(57)【要約】【課題】低分子グリコサミノグリカンを製造するための安全かつ簡易な方法を提供する。【解決手段】グリコサミノグリカンに紫外線を照射することを特徴とする低分子化グリコサミノグリカンの製造方法。【選択図】  なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
グリコサミノグリカンに紫外線を照射することを特徴とする低分子化グリコサミノグリカンの製造方法。
【請求項２】
照射される紫外線の光量と生成される低分子化グリコサミノグリカンの分子量の逆数との比例関係に基づいて、所望の低分子化グリコサミノグリカンの分子量から該光量を決定することを特徴とする請求項１に記載の方法。
【請求項３】
グリコサミノグリカンがヒアルロン酸、コンドロイチン、コンドロイチン硫酸、デルマタン硫酸、ヘパリン、ヘパラン硫酸及びケラタン硫酸からなる群から選択されることを特徴とする請求項１または２に記載の方法。
【請求項４】
紫外線照射時の温度を１〜３７℃に保持することを特徴とする請求項１〜３のいずれかに記載の方法。
【請求項５】
照射する紫外線の波長が２５０ｎｍ〜４５０ｎｍであることを特徴とする請求項１〜４のいずれかに記載の方法。
【請求項６】
夾雑物を含むグリコサミノグリカン粗精製物に紫外線を照射することにより、グリコサミノグリカンを低分子化すると共に前記夾雑物を分解し、これを除去することを特徴とする精製された低分子化グリコサミノグリカンの製造方法。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、低分子化グリコサミノグリカンの製造方法に関する。より詳細には、グリコサミノグリカンに紫外線を照射することを特徴とする低分子化グリコサミノグリカンの製造方法に関するものである。
【０００２】
【従来の技術】
従来、グリコサミノグリカンの生理活性が注目され、例えば、ヒアルロン酸は化粧品や医薬品の成分として使用されているが、主に利用されるヒアルロン酸は高分子で粘性が高く、これまではその粘性を利用した医薬品や化粧品が多く開発されてきた。近年では、低分子のグリコサミノグリカンが注目されており、特許文献１には、低分子量ヒアルロン酸の創傷治癒効果が開示され、特許文献２には、骨誘導に用いられることが開示されている等、分子量（サイズ）と活性の相関が注目されている。
【０００３】
このような低分子グリコサミノグリカンの製造方法、すなわちグリコサミノグリカンを低分子化するための方法として、特許文献３にはヒアルロニダーゼによる酵素処理、特許文献４には酸、アルカリ処理、特許文献６にはホモジナイゼーションに付する方法、特許文献５には剪断処理による物理的処理を使用する方法が開示されている。しかしこれらの方法は、劇薬を用いたりする等危険であったり、用いた酵素や酸、アルカリの除去が困難である等の問題を有している。
【０００４】
また、上記のように分子量（サイズ）とその活性の相関が注目されているが、従来の方法においては、所望の低分子量グリコサミノグリカンを効率よく得るという観点から製造条件を制御するという試みはなされておらず、分子量の厳密な制御は困難であった。
【特許文献１】
特許第２５８５２１６号公報
【特許文献２】
特許第３３３３２０５号公報
【特許文献３】
特開昭６２−７９７９０号公報
【特許文献４】
特許第２５８７２６８号公報
【特許文献５】
特開平６−２９８８０３号公報
【特許文献６】
特表平４−５０５７７４号公報
【０００５】
【発明が解決しようとする課題】
そこで本発明の目的は、上記の問題に鑑み、グリコサミノグリカンから低分子化グリコサミノグリカンを製造するための安全かつ簡易な方法を提供することである。また本発明の別の目的は、グリコサミノグリカンから所望する分子量の低分子化グリコサミノグリカンを効率よく製造するための方法を提供することである。
【０００６】
さらに、本発明の別の目的は、グリコサミノグリカンの粗精製物からの夾雑物の分解・除去と、グリコサミノグリカンの低分子化を同時に行うことである。
【０００７】
【課題を解決するための手段】
本発明者らは、上記目的を達成するため検討した結果、グリコサミノグリカンに紫外線を照射することによりグリコサミノグリカンが分解されて低分子化されること、さらにこの紫外線照射によるグリコサミノグリカンの分解が低分子化グリコサミノグリカンの製造方法として実用的に利用可能であることを見出した。また、グリコサミノグリカンに紫外線を照射した場合、照射される紫外線の光量と生成された低分子化グリコサミノグリカンの分子量の逆数が比例することを見出した。さらに、紫外線を照射することによりグリコサミノグリカンを低分子化すると、グリコサミノグリカンに含まれるタンパク質、核酸等の夾雑物も分解され、低分子化されたグリコサミノグリカンが精製しやすくなることを見出した。本発明はこれらの知見に基づき完成されたものである。
【０００８】
すなわち本発明は、グリコサミノグリカンに紫外線を照射することを特徴とする低分子化グリコサミノグリカンの製造方法を提供するものである。
