(57)【要約】【課題】外来挿入遺伝子断片を保持する組換え体において、該外来挿入遺伝子断片がコードするペプチド、ポリペプチドあるいはタンパク質の方向および読み枠が正しく翻訳される組換え体のみを、効率的にスクリーニング可能な手段を提供する。【解決手段】トランスレーショナルカップリングを利用し、挿入する外来遺伝子の翻訳が正しく行われたときのみマーカー遺伝子を発現させることにより、目的とする外来遺伝子が正しく保持された組換体のみを、極めて効率的にスクリーニングする。【特許請求の範囲】
【請求項１】
マーカー遺伝子と、該マーカー遺伝子の上流に外来遺伝子挿入部位を有するＤＮＡであって、該マーカー遺伝子が、トランスレーショナルカップリングにより、挿入される外来遺伝子全長の翻訳に依存して翻訳されることを特徴とするＤＮＡマーカー材料。
【請求項２】
上記外来遺伝子挿入部位の下流に翻訳終止コドンが配置されることを特徴とする請求項１に記載のＤＮＡマーカー材料。
【請求項３】
翻訳終止終止コドンを３個以上有し、各終止コドンがそれぞれ読み枠をずらせて配置されていることを特徴とする請求項２に記載のＤＮＡマーカー材料。
【請求項４】
外来遺伝子挿入部位が、２個の同一又は異なる制限酵素切断部位からなるとともに、該制限酵素切断部位間の塩基配列中に翻訳終結コドンを有し、該２個の制限酵素切断部位を切断して外来ＤＮＡを挿入することによって該翻訳終止コドンが除かれることを特徴とする請求項１〜３のいずれかに記載のＤＮＡマーカー材料。
【請求項５】
マーカー遺伝子が、宿主の生育に必須の栄養素を供給するための遺伝子であるか、あるいは宿主の生育阻害物質の作用を中和、拮抗あるいは失活させる性質を付与する遺伝子であることを特徴とする請求項１〜４に記載のＤＮＡマーカー材料。
【請求項６】
マーカー遺伝子が、コリシンに対するイミュニティー遺伝子である請求項１〜５に記載のＤＮＡマーカー材料。
【請求項７】
マーカー遺伝子が、翻訳開始コドン翻訳終止コドンを有する請求項１〜６に記載のＤＮＡマーカー材料。
【請求項８】
請求項１〜７のいずれかに記載のＤＮＡマーカー材料の塩基配列を含むベクター。
【請求項９】
請求項１〜７のいずれかに記載のＤＮＡマーカー材料、又は請求項８に記載のベクターの塩基配列に対応する塩基配列を有するＲＮＡ。
【請求項１０】
請求項１〜７のいずれかに記載のＤＮＡあるいは請求項８に記載のベクターと、これらに含まれるマーカー遺伝子の発現を識別する指示物質とを含む、遺伝子組換え体スクリーニングキット。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、外来挿入遺伝子が正しく翻訳される組換え体のみを選択的にスクリーニングするためのＤＮＡあるいはＲＮＡ断片、これらの断片を有するベクター、およびこれら断片あるいはベクターを少なくとも含むスクリーニング試薬キットに関する。
【０００２】
【従来の技術】
例えば、従来の大腸菌等を形質転換するためのベクターにおいては、外来挿入遺伝子が挿入された形質転換体をスクリーニングするために、マーカー遺伝子としてβ−ガラクトシダーゼ遺伝子を用いる方法が知られている。この方法では、発現されたガラクトシダーゼによる指示薬の分解により培地上に生育したコロニーの色が青色に着色するが、外来遺伝子の挿入によってβ−ガラクトシダーゼの発現が抑制され、青色に着色しなくなることを指標にする方法がある（非特許文献１）。
【０００３】
また、トポイソメラーゼやコリシンＥ１遺伝子など、大腸菌の致死遺伝子を利用し、翻訳領域に外来ＤＮＡが挿入されることによって、該遺伝子の発現が抑制され、外来ＤＮＡを保持するクローンのみを選択的に生育させる方法も知られている（特許文献１）。
しかし、βガラクトシダーゼなどを用いた発色による選択では、培地にＸ−Ｇａｌ（５−ｂｒｏｍｏ−４−ｃｈｌｏｒｏ−３−ｉｎｄｏｌｙｌ−ｂｅｔａ−Ｄ−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ）などの発色物質を添加する必要があるばかりでなく、挿入断片を保持しない形質転換体も生育することから、多くの形質転換体を分離するためには広い寒天培地の面積を必要とした。一方、致死遺伝子を用いた場合には、挿入断片を保持しない形質転換体は死滅することから、形質転換体を分離するための培地面積を減少したり、液体培地を用いた選択も可能にする。
【０００４】
一方、遺伝子の機能を解析する場合には、遺伝子の発現産物（タンパク質）の性質や活性を解析するか、または遺伝子の産物が発現した状態での宿主の性質の変化を解析する必要がある。この目的のために、多くの場合、タンパク質の発現が可能な所謂発現ベクターが用いられる。また、例えば、多数の遺伝子の機能を解析するために、ゲノムＤＮＡなどの多数の遺伝子を含むＤＮＡを断片化し、ベクターに挿入してライブラリーを作製することがよく行われるが、この場合、タンパク質がコードされない領域が挿入されたり、あるいは遺伝子がコードされている領域であっても６分の５の確率で本来の読み枠とは異なる読み枠でＤＮＡ断片が挿入されたクローンが生じてしまう。この様なクローンは、本来の長鎖のペプチドは合成されないが、最初の翻訳終止コドン（読み枠のズレにより生じた終止コドン）が現われるまで翻訳が進み、自然界に存在しないペプチドが合成されることになる。これらのペプチドは、往々にして予期されない生化学的・生理学的活性を有することがあり、正しい生理活性を有しない遺伝子がスクリーニングされるのを妨害したり、偽陽性のバックグラウンドが増大する原因となり、スクリーニングが不成功に終わったり効率を減少させる原因となっていた。
