(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
哺乳動物における腫瘍抗原に対する免疫応答を増強するための医薬組成物の製造における、ＯＸ−４０Ｌ、ＯＸ−４０Ｌの機能性ドメイン、ＯＸ−４０ＬもしくはＯＸ−４０Ｌの機能性ドメインを含んでなる融合タンパク質、抗−ＯＸ−４０抗体及び抗−ＯＸ−４０抗体の免疫学的に有効な部分から選ばれるＯＸ−４０レセプター結合因子の使用であって、
前記機能性ドメインは、ＯＸ−４０Ｌの細胞外ドメインであり、
前記医薬組成物は、前記腫瘍抗原によって前記哺乳動物のＴ−細胞をプライミングせしめている間又はプライミングせしめた直後に、前記Ｔ−細胞に前記ＯＸ−４０レセプター結合因子が供与されるように投与されることによって、前記哺乳動物における前記腫瘍抗原に対する免疫応答を増強し、
前記ＯＸ−４０レセプター結合因子は、前記腫瘍抗原とは別に前記哺乳動物に投与される、前記使用。
【請求項２】
前記抗ＯＸ−４０抗体がモノクローナル抗体である、請求項１記載の使用。
【請求項３】
前記抗ＯＸ−４０抗体がヒト化モノクローナル抗体である、請求項１記載の使用。
【請求項４】
前記抗原が腫瘍を有する哺乳動物の腫瘍抗原である、請求項１〜３のいずれか１項記載の使用。
【請求項５】
腫瘍抗原に対する哺乳動物の免疫応答を増強するための医薬組成物の製造において、精製された請求項１に規定するＯＸ−４０レセプター結合因子及び医薬的に許容される担体が使用され、ここで当該増強は当該組成物を当該哺乳動物に投与することで、当該腫瘍抗原がＴ細胞をプライミングせしめている間又はプライミングせしめた直後に当該哺乳動物のＴ−細胞に当該ＯＸ−４０レセプター結合因子が供与されることによるものである、請求項１記載の使用。
【請求項６】
前記ＯＸ−４０レセプター結合因子が前記腫瘍抗原を投与してから３〜７日後に前記哺乳動物に投与されるものである、請求項５記載の使用。
【請求項７】
前記組成物が前記哺乳動物における腫瘍細胞に対する当該哺乳動物の免疫応答を増強するためのものである、請求項１〜６のいずれか１項記載の使用。
【請求項８】
請求項１に規定するＯＸ−４０レセプター結合因子が、腫瘍抗原に対する哺乳動物の免疫応答を増強するための医薬組成物の製造において使用され、ここで当該増強は（ａ）当該哺乳動物からＴ−細胞を取り出し；（ｂ）この取り出したＴ−細胞をＯＸ−４０レセプター結合因子とｅｘ  ｖｉｖｏでインキュベーションし、そして（ｃ）かのようにして処理したＴ−細胞を前記哺乳動物にもどすことによるものである、請求項１記載の使用。
【請求項９】
前記哺乳動物が腫瘍を有する、請求項８記載の使用。
【請求項１０】
前記腫瘍が、乳房、肺、膵、卵巣、腎、大腸及び膀胱のカルシノーマ、並びにメラノーマ及びサルコーマから選ばれる、請求項１〜９のいずれか１項記載の使用。
【請求項１１】
哺乳動物における腫瘍抗原に対する免疫応答を増強するための医薬組成物であって、
前記医薬組成物は、ＯＸ−４０Ｌ、ＯＸ−４０Ｌの機能性ドメイン、ＯＸ−４０ＬもしくはＯＸ−４０Ｌの機能性ドメインを含んでなる融合タンパク質、抗−ＯＸ−４０抗体及び抗−ＯＸ−４０抗体の免疫学的に有効な部分から選ばれるＯＸ−４０レセプター結合因子を含有し、
前記機能性ドメインは、ＯＸ−４０Ｌの細胞外ドメインであり、
前記医薬組成物は、前記腫瘍抗原によって前記哺乳動物のＴ−細胞をプライミングせしめている間又はプライミングせしめた直後に、前記Ｔ−細胞に前記ＯＸ−４０レセプター結合因子が供与されるように投与され、
前記ＯＸ−４０レセプター結合因子は、前記腫瘍抗原とは別に前記哺乳動物に投与される、前記医薬組成物。
【請求項１２】
前記ＯＸ−４０レセプター結合因子が抗−ＯＸ−４０抗体であり、該抗−ＯＸ−４０抗体がモノクローナル抗体である、請求項１１記載の医薬組成物。
【請求項１３】
前記ＯＸ−４０レセプター結合因子が抗−ＯＸ−４０抗体であり、該抗−ＯＸ−４０抗体がヒト化モノクローナル抗体である、請求項１１記載の医薬組成物。
【請求項１４】
前記抗原が腫瘍を有する哺乳動物の腫瘍抗原である、請求項１１〜１３のいずれか１項記載の医薬組成物。
【請求項１５】
前記医薬組成物が、精製された前記ＯＸ−４０レセプター結合因子及び医薬的に許容される担体を含む、請求項１１記載の医薬組成物。
【請求項１６】
前記医薬組成物が、前記腫瘍抗原を投与してから３〜７日後に前記哺乳動物に投与されるものである、請求項１５記載の医薬組成物。
【請求項１７】
前記医薬組成物が、哺乳動物における腫瘍細胞に対する前記哺乳動物の免疫応答を増強するためのものである、請求項１１〜１６のいずれか１項記載の医薬組成物。
【請求項１８】
（ａ）哺乳動物からＴ−細胞を取り出し；（ｂ）この取り出したＴ−細胞をＯＸ−４０レセプター結合因子とｅｘ  ｖｉｖｏでインキュベーションし、そして（ｃ）このようにして処理したＴ−細胞を前記哺乳動物にもどすことによって前記哺乳動物を処置し、腫瘍抗原に対する前記哺乳動物の免疫応答を増強することを含む方法において、前記医薬組成物が使用される、請求項１１記載の医薬組成物。
【請求項１９】
前記哺乳動物が腫瘍を有する、請求項１８記載の医薬組成物。
【請求項２０】
前記腫瘍が、乳房、肺、膵、卵巣、腎、大腸及び膀胱のカルシノーマ、並びにメラノーマ及びサルコーマから選ばれる、請求項１１〜１９のいずれか１項記載の医薬組成物。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
発明の分野
本発明は動物、特にヒト及び非ヒト動物における増強免疫応答を構築するための方法及び組成物に関連する。本発明はかかる方法において利用するための組成物及び材料、例えば関連のワクチン、細胞、プラスミド、ウィルス及びその他のベクター、並びにそれに由来する製剤の製造にも関連する。本発明のその他の観点は以下の説明により明らかとなる。
【０００２】
発明の背景
様々なレセプター−リガンド相互作用が抗原に対して特異的な免疫応答の誘導、樹立及び調節に関与することで知られている。抗原に対するＣＤ４又はＣＤ８Ｔ−細胞応答を活性化するのに少なくとも２つのシグナルが必要である（Lenschowら、1996）。第一シグナルはＴ−細胞レセプター（ＴＣＲ）を介し、抗原提示細胞（ＡＰＣ）の表層上に載っている主要組織適合性（ＭＨＣ）クラスＩ又はII分子に結合した抗原（典型的にはペプチド）により誘導される。第二シグナルはＡＰＣの表層上にあるリガンドのＴ−細胞の表層上の第二レセプター分子に対する結合を包含する。この第二シグナルは補刺激（ｃｏ−ｓｔｉｍｕｌａｔｉｏｎ）と呼ばれ、そしてＡＰＣリガンドは往々にして補刺激分子と呼ばれている。最も良く特性決定されたシグナルはＴ−細胞上のＣＤ２８レセプターとＡＰＣ上のそのリガンドＢ７．１又はＢ７．２との間の相互作用を介して誘導されるが、レセプター／補刺激分子相互作用の多種多様なその他の例も発表されている。
【０００３】
この２つのシグナルは組合さるとＴ−細胞を活性化し、その結果それらはサイトカインを分泌し、そして増強する。ＣＤ４Ｔ−細胞の場合、活性化細胞（ＣＤ４+ と命名）はＩＬ−２及びＩＦＮγ等のサイトカインを産生し、それらは炎症部位のキラー（ＣＤ８+ ）Ｔ−細胞を活性化する。ＣＤ４Ｔ−細胞が活性化されると、別のレセプターＣＴＬＡ−４が発現される。それはＣＤ２８と相同性を有し、そしてＣＤ２８よりも強い親和力でＢ７分子に結合する。Ｂ７／ＣＴＬＡ−４相互作用はＣＤ２８の活性化シグナルを阻害し、そしてＴ−細胞応答をダウンレギュレーションしうるネガティブシグナルを運搬する（Krummel ら、1996；Walunas ら、1996）。このダウンレギュレーションメカニズムは過剰な免疫系応答を、例えば炎症現象の際に産生されるサイトカインの量を減少させることにより阻害しうる。しかしながら、同時に、それは「記憶細胞」となり始めるＴ−細胞の数もダウンレギュレーションしうる。記憶細胞の数を減らすということは、次に遭遇する同一の抗原に対して応答できる細胞の数が減るということである。しかしながら、活性Ｔ−細胞を、ダウンレギュレーションするのではなく、維持することが有利である数多くの状況がある。例えば癌患者は腫瘍細胞に対する活性Ｔ−細胞応答の維持により恩恵を受けるであろう。ワクチン化の概念は投与抗原を認識する記憶Ｔ−細胞の集団の維持を要する。
【０００４】
ＣＤ４Ｔ−細胞の補刺激において役割を果たすものと提唱されている別のレセプター／リガンド組合せはＯＸ−４０レセプター／ＯＸ−４０リガンドの組である。ＣＤ２８レセプターはＴ−細胞の様々なサブクラスの表層上にあるが（それらが活性化していようとしていなかろうと関係なく）、ＯＸ−４０レセプター（「ＯＸ−４０」）（Patersonら、1987；Calderheadら、1993）はｉｎ  ｖｉｖｏでは抗原活性化ＣＤ４+ Ｔ−細胞上にのみあることが示されている（Weinbergら、1994；1996）かくして、ＯＸ−４０は自己免疫疾患における炎症部位にある自己抗原を認識する活性化ＣＤ４+ Ｔ−細胞上にあり、抹消血液系にはないことが示されている（Weinbergら、1994；1996）。ＯＸ−４０は、腫瘍浸潤リンパ球、並びに頭部及び首の鱗状細胞腫瘍並びに黒色腫を有する患者から取り出した排出リンパ節細胞から単離したＣＤ４+ Ｔ−細胞上に所定の割合で存在していることも示されている（Vetto ら、1997）。腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）超科の構成員であるＯＸ−４０リガンドは抗−ＣＤ−３抗体で活性化されたＴ−細胞を補刺激することが示された（即ち、非抗原特異的態様で）（Godfrey ら、1999）。しかしながら、その一般的な補刺激機能の他、免疫応答経路におけるＯＸ−４０レセプター／ＯＸ−４０リガンド相互作用の生物学的役割は今日まで知られていない。
【０００５】
発明の概要
本発明はその一定の観点において、選定の抗原に対する哺乳動物の免疫応答を増強且つ維持するために利用できる組成物及び方法を提供する。従来技術は一般的な免疫応答を強化することを試んできたが、本明細書において開示する組成物及び方法は特定の抗原に応答して活性化されたばかりのＴ−細胞（いわゆる「記憶細胞」）又はかかる感作過程にあるＴ−細胞を特異的に標的とする。詳しくは、本明細書において開示する方法の効果は記憶Ｔ−細胞の数の増加、それ故特定の（選定の）抗原に対する免疫系の応答の増強を含むものと信じられている。
【０００６】
本発明の基礎は（１）ＣＤ４+ Ｔ−細胞上へのＯＸ−４０レセプターの結合、特に例えば抗原によるかかる細胞のプライミングの最中、又はその直後での結合がその抗原に対するＣＤ４+ Ｔ−細胞の増強された応答をもたらしうる、及び（２）この抗原に対する増強された応答がかかる結合がないときよりも実質的に長期にわたり維持されうる、という発見にある。その結果、例えばＴ−細胞プライミングの最中に、ＯＸ−４０レセプターに結合する分子の供与を介する免疫応答の増強は、感染因子、例えば細菌及びウィルス、並びに腫瘍細胞により提示される抗原のＴ−細胞認識を増強させることにより動物の疾患に対する耐性を著しく強めうる。
【０００７】
従って、本発明はとりわけ哺乳動物における抗原に対する免疫応答を増強するための医薬組成物の製造におけるＯＸ−４０レセプター結合因子又はＯＸ−４０レセプター結合因子をコードする核酸の利用を提供し、ここでこの抗原は腫瘍抗原であるか、又は抗原であってかかる抗原がＴ−細胞をプライミングせしめている間又はプライミングせしめた直後に哺乳動物のＴ−細胞にＯＸ−４０レセプター結合因子が供与されるようかかる抗原に対してかかる組成物が投与される抗原である。
【０００８】
このＯＸ−４０レセプター結合因子はＯＸ−４０Ｌ、抗ＯＸ−４０抗体（例えば、モノクローナル抗体、例えばヒト化モノクローナル抗体）及び抗−ＯＸ−４０抗体の免疫学的に有効な部分から選ばれうる。
【０００９】
かかる抗原はウィルス抗原、細菌抗原及び腫瘍抗原から選ばれうる。
【００１０】
