【誤訳訂正書】
【提出日】平成26年4月22日(2014.4.22)
【誤訳訂正１】
【訂正対象書類名】特許請求の範囲
【訂正対象項目名】全文
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【特許請求の範囲】
【請求項１】
ポリエーテルポリマー基材の表面の一部又は全ての親水性を高めるための方法であって、（ａ）前記表面に、適当なガスでのプラズマ表面処理、すなわち０．１〜０．５ｔｏｒｒの圧力、１ＭＨｚ〜２０ＭＨｚの周波数にて酸素での酸化処理を施す工程、及び（ｂ）この表面に１以上の洗浄工程を施して任意の低分子量酸化材料を除去することを含む方法。
【請求項２】
医療での利用で使用するためのポリエーテルポリマー基材の表面の一部又は全ての親水性を高めるための請求項１に記載の方法であって、（ａ）前記表面に、適当なガスでの酸化処理、すなわち０．１〜０．５ｔｏｒｒの圧力、１ＭＨｚ〜２０ＭＨｚの周波数にて酸素での酸化処理を施す工程、及び（ｂ）この表面に１以上の洗浄工程を施して任意の低分子量酸化材料を除去することを含む方法。
【請求項３】
ポリエーテルポリマー基材の表面の一部又は全てへの接着性を高めるための方法であって、（ａ）前記表面に、適当なガスでのプラズマ表面処理、すなわち０．１〜０．５ｔｏｒｒの圧力、１ＭＨｚ〜２０ＭＨｚの周波数にて酸素での酸化処理を施す工程、及び（ｂ）この表面に１以上の洗浄工程を施して任意の低分子量酸化材料を除去することを含む方法。
【請求項４】
医療品での使用のためのポリエーテルポリマー基材の表面の一部又は全てへの細胞の石灰化又は細胞付着性を高めるための方法であって、（ａ）前記表面に、適当なガスでのプラズマ表面処理、すなわち０．１〜０．５ｔｏｒｒの圧力、１ＭＨｚ〜２０ＭＨｚの周波数にて酸素での酸化処理を施す工程、及び（ｂ）この表面に１以上の洗浄工程を施して任意の低分子量酸化材料を除去することを含む方法。
【請求項５】
前記酸化処理が、大気圧又は真空電離プラズマ処理である、請求項１〜３のいずれかに記載の方法。
【請求項６】
前記プラズマは、交流（ＡＣ）、直流（ＤＣ）低周波（ＬＦ）、可聴周波（ＡＦ）、高周波（ＲＦ）及びマイクロ波電源からなる群から選択される電源によって発生される請求項４に記載の方法。
【請求項７】
前記酸化処理が、０℃〜２５℃の温度で行われる、請求項１〜６のいずれかに記載の方法。
【請求項８】
前記ポリエーテルポリマー基材が、ポリエーテルエーテルケトン（ＰＥＥＫ）又はポリエーテルケトンケトン（ＰＥＫＫ）である、請求項１〜７のいずれかに記載の方法。
【請求項９】
前記ポリエーテルポリマー基材が生体適合性である、請求項１〜８のいずれかに記載の方法。
【請求項１０】
前記ポリエーテルポリマー基材の形状が、ブロック、シート、フィルム、ひも状（ｓｔｒａｎｄ）、繊維状、小片又は粒子、粉末、成形品、織物又は密集した繊維をプレスしてシート状にしたものである、請求項１〜９のいずれかに記載の方法。
【請求項１１】
前記ポリエーテルポリマー基材が、医療装置、細胞又は組織培養足場、キット、分析プレート、アッセイ等の全て又は一部を表す、請求項１〜１０のいずれかに記載の方法。
【請求項１２】
前記医療装置は、ステント、プロテーゼ、人工関節、骨又は組織代替材料、人工臓器又は人工皮膚、接着剤、組織シーラント、縫合糸、膜、ステープル、クギ、ネジ、ボルト、脊椎ケージ又は外科的使用のための他の装置、又は他の埋め込み型装置から選択される、請求項１１に記載の方法。
【請求項１３】
請求項１〜１２のいずれかに記載の方法によって得られる、医療での利用で使用するための表面処理されたポリエーテルポリマー基材。
【誤訳訂正２】
【訂正対象書類名】明細書
【訂正対象項目名】００１８
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【００１８】
【図１】図１は、洗浄済み及び未洗浄の酸素プラズマ処理済みＰＥＥＫ表面の表面酸素濃度を示す。
