【誤訳訂正書】
【提出日】平成24年7月4日(2012.7.4)
【誤訳訂正１】
【訂正対象書類名】特許請求の範囲
【訂正対象項目名】全文
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【特許請求の範囲】
【請求項１】
下記一般構造式（Ｉ）の構造を有する化合物、又はその薬剤的に許容される塩若しくは溶媒和物。
Ａ−Ｂ−Ｃ  （Ｉ）
式中、Ｃは、次の構造からなる群から選ばれ、
【化１】
2010531353.tif 000001
（式中、Ｒ１、Ｒ２、Ｒ３、およびＲ４は、互いに独立して、水素及びＣ１〜Ｃ６のアルキル基からなる群より選ばれる。）；
Ｂは−（ＣＨ２）ｎ−、ｎは１〜５の整数であり；
Ａは、下記の構造からなる群から選ばれる：
【化２】
2010531353.tif 000002
（式中、Ｒ５は、水素、Ｃ１〜Ｃ６のアルコキシ基、ＣＨ２ＮＲ１０Ｒ１１、ＣＨ（ＣＨ３）ＮＲ１０Ｒ１１、
【化３】
2010531353.tif 000003
からなる群から選ばれ、
Ｒ６およびＲ７は、互いに独立して、水素、Ｃ１〜Ｃ６のアルキル基、Ｃ１〜Ｃ６のアルコキシ基およびハロゲンからなる群から選ばれ、
Ｒ８は、水素またはＣ１〜Ｃ６のアルキル基であり、
Ｒ９は、
【化４】
2010531353.tif 000004
から選ばれる。
（上記式中、Ｒ１０およびＲ１２は、互いに独立して、水素、Ｃ１〜Ｃ６のアルキル基、（ＣＨ２）ｍＣＯＯＲ１３、（ＣＨ２）ｍＣＯＮ（Ｒ１３）２、
【化５】
2010531353.tif 000005
からなる群から選ばれ、ここでｍは１から４の整数であり、ｋは１から３の整数であり、
Ｒ１３は、水素またはＣ１〜Ｃ６のアルキル基であり、
Ｒ１１は、Ｃ１〜Ｃ６のアルキル基、またはＡｒであり、
Ａｒは、水素、Ｃ１〜Ｃ６アルキル基、Ｃ１〜Ｃ６アルコキシ基、ハロゲン、Ｎ（Ｒ１３）２、ＯＨ、ＮＯ２、ＣＮ、ＣＯＯＲ１３、ＣＯＮ（Ｒ１３）２およびＳＯ２Ｒ１３の群から選ばれた１から５つの置換基で置換されていてもよい、フェニル、ピリジル、オキサゾリル、チアゾリル、チエニル、フラニル、ピリミジニル、ピリダジニル、ピラジニル、インドリル、ベンゾフラニル、およびベンゾチオフェニルからなる群より選ばれる。））。
ただし、Ａが
【化６】
2010531353.tif 000006
又は
【化７】
2010531353.tif 000007
の場合、Ｒ５及びＲ６はそれぞれ水素ではなく、
また、式（Ｉ）の化合物には下記の化合物は含まれない。
【化８】
2010531353.tif 000008
【請求項２】
下記の構造を有する請求項１に記載の化合物、又はその薬剤的に許容される塩若しくは溶媒和物。
【化９】
2010531353.tif 000009
（式中、Ｙは、水素、ハロゲン、ＣＯＯＲ１３、ＣＯＮ（Ｒ１３）２およびＳＯ２Ｒ１３からなる群から選ばれ、
ｒは、２から５の整数である。）
【請求項３】
トロンビンを阻害する能力のある、請求項１に記載の化合物又はその薬剤的に許容される塩若しくは溶媒和物。
【請求項４】
請求項１に記載の化合物又はその薬剤的に許容される塩若しくは溶媒和物の、哺乳類の血栓症疾患を治療するための抗凝血剤としての使用。
【請求項５】
請求項１に記載の化合物又はその薬剤的に許容される塩若しくは溶媒和物の治療有効量と、薬剤的に許容される担体とを含む、トロンビンに依存した血栓塞栓症を治療及び／又は予防するための医薬組成物。
【請求項６】
請求項１に記載の化合物又はその薬剤的に許容される塩若しくは溶媒和物を含む、血液希釈により誘導される凝固亢進症を改善するための血漿代用液。
【誤訳訂正２】
【訂正対象書類名】明細書
【訂正対象項目名】全文
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【発明の詳細な説明】
【発明の名称】新規抗凝血化合物、それらを基にした血栓症疾患治療のための医薬組成物、および血液希釈による凝固亢進の改善のための血漿代用液
【技術分野】
【０００１】
本発明は、新規化学化合物、それらをもとにした抗凝血剤、医薬組成物および血漿代用液としてのこれら化合物の利用に関し、心筋梗塞、脳卒中、深部静脈血栓症、または肺動脈血栓塞栓症などの疾病における血栓塞栓性合併症を治療するため、および、負傷、手術、敗血症、種々の産科病態(obstetric pathologies)、災害医学(disaster medicine)、蘇生などの結果としての凝固亢進の進行を予防するために用いられ得る。
【０００２】
生物の非常に数多くの多種にわたる病変(pathologies)が、止血系における障害によって、引き起こされている。心筋梗塞、脳卒中、深部静脈血栓症、または肺動脈血栓塞栓症などの疾病から進行する血栓塞栓性合併症は、全世界で主な死因になっている。よって、効果的で安全な臨床薬として機能し得る医薬品の開発に、長い間、鋭利努力が重ねられてきたことは驚きに値しない。とりわけ、これら医薬品は、様々な種類の抗凝血特性を示す抗血栓症剤である。
【０００３】
トロンビンは血液凝固系における鍵酵素である。トロンビンは、可溶性血漿タンパク質及びフィブリノゲンを不溶性フィブリン塊に転換するが、この系において正及び負のフィードバックの大部分を惹起し、血小板、V因子、VIII因子、XI因子、XIII因子及びさらにプロテインCを活性化する。また、トロンビンは、内皮細胞の増殖、内皮細胞からのプラスミノーゲン活性因子の放出など、様々な細胞反応及び血管反応を起こす。トロンビンが多くの重要な生体制御事象にかかわっていることから考えると、トロンビンの活性部位を阻害することは、多くの病態生理学的状態の制御に非常に効果的で有望であるに違いない。
【０００４】
望ましくない血栓症を予防するために、止血系に作用する３つの主な方法がある。それらの方法とは、凝固カスケード（第一にはトロンビンおよびXa因子）のセリンプロテアーゼの直接および間接阻害剤を使用すること；血小板の凝集特性を減じてさらなる凝固を防ぐ抗血小板製剤（ＧＰＩＩｂ／ＩＩＩａ拮抗剤、アスピリン、トロンビン受容体拮抗剤など）を使用すること；および、肝臓での凝固因子前駆体の合成を減じるビタミンＫ拮抗剤を使用することである。
【０００５】
今日、３つの主な抗血栓症の製剤が、診療所で用いられている。未分画ヘパリン、経口抗凝血剤ワルファリン（ビタミンＫ拮抗剤）、および血小板凝集阻害剤としてのアスピリンである。しかし、これらの製剤は、各々、使用に制限があり、望ましくない副作用を生じる。
【０００６】
未分画ヘパリン（ＵＦＨ）は、天然の陰イオン性の多糖で、ウロン酸（Ｌ−イズロン酸および／またはＤ−グルクロン酸）残基およびＤ−グルコサミン残基から成る二糖類単位の繰り返しから構築される様々な長さの多糖鎖の混合物である。その分子量は、異なる供給源によって、３，０００〜５，０００から３０，０００〜４０，０００ダルトンにわたり、１２，０００から１５，０００ダルトンがピークである。
【０００７】
未分画ヘパリンおよびより低分子量のその類似体（低分子量ヘパリンまたはＬＭＷＨ）は、間接抗凝血剤である。それらは自身ではトロンビンを阻害せず、天然の血漿凝固阻害因子であるアンチトロンビン（ＡＴＩＩＩ）の効果を高めるのみである。従って、患者の血漿中のＡＴＩＩＩ含有量がなんらかの理由で非常に低い場合、ヘパリンは弱い抗凝血性効果を示す。
【０００８】
臨床で使用するにあたって、未分画ヘパリンには、多くの欠点がある。
１．未分画ヘパリンの効果は短時間しか持続せず、その効果は、投薬を中止後、非常に急速に消滅する。従って、ＵＦＨは、血栓症の再発危険を下げることができない。
２．ヘパリンはその抗血栓症の効果を間接的に生じ、系中に抗トロンビンIIIが存在することを必要とする。
３．ヘパリンは循環しているトロンビンに対してのみ活性があり、血塊に吸収されたトロンビンをほとんど阻害しない。
４．血漿中のＡＴＩＩＩレベル、各人の製剤クリアランスの速度、様々な血漿タンパク質及び活性化血小板（血小板因子４、ヘパリナーゼなど）によるヘパリンの結合及び中和といった多くの理由のため、同一量のヘパリンを投与しても、患者ごとに予期できない反応がある。このため、凝固系の状態を頻繁に観察する必要がある。
５．出血性合併症の危険性および血小板減少症の可能性。
６．長期間におよぶヘパリン治療（６か月超）の後や、十分に(sufficiently)高いヘパリン量（＞１５０００ユニット）を服用した後に、合併症として骨粗しょう症を発症しやすい。
７．ヘパリンは、病院(hospital conditions)での静脈注射によってしか投与できない。
【０００９】
（ワルファリン型の）ビタミンＫ拮抗剤も、間接凝固阻害剤である。凝固系においてこれら製剤が有する効果の機序は、肝臓でのビタミンK依存凝固因子の合成を効果的にブロックする能力によるものである。将来の(future)因子のＮ末端の翻訳後γカルボキシル化は、因子分子の合成に必須である。カルボキシル化は、因子分子が凝固する際、活性化した血小板の負に帯電したリン脂質表面に（Ｃａ２＋イオンを介して）結合し、その機能を発揮するために絶対に必要である。ビタミンKは、カルボキシル化の重要な補因子である。反応中、カルボキシル化反応に実際に関与するヒドロキシキノン形態と酸化エポキシ形態とを交互にとる。このエポキシ形態はビタミンK還元酵素によって還元され、再度カルボキシル化反応に加わり得る。クマリン基の製剤は当該還元をブロックする。
