(57)【要約】【課題】Ｄ−アミノ酸オキシダーゼの安定化方法およびこの方法を利用する安定性の高いホモシステイン測定用試薬を提供すること。【解決手段】本発明のＤ−アミノ酸オキシダーゼの安定化方法は、Ｄ−アミノ酸オキシダーゼとジチオジニコチン酸とを液中で共存させる工程を含む。この液中に、さらに陰イオン界面活性剤を含むことが好ましい。本発明はまた、チオール化合物、ホモシステインメチルトランスフェラーゼ、およびＤ−メチオニンメチルスルホニウムを含有する試薬、およびＤ−アミノ酸オキシダーゼ、ジチオジニコチン酸、好ましくはさらに陰イオン界面活性剤を含有するＤ−アミノ酸測定用試薬を含む、ホモシステイン測定用キットも提供する。【選択図】  なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
Ｄ−アミノ酸オキシダーゼとジチオジニコチン酸とを液中で共存させる工程を含む、Ｄ−アミノ酸オキシダーゼの安定化方法。
【請求項２】
前記液が、陰イオン界面活性剤を含む、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記陰イオン界面活性剤が、ポリオキシエチレンアルキルアルキルエーテル硫酸、ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテル硫酸、ポリオキシエチレンジアルキルアリルエーテル硫酸、ポリオキシエチレンアルケニルアリルエーテル硫酸、およびそれらの塩からなる群より選択される少なくとも１種の化合物である、請求項２に記載の方法。
【請求項４】
前記Ｄ−アミノ酸オキシダーゼがブタ腎臓由来のＤ−アミノ酸オキシダーゼである、請求項１から３のいずれかに記載の方法。
【請求項５】
ジチオジニコチン酸を含む、Ｄ−アミノ酸オキシダーゼ含有液。
【請求項６】
さらに陰イオン界面活性剤を含む、請求項５に記載のＤ−アミノ酸オキシダーゼ含有液。
【請求項７】
請求項５または６に記載のＤ−アミノ酸オキシダーゼ含有液を含む、Ｄ−アミノ酸測定用試薬。
【請求項８】
チオール化合物、ホモシステインメチルトランスフェラーゼ、およびＤ−メチオニンメチルスルホニウムを含有する試薬、および請求項７に記載のＤ−アミノ酸測定用試薬を含む、ホモシステイン測定用キット。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、Ｄ−アミノ酸オキシダーゼの安定化方法、およびこの方法を利用するホモシステイン測定用試薬に関する。
【０００２】
【従来の技術】
ホモシステインを生化学的に定量するために、還元剤で処理した検体中のホモシステインを、アデノシンおよびＳ−アデノシル−Ｌ−ホモシステイン加水分解酵素と接触させ、残存する混合物中のアデノシン量を評価する方法が知られている（特許文献１参照）。しかし、血中の総ホモシステイン測定のために必須である還元処理に用いられるチオール化合物などの還元剤の存在下では、生成する過酸化水素を、通常用いられる酸化系発色剤での測定系に導くことはできないという問題点がある。チオール化合物が、酸化系発色剤の発色を著しく阻害するからである。このため、この方法を汎用の自動分析装置に応用することはできない。
【０００３】
この問題を解決するために、還元後の工程でＳＨ試薬を用いる方法が報告されている（特許文献２参照）。この方法では、残存するホモシステイン補助基質、生成したホモシステイン変換酵素生成物、またはそれらの酵素反応生成物を、ＳＨ試薬の存在下で酸化して過酸化水素を生成させると同時に、ＳＨ試薬を用いて余剰のチオール化合物の作用をブロックすることができる。しかしながら、このＳＨ試薬は反応性が高く、共存する酵素の安定性を著しく損なわせる原因となることがある。例えば、Ｄ−アミノ酸オキシダーゼを用いて酸化系発色剤での測定系に導く方法では、ＳＨ試薬の添加によりＤ−アミノ酸オキシダーゼが不安定になり、測定試薬自体の保存安定性を悪くさせる原因となっていた。
