(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
収縮弛緩機能、細胞間の電気的結合及び配向を保持した心筋組織の細胞からなり、培養基材より剥離された心筋様細胞シートであって、
心筋様細胞シートは、
水に対する上限もしくは下限臨界溶解温度が０〜８０℃である温度応答性ポリマーで基材表面を被覆した細胞培養支持体上で培養し、
培養液温度を上限臨界溶解温度以上又は下限臨界溶解温度以下とし、
培養された細胞シートを高分子膜に密着させ、
そのまま高分子膜と共に剥離する、
ことによって得られたものであり、
高分子膜が、コラーゲンからなる膜、スパンデックスからなるメッシュ、ネット状、及びストッキネット状素材から選択される、
前記細胞シート。
【請求項２】
剥離において蛋白質分解酵素による処理を施さない、請求項１記載の心筋様細胞シート。
【請求項３】
温度応答性ポリマーが、ポリ（Ｎ−イソプロピルアクリルアミド）である、請求項１または２記載の心筋様細胞シート。
【請求項４】
基材から剥離された心筋様細胞シートを特定方向に引き伸ばすことで特定方向に配向された請求項１〜３のいずれか１項記載の心筋様細胞シート。
【請求項５】
水に対する上限もしくは下限臨界溶解温度が０〜８０℃である温度応答性ポリマーで基材表面を被覆した細胞培養支持体上で培養し、その後
（１）培養液温度を上限臨界溶解温度以上又は下限臨界溶解温度以下とし、
（２）培養された細胞シートを高分子膜に密着させ、
（３）そのまま高分子膜と共に剥離する
ことを含む心筋様細胞シートの製造法であって、
高分子膜が、コラーゲンからなる膜、スパンデックスからなるメッシュ、ネット状、及びストッキネット状素材から選択される、前記製造法。
【請求項６】
剥離において蛋白質分解酵素による処理を施さない、請求項５記載の心筋様細胞シートの製造法。
【請求項７】
温度応答性ポリマーが、ポリ（Ｎ−イソプロピルアクリルアミド）である、請求項５または６記載の心筋様細胞シートの製造法。
【請求項８】
心筋様細胞シート自身に内在している血管内皮細胞による管腔を基に血管が形成した請求項１〜４のいずれか１項記載の心筋様細胞シート。
【請求項９】
請求項１〜４及び８のいずれか１項記載の心筋様細胞シートをヒト以外の生体内に埋入することで、当該心筋様細胞シート自身に内在している血管内皮細胞による管腔形成、及び／または埋入された周囲の組織内の血管内皮細胞を進入させかつ管腔を形成させることにより血管を形成させた心筋様組織。
【請求項１０】
心疾患、その他の循環器関連疾患、或いは消化器関連疾患の治療用の請求項１〜４及び８のいずれか１項記載の心筋様細胞シートまたは請求項９記載の心筋様組織。
【請求項１１】
心臓の収縮能の弱まった部位に移植することで心疾患を治療するために使用される、請求項１０記載の心筋様細胞シートまたは心筋様組織。
【請求項１２】
請求項１〜４及び８のいずれか１項記載の心筋様細胞シートまたは請求項９記載の心筋様組織を利用したヒト以外の動物における心疾患、その他の循環器関連疾患、或いは消化器関連疾患の治療法。
【発明の詳細な説明】
技術分野
本発明は、生物学、医学等の分野における心筋様細胞シート、３次元構造体、心筋様組織、それらの製造法及びそれらを利用した治療方法に関する。
背景技術
近年、ｉｎ  ｖｉｔｒｏでの心筋組織構築を目的にコラーゲンやポリ乳酸からなる３次元支持体を用いた心筋細胞培養が報告されている。例えば、エシェンハーゲンらは、コラーゲンマトリックス中における３次元再構築に関する報告を行っている（Ｅｓｃｈｅｎｈａｇｅｎ  ｅｔ  ａｌ，Ｆａｓｅｂ．Ｊ．，１１，６８３−６９４，１９９７）。また、キャリヤーらは、ポリ乳酸による３次元の足場を用いる構築物に関する報告を行っている（Ｃａｒｒｉｅｒ  ｅｔ  ａｌ，Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｌ．Ｂｉｏｅｎｇ．，６４，５８０−５８９，１９９９）。さらに、リーらは、ゼラチンメッシュ内に生物工学的に作製した心臓移植片について報告している（Ｌｉ  ｅｔ  ａｌ，Ｊ．Ｔｈｏｒａｃ．ｃａｒｄｉｏｖａｓｃ．ｓｕｒｇ．，１１９，３６８−３７５，２０００）。これらの文献に記載されている従来技術においては、いずれも心筋細胞を３次元のマトリックス内で培養し、培養基材上で収縮弛緩挙動を実現している。しかし、これらの技術では得られる細胞塊は高分子ゲル若しくは高分子スポンジ内に包埋された状態であり、得られた細胞塊を例えば医療目的で用いることは、高分子材料のコンタミネーションが問題となる。しかも、細胞シート自身を重ね合わせる技術はこれまでになかった。
