(57)【要約】      （修正有）【課題】ＶＰＥの生理学的機能を解明するためのツールとして有用なＶＰＥ欠損マウスを提供する。また、リソソーム蓄積症の治療剤のスクリーニングにおけるＶＰＥ欠損マウスの使用を提供する。【解決手段】液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子の改変により、液胞プロセシング酵素が欠損した、液胞プロセシング酵素欠損マウス及び液胞プロセシング酵素欠損マウスの作製方法；およびリソソーム蓄積症の治療剤のスクリーニングにおける、請求項１〜４いずれか記載の液胞プロセシング酵素欠損マウスの使用。【選択図】  なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子の改変により、液胞プロセシング酵素が欠損した、液胞プロセシング酵素欠損マウス。
【請求項２】
前記改変が、液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子のオープンリーディングフレームの読み枠を破壊するものである、請求項１記載の液胞プロセシング酵素欠損マウス。
【請求項３】
前記改変が、
（ａ）液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子の一部または全てを欠失させること、
（ｂ）液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子の一部または全てを他のポリヌクレオチドにより置換すること、および
（ｃ）液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子中に他のポリヌクレオチドを挿入させること
からなる群より選ばれるものである、請求項１または２記載の液胞プロセシング酵素欠損マウス。
【請求項４】
前記改変が、下記（ａ’）〜（ｃ’）：
（ａ’）液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子において、配列番号：１に記載の塩基配列中の塩基番号：１５４〜１５６、４４８〜４５０、および５７１〜５７３からなる群より選ばれた少なくとも１つの領域に対応する領域の欠失、
（ｂ’）液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子において、配列番号：１に記載の塩基配列中の塩基番号：１５４〜１５６、４４８〜４５０、および５７１〜５７３からなる群より選ばれた少なくとも１つの領域に対応する領域と他のポリヌクレオチドとの置換、および
（ｃ’）液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子において、配列番号：１に記載の塩基配列中の塩基番号：１５４〜１５６、４４８〜４５０、および５７１〜５７３との間からなる群より選ばれた少なくとも１つの位置への他のポリヌクレオチドの挿入、
からなる群より選ばれたものである、請求項３記載の液胞プロセシング酵素欠損マウス。
【請求項５】
（ａ）液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子中の一部または全てが改変されたポリヌクレオチドを含有し、かつ該ポリヌクレオチドが、液胞プロセシング酵素の生理活性を欠損した産物を生じるものであるターゲティングベクターを得る工程、
（ｂ）マウス胚性幹細胞内で、前記（ａ）で得られたターゲティングベクターにより液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子の相同組換えを行い、液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子が欠損したマウス胚性幹細胞を作製する工程、
（ｃ）前記（ｂ）で得られたマウス胚性幹細胞を発生させてキメラマウスを得る工程、および
（ｄ）前記（ｃ）で得られたキメラマウスを交配し、液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子が欠損したホモ接合体マウスを得る工程
を含む、液胞プロセシング酵素欠損マウスの作製方法。
【請求項６】
（ａ）液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子の核酸分子中の欠失させる対象である領域の両端にＬｏｘＰ配列が挿入された核酸分子を含むターゲティングベクターを得る工程、
（ｂ）マウス胚性幹細胞内で、前記（ａ）で得られたターゲティングベクターにより液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子の相同組換えを行い、マウス胚性幹細胞を作製する工程、
（ｃ）前記（ｂ）で得られ液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子が欠損したマウス胚性幹細胞を発生させてＬｏｘＰ配列を有するキメラマウスを得る工程、
（ｄ）前記（ｃ）で得られキメラマウスを交配し、ヘテロ接合体マウスを得る工程、および
（ｅ）前記（ｄ）で得られヘテロ接合体マウスと、Ｃｒｅ酵素を発現するように形質転換されたマウスとを交配して、液胞プロセシング酵素欠損マウスを得る工程
を含む、液胞プロセシング酵素欠損マウスの作製方法。
【請求項７】
リソソーム蓄積症の治療剤のスクリーニングにおける、請求項１〜４いずれか記載の液胞プロセシング酵素欠損マウスの使用。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、液胞プロセシング酵素（ＶＰＥ）欠損モデル、詳細には、液胞プロセシング酵素欠損マウスおよびその作製方法、ならびに治療剤のスクリーニングにおける液胞プロセシング酵素欠損マウスの使用に関する。
【０００２】
【従来の技術】
リソソームは、プロテアーゼ、グリコシダーゼおよびリパーゼなどの種々の酸性加水分解酵素を含み、細胞内分解のための主要部分である（例えば、非特許文献１および非特許文献２参照）。ヒトにおいては、分解プロセスの障害により糖原病、ガングリオシドーシスまたはリピドーシスなどの重篤な疾患が引き起こされる（例えば、非特許文献３参照）。したがって、リソソームでの分解は、細胞内だけでなく体全体のホメオスタシスを維持するのに寄与する。このような疾患のほとんどは、リソソーム酵素における変異によって引き起こされる常染色体の劣性遺伝性障害である。
【０００３】
液胞プロセシング酵素（ＶＰＥ）は、最初に高等植物において液胞内での種子内貯蔵タンパク質の成熟化（プロセシング）に関わる酵素として見出され、アスパラギニルエンドペプチダーゼ（ＡＥＰ）またはレグマインとも呼ばれる（例えば、非特許文献４および非特許文献５参照）。ＶＰＥは、リソソーム酵素の生合成において調節的な役割を有すると考えられているが、哺乳動物におけるＶＰＥの生理学的機能はまだ十分には解明されていない。
【０００４】
【非特許文献１】
フェイファー（Ｐｆｅｉｆｅｒ  ），  １９８７  ｉｎ  Ｌｙｓｏｓｏｍｅ：  Ｔｈｅｉｒ  ｒｏｌｅ  ｉｎ  ｐｒｏｔｅｉｎ  ｂｒｅａｋｄｏｗｎ，  ｅｄｓ．  Ｇｌａｕｍａｎｎ，  Ｈ．  ＆  Ｂａｌｌａｒｄ，  Ｆ．  Ｊ．  （Ａｃａｄｅｍｉｃ  Ｐｒｅｓｓ，  Ｌｏｎｄｏｎ），  ｐｐ．  ３−５９．
【非特許文献２】
メルマン（Ｍｅｌｌｍａｎ  ），  １９８６  Ａｎｎｕ．  Ｒｅｖ．  Ｂｉｏｃｈｅｍ．  ５５，  ６６３−７００．
