(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
フィコビリタンパク質が豊富な安定した沈殿物を得る方法であって、
フィコビリタンパク質の水性抽出物にサリチル酸を添加する沈殿工程を少なくとも１つ含み、
上記沈殿物のフィコビリタンパク質含量が上記水性抽出物中の初期含量の少なくとも５０％に等しく、
上記沈殿物の清澄度が少なくとも７０％に等しい、方法。
【請求項２】
上記沈殿物のフィコビリタンパク質含量は上記水性抽出物中の初期含量の少なくとも５０％に等しく、上記沈殿物の清澄度は少なくとも８０％、好ましくは９０％又は１００％に等しい、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
上記沈殿物のフィコビリタンパク質含量は上記水性抽出物中の初期含量の少なくとも７０％に等しく、上記沈殿物は膜断片を含まない、請求項１に記載の方法。
【請求項４】
上記フィコビリタンパク質の水性抽出物は上記フィコビリタンパク質を少なくとも１．５ｇ／Ｌ含有する、請求項１〜３のいずれか１項に記載の方法。
【請求項５】
上記フィコビリタンパク質の水性抽出物に上記サリチル酸を４ｇ／Ｌ〜２０ｇ／Ｌの範囲で添加する請求項１に記載の方法。
【請求項６】
上記フィコビリタンパク質の水性抽出物に上記サリチル酸を４ｇ／Ｌ〜１３ｇ／Ｌの範囲で添加する請求項１又は３に記載の方法。
【請求項７】
フィコビリタンパク質の水性抽出物に上記サリチル酸を１３〜１４ｇ／Ｌの範囲で添加する請求項１又は２に記載の方法。
【請求項８】
サリチル酸による沈殿工程の前に、デカンテーションにより清澄化する工程を追加する請求項１〜７のいずれか１項に記載の方法。
【請求項９】
上記沈殿物を溶解する工程を追加する請求項１〜８のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１０】
グリセリン、グリセロール、又は、多価アルコールであるプロパン−１，２，３−トリオール（又は１，２，３−プロパントリオール）の任意の誘導体若しくは任意の形態から選択される天然ポリオールに上記沈殿物を溶解する請求項９に記載の方法。
【請求項１１】
事前に、光合成微細藻類バイオマスのフィコビリタンパク質を富化する工程を含む請求項１に記載の方法。
【請求項１２】
上記フィコビリタンパク質を富化する事前工程は、増殖が阻害されたバイオマスにおいてフィコビリタンパク質合成を誘導することを含む、請求項１１に記載の方法。
【請求項１３】
ａ．バイオマスの増殖を阻害する工程、
ｂ．フィコビリタンパク質の合成を誘導する工程、
ｃ．サリチル酸で沈殿させる工程、
ｄ．工程ｃで得られた沈殿物を溶解する工程
を含む請求項１、１１又は１２のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１４】
上記フィコビリタンパク質の水性抽出物は、アルスロスピラ・プラテンシス（Ａｒｔｈｒｏｓｐｉｒａ  ｐｌａｔｅｎｓｉｓ）である光合成微細藻類から得られる、請求項１〜１３のいずれか１項に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、藻類からフィコビリタンパク質が豊富な安定した沈殿物を得る方法に関する。
【０００２】
より詳細には、本発明は、フィコビリタンパク質が豊富な安定した沈殿物を得る方法であって、フィコビリタンパク質の水性抽出物にサリチル酸を添加する沈殿工程を少なくとも１つ含む方法に関し、該沈殿物のフィコビリタンパク質含量が上記水性抽出物中の初期含量の少なくとも５０％に等しく、該沈殿物の清澄度が少なくとも７０％に等しい。フィコビリタンパク質は、フィコシアニン、フィコエリスリン、アロフィコシアニン及びそれらに関連するタンパク質に分けられ、特定の藻類（紅藻及びクリプト藻綱）及び全てのシアノバクテリアに存在する光合成色素タンパク質である。これらのタンパク質色素は、赤色から青色にわたる範囲の発色能を有する。
【背景技術】
【０００３】
近年、これらの色素に新たな関心が寄せられている。実際、現在では、合成成分を天然物に置き換えようとする傾向が強い。この傾向の背景には、健康、生態系及び環境の保護を求めて天然物に対する消費者の需要が高まっていること、また、合成製品よりも天然物を推進しようとする法律の変更がある。このような状況から、天然染料に対する市場需要は大幅に増加している。
【０００４】
市場で入手可能な天然染料のリストを検討した結果、青色染料がかなり欠如していることが明らかになった。用いられるのは、カマズレン（カミツレの花から抽出される）とインジゴ（インジゴ植物の葉を発酵させて得られる）のみである。しかし、これら２種類の染料は抽出収率が低いため（両方とも乾燥重量で０．１％以下）、供給が市場のニーズに対して不足したままである。
【０００５】
