(57)【要約】【課題】好酸球カチオン性タンパク質の新規活性を利用した新しい組成物を提供する【解決手段】好酸球カチオン性タンパク質と他の成分とを含有し、細胞の生存維持、増殖および／または細胞分化の障害を原因とする疾患に対する治療用組成物、および細胞の生存維持、増殖および／または細胞分化を促進する培地組成物。【選択図】　なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
細胞の生存維持、増殖および／または細胞分化の障害を原因とする疾患に対する治療用組成物であって、好酸球カチオン性タンパク質と薬理学的成分とを含有することを特徴とする組成物。
【請求項２】
細胞の生存維持、増殖および／または細胞分化の障害を原因とする疾患が、心臓疾患、骨疾患または、神経変性疾患である請求項１の組成物。
【請求項３】
細胞の生存維持、増殖および／または細胞分化を促進する培地組成物であって、好酸球カチオン性タンパク質と細胞生物学的成分とを含有する組成物。
【請求項４】
細胞の生存維持、増殖および／または細胞分化の障害を原因とする疾患に対する治療用組成物の有効成分物質をスクリーニングする方法であって、細胞に候補物質を接触させ、好酸球カチオン性タンパク質と同程度またはそれ以上に細胞の生存維持および／または細胞分化を促進させる物質を目的物質として特定することを特徴とするスクリーニング方法。
【請求項５】
細胞が、神経細胞、骨細胞、心筋細胞または線維芽細胞である請求項４のスクリーニング方法。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
この出願の発明は、好酸球カチオン性タンパク質を含有する組成物に関するものである。さらに詳しくは、この出願は、好酸球カチオン性タンパク質の新規生理活性を利用する治療用組成物と細胞培地組成物、並びに好酸球カチオン性タンパク質の生理活性を指標とするスクリーニング方法に関するものである。
【０００２】
【従来の技術】
好酸球カチオン性タンパク質（ｅｏｓｉｎｏｐｈｉｌ　ｃａｔｉｏｎｉｃ　ｐｒｏｔｅｉｎ：以下「ＥＣＰ」と記載する）は、好酸球の活性化に伴って発現が上昇するタンパク質であり、塩基性顆粒中に存在する（非特許文献１）。このＥＣＰは、寄生虫殺傷、神経毒、リンパ球増殖抑制、殺菌、ヒスタミン遊離、リボヌクレアーゼ、凝固時間短縮等の活性を有することが知られており（非特許文献２）、特にそのヒスタミン遊離活性はアレルギー反応を惹起することから、ＥＣＰの発現抑制を薬理作用とする抗アレルギー薬が提案されている（特許文献１）。またこのＥＣＰを含む好酸球細胞株を喘息薬や抗アレルギー薬のスクリーニングに利用することも提案されている（特許文献２）。
【０００３】
【特許文献１】
特表２００２−５００５０６号公報
【特許文献２】
特開平０５−１１１３８２号公報
【非特許文献１】
Ｐｒｏｃ．　Ｎａｔｌ．　Ａｃａｄ．　Ｓｃｉ．　ＵＳＡ．　１９８６，　８３（１０）：　３１４６−３１５０
【非特許文献２】
日本臨床　１９９３，　５１（３）：６０（６０６）
【０００４】
【発明が解決しようとする課題】
前記のとおり、ＥＣＰの生理活性はこれまで、細菌や動物細胞に対する毒性や増殖抑制であると認識されてきた。
【０００５】
これに対し、この出願の発明者らは、ＥＣＰが動物細胞の生存維持や分化促進といった新規の生理活性を有することを見出した。
【０００６】
この出願の発明は、発明者らが見出したＥＣＰの新規活性を利用した新しい組成物を提供することを課題としている。
【０００７】
またこの出願は、ＥＣＰの新規活性を指標として、細胞の生存維持や分化を促進させることを薬理作用とする治療薬剤を開発するための新しい方法を提供することを課題としている。
【０００８】
【課題を解決するための手段】
この出願は、前記の課題を解決するための第１の発明として、細胞の生存維持、増殖および／または細胞分化の障害を原因とする疾患に対する治療用組成物であって、好酸球カチオン性タンパク質と薬理学的成分とを含有することを特徴とする組成物を提供する。
【０００９】
この第１発明の組成物においては、細胞の生存維持、増殖および／または細胞分化の障害を原因とする疾患が、心臓疾患、骨疾患または、神経変性疾患であることを好ましい態様としている。
