(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
以下の式（Ｉ）：
【化１】
0004837831.tif 000009
｛式中、
（ａ）各Ｒは、それぞれ、水素、Ｃ1〜Ｃ6アルキル、Ｃ3〜Ｃ7シクロアルキル、フェニルまたはフェニル（Ｃ1〜Ｃ3）−アルキルであり、
（ｂ）Ｘは、−ＣＨ2ＯＨ、−ＣＯ2Ｒ2、−ＯＣ（Ｏ）Ｒ2、−ＣＨ2ＯＣ（Ｏ）Ｒ2またはＣ（Ｏ）ＮＲ3Ｒ4であり、
（ｃ）各Ｒ2、Ｒ3およびＲ4は、それぞれ、Ｈ；Ｃ1〜6−アルキル；１〜３Ｃ1〜6−アルコキシ、Ｃ3〜Ｃ7シクロアルキル、Ｃ1〜6−アルキルチオ、ハロゲン、ヒドロキシ、アミノ、モノ（Ｃ1〜6−アルキル）アミノ、ジ（Ｃ1〜6−アルキル）アミノ、またはＣ6〜10−アリールアリールであって１〜３ハロゲン、Ｃ1〜6−アルキル、ヒドロキシ、アミノ、モノ（Ｃ1〜6−アルキル）アミノ、またはジ（Ｃ1〜6−アルキル）アミノにより置換されうるＣ6〜10−アリールアリールで置換されたＣ1〜6−アルキル；Ｃ6〜10−アリール；またはＣ6〜10−アリールであって１〜３ハロゲン、ヒドロキシ、アミノ、モノ（Ｃ1〜6−アルキル）アミノ、ジ（Ｃ1〜6−アルキル）アミノ、またはＣ1〜6−アルキルにより置換されたＣ6〜10−アリールであり、
（ｄ）ＺおよびＺ’は、それぞれ、１〜３Ｓまたは非過酸化物Ｏに任意に割り込まれる（Ｃ1〜Ｃ6）アルキルであるか、またはそれらは存在せず、かつ、ｎは、１〜３である。｝により表される化合物、または医薬として許容されるその塩。
【請求項２】
５’−Ｘが−ＣＨ2ＯＨまたは−Ｃ（Ｏ）ＮＲ3Ｒ4である、請求項１に記載の化合物。
【請求項３】
５’−Ｘが−Ｃ（Ｏ）ＮＲ3Ｒ4である、請求項２に記載の化合物。
【請求項４】
Ｒ3がＨであり、そしてＲ4が（Ｃ1−Ｃ4）アルキルである、請求項３の化合物。
【請求項５】
各ＲがＨまたは（Ｃ1−Ｃ4）アルキルである、請求項１に記載の化合物。
【請求項６】
Ｚ’が−ＣＨ2−または−ＣＨ2−ＣＨ2−である、請求項１に記載の化合物。
【請求項７】
Ｚが−ＣＨ2−または−ＣＨ2−ＣＨ2−である、請求項６に記載の化合物。
【請求項８】
Ｃ3−Ｃ10シクロアルキルがシクロヘキシルまたはシクロペンチルである、請求項１に記載の化合物。
【請求項９】
Ｘが（Ｃ1−Ｃ4）アルコキシカルボニル、Ｃ（Ｏ）ＮＲ3Ｒ4またはアセトキシメチルである、請求項８に記載の化合物。
【請求項１０】
Ｘ−ＺがＨＯ2Ｃ−Ｚ−である、請求項８に記載の化合物。
【請求項１１】
Ｃ3−Ｃ10シクロアルキル上Ｘ−ＺおよびＺ’がトランスである、請求項８に記載の化合物。
【請求項１２】
ＲがＨであり、５’−Ｘがエチルアミノカルボニルであり、そして（Ｘ−Ｚ−）n〔（Ｃ3−Ｃ10）−シクロアルキル〕−Ｚ’−Ｃ≡Ｃ−が２−（４−メトキシカルボニル−シクロヘキシルメチル）エチニルまたは２−（４−カルボキシ−シクロヘキシルメチル）エチニルである、請求項１に記載の化合物。
【請求項１３】
ＲがＨであり、５’−Ｘがエチルアミノカルボニルであり、そして（Ｘ−Ｚ−）n〔（Ｃ3−Ｃ10）−シクロアルキル〕−Ｚ’−Ｃ≡Ｃ−が２−（４−アセトキシメチル−シクロヘキシルメチル）エチニルである、請求項１に記載の化合物。
【請求項１４】
［４−（３−｛９−［（２Ｒ，３Ｒ，４Ｓ，５Ｓ）−５−（Ｎ−エチルカルバモイル）−３，４−ジヒドロキシオキソラン−２−イル］−６−アミノプリン−２−イル｝プロプ−２−イニル）シクロヘキシル］メチルアセテート、又は医薬として許容されるその塩。
【請求項１５】
［（２Ｒ，３Ｒ，４Ｓ，５Ｓ）−５−（６−アミノ−２−｛３−［４−（ヒドロキシメチル）シクロヘキシル］プロプ−１−イニル｝プリン−９−イル）−３，４−ジヒドロキシオキソラン−２−イル］−Ｎ−エチルカルボキサミド、又は医薬として許容されるその塩。
【請求項１６】
メチル−４−（３−｛９−［（２Ｒ，３Ｒ，４Ｓ，５Ｓ）−５−（Ｎ−エチルカルバモイル）−３，４−ジヒドロキシオキソラン−２−イル］−６−アミノプリン−２−イル）｝プロプ−１−イニル）シクロヘキサン−カルボキシレート、又は医薬として許容されるその塩。
【請求項１７】
４−（３−｛９−［（２Ｒ，３Ｒ，４Ｓ，５Ｓ）−５−（Ｎ−エチルカルバモイル）−３，４−ジヒドロキシオキソラン−２−イル］−６−アミノプリン−２−イル｝プロプ−１−イニル）シクロヘキサンカルボン酸、又は医薬として許容されるその塩。
【請求項１８】
請求項１〜１７のいずれか１項に記載の化合物を含む、炎症反応の抑制用医薬組成物。
【請求項１９】
式中、５’−Ｘが−ＣＨ2ＯＨまたは−Ｃ（Ｏ）ＮＲ3Ｒ4である、請求項１８に記載の組成物。
【請求項２０】
式中、５’−Ｘが−Ｃ（Ｏ）ＮＲ3Ｒ4である、請求項１８に記載の組成物。
【請求項２１】
式中、Ｒ3がＨであり、そしてＲ4が（Ｃ1−Ｃ4）アルキルである、請求項２０に記載の組成物。
【請求項２２】
式中、各ＲがＨまたは（Ｃ1−Ｃ4）アルキルである、請求項１８に記載の組成物。
【請求項２３】
式中、Ｚ’が−ＣＨ2−または−ＣＨ2−ＣＨ2−である、請求項１８に記載の化合物。
【請求項２４】
式中、Ｚが−ＣＨ2−または−ＣＨ2−ＣＨ2−である、請求項１８に記載の組成物。
【請求項２５】
式中、Ｃ3−Ｃ10シクロアルキルがシクロヘキシルまたはシクロペンチルを含む、請求項１８に記載の組成物。
【請求項２６】
式中、Ｘが（Ｃ1−Ｃ4）アルコキシカルボニルまたはアセトキシメチルである、請求項２５に記載の組成物。
【請求項２７】
式中、Ｘ−ＺがＨＯ2Ｃ−Ｚ−である、請求項２５に記載の組成物。
【請求項２８】
式中、Ｃ3−Ｃ10シクロアルキル上のＸ−ＺおよびＺ’がトランスである、請求項２５に記載の組成物。
【請求項２９】
式中、ＲがＨであり、Ｘがエチルアミノカルボニルであり、そして（Ｘ−Ｚ−）n〔（Ｃ3−Ｃ10）−シクロアルキル〕−Ｚ’−Ｃ≡Ｃ−が２−（４−メトキシカルボニル−シクロヘキシルメチル）エチニルまたは２−（４−カルボキシ−シクロヘキシルメチル）エチニルである、請求項１８に記載の組成物。
【請求項３０】
式中、ＲがＨであり、Ｘがエチルアミノカルボニルであり、そして（Ｘ−Ｚ−）n〔（Ｃ3−Ｃ10）−シクロアルキル〕−Ｚ’−Ｃ≡Ｃ−が２−（４−アセトキシメチル−シクロヘキシルメチル）エチニルである、請求項１８に記載の組成物。
【請求項３１】
前記化合物は、［４−（３−｛９−［（２Ｒ，３Ｒ，４Ｓ，５Ｓ）−５−（Ｎ−エチルカルバモイル）−３，４−ジヒドロキシオキソラン−２−イル］−６−アミノプリン−２−イル｝プロプ−２−イニル）シクロヘキシル］メチルアセテートである、請求項１８に記載の組成物。
【請求項３２】
前記化合物は、［（２Ｒ，３Ｒ，４Ｓ，５Ｓ）−５−（６−アミノ−２−｛３−［４−（ヒドロキシメチル）シクロヘキシル］プロプ−１−イニル｝プリン−９−イル）−３，４−ジヒドロキシオキソラン−２−イル］−Ｎ−エチルカルボキサミドである、請求項１８に記載の組成物。
【請求項３３】
前記化合物は、メチル−４−（３−｛９−［（２Ｒ，３Ｒ，４Ｓ，５Ｓ）−５−（Ｎ−エチルカルバモイル）−３，４−ジヒドロキシオキソラン−２−イル］−６−アミノプリン−２−イル）｝プロプ−１−イニル）シクロヘキサン−カルボキシレートである、請求項１８に記載の組成物。
【請求項３４】
前記化合物は、４−（３−｛９−［（２Ｒ，３Ｒ，４Ｓ，５Ｓ）−５−（Ｎ−エチルカルバモイル）−３，４−ジヒドロキシオキソラン−２−イル］−６−アミノプリン−２−イル｝プロプ−１−イニル）シクロヘキサン・カルボン酸である、請求項１８に記載の組成物。
【請求項３５】
タイプＩＶホスホジエステラーゼ抑制剤をさらに含む、請求項１８に記載の組成物。
【請求項３６】
前記抑制剤がロリプラム（ｒｏｌｉｐｒａｍ）である、請求項３５に記載の組成物。
【請求項３７】
前記炎症反応が虚血による、請求項１８に記載の組成物。
【請求項３８】
前記炎症反応がアテローム性動脈硬化症による、請求項１８に記載の組成物。
【請求項３９】
前記炎症反応が自己免疫疾患による、請求項１８に記載の組成物。
【請求項４０】
前記炎症反応が虚血／再灌流障害による、請求項１８に記載の組成物。
【請求項４１】
前記炎症反応が心臓、腎臓、または肺で起こる、請求項１８に記載の組成物。
【請求項４２】
前記炎症反応が脳卒中、外傷性脳障害、または脊髄障害による、請求項１８に記載の組成物。
【請求項４３】
前記炎症反応が器官、組織または細胞移植による、請求項１８に記載の組成物。
【請求項４４】
前記炎症反応が感染による、請求項１８に記載の組成物。
【請求項４５】
前記炎症反応が皮膚疾患による、請求項１８に記載の組成物。
【請求項４６】
前記炎症反応が血管形成術、ステント配置、シャント配置または移植術による、請求項１８に記載の組成物。
【請求項４７】
前記炎症反応がアレルギー疾患による、請求項１８に記載の組成物。
【請求項４８】
前記炎症反応が消耗性疾患による、請求項１８に記載の組成物。
【請求項４９】
前記炎症反応が免疫抑制治療による、請求項１８に記載の組成物。
【請求項５０】
前記炎症反応が、Ａ2Aアデノシン・レセプターの活性が関係し、かつ、このような活性のアゴニズムが望まれるところの、哺乳動物における病理学的症状又は兆候に因るものである、請求項１８に記載の組成物。
【請求項５１】
前記炎症反応を治療するための医薬の製造における、請求項１〜１７のいずれか１項に記載の化合物の使用。
【請求項５２】
前記医薬がタイプＩＶホスホジエステラーゼ抑制剤を含む、請求項５１に記載の使用。
【請求項５３】
前記ホスホジエステラーゼ抑制剤がロリプラムである、請求項５２に記載の使用。
【請求項５４】
前記医薬が液体担体を含む、請求項５２に記載の使用。
【請求項５５】
前記医薬が非経口投与に適合したものである、請求項５２に記載の使用。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
発明の分野
本発明は、炎症活性による組織障害を防止するための方法および組成物に関する。
【０００２】
発明の背景
本発明は、合衆国政府基金（ＮＩＨグラントＲＯＬＨＬ３７９４２）の援助により作製された。合衆国政府は本発明の一定の権利を有する。
【０００３】
炎症反応は身体から有害な作用物質を排除するための目的に役立つ。感染、アレルゲン、自己免疫刺激剤、移植組織に対する免疫反応、有毒性化学物質、および毒素、虚血／再灌流、低酸素症、機械的および熱的外傷を含む炎症反応を引き起こすことが可能である広範囲の病原性傷害がある。炎症は、通常、損傷作用物質および損傷組織の排除、希釈剤による希釈、および単離に役立つごく局所的な作用である。身体の反応は、それが目標作用物質の排除、または外傷傷害への反応の過程において、宿主組織に対して不適切な障害をもたらす時、疾患の作用原因となる。
【０００４】
例として、炎症は、いくつかの血管疾患または障害の病因の構成材料である。例には、虚血／再灌流障害（Ｎ．Ｇ．Ｆｒａｎｇｏｇｉａｎｎｉｓ  ｅｔ  ａｌ．，ｉｎ  Ｍｙｏｃａｒｄｉａｌ  Ｉｓｃｈｅｍｉａ：Ｍｅｃｈａｎｉｓｍｓ，Ｒｅｐｅｒｆｕｓｉｏｎ，Ｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎ，Ｍ．Ｋａｒｍａｚｙｎ，ｅｄ．，Ｂｉｒｋｈｕｓｅｒ  Ｖｅｒｌａｇ（１９９６）ａｔ  ２３６〜２８４；Ｈ．Ｓ．Ｓｈａｒｍａ  ｅｔ  ａｌ．，Ｍｅｄ．ｏｆ  Ｉｎｆｌａｍｍ．，６，１７５（１９８７））、アテローム性動脈硬化症（Ｒ．Ｒｏｓｓ，Ｎａｔｕｒｅ，３６２，８０１（１９９３））、炎症性大動脈瘤（Ｎ．Ｇｉｒａｒｄｉ  ｅｔ  ａｌ．，Ａｎｎ．Ｔｈｏｒ．Ｓｕｒｇ．，６４，２５１（１９９７）；Ｄ．Ｉ．Ｗａｌｋｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，Ｂｒｉｔ．Ｊ．Ｓｕｒｇ．，５９，６０９（１９７２）；Ｒ．Ｌ．Ｐｅｎｎｅｌ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊ．Ｖａｓｃ．Ｓｕｒｇ．，２，８５９（１９８５））、およびバルーン血管形成術を伴う再狭窄（上記引用Ｒ．Ｒｏｓｓを参照すること）が挙げられる。炎症に関連する細胞には、白血球（すなわち、免疫系細胞−好中球、好酸球、リンパ球、単球、好塩基球、マクロファージ、樹状細胞、およびマスト細胞）、血管内皮、血管平滑筋細胞、繊維芽細胞、および筋細胞が挙げられる。
【０００５】
白血球による腫瘍壊死因子アルファ（ＴＮＦα）などの炎症性サイトカインの放出は、感染を含む病原の侵入と闘う一つの手段である。ＴＮＦαは、白血球および内皮細胞上の付着性因子の発現および活性化を刺激し、第２刺激への炎症反応を強化するために好中球を突発させると共に、付着好中球の酸化活性能を強める。上記引用Ｓｈａｒｍａ  ｅｔ  ａｌ．，を参照すること。加えて、マクロファージ／樹状細胞は、抗原をリンパ球まで運ぶ補助細胞として機能する。順番に、リンパ球は刺激されて、炎症性細胞毒性細胞の代わりとして機能する。
【０００６】
