(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
核酸試料中の識別対象の塩基が５−ヒドロキシメチルシトシンであるか否かを判定する方法であって、
前記核酸試料である第一核酸と、５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基を有する第二核酸と、前記第一核酸と相補的な領域及び前記第二核酸と相補的な領域を有する第三核酸とをハイブリダイズさせ、前記塩基と前記５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基とを近接させる工程（ａ）と、
前記塩基と前記５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基との結合反応を行い、前記塩基が５−ヒドロキシメチルシトシンであった場合には、前記第一核酸と前記第二核酸とが結合した第四核酸が生成される工程（ｂ）と、
前記第四核酸を回収する工程（ｃ）と、
回収した前記第四核酸を前記第一核酸と前記第二核酸とに開裂させる工程（ｄ）と、
前記第一核酸又は前記第二核酸の存在を検出し、前記第一核酸又は前記第二核酸が検出された場合には前記塩基が５−ヒドロキシメチルシトシンであると判定し、前記第一核酸又は前記第二核酸が検出されなかった場合には前記塩基が５−ヒドロキシメチルシトシンではないと判定する工程（ｅ）と、を備え、
前記５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基が下記式（１）で表される基であり、
前記結合反応が縮合剤を用いた脱水縮合である、方法。
【化１】
0006769072.tif 000010
［式（１）中、ＡはＯ、Ｓ又はＮＨを表す。］
【請求項２】
前記塩基と前記５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基との結合がエステル結合である、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記第四核酸を前記第一核酸と前記第二核酸とに開裂させる前記工程が、塩基性条件下で行われる、請求項１又は２に記載の方法。
【請求項４】
前記第二核酸が固相上に固定化されている、請求項１〜３のいずれか一項に記載の方法。
【請求項５】
前記第一核酸又は前記第二核酸の存在が核酸増幅法により検出される、請求項１〜４のいずれか一項に記載の方法。
【請求項６】
前記第一核酸又は前記第二核酸の存在が電気泳動を用いて検出される、請求項１〜４のいずれか一項に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、識別対象の塩基が５−ヒドロキシメチルシトシンであるか否かを判定する方法、核酸誘導体及びキットに関する。
【背景技術】
【０００２】
５−ヒドロキシメチルシトシンは修飾核酸の一種であり、シトシンの５位がヒドロキシメチル化されたものである。古くからバクテリオファージ等で存在することが知られてきたが、ヒトに関してもエピジェネティクスな遺伝子の発現抑制に関与する５−メチルシトシンが酵素ＴＥＴ１（Ｔｅｎ  Ｅｌｅｖｅｎ  Ｔｒａｎｓｌｏｃａｔｉｏｎ  ｍｅｔｈｙｌｃｙｔｏｓｉｎｅ  ｄｉｏｘｙｇｅｎａｓｅ）により酸化されて生成されることが２００９年に報告された（非特許文献１、２）。
【０００３】
この５−ヒドロキシメチルシトシンは脱メチル化の過程で生じる中間体であると考えられるが、中枢神経系の細胞に多く集中していることから、それ自体がエピジェネティクスな調整に関与している可能性がある（非特許文献３、４）。
【０００４】
しかしながら、現段階において５−ヒドロキシメチルシトシンの役割には不明な点が多く、胚性幹細胞の自己複製能にも影響を与えること等が示されており、今後も研究が進展することにより明らかになっていくものと考えられる。
【０００５】
ヒト等の哺乳類ゲノム中の５−ヒドロキシメチルシトシンの発見は、生命科学分野に新たな知見をもたらすものであるが、バイサルファイト処理を施して得られたＤＮＡ中の５−メチルシトシンの割合に関するデータに影響を与える可能性が高い。これは５−メチルシトシン検出ためのバイサルファイト処理による塩基変換が５−ヒドロキシメチルシトシンでも同様に起こることに起因し、これまでの研究で得られたデータにおいて５−メチルシトシンとして計上された値に５−ヒドロキシメチルシトシンを含むからである。
【０００６】
このような背景から５−メチルシトシンと５−ヒドロキシメチルシトシンを区別して検出する技術は今後のエピジェネティクス研究において非常に重要なものといえる。
【０００７】
現在開発されている、５−ヒドロキシメチルシトシンの検出方法としては、５−ヒドロキシメチルシトシンを含むＤＮＡに対して酸化還元剤を施した後に、改めてバイサルファイト処理を行うもの（特許文献１）、グリコシルトランスフェラーゼでヒドロキシル基を糖で修飾した後、酵素ＴＥＴ１にて５−メチルシトシンを脱メチル化処理、更にバイサルファイト処理を行うもの（特許文献２）、タングステン酸化剤による５−ヒドロキシメチルシトシン特異的なウラシル誘導体への塩基変換（特許文献３）等が挙げられる。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００８】
【特許文献１】国際公開第２０１３／０１７８５３号
【特許文献２】国際公開第２０１１／１２７１３６号
【特許文献３】国際公開第２０１２／１４１３２４号
【非特許文献】
【０００９】
【非特許文献１】Kriaucionis S. and Heintz N., The nuclear DNA base 5-hydroxymethylcytosine is present in Purkinje neurons and the brain., Science, 324, 929-930, 2009.
