(57)【要約】【課題】本発明は、新規エステル化合物及び性誘引剤としてのその用途を提供することを目的とする。【解決手段】次式（Ｉ）：【化１】2004161654.tif 000009で示される化合物及び該化合物を有効成分として含有する性誘引剤。【選択図】  なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
次式（Ｉ）：
【化１】
2004161654.tif 000007
で示される２，２−ジメチル−３−（１−メチルエテニル）シクロブタンメチル  ３−メチル−３−ブテネート。
【請求項２】
次式（Ｉ）：
【化２】
2004161654.tif 000008
で示される化合物を有効成分として含有する性誘引剤。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、新規エステル化合物及び該化合物を有効成分として含有する性誘引剤に関する。
【０００２】
【従来の技術】
ミカンヒメコナカイガラムシ（Ｐｓｅｕｄｏｃｏｃｃｕｓ  ｃｒｙｐｔｕｓ）は、ハウスミカンなどの施設栽培で多大な被害を与えている、日本のカンキツで発生する最も重要な害虫である。ミカンヒメコナカイガラムシは葉と葉の重なりの間など目立たないところに潜む性質が強く、低密度時にはその存在を把握するのが困難である。このため、この害虫の防除は被害が発生してから行われることから手遅れになることが多く、効率的な発生予察の確立が緊急の課題となっている。
【０００３】
一般的に、コナカイガラムシを含む多くのカイガラムシでは雌と雄とで成虫の形態が著しく異なる。雄成虫は翅があり飛翔できるが寿命は数時間から１日くらいと非常に短命であるのに対し、雌成虫は翅がなく移動能力は高くないが、雄に比べると長寿である。従って、雄は限られた期間の間に雌を見つけて交尾する必要があり、雌を効率よく探すために、カイガラムシの中には、性フェロモンを利用するものも存在する。近年カイガラムシ類でもフェロモンの解明が進み、その構造・成分が明らかになったものがある（例えば、ミカンコナカイガラムシ（Ｐｌａｎｏｃｏｃｃｕｓ  ｃｉｔｒｉ）、クワコナカイガラムシ（Ｐｓｅｕｄｏｃｏｃｃｕｓ  ｃｏｍｓｔｏｃｋｉ）、Ｐｌａｎｏｃｏｃｃｕｓ  ｆｉｃｕｓ、アカマルカイガラムシ（Ａｏｎｉｄｉｅｌｌａ  ａｕｒａｎｔｉｉ）、キマルカイガラムシ（Ａｏｎｉｄｉｅｌｌａ  ｃｉｔｒｉｎａ）、ナシマルカイガラムシ（Ｃｏｍｓｔｏｃｋａｓｐｉｓ  ｐｅｒｎｉｃｉｏｓａ）、クワシロカイガラムシ（Ｐｓｅｕｄａｕｌａｃａｓｐｉｓ  ｐｅｎｔａｇｏｎａ）、Ｍａｔｓｕｃｏｃｃｕｓ属５種等、非特許文献１〜１２参照）。
【０００４】
一方、最近は昆虫の性フェロモンを利用した大量誘殺や雌雄間交信撹乱等の防除方法に関する薬剤や技術の研究が盛んに行なわれている。これらの方法では、性フェロモンを利用して雄成虫を一定の場所に誘引し捕殺したり、あるいは雌雄間の正常な配偶行動を人為的に撹乱して次世代密度を減少させることにより害虫防除を行うことができる。また、性フェロモンを用いて防除対象害虫の発生予察を行うこともできる。性フェロモンを利用した害虫防除は環境に優しい環境負荷低減技術の一つとして位置付けられており、今後さらに多くの害虫について開発されることが期待されている。
【０００５】
このような状況において、本発明者は、ミカンヒメコナカイガラムシの生態、天敵に関する研究を行う中で、ミカンヒメコナカイガラムシにおいても性フェロモンが存在することを初めて見出した。
