(57)【要約】【課題】クローン病を反映する疾患マーカー、該疾患マーカーを利用したクローン病の検出方法、該疾患の改善に有用な薬物のスクリーニング方法を提供する。【解決手段】ＢＡＦＦ　遺伝子の塩基配列において、連続する少なくとも１５塩基を有するポリヌクレオチド及び／または該ポリヌクレオチドに相補的なポリヌクレオチドを、クローン病の疾患マーカーとして利用する。【選択図】　なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
ＢＡＦＦ　遺伝子の塩基配列において、連続する少なくとも１５塩基を有するポリヌクレオチド及び／または該ポリヌクレオチドに相補的なポリヌクレオチドからなる、クローン病の疾患マーカー。
【請求項２】
クローン病の検出においてプローブまたはプライマーとして使用される請求項１記載の疾患マーカー。
【請求項３】
下記の工程（ａ）、（ｂ）及び（ｃ）を含む、クローン病の検出方法：
（ａ）被験者の生体試料から調製されたＲＮＡまたはそれから転写された相補的ポリヌクレオチドと請求項１または２に記載の疾患マーカーとを結合させる工程、（ｂ）該疾患マーカーに結合した生体試料由来のＲＮＡまたは該ＲＮＡから転写された相補的ポリヌクレオチドを、上記疾患マーカーを指標として測定する工程、
（ｃ）上記（ｂ）の測定結果に基づいて、クローン病の罹患を判断する工程。
【請求項４】
工程（ｃ）におけるクローン病の罹患の判断が、被験者について得られる測定結果を正常者について得られる測定結果と対比して、疾患マーカーへの結合量が増大していることを指標として行われる、請求項３に記載のクローン病の検出方法。
【請求項５】
ＢＡＦＦを認識する抗体を含有する、クローン病の疾患マーカー。
【請求項６】
クローン病の検出においてプローブとして使用される請求項５記載の疾患マーカー。
【請求項７】
下記の工程（ａ）、（ｂ）及び（ｃ）を含むクローン病の検出方法：
（ａ）被験者の生体試料から調製されたタンパク質と請求項５または６に記載の疾患マーカーとを結合させる工程、
（ｂ）該疾患マーカーに結合した生体試料由来のタンパク質を、上記疾患マーカーを指標として測定する工程、
（ｃ）上記（ｂ）の測定結果に基づいて、クローン病の罹患を判断する工程。
【請求項８】
工程（ｃ）におけるクローン病の罹患の判断が、被験者について得られる測定結果を正常者について得られる測定結果と対比して、疾患マーカーへの結合量が増大していることを指標として行われる請求項７記載のクローン病の検出方法。
【請求項９】
下記の工程（ａ）、（ｂ）及び（ｃ）を含む、ＢＡＦＦ遺伝子の発現を抑制する物質のスクリーニング方法：
（ａ）被験物質とＢＡＦＦ遺伝子を発現可能な細胞とを接触させる工程、
（ｂ）被験物質を接触させた細胞におけるＢＡＦＦ遺伝子の発現量を測定し、該発現量を被験物質を接触させない対照細胞における上記に対応する遺伝子の発現量と比較する工程、
（ｃ）上記（ｂ）の比較結果に基づいて、ＢＡＦＦ遺伝子の発現量を減少させる被験物質を選択する工程。
【請求項１０】
下記の工程（ａ）、（ｂ）及び（ｃ）を含む、ＢＡＦＦの発現を抑制する物質のスクリーニング方法：
（ａ）被験物質とＢＡＦＦのいずれかを発現可能な細胞とを接触させる工程、
（ｂ）被験物質を接触させた細胞におけるＢＡＦＦの発現量を測定し、該発現量を被験物質を接触させない対照細胞における上記に対応するタンパク質の発現量と比較する工程、
（ｃ）上記（ｂ）の比較結果に基づいて、ＢＡＦＦの発現量を減少させる被験物質を選択する工程。
【請求項１１】
下記の工程（ａ）、（ｂ）及び（ｃ）を含む、ＢＡＦＦの機能または活性を抑制する物質のスクリーニング方法：
（ａ）被験物質をＢＡＦＦに接触させる工程、
（ｂ）上記（ａ）の工程に起因して生じるＢＡＦＦの機能または活性を測定し、該機能または活性を被験物質を接触させない場合のＢＡＦＦの機能または活性と比較する工程、
（ｃ）上記（ｂ）の比較結果に基づいて、ＢＡＦＦの機能または活性の低下をもたらす被験物質を選択する工程。
【請求項１２】
下記の工程（ａ）、（ｂ）及び（ｃ）を含む、ＢＡＦＦの細胞増殖活性を抑制する物質のスクリーニング方法：
（ａ）　被験物質と、ＢＡＦＦ反応性細胞およびＢＡＦＦを接触させる工程、
（ｂ）　被験物質を接触させた上記細胞のＢＡＦＦによる増殖活性を測定し、該活性を被験物質を接触させない対照細胞のＢＡＦＦによる増殖活性と比較する工程、
（ｃ）　上記（ｂ）の比較結果に基づいて、上記細胞のＢＡＦＦによる増殖活性を抑制する被験物質を選択する工程。
【請求項１３】
下記の工程（ａ）、（ｂ）及び（ｃ）を含む、ＢＡＦＦのアポトーシス促進活性を抑制する物質のスクリーニング方法：
（ａ）　被験物質と、ＢＡＦＦ反応性細胞およびＢＡＦＦを接触させる工程、
（ｂ）　被験物質を接触させた上記細胞のＢＡＦＦによるアポトーシス促進活性を測定し、該活性を被験物質を接触させない対照細胞のＢＡＦＦによるアポトーシス促進活性と比較する工程、
（ｃ）　上記（ｂ）の比較結果に基づいて、上記細胞のＢＡＦＦによるアポトーシス促進活性を抑制する被験物質を選択する工程。
【請求項１４】
下記の工程（ａ）、（ｂ）及び（ｃ）を含む、受容体とＢＡＦＦの結合を抑制する物質のスクリーニング方法：
（ａ）被験物質の存在下でＢＡＦＦと受容体とを接触させる工程、
（ｂ）被験物質を接触させた受容体におけるＢＡＦＦの結合量を測定し、該結合量を被験物質を接触させない受容体における上記に対応するＢＡＦＦの結合量と比較する工程、
（ｃ）上記（ｂ）の比較結果に基づいて、ＢＡＦＦの結合量を減少させる被験物質を選択する工程。
【請求項１５】
クローン病の改善または治療剤の有効成分を探索するための方法である、請求項９乃至１４のいずれかに記載のスクリーニング方法。
【請求項１６】
ＢＡＦＦ遺伝子の発現を抑制する物質を有効成分とする、クローン病の改善または治療剤。
【請求項１７】
ＢＡＦＦ遺伝子の発現を抑制する物質が請求項９記載のスクリーニング法により得られるものである、請求項１６記載のクローン病の改善または治療剤。
【請求項１８】
ＢＡＦＦの発現量、機能または活性を抑制する物質を有効成分とする、クローン病の改善または治療剤。
【請求項１９】
ＢＡＦＦの発現量、機能または活性を抑制する物質が、請求項１０乃至１４に記載のスクリーニング法により得られるものである、請求項１８記載のクローン病の改善または治療剤。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明はクローン病の診断に有用な疾患マーカーに関する。より詳細には、本発明は、腸炎症状の進展に関連して生じるクローン病の遺伝子診断においてプライマーまたは検出プローブとして有効に利用できる疾患マーカーに関する。また本発明は、かかる疾患マーカーを利用した腸炎症状の進展に関連するクローン病の検出方法（診断方法）に関する。
【０００２】
さらに本発明は、上記疾患マーカーを利用して、腸炎症状の進展に関連して生じるクローン病の改善薬または治療薬として有効な物質をスクリーニングする方法、並びに該方法によって得られる上記物質を有効成分とするクローン病の改善薬または治療薬に関する。
【０００３】
【従来の技術】
腸は、生体の生命活動に必須である栄養分・水分を消化吸収する器官である。一方で病原体などの異物を排除するための免疫防御機能も備えており相反する性質をバランスよく制御することで生命の維持を担っている器官でもある。しかしこれら機能バランスに異常が生じると、この動的平衡状態が破綻し様々な腸疾患が引き起こされることが知られている。特に近年患者数が増加してきているクローン病などの炎症性腸疾患は、スルファサラジン等の５−アミノサリチル酸製剤やステロイド等の薬物療法では満足できる治療効果が得られておらず、そのため腸切除手術、白血球除去等で治療している状態であり、よりよい薬物が必要とされている疾患である。
【０００４】
近年、抗ＴＮＦ抗体などのタンパク製剤がクローン病の治療剤として有効であることが知られている。しかしながら高価な薬剤でありステロイド耐性の患者のみの適応であり、また効果も充分とは言えず、未だ満足できる医療状況に無いのが現状である。
さらに、個々の患者によって薬物療法への反応が異なっており、現在用いられている治療薬すべてにおいて薬物療法に反応しないクローン病患者が存在している。また、遺伝子多型と疾患感受性の解析からインターロイキン−１の多型やＮＯＤ２遺伝子の多型が疾患原因遺伝子と考えられるケースがあり、基礎医学的な研究においても個々の患者による病態発症の遺伝的背景に差異のあることが明らかになりつつある。
【０００５】
最近の医療現場では、クローン病に限らず、個々の患者の症状に合わせて治療法を的確に選択することが望まれるようになってきている。高齢化社会でのＱＯＬ（Ｑｕａｌｉｔｙ　ｏｆ　ｌｉｆｅ）向上の必要性が認識されてきた近年では、特に、万人に共通した治療ではなく、個々の患者の症状に合わせて適切な治療が施されることが強く求められている。このような所謂テイラーメイド治療を行うためには、個々の疾患について患者の症状やその原因（遺伝的背景）を的確に反映する疾患マーカーが有用であり、その探索並びに開発を目指した研究が精力的に行われているのが現状である。
【０００６】
【発明が解決しようとする課題】
本発明は、クローン病の診断及び治療に有用な疾患マーカーを提供することを目的とする。より詳細には、本発明は腸炎症状の進展に関連して生じるクローン病を特異的に反映した疾患マーカーを提供することを目的とする。さらに本発明は該疾患マーカーを利用したクローン病の検出方法（遺伝子診断方法）、該疾患の改善または治療に有用な薬物をスクリーニングする方法、並びに該疾患の改善または治療に有用な薬物を提供することを目的とする。
【０００７】
【課題を解決するための手段】
本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意研究を行っていたところ、従来はクローン病との関連が明らかではなかったＢＡＦＦ遺伝子が、クローン病患者の病変部位において、正常大腸組織やクローン病患者大腸組織に比べ発現が大きく促進されていることを見出した。さらにこの遺伝子は、消化管系および免疫系組織以外の臓器では、ほとんど発現していないことを見出した。
【０００８】
以上のように本発明者らは、消化管が傷害する自己免疫疾患と考えられているクローン病において、前記遺伝子、若しくはその発現産物（タンパク質）が、優れた疾患マーカーであるとの知見を得た。さらに、前記遺伝子の発現抑制や、当該遺伝子によりコードされるタンパク質の発現抑制や機能（活性）抑制を指標としたスクリーニング系は、新たなメカニズムに基づくクローン病の予防、改善または治療薬の探索に有効であるとの知見を得た。
本発明はかかる知見を基礎にして完成するに至ったものである。
【０００９】
すなわち、本発明は、下記に掲げるものである：
（１）ＢＡＦＦ　遺伝子の塩基配列において、連続する少なくとも１５塩基を有するポリヌクレオチド及び／または該ポリヌクレオチドに相補的なポリヌクレオチドからなる、クローン病の疾患マーカー。
（２）クローン病の検出においてプローブまたはプライマーとして使用される請求項１記載の疾患マーカー。
（３）下記の工程（ａ）、（ｂ）及び（ｃ）を含む、クローン病の検出方法：
（ａ）被験者の生体試料から調製されたＲＮＡまたはそれから転写された相補的ポリヌクレオチドと請求項１または２に記載の疾患マーカーとを結合させる工程、（ｂ）該疾患マーカーに結合した生体試料由来のＲＮＡまたは該ＲＮＡから転写された相補的ポリヌクレオチドを、上記疾患マーカーを指標として測定する工程、
（ｃ）上記（ｂ）の測定結果に基づいて、クローン病の罹患を判断する工程。
（４）工程（ｃ）におけるクローン病の罹患の判断が、被験者について得られる測定結果を正常者について得られる測定結果と対比して、疾患マーカーへの結合量が増大していることを指標として行われる、請求項３に記載のクローン病の検出方法。
（５）ＢＡＦＦを認識する抗体を含有する、クローン病の疾患マーカー。
（６）クローン病の検出においてプローブとして使用される請求項５記載の疾患マーカー。
（７）下記の工程（ａ）、（ｂ）及び（ｃ）を含むクローン病の検出方法：
（ａ）被験者の生体試料から調製されたタンパク質と請求項５または６に記載の疾患マーカーとを結合させる工程、
（ｂ）該疾患マーカーに結合した生体試料由来のタンパク質を、上記疾患マーカーを指標として測定する工程、
（ｃ）上記（ｂ）の測定結果に基づいて、クローン病の罹患を判断する工程。
（８）工程（ｃ）におけるクローン病の罹患の判断が、被験者について得られる測定結果を正常者について得られる測定結果と対比して、疾患マーカーへの結合量が増大していることを指標として行われる請求項７記載のクローン病の検出方法。
（９）下記の工程（ａ）、（ｂ）及び（ｃ）を含む、ＢＡＦＦ遺伝子の発現を抑制する物質のスクリーニング方法：
（ａ）被験物質とＢＡＦＦ遺伝子を発現可能な細胞とを接触させる工程、
（ｂ）被験物質を接触させた細胞におけるＢＡＦＦ遺伝子の発現量を測定し、該発現量を被験物質を接触させない対照細胞における上記に対応する遺伝子の発現量と比較する工程、
（ｃ）上記（ｂ）の比較結果に基づいて、ＢＡＦＦ遺伝子の発現量を減少させる被験物質を選択する工程。
（１０）下記の工程（ａ）、（ｂ）及び（ｃ）を含む、ＢＡＦＦの発現を抑制する物質のスクリーニング方法：
（ａ）被験物質とＢＡＦＦのいずれかを発現可能な細胞とを接触させる工程、
（ｂ）被験物質を接触させた細胞におけるＢＡＦＦの発現量を測定し、該発現量を被験物質を接触させない対照細胞における上記に対応するタンパク質の発現量と比較する工程、
（ｃ）上記（ｂ）の比較結果に基づいて、ＢＡＦＦの発現量を減少させる被験物質を選択する工程。
（１１）下記の工程（ａ）、（ｂ）及び（ｃ）を含む、ＢＡＦＦの機能または活性を抑制する物質のスクリーニング方法：
（ａ）被験物質をＢＡＦＦに接触させる工程、
（ｂ）上記（ａ）の工程に起因して生じるＢＡＦＦの機能または活性を測定し、該機能または活性を被験物質を接触させない場合のＢＡＦＦの機能または活性と比較する工程、
（ｃ）上記（ｂ）の比較結果に基づいて、ＢＡＦＦの機能または活性の低下をもたらす被験物質を選択する工程。
（１２）下記の工程（ａ）、（ｂ）及び（ｃ）を含む、ＢＡＦＦの細胞増殖活性を抑制する物質のスクリーニング方法：
（ａ）　被験物質と、ＢＡＦＦ反応性細胞およびＢＡＦＦを接触させる工程、
（ｂ）　被験物質を接触させた上記細胞のＢＡＦＦによる増殖活性を測定し、該活性を被験物質を接触させない対照細胞のＢＡＦＦによる増殖活性と比較する工程、
（ｃ）　上記（ｂ）の比較結果に基づいて、上記細胞のＢＡＦＦによる増殖活性を抑制する被験物質を選択する工程。
（１３）下記の工程（ａ）、（ｂ）及び（ｃ）を含む、ＢＡＦＦのアポトーシス促進活性を抑制する物質のスクリーニング方法：
（ａ）　被験物質と、ＢＡＦＦ反応性細胞およびＢＡＦＦを接触させる工程、
（ｂ）　被験物質を接触させた上記細胞のＢＡＦＦによるアポトーシス促進活性を測定し、該活性を被験物質を接触させない対照細胞のＢＡＦＦによるアポトーシス促進活性と比較する工程、
（ｃ）　上記（ｂ）の比較結果に基づいて、上記細胞のＢＡＦＦによるアポトーシス促進活性を抑制する被験物質を選択する工程。
（１４）下記の工程（ａ）、（ｂ）及び（ｃ）を含む、受容体とＢＡＦＦの結合を抑制する物質のスクリーニング方法：
（ａ）被験物質の存在下でＢＡＦＦと受容体とを接触させる工程、
