(57)【要約】【課題】下水管路や下水処理場などの排水処理工程などにおいて、微生物に基づく排水中などからの硫化水素の発生を効果的に防止する方法を開発すること。【解決手段】嫌気的条件下でデスルホビブリオ・デスルフリカンスよりも旺盛に増殖する微生物、例えば嫌気的条件下で比増殖速度が少なくとも毎時  ０．８（ＯＤ６６０）  である微生物又は比増殖速度がデスルホビブリオ・デスルフリカンスの少なくとも３倍である微生物を自然界等より選択し、この微生物の培養物を硫化水素を発生する汚泥等に投入して増殖させることにより硫化水素の発生を防止する。【選択図】          なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
硫化水素を発生する微生物が存在すると考えられる場所に、嫌気的条件下で比増殖速度が少なくとも毎時  ０．８（ＯＤ６６０）  である微生物を投入して増殖させることにより硫化水素の発生を防止する、硫化水素の発生を抑制する方法。
【請求項２】
硫化水素を発生する微生物が存在すると考えられる場所に、嫌気的条件下でデスルホビブリオ・デスルフリカンス（Ｄｅｓｕｌｆｏｖｉｂｒｉｏ  ｄｅｓｕｌｆｕｒｉｃａｎｓ）の少なくとも３倍の比増殖速度を有する微生物を投入して増殖させることにより硫化水素の発生を防止する、硫化水素の発生を抑制する方法。
【請求項３】
該比増殖速度が、
（ａ）  無酸素条件下で該微生物を培養して種菌とし、
（ｂ）  １５ｍｌ容のスクリューキャップ付き試験管を用意し、窒素ガスを十分に吹き込んで空気と置換し、窒素ガスの曝気により無酸素状態とした培地（５ｇのペプトン、３ｇの牛肉エキス、０．２ｇの酵母エキス、５ｇのグルコース、１．５ｇのＭｇＣｌ２  ・６Ｈ２  Ｏ、１．４ｇのＮａＣｌ、０．１ｇのＮａ２  ＳＯ４  、２３．６ｇのＮａ２  ＨＰＯ４  ・１２Ｈ２  Ｏ、０．１ｇのＫＨ２  ＰＯ４  、蒸留水１Ｌ、ｐＨ７．５）を試験管の中程まで注入し、
（ｃ）  試験管に種菌０．１ｍＬを加え、試験管の上部まで無酸素状態の上記培地を加え、窒素ガスで十分に曝気させて酸素を追い出した後キャップを締め、３７℃で一定時間培養し、
（ｄ）  培養物の菌体濃度を吸光光度計で経時的に測定する、
ことにより求められるものである、請求項１又は請求項２記載の方法。
【請求項４】
該微生物がシュードモナス属  （Ｇｅｎｕｓ  Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）に属する細菌である、請求項１〜請求項３いずれか１項に記載の方法。
【請求項５】
該微生物がクレブジエラ属（Ｇｅｎｕｓ  Ｋｌｅｂｓｉｅｌｌａ）  に属する細菌である、請求項１〜請求項３いずれか１項に記載の方法。
【請求項６】
該微生物がエシェリキア属（Ｇｅｎｕｓ  Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ）に属する細菌である、請求項１〜請求項３いずれか１項に記載の方法。
【請求項７】
該微生物がラクトバチルス属（Ｇｅｎｕｓ  Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ）に属する細菌である、請求項１〜請求項３いずれか１項に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は硫酸塩還元細菌から生成された硫化水素を抑制する方法に関する。より具体的には、硫化水素を発生する硫酸塩還元細菌の増殖を抑制することにより硫化水素の生成を抑制する方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】
