(57)【要約】【解決手段】　固相としてビーズを、核酸プローブとして蛍光又は発光標識プローブを用いた核酸ハイブリダイゼーション法により、試料溶液中の標的核酸をそれと一塩基以上が異なる変異核酸と区別して検出する方法において、ハイブリダイゼーション反応終了後、ハイブリダイズしていない標識プローブを洗浄除去し、次いでプローブ放出用溶液を添加し、ハイブリダイズされ且つビーズに固定化された標的核酸を容器底面に沈降させた後、反応液の温度を標的核酸の変性温度以上にまで徐々に上げて標識プローブをビーズから上清に放出させ、上清中の蛍光又は発光量を経時的に測定することを特徴とする標的核酸の検出方法；当該検出法を実施するための装置。【効果】　本発明の方法を用いれば、サンプル中の標的核酸を、簡易に且つ効率よく、これと一塩基以上の変異を有する核酸とを明確に区別して検出することができる。【選択図】　　なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
　固相としてビーズを、核酸プローブとして蛍光又は発光標識プローブを用いた核酸ハイブリダイゼーション法により、試料溶液中の標的核酸をそれと一塩基以上が異なる変異核酸と区別して検出する方法において、ハイブリダイゼーション反応終了後、ハイブリダイズしていない標識プローブを洗浄除去し、次いでプローブ放出用溶液を添加し、ハイブリダイズされ且つビーズに固定化された標的核酸を容器底面に沈降させた後、反応液の温度を標的核酸の変性温度以上にまで徐々に上げて標識プローブをビーズから上清に放出させ、上清中の蛍光又は発光量を経時的に測定することを特徴とする標的核酸の検出方法。
【請求項２】
　固相としてビーズを、核酸プローブとして蛍光又は発光標識プローブを用いた核酸ハイブリダイゼーション法により、試料溶液中の標的核酸をそれと一塩基以上が異なる変異核酸と区別して検出する方法において、ハイブリダイゼーション反応終了後、ハイブリダイズした標的核酸を遊離することなく変異核酸のみを遊離する最適温度にて、ハイブリダイズしていない標識プローブ及びハイブリダイズしているが一塩基以上のミスマッチを有する標識プローブを洗浄除去し、次いでプローブ放出用溶液を添加し、ハイブリダイズされ且つビーズに固定化された標的核酸を容器底面に沈降させた後、反応溶液の温度を標的核酸の変性温度以上に上げて標識プローブをビーズから上清に放出させ、上清中の蛍光又は発光量を測定することを特徴とする標的核酸の検出方法。
【請求項３】
　プローブ放出用溶液の添加量が、反応及び洗浄工程で使用される溶液量の１／２〜１／１０００である請求項１又は２記載の検出方法。
【請求項４】
　標的核酸と一塩基以上が異なる変異核酸を検出するプローブとして、それぞれ異なる蛍光又は発光特性を持つ標識をつけた蛍光又は発光標識プローブを複数用いるものである請求項１〜３のいずれか１記載の検出方法。
【請求項５】
　ハイブリダイズした標的核酸は遊離することなく一塩基以上異なる変異核酸のみを遊離する最適温度が、標的核酸及びそれと一塩基以上が異なる変異核酸のそれぞれについて、一方の塩基配列に相補的な標識核酸プローブを各々用いてハイブリダイゼーション反応を行い、ハイブリダイズされ且つビーズに固定化された標的核酸を容器底面に沈降させ、反応液の温度を標的核酸の変性温度付近にまで徐々に上げて標識プローブをビーズから上清に放出させ、上清中の蛍光又は発光量を経時的に測定して、標的核酸に対する蛍光又は発光量と変異核酸に対する蛍光又は発光量との差が最大となる温度として求められるものである請求項２記載の標的核酸の検出方法。
【請求項６】
　請求項１〜５のいずれか１項記載の標的核酸の検出方法を実施するための装置であって、（ａ）反応・検出部、（ｂ）チップラック・上清回収部、（ｃ）試薬部、（ｄ）分注ヘッド部及び（ｅ）検出ヘッド部を備えてなる核酸検出装置。
【請求項７】
　（Ａ）サンプルプレートを保持するプレート保持部、（Ｂ）プレート保持部下方から磁場を発生させる磁気回収部又はプレート保持部を高速回転させる遠心分離回収部、（Ｃ）反応溶液を加温する加熱部、（Ｄ）励起光をプレート上に発生する光照射部、（Ｅ）標識物質から放出される蛍光又は発光を感知する光検出部、（Ｆ）磁気回収部、光照射部及び光検出部の各機能を制御する制御部、（Ｇ）制御部の動作シーケンスを制御する指令部、（Ｈ）光検出部で感知された光量をデータとして出力するデータ表示部、を備えてなる蛍光又は発光検出装置。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
　本発明は、試料溶液中の標的核酸をそれと一塩基以上が異なる変異核酸と区別して検出する方法及び当該方法を実施するための装置に関する。
【背景技術】
【０００２】
　近年、遺伝子解析技術の急速な進歩及び遺伝学的情報の増大等により、病気や患者の体質を遺伝子レベルで診断・検査する技術が普及しつつある。特に、最近では、ゲノムデータの蓄積等によって、各個体間の体質の差を決めている多数の１塩基多型（ＳＮＰｓ:single nucleotide polymorphism）が、染色体上にマッピングされてきており、いくつかのＳＮＰｓについて、タンパク質の機能に及ぼす影響が特定されている。従って、患者のＳＮＰｓの型を判定することは重要である。また、点突然変異に起因する先天性疾患及び後天性疾患においては、当該遺伝子変異（点突然変異）を検出することは、このような疾患の発症予測、疾患の悪性度、予後の判断等に活用することができ、極めて重要である。