【非特許文献３】
ノイフェルド（Ｎｅｕｆｅｌｄ  ），  １９９１  Ａｎｎｕ．  Ｒｅｖ．  Ｂｉｏｃｈｅｍ．  ６０，  ２５７−２８０．
【非特許文献４】
ハラ−ニシムラ（Ｈａｒａ−Ｎｉｓｈｉｍｕｒａ），  Ｉ，  １９９１  ＦＥＢＳ  Ｌｅｔｔ．  ２９４，  ８９−９３．
【非特許文献５】
チェン（Ｃｈｅｎ），  １９９７  Ｊ．  Ｂｉｏｌ．  Ｃｈｅｍ．  ２７２，  ８０９０−８０９８．
【０００５】
【発明が解決しようとする課題】
本発明は、ＶＰＥの生理学的機能を解明するためのツールとして有用なＶＰＥ欠損マウスおよびその作製方法を提供することを目的とする。また本発明は、リソソーム蓄積症の治療剤のスクリーニングにおけるＶＰＥ欠損マウスの使用を提供することを目的とする。
【０００６】
【課題を解決するための手段】
すなわち、本発明は、
［１］  液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子の改変により、液胞プロセシング酵素が欠損した、液胞プロセシング酵素欠損マウス、
［２］  前記改変が、液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子のオープンリーディングフレームの読み枠を破壊するものである、前記［１］記載の液胞プロセシング酵素欠損マウス、
［３］  前記改変が、
（ａ）液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子の一部または全てを欠失させること、
（ｂ）液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子の一部または全てを他のポリヌクレオチドにより置換すること、および
（ｃ）液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子中に他のポリヌクレオチドを挿入させること
からなる群より選ばれるものである、前記［１］または［２］記載の液胞プロセシング酵素欠損マウス、
［４］  前記改変が、下記（ａ’）〜（ｃ’）：
（ａ’）液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子において、配列番号：１に記載の塩基配列中の塩基番号：１５４〜１５６、４４８〜４５０、および５７１〜５７３からなる群より選ばれた少なくとも１つの領域に対応する領域の欠失、
（ｂ’）液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子において、配列番号：１に記載の塩基配列中の塩基番号：１５４〜１５６、４４８〜４５０、および５７１〜５７３からなる群より選ばれた少なくとも１つの領域に対応する領域と他のポリヌクレオチドとの置換、および
（ｃ’）液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子において、配列番号：１に記載の塩基配列中の塩基番号：１５４〜１５６、４４８〜４５０、および５７１〜５７３との間からなる群より選ばれた少なくとも１つの位置への他のポリヌクレオチドの挿入、
からなる群より選ばれたものである、前記［３］記載の液胞プロセシング酵素欠損マウス、
［５］  （ａ）液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子中の一部または全てが改変されたポリヌクレオチドを含有し、かつ該ポリヌクレオチドが、液胞プロセシング酵素の生理活性を欠損した産物を生じるものであるターゲティングベクターを得る工程、
（ｂ）マウス胚性幹細胞内で、前記（ａ）で得られたターゲティングベクターにより液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子の相同組換えを行い、液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子が欠損したマウス胚性幹細胞を作製する工程、
（ｃ）前記（ｂ）で得られたマウス胚性幹細胞を発生させてキメラマウスを得る工程、および
（ｄ）前記（ｃ）で得られたキメラマウスを交配し、液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子が欠損したホモ接合体マウスを得る工程
を含む、液胞プロセシング酵素欠損マウスの作製方法。
［６］  （ａ）液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子の核酸分子中の欠失させる対象である領域の両端にＬｏｘＰ配列が挿入された核酸分子を含むターゲティングベクターを得る工程、
（ｂ）マウス胚性幹細胞内で、前記（ａ）で得られたターゲティングベクターにより液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子の相同組換えを行い、マウス胚性幹細胞を作製する工程、
（ｃ）前記（ｂ）で得られ液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子が欠損したマウス胚性幹細胞を発生させてＬｏｘＰ配列を有するキメラマウスを得る工程、
（ｄ）前記（ｃ）で得られキメラマウスを交配し、ヘテロ接合体マウスを得る工程、および
（ｅ）前記（ｄ）で得られヘテロ接合体マウスと、Ｃｒｅ酵素を発現するように形質転換されたマウスとを交配して、液胞プロセシング酵素欠損マウスを得る工程
を含む、液胞プロセシング酵素欠損マウスの作製方法、および
［７］  リソソーム蓄積症の治療剤のスクリーニングにおける、前記［１］〜［４］いずれか記載の液胞プロセシング酵素欠損マウスの使用
に関する。
【０００７】
【発明の実施の形態】
本発明の液胞プロセシング酵素欠損マウスは、液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子の改変により、液胞プロセシング酵素の生理活性が欠損したノックアウトマウスである。本発明の液胞プロセシング酵素欠損マウスは、腎臓細胞のリソソームが年齢依存的に肥大するという異常な性質を有している。
【０００８】
本明細書において、「液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子の一部または全ての改変」とは、液胞プロセシング酵素を発現するという本来の機能を欠損させる遺伝的改変であればよく、例えば、液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子のオープンリーディングフレームの読み枠を破壊する遺伝的改変が挙げられる。オープンリーディングフレームの読み枠を破壊する遺伝的改変としては、例えば、フレームシフト変異を起こさせるような変異の導入が挙げられる。より具体的には、
（ａ）液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子の一部または全てを欠失させること、
（ｂ）液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子の一部または全てを他のポリヌクレオチドにより置換すること、または
（ｃ）液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子中に他のポリヌクレオチドを挿入させること
が挙げられる。また、前記（ａ）、（ｂ）、（ｃ）のうち２つ以上を組み合わせたものであってもよい。
【０００９】
