(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
一般式（Ｉ）によるヒアルロン酸のＣ１０−Ｃ２２−アシル化誘導体を含むことを特徴とするヒアルロン酸エステルをベースとする自己支持性フィルムであって，且つ厚さが２〜１００μｍの範囲であるフィルム：
0006796075.tif 000010
式中，ＲはＨ＋又はＮａ＋であり，そして，Ｒ１はＨ又は−Ｃ（＝Ｏ）ＣｘＨｙ（式中，ｘは９から２１までの範囲内の整数であり，ｙは１１から４３までの範囲内の整数であり，ＣｘＨｙは直鎖又は分岐した，飽和又は不飽和のＣ９−Ｃ２１鎖である）であり，少なくとも一つの繰り返し単位において１つ以上のＲ１が−Ｃ（＝Ｏ）ＣｘＨｙであり，ｎは１２から４０００までの範囲内である。
【請求項２】
パルミトイル化ヒアルロナン又はラウロイル化ヒアルロナンを含むことを特徴とする請求項１記載のフィルム。
【請求項３】
前記ヒアルロン酸のＣ１０−Ｃ２２−アシル化誘導体が１×１０５〜１×１０６g/molの分子量を有することを特徴とする請求項１又は２記載のフィルム。
【請求項４】
前記ヒアルロン酸のＣ１０−Ｃ２２−アシル化誘導体が，１５〜１６０％の範囲内の置換度を有することを特徴とする請求項１〜３いずれか１項記載のフィルム。
【請求項５】
５μmから２５μmまでの範囲内の厚さを有することを特徴とする請求項１〜４いずれか１項記載のフィルム。
【請求項６】
少なくとも一方の面の二乗平均平方根で表される表面粗さが０．５nmから１００nmまでの範囲内であることを特徴とする請求項１〜５いずれか１項記載のフィルム。
【請求項７】
少なくとも一種類の，薬学的及び美容的活性物質からなる群から選ばれる生物学的活性物質をさらに含むことを特徴とする請求項１〜６いずれか１項記載のフィルム。
【請求項８】
前記一般式（Ｉ）によるヒアルロン酸のＣ１０−Ｃ２２−アシル化誘導体を含む溶液を，水とＣ１−Ｃ６アルコールの混合物中で調製し，それを撹拌し，その後それを支持体上に塗布し，閉鎖空間で乾燥させ，そしてその後，前記支持体から取り出すことを特徴とする請求項１〜７いずれか１項記載のフィルムの調製方法。
【請求項９】
前記Ｃ１−Ｃ６アルコールと水との混合比が，２５〜５５vol％対４５〜７５vol％であり，前記溶液中の前記ヒアルロン酸のＣ１０−Ｃ２２−アシル化誘導体の量が，０．５重量％から３重量％までの範囲内であることを特徴とする請求項８記載のフィルムの調製方法。
【請求項１０】
前記溶液を２０時間〜７２時間撹拌することを特徴とする請求項８又は９記載のフィルムの調製方法。
【請求項１１】
前記乾燥が，２０℃〜５０℃の温度で，３〜６時間行われることを特徴とする請求項８〜１０いずれか１項記載のフィルムの調製方法。
【請求項１２】
前記乾燥が，前記支持体上にあるフィルムの下面を，そのフィルムの反対側の上面が加熱又は冷却される温度より少なくとも１℃高い温度に加熱する温度勾配で行われることを特徴とする請求項８〜１０いずれか１項記載のフィルムの調製方法。
【請求項１３】
前記支持体上にある前記フィルムの前記下面を，２０℃から６０℃までの範囲内の温度に加熱し，前記フィルムの反対側の前記上面を，１０℃から５９℃までの範囲内の温度に加熱又は冷却することを特徴とする請求項１２記載のフィルムの調製方法。
【請求項１４】
前記フィルムを前記温度勾配で，６〜１２時間乾燥することを特徴とする請求項１２又は１３記載のフィルムの調製方法。
【請求項１５】
少なくとも一種類の生物学的活性物質を前記溶液に混入し，前記物質が薬学的及び美容的活性物質からなる群より選択されることを特徴とする請求項８〜１４いずれか１項記載のフィルムの調製方法。
【請求項１６】
前記支持体が，ポリビニルアルコール，ポリプロピレン，ポリエチレン，ポリオキシメチレン又はポリスチレンからなる群から選ばれたポリマー，又は疎水化ガラスであり，濡れ角は，３０°〜１２０°の範囲内であることを特徴とする請求項８〜１５いずれか１項記載のフィルムの調製方法。
【請求項１７】
医療用途又はバイオテクノロジー用途における使用のための請求項１〜７いずれか１項記載のフィルム。
【請求項１８】
医療機器の構造に使用するための請求項１〜７いずれか１項記載のフィルム。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は疎水化ヒアルロン酸をベースとする自己支持性生分解性フィルム，その調製法及びその使用，特にその制御された溶解度，生分解性，表面形態，機械的及びその他の特性に基づく医療用途における使用に関する。
【背景技術】
【０００２】
ヒアルロン酸又はその塩（ＨＡ）は線状多糖類であり，それはＮ−アセチルグルコサミンにβ-1,3−グリコシド結合によって結合されたグルクロン酸によって形成された二糖単位の繰り返しから構成される。
【０００３】
それは生物に自然に生じる物質であり，細胞外マトリックスの一部であり，関節，目などにおける潤滑剤として作用する。さらに，それは細胞のレセプタと相互に作用し，それにより細胞を調節することができる。その特性のおかげで，ＨＡは様々な医療用途への使用が予定されている(Necas, Bartosikova et al. 2008)。ＨＡは水性環境，又は体液に非常に急速に溶けるので，いくつかの用途のためにはそれを修正することが必要である。多くのタイプの修正，例えばチラミンにより誘導された可溶型ＨＡの調製があり，これは架橋剤の添加により不溶性のヒドロゲルネットワークを形成する(Calabro, Darr et al. 2004, Wolfova, Pravda et al. 2013)。ＨＡ鎖の溶解度は疎水基を結合することによっても減少し得る(Valle and Romeo 1987, Smejkalova, Huerta-Angeles et al. 2014, Scudlova, Betak et al. 2014 et al. 2014)。そして，そのような誘導体は水性媒体に不溶であり，水と有機溶媒の混合物にはほとんどの場合可溶である(疎水性鎖による置換度と分子量の組み合わせに依存する)。
【０００４】
国際特許出願WO2014082609(Smejkalova, Huerta-Angeles et al. 2014)は，生物学的に活性な疎水性物質の担体としての疎水化ヒアルロン酸の調製に関する。ヒアルロナンの疎水化は，長鎖カルボン酸によるヒアルロナンのエステル化反応によって行われ，その活性化は２，４，６−トリクロロ安息香酸（ＴＣＢＡ）又は他の有機塩化物によって行なわれる。
【０００５】
疎水化ヒアルロナンの興味深い適用形態の一つは，外用又は内用の薄いフィルムの調製である。医療用途に適用可能なフィルムは知られており，例えば，セプラフィルム（Seprafilm）は繰り返される開腹術における癒着の防止に使用された。セプラフィルムは２つの陰イオン性多糖類，ＨＡ及びカルボキシメチルセルロースから構成され，１−（３−ジメチルアミノプロピル）−３−エチルカルボジイミド塩酸塩（ＥＤＣ）によって共に架橋された透明な付着バリアである(Altuntas, Kement et al. 2008, Beck 2008)。
【０００６】
実験ベースではＨＡを含むフィルムがいくつか調製された。例えばLuo, Kirker et al. (2000)である。さらに，いくつかの特許文献は，不溶性又は架橋されたヒアルロナン，所望により別のポリマーとの混合物におけるヒアルロナン製のフィルムの調製を開示する(Becker, Dayton et al. 1996, Beck 2008)。ヒアルロナン層は，さらに特許文献CN202822230においても使用されたが，ここではそれは自己支持性フィルムではなく，また，言及されているのは天然のヒアルロナンのみである。疎水性を増強するために添加されたレシチンを伴う天然のヒアルロナンが論文(Bialopiotrowicz, Janczuk et al. 2006)に記載された。特に抗付着バリアの調製に使用される別のフィルムは，ヒアルロナンのエポキシド誘導体製のフィルムであり，これは有機溶媒中の沈澱によって調製される(EP2644623)。
