(57)【要約】【課題】コラーゲン様オリゴペプチド（ＦＡＬＧＰＡ、Ｐｚ−ＰＬＧＰＲ、Ｚ−ＧＰＬＧＰなど）を分解するオリゴペプチダーゼの提供。【解決手段】Ｇｅｏｂａｃｉｌｌｕｓ  属に属する微生物（好適にはＧｅｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｃｏｌｌａｇｅｎｏｖｏｒａｎｓ  ＭＯ−１株（ＦＥＲＭ  Ｐ−１９２３０）又は当該菌株と同一な菌学的性質を有する微生物）を培養し、培養物から採取されるオリゴペプチダーゼ、並びにその製造法。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
以下の特性を有することを特徴とするオリゴペプチダーゼ。
作用：Ｐｚ−ＰＬＧＰＲをＰｚ−ＰＬとＧＰＲに分解し、ブラジキニンをＲＰＰＧＦとＳＰＦＲに分解する。ＦＡＬＧＰＡ、Ｚ−ＧＰＬＧＰ、サブスタンスＰ、及びニューロテンシンに対しても分解が認められる。
基質特異性：ＦＡＬＧＰＡ、Ｐｚ−ＰＬＧＰＲ、Ｚ−ＧＰＬＧＰ及びブラジキニンを分解するが、タイプＩコラーゲン、ゼラチン、カゼイン、ケラチン及びエラスチンを分解しない。
至適ｐＨ：８．０〜９．０
力価の測定法：ニンヒドリン比色法、ＨＰＬＣ
至適温度：７０℃
作用適温範囲：５０〜７０℃（５０℃で至適温度の活性の半分の値）
加熱安定性：ｐＨ８．５において７０℃、３０分間加熱後１００％の酵素活性が残存し、７４℃で３０分間加熱後、５５％の酵素活性が残存する。
分子量：ＳＤＳ−ＰＡＧＥ法による変性条件下での分子量は約７０ｋＤａ、ゲル濾過クロマトグラフィーを用いた非変性条件下の分子量は約２５３ｋＤａである。
酵素阻害物質：２  ｍＭの塩化亜鉛、塩化鉄、塩化ニッケル及び塩化銅により、酵素活性が９０％以上阻害される。また、２  ｍＭのＥＤＴＡやｏ−フェナントロリンにより、酵素活性が９０％以上阻害される。
酵素賦活物質：１  ｍＭの塩化マンガンにより酵素活性が３００％以上賦活され、０．２  ｍＭの塩化コバルトにより酵素活性が３００％以上賦活される。
【請求項２】
Ｇｅｏｂａｃｉｌｌｕｓ属に属するオリゴペプチダーゼ生産菌を培養し、培養物からオリゴペプチダーゼを採取することを特徴とするオリゴペプチダーゼの製造法。
【請求項３】
Ｇｅｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｃｏｌｌａｇｅｎｏｖｏｒａｎｓ  ＭＯ−１株（ＦＥＲＭ  Ｐ−１９２３０）又は当該菌株と同一な菌学的性質を有する微生物を培養し、培養物からオリゴペプチダーゼを採取することを特徴とする請求項２に記載のオリゴペプチダーゼの製造法。
【請求項４】
Ｇｅｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｃｏｌｌａｇｅｎｏｖｏｒａｎｓ  ＭＯ−１株（ＦＥＲＭ  Ｐ−１９２３０）を培養し、培養物からオリゴペプチダーゼを採取することを特徴とする請求項２に記載のオリゴペプチダーゼの製造法。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、新規なオリゴペプチダーゼ、当該酵素を製造する方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】
コラーゲンは動物の結合組織を構成する主要タンパク質成分で、皮膚、骨、腱、歯、血管などに多く含まれている。また、分子内にプロリン残基が多く含まれ、強固な三重らせん構造をとるので通常のタンパク質分解酵素では分解されにくく、特異的なコラゲナーゼにより分解される。コラーゲンの分解は生体内では胎児期の骨形成、リュウマチ、悪性腫瘍の浸潤、腸の潰瘍形成、歯周部の炎症など様々な生理現象や疾患と関わり合っていることが知られており、最近コラーゲンの分解物が機能性食品や化粧品材料として注目を集めている。
【０００３】
微生物由来のコラゲナーゼはこれまでいくつか知られているが、そのほとんどが中温菌由来であり、温度安定性に難があるので産業レベルでの利用に関して問題点が多い（例えば非特許文献１参照。）。また、コラーゲン分解性好熱細菌であるＧｅｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｃｏｌｌａｇｅｎｏｖｏｒａｎｓ  ＭＯ−１株（ＦＥＲＭ  Ｐ−１９２３０）が比較的高温でも安定なコラーゲン分解性プロテアーゼ（タイプＩ及びＩＶコラーゲン並びにゼラチンに対するプロテアーゼ）を産生することが知られている（例えば非特許文献２参照。）。該プロテアーゼの分子量は２１０ｋＤａ（１０５ｋＤａサブユニットの二量体）であり、セリンプロテアーゼグループに分類される。このコラーゲン分解性プロテアーゼは自己消化に伴う失活のおそれがあり、該酵素利用の際には酵素を反応させる環境が制限され得る。
