(57)【要約】【課題】細胞を、その活性を維持しつつ長時間、高密度培養することができ、さらに、大容量化も可能である細胞培養装置を提供すること。【解決手段】酸素透過性材料からなり、内部に細胞が固着され且つ培養液が灌流される培養液用流路構造を有する少なくとも２つの細胞培養チャンバーが積層され、各細胞培養チャンバー間の少なくとも１カ所に、酸素透過性材料からなる気体用流路構造が設けられ、各チャンバーを積層面に対して垂直方向に接続し、前記培養液用流路構造に培養液を灌流させるための培養液灌流路を備える細胞培養装置。【選択図】  図１
2004147555.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
酸素透過性材料からなり、内部に細胞が固着され且つ培養液が灌流される培養液用流路構造を有する少なくとも２つの細胞培養チャンバーが積層され、
各細胞培養チャンバー間の少なくとも１カ所に、酸素透過性材料からなる気体用流路構造が設けられ、
各チャンバーを積層面に対して垂直方向に接続し、前記培養液用流路構造に培養液を灌流させるための培養液灌流路を備える細胞培養装置。
【請求項２】
前記酸素透過性材料がポリジメチルシロキサンである請求項１記載の細胞培養装置。
【請求項３】
請求項１又は２記載の細胞培養装置からなるバイオリアクター。
【請求項４】
酸素透過性材料からなり、内部に培養液の流れが一様となる流路構造を有し、該流路構造に細胞が固着され、且つ、該流路構造に培養液を灌流させるための培養液供給口及び培養液排出口を備える細胞培養チャンバー。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、細胞培養装置、バイオリアクター及び細胞培養チャンバーに関する。さらに詳しくは、組織工学分野等において応用上有用な肝細胞や繊維芽細胞等の細胞について、栄養及び酸素の供給並びに老廃物の除去を適切に行いつつ、高密度に培養することが可能な細胞培養装置；これを用いたバイオリアクター；細胞培養チャンバーに関する。
【０００２】
【従来の技術】
現在、組織工学分野においては、細胞を、長時間活性を保ちながら連続的に培養することができるバイオリアクターの研究が行われている。これらのバイオリアクターは、近い将来、ハイブリッド型人工臓器の構築に有用であると考えられ、また、医療分野や薬学分野において、移植や薬剤スクリーニング、動物実験の代替実験などへの利用も期待されている。
【０００３】
肝細胞や繊維芽細胞等の細胞の培養において、細胞の分化・増殖といった活性を維持するためには、通常、付着可能な担体や、栄養成分及び酸素の供給が必要とされている。また、細胞の代謝により生じた老廃物は、細胞の活性を妨げるので、除去する必要がある。
従来より用いられている細胞培養方式の１つとして、ペトリ皿のような培養容器の平坦な表面に細胞を付着させ、そこに栄養成分や酸素を含んだ培養液を灌流させることにより、栄養成分及び酸素の供給と老廃物の除去を同時に行う方式がある。この方式では、培養液中の栄養成分や酸素は、細胞層を通って拡散して個々の細胞に供給され、一方、老廃物は逆に、培養液中に移行して除去される。
【０００４】
【発明が解決しようとする課題】
バイオリアクター、特に人工臓器等を作成する際には、多量の細胞を高密度に培養する必要がある。
しかしながら、細胞の増殖がすすみ、細胞密度が高くなるにつれて、細胞層の厚さは増大するので、培養液中の栄養成分や酸素が全ての細胞に到達することが困難になる。また、深部に存在する細胞の周辺部分の老廃物は除去されにくい。そのため、それらの細胞の活性の維持は次第に困難になる。
