(57)【要約】【課題】Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓ  ｆｕｒｉｏｓｕｓ由来のウイルス様粒子（球状粒子）に関する生化学的な性質を解明して、その球状粒子の利用を容易にするために必要な遺伝子とタンパク質とを提供する。【解決手段】ウイルス様粒子（球状粒子）を構成するタンパク質のアミノ酸配列と、そのタンパク質をコードする遺伝子とを特定した。【選択図】  なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
以下の（ａ）から（ｃ）のいずれか１つのタンパク質をコードすることを特徴とする遺伝子。
（ａ）配列番号３に記載のアミノ酸配列を有するタンパク質。
（ｂ）配列番号３に記載のアミノ酸配列のうち、１個若しくは数個のアミノ酸が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を有し、集合することによって球状粒子を形成するタンパク質。
（ｃ）配列番号６に記載のアミノ酸配列を有し、集合することによって球状粒子を形成するタンパク質。
【請求項２】
配列番号１に記載の塩基配列を有することを特徴とする遺伝子。
【請求項３】
配列番号１に記載の塩基配列のうち、１個若しくは数個の塩基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加された塩基配列を有し、
集合することによって球状粒子を形成するタンパク質をコードしていることを特徴とする遺伝子。
【請求項４】
上記タンパク質は、配列番号３に記載のアミノ酸配列を有していることを特徴とする請求項３に記載の遺伝子。
【請求項５】
上記タンパク質は、配列番号３に記載のアミノ酸配列のうち、１個若しくは数個のアミノ酸が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を有していることを特徴とする請求項３に記載の遺伝子。
【請求項６】
配列番号４に記載の塩基配列を有し、
集合することによって球状粒子を形成するタンパク質をコードしていることを特徴とする遺伝子。
【請求項７】
配列番号４に記載の塩基配列のうち、１個若しくは数個の塩基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加された塩基配列を有し、
集合することによって球状粒子を形成するタンパク質をコードしていることを特徴とする遺伝子。
【請求項８】
配列番号３に記載のアミノ酸配列を有することを特徴とするタンパク質。
【請求項９】
配列番号３に記載のアミノ酸配列のうち、１個若しくは数個のアミノ酸が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を有し、
集合することによって球状粒子を形成することを特徴とするタンパク質。
【請求項１０】
配列番号６に記載のアミノ酸配列を有し、
集合することによって球状粒子を形成することを特徴とするタンパク質。
【請求項１１】
請求項８から１０のいずれか１項に記載のタンパク質を有することを特徴とする球状粒子。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、球状粒子（ウイルス様粒子）を構成する新規タンパク質、及びそのタンパク質をコードする新規遺伝子に関するものである。
【０００２】
【従来の技術】
地球上には大きく分けて３つの生物界、Ｅｕｋａｒｙａ（真核生物）、Ｂａｃｔｅｒｉａ（真正細菌）及びＡｒｃｈａｅａ（古細菌、アーキア）が存在し、人間を含めた哺乳類は真核生物の頂点にある。
【０００３】
古細菌は、外見の類似から２０年ほど以前までは真正細菌に分類されていたけれども、遺伝子の構造解析の結果、真正細菌とは別の生物として認められ、真正細菌と真核生物との中間に位置付けられた。特殊な環境に棲んでいるのが特徴で、超高温や超高塩濃度で生育している。我々が生活しやすい環境と言える条件は、適当な温度、空気、日光、水、食物などが整った条件だが、そのような適当な温度、空気、日光、水、食物などがない条件が、古細菌の生育する条件である。
【０００４】
古細菌は、真核生物に近いＥｕｒｙａｒｃｈａｅｏｔａと真正細菌に近いＣｒｅｎａｒｃｈａｅｏｔａのサブドメインに分かれる。古細菌のＰｙｒｏｃｏｃｃｕｓ属はＥｕｒｙａｒｃｈａｅｏｔａに分類される超好熱菌である。Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓ  ｆｕｒｉｏｓｕｓ（以下適宜「Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓ」と記す）は、硫黄性火山という極限環境の中で見つかった。酸素が少ない状態で生育する嫌気性の菌であり、７０℃〜１０３℃の高い温度と高いｐＨで生育する超好熱菌である（非特許文献１参照）。
【０００５】
この特異な耐熱機構を研究対象として、超好熱菌Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓは、数多く研究されている。現在までに理解されている耐熱機構の要因は、（１）極限環境の中でＤＮＡ（デオキシリボ核酸）の破壊がほとんどなく染色体が完全に維持されていること、（２）ＤＮＡ修復酵素が関与する系のＤＮＡ修復システムが有能であることとされている（非特許文献２参照）。
【０００６】
また、応用として、超好熱菌は耐熱性であるために、そのタンパク質も熱安定で変性しにくく結晶化しやすいので、タンパク質実験に有利であると言われている。他にも、超好熱菌Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓ由来のＤＮＡポリメラーゼはＰｏｌｙｍｅｒａｓｅ  ｃｈａｉｎｒｅａｃｔｉｏｎ（ＰＣＲ）法で使用するために大量生産されるなど、工業的にも広く利用されている（非特許文献３参照）。
【０００７】
ところで、近年の生物科学の急速な発展のおかげで、生命活動に必須な酵素反応、分子認識過程や触媒過程などに関わる重要な機能を持つタンパク質を、Ｘ線結晶構造解析法により、原子分解能で研究することが可能になっている。
【０００８】
本願発明者は、超分子複合体リボソームによる蛋白質合成機構の解明についての研究を行っており、さらに、その研究において重要な、超好熱菌Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓ由来の７０Ｓリボソームの原子構造解析を行った。そして、超好熱菌Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓから高純度の７０Ｓリボソームを抽出して、さらに、７０Ｓリボソームと思われる結晶を得て、その結晶のＸ線結晶構造解析を行った。なお、そのときの結晶化条件を下記に示す。
（結晶化条件）
方法    ハンギングドロップ蒸気拡散法
バッファー    ２０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ
タンパク質    ４０〜６０ｍｇ／ｍｌ
沈殿剤    ＭＰＤ
結晶化ドロップ中の沈殿剤濃度    ０．５％（ｗ／ｖ）
結晶化リザーバー中の沈殿剤濃度    １６％（ｗ／ｖ）
温度    ２５℃
しかし、その解析の途中で、結晶構造に７０Ｓリボソームにはないシェル構造の存在が確認でき、結晶構造は、シェル構造をもつウイルス様粒子であることが判明した。この事から、上記結晶は、７０Ｓリボソームの結晶ではなくウイルス様粒子の結晶であったことが示された。
【０００９】
上記結果は、本願発明者にとって全く予期しないものであった。結晶化用の７０Ｓリボソームサンプルは、ＳＤＳ−ＰＡＧＥの結果も活性測定の結果も７０Ｓリボソームのものであったのだが、結晶化されたのはウイルス様粒子だったのである。なお、ＳＤＳ−ＰＡＧＥの「ＳＤＳ」とは、ドデシル硫酸ナトリウム（ｄｏｄｅｃｙｌ  ｓｕｌｆａｔｅ，  ｓｏｄｉｕｍ  ｓａｌｔ）のことである。また、ＳＤＳ−ＰＡＧＥの「ＰＡＧＥ」とは、ポリアクリルアミドゲル電気泳動（ｐｏｌｙａｃｒｙｌａｍｉｄｅ  ｇｅｌ  ｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｓｉｓ）のことである。
【００１０】
上記のように、７０Ｓリボソームの結晶は得られなかった。しかし、この予期しなかった超好熱菌由来のウイルス様粒子は、研究対象として興味深い点がある。一つは、真核生物に近いＥｕｒｙａｒｃｈａｅｏｔａのウイルスの報告例はまだなく、無論その構造、機能については全く知られていない点である（非特許文献４参照）。また、発明者は、このウイルス様粒子の構造解析を進め、重原子同型置換法によって構造決定を行った。その結果、上記ウイルス様粒子が、１８０個の殻タンパク質からなるＴ＝３の正２０面体の対称を持つ直径約３０ｎｍの球状粒子で、殻タンパク質のＣ末から２５０残基ほどがウイルス様粒子の骨格に関わっていることを確認した。また、その全体構造が、バクテリオファージＨＫ９７のＣａｐｓｉｄの構造と類似性のあることが確認できた（非特許文献５参照）。
【００１１】
【非特許文献１】
Ｊ  Ｂｉｏｌ  Ｃｈｅｍ  ２６４（９）  ５０７０−９（１９８９）
【００１２】
【非特許文献２】
Ｊ  Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ  １７７（２１）  ６３１６−８（１９９５）
【００１３】
【非特許文献３】
Ｇｅｎｅ  １０８（１）  １−６（１９９１）
【００１４】
【非特許文献４】
ＦＥＭＳ  Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ  Ｒｅｖｉｅｗｓ  １８  ２２５−２３６（１９９６）
【００１５】
【非特許文献５】
Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２８９  ２１２９−２１３３（２０００）
【００１６】
【発明が解決しようとする課題】
