(57)【要約】【課題】金表面に安定に固定された区画を有するガラス基板、ならびにそのガラス基板上にＤＮＡまたはプロテインが固定されているＤＮＡチップまたはプロテインチップを提供すること【解決手段】本発明は、ガラス基材上に金表面を有し、かつ該金表面上に区画を有する、ガラス基板を提供し、該区画は、エポキシ樹脂を主成分とする熱硬化性樹脂に有機粉末を含有させて、弾性率を０．１〜３ＧＰａとした樹脂によって形成されている。本発明はさらに、上記ガラス基板の金表面上に、ジスルフィド基またはＳＨ基を有するＤＮＡあるいはジスルフィド基またはＳＨ基を有するスペーサー分子を介してＤＮＡまたはプロテインが固定されている、ＤＮＡチップまたはプロテインチップも提供する。【選択図】  なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
ガラス基材上に金表面を有し、かつ該金表面上に区画を有する、ガラス基板であって、該区画が、エポキシ樹脂を主成分とする熱硬化性樹脂に有機粉末を含有させて、弾性率を０．１〜３ＧＰａとした樹脂によって形成されている、ガラス基板。
【請求項２】
前記区画が、前記樹脂を１７０〜１８０℃の温度で５〜１０分間加圧加熱することによって形成されている、請求項１に記載のガラス基板。
【請求項３】
前記金表面上に、アルカンチオールの単分子膜が形成されている、請求項１または２に記載のガラス基板。
【請求項４】
請求項１から３のいずれかに記載のガラス基板の金表面上に、ジスルフィド基またはＳＨ基を有するＤＮＡあるいはジスルフィド基またはＳＨ基を有するスペーサー分子を介してＤＮＡが固定されている、ＤＮＡチップ。
【請求項５】
請求項１から３のいずれかに記載のガラス基板の金表面上に、ジスルフィド基またはＳＨ基を有するプロテインあるいはジスルフィド基またはＳＨ基を有するスペーサー分子を介してプロテインが固定されている、プロテインチップ。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、ＤＮＡまたはプロテインチップに関する。より詳細には、ＤＮＡまたはプロテインが金表面に固定されているＤＮＡまたはプロテインチップに関する。
【０００２】
【従来の技術】
ポストゲノム時代を迎え、遺伝子およびプロテインの機能解析、これらによる病気の診断などの目的で、ＤＮＡチップおよびプロテインチップが非常に注目されている。現在市販されているＤＮＡチップは、ガラスやシリコン基板上にＤＮＡ断片が固定されている。このＤＮＡ断片の基板への固定は、主として、ＤＮＡ断片と基板表面との静電結合によるか、あるいは、ＤＮＡ末端のアミノ基と基板表面上に付加した該アミノ基と連結可能な基との共有結合による。しかし、これらの方法による固定はあまり安定ではないため、操作中にＤＮＡが脱離しやすく、定量性がよくないという問題がある。例えば、ポリＬ−リジンを基板上にコーティングしてＤＮＡ断片と静電結合させる方法は、作製に手間がかかるだけでなく、安定な固定化ができず、夾雑物が付着しやすいという問題もある。ＤＮＡ断片を基板上に安定に固定するために、基板表面に対して化学修飾（例えば、アミノ基と連結可能な官能基の導入）を施した後、該表面にＤＮＡ断片を共有結合させたＤＮＡチップもあるが、作製に手間やコストがかかる。
【０００３】
