(57)【要約】【課題】β−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体が１−ケストースの製造に有利か否かを判定する方法を提供する。【解決手段】β−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体の遺伝子を宿主細胞に導入し、得られる形質転換体をスクロースのみを炭素源とする培地および１−ケストースのみを炭素源とする培地において別々に培養してそれぞれの生育速度を測定し、これらの生育速度を比較して１−ケストース培地での生育速度の方が遅い場合にそのβ−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体が１−ケストースの製造に有利なものと判定する。【選択図】  なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
β−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体が１−ケストースの製造に有利か否かを判定する方法であって、以下の工程：
（ａ）β−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体をコードする遺伝子を発現可能な形で含むベクターを用いて宿主細胞を形質転換する工程；
（ｂ）工程（ａ）により得られた形質転換体を、炭素源としてスクロースのみを含む培地において培養し、該形質転換体の生育速度を測定する工程；
（ｃ）工程（ａ）により得られた形質転換体を、炭素源として１−ケストースのみを含む培地において培養し、該形質転換体の生育速度を測定する工程；および
（ｄ）炭素源として１−ケストースのみを含む培地での生育速度が、炭素源としてスクロースのみを含む培地での生育速度よりも小さい値を示す場合に、その形質転換体により生産されるβ−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体を、１−ケストースの製造に有利なものと判定する工程、
を含んでなる、方法。
【請求項２】
宿主細胞がスクロース非資化性の酵母である、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
工程（ｂ）および工程（ｃ）において、形質転換体の生育速度が液体培地での培養液の濁度により測定される、請求項１に記載の方法。
【請求項４】
工程（ｄ）において、炭素源としてスクロースのみを含む培地における培養液の濁度により測定される生育速度が、炭素源として１−ケストースのみを含む培地における培養液の濁度により測定される生育速度の１．５倍以上の値を示す場合に、その形質転換体により生産されるβ−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体が、１−ケストースの製造に有利なものと判定する、請求項１に記載の方法。
【請求項５】
１−ケストースの製造に有利なβ−フルクトフラノシダーゼ変異体を製造する方法であって、以下の工程：
（ａ）β−フルクトフラノシダーゼ遺伝子に変異を導入し、β−フルクトフラノシダーゼ変異体をコードする遺伝子を調製する工程；
（ｂ）工程（ａ）により得られた遺伝子を発現可能な形で含むベクターを用いて宿主細胞を形質転換する工程；
（ｃ）工程（ｂ）により得られた形質転換体を、炭素源としてスクロースのみを含む培地において培養し、該形質転換体の生育速度を測定する工程；
（ｄ）工程（ｂ）により得られた形質転換体を、炭素源として１−ケストースのみを含む培地において培養し、該形質転換体の生育速度を測定する工程；および
（ｅ）炭素源として１−ケストースのみを含む培地での生育速度が、炭素源としてスクロースのみを含む培地での生育速度よりも小さい値を示す形質転換体により生産されるβ−フルクトフラノシダーゼ変異体を選択する工程、
を含んでなる、方法。
【請求項６】
宿主細胞がスクロース非資化性の酵母である、請求項５に記載の方法。
【請求項７】
工程（ｃ）および工程（ｄ）において、形質転換体の生育速度が液体培地での培養液の濁度により測定される、請求項５に記載の方法。
【請求項８】
工程（ｅ）において、炭素源としてスクロースのみを含む培地における培養液の濁度により測定される生育速度が、炭素源として１−ケストースのみを含む培地における培養液の濁度により測定される生育速度の１．５倍以上の値を示す形質転換体により生産されるβ−フルクトフラノシダーゼ変異体が選択される、請求項５に記載の方法。
【請求項９】
１−ケストースの製造に有利なβ−フルクトフラノシダーゼ変異体遺伝子を製造する方法であって、以下の工程：
（ａ）β−フルクトフラノシダーゼ遺伝子に変異を導入し、β−フルクトフラノシダーゼ変異体をコードする遺伝子を調製する工程；
（ｂ）工程（ａ）により得られた遺伝子を発現可能な形で含むベクターを用いて宿主細胞を形質転換する工程；
