(57)【要約】【課題】本発明は、非グリコシル化ヘモグロビン、グリコシル化ヘモグロビンに特異的に結合するモノクローナル抗体、その製造方法、並びにそれを用いた非グリコシル化ヘモグロビン及びグリコシル化ヘモグロビンの測定方法を提供することを目的とする。【解決手段】本発明の非グリコシル化ヘモグロビンに特異的に結合するモノクローナル抗体の製造方法は、免疫原としてヒト非グリコシル化ヘモグロビン、アジュバントとしてポリリジンを用いる。本発明のグリコシル化ヘモグロビンに特異的に結合するモノクローナル抗体の製造方法は、免疫原としてヒトグリコシル化ヘモグロビン、アジュバントとしてポリバリンを用いる。【選択図】　　なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
免疫原としてヒト非グリコシル化ヘモグロビン、アジュバントとしてポリリジンを用いることを特徴とする非グリコシル化ヘモグロビンに特異的に結合するモノクローナル抗体の製造方法。
【請求項２】
免疫原としてヒトグリコシル化ヘモグロビン、アジュバントとしてポリバリンを用いることを特徴とするグリコシル化ヘモグロビンに特異的に結合するモノクローナル抗体の製造方法。
【請求項３】
請求項１記載の製造方法により得られる非グリコシル化ヘモグロビンに特異的に結合するモノクローナル抗体。
【請求項４】
請求項２記載の製造方法により得られるグリコシル化ヘモグロビンに特異的に結合するモノクローナル抗体。
【請求項５】
１つの試料中に含有される非グリコシル化ヘモグロビン及びグリコシル化ヘモグロビンを測定する方法であって、
前記試料と請求項４に記載のモノクローナル抗体を含有する抗体試薬（ｉ）とを接触させ、試料中のグリコシル化ヘモグロビンへの抗体試薬（ｉ）の結合量を測定する第１の測定工程と、
更に、請求項３に記載のモノクローナル抗体を含有する抗体試薬（ｉｉ）を接触させ、試料中の非グリコシル化ヘモグロビンへの抗体試薬（ｉｉ）の結合量を測定する第２の測定工程とを有することを特徴とする非グリコシル化ヘモグロビン及びグリコシル化ヘモグロビンの測定方法。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、非グリコシル化ヘモグロビン、グリコシル化ヘモグロビンに特異的に結合するモノクローナル抗体、その製造方法、並びにそれを用いた非グリコシル化ヘモグロビン及びグリコシル化ヘモグロビンの測定方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】
赤血球中に局在するヘモグロビンは、２本のα鎖と２本のβ鎖からなり、酸素及び二酸化炭素の運搬を担っている。このヘモグロビンは、健康な成人の血液中において、その９０％以上が非グリコシル化ヘモグロビン（ＨｂＡ０）として示される形態で存在する。これに対し、全ヘモグロビン中３〜６％の範囲で、グルコースとの非酵素的反応により生じるグリコシル化ヘモグロビンが存在する（グリコシル化ヘモグロビンをＨｂＡ１と呼び、これらの群の最も重要なものをＨｂＡ１ｃと呼ぶ）。赤血球及びＨｂＡ１は、平均して１２０日間生存する。また、血中でのＨｂＡ１量は、血液の糖濃度に依存するものの、炭水化物の富んだ食事後の短時間の血糖値上昇には依存しないため、長時間における血糖値の変化の指標となり、特に糖尿病患者に重要である炭水化物代謝をコントロールするための良好なパラメーターを提供する。
従って、血中のＨｂＡ１ｃ濃度を測定し、全ヘモグロビンに対するＨｂＡ１ｃの割合を把握することは、糖尿病の診断や、病状の程度を知る手段として有効であるといえる。
【０００３】
ところで、特定のタンパク質を検出する方法として、ガスクロマトグラフィー、液体クロマトグラフィー等による測定方法がある。しかしながら、これらの方法は、試料の調製が煩雑であるため、時間と労力がかかり作業性に問題がある。さらに、これらの機器は高価であるため、新たに機器を購入する場合、経済的負担もかかる。
【０００４】