アルカンチオールなどＳＨ基を有する化合物が、金表面に自己単分子膜の様式で結合することが広く知られており（例えば、特許文献１参照）、この原理を利用して金電極などにＤＮＡを固定することが可能である。しかし、スライドガラスに均一な金薄膜を作製する工程は高価であることが、特に実用上の障害となっている。スライドガラス表面上に金薄膜を形成した後に、スクリーン印刷などの技術を利用して区画を設けることができれば、１枚の基板上で複数の試験を実施することができることから、試薬の削減に加え、１検査あたりの費用の削減につながる。しかし、これまで、ＤＮＡやプロテインの試験に使用する条件、例えば、緩衝液、ホルムアミドのような溶媒、１００℃の温度などに耐え得るような金表面との接着強度を保った樹脂の加工は困難であった。
【０００４】
【特許文献１】
特表２００１−５０３７６０号公報
【特許文献２】
特開２００２−３５３３５２号公報
【０００５】
【発明が解決しようとする課題】
本発明は、金表面に安定に固定された区画を有するガラス基板、ならびにそのガラス基板上にＤＮＡまたはプロテインが固定されているＤＮＡチップまたはプロテインチップを提供することを目的とする。
【０００６】
【課題を解決するための手段】
本発明は、区画を形成するための樹脂について種々検討を行い、その物理的性質をある範囲内にすることによって、金表面上に安定な区画を形成し得ることを見出して完成されたものである。
【０００７】
本発明は、ガラス基材上に金表面を有し、かつ該金表面上に区画を有する、ガラス基板を提供し、該区画は、エポキシ樹脂を主成分とする熱硬化性樹脂に有機粉末を含有させて、弾性率を０．１〜３ＧＰａとした樹脂によって形成されている。
【０００８】
好適な実施態様では、上記区画は、上記樹脂を１７０〜１８０℃の温度で５〜１０分間加圧加熱することによって形成されている。
【０００９】
好適な実施態様では、上記金表面上に、アルカンチオールの単分子膜が形成されている。
【００１０】
本発明はまた、上記ガラス基板の金表面上に、ジスルフィド基またはＳＨ基を有するＤＮＡあるいはジスルフィド基またはＳＨ基を有するスペーサー分子を介してＤＮＡが固定されている、ＤＮＡチップを提供する。
【００１１】
本発明はさらに、上記ガラス基板の金表面上に、ジスルフィド基またはＳＨ基を有するプロテインあるいはジスルフィド基またはＳＨ基を有するスペーサー分子を介してプロテインが固定されている、プロテインチップを提供する。
【００１２】
【発明の実施の形態】
本発明において、「ＤＮＡチップ」とは、基板上にプローブとして種々のＤＮＡ断片を固定したものをいう。一般に、ＤＮＡマイクロアレイなどと呼ばれているものも含む。「プロテインチップ」とは、基板上にプローブとして種々のプロテイン（タンパク質、ペプチド）を固定したものをいう。「ガラス基板」とは、プローブが固定されていない基板をいう。「ガラス基材」とは、金表面および区画を有していないガラス板をいう。また、「区画」とは、基板上の金表面を、検出すべき試料が混ざり合ったりあるいは流出しないように、いくつかに区分けするための隔壁（仕切り）をいい、金表面上に形成される。なお、区画は、その一部分が開放されていてもよい。
【００１３】
本発明のガラス基板は、ガラス基材上に金表面を有し、かつ該表面上に区画を有するガラス基板であって、該区画が、エポキシ樹脂を主成分とする熱硬化性樹脂に有機粉末を含有させて、弾性率を０．１〜３ＧＰａとした樹脂によって形成されている。
【００１４】
本発明のガラス基板は、ガラス基材上に金表面を有する。この金表面は、金とＤＮＡに付加されたまたはプロテインに存在するＳＨ基との間で結合を形成し、それによってＤＮＡまたはプロテインをガラス基材上に固定する目的で、ガラス基材表面上に形成されている。ガラス基材は、平坦であることが好ましい。
【００１５】