（ｃ）工程（ｂ）により得られた形質転換体を、炭素源としてスクロースのみを含む培地において培養し、該形質転換体の生育速度を測定する工程；
（ｄ）工程（ｂ）により得られた形質転換体を、炭素源として１−ケストースのみを含む培地において培養し、該形質転換体の生育速度を測定する工程；および
（ｅ）炭素源として１−ケストースのみを含む培地での生育速度が、炭素源としてスクロースのみを含む培地での生育速度よりも小さい値を示す形質転換体に含まれるβ−フルクトフラノシダーゼ変異体遺伝子を選択する工程、
を含んでなる、方法。
【請求項１０】
宿主細胞がスクロース非資化性の酵母である、請求項９に記載の方法。
【請求項１１】
工程（ｃ）および工程（ｄ）において、形質転換体の生育速度が液体培地での培養液の濁度により測定される、請求項９に記載の方法。
【請求項１２】
工程（ｅ）において、炭素源としてスクロースのみを含む培地における培養液の濁度により測定される生育速度が、炭素源として１−ケストースのみを含む培地における培養液の濁度により測定される生育速度の１．５倍以上の値を示す形質転換体に含まれるβ−フルクトフラノシダーゼ変異体遺伝子が選択される、請求項９に記載の方法。
【請求項１３】
請求項１〜４のいずれか一項に記載の方法により１−ケストースの製造に有利なものと判定されたβ−フルクトフラノシダーゼ変異体。
【請求項１４】
請求項１〜４のいずれか一項に記載の方法により１−ケストースの製造に有利なものと判定されたβ−フルクトフラノシダーゼ変異体をコードする遺伝子。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の背景】
発明の分野
本発明は、反応特性が改変されたβ−フルクトフラノシダーゼの選抜方法に関する。
【０００２】
背景技術
フラクトオリゴ糖は、スクロースに１個以上のフルクトースが連鎖的に付加したオリゴ糖類であり、その結合様式は、スクロースのフルクトース部分における１位の炭素に、付加するフルクトースの２位の炭素がβ型で結合し（β２→１結合）、これが繰り返されるというものである。フラクトオリゴ糖の結合様式を模式的に示すと、（Ｆｒｕ）β２−｛１（Ｆｒｕ）β２−｝ｎα１（Ｇｌｃ）（ここで、ＦｒｕはＤ−フルクトース残基、ＧｌｃはＤ−グルコース残基、ｎはスクロースに付加するフルクトース残基の数を表す）となる。フラクトオリゴ糖は難う蝕性や、ビフィズス菌増殖促進作用、コレステロールなどの脂質の代謝改善作用、免疫調節作用など様々な生理機能を有することが明らかになっており、機能性食品素材として産業上極めて有用である。フラクトオリゴ糖は、自然界では広く植物に分布しており、例えばアスパラガス、タマネギ、キクイモ、蜂蜜などに含まれていることが知られている。
【０００３】
近年、微生物由来のβ−フルクトフラノシダーゼの転移反応を利用してスクロースからフラクトオリゴ糖を大量に製造する技術が確立され、フラクトオリゴ糖は工業的に生産されている。この工業的生産に使用されているカビ由来のβ−フルクトフラノシダーゼは、転移活性が高いこと、および異性体の生成が少ないことが特徴であるが、その一方で、１−ケストースしか生成しない植物由来のシュークロース：シュークロースフルクトシルトランスフェラーゼ（ＳＳＴ）ほどオリゴ糖の生成選択性は高くなく、重合度２〜６のオリゴ糖類の混合物しか製造できない。このため、フラクトオリゴ糖は、液体（シロップ）あるいは粉末として利用されており、これらは非結晶性の混合物であるため、砂糖（スクロース）等の結晶性の食品材料と比較すると、吸湿性が高く、加工適性が悪いなどの問題点があった。
【０００４】
一方で、カラムクロマトグラフィーや晶析等を組み合わせることにより、単一オリゴ糖成分を主成分とする結晶性フラクトオリゴ糖、例えば１−ケストース（３糖類；ＧＦ２）、ニストース（４糖類；ＧＦ３）等を得ることができる。特に、結晶１−ケストースは、フラクトオリゴ糖の生理機能を保持したまま優れた物性および加工適性を有している（特許文献１：特開平９−６５８２９号公報、特許文献２：特開平６−３１１６０号公報）。しかし、フラクトオリゴ糖の製造に用いられている酵素の１−ケストース（３糖類；ＧＦ２）への最大変換率は約４２％であり、さらには反応生成物中には副生成物のニストース（４糖類；ＧＦ３）が約１２％、基質であるスクロースが約２３％含まれるため、より高純度の１−ケストースを工業的に効率よく得ることができるβ−フルクトフラノシダーゼが依然として求められている。すなわち、１−ケストースの生成選択性が高く、転移反応生成物であるオリゴ糖の組成が改善された結晶性フラクトオリゴ糖の製造に適したβ−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体の取得が望まれているといえる。
【０００５】
