(57)【要約】【課題】糖化タンパク質を正確に測定するために、ブランクの少ないプロテアーゼを提供する。【解決手段】１００００Ｕ／ｍｌのプロテアーゼ溶液中のケトアミン含有量が０．０〜２．０μｍｏｌ／Ｌである及び／又は、５００〜７００ｎｍの吸光度が０〜２０ｍＡｂｓであるプロテアーゼを用いる。糖化タンパク質を測定する場合に、ブランクを小さくしてより正確に糖化タンパク質が測定できるようになる。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
１００００Ｕ／ｍｌのプロテアーゼ溶液中のケトアミン含有量が０．０〜２．０μｍｏｌ／Ｌである及び／又は、５００〜７００ｎｍの吸光度が０〜２０ｍＡｂｓであるプロテアーゼ。
【請求項２】
プロテアーゼに不純物として存在するケトアミン及び／又は着色物質の含量を減少せしめた、１００００Ｕ／ｍｌのプロテアーゼ溶液中のケトアミン含有量が０．０〜２．０μｍｏｌ／Ｌ及び／又は５００〜７００ｎｍの吸光度が０〜２０ｍＡｂｓであるプロテアーゼ。
【請求項３】
ケトアミン含量の減少を、プロテアーゼ溶液を硫安で沈澱させ、沈殿物を透析して行う請求項２に記載のプロテアーゼ。
【請求項４】
着色物質含量の減少を、プロテアーゼ溶液を活性炭処理し、通過液を透析して行う請求項２に記載のプロテアーゼ。
【請求項５】
プロテアーゼがバチルス属由来のものである請求項１〜４のいずれかに記載のプロテアーゼ。
【請求項６】
１００００Ｕ／ｍｌのプロテアーゼ溶液中のケトアミン含有量が０．０〜２．０μｍｏｌ／Ｌである及び／又は、５００〜７００ｎｍの吸光度が０〜２０ｍＡｂｓであるプロテアーゼを用いることを特徴とする糖化タンパク質の測定方法。
【請求項７】
プロテアーゼがバチルス属由来のものである請求項６に記載の方法。
【請求項８】
糖化タンパク質が糖化ヘモグロビン若しくは糖化アルブミンである請求項６または７に記載の方法。
【請求項９】
１００００Ｕ／ｍｌのプロテアーゼ溶液中のケトアミン含有量が０．０〜２．０μｍｏｌ／Ｌである及び／又は、５００〜７００ｎｍの吸光度が０〜２０ｍＡｂｓであるプロテアーゼを含むことを特徴とする糖化タンパク質測定用試薬。
【請求項１０】
プロテアーゼがバチルス属由来のものである請求項６に記載の試薬。
【請求項１１】
糖化タンパク質が糖化ヘモグロビン若しくは糖化アルブミンである請求項７または８に記載の試薬。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、糖化タンパク質を酵素を用いて測定する場合に使用される、有用なプロテアーゼに関する。より詳細には、糖化ヘモグロビン、糖化アルブミンのごとき糖化タンパク質の定量に有効なプロテアーゼ、それを用いた試薬及び測定方法に関するものである。本発明は臨床検査の分野において有用である。
【０００２】
【従来の技術】
近年、糖尿病患者は爆発的に増加しており、糖化ヘモグロビン（以下、ヘモグロビンＡ１Ｃ又はＨｂＡ１Ｃという）、グリコアルブミン、フルクトサミン、１．５アンヒドログルシトールなどの血糖コントロールマーカー測定の需要が増加している。なかでもタンパク質中の糖化タンパク質割合で示されるＨｂＡ１Ｃ、グリコアルブミンは、個人差が少なく、タンパク質濃度の影響を受けないことから、多用されている。ＨｂＡ１Ｃ、グリコアルブミンはこれまで高速液体クロマトグラフ法（ＨＰＬＣ法）や免疫法で測定されてきたが、最近、大量検体を迅速に処理することが可能であり、かつ正確な酵素法が開発されてきた（特許文献１、２等）。また、本発明者らも正確に糖化タンパク質を測定する目的で、プロテアーゼのグロブリン成分への作用を選択的に阻害する方法（特許文献３）、糖化タンパク質割合の測定方法（特許文献４）を開発してきた。
【０００３】
