(57)【要約】【課題】Ｉ型アレルギーの発症に関わるＩｇＥ抗体量を減少させてアレルギー体質を改善することができ、容易に摂取でき、かつ安全性が高い抗アレルギー剤を提供する。【解決手段】ラクトバチルス・アシドフィラス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ａｃｉｄｏｐｈｉｌｕｓ）に属する乳酸菌、ラクトバチルス・ファーメンタム（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｆｅｒｍｅｎｔｕｍ）に属する乳酸菌、及びこれらの組み合わせからなる群より選択される乳酸菌を有効成分として含む抗アレルギー剤。【選択図】　　　なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
ラクトバチルス・アシドフィラス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ａｃｉｄｏｐｈｉｌｕｓ）に属する乳酸菌、ラクトバチルス・ファーメンタム（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｆｅｒｍｅｎｔｕｍ）に属する乳酸菌、及びこれらの組み合わせからなる群より選択される乳酸菌を有効成分として含む抗アレルギー剤。
【請求項２】
前記ラクトバチルス・アシドフィラスに属する乳酸菌がラクトバチルス・アシドフィラスＣＰ１６１３株（特許生物寄託センター寄託番号ＦＥＲＭ　Ｐ−１４２０４）、Ｌ９２株（特許生物寄託センター寄託番号ＦＥＲＭ　Ｐ−１４２０５）またはこれらの組み合わせからなる群より選択されるものである請求項１記載の抗アレルギー剤。
【請求項３】
前記ラクトバチルス・ファーメンタムに属する乳酸菌がラクトバチルス・ファーメンタムＣＰ３４株（特許生物寄託センター寄託番号ＦＥＲＭ　Ｐ−１８８６６）である請求項１記載の抗アレルギー剤。
【請求項４】
持続的に鼻部に抗原刺激をすることにより血中の抗原特異的ＩｇＥ抗体を増加させた鼻炎モデルマウスにおいて、経口投与により血中の抗原特異的ＩｇＥ抗体を減少させることを特徴とする請求項１記載の抗アレルギー剤。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【産業上の利用分野】
本発明は、抗アレルギー剤に関する。
【０００２】
【従来の技術】
わが国のアレルギー患者は年々増加しており、成人の３人に１人は何らかのアレルギー疾患であるといわれている。アレルギー疾患は作用機序によりＩ型〜ＩＶ型と大きく４タイプに分類されている。花粉症などのアレルギー性鼻炎や、気管支喘息、アトピー性皮膚炎の一部は、免疫グロブリンＥ（ＩｇＥ）依存性のＩ型アレルギーといわれるものであり、血中の抗原特異的ＩｇＥ抗体が増加するとアレルギー症状を引き起こすリスクが高くなる。
【０００３】
Ｉ型アレルギーの発症機構について述べる。体内に侵入した花粉やハウスダスト、ダニなどの抗原に対する特異的ＩｇＥ抗体が産生され、マスト細胞や血中の好塩基球表面のＦｃεレセプターに結合することで感作された状態となる。その後さらに抗原が体内に侵入すると、抗原がＩｇＥ抗体に結合し、複合体が形成されることで脱顆粒を引き起こし、顆粒中のヒスタミンやロイコトリエンなどの化学伝達物質が放出され、これらの作用によりアレルギー症状が現れる。
【０００４】