【０００７】
特許出願US20100092545によるフィルムは，水溶性又は不溶性のポリマー，好ましくはポリエチレンオキシドから調製され，その期待される用途は経口投与剤形の代替物である。そのため，薬物の分散が均質であること（サンプル中１０％以下の変動），調製中に薬物の凝集及び再分散が生じないことは非常に重要である。これは，特に高粘度（アルギン酸塩，カラギーナン，グアーガム，その他のような他の物質の添加によってさらに上昇させ得る）で添加されるポリマーによって達成され，また薬物の凝集及び移行を防ぐ安定剤も添加し得る。さらに，著者によれば，ポリマー溶液から粘弾性のフィルムが生じ，そこで移行又は凝集が進行できないように，溶媒の一部を最初の１０分間に除去しなければならない。これは高温を用いることにより達成されるが，それがフィルムの劣化を導くことになるためヒアルロナン及びその誘導体の場合には用いることができない。US20100092545では，著者は乾燥中及び乾燥後のフィルムの支持体への付着によって影響を受ける得られたフィルムの外観については議論していない。フィルム表面の粗さは測定されず影響も受けていない。この方法で変更できるであろうフィルムの性質，例えば膨張性及び分解率は，この文献には示されていない。著者は意図された利用に関してフィルムを水性環境に溶解させる方が良いと考えている。
【０００８】
特許文献JP06025306は，高度に置換されたアシル化ヒアルロナン誘導体の合成，及びファイバー及びフィルムの調製のためのその使用を開示する。その合成は，有機酸中の多糖類の懸濁液の調製を含む。それは懸濁液であるので，多糖類は系内に完全には溶解せず，それによって系内での不均一反応及び多糖類の適合性の損失が引き起こされる。著者は，この反応は超酸，この場合は水と激しく反応する超求電子の(superelectrophilic)トリフルオロ酢酸無水物によって触媒されると述べている。従って，工業的プロセスの場合には危険性が高い。気湿に接した時に無水物の加水分解によって生じるトリフルオロ酢酸の残渣が製品中に存在する可能性があり，生物医学的な用途においてその誘導体を使用する場合に著しい危険をもたらす(Maeda N. et al., 2014)。さらに，この誘導体の合成には塩素化溶媒が使用されており，これはファイバー及びフィルムの中にそれらの残渣が移行する危険性が高いためＦＤＡが医療用具への使用を勧めないものである。この特許文献は，一般的な用語においてファイバー及びフィルムの調製に言及しているだけであり，それらの性質の特定を扱ってはいない。
【０００９】
別の米国特許出願US20120088832はヒアルロナン及びアルギン酸塩をベースとする多孔性フィルムの調製を開示し，ここで該フィルムは特に抗付着剤として医療に用いられるべきものである。該フィルムは多孔性を有する架橋された相互侵入編目構造である。この文献の実施例では，フィルムの膨潤性，生物分解性，溶解性については何も言及されておらず，残留溶媒の測定は含まれていない。
【００１０】
フィルムを調製するために，特許文献EP0216453は，エステル化され，このためブロックされてＣＤ４４レセプタへの結合にアクセス不能なグルクロン酸のカルボキシル基を有する疎水化ヒアルロナンを使用した。エステル化には低分子又は芳香族アルコールが使用された。自己支持性フィルムを調製する方法は，ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）中にＨＡエステルを溶解し，溶解後にガラス上にそれを塗布し，該ガラスをＤＭＳＯを抽出するエタノールに浸し(フィルムはエタノールに可溶ではない)，次に，フィルムをガラス支持体から剥がし，エタノール，水，そして再びエタノールで洗浄することを含む。得られたフィルムは，圧縮機中，３０℃で４８時間乾燥させる。
【００１１】
特許文献US20040192643も疎水化ヒアルロナン，好ましくはベンゾイルＨＡ誘導体製のフィルムに言及する。ここでも，カルボキシル基の置換が行われ，ヒアルロナンの不溶性を達成するために，ＨＡの全カルボキシル基の８０〜１００%がブロックされる。フィルム調製の方法は上記のEP216453に開示された，既に言及された方法に対応するものである。しかしながら，乾燥は真空下６３℃で３０分間行われる。
【００１２】
他の溶媒へのＤＭＳＯ抽出によって，制御できない表面欠陥が生じる可能性があり，それはいくつかの用途においては許容できないものであり得る。さらに，抽出用溶媒を使用することが必要な場合，最終生産物中の残留溶媒が低濃度であることを保証することができない。更に，上記の文献EP0216453及びUS20040192643にはフィルムの機械的，物理的又は生物学的性質の言及はない。
【００１３】
特許文献WO2010137374は，親水性ポリマーと疎水性ポリマーの構成要素が共有結合で結合したブロック共重合体を含む自己支持性ポリマー透析膜であって，親水性ポリマー構成要素が垂直に配向された円柱構造を形成し，疎水性ポリマー構成要素は架橋可能であるものを開示する。従って，該膜は共有結合で架橋されたブロック共重合体からなる。ヒアルロン酸への言及はない。当該膜の調製方法に関する限り，支持体上に存在するいわゆる「犠牲層」の存在は必要である。ブロック重合体の溶液を「犠牲層」に塗布し，その後該溶媒を蒸発させ，ブロック共重合体の疎水性ポリマー構成要素を光架橋し，次に，得られた膜から「犠牲層」を溶解により，好ましくは膜自体が不溶性の溶媒中で除去しなければならない。
【００１４】
上記のように，今までに知られているヒアルロン酸ベースのフィルムの欠点は，特に多工程の複雑な調製を含んでいる。フィルム調製の他の既知のプロセスは，ヒアルロナン及びその誘導体に使用することができない。いくつかの特許又は特許出願の著者は，医療用具への利用に望ましいフィルムの溶解性，膨潤性及び生分解性に影響する可能性に言及していない。EP0216453又はUS20040192643による方法の場合，フィルムの外観及びその機械的性質は，溶媒と繰り返し接触することによって影響を受けるかもしれない（ＤＭＳＯが抽出されるエタノールは，ヒアルロナンの沈澱剤である）。さらに，例えばＤＭＳＯが使用され，それは許容される制限時間内に乾燥により除去することができない。別の欠点は，多くの溶媒が使用され，生成物に残留溶媒が存在する可能性がより高くなることである。いくつかのプロセスは，最終材料の不溶性を増加させるため，又は最初の高分子溶液の特性に影響を及ぼすために，ヒアルロン酸に加えて他のポリマーをも使用する。
【００１５】
発明の要約
従来技術の上記の欠点は，本発明によるヒアルロン酸エステルをベースとする自己支持性フィルムであって，且つ厚さが２〜１００μmの範囲であるフィルムによって克服され，その主題は，一般式(I)によるＣ１０−Ｃ２２アシル化ヒアルロン酸誘導体を含むことにある：
0006796075.tif 000002
式中，ＲはＨ＋又はＮａ＋であり，そして，Ｒ１はＨ又は−Ｃ（＝Ｏ）ＣｘＨｙ（式中，ｘは９から２１までの範囲内の整数であり，ｙは１１から４３，好ましくは１９〜４３までの範囲内の整数であり，ＣｘＨｙは直鎖又は分岐した，飽和又は不飽和のＣ９−Ｃ２１鎖である）であり，少なくとも一つの繰り返し単位において１つ以上のＲ１が−Ｃ（＝Ｏ）ＣｘＨｙであり，ｎが１２から４０００まで，好ましくは２５０から４０００まで，より好ましくは２５０から２５００まで，最も好ましくは２５０から１０００までの範囲内である。パルミチン酸は体内で脂肪酸のβ酸化により分解されるので，本発明によるフィルムは好ましくはパルミトイル化ヒアルロナンを含む。さらに，本発明によるフィルムは好ましくはラウロイル化ヒアルロナンを含む。
【００１６】