ガラス基材表面に金表面を形成する方法は、表面処理の分野で通常用いられる方法であれば、特に限定されない。例えば、物理蒸着（真空蒸着、イオンプレーティング、スパッタリングなど）、化学蒸着、電気めっき、化学めっき、箔の塗布などが挙げられる。金表面の厚さは、ＤＮＡまたはプロテインの固定強度および安定性には無関係であるため、任意の厚さである。例えば、数オングストローム〜数μｍであってもよい。通常、金表面を安定にガラス基材上に形成するために、予めガラス基材上にクロム、チタンなどを蒸着または塗布した後、金を蒸着または塗布することが好ましい。具体的には、ガラス基材上に、０．１〜０．５μｍの厚さのチタン薄膜を形成し、次いでその上に０．５〜１．０μｍの金薄膜を形成することがより好ましい。
【００１６】
本発明のガラス基板は、上記表面上に区画を有する。この区画は、エポキシ樹脂を主成分とする熱硬化性樹脂に有機粉末を含有させて、弾性率を０．１〜３ＧＰａとした樹脂によって形成されている。
【００１７】
エポキシ樹脂を主成分とする熱硬化性樹脂としては、ビスフェノールＡ型エポキシ樹脂、ビスフェノールＡ変性エポキシ樹脂、ビスフェノールＦ型エポキシ樹脂、フェノールノボラック型エポキシ樹脂、クレゾールノボラック型エポキシ樹脂、特殊ノボラック型エポキシ樹脂、フェノール誘導体エポキシ樹脂、ビフェノール骨格型エポキシ樹脂などのエポキシ樹脂に、イミダゾール系、アミン系、リン系、ヒドラジン系、イミダゾールアダクト系、アミンアダクト系、カチオン重合系、ジシアンジアミド系などの硬化剤を添加したものが挙げられる。なお、２種類以上のエポキシ樹脂を混合して用いてもよい。ここで、主成分のエポキシ樹脂は、熱硬化性樹脂中に７０重量％以上、好ましくは８０重量％以上の割合で含まれる。
【００１８】
上記熱硬化性樹脂に含有される有機粉末は、上記熱硬化性樹脂よりも弾性率が低いものが用いられる。このような有機粉末としては、シリコーンゴム、シリコーンレジン、低密度ポリエチレン、高密度ポリエチレン、ポリメタクリル酸メチル、架橋ポリメタクリル酸メチル、ポリスチレン、架橋ポリスチレン、エチレン−アクリル共重合体、ポリメタクリル酸エチル、ブチルアクリレート、ウレタンなどの軟質微粒子が好ましい。
【００１９】
上記熱硬化性樹脂に上記有機粉末を、弾性率が０．１〜３ＧＰａになるように含有させる。含有させる割合は、選択された樹脂および粉末に応じて適宜決定される。弾性率をこの範囲にすることにより、樹脂を熱硬化させて金表面に接着させる際に発生する残留応力を低減できる。弾性率が０．１ＧＰａ未満であると、所定の位置に樹脂を配置して区画を形成することが困難となる傾向がある。弾性率が３ＧＰａを超えると、熱負荷がかかった場合に、樹脂とガラス基材との弾性率（ヤング率）の差のため、熱応力歪が大きくなり、樹脂にクラックが生じやすくなる傾向がある。なお、ここでいう弾性率とは、ＪＩＳ動的弾性率試験法（曲げ共振法）に従って測定した値である。
【００２０】
金表面上の区画は、金表面上の所定の位置に上記有機粉末を含有する熱硬化性樹脂を配置し、これを熱硬化させることによって形成される。樹脂を配置する方法は、特に限定されず、例えば、通常用いられるプリンティングなどによって行われる。このように配置された熱硬化性樹脂の硬化は、通常、約１５０℃の温度で３０分間程度行われる。樹脂と金表面との接着強度をより強くするために、１７０〜１８０℃の温度で５〜１０分間加圧加熱することが好ましい。
【００２１】