しかしながら、上記ウイルス様粒子に関して、例えばウイルス様粒子の生化学的な性質などは、上記以外のことはほとんど分かっておらず、ウイルス様粒子（球状粒子）を利用することが極めて困難であるという問題点がある。なお、このウイルス様粒子の利用としては、例えば、熱安定な構造を有するウイルス様粒子の内部に、薬剤、遺伝子等を詰め込むことによる、ドラッグデリバリーシステム（Ｄｒｕｇ  Ｄｅｌｉｖｅｒｙ  Ｓｙｓｔｅｍ：ＤＤＳ）への利用などが挙げられる。
【００１７】
本発明は、上記従来の問題点に鑑みなされたものであって、その目的は、ウイルス様粒子（球状粒子）に関する生化学的な性質を解明して、その球状粒子の利用を容易にするために必要な遺伝子とタンパク質とを提供すること、および、これら遺伝子等を利用して得られる球状粒子を提供することにある。
【００１８】
【課題を解決するための手段】
本願発明者は、上記課題に鑑み、上記ウイルス様粒子について鋭意検討した。まず、なぜ超好熱菌にウイルス様粒子が存在したかということを明解し、ウイルス様粒子がどのような働きを持っているのかということについて調べた。そして、結晶化用の７０Ｓリボソームサンプルの中に、ウィルス様粒子は存在するのかどうかを調べ、さらに、ウイルス様粒子の内部に核酸が入っているのかどうかを調べた。さらに、ウイルス様粒子の殻タンパク質と考えられるタンパク質のアミノ酸配列の解析と、ＤＮＡ塩基配列の解析とを行い、様々な種の類似検索について検討した。その結果、本願発明者は、上記殻タンパク質のアミノ酸配列とそのタンパク質をコードする遺伝子の塩基配列とを決定して、本願発明を完成させるに至った。
【００１９】
本発明の遺伝子は、以下の（ａ）から（ｃ）のいずれか１つのタンパク質をコードすることを特徴とする。
（ａ）配列番号３に記載のアミノ酸配列を有するタンパク質。
（ｂ）配列番号３に記載のアミノ酸配列のうち、１個若しくは数個のアミノ酸が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を有し、集合することによって球状粒子を形成するタンパク質。
（ｃ）配列番号６に記載のアミノ酸配列を有し、集合することによって球状粒子を形成するタンパク質。
【００２０】
上記（ａ）のタンパク質は、Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓ由来の、球状粒子（ウイルス様粒子）を構成する殻タンパク質である。上記球状粒子（ウイルス様粒子）は、超好熱菌Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓ由来の粒子であり、正２０面体対称性を持つ球状殻構造体（ＰｆＶ）である。この球状粒子の直径は、図１に記載のように、直径３０．５ｎｍ〜３６．３ｎｍ（３０５〜３６３オングストローム）である。この球状粒子は、１８０本の単一のポリペプチド鎖（上記（ａ）のタンパク質）が、非共有結合で会合してできた粒子である。そして、この球状粒子は、超好熱菌Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓという由来からも分かるように、９０℃〜１００℃といった高温条件下でも安定に存在する。さらに、この球状粒子には、その粒子内に存在する分子、例えばＲＮＡ（リボ核酸）などを、上記高温条件下でも安定に存在させる機能がある。
【００２１】
上記球状粒子は、上記のように、高温条件下において安定であり、粒子内に存在する分子を安定に存在させる機能を有する。それゆえ、例えば、球状粒子の内部に薬剤、遺伝子などを詰め込むことにより、この球状粒子のドラッグデリバリーシステム（Ｄｒｕｇ  Ｄｅｌｉｖｅｒｙ  Ｓｙｓｔｅｍ：ＤＤＳ）への利用が期待できる。
【００２２】
本発明の遺伝子は、上記殻タンパク質をコードする新規遺伝子である。その結果、球状粒子（ウイルス様粒子）の利用を容易にするための遺伝子を、提供することができる。
【００２３】
また、本発明に係る遺伝子としては、例えば、下記（Ａ）〜（Ｆ）の遺伝子が挙げられる。これら遺伝子を利用すれば、球状粒子（ウイルス様粒子）の利用が容易になる。
（Ａ）配列番号１に記載の塩基配列を有することを特徴とする遺伝子。
（Ｂ）配列番号１に記載の塩基配列のうち、１個若しくは数個の塩基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加された塩基配列を有し、集合することによって球状粒子を形成するタンパク質をコードしていることを特徴とする遺伝子。
（Ｃ）上記タンパク質は、配列番号３に記載のアミノ酸配列を有していることを特徴とする（Ｂ）に記載の遺伝子。
（Ｄ）上記タンパク質は、配列番号３に記載のアミノ酸配列のうち、１個若しくは数個のアミノ酸が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を有していることを特徴とする（Ｂ）に記載の遺伝子。
（Ｅ）配列番号４に記載の塩基配列を有し、集合することによって球状粒子を形成するタンパク質をコードしていることを特徴とする遺伝子。
（Ｆ）配列番号４に記載の塩基配列のうち、１個若しくは数個の塩基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加された塩基配列を有し、集合することによって球状粒子を形成するタンパク質をコードしていることを特徴とする遺伝子。
【００２４】
なお、「１個若しくは数個の塩基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加された」とは、公知のＤＮＡ組換え技術、点変異導入方法などによって可能な程度の数の塩基が、置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたことを意味する。また、「１個若しくは数個のアミノ酸が置換、欠失、挿入、及び／又は付加された」とは、部位特異的突然変異誘発法などの公知の変異タンパク質作製法などによって可能な程度の数（好ましくは１０個以下、より好ましくは７個以下、さらに好ましくは５個以下）のアミノ酸が、置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたことを意味する。
【００２５】
ところで、本発明の「遺伝子」には、ＤＮＡ及びＲＮＡが含まれる。ここに言うＤＮＡには、もちろん、クローニング、化学合成技術又はそれらの組み合わせで得られるようなＤＮＡ（例えばｃＤＮＡ（相補ＤＮＡ：ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔａｒｙ  ＤＮＡ）、ゲノムＤＮＡなど）が含まれる。また、ＤＮＡは二本鎖でも一本鎖でもよく、一本鎖ＤＮＡは、センス鎖となるコードＤＮＡであっても、アンチセンス鎖となるアンチコード鎖であってもよい。このアンチセンス鎖は、プローブなどに利用できる。
【００２６】
さらに、本発明の「遺伝子」は、上記（ａ）〜（ｃ）のタンパク質をコードする配列以外に、非翻訳領域（ＵＴＲ）の配列、ベクター配列（発現ベクター配列を含む）などの配列を含むものであってもよい。
【００２７】
なお、上記のように、本発明の遺伝子を説明する上で、配列表を用いる場合がある。その配列表においては、説明の便宜上、ＤＮＡの塩基配列を示している。しかし、本発明の遺伝子がＲＮＡを指す場合には、配列表に示す塩基の「Ｔ（チミン）」を、「Ｕ（ウラシル）」に読み替えて解釈するものとする。
【００２８】
また、本発明のタンパク質は、配列番号３に記載のアミノ酸配列を有することを特徴としている。このタンパク質は、Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓ由来の球状粒子（ウイルス様粒子）を構成する殻タンパク質である。このタンパク質が有するアミノ酸配列は、本発明者が初めて決定したアミノ酸配列である。このことについては、下記に示す実施例で詳しく説明する。また、上記のように、本発明のタンパク質をコードする遺伝子は、本発明者が特定した新規遺伝子である。
【００２９】
その結果、上記ウイルス様粒子に関する生化学的な性質を解明して、そのウイルス様粒子（球状粒子）の利用を容易にするタンパク質を、提供することができる。
【００３０】
さらに、本発明に係るタンパク質としては、下記の（ｉ）〜（ｉｉ）が挙げられる。
（ｉ）配列番号３に記載のアミノ酸配列のうち、１個若しくは数個のアミノ酸が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を有し、集合することによって球状粒子を形成することを特徴とするタンパク質。
（ｉｉ）配列番号６に記載のアミノ酸配列を有し、集合することによって球状粒子を形成することを特徴とするタンパク質。
【００３１】
上記（ｉｉ）のタンパク質は、配列番号３に示すアミノ酸配列の前半１００残基を除いた、２４５アミノ酸残基からなるタンパク質である。この２４５アミノ酸残基からなる部分は、球状粒子の殻部を構成している部分である。よって、この２４５アミノ酸残基からなる部分を有するタンパク質は、球状粒子を構成する可能性が極めて高い。前半１００残基を除いた２４５（約２５０）アミノ酸残基からなる上記タンパク質については、後述の実施例で詳しく説明する。
【００３２】
なお、本発明に係るタンパク質は、細胞などから単離精製された状態のものを主に指す。しかし、本発明に係るタンパク質は、タンパク質をコードする遺伝子を宿主細胞に導入して、そのタンパク質を細胞内発現させた状態のものであってもよい。さらに、本発明に係るタンパク質は、付加的なポリペプチドを含むものであってもよい。付加的なポリペプチドを含むタンパク質としては、例えば、ＨＡ、Ｍｙｃ、ｆｌａｇなどのエピトープで標識されたタンパク質などが挙げられる。
【００３３】
また、本発明の球状粒子は、上記に記載のタンパク質を有することを特徴としている。
【００３４】
本発明の球状粒子を構成するタンパク質は、上記のように、集合することによって、球状粒子（球状殻構造体：ＰｆＶ）を形成する。さらに、発明者は、そのタンパク質をコードしている遺伝子を特定している。それゆえ、耐熱性を有する球状粒子を、容易に取得することができる。
【００３５】
【発明の実施の形態】
本発明の実施の一形態について説明すれば、以下の通りである。なお、本発明は、下記の実施の形態に限定されるものではなく、本発明の範囲内で種々の変更が可能である。