（ｂ）被験物質を接触させた受容体におけるＢＡＦＦの結合量を測定し、該結合量を被験物質を接触させない受容体における上記に対応するＢＡＦＦの結合量と比較する工程、
（ｃ）上記（ｂ）の比較結果に基づいて、ＢＡＦＦの結合量を減少させる被験物質を選択する工程。
（１５）クローン病の改善または治療剤の有効成分を探索するための方法である、前記（９）乃至（１４）のいずれかに記載のスクリーニング方法。
（１６）ＢＡＦＦ遺伝子の発現を抑制する物質を有効成分とする、クローン病の改善または治療剤。
（１７）ＢＡＦＦ遺伝子の発現を抑制する物質が前記（９）記載のスクリーニング法により得られるものである、前記（１６）記載のクローン病の改善または治療剤。
（１８）ＢＡＦＦの発現量、機能または活性を抑制する物質を有効成分とする、クローン病の改善または治療剤。
（１９）ＢＡＦＦの発現量、機能または活性を抑制する物質が、前記（１０）乃至（１４）に記載のスクリーニング法により得られるものである、前記（１８）記載のクローン病の改善または治療剤。
【００１０】
上記のように、本発明によれば、クローン病の疾患マーカー、該疾患の検出系、ＢＡＦＦ遺伝子の発現を抑制する物質のスクリーニング系、ＢＡＦＦの発現、機能もしくは活性を抑制する物質のスクリーニング系、およびこれらの物質を有効成分とするクローン病の改善および治療剤が提供される。
【００１１】
本発明は、前述するように、ＢＡＦＦ遺伝子が、クローン病患者の大腸病変組織において、大腸正常組織と比較して有意に発現上昇しており、またこの遺伝子は、正常組織においては、クローン病病態関連組織である消化管系組織、およびクローン病の発症機構に関与する免疫系組織以外の臓器では、ほとんど発現していないことを見出したことに基づくものである。従って、上記遺伝子及びその発現産物〔タンパク質、（ポリ）（オリゴ）ペプチド〕は、クローン病の解明、診断、予防及び治療に有効に利用することができ、かかる利用によって医学並びに臨床学上、有用な情報や手段を得ることができる。さらに、個体（生体組織）における、上記遺伝子の発現またはその発現産物の検出、または該遺伝子の変異またはその発現不全の検出は、クローン病の解明や診断に有効に利用することができる。
【００１２】
また、上記遺伝子およびその発現産物並びにそれらからの派生物（例えば、遺伝子断片、抗体など）は、ＢＡＦＦ遺伝子の発現を抑制する物質、およびＢＡＦＦの発現量、機能もしくは活性を抑制する物質のスクリーニングに有用であり、該スクリーニングによって得られる物質は、クローン病の予防、改善および治療薬として有効である。更に、これらの遺伝子のアンチセンス核酸（アンチセンスヌクレオチド）は、クローン病の予防、改善及び治療薬として有用である。
【００１３】
【発明の実施の形態】
以下、本明細書において、アミノ酸、（ポリ）ペプチド、（ポリ）ヌクレオチドなどの略号による表示は、ＩＵＰＡＣ−ＩＵＢの規定〔ＩＵＰＡＣ−ＩＵＢ　Ｃｏｍｍｕｎｉｃａｔｉｏｎ　ｏｎ　Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ　Ｎｏｍｅｎｃｌａｔｕｒｅ，　Ｅｕｒ．　Ｊ．　Ｂｉｏｃｈｅｍ．，　１３８：　９　（１９８４）〕、「塩基配列又はアミノ酸配列を含む明細書等の作成のためのガイドライン」（日本国特許庁編）、および当該分野における慣用記号に従う。
【００１４】
本明細書において「遺伝子」または「ＤＮＡ」とは、２本鎖ＤＮＡのみならず、それを構成するセンス鎖およびアンチセンス鎖といった各１本鎖ＤＮＡを包含する趣旨で用いられる。またその長さによって特に制限されるものではない。従って、本明細書において遺伝子（ＤＮＡ）とは、特に言及しない限り、ヒトゲノムＤＮＡを含む２本鎖ＤＮＡおよびｃＤＮＡを含む１本鎖ＤＮＡ（正鎖）並びに該正鎖と相補的な配列を有する１本鎖ＤＮＡ（相補鎖）、およびこれらの断片のいずれもが含まれる。また当該「遺伝子」または「ＤＮＡ」には、特定の塩基配列（配列番号：１）で示される「遺伝子」または「ＤＮＡ」だけでなく、これらによりコードされるタンパク質と生物学的機能が同等であるタンパク質（例えば同族体（ホモログやスプライスバリアントなど）、変異体及び誘導体）をコードする「遺伝子」または「ＤＮＡ」が包含される。かかる同族体、変異体または誘導体をコードする「遺伝子」または「ＤＮＡ」としては、具体的には、後述の（１−１）項に記載のストリンジェントな条件下で、前記の配列番号：１で示される特定塩基配列の相補配列とハイブリダイズする塩基配列を有する「遺伝子」または「ＤＮＡ」を挙げることができる。
【００１５】
例えばヒト由来のタンパク質のホモログをコードする遺伝子としては、当該タンパク質をコードするヒト遺伝子に対応するマウスやラットなど他生物種の遺伝子が例示でき、これらの遺伝子（ホモログ）は、ＨｏｍｏｌｏＧｅｎｅ（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ＨｏｍｏｌｏＧｅｎｅ／）により同定することができる。具体的には、特定ヒト塩基配列をＢＬＡＳＴ（Ｐｒｏｃ．　Ｎａｔｌ．　Ａｃａｄ．　Ｓｃｉ．　ＵＳＡ　９０：５８７３−５８７７，　１９９３、ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ＢＬＡＳＴ／）にかけて一致する（Ｓｃｏｒｅが最も高く、Ｅ−ｖａｌｕｅが０でかつＩｄｅｎｔｉｔｙが１００％を示す）配列のアクセッション番号を取得する。そのアクセッション番号をＵｎｉＧｅｎｅ（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ＵｎｉＧｅｎｅ／）に入力して得られたＵｎｉＧｅｎｅ　Ｃｌｕｓｔｅｒ　ＩＤ（Ｈｓ．で示す番号）をＨｏｍｏｌｏＧｅｎｅに入力する。結果として得られた他生物種遺伝子とヒト遺伝子との遺伝子ホモログの相関を示したリストから、特定の塩基配列で示されるヒト遺伝子に対応する遺伝子（ホモログ）としてマウスやラットなど他生物種の遺伝子を選抜することができる。なお、遺伝子またはＤＮＡは、機能領域の別を問うものではなく、例えば発現制御領域、コード領域、エキソン、またはイントロンを含むことができる。
【００１６】
従って本明細書において「ＢＡＦＦ　遺伝子」または「ＢＡＦＦ　のＤＮＡ」といった用語を用いる場合、配列番号で特に指定しない限り、特定塩基配列（配列番号１）で示されるヒトＢＡＦＦ　遺伝子（ＤＮＡ）や、その同族体、変異体及び誘導体などをコードする遺伝子（ＤＮＡ）を包含する趣旨で用いられる。具体的には、配列番号：１に記載のヒトＢＡＦＦ　遺伝子（ＧｅｎＢａｎｋ　Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．　ＮＭ＿００６５７３）や、そのマウスホモログ、ラットホモログなどが包含される。
【００１７】
本明細書において「ポリヌクレオチド」とは、ＲＮＡおよびＤＮＡのいずれをも包含する趣旨で用いられる。なお、上記ＤＮＡには、ｃＤＮＡ、ゲノムＤＮＡ、及び合成ＤＮＡのいずれもが含まれる。また上記ＲＮＡには、ｔｏｔａｌ　ＲＮＡ、ｍＲＮＡ、ｒＲＮＡ、及び合成のＲＮＡのいずれもが含まれる。
【００１８】
本明細書において「タンパク質」または「（ポリ）ペプチド」には、特定のアミノ酸配列（配列番号：２）で示される「タンパク質」または「（ポリ）ペプチド」だけでなく、これらと生物学的機能が同等であることを限度として、その同族体（ホモログやスプライスバリアント）、変異体、誘導体、成熟体及びアミノ酸修飾体などが包含される。ここでホモログとしては、ヒトのタンパク質に対応するマウスやラットなど他生物種のタンパク質が例示でき、これらはＨｏｍｏｌｏＧｅｎｅ（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ＨｏｍｏｌｏＧｅｎｅ／）により同定された遺伝子の塩基配列から演繹的に同定することができる。また変異体には、天然に存在するアレル変異体、天然に存在しない変異体、及び人為的に欠失、置換、付加および挿入されることによって改変されたアミノ酸配列を有する変異体が包含される。なお、上記変異体としては、変異のないタンパク質または（ポリ）ペプチドと、少なくとも７０％、好ましくは８０％、より好ましくは９５％、さらにより好ましくは９７％相同なものを挙げることができる。またアミノ酸修飾体には、天然に存在するアミノ酸修飾体、天然に存在しないアミノ酸修飾体が包含され、具体的にはアミノ酸のリン酸化体が挙げられる。
【００１９】
従って本明細書において「ＢＡＦＦ　タンパク質」または単に「ＢＡＦＦ」といった用語を用いる場合、配列番号で特に指定しない限り、特定アミノ酸配列（配列番号２）で示されるヒトＢＡＦＦやその同族体、変異体、誘導体、成熟体及びアミノ酸修飾体などを包含する趣旨で用いられる。具体的には、配列番号：２（ＧｅｎＢａｎｋ　Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．　ＮＭ＿００６５７３）に記載のアミノ酸配列を有するヒトＢＡＦＦ　や、そのマウスホモログ、ラットホモログなどが包含される。
【００２０】
本明細書でいう「抗体」には、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、キメラ抗体、一本鎖抗体、またはＦａｂフラグメントやＦａｂ発現ライブラリーによって生成されるフラグメントなどのように抗原結合性を有する上記抗体の一部が包含される。
【００２１】
さらに本明細書において「疾患マーカー」とは、クローン病の罹患の有無、罹患の程度若しくは改善の有無や改善の程度を診断するために、またクローン病の予防、改善または治療に有用な候補物質をスクリーニングするために、直接または間接的に利用されるものをいう。これには、クローン病の罹患に関連して生体内、特に大腸組織において、発現が変動する遺伝子またはタンパク質を特異的に認識し、また結合することのできる（ポリ）（オリゴ）ヌクレオチドまたは抗体が包含される。これらの（ポリ）（オリゴ）ヌクレオチドおよび抗体は、上記性質に基づいて、生体内、組織や細胞内などで発現した上記遺伝子及びタンパク質を検出するためのプローブとして、また（オリゴ）ヌクレオチドは生体内で発現した上記遺伝子を増幅するためのプライマーとして有効に利用することができる。
【００２２】
さらに本明細書において診断対象となる「生体組織」とは、クローン病に伴い本発明のＢＡＦＦ遺伝子が発現上昇する組織を指す。具体的には大腸組織及びその周辺組織などを指す。
【００２３】
以下、ＢＡＦＦ遺伝子並びにその発現産物（ＢＡＦＦ）、およびそれらの派生物について、具体的な用途を説明する。
【００２４】
（１）クローン病の疾患マーカーおよびその応用
（１−１）　ポリヌクレオチド
本発明におけるＢＡＦＦ遺伝子は、Ｂ　ＣＥＬＬ−ＡＣＴＩＶＡＴＩＮＧ　ＦＡＣＴＯＲ（Ｂ細胞活性化因子）、もしくはＴＵＭＯＲ　ＮＥＣＲＯＳＩＳ　ＦＡＣＴＯＲ　ＬＩＧＡＮＤ　ＳＵＰＥＲＦＡＭＩＬＹ，　ＭＥＭＢＥＲ　１３Ｂ　（ＴＮＦＳＦ１３Ｂ）、もしくはＢ−ＬＹＭＰＨＯＣＹＴＥ　ＳＴＩＭＵＬＡＴＯＲ　（ＢＬＹＳ）、もしくはＮＦ−　ＡＮＤ　ＡＰＯＬ−ＲＥＬＡＴＥＤ　ＬＥＵＫＯＣＹＴＥ　ＥＸＰＲＥＳＳＥＤ　ＬＩＧＡＮＤ　１　（ＴＡＬＬ１）、もしくはＴＮＦ　ＨＯＭＯＬＯＧ　ＴＨＡＴ　ＡＣＴＩＶＡＴＥＳ　ＡＰＯＰＴＯＳＩＳ，　ＮＫＦＢ，　ＡＮＤ　ＪＮＫ　（ＴＨＡＮＫ）、もしくはｚＴＮＦ４とも呼ばれる公知の遺伝子である。例えば、ヒト由来のＢＡＦＦ遺伝子としては、配列番号：１に示すポリヌクレオチドが知られており（ＲｅｆＳｅｑ　（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ：８０／ｌｏｃｕｓｌｉｎｋ／ｒｅｆｓｅｑ．ｈｔｍｌ）　Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．　ＮＭ＿００６５７３）、この収得方法についてもＭｏｏｒｅ，　Ｐ．Ａ．ら、Ｓｃｉｅｎｃｅ，　２８５，　２６０−２６３，　１９９９に記載されるように公知である。
【００２５】
本発明は、前述するように、クローン病に罹患した患者の大腸組織において、正常大腸組織に比して、ＢＡＦＦ遺伝子が特異的に発現上昇しているという知見を発端に、これらの遺伝子発現の有無や発現の程度を検出することによって上記クローン病の罹患の有無や罹患の程度が特異的に検出でき、該疾患の診断を正確に行うことができるという知見に基づくものである。
【００２６】
上記ポリヌクレオチドは、従って、被験者における上記遺伝子の発現の有無またはその程度を検出することによって、該被験者がクローン病に罹患しているか否かまたはその罹患の程度を診断することのできるツール（疾患マーカー）として有用である。
また上記ポリヌクレオチドは、後述の（３−１）項に記載するようなクローン病の予防、改善または治療に有用な候補物質のスクリーニングにおいて、ＢＡＦＦ遺伝子の発現変動を検出するためのスクリーニングツール（疾患マーカー）としても有用である。
【００２７】
本発明の疾患マーカーは、前記ＢＡＦＦ遺伝子の塩基配列において、連続する少なくとも１５塩基を有するポリヌクレオチド及び／またはそれに相補的なポリヌクレオチドからなることを特徴とするものである。
【００２８】
具体的には、本発明の疾患マーカーは、配列番号１に記載のＢＡＦＦ遺伝子の塩基配列において、連続する少なくとも１５塩基を有するポリヌクレオチド及び／またはそれに相補的なポリヌクレオチドからなるものを挙げることができる。
【００２９】
ここで相補的なポリヌクレオチド（相補鎖、逆鎖）とは、前記ＢＡＦＦ遺伝子の塩基配列からなるポリヌクレオチドの全長配列、または該塩基配列において少なくとも連続した１５塩基長の塩基配列を有するその部分配列（ここでは便宜上、これらを「正鎖」ともいう）に対して、Ａ：ＴおよびＧ：Ｃといった塩基対関係に基づいて、塩基的に相補的な関係にあるポリヌクレオチドを意味するものである。ただし、かかる相補鎖は、対象とする正鎖の塩基配列と完全に相補配列を形成する場合に限らず、対象とする正鎖とストリンジェントな条件でハイブリダイズすることができる程度の相補関係を有するものであってもよい。なお、ここでストリンジェントな条件は、Ｂｅｒｇｅｒ　ａｎｄ　Ｋｉｍｍｅｌ　（１９８７，　Ｇｕｉｄｅ　ｔｏ　Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｃｌｏｎｉｎｇ　Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ　Ｍｅｔｈｏｄｓ　ｉｎ　Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ，　Ｖｏｌ．　１５２，　Ａｃａｄｅｍｉｃ　Ｐｒｅｓｓ，　Ｓａｎ　Ｄｉｅｇｏ　ＣＡ）　に教示されるように、複合体或いはプローブを結合する核酸の融解温度（Ｔｍ）に基づいて決定することができる。例えばハイブリダイズ後の洗浄条件として、通常「１×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ、３７℃」程度の条件を挙げることができる。相補鎖はかかる条件で洗浄しても対象とする正鎖とハイブリダイズ状態を維持するものであることが好ましい。特に制限されないが、より厳しいハイブリダイズ条件として「０．５×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ、４２℃」程度、さらに厳しいハイブリダイズ条件として「０．１×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ、６５℃」程度の洗浄条件を挙げることができる。具体的には、このような相補鎖として、対象の正鎖の塩基配列と完全に相補的な関係にある塩基配列からなる鎖、並びに該鎖と少なくとも９０％、好ましくは９５％の相同性を有する塩基配列からなる鎖を例示することができる。
