(57)【要約】【課題】１塩基多型を正確、簡便かつ迅速に検出する方法を提供すること。【解決手段】ヘテロ接合における各対立遺伝子の増幅量が実質的に同じになるように設計した２種類の対立遺伝子特異的プライマーを用いる、１塩基多型の検出方法。【選択図】　　　なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
ヘテロ接合における各対立遺伝子の増幅量が実質的に同じになるように設計した２種類の対立遺伝子特異的プライマーを用いる、１塩基多型の検出方法。
【請求項２】
対立遺伝子特異的プライマーの３’末端から４塩基以内に多型部位が存在するように設計した対立遺伝子特異的プライマーを用いる請求項１に記載の方法。
【請求項３】
多型部位の隣接塩基にミスマッチ塩基を導入した対立遺伝子特異的プライマーを用いる、請求項１又は２に記載の方法。
【請求項４】
多型部位に隣接するミスマッチ塩基を各対立遺伝子に応じて選択した対立遺伝子特異的プライマーを用いる、請求項１から３の何れかに記載の方法。
【請求項５】
ポリメラーゼ反応を利用して１塩基多型を検出する、請求項１から４の何れかに記載の方法。
【請求項６】
ポリメラーゼ反応生成物を用いて１塩基多型を検出する、請求項１から５の何れかに記載の方法。
【請求項７】
検出手段として電気泳動、クロマトグラフィー又はＨＰＬＣを用いて１塩基多型を検出する、請求項６に記載の方法。
【請求項８】
ポリメラーゼ反応時の副反応生成物を用いて１塩基多型を検出する、請求項１から５の何れかに記載の方法。
【請求項９】
副反応生成物がピロリン酸である、請求項８に記載の方法。
【請求項１０】
乾式分析素子を用いてピロリン酸の検出を行う、請求項９に記載の方法。
【請求項１１】
１塩基多型の検出が、１塩基多型のホモ／ヘテロ接合を判別することを含む、請求項１から１０の何れかに記載の方法。
【請求項１２】
各対立遺伝子の増幅量が実質的に同じになるように設計した２種類の対立遺伝子特異的プライマーを含む、請求項１から１１の何れかに記載の方法を行うためのプライマーセット。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の技術分野】
本発明は、検体中のＤＮＡ中に含まれる特定の配列の検出、および遺伝子の多型性の検出、１塩基置換（ＳＮＰｓ）分析等に関する
【０００２】
【従来技術】
ゲノム解析研究によりもたらされた成果は、体系的遺伝子多型解析と体系的遺伝子発現解析に集約される。近年、これらのゲノム情報を医療分野に応用しようとする動きが活発になり、遺伝子の多型と発現解析技術は飛躍的に進展している。
【０００３】
遺伝子多型の中でも１塩基置換（ＳＮＰｓ）は、１０００塩基に１つあるといわれており、これらのＳＮＰｓが、各個体差、個人の特性や先天的な体質の違いを生じる原因であると考えられている。そのうえ、これまで環境因子の作用する割合が比較的高いと考えられていた疾患（糖尿病や高血圧症等）にも危険因子として要因遺伝子が関与し、その多くは１塩基多型で規定されていることが明らかになりつつある。それ故、ＳＮＰｓ解析は、個人の体質に合わせた投薬や治療（テーラーメード医療）に繋がっていくと考えられ、非常に注目を浴びている。
【０００４】
現在までにＳＮＰｓ解析に関しては、様々な方法が開発されてきたが、大別すると、未知の塩基置換を検出する方法と、既知の塩基置換を検出する方法とに大別される。
【０００５】
既知の塩基置換としては解析法としては、直接塩基配列を解析する方法やオリゴヌクレオチドを用いたＤＮＡチップ等が挙げられる。
【０００６】
テーラーメード医療のための遺伝子検査という観点で考えるならば、今後必要とされるのは、各疾患に関連付けられた患者のＳＮＰｓをタイピングする技術である。しかも、投薬や治療の指針をできる限り速く決定することにより、より効果的な治療が望める。それ故、誰もが簡単に検査ができ、迅速に結果を得られるようなＳＮＰｓタイピング技術の開発が望まれる。
【０００７】
現在既知のＳＮＰｓをタイピングする方法は、原理で分類すると、ポリメラーゼ反応を利用する方法と、ハイブリダイゼーションを利用する方法の２つになる。
【０００８】
ハイブリダイゼーションを利用する方法は、ＤＮＡチップを用いる単純ハイブリダイゼーション法（Ｓｅｑｕｅｎｃｅ　Ｂｙ　Ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ）（Ｄｒｍａｎａｃ　Ｒ，ｅｔ　ａｌ：Ｇｅｎｏｍｉｃｓ　４：１１４−１２８（１９８９））やＤｙｅ−ｌａｂｅｌｅｄ　ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ　ｌｉｇａｔｉｏｎ法（Ｃｈｅｎ　Ｘ，　ｅｔ　ａｌ．：Ｇｅｎｏｍｅ　Ｒｅｓ．　８：５４９−５５６（１９９８））、及びＩｎｖａｄｅｒ法（Ｌｙａｍｉｃｈｅｖ，　ｅｔ　ａｌ：Ｓｃｉｅｎｃｅ２６０：７７８−７８３（１９９３））の３つがある。いずれの場合も、各対立遺伝子（アレル）に対応したオリゴヌクレオチドを用意し、どちらのアレルにハイブリダイズしたかを検出するのが原則となる。
【０００９】
これらの方法は、ハイブリ操作を必要とするため時間を要したり、あるいは、検出系に蛍光を採用していたりするため装置が高価であるといった問題を有し、簡便に検査を行うことはできない。
【００１０】
ポリメラーゼ反応を利用する方法は、ＳＮａＰＳｈｏｔ法、Ｐｙｒｏｓｅｑｕｅｎｃｅ法（Ａｌｄｅｒｂｏｒｎ，　Ａ．　ｅｔ．ａｌ：Ｇｅｎｏｍｅ　Ｒｅｓ．，２８：１２４９−１２５８（２０００））のようにＳＮＰの近くにプライマーを設定し、ＳＮＰ部位でどの塩基が取りこまれたか見る方法と、３’末端付近に各アレルに対応したＳＮＰ部位を含むようにプライマーを設計し、ポリメラーゼ反応が起こるか否かで判定を行う方法（ＡＲＭＳ法（Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ｒｅｆｒａｃｔｏｒｙ　ｍｕｔａｔｉｏｎ　ｓｙｓｔｅｍ）、Ｎｅｗｔｏｎ　ＣＲ，　ｅｔ　ａｌ．：Ｎｕｃｌ　Ａｃｉｄｓ　Ｒｅｓ．１７：２５０３−２５１６（１９８９）、ＰＡＳＡ法（ＰＣＲ−ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｓｐｅｃｉｆｉｃ　ａｌｌｅｌｅｓ），Ｓａｒｋｅｒ　Ｇ　ｅｔ　ａｌ：Ａｎａｌ　Ｂｉｏｃｈｅｍ　１８６：６４−６８（１９９０））とに別れる。
【００１１】
ＳＮａＰＳｈｏｔ法は、ＳＮＰ部位の直前までプライマーを作り、ジデオキシヌクレオチドのみで伸長反応を行い、どの塩基が取りこまれたか解析する方法である。これは１塩基のみの伸長反応であるため、解析するにはシークエンサーを用いなければならず、高価な装置が必要であるという問題を有する。
【００１２】
Ｐｙｒｏｓｅｑｕｅｎｃｅ法は、ＳＮＰの数塩基上流または直前にプライマーを設計し、これを起点にシークエンス反応を１塩基ずつデオキシヌクレオチドを添加することにより行う方法である。その際、伸長反応が起こった場合のみ生じるピロリン酸をＡＴＰに変換して化学発光を起こさせ、この発光を検出する。取りこまれる塩基量と定量的にピロリン酸が生成するため、定量性に優れている。しかし、４種のｄＮＴＰをそれぞれ順番に反応部に加える必要があるという操作性や発光を検出する装置が必要であるといったコスト面で問題が残る。
