(57)【要約】【課題】本発明はヨモギ抽出物またはヨモギ成分を含む血糖上昇抑制作用を有する健康食品に関する。【解決手段】血糖上昇抑制のために用いられるヨモギ抽出物、およびヨモギ抽出物またはヨモギを含む血糖上昇抑制のための健康食品が、例えば、菓子、飲料、冷菓、デザート食品、スープおよびサプリメント製剤として提供される。【選択図】　なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
血糖上昇抑制に用いられるヨモギ抽出組成物。
【請求項２】
請求項１に記載のヨモギ抽出組成物を含む健康食品。
【請求項３】
ヨモギを含む血糖上昇抑制のための健康食品。
【請求項４】
上記健康食品の形態が、菓子、飲料、冷菓、デザート食品、スープおよびサプリメント製剤からなる群から選ばれる、請求項２または３記載の健康食品。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は血糖上昇抑制作用を有するヨモギの抽出組成物およびヨモギまたはその抽出物を含む健康食品に関する。
【０００２】
【従来の技術および発明が解決しようとする課題】
近年、糖尿病の患者数は増大の一途をたどっている。さらに糖尿病は、動脈硬化、網膜症、腎症などの血管障害あるいは神経障害などの様々な合併症を引き起こす為、その予防、進行を止める事は重要な課題となっている。しかし、糖尿病については長期にわたり血糖をコントロールすれば合併症への移行を防ぐことが可能である。現在経口糖尿病治療薬としてスルホニウムウレア（ＳＵ）剤が主に用いられ、最近ではインスリン抵抗性改善治療薬のチアゾリジン系薬剤も臨床で用いられるようになってきた。しかし、治療薬は副作用があるため副作用の少ない天然物由来の治療薬が必要とされている。
【０００３】
植物界では、オオバサルスベリ葉、ニガウリ、ニンジン根、その他数多くの植物に血糖降下作用があると報告されているが、広く有効性が認められ、利用されているものは数少なく、この分野においてさらなる研究がなされることが望まれていた。本発明者らはその若葉が和菓子の草もちなどに繁用されているヨモギ（Ａｒｔｅｍｉｓｉａ　ｐｒｉｎｃｅｐｓ）及びオトコヨモギ（Ａｒｔｅｍｉｓｉａ　ｊａｐｏｎｉｃａ）の成分を検討していたところ、血糖上昇抑制作用を有するとの知見を得た。これまでヨモギに血糖上昇抑制作用があることは知られていなかった。
【０００４】
【課題を解決するための手段】
本発明は血糖上昇抑制のためのヨモギ抽出組成物およびヨモギの成分を含む健康食品を提供する。具体的には、この健康食品は、菓子、飲料、冷菓、デザート食品、スープまたはサプリメント製剤の形態で提供することができる。
【０００５】
【発明の実施の形態】
本発明のヨモギはヨモギ（Ａｒｔｅｍｉｓｉａ　ｐｒｉｎｃｅｐｓ）およびオトコヨモギ（Ａｒｔｅｍｉｓｉａｊａｐｏｎｉｃａ）を含むが、ヨモギ（Ａｒｔｅｍｉｓｉａ　ｐｒｉｎｃｅｐｓ）の方が多く採取され、ヨモギ（Ａｒｔｅｍｉｓｉａ　ｐｒｉｎｃｅｐｓ）がより好ましい。ヨモギ（Ａｒｔｅｍｉｓｉａ　ｐｒｉｎｃｅｐｓ）は、山野に自生する最も普通のキク科の一年周期の多年草であり、春の成長期、春から夏至までの成熟期、夏至から冬期間を種の保存のための越年期とする。成長期、成熟期のヨモギの特有の香りおよびヨモギの主成分は、葉を中心とする上部にあり、越年期は逆に根の部分に移動し、種子は晩秋に風媒で自然繁殖する。ヨモギは昔から、そのまま食に供したり、葉を乾燥したものを収斂止血薬として煎じて用い、全草は喘息にも用いられ、また乾燥後綿毛を集めたものはもぐさに用いられる。ヨモギにはシネオール、ツヨーンなどの精油類（０．２％）のほか、カフェータンニンが多量含まれているとの報告がある。オトコヨモギ（Ａｒｔｅｍｉｓｉａ　ｊａｐｏｎｉｃａ）は日当たりのよい山地や丘陵地に多いキク科の多年草で全体にほとんど毛がなく、種子が小さい。
