(57)【要約】【課題】優れた腸内酪酸生成作用を有し、加熱処理してもその効果が損われることのない腸内酪酸生成促進剤及びそれを含有する飲食品を提供する。【解決手段】動物の腸内から分離される細菌の死菌体を、腸内酪酸生成促進剤の有効成分として含有させる。また、上記腸内酪酸生成促進剤を飲食品中に含有させる。前記細菌は、乳酸及び酢酸を生成するグラム陽性菌であることが好ましく、エンテロコッカス属（Ｅｎｔｅｒｏｃｏｃｃｕｓ）、ビフィドバクテリウム属（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ）、ラクトバシルス属（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ）に属する細菌であることが更に好ましく、エンテロコッカス・フェカリス（Ｅｎｔｅｒｏｃｏｃｃｕｓ  ｆａｅｃａｌｉｓ）であることが最も好ましい。また、前記細菌の死菌体を１日当たり１×１０１０個以上摂取できるように調製されたものであることが好ましい。【選択図】  なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
動物の腸内から分離される細菌の死菌体を有効成分として含有することを特徴とする腸内酪酸生成促進剤。
【請求項２】
前記細菌が、乳酸及び酢酸を生成するグラム陽性菌である請求項１記載の腸内酪酸生成促進剤。
【請求項３】
前記細菌が、エンテロコッカス属（Ｅｎｔｅｒｏｃｏｃｃｕｓ）、ビフィドバクテリウム属（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ）、ラクトバシルス属（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ）に属する細菌である請求項２に記載の腸内酪酸生成促進剤。
【請求項４】
前記細菌が、エンテロコッカス・フェカリス（Ｅｎｔｅｒｏｃｏｃｃｕｓ  ｆａｅｃａｌｉｓ）である請求項３記載の腸内酪酸生成促進剤。
【請求項５】
前記細菌の死菌体を１日当たり１×１０１０個以上摂取できるように調製された、請求項１〜４のいずれか一つに記載の腸内酪酸生成促進剤。
【請求項６】
請求項１〜５のいずれか一つに記載の腸内酪酸生成促進剤を含有することを特徴とする飲食品。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、特に大腸内の酪酸生成を促進させる腸内酪酸生成促進剤及びそれを含有する飲食品に関する。
【０００２】
【従来の技術】
大腸の絨毛組織は上皮細胞で覆われ、絨毛の基底部には陰窩が存在している。陰窩の中には粘膜分泌細胞が存在し、絶えず粘液を製造してこれが上皮細胞を覆い粘膜を保護するとともに糞便の移動を容易にしている。そして大腸の粘膜層の形成には酪酸の存在が不可欠であることが最近の研究で明らかにされてきた。
【０００３】
大腸内で腸内細菌によって産生される短鎖脂肪酸は、酢酸、プロピオン酸、酪酸及び吉草酸であるが、これらの酸は大腸で吸収され宿主の重要なエネルギー源になっている。豚の場合、吸収されるエネルギーの３０％はこれらの酸によるという。大腸から吸収された物質は門脈を通して肝臓に運ばれるが、門脈血中の有機酸を分析すると、酢酸とプロピオン酸しか検出されない。酪酸は大腸粘膜の再生のためのエネルギー源として直ちに利用されている。末梢血では酢酸のみが検出されるためプロピオン酸は肝臓において糖新生に利用されていると考えられている。酪酸は、粘膜上皮細胞の増殖のエネルギー源として使われるほかに、上皮細胞の分裂を促進し粘膜の肥厚化に寄与し、更には大腸運動を促進することが報告されている（非特許文献１，２，３参照）。
