(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
筋萎縮の予防剤及び／又は治療剤のスクリーニング方法であって、
以下の工程（１）〜（３）：
（１）試験物質と筋肉細胞とを接触させる工程、
（２）該筋肉細胞内のＳｍａｄ２及び／又はＳｍａｄ３の量を測定する工程、及び、
（３）該筋肉細胞内のＳｍａｄ２及び／又はＳｍａｄ３の量の上昇を抑制する試験物質を選択する工程
を含み、
該予防剤及び治療剤がミオスタチンを標的としない、スクリーニング方法。
【請求項２】
工程（１）の筋肉細胞が骨格筋細胞である、請求項１に記載のスクリーニング方法。
【請求項３】
Ｓｍａｄ２がリン酸化Ｓｍａｄ２である、及び／又は、Ｓｍａｄ３がリン酸化Ｓｍａｄ３である、請求項１又は２に記載のスクリーニング方法。
【請求項４】
工程（２）において、Ｓｍａｄ２及び／又はＳｍａｄ３の量を測定し、
工程（３）において、筋肉細胞内のＳｍａｄ２及び／又はＳｍａｄ３の量の上昇を抑制する試験物質を選択する、請求項１〜３のいずれか１項に記載のスクリーニング方法。
【請求項５】
工程（２）において、Ｓｍａｄ２及び／又はＳｍａｄ３の量を、ウェスタンブロッティングにて測定する、請求項１〜４のいずれか１項に記載のスクリーニング方法。
【請求項６】
筋萎縮がサルコペニアである、請求項１〜５のいずれか１項に記載のスクリーニング方法。
【請求項７】
筋萎縮がスポーツ外傷の治療より生じた筋萎縮である、請求項１〜５のいずれか１項に記載のスクリーニング方法。
【請求項８】
請求項１〜７のいずれか１項に記載のスクリーニング方法を行なうためのキットであって、筋肉細胞中のＳｍａｄ２及び／又はＳｍａｄ３の量を測定するための試薬を含むことを特徴とするキット。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、筋萎縮の予防剤及び／又は治療剤のスクリーニング方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
筋萎縮は、加齢、不動、無重力、長期の臥床、長期あるいは大量のステロイド治療、癌によるカヘキシー、栄養飢餓、四肢の骨折や筋、腱及び靭帯の断裂を治療するための固定などの、様々な要因で起こることが知られている。
筋萎縮のうち、加齢による進行性の筋萎縮（筋力の低下を伴うこともある）は、サルコペニアと呼ばれている。サルコペニアは、高齢者に、寝たきり、転倒、不動や認知症などの有害事象を引き起こし、この有害事象により更にサルコペニアが進行するという悪循環をもたらすことが知られている。
そのため、筋萎縮を予防及び治療することで、高齢者においては活動性を維持し、日常生活動作レベルを確保し、更には、上述の有害事象を防止することが期待されている。
筋萎縮の予防及び治療に関しては、ミオスタチン（Myostatin）を標的とすることの有用性が示されている（非特許文献１及び２）。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００３】
【非特許文献１】Cancer Res. 74(24), 7344-56 (2014)
【非特許文献２】Am J Pathol. 178(3), 1287-97 (2011)
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００４】
しかしながら、これまでに筋萎縮を予防又は治療する薬は開発されていない。
【課題を解決するための手段】
【０００５】
本発明者は、筋萎縮について鋭意研究を行なったところ、筋萎縮を発症した動物の筋肉細胞中においてＳｍａｄ２及びＳｍａｄ３の量が上昇していたこと、及び、斯かる上昇がミオスタチンから独立した様式で起きていたことを見いだした。本発明は、これらの知見に基づいてなされたものである。