【０００９】
上記本発明の方法の好ましい態様においては、照射される紫外線の光量と生成される低分子化グリコサミノグリカンの分子量の逆数との比例関係に基づいて、所望の低分子化グリコサミノグリカンの分子量から該光量を決定するものである。
【００１０】
上記本発明の方法においては、グリコサミノグリカンは、好ましくはヒアルロン酸、コンドロイチン、コンドロイチン硫酸、デルマタン硫酸、ヘパリン、ヘパラン硫酸及びケラタン硫酸からなる群から選択される。
【００１１】
また、上記本発明の方法においては、温度を１〜３７℃に保持して紫外線を照射することが好ましい。
さらに、上記本発明の方法においては、２５０〜４５０ｎｍの紫外線の波長を使用することが好ましい。
【００１２】
また、本発明は、夾雑物を含むグリコサミノグリカン粗精製物に紫外線を照射することにより、グリコサミノグリカンを低分子化すると共に、前記夾雑物を分解し、これを除去する精製された低分子化グリコサミノグリカンの製造方法を提供するものである。
【００１３】
【発明の実施の形態】
以下、本発明を詳細に説明する。
【００１４】
本発明の低分子化グリコサミノグリカンの製造方法において、紫外線照射の対象となるグリコサミノグリカン（以下、「原料グリコサミノグリカン」ともいう）とは、Ｄ−グルコサミン又はＤ−ガラクトサミンと、Ｄ−グルクロン酸、Ｌ−イズロン酸又はガラクトースとの二糖の繰り返し単位を基本骨格として構成され、ヒアルロン酸、コンドロイチンを除いて、構成糖のヒドロキシル基、アミノ基、カルボキシル基等が硫酸化された多糖であり、動物等の天然物から抽出されたもの、微生物を培養して得られたもの、化学的若しくは酵素的に合成されたもの等のいずれも使用することができる。
【００１５】
具体的には例えば、ヒアルロン酸、コンドロイチン硫酸（コンドロイチン硫酸Ａ、コンドロイチン硫酸Ｃ、コンドロイチン硫酸Ｄ、コンドロイチン硫酸Ｅ）、コンドロイチン、デルマタン硫酸、ヘパリン、ヘパラン硫酸、ケラタン硫酸が挙げられる。なお、コンドロイチン硫酸、コンドロイチン、デルマタン硫酸のようなＤ−ガラクトサミンを含むグリコサミノグリカンをガラクトサミノグリカンということもある。
【００１６】
また、原料グリコサミノグリカンは、遊離型でも塩型であってもよく、低分子化グリコサミノグリカンを医療、食品等に使用する場合は、通常使用される薬理学的に許容される塩であることが好ましい。グリコサミノグリカンの塩としては、例えばナトリウム、カリウム等のアルカリ金属塩、カルシウム、マグネシウム等のアルカリ土類金属塩、トリアルキルアミン等のアミン塩、及びピリジンなどの有機塩基との塩等が挙げられ、特に限定されないが、特に薬理学的に許容されるアルカリ金属塩が好ましく、ナトリウム塩が最も好ましい。
【００１７】
原料グリコサミノグリカンの分子量は特に限定されないが、所望の低分子化グリコサミノグリカンの分子量より大きい分子量を有するグリコサミノグリカンを使用するものであり、通常は平均分子量で５，０００〜２０，０００，０００程度であるが、ヒアルロン酸では、５，０００〜２０，０００，０００、好ましくは５００，０００〜４，０００，０００、より好ましくは７００，０００〜２，５００，０００、コンドロイチン硫酸では、１０，０００〜１００，０００、好ましくは１０，０００〜８０，０００、ヘパリンでは、５，０００〜３０，０００、好ましくは７，０００〜２０，０００、ヘパラン硫酸では、５，０００〜５０，０００、好ましくは１０，０００〜３０，０００程度である。
【００１８】
なお、グリコサミノグリカンの分子量は、通常、平均分子量、好ましくは、重量平均分子量で表され、この値は、例えばサイズ排除高速液体クロマトグラフィー（ＧＰＣ−ＨＰＬＣ）、多角度光散乱法（ＬＡＬＬＳ）等で測定することができる。
【００１９】
また、上記のような材料から分離されたグリコサミノグリカンを通常の分解処理（例えば酵素分解、化学分解、加熱処理等）に付してある程度低分子化したものを、さらに低分子化するために本発明の方法を使用してもよい。
【００２０】
上記のような原料グリコサミノグリカンに本発明の方法により紫外線を照射する場合、原料グリコサミノグリカンは溶液、懸濁液、固体等任意の形態であってよいが、通常は紫外線照射によるグリコサミノグリカン分解の効率、グリコサミノグリカン分解反応の均一性等の観点から溶液状態にあるグリコサミノグリカンを使用することが好ましい。
【００２１】
原料グリコサミノグリカンを溶液として紫外線を照射する場合、該溶液中のグリコサミノグリカン濃度の上限は特に限定されないが、溶液の粘性、操作性を考慮して約２重量％以下、好ましくは約１重量％以下である。濃度の下限値も特に限定されないが、低分子化グリコサミノグリカンの製造効率の観点から約０．０１重量％以上であることが好ましい。
【００２２】
