(57)【要約】【課題】本発明は、新規な発光触媒活性を有する触媒抗体を提供することを目的とする。【解決手段】本発明は、発光基質の酸素付加反応を触媒し、発光を生じさせる、発光触媒活性を有する触媒抗体およびその製造法に関する。より詳しくは、酸素が発光基質に付加して生成するヒドロペルオキシドまたはジオキセタノンのアナログをハプテンとして免疫して得られる触媒抗体およびその製造法に関する。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
発光基質の酸素付加反応を触媒し、発光を生じさせる、発光触媒活性を有する触媒抗体。
【請求項２】
酸素が発光基質に付加して生成するヒドロペルオキシドのアナログをハプテンとして免疫して得られる、請求項１に記載の触媒抗体。
【請求項３】
酸素が発光基質に付加して生成するジオキセタノンのアナログをハプテンとして免疫して得られる、請求項１に記載の触媒抗体。
【請求項４】
ハプテンが、式Ｉ：
【化１】
2004002212.tif 000025
［式中、
Ｒ５、Ｒ６、Ｒ７およびＲ８の少なくとも１つが、基：
【化２】
2004002212.tif 000026
（式中、
Ｒは水素、メチルまたはエチルであり、ｍは０〜１０の整数である）
で示される末端カルボキシ基を含有する非環式炭化水素基、もしくは基：
【化３】
2004002212.tif 000027
（式中、
Ｒｘは、水素、フルオロ、ヒドロキシまたはスルフェートであり、ｐは０または１であって、ｍは上記の通りである）
で示される末端カルボキシ基を有する芳香族炭化水素基であって、
残余が水素原子、特性原子団、非環式炭化水素基、環式炭化水素基、芳香族炭化水素基もしくはヘテロ環式基であるか、または
Ｒ５およびＲ６の少なくとも１つが、上で示される末端カルボキシ基を含有する非環式炭化水素基もしくは末端カルボキシ基を含有する芳香族炭化水素基であって、残余が水素原子、特性原子団、非環式炭化水素基、環式炭化水素基、芳香族炭化水素基もしくはヘテロ環式基であり、Ｒ７およびＲ８が一緒になって、基：
【化４】
2004002212.tif 000028
（式中、
環Ａは２−ヒドロキシメチルインダノール環と縮合した環式炭化水素基、芳香族炭化水素基またはヘテロ環式基であり、環Ａは更に場合により、環式炭化水素基、芳香族炭化水素基またはヘテロ環式基である環Ｂと縮合し得る）
を形成する］
で示される２−ヒドロキシメチルインダノール骨格を有する化合物である、請求項２に記載の触媒抗体。
【請求項５】
ハプテンが式ＩＩ：
【化５】
2004002212.tif 000029
で示される化合物である、請求項４に記載の触媒抗体。
【請求項６】
発光基質が式ＩＩＩ：
【化６】
2004002212.tif 000030
［式中、
Ｒ１、Ｒ２、Ｒ３およびＲ４の少なくとも１つが非環式炭化水素基もしくは芳香族炭化水素基であって、残余が水素原子、特性原子団、非環式炭化水素基、環式炭化水素基、芳香族炭化水素基またはヘテロ環式基であるか、または
Ｒ１およびＲ２の少なくとも１つが非環式炭化水素基もしくは芳香族炭化水素基であって、残余が水素原子、特性原子団、非環式炭化水素基、環式炭化水素基、芳香族炭化水素基もしくはヘテロ環式基であり、Ｒ３およびＲ４が一緒になって基：
【化７】
2004002212.tif 000031
（式中、
環Ａはイミダゾピラジノン環と縮合した環式炭化水素基、芳香族炭化水素基もしくはヘテロ環式基であり、環Ａは更に場合により、環式炭化水素基、芳香族炭化炭化水素基もしくはヘテロ環式基である環Ｂと縮合し得る）
を形成する］
で示されるイミダゾピラジノン骨格を有する化合物である、請求項１に記載の触媒抗体。
【請求項７】
発光基質が式ＩＶ：
【化８】
2004002212.tif 000032
で示される化合物である、請求項６に記載の触媒抗体。
【請求項８】
モノクローナル抗体である、請求項１〜７のいずれかに記載の触媒抗体。
【請求項９】
受託番号がＦＥＲＭ　Ｐ−１８６６８であるハイブリドーマ７Ｄ１０により産生される、請求項１〜８のいずれかに記載の触媒抗体。
【請求項１０】
発光基質、酸素および触媒抗体のみで発光する、発光触媒抗体システム。
【請求項１１】
発光基質としてイミダゾピラジノン系化合物を利用する、請求項１０に記載の発光触媒抗体システム。
【請求項１２】
式Ｉで示される２−ヒドロキシメチルインダノール骨格を有する化合物をハプテンとして含有する免疫抗原を用いて哺乳動物を免疫し、細胞融合を行なってハイブリドーマを得て、次いで該ハイブリドーマを培養して請求項１に記載の触媒抗体を得る、発光触媒活性を有する触媒抗体の製造法。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、化学発光分析および生物発光分析に関する技術分野に属する。詳しくは、発光基質への酸素付加反応を触媒して、発光を生じさせる発光触媒活性を有する触媒抗体およびその製造法に関する。本発明によれば、天然または非天然を含めた発光基質の酸素付加反応を触媒し、発光を生じさせる抗体を容易に製造することができるので、化学発光分析および生物発光分析における新たな分析技術の開発に貢献することができる。
【０００２】
【従来の技術】
化学発光反応およびルシフェラーゼを用いた生物発光反応は、検出感度が高く、且つ非放射性であること等から安全性が高いために、例えば免疫検定法における有用な分析手段の一つとして知られている。特に、ホタルルシフェリン−ルシフェラーゼ反応等の生物発光、ルミノール等の化学発光を利用する発光分析法は近年、微量物質の分析が要求される生物学および医学を含む分野での基礎研究目的であるいは日常検査法として利用されている。一方、イミダゾピラジノン系ルシフェリンとしては、セレンテラジン、ウミホタルルシフェリン等が知られており、これらはルシフェリン、酸素およびルシフェラーゼのみの単純な反応系で発光を示す特徴を有している。
【０００３】
ここで、ルシフェラーゼとは発光を触媒する酵素であり、酸素添加酵素に分類され、例えば空気（酸素）の存在下でルシフェリンを酸化し、オキシルシフェリンと二酸化炭素とを生じる反応を触媒して発光を生じさせる酵素である。発光は、発光反応過程で生じる酸素添加化合物のヒドロペルオキシドまたはジオキセタノンの遷移状態の分解過程で放出されると考えられる。
【０００４】
一方、触媒抗体は酵素様抗体とも呼ばれ、抗体に触媒活性を与える目的で作製されるものであり、結合した基質に化学変化を誘導する抗体のことである。このものは、目的の化学反応の遷移状態化合物に対する立体的・電子的類似化合物、いわゆるアナログをハプテンとすれば、該ハプテンに特異的なモノクローン抗体は目的の化学反応の遷移状態を認識して安定化し、反応の触媒として作用するであろうとの考えに基づく。これまでに、例えばエステル誘導体の加水分解反応を触媒する触媒抗体が知られている（例えば、Ｌｅｎｅｒ，　Ｒ．　Ａ．によるＳｃｉｅｎｃｅ，　２５２，　６５９　（１９９１））を参照）。しかし、酸素添加反応による発光反応を直接に触媒する触媒抗体については報告されておらず、未解決な領域である。
【０００５】
さらに、該触媒抗体技術を利用して種々の発光基質における発光遷移状態化合物のアナログをハプテンとして用いることによって発光触媒活性を有する触媒抗体を製造し得ると期待されるが、発光遷移状態については未解明な点も多く、遷移状態の構造も特定されていない。一方、遷移状態化合物に対して立体的・電子的に類似するハプテンの設計が重要であることが示唆されているにも関わらず、一般的なハプテンに関するアイデアも提案されていない。
【０００６】