また、細胞への酸素供給は、基本的に、酸素の培養液への自然な溶解に頼っているので、細胞の高密度培養に必要な酸素を、培養液中に十分に溶解させることは困難である。
さらに、上記の培養方式では、培養液の灌流速度や培養容器の傾き、細胞層の厚さの偏りなどによって、培養液の流れる位置に偏りが生じやすい。そのため、栄養成分や酸素、老廃物の分布に偏りが生じてしまうという問題がある。
これらの問題は、特に、培養容器の容量が大きいほど顕著であり、培養容器の容量を大きくして培養することは非常に困難であった。
【０００５】
これに対し、個々の容量の小さい培養容器を多数連結して、大容量の細胞培養装置を構成することが考えられる。
この場合、多数の培養容器を並列に並べたのでは非常に多くのスペースが必要となるので、省スペースのためには、各培養容器を積層することが望ましい。
しかしながら、多数の培養容器を積層すると、酸素と培養容器との接触面積が少なくなるため、培養液中の酸素濃度がますます低くなってしまい、細胞の活性維持に必要な酸素を供給できないという問題がある。
本発明は、以上のとおりの事情に鑑みてなされたものであり、細胞を、その活性を維持しつつ長時間、高密度培養することができ、大容量化も可能である細胞培養装置を提供することを目的としている。
【０００６】
【課題を解決するための手段】
本発明者らは、鋭意研究の結果、酸素透過性材料からなり、内部に細胞が固着され且つ培養液が灌流される培養液用流路構造を有する少なくとも２つの細胞培養チャンバーが積層された細胞装置において、各細胞培養チャンバー間の少なくとも１カ所に、気体用流路構造を設けることにより、上記目的が達成されることを発見し、本発明を完成した。
【０００７】
すなわち、前記課題を解決する本発明の第一の発明は、酸素透過性材料からなり、内部に細胞が固着され且つ培養液が灌流される培養液用流路構造を有する少なくとも２つの細胞培養チャンバーが積層され、
各細胞培養チャンバー間の少なくとも１カ所に、酸素透過性材料からなる気体用流路構造が設けられ、
各チャンバーを積層面に対して垂直方向に接続し、前記培養液用流路構造に培養液を灌流させるための培養液灌流路を備える細胞培養装置である。
前記酸素透過性材料はポリジメチルシロキサンであることが好ましい。
また、前記細胞培養装置は、バイオリアクターとして用いることもできる。
さらに、本発明の第二の発明は、酸素透過性材料からなり、内部に培養液の流れが一様となる流路構造を有し、該流路構造に細胞が固着され、且つ、該流路構造に培養液を灌流させるための培養液供給口及び培養液排出口を備える細胞培養チャンバーである。この細胞培養チャンバーは、前記細胞培養装置に好適に用いられる。
【０００８】
【発明の実施の形態】
以下、添付の図面を用いて、本発明を更に詳細に説明する。
図１に、本発明の細胞培養装置の一例を示す。本実施態様の細胞培養装置１は、４つの細胞培養チャンバー２ａ，２ｂ，２ｃ，２ｄが積層され、細胞培養チャンバー２ｂ，２ｃ間に気体チャンバー３が設けられている。また、細胞培養装置１には、積層面に対して垂直方向に貫通して各チャンバーを接続する培養液灌流路４，５が設けられている。培養液は、培養液灌流路４を介して、細胞培養チャンバー２ａ，２ｂ，２ｃ，２ｄ内部の培養液用流路構造１２ａ，１２ｂ，１２ｃ，１２ｄに供給され、培養液灌流路５を介して回収されるようになっている。つまり、細胞培養装置１内の培養液の流れが並列になるようになっている。気体チャンバー３内部の気体用流路構造１３には、培養液は流されない。
【０００９】
図２に、細胞培養装置１の位置Ａ−Ａにおける断面図を示す。