硫黄は水環境中では主に硫酸塩あるいは硫酸イオンとして存在するが、これは主に鉱石などの硫化物鉱床や海水、温泉水、産業排水などに由来するものである。硫黄はこの他、自然界ではいろいろな化学種の形態をとる。硫酸イオンは栄養分として植物に摂取され、植物は動物の食物となり、タンパク質中の含硫アミノ酸に変換される。動植物が死滅すると、含硫アミノ酸は細菌による生分解を受けて脱硫され、硫化水素を生ずる。硫化水素は好気的条件下で硫黄酸化細菌による酸化あるいは化学的酸化を受けて元素状硫黄に転換され、さらに硫黄酸化細菌により硫酸イオンにまで酸化される。
【０００３】
硫酸イオンは植物による摂取の他に、水環境中の底泥などのような嫌気的な条件下で、硫化水素に転換されることがある。この反応は、硫酸塩還元細菌という微生物によって行なわれる。硫酸塩還元細菌は、一般に嫌気的条件を要求する嫌気性細菌であり、酸化還元電位が通常−１００ｍＶ以下、最適値は−２００ｍＶ程度の環境で生育する。最適な温度範囲は１５〜４５℃であるが、一般には３０℃程度である。菌の増殖にとって最適なｐＨは６．５〜８．０である。ｐＨ６以下では硫酸塩還元活性が低下する傾向にある。この細菌は、電子供与体として乳酸や酢酸、プロピオン酸などの低分子有機物質や水素を利用（酸化）して硫酸塩を硫化水素に還元する。この過程で得られるエネルギーで菌体の活動を行なっている。
【０００４】
硫化水素は微量でも卵の腐敗したような悪臭を放ち、さらに大気中の濃度が２０ｐｐｍ以上になると人体に毒性を及ぼす。
【０００５】
また、下水管内などで、硫酸塩還元細菌から生成された硫化水素が、その場所に存在する硫黄酸化細菌によって、硫酸に酸化される。その硫酸によって、下水管などのコンクリート構造物が腐食されるという現象が起こっている。
【０００６】
このような硫酸塩還元細菌による悪臭や腐食などのトラブルを抑制する方法については、従来から種々の提案がなされている。例えば、塩素、過酸化水素などの酸化剤を加えることにより硫化水素を酸化処理する方法が発表されている（例えば、非特許文献１参照）。
また、金属塩添加により沈殿処理する方法などが行なわれている（例えば、非特許文献２参照）。
しかし、これらの方法は、発生した硫化水素などの臭気成分を短時間で除去するには効果的であるが、除去効果を持続させるためには、継続的に薬剤を添加しなければならないという問題がある。
【０００７】
一方、微生物を用いて臭気対策を行なう方法も開発されている（例えば、非特許文献４参照）。これらの方法は、発生した硫化水素を微生物により別の無害の物質に変換することにより硫化水素を除去する方法であり、前述した薬剤添加のように、継続的な添加を必要としないため、経済的である。
しかし、これらの微生物を用いる方法でも硫化水素の発生源を根源的に断ち切ることはできない。
【０００８】
【非特許文献１】
栗田工業薬品ハンドブック編集委員会編「栗田工業薬品ハンドブック」、栗田工業株式会社発行、１９９５年、２４５〜２６８頁
【非特許文献２】
月刊下水道編集委員会編「月刊下水道」、株式会社環境新聞社発行、１９９６年３月号、７〜１７頁
【非特許文献３】
月刊下水道編集委員会編「月刊下水道」、株式会社環境新聞社発行、１９９３年２月号、２〜６６頁
【非特許文献４】
「月刊ＰＰＭ」、株式会社日本工業新聞社発行、１９９６年３月号、２１〜５５頁
【非特許文献５】
「公害と対策」、公害対策技術同友会発行、１９８８年１１月号、２〜３５頁
【非特許文献６】
環境技術編集委員会編「環境技術」、環境技術研究協会発行、１９９７年２月号、１０〜４８頁
【０００９】
【発明が解決しようとする課題】
従って、本発明が解決しようとする課題は、硫酸塩還元細菌による硫化水素の発生を根源的に断ち切る方法を開発することである。
【００１０】
【課題を解決するための手段】