ここで、前記「他のポリヌクレオチド」とは、液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子に対して異質なポリヌクレオチドをいう。
【００１０】
前記（ａ）〜（ｃ）は、例えば、それぞれ、（ａ’）液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子において、配列番号：１に記載の塩基配列中の塩基番号：１５４〜１５６、４４８〜４５０、および５７１〜５７３からなる群より選ばれた少なくとも１つの領域に対応する領域の欠失、
（ｂ’）液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子において、配列番号：１に記載の塩基配列中の塩基番号：１５４〜１５６、４４８〜４５０、および５７１〜５７３からなる群より選ばれた少なくとも１つの領域に対応する領域と他のポリヌクレオチドとの置換、
（ｃ’）液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子において、配列番号：１に記載の塩基配列中の塩基番号：１５４〜１５６、４４８〜４５０、および５７１〜５７３との間からなる群より選ばれた少なくとも１つの位置への他のポリヌクレオチドの挿入、
でありうる。また、前記（ａ’）、（ｂ’）、（ｃ’）のうち２つ以上を組み合わせたものであってもよい。
【００１１】
本明細書において、「液胞プロセシング酵素が欠損した」とは、液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子の一部または全ての改変により、液胞プロセシング酵素の発現産物が全く発現しないか、または発現しても正常な液胞プロセシング酵素が有する機能を示さないことをいう。
【００１２】
本明細書において、「液胞プロセシング酵素遺伝子の一部」とは、液胞プロセシング酵素の機能的発現に必須な部分、活性中心や基質結合部位等をいい、例えば、１５４〜１５６、４４８〜４５０、および５７１〜５７３等の領域をいう。
【００１３】
前記（ａ’）および（ｂ’）における「対応する領域」とは、例えば、ＨｉｇｇｉｎｓらによるＣｌｕｓｔａｌＷ法によるマルチプルアライメント（例えば、（Ｇａｐ  ｐｅｎａｌｔｙ  ５、Ｆｉｘｅｄ  Ｇａｐ  ｐｅｎａｌｔｙ  １０、ｗｉｎｄｏｗｓｓｉｚｅ  ５、Ｆｌｏａｔｉｎｇ  Ｇａｐ  １０）  等により、配列番号：１に記載される塩基配列と最適な状態にアラインメントされたときに対応する領域をいう。
【００１４】
前記（ｃ）および（ｃ’）における挿入配列としては、液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子のオープンリーディングフレームの読み枠を破壊することが可能であればよく、読み枠に合ったストップコドンを持つ配列、３の倍数以外の塩基数からなるヌヌクレオチド配列、あるいは、マーカーとなる薬剤耐性遺伝子などの独立した遺伝子などが挙げられる。
【００１５】
液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子としては、配列番号：２に記載のアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードする核酸が挙げられる。
【００１６】
液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子として、配列番号：１に記載の塩基配列からなる核酸を使用することもできる。
【００１７】
液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子は、配列番号：２に記載のアミノ酸配列において少なくとも１つのアミノ酸が置換、欠失、付加、または挿入されたアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードし、かつ液胞プロセシング酵素の生理活性を有するポリペプチドをコードする核酸であってもよい。なお、本明細書中において「少なくとも１つ」とは、１または数個の意である。
【００１８】
液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子は、配列番号：２に記載のアミノ酸配列との配列同一性が、前記ＣｌｕｓｔａｌＷ法により、適切にアライメントして、算出した場合、４０％以上、好ましくは６０％以上、より好ましくは７０％以上であるアミノ酸配列を有し、かつ液胞プロセシング酵素の生理活性を有するポリペプチドをコードする核酸であってもよい。
【００１９】
また、液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子は、配列番号：２に記載されるアミノ酸配列をコードする核酸とストリンジェントな条件下でハイブリダイズし得、かつ液胞プロセシング酵素の生理活性を有するポリペプチドをコードする核酸であってもよい。
【００２０】
なお、前記「液胞プロセシング酵素の生理活性」は、１ｍＭ  ＥＤＴＡと１００ｍＭ  ＤＴＴを含む０．１Ｍリン酸バッファー（ｐＨ  ４．５）中で、Ｚ−Ａｌａ−Ａｌａ−Ａｓｎ−ＭＣＡを基質として、反応混合物の蛍光の増加を、蛍光分光光度計または蛍光プレートリーダーを用いて励起波長３６０ｎｍ、発光波長４６０ｎｍで測定することにより評価される。
【００２１】
本明細書において、前記「ストリンジェントな条件」とは、モレキュラー・クローニング：ア・ラボラトリーマニュアル第２版〔ザンブルーク（Ｓａｍｂｒｏｏｋ）ら編、コールドスプリングハーバーラボラトリープレス刊、１９８９〕等に記載の条件が挙げられる。具体的には、例えば、
１）  ６×ＳＳＣ（１×ＳＳＣの組成：０．１５Ｍ  ＮａＣｌ、０．０１５Ｍ  クエン酸ナトリウム、ｐＨ７．０）と０．５％  ＳＤＳと５×デンハルトと１００μｇ／ｍｌ  変性断片化サケ精子ＤＮＡと５０％  ホルムアミドを含む溶液中、プローブとともに４２℃で一晩保温するステップ、
２）  非特異的にハイブリダイズしたプローブを洗浄により除去するステップ、ここで、より精度を高める観点からより低イオン強度および／またはより高温の条件下での洗浄を行なうこと等が挙げられる。なお、Ｔｍは、例えば、下記式：
Ｔｍ＝＝８１．５−１６．６  （ｌｏｇ１０［Ｎａ＋  ］）＋０．４１  （％Ｇ＋Ｃ）−（６００／Ｎ）
（式中、Ｎはオリゴヌクレオチドの鎖長であり、％Ｇ＋Ｃはオリゴヌクレオチド中のグアニンおよびシトシン残基の含有量である）
により求められる。
【００２２】
本発明の液胞プロセシング酵素欠損マウスは、例えば、
（ａ）液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子中の一部または全てが改変されたポリヌクレオチドを含有し、かつ該ポリヌクレオチドが、液胞プロセシング酵素の生理活性を欠損した産物を生じるものであるターゲティングベクターを得る工程、
（ｂ）マウス胚性幹細胞内で、前記（ａ）で得られたターゲティングベクターにより液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子の相同組換えを行い、液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子が欠損したマウス胚性幹細胞を作製する工程、
（ｃ）前記（ｂ）で得られたマウス胚性幹細胞を発生させてキメラマウスを得る工程、および
