(57)【要約】【課題】リガンドを効率よく担持した担体を再現性よく製造すること。【解決手段】ゼラチンおよびアラビアゴムを含み、かつリガンドを担持した担体の製造方法であって、アラビアゴム（Ａ）に対するゼラチン（Ｇ）の比率（Ｇ／Ａ）を０．５〜１．５で用いて担体を製造する工程と、製造された前記担体に、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド法を用いてリガンドを担持させる工程とを具備する方法、並びに前記方法により製造される担体。【選択図】    なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
ゼラチンおよびアラビアゴムを含み、かつリガンドを担持した担体の製造方法であって、
アラビアゴム（Ａ）に対するゼラチン（Ｇ）の比率（Ｇ／Ａ）を０．５〜１．５で用いて担体を製造する工程と、
製造された前記担体に、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド法を用いてリガンドを担持させる工程と
を具備することを特徴とする方法。
【請求項２】
前記担体が、コアセルベートの形態を有することを特徴とする請求項１に記載の方法。
【請求項３】
ゼラチンおよびアラビアゴムを含み、かつリガンドを担持した担体であって、アラビアゴム（Ａ）に対するゼラチン（Ｇ）の比率（Ｇ／Ａ）を０．５〜１．５で用いて担体を製造し、製造された前記担体に、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド法を用いてリガンドを担持させることにより得られる担体。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、ゼラチンおよびアラビアゴムを含み、かつリガンドを効率よく担持した担体、並びに該担体の製造方法に関する。本発明のリガンドを担持した担体は、粒子凝集反応、酵素免疫反応、化学発光法などの担体を用いた免疫学的測定に使用可能である。
【０００２】
【従来の技術】
抗原や抗体を固定化した担体は、粒子凝集法などの免疫学的な検査に利用されている。この担体は、生物由来担体と人工担体に大別することができる。前者は、動物赤血球などが代表で、ヒツジ血球などをホルマリンやグルタルアルデヒドで固定化して使用される。しかし、生物由来であるため表面に存在する抗原部位が交差反応を引き起こし、目的とする凝集反応を正確に検出できない場合がある。
【０００３】
この欠点を補うために人工担体が開発された。その中でも生体由来のゼラチンと水溶性多糖類を用いる複合コアセルベートが使用されている。ゼラチンと水溶性多糖類であるアラビアゴムを使用する複合コアセルベートの歴史は古く、非特許文献１（ＨＧ  Ｂｕｎｄｅｎｂｅｒｇ  ｄｅ  Ｊｏｎｇ．  Ｉｎ  Ｃｏｌｌｏｉｄ  Ｓｃｉｅｎｃｅ  １９４９  Ｖｏｌ  ２，  Ａｍｓｔｅｒｄａｍ）によって紹介され、その後、数々の検討がなされている。特許文献１（特開昭５９−３５１４３）では、ゼラチン、水溶性多糖及びメタリン酸イオンからコアセルベートを作成する方法を述べている。また、特許文献２（特公平７−８６５０８）で木暮らは、リガンド固定用担体の検討を行い、ゼラチンとアラビアゴムを用いて親水性有機溶媒の存在条件下でコアセルベートを形成し、その際に親水性有機溶媒、ゼラチン（Ｇ）、アラビアゴム（Ａ）の濃度と比率が、担体の非特異凝集に大きく影響することを突き止めた。該考案によると、２９〜６５％のエタノールに代表される親水性有機溶媒と０．０１〜２％のゼラチンと０．０１〜２％のアラビアゴムを、アラビアゴムに対するゼラチンの比率（以下、本明細書においてＧ／Ａともいう）を０．４〜２．４で使用することにより、非特異凝集が起こりにくいとした。また該考案によると、Ｇ／Ａが０．４未満ではコアセルベートが形成されず、Ｇ／Ａが２．４以上では不定形粒子となると報告している。