今日アレルギー疾患の治療に主に用いられているのは、抗ヒスタミン剤に代表される化学伝達物質の拮抗剤と、抗炎症剤として用いられるステロイド剤である。しかしいずれも対症療法にすぎず、ステロイド剤については免疫反応全体を抑制してしまうために副作用が伴う。また脱顆粒抑制による化学伝達物質遊離抑制剤も用いられているが、発症の主な因子であるＩｇＥ抗体を特異的に減少させるような根本的な治療薬は現在のところない。
【０００５】
また、抗アレルギー剤は、長期間連用する必要が生じるので、容易に摂取でき、且つ安全性が高いものが望まれる。従って、そのような特性を有しうる新たな抗アレルギー剤が求められている。
【０００６】
【発明が解決しようとする課題】
本発明の目的は、Ｉ型アレルギーの発症に関わるＩｇＥ抗体量を減少させてアレルギー体質を改善することができ、容易に摂取でき、かつ安全性が高い抗アレルギー剤を提供することにある。
【０００７】
【課題を解決するための手段】
上記課題を解決するために、本願発明者らは、大きなＩｇＧの増加を伴わず、顕著に抗原特異的ＩｇＥが増加したマウスモデルを構築し、そのモデルにおいて、腸管免疫系に影響を及ぼしうる各種の乳酸菌菌株のＩｇＥ量抑制作用を検討したところ、各種の乳酸菌のうち特定のものが、特に優れたＩｇＥ産生抑制作用を有することを見出し、本発明を完成した。
【０００８】
即ち、本発明によれば、ラクトバチルス・アシドフィラス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ａｃｉｄｏｐｈｉｌｕｓ）に属する乳酸菌、ラクトバチルス・ファーメンタム（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｆｅｒｍｅｎｔｕｍ）に属する乳酸菌、及びこれらの組み合わせからなる群より選択される乳酸菌を有効成分として含む抗アレルギー剤が提供される。
【０００９】
また、本発明によれば、前記ラクトバチルス・アシドフィラスに属する乳酸菌がラクトバチルス・アシドフィラスＣＰ１６１３株（特許生物寄託センター寄託番号ＦＥＲＭ　Ｐ−１４２０４）、Ｌ９２株（特許生物寄託センター寄託番号ＦＥＲＭ　Ｐ−１４２０５）及びこれらの組み合わせからなる群より選択されるものである前記抗アレルギー剤が提供される。
【００１０】
さらに、本発明によれば、前記ラクトバチルス・ファーメンタムに属する乳酸菌がラクトバチルス・ファーメンタムＣＰ３４株（特許生物寄託センター寄託番号ＦＥＲＭ　Ｐ−１８８６６）である前記抗アレルギー剤が提供される。
【００１１】
さらに、本発明によれば、持続的に鼻部に抗原刺激をすることにより血中の抗原特異的ＩｇＥ抗体を増加させた鼻炎モデルマウスにおいて、経口投与により血中の抗原特異的ＩｇＥ抗体を減少させることを特徴とする前記抗アレルギー剤が提供される。
【００１２】
【発明の実施の形態】
本発明の抗アレルギー剤は、ラクトバチルス・アシドフィラス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ａｃｉｄｏｐｈｉｌｕｓ）に属する乳酸菌、ラクトバチルス・ファーメンタム（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｆｅｒｍｅｎｔｕｍ）に属する乳酸菌、及びこれらの組み合わせからなる群より選択される乳酸菌を有効成分として含む。
【００１３】