酵素を用いた測定方法は、安価で正確に測定できる方法であるが、限られた時間内に反応を終了させるには大量のプロテアーゼを作用させる。しかしながら市販のプロテアーゼは大量に作用させた場合に、プロテアーゼに含まれる物質が原因と考えられるブランクがつくことから問題が多かった。そこで本発明者らはカタラーゼを用いたブランク上昇の回避方法を開発してきた。しかしながらこの方法はあくまで対処療法であり、ブランクの原因解明はなされておらず、プロテアーゼを高濃度に使用した場合にはやはりブランクが生じる問題は回避できなかった。
【０００４】
【特許文献】
【特許文献１】
特開平６−４６８４６号公報
【特許文献２】
特開平５−１９２１９３号公報
【特許文献３】
特開２００１−５４３９８号公報
【特許文献４】
特開２００１−２０４４９号公報
【０００５】
【発明が解決しようとする課題】
上記したようにプロテアーゼを大量に使用するとプロテアーゼのブランクが問題となる。本発明の課題は糖化タンパク質を測定するにあたり、糖化タンパク質をプロテアーゼを用いて測定する場合に、高濃度に使用してもブランクのつかないプロテアーゼ、それを用いた測定方法及び測定試薬を提供することにある。さらに具体的には臨床生化学検査における有用なプロテアーゼ、それを用いた糖化タンパク質の測定方法及び測定試薬を提供することにある。
【０００６】
【課題を解決するための手段】
上記の目的を達成するために、本発明者は、プロテアーゼ中に存在するブランク上昇物質の特定を試み、その除去方法を検討した。
【０００７】
本発明者らは鋭意検討した結果、プロテアーゼ中のブランクを上昇させる物質はプロテアーゼに含まれる色及び糖化アミノ酸を初めとするケトアミンであることをつきとめた。そこで本発明者は透析や塩析、クロマトグラフィー、ケトアミンオキシダーゼ処理等により効果的にケトアミンを除去できること、また色については活性炭処理により効果的に除去できることを見出し本発明の完成するに至った。
【０００８】
すなわち、本発明は、
１）１００００Ｕ／ｍｌのプロテアーゼ溶液中のケトアミン含有量が０．０〜２．０μｍｏｌ／Ｌである及び／又は、５００〜７００ｎｍの吸光度が０〜２０ｍＡｂｓであるプロテアーゼ。
２）プロテアーゼに不純物として存在するケトアミン及び／又は着色物質の含量を減少せしめた、１００００Ｕ／ｍｌのプロテアーゼ溶液中のケトアミン含有量が０．０〜２．０μｍｏｌ／Ｌ及び／又は５００〜７００ｎｍの吸光度が０〜２０ｍＡｂｓであるプロテアーゼ。
３）ケトアミン含量の減少を、プロテアーゼ溶液を硫安で沈澱させ、沈殿物を透析して行う上記２）に記載のプロテアーゼ。
４）着色物質含量の減少を、プロテアーゼ溶液を活性炭処理し、通過液を透析して行う上記２）に記載のプロテアーゼ。
５）バチルス属由来上記１）〜４）のいずれかのプロテアーゼ。
６）１００００Ｕ／ｍｌのプロテアーゼ溶液中のプロテアーゼ溶液中のケトアミン含有量が０．０〜２．０μｍｏｌ／Ｌである及び／又は、５００〜７００ｎｍの吸光度が０〜２０ｍＡｂｓであるプロテアーゼを用いることを特徴とする糖化タンパク質の測定方法。
７）プロテアーゼがバチルス属由来のものである上記６）の方法。
８）糖化タンパク質が糖化ヘモグロビン若しくは糖化アルブミンである上記６）または７）の方法。
９）１００００Ｕ／ｍｌのプロテアーゼ溶液中のケトアミン含有量が０．０〜２．０μｍｏｌ／Ｌである及び／又は、５００〜７００ｎｍの吸光度が０〜２０ｍＡｂｓであるプロテアーゼを含むことを特徴とする糖化タンパク質測定用試薬。
１０）プロテアーゼがバチルス属由来のものである上記９）の試薬。
１１）糖化タンパク質が糖化ヘモグロビン若しくは糖化アルブミンである上記９）又は１０）の試薬。
に関する。
さらに詳しくは、臨床生化学検査における糖化蛋白質の測定に有用なプロテアーゼ、それを用いる測定方法及び測定試薬に関する。
