(57)【要約】【課題】本発明の課題は、ＩｇＡ腎症患者の血液中の糖鎖異常型ＩｇＡ１、「糖鎖異常型ＩｇＡ１細胞性フィブロネクチン複合体」さらにはＩｇＡ２を、体内から吸着除去する血液浄化用吸着材およびその治療方法を提供することにある。【解決手段】本発明の血液浄化用吸着材は、ＩｇＡ２と特異的に結合する「ジャカリン及び／又はジャカリン誘導体」、あるいは糖鎖異常型ＩｇＡ１および「糖鎖異常型ＩｇＡ１細胞性フィブロネクチン複合体」と特異的に結合する「熱処理ジャカリン分解物」であって、該吸着材が水不溶性担体に固定化されてなる構造体により構成されており、ＩｇＡ腎症治療の用途に好適に用いられる。【選択図】  図１
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
免疫グロブリンＡ（ＩｇＡ）腎症患者血液中の、糖鎖異常型ＩｇＡ１及び／又は糖鎖異常型ＩｇＡ１と細胞性フィブロネクチンの複合体及び／又はＩｇＡ２の吸着材において、該吸着材がジャカリン及び／又はその誘導体で構成され、且つ該ジャカリン及び／又はその誘導体が水不溶性担体に固定化された構造体であることを特徴とする血液浄化用吸着材。
【請求項２】
前記のジャカリン及び／又はその誘導体が、ジャカリンの分子数が２〜６からなるジャカリン複合体であって、その分子量が１００〜３００ＫＤａであることを特徴とする請求項１に記載の血液浄化用吸着材。
【請求項３】
前記のジャカリン及び／又はその誘導体が、ジャカリン複合体を、４５℃以上１００℃以下の温度で熱処理して得られる熱処理ジャカリン分解物であって、その分子量が１〜２０ＫＤａであることを特徴とする請求項１又は請求項２のいずれかに記載の血液浄化用吸着材。
【請求項４】
請求項１に記載の水不溶性担体が粒径１００〜５００μｍの粒子であることを特徴とする、請求項１から請求項３の何れかに記載の血液浄化用吸着材。
【請求項５】
請求項１に記載の水不溶性担体が繊維径１００〜５００μｍの範囲の繊維状構造物であることを特徴とする、請求項１から請求項３の何れかに記載の血液浄化用吸着材。
【請求項６】
前記において、水不溶性担体がセルロース、ジェラン、硫酸化ジェラン、ジャカリンの何れかであることを特徴とする、請求項４又は請求項５の何れかに記載の血液浄化用吸着材。
【請求項７】
請求項１〜請求項６の何れかに記載の血液浄化用吸着材を用いて、ＩｇＡ腎症患者の体外において、該患者の血液から糖鎖異常型ＩｇＡ１及び／又は糖鎖異常型ＩｇＡ１と細胞性フィブロネクチンの複合体及び／又はＩｇＡ２を除去することを特徴とするＩｇＡ腎症治療方法。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、血液・体液中の免疫グロブリンＡ１（ＩｇＡ１）の中でも特に糖鎖異常型のＩｇＡ１を吸着する血液浄化用吸着材、およびそれを用いたＩｇＡ腎症治療方法に関する。本発明は、ＩｇＡ腎症患者血液中から糖鎖異常型ＩｇＡ１あるいは糖鎖異常型ＩｇＡ１と細胞性フィブロネクチンの複合体等を、強制的かつ選択的に除去し、ＩｇＡ１の血液濃度を適正値に調節・維持することにより、ＩｇＡ腎症の病態を改善させる用途に好適に用いられる。
【０００２】
【従来の技術】
日本国内では、毎年新規に３万人程の慢性腎不全患者が人工透析治療（維持透析治療）を導入し、多くの場合は死亡するまで透析治療が必要となる（毎年の死亡数は新規人工透析治療導入患者の約半数程度とされる）。即ち、透析治療の必要な腎不全患者総数は年々増加する一方で、臓器移植治療以外には根治的治療が無いのが現状である。しかしながら、生体組織の移植には、免疫拒絶、ドナー不足および生体適合性不全などの多くの重要な社会的・技術的な問題があり大幅な進展は望めない。近年では、この慢性腎不全に陥る患者の３５％以上はＩｇＡ腎症が原因であることが知られている。
【０００３】