【０００４】
一方、コラーゲン様オリゴペプチドを分解して得られる、より分子量の小さい分解物も機能性食品や化粧品材料として注目されている。しかし、上記のコラーゲン分解性プロテアーゼはコラーゲン様合成ペプチドであるＰｚ−ＰＬＧＰＲ及びＦＡＬＧＰＡには活性を示さない。このため、上記のコラーゲン分解性プロテアーゼでコラーゲンを分解して得られる分解物をさらに分解して、より分子量の小さい分解物を生成するオリゴペプチダーゼの開発が待たれている。
【０００５】
【非特許文献１】
マツシタ・オー（Ｍａｔｓｕｓｈｉｔａ，  Ｏ），外５名，「ジーン  デュプリケーションアンド  マルチプリシティ  オブ  コラゲナーゼ  イン  クロストリジウム  ヒストリチカム（Ｇｅｎｅ  ｄｕｐｌｉｃａｔｉｏｎ  ａｎｄ  ｍｕｌｔｉｐｌｉｃｉｔｙ  ｏｆ  ｃｏｌｌａｇｅｎａｓｅｓ  ｉｎ  Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ  ｈｉｓｔｏｌｙｔｉｃｕｍ）」，（米国），ジャーナル  オブ  バクテリオロジー（Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｂａｃｔｅｒｉｏｌｏｇｙ），１９９９，第１８１巻，ｐ．９２３−９３３
【０００６】
【非特許文献２】
エム・オカモト（Ｍ．  Ｏｋａｍｏｔｏ），外５名，「ア  サーモステイブル  コラゲノリティック  プロテアーゼ  ウィズ  ア  ベリー  ラージ  モレキュラー  マスプロデュースド  バイ  サーモフィリック  バシルス  エスピー．  ストレイン  ＭＯ−１（Ａ  ｔｈｅｒｍｏｓｔａｂｌｅ  ｃｏｌｌａｇｅｎｏｌｙｔｉｃ  ｐｒｏｔｅａｓｅ  ｗｉｔｈ  ａ  ｖｅｒｙ  ｌａｒｇｅ  ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  ｍａｓｓ  ｐｒｏｄｕｃｅｄ  ｂｙ  ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｉｃ  Ｂａｃｉｌｌｕｓ  ｓｐ．  ｓｔｒａｉｎ  ＭＯ−１）」，（ドイツ），アプライド  ミクロバイオロジー  アンド  バイオテクノロジー（Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ  ａｎｄ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ），２００１，第５７巻，ｐ．１０３−１０８
【０００７】
【発明が解決しようとする課題】
本発明は、オリゴペプチダーゼ及びその製造法の提供を目的とする。
【０００８】
【課題を解決するための手段】
本発明者らは、鋭意研究を重ねた結果、コラーゲン分解性好熱細菌であるＧｅｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｃｏｌｌａｇｅｎｏｖｏｒａｎｓ  ＭＯ−１株が高温でも安定なオリゴペプチダーゼを産生することを見出した。
【０００９】
すなわち、本発明は、以下のオリゴペプチダーゼ及びその製造法を提供するものである。
項１．以下の特性を有することを特徴とするオリゴペプチダーゼ。
作用：Ｐｚ−ＰＬＧＰＲをＰｚ−ＰＬとＧＰＲに分解し、ブラジキニンをＲＰＰＧＦとＳＰＦＲに分解する。ＦＡＬＧＰＡ、Ｚ−ＧＰＬＧＰ、サブスタンスＰ、及びニューロテンシンに対しても分解が認められる。
基質特異性：ＦＡＬＧＰＡ、Ｐｚ−ＰＬＧＰＲ、Ｚ−ＧＰＬＧＰ及びブラジキニンを分解するが、タイプＩコラーゲン、ゼラチン、カゼイン、ケラチン及びエラスチンを分解しない。
至適ｐＨ：８．０〜９．０
力価の測定法：ニンヒドリン比色法、ＨＰＬＣ
至適温度：７０℃
作用適温範囲：５０〜７０℃（５０℃で至適温度の活性の半分の値）
加熱安定性：ｐＨ８．５において７０℃、３０分間加熱後１００％の酵素活性が残存し、７４℃で３０分間加熱後、５５％の酵素活性が残存する。