【００３６】
（１）本実施の形態の遺伝子について
本実施の形態における遺伝子について説明する。本実施の形態の遺伝子は、超好熱菌Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓ由来の遺伝子であり、球状粒子（ウイルス様粒子）を構成するタンパク質をコードしている。
【００３７】
本実施の形態における遺伝子の塩基配列の例を、配列番号１及び４に示している。配列番号１の塩基配列を有する遺伝子は、配列番号３に示すアミノ酸配列からなるタンパク質をコードしている。なお、配列番号１の塩基配列と配列番号３に示すアミノ酸配列とを併記したものを、配列番号２に示す。
【００３８】
また、配列番号４の塩基配列を有する遺伝子は、配列番号６に示すアミノ酸配列からなるタンパク質をコードしている。なお、配列番号４の塩基配列と配列番号６に示すアミノ酸配列とを併記したものを、配列番号５に示す。
【００３９】
次に、本実施の形態における遺伝子の取得方法について説明する。本実施の形態の遺伝子を取得する方法は、特に限定されるものではない。例えば、配列表（配列番号１〜２及び４〜５）に記載されている塩基配列のデータとＰ．ｆｕｒｉｏｓｕｓデータベース（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｇｅｎｏｍｅ．ｕｔａｈ．ｅｄｕ／ｓｅｑｕｅｎｃｅ．ｈｔｍｌ）に格納されている塩基配列のデータとに基づいて、種々の方法により、本実施の形態の遺伝子を含むＤＮＡ断片を、単離及びクローニングすることができる。
【００４０】
具体的に言えば、本実施の形態の遺伝子は、ＰＣＲ等の増幅手段を用いれば、容易に得ることができる。まず、配列表に記載のＤＮＡ配列とＰ．ｆｕｒｉｏｓｕｓデータベースに格納されているデータとを比較して、得たいタンパク質をコードしている領域が増幅されるように、５’側及び３’側の非翻訳領域の配列（又はその相補配列）の中から、それぞれプライマーを調製する。次に、これらプライマーと、鋳型としてのＰ．ｆｕｒｉｏｓｕｓのＤＮＡ（ゲノムＤＮＡ、ｃＤＮＡ等）とを用いてＰＣＲを行えば、両プライマー間に挟まれるＤＮＡが増幅される。これにより、本実施の形態の遺伝子を含むＤＮＡ断片を、大量に取得することができる。
【００４１】
なお、配列番号１又は配列番号４に記載の塩基配列のうち、１個若しくは数個の塩基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加された塩基配列を取得する方法としては、例えば、部位特異的突然変異誘発法（Ｈａｓｈｉｍｏｔｏ−Ｇｏｔｏｈ，Ｇｅｎｅ  １５２，２７１−２７５（１９９５）他）、トランスポゾンの挿入による突然変異、ＰＣＲ法等を利用することが挙げられる。
【００４２】
（２）本実施の形態のタンパク質及び球状粒子について
本実施の形態のタンパク質は、球状粒子（ウイルス様粒子）を構成する殻タンパク質である。また、本実施の形態の球状粒子は、１８０本の単一のポリペプチド鎖（つまり本実施の形態のタンパク質）が、非共有結合で会合してできた粒子である。
【００４３】
次に、本実施の形態におけるタンパク質の取得方法について説明する。本実施の形態におけるタンパク質の取得方法は、特に限定されるものではない。例えば、まず、本実施の形態の遺伝子を、周知の方法で宿主に組み入れる。なお、ここで言う宿主としては、例えば、微生物（大腸菌、酵母など）、動物細胞などが挙げられる。次に、組み入れた遺伝子を発現させて、その遺伝子がコードするタンパク質を取得及び精製すれば、本実施の形態のタンパク質を容易に取得することができる。
【００４４】
なお、本実施の形態の遺伝子を宿主に組み入れる場合には、ホスト細胞の種類に応じて、確実に遺伝子を発現させるために適宜プロモーター配列を選択し、これと本発明に係る遺伝子を各種プラスミド等に組み込んだものを発現ベクターとして用いればよい。
【００４５】
また、上記発現ベクターをホスト細胞に導入する方法、すなわち形質転換方法も特に限定されるものではなく、電気穿孔法、リン酸カルシウム法、リポソーム法、ＤＥＡＥデキストラン法等の従来公知の方法を好適に用いることができる。
【００４６】
本実施の形態の遺伝子がホスト細胞に導入されたか否か、さらにはホスト細胞中で確実に発現しているか否かを確認するために、各種マーカーを用いてもよい。例えば、ホスト細胞中で欠失している遺伝子をマーカーとして用い、このマーカーと本実施の形態の遺伝子とを含むプラスミド等を発現ベクターとしてホスト細胞に導入する。これによってマーカー遺伝子の発現から本実施の形態の遺伝子の導入を確認することができる。あるいは、本発明に係るタンパク質を融合タンパク質として発現させてもよく、例えば、オワンクラゲ由来の緑色蛍光タンパク質ＧＦＰ（Ｇｒｅｅｎ  Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ  Ｐｒｏｔｅｉｎ）をマーカーとして用い、本発明に係るタンパク質をＧＦＰ融合タンパク質として発現させてもよい。
【００４７】
なお、上記のように、宿主に外来遺伝子を導入する場合、外来遺伝子の組換え領域に宿主内で機能するプロモーターを組み入れた発現ベクター及び宿主には様々なものがあるので、目的に応じたものを選択すればよい。産生されたタンパク質を取り出す方法は、用いた宿主、タンパク質の性質によって異なるが、例えばタグの利用等により、比較的容易に目的のタンパク質を精製することが可能である。
【００４８】
また、変異タンパク質を作製する方法についても、特に限定されるものではない。例えば、部位特異的突然変異誘発法（Ｈａｓｈｉｍｏｔｏ−Ｇｏｔｏｈ，Ｇｅｎｅ  １５２，２７１−２７５（１９９５）他）、ＰＣＲ法等を利用して塩基配列に点変異を導入し、変異タンパク質を作製してもよい。あるいは、トランスポゾンの挿入による突然変異株作製法などの、周知の変異タンパク質作製法を用いてもよい。このように、上述の方法で取得された遺伝子の塩基配列に、１またはそれ以上の塩基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されるように改変を加えれば、容易に変異タンパク質を作製することができる。さらに、変異タンパク質の作製には、市販のキット（例えば、ＱｕｉｋＣｈａｎｇｅ  Ｓｉｔｅ−Ｄｉｒｅｃｔｅｄ  Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ  Ｋｉｔ  ストラタジーン社製）を利用してもよい。
【００４９】
さらには、本発明のタンパク質、またはその部分ペプチドを抗原として抗体を作製することもできる。抗体の作製方法は特に限定されるものではなく、公知の方法によりポリクローナル抗体またはモノクローナル抗体を作製すればよい。公知の方法としては、例えば、文献（Ｈａｒｌｏｗらの「Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ  ：  Ａ  ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  ｍａｎｕａｌ（Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，  Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ（１９８８））、岩崎らの「単クローン抗体  ハイブリドーマとＥＬＩＳＡ，講談社（１９９１）」」に記載の方法が挙げられる。こうして作製した抗体は、本発明のタンパク質の検出に有効である。
【００５０】
（３）本実施の形態の球状粒子について
本実施の形態の球状粒子は、超好熱菌Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓ由来の粒子であり、上記タンパク質より構成されている。
【００５１】
次に、本実施の形態における球状粒子の取得方法について説明する。下記の実施例で詳しく述べるが、Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓの培養し、菌体を破砕して、遠心分離と疎水性クロマトグラフィーとによって、球状粒子を得ることができる。
【００５２】
上記取得方法は、Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓの培養による方法である。しかし、本実施の形態の遺伝子を利用してタンパク質を合成し、その合成したタンパク質を集合させることによっても、球状粒子を取得することができる。例えば、大腸菌などを用いた大量発現系により本実施の形態のタンパク質を合成すれば、自己会合により、容易に高次構造を形成させることができる。
【００５３】
（４）有用性
本実施の形態の遺伝子、タンパク質、及び球状粒子、は、超好熱菌Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓ由来の粒子である。また、本実施の形態の球状粒子は、本実施の形態のタンパク質（タンパク質粒子）１８０個を集合させることによって、製造することができる。
【００５４】
超好熱菌Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓ由来であることからも分かるように、本実施の形態の球状粒子（球状殻構造体：ＰｆＶ）は、９０℃〜１００℃といった高温条件下でも安定に存在する。さらに、この球状粒子には、その粒子内に存在する分子、例えばＲＮＡなどを、上記高温条件下でも安定に存在させる機能がある。
【００５５】
例えば、球状粒子の内部に薬剤、遺伝子などを詰め込むなどにより、本実施の形態の球状粒子を、ＤＤＳ（ドラッグデリバリーシステム）の基材として利用することが可能である。さらに、本実施の形態における球状粒子の利用としては、例えば、高温条件下において、球状粒子の内部に詰め込んだ物を安定に保存する耐熱性カプセルとしての利用、ケージ化合物としての利用などが挙げられる。そして、球状粒子の粒子内に存在する分子を熱から保護する機能を利用すれば、ナノレベルの大きさの分子のプロテクターへの応用も考えられる。