【０００９】
以下本発明の構成及び好ましい形態について更に詳しく説明する。
本発明におけるケトアミンとはメイラード反応により生じるアマドリ化合物のことを指し、糖とアミノ基を有する化合物の反応生成物であれば良く、例えば糖化アミノ酸、糖化エタノールアミン等が挙げられる。
【００１０】
本発明に使用しうるプロテアーゼとしては、臨床検査に使用できるものであればいかなる種類プロテアーゼを用いても良い。特に糖化タンパク質を測定する場合には、被検液に含まれる糖化蛋白質に有効に作用し、かつ当該蛋白質由来の糖化アミノ酸及び／若しくは糖化ペプチドを有効に生成するものであればいかなるものを用いても良いが、例えばトリプシン（Ｔｒｙｐｓｉｎ）、キモトリプシン（Ｃｈｙｍｏｔｒｙｐｓｉｎ）等の動物由来のプロテアーゼ、パパイン（Ｐａｐａｉｎ）、ブロメライン（Ｂｒｏｍｅｌａｉｎ）等の植物由来のプロテアーゼ、微生物由来のプロテアーゼ等が挙げられる。
【００１１】
微生物由来のプロテアーゼの例としては、ズブチリシン（Ｓｕｂｔｉｌｉｓｉｎ）等に代表されるバチルス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ）属由来プロテアーゼ、プロテアーゼタイプ−ＸＩＩＩ（シグマ社製）等に代表されるアスペルギルス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ）由来プロテアーゼ、ＰＤ酵素（キッコーマン社製）等に代表されるペニシリウム（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ）由来プロテアーゼ、プロナーゼ（Ｐｒｏｎａｓｅ）等に代表されるストレプトマイセス（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ）由来プロテアーゼ、エンドプロテイナーゼＬｙｓ−ｃ（シグマ社製）等に代表されるリソバクター（Ｌｙｓｏｂａｃｔｅｒ）由来プロテアーゼ、プロテイナーゼＡ（ＰｒｏｔｅｉｎａｓｅＡ；シグマ社製）  等に代表される酵母（Ｙｅａｓｔ）由来プロテアーゼ、プロテイナーゼＫ（Ｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ  Ｋ；シグマ社製）等に代表されるトリチラチウム（Ｔｒｉｔｉｒａｃｈｉｕｍ）由来プロテアーゼ、アミノペプチダーゼＴ（ＡｍｉｎｏｐｅｐｔｉｄａｓｅＴ；ベーリンガー・マンハイム社製）等に代表されるサーマス（Ｔｈｅｒｍｕｓ）由来プロテアーゼ、エンドプロテイナーゼＡｓｐ−Ｎ（ＥｎｄｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅＡｓｐ−Ｎ；和光純薬社製）等に代表されるシュードモナス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎｕｓ）由来、リジルエンドペプチダーゼ（Ｌｙｓｙｌｅｎｄｏｐｅｐｕｔｉｄａｓｅ和光純薬社製）等に代表されるアクロモバクター（Ａｃｈｒｏｍｏｂａｃｔｅｒ）由来プロテアーゼが挙げられる。これらの具体的な例は１例に過ぎず、なんら限定されるものではない。
【００１２】
本発明に用いることの出来るプロテアーゼの活性測定法はカゼインフォリン法を用いた。活性の定義は、１分間−３７℃において１μｇのチロシンに相当する発色を１Ｕとした。
【００１３】
本発明に使用しうるプロテアーゼのケトアミンの含有量としては、含有量が少ないものが好ましく、例えば１００００Ｕ／ｍｌのプロテアーゼ水溶液中のケトアミン含有量が０．０〜２．０μｍｏｌ／Ｌであれば良く、０．０〜１．０μｍｏｌ／Ｌが好ましい。プロテアーゼからのケトアミンの除去は各種クロマトグラム、塩析、透析等で除去することが可能であるが、特に硫安沈殿、透析が効果的である。