【００１０】
ワルファリンにも、いくつかの制限や欠点がある。第一に、治療に対して反応が遅い。投与後２４時間で最初の反応がみられ、数日内で最大(full strength)に蓄積される。そのうえ、この製剤は、色々な食物成分と強く結合し、多くの薬剤と著しく重複する。また、ワルファリン代謝酵素の活性には、遺伝的多様性がかなりある。このことは、ワルファリンに対する応答に大きな個人差があることを説明しており、ワルファリンを受ける者に対してある種の食事制限や体系的な観察が必要であることを示唆している。
【００１１】
前述したように、抗血小板製剤（アスピリン、ＧＰＩＩｂ／ＩＩＩａ拮抗剤など）は、血小板の活性化を妨害し、結果的に、継続的なトロンビン産生の促進におけるそれらの寄与を減少させる。しかし、これらの薬剤は、すでに形成されているトロンビンの働きには作用しない。
【００１２】
このように、上述した標準的な抗血栓症剤にはそれぞれ固有の欠点がある。あるものは、直接トロンビン阻害剤ではなく、効果を発揮するためにアンチトロンビンＩＩＩ（ＵＦＨまたはＬＭＷＨ）が血漿中に存在することを必要とするか、または、必須凝固因子の合成を阻害してゆっくりとしか効果をださず（ワルファリンなど）、またあるものは、すでに形成されたトロンビンには影響しない（抗血小板剤）。それゆえに、標準的な製剤がもつ多くの欠点を有しない「理想的に」効果的な阻害剤を求めて長年にわたり鋭意研究が続けられているのである。
【００１３】
この点で、抗凝血剤として作用する、低分子合成トロンビン阻害剤を開発する戦略は、非常に興味をそそる。これら阻害剤は、血中にあるトロンビンに素早く直接的な効果を及ぼし、血漿中のATIII濃度が低レベルであっても、急性の血栓性合併症の制御に効果的である希望を抱かせる。
【発明の概要】
【００１４】
凝固系におけるセリンプロテアーゼの新規な直接合成阻害剤を探索するストラテジーは、以下の要件を満足する阻害剤の探索に焦点を当てている。
−  標的酵素に対する高い親和性（すなわち、高い阻害効率）
−  他の関連するセリンプロテアーゼと比較して、標的酵素に対する高い選択性
−  化学的、代謝的安定性
−  毒性がないこと
−  血漿タンパク質との弱い（または非常に強くはない）結合
−  経口で投与した場合の高いバイオアベイラビリティ(bioavailability)
−  １日１回又は２回の経口投与でも治療レベルを維持できる、薬剤の比較的長い半減期
−  薬剤レベルを簡便にモニターできること
【００１５】
本明細書を執筆している時点で、低分子量トロンビン阻害剤の開発に関する多くの報告が発表されている。(Shafer J. A., Cardiovascular Chemotherapy: Anticoagulants, Curr. Opin. Chem. Biol., 1998, 2:458-465; Steinmetzer T., Hauptmann J., Sturzebecher J., Advances in the Development of Thrombin Inhibitors, Exp. Opin. Invest. Drugs, 2001, 10(5):845-864; Edmunds JJ, Rapundalo ST, Siddiqui MA, Thrombin and Factor Xa Inhibition, Ann. Rep. Med. Chem., 1996, 31:51-60; Wiley M.R., Fisher M. J., Small Molecule Direct Thrombin Inhibitors, Expert Opin. Ther. Patents, 1997, 7:1265-1282; Hauptmann J, Sturzebecher J., Synthetic Inhibitors of Thrombin and Factor Xa: from Bench to Bedside, Thromb. Res., 1999, 93(5):203-241; Vacca JP., New Advances in the Discovery of Thrombin and Factor Xa Inhibitors, Curr. Opin. Chem. Biol., 2000, 4(4): 394-400)
【００１６】
しかし、新規化学化合物に基づいて新規薬剤を開発するには、その潜在的な薬剤的作用を調査しなければならないほか、製剤の毒性や遺伝への潜在的影響を注意深く検査すること、それらの利用にあたって可能性のありそうにない(remote)他の結果を特定することが要求される。
【００１７】
この問題は、緩衝水溶液中でトロンビン活性を減じる全ての阻害剤が、生体内で血液凝固を制御する真の抗凝血剤として機能し得るわけでは決してない、という事実により、複雑化している。例えば、このことは、阻害機序に関連し得る。具体的には、もし阻害剤が競合的でないなら、たとえ、血漿トロンビンの活性部位の１００％全てがそのような阻害剤と結合していたとしても、酵素活性は完全には抑制されないであろう。残留トロンビン活性は十分に低いかもしれないが、天然のトロンビン阻害剤−ＡＴＩＩＩによって、血漿中で完全に抑制され得ない場合がある。これは、ATIIIがトロンビン活性部位に近づくのを妨げる、そのような阻害剤に結合した後のトロンビン分子コンフォメーションのある種の改変によって生じる。結果として、血液は長時間残留トロンビン活性にさらされ続け、完全な(integral)凝血応答は低下することなく、当該生体内にこの化合物が存在するがゆえに激化する可能性さえある。見込みのあるトロンビン阻害剤が、凝固系の他の構成成分（因子または凝固阻害剤）と反応する場合、系のトータルの応答を事前に予測することも不可能である。阻害剤と種々の血漿タンパク質との間の強い結合は、所望の抗凝血効果を得るために生物に投与されなければならない量を著しく増加し得る。
【００１８】
前述のことを考慮すると、トロンビンを阻害可能な、現在手に入る合成化合物の非常に多くのもののうち、唯一、日本で合成されたトロンビン阻害剤であるアルガトロバン(Argatroban)が、全ての必要なテストを通り、臨床で、事実上公認されてきたのはなぜかということが、明らかである。（米国特許第５，２１４，０５２号、１９９３；Schwarz R.P., The Preclinical and Clinical Pharmacology of Novastan (Argatroban), "NewAnticoagulants for the Cardiovascular Patient," Pifarre R., editor, Hanley and Belfus, Inc., Philadelphia, PA, U.S., 1997, pp. 231-249; Okamoto S, Hijikata A, Kikumoto R, Tonomura S, Hara H, Ninomiya K, Maruyama A, Sugano M, Tamao Y., Potent Inhibition of Thrombin by the Newly Synthesized Arginine Derivative No. 805. The Importance of Stereo-Structure of its Hydrophobic Carboxamide Portion, Biochem. Biophys. Res. Commun. 1981, 101(2):440-446)
【００１９】
従って、効果的な新規トロンビン阻害剤の開発は、抗凝固療法の改善のための非常に重要な目標である。
【００２０】
これら阻害剤は、種々の病変(pathologies)の結果、生物で発現する急性の血栓性疾患を直接的に治療する抗凝血剤として使用され得る。
【００２１】
くわえて、凝固亢進を未然に防ぐために使用することもできる。本発明は、血漿中で抗凝血活性を示す合成低分子量トロンビン阻害剤を、標準的な血漿代用液に添加して使用することを提案する。
【００２２】
多量の失血を人工血漿代用液（PSS）で迅速に置き換えることが診療所において頻繁に必要となっている。輸液療法はまた、負傷、手術、敗血症、種々の産科病態（obstetric pathologies）、救急蘇生などにおいても必要であり得る。
【００２３】
PSSの輸液は、次の目的を達成しようとしている。
１．動脈血圧および心拍出量を維持するよう循環血液量（ＶＣＢ）を修復すること、血管虚脱を予防すること、血液の正常なレオロジー特性および、臓器や組織への正常なレベルのかん流を維持すること
２．血漿の正常な膠質浸透圧およびその酸−塩基平衡を維持すること
３．血液の酸素輸送機能および凝固系機能を維持すること
【００２４】
はじめの２つの目的を達成するためには、多様な血漿代用液およびアルブミン溶液を輸液することが、一般的なやり方である。酸素輸送機能は、赤血球、改変ヘモグロビンまたはパーフルオラン(perfluorans)等の酸素運搬溶液を輸液することで満たされる。また、凝固系機能は、新鮮凍結血漿（ＦＦＰ）、血小板濃縮物、プロトロンビン複合体因子濃縮物または、個々の凝固因子を輸液することで維持される。
【００２５】