【０００６】
年間通じて安定的にヨモギを各種利用する場合、成長期、成熟期のヨモギを刈り取り、前処理・冷凍、前処理・熱風乾燥、天日乾燥、中・低温通風乾燥、粗抽出物、抽出濃縮液の冷凍、凍結乾燥等の形で保管し、必要時に使用される。
【０００７】
本発明で用いられるヨモギは、例えば次のようにして処理される。春、成長期のヨモギ（Ａｒｔｅｍｉｓｉａ　ｐｒｉｎｃｅｐｓ）の上部２５ｃｍ前後の位置で刈り取り収穫し、乾燥工程終了までは茎付で処理する。ヨモギに付着する泥および虫等を落とすために一次水洗する。水洗終了後、水切りＣｏｎｖｅｙｏｒを利用し、二次水洗タンクへ移動させる。二次水洗は２種類の洗浄機を使用し、泥・砂・異物・鉄粉を確実に洗浄する。二次水洗終了品を遠心脱水機にて脱水する。脱水終了分を異物・異草・枯草等の目視検査後、通風乾燥機にて乾燥する。乾燥終了後、葉及び葉茎、茎の分別撰別を行い、葉及び葉茎部分を集める。乾燥した葉及び葉茎部分を、そのまま、または粉末にして食品に混入させる。
【０００８】
本発明のヨモギ抽出組成物は、ヨモギをエタノールまたは水性エタノール抽出したものであり、例えば、上記の脱水後のヨモギを２〜３日常温でエタノール抽出し、減圧下エタノールを回収する工程を２回繰り返しヨモギ成分の抽出液を得ることができる。このエタノールの粗抽出物には精油類、タンニン類、葉緑素等、ヨモギ成分のほぼ全てが含まれることになる。
【０００９】
上記のエタノール抽出物をさらに５倍濃縮して用いることもでき、５倍濃宿液はそのまま冷凍保存して使用するか、またはデキストリンなどの賦形剤を添加して凍結乾燥品として使用することができる。
【００１０】
これらの濃縮物は繊維成分を含まない状態で、ヨモギ全葉の乾燥粉末品と同様に健康食品、例えば、菓子、飲料、冷菓、デザート食品、スープまたはサプリメント製剤に用いることができる。
【００１１】
本発明のヨモギ抽出組成物または乾燥ヨモギを含む健康食品の形態として、和菓子、餅、団子、キャンデー、チョコレート、チューインガム、ゼリー、ベーカリー、スナック菓子などの菓子；お茶、炭酸飲料、果実飲料、乳性飲料、野菜ジュース、スポーツ飲料、嗜好飲料、保健・栄養ドリンク、アルコール性飲料などの飲料；アイスクリーム、アイスキャンデー、シャーベットなどの冷菓；プリン、ヨーグルト、ゼリー、ババロア、ムースなどのデザート食品；粉末スープ、レトルトパウチスープ、缶詰スープなどのスープ；粉末、顆粒、錠剤などのサプリメント製剤などが挙げられる。
【００１２】
ヨモギそれ自体が食用にされてきており、毒性については問題がない。従って、乾燥ヨモギおよびヨモギ抽出組成物の健康食品における含有量は特に制限がなく、その形態によって適当に変えることができる。
【００１３】
ヨモギの血糖上昇抑制活性試験
本発明のヨモギの血糖上昇抑制作用は下記のようにして確認された。
Ａ．供試植物