また、上記以外の方法として、抗原抗体反応を利用して特定のタンパク質を定量する方法がある。このような測定方法では、特定のタンパク質に特異的に結合する抗体の取得が非常に重要であり、より特異的な抗体を使用すれば、感度が良好で、精度の高い測定を実施することができる。例えば、特許第２５４０３６２号公報には、合成した免疫原を用いて、ＨｂＡ１ｃに対して高い特異性を有する抗体の取得法が記載されている。
【０００５】
また、特公平７−２３８９１号公報には、特定のタンパク質に特異的に結合する抗体試薬を接触させる前に、前記タンパク質を変性してタンパク質中の線状ペプチドエピトープを露出、あるいは露出を増加することによって、特異的な抗原抗体反応を高感度に検出する方法が記載されている。
【０００６】
【発明が解決しようとする課題】
しかしながら、特許第２５４０３６２号公報に記載されている免疫原及び抗体の取得法では免疫原を合成する過程が必要であり、特公平７−２３８９１号公報に記載されている免疫アッセイでは、タンパク質を変性させる前処理が必要であり、上述した方法はいずれも煩雑な工程を含んでいる。従って、安価で、より簡便に得られる特異的抗体、その製造方法、及びそれを利用した非グリコシル化ヘモグロビン及びグリコシル化ヘモグロビンの測定方法の開発が要求されていた。
【０００７】
【課題を解決するための手段】
本発明は上記事情に鑑みてなされたものであり、本発明者らは、非グリコシル化ヘモグロビンに特異的に結合するモノクローナル抗体の製造方法において、ポリリジンをアジュバントとして用いること、グリコシル化ヘモグロビンに特異的に結合するモノクローナル抗体の製造方法において、アジュバントとしてポリバリンを用いることによって、天然抗原を用いた場合でも、特異性の高いモノクローナル抗体を簡便に得ることができ、それらを用いて非グリコシル化ヘモグロビン及びグリコシル化ヘモグロビンの定量が容易に行えることを見出し、本発明を完成した。
即ち、本発明の非グリコシル化ヘモグロビンに特異的に結合するモノクローナル抗体の製造方法は、免疫原としてヒト非グリコシル化ヘモグロビン、アジュバントとしてポリリジンを用いることを特徴とする。
本発明のグリコシル化ヘモグロビンに特異的に結合するモノクローナル抗体の製造方法は、免疫原としてヒトグリコシル化ヘモグロビン、アジュバントとしてポリバリンを用いることを特徴とする。
本発明の非グリコシル化ヘモグロビンに特異的に結合するモノクローナル抗体は上記製造方法により得られることを特徴とする。
本発明のグリコシル化ヘモグロビンに特異的に結合するモノクローナル抗体は、上記製造方法により得られることを特徴とする。
本発明の非グリコシル化ヘモグロビン及びグリコシル化ヘモグロビンの測定方法は、１つの試料中に含有される非グリコシル化ヘモグロビン及びグリコシル化ヘモグロビンを連続的に測定する方法であって、前記試料と上記グリコシル化ヘモグロビンに特異的に結合するモノクローナル抗体を含有する抗体試薬（ｉ）とを接触させ、試料中のグリコシル化ヘモグロビンへの抗体試薬（ｉ）の結合量を測定する第１の測定工程と、更に、上記非グリコシル化ヘモグロビンに特異的に結合するモノクローナル抗体を含有する抗体試薬（ｉｉ）を接触させ、試料中の非グリコシル化ヘモグロビンへの抗体試薬（ｉｉ）の結合量を測定する第２の測定工程とを有することを特徴とする。
【０００８】
【発明の実施の形態】
本発明のモノクローナル抗体は、非グリコシル化ヘモグロビン又はグリコシル化ヘモグロビンに特異的に結合するものであって、非グリコシル化ヘモグロビンに特異的に結合するモノクローナル抗体（以下、Ａｎｔｉ−ＨｂＡ０と略す）、およびグリコシル化ヘモグロビンに特異的に結合するモノクローナル抗体（以下、Ａｎｔｉ−ＨｂＡ１ｃと略す）は、特定のアジュバントを用いることにより簡便に得られる。なお、本明細書において、非グリコシル化ヘモグロビンとグリコシル化ヘモグロビンとを合わせてヘモグロビンという。
【０００９】