一般に、サイトカインは好中球を刺激して、酸化（例えば、過酸化物および二次生成物）および非酸化（例えば、ミエロペルオキシダーゼおよび他の酵素）炎症活性能を強める。サイトカインの不適切ならびに過剰の放出は、組織損傷性の酸化または非酸化生産物の放出を通して、望ましくない過大な病原作用を生み出すことになりうる（Ｋ．Ｇ．Ｔｒａｃｅｙ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．，１６７，１２１１（１９８８）；およびＤ．Ｎ．Ｍａｎｎｅｌ  ｅｔ  ａｌ．，Ｒｅｙ．Ｉｎｆ．Ｄｉｓ．，９（ｓｕｐｐｌ．５），Ｓ６０２〜Ｓ６０６（１９８７））。例えば、ＴＮＦαは、好中球を誘導して血管壁に付着させ、その後、好中球は血管を通して移動し、それらの酸化性または非酸化性炎症生産物を放出することができる。
【０００７】
単球は炎症病巣にゆっくりと集まるが、好ましい条件において、単球は長期滞在補助細胞およびマクロファージの中に集まる。炎症誘引により刺激すると、単球／マクロファージは、また、数多くのサイトカイン（ＴＮＦαを含む）、補体、脂質、反応性酸素化学種、プロテアーゼ、および組織を改造し周囲の組織機能を調節する成長因子を生成し、分泌する。
【０００８】
例えば、炎症性サイトカインは、関節炎（Ｃ．Ａ．Ｄｉｎａｒｅｌｌｏ，Ｓｅｍｉｎ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，４，１３３（１９９２））；虚血（Ａ．Ｓｅｅｋａｍｐ  ｅｔ  ａｌ．，Ａｇｅｎｔｓ−Ａｃｔｉｏｎｓ−Ｓｕｐｐ．，４１，１３７（１９９３））；敗血症性ショック（Ｄ．Ｎ．Ｍａｎｎｅｌ  ｅｔ  ａｌ．，Ｒｅｖ．Ｉｎｆｅｃｔ．Ｄｉｓ．，９（ｓｕｐｐｌ．５），Ｓ６０２〜Ｓ６０６（１９８７））；喘息（Ｎ．Ｍ．Ｃｅｍｂｒｚｙｎｓｋａ  ｅｔ  ａｌ．，Ａｍ．Ｒｅｖ．Ｒｅｓｐｉｒ．Ｄｉｓ．，１４７，２９１（１９９３））；器官移植除去（Ｄ．Ｋ．Ｉｍａｇａｗａ  ｅｔ  ａｌ．，Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ，５１，５７（１９９１））；多発性硬化症（Ｈ．Ｐ．Ｈａｒｔｕｎｇ，Ａｎｎ．Ｎｅｕｒｏｌ．，３３，５９１（１９９３））；エイズ（Ｔ．Ｍａｔｓｕｙａｍａ  ｅｔ  ａｌ．，ＡＩＤＳ，５，１４０５（１９９１））；およびアルカリ焼けの眼の中（Ｆ．Ｍｉｙａｍｏｔｏ  ｅｔ  ａｌ．，Ｏｐｔｈａｌｍｉｃ  Ｒｅｓ．，３０，１６８（１９９７））において病原性であることが示されてきた。加えて、白血球中の過酸化物の形成は、ヒト免疫不全ウイルス（ＨＩＶ）（Ｓ．Ｌｅｇｒａｎｄ−Ｐｏｅｌｓ  ｅｔ  ａｌ．，ＡＩＤＳ  Ｒｅｓ．Ｈｕｍ．Ｒｅｔｒｏｖｉｒｕｓｅｓ，６，１３８９（１９９０））の複製を促進することに関係してきた。
【０００９】
アデノシンおよび非選択的にアデノシン受容体サブタイプを活性化するいくつかのアデノシン類似体は、炎症性酸化生成物の好中球生成を減少させることは、よく知られている（Ｂ．Ｎ．Ｃｒｏｎｓｔｅｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，Ａｎｎ．Ｎ．Ｙ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．，４５１．２９１（１９８５）；Ｐ．Ａ．Ｒｏｂｅｒｔｓ  ｅｔ  ａｌ．，Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｊ．，２２７，６６９（１９８５）；Ｄ．Ｊ．Ｓｃｈｒｉｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１３７，３２８４（１９８６）；Ｂ．Ｎ．Ｃｒｏｎｓｔｅｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，Ｃｌｉｎｉｃａｌ  Ｉｍｍｕｎｏｌ．ａｎｄ  Ｉｍｍｕｎｏｐａｔｈ．，４２，７６（１９８７）；Ｍ．Ａ．Ｉａｎｎｏｎｅ  ｅｔ  ａｌ．，ｉｎ  Ｔｏｐｉｃｓ  ａｎｄ  Ｐｅｒｓｐｅｃｔｉｖｅ  ｉｎ  Ａｄｅｎｏｓｉｎｅ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ，Ｅ．Ｇｅｒｌａｃｈ  ｅｔ  ａｌ．，ｅｄｓ．，Ｓｐｒｉｎｇｅｒ−Ｖｅｒｌａｇ，Ｂｅｒｌｉｎ，ｐ．２８６（１９８７）；Ｓ．Ｔ．ＭｃＧａｒｒｉｔｙ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊ．Ｌｅｕｋｏｃｙｔｅ  Ｂｉｏｌ．，４４，４１１４２１（１９８８）；Ｊ．Ｄｅ  Ｌａ  Ｈａｒｐｅ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１４２，１９８６（１９８９）；およびＣ．Ｐ．Ｎｉｅｌｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，Ｂｒ．Ｊ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．，９７．８８２（１９８９））。例えば、アデノシンは、バクテリアペプチド、ｆ−ｍｅｔ−ｌｅｕ−ｐｈｅ（ｆＭＬＰ）、および補足成分Ｃ5ａ（Ｂ．Ｎ．Ｃｒｏｎｓｔｅｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１３５，１３６６（１９８５））などの化学走性誘因物質により刺激された好中球からの過酸化物放出を抑制することが、示されてきた。アデノシンは、第１にＴＮＦαにより強化され、その後、ｆ−ｍｅｔ−ｌｅｕ−ｐｈｅなどの第２刺激剤により刺激されたＰＭＮ（好中球）の非常に強化された酸化性多発を低減することが可能である（Ｇ．Ｗ．Ｓｕｌｌｉｖａｎ  ｅｔ  ａｌ．，Ｃｌｉｎ．Ｒｅｓ．，４１，１７２Ａ（１９９３））。さらに、アデノシンはＴ−細胞系においてＨＩＶ複製速度を減少させることができる、と報ぜられてきた（Ｓ．Ｓｉｐｋａ  ｅｔ  ａｌ．，Ａｃｔａ．Ｂｉｏｃｈｉｍ．Ｂｉｏｐｙｓ．Ｈｕｎｇ．，２３，７５（１９８８））。しかし、生体内アデノシンが抗炎症性活性能を有するという証拠は何もない（Ｇ．Ｓ．Ｆｉｒｅｓｔｅｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，Ｃｌｉｎ．Ｒｅｓ．，４１，１７０Ａ（１９９３）、およびＢ．Ｎ．Ｃｒｏｎｓｔｅｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，Ｃｌｉｎ．Ｒｅｓ．，４１，２４４Ａ（１９９３））。
【００１０】
過酸化物放出に反対の効果を有することが可能である好中球へのアデノシン受容体の１種以上のサブタイプがあることが、示唆されてきた（Ｂ．Ｎ．Ｃｒｏｎｓｔｅｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．，８５，１１５０（１９９０））。好中球へのＡ2A受容体の存在は、元々Ｖａｎ  Ｃａｌｋｅｒらによって示された（Ｄ．Ｖａｎ  Ｃａｌｋｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ，２０６，２８５（１９９１））。
【００１１】
放射リガンド結合効力検定および生理学的反応に基づくＡ2Aアデノシン受容体（ＡＲ）の作動薬として、またさらに効力があり、および／または選択性のある化合物の開発が進んできている。最初に、アデノシンそれ自体、または５’−Ｎ−エチルカルボックスアミドアデノシン（ＮＥＣＡ）などのアデノシンの５’−カルボックスアミドなどの、Ａ2A受容体に対する選択性が殆どないか、または全くない化合物が開発された（Ｂ．Ｎ．Ｃｒｏｎｓｔｅｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１３５，１３６６（１９８５））。後に、２−アルキルアミノ置換基、例えば、ＣＶ１８０８およびＣＧＳ２１６８０の添加は、効力および選択性を増大することが示された（Ｍ．Ｆ．Ｊａｒｖｉｓ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．Ｅｘｐ．Ｔｈｅｒ．，２５１、８８８（１９８９））。ＷＲＣ−００９０などの２−アルコキシ−置換アデノシン誘導体は、冠状動脈Ａ2A受容体で、一層より効力があり、選択性がある（Ｍ．Ｕｅｅｄａ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．，３４，１３３４（１９９１））。２−アルキルヒドラジノアデノシン誘導体、例えば、ＳＨＡ２１１（ＷＲＣ−０４７４とも呼ばれる）も、冠状動脈Ａ2A受容体での作動薬として評価されてきた（Ｋ．Ｎｉｉｙａｍａ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．，３５，４５５７（１９９２））。
【００１２】
比較的に非特定のアデノシン類似体の組み合わせに関する一つの報告書がある。Ｒ−フェニルイソプロピルアデノシン（Ｒ−ＰＩＡ）および２−クロロアデノシン（Ｃｌ−Ａｄｏ）はホスホジエステラーゼ（ＰＤＥ）抑制剤と共に、好中球酸化活性能の低下をもたらすと言う（Ｍ．Ａ．Ｉａｎｎｏｎｅ  ｅｔ  ａｌ．，Ｔｏｐｉｃｓ  ａｎｄ  Ｐｅｒｓｐｅｃｔｉｖｅｓ  ｉｎ  Ａｄｅｎｏｓｉｎｅ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ，Ｅ．Ｇａｒｌａｃｈ  ｅｔ  ａｌ．，ｅｄｓ．，Ｓｐｒｉｎｇｅｒ−Ｖｅｒｌａｇ，Ｂｅｒｌｉｎ，ｐｐ．２８６〜２９８（１９８７））。しかし、Ｒ−ＰＩＡおよびＣｌ−Ａｄｏ類似体は、実際に、Ａ2Aアデノシン受容体に対するよりも、Ａ1アデノシン受容体に対して、より効力のある活性剤であり、その結果として、「心臓ブロック」などの影響を引き起こす心筋および他組織上のＡ1受容体の活性化による副作用を引き起しやすい。
【００１３】
Ｒ．Ａ．オルソンらは（米国特許第５，２７８，１５０号）、以下の式の選択的アデノシンＡ２受容体作動薬を開示している。
【化３】
0004837831.tif 000002
式中、Ｒｉｂはリボシルであり、Ｒ1はＨでありえて、Ｒ2はシクロアルキルでありえる。化合物は、高血圧、アテローム性動脈硬化症の治療に、および血管拡張薬として有用であることが開示されている。
【００１４】
オルソンらは（米国特許第５，１４０，０１５号）、以下の式の、ある種のアデノシンＡ2受容体作動薬を開示している。
【化４】
0004837831.tif 000003
式中、Ｃ（Ｘ）ＢＲ2はＣＨ2ＯＨでありえて、Ｒ1はアルキル−またはアルコキシアルキルでありえる。化合物は血管拡張薬または抗高血圧性として有用であることが開示されている。
【００１５】
リンデンらは（米国特許第５，８７７，１８０号）、好ましくはタイプＩＶホスホジエステラーゼ抑制剤と組み合わせてのＡ2Aアデノシン受容体の選択的作動薬である化合物の投与により、関節炎および喘息などのある種の炎症疾患は効果的に治療することが可能である、という発見に基づいている。リンデンらの発明の実施形態は、以下の式の、Ａ2Aアデノシン受容体の有効量を投与することにより、炎症疾患を治療するための方法を提供する。
【化５】
0004837831.tif 000004
式中、ＲおよびＸは特許中に記載されている通りである。
【００１６】
好ましい実施形態において、リンデンらの発明は、Ａ2Aアデノシン受容体作動薬と組み合わせたタイプＩＶホスホジエステラーゼ（ＰＤＥ）抑制剤の投与を含む。タイプＩＶホスホジエステラーゼ（ＰＤＥ）抑制剤は、以下の式のラセミ体、および光学的に活性な４−（ポリアルコキシフェニル）−２−ピロリドンを含む。
【化６】
0004837831.tif 000005
式中、Ｒ’、Ｒ18、Ｒ19およびＸは、米国特許第４，１９３，９２６号に開示され記載されている通りである。ロリプラムは、上記式内に含まれる適するタイプＩＶＰＤＥ抑制剤の例である。
【００１７】
Ｇ．クリスタリは（米国特許第５，５９３，９７５号）、リボシド残留物がカルボキシアミノにより置換されるか、またはカルボキシアミノ（Ｒ3ＨＮＣ（Ｏ）−）により置換される２−アリールエチニル，２−シクロアルキルエチニルまたは２−ヒドロキシアルキルエチニル誘導体を開示している。２−アルキニル基が（Ｃ3〜Ｃ16）アルキルにより置換される２−アルキニルプリン誘導体がミヤサカら（米国特許第４，９５６，３４５号）により開示された。’９７５化合物が、血管拡張薬であり、血小板凝集能を抑制し、その結果、抗虚血性、抗アテローム性動脈硬化症および抗高血圧性薬剤として有用であると開示されている。
【００１８】
しかしながら、副作用を減少させ、治療用途に有用である選択的Ａ2アデノシン受容体作動薬に対する、継続的な必要性が存在している。
【００１９】
発明の概要
本発明は、化合物、および哺乳動物組織の炎症活動の治療用にそれらを使用する方法を含む。炎症組織活動は病理的薬剤に帰すことができるか、または物理的、化学的あるいは熱的外傷、または器官、組織あるいは細胞移植、血管形成術（ＰＣＴＡ）、炎症に続く虚血／再灌流、または移植術などの医療処置の外傷に帰すことができる。本化合物は、エチン位で置換シクロアルキル部分により置換された新規のクラスである２−アルキニルアデノシン誘導体を含む。好ましくは、リボシド残留物は、５’−位（「Ｘ」）でＮ−アルキル−（またはシクロアルキル）カルボキシアミノ（「アミノカルボニル」）部分により置換される。よって、本発明は、本発明による１種以上の化合物の有効量を投与することにより、ヒト被験体などの哺乳動物の炎症反応を抑制すると共に、反応に対して組織物体を保護するための方法を提供する。