【００３０】
ここで、正鎖側のポリヌクレオチドには、前記ＢＡＦＦ遺伝子の塩基配列、またはその部分配列を有するものだけでなく、上記相補鎖の塩基配列に対してさらに相補的な関係にある塩基配列からなる鎖を含めることができる。
【００３１】
さらに上記正鎖のポリヌクレオチド及び相補鎖（逆鎖）のポリヌクレオチドは、各々一本鎖の形態で疾患マーカーとして使用されても、また二本鎖の形態で疾患マーカーとして使用されてもよい。
【００３２】
本発明のクローン病の疾患マーカーは、具体的には、前記ＢＡＦＦ遺伝子の塩基配列（全長配列）からなるポリヌクレオチドであってもよいし、その相補配列からなるポリヌクレオチドであってもよい。またこれら本発明遺伝子もしくは該遺伝子に由来するポリヌクレオチドを選択的に（特異的に）認識するものであれば、上記全長配列またはその相補配列の部分配列からなるポリヌクレオチドであってもよい。この場合、部分配列としては、上記全長配列またはその相補配列の塩基配列から任意に選択される少なくとも１５個の連続した塩基長を有するポリヌクレオチドを挙げることができる。
【００３３】
なお、ここで「選択的に（特異的に）認識する」とは、例えばノーザンブロット法においては、ＢＡＦＦ遺伝子またはこれらに由来するポリヌクレオチドが特異的に検出できること、またＲＴ−ＰＣＲ法においては、ＢＡＦＦ遺伝子またはこれらに由来するポリヌクレオチドが特異的に生成されることを意味するが、それに限定されることなく、当業者が上記検出物または生成物がこれらの遺伝子に由来するものであると判断できるものであればよい。
【００３４】
本発明の疾患マーカーは、例えば配列番号１に記載のＢＡＦＦ遺伝子の塩基配列をもとに、例えばｐｒｉｍｅｒ　３（　ＨＹＰＥＲＬＩＮＫ　ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｇｅｎｏｍｅ．ｗｉ．ｍｉｔ．ｅｄｕ／ｃｇｉ−ｂｉｎ／ｐｒｉｍｅｒ／ｐｒｉｍｅｒ３．ｃｇｉ）あるいはベクターＮＴＩ（Ｉｎｆｏｍａｘ社製）を利用して設計することができる。具体的には前記本発明遺伝子の塩基配列を　ｐｒｉｍｅｒ　３またはベクターＮＴＩのソフトウエアにかけて得られる、プライマーまたはプローブの候補配列、若しくは少なくとも該配列を一部に含む配列をプライマーまたはプローブとして使用することができる。
【００３５】
本発明の疾患マーカーは、上述するように連続する少なくとも１５塩基の長さを有するものであればよいが、具体的にはマーカーの用途に応じて、長さを適宜選択し設定することができる。
【００３６】
（１−２）プローブまたはプライマーとしてのポリヌクレオチド
本発明においてクローン病の検出（診断）は、被験者の生体組織、特に大腸組織におけるＢＡＦＦ遺伝子の発現の有無または発現レベル（発現量）を評価することによって行われる。この場合、上記本発明の疾患マーカーは、上記遺伝子の発現によって生じたＲＮＡまたはそれに由来するポリヌクレオチドを特異的に認識し増幅するためのプライマーとして、または該ＲＮＡまたはそれに由来するポリヌクレオチドを特異的に検出するためのプローブとして利用することができる。
【００３７】
本発明疾患マーカーをクローン病の検出（遺伝子診断）においてプライマーとして用いる場合には、通常１５ｂｐ〜１００ｂｐ、好ましくは１５ｂｐ〜５０ｂｐ、より好ましくは１５ｂｐ〜３５ｂｐの塩基長を有するものが例示できる。また検出プローブとして用いる場合には、通常１５ｂｐ〜全配列の塩基数、好ましくは１５ｂｐ〜１ｋｂ、より好ましくは１００ｂｐ〜１ｋｂの塩基長を有するものが例示できる。
【００３８】
本発明の疾患マーカーは、ノーザンブロット法、ＲＴ−ＰＣＲ法、ｉｎ　ｓｉｔｕハイブリダーゼーション法などといった、特定遺伝子を特異的に検出する公知の方法において、常法に従ってプライマーまたはプローブとして利用することができる。該利用によってクローン病におけるＢＡＦＦ遺伝子の発現の有無または発現レベル（発現量）を評価することができる。
測定対象試料としては、使用する検出方法の種類に応じて、被験者の大腸組織の一部をバイオプシ等で採取するか、若しくは腸管洗浄液等から回収し、そこから常法に従って調製したｔｏｔａｌ　ＲＮＡを用いてもよいし、さらに該ＲＮＡをもとにして調製される各種のポリヌクレオチドを用いてもよい。
【００３９】
また、生体組織における本発明遺伝子の遺伝子発現レベルは、ＤＮＡチップを利用して検出あるいは定量することができる。この場合、本発明の疾患マーカーは当該ＤＮＡチップのプローブとして使用することができる（例えば、アフィメトリックス社の　Ｇｅｎｅ　Ｃｈｉｐ　Ｈｕｍａｎ　Ｇｅｎｏｍｅ　Ｕ９５　Ａ，Ｂ，Ｃ，Ｄ，Ｅの場合、２５ｂｐの長さのポリヌクレオチドプローブとして用いられる）。かかるＤＮＡチップを、生体組織から採取したＲＮＡをもとに調製される標識ＤＮＡまたはＲＮＡとハイブリダイズさせ、該ハイブリダイズによって形成された上記プローブ（本発明疾患マーカー）と標識ＤＮＡまたはＲＮＡとの複合体を、該標識ＤＮＡまたはＲＮＡの標識を指標として検出することにより、生体組織中での本発明遺伝子の発現の有無または発現レベル（発現量）が評価できる。
【００４０】
上記ＤＮＡチップは、本発明遺伝子のいずれかと結合し得る１種または２種以上の本発明疾患マーカーを含んでいれば良い。複数の疾患マーカーを含むＤＮＡチップの利用によれば、ひとつの生体試料について、同時に複数の遺伝子の発現の有無または発現レベルの評価が可能である。
【００４１】
本発明の疾患マーカーは、クローン病の診断、検出（罹患の有無や罹患の程度の診断）に有用である。具体的には、該疾患マーカーを利用したクローン病の診断は、被験者の大腸組織と正常者の大腸組織におけるＢＡＦＦ遺伝子の遺伝子発現レベルの違いを判定することによって行うことができる。この場合、遺伝子発現レベルの違いには、発現のある／なしの違いだけでなく、被験者の大腸組織と正常者の大腸組織の両者ともに発現がある場合でも、両者間の発現量の格差が２倍以上、好ましくは３倍以上の場合が含まれる。具体的にはＢＡＦＦ遺伝子はクローン病で発現誘導を示すので、被験者の大腸組織で発現しており、該発現量が正常者の大腸組織の発現量と比べて２倍以上、好ましくは３倍以上多ければ、被験者についてクローン病の罹患が疑われる。
【００４２】
（１−３）抗体
本発明は、クローン病の疾患マーカーとして、ＢＡＦＦ遺伝子の発現産物（タンパク質）（これを本明細書においては「ＢＡＦＦ」ともいう）を特異的に認識することのできる抗体を提供する。
【００４３】
ここで、ＢＡＦＦとしては配列番号１に示されるポリヌクレオチドによってコードされるタンパク質を挙げることができる。
【００４４】
なお、配列番号１に示されるポリヌクレオチドによってコードされるタンパク質の具体的様態としては配列番号２で示されるアミノ酸配列を有するタンパク質を例示することができる。
【００４５】
なお、配列番号２に示すタンパク質はヒト由来のＢＡＦＦ遺伝子によってコードされる公知のタンパク質であり、その収得方法についてもＭｏｏｒｅ，　Ｐ．Ａ．ら、Ｓｃｉｅｎｃｅ，　２８５，　２６０−２６３，　１９９９に記載されるように公知である。
【００４６】
本発明は、前述するように、クローン病に罹患した患者の大腸組織において、正常な大腸組織に比して、ＢＡＦＦ遺伝子が特異的に発現上昇しているという知見を発端に、これらの遺伝子の発現産物（タンパク質）の有無やその発現の程度を検出することによって上記クローン病の罹患の有無や罹患の程度が特異的に検出でき、該疾患の診断を正確に行うことができるという発想に基づくものである。
上記抗体は、従って、被験者における上記タンパク質の発現の有無またはその程度を検出することによって、該被験者がクローン病に罹患しているか否かまたはその疾患の程度を診断することのできるツール（疾患マーカー）として有用である。
また上記抗体は、後述の（３−２）項に記載するようなクローン病の予防、改善または治療に有用な候補物質のスクリーニングにおいて、ＢＡＦＦの発現変動を検出するためのスクリーニングツール（疾患マーカー）としても有用である。
【００４７】
本発明の抗体は、その形態に特に制限はなく、ＢＡＦＦを免疫抗原とするポリクローナル抗体であっても、またそのモノクローナル抗体であってもよい。さらにこれら本発明タンパク質のアミノ酸配列のうち少なくとも連続する、通常８アミノ酸、好ましくは１５アミノ酸、より好ましくは２０アミノ酸からなるポリペプチドに対して抗原結合性を有する抗体も、本発明の抗体に含まれる。
【００４８】
これらの抗体の製造方法は、すでに周知であり、本発明の抗体もこれらの常法に従って製造することができる（Ｃｕｒｒｅｎｔ　Ｐｒｏｔｏｃｏｌ　ｉｎ　Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｂｉｏｌｏｇｙ，　Ｃｈａｐｔｅｒ　１１．１２〜１１．１３（２０００））。具体的には、本発明の抗体がポリクローナル抗体の場合には、常法に従って大腸菌等で発現し精製したＢＡＦＦを用いて、あるいは常法に従ってこれら本発明タンパク質の部分アミノ酸配列を有するオリゴペプチドを合成して、家兎等の非ヒト動物に免疫し、該免疫動物の血清から常法に従って得ることが可能である。一方、モノクローナル抗体の場合には、常法に従って大腸菌等で発現し精製したＢＡＦＦあるいはこれらタンパク質の部分アミノ酸配列を有するオリゴペプチドをマウス等の非ヒト動物に免疫し、得られた脾臓細胞と骨髄腫細胞とを細胞融合させて調製したハイブリドーマ細胞の中から得ることができる（Ｃｕｒｒｅｎｔ　ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ　ｉｎ　Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｂｉｏｌｏｇｙ　ｅｄｉｔ．　Ａｕｓｕｂｅｌ　ｅｔ　ａｌ．　（１９８７）　Ｐｕｂｌｉｓｈ．　Ｊｏｈｎ　Ｗｉｌｅｙ　ａｎｄ　Ｓｏｎｓ．　Ｓｅｃｔｉｏｎ　１１．４〜１１．１１）。
【００４９】
抗体の作製に免疫抗原として使用されるＢＡＦＦは、本発明により提供される遺伝子の配列情報（配列番号１）に基づいて、ＤＮＡクローニング、各プラスミドの構築、宿主へのトランスフェクション、形質転換体の培養および培養物からのタンパク質の回収の操作により得ることができる。これらの操作は、当業者に既知の方法、あるいは文献記載の方法（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｃｌｏｎｉｎｇ，　Ｔ．Ｍａｎｉａｔｉｓ　ｅｔ　ａｌ．，　ＣＳＨ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　（１９８３），　ＤＮＡ　Ｃｌｏｎｉｎｇ，　ＤＭ．　Ｇｌｏｖｅｒ，　ＩＲＬ　ＰＲＥＳＳ　（１９８５））などに準じて行うことができる。
【００５０】
具体的には、ＢＡＦＦをコードする遺伝子が所望の宿主細胞中で発現できる組み換えＤＮＡ（発現ベクター）を作製し、これを宿主細胞に導入して形質転換し、該形質転換体を培養して、得られる培養物から、目的タンパク質を回収することによって、本発明抗体の製造のための免疫抗原としてのタンパク質を得ることができる。また、ＢＡＦＦの部分ペプチドは、本発明により提供されるアミノ酸配列の情報（配列番号２）に従って、一般的な化学合成法（ペプチド合成）によって製造することもできる。
【００５１】
なお、本発明のＢＡＦＦには、配列番号２に示す各アミノ酸配列に関わるタンパク質のみならず、その相同物も包含される。該相同物としては、上記配列番号２のいずれかで示されるアミノ酸配列において、１若しくは複数のアミノ酸が欠失、置換または付加されたアミノ酸配列からなり、且つ改変前の元のタンパク質と免疫学的に同等の活性を有するタンパク質を挙げることができる。
【００５２】
ここで同等の免疫学的活性を有するタンパク質としては、適当な動物あるいはその細胞において特定の免疫反応を誘発し、かつＢＡＦＦに対する抗体と特異的に結合する能力を有するタンパク質を挙げることができる。
【００５３】
なお、タンパク質におけるアミノ酸の変異数や変異部位は、その免疫学的活性が保持される限り制限はない。免疫学的活性を喪失することなくアミノ酸残基が、どのように、何個置換、挿入あるいは欠失されればよいかを決定する指標は、当業者に周知のコンピュータプログラム、例えばＤＮＡ　Ｓｔａｒ　ｓｏｆｔｗａｒｅを用いて見出すことができる。例えば変異数は、典型的には、全アミノ酸の１０％以内であり、好ましくは全アミノ酸の５％以内であり、さらに好ましくは全アミノ酸の１％以内である。また置換されるアミノ酸は、置換後に得られるタンパク質がＢＡＦＦと同等の免疫学的活性を保持している限り、特に制限されないが、タンパク質の構造保持の観点から、残基の極性、電荷、可溶性、疎水性、親水性並びに両親媒性など、置換前のアミノ酸と似た性質を有するアミノ酸であることが好ましい。例えば、Ａｌａ、Ｖａｌ、Ｌｅｕ、Ｉｌｅ、Ｐｒｏ、Ｍｅｔ、Ｐｈｅ及びＴｒｐは互いに非極性アミノ酸に分類されるアミノ酸であり、Ｇｌｙ、Ｓｅｒ、Ｔｈｒ、Ｃｙｓ、Ｔｙｒ、Ａｓｎ及びＧｌｎは互いに非荷電性アミノ酸に分類されるアミノ酸であり、Ａｓｐ及びＧｌｕは互いに酸性アミノ酸に分類されるアミノ酸であり、またＬｙｓ、Ａｒｇ及びＨｉｓは互いに塩基性アミノ酸に分類されるアミノ酸である。ゆえに、これらを指標として同群に属するアミノ酸を適宜選択することができる。
【００５４】
本発明の抗体は、また、ＢＡＦＦの部分アミノ酸配列を有するオリゴペプチドを用いて調製されるものであってよい。かかる抗体の製造のために用いられるオリゴ（ポリ）ペプチドは、機能的な生物活性を有することは要しないが、ＢＡＦＦと同様な免疫原特性を有するものであることが望ましい。好ましくはこの免疫原特性を有し、且つＢＡＦＦのアミノ酸配列において少なくとも連続する８アミノ酸、好ましくは１５アミノ酸、より好ましくは２０アミノ酸からなるオリゴ（ポリ）ペプチドを例示することができる。
【００５５】
かかるオリゴ（ポリ）ペプチドに対する抗体の製造は、宿主に応じて種々のアジュバントを用いて免疫学的反応を高めることによって行うこともできる。限定はされないが、そのようなアジュバントには、フロイントアジュバント、水酸化アルミニウムのようなミネラルゲル、並びにリゾレシチン、プルロニックポリオル、ポリアニオン、ペプチド、油乳剤、キーホールリンペットヘモシアニン及びジニトロフェノールのような表面活性物質、ＢＣＧ（カルメット−ゲラン桿菌）やコリネバクテリウム−パルヴムなどのヒトアジュバントが含まれる。
【００５６】
本発明の抗体は、ＢＡＦＦに特異的に結合する性質を有することから、該抗体を利用することによって、被験者の組織内に発現した上記タンパク質を特異的に検出することができる。すなわち、当該抗体は被験者の組織内におけるＢＡＦＦのタンパク発現の有無を検出するためのプローブとして有用である。
【００５７】
具体的には、患者の大腸組織の一部をバイオプシ等で採取、もしくは腸管洗浄液等から回収し、そこから常法に従ってタンパク質を調製して、例えばウェスタンブロット法、ＥＬＩＳＡ法など公知の検出方法において、上記抗体を常法に従ってプローブとして使用することによって、ＢＡＦＦを検出することができる。
