(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
（１）固体培地を用いる糸状菌の固体培養終了後の培養物に、該糸状菌の胞子を分散させることができる媒体として、水、水に無機若しくは有機塩を含有させた溶液、又は天然油脂を加えて混合する工程と、（２）該混合する工程で得られた懸濁液から該培養物の残渣と胞子分散液を分離する工程と、（３）該分離する工程で分離した該胞子分散液と賦形剤を混合する工程と、（４）該混合する工程で得られた混合物を造粒する工程と、からなることを特徴とする製剤の製造方法。
【請求項２】
該固体培地がふすま培地である請求項１に記載の製剤の製造方法。
【請求項３】
（３）該分離する工程が、口径５０〜１０００μｍの篩を用いて分離する工程である請求項１又は２に記載の製剤の製造方法。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、固体培養した糸状菌培養物の胞子を有効成分とする製剤の製造方法に関し、さらに詳細には微生物農薬又は土壌改質剤である製剤の製造方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】
農業分野における有害生物の防除には、即効性、効果の安定性、コスト対効果の優位性、使用時の簡便性等の理由により化学合成農薬が主に使用されている。
【０００３】
しかしその一方で、薬剤耐性菌の出現による効力の低下、有用生物に対する悪影響、薬剤の環境あるいは作物への残留等の問題も顕在化してきた。
【０００４】
近年、これらの問題点を補う方法として総合防除(化学合成農薬依存型農業を改め様々な防除システムを駆使する方法)の考え方が取り入れられてきているが、その中でも特に生物農薬が注目されている。
【０００５】
この第一の理由は、生物農薬に使用される生物あるいはその原体は、本来自然界に存在するものを使用していることと対象となる有害生物が限定されることから、化学合成農薬の持つ欠点を補うものとして期待できるからである。
【０００６】
特に、植物の土壌病害(土壌中で生育する病害糸状菌によって引き起こされる病害)分野は、化学農薬でも安定した効果が期待できない病害が多いため微生物農薬に注目が集まっている。
【０００７】
土壌病害糸状菌防除のためには通常、病害菌に拮抗能を有する糸状菌(カビ)が使われ、トリコデルマ属のトリコデルマ  ハルジアナム、トリコデルマ  ハマタム、トリコデルマ  ビリデ、トリコデルマ  リグノラムやグリオクラディウム属のグリオクラディウム  ビレンス、グリオクラディウム  カテヌラタムやペニシリウム属のペニシリウム  ニグリカンス、ペニシリウム  クリソジーナム、ペニシリウム  オキザリカム等が知られている。これらの糸状菌は、宿主細胞膜の破壊、グルカナーゼ、キチナーゼ等の溶菌酵素による宿主細胞壁の分解、抗生物質生産等によって病害菌の生育を阻害する。
【０００８】
通常糸状菌の能力を利用した生物農薬は、その取扱い易さと環境変化に対する耐久性の点から、菌糸よりも胞子の形態が好ましいため、分生胞子の状態で製品化される。
【０００９】
したがって、分生胞子の生産量を増やすことを目的に、液状物質あるいは固体培地を水に溶解あるいは分散させた培地を使用する液体培養や、固体培地を用いる固体培養の様々な研究がなされている。
【００１０】
液体培養では菌糸は容易に増殖し、さらに培養条件を調整することで厚膜胞子、出芽胞子を生成させることができるが、一般に、培地と気相の界面で形成される分生胞子は液体培養ではほとんど生成しない。
【００１１】
液体培養で生成される厚膜胞子、あるいは出芽胞子は、固体培養法で容易に生産される分生胞子と比較して、その胞子濃度は、およそ１／１００以下であるため、糸状菌の胞子を目的とする場合は、固体培養法による分生胞子の生産が採用されるのが一般的である。