【０００６】
【特許文献１】
特公昭６１−０３６７３８号公報
【非特許文献１】
Ｂｉｅｒｌ−Ｌｅｏｎｈａｒｄｔ  Ｂ．  Ａ．，  Ｄ．  Ｓ．  Ｍｏｒｅｎｏ，  Ｍ．  Ｓｃｈｗａｒｚ，  Ｈ．  Ｓ．  Ｆｏｒｓｔｅｒ，  Ｊ．  Ｒ．  Ｐｌｉｍｍｅｒ  ａｎｄ  Ｅ．  Ｄ．  ＤｅＶｉｌｂｉｓｓ  （１９８０）  Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｔｈｅ  ｐｈｅｒｏｍｏｎｅｏｆ  ｔｈｅ  ｃｏｍｓｔｏｃｋ  ｍｅａｌｙｂｕｇ．  Ｌｉｆｅ  Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２７：  ３９９−４０２．
【非特許文献２】
Ｂｉｅｒｌ−Ｌｅｏｎｈａｒｄｔ  Ｂ．  Ａ．，  Ｄ．  Ｓ．  Ｍｏｒｅｎｏ，  Ｍ．  Ｓｃｈｗａｒｚ，  Ｊ．  Ｆａｒｇｅｒｌｕｎｄ  ａｎｄ  Ｊ．  Ｒ．Ｐｌｉｍｍｅｒ  （１９８１）  Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ，  ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ  ａｎｄ  ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ  ｏｆ  ｔｈｅ  ｓｅｘ  ｐｈｅｒｏｍｏｎｅ  ｏｆ  ｔｈｅ  ｃｉｔｒｕｓ  ｍｅａｌｙｂｕｇ，  Ｐｌａｎｏｃｏｃｃｕｓ  ｃｉｔｒｉ  （Ｒｉｓｓｏ）．  Ｔｅｔｒａｈｅｄｒ．  Ｌｅｔｔ．２２：  ３８９−３９２．
【非特許文献３】
Ｄｕｎｋｅｌｂｌｕｍ  Ｅ．，  Ｚ．  Ｍｅｎｄｅｌ，  Ｆ．  Ａｓｓａｅｌ，  Ｍ．  Ｈａｒｅｌ，  Ｌ．  Ｋｅｒｈｏａｓ  ａｎｄ  Ｅｉｎｈｏｒｎ  （１９９３）  Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｔｈｅ  ｆｅｍａｌｅ  ｓｅｘ  ｐｈｅｒｏｍｏｎｅ  ｏｆ  ｔｈｅ  Ｉｓｒａｅｌｉ  ｐｉｎｅ  ｂａｓｅ  ｓｃａｌｅ  Ｍａｔｓｕｃｏｃｃｕｓ  ｊｏｓｅｐｈｉ．  Ｔｅｔｒａｈｅｄｒ．  Ｌｅｔｔ．  ３４：２８０５−２８０８．
【非特許文献４】
Ｅｉｎｈｏｒｎ  Ｊ．，  Ｐ．  Ｍｅｎａｓｓｉｅｕ，  Ｃ．  Ｍａｌｏｓｓｅ  ａｎｄ  Ｐ．  Ｄｕｃｒｏｔ  （１９９０）  Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｔｈｅ  ｓｅｘ  ｐｈｅｒｏｍｏｎｅ  ｏｆ  ｔｈｅ  ｍａｒｉｔｉｍｅ  ｐｉｎｅ  ｓｃａｌｅ  Ｍａｔｓｕｃｏｃｃｕｓ  ｆｅｙｔａｕｄｉ．  Ｔｅｔｒａｈｅｄｒ．  Ｌｅｔｔ．  ３１：  ６６３３−６６３６．
【非特許文献５】
Ｇｉｅｓｅｌｍａｎｎ  Ｍ．  Ｊ．，  Ｄ．  Ｓ．  Ｍｏｒｅｎｏ，  Ｊ．  Ｆａｒｇｅｒｌｕｎｄ，  Ｈ．  Ｔａｓｈｉｒｏ  ａｎｄ  Ｗ．Ｌ．  Ｒｏｅｌｏｆｓ  （１９７９ａ）  Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｔｈｅ  ｓｅｘ  ｐｈｅｒｏｍｏｎｅ  ｏｆ  ｔｈｅ  ｙｅｌｌｏｗ  ｓｃａｌｅ．  Ｊ．  Ｃｈｅｍ．  Ｅｃｏｌ．  ５：  ２７−３３．
【非特許文献６】