一方、表皮のような心筋以外の組織の細胞培養に関する知見もこれまでに報告されている。従来、そのような細胞培養は、ガラス表面上あるいは種々の処理を行った合成高分子の表面上にて行われていた。例えば、ポリスチレンを材料とする表面処理、例えばγ線照射、シリコーンコーティング等を行った種々の容器等が細胞培養用容器として普及している。このような細胞培養用容器を用いて培養・増殖した細胞は、トリプシンのような蛋白分解酵素や化学薬品により処理することで容器表面から剥離・回収される。
例えば、特公平２−２３１９１号公報には、ケラチノサイトを、ケラチン組織の膜が容器の表面上に形成される条件下に、培養容器中で培養し、ケラチン組織の膜を酵素を用いて剥離させる、ことを特徴とするケラチン組織の移植可能な膜を製造する方法、が記載されている。具体的には、３Ｔ３細胞をフィーダーレイヤーとして増殖、重層化させ、蛋白質分解酵素であるディスパーゼを用いて細胞シートを回収する技術が開示されている。しかしながら、当該公報に記載されている方法は次のような欠点を有していた。
（１）ディスパーゼは菌由来のものであり、回収された細胞シートを十分に洗浄する必要性があること。
（２）培養された細胞ごとにディスパーゼ処理の条件が異なり、その処理に熟練が必要であること。
（３）ディスパーゼ処理により培養された表皮細胞が病理学的に活性化されること。
（４）ディスパーゼ処理により細胞外マトリックスが分解されること。
（５）そのためその細胞シートを移植された患部は感染され易いこと。
上記欠点を有するため、特公平２−２３１９１号公報に記載の方法をｉｎ  ｖｉｔｒｏでの心筋様組織構築に適用することは困難である。
また、特開平０５−１９２１３８号公報には、水に対する上限若しくは下限臨界溶解温度が０〜８０℃であるポリマーで基材表面を被覆した細胞培養支持体上にて、皮膚細胞を上限臨界溶解温度以下又は下限臨界溶解温度以上で培養し、その後上限臨界溶解温度以上又は下限臨界溶解温度以下にすることにより培養皮膚細胞が剥離されることを特徴とする皮膚細胞培養法が記載されている。この方法においては、温度応答性ポリマーを被覆した培養基材から温度により細胞を剥離させているが、この方法では剥離性が悪く、得られた細胞シートは構造欠陥の多いものであった。したがって、特開平０５−１９２１３８号公報に記載の方法をｉｎ  ｖｉｔｒｏでの心筋様組織構築に適用することも困難である。
発明の開示
本発明は、上記のような従来技術の問題点を解決することを意図してなされたものである。すなわち、本発明は、収縮弛緩機能、細胞間の電気的結合及び配向を保持した心筋組織の細胞からなる心筋様培養細胞シート及びその３次元構造体を提供することを目的とする。また、本発明は、培養された心筋様細胞シートを高分子膜に密着させるとともにディスパーゼのような酵素で処理することなく環境温度を変化させることにより、培養・増殖させた細胞シートを容易にかつその形態を崩さずに支持体表面から剥離・回収することができる方法、及びそれらを３次元構造体とする方法を提供することを目的とする。
本発明者らは、上記課題を解決するために、種々の角度から検討を加えて、研究開発を行った。その結果、温度応答性ポリマーで基材表面を被覆した細胞培養支持体上で心筋組織の細胞を培養し、心筋様細胞シートを得、それを所定の方法で心筋様細胞を重層化させ、その後、培養液温度を上限臨界溶解温度以上又は下限臨界溶解温度以下とし、培養した重層化細胞シートを高分子膜に密着させ、そのまま高分子膜と共に剥離させること、及びそれを所定の方法で３次元構造化させることにより、構造欠陥の少ない、ｉｎ  ｖｉｔｒｏでの心筋様組織として幾つかの機能を備えた細胞シート、及び３次元構造が構築されることを見いだした。本発明はかかる知見に基づいて完成されたものである。
すなわち、本発明は、収縮弛緩機能、細胞間の電気的結合及び配向を保持した心筋組織の細胞からなる心筋様培養細胞シートを提供する。
また、本発明は、血管内皮細胞による管腔形成及び／または心外膜様の一層の細胞層を外層に有しており、収縮弛緩機能を保持し、３次元に細胞間の電気的結合及び配向を保持した心筋様培養細胞の３次元構造体を提供する。
更に、本発明は、水に対する上限もしくは下限臨界溶解温度が０〜８０℃である温度応答性ポリマーで基材表面を被覆した細胞培養支持体上で培養し、その後、
（１）培養液温度を上限臨界溶解温度以上又は下限臨界溶解温度以下とし、さらに必要に応じ、
（２）培養された細胞シートまたは３次元構造体を高分子膜に密着させ、
（３）そのまま高分子膜と共に剥離する
ことを含む心筋様細胞シートの製造法を提供する。
加えて、本発明は、上記製造法において得られた高分子膜に密着した心筋様細胞シートを再び細胞培養支持体、温度応答性ポリマーで表面を被覆した細胞培養支持体、高分子膜、或いは他の細胞シートに付着させ、その後密着された高分子膜を剥がす操作を繰り返すことを含む心筋様細胞の３次元構造体の製造法を提供する。
更に加えて、本発明は、上記製造法によって得られた心筋様細胞シート、及び３次元構造体を提供する。