更に本発明に従うと、抗原に対する哺乳動物の免疫応答を増強するための医薬組成物の製造において精製されたＯＸ−４０レセプター結合因子及び医薬的に許容される担体を利用でき、ここで当該増強は当該組成物を当該哺乳動物に投与することで、当該抗原がＴ細胞をプライミングせしめている間又はプライミングせしめた直後（例えば、前記抗原を投与してから約３〜７日後）に当該哺乳動物のＴ−細胞に当該ＯＸ−４０レセプター結合因子が供与されることを介する。
【００１１】
この技術は前記哺乳動物における腫瘍細胞に対する当該哺乳動物の免疫応答を増強するのに適用できる。
【００１２】
本発明を実施する一の形態は、細胞表層上に局在した（例えば、適当なトランスメンブラン配列の保有により）ＯＸ−４０レセプター結合因子をコードする核酸の、細胞（例えば腫瘍細胞）の中に該核酸を導入して当該細胞の免疫原性を増強するための組成物の製造における利用を介する。
【００１３】
前記核酸は所望するなら第二タンパク質を更にコードしてよく、それは例えば主要組織適合性複合タンパク質、サイトカイン、インターフェロン及び免疫系補刺激分子から選ばれる。
【００１４】
前記ＯＸ−４０レセプター結合因子をコードする核酸はウィルス又はプラスミドベクター、例えばアデノウィルス、レトロウィルス又は及びヘルペスウィルスの一部であってよい。
このウィルスベクターは弱毒化又は衰弱化ウィルスであってよい。
【００１５】
本発明の更なる観点に従うと、細胞表層上に局在したＯＸ−４０レセプター結合因子をコードする核酸は、哺乳動物由来の腫瘍細胞と共に、哺乳動物における腫瘍に対する当該哺乳動物の免疫応答を刺激するための医薬組成物の製造において利用でき、ここで当該刺激は（ａ）当該哺乳動物から腫瘍細胞を取り出し；（ｂ）この取り出しを腫瘍細胞を弱毒化し；（ｃ）この弱毒化した腫瘍細胞に核酸を導入し；そして（ｄ）当該核酸分子を含むかのようにして処理した弱毒化腫瘍細胞を前記哺乳動物に投与することによるものである。この観点においてかかるＯＸ−４０レセプター因子はＯＸ−４０Ｌであってよい。この腫瘍細胞の弱毒化は前記核酸分子の導入の前又は後であってよい。
【００１６】
本発明を実施する別の態様は、細胞表層上に局在したＯＸ−４０レセプター結合因子をコードする核酸を、哺乳動物由来のＴ−細胞と共に、抗原に対する哺乳動物の免疫応答を増強するための医薬組成物の製造において利用することにあり、ここで当該増強は当該哺乳動物からＴ−細胞を取り出し；この取り出したＴ−細胞をＯＸ−４０レセプター結合因子とｅｘ  ｖｉｖｏでインキュベーションし、そしてかのようにして処理したＴ−細胞を前記哺乳動物にもどすことによるものである。ここでも、この哺乳動物は腫瘍を有してよく、そしてこの抗原は腫瘍抗原であってよい。
【００１７】
より一般的には、哺乳動物における腫瘍に対する免疫応答を増強するための医薬組成物の製造においてＯＸ−４０レセプター結合因子又はＯＸ−４０レセプター結合因子をコードする核酸が利用でき、ここで当該増強は当該腫瘍部位においてのＯＸ−４０レセプター結合因子の量の増大によるものである。
【００１８】
本発明は別の観点において、とりわけ細胞の表層上に局在したＯＸ−４０レセプター結合因子をコードする核酸で形質転換された腫瘍細胞、及びかかる細胞から単離された膜を含んで成る組成物を提供する。
【００１９】
本発明は更に本明細書に記載の特徴及び目的を有する組成物、並びにかかる組成物を作る及び使用する方法を提供する。
【００２０】
本発明の一例において、本来１００％の致死率をもたらす所定の腫瘍細胞の動物への投与との対比において、ＯＸ−４０レセプターに結合する分子の腫瘍細胞と一緒での投与は、この動物を腫瘍細胞から保護した。
【００２１】
何ら理論に拘束されるわけでもないが、この発見の基礎となるメカニズムの一つの考えられる解釈を添付図１に示す。図１は免疫系におけるＣＤ４Ｔ−細胞の役割を示す。脾臓又はリンパ節内のナイーブＴ−細胞（即ち、抗原にまだ曝露されていないもの）は抗原に応答して活性化細胞（「エフェクター」）へと分化する。前述の通り、この活性化はＭＨＣ分子との関係で抗原の提示を、補刺激分子と共に要する。今日までに特性決定された補刺激分子、例えばＢ７分子はナイーブ／エフェクター細胞遷移において作用するものと信じられている。活性化の後、このようなエフェクター細胞の大部分がサイトカインを産生し、そして所定のＴ−細胞レセプター／リガンド相互作用（例えばＣＴＬＡ−４／Ｂ７）が関与しうるフィードバックメカニズムを介し、その後予定細胞死に至るものと提唱されている。Ｔ−細胞の残りの部分は増殖し、そして記憶細胞となり、抗原に対する将来の曝露に応答するよう用意されるようになる。この間のＯＸ−４０レセプターの結合によるＴ−細胞の補刺激はエフェクターＴ−細胞機能を増強し、そして更に初期抗原曝露後に残っており、そして最終的に記憶表現型を帯びる抗原特異的活性化ＣＤ４+ Ｔ−細胞の割合を高めるものと信じられている。かくして、ナイーブ／エフェクター細胞遷移において作用する慣用の補刺激分子とは対照的に、ＯＸ−４０リガンドはエフェクター／記憶細胞遷移において作用する。従って、ＯＸ−４０の結合を包含する本発明の方法は記憶細胞へと進行するエフェクター細胞の比率を高めることを担う。この細胞集団の増加により、その特異的な抗原に応答する免疫系の現状及び将来の能力は高まり、そしてこの高まった応答能力は顕著に長い期間維持される。対照的に、補刺激分子を供与することにより免疫応答を増強する従来発表された方法はナイーブ／エフェクター細胞遷移において作用する補刺激分子、例えばＢ７を利用する（例えば、ヨーロッパ特許出願ＥＰ０７３３３７３（Bristol Myers Squibb : L Chen ら：Composition and methods for increasing the immunogenicity of tumor cells by administration of B7 and CD2-transfected cells) 参照のこと）。初期免疫応答の増強は開示されているが、抗原特異的記憶細胞の集団の増大は今までに開示されていないと信じられている。ここに記載する免疫応答を増強するための方法は抗原特異的記憶Ｔ−細胞の集団を増強することにより免疫応答の良好な増強を供することができるものと信じられている。
【００２２】
これはここに開示し、請求する本発明について一の考えられる解釈にすぎないことを強調しておく。実際のメカニズムと関係なく、抗原活性化の際にＯＸ−４０レセプターに結合する分子の投与をここに提供し、そしてこれは有意義な免疫学的利点を供しうる。
【００２３】
ＯＸ−４０レセプターに結合できる分子をここでＯＸ−４０レセプター結合因子と呼ぶ。
【００２４】
かくして、一の観点において、本発明は抗原に対するＣＤ４+ Ｔ−細胞により媒介される免疫応答を誘導する又は増強する方法を提供し、それは抗原プライミングがｉｎ  ｖｉｖｏで起きている最中又はその直後に、ＣＤ４+ Ｔ−細胞をＯＸ−４０レセプター結合因子に導入することを含んで成る。ＯＸ−４０レセプター結合因子及び適当な担体を含んで成るかかる方法に利用するための組成物も提供する。
【００２５】
本発明において有用なＯＸ−４０レセプター結合因子にはＯＸ−４０リガンド、ＯＸ−４０リガンドの機能性ドメイン、例えば単独又は他のペプチドドメインに接合した細胞外ドメイン、例えば融合タンパク質、及び抗−ＯＸ−４０レセプター特異性を有する抗体が挙げられる。
【００２６】
かかるＯＸ−４０レセプター結合因子はウィルス抗原、細菌抗原及び腫瘍抗原等の多種多様な抗原に対するＣＤ４+ Ｔ−細胞媒介免疫応答を誘導又は増強するのに利用できる。本発明の一の観点において、ＯＸ−４０レセプター結合因子は抗原に対する動物の免疫応答を増強するために利用できる。
【００２７】
かくして、本発明は更に抗原に対する動物の免疫応答を増強するための方法を提供し、この方法はかかる動物に精製されたＯＸ−４０レセプター結合因子及び医薬的に許容される担体を含んで成る組成物を投与することを含んで成り、ここでかかる組成物はその動物を、ＯＸ−４０レセプター結合因子が抗原によるＴ−細胞のプライミングの最中又はその直後に哺乳動物のＴ−細胞に供与されるようにする。哺乳動物における抗原によるＴ−細胞プライミングの過程は抗原を導入して約３〜７日後以内に行われると考えられる。かくして「プライミングの直後」とは抗原を投与してから約３〜１０日の期間を一般に意味する。
【００２８】
本発明の更なる観点に従うと、ＯＸ−４０レセプター結合因子は哺乳動物に、例えば抗原調製品の投与の約１０日後、より典型的には約１週間後、下記好ましくは約３〜７日後に、投与抗原に対する哺乳動物のＣＤ４+ Ｔ−細胞媒介免疫応答を増強するために投与されうる。正確な時期は往々にしてあまり厳格でないと信じられる。
【００２９】
本発明は腫瘍に対する哺乳動物の免疫応答を増強する方法も提供する。一のかかる方法において、腫瘍に対する哺乳動物の免疫応答は、この哺乳動物への治療的有効量の精製ＯＸ−４０レセプター結合因子の投与により刺激される。
【００３０】
本発明に包括されるワクチン組成物は１又は複数種の抗原及び治療的に有効な量のＯＸ−４０レセプター結合因子を含む。前述の通り、この抗原は腫瘍抗原、細菌抗原及びウィルス抗原から成る群から選ばれうる。ワクチンがウィルス抗原を含み、そしてそのウィルス抗原が弱毒化又は複製欠陥ウィルスを介して導入されるものである場合、このＯＸ−４０レセプター結合因子はウィルスゲノムの中に挿入されたかかる因子をコードする核酸分子により供されてよく、かくしてそれはワクチンの導入された哺乳動物の細胞の中で発現される。このワクチンが弱毒化細菌又は細菌抗原を介して導入される細菌抗原を含むなら、このＯＸ−４０レセプター結合因子はそれをコードする核酸分子を介して供されてよく、ここでこの核酸分子は細菌細胞の中に収容され、その中で発現されるものである。同様に、ワクチンが腫瘍抗原調製品、例えば腫瘍細胞膜を含む場合、ＯＸ−４０レセプター結合因子はそれをコードする核酸分子を介して供与されてよく、かかる核酸分子はワクチン調製用の細胞の破裂前に腫瘍細胞内で発現される。抗原及びＯＸ−４０レセプター結合因子を供与する材料は別々に、又は一緒に導入してよい。プライミングの直後と言及している時間は生理学的に有効な接触を意味しており、かかる接触は物理的な投与の後、特に投与されたものがＯＸ−４０レセプター結合因子をｉｎ  ｖｉｖｏで間接的に供与するようなものである場合、例えば上記の核酸の場合、起こりうる。
【００３１】
本発明の更なる観点は細胞、例えば抗原提示細胞（ＡＰＣ）、例えば腫瘍細胞内でのＯＸ−４０レセプター結合因子の発現の供与又は増強である。ＡＰＣ内でのＯＸ−４０レセプター結合因子の発現は当該因子をコードする核酸配列を担持するベクターをこの細胞に導入することにより達成され、ここでこの核酸配列の発現は、ベクターを欠く同等の細胞内での発現よりも高いかかる因子の発現レベルを供する。ＯＸ−４０レセプター結合因子を導入及び発現するために適当なベクターは当業界において周知であり、そしてプラスミドベクター及びウィルスベクター、例えばアデノウィルス、ヘルペスウィルス及びレトロウィルスベクターが挙げられる。所定の態様において、このベクターは対応の免疫応答が所望される抗原をコードする１又は複数の追加の核酸配列を担持しうる。かくして、本発明の一の観点は細胞の免疫原性を増強するための方法であり、この方法は細胞にＯＸ−４０レセプター結合因子をコードする核酸分子を導入して、ＯＸ−４０レセプター結合因子を細胞の表層上で発現させることを含んで成る。
【００３２】