【００２０】
本発明の化合物は以下の一般式（Ｉ）を有する。
【化２】
0004837831.tif 000006
式中、（ａ）各Ｒはそれぞれ水素、Ｃ1〜Ｃ6アルキル、Ｃ3〜Ｃ7シクロアルキル、フェニルまたはフェニル（Ｃ1〜Ｃ3）−アルキルであり、
（ｂ）Ｘは−ＣＨ2ＯＨ、−ＣＯ2Ｒ2、−ＯＣ（Ｏ）Ｒ2、ＣＨ2ＯＣ（Ｏ）Ｒ2またはＣ（Ｏ）ＮＲ3Ｒ4であり、
（ｃ）各Ｒ2、Ｒ3およびＲ4は、それぞれＨ、Ｃ1〜6−アルキル；１〜３Ｃ1〜6−アルコキシで置換されたＣ1〜6−アルキル、Ｃ3〜Ｃ7シクロアルキル、Ｃ1〜6−アルキルチオ、ハロゲン、ヒドロキシ、アミノ、モノ（Ｃ1〜6−アルキル）アミノ、ジ（Ｃ1〜6−アルキル）アミノ、またはアリールが１〜３ハロゲン、Ｃ1〜6−アルキル、ヒドロキシ、アミノ、モノ（Ｃ1〜6−アルキル）アミノ、またはジ（Ｃ1〜6−アルキル）アミノにより置換されうるＣ6〜10−アリール；Ｃ6〜10−アリール；または１〜３ハロゲン、ヒドロキシ、アミノ、モノ（Ｃ1〜6−アルキル）アミノ、ジ（Ｃ1〜6−アルキル）アミノ、またはＣ1〜6−アルキルにより置換されたＣ6〜10−アリールであり、
（ｄ）Ｒ1は、式中ＺおよびＺ’がそれぞれ１〜３Ｓまたは非過酸化物Ｏに任意に割り込まれるか、またはそれらがない（Ｃ1〜Ｃ6）アルキルであり、且つｎが１〜３である（Ｘ−（Ｚ）−）n［（Ｃ3〜Ｃ10）シクロアルキル］−（Ｚ’）−であるか、または薬剤的に許容可能なそれの塩である。
【００２１】
本発明は、炎症に関係するヒトなどの哺乳動物の病理的疾患または症状に起因する炎症反応治療用の薬物製造のために、式Ｉ化合物を使用するのみならず、医療治療の使用のためにも、好ましくは炎症反応などの炎症に対して組織を対処し、または保護する使用のためにも式Ｉの化合物を提供する。
【００２２】
ある種のＡ2Aアデノシン受容体作動薬は血管拡張薬であり、従って高血圧、血栓、およびアテローム性動脈硬化症などを直接処置するのに有用である、と報告されてきたが、式（Ｉ）の化合物の組織保護活動は、先行技術によって示唆されてはいない。
【００２３】
本発明は、また、免疫細胞炎症反応の相乗的低減のために、これら化合物をタイプＩＶホスホジエステラーゼ抑制剤と組み合わせて使用することを含む。
【００２４】
本発明は、また、薬剤的に許容可能な希釈剤または担体と組み合わせて、且つ任意にタイプＩＶホスホジエステラーゼ（ＰＤＥ）抑制剤と組み合わせて、式Ｉ化合物の有効量を含む薬剤組成物、または薬剤的に許容可能なそれの塩を提供する。好ましくは、組成物は単位投薬形態を取って投与される。
【００２５】
さらに、本発明は、こうした療法、式Ｉの化合物の有効量、または薬剤的に許容可能なそれの塩を必要とする哺乳動物に投与することを含み、Ａ2Aアデノシン受容体の活動が含まれると共に、前記活動の作動性（agonism）が望まれる、ヒトなどの哺乳動物の病理的疾患または症状を予防するか、または処置するための治療方法を提供する。Ａ2Aアデノシン受容体の活性化は、好中球、マスト細胞、単球／マクロファージ、Ｔ細胞および／または好酸球に影響を及ぼすことにより炎症を抑制することが、信じられている。これらの炎症性細胞の抑制は、組織傷害からの組織保護をもたらす。
【００２６】
式Ｉの化合物により、任意にタイプＩＶＰＤＥ抑制剤と共に治療（予防処置を含めて）が可能である炎症反応の中で、炎症は以下に起因している。
（ａ）ルプスエリテマトーデス、多発性硬化症、子宮腺筋症からの不妊症、糖尿病に至る膵臓小島の破壊および脚潰瘍を含む糖尿病の炎症結果を含む１型真正糖尿病、クローン病、潰瘍性大腸炎、炎症性腸疾患、骨そしょう症および慢性関節リウマチなどの自己免疫性刺激（自己免疫性疾患）、
（ｂ）喘息、アレルギー性鼻炎、鼻炎、春季カタルおよび他の好酸球介在疾患などのアレルギー性疾患、
（ｃ）乾癬、接触性皮膚炎、湿疹、感染性皮膚潰瘍、開放創、小胞炎などの皮膚疾患、
（ｄ）敗血症、敗血症ショック、脳炎、感染性関節炎、エンドトキシンショック、グラム陰性ショック、ヤーリッシュ−ヘルクスハイマー反応、帯状ヘルペス、トキシックショック、大脳マラリア、細菌性髄膜炎、急性呼吸器困難症候群（ＡＲＤＳ）、ライム病、ＨＩＶ感染、（ＴＮＦα強化ＨＩＶ複製、逆転写酵素抑制剤活動のＴＮＦα抑制）を含む感染性疾患、
（ｅ）消耗病：癌およびＨＩＶに従属的な悪液質、
（ｆ）移植除去、および移植片対宿主疾患を含む器官、組織または細胞移植（例えば、骨髄、角膜、腎臓、肺、肝臓、心臓、皮膚、膵臓小島）、
（ｇ）アンホテリシンＢ治療からの逆効果、免疫抑制療法、例えばインターロイキン−２治療からの逆効果、ＯＫＴ３治療からの逆効果、ＧＭ−ＣＳＦ治療からの逆効果、シクロスポリン治療からの逆効果、およびアミノグリコシド抗生物質治療、口内炎および免疫抑制による粘膜炎の逆効果を含む、薬物療法からの逆効果、
（ｈ）虚血、アテローム性動脈硬化症、抹消血管疾患、血管形成術につながる再狭窄、炎症性大動脈瘤、脈管炎、脳卒中、脊髄障害、うっ血性心不全、出血性ショック、虚血／再灌流障害、くも膜下出血につながる血管けいれん、脳血管事故につながる血管けいれん、胸膜炎、心膜炎、および糖尿病の心臓血管合併症などの炎症反応により誘導されるか、または悪化に至る循環系疾患を含む心臓血管疾患、
（ｉ）腹膜透析による心膜炎を含む透析、
（ｊ）痛風、および
（ｋ）火傷、酸およびアルカリなどによる化学的または熱的外傷。
【００２７】
器官、組織または細胞移植、すなわち、同種異系または異種組織の哺乳動物受容体中への移植による炎症反応、循環系病変による自己免疫性疾患および炎症疾患、および血管形成術、ステント配置、シャント配置または移植術を含むそれらの治療を扱うための本化合物の使用は、特別な興味および効力のあるものである。意外なことに、式（Ｉ）の１種以上の化合物投与は、炎症反応の発症後、例えば、被験者が炎症反応を起こす病変または外傷に悩んだ後に有効であることが、見出された。
【００２８】
本発明は、また、反応を測定する方法、または生体内または生体外において、前記受容体を含む、指定Ａ2Aアデノシン受容体部位で、またはその部位に、前記受容体に結合するために有効な式Ｉの化合物量を持つ式Ｉの化合物を結合するための方法を含む。配位子結合受容体部位を含む組織または細胞は、特定の受容体サブタイプへの試験化合物の選択性、血液または他の生理学的流体中の生物活性化合物量を測定するために用いることが可能であるか、または前記薬剤を前記配位子−受容体複合体に接触させ、配位子の置換程度を測定し、および／または薬剤、または細胞反応物を前記薬剤（例えば、ｃＡＭＰ集積物）に結合させることにより、受容体部位活性化に関係する病気または疾患治療のための潜在性治療薬剤を識別するための手段として用いることが可能である。
【００２９】
本発明の詳細な説明
特に指示のない限り、以下の定義が用いられる。ハロは、フルオロ、クロロ、ブロモ、またはヨードである。アルキル、アルコキシ、アルアルキル、アルキルアリールなどは、直鎖および分岐鎖アルキル基の両方を示すが、しかし「プロピル」などの個別の基への対照は直鎖基のみを表し、「イソプロピル」などの分岐鎖異性体は、特別に注記される。アリールは、フェニル基または少なくとも１環が芳香族である約９〜１０個の環原子を有するオルト−縮合２環式炭素環式基を含む。ヘテロアリールは、炭素からなる５〜６個の環原子、および非過酸化物酸素、硫黄、およびＮ（Ｘ）からなる群からそれぞれ選択された１〜４個のヘテロ原子を含有する単環式芳香族環の環炭素を介して結合された基を包含する。式中、Ｘはなしか、またはＨ、Ｏ、（Ｃ1〜Ｃ4）アルキル、フェニルまたはベンジル、およびそこから誘導された約８〜１０環原子のオルト−縮合２環式ヘテロ環ラジカル、特に、ベンズ誘導体またはプロピレン、トリメチレン、またはテトラメチレンジラジカルをそれに縮合することによる誘導体である。
【００３０】
式（Ｉ）の化合物は、１個以上のキラル中心を有し、光学的活性およびラセミ形態に単離することが可能であることは、当業者により認められるであろう。好ましくは、式（Ｉ）のリボシド部分は、Ｄ−リボースから誘導される、すなわち、３’，４’−ヒドロキシル基は糖環に対してアルファであり、２’および５’基はベータである（３R、４Ｓ、２Ｒ、５Ｓ）。シクロヘキシル基上の２個の基が４位にある時、それらは、好ましくはトランスである。いくつかの化合物は多形性を示すことが可能である。本発明は、本明細書において記載される有用な特性を有する本発明の化合物のあらゆるラセミ体、光学的活性、多形、または立体異性形態、またはそれらの混合物を包含することは、理解されるはずであり、光学的活性形態の製造の方法（例えば、再結晶技術または酵素技術によるラセミ形態の分離、光学的活性出発材料からの合成、キラル合成、またはキラル固定相を用いるクロマトグラフィ分離による）、および本明細書において記載される試験を用いる、または技術上よく知られている他の同様な試験を用いるアデノシン作動薬活性能の測定の方法は、技術上よく知られている。
【００３１】
基、置換基、および範囲用に、以下に一覧した固有の値および選択値は、説明のためのみであり、それらは他の決定値または基および置換基のために決められた範囲内の他の値を排除しない。
【００３２】
特に、（Ｃ1〜Ｃ6）アルキルは、メチル、エチル、プロピル、イソプロピル、ブチル、イソ−ブチル、ｓ−ブチル、ペンチル、３−ペンチル、またはヘキシルでありえる。本明細書において用いられる「シクロアルキル」という用語は、任意に１〜２Ｎ、Ｏ、またはＳを含む、二シクロアルキル（ノルボルニル、２．２．２−二シクロオクチルなど）および三シクロアルキル（アダマンチルなど）を包含する。シクロアルキルは、（シクロアルキル）アルキルをも包含する。よって、（Ｃ3〜Ｃ6）シクロアルキルは、シクロプロピル、シクロブチル、シクロペンチル、またはシクロヘキシルでありえて、（Ｃ3〜Ｃ6）シクロアルキル（Ｃ1〜Ｃ6）アルキルは、シクロプロピルメチル、シクロブチルメチル、シクロペンチルメチル、シクロヘキシルメチル、２−シクロプロピルエチル、２−シクロブチルエチル、２−シクロペンチルエチル、または２−シクロヘキシルエチルでありえる。
【００３３】
（Ｃ1〜Ｃ6）アルコキシは、メトキシ、エトキシ、プロポキシ、イソプロポキシ、ブトキシ、イソ−ブトキシ、ｓ−ブトキシ、ペントキシ、３−ペントキシ、またはヘキシルオキシでありえて、（Ｃ2〜Ｃ6）アルケニルは、ビニル、アリル、１−プロペニル、２−プロペニル、１−ブテニル、２−ブテニル、３−ブテニル、１−ペンテニル、２−ペンテニル、３−ペンテニル、４−ペンテニル、１−ヘキセニル、２−ヘキセニル、３−ヘキセニル、４−ヘキセニル、または５−ヘキセニルでありえて、（Ｃ2〜Ｃ6）アルキニルは、エチニル、１−プロピニル、２−プロピニル、１−ブチニル、２−ブチニル、３−ブチニル、１−ペンチニル、２−ペンチニル、３−ペンチニル、４−ペンチニル、１−ヘキシニル、２−ヘキシニル、３−ヘキシニル、４−ヘキシニル、または５−ヘキシニルでありえて、（Ｃ1〜Ｃ6）アルカノイルは、アセチル、プロパノイルまたはブタノイルでありえて、ハロ（Ｃ1〜Ｃ6）アルキルは、ヨードメチル、ブロモメチル、クロロメチル、フルオロメチル、トリフルオロメチル、２−クロロエチル、２−フルオロエチル、２，２，２−トリフルオロエチル、またはペンタフルオロエチルでありえて、ヒドロキシ（Ｃ1〜Ｃ6）アルキルは、ヒドロキシメチル、１−ヒドロキシエチル、２−ヒドロキシエチル、１−ヒドロキシプロピル、２−ヒドロキシプロピル、３−ヒドロキシプロピル、１−ヒドロキシブチル、４−ヒドロキシブチル、１−ヒドロキシペンチル、５−ヒドロキシペンチル、１−ヒドロキシヘキシル、または６−ヒドロキシヘキシルでありえて、（Ｃ1〜Ｃ6）アルコキシカルボニル（ＣＯ2Ｒ2）は、メトキシカルボニル、エトキシカルボニル、プロポキシカルボニル、イソプロポキシカルボニル、ブトキシカルボニル、ペントキシカルボニル、またはヘキシルオキシカルボニルでありえて、（Ｃ1〜Ｃ6）アルキルチオは、メチルチオ、エチルチオ、プロピルチオ、イソプロピルチオ、ブチルチオ、イソブチルチオ、ペンチルチオ、またはヘキシルチオでありえて、（Ｃ2〜Ｃ6）アルカノイルオキシは、アセトキシ、プロパノイルオキシ、ブタノイルオキシ、イソブタノイルオキシ、ペンタノイルオキシ、またはヘキサノイルオキシでありえて、アリールはフェニル、インデニル、またはナフチルでありえて、およびヘテロアリールは、フリル、イミダゾリル、トリアゾリル、トリアジニル、オキサゾイル、イソキサゾイル、チアゾリル、イソチアゾイル、ピラキソリル、ピロリル、ピラジニル、テトラゾリル、プリジル（またはそのＮ−酸化物）、チエンチル、ピリミジニル（またはそのＮ−酸化物）、インドリル、イソキノリル（またはそのＮ−酸化物）またはキノリル（またはそのＮ−酸化物）でありえる。
【００３４】
Ｒに対する固有値はアミノ、モノメチルアミノまたはシクロプロピルアミノである。