このようなモノクローナル抗体（Ａｎｔｉ−ＨｂＡ０及びＡｎｔｉ−ＨｂＡ１ｃ）は、後段で述べる免疫原及びアジュバントを用い、公知の方法で動物を免疫した後、当該分野で公知、あるいはそれと類似の方法で得ることができ、例えばミルシュタインらの方法（Ｎａｔｕｒｅ，２５６；４９５−４９７，１９７５）により製造することができる。以下、免疫原の入手及び製造方法、アジュバントの使用、免疫方法、ミエローマ細胞の準備調製、抗体産生細胞とミエローマ細胞との細胞融合、ハイブリドーマ（融合細胞）の選択方及びモノクローン化、モノクローナル抗体の製造方法について順次説明する。
【００１０】
〈免疫原の入手〉
本発明に用いられる免疫原としては、ヒト赤血球から精製されたヒト非グリコシル化ヘモグロビン、またはヒトグリコシル化ヘモグロビンの天然抗原や、特許第２５４０３６２号公報等に記載の合成ペプチドや、リコンビナントの非グリコシル化ヘモグロビン、リコンビナントのヒトグリコシル化ヘモグロビンを用いることができる。これらの中でも、安価で、簡便に入手できることから、天然抗原を用いることが好ましい。
上記天然抗原の精製方法としては、例えば、“ＰＵＲＩＦＩＣＡＴＩＯＮ　ＯＦ　ＧＬＹＣＡＴＥＤ　ＨＥＭＯＧＬＯＢＩＮ　ＦＲＥＥ　ＯＦ　ＨＥＭＯＧＬＯＢＩＮＡ１ｃ　ＡＮＤ　ＩＴＳ　ＵＳＥ　ＴＯ　ＰＲＯＤＵＣＥ　ＭＯＮＯＣＬＯＮＡＬ　ＡＮＴＩＢＯＤＩＥＳ　ＳＰＥＣＩＦＩＣ　ＦＯＲ　ＤＥＯＸＹＦＲＵＣＴＯＳＹＬＬＳＩＮＥ　ＲＥＳＩＤＵＥＳ　ＩＮ　ＧＬＹＣＯＨＥＭＯＧＬＯＢＩＮ”，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ　Ａｎｄ　Ｂｉｏｐｈｙｓｉｃａｌ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ　Ｃｏｍｍｕｎｉｃａｔｉｏｎｓ　２０７−２１２，　Ｖｏｌ．１７６，　Ｎｏ１，　１９９１に記載されているように、アフィニティーカラムを用いて行うことができる。
【００１１】
〈アジュバントの使用〉
本発明において、Ａｎｔｉ−ＨｂＡ０、Ａｎｔｉ−ＨｂＡ１ｃを製造する際に、免疫原と共に特定のアジュバントを用いることを特徴とする。即ち、Ａｎｔｉ−ＨｂＡ０を製造する際には、アジュバントとして分子量３０００〜５００００程度のポリリジンを用い、Ａｎｔｉ−ＨｂＡ１ｃを製造する際には、アジュバントとして分子量２０００〜７００００程度のポリバリンを用いる。
このように、本発明のＡｎｔｉ−ＨｂＡ０及びＡｎｔｉ−ＨｂＡ１ｃは、上記免疫原と共に特定のアジュバントを用いて製造されるため、従来、特異性の高い抗体を得ることが困難であった天然抗原（免疫原）を用いた場合でも、特異性の高いモノクローナル抗体を簡便に製造することができる。
【００１２】
〈免疫方法〉
動物を免疫するには、例えば村松繁、他編、実験生物学講座１４、免疫生物学、丸善株式会社、昭和６０年、日本生化学会編、続生化学実験講座５、免疫生化学研究法、東京化学同人、１９８６年、日本生化学会編、新生化学実験講座１２、分子免疫学ＩＩＩ、抗原・抗体・補体、東京化学同人、１９９２年などに記載の方法に準じて行うことができる。
免疫は、例えばＢＡＬＢ／ｃなどのマウスをはじめとする動物を使用して行われる。抗原（免疫原）の投与量は、例えばマウスに対して約１〜４００μｇ／個体で、一般には宿主動物の腹腔内や皮下に注射し、以後１〜４週間おきに、好ましくは１〜２週間おきに、腹腔内、皮下、静脈内、あるいは筋肉内に追加免疫を２〜１０回程度反復して行う。また、必要に応じて、抗体価測定系を調製し、抗体価を測定して動物免疫の程度を確認することができる。
なお、免疫用のマウスとしては、ＢＡＬＢ／ｃ系マウスの他、ＢＡＬＢ／ｃ系マウスと他系マウスとのＦ１マウスなどを用いることができる。
【００１３】
〈ミエローマ細胞の準備調製〉