国際公開第９７／３４００４号パンフレット（特許文献３）には、１−ケストースを選択的に生成するβ−フルクトフラノシダーゼ変異体が開示されている。一方、１−ケストースを選択的に生成するβ−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体を効率よく選抜する方法については、本発明者らが知る限り、これまでに報告されていない。
【０００６】
【特許文献１】
特開平９−６５８２９号公報
【特許文献２】
特開平６−３１１６０号公報
【特許文献３】
国際公開第９７／３４００４号パンフレット
【０００７】
【発明の概要】
低吸湿性の結晶性フラクトオリゴ糖を製造するためには、酵素反応液のクロマト分画の負荷軽減と結晶母液の再利用を可能とするために、β−フルクトフラノシダーゼによる１−ケストース（ＧＦ２）への変換率が高いこと、および副生成物であるニストース（ＧＦ３）等の他のフラクトオリゴ糖の生成量が低いことが好ましいと考えられる。
【０００８】
本発明者らは、候補となるβ−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体の遺伝子を宿主細胞に導入し、その形質転換体を、スクロースを唯一の炭素源とする培地と１−ケストースを唯一の炭素源とする培地とで別々に培養し、前者での生育速度が後者での生育速度よりも速い場合には前記β−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体が上記の条件を充足することを見出した。本発明はこのような知見に基づくものである。
【０００９】
従って、本発明によれば、β−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体が１−ケストースの製造に有利か否かを判定する方法、ならびに１−ケストースの製造に有利なβ−フルクトフラノシダーゼ変異体およびこれをコードする遺伝子の製造方法が提供される。
【００１０】
そして、本発明による判定方法は、β−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体が１−ケストースの製造に有利か否かを判定する方法であって、以下の工程：
（ａ）β−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体をコードする遺伝子を発現可能な形で含むベクターを用いて宿主細胞を形質転換する工程；
（ｂ）工程（ａ）により得られた形質転換体を、炭素源としてスクロースのみを含む培地において培養し、該形質転換体の生育速度を測定する工程；
（ｃ）工程（ａ）により得られた形質転換体を、炭素源として１−ケストースのみを含む培地において培養し、該形質転換体の生育速度を測定する工程；および
（ｄ）炭素源として１−ケストースのみを含む培地での生育速度が、炭素源としてスクロースのみを含む培地での生育速度よりも小さい値を示す場合に、その形質転換体により生産されるβ−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体を、１−ケストースの製造に有利なものと判定する工程、
を含んでなるものである。
【００１１】
また、本発明によるβ−フルクトフラノシダーゼ変異体の製造方法は、１−ケストースの製造に有利なβ−フルクトフラノシダーゼ変異体を製造する方法であって、以下の工程：
（ａ）β−フルクトフラノシダーゼ遺伝子に変異を導入し、β−フルクトフラノシダーゼ変異体をコードする遺伝子を調製する工程；
（ｂ）工程（ａ）により得られた遺伝子を発現可能な形で含むベクターを用いて宿主細胞を形質転換する工程；
（ｃ）工程（ｂ）により得られた形質転換体を、炭素源としてスクロースのみを含む培地において培養し、該形質転換体の生育速度を測定する工程；
（ｄ）工程（ｂ）により得られた形質転換体を、炭素源として１−ケストースのみを含む培地において培養し、該形質転換体の生育速度を測定する工程；および
（ｅ）炭素源として１−ケストースのみを含む培地での生育速度が、炭素源としてスクロースのみを含む培地での生育速度よりも小さい値を示す形質転換体により生産されるβ−フルクトフラノシダーゼ変異体を選択する工程、
を含んでなるものである。
【００１２】
さらに、本発明によるβ−フルクトフラノシダーゼ変異体遺伝子の製造方法は、１−ケストースの製造に有利なβ−フルクトフラノシダーゼ変異体遺伝子を製造する方法であって、以下の工程：
（ａ）β−フルクトフラノシダーゼ遺伝子に変異を導入し、β−フルクトフラノシダーゼ変異体をコードする遺伝子を調製する工程；
（ｂ）工程（ａ）により得られた遺伝子を発現可能な形で含むベクターを用いて宿主細胞を形質転換する工程；
（ｃ）工程（ｂ）により得られた形質転換体を、炭素源としてスクロースのみを含む培地において培養し、該形質転換体の生育速度を測定する工程；