【００１３】
ＡＲＭＳ法やＰＡＳＡ法は、プライマーの起点とする伸長反応がプライマー３’末端と鋳型のマッチングに強く依存することを利用したものである（Ｋｗｏｋ　Ｓ．　ｅｔ　ａｌ．：Ｎｕｃｌｅｉｃ　　Ａｃｉｄｓ　Ｒｅｓ　１８，９９９−１００５（１９９０），Ｈｕａｎｇ　Ｍ．Ｍ．　ｅｔ　ａｌ．：Ｎｕｃｌｅｉｃ　Ａｃｉｄｓ　Ｒｅｓ．　２０，４５６７−４５７３（１９９２））。即ち、あらかじめ各アレルに相補的なプライマーを用意しておき、試料の遺伝子型と一致した場合にのみ伸長反応が起きることを利用し、増幅反応が起きたか否かで遺伝子型を判定する方法である。この方法は、電気泳動などの簡便な方法で迅速に調べられると言う点で優れている。
【００１４】
しかし、実際には、各アレル特異プライマー間は１塩基の相違しかなく、鋳型の配列次第ではミスマッチプライマーによってもしばしば非特異的な増幅が起きる（Ｈｕａｎｇ　Ｍ．Ｍ．　ｅｔ　ａｌ．：Ｎｕｃｌｅｉｃ　Ａｃｉｄｓ　Ｒｅｓ．　２０，４５６７−４５７３（１９９２））。また、増幅が起きるか否かは用いる機器や周囲の環境等の微妙な条件によっても左右されるため、非特異増幅を抑える事は困難である。
【００１５】
実際、ＡＲＭＳ法では、ミスマッチを増強する目的でプライマーの３’末端の１塩基上流にもう１つミスマッチを人為的に導入している。これは、３’末端から４塩基以内に２塩基のミスマッチを入れることでＰＣＲの増幅効率が大幅に低下するからである。（Ｋｗｏｋ　Ｓ．　ｅｔ　ａｌ．：Ｎｕｃｌｅｉｃ　　Ａｃｉｄｓ　Ｒｅｓ　１８，９９９−１００５（１９９０））これにより、条件を厳密に制御することなく、非特異増幅をある程度、抑えることができる。
【００１６】
【発明が解決しようとする課題】
上記の方法に基づけば、明確に塩基多型の検出ができるように思われる。しかしながら、ＰＣＲ等の増幅反応において、異なるプライマーを用いて反応を行えば、両プライマー由来の増幅に対する効率が異なることが少なくない。両対立遺伝子に対応する増幅産物が一定でなければ、ＳＮＰの型がヘテロ接合である場合、両アレルの増幅量が異なり、ホモ接合との識別が困難になると言う問題がある。
【００１７】
本発明は、１塩基多型を正確、簡便かつ迅速に検出する方法を提供することを目的とする。特に、本発明は、対立遺伝子のヘテロ接合とホモ接合を明確に区別する方法を提供することを目的とする。
【００１８】
【課題を解決するための手段】
本発明者らは上記課題を解決するために鋭意検討した結果、ヘテロ接合における各対立遺伝子由来の増幅産物量を実質的に同じになるように各対立遺伝子に特異的なプライマーを設計し、このような２種類の対立遺伝子特異的プライマーを用いることにより、ヘテロ接合における増幅産物とホモ接合における増幅産物とを区別できることを見出した。
【００１９】
即ち、両対立遺伝子に特異的なプライマーを、そのＳＮＰ部位を含むように設定し、さらにミスマッチを増強するため、ＳＮＰ部位近傍に人為的なミスマッチが入るよう設計した。その際、ヘテロ接合の試料の各対立遺伝子と各々に対応したプライマーとのミスマッチ度が等しくなるように、人為的なミスマッチ塩基を選択することにより、各対立遺伝子由来の増幅産物量が等しくなりホモ接合と区別できるようになった。
【００２０】
即ち、本発明によれば、ヘテロ接合における各対立遺伝子の増幅量が実質的に同じになるように設計した２種類の対立遺伝子特異的プライマーを用いる、１塩基多型の検出方法が提供される。
好ましくは、対立遺伝子特異的プライマーの３’末端から４塩基以内に多型部位が存在するように設計した対立遺伝子特異的プライマーを用いる。
好ましくは、多型部位の隣接塩基にミスマッチ塩基を導入した対立遺伝子特異的プライマーを用いる。
好ましくは、多型部位に隣接するミスマッチ塩基を各対立遺伝子に応じて選択した対立遺伝子特異的プライマーを用いる。
【００２１】
好ましくは、ポリメラーゼ反応を利用して１塩基多型を検出する。
好ましくは、ポリメラーゼ反応生成物を用いて１塩基多型を検出する。
好ましくは、検出手段として電気泳動、クロマトグラフィー又はＨＰＬＣを用いて１塩基多型を検出する。
【００２２】
好ましくは、ポリメラーゼ反応時の副反応生成物を用いて１塩基多型を検出する。
好ましくは、副反応生成物はピロリン酸である。
好ましくは、乾式分析素子を用いてピロリン酸の検出を行う。
好ましくは、１塩基多型の検出は、１塩基多型のホモ／ヘテロ接合を判別することを含む。
【００２３】
本発明の別の側面によれば、各対立遺伝子の増幅量が実質的に同じになるように設計した２種類の対立遺伝子特異的プライマーを含む、本発明の方法を行うためのプライマーセットが提供される。
【００２４】
【発明の実施の形態】
以下、本発明の実施の形態について詳細に説明する。
本発明の１塩基多型の検出方法は、ヘテロ接合における各対立遺伝子の増幅量が実質的に同じになるように設計した２種類の対立遺伝子特異的プライマーを用いることを特徴とする。本発明の方法を利用することにより、１塩基多型のホモ／ヘテロ接合を判別することが可能である。本発明の方法の好ましい形態では、各アレル特異的なプライマーを用いてポリメラーゼ反応を行わせ、その伸長反応の有無を検出する。検出する方法の具体例として、電気泳動、質量分析、液体クロマトグラフィー等の増幅産物を直接測定する方法や、ポリメラーゼ伸長反応の際、生成するピロリン酸を検出する方法が挙げられる。図１に、本発明の実施形態を説明する概念図を示す。
【００２５】
本発明に係る１塩基多型のホモ／ヘテロ接合を判別する方法の第一の好ましい形態を以下に列記する。
アレル特異的なプライマーを検出したいＳＮＰ部位を含むように設定する。その際、アレルに対するミスマッチを高めるためＳＮＰ部位近傍に人為的にミスマッチを入れる。人為的なミスマッチを各アレルに対する各プライマーのミスマッチ度が等しくなるように選択する。それらのプライマーを別々に用いてポリメラーゼ伸長反応を行わせる。
【００２６】
実際に伸長反応が起きたか否かをピロ燐酸を検出することで行う。より好ましくは、キサントシンまたはイノシン、ピロホスファターゼ、プリンヌクレオシドホスホリラーゼ、キサンチンオキシダーゼ、ペルオキシダーゼ及び発色剤を含有する試薬層を備えることを特徴とするピロ燐酸定量用乾式分析素子を用いて行う。
以下に本発明の実施の形態について更に詳細に説明する。
【００２７】
（Ａ）ターゲット核酸断片：
本発明において分析の対象となるターゲット核酸断片とは、少なくとも一部の塩基配列が既知であるポリヌクレオチドであり、動物、微生物、細菌、植物などすべての生物から単離されるゲノミックＤＮＡ断片が対象となり得る。またウイルスから単離可能なＲＮＡ断片またはＤＮＡ断片、およびｍＲＮＡを鋳型として合成されたｃＤＮＡ断片も対象とすることが可能である。ターゲット核酸断片はできる限り精製され、核酸断片以外の余分な成分が取り除かれていることが望ましい。例えば、動物（例えば人間）の血液から単離したゲノミックＤＮＡ断片を対象とする場合または血液中に存在する感染細菌やウイルスの核酸（ＤＮＡまたはＲＮＡ）断片を対象とする場合、単離の過程で破壊された白血球細胞膜、赤血球中から溶出したヘモグロビン、および血液中存在するその他の一般化学物質は、十分に取り除いておく必要がある。特にヘモグロンビンは、続いて行うポリメラーゼ伸長反応を阻害する。