本発明によるフィルムはＣ１０−Ｃ２２アシル化ヒアルロナン誘導体（即ち疎水化ヒアルロナン）を含み，ここでＣ１０−Ｃ２２アシル中の１つ以上の結合が不飽和であってよく，Ｃ１０−Ｃ２２アシルは，好ましくはＮ−アセチルグルコサミンの６位の第一級アルコールにのみ結合される。従って，カルボキシル基は修飾されず，それらの保持は細胞の相互作用，付着及び移動を媒介し，また細胞とヒアルロナンとの相互作用に関与するＣＤ４４レセプターとヒアルロナンの相互作用に必要である。ヒアルロナンカルボキシル基の置換度が高いほど，ヒアルロナンと細胞の相互作用のプロセスが悪いことが証明された(Qiu, Li et al. 2014)。この観点から，特により高い置換度の要求がある場合，それは殆どの用途において必要であるが，カルボキシル基の修飾を行なわず，第一級及び／又は第二級アルコール基である他の反応部位に注目することが有利である。
【００１７】
上記の式ＩによるＣ１０−Ｃ２２−アシル化ヒアルロン酸誘導体から調製された本発明によるフィルムは，細胞に関して非細胞毒性であり，高度に置換された誘導体（アシルによる１００％の置換度を含む）を使用する場合でさえ，生体適合性であり生物分解性である。医療用の場合，フィルムが機械的にストレスを受けることが前提であり（抗付着バリア，組織工学など），多くの場合膨張により脆弱になる共有結合で架橋された形の代わりに，水性溶媒に不溶な形態，即ち本発明によるフィルムを使用するのが望ましい。本発明によるフィルムは水和に対して抵抗性で弾性のフィルムを形成し，それはある程度の機械的ストレス（伸長，曲げ，圧縮による）にさらすことができる。
【００１８】
本フィルムは細胞に関して非細胞毒性である（インビトロ試験）。
【００１９】
本発明の好ましい実施態様によれば，本フィルムは，１×１０５〜１×１０６g/molまで，好ましくは１×１０５〜５ｘ１０５g/mol，より好ましくは２×１０５〜３×１０５g/molの分子量を有するヒアルロン酸のアシル化誘導体を含む。
【００２０】
本発明の別の好ましい実施態様によれば，本フィルムは，１５〜１６０％，好ましくは５０〜１００％，より好ましくは８０〜１００％の範囲内の置換度を有するヒアルロン酸のアシル化誘導体を含む。
【００２１】
１００％の置換度は，ヒアルロナン二量体の第一級アルコール基（−Ｃ６）の全てが１つの脂肪族鎖によって置換されることを意味する。１００％以上の置換度は，該二量体の全ての第一級アルコール基（−Ｃ６）に加えて，さらにいくつかの第二級アルコール基（Ｎ‐アセチルグルコサミンのＣ４又はグルクロン酸の−Ｃ２又は−Ｃ３）が無作為に置換されることを意味する。
【００２２】
驚くべきことに，本発明によるフィルムは８０〜１００％，さらには１６０％までもの高い置換度を有する誘導体を使用する場合にさえ生物分解性であることが見出された。
【００２３】
本発明の別の好ましい実施態様によれば，本フィルムは，２μmから１００μmまで，好ましくは５μmから２５μmまでの範囲内の厚さを有し，乾燥状態で１MPaから５０００MPaまで，好ましくは５００MPaから５０００MPaまで，より好ましくは１０００MPaから３０００MPaまでの範囲内のヤング率を有する。
【００２４】
本発明による乾燥した水和されていないフィルムの場合には，ヤング率が，置換度，置換基及びＨＡの分子量に依存しない。技術的な理由により，水和された状態でヤング率の量を計るのは非常に難しいが，目視検査により，分子量の減少に伴いフィルムの靭性が減少し，フィルムがより脆弱になることが評価され得る。さらに，置換度の増加に伴い，水和状態のヤング率は増加している。
【００２５】
本発明の別の好ましい実施態様によれば，フィルム面の少なくとも一方の表面粗さＲＭＳ（二乗平均平方根）が０．５nmから１００nmまでの範囲内，好ましくは０．５nmから２nmまでの範囲内にある。
【００２６】
本発明の別の好ましい実施態様によれば，本フィルムは，薬学的及び美容的活性物質，好ましくはビタミン類，医薬，好ましくは細胞増殖抑止剤，ステロイド，その他の植物エキス（phytoextracts），植物錯体（phytocomplexes）又は植物活性物質等からなる群から選ばれる生物学的活性物質を含み得る。
本発明によるフィルムの独特な特徴は次のとおりである：
【００２７】
１）本フィルムは疎水化ヒアルロナンのみからなる，２）合成高分子は使用されない，３）本フィルムはいかなる毒性溶媒も含まない，４）最終的な残留溶媒は無毒であり，医療用途に対する制限値未満である，５）本フィルムの膨張性及び溶解性はヒアルロナンの置換度の変更により調整することができる，６）本フィルムの分解率はヒアルロナンの置換度の変更により調整することができる，７）本フィルムは表面上で変形されず，厚さが均質である，８）本フィルムの表面外観はコントロールすることができる，９）本フィルムの機械的性質は特にその水和形においてコントロールすることができる，１０）本フィルム面の少なくとも一方のＲＭＳ粗さは，２nm未満であり得る，１１）本フィルムの厚さはコントロールすることができる，１２）本フィルムは細胞に対して非付着性である，１３）本フィルムはいわゆる「外皮表面（skin surface）」を含まない。「外皮表面」は表面の硬い膜（crust）であり，これによりフィルムが変形したり，ねじれたり，その下で泡が生じたりする。これは，しばしば高度に濃縮されたポリマーの層が表面の近くに見られる場合に，空気中で高分子溶液を乾燥する間に生じる。この層はフィルムの残りの部分に対して著しく異なる流動学的性質を有する。本発明によるフィルムの乾燥は，フィルムがその周囲の環境に解放されないような方法で行われるため（それは閉鎖空間で乾燥される），より遅い速度で乾燥され，より高い蒸気圧の溶媒蒸気が溶液の上方に存在する。そのような方式は，表面の硬い膜の形成を防ぐのに役立つ。驚くべきことに，フィルム乾燥中に閉鎖空間の湿度が低かった場合でさえ，表面の硬い膜が生じないことが見出された。
【００２８】
その上でフィルムが調製される支持体に由来する疎水化剤の残渣は，本発明によるフィルムには見出されていない。
【００２９】
従来技術の方法と比較すると，本発明によるフィルムの調製法は非常に単純であり，（任意の示された分子量，及び任意の示された置換度の）疎水化ヒアルロナンを各溶媒に溶解し，これを各量で定められた支持体上に塗布し，そして閉鎖空間で乾燥される該溶液の上方により高い蒸気圧の溶媒が存在する方式で該溶媒を蒸発させることからなる。この溶媒の蒸発は，溶媒の自由な蒸発によって，又はフィルムの上面を加熱又は冷却しながら支持体上のフィルムの下面を加熱することによって行われる（温度勾配及び閉鎖空間中での乾燥）。従って，本発明によるフィルムの調製法は非常に安価で単純である。さらに，本発明によるフィルムの表面が支持体に隣接する側（つまりフィルムの下面）で非常に平滑であること（２nm以下のＲＭＳ）は重要である。該フィルムの反対側の面（つまりフィルムの上面）は，乾燥条件及び誘導体のタイプに依存するが，より粗い。
【００３０】
別の観点において，本発明はさらに本発明によるフィルムの調製法に関し，それは，一般式（Ｉ）によるＣ１０−Ｃ２２アシル化ヒアルロン酸誘導体を水とＣ１−Ｃ６アルコール，好ましくはエタノール又はプロパン−２−オールの混合物中に含む溶液を調製し，それを撹拌し，その後，それを支持体上に塗布し，閉鎖空間で乾燥させ，そして支持体から取り出すことからなる。
【００３１】
本発明による方法の別の好ましい実施態様によれば，該溶液中のＣ１０−Ｃ２２−アシル化ヒアルロン酸誘導体の量が，０．５重量％から３重量％までの範囲であり，Ｃ１−Ｃ６アルコール，好ましくはエタノール又はプロパン−２−オールの含量が，２５〜５５vol％の範囲にあり，及び該溶液中の水の含量が４５〜７５vol％の範囲内である。調製された溶液は比較的低粘度であるため，この溶液を撹拌及び添加するときの泡の形成が防止される。
本発明による方法の別の好ましい実施態様によれば，該溶液は２０〜７２時間，好ましくは２０〜４８時間撹拌される。
【００３２】
本発明による方法の別の好ましい実施態様によれば，該フィルムの乾燥は，閉鎖空間で２０℃〜５０℃，好ましくは３０℃〜４０℃の温度で，３〜６時間，好ましくは４〜５時間行われる。
【００３３】
