(57)【要約】【課題】　腎臓病のような病理学的段階におけるマトリックス成分の有害な蓄積を調節する因子を決定し、さらに、不適切なマトリックスの蓄積を含む病理学的状態を防止、制限、または治療するための因子を制御すること。【解決手段】　トランスフォーミング増殖因子β（ＴＧＦ−β）の活性を抑制する薬剤と組織を接触させることによって、組織中に細胞外マトリックス成分の蓄積を阻害する方法を提供する。薬剤は、例えば、抗ＴＧＦ−β抗体、血小板由来の成長因子（ＰＤＧＦ）、Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｓｐを含有するペプチド、デコリン、またはバイグリカン（ｂｉｇｌｙｃａｎ）のような機能的に等しいものであり得る。【選択図】　なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
組織中の細胞外マトリックスの蓄積に特徴がある病変を防止または治療する方法であって、ＴＧＦ−βの細胞外マトリックス産生活性を抑制する薬剤と該組織を接触させる工程を包含し、ここで該病変が、線維症性ガン、肺の線維症、動脈硬化症、後部心筋梗塞、糸球体腎炎、心臓性線維症、血管形成後再狭窄、腎臓間質性線維症、瘢痕、または糖尿病関連病変である、方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
　本発明は、一般に増殖因子に関し、特に過剰な細胞外マトリックスの生産におけるトランスフォーミング増殖因子βの影響に関する。
【背景技術】
【０００２】
　本発明は、一般に増殖因子に関し、特に過剰な細胞外マトリックスの生産におけるトランスフォーミング増殖因子βの影響に関する。
【０００３】
　種々の病変は、細胞外マトリックス物質の有害な蓄積に特徴がある。例えば、進行性の糸球体の病気において、細胞外マトリックスが、糸球体間質中に、または糸球体基底膜に沿って蓄積し、その結果、末期の病気および尿毒症を引き起こす。同様に、成人または急性呼吸促進症候群（ＡＲＤＳ）は、肺でのマトリックス物質の蓄積をも含み、一方、肝硬変は、肝臓中の瘢痕によって証明される有毒なマトリックスの蓄積に特徴がある。
糖尿病は、現在、進行性の腎不全が最も一般的な原因であり、これも細胞外マトリックス成分の有害な蓄積によって特徴がある状態になる。インスリンの導入は、糖尿病の治療を革新し、劇的に患者の生存期間を長くした。しかしながら、インスリンは糖尿病性ネフロパシーのような重度の合併症には効果がなかった。血液中のグルコースの厳密なコントロール、高血圧の治療、および飲食物のタンパク質の制限は、腎臓機能が消失する速度を遅らせ得るが、末期段階の病気へ着実に進行する。
【０００４】
　糖尿病性ネフロパシーの中心となる病理学的特徴は、糸球体中の細胞外マトリックスの蓄積である。細胞外マトリックスの蓄積の原因となる糖尿病環境における因子は、十分に理解されていない。
【０００５】
　細胞外マトリックスは、プロテオグリカン、糖タンパク質、およびコラーゲンの混合物で、集合した複雑な超構造を形成する。様々な免疫学的な、血液力学的な、および毒性の因子が、実験的に糸球体病を誘起するために用いられたが、これらの因子のどれもが、細胞外マトリックス成分の合成または分解に直接的な影響を示さなかった。それ故、急性の細胞傷害と糸球体の細胞外マトリックスの構築との間には、別の介在過程があるようである。
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
　従って、腎臓病のような病理学的段階におけるマトリックス成分の有害な蓄積を調節する因子を決定する必要がある。さらに、不適切なマトリックスの蓄積を含む病理学的状態を防止、制限、または治療するための因子を制御する必要がある。本発明は、これらの必要性を満足し、さらに、関連する有利点も提供する。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
　（発明の要旨）
　本発明は、トランスフォーミング増殖因子β（ＴＧＦ−β）の活性を抑制する薬剤と組織を接触させることによって、組織中に細胞外マトリックス成分の蓄積を阻害する方法を提供する。同様に、本発明は、また同化を促進し、繊維症および脈管形成を誘導するペプチド増殖因子である、トランスフォーミング増殖因子β（ＴＧＦ−β）の活性を抑制する薬剤を提供することによって、細胞外マトリックス成分の蓄積に特徴がある病変の進行を防止または治療する方法を提供する。薬剤は、例えば、抗ＴＧＦ−β抗体、血小板由来の成長因子（ＰＤＧＦ）、Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｓｐを含有するペプチド、デコリン、またはバイグリカン（ｂｉｇｌｙｃａｎ）のような機能的に等しいものであり得る。治療され得る病変には、糸球体腎炎、ＡＲＤＳ、肝硬変、線維症性ガン、肺の線維症、動脈硬化症、後部心筋梗塞、心臓性線維症、血管形成後再狭窄、腎臓間質性線維症、瘢痕および、糖尿病性ネフロパシーのような糖尿病関連病変を含む、様々な線維症性の病気が含まれる。
本発明は、さらに、細胞外マトリックス成分の過度の蓄積に特徴がある組織病変、特に糖尿病性ネフロパシーの存在を検出する方法に関する。この方法は、組織中のＴＧＦ−βのレベルを測定し、次いでこのレベルを正常細胞中のＴＧＦ−βのレベルと比較することによって、行われる。
【０００８】
　本発明は、さらに、インスリンおよびＴＧＦ−βの活性を抑制する薬剤を投与することによって糖尿病を治療する方法を提供する。また、そのような薬剤を含む、本発明の方法に有用な組成物も提供される。
【０００９】
　（発明の詳細な説明）
　本発明は、トランスフォーミング増殖因子β（ＴＧＦ−β）の活性を抑制する薬剤と組織とを接触させることによって、組織中の細胞外マトリックス成分の蓄積を阻害する方法を提供する。本発明はまた、細胞外マトリックスが産生するＴＧＦ−βの活性を抑制するのに有効な量の薬剤と組織とを接触させることによって、組織中の細胞外マトリックスの蓄積に特徴がある病変を治療する方法を提供する。薬剤は、抗ＴＧＦ−β抗体、ＰＤＧＦ、またはＡｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｓｐを含有するペプチドであり得る。好ましくは、このようなＡｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｓｐを含有するペプチドは、４と５０との間のアミノ酸の長さである。
薬剤はまた、デコリン、デコリン類似体、またはデコリンと機能的に同等なものであり得る。本明細書中で用いる「デコリン」は、ＫｒｕｓｉｕｓおよびＲｕｏｓｌａｈｔｉ、一８３：７６３８（１９８６）中のプロテオグワカンに帰属される構造的特徴を実質的に有するプロテオグリカンを指す。ヒト線維芽細胞デコリンは、ＫｒｕｓｉｕｓおよびＲｕｏｓｌａｈｔｉ、上述に示されるアミノ酸配列を実質的に有する。「デコリン」は、天然の組成物、および、デコリンフラグメントのような実質的に機能的特徴を保持しているデコリン改変物の両方を指す。デコリンコアタンパク質は、もはや、実質的にグリコサミノグリカンで置換されてなく、そしてデコリンの定義に含まれないデコリンを指す。酵素処理、突然変異、または、グリコサミノグリカン鎖をコアタンパク質に結合できない細胞中で、組換えデコリンを産生するような他の手段によって、グリコサミノグリカンを含まないデコリンを得られ得る。
【００１０】
　デコリンと機能的に同等なものとしては、デコリンの機能的特徴を保持するデコリン改変物、および、バイグリカンおよびフィブロモジュリンのようなデコリンと同族で、例えばデコリンと類似の機能的活性を有する分子を含む。改変物は、例えば、デコリンコアタンパク質の機能的活性を妨げない１つまたはそれ以上の側鎖を含み得る。
上記の薬剤に加えて、本発明は、そのような薬剤の同族体および類似物の使用を包含することを意図する。本明細書中で、同族体とは、上記薬剤と実質的に類似の構造を有する分子であり、類似物とは、構造的類似にかかわらず実質的に生物学的類似性を有する分子である。
【００１１】
　機能的な同等物、同族体、または類似物が、本発明の目的に対して機能するかどうかは、当業者であれば、それを本明細書中で提供される実施例に置き換えることによって容易に決定し得る。
【００１２】
　接触は、インビトロまたはインビボにおいて行われ得る。インビトロでの接触では、細胞を有効な量の薬剤と共にインキュベートし得る。インビボでの接触では、薬剤を単独または担体と共に投与し得る。投与方法は、当業者にはよく知られており、静脈内注射または筋肉内注射を含むが、これらに限定されない。薬剤を、連続的または断続的に投与し得る。
【００１３】
　有効な量は、病変および治療する固体に依存して変わる。本発明の方法は、哺乳動物、最も好ましくはヒトの治療または防護に有用である。
本発明は、さらに、組織中のＴＧＦ−βのレベルを測定し、そして組織中のＴＧＦ−βのレベルを正常組織中のＴＧＦ−βのレベルと比較することによって、細胞外マトリックス成分の過度の蓄積に特徴がある組織の種々の病変の存在を検出する方法に関する。組織中のＴＧＦ−βレベルの上昇は、そのような病変を示す。また、組織中のフィブロネクチンＥＤＡ＋および／またはテネイシンの検出は、非直接的に、ＴＧＦ−βの過度の活性を示す。
【００１４】
　本発明の方法で治療し得る病変は、細胞外マトリックスの蓄積に特徴がある。これらの病気は、一般に線維症性の病気であり、例えば、糸球体腎炎、成人または急性呼吸促進症候群（ＡＲＤＳ）、および肝硬変を含む。また、類線維腫、線維腫、線維線腫、および線維肉腫を含む、例えば、胸、子宮、または膵臓の線維症性ガン、ならびに、線維細胞の病気、線維硬化症、および線維症も含まれる。さらに、本方法は、肺線維症、動脈硬化症、後部心筋梗塞、心臓性線維症、および血管形成後再狭窄のような線維症状態、ならびに腎臓間質性線維症の治療に用いられ得る。本方法はまた、ケロイド性瘢痕のような過度の瘢痕形成、および外傷、火傷、または外科手術による瘢痕の治療または防止にも用いられ得る。本方法はまた、糖尿病性腎臓病のような糖尿病関連の病変を防止または阻害するのにも用いられ得る。しかしながら、これらの病変は、単なる代表例にすぎず、当業者であれば、本方法が細胞外マトリックスの蓄積に関連するあらゆる病変に有用であることは容易に理解される。
【００１５】