【０００４】
また、このような腸内における酪酸の重要な役割に着眼して、ラクトバシルス・アシドフィルス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ａｃｉｄｏｐｈｉｌｕｓ）及び／又はビフィドバクテリウム・ロンガム（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｌｏｎｇｕｍ）の菌体を有効成分とする腸内酪酸濃度上昇促進剤並びにこの菌体を配合して腸内酪酸濃度上昇促進作用を付与した飲食品及び飼料が提案されている（特許文献１参照）。
【０００５】
【非特許文献１】
Ｓｈｉｍｏｔｏｙｏｄｏｍｅ，  Ａ．，  Ｍｅｇｕｒｏ，  Ｓ．，  Ｈａｓｅ，  Ｔ．，  Ｔｏｋｉｍｉｔｓｕ，  Ｉ．  ＆  Ｓａｋａｔａ，  Ｔ．（２０００）  Ｓｈｏｒｔ  Ｃｈａｉｎ  ｆａｔｔｙ  ａｃｉｄｓ  ｂｕｔ  ｎｏｔ  ｌａｃｔａｔｅ  ｏｒ  ｓｕｃｃｉｎａｔｅ  ｓｔｉｍｕｌａｔｅ  ｍｕｃｕｓ  ｒｅｌｅａｓｅ  ｉｎ  ｔｈｅ  ｒａｔ  ｃｏｌｏｎ．  Ｃｏｍｐ．  Ｂｉｏｃｈｅｍ．  Ｐｈｙｓｉｏｌ．  １２５Ａ：  ５２５−５３１．
【非特許文献２】
Ｓａｋａｔａ，  Ｔ．（１９９７）  Ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ  ｏｆ  ｓｈｏｒｔ−ｃｈａｉｎ  ｆａｔｔｙ  ａｃｉｄｓ  ｏｎ  ｉｎｔｅｓｔｉｎａｌ  ｇｒｏｗｔｈ  ａｎｄ  ｆｕｎｃｔｉｏｎｓ．  Ｉｎ：  Ｄｉｅｔａｒｙ  Ｆｉｂｅｒ  ｉｎ  Ｈｅａｌｔｈ  ａｎｄ  ｄｉｓｅａｓｅ  （Ｋｒｉｔｃｈｅｖｓｋｙ，  Ｄ．  ＆  Ｂｏｎｆｉｅｌｄ，  Ｃ．  ｅｄｓ．），  ｐｐ．  １９１−１９９．  Ｐｌｅｎｕｍ  Ｐｒｅｓｓ，  Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ，  ＮＹ．
【非特許文献３】
Ｙａｊｉｍａ，  Ｔ．  （１９９５）  Ｓｅｎｓｏｒｙ  ｍｅｃｈａｎｉｓｍｓ  ｆｏｒ  ｓｈｏｒｔ−ｃｈａｉｎ  ｆａｔｔｙ  ａｃｉｄｓ  ｉｎ  ｔｈｅ  ｃｏｌｏｎ．  Ｐｐ．  ２０９−２２１．  Ｉｎ：  Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌ  ａｎｄ  ｃｌｉｎｉｃａｌ  Ａｓｐｅｃｔｓ  ｏｆ  ｓｈｏｒｔ−ｃｈａｉｎ  ｆａｔｔｙ  ａｃｉｄｓ．  （Ｃｕｍｍｉｎｇｓ，  Ｊ．  Ｈ．，  Ｒｏｍｂｅａｕ，  Ｊ．Ｌ．  ａｎｄ  Ｓｋａｔａ，  Ｔ．  ｅｄｓ．），  Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ  Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ  Ｐｒｅｓｓ，  Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ，  ＵＫ．
【特許文献１】
特開平１０−８４９０９号公報
【０００６】
【発明が解決しようとする課題】
上記特許文献１には、ラクトバシルス・アシドフィルス及び／又はビフィドバクテリウム・ロンガムの菌体を含む飼料をラットに摂取させると、ラットの盲腸内の酪酸濃度が上昇することが記載されている。