Ｇｉｅｓｅｌｍａｎｎ  Ｍ．  Ｊ．，  Ｒ．  Ｅ．  Ｒｉｃｅ，  Ｒ．  Ａ．  Ｊｏｎｅｓ  ａｎｄ  Ｗ．  Ｌ．  Ｒｏｅｌｏｆｓ  （１９７９ｂ）  Ｓｅｘ  ｐｈｅｒｏｍｏｎｅ  ｏｆ  ｔｈｅ  Ｓａｎ  Ｊｏｓｅ  ｓｃａｌｅ．  Ｊ．  Ｃｈｅｍ．  Ｅｃｏｌ．  ５：８９１−９００．
【非特許文献７】
Ｈｅａｔｈ  Ｒ．  Ｒ．，  Ｊ．  Ｒ．  ＭｃＬａｕｇｈｌｉｎ，  Ｊ．  Ｈ．  Ｔｕｍｌｉｎｓｏｎ，  Ｔ．  Ｒ．  Ａｓｈｌｅｙ  ａｎｄＲ．  Ｅ．  Ｄｏｏｌｉｔｔｌｅ  （１９７９）  Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｔｈｅ  ｗｈｉｔｅ  ｐｅａｃｈ  ｓｃａｌｅ  ｓｅｘ  ｐｈｅｒｏｍｏｎｅ：  Ａｎ  ｉｌｌｕｓｔｒａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｍｉｃｒｏ  ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ．  Ｊ．  Ｃｈｅｍ．  Ｅｃｏｌ．  ５：９４１−９５３．
【非特許文献８】
Ｈｉｎｋｅｎｓ  Ｄ．  Ｍ．，  Ｊ．  Ｓ．  ＭｃＥｌｆｒｅｓｈ  ａｎｄ  Ｊ．  Ｇ．  Ｍｉｌｌａｒ  （２００１）  Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ  ａｎｄ  ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ  ｏｆ  ｔｈｅ  ｓｅｘ  ｐｈｅｒｏｍｏｎｅ  ｏｆ  ｔｈｅ  ｖｉｎｅ  ｍｅａｌｙｂｕｇ，  Ｐｌａｎｏｃｏｃｃｕｓ  ｆｉｃｕｓ．  Ｔｅｔｒａｈｅｄｒ．  Ｌｅｔｔ．  ４２：  １６１９−１６２１．
【非特許文献９】
Ｌａｎｉｅｒ  Ｇ．  Ｎ．，  Ｙ．  Ｑｉ，  Ｊ．  Ｒ．  Ｗｅｓｔ，  Ｓ．  Ｃ．  Ｐａｒｋ，  Ｆ．  Ｘ．  Ｗｅｂｓｔａｒ  ａｎｄ  Ｒ．  Ｍ．  Ｓｉｌｖｅｒｓｔｅｉｎ  （１９８９）  Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｔｈｅ  ｓｅｘ  ｐｈｅｒｏｍｏｎｅ  ｏｆ  ｔｈｒｅｅ  Ｍａｔｓｕｃｏｃｃｕｓ  ｐｉｎｅ  ｂａｓｔ  ｓｃａｌｅｓ．  Ｊ．  Ｃｈｅｍ．  Ｅｃｏｌ．  １５：  １６４５−１６５９．
【非特許文献１０】
Ｎｅｇｉｓｈｉ  Ｔ．，  Ｍ．  Ｕｃｈｉｄａ，  Ｙ．  Ｔａｍａｋｉ，  Ｋ．  Ｍｏｒｉ，  Ｔ．  Ｉｓｈｉｗａｔａｒｉ，  Ｓ．  Ａｓａｎｏ  ａｎｄ  Ｋ．  Ｎａｋａｇａｗａ  （１９８０）  Ｓｅｘ  ｐｈｅｒｏｍｏｎｅ  ｏｆ  ｔｈｅ  ｃｏｍｓｔｏｃｋ  ｍｅａｌｙｂｕｇ，  Ｐｓｅｕｄｏｃｏｃｃｕｓ  ｃｏｍｓｔｏｃｋｉ  Ｋｕｗａｎａ：  Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ  ａｎｄ  ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ．  Ａｐｐｌ．  Ｅｎｔｏｍｏｌ．  Ｚｏｏｌ．  １５：  ３２８−３３３．
【非特許文献１１】
Ｒｏｅｌｏｆｓ  Ｗ．，  Ｍ．  Ｇｉｅｓｅｌｍａｎｎ，  Ａ．  Ｃａｒｄｅ，  Ｈ．  Ｔａｓｈｉｒｏ，  Ｄ．  Ｓ．  Ｍｏｒｅｎｏ，  Ｃ．  Ａ．  Ｈｅｎｒｉｃｋ  ａｎｄ  Ｒ．  Ｊ．  Ａｎｄｅｒｓｏｎ  （１９７７）  Ｓｅｘ  ｐｈｅｒｏｍｏｎｅ  ｏｆ  ｔｈｅ  Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ  ｒｅｄ  ｓｃａｌｅ，  Ａｏｎｉｄｉｅｌｌａ  ａｕｒａｎｔｉｉ．  Ｎａｔｕｒｅ  ２６７：  ６９８−６９９．