【００５６】
上記ＤＤＳへの利用や保存カプセルとしての利用において、複数のタンパク質の非共有結合により球状粒子が構成されていることも、球状粒子の利用価値を高める要因となり得る。例えば、適当な条件下（例えば、塩濃度を上げた条件下）において、球状粒子を容易に解離させることも可能であると考えられるからである。
【００５７】
また、本実施の形態における球状粒子の立体構造に基づいて、例えば、ポリペプチド鎖の任意の領域に分子を特異的に結合させることにより、目的分子を球状粒子の内部に閉じ込めるといったことも容易であると考えられる。さらに、球状粒子の外側に適当な修飾を行うことにより、粒子全体の性質を容易に制御することが可能である。そして、配列番号３に示すアミノ酸配列における、前半１００残基と後半約２５０残基との役割の相違が分かっていることは、上記のように立体構造に基づいて球状粒子の利用を考えるという側面において、貴重な情報である。なお、エピトープ又は特異的結合機能の付加も可能であるため、本実施の形態の球状粒子は、様々な用途に利用できると考えられる。
【００５８】
さらに、本実施の形態のタンパク質をコードする遺伝子が特定されていることから、球状粒子を構成するタンパク質を改変又は修飾することは容易である。つまり、改変又は修飾されたそのタンパク質を利用することも、容易である。さらに、特定の部位のアミノ酸を変異又は修飾することにより、立体構造特異的に機能を制御することも容易である。
【００５９】
従来の合成高分子を用いた類似の構造体とは異なり、ポリペプチド鎖を用いた球状粒子は、サブユニット間、形成された球殻構造間、あるいはターゲット分子間との相互作用の特異性が高く、その利用価値は高いと考えられる。
【００６０】
【実施例】
本発明の実施例を下記に示す。なお、本発明は、下記の実施例に限定されるものではなく、本発明の範囲内で種々の変更が可能である。
【００６１】
（実施例１  ウイルス様粒子の分離及び精製）
まず、結晶構造で見られたウイルス様粒子が、結晶化前のリボソームサンプルの中に存在するのかどうかを検証するために、上記サンプルをさらに精製し、リボソームとウイルス様粒子との分離を試みた。
【００６２】
Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓ由来７０Ｓリボソームの結晶化用サンプルの入手及び精製は、以下のように行った。まず、Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓを培養した。Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓの培養は、９８℃で行い、Ｏ．Ｄ．（５５０ｎｍ）が約０．７となったときに集菌した。その後、洗浄溶液で菌体を洗った。
【００６３】
次に、石英砂の入った乳鉢で菌体を破砕し、遠心分離（８０００ｒｐｍ、２０分）後、上清を得た。その上清を、さらに遠心分離（１８０００ｒｐｍ、１時間）し、再度、上清を得た。次に、その上清を遠心分離（４００００ｒｐｍ、３時間）して、沈殿を得た。
【００６４】
次に、上記沈殿を塩化カリウムバッファーに溶解させて、その溶解液を、スクロース不連続密度勾配遠心分離（１．６Ｍスクロース、４００００ｒｐｍ、２０時間）にかけた。そのスクロース不連続密度勾配遠心分離により得られた沈殿は、再度バッファーに溶解させた後、ピューロマイシンバッファーで反応させた。その反応の後、グリセロール不連続密度勾配遠心分離（２５％（ｖ／ｖ）グリセロール、４００００ｒｐｍ、１５時間）で沈殿を得ることにより、７０Ｓリボソームの結晶化用サンプルを得た。なお、上記操作により、９６リットルの培地から、７０Ｓリボソームの結晶化用サンプルを、約３００ｍｇ得た。
【００６５】
次に、上記操作で得られた７０Ｓリボソームの結晶化用サンプルにウイルス様粒子が混入しているかどうかを調べるために、その結晶化用サンプルを、さらに疎水性クロマトグラフィーにかけた。この疎水性クロマトグラフィーでは、高イオン強度下において、タンパク質の疎水結合が強くなることを利用している。具体的に言えば、まず、濃い硫酸アンモニウムの存在下において、タンパク質をカラムに吸着させる。そして、塩濃度が下降するように調製されている溶出グラジエントを用いて、タンパク質をカラムから溶出させる。
【００６６】
次に、その疎水性クロマトグラフィーの方法について説明する。まず、上記方法により得たリボソーム結晶化用サンプルに、硫酸アンモニウム濃度を終濃度１．７Ｍになるまで加えた。次に、遠心分離（１０００ｒｐｍ、１０分間）により、変性物を除去した。
【００６７】
次に、担体ＴＳＫｇｅｌ  Ｂｕｔｙｌ−トヨパール６５０（東ソー社製）を、カラム体積の２倍の平衡化バッファー３００ｍｌで平衡化した後、タンパク質溶液を吸着させた。そして、５０ｍｌ平衡化バッファーで洗浄した後に、溶出バッファー１５０ｍｌと平衡化バッファー１５０ｍｌとの直線型濃度勾配（硫酸アンモニウム濃度１．５Ｍから０Ｍ）の逆相クロマトグラフィーによって溶出を行った。取得した溶出液は、フラクションコレクターにかけ、ＳＤＳ−ＰＡＧＥを行った。なお、分画サイズは、１本あたり５ｍｌとした。
【００６８】
上記平衡化バッファーの組成は、Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ  ｐＨ７．５（２０ｍＭ）、塩化アンモニウム（７５ｍＭ）、塩化マグネシウム（３０ｍＭ）、塩化カリウム（０．２Ｍ）、ＥＤＴＡ（エチレンジアミン四酢酸：ｅｔｈｙｌｅｎｅｄｉａｍｉｎｅ−Ｎ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’−ｔｅｔｒａａｃｅｔｉｃ  ａｃｉｄ）（０．２５ｍＭ）、メルカプトエタノール（５ｍＭ）、硫酸アンモニウム（１．５Ｍ）とした。上記溶出バッファーの組成は、Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ  ｐＨ７．５（２０ｍＭ）、塩化アンモニウム（７５ｍＭ）、塩化マグネシウム（３０ｍＭ）、塩化カリウム（０．２Ｍ）、ＥＤＴＡ（０．２５ｍＭ）、メルカプトエタノール（５ｍＭ）とした。なお、濃度の単位である「Ｍ」は、ｍｏｌ／ｌを示すものとする。なお、上記「Ｔｒｉｓ」は、（トリスヒドロキシメチルアミノメタン：ｔｒｉｓ（ｈｙｄｒｏｘｙｍｅｔｈｙｌ）ａｍｉｎｏｍｅｔｈａｎｅ）のことである。
【００６９】
上記疎水性クロマトグラフィーにおける、溶出分画番号と吸光度との関係を示すグラフを図２に示す。また、溶出分画液をＳＤＳ−ＰＡＧＥにかけたときの結果を、図３に示す。
【００７０】
図３に示すように、溶出分画液をＳＤＳ−ＰＡＧＥにかけたところ、ウイルス様粒子のコートプロテインと考えられる４０ｋＤａのメインバンドが先に現れ（分画番号５４〜６２）、後からリボソームのリボソームタンパク質と考えられる多数のバンド（分画番号７０〜７８）が続いている。このことは、疎水性カラムクロマトグラフィーの操作により、リボソームとウイルス様粒子が分離したことを示している。よって、ウイルス様粒子と考えられる分画番号５４〜６２のサンプルを濃縮し、カラムで分けたサンプルとした。
【００７１】
（実施例２  ウイルス様粒子の形態）
実施例１における疎水性カラムクロマトグラフィーで分けた４０ｋＤａのサンプルが、結晶と同じウイルス様粒子である事を確認するために、以下の実験を行った。まず、結晶化前のサンプル、カラムクロマトグラフィーで分けたサンプル、結晶溶解液のサンプルの３つを用意し、ＳＤＳ−ＰＡＧＥと電子顕微鏡で確認をした。なお、結晶溶解液は、ハンギングドロップ蒸気拡散法により析出した結晶を、エッペンドルフチューブに集め、ガラス棒でつぶし、沈殿剤を抜いたバッファーで溶解したものである。
【００７２】
上記３つのサンプルをＳＤＳ−ＰＡＧＥで確認した結果を、図４に示す。なお、図４において、レーン１は分子量マーカー、レーン２は結晶化前のサンプル、レーン３は疎水性カラムクロマトグラフィーで分けたサンプル、レーン４は結晶溶解液の結果を示している。
【００７３】
図４によれば、結晶化前のサンプル（レーン２）は、多数のリボソームタンパク質のバンドが確認できる。結晶溶解液（レーン４）は、カラムクロマトグラフィーで分離したサンプル（レーン３）と同様、ウイルス様粒子の殻タンパク質と考えられる４０ｋＤａのバンドが現れている。
【００７４】
また、上記３つのサンプルの電子顕微鏡観察は、次のように行った。まず、３つのサンプルを１０秒間電子顕微鏡用のマイクログリッドにのせ、過量のサンプルを紙で吸収した。次に、ネガティブ染色用の２％（ｗ／ｖ）の酢酸ウラニル溶液を、グリッドに１分間乗せた。この酢酸ウラニル溶液は、電子散乱能の強い重金属原子が試料の表面を被い、繊細な隙間に浸透する結果、微細構造が明瞭に染め出されるために加えている。過量の溶液を紙で吸収し風乾した後、グリッドを電子顕微鏡に取り付けて観察した。
【００７５】
この電子顕微鏡による観察結果を、図５〜７に示す。なお、図５は結晶化前のサンプルの観察結果を、図６は疎水性カラムクロマトグラフィーで分けたサンプルの観察結果を、図７は結晶溶解液のサンプルの観察結果を示している。図５に示すように、結晶化前のサンプルでは、多数のリボソーム粒子を観察することができた。そして、一部、ウイルス様粒子も観察できた。それに対して、図６及び図７に示すように、カラムクロマトグラフィーで分けたサンプル及び結晶溶解液のサンプルの顕微鏡観察では、直径約３０ｎｍの粒子（ウイルス様粒子）を、多数観察できた。
【００７６】
上記結果は、Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓの培養から７０Ｓリボソームを精製した結晶化前のサンプルを、さらに疎水性クロマトグラフィーにかけると、結晶化しなくともウイルス様粒子のみを精製することができることを示している。
【００７７】
これらの実験結果から、結晶化前のサンプルには多量のリボソーム粒子の中に少量のウイルス様粒子が混入されており、結晶化すると、その少量のウイルス様粒子が結晶となって析出したことが理解できた。そもそも、タンパク質の結晶化はそのタンパク質が高純度に存在していなくては結晶化しないことが周知の事実として言われているが、今回の例では完全に異なる結果が得られたと言えよう。
