(57)【要約】【課題】グルクロン酸抱合酵素１Ａ９による解毒代謝の異常の検出に用いる核酸プローブおよびプライマーの提供。【解決手段】グルクロン酸抱合酵素１Ａ９（ＵＧＴ１Ａ９）遺伝子における、ＵＧＴ１Ａ９タンパク質の第２５６番目のアスパラギン酸残基をコードするコドンがアスパラギン残基をコードするコドンとなる変異を検出しうる核酸分子であって、配列番号２で表わされるアミノ酸配列を含んでなるタンパク質において、第２５６番目のアスパラギン酸残基のアスパラギン残基への変異を有してなるタンパク質をコードするポリヌクレオチド、またはこれに相補的なポリヌクレオチドにハイブリダイズするヌクレオチド断片を含んでなる、核酸分子。【選択図】  なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
配列番号２で表わされるアミノ酸配列を含んでなるタンパク質において、第２５６番目のアスパラギン酸残基のアスパラギン残基への変異を有してなるタンパク質をコードするポリヌクレオチド。
【請求項２】
ヒトグルクロン酸抱合酵素１Ａ９遺伝子のゲノムＤＮＡ配列を含んでなるポリヌクレオチドにおいて、配列番号２中の第２５６番目のアスパラギン酸残基をコードするコドンのアスパラギン残基をコードするコドンへの変異を有してなるポリヌクレオチドである、請求項１に記載のポリヌクレオチド。
【請求項３】
配列番号１で表わされるヌクレオチド配列において、第７６６番目のグアニン（Ｇ）残基がアデニン（Ａ）残基に置換されたヌクレオチド配列を含んでなる、請求項１に記載のポリヌクレオチド。
【請求項４】
グルクロン酸抱合酵素１Ａ９遺伝子における、グルクロン酸抱合酵素１Ａ９の第２５６番目のアスパラギン酸残基をコードするコドンがアスパラギン残基をコードするコドンとなる変異を検出しうる核酸分子であって、
請求項１〜３のいずれか一項に記載のポリヌクレオチドまたはこれに相補的なポリヌクレオチドにハイブリダイズするヌクレオチド断片を含んでなる、核酸分子。
【請求項５】
請求項１〜３のいずれか一項に記載のポリヌクレオチド、またはこれに相補的なポリヌクレオチドの、配列番号２中の第２５６番目のアスパラギン酸残基に対応する部分を含む領域にハイブリダイズするヌクレオチド断片を含んでなる、請求項４に記載の核酸分子。
【請求項６】
請求項１〜３のいずれか一項に記載のポリヌクレオチドの、配列番号２中の第２５６番目のアスパラギン酸残基に対応する部分を含む領域を核酸増幅法において増幅することができる、請求項４に記載の核酸分子。
【請求項７】
グルクロン酸抱合酵素１Ａ９による解毒代謝の異常の予測または診断に用いるための、請求項４〜６のいずれか一項に記載の核酸分子。
【請求項８】
グルクロン酸抱合酵素１Ａ９遺伝子における、グルクロン酸抱合酵素１Ａ９の第２５６番目のアスパラギン酸残基をコードするコドンがアスパラギン残基をコードするコドンとなる変異を検出するためのプライマーペアであって、
請求項１〜３のいずれか一項に記載のポリヌクレオチドの、配列番号２中の第２５６番目のアスパラギン酸残基に対応する部分を含む領域を核酸増幅法において増幅しうる、プライマーペア。
【請求項９】
グルクロン酸抱合酵素１Ａ９による解毒代謝の異常の予測または診断に用いるための、請求項８に記載のプライマーペア。
【請求項１０】
グルクロン酸抱合酵素１Ａ９遺伝子の変異を検出することにより、グルクロン酸抱合酵素１Ａ９による解毒代謝の異常を予知または検出する方法であって、
請求項４〜７のいずれか一項に記載の核酸分子、および／または請求項８または９に記載のプライマーペアを用いて、グルクロン酸抱合酵素１Ａ９遺伝子における、グルクロン酸抱合酵素１Ａ９の第２５６番目のアスパラギン酸残基をコードするコドンがアスパラギン残基をコードするコドンとなる変異の有無を検出する工程を含んでなる、方法。
【請求項１１】
請求項４〜７のいずれか一項に記載の核酸分子、および／または請求項８または９に記載のプライマーペアを含んでなる、グルクロン酸抱合酵素１Ａ９による解毒代謝の異常の予測または診断用キット。
【請求項１２】
配列番号２で表わされるアミノ酸配列を含んでなるタンパク質において、第２５６番目のアスパラギン酸残基のアスパラギン残基への変異を有してなるタンパク質。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の背景】
発明の分野
本発明は、グルクロン酸抱合酵素１Ａ９による解毒代謝の異常の遺伝子診断に用いることができる変異型ポリヌクレオチドおよび核酸分子に関する。
【０００２】
背景技術
ヒトグルクロン酸抱合酵素（ＵＤＰ−ｇｌｕｃｕｒｏｎｏｓｙｌｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅ，  ＵＧＴ）は、化合物にグルクロン酸を結合（抱合）させる酵素である。このグルクロン酸抱合により化合物の水溶性が高くなり、該化合物が体外に排出されやすくなる。よって、ヒトＵＧＴは、生体内における解毒代謝機構において重要な役割を果たしている。
【０００３】
ヒトＵＧＴの一種であるヒトグルクロン酸抱合酵素１Ａ９（ＵＧＴ１Ａ９）は５３０アミノ酸からなるタンパク質であり、これをコードする遺伝子配列も報告されている（非特許文献１：Ｗｏｏｓｔｅｒ，  Ｒ．  ｅｔ  ａｌ．，  Ｂｉｏｃｈｅｍ．  Ｊ．  ２７８，  ４６５−４６９，  １９９１）。また、ＵＧＴ１Ａ９が肝臓、腸、腎臓、精巣、卵巣等において発現することも報告されている（非特許文献２：Ｓｔｒａｓｓｂｕｒｇ，  Ｃ．  Ｐ．  ｅｔ  ａｌ．，  Ｊ．  Ｂｉｏｌ．  Ｃｈｅｍ．  ２７３，  ８７１９−８７２６，  １９９８；非特許文献３：Ａｌｂｅｒｔ，  Ｃ．  ｅｔ  ａｌ．，  Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌｏｇｙ  １４０，  ３２９２−３３０２，  １９９９）。
【０００４】
ＵＧＴ１Ａ９は、生体内生理活性物質である卵胞ホルモンおよび甲状腺ホルモンの解毒代謝に関与するだけでなく、様々な薬物、例えば、抗癌剤であるイリノテカンの活性代謝物であるＳＮ−３８、ベータ遮断薬であるプロプラノロール、解熱鎮痛剤であるアセトアミノフェン、麻酔剤であるプロポフォール等、の解毒代謝に関与することが知られている（非特許文献３：Ａｌｂｅｒｔ，  Ｃ．  ｅｔ  ａｌ．，  Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌｏｇｙ  １４０，  ３２９２−３３０２，  １９９９；非特許文献４：Ｆｉｎｄｌａｙ，  Ｋ．  Ａ．  Ｂ．  ｅｔ  ａｌ．，  Ｊ．  Ｃｌｉｎ．  Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌ．  Ｍｅｔａｂ．  ８５，  ２８７９−２８８３，  ２０００；非特許文献５：Ｌｕｕｋｋａｎｅｎ，  Ｌ．  ｅｔ  ａｌ．，  Ｄｒｕｇ  Ｍｅｔａｂ．  Ｄｉｓｐｏｓ．  ２９，  １０９６−１１０１，  ２００１；非特許文献６：Ｃｏｕｒｔ，  Ｍ．  Ｈ．  ｅｔ  ａｌ．，  Ｊ．  Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．  Ｅｘｐ．  Ｔｈｅｒ．  ２９９，  ９９８−１００６，  ２００１；非特許文献７：Ｅｂｎｅｒ，  Ｔ．  ｅｔ  ａｌ．，  Ｄｒｕｇ  Ｍｅｔａｂ．  Ｄｉｓｐｏｓ．  ２１，  ５０−５５，  １９９３；非特許文献８：Ｈａｎｉｏｋａ，  Ｎ．  ｅｔ  ａｌ．，  Ｘｅｎｏｂｉｏｔｉｃａ  ３１，  ６８７−６９９，  ２００１）。従って、ＵＧＴ１Ａ９の活性が低下すると、上記の薬物の血中濃度が上昇し、その副作用が増進するものと考えられる。