それぞれ一対の酸素透過性材料からなるシートによって構成されている細胞培養チャンバー２ａ，２ｂ，２ｃ，２ｄの内部には、複雑な三次元構造の空間（以下、培養液用流路構造という）１２ａ，１２ｂ，１２ｃ，１２ｄが設けられており、ここに細胞が固着され且つ培養液が灌流されるようになっている。複雑な三次元構造とすることにより、表面積が広くなっているので、より多くの細胞が固着できる。
気体チャンバー３（図３参照）は、内部に気体用流路構造１３を有しており、気体用流路構造１３内を気体（空気や酸素）が流れるようになっている。
図４に、細胞培養チャンバーの培養液用流路構造内の培養液の流れ（ａ）及び気体チャンバー内での気体の流れ（ｂ）を示す。
【００１０】
細胞培養チャンバー２ａ，２ｂ，２ｃ，２ｄ及び気体チャンバー３は、ともに、酸素透過性材料から構成されている。そのため、外気中及び気体チャンバー３内の酸素は、装置内を拡散して、培養液中に供給される。
培養液用流路構造内における培養液中の酸素濃度を一定に保持し、且つ、培養液用流路構造の表面に固着した細胞に、活性維持に必要とされる酸素を確実に供給するためには、チャンバー外表面と、チャンバー内部の気体用流路構造表面との間が０．２ｍｍ以下であり、チャンバー全体の厚さが１ｍｍ以下になるように設定することが好ましい。
ただし、外部から培養液を供給するチューブ接続のためと、装置全体の構造強度を保つために、最上部のシートについては１ｍｍ程度の厚みを持たせる必要がある。
【００１１】
また、酸素供給量は、チャンバーと酸素との接触面積に比例する。従来であれば、細胞培養チャンバー２ａ以外の細胞培養チャンバー２ｂ，２ｃ，２ｄの場合、積層されていることで酸素との接触面積が減少するため、酸素供給量が減少し、細胞の活性が低下していた。しかしながら、本装置では、細胞培養チャンバー２ｂ，２ｃ間に気体用流路構造１３を有する気体チャンバー３が設けられているので、気体用流路構造１３内から酸素が供給され、細胞の活性を維持することができる。
したがって、複数、例えば２つの細胞培養チャンバーと、気体用チャンバーとを交互に順次積層していくことで、大容量の細胞培養装置を得ることもできる。
【００１２】
このように、本発明の細胞培養装置は、肝細胞等の有用な細胞を、その活性を維持しつつ長時間、高密度培養することができ、大容量化も可能であるので、バイオリアクターとして好適に用いられる。
【００１３】
前記酸素透過性材料としては、培養する細胞に対して適合性を有するものであれば、既知の任意の酸素透過性材料が使用可能であり、例えば、酸素透過性コンタクトレンズなどに用いられている生体適合性の酸素透過性材料などを挙げることができる。特に、透明性を有するものであれば、流路構造の表面の細胞の分布状況が観察できるので好適である。
そのような材料として、好ましくは、生体適合性のシリコーンゴム、特に好ましくはポリジメチルシロキサン（以下、ＰＤＭＳという）が用いられる。ＰＤＭＳは、安価で生体適合性を有する材料であり、また、透明性及びガス透過性を有している。
【００１４】
図１に示した細胞培養装置１は、例えば以下のようにして製造することができる。
まず、一方の表面に、多数の突起や溝により立体的な流路構造が形成された凹部を有するＰＤＭＳシートを８枚作成する。次いで、各ＰＤＭＳシートを、２枚ずつ、前記流路構造の凹部が内側になるように積層して、内部に培養液用流路構造を有する４個の細胞培養チャンバー２ａ，２ｂ，２ｃ，２ｄを得る。
上記と同様にして、内部に気体用流路構造を有する１個の気体チャンバー３を得る。
その後、細胞培養チャンバー２ａ，２ｂ、気体チャンバー３、細胞培養チャンバー２ｃ，２ｄを順次積層する。
また、各ＰＤＭＳシートには、それぞれ同様の位置に、前記凹部に連絡する２つの貫通孔が設けられており、各チャンバーを積層した際に、この貫通孔が、培養液用流路構造に培養液を灌流させる培養液灌流路を構成する。