この区画は、硬化後に、幅０．３〜１．０ｍｍおよび高さ０．０５〜０．２ｍｍのサイズの隔壁によって形成されることが好ましい。隔壁の幅が狭すぎると、樹脂と金表面との接着力が低下し、隔壁の幅が広すぎると、隔壁の高さが低くなり、区画としての機能を果たさなくなる。
【００２２】
上記のようにして、本発明のガラス基板が得られる。この基板は、以下に詳述するように、プローブとして所望のＤＮＡまたはプロテインを、安定に固定することができるため、ＤＮＡチップおよびプロテインチップ用の基板として有用である。
【００２３】
本発明のＤＮＡチップに固定されるべきＤＮＡは、特に限定されない。例えば、ｃＤＮＡ、合成オリゴＤＮＡなどが挙げられ、目的に応じて一本鎖または二本鎖のＤＮＡのいずれであってもよい。
【００２４】
このようなＤＮＡを、上記ガラス基板の金表面に固定させるためには、ＤＮＡの末端にＳＨ基を導入する必要がある。後の検出にＤＮＡの伸長反応を利用する場合などは、ＳＨ基をＤＮＡの５’末端側に導入することが好ましい。ＳＨ基の導入は、上記特許文献１に記載されるような通常用いられる方法で行われ、例えば、市販のＳＨ基修飾試薬が用いられ得る。
【００２５】
本発明のプロテインチップに固定されるべきプロテイン（タンパク質、ペプチド）は、特に限定されず、例えば、酵素、抗体、それらのフラグメント、生理活性ペプチド、糖ペプチド、レセプター、合成オリゴペプチドなどが挙げられる。
【００２６】
このようなプロテインを、上記ガラス基板の金表面に固定させるためには、プロテイン中に存在するジスルフィド基またはＳＨ基を利用し得る。あるいは、プロテインの場合は、上記ＤＮＡの場合と同様に化学反応によってＳＨ基を導入することもできる。
【００２７】
ＤＮＡおよびプロテインは、ジスルフィド基またはＳＨ基を有するスペーサー分子を介して金表面に固定してもよい。例えば、ＤＮＡを固定するためには、スペーサー分子として、アルカンチオールを用いることができる。例えば、ＤＮＡまたはプロテインの固定のためには、スペーサー分子として、４，４’−ジチオジ酪酸と水溶性カルボジイミド（ＥＤＣ）／Ｎ−ヒドロキシコハク酸イミド（ＮＨＳ）との組み合わせが好適に用いられる。あるいは、３，３’−ジチオジプロピオン酸ビス−（Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド）も用いられる。
【００２８】
ジスルフィド基または遊離のＳＨ基を有するＤＮＡまたはプロテインを、ガラス基板の区画内の金表面の所定の位置に配置することによって、Ｓ−Ａｕ結合が形成される。すなわち、単にＤＮＡまたはプロテインを配置するだけで固定化を行い得る点で、操作性に非常に優れている。所定の位置への配置は、どのような手段で行ってもよく、例えば、マイクロピペット、インクジェット、細い筒状のピンなどが用いられ得る。
【００２９】
上記のように固定することによって、ＤＮＡは、その鎖長によっても異なるが、例えば、約２０ｐｍｏｌ／ｍｍ２以上の密度で固定され得る。プロテインも、分子量や立体構造によって固定され得る密度は大きく異なるが、比較的高密度で固定することが可能である。そのため、高感度の検出が可能である。
【００３０】
本発明のＤＮＡチップまたはプロテインチップは、ＤＮＡまたはプロテインと金表面との間の結合が比較的安定であるため、反応や検出の操作中に、ＤＮＡまたはプロテインが脱離しにくい。さらに、金表面のバックグラウンドレベルはガラスと同程度に低いため、検出に非常に好適である。したがって、本発明のＤＮＡチップまたはプロテインチップは、検出感度や定量性が良好である。ＤＮＡチップの場合は、例えば、アルカリ（例えば、０．１Ｎ  ＮａＯＨ）で洗浄することによって、固定されているＤＮＡと結合した試料を除去できるため、繰り返して使用することも可能である。
