(57)【要約】【課題】エピレグリンの個体レベルでの機能を解明し、これによりエピレグリンが関与する種々の疾患の病態を解明し、その治療手段を提供すること。【解決手段】染色体上のエピレグリン遺伝子の機能が欠損している非ヒト哺乳動物、該動物の免疫異常疾患モデル動物としての使用、および該動物を利用した免疫異常疾患治療薬のスクリーニング方法。【選択図】  なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
染色体上のエピレグリン遺伝子の機能が欠損している非ヒト哺乳動物。
【請求項２】
エピレグリン遺伝子の機能が、エピレグリン遺伝子またはその発現制御領域上における少なくとも一部の配列の欠失、置換、および／または他の配列の挿入によって欠損している、請求項１記載の非ヒト哺乳動物。
【請求項３】
エピレグリン遺伝子のコーディング領域が９０％以上欠失している、請求項１または２記載の非ヒト哺乳動物。
【請求項４】
エピレグリン遺伝子の機能が、染色体上の両アレルで欠損している、請求項１〜３のいずれか一項に記載の非ヒト哺乳動物。
【請求項５】
以下の工程で作製される、請求項１〜４のいずれか一項に記載の非ヒト哺乳動物：
１）エピレグリン遺伝子またはその発現制御領域上における少なくとも一部の配列の欠失、置換、および／または他の配列の挿入を目的としたターゲッティングベクターを作製する；
２）上記ベクターをＥＳ細胞に導入し、該ベクターで相同組換えされたＥＳ細胞を得る；
３）上記組換えＥＳ細胞を初期胚に導入し、発生させてキメラ動物を得る；
４）上記キメラ動物を野生型動物と交配して得られるＦ１ヘテロ接合体動物同士を交配し、得られるＦ２動物またはその子孫から染色体上のエピレグリン遺伝子の機能が欠損している動物を得る。
【請求項６】
非ヒト哺乳動物がマウスである、請求項１〜５のいずれか一項に記載の非ヒト哺乳動物。
【請求項７】
免疫異常疾患のモデル動物である、請求項１〜６のいずれか一項に記載の非ヒト哺乳動物。
【請求項８】
免疫異常疾患が、アトピー性皮膚炎、メザンギウム増殖性糸球体腎炎、ならびに、炎症性腸炎および関節炎を含む自己免疫疾患からなる群より選ばれるいずれか一つまたは二つ以上である、請求項７記載の非ヒト哺乳動物。
【請求項９】
請求項１〜８のいずれか一項に記載の非ヒト哺乳動物において、被験物質の投与条件下と非投与条件下における該動物の表現上の相違を指標として、該被験物質の免疫異常疾患治療薬としての効果を評価する方法。
【請求項１０】
被験物質の免疫異常疾患治療薬としての効果が、抗核抗体の出現レベル、メザンギウム細胞の増殖レベル、炎症性細胞の出現レベル、ＩＬ−６レベル、ＩＬ−１２レベル、体重、および生存期間から選ばれるいずれか一つまたは二つ以上を指標として評価される、請求項９記載の方法。
【請求項１１】
免疫異常疾患が、アトピー性皮膚炎、メザンギウム増殖性糸球体腎炎、ならびに、炎症性腸炎および関節炎を含む自己免疫疾患から選ばれるいずれか一つまたは二つ以上である請求項９または１０記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、染色体上のエピレグリン遺伝子が欠損した非ヒト哺乳動物とその利用方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】
エピレグリン（ｅｐｉｒｅｇｕｌｉｎ）は、ＥＧＦファミリーに属する膜結合型の増殖因子である。エピレグリンは、１９９５年Ｔｏｙｏｄａらによってマウス繊維芽細胞由来の癌細胞株（ＮＩＨ３Ｔ３／Ｔ７）から単離され（例えば、非特許文献１参照）、その後、ヒトでは胎盤および末梢血ｍｏｎｏｃｙｔｅで特異的に強く発現していることが確認された（例えば、非特許文献２参照）。
【０００３】
他のＥＧＦファミリーのメンバーと同様に、エピレグリンは膜貫通型ドメインをもつｐｒｅｐｒｏ型として合成され、細胞膜表面上にＩ型膜タンパク質として発現する。例えば、マウス  エピレグリンは、１６２個のアミノ酸からなるｐｒｅｐｒｏ型として合成され、Ｎ末とＣ末でプロセシングを受けて４６アミノ酸からなる遊離型エピレグリンとして分泌される（例えば、非特許文献３参照）。この遊離型エピレグリンはマウス  ＥＧＦと３７％の相同性を示す。
【０００４】
エピレグリンは、その分子内に１個のＥＧＦ様ドメインを持ち、このドメインを介して、ＥＧＦレセプター（ＥｒｂＢ）を活性化する。エピレグリンのｐｒｉｍａｒｙなレセプターはＥｒｂＢと予測されており（例えば、非特許文献４参照）、ＥｒｂＢ１、ＥｒｂＢ４ホモダイマーや、種々のヘテロダイマーを含むＥｒｂＢレセプター全般に対して強力なリガンドとして機能する（例えば、非特許文献５参照）。興味深いことに、エピレグリンはＥｒｂＢレセプターへの結合能（ａｆｆｉｎｉｔｙ）がＥＧＦに比べて低いにもかかわらず、ＥＧＦよりも強い増殖因子活性を示す。これは、エピレグリンのシグナル伝達が弱いため、レセプターのｄｏｗｎ−ｒｅｇｕｌａｔｉｏｎを起こすことなく持続的なシグナル伝達が可能なためと考えられている（例えば、非特許文献５参照）。なお、ＥＧＦファミリーに属するＨＢ−ＥＧＦでは、膜結合型は抑制性のシグナルを、放出型は増殖性のシグナルを伝達するとの報告があるが、エピレグリンのシグナル伝達の分子機構についてはほとんど解明されていない。
【０００５】
エピレグリンは、ケラチノサイトの増殖に関与することが、培養細胞を用いた系で報告されている（例えば、非特許文献６参照）。また、膵臓腺癌や結腸癌等の癌細胞においてエピレグリンｍＲＮＡの増大が認められており、癌の増殖にも関与していることが報告されている（例えば、非特許文献７および８参照）。
【０００６】
しかしながら、エピレグリンのシグナル伝達の分子機構や、個体レベルでの機能については未だ明らかにされておらず、皮膚炎、腸炎、自己免疫疾患等との関係についての報告もない。
【０００７】
【非特許文献１】
「フェブス  レター（ＦＥＢＳ  ｌｅｔｔｅｒｓ）」  １９９５，  ３７７，  ｐ４０３−４０７
【非特許文献２】
「バイオケミカル  ジャーナル（Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｊｏｕｒｎａｌ）」  １９９７，  ３２６，  ｐ６９−７５
【非特許文献３】
「フェブス  レター（ＦＥＢＳ  Ｌｅｔｔｅｒｓ）」  １９９５，  ３７７（３），  ｐ４０３−４０７
【非特許文献４】
「インターナショナル  ジャーナル  オブ  キャンサー（Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｃａｎｃｅｒ）」  １９９８，  ７５，  ｐ３１０−３１６