【０００４】
【特許文献１】
特許第２８７０７０４号公報
【特許文献２】
国際公開第０２／０２８０２号パンフレット
【０００５】
【発明が解決しようとする課題】
Ｄ−アミノ酸オキシダーゼの安定化剤としては、安息香酸がよく知られているが、同時に同酵素に対する強い阻害作用も示すという問題があった。本発明の目的は、Ｄ−アミノ酸オキシダーゼの安定化方法およびこの方法を利用する安定性の高いホモシステイン測定用試薬を提供することにある。
【０００６】
【課題を解決するための手段】
上記の目的を達成するために検討を重ねた結果、ジチオジニコチン酸がＤ−アミノ酸オキシダーゼ安定化作用を有し、かつ酵素阻害作用が無視できる程度に少ないことを見出した。さらに、陰イオン界面活性剤を用いることによって、Ｄ−アミノ酸オキシダーゼを安定化できると共に、変性して生じると考えられる不溶物の析出を防止し得ることも見出した。
【０００７】
本発明は、Ｄ−アミノ酸オキシダーゼとジチオジニコチン酸とを液中で共存させる工程を含む、Ｄ−アミノ酸オキシダーゼの安定化方法を提供する。
【０００８】
好適な実施態様では、上記液は、陰イオン界面活性剤を含む。
【０００９】
より好適な実施態様では、上記陰イオン界面活性剤は、ポリオキシエチレンアルキルアルキルエーテル硫酸、ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテル硫酸、ポリオキシエチレンジアルキルアリルエーテル硫酸、ポリオキシエチレンアルケニルアリルエーテル硫酸、およびそれらの塩からなる群より選択される少なくとも１種の化合物である。
【００１０】
別の好適な実施態様では、上記Ｄ−アミノ酸オキシダーゼはブタ腎臓由来のＤ−アミノ酸オキシダーゼである。
【００１１】
本発明はまた、ジチオジニコチン酸を含む、Ｄ−アミノ酸オキシダーゼ含有液を提供する。
【００１２】
好適な実施態様では、上記Ｄ−アミノ酸オキシダーゼ含有液は、さらに陰イオン界面活性剤を含む。
【００１３】
本発明はまた、上記いずれかのＤ−アミノ酸オキシダーゼ含有液を含む、Ｄ−アミノ酸測定用試薬を提供する。
【００１４】
本発明はさらに、チオール化合物、ホモシステインメチルトランスフェラーゼ、およびＤ−メチオニンメチルスルホニウムを含有する試薬、および上記のＤ−アミノ酸測定用試薬を含む、ホモシステイン測定用キットを提供する。
【００１５】
【発明の実施の形態】
ジチオジニコチン酸（６，６’−ジチオジニコチン酸）は、Ｄ−アミノ酸オキシダーゼを精製する場合から使用する場合までのあらゆる状況下で、Ｄ−アミノ酸オキシダーゼ含有液中でＤ−アミノ酸オキシダーゼ［ＥＣ  １．４．３．３］を安定化させる。例えば、ジチオジニコチン酸の存在下で通常用いる操作によってＤ−アミノ酸オキシダーゼを精製すると、酵素活性の低下を防止しつつ、精製酵素を得ることができる。また、例えば、Ｄ−アミノ酸オキシダーゼ含有製剤の凍結乾燥工程などでの失活を防止し得る。さらに、例えば、ホモシステイン測定用のＤ−アミノ酸オキシダーゼ含有液のようにＮ−エチルマレイミドのようなＳＨ試薬が共存する場合、この液にジチオジニコチン酸を加えることにより、Ｄ−アミノ酸オキシダーゼの安定性は飛躍的に向上し得る。
【００１６】
ジチオジニコチン酸の濃度は、Ｄ−アミノ酸オキシダーゼを安定化させるのに有効な濃度であれば、特に制限はない。例えば、後述するホモシステイン測定方法では、Ｄ−アミノ酸オキシダーゼ０．１〜１００Ｕ／ｍｌに対して、０．００１〜１００ｍＭ、好ましくは０．０１〜１０ｍＭ、さらに好ましくは０．０５〜２ｍＭの範囲で使用され得る。