【０００４】
これらのゼラチン／アラビアゴムコアセルベートに抗原や抗体を固定するには、数多くの方法が行われている。タンニン酸処理のような物理吸着によるものや、共有結合による結合方法が挙げられる（非特許文献２（石川榮治ら  酵素免疫測定法  １９７８年  医学書院  東京）参照）。共有結合法は、結合が強固で、担体に多くの抗原、抗体を結合させることが出来る優れた方法である。この方法の中でも、カルボキシル基とアミノ基の間の結合を利用した方法として、主に混合酸無水物法とカルボジイミド法が知られている。しかしながら、これらは操作上、再現性に難点があるという問題点がある。そこで、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド（Ｎ−Ｈｙｄｏｒｏｘｙｓｕｃｃｉｎｉｍｉｄｅ）法が考案された（非特許文献３（Ｈ  Ｈｏｓｏｄａ  ｅｔ  ａｌ．Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ  ｏｆ  ｃｏｒｔｉｃｏｓｔｅｒｏｉｄ  ｈａｐｔｅｎｓ  ｐｏｓｓｅｓｓｉｎｇ  ｔｈｅ  ｂｒｉｄｇｅ  ａｔ  ｔｈｅ  Ｃ−４  ｐｏｓｉｔｉｏｎ．  Ｃｈｅｍ  Ｐｈａｒｍ．  Ｂｕｌｌ．  １９８０，  ２８：  １２９４）および非特許文献４（Ｈ  Ｈｏｓｏｄａ  ｅｔ  ａｌ．  Ｔｈｅ  ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｓｔｅｒｏｉｄ  Ｎ−ｈｙｄｒｏｓｕｃｃｉｎｉｍｉｄｅ  ｅｓｔｅｒｓ  ａｎｄ  ｔｈｅｉｒ  ｒｅａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ  ｗｉｔｈ  ｂｏｖｉｎｅ  ｓｅｒｕｍ  ａｌｂｕｍｉｎ．  Ｃｈｅｍ  Ｐｈａｒｍ．  Ｂｕｌｌ．  １９７９，  ２７：  ７４２）参照）。また、特許文献３（特開２００１−３３０６１４）において佐藤らは、先に述べたゼラチンアラビアゴムコアセルベートに、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド法によって抗体を結合させる方法を報告している。
【０００５】
【非特許文献１】
ＨＧ  Ｂｕｎｄｅｎｂｅｒｇ  ｄｅ  Ｊｏｎｇ．  Ｉｎ  Ｃｏｌｌｏｉｄ  Ｓｃｉｅｎｃｅ  １９４９  Ｖｏｌ  ２，  Ａｍｓｔｅｒｄａｍ
【特許文献１】
特開昭５９−３５１４３号公報
【特許文献２】
特公平７−８６５０８号公報
【非特許文献２】
石川榮治ら  酵素免疫測定法  １９７８年  医学書院  東京
【非特許文献３】
Ｈ  Ｈｏｓｏｄａ  ｅｔ  ａｌ．  Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ  ｏｆ  ｃｏｒｔｉｃｏｓｔｅｒｏｉｄ  ｈａｐｔｅｎｓ  ｐｏｓｓｅｓｓｉｎｇｔｈｅ  ｂｒｉｄｇｅ  ａｔ  ｔｈｅ  Ｃ−４  ｐｏｓｉｔｉｏｎ．  Ｃｈｅｍ  Ｐｈａｒｍ．  Ｂｕｌｌ．  １９８０，  ２８：  １２９４
【非特許文献４】
Ｈ  Ｈｏｓｏｄａ  ｅｔ  ａｌ．  Ｔｈｅ  ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｓｔｅｒｏｉｄ  Ｎ−ｈｙｄｒｏｓｕｃｃｉｎｉｍｉｄｅ  ｅｓｔｅｒｓ  ａｎｄ  ｔｈｅｉｒ  ｒｅａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ  ｗｉｔｈ  ｂｏｖｉｎｅ  ｓｅｒｕｍ  ａｌｂｕｍｉｎ．  Ｃｈｅｍ  Ｐｈａｒｍ．  Ｂｕｌｌ．  １９７９，  ２７：  ７４２
【特許文献３】
特開２００１−３３０６１４号公報
【０００６】
【発明が解決しようとする課題】