更に、本発明は、上記の心筋様細胞シートまたは心筋様細胞の３次元構造体を生体内に埋入することで、当該心筋様細胞シートまたは心筋様細胞の３次元構造体自身に内在している血管内皮細胞による管腔形成、及び／または埋入された周囲の組織内の血管内皮細胞を進入させかつ管腔を形成させることにより血管を形成させた心筋様組織を提供する。
加えて、本発明は、心疾患、その他の循環器関連疾患、或いは消化器関連疾患の治療用の上記心筋様細胞シート若しくは心筋様細胞の３次元構造体または上記心筋様組織を提供する。
更に加えて、本発明は、上記心筋様細胞シート若しくは心筋様細胞の３次元構造体または上記心筋様組織を利用した心疾患、その他の循環器関連疾患、或いは消化器関連疾患の治療法を提供する。
上記本発明によれば、心筋様細胞シートを第３物質のコンタミネーションがなく、しかも低損傷な状態で回収できる。また、重ね合わせることでｉｎ  ｖｉｔｒｏで心筋様組織を構築することができ、このものは生体内の心筋組織と同様、収縮弛緩機能、細胞間の電気的同調性、配向性を備えている。本発明によって提供されるかかる心筋様組織細胞シート及び３次元構造体は、従来技術によっては得られなかったものであり、本発明は画期的な発明である。
発明を実施するための最良の態様
本発明における心筋組織の細胞とは、生体内の心臓から得られた細胞であれば特に限定されるものではないが、通常、その中には心筋細胞、血管内皮細胞、及び繊維芽細胞等が含まれている。これらを培養することで、一層からなる心筋様培養細胞シート、更にそれを特定の方法で３次元化することで心筋様培養細胞の３次元構造体を得ることができる。
本発明における心筋様培養細胞シート、及び３次元構造体は、培養時にディスパーゼ、トリプシン等で代表される蛋白質分解酵素による損傷を受けていないものである。そのため、基材から剥離された細胞シート及び３次元構造体は細胞、細胞間の蛋白質が保持された強度ある細胞塊として回収でき、心筋細胞特有の収縮弛緩機能、細胞間の電気的結合、及び配向性等の機能を何ら損なうことなく保有している。また、３次元構造体においては、例えば、結合組織からなる心外膜形成、血管内皮細胞による管腔形成等の生体組織様の幾つかの特徴ある細胞の配列も認められるものである。以上のことを具体的に説明すると、トリプシン等の通常の蛋白質分解酵素を使用した場合、細胞、細胞間のデスモソーム構造、及び細胞、基材間の基底膜様蛋白質等は殆ど保持されておらず、従って細胞は個々に分かれた状態となって剥離される。その中で蛋白質分解酵素であるディスパーゼに関しては、細胞、基材間の基底膜様蛋白質を殆ど破壊してしまうものの、デスモソーム構造については１０℃〜６０℃に保持した状態で剥離させることができることで知られているが、得られる細胞シートは強度の弱いものである。それに対し、本発明の細胞シートは、デスモソーム構造、基底膜様蛋白質共に８０％以上残存された状態のものであり、その結果上述したような種々の効果を得ることができるようになる。
細胞培養支持体において基材の被覆に用いられる温度応答性ポリマーは、水溶液中で上限臨界溶解温度又は下限臨界溶解温度０℃〜８０℃、より好ましくは２０℃〜５０℃を有する。上限臨界溶解温度又は下限臨界溶解温度が８０℃を越えると細胞が死滅する可能性があるので好ましくない。また、上限臨界溶解温度又は下限臨界溶解温度が０℃より低いと一般に細胞増殖速度が極度に低下するか、又は細胞が死滅してしまうため、やはり好ましくない。
本発明に用いる温度応答性ポリマーはホモポリマー、コポリマーのいずれであってもよい。このようなポリマーとしては、例えば、特開平２−２１１８６５号公報に記載されいるポリマーが挙げられる。具体的には、例えば、以下のモノマーの単独重合又は共重合によって得られる。使用し得るモノマーとしては、例えば、（メタ）アクリルアミド化合物、Ｎ−（若しくはＮ，Ｎ−ジ）アルキル置換（メタ）アクリルアミド誘導体、又はビニルエーテル誘導体が挙げられ、コポリマーの場合は、これらのうちの任意の２種以上を使用することができる。更には、上記モノマー以外のモノマー類との共重合、ポリマー同士のグラフト又は共重合、あるいはポリマー、コポリマーの混合物を用いてもよい。また、ポリマー本来の性質を損なわない範囲で架橋することも可能である。
被覆を施される基材としては、通常細胞培養に用いられるガラス、改質ガラス、ポリスチレン、ポリメチルメタクリレート等の化合物を初めとして、一般に形態付与が可能である物質、例えば、上記以外の高分子化合物、セラミックス類など全て用いることができる。
温度応答性ポリマーの支持体への被覆方法は、特に制限されないが、例えば、特開平２−２１１８６５号公報に記載されている方法に従ってよい。すなわち、かかる被覆は、基材と上記モノマー又はポリマーを、電子線照射（ＥＢ）、γ線照射、紫外線照射、プラズマ処理、コロナ処理、有機重合反応のいずれかにより、又は塗布、混練等の物理的吸着等により行うことができる。