ヨモギ鮮葉及びオトコヨモギ鮮葉は、京都府木津川周辺で採集したものを用いた。なお、オトコヨモギに関しても同様に下記に記載する操作を行って分画を行った。
【００１４】
Ｂ．供試植物の分画過程
ヨモギ（Ａｒｔｅｍｉｓｉａ　ｐｒｉｎｃｅｐｓ）の新鮮な地上部６．６ｋｇに４１．０Ｌのメタノールを加え室温で３日間抽出を行った。抽出液を吸引濾過した後、再度残査に等量のメタノールを加え、同様の操作を行った。抽出液は、減圧濃縮を行ってメタノール抽出物（Ｍｅ）（３３９．４ｇ）を得た。このようにして得られたメタノール抽出物（Ｍｅ）をヘキサン画分（Ｈｅ）（３９．０ｇ）、水画分（Ｈｅ−Ａｑ）（２４０．６ｇ）に分画した。さらに水画分（Ｈｅ−Ａｑ）を酢酸エチル画分（ＥＡ）（１６．１ｇ）、水画分（ＥＡ−Ａｑ）（１８２．７ｇ）に再分画した。オトコヨモギに関しても同様の操作を行って分画を行った。
【００１５】
酢酸エチル画分（ＥＡ）および水画分（ＥＡ−Ａｑ）について、下記の試験を行った。
▲１▼二糖類分解酵素阻害活性評価テスト
二糖類から単糖へと分解する二糖類分解酵素を阻害することによって単糖の吸収を抑え血糖値の上昇を抑制する効果を検討した。
▲２▼経口ブドウ糖負荷テスト
ラットにヨモギエキスを経口投与した後、グルコースを経口投与することによって血糖値の上昇抑制効果を検討した。
▲３▼ＳＴＺ誘発糖尿病ラットを用いた長期テスト
ＳＴＺ（ストレプトゾトシン）よる糖尿病ラットに長期的にヨモギエキスを経口投与することによって血糖値及び体重に与える影響を検討した。
【００１６】
予備試験で二糖類分解酵素阻害活性（▲１▼）を示した酢酸エチル画分（ＥＡ）に関しては、さらにＬＨ−２０カラムクロマトグラフィーに供し、Ｆｒ．１（７９ｍｇ）、Ｆｒ．２（１０８ｍｇ）、Ｆｒ．３（９６ｍｇ）、　Ｆｒ．４（１４０ｍｇ）、Ｆｒ．５（２０８ｍｇ）、Ｆｒ．６（３８８ｍｇ）に分画した。
【００１７】
経口ブドウ糖負荷テスト（▲２▼）において活性を示した酢酸エチル抽出水画分（ＥＡ−Ａｑ）に関しては、さらにＨＰ−２０カラムクロマトグラフィーに供し、Ｆｒ．Ａ（水溶出部、３．８１ｇ）、Ｆｒ．Ｂ（水：メタノール　２：８溶出部、１．３５ｇ）、Ｆｒ．Ｃ（水：メタノール　５：５溶出部、１．３４ｇ）、Ｆｒ．Ｄ（メタノール溶出部、２．０４ｇ）に分画した。
【００１８】
【化１】
2004067600.tif 000002
【００１９】
Ｃ．酵素・供試動物
▲１▼スクラーゼ
ラット腸管アセトン粉末（　ＳＩＧＭＡ社・Ｌｏｔ　Ｎｏ．０７０３３　）に緩衝液を加えホモジネイトし、遠心分離を行うことによって得られた粗酵素を用いた。
▲２▼ｎｏｒｍａｌラット
Ｗｉｓｔｅｒ系雄性ラット（日本チャールズリバー）７〜１０週齢を用いた。
ラットは、２３．５℃の室温条件下で１日のうち１２時間を明条件で残りの１２時間を暗条件でＭＦ固形試料（オリエンタル酵母）を用いて飼育した。
▲３▼ＳＴＺ誘発糖尿病ラット
９週齢のｎｏｒｍａｌラットにクエン酸緩衝液に溶解したストレプトゾトシン（ＳＴＺ）　４５ｍｇ／ｋｇを腹腔内投与し、２４時間後血糖値が２００ｍｇ／ｄＬ以上の個体をＳＴＺ誘発糖尿病ラットとした。ＳＴＺは、ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ　ａｃｈｒｏｍｏｇｅｎｓが産出する抗生物質で、すい臓のβ−細胞を特異的に破壊する作用がある。この動物モデルは、インスリンの欠乏と顕著な高血糖を示し、糖尿病モデルとして広く用いられている。飼育条件に関しては、ｎｏｒｍａｌラットと同様である。