【００２８】
（Ｂ）ターゲット核酸断片と特異的なプライマー：
本発明において使用するターゲット核酸断片と特異的なプライマーは、ターゲット核酸断片の塩基配列が既知である目的の部位に対して相補的な塩基配列を有するオリゴヌクレオチドである。このターゲット核酸断片と相補的なプライマーがターゲット核酸断片の目的の部位にハイブリダイゼーションすることで、プライマーの３’末端を起点に、ターゲット核酸を鋳型としポリメラーゼ伸長反応が進行する。即ち、本発明においてはプライマーがターゲット核酸断片の目的の部位を認識して特異的にハイブリダイゼーションするか否かがポイントとなる。本発明で使用するプライマーの好ましい塩基数は５〜６０塩基である。特に好ましくは１５〜４０塩基である。
【００２９】
さらに、本発明におけるプライマーは、少なくとも一方を検出したい多型部位を含むように設定する必要がある。より好ましくは、３’末端より４塩基以内に設定することである。これは、本発明における多型検出が、プライマーの起点とする伸長反応がプライマーの３’末端と鋳型のマッチングに強く依存することを利用したものであるからであり、３’末端近傍にミスマッチが有れば、伸長反応は進まない。しかし、実際には、各アレル特異プライマー間に、検出部位であるＳＮＰ部位の１塩基の相違しか無ければ、鋳型の配列次第ではミスマッチプライマーによっても非特異的な増幅が起きうる。また、増幅が起きるか否かは用いる機器や周囲の環境等の微妙な条件によっても左右されるため、非特異増幅を抑える事は困難となり多型を判定することはできなくなる。そこで、ＳＮＰ多型部位以外にも人為的にさらにミスマッチを入れる必要がある。人為的なミスマッチは、ＳＮＰ多型部位近傍にあることが好ましく、隣接していればより好ましい。これにより、非特異増幅をある程度抑えることができる。
【００３０】
しかしながら、ＰＣＲ等の増幅反応において、異なるプライマーを用いて反応を行えば、両プライマー由来の増幅に対する効率が異なることが少なくない。
これは、ヘテロ接合の場合、両対立遺伝子由来の増幅量が等しくならず、ホモ接合と判断を誤る可能性が生じる。そこで、両アレル由来の増幅産物量が等しくなるよう人為的なミスマッチを設定する。例えば、有る遺伝子が（Ｇ／Ａ）のＳＮＰを有する場合、Ｇ型を検出するプライマーの配列を、・・・・・ＡＧ・・・・・、Ａ型を検出するプライマーの配列を、・・・・・ＣＡ・・・・・、とするように設定すれば良い。
【００３１】
（Ｃ）ポリメラーゼ：
本発明において使用するポリメラーゼは、ターゲット核酸がＤＮＡの場合は、ターゲット核酸断片の一本鎖に変性された部分にプライマーがハイブリダイゼーションすることで形成された２本鎖の部分を起点として、５’→３’の方向に、デオキシヌクレオシド３リン酸（ｄＮＴＰ）を材料として、ターゲット核酸断片を鋳型にして相補的な伸長反応を触媒するＤＮＡポリメラーゼである。具体的に使用されるＤＮＡポリメラーゼとしては、ＤＮＡポリメラーゼＩ、ＤＮＡポリメラーゼＩのクレノー断片、Ｂｓｔ　ＤＮＡポリメラーゼ等がある。ＤＮＡポリメラーゼは目的に応じて選択または組み合わせることが可能である。例えば、ターゲット核酸断片の一部を増幅（例えばＰＣＲ法）する場合には、耐熱性に優れたＴａｑ　ＤＮＡポリメラーゼを用いることが有効である。その他、目的に応じて、３’→５’方向へのヘキソキナーゼ活性を持つ、ＤＮＡポリメラーゼα、Ｔ４ＤＮＡポリメラーゼ、及びＴ７　ＤＮＡポリメラーゼを併用することも可能である。
【００３２】
また、ＲＮＡウイルスのゲノミック核酸またはｍＲＮＡがターゲット核酸断片である場合には、逆転写活性を有するリバーストランスクリプターゼを使用することが可能である。さらにリバーストランスクリプターゼとＴａｑ　ＤＮＡポリメラーゼを併用することも可能である。
【００３３】
（Ｄ）ポリメラーゼ伸長反応：
本発明において対象となるポリメラーゼ伸長反応には、前記（Ａ）に記載されているようなターゲット核酸断片の１本鎖に変性された部分の一部に特異的にハイブリダイゼーションした、前記（Ｂ）に記載されているようなターゲット核酸断片と相補的なプライマーの３’末端を起点として、デオキシヌクレオシド３リン酸（ｄＮＴＰ）を材料として、前記（Ｃ）に記載されているようなポリメラーゼを触媒として、ターゲット核酸断片を鋳型にして進行する相補的な核酸の伸長反応の全てが含まれる。この相補的な核酸の伸長反応とは、少なくとも２回（２塩基分）、連続しての伸長反応が起こることをさしている。
【００３４】
ターゲット核酸の量が少ない場合は、ポリメラーゼ伸長反応を利用した何らかの手段でターゲット核酸の目的部分を増幅することが好ましい。ターゲット核酸の増幅には、これまで開発、発明されてきた各種の方法を使用することができる。
【００３５】
核酸増幅法としては、ＰＣＲ（特公平４−６７９６０号、特公平４−６７９５７号）、ＬＣＲ（特開平５−２９３４号）、ＳＤＡ（Ｓｔｒａｎｄ　Ｄｉｓｐｌａｃｅｍｅｎｔ　Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ：特開平５−１３０８７０号）、ＲＣＡ（Ｒｏｌｌｉｎｇ　Ｃｉｒｃｌｅ　Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ：Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ，　Ｖｏｌ．９２，　４６４１−４６４５　（１９９５））、ＩＣＡＮ（Ｉｓｏｔｈｅｒｍａｌ　ａｎｄ　Ｃｈｉｍｅｒｉｃ　ｐｒｉｍｅｒ−ｉｎｉｔｉａｔｅｄ　Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｎｕｃｌｅｉｃ　Ａｃｉｄｓ）、ＬＡＭＰ（Ｌｏｏｐ−Ｍｅｄｉａｔｅｄ　Ｉｓｏｔｈｅｒｍａｌ　Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ｏｆ　ＤＮＡ；Ｂｉｏ　Ｉｎｄｕｓｔｒｙ，　第１８巻、２号（２００１））、ＮＡＳＢＡ（Ｎｕｃｌｅｉｃ　ａｃｉｄ　Ｓｅｑｕｅｎｃｅ−ｂａｓｅｄ　Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ｍｅｔｈｏｄ；　Ｎａｔｕｒｅ，　３５０，　９１　（１９９１））、及びＴＭＡ（Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ　ｍｅｄｉａｔｅｄ　ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ｍｅｔｈｏｄ；　Ｊ．Ｃｌｉｎ　Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．第３１巻、３２７０（１９９３））等が挙げられる。
【００３６】