【０００５】
【非特許文献１】Ｓａｍｂｒｏｏｋ，Ｊ．  ｅｔ  ａｌ．  （１９８９）  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ：  ａ  ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  ｍａｎｕａｌ．  ｓｅｃｏｎｄ  ｅｄｉｔｉｏｎ．  Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｐｒｅｓｓ，  Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ，  ＮＹ
【特許文献１】特開昭５７−１３９０９５号公報
【０００６】
【発明が解決しようとする課題】
本発明の課題は、上記従来技術の問題点を解消することにあり、外来挿入遺伝子断片を保持する組換え体において、該外来挿入遺伝子断片がコードするペプチド、ポリペプチドあるいはタンパク質の方向および読み枠が正しく翻訳される組換え体のみを、効率的にスクリーニング可能な手段を提供するものであって、これにより、本来生体内では産生されることのないペプチドの発現を抑止することを可能とし、また、発現したペプチド、ポリペプチドあるいはタンパク質が有する機能を用いたスクリーニングする場合において、自然界には存在しないあるいは予期されない遺伝子を選択する可能性を極力排除しようとするものである。また、本発明の課題は、不要なクローンを排除することにより、スクリーニングに必要なライブラリーを構成する独立した形質転換体の数を減少させる手段を提供するものである
【０００７】
【課題を解決するための手段】
本発明者等は、上記課題を解決すべく鋭意研究の結果、いわゆるトランスレーショナルカップリングを応用し、挿入する外来遺伝子の翻訳が正しく行われたときのみマーカー遺伝子を発現させることにより、目的とする外来遺伝子が正しく保持された組換え体のみを、極めて効率的にスクリーニングすることができることを見いだし本発明を完成させるに至ったものである。
【０００８】
すなわち、本発明は以下の（１）〜（１０）に係るものである。
（１）  マーカー遺伝子と、該マーカー遺伝子の上流に外来遺伝子挿入部位を有するＤＮＡであって、該マーカー遺伝子が、トランスレーショナルカップリングにより、挿入される外来遺伝子全長の翻訳に依存して翻訳されることを特徴とするＤＮＡマーカー材料。
（２）  上記外来遺伝子挿入部位の下流に翻訳終止コドンが配置されることを特徴とする（１）に記載のＤＮＡマーカー材料。
（３）翻訳終止終止コドンを３個以上有し、各終止コドンがそれぞれ読み枠をずらせて配置されていることを特徴とする（２）に記載のＤＮＡマーカー材料。
（４）  外来遺伝子挿入部位が、２個の同一又は異なる制限酵素切断部位からなるとともに、該制限酵素切断部位間の塩基配列中に翻訳終結コドンを有し、該２個の制限酵素切断部位を切断して外来ＤＮＡを挿入することによって該翻訳終止コドンが除かれることを特徴とする（１）〜（３）のいずれかに記載のＤＮＡマーカー材料。
（５）  マーカー遺伝子が、宿主の生育に必須の栄養素を供給するための遺伝子であるか、あるいは宿主の生育阻害物質の作用を中和、拮抗あるいは失活させる性質を付与する遺伝子であることを特徴とする（１）〜（４）に記載のＤＮＡマーカー材料。
（６）  マーカー遺伝子が、コリシンに対するイミュニティー遺伝子である（１）〜（５）に記載のＤＮＡマーカー材料。
（７）  マーカー遺伝子が、翻訳開始コドンと翻訳終止コドンを有する（１）〜（６）に記載のＤＮＡマーカー材料。
（８）（１）〜（７）のいずれかに記載のＤＮＡマーカー材料の塩基配列を含むベクター。
（９）（１）〜（７）のいずれかに記載のＤＮＡマーカー材料、又は（８）に記載のベクターの塩基配列に対応する塩基配列を有するＲＮＡ。
（１０）（１）〜（７）のいずれかに記載のＤＮＡあるいは請求項８に記載のベクターと、これらに含まれるマーカー遺伝子の発現を識別する指示物質とを含む、遺伝子組換え体スクリーニングキット。
【０００９】
【発明の実施の形態】
以下、本発明をさらに詳細に説明する。
本発明は、トランスレーショナルカップリングを応用し、挿入する外来遺伝子全長にわたって翻訳が終結されることなく行われたときのみマーカー遺伝子を発現させることにより、目的とする外来遺伝子が正しく保持された組換え体のみスクリーニングすることが可能であるように設計されたＤＮＡマーカー材料あるいは該ＤＮＡマーカ材料の塩基配列を有するベクターに関するものである。
【００１０】
トランスレーショナルカップリングとは、２つの遺伝子が近接している時に、上流側に位置する遺伝子が翻訳されることによって、下流側の遺伝子も翻訳される現象である。また、上流側の遺伝子がの翻訳レベルが減少すると、下流側の遺伝子の翻訳レベルもこれに伴って減少する。このとき隣り合う２つの遺伝子の翻訳は結合しており、トランスレーショナルカップリングされているという。
【００１１】