細胞融合前に、まず使用されるミエローマ細胞の調製をする必要がある。細胞融合に使用される無限増殖可能株（腫瘍細胞株）としては、免疫グロブリンを産生しない細胞株から選ぶことができ、好ましくはマウスミエローマＭＯＰＣ−２１セルライン由来のＰ３−Ｘ６３−Ａｇ８−Ｕ１（Ｐ３Ｕ１、Ｃｕｒｒｅｎｔ　ｔｏｐｉｃｓｉｎ　Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．　ａｎｄ　Ｉｍｍｕｎｏｌ．，８１，１−７，１９７８）以外の細胞株、例えばＳＰ２／０−Ａｇ１４（ＳＰ２，Ｎａｔｕｒｅ，２７６，２６９−２７０，１９７８）、Ｐ３−Ｘ６３−Ａｇ８（Ｘ６３，Ｎａｔｕｒｅ，２５６，４９５−４９７，１９７５）、Ｐ３−Ｘ６３−Ａｇ８−６５３（６５３，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１２３，１５４８−１５５０，１９７９）、ＰＡＩ、ＰＡＩ−０などを用いることができる。８−アザグアニン耐性のマウスミエローマ細胞株はダルベッコＭＥＭ培地（ＤＭＥＭ培地）、ＲＰＭＩ−１６４０培地などの通常当該分野で知られた細胞培地に、例えばペニシリン、ストレプトマイシン、アミカシンなどの抗生物質、牛胎児血清（ＦＣＳ）などを加え、さらに８−アザグアニン（例えば５〜４５μｇ／ｍｌ）を加えた培地で継代されるが、細胞融合の２〜５日前に正常培地で継代して所要数の細胞株を用意することができる。また、使用細胞株は、凍結保存株を約３７℃で完全に解凍したのち、ＲＰＭＩ−１６４０培地などの正常培地で３回以上洗浄後、正常培地で培養して所要数の細胞株を用意したものであってもよい。
【００１４】
〈抗体産生細胞とミエローマ細胞との細胞融合〉
上記の免疫方法に従い免疫された動物、例えばマウスは最終免疫後、２〜５日後にその脾臓が摘出され、それから脾細胞懸濁液を得る。脾細胞の他、生体各所のリンパ節細胞を得て、それを細胞融合に使用することもできる。
こうして得られた脾細胞懸濁液と、上記の工程に従い用意されたミエローマ細胞株を、例えば最小必須培地（ＭＥＭ培地）、ＤＭＥＭ培地、ＲＰＭＩ−１６４０培地などの細胞培地中に置き、細胞融合剤、例えばポリエチレングリコールを添加する。好ましくは、例えば３０〜６０％のポリエチレングリコールを０．５〜２ｍｌ加えることができ、分子量が１，０００〜８，０００のポリエチレングリコールを用いることができ、さらに分子量が１，０００〜４，０００のポリエチレングリコールがより好ましく使用できる。融合培地中でのポリエチレングリコールの濃度は、例えば３０〜６０％となるようにすることが好ましい。必要に応じ、例えばジメチルスルホキシドなどを少量加え、融合を促進することもできる。細胞融合剤としては、この他各種当該分野で知られたものを用いることができ、このようなものとしては不活性化したセンダイウイルス（ＨＶＪ：Ｈｅｍａｇｇｌｕｔｉｎａｔｉｎｇ　ｖｉｒｕｓ　ｏｆ　Ｊａｐａｎ）なども挙げられる。融合に使用する脾細胞（リンパ球）：ミエローマ細胞株の割合は、例えば１：１〜２０：１とすることが挙げられるが、より好ましくは４：１〜７：１とすることができる。融合反応を１〜１０分間行い、次いで、ＲＰＭＩ−１６４０培地などの細胞培地を加える。融合反応処理は複数回行うこともできる。融合反応処理後、遠心などにより細胞を分離した後、選択用培地に移す。
【００１５】
〈ハイブリドーマ（融合細胞）の選択方法、モノクローン化〉
こうして得られたハイブリドーマ（融合細胞）は目的のものが選択され、そしてさらにクローン化される。選択用培地としては、例えばヒポキサンチン、アミノプテリン及びチミジンを含む、ＦＣＳ含有ＭＥＭ培地、ＲＰＭＩ−１６４０培地などの培地、所謂ＨＡＴ培地が挙げられる。選択培地交換の方法は、一般的には培養プレートに分注した容量と当容量を翌日加え、その後１〜３日ごとにＨＡＴ培地で半量ずつ交換するというようにすることができるが、適宜これに変更を加えて行うこともできる。また、融合後８〜１６日目には、アミノプテリンを除いた、所謂ＨＴ培地で１〜４日ごとに培地交換をすることができる。フィーダーとして、例えばマウス胸腺細胞を使用することもでき、それが好ましい場合がある。