【０００６】
すなわち、本発明は、下記に関するものである。
１．筋萎縮の予防剤及び／又は治療剤のスクリーニング方法であって、
以下の工程（１）〜（３）：
（１）試験物質と筋肉細胞とを接触させる工程、
（２）該筋肉細胞内のＳｍａｄ２及び／又はＳｍａｄ３の量及び／又は活性を測定する工程、及び、
（３）該筋肉細胞内のＳｍａｄ２及び／又はＳｍａｄ３の量の上昇を抑制する試験物質、及び／又は、該筋肉細胞内のＳｍａｄ２及び／又はＳｍａｄ３の活性を抑制する試験物質を選択する工程
を含む、スクリーニング方法。
２．工程（１）の筋肉細胞が骨格筋細胞である、前記１に記載のスクリーニング方法。
３．Ｓｍａｄ２がリン酸化Ｓｍａｄ２である、及び／又は、Ｓｍａｄ３がリン酸化Ｓｍａｄ３である、前記１又は２に記載のスクリーニング方法。
４．工程（２）において、Ｓｍａｄ２及び／又はＳｍａｄ３の量を測定し、工程（３）において、筋肉細胞内のＳｍａｄ２及び／又はＳｍａｄ３の量の上昇を抑制する試験物質を選択する、前記１〜３のいずれか１項に記載のスクリーニング方法。
５．工程（２）において、Ｓｍａｄ２及び／又はＳｍａｄ３の量を、ウェスタンブロッティングにて測定する、前記１〜４のいずれか１項に記載のスクリーニング方法。
６．工程（２）において、筋肉細胞内のＳｍａｄ２及び／又はＳｍａｄ３の活性を測定し、工程（３）において、筋肉細胞内のＳｍａｄ２及び／又はＳｍａｄ３の活性を抑制する試験物質を選択する、前記１〜３のいずれか１項に記載のスクリーニング方法。
７．筋萎縮がサルコペニアである、前記１〜６のいずれか１項に記載のスクリーニング方法。
８．筋萎縮がスポーツ外傷の治療より生じた筋萎縮である、前記１〜６のいずれか１項に記載のスクリーニング方法。
９．前記１〜８のいずれか１項に記載のスクリーニング方法を行なうためのキットであって、筋肉細胞中のＳｍａｄ２及び／又はＳｍａｄ３の量又は活性を測定するための試薬を含むことを特徴とするキット。
【発明の効果】
【０００７】
本発明は、筋萎縮の予防剤及び／又は治療剤をスクリーニングする手段を提供する。したがって、本発明を用いることにより、筋萎縮を予防及び／又は治療するための医薬品を開発することが可能になる。
【図面の簡単な説明】
【０００８】
【図１】図１は、実施例１（１）の実験結果を示す。具体的には、マウスの非切断側（control）の筋肉重量を１とした場合の、坐骨神経切断側（denerve）の相対筋肉重量を示す。＊＊＊：p<0.001。
【図２】図２は、実施例１（２）の実験結果を示す。具体的には、マウスの非切断側（control）のAtrogin-1及びMuRF-1の各遺伝子の発現量を１とした場合の、坐骨神経切断側（denerve）の各遺伝子の相対発現量を示す（図２（ａ）：Atrogin-1。図２（ｂ）：MuRF-1）。＊＊：p<0.01。＊＊＊：p<0.001。
【図３】図３は、実施例１（３）の実験結果を示す。具体的には、マウスの非切断側（Cont）及び坐骨神経切断側（Den）における、リン酸化Smad2（pSmad2）、リン酸化Smad3（pSmad3）、非リン酸化Smad2（Smad2）及び非リン酸化Smad3（Smad3）のウェスタンブロッティング分析結果を示す。
【図４】図４は、実施例２（１）の実験結果を示す。具体的には、コントロールマウス（control）及びミオスタチンコンディショナルノックアウトマウス（Mstn cKO）の各マウスについて、非切断側（control）の筋肉重量を１とした場合の、坐骨神経切断側（denerve）の相対筋肉重量を示す。＊＊：p<0.01。＊＊＊：p<0.001。