このような状況下、本発明者は、ゼラチンアラビアゴムコアセルベートを作製し、特許文献３（特開２００１−３３０６１４）で佐藤らが述べるＮ−ヒドロキシスクシンイミド法によって抗体結合を試みたところ、ほとんど抗体を結合させることの出来ないコアセルベートができる場合があることを新たに見出した。そこで本発明は、本発明をなすにあたり新たに見出したこの問題点を解決すること目的とする。すなわち、本発明は、リガンドを効率よく結合した担体を再現性よく製造することを目的とする。
【０００７】
なお、上述の特許文献２（特公平７−８６５０８）で木暮らは、ゼラチンアラビアゴムコアセルベートにおけるＧ／Ａを、非特異反応の発生を防ぐことを目的として決定しているが、「抗体等のリガンドを効率よく結合させる」という観点からＧ／Ａを検討しておらず、またこのような観点から検討を行った他の報告例もない。また、粒子凝集反応等の免疫学的反応に用いる担体が、リガンドを効率よく結合していることは必須事項であるため、効率よくリガンドを結合できる担体の製造には強い要望があるものと考える。
【０００８】
【課題を解決するための手段】
上記課題を解決するため検討を重ねた結果、本発明者は、ゼラチンとアラビアゴム比率（Ｇ／Ａ）が、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド法によるリガンド結合に多大な影響を与えていることを発見し、本発明を完成させるに至った。
【０００９】
すなわち本発明は、以下の手段を提供する。
（１）ゼラチンおよびアラビアゴムを含み、かつリガンドを担持した担体の製造方法であって、
アラビアゴム（Ａ）に対するゼラチン（Ｇ）の比率（Ｇ／Ａ）を０．５〜１．５で用いて担体を製造する工程と、
製造された前記担体に、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド法を用いてリガンドを担持させる工程と
を具備することを特徴とする方法。
（２）前記担体が、コアセルベートの形態を有することを特徴とする請求項１に記載の方法。
（３）ゼラチンおよびアラビアゴムを含み、かつリガンドを担持した担体であって、アラビアゴム（Ａ）に対するゼラチン（Ｇ）の比率（Ｇ／Ａ）を０．５〜１．５で用いて担体を製造し、製造された前記担体に、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド法を用いてリガンドを担持させることにより得られる担体。
【００１０】
【発明の実施の形態】
以下、本発明のリガンドを担持した担体およびその製造方法について詳細に説明する。なお、以下の記載は、本発明を説明するためのものであって、本発明を限定するものではない。
【００１１】
本発明の担体は、ゼラチンおよびアラビアゴムを含み、かつリガンドを効率よく担持したものである。本発明の担体は、担持しているリガンドの種類に応じて、免疫学的な分析、生化学的な分析、遺伝学的な分析等、種々の分析反応に利用することができる。
【００１２】
本発明の担体は、ゼラチンおよびアラビアゴムを含むものであり、ここで「含む」とは、ゼラチンおよびアラビアゴムを主成分として担体が構成されているが、その他必要に応じて任意成分を含んでいてもよいことを意味する。任意成分としては、例えば、担体に所望の性質を付与するために添加される物質、および担体を形成する際に添加され担体に混入する化学物質等が挙げられる。ここで「担体に所望の性質を付与するために添加される物質」には、担体内に封入される後述の芯物質が含まれる。
【００１３】
本発明の担体原料となるゼラチンは、当該技術分野でゼラチンアラビアゴムコアセルベートを調製する際に使用可能なものであればよく、主として、ウシ、ブタの骨や皮に含まれるコラーゲン質を分解生成したものを使用することができる。ゼラチンおよびアラビアゴムは、商業的に入手可能なものを使用することができる。
【００１４】
また本発明において担体は任意の形態であり得、例えば、コアセルベートのような粒子の形態、あるいはマイクロタイタープレートのウェル等の容器底面上に固相させた一層の膜の形態とすることができる。