【非特許文献５】
「ジャーナル  オブ  バイオロジカル  ケミストリー（Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ  Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ）」  １９９８，  ２７３，  ｐ１０４９６−１０５０５
【非特許文献６】
「ジャーナル  オブ  バイオロジカル  ケミストリー（Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ  Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ）」  ２０００  ２７５，  ｐ５７４８−５７５３
【非特許文献７】
「バイオケミカル  アンド  バイオフィジカル  リサーチ  コミュニケーションズ（Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ  ａｎｄ  Ｂｉｏｐｈｙｓｉｃａｌ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｃｏｍｍｕｎｉｃａｔｉｏｎｓ）」  ２０００，  １４，  ２７３（３），  ｐ１０１９−１０２４
【非特許文献８】
「キャンサー  リサーチ（Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ）」  ２０００，  ６０，  ｐ６８８６−６８８９
【０００８】
【発明が解決しようとする課題】
本発明の課題は、エピレグリンの個体レベルでの機能を解明し、これによりエピレグリンが関与する種々の疾患の病態を解明し、その治療手段を提供することにある。
【０００９】
【課題を解決するための手段】
発明者らは上記課題を解決するために、エピレグリン遺伝子欠損マウスを樹立した。そして、このマウスを解析した結果、エピレグリン遺伝子欠損マウスの表現型は、アトピー性皮膚炎類似の慢性皮膚炎、抗核抗体の出現に特徴付けられる自己免疫素因、および腸管に認められる好酸球を中心とした炎症性細胞の浸潤、であることを確認した。さらに、感染に対する免疫防御システムなど、生体の種々の免疫機能においてエピレグリンは重要な役割を担っていることが確認された。以上の知見に基づき、発明者らは、エピレグリンは免疫機能異常やそれによって発症する種々の疾患の研究や治療のための分子標的となると考え、本発明を完成させた。
【００１０】
すなわち、本発明は、染色体上のエピレグリン遺伝子の機能が欠損している非ヒト哺乳動物（エピレグリン遺伝子欠損動物）に関する。
前記動物において、エピレグリン遺伝子の機能は、エピレグリン遺伝子またはその発現制御領域上における少なくとも一部の配列の欠失、置換、および／または他の配列の挿入によって欠損させることができる。
例えば、エピレグリン遺伝子のコーディング領域を９０％以上欠失させれば、確実にエピレグリン遺伝子の機能を欠損させることができる。
【００１１】
本発明のエピレグリン遺伝子欠損動物は、前記エピレグリン遺伝子の機能を染色体上の一方のアレル（ヘテロ）で欠損しているものであっても、両アレル（ホモ）で欠損しているものであってもよいが、両アレル（ホモ）で欠損していることが望ましい。
【００１２】
本発明のエピレグリン遺伝子欠損動物は、例えば、以下の工程で作製される。
１）エピレグリン遺伝子またはその発現制御領域上における少なくとも一部の配列の欠失、置換、および／または他の配列の挿入を目的としたターゲッティングベクターを作製する；
２）上記ベクターをＥＳ細胞に導入し、該ベクターで相同組換えされたＥＳ細胞を得る；
３）上記組換えＥＳ細胞を初期胚に導入し、発生させてキメラ動物を得る；
４）上記キメラ動物を野生型動物と交配して得られるＦ１ヘテロ接合体動物同士を交配し、得られるＦ２動物またはその子孫から染色体上のエピレグリン遺伝子の機能が欠損している動物を得る。
【００１３】
本発明のエピレグリン遺伝子欠損動物としては、特にマウスが好ましい。
本発明のエピレグリン遺伝子欠損動物は、免疫異常疾患のモデル動物として公的に利用できる。そのような免疫異常疾患としては、例えば、アトピー性皮膚炎、メザンギウム増殖性糸球体腎炎、ならびに、炎症性腸炎および関節炎を含む自己免疫疾患等を挙げることができる。
【００１４】
本発明はまた、本発明のエピレグリン遺伝子欠損動物を利用した免疫異常疾患治療薬のスクリーニング方法を提供する。該方法は、被験物質の投与条件下と非投与条件下における動物の表現上の相違を指標として、該被験物質の免疫異常疾患治療薬としての効果を評価する。
【００１５】
例えば、被験物質の免疫異常疾患治療薬としての効果は、抗核抗体の出現レベル、メザンギウム細胞の増殖レベル、炎症性細胞の出現レベル、ＩＬ−６レベル、ＩＬ−１２レベル、体重、および生存期間から選ばれるいずれか一つまたは二つ以上を指標として評価される。
また免疫異常疾患としては、アトピー性皮膚炎、メザンギウム増殖性糸球体腎炎、ならびに、炎症性腸炎および関節炎を含む自己免疫疾患を挙げることができる。
【００１６】
【発明の実施の形態】
以下、本発明について詳細に説明する。
１．エピレグリン遺伝子欠損動物
本発明は、染色体上のエピレグリン遺伝子の機能が欠損している非ヒト哺乳動物に関する。
【００１７】
本発明にかかる「エピレグリン（ｅｐｉｒｅｇｕｌｉｎ）」とは、ＥＧＦファミリーに属する膜結合型の増殖因子で、分子内に存在するＥＧＦ様ドメインを介して、ＥｒｂＢの強力なリガンドとして機能する。ＥＰＲは細胞レベルではケラチノサイトの増殖や、癌との関連が示唆されているが、その個体レベルでの機能は不明である。以下、エピレグリンを「ＥＰＲ」と略記する。
【００１８】
本明細書中において、「エピレグリン遺伝子」にはＥＰＲをコードしているゲノムＤＮＡのほか、そのｍＲＮＡ、ｃＤＮＡも含むものとする。該ＥＰＲ遺伝子の塩基配列は、マウス、ラット、ヒト等の哺乳動物において公知であり、その配列はＧｅｎＢａｎｋ等の公共データベースを通じて容易に入手することができる（例えば、マウス：ＧｅｎＢａｎｋ  Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ  Ｎｏ．Ｄ３０７８２、ラット：ＧｅｎＢａｎｋ  Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ  Ｎｏ．ＡＢ０７８７３９、ヒト：ＧｅｎＢａｎｋ  Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ  Ｎｏ．Ｄ３０７８３等）。また、公共データベースにその配列が登録されていない動物の場合は、常法により、既知のＥＰＲ遺伝子との相同性からそのＥＰＲ遺伝子をクローニングし、配列を決定することができる。すなわち、当該動物のゲノムＤＮＡライブラリーを作製し、遺伝的に最も近い種に由来する既知のＥＰＲ遺伝子、またはその一部をプローブとして該ライブラリーをスクリーニングし、目的とするＥＰＲ遺伝子を同定し、配列を決定すればよい。