【図５】図５は、実施例２（２）の実験結果を示す。具体的には、コントロールマウス（control）及びミオスタチンコンディショナルノックアウトマウス（Mstn cKO）の各マウスについて、マウスの非切断側のAtrogin-1及びMuRF-1の各遺伝子の発現量（白色の棒）を１とした場合の、坐骨神経切断側の各遺伝子の相対発現量（網掛けの棒）を示す（図５（ａ）：Atrogin-1。図５（ｂ）：MuRF-1）。＊：p<0.05。＊＊：p<0.01。
【図６】図６は、実施例２（３）の実験結果を示す。具体的には、ミオスタチンコンディショナルノックアウトマウスの非切断側（control）及び坐骨神経切断側（denerve）における、Smad2及びSmad3のウェスタンブロッティング分析結果を示す。
【図７】図７は、実施例３（１）の実験結果を示す。具体的には、野生型マウス（WT）、Ｓｍａｄ３ノックアウトマウス（Smad3 KO）、並びに、Ｓｍａｄ２及びＳｍａｄ３ダブルノックアウトマウス（DKO）の各マウスについて、非切断側（control）の筋肉重量を１とした場合の、坐骨神経切断側（denerve）の相対筋肉重量を示す。ｎｓ：有意差なし。＊：p<0.05。＊＊：p<0.01。
【図８】図８は、実施例３（２）の実験結果を示す。具体的には、野生型マウス（WT）、Ｓｍａｄ３ノックアウトマウス（Smad3 KO）、並びに、Ｓｍａｄ２及びＳｍａｄ３ダブルノックアウトマウス（DKO）の各マウスについて、非切断側（control）のAtrogin-1及びMuRF-1の各遺伝子の発現量を１とした場合の、坐骨神経切断側（denerve）の各遺伝子の相対発現量を示す（図８（ａ）：Atrogin-1。図８（ｂ）：MuRF-1）。ｎｓ：有意差なし。＊：p<0.05。
【発明を実施するための形態】
【０００９】
以下、本発明に斯かる、筋萎縮の予防剤及び／又は治療剤のスクリーニング方法を詳細に説明する。本発明のスクリーニング方法は、
以下の工程（１）〜（３）：
（１）試験物質と筋肉細胞とを接触させる工程、
（２）該筋肉細胞内のＳｍａｄ２及び／又はＳｍａｄ３の量及び／又は活性を測定する工程、及び、
（３）該筋肉細胞内のＳｍａｄ２及び／又はＳｍａｄ３の量の上昇を抑制する試験物質、及び／又は、該筋肉細胞内のＳｍａｄ２及び／又はＳｍａｄ３の活性を抑制する試験物質を選択する工程
を含んでいる。
【００１０】
筋萎縮の予防剤及び治療剤のスクリーニング
「筋萎縮」とは、安静状態が長く続くことによって筋肉が体積減少を起こし、萎縮した状態をいう。
筋萎縮の原因としては、加齢、不動、無重力、長期の臥床、長期あるいは大量のステロイド治療、癌によるカヘキシー、栄養飢餓、四肢の骨折や筋、腱及び靭帯の断裂を治療するための固定等が挙げられる。前述の四肢の骨折や筋、腱及び靭帯の断裂には、スポーツ外傷により生じたものが含まれる。
筋萎縮のうち、加齢により発症する進行性の筋萎縮はサルコペニアと呼ばれている。本発明は、サルコペニアの予防剤及び／又は治療剤のスクリーニングに好適に用いることができる。
また、本発明は、スポーツ外傷の治療（四肢の骨折や筋、腱及び靭帯の断裂の固定）により生じた筋萎縮の予防剤及び／又は治療剤のスクリーニングにも好適に用いることができる。
筋萎縮は主に骨格筋で発症する。筋萎縮は、あらゆる部位の骨格筋で発症しうるが、腓腹筋や大腿筋で発症しやすく、発症による影響も大きい。
筋萎縮は、筋肉を有するあらゆる動物で起こりうるが、本発明は、哺乳動物、特にヒトにおける筋萎縮の予防剤及び／又は治療剤のスクリーニングに好適に用いることができる。
「筋萎縮の予防剤」には、筋萎縮の発症を阻害する剤の他、筋萎縮の発症を遅延させる剤等が含まれる。
「筋萎縮の治療剤」には、筋萎縮の症状を改善又は緩和する剤の他、発症した筋萎縮の進行を遅延させる剤等が含まれる。
「スクリーニング」とは、上述の筋萎縮の予防剤及び／又は治療剤を、試験物質（候補物質）の中から選択することをいう。