【００１５】
担体がコアセルベートの形態を有する場合、コアセルベート径（直径）は、コアセルベート形成終了時のｐＨおよびゼラチン／アラビアゴム比（Ｇ／Ａ）により適宜調節することができるが（後述の実施例の記載参照）、一般に免疫学的分析に使用する担体を作製する場合には、コアセルベート径（直径）を例えば１〜１０μｍとすることができる。
【００１６】
上記担体に担持させる「リガンド」は、本発明の担体を用いて行われる分析反応に関与するものであり、免疫学的な分析、生化学的な分析、遺伝学的な分析等、任意の分析反応に関与するものであり得る。リガンドとして、例えば、抗原、抗体、酵素、ホルモン、細胞、核酸等が挙げられるが、これに限定されない。
【００１７】
なお、本発明において、リガンドの担体への結合は、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド法によるもの、すなわち、担体のカルボキシル基とリガンドのアミノ基との共有結合によるものであるため、リガンド自身が本来アミノ基を有しているものであることが望ましい。担体にリガンドを担持させる手法については、後で説明する。
【００１８】
先に、ゼラチンおよびアラビアゴムを含む担体（リガンドを担持していないもの）の調製の仕方について説明する。ここでは、その形態がコアセルベートである場合を例に説明する。
【００１９】
まず、ゼラチンのゲル化温度以上（好ましくは３５℃以上、例えば約４０℃）において、０．０１〜２重量％のゼラチンと０．０１〜２重量％のアラビアゴムを、Ｇ／Ａ＝０．５〜１．５、好ましくは０．５〜１．１、より好ましくは０．５〜１．０、更に好ましくは０．６〜０．９になるように、２９〜６５重量％の水溶性有機溶媒中で混合する。ここで水溶性有機溶媒は、メタノール、エタノール、プロパノール、アセトン等が使用可能であるが、毒性等を考慮すればエタノールが望ましい。また、Ｇ／Ａが１．６を超えるとコアセルベート径の調製は困難となる（後述の表１、２参照）。コアセルベートの調製液中には、当該分野で公知のとおり、コアセルベート粒子の凝集を防止するために、界面活性剤を添加しておくことが好ましい。界面活性剤の種類および添加量については、その効果を奏する範囲内において当業者であれば適宜設定することができる。
【００２０】
次いで、酸（例えば酢酸、プロピオン酸、希塩酸、希硫酸）の添加により、ゼラチンアラビアゴムコアセルベートを析出させる。ここで酸の添加量は、作製したいコアセルベート径に応じて適宜設定する（図１参照）。その後ゲル化温度以下（好ましくは３５℃以下、例えば約１０℃）に冷却し、グルタルアルデヒド、ホルマリン等のアルデヒドで架橋する。
【００２１】
また、コアセルベートの形態を有する担体の作製にあたっては、芯物質を加えて、芯物質をコアセルベートで包んだいわゆるマイクロカプセルとすることもできる。所望の芯物質を用いることにより、コアセルベートの比重調整、コアセルベートの磁性化、着色等を行うことが可能である。その際には適当な界面活性剤（例えばＴｗｅｅｎ２０、Ｔｗｅｅｎ８０、Ｔｒｉｔｏｎ  Ｘ−１００など）を添加して、分散性を上げておくことが望ましい。芯物質としては、ＳｉＯ２（ガラス）、ＴｉＯ２、ＣｕＯ、ＣｏＯ、Ｆｅ２Ｏ３などの金属酸化物の微粉末、カーボン、タルクなど種々のものを利用することができる。磁性体を含有させた担体は、適宜の磁気発生手段（永久磁石、電磁石等）により、液体中での攪拌、洗浄、測定等の各種処理工程を短時間で行うことができる。なお、当業者であれば、担体を所望の性質とするために適切な芯物質の種類および芯物質の使用量について適宜選択することができる。
【００２２】
また、コアセルベート以外の形態を有する担体、例えば容器底面上に固相させた膜状の担体については、以下に記載のとおり調製することができる。すなわち、ゼラチンのゲル化温度以上において、０．０１〜２重量％のゼラチン（Ｇ）と０．０１〜２重量％のアラビアゴム（Ａ）をＧ／Ａ比０．５〜１．５となるように塩類を含まない水溶液の溶液中で混合し、これをゲル化温度以下に冷却し、アルデヒドで架橋することにより調製することができる。