これまでに、トランスレーショナル・カップリングを用いることにより、外来遺伝子断片にコードされるタンパク質を発現させるためのベクターはあった（Ｓｅｒｇｅｙ，  Ｖ．  ｅｔ  ａｌ．，  Ｇｅｎｅ，  ８８，  １２１−１２６，  １９９０）。しかしこれらは、元々ベクターに組込まれており、トランスレーショナル・カップリングの上流側に位置する遺伝子の翻訳によって、その下流に挿入されたＤＮＡ断片にコードされるタンパク質を発現させようとするものであり、従来のＨｉｓ−ｔａｇやＧＳＴ  （Ｇｌｕｔａｔｈｉｏｎ−Ｓ−Ｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅ）など、ベクター上にコードされるペプチドやタンパク質などと融合させて発現させる場合と基本的に変わることはなく、挿入される遺伝子断片の翻訳読み枠は挿入される位置により特異的に決定されている。
【００１２】
以上のように、これまでのトランスレーショナル・カップリングを利用した上記ベクターでは、単に挿入ＤＮＡ断片にコードされたタンパク質を発現させるために用いただけであったが、本発明は、トランスレーショナル・カップリングを、組換え体のスクリーニングに初めて利用するものであり、極めて革新的かつ極めて実用的である。
【００１３】
本発明の上記ＤＮＡマーカー材料においては、マーカー遺伝子の上流側に外来遺伝子挿入部位を有し、挿入される外来遺伝子が方向および読み枠において正しく挿入され、その遺伝子全長がペプチドへ翻訳された場合のみ、トランスレーショナルカップリングによりマーカー遺伝子のポリペプチドへの翻訳がなされ、発現されるように設計される。このため外来遺伝子の下流側、マーカー遺伝子の翻訳開始点近傍に終止コドン（ＴＡＡ，ＴＡＧ，ＴＧＡ）を配置し、外来遺伝子が挿入された場合、この外来遺伝子とマーカー遺伝子が、終止コドンを介して接続し、外来遺伝子の翻訳がこのマーカ遺伝子の翻訳開始点近傍でなされた場合にのみ、マーカ遺伝子の翻訳がなされるように設計する。
【００１４】
本発明においては、あらかじめこのようなＤＮＡマーカー材料を調製し、これをプラスミド等のベクターに挿入して組換えベクターを得、この組換えベクターに外来遺伝子を導入してもよいが、ＤＮＡマーカ材料の調製、そのベクターへの挿入工程を行うことなく、ベクター上で直接上記ＤＮＡマーカー材料の塩基配列を有するよう調製し、これに外来遺伝子を導入して組換えベクターを得てもよい。
【００１５】
このようにして得られた組換えベクターは、適当な宿主に導入されるが、この際、外来遺伝子が、ベクターの読み枠と一致しないように導入されたものあるいは逆方向に導入されたものは、外来遺伝子の翻訳において、その読み枠のずれ、あるいは塩基配列の逆方向の翻訳により、外来遺伝子の塩基配列中に終止コドンを生じてしまう可能性が高い。例えば、機能ドメインをコードするような数百ｂｐ程度のＤＮＡ断片では、理論的には５０１  ｂｐのＤＮＡ断片は１６７アミノ酸をコードするが、全コドンの中で終止コドンをコードする確率は３／６４＝約０．０４６９なので、１６７ｘ０．０４６９＝約７．８となり、平均でおおよを８個の終止コドンが現われることになる。従って、外来遺伝子が、ベクターの読み枠と一致しないように導入されたものあるいは逆方向に導入された場合には、翻訳はほぼ確実に外来挿入断片中でストップし、翻訳はこの偽の終止コドンでストップし、上記マーカー遺伝子の翻訳開始点近傍での外来遺伝子の翻訳がなされないため、トランスレーショナルカップリングが起こらず、マーカ遺伝子の翻訳・発現は起こらない。これに対して、外来遺伝子が、読み枠、方向ともに正しく導入された場合には、挿入された外来遺伝子の全長が翻訳されて、上記マーカー遺伝子の翻訳開始点近傍に設けた終止コドンに至るまで翻訳は継続し、トランスレーショナルカップリングが起こり、マーカー遺伝子が発現する。これらの関係について以下に例示する。
【００１６】
〔読み枠が正しい場合〕
【化１】
2004242583.tif 000002
【００１７】
〔読枠にずれがある場合〕
【化２】
2004242583.tif 000003
【００１８】
〔外来遺伝子が逆方向に挿入された場合〕
【化３】
2004242583.tif 000004
【００１９】
このマーカー遺伝子は、その発現の有無により、宿主の生育、増殖、着色、発光、走化性、走磁性等において、指示薬の存在下あるいは非存在下に識別可能な変化をもたらすものであればいずれでもよく、マーカー遺伝子の発現がみられたものは、外来遺伝子が読み枠および方向において正しく挿入された確率が高いものであって、これにより外来遺伝子が読み枠および方向において正しく挿入されたもののみスクリーニングが可能となる。
【００２０】
上記例示において、マーカ遺伝子の翻訳開始点近傍に設けた終止コドンは、挿入する外来遺伝子の全長が翻訳された時点で翻訳を終結させるものでありるから、この終止コドンは外来遺伝子の読み枠と一致させる必要があり、このため、挿入する外来遺伝子の全長が明らかであり、終止コドンの読み枠が外来遺伝子の読み枠と一致しない場合には、この外来遺伝子の読み枠と合わせるために付加的な塩基配列を終止コドンの上流に付加する。しかし、そのような操作を省くため、読み枠を各々ずらせた３個以上の終止コドンを設けるのが好ましい。
【００２１】
2004242583.tif 000005
【００２２】
