(57)【要約】【課題】煩雑な操作を必要とせず、迅速かつ安価にマイコプラズマを検出出来る手段を提供する【課題解決手段】  マイコプラズマに特異的なDNA配列部分をプライマーとして用いて、被験試料から得られるDNAを鋳型としてPCR反応を行うとともに、該反応系に２本鎖DNAにインターカレートする蛍光試薬を含有せしめ、蛍光強度の変動を指標とし、被験試料中のマイコプラズマをリアルタイムで検出する。【特許請求の範囲】
【請求項１】
マイコプラズマに特異的なDNA配列部分をプライマーとして用いて、被験試料から得られるDNAを鋳型としてPCR反応を行うとともに、該反応系に２本鎖DNAにインターカレートする蛍光試薬を含有せしめることを特徴とする、マイコプラズマの検出方法。
【請求項２】
プライマーのうち少なくとも一方が、複数種のマイコプラズマに共通するDNA配列部分からなるものである、請求項１に記載のマイコプラズマの検出方法。
【請求項３】
マイコプラズマに特異的なDNA配列部分が、マイコプラズマの23S rRNA領域由来の配列部分である請求項１又は２のいずれかに記載のマイコプラズマの検出方法。
【請求項４】
配列表の配列番号１〜４で表されるDNAのいずれか一種と、配列番号５で示されるDNAをプライマーとして用いることを特徴とする、請求項１〜３のいずれかに記載のマイコプラズマの検出方法。
【請求項５】
マイコプラズマが、培養細胞に感染するものである請求項４に記載のマイコプラズマの検出方法。
【請求項６】
配列表の配列番号１で表されるDNA、およびこれと相補的配列を有するDNAまたはRNA。
【請求項７】
配列表の配列番号２で表されるDNA、およびこれと相補的配列を有するDNAまたはRNA。
【請求項８】
配列表の配列番号３で表されるDNA、およびこれと相補的配列を有するDNAまたはRNA。
【請求項９】
配列表の配列番号４で表されるDNA、およびこれと相補的配列を有するDNAまたはRNA。
【請求項１０】
配列表の配列番号５で表されるDNA、およびこれと相補的配列を有するDNAまたはRNA。
【請求項１１】
配列表の配列番号１〜４で表されるDNAのいずれか一種以上と、同配列番号５で表されるDNAを含むことを特徴とする、マイコプラズマを検出するために用いるPCRプライマー試薬キット。
【請求項１２】
マイコプラズマに特異的なDNA配列部分を含むプライマー、および２本鎖DNAにインターカレートする蛍光試薬を含むことを特徴とする、マイコプラズマの検出試薬キット。
【請求項１３】
配列表の配列番号１〜４で表されるDNAのいずれか一種以上と、同配列番号５で表されるDNAを含み、かつ２本鎖DNAにインターカレートする蛍光試薬を含むことを特徴とする、マイコプラズマの検出試薬キット。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、マイコプラズマの検出方法、該検出方法に使用するDNA、および該微生物の検出試薬キットに関する。
【背景技術】
【０００２】
マイコプラズマの検出法としては、分離培養法、DNA 蛍光染色法、およびPCR法等が一般に知られている。分離培養法およびDNA 蛍光染色法は、数日から数週間の培養が必要であり、測定時間が長い、観察に経験を要する等の問題点がある。またPCR法として販売されているキットにおいては、感度をあげるために Nested PCR（２段階PCR）を採用しており、PCRを２度行い、さらにゲルに流して染色を行い判定するという手順を行うためかなりの時間を要する。
このキットには増幅産物の長さによってマイコプラズマ種が同定できるという利点があるが、２度のPCRを終えた時点では増幅鎖長が同じものがあり、確実に種を特定するためには制限酵素での切断が必要となる。これにはさらに時間と手間を要し、種の同定が必要でない場合にはこれらの利点は不要である。その他にも16S rRNA 領域を用いてプライマーを作り、PCR を行う方法が一般に知られているが、増幅する鎖長が長く増幅に時間がかかり、ゲルに流し染色を行うため時間と手間を要する。また16S rRNA 領域は大腸菌等の原核生物のそれとも相同性が高いため、マイコプラズマに対する特異性が低くなる場合がある。
【０００３】