【００１４】
また本発明に使用しうるプロテアーゼの色は、極力無いものが好ましいが、例えば１００００Ｕ／ｍｌのプロテアーゼ水溶液の５００〜７００ｎｍの吸光度が０〜２０ｍＡｂｓであれば良く、０〜１０ｍＡｂｓが好ましい。プロテアーゼからの色の除去は各種クロマトグラム、塩析、透析、活性炭処理等で除去することが可能であるが、特に活性炭処理が効果的である。
尚、ケトアミン含有量、色調共に低いものが最も好ましい。
【００１５】
本発明の測定対象である糖化タンパク質としては、例えば糖化アルブミンまたは糖化ヘモグロビンが挙げられるが、測定対象となる糖化蛋白質は何らこれらに限定されるものではなく、何れの糖化タンパク質を測定しても良い。
【００１６】
本発明を用いて糖化タンパク質を測定する場合のプロテアーゼの濃度としては０．１Ｕ〜１ＭＵ／ｍｌの濃度で使用すれば良く、好ましくは１Ｕ〜５００ＫＵ／ｍｌ、最も好ましくは５Ｕ〜１００ＫＵ／ｍｌであるがこれ以外の量を用いても良い。
【００１７】
本発明のプロテアーゼを用いて糖化タンパク質を測定するには、糖化タンパク質をプロテアーゼを用いて断片化し糖化アミノ酸を生成させ、糖化アミノ酸に作用する酵素をもちいて、糖化アミノ酸を測定すればよい。糖化アミノ酸に作用する酵素としてはデヒドロゲナーゼ、キナーゼ、オキシダーゼが知られているが、オキシダーゼが最も良く知られており使用しやすい。
【００１８】
本発明に使用しうるケトアミンオキシダーゼとしては糖化アミノ酸及び／または糖化ペプチドに良好に作用し、過酸化水素を生成するケトアミンオキシダーゼであればいかなる酵素を用いても良いが、糖化アルブミンを測定対象とする場合には、εアミノ基が糖化されたε糖化アミノ酸若しくはペプチドに作用する酵素が好ましく、糖化ヘモグロビンを測定対象とする場合には、αアミノ基が糖化されたα糖化アミノ酸若しくはペプチドに作用する酵素が好ましい。
【００１９】
εアミノ基が糖化された糖化アミノ酸に作用する酵素の例としては、ギベレラ（Ｇｉｂｂｅｒｅｌｌａ）属、アスペルギルス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ  ）属、カンジダ（Ｃａｎｄｉｄａ）属、ペニシリウム（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ  ）属、フサリウム（Ｆｕｓａｒｉｕｍ）属、アクレモニウム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ）属又はデバリオマイゼス（Ｄｅｂａｒｙｏｍｙｃｅｓ）属由来のケトアミンオキシダーゼ等が挙げられる。
【００２０】
αアミノ基が糖化された糖化アミノ酸若しくはペプチドに作用する酵素の例としては、上記アミノ基が糖化された糖化アミノ酸に作用する酵素及びコリネバクテリウム（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ）由来の酵素が挙げられる。
また、αアミノ基が糖化された糖化アミノ酸若しくはペプチドに特異的に作用し、実質的にεアミノ基が糖化された糖化アミノ酸には作用しない酵素としてはコリネバクテリウム（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ）由来の酵素が知られている。一方εアミノ基が糖化された糖化アミノ酸若しくはペプチドに特異的に作用し、実質的にαアミノ基が糖化された糖化アミノ酸には作用しない酵素としては遺伝子操作フルクトサミンオキシダーゼ（ＦＯＤＶＩＩ；旭化成社製；ＰＣＴ／ＪＰ０２／００７２）が知られている。
【００２１】
さらに、αアミノ基及びεアミノ基が糖化された糖化アミノ酸若しくはペプチドに作用し、プロテアーゼと共存させた状態でも充分な活性を有する酵素の例としては、遺伝子組み替え型フルクトサミンオキシダーゼ（ＦＯＤＩＩ；旭化成社製）が挙げられる。