【００１５】
前記ＰＤＭＳシートは、例えば、図５に示すような従来公知のフォトリソグラフィー工程により作成することができる。
ｉ）シリコンウェーハ５１を用意し、
ｉｉ）該ウェーハ５１上に、スピンコーティングによりＳＵ−８（ネガ型フォトレジスト）膜５２を形成する。次いで、
ｉｉｉ）所定のマスクパターン５３（すなわち流路構造のパターン）を介して露光・現像を行い、ウェーハ上にパターンを転写し、マスター（原版）を得る。
ｉｖ）得られたパターンをマスクにして、ＣＨＦ３プラズマ処理を行うことにより、表面がコーティングされて、ポリテトラフルオロエチレン等のフルオロカーボンポリマーの膜５４が形成される。
ｖ）その膜上に、未重合のＰＤＭＳを塗布してＰＤＭＳ層５５を形成し、重合させる。
ｖｉ）得られた透明なＰＤＭＳ層を剥離し、酸素プラズマ処理を行う。得られたＰＤＭＳシート５６の表面には、流路構造５７が形成されている。
ｖｉｉ）得られたＰＤＭＳシートを、流路構造を内側になるようにして別のＰＤＭＳシート５８と積層し、内部に流路構造を有するチャンバーを得る。このとき、別のＰＤＭＳシート５８の表面には、流路構造が設けられていても設けられていなくてもよい。
【００１６】
以下、図６に基づいて、本発明に係る細胞培養装置の別の実施形態を説明する。尚、以下に記載する実施形態において、図１に示した第１実施形態に対応する構成要素には、同一の符号を付してその詳細な説明を省略する。
図６に示す細胞培養装置１は、培養液の流れが、並列ではなく、直列である点で図１に示した細胞培養装置１と異なっている。
すなわち、図６に示した細胞培養装置１においては、培養液は、まず、培養液灌流路４ｅを介して培養液用流路構造１２ａの一端４ａに供給され、流路構造１２ａの他端５ａ方向に流れ、他端５ａから、培養液灌流路５ｅを介して培養液用流路構造１２ｂの一端５ｂに供給される。一端５ｂに供給された培養液は、培養液用流路構造１２ｂ内を他端４ｂ方向に流れ、他端４ｂから、他端４ｂと培養液用流路構造１２ｃの一端４ｃとを連絡する培養液灌流路４ｆ，４ｇ，４ｈを介して培養液用流路構造１２ｃの一端４ｃに供給される。一端４ｃに供給された培養液は、培養液用流路構造１２ｃ内を他端５ｃ方向に流れ、他端５ｃから、他端５ｃと培養液用流路構造１２ｄの一端５ｄとを連絡する培養液灌流路５ｆを介して培養液用流路構造１２ｄの一端５ｄに供給される。一端５ｄに供給された培養液は、培養液用流路構造１２ｄ内を他端４ｄ方向に流れ、他端４ｄから培養液灌流路４ｉを介して回収される。
このように、培養液の流れを直列にすることにより、並列の場合よりも流れがよくなる。
【００１７】
次に、本発明の細胞培養チャンバーについて説明する。
本発明の細胞培養チャンバーは、酸素透過性材料からなり、内部に培養液の流れが一様となる流路構造を有し、該流路構造に細胞が固着されやすい構造を有し、且つ、該流路構造に培養液を灌流させるための培養液供給口及び培養液排出口を備える。
「培養液の流れが一様となる流路構造」とは、培養液供給口からの培養液を、その流路構造内全体に、概ね均質な量、概ね均質な速度、概ね均質な方向で流れるようにする構造であり、多様な高さや大きさの突起や穴、段差等によって形成される。
【００１８】
図７は、本発明の好ましい実施形態における、細胞培養チャンバー内部の「培養液の流れが一様となる流路構造」７０の一部を拡大した図である。この流路構造７０の表面には、培養液供給口の部分から、比較的大きな突起７１、それよりも小さい中程度の突起７２、微細な矢印状の突起７３、微細な細長い六角形状の突起７４、微細な円形の穴７５などが規則的に分散配置されている。これらの突起や穴は、同じ形状のもの同士は、培養液の流れる方向Ｄに対して垂直方向に平行且つ等間隔に配置されている。さらに、その突起や溝が設けられている面自体にも段差７６が設けられている。これらによって、複雑で立体的な、網目状の流路構造が形成されている。