【０００５】
一般に、あるタンパク質の活性の低下を予め診断（予測）する方法として、このような活性の低下をもたらす遺伝子変異を検出する方法が考えられる。しかし、ＵＧＴ１Ａ９の機能変化、特に活性低下、をもたらす遺伝子多型は報告されていない。
【０００６】
【非特許文献１】
Ｗｏｏｓｔｅｒ，  Ｒ．  ｅｔ  ａｌ．，  Ｂｉｏｃｈｅｍ．  Ｊ．  ２７８，  ４６５−４６９，  １９９１
【非特許文献２】
Ｓｔｒａｓｓｂｕｒｇ，  Ｃ．  Ｐ．  ｅｔ  ａｌ．，  Ｊ．  Ｂｉｏｌ．  Ｃｈｅｍ．  ２７３，  ８７１９−８７２６，  １９９８
【非特許文献３】
Ａｌｂｅｒｔ，  Ｃ．  ｅｔ  ａｌ．，  Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌｏｇｙ  １４０，  ３２９２−３３０２，  １９９９
【非特許文献４】
Ｆｉｎｄｌａｙ，  Ｋ．  Ａ．  Ｂ．  ｅｔ  ａｌ．，  Ｊ．  Ｃｌｉｎ．  Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌ．  Ｍｅｔａｂ．  ８５，  ２８７９−２８８３，  ２０００
【非特許文献５】
Ｌｕｕｋｋａｎｅｎ，  Ｌ．  ｅｔ  ａｌ．，  Ｄｒｕｇ  Ｍｅｔａｂ．  Ｄｉｓｐｏｓ．  ２９，  １０９６−１１０１，  ２００１
【非特許文献６】
Ｃｏｕｒｔ，  Ｍ．  Ｈ．  ｅｔ  ａｌ．，  Ｊ．  Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．  Ｅｘｐ．  Ｔｈｅｒ．  ２９９，  ９９８−１００６，  ２００１
【非特許文献７】
Ｅｂｎｅｒ，  Ｔ．  ｅｔ  ａｌ．，  Ｄｒｕｇ  Ｍｅｔａｂ．  Ｄｉｓｐｏｓ．  ２１，  ５０−５５，  １９９３
【非特許文献８】
Ｈａｎｉｏｋａ，  Ｎ．  ｅｔ  ａｌ．，  Ｘｅｎｏｂｉｏｔｉｃａ  ３１，  ６８７−６９９，  ２００１
【０００７】
【発明の概要】
本発明者らは、グルクロン酸抱合酵素１Ａ９（ＵＧＴ１Ａ９）遺伝子において、ＵＧＴ１Ａ９タンパク質の第２５６番目のアスパラギン酸残基をコードするコドンがアスパラギン残基をコードするコドンとなり、ＵＧＴ１Ａ９の機能が低減する遺伝子変異を見出した。本発明はこの知見に基づくものである。
【０００８】
上記の変異を有するヒトにおいては、ＵＧＴ１Ａ９タンパク質の発現量が減少し、さらに、発現したＵＧＴ１Ａ９タンパク質のグルクロン酸抱合活性も低下するため、ＵＧＴ１Ａ９による解毒代謝機構が作動しにくい。
【０００９】
従って、本発明は、グルクロン酸抱合酵素１Ａ９による解毒代謝の異常の遺伝子診断に用いることができる変異型ポリヌクレオチドおよび変異型タンパク質ならびに核酸分子の提供を目的とする。
【００１０】
そして、本発明による変異型ポリヌクレオチドは、配列番号２で表わされるアミノ酸配列を含んでなるタンパク質において、第２５６番目のアスパラギン酸残基のアスパラギン残基への変異を有してなるタンパク質をコードするポリヌクレオチドである。
【００１１】
さらに、本発明による変異型タンパク質は、配列番号２で表わされるアミノ酸配列を含んでなるタンパク質において、第２５６番目のアスパラギン酸残基のアスパラギン残基への変異を有してなるタンパク質である。
【００１２】
さらに、本発明による核酸分子は、グルクロン酸抱合酵素１Ａ９遺伝子における、グルクロン酸抱合酵素１Ａ９の第２５６番目のアスパラギン酸残基をコードするコドンがアスパラギン残基をコードするコドンとなる変異を検出しうる核酸分子であって、本発明による変異型ポリヌクレオチドまたはこれに相補的なポリヌクレオチドにハイブリダイズするヌクレオチド断片を含んでなる、核酸分子である。
【００１３】
【発明の具体的説明】
ヒトグルクロン酸抱合酵素１Ａ９（ＵＧＴ１Ａ９）は配列番号２で表されるアミノ酸配列を含んでなるものであり、これをコードするＤＮＡ配列としては、例えば、配列番号１で表されるヌクレオチド配列が挙げられる。本発明により検出されるグルクロン酸抱合酵素１Ａ９（ＵＧＴ１Ａ９）遺伝子中の変異は、ＵＧＴ１Ａ９タンパク質の第２５６番目のアスパラギン酸残基をコードするコドンがアスパラギン残基をコードするコドンとなるもの（本発明において「Ａｓｐ２５６Ａｓｎ変異」という）である。このような変異としては、例えば、翻訳開始コドンから数えて第７６６番目（配列番号１中においては第７６６番目に相当）のグアニン（Ｇ）残基のアデニン（Ａ）残基への変異（本発明において「７６６Ｇ＞Ａ」という）が挙げられる。
【００１４】
Ａｓｐ２５６Ａｓｎ変異により、ＵＧＴ１Ａ９タンパク質の発現量が減少し、さらには、発現したＵＧＴ１Ａ９の機能であるグルクロン酸抱合活性も低下するため、前記変異を有する被験者においてはＵＧＴ１Ａ９による解毒代謝機構が作動しにくい。従って、Ａｓｐ２５６Ａｓｎ変異を検出することにより、ＵＧＴ１Ａ９による解毒代謝の異常の予知または検出が可能となる。特に、ＵＧＴ１Ａ９による解毒代謝を受ける薬物を投与する前に、ＵＧＴ１Ａ９遺伝子上のＡｓｐ２５６Ａｓｎ変異を検出することにより、該薬物に対する感受性が高いヒト被験者を見出すことが可能となる。これにより、そのような被験者に対する薬物の投与量を調節し、該薬物による副作用を軽減することが可能となる。ＵＧＴ１Ａ９による解毒代謝を受ける薬物としては、特に限定されるものではないが、例えば、抗癌剤であるイリノテカンの活性代謝物であるＳＮ−３８（７−エチル−１０−ヒドロキシカンプトテシン）、ベータ遮断薬であるプロプラノロール、解熱鎮痛剤であるアセトアミノフェン、麻酔剤であるプロポフォール等が挙げられる。
【００１５】
変異型ポリヌクレオチドおよび変異型タンパク質
Ａｓｐ２５６Ａｓｎ変異を検出するためには、配列番号２で表わされるアミノ酸配列を含んでなるタンパク質において、第２５６番目のアスパラギン酸残基のアスパラギン残基への変異を有してなるタンパク質、ならびにこれをコードするポリヌクレオチドを標的とすることができる。すなわち、このような変異型タンパク質または変異型ポリヌクレオチドの存在を確認することにより、Ａｓｐ２５６Ａｓｎ変異を検出することができる。
【００１６】