また、これら終止コドンは外来遺伝子の翻訳ポリペプチドにおいて、余分のアミノ酸配列が付加しないよう設けるものであり、読み枠を一致させるための核酸の付加は、外来遺伝子の発現ポリペプチドの構造に変化を生じないようできるだけ少ない方が好ましい。
さらに、これら終止コドンの配置位置は、外来遺伝子の下流側であればよく、マーカー遺伝子の翻訳開始点の上流側、下流側とを問わない。マーカー遺伝子の翻訳開始コドン（ＡＴＧ）とその近傍に位置する翻訳終止コドンの距離については、マーカー遺伝子の翻訳が、外来挿入遺伝子断片の翻訳とトランスレーショナル・カップリングされていればよく、特に制限はないが、翻訳終止コドンが翻訳開始コドン（ＡＴＧ）の上流に位置する場合には４５  ｂｐ以下であることが好ましく、より好ましくは２０  ｂｐ以下、さらに好ましくは１０  ｂｐ以下である。また、翻訳終止コドンが翻訳開始コドン（ＡＴＧ）の下流に位置する場合には、１０００  ｂｐ以下であることが好ましく、より好ましくは２００  ｂｐ以下、さらに好ましくは４０  ｂｐ以下である。該翻訳終止コドンが該翻訳開始コドンの下流に配置する場合には、該終止コドンがマーカー遺伝子の翻訳を終結させてはならない。このためには、例えば、以下に例示するように、該終止コドンがマーカー遺伝子の翻訳読みとは異なる読み枠になるように設計し、該終止コドンの挿入によってマーカー遺伝子の発現タンパク質中のアミノ酸が変化しないように設計される方が好ましい。
【００２３】
【化４】
2004242583.tif 000006
但し、上記塩基配列中例示において、  ／  は、外来遺伝子の読み枠を表し、：  はマーカ遺伝子の読み枠を表す。
【００２４】
なお、この場合、マーカー遺伝子の発現タンパク質の活性に重要ではないアミノ酸であれば、終止コドンの挿入によって該アミノ酸の変化が伴っても良い。さらに、翻訳終止コドンとマーカー遺伝子の翻訳開始コドンはその配列において重複してもよい。
外来遺伝子の挿入部位の設計は特に限定するものはなく、従来と同様に制限酵素により切断されるように設計する。本発明のＤＮＡ  あるいはこれを有するベクターにおいては、同一若しくは異なる２個の制限酵素に認識され切断される部位を設けるのが好ましく、この制限酵素切断部位間の塩基配列には、終止コドンを設ける。この終止コドンは、プラスミドの読み枠と一致するように設け、外来遺伝子が導入されば、これら２個の切断部位間の塩基配列は取り除かれ、この終止コドンは取り除かれる。
【００２５】
したがって、この終止コドンの配置により、外来遺伝子が挿入していない場合、この上流からの翻訳は、この終止コドンで終結し、翻訳はマーカー遺伝子の翻訳開始部位近傍では外来遺伝子の翻訳がなされないため、トランスレーショナルカップリングは起こらず、マーカー遺伝子の翻訳・発現は行われない。したがって、この外来遺伝子の挿入されていないベクターを保有する組換え体も識別可能となり、さらに、この外来遺伝子の全長が翻訳可能領域か否かも判定できる。
また、本発明においては、少なくとも、上記のＤＮＡマーカー材料あるいはこのマーカー材料の塩基配列を有するベクターと、このマーカ材料あるいはベクター中のマーカー遺伝子の発現の有無を識別するための指示薬とを含む遺伝子組換え体スクリーニングキットも提供する。
【００２６】
以下に、本発明について、図１を参照しつつ、大腸菌に対する毒性タンパク質であるコリシンを指示薬とし、コリシンの毒性を中和するイミュニティ遺伝子をマーカー遺伝子として用いる場合を例にとり、さらに詳細に説明する。
本発明においては、例えば、外来遺伝子断片を大腸菌に保持させるベクターとしてプラスミドを用い、このプラスミドにイミュニティー遺伝子を挿入しておく。このイミュニティ遺伝子は、外来遺伝子挿入断片の期待される転写・翻訳の方向に対して下流に配置される。また、イミュニティ遺伝子は翻訳開始コドンを有し、その近傍に１個以上の翻訳終止コドン（ＩＩ）が配置される。この終止コドンの（ＩＩ）の上流には２個の制限酵素認識部位を配置し、外来遺伝子挿入部位とする。この２個の制限酵素認識部位間には終止コドン（Ｉ）をプラスミドの翻訳読み枠と合わせて配置する。外来遺伝子断片が挿入されると、終止コドン（Ｉ）は削除される。
【００２７】
外来遺伝子挿入断片がコードするペプチド、ポリペプチドあるいはタンパク質は、挿入断片の上流に位置しプラスミドに内在されているか、あるいは挿入断片そのものが保持するプロモーターおよび翻訳開始シグナルより発現される。さらに、外来遺伝子断片の方向および翻訳の読み枠および方向が正しく認識され、自然界の状態と同様に正しくあるいは期待された翻訳がなされた場合には、上記したように、読み枠のずれあるいは挿入方向の誤りによる偽の終止コドンが生じないため、挿入遺伝子断片内で翻訳が終結することなく、マーカー遺伝子の翻訳開始部位近傍に位置する終止コドン（ＩＩ）まで翻訳が継続し、トランスレーションカップリングが生じ、イミュニティ遺伝子の翻訳・発現が行われる。また、外来遺伝子が挿入されていない場合には、翻訳は終止コドン（Ｉ）により、終結し、翻訳は終止コドン（ＩＩ）まで至らず、イミュニティ遺伝子の翻訳・発現は生じない。
【００２８】
