(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
耳下腺唾液を検査用検体として、耳下腺唾液中の脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターを分析することを特徴とする、生体内の脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターを検査する方法。
【請求項２】
耳下腺唾液を検査用検体として、耳下腺唾液中の脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターを分析することを特徴とする、摂取された健康補助食品、薬剤または食物に含まれる脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターの生体内移行を検査する方法。
【請求項３】
検査が、健康補助食品、薬剤もしくは食物を摂取前の被験者の耳下腺唾液中の脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターの濃度を基準あるいは健康補助食品、薬剤もしくは食物を摂取していない対照者群の耳下腺唾液中の脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクタ−の濃度の平均値を基準として行なわれることを特徴とする、請求項２に記載の方法。
【請求項４】
耳下腺唾液を検査用検体として、耳下腺唾液中の脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターを指標として分析することを特徴とする、投与された治療薬剤の脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターの生体内合成もしくは代謝に対する効果または作用を検査する方法。
【請求項５】
検査が、治療薬剤を投与前の被験者の耳下腺唾液中の脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターの濃度を基準あるいは治療薬剤を投与していない対照者群の耳下腺唾液中の脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクタ−の濃度の平均値を基準とすることを特徴とする、請求項４に記載の方法。
【請求項６】
請求項２または３に記載の方法を用いる、脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターを含む健康補助食品、薬剤もしくは食物の摂取または摂取量の適否を判定する方法。
【請求項７】
請求項４または５に記載の方法を用いる、脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターの生体内合成もしくは代謝に対する効果または作用を有する治療薬剤の投与または投与量の適否を判定する方法。
【請求項８】
耳下腺唾液が、耳下腺唾液を選択的かつ定量的に採取する耳下腺唾液採取具で採取されたものである、請求項１〜７のいづれか一に記載の方法。
【請求項９】
唾液採取具が、（ａ）耳下腺唾液を不可逆的に吸収する吸収体からなる採取部と、（ｂ）吸収体に採取された耳下腺唾液の量を定量する定量部、を有することを特徴とする、請求項８に記載の方法。
【請求項１０】
耳下腺唾液採取具が、さらに耳下腺唾液の保存料溶液を含み耳下腺唾液を吸収した吸収体を該溶液に浸漬して保存する保管容器部を有することを特徴とする、請求項９に記載の方法。
【請求項１１】
耳下腺唾液の保存料溶液が、水溶性の有機溶媒であることを特徴とする、請求項１０に記載の方法。
【請求項１２】
検査が、
（ａ）採取された耳下腺唾液、該耳下腺唾液を吸収した吸収体及び／又は該吸収体を保存した保存料溶液を、水溶性の有機溶媒、炭化水素系の有機溶媒、またはイソプロパノールと酢酸エチルの混合液、で抽出する工程、
（ｂ）抽出液を分析試料とし、高速液体クロマトグラフィーにより脂溶性ビタミン及び／ 又は脂溶性フードファクターを分離する工程、
（ｃ）分離した脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターを検出する工程、を含むことを特徴とする、請求項１〜１１のいずれか一に記載の方法。
【請求項１３】
脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターが、ＣｏＱ１０、リコペン、β−カロテンおよびトコフェロールからなる群から選ばれる少なくとも一つの物質である、請求項１〜１２のいずれかに記載の方法。
【請求項１４】
請求項１〜１３のいずれかに記載の方法を使用する薬剤または健康補助食品のスクリーニング方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
この発明は、唾液分析による脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターの検査方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
ダイエタリー・サプリメント（Dietary Supplement）は、「健康補助食品」とか「栄養補助食品」と訳され、主に、ビタミンやミネラル、アミノ酸など、日ごろ不足がちな栄養成分を補助する目的で摂取される（以下、「サプリメント」、「健康補助食品」または「栄養補助食品」と称することがある）。米国にはサプリメントについての法律があり、サプリメントを食品とも医薬品とも異なる新しいジャンルとして位置づけ、病気の発症リスクを下げる働きなどについての健康強調表示（Health Claim）を許可し、使用されている。
通常、生体投与された物質の生体内移行の分析は、血中内含有量あるいは尿内含有量などの分析によっておこなわれるが、医療機関等の特定の施設による検体採取が必須であり、栄養補助食品等に含まれる栄養成分の生体内移行の分析を被験者の都合に合わせて実施することは困難であった。
また、唾液も検体の一つになりうるが、健康補助食品の摂取における、健康補助食品に含まれる栄養成分の生体内移行の分析方法の検体としては不適であった。これは、検体採取の方法が確立しておらず、反復性ある数値の取得が困難なことも理由の一つであった。
健康補助食品に含まれる栄養成分の一つであるユビデカレノン（ＣｏＱ１０）は、ミトコンドリアに常在し、電子伝達系で還元型のユビデカレノールから酸化型のユビデカレノン（ＣｏＱ１０）への酸化によりＡＤＰをＡＴＰへ変換させるエネルギー生産に関わる補酵素である。その体内での主な存在部位は血中ではなく組織であり、細胞膜および細胞内器官のリン脂質二重膜に還元型としてＣｏＱ１０の約９割が存在する。ＣｏＱ１０はヒトの体内でコレステロール合成経路と共通の酵素反応を経て合成できるためビタミンではないが、スタチン系薬剤投与患者では合成が阻害されると言われている（Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ．ＵSＡ、  １９９０  Ｎｏｖ；８７：  ８９３１-４、Ｌｏｖａｓｔａｔｉｎ  ｄｅｃｒｅａｓｅｓ  ｃｏｅｎｚｙｍｅ Ｑ  ｌｅｖｅｌｓ  ｉｎ  ｈｕｍａｎｓ、Ｆｏｌｋｅｒｓ Ｋ、Ｌａｎｇｓｊｏｅｎ  P、Ｗｉｌｌｉｓ  Ｒ．  Ｒｉｃｈａｒｄｓｏｎ  P、Ｘｉａ  LJ、Ye  CQ, Ｔａｍａｇａｗａ  H．）。脂溶性の高いスタチン系薬剤ほどこの合成阻害の程度が強いと言われ、ＣｏＱ１０の摂取がこれによる副作用回避に有用と考えられておりすでに米国では併用投与による治験が行われている。