【００２２】
糖化アミノ酸に作用する酵素の活性は特開２００１−２０４４９号公報（糖化タンパク質割合測定方法）記載の方法にて測定し、３７℃−１  分間に１μｍｏｌの過酸化水素を生成する酵素量を１Ｕと定義した。
【００２３】
本発明を用いて糖化タンパク質を測定する場合のケトアミンに作用する酵素の濃度としては０．０１Ｕ〜１ＫＵ／ｍｌの濃度で使用すれば良く、好ましくは０．１Ｕ〜５００Ｕ／ｍｌ、最も好ましくは０．５Ｕ〜２００Ｕ／ｍｌであるがこれ以外の量を用いても良い。
【００２４】
かくして本発明のプロテアーゼを用いて被検液中の糖化タンパク質を測定する場合には、一定量の被検液０．１〜１０００μｌ程度に、プロテアーゼ含有試薬１μｌ〜１０ｍｌ程度を、例えば３７℃にて１〜５００分程度反応させ、次いでケトアミンに作用する酵素を含有する試薬１μｌ〜１０ｍｌ程度を、例えば３７℃にて１〜５００分程度反応反応させ、レートアッセイを行う場合には、反応開始後一定時間後の２点間の数分ないし数十分間、例えば３分後と４分後の１分間、または３分後と８分後の５分間における変化した補酵素、溶存酸素、過酸化水素若しくはその他生成物の量を直接または間接的に前記の方法で測定すれば良く、エンドポイントアッセイの場合には反応開始後一定時間後の変化した補酵素、溶存酸素、過酸化水素若しくはその他生成物の量を同様に測定すれば良い。この場合既知濃度の糖化蛋白質を用いて測定した場合の吸光度等の変化と比較すれば被検液中の糖化蛋白質の量を求めることができる。
【００２５】
また、本発明に使用しうる糖化タンパク質測定試薬としては、本発明のプロテアーゼを含有するものとして調整すれば良く、例えば液状品及び液状品の凍結物あるいは凍結乾燥品として提供できる。さらに例えば界面活性剤、塩類、緩衝剤、ｐＨ調製剤や防腐剤などを適宜選択して添加しても良い。
また本発明を、電極等を用いた、例えば過酸化水素の定量に応用することも可能である。
【００２６】
妨害物質の消去系を組み込む場合、例えば遊離のケトアミンを消去した後に糖化タンパク質を測定する場合は、第一試薬にケトアミンオキシダーゼ含有試薬を用い、第二試薬にプロテアーゼ及びカップラーを処方すれば良い。アスコルビン酸、過酸化水素の消去系を組み込む場合には、第一試薬のケトアミンオキシダーゼ含有試薬に例えばアスコルビン酸オキシダーゼ、パーオキシダーゼ等を処方すれば良い。
【００２７】
【発明の実施の形態】
ついで、本発明の実施例を詳しく述べるが、本発明は何らこれにより限定されるものではない。
実施例１
１）プロテアーゼの色の除去
市販のバチルス属由来のプロテアーゼ（アルカラーゼ  ２．４Ｌ；ＮＯＶＯ社製；  ２．４ＡＵ／ｇ；アンソン／ヘモグロビン法）１Ｌを、活性炭カラム（２Ｌ）に通し、ＵＶ２８０をモニターしタンパク質分画を取得した。タンパク質分画を１０ｍＭ  Ｔｒｉｓ緩衝液ｐＨ７．５に対して冷蔵にて透析、透析液は３回交換し、凍結乾燥し、脱色プロテアーゼを得た。
【００２８】
２）プロテアーゼ中のケトアミンの除去
市販のバチルス属由来のプロテアーゼ（アルカラーゼ  ２．４Ｌ；ＮＯＶＯ社製；  ２．４ＡＵ／ｇ；アンソン／ヘモグロビン法）１Ｌを、４０％飽和硫安で処理し、沈殿を蒸留水に溶解する。溶解した溶液を１０ｍＭ  Ｔｒｉｓ緩衝液  ｐＨ７．５に透析、濃縮する。再度同じ操作を繰り返し、凍結乾燥しケトアミン除去プロテアーゼを取得した。
【００２９】
３）市販のバチルス属由来プロテアーゼ（アルカラーゼ  ２．４Ｌ；ＮＯＶＯ社製；  ２．４ＡＵ／ｇ；アンソン／ヘモグロビン法）１Ｌを、活性炭カラムに通し、タンパク分画を取得、１０ｍＭ  Ｔｒｉｓ緩衝液  ｐＨ７．５に対して冷蔵にて透析（透析液は３回交換）した。これに２）と同じ操作を行い、脱色、脱ケトアミンプロテアーゼを得た。