ターゲット核酸の増幅法で最も一般的で普及している方法はＰＣＲ（ポリメラーゼチェーンリアクション）法である。ＰＣＲ法では、反応液の温度の上げ下げを周期的にコントロールすることにより、変性（核酸断片を２本鎖から１本鎖に変性する工程）→アニーリング（１本鎖に変性した核酸断片にプライマーをハイブイリダイズさせる工程）→ポリメラーゼ（ＴａｑＤＮＡポリメラーゼ）伸長反応→ディネイチャーの周期的な工程を繰り返すことで、ターゲット核酸断片の目的部分を増幅する方法である。最終的に、ターゲット核酸断片の目的部位は初期量の１００万倍にも増幅し得る。
【００３７】
ターゲット核酸断片がＲＮＡ断片の場合は、逆転写活性を有するリバーストランスクリプターゼを使用し、ＲＮＡ鎖を鋳型にして伸長反応を行うことが可能である。さらにリバーストランスクリプターゼとＴａｑ　ＤＮＡポリメラーゼを併用し、ＲＴ（リバーストランスクリプション）反応に引き続いてＰＣＲ反応を行う、ＲＴ−ＰＣＲ法を用いることができる。
【００３８】
ＬＣＲ（特開平５−２９３４号）は、一本鎖ＤＮＡに２本の相補的なオリゴヌクレオチドプローブ鎖をｅｎｄ−ｔｏ−ｔａｉｌに結合させて、耐熱性リガーゼで２本のオリゴヌクレオチド鎖間のニックを封じる。その結合したＤＮＡ鎖が変性で遊離し、また鋳型となり、増幅するという方法である。プローブ配列を工夫し、増幅が起きたか否かでＳＮＰ判定することができる。また、ＬＣＲを改良して、２つのプライマー間にギャップを設定し、その間をポリメラーゼで埋める方法（Ｇａｐ−ＬＣＲ：Ｎｕｃｌｅｉｃ　Ａｃｉｄｓ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ、第２３巻、４号、６７５（１９９５））も開発されている。この方法を用いると、ポリメラーゼ伸長反応によるピロ燐酸の生成を測定することでＳＮＰを判定することも可能になる。
【００３９】
ＳＤＡ（Ｓｔｒａｎｄ　Ｄｉｓｐｌａｃｅｍｅｎｔ　Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ：特開平５−１３０８７０号）は、エクソヌクレアーゼを用いたサイクリングアッセイ法であり、ポリメラーゼ伸長反応を利用したターゲット核酸断片の目的部位の増幅法の一つである。この方法は、ターゲット核酸断片の目的部位に特異的にハイブリダイゼーションしたプライマーを起点としたポリメラーゼ伸長反応とともに、５’→３’エクソヌクレアーゼを作用させて、プライマーを逆方向から分解する方法である。分解したプライマーの代わりに新たなプライマーがハイブリダイゼーションし、再度ＤＮＡポリメラーゼによる伸長反応が進行する。このポリメラーゼによる伸長反応と、この先に伸長した鎖を外すエクソヌクレアーゼによる分解反応が順次、周期的に繰り返される。ここで、ポリメラーゼによる伸長反応とエクソヌクレアーゼによる分解反応は等温条件で実施することが可能である。プライマー配列を工夫することで、ポリメラーゼ反応が起きたか否かでＳＮＰ判定することが可能である。
【００４０】
ＬＡＭＰ法は、近年開発されたターゲット核酸断片の目的部位の増幅法である。この方法は、ターゲット核酸断片の少なくとも６箇所の特定部位を相補的に認識する少なくとも４種のプライマーと、５’→３’方向へのヌクレアーゼ活性がなく、かつ鋳型上の２本鎖ＤＮＡを１本鎖ＤＮＡとして遊離させながら伸長反応を触媒する鎖置換型のＢｓｔＤＮＡポリメラーゼを使用することで、等温条件でターゲット核酸断片の目的部位を、特別な構造として増幅する方法である。このプライマー配列を工夫し、増幅が起きたか否かでＳＮＰ判定することが可能である。また、このＬＡＭＰ法の増幅効率は高く、ポリメラーゼ伸長反応で生成するピロ燐酸の蓄積量も非常に多くなるので、ピロ燐酸を検出することでＳＮＰを検出することが容易になる。
【００４１】
ＩＣＡＮ法も、近年開発されたターゲット核酸断片の目的部位の増幅法である。ＲＮＡ−ＤＮＡキメラプライマー、鎖置換活性と鋳型交換活性を有するＤＮＡポリメラーゼ、ＲＮａｓｅＨを用いる等温の遺伝子増幅法である。キメラプライマーが鋳型と結合した後、ＤＮＡポリメラーゼにより相補鎖が合成される。その後、ＲＮａｓｅＨがキメラプライマー由来のＲＮＡ部分を切断し、切断部分から鎖置換反応と鋳型交換反応を伴った伸長反応が起きるこの反応が繰り返し起こることにより遺伝子が増幅される。このプライマー配列を工夫し、増幅が起きたか否かでＳＮＰ判定することが可能である。また、このＩＣＡＮ法の増幅効率は高く、ポリメラーゼ伸長反応で生成するピロ燐酸の蓄積量も非常に多くなるので、ピロ燐酸を検出することでＳＮＰを検出することが容易になる。
【００４２】
（Ｅ）検出：
本発明は、ＰＣＲ等のポリメラーゼ反応後の産物量をヘテロ接合における各アレル由来の産物間で等しくするという目的に依るものなので、産物量が定量できるものであれば制限を受けないことはいうまでもない。
【００４３】
検出法としては、電気泳動、液体クロマトグラフィー、質量分析計などの生成産物を直接測定する方法や、あるいはポリメラーゼ反応の結果生じるピロリン酸等を検出する方法も含まれる。定量性を考慮すれば、好ましくはピロリン酸を定量することによる検出法であり、簡便性を考慮すると、乾式分析素子を用いてピロリン酸を定量する方法がさらに好ましい。
【００４４】
従来からピロ燐酸（ＰＰｉ）の検出法としては、式１に示された方法が知られている。この方法では、ピロ燐酸（ＰＰｉ）をスルフリラーゼによりアデノシン３燐酸（ＡＴＰ）に変換し、アデノシン３燐酸がルシフェラーゼによりルシフェリンに作用して生じる発光を検出する。そのため、この方法でピロ燐酸（ＰＰｉ）を検出するには発光を測定できる装置が必要である。
【００４５】
【化１】
2004121087.tif 000002
【００４６】
本発明に適したピロ燐酸の検出方法は式２または式３に示した方法である。式２または式３に示した方法は、ピロ燐酸（ＰＰｉ）をピロホスファターゼで無機燐（Ｐｉ）に変換し、プリンヌクレオシドホスホリラーゼ（ＰＮＰ）により無機燐（Ｐｉ）をキサントシンまたはイノシンと反応させ、生じたキサンチンまたはヒポキサンチンをキサンチンオキシダーゼ（ＸＯＤ）により酸化して尿酸を生成させ、この酸化過程で生じる過酸化水素（Ｈ２Ｏ２）を用いてペルオキシダーゼ（ＰＯＤ）により発色剤（色素前駆体）を発色させ、これを比色するものである。これら式２または式３に示した方法では結果を比色で検出できるため、目視または簡単な比色測定装置を用いてピロ燐酸（ＰＰｉ）の検出が可能である。
式２及び式３：
【００４７】
【化２】
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【００４８】
【化３】
2004121087.tif 000004
【００４９】
ピロホスファターゼ（ＥＣ３，６，１，１）プリンヌクレオシドホスホリラーゼ（ＰＮＰ，ＥＣ２．４．２．１）、キサンチンオキシダーゼ（ＸＯＤ，ＥＣ１．２．３．２）及びペルオキシダーゼ（ＰＯＤ，ＥＣ１．１１．１．７）は市販のものを使用することができる。発色剤（すなわち色素前駆体）は、過酸化水素とペルオキシダーゼ（ＰＯＤ）により色素を生成させるものであればよく、例えば、ロイコ色素の酸化によって色素を生成する組成物（例、米国特許４，０８９，７４７等に記載のトリアリールイミダゾールロイコ色素、特開昭５９−１９３３５２号公報（ＥＰ　０１２２６４１Ａ）等に記載のジアリールイミダゾーロイコ色素）；酸化されたときに他の化合物とカップリングにより色素を生成する化合物を含む組成物（例えば４−アミノアンチピリン類とフェノール類又はナフトール類）などを使用することができる。