健康補助食品に含まれる栄養成分の一つであるトコフェロール（ビタミンE）は、脂質のラジカルによる酸化防御物質の主役であり、トコフェロールラジカル同士の衝突によりラジカルは消去される。存在量の多いトコフェロールではラジカル同士の衝突確率が低く、かえってラジカルの残存時間を長引かせてしまう。しかし体内では還元型ＣｏＱ１０がトコフェロールラジカルのラジカル消去に強く関係すると考えられている。
一方、先進国では動脈硬化に起因すると考えられる心筋梗塞や脳梗塞による死亡率上昇と、生活習慣に起因すると考えられる糖尿病患者が増加しており、国内では糖尿病が新たな血液透析患者となる病因の第一位となっている。
これらいわゆる生活習慣病では、食生活の影響を強く受け、体内酸化ストレスの増加が発症に強くかかわっていると考えられており、栄養補助食品として抗酸化ストレス物質の積極的摂取が推奨されている。しかし、いわゆる非病者では病院で治療をうけるほどではないため、医師による健康管理を受ける機会を逃し、病態を進展させてから受診する悪循環が、患者増加の一因となっていると考えられる。
これまで唾液および唾液分泌にかかわる唾液分泌腺におけるトコフェロール等の脂溶性ビタミンあるいはＣｏＱ１０やリコペン等の脂溶性フードファクターの濃度および含量に関する報告は無かった。これは、人体内で合成不可能なビタミンおよび食事により摂取可能ないわゆるサプリメントの唾液中の濃度測定値は、口腔内に残留する飲食物の量および種類の影響とともに、存在する多様な細菌や真菌由来物の影響、さらには歯表面のプラーク菌叢の影響も受けると容易に想定されるためと考えられる。
なお、脂溶性の一つのビタミンAのプロビタミンであるβ−カロテンについては、血清と全唾液中濃度の間に正相関を示すことが知られていたが（例えば、非特許文献１、２参照）、非特許文献１の報告者らの目的は、「摂取したβ-カロテンが唾液腺でのグリコプロテインやリゾチーム等の抗細菌タンパク質の生産分泌を増強し、口腔衛生維持に役立つとの想定を確認検証すること」であり、β-カロテンの生体移行の程度の判定ではない。非特許文献１の報告者は、耳下腺唾液中のβ−カロテンを検出されなかったと報告している。したがって、唾液は、耳下腺唾液であってもβ-カロテンを検出することが可能であり、脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターを分析して、これらの検査に適した生体試料であることを新たに提示する意義は大きい。さらに、唾液中の脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターを分析して、これらを検査する方法を提供することは大きな意義がある。
【非特許文献１】Ｉｎｔ． Ｊ． Ｖｉｔａｍ． Ｎｕｔｒ． Ｒｅｓ．  １９８８;５８(２): １７１-７      Saliva  ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｓ  ｏｆ  ｓｏｍｅ  ｓｅｌｅｃｔｅｄ  ｐｒｏｔｅｉｎｓ  ａｎｄ  ｇｌｙｃｏｐｒｏｔｅｉｎ  ｍａｒｋｅｒｓ  ｉｎ  ｍａｎ  after  ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔａｒｙ  ｉｎｔａｋｅ  ｏｆ  ｂｅｔａ−ｃａｒｏｔｅｎｅ．  Lumikari M． Johansson I．、 Ericson T．、Virtamo J．
【非特許文献２】Ｎｕｔｒ．  Ｃａｎｃｅｒ １９８８; １１(４): ２３３-４１ Ｅｆｆｅｃｔｓ  ｏｆ  ｅｘｃｅｓｓ  ｖｉｔａｍｉｎ  Ａ  ａｎｄ  ｃａｎｔｈａｘａｎｔｈｉｎ  Ｏｎ  ｓａｌｉｖａｒｙ  ｇｌａｎｄ  ｔｕｍｏｒｓ.  Ａｌａｍ  ＢＳ、  Ａｌａｍ  ＳＱ、  Ｗｅｉｒ  ＪＣ  Ｊｒ．
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００３】
本発明の課題は、健康補助食品、薬剤または食物（以下、「健康補助食品等」と称することがある）の摂取における、健康補助食品等に含まれる栄養成分である脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターの生体内移行を検査する簡易な手段を提供することである。
【課題を解決するための手段】
【０００４】
上記課題を解決するために本発明者らは鋭意研究を重ねた結果、健康補助食品等の摂取における健康補助食品等に含まれる栄養成分である脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターの生体内移行を検査するために、唾液を検体として利用出来ることを見出した。唾液中の分析対象物の濃度レベルが血中の約１/１０程度でも、確実に判定できることを見出した。特に、本発明者らは、全唾液中だけでなく、検出不能であった耳下腺唾液中にβ−カロテンだけでなくリコペン、トコフェロールおよびＣｏＱ１０を検出し分析可能であることを見出した。また、全唾液中ＣｏＱ１０等の濃度よりも耳下腺唾液の方が血中濃度とよりよい正相関を示すことを見出し、耳下腺唾液採取方法を鋭意検討改良した。さらに本発明者らは、唾液採取に吸収体を用いると、吸収体の素材によらず唾液中の脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターは吸着してしまうため、一定容量の唾液と接触するように採取具を工夫し、採取具に吸着した脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターを良好に回収できる抽出溶媒を用いることにより唾液中濃度を正確に分析できることを見出した。本発明はこれらの知見に基づいて完成されたものである。【０００５】
すなわち本発明は、以下からなる。
１．唾液中の脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターを分析することを特徴とする、生体内の脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターを検査する方法。
２．唾液中の脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターを分析することを特徴とする、摂取された健康補助食品、薬剤または食物に含まれる脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターの生体内移行を検査する方法。
３．検査が、健康補助食品、薬剤もしくは食物を摂取前の被験者の唾液中の脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターの濃度を基準あるいは健康補助食品、薬剤もしくは食物を摂取していない対照者群の唾液中の脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクタ−の濃度の平均値を基準として行なわれることを特徴とする、前項２に記載の方法。
４．唾液中の脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターを指標として分析することを特徴とする、投与された治療薬剤の脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターの生体内合成もしくは代謝に対する効果または作用を検査する方法。