一方、リアルタイムPCR によりマイコプラズマを検出するものとして、蛍光標識プローブを用いる試験キットが市販されているが、該蛍光標識プローブは高価であり、これを使用する試験キットも当然高価となるほか、さらにこのキットは、リアルタイムPCRの系としての最適化がなされておらず、従来の16S rRNA 領域のプライマーを用いていると考えられる。そのため増幅に要する時間が長い、マイコプラズマだけでなく大腸菌のDNA 等も検出してしまう、感度が悪い等の問題点があった。
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００４】
本発明の課題は、上記従来技術の問題点を解決し、煩雑な操作を必要とせず、迅速、安価にマイコプラズマを検出するための手段を提供しようとするものである。
【課題を解決するための手段】
【０００５】
本発明者等は、上記課題を解決すべく鋭意研究の結果、マイコプラズマに特異的なDNA配列部分をプライマーとして用いて、被験試料から得られるDNAを鋳型としてPCR反応を行うとともに、該反応系に２本鎖DNAにインターカレートする蛍光試薬を含有せしめることにより、煩雑な操作を必要とせず安価に、かつリアルタイムでマイコプラズマを検出できることを見いだし、本発明を完成するに至ったものである。
【０００６】
すなわち、本発明は以下の（１）〜（１３）に係るものである。
（１）  マイコプラズマに特異的なDNA配列部分をプライマーとして用いて、被験試料から得られるDNAを鋳型としてPCR反応を行うとともに、該反応系に２本鎖DNAにインターカレートする蛍光試薬を含有せしめることを特徴とする、マイコプラズマの検出方法。
（２）  プライマーのうち少なくとも一方が、複数種のマイコプラズマに共通するDNA配列部分からなるものである、（１）に記載のマイコプラズマの検出方法。
（３）  マイコプラズマに特異的なDNA配列部分が、マイコプラズマの23S rRNA領域由来の配列部分である（１）又は（２）のいずれかに記載のマイコプラズマの検出方法。
（４）  配列表の配列番号１〜４で表されるDNAのいずれか一種と、配列番号５で示されるDNAをプライマーとして用いることを特徴とする、（１）〜（３）のいずれかに記載のマイコプラズマの検出方法。
（５）  マイコプラズマが、培養細胞に感染するものである（４）に記載のマイコプラズマの検出方法。
（６）  配列表の配列番号１で表されるDNA、およびこれと相補的配列を有するDNAまたはRNA。
（７）  配列表の配列番号２で表されるDNA、およびこれと相補的配列を有するDNAまたはRNA。
（８）  配列表の配列番号３で表されるDNA、およびこれと相補的配列を有するDNAまたはRNA。
（９）  配列表の配列番号４で表されるDNA、およびこれと相補的配列を有するDNAまたはRNA。
（１０）  配列表の配列番号５で表されるDNA、およびこれと相補的配列を有するDNAまたはRNA。
（１１）  配列表の配列番号１〜４で表されるDNAのいずれか一種以上と、同配列番号５で表されるDNAを含むことを特徴とする、マイコプラズマを検出するために用いるPCRプライマー試薬キット。
（１２）  マイコプラズマに特異的なDNA配列部分を含むプライマー、および２本鎖DNAにインターカレートする蛍光試薬を含むことを特徴とする、マイコプラズマの検出試薬キット。
（１３）  配列表の配列番号１〜４で表されるDNAのいずれか一種以上と、同配列番号５で表されるDNAを含み、かつ２本鎖DNAにインターカレートする蛍光試薬を含むことを特徴とする、マイコプラズマの検出試薬キット。
【発明の効果】
【０００７】
本発明のマイコプラズマの検出法によれば、検出に要する時間は、以下に示す融解曲線を得る時間まで含めてPCR開始から終了までが110分程度であり、極めて迅速にマイコプラズマの検出を行うことができる。さらに特異性の高いプライマー２（下記実施例３参照）を用いれば、融解曲線解析が不必要なため、75分程度で検出を行うことが出来る。この検出までの経過はコンピュータによってリアルタイムに可視化され、ゲルでの電気泳動などの手間を必要としない。
また、本発明ではプローブを用いないため蛍光標識されたプローブに係る費用も要しない。したがって、これらのことから企業や細胞バンクなどで業務として大量の細胞の検査を行う場合などにも本発明は極めて有効な手段である。