（ｄ）工程（ｂ）により得られた形質転換体を、炭素源として１−ケストースのみを含む培地において培養し、該形質転換体の生育速度を測定する工程；および
（ｅ）炭素源として１−ケストースのみを含む培地での生育速度が、炭素源としてスクロースのみを含む培地での生育速度よりも小さい値を示す形質転換体に含まれるβ−フルクトフラノシダーゼ変異体遺伝子を選択する工程、
を含んでなるものである。
【００１３】
本発明により取得されるβ−フルクトフラノシダーゼおよびその変異体は、１−ケストースを選択的に生成させ、他のオリゴ糖の生成量が低いという反応特性を有する。このようなβ−フルクトフラノシダーゼを利用することにより、１−ケストース含有量の高いフラクトオリゴ糖が得られるため、結晶１−ケストースを容易に製造することが可能となる。
【００１４】
【発明の具体的説明】
本明細書において、「β−フルクトフラノシダーゼ」とは、β−Ｄ−フルクトフラノシドを加水分解してフルクトースを遊離させる能力、およびβ−フルクトフラノシル基を他の糖に転移させる能力を有する、ＥＣ３．２．１．２６に分類される酵素であって、天然の生物から得られるものをいう。さらに、「β−フルクトフラノシダーゼ」は、人工的な変異導入によることなく、自然に発生したβ−フルクトフラノシダーゼ変異体をも含む。また、本明細書において、β−フルクトフラノシダーゼについて用いられる「変異体」という用語は、β−フルクトフラノシダーゼに対して人工的にアミノ酸変異を導入したものを意味する。
【００１５】
１．β−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体の遺伝子の用意
本発明による方法においては、まず、候補となるβ−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体の遺伝子を用意する。
【００１６】
β−フルクトフラノシダーゼは、天然の生物に由来するいずれのものであってもよい。例えば、既に知られているβ−フルクトフラノシダーゼを用いてもよいし、または、新たに発見されたものを用いてもよい。このようなβ−フルクトフラノシダーゼの遺伝子は、当業者に公知の方法により取得することができる。
【００１７】
β−フルクトフラノシダーゼ変異体は、β−フルクトフラノシダーゼに対して人工的にアミノ酸変異を導入したものであり、その遺伝子は、β−フルクトフラノシダーゼ遺伝子への変異の導入により取得することができる。変異導入の対象とするβ−フルクトフラノシダーゼ遺伝子は、いかなる生物を起源とするものであってもよいが、好ましくは真菌類由来のβ−フルクトフラノシダーゼ遺伝子、より好ましくはアスペルギルス属、ペニシリウム属、スコプラリオプシス属、フザリウム属、またはオーレオバシジウム属に属する真菌に由来するβ−フルクトフラノシダーゼ遺伝子、さらに好ましくはアスペルギルス属に属する真菌に由来するβ−フルクトフラノシダーゼ遺伝子とされる。
【００１８】
上記のような変異は、予め指定された変異であってもよいし、不作為（ランダム）な変異であってもよい。予め指定された変異は、当業者に公知の方法、例えば、Ｇａｐｐｅｄ  ｄｕｐｌｅｘ法（Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ，  １５４，  ３５０，  １９８７）、Ｋｕｎｋｅｌ法（Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ，  １５４，  ３６７，  １９８７）等により導入することができる。
【００１９】
本発明の好ましい実施態様によれば、上記の変異はランダム変異とされる。β−フルクトフラノシダーゼ遺伝子へのランダム変異の導入は、当業者に公知の方法、例えば、変異原物質、放射線、ＰＣＲ法等を利用する方法により行うことができる。
【００２０】
変異原物質を利用するランダム変異の導入は、例えば、目的のβ−フルクトフラノシダーゼ遺伝子を保有する微生物を、５−ブロモウラシル、５−クロロウラシル等の塩基類似物質、亜硝酸等の塩基の酸化的脱アミノ誘発剤、シトシン・グアニンと反応するヒドロキシアミン、Ｎ−メチル−Ｎ’−ニトロ−Ｎ−ニトロソグアニジン等のアルキル化試薬などの化学物質に暴露させることによって行うことができる。
【００２１】
ＰＣＲ法を利用するランダム変異の導入は、例えば、目的のβ−フルクトフラノシダーゼ遺伝子を含むＤＮＡ断片を鋳型とする該遺伝子の増幅反応において、ＤＮＡポリメラーゼの複製反応の忠実性を低減させる条件下でＰＣＲを行い、増幅したＤＮＡ配列中に複製エラーを起こすことにより行なうことができる。このような方法は、一般に、エラープローン（ｅｒｒｏｒ−ｐｒｏｎｅ）ＰＣＲ法として知られている。ＤＮＡポリメラーゼの複製反応の忠実性を低減させるための条件としては、高ｐＨ、高マグネシウムイオン濃度、基質となる４種類のデオキシリボ核酸（ｄＮＴＰ）の各濃度の変更が挙げられ、あるいは、複製反応の忠実性が低いＤＮＡポリメラーゼを用いてもよい。