【００１１】
工程（１）
工程（１）では、試験物質と筋肉細胞とを接触させる。
筋肉細胞としては、あらゆる動物由来のものを使用できるが、哺乳動物（例えば、マウスやヒト）由来の筋肉細胞を用いることが好ましい。
筋肉細胞としては、筋萎縮を発症しうる筋肉に由来する細胞を特に制限なく用いることができる。筋肉細胞の具体例としては、骨格筋細胞、心筋細胞、血管や腸管の平滑筋細胞等が挙げられる。筋肉細胞としては、骨格筋細胞が好ましい。
骨格筋細胞が由来する部位は特に限定されないが、筋萎縮が発症しやすい腓腹筋や大腿筋に由来する骨格筋細胞が好ましい。
筋肉細胞は、筋萎縮を発症している筋肉組織から採取した細胞であってもよく、筋萎縮を発症していない筋肉組織から採取した細胞であってもよい。
また、筋肉細胞は、採取した細胞自体であってもよく、プライマリー細胞であってもよく、株化された細胞であってもよい。また、筋肉細胞は、間葉系幹細胞から誘導した筋肉細胞であってもよく、ｉＰＳ細胞やＥＳ細胞から誘導した筋肉細胞であってもよい。
【００１２】
試験物質と筋肉細胞とを接触させる手段としては、医薬品候補物質のスクリーニング方法で一般的に用いられている手段を特に制限なく用いることができる。例えば、試験物質を筋肉細胞の培養液へ添加することで、試験物質と筋肉細胞とを接触させることができる。
試験物質と接触させた後の筋肉細胞は、その生存を維持できる任意の条件下でインキュベートしてもよい。インキュベート条件は、筋肉細胞の培養条件として知られているものを特に制限なく用いることができる。
【００１３】
工程（２）
工程（２）では、試験物質と接触させた筋肉細胞内のＳｍａｄ２及び／又はＳｍａｄ３の量及び／又は活性を測定する。
「Ｓｍａｄ２」及び「Ｓｍａｄ３」は、いずれも、ミオスタチン、ＩＧＦ−１やＴＧＦ−βといったサイトカインによる細胞内シグナル伝達に関与することが知られているタンパク質性転写因子である。なお、Ｓｍａｄ２のアミノ酸配列は、例えば、アクセッション番号「NM_001003652」でGenBankに登録されている。また、Ｓｍａｄ３のアミノ酸配列は、例えば、アクセッション番号「NM_001145102」でGenBankに登録されている。
【００１４】
ここで、ミオスタチンと、Ｓｍａｄ２及びＳｍａｄ３とは、健常者における筋肉の異化メカニズムにおいて下記の役割を果たしていることが知られている。
（１）ミオスタチンが筋肉細胞表面のレセプターActRIIBに結合して、ActRIIBの細胞内ドメインをリン酸化する。
（２）リン酸化されたActRIIBが、別の細胞表面レセプターActRIBをリン酸化し、更にActRIBとの会合体を形成する。
（３）前記の会合体が、Ｓｍａｄ２及びＳｍａｄ３をリン酸化する。
（４）リン酸化されたＳｍａｄ２及びＳｍａｄ３が、Ｓｍａｄ４と会合体（Ｓｍａｄ２とＳｍａｄ４との会合体、Ｓｍａｄ３とＳｍａｄ４との会合体や、Ｓｍａｄ２とＳｍａｄ３とＳｍａｄ４との会合体）を形成する。
（５）前記の会合体が筋肉細胞の核内へ移行して、筋肉を構成するタンパク質の分解に関わる遺伝子（Atrogin-1及びMuRF-1）の発現を促進する。
ところで、後述の実施例で示されるように、筋萎縮を発症している筋肉細胞では、Ｓｍａｄ２及びＳｍａｄ３の量がミオスタチンからは独立した様式で上昇している。
したがって、本発明のスクリーニング方法は、ミオスタチンを標的とする筋萎縮治療剤とは異なる機序で作用する医薬品の開発に用いることができる。
【００１５】
工程（２）では、Ｓｍａｄ２又はＳｍａｄ３のいずれか一方の量及び／又は活性を測定すればよいが、Ｓｍａｄ３の量及び／又は活性を測定することが好ましい。
また、Ｓｍａｄ２とＳｍａｄ３の両方の量及び／又は活性を測定してもよい。