【発明を実施するための最良の形態】
【０００８】
本発明は、マイコプラズマの検出法、検出試薬等に係り、本明細書でマイコプラズマとは、一般に呼称されるマイコプラズマを指し、学術名でいえば、マイコプラズマタレス目に属する微生物群を指し、さらに具体的にはマイコプラズマ属、アコレプラズマ属等に属する微生物をいう。
【０００９】
まず、本発明の検出原理について説明する。
本発明においては、マイコプラズマのDNA中、マイコプラズマに特異的な配列を有する領域部分をプライマーとし、被験試料から得られた全DNAを鋳型としてPCRを行う。このとき被験試料がマイコプラズマを含んでいれば、これから得られたDNA中にはマイコプラズマDNAが含まれ、マイコプラズマDNA中の上記プライマー間に対応する領域が増幅され、この領域に対応する２本鎖DNAが多量に形成される。
【００１０】
一方、DNA分子は相補的な塩基対をもつ２重らせん構造をとるため塩基対のスタッキング間に平面構造を有する分子が挿入される。これをインターカレートするといい、本発明においてはインターカレートする蛍光試薬を使用する。この蛍光試薬は、２本鎖DNAにインターカレートして蛍光を発する。したがって、PCR反応系にこの蛍光色素を含有させておくことにより、上記PCR反応によりマイコプラズマDNA中の上記プライマー間に対応する領域が増幅されていくにつれ、蛍光強度が増大する。
【００１１】
このインターカレートはDNAの塩基配列に対して非特異的である。
しかし、上記PCR反応において使用するプライマーは、マイコプラズマに特異的な配列であるため、マイコプラズマ以外のDNAとは塩基対を形成せず、マイコプラズマ以外のDNAがPCR反応系に含まれていても、増幅されない。
したがって、PCR反応のサイクルが進むにつれ、蛍光強度が増大していけば、マイコプラズマ由来のDNAが含まれていたことになり、この蛍光強度の増大をグラフ化することにより、被験試料中のマイコプラズマを検出できる。すなわち、本発明はリアルタイムPCR法により被験試料中のマイコプラズマを検出するものである。
【００１２】
上記プライマーは、例えばマイコプラズマの特定の種のみ検出したいときには、その種に特異的なDNA配列領域を選び合成する。また、マイコプラズマの複数種を検出しようとする場合には、これらマイコプラズマDNAに共通する配列を選び合成してもよく、また、これら各種ごとに特異的な配列を合成し、得られたプライマーを混合してPCR反応を行ってもよい。また、この場合、マイコプラズマに共通するDNA配列領域をセンスあるいはアンチセンスプライマーとし、特定種に特異的なDNA配列領域をアンチセンスあるいはセンスプライマーとして混合使用してもよい。これにより一方のプライマー合成の手間を省くことが可能になる。すなわち、マイコプラズマDNA一般に共通する配列を合成しておけば、一対のプライマーのうち検出したいマイコプラズマDNAに特異的配列のみを合成すればよく、簡便である。当然この場合にも一方のプライマーとして、複数種のマイコプラズマに特異的なDNA配列領域を合成しこれらを混合使用すれば、これら複数種のマイコプラズマを検出することができる。
【００１３】
さらに本発明を具体的に説明する。
本発明において、PCRのプライマーとして用いるDNAとしては、例えば配列番号１〜５の塩基配列を有するDNAが挙げられる。
これらプライマーは、培養細胞に感染することが確認されている代表的なマイコプラズマ7種およびアコレプラズマ１種を迅速に、特異的に検出することを目的として設計したものである。すなわち、上記混合プライマーを用い、被験試料から得られるDNAを鋳型とし、２本鎖DNAにインターカレートする蛍光試料を用いてリアルタイムPCR を行う。本発明においてはプローブを用いない。
【００１４】
上記プライマーは、センスプライマー４種、アンチセンスプライマー１種によって構成されている。本発明実施の際は、センスプライマー４種のうち３種（配列番号１又は２、および３、４）とアンチセンスプライマー１種（配列番号５）を混合して用いる。これらのプライマーは、培養細胞に汚染することが確認されているマイコプラズマ７種 およびアコレプラズマ１種に特異的であり、かつリアルタイム PCR に適することを条件とし作製したものである。