【０００３】
　斯かる遺伝子変異を検出する手法としては、一塩基でもミスマッチがあると、ハイブリット形成が弱いことを利用して、Ｔｍ（融解温度）付近で標識プローブとハイブリダイゼーション反応をさせ、ハイブリッド形成を起こしたか、起こさないかを検出してＤＮＡ上の塩基配列の違いを簡便に検出するというＡＳＯ法が提案されている（例えば、非特許文献１参照）。これによれば、核酸の二本鎖が一本鎖に変性する融解温度をＴｍと呼び、ある核酸の５０％がその相補鎖とハイブリッドを形成する温度と定義されている。そして、このＴｍを算出する式として、Wallace法、Nearest Neighbor 法、ＧＣ％法等が提案されている。
【０００４】
　しかしながら、Ｔｍ値は上記各種方法によって計算から求められるものの、各計算方法による結果もまちまちであり、実際には最適なハイブリダイゼーション温度条件を試行錯誤して測定し、特異的なハイブリダイゼーションシグナルが高く、非特異的なバックグラウンドが低くなる条件を求める必要があり、かなりの時間を要したり、貴重なサンプルを無駄にするという問題があった。
【０００５】
　一方、ＤＮＡプローブを用いた核酸の検出においては、標識された核酸とビーズ等に固定化された核酸の相補性を利用してサンプル中の標的核酸を検出することが行われているが、近年、その検出には非放射性標識物質として各種波長を持った蛍光又は発光標識物質が種々開発されていることから、標識物質に単一波長の励起光を当てて励起し、発光する光の強度をＣＣＤ等のディテクターで検出するという蛍光又は発光測定法が主流となっている。また、プローブを固定化する担体としては、目的物質と３次元的に反応させることができるポリスチレンビーズや磁性ビーズのような直径５０ｎｍ〜１μｍという大きさのビーズが用いられている。
【０００６】
　しかしながら、従来の蛍光又は発光測定法では、反応によりビーズに捕捉されたサンプルの標識物を、ビーズが溶液中に分散された状態でそのまま測定しているため、ビーズに固定されている標識体をエネルギー励起する励起光が、ビーズのシャドー効果や光散乱のために乱れ、バックグラウンドに対する検出シグナルの比（Ｓ／Ｎ比）が悪くなり、感度良い計測ができないという問題があった。また、蛍光物質の種類（例えばストークスシフトの狭い蛍光物質）によっては、検出結果に定量性が見られず、ビーズを用いた検出系には使用できないものもあった。
【非特許文献１】「臨床ＤＮＡ診断法」、（１９９５年７月１日）、古庄敏行、井村裕夫監修、中込弥男、岡田伸太郎、湯浅保人、倉田毅編、金原出版（株）発行、１７０頁〜１７７頁
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
　本発明は、固相としてビーズを、核酸プローブとして蛍光又は発光標識プローブを用いた核酸ハイブリダイゼーション法により、標的核酸をそれと一塩基以上が異なる変異核酸と区別して、より感度よく且つ効率的に検出するための方法及び当該方法を実施するための装置を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
　本発明者らは、斯かる実情に鑑み、鋭意検討したところ、固相としてビーズを、核酸プローブとして蛍光又は発光標識プローブを用いてハイブリダイゼーション反応を行い、ハイブリダイズされ且つビーズに固定化された標的核酸を容器底面に沈降させた後、反応液の温度を標的核酸の変性温度以上にまで徐々に上げることによって標識プローブをビーズから上清に解放し、上清中に浮遊する標識物質の蛍光又は発光量を経時的に測定することにより、標的核酸をそれと一塩基以上が異なる変異核酸と区別しつつ感度良く検出できることを見出した。
【０００９】
　すなわち本発明は、固相としてビーズを、核酸プローブとして蛍光又は発光標識プローブを用いた核酸ハイブリダイゼーション法により、試料溶液中の標的核酸をそれと一塩基以上が異なる変異核酸と区別して検出する方法において、ハイブリダイゼーション反応終了後、ハイブリダイズしていない標識プローブを洗浄除去し、次いでプローブ放出用溶液を添加し、ハイブリダイズされ且つビーズに固定化された標的核酸を容器底面に沈降させた後、反応液の温度を標的核酸の変性温度以上にまで徐々に上げて標識プローブをビーズから上清に放出させ、上清中の蛍光又は発光量を経時的に測定することを特徴とする標的核酸の検出方法を提供するものである。
【００１０】
　また本発明は、固相としてビーズを、核酸プローブとして蛍光又は発光標識プローブを用いた核酸ハイブリダイゼーション法により、試料溶液中の標的核酸をそれと一塩基以上が異なる変異核酸と区別して検出する方法において、ハイブリダイゼーション反応終了後、ハイブリダイズした標的核酸を遊離することなく変異核酸のみを遊離する最適温度にて、ハイブリダイズしていない標識プローブ及びハイブリダイズしているが一塩基以上のミスマッチを有する標識プローブを洗浄除去し、次いでプローブ放出用溶液を添加し、ハイブリダイズされ且つビーズに固定化された標的核酸を容器底面に沈降させた後、反応溶液の温度を標的核酸の変性温度以上に上げて標識プローブをビーズから上清に放出させ、上清中の蛍光又は発光量を測定することを特徴とする標的核酸の検出方法を提供するものである。
【００１１】
　また本発明は、上記標的核酸の検出方法を実施するための装置であって、（ａ）反応・検出部、（ｂ）チップラック・上清回収部、（ｃ）試薬部、（ｄ）分注ヘッド部及び（ｅ）検出ヘッド部を備えてなる核酸検出装置を提供するものである。