　増殖因子の多様性は、細胞外マトリックス産生において役割を担っていることが示唆された。しかしながら、マトリックス成分の病理学的蓄積におけるそれらの影響は明らかでなかった。本発明は、病理学的にマトリックスの蓄積をしやすい組織は、特にプロテオグリカンを合成するという発見に基づく。ＴＧＦ−βと反応する抗体のような、ＴＧＦ−βの活性を阻害する薬剤は、プロテオグリカン産生に対するＴＧＦ−βの刺激効果をブロックすることが見いだされた。この点で、ＴＧＦ−βはテストした増殖因子の中では独特であり、したがって、このＴＧＦ−βの特異的効果を操作することは、種々の病変におけるマトリックス成分の不適切で望ましくない蓄積を制御または治療する上で有用である。
ＴＧＦ−βは、組織の傷害後の修復および再生を調節するのに重要な役割を担っている多機能性サイトカインである。ＴＧＦ−βの３つのイソ型、ＴＧＦ−β１、２、および３が、哺乳動物で発現され、現在までインビトロで類似の特性を示す。血小板は、高濃度のＴＧＦ−βを含有し、そして、傷害部位での脱顆粒においてＴＧＦ−βを周囲の組織に放出する。続いて、ＴＧＦ−βは、（１）単球、好中球、および線維芽細胞の化学吸引、（２）ＴＧＦ−β産生の自動誘導、ならびに、インターロイキン１（ＩＬ−１）、腫瘍壊死因子、および他のサイトカインを分泌する単球の刺激、（３）脈管形成および細胞増殖の誘導、（４）効力のある免疫抑制剤および過酸化物放出のインヒビターとして作用することによる炎症および細胞毒性の制御、および、（５）細胞外マトリックスの増加した堆積を含む、治療を促進する一連のイベントを開始する。
【００１６】
　細胞外マトリックスに対するＴＧＦ−βの効果は、その機能的活性の重要な特徴である。Ｅｄｗａｒｄら、ＥＭＢＯ　６：１８９９（１９８７）およびＬａｉｈｏら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６２：１７４６７（１９８７）に記載されているように、ＴＧＦ−βは、フィブロネクチン、コラーゲン、およびプロテオグリカンのような個々のマトリックス成分の合成を刺激し、同時に、プロテアーゼの合成を減少させ、プロテアーゼインヒビターのレベルを増加させることによってマトリックスの分解をブロックする。ＴＧＦ−βはまた、インテグリンの発現を増加させ、そして、ＩｇｎｏｔｚおよびＭａｓｓａｇｕｅ、Ｃｅｌｌ　５１：１８９（１９８７）に報告されているように、マトリックスヘの接着を促進し得るような方法で細胞表面上のインテグリンの相対割合を変化させる。
ＴＧＦ−βの成熟形態は、それぞれが１１２アミノ酸の２つの同様の鎖からなる。ＴＧＦ−βは、種々の病変で見られる細胞外マトリックスの増加した合成の原因である。ＴＧＦ−βのアミノ酸配列を次に示す：
【００１７】
【表１】
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　特定の腎臓病変は、細胞外マトリックス成分の増加した蓄積に特徴がある。例えば、糸球体間質細胞は、腎糸球体を構成する１つの細胞タイプである。正常な糸球体では、糸球体間質細胞は、細胞外マトリックスで囲まれている。高細胞質を伴うまたは伴わない糸球体間質マトリックス量の増加は、糸球体腎炎の多くの形態および糖尿病性ネフロパシーにおける、最も初期の組織学的知見である。培養糸球体間質細胞は、プロテオグリカン、フィブロネクチン、ラミニン、エンタクチン、トロンボスポンジン、およびコラーゲンＩ型、ＩＩＩ型、ＩＶ型、およびＶ型を含む、数種のマトリックス成分を分泌することが知られている。しかしながら、糸球体間質マトリックスの正確な組成および超分子的構築は、その合成アセンブリおよび分解を制御する因子と同様に知られていない。
【００１８】
　糸球体間質マトリックスの組成を制御する因子を研究するために、培養中の糸球体間質細胞を、ＩＬ−１、ＰＤＧＦ、腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）、およびＴＧＦ−βで処理した。培地の分析は、ＴＧＦ−βはプロテオグリカンとして同定されるバイグリカンおよびデコリンの２つの成分の量を増加させることを示した。ＰＤＧＦ、ＩＬ−１、およびＴＮＦは、コントロールを越える顕著な効果を示さなかった。
【００１９】
　糸球体間質細胞への特定の免疫学的傷害によって、糸球体腎炎を誘起し得る。糸球体細胞傷害を伴う動物から単離した糸球体は、バイグリカンおよびデコリンの産生の増加を示す。さらに、培養した腎炎糸球体からの馴化培地は、正常糸球体間質細胞のバイグリカンおよびデコリンの合成を刺激する。
【００２０】
　同等の刺激効果を、外因性のＴＧＦ−βの添加によって引き起こされ得る。さらに、抗ＴＧＦ−β抗血清のようなＴＧＦ−βの効果をブロックする薬剤は、外因性のＴＧＦ−βの刺激効果をブロックする。モノクローナル抗体またはポリクローナル抗体、ＰＤＧＦ、Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｓｐを含有するペプチド、デコリン、あるいはそれと機能的に同等なものを含む、このような薬剤を、有害なマトリックスプロテオグリカン合成を特異的に制御または治療するのに用い得る。従って、このような薬剤を、例えば、瘢痕形成のような細胞外マトリックス蓄積に関連するあらゆる状態を防止すること、または、組織をＴＧＦ−β活性を抑制する薬剤と接触させることによって組織中の細胞外マトリックスの蓄積を特徴とする病変を治療することに用い得る。
【００２１】
　ＴＧＦ−βにおけるデコリンの効果を、糸球体腎炎モデルを用いて研究した。デコリンは、ＴＧＦ−βの本来の調節剤であるようなので、このモデルにおいてインビボで活性であるべきであり、もしそうであるなら、ＴＧＦ−βの作用に拮抗させて治療的に用いるための理想的な分子である。組換えヒトデコリンおよびウシ組織から精製したデコリンの静脈内投与を用いて、糸球体腎炎のラットの腎臓における、プロテオグリカンがマトリックス蓄積を抑制する能力をテストした。糸球体中に存在するフィブロネクチンの量を用いて、糸球体腎炎における、デコリンのマトリックス堆積をブロックする能力を定量的に評価した。フィブロネクチンは、ラットおよびヒトの正常な糸球体間質マトリックスに豊富に存在するタンパク質であり、そして、ヒトでは糸球体間質増殖性糸球体腎炎に伴って大き
く増加する。Ｃｏｕｒｔｏｙら、Ｊ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏ１．８７：６９１（１９８０）、Ｃｏｕｒｔｏｙら、Ｊ．Ｈｉｓｔｏｃｈｅｍ．Ｃｔｏｃｈｅｍ．３０：８７４（１９８２）、Ｏｏｍｕｒａら、ＶｉｒｃｈｏｗｓＡｒｃｈｉｖ．Ａ　Ｐａｔｈｏｌ．Ａｎａｔ．４１５：１５１（１９８９）、Ｂｏｒｄｅｒ、ＫｉｄｎｅＩｎｔ．３４：４１９（１９８８）。マトリックスのマーカーとして染色したフィブロネクチンを用いることにより、ラット糸球体腎炎モデルにおいて７日までに起こる急性マトリックス構築を、デコリンが顕著に防止することが見いだされた。ＥＤＡ＋フィブロネクチンおよびテネイシンは、ＴＧＦ−β活性およびマトリックス蓄積に対するより特異的なマーカーを提供した。なぜなら、これらのタンパク質は、正常な成熟ラット腎臓では、ほとんど検出できないからであり、そして、それらはＴＧＦ−βによって強く誘起されるからである。両方のマーカーとも、腎炎糸球体中で増加し、そして両方ともデコリンの注射によって抑制された。結局、マトリックス構築に対する効果が、事実上治療的であったということが、本明細書中に参照として援用されているＧｉｎｓｂｅｒｇら、Ｎ．Ｅｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ．３０９：１５４３（１９８３）に記載されているように、ヒトの糸球体損傷の指標として広く用いられるタンパク尿が平行して減少することによって示された。
【００２２】
　急性糸球体間質増殖性糸球体腎炎をもまた、動物モデルにおいて、全体参照として援用されている米国特許出願第０７／４１６，６５６号に記載の抗胸腺細胞血清ラットに注射することによって誘起した。傷害糸球体は、正常糸球体よりも、ＴＧＦ−β　ｍＲＮＡを多く発現し、より多くのＴＧＦ−βタンパク質を合成し、そしてより多くのフィブロネクチンおよびプロテオグリカンを分泌することが見いだされた。ＴＧＦ−βの活性を中和し得る抗血清の腎炎ラットヘの注射は、糸球体によるマトリックス成分の産生を抑制し、そして糸球体間質マトリックスの構築を防止した。
【００２３】
　糖尿病性ネフロパシー（すなわち糖尿病性腎臓病）の進行は、最も頻繁に起こる重度の糖尿病合併症であり、インスリンでの治療にもかかわらず約半分の患者で最終的に起こる。
糖尿病性ネフロパシーの顕著な組織学的特徴は、結果として毛細管閉塞および硬化症を伴う、糸球体の糸球体間質領域に、おける細胞外マトリックスの膨張である。糸球体間質マトリックスの膨張は、タンパク尿、高血圧、および腎不全の臨床的徴候と強く相関している。
【００２４】
　細胞外マトリックスの蓄積が病的になる、糸球体腎炎と糖尿病性ネフロパシーとのマトリックス異常の類似性は、ＴＧＦ−βが糖尿病性腎臓病に関わっている可能性を示唆した。本発明によって、ストレプトゾトシンの注射によって糖尿病になったラットの糸球体が、ＴＧＦ−β１　ｍＲＮＡおよびＴＧＦ−β１タンパク質の発現の著しい増加を含むことが示される。糸球体はまた、細胞外マトリックスタンパク質の択一的にスプライシングされた形態である、フィブロネクチンおよびテネイシンの堆積の増加を示した。これらの成分は両方とも、ＴＧＦ−βによって誘導されることが知られている。これらの結果は、ＴＧＦ−βはまた、糖尿病性ネフロパシーの進行に寄与していることを示している。
本発明に関係する研究において、インスリン欠乏を生じる化学物質であるストレプトゾトシンの投与によって糖尿病になったラットの腎臓を試験した。ストレプトゾトシンモデルは、両方とも本明細書中で参照として援用されている、Ｖｅｌａｓｑｕｅｚら、ＦＡＳＥＢ　４：２８５０（１９９０）およびＭａｕｅｒら、Ｄｉａｂｅｔｅｓ　２５；８５０（１９７６）に記載されているように、動物が、ヒトの糖尿病性ネフロパシーに似た腎臓病を進行させるので広く用いられている。ラットを、処置を受けていない群、または、実施例ＩＩに記載のように毎日インスリンの注射で血中のグルコースを減少させる処置を受けた群に分けた。正常で年齢のそろった雄ラットをコントロールとして用い、これらも処置を受けない群または糖尿病ラットと同じインスリン養生法で処置された群に分けた。糖尿病におけるＴＧＦ−βの発現を評価するために、糖尿病ラットおよびコントロールラットの糸球体中の、ＴＧＦ−β　ｍＲＮＡおよびＴＧＦ−β１タンパク質のレベルを試験した。ｍＲＮＡ分析は、コントロールに比べて糖尿病ラットの糸球体中のＴＧＦ−β１　ｍＲＮＡレベルが上昇していることを示した（図１Ａ）。ＴＧＦ−β１　ｍＲＮＡのレベルは、糖尿病の徴候後の時間と共に増加し、表１に示すように、未処置の糖尿病ラットではインスリンを投与されたラットに比較してより高かった。