５．検査が、治療薬剤を投与前の被験者の唾液中の脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターの濃度を基準あるいは治療薬剤を投与していない対照者群の唾液中の脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクタ−の濃度の平均値を基準とすることを特徴とする、前項４に記載の方法。
６．前項２または３に記載の方法を用いる、脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターを含む健康補助食品、薬剤もしくは食物の摂取または摂取量の適否を判定する方法。
７．前項４または５に記載の方法を用いる、脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターの生体内合成もしくは代謝に対する効果または作用を有する治療薬剤の投与または投与量の適否を判定する方法。
８．唾液が、耳下腺唾液である、前項１〜７のいずれかに記載の方法。
９．耳下腺唾液が、耳下腺唾液を選択的かつ定量的に採取する唾液採取具で採取されたものである、前項８に記載の方法。
１０．唾液採取具が、（ａ）唾液を不可逆的に吸収する吸収体からなる採取部と、（ｂ）吸収体に採取された唾液の量を定量する定量部、を有することを特徴とする、前項９に記載の方法。
１１．唾液採取具が、さらに唾液の保存料溶液を含み唾液を吸収した吸収体を該溶液に浸漬して保存する保管容器部を有することを特徴とする、前項１０に記載の方法。
１２．唾液の保存料溶液が、水溶性の有機溶媒であることを特徴とする、前項１１に記載の方法。
１３．検査が、
（ａ）採取された唾液、該唾液を吸収した吸収体及び／又は該吸収体を保存した保存料溶液を、水溶性の有機溶媒、炭化水素系の有機溶媒、またはイソプロパノールと酢酸エチルの混合液、で抽出する工程、
（ｂ）抽出液を分析試料とし、高速液体クロマトグラフィーにより脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターを分離する工程、
（ｃ）分離した脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターを検出する工程、
を含むことを特徴とする、前項１〜１２のいずれかに記載の方法。
１４．脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターが、ＣｏＱ１０、リコペン、β−カロテンおよびトコフェロールからなる群から選ばれる少なくとも一つの物質である、前項１〜１３のいずれかに記載の方法。
１５．前項１〜１４のいずれかに記載の方法を使用する薬剤または健康補助食品のスクリーニング方法。
【発明の効果】
【０００６】
本発明で提供された方法は、唾液からトコフェロ−ルやβ−カロテン等の脂溶性ビタミン及び／またはリコペンやＣｏＱ１０等の脂溶性フードファクターの分析を可能とし、健康補助食品等の摂取において、健康補助食品等に含まれる栄養成分であるこれらの脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターの生体内移行を簡易に検査可能とする。すなわち、本発明の方法によると、健康補助食品もしくは薬剤の摂取量に応じて、唾液中の目的とする脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターの増加を確認できた。これにより、食事等の栄養価評価、健康補助食品もしくは薬剤の摂取による脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターの生体内移行度の程度の判定が唾液によって非侵襲的に可能となり、また、投与された治療薬剤の脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターの生体内合成もしくは代謝に対する効果または作用の判定が唾液によって非侵襲的に可能となり、本発明は、薬剤もしくは健康補助食品開発等に利用可能である。さらに、本発明の方法により、脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターを含む健康補助食品、薬剤もしくは食物の摂取の適否や、脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターの生体内合成もしくは代謝に対する効果または作用を有する治療薬剤の投与の適否の判定が非侵襲的に可能となる。
【図面の簡単な説明】
【０００７】
【図１】試料注入より濃縮時までの分離システム構成機器、移動相およびカラムの相互接続関係を示す。
【図２】濃縮カラムからの溶出時より分離精製時までの分離システム構成機器、移動相およびカラムの相互接続関係を示す。
【図３】サプリメント摂取者（唾液Ａ）、非摂取者（唾液Ｂ）およびトマトジュースの日常的愛飲者（唾液Ｃ）の試料のクロマトグラムを示す。
【図４】図３の拡大によりリコペンおよびβ−カロテンのピークを拡大図として示す。
【図５】血漿と耳下腺唾液中のＣｏＱ１０測定値間の相関性を示す。
【図６】血漿と直接採取唾液中のＣｏＱ１０測定値間の相関性を示す。
【図７】ＣｏＱ１０含有サプリメント摂取状況による耳下腺唾液中ＣｏＱ１０値の推移を示す。
【図８】トコフェロール含有サプリメント摂取前、摂取中および摂取中止時における耳下腺唾液中トコフェロール値の推移を示す。
【図９】リコペンおよびβ‐カロテン含有野菜ジュース摂取前、摂取中および摂取中止時における耳下腺唾液中リコペン値の推移を示す。
【図１０】リコペンおよびβ‐カロテン含有野菜ジュース摂取前、摂取中および摂取中止時における耳下腺唾液中β‐カロテン値の推移を示す。
【図１１】不良な過塩素酸塩を用いて調製した移動相への有機酸類添加によるＣｏＱ10標準品溶液のクロマトグラム改善効果を示す。
【発明を実施するための最良の形態】
【０００８】
以下に記載する詳細な説明は、本発明の実施態様の一例（代表例）であり、これらの内容に特定はされない。
本発明の本質は、唾液という非侵襲的に採取可能な検体が、健康補助食品等の摂取において、健康補助食品等に含まれる脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターの生体内移行を検査するために有用であるということを見出したことにある。なお、本発明では、測定値を求める行為および測定値を求める方法をそれぞれ分析、分析法と称し、個々の試料および複数試料の分析により得られた値を測定値と称する。
また、本発明で対象とする脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターとは、具体的には脂溶性ビタミンとしてはビタミンEであるトコフェロールやビタミンAのプロビタミンであるβ−カロテン等が、脂溶性フードファクターとしては生体内合成可能なＣｏＱ１０やビタミンではないため摂取を必須としないが積極的な摂取による健康維持増進効果を期待される抗酸化物質のリコペン等が例示される。