【００１９】
例えば、マウスＥＰＲ遺伝子は、５つのエクソンと４つのイントロンを含み、全長１６２個のアミノ酸からなるＥＰＲタンパクをコードする（Ｔｏｙｏｄａ  Ｈ．，  ＦＥＢＳ  Ｌｅｔｔ．  １９９５，  Ｄｅｃ．  ２７；  ３７７  （３），  ｐ４０３−４０７）。配列番号１に本発明者が同定した１２９系マウスのＥＰＲゲノムＤＮＡクローンの塩基配列を示す。また、配列番号２に第２エクソンから第５エクソンまでのｃＤＮＡを示す。
【００２０】
本発明において、「エピレグリン遺伝子の機能が欠損している」とは、染色体上のＥＰＲ遺伝子が破壊され、その機能が正常に発現されないことを意味する。すなわち、ＥＰＲ遺伝子産物が全く発現されない場合だけでなく、当該遺伝子産物が発現されてもＥＰＲとして正常な機能を有しなければ、「エピレグリン遺伝子の機能が欠損している」ことになる。こうしたＥＰＲ遺伝子の破壊は、ＥＰＲ遺伝子上、またはその転写調節領域やプロモーター領域を含む発現制御領域上の部分配列の欠失、置換、および／または他の配列の挿入等の改変によって生じさせることができる。
【００２１】
なお、前記欠失、置換、または挿入を行う部位や、欠失、置換、または挿入される配列は、ＥＰＲ遺伝子の正常な機能が欠損しうる限り、特に限定されない。しかしながら、ＥＰＲ遺伝子のコーディング領域の大部分（例えば、５０％以上、好ましくは８０％以上、特に好ましくは９０％以上）を欠失させるような変異は、確実にＥＰＲ遺伝子の機能を損なわせることができる。このＥＰＲ遺伝子の機能を欠損させる手法については次項で詳細に説明する。
【００２２】
本発明の非ヒト哺乳動物は、前記ＥＰＲ遺伝子機能の欠損を染色体上のアレルの一方（ヘテロ）に有するものであっても、両方（ホモ）に有するものであってもよいが、両方（ホモ）に有することが望ましい。
【００２３】
また、本発明にかかる「非ヒト哺乳動物」は、ヒト以外の哺乳動物であれば特に限定されないが、マウス、ラット、ウサギ等の齧歯動物が好ましく、特にＥＳ細胞が確立し、遺伝子組換えが容易に実施できるマウスが最も好ましい。
【００２４】
２．エピレグリン遺伝子欠損動物の作製方法
本発明のＥＰＲ遺伝子欠損動物は、ジーンターゲッティング、Ｃｒｅ−ｌｏｘＰシステム、体細胞クローン等の技術を利用することにより作製することができる。
【００２５】
２．１  ジーンターゲッティング
ジーンターゲッティングは、相同組換えを利用して染色体上の特定遺伝子に変異を導入する手法である（Ｃａｐｅｃｃｃｈｉ，  Ｍ．Ｒ．  Ｓｃｉｅｎｃｅ，  ２４４，  １２８８−１２９２，  １９８９，  Ｔｈｏｍａｓ，  Ｋ．Ｒ．  ＆  Ｃｐｅｃｃｃｈｉ，  Ｍ．Ｒ．  Ｃｅｌｌ，  ４４，  ４１９−４２８，  １９８６）。
【００２６】
１）ターゲティングベクターの構築
まず、ＥＰＲ遺伝子を欠損させるためのターゲッティングベクターを構築する。ターゲッティングベクターの構築に先立って、使用する動物のゲノムＤＮＡライブラリーを調製する。このゲノムＤＮＡライブラリーは、多型等による組換え頻度の低下が起こらないよう、使用する動物のＥＳ細胞、または当該細胞が由来する系統のゲノムＤＮＡから作製したライブラリーを用いる必要がある。そのようなライブラリーとしては市販のもの（例えば、Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ社製  １２９Ｓｖ／Ｊゲノムライブラリー等）を用いてもよい。ゲノムライブラリーは、標的とするＥＰＲ  ｃＤＮＡまたはその部分配列をプローブとしてスクリーニングを行い、ＥＰＲゲノムＤＮＡをクローニングする。
【００２７】
クローニングされたゲノムＤＮＡはシークエンシング、サザンブロッティング、制限酵素消化等を行うことにより、各エクソンの位置を明示した制限酵素地図を作成し、変異導入部位等を決定する。また、ターゲッティングベクターに使用する相同領域の外側には相同組換え体をスクリーニングするためのプローブ（ｅｘｔｅｒｎａｌ  ｐｒｏｂｅ）を設定する。
【００２８】
本発明において、染色体上に導入する変異（欠失、置換、または挿入）はＥＰＲ遺伝子の正常な機能が損なわれる限り特に限定されない。例えば、欠失または置換される配列は、ＥＰＲ遺伝子のイントロン領域であってもエクソン領域であっても、あるいはＥＰＲ遺伝子の発現制御領域であってもよい。特に、ＥＰＲ遺伝子のコーディング領域の大部分（例えば、５０％以上、好ましくは８０％以上、特に好ましくは９０％以上）を欠失させるような変異であれば、確実にＥＰＲ遺伝子の機能を欠損させることができる。また、挿入される他の配列も特に限定されず、例えば、以下のような各マーカー遺伝子配列であってもよい。
【００２９】
ターゲッティングベクターは、変異導入部位の３’および５’側の相同領域とともに、組み換え体を選択するための適当な選択マーカーを含む。該マーカーとしては、例えば、ネオマイシン耐性遺伝子（ｐＧＫｎｅｏ、ｐＭＣ１ｎｅｏ等）、βラクタマーゼ遺伝子、ハイグロマイシンＢホスホトランスフェラーゼ遺伝子等のポジティブセレクションマーカー、単純ヘルペスウイルスチミジンキナーゼ遺伝子（ＨＳＶ−ＴＫ）、ジフテリア毒素Ａフラグメント（ＤＴ−Ａ）等のネガティブセレクションマーカー等が挙げられるが、これらに限定されない。また、ベクターは相同領域の外側に、ベクターを直鎖化するための適当な制限酵素切断部位を含む。
【００３０】
図２にマウスＥＰＲ遺伝子欠損用のターゲッティングベクターの一例を示す。このコンストラクトは、ＳａｌＩ−ＸｈｏＩ消化によって、マウスＥＰＲ遺伝子のエクソン２、３、４、および５の一部（マウスＥＰＲ遺伝子のコーディング領域の約９０％に相当する：配列番号１）が欠失するように構築されている。また、ポジティブセレクションマーカーとしてｐＧＫプロモーターに連結されたネオマイシン耐性遺伝子（ｐＧＫｎｅｏ）が、ネガティブセレクションマーカーとしてジフテリア毒素Ａフラグメント（ＤＴ−Ａ）が挿入されている。
こうしたターゲッティングベクターの構築は、市販のプラスミドベクター（例えば、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＩＩ  （Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ製）等）を利用して好適に行うことができる。