図８は、図７に示した流路構造の一部の平面図（ａ）及び方向Ｄにおける断面図（ｂ）を概略的に示したものである。
【００１９】
このような流路構造が内部に設けられていることによって、流路構造内に供給された培養液は、各突起や穴、段差により分散され、流路構造全体にわたって均質に広がるようになっており、培養液の一様な流れが得られる。
また、３次元的な流路構造であるため、細胞固着が促進される。これは、３次元的な構造であるため、突起と突起との間や穴の中で、流速が遅くなる部分が生じるためと考えられる。
【００２０】
また、本発明の細胞培養チャンバーは、その製造方法が簡便であるため、設計上の自由度が大きく、様々なデザインの流路構造に対応可能である。
【００２１】
酸素透過性材料としては、培養する細胞に対して適合性を有するものであれば、既知の任意の酸素透過性材料が使用可能であり、好ましくはＰＤＭＳが用いられる。ＰＤＭＳは、上述したような利点を有するほか、図７に示したような複雑で微細な流路構造を容易に作成できるという利点を有する。
【００２２】
本発明の細胞培養チャンバーは、前記培養液供給口及び培養液排出口を介して培養液を灌流させることにより、細胞培養装置として利用することができる。
また、本発明の細胞培養チャンバーは、上述した本発明の細胞培養装置を構成する細胞培養チャンバーとして好適に用いられる。
図９は、本発明の好ましい実施形態の細胞培養チャンバー９１を備えた細胞培養装置９０の一例である。この細胞培養装置９０に用いられている細胞培養チャンバー９１は、その内部に「培養液の流れが一様となる流路構造」９２が設けられており、該流路構造の両端に、培養液供給口９３及び培養液排出口９４が設けられている。培養液供給口９３には、培養液を供給するためのチューブ９５が接続されている。培養液供給口９３から供給された培養液は、流路構造を構成する多数の突起や穴により、流路構造９２内全体に均一な量、均一な圧力で分散し、培養液排出口９４方向へと流される。このように、培養液の流れが一様となって、培養液が流路構造９２内全体に均質に分布するので、培養液中の栄養成分や酸素の供給や、培養液を介した老廃物の回収除去が偏りなく行われる。
【００２３】
本発明の細胞培養装置及び細胞培養チャンバーを用いて培養可能な細胞は、その活性の維持に酸素を必要とする細胞であれば特に制限はなく、動物、特にヒト由来の肝細胞や繊維芽細胞など、応用上、非常に有用な細胞についても、長時間、その活性を維持しながら培養することができる。
遺伝子配列が同じであるヒト由来の細胞を高密度培養できれば、薬物スクリーニング等のヒト健康リスクを評価する上で説得力ある結果を得ることが可能になる。例えば、ヒト肝臓ガン由来細胞株Ｈｅｐ  Ｇ２は、その機能の面で正常肝細胞に大きく劣るが、培養の簡便な株化細胞である。株化した肝由来細胞として、ヒトの正常肝細胞を用いることは事実上不可能であり、注目する機能さえ備えていれば、ガン化した細胞であってもヒト由来の細胞を用いる利点は大きい。
【００２４】
また、細胞を固着させる前に予め、流路構造の表面をＩ型コラーゲン等でプレコーティングしておくと、細胞がより強固に流路構造に固着するので好ましい。培養時の培養液の灌流速度は、流路構造部に固着した細胞が剥がれない程度より遅ければ特に制限はなく、培養する細胞によって適宜設定すればよい。
【００２５】