Ａｓｐ２５６Ａｓｎ変異を検出する際には、ゲノム中の上記変異型ポリヌクレオチドを標的とすることができる。従って、本発明の好ましい実施態様によれば、検出の標的となる変異型ポリヌクレオチドは、ヒトＵＧＴ１Ａ９遺伝子のゲノムＤＮＡ配列を含んでなるポリヌクレオチドにおいて、配列番号２中の第２５６番目のアスパラギン酸残基をコードするコドンのアスパラギン残基をコードするコドンへの変異を有してなるポリヌクレオチドとされる。ヒトＵＧＴ１Ａ９遺伝子のゲノムＤＮＡ配列は、配列番号２で表わされるアミノ酸配列を含んでなるタンパク質を発現しうる限り、特に限定されないが、好ましくは、配列番号１で表わされるヌクレオチド配列中のチミン（Ｔ）残基がウラシル（Ｕ）残基に置換されたヌクレオチド配列を含んでなるｍＲＮＡを生体内において生産しうるヌクレオチド配列とされ、例えば、ＮＣＢＩデータベースに登録番号ＡＦ２９７０９３として登録されているゲノム配列中のＵＧＴ１Ａ９遺伝子配列が挙げられる。ＵＧＴ１Ａ９遺伝子の両末端部位は当業者にとって明らかであるが、好ましくはＵＧＴ１Ａ９遺伝子の全エクソンを含むものとする。
【００１７】
また、Ａｓｐ２５６Ａｓｎ変異を検出する際に、ゲノムにおける上記変異型ポリヌクレオチドの転写産物であるｍＲＮＡに対して生成させたｃＤＮＡを標的とすることもできる。従って、本発明の好ましい実施態様によれば、検出の標的となる変異型ポリヌクレオチドは、配列番号１で表わされるヌクレオチド配列において、第７６６番目のグアニン（Ｇ）残基がアデニン（Ａ）残基に置換されたヌクレオチド配列を含んでなるものとされる。
【００１８】
本発明による変異型ポリヌクレオチドは、一本鎖であっても、相補鎖がハイブリダイズした二本鎖であってもよい。
【００１９】
本発明による変異型タンパク質および変異型ポリヌクレオチドは、既述の通り、Ａｓｐ２５６Ａｓｎ変異を検出する際の標的として有用であるが、さらには、該変異を有するグルクロン酸抱合酵素１Ａ９を活性化する化合物をスクリーニングするためにも有用である。
【００２０】
核酸分子およびこれを用いた解毒代謝異常の予知／検出方法
本発明による核酸分子は、ＵＧＴ１Ａ９遺伝子におけるＡｓｐ２５６Ａｓｎ変異を検出しうるものであり、該核酸分子は、本発明による変異型ポリヌクレオチドまたはこれに相補的なポリヌクレオチドにハイブリダイズするヌクレオチド断片を含んでなる。
【００２１】
本発明において「ハイブリダイズする」とは、本発明による核酸分子が通常のハイブリダイゼーション条件下、好ましくはストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下で標的ヌクレオチド分子にハイブリダイズし、標的ヌクレオチド分子以外のヌクレオチド分子にはハイブリダイズしないことを意味する。ストリンジェントな条件は、本発明による核酸分子とその相補鎖との二重鎖の融解温度Ｔｍ（℃）およびハイブリダイゼーション溶液の塩濃度などに依存して決定することができ、例えば、Ｊ．  Ｓａｍｂｒｏｏｋ，  Ｅ．  Ｆ．  Ｆｒｉｓｃｈ，  Ｔ．  Ｍａｎｉａｔｉｓ；  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ  ２ｎｄ  ｅｄｉｔｉｏｎ，  Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  （１９８９）等を参照することができる。例えば、使用する核酸分子の融解温度よりわずかに低い温度下でハイブリダイゼーションを行なうと、核酸分子を標的ヌクレオチド分子に特異的にハイブリダイズさせることができる。また、あるヌクレオチド分子にハイブリダイズする核酸分子は、特異的なハイブリダイズが可能であれば、そのヌクレオチド分子に対して完全に相補的である必要はないが、好ましくは、そのヌクレオチド分子に相補的なヌクレオチド分子の全部または一部の配列を含んでなるものとする。
【００２２】
本発明において「核酸分子」は、ＤＮＡ、ＲＮＡ、およびＰＮＡ（ｐｅｐｔｉｄｅ  ｎｕｃｌｅｉｃ  ａｃｉｄ）を含む意味で用いられる。本発明の好ましい実施態様によれば、核酸分子はＤＮＡである。
【００２３】
本発明による核酸分子のヌクレオチド配列は、当業者により適宜設計されうる。例えば、検出の標的をゲノムとする場合には、本発明による核酸分子は、エクソンにハイブリダイズする部分だけでなく、イントロンにハイブリダイズする部分をも含むことができ、あるいは、これらのどちらか一方のみにより構成されていてもよい。
【００２４】
本発明による核酸分子は、ＵＧＴ１Ａ９遺伝子におけるＡｓｐ２５６Ａｓｎ変異の検出において、核酸プローブとして用いることができる。この目的のためには、本発明による核酸分子は、本発明による変異型ポリヌクレオチドまたはこれに相補的なポリヌクレオチドの、配列番号２中の第２５６番目のアスパラギン酸残基に対応する部分を含む領域にハイブリダイズするヌクレオチド断片を含んでなることが好ましい。該核酸プローブは、市販のオリゴヌクレオチド合成機等を用いて合成オリゴヌクレオチドとして作製してもよいし、あるいは、制限酵素処理等によって取得される二本鎖ＤＮＡ断片として作製してもよい。
【００２５】
本発明による核酸分子を核酸プローブとして用いる場合、核酸分子の鎖長は１５ヌクレオチド以上とすることが好ましく、また、１００ヌクレオチド以下、より好ましくは５０ヌクレオチド以下とすることが好ましい。
【００２６】
さらに、本発明による核酸分子を核酸プローブとして用いる場合、該核酸分子を適宜標識することが好ましい。標識する方法としては、Ｔ４ポリヌクレオチドキナーゼを用いて、オリゴヌクレオチドの５’端を３２Ｐでリン酸化することにより標識する方法、およびクレノウ酵素等のＤＮＡポリメラーゼを用い、ランダムヘキサマーオリゴヌクレオチド等をプライマーとして３２Ｐ等のアイソトープ、蛍光色素、またはビオチン等によって標識された基質塩基を取り込ませる方法（ランダムプライム法等）が挙げられる。
【００２７】
また、本発明による核酸分子は、ＵＧＴ１Ａ９遺伝子におけるＡｓｐ２５６Ａｓｎ変異の検出において、核酸増幅用プライマーとして用いることができる。この目的のためには、本発明による核酸分子は、本発明による変異型ポリヌクレオチドの、配列番号２中の第２５６番目のアスパラギン酸残基に対応する部分を含む領域を核酸増幅法において増幅することができるものであることが好ましい。
【００２８】
本発明による核酸分子を核酸増幅用プライマーとして用いる場合、核酸分子の鎖長は１５〜１００ヌクレオチドとすることが好ましく、より好ましくは１７〜４０ヌクレオチドとする。
【００２９】
本発明の他の好ましい実施態様によれば、本発明による核酸分子の鎖長は、１５〜１００ヌクレオチド、より好ましくは少なくとも１７ヌクレオチド、さらに好ましくは少なくとも１８ヌクレオチド、さらに好ましくは１８〜５０ヌクレオチドとする。このような鎖長を有する本発明による核酸分子は、特に夾雑物を含む核酸試料から上記Ａｓｐ２５６Ａｓｎ変異を検出する上で好ましいものである。