Ｒ1に対する固有値はカルボキシ−または（Ｃ1〜Ｃ4）アルコキシカルボニル−シクロヘキシル（Ｃ1〜Ｃ4）アルキルである。
Ｒ2に対する固有値はＨまたは（Ｃ1〜Ｃ4）アルキル、すなわち、メチルまたはエチルである。
Ｒ3に対する固有値はＨ、メチルまたはフェニルである。
Ｒ4に対する固有値はＨ、メチルまたはフェニルである。
Ｚに対する固有値は−ＣＨ2−または−ＣＨ2−ＣＨ2−である。
Ｘに対する固有値はＣＯ2Ｒ2、（Ｃ2〜Ｃ5）アルカノイルメチルまたはアミドである。
ｎに対する固有値は１である。
【００３５】
式（Ｉ）の好ましい化合物は、各ＲがＨであり、Ｘがエチルアミノカルボニルであり、およびＲ1が４−カルボキシシクロヘキシルメチル（ＤＷＨ−１４６ａ）であるか、Ｒ1が４−メトキシカルボニルシクロヘキシルメチル（ＤＷＨ−１４６ｅ）であるか、またはＲ1が４−アセトキシメチル−シクロヘキシルメチル（ＪＭＲ−１９３）であるものである。それら、（ＤＷＨ−１４６（酸）およびメチルエステル（ｅ））およびＪＭＲ−１９３は以下に示される。
【化８】
0004837831.tif 000007
【化９】
0004837831.tif 000008
【００３６】
メチル４［３−（６−アミノ−９（５−［（エチルアミノ）カルボニル］−３，４−ジヒドロキシテトラヒドロ−Ｚ−フラニル−９Ｈ−２−プリニル）−２−プロピニル］−１−シクロヘキサンカルボキシレート（ＤＷＨ−１４６ｅ）の合成は、Ｐｄ11触媒の利用により、ヨード−アデノシン誘導体（Ｎ−エチル−１’−デオキシ−１’−（アミノ−２−ヨード−９Ｈ−プリン−９−イル）−β−Ｄ−リボフラヌオルアミド）のメチル４−（２−プロピニル）−１−シクロヘキサンカルボキシレートとの交叉結合により達成された。ヨード−アデノシン誘導体の合成はグアノシンから達成された。グアノシンは、最初に糖ヒドロキシルをアセタール化（acetalate）する無水酢酸で処理し、その後、塩化テトラメチルアンモニウムおよびオキシ塩化燐による６位の塩素化を行う。２位のヨード化は変性サンドマイヤー反応を介して達成され、その後、６−Ｃｌおよび糖酢酸塩をアンモニアで置換した。２’および３’ヒドロキシルはアセトナイドとして保護し、５’ヒドロキシルは過マンガン酸カリウムと共にヨード処理し酸にした。２’および３’アセトナイドの保護解除、エタノールによる５’酸のフィッシャーエステル化、および得られたエチルエステルをエチルアミンによりエチルアミドに転化することによって、Ｎ−エチル−１’−デオキシ−１’−（アミノ−２−ヨード−９Ｈ−プリン−９−イル）−β−Ｄ−リボフラヌオルアミドを生成した。
【００３７】
アセチレン（メチル４−（２−プロピニル）−１−シクロヘキサンカルボキシレート）は、トランス−１，４−シクロヘキサンジメタノールから出発して合成した。最初にトランス−ジオールをモノトシレート化し、続いてトシレートをアセチレンアニオンで置換した。得られたヒドロキシルアセチレン化学種のヒドロキシルは、ジョーンズ薬剤を介して酸に酸化し、続いて（トリメチルシリル）ジアゾメタンによりメチル化して、メチル４−（２−プロピニル）−１−シクロヘキサンカルボキシレートを生成した。
【００３８】
交叉結合反応を、以前に報告した以下の条件下で実施した。Ｎ，Ｎ−ジメチルホルムアミド（０．５ｍＬ）、アセトニトリル（１ｍＬ）、トリエチルアミン（０．２５ｍＬ）、およびＮ−エチル−１’−デオキシ− １’−（アミノ−２−ヨード−９Ｈ−プリン−９−イル）−β−Ｄ−リボフラヌオルアミド（２５ｍｇ、０．０６ｍモル）の溶液に、ビス（トリフェニルホスフィン）パラジウム二塩化物（１ｍｇ、２モル％）およびヨウ化銅（Ｉ）（０．０６ｍｇ、０．５モル％）を添加した。得られた混合物に、メチル４−（２−プロピニル）−１−シクロヘキサンカルボキシレート（５４ｍｇ、０．３ｍモル）を添加し、反応物をＮ2雰囲気下１６時間にわたり攪拌した。溶媒を真空下で除去し、得られた残留物をクロロホルム（Ｒｆ＝０．４５）中２０％メタノールの中でフラッシュ法クロマトグラフィにより分離して、１９ｍｇ（灰色がかった白色の固形物、融点１２５℃（分解される））のメチル４［３−（６−アミノ−９（５−［（エチルアミノ）カルボニル］−３，４−ジヒドロキシテトラヒドロ−Ｚ−フラニル）−９Ｈ−２−プリニル）−２−プロピニル］−１−シクロヘキサンカルボキシレート（ＤＷＨ−１４６ｅ）を生成した。
【００３９】
ＤＷＨ−１４６ｅおよびＪＭＲ１９３は、炎症モデル系において、対照化合物ＣＧＳ２１６８０（２−［ｐ−（カルボキシエチル）−フェニル−エチルアミノ］５’−Ｎ−エチルカルボックスアミドアデノシン）よりも、抑制剤として、実質的により効力がある。例えば、ＤＷＨ−１４６ｅは、ＣＧＳ２１６８０に較べて、Ａ2A受容体に対して約８０倍の効力があり、Ａ3受容体に対するＡ2A受容体の選択性は約４０倍優れている。
【００４０】
薬剤的に許容可能な塩の例は、生理学的に許容可能なアニオン、例えば、トシレート、スルホン酸メタン、リンゴ酸塩、酢酸塩、クエン酸塩、マロン酸塩、酒石酸塩、コハク酸塩、安息香酸塩、アスコルビン酸塩、α−ケトグルカン酸塩、およびα−グリセリン燐酸塩を形成する酸により形成される有機酸添加塩である。適する無機の塩も、塩酸塩、硫酸塩、硝酸塩、重炭酸塩、および炭酸塩を含んで、形成することが可能である。
【００４１】
薬剤的に許容可能な塩は、技術上よく知られる標準的な手段を用いて、例えば、アミンなどの十分に塩基性である化合物を、生理学的に許容可能なアニオンを与える適する酸と反応させることにより、得ることが可能である。カルボン酸のアルカリ金属（例えば、ナトリウム、カリウムまたはリチウム）またはアルカリ土類金属（例えば、カルシウム）塩も、作成することが可能である。
【００４２】
式Ｉの化合物は薬剤組成物として調合し、選択された投与経路、すなわち、経口か、または静脈内、筋内、局所的または皮下経路による非経口かの経路に合わせた多様性のある形態を取って、ヒト患者などの哺乳動物被験者に投与することができる。
【００４３】
こうして、本化合物は、例えば、経口的に、不活性希釈剤または吸収可能な食用担体などの薬剤的に許容可能な賦形剤と組み合わせて、体系的に投与することが可能である。それらは硬いまたは柔らかい殻ゼラチンカプセル中に封じ込めるか、錠剤中に押し込めるか、または直接患者の治療食の食べ物に入れ込むことが可能である。経口治療投与のために、活性化合物は１種以上の付形剤と共に混合され、吸収性錠剤、バッカル錠剤、トローチ、カプセル、エリキシル剤、分散液、シロップ、およびオブラートなどの形態で用いることが可能である。こうした組成物および調合物は、少なくとも０．１％の活性化合物を含有するべきである。組成物および調合物の百分率は当然変動することが可能であり、便宜上、与えられた単位投与形態重量の約２〜約６０％の間にあることが可能である。こうした治療上有用な組成物中の活性化合物の量は、有効な投薬レベルが得られるようなものである。
【００４４】
錠剤、トローチ、ピル、およびカプセルなどは、以下の：トラガカントガム、アラビアゴム、コーンスターチまたはゼラチンなどの結合剤；燐酸二カルシウムなどの付形剤；コーンスターチ、ポテトスターチ、およびアルギン酸などの崩壊剤；ステアリン酸マグネシウムなどの潤滑剤；およびショ糖、果糖、乳糖またはアスパルテームなどの甘味剤を含有することが可能であるし、あるいはペパーミント、冬緑油、またはチェリー調味剤などの調味剤を添加することが可能である。単位投与形態がカプセルの時、それは、上述のタイプの材料に加えて植物油またはポリエチレングリコールなどの液体担体を含有することが可能である。種々の他の材料は、被覆剤として、または固形物の単位投与形態の物理的な形態を別に変更するために存在することが可能である。例えば、錠剤、ピルまたはカプセルは、ゼラチン、ワックス、セラックまたは砂糖などにより被覆することが可能である。シロップまたはエリキシルは、活性成分、甘味剤としてショ糖または果糖、保存剤としてメチルおよびプロピルパラベン、染料およびチェリーまたはオレンジ香味などの調味剤を含有することが可能である。勿論、あらゆる単位投与形態を調合するために用いられるあらゆる材料は、薬剤的に許容可能であり、用いられる量において実質的に無毒であるべきである。さらに、活性化合物は、持続性の調合物および仕組みの中に組み込むことが可能である。
【００４５】
活性化合物は、輸液または注射により、静脈内または腹膜内にも投与することが可能である。活性化合物またはその塩の溶液は、任意に無毒の界面活性剤と混合されて水中で調合することができる。分散液も、グリセリン、液体ポリエチレングリコール、トリアセチン、およびそれらの混合物中および油中で調合することができる。貯蔵および使用の通常の条件下において、これらの調合物は微生物の成長を防止するために防腐剤を含有する。
【００４６】
注射または輸液に適する薬剤の投与形態は、滅菌注射性または輸液性溶液または分散液の即時調合剤に合わされ、任意にリポソーム中にカプセル化された活性成分を含む、滅菌水性溶液または分散液または滅菌粉末を包含することができる。すべての場合において、最終の投与形態は、製造および貯蔵の条件下、滅菌性、流動性および安定性であらねばならない。液体担体または賦形剤は、例えば、水、エタノール、ポリオール（例えば、グリセリン、プロピレングリコール、および液体ポリエチレングリコールなど）、植物油、無毒のグリセリルエステル、およびそれらの適する混合物を含む溶媒または液体分散媒体でありえる。適正な流動性は、例えば、リポソームの形成により、分散液の場合に必要粒子寸法の維持により、または界面活性剤の使用により維持することができる。微生物の作用の防止は、種々の抗バクテリアおよび抗カビ薬剤、例えば、パラベン、クロロブタノール、フェノール、ソルビン酸、およびチメロサールなどによりもたらすことができる。多くの場合において、等張性薬剤、例えば、糖、緩衝剤または塩化ナトリウムを含むことは好ましい。注射可能組成物の長期吸収は、吸収遅延薬剤、例えば、モノステアリン酸アルミニウムおよびゼラチンの使用によりもたらすことができる。
【００４７】
注射可能滅菌溶液は、必要量の活性化合物を、必要として上述に計算された他の種々の成分と共に、適切な溶媒中に入れ込み、続いて濾過滅菌することにより調合される。注射可能滅菌溶液調合用の滅菌粉末の場合において、調合の好ましい方法は真空乾燥および凍結乾燥技術であり、これにより、活性成分にプラスして、前に濾過滅菌した溶液中に存在するあらゆる追加の望ましい成分の粉末を生成する。
【００４８】
局所的投与に対して、本化合物は、それらが液体の時に、純粋形態において適用することが可能である。しかし、それらを組成物または調合物として、固形物または液体でありうる皮膚科学的に許容可能な担体と組み合わせて皮膚に投与することが、一般に望ましい。
【００４９】
有用な固形物担体には、タルク、クレー、微結晶セルロース、シリカ、およびアルミナなどの微細に分別された固形物が挙げられる。有用な液体担体には、本化合物が任意に無毒界面活性剤の助けを借りて、中で有効なレベルで溶解するか、または分散することができる、水、アルコールまたはグリコールまたは水−アルコール／グリコール配合物が挙げられる。芳香剤および追加の抗微生物薬剤などの補助剤は、想定用途特性を最適化するために添加することができる。得られた液体組成物は、吸収パッドから塗布し、包帯および他の手当て用品に含浸させるために用いるか、またはポンプ型またはエアローゾルスプレーを用いて患部上に噴霧することができる。
【００５０】
合成ポリマー、脂肪酸、脂肪酸塩およびエステル、脂肪アルコール、変性セルロースまたは変性ミネラル物質などの増粘剤も、液体担体と共に用いられて、直接使用者の皮膚に塗布するための、よく延びるペースト、ゲル、軟膏、およびソープなどを形成することが可能である。
【００５１】
式Ｉの化合物を皮膚に運ぶために用いることができる有用な皮膚科学的な組成物の例は、ジャケットら（米国特許第４，６０８，３９２号）、ゲリア（米国特許第４，９９２，４７８号）、スミスら（米国特許第４，５５９，１５７号）およびヴォルツマン（米国特許第４，８２０，５０８号）に開示されている。
【００５２】
式Ｉの化合物の有用な投与量は、動物モデルでの、それらの試験管内活性能および生体内活性能の比較により決定することができる。マウスおよび他動物の有効投与量の、ヒトへの外挿方法については、例えば、米国特許第４，９３８，９４９号を参照すること。タイプＩＶＰＤＥ抑制剤の有用な投与量は当該技術分野において知られている。例えば、米国特許第５，８７７，１８０号Ｃｏｌ．１２を参照すること。
【００５３】
一般に、ローション剤などの液体組成物中の式（Ｉ）の化合物（複数を含む）の濃度は、約０．１〜２５重量％、好ましくは約０．５〜１０重量％である。ゲルまたは粉末などの半固形物または固形物組成物中の濃度は、約０．１〜５重量％、好ましくは約０．５〜２．５重量％である。
【００５４】
治療における使用のために必要な、化合物、またはそれの活性塩あるいは誘導体の量は、選択された特定の塩のみならず、投与経路、治療される疾患の性質および患者の年齢および状態によっても変動し、結局は付添いの医師または臨床家の裁量に委ねられる。
