(57)【要約】【課題】    普通卵黄に存在する脂質とカゼイン類物質の大部分を除去し卵黄から抗体を分離する方法を提供すること。【解決手段】    （ａ）家禽雌鳥の卵の卵黄より非水バイオモレキュルス（ｂｉｏ−ｍｏｌｅｃｕｌｅｓ）及び卵黄顆粒（ｇｒａｎｕｌｅｓ）を除去し、従って卵黄抗体を有する水混和性留分を除去し、（ｂ）水混和性留分が、通常卵黄に存在する水混和性脂質物を吸収可能な非水溶解性−非充填吸収体（ｗａｔｅｒｉｎｓｏｌｕｂｌｅ ｎｏｎ−ｃｈａｒｇｅｄ ａｂｓｏｒｂｅｎｔ）を有効量含む固定相を通過し、（ｃ）留分として使用するために固定相を濾過した溶液を収集し、（ｄ）卵黄抗体を前記ステップ（ｃ）の流通溶液より回収する、といったステップを含む卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。【選択図】      図１
2004238401.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
（ａ） 家禽雌鳥の卵の卵黄より非水バイオ−モレキュルス（ｂｉｏ−ｍｏｌｅｃｕｌｅｓ）及び卵黄顆粒（ｇｒａｎｕｌｅｓ）を除去し、これにより卵黄抗体を有する水混和性留分を除去し、（ｂ） 水混和性留分が、水混和性留分中の卵黄抗体と通常卵黄に存在する水混和性脂質物とを吸収可能な非水解性−非充填吸収体（ｗａｔｅｒ ｉｎｓｏｌｕｂｌｅ ｎｏｎ−ｃｈａｒｇｅｄ ａｂｓｏｒｂｅｎｔ）を有効量含む固定相を通過し、（ｃ） 留分として使用するために固定相を流通した溶液を収集し、（ｄ） 卵黄抗体を前記ステップ（ｃ）の流通溶液より回収する、といったステップを含むことを特徴とする、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。
【請求項２】
請求項１に記載の卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法において、除去ステップである（ａ）が、水性緩衝液と水から構成されたグループより選択された有効量の希薄作用物でもって卵黄を希薄化し、その後その結果得られる希薄卵黄を分離処理することにより、非水解性−非充填吸収体（ｗａｔｅｒｉｎｓｏｌｕｂｌｅ ｎｏｎ−ｃｈａｒｇｅｄ ａｂｓｏｒｂｅｎｔ）を除去することを含むことを特徴とする、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。
【請求項３】
請求項２に記載の卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法において、前記希薄作用物の有効量は、卵黄の1部につき量にして５〜約３０部分の範囲であることを特徴とする、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。
【請求項４】
請求項１に記載の卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法において、吸収体は、珪藻土であることを特徴とする、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。
【請求項５】
請求項１に記載の卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法において、（１） 流通溶液を第一コンセントレーションの第一非変性塩で塩析することによって、ステップ（ｃ）の流通溶液からの抗体の第一アイソフォームの大部分を取得し、（２） 第二コンセントレーションの第二非変性塩でステップ（１）の結果得られる生成物を調整することによって、ステップ（１）の結果として得られる水留分から抗体の第二アイソフォームの大部分を塩析した際、第一非変性塩と第二非変性塩が同じ場合、第一コンセントレーションと第二コンセントレーションが異なることを条件とする、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。
【請求項６】
請求項５に記載の卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法において、第一非変性塩と第二非変性塩が、ＮａＣｌと、Ｎａ2ＳＯ4と、（ＮＨ4）2ＳＯ4と、ＫＣｌと、ＣａＣｌ2と、ＭｇＳＯ4とより成るクループより夫々選択されることを特徴とする、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。
【請求項７】
請求項５に記載の卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法において、第一非変性塩と第二非変性塩が同じであった場合、第二コンセントレーションが第一コンセントレーションより高いことを特徴とする、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。
【請求項８】
請求項５に記載の卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法において、（ＮＨ4）2ＳＯ4が唯一の非変性塩として使用される場合、前記ステップ（１）において処理された水留分量及び前記ステップ（２）において処理された水留分量をベースに、第一コンセントレーションが約２１％（ｗ／ｖ）以下であり、第二コンセントレーションが約３１％（ｗ／ｖ）であることを特徴とする、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。
【請求項９】
請求項７に記載の卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法において、（ＮＨ4）2ＳＯ4が第一非変性塩として使用される場合、前記ステップ（１）において処理された水留分量をベースに、第一コンセントレーションが２１％（ｗ／ｖ）以下であり、第二コンセントレーションが前記ステップ（２）で処理された水留分量をベースに、第二非変性塩として約１６％（ｗ／ｖ）のＮａ2ＳＯ4を追加することによって達成されることを特徴とする、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。
【請求項１０】
請求項５に記載の卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法において、抗体の第一アイソトフォームがｌｇＹであり、第二アイソトフォームがｌｇＹ（ΔＦｃ）であることを特徴とする、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。
【請求項１１】
請求項１に記載の卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法において、ゲルろ過クロマトグラフィと、疎水性相互作用クロマトグラフィと、イオン交換クロマトグラフィと、イムノ−アフィニティ・クロマトグラフィとより成るグループから選択された一回以上の浄化方法が続くことを特徴とする、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。
【請求項１２】