【発明が解決しようとする課題】
これまでに知られているホタル、ウミホタル、レニラ、細菌、ラチア、ディプロカーディア（ミミズ）、渦べん毛藻由来のルシフェラーゼは、その基質特異性が高いために特定のルシフェリンを基質として用いなければならなかった。更にこれらルシフェリンはその構造が複雑であることから合成が非常に困難であって、且つ経済的な費用もかかる。また現在、ルシフェラーゼは遺伝子組み換え法によって製造されているが、その精製法は煩雑であるという難点を有するために、より簡便な製造法が望まれている。すなわち、天然のルシフェラーゼに代わる、任意の発光基質について発光反応を触媒する機能を持つ新規タンパク質の創出法が望まれている。
【０００７】
また、現在汎用されているホタルまたは細菌由来のルシフェリン−ルシフェラーゼの発光システムは、ルシフェリンおよび酸素以外に例えば、補酵素（例えば、ＡＴＰやＦＭＮＨ２）および金属イオン（例えば、マグネシウムイオン）等の他の構成要素を必要とする複雑な系である。
【０００８】
更に、ルシフェラーゼをイムノアッセイ法やハイスループットアッセイ法に適用する場合には、ルシフェラーゼの修飾が必要となるが、その化学修飾において個々のルシフェラーゼについて詳細な修飾条件等を検討する必要もある。
【０００９】
ここで、イムノアッセイ法とは、抗原−抗体反応を利用して、タンパク質をその特異的な抗体によって検定する方法である。イムノアッセイ法としては、非標識イムノアッセイ法および標識物質を含む標識イムノアッセイ法を含む。該標識イムノアッセイ法としては、例えば放射性同位体を含むラジオイムノアッセイ法、酵素を含むエンザイムイムノアッセイ法、蛍光物質を含む蛍光イムノアッセイ法および発光物質を含む発光イムノアッセイ法等を含む。
【００１０】
また、ハイスループットアッセイ法とは、ロボットを用いたアッセイシステムの自動化により、大量のサンプルを効率的にスクリーニングする方法である。
【００１１】
【課題を解決するための手段】
そこで、本発明者らは触媒抗体技術を使って天然または非天然を含めた発光基質の酸素付加反応を触媒して発光を生じさせる触媒抗体の製造を企図した。
【００１２】
本発明における発光反応は、分子状酸素が発光基質に付加する反応である。本発明者らは、分子状酸素が発光基質に付加した発光遷移状態の立体的・電子的類似化合物であるアナログをハプテンとして設計し、合成した。次いで、該ハプテンと担体タンパク質とを結合させた縮合体を調製して、得られた縮合体を抗原として哺乳動物に免疫させて特異抗体を産生した。上記方法により、該ハプテン部を抗原決定基として認識する、新規な発光触媒活性を有する触媒抗体を製造することに成功した。
【００１３】
すなわち、本発明は発光基質の酸素付加反応を触媒し、発光を生じさせる、発光触媒活性を有する触媒抗体に関する。
本発明は、発光基質、酸素および触媒抗体のみで発光する発光触媒抗体システムにも関する。
【００１４】
【発明の実施の形態】
以下、本発明を詳細に記載する。
本明細書で使用する用語「発光触媒活性」とは、発光基質の酸素付加による酸化反応を触媒して発光を生じさせる、本発明の触媒抗体が有する活性を意味する。
発光基質とは、化学発光または生物発光に関与する被酸化物質の総称である。特に、生物発光においてルシフェラーゼ反応に使用される「発光基質」を「ルシフェリン」と呼ぶ。ルシフェリンとしては、ホタルルシフェリン、イミダゾピラジノン系ルシフェリン（例えば、セレンテラジン、オプロフォーラスルシフェリン、ホタルイカルシフェリン、ウミホタルルシフェリン等）、発光バクテリアルシフェリン、ラチアルシフェリン、ディプロカーディアルシフェリン（ミミズルシフェリン）、渦べん毛藻ルシフェリンなどが知られている。本明細書で使用する用語「発光基質」にはこれらルシフェリンを含む。
【００１５】
発光基質の典型的な例は式ＩＩＩ：
【化９】
2004002212.tif 000002
［式中、
Ｒ１、Ｒ２、Ｒ３およびＲ４の少なくとも１つが非環式炭化水素基もしくは芳香族炭化水素基であって、残余が水素原子、特性原子団、非環式炭化水素基、環式炭化水素基、芳香族炭化水素基またはヘテロ環式基であるか、または
Ｒ１およびＲ２の少なくとも１つが非環式炭化水素基もしくは芳香族炭化水素基であって、残余が水素原子、特性原子団、非環式炭化水素基、環式炭化水素基、芳香族炭化水素基もしくはヘテロ環式基であり、Ｒ３およびＲ４が一緒になって基：
【化１０】
2004002212.tif 000003
（式中、
環Ａはイミダゾピラジノン環と縮合した環式炭化水素基、芳香族炭化水素基もしくはヘテロ環式基であり、環Ａは更に場合により、環式炭化水素基、芳香族炭化水素基もしくはヘテロ環式基である環Ｂと縮合し得る）
を形成する］
で示されるイミダゾピラジノン骨格を有する化合物である。
【００１６】
ここで、「特性原子団」とは、通常有機化学の分野で使用される、炭素−炭素以外の結合で直結している原子または原子団を意味する。具体的には、該特性原子団とは、例えばハロゲン（すなわち、クロロ、ブロモ、フルオロ、ヨード）、オキソ、ホルミル、ヒドロペルオキシ、ジアゾ、アジド、ニトロ、ヒドロキシ、アルコキシ、スルファニル、アミノ、イミノ、ニトリル、並びにカルボン酸およびその誘導体（例えば、エステル、チオカルボン酸、アミド、酸無水物、酸ハロゲン化物）を含む。
【００１７】
ここで、「非環式炭化水素基」とは、炭素数が１〜１０個の飽和または不飽和の炭化水素基を意味する。該非環式炭化水素基は場合により、少なくとも１つの炭素−炭素二重結合または炭素―炭素三重結合を含み得る。該非環式炭化水素基は直鎖または分枝であり得て、そしてそれら全ては場合により置換され得る。該置換基は上記の特性原子団から選ばれ、具体的には、例えばハロゲン、オキソ、ホルミル、ヒドロペルオキシ、ジアゾ、アジド、ニトロ、ヒドロキシ、アルコキシ、スルファニル、アミノ、イミノ、ニトリル、並びにカルボン酸およびその誘導体（例えば、エステル、チオカルボン酸、アミド、酸無水物、酸ハロゲン化物）を含む。具体的には、該非環式炭化水素基は例えば、例えば、メチル、エチル、ｎ−プロピル、イソプロピル、ｎ−ブチル、イソ−ブチル、ｓｅｃ−ブチル、ｔｅｒｔ−ブチル、ｎ−ペンチル、ｎｅｏ−ペンチル、ｎ−ヘキシル、ｎ−オクチル、エテニル、１−プロペニル、２−ブテニル、エチニル、２−プロピニル、２−ヒドロキシエチル、２−メチルー１−プロペニル、３−ヒドロキシプロパン−１−イルおよび３−グアジニノプロピルが好ましい。
【００１８】
また、「環式炭化水素基」とは、炭素数が３〜７員の単環またはその環からなる多環で飽和または不飽和の非芳香族性の炭化水素基を意味する。該環式炭化水素基は、場合により該環内に少なくとも１つの炭素−炭素二重結合を有し得る。該環式炭化水素基はまた、非環式炭化水素基と環式炭化水素基との組み合わせ（例えば、シクロペンチルメチル）を含む。また、それら全ては場合により置換され得る。該置換基は上記の特性原子団または非環式炭化水素基から選ばれ、具体的には、例えばハロゲン、オキソ、ホルミル、ヒドロペルオキシ、ジアゾ、アジド、ニトロ、ヒドロキシ、アルコキシ、スルファニル、アミノ、イミノ、ニトリル、アルキル（例えば、メチル）、並びにカルボン酸およびその誘導体（例えば、エステル、チオカルボン酸、アミド、酸無水物、酸ハロゲン化物）を含む。具体的には、該環式炭化水素基は例えば、シクロプロピル、シクロヘキシル、シクロヘキセン−２−イル、シクロペンチルメチル、シクロヘキシルメチル、２−シクロヘキシルエチルおよびアダマンチルメチルが好ましい。
【００１９】