細胞培養時の培養液の流速は、５〜３０μＬ／ｍｉｎとすることが好ましい。流速がこの範囲内にあると、流れによって生じる剪断応力によって細胞の固着や流路構造部への分布が妨げられず、また、死んだ細胞を除去することもできる。また、灌流させている培養液は、培養液中に排出された老廃物や細胞の分泌物（例えばＨｅｐ  Ｇ２細胞培養時のアルブミン）を除去するために、少なくとも３〜４日毎に交換することが好ましい。
【００２６】
上記細胞培養装置は、バイオリアクターとして好適に用いられる。特に、組織工学分野等において応用上有用な肝細胞や繊維芽細胞等の細胞について、高密度に、大容量で培養することができるので、臓器類の応答を再現可能なレベルの細胞数を達成でき、そのため、ハイブリッド型人工臓器や、動物実験の代替、薬剤スクリーニング等に利用することができる。
【００２７】
【実施例】
本発明のおよびその効果を具体的に説明し、好ましい培養条件を求めるために、以下の実施例を行った。これらは本発明を限定するものではない。
以下の実施例では、以下の条件で培養した線維芽細胞株３Ｔ３−Ｌ１細胞及びヒト肝癌由来肝細胞株Ｈｅｐ  Ｇ２細胞を用いた。
【００２８】
＜培養液＞
Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ  ｍｏｄｉｆｉｅｄ  Ｍｉｎｉｍｕｍ  Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ  Ｍｅｄｉｕｍ（ＤＭＥＭ、ニッスイ）に、１／１０容量のウシ胎児血清、２５ｍＭのＨＥＰＥＳ（ｈｙｄｒｏｘｙｅｔｈｙｌｐｉｐｅｒａｚｉｎｅ−Ｎ’２−ｅｔｈａｎｅ  ｓｕｌｆｏｎｉｃ  ａｃｉｄ）、１００Ｕ／ｍＬペニシリン、１００μｇ／ｍＬストレプトマイシン、０．２５μｇ／ｍＬアンフォテリシンＢをそれぞれ加えたもの。
＜培養方法＞
細胞の培養にはペトリディッシュを使用し、３４〜３５℃、２０％Ｏ２及び５％ＣＯ２雰囲気下のインキュベータ内で培養を行った。
初期密度２．０×１０４ｃｅｌｌｓ／ｃｍ２を目安として、２〜３日毎に培養液の交換を行った。また、Ｈｅｐ  Ｇ２細胞については少なくとも２週間毎に、また、３Ｔ３−Ｌ１細胞については５〜６日毎に継代操作を行った。
【００２９】
実施例１
１．＜細胞の固着＞
閉鎖系灌流回路上に、培養液タンク１０１、細胞を播種するためのバルブ１０２、ペリスタティックポンプ１０３、バブルトラップ１０４及び細胞培養装置１０５が配置された培養システム１００（図１０参照）を用いて以下の試験を行った。細胞培養装置１０５として、図７に示したのと同様の流路構造を有する細胞培養チャンバー（ＰＤＭＳ製；２０×２０ｍｍ、厚さ４ｍｍ；外表面と流路構造部との間の厚さ１．５ｍｍ）を用いた。
培養システム１００を構成する部材はすべて、予め、オートクレーブにより滅菌した。細胞の播種前に、細胞培養チャンバーを、ダルベッコリン酸緩衝液（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ  ｐｈｏｓｐｈａｔｅ  ｂｕｆｆｅｒｅｄ  ｓａｌｉｎｅ）で洗浄した。その後、３４〜３６℃、酸素濃度１９．５％、二酸化炭素濃度５％のインキュベータ内で、０．０３％Ｉ型コラーゲン水溶液（新田ゼラチン社製）を導入した後、１時間静置して細胞培養チャンバー内部の流路構造表面をコーティングした。
バルブ１０２を介して線維芽細胞株３Ｔ３−Ｌ１細胞を灌流回路内に添加（播種）し、濃度が９μｇ／ｍｌとなるようにグルコースを添加後、インキュベーター内に一晩静置したところ、細胞培養チャンバーの流路構造の表面に細胞の固着がみとめられた。
固着しなかった細胞は培養液を灌流させることによってチャンバー内から取り除き、貯蔵タンク内で吸引除去して、以下の操作を行った。
【００３０】
２．＜灌流速度の影響＞