【００２２】
２．β−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体が１−ケストースの製造に有利か否かの判定
用意されたβ−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体をコードする遺伝子を発現可能な形で含むベクターを用いて宿主細胞を形質転換し、得られた形質転換体を、炭素源としてスクロースのみを含む培地（以下「スクロース培地」という）および炭素源として１−ケストースのみを含む培地（以下「１−ケストース培地」という）においてそれぞれ別個に培養して該形質転換体の生育速度を測定し、これらの生育速度を比較することにより、そのβ−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体が１−ケストースの製造に有利なものか否かを判定することができる。
【００２３】
生育速度の比較においては、上記１−ケストース培地での生育速度が上記スクロース培地での生育速度よりも小さい値を示す形質転換体により生産されるβ−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体が、１−ケストースの製造に有利なものと判定される。また、上記の反応速度の差は大きい方が好ましい。従って、本発明の好ましい実施態様によれば、上記スクロース培地での生育速度が上記１−ケストース培地での生育速度の１．５倍以上、より好ましくは２倍以上、さらに好ましくは２．５倍以上の値を示す形質転換体により生産されるβ−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体が、１−ケストースの製造に有利なものと判定される。
【００２４】
形質転換体の生育速度は、当業者に公知の方法、例えば、コロニーの大きさの測定、培養液の濁度測定、菌体体積測定、菌体成分の定量等によって測定することができる。本発明の好ましい実施態様によれば、形質転換体の生育速度は、培養液の濁度を指標として測定される。濁度は、例えば、培養液の５９５ｎｍでの吸光度として測定することができる。また、比較される生育速度は、両培地について同時に測定したものであればよいが、好ましくは培養開始後一定の期間における平均生育速度（以下「初期平均生育速度」という）とされる。初期平均生育速度は、培養開始後一定の時間経過後における各種測定値をその時間で除した値であり、よって、初期平均生育速度の比較は、当該測定値そのものを比較することにより行なうことができる。初期平均生育速度を測定するための培養開始後の経過時間は、形質転換に用いられる宿主細胞の種類によって異なり、培養物の状態をモニタリングしながら当業者が適宜決定しうるが、好ましくは５〜７２時間、より好ましくは１０〜３０時間、さらに好ましくは約２０時間とされる。
【００２５】
形質転換に用いられる宿主細胞は、Ｄ−グルコースおよび／またはＤ−フルクトースを資化することができ、かつ外来遺伝子の発現を可能とするものであればよく、特に制限されないが、好ましくは微生物、より好ましくは酵母、カビなどの真菌類とされる。また、特に好ましい宿主細胞は、スクロースを資化しないもの、すなわちスクロース非資化性の宿主細胞である。スクロース非資化性宿主細胞は、形質転換により導入されたβ−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体以外にスクロースを基質とする酵素を生産しないため、上述の生育速度の比較が容易かつ明確となる。このようなスクロース非資化性宿主細胞としては、当業者に公知のもの、例えば、国際公開第９７／３４００４号パンフレットに記載の糸状菌、トリコデルマ属に属する数種の菌類や特定の酵母（Ｏｄａ，  Ｙ．  ａｎｄ  Ｏｕｃｈｉ，  Ｋ．，  Ａｐｐｌ．  Ｅｎｖｉｒｏｎ．  Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．，  ５５，  １７４２−１７４７，  １９８９）を利用することができる。
【００２６】
形質転換に用いられるベクターは、上記のような宿主細胞において、組み込まれたβ−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体の遺伝子を発現しうるように作製される。このようなベクターは、使用される宿主細胞の種類に応じて、ウイルスベクター、プラスミドベクター、コスミドベクターなどを適宜用いることができ、例えば、宿主が大腸菌である場合にはλファージ系のバクテリオファージ、ｐＢＲ、ｐＵＣ系のプラスミドなどを用い、宿主が枯草菌である場合にはｐＵＢ系のプラスミドを用い、宿主が酵母である場合にはＹＥｐ系、ＹＲｐ系、ＹＣｐ系などのプラスミドベクターを用いることができる。
【００２７】