【図２】図２は、ＸＰＳで測定した、８ヶ月後のプラズマ表面処理の安定性を示す。
【図３】図３は、培養２日後のヒト初代骨芽細胞様細胞（ＨＯＢ）付着性のＳＥＭで、未処理ＰＥＥＫを用いたものは、ＨＯＢ細胞の接着性が乏しいことを示し（Ａ）、処理済みＰＥＥＫを用いたものは、ＨＯＢ細胞の接着性がよりよく扁平な外観を有することを示す（Ｂ）。
【図４】図４は、表面処理済みＰＥＥＫ表面をＡＲＳ染色によって測定した、ヒト初代骨芽細胞様細胞の石灰化を示し、未処理ＰＥＥＫ、チタン及びＴｈｅｒｍａｎｏｘと比較した。
【誤訳訂正３】
【訂正対象書類名】明細書
【訂正対象項目名】００５０
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【００５０】
材料及び方法：
ＰＥＥＫ  Ｏｐｔｉｍａ（登録商標）ディスク（Ｉｎｖｉｂｉｏ  Ｌｔｄ）を１３ｍｍ径に加工し、ＲＦプラズマ処理によって改質した。Ｔｈｅｒｍａｎｏｘ（Ｎｕｎｃ）及びＴｉ  ＩＳＯ  ５８３２／２（Ｓｙｎｔｈｅｓ）を対照面として用いた。ＥＭＩＴＥＣＨ  ＲＦプラズマ処理機を用いて、１３．５６ＭＨｚ、０．１〜０．５Ｔｏｒｒで最大３０分間、酸素プラズマ処理を行った。処理表面及び未処理表面の表面化学成分をＸＰＳ及び接触角によって特徴づけ、ＡＦＭによりトポグラフの変化を見た。初代ヒト骨芽細胞様細胞（ＨＯＢ、Ｐｒｏｍｏｃｅｌｌ）又は人工股関節全置換手術時に取り除いた大腿骨頭から分離した細胞を、ＤＭＥＭ（５％ＣＯ２中１０％ＦＣＳ、３７℃）に７０〜８０％コンフルエンスまで成長させ、１００００ｃｅｌｌｓ／ｃｍ２でプレーティングする（ｐｌａｔｅｄ）。アルファＭＥＭ（０．１１μＭデキサメタゾン及び１０ｍＭβ−グリセロフォスフェート）を２１日にわたって、石灰化媒体（ｍｉｎｅｒａｌｉｓａｔｉｏｎ  ｍｅｄｉａ）として用いた。アルカリ性ホスファターゼ活性（ＡＬＰ）によって細胞機能性を評価し、ｑＰＣＲによって表現型遺伝子発現を、カルシウム沈殿物のアリザリンレッドＳ（ＡＲＳ）染色によって石灰化を、ＳＥＭ及びａｌａｍａｒＢｌｕｅ（登録商標）アッセイによる細胞密度によって総タンパク量、細胞付着性を評価した。サンプリングは１，７，１４，２１及び２８日に行った。
【誤訳訂正４】
【訂正対象書類名】明細書
【訂正対象項目名】００５４
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【００５４】
実施例３：  表面細胞付着性の分析
ヒト初代骨芽細胞様（ＨＯＢ）細胞付着性及び機能性への表面処理の影響を調べるために、処理済み及び未処理ＰＥＥＫ、チタンディスク（Ｓｙｎｔｈｅｓ、スイス）及び組織培養ＰＳ（Ｎｕｎｃ、デンマーク）へのプレーティング（ｐｌａｔｉｎｇ）後、細胞を観察した。２４時間以内では、処理済み表面は未処理の表面より細胞密度が高いことがわかった。２１日には、処理済み表面は、チタンと同様の細胞密度を有することがわかった。未処理のＰＥＥＫ上に２日間培養した後のＨＯＢ細胞付着性の走査型電子顕微鏡写真は、細胞の付着性が乏しいことを示す一方で（図３Ａ）、処理済みＰＥＥＫでのＨＯＢ細胞は、より良い付着性と扁平な外観をもつ（図３Ｂ）。細胞付着性はまた、未処理のＰＥＥＫ表面に比べて処理済み表面での改良が見られ、これが分化（ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ）の上方調節（ｕｐ−ｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ）につながり、石灰化マーカーがより早い時点で確認された。ＨＯＢ細胞の石灰化（図４参照）は、未処理ＰＥＥＫ、標準チタン及び組織細胞培養ポリスチレン（Ｔｈｅｒｍａｎｏｘ、Ｎｕｎｃ、デンマーク）と比較した、表面処理済みＰＥＥＫ表面でのＡＲＳ染色による測定からわかるように、ＨＯＢ細胞が、未処理ＰＥＥＫ表面より処理済みＰＥＥＫ表面において、より早い時点で、石灰化された細胞外マトリックスを製造することを示した。