【００１７】
陰イオン界面活性剤は、Ｄ−アミノ酸オキシダーゼ含有液中でＤ−アミノ酸オキシダーゼを安定化させるだけでなく、この液中にＮ−エチルマレイミドのようなＳＨ試薬を含む場合に生じる濁りの発生を防止し得る。ＳＨ試薬を含む場合の例としては、後述のホモシステイン測定方法が挙げられる。
【００１８】
陰イオン界面活性剤は、ポリオキシエチレンアルキルエーテル硫酸、ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテル硫酸、ポリオキシエチレンジアルキルアリルエーテル硫酸、ポリオキシエチレンアルケニルアリルエーテル硫酸、およびそれらの塩からなる群より選択される少なくとも１種が好適に使用される。これらのうちの１種を単独で使用してもよいし、２種以上を使用してもよい。より具体的には、ポリオキシエチレンアルキルエーテル硫酸塩［例：ハイテノール１８Ｅ（第一工業製薬（株）製）；エマール２０Ｃおよび２０Ａ、レベノールＷＸ（以上、花王（株）製）］、ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテル硫酸［例：ハイテノールＮ−１７（第一工業製薬（株）製）；エマールＮＣ、レベノールＷＺ（以上、花王（株）製）］、ポリオキシエチレンジアルキルアリルエーテル硫酸［例：ハイテノールＮＥ−１５（第一工業製薬（株）製）］、ポリオキシエチレンアルケニルアリルエーテル硫酸［例：ハイテノールＮＦ−１３（第一工業製薬（株）製）］等が挙げられる。
【００１９】
陰イオン界面活性剤の濃度は、Ｄ−アミノ酸オキシダーゼを安定化させるのに有効な範囲であり、さらにホモシステイン測定に悪影響を及ぼさない範囲であれば、特に制限はない。例えば、後述するホモシステイン測定方法では、０．００１〜５％（ｗ／ｖ）、好ましくは０．０１〜０．５％（ｗ／ｖ）で使用することが好ましい。
【００２０】
Ｄ−アミノ酸オキシダーゼ含有液を利用する場合の代表的な例として、ホモシステインの測定方法について具体的に説明する（特許文献２参照）。
【００２１】
Ｄ−アミノ酸オキシダーゼを用いるホモシステインの測定方法では、チオール化合物で還元処理した試料中のホモシステインに、メチル供与体存在下、メチル転移酵素を作用させた後（以下第一工程という）、生成するＤ−アミノ酸誘導体またはＤ−アミノ酸類似体にＳＨ試薬およびジチオジニコチン酸の存在下でＤ−アミノ酸オキシダーゼを作用させ、そして生成する過酸化水素を酸化系発色剤によって測定する（以下第二工程という）。第二工程においては、さらに陰イオン界面活性剤も使用することが好ましい。
【００２２】
この方法に供される被検試料としては、ホモシステインを含むと考えられる試料であればいずれでもよい。また、ホモシステインの存在様式としては、還元型ホモシステインのみならず、蛋白結合型、ホモシステイン２量体、ホモシステイン−システイン２量体などジスルフィド結合で他の分子に結合した酸化型ホモシステインのいずれでもよい。例えば、血清、血漿、血液、尿、およびそれらの希釈物などが挙げられる。
【００２３】
この方法で用いられるチオール化合物は特に限定されず、例えば、ジチオスレイトール、メルカプトエタノール、Ｎ−アセチルシステイン、ジチオエリスリトール、チオグリコール酸などが挙げられる。チオール化合物の濃度は、酸化型ホモシステインを還元型ホモシステインに変換できる範囲であればいずれでもよく、好ましくはチオール基として０．１ｍＭ以上、より好ましくは１ｍＭ以上の濃度であればよい。
【００２４】
メチル供与体としては、例えば、Ｄ−メチオニンメチルスルホニウム、Ｓ−アデノシル−Ｄ−メチオニン、Ｄ−エチオニンメチルスルホニウムなどが挙げられる。好ましくは、Ｄ−メチオニンメチルスルホニウムを使用する。
