(57)【要約】【課題】癌遺伝子を用いた癌細胞の製造方法、該癌遺伝子を用いた癌の検出方法、癌治療及び／または予防効果を有する化合物のスクリーニング方法、及び癌治療及び／または予防用医薬医薬組成物を提供すること。【解決手段】ＣＤ３９Ｌ４遺伝子を細胞で過剰発現させ、細胞の増殖能に変化が生じた細胞株を選択すること、ＣＤ３９Ｌ４の発現を指標とした癌の検出方法、ＣＤ３９Ｌ４を用いた新規癌治療及び／または癌予防効果を有する化合物のスクリーニング方法、及び、ＣＤ３９Ｌ４を特異的に認識する抗体を含む医薬組成物の提供等。【選択図】なし。【特許請求の範囲】
【請求項１】
下記の工程１）乃至２）を含むことからなる癌細胞の製造方法：
１）下記の▲１▼乃至▲５▼のいずれか一つに記載のポリヌクレオチドを用いて細胞を形質転換する工程；
▲１▼配列表の配列番号１のヌクレオチド番号２４７乃至１５３３に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲２▼配列表の配列番号３のヌクレオチド番号２４７乃至１５３３に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲３▼配列表の配列番号５のヌクレオチド番号２８３乃至１５６９に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲４▼配列表の配列番号７のヌクレオチド番号３９８乃至１６２１に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲５▼上記▲１▼乃至▲４▼のいずれか一つに記載のポリヌクレオチドと相補的なヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズし、ＣＤ３９Ｌ４と実質的に同一の蛋白質をコードするヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
２）工程１）により細胞の増殖能に変化が生じた細胞株を選択する工程。
【請求項２】
細胞が、動物細胞であることを特徴とする、請求項１に記載の癌細胞の製造方法。
【請求項３】
動物細胞が、哺乳類由来であることを特徴とする、請求項２に記載の癌細胞の製造方法。
【請求項４】
哺乳類がヒト、サル、マウス、ラットであることを特徴とする請求項３に記載の癌細胞の製造方法。
【請求項５】
哺乳類がヒトであることを特徴とする請求項３に記載の癌細胞の製造方法。
【請求項６】
細胞がマウス繊維芽細胞株ＮＩＨ３Ｔ３細胞であることを特徴とする請求項１に記載の癌細胞の製造方法。
【請求項７】
組換えベクターで細胞を形質転換することを特徴とする請求項１乃至６のいずれか一つに記載の癌細胞の製造方法。
【請求項８】
請求項１乃至７のいずれか一つに記載の癌細胞の製造方法によって得られた癌細胞。
【請求項９】
請求項８に記載の癌細胞を導入した非ヒト哺乳動物。
【請求項１０】
被験者または被験動物より採取した検体における下記の１）乃至５）のいずれか一つに記載のポリヌクレオチドの発現量を解析する工程を含む、癌の検出方法：
１）配列表の配列番号１のヌクレオチド番号２４７乃至１５３３に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
２）配列表の配列番号３のヌクレオチド番号２４７乃至１５３３に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド；
３）配列表の配列番号５のヌクレオチド番号２８３乃至１５６９に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド；
４）配列表の配列番号７のヌクレオチド番号３９８乃至１６２１に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド；
５）上記１）乃至４）のいずれか一つに記載のポリヌクレオチドと相補的なヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズし、ＣＤ３９Ｌ４と実質的に同一の蛋白質をコードするヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド。
【請求項１１】
被験者または被験動物より採取した検体における下記の１）乃至５）のいずれか一つに記載の蛋白質の発現量を解析する工程を含む、癌の検出方法：
１）配列表の配列番号２のアミノ酸番号１乃至４２８に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質；
２）配列表の配列番号４のアミノ酸番号１乃至４２８に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質；
３）配列表の配列番号６のアミノ酸番号１乃至４２８に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質；
４）配列表の配列番号８のアミノ酸番号１乃至４０７に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質；
５）上記工程１）乃至４）のいずれか一つに記載の蛋白質のアミノ酸配列において１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、ＣＤ３９Ｌ４と実質的に同一の蛋白質。
【請求項１２】
下記の工程１）乃至４）を含む、癌の検出方法：
１）被験者または被験動物より採取した検体より、全ＲＮＡ画分を抽出する工程；
２）正常人または正常動物より採取した検体より、全ＲＮＡ画分を抽出する工程；
３）上記工程１）由来の全ＲＮＡ画分と上記工程２）由来の全ＲＮＡ画分における、下記の▲１▼乃至▲５▼のいずれか一つに記載のポリヌクレオチドの発現量を測定する工程；
▲１▼配列表の配列番号１のヌクレオチド番号２４７乃至１５３３に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲２▼配列表の配列番号３のヌクレオチド番号２４７乃至１５３３に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲３▼配列表の配列番号５のヌクレオチド番号２８３乃至１５６９に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲４▼配列表の配列番号７のヌクレオチド番号３９８乃至１６２１に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲５▼上記▲１▼乃至▲４▼に記載のポリヌクレオチドと相補的なヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズし、ＣＤ３９Ｌ４と実質的に同一の蛋白質をコードするヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド；
４）上記工程１）由来の全ＲＮＡ画分と上記工程２）由来の全ＲＮＡ画分との間における上記工程３）によって測定されたポリヌクレオチドの発現量の差を解析し、上記工程１）に記載の被験者または被験動物の癌を検出する工程。
【請求項１３】
下記の工程１）乃至３）を含む、癌の検出方法：
１）被験者または被験動物から採取した検体における、下記の▲１▼乃至▲５▼のいずれか一つに記載の蛋白質の発現量を測定する工程；
▲１▼配列表の配列番号２のアミノ酸番号１乃至４２８に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質、
▲２▼配列表の配列番号４のアミノ酸番号１乃至４２８に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質、
▲３▼配列表の配列番号６のアミノ酸番号１乃至４２８に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質、
▲４▼配列表の配列番号８のアミノ酸番号１乃至４０７に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質、
▲５▼上記▲１▼乃至▲４▼のいずれか一つに記載の蛋白質のアミノ酸配列において１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、ＣＤ３９Ｌ４と実質的に同一の蛋白質、
２）正常人または正常動物から採取した検体における、上記工程１）の▲１▼乃至▲５▼のいずれか一つに記載の蛋白質の発現量を測定する工程；
３）上記工程１）で検出された蛋白質の発現量と上記工程２）で検出された該蛋白質の発現量の差を解析し、被験者または被験動物の癌を検出する工程。
【請求項１４】
下記の工程１）乃至４）を含むことからなる、癌に対する治療効果及び／または予防効果を有する物質のスクリーニング方法：
１）被験物質を添加した培地で培養した哺乳動物由来培養細胞より、全ＲＮＡ画分を抽出する工程；
２）被験物質を添加しないで培養した哺乳動物由来培養細胞より、全ＲＮＡ画分を抽出する工程：
３）上記工程１）由来の全ＲＮＡ画分と上記工程２）由来の全ＲＮＡ画分における、下記の▲１▼乃至▲５▼のいずれか一つに記載のポリヌクレオチドの発現量を測定する工程；
▲１▼配列表の配列番号１のヌクレオチド番号２４７乃至１５３３に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲２▼配列表の配列番号３のヌクレオチド番号２４７乃至１５３３に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲３▼配列表の配列番号５のヌクレオチド番号２８３乃至１５６９に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲４▼配列表の配列番号７のヌクレオチド番号３９８乃至１６２１に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲５▼上記▲１▼乃至▲４▼に記載のポリヌクレオチドと相補的なヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズし、ＣＤ３９Ｌ４と実質的に同一の蛋白質をコードするヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド。
４）上記工程１）由来の全ＲＮＡ画分と上記工程２）由来の全ＲＮＡ画分との間における上記工程３）によって測定されたポリヌクレオチドの発現量の差を解析し、被験物質の、癌に対する治療効果及び／または予防効果を判定する工程。
【請求項１５】
下記の工程１）乃至４）を含むことからなる、癌の治療効果及び／または予防効果を有する物質のスクリーニング方法：
１）被験物質を投与した哺乳動物個体より採取した検体より、全ＲＮＡ画分を抽出する工程；
２）被験物質を投与しなかった哺乳動物個体より採取した検体より、全ＲＮＡ画分を抽出する工程；
３）上記工程１）由来の全ＲＮＡ画分と上記工程２）由来の全ＲＮＡ画分における、下記の▲１▼乃至▲５▼のいずれか一つに記載のポリヌクレオチドの発現量を測定する工程；
▲１▼配列表の配列番号１のヌクレオチド番号２４７乃至１５３３に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲２▼配列表の配列番号３のヌクレオチド番号２４７乃至１５３３に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲３▼配列表の配列番号５のヌクレオチド番号２８３乃至１５６９に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲４▼配列表の配列番号７のヌクレオチド番号３９８乃至１６２１に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲５▼上記▲１▼乃至▲４▼に記載のポリヌクレオチドと相補的なヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズし、ＣＤ３９Ｌ４と実質的に同一の蛋白質をコードするヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド；
４）上記工程１）由来の全ＲＮＡ画分と上記工程２）由来の全ＲＮＡ画分との間における上記工程３）よって測定されたポリヌクレオチドの発現量の差を解析し、被験物質の癌に対する治療効果及び／または予防効果を判定する工程。
【請求項１６】
下記の工程１）乃至３）を含むことからなる、癌の治療効果及び／または予防効果を有する物質のスクリーニング方法：
１）被験物質を添加した培地で培養した哺乳動物由来培養細胞における、下記の▲１▼乃至▲５▼のいずれか一つに記載の蛋白質の発現量を測定する工程；
▲１▼配列表の配列番号２のアミノ酸番号１乃至４２８に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質、
▲２▼配列表の配列番号４のアミノ酸番号１乃至４２８に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質、
▲３▼配列表の配列番号６のアミノ酸番号１乃至４２８に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質、
▲４▼配列表の配列番号８のアミノ酸番号１乃至４０７に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質、
▲５▼上記▲１▼乃至▲４▼のいずれか一つに記載の蛋白質のアミノ酸配列において１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、ＣＤ３９Ｌ４と実質的に同一の蛋白質；
２）被験物質を添加しない培地で培養した哺乳動物由来培養細胞における、上記工程１）の▲１▼乃至▲５▼のいずれか一つに記載の蛋白質の発現量を該蛋白質に特異的に結合する抗体またはリガンドを用いて検出する工程；
３）上記工程１）で検出された蛋白質の発現量と、上記工程２）で検出された該蛋白質の発現量の差を解析し、被験物質の癌に対する治療効果及び／または予防効果を判定する工程。
【請求項１７】
下記の工程１）乃至３）を含むことからなる、癌の治療効果及び／または予防効果を有する物質のスクリーニング方法：
１）被験物質を投与された哺乳動物個体より採取した検体における、下記の▲１▼乃至▲５▼のいずれか一つに記載の蛋白質の発現量を測定する工程；
▲１▼配列表の配列番号２のアミノ酸番号１乃至４２８に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質、
▲２▼配列表の配列番号４のアミノ酸番号１乃至４２８に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質、
▲３▼配列表の配列番号６のアミノ酸番号１乃至４２８に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質、
▲４▼配列表の配列番号８のアミノ酸番号１乃至４０７に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質、
▲５▼上記▲１▼乃至▲４▼のいずれか一つに記載の蛋白質のアミノ酸配列において１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、ＣＤ３９Ｌ４と実質的に同一の蛋白質；
２）被験物質を投与されなかった哺乳動物個体より採取した検体における、上記工程１）の▲１▼乃至▲５▼のいずれか一つに記載の蛋白質の発現量を測定する工程；
３）上記工程１）で検出された蛋白質の発現量と、上記工程２）で検出された該蛋白質の発現量の差を解析し、被験物質の癌に対する治療効果及び／または予防効果を判定する工程。
【請求項１８】
哺乳動物培養細胞が請求項８に記載の癌細胞であることを特徴とする請求項１４または１６に記載のスクリーニング方法。
【請求項１９】
哺乳動物個体が請求項９に記載の非ヒト哺乳動物であることを特徴とする請求項１５または１７に記載のスクリーニング方法。
【請求項２０】
下記の１）乃至３）からなる群から選択される少なくとも一つ以上を含む、被験物質の癌に対する治療効果及び／または予防効果判定用、及び／または、癌の検出用、キット：
１）配列表の配列番号１、３、５及び７に示される群から選択されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドの少なくとも一つを特異的に増幅するための１５乃至３０塩基長の連続したオリゴヌクレオチドプライマー；
２）配列表の配列番号１、３、５及び７に示される群から選択されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドの少なくとも一つにストリンジェントな条件でハイブリダイズし、該ポリヌクレオチドを検出するための１５ヌクレオチド以上の連続したポリヌクレオチドプローブ；
３）配列表の配列番号１のヌクレオチド番号１７７乃至１０３１に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、配列番号３のヌクレオチド番号１３１乃至９８５に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、配列番号５のヌクレオチド番号５５乃至９０９に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号７のヌクレオチド番号８７乃至９４１に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドからなる群から選択される少なくとも一つのポリヌクレオチドが固定された固相化試料。
【請求項２１】
下記の１）及び２）の少なくとも一つを含む、被験物質の癌に対する治療効果及び／または予防効果判定用、及び／または、癌の検出用、キット：
１）配列表の配列番号２、４、６及び８に示される群から選択されるアミノ酸配列からなる蛋白質に特異的に結合し、該蛋白質を検出するための抗体；
２）上記１）に記載の抗体に結合し得る二次抗体。
【請求項２２】
ポリヌクレオチドの発現量を測定する方法が、ノーザンブロット法、ドットブロット法、スロットブロット法、ＲＴ−ＰＣＲ、リボヌクレアーゼ保護アッセイまたはランオン・アッセイであることを特徴とする、請求項１０、１２、１４、１５、１８及び１９のいずれか一つに記載の方法。
【請求項２３】
ポリヌクレオチドの発現量を測定する方法が動物組織または動物細胞由来の相補的ＤＮＡ群または該ＤＮＡ群の各ＤＮＡの部分配列からなるＤＮＡで作製された遺伝子チップまたはアレイを用いることを特徴とする請求項１０、１２、１４、１５、１８及び１９のいずれか一つに記載の方法。
【請求項２４】
蛋白質の発現量の測定方法が、該蛋白質に特異的に結合する抗体またはリガンドを用いることを特徴とする、請求項１１、１３、１７、１８及び１９のいずれか一つに記載の方法。
【請求項２５】
蛋白質の発現量の測定方法が、ウエスタンブロット法、ドットブロット法、スロットブロット法または固相酵素免疫定量法（ＥＬＩＳＡ法）であることを特徴とする、請求項１１、１３、１７、１８及び１９のいずれか一つに記載の方法。
【請求項２６】
下記の１）乃至３）からなる群から選択される少なくとも一つのヌクレオチド配列または該配列の部分配列に相補的なヌクレオチド配列を有するオリゴヌクレオオチドを含む癌の治療及び／または予防用医薬組成物：
１）配列表の配列番号１のヌクレオチド番号２４７乃至１５３３に示されるヌクレオチド配列；
２）配列表の配列番号３のヌクレオチド番号２４７乃至１５３３に示されるヌクレオチド配列；
３）配列表の配列番号５のヌクレオチド番号２８３乃至１５６９に示されるヌクレオチド配列；
配列表の配列番号７のヌクレオチド番号３９８乃至１６２１に示されるヌクレオチド配列。
【請求項２７】
ＣＤ３９Ｌ４を特異的に認識する抗体を含有する癌の治療及び／または予防用医薬組成物。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明が属する技術分野】
本発明は、癌遺伝子を用いた癌細胞の製造方法、該癌遺伝子を用いた癌の検出方法、癌治療及び／または予防効果を有する化合物のスクリーニング方法、及び癌治療及び／または予防用医薬医薬組成物等に関する。
【０００２】
【従来の技術】
癌は、欧米や日本などの先進諸国において、依然として主たる死亡原因の一つである。臨床的には、外科的癌組織の切除、放射線治療及び化学療法を含む種々の医学的方法がとられてきているが、悪性形質転換及び癌細胞の増殖に関する十分正確な理解に基づくものとは言えず、多くの場合、その効果は部分的で多くの患者を満足させるものではない。そのような悪性形質転換及び癌細胞の増殖機構に関し、過去１０数年に渡り多くの研究施設において精力的な研究が進められてきた。現在では、正常細胞の増殖は、癌遺伝子（Ｏｎｃｏｇｅｎｅ）（増殖促進遺伝子）と癌抑制遺伝子（Ｔｕｍｏｒ　ｓｕｐｐｒｅｓｓｏｒ　ｇｅｎｅ）（増殖阻害遺伝子）のバランスによって制御されていると考えられている（例えば、非特許文献１参照。）。
【０００３】
細胞内在性の癌遺伝子は、一般的にそれ自体は正常細胞を癌化させる効果は必ずしも強いものではないが、構造変異によりその調節機能が失われると、異常増殖、癌化の直接的な原因となる。例えば、点突然変異で癌を引き起こすＲａｓや、染色体転座により酵素活性の異常亢進を引き起こすＡｂｌ遺伝子などがその一例である。また、変異を生じなくとも、癌遺伝子の発現亢進が、癌化の引き金となる場合も多い。増殖因子受容体ＨＥＲ２／ｎｅｕの遺伝子増幅などによる発現亢進が転移性乳癌で惹起され、その阻害剤が転移性乳癌の治療に用いられているのはその一例である。以上のような事実は、これら癌遺伝子が、癌治療の標的として、極めて妥当な標的分子を提供するという作業仮説を強く示唆している。
【０００４】
癌疾患の中でも前立腺癌は、特に米国で最も頻繁に診断される癌であり、かつ男性の癌死原因の第二番目である。年間およそ３００，０００人の男性が新規に前立腺癌と診断され、また４０，０００人以上の男性が本疾患で死亡している。前立腺癌による死亡は主に転移した疾患に起因しているにも関わらず、新しく診断された患者の６０％近くは前立腺に限局した一次腫瘍を有している。こうした限局癌の患者に対しては外科手術及び放射線治療がしばしば有効であるが、転移伝播した癌患者の場合は、ほとんどの場合治療不能である。現在まで精力的な研究が進められてきているものの、前立腺癌の発生及び進行を引き起こす生物学的な機構に関してはごく僅かしか知られていない。
【０００５】
ヌクレオシド三リン酸脱リン酸化酵素（Ｎｕｃｌｅｏｓｉｄｅ　ｔｒｉｐｈｏｓｐｈａｔａｓｅｓ：ＮＴＰａｓｅｓ）は、細胞膜上に存在し、二価陽イオン依存的に細胞外に存在するヌクレオシド二リン酸および三リン酸を加水分解する酵素である。ＮＴＰａｓｅｓは、アピラーゼ保存領域（ＡＣＲ）と呼ばれるモチーフを４個もつことを特徴としている。ヌクレオシド三リン酸脱リン酸化酵素群の中で最もよく検討されている分子にＣＤ３９があるが、このＣＤ３９は、血管内皮細胞に発現しアデノシン二リン酸依存的な血小板凝集を阻害することが報告されており、ヌクレオシド二リン酸を脱リン酸化する酵素群に共通する役割の一つとして、ヌクレオシド加水分解による血小板凝集阻害が想定されている（例えば、非特許文献２及び３参照。）。
【０００６】
ＣＤ３９ファミリー分子の一つＣＤ３９Ｌ４は、４つのＡＣＲを持つ新規ＮＴＰａｓｅとして同定された遺伝子である（例えば、非特許文献４参照。）。本遺伝子をヒトＣＯＳ−７細胞株で発現させると、ＣＤ３９Ｌ４は、可溶性型蛋白として分泌され、また、そのリコンビナント蛋白は、アデノシン二リン酸を分解する酵素活性を有することが報告されており、血小板凝集阻害機能を有すると考えられている（例えば、非特許文献５参照。）。他方、シリアハムスター胎児繊維芽細胞より、発癌剤３−Ｍｅｔｈｙｌｃｈｏｌａｎｔｈｒｅｎｅ処理で活性化する癌遺伝子としてＰＣＰＨ遺伝子が発見されている。ＰＣＰＨ遺伝子は発癌剤処理により、アミノ酸をコードする領域内に一塩基対の欠失し、これによってオープンリーディングフレーム（ＯＲＦ）にずれが生じ、結果としてアミノ末端側に２１３個の正常ＰＣＰＨのアミノ酸配列と、カルボキシ末端側の正常ＰＣＰＨには見られない３３塩基短鎖からなる、異常型ＰＣＰＨ遺伝子ができる。このハムスターの異常型ＰＣＰＨは、ＮＩＨ３Ｔ３細胞を形質転換させることが報告されている（例えば、非特許文献６参照。）。これまでの比較解析結果では、異常型ＰＣＰＨと正常型ＰＣＰＨのいずれもＮＴＰａｓｅ活性を有するものの、様々なストレス刺激後の細胞の生存を促進する活性は、異常型で強く（例えば、非特許文献６参照。）、また、異常型では、癌遺伝子Ｈ−Ｒａｓの下流で増殖シグナルを正に制御するＥＲＫ１の持続的なリン酸化が観察されており（例えば、非特許文献７参照。）、その機能には違いが認められている。
【０００７】
最近、正常型ヒトＰＣＰＨは、ヒトＣＤ３９Ｌ４とアミノ酸配列レベルで９８％と高い類似性をもつことが報告され、また、ＣＤ３９Ｌ４様のＮＴＰａｓｅ活性を持つことから、ＰＣＰＨがＣＤ３９Ｌ４と同一分子であることが指摘された（例えば、非特許文献８参照。）。