【非特許文献２】Tahiliani M., et al., Conversion of 5-methylcytosine to 5-hydroxymethylcytosine in mammalian DNA by MLL partner TET1., Science, 324, 930-935, 2009.
【非特許文献３】Globisch D., et al., Tissue distribution of 5-hydroxymethylcytosine and search for active demethylation intermediates., PLoS ONE, 5, e15367, 2010.
【非特許文献４】Szwagierczak A., et al., Sensitive enzymatic quantification of 5-hydroxymethylcytosine in genomic DNA., Nucleic Acids Research, 38, e181, 2010.
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１０】
特許文献１〜３に記載の方法は、ＤＮＡ中の５−ヒドロキシメチルシトシン全てを一括して処理できることから、塩基配列のシーケンシングと組み合わせることにより網羅的な解析が可能となるものである。しかしながら、ある特定の疾病に関連した１〜数箇所程度の局所的な検出を目的とする場合には、余分な情報が多く効率が悪い場合がある。
【００１１】
また、特許文献１及び２に記載の方法は、煩雑なバイサルファイト法に加え、その前段階で酸化還元反応や酵素反応を用いる複雑なものである。反応工程数が増加することにより、貴重なＤＮＡサンプルのロスや検出感度の低下が問題となる場合がある。
【００１２】
研究の進展に伴い５−ヒドロキシメチルシトシンの頻度や出現パターンと疾病やその他の生命現象との関連が明らかになり、ＤＮＡ中の局所的な５−ヒドロキシメチルシトシン検出及び定量が臨床研究の現場で必要になると予想される。
【００１３】
このような背景のもと、発明者らは、以前に、核酸試料中の識別対象の塩基が５−ヒドロキシメチルシトシンであるか否かを判定する新たな方法を開発した。当該方法は、核酸試料である第一核酸と、５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基を有する第二核酸と、前記第一核酸と相補的な領域及び前記第二核酸と相補的な領域を有する第三核酸とをハイブリダイズさせ、前記塩基と前記５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基とを近接させる工程と、前記塩基と前記５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基との結合反応を行い、前記塩基が５−ヒドロキシメチルシトシンであった場合には、前記第一核酸と前記第二核酸とが結合した第四核酸が生成される工程と、前記第四核酸の存在を検出し、前記第四核酸が検出された場合には前記塩基が５−ヒドロキシメチルシトシンであると判定するものであった。
【００１４】
ところで、少量の核酸試料を用いて核酸試料中の識別対象の塩基が５−ヒドロキシメチルシトシンであるか否かを判定することが必要な場合がある。しかしながら、例えば電気泳動等により上記の第四核酸の存在を検出する場合には、比較的大量の第四核酸が必要である。このため、核酸試料が少量しか用意できない場合、第四核酸を少量しか形成できず、核酸試料中の識別対象の塩基が５−ヒドロキシメチルシトシンであるか否かを判定することが困難な場合がある。
【００１５】
このような場合、第四核酸の存在を、酵素反応を利用した生化学的手法により検出することが考えられる。しかしながら、第四核酸は天然の核酸と構造が異なっているため、非天然の構造が障害となり、酵素反応を行うことができない場合がある。
【００１６】
そこで、本発明は、核酸試料が少量しか存在しない場合においても、核酸試料中の識別対象の塩基が５−ヒドロキシメチルシトシンであるか否かを判定できる技術を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【００１７】
本発明は以下の態様を含む。