本発明の別の態様において、ＡＰＣは哺乳動物被検体から取り出された腫瘍細胞であってよい。これに関し、本発明は体内に存在する腫瘍細胞に対する哺乳動物の免疫応答を増強するために有用である。本発明の一の態様において、腫瘍細胞は哺乳動物から取り出す。次いでＯＸ−４０レセプター結合因子を発現するベクターをこの取り出した細胞に導入し、その後それを哺乳動物にもどす。好ましくは、この腫瘍細胞は患者への再導入の前に弱毒化しておく。腫瘍細胞を弱毒化するためのメカニズムは周知であり、そして例えば照射が挙げられる。この手順の結果は、この再導入された弱毒化腫瘍細胞が腫瘍抗原及びＯＸ−４０レセプター結合因子の双方を同時にＣＤ４Ｔ−細胞に供与することにあり、その結果哺乳動物の体内の腫瘍細胞に対するＣＤ４+ Ｔ−細胞媒介免疫応答は増強される。所定の腫瘍細胞は抗原提示ＭＨＣ分子の発現をダウンレギュレーションすることにより身体の免疫系をかいくぐるため、この取り出した腫瘍細胞の中にＯＸ−４０レセプター結合因子を発現するベクターだけを導入するのではなく、ＭＨＣ分子、好ましくはＭＨＣクラスII分子を発現するベクターも導入するのが好都合でありうる。本発明の所定の態様において、ＯＸ−４０レセプター結合因子とＭＨＣ分子の双方を発現する単独ベクターを腫瘍細胞に導入してよい。かくして、本発明の別の観点において、哺乳動物における腫瘍に対する哺乳動物の免疫応答を刺激するための方法を提供し、ここでこの方法は（ａ）哺乳動物から腫瘍細胞を取り出し；（ｂ）この取り出した腫瘍細胞を弱毒化し；（ｃ）この弱毒化した腫瘍細胞にＯＸ−４０レセプター結合因子をコードする核酸分子を導入してＯＸ−４０レセプター結合因子をこの弱毒化腫瘍細胞の表層上で発現させ；そして（ｄ）この哺乳動物にかかる核酸を含む弱毒化腫瘍細胞の調製品を治療的有効量で投与することを含んで成る。
【００３３】
本発明は更に養子免疫療法の新規の方法を提供し、それにおいては抗原に対する哺乳動物の免疫応答を、その哺乳動物からＴ−細胞を取り出し、その取り出したＴ−細胞をｅｘ  ｖｉｖｏでＯＸ−４０レセプター結合因子とインキュベーションし、そしてそのＴ−細胞を哺乳動物にもどすことにより増強させる。かかる方法は腫瘍に対する動物の免疫応答を増強するための方法も提供し、この方法は腫瘍部位（即ち、腫瘍を含む及び腫瘍に隣接する身体部）でのＯＸ−４０レセプター結合因子の量を増加させることを含んで成る。ＯＸ−４０レセプター結合因子の量の増加はこの腫瘍部位にＯＸ−４０レセプター結合因子及びこのＯＸ−４０レセプター結合因子をコードする核酸分子から成る群から選ばれる組成物を投与することにより達成し得る。
【００３４】
本発明を以下の説明、添付図及び実施例により例示しながら更に説明する。
【００３５】
詳細な記載
１．定義
本明細書に記載される本発明の考察及び理解を容易にするために、以下の用語の定義を供する：
ＯＸ−４０レセプター：抗原活性化哺乳動物ＣＤ４+ Ｔ細胞の表層上で発現される（ＡＣＦ4 及びＡＣＴ３５とも多様に呼ばれる）タンパク質（Weinbergら、1994, 1996 ; WO95/12673 (Stanford Univ & Becton Dickinson : W Godfrey ら）；Latza ら、1994）。マウス、ラット及びヒトＯＸ−４０レセプター相同体をコードするＤＮＡ配列はクローニングされ、配列決定されている（Malletら、1990；Calderheadら、1993；Latza ら、1994；WO95/12673（前掲）。
【００３６】
ＯＸ−４０リガンド：ＯＸ−４０レセプターと特異的に相互作用する（抗原提示細胞（“ＡＰＣｓ”）のような）特定の哺乳動物細胞の表層上で発現される（ｇｐ３４及びＡＣＴ−４−Ｌとも多様に呼ばれる）タンパク質（その機能でなくタンパク質自体はMiura ら、1991に記載され；WO95/21915 (Stanford Univ : Godfrey ら）は、名称ＡＣＴ−４−Ｌを用いて、ヒトタンパク質及びその機能を同定しており；そして米国特許第５，４５７，０３５号（Immuney : PR Baum ら）は対応する機能のネズミタンパク質を記載する）。マウス及びヒトからのＯＸ−４０リガンドをコードする遺伝子はクローニングされ、同定されている（米国特許第５，４５７，０３５号（前掲）；Miura ら、1991, Godfrey ら、1994）。ＯＸ−４０リガンドは、細胞内、トランスメンブラン及び細胞外ドメインを含み；ＯＸ−４０リガンドの機能的に活性を可溶化型（“可溶性ＯＸ−４０リガンド”）は、米国特許第５，４５７，０３５及びＷＯ９５／２１９１５に記載されるように、細胞内及びトランスメンブランドメインを削除することによって作り出すことができる。ＯＸ−４０リガンドの機能的に活性な型は、ＯＸ−４０レセプターに特異的に結合する能力を保持する形態であり；ＯＸ−４０リガンド分子又は誘導体がＯＸ−４０レセプターに特異的に結合する能力を決定する方法が以下に議論される。ＯＸ−４０リガンド及びその誘導体を作る及び用いる方法はＷＯ９５／２１９１５（前掲）に記載されており、それは、培養細胞からのＯＸ−４０リガンドの精製を容易にするため又は哺乳動物への生体内投与後の分子の安定性を増加させるために作り出すことができる、ヒトＩｇＦｃ領域のような他のペプチドに結合したＯＸ−４０リガンドの可溶化型を含むタンパク質も記載する（米国特許第５，４５７，０３５号も参照のこと）。
【００３７】
本明細書に用いる場合、用語“ＯＸ−４０Ｌ”は、全体のＯＸ−４０リガンド、可溶性ＯＸ−４０リガンド、及び第２のタンパク質ドメインに共有結合したＯＸ−４０リガンドの機能的に活性な部分を含む融合タンパク質を含む。天然のＯＸ−４０リガンド分子からアミノ酸配列において変化しているがＯＸ−４０レセプターに特異的に結合する能力を保持するＯＸ−４０リガンド変異体もＯＸ−４０Ｌの定義に含まれる。このような変異体は米国特許第５，４５７，０３５号及びＷＯ９５／２１９１５（前掲）に記載される。
【００３８】
ＯＸ−４０レセプター結合因子：抗原活性化哺乳動物Ｔ細胞、例えば活性化ＣＤ４+ Ｔ細胞の表層上に存在するＯＸ−４０抗原にのみ実質的に結合する因子。本明細書に用いる場合、用語“ＯＸ−４０レセプター結合因子”は、抗ＯＸ−４０抗体及びＯＸ−４０Ｌを含む。
【００３９】
用語“抗ＯＸ−４０抗体”は、ＯＸ−４０に特異的であるモノクローナル及びポリクローナル抗体、即ち以下に記載の方法を用いて評価した時にＯＸ−４０にのみ実質的に結合するもの、及びその免疫学的に有効な部分（“フラグメント”）を包含する。好ましくは、本発明に用いる抗ＯＸ−４０抗体は、モノクローナル抗体（又はその免疫学的に有効な部分）及び好ましくはヒト化モノクローナル抗体（又はその免疫学的に有効な部分）である。モノクローナル抗体の免疫学的に有効な部分には、Ｆａｂ，Ｆａｂ’，Ｆ（ａｂ’）2 ，Ｆａｂｃ及びＦｖ部分がある（報告について、Better及びHorowitz, 1989を参照のこと）。本発明において、モノクローナル抗体の免疫学的に有効な部分は、好ましくは、重鎖ドメインを含む部分である。抗ＯＸ−４０モノクローナル抗体のヒト化型及び抗ＯＸ−４０抗体の免疫学的に有効な部分は、このような抗体を生産するために用いることができる方法と共に、ＷＯ９５／１２６７３及びＷＯ９５／２１９１５（前掲）に記載される。抗ＯＸ−４０抗体は、いくつかの情報源、例えば“Antibodies, A Laboratory Manual ”by Harlow and Lane, Cold Spring Harbor Laboratory (1988)に記載される標準的な手順を用いて生産することもできる。
【００４０】
ヒト化モノクローナル抗体を作る方法は公知であり、例えば、米国特許5,585,089 (Protein Design : CL Queenら；“Humanized Immunoglobulins ”), 5,565,332 (“Production of Chimeric Antibodies--A Combinatorial Approach ”), 5,225,539 (Med Res Council : GP Winter ; “Recombinant Altered Antibodies And Methods Of Making Altered Antibodies ”), 5,693,761-762 (Protein Design : CL Queen ら；“Polynucleotides Encoding Improved Humanized Immunoglobulins ”, and “Humanized Immunoglobulins ”) 、及び5,530,101 (Protein Design : CL Queen et al.;“Humanized Immunoglobulins ”) 、並びにそれらの引用文献に記載されるものがある。
【００４１】
同様に、抗体フラグメントとも呼ぶ、モノクローナル抗体の免疫学的に有効な部分を作り出しそれを用いる方法は公知であり、例えば、Better及びHorowitz (1989)(“Expression of Engineered Antibodies and Antibody Fragments in Microorganisms”) ; Betterら(1990) (“Production and Scale-Up of Chimeric Fab Fragments from Bacteria ”) ; Glockshuber ら(1990) (“A Comparison of Stategies to Stabilize Immunoglobulin F v Fragments ”) ; 及び米国特許Nos. 5,648,237 (Genentech : PJ Carter ; “Expression of Functional Antibody Fragments ”), 4,946,778 (Genex : RC Ladner ら“Single Polypeptide Chain Binding Molecules”) 、及び5,455,030 (Enzon : RC Ladnerら；“Immunotherapy Using Single Chain Polypeptide Binding Molecules”) 、並びにそれらの引用文献に記載されるものがある。
【００４２】
完全なＯＸ−４０Ｌ分子、可溶性ＯＸ−４０Ｌ、及び例えばＯＸ−４０Ｌの細胞外ドメインが第２のタンパク質ドメインに共有結合している融合タンパク質を含む、ＯＸ−４０Ｌの種々の製剤を本発明におけるＯＸ−４０レセプター結合剤として用いることができる。第２のタンパク質ドメインは、ＯＸ−４０Ｌの活性を増強すること、精製を容易にすること、又は体内でのタンパク質の安定性を増加させることを含む、いくつかの機能を供し得る。このような融合タンパク質において、ＯＸ−４０Ｌ、好ましくは細胞外ドメインもしくはその活性フラグメント又はこのようなドメインもしくはフラグメントの突然変異タンパク質は、治療すべき被検体の適切に選択された血液タンパク質に対応する血液タンパク質又はフラグメントのような適切に選択されたタンパク質に融合される。以下の特定の例は、ＯＸ−４０Ｌ細胞外ドメインとヒトＩｇＧの定常ドメイン、特にＩｇＧのＣＨ２及びＣＨ３ドメインであるポリペプチドとの間の融合物に関する。好ましくは、このような融合物は、好ましくはいずれのシステイン残基もアラニン又はグリシンのような非硫黄アミノ酸残基に変異されているＩｇＧのヒンジ領域に対応するヒンジアミノ酸配列領域を含むであろう。任意にスペーサー配列が介在して、ＩｇＧ部分配列のＣ末端から融合タンパク質内で、ＯＸ−４０Ｌ部分配列のＮ末端が続くことが好ましい。その反対の配置も有用であり得、本発明の範囲に包含される。融合パートナーの別の例は、ＩｇＧのＣＨ２及びＣＨ３領域のかわりのＣＤ４配列のドメイン３及び４の使用に関する。このような融合タンパク質は、いずれかの適切な異種発現系において作ることができ、適切には、その融合タンパク質をコードするＤＮＡは、そのＤＮＡが分泌シグナル及び開裂配列を最初に含むが、後にこのような補助的配列を含まずに細胞の外に輸送されるタンパク質に翻訳されるように、用いる宿主細胞系に適した周知の分泌シグナル配列もコードし得る。
【００４３】