【００５０】
（Ｆ）乾式分析素子：
本発明において使用することのできる乾式分析素子とは、一層または複数層の機能層からなる分析素子であって、その少なくとも一層（または複数の層に渡って）に検出試薬を含有させ、層内での反応により生じた生成色素を、分析素子の外から反射光あるいは透過光により比色定量するものである。
【００５１】
このような乾式分析素子を用いて定量分析するには、液体試料を展開層の表面に一定量点着する。展開層で展開された液体試料は試薬層に達し、ここで試薬と反応し、発色する。点着後、乾式分析素子を適当な時間、一定温度に保って（インクベーション）発色反応を充分に進行させた後、例えば透明支持体側から照明光を試薬層に照射し、特定波長域で反射光量を測定して反射光学濃度を求め、予め求めておいた検量線に基づいて定量分析を行う。
【００５２】
乾式分析素子においては、検出を行うまでは乾燥状態で貯蔵・保管されるため、試薬を用時調製する必要がなく、また一般に乾燥状態の方が試薬の安定性が高いことから、試薬溶液を用時調製しなければならないいわゆる湿式法より簡便性、迅速性に優れている。また、微量の液体試料で、精度の高い検査を迅速に行うことができる検査方法としても優れている。
【００５３】
（Ｇ）ピロ燐酸定量用乾式分析素子：
本発明で使用することのできるピロ燐酸定量用乾式分析素子は、公知の多種の乾式分析素子と同様の層構成とすることができる。乾式分析素子は、前記（Ｅ）項（ピロ燐酸（ＰＰｉ）の検出）における、式２または式３の反応を行うための試薬の他、支持体、展開層、検出層、光遮蔽層、接着層、吸水層、下塗り層その他の層を含む多重層としてもよい。このような乾式分析素子として、例えば特開昭４９−５３８８８号公報（対応米国特許３，９９２，１５８）、特開昭５１−４０１９１号公報（対応米国特許４，０４２，３３５）、及び特開昭５５−１６４３５６号公報（対応米国特許４，２９２，２７２）、特開昭６１−４９５９号公報（対応ＥＰＣ公開特許０１６６３６５Ａ）の各明細書に開示されたものがある。
【００５４】
本発明で用いることができる乾式分析素子としては、ピロ燐酸を無機燐に変換する試薬、および無機燐の量に応じた発色反応を行う試薬群を含有する試薬層を備えるピロ燐酸定量用乾式分析素子が挙げられる。
このピロ燐酸定量用乾式分析素子においては、ピロホスファターゼを用いて酵素的にピロ燐酸（ＰＰｉ）を無機燐（Ｐｉ）に変換するまでは本明細書中上記した通り行うことができ、それ以降は、生化学検査分野で既知の以下に述べる「無機燐の定量法」（及びそれらに用いられる各反応の組み合わせ）を用いることにより、無機燐（Ｐｉ）の量に応じた発色反応を行うことができる。
【００５５】
なお、「無機燐」を表記する場合、燐酸（燐酸イオン）として、「Ｐｉ」と表記する場合と「ＨＰＯ４２−、Ｈ２ＰＯ４１−」と表記する両方の場合がある。以下に示す反応の例では、「Ｐｉ」として表記するが、同じ反応式に対して「ＨＰＯ４２−」と表記する場合もある。
【００５６】
無機燐の定量法としては酵素法と燐モリブテン酸塩法が知られている。以下、無機燐の定量法としての酵素法と燐モリブテン酸塩法について説明する。
【００５７】
Ａ．酵素法
Ｐｉを定量検出するための一連の反応における最後の「呈色反応」に用いる酵素に応じて、ペルオキシダーゼ（ＰＯＤ）を用いる方法とグルコース−６−燐酸デヒドロゲナーゼ（Ｇ６ＰＤＨ）を用いる方法がある。以下、これらの方法の具体例を説明する。
【００５８】
（１）ペルオキシダーゼ（ＰＯＤ）を用いる方法の例
（１−１）
無機燐（Ｐｉ）を、プリンヌクレオシドホスホリラーゼ（ＰＮＰ）により、イノシンと反応させ、生じたヒポキサンチンをキサンチンオキシダーゼ（ＸＯＤ）により酸化して尿酸を生成する。この酸化過程で生じる過酸化水素（Ｈ２Ｏ２）を用いて、ペルオキシダーゼ（ＰＯＤ）により、４−アミノアンチピリン（４−ＡＡ）とフェノールとを酸化縮合させてキノンイミン色素を形成し、これを比色する。
【００５９】
（１−２）
無機燐（Ｐｉ）、コカルボキシラーゼ（ＴＰＰ）、フラビンアデニンジヌクレオチド（ＦＡＤ）、Ｍｇ２＋の存在下で、ピルビン酸をピルビン酸オキシダーゼ（ＰＯＰ）により酸化してアセチル酢酸を生成する。この酸化過程で生じる過酸化水素（Ｈ２Ｏ２）を用いて、上記（１−１）の場合と同様に、ペルオキシダーゼ（ＰＯＤ）により、４−アミノアンチピリン（４−ＡＡ）とフェノールとを酸化縮合させてキノンイミン色素を形成し、これを比色する。
【００６０】
なお、上記の（１−１）および（１−２）における最後の呈色反応は、過酸化水素の検出試薬として既知の「Ｔｒｉｎｄｅｒ試薬」を使用して行うことができる。この反応で、フェノールは「水素供与体」として働く。「水素供与体」として用いるフェノールは古典的で、現在は改良された様々な「水素供与体」が使用されている。このような水素供与体の具体例としては、Ｎ−エチル−Ｎ−スルホプロピル−ｍ−アニリジン、Ｎ−エチル−Ｎ−スルホプロピルアニリン、Ｎ−エチル−Ｎ−スルホプロピル−３，５−ジメトキシアニリン、Ｎ−スルホプロピル−３，５−ジメトキシアニリン、Ｎ−エチル−Ｎ−スルホプロピル−３，５−ジメチルアニリン、Ｎ−エチル−Ｎ−スルホプロピル−ｍ−トルイジン、Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−ｍ−アニリジン、Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）アニリン、Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−３，５−ジメトキシアニリン、Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−３，５−ジメトキシアニリン、Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−３，５−ジメチルアニリン、Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−ｍ−トルイジン、及びＮ−スルホプロピルアニリンなどが挙げられる。
【００６１】
（２）グルコース−６−燐酸デヒドロゲナーゼ（Ｇ６ＰＤＨ）を用いる方法
（２−１）
無機燐（Ｐｉ）とグリコーゲンとをホスホリラーゼを用いて反応させ、グルコース−１−燐酸（Ｇ−１−Ｐ）を生成させる。生じたグルコース−１−燐酸をホスホグルコムターゼ（ＰＧＭ）により、グルコース−６−燐酸（Ｇ−６−Ｐ）にする。グルコース−６−燐酸とニコチアミドアデニンジヌクレオチド（ＮＡＤ）との存在下、グルコース−６−燐酸デヒドロゲナーゼ（Ｇ６ＰＤＨ）により、ＮＡＤを還元してＮＡＤＨにし、これを比色する。
【００６２】
（２−２）