ＩｇＡ腎症とは、慢性糸球体腎炎の一種で、腎糸球体メサンギウム領域へ免疫グロブリンタンパクＡ（ＩｇＡ）が沈着する疾患である。特にＩｇＡ腎症患者血液中のＩｇＡ濃度は健常者（通常１ｍｇ／ｍｌ程度）より高値で、この状態が長年に渡り続くことでＩｇＡが腎臓の糸球体に沈着し、そのため腎臓機能が消失するとされる（Ｃｏｎｌｅｙ，  Ｍ．Ｅ．ら（１９８０）、Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｃｌｉｎｉｃａｌ  Ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎ、６６巻、１４３２頁）。ＩｇＡ腎症は１９６９年Ｂｅｒｇｅｒらにより提唱された疾患概念であるが、その後３０年以上を経た現在でも本疾患の成因は不明のままである。また臨床的にも蛋白尿、血尿以外には臨床症状に乏しく、病気の進行に気づきにくい疾患でもあり、診断方法も腎生検による方法以外は一般的な方法が無いため、その発見が遅れる場合が多い。
【０００４】
従来より、ＩｇＡ腎症に対して行われている治療法には、糸球体における抗炎症のための副腎皮質ステロイド剤を用いる方法がある。病初期にステロイド剤治療を開始した場合は、その長期間使用の効果で慢性腎不全への進行を回避することが期待されるが、そのような早期治療が実施できる症例は少ない。しかも、ステロイド剤は副作用が甚大で、多くの患者は何らかの副作用を避けることができない。以上から、ステロイド剤以外のより確実で副作用の少ないＩｇＡ腎症の治療方法が望まれていた。
【０００５】
ＩｇＡはＩｇＡ１とＩｇＡ２と呼ばれる２つのサブタイプに分類され、ＩｇＡ１のヒンジ部と呼ばれる領域に５つの酸素結合型糖鎖が結合していると報告されている（ジャーナルオブバイオロジカルケミストリー、第２４９巻、７２７０−７２８１頁、１９７４年）。一方、ＩｇＡ２のヒンジ部には、この酸素結合型糖鎖は存在しないことも知られている。
最近、こうしたＩｇＡ１の糖鎖の異常が、ＩｇＡ腎症の原因と関係しているとの興味深い報告がなされた（Ｉｗａｓｅ，  Ｈｉｔｏｏら（１９９９）、Ｔｒｅｎｄｓ  ｉｎ  Ｇｌｙｃｏｓｉｅｎｃｅ  ａｎｄ  Ｇｌｙｃｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  １１巻、  １１３頁）。特に正常型のＩｇＡ１には、通常ヒンジ部にシアル酸−ガラクトース・１−３結合Ｎアセチルガラクトースの糖鎖が存在するが、ＩｇＡ腎症患者血液中のＩｇＡ１は、その先端分子であるシアル酸が存在しないアシアロ型の割合が高いとされる（Ｉｗａｓｅ，  Ｈｉｔｏｏら（１９９６）、Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ、１２０巻、  ９２頁）。また、こうした糖鎖異常型のＩｇＡ１同士は結合しやすい性質を有していることも報告されている。加えて、ＣｅｄｅｒｈｏｌｍらはＩｇＡ腎症患者血液中には「ＩｇＡ−フィブロネクチン複合体」が存在することを提案した（Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ  ｏｆ  ｔｈｅ  Ｎａｔｉｏｎａｌ  Ａｃａｄｅｍｙ  ｏｆ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，  ８５巻、４８６５−４８６８頁、１９８８）。特に該発見はＩｇＡ腎症患者の糸球体組織にＩｇＡ１以外にもフィブロネクチンが多く沈着する病態を説明できる重要な発見になった。
【０００６】
現在までに、こうしたＩｇＡ１の糖鎖異常に関する知見あるいは「ＩｇＡ−フィブロネクチン複合体」の発見を利用したＩｇＡ腎症の診断方法が開発されてきた。例えば田中、錦戸、比企らによるＩｇＡ腎症患者血漿中のＩｇＡ１のヒンジ部の糖鎖結合数が非ＩｇＡ腎症患者血漿中のＩｇＡ１より多いことを利用したＩｇＡ腎症の診断方法（特開平１０−１１１２９１）の発明、比企、田中、錦戸らによるＩｇＡ１分子間の結合能の差を検出することによるＩｇＡ腎症の診断方法（特開平９−３１１１３２）の発明、更にはＣｅｄｅｒｈｏｌｍらによる「ＩｇＡ−フィブロネクチン複合体」の分子間の親和性を利用して複合体量を測定することによるＩｇＡ腎症の診断方法および診断キットの発明がある（特許番号２５９２１２１号）。
【０００７】
【特許文献１】特開平１０−１１１２９１号公報
【特許文献２】特開平９−３１１１３２号公報
【特許文献３】特許番号２５９２１２１号公報
【０００８】
