(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
較正不要濃度分析のための標識不要システムの正規化のための方法であって、
（１）既知の濃度の対照高分子粒子を含んでいる前記高分子粒子のｐＩよりも低いｐＨの溶液を用意するステップと、
（２）前記溶液を負に帯電した光学センサ表面に第１の流量にて接触させて、前記高分子粒子の前記表面への静電的結合を可能にし、第１のセンサグラムを得るステップと、
（３）前記溶液を前記光学センサ表面に第２の流量にて接触させて、前記高分子粒子の前記表面への静電的結合を可能にし、第２のセンサグラムを得るステップと、
（４）前記センサグラムを結合方程式へとフィッティングし、前記対照高分子粒子の測定濃度を明らかにするステップと、
を含んでおり、
前記光学センサ表面には、前記対照高分子粒子のためのリガンドが固定されておらず、
前記接触させるステップは、物質移動による律速のもとで実行される、方法。
【請求項２】
前記同じ光学センサ表面におけるアナライトの後の較正不要濃度分析のために、前記測定された濃度を前記既知の濃度と比較することによって前記センサ表面の補正係数を計算するステップ、をさらに含む、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記負に帯電した光学センサ表面は、カルボキシル基によって官能化されている、請求項１に記載の方法。
【請求項４】
前記負に帯電した光学センサ表面は、カルボキシデキストランによって官能化されている、請求項１に記載の方法。
【請求項５】
ステップ２および３の間に、前記溶液のイオン強度より高いイオン強度の緩衝液で前記光学センサ表面を洗浄することで、前記表面から前記結合した高分子粒子を取り除くステップ、をさらに含む、請求項１に記載の方法。
【請求項６】
ステップ３の後で、前記溶液のイオン強度より高いイオン強度の緩衝液で前記光学センサ表面を洗浄することで、前記表面から前記結合した高分子粒子を取り除く随意によるステップ、をさらに含む、請求項１に記載の方法。
【請求項７】
前記第１および第２の流量は異なる、請求項１に記載の方法。
【請求項８】
前記第１の流量は、約５μｌ／分であり、前記第２の流量は、約１００μｌ／分である、請求項１に記載の方法。
【請求項９】
前記対照高分子粒子は、対照たんぱく質である、請求項１に記載の方法。
【請求項１０】
前記対照高分子粒子は、対照抗体である、請求項１に記載の方法。
【請求項１１】
アナライトの濃度を割り出すための方法であって、
（１）前記アナライトを含んでいる前記アナライトのｐＩよりも低いｐＨの溶液を用意するステップと、
（２）前記溶液を負に帯電した光学センサ表面に第１の流量にて接触させて、前記アナライトの前記表面への静電的結合を可能にし、第１のセンサグラムを得るステップと、
（３）前記溶液を前記負に帯電した光学センサ表面に第２の流量にて接触させて、前記アナライトの前記表面への静電的結合を可能にし、第２のセンサグラムを得るステップと、
（４）前記センサグラムを結合方程式へとフィッティングすることによって、前記アナライトの濃度を割り出すステップと、
を含んでおり、
前記光学センサ表面には、前記アナライトのためのリガンドが固定されておらず、前記
接触させるステップは、物質移動による律速のもとで実行される、方法。
【請求項１２】
ステップ２および３の間に、前記溶液のイオン強度より高いイオン強度の緩衝液で前記光学センサ表面を洗浄することで、前記表面から前記結合したアナライトを取り除くステップ、をさらに含む、請求項１１に記載の方法。
【請求項１３】
ステップ３の後で、前記溶液のイオン強度より高いイオン強度の緩衝液で前記光学センサ表面を洗浄することで、前記表面から前記結合したアナライトを取り除く随意によるステップ、をさらに含む、請求項１１に記載の方法。
【請求項１４】
前記第１および第２の流量は異なる、請求項１１に記載の方法。
【請求項１５】
前記第１の流量は、約５μｌ／分であり、前記第２の流量は、約１００μｌ／分である、請求項１１に記載の方法。
【請求項１６】
別の測定にて前記アナライトの濃度を測定し、測定された濃度を比較するステップ、をさらに含む、請求項１１に記載の方法。
【請求項１７】
前記アナライトは、たんぱく質である、請求項１１に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、光学センサ表面における物質移動（ｍａｓｓ  ｔｒａｎｓｐｏｒｔ）特性の正規化（ｎｏｒｍａｌｉｚａｔｉｏｎ）のための方法に関する。より詳しくは、本発明は、較正不要（ｃａｌｉｂｒａｔｉｏｎ−ｆｒｅｅ）濃度分析のための標識不要（ｌａｂｅｌ−ｆｒｅｅ）システムの正規化、およびアナライト（ａｎａｌｙｔｅ）の濃度を割り出すための方法に関する。さらに、本発明は、この方法の各ステップの実行に有用なキットに関する。
【背景技術】
【０００２】