【０００８】
Ｒｏｕｚａｕｔらは、ヒトＰＣＰＨの癌細胞株における発現をウェスタンブロット法で解析し、分子量約４７，０００の正常型相当のものに加え、いくつかの癌細胞株では分子量の約３０，０００の、サイズの小さいの遺伝子産物が存在し、このサイズの小さい遺伝子産物はその分子量が異常型と類似していることから、ヒト癌でも、異常型ＰＣＰＨがヒト組織の癌化の原因となる可能性があると推察している（例えば、非特許文献９参照。）。しかしながら、ヒトＰＣＰＨに関する、細胞形質転換能の証明は、正常型のみならずサイズの小さい異常型についてもこれまで全くなされていない。
【０００９】
以上のように、ＣＤ３９Ｌ４の形質転換能に関する解析は、ハムスターの異常型ＣＤ３９Ｌ４についてなされているのみであり、正常型ＣＤ３９Ｌ４とりわけヒト正常型ＣＤ３９Ｌ４に関するその役割については、全く調べられていない。
【００１０】
【非特許文献１】
新津洋司郎、横田淳編、「臨床家のための癌遺伝子／癌抑制遺伝子」、南江堂、１９９９年１０月１５日、ｐ．１−４６
【非特許文献２】
「ジャーナル・オブ・バイオロジカル・ケミストリー（Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ　Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ）」、１９９６年１２月２０日、第２７１巻、第５１号、ｐ．３３１１６−３３１２２
【非特許文献３】
「ジャーナル・オブ・クリニカル・インベスティゲーション（Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｃｌｉｎｉｃａｌ　Ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎ）」、１９９７年３月１５日、第９９巻、第６号、ｐ．１３５１−１３６０
【非特許文献４】
「ジェノミックス（Ｇｅｎｏｍｉｃｓ）」、１９９８年７月１５日、第５０巻、第３号、ｐ．３５７−３５７
【非特許文献５】
「ジャーナル・オブ・バイオロジカル・ケミストリー（Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ　Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ）」、１９９９年７月１６日、第２７４巻、第２９号、ｐ．２００６４−２００６７
【非特許文献６】
「オンコジーン（Ｏｎｃｏｇｅｎｅ）」、１９９９年１月２９日、弟１８巻、第３号、ｐ．６８９−７０１
【非特許文献７】
「キャンサー・リサーチ（Ｃａｎｃｅｒ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ）」、２０００年３月１５日、第６０巻、第６号、ｐ．１７２０−１７２８
【非特許文献８】
「インターナショナル・ジャーナル・オブ・オンコロジー（Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ　Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｏｎｃｏｌｏｇｙ）」、２００１年１２月、第１９巻、第６号、ｐ．１２４９−１２５４
【非特許文献９】
「ラジエーション・リサーチ（Ｒａｄｉａｔｉｏｎ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ）」、２００１年１月、第１５５巻、１Ｐｔ２）、ｐ．１８１−１８７
【００１１】
【発明が解決しようとする課題】
癌細胞と癌細胞の発生及び／または増殖に関連する遺伝子を見出し、該癌遺伝子を用いて癌細胞を製造する方法を開発し、該癌遺伝子を用いた癌の検出方法、癌治療及び／または予防効果を有する化合物のスクリーニング方法、及び癌治療及び／または予防用医薬医薬組成物を提供することを目的とする。
【００１２】
【課題を解決するための手段】
本発明者らは、ＣＤ３９Ｌ４遺伝子を過剰発現させることで癌細胞を製造することができることを見出し、また、ＣＤ３９Ｌ４を用いた、癌の検出方法、新規癌治療及び／または癌予防効果を有する化合物のスクリーニング方法を開発し、更に、ＣＤ３９Ｌ４の発現を抑制させる物質を提供し本発明を完成させた。
すなわち、本発明は、
（１）　下記の工程１）乃至２）を含むことからなる癌細胞の製造方法：
１）下記の▲１▼乃至▲５▼のいずれか一つに記載のポリヌクレオチドを用いて細胞を形質転換する工程；
▲１▼配列表の配列番号１のヌクレオチド番号２４７乃至１５３３に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲２▼配列表の配列番号３のヌクレオチド番号２４７乃至１５３３に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲３▼配列表の配列番号５のヌクレオチド番号２８３乃至１５６９に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲４▼配列表の配列番号７のヌクレオチド番号３９８乃至１６２１に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲５▼上記▲１▼乃至▲４▼のいずれか一つに記載のポリヌクレオチドと相補的なヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズし、ＣＤ３９Ｌ４と実質的に同一の蛋白質をコードするヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
２）工程１）により細胞の増殖能に変化が生じた細胞株を選択する工程、
（２）　細胞が、動物細胞であることを特徴とする、（１）に記載の癌細胞の製造方法、
（３）　動物細胞が、哺乳類由来であることを特徴とする、（２）に記載の癌細胞の製造方法、
（４）　哺乳類がヒト、サル、マウス、ラットであることを特徴とする（３）に記載の癌細胞の製造方法、
（５）　哺乳類がヒトであることを特徴とする（３）に記載の癌細胞の製造方法、
（６）　細胞がマウス繊維芽細胞株ＮＩＨ３Ｔ３細胞であることを特徴とする（１）に記載の癌細胞の製造方法、
（７）　組換えベクターで細胞を形質転換することを特徴とする（１）乃至（６）のいずれか一つに記載の癌細胞の製造方法、
（８）　（１）乃至（７）のいずれか一つに記載の癌細胞の製造方法によって得られた癌細胞、
（９）　（８）に記載の癌細胞を導入した非ヒト哺乳動物、
（１０）　被験者または被験動物より採取した検体における下記の１）乃至５）のいずれか一つに記載のポリヌクレオチドの発現量を解析する工程を含む、癌の検出方法：
１）配列表の配列番号１のヌクレオチド番号２４７乃至１５３３に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
２）配列表の配列番号３のヌクレオチド番号２４７乃至１５３３に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド；
３）配列表の配列番号５のヌクレオチド番号２８３乃至１５６９に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド；
４）配列表の配列番号７のヌクレオチド番号３９８乃至１６２１に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド；
５）上記１）乃至４）のいずれか一つに記載のポリヌクレオチドと相補的なヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズし、ＣＤ３９Ｌ４と実質的に同一の蛋白質をコードするヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
（１１）　被験者または被験動物より採取した検体における下記の１）乃至５）のいずれか一つに記載の蛋白質の発現量を解析する工程を含む、癌の検出方法：
１）配列表の配列番号２のアミノ酸番号１乃至４２８に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質；
２）配列表の配列番号４のアミノ酸番号１乃至４２８に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質；
３）配列表の配列番号６のアミノ酸番号１乃至４２８に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質；
４）配列表の配列番号８のアミノ酸番号１乃至４０７に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質；
５）上記工程１）乃至４）のいずれか一つに記載の蛋白質のアミノ酸配列において１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、ＣＤ３９Ｌ４と実質的に同一の蛋白質、
（１２）　下記の工程１）乃至４）を含む、癌の検出方法：
１）被験者または被験動物より採取した検体より、全ＲＮＡ画分を抽出する工程；
２）正常人または正常動物より採取した検体より、全ＲＮＡ画分を抽出する工程；
３）上記工程１）由来の全ＲＮＡ画分と上記工程２）由来の全ＲＮＡ画分における、下記の▲１▼乃至▲５▼のいずれか一つに記載のポリヌクレオチドの発現量を測定する工程；
▲１▼配列表の配列番号１のヌクレオチド番号２４７乃至１５３３に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲２▼配列表の配列番号３のヌクレオチド番号２４７乃至１５３３に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲３▼配列表の配列番号５のヌクレオチド番号２８３乃至１５６９に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲４▼配列表の配列番号７のヌクレオチド番号３９８乃至１６２１に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲５▼上記▲１▼乃至▲４▼に記載のポリヌクレオチドと相補的なヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズし、ＣＤ３９Ｌ４と実質的に同一の蛋白質をコードするヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド；
４）上記工程１）由来の全ＲＮＡ画分と上記工程２）由来の全ＲＮＡ画分との間における上記工程３）によって測定されたポリヌクレオチドの発現量の差を解析し、上記工程１）に記載の被験者または被験動物の癌を検出する工程、
（１３）　下記の工程１）乃至３）を含む、癌の検出方法：
１）被験者または被験動物から採取した検体における、下記の▲１▼乃至▲５▼のいずれか一つに記載の蛋白質の発現量を測定する工程；
▲１▼配列表の配列番号２のアミノ酸番号１乃至４２８に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質、
▲２▼配列表の配列番号４のアミノ酸番号１乃至４２８に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質、
▲３▼配列表の配列番号６のアミノ酸番号１乃至４２８に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質、
▲４▼配列表の配列番号８のアミノ酸番号１乃至４０７に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質、
▲５▼上記▲１▼乃至▲４▼のいずれか一つに記載の蛋白質のアミノ酸配列において１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、ＣＤ３９Ｌ４と実質的に同一の蛋白質、
２）正常人または正常動物から採取した検体における、上記工程１）の▲１▼乃至▲５▼のいずれか一つに記載の蛋白質の発現量を測定する工程；
３）上記工程１）で測定された蛋白質の発現量と上記工程２）で測定された該蛋白質の発現量の差を解析し、被験者または被験動物の癌を検出する工程、
（１４）　下記の工程１）乃至４）を含むことからなる、癌に対する治療効果及び／または予防効果を有する物質のスクリーニング方法：
１）被験物質を添加した培地で培養した哺乳動物由来培養細胞より、全ＲＮＡ画分を抽出する工程；
２）被験物質を添加しないで培養した哺乳動物由来培養細胞より、全ＲＮＡ画分を抽出する工程：
３）上記工程１）由来の全ＲＮＡ画分と上記工程２）由来の全ＲＮＡ画分における、下記の▲１▼乃至▲５▼のいずれか一つに記載のポリヌクレオチドの発現量を測定する工程；
▲１▼配列表の配列番号１のヌクレオチド番号２４７乃至１５３３に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲２▼配列表の配列番号３のヌクレオチド番号２４７乃至１５３３に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲３▼配列表の配列番号５のヌクレオチド番号２８３乃至１５６９に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲４▼配列表の配列番号７のヌクレオチド番号３９８乃至１６２１に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲５▼上記▲１▼乃至▲４▼に記載のポリヌクレオチドと相補的なヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズし、ＣＤ３９Ｌ４と実質的に同一の蛋白質をコードするヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド。
４）上記工程１）由来の全ＲＮＡ画分と上記工程２）由来の全ＲＮＡ画分との間における上記工程３）によって測定されたポリヌクレオチドの発現量の差を解析し、被験物質の、癌に対する治療効果及び／または予防効果を判定する工程、
（１５）　下記の工程１）乃至４）を含むことからなる、癌の治療効果及び／または予防効果を有する物質のスクリーニング方法：
１）被験物質を投与した哺乳動物個体より採取した検体より、全ＲＮＡ画分を抽出する工程；
２）被験物質を投与しなかった哺乳動物個体より採取した検体より、全ＲＮＡ画分を抽出する工程；
３）上記工程１）由来の全ＲＮＡ画分と上記工程２）由来の全ＲＮＡ画分における、下記の▲１▼乃至▲５▼のいずれか一つに記載のポリヌクレオチドの発現量を測定する工程；
▲１▼配列表の配列番号１のヌクレオチド番号２４７乃至１５３３に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲２▼配列表の配列番号３のヌクレオチド番号２４７乃至１５３３に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲３▼配列表の配列番号５のヌクレオチド番号２８３乃至１５６９に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲４▼配列表の配列番号７のヌクレオチド番号３９８乃至１６２１に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲５▼上記▲１▼乃至▲４▼に記載のポリヌクレオチドと相補的なヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズし、ＣＤ３９Ｌ４と実質的に同一の蛋白質をコードするヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド；
４）上記工程１）由来の全ＲＮＡ画分と上記工程２）由来の全ＲＮＡ画分との間における上記工程３）よって測定されたポリヌクレオチドの発現量の差を解析し、被験物質の癌に対する治療効果及び／または予防効果を判定する工程、
（１６）　下記の工程１）乃至３）を含むことからなる、癌の治療効果及び／または予防効果を有する物質のスクリーニング方法：
１）被験物質を添加した培地で培養した哺乳動物由来培養細胞における、下記の▲１▼乃至▲５▼のいずれか一つに記載の蛋白質の発現量を測定する工程；
▲１▼配列表の配列番号２のアミノ酸番号１乃至４２８に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質、
▲２▼配列表の配列番号４のアミノ酸番号１乃至４２８に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質、
▲３▼配列表の配列番号６のアミノ酸番号１乃至４２８に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質、
▲４▼配列表の配列番号８のアミノ酸番号１乃至４０７に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質、
▲５▼上記▲１▼乃至▲４▼のいずれか一つに記載の蛋白質のアミノ酸配列において１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、ＣＤ３９Ｌ４と実質的に同一の蛋白質；
２）被験物質を添加しない培地で培養した哺乳動物由来培養細胞における、上記工程１）の▲１▼乃至▲５▼のいずれか一つに記載の蛋白質の発現量を測定する工程；
３）上記工程１）で測定された蛋白質の発現量と、上記工程２）で測定された該蛋白質の発現量の差を解析し、被験物質の癌に対する治療効果及び／または予防効果を判定する工程、
（１７）　下記の工程１）乃至３）を含むことからなる、癌の治療効果及び／または予防効果を有する物質のスクリーニング方法：
１）被験物質を投与された哺乳動物個体より採取した検体における、下記の▲１▼乃至▲５▼のいずれか一つに記載の蛋白質の発現量を測定する工程；
▲１▼配列表の配列番号２のアミノ酸番号１乃至４２８に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質、
▲２▼配列表の配列番号４のアミノ酸番号１乃至４２８に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質、
▲３▼配列表の配列番号６のアミノ酸番号１乃至４２８に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質、
▲４▼配列表の配列番号８のアミノ酸番号１乃至４０７に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質、
▲５▼上記▲１▼乃至▲４▼のいずれか一つに記載の蛋白質のアミノ酸配列において１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、ＣＤ３９Ｌ４と実質的に同一の蛋白質；
２）被験物質を投与されなかった哺乳動物個体より採取した検体における、上記工程１）の▲１▼乃至▲５▼のいずれか一つに記載の蛋白質の発現量を測定する工程；
３）上記工程１）で測定された蛋白質の発現量と、上記工程２）で測定された該蛋白質の発現量の差を解析し、被験物質の癌に対する治療効果及び／または予防効果を判定する工程、
（１８）　哺乳動物培養細胞が（８）に記載の癌細胞であることを特徴とする（１４）または（１６）に記載のスクリーニング方法、
（１９）　哺乳動物個体が（９）に記載の非ヒト哺乳動物であることを特徴とする（１５）または（１７）に記載のスクリーニング方法、
（２０）　下記の１）乃至３）からなる群から選択される少なくとも一つ以上を含む、被験物質の癌に対する治療効果及び／または予防効果判定用、及び／または、癌の検出用、キット：
１）配列表の配列番号１、３、５及び７に示される群から選択されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドの少なくとも一つを特異的に増幅するための１５乃至３０塩基長の連続したオリゴヌクレオチドプライマー；
２）配列表の配列番号１、３、５及び７に示される群から選択されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドの少なくとも一つにストリンジェントな条件でハイブリダイズし、該ポリヌクレオチドを検出するための１５ヌクレオチド以上の連続したポリヌクレオチドプローブ；
３）配列表の配列番号１のヌクレオチド番号１７７乃至１０３１に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、配列番号３のヌクレオチド番号１３１乃至９８５に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、配列番号５のヌクレオチド番号５５乃至９０９に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号７のヌクレオチド番号８７乃至９４１に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドからなる群から選択される少なくとも一つのポリヌクレオチドが固定された固相化試料、
（２１）　下記の１）及び２）の少なくとも一つを含む、被験物質の癌に対する治療効果及び／または予防効果判定用、及び／または、癌の検出用、キット：
１）配列表の配列番号２、４、６及び８に示される群から選択されるアミノ酸配列からなる蛋白質に特異的に結合し、該蛋白質を検出するための抗体；
２）上記１）に記載の抗体に結合し得る二次抗体、
（２２）　ポリヌクレオチドの発現量を測定する方法が、ノーザンブロット法、ドットブロット法、スロットブロット法、ＲＴ−ＰＣＲ、リボヌクレアーゼ保護アッセイまたはランオン・アッセイであることを特徴とする、（１０）、（１２）、（１４）、（１５）、（１８）及び（１９）のいずれか一つに記載の方法、（２３）　ポリヌクレオチドの発現量を測定する方法が動物組織または動物細胞由来の相補的ＤＮＡ群または該ＤＮＡ群の各ＤＮＡの部分配列からなるＤＮＡで作製された遺伝子チップまたはアレイを用いることを特徴とする（１０）、（１２）、（１４）、（１５）、（１８）及び（１９）のいずれか一つに記載の方法、
（２４）　蛋白質の発現量の測定方法が、該蛋白質に特異的に結合する抗体またはリガンドを用いることを特徴とする、（１１）、（１３）、（１７）、（１８）及び（１９）のいずれか一つに記載の方法、
（２５）　蛋白質の発現量の測定方法が、ウエスタンブロット法、ドットブロット法、スロットブロット法または固相酵素免疫定量法（ＥＬＩＳＡ法）であることを特徴とする、（１１）、（１３）、（１７）、（１８）及び（１９）のいずれか一つに記載の方法、
（２６）　下記の１）乃至３）からなる群から選択される少なくとも一つのヌクレオチド配列または該配列の部分配列に相補的なヌクレオチド配列を有するオリゴヌクレオオチドを含む癌の治療及び／または予防用医薬組成物：
１）配列表の配列番号１のヌクレオチド番号２４７乃至１５３３に示されるヌクレオチド配列；
２）配列表の配列番号３のヌクレオチド番号２４７乃至１５３３に示されるヌクレオチド配列；
３）配列表の配列番号５のヌクレオチド番号２８３乃至１５６９に示されるヌクレオチド配列；
配列表の配列番号７のヌクレオチド番号３９８乃至１６２１に示されるヌクレオチド配列。
（２７）　ＣＤ３９Ｌ４を特異的に認識する抗体を含有する癌の治療及び／または予防用医薬組成物、
からなる。
【００１３】
【発明の実施の形態】
本明細書中において、癌治療及び／または癌予防効果を有する化合物とは、癌の増殖を抑制する活性、癌を縮小する活性、及び／または、癌の発生を予防する活性を有する化合物をいう。なお、本明細書中においては、「癌」と「腫瘍」は同じ意味に用いている。本明細書中において、「遺伝子」という語には、ＤＮＡのみならずそのｍＲＮＡ、ｃＤＮＡ及びそのｃＲＮＡも含まれるものとする。したがって、本発明における「ＣＤ３９Ｌ４遺伝子」には、ＣＤ３９Ｌ４のＤＮＡ、ｍＲＮＡ、ｃＤＮＡ及びｃＲＮＡが含まれる。本明細書中において、「ポリヌクレオチド」という語は核酸と同じ意味で用いており、ＤＮＡ、ＲＮＡ、プローブ、オリゴヌクレオチド、及びプライマーも含まれている。本明細中においては、「ポリペプチド」と「蛋白質」は区別せずに用いている。また、本明細書中において、「ＲＮＡ画分」とは、ＲＮＡを含んでいる画分をいう。また、本明細書中において、「細胞」には、動物個体内の細胞、培養細胞も含んでいる。本明細書中において、「細胞の癌化」とは、細胞が接触阻止現象への感受性を喪失することや、足場非依存性増殖を示すこと等、細胞が異常な増殖を示すことをいい、このような異常な増殖を示す細胞を「癌細胞」という。本明細書において、ＣＤ３９Ｌ４と「実質的に同一の蛋白質」とは、ＣＤ３９Ｌ４が有する細胞の癌化活性等と同一の機能を有する蛋白質をいう。なお本発明における癌遺伝子（Ｏｎｃｏｇｅ）という語には癌遺伝子の他に癌原遺伝子、前癌遺伝子（Ｐｒｏｔｏ−Ｏｎｃｏｇｅｎｅ）も含む。
【００１４】
１．ＣＤ３９Ｌ４遺伝子の取得