16s rRNA 領域は核酸配列がデータベースに一般公開されているため、プライマーの作製が容易であるが、同じく培養細胞に汚染する可能性の高い大腸菌等の原核生物との共通配列が多いので、マイコプラズマに特異性の高い核酸領域を23S rRNA 領域から見いだしたものである。
【００１５】
上記プライマーに用いる核酸配列の決定には各マイコプラズマの
“16S-23S rRNA intergenic spacer complete sequence and 23S rRNA gene, partial sequence” (The Entrez Nucleotides database) を用いた。ただしM.salivariumとM.pirum については同領域の核酸配列は不明である。配列番号１又は２で示される核酸配列は,６種のマイコプラズマ ( M.arginini, M.fermentans, M.hominis, M.hyorhinis, M.orale, 
M.salivarium ) に共通の配列である。図 1の（１）に示される、５種のマイコプラズマ（ M.arginini, M.fermentans, M.hominis, M.hyorhinis, M.orale, ）に共通であることを確認したセンスプライマー（配列表の配列番号１又は２）とアンチセンスプライマー（配列表の配列番号５）でマイコプラズマ７種及びアコレプラズマ１種のDNAについてPCRを行ったところ、M.salivarium は検出されたため、同様の配列を有すると考えられた。M.pirum, A.laidlawiiについては検出されなかった。
【００１６】
そこで、A.laidlawii については、同領域の核酸配列からA.laidlawiiに特異的な配列（同配列番号３）を個別に用いた（図1の（２））。  また、M.pirum については23S rRNA領域の配列が不明のため独自に配列解析を行った。 “M. pirum DNA, 16S - 23S rRNA intergenic spacer region”(The Entrez Nucleotides database) よりM.pirum用のセンスプライマーを作製し、図１のアンチセンスプライマー（プライマー５）と共にPCR を行った。増幅された領域の配列解析を行った結果より、M. pirum 23S rRNA 領域にM.pirum 特異的な配列を見いだし、プライマー４（同配列番号４）とした（図１の（３））。
これらの結果を総合して、５種のプライマー１〜５を決定した（同配列番号１〜５）。
【００１７】
以下に、上記５種のプライマーの塩基配列を示す
プライマー１： TCTGAAT(C/T)TGCCGGGACC
プライマー２： TCTGAAT(C/T)TGCCGGGACCACC
プライマー３： GGAATCCCGTTTGAAGATAGGA
プライマー４： GGAAAATGTTATTTTGACGGAACCT
プライマー５： CTTTCC(A/C)TCAC(G/T)GTACT(A/G)GTTCACT
【００１８】
プライマーの設計はソフトウェア「Primer Express version 1.5」( Applied Biosystems)を用いて行った。リアルタイムPCR用プライマーの設計ガイドラインに従ってプライマーを作成した。
このプライマーによってリアルタイムPCRを行ったが、培養細胞に汚染する可能性の高い大腸菌、また人の疾患に関与すると言われるM.pneumoniae, M.genitalium, M.gallisepticum のDNA は検出されなかった。
上記５種のプライマーのうち４種（プライマー１、３、４、５、又はプライマー２、３、４、５）を同時に用いることで、培養細胞に汚染することが確認されているマイコプラズマ７種及びアコレプラズマ1種の検出を特異的に、迅速に行うことが可能となる。プライマー２はプライマー１に３塩基付加することで、マイコプラズマに対する特異性をより向上させたもので、通常混合プライマーとしては１又は２、および３、４、５を混合して用いる。またM.pirum, A.laidlawii におけるプライマー３（同配列番号３）、およびプライマー４（同配列番号４）は、これら各マイコプラズマに特異的DNA配列を用いているため、これら各プライマーをプライマー５とともに個別に用いることで種の同定も可能である。