【００２５】
【表２】
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　新しく合成されたＴＧＦ−β１を認識すると考えられる抗体を用いた糸球体の染色では、コントロールよりも糖尿病ラットの細胞の方が著しく陽性を示した（図３Ａおよび３Ｂを参照）。ＴＧＦ−β１陽性細胞は、単球／マクロファージまたはリンパ球のマーカーでは染色されなかったが、糸球体間質および／または上皮細胞に特徴的な染色パターンを示した。
【００２６】
　糖尿病ラットの糸球体中に発現するＴＧＦ−βは、細胞外マトリックス産生を刺激する活性があるかどうか研究するため、そのような糸球体を、フィブロネクチン（フィブロネクチンＥＤＡ＋）およびテネイシンの択一的にスプライシングされた形態を検出する抗体で染色した。これらのマトリックス成分は、Ｂｏｒｄｅｒら、Ｋｉｄｎｅｙ　Ｉｎｔ．３７：６８９（１９９０）およびＮａｋａｍｕｒａら、Ｋｉｄｎｅｙ　Ｉｎｔ．４１：１２１３（１９９２）に記載されるように、ＴＧＦ−βによって誘導される。マトリックス成分はまた、組織修復部位に現れる。Ｗａｎｇら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６６：１５５９８（１９９１）およびＰｅａｒｓｏｎら、ＥＭＢＯ　Ｊ．７：２９７７（１９８８）。また、フィブロネクチンＥＤＡ＋およびテネイシンは両方とも、光学顕微鏡検査によると腎臓組織学的に正常である時期である、高血糖症進行後６週間もの早期に糖尿病ラットの糸球体中で顕著に増加し、そして時間と共に蓄積し続けることが見いだされた（図１Ａおよび２Ｂ）。
【００２７】
　ＮｅｒｌｉｃｈおよびＳｃｈｌｅｉｃｈｅｒ、Ａｍ　Ｊ．Ｐａｔｈｏｌ．１３９：８８９（１９９１）に記載されているように、間質性コラーゲンＩＩＩ型は、糖尿病性ネフロパシーに伴ってヒトの硬化性の糸球体中で見いだされるが、正常なヒトまたはラット糸球体中では見いだされない。ＩＩＩ型コラーゲンを、６、１５、および４０週時の糖尿病ラットの糸球体中に堆積しているのを見いだした。ＴＧＦ−βを、正常なラットの糸球体間質細胞または上皮細胞の培養物に加えると、ＴＧＦ−βと結合してその活性を中和し得るプロテオグリカンである、デコリンおよびバイグリカンの産生を誘導することが知られている。ラットデコリンｍＲＮＡとは異なるラットバイグリカンは、対応するヒトｃＤＮＡプローブと交差ハイブリダイズするので、バイグリカンｍＲＮＡレベルをテストした。バイグリカンｍＲＮＡレベルの上昇を、図１Ｂおよび表１に示すように、糖尿病ラットの糸球体において検出した。これらの結果は、ＴＧＦ−βが積極的にそして特異的に糖尿病ラットの糸球体におけるマトリックス成分の産生を誘導しているということをさらに示す。
表１は、糸球体でのＴＧＦ−β１ｍＲＮＡおよびバイグリカンｍＲＮＡの発現を示す。図１に記載のように、ノーザンブロッティング分析を、各群の動物から単離した糸球体から調製したＲＮＡを用いて行った。３つの時点で、各実験群を、２つの独立した実験を行うために用いる２つの等しい群に分けた。フィルムを、レーザー密度計を用いてスキャンした。定量的比較をするために、ＴＧＦ−β１およびバイグリカンｍＲＮＡと、同じレーン中のコントロールのグリセルアルデヒドホスフェートデヒドロゲナーゼ（ＧＡＰＤＨ）ｍＲＮＡバンドとの密度比を算出した。続いて、結果を、正常コントロール動物（Ｃ）の比を１．０としたときの比の相対変化として表した。値は、２つの実験の平均である。
これらの結果は、糖尿病糸球体中のマトリックスの拡大と傷のような組織損傷後の修復過程との間で類似していることをさらに示す。両方の過程においても、細胞外マトリックスの局所的産生の増加に関連するＴＧＦ−βｍＲＮＡおよびＴＧＦ−βタンパク質の初期の発現がある。ＴＧＦ−βによって誘導されるマトリックス成分である、フィブロネクチンＥＤＡ＋およびテネイシンが、傷の治療中および糖尿病糸球体中に優先的に発現される。ＩＩＩ型コラーゲンは、正常な糸球体中では見いだされないが、糖尿病糸球体中および治療している傷に現れる。傷の修復の重要な特徴は、過度の瘢痕を避けるために過程を終わらせる必要性である。
【００２８】
　糖尿病患者では、腎臓への波及は、Ｋｎｏｗｌｅｓ、Ｋｉｄｎｅｙ　Ｉｎｔ．　Ｓｕｐｐｌ．１：Ｓ２（１９７４）；Ｄｏｒｍａｎら、Ｄｉａｂｅｔｅｓ　３３：２７１（１９８４）；およびＭａｕｅｒら、Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．７４：１１４３（１９８４）に記載されているように糖尿病発病の１０年から２０年後に起こり、糸球体が細胞外マトリックスによって機能しなくなるまで進行する。糖尿病のストレプトゾトシンモデルでは、光学顕微鏡で糸球体異常が見えるようになるには、６カ月またはそれ以上必要であり、ヒトでは２０年またはそれ以上に相当する期間が必要である。従って、糖尿病の患者および実験動物における糸球体硬化症は、組織修復過程の調節または終結の慢性的不全を示唆し、おそらくＴＧＦ−βの持続した活性を包含している。糖尿病における、組織修復への刺激は、インスリン治療にもかかわらず起こる慢性的な関連性のない高血糖症であるようである。高血糖症は、腎臓での血行力学的変化およびグリコシル化タンパク質の血中レベルの上昇ような、多くの器官特異的および全身的変化を引き起こすことが知られている。
【００２９】
　従って、本発明はさらに、糖尿病患者のＴＧＦ−βの活性を阻害することによって糖尿病性ネフロパシーを防止する方法に関する。ＴＧＦ−β活性の阻害は、例えば、糖尿病腎臓組織を、抗ＴＧＦ−β抗血清、ＰＤＧＦ、Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｓｐを含有するペプチド、デコリン、またはそれと機能的に同等なもののようなＴＧＦ−βの効果をブロックする有効量の薬剤と接触させることによって成し遂げられる。
【００３０】
　さらに本発明は、有効量のインスリン、および、上述のようなＴＧＦ−βの効果をブロックする有効量の薬剤を投与することによって、糖尿病を治療する方法を提供する。
本発明の方法に有用な組成物もまた提供される。このような組成物は、ＴＧＦ−βの活性を抑制する薬剤を含み、上述の薬剤および担体を含有する。本発明の１つの実施態様では、組成物は薬学的組成物である。薬学的に受容可能な担体には、例えば、ヒアルロン酸および水溶液（重炭酸酸塩緩衝液、リン酸緩衝液、リンゲル液および所望によって５％デキストロース、またはヒト血清アルブミンを補給した生理食塩水など）が含まれる。当業者に知られる他の担体もまた考慮される。薬学的組成物はまた、細胞外マトリックスの蓄積に特徴があるかまたは関連する種々の病変の防止または治療に有用な他の薬剤を含有し得る。例えば、糖尿病の場合、薬学的組成物は任意にインスリンを含み得る。
【００３１】
　糖尿病ラットで得られた結果とヒト糖尿病性ネフロパシーとの関連を示すために、６症例の糖尿病性糸球体硬化症（糖尿病性ネフロパシーの末期）、３症例の正常コントロール、ならびに３症例の最小の病状変化および３症例の薄基底膜疾患からなる６症例の疾患コントロールを試験した。コントロールの病気は、タンパク尿および／または血尿を引き起こすが、これまでにほとんど糸球体硬化症にならないことが知られている糸球体障害であるため、それらを選んだ。糖尿病性糸球体硬化症の６症例のすべての糸球体が、図５および６に示す２症例のように、ＴＧＦ−β１およびフィブロネクチンＥＤＡ＋に対して強く陽性であった。組織の量が限られているため、研究をこれら２つのマーカーに限った。これとは対照的に、正常および病気の各コントロールは陰性またはほんのわずかな染色を示した（図５および６）。
【００３２】
　これらの知見は、糖尿病性ネフロパシー中の糸球体マトリックスの膨張と実験的糸球体腎炎との間の類似、および、病気と傷のような組織損傷に続く修復過程との問の連結を確立する。両方とも、細胞外マトリックスの局所的産生の増加に関連するＴＧＦ−β　ｍＲＮＡおよびＴＧＦ−βタンパク質の早い発現がある。ＴＧＦ−β、フィブロネクチンＥＤＡ＋、およびテネイシンによって誘導されるマトリックス成分は、治療している傷、および、この研究で示されるような糖尿病ラット糸球体中で優先的に発現される。傷の修復の重要な特徴は、過度の瘢痕を避けるために、この過程を終結させる必要性である。糖尿病患者の糸球体硬化症の進行は、ＴＧＦ−βの持続した活性を生じる、組織修復過程の調節または終結の慢性的不全を示唆し、そして、ＴＧＦ−βの発現が一時的で、そして病気が元に戻り得る糸球体腎炎モデルにおける本発明者らの知見と対照をなす。糖尿病患者では、腎臓への波及は、糖尿病発病の１０年またはそれ以上の後に起こり、糸球体が細胞外マトリックスによって機能しなくなるまで進行する。糖尿病のストレプトゾトシンモデルでは、糸球体異常が見えるようになるまでに、数ヵ月が必要であり、ヒトでは１０年またはそれ以上の期間が必要である。
【実施例】
【００３３】
　以下の実施例は例示を意図するものであって、本発明を限定するものではない。
【００３４】
　（実施例Ｉ）
　（糸球体間質細胞および糸球体上皮細胞によって生成される細胞外マトリックスに対する増殖因子βの特異的効果）
　（Ａ．成長因子および抗体）