【００５５】
しかし、一般に、適する投与量は、約０．５〜約１００μｇ／ｋｇ、例えば、１日身体重量当たり約１０〜約７５μｇ／ｋｇ、１日宿主身体重量キログラム当たり３〜約５０μｇなどの範囲、好ましくは６〜９０μｇ／ｋｇ／日の範囲、最も好ましくは１５〜６０μｇ／ｋｇ／日の範囲にある。
【００５６】
化合物は便利良く単位投与形態を取って投与される：例えば、単位投与形態当たり、５〜１０００μｇ、便利良く１０〜７５０μｇ、最も便利には５０〜５００μｇの活性成分を含有する。
【００５７】
理想的には、活性成分は約０．１〜約１０ｎＭ、好ましくは約０．２〜約１０ｎＭ、最も好ましくは約０．５〜約５ｎＭの活性成分のピーク血漿濃度を達成するために投与されるべきである。これは、例えば、任意に生理食塩水中の活性成分０．０５〜５％溶液の静脈内注射により達成することが可能であり、または経口的に、約１〜１００μｇの活性成分を含有する大丸薬として投与することが可能である。望ましい血液レベルは、約０．０１〜５．０μｇ／ｋｇ／時間を供給する連続輸液により、または約０．４〜１５μｇ／ｋｇの活性成分（複数を含む）を含有する間欠輸液により維持することが可能である。
【００５８】
望まれる投与は、都合により単独投与、または例えば、１日当たり２、３、４またはそれ以上の回数投与として、適切な間隔で投与される分割投与として存在することが可能である。回数投与それ自体は、さらに例えば、散布器からの多吸入または眼中への無数液滴の適用によるなど、個別にばらばらに間隔を置いた多数の投与に分割することが可能である。例えば、本組成物を、炎症を起こす傷害の後に、静脈内に十分な時間にわたり投与することが望ましい。
【００５９】
本発明により与えられた化合物のＡ2Aアデノシン受容体作動薬（または拮抗薬）として機能する能力は、技術上よく知られる薬理学的モデルを用いて、または以下に説明する試験を用いて決定することが可能である。
【００６０】
本発明は、以下の詳細実施例を参照することにより、さらに詳しく説明されるが、これらの実施例は本発明の説明用に提示されるもので、本発明を限定しようと意図されたものではない。
【００６１】
実施例１．トランス−（１−［（４−ヒドロキシメチル）シクロヘキシル］メチル）−４−メチルベンゼンスルホネート（５．２）。水素化ナトリウム（１．６８ｇ、７０ｍモル）を、テトラヒドロフラン７００ｍL中の［４−（ヒドロキシメチル）シクロヘキシル］メタン−１−オール（５．１）１０ｇ（７０ｍモル）溶液に添加し、１時間にわたり攪拌し、その後、塩化ｐ−トルエンスルホニル（１３．３ｇ、７０ｍモル）を添加し、反応混合物を５時間にわたり還流した。その後、反応物を０℃に冷却し、反応性水素化物がなくなるまでゆっくりと水で冷却した。水素化物を冷却してから、反応混合物をエーテル（７００ｍL）で希釈し、１０％炭酸カリウム水（７００ｍL）で２回抽出した。有機物を、硫酸ナトリウムを用いて乾燥し、溶媒を減圧下で除去した。生成物をアセトン−ジクロロメタン（５：９５）により溶出するシリカゲルカラムのクロマトグラフィにより精製して、５．２（３５％）を生成した。1ＨＮＭＲ（３００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ3）δ７．７５（ｄ、Ｊ＝８．３Ｈｚ、２Ｈ）、７．３２（ｄ、Ｊ＝８．１Ｈｚ、２Ｈ）、３．７９（ｄ、Ｊ＝６．３５Ｈｚ、２Ｈ）、３．３９（ｄ、Ｊ＝６．３５Ｈｚ、２Ｈ）、２．４２（ｓ、３Ｈ）、１．７５（ｍ、４Ｈ）、１．５９（ｍ、１Ｈ）、１．３７（ｍ、１Ｈ）、０．９（ｍ、４Ｈ）。13ＣＮＭＲ（３００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ3）δ１４５．３、１３３．４、１３０．３、１３０．３、１２８．３、１２８．３、７５．８、６８．５、４０．６、３７．８、２８．９、２８．９、２８．９、２８．９、２２．１。
【００６２】
実施例２．（４−プロプ−２−イニルシクロヘキシル）メタン−１−オール（５．３）。リチウムアセチリドエチレンジアミン錯体（９０％）（６．４ｇ、７０ｍモル）を、ジメチルスルホキシド４０ｍL中の５．２（３ｇ、１０ｍモル）溶液に、ごくゆるやかに添加した。反応混合物を放置して５日間にわたり攪拌し、その後、水でゆっくりと０℃に冷却した。この混合物をエーテル（３００ｍL）で希釈し、飽和塩化アンモニウム水（２００ｍL）で３回抽出した。有機物を、硫酸ナトリウムを用いて乾燥した。溶媒を減圧下で除去し、生成物を酢酸エチル−ヘキサン（２０：８０）により溶出するシリカゲルカラムのクロマトグラフィにより精製して、５．３（８５％）を生成した。1ＨＮＭＲ（３００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ3）δ３．４１（ｄ、Ｊ＝６．５Ｈｚ、２Ｈ）、２．０７（ｄｄ、Ｊ＝２．５、６．５Ｈｚ、２Ｈ）、１．９６〜１．７５（ｍ、５Ｈ）、１．４１（ｍ、２Ｈ）、０．０９５（ｍ、４）。13ＣＮＭＲ（３００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ3）δ８３．８、６９．６、６８．９、４０．７、３７．７、３２．３、３２．３、２９．６、２９．６、２６．５。
【００６３】
実施例３．４−プロプ−２−イニルシクロヘキサンカルボン酸（５．４）。１．５Ｍ硫酸（４０ｍＬ、２７ｍモル）中の三酸化クロム（１．１ｇ、１１ｍモル）溶液を０℃に維持し、その間にアセトン８０ｍL中の５．３（０．４６ｇ、３ｍモル）を２時間にわたり添加した。その後、反応混合物を室温でさらに２時間にわたり攪拌した。反応混合物をエーテル（２００ｍL）で希釈し、水で２回抽出した。有機物を硫酸ナトリウムで乾燥した。溶媒を減圧下で除去し、生成物をアセトン−ジクロロメタン（７０：３０）により溶出するシリカゲルカラムのクロマトグラフィにより精製して、５．４（７５％）を生成した。1ＨＮＭＲ（３００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ3）δ２．２４（ｄｔ、Ｊ＝３．６６、１２．１Ｈｚ、１Ｈ）、２．１０（ｄｄ、Ｊ＝２．７、６．５Ｈｚ、２Ｈ）、２．０４〜１．８９（ｍ、５Ｈ）、１．７６（ｄ、Ｊ＝２．３Ｈｚ、１Ｈ）、１．４３（ｄｑ、Ｊ＝３．２８、１３．１Ｈｚ、２Ｈ）、１．０３（ｄｑ、Ｊ＝３．２８、１３．１Ｈｚ、２Ｈ）。13ＣＮＭＲ（３００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ3）δ１８３．２、８３．３、６９．９、４３．４、３６．７、３１．８、２８．９、２６．３。
【００６４】
実施例４．メチル４−プロプ−２−イニルシクロヘキサンカルボキシレート（５．５）。ヘキサン（１ｍＬ、２ｍモル）中の（トリメチルシリル）ジアゾメタン（２．０Ｍ）溶液を、メタノール：ジクロロメタン（３：７）１５ｍL中の５．４（０．３４ｇ、２ｍモル）溶液に添加した。溶媒を減圧下で除去して、出発材料から生成物への１００％転化の結果を得た。1ＨＮＭＲ（３００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ3）δ２．２４（ｄｔ、Ｊ＝３．６６、１２．１Ｈｚ、１Ｈ）、２．１０（ｄｄ、Ｊ＝２．７、６．５Ｈｚ、２Ｈ）、２．０６（ｄｄ、Ｊ＝１．５４、６．５４Ｈｚ、１Ｈ）、２．００〜１．８９（ｍ、３Ｈ）、１．７６（ｄ、Ｊ＝２．３Ｈｚ、１Ｈ）、１．４３（ｄｑ、Ｊ＝３．２８、１３．１Ｈｚ、２Ｈ）、１．０３（ｄｑ、Ｊ＝３．２８、１３．１Ｈｚ、２Ｈ）。13ＣＮＭＲ（３００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ3）δ１７６．８、８３．３、６９．８、５１．９、４３．４、３６．７、３１．９、２９．２、２６．３。
【００６５】
実施例５．［（２Ｒ，３Ｒ，４Ｒ，５Ｒ）−３，４−ジアセチルオキシ−５−（２−アミノ−６−オキソヒロプリン−９−イル）オキソラン−２−イル］メチルアセテート（６．２）。ドライグアノシン（６．１）１１３ｇ（０．４モル）、無水酢酸（２４０ｍＬ、２．５モル）、ドライピリジン（１２０ｍＬ）およびドライＤＭＦ（３２０ｍＬ）の懸濁液を、８０℃を越えないように温度７５℃で３．７５時間にわたり熱した。その後、透明な溶液を３Ｌエルレンマイヤーフラスコに移し、２−プロパノールで充填した。溶液を室温に冷却すると、結晶化が始まり、放置して１夜にわたり４℃で進行させた。白色固形物の濾過液を濾過し、２−プロパノールで洗浄し、２−プロパノールから再結晶化して、６．２（９６％）を生成した。1ＨＮＭＲ（３００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ3）δ８．２０（ｓ、１Ｈｚ、Ｈ−８）、６．１７（ｄ、Ｊ＝５．４１Ｈｚ、１Ｈ、Ｈ−１’）、５．７５（ｔ、Ｊ＝５．３９Ｈｚ、１Ｈ、Ｈ−２’）、５．５６（ｔ、Ｊ＝５．０、Ｈ−３’）、４．４１（ｍ、３Ｈ、Ｈ−４’、５’）、２．１４（ｓ、３Ｈ、Ａｃ）、２．１１（ｓ、３Ｈ、Ａｃ）、２．１０（ｓ、３Ｈ、Ａｃ）。13ＣＮＭＲ（３００ＭＨｚ、ＣＤ3ＯＤ）δ１７１．０、１７０．３、１７０．２、１５７．７、１５４．８、１５２．４、１３６．７、１１７．７、８５．５、８０．４、７３．０、７１．３、６４．０、３１．３、２１．２、２１．０。
【００６６】
実施例６．［（２Ｒ，３Ｒ，４Ｒ，５Ｒ）−３，４−ジアセチルオキシ−５−（２−アミノ−６−クロロプリン−９−イル）オキソラン−２−イル］メチルアセテート（６．３）。１０００ｍＬフラスコに、［（２Ｒ，３Ｒ，４Ｒ，５Ｒ）−３−４−ジアセチルオキシ−５−（２−アミノ−６−オキソヒロプリン−９−イル）オキソラン−２−イル］メチルアセテート（６．２）８０ｇ（０．１９５モル）、塩化テトラメチルアンモニウム（４４ｇ、０．４モル）、無水アセトニトリル（４００ｍＬ）およびＮ，Ｎ−ジメチルアニリン（２５ｍＬ）を投入した。フラスコを氷塩浴の中に置き、２℃に冷却した。この溶液に、ＰＯＣｌ3（１０７ｍＬ、１．１５モル）を温度５℃未満で維持する速度により液滴状に添加した（４５分間）。その後、フラスコを氷浴から取り出し、凝縮器を取りつけ、オイルバスの中に置き、１０分間の還流をかける一方で、溶液は赤／褐色に変色した。その後、溶媒を減圧下で除去して、油残留物を生成した。これを、１０００ｇの氷および４００ｍＬのＣＨＣｌ3を含有するビーカーに移し、放置してあらゆる残留ＰＯＣｌ3を分解するために１．５時間にわたり攪拌した。その後、有機相を除去し、水相を３×ＣＨＣｌ3５０ｍＬで抽出し、有機相と混ぜ合わせた。その後、混合有機物を５０ｍＬの水で逆抽出し、後に飽和ＮａＨＣＯ3２００ｍＬで攪拌した。有機物を、さらに水性抽出物が中性になるまで（２回）、ＮａＨＣＯ3で抽出した。有機物を最終的に塩水で抽出し、その後、ＭｇＳＯ4上で１６時間にわたり乾燥した。溶液に、２−プロパノール８００ｍＬを添加して、その後、溶液を減圧下濃縮した。油固形物に２−プロパノール２００ｍＬを添加し、溶液を１夜にわたり冷凍した。結晶生成物を濾過し、洗浄し、放置して１夜にわたり乾燥して、６．３（７７％）を生成した。1ＨＮＭＲ（３００ＭＨｚ、ＣＤ3ＯＤ）δ８．３１（ｓ、１Ｈ、Ｈ−８）、７．００（ｓ、２Ｈ、ＮＨ2）、６．０６（ｄ、Ｊ＝５．８Ｈｚ、１Ｈ、Ｈ−１’）、５．８３（ｔ、Ｊ＝６．１６Ｈｚ、１Ｈ、Ｈ−２’）、５．６７（ｍ、１Ｈ、Ｈ−３’）、４．２９（ｍ、３Ｈ、Ｈ−４’、５’）、２．０７（ｓ、３Ｈ、Ａｃ）、１．９９（ｓ、３Ｈ、Ａｃ）、１．９８（ｓ、３Ｈ、Ａｃ）。13ＣＮＭＲ（３００ＭＨｚ、ＣＤ3ＯＤ）δ１７１．０、１７０．４、１７０．２、１６０．８、１５４．６、１５０．８、１４２．２、１２４．５、８５．８、８０．６、７２．８、７１．２、６３．９、２１．４、２１．３、２１．１。
【００６７】
実施例７．［（２Ｒ，３Ｒ，４Ｒ，５Ｒ）−３，４−ジアセチルオキシ−５−（６−クロロ−２−ヨードプリン−９−イル）オキソラン−２−イル］メチルアセテート（６．４）。亜硝酸イソアミル（５ｍＬ、３７ｍモル）を、ＴＨＦ（６０ｍＬ）中の［（２Ｒ，３Ｒ，４Ｒ，５Ｒ）−３，４−ジアセチルオキシ−５−（２−アミノ−６−クロロプリン−９−イル）オキソラン−２−イル］メチルアセテート（６．３）５．１２ｇ（１２ｍモル）、Ｉ2（３．０４ｇ、１２ｍモル）、ＣＨ2Ｉ2（１０ｍモル、１２４ｍモル）、およびＣｕＩ（２．４ｇ、１２．６ｍモル）混合物に添加した。混合物を還流下４５分にわたり熱し、その後、放置して室温に冷却した。この溶液に、ヨウ素による赤色を除去する飽和Ｎａ2Ｓ2Ｏ3１００ｍｌを添加した。水相を、クロロホルムを混ぜて３回抽出し、ＭｇＳＯ4上で乾燥し、減圧下で濃縮した。その後、生成物をＣＨＣｌ3−ＭｅＯＨ（９８：２）を用いるシリカゲルカラム上で精製して、［（２Ｒ，３Ｒ，４Ｒ，５Ｒ）−３，４−ジアセチルオキシ−５−（６−クロロ−２−ヨードプリン−９−イル）オキソラン−２−イル］メチルアセテート（６．４）（ＥｔＯＨから８０％結晶化）を収集した。1ＨＮＭＲ（３００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ3）δ８．２０（ｓ、１Ｈ、Ｈ−８）、６．１７（ｄ、Ｊ＝５．４１Ｈｚ、１Ｈ、Ｈ−１’）、５．７５（ｔ、Ｊ＝５．３９Ｈｚ、１Ｈ、Ｈ−２’）、５．５６（ｔ、Ｊ＝５．４０Ｈｚ、１Ｈ、Ｈ−３’）、４．３８（ｍ、３Ｈ、Ｈ−４’、５’）、２．１４（ｓ、１Ｈ、Ａｃ）、２．１１（ｓ、１Ｈ、Ａｃ）、２．１０（ｓ、１Ｈ、Ａｃ）。