【０００７】
しかしながら、特許文献１では、ラクトバシルス・アシドフィルス及び／又はビフィドバクテリウム・ロンガムの生菌体を使用しており、これらの死菌体を摂取した場合にも効果があるかどうかについては、開示も示唆もされていない。そして、生菌体を利用する場合には、加熱処理が必要とされるような飲食品に添加することができず、製品の保存上においても様々な制約があった。
【０００８】
したがって、本発明の目的は、優れた腸内酪酸生成作用を有し、加熱処理してもその効果が損われることのない腸内酪酸生成促進剤及びそれを含有する飲食品を提供することにある。
【０００９】
【課題を解決するための手段】
本発明者らは、上記目的を達成するために鋭意研究した結果、意外にも乳酸菌等を加熱処理して得られる死菌体を摂取することにより、腸内の酪酸生成が促進されることを見出し、本発明を完成するに至った。
【００１０】
すなわち、本発明の一つは、動物の腸内から分離される細菌の死菌体を有効成分として含有することを特徴とする腸内酪酸生成促進剤を提供するものである。
【００１１】
上記発明においては、前記細菌が、乳酸及び酢酸を生成するグラム陽性菌であることが好ましく、エンテロコッカス属（Ｅｎｔｅｒｏｃｏｃｃｕｓ）、ビフィドバクテリウム属（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ）、ラクトバシルス属（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ）に属する細菌であることが更に好ましく、エンテロコッカス・フェカリス（Ｅｎｔｅｒｏｃｏｃｃｕｓ  ｆａｅｃａｌｉｓ）であることが最も好ましい。また、本発明の腸内酪酸生成促進剤は、前記細菌の死菌体を１日当たり１×１０１０個以上摂取できるように調製されたものであることが好ましい。
【００１２】
本発明のもう一つは、上記腸内酪酸生成促進剤を含有することを特徴とする飲食品を提供するものである。
【００１３】
本発明によれば、上記腸内酪酸生成促進剤又はそれを含有する飲食品として、動物の腸内から分離される細菌の死菌体を摂取することにより、腸内、特に大腸内における酪酸生成量を顕著に増大させることができる。その結果、大腸の上皮細胞の分裂を促進し、粘膜の肥厚化に寄与し、大腸運動を活発化して、整腸作用をもたらすことが期待できる。また、大腸がんの予防、抑制作用も期待できる。
【００１４】
更に、細菌の死菌体を有効成分とするので、加熱処理してもその効果が損なわれにくく、加熱処理を必要とするような飲食品にも添加できると共に、保存上の取扱い性も向上する。
【００１５】
【発明の実施の形態】
本発明の腸内酪酸生成促進剤は、動物の腸内から分離される細菌の死菌体を有効成分として含有するものである。ここで、上記細菌は、乳酸及び酢酸を生成するグラム陽性菌であることが好ましく、エンテロコッカス属（Ｅｎｔｅｒｏｃｏｃｃｕｓ）、（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ）、ラクトバシルス属（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ）に属する細菌であることが更に好ましい。
【００１６】
エンテロコッカス属としては、例えば、エンテロコッカス・フェカリス（Ｅｎｔｅｒｏｃｏｃｃｕｓ  ｆａｅｃａｌｉｓ）、エンテロコッカス・フェシウム（Ｅｎｔｅｒｏｃｏｃｃｕｓ  ｆａｅｃｉｕｍ）等が挙げられる。
【００１７】