ブタのＴＧＦ−β１を、Ｒ＆Ｄ　Ｓｙｓｔｅｍｓ，Ｉｎｃ．（Ｍｉｎｎｅａｐｏｌｉｓ，ＭＮ）から入手した。ヒト血小板由来の成長因子（ＰＤＧＦ）および組換えヒトインター口イキン−１（ＩＬ−１）、アルファおよびベータを、Ｃｏｌｌａｂｏｒａｔｉｖｅ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ，Ｉｎｃ．（Ｂｅｄｆｏｒｄ，ＭＡ）から入手した。組換えヒト腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）は、Ａｍｇｅｎ（Ｔｈｏｕｓａｎｄ　Ｏａｋｓ，ＣＡ）から入手した。ヤギ抗ヒトＩ型コラーゲン抗体、およびヤギ抗ヒトＩＩＩ型コラーゲン抗体を、Ｓｏｕｔｈｅｒｎ　Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ　Ａｓｓｏｃｉａｔｅｓ，Ｉｎｃ．（Ｂｉｒｍｉｎｇｈａｍ，ＡＬ）から購入した。ウサギ抗マウスフィブロネクチン、およびコラーゲンＩ型、コラーゲンＩＩＩ型、コラーゲンＩＶ型、およびコラーゲンＶＩ型、および抗ラットラミニン抗体は、すでに述べている。簡潔に言えば、ウサギポリクローナル抗体を、完全フロイントアジュバントに乳化した各精製タンパク質をニュージーランドウサギに皮下注射することにより生成した。最初の免疫感作の３週間後に、不完全フロイントアジュバントに乳化した精製タンパク質を連続して１週間ごとに筋肉内注射した。２回目の注射を、耳の動脈からの５０ｍｌの血液と共に行った。血液を凝結し、血清を遠心分離によって集めた。ラットに対するモノクローナル抗体Ｔｈｙ−１を、Ａｃｃｕｒａｔｅ　Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ（Ｗｅｓｔｂｕｒｙ，Ｎ．Ｙ．）から入手し、そしてヤギ抗ヒト第ＶＩＨ因子を、ＭｉｌｅｓＬａｂｏｒａｔｏｒｙ　Ｉｎｃ．（Ｋａｎｋｏｋｅｅ，ＩＬ）から入手した。
ウサギ抗ラットＦｘ１Ａ抗体を、Ｅｄｇｉｎｇｔｏｎの方法に従って、Ｓｐｒａｇｕｅ−Ｄａｗｌｅｙラットの腎臓から調製したＦＸＩＡで免疫感作することによって生成した。簡潔に言えば、ウサギを、超遠心分離によって単離した、腎臓近位尿細管の刷子縁内に富化した調製物によって、上記のように免疫感作した。ＦＩＴＣおよび標識したアルカリホスファターゼ、または抗ウサギｌｇＧおよび抗ヤギｌｇＧを、Ｃａｐｐｅｌ（Ｍｅｌｖｅｒｎ，ＰＡ）から入手した。
【００３５】
　（Ｂ．細胞培養）
　糸球体上皮細胞および糸球体間質細胞を、６から８週齢のＳｐｒａｇｕｅ−Ｄａｗｌｅｙラットから得た、未処理の糸球体の外殖部分（ｏｕｔｇｒｏｗｔｈ）から得た。糸球体間質細胞の単離および培養を、以下のように行った。
【００３６】
　雄Ｓｐｒａｇｕｅ／Ｄａｗｌｅｙラット（１００ｇ−１４０ｇ、単離物につき２匹のラットを使用）を、ケタミン（１０ｍｇ／ラット１００ｇ）およびＲｏｍｐｕｍ（０．５ｍｇ／ラット）を用いて麻酔し、そしてベタジン（ｂｅｔａｄｉｎｅ）を用いて滅菌した。腎臓を外科的に露出させ、リン酸緩衝化生理食塩水を用いて灌流した。次いで、腎臓を取り出し、滅菌し水冷したＰＢＳ中に入れた。
【００３７】
　腎臓を２等分し、そして皮質を外科的に除去した。残存組織を外科用メスを用いて１ｍｍ３小片に刻んだ。次いで、刻んだ腎臓組織をＰＢＳで連続して洗浄して、一連のふるい（１４９メッシュおよび１０５メッシュ）にかけた。次いで、１０５メッシュのふるいにかけた物質を、７４メッシュのふるい上に集めた。これは糸球体画分を表す。
この画分を臨床用遠心分離機で１０分間遠心分離し、そしてペレットを２０％のウシ胎児血清、０．６６単位／ｍｌのインスリン、および抗生物質を含有するＲＰＭＩ　１６４０培地（Ｃｅｌｌ−Ｇｒｏ，Ｗａｓｈｉｎｇｔｏｎ，Ｄ．Ｃ．）中に再懸濁した。糸球体を腎臓２個相当分、Ｔ７５（７５ｃｍ２）フラスコ中の１２ｍｌの培地中に入れた。糸球体間質細胞を約３週間培養した後接着した糸球体から培養した。新鮮な培地をこの培養期間中、３−４日毎に添加する。
【００３８】
　上皮細胞を単離するために、未処理の糸球体をＶｉｔｒｏｇｅｎＴＭ（ＣｏｌｌａｇｅｎＣｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ，Ｐａｌｏ　Ａｌｔｏ，ＣＡ）でコートしたフラスコ中に入れた。増殖培地は、２０％の加熱不活性化ウシ胎児血清（ＦＣＳ）（Ｈｙｃｌｏｎｅ，Ｌｏｇａｎ，ＵＴ），５０Ｕ／ｍｌのペニシリン、１００μｇ／ｍｌのストレプトマイシン、０．６６Ｕ／ｍｌのインスリンおよび３００ｍｇ／ｍｌのＬ−グルタミンで補足したＲＰＭＩ　１６４０（Ｃｅ１１−Ｇｒｏ，Ｗａｓｈｉｎｇｔｏｎ，Ｄ．Ｃ．）であった。７日後、外殖細胞を０．０２５％のトリプシン−０．５ＭのＥＤＴＡ（ＦｏｌｗＬａｂｓ，ＭｃＬｅａｎ，ＶＡ）で分離した。この物質を３０−メッシュスクリーンを通すことにより、糸球体の破片を除去した。間接パンニング技法を用いることにより、非常に富化した上皮細胞集合体を生成した。とりわけ、糸球体を上記のように単離し、そして０．１５ｍｇ／ｍｌのラットの尾部コラーゲンＩ型で前もってコートした組織培養皿上にプレートした。皿を室温で１時間コートし、次いでＰＢＳで２回洗浄した。１週間培養後、細胞の外殖部分（主として上皮細胞）および糸球体を、０．０５％のトリプシン−０．５３ｍＭのＥＤＴＡを用いてトリプシン処理を行った。細胞懸濁液を３０メッシュを通して、糸球体小片を除去した。残存細胞懸濁液を、Ｔｈｙ１抗原に対するモノクローナル抗体であらかじめコートした皿上にプレートした。糸球体間質細胞は抗原を発現するが、上皮細胞は抗原を発現せず、従って懸濁液中に残るので、糸球体間質細胞のみがＴｈｙ１抗体に結合する。この手順により、糸球体間質細胞を優先して取り出した。プレートを４℃で２４時間抗体（約１００μｇ／ｍｌ）でコートした。細胞を抗Ｔｈｙ１抗体でコートした皿上で、３７℃で１時間インキュベートした。結合していない細胞を集めて、再びプレートした。糸球体間質細胞を、マウス抗Ｔｈｙ−１抗体で４℃で１２時間前もってコートした、６０×１５ｍｍのポリスチレンプレートに添加した。接着していない細胞を取り出し、そしてラミニン（Ｃｏｌｌａｂｏｒａｔｉｖｅ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ，Ｂｅｄｆｏｒｄ，ＭＡ）で前もってコートした６−ウェルプレートに入れた。
【００３９】
　糸球体上皮細胞を、以下により同定した：１）特性ポリゴナル形態学；２）ＦＸＩＡ（Ｈｅｙｍａｎｎ抗原）に対する抗体での均一染色；３）プロマイシンのアミノヌクレオシドに対する感度；４）抗Ｔｈｙ−１あるいは抗第ＶＩＩＩ因子抗体で染色されないこと。近位尿細管細胞による糸球体上皮細胞の汚染を、アルカリホスファターゼ染色により検査し、そして２％未満の細胞がアルカリホスファターゼ陽性であった。それに対して、糸球体間質細胞を以下により同定した：１）典型的星状外観；２）抗Ｔｈｙ−１抗体での均一染色；３）抗ＦＸＩＡ、または抗第ＶＩＩＩ因子抗体で染色されないこと；および４）プロマイシンのアミノヌクレオシドに対する感度がないこと。
【００４０】
　（Ｃ．生合成放射標識）
　通常のプレート、またはラミニンでコートした６ウェルの多ウェルプレートに、糸球体上皮細胞および糸球体間質細胞を、１ウェル当り５×１０５個の細胞の濃度で添加し、そして無血清ＲＰＭＬ１６４０培地中で２４時間培養して、細胞増殖を停止した。接着していない細胞をリン酸緩衝化生理食塩水（ＰＢＳ）で洗浄することにより、除去した。血清および抗生物質を含有していないＲＰＭＩ　１６４０を３５Ｓ硫酸塩標識の低硫酸塩培地として、および３５Ｓメチオニン標識のメチオニン（ＦｌｏｗＬａｂｓ，ＭｃＬｅａｎ，ＶＡ）を含有しないＲＰＭＩ　１６４０として添加した。増殖因子を４８時間、以下の濃度で、培地に添加した：ＴＧＦ−β（２５ｎｇ／ｍｌ）、ＰＤＧＦ（２Ｕ／ｍｌ）、ＩＬ−１α（５Ｕ／ｍｌ）、ＩＬ−１β（５Ｕ／ｍｌ）およびＴＮＦ（５００Ｕ／ｍｌ）。本実験終了１８時間前に、タンパク質を標識するために３５Ｓメチオニン（１００μＣｉ／ｍｌ）を、またはプロテオグリカンを標識するために３５Ｓ硫酸塩（２００μＣｉ／ｍｌ）を、培養物に添加した。
【００４１】
　アイソトープをＮｅｗＥｎｇｌａｎｄ　Ｎｕｃｌｅａｒ（Ｂｏｓｔｏｎ，ＭＡ）から購入した。馴化培地、および細胞層を、上記のように採取し、処理した。細胞増殖を、３Ｈ−チミジンの取り込みにより試験した。ラミニンでコートした１２ウェルのプレートに、２×１０５／ウェルの濃度で、細胞を添加した。２４時間後、無血清培地内で、１０μＣｉ／ｍｌの３Ｈ−チミジン溶液２５μｌを、それぞれのウェルに添加した。２４時間インキュベーションを行った。培養培地を捨て、細胞層を５％のＴＣＡ溶液で２回洗浄し、そして６ＮのＨＣｌ溶液７００μｌで１５分間インキュベートした。３Ｈ−チミジンの取り込みを、液体シンチレーションカウンター（Ｂｅｃｋｍａｎ，Ｉｒｖｉｎｅ，ＣＡ）中のそれぞれの細胞層をカウントすることにより測定し、そしてＢＣＡタンパク質アッセイキット（Ｐｉｅｒｃｅ，Ｒｏｃｋｆｏｒｄ，ＩＬ）によって測定した、それぞれの細胞層のタンパク質含量を用いて、較正した。
【００４２】
　（Ｄ．マトリックス分子の同定）
　マトリックス糖タンパク質を免疫沈降によって同定し、そしてプロテオグリカンを酵素での消化によって同定した。抗血清１００μｌを、馴化培地５００μｌに、または増殖因子を添加した、あるいはしなかった重複ウェルから収集した細胞抽出液３００μｌに添加することにより、免疫沈降を行った。重複ウェル中で、細胞を分離し、そして細胞数の均一性を確認するためにカウントした。予め免疫を有する血清を、並行したコントロール実験において用いた。試料をウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）で前もってコートした４ｍｌのコニカルチューブ内で混合しながら、４℃で一晩インキュベートした。プロテインＡセファロースビーズ（Ｓｉｇｍａ，Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）を２２℃で６０分間、新鮮なＲＰＭＩと前もってインキュベートした。抗原−抗体複合体を沈降するために、懸濁したプロテインＡセファロース５０μｌを、試料に添加し、そして４℃で１２０分間混合した。試料を２０００×Ｇで１０分間、遠心分離し、そして上澄み液を除去した。ペレットを、０．５Ｍ　ＮａＣ１、０．１％　ＴｒｉｔｏｎＸ−１００（ｐＨ７．４）を含有する、水冷したＰＢＳ　ｌｍｌで１０回洗浄した。最終的に、ペレットを氷冷したＰＢＳで洗浄し、新しいチューブに移し、再度遠心分離し、そして３回ＰＢＳで洗浄した。ペレットを、３％のＳＤＳ、および１０％のβメルカプトエタノール（Ｓｉｇｍａ，Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）を含有するＳＤＳ−ＰＡＧＥ試料用緩衝液４０μ１中に溶解し、５分間煮沸した。