［１］核酸試料中の識別対象の塩基が５−ヒドロキシメチルシトシンであるか否かを判定する方法であって、前記核酸試料である第一核酸と、５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基を有する第二核酸と、前記第一核酸と相補的な領域及び前記第二核酸と相補的な領域を有する第三核酸とをハイブリダイズさせ、前記塩基と前記５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基とを近接させる工程（ａ）と、前記塩基と前記５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基との結合反応を行い、前記塩基が５−ヒドロキシメチルシトシンであった場合には、前記第一核酸と前記第二核酸とが結合した第四核酸が生成される工程（ｂ）と、前記第四核酸を回収する工程（ｃ）と、回収した前記第四核酸を前記第一核酸と前記第二核酸とに開裂させる工程（ｄ）と、前記第一核酸又は前記第二核酸の存在を検出し、前記第一核酸又は前記第二核酸が検出された場合には前記塩基が５−ヒドロキシメチルシトシンであると判定し、前記第一核酸又は前記第二核酸が検出されなかった場合には前記塩基が５−ヒドロキシメチルシトシンではないと判定する工程（ｅ）と、を備える方法。
［２］前記塩基と前記５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基との結合がエステル結合である、［１］に記載の方法。
［３］前記５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基が下記式（１）で表される基である、［１］又は［２］に記載の方法。
【化１】
0006769072.tif 000002
［式（１）中、ＡはＯ、Ｓ又はＮＨを表す。］
［４］前記第四核酸は、塩基性条件下で前記第一核酸及び前記第二核酸に開裂する、［１］〜［３］のいずれかに記載の方法。
［５］前記第二核酸が固相上に固定化されている、［１］〜［４］のいずれかに記載の方法。
［６］前記第一核酸又は前記第二核酸の存在が核酸増幅法により検出される、［１］〜［５］のいずれかに記載の方法。
［７］前記第一核酸又は前記第二核酸の存在が電気泳動を用いて検出される、［１］〜［５］のいずれかに記載の方法。
［８］下記式（２）で表される核酸誘導体。
【化２】
0006769072.tif 000003
［式（２）中、ＡはＯ、Ｓ又はＮＨを表し、Ｒ１はリボース又はデオキシリボースを表し、Ｒ４はデオキシリボースを表し、Ｒ２、Ｒ３及びＲ５はポリヌクレオチドを表す。］
［９］核酸試料中の識別対象の塩基が５−ヒドロキシメチルシトシンであるか否かの判定用キットであって、５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基を有する第二核酸と、前記核酸試料である第一核酸と相補的な領域及び前記第二核酸と相補的な領域を有する第三核酸を備えるキット。
［１０］前記５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基が下記式（１）で表される基である、［９］に記載のキット。
【化３】
0006769072.tif 000004
［式（１）中、ＡはＯ、Ｓ又はＮＨを表す。］
［１１］縮合剤を更に備える、［９］又は［１０］に記載のキット。
【発明の効果】
【００１８】
本発明によれば、核酸試料が少量しか存在しない場合においても、核酸試料中の識別対象の塩基が５−ヒドロキシメチルシトシンであるか否かを判定することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１９】
【図１】識別対象の塩基が５−ヒドロキシメチルシトシンであるか否かを判定する方法を説明する模式図である。
【図２】実験例１の電気泳動の結果を示す写真である。
【発明を実施するための形態】
【００２０】
＜識別対象の塩基が５−ヒドロキシメチルシトシンであるか否かを判定する方法＞
１実施形態において、本発明は、核酸試料中の識別対象の塩基が５−ヒドロキシメチルシトシンであるか否かを判定する方法であって、前記核酸試料である第一核酸と、５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基を有する第二核酸と、前記第一核酸と相補的な領域及び前記第二核酸と相補的な領域を有する第三核酸とをハイブリダイズさせ、前記塩基と前記５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基とを近接させる工程（ａ）と、前記塩基と前記５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基との結合反応を行い、前記塩基が５−ヒドロキシメチルシトシンであった場合には、前記第一核酸と前記第二核酸とが結合した第四核酸が生成される工程（ｂ）と、前記第四核酸を回収する工程（ｃ）と、回収した前記第四核酸を前記第一核酸と前記第二核酸とに開裂させる工程（ｄ）と、前記第一核酸又は前記第二核酸の存在を検出し、前記第一核酸又は前記第二核酸が検出された場合には前記塩基が５−ヒドロキシメチルシトシンであると判定し、前記第一核酸又は前記第二核酸が検出されなかった場合には前記塩基が５−ヒドロキシメチルシトシンではないと判定する工程（ｅ）と、を備える方法を提供する。