【００２３】
次に、上述の手法で調製されたコアセルベートの形態の担体にリガンドを担持させる方法、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド法について説明する。ここでは、リガンドとして抗体を用いた場合を例に説明する。
【００２４】
上述のとおり調製された、アルデヒドで架橋済みコアセルベートに対して、これを純水で洗浄後、必要に応じて染色を行い、公知のＮ−ヒドロキシスクシンイミド法を適用する。まず、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミドとカルボジイミドを溶かした水溶液（ＰＢＳ（Ｐｈｏｓｐｈａｔｅ−ｂｕｆｆｅｒｅｄ  ｓａｌｉｎｅ）やＭＥＳ（２−Ｍｏｒｐｈｏｌｉｎｏｅｔｈａｎｅｓｕｌｆｏｎｉｃ  ａｃｉｄ溶液））に、先の架橋済みコアセルベートを懸濁し、室温で２時間から一晩（例えば６〜１２時間）反応させる。反応後、コアセルベートを遠心洗浄し、目的とする抗体を適切なバッファー（例えばＰＢＳ、クエン酸リン酸バッファー、ＨＥＰＥＳバッファー）に適切な濃度で溶解したものを加え、室温あるいは冷蔵（２〜８℃）で２時間から一晩反応させる。反応後、ＢＳＡ（ｂｏｖｉｎｅ  ｓｅｒｕｍ  ａｌｂｕｍｉｎ）やゼラチン、動物血清などで、未反応の官能基をブロックし（ブロッキング）、所望の免疫学的反応に供される抗体を担持したコアセルベートが作製される。作製されたコアセルベートは、そのまま目的とする免疫学的反応用の溶液に置換して目的の反応に利用してもよいし、バイアル瓶等に分注して凍結乾燥し、長期保存をすることも可能である。
【００２５】
本発明で用いるＮ−ヒドロキシスクシンイミド法は、担体のカルボキシル基とリガンドのアミノ基を結合させる方法であるが、当該方法において公知のとおり、担体のカルボキシル基を活性化させる物質として、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド以外に、１−ヒドロキシベンゾトリアゾール、３−ヒドロキシ−４−オキソ−３，４−ジヒドロ−１，２，３−ベンゾトリアジンを含むＮ−ヒドロキシ化合物を使用することができる。また、当該方法において公知のとおり、リガンドの担体への結合反応時に脱水剤として機能するカルボジイミドとして、ＥＤＡＣ；１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド、ＤＩＰＣ；ジイソプロピルカルボジイミド等を使用することができる。なお、後述の実施例では、活性化剤としてＮ−ヒドロキシスクシンイミドを、脱水剤としてＥＤＡＣを使用した。
【００２６】
上述のとおり、本発明に従ってゼラチンとアラビアゴムを所定のＧ／Ａ比で用いて担体を調製し、当該担体にＮ−ヒドロキシスクシンイミド法を適用してリガンドを担持させることにより、リガンドを効率よく担持した担体を再現性よく製造することが可能となる。
【００２７】
【実施例】
以下、本発明を実施例によりさらに詳しく説明するが、本発明はこれに限定されるものではない。
【００２８】
＜実施例１＞
本実施例では、磁性体を封入したゼラチンアラビアゴムコアセルベートにおけるＧ／Ａが抗体結合に及ぼす影響を調べた。
【００２９】
［方法］
（１）ゼラチンアラビアゴムコアセルベートの形成