本発明において、心筋細胞の培養は上述のようにして製造された細胞培養支持体上（例えば、細胞培養皿）で行われる。培地温度は、基材表面に被覆された前記ポリマーが上限臨界溶解温度を有する場合はその温度以下、また前記ポリマーが下限臨界溶解温度を有する場合はその温度以上であれば特に制限されない。しかし、培養細胞が増殖しないような低温域、あるいは培養細胞が死滅するような高温域における培養が不適切であることは言うまでもない。温度以外の培養条件は、常法に従えばよく、特に制限されるものではない。例えば、使用する培地については、公知のウシ胎児血清（ＦＣＳ）等の血清が添加されている培地でもよく、また、このような血清が添加されていない無血清培地でもよい。
本発明の方法においては、前記方法に従い、心筋様細胞シートまたは３次元構造体の使用目的に合わせて培養時間を設定すればよい。培養した心筋様細胞シートまたは３次元構造体を支持体材料から剥離回収するには、培養された細胞シートまたは３次元構造体をそのまま、若しくは必要に応じ高分子膜に密着させ、細胞の付着した支持体材料の温度を支持体基材の被覆ポリマーの上限臨界溶解温度以上若しくは下限臨界溶解温度以下にすることによって、培養された細胞シートまたは３次元構造体を単独で、若しくは高分子膜に密着させた場合はそのまま高分子膜とともに剥離することができる。なお、心筋様細胞シートまたは３次元構造体を剥離することは心筋細胞を培養していた培養液において行うことも、その他の等張液において行うことも可能であり、目的に合わせて選択することができる。また、必要に応じ細胞シートまたは３次元構造体を密着させる際に使用する高分子膜としては、例えば、親水化処理が施されたポリビニリデンジフルオライド（ＰＶＤＦ）、ポリプロピレン、ポリエチレン、セルロース及びその誘導体、キチン、キトサン、コラーゲン、和紙等の紙類、ウレタン、スパンデックス等のネット状、ストッキネット状高分子材料等を挙げることができる。ここで、ネット状、ストッキネット状高分子材料であれば細胞シート及び３次元構造体は自由度が増し、収縮弛緩機能を更に増大させることができる。
本発明における心筋細胞の３次元構造体の製法は特に限定されるものではないが、例えば、上記した高分子膜に密着した心筋培養細胞シートを利用することで製造することができる。かかる方法の例として、次に挙げる方法を用いることができる。
（１）高分子膜と密着した細胞シートを細胞培養支持体に付着させ、その後培地を加えることにより高分子膜を細胞シートから剥がし、そして更に別の高分子膜と密着した細胞シートを付着させることを繰り返すことで細胞シートを重層化させる方法。
（２）高分子膜と密着した細胞シートを反転させ、細胞培養支持体上で高分子膜側で固定させ、細胞シート側に別の細胞シートを付着させ、その後培地を加えることで高分子膜を細胞シートから剥がし、再び別の細胞シートを付着させる操作を繰り返すことにより細胞シートを重層化させる方法。
（３）高分子膜と密着した細胞シート同士を細胞シート側で付着させる方法。
心筋様細胞シート及び３次元構造体を高収率で剥離、回収する目的で、細胞培養支持体を軽くたたいたり、ゆらしたりする方法、更にはピペットを用いて培地を撹拌する方法等を単独で、あるいは併用して用いてもよい。加えて、必要に応じて心筋様細胞シートは等張液等で洗浄して剥離回収してもよい。
基材から剥離された心筋様細胞シート、または３次元構造体は、特定方向に引き伸ばすことで、更に配向された細胞シートまたは３次元構造体となる。その引き伸ばす方法は、何ら制約されるものではないが、テンシロンなどの引っ張り装置を用いる方法、或いは、単純にピンセットで引っ張る方法等が挙げられる。配向させることで、細胞シート及び３次元構造体自身の動きに方向性を持たせることができ、このことは、例えば、特定の臓器の動きに合わせて、細胞シート或いは３次元構造体を重ね合わせることを可能とするため、細胞シート或いは３次元構造体を臓器に適用する場合に効率が良い。
上述の方法により得られた心筋様細胞シート及び３次元構造体は、従来の方法では得られなかったものである。得られた細胞シート或いは３次元構造体は従来技術では断絶された基底膜を保持している為、心臓以外の腕、肩、足、その他のいかなる臓器等、生体内のどこに埋入しても、周囲の組織に良く生着し、それぞれの場合で脈を打ち続ける。これは、生体内に埋入された細胞シート或いは３次元構造体が、生体組織に生着すると同時に、収縮弛緩することで低酸素状態となり、それを補うために生体組織側より積極的に血管内皮細胞が進入し、血管が形成され、血液を介して酸素のみならず栄養分も十分に補給された結果と考えられる。以上より、生体内に埋入された細胞シート及び３次元構造体により、生体内で心筋様組織が形成されることとなる。それらは移植用等の臨床応用が強く期待される。具体的には、本発明の細胞シート、３次元構造体或いは心筋様組織を心臓の収縮力の弱まった部位に移植することで、心筋梗塞等の心疾患等に対する治療用用具として、或いはそれらを血管の周囲に当てることで血行を改善させることができ、例えば、重度のレイノウ、重度な肩こり、更には大動脈の機能不全等の治療用具として有用なものとなる。