（ｄ）前記（ｃ）で得られたキメラマウスを交配し、液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子が欠損したホモ接合体マウスを得る工程
を含む、液胞プロセシング酵素欠損マウスの作製方法により作製することができる。
【００２３】
前記工程（ａ）において、より詳細には、まず、液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子の核酸分子の一部または全てに、マーカーとなる遺伝子、例えば、Ｎｅｏ耐性カセットやＤＴｐＡなどの遺伝子の挿入等の液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子の機能が欠損するような塩基の置換、欠失および／または付加による改変を行い、変異核酸分子を作製する。ここで、前記液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子の核酸分子は、上記のマウス液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子の塩基配列情報に基づいて、ＰＣＲまたは遺伝子ライブラリーのスクリーニング等により単離することができる。また、塩基配列の改変は、ＰＣＲによる増幅核酸の連結または部位特異的変異等の当該分野で慣用の組換え核酸技術により行うことができる。
【００２４】
次いで、前記変異核酸分子をターゲティングベクターに導入する。ターゲティングベクターとは、相同組換えによって目的の遺伝子を破壊するための核酸分子である。ターゲティングベクターは、マウスゲノム上の液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子の機能が相同組換えにより欠損するという効果を有する限り、特に限定されるものではないが、相同組換えにより得られる胚性幹細胞（ＥＳ細胞）の選択をより容易にするために陽性選択マーカーおよび／または陰性選択マーカーを含んでいることが好ましい。陽性選択マーカーとしては、ネオマイシン耐性遺伝子、βガラクトシダーゼ遺伝子等が挙げられ、陰性選択マーカーとしては、ＨＳＶチミジンキナーゼ遺伝子、ジフテリア毒素（ＤＴ−Ａ）遺伝子等が挙げられる。なお、ターゲティングベクターとして、市販のターゲティングベクター構築用プラスミドベクターを使用することもできる。
【００２５】
前記工程（ｂ）での、ＥＳ細胞におけるターゲティングベクターによる液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子の相同組換えは、ターゲティングベクターをマウスのＥＳ細胞に導入することにより達成される。ターゲティングベクターをＥＳ細胞に導入する方法は、特に限定されるものではなく、例えば、エレクトロポレーション法、リポソーム法、リン酸カルシウム法、ＤＥＡＥ−デキストラン法等が挙げられる。なお、ＥＳ細胞としては、特に限定されるものではなく、例えば、Ｅ１４．１細胞株、Ｒ１株、Ｅ１４株等が挙げられる。
【００２６】
ターゲティングベクター導入後のＥＳ細胞を、細胞内での相同組換えが起こっているかを確認するためのサザンブロッティング法やＰＣＲ法等の常法によりスクリーニングすることにより、液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子が欠損したマウスＥＳ細胞が得られる（以下では、ＶＰＥ欠損ＥＳ細胞という）。
【００２７】
前記工程（Ｃ）において、ＶＰＥ欠損ＥＳ細胞を発生させるには、ＶＰＥ欠損ＥＳ細胞を野生型マウスの胚盤胞または８細胞期の胚内に導入し、当該ＥＳ細胞胚を偽妊娠状態の仮親マウスの子宮に移植し、該移植マウスに仔を出産させればよい。ＶＰＥ欠損ＥＳ細胞を胚に導入する方法としては、例えば、マイクロインジュクション法や凝集法が挙げられ、当業者がこれらの方法を適宜改変することもできる。工程（ｃ）において得られるマウスは、通常、成体を構成する細胞として、組換えＥＳ細胞由来の細胞とともに正常細胞を含むキメラマウスである。得られたキメラマウスを、例えば、ＥＳ細胞が由来する被毛色とは異なる被毛色を有する純系のマウスと交配し、次世代個体にＥＳ細胞由来の被毛色が現れることにより、ＥＳ細胞がキメラマウス生殖系列に導入されたことを確認することができる。また、キメラマウスからＤＮＡを抽出し、サザンブロット解析やＰＣＲアッセイを行うことによりセレクションを行うこともできる。
【００２８】
前記工程（ｄ）において、より詳細には、雄性キメラマウスと雌性野生型マウスと交配してヘテロ接合体マウスを産生させ、生まれた雄性および雌性のヘテロ接合性マウスを交配して、液胞プロセシング酵素欠損ホモ接合体マウスを得ることができる。得られた液胞プロセシング酵素欠損マウスを、雄性、雌性の組み合わせとして一旦得ておけば、それ以降は、適宜繁殖させることにより、より容易に本発明の液胞プロセシング酵素欠損マウスを得ることができる。
【００２９】
本発明の液胞プロセシング酵素欠損マウスはまた、コンディショナルなノックアウトマウスの作製において汎用されている、Ｃｒｅ／ＬｏｘＰのシステム［クーン（Ｋｕｈｎ）ら、Ｓｃｉｅｎｃｅ，  ２６９，  １４２７−１４２９，  １９９５  ］を用いることも可能である。Ｃｅｒ／ＬｏｘＰのシステムを用いた液胞プロセシング酵素欠損マウスの作製方法は、具体的には、
（ａ）液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子の核酸分子中の欠失させる対象である領域の両端にＬｏｘＰ配列が挿入された核酸分子を含むターゲティングベクターを得る工程、
（ｂ）マウス胚性幹細胞内で、前記（ａ）で得られたターゲティングベクターにより液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子の相同組換えを行い、マウス胚性幹細胞を作製する工程、
（ｃ）前記（ｂ）で得られ液胞プロセシング酵素をコードする遺伝子が欠損したマウス胚性幹細胞を発生させてＬｏｘＰ配列を有するキメラマウスを得る工程、
（ｄ）前記（ｃ）で得られキメラマウスを交配し、ヘテロ接合体マウスを得る工程、および
（ｅ）前記（ｄ）で得られヘテロ接合体マウスと、Ｃｒｅ酵素を発現するように形質転換されたマウスとを交配して、液胞プロセシング酵素欠損マウスを得る工程
を含む。
【００３０】
前記Ｃｒｅ／ＬｏｘＰのシステムを使用する方法では、工程（ａ）においてＬｏｘＰ配列で挟まれた配列を作製し、それをマウスに相同組換えに導入して得られたヘテロ接合体マウスを、工程（ｅ）において大腸菌のＰ１ファージ由来の組換え酵素であるＣｒｅ酵素を発現しているマウスと交配させたときに、Ｃｒｅ酵素がＬｏｘＰ配列で挟まれた領域を認識して削除するために、その領域を欠損させたマウスを作製することができる。上記以外の工程は、前述のＣｒｅ／ＬｏｘＰのシステムを使用しない液胞プロセシング酵素欠損マウスの製造方法と同様である。
【００３１】
本発明はまた、リソソーム蓄積症の治療剤のスクリーニングにおける、本発明の液胞プロセシング酵素欠損マウスの使用に関する。
【００３２】
本発明の液胞プロセシング酵素欠損マウスは、腎臓細胞のリソソームが年齢依存的に肥大するという性質を有しているため、当該マウスに化合物を投与し、リソソームの肥大の抑制効果を評価することにより、ヒトのリソソーム蓄積症に対して治療効果を有することが期待される治療剤をスクリーニングすることができる。
【００３３】
液胞プロセシング酵素欠損マウスへの化合物の投与法としては、経口投与、静脈注射、腹腔内注射を行う。
