書において、ｖＷＦ分解酵素の濃度が低いとは、ｖＷＦ分解酵素の絶対量が少ない場合が含まれるだけでなく、みかけのｖＷＦ分解酵素量が少ない場合、例えば、ｖＷＦ分解酵素に対する自己抗体の存在により、ｖＷＦ分解酵素と前記自己抗体との複合体が形成され、みかけのｖＷＦ分解酵素量が少なくなる場合も含まれる。【００１８】
本発明方法では、ｖＷＦ分解酵素の定量を、例えば、免疫学的手法又は生化学的手法（例えば、酵素化学的手法）等により行うことができ、ｖＷＦ分解酵素に特異的に結合するモノクローナル抗体及び／若しくはポリクローナル抗体又はそれらの断片を利用した免疫測定法により行うことが好ましい。
前記抗体断片としては、例えば、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２、又はＦｖを用いることができる。以下、抗体（すなわち、免疫グロブリン分子それ自体）を用いた場合に基づいて本発明方法を説明するが、当業者であれば、前記抗体に代えて適宜、抗体断片を使用することが可能である。【００１９】
本発明方法では、異なる２種類以上の抗ｖＷＦ分解酵素抗体を用いることが好ましく、より具体的には、第１の抗ｖＷＦ分解酵素モノクローナル抗体と、この第１抗体の結合領域とは別の領域でｖＷＦ分解酵素と結合する抗ｖＷＦ分解酵素モノクローナル抗体（すなわち、第２のモノクローナル抗体）又はポリクローナル抗体との組み合わせを用いることがより好ましい。
抗ｖＷＦ分解酵素モノクローナル抗体としては、例えば、マウスモノクローナル抗体ＷＨ１０（ＩｇＧ１）、ＷＨ２−２２−１Ａ（ＩｇＧ１）、ＷＨ６３．１（ＩｇＧ１）、ＷＨ７−２Ｂ（ＩｇＧ１）、ＷＨ１４−３（ＩｇＧ１）、又はＷＨ５０−３（ＩｇＧ１）等を挙げることができ、抗ｖＷＦ分解酵素モノクローナル抗体の少なくとも一種がマウスモノクローナル抗体ＷＨ１０（ＩｇＧ１）、ＷＨ２−２２−１Ａ（ＩｇＧ１）、又はＷＨ６３．１（ＩｇＧ１）であることが好ましい。前記第１モノクローナル抗体としては、前記抗体ＷＨ１０が好ましく、前記第２モノクローナル抗体としては、前記抗体ＷＨ２−２２−１Ａ又はＷＨ６３．１が好ましい。【００２０】
なお、前記マウスモノクローナル抗体ＷＨ１０、ＷＨ２−２２−１Ａ、及びＷＨ６３．１は、それぞれ、ハイブリドーマ株ＷＨ１０、ＷＨ２−２２−１Ａ、及びＷＨ６３．１が産生する抗体である。
ハイブリドーマ株ＷＨ１０及びＷＨ６３．１は、それぞれ、２００２年（平成１４年）９月４日に独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センター（あて名：〒３０５−８５６６  日本国茨城県つくば市東１丁目１番地１  中央第６）に国際寄託されたものであり、その受託番号は、それぞれ、ＦＥＲＭ  ＢＰ−８１７４及びＦＥＲＭ  ＢＰ−８１７５である。
また、ハイブリドーマ株ＷＨ２−２２−１Ａは、独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センターに２００３年（平成１５年）４月２２日に国内寄託されたものであり、２００３年（平成１５年）９月１２日から国際寄託に移管されている。国際受託番号（国際受託番号に続く［］内は国内受託番号）は、ＦＥＲＭ  ＢＰ−０８４８３［ＦＥＲＭ  Ｐ−１９３２４］である。