分子量：ＳＤＳ−ＰＡＧＥ法による変性条件下での分子量は約７０ｋＤａ、ゲル濾過クロマトグラフィーを用いた非変性条件下の分子量は約２５３ｋＤａである。
酵素阻害物質：２  ｍＭの塩化亜鉛、塩化鉄、塩化ニッケル及び塩化銅により、酵素活性が９０％以上阻害される。また、２  ｍＭのＥＤＴＡやｏ−フェナントロリンにより、酵素活性が９０％以上阻害される。
酵素賦活物質：１  ｍＭの塩化マンガンにより酵素活性が３００％以上賦活され、０．２  ｍＭの塩化コバルトにより酵素活性が３００％以上賦活される。
項２．Ｇｅｏｂａｃｉｌｌｕｓ属に属するオリゴペプチダーゼ生産菌を培養し、培養物からオリゴペプチダーゼを採取することを特徴とするオリゴペプチダーゼの製造法。
項３．Ｇｅｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｃｏｌｌａｇｅｎｏｖｏｒａｎｓ  ＭＯ−１株（ＦＥＲＭ  Ｐ−１９２３０）又は当該菌株と同一な菌学的性質を有する微生物を培養し、培養物からオリゴペプチダーゼを採取することを特徴とする項２に記載のオリゴペプチダーゼの製造法。
項４．Ｇｅｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｃｏｌｌａｇｅｎｏｖｏｒａｎｓ  ＭＯ−１株を培養し、培養物からオリゴペプチダーゼを採取することを特徴とする項２に記載のオリゴペプチダーゼの製造法。
【００１０】
また、本発明は下記の製造法をも包含する。
項５．Ｇｅｏｂａｃｉｌｌｕｓ属に属するオリゴペプチダーゼ生産菌を培養し、培養物から項１に記載のオリゴペプチダーゼを採取することを特徴とするオリゴペプチダーゼの製造法。
項６．Ｇｅｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｃｏｌｌａｇｅｎｏｖｏｒａｎｓ  ＭＯ−１株（ＦＥＲＭ  Ｐ−１９２３０）又は当該菌株と同一な菌学的性質を有する微生物を培養し、培養物から項１に記載のオリゴペプチダーゼを採取することを特徴とする項５に記載のオリゴペプチダーゼの製造法。
項７．Ｇｅｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｃｏｌｌａｇｅｎｏｖｏｒａｎｓ  ＭＯ−１株を培養し、培養物から項１に記載のオリゴペプチダーゼを採取することを特徴とする項５に記載のオリゴペプチダーゼの製造法。
【００１１】
【発明の実施の形態】
本明細書において、オリゴペプチドの略称として以下の表現を使用することがある。なお、ｐＮａはｐａｒａ−ニトロアニリドを示し、Ｓｕｃはスクシニルを示す。
2004261138.tif 000002
2004261138.tif 000003
本発明の製造法は、Ｇｅｏｂａｃｉｌｌｕｓ属に属するオリゴペプチダーゼ生産菌を培養し、培養物からオリゴペプチダーゼを採取することを特徴とする。特に、Ｇｅｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｃｏｌｌａｇｅｎｏｖｏｒａｎｓ  ＭＯ−１株（ＦＥＲＭ  Ｐ−１９２３０）又は当該菌株と同一な菌学的性質を有する微生物を培養し、培養物からオリゴペプチダーゼを採取することを特徴とする。
【００１２】
Ｇｅｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｃｏｌｌａｇｅｎｏｖｏｒａｎｓ  ＭＯ−１株（ＦＥＲＭ  Ｐ−１９２３０）（以下、ＭＯ−１株と称することがある）は、Ｇｅｏｂａｃｉｌｌｕｓ属に属する。本発明の製造法では、Ｇｅｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｃｏｌｌａｇｅｎｏｖｏｒａｎｓ  ＭＯ−１株（ＦＥＲＭ  Ｐ−１９２３０）又は当該菌株と同一な菌学的性質を有しオリゴペプチダーゼ生産能を備えた微生物を使用することができる。ここで、同一な菌学的性質とは、下記に示した性質が同一であればよく、その他の菌学的性質の一致、不一致は問わない。
【００１３】
前記ＭＯ−１株の菌学的性質は以下のとおりである。なお、本菌株は、京都府京都市左京区の土壌から分離され、産業技術総合研究所特許性物寄託センターに受託番号ＦＥＲＭ  Ｐ−１９２３０として寄託されている。
１．形態的性質
（ａ）形態
（１）形：  桿状
（２）多形性の有無、有りの場合はその詳細：なし
（３）運動性の有無：あり