【００３１】
上記のようにして、プローブとしてＤＮＡまたはプロテインが金表面に固定されている、本発明のＤＮＡチップまたはプロテインチップが得られる。これらのチップは、通常用いられているＤＮＡチップまたはプロテインチップと同様に、これらのチップの各区画内で種々の反応を行うことが可能であり、通常用いられる種々の検出方法が適用できる。例えば、本発明のＤＮＡチップまたはプロテインチップを用いて、バインディングアッセイ（レセプター／リガンドアッセイ、抗原抗体反応、ハイブリダイゼーションなど）、カイネティクス解析などを行い得る。検出方法としては、特に限定されず、検出すべき物質に応じて適宜選択される。例えば、蛍光物質または蛍光標識した物質を直接的または間接的にＤＮＡまたはプロテインあるいは反応生成物に結合させて蛍光を検出する方法；ＤＮＡの伸長反応を利用する検出方法；表面プラズモン共鳴現象（ＳＰＲ）を応用した検出方法；電気化学的検出法などが挙げられる。
【００３２】
【実施例】
（実施例１：ＤＮＡチップの製造）
顕微鏡用スライドガラスに、チタン、次いで金を蒸着させた。次いで、アミン系の硬化剤を約５重量％の割合で含有する熱硬化性樹脂（約２０重量％以上のビスフェノールＡ型エポキシ樹脂および約２０重量％以上のビスフェノールＡ変性エポキシ樹脂）と有機粉末（シリコーン系）とを混合して、弾性率２ＧＰａの樹脂を得た。この樹脂を、上記の金蒸着させたスライドガラス上にスクリーン印刷し、１８０℃にて５分間焼成して、３区画を有するガラス基板を製造した。このガラス基板の金表面を、蛍光検出装置（ＦＵＪＩ  ＦＬＡ−８０００）を用いてスキャンし、樹脂材料による金表面の汚染による蛍光強度の増加がないことを確認した。
【００３３】
次いで、Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｔｕｂｅｒｃｕｌｏｓｉｓ、Ｍ．  ｉｎｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒｅ、およびＭ．  ａｖｉｕｍにそれぞれ特異的な５’末端チオール修飾ＤＮＡ（それぞれ配列番号１、配列番号２、および配列番号３）を、０．１Ｍ  ＭｇＣｌ２−２×ＳＳＣ溶液で１０μｇ／ｍｌになるように調製し、ＤＮＡマイクロアレイヤー（マイクロシステム５１００システム、Ｃａｒｔｅｓｉａｎ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ製）を使用して、ガラス基板の金表面の３区画に別々に固定化した。未固定のＤＮＡを２×ＳＳＣ溶液で洗浄した後、ガラス基板を乾燥して、３種類のＤＮＡを固定したＤＮＡチップを製造した。
【００３４】
（実施例２：ＤＮＡチップによる特異的プローブの検出）
２種類のプライマー（配列番号４および配列番号５）を用いて、Ｍ．  ｔｕｂｅｒｃｕｌｏｓｉｓのｃＤＮＡをテンプレートとしてＰＣＲを行い、約５００ｂｐのＤＮＡ断片を増幅した。得られたＰＣＲ溶液を０．１×ＳＳＣ溶液で１０倍に希釈した後、１００℃にて５分間加熱し、氷中で急冷して、プローブＤＮＡを調製した。このプローブＤＮＡに等容量の４×ＳＳＣ−６０％ｖ／ｖホルムアミド溶液を加えて、３０μｌを上記得られたＤＮＡチップの３区画に載せた。Ｍ．  ｉｎｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒｅおよびＭ．  