本発明で用いるヒトＣＤ３９Ｌ４のｃＤＮＡのヌクレオチド配列は例えば、配列表の配列番号１、３、５及び７のいずれかに示されている。また、ヒトＣＤ３９Ｌ４のアミノ酸配列は、例えば、配列表の配列番号２、４、６及び８のいずれかに示されている。また、ヒトＣＤ３９Ｌ４　ｃＤＮＡのヌクレオチド配列ＧｅｎＢａｎｋにアクセッション番号：ＡＦ０３９９１８（バージョン：ＡＦ０３９９１８．１）、アクセッション番号：ＮＭ＿００１２４９（バージョン：ＮＭ＿００１２４９．１）、アクセッション番号：ＡＦ１３６５７２（バージョン：ＡＦ１３６５７２．１）及びアクセッション番号：ＢＣ０２０９６６．１（バージョン：ＢＣ０２０９６６．１）で登録されている。すなわち、本明細書中において、「ＣＤ３９Ｌ４遺伝子」とは、配列表の配列番号１、３、５及び７のいずれか一つに記載のヌクレオチド配列からなる遺伝子、または、該ヌクレオチド配列からなる遺伝子と相補的なヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズし、ＣＤ３９Ｌ４と同一の生物活性を有する蛋白質をコードするヌクレオチド配列からなる遺伝子をいう。また、本明細書中において、「ＣＤ３９Ｌ４」とは、配列表の配列番号２、４、６及び８のいずれか一つに記載のアミノ酸配列からなる蛋白質、または、該蛋白質のアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、ＣＤ３９Ｌ４と同一の生物活性を有する蛋白質をいう。
【００１５】
ＣＤ３９Ｌ４遺伝子は以下の方法によって取得することができる。
（１）ヒトｃＤＮＡライブラリーを用いる場合
ＣＤ３９Ｌ４遺伝子を発現しているｃＤＮＡライブラリーから、コロニーハイブリダイゼーション法等、公知の方法に従い、完全長ｃＤＮＡを取得する。この完全長ｃＤＮＡを鋳型としてＰＣＲ法を用いてヒトＣＤ３９Ｌ４　ｃＤＮＡを取得できる。ｃＤＮＡライブラリーは例えば、ヒト前立腺癌、ヒト肺癌、ヒト乳癌、ヒト胃癌、ヒト大腸癌、ヒト悪性黒色腫、ヒト膵臓癌、及びそれぞれの癌化していない正常な組織由来のｃＤＮＡライブラリーを用いることができる。市販のヒトｃＤＮＡライブラリーとしてＰｒｏｓｔａｔｅ−Ｌｅｉｏｍｙｏｓａｒｃｏｍａ　ｃＤＮＡ（インビトロジェン（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）社：１１５９８−０１８）、Ｆｅｔａｌ　Ｂｒａｉｎ　ｃＤＮＡ（インビトロジェン社：１０６６２−０１３）、Ｍａｒａｔｈｏｎ−Ｒｅａｄｙ　ｃＤＮＡ、　Ｎｏｒｍａｌ　Ｐｒｏｓｔａｔｅ、　ｐｏｏｌｅｄ（クロンテック社：７４１８−１−１）を用いることもできるし、自ら調製することもできる。なお、ｃＤＮＡライブラリーを鋳型として直接ＰＣＲを行なってＣＤ３９Ｌ４　ｃＤＮＡを取得することもできる。ＰＣＲプライマーとしてはＣＤ３９Ｌ４　ｃＤＮＡを増幅することができればよく、公知の方法で適当なプライマーを選択することができる。ＣＤ３９Ｌ４　ｃＤＮＡを増幅するＰＣＲ用プライマーとしては例えば以下のヌクレオチド配列を有するオリゴヌクレオチドを選択することができる。
５’−　ｃａｃｃａｔｇｇｃｃａｃｔｔｃｔｔｇｇｇｇｃａｃａ　−３’（プライマー１：配列表の配列番号：９）及び、
５’−　ｔｃａａｔｇｇｇａｇａｔｇｃｃｃａｇａｇａ　−３’（プライマー２：配列表の配列番号：１０）。
【００１６】
ｃＤＮＡの調製方法としては以下の方法を挙げることができる。
【００１７】
ヒトより取り出した血液、各種組織、臓器から全ＲＮＡ画分を抽出するに際しては、血液、各種組織、臓器をＲＮＡ抽出用の溶媒（例えばフェノール等、リボヌクレアーゼを不活性化する作用を有する成分を含むもの）で直接溶解するのが好ましい。または、該組織の細胞を破壊しないように、スクレーパーで慎重に掻きとるか、もしくはトリプシン等の蛋白質分解酵素を用いて穏やかに組織から細胞を抽出するなどの方法により、細胞を回収した後、速やかにＲＮＡ画分抽出工程に移行する。
【００１８】
ＲＮＡ画分の抽出方法としては、チオシアン酸グアニジン・塩化セシウム超遠心法、チオシアン酸グアニジン・ホットフェノール法、グアニジン塩酸法、酸性チオシアン酸グアニジン・フェノール・クロロホルム法（Ｃｈｏｍｃｚｙｎｓｋｉ，　Ｐ．　ａｎｄ　Ｓａｃｃｈｉ，　Ｎ．，　（１９８７）　Ａｎａｌ．　Ｂｉｏｃｈｅｍ．，　１６２，　１５６−１５９）などを採用しうるが、酸性チオシアン酸グアニジン・フェノール・クロロホルム法が好適である。また、市販のＲＮＡ抽出用試薬（例えば、ＩＳＯＧＥＮ（ニッポンジーン社製）、ＴＲＩｚｏｌ試薬（インビトロジェン社製））等を試薬に添付のプロトコールに従って用いることもできる。例えばヒトの前立腺癌細胞株ＬＮＣａＰ（アメリカン・ティッシュ・カルチャー・コレクション（Ａｍｅｒｉｃａｎ　Ｔｉｓｓｕｅ　Ｃｕｌｔｕｒｅ　Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ）　ＡＴＣＣ　Ｎｏ．：ＣＲＬ−１７４０）からＴＲＩｚｏｌ試薬を用いて全ＲＮＡ画分を抽出することができる。
【００１９】
得られた全ＲＮＡ画分は、必要に応じてさらにｍＲＮＡのみに精製して用いるのが好ましい。精製方法は特に限定されないが、真核細胞の細胞質に存在するｍＲＮＡの多くは、その３’末端にポリ（Ａ）配列を持つことが知られているので、この特徴を利用して例えばビオチン化したオリゴ（ｄＴ）プローブにｍＲＮＡを吸着させ、さらにストレプトアビジンを固定化した常磁性粒子に、ビオチン／ストレプトアビジン間の結合を利用してｍＲＮＡを捕捉し洗浄操作の後、ｍＲＮＡを溶出することにより、ｍＲＮＡを精製することができる。また、オリゴ（ｄＴ）セルロースカラムにｍＲＮＡを吸着させて、次にこれを溶出して精製する方法も採用し得る。さらにショ糖密度勾配遠心法などにより、ｍＲＮＡをさらに分画することもできる。
【００２０】
ｃＤＮＡは全ＲＮＡあるいはｍＲＮＡを鋳型として逆転写酵素（Ｒｅｖｅｒｓｅ　ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔａｓｅ）を用いて公知の方法により合成することができ、例えば、オムニ・スクリプト・リバーストランスクリプターゼ（Ｏｍｎｉｓｃｒｉｐｔ　Ｒｅｖｅｒｓｅ　Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔａｓｅ：キアゲン（ＱＩＡＧＥＮ）社製）を添付プロトコールの方法に従って用いることでｃＤＮＡを合成することができる。得られたｃＤＮＡに対してＣＤ３９Ｌ４遺伝子の増幅に特異的なＰＣＲプライマー（例えば配列表の配列番号９に示されるヌクレオチド配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーと配列番号１０に示されるヌクレオチド配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーの組み合わせ）を用いてＰＣＲを行なうことでＣＤ３９Ｌ４　ｃＤＮＡを取得することができる。ＰＣＲは通常の反応条件で行なうことができる。
【００２１】
なお、本発明の属する技術分野における通常の知識を有する者であれば、ヒトＣＤ３９Ｌ４遺伝子の天然型のヌクレオチド配列の一部を他のヌクレオチドへの置換やヌクレオチドの欠失、付加などの改変により、天然型のＣＤ３９Ｌ４遺伝子と同等に細胞の癌化を促進する生物活性を有するポリヌクレオチドを調製することが可能である。このように天然型のヌクレオチド配列においてヌクレオチドが置換、欠失、もしくは付加したヌクレオチド配列を有し、天然型のＣＤ３９Ｌ４遺伝子と同等の発現の変動を示すポリヌクレオチドもまた本発明に用いることができる。ヌクレオチド配列の改変は、例えば、制限酵素あるいはＤＮＡエキソヌクレアーゼによる欠失導入、部位特異的変異誘発法による変異導入、変異プライマーを用いたＰＣＲ法によるヌクレオチド配列の改変、合成変異ＤＮＡの直接導入などの方法により行うことができる。また、ＣＤ３９Ｌ４遺伝子と相補的なヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズし、ＣＤ３９Ｌ４と同様の癌細胞増殖活性を有するポリヌクレオチドを使用することもできる。
【００２２】
本発明において、「ストリンジェントな条件でハイブリダイズする」とは、市販のハイブリダイゼーション溶液ＥｘｐｒｅｓｓＨｙｂ　Ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ　Ｓｏｌｕｔｉｏｎ（クローンテック社製）中、６８℃でハイブリダイズすること、または、ＤＮＡを固定したフィルターを用いて０．７−１．０ＭのＮａＣｌ存在下６８℃でハイブリダイゼーションを行なった後、０．１−２倍濃度のＳＳＣ溶液（１倍濃度ＳＳＣとは１５０ｍＭ　ＮａＣｌ、１５ｍＭ　クエン酸ナトリウムからなる）を用い、６８℃で洗浄することにより同定することができる条件またはそれと同等の条件でハイブリダイズすることをいう。
【００２３】
２．ＣＤ３９Ｌ４遺伝子の発現
ＣＤ３９Ｌ４遺伝子を動物個体内で発現させるためには、得られた完全長ｃＤＮＡをウイルスベクターに組み込み、動物に投与する方法が挙げられる。ウイルスベクターによる遺伝子導入方法としては例えば、レトロウイルス、アデノウイルス、アデノ関連ウイルス、ヘルペスウイルス、ワクシニアウイルス、ポックスウイルス、ポリオウイルス等のＤＮＡウイルス、またはＲＮＡウイルスにｃＤＮＡを組み込んで導入する方法が挙げられる。なかでも、レトロウイルス、アデノウイルス、アデノ関連ウイルス、ワクシニアウイルスを用いた方法が好ましい。
【００２４】
非ウイルス性の遺伝子導入方法としては、発現プラスミドを直接筋肉内に投与する方法（ＤＮＡワクチン法）、リポソーム法、リポフェクション法、マイクロインジェクション法、リン酸カルシウム法、エレクトロポレーション法等が挙げられ、なかでも、ＤＮＡワクチン法、リポソーム法が好ましい。
【００２５】
また、培養細胞に対して、完全長ｃＤＮＡをヒト、マウス、ラット等由来の筋肉細胞、肝細胞、脂肪細胞、前立腺細胞あるいは筋肉細胞、肝細胞、脂肪細胞に分化する細胞（例えば繊維芽細胞）等の細胞へ導入し、高発現させ、各標的細胞の有する機能、具体的には、細胞の癌化等、細胞の形態あるいは細胞の分化にどの様な影響が現れるかを検討することができる。逆に、試験する遺伝子に対するアンチセンス核酸を、細胞に導入し、各標的細胞の機能、形態あるいは細胞の分化にどの様な影響が出るかを調べることもできる。
【００２６】
完全長ｃＤＮＡを動物または細胞に導入するにあたっては、適当なプロモーター及び形質発現に関わる配列を含むベクターに該ｃＤＮＡを組み込み、該ベクターで宿主細胞を形質転換させる。脊椎動物細胞の発現プロモーターとしては、通常発現しようとする遺伝子の上流に位置するプロモーター、ＲＮＡのスプライス部位、ポリアデニル化部位、及び転写終結配列等を有するものを使用でき、さらにこれは必要により複製起点を有してもよい。該発現ベクターの例としては、ＳＶ４０の初期プロモーターを有するｐＳＶ２ｄｈｆｒ（Ｓｕｂｒａｍａｎｉ、　Ｓ．　ｅｔ　ａｌ．　（１９８１）　Ｍｏｌ．　Ｃｅｌｌ．　Ｂｉｏｌ．　１、　８５４−８６４）、レトロウイルスベクターｐＬＮＣＸ、ｐＬＮＳＸ、ｐＬＸＩＮ、ｐＳＩＲ（クロンテック（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ）社製）等が挙げられるが、これらに限定されない。該発現ベクターは、ジエチルアミノエチル（ＤＥＡＥ）−デキストラン法（Ｌｕｔｈｍａｎ、　Ｈ．　ａｎｄ　Ｍａｇｎｕｓｓｏｎ、ｇ．（１９８３）　Ｎｕｃｌｅｉｃ　Ａｃｉｄｓ　Ｒｅｓ、１１、１２９５−１３０８）、リン酸カルシウム−ＤＮＡ共沈殿法（Ｇｒａｈａｍ、Ｆ．Ｌ．　ａｎｄ　ｖａｎ　ｄｅｒ　Ｅｂ、Ａ．Ｊ．（１９７３）Ｖｉｒｏｌｏｇｙ　５２、４５６−４５７）、電気パルス穿孔法（Ｎｅｕｍａｎｎ、Ｅ．　ｅｔ　ａｌ．（１９８２）ＥＭＢＯ　Ｊ．　１、８４１−８４５）、あるいはＬｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ　２０００（インビトロジェン社製）、Ｌｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ　ＰＬＵＳ　（インビトロジェン社製）、ＤＭＲＩＥ−Ｃ　Ｒｅａｇｅｎｔ（インビトロジェン社社製）、ＦｕＧＥＮＥ６（ロッシュ・ダイアグノスティクス社製）などによりＣＯＳ細胞やマウス繊維芽細胞株ＮＩＨ３Ｔ３（ＡＴＣＣ　Ｎｏ．：ＣＲＬ−１６５８）等に取り込ませることができ、あるいは、レトロウイルスベクターの場合は、パッケージング細胞株、例えば、２９３−１０Ａ１（ＩＭＧＥＮＥＸ社製）やＰＴ６７（クロンテック社製）に取り込ませるか、２９３細胞（宝酒造社製）やＮＩＨ３Ｔ３細胞にｐＣＬ−１０Ａ１やｐＣＬ−Ｅｃｏ（ＩＭＧＥＮＥＸ社製）等パッケージングプラスミドを一緒に取り込ませる（コ・トランスフェクトする）ことでウイルスを産生させ、これをＣＯＳ細胞やマウス繊維芽ＮＩＨ３Ｔ３等に感染させることで、所望の形質転換細胞を得ることができる。
【００２７】
また、遺伝子操作により、正常動物において対象とする遺伝子を破壊したノックアウト動物を作製し、腫瘍発生及び／または腫瘍増殖メカニズムにどの様な影響が現れるかを検討することも可能である。逆に、腫瘍を有する動物において、目的とする遺伝子が高発現するようにトランスジェニック動物を作製し、その腫瘍の形態変化を観察することでＣＤ３９Ｌ４の機能を調べることも可能である。前記トランスジェニック動物は、動物から受精卵を取得し、遺伝子導入の後、偽妊娠動物に移植し、発生させることにより得ることができ、その手順は公知の方法（発生工学実験マニュアル（野村達次　監修、勝木元也　編、１９８７年刊）、特開平５−４８０９３号等参照）に従えばよい。具体的には、例えば、マウスの場合にはまずメスマウスに排卵誘起剤を投与後、同系統のオスと交配し、翌日メスマウスの卵管より前核受精卵を採取する。次いで、導入するＤＮＡ断片溶液を微小ガラス管を用いて受精卵の前核に注入する。なお、導入する遺伝子を動物細胞内で発現させるためのプロモーターやエンハンサー等の調節遺伝子は、導入された動物の細胞内で機能するものであれば特に限定されない。ＤＮＡを注入した受精卵は、偽妊娠仮親メスマウス（Ｓｌｃ：ＩＣＲ等）の卵管に移植し、約２０日後に自然分娩または帝王切開により出生させる。
【００２８】
こうして得られた動物が、導入遺伝子を保持していることを確認する方法としては、例えば、前記動物の尾等からＤＮＡを抽出し、該ＤＮＡをこれに特異的なセンス及びアンチセンスプライマーを用いてＰＣＲ増幅する方法、該ＤＮＡを制限酵素で消化後、ゲル電気泳動し、ゲル中のＤＮＡをナイロン膜等にブロッティングした後、標識した導入遺伝子の全部または一部をプローブとしてサザンブロット解析を行なう方法等を挙げることができる。
【００２９】
３．ＣＤ３９Ｌ４遺伝子を用いた癌細胞の製造方法
対象とする遺伝子が、癌遺伝子として機能しうるかどうか、すなわち悪性形質能があるか否かは、それらを発現させた細胞株における接触阻止現象（Ｃｏｎｔａｃｔ　ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ）への感受性、あるいは、足場非依存性増殖（Ａｎｃｈｏｒａｇｅ　ｉｎｄｅｐｅｎｄｅｎｔ　ｇｒｏｗｔｈ）などの有無によって調べることができる（横田淳、山本雅編、バイオマニュアルＵＰシリーズ　癌研究プロトコール　羊土社　１６８−１７４（１９９５．１０．１５）。すなわち、細胞に対して接触阻止現象に対する感受性を喪失させたり、足場非依存性増殖を示させたりする遺伝子は癌遺伝子といえる。
【００３０】
例えば、マウス繊維芽細胞株ＮＩＨ３Ｔ３細胞株中でＣＤ３９Ｌ４遺伝子を過剰に発現させると、上記の接触阻止能に対する感受性の喪失及び足場非依存性増殖が確認され、ＣＤ３９Ｌ４遺伝子は癌遺伝子として機能することが明らかとなった。多くの場合、癌遺伝子を過剰発現しているＮＩＨ３Ｔ３細胞をヌードマウスに注射すると注射部位に腫瘍を形成するので、ＣＤ３９Ｌ４遺伝子を過剰発現する細胞株は腫瘍形成実験に用いることもできる。
【００３１】
すなわち、ＣＤ３９Ｌ４遺伝子を用いることで、癌細胞を製造することができる。癌細胞の製造方法としては、例えば、以下の工程１）及び２）を含む癌細胞の製造方法を挙げることができる。
１）下記の▲１▼乃至▲５▼のいずれか一つに記載のポリヌクレオチドを用いて細胞を形質転換する工程；
▲１▼配列表の配列番号１のヌクレオチド番号２４７乃至１５３３に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲２▼配列表の配列番号３のヌクレオチド番号２４７乃至１５３３に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲３▼配列表の配列番号５のヌクレオチド番号２８３乃至１５６９に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲４▼配列表の配列番号７のヌクレオチド番号３９８乃至１６２１に示されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
▲５▼上記▲１▼乃至▲４▼のいずれか一つに記載のポリヌクレオチドと相補的なヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズし、ＣＤ３９Ｌ４と実質的に同一の蛋白質をコードするヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド、
２）１）に記載の細胞より増殖能に変化が生じた細胞株を選択する工程。
【００３２】
上記、１）の工程の細胞の形質転換では、動物個体内の細胞を形質転換し、動物個体内に癌細胞を発生させることもできるし、培養細胞を形質転換し癌細胞化することもできる。細胞の形質転換は、例えば、上記「２．ＣＤ３９Ｌ４遺伝子の発現」の項に記載した方法によって、動物あるいは培養細胞を用いて行なうことができる。
【００３３】
上記、２）の工程における細胞の増殖能の変化とは、形質転換細胞が、細胞に対する接触阻止現象に対する感受性を喪失したり、足場非依存性増殖を示したりすることをいう。細胞の増殖能の変化は、また、形質転換していない細胞に比べて形質転換した細胞において、以下に示すフォーカス形成試験によってフォーカス数が顕著に増加していること、コロニー形成試験においてコロニー数が顕著に増加していること、及び／または、スフェロイド増殖試験において、スフェロイドの直径の顕著な増加が観察されること等によって確認することもできるが、細胞の増殖能の変化を調べることができる限りにおいてこれらの方法に限定されない。細胞の増殖能に変化を生じた細胞株を癌細胞として選択することができる。
【００３４】
なお、ＣＤ３９Ｌ４を過剰に発現する細胞株では、以下の（１）乃至（３）に示すいずれか１つまたは２つ以上の性質を有する。
（１）フォーカス形成
ＮＩＨ３Ｔ３をはじめとする正常繊維芽細胞は、通常、増殖して密集状態になっても細胞が重なり合うことはなく、単層を形成したところで増殖は止まる。一方、形質転換した細胞、癌細胞では、接触阻止現象への感受性が喪失しており、重なり合いながら増殖を続けることが可能であり、何層にも重なった細胞集団を形成し、単層の細胞の広がりの中に高密度の細胞塊であるフォーカス（Ｆｏｃｕｓ）を作るという特性を持つ（横田淳、山本雅編、バイオマニュアルＵＰシリーズ　癌研究プロトコール　羊土社　１６８−１７４（１９９５年１０月１５日刊行）。この現象は、例えば、培養細胞に癌ウイルスを感染させた場合に観察されることから、癌ウイルスの定量にも用いられる場合もあるのみならず（Ｆｕｎｄａｍｅｎｔａｌ　Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ　ｉｎ　Ｖｉｒｏｌｏｇｙ，Ａｃａｄｅｍｉｃ　Ｐｒｅｓｓ（１９６９），ｐ１９８−２１１）、ウイルスや細胞由来の癌遺伝子を含むＤＮＡ断片を細胞にトランスフェクションすることによっても観察することができることから、癌遺伝子、癌抑制遺伝子のスクリーニングに用いられる。
【００３５】
ＣＤ３９Ｌ４遺伝子を過剰発現させた細胞株と過剰発現させなかった細胞株を通常の方法で培養し、新鮮な培養液に置換した後にマルチウェルプレート（例えば９６穴プレート：コーニング−コスター社製３５９８）に分注し一定時間培養した後に各ウェルあたりのフォーカス数を測定する。各ウェルあたりのフォーカス数を集計した後統計処理を行ない、各ウェルあたりの平均フォーカス数及び標準偏差を算出する。
【００３６】
ＣＤ３９Ｌ４遺伝子を過剰発現させたＮＩＨ３Ｔ３細胞ではＣＤ３９Ｌ４遺伝子を過剰発現させなかった細胞に比べ、フォーカス数が顕著に増加していることが観察される。
【００３７】
（２）コロニー形成試験
正常な細胞は、血液細胞を除き、接着する足場のない状態におくと増殖できないことが知られる。これに対して形質転換した細胞、癌細胞は、足場のない状態でも増殖しうる特性をもつ。この特性変化は、これは軟寒天培地中における増殖コロニーの形成で容易に調べることが可能である（横田淳、山本雅編、バイオマニュアルＵＰシリーズ　癌研究プロトコール　羊土社　１６８−１７４（１９９５年１０月１５日刊行）。
【００３８】
ＣＤ３９Ｌ４遺伝子を過剰発現させた細胞株と過剰発現させなかった細胞株を通常の方法で培養し、新鮮な培養液に置換した後に軟寒天培地（例えば０．３３％　Ｂａｃｔｏａｇａｒ（Ｄｉｆｃｏ社製）及び２０％ＦＣＳ含有ＲＰＭＩ１６４０）に懸濁し、寒天培地（例えば０．６６％　Ｂａｃｔｏａｇａｒ及び２０％ＦＣＳ含有ＲＰＭＩ１６４０）の上に重層する。通常の条件（例えば３７℃、５％ＣＯ２）で培養し、形成された軟寒天中の増殖コロニー数を測定する。マルチウェルプレート（例えば１２穴プレート：コーニング−コスター社製３５１２）を用いて培養した場合には、一定時間培養した後に各ウェルあたりのコロニー数を測定する。各ウェルあたりのコロニー数を集計した後統計処理を行ない、各ウェルあたりの平均コロニー数及び標準偏差を算出する。
【００３９】
ＣＤ３９Ｌ４遺伝子を過剰発現させたＮＩＨ３Ｔ３細胞株ではＣＤ３９Ｌ４遺伝子を過剰発現させなかった細胞に比べ、コロニー数が顕著に増加していることが観察される。
【００４０】
（３）スフェロイド（Ｓｐｈｅｒｏｉｄ）増殖試験
形質転換した細胞、癌細胞の足場非依存的な増殖という特性は、スフェロイド（Ｓｐｈｅｒｏｉｄ）状態での培養によっても容易に評価することができる。スフェロイドは細胞が多数集合した凝集体のことであり、細胞接着を極めて低く抑えた培養プレートでの培養によって容易に形成しうる。スフェロイド状態での培養は、通常の単層培養とは異なり、３の（２）に示したのと同様に足場非依存的な状態での培養に類似し、生体内に近い条件下で機能を観察することができる（住友ベークライト社ＳＵＭＩＬＯＮ理化学機器総合カタログ）。
【００４１】
ＣＤ３９Ｌ４遺伝子を過剰発現させた細胞株と過剰発現させなかった細胞株を通常の方法で培養し、新鮮な培養液に置換し、細胞非付着性マルチウェルプレート（例えばスフェロイド９６Ｕ：住友ベークライト社製ＭＳ−００９６Ｓ）に分注する。通常の条件（例えば、３７℃、５％ＣＯ２）で培養し、培養開始後一定時間経過後にプレート上に形成されるスフェロイドの大きさを測定する。スフェロイドの大きさは例えば顕微鏡下、接眼方眼ミクロメータ−（三啓社製：Ｓ−６）を用いて測定することができ、スフェロイドの大きさの指標としてスフェロイドの直径を用いることができる。
【００４２】
ＣＤ３９Ｌ４遺伝子を過剰発現させたＮＩＨ３Ｔ３細胞株ではＣＤ３９Ｌ４遺伝子を過剰発現させなかった細胞に比べ、スフェロイドの直径の顕著な増加が観察される。
【００４３】
４．腫瘍マーカー遺伝子
ＣＤ３９Ｌ４は細胞の癌化及び／または癌細胞の増殖に関与していると考えられる。したがって、ＣＤ３９Ｌ４の各細胞、及び／または各組織における発現量を測定することでＣＤ３９Ｌ４の過剰発現に起因して発生する癌化及び／または癌細胞の増殖の状態を判定することができる。このような癌としては、例えば、前立腺癌、精巣癌、陰茎癌、膀胱癌、腎臓癌、口腔癌、咽頭癌、口唇癌、舌癌、歯肉癌、鼻咽頭癌、食道癌、胃癌、小腸癌、大腸癌、結腸癌、肝臓癌、胆嚢癌、膵臓癌、鼻腔癌、肺癌、骨肉腫、軟部組織癌、皮膚癌、黒色腫、乳癌、子宮癌、卵巣癌、脳腫瘍、甲状腺癌、リンパ腫、白血病などを挙げることができる。
【００４４】
すなわち、ＣＤ３９Ｌ４遺伝子は腫瘍形成のマーカー遺伝子として用いることができる。遺伝子の発現量を測定する方法としては、検体より抽出した全ＲＮＡよりｃＲＮＡまたはｃＤＮＡを調製し、これを適当な標識でラベルすることにより、そのシグナル強度として検出することができる。
【００４５】
以下に、遺伝子の発現量の解析方法として、固相化試料を用いた解析方法と、その他のいくつかの解析方法について説明する。
【００４６】
（１）　固相化試料を用いた解析方法
ｉ）固相化試料
前記固相化試料としては、例えば以下のものが挙げられる。
ａ）遺伝子チップ：