【００５８】
クローン病の診断に際しては、被験者の大腸組織におけるＢＡＦＦのいずれか少なくとも一つと正常な大腸組織におけるこれらのタンパク質との量の違いを判定すればよい。この場合、タンパク量の違いには、タンパクのある／なし、あるいはタンパク量の違いが２倍以上、好ましくは３倍以上の場合が含まれる。具体的には、ＢＡＦＦはクローン病で発現誘導を示すので、被験者の大腸組織で該遺伝子の発現産物（ＢＡＦＦ）が存在しており、該量が正常な大腸組織の発現産物量と比べて２倍以上、好ましくは３倍以上多いことが判定されれば、クローン病の罹患が疑われる。
【００５９】
（２）クローン病の検出方法（診断方法）
本発明は、前述した本発明疾患マーカーを利用したクローン病の検出方法（診断方法）を提供するものである。
【００６０】
具体的には、本発明の検出方法（診断方法）は、被験者の大腸組織の一部をバイオプシ等で採取するか、もしくは腸管洗浄液等から回収し、そこに含まれるクローン病に関連するＢＡＦＦ遺伝子の遺伝子発現レベル、およびこれらの遺伝子に由来するタンパク質（ＢＡＦＦ）を検出し、その発現量またはそのタンパク質量を測定することにより、クローン病の罹患の有無またはその程度を診断するものである。また本発明の検出（診断）方法は、例えばクローン病患者において、該疾患の改善のために治療薬を投与した場合における、該疾患の改善の有無またはその程度を検出（診断）することもできる。
【００６１】
本発明の検出方法は次の（ａ）、（ｂ）及び（ｃ）の工程を含むものである：
（ａ）　被験者の生体試料と本発明の疾患マーカーを接触させる工程、
（ｂ）　生体試料中のＢＡＦＦ遺伝子の遺伝子発現レベル、またはＢＡＦＦのタンパク質量を、上記疾患マーカーと指標として測定する工程、
（ｃ）　（ｂ）の結果をもとに、クローン病の罹患を判断する工程。
【００６２】
ここで用いられる生体試料としては、被験者の生体組織（大腸組織及びその周辺組織など）から調製される試料を挙げることができる。具体的には、該組織から調製されるＲＮＡ含有試料、若しくはそれからさらに調製されるポリヌクレオチドを含む試料、または上記組織から調製されるタンパク質を含む試料を挙げることができる。かかるＲＮＡ、ポリヌクレオチドまたはタンパク質を含む試料は、被験者の大腸組織の一部をバイオプシ等で採取するか、もしくは腸管洗浄液等から回収し、そこから常法に従って調製することができる。
本発明の診断方法は、測定対象として用いる生体試料の種類に応じて、具体的には下記のようにして実施される。
【００６３】
（２−１）　測定対象の生体試料としてＲＮＡを利用する場合
測定対象物としてＲＮＡを利用する場合、クローン病の検出は、具体的に下記の工程（ａ）、（ｂ）及び（ｃ）を含む方法によって実施することができる：
（ａ）被験者の生体試料から調製されたＲＮＡまたはそれから転写された相補的ポリヌクレオチドと、前記本発明の疾患マーカー（ＢＡＦＦ遺伝子の塩基配列において連続する少なくとも１５塩基を有するポリヌクレオチド及び／又は該ポリヌクレオチドに相補的なポリヌクレオチド）とを結合させる工程、
（ｂ）該疾患マーカーに結合した生体試料由来のＲＮＡまたは該ＲＮＡから転写された相補的ポリヌクレオチドを、上記疾患マーカーを指標として測定する工程、
（ｃ）上記（ｂ）の測定結果に基づいて、クローン病の罹患を判断する工程。
【００６４】
測定対象物としてＲＮＡを利用する場合は、本発明の検出方法（診断方法）は、該ＲＮＡ中のＢＡＦＦ遺伝子の発現レベルを検出し、測定することによって実施される。具体的には、本発明の検出方法（診断方法）は、本発明の疾患マーカー（ＢＡＦＦ遺伝子の塩基配列において連続する少なくとも１５塩基を有するポリヌクレオチド及び／又はその相補的なポリヌクレオチド）をプライマーまたはプローブとして用いて、ノーザンブロット法、ＲＴ−ＰＣＲ法、ＤＮＡチップ解析法、ｉｎ　ｓｉｔｕハイブリダイゼーション解析法などにより前記疾患マーカーへのＲＮＡまたはその転写物の結合量が増大していることを指標として行うことにより実施できる。
【００６５】
ノーザンブロット法を利用する場合は、本発明の上記疾患マーカーをプローブとして用いることによって、ＲＮＡ中のＢＡＦＦ遺伝子の発現の有無やその発現レベルを検出、測定することができる。具体的には、本発明の疾患マーカー（相補鎖）を放射性同位元素（３２Ｐ、３３Ｐなど：ＲＩ）や蛍光物質などで標識し、それを、常法に従ってナイロンメンブレン等にトランスファーした被験者の生体組織由来のＲＮＡとハイブリダイズさせた後、形成された疾患マーカー（ＤＮＡ）とＲＮＡとの二重鎖を、疾患マーカーの標識物（ＲＩ若しくは蛍光物質）に由来するシグナルを放射線検出器（ＢＡＳ−１８００ＩＩ、富士フィルム社製）または蛍光検出器で検出、測定する方法を例示することができる。また、ＡｌｋＰｈｏｓ　Ｄｉｒｅｃｔ　Ｌａｂｅｌｌｉｎｇ　ａｎｄ　Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ　Ｓｙｓｔｅｍ　（Ａｍｅｒｓｈａｍ　ＰｈａｒａｍｃｉａＢｉｏｔｅｃｈ社製）を用いて、該プロトコールに従って疾患マーカー（プローブＤＮＡ）を標識し、被験者の生体組織由来のＲＮＡとハイブリダイズさせた後、疾患マーカーの標識物に由来するシグナルをマルチバイオイメージャーＳＴＯＲＭ８６０（Ａｍｅｒｓｈａｍ　Ｐｈａｒｍａｃｉａ　Ｂｉｏｔｅｃｈ社製）で検出、測定する方法を使用することもできる。
【００６６】
ＲＴ−ＰＣＲ法を利用する場合は、本発明の上記疾患マーカーをプライマーとして用いることによって、ＲＮＡ中のＢＡＦＦ遺伝子の発現の有無や発現レベルを検出、測定することができる。具体的には、被験者の生体組織由来のＲＮＡから常法に従ってｃＤＮＡを調製して、これを鋳型として標的のＢＡＦＦ遺伝子の領域が増幅できるように、本発明の疾患マーカーから調製した一対のプライマー（上記ｃＤＮＡ（−鎖）に結合する正鎖、＋鎖に結合する逆鎖）をこれとハイブリダイズさせて、常法に従ってＰＣＲ法を行い、得られた増幅二本鎖ＤＮＡを検出する方法を例示することができる。なお、増幅された二本鎖ＤＮＡの検出は、上記ＰＣＲを予めＲＩや蛍光物質で標識しておいたプライマーを用いて行うことによって産生される標識二本鎖ＤＮＡを検出する方法、産生された二本鎖ＤＮＡを常法に従ってナイロンメンブレン等にトランスファーさせて、標識した疾患マーカーをプローブとして使用してこれとハイブリダイズさせて検出する方法などを用いることができる。なお、生成された標識二本鎖ＤＮＡ産物はアジレント２１００バイオアナライザ（横河アナリティカルシステムズ社製）などで測定することができる。また、ＳＹＢＲ　Ｇｒｅｅｎ　ＲＴ−ＰＣＲ　Ｒｅａｇｅｎｔｓ　（Ａｐｐｌｉｅｄ　Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ　社製）で該プロトコールに従ってＲＴ−ＰＣＲ反応液を調製し、ＡＢＩ　ＰＲＩＳＭ　７７００　Ｓｅｑｕｅｎｃｅ　Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ　Ｓｙｓｔｅｍ　（Ａｐｐｌｉｅｄ　Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ　社製）で反応させて、該反応物を検出することもできる。
【００６７】
ＤＮＡチップ解析を利用する場合は、本発明の上記疾患マーカーをＤＮＡプローブ（１本鎖または２本鎖）として貼り付けたＤＮＡチップを用意し、これに被験者の生体組織由来のＲＮＡから常法によって調製されたｃＲＮＡとハイブリダイズさせて、形成されたＤＮＡとｃＲＮＡとの二本鎖を、本発明の疾患マーカーから調製される標識プローブと結合させて検出する方法を挙げることができる。また、上記ＤＮＡチップとして、ＢＡＦＦ遺伝子の遺伝子発現レベルの検出、測定が可能なＤＮＡチップを用いることもできる。かかる遺伝子の発現レベルを検出、測定することができるＤＮＡチップとしては、Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘ社のＧｅｎｅ　Ｃｈｉｐ　Ｈｕｍａｎ　Ｇｅｎｏｍｅ　Ｕ９５　Ａ，　Ｂ，Ｃ，　Ｄ，　Ｅを挙げることができる。かかるＤＮＡチップを用いた、被験者ＲＮＡ中のＢＡＦＦ遺伝子のいずれかの遺伝子発現レベルの検出、測定については、実施例において詳細に説明する。
【００６８】
（２−２）　測定対象の生体試料としてタンパク質を用いる場合
測定対象物としてタンパク質を用いる場合は、本発明のクローン病の検出方法（診断方法）は、生体試料中のＢＡＦＦのいずれかを検出し、その量を測定することによって実施される。具体的には下記の工程（ａ）、（ｂ）及び（ｃ）を含む方法によって実施することができる：
（ａ）被験者の生体試料から調製されたタンパク質と本発明の疾患マーカー（ＢＡＦＦを認識する抗体）とを結合させる工程、
（ｂ）該疾患マーカーに結合した生体試料由来のタンパク質を、上記疾患マーカーを指標として測定する工程、
（ｃ）上記（ｂ）の測定結果に基づいて、クローン病の罹患を判断する工程。
【００６９】
より具体的には、本発明のクローン病の検出方法（診断方法）は、本発明の疾患マーカー（ＢＡＦＦを認識する抗体）を用いて、ウエスタンブロット法などにより当該マーカーへのＢＡＦＦの結合量が増大していることを指標として行うことにより実施できる。
【００７０】
ウエスタンブロット法は、一次抗体として本発明疾患マーカーを用いた後、二次抗体として１２５Ｉなどの放射性同位元素、蛍光物質、ホースラディッシュペルオキシターゼ（ＨＲＰ）などの酵素等で標識した標識抗体（一次抗体に結合する抗体）を用い、得られる標識化合物の放射性同位元素、蛍光物質などに由来するシグナルを放射線測定器（ＢＡＳ−１８００ＩＩ：富士フィルム社製など）、蛍光検出器などで検出し、測定することによって実施できる。また、一次抗体として本発明疾患マーカーを用いた後、ＥＣＬ　Ｐｌｕｓ　Ｗｅｓｔｅｒｎ　Ｂｌｏｔｔｉｎｇ　Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ　Ｓｙｓｔｅｍ　（アマシャム　ファルマシアバイオテク社製）を用いて、該プロトコールに従って検出し、マルチバイオイメージャーＳＴＯＲＭ８６０（アマシャム　ファルマシアバイオテク社製）で測定することもできる。
【００７１】
なお、上記において測定対象とするＢＡＦＦの機能または活性は、既に知られており、該タンパク質の量と機能乃至活性とは一定の相関関係を有している。従って、上記タンパク質の結合量の測定に代えて、該タンパク質の機能または活性の測定を行うことによっても、本発明のクローン病の検出（診断）を実施することができる。すなわち本発明は、ＢＡＦＦの機能または活性を指標として、これを公知の方法（具体的には後述の（３−３）項を参照）に従って測定、評価することからなる、クローン病の検出（診断）方法をも包含する。
【００７２】
（２−３）クローン病の診断
クローン病の診断は、例えば、被験者の大腸組織におけるＢＡＦＦ遺伝子の遺伝子発現レベル、あるいはこれらの遺伝子の発現産物であるタンパク質（ＢＡＦＦ）の量、機能若しくは活性（以下これらを合わせて「タンパク質レベル」ということがある）を、正常な大腸組織における当該遺伝子発現レベルまたは当該タンパク質レベルと比較し、両者の違いを判定することによって行うことができる。
【００７３】
この場合、正常な大腸組織から採取調製した生体試料（ＲＮＡまたはタンパク質を含む試料）が必要であるが、これらはクローン病に罹患していない人の大腸組織をバイオプシ等で採取するか、もしくは腸管洗浄液等から回収することによって取得することができる。なお、ここでいう「クローン病に罹患していない人」とは、少なくともクローン病の自覚症状がなく、好ましくは他の検査方法、例えば内視鏡検査や、注腸Ｘ腺検査、消化管の生検などの結果、クローン病でないと診断された人をいう。なお、当該「クローン病に罹患していない人」を以下、本明細書では単に正常者という場合もある。
【００７４】
被験者の大腸組織と正常な大腸組織（クローン病に罹患していない人の大腸組織）との遺伝子発現レベルまたはタンパク質レベルの比較は、被験者の生体試料と正常者の生体試料を対象とした測定を並行して行うことで実施できる。並行して行わない場合は、複数（少なくとも２つ、好ましくは３以上、より好ましくは５以上）の正常な大腸組織を用いて均一な測定条件で測定して得られたＢＡＦＦ遺伝子の遺伝子発現レベル、若しくはこれらの遺伝子の発現産物であるタンパク質（ＢＡＦＦ）レベルの平均値または統計的中間値を、正常者の遺伝子発現レベル若しくはタンパク質の量として、比較に用いることができる。
【００７５】
被験者が、クローン病であるかどうかの判断は、該被験者の大腸組織におけるＢＡＦＦ遺伝子の遺伝子発現レベル、またはその発現産物であるタンパク質（ＢＡＦＦ）レベルが、正常者のそれらのレベルと比較して２倍以上、好ましくは３倍以上多いことを指標として行うことができる。また、被験者の上記遺伝子発現レベルまたはタンパク質レベルが、いかなる正常者のそれらのレベルに比べて多ければ、該被験者はクローン病であると判断できるか、該疾患の罹患が疑われる。
【００７６】
（３）候補薬のスクリーニング方法
（３−１）　遺伝子発現レベルを指標とするスクリーニング方法
本発明は、ＢＡＦＦ遺伝子のいずれかの発現を抑制する物質のスクリーニング方法を提供する。
【００７７】
本発明のスクリーニング方法は次の工程（ａ）、（ｂ）及び（ｃ）を含む：
（ａ）被験物質とＢＡＦＦ遺伝子を発現可能な細胞とを接触させる工程、
（ｂ）被験物質を接触させた細胞におけるＢＡＦＦ遺伝子の発現量を測定し、該発現量を被験物質を接触させない対照細胞における上記に対応する遺伝子の発現量と比較する工程、
（ｃ）上記（ｂ）の比較結果に基づいて、ＢＡＦＦ遺伝子の発現量を減少させる被験物質を選択する工程。
【００７８】
かかるスクリーニングに用いられる細胞としては、内在性および外来性を問わず、ＢＡＦＦ遺伝子を発現する培養細胞全般を挙げることができる。培養細胞においてこれら本発明遺伝子が発現しているか否かは、公知のノーザンブロット法やＲＴ−ＰＣＲ法にてこれらの遺伝子発現を検出することにより、容易に確認することができる。
【００７９】
具体的には、例えば以下の（１）〜（３）：
（１）　クローン病の動物モデルより単離、調製した腸管組織やリンパ系組織由来の細胞、
（２）　種々の刺激剤で処理又は未処理の腸管組織やリンパ系組織由来の細胞、
（３）　本発明遺伝子のいずれかを導入した細胞、
等を挙げることができる。
【００８０】
ここで前記（１）の動物モデルとしては、クローン病の動物モデルとして周知である如何なる動物モデルをも用いることができ、具体的には、（１）自然発症炎症性腸疾患（ＩＢＤ）モデル（Ｃ３Ｈ／ＨｅＪＢｉｒマウス、Ｃｏｔｔｏｎ　ｔｏｐ　ｔａｍａｒｉｎｓ等）、（２）化学物質誘発モデル（ジニトロクロロベンゼン誘発モデル（ラット）、酢酸モデル（ラット）、トリニトロスルホン酸誘発モデル（マウス、ラット、ウサギ）、デキストラン硫酸誘発モデル（マウス、ラット、ハムスター）、カラゲナン誘発モデル（ラット、モルモット）、インドメタシン誘発モデル（ラット）等）、（３）トランスジェニック、ミュータント（ＩＬ−２ノックアウトマウス、ＩＬ−１０ノックアウトマウス、ＴＣＲノックアウトマウス等）、または（４）移入モデル（ＣＤ４５ＲＢｈｉ移入ＳＣＩＤマウス等）を挙げることができる。
また前記（１）の腸管組織由来の細胞としては、好ましくは大腸（結腸）由来の初代培養細胞が挙げられる。