分子相互作用をリアルタイムで監視することができる分析センサシステム（すなわち、標識不要システム）について、関心が高まっている。これらのシステムは、多くの場合、光バイオセンサにもとづいており、通常は、相互作用分析センサまたは生体特異性相互作用分析センサと呼ばれる。代表的なバイオセンサシステムは、ＧＥ  Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ  Ｌｉｆｅ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ社が販売するＢｉａｃｏｒｅ（登録商標）という計測機器であり、試料中の分子とセンサ表面に固定された分子構造との間の相互作用を検出するために表面プラズモン共鳴（ＳＰＲ）を使用する。Ｂｉａｃｏｒｅ（登録商標）システムにおいては、試料中の特定の分子の存在および濃度だけでなく、例えば分子相互作用に関する会合速度定数および解離速度定数などの追加の相互作用パラメータも、標識を用いることなくリアルタイムで割り出すことができる。装置および理論的背景は、文献（例えば、Ｊｏｎｓｓｏｎ，Ｕ．他、ＢｉｏＴｅｃｈｎｉｑｕｅｓ  １１：６２０〜６２７頁（１９９１年）を参照されたい）において充分に説明されている。通常は、この技法は、センサチップ（フローセル）の特殊な光学センサ表面へとリガンド（ｌｉｇａｎｄ）を固定し、センサチップに関心のアナライトを含む試料の流れを接触させ、次いでリガンドとアナライトとの間の結合によって生じるセンサチップの表面光学特性の変化を測定することを含む。ＳＰＲのさらなる詳細については、米国特許第５，３１３，２６４号明細書、米国特許第５，５７３，９５６号明細書、および米国特許第５，６４１，６４０号明細書も参照される。
【０００３】
較正不要濃度分析（ＣＦＣＡ）は、試験の実行時に評価変数としてもたらされる測定された物質移動特性ならびに拡散係数および分子量についての値から、アナライトの濃度を計算する。評価は、物質移動成分を含む相互作用のカイネティクス（ｋｉｎｅｔｉｃｓ）のモデルへのセンサグラム（ｓｅｎｓｏｒｇｒａｍ）データのフィッティングにもとづく。物質移動パラメータは、与えられた拡散係数、フローセル特性、および分子量から計算される。全体的にフィッティングされた変数として設定されたアナライト濃度で、アナライトの未知の濃度を明らかにすることができる。ＣＦＣＡに関して、フローセル特性は個体間で変わる可能性があり、これを固定されたリガンドと既知の濃度のアナライトとの間の相互作用を使用することによって補正することができる。異なるチップ個体の相違が、理論的には、大きな変動を単独で引き起こす可能性がある。そのような変動は、補正が困難である可能性があり、その理由は、補正によってチップが消耗するからである。
【０００４】
したがって、プロセスを改善し、チップを消費することのない補正によって異なるチップの間の変動を軽減する全体的な結合手順について、ニーズが存在する。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００５】
【特許文献１】米国特許出願公開第２０１４／１４７９３７号明細書
【発明の概要】
【０００６】
本明細書に開示される内容は、フローセルにおける光学検出面の物質移動特性の正規化のための静電的結合の新規な使用を含む。本方法は、フローセルの物質移動特性を特徴付けるために、ｐＩを下回るｐＨおよび低いイオン強度において生じる例えばＢｉａｃｏｒｅセンサチップ（ＣＭ５、ＣＭ７、ＣＭ４、ＣＭ３、およびＣ１）の光学検出面のカルボキシデキストラン表面への正に帯電した高分子粒子の静電的結合を使用する。静電的に結合した高分子粒子は、生理学的なイオン強度を有する緩衝液がチップを覆って流されるときに洗い流される。そのような静電的な結合を、ここでは、アナライトの濃度の測定に使用することもできる。さらに、この方法の測定は、アナライトの活性濃度に依存しないため、分光法または他の活性に依存しない濃度測定方法と併せたＣＦＣＡの精度の測定または設定に使用することも可能である。
【０００７】
このように、本発明の第１の態様は、較正不要濃度分析のための標識不要システムの正規化のための方法であって、以下の並びのステップ、すなわち
（１）既知の濃度の対照高分子粒子を含んでいる前記高分子粒子たんぱく質のｐＩよりも低いｐＨおよび低イオン強度の溶液を用意するステップと、
（２）前記溶液を負に帯電した光学センサ表面に第１の流量にて接触させて、前記高分子粒子の前記表面への静電的結合を可能にし、第１のセンサグラムを得るステップと、
（３）前記溶液を前記光学センサ表面に第２の流量にて接触させて、前記高分子粒子の前記表面への静電的結合を可能にし、第２のセンサグラムを得るステップと、
（４）前記センサグラムを結合方程式へとフィッティングし、前記対照高分子粒子の測定濃度を明らかにするステップと、
を含んでおり、
前記光学センサ表面には、前記対照高分子粒子のためのリガンドが固定されておらず、前記接触させるステップは、物質移動による律速のもとで実行される、方法を提供することである。
【０００８】