グリコサミノグリカン分解酵素での消化を、ＴＧＦ−βによって調節したプロテオグリカンの型を決定するために用いた。生合成標識を行った後、馴化培地上で消化を行った。培地のアリコート２５μｌを、コンドロイチナーゼＡＢＣまたはコンドロイチナーゼＡＣの１００ミリ単位（両者は１００ｍＭ　Ｔｒｉｓ−ＨＣ１（ｐＨ７．５）、１０ｍＭ酢酸カルシウム、２ｍｇ／ｍｌ　ＢＳＡ中）あるいはヘパリナーゼＩＩ　１００ミリ単位（５０ｍＭ　Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．４）、１ｍＭ塩化カルシウム、５ｍＭ酢酸カルシウム中）と混合した。全ての試料に、１ｍＭ　ＰＭＳＦ、５ｍＭベンズアミジン、１００μｇ／ｍｌダイズトリプシンインヒビター、１０μｇ／ｍｌロイペプチン、および１０μｇ／ｍｌアンチパインも、添加した。全ての物質は、Ｓｉｇｍａ　Ｃｈｅｍｉｃａｌ　Ｃｏ．（Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）より入手した。コンドロイチナーゼを含有する混合物を、３７℃で１．５時間インキュベートした。インキュベーション終了時に、試料をＳＤＳ−ＰＡＧＥのために調製した。
【００４３】
　大きなプロテオグリカンを、ゲル濾過によって特徴付けした。セファロースＣＬ−６Ｂカラムからの、３５Ｓ硫酸塩で標識した画分を、蒸留水で透析し、凍結乾燥した。試料を、上記のプロテアーゼインヒビターを含有する、０．１Ｍ酢酸ナトリウム、０．１Ｍ　ｔｒｉｓ（ｐＨ７．３）２ｍｌに溶解した。次いで、コンドロイチナーゼＡＢＣ溶液（１．２５単位／ｍｌ）０．２ｍｌを、試料１．８ｍｌに添加し、３７℃で２４時間消化を行った。次いで、試料をＣＬ−６Ｂカラム上で分画し、蒸留水で透析し、凍結乾燥し、そして低ｐＨ（１．０）条件下で亜硝酸で処理した。亜硝酸処理後、試料をＣＬ−６Ｂカラム上で再度クロマトグラフィーを行った。
【００４４】
　ＴＧＦ−βによって誘導される、プロテオグリカン生成の増加を定量するために、馴化培地３ｍｌをセファロースＣＬ−６Ｂカラム（１．３×１００ｃｍ）にのせた。カラムを、４Ｍ尿素、０．１５Ｍ　ＮａＣｌ、５０ｍＭ　ＴｒｉｓＨＣ１（ｐＨ７．２）、０．１％（ｖ／Ｖ）ＴｒｉｔｏｎＸ−１００で、流速２０ｍｌ／時間で溶出し、そして３ｍｌ／チューブの画分を収集した。それぞれの溶出画分の放射活性を、Ｂｅｃｋｍａｎ　ＬＳ　２８００液体シンチレーションカウンターによって測定した。
【００４５】
　（Ｅ．電気泳動法）
　試料を、以下の実施例ＩＩに記載のように、フルオログラフィー、およびデンシトメトリーによるＳＤＳ−ＰＡＧＥによって、分析した。
【００４６】
　（Ｆ．結果）
　前述の研究結果によって、ＴＧＦ−βは、上皮細胞によるバイグリカン、フィブロネクチン、およびＩＶ型コラーゲンの生成を調節する一方、培養した糸球体間質細胞により生成するプロテオグリカンに、ＴＧＦ−βのみが作用する、ということが示される。従って、ＴＧＦ−βによって調節された上皮細胞による、マトリックス生成の生合成プロフィルは、糸球体間質細胞による場合と異なる。より具体的には、これらの結果から、糸球体中のＴＧＦ−βが放出されることによって糸球体間質マトリックスが、蓄積し、そして糸球体底膜を形成する、マトリックス分子の生成において増加することが、証明される。この結果を表２に要約する。
【００４７】
【表３】
2004043507.tif 000004
　（実施例ＩＩ）
　（Ａ．ラットにおける糖尿病の誘導）
　Ｖｅｌａｓｑｕｅｚら、ＦＡＳＥＢ　４：２８５０（１９９０）、およびＭａｕｅｒら、Ｄｉａｂｅｔｅｓ　２５：８５０（１９７６）（これらは共に本明細書中に参考として援用されている）に記載のように、６．５ｍｇ／体重１００ｇで、クエン酸緩衝液中のストレプトゾトシン（Ｓｉｇｍａ　Ｃｈｅｍｉｃａｌ　Ｃｏ．，Ｓｔ，Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）を単回静脈内注射することにより、１５０グラムの体重の雄Ｓｐｒａｇｕｅ−Ｄａｗｌｅｙラットに糖尿病を誘導した。血中のグルコースレベルが＞３００ｍｇ／ｄＬである４８匹の糖尿病ラットを、２つの群に分けた。第１の糖尿病の群（Ｄ）には、治療を施さず、第２の群（ＤＩ）には、毎日３．５ＵのＮＰＨインスリン（ＥｌｉＬｉｌｌｙ，Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ，ＩＮ）を皮下注射することにより治療した。４８匹の成熟した雄ラットを、コントロールとして用い、そしてインスリンを与えない群（Ｃ）に分割するか、または糖尿病ラットと同様にインスリン摂取により治療した（ＣＩ）。
【００４８】
　それぞれの群の血中グルコースレベルを、１０週間後、一晩絶食させた後の、８：００ａ．ｍ．に測定し、そしてｍｇ／ｄＬでの値を表３に報告する。値は、平均±標準偏差である。
【００４９】
【表４】
2004043507.tif 000005
　１、６、１５および４０週間後、それぞれの群の６匹のラットを、腎臓を切除するために、１０ｍｇ／体重１００ｇの１Ｍ塩酸ケタミン、および０．５ｍｇ／体重１００ｇのキシラジン（ｘｙｌａｚｉｎｅ）で麻酔した。インスリンを投与しない糖尿病ラット（Ｄ）は、３７週間以降生存せず、従って４０週間目の分析は欠けている。全ての技法の間中、腎臓はインサイチュで、冷リン酸緩衝化生理食塩水（ＰＢＳ）、ｐＨ７．４で灌流し、次いで切除した。皮質の小片を、免疫学的試験のために取り出し、そして、Ｏｋｕｄａら、Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．８６：４５３（１９９０）（これは本明細書中に参考として援用されている）に記載のように、糸球体をｍＲＮＡ検出のために、残存組織から単離した。マトリックス成分を免疫蛍光法で数えた群とＴＧＦ−β１陽性細胞との差異を、ｔ試験によって分析した。
【００５０】
　（Ｂ．全ｍＲＮＡの調製および検出）
　１％２−メルカプトエタノールおよび０．５％ラウリルサルコシルを含む、グアニジンイソチオシアネート（ＧＩＴＣ）溶液（４Ｍ　ＧＩＴＣ：０．５％　ｗ／ｖ　Ｎ−イソリルサルコシン、０．１％消泡剤Ａ、０．１Ｍ　β−メルカプトエタノール、２５ｍＭ　Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．０））３−４ｍｌ中の単離糸球体（８−９×１０４個の細胞）を溶解することにより、全ＲＮＡを調製した。溶解物を、塩化セシウムの密度グラジエントクッションで、１５０，０００×ｇで超遠心分離した。遠心分離後、チューブの底の層からＲＮＡを回収した。４０μｇのＲＮＡを、それぞれの時点の群毎にプールし、そして２．２Ｍホルムアルデヒドおよび０．２Ｍ　ＭＯＰＳ（Ｓｉｇｍａ　Ｃｈｅｍｉｃａｌ　Ｃｏ．，Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）ｐＨ７．０を含む、１％アガロースゲルで電気泳動し、そして０．２ミクロンのナイロンメンブレン（ＩＣＮ　Ｒａｄｉｏｃｈｅｍｉｃａｌｓ，Ｉｎｃ．，Ｉｒｖｉｎｅ，ＣＡ）に、キャピラリーブロッティングにより一晩トランスファーする。
【００５１】
　ＲＮＡ（４０μｇ）相当量を、２６０ｎｍでの吸光度に基づいてロードした。メンブレンを、５×ＳＳＣ（１リットルの最終量に対して、２０×ＳＳＣ：１７５．３ｇ　ＮａＣｌ、８８．２ｇクエン酸ナトリウム、１０Ｎ　ＮａＯＨでｐＨ７．０にする）、５×デンハート溶液（５０×溶液：５ｇフィコール、５ｇポリビニルピロリドン、５ｇ　ＢＳＡ、Ｈ２（０〜５００ｍｌ）、５０ｍＭリン酸ナトリウム（ｐＨ６．５）、０．１％ＳＤＳ、２５０μｇ／ｍｌの音波処理による変性サケ精子ＤＮＡ（Ｓｉｇｍａ　Ｃｈｅｍｉｃａｌ　Ｃｏ．，Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，Ｍｏ）、および５０％ホルムアミド）中で、３７℃で５時間プレハイブリダイズした。
【００５２】
　マウスｃＤＮＡを得るために、マウスＴＧＦ−β１ｃＤＮａからのＨｉｎｃＩＩで消化したｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＳＫＩＩ＋（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ，Ｌａ　Ｊｏｌｌａ，ＣＡ）に、２８０ｂｐのＰｖｕＩＩフラグメントをサブクローン化した。このマウスＴＧＦ−β１　ｃＤＮＡは、Ｄｒ．Ｒ．Ｄｅｒｙｎｃｋから得、そして、Ｄｅｒｙｎｃｋら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６１：４３７７（１９８６）（これは本明細書中に参考として援用されている）に記載されている。成熟ＴＧＦ−β１の２９８−３９０位のアミノ酸をコードする、挿入物の位置付けを決定し、そして、プラスミドを、塩化セシウムの濃度遠心分離により精製した。この濃度遠心分離は、Ｋｏｎｄａｉａｈら、Ｊ．Ｂｉｏ１．Ｃｈｅｍ．２６３：１８３１３（１９８８）（これは本明細書中に参考として援用されている）に記載のように行われた。
【００５３】
　マウスｃＤＮＡプローブ、ラットＧＡＰＤＨ　ｃＤＮＡプローブ（これはＤｒ．Ｍ．Ｂ．Ｓｐｏｒｎ，Ｎａｔｉｏｎａｌ　Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ　ｏｆ　Ｈｅａｌｔｈ（ＮＩＨ）より得た）、およびヒトバイグリカンｃＤＮＡプローブ（プラスミドｐ１６）（これはＤｒ．Ｌ．Ｗ．Ｆｉｓｈｅｒ，ＮＩＨより得た）を、ランダムプライマー法（Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ　Ｍａｎｎｈｅｉｍ，Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ，ＩＮ）により３２Ｐ−ＣＴＰ（シトシン三リン酸）で標識し、そして４２℃で一晩ハイブリダイズした。メンブレンを、２×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳで、室温で５分間ずつ、３回洗浄し、そして０．１×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳで、５０℃で１５分間ずつ３回洗浄した。標準法によりオートラジオグラフィーを行った。フィルムをレーザーデンシトメー夕ー（ＬＫＢ，Ｂｒｏｍｍａ，Ｓｗｅｄｅｎ）を用いてスキャンした。定量的な比較のために、同じゲルレーン中のＧＡＰＤＨ　ｍＲＮＡバンドの濃度に対するＴＧＦ−β１およびバイグリカンｍＲＮＡバンドの濃度の比を算出した。次いで、正常のコントロール動物（Ｃ）の比が、１．０であった場合の、比の相関的な変化として、結果を表した。
【００５４】