請求項１１に記載の卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法において、少なくとも一つの浄化方法は、イムノ−アフィニティ・クロマトグラフィであることを特徴とする、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。
【請求項１３】
請求項１２に記載の卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法において、イムノ−アフィニティ・クロマトグラフィは、ｐＨ４〜７及び５０ｍＭより低いイオン強度で実施されることを特徴とする、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。
【請求項１４】
請求項１３に記載の卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法において、イムノ−アフィニティ・クロマトグラフィは、ｐＨ５．６〜５．８で実施されることを特徴とする、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。
【請求項１５】
請求項１に記載の卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法において、卵黄は選ばれた抗原で免疫化された家禽雌鳥の卵から得られることを特徴とする、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。
【請求項１６】
請求項１５に記載の卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法において、家禽雌鳥がカモであることを特徴とする、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。
【請求項１７】
（ａ） 家禽雌鳥の卵の卵黄より非水バイオ−モレキュルス（ｂｉｏ−ｍｏｌｅｃｕｌｅｓ）及び卵黄顆粒（ｇｒａｎｕｌｅｓ）を除去し、これにより卵黄抗体を有する水混和性留分を除去し、（ｂ） 水混和性留分が、水混和性留分中の卵黄抗体と通常卵黄に存在する水混和性脂質物とを吸収可能な非水解性−非充填吸収体（ｗａｔｅｒ ｉｎｓｏｌｕｂｌｅ ｎｏｎ−ｃｈａｒｇｅｄ ａｂｓｏｒｂｅｎｔ）を有効量含む固定相を通過し、（ｃ） 固定相を流通して溶離液を取得し、（ｄ） 卵黄抗体を前記ステップ（ｃ）の溶離液より回収する、といったステップを含む、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。
【請求項１８】
請求項１７に記載の卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法において、除去ステップである（ａ）が、水性緩衝液と水から構成されたグループより選択された有効量の希薄作用物でもって卵黄を希薄化し、その後その結果得られる希薄卵黄を分離処理することにより、非水解性−非充填吸収体（ｗａｔｅｒｉｎｓｏｌｕｂｌｅ ｎｏｎ−ｃｈａｒｇｅｄ ａｂｓｏｒｂｅｎｔ）を除去することを含むことを特徴とする、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。
【請求項１９】
請求項１８に記載の卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法において、前記希薄作用物の有効量は、卵黄の1部につき量にして５〜約３０部分の範囲であることを特徴とする、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。
【請求項２０】
請求項１７に記載の卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法において、吸収体は、フュームされたシリカと二酸化シリカを含むグループより選ばれることを特徴とする、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。
【請求項２１】
請求項２０に記載の卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法において、前記ステップ（ｃ）での卵黄抗体が、カオトロピック塩または溶出液がｐＨ値４から８で固定相から溶離されることを特徴とする、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。
【請求項２２】
請求項２１に記載の卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法において、カオトロピック塩は、４Ｍグアニデン−ＨＣｌと１−３Ｍチオシアン酸塩を含むグループより選ばれることを特徴とする、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。
【請求項２３】
請求項１７に記載の卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法において、（３） 水留分を第一コンセントレーションの第一非変性塩で塩析することによって、ステップ（ｃ）の溶離液からの抗体の第一アイソフォームの大部分を取得し、（４） 第二コンセントレーションの第二非変性塩でステップ（１）の結果得られる生成物を調整することによって、ステップ（１）の結果として得られる水留分から抗体の第二アイソフォームの大部分を塩析した際、第一非変性塩と第二非変性塩が同じ場合、第一コンセントレーションと第二コンセントレーションが異なることを条件とするサブステップを前記ステップ（ｃ）に盛り込んだことを特徴とする、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。
【請求項２４】
請求項２３に記載の卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法において、第一非変性塩と第二非変性塩が、ＮａＣｌと、Ｎａ2ＳＯ4と、（ＮＨ4）2ＳＯ4と、ＫＣｌと、ＣａＣｌ2と、ＭｇＳＯ4とより成るクループより夫々選択されることを特徴とする、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。
【請求項２５】
請求項２３に記載の卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法において、第一非変性塩と第二非変性塩が同じであった場合、第二コンセントレーションが第一コンセントレーションより高いことを特徴とする、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。
【請求項２６】
請求項２３に記載の卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法において、（ＮＨ4）2ＳＯ4が唯一の非変性塩として使用される場合、前記ステップ（１）において処理された溶離液量及び前記ステップ（２）において処理された結果として得られる生成物量をベースに、第一コンセントレーションが約２１％（ｗ／ｖ）以下であり、第二コンセントレーションが約３１％（ｗ／ｖ）であることを特徴とする、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。