特定の実施形態において、対照高分子粒子は、濃度系列にてもたらされ、正規化は、一連の試料濃度と光学センサ表面との間の静電的結合を測定することによって達成される。
【０００９】
特定の実施形態において、光学センサ表面は、エバネッセントは検出にもとづく検出器の一部である。好ましくは、光学センサ表面は、表面プラズモン共鳴にもとづく検出器の一部である。
【００１０】
特定の実施形態において、高分子粒子は、たんぱく質である。
【００１１】
本発明の第２の態様は、アナライトの濃度を割り出すための方法であって、
１）アナライトを含んでいる前記アナライトのｐＩよりも低いｐＨおよび低イオン強度の溶液を用意するステップと、
２）前記溶液を負に帯電した光学センサ表面に第１の流量にて接触させて、前記アナライトの前記表面への静電的結合を可能にし、第１のセンサグラムを得るステップと、
３）前記溶液を前記負に帯電した光学センサ表面に第２の流量にて接触させて、前記アナライトの前記表面への静電的結合を可能にし、第２のセンサグラムを得るステップと、
４）前記センサグラムを結合方程式へとフィッティングすることによって、前記アナライトの濃度を割り出すステップと、
を含んでおり、
前記光学センサ表面には、前記対照高分子粒子のためのリガンドが固定されておらず、前記接触させるステップは、物質移動による律速のもとで実行される、方法を提供することである。
【００１２】
特定の実施形態において、アナライトは、関心のたんぱく質である。特定の実施形態において、たんぱく質アナライトは、濃度系列にてもたらされ、濃度測定は、希釈された試料の系列のいくつかと光学センサ表面との間の静電的結合を測定することによって達成される。
【００１３】
特定の実施形態において、光学センサ表面は、エバネッセントは検出にもとづく検出器の一部である。好ましくは、光学センサ表面は、表面プラズモン共鳴にもとづく検出器の一部である。
【００１４】
本発明の第３の態様は、既知の濃度の既知の高分子粒子の溶液と、前記高分子粒子の溶液の希釈のための低ｐＨおよび低イオン強度の緩衝液と、指示マニュアルと、を含んでおり、アナライトの較正不要濃度分析のための光学センサ表面の正規化のための標識不要システムにおける使用に適したキットを提供することである。
【００１５】
特定の実施形態において、本キットは、光学センサ表面に付着した高分子粒子を洗い落とすためのより高いイオン強度の緩衝液をさらに含む。
【００１６】
特定の実施形態において、本キットにおける高分子粒子の溶液は、高分子粒子のｐＩよりも低いｐＨを有する。
【００１７】
特定の実施形態において、既知の高分子粒子は、たんぱく質である。
【００１８】
本発明のさらなる詳細および利点が、下記の説明および特許請求の範囲から明らかになるであろう。
【図面の簡単な説明】
【００１９】
【図１】別々のサイクルにおいて５および１００μｌ／分の流量で行われたＢｉａｃｏｒｅ光学センサ表面における抗β２μの静電的結合から得られたセンサグラムを示している。
【発明を実施するための形態】
【００２０】
分析センサシステムのフローセルにおける物質移動特性を評価するために、種々の流量において表面への初期のアナライト結合速度を記録しなければならない。結合速度は、物質移動によって律速される条件下では、流量に依存する。本発明は、標識不要検出システムを正規化し、あるいは未知の濃度のアナライトの濃度を測定するために、既知の濃度のアナライトとセンサチップの光学センサ表面との間の物質移動によって律速される結合を利用する。そのような結合は、センサチップ上の陰イオン性の負に帯電したマトリクスへの陽イオン性のアナライトの静電的な引き付けによって達成される。大部分の高分子粒子（例えば、たんぱく質）は、緩衝液のｐＨがそれらの等電点を下回るとき、陽イオン性になる。試料溶液におけるイオン強度が、たんぱく質およびチップマトリクスの電荷を遮蔽しないように充分に低い（〜１０ｍＭ）場合、たんぱく質は、光学センサ表面へと結合する。この静電的結合が、フローセルにおける現在の物質移動特性を特徴付けるために、厳密に物質移動によって律速された条件のもとで、リアルタイムで注視される。
【００２１】
特定の実施形態において、厳密に物質移動によって律速された条件のもとでの静電的結合が、例えばオフ／異なるフローセルの間などで測定された濃度の精度を正規化するために使用される。良好に特徴付けられた条件（ｐＨ、イオン強度、濃度）のもとでの良好に特徴付けられた高分子粒子（例えば、たんぱく質）が、適切なソフトウェアツールを使用してＣＦＣＡのための分析センサシステムを正規化するために使用される。さらに、測定がアナライトの活性濃度に依存しないため、分光法または他の活性に依存しない濃度測定法との関連におけるＣＦＣＡの精度を測定または設定するために使用することができる。この方法は、ＣＦＣＡを多チャネルシステムに関して実現可能かつ正確にするためにきわめて重要であり、なぜならば、そのようなシステムにおいて、すべてのチャネルを高い精度を達成すべく正規化することが必要だからである。
【００２２】
一実施形態においては、較正不要濃度分析のための標識不要システムの正規化のための方法であって、以下の並びのステップ、すなわち