また、工程（２）では、Ｓｍａｄ２及び／又はＳｍａｄ３（以下、「Ｓｍａｄ２／３」ともいう）の量のみを測定してもよく、活性のみを測定してもよく、量と活性の双方を測定してもよい。
【００１６】
工程（２）で測定する「量」とは、筋肉細胞内のＳｍａｄ２／３の量、すなわち、Ｓｍａｄ２／３のタンパク質としての量をいう。
Ｓｍａｄ２／３の量は、リン酸化されたＳｍａｄ２／３の量として測定してもよい。
【００１７】
Ｓｍａｄ２／３の量は、当該技術分野で一般的に用いられている細胞内タンパク質の定量方法を特に制限なく用いて測定することができる。
例えば、Ｓｍａｄ２／３のタンパク質としての量を直接測定してもよく、当該タンパク質量に対応するＳｍａｄ２／３のｍＲＮＡ量を指標に測定してもよい。
Ｓｍａｄ２／３のタンパク質としての量は、例えば、Ｓｍａｄ２／３に特異的な抗体を用いたウェスタンブロッティングやＥＬＩＳＡ等を使用して測定することができる。
Ｓｍａｄ２／３のｍＲＮＡ量は、例えば、リアルタイムＰＣＲや、リポーター遺伝子アッセイ等を使用して測定することができる。リポーター遺伝子アッセイは、例えば、Ｓｍａｄ２／３をコードする遺伝子の下流にリポーター遺伝子（例えば、ルシフェラーゼ遺伝子）を組み込むことにより、行なうことができる。
【００１８】
Ｓｍａｄ２／３の活性とは、Ｓｍａｄ２／３の転写因子としての活性（タンパク質−タンパク質相互作用活性）をいう。具体的には、筋肉を構成するタンパク質の分解に関わる遺伝子（Atrogin-1及びMuRF-1）の発現を指標に、Ｓｍａｄ２／３の活性を測定することができる。
Ｓｍａｄ２／３の活性は、当該技術分野で一般的に用いられている転写活性の定量方法を特に制限なく用いて測定することができる。具体例としては、リポーターアッセイ法やリアルタイムPCR法等が挙げられる。
【００１９】
工程（３）
工程（３）では、工程（２）の測定結果に基づき、筋肉細胞内のＳｍａｄ２／３の量の上昇を抑制する試験物質、及び／又は、該筋肉細胞内のＳｍａｄ２及び／又はＳｍａｄ３の活性を抑制する試験物質を、筋萎縮の予防剤及び／又は治療剤として選択する。
工程（２）の測定結果と比較される対象（対照）は、工程（１）で用いた試験物質と接触させていない筋肉細胞のＳｍａｄ２／３の量及び／又は活性であってもよく、工程（１）で用いた試験物質とは異なる物質（例えば、Ｓｍａｄ２／３の活性を低下させることが知られている公知物質（例えば、ＳＩＳ３（Smad3 Inhibitor））と接触させた筋肉細胞のＳｍａｄ２／３の活性であってもよい。
「Ｓｍａｄ２／３の量の上昇を抑制する」とは、「Ｓｍａｄ２／３の量を変化させない」ことと、「筋肉細胞内のＳｍａｄ２／３の量を低下させる」こととをいう。
工程（１）で使用した試験物質が、筋肉細胞内のＳｍａｄ２／３の量を変化させなかった場合、当該試験物質は、筋萎縮を予防するための医薬品（例えば、Ｓｍａｄ２／３の量を筋萎縮発症量（発症レベル）未満に維持する医薬品）や、筋萎縮を治療するための医薬品（例えば、筋萎縮の進行を遅延させる医薬品）の候補となる。
工程（１）で使用した試験物質が、筋肉細胞内のＳｍａｄ２／３の量を低下させた場合、当該試験物質は、筋萎縮を予防及び／又は治療するための医薬品（例えば、Ｓｍａｄ２／３のレベルを筋萎縮発症量（発症レベル）未満へと低減する医薬品）の候補となる。
工程（１）で使用した試験物質が、筋肉細胞内のＳｍａｄ２／３の活性を抑制した（低下させた）場合、当該試験物質は、筋萎縮を予防及び／又は治療するための医薬品（例えば、Ｓｍａｄ２／３の活性を筋萎縮が発症する活性（発症レベル）未満へと低減する医薬品）の候補となる。
【００２０】
更に本発明は、上述のスクリーニング方法を行うためのキットに関する。本発明のキットは、筋肉細胞中のＳｍａｄ２／３の量又は活性を測定するための試薬を含む。