【請求項２７】
請求項２３に記載の卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法において、（ＮＨ4）2ＳＯ4が第一非変性塩として使用される場合、前記ステップ（１）において処理された溶離液量をベースに、第一コンセントレーションが２１％（ｗ／ｖ）以下であり、第二コンセントレーションが前記ステップ（２）で処理された結果として得られる生成物量をベースに、第二非変性塩として約１６％（ｗ／ｖ）のＮａ2ＳＯ4を追加することによって達成することができることを特徴とする、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。
【請求項２８】
請求項２３に記載の卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法において、抗体の第一アイソトフォームがｌｇＹであり、第二アイソトフォームがｌｇＹ（ΔＦｃ）であることを特徴とする、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。
【請求項２９】
請求項１７に記載の卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法において、ゲルろ過クロマトグラフィと、疎水性相互作用クロマトグラフィと、イオン交換クロマトグラフィと、イムノ−アフィニティ・クロマトグラフィとより成るグループから選択された一回以上の浄化方法が続くことを特徴とする、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。
【請求項３０】
請求項２９に記載の卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法において、少なくとも一つの浄化方法は、イムノ−アフィニティ・クロマトグラフィであることを特徴とする、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。
【請求項３１】
請求項３０に記載の卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法において、イムノ−アフィニティ・クロマトグラフィは、ｐＨ４〜７及び５０ｍＭより低いイオン強度で実施されることを特徴とする、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。
【請求項３２】
請求項３１に記載の卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法において、イムノ−アフィニティ・クロマトグラフィは、ｐＨ５．６〜５．８で実施されることを特徴とする、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。
【請求項３３】
請求項１７に記載の卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法において、卵黄は選ばれた抗原で免疫化された家禽雌鳥の卵から得られることを特徴とする、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。
【請求項３４】
請求項３３に記載の卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法において、家禽雌鳥がカモであることを特徴とする、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。
【請求項３５】
請求項１〜３４の何れかに記載の卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法において、準備された抗体ｌｇＹ（ΔＦｃ）が本質的にＦｃ同等領域ではないことを特徴とする、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明の分野本発明は、迅速な卵黄の分離及び浄化方法、特に鳥類（以下エビアン）の卵黄からのｌｇＹ（ΔＦｃ）抗体の分離及び浄化方法、そして結果として得られる卵黄抗体に関するものである。より具体的に言うと、本発明は、不溶解性−非充填吸収体を使用し、水相と脂質相の好適な分離を目的とする吸収クロマトグラフィ法、そして卵黄抗体を微分沈殿させる塩析方法による、エビアン卵黄の卵黄抗体分離及び浄化方法に関するものである。また、本発明は、前記卵黄抗体の量的又は質的な免疫分析への使用、または関連する病因物質向けの薬剤成分の調合に使用することにも関連する。
【背景技術】
【０００２】
抗体は、多くの生物学的研究及び臨床外用薬品に幅広く使用されている。過度に免疫化された哺乳類から得た血しょう（Ｓｅｒａ）は、ポリクロン抗体の最も一般的なソースである。そのような免疫血しょうから得た抗体は、「免疫グロブリン」と言う蛋白質のグループに属し、中でも免疫グロブリンＧ（ｌｇＧ）は最多量ある。ｌｇＧ分子は、二つのＦａｂ領域と一つのＦｃ領域の三つドメインから成る。Ｆａｂ部分は、主に抗原結合に関係している。Ｆｃ部分は抗原と結合する能力を持たないものの、補体修理やＦｃ受容器官結合などという幾つかの生物学的活動を管理する役目をする。
【０００３】
免疫診断の分野において、完全なｌｇＧ分子は、哺乳類から得た血しょうを含む検出システムと免疫検定に使用するのに好適ではない。ｌｇＧ分子のＦｃ領域は、Ｆｃ受容器官との結合能力があり、哺体システムを活性化し、哺乳類から得た血しょうにおけるリューマチ因子に反応するからである。ｌｇＧ分子のＦｃ領域の除去は、頻繁に障害となる要因の減少に導くこととなる。（Ｅ．Ｌａｍｏｙｉ，Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ １２１：６５２−６６３（１９８６年））。
【０００４】
免疫治療学において幾つか提案される抗体の使用は、細菌毒素中毒又は蛇毒液に侵された患者の治療（例えば米国特許第５，３４０，９２３及び５，６０１，８２３を参照）、そして子豚新生児には致命的な腸のコライバシローシス（ｃｏｌｉｂａｃｉｌｌｏｓｉｓ）からの保護（例えばＨ．Ｂｒｕｓｓｏｗ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｃｌｉｎ． Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ． ２５：９８２ （１９８７）及びＣ．Ｏ．Ｔａｃｋｅｔ ｅｔ ａｌ．， Ｎｅｗ Ｅｎｇ． Ｊ． Ｍｅｄ． ３１８：１２４０ （１９９８年）を参照）を含む。抗体分子のＦｃ領域は、免疫グロブリンの最抗原部分として知られ（Ｅ．Ｍ．Ａｋｉｔａ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ． Ｍｅｔｈｏｄｓ． １６２：１５５−１６４（１９９３年））、Ｆｃ領域分裂の結果、Ｆ（ａｂ’）2フラグメントが形成される。そのＦ（ａｂ’）2形成は、免疫グロブリンのアレルギ起因に成り得るサイトの数をかなり減少させ、よって免疫グロブリンを与えられた人間又は動物に有益となる。