データベース上のＥＳＴ（ｅｘｐｒｅｓｓｅｄ　ｓｅｑｕｅｎｃｅ　ｔａｇ）配列またはｍＲＮＡ配列をもとに合成したアンチセンスオリゴヌクレオチドが固相化された遺伝子チップを用いることができる。このような遺伝子チップとしてはアフィメトリックス社製の遺伝子チップ（Ｌｉｐｓｈｕｔｚ，　Ｒ．　Ｊ．　ｅｔ　ａｌ．　（１９９９）　Ｎａｔｕｒｅ　ｇｅｎｅｔ．　２１，　ｓｕｐｐｌｉｍｅｎｔ、２０−２４）を用いることができるが、これに限定されず、公知の方法に基づき作製してもよい。遺伝子チップ上に固相化するアンチセンスオリゴヌクレオチドの基となるＥＳＴ配列またはｍＲＮＡ配列は、解析対象の動物あるいは動物細胞と、同種の動物由来のものであることが最も好ましい。マウスやマウス由来培養細胞を用いるときはマウス由来のものが望ましく、ヒト検体やヒト由来培養細胞を用いるときはヒト由来のものが望ましい。マウス腫瘍のｍＲＮＡを解析する場合はマウス由来のものが最も好ましく、例えば、アフィメトリックス社製マウス１９Ｋセット（Ｍｕｒｉｎｅ　１９Ｋ　ｓｅｔ：　１９ＫＡ，　１９ＫＢ，１９ＫＣ）やマウス１１Ｋセット（Ｍｕｒｉｎｅ　１１Ｋ　ｓｅｔ：　１１ＫＡ，　１１ｋＢ）を用いることができる。ヒト腫瘍（例えば前立腺癌細胞株ＬＮＣａＰ：ＡＴＣＣ番号ＣＲＬ−１７４０、ＰＣ−３：ＡＴＣＣ番号ＣＲＬ−１４３５、ＤＵ−１４５：ＡＴＣＣ番号ＨＴＢ−８１など）のｍＲＮＡを解析する場合には、ヒト由来のものが好ましく、例えば、アフィメトリックス社製ヒトＵ９５セットまたはＵ１３３セットを用いることができる。しかしながら、それらに限定されず、例えば近縁種の動物由来のものも使用可能である。近縁種としては、例えば哺乳類同士を挙げることができ、ヒトとマウス、ヒトとサル等組み合わせを挙げることができるがこれらに限定されない。
【００４７】
ｂ）マウスまたはヒト、全ＲＮＡあるいは特定の組織から得た全ＲＮＡより作製されたｃＤＮＡまたはＲＴ−ＰＣＲ産物が固相化された、アレイまたはメンブレンフィルター：
上記ｃＤＮＡまたはＲＴ−ＰＣＲ産物は、マウスまたはヒトのＥＳＴデータベース等の配列情報を基に作製されたプライマーで逆転写酵素反応やＰＣＲを実施することによりクローン化されたものである。このｃＤＮＡやＲＴ−ＰＣＲ産物は、ＣＤ３９Ｌ４遺伝子のみとハイブリダイズするものであってもよい。また、アレイやフィルターは市販のもの（例えば、インテリジーン：宝酒造社製等）を使用してもよいし、上記ｃＤＮＡやＲＴ−ＰＣＲ産物を市販のスポッターで（例えば、ＧＭＳ４１７アレイヤー：宝酒造社製等）を用いて固相化することにより作製してもよい。
【００４８】
ｉｉ）プローブの作製と解析
標識プローブは、特定のｍＲＮＡクローンではなく、発現している全てのｍＲＮＡを標識したものを用いる。プローブ作製のための出発材料としては精製していないｍＲＮＡを用いてもよいが、前述の方法で精製したポリ（Ａ）＋ＲＮＡを用いることが望ましい。以下に、各種固相化試料を用いた場合の、標識プローブの調製方法と検出、解析方法について説明する。
【００４９】
ａ）アフィメトリックス社製遺伝子チップ：
アフィメトリクス社製遺伝子チップに添付されたプロトコール（アフィメトリックス社発現解析技術マニュアル）に従ってビオチン標識したｃＲＮＡプローブを作製する。次いでアフィメトリックス社製遺伝子チップに添付のプロトコール（発現解析技術マニュアル）に従って、アフィメトリックス社製の解析装置（ＧｅｎｅＣｈｉｐ　Ｆｌｕｉｄｉｃｓ　Ｓｔａｔｉｏｎ　４００）を用いてハイブリダイゼーションを行い、アビジンによる発光を検出、解析を行なう。
【００５０】
ｂ）アレイ：
逆転写酵素反応でポリ（Ａ）＋ＲＮＡからｃＤＮＡを作製する際に、ｃＤＮＡの検出ができるようにｃＤＮＡを標識しておくことが必要であり、蛍光色素で標識する場合には、蛍光色素（例えばＣｙ３、Ｃｙ５など）で標識されたｄ−ＵＴＰなどを加えておくことによりｃＤＮＡを蛍光標識する。このとき、被験物質添加細胞由来のポリ（Ａ）＋ＲＮＡと対照細胞由来のポリ（Ａ）＋ＲＮＡをそれぞれ異なる色素で標識しておけば、後のハイブリダイゼーション時には両者を混合して用いることができる。アレイとして例えば、宝酒造（株）社の市販アレイを用いる場合、同社のプロトコールに従いハイブリダイゼーション及び洗浄を行って、蛍光シグナル検出機（例えばＧＭＳ４１８アレイスキャナー（宝酒造社製）等）で蛍光シグナルを検出後、解析を行う。ただし、使用するアレイとしては市販のものに限定されず、自家製のもの、特別に作製したのもでもよい。
【００５１】
ｃ）メンブレンフィルター：
逆転写酵素でポリ（Ａ）＋ＲＮＡからｃＤＮＡを作製する際に、放射性同位元素（例えば、ｄ−ＣＴＰ［α−３３Ｐ］）等を加えることにより標識プローブを調製し、常法によりハイブリダイゼーションを行ない、例えば、市販のフィルター製マイクロアレーである、アトラスシステム（クローンテック社製）を用いてハイブリダイゼーション及び洗浄を行なった後、解析装置（例えば、アトラスイメージ：クローンテック社製等）を用いて検出、解析を行なう。
【００５２】
蛍光標識プローブを用いる場合には、それぞれのプローブを異なる蛍光色素で標識しておけば一つの固相化試料に両プローブの混合物を一度にハイブリダイズさせて蛍光強度を読み取ることができる（Ｂｒｏｗｎ，　Ｐ．　Ｏ．　ｅｔ　ａｌ．　（１９９９）　Ｎａｔｕｒｅ　ｇｅｎｅｔ，　２１，　ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔ，　３３−３７）。
【００５３】
（２）その他の解析方法
ａ）　ＲＴ−ＰＣＲ
まずＣＤ３９Ｌ４のｍＲＮＡを鋳型とする逆転写酵素反応を行ってから、ＰＣＲを実施して特異的にＤＮＡ断片を増幅する。この方法において、目的のヌクレオチド配列を特異的に増幅するためには、目的のｍＲＮＡの特定の部分配列に相補的なアンチセンスプライマーと、該アンチセンスプライマーから逆転写酵素により生成されるｃＤＮＡの配列中の特定の部分配列に相補的なセンスプライマーが用いられる。ＲＴ−ＰＣＲは市販のキット（例えば、ＲＮＡ　ＰＣＲキット　ＡＭＶ　ｖｅｒ２．１：宝酒造社製等）を用いて、キットに添付のマニュアルに従って行なうことができる。
【００５４】
逆転写酵素反応及びＰＣＲの両方に用いられるアンチセンスプライマーは、実質的にＣＤ３９Ｌ４遺伝子のヌクレオチド配列のアンチセンス配列中の、連続した１５ヌクレオチド乃至４０ヌクレオチド、好ましくは少なくとも１８ヌクレオチド乃至３０ヌクレオチド、更に好ましくは２３ヌクレオチド乃至３０ヌクレオチドのヌクレオチド配列からなる。
【００５５】
一方、ＰＣＲにおいて用いられるセンスプライマーの配列は、ＣＤ３９Ｌ４遺伝子のヌクレオチド配列において、上記アンチセンスプライマーの相補鎖にあたる配列中の最も５’末端側の位置よりもさらに５’末端側領域に存在する配列中の連続した１５乃至４０ヌクレオチド、好ましくは１８乃至３５ヌクレオチド、更に好ましくは２１乃至３０ヌクレオチドの任意の部分配列からなる。ただし、センスプライマーとアンチセンスプライマーに互いに相補的な配列が存在すると、プライマー同士がアニーリングすることにより非特異的な配列が増幅され、特異的なポリヌクレオチド検出の妨げとなるおそれがあるので、そのような組み合わせを避けたプライマーの設計を行うことが好ましい。
【００５６】
これらアンチセンスプライマー及びセンスプライマーには、いずれも上記で規定したそれらヌクレオチド配列の５’末端に、ＣＤ３９Ｌ４遺伝子のヌクレオチド配列とは無関係のヌクレオチド配列がリンカーとして付加されていてもよい。ただし、特異的なポリヌクレオチド検出の妨げとならないよう、該リンカーは反応中に反応液内の核酸と非特異的アニーリングを起こさないようなものであることが好ましい。
【００５７】
ＲＴ−ＰＣＲによって核酸の検出を行う態様における、各反応の条件は以下に記載する通りである。なお、ＲＴ−ＰＣＲによる検出のための試料は、通常ポリ（Ａ）＋ＲＮＡにまで精製されている必要はない。
【００５８】
ｉ）逆転写酵素反応
反応液組成の例（全量２０μｌ）：
全ＲＮＡ　適宜；
塩化マグネシウム　２．５乃至５ｍＭ（好ましくは５ｍＭ）；
１×ＲＴ　ＰＣＲ緩衝液（１０ｍＭ　トリス−塩酸（２５℃におけるｐＨ８．３乃至９．０（好ましくは８．３））、５０ｍＭ　塩化カリウム）；
ｄＮＴＰｓ　０．５乃至１ｍＭ（好ましくは１ｍＭ）；
アンチセンスプライマー　１μＭ　（アンチセンスプライマーの代用として、市販のランダムプライマーやオリゴ（ｄＴ）プライマー（１２−２０ヌクレオチド）を２．５μＭ添加することもできる）；
逆転写酵素　０．２５乃至１単位／μｌ（好ましくは０．２５単位／μｌ）；
滅菌水で２０μｌに調整する。
【００５９】
反応温度条件：
３０℃で１０分間保温（ランダムプライマー使用時のみ）した後、４２乃至６０℃（好ましくは４２℃）で１５乃至３０分間（好ましくは３０分間）保温し、さらに９９℃で５分間加熱して酵素を失活させてから、４乃至５℃（好ましくは５℃）で５分間冷却する。
【００６０】
ｉｉ）ＰＣＲ
反応液組成の例：
塩化マグネシウム　２乃至２．５ｍＭ（好ましくは２．５ｍＭ）；
１×ＰＣＲ緩衝液（１０ｍＭ　トリス−塩酸（２５℃におけるｐＨ８．３乃至９．０（好ましくは８．３））、５０ｍＭ　塩化カリウム；
ｄＮＴＰｓ　０．２乃至０．２５ｍＭ（好ましくは０．２５ｍＭ）；
アンチセンスプライマー及びセンスプライマー　０．２乃至０．５μＭ（好ましくは０．２μＭ）；
Ｔａｑポリメラーゼ　１乃至２．５単位（好ましくは２．５単位）；
滅菌水を加えて全量を８０μｌに調整し、その全量を、逆転写反応を終了した反応液全量に加えてからＰＣＲを開始する。
【００６１】
反応温度条件：　まず９４℃で２分間加熱した後、９０乃至９５℃（好ましくは９４℃）で３０秒間、４０乃至６０℃（好ましくは、プライマーの特性から算出される解離温度（Ｔｍ）からそれより２０度低い温度までの範囲内で３０秒間、７０乃至７５℃（好ましくは７２℃）で１．５分間の温度サイクルを２８乃至５０サイクル（好ましくは２８サイクル）繰り返してから、４℃に冷却する。
【００６２】
ＰＣＲ終了後、反応液を電気泳動し、目的の大きさのバンドが増幅されているか否かを検出する。定量的検出を行うためには、予め段階希釈したｃＤＮＡクローンを標準の鋳型ＤＮＡとして同条件でＰＣＲを実施し、定量的検出が可能な温度サイクル数を定めておくか、または、例えば５サイクル毎に一部反応液をサンプリングしてそれぞれ電気泳動を行う。また例えばＰＣＲ反応時に放射標識ｄＣＴＰを用いることにより、バンド中に取り込まれた放射能の量を指標に定量を行うこともできる。遺伝子定量の信頼性を高めた方法として、上記ＲＴ−ＰＣＲ法を改良した競合ＲＴ−ＰＣＲ法（Ｓｏｕａｚｅ　ｅｔ　ａｌ．、ＢｉｏＴｅｃｈｎｉｑｕｅｓ　２１、２８０−２８５（１９９６））や、ＴａｑＭａｎ　ＰＣＲ法（Ｈｅｉｄ　ｅｔ　ａｌ．、Ｇｅｎｏｍ．　　Ｒｅｓ．　　６、９８６−９９４（１９９６））なども利用可能である。
ｂ）　リボヌクレアーゼ保護アッセイ（ＲＮａｓｅ　ｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎ　ａｓｓａｙ）：　ＲＮＡ試料中の、上記１）乃至５）のいずれか一つに記載のヌクレオチド配列を有するｍＲＮＡ（ただし配列中のｔはｕに読み替える）のみに標識プローブをハイブリダイズさせ、二本鎖ポリヌクレオチドを形成させておいてから、試料にリボヌクレアーゼを添加してインキュベーションすると、プローブがハイブリダイズしたｍＲＮＡは二本鎖を形成していることによってリボヌクレアーゼによる消化を免れ、それ以外のＲＮＡは消化されるので、該二本鎖ポリヌクレオチドのみが残る（検出されるｍＲＮＡよりプローブが短ければ、プローブの鎖長に相当する二本鎖ポリヌクレオチドが残る）。この二本鎖ポリヌクレオチドを定量することにより、目的のポリヌクレオチドの発現量を測定する。具体的には、例えば以下に記載する方法に従う。
【００６３】
二本鎖を形成せずに余った標識プローブを二本鎖ポリヌクレオチドと確実に分離して定量を容易にするために、余った標識プローブはリボヌクレアーゼに消化されることが好ましいが、リボヌクレアーゼとして一本鎖ＤＮＡも消化できるようなものを使用すれば、標識プローブはＤＮＡでもＲＮＡでもよい。標識プローブの調製方法は上記常法に従って行なうことができるが、リボヌクレアーゼアッセイにおいて用いられるプローブの長さは５０乃至５００ヌクレオチド程度が好ましい。また、二本鎖ＤＮＡを直接標識して熱変性したのみのプローブ等、相補鎖が混在するようなプローブは本法には好適ではない。
【００６４】
ＲＮＡプローブは、例えば下記の方法に従って調製される。まず鋳型ＤＮＡをバクテリオファージのプロモーター（Ｔ７、ＳＰ６、Ｔ３プロモーター等）を有するプラスミドベクター（例えばｐＧＥＭ−Ｔ（プロメガ社製）など）に挿入する。次にこの組換えプラスミドベクターを、制限酵素で、挿入断片のすぐ下流で一ヶ所だけ切断されるように消化する。得られた直鎖ＤＮＡを鋳型として、放射能標識されたリボヌクレオチド存在下で、イン・ビトロ転写反応を行う。この反応には、ベクター中のプロモーターに合わせてＴ７、ＳＰ６またはＴ３ポリメラーゼ等の酵素を用いる。以上の操作は例えばリボプローブシステム−Ｔ７、同−ＳＰ６または同−Ｔ３（いずれもプロメガ社製）を用いて行うことができる。
【００６５】
ＲＮＡ試料を調製するまでの工程は「１．ＣＤ３９Ｌ４遺伝子の取得」の項に示した方法にしたがって実施することができ、抽出された全ＲＮＡはさらに精製してｍＲＮＡとして使用することが望ましい。調製された全ＲＮＡ試料１０乃至２０μｇ相当分と、５×１０５ｃｐｍ相当の過剰量の標識プローブとを用いてリボヌクレアーゼ保護アッセイを行う。この操作は市販のキット（ＨｙｂＳｐｅｅｄ　ＲＰＡ　Ｋｉｔ、アンビオン社製）を用いて行うことができる。得られたリボヌクレアーゼ消化後の試料を、８Ｍ　尿素を含む４乃至１２％ポリアクリルアミドゲルで電気泳動した後、ゲルを乾燥させ、Ｘ線フィルムでオートラジオグラフィーを行う。以上の操作により、リボヌクレアーゼ消化を免れた二本鎖ポリヌクレオチドのバンドを検出することができ、またその定量は常法に従って実施することができる。さらに、各試料間のＲＮＡ量の差等に起因するばらつきを補正する目的で、β−アクチン遺伝子の発現量を同時に測定しておけば、より精密な評価を行うことができる。
【００６６】
ｃ）　ランオン・アッセイ（Ｒｕｎ−ｏｎ　ａｓｓａｙ、Ｇｒｅｅｎｂｅｒｇ，　Ｍ．　Ｅ．　ａｎｄ　Ｚｉｆｆ，　Ｅ．　Ｂ．Ｂ．　（１９８４）　Ｎａｔｕｒｅ　３１１，　４３３−４３８、Ｇｒｏｕｄｉｎｅ，　Ｍ．　ｅｔ　ａｌ．　（１９８１）　Ｍｏｌ．　Ｃｅｌｌ　Ｂｉｏｌ．　１，　２８１−２８８参照）：本方法は、細胞から核を単離して目的の遺伝子の転写活性を測定する方法であり、細胞内のｍＲＮＡを検出する方法ではないが、本発明においては「遺伝子の発現量を測定する方法」に包含される。単離された細胞核を用いて、試験管内で転写反応を行わせると、核を単離する前に既に転写が開始されｍＲＮＡ鎖が生成されている途中のものが伸長していく反応のみが進行する。この反応時に放射標識したリボヌクレオチドを添加して、伸長していくｍＲＮＡを標識しておき、その中に含まれる、非標識プローブにハイブリダイズするｍＲＮＡを検出することにより、核を単離した時点における目的のポリヌクレオチドの転写活性を測定することができる。なお具体的操作方法は、標識しないプローブを調製する他は、上記参照文献の記載に準ずる。被験者または被験動物から採取した検体由来の試料と、正常人または正常動物由来の試料との間で測定結果を比較し、ＣＤ３９Ｌ４遺伝子の転写活性が正常人または正常動物より高い場合、腫瘍を有していると判断することができる。
【００６７】
ｄ）　ＣＤ３９Ｌ４遺伝子のプロモーター支配下に、該プロモーター活性の検出を可能にする遺伝子（以下「レポーター遺伝子」という。）を利用して、間接的にＣＤ３９Ｌ４遺伝子やＣＤ３９Ｌ４の発現を検出することもできる。以下、レポーター遺伝子を利用した検出方法について説明する。
【００６８】
ｄ−１）レポーター遺伝子
レポーター遺伝子は、宿主細胞が本試験方法の一連の過程において産生し得る他のいかなる蛋白質とも特異的に区別可能な、レポーター蛋白質をコードするものであればよい。好ましくは、形質転換前の細胞が該レポーター蛋白質と同一または類似の蛋白質をコードする遺伝子を持たないようなものがよい。例えば、レポーター蛋白質が該細胞に対して毒性を有するようなものや、該細胞が感受性を有する抗生物質の耐性を付与するものであるような場合でも、レポーター遺伝子の発現の有無は細胞の生存率で判定することが可能である。しかしながら、本発明で用いられるレポーター遺伝子としてより好ましいものは、発現量を特異的かつ定量的に検出することができる（例えば、該レポーター遺伝子にコードされる蛋白質に対する特異的抗体が取得されているような）構造遺伝子である。より好ましくは、外来の基質と特異的に反応することにより定量的測定が容易な代謝産物を生じるような酵素等をコードする遺伝子である。そのようなレポーター遺伝子としては、例えば、以下の蛋白質をコードする遺伝子を例示することができるが、本発明はそれらに限定されない。
【００６９】
ｄ−１−１）クロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼ：
クロラムフェニコールにアセチル基を付加する酵素で、いわゆるＣＡＴアッセイ等で検出することができる。プロモーターを組み込むだけでレポーターアッセイ用のベクターを調製できるベクターとして、ｐＣＡＴ３−Ｂａｓｉｃベクター（プロメガ社製）が市販されている。
【００７０】
ｄ−１−２）ホタルルシフェラーゼ：
ルシフェリンを代謝した際に生じる生物発光を測定することにより定量できる。レポーターアッセイ用のベクターとしては、ｐＧＬ３−Ｂａｓｉｃベクター（プロメガ社製）が市販されている。
【００７１】
ｄ−１−３）β−ガラクトシダーゼ：
呈色反応、蛍光または化学発光でそれぞれ測定可能な基質がある。レポーターアッセイ用のベクターとしては、ｐβｇａｌ−Ｂａｓｉｃ（プロメガ社製）が市販されている。
【００７２】
ｄ−１−４）分泌型アルカリホスファターゼ：
呈色反応、生物発光または化学発光でそれぞれ測定可能な基質がある。レポーターアッセイ用のベクターとしては、ｐＳＥＡＰ２−Ｂａｓｉｃ（クロンテック社製）が市販されている。
【００７３】
ｄ−１−５）緑色蛍光蛋白質（ｇｒｅｅｎ−ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ　ｐｒｏｔｅｉｎ）：
酵素ではないが、自らが蛍光を発するので直接定量できる。同じくレポーターアッセイ用のベクターとしてｐＥＧＦＰ−１（クロンテック社製）が市販されている。
【００７４】
ｄ−２）レポーター遺伝子の導入
公知の方法に従い、ＣＤ３９Ｌ４遺伝子のプロモーター支配下にレポーター遺伝子を発現し得るレポーター発現プラスミドを細胞にトランスフェクションする。
【００７５】
細胞に発現プラスミドを導入する方法としては、ジエチルアミノエチル（ＤＥＡＥ）−デキストラン法（Ｌｕｔｈｍａｎ、Ｈ．　ａｎｄ　Ｍａｇｎｕｓｓｏｎ、Ｇ．（１９８３）Ｎｕｃｌｅｉｃ　Ａｃｉｄｓ　Ｒｅｓ．　１１、１２９５−１３０８）、リン酸カルシウム−ＤＮＡ共沈殿法（Ｇｒａｈａｍ、Ｆ．Ｌ．　ａｎｄ　ｖａｎ　ｄｅｒ　Ｅｂ、Ａ．Ｊ．（１９７３）　Ｖｉｒｏｌｏｇｙ　５２、４５６−４５７）、電気パルス穿孔法（Ｎｅｕｍａｎｎ、Ｅ．　ｅｔ　ａｌ．（１９８２）ＥＭＢＯＪ．１、８４１−８４５）、リポフェクション法（Ｌｏｐａｔａ　ｅｔ　ａｌ．（１９８４）Ｎｕｃｌ．　Ａｃｉｄｓ　Ｒｅｓ．　１２、５７０７−５７１７、Ｓｕｓｓｍａｎ　ａｎｄ　Ｍｉｌｍａｎ（１９８４）　Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．　Ｂｉｏｌ．　４、１６４１−１６４３）などを挙げることができるが、これらに限定されず、本発明の属する技術分野において汎用される任意の方法を採用することができる。ただし、細胞がいわゆる浮遊細胞である場合は、リン酸カルシウム−ＤＮＡ共沈殿法以外の方法を用いることが好ましい。いずれの方法においても、用いる細胞に応じて、至適化されたトランスフェクション条件を用いることが必要である。
【００７６】
ｄ−３）評価
かくして、ＣＤ３９Ｌ４遺伝子のレポーター発現プラスミドをトランスフェクションした細胞を培養すると、該ＣＤ３９Ｌ４遺伝子の発現と相関してレポーター遺伝子の転写が促進される。したがって、レポーター遺伝子の発現が可能な条件下において、培地中に任意の被検物質を添加した場合と添加しない場合でのレポーター遺伝子の発現量変化をみれば、ＣＤ３９Ｌ４遺伝子の発現量が評価できる。ここで、「レポーター遺伝子の発現が可能な条件」とは、レポーター発現ベクターによってトランスフェクトされた細胞が生存して、レポーター遺伝子の転写産物（レポーター蛋白質）の生産が可能な条件であればよい。好ましくは、使用される細胞株に適合した培地（ウシ胎児血清等の血清成分を添加してもよい）で、４〜６％（最も好適には５％）の炭酸ガスを含む空気存在下、３６〜３８℃（最も好適には３７℃）で２〜３日間（最も好適には２日間）培養する。
【００７７】
５．腫瘍マーカー蛋白質
ＣＤ３９Ｌ４は細胞の癌化を引き起こし腫瘍細胞で発現量が増大していると考えられるので腫瘍の存在を検出するための腫瘍マーカー蛋白質として使用することができる。
【００７８】
ＣＤ３９Ｌ４の検出方法の好適な態様として、抗体を利用した方法について説明する。まず、試料中の蛋白質を９６穴プレートや３８４穴プレート等のマルチウエルプレートのウエル内底面やメンブレン等に固相化しておいてから、ＣＤ３９Ｌ４を特異的に認識する抗体を用いた検出が行われる。このうち、９６穴プレートや３８４穴プレート等のマルチウエルプレートを用いるのは一般に固相酵素免疫定量法（ＥＬＩＳＡ法）や放射性同位元素免疫定量法（ＲＩＡ法）と呼ばれる方法である。一方、メンブレンに固相化する方法としては、試料のポリアクリルアミド電気泳動を経てメンブレンに蛋白質を転写する方法（ウエスタンブロット法）か、または直接メンブレンに試料またはその希釈液を染み込ませる、いわゆるドットブロット法やスロットブロット法が挙げられる。
【００７９】
（１）試料の調製
試料としては、ヒトやマウス等のヒト以外の哺乳動物全血、血清、肝臓、前立腺、精巣、陰茎、膀胱、腎臓、口腔、咽頭、口唇、舌、歯肉、鼻咽頭、食道、胃、小腸、大腸、結腸、肝臓、胆嚢、膵臓、鼻腔、肺、軟部組織、皮膚、乳房、子宮、卵巣、脳、甲状腺、リンパ等腫瘍の存在を検出する対象とする臓器または組織を任意に選択することができる。なお、試料の採取に当たっては各実験機関の実験倫理ガイドラインにしたがって行なう必要がある。上記試料は、必要に応じて高速遠心を行うことにより、不溶性の物質を除去した後、以下のようにＥＬＩＳＡ／ＲＩＡ用試料やウエスタンブロット用試料として調製する。
【００８０】
ＥＬＩＳＡ／ＲＩＡ用試料としては、例えば回収した、血清、肝臓、前立腺、精巣、陰茎、膀胱、腎臓、口腔、咽頭、口唇、舌、歯肉、鼻咽頭、食道、胃、小腸、大腸、結腸、肝臓、胆嚢、膵臓、鼻腔、肺、軟部組織、皮膚、乳房、子宮、卵巣、脳、甲状腺、リンパ等をそのまま使用するか、緩衝液で適宜希釈したものを用いる。ウエスタンブロット用（電気泳動用）試料は、例えば、血清、肝臓、前立腺、精巣、陰茎、膀胱、腎臓、口腔、咽頭、口唇、舌、歯肉、鼻咽頭、食道、胃、小腸、大腸、結腸、肝臓、胆嚢、膵臓、鼻腔、肺、軟部組織、皮膚、乳房、子宮、卵巣、脳、甲状腺、リンパ等の抽出液をそのまま使用するか、緩衝液で適宜希釈して、ＳＤＳ−ポリアクリルアミド電気泳動用の２−メルカトルエタノールを含むサンプル緩衝液（シグマ（Ｓｉｇｍａ）社製等）と混合する。ドット／スロットブロットの場合は、例えば回収した血清、肝臓、前立腺、精巣、陰茎、膀胱、腎臓、口腔、咽頭、口唇、舌、歯肉、鼻咽頭、食道、胃、小腸、大腸、結腸、肝臓、胆嚢、膵臓、鼻腔、肺、軟部組織、皮膚、乳房、子宮、卵巣、脳、甲状腺、リンパ等の抽出液そのもの、または緩衝液で適宜希釈したものを、ブロッティング装置を使用するなどして、直接メンブレンへ吸着させる。
【００８１】
（２）試料の固相化
上記のようにして得られた試料中の蛋白質を特異的に検出するためには、試料を免疫沈降法、リガントの結合を利用した方法等によって、沈殿させ、固相化せずに検出することもできるし、そのまま検出する該試料を固相化することもできる。蛋白質を固相化する場合において、ウエスタンブロット法、ドットブロット法またはスロットブロット法に用いられるメンブレンとしては、ニトロセルロースメンブレン（例えば、バイオラッド社製等）、ナイロンメンブレン（例えば、ハイボンド−ＥＣＬ（アマシャム・ファルマシア社製）等）、コットンメンブレン（例えば、ブロットアブソーベントフィルター（バイオラッド社製）等）またはポリビニリデン・ジフルオリド（ＰＶＤＦ）メンブレン（例えば、バイオラッド社製等）等が挙げられる。
【００８２】
電気泳動後のゲルからメンブレンに蛋白質を移す、いわゆるブロッティング方法としては、ウエット式ブロッティング法（ＣＵＲＲＥＮＴ　ＰＲＯＴＯＣＯＬＳ　ＩＮ　ＩＭＭＵＮＯＬＯＧＹ　ｖｏｌｕｍｅ　２　ｅｄ　ｂｙ　Ｊ．　Ｅ．　Ｃｏｌｉｇａｎ，　Ａ．　Ｍ．　Ｋｒｕｉｓｂｅｅｋ，　Ｄ．　Ｈ．　Ｍａｒｇｕｌｉｅｓ，　Ｅ．　Ｍ．　Ｓｈｅｖａｃｈ，　Ｗ．　Ｓｔｒｏｂｅｒ）、セミドライ式ブロッティング法（上記ＣＵＲＲＥＮＴ　ＰＲＯＴＯＣＯＬＳＩＮ　ＩＭＭＵＮＯＬＯＧＹ　ｖｏｌｕｍｅ　２　参照）等を挙げることができる。ドットブロット法やスロットブロット法のための器材も市販されている（例えば、バイオ・ドット（バイオラッド）等）。
【００８３】