ａｖｉｕｍのｃＤＮＡからも、配列番号４および配列番号５の２種類のプライマーを用いて、上記と同様にそれぞれのプローブＤＮＡを調製し、それぞれ別のＤＮＡチップの３区画に載せた。３種類のプローブＤＮＡを載せたＤＮＡチップについて、上記３種類のＤＮＡをターゲットとして用いて、４５℃にて３時間ハイブリダイゼーションを行った。ＤＮＡチップを６０℃に加温した２×ＳＳＣ溶液で３回（各１５分間振盪）洗浄した。次いで、２０μｇ／ｍｌのヘキスト３３２５８溶液（０．８Ｍ  ＮａＣｌ水溶液）を各区画に加えて５分間放置し、洗浄した後、各区画の蛍光強度を測定した。その結果、各ＤＮＡチップの３区画において、各ターゲットに対応するプローブの区画が最も強く反応していた。すなわち、固定したプローブＤＮＡに相補的なターゲットＤＮＡを加えた場合に、最も高い蛍光強度が得られた。また、区画の隔壁を形成している樹脂の剥離、樹脂の溶解、蛍光物質の溶出などは検出されなかった。
【００３５】
（実施例３：プロテインチップの製造）
顕微鏡用スライドガラスに、クロム、次いで金をスパッタリングにより蒸着させた。次いで、アミン系の硬化剤を約５重量％の割合で含有する熱硬化性樹脂（約２０重量％以上のビスフェノールＡ型エポキシ樹脂および約２０重量％以上のビスフェノールＡ変性エポキシ樹脂）と有機粉末（シリコーン系）とを混合して、弾性率２ＧＰａの樹脂を得た。この樹脂を、上記の金蒸着させたスライドガラス上にスクリーン印刷し、１８０℃にて５分間焼成して、４区画を有するガラス基板を製造した。次いで、このガラス基板を濃硝酸で洗浄した後、１ｍＭジチオプロピオン酸−エタノール溶液に２時間浸漬し、蒸留水で洗浄した。２０ｍｇ／ｍｌ  １−（３−ジメチルアミノプロピル）−３−エチルカルボジイミド・ＨＣｌ水溶液と２０ｍｇ／ｍｌ  Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド水溶液とを等量混合した溶液に、ガラス基板を１分間浸漬した。蒸留水で洗浄後、１０ｍｇ／ｍｌ、１ｍｇ／ｍｌ、０．１ｍｇ／ｍｌ、および０．０１ｍｇ／ｍｌのペルオキシダーゼを、ガラス基板上のそれぞれ別の区画に５０μｌずつ加え、１時間放置することによって固定化した。固定化したペルオキシダーゼの酵素活性を、Ｈ２Ｏ２−ジアミノベンジジン系での発色を測定した。
【００３６】
ペルオキシダーゼを１０ｍｇ／ｍｌ加えたときの４２０ｎｍでの吸光度を１とした場合、１ｍｇ／ｍｌ、０．１ｍｇ／ｍｌ、および０．０１ｍｇ／ｍｌの相対的吸光度は、それぞれ０．４２、０．０２２、および０．００１であった。このように、固定化した酵素の濃度に比例した酵素活性を検出できた。
【００３７】
【発明の効果】
本発明のガラス基板は、表面上に区画を有するため、１枚の基板上に数種類または数濃度の所望のＤＮＡまたはプロテインを、特別な操作を行うことなく容易に固定することができる。したがって、オーダーメイドのＤＮＡまたはプロテインチップを容易かつ安価に作製することができる。
【００３８】
本発明のＤＮＡチップまたはプロテインチップは、ＤＮＡまたはプロテインと基板との間の結合が比較的安定であるため、検出操作中に、ＤＮＡまたはプロテインが脱離しにくく、検出感度や定量性が良好である。１枚のチップ上に数区画を設けることが可能であるため、一度に多種の物質についてスクリーニングすることが可能である。さらに、ＤＮＡチップの場合、例えば、０．１Ｎ  ＮａＯＨで洗浄することによって、固定されているＤＮＡと反応して結合した試料をはずすことができ、繰り返して使用することも可能である。
【００３９】
【配列表】
2004239642.tif 000002
2004239642.tif 000003