【０００５】
最近、二価染色体のＦ（ａｂ’）2抗体フラグメントは、免疫診断学テストにおいてより有効性があり（Ｍ．Ｍｕｒａｔｓｕｇｕ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｃｏｌｌｏｉｄ Ｉｎｔｅｒｆａｃｅ Ｓｃｉ １４７：３７８ （１９９１年）；及びＪ．Ｌ．Ｏｒｔｅｇａ−Ｖｉｎｕｅｓａ ｅｔ ａｌ．， Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ Ｍｅｔｈｏｄｓ ９０：２９ （１９９６年）、そして哺乳類血しょうを含む免疫分析物の発生に、母体ｌｇＧより適していると証明されている。
【０００６】
しかしＦ（ａｂ’）2抗体フラグメントは、予想に反して臨床免疫診断セットに幅広く使用されていない。これは商業的にｌｇＧのペプシン消化とそれに続くクロマトグラフィ法による浄化から造られ、Ｆ（ａｂ’）2フラグメントの大生産の難しさと費用的効果の無さに起因すると思われる。
【０００７】
カモと、カモの系統発生論的に近似系統にある類と、例えばカメのような爬虫類とは、三種類の血しょう免疫グロブリンを有する。それら三種とは、高分子免疫グロブリンｌｇＭ（カモの８００ｋＤａ）と夫々の沈降係数７．８Ｓ（カモの１８０ｋＤＡ）と５．７Ｓ（カモの１３０ｋＤＡ）を有した少量の分子量の二つのアイソフォームである。（Ｅ．Ｒ．Ｕｎａｎｕｅ ｅｔ ａｌ． Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ． １２１：６９７−７１４（１９６５年）；Ｈ．Ｍ．Ｇｒｅｙ， Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ ９８：８１１−８１９（１９６７年）；Ｂ．Ｚｉｍｍｅｒｍａｎ ｅｔ ａｌ．， Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ １０：４８２−４４８（１９７１）。エビアンｌｇＧは、卵黄に存在するため度々ｌｇＹと呼ばれる。５．７Ｓ ｌｇＹは、短重チェーンから組成され、構成上そして抗原形成上７．８Ｓ ｌｇＹ（図１）のＦ（ａｂ’）2フラグメントに似ている。そしてこの事実はｌｇＹ（７．８Ｓ ｌｇＹと同量）とｌｇＹ（ΔＦｃ）（５．７Ｓ ｌｇＹと同量）の学名が、ｌｇＹのアイソフォームを象徴する事につながる（Ｋ．Ｅ．Ｍａｇｏｒ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ． １４９：２６２７−２６３３（１９９２年））。
【０００８】
感染した鳥または実験用に免疫化された鳥の研究においては、カモの抗体は、抗原に対応する結合活動を犠牲せず、補体結合とＦｃレセプタ結合を含めて、生物学的効果機能に数的に欠けていると証明された。（Ｇ．Ｗ．Ｌｉｔｍａｎ ｅｔ ａｌ．， Ｉｍｍｕｎｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ １０：３２３ （１９７３年）；Ｔ．Ｅ．Ｔｏｔｈ ｅｔ ａｌ．， Ａｖｉａｎ Ｄｉｓ． ２５：１７−２８（１９８１年））。カモの抗体反応の質的な主要成分であるｌｇＹ（ΔＦｃ）抗体のＦｃ−同等領域の明らかな不足に起因するものである。
【０００９】
それゆえ、Ｆ（ａｂ’）2フラグメントの形態的かつ機能的類似体のようなｌｇＹ（ΔＦｃ）抗体は、抗体を生産する約束された方法が見つかり、抗体の活動に適した物質的必要条件が認識できれば、免疫学的使用において多大な利益となると思われる。
【００１０】
エビアン卵黄抗体は、リサーチと哺乳類の抗体と同様の臨床に有効な特性を開示するとレポートされている（例えば、米国特許第５，３４０，９２３，５，５８５，０９８，５，６０１，８２３，５，９７６，５１９を参照）。産卵鶏より取ることが出来る卵黄は、過度に免疫化された哺乳類血しょうに比べて安価で、より便利で、取り扱いが安全である。より重要なことに、卵黄抗体は、現代の動物保護規定の厳密な試験に耐え得るものである（Ａ．Ｐｏｌｓｏｎ ｅｔ ａｌ．， Ｉｍｍｕｎｏｌ． Ｃｏｍｍｕｎ． ９：４７５ （１９８０年）；とＢ．Ｇｏｔｔｓｔｅｉｎ ｅｔ ａｌ．）。これらの事実は、卵黄を抗体の市販用ソースとして使用する可能性を提案する事実である。しかし、脂肪酸、コレステロール、レシチンのような卵黄の脂質濃い物質は、卵黄抗体の分離を面倒で困難な作業にする。この点については、様々な努力がされた。例えば、細菌培養基、ぺクチン（１９８９年２月８日に発行された特開昭６４−３８０９８号）、デキストラン硫酸塩（Ｊ．Ｃ．Ｊｅｎｓｅｎｉｕｓ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ． Ｍｅｔｈｏｄｓ ４６：６３ （１９８１年））、天然ゴム（Ｈ．Ｈａｔｔａ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｆｏｏｄ Ｓｃｉｅｎｃｅ ５３：４２５ （１９８８年））、そしてポリエチレン・グリコール（ＰＥＧ）（Ａ．Ｐｏｌｓｏｎ ｅｔ ａｌ．， Ｉｍｍｕｎｏｌ． Ｉｎｖｅｓｔ． １４：３２３（１９８５年）；Ａ．Ｐｏｌｓｏｎの所有する米国特許第４，５５０，０１９も参照）などを含む水で溶解可能な沈殿剤は、主に脂質と卵黄小胞子の非水性バイオ分子（ｂｉｏ−ｍｏｌｅｃｕｌｅｓ）を沈殿させ、それにより、卵黄抗体が豊富な水で溶解可能な相を収穫する。Ａ．Ｈａｓｓｌ ｅｔ ａｌは、疎水性相互作用クロマトグラフィとゲルろ過クロマトグラフィを含む２ステップ・クロマトグラフィを、更にＰＥＧ−浄化分留から卵黄抗体を分離するために開発した（Ａ．Ｈａｓｓｌ ａｎｄ Ｈ．Ａｓｐｏｃｋ， Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ． Ｍｅｔｈｏｄｓ １００：２２５ （１９８８年））。
【００１１】
Ａｋｉｔａ ｅｔ ａｌ．は、卵黄を多量の水で希薄して結果的上澄み液をゲルろ過クロマトグラフィ及び、又はイオン交換クロマトグラフィさせ、卵黄抗体を鳥の卵から抽出するｌｇＹ分離の改良方法を説明した。（Ｅ．Ｍ．Ａｋｉｔａｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ． Ｍｅｔｈｏｄｓ． １６０：２０７ （１９９３年）；と Ｅ．Ｍ．Ａｋｉｔａ ａｎｄ Ｓ．Ｎａｋａｉ， Ｊ． Ｆｏｏｄ Ｓｃｉ． ５７：６２９ （１９９３））。
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【００１２】
しかし、これら全ての研究と特許は、ｌｇＹ（ΔＦｃ）抗体の浄化のみというよりもエビアン卵からの（少なくともｌｇＹとｚｌｇＹ（ΔＦｃ）を含む）卵黄抗体の全集団の分離に集中している。更にｌｇＹ（ΔＦｃ）抗体は、カモ、ガチョウを含むガンカモ科（Ｏｒｄｅｒ Ａｎｓｅｒｉｆｏｒｍｅｓ）所属の鳥にのみ存在し、ガンカモ科鳥の卵黄の脂質量は鶏や七面鳥のようなキジ科の鳥のものより濃く、上記説明の従来の方法には有効なｌｇＹ（ΔＦｃ）抗体浄化の提案については触れていない。
【００１３】