【００１２】
この固体培養とは、天然物由来の固形成分に加水し微生物の生育環境を整えた後、一定の含水率を維持しつつ微生物の成育適温で培養する方法であり、代表的な例としては、酒、味噌、醤油等の製造に使われる種麹生産を挙げることができる。
【００１３】
糸状菌を培養する固体培地としては、ふすま、籾、米糠、木材粉、腐葉土、ピートモス、堆肥、きのこ廃材、及びこれらの粉砕物等の有機物を含むものを単独あるいはその他の栄養分を添加して使われる。
【００１４】
培養は、調湿した上記培地を発酵槽あるいは金属トレー等に一定の層厚になるように仕込み種菌を接種して行われる。培養が始まると固体培地内は、菌糸体の増殖に伴い発熱し、さらに培地菌糸によって培地が固化してくるため培養温度の均一化及び培地利用率向上のため培地をほぐす操作を必要に応じて行う。
【００１５】
菌糸体増殖終了後、胞子着生が進み一般的には約１週間〜１ヶ月で培養が終了する。このときの培養終了物の含水率は、培地組成によっても異なるがおよそ２０〜８０％（ｗ／ｗ）の範囲にあり、培養が終了した固体培養物では、雑菌汚染防止及び保存安定性向上を目的に凍結乾燥、送風乾燥等の方法によって含水率を４０％（ｗ／ｗ）以下に調整される。
【００１６】
得られた培養物は、製剤としての各種特性を付与するための物質である賦形剤、例えば、有機栄養分、微量栄養素、結合剤、硬度調整剤等と均一に混合され、更に製剤化のための水分が添加されて製剤化される。
【００１７】
有機栄養分としては、ふすま、籾、米糠、木材粉、腐葉土、ピートモス、堆肥、きのこ廃材、あるいはこれらの粉砕物等で、目的とする菌の栄養分となるものである。
【００１８】
微量栄養素としては鉄、マグネシウム、カリウム等を含む無機物、あるいは、カニガラ、油粕、血粉、肉粉、木酢液等有機物の菌の生育を活性化する物質である。
【００１９】
結合剤とはいわゆる製剤のバインダーであり、カルボキシルメチルセルロース、メチルセルロース、ポリビニルアルコール、クレー、有機ポリマーラテックス、澱粉等が使われる。
【００２０】
硬度調整剤とは製剤自体の強度、硬度、あるいは水中での崩壊度等を調整する助剤であり前述の結合剤等が同様に使用される。
【００２１】
もちろん、これらの賦形剤は、使用する菌種、目的とする製剤の使用方法等によって適宜選択されるものである。
【００２２】
これらの賦形剤と培養物の混合は、培養終了物の含水率が通常４０％以上であるため均一混合が困難となる。
【００２３】
また、均一混合を行うために機械的に高い剪断力をかけて混合分散すると、胞子が熱、機械的剪断に弱いため、胞子が死滅することになる。
【００２４】
そこで一旦培養物を乾燥して混合攪拌することも考えられるが、この場合も乾燥物は乾燥の過程でブロック化してしまい、それを解砕する必要があり、上述した場合と同様に機械的剪断力により胞子の死滅を招いてしまうことになる。
【００２５】
胞子の死滅を防止するには、機械的剪断及びそれに伴う温度上昇を招く粉砕処理工程を省略すれば良いが、例えば培地として用いるフスマの粒子径は１００μｍから５ｍｍ程度と幅が広く、２００μｍ程度の平均粒子径を持つ栄養成分としての機能と賦形剤としての機能を有する増量剤（例えば小麦粉）と均一に混合して製剤化するためには粉砕処理は必須であった。
【００２６】
また、培地を事前に２００μｍ程度にまで粉砕して固体培養する方式も考えられるが、培地の通気性が著しく低下するため、糸状菌の固体培養に問題が発生してしまう。
【００２７】
【発明が解決しようとする課題】
本発明が解決しようとする課題は、固体培養によって得られた糸状菌の分生胞子の生存率(または回収率)を低下させることなく製剤化できる製剤の製造方法を提供することにある。