ラクトバチルス・アシドフィラスに属する乳酸菌としては、ラクトバチルス・アシドフィラスＣＰ１６１３株（特許生物寄託センター（日本国茨城県つくば市東１−１−１中央第６）寄託番号ＦＥＲＭ　Ｐ−１４２０４、寄託日１９９４年３月４日）、Ｌ９２株（特許生物寄託センター寄託番号ＦＥＲＭ　Ｐ−１４２０５、寄託日１９９４年３月４日）又はこれらの組み合わせが特に好ましい。また、ラクトバチルス・ファーメンタムに属する乳酸菌としては、ラクトバチルス・ファーメンタムＣＰ３４株（特許生物寄託センター寄託番号ＦＥＲＭ　Ｐ−１８８６６、寄託日２００２年５月２３日）が特に好ましい。
【００１４】
ラクトバチルス・アシドフィルスＣＰ１６１３株は、以下の菌学的性質を有する。
（形態学的性質）
１）細胞の形：桿菌、２）運動性の有無：無、３）胞子の有無：無、４）グラム染色：陽性
（生理学的性質）
１）カタラーゼ：陰性、２）インドールの生成：陰性、３）硝酸塩の還元：陰性、４）酸素に対する態度：通性嫌気性、５）１５℃で生育：無、６）グルコースからホモ乳酸発酵によりＤＬ乳酸生成、ガス産生無
７）各種糖類から酸生成の有無
グルコース　　　　　＋　　　　　　　メリビオース　　　　　　　　　　　　　＋
ラクトース　　　　　＋　　　　　　　ラフィノース　　　　　　　　　　　　　＋
マンノース　　　　　＋　　　　　　　マンニトール　　　　　　　　　　　　　−
フラクトース　　　＋　　　　　　　ソルビトール　　　　　　　　　　　　　−
ガラクトース　　　＋　　　　　　　エスクリン　　　　　　　　　　　　　　　＋
シュークロース　＋　　　　　　　サリシン　　　　　　　　　　　　　　　　　＋
アラビノース　　　−　　　　　　　Ｎ−アセチルグルコサミン　＋
マルトース　　　　　＋　　　　　　　アミグダリン　　　　　　　　　　　　　＋
キシロース　　　　　−　　　　　　　ゲンチオビオース　　　　　　　　　＋
ラムノース　　　　　−　　　　　　　メレチトース　　　　　　　　　　　　　−
セロビオース　　　＋　　　　　　　デキストリン　　　　　　　　　　　　　＋
トレハロース　　　＋　　　　　　　スターチ　　　　　　　　　　　　　　　　　−。
【００１５】
ラクトバチルス・アシドフィラスＬ９２株は、以下の菌学的性質を有する。
（形態学的性質）
１）細胞の形：桿菌、２）運動性の有無：無、３）胞子の有無：無、４）グラム染色：陽性
（生理学的性質）
１）カタラーゼ：陰性、２）インドールの生成：陰性、３）硝酸塩の還元：陰性、４）酸素に対する態度：通性嫌気性、５）１５℃で生育：無、６）グルコースからホモ乳酸発酵によりＤＬ乳酸生成、ガス産生無
７）各種糖類から酸生成の有無
グルコース　　　　　＋　　　　　　　メリビオース　　　　　　　　　　　　　−
ラクトース　　　　　＋　　　　　　　ラフィノース　　　　　　　　　　　　　＋
マンノース　　　　　＋　　　　　　　マンニトール　　　　　　　　　　　　　−
フラクトース　　　＋　　　　　　　ソルビトール　　　　　　　　　　　　　−
ガラクトース　　　＋　　　　　　　エスクリン　　　　　　　　　　　　　　　＋
シュークロース　＋　　　　　　　サリシン　　　　　　　　　　　　　　　　　＋
アラビノース　　　−　　　　　　　Ｎ−アセチルグルコサミン　＋
マルトース　　　　　＋　　　　　　　アミグダリン　　　　　　　　　　　　　＋
キシロース　　　　　−　　　　　　　ゲンチオビオース　　　　　　　　　＋