【００１０】
またこの出願は、第２の発明として、細胞の生存維持、増殖および／または細胞分化を促進する培地組成物であって、好酸球カチオン性タンパク質と細胞生物学的成分とを含有する組成物を提供する。
【００１１】
さらにこの出願は、第３の発明として、細胞の生存維持、増殖および／または細胞分化の障害を原因とする疾患に対する治療用組成物の有効成分物質をスクリーニングする方法であって、細胞に候補物質を接触させ、好酸球カチオン性タンパク質と同程度またはそれ以上に細胞の生存維持および／または細胞分化を促進させる物質を目的物質として特定することを特徴とするスクリーニング方法を提供する。
【００１２】
この第３発明においては、細胞が、神経細胞、骨細胞、心筋細胞または線維芽細胞であることを好ましい態様としている。
【００１３】
すなわち、この出願の発明者らは、従来は細胞毒性や細胞の増殖抑制を生理活性とするものと考えられてきたＥＣＰについて、以下のとおりの新たな活性を見出した。
（１）　　線維芽細胞の増殖促進とストレスファイバーの形成促進。
（２）　　心筋細胞の筋繊維の成熟と、拍動数の上昇。
（３）　　低血清または無血清培地での神経細胞の生存率の向上。
（４）　　骨芽細胞の分化促進。
【００１４】
そしてまた、前記の活性は、細胞のシグナル伝達経路において重要な役割を果たしている低分子量Ｇタンパク質Ｒｈｏキナーゼの基質（ＲＯＣＫ）に対する阻害剤によって抑制もしくは消失することから、ＥＣＰが細胞のシグナル伝達経路に作用し、前記（１）〜（４）の活性をもたらすことを見出してもいる。
【００１５】
この出願の発明は、以上のとおりの新規な知見を基礎とするものである。以下、この出願の各発明について、実施形態を詳しく説明する。
【００１６】
【発明の実施の形態】
この出願の各発明において使用するＥＣＰは、ヒトをはじめとする各種哺乳動物の細胞（白血球や造血幹細胞）から公知の方法によって単離することができる。また、そのアミノ酸発列（ヒトＥＣＰ：ＧｅｎＢａｎｋ／Ｘ１５１６１、チンパンジー：ＧｅｎＢａｎｋ／ＡＦ２９４０２８、ゴリラ：ＧｅｎＢａｎｋ／Ｕ２４０９７）等に基づいて公知の固相ペプチド合成法により化学合成して作製することもできる。あるいは、それぞれのペプチドをコードするポリヌクレオチドをｉｎ　ｖｉｔｒｏ転写翻訳系や適当な宿主−ベクター系で発現させることによって、組換えＥＣＰとして取得することができる。ポリヌクレオチド（例えばＥＣＰ　ｃＤＮＡ）は前記ＧｅｎＢａｎｋデータベースの塩基配列情報に基づき作製したオリゴヌクレオチドプローブを用いて既存のｃＤＮＡライブラリーをスクリーニングする方法や、オリゴヌクレオチドプライマーを用いたＲＴ−ＰＣＲ法等の公知の方法により取得することができる。
【００１７】
例えば組換えＥＣＰをｉｎ　ｖｉｔｒｏ転写翻訳で作製する場合には、前記ポリヌクレオチドを、ＲＮＡポリメラーゼプロモーターを有するベクターに挿入して発現ベクターを作製し、このベクターを、プロモーターに対応するＲＮＡポリメラーゼを含むウサギ網状赤血球溶解物や小麦胚芽抽出物などのインビトロ翻訳系に添加する。ＲＮＡポリメラーゼプロモーターとしては、Ｔ７、Ｔ３、ＳＰ６などが例示できる。これらのＲＮＡポリメラーゼプロモーターを含むベクターとしては、ｐＫＡ１、ｐＣＤＭ８、ｐＴ３／Ｔ７
１８、ｐＴ７／３　１９、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ　ＩＩなどが例示できる。
【００１８】
組換えＥＣＰを、大腸菌などの微生物で発現させる場合には、微生物中で複製可能なオリジン、プロモーター、リボソーム結合部位、ＤＮＡクローニング部位、ターミネーター等を有する発現ベクターに前記のＤＮＡ断片を組換えた発現ベクターを作成し、培養物から融合ペプチドを単離する。大腸菌用発現ベクターとしては、ｐＵＣ系、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ　ＩＩ、ｐＥＴ発現システム、ｐＧＥＸ発現システムなどが例示できる。
【００１９】