検体は、採取された唾液であり、特に好ましくは耳下腺唾液である。この耳下腺唾液をより選択された環境下で採取することによって、より正確な数値を得ることができる。唾液は、その約７０％程が舌下腺及び顎下腺から分泌され、残りの約３０％程度が耳下腺より分泌される。この耳下腺唾液をより選択的に採取することにより、本発明の目的は達成できる。この採取のためには、既に市販の唾液採取具（例えば、Ｓａｌｉｖａ−ｓａｍｐｌｅｒ  （Ｓａｌｉｖａ  Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃ  Ｓｙｓｔｅｍｓ  Ｉｎｃ.）、Ｏｒａｓｕｒｅ（Ｏｒａｓｕｒｅ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ、      Ｉｎｃ．、特表平５−５０６９２５号）、Ｓａｌｉｖｅｔ（アシスト社製））を使うことが可能であるが、その形態は少なくとも、耳下腺唾液の口腔内出口部位により選択的に接触可能なものがよい。例えば、採取部が扁平であれば、唾液採取により好適である。耳下腺唾液採取には、例えば歯列と頬内側に吸収体を挟んで行う。唾液採取量は、採取具の吸収体の種類により変更されるが、相対的な数値を得るためには、特定の吸収体を使い、吸収体に脂溶性ビタミン及び/又は脂溶性フ−ドファクタ−が吸着するため、一定量の吸収体に対し一定量の唾液と接触させることが必須である。即ち、採取者による吸収体と唾液接触量の比率が一定に保つように配慮され、かつ溶媒を添加して分析試料を液体として回収できる吸収体使用量とすることが必要である。具体的には、唾液を不可逆的に吸収する吸収体を用いるのが好ましく、例えば、毛細管現象を利用した吸収体が挙げられる。
また、採取具は、採取量の一定化を図るために採取インジケータのような機能を付加してもよい。これは例えば採取された唾液量が毛細管現象等で確認できる手段を意味する。吸収体としては、吸水性がありエタノ−ルのようなアルコ−ル類に溶解しないものであればポリエステル繊維や発砲ウレタンのような人工高分子素材および脱脂綿・紙・パルプのような天然素材のいずれも利用できるが、綿素材が最適である。また、採取具に、唾液を吸収させた吸収体を保存する保管容器部を付加してもよく、さらにこの保管容器部は該吸収体を浸漬して保存するために唾液の保存料溶液を含んでいてもよい。保存料溶液は、水溶性の有機溶媒であればいずれでもよい。例えば、エタノール、メタノールまたはイソプロパノールなどの低級アルコール類が挙げられる。被験者から唾液を採取した採取具を分析機関が郵送で回収する場合は、郵便法等の規定で可燃物や毒劇物に該当しない濃度のエタノールが望ましい。また、採取具も郵送が可能なものであればいずれでもよいが、定形郵便として郵送できる形状のものが望ましい。また、唾液分泌の生理的影響の少ない耳下腺唾液検体を採取するため、唾液採取の時期は、唾液分泌が盛んに行われた食後すぐよりも唾液分泌状態の安定している食間が好ましく、特に食後２時間以上経ってから採取することが望ましい。【０００９】
採取された唾液は、採取具のまま保管容器に保存され、例えば分析機関等に回収され分析に付される。目的物質である脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターの分析は、採取具から脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターを抽出分離して検出し定量すればよいが、具体的には、（ａ）採取された唾液、該唾液を吸収した吸収体及び／又は該吸収体を保存した保存料溶液を溶媒で処理して脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターを抽出する工程、（ｂ）抽出液から例えば高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）により脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターを分離する工程、（ｃ）分離した脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターを例えばUV検出器や電気化学検出器（ＥＣＤ）等の微量検定に適した公知の分析法で検出し定量する工程、を含む方法を挙げることができる。
抽出に用いる溶媒は、採取された唾液、該唾液を吸収した吸収体及び／又は該吸収体を保存した保存料溶液から、タンパク質を除去しながら、目的の脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターを抽出できるものが好ましい。ＣｏＱ１０やトコフェロールのような水にわずかに溶解する脂溶性ビタミン及び／または脂溶性フードファクターの場合は、上記の水溶性溶媒がより好ましく、特に抽出に好ましい濃度の水溶性溶媒、具体的には少なくとも７５％の最終濃度を与えるエタノ−ルが最適の溶媒である。その他、溶媒としては、UV検出器よりも高感度なＥＣＤ検出器に利用可能であるメタノ−ルおよびイソプロパノ−ル等も使用できる。また、リコペンやβ‐カロテンなどの水又はエタノールと水の混合液へ極めて溶解しにくい脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターの場合、炭化水素あるいは酢酸エチルとイソプロパノ−ルの混合溶液あるいはイソプロパノ−ルを使用することにより良好な抽出を行うことができる。
例えば抽出方法は、唾液１ｍｌを吸収した吸収体に対して、溶媒としてエタノ−ルでは３倍体積量以上（約６６％以上）を添加し、接触させる。イソプロパノ−ルおよびメタノ−ルでは唾液に対して５倍液量以上を接触させることが必要である。吸収体から脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターは、すみやかに抽出され、また長時間経過しても再吸着することはない。唾液１ｍｌに対する脱脂綿使用量は約２５０ｍｇが好適である。抽出された検体は、そのまま或は遠心分離して凝集したタンパクを除去した上清を回収するような前処理を施し、分析に供させる。【００１０】
脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターを含む健康補助食品等を摂取している被験者を対象とし、このような分析により得られた唾液中の数値（濃度）は、摂取された健康補助食品、薬剤又は食物に含まれる脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターの生体内の移行状態を示しており、この数値を例えば健康補助食品、薬剤又は食物を摂取前の被験者の唾液中の数値や、健康補助食品、薬剤又は食物を摂取していない対照群の唾液中の数値の平均値等と比較することにより、脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターの生体内移行を検査することができ、すなわち被験者の健康状態、被験者の吸収力あるいは栄養化力等を判定可能である。また、健康補助食品、薬剤もしくは食物の摂取または摂取量の適否を判定する方法を提供する。
さらに、脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターの生体内合成もしくは代謝に対する効果または作用を有する治療薬剤を投与している被験者が対象の場合は、このような分析により得られた唾液中の数値を、該治療薬剤の効果または作用の指標とすることができる。すなわち、この数値を例えば治療薬剤を投与前の被験者の唾液中の数値や、該治療薬を投与していない対照者群の唾液中の数値の平均値等と比較すれば良い。また、該治療薬剤の投与または投与量の適否を判定する方法を提供する。例えば、ＣｏＱ１０の生体内合成もしくは代謝に対する効果または作用を有する治療薬剤として、メバロチン（三共社製）やリピトール（ファイザー社製）などのスタチン系薬剤が知られており、これらの治療薬剤を投与している被検者の唾液中のＣｏＱ１０の数値を、これらの治療薬剤の効果または作用の指標とすることができる。
さらに、このような分析方法は、摂取された脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターの生体内移行の追跡を可能とし、創薬もしくは新規な健康補助食品のスクリーニング方法として使用可能である。