一方、ＥＬＩＳＡ法／ＲＩＡ法で検出・定量を行うためには、専用の９６穴プレート（例えば、イムノプレート・マキシソープ（ヌンク社製）等）に試料またはその希釈液（例えば０．０５％　アジ化ナトリウムを含むリン酸緩衝生理食塩水（以下「ＰＢＳ」という）で希釈したもの）を入れて４℃乃至室温で一晩、または３７℃で１乃至３時間静置することにより、ウエル内底面に蛋白質を吸着させて固相化する。
【００８４】
（３）抗体
用いられる抗体は、ＣＤ３９Ｌ４またはその一部を特異的に認識するものである。このような抗体としては、例えば、ＣＤ３９Ｌ４には結合するが、他のいかなるマウスまたはヒト由来の蛋白質とも結合しないような抗体を挙げることができる。
【００８５】
前記抗体は、常法を用いて（例えば、新生化学実験講座１、蛋白質１、ｐ．３８９−３９７、１９９２）、抗原となるポリペプチド、あるいはそのアミノ酸配列から選択される任意のポリペプチドを動物に免疫し、生体内に産生される抗体を採取、精製することによって得ることができる。また、公知の方法（例えば、Ｋｏｈｌｅｒ　ａｎｄ　Ｍｉｌｓｔｅｉｎ，　Ｎａｔｕｒｅ　２５６，　４９５−４９７，　１９７５、Ｋｅｎｎｅｔ，　Ｒ．　ｅｄ．，　Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ　Ａｎｔｉｂｏｄｙ　ｐ．３６５−３６７，　１９８０，　Ｐｒｅｎｕｍ　Ｐｒｅｓｓ，　Ｎ．Ｙ．）に従って、ＣＤ３９Ｌ４に対する抗体を産生する抗体産生細胞とミエローマ細胞とを融合させることによりハイブリドーマを樹立し、モノクローナル抗体を得ることもできる。
【００８６】
抗体を作製するための抗原としては、ＣＤ３９Ｌ４またはその少なくとも６個の連続した部分アミノ酸配列からなるポリペプチド、あるいはこれらに任意のアミノ酸配列や担体が付加された誘導体を挙げることができる。
【００８７】
前記抗原ポリペプチドは本発明のＣＤ３９Ｌ４をｉｎ　ｖｉｔｒｏにて合成する、あるいは遺伝子操作により宿主細胞に産生させることによって得ることができる。具体的には、ＣＤ３９Ｌ４を発現可能なベクターに組み込んだ後、転写と翻訳に必要な酵素、基質及びエネルギー物質を含む溶液中で合成する、あるいは他の原核生物、または真核生物の宿主細胞を形質転換させることによってＣＤ３９Ｌ４を発現させることにより、該蛋白質を得ることが出来る。
【００８８】
ポリペプチドのイン・ビトロ（ｉｎ　ｖｉｔｒｏ）合成としては、例えばロシュ・ダイアグノスティックス社製のラピッドトランスレーションシステム（ＲＴＳ）が挙げられるが、これに限定されない。ＲＴＳを用いる場合を例に挙げると、目的の遺伝子をＴ７プロモーターにより制御される発現ベクターにクローニングし、これをｉｎ　ｖｉｔｒｏの反応系に添加すると、最初に鋳型ＤＮＡよりＴ７ＲＮＡポリメラーゼによりｍＲＮＡが転写され、その後大腸菌溶解液中のリボソーム等により翻訳が行われ、目的のポリペプチドが反応液中に合成される（Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａ，　１，　２０−２３　（２００１），　Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａ，　２，　２８−２９　（２００１）。
【００８９】
原核細胞の宿主としては、例えば、大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ　ｃｏｌｉ）や枯草菌（Ｂａｃｉｌｌｕｓ　ｓｕｂｔｉｌｉｓ）などが挙げられる。目的の遺伝子をこれらの宿主細胞内で形質転換させるには、宿主と適合し得る種由来のレプリコンすなわち複製起点と、調節配列を含んでいるプラスミドベクターで宿主細胞を形質転換させる。また、ベクターとしては、形質転換細胞に表現形質（表現型）の選択性を付与することができる配列を有するものが好ましい。
【００９０】
例えば、大腸菌としてはＫ１２株などがよく用いられ、ベクターとしては、一般にｐＢＲ３２２やｐＵＣ系のプラスミドが用いられるが、これらに限定されず、公知の各種菌株、及びベクターがいずれも使用できる。
【００９１】
プロモーターとしては、大腸菌においては、トリプトファン（ｔｒｐ）プロモーター、ラクトース（ｌａｃ）プロモーター、トリプトファン・ラクトース（ｔａｃ）プロモーター、リポプロテイン（ｌｐｐ）プロモーター、ポリペプチド鎖伸張因子Ｔｕ（ｔｕｆＢ）プロモーター等が挙げられ、どのプロモーターも目的のポリペプチドの産生に使用することができる。
【００９２】
枯草菌としては、例えば２０７−２５株が好ましく、ベクターとしてはｐＴＵＢ２２８（Ｏｈｍｕｒａ，　Ｋ．　ｅｔ　ａｌ．　（１９８４）　Ｊ．　Ｂｉｏｃｈｅｍ．　９５，　８７−９３）などが用いられるが、これに限定されるものではない。枯草菌のα−アミラーゼのシグナルペプチド配列をコードするＤＮＡ配列を連結することにより、菌体外での分泌発現も可能となる。
【００９３】
真核細胞の宿主細胞には、脊椎動物、昆虫、酵母などの細胞が含まれ、脊椎動物細胞としては、例えば、サルの細胞であるＣＯＳ細胞（Ｇｌｕｚｍａｎ，　Ｙ．　（１９８１）　Ｃｅｌｌ　２３，　１７５−１８２、ＡＴＣＣ　ＣＲＬ−１６５０）、マウス繊維芽細胞ＮＩＨ３Ｔ３（ＡＴＣＣ　Ｎｏ．ＣＲＬ−１６５８）やチャイニーズ・ハムスター卵巣細胞（ＣＨＯ細胞、ＡＴＣＣ　ＣＣＬ−６１）のジヒドロ葉酸還元酵素欠損株（Ｕｒｌａｕｂ，　Ｇ．　ａｎｄ　Ｃｈａｓｉｎ，　Ｌ．　Ａ．　（１９８０）　Ｐｒｏｃ．　Ｎａｔｌ．　Ａｃａｄ．　Ｓｃｉ．　ＵＳＡ　７７，　４１２６−４２２０）等がよく用いられているが、これらに限定されない。
【００９４】
脊椎動物細胞の発現プロモーターとしては、通常発現しようとする遺伝子の上流に位置するプロモーター、ＲＮＡのスプライス部位、ポリアデニル化部位、及び転写終結配列等を有するものを使用でき、さらにこれは必要により複製起点を有してもよい。該発現ベクターの例としては、サイトメガロウイルス初期プロモーターを有するｐＣＲ３．１（インビトロジェン社製）、ＳＶ４０の初期プロモーターを有するｐＳＶ２ｄｈｆｒ（Ｓｕｂｒａｍａｎｉ，　Ｓ．　ｅｔ　ａｌ．　（１９８１）　Ｍｏｌ．　Ｃｅｌｌ．　Ｂｉｏｌ．　１，　８５４−８６４）等が挙げられるが、これに限定されない。
【００９５】
宿主細胞として、ＣＯＳ細胞あるいはＮＩＨ３Ｔ３細胞を用いる場合を例に挙げると、発現ベクターとしては、ＳＶ４０複製起点を有し、ＣＯＳ細胞あるいはＮＩＨ３Ｔ３細胞において自立増殖が可能であり、さらに、転写プロモーター、転写終結シグナル、及びＲＮＡスプライス部位を備えたものを用いることができる。該発現ベクターは、ＤＥＡＥ−デキストラン法（Ｌｕｔｈｍａｎ，　Ｈ．　ａｎｄ　Ｍａｇｎｕｓｓｏｎ，　Ｇ．　（１９８３）　Ｎｕｃｌｅｉｃ　Ａｃｉｄｓ　Ｒｅｓ．　１１，　１２９５−１３０８）、リン酸カルシウム−ＤＮＡ共沈殿法（Ｇｒａｈａｍ，　Ｆ．　Ｌ．　ａｎｄ　ｖａｎ　ｄｅｒ　Ｅｂ，　Ａ．　Ｊ．　（１９７３）　Ｖｉｒｏｌｏｇｙ　５２，　４５６−４５７）、及び電気パルス穿孔法（Ｎｅｕｍａｎｎ，　Ｅ．　ｅｔ　ａｌ．　（１９８２）　ＥＭＢＯ　Ｊ．　１，　８４１−８４５）などによりＣＯＳ細胞、あるいはＮＩＨ３Ｔ３細胞に取り込ませることができ、かくして所望の形質転換細胞を得ることができる。また、宿主細胞としてＣＨＯ細胞を用いる場合には、発現ベクターと共に、抗生物質Ｇ４１８耐性マーカーとして機能するｎｅｏ遺伝子を発現し得るベクター、例えばｐＲＳＶｎｅｏ（Ｓａｍｂｒｏｏｋ，　Ｊ．　ｅｔ　ａｌ．　（１９８９）　：　”Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｃｌｏｎｉｎｇ　Ａ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　Ｍａｎｕａｌ”　Ｃｏｌｄ　Ｓｐｒｉｎｇ　Ｈａｒｂｏｒ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，　ＮＹ）やｐＳＶ２ｎｅｏ（Ｓｏｕｔｈｅｒｎ，　Ｐ．　Ｊ．　ａｎｄ　Ｂｅｒｇ，　Ｐ．　（１９８２）　Ｊ．　Ｍｏｌ．　Ａｐｐｌ．　Ｇｅｎｅｔ．　１，　３２７−３４１）などをコ・トランスフェクトし、Ｇ４１８耐性のコロニーを選択することにより、目的のポリペプチドを安定に産生する形質転換細胞を得ることができる。
【００９６】
昆虫細胞を宿主細胞として用いる場合には、鱗翅類ヤガ科のＳｐｏｄｏｐｔｅｒａ　ｆｒｕｇｉｐｅｒｄａの卵巣細胞由来株化細胞（Ｓｆ−９またはＳｆ−２１）やＴｒｉｃｈｏｐｌｕｓｉａ　ｎｉの卵細胞由来Ｈｉｇｈ　Ｆｉｖｅ細胞（Ｗｉｃｋｈａｍ，　Ｔ．　Ｊ．　ｅｔ　ａｌ．　（１９９２）　Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．　Ｐｒｏｇ．　Ｉ：　３９１−３９６）などが宿主細胞としてよく用いられ、バキュロウイルストランスファーベクターとしてはオートグラファ核多角体ウイルス（ＡｃＮＰＶ）のポリヘドリン蛋白質のプロモーターを利用したｐＶＬ１３９２／１３９３がよく用いられる（Ｋｉｄｄ，　Ｉ．　Ｍ．　ａｎｄ　Ｖ．Ｃ．　Ｅｍｅｒｙ　（１９９３）　Ｔｈｅ　ｕｓｅ　ｏｆ　ｂａｃｕｌｏｖｉｒｕｓｅｓ　ａｓ　ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　ｖｅｃｔｏｒｓ．　Ａｐｐｌｉｅｄ　Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ　ａｎｄ　Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ　４２，　１３７−１５９）。この他にも、バキュロウイルスのＰ１０や同塩基性蛋白質のプロモーターを利用したベクターも使用できる。さらに、ＡｃＮＰＶのエンベロープ表面蛋白質ＧＰ６７の分泌シグナル配列を目的蛋白質のＮ末端側に繋げることにより、組換え蛋白質を分泌蛋白質として発現させることも可能である（Ｚｈｅ−ｍｅｉ　Ｗａｎｇ，　ｅｔ　ａｌ．　（１９９８）　Ｂｉｏｌ．　Ｃｈｅｍ．，　３７９，　１６７−１７４）。
【００９７】
真核微生物を宿主細胞とした発現系としては、酵母が一般によく知られており、その中でもサッカロミセス属酵母、例えばパン酵母Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ　ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅや石油酵母Ｐｉｃｈｉａ　ｐａｓｔｏｒｉｓが好ましい。該酵母などの真核微生物の発現ベクターとしては、例えば、アルコール脱水素酵素遺伝子のプロモーター（Ｂｅｎｎｅｔｚｅｎ，Ｊ．　Ｌ．　ａｎｄ　Ｈａｌｌ，　Ｂ．　Ｄ．　（１９８２）　Ｊ．　Ｂｉｏｌ．　Ｃｈｅｍ．　２５７，　３０１８−３０２５）や酸性フォスファターゼ遺伝子のプロモーター（Ｍｉｙａｎｏｈａｒａ，　Ａ．　ｅｔ　ａｌ．　（１９８３）　Ｐｒｏｃ．　Ｎａｔｌ．　Ａｃａｄ．　Ｓｃｉ．　ＵＳＡ　８０，　１−５）などを好ましく利用できる。また、分泌型蛋白質として発現させる場合には、分泌シグナル配列と宿主細胞の持つ内在性プロテアーゼあるいは既知のプロテアーゼの切断部位をＮ末端側に持つ組換え体として発現することも可能である。例えば、トリプシン型セリンプロテアーゼのヒトマスト細胞トリプターゼを石油酵母で発現させた系では、Ｎ末端側に酵母のαファクターの分泌シグナル配列と石油酵母の持つＫＥＸ２プロテアーゼの切断部位をつなぎ発現させることにより、活性型トリプターゼが培地中に分泌されることが知られている（Ａｎｄｒｅｗ，　Ｌ．　Ｎｉｌｅｓ，ｅｔ　ａｌ．　（１９９８）　Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．Ａｐｐｌ．　Ｂｉｏｃｈｅｍ．　２８，
１２５−１３１）。
【００９８】
上記のようにして得られる形質転換体は、常法に従い培養することができ、該培養により細胞内、または細胞外に目的のポリペプチドが産生される。該培養に用いられる培地としては、採用した宿主細胞に応じて慣用される各種のものを適宜選択でき、例えば、上記ＣＯＳ細胞であれば、ＲＰＭＩ１６４０培地やダルベッコ変法イーグル培地（以下「ＤＭＥＭ」という）などの培地に、必要に応じウシ胎児血清などの血清成分を添加したものを使用できる。
【００９９】
上記培養により、形質転換体の細胞内または細胞外に産生される組換え蛋白質は、該蛋白質の物理的性質や化学的性質などを利用した各種の公知の分離操作法により分離・精製することができる。該方法としては、具体的には例えば、通常のタンパク沈殿剤による処理、限外濾過、分子ふるいクロマトグラフィー（ゲル濾過）、吸着クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）などの各種液体クロマトグラフィー、透析法、これらの組合せなどを例示できる。また、発現させる組換え蛋白質に６残基からなるヒスチジンを繋げることにより、ニッケルアフィニティーカラムで効率的に精製することができる。上記方法を組み合わせることにより容易に高収率、高純度で目的とするポリペプチドを大量に製造できる。
【０１００】
ＣＤ３９Ｌ４と特異的に結合する抗体の例として、ＣＤ３９Ｌ４と特異的に結合するモノクローナル抗体を挙げることができるが、その取得方法は、以下に記載する通りである。
【０１０１】
モノクローナル抗体の製造にあたっては、一般に下記のような作業工程が必要である。すなわち、
（ａ）抗原として使用する生体高分子の精製、
（ｂ）抗原を動物に注射することにより免疫した後、血液を採取しその抗体価を検定して脾臓摘出の時期を決定してから、抗体産生細胞を調製する工程、
（ｃ）骨髄腫細胞（以下「ミエローマ」という）の調製、
（ｄ）抗体産生細胞とミエローマとの細胞融合、
（ｅ）目的とする抗体を産生するハイブリドーマ群の選別、
（ｆ）単一細胞クローンへの分割（クローニング）、
（ｇ）場合によっては、モノクローナル抗体を大量に製造するためのハイブリドーマの培養、またはハイブリドーマを移植した動物の飼育、
（ｈ）このようにして製造されたモノクローナル抗体の生理活性、及びその認識特異性の検討、あるいは標識試薬としての特性の検定、等である。
【０１０２】
以下、モノクローナル抗体の作製法を上記工程に沿って詳述するが、該抗体の作製法はこれに制限されず、例えば脾細胞以外の抗体産生細胞及びミエローマを使用することもできる。
【０１０３】
（ａ）抗原の精製
抗原としては、前記したような方法で調製したＣＤ３９Ｌ４またはその一部を使用することができる。さらに、当業者に周知の方法を用いて、本発明の蛋白質の部分ペプチドを化学合成し、これを抗原として使用することもできる。
【０１０４】
（ｂ）抗体産生細胞の調製
工程（ａ）で得られた抗原と、フロインドの完全または不完全アジュバント、またはカリミョウバンのような助剤とを混合し、免疫原として実験動物に免疫する。実験動物としては、マウスが最も好適に用いられるが、これに限定されない。
【０１０５】
マウス免疫の際の免疫原投与法は、皮下注射、腹腔内注射、静脈内注射、皮内注射、筋肉内注射いずれでもよいが、皮下注射または腹腔内注射が好ましい。
【０１０６】
免疫は、一回、または、適当な間隔で（好ましくは１週間から５週間間隔で）複数回繰返し行なうことができる。その後、免疫した動物の血清中の抗原に対する抗体価を測定し、抗体価が十分高くなった動物を抗体産生細胞の供給原として用いれば、以後の操作の効果を高めることができる。一般的には、最終免疫後３〜５日後の動物由来の抗体産生細胞を後の細胞融合に用いることが好ましい。
【０１０７】
ここで用いられる抗体価の測定法としては、ＲＩＡ法、ＥＬＩＳＡ法、蛍光抗体法、受身血球凝集反応法など種々の公知技術があげられるが、検出感度、迅速性、正確性、及び操作の自動化の可能性などの観点から、ＲＩＡ法またはＥＬＩＳＡ法がより好適である。
【０１０８】
本発明における抗体価の測定は、例えばＥＬＩＳＡ法によれば、以下に記載するような手順により行うことができる。まず、精製または部分精製した抗原をＥＬＩＳＡ用９６穴プレート等の固相表面に吸着させ、さらに抗原が吸着していない固相表面を抗原と無関係な蛋白質、例えばウシ血清アルブミン（以下「ＢＳＡ」という）により覆い、該表面を洗浄後、第一抗体として段階希釈した試料（例えばマウス血清）に接触させ、上記抗原に試料中のモノクローナル抗体を結合させる。さらに第二抗体として酵素標識されたマウス抗体に対する抗体を加えてマウス抗体に結合させ、洗浄後該酵素の基質を加え、基質分解に基づく発色による吸光度の変化等を測定することにより、抗体価を算出する。
【０１０９】
（ｃ）ミエローマの調製工程
ミエローマとしては、一般的にはマウスから得られた株化細胞、例えば８−アザグアニン耐性マウス（ＢＡＬＢ／ｃ由来）ミエローマ株Ｐ３Ｘ６３Ａｇ８Ｕ．１（Ｐ３−Ｕ１）［Ｙｅｌｔｏｎ，　Ｄ．Ｅ．　ｅｔ　ａｌ．　Ｃｕｒｒｅｎｔ　Ｔｏｐｉｃｓ　ｉｎ　Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ　ａｎｄ　Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，　８１，　１−７（１９７８）］、Ｐ３／ＮＳＩ　／１−Ａｇ４−１（ＮＳ−１）　［Ｋｏｈｌｅｒ，　Ｇ．　ｅｔ　ａｌ．　Ｅｕｒｏｐｅａｎ　Ｊ．　Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，　６，　５１１−５１９　（１９７６）　］、Ｓｐ２　／Ｏ−Ａｇ１４　（ＳＰ−２）　［Ｓｈｕｌｍａｎ，　Ｍ．　ｅｔ　ａｌ．　Ｎａｔｕｒｅ，　２７６，　２６９−２７０　（１９７８）］、Ｐ３Ｘ６３Ａｇ８．６５３　（６５３）　［Ｋｅａｒｎｅｙ，　Ｊ．　Ｆ．　ｅｔ　ａｌ．　Ｊ．　Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，　１２３，　１５４８−１５５０　（１９７９）］、Ｐ３Ｘ６３Ａｇ８（Ｘ６３）　［Ｈｏｒｉｂａｔａ，　Ｋ．　ａｎｄ　Ｈａｒｒｉｓ，　Ａ．　Ｗ．　Ｎａｔｕｒｅ，　２５６，　４９５−４９７　（１９７５）］などを用いることが好ましい。これらの細胞株は、適当な培地、例えば８−アザグアニン培地［ＲＰＭＩ−１６４０培地にグルタミン、２−メルカプトエタノール、ゲンタマイシン、及びウシ胎児血清（以下「ＦＣＳ」という）を加えた培地に８−アザグアニンを加えた培地］　、イスコフ改変ダルベッコ培地（Ｉｓｃｏｖｅ’ｓ　Ｍｏｄｉｆｉｅｄ　Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ　Ｍｅｄｉｕｍ　；以下「ＩＭＤＭ」という）、またはダルベッコ改変イーグル培地（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ　Ｍｏｄｉｆｉｅｄ　Ｅａｇｌｅ　Ｍｅｄｉｕｍ；以下「ＤＭＥＭ」という）で継代培養するが、細胞融合の３乃至４日前に正常培地［例えば、１０％　ＦＣＳを含むＡＳＦ１０４培地（味の素（株）社製）］で継代培養し、融合当日に２×１０７以上の細胞数を確保しておく。
【０１１０】
（ｄ）細胞融合
抗体産生細胞は、形質細胞、及びその前駆細胞であるリンパ球であり、これは個体のいずれの部位から得てもよく、一般には脾、リンパ節、末梢血、またはこれらを適宜組み合わせたもの等から得ることができるが、脾細胞が最も一般的に用いられる。
【０１１１】
最終免疫後、所定の抗体価が得られたマウスから抗体産生細胞が存在する部位、例えば脾臓を摘出し、抗体産生細胞である脾細胞を調製する。この脾細胞と工程（ｃ）で得られたミエローマを融合させる手段として現在最も一般的に行われているのは、細胞毒性が比較的少なく融合操作も簡単なポリエチレングリコールを用いる方法である。この方法は、例えば以下の手順よりなる。
【０１１２】
脾細胞とミエローマとを無血清培地（例えばＲＰＭＩ１６４０）、またはリン酸緩衝生理食塩液（以下「ＰＢＳ」という）でよく洗浄し、脾細胞とミエローマの細胞数の比が５：１〜１０：１程度になるように混合し、遠心分離する。上清を除去し、沈澱した細胞群をよくほぐした後、撹拌しながら１ｍｌの５０％（ｗ／ｖ）ポリエチレングリコール（分子量１０００〜４０００）を含む無血清培地を滴下する。その後、１０ｍｌの無血清培地をゆっくりと加えた後遠心分離する。再び上清を捨て、沈澱した細胞を適量のヒポキサンチン・アミノプテリン・チミジン（以下「ＨＡＴ」という）液及びマウスインターロイキン−２（以下「ＩＬ−２」という）を含む正常培地（以下「ＨＡＴ培地」という）中に懸濁して培養用プレート（以下「プレート」という）の各ウェルに分注し、５％炭酸ガス存在下、３７℃で２週間程度培養する。途中適宜ＨＡＴ培地を補う。
【０１１３】
（ｅ）ハイブリドーマ群の選択
上記ミエローマ細胞が、８−アザグアニン耐性株である場合、すなわち、ヒポキサンチン・グアニン・ホスホリボシルトランスフェラーゼ（ＨＧＰＲＴ）欠損株である場合、融合しなかった該ミエローマ細胞、及びミエローマ細胞どうしの融合細胞は、ＨＡＴ含有培地中では生存できない。一方、抗体産生細胞どうしの融合細胞、あるいは、抗体産生細胞とミエローマ細胞とのハイブリドーマは生存することができるが、抗体産生細胞どうしの融合細胞には寿命がある。従って、ＨＡＴ含有培地中での培養を続けることによって、抗体産生細胞とミエローマ細胞とのハイブリドーマのみが生き残り、結果的にハイブリドーマを選択することができる。
【０１１４】
コロニー状に生育してきたハイブリドーマについて、ＨＡＴ培地からアミノプテリンを除いた培地（以下「ＨＴ培地」という）への培地交換を行う。以後、培養上清の一部を採取し、例えば、ＥＬＩＳＡ法により抗体価を測定する。
【０１１５】
以上、８−アザグアニン耐性の細胞株を用いる方法を例示したが、その他の細胞株もハイブリドーマの選択方法に応じて使用することができ、その場合使用する培地組成も変化する。
【０１１６】
（ｆ）クローニング
工程（ｂ）の記載と同様の方法で抗体価を測定することにより、特異的抗体を産生することが判明したハイブリドーマを、別のプレートに移しクローニングを行う。このクローニング法としては、プレートの１ウェルに１個のハイブリドーマが含まれるように希釈して培養する限界希釈法、軟寒天培地中で培養しコロニーを回収する軟寒天法、マイクロマニュピレーターによって１個づつの細胞を取り出し培養する方法、セルソーターによって１個の細胞を分離する「ソータクローン」などが挙げられるが、限界希釈法が簡便でありよく用いられる。
【０１１７】
抗体価の認められたウェルについて、例えば限界希釈法によるクローニングを２〜４回繰返し、安定して抗体価の認められたものを本発明のモノクローナル抗体産生ハイブリドーマ株として選択する。
【０１１８】
（ｇ）ハイブリドーマ培養によるモノクローナル抗体の調製
クローニングを完了したハイブリドーマは、培地をＨＴ培地から正常培地に換えて培養される。大量培養は、大型培養瓶を用いた回転培養、あるいはスピナー培養で行われる。この大量培養における上清を、ゲル濾過等、当業者に周知の方法を用いて精製することにより、本発明の蛋白質に特異的に結合するモノクローナル抗体を得ることができる。また、同系統のマウス（例えば、上記のＢＡＬＢ／ｃ）、あるいはＮｕ／Ｎｕマウスの腹腔内で該ハイブリド−マを増殖させることにより、本発明のモノクローナル抗体を大量に含む腹水を得ることができる。精製の簡便な方法としては、市販のモノクローナル抗体精製キット（例えば、ＭＡｂＴｒａｐ　ＧＩＩキット；ファルマシア社製）等を利用することもできる。
【０１１９】
かくして得られるモノクローナル抗体は、ＣＤ３９Ｌ４に対して高い抗原特異性を有する。
【０１２０】
（ｈ）モノクローナル抗体の検定
かくして得られたモノクローナル抗体のアイソタイプ及びサブクラスの決定は以下のように行うことができる。まず、同定法としてはオクテルロニー（Ｏｕｃｈｔｅｒｌｏｎｙ）法、ＥＬＩＳＡ法、またはＲＩＡ法が挙げられる。オクテルロニー法は簡便ではあるが、モノクローナル抗体の濃度が低い場合には濃縮操作が必要である。一方、ＥＬＩＳＡ法またはＲＩＡ法を用いた場合は、培養上清をそのまま抗原吸着固相と反応させ、さらに第二次抗体として各種イムノグロブリンアイソタイプ、サブクラスに対応する抗体を用いることにより、モノクローナル抗体のアイソタイプ、サブクラスを同定することが可能である。また、さらに簡便な方法として、市販の同定用のキット（例えば、マウスタイパーキット；バイオラッド社製）等を利用することもできる。
【０１２１】
さらに、蛋白質の定量は、フォーリンロウリー法、及び２８０ｎｍにおける吸光度［１．４（ＯＤ２８０）＝イムノグロブリン１ｍｇ／ｍｌ］より算出する方法により行うことができる。
【０１２２】
このようにして得られる本発明のモノクローナル抗体は、その特異性を利用したＣＤ３９Ｌ４の検出や分離精製に用いることができる。
【０１２３】
（４）検出
上記（３）記載の方法で得られる抗体は、それを直接標識するか、または該抗体を一次抗体とし、該抗体を特異的に認識する（抗体を作製した動物由来の抗体を認識する）標識二次抗体と協同で検出に用いられる。
【０１２４】
標識の種類として好ましいものは酵素（アルカリホスファターゼまたは西洋ワサビペルオキシダーゼ）またはビオチン（ただし二次抗体のビオチンにさらに酵素標識ストレプトアビジンを結合させる操作が加わる）であるが、これらに限定されない。標識二次抗体（または標識ストレプトアビジン）を使用する方法のための、予め標識された抗体（またはストレプトアビジン）は種々のものが市販されている。ＲＩＡの場合はＩ１２５等の放射性同位元素で標識された抗体を用い、測定は液体シンチレーションカウンター等を用いて行う。
【０１２５】