（１）既知の濃度の対照高分子粒子を含んでいる前記高分子粒子のｐＩよりも低いｐＨおよび低イオン強度の溶液を用意するステップと、
（２）前記溶液を負に帯電した光学センサ表面に第１の流量にて接触させて、前記高分子粒子の前記表面への静電的結合を可能にし、第１のセンサグラムを得るステップと、
（３）前記溶液を前記光学センサ表面に第２の流量にて接触させて、前記高分子粒子の前記表面への静電的結合を可能にし、第２のセンサグラムを得るステップと、
（４）前記センサグラムを結合方程式へとフィッティングし、前記対照高分子粒子の測定濃度を明らかにするステップと、
を含んでおり、
前記光学センサ表面には、前記対照高分子粒子のためのリガンドが固定されておらず、前記接触させるステップは、物質移動による律速のもとで実行される、方法が提供される。
【００２３】
「対照高分子粒子」は、正に帯電し、たんぱく質のような既知の拡散係数を有しており、低いｐＨでの測定において安定である任意の高分子粒子であってよい。高分子粒子は、これらに限られるわけではないが、たんぱく質、合成分子、多糖、アプタマー、または核酸分子であってよい。好ましくは、対照高分子粒子は、約５０００ダルトン〜約５００，０００ダルトンの分子量を有する。好ましくは、対照高分子粒子は、たんぱく質である。例として、対照たんぱく質は、モノクローナル抗体であってよい。
【００２４】
高分子粒子は、既知の濃度を有する。特定の実施形態において、既知の濃度は、０．１〜２０ｎＭの範囲にある。より好ましい実施形態において、既知の濃度は、１〜２０ｎＭの範囲にある。特定の実施形態において、高分子粒子は、濃縮させられた試料からのものであってよく、使用に先立って希釈される。高分子粒子の適切な濃度は、静電的結合が適切な初期結合速度およびＱＣ比に達し、異なる高分子粒子において変わることを保証する。
【００２５】
高分子粒子、例えばたんぱく質が、たんぱく質のｐＩよりも低いｐＨを有する溶液内に存在する場合、たんぱく質は、正に帯電する。ｐＩは、たんぱく質の正味の電荷がゼロとなるｐＨである。ｐＩよりも高いｐＨにおいて、たんぱく質上の酸性基が脱プロトン化し、たんぱく質に正味の負の電荷をもたらす。ｐＩよりも低いｐＨにおいて、たんぱく質上の塩基性基がプロトン化し、たんぱく質に正味の正の電荷をもたらす。
【００２６】
特定の実施形態において、対照高分子粒子は、低いイオン強度を有する溶液中に存在する。低いイオン強度は、約０〜５０ｍＭの間、好ましくは約５〜２０ｍＭの間、より好ましくは約１０ｍＭのイオン強度を意味する。
【００２７】
特定の実施形態において、光学センサ表面は、負に帯電させられる。光学センサ表面を、例えば、カルボキシル基で官能化させることができる。低いイオン強度において、正に帯電した高分子粒子（例えば、たんぱく質）は、カルボキシル基が負であり、たんぱく質が正であって、両者が引き寄せられ、この引き寄せを遮る充分な他のイオンが周囲に存在しないため、カルボキシル基によって官能化された表面に結合すると考えられる。好ましくは、光学センサ表面は、カルボキシデキストランで官能化させられる。より好ましくは、光学センサ表面は、カルボキシメチルで修飾されたデキストランで官能化させられる。
【００２８】
きわめて低いｐＨにおいて、酸性イオンは、光学センサ表面の負の電荷をプロトン化させ始め、表面の容量を低下させる。したがって、好ましいｐＨは、対照高分子粒子（または、アナライト）のｐＩよりも低いが、センサ表面の容量の喪失を引き起こすようには低すぎないｐＨである。特定の実施形態において、好ましいｐＨは、ｐＨ３〜７の間である。
【００２９】
特定の実施形態において、較正不要濃度分析のための標識不要システムの正規化のための方法は、同じ光学センサ表面におけるアナライトの後の較正不要濃度分析のために、測定された濃度を既知の濃度と比較することによってセンサ表面の補正係数を計算するステップをさらに含む。特定の実施形態において、補正係数は、測定された濃度に対する既知の濃度の比である。したがって、後に測定される任意のアナライトの濃度を、補正係数を使用して調節することによって、真の濃度に到達することができる。
【００３０】
特定の実施形態において、較正不要濃度分析のための標識不要システムの正規化のための方法は、ステップ２および３の間に、より高いイオン強度の緩衝液で光学センサ表面を洗浄することで、表面から結合した高分子粒子を取り除くステップをさらに含む。特定の他の実施形態において、本方法は、ステップ３の後で、より高いイオン強度の緩衝液で光学センサ表面を洗浄することで、結合した高分子粒子を表面から取り除くステップをさらに含む。より高いイオン強度の緩衝液は、対照高分子粒子の溶液のイオン強度よりも高いイオン強度を有する。したがって、特定の実施形態において、より高いイオン強度は、約５０〜５００ｍＭであってよい。好ましくは、緩衝液のイオン強度は、１５０〜１８０ｍＭなど、約１００〜２００ｍＭであってよい。
【００３１】