本発明者らは、上記の課題を解決するため、種々検討を重ねた結果、硫酸塩還元細菌の代表的な菌株であるデスルホビブリオ・デスルフリカンス（Ｄｅｓｕｌｆｏｖｉｂｒｉｏ  ｄｅｓｕｌｆｕｒｉｃａｎｓ）と、ある種の微生物を、同じ容器中で嫌気的に同時に培養すると硫化水素の発生を抑制できることを発見した。さらに、これらの微生物が、硫酸塩還元細菌が含まれている実際の汚泥環境中でも、硫化水素の発生を抑制できることを確認し、本発明を完成するに至った。
【００１１】
即ち、本発明の骨子は、
（１）  硫化水素を発生する微生物が存在すると考えられる場所に、嫌気的条件下で比増殖速度が少なくとも毎時  ０．８（ＯＤ６６０）  である微生物を投入して増殖されることにより硫化水素の発生を防止する、硫化水素の発生を抑制する方法、
（２）  硫化水素を発生する微生物が存在すると考えられる場所に、嫌気的条件下でデスルホビブリオ・デスルフリカンス（Ｄｅｓｕｌｆｏｖｉｂｒｉｏ  ｄｅｓｕｌｆｕｒｉｃａｎｓ）の少なくとも３倍の比増殖速度を有する微生物を投入して増殖させることにより硫化水素の発生を防止する、硫化水素の発生を抑制する方法、
（３）  該比増殖速度が、
（ａ）  無酸素条件下で該微生物を培養して種菌とし、
（ｂ）  １５ｍｌ容のスクリューキャップ付き試験管を用意し、窒素ガスを吹き込んで空気と置換し、窒素ガスの曝気により無酸素状態とした培地（５ｇのペプトン、３ｇの牛肉エキス、０．２ｇの酵母エキス、５ｇのグルコース、１．５ｇのＭｇＣｌ２  ・６Ｈ２  Ｏ、１．４ｇのＮａＣｌ、０．１ｇのＮａ２  ＳＯ４  、２３．６ｇのＮａ２  ＨＰＯ４  ・１２Ｈ２  Ｏ、０．１ｇのＫＨ２  ＰＯ４  、蒸留水１Ｌ、ｐＨ７．５）を試験管の中程まで注入し、
（ｃ）  試験管に種菌０．１ｍＬを加え、▲５▼試験管の上部まで無酸素状態の上記培地を加え、窒素ガスを曝気して酸素を追い出した後キャップを締め、３７℃で一定時間培養し、
（ｄ）  培養物の菌体濃度を吸光光度計で経時的に測定する、
ことにより求められるものである、前記（１）又は（２）記載の方法、
（４）  該微生物がシュードモナス属  （Ｇｅｎｕｓ  Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）に属する細菌である、前記（１）〜（３）のいずれかに記載の方法、
（５）  該微生物がクレブジエラ属（Ｇｅｎｕｓ  Ｋｌｅｂｓｉｅｌｌａ）  に属する細菌である、前記（１）〜（３）のいずれかに記載の方法、
（６）  該微生物がエシェリキア属（Ｇｅｎｕｓ  Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ）に属する細菌である、前記（１）〜（３）のいずれかに記載の方法、並びに
（７）  該微生物がラクトバチルス属  （Ｇｅｎｕｓ  Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ）に属する細菌である、前記（１）〜（３）のいずれかに記載の方法、に関する。
【００１２】
【発明の実施の形態】
本発明で使用される細菌は、無酸素条件下で、代表的硫酸塩還元細菌であるデスルホビブリオ・デスルフリカンス等のデスルホビブリオ属菌又はデスルホバクター属菌あるいはデスルホコッカス属菌等よりも速い速度で増殖しうる嫌気性菌又は通性嫌気性菌であれば、特に限定されない。例えば、以下に述べる無酸素条件下で、デスルホビブリオ・デスルフリカンスの比増殖速度の少なくとも３倍の比増殖速度を有する微生物は本発明に使用できる。また、以下に述べる無酸素条件下で、比増殖速度が０．８（ＯＤ６６０  ）より大きな微生物は本発明に使用可能である。
【００１３】
無酸素条件下で良く生育する通性嫌気性細菌である大腸菌や乳酸菌などは本発明に使用できる代表的な微生物である。以下に本発明に使用できる微生物の選択法を記載する。