上記の試薬としては、筋肉細胞中のＳｍａｄ２／３の量又は活性を測定するために当該技術分野で一般的に用いられているものを特に制限なく用いることができる。例えば、Ｓｍａｄ２／３の量をリアルタイムＰＣＲにより測定する場合には、Ｓｍａｄ２／３のプライマーが試薬として挙げられる。Ｓｍａｄ２／３の量をウェスタンブロッティングやＥＬＩＳＡにより測定する場合には、Ｓｍａｄ２／３に対する特異的抗体が試薬として挙げられる。
また、本発明のキットは、前述の試薬の他、測定手段に固有の試薬、例えば、ウェスタンブロッティングやＥＬＩＳＡでは固相ブロッキング剤等を含むことができる。
更に、本発明のキットは、本発明のスクリーニング方法を実施する手順を記載した説明書（指示書）を含んでいてもよい。
【００２１】
次に、実施例により本発明の効果を具体的に説明するが、本発明は実施例に限定されるものではない。
【実施例】
【００２２】
実施例１：筋萎縮とＳｍａｄ２及びＳｍａｄ３との関係
【００２３】
（１）８週齢のC57/BL6野生型マウスに、坐骨神経切断側（denerve）と非切断側（control）とを作成した。坐骨神経切断により、坐骨神経切断側の骨格筋（腓腹筋）は安静状態となった。坐骨神経切断側と非切断側とを作成したマウス５匹を実験に使用した。
切断処置１週間後に腓腹筋の重量を測定した。坐骨神経切断側の筋肉重量は0.817±0.055ｇ／マウス体重であり、非切断側の筋肉重量は1±0.057ｇ／マウス体重であった。非切断側の筋肉重量を１とした場合の、坐骨神経切断側の相対筋肉重量を図１に示す。
図１に示されるように、座骨神経切断側で有意な筋肉重量の減少が見られた。
【００２４】
（２）上記（１）で処置したマウスの腓腹筋の筋肉組織（坐骨神経切断側及び非切断側）からRNAを抽出し逆転写した後、Atrogin-1及びMuRF-1（いずれも、筋肉を構成するタンパク質の分解に関わる遺伝子）の発現をリアルタイムＰＣＲにより測定した。筋肉細胞において発現が高く、当該技術分野で内部比較コントロールとして一般的に用いられているbeta-actinの発現を、本実施例でも内部比較コントロールとして用いた。
非切断側の各遺伝子の発現量を１とした場合の、坐骨神経切断側の各遺伝子の相対発現量を図２に示す。図２（ａ）はAtrogin-1に関する結果を示し、図２（ｂ）はMuRF-1に関する結果を示す。
図２に示されるように、座骨神経切断側では、Atrogin-1及びMuRF-1の発現が有意に上昇していた。Atrogin-1及びMuRF-1は、いずれも筋肉を構成するタンパク質の分解に関わるので、その過剰発現は筋萎縮につながるものである。
（１）及び（２）の結果は、マウスの坐骨神経切断側では、坐骨神経切断に起因する筋肉の安静状態により、筋萎縮が生じたことを示している。
【００２５】
（３）上記（１）で処置したマウスの腓腹筋の筋肉組織（坐骨神経切断側（Den）及び非切断側（Cont））から、細胞溶解緩衝液（RIPA buffer）を用いて細胞溶解物（lysate）を回収した。細胞溶解物におけるリン酸化Smad2及びリン酸化Smad3 の量と、非リン酸化Smad2及び非リン酸化Smad3 の量とを、ウェスタンブロッティングにより比較した。リン酸化Ｓｍａｄ２の検出には、リン酸化Ｓｍａｄ２に対する抗体（pSmad2/ #3101, Cell Signaling）を使用し、リン酸化Ｓｍａｄ３の検出には、リン酸化Ｓｍａｄ３に対する抗体（pSmad3/ #9520, Cell Signaling）を使用した。また、Ｓｍａｄ２及びＳｍａｄ３の検出には、Ｓｍａｄ２及びＳｍａｄ３に対する抗体（#3102, Cell Signaling）を使用した。
同内容の実験を２組（#1, #2）で施行した。
結果を図３に示す。なお、beta-actinの発現を内部比較コントロールとして用いた。