【００２０】
Ｄ．試験
▲１▼スクラーゼ活性評価試験
各試料をエッペンチューブに１００μＬずつ分注し、３７℃のウォーターバス中で保温した後、それぞれのチューブに粗酵素（スクラーゼ）（５０μＬ）を加えた。５分後、スクロース溶液（６０ｍＭ、１００μＬ）を加え１５分間反応させた。１００℃のヒーターで５分間加温することによって反応を停止させた。反応停止後、発色剤（ＷＡＫＯ社・グルコースＢテスト）３ｍＬを加え、再度３７℃のウォーターバスで加温後、吸光度計（　ＤＵＲｓｅｒｅａｚｅ　６５０Ｂｅｃｋｍａｎ社）で波長５０５ｎｍの吸光度を測定した。ブランクにはスクロースの代わりに緩衝液を加えたものを用いた。なお、コントロール無添加区の酵素活性を阻害率０％として各試料の阻害率を算出した。
【００２１】
結果
ヨモギのスクラーゼ活性評価
ヨモギの各画分における二糖類分解酵素阻害活性の評価の結果を表１に示した。
表１
2004067600.tif 000003
【００２２】
以上の結果からＦｒ．６に有効成分が含まれていると推察された。そのため各種機器分析を用いて構造決定を試みたところロズマリン酸が含まれていることが確認された。
【００２３】
ロズマリン酸の含量について
ヨモギ鮮葉６．６ｋｇから、メタノール抽出物は３３９．４ｇ得られた。ロズマリン酸を多く含む画分は、３．８４ｇ得られため、鮮葉には６．６ｋｇには約１．１３％のロズマリン酸が含まれている。ロズマリン酸の構造式を以下に示す。
【００２４】
2004067600.tif 000004
【００２５】
＜ＮＭＲ＞
１Ｈ−ＮＭＲ　　７．５５ｐｐｍ　（１Ｈ，　ｄ，　Ｊ＝１６Ｈｚ，　Ｈ−７），　７．０５ｐｐｍ　（１Ｈ，　ｄ，　Ｊ＝２Ｈｚ，　Ｈ−２），　６．９５ｐｐｍ　（１Ｈ，　ｄｄ，　Ｊ＝２Ｈｚ，　８Ｈｚ，　Ｈ−６），　６．７７ｐｐｍ　（１Ｈ，　ｄ，　Ｊ＝８Ｈｚ，　Ｈ−５），　６．７５ｐｐｍ　（１Ｈ，　ｄ，　Ｊ＝２Ｈｚ，　Ｈ−１３），　６．７０ｐｐｍ　（１Ｈ，　ｄ，　Ｊ＝８Ｈｚ，　Ｈ−１６），　６．６１ｐｐｍ　（１Ｈ，　ｄｄ，　Ｊ＝２Ｈｚ，　Ｈ−１７），　６．２７ｐｐｍ　（１Ｈ，　ｄ，　Ｊ＝１６Ｈｚ，　Ｈ−８），　５．１９ｐｐｍ　（１Ｈ，　ｄｄ，　Ｊ＝４．５Ｈｚ，　８．５Ｈｚ，　Ｈ−１０），　３．１２ｐｐｍ　（１Ｈ，　ｄｄ，　Ｊ＝４．５Ｈｚ，　１４Ｈｚ，　Ｈ−１１），　３．０２ｐｐｍ　（１Ｈ，　ｄｄ，　Ｊ＝４．５Ｈｚ，　１４Ｈｚ，　Ｈ−１０）
【００２６】
１３Ｃ−ＮＭＲ　　１７４．３ｐｐｍ　（Ｃ１８），　１６９．２ｐｐｍ　（Ｃ９），　１５０．０ｐｐｍ　（Ｃ４），　１４８．５ｐｐｍ　（Ｃ７），　１４７．６ｐｐｍ　（Ｃ３），　１４６．９ｐｐｍ　（Ｃ１４），　１４６．１ｐｐｍ　（Ｃ１５），　１３０ｐｐｍ　（Ｃ１２），　１２８．４ｐｐｍ　（Ｃ１），　１２４．０ｐｐｍ　（Ｃ６），　１２２．６ｐｐｍ　（Ｃ１７），　１１８．３ｐｐｍ　（Ｃ１３），　１１７．３ｐｐｍ　（Ｃ１６），　１１７．１ｐｐｍ　（Ｃ５），　１１６．０ｐｐｍ　（Ｃ８），　１１５．２ｐｐｍ　（Ｃ２），　７５．４ｐｐｍ　（Ｃ１０），　３８．７ｐｐｍ　（Ｃ１１）
【００２７】
＜ＵＶ＞　　λｍａｘ　：２１８　ｎｍ，　２４６　ｎｍ，　２９５　ｎｍ，　３３０　ｎｍ
【００２８】
オトコヨモギのスクラーゼ活性評価
オトコヨモギの各画分における二糖類分解酵素阻害活性の評価の結果を表２に示した。
表２
2004067600.tif 000005