ラムノース　　　　　−　　　　　　　メレチトース　　　　　　　　　　　　　−
セロビオース　　　＋　　　　　　　デキストリン　　　　　　　　　　　　　−
トレハロース　　　＋　　　　　　　スターチ　　　　　　　　　　　　　　　　　−。
【００１６】
ラクトバチルス・ファーメンタムＣＰ３４は、以下の菌学的性質を有する。
（形態学的性質）
１）細胞の形：桿菌、２）運動性の有無：無、３）胞子の有無：無、４）グラム染色：陽性
（生理学的性質）
１）カタラーゼ：陰性、２）酸素に対する態度：通性嫌気性、３）グルコースからＤＬ乳酸生成し、ガス産生（＋）
４）各種炭水化物の分解性
アラビノース　　−　　　セロビオース　−
キシロース　　　−　　　ラクトース　　＋
メリビオース　　−　　　トレハロース　−
ラムノース　　　−　　　アミグダリン　−
リボース　　　　＋　　　ラフィノース　−
グルコース　　　＋　　　メレチトース　−
マンノース　　　−　　　マンニトール　−
フラクトース　　＋　　　ソルビトール　−
シュークロース　＋　　　エスクリン　　−
マルトース　　　＋　　　サリシン　　　−。
【００１７】
本発明の抗アレルギー剤中の、前記乳酸菌の含有割合は、特に限定されず製造の容易性や好ましい一日投与量等に応じて適宜調節しうるが、例えば剤型が液体の場合１×１０７ｃｅｌｌｓ／ｍｌ〜１×１０１０ｃｅｌｌｓ／ｍｌとすることが好ましい。
【００１８】
本発明の抗アレルギー剤は、前記乳酸菌に加え、他の成分を含むことができる。他の成分としては、賦形剤等の添加剤、及び後述する培地の成分等を挙げることができる。
【００１９】
本発明の抗アレルギー剤は、前記乳酸菌を培地において培養することにより製造することができる。
【００２０】
培養に用いる培地は、前記乳酸菌が生育可能な培地であればどのようなものでも利用可能であり、獣乳、脱脂乳、乳性ホエー、ＭＲＳ培地、ＧＡＭ培地、ＢＬ培地、Ｂｒｉｇｇｓ　Ｌｉｖｅｒ　Ｂｒｏｔｈや合成培地などを用いることができる。培養温度は２５℃から５０℃、好ましくは３５℃から４２℃とすることができる。また、培養時間は３時間から４８時間、好ましくは８時間から１２時間とすることができる。培養終了後の培地をそのまま、又は必要に応じてさらに処理することにより本発明の抗アレルギー剤とすることができる。例えば、培養終了後の培地から遠心分離、ろ過等により集菌して菌体のみとしたもの、これを凍結乾燥菌体としたもの、さらに加熱処理した菌体、菌体破砕物等も本発明の抗アレルギー剤とすることができる。また、上記のものをさらに製剤化したものや、飲料、錠菓、ペースト、パンなど様々な食品素材に配合したもの等も、本発明の抗アレルギー剤とすることができる。
【００２１】
本発明の抗アレルギー剤の投与方法は、特に限定されないが経口投与が好ましい。投与量は、例えばヒトへの経口投与の場合、菌体数として２×１０９個／日以上、好ましくは２×１０１０個／日とすることができ、１日１回投与、または複数回の分与とすることもできる。
【００２２】
本発明の抗アレルギー剤は、後述する実施例において確認されるとおりＩｇＥ抗体量を効果的に抑制することができる一方、食品として摂食されている菌体を有効成分とするため、安全性は高いものと思われる。
【００２３】
【発明の効果】
本発明の抗アレルギー剤は、生体中のＩｇＥ抗体量を効果的に減少させることができる一方、容易に摂取でき、且つ安全性が高い。したがって、ＩｇＥ抗体量の過剰が関与するアレルギーの抑制に有用である。