特定の実施形態において、第１および第２の流量は異なる。特定の実施形態において、第１の流量は、約５〜２０μｌ／分であってよく、第２の流量は、約５０〜１００μｌ／分であってよい。他の実施形態において、第１の流量は、約５０〜１００μｌ／分であってよく、第２の流量は、約５〜２０μｌ／分であってよい。好ましくは、第１の流量は、約５μｌ／分であってよく、第２の流量は、約１００μｌ／分であってよい。
【００３２】
特定の実施形態においては、厳密に物質移動によって律速された条件のもとでの静電的結合が、関心のアナライトの濃度を測定するために使用される。そのような濃度を、充分に特徴付けられた条件（ｐＨ、イオン強度、濃度希釈）のもとで、適切なソフトウェアツールで較正不要濃度分析によって分析センサシステムを
使用して得ることができる。光学センサ表面にリガンドを存在させて得られる濃度測定と異なり、測定は、アナライトとリガンドとの間の結合を必要としない。したがって、測定は、「活性な」（すなわち、リガンドに結合できる）アナライトと、不活性なアナライトとを区別しない。すなわち、「活性」濃度と比べて、総濃度が測定される。
【００３３】
このように、一実施形態においては、アナライトの濃度を割り出すための方法であって、
（１）前記アナライトを含んでいる前記アナライトのｐＩよりも低いｐＨおよび低イオン強度の溶液を用意するステップと、
（２）前記溶液を負に帯電した光学センサ表面に第１の流量にて接触させて、前記アナライトの前記表面への静電的結合を可能にし、第１のセンサグラムを得るステップと、
（３）前記溶液を前記負に帯電した光学センサ表面に第２の流量にて接触させて、前記アナライトの前記表面への静電的結合を可能にし、第２のセンサグラムを得るステップと、
（４）前記センサグラムを結合方程式へとフィッティングすることによって、前記アナライトの濃度を割り出すステップと、
を含んでおり、
前記光学センサ表面には、前記対照高分子粒子のためのリガンドが固定されておらず、前記接触させるステップは、物質移動による律速のもとで実行される、方法が提供される。
【００３４】
特定の実施形態において、本方法は、ステップ２および３の間に、より高いイオン強度の緩衝液で光学センサ表面を洗浄することで、結合したアナライトを表面から取り除くステップをさらに含む。
【００３５】
特定の実施形態において、本方法は、ステップ３の後で、より高いイオン強度の緩衝液で光学センサ表面を洗浄することで、結合したアナライトを表面から取り除く随意によるステップをさらに含む。
【００３６】
特定の実施形態において、第１および第２の流量は異なる。特定の実施形態において、第１の流量は、約５〜２０μｌ／分であってよく、第２の流量は、約５０〜１００μｌ／分であってよい。他の実施形態において、第１の流量は、約５０〜１００μｌ／分であってよく、第２の流量は、約５〜２０μｌ／分であってよい。好ましくは、第１の流量は、約５μｌ／分であってよく、第２の流量は、約１００μｌ／分であってよい。
【００３７】
特定の実施形態において、本方法は、別の測定でアナライトの濃度を測定し、測定された濃度を比較するステップをさらに含む。特定の実施形態において、アナライトの濃度の別の測定は、たんぱく質の分光光度計を使用する２８０ｎｍにおける吸光度など、伝統的な方法である。
【００３８】
特定の実施形態において、アナライトは、溶液中の正に帯電した化合物または生体分子などの任意の高分子粒子であってよい。高分子粒子は、例えば、たんぱく質、多糖、核酸分子、などであってよい。特定の好ましい実施形態において、アナライトは、抗体などのたんぱく質またはウイルス粒子である。
【００３９】
高分子粒子の溶液は、使用に先立って順次に希釈される。高分子粒子の適切な濃度は、静電的結合が適切な初期結合速度およびＱＣ比に達し、異なる高分子粒子において変わることを保証する。適切な希釈を、センサグラムを１：１の相互作用カイネティクスモデル（下記を参照）へとフィッティングすることによって決定することができる。
【００４０】
特定の実施形態においては、厳密に物質移動によって律速された条件のもとでの静電的結合が、たんぱく質製剤の活性を評価するために使用される。総濃度が上述のように測定された後で、アナライトの活性濃度が、（例えば、並列なフローセルにおいて）固定されたリガンドの存在下でＣＦＣＡにて測定される。この組み合わせによって、製剤における活性の程度を明らかにすることができる。
【００４１】
以下の一般的原理が、本発明のすべての態様について適用可能である。
【００４２】
表面結合相互作用を、いくつかの異なる相互作用分析技法を使用して特徴付けることができる。市販のバイオセンサとして、表面プラズモン共鳴（ＳＰＲ）にもとづき、リアルタイムでの表面相互作用の監視を可能にする上述のＢｉａｃｏｒｅ（登録商標）システム計測機器が挙げられる。
【００４３】