【００３４】
スクリーニング対象の化合物の投与した後、液胞プロセシング酵素欠損マウスを通常条件で１−６  ヶ月間飼育する。
【００３５】
リソソームの肥大の抑制効果は、腎臓の組織標本を作製してリソソームの形態の正常化を光学顕微鏡による観察により評価することができる。また、液胞プロセシング酵素欠損マウスのリソソームは自家蛍光を発するので、この蛍光の消失を蛍光顕微鏡による観察で評価することもできる。
【００３６】
対照として、野生型のマウスに同様の化合物を投与したものと化合物を投与しなかった液胞プロセシング酵素欠損マウスを用いる。
【００３７】
本発明の液胞プロセシング酵素欠損マウスは、腎臓細胞のリソソームが年齢依存的に肥大するという性質を有しているので、液胞プロセシング酵素の生理学的役割を個体レベルで解析するためのモデル動物や、ヒトの腎臓病、特にリソソーム蓄積症の発症や進行のメカニズムの解明のための実験動物として、またかかる疾患に対する治療剤のスクリーニング用動物としてとりわけ有用である。また、液胞プロセシング酵素が、免疫系において外来抗原の抗原提示に関与するということが最近報告されている。また、自己免疫疾患にも関与しているという報告も最近なされている。本発明の液胞プロセシング酵素欠損マウスは、ヒトの自己免疫疾患を含む免疫系の疾患のモデル動物となる可能性がある。
【００３８】
【実施例】
以下、特に明記しない限り、「％」は重量パーセントとする。
【００３９】
実施例１
ＶＰＥをコードするマウスｃＤＮＡを１１日目の胚のｃＤＮＡライブラリー（クロンテック社製）から単離した。ＶＰＥのホモログである植物のＶＰＥ間で最も保存された領域を、ＰＣＲプライマー対：５’−ＣＡ（Ｔ／Ｃ）ＣＡ（Ｇ／Ａ）ＧＣ（Ｇ／Ａ／Ｔ／Ｃ）ＧＡ（Ｔ／Ｃ）ＧＴ（Ｇ／Ａ／Ｔ／Ｃ）ＴＧ（Ｔ／Ｃ）ＣＡ（Ｔ／Ｃ）ＧＣ−３  ’（配列番号：３）および５’−ＧＣ（Ｇ／Ａ／Ｔ）ＡＴ（Ｇ／Ａ）ＴＣ（Ｇ／Ａ）ＴＣ（Ｇ／Ａ）ＴＡＣＡＴ−３’  （配列番号：４）を設計するために選択した。ＰＣＲの条件は、ポリメラーゼ（Ｅｘ  Ｔａｑ）と１０  ｐｍｏｌ／  反応の上記プライマーを用いて、９４℃  ５分反応後、９４  ℃  ４５  秒、５５  ℃  ４５  秒、７２℃  ３０  秒のサイクルを２５回行った後、  ７２℃  １０  分反応させた。前記プライマー対を用いて得られたＰＣＲフラグメントをｃＤＮＡライブラリーのスクリーニングのために使用した。
【００４０】
次いで、得られたＶＰＥ  ｃＤＮＡを用い、ＶＰＥの発現の局在性を調べた。具体的には、商品名：Ｍｏｕｓｅ  ＲＮＡ  ＭａｓｔｅｒＢｌｏｔ（クロンテック社製）を用いてノーザンブロット解析を行なった。ＶＰＥｃＤＮＡのＳｐｈＩ−ＨｉｎｄＩＩＩフラグメントを鋳型として使用し、商品名：Ｍｅｇａｐｒｉｍｅ  ＤＮＡ標識システム（アマシャム−ファルマシア社）を用いてプローブを調製した。シグナルは、商品名：ＢＡＳ−ＩＩＩイメージングプレートおよびＢＡＳ２０００（富士写真フィルム社製）を用いて検出した。シグナル強度を、商品名：Ｉｍａｇｅ  Ｇａｇｅプログラム（富士写真フィルム社製）を用いて定量した。
【００４１】
ＶＰＥの器官特異的発現を図１Ｄに示す。ＶＰＥ  ｍＲＮＡ発現は、以前に報告されたように［タナカ（Ｔａｎａｋａ）、１９９６  Ｃｙｔｏｇｅｎｅｔ．  Ｃｅｌｌ  Ｇｅｎｅｔ．  ７４，  １２０−１２３．  、チェン（Ｃｈｅｎ）、１９９７  Ｊ．  Ｂｉｏｌ．  Ｃｈｅｍ．  ２７２，  ８０９０−８０９８．、チェン（Ｃｈｅｎ）、１９９８  Ｂｉｏｃｈｅｍ．  Ｊ．  ３３５，  １１１−１１７．  ］、腎臓においてひときわ高かった。眼、肝臓および肺などの他の器官の発現レベルは、腎臓でのレベルの８分の１未満であった。
【００４２】
実施例２
ＶＰＥのインビボでの生理学的役割を示すため、ＶＰＥ−欠損（ＶＰＥ−／−  ）マウスを作製した。詳細には以下の通りである。
【００４３】
ＶＰＥ  ｃＤＮＡをプローブとして用い、千葉大学のハタノ・マサヒコ博士から寄贈された１２９／Ｓｖ（１２９）ゲノムライブラリーからＶＰＥのゲノムクローンを単離した。ターゲティングベクターの構築を図１に模式的に示す。推定される３つのエキソン（このうちの１つはＣｙｓ−１９１の触媒中心をコードする）を含むＳａｃＩ−ＢａｍＨＩ  ２．２−ｋｂフラグメントは、２つの同一方向のＬｏｘＰ組換え部位（ｆｌｏｘｅｄ）に隣接した。ベクターｐＧＫ−ＮｅｏｂｐＡ内のネオマイシン耐性遺伝子カセット［ソリアノ（Ｓｏｒｉａｎｏ  ）、１９９１  Ｃｅｌｌ  ６４，  ６９３−７０２．］およびベクターｐＭＣ１ＤＴｐＡ内のジフテリア毒素（ＤＴ−Ａ）遺伝子カセット［ヤギ（Ｙａｇｉ）、１９９０  Ｐｒｏｃ．  Ｎａｔｌ．  Ａｃａｄ．  Ｓｃｉ．  ＵＳＡ  ８７，  ９９１８−９９２２．］を、それぞれ陽性および陰性選択マーカーとして使用した。
【００４４】
以前に報告された［アサノ（Ａｓａｎｏ  ）、１９９７  ＥＭＢＯ  Ｊ．  １６，  １８５０−１８５７］ようにして  、ターゲティングベクターをＳｐｅＩ消化により切断し、Ｅ１４．１胚性幹（ＥＳ）細胞内にエレクトロポレートした［クーン（Ｋｕｈｎ）、１９９１  Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２５４，  ７０７−７１０．  ］。
エレクトロポレーション（２５０Ｖ，  ５００  μＦ）によりターゲティングベクターを導入したＥＳ細胞は、ネオマイシン耐性マウス胎児繊維芽細胞をフィーダー細胞として用いて３７℃  ５％  ＣＯ２の条件下で培養した。エレクトロポレーションの２４時間後にＧ４１８（ネオマイシン  ２５０  μｇ  （  活性形態）／ｍｌ）を添加し、７〜１０日間培養することでネオマイシン耐性を獲得したクローンを選抜した。
【００４５】
プライマー；５’−ＴＣＴＴＧＴＣＴＴＴＣＡＧＴＡＴＧＧＧＡＴＧＧＧＡＴＧＧＡＧＴＧ−３’（配列番号：５）および５’−ＴＡＴＡＣＧＡＡＧＴＴＡＴＣＴＣＧＡＧＴＣＧＣＴＣＧ−３’（配列番号：６）を用いてＰＣＲにより相同的組換えの有無を同定した。ＰＣＲスクリーニングの結果を確認するため、ＰＣＲ−陽性ＥＳクローンから抽出されたゲノムＤＮＡのＢｇｌＩＩフラグメントを、５’−外部プローブとハイブリダイズさせ、ＥｃｏＲＩフラグメントを３’−外部プローブ（図１Ｂ、レーン２）とハイブリダイズさせた。５７８個のネオマイシン耐性クローンのうち７個のＥＳクローンが所望の相同的組換えを起こしていることを示した。
【００４６】
また、前記クローンを、ｎｅｏプローブを用いたサザンブロット解析に供し、単一組込みについて試験した。欠損した対立遺伝子ＡｘＣＡＮＣｒｅを得るため、Ｃｒｅリコンビナーゼ［カネガエ（Ｋａｎｅｇａｅ  ）、１９９５  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．  ２３，  ３８１６−３８２１  ］を発現するアデノウイルスベクターを２個の別々のＥＳクローンに感染させた。ｆｌｏｘｅｄ領域（ＬｏｘＰ配列で挟まれた配列領域）  を欠くＥＳクローンをＰＣＲにより選択して得た。選択した４６個のクローンのうち３５個のクローンが所望の欠失を有した。ゲノムＤＮＡのＥｃｏＲＩフラグメントを、外部３’−プローブを用いたサザンブロット解析に供し、欠失を確認した（図１Ｂ、レーン３）。
【００４７】