【００８１】
前記（２）の腸管組織やリンパ系組織由来の細胞としては、好ましくは大腸（結腸）由来の株化細胞が挙げられ、具体的には　Ｃａｃｏ−２細胞（ヒト結腸腺癌由来、ＡＴＴＣ株番号ＨＴＢ−３７）、ＨＴ−２９細胞（ヒト結腸腺癌由来、ＡＴＴＣ株番号ＨＴＢ−３８）またはＣＯＬＯ　２０５　細胞（ヒト結腸腺癌由来、ＡＴＴＣ株番号ＣＣＬ−２２２）等を挙げることができる。また前記（２）のリンパ系組織由来の細胞としては、好ましくはリンパ球、単球、マクロファージ、好中球または好酸球が挙げられる。また株化細胞としてＲＡＷ　２６４．７細胞（マウス単球由来、ＡＴＴＣ株番号ＴＩＢ−７１）、Ｕ−９３７細胞（ヒト組織球性リンパ腫由来、ＡＴＴＣ株番号ＣＲＬ−１５９３．２）、ＴＨＰ−１細胞（ヒト単球由来、ＡＴＴＣ株番号ＴＩＢ−２０２）またはＪｕｒｋａｔ細胞（ヒトＴ細胞リンパ腫由来、ＡＴＴＣ株番号ＴＩＢ−１５２）等を挙げることができる。
前記（２）において刺激剤とは、リポポリサッカライド（Ｌｉｐｏｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ　：ＬＰＳ）、ホルボールエステル（ＰＭＡ等）、カルシウムイオノフォア、サイトカイン（ＩＬ−１、ＩＬ−６、ＩＬ−１２、ＩＬ−１８、ＴＮＦα、ＩＦＮγ等）等を挙げることができる。これら刺激剤で刺激することにより細胞は炎症部位の環境により近い活性化状態になることが知られている。
【００８２】
前記（３）の遺伝子導入細胞としては、前記（１）及び（２）に挙げた細胞の他、通常遺伝子導入に用いられる宿主細胞、すなわちＣＯＰ、Ｌ、Ｃ１２７、Ｓｐ２／０、ＮＳ−１、ＮＩＨ３Ｔ３、ＳＴ２等のマウス由来細胞、ラット由来細胞、ＢＨＫ、ＣＨＯ等のハムスター由来細胞、ＣＯＳ１、ＣＯＳ３、ＣＯＳ７、ＣＶ１、Ｖｅｒｏ等のサル由来細胞、ＨｅＬａ、２９３等のヒト由来細胞、およびＳｆ９、Ｓｆ２１、Ｈｉｇｈ　Ｆｉｖｅ等の昆虫由来細胞などが例示される。
さらに、本発明のスクリーニング方法に用いられる細胞には、細胞の集合体である組織なども含まれる。
【００８３】
本発明のスクリーニング方法によってスクリーニングされる被験物質（候補物質）は、制限されないが、核酸（本発明遺伝子のアンチセンスヌクレオチドを含む）、ペプチド、タンパク質、有機化合物、無機化合物などであり、本発明スクリーニングは、具体的にはこれらの被験物質またはこれらを含む試料（被験試料）を上記細胞および／または組織と接触させることにより行われる。かかる被験試料としては、被験物質を含む細胞抽出液、遺伝子ライブラリーの発現産物、合成低分子化合物、合成ペプチド、天然化合物などが挙げられるが、これらに制限されない。
【００８４】
また本発明スクリーニングに際して、被験物質と細胞とを接触させる条件は、特に制限されないが、該細胞が死滅せず且つ本発明遺伝子を発現できる培養条件（温度、ｐＨ、培地組成など）を選択するのが好ましい。
【００８５】
実施例に示すように、クローン病に罹患した患者の大腸（結腸）組織では、正常な大腸（結腸）組織に比して、特異的にＢＡＦＦ遺伝子が発現上昇している。この知見から、これら本発明遺伝子の発現亢進はクローン病と関連していると考えられる。よって本発明のスクリーニング方法には、ＢＡＦＦ遺伝子の発現レベルを指標として、その発現を抑制する物質（発現レベルを正常レベルに戻す物質）を探索する方法が包含される。このスクリーニング方法によって、クローン病の緩和／抑制作用を有する（クローン病に対して改善／治療効果を発揮する）候補物質を提供することができる。
すなわち本発明のスクリーニング方法は、ＢＡＦＦ遺伝子の発現を抑制する物質を探索することによって、クローン病の改善薬または治療薬の有効成分となる候補物質を提供するものである。
【００８６】
候補物質の選別は、具体的にはＢＡＦＦ遺伝子が発現している細胞を用いる場合は、被験物質（候補物質）を添加した細胞における前記本発明遺伝子の発現レベルが、被験物質（候補物質）を添加しない細胞のそのレベルに比して低くなることをもって、行うことができる。また、ＢＡＦＦ遺伝子の発現に発現誘導物質を必要とする細胞を用いる場合は、発現誘導物質（例えばリポポリサッカライド（Ｌｉｐｏｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ：ＬＰＳ）、ホルボールエステル（ＰＭＡ等）、カルシウムイオノフォア、サイトカイン（ＩＬ−１、ＩＬ−６、ＩＬ−１２、ＩＬ−１８、ＴＮＦα、ＩＦＮγ等）等）によって誘導される発現が被験物質の存在によって抑制されること、すなわち発現誘導物質の存在下で被験物質を接触させた細胞の遺伝子発現が、発現誘導物質存在下で被験物質を接触させなかった対照細胞（正のコントロール）に比して低くなることを指標として、当該被験物質を候補物質として選別することができる。
【００８７】
より具体的には、例えば結腸由来細胞であるＣａｃｏ−２細胞、ＨＴ−２９細胞またはＣＯＬＯ　２０５　細胞等の細胞を用いてクローン病の改善薬または治療薬の有効成分となる候補物質をスクリーニングするには、被験物質を加えない細胞（対照細胞）と、被験物質を加えた細胞とで、ＢＡＦＦ遺伝子の発現レベルを比較し、その発現レベルの減少を指標として候補物質を選別することができる。また、リポポリサッカライド（Ｌｉｐｏｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ：ＬＰＳ）、ホルボールエステル（ＰＭＡ等）、カルシウムイオノフォア、サイトカイン（ＩＬ−１、ＩＬ−６、ＩＬ−１２、ＩＬ−１８、ＴＮＦα、ＩＦＮγ等）などの刺激剤を添加した細胞（対照細胞）と、刺激剤と被験物質とを同時に加えた細胞とで、ＢＡＦＦ遺伝子の発現レベルを比較し、その発現レベルの減少を指標として候補物質を選別することができる。また、前記刺激剤を添加して、既にＢＡＦＦ遺伝子が発現誘導された状態の細胞に被験物質を添加し、被験物質を添加しない対照細胞とで、前記本発明遺伝子の発現レベルを比較して、その発現レベルの低下を指標として候補物質を選別することもできる。
【００８８】
このような本発明のスクリーニング方法における遺伝子発現レベルの検出及び定量は、前記細胞から調製したＲＮＡまたは該ＲＮＡから転写された相補的ポリヌクレオチドと本発明の疾患マーカーとを用いて、前記（２−１）項に記述したように、ノーザンブロット法、ＲＴ−ＰＣＲ法など公知の方法、あるいはＤＮＡチップを利用する方法に従って実施できる。指標とする遺伝子発現レベルの低下（抑制、減少）の程度は、被験物質（候補物質）を接触させた細胞におけるＢＡＦＦ遺伝子の発現が、被験物質（候補物質）を接触させない対照細胞における発現量と比較して１０％、好ましくは３０％、特に好ましくは５０％以上の低下（抑制、減少）を例示することができる。
【００８９】
またＢＡＦＦ遺伝子の発現レベルの検出及び定量は、これら本発明遺伝子の発現を制御する遺伝子領域（発現制御領域）に、例えばルシフェラーゼ遺伝子などのマーカー遺伝子をつないだ融合遺伝子を導入した細胞株を用いて、マーカー遺伝子由来のタンパク質の活性を測定することによっても実施できる。本発明のＢＡＦＦ遺伝子の発現抑制物質のスクリーニング方法には、かかるマーカー遺伝子の発現量を指標として標的物質を探索する方法も包含されるものであり、この意味において、請求項９に記載する「ＢＡＦＦ遺伝子」の概念には、これら本発明遺伝子の発現制御領域とマーカー遺伝子との融合遺伝子が含まれる。
【００９０】
なお、上記マーカー遺伝子としては、発光反応や呈色反応を触媒する酵素の構造遺伝子が好ましい。具体的には、上記のルシフェラーゼ遺伝子のほか、分泌型アルカリフォスファターゼ遺伝子、クロラムフェニコール・アセチルトランスフェラーゼ遺伝子、βグルクロニダーゼ遺伝子、βガラクトシダーゼ遺伝子、及びエクオリン遺伝子などのレポーター遺伝子が例示できる。
また、ここで前記本発明遺伝子の発現制御領域は、例えば該遺伝子の転写開始部位上流約１ｋｂ、好ましくは約２ｋｂを用いることができる。
【００９１】
本発明遺伝子の発現制御領域は、例えば（ｉ）５’−ＲＡＣＥ法（例えば、５’ｆｕｌｌ　Ｒａｃｅ　Ｃｏｒｅ　Ｋｉｔ（宝酒造社製）等を用いて実施される）、オリゴキャップ法、Ｓ１プライマーマッピング等の通常の方法により、５’末端を決定するステップ；（ｉｉ）Ｇｅｎｏｍｅ　Ｗａｌｋｅｒ　Ｋｉｔ（クローンテック社製）等を用いて５’−上流領域を取得し、得られた上流領域について、プロモーター活性を測定するステップ；を含む手法等により同定することができる。また融合遺伝子の作成、およびマーカー遺伝子由来の活性測定は公知の方法で行うことができる。
【００９２】
本発明のスクリーニング方法により選別される物質は、ＢＡＦＦ遺伝子の少なくとも一種の遺伝子発現抑制剤として位置づけることができる。これらの物質が有する本発明遺伝子に対する発現抑制作用は、大腸組織障害の抑制に深く関わっているものと考えられる。よってこれらの物質は、クローン病を緩和、抑制（改善、治療）する薬物の有力な候補物質となる。
【００９３】
（３−２）タンパク質の発現量を指標とするスクリーニング方法
本発明は、ＢＡＦＦ（ＢＡＦＦタンパク質）の発現を抑制する（減少させる）物質をスクリーニングする方法を提供する。
【００９４】
本発明スクリーニング方法は、次の工程（ａ）、（ｂ）および（ｃ）を含む：
（ａ）被験物質とＢＡＦＦを発現可能な細胞とを接触させる工程、
（ｂ）被験物質を接触させた細胞における　ＢＡＦＦの発現量を測定し、該発現量を被験物質を接触させない対照細胞における上記に対応するタンパク質の発現量と比較する工程、
（ｃ）上記（ｂ）の比較結果に基づいて、ＢＡＦＦの発現量を減少させる被験物質を選択する工程。
【００９５】
本発明スクリーニングに用いられる細胞は、内在性および外来性を問わず、ＢＡＦＦ遺伝子を発現し、発現産物としてのＢＡＦＦを有する培養細胞全般を挙げることができる。ここでＢＡＦＦの発現は、遺伝子産物であるタンパク質を公知のウエスタンブロット法にて検出することにより、容易に確認することができる。該細胞としては、具体的には、前記（３−１）項の（１）〜（３）に記載したような、クローン病の疾患モデルとして用いられうる動物モデルより単離、調製した腸管組織やリンパ系組織由来の初代培養細胞、種々の刺激剤で処理した腸管組織やリンパ系組織由来の株化細胞、または本発明遺伝子のいずれかを導入した株化細胞などが挙げられる。また当該細胞の範疇には、その細胞膜画分、細胞質画分、細胞核画分なども含まれる。
【００９６】
本発明スクリーニング方法によってスクリーニングされる被験物質（候補物質）は、制限されないが、核酸（本発明遺伝子のアンチセンスヌクレオチドを含む）、ペプチド、タンパク質、有機化合物、無機化合物などであり、本発明スクリーニングは、具体的にはこれらの被験物質またはこれらを含む試料（被験試料）を上記細胞や細胞膜画分と接触させることにより行われる。かかる被験試料としては、被験物質を含む細胞抽出液、遺伝子ライブラリーの発現産物、合成低分子化合物、合成ペプチド、天然化合物などが挙げられるが、これらに制限されない。
【００９７】
実施例に示すように、クローン病に罹患した患者の大腸（結腸）組織では、正常な大腸（結腸）組織に比して、特異的にＢＡＦＦ遺伝子が発現上昇している。この知見から、これら本発明遺伝子の発現産物（タンパク質）の発現亢進はクローン病と関連していると考えられる。よって本発明のスクリーニング方法には、これらＢＡＦＦのタンパク発現レベルを指標として、その発現量を低下させる物質（発現レベルを正常レベルに戻す物質）を探索する方法が包含される。このスクリーニング方法によって、クローン病の緩和／抑制作用を有する（クローン病に対して改善／治療効果を発揮する）候補物質を提供することができる。
すなわち本発明のスクリーニング方法は、ＢＡＦＦの発現量を低下させる物質を探索することによって、クローン病の改善薬または治療薬の有効成分となる候補物質を提供するものである。
【００９８】
候補物質の選別は、具体的にはＢＡＦＦを発現産生している細胞を用いる場合は、被験物質（候補物質）を添加した細胞における前記本発明タンパク質のタンパク量（レベル）が、被験物質（候補物質）を添加しない細胞のその量（レベル）に比して低くなることを指標として、行うことができる。また、ＢＡＦＦの発現産生に発現誘導物質を必要とする細胞を用いる場合は、発現誘導物質（例えばリポポリサッカライド（Ｌｉｐｏｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ：ＬＰＳ）、ホルボールエステル（ＰＭＡ等）、カルシウムイオノフォア、サイトカイン（ＩＬ−１、ＩＬ−６、ＩＬ−１２、ＩＬ−１８、ＴＮＦα、ＩＦＮγ等）等）によって誘導される当該タンパクの産生が被験物質の存在によって抑制されること、すなわち発現誘導物質の存在下で被験物質を接触させた細胞の遺伝子発現が、発現誘導物質存在下で被験物質を接触させなかった対照細胞（正のコントロール）に比して低くなることを指標として、当該被験物質を候補物質として選別することができる。
【００９９】
より具体的には、例えば結腸由来細胞であるＣａｃｏ−２細胞、ＨＴ−２９細胞またはＣＯＬＯ　２０５　細胞等の細胞を用いてクローン病の改善薬または治療薬の有効成分となる候補物質をスクリーニングするには、被験物質を加えない細胞（対照細胞）と、被験物質を加えた細胞とで、ＢＡＦＦのタンパク質の量（レベル）を比較し、その量（レベル）の減少を指標として候補物質を選別することができる。また、リポポリサッカライド（Ｌｉｐｏｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ：ＬＰＳ）、ホルボールエステル（ＰＭＡ等）、カルシウムイオノフォア、サイトカイン（ＩＬ−１、ＩＬ−６、ＩＬ−１２、ＩＬ−１８、ＴＮＦ等）などの刺激剤を添加した細胞（対照細胞）と、刺激剤と被験物質とを同時に加えた細胞とで、ＢＡＦＦのいずれかのタンパク質の量（レベル）を比較し、その量（レベル）の低下を指標として候補物質を選別することができる。また、前記刺激剤を添加して、既にＢＡＦＦが産生された状態の細胞に被験物質を添加し、被験物質を添加しない対照細胞とで、前記本発明タンパク質の量（レベル）を比較して、その量（レベル）の低下を指標として候補物質を選別することもできる。
【０１００】
本発明のスクリーニング方法にかかるＢＡＦＦの産生量は、前述したように、例えば本発明疾患マーカーなどの抗体（例えばヒトＢＡＦＦタンパク質またはそのホモログを認識する抗体）を用いたウエスタンブロット法などの公知方法に従って定量できる。ウエスタンブロット法は、一次抗体として本発明疾患マーカーを用いた後、二次抗体として１２５Ｉなどの放射性同位元素、蛍光物質、ホースラディッシュペルオキシターゼ（ＨＲＰ）などの酵素等で標識した一次抗体に結合する抗体を用いて標識し、これら標識物質由来のシグナルを放射線測定器（ＢＡＳ−１８００ＩＩ：富士フィルム社製など）、蛍光検出器などで測定することによって実施できる。また、一次抗体として本発明疾患マーカーを用いた後、ＥＣＬ　Ｐｌｕｓ　Ｗｅｓｔｅｒｎ　Ｂｌｏｔｔｉｎｇ　Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ　Ｓｙｓｔｅｍ　（アマシャム　ファルマシアバイオテク社製）を利用して、該プロトコールに従って検出し、マルチバイオイメージャーＳＴＯＲＭ８６０（アマシャム
ファルマシアバイオテク社製）で測定することもできる。
【０１０１】
（３−３）　タンパク質の機能（活性）を指標とするスクリーニング方法