しかしながらこれらの発明は、ＩｇＡ腎症の診断方法およびその診断キットを提供するものであり、ＩｇＡ腎症の治療方法を提供するものではなかった。
また該公報等における発明の実施例として血清・血液および体液中からＩｇＡ１を分離する材料として、レクチンの一種である「ジャカリン」をアガロースに固定したジャカリン−アガロース（Ｖｅｃｔｏｒ社）を用いており、その分離方法は、Ｒｏｑｕｅ−Ｂａｒｒｅｒｉａらの「ジャカリン」を用いる方法（ジャーナルオブイムノロジー、第１３４巻、１７４０−１７４３頁、１９８５年）に基づいている。
【０００９】
ところで、「ジャカリン」は糖鎖異常型ＩｇＡ１や「糖鎖異常型ＩｇＡ１−フィブロネクチン複合体」のみならず糖鎖正常型ＩｇＡ１にも結合する事が知られている。加えてＩｇＡ２に対する親和性は全く無いと考えられている。即ち、上記の公知の方法では、ＩｇＡ腎症血液中の糖鎖正常型ＩｇＡ１以外のＩｇＡ成分（すなわち糖鎖異常型ＩｇＡ１や「糖鎖異常型ＩｇＡ１−フィブロネクチン複合体」あるいはＩｇＡ２）を選択的に結合させ除去することは不可能である。
ここで、糖鎖異常型ＩｇＡ１あるいは「糖鎖異常型ＩｇＡ１−細胞性フィブロネクチン」が血液中に高濃度で存在する理由としては、糖鎖異常型ＩｇＡ１が体内で分解調節を受けにくいためか、あるいは異常産生されるためかの何れかであると考えられている。しかしながら、患者血液中での濃度バランスの崩れた糖鎖異常型ＩｇＡ１を血液中から強制的に除去することで、腎糸球体への沈着とそれに引き続いて起きる病態の進行を阻止するという治療方法の着想はこれまでになく、またそのために用いる血液浄化用吸着材も無かった。
【００１０】
【発明が解決しようとする課題】
本発明の目的は、ＩｇＡ腎症の治療方法として、ＩｇＡ腎症患者血液中の糖鎖異常型ＩｇＡ１及び／又は糖鎖異常型ＩｇＡ１と細胞性フィブロネクチンの複合体及び／又はＩｇＡ２濃度を、血液浄化用吸着材を用いて適正値に戻すことにより、腎糸球体にこれらの分子が沈着する病態を改善する治療に用いる血液浄化用吸着材及びその治療方法の提供にある。
【００１１】
【課題を解決するための手段】
ＩｇＡ腎症に対するＩｇＡの関与については、上述したように糖鎖異常型ＩｇＡ１あるいは「糖鎖異常型ＩｇＡ１−フィブロネクチン」が、ＩｇＡ腎症患者血液中に高濃度で存在することで、腎糸球体に沈着し、それが原因となり糸球体腎炎を引き起こすと考えられる。また発明者らは炎症性疾患の血液中で複合体化しやすいフィブロネクチンは、通常は血液中には殆ど存在しない「細胞性フィブロネクチン」である可能性が高いことを発見した（ＩｇＡ１との複合体を「糖鎖異常型ＩｇＡ１−細胞性フィブロネクチン」と呼ぶ）。「細胞性フィブロネクチン」と通常血漿中に存在するフィブロネクチンの大きな違いは分子量にあり、血漿フィブロネクチンは分子量約４５万であるが、「細胞性フィブロネクチン」分子にはエキストラドメイン構造と呼ばれる分子量約１０，０００のモジュール構造が、更に多く含まれるのが特徴である。
【００１２】
本発明者は、上述の本発明者による発見に基づいて、血液中のＩｇＡ濃度を調節することで、病気の進行を制御することを目的とする血液浄化用吸着材を提供するために鋭意研究を重ねた結果、ジャカリン及び／又はその誘導体が水不溶性担体に固定化された材料が好適であることを見いだし、本発明を完成させた。
【００１３】
すなわち、１番目の発明は、免疫グロブリンＡ（ＩｇＡ）腎症患者血液中の、糖鎖異常型ＩｇＡ１及び／又は糖鎖異常型ＩｇＡ１と細胞性フィブロネクチンの複合体及び／又はＩｇＡ２の吸着材がジャカリン及び／又はその誘導体で構成され、且つ該ジャカリン及び／又はその誘導体が水不溶性担体に固定化された構造体であることを特徴とする血液浄化用吸着材の提供にある。
次に２番目の発明は、前記のジャカリンにおいて、その分子数が２〜６からなるジャカリン複合体であって且つその分子量が１００〜３００ＫＤａであることを特徴とする血液浄化用吸着材の提供にある。
次に３番目の発明は、前記のジャカリン誘導体が、ジャカリン複合体を４５℃以上１００℃以下の温度で熱処理して得られる熱処理ジャカリン分解物であって、その分子量が１〜２０ＫＤａであることを特徴とする血液浄化用吸着材の提供にある。