【００２１】
本実施形態の方法によれば、核酸試料が少量しか存在しない場合においても、核酸試料中の識別対象の塩基が５−ヒドロキシメチルシトシンであるか否かを判定することができる。また、操作も簡便で正確な判定が可能である。本実施形態の方法は、ＤＮＡ中の局所的な５−ヒドロキシメチルシトシンの検出に特化しており、検出効率がよい。また、従来法と比較して反応工程が少ないため、貴重なＤＮＡサンプルのロスも防ぐことができる。
【００２２】
図１は、本実施形態の方法を説明する図である。図中の第一核酸は核酸試料であり、５−ヒドロキシメチルシトシンであるか否かの識別対象の塩基Ｘを有する核酸である。また、第二核酸は５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基Ｙを有する核酸であり、前記５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基Ｙに隣接する少なくとも３塩基がグアニン又はシトシンである。ここで、５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基Ｙは、第二核酸の５’末端に位置していることが好ましい。また、第三核酸は、第一核酸と相補的な領域及び第二核酸と相補的な領域を有する核酸断片であり、第一核酸及び第二核酸とハイブリダイズすることにより、塩基Ｘと５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基Ｙとを近接させることができる核酸である。
【００２３】
以下、本実施形態の方法の各工程を説明する。
［工程（ａ）］
図１に示すように、本工程では、第一核酸と第二核酸と第三核酸とをハイブリダイズさせ、塩基Ｘと５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基Ｙとを近接させる。
【００２４】
核酸試料が２本鎖核酸である場合には、熱変性処理や化学変性処理等により１本鎖化した後に第一核酸として用いるとよい。
【００２５】
第一核酸、第二核酸及び第三核酸のハイブリダイズは、核酸のハイブリダイゼーションを行う一般的な温度、ｐＨ、塩濃度、緩衝液等の条件下で行うことができるが、後述する工程（ｂ）における第一核酸と第二核酸との結合反応を行う反応溶液と同一の反応溶液中で行うことが好ましい。
【００２６】
上記の反応溶液は、緩衝作用のある塩を含むことが好ましい。反応溶液のｐＨは、６．５〜８．５であることが好ましく、ｐＨ７．０〜８．０であることがより好ましい。また、緩衝作用のある塩の濃度は、５〜２５０ｍＭであることが好ましく、１０〜１００ｍＭであることがより好ましい。緩衝作用のある塩としては、カコジル酸塩、リン酸塩、トリス塩等が挙げられる。
【００２７】
緩衝作用のある塩は、アルカリ金属又はアルカリ土類金属の塩を含むことが好ましい。アルカリ金属又はアルカリ土類金属の塩としては、例えば塩化ナトリウム、塩化マグネシウム等が挙げられる。緩衝作用のある塩は、１種を単独で用いてもよく、２種以上を混合して用いてもよい。
【００２８】
本明細書において、核酸は、ＤＮＡ又はＲＮＡであれば特に限定されず、天然のものであってもよく、合成されたものであってもよい。天然の核酸としては、例えば、動物、植物、微生物、培養細胞等の生体試料から抽出された、ゲノムＤＮＡ、ｍＲＮＡ、ｒＲＮＡ、ｈｎＲＮＡ、ｍｉＲＮＡ、ｔＲＮＡ等が挙げられる。生体試料からの核酸の抽出は、フェノール／クロロホルム法等の公知の方法により行うことができる。
【００２９】
合成された核酸としては、β−シアノエチルホスフォロアミダイト法、ＤＮＡ固相合成法等の公知の化学的合成法により合成されたＤＮＡ、ＰＣＲ等の公知の核酸増幅法により増幅された核酸、逆転写反応により合成されたｃＤＮＡ等が挙げられる。核酸増幅法としては、例えば、ＰＣＲ法、ＬＡＭＰ法、ＳＭＡＰ法、ＮＡＳＢＡ法、ＲＣＡ法等が挙げられる。
【００３０】
［工程（ｂ）］
本工程では、近接させた塩基Ｘと５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基Ｙとの結合反応を行う。その結果、塩基Ｘが５−ヒドロキシメチルシトシンであった場合には、第一核酸と第二核酸とが結合した第四核酸が生成される。また、塩基Ｘが５−ヒドロキシメチルシトシン以外の塩基であった場合には、第四核酸は生成されない。図１においては、塩基Ｘが５−ヒドロキシメチルシトシンであるため、第四核酸が生成される。図１中、Ｚは第一核酸と第二核酸との結合部位を表す。