【００２４】
【実施例】
以下に本発明を実施例を参照してより詳細に説明するが、本発明はこれらに限定されない。
【００２５】
【実施例１】
（高ＩｇＥマウスの作成）
ＢＡＬＢ／ｃ系雄マウスを日本チャールスリバー社から購入し、飼料としてＣＥ−２（日本クレア社製）を自由摂取させ飼育した。卵白アルブミン（以下、ＯＶＡと略す。シグマ社製）１０μｇ及びアジュバントとして水酸化アルミニウム（和光純薬株式会社製）２ｍｇを生理食塩水３００μｌに懸濁した。この懸濁液を、６週齢の上記マウス１０匹のそれぞれに、感作開始日及び４日目に腹腔内投与し、一次感作を行った。二次感作として、ＯＶＡが２５ｍｇ／ｍｌとなるよう生理食塩水に溶解したＯＶＡ抗原溶液にマウスの鼻を約３秒間浸した。この操作を１回につき３度繰り返し、１日に２回行った。これを１０〜１６日目まで毎日行ない、高ＩｇＥマウスを得た。
【００２６】
この高ＩｇＥマウスの眼底静脈より、感作開始日及び１７日目に部分採血し、採取した血液より血清サンプルを得た。この血清サンプル中の、ＯＶＡ特異的ＩｇＥ（以下、ＯＶＡ−ＩｇＥと略す）、総ＩｇＥ及び総ＩｇＧを、下記の測定方法により測定した。結果を図１（ａ）〜図１（ｃ）に示す。
【００２７】
図１（ａ）〜１（ｃ）の結果より、感作により血中の総ＩｇＥ及びＯＶＡ−ＩｇＥが増加量がＩｇＧ増加量に対して著しく大きいことが分かる。このようにして、免疫機能を全体的に変動させることなく、血中ＩｇＥ及び抗原特異的血中ＩｇＥが増加したアレルギーモデルマウスが構築された。
（血中ＯＶＡ−ＩｇＥの測定）
サンドイッチＥＬＩＳＡ法によって行った。９６穴イムノプレート（コーニング社製）の各ウェルにヒツジ抗マウスＩｇＥポリクローナル抗体（商品名「ＡＡＭ１１」、大日本製薬株式会社製）１０μｇ／ｍｌを含む生理食塩水溶液を１００μｌ加えて、４℃で一晩インキュべートした。プレートをリン酸緩衝液（１３７ｍＭ　ＮａＣｌ，　２．７ｍＭ　ＫＣｌ，　８．１ｍＭＮａ２ＨＰＯ４及び１．５ｍＭ　ＫＨ２ＰＯ４を含む。以下ＰＢＳと略す。）で３回洗浄した後、０．５％カゼイン含有ＰＢＳをウェルいっぱいに加えて、室温で３時間インキュベートし、ＰＢＳで３回洗浄した。ＰＢＳで１／１０に希釈した血清サンプル１００μｌを各ウェルに加え、４℃で一晩反応させた。ＰＢＳで４回洗浄し、ビオチン化キット（アメリカン・コーレックス社製）でビオチン化したＯＶＡ（ビオチンラベルＯＶＡ）１０μｇ／ｍｌを含む０．５％カゼイン含有ＰＢＳ溶液を各ウェルに１００μｌ加えて室温で２時間反応後、ＰＢＳで５回洗浄した。ストレプトアビジンペルオキシダーゼ（シグマ社製）１μｇ／ｍｌ及びカゼイン０．５％を含むＰＢＳ溶液を各ウェルに１００μｌ加えて室温で１時間反応させた。プレートを０．１％Ｔｗｅｅｎ２０含有ＰＢＳで５回洗浄した後、２，２’−アジノ−ビス（３−エチルベンゾチアゾリン−６−スルホン酸）（以下ＡＢＴＳと略す。ベーリンガーマンハイム社製）６００μｇ／ｍｌ及び過酸化水素０．００６％を含む０．２Ｍクエン酸緩衝液（０．２Ｍクエン酸と０．２Ｍクエン酸三ナトリウムとを混合してｐＨ５としたもの）を各ウェルに１００μｌ加えて３７℃で３時間遮蔽して発色反応した。反応後、ＯＤ４０５とＯＤ４９２を測定し、ＯＤ４０５値−ＯＤ４９２値を用いて真の発色値とした。
【００２８】