【００１２】
　更に本発明は、（Ａ）サンプルプレートを保持するプレート保持部、（Ｂ）プレート保持部下方から磁場を発生させる磁気回収部又はプレート保持部を高速回転させる遠心分離回収部、（Ｃ）反応溶液を加温する加熱部、（Ｄ）励起光をプレート上に発生する光照射部、（Ｅ）標識物質から放出される蛍光又は発光を感知する光検出部、（Ｆ）磁気回収部、光照射部及び光検出部の各機能を制御する制御部、（Ｇ）制御部の動作シーケンスを制御する指令部、（Ｈ）光検出部で感知された光量をデータとして出力するデータ表示部、を備えてなる蛍光又は発光検出装置を提供するものである。
【発明の効果】
【００１３】
　本発明の方法を用いれば、サンプル中の標的核酸を、簡易に且つ効率よく、これと一塩基以上の変異を有する核酸とを明確に区別して検出することができる。また、本発明の方法では、蛍光又は発光物質を固相のビーズから切り離して測定することから、ビーズによるシャドー効果を受けることなく蛍光又は発光物質を測定することができ、検出感度が飛躍的に向上し、少量のサンプルであっても検出が可能となる。また、ビーズの光散乱のために使用することができなかった蛍光物質、具体的には励起波長に対する放出波長のずれ（ストークスシフト）が２０〜３０ｎｍと狭い物質も使用することができる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１４】
　本発明の標的核酸の検出方法は、固相としてビーズを、核酸プローブとして蛍光又は発光標識プローブを用いた核酸ハイブリダイゼーション法により、試料中の標的核酸をそれと一塩基以上が異なる変異核酸と区別して検出する方法に関するものであり、具体的には、標的核酸に対して相補的である塩基配列を有し且つ蛍光又は発光標識されたＤＮＡプローブ（標識プローブ）、特異的結合試薬を表面に導入したビーズ、及び当該特異的結合試薬と親和性の高い物質で標識した標的核酸、を用いてハイブリダイゼーション反応及び特異的親和反応を行うものである。
【００１５】
　標的核酸と一塩基以上が異なる変異核酸としては、標的核酸と１〜数個の塩基が相違する変異核酸が挙げられ、例えば１塩基多型（ＳＮＰｓ）や点突然変異体が含まれる。
【００１６】
　ビーズとしては、Ｂ／Ｆ分離が容易なものであれば特に限定はされるものでなく、球体、特に平均直径２０ｎｍ〜１００μｍであり、好ましくは５０ｎｍ〜５μｍのものが好ましい。具体的には、ラテックスビーズ等の高分子粒子や外部から磁気的に容易に運動制御できる磁性ビーズが挙げられ、特に磁性ビーズを用いるのが好ましい。
【００１７】
　磁性ビーズとしては、水溶液中で不溶性であり且つ磁性を示すものであるならば特に限定されるものではないが、例えば、FeO,γ-FeO,Co-γ-FeO,NiCuZn)O・FeO,(CuZn)O・FeO,(MnZn)O・FeO,(NiZn)O・FeO,SrO・6FeO,BaO・6FeO,SiO2で被覆したFeO（粒径約200Ａ）〔Enzyme Microb.Tecnol.,vol2,p.2-10(1980) 参照〕、各種の高分子材料（ナイロン、ポリアクリルアミド、ポリスチレン等）とフェライトとの複合微粒子及び磁性細菌が菌体内に合成する磁性細菌粒子等が挙げられる。
【００１８】
　標識物質としては、蛍光物質又は発光物質が用いられるが、蛍光物質としては、例えばフルオレセイン、フルオレセインイソチオシアネート、テトラメチルローダミンイソチオシアネート、ＡＭＣＡ、Ｃｙ３、Ｃｙ５等が挙げられ、発光物質としては、化学発光性物質や生物発光性物質及び発光現象を生じる酵素等が挙げられる。化学発光性物質としては、例えば、ルミノール、イソルミノール及びベンゾペリレン等のルミノール類、アクリジニウムエステル等のアクリジン類、アクリジンオレンジ等が挙げられる。また、生物発光性物質としては、例えばペルオキシダーゼ（ＰＯＤ）、アルカリホスファターゼ（ＡＬＰ）等の酵素が挙げられる。
【００１９】
　また、ビーズと標的核酸との親和的結合を行うための特異的結合物質としては、例えば、抗原と結合する抗体、抗体と結合する抗原、ストレプトアビジンと結合するビオチン、ビオチンと結合するストレプトアビジン、相補的な関係にあるＤＮＡ鎖／又はＲＮＡ鎖とこれらと相補的な関係にあるＤＮＡ鎖／ＲＮＡ鎖等が挙げられる。
【００２０】
　標識プローブと標的核酸とのハイブリダイゼーション反応は、常法に従って行えばよい。またその条件は、用いるプローブの融解温度（Ｔｍ；二本鎖核酸の５０％が一本鎖に変性する温度）や反応バッファの塩濃度などに応じて適宜決定すればよく、この場合、標識プローブと相補的塩基配列を有する標的核酸の他に、標識プローブとは一塩基以上が異なる変異核酸がミスマッチする条件であってもよい。
【００２１】
　そして、本発明の核酸の検出方法は、上記の如くハイブリダイゼーション反応及び特異的親和反応によりハイブリダイズされ且つビーズに固定化された標的核酸を、ハイブリダイズしていない標識プローブを洗浄除去した後、プローブ放出用溶液を添加し、一旦容器底面に沈降させた後、反応液の温度を標的核酸の変性温度（核酸の二本鎖が全て一本鎖となる温度）以上にまで徐々に上げて標識プローブをビーズから上清に放出させ、上清中の蛍光又は発光量を測定するものである（図１参照）。
【００２２】