そのため、望ましいｌｇＹ（ΔＦｃ）抗体をエビアン卵抗体プール（ａｎｔｉｂｏｄｙ ｐｏｏｌ）から簡単に分離し、同時にｌｇＹ（ΔＦｃ）抗体の活動を維持する、迅速で、費用効果性があり、生産率の高い方法に対する必要性が存在する。事実上、浄化したｌｇＹ（ΔＦｃ）抗体は、様々な免疫診断と免疫治療に使用される新しいタイプのＦ（ａｂ’）2抗体として活動することもある。
【００１４】
本発明の要約
前述のように、卵黄抗体の産業的な必要条件を満たすために、大量なリサーチが実施されてきた。エビアン卵黄から卵黄抗体をうまく分離することは、非水溶解−非充填吸収体を使用する吸着クロマトグラフィ法、そして／又は簡単な卵黄抗体の別のアイソフォームを分化させる塩析方法により容易に遂行できることは今日偶然発見された。本発明の方法によると、高度浄化した卵黄抗体、より明確には高度浄化したｌｇＹ（ΔＦｃ）は、経済的に優れた方法で容易に収穫でき、即座にすぐにでも広く多様に免疫学的使用ができる。
【００１５】
従って、本発明の目的は、（１）家禽雌鶏の卵より卵黄の水留分を取得し、（２）水留分を第一コンセントレーションの第一非変性塩で塩析することによって、ステップ（１）の水留分からの抗体の第一アイソフォームの大部分を取得し、（３）第二コンセントレーションの第二非変性塩でステップ（２）の結果得られる水留分を調整することによって、ステップ（２）の結果として得られる水留分から抗体の第二アイソフォームの大部分を塩析して行う、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法において、第一非変性塩と第二非変性塩が同じ場合、第一コンセントレーションと第二コンセントレーションが異なることを条件とする、卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法を提供することにある。
【００１６】
本発明のその他の目的は、吸収性物質を使い、普通卵黄に存在する脂質とカゼイン類物質の大部分を除去し卵黄から抗体を分離する方法を提供することである。
【００１７】
従って本発明は、（ａ）家禽雌鳥の卵の卵黄より非水バイオモレキュルス（ｂｉｏ−ｍｏｌｅｃｕｌｅｓ）及び卵黄顆粒（ｇｒａｎｕｌｅｓ）を除去し、従って卵黄抗体を有する水混和性留分を除去し、（ｂ）水混和性留分が、通常卵黄に存在する水混和性脂質物を吸収可能な非水溶解性−非充填吸収体（ｗａｔｅｒｉｎｓｏｌｕｂｌｅ ｎｏｎ−ｃｈａｒｇｅｄ ａｂｓｏｒｂｅｎｔ）を有効量含む固定相を通過し、（ｃ）留分として使用するために固定相を流通した溶液を収集し、（ｄ）卵黄抗体を前記ステップ（ｃ）の流通溶液より回収する、といったステップを含む卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法を提供することにある。
【００１８】
本発明は、（ａ）家禽雌鳥の卵の卵黄より非水バイオモレキュルス（ｂｉｏ−ｍｏｌｅｃｕｌｅｓ）及び卵黄顆粒（ｇｒａｎｕｌｅｓ）を除去し、従って卵黄抗体を有する水混和性留分を除去し、（ｂ）水混和性留分が、通常卵黄に存在する水混和性脂質物を吸収可能な非水溶解性−非充填吸収体（ｗａｔｅｒ ｉｎｓｏｌｕｂｌｅ ｎｏｎ−ｃｈａｒｇｅｄ ａｂｓｏｒｂｅｎｔ）を有効量含む固定相を通過し、（ｃ）固定相を流通して溶離液を取得し、（ｄ）卵黄抗体を前記ステップ（ｃ）の溶離液より回収する、といったステップを含む卵黄より選択的に抗体アイソフォームを分離する方法を提供する。
【００１９】
本発明の方法によると、多量の卵黄抗体の選択アイソフォーム、より明確には、ｌｇＹ（ΔＦｃ）抗体が、多様な産業外用薬に利用でき、経済的かつ能率的に、そして時間節約可能な方法で獲得できる。
【００２０】
生産されたｌｇＹ（ΔＦｃ）抗体の臨床と研究における使用方法を提供するのは、本発明のやはりもう一つの目的である。本発明は、費用効率が良く準備が簡単な上、本発明によるとｌｇＹ（ΔＦｃ）抗体は、補体システムと哺乳類血しょうのリューマチ要因に対して無活動という利点を持ち、哺乳類ｌｇＧに対し相互反応が弱く、よって、哺乳類血しょうを含む免疫的分析物での使用には、障害も最少で特に適している。当業者にとってｌｇＹ（ΔＦｃ）抗体が単独臨床用試薬、研究、そしてその他の使用、又は有効な成分として市販用セットに入れるなどの形で存在できることは評価されるであろう。
【００２１】
本発明のもう一つの明確な目的は、本発明の方法で獲得したｌｇＹ（ΔＦｃ）抗体を含む、病因学薬剤の免疫分析物としての試薬を提供することである。
【発明を実施するための最良の形態】
【００２２】
本発明の詳細な説明
鳥の血しょう及び卵中には、卵黄抗体が豊富に存在する。しかし前記のように、卵から集められた抗体が、経済的にも好まれる。卵を産む雌鳥は、ｌｇＹとｌｇＹ（ΔＦｃ）のアイソフォーム両方を血しょうから卵黄へ移し変える。原則として、カモの卵は、卵黄の中に各々約１〜４ミリグラムのｌｇＹ／ｍｌそして約３〜１２ミリグラムのｌｇＹ（ Ｆｃ）／ｍｌを含有し、そのため単独の卵の総合的抗体量は１５〜８０ミリグラムのｌｇＹと４５〜２４０ミリグラムのｌｇＹ（ΔＦｃ）と予測される。生産された多量の卵黄は、如何なる場合でも、鳥から安全に得られる血しょう量を遥かに越える。それに加えて、卵黄抗体の摘出は、多額な投資をせず、大きなスケールで行うことができる。本発明によれば、卵黄から抗体を効率的に分離する方法が提供され、その方法においては、単独でも、他の方法と共にでも使用可能な「吸着クロマトグラフィ」又は「微分塩析」と言われる方法が分離において欠かせないステップとなる。
【００２３】
ここで使われる「吸着クロマトグラフィ」は、固定相を使い、流動相から好適な溶質を選択的に吸収し、凝縮することを含む分離方法のタイプであると定義される。本発明の一面において、非水溶解で無充填の吸収体は、固定相において、卵黄に普段存在する水と混合可能な脂質不純物を止める有効な成分として働く。
【００２４】
本発明による「吸着クロマトグラフィ」は、望ましくは部分浄化方法が先行し、その部分浄化方法では大部分の非水性バイオ分子及び大きな小胞子、そして望ましくは卵黄内の大部分の不適切な蛋白質を除去する。このような目的を効果的に達成する従来の方法は全て本発明においても有効利用可能であり、典型的には水性バッファ又は水を抗体の豊富な水性相を得るために使用、そしてＰＥＧ、デキストラン硫酸塩、又はアルギン酸ナトリウム、カラゲナン、キサンタン・ガム等の天然ゴムを使用し、不適当な物質を共同沈降する。
【００２５】