【００１９】
このように、本発明においては、検出しようとするマイコプラズマの範囲に合わせて、プライマーの塩基配列を設計することにより、種々の被験試料に対して適用することが可能である。したがって、被験試料としては、動物細胞培養上清、培養細胞、もしくは凍結チューブの細胞または生体試料等が挙げられるがこれらに特に限定されない。
これらの試料から、DNAの調製のための通常の方法によりDNAを得ることができる。具体的には、細胞を遠心により回収し、Proteinase Kによって融解し、その希釈液をそのままPCR用試料として用いたり、DNAを精製したものを蒸留水（またはT/E）に溶かしたりする方法がある。
【００２０】
本検出方法におけるリアルタイムPCR は、試料から得られるDNA を鋳型とし、特定のプライマー対を使用する以外は、通常のプローブを用いない、２本鎖DNAにインターカレートする蛍光試料を用いるリアルタイムPCRの方法に従って行うことができる。
本発明において使用するインターカレート蛍光試薬としては、例えば
エチジウムブロマイド( EtBr )、YO-PRO-I、及びSYBR Green I等が挙げられる。
【００２１】
被験試料から得られたDNA中に検出すべきマイコプラズマ由来のDNAが存在すれば、PCRによって２本鎖のDNAが増幅され、量依存的に蛍光強度を増し、その蛍光試料の波長を検出するフィルターを設置したリアルタイムPCR装置を用いて目的の増幅産物を検出することができる。
一方、プローブを用いるリアルタイムPCRと比較しての問題点として、非特異的増幅による２本鎖DNAも検出してしまうことがあげられるが、目的とする増幅産物とこれらの非特異的増幅産物における２本鎖DNAとは、通常、融解温度（Tm値）が異なる場合が多いので、融解曲線を描かせることで区別が容易につく。この原理を説明する。
【００２２】
PCR 終了後、PCR 産物はすべて２本鎖なので、高い蛍光値を示すが、温度を徐々に上昇させると、２本鎖DNAは解離していくため、蛍光値は下がっていく。
各PCR 産物のTm 値に達した時、２本鎖DNAは１本鎖となり、急激に蛍光値が下がる。Tm 値は各PCR 産物の GC 含有量や鎖長等によって決定される。
目的の増幅産物と非特異的増幅産物は、増幅される領域、長さ共に異なると考えられるので、Tm 値も異なると考えられる。したがって、温度に対する蛍光強度変化を示すことで各 PCR 産物の Tm 値を求めることができ、それにより両者を区別することができる。本検出方法においても、目的の増幅産物と非特異的増幅産物における２本鎖DNAの融解温度（Tm値）が異なることを確認している。
以下に、実施例を示すが、本発明はこれら実施例に限定されるものではない。
【実施例】
【００２３】
以下に示す実施例１、実施例３、比較例１、比較例２においては、市販品のマイコプラズマDNAを用いて行ったものであり、実施例２および実施例４においては、実際にマイコプラズマに汚染された動物培養細胞を用いたものである。
また、すべての例においてはリアルタイムPCR 解析機能の付属したPCR 機器 I Cycler iQ (Bio-Rad社)を用いたため、測定時間に関与する加熱速度、冷却速度は一定である。
〔実施例１〕                                 
【００２４】
（１）M.arginini (23838D), M.fermentans (19989D), M.hyorhinis (17981D), M.orale (23714D), M.pirum (25960D)については American Type Culture Collection （以下ATCCと略する） より、M.salivarium (010113), A.laidlawii (010116) についてはMinerva Biolabs Gmbh より Total DNAをそれぞれ入手し、M.hominis については NBRC（生物遺伝資源センター）より入手した菌株（NBRC 14850）を培養し、通常の方法によりDNAを精製し、Total DNAを得た。大腸菌 (E.coli)についてはTaKaRaよりTotal DNAを入手した。上記マイコプラズマ、アコレプラズマのDNA溶液を 0.2 ng/μlに調製して被験試料溶液とした。またコントロールとして大腸菌DNA溶液0.2 ng/μlおよびDNAを含まない溶液（蒸留水）も用意した。