【００６８】
実施例８．（４Ｓ，２Ｒ，３Ｒ，５Ｒ）−２−（６−アミノ−２−ヨードプリン−９−イル）−５−（ヒドロキシメチル）オキソラン−３，４−ジオール（６．５）。［（２Ｒ，３Ｒ，４Ｒ，５Ｒ）−３，４−ジアセチルオキシ−５−（６−クロロ−２−ヨードプリン−９−イル）オキソラン−２−イル］メチルアセテート（６．４）６．０ｇ（１１．１ｍモル）を含むフラスコに、液体ＮＨ3１００ｍｌを−７８℃で添加し、放置して６時間にわたり攪拌した。その後、それを１夜にわたり放置し室温にすると共に、並行してＮＨ3を蒸発して褐色の油を生成した。生成物を熱イソプロパノールから結晶化して、６．５（８０％）を生成した。ｍ．ｐ．１４３〜１４５℃、ｒ．ｆ．＝２０％ＭｅＯＨ／ＣＨＣｌ3中０．６。1ＨＮＭＲ（３００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）δ８．２４（ｓ、１Ｈ）、７．６８（ｓ、２Ｈ）、５．７５（ｄ、Ｊ＝６．１６、１Ｈ）、５．４２（ｄ、Ｊ＝５．４０Ｈｚ、１Ｈ）、５．１６（ｄ、Ｊ＝４．６２Ｈｚ、１Ｈ）、４．９９（ｔ、Ｊ＝５．３９Ｈｚ、１Ｈ）、４．６７（ｄ、Ｊ＝４．８１Ｈｚ、１Ｈ）、４．０６（ｄ、Ｊ＝３．３７Ｈｚ、１Ｈ）、３．８９（ｍ、１Ｈ）、３．５４（ｍ、２Ｈ）。
【００６９】
実施例９．［（１Ｒ，２Ｒ，４Ｒ，５Ｒ）−４−（６−アミノ−２−ヨードプリン−９−イル）−７−７−ジメチル−３，６，８−トリオキサビシクロ［３．３．０］オクト−２−イル］メタン−１−オール（６．６）。アセトン１００ｍＬ中の（４Ｓ，２Ｒ，３Ｒ，５Ｒ）−２−（６−アミノ−２−ヨードプリン−９−イル）−５（ヒドロキシメチル）オキソラン−３，４−ジオール（６．５）２．０ｇ（５．０８ｍモル）の溶液に、ｐ−トルエンスルホン酸９．６ｇおよびジメトキシプロパン５ｍＬを添加した。反応物を室温で１時間にわたり攪拌し、その時にＮａＨＣＯ3１５ｇを添加し、その後、さらに３時間にわたり攪拌した。残留物を濾過し、ＥｔＯＡｃで２回洗浄した。その後、濾過液を減圧下で濃縮した。残留物をＭｅＯＨ−ＣＨＣｌ3（１：９９）を用いるシリカゲルカラム上でクロマトグラフィにより精製して、固形物、ｍ．ｐ．１８５〜１８７℃の６．６（７２％）を生成した。1ＨＮＭＲ（３００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）δ８．２２（ｓ、１Ｈ、Ｈ−８）、７．６９（ｓ、２Ｈ、ＮＨ2）、６．００（ｄ、Ｊ＝２．７０Ｈｚ、１Ｈ、Ｈ−１’）、５．２１（ｍ、１Ｈ、Ｈ−２’）、５．０７（ｂｓ、１Ｈ、ＯＨ）、４．８８（ｍ、１Ｈ、Ｈ−３’）、４．１３（ｍ、１Ｈ、Ｈ−４’）、３．４７（ｍ、２Ｈ、Ｈ−５’）、１．４９および１．２８（ｓ、３Ｈ、Ｃ（ＣＨ3）2）。
【００７０】
実施例１０．（２Ｓ，１Ｒ，４Ｒ，５Ｒ）−４−（６−アミノ−２−ヨードプリン−９−イル）−７，７−ジメチル−３，６，８−トリオキサビシクロ［３．３．０］オクタン−２−カルボン酸（６．７）。水２００ｍＬ中の［（１Ｒ，２Ｒ，４Ｒ，５Ｒ）−４−（６−アミノ−２−ヨードプリン−９−イル）−７−７−ジメチル−３，６，８−トリオキサビシクロ［３．３．０］オクト−２−イル］メタン−１−オール（６．６）１．６ｇ（３．７ｍモル）の攪拌溶液に、ＫＯＨ０．６０ｇ、およびＨ2Ｏ５０ｍＬ中のＫＭｎＯ4１．７０ｇ（１０．８ｍｍｌ）溶液を液滴状に添加した。混合物を室温で２２５時間にわたり暗室に置いた。その後、反応混合物を５〜１０℃に冷却し、水１６ｍＬ中の３０％Ｈ2Ｏ2４ｍＬの溶液により、氷−塩浴を用いて温度１０℃より下を維持しながら脱色した。混合物を、セライトを通して濾過し、濾過液を減圧下約１０ｍＬに濃縮し、その後、２ＮＨＣｌによりｐＨ４に酸性化した。得られた沈殿物を濾過分離し、エーテルで洗浄して、乾燥後白色固形物、ｍ．ｐ．１８７〜１９０℃の６．７（７０％）を生成した。1ＨＮＭＲ（３００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）δ８．１１（ｓ、１Ｈ、Ｈ−８）、７．６２（ｓ、２Ｈ、ＮＨ2）、７．４６（ｓ、１Ｈ、ＣＯＯＨ）、６．２２（ｓ、１Ｈ、Ｈ−１’）、５．４２（ｄ、Ｊ＝５．７１Ｈｚ、１Ｈ、Ｈ−２’）、５．３４（ｄ、Ｊ＝６．１６Ｈｚ、１Ｈ、Ｈ−３’）、４．６３（ｓ、１Ｈ、Ｈ−４’）、１．４６および１．３０（ｓ、３Ｈ、Ｃ（ＣＨ3）2）。
【００７１】
実施例１１．（２Ｓ，３Ｓ，４Ｒ，５Ｒ）−５−（６−アミノ−２−ヨードプリン−９−イル）−３，４−ジヒドロキシオキソラン−２−カルボン酸（６．８）。５０％ＨＣＯＯＨ８０ｍＬ中の（２Ｓ，１Ｒ，４Ｒ，５Ｒ）−４−（６−アミノ−２−ヨードプリン−９−イル）−７，７−ジメチル−３，６，８−トリオキサビシクロ［３．３．０］オクタン−２−カルボン酸（６．７）１．７２ｇ（３．８５ｍモル）の溶液を、８０℃で１．５時間にわたり攪拌した。反応混合物を減圧下で蒸発させ、水中に溶解し、溶液を再び蒸発させた。このプロセスを残留物中にギ酸の匂いがなくなるまで繰り返した。水からの再結晶化により、白色固形物、ｍ．ｐ．２２１〜２２３℃の１．３３ｇ（８５％）の６．８を生成した。1ＨＮＭＲ（３００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）δ８．３１（ｓ、１Ｈ、Ｈ−８）、７．６８（ｓ、２Ｈ、ＮＨ2）、５．９０（ｄ、Ｊ＝６．５５Ｈｚ、１Ｈ、Ｈ−１’）、４．４２（ｍ、１Ｈ、Ｈ−２’）、４．３５（ｄ、Ｊ＝２．３１Ｈｚ、１Ｈ、Ｈ−４’）、４．２２（ｍ、１Ｈ、Ｈ−３’）。
【００７２】
実施例１２．［（２Ｓ，３Ｓ，４Ｒ，５Ｒ）−５−（６−アミノ−２−ヨードプリン−９−イル）−３，４−ジヒドロキシオキソラン−２−イル］−Ｎ−エチルカルボキサミド（６．９）。無水エタノール１５０ｍＬ中の（２Ｓ，３Ｓ，４Ｒ，５Ｒ）−５−（６−アミノ−２−ヨードプリン−９−イル）−３，４−ジヒドロキシオキソラン−２−カルボン酸（６．８）１．２９ｇ（３．１７ｍモル）の冷却され（５℃）攪拌された溶液に、氷冷却したＳＯＣｌ2１．１５ｍＬを液滴状に添加した。混合物を室温で１夜にわたり攪拌し、その後、飽和ＮａＨＣＯ3水でｐＨ８に上げた。混合物を濾過し、その後、濾過液を減圧下濃縮して、白色固形物を生成した。これを乾燥し、その後、−２０℃で、３時間にわたりドライエチルアミン２０ｍＬ中に再溶解し、それから１夜にわたり室温で溶解した。反応混合物を無水エタノールで希釈し、沈殿生成物を濾過分離し、ドライエーテルで洗浄して、純粋固形物、ｍ．ｐ．２３２〜２３４℃の５３０ｍｇ（７２％）の６．９を生成した。1ＨＮＭＲ（３００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）δ８．３４（ｓ、１Ｈ、Ｈ−８）、８．１２（ｔ、１Ｈ、ＮＨ）、７．７３（ｓ、２Ｈ、ＮＨ2）、５．８５（ｄ、Ｊ＝６．９３Ｈｚ、１Ｈ、Ｈ−１’）、４．５４（ｍ、１Ｈ、Ｈ−２’）、４．２５（ｄ、Ｊ＝１．９２Ｈｚ、１Ｈ、Ｈ−４’）、４．１３（ｍ、１Ｈ、Ｈ−３’）、３．２８（ｍ、２Ｈ、ＣＨ2ＣＨ3）、１．００（ｔ、Ｊ＝７．２Ｈｚ、３Ｈ、ＣＨ2ＣＨ3）。
【００７３】
実施例１３．メチル−４−（３−{９−［（４Ｓ，５Ｓ，２Ｒ，３Ｒ）−５−（Ｎ−エチルカルバモイル）−３，４−ジヒドロキシオキソラン−２−イル］−６−アミノプリン−２−イル）}プロプ−２−イニル）シクロヘキサン−カルボキシレート（ＤＷＨ−１４６ｅ）。それぞれトリエチルアミン（ＴＥＡ）およびアセトニトリル５ｍＬ中の［（２Ｓ，３Ｓ，４Ｒ，５Ｒ）−５−（６−アミノ−２−ヨードプリン−９−イル）−３，４−ジヒドロキシオキソラン−２−イル］−Ｎ−エチルカルボキサミド（６．９）２５ｍｇ（０．０６３ｍモル）、（５．５）１６．９ｍｇ（０．０９４ｍモル）、およびＣｕＩ０．７５ｍｇの脱気溶液に、Ｐｄ（ＰＰｈ3）4１５ｍｇを添加した。溶液を７０℃で２４時間にわたり攪拌し、その後溶液を、セライトを通して濾過し、ＭｅＯＨ−ＣＨＣｌ3（５：９５）を用いるシリカゲルカラム上でクロマトグラフィにより精製して、ＤＷＨ−１４６ｅ（２４％）を生成した。
【００７４】
実施例１４．（４−プロプ−２−イニルシクロヘキシル）メチルアセテート（５．６）。無水酢酸（０．９２ｍＬ、８．２５ｍモル）およびピリジン（０．２ｍＬ、２．５ｍモル）を、エーテル２５ｍＬ中の５．３（２５０ｍｇ、１．６５ｍモル）の溶液に添加した。反応物を放置して、室温で２４時間にわたり攪拌した。水を反応物に添加し、有機物をさらに１０％ＮａＨＣＯ3で抽出した。有機層をＭｇＳＯ4で乾燥し、蒸発させた。残留物をＥｔＯＡｃ−ヘキサン（５：９５）を用いるシリカゲルのクロマトグラフィにより精製して、５．６（４７％）を生成した。
【００７５】
実施例１５．［４−（３−{９−［（４Ｓ，５Ｓ，２Ｒ，３Ｒ）−５−（Ｎ−エチルカルバモイル）−３，４−ジヒドロキシオキソラン−２−イル］−６−アミノプリン−２−イル}プロプ−２−イニル）シクロヘキシル］メチルアセテート（ＪＭＲ１９３）。ＴＥＡ１．３ｍＬおよびＤＭＦ４ｍＬ中の［（２Ｓ，３Ｓ，４Ｒ，５Ｒ）−５−（６−アミノ−２−ヨードプリン−９−イル）−３，４−ジヒドロキシオキソラン−２−イル］−Ｎ−エチルカルボキサミド（６．９）１２５ｍｇ（０．２９ｍモル）、（５．６）１５０ｍｇ（０．７７ｍモル）、およびＣｕＩ１．０ｍｇの脱気溶液に、Ｐｄ（ＰＰｈ3）4２５ｍｇを添加した。溶液を６０℃で７２時間にわたり攪拌し、その後、溶液を、セライトを通して濾過し、ＭｅＯＨ−ＣＨＣｌ3（５：９５）を用いるシリカゲルカラム上でクロマトグラフィにより精製して、ＪＭＲ１９３（１０％）を生成した。
【００７６】
実施例１６．［（２Ｓ，３Ｓ，４Ｒ，５Ｒ）−５−（６−アミノ−２−｛３−［４−（ヒドロキシメチル）−シクロヘキシル］プロプ−２−イニル｝プリン−９−イル）−３，４−ジヒドロキシオキソラン−２−イル］−Ｎ−エチルカルボキサミド。
Ａ．（４−プロプ−２−イニルシクロヘキシル）メタン−１−オール。リチウムアセチリドエチレンジアミン錯体（９０％）（６．４ｇ、７０ｍモル）を、ジメチルスルホキシド４０ｍＬ中のトランス−［４−（ヒドロキシメチル）シクロヘキシル］メチル４−メチルベンゼン−スルホネート（３ｇ、１０ｍモル）の溶液に非常にゆっくりと添加していった。反応混合物を放置して、５日間にわたり攪拌し、その後、水で０℃に徐々に冷却した。この混合物をエーテル（３００ｍＬ）で希釈し、飽和塩化アンモニウム水（２００ｍＬ）で３回洗浄した。有機物を硫酸ナトリウムで乾燥した。溶媒を減圧下で除去した。酢酸エチル−ヘキサン（２０：８０）で溶出するシリカゲルカラム上でクロマトグラフィにより精製して、生成物（８５％）を供給した。1ＨＮＭＲ（３００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ3）ｄ３．４１（ｄ、Ｊ＝６．５Ｈｚ、２Ｈ）、２．０７（ｄｄ、Ｊ＝２．５、６．５Ｈｚ、２Ｈ）、１．９６〜１．７５（ｍ、５Ｈ）、１．４１（ｍ、２Ｈ）、０．０９５（ｍ、４）。13ＣＮＭＲ（３００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ3）ｄ８３．８、６９．６、６８．９、４０．７、３７．７、３２．３、３２．３、２９．６、２９．６、２６．５。
【００７７】
Ｂ．［（２Ｓ，３Ｓ，４Ｒ，５Ｒ）−５−（６−アミノ−２−｛３−［４−（ヒドロキシメチル）シクロヘキシル］−プロプ−１−イニル｝プリン−９−イル）−３，４−ジヒドロキシオキソラン−２−イル］−Ｎ−エチルカルボキサミド（ＪＭＲ２０３７）。Ｐｄ（ＰＰｈ3）4１０ｍｇを、トリエチルアミン（ＴＥＡ）１ｍＬ、ＤＭＦ１ｍＬ、およびアセトニトリル１ｍＬ中の、［（２Ｓ，３Ｓ，４Ｒ，５Ｒ）−５−（６−アミノ−２−ヨードプリン−９−イル）−３，４−ジヒドロキシオキソラン−２−イル］−Ｎ−エチルカルボキサミド２８ｍｇ（０．０６５ｍモル）、（４−プロプ−２−イニルシクロヘキシル）メタン−１−オール３０ｍｇ（０．２０ｍモル）、およびＣｕＩ１．０ｍｇの脱気溶液に添加した。溶液を室温で６０時間にわたり攪拌し、その後溶液を、セライトを通して濾過し、ＭｅＯＨ−ＣＨＣｌ3（７：９３）を用いてシリカゲル上でクロマトグラフィにより精製して、５ｍｇ（１７％）のＪＭＲ２０３７を生成した。標題の化合物を、本明細書において開示された結合分析法を用いて試験を行い、組替え型ヒトＡ2A受容体に結合することが見出された。Ｋｉは６９４±６９ｎＭ。
【００７８】
実施例１７．放射リガンド結合研究。Ａ2A受容体への結合を、放射リガンド125Ｉ−ＺＭ２４１３８５により評価した。図２Ｂは組替え型ヒトＡ2Aアデノシン受容体に結合するための選択的作動薬による競合を示している。ＤＷＨ−１４６ｅは組替え型ヒトＡ2A（ｈＡ２Ａ）サブタイプに対して高度に選択的である。Ａ3受容体（示されていない）に対する選択性は、印象に残るほどではないが、それでも約５０倍である。ＤＷＨ−１４６ｅは、それぞれＷＲＣ０４７０およびＣＧＳ２１６８０よりも約５および５０倍効力がある（図１）。予期せぬしかも興味ある発見は、エステル、ＤＷＨ−１４６ｅは、酸、ＤＷＨ−１４６ａよりも約５０倍も効力がある、ということである（図１）。