ハイブリドーマの増殖の盛んな培養ウェルの培養上清を、例えば放射免疫分析（ＲＩＡ）、酵素免疫分析（ＥＬＩＳＡ）、蛍光免疫分析（ＦＩＡ）などの測定系、あるいは蛍光惹起細胞分離装置（ＦＡＣＳ）などで測定するなどしてスクリーニングする。例えば、精製抗原固相−培養上清−ＰＯＤ標識抗マウスＩｇＧの系を用いて非グリコシル化ヘモグロビン又はグリコシル化ヘモグロビン産生クローンをチェックする。そして、目的抗体を産生しているハイブリドーマをクローニングするが、クローニングには、寒天培地中でコロニーをピックアップするか、あるいは限界希釈法によりなされうる。限界希釈法でより好ましく行うことができる。クローニングは複数回行うことが好ましい。
【００１６】
〈モノクローナル抗体の製造〉
こうしてクローン化されたハイブリドーマ（融合細胞）は、培養されてモノクローナル抗体の製造に用いることができる。得られたハイブリドーマは、ＦＣＳ含有ＭＥＭ培地、ＲＰＭＩ−１６４０培地などの適当な増殖用培地中で培養し、その培地上清から所望のモノクローナル抗体を得ることができる。
また、ハイブリドーマを腹水化することにより、大量のモノクローナル抗体を得ることができる。この場合、ミエローマ細胞由来の動物と同系の組織適合性動物の腹腔内に各ハイブリドーマを移植し、増殖させるか、例えばヌードマウスなどに各ハイブリドーマを移植し、増殖させ、該動物の腹水中に産生されたモノクローナル抗体を回収して得ることができる。
使用される動物は、ハイブリドーマの移植に先立ち、プリスタン（２，６，１０，１４−テトラメチルペンタデカン）などの鉱物油を腹腔内投与しておくことができ、その処理後、ハイブリドーマを増殖させ、腹水を採取することもできる。腹水液はそのまま、あるいは従来公知の方法、例えば硫酸アンモニウム沈殿法などの塩析、セファデックスなどによるゲルろ過法、イオン交換クロマトグラフィー法、電気泳動法、透析、限外ろ過法、アフィニティクロマトグラフィー法、高速液体クロマトグラフィー法などにより精製してモノクローナル抗体として用いることができる。好ましくは、モノクローナル抗体を含有する腹水は、硫安分画した後、ＤＥＡＥ−セファロースの如き、陰イオン交換ゲル及びプロテインＡカラムの如きアフィニティーカラムなどで処理し精製分離処理できる。特に好ましくは、抗原又は抗原断片（抗体が特異的に認識する部位）を固定化したアフィニティークロマトグラフィー、プロテインＡを固定化したアフィニティークロマトグラフィーなどを用いて精製する。
【００１７】
次に、上記のようにして製造されたモノクローナル抗体を含有する抗体試薬を用いた非グリコシル化ヘモグロビン及びグリコシル化ヘモグロビンの測定方法について説明する。
本発明の非グリコシル化ヘモグロビン及びグリコシル化ヘモグロビンの測定方法は、１つの試料中に含有される非グリコシル化ヘモグロビン及びグリコシル化ヘモグロビンを測定する方法であって、試料とＡｎｔｉ−ＨｂＡ１ｃを含有する抗体試薬（ｉ）とを接触させ、試料中のグリコシル化ヘモグロビンへの抗体試薬（ｉ）の結合量を測定する第１の測定工程と、更に、Ａｎｔｉ−ＨｂＡ０を含有する抗体試薬（ｉｉ）を接触させ、試料中の非グリコシル化ヘモグロビンへの抗体試薬（ｉｉ）の結合量を測定する第２の測定工程とを有する。
【００１８】
第１の測定工程では、試料と、上記のようにして得られるＡｎｔｉ−ＨｂＡ１ｃをリン酸緩衝液などに分散させた抗体試薬（ｉ）とを接触させる。ここで、本発明で測定される試料としては、血液、あるいは血液を精製水などで溶血させた試料等が挙げられる。
このときの温度としては、２５〜４０℃、好ましくは３６〜３８℃とし、約５分間程度反応させ、例えば反応溶液の濁度などを汎用の生化学自動分析装置を用いて測定することにより、グリコシル化ヘモグロビンへの抗体試薬（ｉ）の結合量、即ち試料中のグリコシル化ヘモグロビン量を測定することができる。
【００１９】
次いで、第２測定工程では、第１の測定工程終了後の反応溶液と、上記のようにして得られるＡｎｔｉ−ＨｂＡ０をリン酸緩衝液などに分散させた抗体試薬（ｉｉ）とを接触させる。
このときの温度としては、２５〜４０℃、好ましくは３６〜３８℃とし、約５分間程度反応させ、反応溶液の濁度などを生化学自動分析装置を用いて測定する。このときの試料中の非グリコシル化ヘモグロビン量は、第２の測定工程で求めた濁度と第１の測定工程で求めた濁度との差であり、これらの測定値から容易に全ヘモグロビン中のグリコシル化されたヘモグロビンの相対比を算出できる。また、上記生化学自動分析装置の具体例としては、７１７０型自動分析装置（日立製作所）、ＭＩＲＡ（ＣＯＢＡＳ社製）等が挙げられる。