【００３０】
核酸増幅法は、通常、プライマーのペアを用いて実施される。従って、本発明によれば、ＵＧＴ１Ａ９遺伝子におけるＡｓｐ２５６Ａｓｎ変異を検出するためのプライマーペアであって、本発明による変異型ポリヌクレオチドの、配列番号２中の第２５６番目のアスパラギン酸残基に対応する部分を含む領域を核酸増幅法において増幅しうるプライマーペアが提供される。このようなプライマーペアを構成する２本のプライマーとしては、本発明による核酸分子を用いることができる。このようなプライマーは、増幅の対象となる領域のヌクレオチド配列に基づいて当業者が適宜設計することができる。例えば、プライマーペアの一方のプライマーを、増幅対象領域のヌクレオチド配列中における５’末端部分の配列を有するものとし、他方のプライマーを、増幅対象領域の相補鎖のヌクレオチド配列中における５’末端部分の配列を有するものとすることができる。
【００３１】
本発明による核酸分子または本発明によるプライマーペアを用いることにより、ＵＧＴ１Ａ９遺伝子におけるＡｓｐ２５６Ａｓｎ変異の有無を検出することができ、これにより、グルクロン酸抱合酵素１Ａ９による解毒代謝の異常を予知もしくは検出または予測もしくは診断することができる。
【００３２】
具体的には、本発明による核酸分子または本発明によるプライマーペアは、ＵＧＴ１Ａ９遺伝子におけるＡｓｐ２５６Ａｓｎ変異を検出するための核酸増幅法においてプライマーとして用いることができ、より具体的には、本発明による変異型ポリヌクレオチドの、配列番号２中の第２５６番目のアスパラギン酸残基に対応する部分を含む領域を増幅するための核酸増幅法においてプライマーとして用いることができる。従って、本発明によれば、本発明による核酸分子またはプライマーペアを用いて、被検者由来の核酸試料を鋳型とする核酸増幅法を行ない、得られた増幅産物中においてＡｓｐ２５６Ａｓｎ変異の有無を検出する工程を含んでなる、ＵＧＴ１Ａ９による解毒代謝の異常を予知または検出する方法が提供される。
【００３３】
この方法による解毒代謝異常の予測または診断に当たっては、例えば、被験者から白血球、皮膚、口腔粘膜等の組織または細胞、涙、唾液、尿、糞便または毛髪などの試料を採取し、得られた試料からゲノムＤＮＡやｍＲＮＡ等の核酸試料を抽出し、必要であればｍＲＮＡから逆転写酵素によりｃＤＮＡを作製し、得られた核酸試料を鋳型として、本発明による核酸分子またはプライマーペアを用いて核酸増幅法を実施し、得られた増幅産物のヌクレオチド配列を解析することにより、ＵＧＴ１Ａ９遺伝子におけるＡｓｐ２５６Ａｓｎ変異を検出することができる。核酸増幅法およびこれによる変異の検出法としては、当技術分野において公知のいずれの方法を用いてもよい。例えば、核酸増幅法としては、ゲノムＤＮＡまたはｃＤＮＡを鋳型とする場合には通常のＰＣＲ法等を用いることができ、ｍＲＮＡを鋳型とする場合には、ＲＴ−ＰＣＲ法、ＮＡＳＢＡ法等を用いることができる。
【００３４】
核酸増幅法により得られた増幅産物のヌクレオチド配列の解析は、例えば、シークエンス用プライマーを用いるダイレクトシークエンス法等により容易に行なうことができる。このような方法は当技術分野において周知であり、例えば、市販のキットを用いて実施することができる。
【００３５】
上記の核酸増幅法とダイレクトシークエンス法とによりＡｓｐ２５６Ａｓｎ変異を検出する場合には、例えば、以下の配列を有するプライマー：
フォワード：５’−ＣＣＡＡＧＧＣＡＡＡＧＡＣＣＡＴＡＡＧＣ−３’（配列番号５）；
リバース：５’−ＴＴＧＣＴＡＣＴＧＡＣＧＡＧＴＡＣＡＣＧＣ−３’（配列番号６）、
を用いて核酸増幅法を行ない、これらのプライマーをシークエンスプライマーとしてダイレクトシークエンス法を行なうことができる。あるいは、シークエンスプライマーとして以下のプライマーを用いてもよい：
フォワード：５’−ＴＧＣＴＣＣＴＣＴＴＴＣＣＴＡＴＧＴＣＣ−３’（配列番号７）；
リバース：５’−ＴＧＴＣＡＡＡＴＣＡＣＡＧＴＴＣＡＧＴＡＡＡＧＡ−３’（配列番号８）。
【００３６】
また、ＵＧＴ１Ａ９遺伝子におけるＡｓｐ２５６Ａｓｎ変異において、この変異により特定の制限酵素による認識配列が失われるかまたは生成する場合には、制限断片長多型（ＲＦＬＰ）を利用する方法、例えば、ＰＣＲ−ＲＦＬＰ法を用いて上記の変異を検出することができる。このような方法は、例えば、上述の核酸増幅法において前記制限酵素認識配列を包含する領域を増幅するようなプライマーペアを用い、得られた増幅断片をこの制限酵素で消化した後、得られる断片の数およびそれらの鎖長を調べることにより実施することができる。このような方法は当技術分野において周知であり、当業者であれば、適切な制限酵素、プライマー、増幅反応条件、制限酵素反応条件等を適宜設定することができる。
【００３７】
さらに、上述のような核酸増幅法によって得られた増幅断片につき、その増幅断片中に何らかの変異が存在するか否かを簡便な方法により調べ、変異を有すると判断されたサンプルについてのみ、Ａｓｐ２５６Ａｓｎ変異の検出を行なうこともできる。
【００３８】
上記の簡便法としては、例えば、一本鎖高次構造多型（ｓｉｎｇｌｅ−ｓｔｒａｎｄ  ｃｏｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ  ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｓｍ）を利用した方法（ＰＣＲ−ＳＳＣＰ法：Ｃｌｏｎｉｎｇ  ａｎｄ  ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ  ｃｈａｉｎ  ｒｅａｃｔｉｏｎ−ｓｉｎｇｌｅ−ｓｔｒａｎｄ  ｃｏｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ  ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｓｍ  ａｎａｌｙｓｉｓ  ｏｆ  ａｎｏｎｙｍｏｕｓ  Ａｌｕ  ｒｅｐｅａｔｓ  ｏｎ  ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅ  １１．  Ｇｅｎｏｍｉｃｓ．  １９９２  Ｊａｎ  １；  １２（１）：  １３９−１４６．、Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ  ｏｆ  ｐ５３  ｇｅｎｅ  ｍｕｔａｔｉｏｎｓ  ｉｎ  ｈｕｍａｎ  ｂｒａｉｎ  ｔｕｍｏｒｓ  ｂｙ  ｓｉｎｇｌｅ−ｓｔｒａｎｄ  ｃｏｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ  ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｓｍ  ａｎａｌｙｓｉｓ  ｏｆ  ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ  ｃｈａｉｎ  ｒｅａｃｔｉｏｎ  ｐｒｏｄｕｃｔｓ．  Ｏｎｃｏｇｅｎｅ．  １９９１  Ａｕｇ  １；  ６（８）：  １３１３−１３１８．、Ｍｕｌｔｉｐｌｅ  ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ−ｂａｓｅｄ  ＰＣＲ−ＳＳＣＰ  ａｎａｌｙｓｉｓ  ｗｉｔｈ  ｐｏｓｔｌａｂｅｌｉｎｇ．、ＰＣＲ  Ｍｅｔｈｏｄｓ  Ａｐｐｌ．  １９９５  Ａｐｒ  １；  ４（５）：  ２７５−２８２）が挙げられる。この方法では、増幅したＤＮＡを一本鎖ＤＮＡに解離させ、次いで、この一本鎖ＤＮＡを非変性ゲル上で分離し、そのゲル上での移動度を、変異を有しない対照サンプルの移動度と比較する。この方法において増幅するＤＮＡ断片の鎖長は２００〜４００ｂｐとすることが好ましい。