一方、ＯＶＡ２５ｍｇ／ｍｌを含む生理食塩水を５回（１回／週）腹腔内投与したマウスの血液を採血し、これから血清を調製し、スタンダード血清とした。このスタンダード血清をＰＢＳで１／１０に希釈した。この希釈液をさらに未免疫血清で２倍に希釈する操作を段階的に行い、検量線作成用の希釈液を調製した。これらの希釈液について、上記と同様の操作を行い発色値を測定し、検量線を得た。この検量線に基き、血清サンプル中のＯＶＡ−ＩｇＥ量を、スタンダード血清中のＯＶＡ−ＩｇＥ量を１とした相対量で求めた。
（血中総ＩｇＥの測定）
９６穴イムノプレート（コーニング社製）の各ウェルにヒツジ抗マウスＩｇＥポリクローナル抗体（商品名「ＡＡＭ１１」、大日本製薬株式会社製）１０μｇ／ｍｌを含む生理食塩水溶液を５０μｌ加えて、４℃で一晩インキュべートした。プレートをＰＢＳで３回洗浄した後、０．５％カゼイン含有ＰＢＳをウェルいっぱいに加えて、室温で３時間インキュベートし、ＰＢＳで３回洗浄した。０．５％カゼイン含有ＰＢＳで１／２５に希釈した血清サンプル５０μｌを各ウェルに加え、４℃で一晩反応させた。ＰＢＳで４回洗浄し、ビオチンラベル抗マウスＩｇＥ抗体（ヤマサ醤油株式会社製）２μｇ／ｍｌ及びカゼイン０．５％を含むＰＢＳ溶液を各ウェルに５０μｌ加えて２時間室温で反応させた。０．１％Ｔｗｅｅｎ２０含有ＰＢＳで５回洗浄後、ストレプトアビジンペルオキシダーゼ１μｇ／ｍｌ及びカゼイン０．５％を含むＰＢＳ溶液を各ウェルに５０μｌ加えて室温で１時間反応させた。プレートを０．１％Ｔｗｅｅｎ２０含有ＰＢＳで５回洗浄した後、ＡＢＴＳ　３００μｇ／ｍｌ及び過酸化水素０．００６％を含む０．２Ｍクエン酸緩衝液（ｐＨ５）を各ウェルに５０μｌ加えて、室温で２０〜３０分間遮蔽して反応させ、ＯＤ４０５を測定した。
【００２９】
一方、血清サンプルの代わりに、マウス抗ＤＮＰ−ＩｇＥ（ヤマサ醤油株式会社製）を、カゼイン０．５％を含むＰＢＳに種々の濃度で溶解したものを用いて上記と同様に操作し、検量線を得た。この検量線に基き、血清サンプル中の総ＩｇＥ量を算出した。
（血中総ＩｇＧの測定）
９６穴イムノプレート（コーニング社製）の各ウェルにヤギ抗マウスＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）抗体（商品名「６２−６５００」、ザイメッド社製）１μｇ／ｍｌを含む生理食塩水溶液を５０μｌ加えて、４℃で一晩インキュべートした。プレートをＰＢＳで３回洗浄した後、０．５％カゼイン含有ＰＢＳをウェルいっぱいに加えて、室温で３時間インキュベートし、ＰＢＳで３回洗浄した。０．５％カゼイン含有ＰＢＳで１／１０００に希釈した血清サンプル５０μｌを加え、４℃で一晩反応させた。ＰＢＳで４回洗浄し、ペルオキシダーゼラベル抗マウスＩｇＧ（γ）抗体（カッペル社製）２μｇ／ｍｌ及びカゼイン０．５％を含むＰＢＳ溶液を各ウェルに５０μｌ加えて２時間室温で反応させた。０．１％Ｔｗｅｅｎ２０含有ＰＢＳで５回洗浄後、ＡＢＴＳ　３００μｇ／ｍｌ及び過酸化水素０．００６％を含む０．２Ｍクエン酸緩衝液（ｐＨ５）を各ウェルに５０μｌ加えて、室温で２０〜３０分間遮蔽して反応させ、ＯＤ４０５を測定した。
【００３０】
一方、血清サンプルの代わりに、精製したマウスＩｇＧ（カッペル社製）を、カゼイン０．５％を含むＰＢＳに種々の濃度で溶解したものを用いて上記と同様に操作し、検量線を得た。この検量線に基き、上記血清サンプル中の総ＩｇＧ量を算出した。
【００３１】
【実施例２】
（各種乳酸菌の効果の比較）