【００２５】
メチル転移酵素としては、Ｄ−メチオニンメチルスルホニウムおよびＬ−ホモシステインに作用し、Ｄ−メチオニンおよびＬ−メチオニンの生成を触媒するものであればどのようなものでもよく、例えば、ホモシステインメチルトランスフェラーゼ［ＥＣ  ２．１．１．１０］、５−メチルテトラヒドロ葉酸−ホモシステイン  Ｓ−メチルトランスフェラーゼ［ＥＣ  ２．１．１．１３］、５−メチルテトラヒドロプテロイルトリグルタミン酸−ホモシステイン  Ｓ−メチルトランスフェラーゼ［ＥＣ  ２．１．１．１４］が挙げられる。好ましくは、ホモシステインメチルトランスフェラーゼ［ＥＣ  ２．１．１．１０］が使用される。ホモシステインメチルトランスフェラーゼの系統名は、Ｓ−アデノシル−Ｌ−メチオニン：Ｌ−ホモシステイン  Ｓ−メチルトランスフェラーゼであり、メチル受容体のＬ−ホモシステインおよびメチル供与体のＳ−アデノシル−Ｌ−メチオニンを基質とし、Ｌ−メチオニンおよびＳ−アデノシル−Ｌ−ホモシステインを産生する酵素である（酵素ハンドブック、朝倉書店、１９８２年）。また、Ｓ．Ｋ．Ｓｈａｐｉｒｏにより、この酵素は、メチル供与体として、Ｓ−メチル−Ｌ−メチオニン（Ｌ−メチオニンメチルスルホニウム）、またはＳ−アデノシル−Ｄ−メチオニンも利用することが報告されている（Ｂｉｏｃｈｉｍ．  Ｂｉｏｐｈｙｓ．  Ａｃｔａ，  ２９，  ４０５−４０９，  １９５８）。
【００２６】
使用するホモシステインメチルトランスフェラーゼは、Ｄ−メチオニンメチルスルホニウムをメチル供与体とするものであればどのような由来のものでも使用できる。例えば、細菌、酵母、ラット等に由来する酵素が使用できる。
【００２７】
Ｄ−メチオニンの定量は、Ｄ−アミノ酸オキシダーゼ［ＥＣ  １．４．３．３］を利用して行う。Ｄ−アミノ酸の１つであるＤ−メチオニンメチルスルホニウムは、ほとんどＤ−アミノ酸オキシダーゼの基質にならないため、Ｄ−アミノ酸変換酵素がＤ−メチオニンメチルスルホニウムには作用しないか、または作用してもＤ−メチオニンに対するよりも反応性が十分に低いものであれば、ホモシステインメチルトランスフェラーゼでの反応後に残存しているＤ−メチオニンメチルスルホニウムを反応系外に除くことなく、生成したＤ−メチオニンを測定することができる。
【００２８】
使用するＤ−アミノ酸オキシダーゼは、どのような由来のものでも使用できる。例えば、細菌、無脊椎動物、脊椎動物等に由来する酵素が使用できる。ブタ腎臓由来の酵素が最も好適である。
【００２９】
Ｄ−メチオニンにＤ−アミノ酸オキシダーゼを作用させると、過酸化水素が生成するため、これをＳＨ試薬の存在下で通常用いられる酸化系発色剤に導き比色定量することができる。発生した過酸化水素は、パーオキシダーゼにより通常の酸化系発色剤を発色させることができる。この発色方法は、臨床化学の分野では一般的に用いられる既知の方法である。しかし、第一工程で用いるチオール化合物の還元作用によりその発色が著しく妨害されるため、第二工程では、チオール化合物のブロック剤であるＳＨ試薬の添加が必須となる。したがって、第二工程におけるＳＨ試薬の添加は、第一工程で用いたＳ−アデノシル−Ｌ−ホモシステイン加水分解酵素が第二工程において逆反応（加水分解反応）を触媒することを阻止すると共に、チオール化合物による酸化系発色剤の発色妨害を防止する効果を有する。
【００３０】
ＳＨ試薬としては、生化学辞典（第３版、ｐ．１８２、東京化学同人、１９９８年）にも記載されるとおり、エルマン試薬などの酸化剤、ｐ−メクリル安息香酸などのメルカプト形成剤、ヨード酢酸、Ｎ−エチルマレイミドなどのアルキル化剤が挙げられる。好ましくはアルキル化剤を、さらに好ましくはマレイミド化合物を、最も好ましくはＮ−エチルマレイミドを使用する。