溶液のｐＨも特に限定されず、通常はグリコサミノグリカンの中性塩を溶解したままの溶液を使用すればよいが、必要によりｐＨを調整しても差し支えない。例えば、低分子化グリコサミノグリカンの分子量を所望の一定範囲にコントロールすることを優先する場合は中性付近に保つことが好ましく、低分子化の反応を促進することを優先する場合には、酸性側に調整することもできる。
【００２３】
溶液に使用する溶媒も特に限定されず、水性溶媒（水、リン酸緩衝液等）、有機溶媒（ジメチルホルムアミド、ジメチルスルホキシド、ジオキサン等）の単独、もしくはこれらの有機溶媒を含む含水有機溶媒等の、グリコサミノグリカンを溶解することができる通常の溶媒を使用することができるが、不純物の混入を防止するため注射用蒸留水等を使用することが好ましい。
【００２４】
上記グリコサミノグリカンに照射する紫外線の波長は特に限定されず、通常紫外線と指称される範囲、すなわち可視光線より波長が短く、Ｘ線より波長の長い範囲であればよいが、グリコサミノグリカン分解反応の効率から２５０〜４５０ｎｍの範囲が好ましい。紫外線の光源としては、紫外線、好ましくは上記の範囲の波長の紫外線を発する光源であれば特に限定されないが、メタルハライドランプ、高圧水銀ランプ、キセノンランプ、キセノン−水銀ランプ等のランプを使用することができる。紫外線の光量は特に限定されず、所望する低分子化グリコサミノグリカンの製造規模、対象とするグリコサミノグリカンの種類等により選択することができるが、通常は１×１０４〜１×１０６ｍＪ（ミリ・ジュール）／ｃｍ２であり、好ましくは４０，０００〜２４０，０００ｍＪ／ｃｍ２である。
【００２５】
紫外線の照射の具体的方法については特に限定されることはなく、少なくとも上記のような紫外線光源と、該光源から発せられた紫外線が本発明の目的とする低分子化または夾雑物分解が十分達成される程度に照射されるように低分子化の対象となる原料グリコサミノグリカンとを位置させる手段を含む任意の構成を使用して本発明の方法を実施することができる。
【００２６】
例えば溶液の状態の原料グリコサミノグリカンに紫外線を照射する場合、該溶液を収容する容器は紫外線を透過させるものである必要があり、例えば石英管、硬質ガラス、ポリエチレンやポリプロピレンのようなプラスチック等を使用することができる。
【００２７】
その他、本発明の方法を実施するためには、紫外線が外部に漏洩するのを防止するための遮蔽手段、紫外線照射による照射対象の温度の上昇を防止するための冷却手段（水冷系等）等を任意に含めることができ、それら自体は当業者により容易に選択及び利用され得る範囲であり、例えば特開２０００−１２６５８９号公報に記載された紫外線照射装置を利用することもできる。
【００２８】
本発明の方法を実施する温度は、グリコサミノグリカンの熱分解が起こらない程度の温度範囲内（例えば１〜３７℃）であれば特に制限されないが、通常室温程度に制御されるように照射を行えばよく、具体的には１０℃〜２５℃程度とすることができる。また、本発明の方法により紫外線を照射すると、反応系の温度が上昇するので、グリコサミノグリカンを冷却しつつ紫外線を照射することが好ましい。グリコサミノグリカンを冷却する方法も特に限定されるものではなく、例えばグリコサミノグリカンを入れた容器周囲に冷却水を循環させたり、冷却した空気を送風することなどにより行うことができる（例えば、特開２０００−１２６５８９号公報参照）。
【００２９】
先に記載したように、本発明の方法によりグリコサミノグリカンに紫外線を照射した場合、照射した紫外線の光量と生成された低分子化グリコサミノグリカンの分子量の逆数が比例することが見出された。すなわち、原料グリコサミノグリカンに本発明の方法によって紫外線を照射して低分子化すると、Ｙ＝ａＸ＋ｂ（Ｙは低分子化グリコサミノグリカンの分子量の逆数、Ｘは紫外線の光量、ａ，ｂは原料グリコサミノグリカンの種類とその分子量によって定まる定数）の関係が成り立つことが見出されたものであり、この関係に従い本発明方法を実施することができる。従って、本発明の方法においては、原料グリコサミノグリカンの種類および分子量が決定すれば、照射紫外線の光量と生成低分子化グリコサミノグリカンの分子量の関係式が決まり、所望の低分子化グリコサミノグリカンの分子量とこの関係式とから必要な照射紫外線の光量を算出することができる。従って、所望する分子量の低分子化グリコサミノグリカンを極めて効率的に製造することができる。
【００３０】
本発明の方法を上記態様に従って実施する場合は、実際の低分子化グリコサミノグリカンの製造に使用する光源を実際の製造と同様の条件で使用して紫外線の光量を変えて分解を行い、光量と低分子化グリコサミノグリカンの分子量の逆数との比例関係を予め確認した後、所望する低分子化グリコサミノグリカンの分子量が得られる光量を選択し、低分子化グリコサミノグリカンの製造を行えばよい。すなわち、上記のように実際の製造と同様の条件で紫外線の光量を変えて分解を行い、得られたそれぞれの低分子化グリコサミノグリカンの分子量を求め、上記比例関係が認められる範囲において上記関係式におけるａおよびｂの値を求め、得られた関係式に基づいて所望する低分子化グリコサミノグリカンの分子量が得られる光量を算出し、その光量を使用して低分子化グリコサミノグリカンの製造を行えばよい。