【００２５】
一方、インターカレートする蛍光試薬としてSYBR Green Iを用い、また、配列表の配列番号１，３，４，５の塩基配列からなるプライマー１，３，４，５（図１参照）の混合プライマーを用いて、マスターミクスチャー ( iQ SYBR Green Supermix (Bio-Rad社) 25μl, Primers mix ( 2.5 μM each ) 6μl, water 14μl )を調製した。このマスターミクスチャー45μl に、上記DNA を含有する各被験試料溶液、コントロール溶液 5μl を加えて、それぞれ、95℃ 3分を1サイクル、95℃ 15秒＋60℃ 30秒を40サイクルの条件でリアルタイム PCRを行った。PCR は96穴プレートを用いて行い、10個の穴にマスターミクスチャーを45μlずつ分注し、それぞれの穴に各被験試料溶液（マイコプラズマ及びアコレプラズマDNA ８種）およびコントロール溶液 （大腸菌DNA溶液及びDNA の含まれない蒸留水 ）各5μl を加えて同時に検出を行った。図２−１（１）に、各PCR反応過程の蛍光強度グラフを示す。これによれば、実験に用いたDNA量は各1 ngであるが、マイコプラズマ７種及びアコレプラズマ１種共にPCR 反応のみで十分に検出されている。
また、この際要する時間は反応開始から終了まで約75分であった。
【００２６】
（２）次いで、上記（１）のPCR操作の後、各試料について、それぞれ95℃ 1分、55℃ 1分でそれぞれ１サイクルPCRを行い、その後55℃から95℃まで10秒ごとに0.5℃ずつ上昇させながら、リアルタイムで蛍光強度を測定し、各試験試料の融解曲線を得た。図２−２（２）にその結果を示す。
これによれば、目的増幅物のTm 値は80.5〜81.5、非特異的増幅物のTm値は76.5〜77.5である。また図４に示されるように、大腸菌DNAは検出されず、その他のマイコプラズマのDNA（例えば、M.pneumoniae, M.genitalium, M.gallisepticum等）も検出されないことを確認した。
〔実施例２〕
【００２７】
M.hyorhinis に汚染したマウス細胞凍結チューブ、M.fermentansに汚染したマウス細胞凍結チューブ、汚染していないマウス細胞凍結チューブをそれぞれ融解し、各5 X 105個の細胞から以下の方法によりDNAを抽出した。各5 X 105個の細胞を1 mlチューブに移し、13000 g, 10分の遠心を行った。上清を取り除き、細胞塊をLysis Buffer ( 150 mM NaCl, 10 mM Tris-HCl, 10 mM EDTA ) 100μlに懸濁した。10% SDS溶液を1μl加え、250μg/ml の濃度でProteinase K を加えた。55℃で１時間インキュベートした後、酵素の働きを止めるため95℃で10分インキュベートした。その後、500μl の滅菌蒸留水を加えた。この各溶液を試験溶液として以下に用いた。
【００２８】
実施例１と同様に、マスターミクスチャー ( iQ SYBR Green Supermix (Bio-Rad社) 25μl, Primers mix (2.5μM each) 6 μl, water 14 μl ) 45μl に上記各試料溶液5μl を加えて、95℃ 3分を1サイクル、95℃ 15秒＋60℃ 30秒を40サイクルの条件でリアルタイムPCR を行った。さらに95℃ 1分、55℃ 1分をそれぞれ１サイクル、55℃から95℃まで10秒ごとに0.5℃ずつ上昇させるという条件で融解曲線を得た。結果を図３に示す。図３（１）および（２）によれば、マウス細胞を汚染しているM.hyorhinis及びM.fermentansは明瞭に検出されており、汚染のない細胞ではマイコプラズマ様の増幅産物は全く確認されない。その他にも、ヒト、ラット、ハムスター、サル由来の汚染のない細胞で擬陽性が検出されないことも確認した。
〔実施例３〕
【００２９】