次に４番目の発明は、一番目の発明における水不溶性担体が粒径１００〜５００μｍの粒子であることを特徴とする血液浄化用吸着材の提供にある。
次に５番目の発明は、一番目の発明における水不溶性担体が繊維径１００〜５００μｍの範囲の繊維状構造物であることを特徴とする血液浄化用吸着材の提供にある。
次に６番目の発明は、前記の水不溶性担体がセルロース、ジェラン、硫酸化ジェラン、ジャカリンの何れかであることを特徴とする血液浄化用吸着材の提供にある。
次に７番目の発明は、前記の血液浄化用吸着材を用いて、ＩｇＡ腎症患者の体外において、該患者の血液から糖鎖異常型ＩｇＡ１及び／又は糖鎖異常型ＩｇＡ１と細胞性フィブロネクチンの複合体及び／又はＩｇＡ２を除去することを特徴とするＩｇＡ腎症治療方法の提供にある。
【００１４】
【本発明の実施の形態】
以下に本発明の実施形態について詳細に説明するが、本発明の技術的範囲は、下記の実施形態によって限定されるものではなく、その要旨を変更することなく、様々に改変して実施することができる。また、本発明の技術的範囲は、均等の範囲にまで及ぶものである。
【００１５】
本発明に使用する「ジャカリン」とは桑科の果実であるジャックフルーツ（Ａｒｔｏｃａｒｐｕｓ  ｈｅｔｅｒｏｐｈｙｌｌｕｓ）の種子に含まれる植物レクチンの一種であり、抽出・精製して得られるものである。果実は特に限定されるものではないが、おもにジャックフルーツがその名前の由来であることからも、最も多く含まれ、また抽出も容易である。通常、「ジャカリン」はジャックフルーツの種子から抽出されるタンパク質の５０％以上を占めているとされる（Ｋａｂｉｒら、Ｃｏｍｐａｒａｔｉｖｅ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，  Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ  ａｎｄ  Ｉｎｆｅｃｔｉｏｕｓ  Ｄｉｓｅａｓｅｓ，  １６巻、１５３頁、１９９３）。
【００１６】
一般にレクチン類は特定の糖鎖構造を認識するタンパク質として知られ、特に植物のレクチンには、動物タンパクを特異的に認識できる特殊な性質を有しているものが多く知られている。「ジャカリン」はＩｇＡの糖鎖を認識するレクチンとして知られ、その認識糖鎖は１種類に限定されないが、酸素結合型で正常型ＩｇＡ１の糖鎖構造であるシアル酸ガラクトース１−３結合Ｎアセチルガラクトース、あるいはガラクトース１−３結合Ｎアセチルガラクトース（異常型糖鎖）が親和性が高い構造として知られている。（Ｓ．  ＫａｂｉｒらＪｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ  Ｍｅｔｈｏｄｓ  ２１２巻、１９３−２１１頁、１９９８年）
ヒト血清タンパク質の中で酸素結合型の糖鎖、すなわちタンパク質分子中のアミノ酸であるセリンまたはトレオニンの水酸基に結合しているガラクトース１−３結合Ｎアセチルガラクトース糖鎖を持つものは少なく、そのほとんどはアスパラギンのアミノ基に結合するＮ結合型である。ＩｇＡ１分子は正常型・異常型の何れも酸素結合型の糖鎖を有しており、「ジャカリン」に特異的に認識され結合すると考えられている。
【００１７】
ところで、「ジャカリン」は４つのα鎖と呼ばれる分子量約１５ＫＤａのサブユニット構造と４つのβ鎖と呼ばれる分子量約２．１ＫＤａから成り立つ分子量約６５ＫＤａの糖タンパク質である。本発明における「ジャカリン」の形態は、こうした「ジャカリン」１分子でその分子量が２０〜１００ＫＤａのものでも良いが、より効果的な構造としては、ジャックフルーツの種子から低温で抽出することにより得られる複合体（「ジャカリン」が約２〜６分子且つ分子量が１００〜３００ＫＤａで構成され、これを「ジャカリン複合体」と呼ぶ）、又はこの抽出した「ジャカリン複合体」を４５℃〜１００℃の温度で熱処理をすることにより、分子量約１〜２０ＫＤａ以下に分解した物（これを「熱処理ジャカリン分解物」と呼ぶ）の２つの形態であるほうがより望ましい。その理由は、ジャカリンは熱処理することで、糖鎖異常型ＩｇＡ１に対する結合性が向上し、また複合体化することでＩｇＡ２に対する結合親和性が向上することを本発明者が発見したためである。