ビフィドバクテリウム属としては、例えば、ビフィドバクテリウム・ロンガム（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ  Ｌｏｎｇｕｍ）、ビフィドバクテリウム・ブレーベ（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｂｒｅｖｅ）、ビフィドバクテリウム・ビフィダム（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｂｉｆｉｄｕｍ）等が挙げられる。
【００１８】
ラクトバシルス属としては、ラクトバシルス・アシドフィラス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ａｃｉｄｏｐｈｉｌｕｓ）、ラクトバシルス・カゼイ（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｃａｓｅｉ）、ラクトバシルス・サリバリウス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｓａｌｉｖａｒｉｕｓ）等が挙げられる。
【００１９】
なお、前記細菌として、最も好ましくは、エンテロコッカス・フェカリス（Ｅｎｔｅｒｏｃｏｃｃｕｓ  ｆａｅｃａｌｉｓ）が用いられる。エンテロコッカス・フェカリスとしては、例えばＡＴＣＣ  １９４３３、ＡＴＣＣ  １４５０８、ＡＴＣＣ  ２３６５５、ＩＦＯ  １６８０３、ＩＦＯ  １６８０４等の菌株を利用することができる。
【００２０】
上記細菌の死菌体は、上記細菌を例えば加熱処理等の手段で殺菌することにより得ることができる。具体的には、上記の細菌を常法に従って培養して得られた培養物から、例えば、濾過、遠心分離等の方法により菌体を回収し、水洗後、水等に懸濁して８０〜１１５℃、３０分〜３秒間加熱処理した後、必要に応じて濃縮、乾燥することにより調製できる。
【００２１】
また、エンテロコッカス・フェカリス（Ｅｎｔｅｒｏｃｏｃｃｕｓ  ｆａｅｃａｌｉｓ）の加熱処理による死菌体粉末は、商品名「ＥＣ−１２」（コンビ株式会社製）として市販されているので、このような市販品を用いることもできる。
【００２２】
本発明の腸内酪酸生成促進剤は、上記細菌の死菌体を１日当たり１×１０１０個以上、より好ましくは５×１０１１個以上、特に好ましくは１×１０１２個以上摂取できるように調製されていることが好ましい。該死菌体の１日当たりの摂取量が上記より少ないと、充分な腸内酪酸生成促進効果が期待できない。
【００２３】
本発明の腸内酪酸生成促進剤は、上記の加熱処理菌体の他に、必要に応じて、賦形剤、甘味料、酸味料、ビタミン類、ミネラル類、オリゴ糖類、食物繊維等を添加して、粉末、顆粒、錠剤、カプセル剤、ペースト状又はゼリー状の飲料として調製することができる。
【００２４】
また、本発明の腸内酪酸生成促進剤は、例えば、パン、うどんやラーメン等の各種麺類、納豆、ドリンク剤やゼリー飲料等の各種飲料、ゼリー、グミ、キャンディー、ビスケット、インスタントスープやインスタント味噌汁等の各種インスタント食品、レトルト食品、電子レンジ対応食品等の一般の飲食品に添加することができる。
【００２５】
上記各飲食品における腸内酪酸生成促進剤の添加量は、各飲食品の１食分中に上記加熱処理菌体が１×１０１０個以上、より好ましくは５×１０１１個以上、特に好ましくは１×１０１２個以上含有されるように添加することが好ましい。なお、添加方法は、特に制限はなく、各飲食品に用いられる他の原料と一緒に最初から添加することができる。