なお、本発明において、第１の測定工程で上記抗体試薬（ｉｉ）を用いて非グリコシル化ヘモグロビン量を測定後、第２の測定工程で抗体試薬（ｉ）を用いてグリコシル化ヘモグロビン量を測定し、全ヘモグロビン中のグリコシル化ヘモグロビンの相対比を算出することも可能であるが、低濃度で存在するグリコシル化ヘモグロビンを第１の測定工程で測定するほうが望ましい。
【００２０】
また、本発明において、例えばポリスチレンなどから作製された粒径が２０〜１０００ｎｍ、より好ましくは５０〜１０００ｎｍの粒子を含有するラテックスに、予めそれぞれのモノクローナル抗体を感作させたラテックス試薬を用いることができ（ここで、Ａｎｔｉ−ＨｂＡ１ｃを感作させたラテックス試薬をラテックス試薬（ｉ）、Ａｎｔｉ−ＨｂＡ０を感作させたラテックス試薬をラテックス試薬（ｉｉ）とする）、非グリコシル化ヘモグロビンに比べて低濃度で存在するグリコシル化ヘモグロビンの測定に用いられるラテックス試薬（ｉ）は、ラテックス試薬（ｉｉ）に用いるラテックスの粒径より大きな粒径を有するラテックスを用いることが好ましい。
このように、モノクローナル抗体を感作したラテックス試薬によれば、抗原抗体反応の際に、ラテックスの凝集が起こり、抗原抗体反応が増感されて検出されるため、感度の良好な結果を得ることができる。そのため、精度に優れた測定を実施することが可能となる。
【００２１】
このように、本発明の測定方法は、従来、汎用されている自動分析装置を用いることが可能なため、新たな設備コストを必要とせず、さらに短時間で精度に優れた結果を得ることができる。
【００２２】
本発明の非グリコシル化ヘモグロビン及びグリコシル化ヘモグロビンの測定方法によれば、約１０分間程度の短時間で、全ヘモグロビンに対するグリコシル化ヘモグロビンの割合を求めることができるため、糖尿病の診断、病状の監視として非常に有用であるといえる。
【００２３】
【実施例】
以下、実施例によってより具体的に説明するが、本発明はこれに限定されるものではない。
【００２４】
（製造例１）
ヒト赤血球から精製された非グリコシル化ヘモグロビンを免疫原とし、フロイントアジュバントをアジュバントとして用い、これをＢＡＬＢ／ｃマウスに免疫して、公知の方法により、モノクローナル抗体産生細胞を取得し、モノクローナル抗体を得た。
【００２５】
（製造例２）
アジュバントとして、平均分子量６６００のポリリジンを用いた以外は、製造例１と同様の方法により、モノクローナル抗体（Ａｎｔｉ−ＨｂＡ０）を得た。
【００２６】
（モノクローナル抗体の特異性の評価（Ｉ））
ヒト赤血球から精製されたヒト非グリコシル化ヘモグロビンを生理食塩で、５μｇ／ｍｌ、２．５μｇ／ｍｌ、１．２５μｇ／ｍｌ、０．６３μｇ／ｍｌ、０．３１μｇ／ｍｌ、０．１６μｇ／ｍｌ、０．０８μｇ／ｍｌに希釈した。これらの希釈系列それぞれ１００μｌに対して、０．２Ｍグリシン緩衝液（ｐＨ２．５）を１００μｌ加え、室温に５分間放置した。そこにＰＢＳ−Ｔ（０．０１Ｍリン酸緩衝液ｐＨ６．８／０．１５ＭＮａＣｌ／０．１％Ｔｗｅｅｎ２０）を８００μｌ加え攪拌したのち、その１００μｌに、製造例１又は２で得られたモノクローナル抗体（培養上清、５０倍希釈）を１００μｌ加え、室温に３０分間放置した。
次いで、そのうちの１００μｌを、あらかじめヒト非グリコシル化ヘモグロビンを固相化した９６ウェルプレート（５μｇ／ｍｌ、１００μｌを９６ウェルプレートに加え、４℃一晩放置することにより固相化し、ＰＢＳ−Ｔで４回洗浄したもの）に加え、室温で２時間反応させた。反応後、ＰＢＳ−Ｔで洗浄４回行ない、ＰＯＤ（ペルオキシダーゼ）標識抗マウスＩｇＧ抗体（「３７１１−００８１」、ＣＡＰＰＥＬ社製）（５０００倍希釈）を１００μｌ加え、室温で１時間反応させた。その後、基質溶液（０．１％ｏ−フェニレンジアミン／リン酸−クエン酸緩衝液（クエン酸１水和物７．３ｇ、リン酸２ナトリウム１２水和物２３．９ｇ、精製水１ｌ／０．００３％Ｈ２　Ｏ２）１００μｌ加え、室温で３０分間反応させた後、２Ｎ−硫酸を５０μｌ加え、酵素反応を停止させた。