本発明による方法の別の好ましい実施態様によれば，フィルムの乾燥は，支持体上にあるフィルムの下面を，そのフィルムの反対側の上面が加熱又は冷却される温度より少なくとも１℃高い温度に加熱することにより達成される温度勾配で行なわれる。好ましくは，支持体上にあるフィルムの下面は，２０℃から６０℃までの範囲内の温度に加熱され，フィルムの反対側の上面は，１０℃から５９℃の範囲内の温度に加熱又は冷却される。より好ましくは，支持体上にあるフィルムの下面は５０℃の温度に加熱され，フィルムの反対の上面は２０℃の温度に冷却される。該温度勾配を適用し，フィルムを閉鎖空間で乾燥する。
【００３４】
本発明による方法の別の好ましい実施態様によれば，該溶液は６時間〜１２時間，好ましくは６時間，該温度勾配で乾燥される。
【００３５】
本発明によるフィルムの調製の利点は，フィルムが水性溶媒に不溶であり，かつ架橋剤及び別の処理を加える必要なしに上記で定義した一般式（I）によるアシル化ヒアルロナンのみで形成されるという事実である。また，本発明によるフィルムは多量の，好ましくは８５％より多い量の乾燥物質(dry matter)を含む。
【００３６】
本発明によるフィルムの調製に使用されるアシル化ヒアルロナン誘導体の溶液は，様々な方法で好ましく変更されてもよく，生物学的活性物質を該溶液に混入させてもよく，該生物学的活性物質は薬学的及び美容的活性物質，好ましくはビタミン類，医薬，好ましくは細胞増殖抑止剤，ステロイド，その他の植物エキス，植物錯体又は植物活性物質等からなる群より選ばれる。
【００３７】
本発明による方法の別の好ましい実施態様によれば，支持体は，ポリビニルアルコール，ポリプロピレン，ポリエチレン，ポリオキシメチレン又はポリスチレンからなる群から選ばれたポリマーである。さらに，支持体は疎水化ガラスであってもよい。好ましい実施態様では，疎水化ガラスが使用される。脱塩(demi)水による支持体表面の濡れ角は，３０°〜１２０°，好ましくは５０°〜７０°の範囲内である。
【００３８】
本発明による上記に示された方法の利点は，その単純性のほか，それ自体非常に滑らかな適切な支持体を選ぶことにより支持体の側から表面が非常に平滑なフィルム（即ち非常に滑らかな下面を有するフィルム）を調製する可能性にある。
【００３９】
フィルムの変形及び全体的な外観に影響を及ぼす可能性は非常に有用であると考えられ，その影響は，溶液が塗布されかつ乾燥が行われる支持体に対するポリマー溶液並びに乾燥中及び乾燥後のフィルムの付着(相互作用)に影響を及ぼすことにより達成される。ポリマーフィルムは支持体に完全に付着し，自然に剥がれず，それと同時に，フィルムは最小の力を加えるだけで支持体から取り外し得るのが好ましい。
【００４０】
ポリマー溶液による支持体表面の良好な濡れ性は，付着の第一段階である。本発明による乾燥中の及び乾燥したフィルムの支持体への付着，及びこれによるフィルムの外観は，接触角で表される表面の濡れ性が様々である支持体の選択によって影響され得る。各タイプの誘導体(異なる修飾，異なる分子量及び異なる置換度)に対して，全く特有な濡れ性の値を有する支持体が好ましく使用され得る。よく付着させたフィルムの場合には，剥がした後，それらの表面は平滑であり，あまり付着していないフィルム又は非付着性のフィルムの場合には，その表面は多かれ少なかれ変形するか縮んでいる。好ましくは，疎水化ガラスが支持体として使用される。
【００４１】
本フィルムは，有機溶媒(典型的にＣ１-Ｃ６アルコール)と水との混合物を蒸発させることにより調製される。このように調製したフィルムの表面は，最適な溶媒，誘導体，乾燥条件及び支持体の選択によってコントロールされた表面外観及びＲＭＳ粗さを有し，また，透明なものとして調製し得る。このフィルムの厚さは２〜１００μm，好ましくは５〜２５μmである。このフィルムは濡れ性を調整し得る支持体上で調製されているので，支持体へのフィルムの付着，またそれによりフィルム表面の形態も影響を受け得る。
【００４２】
フィルムの調製は次の方法で行われる:比較的低粘度であるアシル化ヒアルロナン誘導体の溶液を，十分に撹拌した後に，適切な支持体上に塗布し乾燥する。支持体上に塗布する溶液の粘度が低いことにより，溶液を撹拌しドーズするときの泡の形成が防止される。その後，フィルムを支持体から取り外す。乾燥時間は溶液の体積及び濃度，さらに設定温度及び使用する溶媒によって，５〜１２時間まで変動する。該フィルムは，０．０２%未満の溶媒，例えばエタノール，プロパン−２−オールを含み，これは医療用の残留溶媒量についての必要条件を安全に満たす。そのような材料は医療機器の構造に使用されてもよい。本発明によるそのようなフィルムの調製法の利点は，フィルムが水性溶媒に不溶性で，架橋剤及び別の処理を加える必要なしに修飾されたヒアルロナンのみからなることである。
【００４３】
本発明によるフィルムは，例えば抗付着バリアの生産，及び医学及び獣医学における他の用途のために，本発明により使用することができる。人体中での本フィルムの分解は，使用される誘導体の分子量，及びアシル基によるヒアルロナンの置換度によって調節することができるが，数時間と数か月の間の範囲である。アシル化ヒアルロナン誘導体並びにそこから調製されたフィルムはインビトロで分解できる。
【００４４】
フィルムの膨張性又はその溶解性解度も，使用される誘導体の分子量，及びＣ１０−Ｃ２２アシル基によるヒアルロン酸鎖の置換度によって調節される。
【００４５】
先行技術特許文献に示された誘導体に対立するものとして，本発明によるフィルムがヒアルロナンの生物学的性質の原因である基であるグルクロン酸のカルボキシル基をすべて保持したＣ１０−Ｃ２２−アシル化ヒアルロン酸誘導体のみを含むことは重要である。
【００４６】
本発明の別の態様は，その上でフィルムが調製されている支持体への乾燥したポリマーの付着に影響を及ぼすことによりフィルムの表面外観に影響を及ぼすことである。その結果，折り目が付かず縮まずに非常に平滑なフィルムとなり得る。
【００４７】
さらに別の実施態様によれば，上に定義された本発明によるフィルムは，医薬用途，バイオテクノロジー用途，又は活性成分の沈着のための支持体として使用される。好ましくは，細胞がそれに付着しないので，抗付着バリアのような医療機器の構造に使用される。さらに，本発明によるフィルムが使用されてもよい好ましい医療用途には，例えば，慢性及び急性創傷の治療のような医学薬学用途又は例えば歯科用途が含まれる。
【００４８】
用語の定義
用語「置換度」は，１００個のヒアルロナン二量体に結合したＣ１０−Ｃ２２アシル基の数を意味する。例えば，２０％の置換度は，１００のヒアルロナン二量体当たり２０がＣ１０−Ｃ２２アシル基によって置換されることを意味する。置換において，Ｎ−アセチルグルコサミンの第一級水酸基，第二級水酸基又はグルクロン酸の第級二水酸基上の水素原子が，Ｃ１０−Ｃ２２アシル基によって置換される。
【００４９】
用語「フィルム」は自己支持性の薄いポリマーシート，平面構造を意味する。
【００５０】
用語「フィルム面積」は，その寸法(m2)から計算されたフィルムの面積を意味する。
【００５１】
用語「医療機器」は単独で又は診断もしくは医療目的のための特定用途に使用される付属品と組み合わせて使用可能な補助具，例えば抗付着バリアを意味する。
【００５２】
用語「閉鎖空間」は，その中で特定温度で又は温度勾配でフィルムの乾燥が行なわれ，大気の自由な出入りなしに閉じられている空間を意味する。
【００５３】
用語「調整培地」はＴＨＰ−１(ヒト単球癌細胞株)調整培地を意味する。それは，ヒト細胞株ＴＨＰ−１細胞を7日間続けて培養した１０%のウシ胎児血清を添加した標準ＲＰＭＩ培地(Roswell Park Memorial Institute培地)である。ＴＨＰ−１細胞はヒト単球モデルとして使用され，それらは，多くの発育因子及びサイトカインのほか，さらに細胞外マトリックス成分の分解を起こす酵素，特にマトリックスメタロプロテアーゼ，ヒアルロニダーゼ又はエステラーゼを生産する。培地は使用又は凍結の前に，純度と無菌状態を保証するために遠心分離機にかけ，０．２２μmフィルタで濾過する。
【図面の簡単な説明】
【００５４】