【００１８】
次に、本発明の血液浄化用吸着材は、これら「ジャカリン複合体」もしくは「熱処理ジャカリン分解物」あるいは「ジャカリン」を、水不溶性担体に導入することにより完成される。本発明に用いられる水不溶性担体の材料は、セルロース、デキストラン、ジェラン、キトサン、酢酸セルロース、硫酸化ジェランである多糖類、またはゼラチン、コラーゲン、エラスチン、ジャカリン、アルブミンであるタンパク質、ポリスチレン、ポリアクリル酸、ポリアクリルアミド、ポリイソプロピルアクリルアミド、ポリメタクリル酸メチル、ポリスルホン、ポリビニルアルコール、ポリエチレンなどの合成高分子材料などが好適に用いられる。
【００１９】
ここで、該血液浄化用吸着剤を水不溶性担体に導入する方法は、材料表面の官能基であるアミノ基、カルボキシル基、水酸基などを利用した共有結合で行われ、固定化させる方法は公知の方法により行うことができる。導入方法の例として、水溶性カルボジイミドを用いて担体表面のアミノ基とジャカリンのカルボキシル基を縮合させる方法、あるいは担体表面のカルボキシル基とジャカリンのアミノ基を縮合させる方法などがある。その他、ジャカリンの糖鎖異常型ＩｇＡ１に対する結合性を失わせない方法であれば、その結合方法は特に限定されるものではない。
【００２０】
本発明の材料の形状は、粒子状、膜状、中空糸状あるいは繊維状などの形態を用いることができるが、特に粒子状あるいは繊維状が好ましく用いられ、その粒径あるいは繊維径は１０〜５０００μｍが望ましく、より好ましくは１００乃至５００μｍである。粒径あるいは繊維径サイズがこの値より大きい場合は、血液あるいは血漿分離膜により赤血球、白血球、血小板等を分離した血漿との接触面積が小さいため、吸着効率が著しく悪く、またサイズが小さい場合には血球あるいは血漿蛋白の目詰まりによる結合量の低下が引き起こされるからである。担体素材に関しては、多孔質で水分を内部に保持できる形態であれば、上述したような素材での使用が可能と思われるが、多孔のサイズが０．１〜５０μｍの間で、好ましくは１〜５μｍであるのが望ましい。理由は、この値より小さい場合は、糖鎖異常型ＩｇＡ１の吸着材料内部への拡散速度が遅いために、吸着材料内部に結合しにくく、大きすぎる場合には、内部の実効表面積が小さいために結合サイトが軽減し、やはり結合しにくい状況になるためである。
【００２１】
なお本発明の血液浄化用吸着材は「ジャカリン複合体」、「熱処理ジャカリン分解物」あるいは「ジャカリン」の何れかに加えて、第３成分を含有するものであってもよい。該第３成分として、硫酸化ジェラン、硫酸化セルロース、硫酸化カルボキシメチルセルロース、ヘパリンなどの硫酸エステルを有する多糖類を含むのがより好ましい。その理由は、これらの材料を本発明の血液浄化用吸着材に含有させることにより、「糖鎖異常型ＩｇＡ１細胞性フィブロネクチン複合体」を、より吸着材料に結合させやすくすることができるためである。
【００２２】
本発明の血液浄化用吸着剤が用いられる血液浄化システムは、通常の血液浄化システムの範疇では血漿吸着方法が最適である。これは血液細胞がレクチン蛋白と直接接触する場合に惹起される未知の影響を避けるため、血液中の細胞成分と血漿成分を分離した後、血漿成分から糖鎖異常型ＩｇＡ１を強制的に除去する方法が好適であるためである。図１にその血液浄化システムの概念図を示す。腕あるいは患部から血液を体外に循環させ、血漿分離器（カラム１）で細胞成分と血漿成分に分けた後に、本発明品の血液浄化用吸着材の充填されたカラム（カラム２）で糖鎖異常型ＩｇＡ１あるいは「糖鎖異常型ＩｇＡ１−細胞性フィブロネクチン複合体」を吸着させ、吸着しなかった血漿成分は再度細胞成分とあわせて患者体内へ戻し循環させる。該システムは、カラム、ポンプ、各種生体状態監視装置（血圧、血流、脈拍、抗凝固剤量、ジャカリン溶出量等）から構成される。
【００２３】
ａ．測定方法
血漿中の総ＩｇＡおよびＩｇＡ１濃度は、ＥＬＩＳＡ法を用いて定量した。