それぞれのプロテアーゼの性能評価結果を表１に示す。色調は５５０ｎｍの吸光度の測定で、ケトアミン含有量及び試薬ブランクの測定は以下の試薬及び操作にて行った。
【００３０】
【表１】
プロテアーゼの色及びケトアミンの除去（プロテアーゼ１０ＫＵ／ｍｌ溶液中の濃度）
2004222570.tif 000002
【００３１】
＜ケトアミン測定試薬＞
５０ｍＭ    Ｔｒｉｓ  緩衝液  ｐＨ７．５      （和光純薬社製）
０．０２％  ４アミノアンチピリン    （和光純薬社製）
０．０２％    ＴＯＯＳ                                  （和光純薬社製）
５Ｕ／ｍｌ      ケトアミンオキシダーゼ  （旭化成社製）
５Ｕ／ｍｌ      パーオキシダーゼ          （シグマ社製）
【００３２】
＜ケトアミン測定法＞
上記ケトアミン測定試薬１ｍｌを３７℃にインキュベートし、試料２０μｌを加え反応を３７℃５分間行った。反応終了後１％ＳＤＳ  １ｍｌを添加し反応を停止し５５５ｎｍを測光（Ａ０）した。一方、試料の代わりに蒸留水を用いてブランクの吸光度を測定し、ブランク引きの試料の感度（Ａ−ブランクＡ）を求めた。別途ケトアミン標準品（糖化Ｚリジン；ハシバらの方法により合成、精製した。ＨａｓｈｉｂａＨ，  Ｊ．Ａｇｒｉｃ．  Ｆｏｏｄ  Ｃｈｅｍ．２４：７０，１９７６）で検量線を作成し、ケトアミン濃度を算出した。
【００３３】
＜プロテアーゼの色の測定＞
プロテアーゼ凍結乾燥品の活性を測定し、１０ＫＵ／ｍｌになるように溶解し５５０ｎｍの吸光度を測定した。
【００３４】
＜糖化タンパク質測定試薬＞
2004222570.tif 000003
【００３５】
＜糖化タンパク質測定法＞
上記プロテアーゼ含有試薬１８０μｌおよび血清、血漿、全血等の血液試料９μｌをセルに分注し３７℃−５分間インキュベーションし５５５ｎｍを測光（Ａ０）した。続いてケトアミンオキシダーゼ含有試料１８０μｌを添加し３７℃−５分間インキュベーションし５５５ｎｍを測光し（Ａ１）、試料の吸光度変化（ΔＡ＝Ａ１−Ａ０）を求めた。一方、試料の代わりに蒸留水を用いて試料ブランク（ブランクΔＡ＝Ａ１ブランク−Ａ０ブランク）を測定し、ブランク引きの試料の感度（ΔＡ−ブランクΔＡ）を求めた。
【００３６】
プロテアーゼの精製の結果を表１し示す。表１の様に色を除く場合、活性炭処理が有効であり、ケトアミンを除く場合は硫安処理が有効であった。
【００３７】
実施例２
＜プロテアーゼ中の色及びケトアミン濃度の試薬ブランクに及ぼす影響＞
実施例１の精製プロテアーゼを適宜混合してプロテアーゼ中の色及びケトアミン濃度の試薬ブランクに及ぼす影響を調べた。色の検討を行う場合は２）硫安処理のものと３）の活性炭処理＋硫安処理のものを活性値で一定比率で混合し、その混合プロテアーゼを用いて試薬ブランクを測定した。また、ケトアミン濃度の検討を行う場合は１）活性炭処理のものと３）の活性炭処理＋硫安処理のものを活性値で一定比率で混合し、その混合プロテアーゼを用いて試薬ブランクを測定した。試薬の調整方法、操作法は実施例１に同じ。また、それぞれの混合プロテアーゼの色及びケトアミン含有量は、実施例１と同じ方法で測定した。結果を図１、図２に示す。
【００３８】
図１から分かるようにプロテアーゼ中の色は試薬ブランクに影響を与える。一方本糖化タンパク質測定試薬に於ける健常者血清の吸光度は約５０ｍＡｂｓであるから、再現性よく測定するには、ブランクをその半分の２５ｍＡｂｓ以下に押さえると良いことが我々の検討では分かっている。よって再現性良く測定を行うための１００００Ｕ／ｍｌ中のプロテアーゼ溶液中の色は５００ｎｍ〜７００ｎｍの吸収が０〜２０ｍＡｂｓであれば良い。ちなみにプロテアーゼの５００ｎｍ〜７００ｎｍの吸収は、特別青色がついていない限り、一般的に小さくほぼ一定である。