本発明に使用するモノクローナル抗体又はポリクローナル抗体は、免疫原としてｖＷＦ分解酵素を用いること以外は、公知の抗体製造法により調製することができる。また、寄託はしていないものの同様操作により得られた所有抗体であるＷＨ７−２Ｂ、ＷＨ１４−３、又はＷＨ５０−３も使用することができる。【００２１】
本発明方法において免疫測定法を使用する場合には、例えば、通常のサンドイッチ法による酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ法）に従うことができ、あるいは、通常の競合法、サンドイッチ法等によるＲＩＡ法、凝集法等に従うこともできる。これら各方法の操作及び手順等は常法に従うことができる。
特に本発明方法は、抗ｖＷＦ分解酵素モノクローナル抗体を用いた２ステップサンドイッチ法によるのが好ましい。この方法は、例えば代表的には以下のとおり実施することができる。【００２２】
すなわち、適当な担体（例えば、９６ウェルプレート等）に固相化させた抗ｖＷＦ分解酵素モノクローナル抗体を第１抗体として用い、これと、測定対象物質（すなわち、ｖＷＦ分解酵素）を含む被検試料（例えば、実験サンプル等の検体）又はｖＷＦ分解酵素標準溶液とを、室温にて２時間反応させ〔第１ステップ〕、次いで、第２抗体としての酵素標識抗ｖＷＦ分解酵素抗体（例えば、マウス抗ｖＷＦ分解酵素モノクローナル抗体）を前記プレートに加え、室温で１時間程度反応させることにより、前記第２抗体と第１ステップでの反応物（モノクローナル抗体と測定対象物質との反応物）とを反応させ〔第２ステップ〕、次いで発色溶液を加えて発色反応させ、０．５Ｎ硫酸にて発色反応を停止させ、得られる発色反応液の吸光度を測定することにより実施される。【００２３】
また別の好ましい方法の形態として、第１ステップの次に、第２抗体としての抗ｖＷＦ分解酵素ウサギ血清（ウサギ抗ｖＷＦ分解酵素ポリクローナル抗体）を前記プレートに加え、室温で１時間程度反応させることにより、前記第２抗体と第１ステップでの反応物（モノクローナル抗体と測定対象物質との反応物）とを反応させる。更に抗ウサギＩｇＧ抗体等の標識抗体の一定量を前記プレートに加え、室温で１時間程度反応させることも可能である。これらの方法により、被検試料中のｖＷＦ分解酵素を定量することができる。【００２４】
前記方法において、用いる各抗体の固相化（不溶化）は、常法に従いこれらの抗体を不溶性担体に物理的又は化学的に結合させることにより実施できる。前記不溶化のための担体としては、例えば、ポリスチレン、セファデックス、イオン交換樹脂、プラスチックチューブ、又はアミノ共重合体等を使用できる。不溶化は、例えば、共有結合法としてのジアゾ法、ペプチド法、若しくはアルキル化法、架橋試薬による担体結合法、イオン交換樹脂のような担体を用いるイオン結合法、又はガラスビーズ等の多孔性ガラスを担体として用いる物理的吸着法等によって行なうことができる。【００２５】
前記ポリクローナル抗体としては、ｖＷＦ分解酵素を認識するものである限り、特に限定されるものではなく、前述のモノクローナル抗体の製造において開示した免疫抗原を哺乳動物に投与して生体内に産生される抗血清を利用でき、これは常法に従い採取することができる。
【００２６】
また、標識に用いられる標識抗体としては、公知のものを使用することができ、例えば、既に市販のマウス、ラット、モルモット、ウサギ、ヒツジ、ヤギ、ウマ、又はウシ等の動物に免疫して得られる抗血清を、適当な酵素、例えば、パーオキシダーゼ（POD）、アルカリホスファターゼ、β−Ｄ−ガラクトシダーゼ、又は酸性ホスファターゼ等で標識した抗イムノグロブリン抗体、例えば、ＰＯＤ標識抗ウサギＩｇＧ抗体又はＰＯＤ標識抗マウスＩｇＧ抗体等を使用することができる。この酵素標識は、常法に従って実施することができる。【００２７】