【００３１】
本工程において、塩基Ｘと５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基Ｙとの結合は、共有結合であってもよい。また、当該共有結合は、例えばエステル結合であってもよい。
【００３２】
塩基Ｘと５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基Ｙとの共有結合は、上述した工程（ａ）で塩基Ｘと５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基Ｙとを適切な位置に近接させた後、縮合剤を反応させることにより形成してもよい。
【００３３】
この場合、縮合剤としては、水中で作用することができる脱水縮合剤等が挙げられる。縮合剤は予め反応溶液中に添加していてもよく、工程（ａ）の後に反応溶液中に添加してもよい。
【００３４】
より具体的な縮合剤としては、例えば、４−（４，６−ジメトキシ−１，３，５−トリアジン−２−イル）−４−メチルモルホリニウムクロリド；エチル（ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド等のカルボジイミド化合物等が挙げられる。
【００３５】
５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基Ｙは、下記式（１）で表される基であってもよい。
【化４】
0006769072.tif 000005
【００３６】
式（１）中、ＡはＯ、Ｓ又はＮＨを表す。５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基Ｙが上記式（１）で表される基であることにより、上述した工程（ａ）で塩基Ｘと５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基Ｙとを、両者の特異的な結合に適切な位置に近接させることができる。その結果、塩基Ｘが５−ヒドロキシメチルシトシンであった場合には、塩基Ｘと５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基Ｙとが結合可能になる。
【００３７】
上記式（１）において、ＡがＯである場合、上記式（１）で表される基は、５−カルボキシビニルウラシルの一部である。
【００３８】
塩基Ｘと５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基Ｙとの共有結合は、上述した工程（ａ）で塩基Ｘと５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基Ｙとを適切な位置に近接させた後、５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基Ｙ自身の作用による化学結合で形成してもよい。
【００３９】
このような５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基Ｙとしては、例えばカルボキシル基が挙げられる。
【００４０】
塩基Ｘと５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基Ｙとが共有結合を形成するのに要する時間は、１秒以上、１０秒以上、３０秒以上、１分間以上、５分間以上、１０分間以上、又は１５分間以上の時間とすることができる。また、６０分間以下、４５分間以下、又は３０分間以下の時間とすることができる。
【００４１】
塩基Ｘと５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基Ｙとが共有結合を形成するのに要する時間は、１分間〜６０分間であってもよく、１分間〜４５分間であってもよく、５分間〜４５分間であってもよく、５分間〜３０分間であってもよく、１０分間〜３０分間であってもよく、１５分間〜３０分間であってもよい。
【００４２】
［工程（ｃ）］
本工程において、上記の第四核酸を回収する。なお、識別対象の塩基が５−ヒドロキシメチルシトシンでなかった場合には、前記第一核酸と前記第二核酸とが結合した第四核酸は生成されないため、本工程で第四核酸が回収されることはない。
【００４３】
第四核酸の回収方法は特に制限されず、例えば、上記の第二核酸を固相上に固定化しておき、上記の工程（ａ）〜（ｃ）を実施した後、固相を洗浄することが挙げられる。これにより、第四核酸が生成されていた場合には、固相上に第四核酸を回収することができる。なお、本工程においては、第四核酸のみを回収することが好ましく、特に未反応の（第四核酸を形成していない）第一核酸及び第二核酸を完全に除去することが好ましい。