なお、本発明の方法において使用される細胞培養支持体は繰り返し使用が可能である。
実施例
以下に、本発明を実施例に基づいて更に詳しく説明するが、これらは本発明を何ら限定するものではない。
実施例１
（材料、使用機器）
１．細胞：初代ニワトリ胚心筋細胞を常法により採取、培養した（Ｃａｒｄｉｏｖａｓｃ．Ｒｅｓ．，４１，６４１（１９９９）を参照）。
２．培養皿：温度応答性培養皿（グラフト量  ２．０μｇ／ｃｍ２）を用いた。対照として、温度応答性ポリマーで被覆されていない市販培養皿（Ｆａｌｃｏｎ３００１）を使用した。
３．培地：６％ＦＢＳ、４０％１９９培地、０．２％ペニシリンーストレプトマイシン、２．７ｍＭグルコース、５４％生理食塩水（１１６ｍＭ  ＮａＣｌ，１．０ｍＭ  ＮａＨ２ＰＯ４，８ｍＭ  ＭｇＳＯ４，１．１８ｍＭ  ＫＣｌ，０．８７ｍＭ  ＣａＣｌ２，２６．２ｍＭ  ＮａＨＣＯ３）からなる培地を用いた。
４．培養：初代トリ胎児心筋細胞を３５ｍｍの培養皿に０．５ｘ１０６  ｃｅｌｌｓ／ｃｍ２の細胞密度で播種した。
５．その他の条件は常法に従った。
６．細胞の顕微鏡観察：位相差顕微鏡（ＥＴ３００、ニコン製）及び蛍光顕微鏡（ＤＭＩＲＢ、ライカ製）を使用した。
７．収縮弛緩挙動測定法：ＣＣＤカメラ（ＲＳ−１７０、ＣＯＨＵ製）にて撮影したものを画像解析した。
（方法）
具体的には下記のようにして、心筋様細胞シートを作製した。
１０日目ニワトリ胚よりトリプシンを用いて心筋細胞を単離し、温度応答性培養皿、すなわち、ポリ（Ｎ−イソプロピルアクリルアミド）（ＰＩＰＡＡｍ）をグラフトした培養皿上で培養した。細胞との接着を減少させる目的で、種々の高分子からなるメッシュを支持体として用い低温処理（２０℃）を行った。培養皿から脱着しメッシュに付着した心筋細胞シートを培養皿上で上下反転し遊離した状態で培養した。また、心筋細胞シートの付着したメッシュを、温度応答性培養皿上に培養した新たな心筋細胞シートに重層し、低温処理後２枚の心筋細胞シートと一緒にメッシュを反転し培養した。形態を組織切片像（Ｈ．Ｅ、Ａｚａｎ染色）にて、収縮弛緩機能を顕微鏡に接続したＣＣＤカメラを介してＶＴＲ録画し、画像解析装置にて定量化した。その方法は特に限定されるものではないが、例えば、細胞質中に目視できる濃淡部を特定し、その動きを画像解析装置にて追跡しその軌跡を調べることで定量化することができる。
（結果）
図１は、心筋細胞を温度応答性培養皿（グラフト量  ２．０μｇ／ｃｍ２）を用いて培養した場合と、温度応答性ポリマーで被覆されていない市販培養皿を用いて培養した場合との心筋細胞の増殖状態を示す顕微鏡写真である。図１において、Ｎｏｒｍａｌは市販培養皿を用いて培養した場合、ＰＩＰＡＡｍは温度応答性培養皿を用いて培養した場合をそれぞれ表す。Ｓｐａｒｓｅは心筋細胞の散生状態を示し、Ｃｏｎｆｌｕｅｎｔは心筋細胞の集密状態を示す。図１から、ポリ（Ｎ−イソプロピルアクリルアミド）をグラフトした培養皿上でも、通常の市販培養皿と同様、心筋細胞はコンフルエント（ｃｏｎｆｌｕｅｎｔ）になることが判る。
図２は、心筋細胞を温度応答性培養皿（グラフト量  ２．０μｇ／ｃｍ２）を用いて培養した場合と、温度応答性ポリマーで被覆されていない市販培養皿を用いて培養した場合との心筋細胞の運動状態を示すチャートである。図２において、Ｎｏｒｍａｌは市販培養皿を用いて培養した場合、ＰＩＰＡＡｍは温度応答性培養皿を用いて培養した場合をそれぞれ表す。Ｍｏｔｉｏｎは細胞の振幅を画像解析装置にて測定した結果で、それは心筋細胞の収縮弛緩を示す。図２から、ポリ（Ｎ−イソプロピルアクリルアミド）をグラフトした培養皿上でも、通常の市販培養皿と同様、心筋細胞は収縮弛緩機能を有することが判る。但し、前者においては、心筋細胞が皿上に接着しているため変化量は少ない。
図３は、ポリ（Ｎ−イソプロピルアクリルアミド）をグラフトした培養皿上で培養した心筋細胞に低温処理を施した場合の、心筋細胞の形態学的変化を示す顕微鏡写真である。図３において、Ｐｒｅは低温処理前の心筋細胞の状態を、Ｐｏｓｔは低温処理後の心筋細胞の状態をそれぞれ示す。図３から、ポリ（Ｎ−イソプロピルアクリルアミド）をグラフトした培養皿上の細胞は、低温処理により剥離することが判る。
図４は、心筋細胞シートの２次元マニピュレーション（以下、「マニピュレーション法▲１▼」と略す）を説明する図である。まず、ポリイソプロピルアクリルアミドをグラフトした培養皿上で培養。コンフルエント（ｃｏｎｆｌｕｅｎｔ）後、高分子膜（ポリビニリデンジフルオライド）を密着させながら、低温処理し、剥離。別の培養皿に移し替える。図４において、Ｓｕｐｐｏｒｔ  ｍｅｍｂｒａｎｅは高分子膜を表し、ＰＩＰＡＡｍ  ｇｒａｆｔｅｄ  ｄｉｓｈはポリ（Ｎ−イソプロピルアクリルアミド）をグラフトした培養皿を表し、Ｎｏｒｍａｌ  ｃｕｌｔｕｒｅ  ｄｉｓｈは通常の市販培養皿を表す。Ｒｅｃｏｖｅｒｅｄ  ｃａｒｄｉａｃ  ｃｅｌｌ  ｓｈｅｅｔは回収された心筋細胞シートを表す。