また、「芳香族炭化水素基」とは、少なくとも１つの環が共役パイ電子系を有する芳香族環基を意味する。該芳香族炭化水素基は、単環、多環（縮合環を含む）の芳香族環基、非環式炭化水素基と芳香族炭化水素基との組み合わせ（例えば、ベンジルなどのアラルキル）および環式炭化水素基と芳香族炭化水素基との組み合わせ（例えば、インデニル）を含む。また、それら全ては場合により、置換され得る。該置換基は上記の特性原子団、非環式炭化水素基または環式炭化水素基から選ばれ、具体的には、例えばハロゲン、オキソ、ホルミル、ヒドロペルオキシ、ジアゾ、アジド、ニトロ、ヒドロキシ、アルコキシ、スルファニル、アミノ、イミノ、ニトリル、アルキル（例えば、メチル）、シクロアルキル（例えば、シクロヘキシル）、並びにカルボン酸およびその誘導体（例えば、エステル、チオカルボン酸、アミド、酸無水物、酸ハロゲン化物）を含む。具体的には、該芳香族炭化水素基は例えば、フェニル、ナフチル、アントリル、フェナントリル、インデニル、フルオレニル、ビフェニル、４−アミノフェニル、４−ニトロフェニル、（２−、３−または４−）ヒドロキシフェニルおよびスルフェート（スルフェート金属塩（例えば、ナトリウムスルフェートなどのアルカリ金属塩またはアルカリ土類金属塩）を含む）、４−メトキシフェニル、４−フルオロフェニル、３，３−ジフルオロフェニル、２，３，４，５，６−ペンタフルオロフェニル、４−トリフルオロメトキシフェニル、ベンジル、２−ナフチルメチル、フェネチル、４−ヒドロキシベンジルおよびスルフェート（スルフェート金属塩（例えば、ナトリウムスルフェートなどのアルカリ金属塩またはアルカリ土類金属塩）を含む）、４−トリフルオロメトキシベンジル、４−トリフルオロメチルベンジル、４−ニトロベンジル、４−クロロベンジル、４−ブロモベンジル、４−ヨウ化ベンジル、４−フルオロベンジル、３，４−ジフルオロベンジル、α−ヒドロキシベンジル、フェニルエチニル、３−フェニルプロピル、４−メトキシフェニルエチニル、スチリル（ＥおよびＺ異性体を含む）が好ましい。
【００２０】
また、「ヘテロ環」とは、環内に少なくとも１つのヘテロ原子を含有する環式炭化水素基または芳香族炭化水素基を意味する。該へテロ原子とは、例えば酸素、窒素、硫黄、リンおよびケイ素からなる群から選ばれる。ここでの環式炭化水素基および芳香族炭化水素基とは、上で定義する通りである。また、それらは全て場合により、置換され得る。該置換基は上記の特性原子団、非環式炭化水素、環式炭化水素または芳香族炭化水素基から選ばれ、具体的には、例えばハロゲン、オキソ、ホルミル、ヒドロペルオキシ、ジアゾ、アジド、ニトロ、ヒドロキシ、アルコキシ、スルファニル、アミノ、イミノ、ニトリル、アルキル（例えば、メチル）、シクロアルキル（例えば、シクロヘキシル）、フェニル、ベンジル、並びにカルボン酸およびその誘導体（例えば、エステル、チオカルボン酸、アミド、酸無水物、酸ハロゲン化物）を含む。具体的には、該ヘテロ環式基は例えば、ピロリジニル、ピペリジル、イミダゾリル、キノリル、フリル、ベンゾフリル、ピロリル、チエニル、ピリジル、キノリニル、ピロリル、クロマニル、インドリル（２−または３−インドリルを含む）、１−メチル−３−インドリル、チエニル（２−チエニルおよび３−チエニルを含む）、ピペラジニル、モルホリルおよびプリニルが好ましい。
【００２１】
基：
【化１１】
2004002212.tif 000004
において、環Ａはイミダゾピラジノン環と縮合した環式炭化水素基、芳香族炭化水素基もしくはヘテロ環式基であり、そして環Ｂと環Ａと縮合した環式炭化水素基、芳香族炭化水素基もしくはヘテロ環式基であり得る。また、これらの基は全て場合により、置換され得る。該置換基は上記の特性原子団から選ばれ、具体的には、例えばハロゲン、オキソ、ホルミル、ヒドロペルオキシ、ジアゾ、アジド、ニトロ、ヒドロキシ、アルコキシ、スルファニル、アミノ、イミノ、ニトリル、並びにカルボン酸およびその誘導体（例えば、エステル、チオカルボン酸、アミド、酸無水物、酸ハロゲン化物）を含む。環Ａは環式炭化水素基または芳香族炭化水素基が好ましく、環Ｂは芳香族炭化水素基が好ましい。具体的には、下式：
【化１２】
2004002212.tif 000005
で示される通り、環Ａはシクロペンチル、シクロヘキシルまたはシクロヘプチルがより好ましく、環Ｂはフェニルがより好ましい。置換基Ｒ９は２−ヒドロキシまたは２−メトキシが特に好ましい。
【００２２】
具体的な好ましい発光基質を以下に示す。
【化１３】
2004002212.tif 000006
【化１４】
2004002212.tif 000007
【化１５】
2004002212.tif 000008
【００２３】
好ましい態様によれば、発光基質はＲ１がメチルであり、Ｒ２およびＲ４が共に水素であってＲ３が４−メトキシフェニルである、３−メチル−６−（４−メトキシフェニル）−３，７−ジヒドロイミダゾ［１，２−ａ］ピラジン−３−オン（以下、ＭＣＬＡと略す）である。
【００２４】
発光基質の他の代表的な例は式：
【化１６】
2004002212.tif 000009
で表わされるホタルルシフェリンである。
【００２５】
触媒抗体とは、抗体が触媒活性を有するように製造され、結合した基質に化学変化を誘導する抗体を意味する。酵素様抗体またはアブザイムとも呼ばれる。触媒抗体を製造する場合には、一般に基質の遷移状態のアナログをハプテンとして用いて動物を免疫して抗体を得る。ハプテンとは、一般に低分子量の化合物であってそのもの自身は免疫原性を有しないが、担体と呼ばれるより高分子量の化合物（例えば、タンパク質）と結合させたりまたは吸着させて動物を免疫すると、該化合物と特異的に反応する抗体を産生する化合物を意味する。
本発明者は発光基質の遷移状態のアナログを設計し、製造してこれをハプテンとして用いて本発明の触媒抗体を得た。本発明の発光基質の遷移状態のアナログは、発光基質に分子状酸素が付加したヒドロペルオキシド又はジオキセタノンのアナログである。
ハプテンの設計：
例えば、ホタルルシフェリンについての発光は、下式に示す通り、ジオキセタノン（１）を経由することが強く示唆されている。したがって、該ジオキセタノン（１）の安定なアナログをハプテンとして設計する。すなわち、ジキセタノンのペルオキソの１個をメチレン基で置換した、β−プロピオラクトン含有化合物（２）または１，３−エポキシ−２−プロパノン含有化合物（３）を、ハプテンとして設計する。次いで、該ハプテンを免疫することにより、ホタルルシフェリンの発光反応を触媒する触媒抗体を作製することができる。
【化１７】
2004002212.tif 000010
【００２６】
また、イミダゾピラジノン系発光基質についてのハプテンを設計する。イミダゾピラジノン系化合物の代表的な化合物であるＭＣＬＡについての発光機構を下式に示す。該式に示す通り、該機構は遷移状態化合物としてヒドロペルオキシド（４）、更にジオキセタノン（５）を経由すると考えられている。すなわち、ＭＣＬＡは酸素付加反応により、まずヒドロペルオキシド（４）を生成する。次いで、該ヒドロペルオキシド（４）は分子内環化反応により、ジオキセタノン（５）を生成する。そして、該ジオキセタノン（５）が分解することにより、発光が観察される。
【化１８】
2004002212.tif 000011
従って、これらの発光機構において最も重要な遷移状態化合物であると考えられるヒドロペルオキシドの安定なアナログをハプテンとして用いる。すなわち、ヒドロペルオキシド（４）のアナログである、式Ｉの新規な２−ヒドロキシメチルインダノール骨格を有する化合物をハプテンとして用いる。
【化１９】
2004002212.tif 000012