０．６ｇのアラビアゴム（仙波糖化工業）をＥｔＯＨ：Ｈ２Ｏ（２：１）に溶かし、更にＴｗｅｅｎ２０、フェリコロイドＷ１０（タイホー工業）を添加し、１Ｎ  ＮａＯＨでｐＨを調整したのち、４０℃に加温した４％ゼラチン水溶液（ニッピ工業）を３〜２４ｍＬの各濃度で混合する。攪拌しながら、酢酸（１→１０（１０倍希釈））をゆっくり添加し、コアセルベートを作製する。ｐＨ５．５〜４．０の間で、予め求めたｐＨにおいて酢酸添加を中止して、各ゼラチン添加量でほぼ同一径のコアセルベートを作製した。コアセルベートが形成されたら、氷水の入ったバットにて攪拌して１０℃以下に冷却し、ゲル化した。後、グルタルアルデヒド（和光純薬製）を２ｍＬ加え、そのまま３０分間攪拌し、室温で一晩静置して、Ｇ／Ａ比の異なる各コアセルベートを架橋した。
【００３０】
得られたコアセルベートは、粒度分布測定器（ＨＯＲＩＢＡ製作所  ＣＡＰＡ７００）を用いてコアセルベート粒径がほぼ同一であることを確認した。
【００３１】
（２）Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド法によるウサギ抗ヒトＩｇＧの結合
架橋した各コアセルベートは、純水で洗浄後、２０％（Ｖ／Ｖ）に調整した。その１０ｍＬを分取して、沈さに１０ｍＬのＮ−ヒドロキシスクシンイミド（ナカライテスク（株））０．０１ｇ／ｍＬとＥＤＡＣ（Ｓｉｇｍａ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ）０．０１ｇ／ｍＬ水溶液を加え、攪拌しながら室温で２時間反応させた。反応後、コアセルベートを洗浄し、ウサギ抗ヒトＩｇＧ（Ｊａｃｋｓｏｎ）を０．１Ｍクエン酸リン酸バッファー（ｐＨ５）に５μｇ／ｍＬになるように溶解したものを加えて、室温で一晩反応させた。反応後はＢＳＡ／ＰＢＳ（０．１％ＢＳＡ含ＰＢＳ  ｐＨ７．２）で３回洗浄して、ウサギ抗ヒトＩｇＧ感作粒子とした。また、同様に抗体を加えない未感作粒子も同様に作製した。
【００３２】
（３）ウサギ抗ヒトＩｇＧ結合量の測定
ウサギ抗ヒトＩｇＧ感作粒子と未感作粒子をＢＳＡ／ＰＢＳ  ｐＨ７．２で０．５（Ｖ／Ｖ）に希釈し、その２００μＬを分取して遠心し、沈さに、ＢＳＡ／ＰＢＳ  ｐＨ７．２で予め求めた最適濃度に希釈した抗ウサギＩｇＧ抗体ＰＯＤ標識（フナコシ）を１ｍＬ加えて攪拌しながら室温で１時間反応させた。後、ＢＳＡ／ＰＢＳ  ｐＨ７．２で６回洗浄して、沈さに１ｍＬの基質溶液（ＰＯＤ含、Ｈ２Ｏ２添加クエン酸バッファー  ｐＨ５）を加えて室温で１５分間発色の後、３Ｎ硫酸０．５ｍＬを加えて遠心し、上清のＯＤ４９２ｎｍを測定した。
【００３３】
［結果］
ゼラチン／アラビアゴム比（Ｇ／Ａ）を変えて作製した各コアセルベートに対するウサギ抗ヒトＩｇＧ抗体の結合量を、上述のとおりＥＩＡで測定し、その結果を表１および表２に示す。
【００３４】
【表１】
2004157040.tif 000002
【００３５】
【表２】
2004157040.tif 000003
【００３６】
表１、２に示すように、ウサギ抗ヒトＩｇＧは、Ｇ／Ａ比が大きくなるほど良く結合することが判明した。Ｇ／Ａ比が大きくなるほど抗体が多く結合するが、Ｇ／Ａ＝０．８程度でプラトーになっていた。
【００３７】
図１に示すように、コアセルベート径は主にゼラチン量（Ｇ／Ａ比）とコアセルベート形成終了時のｐＨによって決定され、Ｇ／Ａが大きくなるとコアセルベート作成に際してｐＨの変化による径の変化が大きくなり、特に小さな径のものは作りにくくなった。またＧ／Ａ＝１．６以上ではコアセルベートが不定形（綺麗な球状ではない）になり易くなった。このことから免疫学的な凝集反応に用いる担体としては、Ｇ／Ａ比０．５〜１．５が好ましく、０．５〜１．１がより好ましく、０．５〜１．０が更に好ましいと考えられた。
【００３８】
なお、未感作粒子に関しては、Ｇ／Ａが０．５以下（本発明の範囲外）では、Ｇ／Ａ＝０．５〜１．５（本発明の範囲内）に比べて非特異反応の増加が観察されたが、Ｇ／Ａ＝０．５〜１．５（本発明の範囲内）においては非特異反応もなくコントロールとして良好であった。
【００３９】
＜実施例２＞
本実施例では、ゼラチン（Ｇ）とアラビアゴム（Ａ）をＧ／Ａ＝０．６７で用いて調製したコアセルベートに対し、各種抗体結合法により抗体を結合させ、抗体結合法の違いにより抗体結合量に差がみられるか調べた。