　この分析結果を図１に示し、そして表１に要約する。ＧＡＰＤＨ　ｍＲＮＡのレベルに対する比によって標準を決めた場合、インスリンで治療をしなかった糖尿病ラット内に、ＴＧＦ−β１ｍＲＮＡが３．４倍増加して、そして、バイグリカンｍＲＮＡが２．３倍増加する。インスリンで治療した糖尿病ラットは、ＴＧＦ−β１およびテネイシンｍＲＮＡの増加がいっそう少ないことを示した。
【００５５】
　（Ｃ．糖尿病糸球体中におけるＴＧＦ−βの検出）
　糸球体組織を、液体窒素中で素早く凍結し、アセトン中で固定し、そして成熟ＴＧＦ−β１の最初の３０個のアミノ酸に対応する合成ペプチドに対して製造した抗体（５０μｇ／ｍｌ）で、４μｍの断片を染色した。この抗体（抗ＬＣ）（Ｄｒｓ．Ｋ．Ｃ．ＦｌａｎｄｅｒｓおよびＭ．Ｂ．Ｓｐｏｒｎ，Ｎａｔｉｏｎａｌ　Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅｓ　ｏｆ　Ｈｅａｌｔｈから供与）で、細胞内ＴＧＦ−β１を染色する。抗ＬＣ抗体は、Ｆｌａｎｄｅｒｓら、Ｂｉｏｃｈｅｍ．２７：７３９（１９８８）中に公表されており、その教示内容は本明細書中に参考として援用されている。ウサギＩｇＧまたは、またはリサミンローダミンロバＦ（ａｂ’）２抗ウサギＩｇＧ（Ｊａｃｋｓｏｎ　Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ　Ｌａｂ，Ｗｅｓｔ　Ｇｒｏｖｅ，ＰＡ）に対するフルオレセインイソチオシアネート複合抗血清（×５００）を、１：３００の希釈で、２次抗体として用いた。
【００５６】
　ＴＧＦ−β１陽性細胞を、フルオレセインおよびローダミン複合２次抗体を用いた、２重染色免疫蛍光技法によって同定した。この複合２次抗体は、ＥＤ１（単核細胞／マクロファージ）、ＯＸ１９（リンパ球）、およびビメンチン、デスミン、およびα−平滑筋アクチン（Ｊａｃｋｓｏｎ　Ｉｍｍｕｎｏｒｅｓｅａｒｃｈ　Ｌａｂ）に対するモノクローナル抗体を用いて１次染色されていた。コントロール群、および糖尿病群の６匹の動物それぞれから調製したコード部分で、不規則に選択した２０個の糸球体中のＴＧＦ−β１陽性細胞の数を、カウントした。
【００５７】
　インスリンで治療しなかった糖尿病ラットからの糸球体（糖尿病を誘導してから１５週間後）を染色することにより、ＴＧＦ−β１陽性細胞数の著しい増加が示された。糖尿病の糸球体では、コントロールラットからの糸球体と比較して、糸球体１個当りに著しく陽性な細胞があり、それは＊３２±２対２５±１（値は、平均±標準偏差、＊ｐ＜０．００１）である。
【００５８】
　（Ｄ．糖尿病ラットの糸球体中のフィブロネクチンＥＤＡ＋およびテネイシン沈殿物の定量）
　免疫蛍光法のための組織を、上記のように調製した。ヒトフィブロネクチンＥＤＡ＋に対して調製した、マウスモノクローナル抗体は、Ｄｒ．Ｌ．Ｚａｒｄｉ，Ｉｎｓｔｉｔｕｔｏ　Ｎａｚｉｏｎａｌｅ　ｐｅｒ　ｌａ　Ｒｉｃｅｒｃａ　ｓｕｌ　Ｃａｎｃｒｏ，Ｉｔａｌｙより提供され、そしてＢａｌｚａら、ＦＥＢＳ　Ｌｅｔｔｅｒｓ　２２８：４２（１９８８）、およびＳｅｋｉｇｕｉｃｈｉら、Ｊ．Ｂｉｏ１．Ｃｈｅｍ．２６０：５１０４−５１１４（１９８５）に記載されている。これらの開示内容は、共に本明細書中に参考として援用されている。ウサギ抗ヒトテネイシンを、Ｔｅｌｉｏｓ　Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌｓ　Ｉｎｃ．（Ｌａ　Ｊｏｌｌａ，ＣＡ）より得た。Ｂｏｕｒｄｏｎら、Ｃａｎｃｅｒ　Ｒｅｓ．４３：２７９６−２８０５（１９８３）（これらは本明細書中に参考として援用されている）に記載のように、テネイシンを、ヒト神経膠芽細胞腫Ｕ２５１細胞から単離した。フルオレセインイソチオシアネート抗ウサギＩｇＧおよびラットＦ（ａｂ’）２抗マウスＩｇＧ（これらは共にＪａｃｋｓｏｎ　Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ　Ｌａｂ，Ｗｅｓｔ　Ｇｒｏｖｅ，ＰＡから得られた）を、２次抗体として用いた。
【００５９】
　テネイシンに対する免疫蛍光法（ＩＦ）染色において、４μｍの組織断片を、４−５分間アセトンに浸した。乾燥せずに、固定化断片を、室温で約１０分間ＰＢＳ（ｐＨ７．４）に浸した。次いで、スライド上に水の小滴がほんの少しだけ残っている状態まで、約５分間送風機を用いて、断片を緩やかに乾燥した。ウサギポリクローナル抗ヒトテネイシン抗体（Ｔｅｌｉｏｓ　Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌｓ，Ｌａ　Ｊｏｌｌａ，ＣＡ）を、０．０１％のアジ化ナトリウムを含むＰＢＳで、１：１５から１：２０までに希釈した。ＰＢＳ溶液約１０μｌから１５μｌを、組織に添加し、そしてその後、湿った容器中で３７℃で約４５分間インキュベートした。次いで、直接その部分にＰＢＳをかけるのではなく、スライドを傾けて、ＰＢＳを緩やかに流すようにして、ＰＢＳ洗浄する。次いで、断片を振とうしながら室温で５分間ずつ３回ＰＢＳに浸した。次いで、断片を送風機を用いて乾燥した。０．０１％のアジ化ナトリウムを含むＰＢＳで、１：４００に希釈した、ＦＩＴＣ結合アフィニティー精製ロバｆ（ａｂ’）２抗ウサギＩｇＧ（Ｊａｃｋｓｏｎ　Ｉｍｍｕｎｏ．Ｌａｂ，７１１−０９６−１３２，＃１４６２０）を、スライドに添加した。上記のように、スライドをＰＢＳで３回洗浄した。Ｂａｒｔｅｌｓ緩衝化グリセロール封入剤ＦＡ（Ｂａｘｔｅｒ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ）を用いて、カバーガラスで組織を固定した。
【００６０】
　上記手順に続き、フィブロネクチンＥＤＡ＋のＩＦ染色を行った。適切なマウスモノクローナル抗体抗ヒトフィブロネクチンＥＤＡを、１次抗体として用い、そしてＦＩＴＣ結合アフィニティー精製Ｆ（ａｂ’）２ラット抗マウスＩｇＧ（Ｊａｃｋｓｏｎ　Ｉｍｍｕｎｏｒｅｓｅａｒｃｈ　Ｌａｂ＃１６３８１）を０．０１％のアジ化ナトリウムを含むＰＢＳで１：３０に希釈したものを、２次抗体として用いた。
【００６１】
　定量アッセイ結果を図２に示す。それぞれの実験群の６匹の動物から調製したコード部分から、不規則に選択した２０個の糸球体中の０から４の尺度（０＝染色されず、４＝最大に強く染色された）を用いて免疫蛍光法染色を数えた。それぞれの時点で、糖尿病動物中に２種のマトリックス成分の堆積物が、著しく増加する。
【００６２】
　抗フィブロネクチンＥＤＡ＋抗体で染色された糸球体の免疫蛍光クロマトグラフによるコントロール糸球体および糖尿病糸球体におけるフィブロネクチンＥＤＡ＋の蓄積物の検出において、４０週間インスリンで治療した、正常のコントロールラットの糸球体は、ほのかに染色されることを示したが、一方、４０週間インスリンで治療をした、糖尿病のラットからの糸球体は、染色が目だって増強することを示す。
【００６３】
　（実施例ＩＩＩ）
　（ＡＲＧ−ＧＬＹ−ＡＳＰ含有ペプチドでのプロテオグリカン合成の阻害）
　Ｈａｒｐｅｒら、Ｋｉｄｎｅｙ　Ｉｎｔｅｍａｔｉｏｎａｌ　２６：８７５（１９８４）（この開示内容は、本明細書中に参考として援用されている）の方法に従って、４から６週齢のＳｐｒａｇｕｅ−Ｄａｗｌｅｙラットの未処理の糸球体から、糸球体間質細胞を得た。使用した増殖培地は、２０％の熱不活性化ウシ胎児血清（ＦＣＳ）（Ｈｙｃｌｏｎｅ，Ｌｏｇａｎ，ＵＴ）、５０Ｕ／ｍｌペニシリン、１００μｇ／ｍｌストレプトマイシン、０，６６Ｕ／ｍｌインスリン、および３００ｍｇ／ｍｌ　Ｌ−グルタミンで補足したＲＰＭＩ　１６４０（Ｃｅ１１−Ｇｒｏ，Ｗａｓｈｉｎｇｔｏｎ，Ｄ．Ｃ．）であった。１５日から２０日の間で、０．０２５％トリプシン−０．５ｍＭ　ＥＤＴＡ溶液（Ｆｌｏｗ　Ｌａｂｓ，ＭｃＬｅａｎ，ＶＡ）で、１次培養物を分離し、そして２×１０６個の細胞をフラスコに加えた。細胞は７日毎に継代が代わり、そして全ての実験を３継代目と７継代目との問の細胞に対して行った。
【００６４】
　ラットの糸球体間質細胞は６−ウェルのマルチプレート中で、準集密（ｓｕｂｃｏｎｆｌｕｅｎｃｙ）まで成長した。培養物を２４時間無血清にして、そして、０．３、０．１、０．０３、０．０１、または０．００３ｍｇ／ｍｌでのＧｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｓｐ−Ｓｅｒ−Ｐｒｏ（ＧＲＧＤＳＰ）、または、０．３ｍｇ／ｍ１でのＧｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｕ−Ｓｅｒ−Ｐｒｏ（ＧＲＧＥＳＰ）と共にＴＧＦ−β１を２５ｎｇ／ｍｌで添加した。ＰｉｅｒｓｃｈｂａｃｃｈｅｒおよびＲｕｏｓｌａｈｈ，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２９２；１７９４−１７９８（１９８７）（この開示内容は、本明細書中に参考として援用されている）に記載のように、製造業者のプロトコルに従って、Ａｐｐｌｉｅｄ　Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ　Ｐｅｐｔｉｄｅ　Ｓｙｎｔｈｅｓｉｚｅｒでペプチドを合成した。３０時間後、培養物を３５Ｓ硫酸塩で代謝的に標識し、そして１８時間後、馴化培地をＳＤＳ−ＰＡＧＥおよび蛍光光度法によって分析した。フルオログラムをレーザーデンシトメー夕ーでスキャンした。以下のものは、プロテオグリカンバンドの相対的な比重単位を表す。
【００６５】
【表５】
2004043507.tif 000006
　これらのデータは、ＧＲＧＤＳＰのより多い用量の用量反応効果により、コントロールペプチドＧＲＧＥＳＰの効果無しでのＴＧＦ−β１一誘導プロテオグリカン生成が阻害されることを示す。
【００６６】
　（実施例ＩＶ）
　腎臓生検材料からの腎臓組織、または、Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ　ｏｆ　Ｕｔａｈ　Ｍｅｄｉｃａｌ　Ｃｅｎｔｅｒの糖尿病患者、または外科手術を行った患者から得た腎摘出試料を研究した。分析は、糖尿病性の腎症の６つの症例、最小の病状変化の３つの症例、薄い基底膜疾患の３つの症例、および正常な腎臓３つを包含していた。４つまたはそれ以上の糸球体が、それぞれの試料には存在し、そして従来の臨床的尺度および病理学的尺度を用いて、最新の研究には加わっていない医師によって、それぞれの症例の診断法が確立された。実験モデルについて実施例ＩＩに記載のように免疫蛍光法顕微鏡検査によって、凍結組織をＴＧＦ−β１タンパク質およびフィブロネクチンＥＤＡ＋の存在について研究した。ヒトおよび動物の研究は、Ｉｎｓｔｉｔｕｔｉｏｎａｌ　Ｒｅｖｉｅｗ　Ｂｏａｒｄ　ｏｆ　ｔｈｅ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ　ｏｆ　Ｕｔａｈ　Ｓｃｈｏｏｌ　ｏｆ　Ｍｅｄｉｃｉｎｅによって承認された。