【００３１】
第二工程におけるＳＨ試薬の濃度は、検体の還元処理に用いたチオール化合物のチオール基を酸化系発色剤による定量が妨害されない程度にブロックできる範囲であればいずれでもよく、好ましくは０．１ｍＭから１００ｍＭの範囲で使用できる。より好ましくは１ｍＭから３０ｍＭで用いられるが、Ｓ−アデノシル−Ｌ−ホモシステイン加水分解酵素を阻害する効果も発揮させるために、用いたチオール化合物に比べて過剰量のＳＨ試薬を使用することが望ましい。
【００３２】
酸化系発色剤としては、種々のトリンダー試薬をカップラー試薬と組み合わせて利用できる。この方法はトリンダー法とも呼ばれ、臨床化学分析の分野では一般に用いられており、ここでは詳細に説明しないが、好ましくはカップラー試薬として４−アミノアンチピリンを、トリンダー試薬としてＡＤＯＳ［Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−３−メトキシアニリン］、ＤＡＯＳ［Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−３，５−ジメトキシアニリン］、ＨＤＡＯＳ［Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−３，５−ジメトキシアニリン］、ＭＡＯＳ［Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−３，５−ジメチルアニリン」、ＴＯＯＳ［Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−３−メチルアニリン］等が用いられる。また、カップラー試薬を必要としない、ｏ−トリジン、ｏ−ジアニシジン、ＤＡ−６７［１０−（カルボシキメチルアミノカルボニル）−３，７−ビス（ジメチルアミノ）フェノチアジンナトリウム、和光純薬工業（株）製］、ＴＰＭ−ＰＳ［Ｎ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’，Ｎ”，Ｎ”−ヘキサ（３−スルホプロピル）−４，４’，４”−トリアミノトリフェニルメタン６ナトリウム塩、同仁化学研究所］などのロイコ型発色試薬も同様に用いることができる。特に、ＤＡ−６７およびＴＰＭ−ＰＳは、上記トリンダー試薬と比べてモル吸光係数が大きいため、より感度よく測定することができる。
【００３３】
本発明のホモシステイン測定用キットは、（１）ホモシステインを還元するためのチオール化合物、メチル転移酵素（好ましくは、ホモシステインメチルトランスフェラーゼ）、およびメチル供与体（好ましくは、Ｄ−メチオニンメチルスルホニウム）を含有する試薬、および（２）生成したＤ−メチオニンを測定するためのＤ−アミノ酸オキシダーゼおよびジチオジニコチン酸を含むＤ−アミノ酸測定用試薬を含む。好ましくは、（２）のＤ−アミノ酸測定用試薬は、陰イオン界面活性剤も含む。（２）のＤ−アミノ酸測定用試薬は、さらに、ＳＨ試薬（好ましくは、Ｎ−エチルマレイミド）、パーオキシダーゼ、および酸化系発色剤を含むことが好ましい。なお、酸化系発色試薬は、（１）の試薬に含まれていてもよい。
【００３４】
【実施例】
実施例１：Ｄ−アミノ酸オキシダーゼおよびホモシステイン測定試薬に対するジチオジニコチン酸（０．５ｍＭ）の安定化効果