２個のｆｌｏｘｅｄＥＳ細胞クローンおよび２個の欠失ＥＳ細胞クローンを用いてサンドイッチ凝集法［ネイジー（Ｎａｇｙ）、１９９３  Ｐｒｏｃ．  Ｎａｔｌ．  Ａｃａｄ．  Ｓｃｉ．  ＵＳＡ  ９０，  ８４２４−８４２８．］によりキメラマウスを作製した。前記キメラマウスにおける生殖細胞系への遺伝を各クローンについて確認した。前記キメラマウスを、Ｃ５７ＢＬ／６Ｊ（Ｂ６）［日本クレア社供給］の雌と交配することにより該変異についてヘテロ接合体マウスを得た。次いで、得られたヘテロ接合体マウスを同系交配してホモ接合体野生型の同腹仔を得るか、またはＢ６マウスとさらに戻し交配した。尾ＤＮＡのＰＣＲにより遺伝子型を決定した。結果を図１Ｃに示す。本明細書に記載の表現型を１２９／Ｂ６交配バックグラウンドマウスを用いて調べた結果、対立遺伝子が破壊された２種類の独立したマウス系において同一であった。なお、マウスを、国立基礎生物学研究所のトランスジェニック動植物センターの環境が制御されたクリーンルーム内で、特定の病原体を含まない条件下に維持した。実験は、研究所の動物実験のための倫理ガイドラインおよび遺伝子操作実験のための安全ガイドラインに従って行なった。
【００４８】
得られたマウスについて、腎臓から全ＲＮＡを単離した。１μｇの精製ＲＮＡを、商品名：Ｓｕｐｅｒｓｃｒｉｐｔ  ＩＩ逆転写酵素（インビトロゲン社製）およびオリゴ−ｄＴプライマーとともに３７℃でインキュベートすることにより第１鎖ｃＤＮＡを合成した。次いで、得られたｃＤＮＡを、ＶＰＥ転写物についてはプライマー５’−ＡＴＧＡＣＣＴＧＧＡＧＡＧＴＧＧＣＴＧ−３’  （配列番号：７）および５’−ＣＧＴＴＧＡＴＧＴＣＧＴＣＧＧＧＣＡ−３’（配列番号：８）を、β−アクチン転写物については５’−ＧＴＧＧＧＣＣＧＣＴＣＴＡＧＧＣＡＣＣＡ−３’（配列番号：９）および５’−ＣＧＧＴＴＧＧＣＣＴＴＡＧＧＧＴＴＣＡＧＧＧＧＧＧ−３’  （配列番号：１０）を用いたＰＣＲに供した。
【００４９】
ＶＰＥタンパク質の検出はマウス液胞プロセシング酵素に対する特異抗体を用いたウェスタンブロット法で行った。この特異抗体は、マウス液胞プロセシング酵素のＣｙｓ−５２からＨｉｓ−１６４  領域のポリペプチドのＮ  末端にＨｉｓ  タグを挿入したものを大腸菌で発現させ、これを抗原としてウサギに免疫して作製した。
【００５０】
その結果、ＶＰＥ−／−  マウスでは、ＶＰＥ転写物（図１Ｅ）もタンパク質（図３Ｂ）も検出されなかった。これは、ＶＰＥ遺伝子の破壊を示す。ヘテロ接合体（ＶＰＥ＋／−  ）マウスにおける該転写物およびタンパク質の量は、ＶＰＥ＋／＋  マウスと比べてほぼ半分であり、遺伝子量を反映している。
【００５１】
ＶＰＥ＋／−  マウスの交配により、予期したメンデル頻度で子孫が得られ、これは、ＶＰＥが胚の正常発生に必須でないことを示す。ＶＰＥ−／−  マウスは、生殖能があり、肉眼での構造的および形態学的な異常は認められなかったが、野生型（ＶＰＥ＋／＋  ）マウスおよびＶＰＥ＋／−  マウスよりもやや小さかった（図２）。ＶＰＥ−／−  マウスの体重は、離乳後２０週間ではＶＰＥ＋／＋  同腹仔およびＶＰＥ＋／−  同腹仔とほぼ同様に増加した。その後、ＶＰＥ−／−  マウスの体重増加は停滞し始めた。４０〜５０週間後では、ＶＰＥ−／−  マウスの体重はＶＰＥ＋／＋  およびＶＰＥ＋／−  マウスとは有意に異なった（雌ではＰ＜０．０５、および雄ではＰ＜０．０１）。ＶＰＥ＋／＋  およびＶＰＥ＋／−  マウスの平均体重は、５０週目において、雌では３８．３±６．３４ｇ、雄では４８．２１±６．９１ｇであった。同じ段階で、ＶＰＥ−／−  マウスの体重は、雌では３１．１±４．３５ｇ、雄では３８．７±５．８５ｇであった。５０週目のＶＰＥ−／−  マウスの平均体重は、ＶＰＥ＋／＋  およびＶＰＥ＋／−  同腹仔の体重の約７０〜８０％であった。
【００５２】
実施例３
４ヶ月齢のＶＰＥ−／−  、ＶＰＥ＋／−  およびＶＰＥ−／−  マウスの腎臓のホモジネートにおけるリソソームプロテアーゼの活性を調べた。腎臓のホモジネートは、マウスを充分に麻酔し、腎臓を取り出す直前にＰＢＳで灌流した。液体窒素中で器官を急速凍結し、商品名：Ｃｒｙｏ−ｐｒｅｓｓ（マイクロテク（Ｍｉｃｒｏｔｅｋ）社製）で破砕し、適当なバッファー中で商品名：Ｐｏｌｙｔｒｏｎを用いてホモジナイズすることにより調製した。ＶＰＥ特異的基質を用い、アスパラギニル結合の切断活性を調べた。
【００５３】
各リソソームプロテアーゼについて以前に報告［クローズ（Ｃｌａｕｓｅ）、１９９８  Ｊ．  Ｂｉｏｌ．  Ｃｈｅｍ．  ２７３，  ９８４２−９８５１．；チェン、１９９７  Ｊ．  Ｂｉｏｌ．  Ｃｈｅｍ．  ２７２，  ８０９０−８０９８］されたような条件下、具体的な反応液としては、カテプシンＢ  （ＣａｔＢ）には１  ｍＭ  ＥＤＴＡ，と２  ｍＭシステインを含む７５  ｍＭ  リン酸バッファー（ｐＨ  ６．０）を用い、カテプシンＢとカテプシンＬ（ＣａｔＢ／Ｌ）には１  ｍＭ  ＥＤＴＡ，と２  ｍＭ  ＤＴＴ，  を含む０．１  Ｍ  酢酸バッファー（ｐＨ  ５．５）を用い、カテプシンＨ  （ＣａｔＨ）には  １  ｍＭ  ＥＤＴＡ，  と１０  ｍＭ  システインを含む０．１  Ｍ  リン酸バッファー（ｐＨ  ６．８）を用い、ジペプチジルペプチダーゼＩＩ（ＤＰＰ  ＩＩ）には８０  ｍＭ  ｂｏｒａｔｅと２０  ｍＭ  クエン酸を含む  ０．１  Ｍリン酸バッファー（  ｐＨ５．３）を用い、ＶＰＥには１  ｍＭ  ＥＤＴＡ，と１００  ｍＭ  ＤＴＴを含む  ０．１  Ｍリン酸バッファー（ｐＨ  ４．５）用いるとともに、蛍光性基質（１ｍＭ）を用いて３７℃ですべての酵素活性を測定した。基質として、ＶＰＥに対してＺ−Ａｌａ−Ａｌａ−Ａｓｎ−ＭＣＡ  、ＣａｔＢに対してＺ−Ａｒｇ−Ａｒｇ−ＭＣＡ  、ＣａｔＢ／Ｌに対してＺ−Ｐｈｅ−Ａｒｇ−ＭＣＡ  、ＣａｔＨに対してＡｒｇ−ＭＣＡ  、およびジペプチジルペプチダーゼＩＩ（ＤＰＰ  ＩＩ）に対してＬｙｓ−Ａｌａ−ＭＣＡ  を用いた。すべての蛍光性基質は、ペプチド・インスティテュート社から購入した。励起波長３６０ｎｍ、発光波長４６０ｎｍを用いて蛍光性基質に由来する蛍光色素を定量した。１単位の酵素活性は、１分あたり１ｎｍｏｌの基質を切断する各酵素の量である。結果を図３Ａに示す。ＶＰＥ−／−  マウスにおける活性は、ＶＰＥ＋／＋  マウスにおけるＶＰＥ活性の１０％未満であったが、ＶＰＥ＋／−  マウスは、ＶＰＥ＋／＋  マウスにおける活性の６５％であった。また、ＣａｔＨ、ＣａｔＢ、ＣａｔＢ／ＬおよびＤＰＰＩＩに対する特異的基質を用い、他のリソソームプロテアーゼの活性を調べた。興味深いことに、ＶＰＥ−／−  マウスにおけるＣａｔＢおよびＤＰＰＩＩの活性は、ＶＰＥ＋／＋  同腹仔のほぼ２倍に増加した。また、ＣａｔＬ活性においてわずかな増加が観察された。一方、ＶＰＥ−／−  マウスにおけるＣａｔＨ活性は、ＶＰＥ＋／＋  およびＶＰＥ＋／−  マウスのほぼ半分に減少した。ＶＰＥ＋／＋  マウスおよびＶＰＥ＋／−  マウスとの間で活性に有意差は認められなかった。
【００５４】