ただし、外来遺伝子断片は、完全長ｃＤＮＡのように本来の遺伝子が備える翻訳終止コドンを有する物ではなく、タンパク質の機能ドメインやエピトープをコードしうる断片化したＤＮＡ断片が好んで用いられる。断片化ＤＮＡの長さについて特に制限はないが、好ましくは９〜３０００  ｂｐ、より好ましくは４５〜１５００  ｂｐ、さらに好ましくは２００〜１０００  ｂｐである。また、断片化に用いられるＤＮＡ材料としては、ゲノムＤＮＡであってもｃＤＮＡであってもよい。断片化の方法としては、通常用いられるいずれの方法でも良く、細管内を高速に通過させることによる機械的な細断、超音波、ＤＮａｓｅ  Ｉ、制限酵素などが利用可能である。また、人為的に設計された合成ＤＮＡ断片や、人為的に変異を導入したＤＮＡ断片も用いることができる。
【００２９】
前記イミュニティ遺伝子の翻訳開始コドンの近傍に位置する翻訳終止コドンは、上記したように好ましくは３個であり、翻訳の３種類の読み枠の全てに対して翻訳が終結するように、各終止コドンは、読み枠をずらして配置される。しかし、正しく翻訳されたときの読み枠が１通りあるいは２通りに限定されている場合には、１個あるいは２個でも目的は達成される。また、３個より多くの翻訳終止コドンを配置することも可能であるが、翻訳の原理上から、有効に機能する翻訳終止コドンは３個になる。
【００３０】
イミュニティー遺伝子の翻訳開始コドン（ＡＴＧ）とその近傍に位置する翻訳終止コドン（ＩＩ）との距離については、上記したように、イミュニティー遺伝子の翻訳と、外来挿入遺伝子断片の翻訳は結合されて（トランスレーショナル・カップリングされて）いればよく、特に制限はないが、翻訳終止コドン（ＩＩ）が翻訳開始コドン（ＡＴＧ）の上流に位置する場合には４５  ｂｐ以下であることが好ましく、より好ましくは２０  ｂｐ以下、さらに好ましくは１０  ｂｐ以下である。また、上記説明においては、翻訳終止コドン（ＩＩ）が翻訳開始コドン（ＡＴＧ）の上流側に配置される場合について述べたが、本発明においては上記したように、翻訳終止コドンを翻訳開始コドン（ＡＴＧ）の下流に配置してもよく、この場合には、翻訳開始コドン（ＡＴＧ）と翻訳終止コドン（ＩＩ）との距離は、１０００  ｂｐ以下であることが好ましく、より好ましくは２００  ｂｐ以下、さらに好ましくは４０  ｂｐ以下であり、イミュニティー遺伝子の翻訳と、外来挿入遺伝子断片の翻訳は結合されている（トランスレーショナル・カップリングされている）必要がある。また、該翻訳終止コドンが該翻訳開始コドンの下流にある場合には、該終止コドンがイミュニティタンパク質の翻訳を終結させることにより不活性型にしてはならないこと、およびそのための手段は上記したとおりである。
【００３１】
本発明において、マーカー遺伝子として、上記コリシンに対するイミュニティー遺伝子を用いたＤＮＡ  マーカー材料あるいは該マーカーの塩基配列を有するプラスミドを用いて、外来遺伝子による遺伝子組換え操作を行う場合には、選択培地としてコリシン含有培地を用いる。
これにより、外来遺伝子が導入されていないプラスミドあるいはベクターを持つ大腸菌、外来遺伝子の読み枠が本来のものと一致していないプラスミドあるいはベクターを持つ大腸菌、あるいは外来遺伝子の挿入が逆であるプラスミドあるいはベクターを持つ大腸菌においては、イミュニティー遺伝子が発現できず、大腸菌に対する毒性タンパク質であるコリシンにより死滅する。したがって、このコリシン含有培地において増殖した大腸菌は、外来遺伝子が正しく導入され、本来のポリペプチドを発現しているものであり、これを採取することにより極めて効率的にスクリーニングを行うことが可能となる。
【００３２】
なお、この例においては、大腸菌に対して致死性を示すタンパク質の致死性を中和する遺伝子をマーカー遺伝子として用いて例示しているが、特に致死性を示すタンパク質を用いる必要はなく、何らかの物質を培地に添加する必要はなく、特定の条件を設定する必要もない。マーカー遺伝子としては、その発現が検出あるいは観察される遺伝子など、該遺伝子が発現していない状態と区別できる遺伝子であればよく、好ましくは該遺伝子を発現する宿主の生育速度が該遺伝子を発現していない宿主に比較して有意に向上させることが可能な遺伝子である。本発明に用いるマーカ遺伝子としては、例えば、アンピシリン、カナマイシン、テトラサイクリン、クロラムフェニコールなどの抗生物質に対する耐性遺伝子（薬剤耐性マーカー）、メチオニン、アルギニン、ヒスチジン、トリプトファン、ウラシルなどのアミノ酸等の合成系に関る必須遺伝子の不活化変異株に対する相補性遺伝子（栄養要求性マーカー）、ラクトースやガラクトースなどの糖の資化性に関する遺伝子などのポジティブセレクションマーカーが好んで用いられるが、β−ガラクトシダーゼ遺伝子などの適当な基質を用いることにより発色反応を触媒する酵素の遺伝子、適当な基質を添加することによって発色や発光を引起こすルシフェラーゼなどの遺伝子、蛍光を発するグリーン・フルオレッセント・プロテイン（ＧＦＰ）遺伝子等が挙げられる。
【００３３】
また、本発明は大腸菌に限定されるものではなく、上記のようなマーカー遺伝子が利用可能であればいかなる生物種にも利用可能である。