【００４０】
［方法］
（１）ゼラチンアラビアゴムコアセルベートの形成
上記実施例１と同じ手法に従って、ゼラチン０．４ｇおよびアラビアゴム０．６ｇ（Ｇ／Ａ＝０．６７）を用いて直径約１０μｍのゼラチンアラビアゴムコアセルベートを調製した。
【００４１】
（２）Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド法によるウサギ抗ヒトＩｇＧの結合
上記実施例１と同じ手法（Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド法）に従って、ウサギ抗ヒトＩｇＧ感作粒子を作製した。
【００４２】
（３）染色法によるウサギ抗ヒトＩｇＧの結合
上記（１）で調製した２０％（Ｖ／Ｖ）コアセルベートを純水で遠心洗浄し、沈さに、染料（Ｒｅｄ  Ｅ−８ＢＮ；日本化薬（株））を１．０重量％に溶かした１．５炭酸ナトリウム、３％ＮａＣｌ溶液を加えて、２０％濃度で一晩攪拌して染色を行った。後、純水で３回洗浄して、染色粒子とした。この染色粒子の染料を介して抗体結合を行った。染色済みの粒子に、ウサギ抗ヒトＩｇＧ（Ｊａｃｋｓｏｎ）を０．０１Ｍ  ＰＢＳ  ｐＨ７．２に５μｇ／ｍＬになるように溶解したものを加えて、室温で一晩反応させた。以後、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド法によるウサギ抗ヒトＩｇＧの結合と同様に操作し、ウサギ抗ヒトＩｇＧ感作粒子を作製した。
【００４３】
（４）タンニン酸法によるウサギ抗ヒトＩｇＧの結合
上記（１）で調製した２０％（Ｖ／Ｖ）コアセルベートを純水で遠心洗浄し、沈さにタンニン酸０．１ｍｇ／ｍＬのタンニン酸溶液を等量分注して室温で２時間反応させた。後に純水で３回洗浄してタンニン酸処理粒子とした。以後、同様に操作し、タンニン酸処理粒子にウサギ抗ヒトＩｇＧ（Ｊａｃｋｓｏｎ）を感作した。
【００４４】
（５）グルタルアルデヒド法によるウサギ抗ヒトＩｇＧの結合
上記（１）で調製したコアセルベートを、１％グルタルアルデヒド中に２０％（Ｖ／Ｖ）濃度で浮遊し、室温で一晩反応させた。以後、同様に操作し、グルタルアルデヒド処理粒子にウサギ抗ヒトＩｇＧ（Ｊａｃｋｓｏｎ）を感作した。
【００４５】
（６）ウサギ抗ヒトＩｇＧ結合量の測定
上述のとおり各種抗体結合法により調製したウサギ抗ヒトＩｇＧ感作粒子に対し、上記実施例１と同様の手法に従ってＩｇＧ結合量を測定した。
【００４６】
［結果］
抗体結合法の違いによる抗体結合量の比較
図２に、染色法、タンニン酸法、グルタルアルデヒド法、Ｎ−ヒドロキシスクシンインド法による抗体結合量の違いを示した。図２によると、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド法において最も抗体結合量が高く、コアセルベートの抗体感作法としてＮ−ヒドロキシスクシンイミド法が有用であることが示された。
【００４７】
【発明の効果】
以上、説明したとおり、本発明のリガンドを担持した担体の製造方法によれば、リガンドを効率よく結合した担体を再現性よく作製することが可能である。このように本発明の担体は、免疫学的反応等の分析反応に関与するリガンドを高効率に結合しているため、本発明の担体を分析反応に使用することにより、高感度な分析反応を行うことが可能となる。また、本発明の方法を用いて作製される磁性体を封入した担体粒子を使用することにより、Ｂ／Ｆ分離に優れたイムノアッセイなどを行うことも可能となる。
【図面の簡単な説明】
【図１】コアセルベート径に及ぼすゼラチン量とｐＨ（コアセルベート形成終了時）との関係を示すグラフ図。
【図２】各種抗体感作方法による、コアセルベートへの抗体感作量の違いを示すグラフ図。
【図１】
2004157040.tif 000004
【図２】
2004157040.tif 000005