【００２８】
【課題を解決するための手段】
上記課題を解決するには、固体培養後の培養物が水分に馴染みやすい性質を持つこと、胞子が水分や油脂分中で分散しやすいこと、さらに培養物と胞子の大きさに対して培養物の大きさが格段に大きいことから容易に分離できることに着目して本発明を完成するに至った。
【００２９】
すなわち本発明は、（１）固体培地を用いる糸状菌の固体培養終了後の培養物に、該糸状菌の胞子を分散させることができる媒体として、水、水に無機若しくは有機塩を含有させた溶液、又は天然油脂を加えて混合する工程と、（２）混合する工程で得られた懸濁液から培養物の残渣と胞子分散液を分離する工程と、（３）分離する工程で分離した胞子分散液と賦形剤を混合する工程と、（４）混合する工程で得られた混合物を造粒する工程と、からなることを特徴とする製剤の製造方法を提供するものである。
【００３０】
固体培養終了後の培養物に対して加える媒体としては、蒸留水、イオン交換水、水道水等の水分や、これらにさらに緩衝液や生理食塩水等の無機あるいは有機塩を含有した溶液であってもよく、または、胞子の死滅がなければ大豆油、オリーブ油等の天然油脂であってもよい。
【００３１】
この加える媒体の量としては、固体培地の種類と上記媒体の種類にもよるが、懸濁液中の培養物の分散状態と胞子の分散状態との点から、乾燥培養物１部に対して５〜５０００倍（重量換算）とすることが好適である。
【００３２】
また、上記媒体にさらに胞子に対して栄養成分となる溶液を混合した混合液としても構わない。
【００３３】
固体培地としては上述したような種々の培地が挙げられるが、菌糸を培養しやすく多数の胞子が得られること、品質の均一性に優れること、および上記（２）の懸濁液から培養物の残渣と胞子分散液を分離する工程において分離がしやすいこと等の点から、ふすま培地が好適である。
【００３４】
ふすま培地であれば、トリコデルマ属のトリコデルマ  ハルジアナム、トリコデルマ  ハマタム、トリコデルマ  ビリデ、トリコデルマ  リグノラムやグリオクラディウム属のグリオクラディウム  ビレンス、グリオクラディウム  カテヌラタムやペニシリウム属のペニシリウム  ニグリカンス、ペニシリウム  クリソジーナム、ペニシリウム  オキザリカム等の種々の糸状菌に対して好適に使用することができるのである。
【００３５】
こうして得られる懸濁液中の残渣の大きさは、例えばふすま培地の場合には通常乾燥状態では５００〜１０００μｍであるが、膨潤していることにより２０００〜５０００μｍとなっている。
【００３６】
一方、懸濁液中の胞子の大きさは１０μｍ以下であることから、両者の大きさは２オーダー以上の違いがあることになる。
【００３７】
したがって、懸濁液から胞子分散液を分離する際には、上記それぞれの粒径の大きさに対して分離できるものであれば濾紙、濾布、篩、中空紙等の種々の分離手段を適用することができるが、分離速度や目詰まり等の分離効率を考慮すると口径５０〜１０００μｍの篩を用いることが好適である。
【００３８】
この口径は、作製する製剤の種類によって変えることが好ましい。すなわち顆粒水和剤を作製する場合は５０〜２００μｍ、粒剤を作製する場合は２００〜１０００μｍが好ましく、特に３００〜５００μｍが好ましい。
【００３９】
この分離手段は複数段の構成としてもよい。例えば顆粒水和剤製造に当たり２段の分離工程とする際には、第１段として口径の大きな篩（例えば２００〜１０００μｍの篩）を使用して粗濾過を行い、第２段として口径の小さな篩（例えば５０〜２００μｍ）を使用して密濾過する構成としてもよい。
【００４０】