無機燐（Ｐｉ）とマルトースとをマルトースホスホリラーゼ（ＭＰ）を用いて反応させ、グルコース−１−燐酸（Ｇ−１−Ｐ）を反応させる。以下、上記（２−１）と同様に、生じたグルコース−１−燐酸をホスホグルコムターゼ（ＰＧＭ）により、グルコース−６−燐酸（Ｇ−６−Ｐ）にする。グルコース−６−燐酸とニコチアミドアデニンジヌクレオチド（ＮＡＤ）との存在下、グルコース−６−燐酸デヒドロゲナーゼ（Ｇ６ＰＤＨ）により、ＮＡＤを還元してＮＡＤＨにし、これを比色する。
【００６３】
Ｂ．燐モリブテン酸塩法
酸性下で無機燐（燐酸塩）と水溶性モリブテン酸イオンとを錯化させた「燐モリブテン酸塩（Ｈ３［ＰＯ４Ｍｏ１２Ｏ３６］）を直接定量する「直接法」と、上記直接法の反応に続いて、還元剤により、Ｍｏ（ＩＶ）からＭｏ（ＩＩＩ）として、モリブテン青（Ｍｏ（ＩＩＩ））を定量する「還元法」とがある。水溶性モリブテン酸イオンの例としては、モリブテン酸アルミニウム、モリブテン酸カドミウム、モリブテン酸カルシウム、モリブテン酸バリウム、モリブテン酸リチウム、モリブテン酸カリウム、モリブテン酸ナトリウム、モリブテン酸アンモニウムなどが挙げられる。還元法で使用される代表的な還元剤の例としては、１，２，４アミノナフトールスルホン酸、硫酸第一鉄アンモニウム、塩化第一鉄、塩化第一スズ−ヒドラジン、硫酸−ｐ−メチルアミノフェノール、Ｎ，Ｎ−ジメチル−フェニレンジアミン、アスコルピン酸、マラカイトグリーンなどが挙げられる。
【００６４】
光透過性水不透過性支持体を用いる場合の乾式分析素子は、実用的に次のような構成を取り得る。ただし、本発明の内容はこれに限定されない。
（１）　　支持体上に試薬層を有するもの。
（２）　　支持体上に検出層、試薬層をこの順に有するもの。
（３）　　支持体上に検出層、光反射層、試薬層をこの順に有するもの。
（４）　　支持体上に第２試薬層、光反射層、第１試薬層をこの順に有するもの。
（５）　　支持体上に検出層、第２試薬層、光反射層、第１試薬層をこの順に有するもの。
【００６５】
上記（１）ないし（３）において試薬層は異なる複数の層から成ってもよい。例えば第１試薬層には、式２または式３に示すピロホスファターゼ反応に必要な酵素ピロホスファターゼ、ＰＮＰ反応に必要な基質キサントシンまたは基質イノシンと酵素ＰＮＰを、第２試薬層には、式２または式３に示すＸＯＤ反応に必要な酵素ＸＯＤを、そして第３試薬層には、式２または式３に示すＰＯＤ反応に必要な酵素ＰＯＤと発色色素（色素前駆体）を、それぞれ含有させてもよい。あるいは試薬層を２層として、第１試薬層ではピロホスファターゼ反応とＰＮＰ反応を、第２試薬層ではＸＯＤ反応とＰＯＤ反応を進行させてもよい。又は、第１試薬層ではピロホスファターゼ反応とＰＮＰ反応とＸＯＤ反応を、第２試薬層でＰＯＤ反応を進行させてもよい。
【００６６】
なお支持体と試薬層又は検出層との間には吸水層を設けてもよい。また各層の間には濾過層を設けてもよい。また試薬層の上には展開層を設けてもよく、その間に接着層を設けてもよい。
【００６７】
支持体は光不透過性（不透明）、光半透過性（半透明）、光透過性（透明）のいずれのものも用いることができるが、一般的には光透過性で水不透過性の支持体が好ましい。光透過性水不透過性支持体の材料として好ましいものはポリエチレンテレフタレート、ポリスチレンである。親水性層を強固に接着させるため通常、下塗り層を設けるか、親水化処理を施す。
【００６８】
試薬層として多孔性層を用いる場合、その多孔性媒体は繊維質であってもよいし、非繊維質であってもよい。繊維質材料としては、例えば濾紙、不織布、織物布地（例えば平織り布地）、編物布地（例えばトリコット編物布地）、ガラス繊維濾紙等を用いることができる。非繊維質材料としては特開昭４９−５３８８８号公報等に記載の酢酸セルロースなどからなるメンブランフイルター、特開昭４９−５３８８８号公報、特開昭５５−９０８５９号公報（対応米国特許４，２５８，００１）特開昭５８−７０１６３号公報（対応米国特許４，４８６，５３７）等に記載の無機物又は有機物微粒子からなる連続空隙含有粒状構造物層等のいずれでもよい。特開昭６１−４９５９号公報（対応欧州公開ＥＰ　０１６６３６５Ａ）、特開昭６２−１１６２５８号公報、特開昭６２−１３８７５６号公報（対応欧州公開ＥＰ　０２２６４６５Ａ）、特開昭６２−１３８７５７号公報（対応欧州公開ＥＰ　０２２６４６５Ａ）、特開昭６２−１３８７５８号公報（対応欧州公開ＥＰ　０２２６４６５Ａ）等に記載の部分接着された複数の多孔性層の積層物も好適である。
【００６９】
多孔性層は、供給される液体の量にほぼ比例した面積に液体を展開する、いわゆる計量作用を有する展開層であってもよい。展開層としては、これらのうち織物布地、編物布地などが好ましい。織物布地などは特開昭５７−６６３５９号公報に記載されたようなグロー放電処理をしてもよい。展開層には、展開面積、展開速度等を調節するため特開昭６０−２２２７７０号公報（対応：ＥＰ　０１６２３０１Ａ）、特開昭６３−２１９３９７号公報（対応西独特許公開ＤＥ　３７１７９１３Ａ）、特開昭６３−１１２９９９号公報（対応：ＤＥ　３７１７９１３Ａ）、特開昭６２−１８２６５２号公報（対応：ＤＥ　３７１７９１３Ａ）に記載したような親水性高分子あるいは界面活性剤を含有させてもよい。
【００７０】
例えば紙、布、高分子からなる多孔質膜等に本発明の試薬を予め含浸又は塗布した後、支持体上に設けた他の水浸透性層、例えば検出層の上に、特開昭５５−１６４５３５６号公報のような方法で接着させるのも有用な方法である。
【００７１】
こうして作られる試薬層の厚さは特に制限されないが、塗布層として設ける場合には、１μｍ〜５０μｍ程度、好ましくは２μｍ〜３０μｍの範囲が適当である。ラミネートによる積層など、塗布以外の方法による場合、厚さは数十μｍから数百μｍの範囲で大きく変化し得る。
【００７２】
親水性ポリマーバインダーからなる水浸透性層で試薬層を構成する場合、使用できる親水性ポリマーとしては、例えば、以下のものがある。ゼラチン及びこれらの誘導体（例えばフタル化ゼラチン）、セルロース誘導体（例えばヒドロキシエチルセルロース）、アガロース、アルギン酸ナトリウム、アクリルアミド共重合体やメタアクリルアミド共重合体（例えば、アクリルアミド又はメタアクリルアミドと各種ビニル性モニマーとの共重合体）、ポリヒドロキシエチルメタクリレート、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、ポリアクリル酸ナトリウム、アクリル酸と各種ビニル性モノマーとの共重合体などである。
【００７３】
親水性ポリマーバインダーで構成される試薬層は、特公昭５３−２１６７７号公報（対応米国特許３，９９２，１５８）、特開昭５５−１６４３５６号公報（対応米国特許４，２９２，２７２）、特開昭５４−１０１３９８号公報（対応米国特許４，１３２，５２８）等の明細書に記載の方法に従って本発明の試薬組成物と親水性ポリマーを含む水溶液又は水分散液を支持体又は検出層等の他の層の上に塗布し乾燥することにより設けることができる。親水性ポリマーをバインダーとする試薬層の乾燥時の厚さは約２μｍ〜約５０μｍ、好ましくは約４μｍ〜約３０μｍの範囲、被覆量では約２ｇ／ｍ２〜約５０ｇ／ｍ２、好ましくは約４ｇ／ｍ２〜約３０ｇ／ｍ２の範囲である。
【００７４】