これら標識された酵素の活性を検出することにより、抗原であるポリペプチドの量が測定される。アルカリホスファターゼまたは西洋ワサビペルオキシダーゼの場合、それら酵素の触媒により発色する基質や発光する基質が市販されている。
【０１２６】
発色する基質を用いた場合、ウエスタンブロット法やドット／スロットブロット法においては目視で検出できる。ＥＬＩＳＡ法においては、好ましくは市販のマイクロプレートリーダーを用いて各ウエルの吸光度（測定波長は基質により異なる）を測定することにより定量する。また好ましくは上記（３）において抗体作製のために使用した抗原の希釈系列を調製し、これを標準抗原試料として他の試料と同時に検出操作を行って、標準抗原濃度と測定値をプロットした標準曲線を作成することにより、他の試料中の抗原濃度を定量することが可能である。
【０１２７】
一方、発光する基質を使用した場合は、ウエスタンブロット法やドット／スロットブロット法においてはＸ線フィルムまたはイメージングプレートを用いたオートラジオグラフィーや、インスタントカメラを用いた写真撮影により検出することができ、デンシトメトリーやモレキュラー・イメージャーＦｘシステム（バイオラッド社製）等を利用した定量も可能である。また、ＥＬＩＳＡ法で発光基質を用いる場合は、発光マイクロプレートリーダー（例えば、バイオラッド社製等）を用いて酵素活性を測定する。
【０１２８】
（５）測定操作
ｉ）ウエスタンブロット、ドットブロットまたはスロットブロットの場合
まず、抗体の非特異的吸着を阻止するため、予めメンブレンをそのような非特異的吸着を阻害する物質（スキムミルク、カゼイン、ウシ血清アルブミン、ゼラチン、ポリビニルピロリドン等）を含む緩衝液中に一定時間浸しておく操作（ブロッキング）を行う。ブロッキング溶液の組成は、例えば５％　スキムミルク、０．０５乃至０．１％　ツイーン２０を含むリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）またはトリス緩衝生理食塩水（ＴＢＳ）が用いられる。スキムミルクの代わりに、ブロックエース（大日本製薬）、１乃至１０％のウシ血清アルブミン、０．５乃至３％のゼラチンまたは１％のポリビニルピロリドン等を用いてもよい。ブロッキングの時間は、４℃で１６乃至２４時間、または室温で１乃至３時間である。
【０１２９】
次に、メンブレンを０．０５乃至０．１％　ツイーン２０を含むＰＢＳまたはＴＢＳ（以下「洗浄液」という）で洗浄して余分なブロッキング溶液を除去した後、上記（３）記載の方法で作製された抗体をブロッキング溶液で適宜希釈した溶液中に一定時間浸して、抗体をメンブレン上の抗原に結合させる。このときの抗体の希釈倍率は、例えば上記３）記載の組換え抗原を段階希釈したものを試料とした予備のウエスタンブロッティング実験を行って決定することができる。この抗体反応操作は、好ましくは室温で２時間行う。抗体反応操作終了後、メンブレンを洗浄液で洗浄する。ここで、用いた抗体が標識されたものである場合は、ただちに検出操作を行うことができる。未標識の抗体を用いた場合には、引き続いて二次抗体反応を行う。標識二次抗体は、例えば市販のものを使用する場合はブロッキング溶液で２０００乃至２００００倍に希釈して用いる（添付の指示書に好適な希釈倍率が記載されている場合は、その記載に従う）。一次抗体を洗浄除去した後のメンブレンを二次抗体溶液に室温で４５分乃至１時間浸し、洗浄液で洗浄してから、標識方法に合わせた検出操作を行う。洗浄操作は、例えばまずメンブレンを洗浄液中で１５分間振盪してから、洗浄液を新しいものに交換して５分間振盪した後、再度洗浄液を交換して５分間振盪することにより行う。必要に応じてさらに洗浄液を交換して洗浄してもよい。
【０１３０】
ｉｉ）ＥＬＩＳＡ／ＲＩＡ
まず、上記（２）の方法で試料を固相化させたプレートのウェル内底面への抗体の非特異的吸着を阻止するため、ウエスタンブロットの場合と同様、予めブロッキングを行っておく。ブロッキングの条件については、ウエスタンブロットの項に記載した通りである。
【０１３１】
次に、ウェル内を０．０５乃至０．１％　ツイーン２０を含むＰＢＳまたはＴＢＳ（以下「洗浄液」という）で洗浄して余分なブロッキング溶液を除去した後、上記（３）記載の方法で作製された抗体を洗浄液で適宜希釈した溶液を分注して一定時間インキュベーションし、抗体を抗原に結合させる。このときの抗体の希釈倍率は、例えば上記（３）記載の組換え抗原を段階希釈したものを試料とした予備のＥＬＩＳＡ実験を行って決定することができる。この抗体反応操作は、好ましくは室温で１時間程度行う。抗体反応操作終了後、ウェル内を洗浄液で洗浄する。ここで、用いた抗体が標識されたものである場合は、ただちに検出操作を行うことができる。未標識の抗体を用いた場合には、引き続いて二次抗体反応を行う。標識二次抗体は、例えば市販のものを使用する場合は洗浄液で２０００乃至２００００倍に希釈して用いる（添付の指示書に好適な希釈倍率が記載されている場合は、その記載に従う）。一次抗体を洗浄除去した後のウェルに二次抗体溶液を分注して室温で１乃至３時間インキュベーションし、洗浄液で洗浄してから、標識方法に合わせた検出操作を行う。洗浄操作は、例えばまずウェル内に洗浄液を分注して５分間振盪してから、洗浄液を新しいものに交換して５分間振盪した後、再度洗浄液を交換して５分間振盪することにより行う。必要に応じてさらに洗浄液を交換して洗浄してもよい。
【０１３２】
また本発明において、いわゆるサンドイッチ法のＥＬＩＳＡは例えば以下に記載する方法により実施することができる。まず、ＣＤ３９Ｌ４のアミノ酸配列のいずれか一つにおいて、親水性に富む領域を２箇所選んで、それぞれの領域中のアミノ酸６残基以上からなる部分ペプチドを合成し、該部分ペプチドを抗原とした２種類の抗体を取得する。このうち一方の抗体を上記（４）記載のように標識しておく。標識しなかった方の抗体は、上記（２）記載の方法に準じて９６穴ＥＬＩＳＡ用プレートのウェル内底面に固相化する。ブロッキングの後、試料液をウェル内に入れて常温で１時間インキュベーションする。ウェル内を洗浄後、標識した方の抗体希釈液を各ウェルに分注してインキュベーションする。再びウェル内を洗浄後、標識方法に合わせた検出操作を行う。
【０１３３】
（６）リガンド
抗体の他に、ＣＤ３９Ｌ４に特異的に結合する基質、補酵素、調節因子等のリガンドを用いることによってもＣＤ３９Ｌ４を定量することができる。
【０１３４】
（７）判定
以上に記載した方法で、被験者または被験動物から採取した検体と、正常人または正常動物から採取した検体との間で検出結果を比較し、その結果上記（３）記載の方法で作製された抗体またはリガンドが特異的に結合するポリペプチドの量を各ＣＤ３９Ｌ４の発現量として、正常個体にＣＤ３９Ｌ４の発現量が増加している場合に腫瘍を有している可能性が高いと判定することができる。
【０１３５】
６．ＣＤ３９Ｌ４の機能
このようにしてＣＤ３９Ｌ４遺伝子を利用して遺伝子工学的手法により得られるＣＤ３９Ｌ４の生理機能は以下のような　ウイルスを用いた発現実験で調べることができる。
【０１３６】
ＣＤ３９Ｌ４遺伝子を例えばＰＣＲ法で増幅し、アデノウイルス用発現ベクターあるいはレトロウイルスベクターに組み込む。その際に市販のキットを用いることもできる（例えば、アデノウイルス・エクスプレッション・ベクター・キット（宝酒造社製）やＲｅｔｒｏ−Ｘ　Ｓｙｓｔｅｍ（クロンテック社製））。こうして得られたウイルスを例えば、糖尿病マウス（例えばＢａｌｂ／ｃマウス（日本クレア社））に尾静脈より接種し、コントロールとして上記ＣＤ３９Ｌ４遺伝子を含まないアデノウイルスを摂取したマウスとの間で血中のＡＬＴ値（アラニン　アミノ　トランスフェラーゼ値）、腫瘍マーカー遺伝子の発現量を測定する。また、マウスより各種組織を取り出して、組織の状態を調べる、この際、組織特異的なプロモーター（例えば、ラットプロバシンプロモーター（Ｇｒｅｅｎｂｅｒｇら，Ｍｏｌ．　　Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌ．（１９９４）　ｐ．２３０−２３９）、マウス乳癌ウイルスプロモーター（Ｗｙｎｓｈａｗ−Ｂｏｒｉｓ，　Ｃａｎｃｅｒ　Ｈａｎｄｂｏｏｋ　２　（２００２）、Ｎａｔｕｒｅ　Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ　Ｇｒｏｕｐ、Ｌｏｎｄｏｎ、ｐ．８９１−９０２等）を用いたときには該遺伝子が特異的に発現する組織を取り出して組織の状態を調べる。コントロールと各測定値を比較することによりＣＤ３９Ｌ４の生理機能を把握することができる。
【０１３７】
７．癌の検出方法
ＣＤ３９Ｌ４は細胞の癌化及び／または癌細胞の増殖に関与しており、癌細胞で高い発現が認められると考えられる。したがって、ＣＤ３９Ｌ４が過剰に発現している細胞においてＣＤ３９Ｌ４の発現量を抑制する物質は細胞の癌化を抑制し、また、癌細胞の増殖を抑制すると考えられる。なお、「検体」とは、被験者や臨床検体、被験動物等から得られた、血液、体液、前立腺、精巣、陰茎、膀胱、腎臓、口腔、咽頭、口唇、舌、歯肉、鼻咽頭、食道、胃、小腸、大腸、結腸、肝臓、胆嚢、膵臓、鼻、肺、骨、軟部組織、皮膚、乳房、子宮、卵巣、脳、甲状腺、リンパ節、筋肉、脂肪組織等の組織または排泄物等の試料を意味するが、本発明においては前立腺がより好ましい。
【０１３８】
本発明において、正常人及び正常動物とは、癌を有さない人及び動物を意味する。正常人あるいは正常動物であるか否かは、ＣＤ３９Ｌ４の濃度を測定し、あらかじめ正常人の値として決められている数値範囲に入るか否かで判定することもできる。ＣＤ３９Ｌ４の発現量と、正常人または正常動物の癌の形成度の相関をあらかじめ調べておくことによって、被験者または被験動物から採取した検体におけるＣＤ３９Ｌ４の発現量を測定することによって被験者または被験動物が、正常人または正常動物であるか否かを判定することができる。
【０１３９】
７．１　ＣＤ３９Ｌ４遺伝子を利用した癌の検出方法
ＣＤ３９Ｌ４を利用した癌の検出方法は、具体的には、７．１．１または７．１．２に記載するとおりである。
【０１４０】
７．１．１　以下の工程１）乃至４）を含む：
１）被験者または被験動物より採取した検体より、全ＲＮＡを抽出する工程；
２）上記工程１）に記載の検体由来の全ＲＮＡと正常人または正常動物より採取した検体より抽出した全ＲＮＡの間における、ＣＤ３９Ｌ４遺伝子の発現量の差を測定する工程；
３）上記工程２）に記載の遺伝子の発現量の差を解析し、上記工程１）に記載の被験者または被験動物の癌を検出する工程。
【０１４１】
７．１．２　以下の工程１）乃至４）を含む：
１）被験者または被験動物より採取した検体より、全ＲＮＡ画分を抽出する工程；
２）正常人または正常動物より採取した検体より、全ＲＮＡ画分を抽出する工程；
３）上記工程１）に記載の全ＲＮＡ画分と上記工程２）に記載の全ＲＮＡ画分の間におけるＣＤ３９Ｌ４遺伝子の発現量を測定する工程；
４）上記工程１）由来の全ＲＮＡ画分と上記工程２）由来の全ＲＮＡ画分との間における上記工程３）によって測定された遺伝子の発現量の差を解析し、上記工程１）に記載の被験者または被験動物の癌を検出する工程。
【０１４２】
７．１．３　ここで、７．１．１の工程１）及び７．１．２の工程１）及び工程２）における全ＲＮＡの抽出は上記、「１．ＣＤ３９Ｌ４遺伝子の取得」の項に示した方法にしたがって実施することができ、抽出された全ＲＮＡはさらに精製してｍＲＮＡとして使用することが望ましい。また、７．１．１の工程２）及び７．１．２の工程３）におけるＣＤ３９Ｌ４遺伝子の発現量の測定は上記、「４．腫瘍マーカー遺伝子」の項に記載の方法を用いて測定することができ、ノーザンブロット法、ドットブロット法、スロットブロット法、ＲＴ−ＰＣＲ、リボヌクレアーゼ保護アッセイ、ランオン・アッセイ、遺伝子チップ、ｃＤＮＡアレイ等の固相化試料を用いた核酸ハイブリダイゼーションを用いて測定することが望ましい。
【０１４３】
７．２　ＣＤ３９Ｌ４を利用した癌の検出方法
本発明のＣＤ３９Ｌ４を利用した癌の検出方法は、具体的には以下の７．２．１、７．２．２、７．２．３または７．２．４からなる。
７．２．１　以下の工程１）乃至２）を含む：
１）被験者または被験動物から採取した検体における、ＣＤ３９Ｌ４の発現量を測定する工程；
２）上記工程１）で検出された蛋白質の発現量と正常人または正常動物から採取した検体における該蛋白質の発現量の差を解析し、上記工程１）における被験者または被験動物の癌を検出する工程。
【０１４４】
７．２．２　以下の工程１）乃至３）を含む：
１）被験者または被験動物より採取した検体における、ＣＤ３９Ｌ４の発現量を測定する工程：
２）正常人または正常動物より採取した検体における、上記１）に記載の蛋白質の発現量を測定する工程：
３）上記工程１）で測定された蛋白質の発現量と上記工程２）で測定された該蛋白質の発現量の差を解析し、被験者または被験動物の癌を検出する工程。
【０１４５】
７．２．３　以下の工程１）乃至３）を含む：
１）被験者または被験動物より採取した検体より得た全蛋白質を固相化する工程；
２）上記工程１）に記載の固相化蛋白質における、ＣＤ３９Ｌ４の発現量を測定する工程；
３）上記工程２）で測定された蛋白質の発現量と正常人または正常動物より採取した検体より得た全蛋白質における該蛋白質の発現量の差を解析し、上記工程１）における被験者または被験動物の癌を検出する工程。
【０１４６】
７．２．４　以下の工程１）乃至５）を含む、癌の検出方法：
１）被験者または被験動物より採取した検体より得た全蛋白質を固相化する工程；
２）正常人または正常動物より採取した検体より得た全蛋白質を固相化する工程；
３）上記工程１）に記載の固相化蛋白質における、ＣＤ３９Ｌ４の発現量を測定する工程：
４）上記工程２）に記載の固相化蛋白質における、上記工程３）で発現量を測定した蛋白質の発現量を測定する工程；
５）上記工程３）で測定された蛋白質の発現量と上記工程４）で測定された蛋白質の発現量の差を解析し、上記工程１）に記載の被験者または被験動物の癌を検出する工程。
【０１４７】
７．２．５　ここで、７．２．１の工程１）、工程２）、７．２．２の工程１）、工程２）、７．２．３の工程２）、工程３）、７．２．４の工程３）及び工程４）における蛋白質の発現量の測定は上記「５．腫瘍マーカー蛋白質」の項に記載した方法を用いることができ、好ましくはＣＤ３９Ｌ４に特異的に結合する抗体またはリガンドを用いた方法、より好ましくは、ウエスタンブロット法、ドットブロット法、スロットブロット法または固相酵素免疫定量法（ＥＬＩＳＡ法）を用いることができる。
【０１４８】
７．３　判定
７．１．１の工程３）、７．１．２の工程４）、７．２．１の工程１）、７．２．２の工程３）、７．２．３の工程３）及び７．２．４の工程５）における癌の検出は、発現量の差を総合的に評価して行なうことが望ましい。なお、「発現量の差」は、被験者または被験動物由来の検体と、正常人または正常動物由来の検体におけるＣＤ３９Ｌ４の発現量を定量的に比較できる限り、発現量差であっても発現量比であってもよい。
【０１４９】
上記分析の結果、被験者または被験動物から採取した検体由来の試料と、正常人または正常動物由来の試料との間で測定結果を比較し、ＣＤ３９Ｌ４の発現量が正常人または正常動物より高い場合、癌を有すると判断することができる。
【０１５０】
８．ＣＤ３９Ｌ４遺伝子及び／またはＣＤ３９Ｌ４検出用キット
ＣＤ３９Ｌ４遺伝子及び／またはＣＤ３９Ｌ４は、以下の１）乃至５）からなる群から選択される少なくとも一つ以上を含むキットを用いて検出することができる。
１）配列表の配列番号１、５及び７に示される群から選択されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを特異的に増幅するための１５乃至３０塩基長の連続したオリゴヌクレオチドプライマー；
２）配列表の配列番号１、３、５及び７に示される群から選択されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドにストリンジェントな条件でハイブリダイズし、該ポリヌクレオチドを検出するための１５ヌクレオチド以上の連続したポリヌクレオチドプローブ；
３）配列表の配列番号１、３、５及び７に示される群から選択されるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドが固定された固相化試料；
４）配列表の配列番号２、４、６及び８に示される群から選択されるアミノ酸配列からなる蛋白質に特異的に結合し、該蛋白質を検出するための抗体；
５）上記４）に記載の抗体に結合し得る二次抗体。
【０１５１】
前記１）記載のプライマーは、ＣＤ３９Ｌ４遺伝子のヌクレオチド配列（配列表の配列番号１、３、５及び７のいずれか一つに示されるヌクレオチド配列）に基づき市販のプライマー設計ソフト（たとえば、Ｗｉｓｃｏｎｓｉｎ　ＧＣＧ　ｐａｃｋａｇｅ　Ｖｅｒｓｉｏｎ　１０．２）を用いる等、常法により容易に設計し、増幅することができる。このようなプライマーとしては例えば、配列表の配列番号１に記載のヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを増幅するためには配列表の配列番号９に示されるヌクレオチド配列からなるオリゴヌクレオチドと配列表の配列番号１０に示されるヌクレオチド配列からなるオリゴヌクレオチドの組み合わせを使用することができる。また、前記２）に記載のプローブは、ＣＤ３９Ｌ４に特異的にハイブリダイズするポリヌクレオチドであって、１００乃至１５００塩基長、好ましくは３００乃至６００塩基長である。これらのプライマーやプローブは、適当な標識によりラベル（例えば、酵素標識、放射性標識、蛍光標識等）されていてもよく、また、リンカーを付加していてもよい。
【０１５２】
上記３）に記載の固相化試料は、上記２）に記載のプローブをガラス板、ナイロンメンブレン等の固相に固定することにより作製される。このような固相化試料の作成方法については、既に「４．腫瘍マーカー遺伝子」の項中、「（１）固相化試料を用いた解析方法」の項で説明した通りであり、例えば、遺伝子チップ、ｃＤＮＡアレイ、オリゴアレイ、メンブレンフィルター等を挙げることができる。
【０１５３】
本発明のキットには、更に耐熱性ＤＮＡポリメラーゼ、ｄＮＴＰ（ｄＡＴＰ、ｄＣＴＰ、ｄＧＴＰ、ｄＴＴＰの混合物）及び緩衝液を含めることもできる。耐熱性ＤＮＡポリメラーゼとしてはＴａｑ　ＤＮＡポリメラーゼ、ＬＡ　Ｔａｑ　ＤＡＮ　ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ（宝酒造社製）、Ｔｔｈ　ＤＮＡポリメラーゼ、ＰｆｕＤＮＡポリメラーゼなどが例示できる。緩衝液は使用するＤＮＡポリメラーゼに応じて選ばれ、必要に応じてＭｇ２＋などが添加されている。
【０１５４】
前記、４）及び５）に記載の抗体は３．２に記載した方法により作製することができる。該抗体は、適当な標識によりラベル（例えば、酵素標識、放射性標識、蛍光標識等）されていてもよい。
【０１５５】
本発明のキットはＣＤ３９Ｌ４遺伝子及び／またはＣＤ３９Ｌ４の検出に用いることができ、癌の有無の判定や、癌の増殖を抑制する物質のスクリーニングにも用いることができる。
【０１５６】
９．癌の治療効果及び／または予防効果を有する物質のスクリーニング方法
ＣＤ３９Ｌ４遺伝子またはＣＤ３９Ｌ４の少なくとも一つの発現量を測定することによって癌に対して治療及び／または予防効果を有する物質のスクリーニングをすることができる。
【０１５７】
なお、「被験物質」とは、本発明のスクリーニング方法で癌の増殖抑制活性を調べる対象となる物質をいう。被験物質としては、化合物、微生物の代謝産物、植物や動物組織の抽出物、それらの誘導体またはそれらの混合物等が挙げられる。また、ＣＤ３９Ｌ４の発現量を低下するように設計された核酸またはその誘導体（アンチセンスオリゴヌクレオチド、リボザイム、ｄｓＲＮＡ、ｓｉＲＮＡ等を含む）を、被験物質として使用することも可能である。被験物質の投与量や濃度は適宜設定するか、または例えば希釈系列を作成するなどして複数種の投与量を設定してもよく、固体、液体等適当な状態で投与することができ、適当なバッファーに溶解したり、安定化剤等を加えてもよい。培養細胞を用いるスクリーニング方法の場合には、培地に添加して培養することができる。培地に添加する場合には培養開始時から添加してもよいし、培養途中で添加しても良く、また、添加の回数も１回に限らない。被験物質存在下で培養する期間も適宜設定してよいが、好ましくは３０分乃至２週間であり、より好ましくは、３０分乃至４８時間である。哺乳動物個体に被験物質を投与する場合は、被験物質の物性等により経口投与、静脈注射、腹腔内注射、経皮投与、皮下注射等の投与形態を使い分ける。また、癌に直接塗布または注射することもできる。なお被験物質の投与から、検体を得るまでの時間は適当に選択することができる。
【０１５８】
本発明のスクリーニング方法において用いられる培養細胞は、ＣＤ３９Ｌ４を発現する哺乳動物細胞である限りにおいて、正常な細胞でも、癌細胞等の異常な増殖を示す細胞でもよく、例えば、マウス繊維芽細胞由来細胞株ＮＩＨ３Ｔ３細胞、ヒト前立腺癌細胞株ＬｎＣａＰ、マウス、ラット及びヒト遊離脂肪細胞、マウス、ラット及びヒト初代肝細胞等を挙げることができるがこれらに限定されない。培養細胞の哺乳動物種としては、ヒト、マウスまたはハムスターが好ましく、ヒトまたはマウスがより好ましいが、これらに限定されない。なお、培養細胞としてはＣＤ３９Ｌ４を過剰発現している哺乳動物細胞を用いるのがより好ましく、例えばＣＤ３９Ｌ４遺伝子をそのプロモーター領域とともに導入し、ＣＤ３９Ｌ４を過剰発現するＮＩＨ３Ｔ３細胞などを挙げることができる。
【０１５９】
本発明のスクリーニング方法には、培養細胞を用いず、哺乳動物個体に被験物質を投与して、その後該動物個体から摘出されたその臓器または組織細胞における本発明のＣＤ３９Ｌ４遺伝子の発現を検出する方法も含まれる。遺伝子発現の検出対象となる臓器または組織は、ＣＤ３９Ｌ４を発現するものであればよいが、好ましくは癌が発生している組織である。哺乳動物種としては非ヒト哺乳動物を用いることができ、マウス、ラットまたはハムスターが好ましく、マウスまたはラットがより好ましい。なお、ヒト、サル、マウスまたはラット由来の腫瘍を皮下、皮内あるいは腹腔等に移植した腫瘍モデル動物である、担癌動物（ヒト癌株を移植したヌードマウス、同種移植マウスなど）、あるいは、癌を自然発生する系統の動物（天然に同定された動物及び遺伝子改変動物を含む。例えば、ｐ５３ノックアウトマウス（Ｄｏｎｅｈｏｗｅｒら、Ｎａｔｕｒｅ（１９９２）、３５６巻、ｐ．２１５−２２１）、Ｍｙｃトランスジェニックマウス（Ａｄａｍｓら、Ｎａｔｕｒｅ（１９８５）、３１８巻、ｐ．５３３−５３８）、ＴＲＡＭＰマウス（Ｆｏｓｔｅｒら、　Ｃａｎｃｅｒ　Ｒｅｓ．（１９９７）、５７巻、ｐ．３３２５−３３３０）などを用いることもできる。更に、ＣＤ３９Ｌ４を過剰発現させた動物を用いることもできる。また、癌誘発処置を行なった動物を用いることもできる。
【０１６０】
本発明の方法において用いられる培養細胞は、被験物質を添加しない場合にはＣＤ３９Ｌ４を発現可能な条件であれば、いかなる条件で培養してもよい。例えば、該培養細胞について公知の培養条件が知られており、該条件下において該細胞がＣＤ３９Ｌ４を発現する場合は、該条件で培養してもよい。また、哺乳動物個体から摘出した臓器または組織におけるＣＤ３９Ｌ４の発現を検出する場合における、該動物の飼育条件も、被験物質を添加しない場合にＣＤ３９Ｌ４を発現可能な条件であればよい。
【０１６１】
なお、被験物質の、ＣＤ３９Ｌ４遺伝子の発現に対する影響を調べるためには、ＣＤ３９Ｌ４遺伝子の発現量を測定する方法と、ＣＤ３９Ｌ４遺伝子の翻訳産物である、ＣＤ３９Ｌ４の発現量を測定する方法がある。ＣＤ３９Ｌ４遺伝子またはＣＤ３９Ｌ４の発現を抑える被験物質は癌に対する治療効果及び／または予防効果を有する物質であると考えられる。
【０１６２】
培養細胞からの、全ＲＮＡの抽出、ＣＤ３９Ｌ４遺伝子の発現量の測定、ＣＤ３９Ｌ４の発現量の測定については、上記「１．ＣＤ３９Ｌ４遺伝子の取得」、「４．腫瘍マーカー遺伝子」及び「５．腫瘍マーカー蛋白質」の項に記載した方法に従って行うことができる。
【０１６３】
９．１　ＣＤ３９Ｌ４遺伝子を用いる方法
本発明のスクリーニング方法としては例えば、哺乳動物由来培養細胞を用いる方法、及び哺乳動物個体を用いる方法についてそれぞれ以下のようになる。
【０１６４】
Ａ）哺乳動物由来培養細胞を用いる方法
Ａ−１）以下の工程１）乃至３）を含む。
１）被験物質を添加した培地で培養した哺乳動物由来培養細胞より、全ＲＮＡを抽出する工程；
２）１）由来の全ＲＮＡと被験物質を添加しないで培養した哺乳動物培養細胞由来全ＲＮＡの間における、ＣＤ３９Ｌ４遺伝子の発現量の差を検出する工程；
３）ＣＤ３９Ｌ４遺伝子の発現量の差を解析し、被験物質の、癌に対する治療、及び／または予防効果を判定する工程。
【０１６５】
Ａ−２）以下の工程１）乃至４）を含む。
１）被験物質を添加した培地で培養した哺乳動物由来培養細胞より、全ＲＮＡ画分を抽出する工程；
２）被験物質を添加しない培地で培養した哺乳動物由来培養細胞より、全ＲＮＡ画分を抽出する工程；
３）上記工程１）由来の全ＲＮＡ画分と上記工程２）由来の全ＲＮＡ画分における、ＣＤ３９Ｌ４遺伝子の発現量を測定する工程；