【００２６】
本発明の腸内酪酸生成促進剤は、上記細菌の死菌体を有効成分とするので、加熱処理（加熱殺菌、焼成、蒸煮等の菌体が死滅するような温度条件下での処理）が必要な飲食品に添加しても、腸内酪酸生成促進効果が損われることがない。
【００２７】
【実施例】
以下、実施例を挙げて本発明を具体的に説明する。なお、以下の説明において、特に断りのない限り、「％」は「質量％」を表す。
【００２８】
実施例
エンテロコッカス・フェカリス（Ｅｎｔｅｒｏｃｏｃｃｕｓ  ｆａｅｃａｌｉｓ  ＡＴＣＣ  １９４３３）をロゴサ培地で３７℃、２４時間培養した前培養液を、酵母エキス４％、ポリペプトン３％、乳糖１０％を含む液体培地に０．１（ｖ／ｖ）％接種し、ｐＨスタットを用いてｐＨ６．８〜７．０に苛性ソーダ水溶液で調整しながら３７℃、２２〜２４時間中和培養を行なった。
【００２９】
培養終了後、連続遠心機で菌体を分離、回収した後、水を加えて元の液量まで希釈して再度連続遠心機で菌体を分離、回収した。この操作を合計４回繰り返して菌体を洗浄した。次いで、洗浄した菌体を適量の水に懸濁し、１００℃、３０分間殺菌した後、スプレードライヤーを用いて菌体を乾燥して加熱処理による死菌体粉末を調製した。
【００３０】
試験例
上記実施例と同様な方法で調製された市販のエンテロコッカス・フェカリスの死菌体粉末を用いて、以下の条件で試験を行った。
【００３１】
（１）供試物質
▲１▼エンテロコッカス・フェカリスの死菌体粉末「ＥＣ−１２」（商品名、コンビ株式会社製、以下「ＥＣ−１２」と略称する）
▲２▼ビール酵母（以下「酵母」と略称する）
【００３２】
（２）供試動物
盲腸フィステル装着成メスブタ３頭（ＬＷＤ系雑種、体重９１−１５３ｋｇ）
【００３３】
（３）給与飼料
市販試験用飼料（商品名「ＳＤＳ  Ｎｏ．４」；抗菌剤・生菌製剤を含まないもの、日本配合飼料株式会社製）を基礎飼料とした。
給餌量は１日２．４ｋｇで、朝（９時）晩（２１時）に等分して給与した。飲水は自由摂取とした。
【００３４】
（４）飼育環境
農場内の開放系畜舎にある分娩ストールで個体毎に飼育した。
【００３５】
（５）試験方法
１週間の飼料馴化期間を設け、上記基礎飼料に馴化させた。馴化終了後、供試豚を１頭ずつ３群に分けて、１つの群には基礎飼料給与（対照群）、もう１つの群にはＥＣ−１２を１０ｍｇ／ｋｇＢ．Ｗ．基礎飼料に混合して給与（ＥＣ−１２群）、更にもう１つの群には酵母を１０ｍｇ／ｋｇＢ．Ｗ．基礎飼料に混合して給与（酵母群）し、それぞれ９日間飼育した。
【００３６】
なお、ＥＣ−１２及び酵母は、市販薄力粉を用いて１０倍希釈した後、飼料中に添加した。無添加試料にも、同重量の小麦粉を添加した。試験はラテン方格法を用い、計３実験期を設定した。それぞれの実験期の試験開始後８日目の朝１０時の給餌時に消化管内滞留時間測定用マーカーとしてＣｏ−ＥＤＴＡ（液相マーカー）及びＹｂＣｌ３（固相マーカー）を投与した。また、夜２２時の給餌時にＥｕ−ＥＤＴＡ（液相マーカー）及びＣｅＣｌ３（固相マーカー）を投与した。試験開始後８日から２日間それぞれ以下に示すようなサンプリングを行った。
【００３７】
▲１▼盲腸内容物の採取
それぞれの実験期の試験開始後８日の朝の給餌時から４８時間、２時間毎に盲腸液を約４．５ｍＬポリエチレン製ディスポーサブルチューブにサンプリングした。サンプルのうち、約２ｇは消化管内滞留時間測定用サンプルとしてあらかじめ希塩酸で洗浄した試験管に入れて、８０℃で２日間乾燥させた。なお、乾燥前にサンプル量を計測しておいた。次に少量をｐＨメーターでｐＨ測定に供した。更に、０．３ｇを有機酸濃度測定用として１．５ｍＬ容Ｍｉｃｒｏｆｕｇｅ  ｔｕｂｅ（プラスチック製小型遠心管）に入れ、蒸留水６００μＬ及び過塩素酸９０μＬを添加して凍結保存した。