上記のベクターは、β−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体の遺伝子を効率的に発現させるためのＤＮＡ配列、例えば、プロモーター、転写開始シグナル、リボゾーム結合部位、翻訳停止シグナル、転写終結シグナル等の、転写調節シグナル、翻訳調節シグナルなどを、機能しうる形で含むことが好ましい。このようなＤＮＡ配列は、当業者であれば適宜選択し、使用することができる。
【００２８】
上記のベクターは、形質転換体を選択するための選択マーカーを含んでいてもよい。選択マーカーとしては、薬剤耐性マーカー遺伝子や栄養要求マーカー遺伝子などを適宜用いることができ、例えば、宿主が細菌である場合にはアンピシリン耐性遺伝子、カナマイシン耐性遺伝子、テトラサイクリン耐性遺伝子等、宿主が酵母である場合にはトリプトファン合成遺伝子（例えばＴＲＰ１）、ウラシル合成遺伝子（例えばＵＲＡ３）、ロイシン合成遺伝子（例えばＬＥＵ２）等、宿主がカビである場合にはハイグロマイシン耐性遺伝子（Ｈｙｇ）、ビアラホス耐性遺伝子（Ｂａｒ）、硝酸還元酵素遺伝子（ｎｉａＤ）等を用いることができる。
【００２９】
上記のような宿主細胞とベクターとの組合せとして適切なものが多数知られており、当業者は適宜選択して利用することができる。特に好ましい宿主細胞とベクターとの組合せとして、例えば、Ｂｉｏｓｃｉ．  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．  Ｂｉｏｃｈｅｍ．，  ６５（４），  ７６６−７７３，  ２００１に記載されている、スクロース非資化性の酵母Ｓ．  ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ  ＭＳ−１６１株およびそのための発現ベクターが挙げられる。
【００３０】
形質転換体の培養に用いる培地は、平板培地のような固体培地および液体培地のいずれであってもよい。ただし、生育速度の測定法に応じて適切な培地を選択することが好ましく、例えば、コロニーの大きさにより生育速度を測定する場合には固体培地が適切であり、培養液の濁度により生育速度を測定する場合には液体培地が適切である。また、炭素源以外の培地の具体的な組成は、当業者により適宜決定される。スクロース培地中の炭素源はスクロースのみとされ、その含有量は培地の全重量に対して、好ましくは０．５〜５重量％、より好ましくは１．５〜３重量％、最も好ましくは約２重量％とされる。また、１−ケストース培地中の炭素源は１−ケストースのみとされ、その含有量は、スクロース培地中のスクロースの濃度と同一とされる。
【００３１】
さらに、形質転換体の他の培養条件は、使用する宿主細胞の種類等に応じて当業者により適宜決定されるため、特に制限されないが、好ましい温度条件は２５〜３７℃、より好ましくは約３０℃である。
【００３２】
以上のようにして、β−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体が１−ケストースの製造に有利か否かを判定することができるが、上記の判定法に先立ち、形質転換体の予備的な選択を行なってもよい。例えば、形質転換に用いられるベクターが上記の選択マーカーを含んでいる場合には、その選択マーカーを利用して該ベクターを含む宿主細胞（すなわち形質転換体）を選択することができる。また、宿主細胞としてスクロース非資化性のものを用いる場合には、炭素源としてスクロースのみを含む培地上で培養することにより、導入されたβ−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体が発現している形質転換体のみを選択することができ、同時に、導入されたβ−フルクトフラノシダーゼ変異体がβ−フルクトフラノシダーゼ活性を有することをも確認することができる。このような予備的な選択は、候補となるβ−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体の数が多い場合などに、労力を軽減する上で有利である。
【００３３】
３．１−ケストースの製造に有利なものと判定されたβ−フルクトフラノシダーゼもしくはその変異体またはその遺伝子の回収