図５は、マニピュレーション法▲１▼中の細胞骨格（Ｆ−ａｃｔｉｎ）、細胞核（Ｎｕｃｌｅｉ）の様子を示す顕微鏡写真である。図５において、Ｎｏｒｍａｌ  ｓｈｅｅｔは、ポリ（Ｎ−イソプロピルアクリルアミド）をグラフトした培養皿上で培養された細胞を表し、Ｓｈｒｕｎｋ  ｓｈｅｅｔは、剥離し、丸まってしまった状態の細胞を表し、Ｒｅｃｏｖｅｒｅｄ  ｓｈｅｅｔは高分子膜と共に回収された心筋細胞シートが再び細胞培養支持体上に付着された状態の細胞シートを表す。図５から、別の培養皿に移し替えたもの（図４におけるＲｅｃｏｖｅｒｅｄ  ｓｈｅｅｔ）も、移し替える前の状態を再現できていることが判る。
図６は、図５に対応する各々の心筋細胞の運動状態を示すチャートである。Ｍｏｔｉｏｎは細胞の振幅を画像解析装置にて測定した結果で、それは心筋細胞の収縮弛緩を示す。図６から、マニピュレーション法▲１▼前後（Ｎｏｒｍａｌ  ｓｈｅｅｔとＲｅｃｏｖｅｒｅｄ  ｓｈｅｅｔ）の心筋細胞の収縮弛緩機能が維持されていることが裏付けられた。一方、高分子膜と共に剥離しなかったものは、低温処理により細胞培養支持体上より剥離されるが、細胞シート自身が丸まり、収縮してしまい、目的とする収縮弛緩機能は認められなかった。
図７は、マニピュレーション法▲１▼を２回繰り返し２層の新規細胞シートを得る方法（以下、「マニピュレーション法▲２▼」と略す）を説明する図である。
即ち、高分子膜と密着した細胞シートを細胞培養支持体に付着させ、その後培地を加えることにより高分子膜を細胞シートから剥がし、そして更に別の高分子膜と密着した細胞シートを付着させることを繰り返すことで細胞シートを重層化させる方法を示している。
図７において、Ｓｕｐｐｏｒｔ  ｍｅｍｂｒａｎｅは高分子膜を表し、ＰＩＰＡＡｍ  ｇｒａｆｔｅｄ  ｄｉｓｈ及びＮｏｒｍａｌ  ｃｕｌｔｕｒｅ  ｄｉｓｈは前記と同じ意味を表す。Ｐｉｌｅｄ  ｕｐ  ｃａｒｄｉａｃ  ｃｅｌｌ  ｓｈｅｅｔｓは２層の心筋細胞シートを示す。
図８は、マニピュレーション法▲１▼及びマニピュレーション法▲２▼によって得られた心筋細胞の断面の様子を示す顕微鏡写真である。いずれの方法によって得られた細胞シートもヘマトキシリン−エオシンにより染色した。図８において、Ｓｉｎｇｌｅ  ｌａｙｅｒはマニピュレーション法▲１▼によって得られた心筋細胞（単層）の断面の様子を、Ｄｏｕｂｌｅ  ｌａｙｅｒはマニピュレーション法▲２▼によって得られた心筋細胞（２層）の断面の様子をそれぞれ表す。Ｈｅｍａｔｏｘｙｌｉｎ−ｅｏｓｉｎ  ｓｔａｉｎはこれらの細胞シートがヘマトキシリン−エオシン染色を施されたことを意味する。
図９は、マニピュレーション法▲１▼における高分子膜を高分子メッシュとし、剥離させた心筋細胞シートをそのまま培養皿に反転、固定させる方法を方法（以下、「マニピュレーション法▲３▼」と略す）を説明する図である。マニピュレーション法▲３▼によれば、心筋細胞シートが接している高分子材料がメッシュであるため、心筋細胞シートの収縮弛緩機能が高まる。図９において、Ｍｅｓｈは高分子メッシュを表し、ＰＩＰＡＡｍ  ｇｒａｆｔｅｄ  ｄｉｓｈ及びＮｏｒｍａｌ  ｃｕｌｔｕｒｅ  ｄｉｓｈは前記と同じ意味を表す。Ｒｅｃｏｖｅｒｅｄ  ｆｒｅｅ  ｃａｒｄｉａｃ  ｃｅｌｌ  ｓｈｅｅｔは回収された遊離心筋細胞シートを表す。Ｉｎｖｅｒは剥離させた心筋細胞シートをそのまま培養皿に反転させることを意味する。
図１０は、高分子メッシュをあらかじめ別の培養皿上に固定しておき、その後はマニピュレーション法▲１▼の方法に従い心筋細胞シートを移し替える方怯（以下、「マニピュレーション法▲４▼」と略す）を説明する図である。図１０において、Ｓｕｐｐｏｒｔ  ｍｅｍｂｒａｎｅ、ＰＩＰＡＡｍ  ｇｒａｆｔｅｄ  ｄｉｓｈ及びＲｅｃｏｖｅｒｅｄ  ｆｒｅｅ  ｃａｒｄｉａｃ  ｃｅｌｌ  ｓｈｅｅｔは前記と同じ意味を表す。また、Ｍｅｓｈ  ｉｎ  ａ  ｃｕｌｔｕｒｅ  ｄｉｓｈは、培養皿上に固定されたメッシュを表す。
図１１は、マニピュレーション法▲３▼によって得られた心筋細胞シート表面の顕微鏡写真（上段）及びＨ．Ｅ．染色後の断面図（下段）の顕微鏡写真である。図１１において、Ｍｅｓｈは前記と同じ意味を表し、Ｆｒｅｅ  ｃａｒｄｉａｃ  ｓｈｅｅｔは遊離された心筋細胞シートを、Ｃｒｏｓｓ−ｓｅｃｔｉｏｎａｌ  Ｖｉｅｗ（Ｈ．Ｅ．）はＨ．Ｅ．染色後の断面図を表す。