【００４４】
［工程（ｄ）］
続いて、本工程において、回収した前記第四核酸を前記第一核酸と前記第二核酸とに開裂させる。なお、識別対象の塩基が５−ヒドロキシメチルシトシンでなかった場合には、第四核酸が回収されることはないため、本工程において第一核酸及び第二核酸が生成されることはない。
【００４５】
前記第四核酸を前記第一核酸と前記第二核酸とに開裂させる前記工程は、塩基性条件下で行うことが好ましい。これにより、天然の核酸構造を有する第一核酸及び第二核酸に開裂させることができる。このため、得られた第一核酸又は第二核酸に、酵素反応等の生化学的手法を適用することが可能となる。
【００４６】
塩基性条件としては、例えば、ｐＨ９〜１１の条件が挙げられる。ｐＨの調製は、第四核酸に、例えば、水酸化ナトリウム水溶液、水酸化カリウム水溶液、アンモニア水溶液（水酸化アンモニウム水溶液）等を添加することにより行うことができる。
【００４７】
また、第四核酸を第一核酸と第二核酸とに開裂させた後、溶媒のｐＨを中性に調整してもよい。試料のｐＨの調整は中和することにより行ってもよい。あるいは、例えばエタノール沈殿等を行った後、所望のバッファーに交換してもよい。あるいは、適切なカラムを用いてバッファー交換を行ってもよい。
【００４８】
［工程（ｅ）］
続いて、本工程において、前記第一核酸又は前記第二核酸の存在を検出し、前記第一核酸又は前記第二核酸が検出された場合には前記塩基が５−ヒドロキシメチルシトシンであると判定し、前記第一核酸又は前記第二核酸が検出されなかった場合には前記塩基が５−ヒドロキシメチルシトシンではないと判定する。
【００４９】
第一核酸又は第二核酸の存在は核酸増幅法により検出してもよい。核酸増幅法としては上述したものが挙げられる。核酸増幅法を用いることにより、第一核酸又は第二核酸が少量しか存在しない場合においても第一核酸又は第二核酸を検出することができる。
【００５０】
第一核酸又は第二核酸が十分量存在する場合には、第一核酸又は第二核酸の存在を、例えば電気泳動を用いて検出してもよい。より具体的には、例えば、アガロースゲル電気泳動、ポリアクリルアミドゲル電気泳動、キャピラリー電気泳動等が挙げられる。この場合、第一核酸又は第二核酸に特異的なバンドが検出されるか否かにより、第一核酸又は第二核酸の存在を検出することができる。
【００５１】
本実施形態の方法において、上記の第二核酸は固相上に固定化されていてもよい。固相としては、例えば、ビーズ等の粒子、スライドガラス等の板状基板、膜等が挙げられる。また、上記の板状基板には、凹部（ウェル）や流路等が設けられていてもよい。
【００５２】
＜核酸誘導体＞
１実施形態において、本発明は、下記式（２）で表される核酸誘導体を提供する。式（２）中、ＡはＯ、Ｓ又はＮＨを表し、Ｒ１はリボース又はデオキシリボースを表し、Ｒ４はデオキシリボースを表し、Ｒ２、Ｒ３及びＲ５はポリヌクレオチドを表す。
【化５】
0006769072.tif 000006
【００５３】
本実施形態の核酸誘導体は、上述した第四核酸に相当する。より具体的には、Ｒ３、Ｒ４、Ｒ５が第一核酸に由来するポリヌクレオチド鎖であり、Ｒ１、Ｒ２が第二核酸に由来するポリヌクレオチド鎖である。
【００５４】
上述した、核酸試料中の識別対象の塩基が５−ヒドロキシメチルシトシンであるか否かを判定する方法において、本実施形態の核酸誘導体が形成されることは、識別対象の塩基が５−ヒドロキシメチルシトシンであることを示す。
【００５５】
＜キット＞
１実施形態において、本発明は、核酸試料中の識別対象の塩基が５−ヒドロキシメチルシトシンであるか否かの判定用キットであって、５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基を有する第二核酸と、前記核酸試料である第一核酸と相補的な領域及び前記第二核酸と相補的な領域を有する第三核酸と、を備えるキットを提供する。
【００５６】
本実施形態のキットにおいて、５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基は、下記式（１）で表される基であってもよい。式（１）中、ＡはＯ、Ｓ又はＮＨを表す。
【化６】
0006769072.tif 000007
【００５７】
本実施形態のキットは、縮合剤を更に備えていてもよい。縮合剤としては、上述したものと同様のものが挙げられる。
【００５８】
本実施形態のキットにおいて、上記の第二核酸は固相上に固定化されていてもよい。固相としては、上述したものと同様のものが挙げられる。
【実施例】
【００５９】
以下、実施例により本発明を説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。
【００６０】
［実験例１］