実施例１で用いたプライマー１の替わりに配列表の配列番号２の塩基配列からなるプライマー２を用いて、プライマー２，３，４，５の混合プライマーとし、マスターミクスチャー( iQ SYBR Green Supermix (Bio-Rad社) 25μl, Primers mix (2.5μM each) 6μl, water 14μl )を調整した。プライマー２はプライマー１に３塩基付加することで、マイコプラズマに対する特異性をより高めたものである。これにより非特異的増幅は起こりにくくなり、融解曲線による目的増幅物の判別という手順が省略され、実施例１と比較し、検出時間が短縮される。
【００３０】
このマスターミクスチャー45μl に、実施例１で用いたDNA を含有する各被験試料溶液、コントロール溶液 5μl を加えて、それぞれ、95℃ 3分を1サイクル、95℃ 15秒＋65℃ 30秒を40サイクルの条件でリアルタイム PCRを行った。PCR は96穴プレートを用いて行い、10個の穴にマスターミクスチャーを45μlずつ分注し、それぞれの穴に各被験試料溶液（マイコプラズマ及びアコレプラズマDNA ８種）及びコントロール溶液 （大腸菌DNA溶液及びDNA の含まれない蒸留水 ）各5μl を加えて同時に検出を行った。図３に、各PCR反応過程の蛍光強度グラフを示す。実験に用いたDNA量は各1 ngである。この際要する時間は反応開始から終了まで約75分であった。図４に示されるように、コントロール溶液において非特異的増幅が見られないため、融解曲線解析は行わなかった。
〔実施例４〕
【００３１】
M.hyorhinis に汚染したマウス細胞凍結チューブ、M.fermentansに汚染したマウス細胞凍結チューブ、汚染していないマウス細胞凍結チューブをそれぞれ融解し、各5 X 105個の細胞から以下の方法によりDNAを抽出した。各5 X 105個の細胞を1 mlチューブに移し、13000 g, 10分の遠心を行った。上清を取り除き、細胞塊をLysis Buffer ( 150 mM NaCl, 10 mM Tris-HCl, 10 mM EDTA ) 100μlに懸濁した。10% SDS溶液を1μl加え、250μg/ml の濃度でProteinase K を加えた。55℃で１時間インキュベートした後、酵素の働きを止めるため95℃で10分インキュベートした。その後、500μl の滅菌蒸留水を加えた。この各溶液を試験溶液として以下に用いた。
【００３２】
実施例３と同様に、マスターミクスチャー ( iQ SYBR Green Supermix (Bio-Rad社) 25μl, Primers mix (2.5μM each) 6 μl, water 14μl ) 45μl に上記各試料溶液5μl を加えて、95℃ 3分を1サイクル、95℃ 15秒＋65℃ 30秒を40サイクルの条件でリアルタイムPCR を行った。融解曲線解析は行わなかった。結果を図５に示す。マウス細胞を汚染しているM.hyorhinis及びM.fermentansは明瞭に検出されており、汚染のない細胞ではマイコプラズマ様の増幅産物は全く確認されなかった。その他にも、ヒト、ラット、ハムスター、サル由来の汚染のない細胞で擬陽性が検出されないことも確認した。
〔比較例１〕
【００３３】
以下の比較例は、Nested PCR（２段階PCR）を採用した市販キットを用い、その使用マニュアルにしたがい、実施例１の被験試料についてマイコプラズマの検出を行ったものである。
実施例１と同様にして各DNAを含有する被験試料溶液およびコントロール溶液をそれぞれ調製した。
マスターミクスチャー ( 1st stage Primers 1 μl, Taq Polymerase Buffer 45 μl, Taq Polymerase 1unit ) のうち45μl に上記各試料溶液及びコントロール溶液をそれぞれ５μl 加えて、94℃ 2分を１サイクル、94 ℃ 30秒＋ 55 ℃ 30秒＋72℃ 1分を30サイクルの条件で1回目の増幅反応を行った。この際要する時間は反応の開始から終了まで約100分であった。さらに1回目の増幅産物を用いて２回目の増幅反応を行った。1st stage primers の代わりに2nd stage primers を加えたマスターミクスチャー 45μl に1回目PCR 反応液を5 μl加えて１回目と同条件で増幅反応を行った。この際も要する時間は約100分であった。２回目の増幅反応終了後、アガロースゲルを用いて増幅物の電気泳動を行った。この泳動に要する時間は約３０分から４０分であった。さらに、ゲルの染色を（約１５分）行い、UV 照射装置でバンドの有無、サイズを確認した。これらを含めて検出過程に要する時間における時間は、最短でも４時間以上であった。