【００７８】
今回の例と同様に、リボソームの結晶化を目指し結晶を析出させたけれども、リボソーム自身ではなく他のタンパク質が結晶化したことを、以前にも確認していた。このように偶然の結晶化が起こった背景として、リボソームの親水性が高いという性質があると思われる。結晶化に使う沈殿剤であるＰＥＧ（ポリエチレングリコール）のようなタンパク質の溶解度を下げる役割を、リボソームが果たしていると考えられる。
【００７９】
また、ウイルス様粒子の形態としては、Ｘ線構造解析の結果から、粒子の直径が約３０ｎｍということが判明していた。このウイルス様粒子を電子顕微鏡で見た結果、粒子直径は一致していたことが確認できた。
【００８０】
現在、既存のウイルスは、細菌ウイルス（バクテリオファージ）、動物ウイルス、植物ウイルスの３つに分類できる。このウイルス様粒子が、Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓを宿主として感染している成熟したウイルスと仮定すると、まず細菌ウイルスに分類できる。
【００８１】
細菌ウイルスの形態は、頭部と尾部をもつ形態と尾部をもたない頭部をもつ形態があり、このウイルス様粒子は、電子顕微鏡で見る限り、尾部は存在せず、細菌ウイルスの分類でＥ型（Ｌｅｖｉｖｉｒｕｓ）を表す。図８に、細菌ウイルスの形態を示す。図８に示すように、細菌ウイルスの形態は、Ａ型〜Ｆ型に分類することができ、Ｅ型はＲＮＡを持つ。
【００８２】
しかし、現在明らかにされているＥ型の他のバクテリオファージは、直径が２５ｎｍ以下もので、全て殻タンパク質の分子量が約１４０００である（Ｂａｃｔｅｒｉｏｌｏｇｉｃａｌ  ｒｅｖｉｅｗｓ  ３１  ２３０−３１１（１９６７））。ウイルス様粒子の殻タンパク質の分子量は、４０ｋＤａと非常に大きい事から、この分類にあてはまらなく、発見したウイルス様粒子に特に類似したウイルスはないといえる。ただし、発明者が構造解析した上でモデル分子としたバクテリオファージＨＫ９７は、尾部をもつＤＮＡウイルス（Ａ型）で、頭部分が直径６０ｎｍと大きい粒子である。しかし、殻タンパク質の一つの構造や粒子の外殻部分が薄い特徴的な構造などは、バクテリオファージＨＫ９７とウイルス様粒子とは類似している。
【００８３】
以上の事から、発明者が発見したウイルス様粒子は、形態上からでも既知のウイルスの分類にあてはまらず、真核生物に近いＥｕｒｙａｒｃｈａｅｏｔａの初めてのウイルスである可能性がある。このため、詳細な生化学的解明が必要であるので、まず、ウイルス様粒子を構成する殻タンパク質のアミノ酸配列を決定し、さらに、他種との相同性について比較を行った。
【００８４】
（実施例３  殻タンパク質のアミノ酸配列の解析）
ウイルス様粒子の生化学的性質を検証するために、ウイルス様粒子を構成する殻タンパク質のアミノ酸配列の解析、さらにＤＮＡ塩基配列の解析を行った。
【００８５】
４−１  アミノ酸配列における部分配列の決定
ウイルス様粒子の殻タンパク質と考えられる４０ｋＤａのタンパク質の生理機能を解析する上で必要となるものが、構造上の情報である。目的タンパク質の全アミノ酸配列と全塩基配列とを決定することによって、他種タンパク質との相同性をもとに生理機能を大まかに推測することができる。タンパク質の立体構造解析においても、得られた電子密度に目的タンパク質のアミノ酸側鎖構造を１残基ずつフィットさせるので、アミノ酸配列の情報は欠かせない情報である。
【００８６】
実際にアミノ酸配列を決定するには、部分的なアミノ酸配列をまず決定し、その情報に基づいてｃＤＮＡをクローニングし、その塩基配列から全アミノ酸配列を演繹する方法が定法となっている。発明者はこの方法に従い、まず部分アミノ酸配列を決定するために、プロテインシークエンサーを使用したＮ末シーケンス法と質量分析器を使用したマススペクトル法とを行った。
【００８７】
ここで、プロテインシークエンサーを用いたＮ末シーケンス法について、簡単に説明する。プロテインシークエンサーの原理は、タンパク質のＮ末端アミノ基にＰＩＴＣ（イソチオシアン酸フェニル：ｐｈｅｎｙｌ  ｉｓｏｔｈｉｏｃｙａｎａｔｅ）をカップリング反応させ、Ｎ末端アミノ酸をトリフルオロ酢酸で切り出すＥｄｍａｎ分解を利用したものである。そして、順次、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）で分離同定し、この反応を繰り返すことでＮ末端からのアミノ酸配列（１０〜２０残基）が決定されるというものである。
【００８８】
それでは、プロテインシークエンサーを用いたＮ末シーケンス法の操作について説明する。結晶の溶解液のＳＤＳ−ＰＡＧＥを行った後、そのゲルと前処理したＰＶＤＦ膜をろ紙にはさんで、セミブロッティング装置に取り付けた。次に、定電流（０．５ｍＡ／ｃｍ２）を６０分間流して、タンパク質をＰＶＤＦ膜に転写させた。次に、転写後のＰＶＤＦ膜をＣＢＢ染色液で染色して、プロテインシークエンサーにセットし、解析を行った。なお、上記ＰＶＤＦ膜の「ＰＶＤＦ」とは、ポリビニリジンフルオライドのことである。
【００８９】
上記部分アミノ酸配列の解析の結果、ＭＬＫＩＸＰＸＬＩＸＹＤＫＰＬ（Ｘは解析不能）という、１５残基中１２残基のＮ末端の部分アミノ酸配列を同定することができた。図９は、５残基目（Ｘを含めると６残基目）のＰ（プロリン）が見つかったときの、Ｎ末シークエンス法によるＨＰＬＣの結果を示している。
【００９０】
次に、質量分析法による部分配列の決定について説明する。具体的には、ＳＤＳ−ＰＡＧＥで分離した約４０ＫＤａのバンドを、質量分析法によって解析した。
【００９１】
タンパク質やそのペプチドなどの正確な分子量を測定する質量分析は、アミノ酸配列の分析に利用することもできる。質量分析計は、ＶｏｙｇｅｒＴＭＥｌｉｔｅ  ＸＬ（ＰｅｒＳｅｐｔｉｖｅ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社製）を用いた。試料をイオン化するイオン源には、レーザー照射によって励起されたマトリックス分子からのエネルギーによって二次元的にイオン化するＭＡＬＤＩ法を取り入れた。質量分析には、ＴＯＦＭＳと呼ばれる飛行時間型を用いた。このＴＯＦＭＳを用いることによって、準安定イオンを読み取り、アミノ酸配列の分析も可能にしている。
【００９２】
操作は、まず、ＳＤＳ−ＰＡＧＥを行った後の目的タンパク質部分のゲルをメスで切り取り、洗浄した後、ジスルフィド結合を切断するため、還元アルキル化をした。そして、リシルエンドペプチダーゼによる酵素消化を行い、ゲル部分からトリフルオロ酢酸とアセトニトリル溶液とを用いて、消化ペプチドの抽出をして、脱塩した。得られた消化ペプチドサンプルをマトリックス分子の溶液と混合し、質量分析計にセットして、解析を行った。その解析結果を図１０に示す。
【００９３】
上記解析で得られたアミノ酸配列分析の結果は、種々のタンパク質のアミノ酸データベースで検索し、さらに解析値との詳細な検討を行った。この結果、特徴的な部分ペプチドが解析され、Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓデータベース（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｇｅｎｏｍｅ．ｕｔａｈ．ｅｄｕ／ｓｅｑｕｅｎｃｅ．ｈｔｍｌ）にある２つのタンパク質ＰＦ１１９１とＰＦ１１９２に合致した（図１１参照）。
【００９４】
図１１には、ＰＦ１１９２の９６アミノ酸残基と、ＰＦ１１９１の２６１アミノ酸残基とを示している。そして、太字かつ斜体（図中「太斜」と記す）で示しさらに下線を引いている箇所は、Ｎ末シークエンス法で得られた結果及びマススペクトル法で得られた結果という両方の結果と、Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓデータベースにあるアミノ酸残基とが一致した箇所を示している。また、太字で示す箇所は、マススペクトル法で得られた結果と、Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓデータベースにあるアミノ酸残基とが一致した箇所を示している。
【００９５】
データベースにあるＰＦ１１９２のＮ末端配列（１５アミノ酸残基）は、図１１にあるように「ＭＬＳＩＮＰＴＬＩＮＲＤＫＰＹ」である。一方、Ｎ末シークエンス法で得られた結果は、上記のように「ＭＬＫＩＸＰＸＬＩＸＹＤＫＰＬ」である。これらを比較すれば、１〜２番目、４番目、６番目、８〜９番目、１２〜１４番目の計９残基が一致している。そして、一致していない６残基（３番目、５番目、７番目、１０〜１１番目及び１５番目）については、Ｎ末シークエンス法で得られた結果について、若干、解釈にあいまいな点があった。そのため、ＨＰＬＣの結果を考慮しつつ再度検討したところ、Ｎ末シークエンス法の結果は、ＨＰＬＣの結果と矛盾しないデータであることが分かった。その結果、Ｎ末シークエンス法による結果及びマススペクトル法による結果は、一致すると結論づけた。このことから、ウイルス様粒子の殻タンパク質は、Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓのＰＦ１１９１及びＰＦ１１９２のタンパク質であるという結果となった。
【００９６】
この実験結果は、当初、解析上の誤りであると思われた。なぜなら、約４０ｋＤａのバンド部分を抽出したにもかかわらず、２つのタンパク質と合致したからである。
【００９７】
しかしながら、下記に示す（１）（２）の理由により、単に誤った結果であるとは言い切れなかった。
（１）２つの９６残基と２６１残基のタンパク質の予想分子量である約１２ｋＤａ、２８ｋＤａを足し合わせると、目的の約４０ｋＤａになる。
（２）膨大な数のデータベースで見つかった２つのタンパク質は、ＤＮＡの配列上すぐ隣同士であった。
【００９８】
上記（１）及び（２）の２点から推測すると、タンパク質が発現するＲＮＡの翻訳過程で翻訳の誤りが起こり、この２つのタンパク質の中間にあたるＲＮＡの１塩基が読みとばされ、この１つのタンパク質が生まれたという仮説が考えられた。そのため、さらに実験を続けた。