【００３８】
▲２▼糞便の採取
上記の盲腸内容物採取期間中に排泄された糞便については、糞便毎に重量測定後、有機酸、胆汁酸及びアンモニア濃度測定及び消化管内滞留時間測定用サンプルとして▲１▼と同様に処理した。
【００３９】
（６）化学分析
▲１▼有機酸濃度の測定
有機酸濃度の測定は、保存したサンプルを解凍し、遠心分離（１５、０００ｒｐｍ×１０分）で除タンパク質をおこない、メンブランフィルターでろ過後、上清の一部をイオン排除ＨＰＬＣ分析した（Ｕｓｈｉｄａ，  Ｋ．，  Ｓａｋａｔａ，  Ｔ．  （１９９８）  Ｅｆｆｅｃｔ  ｏｆ  ｐＨ  ｏｎ  ｏｌｉｇｏｓａｃｃｈａｒｉｄｅ  ｆｅｒｍｅｎｔａｔｉｏｎ  ｂｙ  ｐｏｒｃｉｎｅ  ｃｅｃａｌ  ｄｉｇｅｓｔａ．  Ａｎｉｍ．
Ｓｃｉ．  Ｔｅｃｈｎｏｌ．  （Ｊｐｎ．）  ６９：  １００−７参照）。
【００４０】
▲２▼マーカー濃度の測定及び解析
凍結保存された盲腸内容物を解凍後、約２．０ｇを試験管に精秤して、予備乾燥（８０℃×２４時間）後、更に乾燥（１２０℃×２４時間）した。デシケータ内で３０分放冷後、乾物を秤量して水分含量を測定した。秤量後、ただちに硝酸３ｍｌを加え、Ｂ玉で蓋をして一晩放置した。サーモアルミバス（ＡＬＢ−２２０：ＩＷＡＫＩ）で一晩加熱（８０℃）した後、室温まで冷却し、７０％過塩素酸１．０ｍｌを加えた。再び１２０℃で一晩加熱を続けた後、溶液量が約０．３ｍｌになるまで１８０℃で加熱し続けた。蒸留水で２０ｍｌに定容し、ＳＰＳ１５００（セイコー電子工業）を用いてＩＣＰ（Ｉｎｄｕｃｔｉｖｅ  Ｃｏｕｐｌｅｄ  Ｐｌａｓｍａ）発酵分析に供した。このとき、測定波長（ｎｍ）はＣｏ：２２８．６１６、Ｃｅ：４１３．３８０、Ｙｂ：３２８．９３７、Ｅｕ：３８１．９６７とした。
【００４１】
（７）統計解析
各測定項目について、ラテン方格法に基づき統計解析を実施した。試験群間に有意差が認められた場合は、Ｄｕｎｎの多重比較検定に行い試験群間の差の判定を行なった。
【００４２】
（８）試験結果
▲１▼マーカー投与による動態解析
各マーカー投与による消化管内の薬物動態解析結果を、表１及び図１〜４に示した。その結果、ＥＣ−１２を投与した群では、他の群に比べて、口から盲腸に流入するまでの時間が長く、盲腸内に滞留する時間は短い傾向が認められた。
【００４３】
【表１】
2004346043.tif 000002
【００４４】
▲２▼採材期間中の糞便回数
採材期間中（４８時間）の糞便回数測定結果を表２に示した。その結果、ＥＣ−１２を投与した群では、他の群に比べて、糞便回数が増える傾向が認められた。
【００４５】
【表２】
2004346043.tif 000003
【００４６】
▲３▼盲腸内容物中の有機酸濃度の推移
盲腸内容物中の有機酸濃度の推移を図５〜１４に示した。その結果、平均酢酸濃度の経時的な変化は、飼料給与による変動は認められたものの、ＥＣ−１２投与による顕著な変化は認められなかった。平均プロピオン酸濃度の経時的な変化は、飼料給与による変動は認められたものの、ＥＣ−１２投与による顕著な変化は認められなかった。平均酪酸濃度の経時的な変化は、飼料給与時及び前後２から４時間の間でＥＣ−１２投与により酪酸が高値を示した。平均乳酸濃度の経時的な変化は、酪酸が高値を示していた飼料給与時でＥＣ−１２投与群では乳酸が低値を示していた。平均吉草酸濃度の経時的な変化は、飼料給与時及び前後２から４時間の間でＥＣ−１２投与により吉草酸が高値を示した。総短鎖脂肪酸濃度の経時的な変化は、ＥＣ−１２投与による顕著な変化は認められなかった。コハク酸、ギ酸、イソ酪酸及びイソ吉草酸濃度はどの採材時間も１５ｍｍｏｌ／ｋｇ以下であった。