（４）胞子の有無、有りの場合は胞子、胞子嚢の形、大きさおよび胞子の部位：
胞子あり
胞子・胞子嚢の形：楕円
胞子の部位：  細胞端
（５）グラム染色性：陽性
（６）抗酸性：弱い
２．生理学的性質
（１）増殖温度
４℃：−
２５℃：−
３０℃：−
４０〜７０℃：＋
（２）硝酸塩の還元：  ＋
（３）脱窒反応：  弱
（４）ＭＲテスト：弱
（５）ＶＰテスト：弱
（６）硫化水素の生成：弱
（７）インドールの生成：  弱
（８）クエン酸の利用：弱
（９）無機窒素源（硝酸塩およびアンモニウム塩）の利用：＋
（１０）色素の生成（水溶性かどうかを明記する）：なし
（１１）ウレアーゼ：−
（１２）オキシダーゼ：＋
（１３）カタラーゼ：＋
（１４）生育の範囲（ｐＨ、温度など）：５．４〜８．８
（１５）酸素に対する態度（好気性、嫌気性の区別）：好気性
上記菌学的性質の試験方法は、主としてバージェイズ・マニュアル・オブ・システマティック・バクテリオロジー（Ｂｅｒｇｅｙ’ｓ  Ｍａｎｕａｌ  ｏｆ  Ｓｙｓｔｅｍａｔｉｃ  Ｂａｃｔｅｒｉｏｌｏｇｙ）第２巻を参考にした。
【００１４】
このＭＯ−１株を用いて本発明のオリゴペプチダーゼを生産するには、当該菌体を適当な培地に接種し、好ましくは誘導物質の存在化で常法に従って培養すればよい。
【００１５】
培地としては細菌培養用の通常の培地が用いられる。例えば、炭素源としてグルコース、マルトース、キシロース、スクロース、ペプトン等が例示でき、窒素源としては、イーストエキス、ペプトン、肉エキス、アミノ酸溶液等の有機窒素、または硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム等の無機窒素が例示できる。また誘導物質を炭素源、窒素源としてもよい。無機塩としては、硫酸マグネシウム、塩化マグネシウム、リン酸ナトリウム、リン酸カリウム、塩化カリウム、塩化ナトリウム、塩化カルシウム等を適宜組み合わせて使用できる。好ましい培地としては、ＬＢ培地（１％トリプトン（ＢａｃｔｏＴＭ−Ｔｒｙｐｔｏｎｅ、Ｄｉｆｃｏ社製）、０．５  ％乾燥酵母エキス、０．５％ＮａＣｌ、ｐＨ７．２）が例示される。
【００１６】
上記培地のｐＨは、ＮａＯＨを加えることにより、好ましくは７．２に調整され、オートクレーブにより殺菌される。培養温度は、４０〜７０℃、好ましくは６０〜６５  ℃で８時間、好気的に振とうまたは撹拌しながら培養を行う。また上記の炭素源、窒素源、無機塩、及び寒天を適宜含む平板培地を使用し、培養温度４０〜７０℃、好ましくは６０〜６５℃で  １２〜２４時間培養を行う。また、本菌の培養は、静置でも可能である。
【００１７】
培養によって得られた培養物から培養液と菌体とを分離する方法としては、従来から行われている遠心分離法やろ過等の方法が使用できるが、遠心分離法が好適である。菌体内に蓄積された該酵素を菌体から抽出する方法としては、従来から行われている超音波による菌体破砕、あるいはガラス・ビーズとともに回転させるダイノミル細胞破砕機による菌体破砕、またはリゾチーム等の酵素やトルエン等の有機溶媒による細胞膜の破壊等の方法が挙げられる。これらの中から適当な方法を選択して菌体から酵素の抽出を行うことにより、酵素を採取することができる。
【００１８】
これらの方法で抽出された粗酵素液からオリゴペプチダーゼをさらに精製する必要がある場合には、通常実施されている一般的な酵素の精製手段である、塩析、イオン交換クロマトグラフィー、ゲルろ過法、吸着クロマトグラフィー、疎水クロマトグラフィー、調製用電気泳動法等を適宜組み合わせることによって、精製を行うことができる。
【００１９】
上記のようにして得られた本発明のオリゴペプチダーゼは、以下の理化学的性質を有する。
作用：Ｐｚ−ＰＬＧＰＲをＰｚ−ＰＬとＧＰＲに分解し、ブラジキニンをＲＰＰＧＦとＳＰＦＲに分解する。ＦＡＬＧＰＡ、Ｚ−ＧＰＬＧＰ、サブスタンスＰ、及びニューロテンシンに対しても分解が認められる。
基質特異性：ＦＡＬＧＰＡ、Ｐｚ−ＰＬＧＰＲ、Ｚ−ＧＰＬＧＰ及びブラジキニンを分解するが、タイプＩコラーゲン、ゼラチン、カゼイン、ケラチン及びエラスチンを分解しない。
至適ｐＨ：８．０〜９．０
力価の測定法：ニンヒドリン比色法、ＨＰＬＣ
至適温度：７０℃
作用適温範囲：５０〜７０℃（５０℃で至適温度の活性の半分の値）
加熱安定性：ｐＨ８．５において７０℃、３０分間加熱後１００％の酵素活性が残存し、７４℃で３０分間加熱後、５５％の酵素活性が残存する。