以上の結果からＦｒ．６に有効成分が含まれていると推察された。
【００２９】
▲２▼経口ブドウ糖負荷試験（ｎｏｒｍａｌラット）
分画画分は、５％アラビアガム水溶液、または２０％ＤＭＳＯ水溶液に懸濁させて、胃ゾンデによる経口投与法によりラット体内に２．５ｍＬ／ｋｇ投与した。なお調製に用いた溶媒のみを２．５ｍＬ／ｋｇ投与した区を対照として設定した。
【００３０】
経口ブドウ糖負荷試験は、１８時間絶食、飲料水は自由摂取させたｎｏｒｍａｌラットを用いて、分画画分を投与３０分後にそれぞれ４０％グルコース溶液を２ｇ／ｋｇ投与した。グルコース投与直前の時間を０分とし、０分、３０分、６０分、９０分及び１２０分後に下記手法にて血糖値を測定した。
【００３１】
ラットの尾静脈を剃刀で切開して出血させた後採血し、グルコースオキシダーゼ法によるデキスターＺ（バイエル　メディカル株式会社）を用いて血中グルコース量を測定した。
【００３２】
結果
ヨモギの経口ブドウ糖負荷試験（ｎｏｒｍａｌラット）
へキサン画分（Ｈｅ）及びヘキサン抽出水画分（ＥＡ−Ａｑ）の血糖値（ｍｇ／ｄｌ）の変化を表３および図１に示した。
表３
2004067600.tif 000006
【００３３】
以上の結果より、活性が示されたヘキサン抽出水画分（Ｈｅ−Ａｑ）をさらに酢酸エチル画分（ＥＡ）と酢酸エチル抽出水画分（ＥＡ−Ａｑ）に分画した。経口ブドウ糖負荷試験（ｎｏｒｍａｌラット）のそれぞれの画分における血糖値（ｍｇ／ｄｌ）の変化を表４および図２に示す。
表４
2004067600.tif 000007
以上の結果より、ヨモギ酢酸エチル抽出水画分（ＥＡ−Ａｑ）に有効成分が含まれていることが推察された。
【００３４】
ヨモギの経口ブドウ糖負荷試験（ｎｏｒｍａｌラット）
経口ブドウ糖負荷試験に関しては、オトコヨモギのヘキサン抽出水画分は活性を示さなかった。
【００３５】
▲３▼ＳＴＺ誘発糖尿病ラット（長期アッセイ）
ヨモギのヘキサン抽出水画分（Ｈｅ−Ａｑ）２００ｍｇ／ｋｇを２０％ＤＭＳＯ水溶液に懸濁させて、胃ゾンデによる経口投与法によりラット体内に４ｍＬ／ｋｇ、２５日間毎日投与した。なお調製に用いた溶媒のみを４ｍＬ／ｋｇ投与した区を対照として設定した。
【００３６】
血糖値及び体重の測定に関しては、１０、１５、２０、２５日にその日の経口投与を行う前に上記方法を用いて測定した。２５日間、毎日経口投与を行った後、１８時間絶食、飲料水は自由摂取させ経口ブドウ糖負荷試験を行った。４０％グルコース溶液のみを２ｇ／ｋｇ投与した。グルコース投与直前の時間を０分とし、０分、３０分、６０分、９０分及び１２０分後に上記手法にて血糖値（ｍｇ／ｄｌ）を測定した。
【００３７】
結果
ＳＴＺ誘発糖尿病ラット（長期投与）
経口ブドウ糖負荷試験において血糖上昇抑制効果が示されたヘキサン抽出水画分（Ｈｅ−Ａｑ）を用いて、ＳＴＺ誘発糖尿病ラットの血糖値（ｍｇ／ｄｌ）の変化を表５および図３に、体重（ｇ）の変化を表６および図４に示す。
【００３８】
２５日間の血糖値（ｍｇ／ｄｌ）の変化を表５に示す。
表５
2004067600.tif 000008
【００３９】
以上の結果より２５日間ヨモギのヘキサン抽出水画分を経口投与することによってｃｏｎｔｒｏｌの血糖値上昇を抑制しているのではないかと推察された。
【００４０】
２５日間の体重（ｇ）の変化を表６に示す。
表６
2004067600.tif 000009