図１２は、マニピュレーション法▲３▼によって得られた心筋細胞シートの顕微鏡写真（上段）及びその運動性を示すチャートである。図１２において、Ｍｏｔｉｏｎは前記と同じ意味を表し、Ｏｎ  ｄｉｓｈは培養皿上における場合を表し、Ｏｎ  ｍｅｓｈはメッシュ上における場合を表す。図１２から、支持体がメッシュにになったため、心筋細胞の運動の変化量が増大したことが判る。
図１３の上下段の写真は共に、ヘマトキシリン−エオシン染色した、マニピュレーション法▲３▼によって得られた培養心筋細胞シートの断面を表す顕微鏡写真である。
図１４は、ヘマトキシリン−エオシン染色した、マニピュレーション法▲３▼によって得られた培養心筋細胞シートの断面を表す顕微鏡写真である。上段は本発明の方法により得られた心筋組織の顕微鏡写真であり、下段はニワトリ胚（１０日目）心筋組織の顕微鏡写真である。図１４から、本発明の方法により得られた心筋組織が生体内組織と極めて似た構造となっていることが判る。
図１５は、マニピュレーション法▲３▼を改良して２層の心筋細胞シートを得る方法（以下、「マニピュレーション法▲５▼」と略す）を説明する図である。マニピュレーション法▲５▼においては、高分子メッシュとしてストッキングを利用する。図１５において、Ｍｅｓｈ、ＰＩＰＡＡｍ  ｇｒａｆｔｅｄ  ｄｉｓｈ、Ｉｎｖｅｒｔ、Ｎｏｒｍａｌ  ｃｕｌｔｕｒｅ  ｄｉｓｈは前記と同じ意味を表す。Ｒｅｃｏｖｅｒｅｄ  ｆｒｅｅ  ｃａｒｄｉａｃ  ｃｅｌｌ  ｓｈｅｅｔｓ（Ｄｏｕｂｌｅ）は、回収された遊離心筋細胞シート（２層）を表す。
図１６は、マニピュレーション法▲５▼によって得られた心筋細胞シート表面の顕微鏡写真（上段）及びＨ．Ｅ．染色後の断面図（下段）の顕微鏡写真である。図１６において、Ｍｅｓｈ及びＣｒｏｓｓ−ｓｅｃｔｉｏｎａｌ  Ｖｉｅｗ（Ｈ．Ｅ．）は前記と同じ意味を表す。上段のＳｉｎｇｌｅは１層目、Ｄｏｕｂｌｅは２層目を表す。
図１７は、２枚の心筋様細胞シートを一部重ね合わせて付着させ、一方の細胞シート（右側の細胞シート（図中ａ））より電気刺激を与えると、もう一方の細胞シート（左側の細胞シート（図中ｂ））へその電気刺激が伝わることを示す図である（但し、図が横長であるため、本来の上下の位置を反時計回りに９０度回転して示してある）。図１７において、Ｅｌｅｃｔｒｉｃａｌ  ｓｔｉｍｕｌａｔｉｏｎとは右側の細胞シートから送られるパルス状の電気的刺激を意味する（図中のＥｌｅｃｔｒｉｃａｌ  ｓｔｉｍｕｌａｔｉｏｎの下線部分の後半（右側）に示される縦の線がパルス状の刺激を示す。）。その刺激を左側の細胞シートより上述した細胞の振幅を画像解析装置にて観測（ｏｂｓｅｒｖａｔｉｏｎ）する方法をとった。図中下に示されるＭｏｔｉｏｎとは、その細胞の振幅を画像解析装置にて測定した結果で、Ｓｐｏｎｔａｎｅｏｕｓ  ｂｅａｔｓとは、先の電気刺激が与えられた後の細胞の挙動を示している。一方の細胞シートに与えられた電気刺激により、他方の細胞シートの収縮弛緩のリズムが速くなっている結果を示している。このことは、本発明で得られた心筋様細胞シートにおいては、シート内の細胞と細胞の間、さらにシート同士を重ね合わせるだけで異なるシート間の細胞と細胞の間にも電気的結合が保持されていることを意味する。
（考察）
上記実施例及び図１〜図１７に示された結果から次のことが判明した。
（１）メッシュ上の心筋細胞シート及びその３次元構造体は、培養皿表面に固定されている時と比べ、より大きな収縮弛緩を示す。これは、個々の細胞が培養皿から脱着し自由度が増大したためと考えられる。
（２）心筋細胞シートの重層化による３次元培養を行ったところ、組織切片上２枚のシート接着が認められた。また、重層化心筋細胞シート全体が同期して拍動し、２枚のシートの電気的な結合が示唆された。さらに、心筋細胞シート全体をメッシュ上で、ある一方向にのみ収縮させると、それと垂直方向に３次元的な束状になり、その結果、心筋細胞が配向性を獲得し、長軸方向に拍動した。
（３）長期（５日間）に培養しておくと、横断組織切片上、束状の心筋細胞の周囲に、心外膜様の一層の細胞層の形成が観察された。
実施例２
新生仔ラットより心筋細胞をコラゲナーゼを用い単離し、実施例１と同じ温度応答性培養皿に播種した。実施例１と同じ培地、培養条件で４日間培養し、コンフルエントになった心筋細胞シートを低温処理することで剥離させた。２枚の剥離心筋様細胞シートを培養液中でピペッティング操作により重ね合わせた。この際、高分子膜は用いず、剥離後収縮した心筋シートをそのまま重ね合わせる方法をとった。約２０分で２枚のシートは互いに接着した。次にこの３次元構造体をヌードラット（免疫不全ラット、Ｆ３４４）の背部皮下組織に常法に従い移植した。
その結果、図１８に示すように、移植直後より体表面からラットの自己心臓の拍動とは独立した移植細胞構造体由来の心電波形が確認された。移植３週間後、移植部位を切開したところ、移植細胞構造体の拍動およびそれへの生体組織側からの血管新生が肉眼レベルで確認された。