　ここで用いられるプローブ放出用溶液としては、ハイブリダイゼーション反応や洗浄に用いられるバッファと同様の溶液の他、尿素水溶液、アルカリ性溶液（例えば、水酸化ナトリウム水溶液）、有機溶媒（例えば、ホルムアミド、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）等）、界面活性剤（Ｔｗｅｅｎ２０）等のＤＮＡ変性剤を用いることができる。尚、ＦＩＴＣ等のｐＨ依存性の高い蛍光物質を標識したプローブを用いる場合には、蛍光強度を増大させる点から、アルカリ性溶液を用いるのが好ましい。斯かる溶液には、必要に応じて蛍光脱色抑制剤を添加することができる。また、プローブを放出後の蛍光検出時には、蛍光物質の温度特性の点から、当該溶液は冷却した状態に保たれるのが好ましい。
　当該溶液の添加量は、バックグラウンドが抑えられ、最も感度良く測定できる量とすればよいが、反応及び洗浄工程で使用される溶液量よりもかなり少量（但し溶液が蒸発しない程度の量）とするのが好ましい。特に１／２〜１／１０００、更には１／５程度とするのが、標的核酸と一塩基変異核酸との蛍光強度比を飛躍的に高めることができ（図６参照）、好ましい。
【００２３】
　反応後浮遊しているビーズを容器底面に沈降させる手段としては、例えば遠心分離による方法やビーズに磁性ビーズを用いて磁気固定する方法が挙げられる。
　遠心分離の条件は、用いるビーズ、目的物質、バッファの種類によっても異なるが、通常４〜４０℃、８，０００〜２０，０００回転、１分〜１０分行うのが好ましい。
　ビーズとして、上記磁性ビーズを用いる場合には、例えば永久磁石、電磁石等の磁力発生源を検出容器底面に設ければよい。
【００２４】
　蛍光又は発光の測定は、溶液の温度を標的核酸の変性温度以上にまで徐々に上げて標識プローブをビーズから上清に放出させた後、励起光を照射することにより行われる。上清に浮遊した標識プローブを測定することにより、励起光の通り道を邪魔するビーズが存在せず、蛍光又は発光物質から発せられた発光をダイレクトに検出することができ、検出の感度はビーズが浮遊している状態で測定した場合に比べて飛躍的に向上する（図５参照）。また、ビーズを容器底面に保持した状態で行われるので、上清を別の容器に移し替える必要はなく、同一容器内での検出が可能である。
　尚、蛍光物質に照射される励起光としては、キセノン光、ハロゲン光、アルゴンイオンレーザー等が挙げられる。
【００２５】
　標的核酸と、それに対して一塩基以上の変異を有する核酸では融解温度（Ｔｍ）が異なることから、相補的な結合によりハイブリダイズした核酸とハイブリダイズはしているが一塩基以上のミスマッチを有する核酸に対して、反応溶液の温度をそれぞれの変性温度以上になるまで徐々に上昇させてディネーチャーさせ、浮遊した標識プローブから発せられる蛍光量又は発光量を経時的に測定し、そのパターンを解析することにより、試料溶液中の標的核酸をそれと一塩基以上が異なる変異核酸と区別して検出することができる。すなわち、試料溶液中の核酸が標識プローブと相補的な標的核酸の蛍光又は発光パターンは、一塩基以上の変異を有する核酸の蛍光又は発光パターンに比べて、右側の軸跡を通る（図７，図８）。
　また、目的の標的核酸及びそれと一塩基以上が異なる変異核酸のそれぞれについて、一方の塩基配列に相補的な標識核酸プローブを各々用いてハイブリダイゼーション反応を行い、上記操作を行って、上清中の蛍光又は発光量を経時的に測定して、標的核酸に対する蛍光又は発光量と変異核酸に対する蛍光又は発光量との差が最大となる温度を求めることにより、両者を区別するための最適温度、すなわちハイブリダイズした標的核酸を遊離することなく変異核酸のみを遊離する最適温度を導くことができる（実施例３参照）。
【００２６】
　そして、試料溶液について、ハイブリダイゼーション反応終了後、上記のようにして予め導かれた最適温度にて、ハイブリダイズ反応物を洗浄することにより、ハイブリダイズしていない標識プローブ及びハイブリダイズしているが一塩基以上のミスマッチを有する標識プローブを除去することができ、続いてプローブ放出用溶液を添加し、ハイブリダイズされ且つビーズに固定化された標的核酸を、上記の如く容器底面に沈降させた後、反応溶液の温度を標的核酸の変性温度以上に上げて標識プローブをビーズから上清に放出させ、上清中の蛍光又は発光を測定することにより、目的の標的核酸をそれと一塩基以上が異なる変異核酸と区別して検出することができる。
　尚、蛍光又は発光標識プローブとして、標的核酸と、一塩基以上が異なる変異核酸についてそれぞれ異なる蛍光又は発光特性を持つ標識をつけることにより、同一容器中の反応で、試料溶液中の標的核酸をそれと一塩基以上が異なる複数の変異核酸と区別して検出することが可能となる。また、試料溶液中の標的核酸と一塩基以上異なる変異核酸の含有率（比率）も検出することが可能となる。
【００２７】
　本発明の標的核酸の検出装置は、上記標的核酸の検出方法を実施するための装置であって、（ａ）反応・検出部、（ｂ）チップラック・上清回収部、（ｃ）試薬部、（ｄ）分注ヘッド部及び（ｅ）検出ヘッド部を備えてなるものである。
　図２に本発明の標的核酸の検出装置の一例を示す。図中、１は反応・検出部、２はチップラック・上清回収部、３は試薬部、４は分注ヘッド部、５は検出ヘッド部を示す。
　同図において、１は、標的核酸の一本鎖（ディネーチャー）化、一本鎖核酸を容器中に偏在させるＢ／Ｆ分離、及び一本鎖核酸と検出核酸プローブとのハイブリダイゼーション（アニーリング）を行う反応を行い、且つハイブリダイズされた標識プローブを検出する反応・検出部であって、反応容器を収納保持するための保持具と、ディネーチャー及びアニーリングの各温度を調節する加温・冷却装置及び磁力制御装置で構成される。