さらに、本発明は、以上説明したような生物を用いたスクリーニングに限定されるものではなく、試験管内であってもトランスレーショナル・カップリングが起こる系であればよい。例えば、大腸菌とファージを利用した試験管内転写翻訳系など、生細胞内と類似の翻訳系を試験管内に構築した場合、生細胞内と同様にトランスレーショナルカップリングが起きると推察されるが、本発明はこの様な場合にも利用可能である。この場合には、マーカー遺伝子からのタンパク質の発現の有無によって、外来挿入遺伝子断片が正しく挿入されその全長が翻訳されたベクターあるいは外来遺伝子保持ベクター、ＤＮＡあるいはＲＮＡが、これを発現しないベクターあるいは外来遺伝子保持ベクター、ＤＮＡあるいはＲＮＡと試験管内で区別できればよく、例えば、マーカー遺伝子として、例えば、蛍光を発するグリーン・フルオレッセント・プロテイン（ＧＦＰ）や、適当な基質を添加することによって発色や発光を引起こすルシフェラーゼなどのタンパク質をコードする遺伝子を用いることができる。試験管内で実施される場合においては、挿入遺伝子断片を保持するあるいは保持しない単一種あるいは複数種のベクター、ＤＮＡあるいはＲＮＡを容器あるいはカプセルなどで隔離することによって、多数の挿入遺伝子断片を保持するあるいは保持しない単一あるいは複数のベクター、ＤＮＡあるいはＲＮＡについて、一斉にスクリーニングを行うことができる。ベクターおよび挿入遺伝子断片は、ＤＮＡであってもＲＮＡであっても良く、化学合成、ＰＣＲ、転写、細胞からの抽出など、適当な手段によって用意される。ただし、ＲＮＡを用いる場合には、転写翻訳系とともに逆転写系を共存させることが必要である。
以下に本発明の実施例を示すが、本発明は実施例により限定されるものではない。
【００３４】
【実施例１】
（１）コリシンＥ３およびイミュニティＥ３遺伝子（配列番号１４）を有するプラスミドｐＳＨ３５０（（１）Ｔｏｂａ，Ｍ．，  Ｍａｓａｋｉ，Ｈ．，  ＆  Ｏｈｔａ，Ｔ．；  Ｐｒｉｍａｒｙ  ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ  ｏｆ  ｔｈｅ  ＣｏｌＥ２−Ｐ９，ａｎｄ  ＣｏｌＥ３−ＣＡ３８  ｌｙｓｉｓ  ｇｅｎｅｓ．  Ｊ．  Ｂｉｏｃｈｅｍ．，  ９９，（２），５９１−５９６，１９８６．  （２）Ａｋｕｔｓｕ，Ａ．，  ｅｔａｌ．  Ｊ．  Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．，  １７１，  ６４３０−６４３６，  １９８９．）を鋳型として、下記の２回のＰＣＲによって、所定のＤＮＡ断片を得た。このＰＣＲにおいては、１ｓｆｎ−ｔｇａｔｇ−ｉｍｍ、２ｓｆｎ−ｔｇａｔｇ−ｉｍｍ、３ｓｆｎ−ｔｇａｔｇ−ｉｍｍ、ＩｍＥ３ＲＥｃｏ、Ｘｂａ−ＨＡ２、Ｘｂａ−ｔ−ＨＡ２をそれぞれ合成し、プライマーあるいは鋳型として用いた。これらの塩基配列を、ぞれぞれ、順に配列番号１、２、３、４、５、６として配列表に示した。以下の表１に１回目のＰＣＲ条件を示す。
【００３５】
【表１】
2004242583.tif 000007
上記で得られた３種類の各ＰＣＲ産物をそれぞれ鋳型として、２回目のＰＣＲを行った。
表２に２回目のＰＣＲ条件を示す。
【００３６】
【表２】
2004242583.tif 000008
上記２回のＰＣＲにより、下記の６種類のＰＣＲ産物を得た。該ＰＣＲ産物を、用いたプライマーとともに表３に示す。
【００３７】
【表３】
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【００３８】
次に、上記で得られた６種類のＰＣＲ産物をＸｂａ  ＩとＥｃｏ  Ｒ  Ｉで消化し、ｐＵＣ１９の対応する制限酵素部位にリガーゼを用いて連結した後、大腸菌ＸＬＩ−Ｂｌｕｅ  ＭＲＦ’に形質転換した。６種類のそれぞれの形質転換体よりプラスミドを回収し、ＬＩ−ＣＯＲ社製Ｍｏｄｅｌ  ４２００Ｌ  ＤＮＡシークエンサーを用いて、プラスミドに挿入されたＤＮＡ断片の配列を確認した。図２は、上記の結果得られた６種のＨＡｉｍｍシリーズのＤＮＡ断片の構造をその塩基配列中に示した図である。また、６種の挿入ＤＮＡの構造の模式図を図３に示す。この第３図中、Ｘｂａ  Ｉ、Ｓｆｉ  ＩおよびＥｃｏＲ  Ｉは、それぞれの制限酵素で切断される配列であり（第２図にその塩基配列が示されている。）、このＸｂａ  ＩとＳｆｉ  Ｉは外来遺伝子の挿入部位として設けられている。
【００３９】
また、第３図中ＨＡはＨＡ  ｔａｇをコードする配列（第２図中のＨＡ  ｔａｇ領域）を、下線部はイミュニティーＥ３遺伝子（第２図中、ＩｍｍＥ３領域）の翻訳開始コドンを示す。また、これらの挿入断片は、プラスミドベクターに由来するプロモーターおよび翻訳開始シグナルにより、転写と翻訳によって発現されるが、太文字部は、それぞれのプラスミド上の翻訳読み枠における終止コドン（ｔｇａ）示す。これら６種の挿入ＤＮＡ  断片はいずれも終止コドンとして各々を読み枠をずらした終止コドンを３個配置している。また、ＨＡｉｍｍ−１、ＨＡｉｍｍ−ｔ１、ＨＡｉｍｍ−２およびＨＡｉｍｍ−ｔ２に存在するｃｃあるいはｃは、終止コドン中翻訳読み枠をずらすための付加的な塩基配列である。また、ＨＡｉｍｍ−ｔ１  、ＨＡｉｍｍ−ｔ２  、  ＨＡｉｍｍ−ｔ３のＸｂａ  ＩとＳｆｉＩとの間に塩基配列中、太字で示したｔａａは、終止コドンであ
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造を示すとともに、挿入されるＤＮＡ断片の塩基配列中に終止コドンがある場合の結果を見るために設けたものである。一方、ＨＡｉｍｍ−１  、ＨＡｉｍｍ−２  、  ＨＡｉｍｍ−３は、挿入したＤＮＡ  断片の塩基配列中に終止コドンがない場合を想定したものである。