同じように粒剤製造に当たり２段の分離工程とする際には、第１段として口径の大きな篩（例えば５００〜１０００μｍの篩）を使用して粗濾過を行い、第２段として口径の小さな篩（例えば２００〜５００μｍ）を使用して密濾過する構成としてもよい。
【００４１】
これらは懸濁液の総量に対して適宜選択すればよく、また、混合槽でバッチ処理するような製造ラインにおいては循環ライン中に上記篩を複数段配置した構成としてもよく、混合槽からの連続製造ラインを構成する場合には、配管に上記篩を複数段配置して濾液回収槽に濾液のみを回収する構成としてもよい。
【００４２】
培養物中の胞子は、例えば水を加え攪拌することで容易に水中に分散するが、濾過残渣の保水能は通常、非常に大きいので、胞子回収効率は、専ら濾過残渣中の濾液の回収率に依存することになる。
【００４３】
したがって、胞子の回収率を上げるためには、分離工程として減圧濾過、加圧濾過、あるいは濾過残渣を絞る等の方法を使用してもよく、またこれらの方法を複数併用することも効果的である。
また、さらに胞子を死滅させることのないような界面活性剤等を併用して濾過効率を高めることも有効である。
【００４４】
こうして得られた胞子分散液は、製剤化するための造粒工程にそのまま使用することができるのである。
【００４５】
上述した各種賦形剤を均一に混合した原料に、上記胞子分散液を噴霧等の方法により加液し、これを混練したものを押出し造粒により造粒して製剤とする。
【００４６】
もちろん、原料の混練と胞子分散液の噴霧とを同時に行い、さらに造粒する工程とを同時に行うことにより、製剤工程の効率化を図ることも好ましく、その際には転動造粒機や混合造粒機を使用することが好適である。
【００４７】
転動造粒機には、例えば回転容器型、振動型、パン型、ドラム型、混合機械型などがあり、また混合造粒機には、ブレード式造粒機やピン造粒機など種々の造粒機があるが、いずれの方式を採用しても構わない。
【００４８】
【実施例】
以下、実施例と比較例を用い本発明を更に具体的に説明する。
（実施例１）
ポテトデキストロース寒天培地(ディフコ社製)で培養温度２８℃、１週間培養したトリコデルマ  ハルジアナムＡＴＣＣ７４０５８の分生胞子を１２１℃、６０分殺菌済みのふすま培地(千葉製粉（株）社製)に接種し、含水率６８％、培養温度２８℃で１週間培養した。
【００４９】
次に、図１に示す工程に従い、この固体培養終了後の培養物１に対し重量比で９倍量の水道水２を加えて撹拌混合し、懸濁液を作製した。次にこの懸濁液を目開き１０００μｍの篩３と、続いて３００μｍの篩４に通し、培地として使用したフスマのみを取り除いた。
【００５０】
胞子を含む濾液１ｋｇに対し２ｋｇ(重量換算２倍量)の小麦粉(日清製粉（株）社製)を予め混合造粒装置５レーディゲミキサーＭ−２０型(総発売元（株）マツボー)に仕込んでおき、主軸回転数毎分２３０回転で撹拌しながら濾液を毎分１Ｌで噴霧し、２０分間造粒処理を行い、その後５０℃で４時間乾燥して造粒品６とした。
【００５１】
以上の製造方法で得られた造粒品７は、分生胞子生存率が固体培養後の培養物に比し、８０％という極めて高い数値を示した。
【００５２】
（実施例２）
ポテトデキストロース寒天培地(ディフコ社製)上で培養温度２５℃、１週間培養したグリオクラディウム  ビレンスＩＦＯ６３５５の分生胞子を１２１℃、６０分殺菌済みのふすま培地(千葉製粉（株）社製)に接種し、含水率６８％、培養温度２５℃で１週間培養した。
【００５３】
この固体培養終了後の培養物に対し重量比で９倍量の水道水を加えて撹拌混合し、懸濁液を作製した。次にこの懸濁液を目開き１０００μｍ、続いて３００μｍの篩に通し、培地として使用したフスマのみを取り除いた。
【００５４】