これをイムノプレートリーダー（「ＭＲ５０００」、ダイナテック社製）を用いて上記酵素反応後の溶液の４９０ｎｍにおける吸光度（ＯＤ）を求めた。この結果を表１に示す。
【００２７】
（製造例３）
ヒト赤血球から精製されたグリコシル化ヘモグロビンを免疫原とし、フロイントアジュバントをアジュバントとして用い、これをＢＡＬＢ／ｃマウスに免疫して、公知の方法により、モノクローナル抗体産生細胞を取得し、モノクローナル抗体を得た。
【００２８】
（製造例４）
アジュバントとして、平均分子量５９００のポリバリンを用いた以外は、製造例３と同様の方法によりモノクローナル抗体（Ａｎｔｉ−ＨｂＡ１ｃ）を得た。
【００２９】
（モノクローナル抗体の特異性の評価（ＩＩ））
ヒト赤血球から精製されたグリコシル化ヒトヘモグロビンを生理食塩で、５μｇ／ｍｌ、２．５μｇ／ｍｌ、１．２５μｇ／ｍｌ、０．６３μｇ／ｍｌ、０．３１μｇ／ｍｌ、０．１６μｇ／ｍｌ、０．０８μｇ／ｍｌに希釈した。これらの希釈系列それぞれ１００μｌに対して、０．２Ｍグリシン緩衝液（ｐＨ２．５）を１００μｌ加え、室温に５分間放置した。そこにＰＢＳ−Ｔ（０．０１Ｍリン酸緩衝液ｐＨ６．８／０．１５ＭＮａＣｌ／０．１％Ｔｗｅｅｎ２０）を８００μｌ加え攪拌したのち、その１００μｌに、製造例３又は４で得られたモノクローナル抗体（培養上清、５０倍希釈）を１００μｌ加え、室温に３０分間放置した。
次いで、そのうちの１００μｌを、あらかじめヒトグリコシル化ヘモグロビンを固相化した９６ウェルプレート（５μｇ／ｍｌ、１００μｌを９６ウェルプレートに加え、４℃一晩放置することにより固相化し、ＰＢＳ−Ｔで４回洗浄したもの）に加え、室温で２時間反応させた。反応後、ＰＢＳ−Ｔで洗浄４回行ない、ＰＯＤ（ペルオキシダーゼ）標識抗マウスＩｇＧ抗体（「３７１１−００８１」、ＣＡＰＰＥＬ社製）（５０００倍希釈）を１００μｌ加え、室温で１時間反応させた。その後、基質溶液（０．１％ｏ−フェニレンジアミン／リン酸−クエン酸緩衝液（クエン酸１水和物７．３ｇ、リン酸２ナトリウム１２水和物２３．９ｇ、精製水１ｌ／０．００３％Ｈ２　Ｏ２　）１００μｌ加え、室温で３０分間反応させた後、２Ｎ−硫酸を５０μｌ加え、酵素反応を停止させた。
これをイムノプレートリーダー（「ＭＲ５０００」、ダイナテック社製）を用いて上記酵素反応後の溶液の４９０ｎｍにおける吸光度（ＯＤ）を求めた。この結果を表１に示す。
【００３０】
【表１】
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【００３１】
表１の結果から、アジュバントとしてポリリジン、ポリバリンを用いて製造されたモノクローナル抗体のほうが、従来使用されているフロイントアジュバントを用いて製造されたものに比べ、特異性が高いことが判明した。
【００３２】
（試験例１）
ポリスチレンから作製された粒径１１０ｎｍのラテックス粒子に、製造例４で製造されたＡｎｔｉ−ＨｂＡ１ｃを結合させて、これをｐＨ７．２のリン酸緩衝液（３５ｍＭリン酸溶液に７０ｍＭのＮａＣｌ溶液を溶解した）に分散させてラテックス試薬（ｉ）とした。
日立自動分析装置７１７０を用いて、ラテックス試薬（ｉ）３００μｌと、ヒト全血１部に精製水１００部を加えて調製した試料（試料１）８μｌとを３７℃で５分間反応させ、主波長５７０ｎｍ、副波長８００ｎｍにて、エンドポイント法でグリコシル化ヘモグロビン量を測定した。
次いで、ポリスチレンから作製された粒径７０ｍのラテックス粒子に、製造例２で製造されたＡｎｔｉ−ＨｂＡ０を結合させて、これをｐＨ７．２のリン酸緩衝液（３５ｍＭリン酸溶液に７０ｍＭのＮａＣｌ溶液を溶解した）に分散させたラテックス試薬（ｉｉ）１００μｌを加え、３７℃で５分間反応させ、主波長５７０ｎｍ、副波長８００ｎｍにてエンドポイント法で測定し、全ヘモグロビン中のグリコシル化ヘモグロビンの割合（％）を算出した。この結果を表２に示す。