本発明の好適な実施例では、まず卵黄が卵白から分離され、その後蒸留水で洗われ、出来る限りの卵白を除去する。卵黄をカプセルする卵黄膜に穴が開き、分離された卵黄留分がその後、効果的な量の水性バッファ又は水で、卵黄懸濁の形成のために希釈される。好適には、集収された卵黄は、水性バッファ又は蒸留水により、量的に２パートから、大体４０パートに希釈化し、より好適には、卵黄一つにつき量的に５パートから３０パートに希釈化する。ｐＨ値は、部分浄化の段階において決定的な要素である（Ｅ．Ｍ．Ａｋｉｔａ ｔｏ Ｓ．Ｎａｋａｉ， Ｊ． Ｆｏｏｄ Ｓｃｉ， ５７：６２９ （１９９３年））。卵黄抗体の最適な回収の為に、ｐＨは約５〜７の範囲内に定められることが望ましい。このステップの温度は、約０度〜６０度の範囲内が望ましい。卵黄の懸澱液は、同類の混合物を作るために穏やかに攪拌され、そしてその後、水相及び非水相作りに十分な期間そのまま放置される。脂肪蛋白質、燐脂質、ステロール、そしてそれと同等な非水性バイオ分子を含む非水溶解物質は、その後遠心分離により水性卵黄懸澱液から除去される。結果として得られる上澄み液を含んだ抗体は、その後傾斜、吸収、又はその他の当業者に周知な方法により粘着沈殿剤から分離される。一般的に、こうして獲得した水溶性留分の脂質含量は、依然としてその後の操作に不利になる程多い。本発明によると、非水溶解の非充填吸収体を含む変動相は、大部分の水溶性物質に残留する水溶性脂質物質を吸着するのに十分な量の水溶性留分で培養する。適した吸収体は、これらに限定されてはないが、フューム・シリカ、無定形珪酸、二酸化珪酸、シリカ・ゲル、珪酸塩、珪藻土、酸性白土、滑石、アルミナ、活性炭、酸化アルミニウム、酸化チタン、そしてその他の物質的に脂質吸収可能な合成物、または天然荒壁土などを含む。特に好適な吸収体は、フューム・シリカ、二酸化珪酸、珪藻土である。水溶性留分への吸収率は、選択された吸収体の特質により広範囲に変わる。フューム・シリカが本過程に使用された場合、０．１％以上の重量を増やすことが望ましく、より好適には、処理する水溶性留分の分量に基づき０．３〜５％の重量を増やすことが望ましい。吸収体が二酸化珪酸若しくは珪藻土の場合、本発明の吸収クロマトグラフィは、好適には１％以上の重量、より好適には処理する水溶性留分の分量に基づき３〜２０％の範囲で行われる。本発明による吸収クロマトグラフィは、吸収体を用いる水溶性留分のバッチ・トリートメント、または吸収体が詰められたクロマトグラフィ・コラム上に水溶性留分を流すなど、吸収体の表面に保持される脂質物質量が十分である限り如何なる従来の方法においても実施可能である。処理中の反応時間と反応温度は、その結果に致命的な影響を及ぼすことはなく、４〜３０度の反応温度と１０〜６０分の反応時間は、通常実行可能である。吸収法は、必要であれば、各々新しい吸収体で何度か繰り返すことも可能であるが、通常は一度の作業十分である。この方法により、脂質と大体の脂質でない物質は、二つの不混和性相にうまく分離できる。
【００２６】
免疫グロブリンを取得するよう選択された吸収体の能力により、卵黄抗体は、固定相から溶離した溶離物またはここで固定相を通過する溶液の意味で表される「流動液」から回収できる。本文の好適な実施例に表されたように、卵黄抗体はフューム・シリカ若しくは二酸化珪酸が吸収体として使用された時、卵黄抗体が大抵固定相に存在するのに対して、珪藻土は９０％以上の抗体を流動液に残すこととなる。卵黄抗体を溶離する特殊方法の選択は当業者によって決定される。一般的に、ｐＨが４未満または８よりも大きい値で緩衝した溶出液、またはカオトロピック試薬を含む溶出液は、脂質物質を固定相から十分に解離せずに、固定相から抗体を溶離するために本発明に利用でき、これによって抗体を含む溶離液が形成される。ここで使用されたように、「溶離液」という用語は、固定相からの溶離液によって解かれた望ましい物質を含む液体を示す。「カオトロピック試薬」または「カオトロープ」という用語は、抗体分子のような蛋白質分子において配座変化を誘導可能な薬品で、そのため蛋白質変性剤としてよく知られている。本発明によると、結合抗体の大部分は、適度の濃縮度の（１＞Ｍ）カオトロピック試薬を含む如何なる中性緩衝を用いてうまく溶離できる。多くの用例において、溶離後にカオトロープを除去することが、天然蛋白の構成を復元することとなる。
【００２７】
ここに記したものに限定される訳ではないが、有用な溶出液は、グリシン−ＨＣｌ０．１Ｍ，ｐＨ２．３；グリシン−ＨＣｌ０．１Ｍ，ｐＨ１０．０；グアニン−ＨＣｌ６Ｍ，ｐＨ３．０；塩化カリウム３．０Ｍ；ヨウ化カリウム５Ｍ；塩化マグネシウム３．５Ｍ；アンモニウム／ナトリウム／チオシアン酸カリウム１〜３Ｍ、そしてウレア６Ｍ等が含まれる。しかしながら、収集された抗体の活量に関しては、２０ｍＭ ＭＥＳバファ（ｐＨ５．８）または２０ｍＭトリス（ヒドロキシメチル）−アミノメチルで緩衝したチオシアン酸ナトリウム３Ｍなどのような、適度のイオン強度を持ち、カオトロープを含んだに中性ｐＨバッファが、本発明を実践するにはより適している。収集された抗体の活動状態は、例えばイオン強度が低いこと、カオトロープを含まないことや、弱い酸性バッファなどに対して広範囲に透析をすることにより容易に回復することができる。本発明の一つの特徴として、抗体で濃縮した溶離液または流動液は、その後卵黄抗体アイソフォームを分離するための微分塩析工程にさらすこともできる。本文中において「塩析」という用語は、蛋白質科学の分野においては共通な意味を持ち、蛋白質の溶解度を減少させるために混合物またはプロダクション・バッチに追加される不変性塩を示し、蛋白質の沈殿または凝結を導く。「微分塩析」という用語は、加塩または塩の濃度を変えることにより、二つ以上の蛋白質が混合物から微分沈殿または凝結される塩析方法を意味する。本発明では、微分塩析をする蛋白質は、卵黄抗体アイソフォームであり、例えば、ｌｇＹとｌｇＹ（ΔＦｃ）である。卵黄抗体の沈殿に有用な不変性塩の例は、下記に限定しないが、ＮａＣｌ、Ｎａ2ＳＯ4、（ＮＨ４）2ＳＯ4、ＫＣｌ、ＣａＣｌ2、そしてＭｇＳＯ4である。好適には、不変性塩はＮａ2ＳＯ4か（ＮＨ4）2ＳＯ4、そして（ＮＨ4）ＳＯ4が最も好適である。卵黄抗体アイソフォームの微分沈殿の塩分濃度は、塩のタイプにより異なり、そして当業者の行う簡単なテストを通じて決定できる。本発明の好適な実施例で（ＮＨ4）2ＳＯ4が使われるとすると、ｌｇＹが処理された溶離液か流動液の２１％（ｗ／ｖ）以下の塩濃度で塩析され、ｌｇＹ（ΔＦｃ）は処理された溶離液か流動液の約３１％（ｗ／ｖ）の塩濃度に上昇する。二つの抗体アイソフォームの沈殿順序も、塩の選択により異なることも認識できる。この作業において二以上の塩の組み合わせ、例えば、まず一つの塩で最初のアイソフォームを沈殿し、それに次いで二番目のアイソフォームを別の塩で沈殿することも可能である。本発明の微分沈殿方法は、例えば、ｌｇＹとｌｇＹ（ΔＦｃ）の両方で構成された卵黄抗体の全個体群からの望ましいｌｇＹ（ΔＦｃ）抗体の本質的分離といった本発明の主な目的を大いに達成することとなる。より高い純度での抗体獲得が望ましいとしたら、沈殿した抗体を適したバッファ・システムに再溶解し、例えば、ゲルろ過クロマトグラフィ、疎水性相互作用クロマトグラフィ、イオン交換クロマトグラフィ、イムノアフィニティ・クロマトグラフィ等の追加的浄化手段を行えばよい。本文で使われている用語「イムノアフィニティ浄化法」または「イムノアフィニティ・クロマトグラフィ」は、特定の抗原用の抗体の結合特��に基づいた分離方法を示している。即ち、ある特定の状態の下で特定の抗原に結合した抗体が、その状態の下に解けた抗体から分離する。本発明は、無関連な蛋白質を排除するための、イムノアフィニティ浄化の使用を意図したもので、特に非抗原結合免疫グロブリンを除去するものである。
【００２８】