ＯＸ−４０Ｌの組換え型の例は、ＯＸ−４０Ｌの細胞外ドメインがヒトＩｇＧの重鎖に融合しているＯＸ−４０Ｌ：ＨｕＦｃＩｇＧである。このような融合タンパク質の生産は米国特許第５，４５７，０３５号に記載される。例えば、以下の実験に用いるＯＸ−４０Ｌ：ＨｕＦｃＩｇＧ融合物は以下の通り生産した。融合タンパク質ＯＸ４０Ｌ：ｈｕＦｃＩｇＧを、Ｇ４１８選択及び周知のｐＧＥＭ−Ｔクローニングベクターシステムを用いて、公知のＣＨＯ細胞発現系において発現させた。ＣＨＯ細胞発現システムに適した分泌シグナルを含むリーダー配列を、合成オリゴヌクレオチドを用いて作製し、アニーリングして連結させ、約９０bpのフラグメントを形成した。アセンブリーの後、アガロースゲルからＤＮＡを切り出し、特定のプライマーを用いてＰＣＲ反応で増幅し、末端にＨｉｎｄIII 及びＸｈｏＩ部位を形成した。次に、リーダーをｐＧＥＭ−Ｔクローニングベクターにクローニングしてリーダ−配列を含む産物ベクターを形成した。そのリーダー配列は、シグナルペプチドの開裂のための部位を供するための抗体重鎖配列由来の７アミノ酸残基をコードする塩基を更に含んだ。ヒンジ、ＣＨ２及びＣＨ３ドメインを含むヒトＩｇＧ１遺伝子（ｃＤＮＡ）由来のサブ配列を、５’及び３’端への各々ＸｈｏＩ及びＰｓｔＩ部位の導入と共にＰＣＲでクローニングし、リーダー及びヒトＯＸ４０Ｌ配列に連結させた。ｐＧＥＭ−Ｔへのクローニングの後、ＸｈｏＩ−ＰｓｔＩフラグメントを単離し、（ベクターをＸｈｏＩ及びＰｓｔＩで消化した後の）上述のリーダー配列を含むベクターに連結し、リーダー配列及びヒンジ−ＣＨ２−ＣＨ３領域を含む更なる結果ベクターを形成した。ヒトＯＸ４０Ｌ遺伝子の細胞外ドメインを５’及び３’末端への各々のＰｓｔＩ及びＨｉｎｄIII 部位の導入を伴い、ＰＣＲでクローニングし、クローニングベクターｐＧＥＭ−Ｔに連結した。ＰｓｔＩのみでの消化がＯＸ４０Ｌ及び３’末端のポリリンカー配列を遊離させるように、正しい方向のクローンを選択した。次にこのフラグメントを先の結果ベクターのＰｓｔＩ部位に連結し、それにより要求されるリーダー−ＩｇＧ−ＯＸ４０Ｌ融合構成物をコードするベクターを形成した。次に、その遺伝子構成物をＨｉｎｄIII フラグメントとして単離し、発現を駆動するためのｈＣＭＶプロモーター及びｍｅｏＲ選択マーカーを含む発現ベクターに移した。正しい方向の挿入物についてクローンをスクリーニングし、次にトランスフェクションのために増殖させた。この構成物を用いてＣＨＯ細胞にトランスフェクトし、陽性ＣＨＯクローンをＧ４１８を用いて選択し；融合タンパク質分泌を、ＯＸ４０をトランスフェクトしたＳｐ２１０骨髄腫細胞との上清のインキュベーション及びフローサイトメトリー分析による結合の検出により検出した。高レベル分泌細胞をふくらませ（ｂｕｌｋｅｄ  ｕｐ）、その上清からの融合タンパク質をプロテインＧ−Ｓｅｐｈａｒｏｓｅカラムで精製した。 溶出した材料をＳＤＳ−ＰＡＧＥ（１２％）ゲルに走らせ、そのゲルをクーマシーブルーで染色して純度を確認した。 ヒトＯＸ−４０配列 (‘ＡＣＴ−４−ｈ−１’）についてはＷＯ９５／１２６７３を参照のこと。 ヒトＯＸ−４０Ｌ配列（‘ＡＣＴ−４−ｈ−１−Ｌ’）についてはＷＯ９５／２１９１５及びそこで引用される文献を参照のこと。ＯＸ−４０レセプター結合因子に有効に融合させることができる他のペプチドには、可溶性ＭＨＣクラスII分子、他の補刺激分子、例えばＢ７．１及びＢ７．２、並びにＴ細胞増強性サイトカイン、例えばＩＬ−２がある。
特定の因子がＯＸ−４０レセプターにのみ結合することの測定は、慣用的な方法を用いて、又はそれらを適合させることにより直ちに行うことができる。ｉｎ  ｖｉｔｒｏアッセイに適したものは、（Harlow及びLaneによる“Antibodies, A Laboratory Manual ”を含む、多くの標準的文献に記載される）ウエスタン・ブロッティング法を利用する。所定のＯＸ−４０レセプター結合因子、例えば可溶性ＯＸ−４０Ｌの選択されたフラグメントがヒトＯＸ−４０タンパク質にのみ実質的に結合することを決定するために、全細胞タンパク質は、ＯＸ−４０抗原を発現しないヒト細胞、例えばＯＸ−４０をコードする核酸分子で形質転換された非リンパ球細胞（例えばＣＯＳ細胞又はＣＨＯ細胞）から抽出される。陰性対照として、全細胞タンパク質は、対応する非形質転換細胞からも抽出される。次に、これらのタンパク質調製物は非変性ポリアクリルアミドゲル上で電気泳動される。その後、タンパク質はウエスタン・ブロッティングにより、膜 (例えばニトロセルロース）に移され、そしてテストすべき因子がその膜と一緒にインキュベートされる。その膜を洗って非特異的に結合した因子を除去した後、結合した因子の存在は、検出剤、例えば酵素アルカリホスファターゼにコンジュゲートしたテスト因子に対して生じた抗体の使用により検出され；基質５−ブロモ−４−クロロ−３−インドリルホスフェートノニトロブルーテトラゾリウムの適用は免疫局在化アルカリホスファターゼによる濃い青色の化合物の生産を引きおこす。ヒトＯＸ−４０にのみ実質的に結合する因子は、この技術により、ＯＸ−４０で形質転換された細胞からの抽出物中の（その分子量により決定されるゲル上の所定の位置に局在化するであろう）ヒトＯＸ−４０バンドに結合することが示されるであろうが、非形質転換細胞からの抽出物中では結合はほとんど又は全く観察されないであろう。その因子の他のタンパク質への非特異的結合が発生し得、ウエスタンブロット上で弱いシグナルとして検出され得る。この結合の非特異的性質は、特定の因子／ヒトＯＸ−４０タンパク質結合から生ずる強力な第１のシグナルに対するウエスタン・ブロット上で得られる弱いシグナルにより、当業者に認識されるであろう。理想的には、ＯＸ−４０レセプター結合因子は、非形質転換細胞から抽出されたタンパク質に結合しないであろう。
【００４４】
抽出されたタンパク質を用いる結合アッセイに加えて、ＯＸ−４０レセプター結合因子と予想される因子は、その因子を蛍光タグ (例えばＦＩＴＣ）にコンジュゲートさせ、蛍光活性化セルソーター（ＦＡＣＳ）により抗原活性化ＣＤ４+ Ｔ細胞及び非活性化Ｔ細胞への結合を分析することにより、生体内で実質的にＯＸ−４０レセプターのみに結合する能力を確認するためにテストされる。実質的にＯＸ−４０レセプターのみに結合する因子は、活性化ＣＤ４+ Ｔ細胞のみを染色するであろう。
【００４５】
形質転換：形質転換された細胞は、分子生物学技術により核酸分子が導入されている細胞である。本明細書に用いる場合、形質転換との用語は、ウイルスベクターでのトランスフェクション、プラスミドベクターでの形質転換、並びにエレクトロポレーション、リポフェクション、及びパーティクルガンアクセラレーションによる裸のＤＮＡの導入を含む、核酸分子を細胞に導入し得る全ての技術を包含する。
【００４６】
単離：（核酸又はタンパク質のような）“単離された”生物学的成分は、その成分が天然で存在する生物の細胞中の他の生物学的成分、即ち他の染色体及び染色体外ＤＮＡ及びＲＮＡ、並びにタンパク質から実質的に分離され又は精製されている。これにより、“単離”されている核酸及びタンパク質は、標準的な精製法により精製された核酸及びタンパク質を含む。その用語は、宿主細胞内で組換え発現により調製された核酸及びタンパク質並びに化学的に合成された核酸も包含する。
【００４７】
精製：精製との用語は絶対純度を要求せず；むしろ相対的用語として解釈する。これにより例えば、精製されたＯＸ−４０リガンド調製物は、ＯＸ−４０リガンドが細胞内でその天然の環境にあるリガンドより高純度であるものである。好ましくは、ＯＸ−４０リガンドの調製物は、ＯＸ−４０リガンドタンパク質が調製物の全タンパク質成分の少なくとも５０％を示すように精製される。
【００４８】
作用可能に結合（連結）：第１の核酸配列が第２の核酸配列と機能的関係をもって配置される時に、その第１の核酸配列は第２の核酸配列に作用可能に結合している。例えば、プロモーターは、そのプロモーターがコードする配列の転写又は発現に作用するため、コード配列に作用可能に結合されている。一般に、作用可能に結合したＤＮＡ配列は、連続的であり、２つのタンパク質コーディング領域を連結することが必要であるなら、同じ読み枠内にある。
【００４９】
組換体：組換核酸は、天然でない配列を有するか、２つの他の分離した配列のセグメントの人工的な組合せにより作られたものである。この人工的な組合せは、しばしば、化学的合成により、又はより一般的には核酸の単離されたセグメントの人工的な操作により、例えば遺伝子工学技術により行われる。
哺乳動物：その用語は、ヒト及び非ヒト哺乳動物の両方を含む。同様に、用語“被検体”は、ヒト及び獣医学の対象を含む。
【００５０】
２．動物の抗原特異的免疫応答を増強する組成物及び方法
抗原活性化の最中又は後のＣＤ４Ｔ−細胞に対するＯＸ−４０レセプター結合による哺乳動物の抗原特異的免疫応答の増強は様々な方法を利用して成し遂げられうる。選定の方法は主に対応の免疫応答の増強が所望される抗原のタイプに依存し、そして有用な様々な方法を以下に論じる。どの方法を選定しようと、精製ＯＸ−４０レセプター結合因子は抗原によるＴ−細胞のプライミングの最中又は直後にその動物のＴ−細胞に供与されるようにその動物に投与すべきである。Ｔ−細胞の活性化は一般に抗原を免疫系に供与してから約３〜７日後以内に起こるため、一般にＯＸ−４０レセプター結合因子を動物に選定の方法により、抗原に対して動物の免疫系を曝露してから約７日以内に投与するのが好ましい。ＯＸ−４０レセプター結合因子を抗原と一緒に投与する場合、体内で増強された安定性（即ち、長くなった半減期）を有する剤型で投与することで、抗原プライミングの最中又は後、その因子が循環系内にＯＸ−４０と結合するのに十分な時間残留できるようにすることが好都合でありうる。かかる増強した安定性を有するＯＸ−４０レセプター結合因子の形状には例えばヒトＩｇＧの定常領域に融合された可溶性ＯＸ−４０リガンドを含んで成る融合タンパク質が挙げられる。任意の選定のＯＸ−４０レセプター結合因子の半減期の決定のため、標準的な方法が利用されうる。例えば、静脈内注射によるかかる因子の投与後、少量の血液サンプルを動物から採取し、次いでそのサンプルを約１０日間にわたり６〜２４時間毎に採取する。その後、各サンプル中に存在する因子の濃度を決定する( 例えば、Harlow & Lane, 1988 に記載の標準の免疫定量法、例えばELISA)。この因子の半減期はこの因子の濃度が第一サンプル測定のそれの５０％にまで低下した時点と定義する。
【００５１】
ある状況では、例えば抗原が免疫系に長期間供されるような場合 (例えば癌患者において）、ＯＸ−４０レセプター結合因子は免疫系を抗原に曝露してから７日以上経過した後に投与してよい。例えば、患者からの一次腫瘍の外科的除去の後、ＯＸ−４０レセプター結合因子を投与して転移部にある腫瘍抗原に対する免疫応答を増強させ、これにより身体からのかかる転移部の浄化を促進する。このような状況では、ＯＸ−４０レセプター結合因子の投与は通常患者の免疫系を腫瘍抗原に対して、一次曝露してから７日以上経過した後に行われるが、にもかかわらず、それは抗原がＴ−細胞に供与されるときに存在している。
【００５２】
ＯＸ−４０レセプターに結合する分子は一般にタンパク質、例えば抗−ＯＸ−４０抗体又はＯＸ−４０リガンドであろうが、哺乳動物に投与される調製品は様々な形態をとってよく、例えば精製ＯＸ−４０レセプター結合因子、ＯＸ−４０レセプター結合因子をコードする核酸分子、ＯＸ−４０レセプター結合因子を発現する細胞もしくはウィルス、又はかかる細胞もしくはウィルスに由来する調製品等であってよい。
【００５３】