該式Ｉにおける１位のヒドロキシ基と２位のヒドロキシメチル基とがトランス異性の関係であることが好ましい。
ここで、式Ｉ中、Ｒ５、Ｒ６、Ｒ７およびＲ８の少なくとも１つが、基：
【化２０】
2004002212.tif 000013
（式中、
Ｒは水素、メチルまたはエチルであり、ｍは０〜１０の整数である）
で示される末端カルボキシ基を含有する非環式炭化水素基、もしくは基：
【化２１】
2004002212.tif 000014
（式中、
Ｒｘは、水素、フルオロ、ヒドロキシまたはスルフェートであり、ｐは０または１であって、ｍは上記の通りである）
で示される末端カルボキシ基を有する芳香族炭化水素基であって、
残余が水素原子、特性原子団、非環式炭化水素基、環式炭化水素基、芳香族炭化水素基もしくはヘテロ環式基であるか、または
Ｒ５およびＲ６の少なくとも１つが、上で示される末端カルボキシ基を含有する非環式炭化水素基もしくは末端カルボキシ基を含有する芳香族炭化水素基であって、残余が水素原子、特性原子団、非環式炭化水素基、環式炭化水素基、芳香族炭化水素基もしくはヘテロ環式基であり、Ｒ７およびＲ８が一緒になって、基：
【化２２】
2004002212.tif 000015
（式中、
環Ａは２−ヒドロキシメチルインダノール環と縮合した環式炭化水素基、芳香族炭化水素基またはヘテロ環式基であり、環Ａは更に場合により、環式炭化水素基、芳香族炭化水素基またはヘテロ環式基である環Ｂと縮合し得る）
を形成する。
すなわち、式Ｉのハプテンにおける置換基Ｒ５、Ｒ６、Ｒ７およびＲ８のうちリンカー分子と結合する基を除く３個の置換基が、式ＩＩＩの発光基質の置換基Ｒ１、Ｒ２、Ｒ３およびＲ４のうちの３個の置換基と同一であることが好ましい。
【００２７】
上記式Ｉにおいて、置換基Ｒ５はｍが２である末端カルボキシ基を含有する非環式炭化水素基であり、置換基Ｒ６およびＲ８は共に水素であって、置換基Ｒ７は４−メトキシフェニルである発光基質のＭＣＬＡの発光遷移状態アナログである、式ＩＩ：
【化２３】
2004002212.tif 000016
の２−ヒドロキシメチルインダノール化合物が特に好ましい。
【００２８】
本発明の発光触媒活性を有する触媒抗体は、以下の工程によって産生し得る。
（１）ハプテンを製造する；
（２）上記のハプテンと結合し得る連結部分を有する担体タンパク質を製造して、上記で製造したハプテンと結合させて縮合体を得る；
（３）上記で得た縮合体を免疫抗原として哺乳動物に免疫させる；
（４）上記の免疫させた動物からリンパ球を含有する組織を取り出し、ミエローマ細胞と細胞融合させてハイブリドーマを得て、抗体の検出を行なうことにより、抗体産生ハイブリドーマを得る；そして、
（５）上記で得た抗体産生ハイブリドーマを培養して目的とする触媒抗体を得る。本発明の触媒抗体はポリクローナル抗体であっても、またはモノクローナル抗体であってもよいが、モノクローナル抗体であることが好ましい。また、本発明の触媒抗体は抗体分子全体ではなく、ハプテン化合物との結合部位を有する分子であってもよく、その例としてＦａｂ部分またはＦａｂの中のハプテン化合物との結合部位等が挙げられる。
【００２９】
以下に発光基質として上記のイミダゾピラジノン系ルシフェリンを用いる場合を例にとって、本発明の触媒抗体の製造方法を具体的に説明する
１）ハプテンおよび免疫抗原の製造
ハプテンの製造
発光基質として上記のイミダゾピラジノン系化合物を用いる場合のハプテンである、２−ヒドロキシメチルインダノール骨格を有する化合物３の合成例を下記スキーム１に示す。
【００３０】
【化２４】
2004002212.tif 000017
インダン−１−オン誘導体１をアルカリ性試薬（例えば、水酸化ナトリウム）を用いて処理した後、ハロゲン化アルコキシレートと縮合させ、アルカリ加水分解（例えば、水酸化ナトリウムを使用）して化合物２を得る。該化合物２をアルカリ性試薬（例えば、水酸化ナトリウム）を用いて処理した後、ホルムアルデヒドとのアルドール縮合反応を行ない、次いで還元試薬（例えば、水素化ホウ素ナトリウム）を用いて還元する。ここで、得る化合物は１位のヒドロキシ基および２位のヒドロキシメチル基について、シスおよびトランス異性の関係である異性体混合物である。該異性体混合物をクロマトグラフィー（例えば、分取ＴＬＣ）を用いて、トランス異性体であるハプテン３を単離精製する。最後に、該ハプテン３をリンカー分子と縮合させることによって、連結基を有する化合物４を製造する。
【００３１】
ハプテンと担体タンパク質との結合方法としては、アミノ基とカルボキシ基とのペプチド結合生成反応を利用する方法、およびマレイミド基内の二重結合ヘのスルファニル基の付加反応を利用する方法等が知られている。したがって、式Ｉにおける置換基Ｒ５、Ｒ６、Ｒ７およびＲ８の少なくとも１つは担体タンパク質の官能基と連結可能な結合基を有することが必要とされる。よって、上記の式Ｉにおける基：
【化２５】
2004002212.tif 000018
で示される末端カルボキシ基を有するアルキル鎖に、担体タンパク質の官能基と連結可能な官能基を有するリンカー分子を導入することを企図する。該リンカー分子としては、例えば式：
【化２６】
2004002212.tif 000019
（式中、ｎは１〜５の整数である）
で示される、一方の末端に該末端カルボキシ基と結合可能なアミノ基を有し、且つ他方の末端に担体タンパク質の官能基と連結可能な官能基Ｘを有する分子を選ぶ。該官能基Ｘとしては、例えばカルボキシ基、アミノ基、スルファニル基、カルボン酸活性エステル基（例えば、Ｎ−ヒドロキシコハク酸イミドエステル）、マレイミド基、チオイソシアネート基、ジチオピリジル基、ハロゲン化アセチル基、アジド基およびホルミル基が挙げられる。スルファニル基が特に好ましい。
【００３２】
該リンカー分子を上記の式Ｉの末端カルボキシ基と反応させてアミド結合を生成させることにより、担体タンパク質と連結することが可能な結合基を得る。
【００３３】
スキーム１では、上記のマレイミド基内の二重結合ヘのスルファニル基の付加反応を利用する結合方法を選び、２−ヒドロキシメチルインダノール骨格上に、結合基としてスルファニル含有置換基を有する化合物４を製造する場合を示している。
【００３４】
ハプテンと担体タンパク質との縮合体との製造
上記のハプテンと結合し得るように修飾した担体タンパク質を製造し、次いで該ハプテンと結合させて縮合体を得る。ここで、本明細書で使用する用語「担体タンパク質」とは、上記のハプテンと結合して縮合体を生成して免疫抗原として作用し得るタンパク質を意味する。担体として用いるタンパク質としては、例えばスカシガイ血青素（ＫＬＨ）またはウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）を含むが、これらに限定しない。
【００３５】
上記のスルファニル含有置換基を有するハプテンと結合し得るマレイミド基によって修飾した担体タンパク質を製造する。担体タンパク質の溶液（例えば、ＰＢＳ溶液）および３−マレイミドプロピオン酸Ｎ−ヒドロキシサクシイミドエステルを混合し、撹拌して反応させる。得られた反応液を透析（例えば、ＰＢＳを使用）する。
【００３６】
次いで、該得られた溶液に上記の連結基を有する化合物４を加え、撹拌して反応させる。得られた縮合体を透析（例えば、ＰＢＳ溶液を使用）して目的のハプテンと担体タンパク質との縮合体を得る。
【００３７】
得られた縮合体のタンパク質濃度は、例えばＢＣＡタンパクアッセイ法（Ｐ．　Ｋ．　Ｓｍｉｔｈらによる、Ａｎａｌ，　Ｂｉｏｃｈｅｍ．，　１５０，　７６　（１９８５））を用いて決定する。
【００３８】
２）触媒抗体の製造