人工血漿代用液は、晶質および膠質の２つのグループに分類される。第一のグループは、塩の溶液であり（例えば、０．９％ＮａＣｌ溶液、生理食塩水）、第二のグループは、高分子量ポリマー（デキストラン、ヒドロキシエチルデンプン、ゼラチン誘導体など）の添加剤を含む。
【００２６】
標準的なＰＳＳを多量に注入することは、これら溶液で血液を希釈することになる（血液希釈）。今日使用されている標準血漿代用液には、凝固因子や阻害剤を含むものがないため、血液希釈は血中の凝固系成分の濃度を下げる。多量の標準ＰＳＳ輸液によって起こる血液希釈は、凝固系の平衡を損ない、凝固を増大させることが既に示されている。このようなことが起こるのは、希釈が当該系をより敏感にして凝固阻害剤の濃度を低下させるからである。凝固因子の凝血促進前駆体は血漿中にかなり過剰の量で存在し、従って、中等度の希釈におけるそれらの濃度の低下は、凝固速度にそれほどの影響を及ぼさない。多量のＰＳＳ輸液により起こる凝固亢進症の可能性を改善するために、本願発明者らは、天然トロンビン阻害剤、アンチトロンビンＩＩＩを含む新規のＰＳＳを開発してきた（２００５年１２月２７日のロシア連邦特許番号２００５１４０８４１）。特許権が請求された溶液は、多量のＰＳＳ輸液によって起こる凝固亢進症を部分的に改善することができる新しい世代の血漿代用液の先端(forerunner)を行くものである。この溶液の欠点は、アンチトロンビンＩＩＩがヒト血漿から抽出しなければならない天然のタンパク質であるという事実である。そういったことで、該溶液は、むしろ高価であり、薬剤がウィルス（ＨＩＶ、肝炎ウィルスなど）に感染している可能性を除外しない。合成低分子量トロンビン阻害剤（抗凝血剤）は、アンチトロンビンＩＩＩの良い代替物であり得る。
【００２７】
抗凝血剤としての実用上魅力的な化合物、すなわち、血液凝固を遅らせ又は防止する能力のある化合物を、次の基準をもとに選択した。
１．物質は、トロンビン阻害剤でなければならない。すなわち、トロンビンが触媒するフィブリノゲン切断のアミド分解反応を防ぐ能力がなければならない。
２．物質は、血漿中で、結合しない状態で十分な濃度存在するために、許容される物理化学的性質（親油性および親水性）を有しなければならない。言い換えれば、物質は、他の血液血漿タンパク質（アルブミン、グロブリンなど）と適度に結合しなければならない。
３．物質は、元来の治療効果をだすために、血漿中で、十分に長い半減期を有しなければならない。
【００２８】
第一の基準に従った選択は、２つの工程でなされた。まず、一般構造式（Ｉ）で表わされる構造に焦点を当てた仮想ライブラリーを構築し、得られた構造を、トロンビン分子の活性部位にドッキングした。最も見込みのありそうな候補物質（「バーチャルヒット」）、つまり、十分にネガティブなＳＯＬスコアリング関数（＜-5.0 kcal/mol）を有する分子が、第一工程の終了時に選択された。第二の選択工程は、トロンビンが特異的発色（または蛍光）基質を切断する水性緩衝溶液中での、選択された化合物の直接トロンビン阻害効果を測定することを含んだ。基質分解反応速度は、阻害剤の存在下で低下する。十分に低濃度（＜１ｍＭ）でも６０％を超えて緩衝溶液中でトロンビン活性を阻害した構造式（Ｉ）の化合物は、血漿中における新規化合物の抗凝血性効果についての、次の試験に選ばれた。
【００２９】
有益な薬物動態に寄与する許容される物理化学的特性を有する新規トロンビン阻害剤分子を構築するためには、阻害剤分子の全体の性質としての疎水性を、親水性リンカーで部分的にバランスすることが好ましい。また、同じ目的で、トロンビン分子のポケットＳ３に置かれた(deposited)疎水性断片を、溶媒にさらされた側のポケットに置かれた(deposited)親水性残基で改変することも可能である。
【００３０】
血中での十分な半減期は、阻害剤構造を、化学的または生化学的過程で簡単に切断する不安定な化学基を含まないようにすることで得ることができる。例えば、エステル基が、そのような好ましくない基の例示である。
【００３１】
結論として、上記の基準（時に矛盾するとしても）に最適に合う分子を、抗凝血剤としての化学合成や次の実験的試験に向けて、選択することができる。
【００３２】
合成を行うかどうかは、推定される複雑さを考慮して、最終的に判断する。
【図面の簡単な説明】
【００３３】
【図１】血漿試料の活性トロンビン濃度と時間の関係を示す図である。
【図２】正常な血漿における血塊の成長の連続写真である。
【図３】凝固開始から異なる時間における成長欠塊の光分散分析結果を示す。
【図４】算出した、時間の対する血塊の大きさの割合を示す図である。
【図５】血漿凝固による蛍光基質とトロンビンとの間の分解反応における蛍光産物の蓄積に関して構築した曲線を示す図である。
【図６】図５の曲線を微分することによって測った、実験を通してのトロンビン濃度変化の動態プロファイルを示す図である。
【図７】トロンビン産生能の減少にともなって、トロンビン生成曲線上の最大の点に達するのに要する時間を示す図である。
【図８】系中の阻害剤濃度の増加にともなって、トロンビン生成曲線上の最大の点に達するのに要する時間を示す図である。
【図９】凝固が初期の通常の血漿中で進行している間の記録された光散乱プロファイルを示す。
【図１０】凝固が１μＭのこの化合物ＨＣ−０２５ｓ−ＩＯＣの存在する同じ血漿中で進行している間の記録された光散乱プロファイルを示す。
【図１１】コントロール血漿、および１μＭの化合物ＨＣ−０２５ｓ−ＩＯＣの存在する血漿の、時間に対する凝固の大きさ（血塊が広がる活性剤からの距離）の成長を示す。
【図１２】様々な阻害剤濃度を含むＮａＣｌ（０．９％）溶液で希釈した、一連の血漿希釈液におけるＥＴＰ測定の結果を示す。
【発明を実施するための形態】
【００３４】
特に他に指示がない限り、次の定義が、本明細書において用いられる。
【００３５】
活性部位とは、生化学反応において鍵となる役割を果たすタンパク質高分子の領域である。
【００３６】
タンパク質とは、タンパク質高分子を意味する。
【００３７】
標的タンパク質とは、結合過程に関与するタンパク質高分子を意味する。
【００３８】
リガンドとは、低分子量の化学構造物の集団を意味する。
【００３９】
結合過程とは、リガンドと標的タンパク質の活性部位との間の、ファン・デル・ワールス力または共有結合による複合体の形成を意味する。
【００４０】
スクリーニングとは、タンパク質高分子の特定の領域に選択的に反応する化学的構造物の集団の中で、化合物の集まり(set)を同定することを意味する。
【００４１】
位置修正(correct positioning)とは、リガンド−タンパク質複合体の最小の自由エネルギーに対応する位置にリガンドを位置決めすることである。
【００４２】
選択的リガンドとは、任意の標的タンパク質に特異的に結合するリガンドを意味する。
【００４３】
参照タンパク質とは、実験データを踏まえて、または実施している系のバリデーションの際に、モデル計算（スコアリング関数）のパラメータを調整するために、または特定の阻害剤の結合特異性を評価するために用いられるタンパク質を意味する。
【００４４】
バリデーションとは、実施している系の品質、およびランダムなリガンド集団から任意の標的タンパク質に確実に結合しているリガンドを選択する当該系の効率を評価する、一連の計算および比較方法論を意味する。
【００４５】
特異的に結合するリガンドとは、特定のタンパク質にのみ結合し、他のタンパク質には結合しないリガンドを意味する。
【００４６】
阻害剤とは、任意の標的タンパク質の活性部位に結合し、生化学反応の通常の進行を妨げるリガンドを意味する。
【００４７】
ドッキングとは、タンパク質の活性部位における、リガンドの位置決めを意味する。
【００４８】
スコアリングとは、リガンドをタンパク質に結合するために要する自由エネルギーの算出を意味する。
【００４９】
結合自由エネルギー(ΔG binding)とは、（ＳＯＬソフトウェアを用いた）標的タンパク質へのリガンドの結合のための自由エネルギー計算の結果を意味する。
【００５０】
Ｃ１〜Ｃ６アルキル基とは、炭素数が１から６の非分岐または分岐の炭化水素鎖を含むアルキル基を意味する。例えば、メチル、エチル、ｎ‐プロピル、イソプロピル、ｎ‐ブチル、イソブチル、ｔｅｒｔ‐ブチルなどが挙げられる。
【００５１】
Ｃ１〜Ｃ６アルコキシ基とは、炭素数が１から６の非分岐または分岐の炭化水素鎖を含むアルコキシ基を意味する。例えば、メトキシ、エトキシ、ｎ‐プロポキシ、イソプロポキシなどが挙げられる。
【００５２】
ハロゲンとは、塩素、臭素、ヨウ素あるいはフッ素を意味する。
【００５３】
薬剤的に許容される塩とは、毒性を呈したり、活性化合物の吸収および薬効を阻害する場合を除き、構造式（Ｉ）の活性化合物により作られた任意の塩を意味する。このような塩は、構造式（Ｉ）の化合物、および、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、水酸化アンモニウム、メチルアミン、エチルアミンなどの有機または無機塩基との間の反応によって作られる。
【００５４】
溶媒和物とは、構造式（Ｉ）の活性化合物の結晶形態であり、その結晶格子が、水の分子、または構造式（Ｉ）の活性化合物が結晶化する他の溶媒の分子を含む結晶形態を意味する。
【００５５】