【００３９】
上記の簡便法としては、また、変性剤濃度勾配ゲル法（ｄｅｎａｔｕｒａｎｔ  ｇｒａｄｉｅｎｔ  ｇｅｌ  ｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｓｉｓ：ＤＧＧＥ法）を用いることもできる。この方法では、増幅したＤＮＡをＤＮＡ変性剤の濃度が次第に高まるゲル上で分離し、そのゲル上での移動度を、変異を有しない対照サンプルの移動度と比較する。このような方法は当技術分野において公知であり、当業者であれば適切に実施することができる。
【００４０】
本発明による解毒代謝異常の予測または診断法においては、アレル特異的ＰＣＲ法を実施できるようにプライマーを設計することもできる。具体的には、プライマーの一方を変異部位に対合できるように設計し、他方を変異部位を含まない領域に対合できるように設計することができる。このように設計されたプライマーペアを用いて核酸増幅法を実施すると、核酸試料中に変異が存在する場合には増幅産物が得られ、変異が存在しない場合には増幅産物が得られない。従って、この場合には、増幅産物の有無を検出することにより変異の有無を判定することができる。
【００４１】
本発明による核酸分子は、ハイブリダイゼーション法等による変異の検出にプローブとして用いることができる。従って、本発明によれば、本発明による核酸分子と被検者由来の核酸試料とのハイブリダイゼーションを行ない、次いでハイブリダイゼーション複合体の存在を検出する工程を含んでなる、ＵＧＴ１Ａ９による解毒代謝の異常を検出する方法が提供される。ハイブリダイゼーション複合体の存在は、ＵＧＴ１Ａ９遺伝子におけるＡｓｐ２５６Ａｓｎ変異の存在を示す。このハイブリダイゼーション法を用いる方法は、上述の核酸増幅法を用いる方法により得られる増幅産物に対して適用することもできる。
【００４２】
この方法による解毒代謝異常の予測または診断に当たっては、例えば、被検者から白血球、皮膚、口腔粘膜等の組織または細胞、涙、唾液、尿、糞便または毛髪などの試料を採取し、得られた試料からゲノムＤＮＡやｍＲＮＡ等の核酸試料を抽出し、必要であればｍＲＮＡから逆転写酵素によりｃＤＮＡを作製し、ストリンジェントな条件下、本発明による核酸分子とのハイブリダイゼーションの有無を検出することにより、ＵＧＴ１Ａ９遺伝子におけるＡｓｐ２５６Ａｓｎ変異を検出することができる。核酸試料は必要であれば制限酵素処理等を施し、ハイブリダイゼーションに適切な長さとすることもできる。ハイブリダイゼーション法とこれによる変異の検出法としては、当技術分野において公知のいずれの方法を用いてもよい。例えば、サザンハイブリダイゼーション、コロニーハイブリダイゼーション等の技術を用いることができ、これらの方法については、例えば、Ｊ．  Ｓａｍｂｒｏｏｋ，  Ｅ．  Ｆ．  Ｆｒｉｓｃｈ，  Ｔ．  Ｍａｎｉａｔｉｓ；  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ  ２ｎｄ  ｅｄｉｔｉｏｎ，  Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  （１９８９）を参照することができる。
【００４３】
本発明による核酸分子をハイブリダイゼーション法による変異の検出においてプローブとして用いる場合、本発明による核酸分子を基板上に固定したＤＮＡチップを作製し、このＤＮＡチップと被験者由来の核酸試料とをハイブリダイゼーション条件下で接触させ、ハイブリダイゼーションの有無を検出してもよい。従って、本発明によれば、本発明による核酸分子を基板上に固定してなる、ＵＧＴ１Ａ９遺伝子におけるＡｓｐ２５６Ａｓｎ変異を検出しうるＤＮＡチップ、さらには、このＤＮＡチップを用いてＡｓｐ２５６Ａｓｎ変異を検出する工程を含んでなる、ＵＧＴ１Ａ９による解毒代謝の異常を検出する方法が提供される。本発明において基板に結合させるプローブの鎖長は特に制限されないが、好ましくは１５〜１００ヌクレオチド、より好ましくは１５〜５０ヌクレオチド、さらに好ましくは１７〜２５ヌクレオチドとする。このようなＤＮＡチップを用いて変異を検出する技術は当技術分野において周知であり（ポストシークエンスのゲノム科学、第１巻「ＳＮＰ遺伝子多型の戦略」、松原謙一・榊佳之、中山書店、ｐ１２８−１３５、２０００年）、当業者であれば、本発明による核酸分子を用いて適切なＤＮＡチップを作製し、このＤＮＡチップを用いてＡｓｐ２５６Ａｓｎ変異を検出することができる。
【００４４】
ＵＧＴ１Ａ９遺伝子におけるＡｓｐ２５６Ａｓｎ変異を検出する場合には、また、本発明による核酸分子をプライマーとして使用するプライマーエクステンション法を用いることもできる。この方法は、Ａｓｐ２５６Ａｓｎ変異が一塩基多型である場合において特に好ましい。このような一塩基多型としては、例えば、７６６Ｇ＞Ａが挙げられる。プライマーエクステンション法は当業者に公知であり、その操作手順および使用するプライマーの具体的ヌクレオチド配列は、当業者であれば容易に決定することができる。本発明の好ましい実施態様によれば、上記のプライマーエクステンション法としては、ＳＮａＰｓｈｏｔＴＭ法またはＰｙｒｏｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ法として知られる方法が用いられる。
【００４５】
ＳＮａＰｓｈｏｔＴＭ法においては、一塩基多型の部位に隣接するプライマーであって、伸長反応によりその３’末端に付加するヌクレオチドが前記一塩基多型の部位に相補的なものとなるプライマーが用いられる。このようなプライマーを使用し、被検者からの核酸試料を鋳型としてプライマーの伸長反応が行なわれるが、その際にｄｄＮＴＰ（ジデオキシＮＴＰ）を用いることにより、伸長反応は、上記の多型部位に対応する一個のヌクレオチドを取り込んだ時点で終了する。取り込まれたヌクレオチドは、蛍光標識等で予め標識しておくことにより容易に同定され、従って、多型部位のヌクレオチドが同定される。このような方法は当業者に公知であり、その操作手順および使用するプライマーの具体的ヌクレオチド配列は、当業者であれば容易に決定することができる。