【００３１】
本発明の方法を上記態様に従って実施する場合は、所望の分子量の低分子化グリコサミノグリカンを得るために一定の光量の紫外線を照射しなければならないが、照射光量は紫外線光源の出力、光源から照射対象までの距離、及び照射時間によって決まり、当業者であればこれらの要素を調整することにより容易に所望の照射光量を得ることができる。例えば、一定の光源、一定の紫外線照射装置を用い、一定照射面積に存在する原料グリコサミノグリカンに紫外線を照射する場合には、照射光量は照射時間に比例する。
【００３２】
上記のようにして実際に求められたａおよびｂの値としては、例えば、グリコサミノグリカンが分子量５〜４０００ｋＤａのヒアルロン酸の場合、ａは０．５×１０−６〜１０×１０−６、好ましくは１×１０−６〜５×１０−６、ｂは−０．０００５〜０．００１、好ましくは−０．００１〜０．０００５である。グリコサミノグリカンが分子量５〜５０ｋＤａのヘパラン硫酸の場合、ａは０．５×１０−５〜１０×１０−５、好ましくは１×１０−５〜３×１０−５、ｂは０．００１〜０．１、好ましくは０．０２〜０．０５であり、分子量５〜２０ｋＤａのヘパリンの場合、ａは０．１×１０−５〜１０×１０−５、好ましくは０．５×１０−５〜２×１０−５、ｂは０．００１〜０．２、好ましくは０．０５〜０．１であり、１０〜１００ｋＤａのコンドロイチン硫酸の場合、ａは１×１０−６〜２０×１０−６、好ましくは５×１０−６〜１０×１０−６、ｂは０．００１〜０．０１、好ましくは０．０１〜０．０５程度である。
【００３３】
尚、上記分子量はいずれも前記の方法で測定される重量平均分子量である。また、上記具体的なａおよびｂの値は比例関係を直線として表す場合に使用されるものであり、これらの値に基づいて決定される関係式はＸおよびＹがいずれも正となる範囲において適用される。
【００３４】
上記のようにして紫外線を照射することにより得られる低分子化グリコサミノグリカンの分子量は特に限定されないが、通常は平均分子量で２００〜１，０００，０００程度であり、好ましくは４，０００〜４００，０００、さらに好ましくは４，０００〜２０，０００程度である。
【００３５】
多くのグリコサミノグリカンは、硫酸基を有しており、この硫酸基の含量、硫酸基の結合位置が、生理活性に大きな影響を及ぼすことが知られているが、従来の低分子化法では、低分子化と同時にこの硫酸基が脱離することもあった。しかしながら、本発明の方法により、硫酸化グリコサミノグリカンを低分子化する場合には、実質的に硫酸基の脱離を伴わずに低分子化することが可能である。さらに、後述の実施例から明らかなように、本発明の方法によって低分子化する際には、構成糖の分解は起こらず、構成糖同士のグリコシド結合の開裂が起こっていることから、生成した低分子化グリコサミノグリカンは、低分子化に伴う変化を除いて生理活性に影響を及ぼす変化は起こらないことが確認されている。
【００３６】
さらに、夾雑物として微量のタンパク質や核酸を含有する原料グリコサミノグリカンに紫外線を照射し、照射前後のタンパク質あるいは核酸を分析、定量したところ、これらの物質の量は紫外線照射後、著しく低下していた。従って、本発明の方法によりグリコサミノグリカンの低分子化を行えば、低分子化と同時にタンパク質、核酸、色素、その他の紫外線吸収物質等の紫外線吸収性の夾雑物の分解を同時に行うことができる。
【００３７】
本発明の方法により低分子化されたグリコサミノグリカンを、陰イオン交換クロマトグラフィー、ゲル濾過クロマトグラフィー、エタノール分画、透析、限外濾過等の慣用の精製手段を使用して精製することにより、夾雑物の分解産物を除去したり、より狭い平均分子量分布を有する精製された特定分子量の低分子化グリコサミノグリカンとすることができる。
【００３８】
さらには紫外線照射により、対象グリコサミノグリカンの滅菌も可能である。
【００３９】
【実施例】
以下に実施例をあげて本発明を詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。
【００４０】
実施例１
各種グリコサミノグリカンの紫外線照射による低分子化
下記グリコサミノグリカン試料のそれぞれについて、注射用蒸留水を使用して１重量％水溶液を調製した。
１．ヒアルロン酸（ＨＡ）：平均分子量８９９．１  ｋＤａ、鶏冠由来、生化学工業（株）製
２．高分子ヒアルロン酸（ＨＡｈｉｇｈ）：平均分子量２５８０  ｋＤａ、鶏冠由来、生化学工業（株）製
３．コンドロイチン硫酸（ＣＳ）：  平均分子量６６．７２  ｋＤａ、鮫軟骨由来、生化学工業（株）製
４．ヘパラン硫酸（ＨＳ）：  平均分子量２７．８  ｋＤａ、牛腎臓由来、生化学工業（株）製
５．ヘパリン（Ｈｅｐ）：平均分子量１１．１  ｋＤａ、牛小腸由来、ＳＰＬ社製
【００４１】