上記の方法により１−ケストースの製造に有利なものと判定されたβ−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体は、次のようにして回収することができる。まず、上記の形質転換体を適切な条件下で培養し、得られた培養物から公知の方法、例えば遠心分離により培養上清または菌体を得る。菌体を取得した場合には、これを適切な緩衝液中に懸濁し、凍結融解、超音波処理、磨砕等により菌体を破砕し、遠心分離または濾過により上記β−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体を含む菌体抽出物を得る。培養上清または菌体抽出物からの酵素の精製は、当業者に公知の分離・精製法を適宜組み合わせて実施することができる。このような分離・精製法としては、例えば、熱処理のような耐熱性の差を利用する方法、塩沈澱および溶媒沈澱のような溶解性の差を利用する方法、透析、限外濾過、ゲル濾過およびＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動のような分子量の差を利用する方法、イオン交換クロマトグラフィーのような電荷の差を利用する方法、アフィニティークロマトグラフィーのような特異的親和性を利用する方法、疎水クロマトグラフィー、逆相クロマトグラフィーのような疎水性の差を利用する方法、等電点電気泳動のような等電点の差を利用する方法などが挙げられる。
【００３４】
また、上記の方法により１−ケストースの製造に有利なものと判定されたβ−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体の遺伝子は、当該遺伝子を含む形質転換体中のベクターから、当業者に公知の方法により回収することができる。
【００３５】
４．１−ケストースの製造に有利なものと判定されたβ−フルクトフラノシダーゼもしくはその変異体またはその遺伝子の利用
上記の方法により１−ケストースの製造に有利なものと判定されたβ−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体は、スクロースを原料物質とする１−ケストースの製造に利用することができる。この場合の酵素反応の条件は、当該β−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体の酵素特性、例えば、酵素反応時の生成物中の糖組成、比活性、基質特異性、至適ｐＨ、至適温度、ｐＨ安定性、熱安定性等に応じて、当業者により適切に設定される。これらの酵素特性は、当業者に公知の方法よって確認することができる。上記β−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体は、粗酵素のまま用いてもよいし、精製酵素として用いてもよい。また、上記β−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体は、適切な担体に固定化された状態で用いてもよい。
【００３６】
上記の方法により１−ケストースの製造に有利なものと判定されたβ−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体の遺伝子は、適当な宿主−ベクター系を用いて当該遺伝子による形質転換体を作製することにより、β−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体の製造に利用することができる。形質転換体の作製については、上述した通りである。特に、宿主細胞としてスクロース非資化性のものを用いると、形質転換により導入されたβ−フルクトフラノシダーゼまたはその変異体以外にスクロースを基質とする酵素を生産しないため、酵素を精製することなく、粗酵素の状態で１−ケストースの製造に利用することが可能となる。
【００３７】
【実施例】
以下に本発明の具体的な実施例を示すが、本発明の範囲はこれらに限定されるものではない。
【００３８】
例１：β−フルクトフラノシダーゼ（ＦＦａｓｅ）遺伝子へのランダム変異の導入
フラクトオリゴ糖製造に用いられているアスペルギルス・ニガー（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ）ＡＴＣＣ２０６１１株由来のβ−フルクトフラノシダーゼ（以下「ＦＦａｓｅ」という）の遺伝子中にランダム変異を導入した。このランダム変異の導入は、以下のように、市販のＰＣＲ  ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ  ｋｉｔ（Ｇｅｎｅ  Ｍｏｒｐｈ，  Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ社）を用いて行った。
【００３９】
ＰＣＲ反応液（５０μｌ）の組成は、ＦＦａｓｅ遺伝子を含む鋳型ＤＮＡ（１μｌ）、ｄＮＴＰ（４０ｍＭ、１μｌ）、１０倍濃度の緩衝液（５μｌ）、フォワードプライマー：５’−ＧＣＧＡＡＴＴＣＡＴＧＡＡＧＣＴＣＡＣＣＡＣＴＡＣＣＡ−３’（配列番号１）およびリバースプライマー：５’−ＧＣＧＧＡＴＣＣＣＧＧＴＣＡＡＴＴＴＣＴＣＴ−３’（配列番号２）（それぞれ、２５０ｎｇ／ｍｌ、０．５μｌ）、Ｍｕｔａｚｙｍｅ（２．５Ｕ／μｌ、１μｌ）、ＤＭＳＯ（５μｌ）、ならびに滅菌水（３６μｌ）とした。反応条件は、９４℃で２分間の前処理を行なった後、９４℃で１分間（変性ステップ）、５０℃で２分間（アニーリングステップ）、および７２℃で２．５分間（伸長ステップ）のインキュベーションを３０サイクルとした。