ここで、対照群の唾液中の脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターの数値（濃度）の平均値を基準とする判定には、一例として、対照群の平均値の標準偏差を用いることができる。例えば、ＣｏＱ１０を摂取している被験者の唾液中のＣｏＱ１０の値が、対照群の平均値プラス２ＳＤをはるかに超えたなら摂取量を減らし、平均値マイナス２ＳＤと平均値プラス２ＳＤの間であれば摂取量を増やす、といった指標とすることができる。さらに後日再度唾液を採取してＣｏＱ１０の値の検査を行うことを繰り返してもよい。
【実施例】
【００１１】
以下実施例をあげて本発明を説明する。以下の実施例では、健康補助食品等に含まれる栄養成分の代表例として、ＣｏＱ１０及びトコフェロ−ルを使って効果の確認をおこなったが、本発明は、脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターに適用可能であり、本発明の範囲はこれらの実施例により限定されるものではない。なお、実施例で、検体中のＣｏＱ１０、トコフェロ−ル、リコペン、β−カロテンは次のように分析した。【００１２】
（分析条件）
ＨＰＬＣは血漿中ＣｏＱ１０分析法である既知の方法（Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ  Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  Ｖｏｌ.２５０、  ｐ６６-７３、１９９７）を参考とし、唾液分析に適するように改良を加えて実施した。【００１３】
前処理およびオートサンプラーへの搭載
検体の前処理は、オートサンプラーバイアル(サンプラーバイアルＰＰ  ２５０μｌ：資生堂社製)に血漿２０μｌとエタノール（和光純薬製：ＨＰＬＣグレード）１８０μｌを加えエタノール終濃度９０％（V/V）とし、５分間１０００Ｇにて冷却遠心分離によりタンパクを沈殿させて行った。直接採取した唾液では、検体５０μｌにエタノール１５０μｌを加え、エタノール終濃度７５％（V/V）とし、５分間１０００Ｇにて冷却遠心分離によりタンパクを沈殿させて行った。Ｓａｌｉｖａ−ｓａｍｐｌｅｒを用いて採取した耳下腺唾液の場合は、唾液液量として１ｍｌ吸着されるので、これに３ｍｌのエタノール（ＨＰＬＣグレード）を加え１５分間の転倒混和した後、２００μｌをオートサンプラーバイアル(サンプラーバイアルＰＰ  ２５０μｌ：資生堂社製)に分取し、５分間１０００Ｇにて冷却遠心分離によりタンパクを沈殿させて行った。遠心分離されたオートサンプラーバイアルは、オートサンプラーに搭載しＨＰＬＣに供した。  【００１４】
（使用カラム）
ＨＰＬＣには以下の３種類のカラムを用意した。
１. 濃縮カラム：ＣＡＰＣＥＬＬ  ＰＡＫＣ１８  ＡＱ  ５μｍ  φ２．０×３５ｍｍ（資生堂社製）
２. 分離カラム：ＣＡＰＣＥＬＬ   ＰＡＫＣ１８  ＡＱ  ３μｍ  φ２．０×１５０ｍｍ（資生堂社製）
３. 還元カラム：ＳＨＩＳＥＩＤＯ  ＣＱ  ＩＤ  ２．０ｍｍ ×２０ｍｍ（資生堂社製）
濃縮カラムは、試料中分析目的成分の濃縮と親水性夾雑物質除去のために使用する。分離カラムは各成分を純化精製し単一成分として検出するために使用する。還元カラムは、ユビデカレノン（ＣｏＱ１０）をユビデカレノールへ還元させるために使用する。還元処理は、ＣｏＱ１０をトコフェロール、リコペンあるいはβ-カロテンといったＯＨ基を有する脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターの一斉分析を行う場合は特に有用であるが、ＵＶ検出器を用いて検出する場合は特に必要ではない。
一斉分析を必要としない場合、例えば唾液中ＣｏＱ１０のみを分析する場合は、濃縮カラムとしてＣＡＰＣＥＬＬ  ＰＡＫＣ８  ＤＤ  Ｓ−５φ４．０×１０ｍｍ（資生堂社製）、分離カラムとしてＣＡＰＣＥＬＬ  ＰＡＫ  ＡＱ  ３μｍ  φ２.０×１００ｍｍ（資生堂社製）を用い良好な検出定量を行うことが可能である。【００１５】
（移動相）
カラム展開用溶媒として以下を用意した。
移動相１：メタノール９５０ｍｌと蒸留水５０ｍｌに無水過塩素酸ナトリウム６．１２２ｇの割合で混合溶解させ、超音波減圧脱気した後使用する。
移動相２：メタノール９５０ｍｌとイソプロパノール５０ｍｌに無水過塩素酸ナトリウム６．１２２ｇの割合で混合溶解させ、超音波減圧脱気した後使用する。
移動相１は、試料注入後に濃縮カラムに送液し、分析目的成分をカラムに保持させ、前処理では除去しきれない分析試料中に残存するタンパク質、ポリペプチド、アミノ酸、有機酸、糖類および塩類等の親水性夾雑成分を除去し、さらに生体試料中に多量に含まれる分析目的成分ではないコレステロール、脂肪酸、リン脂質および中性脂質等の疎水性成分を有効に流去させる目的で使用される。移動相２は、試料注入時から濃縮カラムでの夾雑成分除去プロセス完了時まで分離カラムに通液させておき、除去プロセス完了後、直ちにカラムスイッチングにより濃縮カラムに逆流させることによって分析目的成分を一気に溶出させ、同時に分離カラムに分析目的成分を送り込み純化精製し、単一分画化させる目的で使用される。【００１６】
移動相１の調製にあたっては、メタノールに対する蒸留水混合割合を増やすと疎水性夾雑成分の除去に支障を生じ、混合割合を減らすと親水性夾雑成分の除去に支障を生ずることに注意を要す。なお、移動相２のメタノールに対するイソプロパノールの混合割合を９５：５から９０：１０あるいは８０：２０と増やしても、濃縮カラムからの溶出、分離カラムでの成分分離に大きな影響はない。無水過塩素酸ナトリウム添加量は、調製後の濃度を５０ｍＭとするために６．１２２ｇ使用しており、６ｇあるいは７ｇであってもかまわない。過塩素酸ナトリウムは無水物ではなく水和物であってもよい。ただし、移動相を調製するために使用する試薬は、唾液中の脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクター濃度は血中に比べ低濃度であるため、クロマトグラムのノイズを大きくしないメーカーおよびロットのものを選んで用いる必要がある。あるいは、移動相に蟻酸ナトリウムあるいは酢酸ナトリウムといった有機酸を少量加えると良い。移動相１および移動相２への有機酸の添加量は、検量線の低濃度側から高濃度側まで問題なく測定可能な、１〜１０ｍＭ、好ましくは３〜７ｍＭ、より好ましくは５ｍＭである。【００１７】
（分離方法）
分離方法は、図１に示した濃縮工程と図２に示した分離定量工程からなる。試料注入から濃縮時までの分離システム構成機器、移動相およびカラムの相互接続関係を図１に示した。濃縮カラムからの溶出時から分離生成時までの分離システム構成機器、移動相およびカラムの相互接続関係を図２に示した。図１および図２の中で、移動相１の流れは黒い矢印で、移動相２の流れは灰色の矢印で示されている。還元カラムおよび分離カラムの接続順序は、目的により逆にしてもよい。例えば唾液中ＣｏＱ１０を測定する場合、還元カラム分離カラムの順であっても分離カラム還元カラムの順であってもよい。保持時間の短い不純物を多く含む試料の場合、採取された唾液中にはユビデカレノールがほとんど検出されないので、保持時間の長いＣｏＱ１０として分離した後、ユビデカレノールに還元してから検出すると、ピークの分離が良い。試料および標準品はオートサンプラー（商品名：ＨＴＳオートサンプラー、資生堂社製）を用いて注入する。流路切り替えはシステムコントローラー（商品名：ＥＺＣｈｒｏｍ、資生堂社製）を用いてプログラム設定し、自動運転させて分離分析を行うことができる。移動相１、２の送液には、それぞれ１台ずつのポンプ１、２（商品名：ポンプ３００１、資生堂社製）、計２台を使用する。流速は、分析開始から終了時まで、移動相１は２００μｌ毎分の速さ、移動相２は流速４００μｌ毎分とした。分析中には、移動相１、２に気泡が発生しないよう、３経路型減圧脱気装置（商品名：ＳＳＣ３２１５、センシュウ科学社製）を通過させた移動相を通液させる。また、還元カラムと分離カラムは直列に接続し、カラムオーブン（商品名：タイプ３００４、資生堂社製）内で４０℃恒温状態に維持する。六方バルブ１には、リンスバルブ（商品名：タイプ３０３４、資生堂社製）、六方バルブ２には高圧切り替え六方バルブ（商品名：タイプ３０１１、資生堂社製）をそれぞれ用いる。オートサンプラーはＨＴＳオートサンプラー（資生堂社製）を用い、システム全体のプログラム設定制御管理および数値処理には、ＥＺＣｈｒｏｍ（資生堂社製）を用いる。【００１８】