【００４６】
Ｐｙｒｏｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ法（Ａｈｍａｄｉａｎ  Ａ  ｅｔ  ａｌ．，  Ａｎａｌ．  Ｂｉｏｃｈｅｍ．  ｖｏｌ．  ２８０，  ｐｐ１０３−１１０，  （２０００））においては、被検者からの核酸試料を鋳型とするプライマーの伸長反応の際に、４種のｄＮＴＰを１種ずつ反応させる。ｄＮＴＰのいずれかが取り込まれると、等量のピロリン酸塩（ＰＰｉ）が遊離し、遊離したＰＰｉはスルフリラーゼと反応してＡＴＰを生成させ、このＡＴＰによりルシフェラーゼの反応が起こり、発光が起こる。従って、ある特定のｄＮＴＰを加えたときに発光が起こった場合には、そのｄＮＴＰに対応するヌクレオチドが取り込まれたことが明らかとなり、これにより核酸試料中の対象部位のヌクレオチドが同定される。この方法においては、ｄＮＴＰが用いられるため、ＳＮａＰｓｈｏｔＴＭ法で用いられるような多型部位に隣接するプライマーを用いる必要はなく、数塩基はなれたプライマーを用いてもよい。このような方法は当業者に公知であり、その操作手順および使用するプライマーの具体的ヌクレオチド配列は、当業者であれば容易に決定することができる。
【００４７】
ＵＧＴ１Ａ９遺伝子におけるＡｓｐ２５６Ａｓｎ変異が上述のような一塩基多型である場合には、さらに、本発明による核酸分子をプローブおよび／またはプライマーとして使用する遺伝子型決定法（タイピング法）を用いてその変異を検出することもできる。遺伝子型決定法は当業者に公知であり、その操作手順および使用するプローブおよび／またはプライマーの具体的ヌクレオチド配列は、当業者であれば容易に決定することができる。本発明の好ましい実施態様によれば、上記の遺伝子型決定法としては、ＴａｑＭａｎ  ＰＣＲ法として知られる方法が用いられる。
【００４８】
ＴａｑＭａｎ  ＰＣＲ法（Ｌｉｖａｋ  ＫＪ．  Ｇｅｎｅｔ．  Ａｎａｌ．  ｖｏｌ．１４，  ｐｐ１４３−１４９，  （１９９９））において、例えば、７６６Ｇ＞Ａ変異を検出する場合には、多型部位のヌクレオチドを含む領域に対して、ＧアレルおよびＡアレルのそれぞれに特異的にハイブリダイズする２種のプローブであって、それぞれ別の蛍光標識物質が５’末端に付され、その蛍光標識に対するクエンチャー（消光物質）が３’末端に付され、さらに３’末端がリン酸化されてなるプローブ（ＴａｑＭａｎプローブ）が用いられ、これらをＰＣＲ反応液中に添加して、被検者由来の核酸試料を鋳型とするＰＣＲ反応を行なう。ＴａｑＭａｎプローブおよびＰＣＲ用プライマーとしては、本発明による核酸分子を用いることができ、それらの具体的なヌクレオチド配列は、当業者であれば適宜決定することができる。また、２種の蛍光標識物質は、互いに識別可能な組合せであればよく、そのような蛍光標識物質の組合せはそれぞれのクエンチャーとともに当業者に公知のもの、例えば、ＦＡＭとＶＩＣの組合せ等を用いることができる。このＰＣＲ反応においては、まず、各アレルにＴａｑＭａｎプローブがハイブリダイズし、プライマーからの伸長反応がそのハイブリダイゼーション領域に到達した際にＴａｑＤＮＡポリメラーゼの作用によって蛍光標識物質が遊離する。遊離した蛍光標識物質はクエンチャーの作用を受けないため、蛍光を発する。従って、この方法によれば、各アレルの存在量に対応する強度の各蛍光を観察することができ、これにより、被検者の遺伝子型（Ｇ／Ｇ、Ｇ／Ａ、またはＡ／Ａ）が容易に決定される。
【００４９】
ＵＧＴ１Ａ９遺伝子におけるＡｓｐ２５６Ａｓｎ変異の検出に用いることのできる他の方法としては、質量分析法による方法（Ｇｒｉｆｆｉｎ  ＴＪ  ａｎｄ  Ｓｍｉｔｈ  ＬＭ，  Ｔｒｅｎｄｓ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．  ｖｏｌ．  １８，  ｐｐ７７−８４，  （２０００））、Ｉｎｖａｄｅｒ法（Ｌｙａｍｉｃｈｅｖ  Ｖ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｎａｔ．  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．  ｖｏｌ．  １７，  ｐｐ２９２−２９６，  （１９９９）；「遺伝子医学」ｖｏｌ．４，  Ｎｏ．１，  メディカルドゥ社発行、ｐｐ４４−５１およびｐｐ６８−７２  （２０００））が挙げられるが、これらに限定されるものではなく、遺伝子の変異を検出しうる方法であれば、いかなる方法を用いることもできる。
【００５０】
本発明による解毒代謝異常の予測または診断法において、ＵＧＴ１Ａ９遺伝子におけるＡｓｐ２５６Ａｓｎ変異が存在すると評価されたサンプルは、ＵＧＴ１Ａ９のグルクロン酸抱合活性が低いと、すなわち、ＵＧＴ１Ａ９による解毒代謝機構が作動しにくいものと判断することができる。従って、Ａｓｐ２５６Ａｓｎ変異を有すると評価された被験者はＵＧＴ１Ａ９による解毒代謝を受ける薬物に対して感受性が高いものと判断され、その被験者に対する前記薬物の投与量を予め調節することが可能となる。これにより、前記被験者における前記薬物による副作用を低減することが可能となる。また、本発明によれば、出生前および出生直後の診断も可能である。
【００５１】
以上のような解毒代謝異常の予測または診断のために、必要な試薬をまとめてキットとすることができる。従って、本発明によるキットは、本発明による核酸分子および／または本発明によるプライマーペアを含んでなる。本発明によるキットはさらに、ＵＧＴ１Ａ９遺伝子におけるＡｓｐ２５６Ａｓｎ変異を検出するための具体的方法に応じて、試薬類、反応容器、説明書等を含んでいてもよい。
【００５２】
【実施例】
以下、本発明を実施例によりさらに具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例により何ら制限されるものではない。
【００５３】
例１：ＵＧＴ１Ａ９遺伝子中の多型の探索およびその機能との関連
（１）ヒトゲノムＤＮＡ試料の調製
イリノテカンを投与された各種癌の日本人患者４７名から血液白血球を採取し、その白血球からＤＮＡを抽出した。なお、本研究を行なうに当たり、国立がんセンター（日本国）および国立医薬品食品衛生研究所（日本国）の倫理審査委員会の承認を得た。また、上記の全ての患者から、書面にてインフォームドコンセントを得た。
【００５４】
（２）ＰＣＲによるＤＮＡ配列決定