各グリコサミノグリカン水溶液を石英管（直径１  ｃｍ×１５  ｃｍ）に入れ、シリコン栓で密栓した。
【００４２】
紫外線照射装置としては、６０００  Ｗ（型式ＳＭＸ−７０００Ｈ）のメタルハライドランプを有し、メタルハライドランプから発する紫外線（ＵＶ）を被照射物より７０ｃｍのところから照射するように構成したＵＶ照射装置（特開２０００―１２６５８９記載の装置）であって、光量を計測できるようにしたもの（ＨＭＷ−６８０、オーク製作所）を使用した。ランプの冷却は、ランプを囲む石英の２重管内に冷却水を流す間接冷却式で行った。また、光源によって試料の温度が上昇するのを防止するために、ＵＶ照射部は装置内の冷却型冷凍機で発生させた冷風を循環させ、被照射物に吹きかけた。これによりＵＶ照射部内の温度は１４〜１６℃に保持された。下記表１〜５に示す光量のＵＶを照射後、試料を採取し、サイズ排除高速液体クロマトグラフィー（下記条件によるＧＰＣ−ＨＰＬＣ−１又は２）により分析し、各試料の各時点における平均分子量の逆数を求めた。結果を同様に表１〜５に示す。なお、ＨＰＬＣの条件は以下の通りである。
【００４３】
ＧＰＣ−ＨＰＬＣ−１
カラム１：ＴＳＫｇｅｌ  Ｇ２５００  ＰＷＸＬ（東ソー（株）製）、ＴＳＫｇｅｌ  Ｇ３０００  ＰＷＸＬ（東ソー（株）製）及びＴＳＫｇｅｌ  Ｇ４０００  ＰＷＸＬ（東ソー（株）製）の３本を連結したもの（至適分子量範囲  ３〜３５０ｋＤａ程度）
カラム２：ＴＳＫｇｅｌ  Ｇ６０００  ＰＷＸＬ（東ソー（株）製）、ＴＳＫｇｅｌ  Ｇ５０００  ＰＷＸＬ東ソー（株）製）及びＴＳＫｇｅｌ  Ｇ４０００  ＰＷＸＬ東ソー（株）製）の３本を連結したもの（至適分子量範囲  ４０〜２５００ｋＤａ程度）
溶媒：  ０．２  Ｍ  ＮａＣｌ
流速：  ０．６  ｍＬ／分
カラム温度：４０℃
高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）装置一式
ポンプ：デュアルポンプＤＰ−８０２０
カラムオーブン：ＣＯ−８０２０
オートサンプラ：ＡＳ−８０２０
デガッサー：オンラインデガッサＳＤ−８０２３
検出器：示差屈折計ＲＩ−８０２０（東ソー（株）製）（４０℃）
ＧＰＣ−ＨＰＬＣ−２
カラム：ＴＳＫｇｅｌ  Ｓｕｐｅｒ  ＡＷ６０００（東ソー（株）製）を２本連結したもの（至適分子量範囲  ３〜２５００ｋＤａ程度）
カラムは試料の分子量に応じて適宜必要なサイズを用いた。
溶媒：  ０．２  Ｍ  ＮａＣｌ
流速：  ０．３  ｍＬ／分
カラム温度：４０℃
高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）装置一式
ポンプ：デュアルポンプＤＰ−８０２０
カラムオーブン：ＣＯ−８０２０
オートサンプラ：ＡＳ−８０２０
デガッサー：オンラインデガッサＳＤ−８０２３
検出器：示差屈折計ＲＩ−８０２０（東ソー（株）製）（４０℃）
【００４４】
【表１】
2004250592.tif 000002
【００４５】
【表２】
2004250592.tif 000003
【００４６】
【表３】
2004250592.tif 000004
【００４７】
【表４】
2004250592.tif 000005
【００４８】
【表５】
2004250592.tif 000006
【００４９】
表１〜５に示した各低分子化グリコサミノグリカンの分子量（重量平均分子量（以下、同様））の逆数を紫外線の光量に対してプロットしたグラフを図１〜５にそれぞれ示す。図１〜５に示すように、生成した低分子化グリコサミノグリカンの分子量の逆数と照射した紫外線の光量の間に比例関係が認められ、原料グリコサミノグリカンの種類および分子量が決定すれば、紫外線の光量と得られる低分子化グリコサミノグリカンの分子量との間の関係式が決定する。このように紫外線の光量は、得られる低分子化グリコサミノグリカンの分子量の逆数との比例関係に基づいて決まるため、その関係に従い光量を設定することによって所望する分子量を有する低分子化グリコサミノグリカンを調製することができる。
【００５０】
また、各試料についてカルバゾール硫酸法でウロン酸の定量を行い、毛細管粘度計法で還元粘度を測定したところ、カルバゾール硫酸法による定量では照射による定量値の変化は認められず、毛細管粘度計法による還元粘度は紫外線の光量の増加とともに低下していたことから、紫外線照射によっては上記定量に影響を与えるほどの糖鎖自体の構造変化を伴わずに低分子化が進行することが示された。
【００５１】
更に、各試料についてグリコサミノグリカン分解酵素（コンドロイチナーゼＡＢＣあるいはヘパリチナーゼＩ、ＩＩ及びヘパリナーゼの混合酵素）による原料グリコサミノグリカンの消化率を確認したところ、いずれも１００％消化されることから、酵素消化に影響を与えるほどの糖鎖自体の構造変化を伴わずに低分子化が進行していることも示された。
【００５２】
実施例２
紫外線照射によるグリコサミノグリカンの低分子化に伴う夾雑物の除去