ＳＰＲの現象は、周知である。ＳＰＲは、異なる屈折率を有する２つの媒質の間の界面において光が特定の条件下で反射させられるときに生じ、この界面は、金属膜で被覆され、典型的には銀または金で被覆されている。Ｂｉａｃｏｒｅ（登録商標）計測機器において、媒質は、試料ならびにマイクロ流体フローシステムによって試料が接触させられるセンサチップのガラスである。金属膜は、チップ表面上の金の薄層である。ＳＰＲは、特定の反射角度において反射光の強度の低下を引き起こす。この反射光強度が最小となる角度は、反射光と反対側（Ｂｉａｃｏｒｅ（登録商標）システムにおいては、試料側）の表面付近の屈折率につれて変化する。
【００４４】
試料中の分子がセンサチップ表面に結合すると、濃度ひいては表面における屈折率が変化し、ＳＰＲ応答が検出される。相互作用の過程における応答を時間に対してプロットすることにより、相互作用の進展に関する定量的尺度がもたらされる。そのようなプロットは、通常は、センサグラムと呼ばれる。Ｂｉａｃｏｒｅ（登録商標）システムにおいて、ＳＰＲ応答値は、レゾナンスユニット（ＲＵ）を単位として表される。１ＲＵは、反射光強度が最小となる角度の０．００００１°の変化を表し、これは大部分のたんぱく質において、センサ表面における約１ｐｇ／ｍｍ2の濃度変化にほぼ等しい。アナライトを含有する試料がセンサ表面に接触するとき、センサ表面は、「会合」と呼ばれる段階にてアナライトと相互作用する。この段階は、試料が最初にセンサ表面に接触させられるときのＲＵの増加として、センサグラム上に示される。反対に、「解離」は、通常は、試料の流れを例えば緩衝液の流れで置き換えたときに生じる。この段階は、表面に結合したリガンドからアナライトが解離するときの時間につれてのＲＵの減少として、センサグラム上に示される。
【００４５】
較正不要濃度分析は、試験の実行時に評価変数としてもたらされる測定された物質移動特性ならびに拡散係数および分子量についての値から、アナライトの濃度を計算する。一例において、評価は、与えられた拡散係数、フローセル特性、および分子量から計算される物質移動パラメータ、ならびに全体的にフィッティングされた変数として設定されるアナライト濃度における１：１の相互作用カイネティクスのモデルへのセンサグラムデータのフィッティングにもとづく。
【００４６】
フローセルおよびセンサ表面における事象を、次のように表現することができる。
【００４７】
例えばバルク（Ａbulk）中のたんぱく質などの高分子粒子のチップ表面（Ｂ）への結合は、２段階のプロセスである。第１の段階において、バルクからのたんぱく質が、物質移動係数ｋmにて表面（Ａsurf）へと運ばれ、第２の段階において、ＡsurfとＢとの間の結合が、会合定数ｋaおよび解離定数ｋdにて生じ、複合体ＡＢが形成される。
【００４８】
Ａbulkのセンサ表面への移動が、ＡsurfのＢへの結合よりも遅い場合、物質移動による律速が生じ、アナライト濃度を測定することができる。
【００４９】
【数１】
0006662525.tif 000002
【００５０】
実験の手順は、少なくとも２つの大きく離れた流量における応答の監視および適切なモデルによる評価を含む。
【００５１】
そのような実験から得られた曲線（すなわち、センサグラム）の結合段階が、物質移動の項（ｋt）による２分子相互作用モデルへとフィッティングされ、アナライト濃度（Ｃｏｎｃ）がフィッティングされたパラメータである。
【００５２】
Ａ（溶液）＝Ｃｏｎｃ
Ａ［０］＝０
ｄＡ／ｄｔ＝ｋｔ＊（Ｃｏｎｃ−Ａ）−（ｋａ＊Ａ＊Ｂ−ｋｄ＊ＡＢ）
Ｂ［０］＝ＲＭａｘ
ｄＢ／ｄｔ＝−（ｋａ＊Ａ＊Ｂ−ｋｄ＊ＡＢ）
ＡＢ［０］＝０
ｄＡＢ／ｄｔ＝（ｋａ＊Ａ＊Ｂ−ｋｄ＊ＡＢ）
総応答：
ＡＢ＋ＲＩ
このモデルにおいて、物質移動定数ｋtの値は、以下の式に従って計算される定数として導入される。
【００５３】
【数２】
0006662525.tif 000003
【００５４】
この式におけるパラメータを、たんぱく質依存（ｐｒｏｔｅｉｎ−ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ）および計測機器依存（ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔ−ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ）へとグループ化すると、以下が得られる。
【００５５】
【数３】
0006662525.tif 000004
【００５６】
または
【００５７】
【数４】
0006662525.tif 000005
【００５８】
較正不要濃度分析のための作業は、異なる流量で実行される各々の試料についての少なくとも２回のサイクルを必要とする。各々の流量におけるブランク（ｂｌａｎｋ）サイクルは、随意である。
【００５９】
最低および最高の流量（例えば、それぞれ５および１００μｌ／分）におけるセンサグラムが、充分に離れていることが重要である。曲線が互いに近く、あるいは一致する場合、それは信頼できる濃度測定のための結合における充分な物質移動による律速が、存在しないことを示している。充分な物質移動による律速は、一般に、約０．２またはそれよりも大きいＱＣ比の値によって示される。低ＱＣ比の試料は、用心して取り扱われるべきである。