【００７９】
実施例１７Ａ．好中球酸化活性能へのＤＷＨ−１４６ｅおよびＪＭＲ１９３の影響
Ａ．材料
ｆ−ｍｅｔ−ｌｅｕ−ｐｈｅ（ｆＭＬＰ）、ルミノール、スーパーオキシドジスムターゼ、チトクロームＣ、フィブリノーゲン、アデノシンデアミナーゼ、およびトリパンブルーは、シグマケミカルから入手した。フィコール−ハイパークはＩＣＮ（オーローラ、オハイオ州）、およびカージナル・サイアンテイフィック（サンタフェ、ニューメキシコ州）およびアキュレート・ケミカルアンドサイアンテイフィック（ウエスターベリー、ニューヨーク州）から購入した。エンドトキシン（リポポリサッカリド；大腸菌Ｋ２３５）はリスト・バイオロジカル（キャンベル、カリフォルニア州）から購入した。リムルスアメーバ様細胞分解産物試験キットはバイオ・ウイッテイカー（ウオーカースビル、メリーランド州）から購入した。ヒト血清アルブミン（ＨＳＡ）はカッター・バイオロジカル（エルクハート、インデイアナ州）から購入した。組替え型ヒト腫瘍壊死因子アルファは大日本製薬（Ｄａｉｎｉｐｐｏｎ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ  Ｃｏ．Ｌｔｄ．）（大阪、日本）から提供された。ＺＭ２４１３８５（４−（２−［７−アミノ−２−（２−フリル）−［１，２，４］−トリアゾロ［２，３−ａ］［１，３，５］トリアジン−５−イルアミノ］エチル）フェノール）は、シモン・パウチャー、ゼネカ・ファーマシューテイカル、チエシャー（ＵＫ）から贈られた。貯蔵液（ＤＭＳＯ中１ｍＭおよび１０ｍＭ）は製造し、−２０℃で貯蔵した。
【００８０】
Ｂ．ヒト好中球製造
５好中球当たり＜１の血小板および＜５０ｐｇ／ｍｌのエンドトキシン（リムルスアメーバ様細胞分解産物試験）を含有する精製好中球（〜９８％好中球およびトリパンブルー排除による＞９５％生存可能）を、１段フィコール−ハイパーク分離法（Ａ．Ｆｅｒｒａｎｔｅ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈ．，３６，１０９（１９８０））により通常のヘパリン化（１０Ｕ／ｍｌ）静脈血から得た。
【００８１】
Ｃ．突発性、刺激性のヒト好中球化学発光からの炎症性反応性酸素化学種の放出
ルミノール強化化学発光、好中球酸化活性能の程度は、過酸化物生成、およびリソゾームの顆粒酵素ミエロペルオキシダーゼの可動化、の両方に応じて決まる。光は、活性化好中球により生じる不安定な高エネルギー酸素化学種から放出される。震とう水浴の中において、精製好中球（５〜１０×１０5／ｍｌ）を、３７℃で３０分にわたり、ＤＷＨ−１４６ａ、ＤＷＨ−１４６ｅ、ＣＧＳ２１６８０、またはＪＭＲ１９３と共に、またはなしで、ロリプラム（rolipram）と共に、またはなしで、および腫瘍壊死因子アルファ（１Ｕ／ｍｌ）と共に、またはなしで０．１％ヒト血清アルブミン（１ｍｌ）を含有するハンクス液中で培養した。その後、ルミノール（１×１０-4Ｍ）強化ｆ−ｍｅｔ−ｌｅｕ−ｐｈｅ（１ｍｃＭ）刺激化学発光を、３７℃で２〜４分間、クロノログ（登録商標）フォトメーター（Ｃｒｏｎｏ−ｌｏｇ  Ｃｏｒｐ．，ハバータウン、ペンシルバニア州）により読み取った。化学発光は、ＤＷＨ、ＪＭＲまたはロリプラムなしの腫瘍壊死因子アルファでの例に較べての相対的なピーク放出光（＝曲線の高さ）として報告される。
【００８２】
Ｄ．結果
図２に示すように、ＪＭＲ１９３およびＤＷＨ−１４６ｅ両方共、ルミノール強化化学発光による測定として、アデノシンＡ2A受容体作動薬ＣＧＳ２１６８０よりも、腫瘍壊死因子アルファ突発ｆ−ｍｅｔ−ｌｅｕ−ｐｈｅ刺激ヒト好中球酸化活性能を、より有効に減少させた。横軸はＣＧＳ２１６８０、ＤＷＨ−１４６ａ、ＤＷＨ−１４６ｅまたはＪＭＲ１９３の濃度（ｌｏｇｎＭ）を示す。縦軸は、ルミノール強化化学発光による測定として、腫瘍壊死因子アルファにより突発されていない対照（コントロール）サンプルとの比較で、反応性酸素化学種の刺激放出の相対的な量として得られるピークヒト好中球活性能を示す。平均ＳＥＭ（ｎ＝４〜５の個別の実験）。
【００８３】
図２の横軸下のデータは、ヒト好中球活性能（図２中のデータに基づく）を減少するためのＥＣ50を与える。平均ＳＥＭ（ｎ＝４〜５の個別の実験）。*ｐ＜０．０５、ＣＧＳ２１６８０に較べて減少したＩＣ50。
【００８４】
ＪＭＲ１９３およびＤＷＨ−１４６ｅは、刺激好中球酸化発生を、ＥＣ50で１ｎＭ（それぞれ０．８および０．３ｎＭ）未満に減少させた。対照的に、遊離酸Ａ2Aアデノシン受容体作動薬ＤＷＨ−１４６ａおよびＣＧＳ２１６８０は、酸化発生の抑制において、それほど有効ではなかった（それぞれ５３および９ｎＭ；図２）。刺激好中球酸化発生のＤＷＨ−１４６ｅ抑制は、選択的Ａ2AＡＲ作動薬ＺＭ２４１３８５により中和された。
【００８５】
図３に示すように、ＪＭＲ１９３（１ｎＭ）は、ロリプラム（１００ｎＭ）と相乗的に反応性酸素化学種の刺激放出を減少させた。ヒト好中球を、腫瘍壊死因子アルファ（１Ｕ／ｍｌ）で突発し、ｆ−ｍｅｔ−ｌｅｕ−ｐｈｅ（１μＭ）で刺激した。縦軸は、ルミノール強化化学発光により測定される酸化活性能の抑制％を示す。ミーンズＳＥＭ（ｎ＝４の個別の実験）。*ｐ＜０．０５、ＪＭＲ１９３およびロリプラム間の、加算に較べての相乗作用。
【００８６】
図４に示すように、高度に選択的なＡ2Aアデノシン受容体作動薬ＺＭ２４１３８５（１００ｎＭ）（ＺＭ）は、ルミノール強化化学発光により測定されるように、ＪＭＲ１９３（１０ｎＭ）により抑制される、ヒト好中球酸化活性能を中和した。平均ＳＥＭ（ｎ＝４の個別の実験）。*ｐ＜０．０００４、ＪＭＲ１９３抑制酸化活性能を中和したＺＭ２４１３８５。
【００８７】
Ｅ．ヒト好中球［ｃＡＭＰ］および生物表面への好中球付着
５％ＣＯ2中において、２４穴組織培養プレートを、３７℃で１夜にわたり、ヒトフィブリノーゲン（１．５％重炭酸ナトリウム中５ｍｇ／ｍｌ；０．５ｍｌ／穴；シグマ・ケミカル）で被覆した。組替え型ヒトＴＮＦα（１０Ｕ／ｍｌ）、ＤＷＨ−１４６ｅ（３〜３００ｎＭ）、ロリプラム（３００ｎＭ）、および／またはＺＭ２４１３８５（１００ｎＭ）の存在下およびなしの場合に、０．１％ＨＳＡおよびＡＤＡ（１Ｕ／ｍｌ）を含有するＨＢＳＳ０．５ｍｌ中で、４５分間にわたり被覆プレートの１穴内において、好中球（３〜４×１０6／０．５ｍｌ／サンプル）を培養した。培養に続いて、０．５ｍｌＨＣｌ（０．２Ｎ）を穴に添加し、さらに室温で４５分間にわたり培養して、ｃＡＭＰを抽出した。その後、試料を２分間微細遠心器の中で遠心分離して、細胞崩壊物を除去した。半ｍｌ試料をｃＡＭＰ分析（Ｂ．Ｂｒｏｏｋｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ，１９４，２７０（１９７６））用に凍結した。穴を通常の食塩水で２回洗浄し、ＳＤＳを含有する０．２ＮＮａＯＨ０．２ｍｌにより、室温で２時間にわたり残留単一層を消化した。その後、蛋白質試料を凍結し（−７０℃）、後に相対的なＰＭＮ付着性（Ｋ．Ｐ．Ｓｔｏｗｅｌｌ  ｅｔ  ａｌ．，Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，８５，５７２（１９７８））を決めるための蛋白質分析に供した。
【００８８】
結果
ＤＷＨ−１４６ｅ（３０〜３００ｎＭ）単独で、およびロリプラム（３００ｎＭ）と共に相乗的にヒト好中球ｃＡＭＰ含量を増大し、フィブリノーゲン被覆表面への好中球付着をロリプラムと共に相乗的に減少させた（図５）。ＤＷＨ−１４６ｅ（３００ｎＭ）＋ロリプラム（３００ｎＭ）の好中球ｃＡＭＰ生成および付着に及ぼす影響を、選択的なＡ2Aアデノシン受容体作動薬、ＺＭ２４１３８５（ＺＭ；１００ｎＭ）により中和した。５の個別実験の平均ＳＥＭ。*ｐ＜０．０５、ＤＷＨ−１４６ｅなしに較べての増加好中球［ｃＡＭＰ］；**ｐ＜０．０５、ＤＷＨ−１４６ｅなしに較べての減少好中球付着性。
【００８９】
Ｆ．付着ヒト好中球酸化活性能
方法。セクションＥから変性した方法を用いて、０．１％ヒト血清アルブミンおよびアデノシンデアミナーゼ（１Ｕ／ｍｌ）、ロリプラム（３００ｎＭ）、およびＤＷＨ−１４６ｅ（３〜３００ｎＭ）を含有するハンクス液０．４５ｍｌ中において、フィコール−ハイパーク分離法からの好中球（２×１０6／ｍｌ）を３７℃で１５分間培養した。培養に続いて、ヒト腫瘍壊死因子アルファ（１Ｕ／ｍｌ）の存在下およびなしの場合で、サイトクロムＣ（１２０μＭ）およびカタラーゼ（０．０６２ｍｇ／ｍｌ）を添加し、細胞懸濁液２００μｌの分取試料を、１夜にわたりヒトフィブリノーゲンで被覆していた９６穴平底組織培養プレートの複製穴に、直ちに移した。試料の光学的密度を、対応過酸化物ジスムターゼ（２００Ｕ／ｍｌ）試料に対して５５０ｎｍで読み取った。
【００９０】
Ｇ．結果
図６に示すように、フィブリノーゲン被覆表面上での腫瘍壊死因子アルファ（ＴＮＦ）刺激付着ヒト好中球過酸化物放出の抑制剤は、ロリプラム（３００ｎＭ）およびＤＷＨ−１４６ｅにより達成された。ＤＷＨ−１４６ｅは、付着性好中球の酸化発生を減少させ、それ自体では好中球酸化活性能に影響を与えないロリプラムの存在下で、酸化発生を相乗的に減少させた。横軸はｎＭ単位のＤＷＨ−１４６ｅ濃度を示し、縦軸はサイトクロームｃ還元により測定される、好中球により放出される過酸化物の量を示す。腫瘍壊死因子アルファ刺激付着性ヒト好中球酸化活性能を減少させるための、ＤＷＨ−１４６ｅとタイプIＶＰＤＥ抑制剤、ロリプラムとの著しい相乗作用があった。４〜５の個別実験からの反復試験の平均ＳＥＭ。*ｐ＜０．０５、ＤＷＨ−１４６ｅなしに較べての減少過酸化物放出；**ｐ＜０．０５、ロリプラムあり、ＤＷＨ−１４６ｅなしに較べての減少過酸化物放出。
【００９１】
実施例１８
腎臓の虚血／再灌流（Ｉ／Ｒ）障害のＤＷＨ−１４６ｅによる治療
ＤＷＨ−１４６ｅ誘導Ａ2Aアデノシン受容体活性化が、血漿クレアチニンを２４時間および４８時間で減少させるかさせないかを決定するために、ラットのＩ／Ｒ障害に続いて、ラット腎臓に４５分間の虚血、および２４時間または４８時間の再灌流を受けさせた。ＤＷＨ−１４６ｅ（０．００４μｇ／ｋｇ／分）または賦形剤を、ミニポンプを介してＩ／Ｒ前５時間に開始して、連続的に投与した。図７に示すように、ＤＷＨ−１４６ｅは、それぞれ２４時間および４８時間で、ＤＷＨ−１４６ｅにより処理した７／７ラット（Ｐ＜０．０５）および６／６ラット（Ｐ＜０．００１）において血漿クレアチニンを有意に減少させた。
【００９２】
Ｉ／Ｒを受けたラット中の血漿クレアチニンの減少へのＤＷＨ−１４６ｅの影響がＡ2A受容体仲介のせいかどうかを決定するために、ラットの腎臓に４５分間の虚血、続いて４８時間の再灌流を受けさせた。ＤＷＨ−１４６ｅ（０．００４μｇ／ｋｇ／分）を、ミニポンプを介して虚血前５時間に開始して、連続的に投与した。図８に示すように、腎臓機能の改善は、Ａ2A作動薬ＺＭ−２４１３８５（０．００３μｇ／ｋｇ／分−ＤＷＨ−１４６ｅ比等モル伝達速度）により逆転した（*ｐ＜０．００１、賦形剤対ＤＷＨに対して；**ｐ＜０．０５、ＤＷＨ対ＤＷＨ／ＺＭ。賦形剤、ＤＷに対してＮ＝５；ＤＷＨ／ＺＭに対してＮ＝６。ＡＮＯＶＡ続いてボンフェローニ補正）。
【００９３】
血流力学的影響を持たない濃度でのＤＷＨ−１４６ｅは、腎臓の水腫、壊死および延髄内部の赤血球貯留を防止する。
【００９４】
ＤＷＨ−１４６ｅ（０．０１μｇ／ｋｇ／分ｓ．ｃ．４８時間）により与えられる腎臓障害に対する保護は、血管内皮への好中球付着の劇的な抑制と相関した。好中球および血管内皮間の相互作用のＤＷＨ−１４６ｅによる抑制は、少なくとも部分的に、腎臓障害に対する保護に責任能力を有するもの、と信じられている。
【００９５】
Ａ2A−ＡＲ活性化がＩ／Ｒを受けたラットの外側延髄中の好中球を減少させるかどうかを、ニューロルシーダ（Neurolucida）（登録商標）を用いて決定するために、腎臓を１００×ｍａｇ下で観察し、全体の腎臓を引き出した。２５０×ｍａｇ下で腎臓断面を観察することによりＰＭＮ数を計算した。腎臓断面を顕微鏡下で観られる光学フレームで覆い、すべてのＰＭＮ数を各フレーム内で計算した。このシステムは２度目からのＰＭＮ数計算はできない。図９に示すように、好中球の密度は、賦形剤に対して１５．６５／ｍｍ2およびＤＷＨ−１４６ｅ治療に対して３．０２／ｍｍ2であった。
【００９６】
実施例１９．ＤＷＨ−１４６ｅの肺再灌流障害への影響
Ａ．方法。単離された、全血灌流の、通気されたラビットの肺モデルを用いた。ドナーラビットからの肺採取を肺動脈ＰＧＥ１注射およびユーロ−コリンズ保存溶液噴出の後に行い、肺を４℃で１８時間保存した。グループＩの肺（ｎ＝９）は対照被検物として機能した。グループＩＩの肺（ｎ＝９）は、最初に白血球除去フィルターを通過させた全血で再灌流した。グループＩＩＩ（ｎ＝９）においては、ＤＷＨ−１４６ｅを、再灌流の直前に再灌流血液（２５μｇ／ｋｇ）に添加し、再灌流期間を通して投与した（１μｇ／ｋｇ／分）。すべての肺を３０分間再灌流し、肺動脈圧（ＰＡＰ）、肺血管抵抗（ＰＶＲ）、気道コンプライアンス（ＣＰＬ）および動脈酸素付加を記録した。ミエロペルオキシダーゼ活性能（ＭＰＯ）を、好中球分画症を定量化するために記録し、ウェット／ドライ重量比を肺水腫の実証のために測定した。