（検出方法）
ユビデカレノール、トコフェロール、リコペンおよびβ−カロテンは６００ｍＶで定量的に分析可能である。アンペロメトリ−式電気化学検出器３００５（資生堂社製）やパルス式電気化学検出器３０１６（資生堂社製）を用い、図１および図２に示したＨＰＬＣ条件で、唾液中にカルボニル基を有するＣｏＱ１０とＯＨ基を有するトコフェロール、リコペンおよびβ−カロテンが混在するため、前述の市販のオンライン還元カラムを用いてＣｏＱ１０のカルボニル基をＯＨ基へ還元しユビデカレノ−ルに変換してから酸化モードで検出することにより図３、図４に示すように一括検出することが可能である。
ＥＣＤ検出器は毎分析前に、Ｓｅｎｓｉｔｉｖｉｔｙを０．１にＴｉｍｅ  Ｃｏｎｓｔａｎｔを標準（Std.）に設定し、ベースラインの水準が１ｎＡ程度に維持できることを確認して使用した。ＵＶ検出器あるいは蛍光検出器は試料中存在量が多いトコフェロールの分析に便利である。設定すべき検出波長は、既知の波長で十分である。ＥＣＤ検出器とＵＶあるいは蛍光検出器を共存させて接続して定量的に分析する場合は、図１、図２のようにドレイン直前にＥＣＤ検出器を接続し、ＥＣＤ検出器以降の背圧変化が小さくなるようにする。これによりＥＣＤ検出信号のノイズを小さく押さえられ、感度良く定量的に分析することが可能となる。【００１９】
（検量線、感度および試料注入量）
アンペロメトリ−式電気化学検出器３００５（資生堂社製）やパルス式電気化学検出器３０１６（資生堂社製）を用いた場合、ＣｏＱ１０、α-トコフェロール、ユビデカレノール、リコペンおよびβ−カロテンは１．５６〜２００ｎｇ／ｍｌを含むように調製した混合標準品を２０μｌ注入し、直線回帰可能な検量線を作成した。試料注入量は、オートサンプラーとしてＨＴＳオートサンプラー（資生堂社製）を用いた場合、標準的には２０μｌであるが、濃厚試料では２μｌ注入で、希薄試料では１５０μｌ注入して分離定量することができる。感度は、前処理した試料の濃縮倍率を上げ、試料注入量を増やすことで所望するレベルに変えることができる。【００２０】
実施例１
耳下腺唾液検体Ａ、ＢおよびＣの試料のクロマトグラムを図３に示し、リコペン、β−カロテンおよびＣｏＱ１０のピ−クを見やすくするため図３の拡大図を図４に示した。耳下腺唾液検体Ａの試料のクロマトグラムは、市販ＣｏＱ１０サプリメントであるコーキューリブロン（商品名、日清ファルマ社製。以下、「サプリメントＮ」と称することがある）を毎朝晩７時に１錠、１ヶ月摂取しているボランティアの耳下腺唾液を採取し、唾液１ｍｌに対しエタノール３ｍｌを加えて除タンパクした上清を５０μｌ注入して得たものである。なお、サプリメントＮの脂溶性ビタミンおよび脂溶性フードファクターの含量は、ＣｏＱ１０として３０ｍｇ／１錠、α−トコフェロールとして１０ｍｇ／１錠である。１日当たりのサプリメントからの摂取量は、ＣｏＱ１０として６０ｍｇ、α−トコフェロールとして２０ｍｇである。一方、耳下腺唾液検体Ｂの試料のクロマトグラムは、市販サプリメントを一切摂取していないボランティアの耳下腺唾液１ｍｌに対しエタノール３ｍｌを加えて除タンパクした上清５０μｌで行った。さらに、唾液Ｃの試料のクロマトグラムは、市販トマトジュースを毎日一缶（１８０ｍｌ入り）摂取しているボランティアに、銘柄を指定（商品名：缶熟トマト  食塩無添加、伊藤園社製）して１週間摂取させた後に採取した耳下腺唾液１ｍｌに対しエタノール３ｍｌを加えて除タンパクした上清５０μｌを注入して得たものである。１缶中の表示含量はリコペン２０ｍｇ、β−カロテン１．８ｍｇであった。
図３の耳下腺唾液ＡとＢの試料のクロマトグラム上のトコフェロールとＣｏＱ１０のピ−クを比較すると、サプリメント摂取者Ａの方が大きい。また図４の耳下腺唾液ＢとＣの試料のクロマトグラムを比較すると明らかにトマトジュース常用者リコペンおよびβ−カロテンのピークが大きい。従って、摂取量の多いボランティアでは耳下腺唾液中の濃度も高くなっており、唾液中の脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターを分析することは、摂取された健康補助食品等に含まれる脂溶性ビタミン及び／又は脂溶性フードファクターの生体内への移行程度の判定に有用である。
【００２１】
実施例２（ＣｏＱ１０摂取試験その１）
ボランティア１１名に市販ＣｏＱ１０サプリメントであるＱ１０ＡＡ  Ｍｕｌｔｉ（商品名、資生堂社製。以下、「サプリメントＳ」と称することがある）を１週間連続して毎朝７時に２錠（ＣｏＱ１０の２錠中含量１００ｍｇ）を経口摂取させた。なお、サプリメントＳの脂溶性ビタミンおよび脂溶性フードファクターの含量は、ＣｏＱ１０として５０ｍｇ／１錠、α−トコフェロールとして１６．４ｍｇ／１錠である。そして、摂取開始前、摂取１週間後および摂取中止２週間後の３回、午後４から５時の間に耳下腺唾液、直接採取唾液およびヘパリン加血漿の採取が行われた。唾液の採取は、水で口をすすいだ後、５分間椅子に座り安静にしこの間に口腔内に溜まった唾液を吐き捨てて、口腔内の初期化を行ってから実施した。直接採取唾液は、口腔内に溜まった唾液を直接採取唾液として約１ｍｌ採取した。耳下腺採取唾液は、舌下に脱脂綿２ｇを咥えさせ、舌下腺・顎下腺の唾液混入の起こらないようにして、コットン製の唾液吸収体と色変化で採取終了を知らせるインジケータからなるＳａｌｉｖａ−ｓａｍｐｌｅｒを耳下腺開口部の近くである歯列と頬の間に挟みこませ、椅子に座らせ安静静粛状況にて採取した。Ｓａｌｉｖａ−ｓａｍｐｌｅｒを用いたときに採取された唾液量の１１人での平均は１ｍｌ、変動幅は０.９〜１.１ｍｌと良好な再現性を示した。耳下腺採取唾液中ＣｏＱ１０分析は、唾液を吸収させたＳａｌｉｖａ−ｓａｍｐｌｅｒを専用チューブに移し、これに３ｍｌのエタノールを加え、終濃度７５％とし、１０分間転倒混和を行い吸収体からの抽出とタンパクの凝固を行った後、吸収体の断片と不要なタンパクを４℃、１０００Ｇにて遠心分離して除去した上清２０μｌをＨＰＬＣに供した。なお、耳下腺唾液採取の際に、舌下に脱脂綿２ｇを咥えることは必須ではなく、実施例３に示すように、舌下腺・顎下腺唾液を嚥下により飲み込むことで、混入を回避することができる。直接採取唾液の前処理は、２５０μｌの検体にエタノール７５０μｌを加えて混合し、４℃、１０００Ｇにて５分間遠心分離により除タンパクを行い、上清２０μｌをＨＰＬＣに供した。血漿の前処理は、血漿２０μｌにエタノール１８０μｌを加えて混合し、不要なタンパクを４℃１０００Ｇにて遠心分離して除去した上清２０μｌをＨＰＬＣに供した。【００２２】
実施例３（ＣｏＱ１０摂取試験その２）