分子量：ＳＤＳ−ＰＡＧＥ法による変性条件下での分子量は約７０ｋＤａ、ゲル濾過クロマトグラフィーを用いた非変性条件下の分子量は約２５３ｋＤａである。
酵素阻害物質：２  ｍＭの塩化亜鉛、塩化鉄、塩化ニッケル及び塩化銅により、酵素活性が９０％以上阻害される。また、２  ｍＭのＥＤＴＡやｏ−フェナントロリンにより、酵素活性が９０％以上阻害される。
酵素賦活物質：１  ｍＭの塩化マンガンにより酵素活性が３００％以上賦活され、０．２  ｍＭの塩化コバルトにより酵素活性が３００％以上賦活される。
【００２０】
なお、活性は以下の方法により測定した。
【００２１】
ｖａｎ  Ｗａｒｔら（Ａｎａｌ．  Ｂｉｏｃｈｅｍ．  （１９８１）、１１３：３５６−３６５）の方法に準じて行った。即ち、２（ｍｇ／ｍｌ）  のＰｚ−ＰＬＧＰＲ２５μｌ、酵素サンプル、緩衝液（５０  ｍＭ  ＨＥＰＥＳ−ＮａＯＨ  ｐＨ  ８．０）で総量１００μｌにし、６０℃で反応を行った。０、１５分毎に１００μｌの反応停止液（１．２５％  クエン酸）を加え氷冷した。直ちに、１．５  ｍｌの酢酸エチルを加え約１０秒撹拌した。遠心分離（１２，０００回転、１０分）により、酢酸エチル層と水層を分離した。酢酸エチル層の３２０  ｎｍの吸光度を測定し酵素活性を測定した。
【００２２】
【発明の効果】
本発明の酵素は、ＦＡＬＧＰＡ、Ｐｚ−ＰＬＧＰＲ、Ｚ−ＧＰＬＧＰ及びブラジキニン等のコラーゲン様オリゴペプチドを分解する。このため、コラーゲン分解性プロテアーゼの分解物に本発明の酵素を作用させることによって、当該分解物をさらに小さい分解物とすることができる。
【００２３】
【実施例】
以下、実施例により本発明をより詳細に説明するが、本発明はこれら実施例に限定されるものではない。なお、Ｐｚ−ＰＬＧＰＲ、ＦＡＬＧＰＡ、Ｐｒｏ−ｐＮａ、ブラジキニン、サブスタンスＰ（ｓｕｂｓｔａｎｃｅ  Ｐ）、ニューロテンシン（ｎｅｕｒｏｔｅｎｓｉｎ）はＳＩＧＭＡから入手した。Ａｓｐ１，  Ｖａｌ５−Ａｎｇｉｏｔｅｎｓｉｎ  ＩＩは、ノバルティスファーマ社から入手した。
Ｚ−ＧＰ−ｐＮａ、Ｓｕｃ−Ａｌａ−Ａｌａ−Ａｌａ−ｐＮａ、Ｓｕｃ−Ａｌａ−Ａｌａ−Ｐｒｏ−Ｐｈｅ−ｐＮａ、Ｇｌｕｔａｒｙｌ−ＡＡＰＬ−ｐＮａ  はＢａｃｈｅｍ社の製品を用いた。ジイソプロピルフルオロリン酸（ＤＦＰ）はＷａｋｏ社から入手した。エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）、フッ化フェニルメチルスルホニル（ＰＭＳＦ）、Ｎ−エチルマレイミド（ＮＥＭ）、その他の試薬はナカライテスクから入手した。ゲル濾過クロマトグラフィーの分子量測定用のマーカーはＨｉｇｈ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｗｅｉｇｈｔ  Ｇｅｌ  Ｆｉｌｔｒａｔｉｏｎ  Ｃａｌｉｂｒａｔｉｏｎ  Ｋｉｔ  （Ａｍｅｒｓｈａｍ社製）  （Ａｌｄｏｌａｓｅ  １５８  ｋＤａ，  Ｃａｔａｌａｓｅ  ２３２  ｋＤａ，  Ｆｅｒｒｉｔｉｎ  ４４０  ｋＤａ，  Ｔｈｙｒｏｇｌｏｂｕｌｉｎ  ６６９  ｋＤａ）を用いた。
【００２４】
実施例１
ＭＯ−１株の培養と酵素の精製
京都府京都市左京区の土壌から分離されたＭＯ−１株を、６５℃、ｐＨ７．２条件下、ＬＢ培地（１．０％ｔｒｙｐｔｏｎトリプトン、０．５％乾燥酵母エキス、０．５％ＮａＣｌ）中で４．５時間、好気的に振盪培養（１００  ｒｐｍ）した。
【００２５】
３００  ｍｌの培養液の入った２  ｌの坂口フラスコをのべ５０本、合計１５Ｌの培養液を遠心分離して菌体を採取した。得られた菌体（湿重量６９  ｇ）を超音波破砕、遠心分離を行い、無細胞抽出液を調製した（ｓｔｅｐ  １）。
【００２６】
硫酸アンモニウムを加え、５０％−９０％の硫安画分のタンパク質（３２３０  ｍｇ）を回収した（ｓｔｅｐ  ２）。
【００２７】
その後、ＤＥＡＥ−Ｃｅｌｌｕｌｌｏｓｅカラムクロマトグラフィー（ｓｔｅｐ  ３）、ＤＥＡＥ−Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ  ＣＬ６Ｂカラムクロマトグラフィー（ｓｔｅｐ  ４、ｓｔｅｐ  ５）を行った。ｓｔｅｐ  ４において活性のピークが２６３〜２８０と３００〜３１５の２つに分離し、後者のピークの精製を進めた。
【００２８】