その最も単純な形態において、哺乳動物に投与する調製品はＯＸ−４０レセプター結合因子であり、慣用の投与形で投与され、そして好ましくは医薬賦形剤、担体又は希釈剤と組合せる。適当な医薬担体は固体でも液体でもよく、そして緩衝剤、酸化防止剤、例えばアスコルビン酸、他のポリペプチド又はタンパク質、例えば血清アルブミン、炭水化物、錯形成剤、並びにその他の安定化剤及び賦形剤が挙げられる。適当な固体担体にはラクトース、ステアリン酸マグネシウム、テラアルバ、スクロース、タルク、ステアリン酸、ゼラチン、アガー、ペクチン、アカシア及びココアバターが挙げられる。固体担体の量はどの担体を選定するかに依存して大幅に変わり、但し好ましくは１回の活性剤の投与当り約２５mg〜約１ｇであろう。適当な液体担体には中性緩衝食塩水が挙げられ、任意的に適当な保存剤、安定化剤及び賦形剤が挙げられる。この担体又は希釈剤は更に当業界周知の遅延剤、例えばグリセロールジステアレートを単独で、又はワックスと組合さって含みうる。適当な医薬担体の上記の例は例示にすぎず、そして当業者は多種多様なかかる担体が採用し得ることを認識しているであろう。リポソームベース導入システムもＯＸ−４０レセプター結合因子の導入に採用できうる。血流の中に時間をかけて因子を計量放出するために採用されうるリポソームベースシステムは当業界において周知であり、そして米国特許第4,356,167 号（Sandoz : LA Kelly ; “Liposome drug delivery systems”) 、同5,580,575 号（ImaRx : EC Ungerら；“Therapeutic drug delivery systems ”) 、同5,595,756 号（Inex Pharm and Univ of BC : MB Bally et al, ; “Liposomal compositions for enhanced retention of bioactive agents ”) 及び同5,188,837 号（Nova Pharm : AJ Domb ;“Lipospheres for controlled delivery of substances ”）並びにその引用文献に記載のシステムにより例示される。
【００５４】
ＯＸ−４０レセプター結合因子と医薬担体との製剤はあらゆる物理形態をとってよいが、好ましくは直接注射に適当な無菌液体懸濁物又は溶液とする。好ましくは、患者に上記の製剤でＯＸ−４０レセプター結合因子を投与する（即ち、医薬担体との組合せで）。ここでこの製剤は臨床学的に有効な量の因子を含むものとする。
【００５５】
本明細書で利用する「臨床学的に有効な量」とは臨床学的に有意義な効果をもたらす量である。この種の効果はＯＸ−４０レセプター結合因子の使用される臨床学的背景、例えば当該因子を治療薬として使用するのか（例えば、感染症又は癌の治療）又は予防薬として使用するのか（例えばワクチン）に応じて変わるであろう。治療的背景においては、ＯＸ−４０レセプター結合因子も癌患者に投与するなら、患者の症状の任意の改善が臨床学的に有意義となることが期待されるであろう。従って、かかる状況では、「臨床学的に有効な量」は癌の少なくとも部分的な退行をもたらすＯＸ−４０レセプター結合因子の量、及び癌の更なる進行を遅める又は抑える量を包括する。同様に、当該因子を感染因子、例えばウィルス又は細菌に対する患者の免疫応答を増強するために利用する治療的背景においては、患者がかかる感染因子に既に感染している場合、臨床学的に有効な量とは臨床学的に有意義な効果を、即ち感染症又は臨床学的徴候のある程度の退行をもたらす効果をもたらす量をいう。
【００５６】
予防的背景、例えばワクチン化においては、ＯＸ−４０レセプター結合因子の臨床学的有効量は標的抗原に対する免疫応答の増強を供する、即ち、ＯＸ−４０レセプター結合因子の投与抜きで示されるものより強い免疫応答を生み出すのに十分な量をいう。ワクチン化により生ずる免疫応答の定量化は任意の標準的な手段、例えば任意の慣用テスト抗原に対する血清抗体力価のレベル及び／もしくは期間の測定、並びに／又はｉｎ  ｖｉｔｒｏでのテスト抗原に応答するリンパ増殖の測定により達成されうる。
【００５７】
ＯＸ−４０レセプター結合因子の臨床学的に有効な量は使用する実際のＯＸ−４０レセプター結合因子（例えば、それが可溶性ＯＸ−４０リガンド又は抗−ＯＸ−４０抗体フラグメントであるか）、臨床学的背景 (例えば、その因子を治療的に使用するのか、予防的に使用するのか）、患者の特性（年齢、体重、受けている他の投薬、等）、及び治療的背景、症状の症度に依存して変わるであろう。かくして、臨床学的に有効な用量の評価は最終的には医師、獣医、又はその他の患者をよく知る看護人により決定されるであろう。典型的には、本発明の方法に従う哺乳動物へのＯＸ−４０レセプター因子の投与は一回の投与当り約１０ng〜１ｇのＯＸ−４０レセプター結合因子の投与を包含し、一般に約１０μｇ〜１００mgの単独用量単位が利用され、そして１mg又は１０mgまでの特別な用量もよく利用される範囲であろう。
【００５８】
治療的用途の場合、ＯＸ−４０レセプター結合因子は患者に様々なルート、例えば静脈内ルートで投与してよく、又は患者が腫瘍を有する場合、腫瘍部位に直接投与してよい。この因子は組成物中の唯一の活性成分であっても、又は有益な効果を有するその他の因子、例えばインターフェロン又はその他の免疫刺激分子と組合わせてもよい。
【００５９】
予防的 (ワクチン) 背景においては、ＯＸ−４０レセプター結合因子は患者に慣用のワクチン調製品、例えば細菌又はウィルス抗原を含んで成るワクチン調製品と組合せて投与してよい。ＯＸ−４０レセプター結合因子は慣用のワクチンと組合せてよく、又は慣用のワクチンと共に個別の調製品とに投与してよい。前述の通り、適当なＯＸ−４０レセプター結合因子の選別は、この因子が循環系の中で抗原プライミングの間Ｔ−細胞上のＯＸ−４０レセプターに対して結合できるのに十分長く（即ち、抗原を投与してから約３〜７日）残ることを確実なものとなるように行う。好ましくは、ＯＸ−４０レセプター結合因子を別々に投与するなら、それはワクチンを投与してから１週間以内に投与する。本発明において利用するのに適当な慣用のワクチン調製品は精製細菌抗原、加熱殺菌済み細菌、サブユニットワクチン及び生きた又は弱毒化したウィルスをベースとするウィルスワクチンで調製されたものが挙げられる。
【００６０】
ＯＸ−４０レセプター結合因子を哺乳動物にワクチン抗原を有する単一調製品で投与する場合、この調製品は単に臨床学的に有効な量のＯＸ−４０レセプター結合因子を抗原調製品と混合することにより調剤できうる。他方、ＯＸ−４０レセプター結合因子は抗原と一緒に製造してよい。例えば、ワクチンとして投与する抗原が細菌抗原又はその混合物である場合、その抗原調製品のもととなる細菌はＯＸ−４０レセプター結合因子を発現する遺伝子導入細菌であってよい。かかる状況では、ＯＸ−４０レセプター結合因子は細菌抗原との組合せで直接得られる。同様に、腫瘍抗原及びＯＸ−４０レセプター結合因子を含んで成るワクチンはＯＸ−４０レセプター結合因子を発現する腫瘍細胞から調製できうる。遺伝子導入原核及び真核細胞内でタンパク質、例えばＯＸ−４０リガンドを発現する方法は周知であり、そして標準の実験教科書、例えばSambrookら（1988）に記載されている。
【００６１】
その他の態様において、本発明は特定の抗原に対する哺乳動物の免疫応答がＯＸ−４０レセプター結合因子をコードする核酸分子を哺乳動物に投与することにより増強し得ることを考慮する。かかる核酸分子は好ましくは細胞内に投与するか、又はウィルスゲノムの一部として投与するが、それは「裸」の核酸分子として直接投与してもよい。例えば、ＯＸ−４０レセプター結合因子をコードする核酸分子は弱毒化細菌 (即ち、哺乳動物に投与したときに有意義な疾患を惹起しない生物形態）にプラスミドベクターで導入し、ＯＸ−４０レセプター結合因子が細菌の表層上で発現されるようにしてよい。この細菌を哺乳動物に慣用の弱毒化細菌ワクチンと同じようにして投与してよい。他方、ＯＸ−４０レセプター結合因子をコードする核酸分子は生きた弱毒化ワクチンとして利用されるウィルスのゲノムの中に導入してよい。弱毒化ウィルスには必須遺伝子が欠失しているものが挙げられる。米国特許第5,665, 362号及び同5,837,261 号（Cantab Pharmacenticals : Inglis ら）。この目的のために適当なウィルスにはＤＮＡウィルス、例えばアデノ、ヘルペス、パポバ、パピロマ及びパーボウィルス、並びにＲＮＡウィルス、例えばポリオウィルス及びインフレンザウィルスが挙げられる。ウィルスワクチンとして使用できうる異種核酸配列を担持するウィルスの調製方法は米国特許第5,665,362 号及び同5,837,261 号 (前掲）、同5,338,683 号（Health Research : E Paoletti) 及び同5,494,807 号（E Paoletti) に記載されている。
【００６２】
別の態様では、ＯＸ−４０受容体結合因子をコードする核酸を腫瘍細胞に導入し得る。多くのガン患者で、腫瘍細胞が、例えばＭＨＣのダウンレギュレーション及び／又は補刺激分子発現などの機構を介して免疫系による検出を逃がれている。従って、以前に提唱された一つの治療法は、患者から腫瘍細胞を取り出し、それに、例えばＭＨＣクラスII、補刺激分子Ｂ７、及び刺激／接着分子ＣＤ２（欧州特許出願ＥＰ０７３３３７３）をコードする核酸を導入することであった。本発明を、この様な方法に応用して、ＯＸ−４０受容体結合因子をコードする核酸分子を腫瘍細胞に導入することにより、かなりの利益が期待される。
【００６３】
全ての型の腫瘍が、例えば乳房、肺、膵、卵巣、腎、大腸及び膀胱のカルシノーマ、並びにメラノーマ及びサルコーマが、潜在的にはこの方法によって治療され得る。ＯＸ−４０受容体結合因子をコードする核酸を、腫瘍細胞でＯＸ−４０受容体結合因子を発現するために適したベクター内に組込む。適当なベクターには、プラスミド、コスミド及びウィルスベクター、例えばレトロウィルス、アデノウィルス及びヘルペスウィルスがある。欠陥ウィルス、例えば米国特許５，６６５，３６２及び５，８３７，２６１に記載したものを、この目的のために使用し得る。ウィルスベクターは高効率に哺乳動物細胞に感染するので、他の型のベクターに比べて利点がある。ＯＸ−４０受容体結合因子をコードする核酸分子に加えて、他の核酸分子を、免疫原効果を更に強めるために、ベクターに組込むこともできる。例として、その様な核酸分子には、ＭＨＣクラスIIタンパク質 (α及びβサブユニットを含む）、及び他の補刺激分子、例えばＢ７．１及びＢ７．２がある。希望するなら、選択マーカーをコードする核酸分子をベクターに導入してもよく、その結果、ベクターによってうまく形質転換された腫瘍細胞を容易に選択し得る。
【００６４】
次にベクターを腫瘍細胞内に、一連の技術、例えばエレクトロポレーション、リポフェクション、ウィルス生産細胞との共培養、又はその他標準的な方法により導入する。好ましい態様では、腫瘍細胞は、治療するために患者から取り出した細胞であり、あるいは、腫瘍細胞株、例えばAmerican Type Culture Collection (ATCC) から入手できるヒト腫瘍細胞株に由来する細胞であってもよい。
【００６５】
ベクターが導入された細胞を選択するために、細胞選別を行いたい場合、多数の方法により、例えば選択マーカーを用いた場合には、それの発現を選択し、あるいは、細胞表面上のＯＸ−４０受容体結合因子の発現を選択することにより、これを行い得る。後者の方法は、蛍光活性化細胞選別機（ＦＡＣＳ）により簡便に行い得る。
【００６６】
次にその腫瘍細胞を、適当な担体、例えば緩衝水溶液、食塩水、又はグリシンと共に患者に投与する。好ましい態様では、その腫瘍細胞が元々患者から取り出した場合、患者に投与する前に、それらを弱毒化する。弱毒化した細胞は、代謝上活性があるが、もはや増殖することができないものである。腫瘍細胞を弱毒化する方法が周知であり、例えばＥＰ０７３３３７３に記載されている。
【００６７】
別の態様では、ＯＸ−４０受容体結合因子を含有する。腫瘍細胞由来の細胞膜を、完全な腫瘍細胞の代りに患者に投与し得る。標準的な方法、例えばフレンチプレス、凍結融解又は超音波処理によって細胞を破壊又は溶解することにより、細胞膜調製品を容易に調製できる。細胞の破壊後、膜に富む分画を遠心により得ることができる。
【００６８】
あるいは、患者の体内でＯＸ−４０受容体結合因子を発現させるために、ＯＸ−４０受容体結合因子をコードする核酸分子を、「裸の」ＤＮＡの形で患者に投与し得る。動物の体内で当該ＤＮＡを発現させるために、裸のＤＮＡを動物に投与する方法が周知であり、例えば米国特許5,620,896 (Univ Massachusetts Med Ctr : JE Herrmann et al.; “DNA vaccines against rotavirus infections ”), 5,643,578 (Univ Massachusetts Med Ctr & St Jude Children's Res Hosp : HL Robinson et al.;“Immunization by inoculation of DNA transcription unit ”) 及び5,593,972 (Wistar Inst & Univ of PA : DB Weiner et al.; “Genetic immunization”) に記載されている。