本発明によるとイムノアフィニティ浄化は、不溶解サポートに固定した抗原より成る「抗原マトリックス」を使用して実施されている。サポートのタイプに関しては、本発明のイムノアフィニティ浄化においては重大ではない。抗原の共有アッタチメントに適した従来のサポート・マテリアルで、望ましい抗体とその上に固定された抗原の相互作用への介入物が有用である。普通、そのサポートは、ファーマシア(ＰＨＡＲＭＡＣＩＡ)より購入可能なＣＮＢｒ活性化セファローズ４Ｂ等のような、架橋アガロースか架橋デキストランより構成されている。微分塩析で浄化された抗体は「結合バッファ」に溶解し、固定抗原の免疫複合剤と卵黄抗体が形成されるように、抗原マトリックスの上に適用する。抗原−抗体相互作用へ介挿されたバッファ・システムと、望ましい結合状態を維持するのに効果のあるバッファ・システムは、何れも本発明において有用である。好ましくは、結合バッファは、燐酸塩バッファ、ＭＥＳ（２−［Ｎ−モルホリン］エタンスルホン酸）バッファ、そしてビズ−トリス・バッファで成るグループの中から選択するが、中でも２０ｍＭ濃度のＭＥＳバッファが最も好適である。
【００２９】
好適にはイムノアフィニティ浄化は、弱酸でかつイオン強度の低い環境で行われる。例えば、ｐＨの範囲が４〜７以内でかつイオン強度が５０ｍＭより低い環境である。より好適には、抗体は、固定した抗原と５〜６のｐＨ範囲、最適には５．６〜５．８の範囲内での相互作用を許容する。卵黄抗体は、抗原マトリックスからカオトロピック塩またはｐＨが４より低いか８よりも高いことで解離できる。収集した抗体の活動は、例えば、イオン強度が低く、カオトロープを含まない、弱酸バッファに対する大量透析などにより復活できる。
【００３０】
本発明におけるｌｇＹ（ΔＦｃ）浄化によると、補体システムを活性化せず、また哺乳類の血しょうのリューマチの要因にも結びつかない。ｌｇＹ（ΔＦｃ）と哺乳類ｌｇＧ間での免疫学的な相互反応は重要ではない。それゆえ、本発明は臨床用と研究用にも適した新しいタイプの抗体を提供することとなる。
【００３１】
また本発明は、本発明に基づき準備されたｌｇＹ（ΔＦｃ）抗体の、広く多様な臨床的かつ研究的使用を提供するものである。例えば、本発明は（それは家禽、家畜、そしてコンパニオン・アニマルを含む）動物または患者を本発明のｌｇＹ（ΔＦｃ）抗体を治療用量与え、免疫化する方法を提供するものである。本発明は、細菌、天然、組換型またはペプチド合成物病原体、真菌、原生動物、線虫、等のような微生物を含む様々な病因作用物、そして天然、組換型またはペプチド合成物アレルゲン、毒素、毒液、ホルモン、またはその他の免疫反応を惹起できる免疫原等の蛋白または非蛋白物質から保護するものである。好ましくは、浄化したｌｇＹ（ΔＦｃ）抗体は、水、含塩物等のような薬学的許容担体と共に与える。
【００３２】
本発明のｌｇＹ（ΔＦｃ）抗体は、重要な病因物質の検知にも有用であり、例えば、大腸菌やゲルトネル菌等のような病原性又は非病原性生物、そしてその他の細菌生物；天然、組換型、またはエストロゲン、プロゲステロン、放射性サイロキシン等のペプチド合成物ホルモン；主な組織適合複合抗原等；天然、組換型、またはアルファ・フェトプロティン、前立腺用抗原やその様なペプチド合成物腫瘍マーカー；Ｃ−反応蛋白質、フェリチン等の疾病状態マーカー；流体、組織、細胞エキス等の身体内の例などで、人間や動物から派生している。
【００３３】
本発明に従い獲得したｌｇＹ（ΔＦｃ）抗体を使い、病因物質は当業者に周知な方法を使って、量的または質的に検知することができる。例えば、オクタロニ法（ＭＯ）、一元放射状免疫拡散法（ＳＲＩＤ）、免疫電気泳動法（ＩＥＰ）、放射免疫測定法（ＲＩＡ）、エリザ法（ＥＬＩＳＡ）、ウエスタン・ブロット法（ＷＢ）、比濁分析免疫測定法、酵素免疫測定法、比濁分析免疫測定法、化学発光分析免疫測定法、免疫金測定法、又は免疫クロマトグラフィ測定法などである。
【００３４】
本発明のｌｇＹ（ΔＦｃ）抗体はバイオチップとバイオセンサでの使用にも適応できる。
【００３５】
本発明の好適な実施例以下の例を表示は本発明の説明を目的としたものであり、本発明の範囲を限定する目的で開示された訳ではない。
【００３６】
例１：特定抗体生産の刺激のための免疫方法生後１６週間の１２羽の家屋内カモ（Ａｎａｓ ｐｌａｔｙｒｈｙｎｃｈｏｓｖａｒ． ｄｏｍｅｓｔｉｃａ）が、夫々抗体と卵の生産のために収容された。カモはまず、リン酸緩衝液における人間Ｃ−反応蛋白質（ＣＲＰ；人間腹水から浄化されたもの）１〜５ｍｇ／ｍｌであって、同量のフロイント完全アジュバントによってｐＨ７．５で乳化されたものを皮下注射される。使用された抗原の濃度は普通１〜５ｍｇ／ｍｌの範囲である。最初の注射の後、若い雌鳥は、三つの１〜５ｍｇ／ｍｌの抗体の追加注射を毎二週間おきに受ける。一週間後、卵が収集され始め、ラベルを着けられ、抗体の抽出と浄化作業をされるまで摂氏４度下に保存される。追加免疫方法（ブースタ方法）が、本実験中、毎四週間繰り返される。毎ブースタ注射の七日後、血液が収集される。各々の血液サンプルは遠心分離され、その結果の血しょうが集められる。
【００３７】
例２：カモの卵黄からの抗体抽出例１の過免疫カモが産んだ卵より収集された卵黄は、蒸留水の弱い噴射で綿密に洗い、蛋白腺を除去する。卵黄量の測定した後、その測定卵黄量の十倍の蒸留水と綿密に混ぜる。前記混合物は、摂氏４度下に最低二時間保たれた後、日立製ＣＲ−２２Ｆの遠心分離機の中に、速度１０，０００ｒｐｍで一時間遠心分離される。青白い上澄み液と半固体可撓性層が遠心分離機の管内に形成される。
【００３８】
例３：吸収体による治療例１で用意された粗抽出液に吸収体の一つが加えられる：２％（ｗ／ｖ）の（シグマより購入した）フューム・シリカ、３％（ｗ／ｖ）の二酸化珪酸（シグマ）、（リセット社より購入した）３％（ｗ／ｖ）のシーライト・ジアトミン、又は５％（ｗ／ｖ）のシーライト・ジアトミン・ハイフロセル（セリット社）。結果の懸濁液を、摂氏４度下で６０分間静かに攪拌して培養する。培養完成後の吸収体は、日立製ＣＲ−２２Ｆ遠心分離機を使い、摂氏４度で速度２０，０００ｒｐｍで沈殿され、その上澄み液とペレットは別々に収穫される。前記上澄み液から夫々取られた１０μのサンプルは、非還元ドデシル硫化ナトリウム・ポリアクリルアミド・ゲル電気泳動（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）にさらされる。
【００３９】
図１のように、吸収体により吸収された抗体量に関しては、フューム・シリカが最大限の吸収活動をし、流動液中に残された抗体は無に近い。二酸化珪酸は、多孔度が低いため（粗放表面積が少なく構成されるから）だと思われるが、フューム・シリカに比べて免疫グロブリンに対して僅かに弱い親和力を示した。それとは逆に、どちらのタイプの珪藻土をもっても、獲得された抗体は１０％以下である。
【００４０】
例４：卵黄抗体の微分塩析例３におけるフューム・シリカ・ペレットは、その上に束縛された抗体を溶離するために、２．５Ｍのチサシアン酸ナトリウム（ｐＨ７．５）で処理される。その結果の溶出液は、初めに溶出液量の２１％（ｗ／ｖ）の濃度の硫酸アンモニウムで第一沈殿させられ、次に追加の３１％（ｗ／ｖ）の濃度の硫酸アンモニウムで第二沈殿が行われる。沈殿した抗体物は、リン酸塩緩衝液（ＰＢＳ）の中で再溶解される。８％の非還元アクリレアミド・ゲルのＳＤＳ−ＰＡＧ分析が実施される。それには、例２（レーン１）の２２３７μｇの粗抽出液、例３（レーン２）の１０μｌの収穫された流動液、（レーン３）のフューム・シリカ・ペレットからの１１２２．２５μｇの溶出液、そして第一及び第二沈殿ステップから収穫した１５３μｇと３７２．８５μｇの抗体物（各々レーン４とレーン５）がロードされている。その結果は、表２に表れている。再生と浄化のパーセントは、ゲルの濃度をスキャンして測定され、それは表１に要約されている。