１．試料
下記の試料溶液をそれぞれ作製した。
▲１▼コンドロイチン硫酸（ＣＳ）（濃度０．９７  ｍｇ／ｍＬ、平均分子量６６．７２ｋＤ鮫軟骨由来、  生化学工業（株）製）
▲２▼ヒアルロン酸（ＨＡ）（濃度０．８２  ｍｇ／ｍＬ、平均分子量８９９．１ｋＤ鶏冠由来、生化学工業（株）製）
▲３▼ＤＮＡ（仔牛胸腺ＤＮＡ、濃度０．１９  ｍｇ／ｍＬ、ＳＩＧＭＡ社製）
▲４▼牛血清アルブミン（ＢＳＡ）（濃度１．１３  ｍｇ／ｍＬ、生化学工業（株）製）
【００５３】
２．実験方法
１）試料調製
上記ＣＳ溶液及びＨＡ溶液各１９  ｍＬに蒸留水、上記ＤＮＡ溶液またはＢＳＡ溶液各１ｍＬを添加し、６種類の試料を調製した。すなわち、ＣＳ  ０．９２ｍｇ／ｍＬまたはＨＡ  ０．７８ｍｇ／ｍＬのみを含む試料、同濃度のＨＡまたはＣＳと、ＤＮＡまたはＢＳＡとを含む溶液をそれぞれ調製した。さらに蒸留水１９  ｍｌに１  ｍｌのＤＮＡまたはＢＳＡ溶液を含む溶液を調製した。
【００５４】
２）紫外線照射方法
それぞれの溶液を実施例１と同様の石英管に入れ、クリーンベンチ内に置き、付属のＵＶランプ（１５Ｗ）２本で連続１４日間紫外線を照射した。ランプと試料との間の距離は約３０ｃｍであった。クリーンベンチ内はファンを回し温度の上昇を抑えた。毎日温度を測定し、２２．３〜２２．５℃程度に維持した。
【００５５】
３）分析方法
▲１▼  紫外線照射前後の各試料をサイズ排除高速液体クロマトグラフィー（ＧＰＣ−ＨＰＬＣ）により分析し、試料ＨＡ及びＣＳ並びに分解物の分子量を確認した。ＨＰＬＣの条件は以下の通りである。
カラム：ＴＳＫｇｅｌ  Ｇ２５００  ＰＷＸＬ（東ソー（株）製）、ＴＳＫｇｅｌ  Ｇ３０００  ＰＷＸＬ（東ソー（株）製）及びＴＳＫｇｅｌ  Ｇ４０００  ＰＷＸＬ（東ソー（株）製）の３本を連結したもの（至適分子量範囲  ３〜３５０ｋＤａ程度）
溶媒：  ０．２  Ｍ  ＮａＣｌ
流速：  ０．６  ｍＬ／分
カラム温度：４０℃
高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）装置一式
ポンプ：デュアルポンプＤＰ−８０２０
カラムオーブン：ＣＯ−８０２０
オートサンプラ：ＡＳ−８０２０
デガッサー：オンラインデガッサＳＤ−８０２３
検出器：示差屈折計ＲＩ−８０２０及び紫外可視検出器ＵＶ−８０２０（２１０  ｎｍ）
▲２▼  ＤＮＡを添加した各試料を紫外線照射前後においてエチレンブロミド法により分析し、ＤＮＡの存在を確認した。
▲３▼  ＢＳＡを添加した各試料を紫外線照射前後においてＢｉｏＲａｄ  Ｐｒｏｔｅｉｎ  Ａｓｓａｙ  （ＢｉｏＲａｄ社製タンパク質定量用キット）  により分析し、ＢＳＡ  の存在を確認した。
▲４▼  紫外線照射前後の各試料について紫外吸収スペクトル（２００〜８００  ｎｍ）を測定した。
５  照射後の各試料についてカルバゾール硫酸法でウロン酸の定量を行った。
【００５６】
４）結果
▲１▼  ＨＰＬＣによる分析の結果、ＣＳを含む試料では紫外線照射前、平均分子量６０，０００程度のＣＳが検出されたのに対し、照射後では分子量５，０００以下の低分子ＣＳ分解物が検出された。ＨＡを含む試料では紫外線照射前、平均分子量８９０，０００程度のＨＡが検出されたのに対し、照射後ではオリゴ糖〜単糖サイズの分解物が検出された。
▲２▼  エチレンブロミド法による分析の結果、ＤＮＡを添加した試料ではいずれも紫外線照射前７０〜９０μｇ／ｍＬ程度のＤＮＡが検出されたが、照射後はいずれの試料についてもＤＮＡは検出されなかった（検出限界以下）。
▲３▼  ＢｉｏＲａｄ  Ｐｒｏｔｅｉｎ  Ａｓｓａｙを用いたタンパク質含量の測定の結果、ＢＳＡ  を添加した試料ではいずれも紫外線照射前０．９  ｍｇ／ｍＬ程度のＢＳＡ  が検出されたが、照射後はいずれの試料においてもＢＳＡ含量は１／１０〜１／２０程度に減少していた。
▲４▼  各試料の紫外線照射前後の紫外吸収スペクトル（２００〜８００  ｎｍ）を図６〜１０に示す。ＤＮＡを添加した試料はいずれも紫外線照射前２６０  ｎｍにピークトップを有する吸収スペクトルが得られるが、照射後はこのピークが減少もしくは消失していた。ＨＡまたはＣＳのみを含む試料については、照射前には認められなかったピークが照射後認められた。これは照射によって分解されたＨＡまたはＣＳの断片によるものと考えられる。
▲５▼  照射後の各試料についてカルバゾール硫酸法によるウロン酸の定量を行ったところ、いずれも呈色が認められ、低分子化後もウロン酸構造が残存していること、すなわち、構成糖自体の分解は起こっていないことが確認された。
【００５７】
上記の結果により、グリコサミノグリカンはＤＮＡまたはタンパク質が存在しているか否かにかかわらず紫外線照射により、グリコサミノグリカンの構造を維持したまま低分子化され、また共存するＤＮＡ及びタンパク質は紫外線の照射によりグリコサミノグリカンの低分子化と同時に分解することが確認された。
【００５８】