本発明方法において、被検試料としては、例えば、血漿形態の血液が好ましいが、それ以外にも、例えば、細胞組織液、リンパ液、胸腺水、腹水、羊水、胃液、尿、膵臓液、骨髄液、又は唾液等の各種体液を用いることもできる。また、前記血漿は、クエン酸血漿であることが好ましい。【００２８】
前記測定系に利用される溶媒としては、反応に悪影響を与えない通常の各種溶媒をいずれも利用することができ、ｐＨが約５．０〜９．０程度の緩衝液、例えば、クエン酸緩衝液、リン酸緩衝液、トリス塩酸緩衝液、又は炭酸緩衝液等の利用が好ましい。なお、本発明においては、前記溶媒に、約０．１〜１０ｗ／ｖ％程度の血清及び／又は約０．１〜１Ｍ程度のＮａＣｌを含ませることが、本発明方法の目的により合致していて好ましい。【００２９】
本発明方法では、免疫反応終了後の固相−液相（前記２ステップサンドイッチ法での反応複合体と標識抗体との結合体−非結合標識抗体）の分離を、例えば、遠心分離、濾別、デカンテーション、又は洗浄等の通常の方法により行なうことができる。【００３０】
また、このようにして分離された各物質の酵素標識活性の測定は、使用した酵素の種類に応じて、公知の各種方法に従い実施することができる。その際用いられる発色溶液としては、通常のもの、例えば、パーオキシダーゼを用いる場合には、テトラメチルベンジジン（ＴＭＢ）やｏ−フェニレンジアミン（ＯＰＤ）等を用いることができ、発色反応の停止も常法に従い、例えば、反応液に０．５〜４Ｎの硫酸等の適当な酵素活性阻害剤を添加することにより実施することができる。【００３１】
［２］本発明の検出用キット
本発明の検出用キットは、抗ｖＷＦ分解酵素抗体又はその断片を少なくとも含み、異なる２種類以上の抗ｖＷＦ分解酵素抗体を含むことが好ましい。本発明の検出用キットは、本発明方法を実施するのに用いることができる。【００３２】
本発明の検出用キットでは、第１の抗ｖＷＦ分解酵素モノクローナル抗体と、この第１抗体の結合領域とは別の領域でｖＷＦ分解酵素と結合する抗ｖＷＦ分解酵素モノクローナル抗体（すなわち、第２のモノクローナル抗体）又はポリクローナル抗体との組み合わせを用いることがより好ましい。
前記第１抗体は、適当なキャリア（すなわち、固相化担体）に予め固定化されていることが好ましい。また、前記第２抗体は標識抗体であることもできるし、あるいは、第２抗体を標識化する代わりに、第２抗体に対する抗体に標識を結合させた標識抗体を更にキットに追加することもできる。【００３３】
前記モノクローナル抗体を含む試薬中には、安定化剤、例えば、グリセロール又はウシ血清タンパク質等を添加存在させることもできる。この抗体試薬は、液状品であっても、凍結乾燥したものであることもでき、この場合試薬中に水溶性又は水と混和し得る溶媒を含有させることもできる。更に、抗体試薬には、再構成された試薬系を一定のｐＨに保つための緩衝液や、試料が悪化するのを防止するための保存剤を配合することができる。緩衝液としては、本発明方法を実施する際にｐＨを約５．０〜９．０とするものを用いることが好ましい。また、再構成剤は、好ましくは水を含んだものであるが、前記水の一部又は全部を水と混和し得る溶媒で置き換えることもできる。この水と混和し得る溶媒としては、公知の溶媒、例えば、グリセリン、アルコール類、又はグリコールエーテル類等を例示することができる。