薬剤的に許容される担体とは、組成物の他の成分と混合可能で、受け手に害を及ぼさない、すなわち、それが使用される用量および濃度において細胞または哺乳類に対して無毒でなければならない担体を意味する。しばしば、薬剤的に許容される担体は、水性のｐＨ緩衝溶液である。生理学的(physiologically)に許容される担体として、例えば：
1)  リン酸塩、クエン酸塩、またはその他の有機酸の塩に基づく溶液等の緩衝溶液；
2)  アスコルビン酸等の抗酸化剤；
3)  低分子量（１０残基未満）のポリペプチド；
4)  血清アルブミン、ゼラチンまたは免疫グロブリンなどのタンパク質；
5)  ポリビニルピロリドンなどの親水性ポリマー；
6)  グリシン、グルタミン、アスパラギン、アルギニンまたはリジンなどのアミノ酸；
7)  グルコース、マンノースまたはデキストリンなどの単糖類、二糖類および他の炭水化物；
8)  ＥＤＴＡなどのキレート剤；
9)  マンニトールまたはソルビトールなどの糖アルコール
が挙げられる。
【００５６】
治療有効量とは、哺乳類生物において、所望の程度のトロンビン阻害を達成するために必要な化合物の量を意味する。
【００５７】
ここで用いられる意味において、哺乳類は、霊長類（例えば、ヒト、類人猿、非類人猿およびより下等な猿）、捕食動物（例えば、猫、犬および熊）、げっ歯動物（例えば、マウス、ラットおよびリス）、食虫類（例えば、トガリネズミとモグラ）などを含む。
【００５８】
本発明の実際の目的(practical task)は、高い抗凝血活性を有する新規な低分子量化合物を開発することである。
【００５９】
本出願は、一連のそのような高い抗凝血活性を示す新規の低分子量化合物、具体的に、一般構造式（Ｉ）の化合物、およびその薬剤的に許容される塩または溶媒和物を、記述する。
Ａ−Ｂ−Ｃ  （Ｉ）
式中、Ｃは、次の構造を含む群から選ばれる、
【００６０】
【化１】
2010531353.tif 000010
【００６１】
（式中、Ｒ１、Ｒ２、Ｒ３、およびＲ４は、互いに独立して、水素またはＣ１〜Ｃ６のアルキル基を含む群から選ばれる）；
Ｂは、−（ＣＨ２）ｎ−、ｎは１〜５の整数であり；
Ａは、次の群から選ばれる構造である：
【００６２】
【化２】
2010531353.tif 000011
【００６３】
（式中、Ｒ５は、水素、Ｃ１〜Ｃ６のアルコキシ基、ＣＨ２ＮＲ１０Ｒ１１、ＣＨ（ＣＨ３）ＮＲ１０Ｒ１１、
【００６４】
【化３】
2010531353.tif 000012
【００６５】
を含む群から選ばれ、
Ｒ６およびＲ７は、互いに独立して、水素、Ｃ１〜Ｃ６のアルキル基、Ｃ１〜Ｃ６のアルコキシ基およびハロゲンからなる群から選ばれ、
Ｒ８は、水素またはＣ１〜Ｃ６のアルキル基であり、
Ｒ９は、下記の群から選ばれる構造である：
【００６６】
【化４】
2010531353.tif 000013
【００６７】
（式中、Ｒ１０およびＲ１２は、互いに独立して、水素、Ｃ１〜Ｃ６のアルキル基、（ＣＨ２）ｍＣＯＯＲ１３、（ＣＨ２）ｍＣＯＮ（Ｒ１３）２、
【００６８】
【化５】
2010531353.tif 000014
【００６９】
からなる群から選ばれ、ここでｍは１から４の整数であり、ｋは１から３の整数であり、
Ｒ１３は、水素またはＣ１〜Ｃ６のアルキル基であり、
Ｒ１１は、Ｃ１〜Ｃ６のアルキル基、またはＡｒであり、
Ａｒは、水素、Ｃ１〜Ｃ６アルキル基、Ｃ１〜Ｃ６アルコキシ基、ハロゲン，Ｎ（Ｒ１３）２、ＯＨ、ＮＯ２、ＣＮ、ＣＯＯＲ１３、ＣＯＮ（Ｒ１３）２およびＳＯ２Ｒ１３の群から選ばれた１から５つの置換基で置換されていてもよい、フェニル、ピリジル、オキサゾリル、チアゾリル、チエニル、フラニル、ピリミジニル、ピリダジニル、ピラジニル、インドリル、ベンゾフラニル、およびベンゾチオフェニルからなる群から選ばれる。））
ただし、Ａが
【００７０】
【化６】
2010531353.tif 000015
又は
【化７】
2010531353.tif 000016
の場合、Ｒ５及びＲ６は同時に水素ではなく、また、下記の化合物は除外される。
【化８】
2010531353.tif 000017
【００７１】
この羅列(List)から除かれた化合物は既に公知である。特に、４−アミノ−１−［３−［（２−メチルフェニル）アミノ］−３−オキソプロピル］ピリジニウムクロライドは、"Carbocyclic Derivatives Related to Indoramin"（J. Med. Chem.1974, 17(7):739-744）に記載されており、４−アミノ−１−（２−フェノキシエチル）−ピリジニウムブロマイドは、"Application of Sodium Borohydride Reduction to Synthesis of Substituted Aminopiperidines, Aminopiperazines, Aminopyridines And Hydrazines"（J. Org. Chem. 1961, 26:2740-2747）に記載されている。その他の除外された化合物は、特許JP 05 134337, WO 2005/094828, US 3407229に記載されていた。なお、これらの出典はこれらの化合物がトロンビン阻害剤である可能性について言及していない、という点は重要である。
【００７２】
本発明の好ましい実施態様は、次の請求項１の化合物、および薬剤的に許容される塩または溶媒和物を記載する。
【００７３】
【化９】
2010531353.tif 000018
【００７４】
式中、Ｙは、水素、ハロゲン、ＣＯＯＲ１３、ＣＯＮ（Ｒ１３）２およびＳＯ２Ｒ１３からなる群から選ばれ、
ｒは、２から５の整数である。
【００７５】
本出願は、様々な血栓性状態の治療および予防のための抗凝血剤としての、請求項１の化合物、並びに、その薬剤的に許容される塩および溶媒和物の投与、並びに、請求項１で請求された化合物、並びに／若しくは、その薬剤的に許容される塩および／または溶媒和物、および薬剤的に許容される担体の治療有効量を含む、血栓性状態の治療および予防のための医薬組成物も記述する。
【００７６】
本出願は、式(I)の化合物およびその薬剤的に許容される塩または溶媒和物を抗凝血剤として含む、新規血漿代用液（ＰＳＳ）を記述する。この液は、式(I)の化合物およびその薬剤的に許容される塩または溶媒和物を、標準的な血漿代用液に添加することによって調製される。添加される抗凝血剤の濃度は、その阻害力に依存し、異なる化合物によって広い範囲内で（０．０１ｎＭ〜１ｍＭ）変動し得る。抗凝血剤含有液は、凝固因子を含まず、より重要には凝固阻害剤を含まない標準的な血漿代用液の大量注入の結果として生物内で進展する凝固亢進撹乱を部分的に正すことができる。人工合成低分子量抗凝血剤を含む新規ＰＳＳは、天然のトロンビン阻害剤ＡＴＩＩＩを含む類似の溶液より、有利に優れている。その理由は、新規ＰＳＳは、高価な天然タンパク質（ＡＴＩＩＩ）に代えて、より低価格の標準的化合物を含み、ＰＳＳを輸液する際、ウィルス感染の脅威をもたらさないからである。
【００７７】
本発明の化合物は、血中に生体蓄積がおこるように、任意の適切なやり方で投与される。投与は、静脈、筋肉、皮内、皮下、また腹腔内注射といった非経口投与の方法でなされる。適切な組成物を経口で服用することによる、消化管を通した吸収など、他の投与方法も用いられ得る。使用が簡単なため、経口服用が好ましい。或いは、この薬剤は、膣および直腸の経路で投与し得る。さらに、本発明の化合物は、皮膚を通して（例えば、経皮的に）または、吸入によって投与し得る。当然のことながら、好適な投与方法は、患者の病状、年齢、感受性による。
【００７８】
経口服用用に、医薬組成物を、結合剤（例えば、解膠トウモロコシデンプン、ポリビニルピロリジノン、または、ヒドロキシプロピル  メチルセルロース）、賦形剤（例えば、乳糖、微結晶セルロース、リン酸水素カルシウム、ステアリン酸マグネシウム、タルク、酸化シリコン、ジャガイモデンプンまたはでんぷん質のグリコール酸ナトリウム）、湿潤剤（例えば、ラウリル硫酸ナトリウム）などの薬剤的に許容される添加物とともに、例えば、錠剤またはカプセル剤に包み込むことができる。錠剤を、コートしてもよい。液体経口組成物は、溶液、シロップ、または懸濁液の形に、調製することができる。そのような液体組成物は、懸濁剤（例えば、セルロース誘導体）、乳化剤（例えば、レシチン）、希釈剤（精製植物油）および保存料（例えば、メチルまたはプロピル−ｐ−ヒドロキシベンゾエート、ソルビン酸）などの薬剤的に許容される添加物を用いる一般的な方法により得ることができる。組成物は、また、適当な緩衝塩、香料、色素および甘味料を含んでもよい。
【００７９】
これら新規抗凝血性化合物の毒性は、実験動物においてLD50（個体群の５０％に対する致死量）を測定する標準的な製薬学的手順を用いて測定した。本発明の好ましい化合物については、ＬＤ５０量は、３６７ｍｇ／ｋｇを超えていたが、これは、臨床使用を承認された、ＬＤ５０＝４７５ｍｇ／ｋｇであるアルガトロバンの致死量と釣り合っている。
【００８０】
本発明の主題をより理解しやすくするため、以下に、新規化合物の生成、これら化合物の凝血活性を検討するために用いられた方法、およびその結果を説明するいくつかの例を示す。実施例は単なる例示であり、本発明の本質を下記実施例の範囲に制限するものではない。
実施例１