【００３１】
２）ＥＳ細胞へのターゲッティングベクターの導入
次に、構築されたターゲティングベクターを胚性幹細胞（ＥＳ細胞）等の全能性を有する細胞に導入する。ＥＳ細胞は、マウス、ハムスター、ブタ等では細胞株が樹立されており、特にマウスでは、１２９系マウス由来のＫ１４株、Ｅ１４株、Ｄ３株、ＡＢ−１株、Ｊ１株や、Ｒ１株、ＴＴ２株等、複数の細胞株が入手可能である。また、マウスではＥＳ細胞に代えて胚性ガン腫細胞（ＥＣ細胞）を利用することもできる。
【００３２】
ＥＳ細胞は、ターゲッティングベクターの導入に先立って、適当な培地で培養しておく。例えば、マウスＥＳ細胞であれば、マウス繊維芽細胞等をフィーダー細胞として、これにＥＳ細胞用の液体培地（例えば、ＧＩＢＣＯ製）を加えて共培養する。
【００３３】
ＥＳ細胞へのターゲッティングベクターの導入は、エレクトロポレーション、マイクロインジェクション、リン酸カルシウム法等、公知の遺伝子導入法により実施することができる。ターゲッティングベクターが導入されたＥＳ細胞は、ベクター中に挿入されたマーカーにより容易に選択することができる。例えば、ネオマイシン耐性遺伝子をマーカーとして導入した細胞であれば、Ｇ４１８を加えたＥＳ細胞用培地で培養することにより、一次セレクションを行うことができる。
【００３４】
ターゲッティングベクターが導入されたＥＳ細胞では、相同組換えによって、染色体上のＥＰＲ遺伝子の一部が該ベクターで置換され、内因性のＥＰＲ遺伝子が破壊される。所望の相同組換えがなされたか否かは、サザンブロティングやＰＣＲ法等を利用したジェノタイプ解析によって判定できる。サザンブロッティングによるジェノタイプ解析は、変異導入部位の外側に設定したプローブ（ｅｘｔｅｒｎａｌ  ｐｒｏｂｅ）を用いて行うことができる。ＰＣＲ法によるジェノタイプ解析は、それぞれ野性型と変異型ＥＰＲ遺伝子の特異的増幅産物を検出することにより実施できる。こうしてターゲッティングベクターが適切に導入されたＥＳ細胞は、さらに次の段階に備えて培養しておく。
【００３５】
３）キメラ動物の作製
ターゲッティングベクターが導入されたＥＳ細胞（組換えＥＳ細胞）は、ＥＳ細胞が由来する系統とは外見上明らかな相違を有する別な系統由来の初期胚に導入し、キメラ動物として発生させる。例えば、マウスであれば、Ａｌｂｉｎｏ色の毛色を有する１２９系由来のＥＳ細胞に対しては、黒色の毛色を有し、マーカーとして利用できる各種遺伝子座が１２９系マウスとは異なっているＣ５７ＢＬ／６マウス等の初期胚を用いることが望ましい。これにより、キメラマウスはその毛色によって、キメラ率を判断することができる。
【００３６】
ＥＳ細胞の初期胚への導入は、マイクロインジェクション法（Ｈｏｇａｎ，  Ｂ．  ｅｔ  ａｌ．  ”Ｍａｎｉｐｕｌａｔｉｎｇ  ｔｈｅ  Ｍｏｕｓｅ  Ｅｍｂｒｙｏ”  Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｐｒｅｓｓ，  １９８８）や、アグリゲーション法（Ａｎｄｒａ，  Ｎ．  ｅｔ  ａｌ．  Ｐｒｏｃ．  Ｎａｔｌ．  Ａｃａｄ．  Ｓｃｉ．  ＵＳＡ，  ９０，  ８４２４−８４２８，  １９９３，  Ｓｔｅｐｈｅｎ，  Ａ．Ｗ．  ｅｔ  ａｌ．  Ｐｒｏｃ．  Ｎａｔｌ．  Ａｃａｄ．  Ｓｃｉ．  ＵＳＡ，  ９０，  ４５８２−４５８５，  １９９３）等により行うことができる。
【００３７】
マイクロインジェクション法は、ＥＳ細胞を胚盤胞（ブラストシスト）に直接注入する方法である。すなわち、動物より採取した胚盤胞（ブラストシスト）に、マイクロマニピュレーター等を用いて組換えＥＳ細胞を顕微鏡下で直接注入してキメラ胚を作製する。このキメラ胚を、仮親（偽妊娠動物）の子宮に移植し、発生させれば、所望のキメラ動物を得ることができる。
【００３８】
一方、アグリゲーション法では、透明帯を除去した２個の８細胞期の胚の間に、ＥＳ細胞の塊を挟み込むように挿入して培養し、凝集させてキメラ胚を得る。このキメラ胚を、仮親（偽妊娠動物）の子宮に移植し、発生させれば、キメラ動物を得ることができる。
【００３９】
４）ＥＰＲ遺伝子欠損動物の作製
仮親から得られたキメラ動物は、さらに同系の野性型動物と交配する。得られる動物の約半分は、ＥＰＲ遺伝子欠失染色体をヘテロで有するはずである。各個体のジェノタイプは、毛色等の外見上の特徴で一時判定できるほか、前述したサザンブロッティングやＰＣＲ法を利用したジェノタイプ解析によって決定することができる。こうして、ヘテロ型のＥＰＲ遺伝子欠損動物が同定されたら、このヘテロ型のＥＰＲ遺伝子欠損動物同士を交配して、ＥＰＲ遺伝子の欠損をホモで有する動物を得ることができる。
【００４０】
本発明のＥＰＲ遺伝子欠損動物には、上記ＥＰＲ遺伝子の欠損をヘテロで有する動物と、ホモで有する動物の両方を含むものとする。さらに、上記のようにして作製されたＥＰＲ遺伝子欠損動物の子孫も、染色体上のエピレグリン遺伝子の機能が欠損している限り、本発明のＥＰＲ遺伝子欠損動物に含まれる。
【００４１】
２．２  Ｃｒｅ−ｌｏｘＰシステムの利用
ジーンターゲッティングにバクテリオファージＰ１由来のＣｒｅ−ｌｏｘＰシステムを利用して、部位特異的、時期特異的に標的遺伝子を欠損させる方法（Ｋｕｈｎ  Ｒ．  ｅｔ  ａｌ．，  Ｓｃｉｅｎｃｅ，  ２６９，  １４２７−１４２９，  １９９５）もある。ｌｏｘＰ（ｌｏｃｕｓ  ｏｆ  Ｘ−ｉｎｇ−ｏｖｅｒ）配列は３４塩基対からなるＤＮＡ配列でＣｒｅ（Ｃａｕｓｅｓ  ｒｅｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎ）組換え酵素の認識配列である。遺伝子上の２つのｌｏｘＰ配列はＣｒｅ蛋白の存在下で特異的組換えを起こす。すなわち、欠損させたい標的遺伝子をｌｏｘＰで挟んだものに置換し、さらにＣｒｅ発現ベクターを組み込めば、部位特異的・時期特異的なＣｒｅ蛋白の産生により、ｌｏｘＰで挟まれた標的遺伝子を欠失させることができる。
【００４２】
例えば、前項２．１の１）に準じて欠損させるＥＰＲ遺伝子領域の５’側にｌｏｘＰ遺伝子を３’側にｌｏｘＰ遺伝子で挟んだマーカー遺伝子（ネオマイシン耐性遺伝子等）を組み込んだターゲッティングベクターを作製し、ＥＳ細胞に導入する。ＥＳ細胞はマーカーによる選択の後、サザンブロッティングあるいはＰＣＲ法によるジェノタイプ解析を行って相同組換えを確認する。この相同組換えＥＳ細胞に、さらにＣｒｅ蛋白を特異的プロモーターに連結したＣｒｅ発現ベクターを導入する。得られたＥＳ細胞から、ｌｏｘＰ組換えによってマーカー遺伝子のみが欠失し、ＥＰＲ遺伝子領域は欠失していないＥＳ細胞クローンを同定する。このＥＳ細胞を前項２．２の３）および４）に準じて動物に導入し、Ｃｒｅ−ｌｏｘＰ組換え動物を得る。