【図１】その表面外観（ｃ）に対するヒアルロン酸ナトリウムのオレイル誘導体をベースとするフィルムの付着効果（ａ，ｂ）。
【図２】その表面外観に対するヒアルロン酸ナトリウムのパルミトイル誘導体をベースとするフィルムの付着効果。
【図３】調整培地中で３週間分解した後の実施例２（ｂ）及び１８（ａ）によって調製されたフィルムの比較。
【図４】酵素を添加したＤＭＥＭ(ダルベッコ改変イーグル培地)中でのインキュベーションの後の実施例５によるフィルム(DS=20%)の溶液におけるＨＡベースのオリゴ糖類の存在のＨＰＬＣによる証明。図は，(i)ＨＡオリゴ糖類標準(標準ＨＡ２(tR = 4.1min)，ＨＡ４(tR = 12min)，ＨＡ６(tR = 18.1min)，ＨＡ８(tR = 22.9min))の分離 (ii)ブランク試料-酵素添加ＤＭＥＭ及び(iii)フィルムのインキュベーションが実行された溶液，に対応する３つのクロマトグラムを開示する。
【図５】実施例１６によって調製されたフィルムの支持体側の形態。
【図６】ヒアルロン酸ナトリウムのパルミトイル誘導体をベースとする実施例１によって調製されたフィルムと共に２４時間及び７２時間のインキュベーションを実施した後の懸濁ＴＨＰ−１細胞の生存度。
【図７】ヒアルロン酸ナトリウムのパルミトイル誘導体をベースとする実施例１によって調製されたフィルムと共に２４時間のインキュベーションを実施した後の細胞死の誘導。
【図８】ヒアルロン酸ナトリウムのパルミトイル誘導体をベースとする実施例１によって調製されたフィルムと共に７２時間のインキュベーションを実施した後の細胞死の誘導。
【図９】実施例１によって調製されたフィルムによって引き起こされたマウスの３Ｔ３スイス繊維芽細胞の増殖の接触抑制。
【図１０】フィルム：Ａ−実施例１７によって調製されたフィルムのフィルム上面，Ｂ−実施例１７によって調製されたフィルムのフィルム下面，Ｃ−実施例２によって調製されたフィルムのフィルム上面，Ｄ−実施例２によって調製されたフィルムのフィルム下面，CTRL−コントロールの細胞抗付着性。
【００５５】
実施例
実施例１：ヒアルロン酸ナトリウムのパルミトイル誘導体をベースとするフィルムの調製
置換度１００%及び分子量２．８×１０５g/molのヒアルロン酸ナトリウムのパルミトイル誘導体100mgを，プロパン−２−オールの５５%溶液２０mlに溶解し，少なくとも７２時間攪拌した。攪拌後，demi水によって６１°（＋／−２°）の濡れ性を有する疎水化ガラス上に該溶液をドーズし，閉鎖空間中，下板の温度５０℃，上板の温度４０℃の温度勾配で１２時間乾燥させた。乾燥後，フィルムを評価し，疎水化ガラスから取り出し，特徴づけた。このように調製したフィルムの厚さは約１５μmであることがわかった。乾燥物質は約９２%であるとわかった。
【００５６】
実施例２：ヒアルロン酸ナトリウムのパルミトイル誘導体をベースとするフィルムの調製
置換度１００％及び分子量２．１２×１０５g/molのヒアルロン酸ナトリウムのパルミトイル誘導体１００mgを，プロパン−２−オールの５５%の溶液の２０mlに溶解し，少なくとも４８時間攪拌した。攪拌後，demi水によって６１°（＋／−２°）の濡れ性を有する疎水化ガラス上に該溶液をドーズし，閉鎖空間中，下板の温度５０℃，上板の温度２０℃の温度勾配で６時間乾燥させた。乾燥後，フィルムを評価し，疎水化ガラスから取り出し，特徴づけた。このように調製したフィルムの厚さは約15μmであることがわかった。
【００５７】
実施例３：ヒアルロン酸ナトリウムのパルミトイル誘導体をベースとするフィルムの調製：
置換度５５%及び分子量６．０×１０５g/molのヒアルロン酸ナトリウムのパルミトイル誘導体１００mgを，エタノールの５０%溶液２０mlに溶解し，少なくとも２０時間攪拌した。攪拌後，demi水によって７９°（＋／−４°）の濡れ性を有するポリエチレン支持体上に該溶液をドーズし，閉鎖空間中，下板の温度３０℃，上板の温度２９℃の温度勾配で１２時間乾燥させた。乾燥後，フィルムを評価し，支持体から取り出し，特徴づけられた。このように調製したフィルムの厚さは約１５μmであることがわかった。
【００５８】
実施例４：ヒアルロン酸ナトリウムのパルミトイル誘導体をベースとするフィルムの調製
置換度３１%及び分子量９．９×１０５g/molのヒアルロン酸ナトリウムのパルミトイル誘導体５０mgを，エタノールの４５%溶液２０mlに溶解し，少なくとも２０時間攪拌した。攪拌後，demi水によって６１°(＋／−２°)の濡れ性を有する疎水化ガラス上に該溶液をドーズし，閉鎖空間中，３０℃の温度で４時間溶媒を蒸発させることにより乾燥させた。乾燥後，フィルムを評価し，支持体から取り出し，特徴づけた。このように調製したフィルムの厚さは約８μmであることがわかった。
【００５９】
実施例５：ヒアルロン酸ナトリウムのパルミトイル誘導体をベースとするフィルムの調製
置換度２０%及び分子量２．４×１０５g/molのヒアルロン酸ナトリウムのパルミトイル誘導体１００mgを，エタノールの２５%溶液２０mlに溶解し，少なくとも２０時間攪拌した。攪拌後，demi水によって１０２°（＋／−４°）の濡れ性を有するポリスチレン支持体上に該溶液をドーズし，閉鎖空間中，下板の温度５０℃，上板の温度２０℃の温度勾配で１２時間乾燥させた。乾燥後，フィルムを評価し，支持体から取り出し，特徴づけた。このように調製したフィルムの厚さは約15μmであるとわかった。
【００６０】
実施例６：ヒアルロン酸ナトリウムのエルコイル（erucoyl）誘導体をベースとするフィルムの調製
置換度１６０%及び分子量２．０４×１０５g/molのヒアルロン酸ナトリウムのエルコイル誘導体１００mgを，プロパン−２−オールの６０%溶液２０mlに溶解し，少なくとも２０時間攪拌した。攪拌後，demi水によって１０５°（＋／−２°）の濡れ性を有するポリプロピレン支持体上に該溶液をドーズし，閉鎖空間中，５０ ℃の温度で３時間溶媒を蒸発させることにより乾燥させた。乾燥後，フィルムを評価し，支持体から取り出し，特徴づけた。このように調製したフィルムの厚さは約１５μmであることがわかった。
【００６１】
実施例７：ヒアルロン酸ナトリウムのラウロイル誘導体をベースとするフィルムの調製
置換度６４%及び分子量３．２×１０５g/molのヒアルロン酸ナトリウムのラウロイル誘導体１００mgをプロパン−２−オールの５０％溶液２０mlに溶解し，少なくとも２０時間攪拌した。攪拌後，demi水によって５０°（＋／−３°)の濡れ性を有する疎水化ガラス上に該溶液をドーズし，閉鎖空間中，下板の温度５０℃，上板の温度２０℃の温度勾配で６時間乾燥させた。乾燥後，フィルムを評価し，支持体から取り出し，特徴づけた。このように調製したフィルムの厚さは約１５μmであるとわかった。
【００６２】
実施例８：ヒアルロン酸ナトリウムのラウロイル誘導体をベースとするフィルムの調製
置換度９０%及び分子量１．８８×１０５g/molのヒアルロン酸ナトリウムのラウロイル誘導体１００mgをプロパン−２−オールの５０％溶液２０mlに溶解し，少なくとも２０時間攪拌した。攪拌後，demi水によって６１°（＋／−２°)の濡れ性を有する疎水化ガラス上に該溶液をドーズし，閉鎖空間中，２０℃の温度で６時間溶媒を蒸発させることにより乾燥させた。乾燥後，フィルムは評価され，支持体から取り出され，特徴づけられた。このように調製したフィルムの厚さは約１５μmであるとわかった。
【００６３】
実施例９：ヒアルロン酸ナトリウムのオレイル誘導体をベースとするフィルムの調製
置換度２０%及び分子量２．８×１０５g/molのヒアルロン酸ナトリウムのオレイル誘導体１００mgをプロパン−２−オールの５０%の溶液の２０mlに溶解し，少なくとも２０時間攪拌した。攪拌後，demi水によって９５°（＋／−５°)の濡れ性を有するポリ塩化ビニル支持体上に該溶液をドーズし，閉鎖空間中，下板の温度５０℃，上板の温度２０℃の温度勾配で６時間乾燥させた。乾燥後，フィルムを評価し，支持体から取り出し，特徴づけた。このように調製したフィルムの厚さは約１５μmであるとわかった。
【００６４】