中間体である３−（３−クロロプロポキシ）−５−メチルフェノールの合成
【００８１】
【化１０】
2010531353.tif 000019
【００８２】
３．８ｇ（２７ｍｍｏｌ）のオルシン水和物、４．８ｇ（３０ｍｍｏｌ）の１−ブロモ−３−クロロプロパンおよび４．０ｇ（２９ｍｍｏｌ）の炭酸カリウムの混合物を、３０ｍｌのアセトニトリル中で攪拌しながら３６時間還流した。溶媒を留去させた後、残部を３０ｍｌのエーテルに溶解し、１５ｍｌの炭酸カリウムの飽和溶液で２回洗った。水層を捨て、エーテル層を、１５ｍｌの１０％水酸化ナトリウム溶液で、３回抽出した。エーテル層を捨て、水層を注意深く濃ＨＣｌで酸性にし、１５ｍｌのエステルで３回抽出した。エーテル抽出物を合わせ、少量の炭酸水素ナトリウムの飽和溶液で洗った。無水硫酸ナトリウムで乾燥し，約３分の１体積部のヘキサンで希釈し、シリカゲルの層を通してろ過した。溶媒を蒸発することにより、１．７ｇの黄色の油、約７０％のオルシン（Ｒｆ０．１０）および約３０％の３−（２−クロロプロポキシ）−５−メチルフェノール（Ｒｆ０．２６、収量  約１．２ｇ（純粋な基質あたり(per pure substance)２２％）の混合物を得た。
【００８３】
同様の方法を用いて、オルシン水和物および１−ブロモ−２−クロロエタンから３−（２−クロロエトキシ）−５−メチルフェノール（Ｒｆ０．２６、収量約１．１ｇ（純粋な基質あたり(per pure substance)２０％）を生成し、オルシン水和物および１−ブロモ−４−クロロブタンから３−（４−クロロブトキシ）−５−メチルフェノールを得た。
【００８４】
実施例２
中間体である２−フルオロベンゼンスルホン酸の３−（３−クロロプロポキシ）−５−メチルフェニルエステルの合成
【００８５】
【化１１】
2010531353.tif 000020
【００８６】
２．０５ｇ（１０ｍｍｏｌ）のフルオロベンゼンスルホクロライドおよび１．１ｇ（１１ｍｍｏｌ）のトリエチルアミンを、３０ｍｌの乾燥テトラヒドロフラン（ＴＨＦ）に１．３ｇの上記実施例の混合物を溶かした溶液に加えた。混合物を６時間攪拌し、トリエチルアミン塩酸塩の沈澱をろ過して除き、溶媒を蒸発させた。得られた油を、２０ｍｌのエーテルに溶解し、１０ｍｌの１０−１２％アンモニア水溶液で数回洗い、過剰な未反応ベンゼンスルホクロライドを分離し（薄層クロマトグラフィー（ＴＬＣ）によってコントロール）、次に、１０ｍｌの２０％塩酸で洗った。無水硫酸ナトリウムで乾燥し、溶媒を蒸発させることにより、目的生成物とジベンゼンスルホン酸オルシンの約２：１の割合の混合物である淡黄色の油を２．４ｇ得た。純粋な目的生成物換算の収量は１．６ｇであった。（９７％）（Ｍｅｒｃｋ  ｐｌａｔｅ  ６０によるＴＬＣ、ヘキサン−酢酸エチル  ２：１、Ｒｆ０．３５−生成物、Ｒｆ０．２５−ジベンゼンエステル不純物）
【００８７】
同様にして、３−（２−クロロエトキシ）−５−メチルフェノール、３−（３−クロロプロポキシ）−５−メチルフェノール、および３−（４−クロロブトキシ）−５−メチルフェノール並びに適当なアリルスルホクロリドから、次を得た。
２−クロロベンゼンスルホン酸の３−（３−クロロプロポキシ）−５−メチルフェニルエステル（純粋な基質あたり(per pure substance)７７％）、
ベンゼンスルホン酸の３−（３−クロロプロポキシ）−５−メチルフェニルエステル（６０％）、
２−カルボメトキシベンゼンスルホン酸の３−（３−クロロプロポキシ）−５−メチルフェニルエステル（５６％）、
ベンゼンスルホン酸の３−（２−クロロエトキシ）−５−メチルフェニルエステル（７２％）、
２−クロロベンゼンスルホン酸の３−（２−クロロエトキシ）−５−メチルフェニルエステル（３５％）、
２−フルオロベンゼンスルホン酸の３−（２−クロロエトキシ）−５−メチルフェニルエステル（３４％）、
２−カルボメトキシベンゼンスルホン酸の３−（２−クロロエトキシ）−５−メチルフェニルエステル（３７％）、
ベンゼンスルホン酸の３−（４−クロロブトキシ）−５−メチルフェニルエステル（４５％）、
２−クロロベンゼンスルホン酸の３−（４−クロロブトキシ）−５−メチルフェニルエステル（２７％）、
２−フルオロベンゼンスルホン酸の３−（４−クロロブトキシ）−５−メチルフェニルエステル（３２％）、
２−カルボメトキシベンゼンスルホン酸の３−（４−クロロブトキシ）−５−メチルフェニルエステル（２１％）
実施例３
中間体である２−フルオロベンゼンスルホン酸の３−（３−ヨードプロポキシ）−５−メチルフェニルエステルの合成
【００８８】
【化１２】
2010531353.tif 000021
【００８９】
２ｇ（１３ｍｍｏｌ）のか焼(calcined)ヨウ化ナトリウムを、３０ｍｌの乾燥アセトンに溶解した実施例２の混合物２．４ｇに加え、２７時間還流した。次に、この反応混合物を１０ｍｌのヘキサンで希釈し、ろ過し、濃縮した。得られた暗黄色の油を２０ｍｌのエーテル−ヘキサン混合物（２．３ｇ）に溶解し、シリカゲル層（２ｃｍ、Ｌａｎｃａｓｔｅｒ）を通してろ過し、溶媒を蒸発させた。結果は、２−フルオロベンゼンスルホン酸の３−（２−ヨードエトキシ）−５−メチルフェニルエステル（Ｒｆ０．３５）と個々のオルシンのジベンゾイルスルホン酸エステル（Ｒｆ０．２５）とを含む２．４５ｇの黄色の油であった。
【００９０】
同様の技法を用いて、適当な塩化物を、下記のものに加工した。
ベンゼンスルホン酸の３−（３−ヨードプロポキシ）−５−メチルフェニルエステル；
２−クロロベンゼンスルホン酸の３−（３−ヨードプロポキシ）−５−メチルフェニルエステル；
２−カルボメトキシベンゼンスルホン酸の３−（３−ヨードプロポキシ）−５−メチルフェニルエステル；
ベンゼンスルホン酸の３−（２−ヨードエトキシ）−５−メチルフェニルエステル；
２−クロロベンゼンスルホン酸の３−（２−ヨードエトキシ）−５−メチルフェニルエステル；
２−フルオロベンゼンスルホン酸の３−（２−ヨードエトキシ）−５−メチルフェニルエステル；
２−カルボメトキシベンゼンスルホン酸の３−（２−ヨードエトキシ）−５−メチルフェニルエステル；
ベンゼンスルホン酸の３−（４−ヨードブトキシ）−５−メチルフェニルエステル；
２−クロロベンゼンスルホン酸の３−（４−ヨードブトキシ）−５−メチルフェニル  エステル；
２−フルオロベンゼンスルホン酸の３−（４−ヨードブトキシ）−５−メチルフェニルエステル；
２−カルボメトキシベンゼンスルホン酸の３−（４−ヨードブトキシ）−５−メチルフェニルエステル
実施例４
４−アミノ−１−（３−（３−メチル−５−（２−フルオロベンゼンスルホニルオキシ）フェノキシ）プロピル）−ピリジニウムイオダイド（ＨＣ＿０２９ｃ＿ＩＯＣ）の合成
【００９１】
【化１３】
2010531353.tif 000022
【００９２】
１０ｍｌの乾燥ジオキサン中に、０．６５ｇの実施例３の「未加工のヨウ化物(raw iodide)」（７０％の2-フルオロベンゼンスルホン酸の3-(3-ヨードプロポキシ)-5-メチルフェニルエステルを含むものと計算）と０．０９ｇ（０．９５ｍｍｏｌ）の４−アミノピリジンを混ぜたものを、２０時間還流した。溶液を濃縮し、得られた油を、固体になるまで、少量のエーテルで砕いた。固体沈澱をろ取し、ジオキサンとアセトニトリル（５：１）の混合物から再結晶し、ろ取し、エーテルで洗った。
真空乾燥することにより、同定されない不純物を約４〜５％含む淡いベージュの塩、０．４ｇ（７２％）を得た。その物質を同じ系から再度再結晶し、不純物を取り除き、０．２５ｇの薄い色の粉末を得た。
【００９３】
同様の技法を用いて、適当なヨウ化物および複素環式化合物、チオ尿素およびチオ尿素誘導体を加工して、下記のものを得た。
４−アミノ−１−（３−（３−メチル−５−（ベンゼンスルホニルオキシ）フェノキシ）プロピル）−ピリジニウムイオダイド（ＨＣ＿０１６ｓ＿ＩＯＣ）
【００９４】
【化１４】
2010531353.tif 000023
【００９５】
【数１】
2010531353.tif 000024
【００９６】
２−アミノ−１−（３−（３−メチル−５−（ベンゼンスルホニルオキシ）フェノキシ）プロピル）−チアゾリウムイオダイド（ＨＣ＿０１７ｓ＿ＩＯＣ）
【００９７】
【化１５】
2010531353.tif 000025
【００９８】
【数２】
2010531353.tif 000026
【００９９】
３−（３−メチル−５−（ベンゼンスルホニルオキシ）フェノキシ）プロピル−イソチオウロニウムイオダイド（ＨＣ＿０１８ｓ＿ＩＯＣ）
【０１００】
【化１６】
2010531353.tif 000027
【０１０１】
【数３】
2010531353.tif 000028
【０１０２】
４−アミノ−１−（２−（３−メチル−５−（ベンゼンスルホニルオキシ）フェノキシ）エチル）−ピリジニウムイオダイド（ＨＣ＿０１９ｓ＿ＩＯＣ）
【０１０３】
【化１７】
2010531353.tif 000029
【０１０４】
【数４】
2010531353.tif 000030
【０１０５】
２−（３−メチル−５−（ベンゼンスルホニルオキシ）フェノキシ）エチル−イソチオウロニウムイオダイド（ＨＣ＿０２０ｓ＿ＩＯＣ）
【０１０６】
【化１８】
2010531353.tif 000031
【０１０７】
【数５】
2010531353.tif 000032
【０１０８】