灌流速度の影響を調べるために、培養液をいくつかの流速で灌流させて培養を行った。その際、グルコースについては、追加の添加をせずに濃度変化を計測した。
培養中、流路構造表面の細胞を観察したところ、細胞は、培養液の流れる方向に沿って分布していった。
また、活性を維持している細胞の数と、グルコース消費量とは関連しているので、培養開始後、灌流回路内のグルコース濃度の培養日数による変化を、グルコースアナライザー（Ｇｌｕｃｏｓｅ  ａｎａｌｙｓｅｒ  ２，  Ｂｅｃｋｍａｎ  Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ  Ｉｎｃ．）を用いて測定した。
【００３１】
図１１に、流速５μｌ／ｍｉｎ（系列１：◆）及び１０μｌ／ｍｉｎ（系列２：■）の結果を示す。流速の遅い系列１の場合、培養５日目には、系列２に比べて比較的多くの細胞の死亡が確認された。この原因は、図１１においてグルコース濃度が十分維持されていることからもわかるように、グルコースが不足したためではない。一方、流速の速い１０μｌ／ｍｉｎの場合、グルコースの減少が順調であり、良好な培養条件が得られたことがわかる。この原因は、培養液の流速が速いため、グルコースが均質に配分されると同時に死細胞が適正に除去されたためであると考えられる。
【００３２】
また、光学顕微鏡で観察したところ、比較的速い流速（例えば３０μｌ／ｍｉｎ）で培養液を灌流させた場合、細胞の形状は長く延びており、１週間以上生育することは困難であった。これは、流速が速すぎると、細胞が十分に固着せず、正常に分布することが困難になることを示している。また、この場合、培養開始後すぐに、多くの細胞の死亡が確認された。
なお、３Ｔ３−Ｌ１細胞の培養時に細胞にかかる剪断応力を測定したところ、培養に適した最大剪断応力は約１２ｄｙｎ／ｃｍ２以下であった。また、同様の操作をＨｅｐ  Ｇ２細胞を用いて行ったところ、培養に適した最大剪断応力は約４ｄｙｎ／ｃｍ２以下であった。
【００３３】
実施例２
培養液を上記実施例１の系列２と同じ流速で灌流させ、培養液中のグルコース濃度が低くなるとグルコースを添加した以外は上記試験例１の系列２と同様の条件で３Ｔ３−Ｌ１細胞（播種した細胞密度：１×１０６ｃｅｌｌｓ／ｍｌ）及びＨｅｐＧ２細胞（播種した細胞密度：４×１０６ｃｅｌｌｓ／ｍｌ）それぞれの培養を行った。播種した細胞密度が違うのは、培養初日のグルコース消費量がかなり異なっているためである。なお、５日目及び９日目に培養液の交換を行った。
細胞密度は培養６日目に最大に達した。その間に死亡した細胞は、流速を上げることによって取り除き、更に培養を続けたところ、１３日目まで細胞密度の増加が続いた。
図１２に、１日あたりのグルコース消費量の変化を示す（３Ｔ３−Ｌ１細胞（●）、Ｈｅｐ  Ｇ２細胞（◆））。培養１４日後まで、グルコースが順調に消費されており、細胞活性が維持されていたことがわかる。
図１３に、Ｈｅｐ  Ｇ２細胞培養時の灌流回路内のアルブミン濃度変化を示す。アルブミンの分泌量が多いほど細胞の活性が高いので、アルブミン濃度を測定することにより、細胞の活性の有無を確認することができる。図１３に示す結果は、培養２週間後にも、細胞の活性が維持されていたことを示している。
【００３４】
実施例３＜気体用流路構造の効果＞
気体用流路構造が設けられていることによる効果を示すために、（Ａ）１つの細胞培養チャンバーからなる細胞培養装置、（Ｂ）図１に示す、気体用チャンバーが挿入された細胞培養装置、（Ｃ）４つの細胞培養チャンバーが積層された細胞培養装置を用いて、実施例２と同様の条件で、以下の実験を行った。
【００３５】