１次抗体原液に総ＩｇＡ測定用としてはＧｏａｔ  ａｎｔｉ−ｈｕｍａｎ  ＩｇＡ    （フナコシ社製）、ＩｇＡ１測定用としてＧｏａｔ  ａｎｔｉ−ｈｕｍａｎ  ＩｇＡ１    （フナコシ社製）、また２次抗体原液にＧｏａｔ  ａｎｔｉ−ｈｕｍａｎ  ＩｇＡ  ＨＲＰ  ｃｏｎｊｕｇａｔｅｄ  （フナコシ社製）を用い、濃度決定のための標準溶液にはＨｕｍａｎ  ｓｅｒｕｍ  Ｃａｌｉｂｒａｔｏｒ  （ＩｇＡ）（フナコシ社製）を用い、２５０ｎｇ／ｍｌ−７ｎｇ／ｍｌの範囲で７サンプル調製し用いた。
１次抗体溶液として抗体原液１００μｌを０．０５ＭのＮａＣＯ３−ＨＣｌ  緩衝液（ｐＨ９．６）１０ｍｌに溶解し希釈した後、９６穴ＥＬＩＳＡ用イムノプレート（ナルジェン・ヌンク社製）に１００μｌずつ添加し９０分静置する。その後溶液を除去し、０．１４Ｍ  ＮａＣｌ、０．０５％  Ｔｗｅｅｎ２０を含む０．０５Ｍ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ  （ｐＨ８）緩衝液で洗浄し、自然乾燥させ測定用ＥＬＩＳＡプレートとした。
測定する血漿試料は０．１４Ｍ  ＮａＣｌ、１％  ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）を含む０．０５Ｍ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ  （ｐＨ８）  緩衝液を用いて１／２００００あるいは１／５００００に希釈し、測定用プレートの穴に１００μｌ加え、６０分間浸透させる。同時に別な穴に７種類の標準溶液をそれぞれ加える。浸透後、溶液を除去し０．１４Ｍ  ＮａＣｌ、０．０５％  Ｔｗｅｅｎ２０を含む０．０５Ｍ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ  （ｐＨ８）緩衝液で数回洗浄し、次に１／１００希釈した２次抗体溶液を２００μｌずつ穴に加え更に６０分間浸透させる。２次抗体溶液を除去し、洗浄後、クエン酸緩衝液１２ｍｌに対しＯＰＤ錠（和光純薬社製）を１錠およびＨ２Ｏ２を５μｌ加えた溶液を、１００μｌずつ穴に加え１０分間静置して発色させた後、更に１Ｎ硫酸水溶液を１００μｌずつ穴に加え発色を停止させ、４５０ｎｍでの吸光度をプレートリーダー（バイオラッド社製）にて測定し、標準試料から作製した校正曲線に照らして濃度を算出した。総ＩｇＡおよびＩｇＡ１濃度は１次抗体溶液を変えることにより、それぞれについて測定した。
またＩｇＡ２濃度は、総ＩｇＡおよびＩｇＡ１の測定値を用いて、ＩｇＡ２＝総ＩｇＡ−ＩｇＡ１の算出式より求めた。
【００２４】
次に、血漿中の総フィブロネクチンおよび細胞性フィブロネクチン濃度はＥＬＩＳＡ法で定量した。
１次抗体原液に総フィブロネクチン（ｔＦＮ）測定用としてｍｏｕｓｅ  ａｎｔｉ−ｈｕｍａｎ  ＦＮ    （１１７抗体：宝酒造社製）、細胞性ＦＮ測定用としてｍｏｕｓｅ  ａｎｔｉ−ｈｕｍａｎ  ＥＤＡ（＋）ＦＮ    （０１抗体：大塚アッセイ）、また２次抗体原液にｍｏｕｓｅ  ａｎｔｉ−ｈｕｍａｎ  ＦＮ  ＨＲＰ  ｃｏｎｊｕｇａｔｅｄ  を用い、濃度決定のための標準溶液には血漿由来ＦＮ、及び細胞培養液由来のＦＮ（細胞性フィブロネクチン）を用い、５０００ｎｇ／ｍｌ〜７８ｎｇ／ｍｌの範囲で４サンプル調製し用いた。抗体と標準溶液の違い以外は、（１）に準じたＥＬＩＳＡ法で行い濃度を算出した。
【００２５】
ｂ．ＩｇＡ腎症患者および健常者血漿中の総ＩｇＡ、ＩｇＡ１、総フィブロネクチンおよび細胞性フィブロネクチン濃度の測定
クエン酸採血したＩｇＡ腎症患者血漿（ｎ＝４８）および非ＩｇＡ患者（健常者）血漿（ｎ＝６）の血漿総ＩｇＡ、ＩｇＡ１、総フィブロネクチンおよび細胞性フィブロネクチン濃度をＥＬＩＳＡ法にて測定した。結果を表１および表２に示す。
【００２６】
【表１】
2004321682.tif 000003
【００２７】
【表２】
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【００２８】
ＩｇＡ１／総ＩｇＡ＝０．４６以上かつ細胞性フィブロネクチン／総フィブロネクチン＝６．６  （×１０−４）以上のＩｇＡ腎症患者数は、測定数の７０％にあたる３４人であった。すなわちＩｇＡ１比率の高い血漿では細胞性フィブロネクチンの比率も高いことがわかる。以上の結果から「ＩｇＡ−細胞性フィブロネクチン複合体」の存在の可能性が大いに示唆される事が分かる。