【００１４】
本発明に使用しうる微生物の選択法
（ａ）  無酸素条件下で該微生物を培養して種菌を調製する。
（ｂ）  １５ｍｌ容のスクリューキャップ付き試験管を用意し、窒素ガスを十分に吹き込んで空気と置換する。
（ｃ）  窒素ガスの曝気により無酸素状態とした培地（ペプトン５ｇ、牛肉エキス３ｇ、グルコース５ｇ、１．５ｇのＭｇＣｌ２  ・６Ｈ２  Ｏ、１．４ｇのＮａＣｌ、０．１ｇのＮａ２  ＳＯ４  、２３．６ｇのＮａ２  ＨＰＯ４  ・１２Ｈ２  Ｏ、０．１ｇのＫＨ２  ＰＯ４  、蒸留水１Ｌ、ｐＨ７．５）を試験管の中程まで注入する。
（ｄ）  試験管に種菌を０．１ｍＬ加える。
（ｅ）  試験管の上部まで培地を加え、窒素ガスで十分に曝気させて酸素を追い出した後キャップを締め、３７℃で一定時間培養し、経時的に培養物の菌体濃度を吸光光度計で測定する。
（ｆ）  比増殖速度を求める。
（ｇ）  比増殖速度が０．８（ＯＤ６６０  ）／時の微生物を選択する、又はデスルホビブリオ・デスルフリカンスの比増殖速度の３倍以上の比増殖速度を有する微生物を選択する。
【００１５】
上記の微生物選択法により選択される微生物の例としては、一部のシュードモナス属菌、クレブジエラ属菌、大腸菌、エンテロバクター属菌、エルウィニア属菌、ビブリオ属菌、ザイモモナス属菌などのグラム陰性通性嫌気性細菌、及び乳酸菌などのラクトバチルス属菌、ストレプトコッカス属菌、ビフィドバクテリウム属菌、スタフィロコッカス属菌、コリネバクテリウム属菌などのグラム陽性通性嫌気性細菌などの中で無酸素条件下で特に生育の著しいものが挙げられる。これらの微生物は酸素の存在下でも無酸素条件下でも生育しうるが、上記の選択法により、無酸素条件下での生育の良いことが確認されたものが選択される。
硫酸塩還元細菌は偏性嫌気性細菌であって、酸素の存在下では生育できない。従って、汚泥等で硫化水素が発生するのは、偏性嫌気性細菌である硫酸塩還元細菌が良く生育する無酸素条件下であるから、上記の微生物選択法では、▲３▼の無酸素条件の設定が重要である。
【００１６】
上記の微生物選択法により選択され、本発明に使用できる微生物の具体例としては、例えばシュードモナス・フルオレッセンス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ  ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｓ）  ＦＥＲＭ  Ｐ−１９１４０  、クレブジエラ・ニューモニエ（Ｋｌｅｂｓｉｅｌｌａ  ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）    ＩＦＯ  １２００９  、大腸菌  ＡＴＣＣ  １１２４６  、ラクトバチルス・フェルメントゥム（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｆｅｒｍｅｎｔｕｍ）  ＡＴＣＣ  ９３３８  などを挙げることができる。
【００１７】
本発明に使用できる微生物を代表的硫酸塩還元細菌であるデスルホビブリオ・デスルフリカンスと上記の培地を含む同じ試験管中で無酸素条件下で３７℃で培養すると、例えば、培養液の溶存硫化物濃度（ｐｐｍ）から求めた硫化水素発生量は、本発明に使用できる微生物を加えなかったデスルホビブリオ・デスルフリカンス培養液の硫化水素発生量に比べ、激減する。
【００１８】
また、上記微生物選択法の無酸素条件下で、比増殖速度がデスルホビブリオ・デスルフリカンスの比増殖速度よりも大きいが２倍程度の微生物をデスルホビブリオ・デスルフリカンスと同時培養すると、培養液の溶存硫化物濃度（ｐｐｍ）から求めた硫化水素発生量は、デスルホビブリオ・デスルフリカンス単独の培養液の硫化水素発生量と殆ど変わらない。