【００６７】
　糖尿病性の糸球体硬化症の６つの症例を示す糸球体の全てが、図５および６に示した２つの症例と同様に、ＴＧＦ−β１およびフィブロネクチンＥＤＡ＋に対して強い陽性を示した。組織の定量限界のために、研究をこれら２つのマーカーに限った。それに対して、正常および疾患コントロールの糸球体はそれぞれ、陰性またはほんの微量な染色を示しただけであった（図５および６）。
【００６８】
　（実施例Ｖ）
　（組換え体のヒトデコリンによるＴＧＦ−Ｂ１、２、および３の活性の中和）
　（Ａ．試薬）
　精製したヒトＴＧＦ−β１および２は、Ｒ＆Ｄ　Ｓｙｓｔｅｍｓ（Ｍｉｎｎｅａｐｏｌｉｓ，ＭＮ）から得られ、そしてＴＧＦ−β３は、Ｎａｔｉｏｎａｌ　Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅｓ　ｏｆ　ＨｅａｌｔｈのＤｒｓ．Ａ．ＲｏｂｅｒｔｓおよびＭ．Ｓｐｏｒｎから供与
された。Ｙａｍａｇｕｃｈｉら、（前出）（この開示内容は、本明細書中に参考として援用されている）に記載のように、チャイニーズハムスターの卵巣細胞系クローン６２の培養培地から、組換え体ヒトデコリンを調製した。デコリンを、Ｑ−セファロース上でのイ
オン交換と、オクチルーセファロース上での疎水クロマトグラフィーとを組み合わせた、改変した手順によって精製した。この手順は、Ｃｈｏｉら、Ｊ．Ｂｉｏｌ，Ｃｈｅｍ．２６４：２８７６（１９８９）に記載されており、その開示内容は、本明細書中に参考として援用されている。オクチルーセファロースカラムから４Ｍ塩酸グアニジンによって溶出した後、調製物をＰＢＳ（ｐＨ７．４）で透析し、そしてデコリン濃度を１ｍｌ当り０．９ｍｇに調整した。
【００６９】
　卵白アルブミンおよびウシ血清アルブミンを、Ｓｉｇｍａ（Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）から得、そしてデコリン精製に使用した条件と同じ条件下で調製した。
【００７０】
　（Ｂ．細胞培養）
　増殖阻害を測定するミンク肺細胞のアッセイを、イソ型のＴＧＦ−βの活性を中和する組換えデコリンの効力をアッセイするのに使用した。［３Ｈ］チミジンの取り込みをＹａｍａｇｕｃｈｉら、（前出）に記載のように、ＴＧＦ−βの存在、およびデコリン（○）またはウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）（●）の濃度の増加で決定した。ＴＧＦ−βを、［３Ｈ］チミジンの取り込みを５０％阻害する濃度で添加した；これらの濃度は、ＴＧＦ−β１、ＴＧＦ−β２、およびＴＧＦ−β３に対して、それぞれ０．２ｎｇ／ｍｌ、０．１ｎｇ／ｍｌおよび０．０５ｎｇ／ｍｌであった。図７に示したデータは、ＴＧＦ−β１で誘導された増殖阻害を中和したパーセントを表す。［３Ｈ］チミジンの取り込みが、ＴＧＦ−βおよびデコリンのどちらにも無い場合を１００％と定義する（ＴＧＦ−β１およびＴＧＦ−β３については１２５，０００ｃｐｍ；ＴＧＦ−β２については１０７，０００ｃｐｍ）。ＴＧＦ−βには取り込みが存在するが、デコリンには存在しない場合を、０％と定義する（ＴＧＦ−β１については５７，０００ｃｐｍ；ＴＧＦ−β２については７８，０００ｃｐｍ；ＴＧＦ−β３については５９，０００ｃｐｍ）。それぞれの点は、二連の試料からの結果の平均を表す。
【００７１】
　図７に示したように、デコリンは３種のＴＧＦ−βのそれぞれの増殖阻害活性を中和した。
【００７２】
　Ｂｏｒｄｅｒら、Ｎａｔｕｒｅ３４６：３７１（１９９０）に記載のように、上記で
糸球体腎炎を回復させるのに用いた抗ＴＧＦ−β１血清もまた、試験した。この抗血清は、ＴＧＦ−β１を中和したが、ＴＧＦ−β２もＴＧＦ一β３も中和しなかった（データは示さず）。従って、デコリンは、抗ＴＧＦ−β１よりも、ＴＧＦ−βに対する広い結合反応活性を有する。
【００７３】
　（実施例ＶＩ）
　（組換えヒトデコリンの静脈内投与）
　組換えヒトデコリン、およびウシの組織から精製したデコリンの静脈内投与を、糸球体腎炎のラットの腎臓中にマトリックスが蓄積するのを抑制する、プロテオグリカンの能力を検査するのに用いた。糸球体中に存在するフィブロネクティン量を、糸球体腎炎でのマトリックスの蓄積をブロックするデコリンの能力を評価するために、定量的に用いた。
【００７４】
　（Ａ．プロトコル）
　Ｏｋｕｄａ，ら、（前出）に記載のように、抗胸腺細胞血清を静脈内注射することによって、糸球体腎炎をＳｐｒａｇｕｅ−Ｄａｗｌｅｙラット（４−６週齢）に誘起した。同齢のラットを正常コントロールとして使用した。組換えヒトデコリン（これは、実施例Ｖ．
Ａ．に記載のように調製された）およびウシデコリンを、以下のプロトコルに従った同定実験以外は、別々に試験した。
【００７５】
　８匹のラットを、それぞれ２匹ずつ４っの群に分け、そし
て抗胸腺細胞血清を注射した。１時間後、ＰＢＳ０．５ｍｌ中の組換えヒトデコリンまたはウシデコリン０．４５ｍｇを、あるいはコントロールとして０．５ｍｌのＰＢＳだけを、１回静脈内注射することにより、治療を開始した（注射するためにラットを押さえつけたが、麻酔はしなかった）。関節の軟骨から、４Ｍ　塩酸グアニジンおよびプロテアーゼインヒビターで２４時間抽出することにより、ウシデコリンを単離した。次いで、実施例Ｖ．Ａ．に記載のように精製した。以下のようにデコリンまたはＰＢＳを１日１回注射することで治療を続けた：デコリンを第１群には２日間、第２群には４日間、第３群には６日間投与した。第４群にはＰＢＳのみを６日間投与した。第１群および第２群においてデコリン投与を中止したとき、ＰＢＳを代わりに投与して、全ての動物に６日間注射を行った。７日目に全ての治療を中止し、２４時間尿を採取し、その後動物を殺して腎臓を取り出し
た。
【００７６】
　上記プロトコルに従って、以下に示すコントロール調製物を試験した：８匹のラットに抗胸腺細胞血清を注射し、それぞれ２匹ずつの群に分け、そして０．５ｍｌのＰＢＳのみ、またはアグレカン、卵白アルブミン、ウシ血清アルブミンを含むＰＢＳを、１日１回６日間注射した。アグレカンおよびデコリンの炭水化物含量を決定し、そしてＰＢＳ中のアグレカンを、デコリンと同様の炭水化物濃度で注射した。別の４匹のラットには、抗胸腺細胞血清の代わりにＰＢＳを１回注射し、正常なコントロールとして使用した。全ての動物を、上記のように２４時間尿を採取した後に殺し、そして尿タンパク質およびクレアチニンを、Ｏｋｕｄａら（前出）に記載のように測定した。
【００７７】
　全ての技法を行うために、腎臓をインサイチュで冷ＰＢＳで灌流し、次いで切除した。腎臓組織を、Ｏｋｕｄａら（前出）（これは、本明細書中に参考として援用されている）に記載のように、光および免疫蛍光顕微鏡検査のために調製した。
【００７８】
　（Ｂ．フィブロネクチン染色）
　フルォレセインイソチオシアネート結合ヒツジ抗ヒトフィブロネクチンは、Ｂｉｎｄｉｎｇ　Ｓｉｔｅ，Ｉｎｃ．（Ｓａｎ　Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ）からのものであった。フィブロネクチンに対する免疫蛍光染色を、それぞれの動物から調製したコード部分で不規則に選択した２０個の糸球体において、０から４までの尺度（０＝染色されず、４＝最大に濃く染色された）を用いて、組織起源を認識せずに数えた。群の間の相違を、Ｏｋｕｄａら（前出）に記載のｔ試験によって分析した。
【００７９】
　（Ｃ．ＥＤＡ＋およびテネイシン染色）
　糸球体を、ＥＤＡ＋フィブロネクチンおよびテネイシンを検出する抗体で染色した；これらのマトリックス成分はＴＧＦ−βによって比較的特異的に誘導される。特別のドメインＡ（ＥＤＡ＋）を含有するヒトフィブロネクチンに対して調製されたマウスモノクローナル抗体は、Ｄｒ．Ｌ．Ｚａｒｄｉ，Ｉｎｓｔｉｔｕｔｏ　Ｎａｚｉｏｎａｌｅ　ｐｅｒ　ｌａ　Ｒｉｃｅｒｃａｓｕｌ　Ｃａｎｃｒｏ，Ｒａｌｙより提供された。ウサギ抗ヒトテネイシンを、Ｔｅｌｉｏｓ　Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｉｓ，Ｉｎｃ．（Ｌａ　Ｊｏｌｌａ，ＣＡ）から得た。フルオレセインイソチオシアネートで結合のラットＦ（ａｂ’）２抗マウスＩｇＧおよびロバＦ（ａｂ’）２抗ウサギＩｇＧを、２次抗体（Ｊａｃｋｓｏｎ　ＩｍｍｕｎｏｒｅｓｅａｒｃｈＬａｂ，Ｗｅｓｔ　Ｇｒｏｖｅ，ＰＡ）として用いた。マトリックスを数える技法、およびＥＤＡ＋フィブロネクチンおよびテネイシン染色に対する統計学的分析方法は、上記のフィブロネクチンに対するものと同じである。
【００８０】
　（Ｄ．結果）
　図８は、組換えデコリン、またはウシデコリンを４日間あるいは６日間毎日注射することで、フィブロネクチンの蓄積が、正常のラットに見いだされるレベルと大きく違わないレベルにまで抑制されることを示す。コントロール注射物は、緩衝液だけ、異なるプロテオグリカン、および２種のタンパク質から成る。軟骨のプロテオグリカン、アグレガンを、デコリンのグリコサミノグリカン鎖をコントロールする負に帯電した分子として用いた；アグレガンは、Ｙａｍａｇｕｃｈｉら（前出）に記載のように、ＴＧＦ−βを阻害しない。卵白アルブミンを、デコリンのコアタンパク質に対するコントロールとして用いた。なぜなら、これらのタンパク質の両者は、ほとんど同じ分子サイズだからである。血清アルブミンを、無関係なタンパク質コントロールとして用いた。図８は、プロテオグリカンおよびタンパク質コントロールが、緩衝液のみを注射した糸球体腎炎ラットとは、区別され得ないことを示す。疾患の早期にデコリンを２回注射することも、フィブロネクチンの蓄積には、何ら効果が無かった。
【００８１】
　図９に定量的に示したように、ＥＤＡ＋フィブロネクチンは、正常なラットの糸球体に痕跡量存在するのみであり、テネイシンに対しても、同様の検出物が得られた。結果は、ＥＤＡ＋フィブロネクチンおよびテネイシンの両者が、デコリンを全く注射しない、または２回注射して治療した、ラットの腎炎の糸球体中で、非常に増加したことを示す。しかし、フィブロネクチン全体の場合のように、デコリンを４回または６回注射することにより、ＴＧＦ−β活性のこれら２つのマーカーの堆積が、非常に減少した（図９）。過ヨウ素酸一シッフで染色した、同じ腎臓の断片の組織学的分析により、疾患中に生じる