また組換えＥＣＰを真核細胞で発現させる場合には、前記の融合ポリヌクレオチドを、プロモーター、スプライシング領域、ポリ（Ａ）付加部位等を有する真核細胞用発現ベクターに挿入して組換えベクターを作成し、真核細胞内に導入すれば、融合ペプチドを形質転換真核細胞で発現させることができる。発現ベクターとしては、ｐＫＡ１、ｐＣＤＭ８、ｐＳＶＫ３、ｐＭＳＧ、ｐＳＶＬ、ｐＢＫ−ＣＭＶ、ｐＢＫ−ＲＳＶ、ＥＢＶベクター、ｐＲＳ、ｐｃＤＮＡ３、ｐＭＳＧ、ｐＹＥＳ２などが例示できる。真核細胞としては、サル腎臓細胞ＣＯＳ７、チャイニーズハムスター卵巣細胞ＣＨＯなどの哺乳動物培養細胞、出芽酵母、分裂酵母、カイコ細胞、アフリカツメガエル卵細胞などが一般に用いられるが、目的とするタンパク質を発現できるものであれば、いかなる真核細胞でもよい。
【００２０】
発現ベクターを宿主細胞に導入するには、電気穿孔法、リン酸カルシウム法、リポソーム法、ＤＥＡＥデキストラン法など公知の方法を用いることができる。
【００２１】
融合ペプチドを原核細胞や真核細胞で発現させたのち、培養物から組換えＥＣＰを単離精製するためには、公知の分離操作を組み合わせて行うことができる。例えば、尿素などの変性剤や界面活性剤による処理、超音波処理、酵素消化、塩析や溶媒沈殿法、透析、遠心分離、限外濾過、ゲル濾過、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ、等電点電気泳動、イオン交換クロマトグラフィー、疎水性クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、逆相クロマトグラフィーなどが挙げられる。
【００２２】
なお、ＥＣＰは分泌性タンパク質であり、例えばヒトＥＣＰの場合にはそのＮ端側の２３アミノ酸配列が分泌シグナルである。従って、原核細胞や真核細胞で組換えＥＣＰを発現させる場合には、その培養物からの組換えＥＣＰの回収効率を考慮して、分泌シグナル配列よりＣ端側（例えば第２８位Ａｒｇ以降）の活性領域を発現させることが好ましい。
【００２３】
第１発明の組成物は、前記のとおりのＥＣＰと薬理学的成分とを含有することを特徴とする医療用組成物であり、細胞の生存維持、増殖および／または細胞分化の障害を原因とするヒト疾患の治療に用いられる。すなわち、このような疾患は生体の各種組織細胞の正常なライフサイクル（増殖、分化、細胞死等）の異常によって発症する疾患であり、遺伝や様々な細胞障害物質を原因とする各種の疾患を対象とすることができる。特には、心臓疾患、骨疾患および神経変性疾患の完治、寛解または症状の改善に使用することができる。心臓疾患としては、心筋の細胞骨格の形成以上や変性等を原因とする心筋梗塞、心筋炎、心筋症（拡張型心筋症、肥大型心筋症、拘束型心筋症、内腔閉鎖型心筋症等）、心筋線維症などである。骨疾患としては、特に造骨細胞（骨芽細胞）の分化障害を原因とする骨粗鬆症や歯周病である。またこの治療用組成物は骨折後の骨組織再生のためにも使用することができる。神経変性疾患としては、神経細胞の変性や細胞死を原因とするアルツハイマー病、老年性痴呆、ダウン症、パーキンソン病、クロイツフェルト・ヤコブ病、筋萎縮性脊髄側索硬化症、ニューロパチー等である。
【００２４】
この第１発明の医療用組成物の成分である「薬学的成分」とは、第１には、通常の薬剤製造に用いられる各種の担体を意味する。担体は、対象疾患の種類や薬剤の投与形態に応じて広い範囲から適宜に選択することができるが、この発明の医療用組成物は、経口的にまたは注射により投与しうる単位服用形態にあることが望ましい。特に、注射による投与の場合には、局所注入、腹腔内投与、選択的静脈内注入、静脈注射、皮下注射、臓器灌流液注入等を採用することができる。
【００２５】
懸濁剤およびシロップ剤のような経口液体調製物は、水、シュークロース、ソルビトール、フラクトース等の糖類、ポリエチレングリコール等のグリコール類、ゴマ油、大豆油等の油類、アルキルパラヒドロキシベンゾエート等の防腐剤、ストロベリー・フレーバー、ペパーミント等のフレーバー類等を使用して製造することができる。
【００２６】