４）上記工程１）由来の全ＲＮＡ画分と上記工程２）由来の全ＲＮＡ画分との間における上記工程３）によって測定されたポリヌクレオチドの発現量の差を解析し、被験物質の、癌に対する治療、及び／または治療効果を判定する工程。
【０１６６】
Ｂ）哺乳動物個体を用いる方法
Ｂ−１）以下の工程１）乃至３）を含む。
１）被験物質を投与した哺乳動物個体より採取した検体より、全ＲＮＡを抽出する工程；
２）上記工程１）由来の全ＲＮＡと被験物質を投与しなかった動物個体より採取した検体より得た全ＲＮＡの間における、ＣＤ３９Ｌ４遺伝子の発現量の差を検出する工程；
３）上記工程２）に記載のＣＤ３９Ｌ４遺伝子の発現量の差を解析し、被験物質の癌に対する治療、及び／または予防効果を判定する工程。
【０１６７】
Ｂ−２）以下の工程１）乃至４）を含む。
１）被験物質を投与した哺乳動物個体より採取した検体より、全ＲＮＡを抽出する工程；
２）被験物質を投与しなかった哺乳動物個体より採取した検体より、全ＲＮＡを抽出する工程；
３）上記工程１）由来の全ＲＮＡと上記工程２）由来の全ＲＮＡにおける、ＣＤ３９Ｌ４遺伝子の発現量を測定する工程；
４）３）に記載のＣＤ３９Ｌ４遺伝子の発現量の差を解析し、被験物質の癌に対する治療及び／または予防効果を判定する工程。
【０１６８】
９．２　ＣＤ３９Ｌ４を用いる方法
ＣＤ３９Ｌ４の発現量を測定することを利用したスクリーニング方法については哺乳動物培養細胞を用いた方法と動物個体を用いた方法についてそれぞれ以下の工程を含む。
【０１６９】
Ａ）哺乳動物由来培養細胞を用いる方法
Ａ−１）以下の工程１）及び２）を含む：
１）被験物質を添加した培地で培養した哺乳動物由来培養細胞における、ＣＤ３９Ｌ４の発現量を測定する工程；
２）１）で測定されたＣＤ３９Ｌ４の発現量と、被験物質を添加しない培地で培養した哺乳動物由来培養細胞における該蛋白質の発現量の差を解析し、被験物質の癌に対する治療効果及び／または予防効果を判定する工程。
【０１７０】
Ａ−２）以下の工程１）乃至３）を含む：
１）被験物質を添加した培地で培養した哺乳動物由来培養細胞における、ＣＤ３９Ｌ４の発現量を測定する工程；
２）被験物質を添加しない培地で培養した哺乳動物由来培養細胞における、上記１）に記載のＣＤ３９Ｌ４の発現量を測定する工程；
３）上記工程１）で測定されたＣＤ３９Ｌ４の発現量と、上記工程２）で測定されたＣＤ３９Ｌ４の発現量の差を検出し、被験物質の癌に対する治療効果及び／または予防効果を判定する工程。
【０１７１】
Ａ−３）以下の工程１）乃至３）を含む：
１）被験物質を添加した培地で培養した哺乳動物由来培養細胞から得た全蛋白質を固相化する工程；
２）上記固相化蛋白質における、本発明のＣＤ３９Ｌ４の発現量を測定する工程；
３）上記２）で検出されたＣＤ３９Ｌ４の発現量と、被験物質を添加しない培地で培養した哺乳動物由来培養細胞から得た全蛋白質における該蛋白質の発現量の差を解析し、被験物質の癌に対する治療効果及び／または予防効果を判定する工程。
【０１７２】
Ａ−４）以下の工程１）乃至５）を含む：
１）被験物質を添加した培地で培養した哺乳動物由来培養細胞から得た全蛋白質を固相化する工程；
２）被験物質を添加しない培地で培養した哺乳動物由来培養細胞から得た全蛋白質を固相化する工程；
３）上記工程１）に記載の固相化蛋白質におけるＣＤ３９Ｌ４の発現量を該蛋白質に特異的に結合する抗体またはリガンドを用いて測定する工程；
４）上記工程２）に記載の固相化蛋白質におけるＣＤ３９Ｌ４の発現量を該蛋白質に特異的に結合する抗体またはリガンドを用いて測定する工程；
５）上記工程３）で測定された蛋白質の発現量と、上記工程４）で測定された蛋白質の発現量の差を解析し、被験物質の、癌に対する治療効果及び／または予防効果を判定する工程。
【０１７３】
Ｂ）哺乳動物個体を用いる方法
Ｂ−１）以下の工程１）及び２）を含む：
１）被験物質を投与された哺乳動物個体より採取した検体における、ＣＤ３９Ｌ４タンパクの発現量を測定する工程；
２）上記工程１）で測定されたＣＤ３９Ｌ４の発現量と、被験物質を投与されなかった哺乳動物個体から採取した検体における該蛋白質の発現量の差を解析し、被験物質の癌に対する治療効果及び／または予防効果を判定する工程。
【０１７４】
Ｂ−２）以下の工程１）乃至３）を含む：
１）被験物質を投与された哺乳動物個体より採取した検体における、ＣＤ３９Ｌ４の発現量を該蛋白質に特異的に結合する抗体またはリガンドを用いて測定する工程；
２）被験物質を投与されなかった哺乳動物個体より採取した検体における、該蛋白質の発現量を測定する工程；
３）１）で測定されたＣＤ３９Ｌ４の発現量と、２）で測定されたＣＤ３９Ｌ４の発現量の差を解析し、被験物質の癌に対する治療効果及び／または予防効果を判定する工程。
【０１７５】
Ｂ−３）以下の工程１）乃至３）を含む：
１）被験物質を投与された哺乳動物個体より採取した検体中の全蛋白質を固相化する工程；
２）上記固相化蛋白質における、ＣＤ３９Ｌ４の発現量を測定する工程；
３）上記工程２）で検出されたＣＤ３９Ｌ４の発現量と、被験物質を投与されなかった哺乳動物個体より採取した検体中における該蛋白質の発現量の差を解析し、被験物質の癌に対する治療及び／または予防効果を判定する工程。
【０１７６】
Ｂ−４）以下の工程１）乃至５）を含む：
１）被験物質を投与された哺乳動物個体より採取した検体中の全蛋白質を固相化する工程；
２）被験物質を投与されなかった哺乳動物個体より採取した検体中の全蛋白質を固相化する工程；
３）上記工程１）に記載の固相化蛋白質における、ＣＤ３９Ｌ４の発現量を該蛋白質に特異的に結合する抗体またはリガンドを用いて検出する工程；
４）上記２）に記載の固相化蛋白質における、ＣＤ３９Ｌ４の発現量を該蛋白質に特異的に結合する抗体またはリガンドを用いて検出する工程；
５）上記３）で検出されたＣＤ３９Ｌ４の発現量と、上記４）で検出されたＣＤ３９Ｌ４の発現量の差を解析し、被験物質の癌に対する治療効果及び／または予防効果を判定する工程。
【０１７７】
９．３　その他の方法
ＣＤ３９Ｌ４を過剰発現させた哺乳動物個体に被験物質を投与した場合と投与しなかった場合について、経時的に癌の発生率、癌の大きさ、及び／または生存率等を測定する。被験物質を投与した哺乳動物で癌の発生率が有意に低下している、癌の大きさが有意に小さい、及び／または、生存率が約１０％以上、好ましくは約３０％以上、より好ましくは、約５０％以上上昇した場合に、被験物質は癌に対して癌に対する治療及び／または予防効果を有する化合物として選択することができる。
【０１７８】
１０．直接相互作用する物質の探索
本発明の他の一つの態様としては、ＣＤ３９Ｌ４の活動を抑制するような物質を得ることを目的とした、該蛋白質の立体構造をベースとしたドラッグデザインの手法を含む。このような手法は、ラショナルドラッグデザイン法として知られており、酵素活性などの機能や、リガンド、コファクター、またはＤＮＡへの結合などを効率よく阻害もしくは活性化させるような化合物の探索に利用されている。この例として、すでに上市されている抗ＨＩＶ剤であるプロテアーゼの阻害剤がよく知られている。本発明のＣＤ３９Ｌ４の三次元構造解析においても、Ｘ―線結晶解析や核磁気共鳴法といった一般的によく知られている手法が利用できると考えられる。さらに、ＣＤ３９Ｌ４の機能を抑制する物質の探索には、コンピュータードラッグデザイン（ＣＡＤＤ）を活用した設計も可能である。この例としては、慢性関節リウマチ治療の新たなゲノム新薬として期待されているＡＰ−１の働きを阻害する低分子化合物（国際特許出願公開ＷＯ９９／５８５１５号）などが知られている。このような方法により、ＣＤ３９Ｌ４に直接結合したり、あるいはＣＤ３９Ｌ４と他の因子との相互作用を阻害することにより、ＣＤ３９Ｌ４の機能を抑制するような物質を得ることができる。
【０１７９】
さらに、他の一つの態様は、本発明のＣＤ３９Ｌ４が会合するポリペプチド、すなわちＣＤ３９Ｌ４のパートナー蛋白質に関する。すなわち、本発明は、ＣＤ３９Ｌ４の活性を調節するパートナー蛋白質のスクリーニング方法に関する。
【０１８０】
このスクリーニング方法の一つの態様は、ＣＤ３９Ｌ４に被験蛋白質試料を接触させ、ＣＤ３９Ｌ４に結合する蛋白質を選択する工程を含む。このような方法としては、例えば、精製したＣＤ３９Ｌ４を用いて、これに結合する蛋白質のアフィニティー精製を行う方法が挙げられる。具体的な方法の一例を示せば、ＣＤ３９Ｌ４にヒスチジン６個よりなる配列をアフィニティータグとして融合したものを作製して、これを細胞の抽出液（予めニッケル−アガロースカラムにチャージして、このカラムを素通りした画分）と４℃で１２時間インキュベートし、次いで、この混合物に別途ニッケル−アガロース担体を加えて４℃で１時間インキュベートする。ニッケル−アガロース担体を洗浄バッファーで十分洗浄した後、１００ｍＭイミダゾールを加えることにより、ＣＤ３９Ｌ４と特異的に結合する細胞抽出液中の蛋白質を溶出させて精製し、この構造を決定する。このようにして、ＣＤ３９Ｌ４と直接結合する蛋白質、及びＣＤ３９Ｌ４との結合活性は持たないが、サブユニットとしてＣＤ３９Ｌ４に直接結合する蛋白質と複合体を形成することにより間接的にＣＤ３９Ｌ４に結合する蛋白質が精製できる［実験医学別冊、バイオマニュアルシリーズ５「転写因子研究法」ｐｐ２１５−２１９（羊土社刊）］。
【０１８１】
別の方法としては、ファーウエスタンブロット法［実験医学別冊、「新遺伝子工学ハンドブック」ｐｐ７６−８１（羊土社刊）］や、酵母や哺乳類動物細胞を用いたツーハイブリッドシステム法［実験医学別冊、「新遺伝子工学ハンドブック」ｐｐ６６−７５（羊土社刊）、「チェックメイト・マンマリアン・ツーハイブリッドシステム」（プロメガ社製）］によるクローニングも可能であるが、これらの方法に限定されない。
【０１８２】
このようにして、ＣＤ３９Ｌ４と直接もしくは間接的に相互作用するパートナー蛋白質のｃＤＮＡが得られれば、ＣＤ３９Ｌ４と該パートナー蛋白質との相互作用を阻害する物質の機能的スクリーニングに利用することができる。具体的には、例えば、ＣＤ３９Ｌ４とグルタチオンＳ−トランスフェラーゼとの融合蛋白質を調製して、抗グルタチオンＳ−トランスフェラーゼ抗体で覆ったマイクロプレートに結合させた後、ビオチン化した該パートナー蛋白質をこの融合蛋白質と接触させ、該融合蛋白質との結合をストレプトアビジン化アルカリフォスファターゼで検出する。ビオチン化した該パートナー蛋白質添加の際、被験物質も添加し、融合蛋白質と該パートナー蛋白質との結合を促進あるいは阻害する物質を選択する。この方法では、融合蛋白質に直接作用する物質または該パートナー蛋白質に直接作用する物質が得られる。
【０１８３】
融合蛋白質と該パートナー蛋白質との結合が間接的であり、何らかの別の因子を介しているような場合には、例えば該因子を含むような細胞抽出液存在下で、同様に上記アッセイを行う。この場合には、該因子に対して作用するような物質も選択される可能性がある。
【０１８４】
また、得られたパートナー蛋白質が、ＣＤ３９Ｌ４の機能を抑制する活性を有している場合には、既に記載したＣＤ３９Ｌ４遺伝子の発現ベクターを応用した試験方法に従って、抗癌剤、例えば、前立腺癌の治療または予防剤として有用な候補物質のスクリーニングを行うことができる。また、得られたパートナー蛋白質が、ＣＤ３９Ｌ４の機能を抑制する活性を有している場合には、このような抑制因子をコードするヌクレオチド配列を有するポリヌクレオチドは、癌の遺伝子治療に用いることができる。
【０１８５】
そのようなポリヌクレオチドは、例えば同定された阻害因子のアミノ酸配列を解析し、該アミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列からなるオリゴヌクレオチドプローブを合成してｃＤＮＡライブラリーやゲノムライブラリーのスクリーニングを行うことにより取得できる。また、ＣＤ３９Ｌ４の機能の阻害活性を有するぺプチドが、ランダムに合成された人工ペプチドライブラリー由来である場合は、該ペプチドのアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列からなるＤＮＡを化学合成する。
【０１８６】
遺伝子治療においては、そのようにして得られた阻害因子をコードする遺伝子を、例えばウイルスベクターに組み込んで、該組換えウイルスベクターを有するウイルス（無毒化されたもの）を患者に感染させる。患者体内では抗癌因子が産生され、癌細胞の増殖抑制機能を有するので、癌の治療が可能となる。
【０１８７】
遺伝子治療剤を細胞内に導入する方法としては、ウイルスベクターを利用した遺伝子導入方法、あるいは非ウイルス性の遺伝子導入方法（日経サイエンス，１９９４年４月号，２０−４５頁、実験医学増刊，１２（１５）（１９９４）、実験医学別冊「遺伝子治療の基礎技術」，羊土社（１９９６））のいずれの方法も適用することができる。
【０１８８】
ウイルスベクターによる遺伝子導入方法としては、例えばレトロウイルス、アデノウイルス、アデノ関連ウイルス、ヘルペスウイルス、ワクシニアウイルス、ポックスウイルス、ポリオウイルス、シンビスウイルス等のＤＮＡウイルスまたはＲＮＡウイルスに、ＴＲ４あるいは変異ＴＲ４をコードするＤＮＡを組み込んで導入する方法が挙げられる。このうち、レトロウイルス、アデノウイルス、アデノ関連ウイルス、ワクシニアウイルスを用いた方法が、特に好ましい。非ウイルス性の遺伝子導入方法としては、発現プラスミドを直接筋肉内に投与する方法（ＤＮＡワクチン法）、リポソーム法、リポフェクチン法、マイクロインジェクション法、リン酸カルシウム法、エレクトロポレーション法等が挙げられ、特にＤＮＡワクチン法、リポソーム法が好ましい。
【０１８９】
また遺伝子治療剤を実際に医薬として作用させるには、ＤＮＡを直接体内に導入するインビボ（ｉｎ　ｖｉｖｏ）法及びヒトからある種の細胞を取り出し体外でＤＮＡを該細胞に導入し、その細胞を体内に戻すエクスビボ（ｅｘ　ｖｉｖｏ）法がある（日経サイエンス，１９９４年４月号，２０−４５頁、月刊薬事，３６（１），２３−４８（１９９４）、実験医学増刊，　１２　（１５）（１９９４））。
【０１９０】
例えば、該遺伝子治療剤がインビボ法により投与される場合は、疾患、症状等に応じ、静脈、動脈、皮下、皮内、筋肉内等、適当な投与経路により投与される。またインビボ法により投与する場合は、該遺伝子治療剤は一般的には注射剤等とされるが、必要に応じて慣用の担体を加えてもよい。また、リポソームまたは膜融合リポソーム（センダイウイルス−リポソーム等）の形態にした場合は、懸濁剤、凍結剤、遠心分離濃縮凍結剤等のリポソーム製剤とすることができる。
【０１９１】
配列表の配列番号１のヌクレオチド番号２４７乃至１５３３、配列番号３のヌクレオチド番号２４７乃至１５３３、配列番号５のヌクレオチド番号２８３乃至１５６９または配列番号７のヌクレオチド番号３９８乃至１６２１に示されるヌクレオチド配列に相補的なヌクレオチド配列または該配列の部分配列に相補的なヌクレオチド配列は、いわゆるアンチセンス治療に用いることができる。アンチセンス分子は、配列表の配列番号１のヌクレオチド番号２４７乃至１５３３、配列番号３のヌクレオチド番号２４７乃至１５３３、配列番号５のヌクレオチド番号２８３乃至１５６９または配列番号７のヌクレオチド番号３９８乃至１６２１に示されるヌクレオチド配列の一部に相補的な、通常１５乃至３０ｍｅｒからなるＤＮＡ、もしくはそのホスホロチオエート、メチルホスホネートまたはモルフォリノ誘導体などの安定なＤＮＡ誘導体、２’−Ｏ−アルキルＲＮＡなどの安定なＲＮＡ誘導体として用いられ得る。そのようなアンチセンス分子を、微量注入、リポソームカプセル化により、あるいはアンチセンス配列を有するベクターを利用して発現させるなど、本発明の技術分野において周知の方法で、細胞に導入することができる。このようなアンチセンス療法は、配列表の配列番号１のヌクレオチド番号２４７乃至１５３３、配列番号３のヌクレオチド番号２４７乃至１５３３、配列番号５のヌクレオチド番号２８３乃至１５６９または配列番号７のヌクレオチド番号３９８乃至１６２１に示されるヌクレオチド配列がコードする蛋白質の活性が増加しすぎることによって引き起こされる病気の治療または予防に有用である。
【０１９２】
上記アンチセンスオリゴヌクレオチドを含む医薬として有用な組成物は、医薬として許容できる担体の混合などの公知の方法によって製造され得る。このような担体と製造方法の例は、Ａｐｐｌｉｅｄ　Ａｎｔｉｓｅｎｓｅ　Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ　Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（１９９８　Ｗｉｌｅｙ−Ｌｉｓｓ、Ｉｎｃ．）に記載されている。アンチセンスオリゴヌクレオチドを含む製剤は、それ自体あるいは適宜の薬理学的に許容される、賦形剤、希釈剤等と混合し、錠剤、カプセル剤、顆粒剤、散剤若しくはシロップ剤等により経口的に、または、注射剤、坐剤、貼付剤、若しくは、外用剤等により非経口的に投与することができる。これらの製剤は、賦形剤（例えば、乳糖、白糖、葡萄糖、マンニトール、ソルビトールのような糖誘導体；トウモロコシデンプン、バレイショデンプン、α澱粉、デキストリンのような澱粉誘導体；結晶セルロースのようなセルロース誘導体；アラビアゴム；デキストラン；プルランのような有機系賦形剤；及び、軽質無水珪酸、合成珪酸アルミニウム、珪酸カルシウム、メタ珪酸アルミン酸マグネシウムのような珪酸塩誘導体；燐酸水素カルシウムのような燐酸塩；炭酸カルシウムのような炭酸塩；硫酸カルシウムのような硫酸塩等の無機系賦形剤を挙げることができる。）、滑沢剤（例えば、ステアリン酸、ステアリン酸カルシウム、ステアリン酸マグネシウムのようなステアリン酸金属塩；タルク；コロイドシリカ；ビーズワックス、ゲイ蝋のようなワックス類；硼酸；アジピン酸；硫酸ナトリウムのような硫酸塩；グリコール；フマル酸；安息香酸ナトリウム；ＤＬロイシン；ラウリル硫酸ナトリウム、ラウリル硫酸マグネシウムのようなラウリル硫酸塩；無水珪酸、珪酸水和物のような珪酸類；及び、上記澱粉誘導体を挙げることができる。）、結合剤（例えば、ヒドロキシプロピルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、ポリビニルピロリドン、マクロゴール、及び、前記賦形剤と同様の化合物を挙げることができる。）、崩壊剤（例えば、低置換度ヒドロキシプロピルセルロース、カルボキシメチルセルロース、カルボキシメチルセルロースカルシウム、内部架橋カルボキシメチルセルロースナトリウムのようなセルロース誘導体；カルボキシメチルスターチ、カルボキシメチルスターチナトリウム、架橋ポリビニルピロリドンのような化学修飾されたデンプン・セルロース類を挙げることができる。）、乳化剤（例えば、ベントナイト、ビーガムのようなコロイド性粘土；水酸化マグネシウム、水酸化アルミニウムのような金属水酸化物；ラウリル硫酸ナトリウム、ステアリン酸カルシウムのような陰イオン界面活性剤；塩化ベンザルコニウムのような陽イオン界面活性剤；及び、ポリオキシエチレンアルキルエーテル、ポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステル、ショ糖脂肪酸エステルのような非イオン界面活性剤を挙げることができる。）、安定剤（メチルパラベン、プロピルパラベンのようなパラオキシ安息香酸エステル類；クロロブタノール、ベンジルアルコール、フェニルエチルアルコールのようなアルコール類；塩化ベンザルコニウム；フェノール、クレゾールのようなフェノール類；チメロサール；デヒドロ酢酸；及び、ソルビン酸を挙���ることができる。）、矯味矯臭剤（例えば、通常使用される、甘味料、酸味料、香料等を挙げることができる。）、希釈剤等の添加剤を用いて周知の方法で製造される。
【０１９３】
本発明の化合物を患者へ導入する方法については、上記に加えてコロイド分散系を用いることができる。コロイド分散系は化合物の生体内の安定性を高める効果や、特定の臓器、組織または細胞へ化合物を効率的に輸送する効果が期待される。コロイド分散系は、通常用いられるものであれば限定しないが、高分子複合体、ナノカプセル、ミクロスフェア、ビーズ、及び水中油系の乳化剤、ミセル、混合ミセル及びリポソームを包含する脂質をベースとする分散系を挙げる事ができ、好ましくは、特定の臓器、組織または細胞へ化合物を効率的に輸送する効果のある、複数のリポソーム、人工膜の小胞である（Ｍａｎｎｉｎｏ　ｅｔ　ａｌ．，Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ，１９８８，６，６８２；Ｂｌｕｍｅ　ａｎｄ　Ｃｅｖｃ，Ｂｉｏｃｈｅｍ．ｅｔ　Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ａｃｔａ，１９９０，１０２９，９１；Ｌａｐｐａｌａｉｎｅｎ　ｅｔ　ａｌ．，Ａｎｔｉｖｉｒａｌ　Ｒｅｓ．，１９９４，２３，１１９；Ｃｈｏｎｎ　ａｎｄ　Ｃｕｌｌｉｓ，Ｃｕｒｒｅｎｔ　Ｏｐ．Ｂｉｏｔｅｃｈ．，１９９５，６，６９８　）。
【０１９４】
０．２−０．４　μｍのサイズ範囲をとる単膜リポソームは、巨大分子を含有する水性緩衝液のかなりの割合を被包化し得、化合物はこの水性内膜に被胞化され、生物学的に活性な形態で脳細胞へ輸送される（Ｆｒａｌｅｙ　ｅｔ　ａｌ．，Ｔｒｅｎｄｓ　Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｓｃｉ．，１９８１，６，７７　）。リポソームの組成は、通常、脂質、特にリン脂質、とりわけ相転移温度の高いリン脂質を１種またはそれ以上のステロイド、特にコレステロールと通常複合したものである。リポソーム生産に有用な脂質の例は、ホスファチジルグリセロール、ホスファチジルコリン、ホスファチジルセリン、スフィンゴ脂質、ホスファチジルエタノールアミン、セレブロシド及びガングリオシドのようなホスファチジル化合物を包含する。特に有用なのはジアシルホスファチジルグリセロールであり、ここでは脂質部分が１４−１８の炭素原子、特に１６−１８の炭素原子を含有し、飽和している（１４−１８の炭素原子鎖の内部に二重結合を欠いている）。代表的なリン脂質は、ホスファチジルコリン、ジパルミトイルホスファチジルコリン及びジステアロイルホスファチジルコリンを包含する。
【０１９５】
リポソームを包含するコロイド分散系の標的化は、受動的または能動的のいずれかであってもよい。受動的な標的化は、洞様毛細血管を含有する臓器の網内系細胞へ分布しようとするリポソーム本来の傾向を利用することによって達成される。一方、能動的な標的化は、例えば、ウイルスの蛋白質コート（Ｍｏｒｉｓｈｉｔａ　ｅｔａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．（Ｕ．Ｓ．Ａ．），１９９３，９０，８４７４　）、モノクローナル抗体（またはその適切な結合部分）、糖、糖脂質または蛋白質（またはその適切なオリゴペプチドフラグメント）のような特定のリガンドをリポソームへ結合させること、または天然に存在する局在部位以外の臓器及び細胞型への分布を達成するためにリポソームの組成を変えることによってリポソームを修飾する手法等を挙げる事ができる。標的化されたコロイド分散系の表面は様々なやり方で修飾され得る。リポソームで標的したデリバリーシステムでは、脂質二重層との緊密な会合において標的リガンドを維持するために、リポソームの脂質二重層へ脂質基が取込まれ得る。脂質鎖を標的リガンドと結びつけるために様々な連結基が使用され得る。本発明のオリゴヌクレオチドのデリバリーが所望される細胞の上に支配的に見出される特定の細胞表面分子に結合する標的リガンドは、例えば、（１）デリバリーが所望される細胞によって支配的に発現される特定の細胞受容体と結合している、ホルモン、成長因子またはその適切なオリゴペプチドフラグメント、または（２）標的細胞上で支配的に見出される抗原性エピトープと特異的に結合する、ポリクローナルまたはモノクローナル抗体、またはその適切なフラグメント（例えば、Ｆａｂ　；Ｆ　（ａｂ’）２　）、であり得る。２　種またはそれ以上の生物活性剤は、単一のリポソーム内部で複合し、投与することもできる。内容物の細胞内安定性及び／または標的化を高める薬剤をコロイド分散系へ追加することも可能である。
【０１９６】
その使用量は症状、年齢等により異なるが、経口投与の場合には、１回当り下限１ｍｇ（好適には、３０ｍｇ）、上限２０００ｍｇ（好適には、１５００ｍｇ）を、注射の場合には、１回当り下限０．１ｍｇ（好適には、５ｍｇ）、上限１０００ｍｇ（好適には、５００ｍｇ）を皮下注射、筋肉注射または静脈注射によって投与することができる。
【０１９７】
１１．ＣＤ３９Ｌ４に対する抗体を含有する医薬