実施例１０：ヒアルロン酸ナトリウムのオレイル誘導体をベースとするフィルムの調製
置換度２０%及び分子量２．８×１０５g/molのヒアルロン酸ナトリウムのオレイル誘導体３００mgをプロパン−２−オールの３０％溶液２０mlに溶解し，少なくとも２０時間攪拌した。攪拌後，demi水によって５７°（＋／−３°)の濡れ性を有する疎水化ガラス上に該溶液をドーズし，閉鎖空間中，下板の温度５０℃，上板の温度２０℃の温度勾配で１２時間乾燥させた。乾燥後，フィルムを評価し，支持体から取り出し，特徴づけた。このように調製したフィルムの厚さは約４０μmであるとわかった。
【００６５】
実施例１１：ヒアルロン酸ナトリウムのオレイル誘導体をベースとするフィルムの調製
置換度２０%及び分子量２．８×１０５g/molヒアルロン酸ナトリウムのオレイル誘導体３００mgをプロパン−２−オールの３０％溶液２０mlに溶解し，少なくとも２０時間攪拌した。攪拌後，demi水によって１０７°（＋／−１°）の濡れ性を有する疎水化ガラス上に該溶液をドーズし，閉鎖空間中，下板の温度５０℃，上板の温度２０℃の温度勾配で１２時間乾燥させた。乾燥後，フィルムを評価し，支持体から取り出し，特徴づけた。このように調製したフィルムの厚さは約４０μmであるとわかった。
【００６６】
実施例１２：ヒアルロン酸ナトリウムのカプリニル（caprinyl）（Ｃ１０）誘導体をベースとするフィルムの調製
置換度８７%及び分子量２．５０×１０５g/molのヒアルロン酸ナトリウムのカプリニル(C10)誘導体１００mgを５０％エタノール２０mlに溶解し，少なくとも２０時間攪拌した。攪拌後，demi水によって６１°（＋／−２°)の濡れ性を有する疎水化ガラス上に該溶液をドーズし，閉鎖空間中，下板の温度６０℃，上板の温度４０℃の温度勾配で１０時間乾燥させた。乾燥後，フィルムを評価し，支持体から取り出し，特徴づけた。このように調製したフィルムの厚さは約１５μmであるとわかった。乾燥物質は約９２%であるとわかった。フィルムの膨張性は平衡状態で１００%より大きいことがわかった(フィルム面積の変動を測定した)。
【００６７】
実施例１３：ヒアルロン酸ナトリウムのベヘノイル（behenoyl）誘導体をベースとするフィルムの調製
置換度１６%及び分子量３．３×１０５g/molのヒアルロン酸ナトリウムのベヘノイル誘導体１００mgをプロパン−２−オールの５０%の溶液の２０mlに溶解し，少なくとも２０時間攪拌した。攪拌後，demi水によって１０５°（＋／−２°)の濡れ性を有するポリプロピレン支持体上に該溶液をドーズし，閉鎖空間中，下板の温度５０℃，上板の温度２０℃の温度勾配で６時間乾燥させた。乾燥後，フィルムを評価し，支持体から取り出し，特徴づけた。このように調製したフィルムの厚さは約１５μmであるとわかった。
【００６８】
実施例１４：ヒアルロン酸ナトリウムのラウロイル誘導体をベースとするフィルムの調製
置換度２９%及び分子量１．８８×１０５g/molのヒアルロン酸ナトリウムのラウロイル誘導体１００mgを，プロパン−２−オールの５０％溶液２０mlに溶解し，少なくとも２０時間攪拌した。攪拌後，demi水によって６１°（＋／−２°)の濡れ性を有する疎水化ガラス上に該溶液をドーズし，閉鎖空間中，下板の温度５０℃，上板の温度２０℃の温度勾配で７時間乾燥させた。乾燥後，フィルムを評価し，支持体から取り出し，特徴づけた。このように調製したフィルムの厚さは約１５μmであるとわかった。
【００６９】
実施例１５：ヒアルロン酸ナトリウムのオレイル誘導体をベースとするフィルムの調製
置換度１５%及び分子量２．８×１０５g/molのヒアルロン酸ナトリウムのオレイル誘導体１００mgをプロパン−２−オールの５０％溶液２０mlに溶解し，少なくとも４８時間攪拌した。攪拌後，demi水によって６１°（＋／−２°)の濡れ性を有する疎水化ガラス上に該溶液をドーズし，閉鎖空間中，下板の温度５０℃，上板の温度２０℃の温度勾配で１２時間乾燥させた。乾燥後，フィルムを評価し，支持体から取り出し，特徴づけた。このように調製したフィルムの厚さは約１５μmであるとわかった。
【００７０】
実施例１６：ヒアルロン酸ナトリウムのパルミトイル誘導体をベースとするフィルムの調製
置換度３４%及び分子量２．６７×１０５g/molのヒアルロン酸ナトリウムのパルミトイル誘導体をエタノールの５０％溶液２０mlに溶解し，少なくとも４８時間攪拌した。攪拌後，demi水によって６１°（＋／−２°)の濡れ性を有する疎水化ガラス上に該溶液をドーズし，閉鎖空間中，下板の温度５０℃，上板の温度２０℃の温度勾配で１２時間乾燥させた。乾燥後，フィルムを評価し，支持体から取り出し，特徴づけた。このように調製したフィルムの厚さは約１５μmであるとわかった。
【００７１】
実施例１７：ヒアルロン酸ナトリウムのパルミトイル誘導体をベースとするフィルムの調製
置換度６０%及び分子量２．８×１０５g/molのヒアルロン酸ナトリウムのパルミトイル誘導体１００mgをエタノールの５０％溶液２０mlに溶解し，少なくとも４８時間攪拌した。攪拌後，demi水によって６１°（＋／−２°)の濡れ性を有する疎水化ガラス上に該溶液をドーズし，閉鎖空間中，下板の温度５０℃，上板の温度２０℃の温度勾配で１２時間乾燥させた。乾燥後，フィルムを評価し，支持体から取り出し，特徴づけた。このように調製したフィルムの厚さは約１５μmであるとわかった。
【００７２】
実施例１８：ヒアルロン酸ナトリウムのパルミトイル誘導体をベースとするフィルムの調製
置換度３１%及び分子量２．７×１０５g/molのヒアルロン酸ナトリウムのパルミトイル誘導体１００mgをプロパン−２−オールの５０％溶液２０mlに溶解し，少なくとも20時間攪拌した。攪拌後，demi水によって６１°（＋／−２°)の濡れ性を有する疎水化ガラス上に該溶液をドーズし，閉鎖空間中，下板の温度５０℃，上板の温度２０℃の温度勾配で１２時間乾燥させた。乾燥後，フィルムを評価し，支持体から取り出し，特徴づけた。このように調製したフィルムの厚さは約１５μmであるとわかった。
【００７３】
実施例１９：ヒアルロン酸ナトリウムのラウロイル誘導体をベースとするフィルムの調製
置換度５８%及び分子量１．８８×１０５g/molのヒアルロン酸ナトリウムのラウロイル誘導体１００mgをプロパン−２−オールの５０％溶液２０mlに溶解し，少なくとも４８時間攪拌した。攪拌後，demi水によって６１°（＋／−２°)の濡れ性を有する疎水化ガラス上に該溶液をドーズし，閉鎖空間中，下板の温度２０℃，上板の温度１０℃の温度勾配で１２時間乾燥させた。乾燥後，フィルムを評価し，支持体から取り出し，特徴づけた。このように調製したフィルムの厚さは約１５μmであるとわかった。
【００７４】
実施例２０：様々な疎水化剤の使用により得られた支持体の濡れ性の比較
得られるdemi水による濡れ性が１０°以下となるように，疎水性化すべきガラスをまず徹底的に清浄した。その後，ガラスの疎水性化を実施した。ガラスの疎水性化については，次の疎水化剤が使用された：クロロトリメチルシラン（ＣＴＭＳ），（３−アミノプロピル）トリメトキシシラン（ＡＰＴＭＳ）及びオクタデシルトリクロロシラン（ＯＴＳ）。ガラス濡れ性（１%の薬剤使用濃度による）の値の結果を表１に列挙する。さらに，ＣＴＭＳについては，ヘキサン中の様々な薬剤濃度で試験した。測定されたガラス濡れ性の値の結果を表２に列挙する。
【００７５】
表１：１％濃度の薬剤による疎水性化に対して接触角により表されるガラス濡れ性
0006796075.tif 000003
ＣＡは接触角を意味する。
【００７６】
表２：ヘキサン中のＣＴＭＳの様々な濃度による疎水性化による接触角により表されるガラス濡れ性
0006796075.tif 000004
ＣＡは接触角を意味する。
【００７７】
実施例２１：実施例１により調製されたフィルム中の疎水化剤残渣の測定