【実施例】
【００３４】
以下、実施例によって本発明を具体的に説明するが、これらは本発明の範囲を限定するものではない。【００３５】
《実施例１：ｖＷＦ分解酵素の定量》
（ａ）モノクローナル抗体の組み合わせ：ｖＷＦ分解酵素のサンドイッチ酵素免疫測定法
ｖＷＦ分解酵素を免疫原として取得した６種類の抗ｖＷＦ分解酵素モノクローナル抗体（ＷＨ１０、ＷＨ２−２２−１Ａ、ＷＨ６３．１、ＷＨ７−２Ｂ、ＷＨ１４−３、及びＷＨ５０−３）の中から、以下の手順に従って、測定に最も適切な抗体の組合せを調べた。【００３６】
すなわち、抗ｖＷＦ分解酵素モノクローナル抗体をリン酸緩衝化生理食塩水（ＰＢＳ）にて２μｇ／ｍＬに希釈し、９６穴ＥＩＡプレート（ヌンク社製）に各ウェル１００μＬずつ添加し、４℃にて一晩コーティングした。次に過剰の抗体をＰＢＳで洗浄除去したのち、２％ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）を含むＰＢＳを各ウェル２５０μＬずつ添加し、４℃で一晩ブロッキングを行った。ブロッキング液を０．１％Ｔｗｅｅｎ２０含有ＰＢＳ（ＰＢＳＴ）にて洗浄除去したのち、１００μＬの検体（正常ヒトプール血漿）又は精製ｖＷＦ分解酵素抗原より調製した標準品を添加し、室温にて２時間反応を行った。ＰＢＳＴで反応液を洗浄除去したのち、１μｇ／ｍＬビオチン標識抗ｖＷＦ分解酵素モノクローナル抗体１００μＬを添加し、室温にて１時間反応を行った。反応後、前記と同様に洗浄を行ったのち、０．１μｇ／ｍＬペルオキシダーゼ標識ストレプトアビジン（バイオラッド社製）溶液１００μＬを添加し、室温にて１時間反応を行い、洗浄後、テトラメチルベンジジン（ＴＭＢ）溶液／過酸化水素溶液（ＫＰＬ社）を各ウェル１００μＬ添加し、室温にて１５分間反応させた。次にマイクロプレート用比色計で４５０ｎｍの吸光度を測定した。【００３７】
この結果、モノクローナル抗体のいずれの組み合わせも測定が可能であったが、モノクローナル抗体ＷＨ１０を固定化抗体としてコーティングに用い、モノクローナル抗体ＷＨ２−２２−１Ａ又はＷＨ６３．１を２次抗体として用いる組合せが最も高感度な測定を可能とする組合せであった。【００３８】
（ｂ）モノクローナル抗体の酵素標識
抗体ＷＨ２−２２−１Ａ及びＷＨ６３．１をImagawaらの方法［Imagawa et al. (1982) J. Appl.Biochem., 4, 41］によりペルオキシダーゼで標識を行った。【００３９】
（ｃ）モノクローナル抗体を用いたサンドイッチ酵素免疫測定法
抗ｖＷＦ分解酵素モノクローナル抗体ＷＨ１０を２μｇ／ｍＬの濃度で９６穴ＥＩＡプレート（ヌンク社製）にコーティングを行い、標準品として正常ヒトプール血漿を用い、２次抗体として実施例１（ｂ）でペルオキシダーゼ標識したＷＨ２−２２−１Ａ又はＷＨ６３．１、基質溶液としてＴＭＢ溶液／過酸化水素溶液（ＫＰＬ社）、反応停止液として０．５Ｎ硫酸溶液を用いて、実施例１（ａ）と同様にして精製ｖＷＦ分解酵素の測定を行った。測定は４５０ｎｍの吸光度を測定した。
結果を図１に示す。図１におけるＹ軸の単位は、吸光度（４５０ｎｍ）である。正常ヒトプール血漿を１Ｕｎｉｔ（Ｕ）と定義すると、図１に示すように、０．０３Ｕ以上のｖＷＦ分解酵素を正確に定量することが可能であった。【００４０】
（ｄ）モノクローナル抗体とポリクローナル抗体の組み合わせ：ｖＷＦ分解酵素のサンドイッチ酵素免疫測定法