上記で製造した免疫抗原を、触媒抗体に関する公知の方法（例えば、Ｌｅｒｎｅｒ，　Ｒ．Ａ．によるＳｃｉｅｎｃｅ，　２５２，　６５９　（１９９１））に従って哺乳動物に免疫させて、抗体を製造する。哺乳動物は、研究目的、使用する抗原の種類および抗血清に必要な量などを考慮して選択されるべきである。本明細書における哺乳動物とは、例えばウサギ、モルモット、ラット、マウスおよびニワトリを含むが、マウスが好ましく、Ｂａｌｂ／ｃマウスが特に好ましい。
【００３９】
免疫
上記の通り製造した免疫抗原を哺乳動物に免疫する。該哺乳動物としては、例えばＢａｌｂ／ｃマウス（雌性、８週齢）を用いる。上記の免疫抗原の生理食塩水水溶液をＢａｌｂ／ｃマウスに免疫する。通常、免疫は２〜３週間の間隔で数回にわたって追加免疫を行なう。免疫は、例えば皮下、腹腔内、静脈内に注射するか、または脾臓に直接に注射することによって行なうことができる。腹腔内注射によって免疫を行なうことが好ましい。これら免疫の操作を行なう際に必要に応じてアジュバント（例えば、ＲＩＢＩアジュバント）を用いることができる。また、これら免疫操作は、免疫後の動物血清について、例えば酵素結合免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）法によって目的の抗原に対する高い抗体価の抗体の出現が確認されるまで行なう。
【００４０】
ハイブリドーマの製造
ハイブリドーマの製造は例えば、以下の通り行なう。
先ず、最終免疫の数日後に免疫された動物からリンパ球を含有する組織（例えば、脾臓）を摘出する。次いで、該組織細胞と予め培養させたミエローマ細胞とを電気細胞融合装置を用いて細胞融合させる。細胞融合とは、一般に２種類の異なった細胞を融合させて両方の遺伝子を含有する雑種細胞を得る技術を意味し、例えば該技術はウイルス（例えば、センダイウイルス）、ポリエチレングリコールまたは電気的パルス（例えば、電気細胞融合装置）等を用いることによって、達成することができる。電気的パルス（例えば、電気細胞融合装置）を用いることが好ましい。該方法はまた、ハイブリドーマによるモノクローナル抗体の産生において使用することができる。
続いて、選択培養液（例えば、ＨＡＴ選択培地）を加えた９６マイクロウェルプレート中で選択培養することによって、ハイブリドーマを得る。
【００４１】
次いで、細胞融合後にコロニーを形成したウェルの上清を採取する。該上清について、ＥＬＩＳＡ法によりスクリーニングを行なって抗体の存否または抗体の特異性について検討を行なって、陽性クローンである抗体産生ハイブリドーマを得る。
【００４２】
モノクローナル抗体の製造
上記の通り製造したハイブリドーマについて、完全培地（例えば、１０％牛胎児血清ＲＰＭＩ培地）中で限界希釈法を用いて培養してモノクローンＩｇＧ産生ハイブリドーマを得て、続けてそれら培養上清を抗マウスＩｇＧ＋Ｍアフィニティークロマトグラフィーによって精製して、本発明の触媒抗体を製造する。
【００４３】
３）触媒抗体の特定
次に、上記で得た抗体の触媒活性についてスクリーニングする。すなわち、本発明の抗体が以下の反応式に示す本発明の酸素付加による酸化反応に及ぼす影響について調べる。
【化２７】
2004002212.tif 000020
該触媒抗体の存在下、当量の基質：ＭＣＬＡと反応させてそれぞれの場合の発光量をルミノメータを用いて測定する。また、同様な反応条件下、該触媒抗体の存在しない場合での発光量を測定し、両者の結果を比較して本発明の抗体が上記反応に及ぼす影響について調べる。
【００４４】
次いで、上記反応式の反応生成物であるアミド化合物５の生成量を経時的に追跡して、本発明の触媒抗体が上記酸化反応を触媒し得ることを確認する。
【００４５】
本発明は、発光基質、酸素および触媒抗体のみで発光する発光触媒抗体システムにも関する。本明細書で使用する用語「発光触媒抗体システム」とは、発光に必要な構成要素として、発光基質、酸素および触媒抗体を組み合わせたシステムを意味する。本発明のシステムでは、発光基質、酸素および触媒抗体のみで発光する。即ち、補酵素（例えば、ＡＴＰ、ＦＭＮＨ２）および金属イオン（例えば、マグネシウムイオン）等の他の構成要素を必要としない。
【００４６】
更に、本発明により提供されたモノクローナル抗体に対する該遺伝子の単離は容易であり、遺伝子組換え技術との併用により、抗体の発光触媒能の増強への（技術的）基盤を提供することも可能となる。
【００４７】
以下に本発明を実施例をもって説明するが、本発明はこれら実施例によって限定されるものではないことは無論である。本発明におけるルミノメータは、ＡＢ−２２００（アトー株式会社製）を使用した。
【００４８】
【実施例】
実施例１
ハプテン１０の製造
以下のスキーム２に従って、ハプテン１０、および連結基を有する化合物１１を製造した。
【化２８】
2004002212.tif 000021
【００４９】
（ｉ）化合物７の製造
三臭化ホウ素（２５ｍＬ、１Ｍジクロロメタン溶液、２５ｍＭ）の乾燥ジクロロメタン（５０ｍＬ）溶液に撹拌下、−７８℃で６−メトキシインダン−１−オン６（２ｇ、１２ｍｍｏｌ）のジクロロメタン（５０ｍＬ）溶液をゆっくりと滴下した。５時間後、室温まで昇温し、室温にて１２時間攪拌した。反応溶液に水を加えた後、水層をジクロロメタンで抽出した。有機層を合わせて、硫酸ナトリウムで乾燥し、減圧下濃縮した。得られた粗生成物（０．９２ｇ、６．２ｍｍｏｌ）をジクロロメタン（５０ｍＬ）に溶解し−７８℃に冷却後、トリエチルアミン（１．６ｇ、６．２ｍｍｏｌ）とＤＭＡＰ（１５ｍｇ、触媒量）を加えた。この溶液に無水トリフルオロメタンスルホン酸（１．６ｇ、６．２ｍｍｏｌ）を５分間かけて加えた。混合溶液を−７８℃で３０分撹拌した後、室温まで昇温して２時間撹拌した。反応液を飽和塩化アンモニウム水溶液（２０ｍＬ）に注ぎ、有機層と水層を分離した。水層をジクロロメタンで抽出して有機層を合わせた後、無水硫酸マグネシウムで乾燥した。ろ過により硫酸マグネシウムを除いた後、溶媒を減圧下留去した。残渣をシリカゲルカラムにより精製して化合物７を得た（１．４ｇ、４３％）。
１Ｈ−ＮＭＲ　（３００　ＭＨｚ，　ＣＤＣｌ３　）：δ　＝　２．７８　（２Ｈ，　ｔ，　Ｊ　＝　６．０　Ｈｚ），　３．２０　（２Ｈ，　ｔ，　Ｊ＝　６．０　Ｈｚ），　７．２７　（１Ｈ，　ｄ，　Ｊ　＝　８．４　Ｈｚ），　７．４９　（１Ｈ，　ｄｄ，　Ｊ　＝　８．４、２．０　Ｈｚ），　７．６４　（１Ｈ，　ｄ，　Ｊ　＝　２．０　Ｈｚ）；
ＩＲ　（ＣＨＣｌ３）　ν最大値　１７２０，　１６８６，　１６１０，　１４９８，　１２９６，　１１４４　ｃｍ　−１。
ＨＲＭＳ　（ＥＩ）（Ｃ１０Ｈ７Ｏ４Ｆ３Ｓとして計算）計算値　２８０．００１７、測定値　２８０．００１８。
【００５０】
（ｉｉ）化合物８の製造
上記の化合物７（０．７　ｇ，　２，５　ｍｍｏｌ）、４−メトキシフェニルボロン酸（０．５　ｇ，　３　ｍｍｏｌ）、２Ｍ　炭酸ナトリウム水溶液（１．６　ｍＬ、３．２　ｍｍｏｌ）、テトラキス（トリフェニルホスフィン）パラジウム（１６４　ｍｇ、０．１２　ｍｍｏｌ）　のベンゼン（５　ｍＬ）／　メタノール（２　ｍＬ）溶液を８０℃で１時間加熱撹拌した。溶液を無水硫酸ナトリウムで乾燥した後、濃縮した。残渣についてシリカゲルクロマトグラフィーにより化合物８を黄色のアモルファス状固体として得た（０．５ｇ、８５％）。
融点：１３９−１４１　℃；
１Ｈ−ＮＭＲ　（３００　ＭＨｚ，　ＣＤＣｌ３）　δ＝　２．７４　（２Ｈ，　ｔ，　Ｊ＝６．０　Ｈｚ），　３．１８　（２Ｈ，　ｔ，　Ｊ＝６．０Ｈｚ），　３．８７　（３Ｈ，　ｓ），　６．９９　（２Ｈ，　ｄ，　Ｊ＝８．４　Ｈｚ），　７．５２　（１Ｈ，　ｄ，　Ｊ＝８．４　Ｈｚ），　７．５４（２Ｈ，　ｄ，　Ｊ＝８．４　Ｈｚ），　７．８０　（１Ｈ，　ｄｄ，　Ｊ＝８．４，　２．０　Ｈｚ），　７．９３　（１Ｈ，　ｄ，　Ｊ＝２．０　Ｈｚ）；