本発明は、ＢＡＦＦの機能（活性）を抑制する物質をスクリーニングする方法を提供する。本発明のスクリーニング方法は次の工程（ａ）、（ｂ）及び（ｃ）を含む：
【０１０２】
（ａ）被験物質を　ＢＡＦＦに接触させる工程、
（ｂ）上記（ａ）の工程に起因して生じるＢＡＦＦの機能または活性を測定し、該機能または活性を被験物質を接触させない場合のＢＡＦＦの機能または活性と比較する工程、（ｃ）上記（ｂ）の比較結果に基づいて、ＢＡＦＦの機能または活性の低下をもたらす被験物質を選択する工程。
【０１０３】
本発明のスクリーニング方法においては、ＢＡＦＦの公知の機能・活性に基づく如何なる機能・活性測定方法をも利用することができる。すなわち、ＢＡＦＦの公知の機能・活性測定系に被験物質を添加し、当該ＢＡＦＦの公知の機能・活性を抑制・阻害する被験物質を、クローン病に対して改善／治療効果を有する候補物質として選択するスクリーニング方法であれば、本発明のスクリーニング方法の範疇に含まれる。
【０１０４】
前記本発明のスクリーニングは、ＢＡＦＦを含む水溶液、細胞または該細胞から調製した細胞画分と、被験物質とを接触させることにより行うことができる。
【０１０５】
ここでＢＡＦＦを含む水溶液としては、例えばＢＡＦＦを含む通常の水溶液の他、このタンパク質を含む細胞溶解液、細胞破砕液、核抽出液あるいは細胞の培養上清などを例示することができる。
【０１０６】
また、本発明のスクリーニング方法に用いられる細胞としては、内在性及び外来性を問わず、ＢＡＦＦを発現し得る細胞を挙げることができる。該細胞としては、具体的には、前記（３−１）項の（１）〜（３）に記載したような、クローン病の疾患モデルとして用いられうる動物モデルより単離、調製したリンパ系組織や腸管組織由来の初代培養細胞、種々の刺激剤で処理したリンパ系組織や腸管組織由来の株化細胞、または本発明遺伝子のいずれかを導入した株化細胞などを用いることができる。
また本発明のスクリーニング方法に用いられる細胞画分とは、上記細胞に由来する各種の画分を意味し、これには、例えば細胞膜画分、細胞質画分、細胞核画分などが含まれる。
【０１０７】
前記スクリーニングにおいて用いられるＢＡＦＦは、公知のタンパク質であり、前記（１−３）に記述したように、本発明により提供される遺伝子の配列情報（配列番号１）に基づいて、ＤＮＡクローニング、各プラスミドの構築、宿主へのトランスフェクション、形質転換細胞の培養、および必要に応じて培養物からのタンパク質の回収の操作により得ることができる。これらの操作は、当業者に既知の方法、あるいは文献記載の方法（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｃｌｏｎｉｎｇ，　Ｔ．　Ｍａｎｉａｔｉｓ　ｅｔ　ａｌ．，　ＣＳＨＬａｂｏｒａｔｏｒｙ　（１９８３），　ＤＮＡ　Ｃｌｏｎｉｎｇ，　ＤＭ．　Ｇｌｏｖｅｒ，　ＩＲＬ　ＰＲＥＳＳ　（１９８５））などに準じて行うことができる。
【０１０８】
実施例に示すように、クローン病に罹患した患者の大腸（結腸）組織では、正常な大腸（結腸）組織に比して、特異的にＢＡＦＦ遺伝子が発現上昇している。この知見から、これらの遺伝子の発現産物（タンパク質）の機能（活性）亢進は、クローン病と関連していると考えられる。よって本発明のスクリーニング方法には、ＢＡＦＦの機能（活性）を指標として、該タンパク質の機能（活性）を抑制する物質を探索する方法が包含される。本発明スクリーニング方法によれば、ＢＡＦＦの機能または活性を抑制する物質を探索でき、かくしてクローン病の緩和／抑制作用を有する（クローン病に対して改善／治療効果を発揮する）候補物質が提供される。
【０１０９】
すなわち本発明のスクリーニング方法は、ＢＡＦＦの機能または活性を抑制する物質を探索することによって、クローン病の改善薬または治療薬の有効成分となる候補物質を提供するものである。
【０１１０】
本発明スクリーニング方法によってスクリーニングされる被験物質（候補物質）は、制限されないが、核酸、ペプチド、蛋白質（ＢＡＦＦに対する抗体を含む）、有機化合物、無機化合物などであり、本発明スクリーニングは、具体的にはこれらの被験物質またはこれらを含む試料（被験試料）を上記水溶液、細胞または細胞画分と接触させることにより行われる。被験試料としては、被験物質を含む、細胞抽出液、遺伝子ライブラリーの発現産物、合成低分子化合物、合成ペプチド、天然化合物などが挙げられるが、これらに制限されない。
【０１１１】
以下、本発明タンパク質の各々の機能（活性）に基づくスクリーニング方法につき例示する。
【０１１２】
ＢＡＦＦは、ＴＮＦファミリーに属し、ＴＮＦリガンドスーパーファミリーメンバー１３Ｂ、Ｂ細胞活性化因子、ＴＡＬＬ、もしくはＴＨＡＮＫとも呼ばれる。活性の測定方法としてＴＮＦの活性測定系やＢ細胞活性化の測定系を用いることができる。実際にＢＡＦＦを用いて活性を測定している論文として、Ｍｏｏｒｅ，　Ｐ．　Ａ．ら、Ｓｃｉｅｎｃｅ，　２８５，　２６０−２６３，　１９９９（Ｂ細胞の増殖活性化）や、Ｍｕｋｈｏｐａｄｈｙａｙ，　Ａら、Ｊ．　Ｂｉｏｌ．　Ｃｈｅｍ．，　　２７４，　１５９７８−１５９８１，　１９９９（ＮＦ−ｋＢ，　ＪＮＫ　活性化、がん細胞に対する細胞毒性とＣａｓｐａｓｅ−３　活性化）などが挙げられる。
【０１１３】
ＢＡＦＦの細胞増殖活性を抑制する物質のスクリーニング方法は、下記の工程（ａ）、（ｂ）及び（ｃ）を含む：
（ａ）　被験物質と、ＢＡＦＦ反応性細胞およびＢＡＦＦを接触させる工程、
（ｂ）　被験物質を接触させた上記細胞のＢＡＦＦによる増殖活性を測定し、該活性を被験物質を接触させない対照細胞のＢＡＦＦによる増殖活性と比較する工程、
（ｃ）　上記（ｂ）の比較結果に基づいて、上記細胞のＢＡＦＦによる増殖活性を抑制する被験物質を選択する工程。
ＢＡＦＦの増殖活性の測定は、例えばＢＡＦＦ反応性細胞としてＢ細胞の増殖活性を測定することにより行うことができる（Ｍｏｏｒｅ，　Ｐ．　Ａ．ら、Ｓｃｉｅｎｃｅ，　２８５，　２６０−２６３，１９９９）。
【０１１４】
ＢＡＦＦのアポトーシス促進活性を抑制する物質のスクリーニング方法は、下記の工程（ａ）、（ｂ）及び（ｃ）を含む、：
（ａ）　被験物質と、ＢＡＦＦ反応性細胞およびＢＡＦＦを接触させる工程、
（ｂ）　被験物質を接触させた上記細胞のＢＡＦＦによるアポトーシス促進活性を測定し、該活性を被験物質を接触させない対照細胞のＢＡＦＦによるアポトーシス促進活性と比較する工程、
（ｃ）　上記（ｂ）の比較結果に基づいて、上記細胞のＢＡＦＦによるアポトーシス促進活性を抑制する被験物質を選択する工程。
ＢＡＦＦのアポトーシス促進活性の測定は、例えばＢＡＦＦ反応性細胞として腫瘍細胞に対するアポトーシス誘導（Ｍｕｋｈｏｐａｄｈｙａｙ，　Ａら、Ｊ．　Ｂｉｏｌ．　Ｃｈｅｍ．，　　２７４，　１５９７８−１５９８１，　１９９９）を測定することにより行うことができる。
【０１１５】
ＢＡＦＦの受容体結合活性を抑制する物質のスクリーニング方法は、下記の工程（ａ）、（ｂ）及び（ｃ）を含む：
（ａ）　被験物質の存在下でＢＡＦＦと受容体とを接触させる工程、
（ｂ）被験物質を接触させた受容体におけるＢＡＦＦの結合量を測定し、該結合量を被験物質を接触させない受容体における上記に対応するＢＡＦＦの結合量と比較する工程、
（ｃ）上記（ｂ）の比較結果に基づいて、ＢＡＦＦの結合量を減少させる被験物質を選択する工程。
この場合の受容体とは受容体分子以外に、ＢＡＦＦ結合能を有する細胞、もしくはＢＡＦＦ結合能を有する細胞膜画分も含む。ＢＡＦＦ受容体分子としてはＢＡＦＦ−Ｒ　（ヒト；ＡＦ３７３８４６、マウス；ＡＦ３７３８４７）　、ＢＣＭＡ　（ヒト；Ｚ２９５７５、マウス；ＮＭ＿０１１６０８、ラット；ＢＦ５５９６７３）、　ＴＡＣＩ　（ヒト；ＡＦ０２３６１４、マウス；ＡＫ００４６６８）などを挙げることができる。また、ＢＡＦＦ結合能を有する細胞としては、株化細胞を含むＢ細胞（Ｍｏｏｒｅ，　Ｐ．　Ａ．ら、Ｓｃｉｅｎｃｅ，　２８５，　２６０−２６３，　１９９９）を挙げることができる。
【０１１６】
この場合、前記受容体とリガンド（ＢＡＦＦ）との結合阻害は、▲１▼受容体に結合することによって、リガンドの受容体への結合を阻害する態様のものであってもよいし、▲２▼リガンドに結合することによって、リガンドの受容体への結合を阻害する態様のものであってもよい。但し、とりわけ▲１▼の態様の場合は、受容体に結合してもリガンドと同じ作用を発揮しない被験物質を選択することが必要である。このため、上記のスクリーニング方法で選別された被験物質は更に、下記：
（ｄ）上記（ｃ）で選択された被験物質の中から、更にリガンドと同じ作用を発揮しない被験物質を選択する工程、
に供することが好ましい。
【０１１７】
本発明スクリーニングで用いる受容体は、精製物（単離物）であっても良いし、当該受容体を含有する細胞またはその細胞画分の形態であっても良い。
本発明スクリーニングで用いる受容体を含有する細胞は、当該受容体を天然に発現している細胞を用いても良いし、また当該受容体をコードする遺伝子を細胞に導入して作製した形質転換細胞を用いても良い。
【０１１８】
前記形質転換細胞は、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｃｌｏｎｉｎｇ　２ｎｄ　Ｅｄｔ．，　Ｃｏｌｄ　Ｓｐｒｉｎｇ　Ｈａｒｂｏｒ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　Ｐｒｅｓｓ　（１９８９）等の基本書に従い、当業者にとって公知の方法で調製することができる。例えば、前記受容体のｃＤＮＡをｐＣＡＧＧＳ（Ｇｅｎｅ　１０８，１９３−１９９（１９９１））、ｐｃＤＮＡ１．１、ｐｃＤＮＡ３．１誘導体（インビトロジェン社）などの公知の発現ベクターに挿入する。その後、適当な宿主に導入し、培養することにより、導入した受容体のＤＮＡに対応するタンパク質を発現させた形質転換細胞を作製することができる。宿主としては、一般的に広く普及している、ＣＨＯ細胞、Ｃ１２７細胞、ＢＨＫ２１細胞、ＣＯＳ細胞などを用いることができるが、これに限定されることなく、酵母、細菌、昆虫細胞などを用いることもできる。
【０１１９】
受容体タンパク質のｃＤＮＡを有する発現ベクターの宿主細胞への導入方法としては、公知の発現ベクターの宿主細胞への導入方法であれば、どのような方法でもよく、例えばリン酸カルシウム法（Ｊ．　Ｖｉｒｏｌ．，　５２，　４５６−４６７（１９７３））、ＬＴ−１（Ｐａｎｖｅｒａ社製）を用いる方法、遺伝子導入用リピッド（Ｌｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ、Ｌｉｐｏｆｅｃｔｉｎ；Ｇｉｂｃｏ−ＢＲＬ社製）を用いる方法などが挙げられる。
前記受容体を天然に発現する細胞、および前記受容体を発現する形質転換細胞は、そのままスクリーニングに用いることができるが、細胞膜をスクリーニングに用いる場合は、例えば以下のようにして細胞膜画分を得ることができる。すなわちまず細胞に低張バッファーを添加し、細胞を低張破壊した後、ホモジナイズし、遠心分離することにより細胞膜画分の沈殿物を得る。そしてこの沈殿物をバッファーに懸濁することにより、受容体を含有する細胞膜画分を得ることができる。得られた細胞膜画分は、抗体を結合させたカラム等により常法で精製することもできる。
【０１２０】
本発明スクリーニングで用いられる前記リガンド（ＢＡＦＦ）も、前記受容体と同様の手法で調製された形質転換細胞から、常法により組換えタンパクを回収することにより得ることができる。さらに、前記天然リガンドの他、アゴニストリガンドとして公知のものも用いることができる。
これらリガンドは、そのままで用いても良いし、任意の標識物質で標識されたものを用いることもできる。ここで標識物質としては、放射性同位体（３Ｈ、１４Ｃ、３５Ｓ、１２５Ｉ等）、蛍光物質（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｐｒｏｂｅｓ社Ａｌｅｘａ　Ｐｒｏｔｅｉｎ　Ｌａｂｅｌｉｎｇ　Ｋｉｔｓ等）、化学発光物質（Ａｓｓａｙ　Ｄｅｓｉｇｎｓ社Ｃｈｅｍｉｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｃｅ　Ｌａｂｅｌｉｎｇ　Ｋｉｔ等）、ビオチン（Ｐｉｅｒｃｅ社ＥＺ−Ｌｉｎｋ　Ｂｉｏｔｉｎｙｌａｔｉｏｎ　Ｋｉｔｓ等）、マーカータンパク質、またはペプチドタグなどを例示することができる。マーカータンパク質としては、例えばアルカリフォスファターゼ（Ｃｅｌｌ，　６３，１８５−１９４，１９９０）、抗体のＦｃ領域（Ｇｅｎｂａｎｋ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　ｎｕｍｂｅｒ　Ｍ８７７８９）、またはＨＲＰ（Ｈｏｒｓｅ　ｒａｄｉｓｈ　ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ）などの従来公知のマーカータンパク質を挙げることができる。またペプチドタグとしては、例えばＭｙｃタグ、Ｈｉｓタグ、ＦＬＡＧタグなどの従来公知のペプチドタグを挙げることができる。
【０１２１】
受容体結合阻害活性の測定は、具体的には、以下の方法が例示される。すなわち、前記受容体を含有する水溶液（通常緩衝液が用いられる）、前記細胞若しくは細胞膜画分に、１０−３〜１０−１０Ｍの適当な濃度に調製した被験化合物溶液（通常溶媒には水もしくは緩衝液が用いられるが、溶解度に応じてエタノールやＤＭＳＯを添加することもできる）を加えた後、放射性同位体で標識した前記リガンドを加え、一定時間（通常、１０分〜２時間）反応させる。その後遠心分離等により上清を単離して放射活性を測定し、上清中に含まれる標識したリガンド量を計測することができる。あるいは、形質転換細胞もしくは細胞膜画分を含む沈殿物を界面活性剤、塩基を含む溶液に溶解し、その放射活性を測定し、沈殿物に含まれる標識リガンド量を計測することもできる。
【０１２２】
上記の数値を、被験化合物の代わりに溶媒をブランクとして用いて実施した場合の値（対照結合量）と比較することにより、被験化合物が、受容体と標識リガンドの結合を阻害するか否かを評価することができる。すなわち候補物質のスクリーニングは、被験物質存在下での結合量が、被験物質非存在下での結合量に比して、減少するか否かを指標にして行うことができる。
具体的な阻害率（％）については、以下の式：
｛１−（被験物質を添加した場合に本発明タンパク質と結合した標識アゴニストリガンド量）／（被験物質非添加時における本発明タンパク質と結合した標識アゴニストリガンド量）｝Ｘ１００
で算出することによって求めることができる。
【０１２３】
かくして選抜取得される被験物質は、クローン病を緩和、抑制（改善、治療）する薬物の有力な候補となる。
【０１２４】
上記（３−１）〜（３−３）に記載する本発明のスクリーニング方法によって選別された候補物質は、さらにクローン病のモデル動物である以下の（１）〜（３）の動物：（１）自然発症炎症性腸疾患（ＩＢＤ）モデル（Ｃ３Ｈ／ＨｅＪＢｉｒマウス、Ｃｏｔｔｏｎ　ｔｏｐ　ｔａｍａｒｉｎｓ等）、（２）化学物質誘発モデル（ジニトロクロロベンゼン誘発モデル（ラット）、酢酸モデル（ラット）、トリニトロスルホン酸誘発モデル（マウス、ラット、ウサギ）、デキストラン硫酸誘発モデル（マウス、ラット、ハムスター）、カラゲナン誘発モデル（ラット、モルモット）、インドメタシン誘発モデル（ラット）等）、（３）トランスジェニック、ミュータント（ＩＬ−２ノックアウトマウス、ＩＬ−１０ノックアウトマウス、ＴＣＲノックアウトマウス等）、または（４）移入モデル（ＣＤ４５ＲＢｈｉ移入ＳＣＩＤマウス等）、を用いた薬効試験、安全性試験、さらにクローン病患者への臨床試験に供してもよく、これらの試験を実施することによって、より実用的なクローン病の改善または治療薬を取得することができる。このようにして選別された物質は、さらにその構造解析結果に基づいて、化学的合成、生物学的合成（発酵）または遺伝子学的操作によって、工業的に製造することができる。