【非特許文献１２】
Ｒｏｅｌｏｆｓ  Ｗ．，  Ｍ．  Ｇｉｅｓｅｌｍａｎｎ，  Ａ．  Ｃａｒｄｅ，  Ｈ．  Ｔａｓｈｉｒｏ，  Ｄ．  Ｓ．  Ｍｏｒｅｎｏ，  Ｃ．  Ａ．  Ｈｅｎｒｉｃｋ  ａｎｄ  Ｒ．  Ｊ．  Ａｎｄｅｒｓｏｎ  （１９７８）  Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｔｈｅ  Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ  ｒｅｄ  ｓｃａｌｅ  ｓｅｘ  ｐｈｅｒｏｍｏｎｅ．  Ｊ．  Ｃｈｅｍ．  Ｅｃｏｌ．  ４：  ２１１−２２４．
【０００７】
【発明が解決しようとする課題】
本発明は、新規エステル化合物及び該化合物を有効成分として含有する性誘引剤を提供することを目的とする。
【０００８】
【課題を解決するための手段】
本発明者は、前述した状況に鑑みて上記課題を解決するため、コナカイガラムシ類の性フェロモンについてミカンヒメコナカイガラムシを対象に性フェロモンの探索を行い鋭意検討を重ねた結果、その性フェロモンを単離し、構造を決定することに成功し、ミカンヒメコナカイガラムシ性フェロモンの特性ならびにフェロモン成分が２，２−ジメチル−３−（１−メチルエテニル）シクロブタンメチル  ３−メチル−３−ブテネートであることを突き止め、本発明を完成させるに至った。
【０００９】
すなわち、本発明は以下の発明を包含する。
（１）次式（Ｉ）：
【化３】
2004161654.tif 000002
で示される化合物。
【００１０】
（２）前記式（Ｉ）で示される化合物を有効成分として含有する性誘引剤。
前記式（Ｉ）で示される化合物は、ミカンヒメコナカイガラムシより抽出・精製することにより得ることができる。
【００１１】
ここで用いる抽出溶媒としては、一般には有機溶媒、好ましくはメタノール、エタノール、プロパノール、アセトン等の水混和性溶媒及びエーテル、酢酸エチル、クロロホルム、ペンタン、ヘキサン等の水と混和しない有機溶媒が挙げられる。得られた抽出液は濃縮後、精製することにより目的とするエステル化合物を効率よく得ることができる。
【００１２】
精製は、シリカゲルクロマトグラフィー、逆相シリカゲルクロマトグラフィー、吸着クロマトグラフィー、逆相吸着クロマトグラフィー、ガスクロマトグラフィー、高速液体クロマトグラフィー、逆相高速液体クロマトグラフィー等を適宜組み合わせることにより行うことができる。
【００１３】
以上のようにして得られる前記エステル化合物は、ミカンヒメコナカイガラムシに対して性誘引性を示し、性誘引剤として用いることができる。
【００１４】
本発明化合物の性誘引剤としての用法は、前記エステル化合物をそのままトラップに含有させてもよいが、通常は、例えば前記エステル化合物をペンタン、ヘキサン、ジエチルエーテル、アセトン、塩化メチレンなどの適当な有機溶媒に溶解して、ゴムキャップ、毛細管、プラスチック製カプセルなどに封入するか又は、活性炭、シリカゲルなどの不活性粉末又は粒状体に担持吸着させて利用する。性誘引剤としての本発明化合物の使用量及び使用方法に制限はないが、通常上記のように調製される性誘引剤中に本発明化合物をｎｇオーダーで含有させ、これを例えば粘着物質を塗布したトラップ内に載置し、果樹園内に２〜３樹毎に１個設置すればよい。これによりミカンヒメコナカイガラムシの雄成虫は本発明化合物に誘引され粘着物質を塗布されたトラップに捕獲される。