糸球体中の細胞外マトリックスおよび関連する糸球体腫脹の増加を防止するデコリンに匹敵する効果が示された。
【００８２】
　４日間または６日間デコリンを投与することもまた、タンパク尿の進行を抑制した。尿タンパク質濃度と尿のクリアチニン濃度との比を、タンパク尿を評価するのに用いた。なぜなら、この方法はＧｉｎｓｂｅｒｇら（前出）に記載のように、タンパク質排出量に関する尿量の差の影響を、最小にするからである。正常ラット、疾患コントロールラット、低用量デコリン（２回注射）で治療したラット、および高用量デコリン（４回および６回注射）で治療したラットに対する平均値はそれぞれ、０．７、１５．２、１４．８、および２．４であった（疾患コントロールに比較した高用量に対して、ｐ＜０．０１である）。
【００８３】
　これらの結果は、デコリンが、腎炎ラットからの傷ついた糸球体中に、細胞外マトリックスが堆積することを防止するのに、著しい効果をあげることを示す。糸球体腎炎において細胞外マトリックスが蓄積することは、ＴＧＦ−βの過剰生成が原因であることが、以前に示されている（Ｏｋｕｄａら（前出）Ｂｏｒｄｅｒら、（１９９０）（前出））。このモデルにおけるマトリックスの蓄積を、デコリンの注射により防止したことは、ＴＧＦ−βを抑制するデコリンのインビボにおける活性を証明する。
【００８４】
　本発明を、種々の実施態様に関して記載してきたが、本発明の主旨から逸脱することなく種々の改変を施すのは可能である、ということを理解すべきである。従って、本発明は、以下の請求項の範囲によってのみ限定される。
【図面の簡単な説明】
【００８５】
【図１】図１は、ｍＲＮＡのノーザンブロッティングの結果を示す。このｍＲＮＡは、ラットの糸球体から単離され、（Ａ）ＴＧＦ−β１、（Ｂ）バイグリカン、および（Ｃ）グリセルアルデヒド−３−デヒドロゲナーゼ（ＧＡＰＤＨ）（これはラット糸球体中で本質的に発現した酵素）に対するｃＤＮＡプローブとハイブリダイズされた。コントロールラット（Ｃ）、インスリンで治療したコントロールラット（ＣＩ）、糖尿病ラット（Ｄ）、および糖尿病を誘起してから１５週間後にインスリンで治療した糖尿病ラット（ＤＩ）から単離した糸球体から調製した。分子量マーカーを左側に示す。
【図２】図２は、コントロールラットおよび糖尿病ラットの糸球体中に、フィブロネクチン、フィブロネクチンＥＤＡ＋（図２Ａ）、およびテネイシン（図２Ｂ）の交互に結合した形の定量を示す。＊印は、同じ時点における正常コントロール（Ｃ）と比較した、糖尿病ラット（Ｄ）、およびインスリンで治療した糖尿病ラット（ＤＩ）について、ｐ＜０．０１を示す。インスリンで治療した正常コントロールラット（ＣＩ）を比較のために含む。インスリンで治療しなかった糖尿病動物は、３７週間以降は生存しなかった。従って、４０週間目のデータは無い。値は平均±標準偏差である。
【図３】図３は、抗ＴＧＦ−β１抗体で染色した糸球体の免疫蛍光法の顕微鏡写真を示す。（Ａ）正常コントロールラットの糸球体の染色。（Ｂ）糖尿病を誘導した１５週間後にインスリンで治療しなかった糖尿病ラットからの糸球体の染色は、ＴＧＦ−β１に対して陽性の細胞数の著しい増加を示す。陽性の細胞を糸球体の糸球体間質および上皮細胞として同定した。糖尿病の糸球体では、コントロールラットからの糸球体と比較して、糸球体１個当りに著しく陽性の細胞があり、それは＊３２±１対２５±１（値は、平均±標準偏差、＊ｐ＜０．０１）であった。写真を６０秒の同じ露光時間、同一条件下で撮影した。倍率×５００。
【図４】図４は、抗フィブロネクチンＥＤＡ＋抗体で染色した糸球体の免疫蛍光法の顕微鏡写真を示す。（Ａ）４０週間インスリンで治療した、正常コントロールラットの糸球体が、かすかに染色されたことを示す。（Ｂ）４０週間インスリンで治療した、糖尿病のラットからの糸球体の染色は、著しく染色が増加することを示す。写真を６０秒の同じ露光時間、同一条件下で撮影した。倍率×５００。
【図５】図５は、抗ＴＧＦ−β１抗体で染色したヒト糸球体の免疫蛍光法の顕微鏡写真を示す。（Ａ）正常な腎臓からの糸球体のかすかな染色、および（Ｂ）最小の病状変化を有する患者の腎臓からの糸球体のかすかな染色。（ＣおよびＤ）進行した糖尿病の糸球体硬化症の徴候である、重症のマトリックス蓄積のみられる２人の患者からの糸球体は、免疫反応性のＴＧＦ−β１タンパク質で鮮やかに染色されることを示す。マトリックスの蓄積が少ない初期の糖尿病の腎症の他の症例では、染色パターンは、進行したヒトの疾患のこうした場合にみられるパターンと、図３Ｂに示した、発病１５週の糖尿病ラットにみられるパターンとの中間であり、それは、ＴＧＦ−β１染色パターンが疾患の重篤さで連続していることを示唆し、最初は個々の細胞の染色を示し、そして後に細胞毎の染色が曖昧になる程度まで増加する。（Ｄ）この顕微鏡写真は、糸球体を包む上皮嚢（ボーマン嚢）における染色を示す。写真を６０秒の同じ露光時間、同一条件下で撮影した。倍率×５００。
【図６】図６は、抗フィブロネクチンＥＤＡ＋抗体で染色したヒト糸球体の免疫蛍光を示す。（Ａ）正常な腎臓からの糸球体、および（Ｂ）最小の病状変化を有する患者からの糸球体は、わずかに染色される。（ＣおよびＤ）一方、糖尿病の糸球体硬化症の２人の患者は、異常糸球体内およびその周りの嚢（ボーマン嚢）で強い染色を示した。写真を６０秒の同じ露光時間、同一条件下で撮影した。
【図７】図７は、ＴＧＦ−β１、２、３の活性の、組換えヒトデコリンによる中和を示す。増殖阻害を測定するミンクの肺細胞アッセイを、イソ型のＴＧＦ−βの活性を中和する組換えデコリンの能力をアッセイするために使用した。［３Ｈ］チミジンの取り込みを、Ｙａｍａｇｕｃｈｉら、Ｎａｔｕｒｅ　３４６：２８１（１９９０）（これは本明細書中に参考として援用されている）に記載のように、ＴＧＦ−βの存在、およびデコリン（○）またはウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）（●）の濃度の増加で決定した。データは、ＴＧＦ−β１で誘導した増殖阻害の中和のパーセントを表す。［３Ｈ］チミジンの取り込みが、ＴＧＦ−βおよびデコリンのどちらにも無い場合を、１００％と定義する（ＴＧＦ−β１およびＴＧＦ−β３については１２５，０００ｃｐｍ；ＴＧＦ−β２については１０７，０００ｃｐｍ）。ＴＧＦ−βには取り込みが存在するが、デコリンには存在しない場合を、０％と定義する（ＴＧＦ−β１については５７，０００ｃｐｍ；ＴＧＦ−β２については７８，０００ｃｐｍ；ＴＧＦ−β３については５９，０００ｃｐｍ）。それぞれの点は二連の試料からの結果の平均を表す。
【図８Ａ】図８は、デコリンで治療した糸球体腎炎のラットの糸球体におけるフィブロネクチンの堆積を示す。（Ａ）リン酸緩衝化生理食塩水（ＰＢＳ）、蛋白アルブミン（ＯＶＡ）、アグレカン（ａｇｇｒｅｃａｎ）（ＡＧＣ）、またはウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）、または様々な量のデコリンを６回注射した、正常コントロールラット、およびコントロール糸球体腎炎ラットからの糸球体中のフィブロネクチン染色の定量。デコリンを４回または６回注射して治療したラットは、同じ治療を行った疾患コントロールラットまたはデコリンで治療しなかった疾患コントロールラットあるいはデコリンを２回注射して治療した疾患コントロールラットよりも、糸球体中に堆積したフィブロネクチンは、著しく少なかった（ｐ＜０．０１）。
【図８Ｂ】図８は、デコリンで治療した糸球体腎炎のラットの糸球体におけるフィブロネクチンの堆積を示す。（Ｂ）抗フィブロネクチン抗体で染色した、糸球体腎炎ラットからの糸球体の免疫蛍光の顕微鏡写真。ラットをデコリン注射で治療しなかった（ＮＤ）（すなわちＰＢＳのみ）、または２日間デコリン注射で治療した（２Ｄ）、４日間デコリン注射で治療した（４Ｄ）または６日間デコリン注射で治療した（６Ｄ）。いずれの動物の場合も、糸球体の数の平均の最大標準誤差は、低い糸球体間の変数を示す０．１６であった。例示した糸球体のマトリックス数は：ＭＤ，３．５；２Ｄ，３．５；４Ｄ，２．０；５Ｄ，２．０である。写真を４０秒の露光時間、同一条件下で撮影した。倍率×５００。
【図９Ａ】図９は、デコリンで治療した糸球体腎炎ラットの糸球体中の、ＥＤＡ＋フィブロネクチン、およびテネイシンの蓄積を示す。（Ａ）糸球体におけるＥＤＡ＋フィブロネクチン染色の定量。符号は、図８Ａに記載の通りである。デコリンの注射を４回または６回したラットは、他の全ての糸球体腎炎群と比較して、ＥＤＡ＋フィブロネクチンの堆積から有意に保護されていた（ｐ＜０．０１）。
【図９Ｂ】図９は、デコリンで治療した糸球体腎炎ラットの糸球体中の、ＥＤＡ＋フィブロネクチン、およびテネイシンの蓄積を示す。（Ｂ）抗ＥＤＡフィブロネクチン抗体で染色した糸球体腎炎ラットからの糸球体の免疫蛍光の顕微鏡写真。符号は、図８Ｂに記載の通りである。いずれの動物の場合も、糸球体の数の平均の最大標準誤差は、低い糸球体間の変数を示す０．１１であった。例示した糸球体の最大数は：ＮＤ，４．０；２Ｄ，３．５；４Ｄ，１．０；６Ｄ，１．５である。写真を６０秒の露光時間、同一条件下で撮影した。倍率×５００。抗テネイシン抗体で染色した、糸球体腎炎ラットからの糸球体の、免疫蛍光の顕微鏡写真もまた、得た。ラットをデコリンを４回または６回注射して治療したところ、ラットは、デコリンで治療しなかったラットまたはデコリンを２回注射して治療したラットが有するよりも少ないテネイシンを糸球体中に有していた。ＥＤＡ＋フィブロネクチンおよびテネイシンはどちらも、デコリンで治療しなかったラットまたはデコリンを２回注射して治療したラットの腎炎の糸球体において、著しく増加していた。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８Ａ】
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【図８Ｂ】
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【図９Ａ】
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【図９Ｂ】
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