従って、本発明の方法によりグリコサミノグリカンを低分子化すれば同時に含まれる核酸、タンパク質等が分解され、原料グリコサミノグリカンにそのような夾雑物が含まれていても、得られた低分子化グリコサミノグリカンを含む画分においてはそのような夾雑物も分解され、精製が容易になる。
【００５９】
実施例３
紫外線照射によるガラクトサミノグリカン粗精製物の夾雑物除去
１．鶏冠粗精製物の調製
鶏冠１，５００Ｋｇに水４０００Ｌを加えてミンチした後煮沸し、冷却後プロテアーゼ（プロナーゼ、科研製薬（株））を添加して一晩加水分解した。加水分解液に、塩化ベンザルコニウム溶液３２Ｌを加えた後、珪藻土でろ過し、ろ過上清を捨て、珪藻土１８０ｋｇを得た。この珪藻土５００ｇに２Ｍ塩化ナトリウム溶液８００ｍＬを加え４０℃に加温して、１．５時間攪拌したろ過し、ろ液に二倍量のエタノールを加え、得られた沈殿物を０．５％炭酸ナトリウムに溶解しｐＨを１０に調整後アルカリプロテアーゼ１ｇを加え、４５℃で一晩反応させた。反応液をろ過し、ろ液を１Ｎ水酸化ナトリウム溶液になるように調整し、４０℃で１時間反応させた後中和し、ろ過した。得られたろ液に対し、４２％になるようにエタノールを加え、得られた沈殿を乾燥させ、粉体３．２ｇを得た。
【００６０】
上記粉体５００ｍｇを５％酢酸カルシウム溶液１００ｍＬに溶解し、氷浴中で、溶解液に対しエタノールを１５％になるように攪拌下で加えた。生じた沈殿を遠心で除去し、上清に対してエタノールを２６％になるように攪拌下でさらに加えた。得られた沈殿を遠心で回収し、乾燥させて主としてデルマタン硫酸からなるガラクトサミノグリカン粗精製物３４０ｍｇを得た。
【００６１】
２．実験方法
１）試料調製
上記粗精製物５６ｍｇを５ｍＬ蒸留水に溶解した．
２）紫外線照射方法
上記溶液を石英管（直径１  ｃｍ×１５ｃｍ）に入れ、シリコン栓で密栓した。紫外線光源としては３０００Ｗメタルハライドランプ（型式  ＵＶＬ−３０００Ｍ２）を使用した。紫外線装置としてステンレスケースに上記紫外線光源をケースの長さ方向に沿ってケース中央の位置に配置した。また光源によって試料の温度が上昇するのを防止するため、上記ステンレスケースには冷却水取り入れ口と冷却水排出口とを各１個配置し、ケースをステンレス製蓋で密閉し、紫外線照射中は流水で冷却した。これにより紫外線照射中の試料温度を１９〜２２℃に維持した。上記試料を封入した石英管はケース底部に光源ランプと平行に置き照射中の光源からの距離はおよそ１０ｃｍに保持した。上記条件で３時間照射した。
【００６２】
３）分析方法
▲１▼紫外線照射前後の各試料を実施例２と同様にＧＰＣ−ＨＰＬＣにより分析し、ガラクトサミノグリカンの低分子化を確認した。但し検出器は示差屈折計ＲＩ−８０２０のみを使用した。
▲２▼紫外線照射前後の各試料について紫外吸収スペクトル２００〜５００ｎｍを測定した。
【００６３】
４）結果
ＨＰＬＣによる分析の結果、紫外線照射によってガラクトサミノグリカンの低分子化が確認できた。また紫外部吸収スペクトルの結果、照射前に確認されていた２６０ｎｍにピークトップを有する吸収スペクトルが照射後は消失していること、すなわち、核酸が分解されたことが確認された。
結果を図１１に示す。
上記の結果により、低分子化グリコサミノグリカンを調製する際に夾雑する核酸、タンパク質、色素等、紫外部吸収を持つ物質の除去に本発明の方法が有効であることがわかった。
【００６４】
実施例４
グリコサミノグリカンの二糖組成分析
表６および表７に示す各種の硫酸化グリコサミノグリカンに実施例１と同様に紫外線を照射して低分子化するとともに、照射前後の各サイズのグリコサミノグリカンについて、常法によって構成糖に結合している硫酸基の脱離の有無を確認するため二糖組成を解析した。解析は、新生化学実験講座３糖質ＩＩｐ４９−６２の記載に準拠して行った。
【００６５】
Ａ）照射前後のコンドロイチン硫酸
コンドロイチン硫酸をコンドロイチナーゼＡＢＣ（生化学工業（株））により完全に不飽和二糖に消化したものをＨＰＬＣで二糖組成を分析した。詳細を以下より記す。
１）コンドロイチナーゼＡＢＣによる消化
１％コンドロイチン硫酸溶液２０μＬ  に、緩衝液Ａ（０．０１ｍｏｌ／Ｌ酢酸ナトリウム，０．０５ｍｏｌ／Ｌ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，ｐＨ７．５）１０μＬを加え、０．５Ｕ／１０μＬ  のコンドロイチナーゼＡＢＣを添加した。３７℃で２時間消化し、沸騰湯浴中で１分加熱して反応を停止した。この分解物および消化前の基質（ＣＳ）をＧＰＣ−ＨＰＬＣに供し、コンドロイチン硫酸が完全に分解されていることを確認した。さらに以下の条件のＨＰＬＣで、同分解物を分析し、二糖組成を解析した。
【００６６】
２）ＨＰＬＣによる分析