【００６０】
ＱＣ比は、物質移動による律速の程度を反映する指数Ｑから以下のように計算される（初期の結合は、ＲＵ／秒を単位とするセンサグラムの傾きによって測定される）。
【００６１】
指数Ｑ＝（大流量における初期の結合／小流量における初期の結合）＊（小流量／大流量）1/3
完全な物質移動による律速の条件下で、結合速度は、流量の立方根に比例し、したがって指数Ｑは、１という値を有する。物質移動による律速が存在しない場合、結合速度は、流量とは無関係であり、したがってＱは、流量比の立方根に等しい値を有する。したがって、Ｑについて考えられる理論値の範囲は、使用される流量に依存する（５および１００μ／分の流量の場合、値は０．３７）。ＱＣ比は、０〜１の尺度へと正規化されたＱについての測定値から計算される。
【００６２】
Ｑmax＝１
Ｑmin＝（小流量／大流量）1/3
ＱＣ比＝（Ｑmeasured−Ｑmin）／（Ｑmax−Ｑmin）
場合により、測定された結合速度が、大流量における結合速度よりも低くなり、ＱＣ比について負の値がもたらされる可能性がある。これは、センサグラムが乱された場合や、実験変動の結果として結合速度が流量に左右されない（したがって、結合速度が理論的には等しくなり、ＱＣ比が０となる）場合に生じ得る。
【００６３】
測定された濃度は、フィッティングから計算された値であり、実際の濃度は、元の試料における濃度をもたらすように測定された濃度と希釈係数とを乗算することによって得られる。特定の実施形態においては、本発明の実施形態に従って得られる補正係数が、アナライトの実際の濃度の計算において適用される。
【００６４】
上記の説明は、Ｂｉａｃｏｒｅ（登録商標）システムに多少なりとも関連して行われているが、本発明を、例えば放射性標識、発色団、フルオロフォア、光を散乱させるマーカ、電気化学的活性マーカ（ｅｌｅｃｔｒｏｃｈｅｍｉｃａｌｌｙ  ａｃｔｉｖｅ  ｍａｒｋｅｒ）（例えば、電界効果トランジスタにもとづく電位差測定）、電場活性マーカ（ｅｌｅｃｔｒｉｃ  ｆｉｅｌｄ  ａｃｔｉｖｅ  ｍａｒｋｅｒ）（電気刺激誘導放出（ｅｌｅｃｔｒｏ−ｓｔｉｍｕｌａｔｅｄ  ｅｍｉｓｓｉｏｎ））、磁気活性マーカ（ｍａｇｎｅｔｉｃａｌｌｙ  ａｃｔｉｖｅ  ｍａｒｋｅｒ）、熱活性マーカ（ｔｈｅｒｍｏａｃｔｉｖｅ  ｍａｒｋｅｒ）、化学発光部分（ｃｈｅｍｉｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｔ  ｍｏｉｅｔｙ）、または遷移金属などの標識に頼る技法、ならびにいわゆる標識不要検出システムなど、固相担体表面における結合相互作用を検出するための多数の他の技法に関連して使用できることを、理解すべきである。しかしながら、リアルタイム検出システム、とくには化学センサまたはバイオセンサ技術にもとづく検出システムが好ましい。
【００６５】
バイオセンサは、広くには、分子認識のための構成要素（例えば、抗体が固定された層）を固体（ｓｏｌｉｄ  ｓｔａｔｅ）の物理化学的トランスデューサに直接組み合わせ、あるいはトランスデューサと協働する可動な担体ビーズ／粒子によって組み合わせて使用する装置と定義される。そのようなセンサは、典型的には、例えば固定層の質量、屈折率、または厚さの変化を検出する標識不要の技法にもとづくが、或る種の標識に頼るセンサも存在する。典型的なセンサ検出技法として、これらに限られるわけではないが、光学的方法、熱光学的方法、ならびに圧電または音波（例えば、表面弾性波（ＳＡＷ）および水晶振動子マイクロバランス（ＱＣＭ）など）による方法などの質量検出法や、電位差測定による（ｐｏｔｅｎｔｉｏｍｅｔｒｉｃ）方法、電気伝導度測定による（ｃｏｎｄｕｃｔｏｍｅｔｒｉｃ）方法、電流測定による（ａｍｐｅｒｏｍｅｔｒｉｃ）方法、ならびに容量／インピーダンス法などの電気化学的方法が挙げられる。光学的検出方法に関しては、代表的な方法として、角度分解、波長分解、偏光分解、または位相分解であり得る外部反射による方法および内部反射による方法の両方を含む反射光学的方法などの質量表面濃度を検出する方法が挙げられ、例えば、どちらも表面プラズモン共鳴（ＳＰＲ）によるエバネッセント場の増強を含み得るエバネッセント波偏光解析法（ｅｖａｎｅｓｃｅｎｔ  ｗａｖｅ  ｅｌｌｉｐｓｏｍｅｔｒｙ）およびエバネッセント波分光法（ｅｖａｎｅｓｃｅｎｔ  ｗａｖｅ  ｓｐｅｃｔｒｏｓｃｏｐｙ）（ＥＷＳ、または内部反射分光法（Ｉｎｔｅｒｎａｌ  Ｒｅｆｌｅｃｔｉｏｎ  Ｓｐｅｃｔｒｏｓｃｏｐｙ））、ブリュースター角屈折率測定法（Ｂｒｅｗｓｔｅｒ  ａｎｇｌｅ  ｒｅｆｒａｃｔｏｍｅｔｒｙ）、臨界角屈折率測定法（ｃｒｉｔｉｃａｌ  ａｎｇｌｅ  ｒｅｆｒａｃｔｏｍｅｔｒｙ）、漏れ全反射（ｆｒｕｓｔｒａｔｅｄ  ｔｏｔａｌ  ｒｅｆｌｅｃｔｉｏｎ）（ＦＴＲ）、散乱全内部反射（ｓｃａｔｔｅｒｅｄ  ｔｏｔａｌ  ｉｎｔｅｒｎａｌ  ｒｅｆｌｅｃｔｉｏｎ）（ＳＴＩＲ）（散乱増強標識、光導波路センサを含み得る）、外部反射イメージング、臨界角分解イメージング、ブリュースター角分解イメージング、ＳＰＲ角分解イメージングなどのエバネッセント波にもとづくイメージングが挙げられる。さらに、例えば表面増強ラマン分光法（ＳＥＲＳ）、表面増強共鳴ラマン分光法（ＳＥＲＲＳ）、エバネッセント波蛍光（ＴＩＲＦ）、およびリン光にもとづく光度測定およびイメージング／顕微鏡法の「それ自体」または反射による方法との組み合わせ、ならびに導波路干渉計、導波路漏れモード分光法、反射干渉分光法（ＲＩｆＳ）、透過干渉法、ホログラフィー分光法、および原子間力顕微鏡法（ＡＦＭ）に、言及することができる。