次いで、ＶＰＥがどのようにリソソームプロテアーゼの活性に影響するかを調査するために、腎臓ホモジネートを、これらのリソソームプロテアーゼのそれぞれに対する抗体を用いてイムノブロット解析に供した。ここで、抗体は以下のように調製した。細菌により発現させた、ＶＰＥ（Ｃｙｓ−５２からＨｉｓ−１６４まで）の６×Ｈｉｓタグ融合タンパク質でウサギを免疫することにより抗−マウスＶＰＥ抗体を調製した。発生研究ハイブリドーマ・バンク（（Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｌ  Ｓｔｕｄｉｅｓ  Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ  Ｂａｎｋ）（ＤＳＨＢ）、アイオワ大学）から入手したＬＡＭＰ−２（ラットクローンＧＬ２Ａ７）に対するモノクローナル抗体、サンタクルス・バイオテクノロジー（Ｓａｎｔａ  Ｃｒｕｚ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ）社のＣａｔＤに対するヤギポリクローナル抗体、順天堂大学のイシドウカズミ博士およびコミナミエイキ教授より寄贈された抗−ＣａｔＢ抗体および抗−ＣａｔＬ抗体の両方、大阪大学のウチヤマヤスオ教授から寄贈された抗−ＣａｔＨ抗体、ジャクソン・イムノリサーチ研究所（Ｊａｃｋｓｏｎ  Ｉｍｍｕｎｏｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  ）およびアマシャム・ファルマシア社製のＣｙ−３結合二次抗体、およびモレキュラー・プローブス（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｐｒｏｂｅｓ）社製の商品名：Ａｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ４８８結合二次抗体を使用した。
【００５５】
また、イムノブロット解析法は、具体的には、以下の通りである。ＢＳＡを標準とし、ＢＣＡタンパク質アッセイ試薬（ピアス社製）を用いてタンパク質濃度を測定した。ホモジネートをＳＤＳ−ＰＡＧＥに供した。分離したタンパク質をＰＶＤＦ膜に電気的に移した後、イムノブロット解析を行なった。商品名：ＥＣＬキット（アマシャム−ファルマシア社製）を用いてバンドを可視化し、商品名：ＬＡＳ１０００  ｐｌｕｓ（富士写真フィルム社製）で解析した。
【００５６】
ＣａｔＨ、ＣａｔＢおよびＣａｔＬは、プレプロタンパク質として合成され、かつ単鎖形態を介して二本鎖形態にプロセシングされることが示されている［キルシュケ（Ｋｉｒｓｃｈｋｅ）、１９９８  Ｌｙｓｏｓｏｍａｌ  ｃｙｃｔｅｉｎｅ  ｐｒｏｔｅｉｎａｓｅｓ．  （Ｏｘｆｏｒｄ  Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ  Ｐｒｅｓｓ，  Ｏｘｆｏｒｄ）．  ］。前記イムノブロット解析により、単鎖形態および二本鎖形態は、ともにＶＰＥ＋／＋  マウスおよびＶＰＥ＋／−  マウスにおいて見られた（図３Ｂ）。これに対し、ＶＰＥ−／−  マウスでは、各リソソームプロテアーゼの単鎖形態しか検出されなかった（図３Ｂ）。この結果は、ＶＰＥが、ＣａｔＨ、ＣａｔＢおよびＣａｔＬの単鎖形態から二本鎖形態へのプロセシングに寄与することを明白に示す。各カテプシンの量がＶＰＥ−／−  マウスにおいて増加したことは注目に値する。
【００５７】
実施例４
ＶＰＥは、腎臓に多量に存在する（図１Ｄ）。腎臓におけるＶＰＥの分布を調べるため、抗−ＶＰＥ抗体を用いて免疫蛍光顕微鏡検査を行なった。１、３および１２ヶ月齢マウスの腎臓を灌流により固定し、解析に供した。なお、実施例中において免疫蛍光顕微鏡検査は以下のように行った。
【００５８】
マウスを充分麻酔し、４％パラホルムアルデヒド、０．２％ピクリン酸および０．１Ｍリン酸ナトリウム（ｐＨ７．４）を用いて液胞灌流により室温で固定した。固定された腎臓を小片に切り分け、２０％スクロースを含有するＰＢＳ中で、一晩４℃で低温保護した。試料を、商品名：Ｔｉｓｓｕｅ−ＴｅｋＯＣＴ化合物（サクラ・ファインテクニカル社製）中に包埋し、液体窒素中で凍結した。クリオスタット（商品名：Ｆｒｉｇｏｃｕｔ  ２８００Ｅ、Ｒｅｉｃｈｅｒｔ−Ｊｕｎｇ社製）で６μｍ厚の切片を作製し、コートされたスライド上に集めた。切片をＰＢＳ中で手短かに洗浄し、０．５％ＢＳＡおよび０．３％Ｔｒｉｔｏｎ  Ｘ−１００を含有するいずれかのＰＢＳ中で浸透させ、ＶＰＥおよびＣａｔＤの両方を検出した。ＶＰＥおよびＬＡＭＰ−２の二重染色の場合は、０．５％ＢＳＡおよび０．３％サポニンを含有するＰＢＳ中で切片を浸透させた。切片を一次抗体とともにインキュベートした後、蛍光標識した二次抗体とともにインキュベートした。共焦点レーザー走査イメージングシステム（商品名：ＬＳＭ５１０、カール・ツァイス社製）を用いて蛍光画像を調べた。
【００５９】
１、３および１２ヶ月齢マウスのそれぞれについて、本質的に同じ結果が得られた。ＶＰＥは、皮質のごく限られた領域では見られたが（図４Ａ、右）、回収した細管細胞または尿細管細胞を含む髄質では見られなかった。近位尿細管では顕著なＶＰＥシグナルが検出され、遠位尿細管では弱いシグナルが観察され、糸球体では匹敵するシグナルは検出されなかった。予備免疫血清は、全くシグナルを生じなかった。
【００６０】
腎臓近位尿細管細胞において、ＶＰＥは細胞内の先端領域内の斑点状構造に局在した。構造を解明するため、ＣａｔＤ、リソソームプロテアーゼに対する抗体を用いて、二重標識免疫蛍光顕微鏡検査を行なった（図４Ｂ）。ＶＰＥ含有構造は、細胞の先端側にほぼ限定されたが（図４Ｂ、左）、ＣａｔＤ−陽性リソソームは細胞の中央領域に分布した（図４Ｂ、中央）。ＶＰＥとＣａｔＤとの同時局在はほとんどなかった（図４Ｂ、右）。これらの結果は、ＶＰＥが、リソソームとは異なる非細胞画分に局在することを示す。
【００６１】
次に、ＶＰＥの局在を、後期エンドソームおよびリソソームに対するマーカーであるＬＡＭＰ−２［グランジャー（Ｇｒａｎｇｅｒ  ）、１９９０  Ｊ．  Ｂｉｏｌ．  Ｃｈｅｍ．  ２６５，  １２０３６−１２０４３．  ］の局在と比較した。抗−ＶＰＥ抗体で染色された構造の大部分は、抗−ＬＡＭＰ−２モノクローナル抗体で染色された（図４Ｃ、右）。この結果は、ＶＰＥが腎臓近位尿細管細胞の後期エンドソームに局在することを示した。ほぼすべてのＶＰＥシグナルがＬＡＭＰ−２のものと重複するため、ＶＰＥが初期エンドソームに局在する可能性を排除した。
【００６２】
非細胞局在をさらに詳細に示すため、４週齢マウスの腎臓から調製した極薄切片を用いて免疫電子顕微鏡検査を行なった。免疫電子顕微鏡検査は具体的には以下のように行った。
【００６３】
４％パラホルムアルデヒドの代わりに２．５％グルタルアルデヒドを用いた以外は上述の免疫蛍光顕微鏡検査の手順と同様にしてマウスを固定した。取出した腎臓を、同じ固定液中でさらに２時間固定し、以前に記載されたような標準的電子顕微鏡検査技術に供した。免疫電子顕微鏡検査のため、予備包埋銀増強イムノゴールド法を使用した。凍結超薄切片を抗−ＶＰＥ抗体と反応させた後、コロイド状の金を結合した二次抗体と反応させた。金標識は、銀増強キットを用いて増強した。次いで、クリオ切片を脱水し、ＬＲ−ホワイト内に包埋し、標準的な電子顕微鏡検査技術に従ってさらに処理した。商品名：日立Ｈ７００電子顕微鏡（日立社製）下で極細切片を観察した。
【００６４】
近位尿細管細胞において、ＶＰＥは電子発光性多液胞体様構造である後期エンドソームに局在した（図４Ｄ）。ＶＰＥの局在を示す金粒子は、高電子密度の均一な構造であるリソソーム上では検出されなかった。この結果は、ＶＰＥが腎臓近位尿細管細胞の後期エンドソームに濃縮されることを示す。
【００６５】
実施例５