【００４３】
あるいは、ＥＰＲ遺伝子両端にｌｏｘＰ遺伝子を組み込んだターゲッティングベクターを導入したｌｏｘＰ導入組換え動物と、Ｃｒｅ発現ベクターを導入したＣｒｅ発現組換え動物を別個に作製し、両者を交配することによって、Ｃｒｅ−ｌｏｘＰ組換え動物を作製してもよい。
こうして得られたＣｒｅ−ｌｏｘＰ組換え動物は、Ｃｒｅ蛋白の発現に応じて、部位特異的、時期特異的にＥＰＲ遺伝子を欠損しうる。したがって、特定時期、特定部位におけるＥＰＲ遺伝子の機能解析に極めて有用である。
【００４４】
２．３  体細胞クローン
ＥＳ細胞が利用できない動物の場合、体細胞クローン（Ｉ．  Ｗｉｌｍｕｔ  ｅｔ  ａｌ，  Ｎａｔｕｒｅ，  Ｖｏｌ．３８５，  ８１０−８１３，  １９９７、Ａ．  Ｅ．  Ｓｃｈｎｉｅｋｅ  ｅｔ  ａｌ，  Ｓｃｉｅｎｃｅ，  Ｖｏｌ．２７８，  ２１３０−２１３３，  １９９７）を利用してＥＰＲ遺伝子欠損動物を作製することも可能である。体細胞クローンとは、体細胞から取り出した核を、脱核した未受精卵に移植してクローン胚を作製し、このクローン胚を仮親の子宮に移植して発生させたクローンである。この体細胞クローンに遺伝子導入技術を組み合わせれば、所望の組換え動物クローンを得ることができる。すなわち、予めＥＰＲ遺伝子を欠損させる組換え操作を行った体細胞から核を取り出し、これを脱核した未受精卵に移植して、クローン胚を作製する。このクローン胚を仮親（偽妊娠動物）の子宮に移植して、体細胞クローン動物を得れば、この動物はＥＰＲ遺伝子の欠損を有することになる。
【００４５】
３．エピレグリン遺伝子欠損動物の表現型
本発明のＥＰＲ遺伝子欠損動物において、同腹の野生型動物とは異なる表現型が現れた場合、それはＥＰＲ遺伝子の欠損に起因することが予測される。例えば、ＥＰＲ遺伝子欠損マウスでは、以下に示すような種々の変化が認められた。
【００４６】
１）抗核抗体の出現
ＥＰＲ遺伝子欠損マウスの血清中には、高レベルの抗核抗体と、ａｎｔｉ−ｄｓＤＮＡ抗体が確認された。抗核抗体（ａｎｔｉｎｕｃｌｅｒ  ａｎｔｉｂｏｄｙ  ；  ＡＮＡ）とは、真核細胞の種々の核成分を特異抗原とする自己抗体で、全身性エリテマトーデスなど、種々の自己免疫疾患患者の血清中に出現する。抗核抗体には、対応する特異抗原によって種々のものが同定されているが、疾患特異性の高い抗体も多く、また、抗体価が疾患の病態を反映する場合も多い。そのため、抗核抗体の測定は、自己免疫疾患等の臨床検査として有用性が高い。
抗核抗体は、▲１▼蛍光抗体法、▲２▼ゲル内沈降法、▲３▼ＲＩＡ、ＥＬＩＳＡ、ＰＨＡ等により検査することができる。
【００４７】
▲１▼蛍光抗体法：
現在最も広く普及している測定法であり、抗核抗体群のすべてを一括してスクリーニングできるため、一次スクリーニングに適している。本検査で陽性が判明すれば、次の段階として、どの種類の特異的抗核抗体が陽性であるかを、特異抗原を使った検査法で確かめるが、陽性検体における染色パターンによってはある程度まで対応抗原の推定も可能である。一般的には、ヒト末梢血白血球、ラット肝細胞、ＨＥｐ−２細胞、Ｗｉｌ−２細胞などの核材をスライドグラス上に固定し、稀釈した被験血清を反応させる。洗浄後、蛍光（ＦＩＴＣ）標識した抗ヒト免疫グロブリン抗体を反応させ、核成分に結合した抗核抗体の有無を判定する。抗核抗体の抗体価は被験血清が陽性を示す最終希釈倍数で表示する。染色は、核の辺縁部に強い蛍光を認めるｐｅｒｉｐｈｅｒａｌ  ｐａｔｔｅｒｎ、核全体に均一な蛍光を認めるｈｏｍｏｇｅｎｅｏｕｓ  ｐａｔｔｅｒｎ、核に斑紋状の蛍光が観察されるｓｐｅｃｋｌｅｄ  ｐａｔｔｅｒｎ等に大別され、これらの染色パターンによって対応する抗原の推定が可能である。
【００４８】
▲２▼ゲル内沈降反応：
核から抽出した可溶性抗原と被験血清をオクタロニー法によってアガロースゲル内で反応させ、沈降線の形成によって抗核抗体の有無を判定する。被験血清中中の抗核抗体の種類は、既知の特定抗核抗体を含む血清および被験血清が、核抗原との間に形成するそれぞれの沈降線を比較することによって同定できる。この方法は、蛍光抗体法の陽性検体に対する二次検査として実施されることが多い。
【００４９】
▲３▼ラジオイムノアッセイ（ＲＩＡ）、酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）、受身血球凝集反応（ＰＨＡ）：
精製した特異的核抗原を用い、ＲＩＡ、ＥＬＩＳＡまたはＰＨＡにより抗核抗体を検出する。抗原としては、ＤＮＡ、ヒストン、可溶性核抗原（ｎＲＮＰ、Ｓｍ）が用いられ、これらに対応する抗体を特異的、かつ定量的に測定でき、感度が高いことが特徴である。
【００５０】
２）アトピー性皮膚炎に類似した慢性皮膚炎の出現
ＥＰＲ遺伝子欠損マウスでは、ＳＰＦ（ｓｐｅｃｉｆｉｃ  ｐａｔｈｏｇｅｎ  ｆｒｅｅ）環境下においてさえも、その顔面や耳に、アトピー性皮膚炎に類似した慢性皮膚炎が高頻度（７５％）で出現した。
上記皮膚炎（特にアトピー性皮膚炎）の症状は、目視観察で容易に評価しうるほか、ＩｇＥ血症、各種のアレルゲンに対するＩｇＥ抗体の存在、好酸球の増加、角化の異常亢進、表皮の肥厚、炎症性細胞の浸潤等の変化によって診断できる。
【００５１】
３）メザンギウム増殖性糸球体腎炎の発症
ＥＰＲ遺伝子欠損マウスでは、ｃｏｎｖｅｎｔｉｏｎａｌな環境下に加えて、ＳＰＦ環境下においても、メザンギウム増殖性糸球体腎炎が観察された。
メザンギウム増殖性糸球体腎炎は代表的な慢性糸球体腎炎で、組織学的にはメザンギウム細胞の増殖と器質の増加を主病変とし、臨床的には蛋白尿、血尿が単独またはともに長期にわたって持続する。メザンギウム増殖性糸球体腎炎のうち、メザンギウム領域にＩｇＡが優位に局在する糸球体腎炎をＩｇＡ腎症、それ以外のものを非ＩｇＡ腎症という。ＩｇＡ腎症は慢性に経過する糸球体腎炎の約半数を占め、日本人に最も多い病気の一つである。メザンギウム増殖性腎炎の症状は、前述のようにメザンギウム領域の病変、すなわちメザンギウム細胞増殖と基質増加や、免疫複合体の沈着等により検査することができる。
【００５２】
４）炎症性細胞の浸潤
ＥＰＲ遺伝子欠損マウスでは、腸管（例えば、大腸の粘膜層）において、好酸球を中心とした炎症性細胞の浸潤が観察された。さらに、胃、十二指腸、小腸にも同様の所見が観察された。その他、関節炎の症状がみられたものもあった。
【００５３】
５）感染に対する抵抗力の低下