【００４１】
以上の結果より、ｃｏｎｔｒｏｌの体重の増加が±０ｇであるのに対し、２５日間ヨモギのヘキサン抽出水画分を長期間経口投与することによって１２ｇ増加するといった結果となった。
【００４２】
ｎｏｒｍａｌラット（経口ブドウ糖負荷試験）
経口ブドウ糖負荷試験（▲２▼）に関しては、オトコヨモギのヘキサン抽出水画分は活性を示さなかった。そのため、ＳＴＺ誘発糖尿病ラットを用いた長期投与は行わなかった。
【００４３】
【実施例】
実施例１　ヨモギの中・低温通風乾燥処理
▲１▼成長期、成熟期のヨモギの上部から２５ｃｍ前後を刈り取り（摘み取り）収穫する（なお、乾燥工程終了までは茎付で処理する）。
▲２▼一次水洗、流水とＡｉｒ−ｖｉｂｒａｔｉｏｎ　の併用による振動水洗でヨモギに付着する泥等を落とした。水洗タンクは流水ｏｖｅｒｆｌｏｗ方式を採用し生きた虫等はｏｖｅｒｆｌｏｗ水とともに排出させる。
▲３▼一次水洗終了後、水切りＣｏｎｖｅｙｏｒを利用し二次水洗タンクへ移動させる。
▲４▼二次水洗には加圧Ｓｈｏｗｅｒ式Ｒｏｔａｒｙ−ｎｅｔ−ｃｏｎｖｅｙｏｒ　洗浄とＦｏｒｋ　ｔｙｐｅ回転洗浄機の直列二槽式を使用し、泥・砂・異物・鉄粉を確実に洗浄する。
▲５▼二次水洗終了品を遠心脱水機にて脱水する。
▲６▼脱水終了分を検査台にて異物・異草・枯草等の目視検査する。
▲７▼通風乾燥機にて乾燥（送風Ｍａｘ６５℃、６〜７Ｈｒ）する（仕上がり水分５％以下）。
生ヨモギ１０００ｋｇから乾燥仕上がり量１６５〜１７５ｋｇの間となる。
▲８▼乾燥終了後、葉及び葉茎、茎の分別撰別を行い、葉及び葉茎部分を集める。
乾燥仕上がり量１７５ｋｇから分別撰別を行うと、葉及び葉茎部分として６０〜６５ｋｇの収率となる。
【００４４】
実施例２　ヨモギ茶
実施例１で製造した葉及び葉茎部分そのまま利用（計量・袋詰）して煎茶用茶葉とする。乾燥品適量をそのまま又は軽く手揉みし、コップで直接または急須を使用するか、適量を薬缶で軽く煮出して飲む。
【００４５】
実施例３　各種餅・団子
実施例１で製造した葉の適当に熱湯で戻したヨモギを、仕上がり重量に対し生ヨモギ１０％〜１５％相当を含むように、杵搗き餅・団子に入れるとヨモギの葉が適当に散らばり、風味の強い餅・団子ができ、風味・食感共が一体化した和菓子が出来上がる。
【００４６】
実施例４　微粉末ヨモギ粉
実施例１で製造した葉及び葉茎部分をＢａｌｌ　Ｍｉｌｌ粉砕機を使用して微粉化処理することにより、微粉末ヨモギ粉を得た。
【００４７】
実施例５　微粉末ヨモギ粉入り錠剤（Ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔ剤）
実施例４で製造した微粉末に、約３０重量％の賦形剤（１５％結晶セルロース、１０％還元麦芽糖、５％蔗糖脂肪酸エステルからなる賦形剤）を加える。直打法により錠剤とし、乾燥ヨモギ粉末の錠剤が出来る。
【００４８】
実施例６　微粉末ヨモギ粉入り各種菓子
乾燥微粉ヨモギとして８〜１６重量％を含む、ヨモギ蒸しスフレ、田舎大福ヨモギ、草餅、三色団子、ヨモギ大福などを通常用いる方法で製造すると風味・食感が一体化した菓子となる。
【００４９】
実施例７　微粉末ヨモギ粉入り各種パン類
生地調整前の主たる粉に乾燥微粉末ヨモギを３〜５重量％を含ませて配合、その後発酵・焼き上げを行い、蒸しパン、蒸しケーキ等を得る。
【００５０】
実施例８　洋菓子・冷菓