【００６９】
本発明は、ガン等の症状を治療するための他の免疫治療法、例えば養子免疫をも含む。当分野で周知の通り、養子免疫とは、特定の抗原に露出されたリンパ細胞を採取し、当細胞の活性が増加する条件下でｅｘ  ｖｉｖｏで当細胞を培養し、そして当細胞を個体に投与することである。当リンパ細胞は、好ましくは、ガン患者から取り出したＴ細胞、例えば排出リンパ節からのＴ細胞である。本発明によると、当細胞上のＯＸ−４０受容体とＯＸ−４０受容体結合因子とが結合することにより、当細胞が刺激され、そして当細胞から生じる記憶細胞の数が増加するだろう。従って、本発明の１つの点は、患者に当細胞を投与する前に、ｅｘ  ｖｉｖｏでリンパ細胞を、ＯＸ−４０受容体結合因子を含有する培地中でインキュベーションするという形の養子免疫である。リンパ細胞の採取、ｅｘ  ｖｉｖｏでの当細胞と免疫刺激剤とのインキュベーション、及び患者への投与に関する方法の詳細な技術が、当分野に周知であり、例えば米国特許4,690,915 (US DHHS : SA Rosenberg ; “Adoptive immunotherapy as a treatment modality in humans”), 5,229,115 (Immunex : DA Lynch ;“Adoptive immunotherapy with interleukin-7 ”), 5,631,006 (Endotronics : GB Melink et al.; “Immunotherapy protocol of culturing leukocytes in the presence of interleukin-2 in a hollow fiber cartridge ”、及び4,902,288 (M Ingram ; “Implantable immunotherapy system using stimulated cells ”) に記載されている。
【００７０】
３．実施例
以下の実施例で、本発明で使用する方法と材料、並びに本発明の効能を説明する。
実施例１：ＯＸ−４０受容体結合因子による抗原特異的Ｔ細胞の刺激
ＯＸ−４０受容体結合因子が抗原特異的Ｔ細胞を刺激することを証明するために、ミエリン塩基性タンパク質（ＭＢＰ）特異的Ｔ細胞及び、ＯＸ−４０受容体結合因子としての抗ＯＸ−４０ｍＡｂを用いて、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ  Ｔ細胞増殖検査を行った。
【００７１】
ＲＰＭＩ／１０％ＦＣＳ中で増殖させた後、ＭＢＰ特異的Ｔ細胞を採集し、洗浄し、計数し、そして培地中に再懸濁し、それをVandenbark et al. (1985)が報告したＴ細胞増殖検査に用いた。９６ウエル平底プレート内で、２×１０5 Ｔ細胞を刺激培地中で４８時間刺激し、そして１８時間１μＣｉ〔3 Ｈ〕−ＴｄＲで標識した。細胞を集め、平均チミジン取り込み(cpm）を３ウエルから計算した。ラットＣＤ３，ＯＸ−４０及びＣＤ２８に対するモノクロナル抗体をPharmingen (La Jolla, CA) から購入した。
【００７２】
ｉｎ  ｖｉｔｒｏでＴ細胞増殖に対するＯＸ−４０Ｌの効果を調べるために、９６ウエル平底プレート内で２×１０5 ／ウエルでＴ細胞をまき、１０μｇ／mlの可溶性又はプレート結合性抗ＣＤ３抗体と共に、種々の濃度の抗ＯＸ−４０抗体によって刺激した。当細胞を４８時間培養し、１８時間〔3 Ｈ〕−チミジンで標識し、その後採集し、そして計数した。図２に示す通り、その結果を、３ウエルから計算したＣＰＭ平均値と標準偏差とで表す。その結果から、ＯＸ−４０受容体結合因子（すなわち抗ＯＸ−４０ｍＡｂ）は、用量依存的に、ＭＢＰ特異的ＣＤ４+ Ｔ細胞を補刺激／刺激（分裂促進）したことが示される。
【００７３】
実施例２：ＯＸ−４０受容体結合はエフェクター段階で起こる
ＯＸ−４０受容体結合が効果を呈するＴ細胞の発達段階（ナイーブ又はエフェクター細胞）を決定するために、マウスＩＥk ＭＨＣクラスII分子を発現する線維芽細胞株を用いた（Dubey et al., 1995) 。この細胞株は、Kaye and Hedrick (1989) により報告されたＴ細胞受容体トランスジェニックマウスから得たＴ細胞に、抗原（ハトチトクロームＣ（ＰＣＣ））を提示できる。この細胞株を用いて、ＯＸ−４０リガンドを発現し、且つＴ細胞受容体トランスジェニックマウスから得た脾臓ＣＤ４+ Ｔ細胞を刺激できるトランスジェニック線維芽細胞株を生産した。
【００７４】
当該マウスから直接採取したナイーブＴ細胞を、（１）ＭＨＣクラスII単独、（２）ＭＨＣクラスII及びＢ７．１、（３）ＭＨＣクラスII及びＯＸ−４０リガンド、又は（４）ＭＨＣクラスII、ＯＸ−４０リガンド及びＢ７．１、を発現する線維芽細胞と組み合せて、ＰＣＣ抗原によって刺激した効果を比較した実験から、ＭＨＣクラスII／ＯＸ−４０リガンド／Ｂ７．１の組合せが、ナイーブＴ細胞を最もよく刺激することが示された（データ未記載）。
【００７５】
しかる後、当該動物から直接取り出したナイーブＴ細胞を、ＰＣＣ抗原と、ＭＨＣクラスII及びＢ７．１を発現する線維芽細胞とで刺激して、エフェクター細胞を生産した。次にこれらのエフェクター細胞を、ＩＬ−２中で５日間増殖させ、洗浄し、そして（１）ＭＨＣクラスII単独、（２）ＭＨＣクラスII及びＢ７．１、又は（３）ＭＨＣクラスII及びＯＸ−４０リガンド、を発現する線維芽細胞と組み合せてＰＣＣ抗原によって再刺激した。この実験を、ＡＰＣ：Ｔ細胞の３つの異なる比率において行い、２回目の刺激の効果を、ＩＬ−２生産量の測定から決定した。図３に示す通り、その結果から、ＭＨＣクラスII及びＯＸ−４０リガンドを発現するＡＰＣによる抗原提示が、エフェクター段階Ｔ細胞を最も強力に刺激したことが示された。従って明らかに、ＯＸ−４０受容体結合は、エフェクターＴ細胞の段階においてより重要であり、このことは、エフェクター段階にあるＣＤ４+ Ｔ細胞の発達においてＯＸ−４０受容体の結合が機能し、そして記憶細胞の発達を促進することを示唆する。このことから、ＯＸ−４０Ｌによる補刺激の効果は、ナイーブ細胞に作用してエフェクター細胞に転移させる以前に記載された補刺激分子による補刺激の効果とは明らかに区別される。
【００７６】
実施例３：ＯＸ−４０受容体結合因子は腫瘍耐性を誘導する
ｉｎ  ｖｉｖｏで腫瘍のプライミング中にＴ細胞にＯＸ−４０受容体結合因子を供与する効果を決定するために、ＯＸ−４０受容体結合因子として、ヒトＩｇＧのＦｃ部分に連結した可溶性ＯＸ−４０Ｌ（ＯＸ−４０Ｌ：ＨｕＦｃＩｇＧ）を用いて実験を行った。
【００７７】
この一連の実験のための接種方法として、１−３×１０5 ＭＣＡ３０３サルコーマ腫瘍細胞（Huntzicker & Fox, 1995) を、０日目にマウスの皮下に接種した。３日後に、その動物の腹腔内にＯＸ−４０Ｌ：ＨｕＦｃＩｇＧを注射し、そして腫瘍接種の７日後に、２回目の投与を行った (投与量は実験に応じて変動した、下記参照）。それから５０日間以上、その動物の腫瘍成長を監視した。腫瘍のサイズが１．９４cm2 （０．３in2 ）になった時点で動物を殺した。
【００７８】
図４は、３日目に確立した腫瘍に対する、腹腔内注射した可溶性ＯＸ−４０リガンドの顕著な効果を示す。６匹の動物に、インビトロで継代培養した３×１０5 ＭＣＡ３０３腫瘍細胞を注射した。腫瘍接種後３日目と７日目に、３匹の動物に、可溶性マウスＯＸ−４０リガンド１００μｇ／５００μｌ  ＲＰＭＩを与え、別の３匹の動物に、５００μｌ  ＲＰＭＩ単独を与えた。接種後５０日間、その動物の腫瘍の徴候を監視した。図４に示す通り、ＯＸ−４０Ｌを与えなかった全ての動物は３８日以内に死亡したが、ＯＸ−４０Ｌを与えた動物では腫瘍がなくなった。
【００７９】
しかる後、腫瘍のプライミング中に可溶性ＯＸ−４０リガンドで処置し、且つ腫瘍攻撃に対して耐性となった動物では、抗ＣＤ８の腹腔内投与により、ＣＤ８+ Ｔ細胞が枯渇した。これらの動物を殺し、脾臓細胞を単離し、その表現型を調べたところ、ＣＤ８+ Ｔ細胞は枯渇していた。その脾臓細胞をナイーブマウスに養子移入し（１脾臓相当数／マウス）、移転後９日目にその受容マウスをＭＣＡ３０３腫瘍で負荷を与えた。等数のＭＣＡ３０３腫瘍細胞をコントロールのナイーブマウスに接種し、そして全ての動物の腫瘍の徴候を、接種後５０日間監視した。図５で示す通り、腫瘍細胞のみを与えた全ての動物は、腫瘍細胞の投与後３１日以内に死亡したが、腫瘍免疫動物から得た脾臓細胞を移入した動物は、健康のままであった。この実験から、腫瘍細胞と共にＯＸ−４０受容体結合因子をマウスに投与した効果により、養子移入後に免疫を付与するために十分な量の腫瘍抗原特異的記憶Ｔ細胞が生産されることが示される。従って、エフェクター／記憶細胞転移において、ＯＸ−４０受容体の結合によりエフェクターＴ細胞を補刺激することが重要であることが明白である。
【００８０】
実施例４：ＯＸ−４０受容体結合因子はｉｎ  ｖｉｖｏで継代された腫瘍細胞に対する耐性を付与する
実施例３に記載された、ＯＸ−４０Ｌ投与により付与された防御性は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏで継代培養された腫瘍細胞に対して示された。ｉｎ  ｖｉｖｏで継代された腫瘍細胞は、有意により高い腫瘍性を有するので、ＯＸ−４０Ｌがｉｎ  ｖｉｖｏで継代された細胞に対して防御性を付与することができるかどうかを調べた。１０匹の動物に、ｉｎ  ｖｉｖｏで継代された１×１０5 ＭＣＡ３０３細胞を皮下注射した。腫瘍接種後３日目と７日目に、５匹の動物に、１００μｇの可溶性ＯＸ−４０リガンドを腹腔内注射し、別の５匹の動物に同量のＲＰＭＩを注射した。腫瘍接種後８０日間、その動物の腫瘍の徴候を追跡した。図６で示す通り、その結果から、ＯＸ−４０Ｌの投与は、高腫瘍性のｉｎ  ｖｉｖｏで継代された腫瘍細胞に対してさえも、増加した防御性を付与することが示される。
【００８１】
異なる投与量のＯＸ−４０Ｌを用いて、ｉｎ  ｖｉｖｏで継代された腫瘍細胞に対する防御性を、ＯＸ−４０Ｌが付与できるかどうかも調べた。２０匹の動物に、１×１０5 個のｉｎ  ｖｉｖｏで継代されたＭＣＡ３０３腫瘍細胞を皮下注射した。その動物を５群に分け、腫瘍接種後３日目と７日目に、種々の量の可溶性ＯＸ−４０リガンドを腹腔内注射した。コントロ−ル群にはＲＰＭＩを与え、一方投与量の変更として、２５，５０，１００及び２５０μｇのＯＸ−４０Ｌの注射を行った。腫瘍接種後６０日間、その動物の腫瘍の徴候を追跡した。図７で示す通り、その結果から、ＯＸ−４０Ｌを与えた動物に現れる腫瘍耐性の増加は、ＯＸ−４０Ｌの投与量に依存すること、そして悪性のｉｎ  ｖｉｔｒｏで継代された腫瘍細胞に対してさえ、より多い投与量のＯＸ−４０受容体結合因子により、５０％生存が達成され得る。
【００８２】
実施例５：腫瘍ワクチンの成分としてのＯＸ−４０受容体結合因子
この実施例で、腫瘍ワクチン中でのＯＸ−４０受容体結合因子の効能を証明する。ＭＨＣクラスII又はＯＸ−４０リガンドを発現しないＢ１６−メラノーママウス細胞株Ｆ１０に、ＯＸ−４０リガンド及びＣIIＴＡのｃＤＮＡをトランスフェクション（リポフェクチンによる）した。ＣIIＴＡのｃＤＮＡは、ＭＨＣクラスIIプロモーターに結合し、そして内因性ＭＨＣクラスII遺伝子の合成及び細胞表層での発現を促進するタンパク質をコードする。これらの２つの遺伝子を、親株Ｆ１０に共トランスフェクションし、そして３つの変種を単離した：１）ＭＨＣクラスII+ 、２）ＯＸ−４０リガンド+ 、及び３）ＭＨＣクラスII+ 且つＯＸ−４０リガンド+ 。これらの変種及び親株に、５００ラドの放射線を照射し、そしてそれを（２×１０6 細胞／注射）、ナイーブ動物に皮下注射し、さらに１４日後にこのワクチン接種を繰り返した。免疫化された動物に、負荷のために、Ｆ１０親細胞株（５×１０5 ／動物）を皮下注射した。