図１９は、その部分の組織切片をアザン染色（Ｈ．Ｅ、Ａｚａｎ染色）した結果を示す顕微鏡写真である。移植細胞構造体は筋組織であるために赤色に、移植された皮下組織は結合組織であり、青色に染まる。そしてその移植細胞構造体に赤色に染まった血管に認められ、その管内に赤色の血球のあることを認められた。また、この移植細胞構造体内に血管が形成されたことは、図２０の血管内皮細胞のみが染色されるＦａｃｔｔｏｒ  ＶＩＩＩ免疫染色の結果からも確認することができた。
以上により、組織切片上でも心筋組織同様の構造及び移植細胞構造体内の血管の新生が確認された。
産業上の利用の可能性
本発明によれば、心筋細胞シートの３次元培養が可能となり、心筋様組織を構築することができる。したがって、本発明は臨床応用が大いに期待でき、細胞工学、医用工学、などの医学、生物学等の分野における極めて有用な発明である。
【図面の簡単な説明】
図１は、心筋細胞を温度応答性培養皿（グラフト量  ２．０μｇ／ｃｍ２）を用いて培養した場合と、温度応答性ポリマーで被覆されていない市販培養皿を用いて培養した場合との心筋細胞の増殖状態を示す顕微鏡写真である。
図２は、心筋細胞を温度応答性培養皿（グラフト量  ２．０μｇ／ｃｍ２）を用いて培養した場合と、温度応答性ポリマーで被覆されていない市販培養皿を用いて培養した場合との心筋細胞シートの運動状態を示すチャートである。
図３は、ポリ（Ｎ−イソプロピルアクリルアミド）をグラフトした培養皿上で培養した心筋細胞シートに低温処理を施した場合の、心筋細胞シートの形態学的変化を示す顕微鏡写真である。
図４は、心筋細胞シートを得るための２次元マニピュレーション（マニピュレーション法▲１▼）を説明する図である。
図５は、マニピュレーション法▲１▼中の細胞骨格（Ｆ−ａｃｔｉｎ）、細胞核（Ｎｕｃｌｅｉ）の様子を示す顕微鏡写真である。
図６は、図５に対応する各々の心筋細胞シートの運動状態を示すチャートである。
図７は、マニピュレーション法▲１▼を２回繰り返し２層の心筋様細胞の３次元構造体を得る方法（マニピュレーション法▲２▼）を説明する図である。
図８は、マニピュレーション法▲１▼及びマニピュレーション法▲２▼によって得られた心筋細胞シート及び３次元構造体の断面の様子を示す顕微鏡写真である。
図９は、マニピュレーション法▲１▼における高分子膜を高分子メッシュとし、剥離させた心筋細胞シートをそのまま培養皿に反転、固定させる方法を方法（マニピュレーション法▲３▼）を説明する図である。
図１０は、高分子メッシュをあらかじめ別の培養皿上に固定しておき、その後はマニピュレーション法▲１▼の方法に従い心筋細胞シートを移し替える方法（マニピュレーション法▲４▼）を説明する図である。
図１１は、マニピュレーション法▲３▼によって得られた心筋細胞シート表面の顕微鏡写真（上段）及びＨ．Ｅ．染色後の断面図（下段）の顕微鏡写真である。
図１２は、マニピュレーション法▲３▼によって得られた心筋細胞シートの顕微鏡写真（上段）及びその運動性を示すチャートである。
図１３は、ヘマトキシリン−エオシン染色した、マニピュレーション法▲３▼によって得られた心筋様細胞の３次元構造体の断面を表す顕微鏡写真である。
図１４は、ヘマトキシリン−エオシン染色した、マニピュレーション法▲３▼によって得られた培養心筋様細胞の３次元構造体の断面を表す顕微鏡写真である。
図１５は、マニピュレーション法▲３▼を改良して２層の心筋様細胞の３次元構造体を得る方法（マニピュレーション法▲５▼）を説明する図である。
図１６は、マニピュレーション法▲５▼によって得られた心筋様細胞の３次元構造体表面の顕微鏡写真（上段）及びＨ．Ｅ．染色後の断面図（下段）の顕微鏡写真である。
図１７は、２枚の心筋様細胞シートを一部重ね合わせて付着させ、一方の細胞シートより電気刺激を与えると、もう一方の細胞シートへその電気刺激が伝わることを示す図である。
図１８は、実施例２におけるラットの自己心臓の心電波形及び移植細胞構造体由来の心電波形を示すチャートである。
図１９は、実施例２におけるラットの移植細胞構造体周辺部分の組織切片をアザン染色した顕微鏡写真である。
図２０は、実施例２におけるラットの移植細胞構造体の組織切片をＦａｃｔｏｒ  ＶＩＩＩ免疫染色した顕微鏡写真である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【図１７】
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【図１８】
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【図１９】
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【図２０】
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