このことから、本発明で使用できる微生物をデスルホビブリオ・デスルフリカンスと無酸素条件下で同時培養すると硫化水素の発生が激減するのは、デスルホビブリオ・デスルフリカンスの生育が、デスルホビブリオ・デスルフリカンスを単独で培養した場合に比べ大きく抑制されることが一因であると思われる。
【００１９】
さらに、上記の効果は天然の汚泥中でも再現されることが確認される。汚泥に０．１ｇ／ｌ  濃度のＮａ２  ＳＯ４  を加えた培地に無酸素条件下でデスルホビブリオ・デスルフリカンスと本発明で使用できる微生物を同時に培養すると、デスルホビブリオ・デスルフリカンス単独で培養した場合に比べ、硫化水素の発生量が激減する。
【００２０】
【実施例】
以下、実施例により本発明をさらに詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例によりなんら限定されるものではない。
【００２１】
実施例１
上記の微生物選択法により選択された選択菌２株、即ちシュードモナス・フルオレッセンス  ＦＥＲＭ  Ｐ−１９１４０  及びクレブジエラ・ニューモニエ  ＩＦＯ  １２００９、とデスルホビブリオ・デスルフリカンス１株、及び対照菌１株の無酸素状態における増殖速度を調べた。
５ｇのペプトン、３ｇの牛肉エキス、０．２ｇの酵母エキス、５ｇのグルコース、１．５ｇのＭｇＣｌ２  ・６Ｈ２  Ｏ、１．４ｇのＮａＣｌ、０．１ｇのＮａ２  ＳＯ４  、２３．６ｇのＮａ２  ＨＰＯ４  ・１２Ｈ２  Ｏ、０．１ｇのＫＨ２  ＰＯ４  、及び蒸留水１リットル、ｐＨ７．５からなる培地を調製し、オートクレーブ滅菌した後窒素ガス置換を行なって、無酸素状態とした。この培地を１５ｍｌ容スクリューキャップ付き試験管に注入し、窒素ガスを吹き込んで無酸素状態とした。これに、選択菌、デスルホビブリオ・デスルフリカンス及び対照菌の種培養を０．１ｍｌ加え、さらに試験管上部まで無酸素培地を注入し、キャップを締めて３７℃で培養し、増殖速度を調べた。その結果を表１に示す。
【００２２】
【表１】
2004344757.tif 000002
【００２３】
表１から明らかなように、シュードモナス・フルオレッセンス  ＦＥＲＭ  Ｐ−１９１４０  （選択菌１）及びクレブジエラ・ニューモニエ  ＩＦＯ  １２００９（選択菌２）の比増殖速度はそれぞれ０．９０及び０．８０であり、無酸素状態で、デスルホビブリオ・デスルフリカンス（比増殖速度は０．２４）よりも遙に大きな増殖速度を示した。なお、対照菌の比増殖速度は０．５４であり、デスルホビブリオ・デスルフリカンスの増殖速度よりも速い増殖を示したが、選択菌よりもその増殖速度はかなり小さいことが分かる。
比増殖速度μは次式に従って求めた。
ｌｎ（Ｘ／Ｘ０）＝μｔ
μ＝ｌｎ２／ｔｄ  
Ｘ：対数増殖期後の菌体濃度
Ｘ０  ：対数増殖期前の菌体濃度
ｔ：対数増殖期の時間（ｈ）
μ：比増殖速度（ｈ−１）
ｔｄ  ：  倍加時間（ｈ）
【００２４】
実施例２
実施例１で使用したデスルホビブリオ・デスルフリカンス１株、シュードモナス・フルオレッセンス  ＦＥＲＭ  Ｐ−１９１４０  （選択菌１）１株、クレブジエラ・ニューモニエ  ＩＦＯ  １２００９（選択菌２）１株及び対照菌１株を、１０ｇのペプトン、７ｇの牛肉エキス、３ｇのＮａＣｌ、水道水１Ｌ、ｐＨ７．０の培地中、３７℃で無酸素状態で培養し、それぞれの種培養を調製した。
【００２５】