試薬層には式２または式３の試薬組成物の他に、塗布特性、拡散性化合物の拡散性、反応性、保存性等の諸性能の向上を目的として、酵素の活性化剤、補酵素、界面活性剤、ｐＨ緩衝剤組成物、微粉末、酸化防止剤、その他、有機物あるいは無機物からなる各種添加剤を加える事ができる。試薬層に含有させることができる緩衝剤はの例としては、日本化学学会編「化学便覧　基礎」（丸善（株）、１９６６年発行）１３１２−１３２０頁、Ｒ．Ｍ．Ｃ．Ｄａｗｓｏｎ　ｅｔ　ａｌ編、「Ｄａｔａ　ｆｏｒ　Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ」第２版（Ｏｘｆｏｒｄ　ａｔ　ｔｈｅ　Ｃｌａｒｅｎｄｏｎ　Ｐｒｅｓｓ，１９６９年発行）４７６−５０８頁、「Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ」５，４６７−４７７頁（１９６６年）、「Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ　Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ」１０４，３００−３１０頁（１９８０年）に記載のｐＨ緩衝剤系がある。ｐＨ緩衝剤系の具体例として硼酸塩を含む緩衝剤；クエン酸又はクエン酸塩を含む緩衝剤；グリシンを含む緩衝剤；ビシン（Ｂｉｃｉｎｅ）を含む緩衝剤；ＨＥＰＥＳを含む緩衝剤；ＭＥＳを含む緩衝剤などのグッド緩衝剤等がある。なお燐酸塩を含む緩衝剤は、ピロ燐酸検出用乾式分析素子に使用することはできない。
【００７５】
本発明で使用することのできる、ピロ燐酸定量用乾式分析素子は前述の諸特許明細書に記載の公知の方法により調製することができる。ピロ燐酸定量用乾式分析素子は一辺約５ｍｍから約３０ｍｍの正方形またはほぼ同サイズの円形等の小片に裁断し、特公昭５７−２８３３３１号公報（対応米国特許４，１６９，７５１）、実開昭５６−１４２４５４号公報（対応米国特許４，３８７，９９０）、特開昭５７−６３４５２号公報、実開昭５８−３２３５０号公報、特表昭５８−５０１１４４号公報（対応国際公：ＷＯ０８３／００３９１）等に記載のスライド枠に収めて化学分析スライドとして用いることが製造，包装，輸送，保存，測定操作等の観点で好ましい。使用目的によっては、長いテープ状でカセットまたはマガジンに収めて用いたり、又は小片を開口のある容器内に収めて用いたり、又は小片を開口カードに貼付または収めて用いたり、あるいは裁断した小片をそのまま用いることなどもできる。
【００７６】
本発明で使用することのできるピロ燐酸定量用乾式分析素子は前述の諸特許明細書等に記載の操作と同様の操作により液体試料中の被検物であるピロ燐酸の定量検出ができる。例えば約２μＬ〜約３０μＬ、好ましくは４μＬ〜１５μＬの範囲の水性液体試料液を試薬層に点着する。点着した分析素子を約２０℃〜約４５℃の範囲の一定温度で、好ましくは約３０℃〜約４０℃の範囲内の一定温度で１〜１０分間インキュベーションする。分析素子内の発色又は変色を光透過性支持体側から反射測光し、予め作成した検量線を用いて比色測定法の原理により検体中のピロ燐酸の量を求めることができる。点着する液体試料の量、インキュベーション時間及び温度を一定にすることにより定量分析を高精度に実施できる。
【００７７】
測定操作は特開昭６０−１２５５４３号公報、特開昭６０−２２０８６２号公報、特開昭６１−２９４３６７号公報、特開昭５８−１６１８６７号公報（対応米国特許４，４２４，１９１）などに記載の化学分析装置により極めて容易な操作で高精度の定量分析を実施できる。なお、目的や必要精度によっては目視により発色の度合いを判定して、半定量的な測定を行ってもよい。
【００７８】
本発明で使用することのできる、ピロ燐酸定量乾式分析素子においては、分析を行うまでは乾燥状態で貯蔵・保管されるため、試薬を用時調製する必要がなく、また一般に乾燥状態の方が試薬の安定性が高いことから、試薬溶液を用時調製しなければならないいわゆる湿式法より簡便性、迅速性に優れている。また、微量の液体試料で、精度の高い検査を迅速に行うことができる検査方法としても優れている。
【００７９】
本発明の第二の形態において使用することのできる無機燐定量用乾式分析素子は、前記のピロ燐酸定量乾式分析素子における試薬層からピロホスファターゼを除くことで調製することができる。また、特開平７−１９７号公報に記載の乾式分析素子を使用することも可能である。無機燐定量用乾式分析素子は、試薬層にピロホスファターゼを含有しない以外は、その層構成、製造方法、使用方法において、前記ピロ燐酸定量乾式分析素子と同様である。
以下、実施例にて本発明を詳細に説明する。しかしながら、本実施例により本発明の技術的範囲が限定されるものではない。
【００８０】
【実施例】
＜参考例１（比較例）＞
ピロ燐酸定量用乾式分析素子を用いたアルデヒド脱水素酵素遺伝子（ＡＬＤＨ２遺伝子）関連部位の１塩基多型（ＳＮＰｓ）検出　（１塩基多型に対応する部分をプライマーの３’末端付近に設定した例）
（１）ターゲット核酸断片を含む核酸試料液の調製
予め塩基配列のシーケンシングにより、ＡＬＤＨ２遺伝子関連部位の特定の１塩基種が異なることにより、ＡＬＤＨ２活性型、ＡＬＤＨ２低活性型、不活性型であることが既知である、各々１人から採取した血液試料のそれぞれから、市販の核酸抽出、精製キット（ＱＩＡＧＥＮ社製、ＱＩＡａｍｐ　ＤＮＡ　ＢｌｏｏｄＭｉｎｉ　Ｋｉｔ）を用いて抽出、精製したゲノミック核酸断片を１ｍＬの精製蒸留水中に回収することで、ターゲット核酸断片を含む核酸試料液を調製した。
【００８１】
（２）ピロ燐酸定量用乾式分析素子の作製
ゼラチン下塗層が設けられている厚さ１８０μｍの無色透明ポリエチレンテレフタレ−ト（ＰＥＴ）平滑フイルムシ−ト（支持体）上に表１記載の組成（ａ）の水溶液を、以下の被覆率となるように塗布し、乾燥して試薬層を設けた。
【００８２】
【表１】
2004121087.tif 000005
【００８３】
この試薬層の上に下記の表２記載の組成（ｂ）の接着層水溶液を以下の被覆率となるように塗布し、乾燥して接着層を設けた。
【００８４】
【表２】
2004121087.tif 000006
【００８５】
次いで接着層の上に３０ｇ／ｍ２の割合で水を全面に供給してゼラチン層を膨潤させ、その上に純ポリエステル製のブロ−ド織物布地をほぼ一様に軽く圧力をかけてラミネ−トして多孔性展開層を設けた。
【００８６】
次にこの展開層の上から下記の表３記載の組成（ｃ）の水溶液を以下の被覆率となるようにほぼ均一塗布し、乾燥させ、１３ｍｍ×１４ｍｍに裁断し、プラスチック製マウント材内に収めることで、ピロ燐酸定量用乾式分析素子を作成した。
【００８７】
【表３】
2004121087.tif 000007
【００８８】
（３）ＰＣＲ増幅
上記（１）で、ＡＬＤＨ２活性型またはＡＬＤＨ２不活性型それぞれのヒト全血試料から抽出・精製して得たタ−ゲット核酸断片を含む核酸試料液をそのまま用いて、以下の条件でＰＣＲ増幅を行った。
【００８９】
＜プライマー＞