散剤、丸剤、カプセル剤および錠剤は、ラクトース、グルコース、シュークロース、マンニトール等の賦形剤、デンプン、アルギン酸ソーダ等の崩壊剤、マグネシウムステアレート、タルク等の滑沢剤、ポリビニルアルコール、ヒドロキシプロピルセルロース、ゼラチン等の結合剤、脂肪酸エステル等の表面活性剤、グリセリン等の可塑剤等を用いて製剤化することができる。錠剤およびカプセル剤は、投与が容易であるという点において、この発明の組成物における好ましい単位投与形態である。錠剤やカプセルを製造する際には、固体の製薬担体が用いられる。
【００２７】
また、注射用の溶液は、塩溶液、グルコース溶液、または塩水とグルコース溶液の混合物、各種の緩衝液等からなる担体を用いて製剤化することができる。また粉末状態で製剤化し、使用時に前記液体担体と混合して注射液を調製するようにしてもよい。
【００２８】
この発明の医療用組成物の投与量は、患者の年齢や体重、症状、投与経路等によって異なるが、ＥＣＰの血中濃度が１０ｎｍｏｌ〜０．１ｍｍｏｌ、好ましくは５ｎｍｏｌ〜０．５ｍｍｏｌ程度となる量を投与すればよい。
【００２９】
薬学的成分の第２は、ＥＣＰを細胞内に導入可能な形態とするための成分である。例えば、このポリペプチドの構造や機能を変更することなく、かつ薬理学的に許容される溶液にこのポリペプチドを混合して組成物とすることができる。このような組成物は、例えばマイクロインジェクション法により細胞内に導入する方法や、脂質（例えば、ＢｉｏＰＯＲＴＥＲ（Ｇｅｎｅ　Ｔｈｅｒａｐｙ　Ｓｙｓｔｅｍｓ社、米国）、Ｃｈａｒｉｏｔ（Ａｃｔｉｖｅ　Ｍｏｔｉｆ社、米国）等）を用いた細胞内導入法によって標的細胞に導入することができる。
【００３０】
薬学的成分の第３は、ＥＣＰをコードするポリヌクレオチドを細胞内に導入可能な形態とするための成分である。すなわち、ポリヌクレオチドを真核細胞用の発現ベクターに組み込み、このベクターを、例えば生体認識分子を提示した中空ナノ粒子、レトロウイルス、アデノウイルス、アデノ随伴ウイルス等に組み込むようにすればよい。このような組成物は、遺伝子治療の手法により生体内の標的細胞に導入することができる。
【００３１】
この出願の第２の発明は、好酸球カチオン性タンパク質と細胞生物学的成分とを含有する培地組成物であって、培養細胞の生存維持、増殖および／または細胞分化を促進させるための使用することができる。
【００３２】
「細胞生物学的成分」とは、細胞の生存、増殖、分化等に必須の成分であって、具体的には通常の動物細胞培地を構成する成分である。具体的には、緩衝液（リン酸塩−炭酸水素ナトリウムと二酸化炭素ガスなど）、塩類、グルコース、ビタミン、アミノ酸等の有機物質、血清（ウシ胎児血清：ＦＢＳ）や栄養因子（Ｇｒｏｗｔｈ　Ｆａｃｔｏｒ　ｉｎ　Ｓｅｒｕｍ：ＧＦＳ）等である。これらの成分とＥＣＰとを適宜に混合することによってこの発明の培地組成物を製造することができる。各成分の含有量は通常の動物培養培地と同程度とすることができる。ＥＣＰは、細胞の種類や目的に応じて適宜とすることができるが、培地１ｍｌに対して０．００１〜１０μ程度とすることができる。「細胞」は、通常の動物細胞の対象となる細胞を用いることができるが、特に、神経細胞、骨細胞、心筋細胞、線維芽細胞等が好ましい。またこれらの細胞は、動物組織から単離した初代細胞、継代細胞、株化細胞、あるいは外来遺伝子を導入した形質転換細胞であってもよい。「培養」は、浮遊細胞の場合には浮遊培養、接着性細胞の場合には単層培養または３次元培養として行うことができる。また中空性ポリマー管内でのホロファイバー培養としてもよい。
【００３３】
この第２発明の培地組成物を用いた培養によって、培養細胞を長期間に渡って生存させ、または機能発現のために分化させることができる。このため、この組成物を用いた培養系は、細胞の生存、細胞骨格形成、増殖、分化といった細胞生物学的事象、あるいはこれらの事象を司るシグナル伝達カスケード（特にＲｈｏキナーゼ経路）の解明に有用である。また、この組成物は、細胞を機能発現状態に分化させ、あるいは細胞を長期間に渡って生存させることができるため、有用物質の製造（バイオリアクター等）にも利用することこができる。
【００３４】
さらに、この発明の培地組成物は、ＥＣＰを含有することによって、低血清や無血清であっても神経細胞等を長期間に渡って生存させることができる。このため、ＥＣＰ以外のタンパク質成分が少ない、または全くない状態で細胞機能を解析することができるため、細胞の特定機能に作用するタンパク質因子等をスクリーニングするための系としても有用である。