ＨＲＭＳ　（ＥＩ）（Ｃ１６Ｈ１４Ｏ２として計算）：計算値２３８．０９９３，　測定値２３８．０９８７；
ＩＲ　（ＣＨＣｌ３）ν最大値　１７０２，　１６０８，　１４８２，　１２６９，　８２８　ｃｍ　−１．
【００５１】
（ｉｉｉ）化合物９の製造
水素化ナトリウム（２４０　ｍｇ，　１０　ｍｍｏｌ）、炭酸ジエチル（０．５　ｍＬ，　４．２　ｍｍｏｌ）のベンゼン（２０　ｍＬ）溶液を８０℃で３０分間攪拌した。この溶液に化合物８（５００　ｍｇ，　２．１　ｍｍｏｌ）のベンゼン（５　ｍＬ）溶液を加えて混合溶液を８０℃で３時間攪拌した。５％炭酸水素ナトリウム水溶液を加えて水層を酢酸エチルで抽出した。有機層を混合して、無水硫酸ナトリウムで乾燥後、濃縮した。粗生成物（２４０　ｍｇ，　０．７　ｍｍｏｌ）をジメチルホルムアミド（４　ｍＬ）に溶解し、これに室温下、炭酸カリウム（１０６ｍｇ，　０．７　ｍｍｏｌ）とメチル４−ヨウ化ブチレート（１７５　ｍｇ，　０．７　ｍｍｏｌ）を加えて１２時間攪拌した。５％炭酸水素ナトリウム水溶液を加えて水層を酢酸エチルで抽出した。有機層を混合後、無水硫酸ナトリウムで乾燥した。濾過により硫酸ナトリウムを除いた後、溶媒を減圧下留去した。粗生成物（１９６　ｍｇ）をエタノール（６　ｍＬ）と水（１　ｍＬ）に溶解し、３Ｍ水酸化ナトリウム水溶液（０．４　ｍＬ）を加えて室温で２４時間反応させた。溶媒を減圧下留去後、残渣を１Ｎ塩酸で処理すると結晶が析出した。得られた結晶を濾過して集め水で洗った後、乾燥して化合物９（２０％、１５８ｍｇ）が黄色固体として得られた。
１　Ｈ−ＮＭＲ　（３００　ＭＨｚ，　ＣＤＣｌ３）　δ＝１．５０−１．６２　（１Ｈ，　ｍ），　１．８２　（２Ｈ，　ｔ，　Ｊ＝７．２　Ｈｚ），１．９８−２．１０　（１Ｈ，　ｍ），　２．４６　（２Ｈ，　ｔ，　Ｊ＝７．２　Ｈｚ），　２．４６−２．５０　（１Ｈ，　ｍ），　２．８７　（１Ｈ，ｄｄ，　Ｊ　＝１５．２，　２．０　Ｈｚ），　３．３９　（１Ｈ，　ｄｄ，　Ｊ＝１５．２，　８．０　Ｈｚ），　３．８８　（３Ｈ，　ｓ）　７．０１　（２Ｈ，　ｄ，　Ｊ＝８．４　Ｈｚ），　７．５６　（１Ｈ，　ｄ，　Ｊ＝８．４　Ｈｚ），　７．５７　（２Ｈ，　ｄ，　Ｊ＝８．４　Ｈｚ）　７．８２　（１Ｈ，　ｄｄ，　Ｊ＝８．４，　２．０　Ｈｚ），　７．９３　（１Ｈ，　ｄ，　Ｊ＝２．０　Ｈｚ）；　　ＨＲＭＳ　（ＥＩ）（Ｃ２０Ｈ２０Ｏ４として計算）：計算値３２４．１３６２，　測定値　３２４．１３４９；
ＩＲ　（ＫＢｒ）ν最大値　３４４８，　２９２９，　２３６１，　２３４２，　１７０６，　１６８５，　１６０８，　１４９７，　１２５０，　８１２　ｃｍ−１，
元素分析（Ｃ２０Ｈ２０Ｏ４として計算）：計算値　Ｃ，　７０．２３％；　Ｈ，　６．３９％；測定値　Ｃ，　７０．２６％；　Ｈ，　６．２２％。
【００５２】
（ｉｖ）ハプテン１０の製造
化合物９（４０　ｍｇ，　０．１２　ｍｍｏｌ）、２．５　Ｍ水酸化ナトリウム水溶液（０．１０　ｍＬ，　０．２５　ｍｍｏｌ）、および３７％ホルムアルデヒド溶液（０．０２　ｍＬ，　０．２５　ｍｍｏｌ）を９９．５％エタノール（５　ｍＬ）中、室温下２時間攪拌した。エタノールを減圧下留去後、残渣をジクロロメタンに溶解して塩酸で洗浄した。溶液を無水硫酸ナトリウムで乾燥した後、溶媒を減圧下留去した。残渣（４０　ｍｇ）のメタノール溶液（２　ｍＬ）に２．５Ｍ　水酸化ナトリウム水溶液（０．０４３　ｍＬ，　０．１１　ｍｍｏｌ）と水素化ホウ素ナトリウム（４．８　ｍｇ，　０．１１　ｍｍｏｌ）を加えて室温で１２時間攪拌した。混合溶液を１Ｎ塩酸で処理した後、濃縮した。残渣を分取用ＴＬＣ（展開溶媒：ジクロロメタン−メタノール（９：１））で精製し、ハプテンのトランス体１０（２０　ｍｇ，　４５％）およびシス体１０（１５　ｍｇ，　３４％）をそれぞれ白色固体として得た。以下の実験にはトランス体１０を用いた。
ハプテンのトランス体１０のデータ：
１Ｈ−ＮＭＲ　（３００　ＭＨｚ，　９：１　ＣＤＣｌ３−ＣＤ３ＯＤ）　δ＝１．５０−１．８３　（４Ｈ，　ｍ），　２．３５　（２Ｈ，　ｔ，　Ｊ＝　７．２　Ｈｚ），　２．７２　（１Ｈ，　ｄ，　Ｊ　＝　１０．８　Ｈｚ），　２．７４　（１Ｈ，　ｄ，　Ｊ　＝　１０．８　Ｈｚ），　３．７８　（１Ｈ，　ｄ，　Ｊ　＝　１０．８　Ｈｚ），　３．６５　（１Ｈ，　ｄ，　Ｊ　＝　１０．８　Ｈｚ），　３．８６　（３Ｈ，　ｓ），　５．００　（１Ｈ，　ｓ），　６．９８　（２Ｈ，　ｄ，　Ｊ　＝　８．４　Ｈｚ），　７．２１　（１Ｈ，　ｄ，　Ｊ　＝　８．４　Ｈｚ），　７．４４　（１Ｈ，　ｄ，　Ｊ　＝８．４　Ｈｚ），　７．５４　（２Ｈ，　ｄ，　Ｊ　＝　８．４　Ｈｚ），　７．５６　（１Ｈ，　ｓ），　ＩＲ　（ＫＢｒ）　ν最大値　３４２２，　２９２４，　２３６１，　２３４２，　１７３５，　１７１７，　１６７０，　１６１７，　１５７０，　１４５８，　１２４８，　８２１　ｃｍ−１，
融点：１０５−１０７℃，
ＨＲＭＳ　（ＥＩ）（Ｃ２１Ｈ２４Ｏ５として計算）：計算値３５６．１６０４，　測定値　３５６．１６２２。
シス体１０のデータ：
１Ｈ−ＮＭＲ　（３００　ＭＨｚ，　９：１　ＣＤＣｌ３−ＣＤ３ＯＤ）　δ＝１．５０−１．７３　（４Ｈ，　ｍ），　２．３４　（２Ｈ，　ｔ，　Ｊ＝　７．２　Ｈｚ），　２．６８　（１Ｈ，　ｄ，　Ｊ　＝　１０．８　Ｈｚ），　２．８０　（１Ｈ，　ｄ，　Ｊ　＝　１０．８　Ｈｚ），　３．５３　（１Ｈ，　ｄ，　Ｊ　＝　１０．８　Ｈｚ），　３．６６　（１Ｈ，　ｄ，　Ｊ　＝　１０．８　Ｈｚ），　３．８５　（３Ｈ，　ｓ），　５．０３　（１Ｈ，　ｓ），　６．９８　（２Ｈ，　ｄ，　Ｊ　＝　８．４　Ｈｚ），　７．５４　（２Ｈ，　ｄ，　Ｊ　＝　８．４　Ｈｚ），　７．４４　（１Ｈ，　ｄ，　Ｊ　＝８．４　Ｈｚ），　７．５６　（１Ｈ，　ｓ）および７．２０　（１Ｈ，　ｄ，　Ｊ　＝　８．４　Ｈｚ）。
【００５３】
（ｖ）化合物１１の製造
ハプテンのトランス体１０（２０　ｍｇ，　０．０６　ｍｍｏｌ）、（１−（３−ジメチルアミノプロピル）−３−エチルカルボジイミド塩酸塩、ＷＳＣと略す）（１２　ｍｇ，　０．０６ｍｍｏｌ）、１−ヒドロキシベンゾトリアゾール、ＨＯＢＴと略す）（８　ｍｇ，　０．０６　ｍｍｏｌ）とシスタミン二塩酸塩（１３　ｍｇ，　０．０６　ｍｍｏｌ）をジメチルホルムアミド（１ｍＬ）中で室温下、１２時間攪拌した。溶媒を減圧下留去した後、残渣をジクロロメタンに溶解し、５％炭酸水素ナトリウム水溶液で洗浄した。有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥後、溶媒を減圧下留去した。粗生成物（１５　ｍｇ，　０．０３６　ｍｍｏｌ）と０．５　Ｍトリス（２−カルボキシエチル）ホスフィン（ＴＣＥＰと略す）（０．０８　ｍＬ，０．０４ｍｍｏｌ）のジオキサン（０．９　ｍＬ）とＴＨＦ（０．１　ｍＬ）の混合溶媒を室温で２時間攪拌した。溶媒を減圧下留去して、残渣を分取用ＴＬＣ（展開溶媒：ジクロロメタン−メタノール（９：１））で精製することにより化合物１１（９　ｍｇ）を油状物として得た。
１Ｈ−ＮＭＲ　（３００　ＭＨｚ，　９：１　ＣＤＣｌ３−ＣＤ３ＯＤ）　δ＝１．４７−１．６８　（４Ｈ，　ｍ），　２．１８−２．４８　（２Ｈ，ｍ），　２．６１　（２Ｈ，　ｔ，　Ｊ　＝　６．０　Ｈｚ），　２．７２　（２Ｈ，　ＡＢｑ），　３．３８　（２Ｈ，　ｔ，　Ｊ　＝　６．０　Ｈｚ），３．５７　（２Ｈ，　ＡＢｑ），　３．８５　（３Ｈ，　ｓ），　５．０２　（１Ｈ，　ｓ），　６．９７　（２Ｈ，　ｄ，　Ｊ　＝　８．４　Ｈｚ），　７．２０　（１Ｈ，　ｄ，　Ｊ　＝　８．１　Ｈｚ），　７．４２　（１Ｈ，　ｄ，　Ｊ　＝　８．１　Ｈｚ），　７．５３　（２Ｈ，　ｄ，　Ｊ　＝　８．４　Ｈｚ），　７．５６　（１Ｈ，　ｓ）．