【０１２５】
なお、上記（３−１）〜（３−３）に記載するスクリーニング方法は、クローン病の改善または治療薬の候補物質を選別するのみならず、クローン病の既存の若しくは新規な改善または治療薬（候補薬）が、ＢＡＦＦ遺伝子の発現を抑制するか否か、あるいはＢＡＦＦの発現若しくは機能・活性を抑制するか否かを評価、確認するためにも用いることができる。すなわち本発明のスクリーニング方法の範疇には、候補物質の探索のみならず、このような評価あるいは確認を目的とするものも含まれる。
【０１２６】
（４）クローン病の改善・治療剤
本発明は、クローン病の改善・治療剤を提供するものである。
本発明はＢＡＦＦ遺伝子及びこれらの遺伝子によりコードされるタンパク質が、クローン病と関連しているという新たな知見から、これら遺伝子の発現を抑制する物質、あるいは、これら遺伝子によりコードされるタンパク質の発現若しくは機能（活性）を抑制する物質が、上記疾患の改善または治療に有効であるという考えに基づくものである。すなわち、本発明のクローン病の改善・治療剤は、ＢＡＦＦ遺伝子の発現を抑制する物質、あるいはＢＡＦＦの発現若しくは機能（活性）を抑制する物質を有効成分とするものである。
【０１２７】
当該有効成分となるＢＡＦＦ遺伝子のいずれかの発現抑制物質、あるいはＢＡＦＦの発現若しくは機能（活性）抑制物質は、上記のスクリーニング方法を利用して選別されたもののみならず、選別された物質に関する情報に基づいて常法に従って工業的に製造されたものであってもよい。
【０１２８】
ＢＡＦＦ遺伝子の発現抑制物質、あるいはＢＡＦＦの発現若しくは機能（活性）抑制物質は、そのままもしくは自体公知の薬学的に許容される担体（賦形剤、増量剤、結合剤、滑沢剤などが含まれる）や慣用の添加剤などと混合して医薬組成物として調製することができる。当該医薬組成物は、調製する形態（錠剤、丸剤、カプセル剤、散剤、顆粒剤、シロップ剤などの経口投与剤；注射剤、点滴剤、外用剤、坐剤などの非経口投与剤）等に応じて経口投与または非経口投与することができる。また投与量は、有効成分の種類、投与経路、投与対象または患者の年齢、体重、症状などによって異なり一概に規定できないが、通常、１日投与用量として、数ｍｇ〜２ｇ程度、好ましくは数十ｍｇ程度を、１日１〜数回にわけて投与することができる。
【０１２９】
また、上記の物質がＤＮＡによりコードされるものであれば、該ＤＮＡを遺伝子治療用ベクターに組み込み、遺伝子治療を行うことも考えられる。更に、上記有効成分物質がＢＡＦＦ遺伝子に対するアンチセンスヌクレオチドの場合は、そのままもしくは遺伝子治療用ベクターにこれを組込むことにより、遺伝子治療を行うこともできる。これらの場合も、遺伝子治療用組成物の投与量、投与方法は患者の体重、年齢、症状などにより変動し、当業者であれば適宜選択することが可能である。
【０１３０】
上記アンチセンスヌクレオチドを利用する遺伝子治療につき詳述すれば、該遺伝子治療は、通常のこの種の遺伝子治療と同様にして、例えばアンチセンスオリゴヌクレオチドまたはその化学的修飾体を直接患者の体内に投与することにより目的遺伝子の発現を制御する方法、もしくはアンチセンスＲＮＡを患者の標的細胞に導入することにより該細胞による目的遺伝子の発現を制御する方法により実施できる。
【０１３１】
ここで「アンチセンスヌクレオチド」には、ＢＡＦＦ遺伝子の少なくとも８塩基以上の部分に対応するアンチセンスオリゴヌクレオチド、アンチセンスＲＮＡ、アンチセンスＤＮＡなどが含まれる。具体的には、配列番号：１に記載の塩基配列の少なくとも８塩基以上の部分に対応するアンチセンスオリゴヌクレオチド、アンチセンスＲＮＡ、アンチセンスＤＮＡなどが含まれる。
【０１３２】
また、その化学修飾体には、例えばホスホロチオエート、ホスホロジチオエート、アルキルホスホトリエステル、アルキルホスホナート、アルキルホスホアミデートなどの、細胞内への移行性または細胞内での安定性を高め得る誘導体（”Ａｎｔｉｓｅｎｓｅ　ＲＮＡ　ａｎｄ　ＤＮＡ”　ＷＩＬＥＹ−ＬＩＳＳ刊、１９９２年、ｐｐ．１−５０、Ｊ．　Ｍｅｄ．　Ｃｈｅｍ．　３６，　１９２３−１９３７（１９９３））が含まれる。これらは常法に従い合成することができる。
【０１３３】
アンチセンスヌクレオチドまたはその化学的修飾体は、細胞内でセンス鎖ｍＲＮＡに結合して、目的遺伝子の発現、即ちＢＡＦＦ遺伝子の発現を抑制することができ、かくしてＢＡＦＦの機能（活性）を抑制することができる。
【０１３４】
アンチセンスオリゴヌクレオチドまたはその化学的修飾体を直接生体内に投与する方法において、用いられるアンチセンスオリゴヌクレオチドまたはその化学修飾体は、好ましくは５−２００塩基、さらに好ましくは８−２５塩基、最も好ましくは１２−２５塩基の長さを有するものとすればよい。その投与に当たり、アンチセンスオリゴヌクレオチドまたはその化学的修飾体は、通常慣用される安定化剤、緩衝液、溶媒などを用いて製剤化され得る。
アンチセンスＲＮＡを患者の標的細胞に導入する方法において、用いられるアンチセンスＲＮＡは、好ましくは１００塩基以上、より好ましくは３００塩基以上、さらに好ましくは５００塩基以上の長さを有するものとすればよい。また、この方法は、生体内の細胞にアンチセンス遺伝子を導入するｉｎ　ｖｉｖｏ法および一旦体外に取り出した細胞にアンチセンス遺伝子を導入し、該細胞を体内に戻すｅｘ　ｖｉｖｏ法を包含する（日経サイエンス，　１９９４年４月号，　２０−４５頁、月刊薬事，　３６　（１），　２３−４８　（１９９４）、実験医学増刊，　１２　（１５），　全頁　（１９９４）など参照）。この内ではｉｎ　ｖｉｖｏ法が好ましく、これには、ウイルス的導入法（組換えウイルスを用いる方法）と非ウイルス的導入法がある（前記各文献参照）。
【０１３５】
上記組換えウイルスを用いる方法としては、例えばレトロウイルス、アデノウイルス、アデノ関連ウイルス、ヘルペスウイルス、ワクシニアウイルス、ポリオウイルス、シンビスウイルスなどのウイルスゲノムに本発明遺伝子のアンチセンスヌクレオチドを組込んで生体内に導入する方法が挙げられる。この中では、レトロウイルス、アデノウイルス、アデノ関連ウイルスなどを用いる方法が特に好ましい。非ウイルス的導入法としては、リポソーム法、リポフェクチン法などが挙げられ、特にリポソーム法が好ましい。他の非ウイルス的導入法としては、例えばマイクロインジェクション法、リン酸カルシウム法、エレクトロポレーション法なども挙げられる。
【０１３６】
遺伝子治療用製剤組成物は、上述したアンチセンスヌクレオチドまたはその化学修飾体、これらを含む組換えウイルスおよびこれらウイルスが導入された感染細胞などを有効成分とするものである。該組成物の患者への投与形態、投与経路などは、治療目的とする疾患、症状などに応じて適宜決定できる。例えば注射剤などの適当な投与形態で、静脈、動脈、皮下、筋肉内などに投与することができ、また患者の疾患対象部位に直接投与、導入することもできる。ｉｎ　ｖｉｖｏ法を採用する場合、遺伝子治療用組成物は、ＢＡＦＦ遺伝子のアンチセンスヌクレオチドを含む注射剤などの投与形態の他に、例えばＢＡＦＦ遺伝子のアンチセンスヌクレオチドを含有するウイルスベクターをリポソームまたは膜融合リポソームに包埋した形態（センダイウイルス（ＨＶＪ）−リポソームなど）とすることができる。これらのリポソーム製剤形態には、懸濁剤、凍結剤、遠心分離濃縮凍結剤などが含まれる。また、遺伝子治療用組成物は、上記ＢＡＦＦ遺伝子のアンチセンスヌクレオチドを含有するベクターを導入されたウイルスで感染された細胞培養液の形態とすることもできる。これら各種形態の製剤中の有効成分の投与量は、治療目的である疾患の程度、患者の年齢、体重などにより適宜調節することができる。通常、ＢＡＦＦ遺伝子に対するアンチセンスヌクレオチドの場合は、患者成人１人当たり約０．０００１−１００ｍｇ、好ましくは約０．００１−１０ｍｇが数日ないし数カ月に１回投与される量とすればよい。アンチセンスヌクレオチドを含むレトロウイルスベクターの場合は、レトロウイルス力価として、１日患者体重１ｋｇ当たり約１×１０３ｐｆｕ−１×１０１５ｐｆｕとなる量範囲から選ぶことができる。アンチセンスヌクレオチドを導入した細胞の場合は、１×１０４細胞／ｂｏｄｙ−１×１０１５細胞／ｂｏｄｙ程度を投与すればよい。
【０１３７】
【実施例】
次に、本発明を実施例によりさらに具体的に説明する。しかし、本発明はこれらの実施例になんら限定されるものではない。
【０１３８】
実施例１　　ヒト組織サンプルからトータルＲＮＡの調製
ヒトの正常な大腸組織１１７サンプル、潰瘍性大腸炎患者の大腸病変組織３サンプル、およびクローン病患者の大腸病変組織２サンプルから、それぞれ常法に従いトータル　ＲＮＡ　を調製した。
【０１３９】
さらにヒトの右心房正常組織１５１サンプル、右心室正常組織１４０サンプル、左心房正常組織１３２サンプル、子宮筋層正常組織９０サンプル、子宮頚部正常組織９０サンプル、胸正常組織８４サンプル、肺正常組織７７サンプル、胸腺正常組織６７サンプル、卵巣正常組織６２サンプル、腎臓正常組織６１サンプル、皮膚正常組織５６サンプル、小腸正常組織４８サンプル、直腸正常組織４６サンプル、肝臓正常組織４２サンプル、白血球正常組織３７サンプル、胃正常組織３７サンプル、子宮正常組織３２サンプル、子宮内膜正常組織３１サンプル、筋肉正常組織３０サンプル、前立腺正常組織２８サンプル、脾臓正常組織２６サンプル、脂肪組織正常組織２５サンプル、膵臓正常組織２０サンプル、食道正常組織２０サンプル、十二指腸正常組織１７サンプル、甲状腺正常組織１３サンプル、卵管正常組織１３サンプル、リンパ節正常組織１１サンプル、静脈正常組織８サンプル、軟組織正常組織７サンプル、前頭葉皮質正常組織７サンプル、海馬正常組織６サンプル、網正常組織５サンプル、左心室正常組織５サンプル、喉頭正常組織５サンプル、心臓正常組織５サンプル、側頭葉皮質正常組織５サンプル、骨正常組織５サンプル、副腎正常組織５サンプル、精嚢正常組織４サンプル、小脳正常組織４サンプルおよび膀胱正常組織４サンプルより、それぞれ常法に従いトータル　ＲＮＡ　を調製した。
【０１４０】
実施例２　　ＤＮＡチップ解析
実施例１に示したサンプルより調製したｔｏｔａｌ　ＲＮＡを用いて、ＤＮＡチップ解析を行った。なお、ＤＮＡチップ解析はＡｆｆｙｍｅｔｒｉｘ社Ｇｅｎｅ　Ｃｈｉｐ　Ｈｕｍａｎ　Ｇｅｎｏｍｅ　Ｕ９５セットを用いて行った。具体的には、解析は、（１）　ｔｏｔａｌ　ＲＮＡからｃＤＮＡの調製、（２）　該ｃＤＮＡからラベル化ｃＲＮＡの調製、（３）　ラベル化ｃＲＮＡのフラグメント化、（４）　フラグメント化ｃＲＮＡとプローブアレイとのハイブリダイズ、（５）　プローブアレイの染色、（６）　プローブアレイのスキャン、及び（７）　遺伝子発現解析、の手順で行った。
【０１４１】
（１）　ｔｏｔａｌ　ＲＮＡからｃＤＮＡの調製
実施例１で得られた各ｔｏｔａｌ　ＲＮＡ　１０μｇとＴ７−（ｄＴ）２４プライマー（Ａｍｅｒｓｈａｍ社製）１００ｐｍｏｌを含む１１μＬの混合液を、７０℃、１０分間加熱した後、氷上で冷却した。冷却後、ＳｕｐｅｒＳｃｒｉｐｔ　Ｃｈｏｉｃｅ　Ｓｙｓｔｅｍ　ｆｏｒ　ｃＤＮＡ　Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ（Ｇｉｂｃｏ−ＢＲＬ社製）に含まれる５×Ｆｉｒｓｔ　Ｓｔｒａｎｄ　ｃＤＮＡ　Ｂｕｆｆｅｒ　４μＬ、該キットに含まれる０．１Ｍ　ＤＴＴ　（ｄｉｔｈｉｏｔｈｒｅｉｔｏｌ）２μＬ、該キットに含まれる１０ｍＭ　ｄＮＴＰ　Ｍｉｘ　１μＬを添加し、４２℃で２分間加熱した。更に、該キットに含まれるＳｕｐｅｒ　ＳｃｒｉｐｔＩＩ　ＲＴ　２μＬ（４００Ｕ）を添加し、４２℃で１時間加熱した後、氷上で冷却した。冷却後、ＤＥＰＣ処理水（ナカライテスク社製）滅菌蒸留水９１μＬ、該キットに含まれる５×Ｓｅｃｏｎｄ　Ｓｔｒａｎｄ　Ｒｅａｃｔｉｏｎ　Ｂｕｆｆｅｒ　３０μＬ、１０ｍＭ　ｄＮＴＰ　Ｍｉｘ　３μＬ、該キットに含まれるＥ．　ｃｏｌｉ　ＤＮＡ　Ｌｉｇａｓｅ　１μＬ（１０Ｕ）、該キットに含まれるＥ．　ｃｏｌｉ　ＤＮＡ　Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ　Ｉ　４μＬ（４０Ｕ）、該キットに含まれるＥ．　ｃｏｌｉ　ＲＮａｓｅＨ　１μＬ（２Ｕ）を添加し、１６℃で２時間反応させた。次いで、該キットに含まれるＴ４　ＤＮＡ　Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ　２μＬ（１０Ｕ）を加え、１６℃で５分間反応させた後、０．５Ｍ　ＥＤＴＡ　１０μＬを添加した。次いで、フェノール／クロロホルム／イソアミルアルコール溶液（ニッポンジーン社製）１６２μＬを添加し、混合した。該混合液を、予め室温、１４，０００ｒｐｍ、３０秒間遠心分離しておいたＰｈａｓｅ　Ｌｏｃｋ　Ｇｅｌ　Ｌｉｇｈｔ（エッペンドルフ社製）に移し、室温で１４，０００ｒｐｍ、２分間遠心分離した後、１４５μＬの水層をエッペンドルフチューブに移した。得られた溶液に、７．５Ｍ酢酸アンモニウム溶液７２．５μＬ、エタノール３６２．５μＬを加えて混合した後、４℃で１４，０００ｒｐｍ、２０分間遠心分離した。遠心分離後、上清を捨て、作製したｃＤＮＡを含むペレットを得た。その後、該ペレットに８０％エタノール０．５ｍＬを添加し、４℃で１４，０００ｒｐｍ、５分間遠心分離した後、上清を捨てた。再度同様の操作を行った後、該ペレットを乾燥させ、ＤＥＰＣ処理水１２μＬに溶解した。以上の操作により実施例１で調製した各トータル　ＲＮＡから、各ｃＤＮＡを取得した。
【０１４２】
（２）　ｃＤＮＡからラベル化ｃＲＮＡの調製
各ｃＤＮＡ溶液５μＬに、ＤＥＰＣ処理水１７μＬ、ＢｉｏＡｒｒａｙ　Ｈｉｇｈ　Ｙｉｅｌｄ　ＲＮＡ　Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔ　Ｌａｂｅｌｉｎｇ　Ｋｉｔ（ＥＮＺＯ社製）に含まれる１０×ＨＹ　Ｒｅａｃｔｉｏｎ　Ｂｕｆｆｅｒ　４μＬ、該キットに含まれる１０×Ｂｉｏｔｉｎ　Ｌａｂｅｌｅｄ　Ｒｉｂｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓ　４μＬ、該キットに含まれる１０×ＤＴＴ　４μＬ、該キットに含まれる１０×ＲＮａｓｅ　Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ　Ｍｉｘ　４μＬ、該キットに含まれる２０×Ｔ７　ＲＮＡ　Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ　２μＬを混合し、３７℃で５時間反応させて、ラベル化ｃＲＮＡを調製した。反応後、該反応液にＤＥＰＣ処理水６０μＬを加えたのち、ＲＮｅａｓｙ　Ｍｉｎｉ　Ｋｉｔ（ＧＩＡＧＥＮ社製）を用いて添付プロトコールに従い、調製したラベル化ｃＲＮＡを精製した。
【０１４３】
（３）　ラベル化ｃＲＮＡのフラグメント化