【００３５】
この出願の第３の発明は、細胞の生存維持、増殖および／または細胞分化の促進作用を有する、ＥＣＰ以外の新規因子を特定するためのスクリーニング方法である。すなわち、細胞に候補物質を接触させ、その細胞の生存期間あるいは分化状態を測定する。そして、この測定値が、ＥＣＰを細胞に接触させた時の測定値と同程度またはそれ以上である場合に、試験した候補物質が目的因子であると決定することができる。細胞の生存は、例えばトリパンブルー染色法等の公知の方法で行うことができる。細胞の増殖は、一定期間の培養後の生細胞数を計測することによって行うことができる。また細胞の分化は、分化細胞に特有のマーカーを対象とする免疫染色やウエスタンブロット分析、ＲＴ−ＰＣＲ法等によって行うことができる。
【００３６】
細胞は、ＥＣＰの接触によってその生存期間を延長させる細胞、増殖または分化を促進させる細胞であり、具体的には、神経細胞、骨細胞、心筋細胞、線維芽細胞等が好ましい。またこれらの細胞は、動物組織から単離した初代細胞、継代細胞、株化細胞、あるいは外来遺伝子を導入した形質転換細胞であってもよい。これらの細胞は、通常の動物細胞培養と同一の条件下で試験することができる。なお、細胞の生存を試験する場合には、血清や成長因子が存在しない条件下で培養することが好ましい。さらに、これらの細胞は、動物個体内にある細胞であってもよい。
【００３７】
「候補物質」は、例えば、未知および既知の有機または無機化合物、タンパク質、ペプチド、ポリヌクレオチド、オリゴヌクレオチド等である。これらの候補物質を細胞に接触させる場合には、候補物質を培養細胞の培地に添加する方法、培養細胞または動物個体内の細胞に候補物質を導入する方法（マイクロインジェクションや脂質による細胞内導入法）等を採用することができる。また、候補物質がポリヌクレオチドやオリゴヌクレオチドの場合には、その発現ベクターを公知の方法で細胞にトランスフェクションしたり、遺伝子治療の方法に準じて動物個体にウイルスベクターを感染させてもよい。
【００３８】
このスクリーニング方法によって特定される新規因子は、単独で、またはＥＣＰとの組み合わせによって、治療用組成物や培地組成物の有効成分となりうる。
【００３９】
以下、実施例として、ＥＣＰの新規生理活性を確認するために行った試験研究の結果を示して、この出願の発明についてさらに詳細かつ具体的に説明するが、この出願の発明は以下の例によって限定されるものではない。
【００４０】
【実施例】
実施例１：正常組織由来細胞株の増殖に対するＥＣＰの効果
マウス線維芽細胞株（ＢＡＬＢ／ｃ　３Ｔ３）、大動脈平滑筋細胞株（Ａ１０）、マウス乳腺内皮細胞株（ＨＣ−１１）およびヒト臍帯血管内皮細胞株（ＨＵＶＥＣ）の増殖に対するＥＣＰの効果を、１０％　ＦＢＳの存在下で解析した。まず、９６穴培養プレートの１０％　ＦＢＳ含有ＤＭＥＭ培養液中に５００　ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌになるように各細胞を播種した。２４時間、５％ＣＯ２に維持した培養庫で培養し、０から１０μＭの各濃度のＥＣＰおよびＲＮａｓｅＡを添加し、４８時間、同じ培養庫で培養を続けた。そして、３−（４，５−ｄｉｍｅｔｈｙｌｔｈｉａｚｏｌ−２−ｙｌ）−ｄｉｐｈｅｎｙｌ−ｔｅｔｒａｚｏｌｉｕｍ　ｂｒｏｍｉｄｅ（ＭＴＴ）を添加し、各細胞の増殖率を求めた。
【００４１】
その結果を図１に示した。この図１から明らかなように、ＢＡＬＢ／ｃ　３Ｔ３細胞はＥＣＰの添加により、細胞増殖が促進されることが確認された。一方その他の細胞株は、ＥＣＰによる増殖促進がないか、または増殖が抑制された。
実施例２：　ＢＡＬＢ／ｃ　３Ｔ３細胞増殖に対するＥＣＰの効果
９６穴培養プレートの１０％　ＦＢＳ含有ＤＭＥＭ培養液中にＢＡＬＢ／ｃ　３Ｔ３　Ａ３１−Ｋ細胞を１０００　ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌの濃度で播種した。２４時間後、最終濃度１μＭのＥＣＰまたはＲＮａｓｅＡをそれぞれ培養液中に添加した。４８時間培養を続けた後に生細胞数を測定した。