ＨＲＭＳ　（ＦＡＢ）（Ｃ２３Ｈ３０ＮＯ４Ｓとして計算）（Ｍ＋Ｈ）：計算値４１６．１８９６，　測定値　４１６．１９１４；
ＩＲ　（ＫＢｒ）　ν最大値　３３０９，　２９２８，　２８１０，　１６４７，　１６０９，　１５５９，　１５４１，　１２４８，　８２１　ｃｍ−１。
【００５４】
実施例２
ハプテンと担体タンパク質との縮合体の製造
次いで、上記の通り製造した化合物１１と担体タンパク質とを結合させて、縮合体１２（タンパク質がスカシガイ血素（ＫＬＨ）の場合）または１３（タンパク質がウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）の場合）を得た。スカシガイ血素（ＫＬＨ）およびウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）は共にＰｉｅｒｃｅ製である。
【００５５】
（ｉ）ＫＬＨ縮合体１２の製造
ＫＬＨ（２０　ｍｇ）のＰＢＳ（日水製薬株式会社製）（４　ｍＬ）に３−マレイミドプロピオン酸Ｎ−ヒドロキシサクシイミドエステル（Ａｌｄｒｉｃｈ製，　１２．５ｍｇ）のジメチルホルムアミド（０．４　ｍＬ）溶液を加え、室温で３時間攪拌した。得られた水溶液を１ＬのＰＢＳで３回透析した。得られた水溶液の約半量（２．５　ｍＬ）に化合物１１のジメチルホルムアミド（０．５　ｍＬ）溶液を添加し、室温で１７時間穏やかに攪拌した。得られた縮合体をＰＢＳ（１Ｌ）で３回透析してＫＬＨ縮合体１２を得た。該縮合体のタンパク質濃度は、ＢＣＡタンパクアッセイ法（Ｐ．　Ｋ．　Ｓｍｉｔｈら，　Ａｎａｌ．　Ｂｉｏｃｈｅｍ，　１５０，　７６　（１９８５））によって決定した（３．６　ｍｇ　／　ｍＬ）。
【００５６】
（ｉｉ）ＢＳＡ縮合体１３の製造
ＢＳＡ（２０　ｍｇ）のＰＢＳ（４　ｍＬ）に３−マレイミドプロピオン酸Ｎ−ヒドロキシサクシイミドエステル（１２．５ｍｇ）のジメチルホルムアミド（０．４　ｍＬ）溶液を加え、室温で３時間攪拌した。得られた水溶液を１ＬのＰＢＳで３回透析した。得られた水溶液の約半量（２．５　ｍＬ）に化合物１１のジメチルホルムアミド（０．５　ｍＬ）溶液を添加し、室温で１７時間穏やかに攪拌した。得られた縮合体をＰＢＳ（１Ｌ）で２回透析してＢＳＡ縮合体１３を得た。該縮合体のタンパク質濃度は、上記のＢＣＡタンパクアッセイ法によって決定した（３．０　ｍｇ　／　ｍＬ）。
【００５７】
実施例３
触媒抗体の製造
（ｉ）免疫
実施例２より製造した免疫抗原（ＫＬＨ縮合体１２）（１００μｇ）の生理食塩水溶液（２００μＬ）をＲＩＢＩアジュバント（ＲＩＢＩ製　Ｉｍｍｕｎｏｌ，　Ｒｅｓ．　Ｉｎｓｔ．製）と混和し、その混合液をＢａｌｂ／ｃマウス（８週齢、雌）（日本ＳＬＣから購入）に腹腔内注射した。１４日後および２８日後に該免疫抗原（１００μｇ）の生理食塩水溶液（２００μＬ）とＲＩＢＩアジュバントとの混合液で追加免疫を行い、そのマウスの尾静脈より採血し、抗体価をＢＳＡ縮合体を用いた酵素結合免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）法（二次抗体　抗マウスＩｇＧペルオキシターゼ）により測定し、５１２００抗体価の値を得た。最終追加免疫より２４日後に抗原（１００μｇ）の生理食塩水溶液（２００μＬ）とＲＩＢＩアジュバントとの混合液を腹腔内に投与（最終免疫）した。
【００５８】
（ｉｉ）抗体産生ハイブリドーマの製造
最終免疫より３日後にマウスから脾臓を摘出し、次いで脾臓細胞と５×１０７個のミエローマ細胞（Ｐ３Ｘ６３−Ａｇ８．６５３、大日本製薬社製）とを電気細胞融合装置（島津電気細胞融合装置ＳＳＨ−１０）を用いて細胞融合し（条件：電極の距離、１．０　ｍｍ；振動数、１ＭＨｚ；一次ＡＣ電圧、８０　Ｖ；開始時間、１０秒；パルス幅、４０　μｓ；ＤＣ電圧、９２０　Ｖ；電解密度、２．３０　ｋＶ／ｃｍ；二次ＡＣ電圧、８０　Ｖ；パルス反復間隔、１秒；パルス数、１；ＶＤＣ変化、＋０　Ｖ；最終時間、１０秒；ＡＣ電圧減少比率、０　％；吸着増感剤、なし）、ＨＡＴ選択培地（１００μＭヒポキサンチン、０．４μＭアミノプテリン、１６μＭチミジン、２０％牛胎児血清ＲＰＭＩ培地）を加えた９６ウェルプレート（１０枚）を用いて得られた融合体の選別を行った（３７℃、５％炭酸ガス）。８〜１４日後にコロニーが現れてきたウェルより上清をとり、ＥＬＩＳＡ法によりスクリーニングを行い陽性クローンを得た。これらのクローンをクローニングを２回行い、最終的に７０個のＩｇＧ産生クローンを得た。
【００５９】
（ｉｉｉ）モノクローナル抗体の製造
上記実施例３（ｉｉ）において製造した７０種のハイブリドーマを完全培地（１０％牛胎児血清ＲＰＭＩ培地、ＧＩＢＣＯ社製）においてそれぞれ約７日間培養した。その培養上清を抗マウスＩｇＧ＋Ｍアフニティークロマトグラフィー（ＮＧＦ　Ｉｎｄｕｓｔｒｉｅｓ．　Ｌｔｄ．社製）により精製し、精製したモノクローナル抗体を得た。
【００６０】
（ｉｖ）触媒抗体の特定
上記実施例３（ｉｉｉ）において製造した７０個の精製抗体の５０　ｍＭトリス緩衝液、ｐＨ　８．０溶液（９０μＬ）にＭＣＬＡの１００　μＭメタノール溶液（１０　μＬ）（ナカライテスク（株）社製）を２５℃で加え、混和し、抗体濃度１０　μＭ、基質濃度１０　μＭとした。ルミノメータ（ＡＢ−２２００、アトー株式会社製）により２０秒間の発光量を求めた。また、抗体を加えない反応溶液中の自然酸化反応により生じるコントロールとしてのバックグラウンドの発光量を求めた。その結果、３Ａ５、７Ｄ１０、８Ｇ１０、９Ｂ４、１１Ｄ６、１３Ｇ７、１３Ｈ１１、１４Ｃ９、１５Ｂ３、１５Ｃ８、１６Ｂ２、１８Ｆ９、１９Ｂ１１、１９Ｄ６の１４個の抗体が該コントロールに比べて大きく発光量が増大していた。
【００６１】
（ｖ）モノクローナル抗体の酸化反応速度の測定
上記実施例３（ｉｉｉ）において製造した７０個の精製抗体の５０　ｍＭトリス−ＨＣｌ緩衝液、ｐＨ　８．０溶液（９０　μＬ）に該ＭＣＬＡの１ｍＭメタノール溶液（１０　ｍＬ）を２５℃で加え、混和し、一定の抗体濃度（１０μＭ）、一定の基質濃度（１００μＭ）とした。ＨＰＬＣ（ＹＭＣ　ＡＭ−３０３：Ｃ−１８、φ４．６　ｍｍ×２５０　ｍｍ、アセトニトリル：０．１％トリフルオロ酢酸水溶液　＝　４０：６０、１．０　ｍＬ／分、２７８　ｎｍ）により、反応溶液中に生成したアミド化合物（保持時間８．３分）の量を経時的に追跡し、酸化反応速度を測定した。また、抗体を加えない反応溶液中の自然酸化により生成したアミド化合物の量からコントロールとしてのバックグラウンドの酸化反応速度を決定した。その結果、１Ｃ６、３Ａ５、５Ｅ１１、７Ｄ１０、１１Ｄ６、１３Ｇ７、１３Ｈ１１、１４Ｃ９、１５Ｂ３、１５Ｃ８、１５Ｄ６、１６Ｂ２、１８Ｆ９、１９Ｂ１１、１９Ｄ６の１５個の抗体がバックグラウンドに比べて酸化反応を加速することが明らかとなった。
【００６２】
次に、一定の抗体濃度（１０μＭ）で基質濃度を１０　￣　２００　μＭまで増減させて、反応加速初速度（このものは、抗体存在下での反応初速度から抗体が存在しない条件下での反応初速度を引いたものである）を測定し、ミカエリス−メンテン式（下記の式Ｉ）に当てはめて分子活性ｋｃａｔおよびミカエリス定数Ｋｍを算出した（図２を参照）。
【化２９】
2004002212.tif 000022
上記式中、Ｖは反応速度を、［Ａｂ］は抗体濃度を、［Ｓ］は基質濃度を、ｋｃａｔは分子活性を、およびＫｍはミカエリス定数を示す。
【００６３】