【００１５】
【発明の実施の形態】
以下、実施例により本発明を更に具体的に説明するが、本発明の範囲は、かかる実施例に限定されるものではない。
【００１６】
【実施例】
［実施例１］
（１）  単離操作
性フェロモンの抽出
ミカンヒメコナカイガラムシ未交尾雌成虫５００〜４０００匹を接種したカボチャを５リットルの二口付きデシケーターに入れ、内部に貯まったフェロモンを１ｇの吸着剤（Ｔｅｎａｘ  ＧＣ）で捕集した。捕集期間は約３０日間とし、１日当たり捕集時間は７時間、空気の流量は１分あたり７リットルとした。吸着剤で捕集したフェロモンは、３日に１回の割合で４０ｍＬのペンタンで抽出した。また、捕集量を推定するため、３〜４日ごとに死亡虫を除去するとともに未交尾雌成虫を補充した。集めた抽出液（４００ｍＬ）は室温条件下で減圧濃縮し、該濃縮物（１０ｍＬ）をミカンヒメコナカイガラムシ性フェロモン粗抽出物とした。
【００１７】
性フェロモンの精製
次に、該性フェロモン粗抽出物を、ミカンヒメコナカイガラムシ雄成虫に対する性誘引活性を指標として、性フェロモンの精製を行った。先ず、再度減圧濃縮した性フェロモン粗抽出物（２ｍＬ）をフロリジル（７％含水，  １００−２００  ｍｅｓｈ，  Ｆｌｏｒｉｄｉｎ  Ｃｏ．）  ３０ｇを充填したカラムを用いてクロマトグラフィーにより分画した。溶出にはジエチルエーテルとヘキサンの混合液を用い、ヘキサン５０ｍＬ、５％エーテル／ヘキサン１２０ｍＬ、１５％エーテル／ヘキサン１５０ｍＬ、２５％エーテル／ヘキサン１５０ｍＬ、５０％エーテル／ヘキサン１５０ｍＬにより順次抽出した。続いて、最も誘引活性の高かった５％エーテル／ヘキサン画分（１２０ｍＬ）を減圧濃縮後１０ｍＬにし、高速液体クロマトグラフィー（以下、ＨＰＬＣという）（ＨＥＷＬＥＴＴ  ＰＡＣＫＡＲＤ  ＳＥＲＩＥＳ  １０５０）で精製を行った。ＨＰＬＣではシリカゲルカラム（Ｉｎｅｒｔｓｉｌ，  ５μｍ，  ４．６ｍｍ  Ｉ．Ｄ．×２５０ｍｍ，  ＧＬ  Ｓｃｉｅｎｃｅ  Ｉｎｃ．）を用い、３％エーテル／ヘキサンの組成の溶媒で１ｍＬ／ｍｉｎの流速で溶出した。ＨＰＬＣでは、保持時間７．５〜８分の画分（０．５ｍＬ）の誘引活性が最も高く、この画分と次の画分（保持時間８〜８．５分の画分（０．５ｍＬ））を合わせてガスクロマトグラフィー（以下、ＧＣという）により分画した。ＧＣ装置はＨＥＷＬＥＴＴ  ＰＡＣＫＡＲＤ  ５８９０  ＳＥＲＩＥＳ  ＩＩで、カラムはＦＦＡＰ（０．５６ｍｍ  Ｉ．Ｄ．×１５ｍ，  液層厚１μｍ，  ＧＬ  Ｓｃｉｅｎｃｅ  Ｉｎｃ．）を用いた。キャリアーガスはヘリウムを使い、流速は５ｍＬ／ｍｉｎとした。オーブンの温度は５０℃で１分間保持し、その後２２０℃まで毎分５℃昇温する条件に設定した。ＧＣでは保持時間２０．５〜２１分の画分の誘引活性が最も高かった（下記表１参照）。以上の抽出・精製工程を反復実施することにより、精製性フェロモンとして（５０万雌・日量／３００ｍＬ）３ｍＬが得られた。本明細書中で、「５０万雌・日量」とは、５０万匹の雌成虫が１日に放出するフェロモンに相当する量を意味する。
【００１８】
【表１】
2004161654.tif 000003
【００１９】
（２）  構造決定
フェロモンの構造分析