最後に７２℃で３分間のインキュベーションを行なった。得られた反応液から反応産物をフェノール／クロロホルム／イソアミルアルコール（２５：２４：１）で抽出し、その抽出液にエタノールを添加することにより沈殿させた。沈殿物をＴＥ緩衝液に溶解後、アガロース電気泳動を行い、特異的に増幅された１．９ｋｂｐのバンドを常法に従って切り出してＤＮＡ断片を回収した。１．９ｋｂｐのＥｃｏＲＩ−ＢａｍＨＩ断片をＢｉｏｓｃｉ．  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．  Ｂｉｏｃｈｅｍ．，  ６５（４），  ７６６−７７３，  ２００１に記載されている酵母での発現ベクターのＥｃｏＲＩ−ＢａｍＨＩ部位に挿入したプラスミドを、スクロース非資化性の酵母Ｓ．  ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ  ＭＳ−１６１株（Ｂｉｏｓｃｉ．  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．  Ｂｉｏｃｈｅｍ．，  ６５（４），  ７６６−７７３，  ２００１に記載）に酢酸リチウム法によって導入し、形質転換体を得た。個々の形質転換体を、ＳＤ−ＧＦ寒天培地（０．６７％  ｙｅａｓｔ  ｎｉｔｒｏｇｅｎ  ｂａｓｅ  （ｗ／ｏ  ａｍｉｎｏ  ａｃｉｄｓ）、２％  ｓｕｃｒｏｓｅ、２％  ａｇａｒ、５０μｇ／ｍｌ  Ｌ−Ｕｒａｃｉｌ）にレプリカし、３０℃で３日間の培養により良好に生育する形質転換体をＦＦａｓｅ活性を保持している株として選択し、ランダム変異ライブラリーを作製した。
【００４０】
例２：改質ＦＦａｓｅのスクリーニング
実施例１で作製したランダム変異ライブラリーから、反応特性が改変されたＦＦａｓｅを以下のように選抜した。すなわち、個々の株を、９６穴マイクロプレートを用いて、１５０μｌのＳＤ培地（０．６７％  ｙｅａｓｔ  ｎｉｔｒｏｇｅｎ  ｂａｓｅ  （ｗ／ｏ  ａｍｉｎｏ  ａｃｉｄｓ）、２％  ｇｌｕｃｏｓｅ、５０μｇ／ｍｌ  Ｌ−Ｕｒａｃｉｌ）中、３０℃で一晩前培養した。
【００４１】
次に、この前培養液を、ＳＤ−ＧＦ培地（０．６７％  ｙｅａｓｔ  ｎｉｔｒｏｇｅｎ  ｂａｓｅ  （ｗ／ｏ  ａｍｉｎｏ  ａｃｉｄｓ）、２％  ｓｕｃｒｏｓｅ、５０μｇ／ｍｌ  Ｌ−Ｕｒａｃｉｌ）とＳＤ−ＧＦ２培地（０．６７％ｙｅａｓｔ  ｎｉｔｒｏｇｅｎ  ｂａｓｅ  （ｗ／ｏ  ａｍｉｎｏ  ａｃｉｄｓ）、２％  １−ｋｅｓｔｏｓｅ、５０μｇ／ｍｌ  Ｌ−Ｕｒａｃｉｌ）の２種類の液体培地各１５０μｌに４．５μｌずつ植菌し、３０℃で培養した。２０時間後の培養液の濁度（５９５ｎｍの吸光度）を測定し、（ＳＤ−ＧＦ培地での培養液の濁度）／（ＳＤ−ＧＦ２培地での培養液の濁度）の比を算出した結果を表１に示す。
【００４２】
【表１】
2004242528.tif 000002
【００４３】
さらに、これらの株の培養上清をＦＦａｓｅ粗酵素液として、ＦＦａｓｅ活性測定とスクロースを基質とした酵素反応を行い、反応液の糖組成をＨＰＬＣ（カラム：リクロスフェア１００ＮＨ２、溶離液：７２％アセトニトリル、流速：１ｍｌ／分、検出器：示差屈折計）で分析した。ＦＦａｓｅ活性は、Ａｇｒｉｃ．  Ｂｉｏｌ．  Ｃｈｅｍ．，  ５３，  ６６７−６７３  （１９８９）に記載の方法に従って測定した。また、酵素反応は、培養上清中に４８重量％のスクロースを添加し、この反応液を、４０℃、ｐＨ７でインキュベートすることにより行なった。
【００４４】
上記表１に記載の株はいずれも、ＦＦａｓｅ活性を有していることが確認された。さらに、スクロースを基質とした酵素反応により得られる反応液中の糖組成を下記の表２に示す。ここで、各株についてのデータは、それぞれ１−ケストース（ＧＦ２）の量が最大となる時点での反応液の糖組成を示す。
【００４５】
【表２】
2004242528.tif 000003
【００４６】
１−ケストースの製造に用いるＦＦａｓｅは、１−ケストースの含有量が多く、他の糖類、特にニストースおよびフラクトシルニストースの含有量が少ない酵素反応産物を与えるものであることが好ましいと考えられる。このような観点から表１および表２に記載のＦＦａｓｅを評価すると、（２１−３６）株、（２２−９５）株および（６４−６０）株では、上記両培地における濁度の比が野生型よりも大きく、１−ケストースの含有量が多く、ニストースの生成が抑制されている。すなわち、これらの株により生産されるＦＦａｓｅは、１−ケストースの製造に有利な反応特性を有するといえる。
【００４７】
一方で、（Ｍ−２）株、（６４−８１）株および（５１−２４）株では、上記両培地における濁度の比が野生型と同程度で、１−ケストースおよびニストースの含有量に変化は見られない。
【００４８】
【配列表】
2004242528.tif 000004
2004242528.tif 000005