トリメチルシラノール（Trimethylsilanol）をヒアルロナン誘導体のＯＨ基との反応後の塩化トリメチルシリルの残留物として分析した。その分析は，ヘッドスペースサンプラ及び単純な四重極型の質量分析法検出器を装備したガスクロマトグラフで行なわれた。実施例１によって調製されたフィルムのサンプルを，５０%(vol/vol)のプロパン−２−オールの中に６mg/mlの濃度で溶解し，溶解により内部標準として作用する４．７５mlのサンプル及び０．２５mlのｎ−ブタノール(１mg/ml)をピペットでバイアルに移した。塩化トリメチルシリル (１mg/ml)の原液を，同様に５０%のプロパン−２−オール中に調製し，ただちにトリメチルシラノールと反応させた。この溶液から，０．５〜１５．０μg/mlの範囲の較正シリーズを内部標準としてｎ−ブタノールを添加して調製した。分析されたフィルムサンプルでは，最初の較正点より高濃度のトリメチルシラノールの存在は証明されなかった。即ち，フィルムサンプル中のトリメチルシラノール量は０．００８重量%未満であった。
【００７８】
実施例２２：ヒアルロン酸ナトリウムのオレイル誘導体をベースとするフィルムの付着の表面外観に対する影響
実施例１０及び１１によって調製されたフィルムを，濡れ性が異なる２つのガラス (すなわち５７°（＋／−３°)，１０７°（＋／−１°））上で調製した。乾燥後，フィルムの表面外観を評価し，付着と関連付けた。支持体へのフィルムの付着が良好な場合は，フィルム表面は平滑であり，表面の変形がない。該フィルムは，より低い接触角を有する支持体には完全に付着し，より高い接触角を有する支持体では部分的に剥離し変形した。結果を図１ａ，１ｂ，１ｃに示す。図は，フィルムが表面へ完全に付着している場合は平らであり，剥離した後に表面変形がないことを示唆する（図１ｃの右）。反対に，不完全な付着の場合には，フィルムは多かれ少なかれ変形する（図１ｃの左）。
【００７９】
実施例２３：ヒアルロン酸ナトリウムのパルミトイル誘導体をベースとするフィルムの付着の表面外観に対する影響
実施例２によって６１°（＋／−２°)の濡れ性を有するガラス上に調製されたヒアルロン酸ナトリウムのパルミトイル誘導体をベースとするフィルムを評価した。乾燥後，付着及びフィルムの外観を評価した。付着の結果を図２に示す。
【００８０】
実施例２４：フィルム中の残留プロパン−２−オールの測定
実施例１，８及び１２によって調製されたフィルム中の有機溶媒プロパン−２−オールの残留濃度をガスクロマトグラフィーで測定した。該溶媒測定の原理は，その高温の気相への転移，そのガスクロマトグラフによる分離及び続いての水素炎イオン化検出器による検出である。フィルム中のプロパン−２−オールの濃度は，検量線から読むことにより，常に２回(つまり二つのサンプルについて)測定された。サンプル重量は常に５０mgであった。分析を終えた後に，残留プロパン−２−オールの濃度はすべてのフィルムにおいて最低の検量線ポイントより低いことが確定し，＜０．０２重量%として表された。この値は，安全にＥＵの薬局方によるクラス３の残留溶媒量についての必要条件を満たす。
【００８１】
実施例２５：その面積内の重量均質性の測定
実施例１によって調製されたフィルムを，１cm2の面積で５５個の正方形に切断した。測定に先立って個々のサンプルを部屋の湿度及び温度で５時間放置した。その後，個々の正方形を分析スケールで秤量した。個々の正方形の重量の結果を表３に挙げる。平均，標準偏差及び変動系数を表に挙げたすべての値に基づいて計算した。
計算値:平均２．３５mg，標準偏差０．１８mg，変動系数７．５１%。
【００８２】
表３：フィルムの重量均質性の測定
0006796075.tif 000005
【００８３】
実施例２６：その面積内の厚さの均一性の測定
１cm2の面積で総数３５の正方形のグリッドを，実施例１５によって調製されたフィルム上に引いた。各正方形において，フィルムの厚さを機械式厚さ計Mytutoyo VL-50によって測定した。その測定は，湿度５０％及び温度２５℃の安定な環境において行なわれた。測定値を表４に挙げる。平均，標準偏差及び変動系数を表に挙げたすべての値に基づいて計算した。
計算値:平均１４．６μm，標準偏差１．１７μm，変動系数８．０２%。
【００８４】
表４：厚さ均一性の測定，値はμm
0006796075.tif 000006
【００８５】
実施例２７：様々な置換度を有するヒアルロン酸ナトリウムのパルミトイル誘導体から調製されたフィルムのpH７．４の０．１M燐酸緩衝液中での膨張性の比較
実施例２，１６及び１７によって調製されたフィルムを，正確に測定された正方形に切断し，秤量し，０．１M燐酸緩衝液（ＰＢＳ） pH７．４，３７ ℃に入れ，フィルムの膨張性をモニターした;各実験はそれぞれ３回繰り返して行われた。フィルムの重量及び寸法の変化を評価した。結果を表５に挙げる。この表からフィルムの置換度が低いほど膨張性が高いことが明白である。高い置換度の使用の場合には，フィルム面積の変化を少なくすることができる。これは多くの適用において非常に重要かもしれない。
【００８６】
表５:様々な置換度を有するパルミトイル誘導体から調製されたフィルムの膨張性
0006796075.tif 000007
【００８７】
実施例２８：ヒアルロン酸ナトリウムのパルミトイル誘導体から調製されたフィルムの調整培地中での分解−２つの置換度の比較
実施例２及び実施例１８によって調製されたフィルムを，正確に測定された正方形に切断し，秤量し，調整培地に入れた。培地の汚染及び不適当な反応が生じないように，すべての調製は層流箱内で実施した。３７℃で，フィルムの面積の変化及びその外観を，所定間隔でチェックした。この特性は分解に関係し得る。調整培地は一定間隔で交換した;実験は３回繰り返して実施した。実施例２により調製されたフィルムは実施例１８により調製されたフィルムに比べて著しく遅く分解し始めた。結果を図３ａ及び３ｂに示す。ここでは，調整培地において３週間分解した後のフィルムの外観が示されている。表６は，実施例２及び実施例１８によるフィルムの１週間の分解後，及び実施例２によるフィルムの３週間の分解後（実施例１８によるフィルムは３週間後には粉々に分解されたか，溶けた）のフィルム面積の変化を示す。これらの結果に基づくと，分解速度がヒアルロン酸ナトリウムのアシル鎖による置換度に著しく依存することは明白である。実施例２によって調製された高度に置換されたフィルムの場合には，分解が数か月の期間で進行した。
【００８８】
表６：調整培地における１週後のフィルム面積の変化，２つの置換度の比較
0006796075.tif 000008
【００８９】
実施例２９：ヒアルロン酸ナトリウムのパルミトイル誘導体をベースとするフィルムの分解
実施例５によって調製されたフィルムのサンプルを，フィルム１mgあたり３００IUの酵素を追加した細胞培養の標準培地(ダルベッコ改変イーグル培地)でインキュベートした。インキュベーションは３７℃で実施した。また，サンプルは２４時間後に分析した。サンプル分析は，ＨＰＬＣシステム，アライアンス（ウォータース）で内部の標準操作手順に従って行なわれた。２４時間後，まだ分解していない数片のフィルムを観察することができた。それにもかかわらず，図４に示されるように，ヒアルロナンをベースとするオリゴ糖類が溶液中で検出された。
【００９０】
実施例３０：ヒアルロン酸ナトリウムのパルミトイル誘導体をベースとするフィルムの分解
実施例２により調製されたフィルムのサンプルを，フィルム１mgあたり３００IUの酵素を追加した細胞培養の標準培地(ダルベッコ改変イーグル培地)でインキュベートした。インキュベーションは３７℃で実施した。また，サンプルは２４時間後に分析した。サンプル分析は，ＨＰＬＣシステム，アライアンス（ウォータース）で内部標準操作手順に従って行なわれた。２４時間後，ヒアルロナンをベースとするオリゴ糖類は，溶液中に検出されなかった。これは，実施例２によるフィルムについて非常に長い分解時間が観察された実施例２８に適合するものである。これは置換度による分解の調節の可能性を実証する。
【００９１】
実施例３１：ヤング率によるフィルムの特徴づけ