ｃｏｎｖｅｎｔｉｏｎａｌな環境下において、ＥＰＲ遺伝子欠損マウスのうち約２０％は極度の発育不良を呈し、２ヶ月程度で死亡した。このことは、ＥＰＲが感染に対する免疫防御システムに関与していることを示唆するものである。
【００５４】
６）サイトカインレベルの上昇
ＥＰＲ遺伝子欠損マウスでは、血中ＩＬ−１２およびＩＬ−６レベルが野生型マウスに比較して有意に高いことが確認された。さらに、ＥＰＲ遺伝子欠損マウスのマクロファージは、ｉｎ  ｖｉｔｒｏでのＬＰＳ刺激に対するＩＬ−１２の放出量が野生型マウスのマクロファージに比較して有意に高いことが確認された。
【００５５】
４．  ＥＰＲ遺伝子欠損動物の利用方法
４．１  疾患モデル動物
本発明のＥＰＲ遺伝子欠損動物では、ＥＰＲの欠損に起因すると考えられる種々の病態が現れた。本発明は、かかる病態モデル動物としてのＥＰＲ遺伝子欠損動物を提供する。
【００５６】
例えば、本発明のＥＰＲ遺伝子欠損動物はＳＰＦ環境下においても高率（例えば、ＥＰＲ遺伝子欠損マウスの場合約７５％）にアトピー性皮膚炎に類似する慢性皮膚炎（病理学的には）を呈することから、皮膚炎、特にアトピー性皮膚炎のモデル動物として利用できる。また、高レベルの抗核抗体の出現は自己免疫疾患に特徴的なものであることから、本発明のＥＰＲ遺伝子欠損動物は自己免疫疾患のモデル動物としても利用できる。さらに、ＩｇＡ腎症を含むメザンギウム増殖性糸球体腎炎のモデル動物としても使用できる。
【００５７】
以上の疾患のほか、随処に見られる炎症性細胞の浸潤や、感染に対する抵抗力の低下は、いずれも免疫機能異常に起因すると考えられ、したがって本発明のＥＰＲ遺伝子欠損動物はこうした免疫機能異常のモデル動物としても利用しうる。
【００５８】
４．２  治療薬のスクリーニング
本発明のＥＰＲ遺伝子欠損動物は、上述のとおり、皮膚炎（特に、アトピー性皮膚炎）、メザンギウム増殖性糸球体腎炎、自己免疫疾患を含む、種々の免疫機能異常により発症する疾患のモデル動物として利用しうる。本発明は、かかるＥＰＲ遺伝子欠損動物を利用した免疫異常疾患治療薬のスクリーニング方法も提供する。
【００５９】
例えば、被験物質の投与条件下と非投与条件下でＥＰＲ遺伝子欠損動物を飼育し、その表現上の相違を指標として、該被験物質の免疫異常疾患治療薬としての効果を評価することができる。評価は、例えば、抗核抗体の出現レベル、メザンギウム細胞の増殖レベル、炎症性細胞の出現レベル、ＩＬ−６レベル、ＩＬ−１２レベル、体重、生存期間等を指標として行うことができる。こうした各指標の検査や測定は、３．に記載した方法を含めて、当該技術分野で公知の方法により実施することができる。
【００６０】
より具体的には、本発明のＥＰＲ遺伝子欠損動物に被験物質を投与することにより、皮膚炎（特にアトピー性皮膚炎）の症状が改善されれば、当該被験物質は皮膚炎（特にアトピー性皮膚炎）の治療薬候補として有用であると判定できる。また、本発明のＥＰＲ遺伝子欠損動物に被験物質を投与することにより、抗核抗体レベルが低下すれば、当該被験物質は自己免疫疾患の治療薬候補として有用であると判定できる。
【００６１】
同様に、本発明のＥＰＲ遺伝子欠損動物に被験物質を投与することにより、メザンギウム細胞の増殖が抑制されれば、当該被験物質はＩｇＡ腎症を含むメザンギウム増殖性糸球体腎炎の治療薬候補として有用であると判定できる。その他、腎炎、腸炎等の炎症症状の改善、炎症性細胞の浸潤抑制等、本発明のＥＰＲ遺伝子欠損動物にみられるあらゆる免疫異常の改善を指標として、これら免疫機能異常に起因する疾患の治療薬をスクリーニングすることができる。
【００６２】
４．３  その他
本発明のＥＰＲ遺伝子欠損動物は、個体レベルでのＥＰＲの機能や作用メカニズムの解明に有用である。こうした個体レベルでの機能解明には、恒常的なＥＰＲの発現抑制に加えて、前述したＣｒｅ−ｌｏｘＰシステム等を利用した、部位特異的、時期特異的ＥＰＲの発現抑制が有用である。
【００６３】
本発明のＥＰＲ遺伝子欠損動物における種々の免疫機能異常から、ＥＰＲやＥＰＲ遺伝子自体もまた、前記免疫機能異常やそれに伴う疾患の治療に利用可能であることが示唆される。すなわち、ＥＰＲ遺伝子の発現制御や、ＥＰＲまたはＥＰＲ遺伝子を含む組成物の投与により、免疫機能異常やそれに伴う疾患を治療することも可能と考えられる。
【００６４】
【実施例】
以下、実施例により本発明についてさらに詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例に制限されるものではない。
【００６５】
〔実施例１〕  エピレグリン（ＥＰＲ）の発現解析
１．試験方法
（１）ヒトＥＰＲの発現解析
ヒトの種々の組織（脳、心臓、骨格筋、大腸、胸腺、脾臓、腎臓、肝臓、小腸、胎盤、肺、末梢血リンパ球）由来のｍＲＮＡがブロットされたフィルター（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ製）を用いて、ヒトＥＰＲ  の発現解析を行った。検出は、ｈｕｍａｎ  ＥＰＲ  ｃＤＮＡ配列（配列番号３）、およびβ−アクチン検出用プローブ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ製）を用いてノザン解析を行った。
同様に、ヒト免疫組織（脾臓、リンパ節、胸腺、末梢血リンパ球、骨髄、胎仔肝）におけるＥＰＲの発現解析を行った。
【００６６】
さらに、末梢血リンパ球のｓｕｂ−ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ（ｍｏｎｏｎｕｃｌｅａｒ、ＣＤ８＋、ＣＤ４＋、ＣＤ１４＋、ＣＤ１９＋）について、その休止状態と活性化状態（ＰＷＭ、ＣｏｎＡ、ＰＨＡ処理）におけるＥＰＲの発現解析を行った。なお、対照として、各細胞におけるＩＦＮ−γ、ＣＤ８６、Ｇ３ＰＤＨの発現を確認した。解析には、ＩＦＮ−γ、Ｇ３ＰＤＨは市販のプライマー（それぞれＴＯＹＯＢＯ製、Ｃｌｏｎｔｅｃｈ製）、ＣＤ８６は以下の配列を有するプライマーをデザインして用いた。
ＣＤ８６用プライマー：
Ｆｏｒｗａｒｄ  ｐｒｉｍｅｒ  ；  ５’−ｃａｇｔｇｇａｃａｇｇｃａｔｔｔｇｔｇａｃ−３’（配列番号４）
Ｒｅｖｅｒｓｅ  ｐｒｉｍｅｒ；  ５’−ｇａａｇａｔｇｇｔｃａｔａｔｔｇｃｔｃｇｔ−３’（配列番号５）
【００６７】
（２）マウスＥＰＲの発現解析
マウスの種々の組織よりｍＲＮＡを調製し、上記（１）と同様にして、ｍｏｕｓｅ  ＥＰＲ  ｃＤＮＡ配列（配列番号６）をプローブとして、ノザン解析を行った。
【００６８】
２．試験結果
（１）ヒトＥＰＲの発現解析結果