図３に示されるように、坐骨神経切断側（すなわち、筋萎縮を起こしている筋肉）において、Ｓｍａｄ２及びＳｍａｄ３の発現の増加（タンパク質としての量の増加）が認められた。また、リン酸化Ｓｍａｄ２及びＳｍａｄ３についても、坐骨神経切断側で発現の増加が認められた。
【００２６】
これらの実験結果は、筋萎縮を起こしている筋肉組織から得られた筋肉細胞においてＳｍａｄ２及びＳｍａｄ３の量及び活性が上昇していることを示している。
したがって、筋肉細胞内のＳｍａｄ２及び／又はＳｍａｄ３の量の上昇の抑制及び／又はＳｍａｄ２及び／又はＳｍａｄ３の活性の抑制の有無を指標として、筋萎縮の予防剤及び／又は治療剤をスクリーニングすることができる。
【００２７】
実施例２：筋萎縮におけるＳｍａｄ２及びＳｍａｄ３とミオスタチンとの関係
（１）８週齢のミオスタチンコンディショナルノックアウトマウス (Mstn cKO, Mx Cre/Mstnflox/flox)（５匹）と、コントロールマウス（control, Mstnflox/flox）（５匹）に、polyIpolyCを投与した。なお、polyIpolyCは、Creの発現誘導からミオスタチンを欠損させるために投与した。
投与から３週間後に、各マウスに坐骨神経切断側（denerve）と非切断側（control）とを作成した。坐骨神経切断により、坐骨神経切断側の骨格筋は安静状態となった。
切断処置１週間後に、腓腹筋の重量を測定した。ミオスタチンコンディショナルノックアウトマウスについて、坐骨神経切断側の筋肉重量は0.774±0.068ｇ／マウス体重であり、非切断側の筋肉重量は1±0.063ｇ／マウス体重であった。コントロールマウスについて、坐骨神経切断側の筋肉重量は0.756±0.069ｇ／マウス体重であり、非切断側の筋肉重量は1±0.1ｇ／マウス体重であった。各マウスについて、非切断側の筋肉重量を１とした場合の、坐骨神経切断側の相対筋肉重量を図４に示す。
図４に示されるように、座骨神経切断側における筋肉重量の有意な減少がミオスタチンコンディショナルノックアウトマウス及びコントロールマウスの双方において見られた。
【００２８】
（２）上記（１）で処置したマウスの腓腹筋の筋肉組織（坐骨神経切断側及び非切断側）からRNAを抽出し逆転写した後、Atrogin-1及びMuRF-1（いずれも、筋肉を構成するタンパク質の分解に関わる遺伝子）の発現をリアルタイムＰＣＲにより測定した。beta-actinの発現を内部比較コントロールとして用いた。
各マウスについて、非切断側の各遺伝子の発現量を１とした場合の、坐骨神経切断側の各遺伝子の相対発現量を図５に示す。
図５に示されるように、ミオスタチンコンディショナルノックアウトマウス及びコントロールマウスの双方において、座骨神経切断側では、Atrogin-1及びMuRF-1（いずれも、筋肉を構成するタンパク質の分解に関わる遺伝子）の発現が有意に上昇していた。
【００２９】
（３）上記（１）で処置したミオスタチンコンディショナルノックアウトマウスの腓腹筋の筋肉組織（坐骨神経切断側及び非切断側）から、細胞溶解緩衝液（RIPA buffer）を用いて細胞溶解物（lysate）を回収した。細胞溶解物におけるSmad2及びSmad3の量を、Ｓｍａｄ２及びＳｍａｄ３に対する抗体(#3102, Cell Signaling)を用い、ウェスタンブロッティングにより比較した。
結果を図６に示す。なお、beta-actinの発現を内部比較コントロールとして用いた。
図６に示されるように、ミオスタチンコンディショナルノックアウトマウスの坐骨神経切断側（すなわち、筋萎縮を起こしている筋肉）において、Ｓｍａｄ２及びＳｍａｄ３の発現の増加（タンパク質としての量の増加）が認められた。