その後、Ｓｅｐｈａｄｅｘ  Ｇ−２００カラムクロマトグラフィー（ｓｔｅｐ  ６）、ＴＯＹＯＰＥＡＲＬ−Ｂｕｔｙｌ  ６５０Ｓカラムクロマトグラフィー（ｓｔｅｐ  ７）、Ｐｈｅｎｙｌ−Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ  ＣＬ６Ｂカラムクロマトグラフィー（ｓｔｅｐ  ８）、Ｅｔｈｙｌ−Ａｇａｒｏｓｅカラムクロマトグラフィー（ｓｔｅｐ  ９）、Ｓｅｐｈａｃｒｙｌ  Ｓ−３００カラムクロマトグラフィー（ｓｔｅｐ  １０）を経て、電気泳動的に均一な酵素に精製された（図１）。各精製段階における比活性、総活性、収率等を図２に示す。
【００２９】
なお、各精製段階における精製の指標となる活性測定は、ｖａｎ  Ｗａｒｔら（Ａｎａｌ．  Ｂｉｏｃｈｅｍ．  （１９８１）、１１３：３５６−３６５）の方法に準じて行った。即ち、２（ｍｇ／ｍｌ）  のＰｚ−ＰＬＧＰＲ２５μｌ、酵素サンプル、緩衝液（５０  ｍＭ  ＨＥＰＥＳ−ＮａＯＨ  ｐＨ  ８．０）で総量１００μｌにし、６０℃で反応を行った。０、１５分毎に１００μｌの反応停止液（１．２５％  クエン酸）を加え氷冷した。直ちに、１．５  ｍｌの酢酸エチルを加え約１０秒撹拌した。遠心分離（１２，０００回転、１０分）により、酢酸エチル層と水層を分離した。酢酸エチル層の３２０  ｎｍの吸光度を測定し酵素活性を測定した。
【００３０】
実施例２
分子量の測定
実施例１にて得られた酵素に対し、ＳＤＳ−ＰＡＧＥにより変性条件下での分子量を測定し、Ｓｅｐｈａｃｒｙｌ  Ｓ−３００を使用したゲル濾過クロマトグラフィーにより非変性条件下での分子量を測定した。なお、変性条件とはタンパク質の電荷やコンフォメーションの影響をなくし、ポリペプチド鎖の分子量のみに依存して測定可能な条件であり、非変性条件とは立体構造やオリゴマー構造を保持したまま測定可能な条件である。
【００３１】
測定の結果、分子量は、変性条件下では約７０ｋＤａ（図１のｓｔｅｐ  １０）、非変性条件下では約２５３ｋＤａ（図３）であった。この結果、非変性条件下での分子量が変性条件下の分子量の約４倍の分子量であることから、本酵素が４量体などのオリゴマー構造を有していることが推測される。
【００３２】
なお、非変性条件の分子量を測定時のマーカーにはＨｉｇｈ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｗｅｉｇｈｔ  Ｇｅｌ  Ｆｉｌｔｒａｔｉｏｎ  Ｃａｌｉｂｒａｔｉｏｎ  Ｋｉｔ（Ａｍｅｒｓｈａｍ社製）  （Ａｌｄｏｌａｓｅ  １５８  ｋ，  Ｃａｔａｌａｓｅ  ２３２  ｋ，  Ｆｅｒｒｉｔｉｎ  ４４０  ｋ，  Ｔｈｙｒｏｇｌｏｂｕｌｉｎ  ６６９  ｋ）を用いた。マーカータンパク質は、それぞれ約３  ｍｇを５  ｍｌのｂｕｆｆｅｒに溶解したものを用い、別々に溶出させた。また、Ｋｄ＝（Ｖｅ−Ｖ０）／（Ｖｉ）（Ｖｅは各サンプルの溶出体積、Ｖ０はゲルカラム内の自由空間の体積、そしてＶｉは内部容積）である。即ち、Ｖ０、つまり自由空間体積とは大きな分子量であるブルーデキストランの溶出体積として求め、Ｖｉ、つまり内部容積とは低分子量であるリボフラビンの溶出体積からＶ０を差し引くことで求めた値である。
【００３３】
実施例３
速度論量の測定
Ｐｚ−ＰＬＧＰＲに対する速度論量を決定した。実施例１に示す活性測定法に基づき、基質濃度を段階的に希釈した条件で反応させた後、１／ｖ〜１／［Ｓ］０プロットを作成することで算出した。その結果、Ｋｍ＝０．３９  （ｍＭ）、ｋｃａｔ＝３４．７（ｓｅｃ−１）、そしてｋｃａｔ／  Ｋｍ＝８８．７であった。
【００３４】
実施例４
Ｎ末端アミノ酸配列の解析
得られた酵素についてＰＰＳＱ−２１プロテインシークエンサー（島津製作所製）を用いたエドマン分解法により分析し、Ｎ末端アミノ酸配列１５残基の配列を決定した。決定された配列は、ＭＥＡＫＱＴＫＫＳＬＰＬＬＳＥ（配列番号１０）であった。ＦＡＳＴＡ（Ｃｏｐｙｌｉｇｈｔ：Ｈｕｍａｎ  Ｇｅｎｏｍｅ  Ｃｅｎｔｅｒ）及びＢＬＡＳＴ（Ｂａｓｉｃ  Ｌｏｃａｌ  Ａｌｉｇｎｍｅｎｔ  Ｓｅａｒｃｈ  Ｔｏｏｌ）のデータベースを使用して相同性検索を行ったところ、相同性の高いタンパク質は確認されなかった。
【００３５】
実施例５
酵素のｐＨ及び温度特性