【００８３】
図８は、ナイーブ動物に、放射線照射した親Ｆ１０腫瘍、ヒグロマイシン耐性のＦ１０腫瘍、ＭＨＣクラスIIのみを発現したＦ１０、又は、ＭＨＣクラスII及びＯＸ−４０リガンドを発現したＦ１０を注射した実験の結果を示す。２週間後に、それらの動物を、生きた親Ｆ１０腫瘍で負荷し、そして８４日間、その動物の腫瘍の徴候を追跡した。図８に示す通り、初期免疫接種しなかった動物は、Ｆ１０腫瘍細胞によって急速に死亡したが、放射線照射したＦ１０腫瘍による初期免疫接種により、ある程度の防御性が付与された。放射線照射したＭＨＣクラスIIを発現したＦ１０細胞により動物を免疫化した場合、より大きな防御が認められ、ＭＨＣクラスII及びＯＸ−４０Ｌの両方を発現したＦ１０細胞により免疫化した場合に、最大の防御が観察された。ＭＨＣクラスIIを発現しないＦ１０細胞では、Ｔ細胞受容体との相互作用能が大きく損われるだろうから、この様な結果は予想された。多くの腫瘍細胞ではＭＨＣクラスIIの発現がダウンレギュレーションされるか、又は完全に失なわれる。従って、臨床上の適用では、患者から取り出した腫瘍細胞を、ＭＨＣクラスII及びＯＸ−４０受容体結合因子をコードする核酸分子によって形質転換してから、その細胞を患者に戻すことが有益であろう。
【００８４】
実施例６−９
以下の実施例では、エフェクターＴ細胞に補刺激シグナルを伝えるために、ＯＸ−４０受容体 (ＯＸ−４０Ｒ）に、ＯＸ−４０リガンド (ＯＸ−４０Ｌ) 又は抗体アゴニストを結合させた。これは、腫瘍特異的Ｔ細胞の応答を促進するために行われた。ｉｎ  ｖｉｖｏで腫瘍のプライミング中にＯＸ−４０Ｌ：Ｉｇ又は抗ＯＸ−４０Ｒを注射することにより、４つの別個の組織に由来する４つの異なる腫瘍において、ある割合で（２０−５５％）腫瘍が消失した生存個体が生じた。抗ＯＸ−４０Ｒの効果は用量依存的であり、そして腫瘍特異的Ｔ細胞の記憶を強化した。これらの実施例のデータから、ｉｎ  ｖｉｖｏにおいてＯＸ−４０Ｒの結合は、宿主の天然種の腫瘍特異的Ｔ細胞を刺激／増殖することによって、腫瘍特異的なプライミングを増加させることが示されるであろう。ｉｎ  ｖｉｖｏにおいてヒト腫瘍細胞周辺に集塊形成したＯＸ−４０+ Ｔ細胞の出現は、腫瘍反応性Ｔ細胞を増殖させ、よってガン患者における腫瘍の免疫治療を促進するための実用的なアプローチであることも示されるであろう。
【００８５】
実施例６：ヒト乳ガンにおけるＯＸ−４０Ｒの発現
ＯＸ−４０Ｒ+ Ｔ細胞と腫瘍細胞との空間的関係を決定するために、免疫組織化学により、いくつかのヒト乳ガンの生検試料を調べた。原発性腫瘍及び腫瘍により侵襲されたリンパ節の両方において、ＣＤ４+ 及びＯＸ−４０Ｒ+ 細胞を分析した。図９は、浸潤性の延性乳房カルシノーマを有する別個の２人の患者からの典型的な試料を示す。パネルＡは、１°腫瘍内での腫瘍に浸潤したリンパ球を図示し、一方パネルＢは、腫瘍により侵襲されたリンパ節を図示する。パネルＡは、ＣＤ４+ 細胞が、手術標本の外縁の周りで腫瘍に浸潤していることを示す。ＯＸ−４０Ｒ+ 細胞を（より高倍率で）視覚観察したところ、それは、腫瘍細胞の極近傍にある侵襲したリンパ球の一群であった。ＯＸ−４０Ｒ+ 細胞の多数は明らかにより大きく（芽球）、いくつかは有紛裂しているリンパ球の外観を示す。パネルＢは、その構造の半分以上が腫瘍により侵襲されたリンパ節を図示する。侵襲した腫瘍の周りに多数のＣＤ４+ 細胞が存在する。侵襲した腫瘍に隣接する領域に、ＯＸ−４０Ｒ+ 細胞が集積していた。また、腫瘍が侵襲していない領域にもＯＸ−４０Ｒ+ 細胞が認められたが、腫瘍の浸潤部位の最も近傍での割合が最も高かった。これらの組織切片内のＯＸ−４０Ｒ+ 細胞が、腫瘍特異的Ｔ細胞である可能性が最も高いと考えられる。
【００８６】
実施例７：ｉｎ  ｖｉｖｏでの腫瘍プライミング（サルコーマ）中のＯＸ−４０Ｒ結合
理論に束縛されることを望まない場合、腫瘍部位又は排出性リンパ節でのＯＸ−４０Ｒ+ 細胞が、ｉｎ  ｖｉｖｏで腫瘍特異的Ｔ細胞である可能性が最も高いと考えられる。ＯＸ−４０Ｒの結合が、強力な補刺激応答を引き起こし、Ｔ細胞の増殖、サイトカイン生産の増加、及びエフェクターＴ細胞の生存促進に至ると考えられる。図１０は、ｉｎ  ｖｉｖｏでの腫瘍プライミング中のＯＸ−４０Ｒの結合が、抗腫瘍特異的応答の増加を誘導するかどうかを調べた検査の結果を示す。図１０では、致死的移植物であるＭＣＡ３０３（メチル−コラントレン誘導サルコーマ）を皮下注射し、その３日後及び７日後に、ｍＯＸ−４０Ｌ：Ｉｇ，ＯＲ３：１ｇ、又は塩水で処理したマウスを示す。ＤＲ３：Ｉｇで処理したマウスは、塩水を与えたマウスと同様のキネテックスで腫瘍が成長したので、死亡した。対照的に、ｍＯＸ−４０Ｌ：Ｉｇを与えたマウスでは、全ての腫瘍の成長が遅れ、その内６０％は７０日間以上腫瘍が消失した。ｍＯＸ−４０Ｌ：Ｉｇで防御されたマウスを再度ＭＣＡ３０３の皮下注射で攻撃したところ、そのマウスは腫瘍が消失したままであった。このことは、そのマウスで、腫瘍特異的記憶Ｔ細胞応答が展開したことを示すと考えられる。
【００８７】
次に、ＭＣＡ３０３を注射したマウスに、腫瘍接種後３日目と７日目に、種々の用量のｍＯＸ−４０Ｌ：Ｉｇを与えた。２５又は５０μｇのｍＯＸ−４０Ｌ：Ｉｇを与えたマウスは、塩水処理したコントロールマウスと同様な時間経過で腫瘍が成長したので、死亡した。１００μｇのｍＯＸ−４０Ｌ：Ｉｇを与えたマウスの５０％で、腫瘍の成長が遅れ、２５０μｇを与えたマウスの１００％で、腫瘍の成長が遅れた。最後には、１００μｇ群の２５％及び２５０μｇ群の５０％で、腫瘍攻撃後７０日間以上腫瘍が消失した。ＭＣＡ３０３腫瘍細胞株は、ｉｎ  ｖｉｖｏで継代した回数が多くなるに連れて、腫瘍性がより高く、そして免疫原性がより低くなることに注意すべきであろう。図１１では、ＭＣＡ３０３腫瘍細胞株は、図１０の場合よりも多い回数継代されたので、ＯＸ−４０Ｌ：Ｉｇ処理は、１００μｇ用量では、少しより小さな程度の効果を示したと考えられる。
【００８８】
図１２は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏで継代されたＭＣＡ３０３を接種してから、ｍＯＸ−４０Ｌ：Ｉｇで処理したマウスの生存経過を示す（ｉｎ  ｖｉｔｒｏで継代したＭＣＡ３０３は、処理が容易である）。マウスに、腫瘍を皮下接種し、そして腫瘍接種後３日目及び６日目に、ｍＯＸ−４０Ｌ：Ｉｇを注射した。パネル４Ａは、ｍＯＸ−４０Ｌ：Ｉｇで処理した全てのマウスが、最初の腫瘍攻撃から生存したが、塩水注射した全てのマウスは、腫瘍の負荷のために死亡した。次に、最初の腫瘍攻撃から生存したｍＯＸ−４０Ｌ：Ｉｇ処理マウスを、ＭＣＡ３０３で再度攻撃したところ、全てのマウスが、５３日間、２回目の攻撃から免れた（データ未表示）。次に、これらの同一マウスにＭＣＡ３０３を皮下接種し、１０日後に、抗Ｌｙｔ−２を腹腔内注射することによりＣＤ８細胞を除いた。３日後に、これらのマウスを殺し、その脾臓内にＣＤ８細胞がないことが示された。そしてこれらの脾臓細胞１．４５×１０7 個を、ナイーブマウスに移入した。１５日後に、そのマウスをＭＣＡ３０３の皮下注射により攻撃した。図１２Ｂは、ＣＤ８細胞欠失した免疫細胞を与えたマウスは、腫瘍攻撃に耐性であったが、コントロールマウスは、腫瘍の負荷により死亡した。
【００８９】
実施例８：弱免疫原性腫瘍モデル（Ｂ１６／Ｆ１０）におけるＯＸ−４０Ｒ特異的治療
Ｂ１６／Ｂ１６メラノーマ株のＦ１０変種を、放射線照射したワクチンとして皮下注射した場合、それは、防御性の免疫応答を惹起しないことから、免疫原性の弱い腫瘍として評価された。図１３は、腫瘍のプライミング中のＯＸ−４０Ｒの結合が、その攻撃的な腫瘍に対する免疫性を増加させるかどうかを決定するための試験の結果を示す。図１３Ａは、Ｆ１０の接種後３日目及び７日目にｍＯＸ−４０Ｌ：Ｉｇでマウスを処理したことは、コントロールマウスに比べて有効であったことを示す（約２５％が腫瘍攻撃から長期間生存した）。図１３Ｂは、同じ投与量で供給された、ＯＸ４０Ｒに結合する別個の薬剤（モノクローナル抗体ＯＸ−８６）が、ｍＯＸ−４０Ｌ：Ｉｇの場合と同レベルまで腫瘍が欠失した生存数を増加したことを示す。当抗体処理による腫瘍欠失マウスの割合は、ＯＸ−４０Ｌ：Ｉｇによる場合と非常に同等であった。ログランク分析から、両試薬は、統計的有意に腫瘍防御性を付与することが示された（ｐ＝．００７（Ａｂ）及び．０５（ｍＯＸ−４０Ｌ：Ｉｇ）。
【００９０】
実施例９：結腸直腸ガンモデル（ＣＴ２６）における抗腫瘍免疫の増強
同様の方法で、前記通りに皮下注射により、ＣＴ２６腫瘍細胞を有するマウスを処理した（ｍＯＸ−４０Ｌ：Ｉｇ；２回投与様式）。ＨｕＯＸ−４０Ｌ：ＩｇはマウスＯＸ−４０Ｒに結合しないので、それをネガティブコントロールとして用いた。最初の実験では、２回投与により、腫瘍欠失生存を有意に（ｐ＝．０４）増強することができた（データ未表示）。次に、腫瘍接種後複数回注射すること以外は前記と同様の実験を行った（２，７，１４，２１，２７及び４０日目に注射した）。図１４Ａは、複数回の注射は、２回注射よりも、より高い有意性（ｐ＝．０１）で腫瘍欠失した生存に有益であった。次に、ｍＯＸ−４０Ｌ：Ｉｇで処理した中から生存した７匹のマウスを、ＣＴ２６で再度攻撃した。図１４Ｂは、その全てのｍＯＸ−４０Ｌ：Ｉｇマウスが攻撃に耐性を示し、そして腫瘍欠失したままであったが、ナイーブコントロールマウスの全ては、腫瘍攻撃により死亡した。次に、その７匹の腫瘍欠失マウスを、異なる組織に由来する同系の腫瘍（Ｒｅｕｃａ；腎由来）で攻撃して、腫瘍特異的な応答を検査した。ＣＴ２６耐性マウス７匹中６匹が、Ｒｅｕｃａ腫瘍による負荷のために死亡した。このことから、ＣＴ２６耐性マウスは、大腸ガンに伴う腫瘍抗原に特異性を示すことが示されると考えられる。
【００９１】
実施例６−９の要約：腫瘍のプライミング中のＯＸ−４０Ｒの結合
表１に、実施例６−９に示した通り、４つの腫瘍モデルにおいて腫瘍のプライミング中にＯＸ−４０Ｒを結合させた場合のデータを要約した。このデータから、免疫原性がより高い腫瘍ほど、治療に対してより大きく反応することが示唆されるが、それでもなお、免疫原性の貧しいメラノーマモデル（Ｆ１０）においてもある程度の治療結果が認められた。前記の図には、ＳＭ１乳ガン株以外の全ての腫瘍株に関するデータが示されている。ＳＭ１を注射し、その接種後３日目及び７日目にＯＸ−４０Ｌ：Ｉｇを注射したマウスでは、腫瘍欠失した生存個体の増加から示される通り、抗腫瘍活性が増加した。そのＳＭ１のデータをログランク（ｌｏｇ−ｒａｎｋ）統計分析にかけ、それがｐ＝．０１で有意であることが示された。
【００９２】
表１：
例６−９：腫瘍プライミングの際のＯＸ−４０Ｒ結合のまとめ
腫瘍起源      免疫原性      処理          腫瘍なし／注射を施したマウス
ＭＣＡ３０３      中      mOX-40L:Ig              ９／１６
（肉腫）                  食塩水又はDR3:Ig        ０／１６
ＣＴ２６          中      mOX-40L:Ig              ９／２４
（大腸癌）                hOX-40L:Ig              ２／２４
ＳＭ１            弱      mOX-40L:Ig              ７／２８
（乳癌）                  食塩水                  １／２８
Ｂ１６／Ｆ１０    微弱    mOX-40L:Ig              ５／２０
（黒色腫）                食塩水                  ０／２０
抗OX-40R                ５／２５
ラットIg                ０／２５
【００９３】