抗ｖＷＦ分解酵素モノクローナル抗体ＷＨ１０をＰＢＳにて２μｇ／ｍＬに希釈し、９６穴ＥＩＡプレート（ヌンク社製）に各ウェル１００μＬずつ添加し、４℃にて一晩コーティングした。次に過剰の抗体をＰＢＳで洗浄除去したのち、２５％ブロックエース（大日本製薬社）を含むＰＢＳを各ウェル２５０μＬずつ添加し、室温で２時間ブロッキングを行った。ブロッキング液を吸引除去したのち、１００μＬの正常ヒトプール血漿を添加し、室温にて２時間反応を行った。ＰＢＳＴで反応液を洗浄除去したのち、０．５μｇ／ｍＬ抗ｖＷＦ分解酵素ポリクローナル抗体１００μＬを添加し、室温にて１時間反応を行った。反応後、前記と同様に洗浄を行った後、１００００倍希釈したペルオキシダーゼ標識抗ウサギＩｇＧポリクローナル抗体（バイオラッド）１００μＬを添加し、室温にて１時間反応を行った後、前記と同様に洗浄を行った後、ＴＭＢ溶液／過酸化水素溶液（ＫＰＬ社）を各ウェル１００μＬ添加し、室温にて５分間反応させた後、０．５Ｎ硫酸を１００μＬ添加した。次にマイクロプレート用比色計で４５０ｎｍの吸光度を測定した。【００４１】
結果を図１に示す。図１における記号「ＰｏＡｂ」は、ポリクローナル抗体を意味する。正常ヒトプール血漿を１Ｕと定義すると、図１に示すように、この抗体の組み合わせによっても、０．０３Ｕ以上のｖＷＦ分解酵素を正確に定量することが可能であった。【００４２】
《実施例２：各種疾患群におけるｖＷＦ分解酵素濃度の比較》
実施例１（ｃ）及び（ｄ）に記載した組合せのサンドイッチ酵素免疫測定法により、血漿中ｖＷＦ分解酵素の定量を行った。この定量においては、正常ヒトプール血漿を標準物質として用いて、これを１Ｕとした。【００４３】
抗体ＷＨ１０及び抗体ＷＨ２−２２−１Ａの組み合わせを用いた場合の結果を図２に、抗体ＷＨ１０及び抗体ＷＨ６３．１の組み合わせを用いた場合の結果を図３に、抗体ＷＨ１０及びポリクローナル抗体の組み合わせを用いた場合の結果を図４に、それぞれ示す。また、健常人及び各種疾患群におけるｖＷＦ分解酵素量の比較をまとめた結果を、表１に示す。【００４４】
図２〜図４及び表１における各記号「ＡＭＬ」、「ＡＰＬ」、「ＣＭＬ」、「ＨＵＳ」、「ＴＴＰ」、「ＡＬＬ」、「ＳＬＥ」、及び「ＤＶＴ」は、それぞれ、急性骨髄性白血病（acute myeloid leukemia）、急性前骨髄球性白血病（acute promyelocytic leukemia）、慢性骨髄性白血病（chronic
myeloid leukemia）、溶血性尿毒症症候群（hemolytic uremic syndrome）、血栓性血小板減少性紫斑病（thrombotic
thrombocytopenic purpura）、急性リンパ球性白血病（acute lymphocytic leukemia）、全身性エリトマトーデス（systemic
lupus erythematosus）、及び深部静脈血栓症（deep vein thrombosis）を意味する。また、表１における各記号「ＭＥＡＮ」、「ＳＥＭ」、及び「ｎｏｒｍａｌ」は、それぞれ、平均値、標準誤差、及び健常人を意味する。図２〜図４におけるＹ軸の単位は、正常ヒトプール血漿の希釈列にて作製した検量線から算出したＵｎｉｔである。【００４５】