表１に示す乳酸菌菌株のそれぞれを、ＭＲＳ培地で３７℃で一晩前培養し、３０００ｒｐｍで１０分間の遠心分離により菌体を回収した。この菌体を、９％（Ｗ／Ｖ）還元脱脂乳（０．１％（Ｗ／Ｖ）酵母エキス（ＤＩＦＣＯ社製）を含む）に添加し、３７℃で乳が凝固するまで発酵させ、発酵終了後、各発酵乳の総菌数を測定した。結果を表１に示す。
【００３２】
【表１】
2004026729.tif 000002
【００３３】
次に、実施例１と同様の手順で高ＩｇＥマウスを作製し、感作１８日目に血中ＯＶＡ−ＩｇＥを実施例１と同様の測定方法にて測定した。血中ＯＶＡ−ＩｇＥ量が均等になるよう一群１０匹ずつにマウスを振り分けた。各群のマウスに、感作１９日目〜２１日目にわたり、上記の各種発酵乳、発酵させていない９％（Ｗ／Ｖ）還元脱脂乳、又はシクロホスファミドを７５０μｇ含む発酵させていない９ｗ／ｖ％還元脱脂乳を１日につき１ｍｌ、３日間胃ゾンデにより強制投与した。感作開始２２日目に、これらのマウスの眼底静脈から採血し、血清を調製し、血中ＯＶＡ−ＩｇＥ及び総ＩｇＧ量を測定した。また、対照として、同様に感作を行ったが発酵乳等の投与は何も行わなかったマウスについても、同様に採血し、血中ＯＶＡ−ＩｇＥ及び総ＩｇＧ量を測定した。結果を図２に示す。
【００３４】
図２に示される通り、ラクトバチルス・アシドフィラス又はラクトバチルス・ファーメンタム発酵乳を投与した群においては、ＯＶＡ−ＩｇＥ量に関して有意な抑制効果が得られた（ｐ＜０．０１）。一方血中総ＩｇＧ量に関しては大きな変化は認められなかった。
【００３５】
【実施例３】
乳酸菌菌株として表２に示すものを用いた他は、実施例２と同様に操作した。各発酵乳中の総菌数の測定結果を表２に示す。また、血中ＯＶＡ−ＩｇＥの測定結果を図３に示す。
【００３６】
【表２】
2004026729.tif 000003
【００３７】
図３に示される通り、ラクトバチルス・アシドフィラス発酵乳を投与した群においては、ＯＶＡ−ＩｇＥ量に関して有意な抑制効果が得られた（ｐ＜０．０１）。一方血中総ＩｇＧ量に関しては大きな変化は認められなかった。
【００３８】
【実施例４】
（低用量での効果の確認）
ラクトバチルス・アシドフィラスＬ９２株とラクトバチルス・ファーメンタムＣＰ３４株のそれぞれをＭＲＳ培地で３７℃で一晩前培養した。３０００ｒｐｍで１０分間の遠心分離により菌体を回収してＭＲＳ培地に添加し、３７℃で一晩本培養し、再び３０００ｒｐｍで１０分間の遠心分離により菌体を回収した。それぞれ菌数を測定して、１ｍｌあたり１×１０６個となるように９％脱脂乳に菌体を懸濁し、懸濁液を調製した。
【００３９】
次に、実施例１と同様の手順で高ＩｇＥマウスを作製し、感作１８日目に血中ＯＶＡ−ＩｇＥを実施例１と同様の測定方法にて測定した。血中ＯＶＡ−ＩｇＥ量が均等になるよう一群１０匹ずつにマウスを振り分けた。各群のマウスに、感作１９日目〜２１日目にわたり、上記の懸濁液を１日につき１ｍｌ、３日間胃ゾンデにより強制投与した。感作開始２２日目に、これらのマウスの眼底静脈から採血し、血清を調製し、血中ＯＶＡ−ＩｇＥ及び総ＩｇＧ量を測定した。結果を図４に示す。
【００４０】
図４に示される通り、ラクトバチルス・アシドフィラスＬ９２株及びラクトバチルス・ファーメンタムＣＰ３４株のいずれを投与した群においても、ＯＶＡ−ＩｇＥ量に関して有意な抑制効果が得られた。一方血中総ＩｇＧ量に関しては大きな変化は認められなかった。
【００４１】