精製した誘引活性成分はガスクロマトグラフィー質量分析計（以下、ＧＣ−ＭＳという）（ＧＣ−ＭＳのＭＳ装置は、二重収束質量分析計ＪＥＯＬ  ＳＸ−１０２Ａ、日本電子株式会社）を用い分子量・分子構造を分析した。ＧＣ−ＭＳのＧＣ装置はＨＥＷＬＥＴＴ  ＰＡＣＫＡＲＤ  ５８９０  ＳＥＲＩＥＳ  ＩＩで、カラムはＦＦＡＰ（０．２５ｍｍ  Ｉ．Ｄ．×３０ｍ，  液層厚０．２５μｍ，  ＧＬ  Ｓｃｉｅｎｃｅ  Ｉｎｃ．）、キャリアーガスはヘリウムで、流速は１ｍＬ／ｍｉｎとした。オーブンの温度は８０℃で１分間保持し、その後２１０℃まで毎分７℃昇温する条件に設定した。イオン化電圧は７０ｅＶ、イオン化電流は３００μＡであった。ＣＩモードでの測定は反応ガスとしてイソブタンガスを用いて行った。
【００２０】
単離した活性成分はＧＣ−ＭＳでの保持時間が１４．７３分であった。ＥＩモードでの質量スペクトルはＭ／ｅ；  ６９（１００％）、２３６（８％）、１６８（２６％）、１３６（２２％）、１００（３２％）の特徴ピークを示した。ＣＩモードの質量スペクトルから質量数は２３６と推定された。また、高分解能測定で質量数は２３６．１８０８と計算され、元素組成はＣ１５Ｈ２４Ｏ２と推定された。この単離した活性成分の水素添加産物の保持時間は１３．３５分であり、ＥＩモードの質量スペクトルはＭ／ｅ；  ８３（１００％）、１７０（２５％）、１４３（１２％）、１２３（１０％）、９８（６９％）の特徴ピークを示した。水素添加物はＣＩモードの質量スペクトルから質量数は２４０と推定され、２個の二重構造を持つと推定された。
【００２１】
活性成分のアルコール部分の分析
さらに、単離した活性成分のアルコール部分の構造決定のため、該活性成分に対してアルカリによる加水分解とアセチル化を行った。単離した活性成分の一部（０．１ｍＬ）に０．５Ｎ  ＫＯＨ（２ｍＬ）を加え、一晩後、ヘキサン（４ｍＬ×３回）で抽出した。減圧濃縮したヘキサン画分（０．１ｍＬ）に無水酢酸（１ｍＬ）を加え一晩放置した後、ヘキサン（４ｍＬ×３回）で抽出した。
【００２２】
単離した活性成分の加水分解産物をＧＣ−ＭＳ分析したところ、中性・塩基性画分に保持時間が１２．６３分で、ＣＩモードの質量スペクトルから質量数が１５４と推定される物質が検出された。この物質はＥＩモードの質量スペクトルとしてＭ／ｅ；  ７１（１００％）、１３９（１２％）、１２３（９％）、１２１（２７％）の特徴ピークを示した。従って、上記精製によって単離した活性成分は、分子量１５４のアルコールと分子量１００の酸とのエステルと推定された。
【００２３】
次に、単離した活性成分のアルコール部分をアセチル化し、ＧＣ−ＭＳ分析したところ、保持時間が１０．６３分で、ＥＩモードの質量スペクトルとしてＭ／ｅ；  ６８（１００％）、１９６（１．６％）、１２８（２０％）、１２１（１９％）、８６（９％）の特徴ピークを示した。ＣＩモードの質量スペクトルから質量数は１９６であると推定された。この物質の質量スペクトルはミカンコナカイガラムシ（Ｐｌａｎｏｃｏｃｃｕｓ  ｃｉｔｒｉ）の性フェロモンのデータと良く一致した。さらに本物質は、ミカンコナカイガラムシ雄成虫に対する誘引性が認められ（下記表２参照）、誘引性はミカンコナカイガラムシ性フェロモン粗抽出物、ミカンコナカイガラムシ性フェロモンのアルコール部分をアセチル化した物とほぼ同じくらいであったことから（下記表３参照）、ミカンヒメコナカイガラムシから単離した活性成分のアルコール部分のアセチル化物はミカンコナカイガラムシの性フェロモンと非常によく似た構造をもつ物質で、単離したミカンヒメコナカイガラムシの活性成分のアルコール部分とミカンコナカイガラムシの性フェロモン物質のアルコール部分とは同一である可能性が強く示唆された。