【００９９】
（実施例４  ＤＮＡ塩基配列及びアミノ酸配列の確定）
タンパク質の発現には、（Ｉ）ＤＮＡの複製、（ＩＩ）ＲＮＡへの転写、（ＩＩＩ）ＲＮＡからタンパク質への翻訳、という３つの過程がある。翻訳過程では、ＲＮＡの塩基配列が順に３つずつ読まれ、この塩基のトリプレットが１つのアミノ酸に対応し、タンパク質が合成される。したがって、タンパク質のアミノ酸配列は、遺伝子の塩基配列で決定される。さらに、遺伝子の塩基配列が決定できれば、アミノ酸配列は確定する。
【０１００】
上記に、遺伝子の塩基配列が決定できればアミノ酸配列は確定する、と記載した。しかし、原理的には、どこから翻訳が始まるかによって、ＲＮＡの配列は３通りの読み枠で翻訳でき、３つのタンパク質が合成されることになる（図１２参照）。このように、原理的には、３通りの読み枠とその読み枠による３つのタンパク質の合成とが考えられるけれども、ほとんどの場合、途中で終止コドンが入るなどの理由により、機能をもつタンパク質が合成できるのは１通りだけであると言われている。
【０１０１】
翻訳の過程を説明すれば、上記のようになる。しかし、翻訳の過程において何らかの原因で、ＲＮＡの１塩基を読みとばされる、又は１塩基を２回読むことが起きて、フレームシフトの現象が起こることもある。
【０１０２】
そこで、上記２つのタンパク質の間にあるＲＮＡ部分の１塩基が読みとばされたことによって、＋１のフレームシフトの現象が起こっていると考えた（図１３及び図１４参照）。また、そのフレームシフトは、２つのタンパク質が重なる２５０〜２９０塩基あたりで起こっていると予測した。
【０１０３】
一方、データベースに保存されているデータに誤りがある、という可能性もある。そこで、Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓのＤＮＡの全塩基配列を確認した。具体的には、Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓの菌からゲノムＤＮＡを採取し、採取したゲノムＤＮＡから目的部分の塩基配列を読むことにした（図１５参照）。
【０１０４】
Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓの菌からゲノムＤＮＡを採取する操作は、次のように行った。まず、５ｍｌの菌（Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓ）を集菌し、ＰｒｏｔｅｉｎａｓｅＫが入ったＤＮＡ抽出バッファーで穏やかに混合した。次に、３７℃で１時間インキュベート後、ＮａＣｌ、ＣＴＡＢ／ＮａＣｌ溶液を混合し、さらにインキュベート（６５℃、１０分間）した。次に、フェノール・クロロホルム処理をし、エタノールにより沈殿物（ゲノムＤＮＡ）を得た。なお、上記「ＣＴＡＢ」とは、ｃｅｔｙｌｔｒｉｍｅｔｈｙｌａｍｍｏｎｉｕｍ  ｂｒｏｍｉｄｅの略である。
【０１０５】
次に、上記ゲノムＤＮＡを用いて、部分ＤＮＡの増幅を行った。具体的には、フレームシフトがあると思われる部分の遺伝子を含むＤＮＡ断片を、ＰＣＲ（Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ  ｃｈａｉｎ  ｒｅａｃｔｉｏｎ）法により増幅した。
【０１０６】
ここで、ＰＣＲ法の原理について、簡単に説明する。ＰＣＲ法の原理は、下記の３段階からなるＤＮＡ合成反応を、繰り返して行うことにある。
（段階１）加熱して変性することにより、鋳型となるＤＮＡを１本鎖にする。
（段階２）増幅したいＤＮＡ鎖の両端に相補的な２種類のオリゴヌクレオチドプライマー（以下、適宜「プライマー」と記す）を、反応系に過剰に加えた状態で温度を下げる。この操作により、プライマーが、鋳型のＤＮＡ鎖と相補的な部分と２本鎖を形成する。
（段階３）段階２の状態で合成基質のｄＮＴＰ（デオキシリボヌクレオチド３リン酸）とＤＮＡポリメラーゼとを作用させる。この操作により、プライマーが２本鎖を形成した部分から、ＤＮＡの相補鎖が合成される。
【０１０７】
なお、１サイクル目で合成されたＤＮＡは、次の反応の鋳型となる。それゆえ、次のサイクル以降において、ＤＮＡは連鎖反応的に合成される。そして、３０サイクルの反応後には、莫大なＤＮＡ分子が得られることとなる。
【０１０８】
次に、具体的な操作方法について説明する。まず、下記に示す反応液を混合した。次に、それをサーマルサイクラーにセットし、ＤＮＡを増幅させた。鋳型のＤＮＡは、抽出したＰ．ｆｕｒｉｏｓｕｓのゲノムＤＮＡを用いた。プライマーは、データベース上にあるＰ．ｆｕｒｉｏｓｕｓの塩基配列をもとに、得られるＤＮＡがフレームシフト部分を含む約２４０塩基になるように作製した。なお、この反応（ＰＣＲ）には、Ｔａｋａｒａ  ＴａｑＴＭ（宝酒造社製）を用いた。
【０１０９】
上記ＰＣＲ反応における反応液の組成は、ゲノムＤＮＡ（１μｌ）、プライマー（１μｌ）、ＬＡＴａｑ（１μｌ）、バッファー（５μｌ）、ｄＮＴＰ（５μｌ）、及びＨ２Ｏ（３６μｌ）である。また、上記ＰＣＲ反応に用いたプライマーを下記に示す。
（プライマー）
５’    ＡＡＧＧＧＡＧＧＡＧＡＡＧＧＣＴＣＡＣＧ    ３’
３’    ＴＴＣＴＣＧＴＴＡＣＴＧＧＣＡＡＧＴＧＣ    ５’
上記ＰＣＲ反応における温度条件を、下記ステップ１〜５に示す。なお、ＰＣＲ反応の温度条件は、ステップ１からスタートして、ステップ２〜４を３０サイクル行った後、ステップ５に進んだ。
ステップ１  ９５℃（２分）
ステップ２  ９４℃（３０秒）
ステップ３  ５５℃（１分）
ステップ４  ７２℃（２分）
ステップ５  ７２℃（１０分）
上記の操作により得られたＰＣＲ産物は、０．７％アガロースゲルで電気泳動にかけられた。その結果を図１６に示す。図１６に示すように、目的部分である約２３０〜２４０塩基の部分を有するＤＮＡの増幅を、電気泳動により確認した。
【０１１０】
次に、増幅したＤＮＡの塩基配列の確認を行った。その確認には、ＤＮＡシークエンサーを用いた。ＤＮＡシークエンサーは、ＰＣＲで増殖した４色の蛍光で標識されたＤＮＡフラグメントを、４色の波長で解析する。蛍光標識された目的のＤＮＡフラグメントは、プライマーと蛍光試薬とを加え、ＰＣＲをすることにより作製される。本実施例では、ＢｉｇＤｙｅ−Ｔｅｒｍｉｎａｔｏｒ  Ｃｙｃｌｅ  Ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ  ｋｉｔ（Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社製）を用い、ＤＮＡの塩基配列の確認を行った。
【０１１１】
ＤＮＡの塩基配列の確認をするためのＰＣＲにおける反応液の組成は、Ｐｒｅｍｉｘ（４μｌ）、バッファー（４μｌ）、プライマー（３．２ｐｍｏｌ）、鋳型ＤＮＡ（３００ｎｇ）である。また、そのＰＣＲの反応条件（温度条件）は、下記のステップ１〜３（２５サイクル）である。
ステップ１  ９６℃（２０秒）
ステップ２  ５０℃（１０秒）
ステップ３  ６０℃（４分）
次に、エタノールを用いた沈殿によって、ＰＣＲ産物を得た。そしてＴｅｍｐｌａｔｅＳｕｐｐｒｅｓｓｉｏｎ  Ｒｅａｇｅｎｔを加えて９５℃に２分間加熱した後、氷上で冷やした。そして、ＤＮＡシークエンサー（ＡＢＩ  ＰＲＩＳＭ（登録商標）  ３１０  Ｇｅｎｔｅｔｉｃ  Ａｎａｌｙｚｅｒ（Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社製））にセットして、解析を行った。
【０１１２】
上記確認により得られたＤＮＡの塩基配列とデータベースにある塩基配列とを一塩基ずつ比較することにより、データベースの塩基配列の１つ（２７１番目の塩基「ｃ」）が欠落していることを確認した（図１７参照）。これは、データベースに格納されているＰ．ｆｕｒｉｏｓｕｓの遺伝子のデータが、間違いであったことを示している。つまり、翻訳の途中でフレームシフトが行われているのではなく、データベースのデータの方が１塩基余分にあるため、本来なら１つのタンパク質が、データベース上では２つのタンパク質が存在するものとして解釈されていたのである（図１８参照）。図１８には、修正した塩基配列と対応するアミノ酸配列の一部とを記載している。なお、太字で示されている「ＴＥＬＫＧＧＦＥＥＶ」は、Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓデータベースにあるタンパク質ＰＦ１１９２を示している。また、太字かつ斜字で示されている「ＫＥＬＴＧＩＥＡＨ」は、Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓデータベースにあるタンパク質ＰＦ１１９１を示している。
【０１１３】
上記のように、データベースのデータと実際のＤＮＡの塩基配列との間には違いがあることが分かった。よって、プライマーの設計を変えて、殻タンパク質をコードする全１０３８塩基をクローニングし、塩基配列を確認した。
【０１１４】
なお、塩基配列の確認は、まず、Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓのゲノムＤＮＡからＰＣＲで目的部分を増幅させて、目的部分の配列の増幅を電気泳動で確認した。そして、増幅させたものをベクター（ｐＴＡ）に組み込んだ後、ＤＮＡの塩基配列を確認した。
【０１１５】
上記ＰＣＲの反応液は、ゲノムＤＮＡ（１μｌ）、バッファー（５μｌ）、プライマー（１μｌ）、ｄＮＴＰ（５μｌ）、ＬＡＴａｑ（１μｌ）、Ｍｇバッファー（５μｌ）である。上記ＰＣＲに用いた反応条件（温度条件）は、下記ステップ１〜５に示す。なお、そのＰＣＲ反応の反応条件は、ステップ１からスタートして、ステップ２〜４を３０サイクル行った後、ステップ５に進んだ。
ステップ１  ９５℃（２分）
ステップ２  ９４℃（３０秒）
ステップ３  ５６℃（１分）
ステップ４  ７２℃（２分）
ステップ５  ７２℃（１０分）
また、上記ＰＣＲ反応に用いたプライマーを下記に示す。
（プライマー）
Ｎ：  ５’    ＧＡＴＣＣＡＴＡＴＧＣＴＣＴＣＡＡＴＡＡＡＴＣＣ    ３’