ＣＤ３９Ｌ４を過剰発現させると細胞が癌化することから、ＣＤ３９Ｌ４に対する抗体は、癌の治療及び／または予防剤となり得る。ＣＤ３９Ｌ４に対する抗体をヒトに対する医薬として用いる場合、抗原性の問題からヒト型抗ヒトＣＤ３９Ｌ４抗体を作製することが望ましい。ヒト型抗ヒトＣＤ３９Ｌ４抗体の作製は、次に述べるような手法により得ることができる。即ち、▲１▼ヒト末梢血あるいは脾臓から採取したヒトリンパ球をｉｎ　ｖｉｔｒｏでＩＬ−４存在下、抗原であるヒトＣＤ３９Ｌ４で感作し、感作したヒトリンパ球をマウスとヒトとのヘテロハイブリドーマであるＫ６Ｈ６／Ｂ５（ＡＴＣＣ　ＣＲＬ−１８２３）と細胞融合させることにより目的の抗体産生ハイブリドーマをスクリーニングする。得られた抗体産生ハイブリドーマが生産する抗体は、ヒト型抗ヒトＣＤ３９Ｌ４モノクローナル抗体である。これらの抗体の中からヒトＣＤ３９Ｌ４の活性を中和する抗体を選別する。しかしながら、このようにヒトリンパ球をｉｎ　ｖｉｔｒｏで感作する方法では、一般的に抗原に対して高親和性の抗体を得るのは困難である。従って、ヒトＣＤ３９Ｌ４に高親和性のモノクローナル抗体を得るには、上記のようにして得られた低親和性のヒト型抗ヒトＣＤ３９Ｌ４モノクローナル抗体を高親和化する必要がある。それには、上記のようにして得られ、中和抗体であるものの低親和性であるヒト型抗ヒトＣＤ３９Ｌ４モノクローナル抗体のＣＤＲ領域（特にＣＤＲ−３）にランダム変異を導入し、これをファージで発現させてヒトＣＤ３９Ｌ４を固相化したプレートを用いてファージディスプレー法により、抗原であるヒトＣＤ３９Ｌ４に強力に結合するファージを選択し、そのファージを大腸菌で増やし、その塩基配列から高親和性を有するＣＤＲのアミノ酸配列を決定すればよい。このようにして得られたヒト型抗ヒトＣＤ３９Ｌ４モノクローナル抗体をコードする遺伝子を一般的に使用されている哺乳動物細胞用発現ベクターに組み込んで、発現させることによりヒト型抗ヒトＣＤ３９Ｌ４モノクローナル抗体が得られる。これらの中から、ヒトＣＤ３９Ｌ４の生物活性を中和し、かつ高親和性である目的のヒト型抗ＣＤ３９Ｌ４モノクローナル抗体を選別することができる。また、▲２▼Ｂａｌｂ／ｃマウスを用いて、本発明と同じように常法（Ｋｏｈｌｅｒ　ｅｔ　ａｌ．：　Ｎａｔｕｒｅ　２５６，　ｐ．４９５−４９７，　１９７５）によりマウス型抗ヒトＣＤ３９Ｌ４モノクローナル抗体を作製し、ヒトＣＤ３９Ｌ４の生物活性を中和し、かつ高親和性を有するモノクローナル抗体を選択する。この高親和性マウス型抗ヒトＣＤ３９Ｌ４モノクローナル抗体のＣＤＲ−領域（ＣＤＲ−１、２および３）をヒトＩｇＧのＣＤＲ領域に移植するＣＤＲ−ｇｒａｆｔｉｎｇ（Ｗｉｎｔｅｒ　ａｎｄＭｉｌｓｔｅｉｎ：　Ｎａｔｕｒｅ　３４９，　ｐ２９３−２９９，　１９９１）の手法を駆使することによりヒト型化が可能である。上記に加え、さらに▲３▼ヒト抹消血リンパ球をＳｅｖｅｒｅ　ｃｏｍｂｉｎｅｄ　ｉｍｍｕｎｅ　ｄｅｆｉｃｉｅｎｃｙ（ＳＣＩＤ）マウスに移植し、この移植されたＳＣＩＤマウスはヒト型抗体を生産する（Ｍｏｓｉｅｒ　Ｄ．　Ｅ．　ｅｔ　ａｌ．：　Ｎａｔｕｒｅ　３３５，　ｐ２５６−２５９，　１９８８；　Ｄｕｃｈｏｓａｌ　Ｍ．　Ａ．　ｅｔ　ａｌ．：　Ｎａｔｕｒｅ　３５５，　ｐ２５８−２６２，　１９９２）ので、抗原としてヒトＣＤ３９Ｌ４を抗原として感作し、スクリーニングすることにより、ヒトＣＤ３９Ｌ４に特異的なヒト型モノクローナル抗体を生産するリンパ球をそのマウスから採取することができる。得られたリンパ球を前述のヒト型抗体の作製法▲１▼と同様に、マウスとヒトとのヘテロハイブリドーマであるＫ６Ｈ６／Ｂ５（ＡＴＣＣ　ＣＲＬ−１８２３）と細胞融合させ、得られたハイブリドーマをスクリーニングすることにより、目的のヒト型モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを得ることができる。このようにして得られたハイブリドーマを培養することにより、目的のヒト型モノクローナル抗体を大量に製造でき、該タンパク質の物理的性質や化学的性質などを利用した各種の公知の分離操作法により分離・精製することができる。該方法としては、具体的には例えば、通常のタンパク沈殿剤による処理、限外濾過、分子ふるいクロマトグラフィー（ゲル濾過）、吸着クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）などの各種液体クロマトグラフィー、透析法、これらの組合せなどを例示できる。また、目的のヒト型モノクローナル抗体をコードする遺伝子（ｃＤＮＡ）をクローニングし、この遺伝子を遺伝子工学的手法により適当なベクターに組み込み、各種動物細胞、混注細胞、あるいは大腸菌などを宿主として発現させることにより、遺伝子組換えヒト型モノクローナル抗体を大量に製造することができる。得られた培養液から上述と同様の方法により精製することにより、精製されたヒト型モノクローナル抗体を大量に得ることができる。更に、上述の方法で得られた抗ＣＤ３９Ｌ４モノクローナル抗体の中から、ＣＤ３９Ｌ４の生物活性を中和する抗体を得ることができる。これらＣＤ３９Ｌ４の生物活性を中和する抗体は、生体内でのＣＤ３９Ｌ４の生物活性、即ち、細胞の癌化を阻害することから、医薬として、特に癌に対する治療及び／または予防剤として期待される。ｉｎ　ｖｉｔｒｏでの抗ＣＤ３９Ｌ４抗体によるＣＤ３９Ｌ４の生物活性の中和活性は例えば、ＣＤ３９Ｌ４を過剰発現している細胞における細胞の癌化の抑制活性で測定することができる。例えば、ＣＤ３９Ｌ４を過剰発現しているマウス繊維芽細胞株ＮＩＨ３Ｔ３を培養し、培養系に種々の濃度で抗ＣＤ３９Ｌ４抗体を添加し、フォーカス形成、コロニー形成及びスフェロイド増殖に対する抑制活性を測定することができる。ｉｎ　ｖｉｖｏでの実験動物を利用した抗ＣＤ３９Ｌ４抗体の癌に対する治療及び／または予防効果は、例えば、ＣＤ３９Ｌ４を過剰に発現しているトランスジェニック動物に同ＣＤ３９Ｌ４抗体を投与し、癌細胞の変化を測定することができる。
【０１９８】
このようにして得られたＣＤ３９Ｌ４の生物活性を中和する抗体は、医薬として特に癌の治療及び／または予防を目的とした医薬組成物として、あるいはこのような疾患の免疫学的診断のための抗体として有用である。本発明の抗体は製剤化して経口的あるいは非経口的に投与することができる。本発明抗体を含む製剤は、ＣＤ３９Ｌ４を認識する抗体を有効成分として含有する医薬組成物として、ヒトあるいは動物に対し安全に投与されるものである。医薬組成物の形態としては、点滴を含む注射剤、坐剤、経鼻剤、舌下剤、経皮吸収剤などが挙げられる。モノクローナル抗体は高分子蛋白質であることから、バイアル瓶などのガラス容器や注射筒などへの吸着が著しい上に不安定であり、種々の物理化学的因子、例えば、熱、ｐＨ及び湿度等により容易に失活する。従って、安定な形で製剤化するために、安定化剤、ｐＨ調整剤、緩衝剤、可溶化剤、界面活性剤などを添加する。安定化剤としてはグリシン、アラニン等のアミノ酸類、デキストラン４０及びマンノース等の糖類、ソルビトール、マンニトール、キシリトール等の糖アルコール等が挙げられ、またこれらの二種以上を併用してもよい。これらの安定化剤の添加量は、抗体の重量にたいして０．０１〜１００倍、特に０．１〜１０倍添加するのが好ましい。これら安定化剤を加えることにより、液状製剤あるいは凍結乾燥製剤の保存安定性を向上することができる。緩衝剤としては、例えばリン酸バッファー、クエン酸バッファー等が挙げられる。緩衝剤は、液状製剤あるいは凍結乾燥製剤の再溶解後の水溶液のｐＨを調製し、抗体の安定性、溶解性に寄与する。緩衝剤の添加量としては、例えば液状製剤あるいは凍結乾燥製剤を採用解した後の水量に対し、１〜１０ｍＭとするのが好ましい。界面活性剤としては、好ましくはポリソルベート２０、プルロニックＦ−６８、ポリエチレングリコール等、特に好ましくはポリソルベート８０が挙げられ、またこれらの２種以上を併用してもよい。抗体のような高分子蛋白質は容器の材質であるガラスや樹脂などに吸着しやすい。従って、界面活性剤を添加することによって、液状製剤あるいは凍結乾燥製剤の再溶解後の抗体の、容器への吸着を防止することができる。界面活性剤の添加量としては、液状製剤あるいは凍結乾燥製剤の再溶解後の水重量に対して０．００１〜１．０％添加することが好ましい。以上のような安定化剤、緩衝剤、あるいは吸着防止剤を加えて本発明抗体の製剤を調製することができるが、特に医療用または動物用注射剤として用いる場合は、浸透圧として許容される浸透圧比は１〜２が好ましい。浸透圧比は、製剤化に際して塩化ナトリウムの増減により調製することができる。製剤中の抗体含量は、適用疾患、適用投与経路などに応じて適宜調整することができ、ヒトに対するヒト型抗体の投与量は、抗体のヒトＣＤ３９Ｌ４に対する親和性、即ち、ヒトＣＤ３９Ｌ４に対する解離定数（Ｋｄ値）に対し、親和性が高い（Ｋｄ値が低い）ほど、ヒトへの投与量を少なく薬効を発揮することができる。ヒト型抗ＣＤ３９Ｌ４抗体をヒトに対して投与する際には、約０．１〜１００ｍｇ／ｋｇを１〜３０日間に１回投与すればよい。
【０１９９】
【０２００】
【実施例】
以下、実施例によって本発明を説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。なお、下記実施例において、遺伝子操作に関する各操作は特に明示がない限り、「モレキュラークローニング（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｃｌｏｎｉｎｇ）」［Ｓａｍｂｒｏｏｋ，　Ｊ．，Ｆｒｉｔｓｃｈ，　Ｅ．Ｆ．およびＭａｎｉａｔｉｓ，　Ｔ．　著、Ｃｏｌｄ　Ｓｐｒｉｎｇ　Ｈａｒｂｏｒ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　Ｐｒｅｓｓより１９８９年に発刊］に記載の方法により行うか、または、市販の試薬やキットを用いる場合には市販品の指示書に従って使用した。
【０２０１】
実施例１．ヒトＣＤ３９Ｌ４　ｃＤＮＡクローンの取得
ａ）全ＲＮＡの単離
ヒト前立腺癌細胞株ＬＮＣａＰ（Ａｍｅｒｉｃａｎ　Ｔｉｓｓｕｅ　Ｃｕｌｔｕｒｅ　Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ　ＡＴＣＣ　Ｎｏ．：ＣＲＬ−１７４０）を、１０％牛胎児血清（ＦＣＳ：Ｈｙｃｌｏｎｅ社製）を含むＲＰＭＩ１６４０培地（旭テクノグラス社製）を用いて、７５ｃｍ２の組織培養フラスコ（住友ベークライト社製：ＭＳ−２３２５０）中で培養した。コンフルエント（ｃｏｎｆｌｕｅｎｔ）にならないよう注意しつつ５％ＣＯ２、３７℃条件下で培養し、対数増殖期のうちにトリプシン−ＥＤＴＡ溶液（シグマ社製）を用いて組織培養フラスコより剥がし回収しその一部を新しい組織培養フラスコに移して継代培養した。全ＲＮＡの単離は、対数増殖期のヒト前立腺癌細胞株ＬＮＣａＰを集め、添付プロトコールに従ってＴＲＩｚｏｌ（インビトロジェン社製）を用いて行なった。
【０２０２】
ｂ）ファーストストランドｃＤＮＡ合成
Ｏｍｎｉｓｃｒｉｐｔ　Ｒｅｖｅｒｓｅ　Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔａｓｅ（キアゲン社製）を用いて、その添付プロトコールに従って実施例１ａ）で得た全ＲＮＡから、ファーストストランドｃＤＮＡを合成した。なお、反応は２０μｌの容量で行った。
【０２０３】
ｃ）ＰＣＲ反応
ＣＤ３９Ｌ４　ｃＤＮＡをＰＣＲで増幅するためのプライマーとして
５’−ｃａｃｃａｔｇｇｃｃａｃｔｔｃｔｔｇｇｇｇｃａｃａ−３’（プライマー１：配列表の配列番号９）
および、
５’−ｔｃａａｔｇｇｇａｇａｔｇｃｃｃａｇａｇａ−３’（プライマー２：配列表の配列番号１０）
の配列を有するオリゴヌクレオチドを常法に従って合成した。なお、プライマー１はＣＤ３９Ｌ４遺伝子の開始コドン上流にＫｏｚａｋ配列として４塩基、ＣＡＣＣを付加したオリゴヌクレオチドであり、配列表の配列番号１のヌクレオチド番号３９５乃至４１０からなるヌクレオチド配列の５’側に４塩基配列（ＣＡＣＣ）付加した塩基配列からなるオリゴヌクレオチドである。このＣＡＣＣ配列は、クローニングベクターｐＥＮＴＲ／ＳＤ／Ｄ−ＴＯＰＯへの組み込みの際にベクター３’末端と相補鎖を形成するため、遺伝子の方向性を保持したベクターへの組み込みを可能としている。プライマー２は配列表の配列番号１のヌクレオチド番号１４９８乃至１５１９ならなるヌクレオチド配列の相補鎖からなるオリゴヌクレオチドである。
【０２０４】
ＰＣＲ反応はＰｒｏｏｆＳｔａｒｔ　ＤＮＡ　Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ（キアゲン社製）を添付プロトコールに従って用いて行った。具体的には、得られたファーストストランドｃＤＮＡ　１μｌに１００ｐｍｏｌ／μｌの濃度の合成プライマー１と合成プライマー２をそれぞれ０．５μｌ、１０Ｘ　ＰｒｏｏｆＳｔａｒｔ　ＰＣＲ　Ｂｕｆｆｅｒ　５μｌ、１０ｍＭ　ｄＮＴＰ　Ｍｉｘを１．５μｌ、ＰｒｏｏｆＳｔａｒｔ　ＤＮＡ　Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ　２μｌ、５ｘＱ−Ｓｏｌｕｔｉｏｎ　１０μｌ、滅菌精製水　２９．５μｌを添加し、５０μｌのＰＣＲ反応溶液を作製した。ＰＣＲ反応は、ＧｅｎｅＡｍｐ　ＰＣＲ　Ｓｙｓｔｅｍ　９７００（アプライド・バイオシステムズ（Ａｐｐｌｉｅｄ　Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）社製）により行なった。まず９５℃で５分加熱した後、引き続き９４℃で３０秒、５７℃で３０秒、７２℃で４分の温度サイクルを３５回繰り返し、最後に７２℃で２０分間保温してから、４℃に保存した。目的ｃＤＮＡは、反応物を１％のアガロースゲルで電気泳動し、ＣＤ３９Ｌ４　ｃＤＮＡ（１２８７ｂｐ）の増幅を確認後、ＱＩＡｑｕｉｃｋ　Ｇｅｌ　Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ　Ｋｉｔ（キアゲン社製）をその添付プロトコールに従って用いることによりアガロースゲルよりＤＮＡを精製した。精製されたＣＤ３９Ｌ４　ｃＤＮＡの濃度は、吸光光度計（Ｇｅｎｅ　Ｓｐｅｃ　Ｉ：日立計測器サービス社製）により測定した。
【０２０５】
ｄ）　ＣＤ３９Ｌ４　ｃＤＮＡのｐＥＮＴＲ／ＳＤ／Ｄ−ＴＯＰＯベクターへのクローニング
ｐＥＮＴＲ　Ｄｉｒｅｃｔｉｏｎａｌ　ＴＯＰＯ　Ｃｌｏｎｉｎｇ　Ｋｉｔｓ（インビトロジェン社製）を添付プロトコールに従って用い、実施例１ｃ）によって得られたＣＤ３９Ｌ４　ｃＤＮＡをｐＥＮＴＲ／ＳＤ／Ｄ−ＴＯＰＯベクターにクローニングした。ＣＤ３９Ｌ４　ｃＤＮＡを、キット付属の反応バッファー中でＴｏｐｏｉｓｏｍｅｒａｓｅを結合させてあるｐＥＮＴＲ／ＳＤ／Ｄ−ＴＯＰＯベクターと混合し室温で５分間インキュベートした。得られた反応物を用いて大腸菌ＯｎｅＳｈｏｔ　ＴＯＰ１０　Ｃｈｅｍｉｃａｌｌｙ　Ｃｏｍｐｅｔｅｎｔ　Ｅ．ｃｏｌｉ（インビトロジェン社製）を形質転換し、５０μｇ／ｍｌのカナマイシンを含むＬＢ寒天培地上で培養した。その結果カナマイシン耐性を示して生育してきた大腸菌コロニーを選択して、０．３ｍｌの５０μｇ／ｍｌのカナマイシンを含む液体ＬＢ培地中で３７℃で一晩培養し、ＢＩＯ　ＲＯＢＯＴ　９６００（キアゲン社製）を利用することによりプラスミドＤＮＡを単離精製した。得られたプラスミドＤＮＡについて、ＡＢＩ　ＰＲＩＳＭ　３７００　ＤＮＡ　Ａｎａｌｙｚｅｒ（アプライド・バイオシステムズ社製）によりヌクレオチド配列解析を行ない、ＧｅｎＢａｎｋ　アクセッション番号（ＡＣＣＥＳＳＩＯＮ　ＮＯ．）ＡＦ０３９９１８に示されるヌクレオチド配列のＯｐｅｎ　Ｒｅａｄｉｎｇ　Ｆｒａｍｅを有するｃＤＮＡ（配列表の配列番号１）が、ｐＥＮＴＲ／ＳＤ／Ｄ−ＴＯＰＯベクターに組み込まれていることを確認した。
【０２０６】
ｅ）レトロウイルスベクターｐＬＮＣＸへのクローニング
ＧＡＴＥＷＡＹ　Ｖｅｃｔｏｒ　Ｃｏｎｖｅｒｓｉｏｎ　Ｓｙｓｔｅｍ（インビトロジェン社製）に含まれるＤＮＡ断片、Ｒｅａｄｉｎｇ　Ｆｒａｍｅ　Ｃａｓｓｅｔｔｅ　Ａを、ＲｅｔｒｏＸｐｒｅｓｓ　Ｓｙｓｔｅｍ（クロンテック社製）に含まれるレトロウイルスベクターｐＬＮＣＸ（図１）のＨｐａＩ部位に、プラスミド上のＣＭＶプロモーターに対し順方向に挿入し、改変ベクターｐＬＮＣＸ−ＧＷを作製した。ＬＲ　ＣＬＯＮＡＳＥ　Ｅｎｚｙｍｅ　Ｍｉｘ（インビトロジェン社製）を添付のプロトコールに従って用い、ｐＥＮＴＲ／ＳＤ／Ｄ−ＴＯＰＯベクターにクローニングしたＣＤ３９Ｌ４　ｃＤＮＡをｐＬＮＣＸ−ＧＷに移し換えた組換えベクターを作製した。この組換えベクターで大腸菌ＯｎｅＳｈｏｔ　ＴＯＰ１０　Ｃｈｅｍｉｃａｌｌｙ　Ｃｏｍｐｅｔｅｎｔ　Ｅ．ｃｏｌｉを形質転換し、５０μｇ／ｍｌのアンピシリンを含むＬＢ寒天培地上で培養した。その結果アンピシリン耐性を示して生育してきた大腸菌コロニーを選択して、０．３ｍｌの５０μｇ／ｍｌのアンピシリンを含む液体ＴＢＧ培地中で３７℃で一晩培養後、増殖した大腸菌クローンを１５０ｍｌの容量の５０μｇ／ｍｌのアンピシリンを含むＬＢ培地中で一晩培養し、この培養液よりＥｎｄｏ　Ｆｒｅｅ　Ｐｌａｓｍｉｄ　Ｍａｘｉ　Ｋｉｔｓ（キアゲン社製）を添付のプロトコールに従って用いて、プラスミドを精製した。このプラスミドをｐＬＮＣＸ−ＧＷ−ＣＤ３９Ｌ４と命名した。本プラスミドの挿入遺伝子がＣＤ３９Ｌ４　ｃＤＮＡであることは、制限酵素による消化後のＤＮＡ断片の長さをアガロース電気泳動で検定することで確認した。
【０２０７】
実施例２　ＣＤ３９Ｌ４遺伝子発現レトロウイルスの作製とＣＤ３９Ｌ４安定発現細胞株の樹立
ａ）細胞株とその継代培養
パッケージング細胞株２９３−１０Ａ１（ＩＭＧＥＮＥＸ社製）及びマウス繊維芽細胞株ＮＩＨ３Ｔ３（Ａｍｅｒｉｃａｎ　Ｔｉｓｓｕｅ　Ｃｕｌｔｕｒｅ　Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ）の培養は、１０％牛胎児血清（ＦＣＳ：Ｈｙｃｌｏｎｅ社製）を含むＲＰＭＩ１６４０培地（旭テクノグラス社製）を用いて、２５、７５乃至２２５ｃｍ２の組織培養フラスコ（コーニング・コスター社製あるいは住友ベークライト社製）中で行った。コンフルエント（ｃｏｎｆｌｕｅｎｔ）にならないよう注意しつつ５％ＣＯ２、３７℃条件下で培養し、対数増殖期のうちにトリプシン−ＥＤＴＡ溶液（シグマ社製）を用いて組織培養フラスコより剥がし回収しその一部を新しい組織培養フラスコに移して継代培養した。
【０２０８】
ｂ）遺伝子発現レトロウイルスの作製と安定発現株の樹立
Ｉ型コラーゲンをコートしてある直径１０ｃｍの組織培養シャーレ（旭テクノグラス社製）に２９３−１０Ａ１細胞を２ｘ１０６個ずつまき、１０ｍｌの１０％ＦＣＳ含有ＲＰＭＩ１６４０培地中で一晩培養した。培養上清を新鮮なＲＰＭＩ１６４０培地２ｍｌに交換した後、Ｌｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ　２０００（インビトロジェン社製）を添付のプロトコールに従い用いてｐＬＮＣＸ−ＧＷ−ＣＤ３９Ｌ４ベクター約１０μｇを遺伝子導入した。６時間培養後、２０％ＦＣＳ含有ＲＰＭＩ１６４０培地を６ｍｌ加えさらに一晩培養した。培養液を新鮮な２０％ＦＣＳ含有ＲＰＭＩ１６４０培地に交換し、さらに２４時間培養することでウイルスを産生させた。ウイルスを含む培養上清を回収し、ポアサイズ０．４５μｍのフィルター（ＭＩＬＬＥＸ−ＨＶ：ミリポア社製）でろ過し、ろ液に２倍量の新鮮な１０％ＦＣＳ含有ＲＰＭＩ１６４０培地及び最終濃度８μｇ／ｍｌのポリブレン（Ｐｏｌｙｂｒｅｎｅ、別名：Ｈｅｘａｄｉｍｅｔｈｒｉｎｅ　ｂｒｏｍｉｄｅ）（シグマ社製）を加え混合しウイルス感染溶液を調製した。１．２ｘ１０６個ずつのＮＩＨ３Ｔ３細胞をまいて一晩培養した組織培養シャーレ（４３０２９３：コーニング・コスター社製）にこのウイルス感染溶液を添加し細胞をこのウイルスに感染させた。この感染の手順を１２時間ごとに４回繰り返した。さらに、３日間培養後、非感染細胞すなわち目的遺伝子の発現がない細胞を除去するために、培養液をＧｅｎｅｔｉｃｉｎ（インビトロジェン社製）を５００μｇ／ｍｌ含む１０％ＦＣＳ含有ＲＰＭＩ１６４０培地に交換した。引き続き２〜３日間に１回、培養液を新鮮なＧｅｎｅｔｉｃｉｎ含有培地に交換し７日間培養を継続することにより、目的遺伝子を安定発現する細胞株を樹立した。本細胞株における目的遺伝子の発現は、ｐＬＮＣＸ−ＧＷに挿入した断片を増幅しうるプライマーセット、
５’−ｃｃａａａａｔｇｔｃｇｔａａｃａａｃｔｃ−３’（プライマー３：配列表の配列番号：１１）
５’−ｇａｃｃｔｔｇａｔｃｔｇａａｃｔｔｃｔｃ−３’（プライマー４：配列表の配列番号：１２）
を用いたＲＴ−ＰＣＲによって確認した。プライマー３及びプライマー４はｐＬＮＣＸヌクレオチド配列に基づいて設計されたオリゴヌクレオチドであり、ｐＬＮＣＸに挿入されたＤＮＡ断片を増幅することができる。
【０２０９】
実施例３　フォーカス形成試験
実施例２で樹立したＣＤ３９Ｌ４遺伝子安定発現株及び遺伝子導入を行なわなかったＮＩＨ３Ｔ３細胞株を、トリプシン−ＥＤＴＡ処理により回収し、新鮮培養液で２回洗浄したのち、新鮮培養液で細胞懸濁液を調整し１ウェル当り約１，０００個ずつ１００μｌの容量で９６ウェルプレート（コーニング−コスター社製３５９８）に分注した。同様のウェルをそれぞれ６つずつ作製した。３７℃、５％ＣＯ２条件下１４日間培養した後１ウェル当りのフォーカス（Ｆｏｃｕｓ）数を測定した。
その結果、対照とした遺伝子を導入しなかったＮＩＨ３Ｔ３細胞株では、１ウェルあたりそれぞれ０．５±０．５（平均±標準偏差）個しかフォーカスを検出できなかったのに対し、ＣＤ３９Ｌ４を発現させた細胞では３６．３±８．０（平均±標準偏差）個のフォーカスが検出され（表１）、ＣＤ３９Ｌ４がフォーカス形質を顕著に惹起する活性を有することが強く示唆された。
【０２１０】
【表１】
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【０２１１】
実施例４　コロニー形成試験
樹立したＣＤ３９Ｌ４遺伝子安定発現株及び対照として非遺伝子導入親株を、トリプシン−ＥＤＴＡ処理により回収し、新鮮培地で２回洗浄したのち、１ウェル当り５０，０００個の各細胞を、約３８〜３９℃に暖め、液状化してある０．３３％Ｂａｃｔｏａｇａｒ及び２０％ＦＣＳ含有ＲＰＭＩ１６４０　１ｍｌに懸濁し、これをすばやくあらかじめ０．６６％Ｂａｃｔｏａｇａｒ（Ｄｉｆｃｏ社製）及び２０％ＦＣＳ含有ＲＰＭＩ１６４０を分注固化してある１２ウェルプレート（３５１２：コーニングーコスター社製）に全量分注した。同様のウェルをそれぞれ３つずつ作製した。室温で３０分放置し、Ｂａｃｔｏａｇａｒを完全に固化させたのち、３７℃、５％ＣＯ２条件下、１７日間培養した後、形成された軟寒天中の増殖コロニー数を測定した
培養後の顕微鏡観察像（ニコン社製ＤＩＡＰＨＯＴＯ３００）を図２に示す。対照としたＮＩＨ３Ｔ３親株では１ウェルあたり２．０±２．０（平均±標準偏差）個しかコロニーを検出できなかったのに対し、ＣＤ３９Ｌ４を発現させた細胞では３３７．０±６０．１（平均±標準偏差）個のコロニーが検出され（表２）、ＣＤ３９Ｌ４がコロニー形成を誘発する活性を有することが強く示唆された。
【０２１２】
【表２】
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【０２１３】
実施例５　スフェロイド（ｓｐｈｅｒｏｉｄ）増殖試験
樹立したＣＤ３９Ｌ４遺伝子安定発現株及び遺伝子を導入しなかったＮＩＨ３Ｔ３親株を、トリプシン−ＥＤＴＡ処理により回収し、新鮮培養液で２回洗浄したのち、新鮮培養液で細胞懸濁液を調整し１ウェル当り約１，０００個ずつ２００μｌの容量で細胞非付着性９６ウェルプレート（スフェロイド９６Ｕ：住友ベークライト社製ＭＳ−００９６Ｓ）に分注した。同様のウェルをそれぞれ３つずつ作製した。３７℃、５％ＣＯ２条件下培養し、培養開始１、４、５、６、７、８、１１日後にプレート上に形成される球状細胞塊（スフェロイド；ｓｐｈｅｒｏｉｄ）を、顕微鏡（ニコン社製ＤＩＡＰＨＯＴＯ３００）下、接眼方眼ミクロメータ（三啓社製：Ｓ−６）を使用して観察しその直径を測定した。
【０２１４】
その結果を表３及び図３に示す。対照とした親株では、スフェロイド直径は一定のままであり、非付着性プレート上でのスフェロイド状態での増殖能は全く認められなかったのに対し、ＣＤ３９Ｌ４を発現させた細胞では、顕著なスフェロイド直径の増加が継時的に観察された。このことからＣＤ３９Ｌ４が、ＮＩＨ３Ｔ３細胞のスフェロイド状態での増殖を誘発することが強く示唆された。
【０２１５】
【表３】
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【０２１６】
【発明の効果】
本発明により、ヒトＣＤ３９Ｌ４を用いて、癌細胞を製造することが可能となり、さらに癌の特異的検出も可能となった。また、ＣＤ３９Ｌ４遺伝子を標的とした阻害剤を開発することにより、癌に対する治療及び／または予防効果の極めて高い新規抗癌剤のスクリーニングが可能となった。更に、ＣＤ３９Ｌ４に特異的に結合する抗体は癌の治療及び／予防剤となり得る。
【０２１７】
【配列表フリーテキスト】
配列番号９：ＣＤ３９Ｌ４遺伝子用のＰＣＲプライマー
配列番号１０：ＣＤ３９Ｌ４遺伝子用のＰＣＲアンチセンスプライマー
配列番号１１：ＣＤ３９Ｌ４遺伝子検出用ＲＴ−ＰＣＲセンスプライマー
配列番号１２：ＣＤ３９Ｌ４遺伝子検出用ＲＴ−ＰＣＲ用アンチセンスプライマー
【０２１８】
【配列表】
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【図面の簡単な説明】
【図１】発現ベクターｐＬＮＣＸ。
【図２】ＣＤ３９Ｌ４発現株によるコロニー形成図。
【図３】スフェロイド増殖試験。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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