測定した健常人１２例のｖＷＦ分解酵素濃度の平均値に対して、各疾患群のｖＷＦ分解酵素濃度の平均値は、いずれの抗体の組み合わせによる測定結果においてもこれよりも有意に低い値を示した。また、具体的データは示さないが、肝中心静脈閉塞症（veno-occlusive disease；VOD）患者においても、ｖＷＦ分解酵素濃度が健常人よりも低値であることを確認している。【００４６】
【表１】
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【００４７】
《実施例３：慢性透析患者におけるシャント再建の有無による透析前、透析開始２時間後、透析後のｖＷＦ分解酵素量の推移》
シャント再建を繰り返し行った慢性透析患者由来の血漿と、シャント再建を行ったことがない慢性透析患者由来の血漿とを用いて、実施例１（ｃ）に記載した組合せの内、抗体ＷＨ１０及び抗体ＷＨ２−２２−１Ａの組み合わせを用いたサンドイッチ酵素免疫測定法により、血漿中ｖＷＦ分解酵素の定量を行った。結果を図５に示す。図５におけるＹ軸の単位は、正常ヒトプール血漿の希釈列にて作製した検量線から算出したＵｎｉｔである。また、図５における記号「ＰＬＴ＜１０＾５」は、血小板数が１ｘ１０５／μＬ未満であることを意味する。【００４８】
シャント再建をくり返している患者では、シャント再建を行ったことがない患者に比べ、ｖＷＦ分解酵素量が有意に低下しており、シャント再建をくり返す患者では血栓形成傾向が強いことと相関していた。また透析開始２時間後では、透析後に比べ有意にｖＷＦ分解酵素量が低下しており、透析中に血栓性を示し、シャントがつまりやすくなるという臨床観察に一致していた。
この結果、これらのことから、本発明方法によれば、血栓症患者の血栓の程度の検出が行い得ることは勿論のこと、シャント再建をくり返す慢性透析患者において、透析後の血栓性の程度も容易にモニタリングすることが可能であり、シャント閉塞の予知、予後の経過の観察をも行い得る利点のあることが明らかとなった。
【産業上の利用可能性】
【００４９】
本発明は、血栓形成傾向の程度又は血栓症の検出の用途に適用することができる。
以上、本発明を特定の態様に沿って説明したが、当業者に自明の変形や改良は本発明の範囲に含まれる。
【図面の簡単な説明】
【００５０】
【図１】モノクローナル抗体の組み合わせ、又はモノクローナル抗体とポリクローナル抗体の組み合わせを用いた場合の検量線を示すグラフである。
【図２】ｖＷＦ分解酵素に特異的に結合するモノクローナル抗体ＷＨ１０及びモノクローナル抗体ＷＨ２−２２−１Ａを用いた場合の、健常人及び各種疾患群におけるｖＷＦ分解酵素量を比較した結果を示すグラフである。
【図３】ｖＷＦ分解酵素に特異的に結合するモノクローナル抗体ＷＨ１０及びモノクローナル抗体ＷＨ６３．１を用いた場合の、健常人及び各種疾患群におけるｖＷＦ分解酵素量を比較した結果を示すグラフである。
【図４】ｖＷＦ分解酵素に特異的に結合するモノクローナル抗体ＷＨ１０及びポリクローナル抗体を用いた場合の、健常人及び各種疾患群におけるｖＷＦ分解酵素量を比較した結果を示すグラフである。
【図５】ｖＷＦ分解酵素に特異的に結合するモノクローナル抗体ＷＨ１０及びモノクローナル抗体ＷＨ２−２２−１Ａを用いた場合の、慢性透析患者におけるシャント再建の有無による透析前、透析開始２時間後、及び透析後のｖＷＦ分解酵素量の推移を示すグラフである。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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