腫瘍プライミングの際のｉｎ  ｖｉｖｏでのＯＸ−４０Ｒの結合はいくつかの腫瘍モデルにおいて顕著な治療的利点を示すことが信じられる。この効果は用量依存性であり、そしてマウスにおいて持続性腫瘍特異的免疫を構築し、マウスは初期腫瘍負荷から治療した。ＥＡＥにおける炎症損傷内のＯＸ−４０Ｒ+ 細胞が自己抗原に応答するＴ−細胞であることを示すその他のデーターは、ここに記載の実験がＯＸ−４０Ｒ特異的治療による腫瘍−Ａｇ特異的細胞を標的とすることを示唆している。ｉｎ  ｖｉｔｒｏでのＯＸ−４０Ｒの結合はＴ細胞サイトカインの生産、増殖及び生存を高める強力な補刺激現象を及ぼすことが示される。従って、腫瘍プライミングの際のＯＸ−４０Ｒの結合は腫瘍フリー生存に結びつく腫瘍−Ａｇ特異的ＣＤ４+ Ｔ細胞の増殖及び機能を増強するものと信じられている。乳癌生検中の腫瘍細胞に隣接するＯＸ−４０Ｒ+ Ｔ細胞の出現はこれらの発見が似たような治療的効果を有するヒト臨床試験に適用できることを示唆する。
【００９４】
腫瘍プライミングの際のＯＸ−４０Ｒのｉｎ  ｖｉｖｏ結合は４種類の組織タイプから隆起した４種類の固形腫瘍における腫瘍フリーマウスの比率に結びつく。このデーターはＯＸ−４０Ｒベース治療が一般に免疫系を腫瘍免疫に限らず増強できるだけでなく、あらゆるタイプのワクチン（ウィルス、細菌、等）のための免疫アジュバントとしても利用できることを示唆する。ＯＸ−４０Ｒ特異的免疫増強は、ｉｎ  ｖｉｖｏで導入されたＯＸ−４０Ｒに対する抗体が自己免疫疾患を一層悪化し、そして慢性型のＧＶＨＤを急性ＧＶＨＤに転換させてしまいうることを示しながら説明されてきた。
【００９５】
ｈｕＯＸ−４０Ｌ：Ｉｇ融合タンパク質がヒト臨床試験において利用でき、且つヒトＴ−細胞をｉｎ  ｖｉｔｒｏで刺激できる本発明に適用可能なタンパク質の例であると信じられている。抗体及び可溶性ＯＸ−４０Ｌ融合タンパク質はここに記載の腫瘍モデルにおいて似たような効能をもって機能しうるが（図１３、そして他のデータ−は示していない）、この抗体はもしそれが免疫原性が弱く、且つｉｎ  ｖｉｖｏで長い半減期を有するものとなったなら、将来においていくつかの長所を有しうるようになる可能性があるものとなりうる。
【００９６】
抗体、例えば抗−４−１ＢＢ又は抗−ＣＴＬＡ４による腫瘍免疫の増強は、誘導又は阻止されたときに腫瘍特異的免疫を増強するＴ細胞活性化抗原の他の例である。ＯＸ−４０Ｒと同様に、４−１ＢＢレセプターはＴＮＦ−レセプター科の構成員であり、且つ強い補刺激特性を有するＴ細胞活性化抗原として発表されている。４−１ＢＢレセプターはＣＤ８及びＣＤ４Ｔ細胞並びにＮＫ細胞上で発現される。４−１ＢＢレセプター補刺激機能は主にＣＤ８+ Ｔ細胞に対して有効であるようであり、そして腫瘍プライミングの際のこのレセプターの結合は腫瘍特異的ＣＤ８+ Ｔ細胞溶解機能の５０倍の上昇及び増大した腫瘍細胞生存率へと結びつく。ＣＴＬＡ−４タンパク質はＣＤ８及びＣＤ４Ｔ細胞の双方で発現され、そしてそのリガンド（Ｂ７．１又はＢ７．２）と結合すると、Ｔ細胞に対してダウンレギュレーションシグナルを送る。ＣＴＬＡ−４／Ｂ７相互作用を阻害する抗体はＡｇ−特異的Ｔ細胞機能を増強し、そして最終的に腫瘍特異的免疫を増強しうる。ＯＸ−４０Ｒ特異的治療はそれ自体有効であるが、１００％の腫瘍フリーマウスには結びつかず、それ故抗−ＣＴＬＡ４又は抗−４−１ＢＢと本発明に係る抗−ＯＸ−４０Ｒ結合との組合せが、Ａｇ−特異的Ｔ−細胞治療を強化する本発明の好都合な態様を供しうる。他方、腫瘍特異的Ｔ細胞療法は、ＣＤ４及びＣＤ８  Ａｇ−特異的エフェクター／記憶Ｔ細胞応答の双方の増強を担いとして、腫瘍プライミングの際に２種以上のこれらの抗体を組合せてよい。
【００９７】
Ａｇ−特異的プライミングの際のＯＸ−４０Ｒのｉｎ  ｖｉｖｏ結合はＡｇ−特異的ＣＤ４+ Ｔ細胞の数及び寿命を増大させるものと信じられている（データーは示さない）。ほとんどのＴ−細胞はエフェクターＴ細胞段階においてＡｇと遭遇してから活性化誘導細胞死（ＡＩＣＤ）に対して感受性となりはじめ、そしてそのわずかしか記憶Ｔ−細胞とならなかった。腫瘍プライミングの際のＯＸ−４０Ｒへの結合は腫瘍反応性ＣＤ４+ Ｔ細胞を標的とし、そしてそれらをＡＩＣＤから助ける。Ａｇ−特異的細胞の数の増大はマウスを腫瘍フリーにし続け、そして第二腫瘍負荷に対して戦うようにする。図１１ＢはＯＸ−４０Ｒ処理腫瘍免疫マウスがＣＤ８枯渇脾臓細胞の養子移入を介して抗腫瘍免疫を授けうることを示す。このデーターは腫瘍−Ａｇ特異的記憶ＣＤ４+ Ｔ細胞の増加及び／又は増強があり、そしてそれらが養子防御力を移入できることを示唆する。ＣＤ４+ Ｔ細胞は腫瘍と相互作用する最終エフェクター細胞ではないことがあり、なぜなら４つのモデル全てにおいて、腫瘍細胞はＭＨＣクラスIIを発現できないからである。にもかかわらず、腫瘍Ａｇ−特異的ＣＤ４+ Ｔ細胞による増強したサイトカイン生産は、その後腫瘍と直接相互作用して腫瘍を破壊するようになるＣＤ８+ Ｔ細胞、ＮＫ細胞及びマクロファージの活性化を助けることにより有効でありうる。
【００９８】
ＯＸ−４０Ｒは癌及び自己免疫疾患における炎症部位から単離されたＣＤ４+ Ｔ細胞上でのみ発現し、そしてかなり迅速に代謝回転するものと信じられている（２４〜４８hr以内）。しかしながら、ＣＤ４及びＣＤ８Ｔ細胞の双方はｉｎ  ｖｉｔｒｏでＣｏｎＡ又はＰＨＡで刺激されるＯＸ−４０Ｒを発現できることが示された。Ｔ細胞上でＯＸ−４０Ｒ発現をアップレギュレーションする唯一の方法はＴＣＲ結合を介するものであると認められる。高度な炎症状況、例えば超Ａｇ刺激でさえも、Ａｇ非特異的細胞上でのＯＸ−４０Ｒの間接的（ｂｙｓｔａｎｄｅｒ）なアップレギュレーションはないものと認められる。超抗原ＳＥＡの注射されたマウスでは、ＯＸ−４０Ｒはこの超Ａｇの標的ＴＣＲであるＶベーター３／ＣＤ４+ Ｔ細胞上でのみ発現される。従って、ｉｎ  ｖｉｖｏでの腫瘍プライミングの際のＯＸ−４０Ｒへの結合はＡｇ活性化されたばかりのＴ細胞を標的とする。
【００９９】
超Ａｇ刺激及びＥＡＥの臨床徴候に関する炎症はＴｈ１サイトカインの生産に関与することが示された。Ｔｈ１系へのＯＸ−４０Ｒの結合はＩＬ−２の転写及び翻訳のアップレギュレーションによりＴ−細胞増殖を増強でき、そしてエフェクターＴ−細胞はナイーブＴ−細胞よりもＯＸ−４０Ｒ特異的補刺激に対して一層感受性であると認められた。分化してＴｈ１又はＴｈ２サイトカインのいずれかを産生するに至ったエフェクターＴ−細胞は共にＯＸ−４０Ｒ−特異的補刺激に対して感受性である。Ｔｈ２エフェクター細胞に対するＯＸ−４０Ｒの結合はＩＬ−４及びＩＬ−５の翻訳及び分泌を増大させ、そしてその増殖を増強する。２つの報告は最近ＯＸ−４０Ｒの結合が細胞をＴｈ２表現型に局在化させうることを示した。我々のデーターはＴ細胞局在化が、分化の際のＴ−細胞の周囲環境に依存し、そしてＯＸ−４０Ｒの結合がＴｈ１又はＴｈ２応答の双方を強化することを示唆した。抗−腫瘍Ｔｈ２免疫応答は腫瘍の撲滅には結びつかないが、Ｉ型応答は結びつく。従って、腫瘍プライミング（ＩＬ−１２，ＩＦＮ−ガンマー及び／又は抗−ＩＬ−４による）の際にＴｈ１応答を増強することが、ｉｎ  ｖｉｖｏでＯＸ−４０Ｒと結合する試薬を投与したときに最適な抗腫瘍免疫応答を得るために好都合であると期待される。
【０１００】
ＯＸ−４０Ｌは活性化された抗原提示細胞、例えばＢ細胞、樹状細胞、内皮細胞及びマクロファージ上でのみ発現される。ＯＸ−４０Ｌのｉｎ  ｖｉｖｏ発現は高度な炎症状況、例えばＭＭＴＶ（排出性ＬＮ）によるマウスの感染症又は炎症器官（脳）から単離されたマクロファージ上にＥＡＥを有するマウスにおいて起こると認められる。正常な一次Ｔ−細胞応答、例えばＣＦＡにおけるＡｇによる免疫でさえも、ＯＸ−４０Ｌ発現は脾臓マクロファージ上でかなり低かった。ＯＸ−４０ＲはＴ−細胞がＴＣＲを通じて誘導されると常に発現され、従って有能なＯＸ−４０Ｒ補刺激効果はＡＰＣに対するＯＸ−４０Ｌのアクセス不能さにより調節されうる。免疫系は発展して免疫応答を構築し、外来物質を迅速に浄化し、次いでそれ自身容易にダウンレギュレーションする。ＯＸ−４０Ｌ媒介補刺激はエフェクターＴ細胞段階でかなり強いため、それは多大な侵入が起こり、持続炎症に至ったときにのみ必要でありうる。アグレッシブな腫瘍は免疫抑制メカニズムを介して免疫応答をダウンレギュレーションし、従って腫瘍部位付近のＡＰＣはおそらくはＯＸ−４０Ｌを発現しないであろう。腫瘍特異的免疫応答は上記の実験において、ｉｎ  ｖｉｖｏでＯＸ−４０Ｒに結合するシグナルを添加することで増強し、それ故腫瘍負荷マウスの大部分が腫瘍フリーであり続けることができるものと信じられている。
【０１０１】
まとめると、上記の例６〜９において、腫瘍プライミングの際のＯＸ−４０Ｒの結合は、コントロール処置マウスと比べ、腫瘍の出現を遅らせ、且つ阻止するのに有効であると信じられる。ＯＸ−４０Ｒ効果は用量依存性であり、そして様々な免疫原性及び非免疫原性腫瘍モデルにおいて観察された。ＯＸ−４０Ｒ発現は様々なヒト癌（黒色腫、頭及び首、並びに乳癌（図９参照））の腫瘍部位に局在したＴ細胞上で認められた。ＯＸ−４０Ｒ+ Ｔ−細胞と１°腫瘍及びリンパ節に侵入した腫瘍の双方における乳癌細胞との物理的な関係の検討は、ＯＸ−４０Ｒ+ Ｔ−細胞が腫瘍を囲む領域において濃厚であることを示唆し、そしてそれらは腫瘍特異的Ｔ−細胞であると信じられている。マウス腫瘍モデルにおけるＯＸ−４０Ｒ治療データーと腫瘍担持患者におけるＯＸ−４０Ｒ+ の出現との組合せは、免疫腫瘍反応性が、癌を有する患者のＯＸ−４０Ｒと結合するようにデザインされた試薬により増強されることを示唆するものと信じられる。このデータ−は特に例えばＡｇ−特異的プライミングの際のＯＸ−４０Ｒの結合が多種多様ワクチン製剤の有用なアジュバントでありうることを示唆するものと信じる。
【０１０２】
以上は本発明の限定でない例示であり、本発明の請求の範囲を逸脱することなく様々に改良、変更されることが当業者に明らかである。
【０１０３】
【表１】
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【図面の簡単な説明】
【図１】  免疫系ＣＤ４Ｔ−細胞活性化及び応答の提唱のメカニズムの模式図。
【図２】  ｉｎ  ｖｉｔｒｏでのＴ−細胞増殖に対するＯＸ−４０レセプターの結合の効果を示すグラフ。
【図３】  ＭＨＣクラスIIのみ、ＭＨＣクラスII＋Ｂ７．１又はＭＨＣクラスII＋ＯＸ−４０リガンドのいずれかを発現するＡＰＣで再刺激したＴ−細胞により生産されるＩＬ−２のレベルの対比を示すグラフ。
【図４】  腫瘍細胞の接種されたマウスに対するＯＸ−４０レセプター結合因子の投与の保護効果を示すグラフ。
【図５】  ＯＸ−４０レセプター結合因子及び腫瘍細胞の接種されたマウスからの脾臓細胞の、腫瘍細胞によりその後負荷されたナイーブマウスへの養子移入の保護効果を示すグラフ。
【図６】  ｉｎ  ｖｉｖｏ継代した腫瘍細胞の接種されたマウスへのＯＸ−４０レセプター結合因子の投与の保護効果を示すグラフ。
【図７】  ｉｎ  ｖｉｖｏ継代された腫瘍細胞に対するＯＸ−４０レセプター結合因子の保護効果が投与するＯＸ−４０レセプター結合因子の用量に依存することを示すグラフ。
【図８】  ＯＸ−４０レセプター結合因子及びＭＨＣクラスIIを発現する照射腫瘍マウスによるマウスの種痘の保護効果を示すグラフ。
【図９】  本明細書に記載の方法による乳癌の処置に関連する。リンパ球及びＯＸ−４０Ｒ+ 細胞の局在化を示す染色による２人の患者の由来のかかる癌生検の顕微鏡写真。
【図１０】  例６〜９の実験における動物の生存率を示すグラフ。
【図１１】  例６〜９の実験における動物の生存率を示すグラフ。
【図１２】  例６〜９の実験における動物の生存率を示すグラフ。
【図１３】  例６〜９の実験における動物の生存率を示すグラフ。
【図１４】  例６〜９の実験における動物の生存率を示すグラフ。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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