各ラベル化ｃＲＮＡ　２０μｇを含む溶液に、５×Ｆｒａｇｍｅｎｔａｔｉｏｎ　Ｂｕｆｆｅｒ（２００ｍＭトリス−酢酸　ｐＨ８．１（Ｓｉｇｍａ社製）、　５００ｍＭ酢酸カリウム（Ｓｉｇｍａ社製）、１５０ｍＭ酢酸マグネシウム（Ｓｉｇｍａ社製））８μＬを加えた反応液４０μＬを、９４℃で３５分間加熱した後、氷中に置いた。これによって、ラベル化ｃＲＮＡをフラグメント化した。
【０１４４】
（４）　フラグメント化ｃＲＮＡとプローブアレイとのハイブリダイズ
各フラグメント化ｃＲＮＡ　４０μＬに、５ｎＭ　Ｃｏｎｔｒｏｌ　Ｏｌｉｇｏ　Ｂ２（Ａｍｅｒｓｈａｍ社製）４μＬ、１００×Ｃｏｎｔｒｏｌ　ｃＲＮＡ　Ｃｏｃｋｔａｉｌ　４μＬ、Ｈｅｒｒｉｎｇ　ｓｐｅｒｍ　ＤＮＡ（Ｐｒｏｍｅｇａ社製）４０μｇ、Ａｃｅｔｙｌａｔｅｄ　ＢＳＡ（Ｇｉｂｃｏ−ＢＲＬ社製）２００μｇ、２×ＭＥＳ　Ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ　Ｂｕｆｆｅｒ（２００ｍＭ　ＭＥＳ、２Ｍ　［Ｎａ＋］，　４０ｍＭ　ＥＤＴＡ、０．０２％　Ｔｗｅｅｎ２０　（Ｐｉｅｒｃｅ社製）、ｐＨ６．５〜６．７）　２００μＬ、及びＤＥＰＣ処理水１４４μＬを混合し、４００μＬのハイブリカクテルを得た。得られた各ハイブリカクテルを９９℃で５分間加熱し、更に４５℃で５分間加熱した。加熱後、室温で１４，０００ｒｐｍ、５分間遠心分離し、ハイブリカクテル上清を得た。
【０１４５】
一方、１×ＭＥＳハイブリダイゼーションバッファーで満たしたＨｕｍａｎ　ｇｅｎｏｍｅ　Ｕ９５プローブアレイ（Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘ社製）を、ハイブリオーブン内で、４５℃、６０ｒｐｍで１０分間回転させた後、１×ＭＥＳハイブリダイゼーションバッファーを除去してプローブアレイを調製した。上記で得られたハイブリカクテル上清２００μＬを該プローブアレイにそれぞれ添加し、ハイブリオーブン内で４５℃、６０ｒｐｍで１６時間回転させ、フラグメント化ｃＲＮＡとハイブリダイズしたプローブアレイを得た。
【０１４６】
（５）　プローブアレイの染色
上記で得られたハイブリダイズ済みプローブアレイそれぞれからハイブリカクテルを回収除去した後、Ｎｏｎ−Ｓｔｒｉｎｇｅｎｔ　Ｗａｓｈ　Ｂｕｆｆｅｒ（６×ＳＳＰＥ（２０×ＳＳＰＥ（ナカライテスク社製）を希釈）、０．０１％Ｔｗｅｅｎ２０、０．００５％Ａｎｔｉｆｏａｍ０−３０（Ｓｉｇｍａ社製））で満たした。次にＮｏｎ−Ｓｔｒｉｎｇｅｎｔ　Ｗａｓｈ　ＢｕｆｆｅｒおよびＳｔｒｉｎｇｅｎｔ　Ｗａｓｈ　Ｂｕｆｆｅｒ（１００ｍＭ　ＭＥＳ、０．１Ｍ　ＮａＣｌ、０．０１％Ｔｗｅｅｎ２０）をセットしたＧｅｎｅＣｈｉｐ　Ｆｌｕｉｄｉｃｓ　Ｓｔａｔｉｏｎ　４００（Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘ社製）の所定の位置にフラグメント化ｃＲＮＡとハイブリダイズしたプローブアレイを装着した。その後染色プロトコールＥｕＫＧＥ−ＷＳ２に従って、１次染色液（１０μｇ／ｍＬ　Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ　Ｐｈｙｃｏｅｒｙｔｈｒｉｎ　（ＳＡＰＥ）（ＭｏｌｅｃμＬａｒ　Ｐｒｏｂｅ社製）、２ｍｇ／ｍＬ　Ａｃｅｔｙｌａｔｅｄ　ＢＳＡ、１００ｍＭ　ＭＥＳ、１Ｍ　ＮａＣｌ（Ａｍｂｉｏｎ社製）、０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０、０．００５％Ａｎｔｉｆｏａｍ０−３０）、　２次染色液（１００μｇ／ｍＬ　Ｇｏａｔ　ＩｇＧ　（Ｓｉｇｍａ社製）、３μｇ／ｍＬ　Ｂｉｏｔｉｎｙｌａｔｅｄ　Ａｎｔｉ−Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ　ａｎｔｉｂｏｄｙ　（Ｖｅｃｔｏｒ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社製）、２ｍｇ／ｍＬ　Ａｃｅｔｙｌａｔｅｄ　ＢＳＡ、１００ｍＭ　ＭＥＳ、１Ｍ　ＮａＣｌ、０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０、０．００５％Ａｎｔｉｆｏａｍ０−３０）により染色した。
【０１４７】
（６）　プローブアレイのスキャン、及び　（７）　遺伝子発現量解析
染色した各プローブアレイをＨＰ　ＧｅｎｅＡｒｒａｙ　Ｓｃａｎｎｅｒ（Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘ社製）に供し、染色パターンを読み取った。染色パターンをもとにＧｅｎｅＣｈｉｐ　Ｗｏｒｋｓｔａｔｉｏｎ　Ｓｙｓｔｅｍ（Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘ社製）によってプローブアレイ上の遺伝子の発現を解析した。次に、解析プロトコールに従ってＮｏｒｍａｌｉｚａｔｉｏｎを行ったのち、各サンプルにおける各プローブ（各遺伝子）の発現量（ａｖｅｒａｇｅ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ）を算出した。同一のプローブにつき、サンプルの種類ごとに遺伝子発現量の平均値を求め、さらに各サンプル種類間における発現量の変化率を求めた。
【０１４８】
実施例３　　クローン病患者大腸病変組織にて、発現が増加している遺伝子の選抜
実施例２で行ったＤＮＡチップ解析による遺伝子発現の解析結果から、結腸正常組織に比べてクローン病患者の結腸病変組織で発現が増加しているプローブセットのうち、最も変化率の大きいプローブから４００番目までを選択した。また、潰瘍性大腸炎患者の大腸病変組織に比べてクローン病患者の大腸病変組織で発現が増加しているプローブセットについても変化率の大きいものから４００番目までを選択した。両グループで共通に選抜されたプローブにつき解析した結果、共通に発現増加するプローブとして６７プローブが選択された。
【０１４９】
次にこれら６７プローブの中から、より病態との関連性の高いプローブを選択する目的で、病変関連組織（大腸を含む消化管）およびクローン病の発症機構に関与する免疫系組織以外の組織において発現量の低いプローブを選択した。すなわち、これら６７プローブについて、結腸正常組織を含む４３種類の正常組織における発現量をＤＮＡチップの結果より解析し、消化管もしくは免疫系組織以外の組織において発現量の低いプローブを選択した。次に、これら選択されたプローブの対応遺伝子を調べ、これらの遺伝子の中から、さらに薬剤ターゲットとなる機能を有する遺伝子を選別した。
その結果、ＢＡＦＦ遺伝子が選択された。
【０１５０】
【表１】
2004135546.tif 000002
【０１５１】
表中、Ｈｕｍａｎ　Ｕ９５プローブ名は　Ｈｕｍａｎ　Ｇｅｎｏｍｅ　Ｕ９５　Ｃｈｉｐ　におけるプローブ名を示す。また表中　Ａｃｃ　Ｎｏは、Ｇｅｎｂａｎｋデータベースにおけるアクセッション番号を示す。また表中、変動倍率は、Ｈｕｍａｎ　Ｇｅｎｏｍｅ　Ｕ９５　Ｃｈｉｐで解析した結腸正常組織の遺伝子発現量を１とした場合におけるクローン病患者の結腸病変組織での遺伝子発現量、および潰瘍性大腸炎患者の遺伝子発現量を１とした場合におけるクローン病患者の結腸病変組織での遺伝子発現量を示す。また各遺伝子の塩基配列およびアミノ酸配列を示す後記配列表の配列番号も合わせて示す。
【０１５２】
以上のように、選別された遺伝子は、正常な結腸組織と比較して　クローン病患者の結腸組織で特異的に発現上昇しており、また病態との関連性の高い遺伝子であった。従ってこの遺伝子およびその発現産物（タンパク質）は、クローン病に関するマーカーとして応用可能であると考えられた。また、この遺伝子またはその発現産物（タンパク質）を用いることによって、クローン病を緩和、抑制する治療薬の候補薬をスクリーニングすることが可能であると考えられた。
【０１５３】
実施例４　ＢＡＦＦ遺伝子発現抑制剤のスクリーニング
Ｃａｃｏ−２細胞（ヒト結腸腺癌由来、ＡＴＴＣ株番号ＨＴＢ−３７、大日本製薬株式会社）、ＨＴ−２９細胞（ヒト結腸腺癌由来、ＡＴＴＣ株番号ＨＴＢ−３８、大日本製薬株式会社）、またはＣＯＬＯ　２０５　細胞（ヒト結腸腺癌由来、ＡＴＴＣ株番号ＣＣＬ−２２２、大日本製薬株式会社）を、１０％　不活性化牛胎児血清、２ｍＭグルタミン、５０ＩＵ／ｍｌペニシリン、５０ｍｇ／ｍｌストレプトマイシン含有Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ　Ｍｏｄｉｆｉｅｄ　Ｅａｇｌｅ培地を用い、３７℃、ＣＯ２濃度５％の条件下で培養する。計数したＣａｃｏ−２細胞、ＨＴ−２９細胞またはＣＯＬＯ　２０５　細胞を２４穴組織培養プレートに０．６−１．２ｘ１０５　ｃｅｌｌｓ／ｃｍ２で播種し、３７℃、ＣＯ２濃度５％で培養する。これらの細胞に対して刺激剤（ホルボール１２−ミリステート１３アセテート、サイトカイン（Ｉｎｔｅｒｆｅｒｏｎγ、Ｔｕｍｏｒ　ｎｅｃｒｏｓｉｓ　ｆａｃｔｏｒ−α、Ｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ−１、Ｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ−６等）あるいはＢｕｔｙｒａｔｅ）の存在下で被験物質含有溶液（１００　μＭ、１０　μＭ、および　１　μＭの各濃度の被験物質を含む溶液）を添加する。ここで対照実験として、被験物質無添加の細胞についても同様の培養を行う（コントロール）。これらの各培養細胞より抽出したＲＮＡを用いて実施例２に記載された方法で、ＢＡＦＦ遺伝子の発現量を調べる。その発現量からコントロールと比べて、ＢＡＦＦ遺伝子の発現量が１０％、好ましくは３０％、特に好ましくは５０％　以上低下している培養系に添加した被験物質を、クローン病を緩和、抑制（改善、治療）する候補化合物として選択する。
【０１５４】
実施例５　ＢＡＦＦの機能（活性）抑制剤のスクリーニング
ＢＡＦＦは、ＴＮＦファミリーに属し、ＴＮＦリガンドスーパーファミリーメンバー１３Ｂ、Ｂ細胞活性化因子、ＴＡＬＬ１、もしくはＴＨＡＮＫとも呼ばれる。活性の測定方法としてＴＮＦの活性測定系やＢ細胞活性化の測定系を用いることができる。実際にＢＡＦＦを用いて活性を測定している論文として、Ｍｏｏｒｅ，　Ｐ．　Ａ．ら、Ｓｃｉｅｎｃｅ，　２８５，　２６０−２６３，　１９９９（Ｂ細胞の増殖活性化）や、Ｍｕｋｈｏｐａｄｈｙａｙ，　Ａら、Ｊ．　Ｂｉｏｌ．　Ｃｈｅｍ．，　　２７４，　１５９７８−１５９８１，　１９９９（ＮＦ−ｋＢ，　ＪＮＫ　活性化、がん細胞に対する細胞毒性とＣａｓｐａｓｅ−３　活性化）などが挙げられる。
ヒト扁桃腺Ｂ細胞は、マグネティックビーズ（ＭＡＣＳ）などを用いてＣＤ３＋を除いておく。９６穴プレートに１０５　ｃｅｌｌｓ　懸濁液を添加する（ＲＰＭＩ−１６４０，　１０％　ＦＢＳ，　５ｘ１０−５　Ｍ　２ＭＥ，　１００　ｕ／ｍｌ　ペニシリン，　１００　ｕｇ／ｍｌ　ストレプトマイシンにて懸濁）。被験物質を添加した後、ＢＡＦＦ（もしくはコントロールとしてＩＬ−２）を、１００　ｎｇ／ｍｌ　になるよう添加し、７２　時間培養後、０．５　ｕＣｉ／ｗｅｌｌ　の［３Ｈ］ｔｈｙｍｉｄｉｎｅ（６．７　Ｃｉ／ｍＭ）を添加し、さらに２０　時間培養し、取り込み率を測定する。ウェルはあらかじめ　５０　ｕｌ　の　１０　ｕｇ／ｍｌ　ａｎｔｉ−ｈｕｍａｎ　ＩｇＭ　ｍＡｂ、１２　時間　４℃にて、コートしておく（Ｍｏｏｒｅ，　Ｐ．　Ａ．ら、Ｓｃｉｅｎｃｅ，　２８５，　２６０−２６３，　１９９９）。
Ｂ細胞の［３Ｈ］ｔｈｙｍｉｄｉｎｅの取り込み率が被験物質無添加群に比して１０％、好ましくは３０％、特に好ましくは５０％　以上減少した系に添加していた被験物質を、クローン病を緩和、抑制（改善、治療）する候補化合物として選択する。
【０１５５】
実施例６　ＢＡＦＦの機能（活性）抑制剤のスクリーニング
Ｍｕｋｈｏｐａｄｈｙａｙ，　Ａら、Ｊ．　Ｂｉｏｌ．　Ｃｈｅｍ．，　　２７４，　１５９７８−１５９８１，　１９９９の方法を参考に、ＢＡＦＦのアポトーシス促進活性を測定することができ、この測定系を用いてＢＡＦＦの機能（活性）を抑制する物質をスクリーニングすることができる。
Ｕ９３７等の腫瘍細胞を　９６穴プレートに１　ウェルあたり５ｘ１０３　ｃｅｌｌｓ／０．１　ｍｌにて播種し、被験物質を添加した後、ＢＡＦＦ（０．１　ｎＭ）を添加する。７２　時間３７℃で培養した後、生存細胞もしくはアポトーシスを測定する。Ｃａｓｐａｓｅ−３活性の場合、被験物質と１０　ｎＭ　のＢＡＦＦ、　１０　ｕｇ／ｍｌ　のｃｙｃｌｏｈｅｘｉｍｉｄｅを添加し、２　時間の処理の後、市販のＣａｓｐａｓｅ−３　アッセイキット（Ｃａｓｐａｓｅ−３　Ａｓｓａｙ　Ｋｉｔ，　Ｃｅｌｌ＆Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ　Ｉｎｃ．　社）にて測定する。
候補物質のスクリーニングは、被験物質を添加しない細胞に比して被験物質を添加した細胞のＣａｓｐａｓｅ−３活性が１０％、好ましくは３０％、特に好ましくは５０％　以上減少した系に添加していた被験物質を、クローン病を緩和、抑制（改善、治療）する候補化合物として選択する。
【０１５６】
実施例７　ＢＡＦＦの機能（活性）抑制剤のスクリーニング
Ｇｒｏｓｓ　Ｊ．Ａ．ら、Ｎａｔｕｒｅ，　４０４，　９９５−９９９，　２０００の方法を参考に、ＢＡＦＦのレセプター結合アッセイを行うことができ、この測定系を用いてＢＡＦＦの機能（活性）を抑制する物質をスクリーニングすることができる。
ヒトＢＡＦＦタンパク質を１２５Ｉ−Ｎａ（Ａｍｅｒｓｈａｍ）およびＩｏｄｏ−ｂｅａｄｓ（Ｐｉｅｒｃｅ）を用いて標識し、Ｓｅｐｈａｄｅｘ　Ｇ２５　ＰＤ−１０カラムにて精製しておく。ＢＨＫ細胞（ｂａｂｙ　ｈａｍｓｔｅｒ　ｋｉｄｎｅｙ　ｃｅｌｌ、大日本製薬株式会社）にＴＡＣＩもしくはＢＣＭＡをトランスフェクトし発現させた細胞、２ｘ１０５　ｃｅｌｌｓ　を被験化合物および１．０　ｎＭの標識ＢＡＦＦとともに４℃にてインキュベートする。２時間後に洗浄し、放射活性をガンマカウンターにて測定する。
候補物質のスクリーニングは、被験物質を添加しない細胞に比して被験物質を添加した細胞の放射活性が１０％、好ましくは３０％、特に好ましくは５０％　以上減少した系に添加していた被験物質を、クローン病を緩和、抑制（改善、治療）する候補化合物として選択する。
【０１５７】
【発明の効果】
本発明によって、クローン病患者の結腸病変組織において、結腸正常組織と比較して特異的に発現増大している遺伝子（ＢＡＦＦ遺伝子）が明らかになった。かかる遺伝子はクローン病の遺伝子診断に用いられるマーカー遺伝子（プローブ、プライマー）として有用である。かかるマーカー遺伝子によればクローン病であるかどうか、その原因を明らかにすることができ（診断精度が向上）、これによりより適切な治療を施すことが可能となる。すなわち、クローン病の適切な治療のためのツールとして利用することができる。
【０１５８】
また、上記遺伝子の発現増加とクローン病との関連性から、該遺伝子の発現を抑制する化合物は、クローン病の治療薬として有用と考えられる。従って、これら遺伝子の発現の抑制または減少、または当該遺伝子がコードするタンパク質の発現や機能（活性）の抑制または減少を指標とすることによって、クローン病の治療薬となり得る候補薬をスクリーニングし選別することが可能である。本発明は、このようなクローン病治療薬の開発技術をも提供する。
【０１５９】
【配列表】
2004135546.tif 000003
2004135546.tif 000004
2004135546.tif 000005