ヤング率を，実施例１０，１５，１６及び１９によって調製されたフィルムについて乾燥状態で測定した。フィルムを１００Ｎヘッドの単段引張試験機INSTRON3343による機械的性質に関して試験した。ヤング率は，少なくとも９つの有効な測定の平均値に基づいて計算した。表７は乾燥した水和されていないフィルムのヤング率が，分子量，置換又は置換度に依存しないことを示す。
【００９２】
表７：フィルムのヤング率
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【００９３】
実施例３２：フィルム表面形態の評価及びＡＦＭによるＲＭＳの測定
実施例８及び１６によって調製されたフィルムを原子間力顕微鏡（ＡＦＭ）法によって評価し，特にそこでは表面の外観及び性質をモニターした。特に，ＲＭＳ粗さ（二乗平均平方根粗さ）を測定した。ＲＭＳの値が２nm以下である非常に平滑な表面が支持体の側で得られることが見出された(実施例１６によるフィルム用の図５を参照)。乾燥中に大気に暴露されるフィルムの側は通常はより粗く，ＲＭＳは約５０nm以上である。
【００９４】
実施例３３：温度勾配及び閉鎖空間において乾燥させたフィルムの比較
実施例８及び１９によって調製されたフィルムを，乾燥後に視覚的に比較した。両方ともフィルムの表面は変形せず，表面の硬い膜はいずれのフィルムにも生じなかった。両方のフィルムは質的に同じ(目視比較)であった。
【００９５】
実施例３４：ヒアルロン酸ナトリウムのパルミトイル誘導体をベースとする実施例１によって調製されたフィルムと共に２４時間及び７２時間インキュベートした後のＴＨＰ−１懸濁細胞の生存度
ＴＨＰ−１細胞株を１０%ウシ胎児血清を添加した培地で培養した。十分な密度及び生存度(自動細胞計数装置CASY TT，Rocheによって測定された)を達成した後に，細胞を１０％培地２ml中の６ウェルパネルに接種した。試験フィルムを，１mg/ml及び０．５mg/mlの量で該細胞に添加した。２４時間及び７２時間のインキュベーションの後，細胞を洗浄し，それらの生存度及び細胞死の出現をフローサイトメーターMACSQuant（登録商標）(Miltenyi Biotec)上の検出キットApoFlowEx（登録商標） FITC  Kit(Exbio)によって検出した。ヨウ化プロピジウムの螢光が検出されなかった場合，細胞は生存と評価された。図６は，２４時間のインキュベーションの後に生存率のごくわずかな減少があり，それは７２時間後にはもはや検出されないことを示す。従って，試験されたフィルムは前述の濃度において非細胞毒性であるとして評価される。
【００９６】
実施例３５：ヒアルロン酸ナトリウムのパルミトイル誘導体をベースとした実施例１により調製されたフィルムと共に２４時間及び７２時間インキュベートした後のＴＨＰ−１懸濁細胞の細胞死の分析
ＴＨＰ−１細胞株を１０%ウシ胎児血清を添加した培地で培養した。十分な密度及び生存度(自動細胞計数装置CASY TT，Rocheによって測定された)を達成した後に，細胞を１０％培地２ml中の６ウェルパネルに接種した。試験フィルムを，１mg/ml及び０．５mg/mlの量で該細胞に添加した。２４時間及び７２時間のインキュベーションの後，細胞を洗浄し，それらの生存度及び細胞死の出現をフローサイトメーターMACSQuant（登録商標）(Miltenyi Biotec)上の検出キットApoFlowEx（登録商標） FITC  Kit(Exbio)によって検出した。細胞死(アポトーシスとネクローシス)の存在の評価はキット製造者の推奨に従って実施した。要するに，個別細胞の個体群を，ヨウ化プロピジウム及びAnnexin V-FITCの蛍光強度に基づいて３つの群：両方のチャネルに陰性(生存細胞)，Annexin V-FITCのチャネルにのみ陽性(アポトーシス細胞)及びチャネルヨウ化プロピジウム+/-Annexin V-FITCに陽性の細胞 (ネクローシス細胞)に分けた。図７及び８は，２４時間後及び７２時間後に，培養液にアポトーシス又はネクローシスの細胞の数に大きな増加が生じず，従って，試験されたサンプルが，細胞死を引き起こさないとして評価され得ることを示唆する。
【００９７】
実施例３６：マウス３Ｔ３スイス繊維芽細胞の増殖の接触抑制
マウスの３Ｔ３スイス繊維芽細胞株を１０%ウシ胎児血清を添加した培地で培養した。指数増殖期に，細胞を１０％の培地２ml中６ウェルパネルに接種した。コンフルエントに達した後，実施例１により調製された１cm2の面積の試験フィルムを入れて，単層培養上のフィルムが著しく動かないように，シリコン滅菌リングを載せた。同時に，対照細胞を処理を加えることなく，シリコンリングのみと共にインキュベートした。７２時間のインキュベーションの後，フィルムサンプル及びシリコンリングを除去し，細胞をＰＢＳで洗浄し，４％のホルムアルデヒドによって固定した（１０分間／室温）。細胞を脱イオン水で洗浄した後，クリスタルバイオレットで染色し(水中０．１％，３０分間/室温)，色素を洗い流した後，細胞領域を撮影し光学顕微鏡下で観察した。試験材料の下の細胞面積，細胞の損傷の範囲及び損傷を受けたゾーンの大きさが評価された。拡大写真（図９）は，単層の損傷を受けたゾーンが限られており，フィルムの直下の細胞のみが損傷を受けており，それはおそらく少しの摩擦によるものであろうことを明白に示す。光学顕微鏡からの詳細は，細胞がフィルムの下で再度成長する傾向があったことを示す。試験されたフィルムの縁の細胞についてはいかなる損傷も形態学的変化も観察されなかった。従って，試料が細胞増殖の接触抑制を示さないと仮定することができる。
【００９８】
実施例３７：フィルムの細胞の抗付着性
実施例２及び実施例１７（誘導体は２つの異なる置換度を有する）により調製されたフィルムを，無菌的方法で１cm2の寸法の切片に裁断した。これらの切片を，６ウェル培養パネルに上向き又は下向きに入れた。その後，それらに無菌のシリコンリングを載せ，このように調製したサンプルに，１０%のウシ胎児血清を含む一次ヒト線維芽細胞（ＮＨＤＦ）の培養液(２ml)をピペットで入れた。その間にＮＨＤＦ懸濁液を調製し，１０００００細胞／サンプルの量でフィルム面上のシリコンリングの中央にピペットで移した。細胞を含むサンプルを７２時間インキュベートし，光学顕微鏡下で２４時間の間隔でチェックした。良好な付着性を有する細胞培養に適したポリスチレンを，陽性対照（ＣＴＲＬ）として使用した。インキュベーションの完了後，シリコンリングを除去し，細胞を有するフィルムを４％のホルムアルデヒドによって１０分間固定し，その後，水中の１％のクリスタルバイオレットで染色した（１０分間）。未結合のクリスタルバイオレットを徹底的に（蒸留水で２×５分間のすすぎ）洗い流した後に，サンプルを１００倍の倒立顕微鏡（Nicon）を使用して撮影した。結果を図１０に示す。ＣＴＲＬ写真においては，ほとんどコンフルエントな細胞層が見られ得る。フィルムの写真（Ａ-Ｄ）においては，恐らく培地中での長いインキュベーションにより形成され，クリスタルバイオレットによって可視化された一定の構造が観察される。しかしながら，細胞はフィルム上には存在しない。従って，フィルムはこの系において完全に非付着性であり，培地中のタンパク質の存在さえ付着を促進しないと述べることができる。
【００９９】
実施例３８：オクテニジン二塩酸塩を用いたフィルムの調製
エタノール中の１０mg/mlの重量濃度のオクテニジン二塩酸塩の原液20μlを５０％のプロパン−２−オール２０mlと混合した。徹底的に撹拌した後，５７%の置換度及び２．６７×１０５g/molの分子量を有するヒアルロン酸ナトリウムのパルミトイル誘導体１００mgをこの溶液に添加した。該溶液を７２時間攪拌した。攪拌後，６５°（＋／−３°)の濡れ性を有する疎水化ガラス上に該溶液をドーズし，閉鎖空間中，下板の温度５０℃，上板の温度２０℃の温度勾配で６時間乾燥させた。乾燥後，フィルムを評価し，支持体から取り出し，特徴づけた。このように調製したフィルムの厚さは約１５μmであるとわかった。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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