本酵素のｐＨに対する特性はｐＨを４．５から１０．８の範囲で変化させた反応系において、Ｐｚ−ＰＬＧＰＲ分解活性測定することで調査した。各ｐＨにおける緩衝液は、５０  ｍＭ  ＭＥＳ／１００  ｍＭ  ＫＣｌ（ｐＨ３．５）、５０  ｍＭ  ＨＥＰＥＳ／１００  ｍＭ  ＫＣｌ（ｐＨ８．０）、５０  ｍＭ  Ｂｏｒａｔｅ／１００  ｍＭ  ＫＣｌ（ｐＨ３．５）を用い、組み合わせることで調整した。なお、活性測定は実施例１に記載したＰｚ−ＰＬＧＰＲ  に対する酵素活性の測定と同様にして行った。
【００３６】
本酵素の温度に対する特性を以下のようにして確認した。
【００３７】
反応の温度依存性については、２５℃から８０℃の範囲で反応温度を変化させてＰｚ−ＰＬＧＰＲ分解活性測定を行い、初速５分間の吸光度の変化を測定することで調査した。
【００３８】
熱安定性に関しては、４５℃から８０℃の範囲で温度を変化させ、それぞれの温度で３０分間熱処理を行った後、６０℃で１０分間  Ｐｚ−ＰＬＧＰＲ分解活性測定を行うことで調査した。熱処理は、精製酵素希釈液１００  μｌをＰＣＲチューブに入れ、湯せんで行った。
【００３９】
なお、その他の条件は実施例１に記載したＰｚ−ＰＬＧＰＲ  に対する酵素活性の測定同様にして行った。
【００４０】
本酵素のｐＨ特性及び温度特性を各々図４及び図５に示す。至適ｐＨは８．０〜９．０、反応至適温度は７０℃、作用適温範囲は５０〜７０℃（５０℃で至適温度の活性の半分の値、７０℃を超えると活性は激減する）であった。
実施例６
基質特異性１（タンパク質基質に対する分解の確認）
実施例１で得られた酵素の、コラーゲン（タイプＩ）、ゼラチン、カゼイン、ケラチン及びエラスチンに対する活性の測定をニンヒドリン発色法で行った。ニンヒドリン溶液は、ニンヒドリン２００  ｍｇ、ＳｎＣｌ２  ２０  ｍｇを１０  ｍｌの２−メトキシエタノールに溶かした後、酢酸クエン酸バッファー（０．２  Ｍ酢酸／０．０４  Ｍクエン酸ｐＨ４．０）を１０  ｍｌ加えることにより調製した。酵素反応は５  ｍｌの反応溶液（基質５  ｍｇ／ｍｌ、５０  ｍＭ  ＨＥＰＥＳ−ＮａＯＨ  ｐＨ  ８．５、酵素サンプル）中において６０℃で振盪（１００  ｒｐｍ）することで行った。０、３０、６０分後に３００μｌの反応溶液を取り出し、０．５  Ｍ  ＥＤＴＡ  ６μｌを加え直ちに混合した。反応溶液を遠心分離（１４，０００回転、５分）し、上清２００μｌを取り出した。その後４００μｌニンヒドリン溶液と混合し、５分間煮沸した。氷冷後、希釈し１．６  ｍｌとし、５７０  ｎｍの吸光度を測定した。なお、検量線の作成のために０，  ０．１，  ０．２，  ０．３  ｍＭのＬ−ロイシン溶液を２００μｌずつ調製し、上記と同様の操作を行った。
【００４１】
実施例７
基質特異性２（Ｐｚ−ＰＬＧＰＲ以外の合成基質に対する分解の確認）
Ｐ−ｐＮａ、Ｚ−ＧＰ−ｐＮａ、Ｓｕｃ−ＡＡＡ−ｐＮａ、Ｓｕｃ−ＡＡＰＦ−ｐＮａ、Ｇｌｕｔａｒｙｌ−ＡＡＰＬ−ｐＮａ、ＦＡＬＧＰＡ、
Ｚ−ＧＰＬＧＰ（Ｚ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｌｅｕ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ）、アンジオテンシンＩＩ、ブラジキニン、サブスタンス  Ｐ及びニューロテンシンに対する実施例１で得られた酵素の活性の測定は以下のようにして行った。
【００４２】
酵素反応の条件は以下の通りである。１００μｌ  の反応溶液（５０  ｍＭ  ＨＥＰＥＳ−ＮａＯＨ  ｐＨ  ８．９、基質、酵素サンプル）中において、６０℃で１時間インキュベートすることで酵素反応を行った。なお、基質濃度に関して、Ｐ−ｐＮａ、Ｚ−ＧＰ−ｐＮａ、Ｓｕｃ−ＡＡＡ−ｐＮａ、Ｓｕｃ−ＡＡＰＦ−ｐＮａ、Ｇｌｕｔａｒｙｌ−ＡＡＰＬ−ｐＮａについては２  ｍＭ、ＦＡＬＧＰＡについては１  ｍＭ、Ｚ−ＧＰＬＧＰについては０．５  ｍＭ、そしてアンジオテンシンＩＩ、ブラジキニン、サブスタンス  Ｐ及びニューロテンシンについては０．２  ｍＭで用いた。
【００４３】
全ての基質に対する分解の確認に、薄層クロマトグラフィー（ＴＬＣ）を用いた。反応液全量１００μｌをＫｉｅｓｅｌｇｅｌ  ６０  Ｆ２５４プレート上にスポットした。その後、ブタノール−酢酸−水（４：１：１，  ｖ／ｖ／ｖ）を用いて展開し、ニンヒドリン溶液を噴霧することで分解産物を確認した。紫外光によって検出可能な合成基質については、ニンヒドリン溶液を噴霧する前に紫外光照射による検出も同時に行った。