【００４２】
結果は図２に示したとおりである。ＥＣＰは何れの濃度においても有意に細胞増殖を促進させた。一方、ＲＮａｓｅＡには増殖促進効果は見られなかった。
実施例３：　ＢＡＬＢ／ｃ　３Ｔ３細胞増殖の経時変化に対するＥＣＰの効果
９６穴培養プレートの１０％　ＦＢＳ含有ＤＭＥＭ培養液中にＢＡＬＢ／ｃ　３Ｔ３細胞を１０００　ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌの濃度で播種した。培養２４時間後、１μＭ　ＥＣＰまたは１μＭ　ＲＮａｓｅＡをそれぞれ１ｎｇ／ｍｌになるように培養液中に添加した。４日間培養を続け、２４時間ごとに生細胞数を測定した。なお、培養２日目に培養液の交換を行った。
【００４３】
結果は図３に示したとおりである。培養２日目の培地交換ののち、ＥＣＰ添加条件では細胞の増殖が著しく促進された。
実施例４：低血清条件下でのＢＡＬＢ／３Ｔ３細胞増殖に対するＥＣＰの効果
２４穴培養プレートの１０％　ＦＢＳ含有ＤＭＥＭ培養液に、２×１０４ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌになるようにＢＡＬＢ／ｃ　３Ｔ３細胞を播種し培養した。２４時間後、培養細胞が安定したら、０．５％　ＦＢＳを含むＤＭＥＭ培養液に培地を交換して培養を続けた。２４時間後、１μＭのＥＣＰおよびＲｎａｓｅＡ、６０ｐＭのｂＦＧＦをそれぞれ組み合わせて培養液に添加し、さらに４８時間培養を行った後、各条件下で培養した細胞を位相差顕微鏡（対物レンズ×２０）にて観察した。
【００４４】
結果は図４に示したとおりである。細胞はｂＦＧＦ単独で増殖したが、ｂＦＧＦ＋ＥＣＰの条件でさらに顕著な細胞増殖効果が観察された。
実施例５：低血清条件下でのＢＡＬＢ／ｃ　３Ｔ３細胞骨格分子に対するＥＣＰの効果
２４穴培養プレートに予め滅菌した直径１５ｍｍの丸型カバーガラスを置き、０．１％ゼラチンを含む１×リン酸緩衝液（ＰＢＳ）を各ウェルにカバーガラスが十分浸たる程度に入れて、３０分間室温に放置し、カバーガラスをゼラチンコートした。各ウェルに１０％　ＦＢＳ含有ＤＭＥＭ培養液を充填し、ＢＡＬＢｃ／　３Ｔ３細胞を２×１０４ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌになるように播種して培養した。２４時間後、０．５％　ＦＢＳ含有ＤＭＥＭ培養液に培地を交換した。さらにその２４時間後、１μＭ　のＥＣＰまたはＲＮａｓｅＡをそれぞれ培養液に添加した。６時間後にＢＡＬＢ／ｃ　３Ｔ３細胞が生育したカバーガラスをウェルから取り出して、１×ＰＢＳで２−３回洗浄した後、カバーガラスを４％フォルムアルデヒド（和光純薬工業社）に室温で１０分間浸して細胞を固定した。次に、１×ＰＢＳで２−３回洗浄し、０．１％　Ｔｒｔｏｎ−Ｘ１００を含む１×ＰＢＳに１０分間浸して細胞膜を溶解させ、１×ＰＢＳで２−３回再度洗浄し、０．５％　ＢＳＡ／ＰＢＳに浸けて室温で３０分間放置し、この操作中のＢＳＡによって非特異的吸着部分をブロックした。１次抗体を含むＰＢＳで１１μｇ／ｍｌに希釈し、細胞をこの抗体希釈液に３０分間浸し、１次抗体反応を行った。１次抗体は、Ｆ−ａｃｔｉｎ、ｖｉｎｃｕｌｉｎおよびＦ−ａｃｔｉｎとｖｉｎｃｕｌｉｎの混合の３種類を用いた。
【００４５】
次に、５分毎に新しい１×ＰＢＳに交換・洗浄を行い、２次抗体としてＲＩＴＣ結合型ヤギ抗マウスＩｇＧ抗体（ＣＨＥＭＩＣＯＮ社）を１０μｇ／ｍｌ、１０μＭのＦＩＴＣ−ｐｈａｌｌｏｉｄｉｎ／メタノール（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｐｒｏｂｅｓ社）を１００ｎＭになるように１×ＰＢＳ中で混合し、細胞をこの抗体希釈液に３０分間浸して反応させた。その後、５分毎に新しい１×ＰＢＳに交換・洗浄し、等量の１×ＰＢＳ：グリセロール溶液を挟んで前記の丸型カバーガラスをスライドガラスに落とし、共焦点レーザー顕微鏡（ＭＲＣ−１０２４、Ｂｉｏ−Ｒａｄ社）で観察した。
【００４６】
結果は図５に示したとおりである。ＥＣＰを加えた場合の細胞群には、多くの細胞骨格分子（ストレスファイバー）の形成が増加（矢印）していることが確認された。