Ｃ：  ５’    ＡＴＧＣＡＣＡＴＡＴＧＧＣＣＧＴＧＡＡＣ    ３’
また、上記のように、ｐＴＡベクターに組み込んだ後に、塩基配列を確認した。その塩基配列の確認（シーケンス）時におけるＰＣＲ反応は、ＤＮＡの長さが１０００塩基を超えるため、プライマーは２つに分け、さらに、相補鎖の塩基配列の確認も行った。このプライマーの設計においては、ｐＴＡのベクターのインサート前後を、プライマーＮ及びＣとした。そして、目的部分のおおよそ半分くらいに位置するＤＮＡを、プライマーＭ１及びＭ２とした。つまり、プライマーＮ及びＭ１とプライマーＣ及びＭ２との計４つのプライマーを用いて、塩基配列の確認を行った。それらプライマーを下記に示す。
（プライマー）
Ｎ：    ５’    ＧＡＴＣＣＡＴＡＴＧＣＴＣＴＣＡＡＴＡＡ    ３’
Ｃ：    ５’    ＡＴＧＣＡＣＡＴＡＴＧＧＣＣＧＴＧＡＡ        ３’
Ｍ１：  ５’    ＧＡＡＧＡＡＧＡＡＡＴＴＣＴＡＴＧＴＧＧ    ３’
Ｍ２：  ５’    ＣＣＡＣＡＴＡＧＡＡＴＴＴＣＴＴＣＴＴＣ    ３’
また、塩基配列の確認時におけるＰＣＲ反応の反応条件（温度条件）を、下記のステップ１〜ステップ３に示す。なお、このＰＣＲ反応の反応条件は、ステップ１〜３を２５サイクル行った。
ステップ１    ９６℃（２０秒）
ステップ２    ５０℃（１０秒）
ステップ３    ６０℃（４分）
塩基配列の確認時におけるＰＣＲ反応の反応液は、ＤＮＡを組み込んだ環状ＤＮＡ（４μｌ）、バッファー（４μｌ）、プライマー（４μｌ）、Ｈ２Ｏ（６μｌ）である。
【０１１６】
その結果、他の配列は、データベースと同様の配列であった。以上のことから、ウイルス様粒子の殻タンパク質の全塩基配列と全アミノ酸配列とを確定した。それら全塩基配列と全アミノ酸配列とを図１９に示す。なお、ウイルス様粒子の殻タンパク質の全アミノ酸配列は、配列表の配列番号３にも示している。さらに、その殻タンパク質の全アミノ酸配列をコードする全塩基配列は、配列表の配列番号１にも示している。なお、配列番号２に示す配列は、配列番号１に示す塩基配列と配列番号３のアミノ酸配列とを併記した配列である。
【０１１７】
当初、ウイルス様粒子は、外来種由来のものであると考えていたので、アミノ酸配列、塩基配列のデータベースで合致するものがあればＰ．ｆｕｒｉｏｓｕｓのデータベースではなく、他のウイルスのデータベースに合致することを想定していた。もしくは、まだ発見されていない新種のウイルスならば、データベースにも登録されていないはずで、検索合致はないであろうと考えていた。
【０１１８】
しかし、上記結果によれば、ウイルス様粒子の由来はＰ．ｆｕｒｉｏｓｕｓ自身の種にあることが判明した。これは、ウイルス様粒子を構成する殻タンパク質のアミノ酸配列が、Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓの遺伝子上でコードされているという、新たな事実であった。すなわち、このウイルス様粒子は、もともとＰ．ｆｕｒｉｏｓｕｓ内で発現されている可能性がある。
【０１１９】
（実施例５  アミノ酸配列の相同性）
次に、このウイルス様粒子がどのような働きをもって宿主であるＰ．ｆｕｒｉｏｓｕｓに存在しているのか、及び、ウイルス様粒子は他の生物種に存在するのかについて、決定したアミノ酸配列の相同性から検証した。
【０１２０】
相同性（ホモロジー）とは、共通の祖先遺伝子から種分化や遺伝子重複によって分岐してきた子孫遺伝子あるいはその産物に見られる類似性のことである。また、特定の塩基配列又はアミノ酸配列（問い合わせ配列）を、データベースに登録されている全ての配列と比較して類似配列を探すことを、ホモロジー検索という。そのホモロジー検索において、既知のタンパク質のアミノ酸配列との有意な類似性（約２０％以上）が検出された場合には、同様の構造・機能を持つものと考えられる。
【０１２１】
まず、Ｗｅｂ上のＣｌｕｓｔａｌＷ  配列解析（ｈｔｔｐ：／／ｃｌｕｓｔａｌｗ．ｇｅｎｏｍｅ．ａｄ．ｊｐ）を用いて、構造の類似性があるバクテリオファージＨＫ９７殻タンパク質とのマルチプルアライメントを行うことにより、配列の解析を行った（Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ  ２２  ４６７３−４６８０．（１９９４）参照）。そして、４０ｋＤａのタンパク質（ウイルス様粒子を構成する殻タンパク質）のアミノ酸配列と類似したタンパク質があるかどうかを、ＦＡＳＴＡデータベース（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｆａｓｔａ．ｇｅｎｏｍｅ．ａｄ．ｊｐ）を用いて調べた（Ｐｒｏｃ  Ｎａｔｌ  Ａｃａｄ  Ｓｃｉ  Ｕ  Ｓ  Ａ  ８５（８）２４４４−８（１９８８）参照）。
【０１２２】
上記マルチプルアライメントによる配列の解析によれば、バクテリオファージＨＫ９７との類似性は、１９％であった。また、ＦＡＳＴＡデータベースを用いた調査により見つかった類似性が高いと考えられるタンパク質は、次の表１に示す４つのタンパク質（表中の２番〜５番のタンパク質）、つまり類似性が２０％以上のタンパク質である。
【０１２３】
【表１】
2004229612.tif 000002
【０１２４】
表１の２番及び３番に示すＳｕｌｆｏｌｏｂｕｓ属のタンパク質では、アミノ酸配列の長さ（アミノ酸残基数）がほとんど変わらず（約３４０アミノ酸残基）、類似性は約３０％であった。表１の４番及び５番に示すタンパク質は、同じＰｙｒｏｃｏｃｃｕｓ属のタンパク質であり、タンパク質の長さが１０１残基と短いものの、５０％以上という高い類似性を示した。なお、上記４種以外のタンパク質は、タンパク質の長さが異なり、類似性も２０％を切るので、相同性があるとは言えないと判断した。
【０１２５】
図２０には、表１の２番に示すＳｕｌｆｏｌｏｂｕｓ  ｔｏｋｏｄａｉｉ  ＳＴ  ０９９２のアミノ酸配列と、Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓのアミノ酸配列との比較結果を示している。表１に示すように類似性は３０％であるが、図２０によれば、前半部分の類似性のほうが、後半部分の類似性よりも高いことが分かる。
【０１２６】
なお、図２０と後述の図２１とにおいて、相同性を示す記号として、「＊」と「：」と「．」と「  」（空白）とを用いている。「＊」は、生物種間において、完全にアミノ酸配列が保存されていることを示している。「：」は、生物種間において、性質が非常に近いアミノ酸残基間の変異が起きていることを示している。「．」は、生物種間において、性質が近いアミノ酸残基間の変異が起きていることを示している。「  」（空白）は、生物種間において、「：」及び「．」で表すことができない変異が起きていることを示している。
【０１２７】
バクテリオファージＨＫ９７の場合は、立体構造が類似している部分があるので、類似性は相当高いと予想された。しかし、実際は、表１に示すように、アミノ酸配列の類似性が１９％とそれほど高くなかった。このことから、殻タンパク質は、それほど類似性がなくとも、ウイルス様粒子となる可能性が十分にあるということが推測される。
【０１２８】
相同性配列で見つかった４つのタンパク質（表１における番号２〜５のタンパク質）は、いずれも機能未知なタンパク質である。表１の番号２〜３に示すタンパク質の種であるＳｕｌｆｏｌｏｂｕｓ属は、Ｃｒｅｎａｒｃｈａｅｏｔａ（古細菌のサブドメインの一つ）に分類される好酸性好熱菌で、１００℃以上でも生育する超好熱菌ではなく、Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓと近い関係ではない。しかし、この目的のタンパク質（表１の番号２〜３に示すタンパク質）の類似性は、全体の約３０％の類似性をもつ。この数字は、表１に示すように、ＨＫ９７の殻タンパク質との類似性より高い。さらに、表１の番号２〜３に示すタンパク質のアミノ酸残基数は、どちらも、発明者の解析したウイルス様粒子を構成する殻タンパク質のアミノ酸の数（３４５残基）に極めて近い。このことから、表１の番号２〜３に示すタンパク質は、Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓの殻タンパク質と同じ機能・構造をもつタンパク質であることが推測され、この発明者の解析したウイルス様粒子が、Ｓｕｌｆｏｌｏｂｕｓ属にも存在する可能性もあるといえる。
【０１２９】
表１の番号４〜５に示すタンパク質の種であるＰｙｒｏｃｏｃｃｕｓ  ａｂｙｓｓｉとＰｙｒｏｃｏｃｃｕｓ  ｈｏｒｉｋｏｓｈｉｉは、Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓと同じＰｙｒｏｃｏｃｃｕｓ属で、菌の生育条件も似ており、各々のタンパク質の類似性も非常に高い。この類似検索で見つかったタンパク質は、どちらも１０１残基であり、発明者の発見したウイルス様粒子を構成するタンパク質の３４５残基と異なっている。しかし、Ｎ末から前半約１００残基の部分に限り、類似性が５０％を超えているという結果であった。図２１には、Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓの殻タンパク質のアミノ酸配列と、Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓ  ｈｏｒｉｋｏｓｈｉｉ  ＰＨ１７３４のアミノ酸配列との相同性を示しており、５３％の類似性があることが分かる。Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓ属で後半約２５０残基の類似性の高い部分が存在しないことは、進化の過程上で何らかの原因で淘汰され、失われた可能性があるといえよう。
【０１３０】
また、解析したウイルス様粒子の立体構造の結果とこの相同性検索の結果とから、ウイルス様粒子を構成する殻タンパク質の前半部分と後半部分とが、まるで異なるタンパク質であるかのように、機能・構造が分離されていると考えられる。このように考えられるのは、次の理由による。
【０１３１】