【００４７】
（９）まとめ
上記結果に示されるように、ＥＣ−１２を投与することで、昼夜、液相固相を問わずマーカーが盲腸に到達する時間が無添加対照に比べて長くなった。また、盲腸にマーカーが流入する時間帯も昼の液相マーカーを除いて同様の傾向を示した。一方で盲腸から流出する時間は、昼では液相マーカーで長くなっていたものの、夜では液相固相とも短くなった。また、盲腸内滞留時間は、昼夜、液相固相を問わず短くなった。また、ＥＣ−１２投与群では酪酸及び吉草酸が顕著に高値を示し、糞便回数が多くなった。
【００４８】
これらのことから、ＥＣ−１２を投与すると内容物の小腸での滞留時間は長くなるものの、盲腸の滞留時間が短くなっていたことから、大腸運動が亢進されていることが推察され、その結果糞便回数が多くなったと考えられる。また、盲腸内の酪酸及び吉草酸濃度が増加していたが、これは小腸から盲腸へ流入してくる内容物の速度が遅くなったことが、大腸発酵に影響を与えたものと考えられる。酪酸は大腸組織のエネルギー源といわれており、前述したように、水分やミネラル吸収促進、粘液分泌促進、大腸上皮組織の肥厚の他に大腸運動を促進することが知られている。したがって、ＥＣ−１２投与による大腸運動の亢進は、酪酸の増加が一因にあると考えられ、その結果整腸作用などの生理効果につながったものと推察される。
【００４９】
【発明の効果】
以上説明したように、本発明によれば、腸内酪酸生成促進剤又はそれを含有する飲食品として、動物の腸内から分離される細菌の死菌体を摂取することにより、腸内、特に大腸内における酪酸生成量を顕著に増大させることができる。その結果、大腸の上皮細胞の分裂を促進し、粘膜の肥厚化に寄与し、大腸運動を活発化して、整腸作用をもたらすことが期待できる。また、大腸がんの予防、抑制作用も期待できる。更に、細菌の死菌体を有効成分とするので、加熱処理してもその効果が損なわれにくく、加熱処理を必要とするような飲食品にも添加できると共に、保存上の取扱い性も向上する。
【図面の簡単な説明】
【図１】朝１０時に投与した液相マーカーの推移を示す図表である。
【図２】朝１０時に投与した固相マーカーの推移を示す図表である。
【図３】夜１０時に投与した液相マーカーの推移を示す図表である。
【図４】夜１０時に投与した固相マーカーの推移を示す図表である。
【図５】酢酸濃度の推移を示す図表である。
【図６】プロピオン酸濃度の推移を示す図表である。
【図７】酪酸濃度の推移を示す図表である。
【図８】乳酸濃度の推移を示す図表である。
【図９】吉草酸濃度の推移を示す図表である。
【図１０】総短鎖脂肪酸濃度の推移を示す図表である。
【図１１】コハク酸濃度の推移を示す図表である。
【図１２】ギ酸濃度の推移を示す図表である。
【図１３】イソ酪酸濃度の推移を示す図表である。
【図１４】イソ吉草酸濃度の推移を示す図表である。
【図１】
2004346043.tif 000004
【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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