【００４７】
また、１μＭ　のＥＣＰまたはＲＮａｓｅＡに加え、それぞれ６０ｐＭのｂＦＧＦを添加して同様に細胞骨格形成を観察した。
【００４８】
結果は図６に示したとおりであり、ＥＣＰとｂＦＧＦの共存下では細胞骨格分子がより顕著に形成されることが確認された。
実施例６：ＥＣＰによる細胞骨格形成に対するＲＯＣＫ阻害剤の効果
２４穴培養プレートでＢＡＬＢ／３Ｔ３細胞および同細胞のクローンＡ３１−１１−１細胞を１×１０４ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌで播種し培養し、２４時間後に０．５％　ＦＢＳ含有ＤＭＥＭ培養液に培地を交換し、培養を続けた。そのさらに２４時間後、１μＭのＥＣＰまたはＲＮａｓｅＡとともに、１０μＭのＲＯＣＫ阻害剤（Ｙ２７６３２）を添加した。６時間後細胞を回収し、抗体染色を行い、顕微鏡（対物レンズ×４０）で細胞骨格の形成を観察した。
【００４９】
結果は図７に示したとおりである。ＲＯＣＫ阻害剤を添加することによって、ＥＣＰによるストレスファイバー形成促進が阻害されたことから、ＥＣＰによる細胞骨格形成にはＲｈｏキナーゼが関与していることが確認された。
実施例７：新生仔ラット由来の心筋細胞に対するＥＣＰの効果
心筋培養細胞をＳＦＭ（２μＭ　ＢｒＤＵ、１００ｕｎｉｔ／ｍｌペニシリン、１００μｇ／ｍｌストレプトマイシン）中で４８時間培養して脱分化させた。その後、培養液を交換し、最終濃度１００ｎｇ／ｍｌのＥＣＰを添加し、さらに２４時間後、１×ＰＢＳで１０分間、３回洗浄し、４％パラフォルムアルデヒドに３０分間室温で浸し、細胞を固定した。そして、０．２５％　Ｔｒｉｔｏｎ−Ｘ１００を含むＰＢＳに１５分間室温で浸し、ＢＳＡ含有のブロッキングバッファーに、抗ＥＮＨ１抗体を１：４０の割合で、抗アクチニン抗体は１：１００の割合で添加し、４℃で一晩浸し反応させた。次に、０．０３％　Ｔｒｉｔｏｎ−Ｘ１００含有ＰＢＳで２０分間洗浄し、これを３回繰り返した。ブロッキングバッファーにＣｙ３標識抗マウスおよびＣｙ２標識抗ウサギをそれぞれ１：２５０になるよう添加し、４℃で４時間反応させた。反応後、再度０．０３％　Ｔｒｉｔｏｎ−Ｘ１００含有ＰＢＳで２０分間洗浄し、これを３回繰り返し、水分を除去して、９０％グリセロールを加えた。
【００５０】
図８は免疫蛍光染色の結果である。この図８に示したように、ＥＣＰによって心筋細胞に心肥大化作用が確認された。
実施例８：新生仔ラット由来の心筋細胞の拍動数に対するＥＣＰの効果
新生仔ラットから単離した心筋細胞を、実施例７と同様にして脱分化し、ＥＣＰ（１ｍｌ当たり１０ｎｇ、１００ｎｇまたは１μｇ）を培養液に添加して、その２４時間後に拍動数を計測した。
【００５１】
結果は図９に示したとおりである。心筋細胞拍動数がＥＣＰ用量依存的に増加することが確認された。
【００５２】
さらに、このＥＣＰの心筋細胞拍動数の増加効果に対するＲＯＣＫ阻害剤（Ｙ２７６３２）の効果を試験した。Ｙ２７６３２の添加量は０、５、１０または１５μＭとし、ＥＣＰ濃度は１００ｎｇ／ｍｌとした。
【００５３】
結果は図１０に示したとおりである。ＲＯＣＫ阻害剤によって、ＥＣＰによる拍動数の増加が消失することから、このＥＣＰ活性がシグナル伝達カスケードにおけるＲｈｏキナーゼ経路に依存することが確認された。
実施例９：神経様ＰＣ１２細胞の無血清条件下での細胞生存に対するＥＣＰの効果
ＰＣ１２細胞を９６穴培養プレートで、１×１０４ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌ／１００μｌで一晩培養した。培地は、１０％　ＦＢＳ、ペニシリンおよびストレプトマイシンを含有するＤＭＥＭ培養液を使用した。その後、１５０μｌのＤＭＥＭで１回洗浄し、１００μｌのＥＣＰ、ペニシリンおよびストレプトマイシンを含有するＤＭＥＭ培養液に培地を交換し、７２時間培養を行い、生存細胞数をＣｅｌｌＴｉｔｅｒ−ＧｌｏＴＭ　Ｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｔ　Ｃｅｌｌ　Ｖｉａｂｉｌｉｔｙ　Ａｓｓａｙ（Ｎｏ．　Ｇ７５７０；Ｐｒｏｍｅｇａ社）で計測した。