次いで、５ｇのペプトン、３ｇの牛肉エキス、０．２ｇの酵母エキス、５ｇのグルコース、１．５ｇのＭｇＣｌ２  ・６Ｈ２  Ｏ、１．４ｇのＮａＣｌ、０．１ｇのＮａ２  ＳＯ４  、２３．６ｇのＮａ２  ＨＰＯ４  ・１２Ｈ２  Ｏ、０．１ｇのＫＨ２  ＰＯ４  及び蒸留水１リットル、ｐＨ７．５からなる培地を調製し、窒素ガスを曝気して無酸素状態とした。この培地を、窒素ガスを吹き込んだ１５ｍｌ容のスクリューキャップ付き試験管に約１０ｍｌ注入し、ついで硫酸塩還元細菌の種培養を０．１ｍｌ加え、さらに選択菌又は対照菌の種培養、又は種培養用培地を０．１ｍｌ加えた後、窒素ガスを吹き込んで酸素を除き、さらに試験管の上部まで培地を注入した後キャップを締め、３７℃で静置培養した。一定時間培養の後、培養液中の溶存硫化物の濃度を吸光光度計を用いて測定した。なお、選択菌の種培養の代わりに選択菌培養用の培地０．１ｍｌを加えたものはブランクとして用いた。その結果を表２に示す。
【００２６】
【表２】
2004344757.tif 000003
【００２７】
表２から明らかなように、硫化水素を発生する微生物であるデスルホビブリオ・デスルフリカンスの種培養と選択菌培養用培地のみを添加したブランクでは、培養液中の溶存硫化物の量が１２時間以降顕著に増加することが認められる。これに対し、デスルホビブリオ・デスルフリカンスの種培養と選択菌の種培養を同時に添加して同時培養した場合は、シュードモナス・フルオレッセンス  ＦＥＲＭ  Ｐ−１９１４０  （選択菌１）及びクレブジエラ・ニューモニエ  ＩＦＯ  １２００９（選択菌２）のいずれにおいても、溶存硫化物の生成量は顕著に抑制され、硫化水素の発生は実質的に完全に抑制されたことが分かる。さらに、選択菌の代わりに対照菌の種培養を加えた場合は、ブランクとほぼ同様の溶存硫化物の生成が観察され、デスルホビブリオ・デスルフリカンスが正常に硫化水素を生成させていることが分かる。
【００２８】
実施例３
シュードモナス・フルオレッセンス  ＦＥＲＭ  Ｐ−１９１４０  （選択菌１）及びクレブジエラ・ニューモニエ  ＩＦＯ  １２００９（選択菌２）が実施例２の条件下でデスルホビブリオ・デスルフリカンスによる硫化水素発生を顕著に抑制することが明らかになったが、これらの選択菌が実際の汚泥の環境中で汚泥中に含まれる硫酸塩還元細菌による硫化水素の発生を抑制しうるかどうかを検討した。
【００２９】
１５ｍｌ容のスクリューキャップ付き試験管に汚泥３ｍｌを加えた。さらに、汚泥の遠心分離上清とＮａ２  ＳＯ４  を０．１ｇ／リットルになるように加えた。これに、選択菌又は対照菌の種培養０．１ｍｌを加えて、試験管の最上部まで汚泥の遠心分離上清を加え、キャップを締めて、３７℃で静置培養した。一定時間培養した後、試料中の溶存硫化物の濃度を測定した。なお、ブランクとして、選択菌の種培養の代わりに選択菌培養用の培地を０．１ｍｌ加えたものを用いた。その結果を表３に示す。
【００３０】
【表３】
2004344757.tif 000004
【００３１】
表３から明らかなように、ブランク及び対照菌を加えた汚泥環境中では、経時的に溶存硫化物の濃度が増加したが、シュードモナス・フルオレッセンス  ＦＥＲＭ  Ｐ−１９１４０  （選択菌１）又はクレブジエラ・ニューモニエ  ＩＦＯ  １２００９（選択菌２）を添加した汚泥では、溶存硫化物の生成は顕著に抑制されたことが分かる。この結果は、シュードモナス・フルオレッセンス  ＦＥＲＭ  Ｐ−１９１４０  （選択菌１）及びクレブジエラ・ニューモニエ  ＩＦＯ  １２００９（選択菌２）が硫酸塩還元細菌による汚泥中での硫化水素発生を効果的に抑制しうることを示すものであり、本発明方法が汚泥中での硫酸塩還元細菌による硫化水素発生の防止法として有効であることを明らかにするものである。
【００３２】
【発明の効果】
本発明方法の使用により、汚泥中での硫酸塩還元細菌による硫化水素の発生が効果的に防止される。投入された微生物の増殖により汚泥中の硫化水素を発生する微生物の増殖が抑制され、その結果硫化水素の発生が抑制されることが一因であると考えられる。