コンドロイチナーゼＡＢＣ消化液を、以下のＨＰＬＣを用いて分析した。カラムはＹＭＣ−Ｐａｃｋ  ＰＡ−１２０−Ｓ５イオン交換カラム（φ２．６Ｘ２５０ｍｍ，ＹＭＣ（株））を用いた。流速１．５ｍＬ／分で６０分間に０．８ｍｏｌ／Ｌリン酸水素ナトリウムを２％から１００％までの直線濃度勾配で流した。不飽和コンドロ−二糖キット（生化学工業（株））の溶出位置を基準として、この間に溶出する各種不飽和二糖を２３２ｎｍの吸光度を測定することにより同定し、不飽和二糖と同定されたピーク面積の総和を１００％として計算して二糖組成比を求めた。結果を表６に示す。
【００６７】
【表６】
2004250592.tif 000007
【００６８】
尚、表の上段に示す不飽和二糖組成の略号はＡＮＡＬＹＴＩＣＡＬ  ＢＩＯＣＨＥＭＩＳＴＲＹ  １７７，  ３２７−３３２（１９８９）に従う表記であり、各不飽和二糖異性体の具体的構造を図１２に示した。
【００６９】
Ｂ）ヘパリン（Ｈｅｐ）及びヘパラン硫酸（ＨＳ）
１）ヘパリン／ヘパラン硫酸分解酵素による消化
照射前後のヘパリンあるいはヘパラン硫酸１％溶液２０μＬに２ｍＭ酢酸カルシウムを含む２０ｍＭ酢酸ナトリウム（ｐＨ７．０）１０μｌを加え、３０ｍＵヘパリチナーゼＩ、２０ｍＵのヘパリチナーゼＩＩ及び５０ｍＵヘパリナーゼを混合した酵素溶液（ＥＭＩＩ）１０μＬ  を加えて、３７℃で２時間反応させた。沸騰湯浴中で１分間加熱して反応を停止した。この分解物および消化前の基質（Ｈｅｐ／ＨＳ）をＧＰＣ−ＨＰＬＣに供し、完全に分解されていることを確認した。さらに以下の条件のＨＰＬＣで同分解物を分析し、二糖組成を解析した。
【００７０】
２）ＨＰＬＣによる分析
ヘパリチナーゼＩ、ＩＩおよびヘパリナーゼの混合酵素の消化液を、以下のＨＰＬＣを用いて分析した。カラムはＤＩＯＮＥＸ  ＣａｒｂｏＰａｃ  ＰＡ−１イオン交換カラム（φ４Ｘ２５０ｍｍ，ＤＩＯＮＥＸ社））を用いた。流速１ｍＬ／分で３０分間に３Ｍ  塩化リチウム溶液を０から７５％までの直線濃度勾配で流した。不飽和ヘパラン／ヘパリン二糖キット（生化学工業（株））の溶出位置を基準として、この間に溶出する各種不飽和二糖を２３２ｎｍで同定し、不飽和二糖と同定されたピーク面積の総和を１００％として計算して二糖組成比を求めた。結果を表７に示す。
【００７１】
【表７】
2004250592.tif 000008
【００７２】
尚、表の上段に示す不飽和二糖組成の略号はＡＮＡＬＹＴＩＣＡＬ  ＢＩＯＣＨＥＭＩＳＴＲＹ  １７７，  ３２７−３３２（１９８９）に従う表記であり、各不飽和二糖異性体の具体的構造を図１３に示した。
【００７３】
上記の結果から、紫外線照射により得られた低分子化されたグリコサミノグリカンの二糖組成は原料グリコサミノグリカンの構造を維持し、紫外線照射によってもほとんど影響を受けないことが示された。
【００７４】
【発明の効果】
本発明によれば新規な低分子化グリコサミノグリカンの製造方法が提供される。紫外線の光量は、低分子化グリコサミノグリカンの分子量の逆数との比例関係に基づいて決まるため、その関係に従い光量を設定することによって所望する分子量を有する低分子化グリコサミノグリカンを調製することができる。そのため、本発明方法によれば極めて効率的に低分子化グリコサミノグリカンを製造することができ、産業上極めて有用である。また、本発明によれば原料グリコサミノグリカンに含まれ得る核酸、タンパク質等の紫外線吸収性の夾雑物が分解されると同時に滅菌も可能となり、低分子化グリコサミノグリカンの精製も容易になる。
【図面の簡単な説明】
【図１】ヒアルロン酸についての紫外線の光量と低分子化ヒアルロン酸の分子量の逆数との関係を示すグラフである。
【図２】高分子ヒアルロン酸についての紫外線の光量と低分子化ヒアルロン酸の分子量の逆数との関係を示すグラフである。
【図３】コンドロイチン硫酸についての紫外線の光量と低分子化コンドロイチン硫酸の分子量の逆数との関係を示すグラフである。
【図４】ヘパラン硫酸についての紫外線の光量と低分子化ヘパラン硫酸の分子量の逆数との関係を示すグラフである。
【図５】ヘパリンについての紫外線の光量と低分子化ヘパリンの分子量の逆数との関係を示すグラフである。
【図６】コンドロイチン硫酸を含む試料の紫外線照射前後の紫外吸収スペクトルを示す図である。
【図７】コンドロイチン硫酸及びＤＮＡを含む試料の紫外線照射前後の紫外吸収スペクトルを示す図である。
【図８】ヒアルロン酸を含む試料の紫外線照射前後の紫外吸収スペクトルを示す図である。
【図９】ヒアルロン酸及びＤＮＡを含む試料の紫外線照射前後の紫外吸収スペクトルを示す図である。
【図１０】ＤＮＡを含む試料の紫外線照射前後の紫外吸収スペクトルを示す図である。
【図１１】ガラクトサミノグリカン粗精製物の紫外線照射前後の紫外吸収スペクトルを示す図である。
【図１２】コンドロイチン硫酸構成不飽和二糖異性体の構造を示す図である。
【図１３】ヘパリン及びヘパラン硫酸構成不飽和二糖異性体の構造を示す図である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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