【００４０】
（２）０．１％グルコースあるいは０．２  ｍＭ  ＩＰＴＧ（ｉｓｏｐｒｏｐｙｌ−ｂ−Ｄ−ｔｈｉｏｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ）あるいはそのいずれも含まない３種類のＬＢ寒天培地を作製し、それぞれに、図４Ａに示されたように中央に縦線状にコリシンＥ３タンパク質を塗布した。この３種類の寒天培地のそれぞれに、図４Ａに示されたように各形質転換体を横線上に左から右に向けて塗布した。また、これらの形質転換体以外に、イミュニティーＥ３遺伝子を保持しないプラスミド（ｇａｌ４）、およびイミュニティーＥ３遺伝子が常に発現するように構築されたプラスミド（ＩｍＥ３）の各形質転換体をコントロールとして、上記の形質転換体と同様に塗布した。
【００４１】
上記の形質転換体を塗布した寒天培地を３７℃で一昼夜インキュベートし、縦線上に塗布されたコリシンＥ３タンパク質の両側の各形質転換体の生育を観察した。この結果を図４に示す。イミュニティーＥ３遺伝子が恒常的に発現しているプラスミド（ＩｍＥ３）を有する形質転換体は、いずれのプレートにおいても塗布された全領域にわたって旺盛に生育していた。また、イミュニティーＥ３遺伝子を持たないプラスミド（ｇａｌ４）を有する形質転換体は、コリシンＥ３が塗布された領域よりも右側にはほとんど生育が見られなかった。
【００４２】
一方、ＨＡｉｍｍシリーズのプラスミドを有する各形質転換体については、グルコース、ＩＰＴＧの存在下・非存在下に関らず、いずれの場合にも、Ｘｂａ  ＩとＳｆｉ  Ｉの間に、プラスミドの読み枠と一致する翻訳終止コドン（ｔａａ）が存在しない場合（ＨＡｉｍｍ−１、ＨＡｉｍｍ−２およびＨＡｉｍｍ−３）の方が、存在する場合（ＨＡｉｍｍ−ｔ１、ＨＡｉｍｍ−ｔ２およびＨＡｉｍｍ−ｔ３）に比較して、その生育が明確に良好であった。特に、ＩＰＴＧによって転写を誘導した場合においては、この翻訳終止コドンが存在しない場合にはイミュニティーＥ３遺伝子を恒常的に発現するプラスミドを保持する形質転換体と同等の生育を示したのに対して、この翻訳終止コドン（ｔａａ）が存在する場合にはほとんど生育が見られなかった。
【００４３】
以上により、本発明によって製作されたプラスミドは、Ｘｂａ  ＩおよびＳｆｉ  Ｉサイトをクローニング部位として用いることにより、この間に挿入されたＤＮＡ断片の全長が翻訳された場合にのみ、生育が可能であることが示された。
【００４４】
【実施例２】
ｐＨＮ３０１プラスミドを鋳型として、３Ｓｆｎ−ｔｇａｔｇ−ｉｍｍ（配列番号３）とＩｍＥ３ＮｏｔＥｃｏ（配列番号１５）のプライマーペアーを用いてＰＣＲを行った。次に、このＰＣＲ産物を２０倍希釈して鋳型とし、ＳｆｉＴＡＡ（配列番号１６）とＩｍＥ３ＮｏｔＥｃｏ（配列番号１５）のプライマーペアーを用いてＰＣＲを行った。さらに、このＰＣＲ産物を２０倍希釈して鋳型とし、ＢａｍＳｆｉ（配列番号１７）とＩｍＥ３ＮｏｔＥｃｏ（配列番号１５）のプライマーペアーを用いてＰＣＲを行った。上記の合計３回のＰＣＲにより、ＩｍＥ３Ｓｆｉ２の配列（配列番号１８）よりなるＤＮＡ断片を得た。なお、３回のＰＣＲは全て下記表４に示す温度条件を用いた。
【００４５】
【表４】
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【００４６】
得られたＩｍＥ３Ｓｆｉ２（配列番号１８）断片の構造を図５に示す。ＩｍＥ３Ｓｆｉ２は、その両末端側にＢａｍＨＩとＥｃｏＲＩの認識部位を有し、ＢａｍＨＩサイトの下流側に外来遺伝子の挿入部位である２つのＳｆｉＩ認識部位を有し、この間にそれぞれ読み枠をずらした３個の終止コドン（ＴＡＡ）を配置している。２個目のＳｆｉＩの下流側は３個の終止コドン（ＴＧＡ）を介してイミュニテイ遺伝子（Ｉｍｍｕｎｉｔｙ  Ｅ３）に連結している。３番目の終止コドンとイミュニテイ遺伝子（Ｉｍｍｕｎｉｔｙ  Ｅ３）の開始コドン（ＡＴＧ）は読み枠をずらせて重複して配置されている。
【００４７】
このＤＮＡ断片をＢａｍＨＩとＥｃｏＲＩで消化し、ｐＵＣ１９の対応する制限酵素部位にリガーゼを用いて連結した後、大腸菌ＸＬＩ−Ｂｌｕｅ  ＭＲＦ’に形質転換した。形質転換体よりプラスミドを回収し、ＬＩ−ＣＯＲ社製Ｍｏｄｅｌ  ４２００Ｌ  ＤＮＡシークエンサーを用いて、プラスミドに挿入されたＤＮＡ断片の配列を確認した。こうして得られた正しい塩基配列を有するプラスミドをｐＴＬＣと命名した。このプラスミドｐＴＬＣの構造を図６に示す。図中の記号は図５と同様である。
【００４８】