（１）〜（３）の結果は、ミオスタチンコンディショナルノックアウトマウス（すなわち、ミオスタチンを発現できないマウス）の坐骨神経切断側（すなわち、筋萎縮を起こしている筋肉）において、Ｓｍａｄ２及びＳｍａｄ３の発現の増加が起きたことを示している。これは、筋萎縮におけるＳｍａｄ２及びＳｍａｄ３のタンパク質の量レベルでの増加は、ミオスタチンに依存しないことを示している。
【００３０】
実施例３：筋萎縮とＳｍａｄ３との関係
【００３１】
（１）８週齢のC57/BL6野生型マウス（WT）（５匹）、Ｓｍａｄ３ノックアウトマウス（Smad3 KO）（５匹）、並びに、Ｓｍａｄ２及びＳｍａｄ３ダブルノックアウトマウス（DKO）（５匹）のそれぞれに、坐骨神経切断側（denerve）と非切断側（control）とを作成した。坐骨神経切断により、坐骨神経切断側の骨格筋は安静状態となった。
切断処置１週間後に、腓腹筋の重量を測定した。
野生型マウス（WT）について、非切断側の筋肉重量を１とした場合の坐骨神経切断側の相対筋肉重量は0.779であった。
Ｓｍａｄ３ノックアウトマウス（Smad3 KO）について、非切断側の筋肉重量を１とした場合の坐骨神経切断側の相対筋肉重量は0.89であった。
Ｓｍａｄ２及びＳｍａｄ３ダブルノックアウトマウス（DKO）について、非切断側の筋肉重量を１とした場合の坐骨神経切断側の相対筋肉重量は1.033であった。
非切断側の筋肉重量を１とした場合の、坐骨神経切断側の相対筋肉重量を図７に示す。
図７に示されるように、Ｓｍａｄ３の発現が抑制されていないマウス（WT）では、座骨神経切断側で有意な筋肉重量の減少が見られた。一方、Ｓｍａｄ３の発現を抑制したマウス（Smad3 KO及びDKO）では、座骨神経切断側における統計学的に有意な筋肉重量の減少は見られなかった。
【００３２】
（２）上記（１）で処置したマウスの腓腹筋の筋肉組織（坐骨神経切断側及び非切断側）からRNAを抽出し逆転写した後、Atrogin-1及びMuRF-1（いずれも、筋肉を構成するタンパク質の分解に関わる遺伝子）の発現をリアルタイムＰＣＲにより測定した。beta-actinの発現を内部比較コントロールとして用いた。
非切断側（control）の各遺伝子の発現量を１とした場合の、坐骨神経切断側（denerve）の各遺伝子の相対発現量を図８に示す。
図８に示されるように、Ｓｍａｄ３の発現が抑制されていないマウス（WT）では、座骨神経切断側において、Atrogin-1及びMuRF-1（いずれも、筋肉を構成するタンパク質の分解に関わる遺伝子）の発現が有意に上昇していた。一方、Ｓｍａｄ３の発現を抑制したマウス（Smad3 KO及びDKO）では、座骨神経切断側における統計学的に有意なAtrogin-1及びMuRF-1の上昇は見られなかった。
【００３３】
上記（１）の結果は、筋萎縮にＳｍａｄ３の量及び活性が関与していることを示している。上記（２）の結果は、筋萎縮つながるAtrogin-1及びMuRF-1の発現量増加に、Ｓｍａｄ３の活性が関与していることを示している。
したがって、Ｓｍａｄ３の量の上昇の抑制又はＳｍａｄ３の活性抑制の有無を指標として、筋萎縮の予防剤及び／又は治療剤をスクリーニングすることができる。
【産業上の利用可能性】
【００３４】
本発明は、筋萎縮を予防又は治療するための医薬品の開発に利用することができる。
【図１】
0006664129.tif 000002
【図２】
0006664129.tif 000003
【図３】
0006664129.tif 000004
【図４】
0006664129.tif 000005
【図５】
0006664129.tif 000006
【図６】
0006664129.tif 000007
【図７】
0006664129.tif 000008
【図８】
0006664129.tif 000009