生地またはクリーム等に実施例４で製造した微粉末ヨモギ粉を添加し、通常の方法で製造する。
【００５１】
実施例９　ヨモギのエタノール抽出
実施例１の工程▲５▼の脱水後のヨモギ１００ｋｇを各１０００Ｌ容量の二段式タンクの上段、密閉型タンクに取り、エタノール５５０Ｌ（４４０　ｋｇ　比重ｄ２０＝０．７８９）を入れ、６８〜７０時間常温抽出を行う、抽出終了後二段式タンク下段の減圧濃縮タンクに抽出液だけを取り、減圧濃縮（１３０ｍｍＨｇ：４０℃）でエタノールを回収する。回収したエタノールは再度上部タンクに移し、上部タンクのヨモギを再度同様の抽出操作を繰り返す。エタノール粗抽出物５　ｋｇを得た。
【００５２】
実施例１０　ヨモギの粗抽出物５倍濃宿液
粗抽出物には精油類、タンニン類、葉緑素等、ヨモギ成分のほぼ全てが含まれることになるが、紫外部吸収（ＵＶ）帯λｍａｘ：２４６ｎｍに今回血糖上昇抑制効果をもったロズマリン酸が含まれている（生ヨモギ１００ｋｇに約５５ｇ含む）ことが判明したので、より効率的利用を考えエタノール粗抽出物をさらに５倍濃縮（濃縮度合の確認は紫外部吸収（ＵＶ）帯λｍａｘ：２４６ｎｍのレベルで確認）した。粗抽出物５倍濃縮品をそのまま冷凍保存し、濃縮液体で使用する。濃縮液体１ｇ中に紫外部吸収（ＵＶ）、λｍａｘ：２４６ｎｍ帯品が約５０ｍｇ含まれていることになる。
【００５３】
実施例１１　ヨモギ成分の凍結乾燥品
粗抽出物５倍濃縮品４部（８００ｇ）に対して賦形剤としてデキストリン１部（２００ｇ）を混合、真空凍結乾燥処理を行い、ＦＤ乾燥品（水分４．８％：６０℃恒量）４４０ｇを得た。ＦＤ乾燥品１ｇ中に紫外部吸収（ＵＶ）、λｍａｘ：２４６ｎｍ帯品が約１５０ｍｇ含まれていることになる。
【００５４】
実施例１２　ヨモギ成分強化サプリメント（錠剤）
予め葉及び葉茎部分を含む通常乾燥ヨモギと、実施例１１のＦＤ乾燥品を５：５で混合し微粉砕化処理する。微粉砕品をそのまま錠剤化すると、錠剤としての強度が非常に弱いため、商品としての価値が保てなくなる。そこで賦形剤を混合し、強度を強化するために、ヨモギ重量に対して１５％の結晶セルロースおよび１０％の還元麦芽糖、５％蔗糖脂肪酸エステルを混合した（最終的に、ヨモギ７０重量％、賦形剤３０％）。錠剤一粒２００ｍｇには、ヨモギ乾燥品として１４０ｍｇ（紫外部吸収（ＵＶ）、λｍａｘ：２４６ｎｍ帯品が１０ｍｇ以上）が含まれるていることになる。
【図面の簡単な説明】
【図１】ヨモギのへキサン画分（Ｈｅ）及びヘキサン抽出水画分（Ｈｅ−Ａｑ）の経口ブドウ糖負荷試験（ｎｏｒｍａｌラット）における血糖値の変化を示す折線グラフである。
【図２】ヨモギの酢酸エチル画分（ＥＡ）と酢酸エチル抽出水画分（ＥＡ−Ａｑ）の経口ブドウ糖負荷試験（ｎｏｒｍａｌラット）における血糖値の変化を示す折線グラフである。
【図３】ヨモギのヘキサン抽出水画分（Ｈｅ−Ａｑ）長期投与の経口ブドウ糖負荷試験（ＳＴＺ誘発糖尿病ラット）における血糖値の変化を示す折線グラフである。
【図４】ヨモギのヘキサン抽出水画分（Ｈｅ−Ａｑ）長期投与の経口ブドウ糖負荷試験（ＳＴＺ誘発糖尿病ラット）における体重の変化を示す折線グラフである。
【図１】
2004067600.tif 000010
【図２】
2004067600.tif 000011
【図３】
2004067600.tif 000012
【図４】
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