【００２９】
ｃ．ＩｇＡ腎症患者の腎糸球体組織中の細胞性フィブロネクチン染色
ＩｇＡ腎症患者に対して行われた腎生検より糸球体組織切片を作製し、蛍光免疫染色を行った。方法は公知の方法により行った。染色には１次抗体としてｍｏｕｓｅ  ａｎｔｉ−ｈｕｍａｎ  ＥＤＡ（＋）ＦＮ    （０１抗体：抗細胞性フィブロネクチン抗体）、２次抗体にｍｏｕｓｅ  ａｎｔｉ−ｈｕｍａｎ  ＦＮ  ＦＩＴＣ  ｃｏｎｊｕｇａｔｅｄ  を用いた。結果を図２及び図３に示す。図２中で白く明るく見える箇所がＦＩＴＣによる蛍光が検出された箇所で、即ち細胞性フィブロネクチンが存在していることを表している。図３は１次抗体処理無しの染色（コントロール）であり、細胞性フィブロネクチン以外の部分で検出されていないことを確認した。図２より患者糸球体組織中には細胞性フィブロネクチンが多く沈着していることがわかった。
【００３０】
ｄ．「ジャカリン複合体」および「熱処理ジャカリン分解物」の調製
ジャックフルーツの種子（種子１つの大きさが、長軸方向３．５ｃｍ、短軸方向２ｃｍ）を果肉から分離し、種子を覆う皮の部分を除き、フードプロセッサー等で細かく粉砕する。トリス−塩酸緩衝溶液（ｐＨ＝７）を加えて、４℃で２４時間撹拌しジャカリン粗精製溶液を得る。不溶部分を濾過により除き、次に遠心分離（３，０００ｒｐｍ、３０分）し、上澄み部分のみを回収した。更に０．４５μｍの孔サイズのメンブレンフィルターで濾過し、溶液を再生セルロース系透析膜からなるチューブにいれ（除去分子量６，０００以下）、脱イオン水に対して４８時間以上透析を行い、その後凍結乾燥して「ジャカリン複合体」を得た。
乾燥した「ジャカリン複合体」２００ｍｇに対し、ドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）を２０ｇ加え、脱イオン水１００ｍｌに溶解し、０．４５μｍの孔サイズのメンブレンフィルターで濾過する。濾液を１００℃にて１０分間処理し、再度４℃に冷却し凍結乾燥することで「熱処理ジャカリン分解物」を得た。
【００３１】
ｅ．電気泳動による「ジャカリン複合体」および「熱処理ジャカリン分解物」の同定
上記のようにして得られた「ジャカリン複合体」および「熱処理ジャカリン分解物」の分子量を、ＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳動を用いて測定した。方法は公知の方法で行った。
具体的条件として、「ジャカリン複合体」に対しては７．５％（ｗ／ｗ）  ポリアクリルアミドゲル、「熱処理ジャカリン分解物」に対しては１５％（ｗ／ｗ）  ポリアクリルアミドゲルを用いて行った。タンパク質バンドはクマシーブリリアントブルー染色により行った。また分子量マーカー（バイオラット社製）からの相対移動度より「ジャカリン複合体」および「熱処理ジャカリン分解物」の分子量を算出した。電気泳動結果から算出した分子量を表３に示す。
【００３２】
【表３】
2004321682.tif 000005
【００３３】
ｆ．「ジャカリン複合体」固定化粒子の作製
「ジャカリン複合体」１００ｍｇ、ＳＤＳ１ｇを０．１ＮのＮａＨ２ＰＯ４−ＮａＯＨ緩衝液  （ｐＨ５）  １０ｍｌに溶解させ、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド（ＮＨＳ）２ｍｇ、水溶性カルボジイミド（ＷＳＣＤ）４．５ｍｇを加え２時間攪拌する。この溶液にアミノセルロファイン（チッソ社製：平均粒径１００〜５００μｍ）２．５ｍｌを加え、２ＭのＮａＯＨ水溶液にてｐＨ８に合わせ、更に２時間攪拌する。反応終了後、脱イオン水および生理食塩水にて洗浄し、「ジャカリン複合体」固定化粒子とした。
【００３４】
ｇ．「熱処理ジャカリン分解物」固定化粒子の作製
「熱処理ジャカリン分解物」１００ｍｇ、ＳＤＳ１ｇを０．１ＮのＮａＨ２ＰＯ４−ＮａＯＨ  緩衝液  （ｐＨ５）  １０ｍｌに溶解させ、ＮＨＳ２ｍｇ、ＷＳＣＤ４．５ｍｇを加え２時間攪拌する。この溶液にアミノセルロファイン（チッソ社製：平均粒径１００〜５００μｍ）２．５ｍｌを加え、２Ｍ  ＮａＯＨ水溶液にてｐＨ８に合わせ、更に２時間攪拌する。反応終了後、脱イオン水および生理食塩水にて洗浄し、「熱処理ジャカリン分解物」固定化粒子とした。