【００３３】
（試験例２〜１５）
別人の１４人から採血されたヒト全血を上記と同様の方法で希釈して試料（試料２〜１５）とした以外は、試験例１と同様の方法により、全ヘモグロビン中のグリコシル化ヘモグロビンの割合（％）を算出した。この結果を表２に示す。
【００３４】
（比較試験例１）
上記試料１を用いて、ＨＰＬＣ法にてヘモグロビン及びグリコシル化ヘモグロビンを定量し、全ヘモグロビン中のグリコシル化ヘモグロビンの割合（％）を算出した。この結果を表２に示す。
【００３５】
（比較試験例２〜１５）
別人の１４人から採血されたヒト全血を上記と同様の方法で希釈して試料（試料２〜１５に対応）とした以外は、比較試験例１と同様の方法により、全ヘモグロビン中のグリコシル化ヘモグロビンの割合（％）を算出した。この結果を表２に示す。
【００３６】
【表２】
2004059477.tif 000003
【００３７】
表２の結果から、本発明の簡便で、且つ短時間で実施された測定の測定値（全ヘモグロビン中のグリコシル化ヘモグロビンの割合（％））は、試料の調製が煩雑で、時間を要するＨＰＬＣ法の測定結果と良く一致した。
【００３８】
（試験例１６）
ポリスチレンから作製された粒径８０ｎｍのラテックス粒子に、製造例４で製造されたＡｎｔｉ−ＨｂＡ１ｃを結合させて、これをｐＨ７．２のリン酸緩衝液（３５ｍＭリン酸溶液に７０ｍＭのＮａＣｌ溶液を溶解した）に分散させたものをラテックス試薬（ｉｉｉ）とした。
日立自動分析装置７１７０を用いて、ラテックス試薬（ｉｉｉ）３００μｌと、ヒト全血１部に精製水１００部を加えて調製した試料（試料１６）８μｌとを３７℃で５分間反応させ、主波長５７０ｎｍ、副波長８００ｎｍにて、エンドポイント法でグリコシル化ヘモグロビン量を測定した。
次いで、ポリスチレンから作製された粒径５２ｍのラテックス粒子に、製造例２で製造されたＡｎｔｉ−ＨｂＡ０を結合させて、これをｐＨ７．２のリン酸緩衝液（３５ｍＭリン酸溶液に７０ｍＭのＮａＣｌ溶液を溶解した）に分散させたラテックス試薬（ｉｖ）１００μｌを加え、３７℃で５分間反応させ、主波長５７０ｎｍ、副波長８００ｎｍにてエンドポイント法で測定し、全ヘモグロビン中のグリコシル化ヘモグロビンの割合（％）を算出した。この結果を表３に示す。
【００３９】
（試験例１７〜２１）
別人の５人から採血されたヒト全血を上記と同様の方法で希釈して試料（試料１７〜２１）とした以外は、試験例１６と同様の方法により、全ヘモグロビン中のグリコシル化ヘモグロビンの割合（％）を算出した。この結果を表３に示す。
【００４０】
（比較試験例１６）
上記試料１６を用いて、ＨＰＬＣ法にてヘモグロビン及びグリコシル化ヘモグロビンを定量し、全ヘモグロビン中のグリコシル化ヘモグロビンの割合（％）を算出した。この結果を表３に示す。
【００４１】
（比較試験例１７〜２１）
別人の５人から採血されたヒト全血を上記と同様の方法で希釈して試料（試料１７〜２１に対応）とした以外は、比較試験例１６と同様の方法により、全ヘモグロビン中のグリコシル化ヘモグロビンの割合（％）を算出した。この結果を表３に示す。
【００４２】
【表３】
2004059477.tif 000004
【００４３】
表２の結果と同様に、本発明による測定結果とＨＰＬＣ法による測定結果とが良く一致した。
【００４４】
【発明の効果】
本発明のモノクローナル抗体の製造方法によれば、天然抗原を用いた場合でも、特異性の高いモノクローナル抗体を簡便に得ることができる。
本発明の非グリコシル化ヘモグロビン及びグリコシル化ヘモグロビンの測定方法によれば、従来、汎用されている自動分析装置を用いることが可能なため、新たな設備コストを必要とせず、さらに短時間で精度に優れた結果を得ることができる。
また、本発明の非グリコシル化ヘモグロビン及びグリコシル化ヘモグロビンの測定方法によれば、全ヘモグロビンに対するグリコシル化ヘモグロビンの割合を容易に求めることができるため、糖尿病の診断、病状の監視として非常に有用である。