【００２８】
　反応容器は、その形状及び材質には特に制限されるものではないが、複数のサンプルを同時に試験でき、且つ汎用性の高い樹脂製の２４〜９６ウェルマイクロプレートを使用するのが好ましい。
【００２９】
　加温・冷却装置は、反応容器保持具を加温するヒータと、これを冷却するチラーと、温度を制御するセンサーと、温度を制御する温度制御装置とを備えるものである。
　温度制御装置は、ディネーチャーにおいては、反応容器内部でディネーチャー反応を進行させる温度９５℃（一般には９５℃前後であるが、サンプル核酸の長さが短い場合にはこれより低くてもよい）を保持するようにコントロールでき、アニーリングにおいては、サンプル核酸と標識核酸とのアニーリングが完全に行われるための温度付近まで、一定の速度で徐々に温度上昇するようにコントロールできるものであり、更に検出時の加温において、数℃きざみで温度を上昇させ、検出を行っている時はその温度に保つようコントロールできるものである。また、温度制御装置のタイマー機能により反応時間もコントロールされる。
【００３０】
　磁力制御装置は、反応容器それぞれについて対応する磁力を発生し、容器内のＢ／Ｆ分離に使用する磁性粒子に磁力を作用させるものである。
　斯かる磁力制御装置は、反応容器の底部のみに磁性粒子が不動化するように磁力制御するように配置され、反応容器の真下に置くことで容器底面の狭い領域に集めることができる。具体的には反応容器の下部に配置し、反応容器下部の磁力をＯＮ、ＯＦＦすることにより磁力制御すればよい。
【００３１】
　２は、チップラック・上清回収部であって、試薬を分注するためのディスポーザブルチップ（以下「ディスポチップ」という）を保持するチップラックと、反応部から吸い上げた上清を回収又は廃棄するための上清回収容器をその下部に備えるものである。
　チップラックには、測定を開始する前はそこにディスポチップがささっている。
【００３２】
　３は、試薬部であって、試薬収容容器を備えるものである。ここで用いられる試薬としては、洗浄バッファ等が挙げられる。
　４は分注ヘッド部であり、Ｘ−Ｚ軸或いはＸ−Ｙ−Ｚ軸方向へ自在に移動な能なアームユニットを有する。当該アームユニットは、チップノズルと、ヘッド部を移動させる機構と、該ヘッド部を移動させることにより該チップノズルにチップを装着・脱着させる機構と、装着されたチップから処理液（試薬及び上清）を吸引・注入する機構、より構成される。
【００３３】
　５は検出ヘッド部であり、標識プローブの蛍光又は発光を検出するための光照射部、光検出部及び制御部を備えている。
【００３４】
　図３に、本発明の標的核酸の検出方法に使用できる磁気回収部を有する蛍光又は発光検出装置の一例を示す。本検出装置を、核酸ハイブリダイゼーション装置と組み合わせて用いることより、感度よく目的物質の測定が可能となる。
　すなわち、図３に示した装置は、プレート保持部の真下に磁石及び加温装置を設置し、ビーズ粒子を容器底面に凝集させ保持する機能と反応溶液を加熱する機能を備えた蛍光検出装置であり、プレート保持部２１、磁気回収・加熱部２２、光照射部２３、光検出部２４、制御部２５、指令部２６、データ表示部２７から構成される。
【００３５】
　プレート保持部２１はマイクロプレート等のサンプルプレートを保持するものであり、その下部に磁場を発生させる磁気回収・加熱部２２が設置され、プレート下方から磁場を発生できるようになっている。
【００３６】
　光照射部２３は、プレート保持部１の上方に設置され、励起光を発する光源２３ａ、その光を絞る集光レンズ２３ｂ及び特定の波長のみを通過させる干渉フィルター２３ｃを備えている。光照射部２３から放出された特定の励起光がサンプルプレート中のサンプルに照射され、蛍光又は発光物質から放出される発光を光検出部２４にて感知される。
【００３７】
　光検出部２４は、放出された発光強度を感知するディテクター２４ａ、その光を絞る集光レンズ２４ｂ、特定の波長のみを通過させる干渉フィルター２４ｃを備えている。
【００３８】
　磁気回収・加熱部２２、光照射部２３、光検出部２４の各機能は、制御部２５により制御され、更にこれらの動作シーケンスは指令部２６により制御されている。光検出部２４により感知された光量は、データ表示部２７によりデータとして出力される。
【００３９】
　図４に、遠心分離回収部を有する蛍光又は発光検出装置の例を示す。
　プレートを保持するプレート保持部３１、水平回転する遠心分離回収・加熱部部３２及び当該遠心分離回収・加熱部を回転させる駆動部（図示せず）を備えている。回転速度及び時間は制御部２５により制御され、更にこれらの動作シーケンスは指令部２６により制御されている。
【実施例】
【００４０】
実施例１　加温検出の効果についての検証
　オリゴ合成により、５’末端にビオチン標識し、変異サイトを含むターゲットＤＮＡ（ＡＬＤＨ２遺伝子の一塩基変異サイト※を含む２０mer）；ＡＬＤＨ２*１型サンプル、ＡＬＤＨ２*２型サンプルを作成した。また、５’末端にＦＩＴＣ標識したＡＬＤＨ２*１型サンプルと相補的配列でＡＬＤＨ２*２型サンプルとは一塩基のみが異なる配列のＡＬＤＨ２*１型検出プローブも同様にオリゴ合成した。標的核酸及び検出プローブの塩基配列を表１に示す。
　※:ＡＬＤＨ２遺伝子の一塩基変異は、ゲノムＤＮＡ第１２染色体、exon１２に存在し、アルコール代謝に必要なアセトアルデヒド脱水素酵素の活性有無を決定することで知られている。
【００４１】
【表１】