【００５４】
結果は図１１１に示したとおりである。ＥＣＰ添加によって、神経細胞の生存が維持されることが確認された。
実施例１０：骨芽細胞様ＭＣ３Ｔ３−Ｅ１細胞のアルカリフォスファターゼ（ＡＬＰ）活性に対するＥＣＰの効果
ＭＣ３Ｔ３−Ｅ１を２４穴培養プレート中のα−ＭＥＭ培地に播種し、ＥＣＰ（最終濃度として１ｍｌ当たり１ｎｇ、１０ｎｇ、１００ｎｇまたは１μｇ）、ＢＭＰ−４（１００ｎｇ／ｍｌ）またはｂＦＧＦ（１００ｎｇ／ｍｌ）を添加した。７２時間後、細胞を１０ｍＭ　Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．２）溶液で２回洗浄し、０．１％　Ｔｒｉｔｏｎ−Ｘ１００含有の１０ｍＭ　Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．２）溶液で溶解した。次に、前記細胞溶解液を１５秒間、超音波処理いて細胞を破砕し、この細胞破砕液１００μｌと０．１ＭアミノメチルプロパノールでｐＨ１０．５に調整した基質溶液（４ｍｇ／ｍｌ　ｐ−ｎｉｔｏｒｏｐｈｅｎｙｌ　ｐｈｏｓｐｈａｔｅおよび２ｍＭ　ＭｇＣｌ２）１００μｌを混合し、３７℃で３０分間反応させた。この反応を０．５ＭのＮａＯＨにて停止させ、４１０ｎｍの吸光度を測定した。得られた値を細胞破砕液の総タンパク質量で割り、比活性を算出した。
【００５５】
結果は図１２に示したとおりである。コントロール置を１００％として各添加成分の効果を示した。ＥＣＰを１ｎｇ／ｍｌ添加した場合、骨誘導因子の一種であるＢＭＰ−４と同等以上のＡＬＰ活性が得られた。
【００５６】
【発明の効果】
以上詳しく説明したとおり、この出願の発明によって、ＥＣＰの新規生理活性に基づく治療用組成物が提供され、細胞の生存、増殖および／または分化の異常を原因とする心臓疾患、骨疾患および神経変性疾患等の治療に新たな途が拓かれる。また、培養細胞の生存期間の延長、増殖促進および／または分化促進のための培地組成物が提供される。さらには、細胞の生存、増殖および／または分化を促進する新規因子を特定するための手段が提供され、さらに有効な治療用組成物の開発が可能となる。
【図面の簡単な説明】
【図１】正常組織由来細胞株の増殖に対するＥＣＰの効果を試験した結果である。黒丸はＢＡＬＢ／ｃ　３Ｔ３細胞、三角はＡ１０細胞、四角はＨＣ−１１細胞、白丸はＨＵＶＥＣ細胞である。
【図２】ＢＡＬＢ／ｃ　３Ｔ３細胞の増殖に対するＥＣＰの用量依存効果を試験した結果である。
【図３】ＢＡＬＢ／ｃ　３Ｔ３の増殖に対するＥＣＰの経時効果を試験した結果である。黒丸はＥＰＣ、黒四角はＲＮａｓｅ、白四角はコントロールである。
【図４】低血清培地でのＢＡＬＢ／ｃ　３Ｔ３増殖に対するＥＣＰの効果を試験した結果（位相差顕微鏡像）である。
【図５】低血清培地でのＢＡＬＢ／ｃ　３Ｔ３細胞骨格分子形成に対するＥＣＰ効果を試験した結果（共焦点レーザー顕微鏡像）である。
【図６】低血清培地でのＢＡＬＢ／ｃ　３Ｔ３細胞骨格分子形成に対するＥＣＰ＋ｂＦＧＦ効果を試験した結果（共焦点レーザー顕微鏡像）である。
【図７】ＢＡＬＢ／ｃ　３Ｔ３細胞の細胞骨格形成に対するＥＣＰ効果とＲＯＣＫ阻害剤の効果を試験した結果（共焦点レーザー顕微鏡像）である。
【図８】新生仔ラット由来の心筋細胞における細胞骨格形成に対するＥＣＰ効果を試験した結果（共焦点レーザー顕微鏡像）である。
【図９】新生仔ラット由来の心筋細胞の拍動数に対するＥＣＰ効果を試験した結果である。
【図１０】心筋細胞拍動数に対するＥＣＰとＲＯＣＫ阻害剤の効果を試験した結果である。
【図１１】無血清培養液における神経様ＰＣ１２細胞の生存に対するＥＣＰの効果を試験した結果である。カラムは、１：ＥＣＰ添加前、２：ＥＣＰ　０　ｎｇ／ｍｌ、３：ＥＣＰ　１０　ｎｇ／ｍｌ、４：ＥＣＰ　１０００　ｎｇ／ｍｌの平均値である。
【図１２】ラット頭蓋冠骨由来のＭＣ３Ｔ３−Ｅ１細胞におけるアルカリフォスファターゼ活性に対するＥＣＰ効果を試験した結果である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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