次に、このベクターの評価用の挿入断片として、アビジン遺伝子を有するＤＮＡ断片であって、配列中に停止コドンを有しないＡｖｄ１Ｓｆｉ２（配列番号１９）、Ａｖｄ２Ｓｆｉ２（配列番号２０）、Ａｖｄ３Ｓｆｉ２（配列番号２１）、および停止コドンを有するＡｖｄ１Ｓｆｉ２−ｔ（配列番号２２）、Ａｖｄ２Ｓｆｉ２−ｔ（配列番号２３）、Ａｖｄ３Ｓｆｉ２−ｔ（配列番号２４）を作製した。これらＡｖｄＳｆｉシリーズの構造を、図７に示す。すなわち図７中、Ｓｆｉ  ＩはｐＴＬＣベクターに挿入するための制限酵素切断部位を、ＴＡＡは挿入断片中で翻訳が集結するように人為的に挿入された終止コドンを、−、Ｃ、ＣＣはアビジン遺伝子の翻訳がｐＴＬＣベクターに継続される場合に、翻訳が異なる読み枠となるようにするための挿入塩基を示す。以上より、Ａｖｄ１Ｓｆｉ２はｐＴＬＣベクターに継続される翻訳読み枠が１番目の挿入断片を、Ａｖｄ１Ｓｆｉ２−ｔはｐＴＬＣベクターに継続される翻訳読み枠が１番目で上記の人為的終止コドンを有する挿入断片を、Ａｖｄ２Ｓｆｉ２はｐＴＬＣベクターに継続される翻訳読み枠が２番目の挿入断片を、Ａｖｄ２Ｓｆｉ２−ｔはｐＴＬＣベクターに継続される翻訳読み枠が２番目で上記の人為的終止コドンを有する挿入断片を、Ａｖｄ３Ｓｆｉ２はｐＴＬＣベクターに継続される翻訳読み枠が３番目の挿入断片を、Ａｖｄ３Ｓｆｉ２−ｔはｐＴＬＣベクターに継続される翻訳読み枠が３番目で上記の人為的終止コドンを有する挿入断片である。
【００４９】
これらの各断片を、ｐＴＬＣベクターの対応する制限酵素部位にリガーゼを用いて連結した後、Ｂｉｏ−Ｒａｄ社  Ｇｅｎｅ  Ｐｕｌｓｅｒを用いてエレクトロポレーション法によって大腸菌ＸＬＩ−Ｂｌｕｅ  ＭＲＦ’に形質転換した。エレクトロポレーション後に、定法通り直ちにＳＯＣ培地を添加して３７℃で１時間静置した後、最終濃度が１  ｍＭとなるようにＩＰＴＧを添加して、さらに３７℃で６時間静置した。この形質転換体懸濁液に、最終濃度が１  ｍｇ／ｍｌとなるようにコリシンＥ３を添加し、各形質転換体のそれぞれ等量づつを１００  ｍｇ／ｍｌのアンピシリンと０．２  ｍＭ  ＩＰＴＧを含むＬＢ寒天培地に塗布した。また、対照として、コリシンＥ３を添加しないで同様の操作を行った。この操作により、６種類のプラスミドによる形質転換体のそれぞれについて、コリシンＥ３と添加した場合としない場合の２種類、合計１２種類の寒天培地による培養の結果を得た。さらに、外来断片を挿入していないｐＴＬＣベクターそのものの形質転換体を調製し、コリシンＥ３を線上に縦方向に塗布した寒天培地上に、これらの形質転換体を横方向に線上に塗布した。図中の１、１２、１６、４７、４８はこれらの形質転換体を表す。また、ｇａｌ４とｉｍｍＥ３は、実施例１におけるｇａｌ４とｉｍｍＥ３と同じ形質転換体を表す。この寒天培地を３７℃で一昼夜保温し、生育してきたコロニーを観察したところ、図８の結果を得た。これにより、Ａｖｄ１Ｓｆｉ２、Ａｖｄ２Ｓｆｉ２、Ａｖｄ３Ｓｆｉ２を保持する形質転換体は、Ａｖｄ１Ｓｆｉ２−ｔ、Ａｖｄ２Ｓｆｉ２−ｔ、Ａｖｄ３Ｓｆｉ２−ｔを保持する形質転換体に比較して１０〜１００倍の数のコロニーを形成した。また、ＤＮＡ断片を挿入しないｐＴＬＣベクターは、同様の操作によってコロニーを形成しなかった。以上より、ｐＴＬＣベクターは、挿入断片の全長が翻訳された場合にのみ、生育可能な形質転換体を得られることが証明された。
【００５０】
【発明の効果】
本発明は、特に発現ライブラリーの構築および利用について、翻訳の方向あるいは読み枠が正しくないことによって生じる自然界に存在しないあるいは発現が好ましくないアミノ酸配列を有するペプチド、ポリペプチドあるいはタンパク質を生産する宿主を排除することにより、正しい生理活性を有しない遺伝子のスクリーニングあるいは偽陽性のバックグラウンドが増大することを防止する。また、指示物質として宿主に対する致死物質、およびマーカー遺伝子として致死物質に対する抵抗遺伝子を用いれば、外来遺伝子断片が挿入されているクローンのみを特異的に生育させることが可能であることから、極めて効率的にスクリーニングを行うことができる。
【００５１】
【配列表】
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【００５２】
さらに、本発明によれば、試験管内であってもトランスレーショナル・カップリングが起こる系であれば利用することが可能であり、挿入遺伝子断片を保持する単一種あるいは複数種のベクター、ＤＮＡあるいはＲＮＡを容器あるいはカプセルなどで隔離することによって、多数の挿入遺伝子断片を保持する単一あるいは複数のベクター、ＤＮＡあるいはＲＮＡについて、一斉にスクリーニングを行うことができる。
【図面の簡単な説明】
【図１】マーカ遺伝子としてコリシンに対するイミュニティー遺伝子を用いて、本発明のＤＮＡマーカー材料を構築した場合および外来遺伝子を挿入した場合の各構造を示す概念図である。
【図２】実施例１において作製したＨＡｉｍｍシリーズの各ＤＮＡ断片の構造を示す図である。
【図３】実施例１において作製した挿入ＤＮＡ断片の構造を示す模式図である。
【図４】実施例１において作製された６種の挿入ＤＮＡ断片を保持する形質転換体のコリシンによる耐性を他の断片と比較して示した培養試験の結果を示す写真である。
【図５】実施例２において作製されたＩｍＥ３Ｓｆｉ２の構造を示す図である
【図６】実施例２において作製されたｐＴＬＣベクターの構造を示す図である。
【図７】実施例２において作製されたＡｖｄＳｆｉシリーズの各ＤＮＡ断片の構造を示す図である。
【図８】実施例２において作製されたＡｖｄ１Ｓｆｉ２、Ａｖｄ２Ｓｆｉ２、Ａｖｄ３Ｓｆｉ２、Ａｖｄ１Ｓｆｉ２−ｔ、Ａｖｄ２Ｓｆｉ２−ｔ、Ａｖｄ３Ｓｆｉ２−ｔを挿入したｐＴＬＣベクターを保持する形質転換体の増殖結果を表す図である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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