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【００４２】
　２つの容器を準備し、それぞれに、（１）ＡＬＤＨ２*１型サンプルとＡＬＤＨ２*１型検出プローブ、（２）ＡＬＤＨ２*２型サンプルとＡＬＤＨ２*１型検出プローブを混合した。２つの容器に、それぞれストレプトアビジンを固定した磁性粒子を混合し、よく攪拌した。
【００４３】
　８０℃、３分間加熱し、ＤＮＡを熱変性した。５０℃で５分間、２５℃で５分間インキュベートし、ストレプトアビジン磁性粒子とビオチン標識したターゲットＤＮＡの親和的結合及びターゲットＤＮＡとＦＩＴＣ標識検出プローブのアニーリングを行った（ここでは、相補的なペアも一塩基変異の存在するペアも同量程度二本鎖を形成する）。最適洗浄条件である５８℃に保ったまま、磁石を容器に近づけ、底部にＤＮＡ結合体を含む磁性粒子を収集した。
【００４４】
　底部に収集後、容器中の上清部をピペッターで吸引し、廃棄することで磁性粒子上に結合しなかった余分な検出プローブを除去した。容器から磁石を外し、洗浄バッファを容器に分注し、ピペッターで吸引、吐出を繰り返すことで、磁性粒子の撹拌を行った。同様に洗浄を２回繰り返すことで磁性粒子上に結合しなかった余分な検出プローブ及び非特異吸着していた検出プローブを除去した。
【００４５】
　容器底部への磁性粒子の回収を行い、次いで８０℃、３分間の加熱を行った後、その容器を蛍光検出器にセットし、ＦＩＴＣ標識の蛍光量を励起光４８５ｎｍを照射し、蛍光５２０ｎｍで検出した。また、比較として、検出前に８０℃、３分間の加熱を行わなかったサンプルについても同様に蛍光検出を行った。検出結果を図５に示す。
【００４６】
　これより、蛍光検出に当たり、８０℃、３分間の加熱をして、標識プローブをビーズから解放させて測定した場合には、検出感度が飛躍的に向上することが明らかとなった。
【００４７】
実施例２　検出時のバッファ量少量化によるバックグラウンド低減についての検証
　実施例１と同様にして、２つの容器を準備して、それぞれに、（１）ＡＬＤＨ２*１型サンプルとＡＬＤＨ２*１型検出プローブ、（２）ＡＬＤＨ２*２型サンプルとＡＬＤＨ２*１型検出プローブを混合した。また、ストレプトアビジンを固定した磁性粒子を混合し、よく攪拌した。
【００４８】
　８０℃、３分間加熱し、ＤＮＡを熱変性した。５０℃で５分間、２５℃で５分間インキュベートし、ストレプトアビジン磁性粒子とビオチン標識したターゲットＤＮＡの親和的結合、及びターゲットＤＮＡとＦＩＴＣ標識のＡＬＤＨ２*１型検出プローブのアニーリングを行った。その後、最適洗浄温度である５８℃に保ったまま、磁石を容器に近づけ、底部にＤＮＡ結合体を含む磁性粒子を収集した。
【００４９】
　底部に収集後、容器中の上清部をピペッターで吸引し、廃棄することで磁性粒子上に結合しなかった余分な検出プローブを除去した。容器から磁石を外し、洗浄バッファを容器に分注し、ピペッターで吸引、吐出を繰り返すことで、磁性粒子の攪拌を行った。同様に洗浄を２回繰り返すことで磁性粒子上に結合しなかった余分な検出プローブ及び非特異吸着していた検出プローブを除去した。
【００５０】
　その後、上記洗浄時に使用した洗浄バッファの１／５量を、ピペッターで容器に分注し、容器底部への磁性粒子の回収を行い、次いで８０℃、３分間の加熱を行った後、その容器を蛍光検出器にセットし、ＦＩＴＣ標識の蛍光量を励起光４８５ｎｍを照射し、蛍光５２０ｎｍで検出した。また、比較として、検出前に分注する量を洗浄時に使用した量と同量とした場合のサンプルについても同様に蛍光検出を行った。検出結果を図６に示す。
これより、蛍光検出に当たり、標識プローブを磁性粒子から解放させるバッファ量を１／５量とした場合には、一塩基変異サンプルとの蛍光強度比が飛躍的に向上することが明らかとなった。
【００５１】
実施例３　最適洗浄温度の測定
　実施例１と同様にして、ＡＬＤＨ２*１型サンプル、ＡＬＤＨ２*２型サンプル、ＡＬＤＨ２*１型検出プローブ、ＡＬＤＨ２*２型検出プローブを作成し、４つの容器を準備して、それぞれに、（１）ＡＬＤＨ２*１型サンプルとＡＬＤＨ２*１型検出プローブ、（２）ＡＬＤＨ２*２型サンプルとＡＬＤＨ２*１型検出プローブ、（３）ＡＬＤＨ２*１型サンプルとＡＬＤＨ２*２型検出プローブ、（２）ＡＬＤＨ２*２型サンプルとＡＬＤＨ２*２型検出プローブを混合した。４つの容器に、ストレプトアビジンを固定した磁性粒子を混合し、よく撹拌した。
【００５２】
　８０℃、３分間加熱し、ＤＮＡを熱変性した。２５℃にゆっくりと下げ、そのまま１０分間に保ち、ストレプトアビジン磁性粒子とビオチン標識したターゲットＤＮＡの親和的結合、及びターゲットＤＮＡとＦＩＴＣ標識検出プローブのアニーリングを行った（ここでは、相補的なペアも一塩基変異の存在するペアも同量程度二本鎖を形成する）。
　２５℃に保ったまま、磁石を容器に近づけ、底部にＤＮＡ結合体を含む磁性粒子を収集した。底部に収集後、容器中の上清部をピペッターで吸引し、廃棄することで磁性粒子上に結合しなかった余分な検出プローブを除去した。容器から磁石を外し、洗浄バッファを容器に分注し、ピペッターで吸引、吐出を繰り返すことで、磁性粒子の撹拌を行った。同様に洗浄を２回繰り返すことで磁性粒子上に結合しなかった余分な検出プローブを除去した。
【００５３】