４つの反応チューブに、表１に示す塩基配列を有する、第一核酸（１）、第一核酸（２）、第二核酸、第三核酸、３−モルフォリノプロパンスルフォン酸溶液、ＭｇＣｌ２溶液及び蒸留水を、それぞれ表２に示す濃度となるように混合した。表１中、「ｈｍＣ」は５−ヒドロキシメチルシトシンを表し、「ＣＶＵ」は５−カルボキシビニルウラシルを表す。
【００６１】
第二核酸において、５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基は５−カルボキシビニルウラシル基（より詳細には、５−カルボキシビニルウラシル基のカルボキシル基）である。
【００６２】
【表１】
0006769072.tif 000008
【００６３】
【表２】
0006769072.tif 000009
【００６４】
続いて、反応チューブ２及び５に、縮合剤である４−（４，６−ジメトキシ−１，３，５−トリアジン−２−イル）−４−メチルモルホリニウムクロリド（３４０ｍＭ）を２０μＬずつ添加して混合した。また、反応チューブ１及び４に、蒸留水を２０μＬずつ添加して混合した。
【００６５】
続いて、反応チューブ１、２、４、５をサーマルサイクラーにセットし、３７℃で１２時間静置した。
【００６６】
続いて、反応チューブ２及び５から、１０μＬずつ取り出して、それぞれ新しい反応チューブ３及び６に移した。続いて、反応チューブ３及び６に、１Ｍ  ＮａＯＨ水溶液を１０μＬずつ添加して、３７℃で１２時間静置した。その後、反応チューブ１〜６内の試料を、１５％ポリアクリルアミドゲル（モノアクリルアミド：ビスアクリルアミド＝１９：１）を用いた電気泳動に供し、反応の確認を行った。
【００６７】
図２は、電気泳動の結果を示す写真である。図２のレーン１〜６には、それぞれ上記の反応チューブ１〜６内の試料を電気泳動した。標的（核酸試料）として５−ヒドロキシメチルシトシンを含む第一核酸（１）を用いた反応系がレーン１〜３であり、５−ヒドロキシメチルシトシンを含まない第一核酸（２）を用いた反応系がレーン４〜６である。
【００６８】
図２中、レーン１の「ａ」で示す位置のバンドは第三核酸に相当する。また、「ｂ」で示す位置のバンドは第一核酸（１）又は第一核酸（２）に相当する。また、「ｃ」で示す位置のバンドは第二核酸に相当する。また、レーン２の「ｄ」で示す位置のバンドは第四核酸に相当する。また、「ｅ」で示す位置のバンドは第一核酸（１）と第二核酸とが第三核酸とハイブリダイズしたものに相当する。また、レーン３はチューブ３の内容物であり第四核酸が消失していることが示されている。
【００６９】
対照実験として、５−ヒドロキシメチルシトシンを含まない第一核酸（２）を用いた反応系がレーン４〜６である。図２中、「ｆ」で示す位置のバンドは第一核酸（２）と第二核酸とが第三核酸とハイブリダイズしたものに相当する。レーン４〜６では連結反応が生じずに、いずれも変化していないことを示している。
【００７０】
その結果、識別対象の塩基が５−ヒドロキシメチルシトシンである第一核酸（１）を反応させた反応チューブ２の試料のみにおいて、第四核酸の生成が観察された。
【００７１】
また、チューブ２の反応液を塩基性条件下に置いたチューブ３では、第四核酸の消失が観察された。この結果から、第一核酸及び第二核酸の結合による第四核酸の生成、並びに、第四核酸の第一核酸及び第二核酸への開裂が可逆的であることが確認された。非天然型の核酸構造である第四核酸を、天然の核酸構造を有する第一核酸及び第二核酸に開裂させることにより、酵素反応等の生化学的な手法を適用することが可能となる。
【００７２】
また、識別対象の塩基がシトシンであった第一核酸（２）を反応させた反応チューブ５の試料中には、第四核酸の生成は認められなかった。また、チューブ５の反応液を塩基性条件下に置いたチューブ６にも変化は見られなかった。
【００７３】
以上の結果は、本実験例の反応により、識別対象の塩基が５−ヒドロキシメチルシトシンであるか否かを判定することができることを示す。
【産業上の利用可能性】
【００７４】
本発明によれば、核酸試料が少量しか存在しない場合においても、核酸試料中の識別対象の塩基が５−ヒドロキシメチルシトシンであるか否かを判定することができる。
【符号の説明】
【００７５】
Ｘ…５−ヒドロキシメチルシトシン、Ｙ…５−ヒドロキシメチルシトシン特異的結合基、Ｚ…結合部位。
【図１】
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【図２】
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【配列表】
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