発酵させていない脱脂乳を試料とした際のＯＶＡ−ＩｇＥ量のスタンダード比をａ、各懸濁液を試料とした際のＯＶＡ−ＩｇＥのスタンダード比をｂとすると、各懸濁液中を投与した場合のＯＶＡ−ＩｇＥの減少率ｄは、式ｄ＝１−（ｂ／ａ）により求められる。投与した懸濁液中の菌濃度をｓ（ｃｅｌｌｓ／ｍｌ）とし、ｓと減少率ｄとが比例すると仮定すると、この実験系においてＯＶＡ−ＩｇＥを半減させるのに必要な懸濁液中の菌数ｘ（ｃｅｌｌｓ／ｍｌ）は、式ｘ＝（ｓ×０．５）／ｄで求められる。この式に基いて、実施例２〜３で用いた各菌株における菌数ｘを求めた。結果を表３に示す。
【００４２】
【表３】
2004026729.tif 000004
【００４３】
【実施例５】
（ヒト臨床効果）
通年性アレルギー性鼻炎に罹患して症状を呈している１３名の被験者（平均年齢２２．９±６．１歳、男性６名、女性７名）に、２週間の観察期間の後、ラクトバチルス・アシドフィラスＬ９２株を８．０×１０８〜１．３×１０９ｃｅｌｌ／ｍｌ含む発酵乳を１００ｍｌ／日づつ４週間摂取させた。経時的に自覚症状に関するアンケートをとり、これを元に日本アレルギー学会「アレルギー性鼻炎重症度分類」に従って症状をスコア化した。また、経時的に鼻炎症状を、日本アレルギー学会ガイドラインの基準に従って診断した。また、経時的に採血し、血液中のＩｇＥ抗体価を測定した。さらに、試験期間中の最低気温を記録した。試験期間中の被験者の鼻閉の重症度、鼻をかんだ回数及び最低気温を図５及び図６に示す。
【００４４】
試験期間の最低気温の変化が激しく、摂取期間開始日（１１月１５日）の１４℃から、摂取期間終了日（１２月１３日）の３．７℃まで１０℃以上低下し、鼻炎症状は悪化しやすい条件であったにもかかわらず、鼻閉は摂取開始２週間後に改善傾向が見られ（Ｗｉｌｃｏｘｏｎ　ｔｅｓｔ：　ｐ＜０．１）、摂取開始４週間後には有意な改善を認めた（Ｗｉｌｃｏｘｏｎ　ｔｅｓｔ：　ｐ＜０．０５）。鼻かみ回数においても摂取開始３週間後に減少傾向が見られた（Ｗｉｌｃｏｘｏｎ　ｔｅｓｔ：　ｐ＜０．１）。また、摂取期間中、くしゃみ回数の減少、下鼻甲介の腫脹の軽快、及び血中総ＩｇＥ抗体価の低下の傾向が見られた。
【図面の簡単な説明】
【図１】実施例１における、高ＩｇＥマウスの血中免疫グロブリン量の変化を示すグラフである。
【図２】実施例２における、高ＩｇＥマウスに対する発酵乳投与によるＯＶＡ−ＩｇＥ量抑制の実験結果を示すグラフである。
【図３】実施例３における、高ＩｇＥマウスに対する発酵乳投与によるＯＶＡ−ＩｇＥ量抑制の実験結果を示すグラフである。
【図４】実施例４における、高ＩｇＥマウスに対する発酵乳投与によるＯＶＡ−ＩｇＥ量抑制の実験結果を示すグラフである。
【図５】実施例５における、ヒトに対する発酵乳投与によるアレルギー抑制の実験結果を示すグラフである。
【図６】実施例５における、ヒトに対する発酵乳投与によるアレルギー抑制の実験結果を示すグラフである。
【図１】
2004026729.tif 000005
【図２】
2004026729.tif 000006
【図３】
2004026729.tif 000007
【図４】
2004026729.tif 000008
【図５】
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【図６】
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