【００３９】
また、図２から分かるようにプロテアーゼ中のケトアミンは試薬ブランクに驚くほど影響を与える。色と同じように試薬ブランクを２５ｍＡｂｓ以下に設定すると、１００００Ｕ／ｍｌのプロテアーゼ溶液中のケトアミン濃度は２μｍｏｌ／Ｌ以下であればよいことになる。ちなみにこの評価は１００００Ｕ／ｍｌと非常に高濃度にプロテアーゼを溶解した場合の結果であり、１Ｕ／ｍｌの濃度ならば２ｐｍｏｌ／Ｌ以下となり通常とても測れる濃度ではない。このように考えられないほど低濃度のケトアミンが実際の糖化タンパク質の測定に試薬ブランクとして影響を与えることが判明した。これは新しい知見である。
【００４０】
実施例３
＜本発明のプロテアーゼを用いた糖化アルブミンの測定＞
実施例１の３）のプロテアーゼを用いて、実施例１の糖化タンパク質測定試薬を作成し、試料中の糖化アルブミンを測定した。測定感度から糖化アルブミン濃度への換算は市販の糖化アルブミンキャリブレーター（旭化成社製）を用いて行った。また別途アルブミン試薬（アルブミンＩＩ−ＨＡテストワコー；和光純薬社製）にてアルブミンを測定し、測定値は糖化アルブミン割合として算出した。
【００４１】
＜ＨＰＬＣ法＞
グリコアルブミン計（ＧＡＡ−２０００；アークレイ社製）使用
＜試料＞  健常者血清５検体、患者血清５検体
＜反応手順＞
糖化タンパク測定試薬の操作法は実施例１に同じ。アルブミンの測定はアルブミン測定キット（アルブミンＩＩ−ＨＡテストワコー；  和光純薬社製）の用法用量に従って測定した。その結果を図３に示す。
図３から分かるように、本発明のプロテアーゼを用いて正確に糖化アルブミンを測定できることが明らかであった。
【００４２】
実施例４
＜本発明のプロテアーゼを用いた糖化ヘモグロビンの測定＞
本実施例１と同じ方法でストレプトマイセス属由来プロテアーゼ（プロテアーゼタイプＸＩＶ；シグマ社製）を精製し使用した。
2004222570.tif 000004
【００４３】
2004222570.tif 000005
【００４４】
＜試料＞  市販ヘモグロビン（シグマ社製）５０ｍｇ／ｍｌ
ＨｂＡ１Ｃ値はＨｂＡ１ｃ測定装置（アークレイ社製）にて測定した。
＜反応手順＞
上記Ｒ１試薬０．９ｍｌおよび試料９０μｌを混合し、３７℃−２時間反応させた。分子量１万カットの膜で濾過し、ろ液をプロテアーゼ反応溶液とした。プロテアーゼ反応溶液１８９μｌをセルに分注し５５５ｎｍを測光した（Ａ０）。続いてＲ２試薬１８０μｌを添加し３７℃−５分間インキュベーションし５５５ｎｍを測光した（Ａ１）。ブランクの測定は、試料に蒸留水を用いてブランクの吸光度変化（ブランクΔＡ＝Ａ１ブランク−Ａ０ブランク）を測定した。また試料に検体及び糖化ヘモグロビン値既知の試料を用いて感度（感度ΔＡ＝（Ａ１−Ａ０）−ブランクΔＡ）を求め、糖化ヘモグロビン濃度を算出した。さらに糖化ヘモグロビン濃度をヘモグロビン濃度で除し、糖化ヘモグロビン値を算出した。その結果を図４に示す。
図４から分かるように、ＨＰＬＣ法と酵素法の値が一致し、正確にグリコヘモグロビンを測定していることが明白であった。
【００４５】
【図面の簡単な説明】
【図１】実施例２に基づくプロテアーゼ中のケトアミン含有量と試薬ブランクとの関係を示す。
【図２】実施例２のに基づくプロテアーゼ中の色と試薬ブランクとの関係を示す。
【図３】実施例３の酵素法とＨＰＬＣ法による血清の糖化アルブミン測定値の相関を示す。
【図４】実施例４の酵素法とＨＰＬＣ法による糖化ヘモグロビンの測定の相関を示す。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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