【００４１】
【表１】
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【００４２】
表１に示されているように、結果として得られたｌｇＹ（ΔＦｃ）抗体は、９６％より高い浄化値を持ち、約７６％の収量（７２．０５ｍｇ／１１９．８ｍｇｘ１００％）で再生される。より重要なのは、この浄化案は、望ましいｌｇＹ（ΔＦｃ）抗体を、主にｌｇＹとｌｇＹ（ΔＦｃ）の両方から組成する全卵黄抗体から本質的に分離するよう導くことである。
【００４３】
例５：卵黄抗体のイムノアフィニティ浄化脂質を引き寄せそして抗体を拒絶する珪藻土の能力を利用し、例２において用意された粗抽出液は、粗抽出液注入量をベースに１０％の重さのシーライト・アトミンと共に濾過コラム上へ注入される。コラムを流動している溶液は、収集され、そして溶液中の流動液量の２１％（ｗ／ｖ）の硫酸アンモニウムと共に第一沈殿される。沈殿された抗体は収集され、そして上澄み液は二分される。上澄み液の一部は、約３１％の濃度の硫酸アンモニウムと共に沈殿され、上澄み液の他部は１６（ｗ／ｖ）の硫酸ナトリウムと共に沈殿される。沈殿抗体物は、ＰＢＳの中で再溶解される。８％の非還元アクルレアミド・ゲルにおいてＳＤＳ−ＰＡＧＥ分析が行われ、そこでは、例２（レーン１）の粗抽出液２０１２．５μｇ、１６７８μｇのシーライト・ジアトミンの濾過（レーン２）から集められた流動液、９４．９μｇの第一沈殿ステップで（レーン３）集められた溶出液、そして３１％の硫酸アンモニウムと１６％の硫酸ナトリウムが（レーン４−５）による第二沈殿ステップから集められた抗体物がロードされている。その結果は図３に表れている。回復と浄化のパーセントは、ゲルの濃度をスキャンして測定することによって決定され、表２に要約されている。
【００４４】
【表２】
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【００４５】
表２に示されているように、結果として得られたｌｇＹ（ΔＦｃ）抗体は、（硫酸ナトリウムが第二沈殿ステップに使用された時）約７７％、（硫酸アンモニウムが第二沈殿ステップに使用された時）約６９％の浄化率といったどちらも高率で各々回収される。
【００４６】
例６：卵黄抗体のイムノアフィニティ浄化Ｃ−反応蛋白（ＣＲＰ）溶液が、濃度５ｍｇ／ｍｌでｐＨ８．５の０．１Ｍの炭酸緩衝液の中に用意される。ファーマシアから購入したＣＮＢｒ反応セファローズ４Ｂは、最初にマトリックス量で十倍の冷却されたＨＣＩ１ｍＭで洗浄され、マトリックス量で二倍のＣＲＰ溶液と共に摂氏４度下で一夜反応させる。抗原マトリックスは、１対１の比例値の２０ｍＭのＴｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８．５）中のエタノールアミン溶液０．５Ｍ中に二時間摂氏４度下に保留する。その後抗原マトリックスは、アジ化ナトリウム０．０２％を含むＰＢＳで洗浄され摂氏４度下で保管される。
【００４７】
例４において２１％（ｗ／ｖ）の硫酸アンモニウムで沈殿させられたカモの抗体と抗原マトリックスが使用されている。１ｍｌの抗原マトリックスは、従来のコロムに詰められ、２０ｍＭのＭＥＳ（２−［Ｎ−モルホリノ］エタンスルホン酸）バッファ（ｐＨ５．８）に侵される。抗原マトリックスは、同じ結合緩衝液に調合された抗体０．２５ｍｌとの反応を許容する。抗原マトリックスは、溶出液に蛋白質が殆ど無くなるまで結合緩衝液で洗浄される。結合抗体は、直ちに６Ｍのグアニジン−ＨＣｌで溶離され、従ってその光学密度が、完全透析後２８０ｎｍで測定される。分析ＳＤＳ−ＰＡＧＥは、図４に示され、アフィニティ浄化された抗体が、主にゲル上の単独バンドにより表されるｌｇＹ（ΔＦｃ）抗体によって構成されているのが示されている。
【００４８】
本明細書に引用された全ての特許と参照文献は、ここに全て本明細書に引用されるものとする。引用文献と不一致が生じた場合は、定義を含む本明細書記載事項が優先される。本発明は、前記の特定の実施例に関して記述する一方、当業者にとって自明な様々な改良や変更が、本発明の精神とスコープからは外れない範囲で行われることが可能であると認知されるべきである。
【図面の簡単な説明】
【００４９】
前記のそしてその他の本発明の目的及び特質は、下記の好適な実施例と添付図面の説明を参考することにより明確となる。
【図１】ＳＤＳ−ＰＡＧＥ分析の図で、４つの抗体取得能力を持つ吸収体が示されている：そこでレーン１は、部分的に浄化した抗体抽出液；レーン２は、２％のフューム・シリカ（FUMED SILICA）を流通中の液体；レーン３は、３％の二酸化シリカを流通中の液体；レーン４は、３％のシーライト珪藻土（CELITE DIATOMITE）を流通中の液体；レーン５は、３％のシーライト珪藻土ハイフロセル（CELITE DIATOMITE FYFLO-CEL）を流通中の液体；レーン６は、５％のシーライト珪藻土ハイフロセルを流通中の液体；
【図２】ヒューム・シリカを吸収体として、８％のＳＤＳポリアクリルアミド・ゲル（POLYACRYLAMIDE GEL）に通した、浄化した卵黄抗体の電気泳動の結果図：そこでレーン１は、部分的に浄化した抗体抽出液；レーン２は、２％のフューム・シリカに流通中の液体；レーン３は、フユーム・シリカ・ペレットからの溶離物；レーン４は、第一沈殿ステップにおいて２１％（ｗ／ｖ）硫酸アンモニウムを用いて沈殿した抗体生成物；レーン５は、第二沈殿ステップにおいて３１％（ｗ／ｖ）硫酸アンモニウムを用いて沈殿した抗体生成物；
【図３】シーライト・ジアトミンを吸収体として、８％のＳＤＳポリアクリルアミド・ゲルに通した、浄化した卵黄抗体の電気泳動の結果図；レーン１は、部分的に浄化した抗体抽出液；レーン２は、シーライト・ジアトミン濾液；レーン３は、第一沈殿ステップにおいて２１％（ｗ／ｖ）硫酸アンモニウムを用いて沈殿した抗体生成物；レーン４は、第二沈殿ステップにおいて３１％（ｗ／ｖ）硫酸アンモニウムを用いて沈殿した抗体生成物；レーン５は、第二沈殿ステップにおいて１６％（ｗ／ｖ）硫酸ナトリウムを用いて沈殿した抗体生成物；そして、
【図４】シーライト・ジアトミンを吸収体として、８％のＳＤＳポリアクリルアミド・ゲルに通した、浄化した卵黄抗体の電気泳動の結果図；Ｍは分子ウェイト・マーカー；レーン１は、部分的に浄化した卵黄抗体エキス；レーン２は、２％のフューム・シリカ流通中の液体；レーン３は、ヒューム・シリカ・ペレットからの溶離物；レーン４は、２１％（ｗ／ｖ）硫酸アンモニウムを用いて沈殿した抗体生成物；レーン５は、生体親和性クロマトグラフィにより浄化された抗体生成物。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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