【００３４】
また、初回PCRの増幅産物を２回目のPCRに使用すること、電気泳動を行うこと等作業手順が多く煩雑で、サンプル数が増えることによりさらに時間を要した。図６に上記電気泳動写真を示す。このキットは増幅産物サイズの違いでマイコプラズマ種を同定できる特色があるが、ほぼ同サイズの増幅産物を呈するマイコプラズマも存在し、確実な判定には増幅産物を濃縮して、制限酵素で切断して電気泳動を行うという手順を要する。
〔比較例２〕
【００３５】
この比較例は、リアルタイムPCR用のキットとして、蛍光プローブを使用する試験キットを用いて、該キットの使用マニュアルにしたがって、実施例１の被験試料についてマイコプラズマの検出を行ったものである。
実施例１と同様にして各DNAを含有する被験試料溶液およびコントロール溶液をそれぞれ調製した。
次いで、マスターミクスチャー( water 12.1μl, 10 X reaction buffer 2.5μl, primer/mucleotide mix 2.5 μl, internal control probe 2.5 μl, internal control 2.5 μl, Taq Polymerase 1unit, UNG 0.2 unit ) 22.5 μlに、上記各DNA含有試料溶液 2.5 μlを加えて、95℃ 10分を１サイクル、95 ℃ 30秒＋55 ℃ 30秒＋60 ℃ 30秒を45サイクルの条件（本キット説明書記載条件）でリアルタイムPCR を行った。この際要した時間は反応開始から終了まで約130分であった。
【００３６】
図７に反応過程の蛍光強度グラフを示す。これによれば、M.arginini, M.fermentans, M.hyorhinisに関しては蛍光強度がThreshold lineを越えておらず、検出されていないことが明らかである。その他のマイコプラズマに関してもすべてThreshold cycleが38 以上と高い値を示す。これは感度が低いことを示す。反応開始から終了までに要する時間もリアルタイムPCR
の系としては長いと思われる。このキットに関しては論文が示されておらず、説明書にも詳細は記載されていないが、リアルタイムPCR としての条件の最適化が不十分であると考えられる。また、図７に示すように、大腸菌DNAが検出されており、マイコプラズマ特異的検出法としては不十分な結果が生じた。
【図面の簡単な説明】
【００３７】
【図１】本発明において使用した各プライマーについて、各マイコプラズマの23SｒRNA領域中の対応位置を示した図である。
【図２−１】実施例１の（１）の試験におけるリアルタイムPCRにおいて測定された蛍光強度のグラフである。
【図２−２】実施例１の（２）の試験におけるリアルタイムPCRにおいて測定された蛍光強度のグラフである。
【図３】実施例２の（１）および（２）の試験におけるリアルタイムPCRにおいて測定された蛍光強度のグラフである。
【図４】実施例３の試験におけるリアルタイムPCRにおいて測定された蛍光強度のグラフである。
【図５】実施例４の試験におけるリアルタイムPCRにおいて測定された蛍光強度のグラフである。
【図６】比較例１における２回目のPCR産物を用いて電気泳動を行った結果を示す写真である。
【図７】比較例２の試験におけるリアルタイムPCRにおいて測定された蛍光強度のグラフである。
【図１】
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【図２−１】
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【図２−２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【配列表】
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