２−（３−メチル−５−（２−クロロベンゼンスルホニルオキシ）フェノキシ）エチル−イソチオウロニウムイオダイド（ＨＣ＿０２４ｓ＿ＩＯＣ）
【０１０９】
【化１９】
2010531353.tif 000033
【０１１０】
【数６】
2010531353.tif 000034
【０１１１】
３−（３−メチル−５−（２−クロロベンゼンスルホニルオキシ）フェノキシ）プロピル−イソチオウロニウムイオダイド（ＨＣ＿０２６ｓ＿ＩＯＣ）
【０１１２】
【化２０】
2010531353.tif 000035
【０１１３】
【数７】
2010531353.tif 000036
【０１１４】
４−アミノ−１−（２−（３−メチル−５−（２−クロロベンゼンスルホニルオキシ）フェノキシ）エチル）−ピリジニウムイオダイド（ＨＣ＿０２５ｓ＿ＩＯＣ）
【０１１５】
【化２１】
2010531353.tif 000037
【０１１６】
【数８】
2010531353.tif 000038
【０１１７】
同様の方法で、実施例１〜４に記載の技法によって、様々なアリールスルホニル塩化物および複素環式スルホニル塩化物から、化合物を合成した。合成した化合物の化学式、質量分析パラメーター、および算出したスコアリング関数を表１に示す。それら化合物は、ヨウ化物、臭化物、塩化物、または他の塩の形で得られる可能性がある。
【０１１８】
実施例５
化合物の合成
【０１１９】
【化２２】
2010531353.tif 000039
【０１２０】
１．  ４−クロロ−３−ニトロベンゼン−１−スルホニルクロライド
ｏ−ニトロクロロアニリン（１５ｇ）を３０ｍｌのクロロスルホン酸に攪拌しながら加え、１００℃で２時間加熱した。引き続き、１１０℃で２時間、さらに、１２７℃で５時間加熱した。反応混合物を、室温まで冷却し、砕いた氷（１４０ｇ）に注いだ。沈澱をろ過し、ろ過ケーキを氷水で洗い、風乾し、１５ｇの４  クロロ−３−ニトロベンゼン−１  スルホニルクロライドを得た。
２．  ４−クロロ−Ｎ−メチル−３−ニトロ−Ｎ−フェニルベンゼンスルホンアミド
【０１２１】
【化２３】
2010531353.tif 000040
【０１２２】
４−クロロ−３−ニトロベンゼン−１−スルホニルクロライド（１０．６ｇ、０．０４１ｍｏｌ）を、トルエン（５０ｍｌ）に溶解し、次いで、トリエチルアミン（４．１４ｇ、０．０４１ｍｏｌ）を加えた。得られた溶液に、Ｎ−メチルアニリン（４．４ｇ、０．０４１ｍｏｌ）を攪拌しながら加えた。反応混合物を７０〜８０℃で１時間維持した後、冷却した。該溶液を、３０ｍｌの水で２回洗い、真空下で濃縮した。残渣を、エタノールから再結晶化した。４−クロロ−Ｎ−メチル−３−ニトロ−Ｎ−フェニルベンゼン  スルホンアミドの収量は、９．４ｇ（６１％）であった。
３．  Ｎ−メチル−４−（メチルアミノ）−３−ニトロ−Ｎ−フェニルベンゼンスルホンアミド
【０１２３】
【化２４】
2010531353.tif 000041
【０１２４】
４−クロロ−Ｎ−メチル−３−ニトロ−Ｎ−フェニルベンゾイルスルホンアミド（９．４ｇ、０．０２９ｍｏｌ）のエタノール溶液（５０ｍｌ）を、２５ｍｌの４０％メチルアミン水溶液と混ぜた。反応混合物を、７０℃に熱し、この温度で１時間攪拌した。冷却、ろ過した後、ろ過ケーキをエタノールで洗い、６０℃で乾燥した。Ｎ−メチル−４−（メチルアミノ）−３−ニトロ−Ｎ−フェニルベンゾイルスルホンアミドの収量は、９．０ｇ（９７％）であった。
４．  ３−アミノ−Ｎ−メチル−４−（メチルアミノ）−Ｎ−フェニルベンゼンスルホンアミド
【０１２５】
【化２５】
2010531353.tif 000042
【０１２６】
Ｎ−メチル−４−（メチルアミノ）−３−ニトロ−Ｎ−フェニルベンゾイルスルホンアミド（９ｇ、０．０２８ｍｏｌ）をイソプロパノール（９０ｍｌ）に溶解した。この溶液に、ヒドラジン水和物（１１ｍｌ）、活性炭（２ｇ）およびＦｅＣｌ３・６Ｈ２Ｏ（１０ｍｌのエタノール中に、０．５  ｇ）を加えた。反応混合物を、８時間煮沸した。炭(charcoal)を、ろ過して除いた。ろ液を、蒸発乾固した。３−アミノ−Ｎ−メチル−４−（メチルアミノ）−Ｎ−フェニルベンゼンスルホンアミドの収量は、８．１ｇ（９９％）であった。
５．  ３−クロロ−Ｎ−（５−（Ｎ−メチル−Ｎ−フェニルスルファモイル）−２−（メチルアミノ）フェニル）プロパンアミド
【０１２７】
【化２６】
2010531353.tif 000043
【０１２８】
氷上で冷やした（〜５℃）、３−アミノ−Ｎ−メチル−４−（メチルアミノ）−Ｎ−フェニルベンゼンスルホンアミド（５．４ｇ、０．０１８ｍｏｌ）およびトリエチルアミン（１．８１ｇ、０．０１８ｍｏｌ）のジメチルホルムアミド（１６ｍｌ）溶液に、クロロプロピオニルクロライド（２．３２ｇ、０．０１８ｍｏｌ）を加えた。反応混合物を室温で５時間攪拌した。次いで、水（１４ｍｌ）とアセトニトリル（５ｍｌ）を加えた。５時間後に生じた沈澱をろ過した。３−クロロ−Ｎ−（５−（Ｎ−メチル−Ｎ−フェニルスルファモイル）−２−（メチルアミノ）フェニル）プロパンアミドの収量は、３．１ｇ（４５％）であった。
６．  ４−アミノ−１−（３−（５−（Ｎ−メチル−Ｎ−フェニルスルファモイル）−２−（メチルアミノ）フェニルアミノ）−３−オキソプロピル）ピリジニウムクロライド
【０１２９】
【化２７】
2010531353.tif 000044
【０１３０】
３−クロロ−Ｎ−（５−（Ｎ−メチル−Ｎ−フェニルスルファモイル）−２−（メチルアミノ）フェニル）プロパンアミド（１ｇ、０．００２６ｍｏｌ）および４−アミノピリジニウム（０．７３ｇ、０．００７８ｍｏｌ）を、無水アセトン（５０ｍｌ）中で５０時間、還流した。残渣をろ過し、アセトニトリルとエタノールを１０：１で混合したものから、結晶化した。４−アミノ−１−（３−（５−（Ｎ−メチル−Ｎ−フェニルスルファモイル）−２−（メチルアミノ）フェニルアミノ）−３−オキソプロピル）ピリジニウムクロライドの収量は、０．５４ｇ（４３％）であった。
７．  ４−アミノ−１−（２−（１−メチル−５−（Ｎ−メチル−Ｎ−フェニルスルファモイル）−１Ｈ−ベンゾ［ｄ］イミダゾール−２−イル）エチル）ピリジニウムクロライド
【０１３１】
【化２８】
2010531353.tif 000045
【０１３２】
アセトニトリル（８ｍｌ）に４−アミノ−１−（３−（５−（Ｎ−メチル−Ｎ−フェニルスルファモイル）−２−（メチルアミノ）フェニルアミノ）−３−オキソプロピル）ピリジニウムクロライド（０．２ｇ、０．０００４２ｍｏｌ）を入れた懸濁液に、塩化チオニル（０．２ｍｌ）を加えた。反応混合物を１０分間煮沸した後、室温で２４時間放置し、ジエチルエーテル（８ｍｌ）で希釈した。生じた沈澱を、ろ過して回収し、アセトニトリルと無水エタノールを１０：１で混合したものから、結晶化した。４−アミノ−１−（２−（１−メチル−５−（Ｎ−メチル−Ｎ−フェニルスルファモイル）−１Ｈ−ベンゾ［ｄ］イミダゾール−２−イル）エチル）ピリジニウムクロライドの収量は、０．０５５ｇ（２６％）であった。
【０１３３】
同様にして、実施例５に記載の技法によって、様々な化合物を合成した。それらの化学式、質量分析のパラメーター、および算出したスコアリング関数を表２に示す。化合物は、ヨウ化物、臭化物、塩化物、その他の塩の形で得られる可能性がある。
【０１３４】
実施例６
合成した化合物の止血への効果の評価
ここで、新規合成化合物が存在する場合の凝固系の状況を、トロンビン凝固時間（ＴＴ）を測定する標準凝固試験、および２つの新しいインビトロ試験（空間での(in space)トロンビン生成および血塊成長速度の測定）を用いて、を評価した。凝固時間（活性化部分トロンボプラスチン時間及びプロトロンビン時間）の測定のための標準的な試験は、それぞれ内部または外部経路(internal or external path)での最大凝固活性によって誘導され、それゆえに当該検討対象の系内では凝固亢進状態を検出できない試験であるが、これとは対照的に、上記の試験は、生物中で存在する活性に近い、かなり低い初期活性化で実施される。これにより、これらの試験は、検討された血漿試料の低凝固および凝固亢進をともに感知できる。
【０１３５】
トロンビン時間測定
トロンビン凝固時間試験は、一連の凝固反応、すなわち、系に加えられたトロンビンによる血漿フィブリノゲンの不溶性フィブリン塊への転換の最後の段階を定義する。標準的な活性を有するトロンビンの定められた量を、３．８％クエン酸ナトリウム（ｐＨ＝５．５）で採取した血液（血液対クエン酸比率＝９：１）を遠心分離（１，３００ｇで１５分間）することにより得られた貧血小板血漿（ＰＰＰ）に加えた。この試験で測定される凝固時間は、血中にあるトロンビン阻害剤の総量に依存する。強力なトロンビン阻害剤が系中にある場合、加えられた酵素の活性を減じ、凝固を遅らせて、凝固時間が、長くなった。
【０１３６】
トロンビン時間は、標準的な方法(Z.S. Barkagan, A.P. Momot, "Diagnostics and Controlled Therapy of Hemostatic Disorders," Newdiamed, Moscow, 2001, pp. 87-89) で、測定された。具体的には、水槽で３分間３７℃に熱したＰＰＰの90マイクロリットルを、血小板凝集測定装置（Ｂｉｏｌａ社、ロシア）のキュベットに入れ、次いで、１０マイクロリットルの試験基質とバッファーの混合物（キュベット中の異なる化合物によって０．００５ｍＭから５ｍＭまでの終濃度）および１００マイクロリットルのトロンビン溶液（正常血漿コントロールの活性によって標準化）を加えた。凝固時間を測定し、３回の独立した実験から、結果を平均した。