【００４４】
結果を図６に示した。なお、図６中の分解活性では、活性が見られたものを＋、見られなかったものを−として示している。
【００４５】
また、パラニトロアニリド（ｐＮａ）を有するペプチド性基質を使用した際には、分解産物であるｐＮａが４０５  ｎｍに吸収を持つことを利用して分解の有無を確認したが、分解は見られなかった。
【００４６】
実施例８
基質特異性３（切断部位の決定）
Ｐｚ−ＰＬＧＰＲ及びブラジキニンの切断部位を決定するために、実施例１及び７で分解の見られた基質の反応液を高速液体クロマトグラフィー及び飛行時間型質量分析機を用いて分析した。１００μｌの酵素反応溶液（０．２  ｍＭ各基質、酵素サンプル、５０  ｍＭ  ＨＥＰＥＳ−ＮａＯＨ  ｐＨ  ８．９）を６０℃で１時間反応させた後、５０μｌ取り出し逆相カラムクロマトグラフィー（Ｗａｋｏｓｉｌ  ＷＳ−ＩＩ  ５Ｃ１８ＡＲ  φ４．６×５０）を用いた高速液体クロマトグラフィーにより分離精製した。分離精製したサンプルは飛行時間型質量分析機（Ｓｈｉｍａｄｚｕ／Ｋｒａｔｏｓ  Ｋｏｍｐａｃｔ  ＭＡＬＤＩ  ＩＩ）を用い、分子量を決定し切断部位を同定した。
【００４７】
その結果、Ｐｚ−ＰＬＧＰＲに関しては、ロイシン（Ｌｅｕ）とグリシン（Ｇｌｙ）の間で分解されることが確認された。ブラジキニンに関しては、フェニルアラニン（Ｐｈｅ）とセリン（Ｓｅｒ）の間で分解されることが確認された。これらのことから、本酵素はエンド型で切断するオリゴペプチダーゼであることが確認された。
【００４８】
実施例９
金属塩及び各種阻害剤の影響
本酵素活性に対するプロテアーゼ阻害剤や金属塩の影響を調べた（図７）。阻害剤としてはエチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）、ｏ−フェナントロリン、フッ化メチルスルホニル（ＰＭＳＦ）、ジイソプロピルフルオロリン酸（ＤＦＰ）、Ｎ−エチルマレイミド（ＮＥＭ）、そしてメルカプトエタノールを用い、金属塩として、塩化ナトリウム、塩化カリウム、塩化カルシウム、塩化マグネシウム、塩化マンガン、塩化亜鉛、塩化鉄、塩化ニッケル、塩化コバルト、そして塩化銅を用いた。適当な濃度の各阻害剤、金属塩と共に室温でインキュベートした後、実施例１に基づいてＰｚ−ＰＬＧＰＲ分解活性を測定した。その結果２  ｍＭ  ＥＤＴＡや２  ｍＭ  ｏ−フェナントロリンといった金属キレート剤により活性が完全に阻害された。このことから、本酵素が金属原子を含むメタロペプチダーゼであることが示唆された。そして２  ｍＭ塩化鉄、塩化ニッケル、塩化コバルト、そして塩化銅によっても活性が完全に阻害された。また、１  ｍＭの塩化マンガンにより活性が３３６％賦活され、０．２  ｍＭの塩化コバルトにより３２１％賦活された。
【００４９】
【配列表】
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【図面の簡単な説明】
【図１】実施例１における各精製段階の精製度の指標となる電気泳動写真である。
【図２】実施例１における各精製段階の比活性等を示す表である。
【図３】実施例２において測定された非変性条件下での分子量を表すグラフである。縦軸は分子量を示し、横軸はＫｄ＝（Ｖｅ−Ｖ０）／（Ｖｉ）（Ｖｅは各サンプルの溶出体積、Ｖ０はゲルカラム内の自由空間の体積、そしてＶｉは内部容積）を示す。●は本発明酵素の分子量（２５３ｋＤａ）を示し、■はゲル濾過クロマトグラフィー用分子量マーカー（Ａｌｄｏｌａｓｅ  １５８  ｋＤａ，  Ｃａｔａｌａｓｅ  ２３２  ｋＤａ，  Ｆｅｒｒｉｔｉｎ  ４４０  ｋＤａ，  Ｔｈｙｒｏｇｌｏｂｕｌｉｎ  ６６９  ｋＤａ）の挙動を示す。
【図４】実施例５において測定された、本発明酵素に対するｐＨの影響を示すグラフである。
【図５】実施例５において測定された、本発明酵素に対する温度の影響を示すグラフである。
【図６】実施例６及び７において測定された、本発明酵素の各種物質に対する基質特異性を示す表である。
【図７】実施例９において測定された、本発明酵素の各種金属塩及び阻害剤に対する相対活性を示す表である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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