（理由１：構造上の理由）ウイルス様粒子のモノマー構造において、ウイルス様粒子の殻部を構成している部分は、後半の約２５０残基だけであり、前半のＮ末から１００残基ほどは、粒子の内部にありタンパク質構造がゆらいでいると考えられる。そのため、前半の１００残基は電子密度図で確認できていない。図２２は、ウイルス様粒子のモノマー構造を示しており、後半の２５０残基のリボン図で前半の１００残基は確認できないことを示している。
【０１３２】
（理由２：相同性検索結果による理由）相同性の検索において、Ｓｕｌｆｏｌｏｂｕｓ属のタンパク質のアミノ酸配列との比較を注意深く見ると、前半１００残基の配列の類似性が３７％で、後半２５０残基の配列の類似性は２０％であり、前半と後半との相同性が異なっている。さらに、Ｐ．ａｂｙｓｉｉ及びＰ．ｈｏｒｉｋｏｓｈｉｉは、表１に記載したように、前半１００残基の配列の類似性が５０％を超えているけれども、後半２５０残基の類似配列はない。つまり、類似性からも、前半と後半とが分離されている。
【０１３３】
よって、後半の２５０残基部分が、ウイルス様粒子の殻部を構成している部分であって、前半の１００残基部分は、ウイルス内部で核酸などを認識している機能部分である可能性が強い。このことから、同じＰｙｒｏｃｏｃｃｕｓ属でも、Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓ由来のタンパク質だけがウイルス様粒子となり、前半１００残基部分のタンパク質しかないＰ．ａｂｙｓｉｉ及びＰ．ｈｏｒｉｋｏｓｈｉｉ由来のタンパク質では粒子とならないことが考えられる。
（実施例６  大腸菌を用いた発現系）
この熱安定のウイルス様粒子の応用として、大腸菌を用いた発現系を構築した。まず、発現ベクターとしてｐＥＴ９及びｐＥＴ１１を、ホストとしてＢＬ２１１（ＤＥ３）ｐＬｙｓＳ及びＢＬ２１（ＤＥ３）Ｃｏｄｏｎ＋を用いて、ウイルス様粒子を構成するタンパク質を発現させた。次に、ＳＤＳ−ＰＡＧＥにより、目的タンパク質の発現を確認した。さらに、タンパク質を遠心分離により精製した。その精製は、まず、超音波により細胞を破砕後、加熱処理（８０℃、１時間）を行った。次に、Ｓｅｐｈａｄｅｘ２００によるゲルろ過後、スクロース不連続密度勾配遠心分離（４０−１０％、２００００ｒｐｍ、１０時間）により、タンパク質を精製した。そして、タンパク質の精製後、電子顕微鏡により、球殻構造の形成を確認した。
【０１３４】
なお、大腸菌を用いた発現系の条件下でも、球殻構造が形成していることを確認している。その条件とは、Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．５）（２０ｍＭ）、グリセロール（１０％）、ＥＤＴＡ（５ｍＭ）、ＮａＣｌ（１００ｍＭ）である。
【０１３５】
このように、大腸菌を用いて殻タンパク質を発現することと、球殻構造が形成することとを確認した。これは、本発明の遺伝子及びタンパク質を用いれば、ウイルス様粒子（球状粒子）を大量に生産できるという可能性を示すものである。
【０１３６】
上記実施例１〜６により、次のことが言える。
（１）ウイルス様粒子は、直径３０ｎｍである。
（２）ウイルス様粒子は、超好熱菌Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓの中に共生しながら存在している。
（３）ウイルス様粒子の殻タンパク質は、２つの機能、構造をもっている。
（４）大腸菌を用いた発現系により、球状構造を形成させることができる。
【０１３７】
また、相同性検索から、Ｓｕｌｆｏｌｏｂｕｓ属の２種で同様なウイルス様粒子が存在する可能性があり、同じＰｙｒｏｃｏｃｃｕｓ属の中においては、Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓ由来のものだけがウイルス様粒子となることが予想される。そのため、ウイルス様粒子は、進化の上でも興味深い対象であることが分かった。
【０１３８】
【発明の効果】
本発明の遺伝子は、以上のように、球状粒子を構成するタンパク質をコードしている。それゆえ、この遺伝子により、球状粒子を構成するタンパク質を容易に合成して、さらに、そのタンパク質を利用して、ウイルス様粒子（球状粒子）を容易に製造することができる、という効果を奏する。
【０１３９】
また、本発明のタンパク質は、以上のように、集合することによって球状粒子を形成するタンパク質である。さらに、そのタンパク質をコードしている遺伝子は特定されている。それゆえ、球状粒子（ウイルス様粒子）の製造及び利用が容易になるという効果を奏する。
【０１４０】
また、本発明の球状粒子は、上記タンパク質を有することを特徴としている。それゆえ、上記タンパク質を集合させるといった方法により、容易に球状粒子を製造して利用することができるという効果を奏する。
【０１４１】
【配列表】
2004229612.tif 000003
2004229612.tif 000004
2004229612.tif 000005
2004229612.tif 000006
2004229612.tif 000007
2004229612.tif 000008
2004229612.tif 000009
2004229612.tif 000010
2004229612.tif 000011
2004229612.tif 000012
2004229612.tif 000013
2004229612.tif 000014
【図面の簡単な説明】
【図１】構造解析により得られた、ウイルス様粒子（球状粒子）の構造を示す模式図及び断面図である。
【図２】本発明の実施例の疎水性クロマトグラフィーにおける、溶出分画番号と吸光度との関係を示すグラフである。
【図３】本発明の実施例の疎水性クロマトグラフィーで得られた溶出分画液を、ＳＤＳ−ＰＡＧＥにかけたときの結果を示す模式図である。
【図４】結晶化前のサンプル、カラムクロマトグラフィーで分けたサンプル、及び結晶溶解液のサンプルの３つを、ＳＤＳ−ＰＡＧＥにかけたときの結果を示す模式図である。
【図５】結晶化前のサンプルの観察結果を示す電子顕微鏡写真である。
【図６】疎水性カラムクロマトグラフィーで分けたサンプルの観察結果を示す電子顕微鏡写真である。
【図７】結晶溶解液のサンプルの観察結果を示す電子顕微鏡写真である。
【図８】細菌ウイルスの形態を説明する説明図である。
【図９】部分アミノ酸配列の解析の結果、５残基目のＰ（プロリン）が見つかったときの、Ｎ末シークエンス法のＨＰＬＣの結果を示す模式図である。
【図１０】ＳＤＳ−ＰＡＧＥを行った後の目的タンパク質を、質量分析計で解析した結果を示す模式図である。
【図１１】Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓデータベースで見つかったタンパク質（ＰＦ１１９１及びＰＦ１１９２）のアミノ酸配列を示す模式図である。
【図１２】タンパク質合成における可能な３通りの読み枠を示す模式図である。
【図１３】本発明の実施例において、データベースのデータ及び解析結果をもとに、目的部分の塩基配列と対応するアミノ酸配列とを示した模式図である。
【図１４】図１３の続きを示す模式図である。
【図１５】Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓのゲノムＤＮＡからＰＣＲで目的ＤＮＡを増幅させ、目的アミノ酸配列を読むことを示す模式図である。
【図１６】データベース上にあるＰ．ｆｕｒｉｏｓｕｓの塩基配列をもとに、得られるＤＮＡがフレームシフト部分を含む約２４０塩基になるように作製したプライマーと、Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓのゲノムＤＮＡとを用いてＰＣＲを行い、そのＰＣＲ産物を電気泳動にかけたときの結果を示す模式図である。
【図１７】解析により得られたＤＮＡの塩基配列と、データベースにある塩基配列とを一塩基ずつ比較したときの結果を示す模式図である。
【図１８】修正した塩基配列と対応するアミノ酸配列の一部とを併記して、２つのタンパク質（ＰＦ１１９１及びＰＦ１１９２）がつながることを説明する説明図である。
【図１９】修正した１０３８塩基の全塩基配列と、それに対応する３４５残基の全アミノ酸配列とを示す図である。
【図２０】Ｓｕｌｆｏｌｏｂｕｓ  ｔｏｋｏｄａｉｉ  ＳＴ  ０９９２のアミノ酸配列とＰ．ｆｕｒｉｏｓｕｓのアミノ酸配列との相同性を示す模式図である。
【図２１】Ｐ．ｆｕｒｉｏｓｕｓの殻タンパク質のアミノ酸配列と、Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓ  ｈｏｒｉｋｏｓｈｉｉ  ＰＨ１７３４のアミノ酸配列との相同性を示す模式図である。
【図２２】ウイルス様粒子のモノマー構造（ウイルス様粒子の殻タンパク質の構造）を示す立体構造図である。
【図１】
2004229612.tif 000015
【図２】
2004229612.tif 000016
【図３】
2004229612.tif 000017
【図４】
2004229612.tif 000018
【図５】
2004229612.tif 000019
【図６】
2004229612.tif 000020
【図７】
2004229612.tif 000021
【図８】
2004229612.tif 000022
【図９】
2004229612.tif 000023
【図１０】
2004229612.tif 000024
【図１１】
2004229612.tif 000025
【図１２】
2004229612.tif 000026
【図１３】
2004229612.tif 000027
【図１４】
2004229612.tif 000028
【図１５】
2004229612.tif 000029
【図１６】
2004229612.tif 000030
【図１７】
2004229612.tif 000031
【図１８】
2004229612.tif 000032
【図１９】
2004229612.tif 000033
【図２０】
2004229612.tif 000034
【図２１】
2004229612.tif 000035
【図２２】
2004229612.tif 000036