【００２４】
フェロモンの構造決定
単離した活性成分をＧＣ−ＭＳで解析したところ、図１のようなマススペクトルが得られた。また、活性成分をプロトンＮＭＲ装置（ＪＥＯＬ  Ａ６００、１Ｈ  ＮＭＲ  ６００  ＭＨｚ、日本電子株式会社）を用い、ＣＯＳＹ、ＨＯＨＡＨＡ測定で構造解析を行ったところ、図２のようなＮＭＲスペクトルが得られ、それぞれの水素は図３のようにアサインされた。以上の結果から、ミカンヒメコナカイガラムシ雄成虫に対する誘引性を有する性フェロモンの構造を次式（Ｉ）と決定した。
【００２５】
【化４】
2004161654.tif 000004
【００２６】
［実施例２］
性誘引活性
シャーレ内での誘引活性の生物検定
表１および表２に示した性誘引活性の生物検定は以下の通り実施した。先ず、直径９０ｍｍのシャーレ内に、１ｃｍ２の正方形のろ紙片２枚を置き、一方のろ紙に（表１および表２に示す）各供試溶液（表１における各画分および表２における粗抽出物はその原液１００μＬ、ならびに、表２におけるアセチル化物はその原液１０μＬ）を含浸させ処理区とし、他方のろ紙には溶媒のみ（１００μＬ）を含浸させて対照区とした。溶媒はヘキサンを用いた。ろ紙を風乾させた後、ミカンヒメコナカイガラムシ（表１に示した生物検定において）またはミカンコナカイガラムシ（表２に示した生物検定において）雄成虫１０〜２０匹をシャーレ内に放飼し蓋をして、約１０〜６０分後、雄成虫の動きが収まった時にそれぞれのろ紙に誘引された雄成虫の割合から誘引性の有無を判断した。その結果を上記表および表２に示した。
【００２７】
【表２】
2004161654.tif 000005
【００２８】
フェロモントラップでの誘引活性の生物検定
表３に示した性誘引活性の生物検定は以下の通り実施した。先ず、表３に示す各種誘引物質（表３における粗性フェロモンはその原液１００μＬ、およびアセチル化物はその原液１０μＬ）を含浸させて風乾した１ｃｍ２の正方形のろ紙片をそれぞれ黄色粘着トラップ（高さ１０ｃｍ×幅２０ｃｍ）の中央に貼り付けた後、一辺が５ｍ×６．５ｍのガラス室内に設置した。また溶媒のみ（１００μＬ）を含浸させたものを対照とした。３つのトラップは高さ１．８ｍの位置に１．４ｍ間隔をおいて一列に配置し、溶媒を含浸させ風乾したろ紙を貼り付けたトラップ（対照）を中央に設置した。対照の下には雄の羽化が間近な蛹のついたチリ紙を毎日設置して、ここから自然に羽化した雄成虫を試験に供試した。トラップは毎日午前中に交換し、トラップで捕獲された雄成虫数を調査した。その結果を表３に示した。
【００２９】
【表３】
2004161654.tif 000006
【００３０】
【発明の効果】
本発明により、ミカンヒメコナカイガラムシ雄成虫に対する誘引性を有し、性誘引剤として有用な新規エステル化合物が提供される。
【図面の簡単な説明】
【図１】ミカンヒメコナカイガラムシ性フェロモンの活性成分のマススペクトルを示す図である。
【図２】ミカンヒメコナカイガラムシ性フェロモン活性成分の６００  ＭＨｚ  １Ｈ  ＮＭＲスペクトルを示す図である。
【図３】ＣＯＳＹ解析およびＨＯＨＡＨＡ解析によりアサインされた水素の配置を示す図である。
【図１】
2004161654.tif 000010
【図２】
2004161654.tif 000011
【図３】
2004161654.tif 000012