図１４に、３Ｔ３−Ｌ１細胞培養時のグルコース濃度の変化を示す（（Ａ）：△、（Ｂ）：■、（Ｃ）：◆）。グルコース濃度の減少率は、（Ｂ）＞（Ａ）＞（Ｃ）の順であった。この結果は、気体用チャンバーを設けた積層型の（Ｂ）が、単層で用いる場合よりも細胞の培養に適しており、一方、気体用チャンバーを設けない場合には、積層することにより、単層で用いる場合よりも細胞の活性が維持されにくくなることを示している。
【００３６】
図１５に、Ｈｅｐ  Ｇ２細胞培養時のアルブミン分泌量（（Ａ）：◆、（Ｂ）：●、（Ｃ）：■）の変化を示す。
気体チャンバーを有していない（Ｃ）の場合、アルブミン分泌量が１つの細胞培養チャンバーのみ（Ａ）の場合よりも少ないのに対して、気体チャンバーを備えた（Ｂ）を用いた場合、細胞の活性は測定期間中（１２日目まで）維持され、アルブミンの分泌量も最大であり、細胞の活性が高かった。
【００３７】
【発明の効果】
本発明の細胞培養装置では、気体用流路構造が設けられており、該気体用流路構造内の酸素が、チャンバーの壁を透過して細胞培養チャンバー内に供給されるので、多数の細胞培養チャンバーを積層して、細胞培養装置を大容量化することができる。また、個々の細胞培養チャンバーの大きさを小さくすれば、大容量であり且つ小型の細胞培養装置となる。このような細胞培養装置を用いることにより、組織工学において生理学的な数の細胞を高密度で得ることができるので、バイオリアクター、特に、人工臓器等の作成において非常に有用である。これらは、各種臓器内での薬物動態やその影響を調べる上でも有用である。
また、本発明の細胞培養チャンバーは、培養液の流れが一様となる流路構造を有しているので、栄養成分や酸素の分布に偏りが生じにくく、老廃物の回収除去も良好である。そのため、細胞を、その活性を維持しつつ長時間、高密度培養することができる。
【図面の簡単な説明】
【図１】本発明の細胞培養装置の一例を示す概略図である。
【図２】図１の細胞培養装置の位置Ａ−Ａにおける縦断面図である。
【図３】気体チャンバーの概略図である。
【図４】流路構造内における培養液の流れ（ａ）及び気体チャンバー内部の気体の流れ（ｂ）を示す概略図である。
【図５】ＰＤＭＳシートの製造工程の一例を示す図である。
【図６】本発明の細胞培養装置の一例を示す概略図である。
【図７】本発明の細胞培養チャンバーの一例において、その流路構造の一部を拡大した図である。
【図８】図７に示した流路構造の一部の平面図（ａ）及び方向Ｄにおける断面図（ｂ）を概略的に示した図である。
【図９】本発明の細胞培養チャンバーを備えた細胞培養装置の一例を示す図である。
【図１０】本発明の細胞培養装置を用いた閉鎖系灌流システムの一例を示す概略図である。
【図１１】実施例１：培養液中のグルコース濃度を示すグラフである。
【図１２】実施例２：培養細胞の１日あたりのグルコース消費量（３Ｔ３−Ｌ１細胞（●）とＨｅｐ  Ｇ２細胞（◆））を示すグラフである。
【図１３】実施例２：Ｈｅｐ  Ｇ２細胞の培養液中のアルブミン濃度の変化を示すグラフである。
【図１４】実施例３：３Ｔ３−Ｌ１細胞の培養液中のグルコース濃度の変化を示すグラフである。
【図１５】実施例３：Ｈｅｐ  Ｇ２細胞によるアルブミン分泌量の変化を示すグラフである。
【符号の説明】
１…細胞培養装置、２ａ〜２ｄ…細胞培養チャンバー、３…気体チャンバー、４，５…培養液灌流路、１２ａ〜１２ｄ…培養液用流路構造、１３…気体用流路構造、９０…細胞培養装置、９１…細胞培養チャンバー、９２…流路構造、９３…培養液供給口、９４…培養液排出口
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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