【０１３７】
内在性トロンビン潜在能の測定（トロンビン生成試験）
多くの論文で、この方法は詳細に記述されている。(Hemker HC, Giesen PL, Ramjee M, Wagenvoord R, Beguin S. The thrombogram: monitoring thrombin generation in platelet-rich plasma. Thromb. Haemost, 2000; 83(4): 589-591; Hemker HC, AlDieri R, Beguin S. Thrombin generation assays: accruing clinical relevance. Curr. Opin. Hematol., 2004, ll(3):170-175; Hemker HC, Giesen P, AlDieri R, Regnault V, de Smed E, Wagenvoord R, Lecompte T, Beguin S. The calibrated automated thrombogram (CAT): a universal routine test for hyper- and hypocoagulability. Pathophysiol. Haemost. Thromb., 2002, 32(5-6):249-253)この試験は、試料中における標準的な凝固活性レベルにおける、ある定まった時間内での血漿試料中で精製された活性トロンビンの動態および全量を測定するために用いられる。この出願人らの方法は、トロンビンによって分解され際に、高い蛍光性をもつ産物を生じる、ゆっくりと作用する蛍光基質（ＢＯＣ−Ｉｌｅ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−ＡＭＣ）を用いて、トロンビン濃度を測定するのに適している。発行物質よりも蛍光物質を使用することは、蛍光レベルが、測定する細胞中で、形成された固体フィブリン塊にほとんど影響を受けないことによって、決定される。しかし、これは、発光物質の利用を制限する条件(qualification)である。(Hemker HC, Giesen P, AlDieri R, Regnault V, de Smed E, Wagenvoord R, Lecompte T, Beguin S. The calibrated automated thrombogram (CAT): a universal routine test for hyper- and hypocoagulability. Pathophysiol. Haemost. Thromb., 2002, 32(5-6) :249-253)他方、試料中のトロンビンの大部分（約９５％）は、はじめの塊が形成された後に生じることは、一般的な知識である。(Hemker HC, AlDieri R, Beguin S. Thrombin generation assays: accruing clinical relevance. Curr. Opin. Hematol., 2004, ll(3):170-175)
【０１３８】
トロンビン生成および凝固活性化後の血漿中での最終的な消滅の動態を、図１に示す。図１は、血漿試料の活性トロンビン濃度と時間の関係を明らかにしている。トロンビン生成時間曲線の下の面積（本発明では、インキュベーション０分から５０分）は、内在性トロンビン産生能（ＥＴＰ）と呼ばれる。曲線は、ｔｍａｘ、試料中のトロンビンが、最大濃度に達する時間、Ａｍａｘ、系の最大トロンビン濃度、およびｔｌａｇ通常、トロンビンが５ｎＭの濃度に達する時間である、凝固開始前の時間によって、さらに特徴付けされる。
【０１３９】
明らかに、重要な凝固についての情報は、時間に対するトロンビン濃度曲線の形および積分ＥＴＰレベルに含まれる。具体的には、血漿試料中の凝固因子及び／又は阻害剤の濃度が抑制されると、全ＥＴＰは全く変化ないかもしれないにもかかわらず、標準血漿におけるよりもトロンビン濃度最大値は低く、幅広くなり得る。血漿中にさらにトロンビン阻害剤が存在すると、ＥＴＰおよび得られうる最大トロンビン濃度は減少し、凝固遅れ(lag)およびトロンビンが最大濃度に達するのに要する時間は増加するはずである。
【０１４０】
測定は、次のようになされた。９０マイクロリットルの健常な提供者の血漿  （ＰＰＰ）、０〜２０マイクロリットルの試験物質溶液、および２０〜０マイクロリットルのバッファー溶液（２０ｍＭのＨＥＰＥＳ、１４０ｍＭのＮａＣａｌ、ｐＨ７．５）を、９６ウェルプレートのウェルに、添加した物質およびバッファーの全量が常に２０マイクロリットルになるように入れた。直ちに、２０マイクロリットルの蛍光基質溶液（初期濃度５ｍＭ）をプレートの各ウェルに加え、血漿を３７℃で３分から５分熱した。次に、２５マイクロリットルの凝固活性化溶液を、すべてのウェルに（マルチチャネルピペットを用いて）、同時に加えた。８０ｍＭのＣａＣｌ２を添加した同じバッファーを用いて原液濃度を1/250に希釈したプロトロンビン時間（ＰＴ）測定用の標準トロンボプラスチン試薬（ＲＥＮＡＭ、ロシア）から調製したトロンボプラスチン溶液を活性剤として用いた。活性剤を加えた時間を、時間計測の開始点とした。蛍光反応生成物（ＡＭＣ）蓄積の動態を６０分間記録した。各時間における生成物蓄積速度は、その時点の血漿中のトロンビン濃度に比例する。ＡＭＣ蓄積曲線を微分することにより、各時点での系中のトロンビン濃度の割合を算出することができ、その結果、トロンビン生成の曲線を特徴付けるパラメーターを測定することができる。各試料に対して、これら血漿試料で既知のＡＭＣ濃度のシグナル(signals)に基づいて、シグナル(signal)を修正することによって、従来の蛍光単位を、絶対ＡＭＣ濃度に換えた。予め、この方法の直線性を、ＡＭＣ濃度の広い範囲にわたって、テストした。
【０１４１】
空間での(in space)血塊成長速度の測定
空間での血塊成長速度は、時間をかけて空間にわたって進行する過程である凝固の動態について表す。この方法は、いったん凝固が開始し、異なる時間における血塊の大きさを決めるために、光分散を測定する。凝固は、空間に正確に位置された活性剤によって、攪拌することなしに血漿試料中で活性化される。或いは、活性剤は、内部経路(internal path)で接触活性化を引き起こす、接地した端(ground edge)を有する簡単なガラス板、または、外部経路(external path)で凝固を活性化する組織因子をその表面に付与する、線維芽細胞をコートしたポリエチレンテレフタル酸エステル膜であった。外部経路(external path)で凝固が活性化された場合、トウモロコシトリプシン阻害剤（CTI, 200μg/ml）を、初期血漿に加え、系における接触凝固活性化を防止した。測定は、ＰＰＰを１０，０００ｇで１０分間、さらに遠心分離して得た無血小板血漿（ＰＦＰ）で行った。
【０１４２】
マイクロチャンバーを、３５ｍｍのポリスチレンペトリ皿に設置した。凝固を、外部経路(external path)で活性化したとき、線維芽細胞が増殖した、１ｍｍ厚のガラス板の端をポリエチレンテレフタル酸エステル膜で包んだ。次に、ガラス板を、ペトリ皿の底部に両面テープで固定した。ガラス板の端は、活性剤でコートされたマイクロチャンバーの側端として役目を果たす。同様に、外側を黒色の塗料で覆われ、ガラス板の端を超えて伸びているポリスチレン板を、ガラス板の上部表面に貼り、マイクロチャンバーの上部表面を規定した。見込みのあるトロンビン阻害剤を含有するまたは含有しない、カルシウム再加無血小板血漿（添加ＣａＣｌ２最終濃度２０ｍＭ）を、上部板とチャンバー底部の間に注意深く注ぎ、凝固活性化壁に接触するようにした。血漿が、活性剤と接触した瞬間を、ｔ＝０とした。ペトリ皿を、しっかりと密閉し、透明底の恒温３７℃キュベットに入れた。透明底を通して、皿の血漿を赤色ダイオード光（波長６６０ｎｍ）で照射した。常置の(permanent)マイクロチャンバー領域(area）（７．２ｘ５．４ｍｍ）の画像を、30秒毎に画像取り込みプレートＥＺ９８（ライフビュー社(Lifeview Inc.)、米国）につなげたビデオカメラＯＳ−７５（Ｍｉｎｔｒｏｎ  Ｅｎｔｅｒｐｒｉｓｅ、台湾）で記録し、デジタル化、およびビデオカメラからコンピューターのメモリーに入力した。
【０１４３】