まず、２．５ユニットのＺ−Ｔａｑ（宝酒造、東京、日本国）ならびに各０．２μＭのプライマー：ＵＧＴ１Ａ９−ＺＦ：５’−ＴＣＴＴＧＡＴＴＧＴＣＣＴＣＣＡＴＴＧＡＧＴ−３’（配列番号３）；およびＵＧＴ１Ａ９−ＺＲ：５’−ＡＣＣＡＡＧＣＡＡＣＣＡＴＡＣＴＣＡＴＡＧＧ−３’（配列番号４）を用いて、ゲノムＤＮＡ（１５０ｎｇ）からＵＧＴ１Ａ９のエクソン１を増幅した。この第一のＰＣＲは、９８℃で５秒間、５５℃で５秒間および７２℃で１９０秒間の反応を３０サイクルという条件で行なった。次いで、得られたＰＣＲ産物を、０．６２５ユニットのＥｘ−Ｔａｑ（宝酒造）ならびにイントロン中に設計した各０．２μＭのプライマー：ＵＧＴ１Ａ９−１ｓｔＦ：５’−ＣＣＡＡＧＧＣＡＡＡＧＡＣＣＡＴＡＡＧＣ−３’（配列番号５）；およびＵＧＴ１Ａ９−１ｓｔＲ：５’−ＴＴＧＣＴＡＣＴＧＡＣＧＡＧＴＡＣＡＣＧＣ−３’（配列番号６）を用いて増幅した。この第二のＰＣＲは、９４℃で５分間の反応の後に、９４℃で３０秒間、５５℃で１分間および７２℃で２分間の反応を３０サイクルという条件で行なった。この２段階のＰＣＲにより、ＵＧＴ１Ａ９のエクソン１を特異的に増幅した。次いで、得られたＰＣＲ産物をＰＣＲ  Ｐｒｏｄｕｃｔ  Ｐｒｅ−Ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ  Ｋｉｔ（ＵＳＢ  Ｃｏ．，  Ｃｌｅｖｅｌａｎｄ，  ＯＨ，  ＵＳＡ）で処理し、その両鎖につき、ＡＢＩ  Ｂｉｇ  Ｄｙｅ  Ｔｅｒｍｉｎａｔｏｒ  Ｃｙｃｌｅ  Ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ  Ｋｉｔ（Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ，  Ｆｏｓｔｅｒ  Ｃｉｔｙ，  ＣＡ，  ＵＳＡ）およびプライマー：ＵＧＴ１Ａ９Ｆ３：５’−ＴＧＣＴＣＣＴＣＴＴＴＣＣＴＡＴＧＴＣＣ−３’（配列番号７）；およびＵＧＴ１Ａ９Ｒ３：５’−ＴＧＴＣＡＡＡＴＣＡＣＡＧＴＴＣＡＧＴＡＡＡＧＡ−３’（配列番号８）を用いて直接配列決定した。余分な色素は、ＤｙｅＥｘ９６  Ｋｉｔ（Ｑｉａｇｅｎ，  Ｈｉｌｄｅｎ，  Ｇｅｒｍａｎｙ）を用いて除去した。得られた溶出液を、ＡＢＩ  Ｐｒｉｓｍ  ３７００  ＤＮＡ  Ａｎａｌｙｚｅｒ（Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）を用いて分析した。
【００５５】
決定されたヌクレオチド配列をＵＧＴ１Ａ９の参照配列（ＧｅｎＢａｎｋアクセス番号：ＡＦ２９７０９３）と比較したところ、遺伝子変異がヘテロ接合体として見出された。この遺伝子変異は、ＵＧＴ１Ａ９のｍＲＮＡに対するｃＤＮＡのヌクレオチド配列において、翻訳開始コドンの第一ヌクレオチドであるアデニン（Ａ）残基を１とした場合に第７６６ヌクレオチドとなるグアニン（Ｇ）残基がアデニン（Ａ）残基に置換されるものである（７６６Ｇ＞Ａ変異；この変異の位置は、配列番号１中の第７６６ヌクレオチドに相当する）。この変異により、発現されるＵＧＴ１Ａ９タンパク質の第２５６アミノ酸であるアスパラギン酸残基がアスパラギン残基に置換される（Ａｓｐ２５６Ａｓｎ変異；この変異の位置は、配列番号２中の第２５６アミノ酸に相当する）。
【００５６】
（３）プラスミドの構築
ヒト肝臓ポリＡ＋ＲＮＡ（ＯｒｉＧｅｎｅ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，  Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ，  ＭＤ）から、ＳｕｐｅｒＳｃｒｉｐｔ  ｆｉｒｓｔ−ｓｔｒａｎｄ  ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ  ｓｙｓｔｅｍ  ｆｏｒ  ＲＴ−ＰＣＲ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，  Ｃａｒｌｓｂａｄ，  ＣＡ，  ＵＳＡ）およびオリゴ（ｄＴ）プライマーを用いてｃＤＮＡを合成した。得られた一本鎖ｃＤＮＡから、ａｔｔＢアダプターＰＣＲによって野生型ＵＧＴ１Ａ９をコードするｃＤＮＡを増幅し、該ｃＤＮＡを、ＧＡＴＥＷＡＹＴＭクローニング技術（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）によってｐＤＯＮＲ２０１ベクター中にクローニングした。すなわち、まず、１２ヌクレオチドの部分的ａｔｔＢ配列を５’末端に含む遺伝子特異的プライマー：ａｔｔＢ１  ＵＧＴ１Ａ９Ｆ：５’−ＡＡＡＡＡＧＣＡＧＧＣＴＧＣＡＧＴＴＣＴＣＴＧＡＴＧＧＣＴＴＧＣＡ−３’（配列番号９）；およびａｔｔＢ２  ＵＧＴ１ＡＲ：５’−ＡＧＡＡＡＧＣＴＧＧＧＴＣＴＣＡＡＴＧＧＧＴＣＴＴＧＧＡＴＴＴＧＴＧＧＧ−３’（配列番号１０）（下線部は部分的ａｔｔＢ配列である）を用いた１０サイクルのＰＣＲにより、ＵＧＴ１Ａ９のｃＤＮＡを増幅した。次いで、得られた反応混合物の一部を、ａｔｔＢアダプタープライマー：ａｔｔＢ１  Ａｄａｐｔｏｒ：５’−ＧＧＧＧＡＣＡＡＧＴＴＴＧＴＡＣＡＡＡＡＡＡＧＣＡＧＧＣＴ−３’（配列番号１１）；およびａｔｔＢ２  Ａｄａｐｔｏｒ：５’−ＧＧＧＧＡＣＣＡＣＴＴＴＧＴＡＣＡＡＧＡＡＡＧＣＴＧＧＧＴ−３’（配列番号１２）を用いた２５サイクルの第二のＰＣＲに供した。得られたａｔｔＢ配列付加産物を、ＧＡＴＥＷＡＹ  ＢＰ反応を用いたａｔｔＢ部位とａｔｔＰ部位との間における組換えにより、ｐＤＯＮＲ２０１ベクター中にクローニングした。５’−リン酸化オリゴヌクレオチドプライマー（ＵＧＴ１Ａ９  ７６６Ａ）：５’−ｐｈｏｓｐｈｏ−ＴＴＧＧＴＴＧＴＴＧＣＧＡＡＣＧＡＡＣＴＴＴＧＴＴＴＴＧＧＡＣＴＡＴＣ−３’（配列番号１３）（下線部は置換されるヌクレオチドである）を用いるＱｕｉｋＣｈａｎｇｅ  ｍｕｌｔｉ  ｓｉｔｅ−ｄｉｒｅｃｔｅｄ  ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ  ｋｉｔ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ，  Ｌａ  Ｊｏｌｌａ，  ＣＡ，  ＵＳＡ）を利用して、ｐＤＯＮＲ２０１中の野生型ＵＧＴ１Ａ９  ｃＤＮＡクローン中に変異（７６６Ｇ＞Ａ）を導入した。増幅過程において誤ったヌクレオチドが導入されていないことを確認するために、全プラスミド構築物の両鎖のＤＮＡ配列を決定した。ｐＤＯＮＲ２０１からのそれぞれのＵＧＴ１Ａ９断片を、ＧＡＴＥＷＡＹ  ＬＲ反応を用いたａｔｔＬ部位とａｔｔＲ部位との間における組換えにより、ｐｃＤＮＡ−ＤＥＳＴ４０中にサブクローニングした。
【００５７】
（４）ＣＯＳ−１細胞中における野生型および変異型（７６６Ｇ＞Ａ）ＵＧＴ１Ａ９の発現
ＣＯＳ−１細胞（ヒューマンサエンス研究資源バンク、大阪、日本国）を、１０％ウシ胎児血清を含むダルベッコ改変イーグル培地中で増殖させた。トランスフェクションの前日に、ＣＯＳ−１細胞を、５．５×１０４細胞／ｃｍ２の密度で１００ｍｍ培養皿にプレーティングした。翌日、培地を８ｍｌのＯｐｔｉ−ＭＥＭ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）に置換し、ＬｉｐｏｆｅｃｔＡＭＩＮＥ  ２０００試薬（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を用いて発現プラスミドをトランスフェクトした。すなわち、希釈したＤＮＡ（８１０μｌのＯｐｔｉ−ＭＥＭ中の１４μｇ）と希釈したＬｉｐｏｆｅｃｔＡＭＩＮＥ  ２０００試薬（８１０μｌのＯｐｔｉ−ＭＥＭ中の４８μｌ）とを混合し、室温で２０分間インキュベートした。得られたＤＮＡ−ＬｉｐｏｆｅｃｔＡＭＩＮＥ  ２０００複合体を各培養皿に直接添加した。