１５０ｍＭ  ２−モルホリノエタンスルホン酸  （ｐＨ  ６．０）、２０ｍＭ  Ｎ−エチルマレイミド、４Ｕ／ｍＬ  ブタ腎臓由来Ｄ−アミノ酸オキシダーゼ、５．５Ｕ／ｍＬ  パーオキシダーゼ、０．０５％  トリトンＸ−１００を含有する液と、さらにこの液に被検物質６，６’−ジチオジニコチン酸（ＤＴＮＡ）、ニコチン酸（ＮＡ）、もしくは安息香酸（ＢＡ）をそれぞれ０．５ｍＭ含有する液とを調製した。調製直後および７℃で３日間および７日間保存後のＤ−アミノ酸オキシダーゼ（ＤＡＯ）活性をそれぞれ測定し、その残存活性を算出した（図１）。ＤＡＯ活性は、日立７１７０自動分析装置を用いて、次のようにして測定した。調製直後または保存後の液５μＬに、１２０ｍＭ  ビシン（ｐＨ  ８）、１ｍＭ  ＴＯＯＳ、および１．５ｍＭ  ＦＡＤを含む第１試薬を１８０μＬ添加し、３７℃で約５分間反応させた。続いて、１２０ｍＭ  ビシン（ｐＨ  ８）、３ｍＭ  ４−アミノアンチピリン、１３．２Ｕ／ｍＬ  パーオキシダーゼ、および６４ｍＭ  Ｄ−メチオニンを含む第２試薬を６０μＬ添加し、３７℃で約５分間反応させた。測定ポイント１６から３４における吸光度（主波長５４６ｎｍ、副波長７００ｎｍ）変化を求めた。
【００３５】
同時にこれらの液を、ホモシステイン（Ｈｃｙ）測定の第２試薬として用いて、５０μＭ  ホモシステイン（Ｈｃｙ）を含む試料を、日立７１７０自動分析装置を用いて測定した（図２）。すなわち、２５μＭ  Ｈｃｙを含む試料１５μＬに、１５０ｍＭ  ビシン、１００Ｕ／Ｌ  ホモシステインメチルトランスフェラーゼ、５．６ｍＭ  ジチオスレイトール、０．０６ｍＭ  Ｄ−メチオニンメチルスルホニウム、１ｍＭ  臭化亜鉛、および０．３ｍＭ  ＤＡ−６７を含む第１試薬を１８０μＬ添加し、３７℃で約５分間反応させた。次いで、これに上記第２試薬を１２０μＬ添加し、さらに３７℃で約５分間反応させた。測定ポイント１６から３４における吸光度（主波長６６０ｎｍ、副波長７００ｎｍ）変化を求めた。
【００３６】
図１は、試薬調製直後の活性を１００として、７℃で３日間および７日間保存後の相対活性を示した。ＤＴＮＡ、ＮＡ、またはＢＡを含有するいずれの液においても、無添加の場合よりもＤＡＯの活性が高かった。
【００３７】
図２は、調製直後の試薬（添加剤なし）を用いて試料中のＨｃｙを測定したときの感度を１００として、７℃で３日間および７日間保存後の試薬を用いて測定したときの相対感度を示した。ＤＴＮＡを添加した試薬では、３日間保存後でも１００％の感度を保持した。一方、ＢＡはそのＤＡＯ阻害作用により調製直後から測定感度が非常に悪かった。また、ＤＴＮＡには及ばないものの、ＮＡも測定感度の低下が少なかった。
【００３８】
実施例２：ＤＴＮＡおよびポリオキシエチレンアルキルエーテル硫酸のＤＡＯ安定化効果
１５０ｍＭ  Ｎ−（２−アセタミド）イミノジ酢酸  （ｐＨ  ６．０）、２３ｍＭ  Ｎ−エチルマレイミド、４Ｕ／ｍＬ  ブタ腎臓由来ＤＡＯ、５．５Ｕ／ｍＬ  パーオキシダーゼ、および０．０５％  トリトンＸ−１００を含むＡ液、Ａ液中の０．０５％  トリトンＸ−１００の代わりに０．０５％  ハイテノール１８Ｅを含むＢ液、ならびにＢ液にさらに０．８ｍＭ  ＤＴＮＡを含むＣ液を調製し、これらのＤＡＯ活性を測定した。次に、２５℃で１日間および９日間保存後、再びＤＡＯ活性を測定し、その残存活性を算出した（図３）。
【００３９】
Ａ液は保存中に析出物が認められたが、ハイテノール１８Ｅを含むＢ液およびＣ液は澄明であった。また、図３に示すようにハイテノール１８Ｅの方がトリトンＸ−１００よりもわずかながらＤＡＯ安定化効果が認められた。さらに、ＤＡＯは、ＤＴＮＡにより顕著に安定化されることが明らかとなった。
【００４０】
実施例３：ＤＡＯおよびＨｃｙ測定試薬に対するＤＴＮＡ（０．８ｍＭ）の安定化効果