実験開始から様々な時間に相当する光分散分析結果(profiles)を、一連の記録画像を加工することによって得た。血塊が成長するにつれて、血塊が、活性剤表面から血漿に広がっていた。各コマにおける血塊の大きさを、活性剤から、光分散が最大値の半分である点であると仮定された血塊端までの距離として測定した。次に、血塊成長速度を、時間に対する血塊サイズの直線領域の時間曲線に対する傾斜角の正接として、見出した。この方法は、次の論文に、より詳しく記述されている。Ovanesov MV, Krasotkina JV, Ul'yanova LI, Abushinova KV, Plyushch OP, Domogatskii SP, Vorob'ev AI, Ataullakhanov FI. Hemophilia A and B are associated with abnormal spatial dynamics of clot growth. Biochim. Biophys. Acta, 2002, 1572(l):45-57; Ovanesov MV, Lopatina EG, Saenko EL, Ananyeva NM, Ul'yanova LI, Plyushch OP, Butilin AA, Ataullakhanov FI. Effect of factor VIII on tissue factor-initiated spatial clot growth. Thromb. Haemost, 2003, 89(2):235-242
【０１４４】
図２は、正常な血漿における血塊の成長の連続写真を示す。（左のバンドはガラス活性剤で、フィブリンは、明るい領域で明らかにされている。）最初のコマは、活性剤に直交したラインを示す。そこで、光分散分析結果(profiles)が算出された。
【０１４５】
凝固開始から異なる時間における成長血塊の光散乱プロファイルを、図３に示す。
【０１４６】
最後のプロセッシング段階は、得られた光散乱プロファイルをもとに、血塊成長速度を算出することである。各時間における血塊の大きさを、活性剤からの個々の光散乱プロファイルの距離として(最大分析結果高(maximum profile height)の半分のところで）算定した。図４は、算出した、時間の対する血塊の大きさの割合を示す。血塊の準定常(quasi-stationary)成長速度を、その曲線の直線部分の傾斜角から算出した。
【０１４７】
行った試験は、本出願で特許権が請求されている新規合成化合物が、抗凝血特性を有する、すなわち、新規合成化合物が、血漿凝固を遅らせることを示している。
【０１４８】
血漿中に様々な濃度の化合物ＨＣ−０２０ｓ−ＩＯＣが存在する場合のトロンビン生成試験で測定された所定のパラメーターの変化を、実施例を使って、次に再検討した（表３を参照のこと）。図５は、血漿凝固による蛍光基質とトロンビンとの間の分解反応における蛍光産物の蓄積に関して構築した曲線を示す。直接、レコーダーによって記録された（従来蛍光単位を、絶対ＡＭＣ濃度に換算した。）図６は、図５の曲線を微分することによって算出した、実験を通してのトロンビン濃度変化の動態プロファイルを示す。トロンビン産生能の減少および系中の阻害剤濃度の増加にともなって、トロンビン生成曲線上の最大の点に達するのに要する時間を、それぞれ、図７および図８示す。これら結果は、試験化合物（ＨＣ−０２０ｓ−ＩＯＣ）の濃度の増加とともに、血漿凝固が著しく遅くなることを示す。内在性トロンビン産生能の５０％減少を引き起こした化合物の濃度（ＩＣ５０）が、０．９ｍｃＭであることを見出した。従って、この化合物は、強力な抗凝血剤である。
【０１４９】
次の３つの図は、化合物ＨＣ−０２５ｓ−ＩＯＣの存在下での空間(spatial)血塊成長動態における変化を示す。図９および図１０は、凝固が初期の通常の血漿中、および、１μＭのこの化合物ＨＣ−０２５ｓ−ＩＯＣの存在する同じ血漿中で進行している間の記録された光散乱プロファイルを、それぞれ示す。図１１は、コントロール血漿、および１μＭの化合物ＨＣ−０２５ｓ−ＩＯＣの存在する血漿の、時間に対する凝固の大きさ（血塊が広がる活性剤からの距離）の成長を示す。得られた曲線の比較をすることもまた、血漿中にある化合物ＨＣ−０２５ｓ−ＩＯＣは凝固を阻害することを示す。
【０１５０】
いくつかの新規合成化合物の抗凝血効果を示す例を、表３に示す。
【０１５１】
実施例７
正常ドナー血漿の晶質血漿代用液（ＮａＣｌ  ０．９％）での希釈により誘導される凝血亢進、およびトロンビン阻害化合物ＨＣ−０２５ｓ−ＩＯＣを様々な濃度で含む標準血漿代用液の添加によるその改善
３．８％クエン酸ナトリウム（血液対クエン酸比率＝９：１）で調製したドナー血液（20 ml）を、１，３００ｇで１５分間遠心分離した。得られた貧血小板血漿（ＰＰＰ）を、内在性トロンビン産生能を測定するために用いた。
【０１５２】
輸液グレードの生理食塩水（ＮａＣｌ  ０．９％）、または、トロンビン阻害剤 ＨＣ−０２５ｓ−ＩＯＣを（濃度０．２５、０．５または１μＭで）さらに含む同溶液を用いて、ＰＰＰを、１．５、２、３および４の割合で希釈した。カルシウム再添加後の全ての希釈試料中でＣａ２＋濃度を一定にするため、クエン酸ナトリウム濃度を、最初の未希釈血漿中の濃度と同じになるように、すべての血漿希釈で一定に維持した。その目的のため、血漿を希釈するのに用いた最初の血漿代用液を、まず、初期血液と同様に、溶液対クエン酸塩比９：１で３．８％クエン酸ナトリウムと混合した。
【０１５３】
上記のＥＴＰ測定法に用いた血漿試料を、常に１：５の割合で希釈した。PSSで血漿を希釈する実験において、未希釈の血漿中でＥＴＰを測定する機会は、設けられなければならない。従って、特別な方法を開発し、測定の際に実際に血漿を希釈することなしに、これらの実験でＥＴＰを測定した。測定するため、２００マイクロリットルの血漿試料（未希釈ＰＳＳまたは所望の倍数(number of times)を、９６ウェルプレートのウェルに入れ、測定を行った。次に、２マイクロリットルのＤＭＳＯ中の蛍光基質溶液（開始濃度３０．７５ｍＭ）を、各ウェルに加えた。凝固が開始すると、３マイクロリットルの活性剤を各ウェルに加えた。活性剤溶液を、プロトロンビン時間を測定するために用いた標準トロンボプラスチン（Ｒｅｎａｍ社、ロシア）から２０ｍＭのＨＥＰＥＳ、１４０ｍＭのＮａＣｌおよび１．２３５ＭのＣａＣｌ２を含むバッファー（ｐＨ７．５）で２０倍希釈して調製した。次いで、先に説明した方法で、測定を行った。内在性トロンビン産生能を、様々な濃度のＨＣ−０２５ｓ−ＩＯＣの存在下で、希釈した血漿の各々について、測定した。
【０１５４】
図１２は、様々な阻害剤濃度を含むＮａＣｌ（０．９％）溶液で希釈した、一連の血漿希釈液におけるＥＴＰ測定の結果を示す。明らかに、阻害剤を添加しない場合、血漿を代用溶液で徐々に希釈するにつれて、内在性トロンビン産生能が、顕著に増加し、これは、この条件において凝固が増強されることを示唆する。具体的に、ＥＴＰの変化がわずか２０％ある場合、血栓症危険因子とみなされる。(Hemker HC, Al Dieri R, Beguin S. thrombosis generation assays: accruing clinical relevance. Curr. Opin. Hematol. 2004, l l(3):170-175). しかし、我々の実験では、１．５〜４の割合で希釈した初期血漿で、最大ＥＴＰは、異なる血漿によって１．５倍から４倍超まで増加する。阻害剤の追加は、血漿希釈により誘導された凝固増強効果を完全に中和せず、異なる血漿希釈に対するＥＴＰ値を減じて、凝固増強効果を顕著に調整する。さらに、溶液中０．２５〜０．５μＭのＨＣ−０２５ｓ−ＩＯＣ濃度は、異なる血漿希釈に対するＥＴＰ値が正常なものに最も近くなっている曲線を形成した。
【０１５５】
【表１−１】
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【０１５６】
【表１−２】
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【０１５７】
【表１−３】
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【０１５８】
【表１−４】
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【０１５９】
【表１−５】
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【０１６０】
【表２−１】
2010531353.tif 000051
【０１６１】
【表２−２】
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【０１６２】
【表３−１】
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【０１６３】
【表３−２】
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【０１６４】
【表３−３】
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【０１６５】
【表３−４】
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【０１６６】
【表３−５】
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【０１６７】
【表３−６】
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【０１６８】
【表３−７】
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