プライマーは、１２番染色体上のＡＬＤＨ２遺伝子関連部位のなかに、共通のプライマー（ｕｐｐｅｒ）と、ＡＬＤＨ２の活性を決定する１塩基多型に対応する部分を３’末端付近に設定（ｌｏｗｅｒ−１とｌｏｗｅｒ−２に記載のプライマー塩基配列の下線部分）した、ＡＬＤＨ２活性型および不活性型に対応する、２種のプライマ−（ｌｏｗｅｒ−１）および、プライマ−（ｌｏｗｅｒ−２）のセットを使用した。なお。ｌｏｗｅｒプライマーの１塩基多型に対応する配列の１塩基分５‘上流の塩基を変え（Ｔ→Ａ）、人為的にミスマッチを作り出した．
【００９０】
活性型検出用プライマー
プライマー（ｕｐｐｅｒ）：
５’−ＡＡＣＧＡＡＧＣＣＣＡＧＣＡＡＡＴＧＡ−３’（配列番号１）
プライマー（ｌｏｗｅｒ−１）：
５’−ＧＧＧＣＴＧＣＡＧＧＣＡＴＡＣＡＣＡＧＡ−３’（配列番号２）
不活性型検出用プライマー
プライマ−（ｕｐｐｅｒ）：
５’−ＡＡＣＧＡＡＧＣＣＣＡＧＣＡＡＡＴＧＡ−３’（配列番号１）
プライマ−（ｌｏｗｅｒ−２）：
５’−ＧＧＧＣＴＧＣＡＧＧＣＡＴＡＣＡＣＡＡＡ−３’（配列番号３）
【００９１】
以下に示す反応液の組成で、［変性：９４℃・２０秒、アニーリング：６０℃・３０秒、ポリメラーゼ伸長反応：７２℃・１分３０秒］を３５サイクル繰り返すことでＰＣＲ増幅を実施した。
【００９２】
＜反応液の組成＞
１０×ＰＣＲバッファ−　　　　　　　　　５μＬ
２．５ｍＭ　ｄＮＴＰ　　　　　　　　　　５μＬ
５μＭプライマ−（ｕｐｐｅｒ）　　　　　　　　　　　　　　　　２μＬ
５μＭプライマ−（ｌｏｗｅｒ−１または−２）　　　　　　２μＬ
Ｔａｑ　　　　　　　　　　　　　　　０．５μＬ
（１）で得た核酸断片試料液　　　　　０．５μＬ
精製水　　　　　　　　　　　　　　　　３５μＬ
【００９３】
（４）ピロ燐酸定量用分析素子を用いた検出
前記（３）におけるＰＣＲ増幅反応後の溶液をそのまま、上記（２）で製作したピロ燐酸定量用乾式分析素子上に各々２０μＬ点着し、ピロ燐酸定量用乾式分析素子を３７℃にて５分間インキュベーション後、波長６５０ｎｍにて支持体側から反射光学濃度（ＯＤＲ）を測定した。得られた結果を以下の表４に示す。
【００９４】
【表４】
2004121087.tif 000008
【００９５】
参考例１の結果より、試料中の既知であるＡＬＤＨ２の活性型とピロ燐酸定量用乾式分析素子を用いて測定した反射光学濃度（ＯＤｒ）との関係は一致している。すなわちアルデヒド脱水素酵素遺伝子（ＡＬＤＨ２遺伝子）関連部位の１塩基多型（ＳＮＰｓ）を検出できていることがわかる。しかしながら、低活性型の各対立遺伝子におけるピロリン酸の生成量が異なるため、活性型と低活性型の判定が難しいことがわかる。
【００９６】
＜実施例１＞
ピロ燐酸定量用乾式分析素子を用いたアルデヒド脱水素酵素遺伝子（ＡＬＤＨ２遺伝子）関連部位の１塩基多型（ＳＮＰｓ）検出　（プライマーの塩基を各対立遺伝子に応じて設定した例）
【００９７】
（１）ターゲット核酸断片を含む核酸試料液の調製
参考例１と同様に、予め塩基配列のシーケンシングにより、ＡＬＤＨ２活性型、ＡＬＤＨ２低活性型、不活性型であることが既知であるそれぞれ１人の血液試料から、ターゲット核酸断片を含む核酸試料液を調製した。
【００９８】
（２）ピロ燐酸定量用乾式分析素子の作製
参考例１と同様に行った．
【００９９】
（３）ＰＣＲ増幅
上記（１）で、ＡＬＤＨ２活性型またはＡＬＤＨ２不活性型それぞれのヒト全血試料から抽出・精製して得たタ−ゲット核酸断片を含む核酸試料液をそのまま用いて、以下の条件でＰＣＲ増幅を行った。
【０１００】
＜プライマー＞
プライマーは、１２番染色体上のＡＬＤＨ２遺伝子関連部位のなかに、共通のプライマー（ｕｐｐｅｒ）と、ＡＬＤＨ２の活性を決定する１塩基多型に対応する部分を３’末端付近に設定（ｌｏｗｅｒ−１とｌｏｗｅｒ−２に記載のプライマー塩基配列の下線部分）した、ＡＬＤＨ２活性型および不活性型に対応する、２種のプライマ−（ｌｏｗｅｒ−１）および、プライマ−（ｌｏｗｅｒ−２）のセットを使用した。なお、人為的にミスマッチを作り出すため、ｌｏｗｅｒプライマーの１塩基多型に対応する配列の１塩基分５‘上流の塩基を（Ｔ→Ａ）に変えたものと、（Ｃ→Ａ）に変えたもののそれぞれを用いた．
【０１０１】
○活性型検出用プライマー
プライマー（ｕｐｐｅｒ）：
５’−ＡＡＣＧＡＡＧＣＣＣＡＧＣＡＡＡＴＧＡ−３’（配列番号１）
プライマー（ｌｏｗｅｒ−１Ａ）：
５’−ＧＧＧＣＴＧＣＡＧＧＣＡＴＡＣＡＣＡＧＡ−３’（配列番号４）
プライマー（ｌｏｗｅｒ−１Ｃ）：
５’−ＧＧＧＣＴＧＣＡＧＧＣＡＴＡＣＡＣＣＧＡ−３（配列番号５）
○不活性型検出用プライマー
プライマ−（ｕｐｐｅｒ）：
５’−ＡＡＣＧＡＡＧＣＣＣＡＧＣＡＡＡＴＧＡ−３’（配列番号１）
プライマ−（ｌｏｗｅｒ−２Ａ）：
５’−ＧＧＧＣＴＧＣＡＧＧＣＡＴＡＣＡＣＡＡＡ−３’（配列番号６）
プライマ−（ｌｏｗｅｒ−２Ｃ）：
５’−ＧＧＧＣＴＧＣＡＧＧＣＡＴＡＣＡＣＣＡＡ−３’（配列番号７）
【０１０２】
以下に示す反応液の組成で、［変性：９４℃・２０秒、アニーリング：６０℃・３０秒、ポリメラーゼ伸長反応：７２℃・１分３０秒］を３５サイクル繰り返すことでＰＣＲ増幅を実施した。
【０１０３】
＜反応液の組成＞
１０×ＰＣＲバッファ−　　　　　　　　　５μＬ
２．５ｍＭ　ｄＮＴＰ　　　　　　　　　　５μＬ
５μＭプライマ−（ｕｐｐｅｒ）　　　　　　　　　　　　　　　　２μＬ
５μＭプライマ−（ｌｏｗｅｒ−１Ａ，Ｃ又は−２Ａ，Ｃ）　２μＬ
Ｔａｑ　　　　　　　　　　　　　　　０．５μＬ
（１）で得た核酸断片試料液　　　　　０．５μＬ
精製水　　　　　　　　　　　　　　　　３５μＬ
【０１０４】
（４）ピロ燐酸定量用分析素子を用いた検出
前記（３）におけるＰＣＲ増幅反応後の溶液をそのまま、上記（２）で製作したピロ燐酸定量用乾式分析素子上に各々２０μＬ点着し、ピロ燐酸定量用乾式分析素子を３７℃にて５分間インキュベーション後、波長６５０ｎｍにて支持体側から反射光学濃度（ＯＤＲ）を測定した。得られた結果を以下の表５に示す。
【０１０５】
【表５】
2004121087.tif 000009
【０１０６】
実施例１の結果より、ピロ燐酸定量用乾式分析素子を用いて測定した反射光学濃度（ＯＤｒ）は、低活性型の試料において、活性型プライマーとして１Ａ、不活性型プライマーとして２Ｃを用いれば、等しくなっている。これにより、活性型／不活性型と低活性型との判別が明らかにできるようになった。
【０１０７】
【発明の効果】
本発明によれば、１塩基多型を正確、簡便かつ迅速に検出することが可能になった。特に、本発明によれば、対立遺伝子のヘテロ接合とホモ接合を明確に区別することが可能である。
【０１０８】
【配列表】
2004121087.tif 000010
【０１０９】
2004121087.tif 000011
【０１１０】
2004121087.tif 000012
【０１１１】
2004121087.tif 000013
【０１１２】
2004121087.tif 000014
【０１１３】
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【０１１４】
2004121087.tif 000016
【０１１５】
2004121087.tif 000017
【図面の簡単な説明】
【図１】図１は、本発明の実施形態を説明する概念図を示す。
【図１】
2004121087.tif 000018