１５０ｍＭ  ２−モルホリノエタンスルホン酸  （ｐＨ  ６．０）、２３ｍＭ  Ｎ−エチルマレイミド、４Ｕ／ｍＬ  ブタ腎臓由来ＤＡＯ、５．５Ｕ／ｍＬ  パーオキシダーゼ、および０．０５％  ハイテノール１８Ｅを含有する液と、さらにこの液に０．８ｍＭ  ＤＴＮＡ、１．３ｍＭ  ＮＡ、０．８ｍＭ  ２，２’−ジチオジ安息香酸（ＤＴＢＡ）、もしくは０．１ｍＭ  ＢＡを含有する液を調製した。調製直後および７℃で６日間保存後のＤＡＯ活性を測定し、その残存活性を算出した（図４）。同時にこれらの液をＨｃｙ測定の第２試薬として用いて、５０μＭ  Ｈｃｙを含む試料を測定した（図５）。
【００４１】
図４は、試薬調製直後のＤＡＯ活性を１００として、７℃で６日間保存後の相対活性を示した。添加剤なしの試薬では残存活性が約１０％にまで低下するのに対して、ＤＴＮＡおよびＢＡでは約８０％、ＮＡおよびＤＴＢＡでは約６０％の活性が残存し、ＤＡＯ安定化効果が認められた。
【００４２】
図５は、添加剤なし試薬の調製直後のＨｃｙ測定感度を１００として、７℃で６日間保存後の試薬を用いて測定したときの相対感度を示した。添加剤なし試薬では７℃で６日間保存後に感度が５０％以下に低下するのに対して、ＤＴＮＡを添加した場合には１００％の感度を保持していた。一方、ＮＡ、ＤＴＢＡ、およびＢＡの場合は、それら自身の強い阻害作用のため、調製直後においても測定感度が無添加試薬での感度に対して約４０％であった。
【００４３】
実施例４：凍結乾燥製剤に対するＤＴＮＡの安定化効果
２００ｍＭ  クエン酸緩衝液（ｐＨ  ５．６）、１６Ｕ／ｍＬ  ブタ腎臓由来ＤＡＯ、２２Ｕ／ｍＬ  パーオキシダーゼ、および１％ラクトースを含有する溶液と、さらにこの液に被検物質ＤＴＮＡを１．６ｍＭ含有する溶液を調製し、それぞれ１．５ｍＬずつを凍結乾燥させた。各凍結乾燥製剤を、２５ｍＭ  Ｎ−エチルマレイミドを含む溶解液で復水し、それぞれのＤＡＯ活性を測定した。また、凍結乾燥製剤の原液に用いた緩衝液の代わりに５０ｍＭ  リン酸緩衝液（ｐＨ  ７．０）を、そして上記溶解液の代わりに２５ｍＭ  Ｎ−エチルマレイミドを含む５０ｍＭ  クエン酸緩衝液（ｐＨ  ５．６）を用いること以外は、上記と同様に操作した凍結乾燥製剤についても検討した（図６）。
【００４４】
図６からわかるように、いずれの凍結乾燥製剤でも、ＤＴＮＡはＤＡＯの失活を防ぎ得ることが明らかとなった。
【００４５】
【発明の効果】
本発明の方法によれば、Ｄ−アミノ酸オキシダーゼを安定化させることができる。そのため、従来品よりも高い酵素活性を有するＤ−アミノ酸オキシダーゼを含有する試薬や製剤を得ることができる。また、Ｄ−アミノ酸オキシダーゼを利用する測定において、より高い感度での測定も可能である。さらに、Ｄ−アミノ酸オキシダーゼを含む試薬や製剤の保存性も向上する。
【図面の簡単な説明】
【図１】種々の添加剤（ＤＴＮＡ、ＮＡ、またはＢＡ）を含むＤ−アミノ酸オキシダーゼ（ＤＡＯ）含有液中の残存ＤＡＯ活性の経時変化を示すグラフである。
【図２】種々の添加剤（ＤＴＮＡ、ＮＡ、またはＢＡ）を含むホモシステイン（Ｈｃｙ）測定試薬によるＨｃｙ測定感度の経時変化を示すグラフである。
【図３】界面活性剤および／またはＤＴＮＡを含むＤ−アミノ酸オキシダーゼ（ＤＡＯ）含有液中の１日間および９日間保存後の残存ＤＡＯ活性を示すグラフである。
【図４】種々の添加剤（ＤＴＮＡ、ＮＡ、ＤＴＢＡ、またはＢＡ）を含むＤ−アミノ酸オキシダーゼ（ＤＡＯ）含有液中の６日間保存後の残存ＤＡＯ活性を示すグラフである。
【図５】種々の添加剤（ＤＴＮＡ、ＮＡ、ＤＴＢＡ、またはＢＡ）を含むＨｃｙ測定試薬の調製直後および６日間保存後の、Ｈｃｙ測定時の相対感度を示すグラフである。
【図６】ＤＴＮＡを含むＤＡＯ凍結乾燥製剤中のＤＡＯ相対活性を示すグラフである。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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