【００９７】
Ｂ．結果。グループＩＩおよびグループＩＩＩにおける動脈酸素付加は、３０分の再灌流後、グループＩのそれよりも有意に高かった（５１４．２７±３５．８０および４６１．１２±４３．７７対９１．４１±２０．５８ｍｍＨＧ、ｐ＜０．００１）。図１０に示すように、グループＩＩＩの肺は、再灌流を通してｐＯ2への進行性影響を示した。グループＩＩの肺における白血球除去は、早期の再灌流において動脈酸素付加を改善した。*ｐ＝０．００４（グループＩＩ対グループＩおよびＩＩＩ）；**ｐ＜０．００１（グループＩＩおよびＩＩＩ対グループＩ）。
【００９８】
図１１に示すように、グループＩＩにおける平均ＰＶＲは、対照肺に較べた時、有意に減少した（*ｐ＜０．００１）。グループＩＩＩの肺のＰＶＲは、白血球除去血液で再灌流を行った肺さえよりも有意により低かった（**ｐ＜０．００１対グループＩおよびＩＩ）。肺血管抵抗は、グループＩＩおよびＩ（３１，０５７±１７４３および３６，９１１±２１７３ｄｙｎｅｓ・ｓ・ｃｍ-5、ｐ＜０．００１）の両方に較べて、グループＩＩＩ（２２，７８３±３５７ｄｙｎｅｓ・ｓ・ｃｍ-5）において有意に減少した。気道コンプライアンスは、グループＩに較べた時、グループＩＩおよびＩＩＩにおいて改善された（１．６８±０．０８および１．６８±０．０５対１．３６±０．１３、ｐ＝０．０３）。グループＩＩＩにおける微子血管透過性は、グループＩの１６５．７０±２１．８３ｎｇエバンス−ブルー染料／ｇｍ組織に較べて、１０６．８２±１７．０９に減少した（ｐ＝０．０５）。図１２に示すように、グループＩＩＩにおけるミエロペルオキシダーゼ活性能は、グループＩにおけるよりも有意により低かった（*ｐ＝０．０３）。ＭＰＯ＝ミエロペルオキシダーゼ。グループＩＩＩミエロペルオキシダーゼ活性能は、グループＩの８８．７０±１８．６９ΔＯＤ／ｇｍ／分に較べて３９．８８±４．８７であり（ｐ＝０．０３）、グループＩＩミエロペルオキシダーゼ活性能は、５６．０６±７．４６であった。
【００９９】
Ｃ．結論。ＤＷＨ−１４６ｅは肺の好中球分画症を減少させ、劇的に肺移植機能を改善した。好中球は再灌流障害の炎症カスケードの重要な構成成分であり、それらの供給源は循環血液および肺移植それ自体の両方を含むことが可能である。選択的アデノシン−Ａ2A活性化は好中球介在炎症反応を妨げ、移植後の肺再灌流障害を減少させる。
【０１００】
光顕微鏡検査下、グループＩの対照肺は、１８時間の虚血貯蔵および３０分の再灌流後、肺胞空間に苛酷な白血球浸潤および水腫形成を示した。白血球除去血液で再灌流を行ったグループＩＩの肺、および再灌流の間ＤＷＨ−１４６ｅを受けたグループＩＩＩの肺において、この浸潤は非常に少なかった。
【０１０１】
実施例２０．ＤＷＨ−１４６ｅの動脈障害後の新内膜形成への影響
炎症性サイトカインの放出による白血球活性化は、経皮的冠状動脈関与後に起こり、再狭窄の役割を供することが可能である。マウスにおける、無傷の内皮面の存在下での強い内膜形成は、通常の頚動脈の結さつ後に起こる。このモデルを用いて、Ｃ５７／ＢＬ６マウスを無作為に選び、頚動脈結さつ時に、浸透圧ポンプを介してＤＷＨ−１４６ｅ（ｎ＝７）または賦形剤（ｎ＝８）の７日間の輸液を行った。
【０１０２】
頚動脈結さつ後１４日で、組織学的外形計測によると、対照（コントロール）に較べて処置動物において、新内膜面積（０．００５±０．００４ｍｍ2対０．０２１±０．０１４ｍｍ2、ｐ＝０．０２）および新内膜面積対内側面積比（０．１３±０．０７対０．６４±０．４４、ｐ＝０．０１）の著しい減少が見られた。内側面積は２グループ（０．０３４±０．００７ｍｍ2対０．０３６±０．００９ｍｍ2、ｐ＝０．８１）で同様であった。この新内膜成長を限定する利点は２８日間続いた。図１３は、マウスＬＣＣＡモデルの中の新内膜成長を抑制するＤＷＨ−１４６ｅの効果を要約している。これらの実験は、マウス頚動脈結さつモデルにおいて、ＤＷＨ−１４６ｅによる長期Ａ2A刺激（７日間）は、多分白血球の活性化および機能へのその効果を通して、少なくとも２１日間にわたり著しい新内膜形成の減少をもたらす、ことを示している。
【０１０３】
実施例２１．エンドトキシン刺激ヒト単球ＴＮＦα放出の抑制
Ａ．材料
フィコール−ハイパークをＩＣＮ（オーローラ、オハイオ州）およびカージナル・サイアンテイフィック（サンタフェ、ニューメキシコ州）およびアキュレート・ケミカルズアンドサイアンテイフィック（ウエストベリー、ニューヨーク州）から購入した。エンドトキシン（リポポリサッカリド；大腸菌０１１１Ｂ４）をリスト・バイオロジカル（キャンベル、カリフォルニア州）から購入した。ハンクス液（ＨＢＳＳ）、およびリムルスアメーバ様細胞分解産物試験キットをバイオ・ウイッテイカー（ウオーカースビル、メリーランド州）から購入した。ヒト血清アルブミン（ＨＳＡ）をカッター・バイオロジカル（エルクハート、インデイアナ州）から購入した。ＺＭ２４１３８５（４−（２−［７−アミノ−２−（２−フリル）［１，２，４］−トリアゾロ［２，３−ａ］［１，３，５］トリアジン−５−イルアミノ］エチル）フェノール）は、シモン・パウチャー、ゼネカ・ファーマシューテイカル、チエシャー（ＵＫ）から贈られた。貯蔵液（ＤＭＳＯ中１ｍＭおよび１０ｍＭ）は製造し、−２０℃で貯蔵した。
【０１０４】
Ｂ．精製ヒト付着単球によるＴＮＦαの製造
方法：フィコール−ハイパーク分離法（Ａ．Ｆｅｒｒａｎｔｅ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈ．，３６，１０９（１９８０））からの単核白血球留分（５×１０5／ｍｌ）１ｍｌを、２４穴組織培養プレート穴において培養する（１時間、３７℃、５％ＣＯ2）ことにより、単球に富んだ単層（＞６５％単球）を製造した。非付着性白血球を洗浄により除去し、培養媒体（０．１％ヒト血清アルブミン、アデノシンデアミナーゼ［５Ｕ／ｍｌ］および１％熱不活性化自己血清を含有する１ｍｌハンクス液）を、付着性白血球を含む穴に添加した。上述したように、以下のものを添加した：（１）エンドトキシン（１００ｎｇ／ｍｌ）およびＡ2AＡＲ選択的作動薬ＺＭ−２４１３８５（１００ｎＭ）および、（２）Ａ2Aアデノシン受容体選択的作動薬ＪＭＲ１９３（１〜１０００ｎＭ）、ＤＷＨ−１４６ｅ（１〜１０００ｎＭ）およびＣＧＳ２１６８０（１０〜１０００ｎＭ）。その後、試料を４時間にわたり培養し（３７℃、５％ＣＯ2）、上澄みを採取した。あらゆる懸濁細胞を遠心分離法により除去し、細胞なしの試料を凍結した（−７０℃）。ＥＬＩＳＡキット（コールター／イミュノテック、マイアミ、フロリダ州）により、細胞なし上澄み（ｎ＝６）における、ＴＮＦαの効力検定を行った。
【０１０５】
Ｃ．結果
図１０、１４に示すように、Ａ2Aアデノシン受容体作動薬は、ＴＮＦαのエンドトキシン刺激付着性単球生成を減少させた。Ａ2AＡＲ選択的作動薬ＺＭ２４１３８５（１００ｎＭ）は、ＪＭＲ１９３のＴＮＦα生成への影響を中和した（図１５）。従って、ＤＷＨ−１４６ｅおよびＪＭＲ１９３は、Ａ2Aアデノシン受容体に結合する作動薬に依存する機構により、ヒト単球を通じて、ＬＰＳエンドトキシン刺激ＴＮＦα生成を減少させる。
【０１０６】
実施例２２．マウスの腹膜炎モデルにおけるＤＷＨ−１４６ｅの活性能
実験腹膜炎での予備実験は、強力な炎症の刺激としてのチモサン（Ｚｙｍ）の注射を含んでいた（Ｙ．Ｚｈａｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．，３１３，２３７（１９９６））。図１６に示すように、チモサン注射後、ノイバウアー血球計で測定した平均白血球濃度は７，３２５±１，８９３／ｍｍ3であった。チモサン前１時間での投与量２．５μｇ／ｋｇのＤＷＨ−１４６ｅ腹膜内注射は、６時間後の２，０１２±３７４／ｍｍ3の平均±ＳＥＭ白血球濃度により、腹膜炎の発生を抑制した（ｐ＜０．０５）。従って、これらの研究は、Ａ2AＡＲがチモサン攻撃後に腹膜中へのＰＭＮ妨害を和らげることにおいて役立つことを、示している。
【０１０７】
実施例２３．ＪＭＲ１９３の抗炎症効果の介在による心臓保護
冠状動脈の血液供給の反復閉鎖により、妨げられた冠状動脈血液流の反復一過性の期間に続いて起こる、心臓障害の形態である心筋失神を導入することにより、本発明の化合物の試験を行った。
【０１０８】
Ａ．閉鎖−再灌流４サイクルの効果
犬のグループの冠動脈左前下行枝（ＬＡＤ）を単離し、スネアオクルーダーで取り囲んだ。犬のＬＡＤ動脈血液供給を５分間にわたり４回閉鎖した。各閉鎖の後に、血液流を１０分にわたり貯蔵した。６犬からなる１グループに、各閉鎖期の後に、実施例１５で製造された酢酸塩化合物（ＪＭＲ１９３）を含有する溶液を注入した（ＪＭＲ１９３）（０．０１μｇ／ｋｇ／分）。６犬の第2グループに、賦形剤（担体）を含有する溶液を注入した。最終再灌流サイクル後、動物の心臓機能を３時間にわたり監視した。
【０１０９】
結果を図１７および１８に示す。図１７は対照６犬の収縮期左心室（ＬＶ）肥大反応を示す。心臓肥大は、最後の閉鎖後３時間で約５０％減少した。図１８は、試験化合物、ＪＭＲ１９３（０．０１μｇ／ｋｇ／分）の静脈内注入を受けた６犬中のＬＶ肥大反応を、ベースライン期から始まり実験を通して連続的に示す。ＪＭＲ１９３注入により心臓機能は、再灌流後９０分ほどでほぼ正常に戻った。
【０１１０】
Ｂ．閉鎖−再灌流１０サイクルの効果
新たな２グループの犬に、各閉鎖が５分間であり、所々に５分間の再灌流を置く、１０回（別に４回）の閉鎖−再灌流１０サイクルを受けさせた。この実施例において、動物の２匹に、各閉鎖期の後に、実施例１５で製造された酢酸塩化合物（ＪＭＲ１９３）を含有する溶液を注入した（０．０１μｇ／ｋｇ／分）。別の３匹の動物に、賦形剤（担体）を含有する溶液を注入した。最終再灌流サイクルの後、動物の心臓機能を３時間にわたり監視した。
【０１１１】
結果を図１９および２０に示す。図１９は、対照３犬の収縮期左心室（ＬＶ）肥大反応を示す。これは、実施例２３Ａにおけるよりも、さらに厳しい心臓障害であり、結果として、ＬＶ肥大は再灌流後早めに完全になくなり、運動不能症が３時間残った。図２０は、試験化合物、ＪＭＲ１９３（０．０１μｇ／ｋｇ／分）の静脈内注入を受けた２犬中のＬＶ肥大を、ベースライン期から始まり実験を通して連続的に示す。対照グループに較べて、ＪＭＲ１９３注入を受けた犬は、３時間続けた再灌流後直後に、心臓機能の有意で著しい改善を示した。
【０１１２】
Ｃ．酢酸塩化合物ＪＭＲ１９３の、閉鎖−再灌流間の好中球摂取への影響
いくつかの動物に放射線標識好中球を投与した（好中球を犬血液から単離し、99mＴｃを含有する化合物で培養し、犬に再注入した）。再灌流領域中の炎症のレベルを決定するために、４回の虚血／再灌流サイクル後に、99mＴｃ−標識好中球を標識として静脈内に投与した。閉鎖−再灌流サイクルからの炎症は、放射性好中球の付着を引き起こし、ガンマカメラにより定量化された。好中球付着性はＪＭＲ１９３により抑制された。結果は図２１に示され、賦形剤のみ（固形棒）で処置された犬における99mＴｃ−標識好中球の限局化は、ＪＭＲ１９３処置（縞状の棒）犬よりも、より大きいものであった。従って、ＪＭＲ１９３注入により引き起こされた中心虚血領域における放射性標識好中球の減少は、（*）心臓炎症の減少を示す。
【０１１３】
実施例２３Ａおよび２３Ｂにおいて記載された研究は、心臓炎症が心筋失神を引き起こすことにおいて、有意に有害な役割を果たしていることを、示している。加えて、例えば、ＪＭＲ１９３などのアデノシンＡ2A受容体作動薬の投与は、ゆるやかな失神（図１７および１８）を防止するか、または厳しい失神（図１９および２０）を伴う心筋機能障害を有意に弱めるかのいずれかに寄与する。
【０１１４】
すべての刊行物、特許、および特許文書を、あたかもそれぞれが参考として参照されるように、本明細書において参考として包含するものである。本発明は、種々の特定のおよび好ましい実施形態および技術に関連して記載されてきた。しかし、本発明の精神および範囲内にあって、多くの変化および変更がなされうることは、理解されるべきである。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【図１７】
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【図１８】
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【図１９】
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【図２０】
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【図２１】
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