ヒトにおいては、従来報告されているように末梢血リンパ球（ＰＢＬ）においてＥＰＲの発現が確認された（図１ａ）。免疫組織においては、脾臓、リンパ節、胸腺、骨髄にはほとんど発現が確認されず、末梢血リンパ球にのみ特異的な発現が確認された（図１ｂ）。末梢血リンパ球のｓｕｂ−ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎにおいては、ＥＰＲは休止状態にあるＣＤ１４＋  （ｍｏｎｏｃｙｔｅ系）細胞特異的に発現する分子であることが判明した（図２ｃ）。
【００６９】
（２）マウスＥＰＲの発現解析結果
マウスにおいても、従来報告されているように末梢血単球、および腹腔マクロファージにおいてＥＰＲの発現が確認された。また、ｃＲＮＡ  ｉｎ  ｓｉｔｕ  ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎにより、表皮のごく一部の細胞においても明らかな発現が確認されたが、それはケラチノサイトではなく、おそらくランゲルハンス細胞と思われた。
【００７０】
〔実施例２〕エピレグリン（ＥＰＲ）遺伝子欠損マウスの作製
１．試験方法
ジーンターゲッティングにより、以下のようにしてエピレグリン遺伝子欠損マウスを作製した。まず、１２９ＳＶ／Ｊマウスのゲノムライブラリー（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ製）を、前述のｍｏｕｓｅ  ＥＰＲ  ｃＤＮＡ配列（配列番号６）をプローブとしてスクリーニングを行い、マウスＥＰＲゲノムクローンを複数個同定した。得られたクローンよりマップを作製し、ＥＰＲのコーディング領域をほぼ全て欠損し、そこに選択マーカー遺伝子を挿入したターゲッティングベクターを構築した（図２ａ）。すなわち、マウスＥＰＲゲノムＤＮＡをＳａｌＩ−ＸｈｏＩで消化し、約６．５ｋｂのフラグメント（ＥＰＲのエクソン２、３、４およびエクソン５の一部が含まれる）を切り出した後、ポジティブセレクションマーカーとしてｐＧＫプロモーターに連結したネオマイシン耐性遺伝子（ｐＧＫｎｅｏ）を挿入した。さらに、相同領域の外側にネガティブセレクションマーカーとしてジフテリア毒素フラグメントＡ遺伝子（ＤＴＡ）を挿入した。
【００７１】
配列番号１に上記１２９ＳＶ／ＪマウスＥＰＲゲノムＤＮＡクローンの塩基配列を示す。配列番号１中、３５７５番目〜３５８０番目の塩基配列：ＧＴＣＧＡＣがＳａｌＩ−ｓｉｔｅに、同９５４１番目〜９５４６番目の塩基配列：ＣＴＣＧＡＣがＸｈｏＩ−ｓｉｔｅに該当する。また、配列番号２に上記ＳａｌＩ−ＸｈｏＩフラグメントのｃＤＮＡ配列（第２エクソン〜第５エクソン）を示す。これにより、全長１６２アミノ酸をコードするマウスＥＰＲ遺伝子のうち、Ｃ末からＥＧＦ様ドメインを含む１４６個のアミノ酸（ＥＰＲタンパクの約９０％）が欠損することになる。
【００７２】
調製したターゲッティングコンストラクトはエレクトロポレーションにより１２９系マウス由来のＥＳ細胞（Ｋ１４株：九州大学生体防御医学研究所  中山敬一教授より供与を受けた）に導入し、マウス繊維芽細胞をフィーダー細胞とするＧ４１８を含むＥＳ細胞用培地（ＧＩＢＣＯ製）で選抜した。選抜されたＥＳ細胞は、さらに培養した後、相同組換え体を同定するために、常法に従ってＤＮＡ抽出を行った。抽出されたＤＮＡは、前述のサザン解析によりＧｅｎｏｔｙｐｅスクリーニングを行った。サザン解析は、ＤＮＡをＫｐｎＩで消化後、標識したｅｘｔｅｒｎａｌ  ｐｒｏｂｅ（図２ａのｅｘｔ：配列番号７）を用いて行った。このｅｘｔｅｒｎａｌ  ｐｒｏｂｅは、ターゲッティングベクターに用いる相同領域の外側に位置するＥｃｏＲＩ  ｆｒａｇｍｅｎｔとして設定されている。サザン解析により、野性型アレルからは７．２ｋｂ、変異アレルからは６．６ｋｂのバンドが検出された（図２ｂ）。
【００７３】
相同組換えが確認されたＥＳ細胞は、常法に従いＣ５７Ｂ６／Ｊマウスから摘出したブラストシストに注入してキメラ胚を作製した。キメラ胚は、仮親である偽妊娠ＩＣＲマウスの子宮角に移植してキメラマウスを樹立した。次いで、得られたキメラマウスの雄をさらに別の野性型Ｃ５７Ｂ６／Ｊマウスの雌と交配してＦ１マウスを得た。
【００７４】
さらに、Ｆ１マウスからＥＰＲ遺伝子欠損を有するマウス（ＥＰＲ遺伝子欠損をヘテロで有する：ヘテロマウス）を選別し、このヘテロマウス同士を交配してＥＰＲ遺伝子欠損をホモで有するマウスを樹立した。
【００７５】
なお、各マウスのＧｅｎｏｔｙｐｉｎｇは、マウス尾部より常法に従って抽出したＤＮＡを用いて、ＰＣＲ法によりターゲッティングベクターに挿入したネオマイシン耐性遺伝子（ｐＧＫｎｅｏ：約６００ｂｐ）、および６．５ｋｂの欠損領域上の部分断片（ｍｍＧＦ：約６６０ｂｐ）の増幅断片を検出することにより行った。ＰＣＲ条件、および用いたプライマーは以下のとおりである。
ｐＧＫ−ｎｅｏ増幅用プライマー：
Ｆｏｒｗａｒｄ  ｐｒｉｍｅｒ：  ５’−ｇｇａｇａｇｇｃｔａｔｔｃｇｇｃｔａｔｇ−３’（配列番号８）
Ｒｅｖｅｒｓｅ  ｐｒｉｍｅｒ：  ５’−ｇｃｔｃｔｔｃａｇｃａａｔａｔｃａｃｇｇ−３’（配列番号９）
ｍｍＧＦ増幅用プライマー：
Ｆｏｒｗａｒｄ  ｐｒｉｍｅｒ：  ５’−ｔｔｃａｇａｔｇｇａａｇａｃｇａｔｃｃｃ−３’（配列番号１０）
Ｒｅｖｅｒｓｅ  ｐｒｉｍｅｒ：  ５’−ｃａｔｃｔｇｃａｇａａａｔａｇｔａｔａｔｇｃ−３’（配列番号１１）
【００７６】
【表１】
2004290038.tif 000002
【００７７】
〔実施例３〕  エピレグリン（ＥＰＲ）遺伝子欠損マウスにおける表現型の変化
実施例２にしたがって作製したＥＰＲ遺伝子欠損マウスをｃｏｎｖｅｎｔｉｏｎａｌな条件下（Ｎ＞２００）とＳＰＲ（ｓｐｅｃｉｆｉｃ  ｐａｔｈｏｇｅｎ  ｆｒｅｅ）環境下（Ｎ＞６０）で飼育し、その表現型の変化を観察した。
【００７８】
（１）抗核抗体の出現
ＥＰＲ遺伝子欠損マウスの血清を採取し、蛍光抗体法（ＦＡＮＡ法）により抗核抗体の出現を確認した。ＥＰＲ遺伝子欠損マウスでは、生後４ヶ月までに約１２％、生後４ヶ月以上で約７５％にｈｏｍｏｇｅｎｅｏｕｓ  ｔｙｐｅ、ｐｅｒｉｐｈｅｒａｌ  ｔｙｐｅを中心とした抗核抗体が検出された（図３、図１３）。さらに、ＥＬＩＳＡにより特異抗原を使った検査を実施したところ、これらの中にはａｎｔｉ−ｄｓＤＮＡ抗体が存在するものもあることが確認された。このａｎｔｉ−ｄｓＤＮＡ抗体の存在は自己免疫素因を示す現象である。
【００７９】
（２）アトピー性皮膚炎に類似した慢性皮膚炎の出現