　容器底部への磁性粒子の回収を行い、次いで８０℃、３分間の加熱を行った後、その容器を蛍光検出器にセットし、ＦＩＴＣ標識の蛍光量を検出した。その後、２５℃から８０℃に徐々に加熱温度を上げていき、その度毎に同様にして容器のＦＩＴＣ標識の蛍光量を検出し、その数値を記憶した。結果を図７及び図８に示す。また、各検出プローブにおいて、各温度におけるＡＬＤＨ２*２型サンプルの蛍光量からＡＬＤＨ２*１型サンプルの蛍光量の差を計算した結果を図９に示す。
　蛍光量の差がピークとなる温度は、ＡＬＤＨ２*１検出プローブ使用時には６０℃、ＡＬＤＨ２*２検出プローブ使用時には５８℃であった。
【００５４】
　更に、図９に示すＡＬＤＨ２*１検出プローブを用いたときの蛍光量差からＡＬＤＨ２*２検出プローブを用いたときの蛍光量差を図１０に示す。
　この最大値となる温度は５８℃であり、この温度を最適洗浄温度と決定した。
【００５５】
実施例４　サンプルの同定（１）
　ＡＬＤＨ２遺伝子の３つの遺伝子型を判別を行った実施例を示す。
　人など高等生物は、全て遺伝子を必ずペアで持っており、父母から子へ遺伝子が伝えられる時にお互いにどちらか一方が選ばれる。従って、一塩基変異のような２つの対立遺伝子（アリル）がある場合（例えばＡＬＤＨ２*１アリルとＡＬＤＨ２*２アリル）、ＡＬＤＨ２*１／*１のホモ接合体、ＡＬＤＨ２*１／*２のヘテロ接合体、ＡＬＤＨ２*２／*２のホモ接合体という３つの遺伝子型を持つ。
　よって、ＡＬＤＨ２*１／*１のホモ接合体は、お酒をいくら飲んでも分解でき、ＡＬＤＨ２*１／*２のヘテロ接合体は、多少のお酒であれば分解できる。しかし、ＡＬＤＨ２*２／*２のホモ接合体はお酒を飲んでも分解できないため下戸である。
【００５６】
　サンプルは、フォワードにビオチン標識したプライマを用いてＰＣＲ増幅した。このＰＣＲ産物を精製後、２つの容器を準備し、それぞれに、（１）サンプルとＦＩＴＣ標識したＡＬＤＨ２*１型検出プローブ、（２）サンプルとＦＩＴＣ標識したＡＬＤＨ２*２型検出プローブを混合した。ストレプトアビジン固定化磁性ビーズを混合し、よく撹拌した。９５℃、３分間加熱し、ＤＮＡを熱変性した。２５℃にゆっくりと下げ、そのまま１０分間保ち、ストレプトアビジン磁性粒子とビオチン標識したターゲットＤＮＡの親和的結合、及びターゲットＤＮＡとＦＩＴＣ標識検出プローブのアニーリングを行った（ここでは、相補的なペアも一塩基変異の存在するペアも同量程度二本鎖を形成する）。
【００５７】
　２５℃に保ったまま、磁石を容器に近づけ、底部にＤＮＡ結合体を含む磁性粒子を収集した。底部に収集後、容器中の上清部をピペッターで吸引し、廃棄することで磁性粒子上に結合しなかった余分な検出プローブを除去した。容器から磁石を外し、洗浄バッファを容器に分注し、ピペッターで吸引、吐出を繰り返すことで、磁性粒子の撹拌を行った。同様に洗浄を２回繰り返すことで磁性粒子上に結合しなかった余分な検出プローブを除去した。
【００５８】
　容器底部への磁性粒子の回収を行い、次いで８０℃、３分間の加熱を行った後、その容器を蛍光検出器にセットし、ＦＩＴＣ標識の蛍光量を検出した。その後、２５℃から８０℃に徐々に加熱温度を上げていき、その度毎に同様にしてその容器のＦＩＴＣ標識の蛍光量を検出し、その数値を記憶した。
　各検出プローブにおけるサンプルＤＮＡの、温度変化に対する蛍光量を図１１に示す。
【００５９】
　ＡＬＤＨ２*２型検出プローブを用いた時の方が、温度上昇させていく課程で蛍光検出量は高い結果となった。このことから、サンプルはＡＬＤＨ２*１検出プローブとより特異的に結合しているということが分かり、ＡＬＤＨ２*１ホモ接合体であることが判別された。
【００６０】
　結果では示さないが、ＡＬＤＨ２*１検出プローブを用いた時の方が、温度上昇させていく課程で蛍光検出量が大きい場合は、サンプルはＡＬＤＨ２*２ホモ接合体であると判別できる。また、ＡＬＤＨ２*１検出プローブを用いた時と、ＡＬＤＨ２*２検出プローブを用いた時の蛍光検出量がほぼ等しい場合は、サンプルはヘテロ接合体であると判別できる。
【００６１】
実施例５　サンプルの同定（２）
　サンプルは、フォワードにビオチン標識したプライマを用いてＰＣＲ増幅した。このＰＣＲ産物を精製後、２つの容器を準備し、それぞれに、（１）サンプルとＦＩＴＣ標識したＡＬＤＨ２*１型検出プローブ、（２）サンプルとＦＩＴＣ標識したＡＬＤＨ２*２型検出プローブを混合した。ストレプトアビジン固定化磁性ビーズを混合し、よく撹拌した。９５℃、３分間加熱し、ＤＮＡを熱変性した。２５℃にゆっくりと下げ、そのまま１０分間に保ち、ストレプトアビジン磁性粒子とビオチン標識したターゲットＤＮＡの親和的結合及びターゲットＤＮＡとＦＩＴＣ標識検出プローブのアニーリングを行った（ここでは、相補的なペアも一塩基変異の存在するペアも同量程度二本鎖を形成する）。
【００６２】
　最適洗浄条件である５８℃に保ったまま、磁石を容器に近づけ、底部にＤＮＡ結合体を含む磁性粒子を収集した。底部に収集後、容器中の上清部をピペッターで吸引し、廃棄することで磁性粒子上に結合しなかった余分な検出プローブを除去した。容器から磁石を外し、洗浄バッファを容器に分注し、ピペッターで吸引、吐出を繰り返すことで、磁性粒子の撹拌を行った。同様に洗浄を２回繰り返すことで磁性粒子上に結合しなかった余分な検出プローブ及び、非特異吸着していた検出プローブを除去した。
【００６３】
　容器底部への磁性粒子の回収を行い、次いで８０℃、３分間の加熱を行った後、その容器を蛍光検出器にセットし、ＦＩＴＣ標識の蛍光量を励起光４８５ｎｍを照射し、蛍光５２０ｎｍで検出した。３つの型における検出結果を図１２に示す。
【００６４】