リソソーム／エンドソーム機能に対するＶＰＥ欠損の効果を明らかにするため、ＶＰＥ−／−  マウスの腎臓におけるＬＡＭＰ−２の分布を試験した。４ヶ月齢マウスおよび７ヶ月齢マウスから腎臓を単離し、免疫蛍光顕微鏡検査に供した。４ヶ月齢のＶＰＥ−／−  マウスおよびＶＰＥ＋／＋  マウスとの間で著しい差は検出されなかった。これに対し、７ヶ月齢ＶＰＥ−／−  マウスの腎臓近位尿細管細胞において、ＬＡＭＰ−２陽性構造の過剰誇大が認められた（図５Ｂ）。これらは、最大径１μｍの環状構造として観察された。また、ＬＡＭＰ−２含有構造の分布はＶＰＥ−／−  マウスにおいて影響を受けた。ＬＡＭＰ−２陽性構造は、ＶＰＥ＋／＋  腎臓近位尿細管細胞の先端領域において主に見られたが（図５Ａおよび図４Ｃ、中央）、それらは、ＶＰＥ−／−  マウスの細胞内に広く分布した（図５Ｂ）。遠位尿細管、糸球体または集合管などの腎臓の他の領域ではかかる構造は見られなかった。この構造の性質を解明するため、電子顕微鏡解析を行なった。図５Ｃは、ＶＰＥ−／−  マウスの近位尿細管細胞においてリソソームのほとんどが肥大し、異常であることを示す。異常リソソームは、高電子密度および／または膜性の物質を含んでいた（図５Ｄ）。この結果は、ＶＰＥ−／−  マウスでは腎臓近位尿細管細胞内にリソソームが高填されることを示す。
【００６６】
実施例６
スクリーニング対象の化合物をＶＰＥ−／−  マウスに経口投与し、通常条件で１ヶ月間飼育する。次いで、前記マウスを屠殺し、腎臓の組織標本を作製してリソソームの形態の正常化を光学顕微鏡による観察により評価する。前記腎臓の組織標本を、スクリーニング対象の化合物を投与した野生型マウスの腎臓の組織標本およびスクリーニング対象の化合物を投与しなかったＶＰＥ−／−  マウスの腎臓の組織標本と比較し、リソソームの形態の正常化が見られるか否かを観察する。
【００６７】
【発明の効果】
本発明の液胞プロセシング酵素欠損マウスによれば、リソソーム蓄積症の実験動物が提供されるという優れた効果を奏する。また、本発明の液胞プロセシング酵素欠損マウスの製造方法によれば、液胞プロセシング酵素欠損マウスが提供されるという優れた効果を奏する。また、本発明のリソソーム蓄積症の治療剤のスクリーニングにおける液胞プロセシング酵素欠損マウスの使用によれば、リソソーム蓄積症に対して治療効果を有する化合物をスクリーニングすることができるという優れた効果を有する。
【００６８】
【配列表】
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【図面の簡単な説明】
【図１】図１は、マウスにおけるＶＰＥ遺伝子の標的化破壊および野生型マウスにおけるマウスＶＰＥの発現を示す図である。
（Ａ）  ＶＰＥ遺伝子の破壊のためのターゲティングベクターおよび生じた標的化遺伝子座。黒四角はエキソンを表す。ＬｏｘＰ組換え部位およびＦＲＴ組換え部位を、それぞれ黒三角および灰色五角形で示す。ネオマイシンカセット（Ｎｅｏ）を陽性選択マーカーとして使用し、ジフテリア毒素遺伝子カセット（ＤＴ−Ａ）を陰性選択マーカーとして使用した。制限酵素の略語は、ＲＩ：ＥｃｏＲＩ、Ｂｇ：ＢｇｌＩＩ、Ｓａ：ＳａｃＩ、ＢＨ：ＢａｍＨＩ、Ｓｐ：ＳｐｅＩである。
（Ｂ）野生型ＥＳ細胞（レーン１および４）ならびにＣｒｅリコンビナーゼによる処理前の標的化ＥＳ細胞（レーン２）および処理後の標的化ＥＳ細胞（レーン３）から単離したゲノムＤＮＡをＥｃｏＲＩで消化し、次いで、Ａに示した３’−外部プローブを用いてサザンブロット解析に供した。１７ｋｂフラグメントを野生型遺伝子座から誘導し、１２ｋｂフラグメントを標的化遺伝子座から誘導し、１０ｋｂフラグメントを破壊遺伝子座から誘導し、これらをＡ  において両方向矢印で示す。
（Ｃ）野生型（＋／＋）、ヘテロ接合体（＋／−）およびホモ接合体（−／−）マウスのテイルＤＮＡを用いてＰＣＲを行なった。１５０ｂｐおよび２９０ｂｐのＤＮＡフラグメントを、それぞれ野生型の対立遺伝子および変異対立遺伝子を用いて増幅した。
（Ｄ）マウスＲＮＡ  Ｍａｓｔｅｒ  Ｂｌｏｔ（クロンテック社製）を用い、ＶＰＥ  ｍＲＮＡの器官特異的発現を調べた。シグナル強度は、Ｉｍａｇｅ  Ｇａｇｅプログラムを用いて定量した。
（Ｅ）野生型（＋／＋）、ヘテロ接合体（＋／−）およびホモ接合体（−／−）マウスの腎臓から調製した全ＲＮＡを、ＶＰＥまたはβ−アクチンに対する特異的プライマー対を用いてＲＴ−ＰＣＲに供した。
【図２】図２は、野生型マウスの体重と比較した５０週齢ＶＰＥ−／−  マウスの体重を示すグラフである。
ＶＰＥ−／−  マウス（ｎ＝１０）および野生型マウス（ＶＰＥ＋／＋  およびＶＰＥ＋／−  、ｎ＝１０）の体重を、乳離後５０週間モニターした。雌マウス（左）ではＰ＜０．０５、雄マウス（右）ではＰ＜０．０１であると統計学的に算出された。
【図３】図３は、多数のリソソームプロテアーゼのプロセシングを担うＶＰＥを示す図である。
（Ａ）  ＶＰＥ＋／＋  、ＶＰＥ＋／−  およびＶＰＥ−／−  マウスの腎臓からホモジネートを調製した。これらのホモジネート中のプロテアーゼの特異的活性を、ＶＰＥ、カテプシンＨ、カテプシンＢ、カテプシンＢ／ＬおよびＤＰＰＩＩのそれぞれに対する特異的基質を用いて測定した。ＶＰＥ−／−  マウス（白色柱）およびＶＰＥ＋／−  マウス（灰色柱）の相対特異的活性は、ＶＰＥ＋／＋  マウス（黒色柱）の活性の％で示す。
（Ｂ）  腎臓ホモジネート（２０μｇタンパク質）を、ＶＰＥ、ＣａｔＨ、ＣａｔＢおよびＣａｔＬのそれぞれに対する特異的抗体を用いてイムノブロットに供した。ＶＰＥの欠損は、これらのプロテアーゼの単鎖形態レベルの上昇を引き起こした。各酵素について、単鎖形態（Ｓ）および二本鎖形態（Ｔ）がブロットで示されている。
【図４】図４は、腎臓近位尿細管細胞の後期エンドソームにおけるＶＰＥの特異的局在を示す図である。
（Ａ）  マウス腎臓の凍結切片を、抗−ＶＰＥ抗体を用いて免疫蛍光顕微鏡検査に供し、共焦点レーザー走査顕微鏡（右）または差異干渉対比顕微鏡（左）で検査した。アスタリスクは近位尿細管を示す。ｇｌ：糸球体、ｄ：遠位尿細管。バー＝５０μｍ。
（Ｂ）  腎臓の凍結切片を、抗−ＶＰＥ抗体（左）または抗−カテプシンＤ抗体（中央）のいずれかを用いて二重免疫染色に供し、共焦点レーザー走査顕微鏡で検査した（右）。バー＝１０μｍ。
（Ｃ）  腎臓の凍結切片を、抗−ＶＰＥ抗体（左）または抗−ＬＡＭＰ−２モノクローナル抗体（中央）のいずれかを用いて二重免疫染色に供し、共焦点レーザー走査顕微鏡で検査した（右）。バー＝１０μｍ。
（Ｄ）  抗−ＶＰＥ抗体で染色した腎臓近位尿細管細胞の銀増強免疫電子顕微鏡画像。矢印部は、金粒子が局在した後期エンドソームを示す。Ｍｔ：ミトコンドリア、Ｌｙ：リソソーム。バー＝１０μｍ。なお、本図については図面参照用写真を提出する。
【図５】図５は、ＶＰＥ−／−  マウスの腎臓近位尿細管細胞におけるリソソームの誇大を示す図である。
ＶＰＥ＋／＋  マウス（Ａ）およびＶＰＥ−／−  マウス（Ｂ）から単離した腎臓の凍結切片を、抗−ＬＡＭＰ−２抗体を用いて免疫蛍光顕微鏡検査に供した。矢印部は、ＶＰＥ−／−  マウスにおいて観察された誇大化構造を示す。バー＝１０μｍ。（Ｃ）ＶＰＥ−／−  マウスの近位尿細管細胞を、電子顕微鏡を用いて検査した。バー＝１μｍ。（Ｄ）ＶＰＥ−／−  マウスにおいて見られたリソソームの高倍率画像を示す。バー＝１μｍ。なお、本図については図面参照用写真を提出する。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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