胞子を含む濾液１００ｇに対し２００ｇ(重量換算２倍量)の小麦粉(日清製粉（株）社製)を予め転動造粒装置ラボラトリーマトリックス(ＬＭＡ５)(奈良機械（株）社製)に仕込んでおき、主軸回転数毎分６００回転で撹拌しながら濾液を毎分１０ｇの速度で滴下し小麦粉と濾液を良くなじませた後、主軸回転数を毎分１００回転に変え１０分間造粒処理を行った。造粒終了物は、３０℃で２４時間送風乾燥し造粒品とした。
【００５５】
以上の製造方法で得られた造粒品は、分生胞子生存率が固体培養後の培養物に比し、７２％という極めて高い数値を示した。
【００５６】
（比較例１）
ポテトデキストロース寒天培地(ディフコ社製)で培養温度２８℃、１週間培養したトリコデルマ  ハルジアナムＡＴＣＣ７４０５８の分生胞子を１２１℃、６０分殺菌済みのふすま培地(千葉製粉（株）社製)に接種し、含水率６８％、培養温度２８℃で１週間培養した。
【００５７】
次に、図２に示す工程に従い、この固体培養終了後の培養物を除湿乾燥機７Ｔ−５Ｆ型(（株）田中化学機械製造所社製)を使用し３０℃、２４時間乾燥した。
【００５８】
次にこの乾燥物をエックサンプルミル８ＫＩＩ−１型(不二パウダル社製：現（株）ダルトン)にて平均粒子径３００μｍまで粉砕し粒剤の原料とした。
【００５９】
この乾燥培養物粉砕品１ｋｇと２ｋｇ(重量換算２倍量)の小麦粉(日清製粉（株）社製)を予め混合造粒装置５レーディゲミキサーＭ−２０型(総発売元（株）マツボー)に仕込んでおき、主軸回転数毎分２３０回転で撹拌しながら水道水１．５Ｌを毎分１Ｌで噴霧し、２０分間造粒処理を行い、その後５０℃で４時間乾燥し造粒品９とした。
【００６０】
以上の製造方法で得られた造粒品９は、分生胞子生存率が固体培養後の培養物に比し、１２％であり大幅に低下していた。
【００６１】
（比較例２）
ポテトデキストロース寒天培地(ディフコ社製)上で培養温度２８℃、１週間培養したグリオクラディウム  ビレンスＩＦＯ６３５５の分生胞子を１２１℃、６０分殺菌済みのふすま培地(千葉製粉（株）社製)に接種し、含水率６８％、培養温度２５℃で１週間培養した。
【００６２】
この固体培養終了後の培養物を除湿乾燥機Ｔ−５Ｆ型(（株）田中化学機械製造所社製)を使用し３０℃、２４時間乾燥した。
【００６３】
次にこの乾燥物をエックサンプルミルＫＩＩ−１型(不二パウダル社製：現（株）ダルトン)にて平均粒子径３００μｍまで粉砕し粒剤の原料とした。
【００６４】
この乾燥培養物粉砕品１００ｇに対し２００ｇ(重量換算２倍量)の小麦粉(日清製粉（株）社製)を予め転動造粒装置ラボラトリーマトリックス(ＬＭＡ５)(奈良機械（株）社製)に仕込んでおき、主軸回転数毎分６００回転で撹拌しながら水道水１５０ｇを毎分１０ｇの速度で滴下し小麦粉と濾液を良くなじませた後、主軸回転数を毎分１００回転に変え１０分間造粒処理を行った。造粒終了物は、３０℃で２４時間送風乾燥し造粒品とした。
【００６５】
以上の製造方法で得られた造粒品は、分生胞子生存率が固体培養後の培養物に比し、８％であり大幅に低下していた。
【００６６】
【発明の効果】
以上、詳細に説明したように、固体培養終了後の培養物に糸状菌の胞子を分散させることができる媒体を加えて混合した懸濁液から、培養物の残渣と胞子分散液を分離し、この分離した胞子分散液と賦形剤を混合・造粒することにより、糸状菌の分生胞子の生存率を低下させることなく製剤化することができる。
【図面の簡単な説明】
【図１】本発明による製剤の製造方法の一例を示す工程図。
【図２】従来方法による製剤の製造方法の一例を示す工程図。
【符号の説明】
１  培養物
２  水道水
３  篩
４  篩
５  混合・造粒・乾燥機
６  造粒品
７  乾燥機
８  粉砕機
９  造粒品
【図１】
0004831898.tif 000002
【図２】
0004831898.tif 000003