最も強い発光量を示す触媒抗体７Ｄ１０の場合は、ｋｃａｔ　＝　０．０１　ｍｉｎ−１、Ｋｍ　＝　５２　μＭであった。
【００６４】
抗体７Ｄ１０を産生するハイブリドーマをハイブリドーマ７Ｄ１０と命名した。該ハイブリドーマ７Ｄ１０は、特許手続き上の微生物の寄託に関するブタベスト条約の下、独立行政法人産業技術総合研究所に受託番号ＦＥＲＭ　Ｐ−１８６６８（寄託日は平成１３年１２月２６日）として寄託されている。
【００６５】
実施例４
触媒抗体７Ｄ１０を用いた発光システム
（ｉ）触媒抗体７Ｄ１０の効果
次いで、（１）発光基質であるＭＣＬＡのみが自然酸化によって生じるバックグラウンドの発光量、（２）触媒抗体７Ｄ１０の存在下で反応させた場合の発光量、および（３）更にＭＣＬＡの競合基質としてハプテン１０の存在下で反応させた場合の発光量を経時的に比較することによって、本発明の発光量の増大が本発明の触媒抗体の効果によるものであることを確認した。
【００６６】
以下のそれぞれの条件で発光量を測定し、それらの発光量を比較した（図１Ａ）。
（１）コントロールとしてのバックグラウンドの反応については、発光基質であるＭＣＬＡの１ｍＭ　エタノール溶液（１０μＬ）のみを５０　ｍＭトリス−ＨＣｌ（ｐＨ　８．０、４９０μＬ）中で２５℃で混合して、発光量を測定した。
（２）触媒抗体７Ｄ１０存在下での反応については、ＭＣＬＡの１ｍＭ　エタノール溶液（１０μＬ）および触媒抗体７Ｄ１０の１０μＭ溶液（５０　ｍＭ　トリス−ＨＣｌ、ｐＨ　８．０、４９０μＬ）を２５℃で混合して、発光量を測定した。
（３）更にＭＣＬＡの競合基質であるハプテン１０の存在下での反応については、ＭＣＬＡの１ｍＭ　エタノール溶液（１０μＬ）、ハプテン１０の１ｍＭ　エタノール溶液（１０μＬ）および触媒抗体７Ｄ１０の１０μＭ溶液（５０　ｍＭ　トリス−ＨＣｌ）（ｐＨ　８．０、４８０μＬ）を２５℃で混合して、発光量を測定した。
【００６７】
上記の実験の結果、（２）の触媒抗体７Ｄ１０の存在下での発光量は、発光基質ＭＣＬＡのみである（１）の発光量と比較して、３０倍以上の増大であることが観察された。一方で、ＭＣＬＡの競合基質であるハプテン１０が存在する（３）の発光量の増大はほぼ抑制された。このことは、本発明による発光が、本発明の触媒抗体との結合部位で起こっていることを示唆する。
【００６８】
（ｉｉ）発光スペクトルの測定
また、発光スペクトルは、ＭＣＬＡの１ｍＭ　エタノール溶液（１０μＬ）と触媒抗体７Ｄ１０の１０μＭ溶液（５０　ｍＭ　トリス−ＨＣｌ）（ｐＨ　８．０、４９０μＬ）を２５℃で混合して、直ちに測定することで得た。
【００６９】
その結果、該触媒抗体の存在下で発光基質であるＭＣＬＡは、青色の発光を示し、その発光スペクトルは４３１ｎｍに吸収極大を示した（図１Ｂ）。これは、イミダゾピラジノン系化合物に特徴的な発光スペクトルである。
【００７０】
（ｉｉｉ）触媒抗体７Ｄ１０の基質特異性
次いで、本触媒抗体７Ｄ１０による発光反応の基質特異性を調べる目的で、下記式に示す同様なイミダゾピラジノン骨格を有する化合物１４から１７について、それぞれの場合の発光量を調べた。
【化３０】
2004002212.tif 000023
実験は、上記の発光量の測定法と同様の方法に従って、これらの化合物１４〜１７およびＭＣＬＡのそれぞれの１ｍＭ　エタノール溶液（１０μＬ）および触媒抗体７Ｄ１０の１０μＭ溶液（５０　ｍＭ　トリス−ＨＣｌ、ｐＨ　８．０、４９０μＬ）を２５℃で混合し、発光量を測定して比較した。その結果、これら同様なイミダゾピラジノン骨格を有する化合物１４〜１７は、いずれの場合についても発光量は本発明のＭＣＬＡの発光量の５％以下であった。このことは、本発明の触媒抗体７Ｄ１０の発光基質ＭＣＬＡについての基質特異性を示唆する。
【００７１】
（ｉｖ）発光反応に関与する酸素活性種の特定
触媒抗体による発光基質への酸素付加反応過程に関与する酸素活性分子種について、モデル系として触媒抗体７Ｄ１０及び発光基質のＭＣＬＡを含む系を用いて、該反応系にいくつかの酸素活性分子種に特異的な阻害剤を添加することにより、それぞれの添加物が発光量に及ぼす影響を調べることによって、その酸素活性分子種を調べた。
【００７２】
調べた発光反応系は、１００μＬの５０　ｍＭ　トリス−ＨＣｌ（ｐＨ　８．０）、１μＬの１ｍＭＭＣＬＡ、１μＬの１１μＭの触媒抗体７Ｄ１０より構成され、使用した阻害剤とその最終濃度は、以下のものを用いた。一重項酸素の阻害剤であるアジ化ナトリウム（最終濃度０．５　ｍＭ：和光純薬社製）、鉄イオンのキレート剤であるエチレンジアミン四酢酸二ナトリウム（ＥＤＴＡと略す）（最終濃度１ｍＭ：和光純薬社製）、過酸化水素の分解酵素であるカタラーゼ（最終濃度　０．０２ｍｇ：シグマ社製）、スーパーオキシドアニオンの阻害酵素であるスーパーオキシドジスムターゼ（最終濃度　５００ｎＭ：シグマ社製）。発光量は、ルミノメーター（ＡＢ２２００型、アトー社製）を用い、阻害剤添加の１秒後から６秒までの発光量を積算し、相対発光値で評価した。
【００７３】
その結果を表１に示す。
表１．添加物が触媒抗体７Ｄ１０によるＭＣＬＡの発光量に及ぼす影響
【表１】
2004002212.tif 000024
脚注）反応条件：　５０ｍＭ　トリス−ＨＣｌ（ｐＨ　８．０、０．１ｍＬ）、１ｍＭ　ＭＣＬＡ（１μＬ）、１１μＬ　７Ｄ１０（１μＬ）および化学品／酸素（１μＬ）
【００７４】
表１に記載の通り、添加剤を加えたいずれの場合にも添加剤を入れなかった場合に比べて約９５％以上の発光量を示すことが明らかとなった。すなわち、本発明の方法により製造した触媒抗体による発光の酸素添加反応過程において関与する酸素活性種は、三重項の分子状酸素であり、通常のルシフェラーゼ酵素による生物発光反応系において関与する酸素活性種と同様であることが分かった。このことより、他の機能性タンパク質と同様に、本発明の製造法で単離された触媒抗体に対する遺伝子を取得後に改変することによって、さらに高効率を有する触媒抗体の製造が可能となろう。
【００７５】
【発明の効果】
本発明によって得られる触媒抗体は、現在知られているルシフェラーゼに代わる発光触媒活性を有する触媒抗体である。また、該触媒抗体は熱的に安定であり、且つ通常の抗体精製技術を用いて容易に精製することができる。更に、本発明における発光触媒活性を有する触媒抗体をイムノアッセイ法（例えば、発光イムノアッセイ法）およびハイスループットアッセイ法（例えば、発光イムノアッセイ法に応用）に応用する場合にも、該触媒抗体に従来の確立された抗体の修飾法を適用することによって、分析目的に応じて触媒抗体の化学的な修飾が可能となろう。
【図面の簡単な説明】
【図１】図１Ａは、（１）発光基質であるＭＣＬＡのみが自然酸化によって生じるバックグラウンドの発光量、（２）触媒抗体７Ｄ１０の存在下で反応させた場合の発光量、および（３）更にＭＣＬＡの競合基質としてハプテン１０の存在下で反応させた場合の発光量を、経時的に比較した結果を示す図である。図１Ａにより、（２）の触媒抗体７Ｄ１０の存在下の発光量は、発光基質ＭＣＬＡのみである（１）の発光量と比較して、３０倍以上の増大であることが観察された。
図１Ｂは、触媒抗体７Ｄ１０によるＭＣＬＡの発光スペクトルは４３１ｎｍに吸収極大を有することを示す図である。
【図２】図２は、一定の抗体濃度（１０μＭ）で基質濃度を１０〜２００　μＭまで増減させて、触媒抗体７Ｄ１０による反応加速初速度を測定した場合の結果についてのミカエリスーメンテン速度論を示す図である。横軸は基質濃度（単位はμＭ）を表わし、縦軸は酵素反応の速度（単位はμＭ／分）を表わす。
【図１】
2004002212.tif 000033
【図２】
2004002212.tif 000034