ＣｏＱ１０摂取試験は、1錠中にＣｏＱ１０を５０ｍｇ含有する市販サプリメントＳおよび１錠中に３０ｍｇ含有する市販サプリメントＮを用いて行った。ボランティアＳ群の１０名には、サプリメントＳを、ボランティアＮ群の１０名にはサプリメントＮを摂取させた。サプリメントＳの摂取は、各ボランティアに１週間連続して毎朝９時に２錠を経口摂取させ、次の１週間連続して毎朝９時に倍量の４錠を経口摂取させた後、２週間摂取を中止させて行った。サプリメントＮの摂取は、１週間連続して毎朝９時に３錠を経口摂取させ、次の１週間連続して毎朝９時に倍量の６錠を経口摂取させた後、２週間摂取を中止させて行った。検体は、Ｓ群およびＮ群ともに摂取開始前、摂取１週間後、倍量および摂取中止２週間後の計４回、午後４から５時の間に耳下腺唾液およびヘパリン加血漿を採取した。耳下腺唾液は、採取前に水で口をすすいだ後、５分間椅子に座り安静にしこの間に口腔内に溜まった唾液を吐き捨てて、口腔内の初期化を行ってから採取した。耳下腺唾液の採取は、Ｓａｌｉｖａ−ｓａｍｐｌｅｒを耳下腺開口部の近くである歯列と頬の間に挟みこませ、椅子に座らせ安静静粛状況にて採取した。この際、舌下腺・顎下腺の唾液混入を防ぐため舌下腺・顎下腺から分泌されて下顎に溜まった唾液を嚥下により飲み込むことにより、混入を回避して耳下腺唾液採取は行われた。耳下腺採取唾液中ＣｏＱ１０分析は、唾液を吸収させたＳａｌｉｖａ−ｓａｍｐｌｅｒを５０％エタノール１ｍｌ含む専用チューブに移し、これに４ｍｌのエタノールを加え、終濃度７５％とし、１０分間転倒混和を行い吸収体からの抽出とタンパクの凝固を行った後、吸収体の断片と不要なタンパクを４℃、１０００Ｇにて遠心分離して除去した上清１５０μｌをＨＰＬＣに供した。血漿の前処理は、血漿２０μｌにエタノール１８０μｌを加えて混合し、不要なタンパクを４℃、１０００Ｇにて遠心分離して除去した上清２０μｌをＨＰＬＣに供した。なお、２週間摂取を中断させたときの検体をボランティアＮ群の１名（Ｎ４）から採取できなかったため、唾液および血漿それぞれの検体総数は７９である。【００２３】
実施例４（血中値と唾液含有量の相関性の実験）
図５に示すように、実施例２および実施例３で得られた１１２検体の耳下腺唾液と血漿のＣｏＱ１０の濃度（以下、測定されたＣｏＱ１０の濃度を「ＣｏＱ１０値」と称する）の間に良好な相関性のあることが確認された。また、図６に示すように、直接採取唾液と血漿のＣｏＱ１０値間の相関性は弱いながらも認められた。これにより、唾液、特に耳下腺唾液中の数値を分析すれば、栄養補助食品等の生体内移行量をより正確に判定できることが確認された。【００２４】
実施例５（ＣｏＱ１０含有サプリメント摂取状況による耳下腺唾液中ＣｏＱ１０値の推移）
実施例４のサプリメントＮ摂取状況を摂取開始前、摂取１週間後、倍量摂取１週間後および摂取中止２週間後として横軸に配し、縦軸に耳下腺唾液のＣｏＱ１０値を取り、ＣｏＱ１０含有サプリメント摂取状況による耳下腺唾液中ＣｏＱ１０値の推移を図７に示した。一般に、ＣｏＱ１０は食後摂取したほうが生体内中移行しやすく、効率的に摂取するには食後３０分以内に摂取したほう良いとされている。図７のボランティアＮ１は、ここ数年間毎朝食を取らない習慣の者であり、ボランティアＮ５も朝食を頻繁に欠食する習慣の者であり、ＣｏＱ１０サプリメントを摂取しても効率的な生体内中移行を期待できない例である。Ｎ１およびＮ５の耳下腺唾液のＣｏＱ１０値は、サプリメント摂取量を増やしてもほとんど上昇しておらず、妥当な挙動が確認できた。ボランテイアＮ９は毎朝食を午前６時頃に定期的に摂取する者であるが食後３時間程度経過した午前９時にサプリメントを摂取したため、効率的な摂取とならず、耳下腺唾液のＣｏＱ１０値はサプリメント摂取しても値の上昇は小さかったと考えられる。その他７例のボランティアの場合は、耳下腺唾液中のＣｏＱ１０値は、ＣｏＱ１０含有サプリメント摂取により上昇し、摂取量を増やすとさらに上昇し、摂取中断後に低下して摂取状況を反映した推移を示すことが確認された。このことより、ＣｏＱ１０サプリメントの適正摂取の判断基準として、耳下腺唾液のＣｏＱ１０値の検査が有用であることを示していると結論される。【００２５】
実施例６（サプリメント非摂取者の耳下腺唾液ＣｏＱ１０値の平均値とＳＤの個人別摂取量設定のための基準としての利用）
ＣｏＱ１０サプリメントを効率的に吸収するのに適しているとされる食後３０分以内に摂取しても、吸収に大きな個人差があるため、同一商品を同量摂取しても血中濃度上昇に差があることが知られており、個人ごとに適正な摂取量を判断できる基準が求められている。ＣｏＱ１０サプリメント非摂取者の耳下腺唾液中ＣｏＱ１０値の平均値とＳＤ（標準偏差）が基準の一例として有用であることが、図７より容易に理解できる。例えば、食後適正な時間にＣｏＱ１０サプリメントを摂取している人が、非摂取者の血中ＣｏＱ１０値の上限まで血中濃度を上昇させることを目的に摂取する場合を例に説明する。耳下腺唾液のＣｏＱ１０値が、平均値プラス２ＳＤをはるかに超えたなら摂取量を減らし、平均値マイナス２ＳＤと平均値プラス２ＳＤの間であれば摂取量を増やし、後日再度耳下腺唾液を採取してＣｏＱ１０値の検査を行うことを繰り返すことにより目的を達成することができる。なお図７の平均値および２ＳＤは、ＣｏＱ１０サプリメント非摂取者５５名の耳下腺唾液のＣｏＱ１０値をから得た値であり、平均値は１７．０ｎｇ／ｍｌ、２ＳＤは１３．５ｎｇ／ｍｌである。【００２６】
実施例７（トコフェロール含有サプリメント摂取前、摂取中および摂取中止時における耳下腺唾液中トコフェロール濃度の推移）
トコフェロ−ルを２錠中にα-トコフェロ−ルとして３２．８ｍｇ含有する市販ＣｏＱ１０サプリメントＳをボランティア３名に１週間連続して毎朝７時に２錠経口摂取させ、検体として、摂取開始前、摂取１週間後および摂取中止２週間後の３回、午後４から５時の間に耳下腺唾液の採取を行った。唾液の採取は、水で口をすすいだ後、５分間椅子に座り安静にし、この間に口腔内に溜まった唾液を吐き捨てて、口腔内の初期化を行ってから実施した。耳下腺唾液の採取は、Ｓａｌｉｖａ−ｓａｍｐｌｅｒを耳下腺開口部の近くである歯列と頬の間に挟みこませ、椅子に座らせ安静静粛状況にて採取した。この際、舌下腺・顎下腺の唾液混入を防ぐため舌下腺・顎下腺を嚥下により飲み込むことにより、混入を回避して耳下腺唾液採取は行われた。耳下腺採取唾液中トコフェロ−ル分析は、唾液を吸収させたＳａｌｉｖａ−ｓａｍｐｌｅｒを空の専用チューブに移し、これに４ｍｌのイソプロパノ−ルを加え、終濃度８０％とし、１０分間転倒混和を行い吸収体からの抽出とタンパクの凝固を行った後、吸収体の断片と不要なタンパクを４℃、１０００Ｇにて遠心分離して除去した上清２０μｌをＨＰＬＣに供した。
サプリメント摂取状況を摂取開始前、摂取１週間後および摂取中止２週間後として横軸に配し、縦軸に耳下腺唾液のトコフェロ−ルの濃度（以下、測定されたトコフェロールの濃度を「トコフェロール値」と称する）を取り、トコフェロ−ル含有サプリメント状況による耳下腺唾液のトコフェロ−ル値の推移を図８に示す。耳下腺唾液のトコフェロ−ル値は、摂取状況を反映して摂取により上昇し、摂取中止により低下することが確認された。【００２７】
実施例８（リコペンおよびβ‐カロテン含有市販サプリメント摂取前、摂取中および摂取中止時における耳下腺唾液リコペンおよびβ‐カロテン濃度の推移）