【００６６】
なかでも、今日市販されているものは、ＳＰＲにもとづくバイオセンサシステムである。このようなＳＰＲバイオセンサの例として、上述のＢｉａｃｏｒｅ（登録商標）計測機器が挙げられる。Ｂｉａｃｏｒｅ（登録商標）計測機器およびＳＰＲの現象についての技術的側面の詳細な検討を、米国特許第５，３１３，２６４号明細書において見つけることができる。バイオセンサの検出面のマトリクス被覆についてのさらに詳細な情報は、例えば米国特許第５，２４２，８２８号明細書および第５，４３６，１６１号明細書に提示されている。加えて、Ｂｉａｃｏｒｅ（登録商標）計測機器に関連して使用されるバイオセンサチップの技術的側面についての詳細な検討を、米国特許第５，４９２，８４０号明細書において見つけることができる。上述の米国特許の全開示内容は、本明細書に援用される。
【００６７】
例えば、上述のＢｉａｃｏｒｅ（登録商標）計測機器において使用されるタイプのフローセルにおいて本発明の方法を実行することが、多くの場合に便利かもしれない。本発明において使用することができる他のフローセルも、当業者にとって周知であり、本明細書において説明する必要もない。
【００６８】
用語「固相担体（ｓｏｌｉｄ  ｓｕｐｐｏｒｔ）」が、本明細書において使用されるとき、広義に解釈されるべきであり、固相（可撓または剛体）の基板であって、この基板上でこの基板との分子相互作用を選択された特定の検出システムによって検出することができるあらゆる基板を含むように意図されていることに、注意すべきである。基板は、生物学的基板、非生物学的基板、有機基板、無機基板、またはこれらの組み合せであってよく、円盤、球、円、などを含む任意の便利な形状を有する粒子、紐、沈殿物、ゲル、シート、管、球、容器、毛管、パッド、切片、フィルム、プレート、スライドなどの形態であってよい。基板表面は、任意の二次元構成を有してよく、例えばステップ、リッジ、キンク、テラスなどを含んでよく、基板の他の部分の材料とは異なる材料の層の表面であってよい。
【実施例】
【００６９】
ＣＦＣＡを、以下のステップによる抗β２μ抗体の濃度の割り出しに使用した。
【００７０】
１．抗β２μを、１ｇ／ｌのストック溶液から１０ｍＭの酢酸  ｐＨ５．０において１０ｍｇ／ｌへと希釈し、これは６７ｎＭに相当すると計算される（希釈係数１）。
【００７１】
２．溶液を、酢酸緩衝液で５および２５倍にさらに希釈した。
【００７２】
３．すべての希釈物を、リガンドのないセンサチップＣＭ５への結合を監視する別々のサイクルにおいて５および１００μｌ／分の流量でＢｉａｃｏｒｅ  Ｔ２００のためのＣＦＣＡ標準Ｂｉａｃｏｒｅ法（Ｂｉａｃｏｒｅ  Ｔ２００ソフトウェアマニュアルを参照）に従って試験した。酢酸緩衝液のみによるサイクルを、対照として実行し、対応する抗β２μサイクルから引き算した。
【００７３】
４．Ｄ係数４．５７８Ｅ−１１（抗体に典型的）および分子量１５００００Ｄａを入力し、ＱＣ比をチェックした。
【００７４】
５．各々の希釈物の２つの流量からの重ねたセンサグラムへのフィッティングを実行した。導入前ベースラインおよび導入後の最初の１５秒を使用した。
【００７５】
６．ソフトウェアアルゴリズムは、入力された希釈係数を考慮に入れて割り出された濃度を提示する。
【００７６】
初期の結合（導入開始後の最初の１５秒のＲＵ／秒を単位とするセンサグラムの傾き）は、３つのすべての希釈物について低流量において充分であり、ＱＣ比から判定されるとおりに２つの流量の間の初期の結合速度の差もそのようであった。平均濃度は、２６ｎＭになると割り出された。
【００７７】
要約すると、この結果は、本方法がＣＦＣＡ評価に適したデータ品質をもたらすことを示している（図１）。縦軸（ｙ軸）は、応答（ここで、単位はレゾナンスユニット（ＲＵ））を表し、横軸（ｘ軸）は、時間（ここで、単位は秒（ｓ））を表している。この図は、希釈係数５からのデータを示している。
【００７８】
本発明の特定の実施形態を図示および説明したが、本発明の教示から離れることなく、変更および修正を行うことが可能であることは、当業者にとって自明であろう。以上の説明および添付の図面において説明された主題は、あくまでも例示として提示されているにすぎず、本発明を限定するものとして提示されているのではない。本発明の実際の技術的範囲は、以下の特許請求の範囲に、先行技術にもとづく適切な見方にて眺めるときに定められるように意図されている。
【図１】
0006662525.tif 000006