　左サンプルは、ＡＬＤＨ２*１検出プローブを用いた時の方が、ＡＬＤＨ２*２検出プローブを用いた時よりも蛍光検出量があきらかに大きいため、ＡＬＤＨ２*１ホモサンプルであると判別された。中サンプルは、ＡＬＤＨ２*１検出プローブを用いた時と、ＡＬＤＨ２*２検出プローブを用いた時の蛍光検出量は、共にバックグラウンドと比べて大きく、それぞれあまり差が無いため、ヘテロサンプルであると判別された。右サンプルは、ＡＬＤＨ２*１検出プローブを用いた時よりも、ＡＬＤＨ２*２検出プローブを用いた時の方が、蛍光検出量はあきらかに大きいため、ＡＬＤＨ２*２ホモサンプルであると判別された。
　また、この型判別の方法について、図１２の各プローブにおける検出値からバックグラウンドの値を引き算した結果を図１３に示す。より判別が明確になる。
【００６５】
実施例６　サンプルの同定（３）
　サンプルは、フォワードにビオチン標識したプライマを用いてＰＣＲ増幅した。このＰＣＲ産物を精製後、容器にサンプル、Ｃｙ３標識したＡＬＤＨ２*１型検出プローブ、及びＣｙ５標識したＡＬＤＨ２*２型検出プローブを混合した。ストレプトアビジン固定化磁性ビーズを混合し、よく撹拌した。
　９５℃、３分間加熱し、ＤＮＡを熱変性した。２５℃にゆっくりと下げ、そのまま１０分間に保ち、ストレプトアビジン磁性粒子とビオチン標識したターゲットＤＮＡの親和的結合、及びターゲットＤＮＡとＣｙ３及びＣｙ５標識検出プローブのアニーリングを行った。ここでは、相補的なペアも一塩基変異の存在するペアも同量程度二本鎖を形成する。最適洗浄条件である５８℃に保ったまま、磁石を容器に近づけ、底部にＤＮＡ結合体を含む磁性粒子を収集した。
【００６６】
　底部に収集後、容器中の上清部をピペッターで吸引し、廃棄することで磁性粒子上に結合しなかった余分な検出プローブを除去した。容器から磁石を外し、洗浄バッファを容器に分注し、ピペッターで吸引、吐出を繰り返すことで、磁性粒子の撹拌を行った。同様に洗浄を２回繰り返すことで磁性粒子上に結合しなかった余分な検出プローブ及び、非特異吸着していた検出プローブを除去した。
　容器底部への磁性粒子の回収を行い、次いで８０℃、３分間の加熱を行った後、その容器を蛍光検出器にセットし、Ｃｙ３標識の蛍光量を励起光５５０ｎｍを照射し、蛍光５７０ｎｍで検出した。また、Ｃｙ５標識の蛍光量について励起光６５０ｎｍを照射、蛍光６７０ｎｍで検出した。図１４に３つの型における検出結果を示す。
　その結果、実施例４〜５と同様に、ＡＬＤＨ２の３つの型の判別が可能であった。
【図面の簡単な説明】
【００６７】
【図１】図１は、本発明方法における標識物質の検出過程を示す模式図である。
【図２】図２は、本発明標的核酸の検出装置の概念図である。
【図３】図３は磁気回収・加熱部を有する本発明検出装置の概念図である。
【図４】図４は遠心分離回収・加熱部を有する本発明検出装置の概念図である。
【図５】図５は本発明の検出方法における検出感度を示したグラフである。
【図６】図６は蛍光強度に対するバッファ添加量の影響を示した図である。
【図７】図７はＡＬＤＨ２*１検出プローブを使用した場合の温度変化に対する蛍光量を示したグラフである。
【図８】図８はＡＬＤＨ２*２検出プローブ使用を使用した場合の温度変化に対する蛍光量を示したグラフである。
【図９】図９は各温度におけるＡＬＤＨ２*２型サンプルの蛍光量とＡＬＤＨ２*１型サンプルの蛍光量の差を示したグラフである
【図１０】図１０は図９で示された蛍光量差とＡＬＤＨ２*２検出プローブを用いたときの蛍光量の差を示したグラフである。
【図１１】図１１はサンプルＤＮＡの温度変化に対する蛍光量を示したグラフである。
【図１２】図１２は各遺伝子型における蛍光量を示したグラフである。
【図１３】図１３は図１２で示された蛍光量からそのバックグラウンドの値を引き算した結果を示したグラフである。
【図１４】図１４は二つの蛍光プローブを同一容器中で反応させる方法によって検出した各遺伝子型における蛍光量を示したグラフである。
【符号の説明】
【００６８】
　１　反応・検出部
　２　チップラック・上清回収部
　３　試薬部
　４　分注ヘッド部
　５　検出ヘッド部
　２１　プレート保持部
　２２　磁気回収・加熱部
　２３　光照射部
　２４　光検出部
　２５　制御部
　２６　指令部
　２７　データ表示部
　２３ａ　光源
　２３ｂ　集光レンズ
　２３ｃ　干渉フィルター
　２４ａ　ディテクター
　２４ｂ　集光レンズ
　２４ｃ　干渉フィルター
　３１　プレート保持部
　３２　遠心分離回収・加熱部
　　ａ　標識プローブ
　　ｂ　標的核酸
　　ｃ　ビーズ
【図６】
2004121231.tif 000003
【図１】
2004121231.tif 000004
【図２】
2004121231.tif 000005
【図３】
2004121231.tif 000006
【図４】
2004121231.tif 000007
【図５】
2004121231.tif 000008
【図７】
2004121231.tif 000009
【図８】
2004121231.tif 000010
【図９】
2004121231.tif 000011
【図１０】
2004121231.tif 000012
【図１１】
2004121231.tif 000013
【図１２】
2004121231.tif 000014
【図１３】
2004121231.tif 000015
【図１４】
2004121231.tif 000016
【配列表】
2004121231000001.app