【００５８】
トランスフェクションの４８時間後、ＣＯＳ−１細胞を、氷冷したリン酸緩衝化生理食塩水で２回洗浄し、０．２５Ｍスクロース−５ｍＭＨＥＰＥＳ（ｐＨ７．４）（緩衝化スクロース）中に回収した。得られた細胞懸濁液について、超音波処理装置ＵＳＰ−３００（島津製作所、京都、日本国）での１０秒間の処理を３回行ない、次いで、１０５，０００×ｇでの遠心処理を６０分間行なった。得られたペレットを緩衝化スクロース中に再懸濁し、−８０℃で保存した。
【００５９】
（５）ウェスタンブロッティング
ＣＯＳ−１細胞からの２０μｇの膜画分タンパク質をＳＤＳ−ＰＡＧＥ（１０％ゲル）によって電気泳動し、ＰＶＤＦ膜上に転写した。各ＵＧＴ１Ａ９タンパク質は、ウサギ抗ヒトＵＧＴ１Ａ抗体（１：５０００で希釈；Ｇｅｎｔｅｓｔ，  Ｗｏｂｕｒｎ，  ＭＡ，  ＵＳＡ）および西洋ワサビペルオキシダーゼに結合したロバ抗ウサギＩｇ抗体（１：２０００で希釈）を用いる化学蛍光によって、免疫化学的に検出した。化学蛍光（ＥＣＬ−ｐｌｕｓ，  Ａｍｅｒｓｈａｍ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ，  Ｐｉｓｃａｔａｗａｙ，  ＮＪ，  ＵＳＡ）は、Ｔｙｐｈｏｏｎ  ９４００  Ｖａｒｉａｂｌｅ  Ｍｏｄｅ  ＩｍａｇｅｒおよびＩｍａｇｅＱｕａｎｔ解析ソフトウェア（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｄｙｎａｍｉｃｓ，  Ｓｕｎｎｙｖａｌｅ，  ＣＡ，  ＵＳＡ）を用いて検出・定量した。
【００６０】
各サンプルのＵＧＴ１Ａ９タンパク質発現量は、野生型試料の一つの発現量を基準とする相対量として算出した。また、これらのデータは、３つの別々に調製した試料から得られたものである。図１に示すように、Ａｓｐ２５６Ａｓｎ変異体の相対発現量は０．７６±０．０５であり、野生型の発現量との間で、Ｓｔｕｄｅｎｔのｔ検定による有意差が認められた（ｐ＜０．０５）。
【００６１】
（６）酵素アッセイ
野生型および変異型ＵＧＴ１Ａ９のグルクロン酸抱合活性を、文献（Ｈａｎｉｏｋａ，  Ｎ．，  Ｏｚａｗａ，  Ｓ．，  Ｊｉｎｎｏ，  Ｈ．，  Ａｎｄｏ，  Ｍ．，  Ｓａｉｔｏ，  Ｙ．  ａｎｄ  Ｓａｗａｄａ，  Ｊ．：  Ｈｕｍａｎ  ｌｉｖｅｒ  ＵＤＰ−ｇｌｕｃｕｒｏｎｏｓｙｌｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅ  ｉｓｏｆｏｒｍｓ  ｉｎｖｏｌｖｅｄ  ｉｎ  ｔｈｅ  ｇｌｕｃｕｒｏｎｉｄａｔｉｏｎ  ｏｆ  ７−ｅｔｈｙｌ−１０−ｈｙｄｒｏｘｙｃａｍｐｔｏｔｈｅｃｉｎ．  Ｘｅｎｏｂｉｏｔｉｃａ  ３１：  ６８７−６９９，  ２００１）に記載の方法に従ってアッセイした。すなわち、５０ｍＭのＴｒｉｓ−ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．４）、２．５〜１５０μＭのＳＮ−３８（ヤクルト本社、東京、日本国、Ｌｏｔ：  ９７０５０７Ｒ）、ＣＯＳ−１細胞の膜画分（タンパク質量：１００μｇ）、および１０ｍＭのＭｇＣｌ２を含む混合物を調製し、この混合物を３７℃で１分間インキュベートした。その後、この混合物に５ｍＭのＵＤＰ−グルクロン酸を添加することにより反応を開始し、該混合物を３７℃で８０分間インキュベートした。この反応は、１００μｌの１０％（ｗ／ｖ）ＨＣｌＯ４の添加によって停止した。得られた混合物を１２，０００×ｇ、４℃で１０分間遠心処理し、透明な上清を０．４５μｍＰＴＦＥ膜フィルターを用いて濾過し、ＨＰＬＣにより分析した。
【００６２】
見かけの酵素動力学パラメーター（Ｋｍ、Ｖｍａｘ、およびＶｍａｘ／Ｋｍ）は、各種濃度のＳＮ−３８（２．５〜１５０μＭ）の存在下において測定された初期反応速度値を、Ｐｒｉｓｍ  ３．０（Ｇｒａｐｈ  Ｐａｄ  Ｓｏｆｔｗａｒｅ，  Ｉｎｃ．，  Ｓａｎ  Ｄｉｅｇｏ，  ＣＡ，  ＵＳＡ）を用いてミカエリス・メンテンの式にフィッティングすることにより算出した。また、動力学パラメーターは、３つの別々に調製したＵＧＴ１Ａ９タンパク質から得られたものである。さらに、統計学的な比較は、Ｓｔｕｄｅｎｔのｔ検定によって行なった。
【００６３】
図２に示す代表的な非線形回帰曲線から明らかなように、上記の酵素反応はミカエリス・メンテンの動力学に従うものであった。さらに、下記の表１は、野生型ＵＧＴ１Ａ９およびＡｓｐ２５６Ａｓｎ変異型ＵＧＴ１Ａ９によるＳＮ−３８グルクロン酸抱合についての見かけの動力学パラメーターをまとめたものである。
【００６４】
【表１】
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【００６５】
野生型ＵＧＴ１Ａ９によるＳＮ−３８グルクロン酸抱合の見かけのＫｍ値が１９．３μＭであったのに対し、Ａｓｐ２５６Ａｓｎ変異体によるＫｍ値は４４．４μＭであった。また、これらの酵素反応におけるＶｍａｘ値は、野生型およびＡｓｐ２５６Ａｓｎ変異型について、それぞれ、膜タンパク質１ｍｇ当たり２．９４および０．２４ｐｍｏｌ／ｍｉｎであった。このＶｍａｘ値を発現量の相違について標準化した場合、ＳＮ−３８グルクロン酸抱合の効率（標準化されたＶｍａｘ／Ｋｍ）は、野生型およびＡｓｐ２５６Ａｓｎ変異型について、それぞれ、膜タンパク質１ｍｇ当たり１５３および７．１ｎｌ／ｍｉｎであった。これらの動力学パラメーターにより、Ａｓｐ２５６Ａｓｎ変異型ＵＧＴ１Ａ９は、野生型ＵＧＴ１Ａ９に比べて、ＳＮ−３８グルクロン酸抱合の機能を本質的に欠いていることが明確に実証された。
【００６６】
（７）まとめ
以上の結果から、Ａｓｐ２５６Ａｓｎ変異を有するＵＧＴ１Ａ９は、野生型に比べて、発現量が７６％に低下し、発現されたタンパク質のＳＮ−３８グルクロン酸抱合活性が４．６％に低下することが明らかとなった。
【００６７】
【配列表】
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【図面の簡単な説明】
【図１】図１は、野生型およびＡｓｐ２５６Ａｓｎ変異型それぞれのＵＧＴ１Ａ９タンパク質の発現量（野生型試料の一つの発現量を基準とする相対量）を示す棒グラフである。
【図２】図２は、野生型およびＡｓｐ２５６Ａｓｎ変異型それぞれのＵＧＴ１Ａ９の、ＳＮ−３８に対するグルクロン酸抱合活性を示す図である。
【図１】
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【図２】
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