【００３５】
ｈ．ＩｇＡ腎症患者、健常者血漿中のＩｇＡ１と「ジャカリン複合体」および「熱処理ジャカリン分解物」固定化粒子との親和性測定
クエン酸採血したＩｇＡ腎症患者血漿および健常者血漿を用いて、「ジャカリン複合体」および「熱処理ジャカリン分解物」固定化粒子と各血漿中のＩｇＡ１との親和性の測定は、結合定数の算出をすることで評価した。
クエン酸採血したＩｇＡ腎症患者および健常者血漿１ｍｌ（４〜７種類程度の濃度になるようにあらかじめ希釈したものを用意した）に対して、上記で作製した「ジャカリン複合体」（または「熱処理ジャカリン分解物」）固定化粒子を０．２５ｍｌ加えて、室温にて１時間攪拌させる。吸着実験後は３，０００ｒｐｍにて１分間遠心分離した上澄みを測定検液とする。
ＩｇＡ１の初期濃度をＣａ、上澄み濃度をＣａ’とし、それぞれの濃度をＥＬＩＳＡ法にて測定した値を用いて、結合定数ＫＬ（Ｍ−１）を以下のＳｃａｔｃｈａｒｄプロット解析から算出した。その結果を表４に示す。
（Ｃａ−Ｃａ’）／Ｃａ’＝（１／ＫＬ）×（Ｃａ−Ｃａ’）＋Ｈｏ／ＫＬ
※Ｈｏは結合サイト濃度（Ｍ）で、ＫＬは値が小さいほど親和性が大きいことを表す。
【００３６】
【表４】
2004321682.tif 000006
【００３７】
以上の結果より、２つの事を明らかにした。すなわち、ＩｇＡ腎症患者  ＩｇＡ１は健常者  ＩｇＡ１よりも「ジャカリン複合体」および「熱処理ジャカリン分解物」固定化粒子に対する親和性が大きい。もう一つの点は「ジャカリン複合体」よりも「熱処理ジャカリン分解物」のほうが各ＩｇＡ１に対する親和性が大きい。即ち、これらの結果は糖鎖異常型ＩｇＡ１を「熱処理ジャカリン分解物」固定化粒子が認識していることを示している。
【００３８】
ｉ．「ジャカリン複合体」および「熱処理ジャカリン分解物」固定化粒子による吸着除去実験
「ジャカリン複合体」および「熱処理ジャカリン分解物」固定化粒子  ０．１ｍｌとＩｇＡ１腎症患者血漿１ｍｌを、２ｍｌ  プラスチックチューブ内で混合して、３時間インキュベートし血液中の蛋白質を吸着させた後、遠心分離（３，０００ｒｐｍ、２分）し、上澄み部分の血漿を回収した。血漿中のＩｇＡ１、ＩｇＡ２および細胞性フィブロネクチンの吸着除去率は、吸着実験前後の溶液濃度の測定値から、以下の式にて算出した。なおＩｇＡ２の濃度はＩｇＡ２＝総ＩｇＡ−ＩｇＡ１より算出したうえで吸着除去率を算出した。結果を表５に示す。
吸着除去率（％）＝［初期蛋白濃度−上澄み血漿中の蛋白濃度］  ／  初期蛋白濃度
【００３９】
【表５】
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▲１▼は「ジャカリン複合体」固定化粒子による除去率を、▲２▼は「熱処理ジャカリン分解物」固定化粒子による除去率を示す。
【００４０】
以上の結果より「ジャカリン複合体」固定化粒子はＩｇＡ２を、「熱処理ジャカリン分解物」固定化粒子はＩｇＡ１を選択的に吸着除去する材料であることがわかる。また細胞性フィブロネクチンの除去結果には「糖鎖異常型ＩｇＡ１−細胞性フィブロネクチン複合体」の除去効果が含まれている。
【００４１】
【発明の効果】
上述の説明から明らかなように、本発明の血液浄化吸着材を用いることにより、ＩｇＡ腎症患者の糖鎖異常型ＩｇＡ１、「糖鎖異常型ＩｇＡ１と細胞性フィブロネクチンの複合体」及びＩｇＡ２を選択的に除去し、ＩｇＡ腎症患者の病態を改善させることができる。
【図面の簡単な説明】
【図１】本発明における血液浄化用吸着剤を用いた、ＩｇＡ腎症患者の血液浄化システムを示す概念図である。
【図２】ＩｇＡ腎症患者の糸球体組織片に蛍光免疫染色を行い、細胞性フィブロネクチンが存在することを示す図である。
【図３】糸球体組織片に細胞性フィブロネクチンが存在しないことを示す図である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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