１錠中にリコペンを１０ｍｇとβ−カロテンを３０ｍｇ含有する市販サプリメントであるリコピン＋β-カロテンＭＡＸ１（商品名、ミナミヘルシ−フ−ド社製）をボランティア３名の内２名に１週間連続して毎朝７時に２錠（２錠中含量リコペンを２０ｍｇとβ−カロテンを６０ｍｇ）を経口摂取させ、検体として、摂取開始前、摂取１週間後および摂取中止２週間後の３回、午後４から５時の間に耳下腺唾液の採取を行った。唾液の採取は、水で口をすすいだ後、５分間椅子に座り安静にしこの間に口腔内に溜まった唾液を吐き捨てて、口腔内の初期化を行ってから実施した。耳下腺唾液の採取は、Ｓａｌｉｖａ−ｓａｍｐｌｅｒを耳下腺開口部の近くである歯列と頬の間に挟みこませ、椅子に座らせ安静静粛状況にて採取した。この際、舌下腺・顎下腺の唾液混入を防ぐため舌下腺・顎下腺を嚥下により飲み込むことにより、混入を回避して耳下腺唾液採取は行われた。耳下腺採取唾液中リコペンおよびβ−カロテンの分析は、唾液を吸収させたＳａｌｉｖａ−ｓａｍｐｌｅｒを空の専用チューブに移し、これに４ｍｌのイソプロパノ−ルを加え、終濃度８０％とし、１０分間転倒混和を行い吸収体からの抽出とタンパクの凝固を行った後、吸収体の断片と不要なタンパクを４℃、１０００Ｇにて遠心分離して除去した上清１５０μｌをＨＰＬＣに供して行った。
サプリメント摂取状況を摂取開始前、摂取１週間後および摂取中止２週間後として横軸に配し、縦軸に耳下腺唾液のリコペンの濃度およびβ−カロテンの濃度（以下、測定されたリコペンまたはβ−カロテンの濃度をそれぞれ「リコペン値」、「β−カロテン値」と称する）を取り、図９および図１０に、サプリメント摂取による耳下腺唾液のリコペンおよびβ−カロテン値の推移を示す。耳下腺唾液のリコペンおよびβ−カロテン値は、非摂取ボランティア１名に比べ摂取したボランテイア２名では摂取状況を反映して明らかな上昇を示し、摂取中止により低下することが確認された。【００２８】
実施例９（耳下腺唾液の吸収体素材と抽出の必要性）
実施例２の検体調製法において唾液の吸収体の素材について比較検討を行った。吸収体５０ｍｇを唾液６００μｌに浸漬し、吸収体からしみでた唾液中のＣｏＱ１０濃度を分析するため２０μｌを分取し、これにイソプロパノール１８０μｌを加えて混合し、４℃、１０００Ｇで５分間の遠心分離により除タンパクを行い、上清２０μｌをＨＰＬＣに供した。ＣｏＱ１０分析結果を「吸収体５０ｍｇを唾液６００μｌに浸漬し、吸収体の隙間に保持された唾液中のＣｏＱ１０濃度」として表１に示す。耳下腺唾液の分泌は１ｍｌの分泌に要する時間は短い人で３分間ほど、長いボランティアでは１０分以上要したため、吸収体を用いることなく採取することは実施上困難である。この際、用いる唾液吸収体の素材、ポリエステル、コットンおよびアセチルセルロースの何れにたいしても脂溶性フードファクターや脂溶性ビタミンの吸着は起こる。また低吸着性のポリウレタンであっても唾液中の水分を結合水として補足してしまうため濃縮が起こり、見かけ上高い値を示す（表１参照）。従って、吸着した成分を抽出させることが必要となる。また、例えば、２ｍｌの唾液と接触したにコットン製の吸収体が、隙間に１ｍｌの唾液を含んでいたとして実際には２ｍｌの唾液中に含まれていた成分を吸着してしまうため、抽出を行うと唾液１ｍｌと接触したときよりも高値結果を与えることとなることが明らかとなった。このことは、口腔内で一定量の吸収体に一定量の唾液を吸収させなければならないことを意味する。従って、唾液の採取は、Ｓａｌｉｖａ−ｓａｍｐｌｅｒなどのの吸収体の毛細管現象により一度吸収された唾液画の吸収体からの漏れ出しの起こらないものを用い、かつ一定容量の唾液を吸収するとインジケータの色の変化などで正確な採取量を知ることができる採取具を用いるべきである。
【表１】
0004694474.tif 000002
【００２９】
実施例１０
（除タンパク質溶媒の違いによる抽出効果の確認）
実施例１及び２の検体調製法において、溶媒をエタノール（９０、７５、５０％）、イソプロパノール（９０、７５、５０％）、又はメタノール（９０、７５、５０％）を使って比較検討した。５０ｍｇの吸収体に唾液６００μｌと各溶媒を６００、１８００および５４００μｌ加え、各々終濃度５０、７５および９０％（V/V）として混合攪拌した後、４℃、１０００Ｇで遠心分離した上清２０μｌを用いＨＰＬＣにてＣｏＱ１０の分析を行った。その結果、以下の表２「３種類の溶媒、３濃度レベルで唾液を除タンパクして得られた上清中のＣｏＱ１０濃度（ｎｇ／ｍｌ）」の数値を得た。７５％濃度でもタンパク質への吸着による影響がみられない抽出効率の良いエタノールが最適と考えられた。
【表２】
0004694474.tif 000003
【００３０】
実施例１１
（唾液吸収体素材の材質の違いによらずエタノールで分析目的成分が抽出されることの確認）
実施例２の検体調製法において唾液の吸収体の素材と７５％(V/V)エタノールでの抽出回収率について比較検討を行った。吸収体５０ｍｇを唾液６００μｌに浸漬した後、エタノール１８００μｌを加えて混合し、４℃、１０００Ｇにて５分間の遠心分離により除タンパク質を行い、上清２０μｌをＨＰＬＣに供した。ＣｏＱ１０分析結果を表３「吸収体５０ｍｇを唾液６００μｌに浸漬した後、エタノール１８００μｌ（終濃度７５％）で抽出したときの唾液中のＣｏＱ１０濃度」に示す。濃度７５％(V/V)で抽出したときの唾液中のＣｏＱ１０濃度は、唾液吸収体の素材によらず、７５％(V/V)でほぼ１００％回収できることを確認した。これより、唾液中の脂溶性成分が吸収体へ吸着しても、、吸収体と隙間に保持された唾液中に含まれる脂溶性フードファクターや脂溶性ビタミンの総和を分析することにより、一定容量の唾液ｌ中の含量を求めることが可能となる。
【表３】
0004694474.tif 000004
【００３１】
実施例１２
（不良な過塩素酸塩を用いて調製した移動相への有機酸類添加によるＣｏＱ１０標準品溶液のクロマトグラム改善効果）
５０ｎｇ／ｍｌのＣｏＱ１０標準品溶液を１５０μｌ注入して得られる良好なクロマトグラム形状の例を図１１の（１）に、移動相調製にロット不良な塩素酸ナトリウムを用いたときに得られる形状不良なクロマトグラムを図１１の（２）に示した。図１１の（１）の形状良好なクロマトグラムは、例えば移動相調製にＳｉｇｍａ-Ａｌｄｒｉｃｈｉ社製の過塩素酸ナトリウム（ロット番号０９７０４ＫＢ）を用いることによって得ることができる。図１１の（２）の形状不良なクロマトグラムは、移動相調製に関東化学社製の過塩素酸ナトリウム（ロット番号１７１２９ＣＡ）を用いて得たものである。図１１の（２）の形状不良のクロマトグラムを発生させる移動相にギ酸ナトリウムを５ｍＭ加え、５０ｎｇ／ｍｌのＣｏＱ１０標準品溶液を１５０μｌ注入して得られた良好な形状のクロマトグラムが図１１の（３）である。同様に、図１１の（２）の形状不良のクロマトグラムを発生させる移動相に酢酸ナトリウム、グリシン、クエン酸ナトリウムおよびＥＤＴＡ（エチエレンジアミン四酢酸）二ナトリウムをそれぞれ５ｍＭ加え、５０ｎｇ／ｍｌのＣｏＱ１０標準品溶液を１５０μｌ注入して得られた良好な形状のクロマトグラムが図１１の（４）、（５）、（６）および（７）である。有機酸添加による過塩素酸ナトリウムのメ−カ及びロット間差によるクロマトグラムの形状不良の改善効果は、移動相２へ添加することにより得られる。より好ましくは移動相１と移動相２の両方へ添加することにより得られる。移動相１および移動相２への有機酸の添加量は、検量線の低濃度側から高濃度側まで問題なく測定可能な、０．１〜１０ｍＭ、好ましくは３〜７ｍＭ、より好ましくは５ｍＭである。ＥＤＴＡおよびクエン酸は移動相に５ｍＭ加えると溶解しきらずに析出するが場合があるが、このような場合であっても、過塩素酸ナトリウムのメ−カ−及びロット間差によるクロマトグラムの形状不良の改善効果を得ることができる。
【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図１１】
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