ＳＰＦ（ｓｐｅｃｉｆｉｃ  ｐａｔｈｏｇｅｎ  ｆｒｅｅ）環境下において、ＥＰＲ遺伝子欠損マウスでは、その顔面部、耳を中心とした皮膚炎が、早いものは生後約５ヶ月で出現し、生後１２ヶ月では約５０％に、最終的には約７５％に出現した（図４）。その病理像は、角化の亢進、表皮の肥厚、皮下の炎症性細胞の浸潤に特徴付けられた（図５）。さらに、炎症性細胞はトルイジンブルー染色（図６）、およびルナ染色（図７）により、それぞれ肥満細胞、および好酸球であることが確認された。この病理像はアトピー性皮膚炎に類似するものである。
【００８０】
（３）ｃｏｎｖｅｎｔｉｏｎａｌな環境における成長および生存
ｃｏｎｖｅｎｔｉｏｎａｌな環境下において、ＥＰＲ遺伝子欠損マウスのうち約２０％は極度の発育不良を呈し（図８）、２ヶ月程度で死亡した。この原因は不明であるが、感染等の環境要因が引き金なっていることが予測された。このことは、ＥＰＲが感染に対する免疫システムに関与していることを示唆するものである。
【００８１】
（４）メザンギウム増殖性糸球体腎炎の発症
ｃｏｎｖｅｎｔｉｏｎａｌな環境下で飼育したＥＰＲ遺伝子欠損マウスでは、解析した１０例中全てにメザンギウム細胞の増殖が観察された。ＳＰＦ環境下においてさえも、数は少ないものの（２０例中２例）、メザンギウム増殖性糸球体腎炎が観察された（図９）。
【００８２】
（５）炎症性細胞の浸潤
ＥＰＲ遺伝子欠損マウスでは、腸管における好酸球を中心とした炎症性細胞の浸潤が観察された。例えば、大腸の粘膜層に好酸球が認められた（図１０）。さらに、胃、十二指腸、小腸にも同様の所見が観察された。
【００８３】
（６）サイトカインレベルの上昇
血中サイトカインレベルを経時的に測定したところ、ＥＰＲ遺伝子欠損マウスでは皮膚炎等の症状出現前からＩＬ−１２のレベルが野生型マウスに比較して有意に高いことが確認された（図１１ａ）。また、症状が出現したＥＰＲ遺伝子欠損マウスでは、ＩＬ−６のレベルが野生型マウスに比較して有意に高くなることが確認された（図１１ｂ）。
さらに、腹腔マクロファージを取り出し、ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおけるＬＰＳ刺激に対するサイトカイン放出量を測定した。その結果、ＥＰＲ遺伝子欠損マウスのマクロファージ（ｅｐｒ−／−）ではＩＬ−１２の放出量が野生型マウスのマクロファージ（ｅｐｒ＋／＋）に比較して有意に高いことが確認された（図１２）。
【００８４】
以上のとおり、ＥＰＲ遺伝子欠損マウスでは、免疫機能異常に起因すると思われる種々の表現型の変化が認められた。これらの事実は、ＥＰＲはアトピー性皮膚炎、メザンギウム増殖性糸球体腎炎、自己免疫疾患等の免疫異常疾患発症に関与し、これら疾患を治療するための分子標的となりうることを示唆するものである。
【００８５】
【発明の効果】
本発明により、エピレグリン遺伝子の機能が欠損した動物が提供される。この動物は免疫機能異常に起因する種々の疾患症状を呈し、したがってかかる疾患の病態解明や治療手段の研究に有用である。
【００８６】
【配列表】
2004290038.tif 000003
2004290038.tif 000004
2004290038.tif 000005
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2004290038.tif 000016
【００８７】
【配列表フリーテキスト】
配列番号１−エピレグリン遺伝子  第１イントロン
エピレグリン遺伝子  第２エクソン
エピレグリン遺伝子  第２イントロン
エピレグリン遺伝子  第３エクソン
エピレグリン遺伝子  第３イントロン
エピレグリン遺伝子  第４エクソン
エピレグリン遺伝子  第４イントロン
エピレグリン遺伝子  第５エクソン
配列番号４−人工配列の説明：ＣＤ８６用フォワードプライマー
配列番号５−人工配列の説明：ＣＤ８６用リバースプライマー
配列番号７−人工配列の説明：サザンブロット用ｅｘｔｅｒｎａｌプローブ
配列番号８−人工配列の説明：ｐＧＫ−ｎｅｏ用フォワードプライマー
配列番号９−人工配列の説明：ｐＧＫ−ｎｅｏ用リバースプライマー
配列番号１０−人工配列の説明：ｍｍＧＦ用フォワードプライマー
配列番号１１−人工配列の説明：ｍｍＧＦ用リバースプライマー
【図面の簡単な説明】
【図１】図１は、ノザン法によるヒト  ＥＰＲ  ｍＲＮＡの発現解析結果を示す。１ａは種々の組織における発現解析結果、１ｂは免疫組織における発現解析結果、１ｃは末梢血リンパ球のｓｕｂ−ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎにおける発現解析結果を示す。
【図２】図２は、ＥＰＲ遺伝子欠損用ターゲッティングベクターとジェノタイプスクリーニングの結果を示す。２ａはターゲッティングコンストラクトを、２ｂはサザンブロットによるジェノタイプ解析結果を、２ｃはＰＣＲ法によるジェノタイプ解析結果を示す。
【図３】図３は、ＥＰＲ遺伝子欠損マウスにおける抗核抗体検出結果を示す。
【図４】図４は、ＥＰＲ遺伝子欠損マウス顔面の皮膚炎を示す写真である。
【図５】図５は、ＥＰＲ遺伝子欠損マウス（右）と野性型マウス（左）の顔面皮膚を比較した写真である。ＥＰＲ遺伝子欠損マウスは慢性皮膚炎症状を呈している。
【図６】図６は、ＥＰＲ遺伝子欠損マウス（右）と野性型マウス（左）のトルイジンブルー染色の結果を比較した写真である。写真で青く染色されて見えるのは肥満細胞である。
【図７】図７は、ＥＰＲ遺伝子欠損マウス（右）と野性型マウス（左）のルナ染色の結果を比較した写真である。写真で赤く染色されて見えるのは好酸球である。
【図８】図８は、Ｃｏｎｖｅｎｔｉｏｎａｌな環境で飼育したＥＰＲ欠損マウス（生後５週齢）を示す写真である。
【図９】図９は、ＥＰＲ遺伝子欠損マウス（右）と野性型マウス（左）のメザンギウム領域を比較した写真である。
【図１０】図１０は、ＥＰＲ遺伝子欠損マウスの大腸粘膜層における好酸球の浸潤を示す写真である。
【図１１】図１１は、ＥＰＲ遺伝子欠損マウス（●：ＫＯ）と野性型マウス（○：ＷＴ）の血中ＩＬ−６（ａ）およびＩＬ−１２（ｂ）レベルを経時的に比較したグラフである。
【図１２】図１２は、ＥＰＲ遺伝子欠損マウス（右：ＫＯ）と野性型マウス（左：ＷＴ）由来マクロファージの、ｉｎ  ｖｉｔｒｏでのＬＰＳ刺激に対するＩＬ−１２放出量を比較したグラフである。
【図１３】図１３は、皮膚炎が出現したＥＰＲ遺伝子欠損マウス（ｐｈｅｎｏ）と皮膚炎が出現していないＥＰＲ遺伝子欠損マウス（ＮＯＲＭＡＬ）の抗核抗体検出結果を示すグラフである。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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