フィコビリタンパク質の中で、フィコシアニンはその独特の青色から事実上の独占状態である。フィコシアニンは、ラン藻類のみに見られる有色タンパク質であり、化学的に合成することができない。フィコシアニンに関する様々な研究の結果によれば、フィコシアニンには抗酸化、抗炎症及び抗腫瘍能を有する可能性がある。
【０００６】
フィコシアニンは、特定の食品（コールドドリンク、アイスクリーム、パン生地、ケーキ、クッキー等のアイス又は菓子類）を青色に着色するために広く用いられている。
【０００７】
スキンケアクリーム、美容マスク及び日焼け防止製品に成分として導入することができる。リスクが疑われる合成色素の代替として有利である。
【０００８】
現在、工業規模でのフィコシアニンの用途として知られているのは、少数の食品（マジパン、甘いジュース、アイス、シャーベット、更にはチョコレート）又は少数の化粧品（クリーム及びゲル）に限られる。フィコシアニンの市場での唯一の販売は、少数の企業（実質的に日本企業）によって独占されており、どうにかアメリカの天然食用色素市場のたかだか２％を占めているに過ぎない。
【０００９】
また、フィコシアニンは、シアノバクテリアであるスピルリナ（アルスロスピラ・プラテンシス）から抽出可能であり、該スピルリナは３％〜１２％のフィコシアニンを含有し得る。この青色の微細藻類は、ＷＨＯによって安全性が認められており、工業規模で生産されている。その利用は世界中の複数の国々に広がっている。
【００１０】
バイオマスからフィコビリタンパク質を抽出したら濃縮工程を行う必要がある。通常、この工程では沈殿が生じる。
【００１１】
フィコビリタンパク質の濃縮方法が複数存在する。遠心分離、凍結乾燥又は透析等、大型設備を用いた非常に時間がかかるものもある。このような方法を工業規模で適用すると、投資コストが高くなる。より単純な他の方法では、塩、特に硫酸アンモニウムを使用して沈殿を行う。これにより、フィコビリタンパク質を細菌及び真菌から保護することも可能である。硫酸アンモニウムを使用した沈殿に関して言えば、この塩は多量（抽出物の重量の６０％を超える量）に必要となる。また、硫酸アンモニウムは、摂取又は吸入の際に急性作用として皮膚及び眼に対する刺激や肺鬱血及び呼吸困難を引き起こすことが知られている。
【００１２】
上記方法以外の他のタンパク質を沈殿させる一般的な方法は、酸、有機溶媒、非イオン性ポリマー、更には非食品グレードであり且つフィコビリタンパク質の変性を引き起こすことが多い凝集剤を使用するものである。
【００１３】
本発明者らは、フィコビリタンパク質の水性抽出物にサリチル酸を添加することによって、フィコビリタンパク質を沈殿させることができることを明らかにした。サリチル酸は食品品質の天然の酸であり、食品保存料としてごく一般的に使用されている。
【００１４】
フィコビリタンパク質市場で求められる主な要件は、以下の３つの重要な点を満たすことである。食品又は化粧品に関する様々な法律に対応しなければならないこと、色安定性が良好であること、及び、競争価格を有すること。一般的なフィコビリタンパク質の天然の性質、及び、フィコビリタンパク質が有機溶媒の非存在下、水溶液で抽出されるという事実は、法律の点で明らかに有利である。
【００１５】
本発明が解決しようとする技術的課題は、フィコビリタンパク質が豊富であると同時に安定している沈殿物を得ることである。
【００１６】
フィコビリタンパク質は天然のタンパク質であり、水性溶媒に可溶であるため、細菌及び真菌の発生が促進され、保存可能期間に深刻な影響がでてしまう。また、フィコビリタンパク質は感光性が強いため、色安定性が悪く、その工業的な大量使用が制限されてしまう。実際、フィコビリタンパク質は光分解しやすく、そのため弱い照射によっても発色能が急速に失われてしまう。この光化学的プロセスによって、発色団分子は部分的又は完全に変性する。酸素捕捉剤及びフリーラジカル捕捉剤（例えばビオプテリングルコシド）を用いる方法もある。フィコビリタンパク質はこれらの捕捉剤に化学的に結合する。このような安定剤は非毒性が不確実であるため今のところ完全に満足できるものではない。また、そのコストが高すぎるため、フィコビリタンパク質の最終用途が何であれ、大規模な使用が想定できない。
【００１７】
最後に、これまでの安定化したフィコビリタンパク質は短期間（数時間）しか安定化していないため、その色素は化粧品、機能性食品又は食品加工用途には適合しない。
【００１８】
特許文献１は、不溶性でより安定した形態の紅藻由来物質の使用を提案している。該物質は有機溶媒を用いる方法によって得られる。このように不溶性であるため、該色素を粉末状化合物に適用することが制限される。
【００１９】
特許文献２は、水性抽出物にアスコルビン酸を含有する賦形剤を添加することによってフィコビリタンパク質を光安定化する方法を開示している。この方法には、低含水量とするためには必須である抽出物の濃縮工程は記載されていない。
【００２０】
特許文献３は、バイオマスをグリセリン又は水／グリセリン混合物に直接浸軟させてから濾過することによってフィコシアニンを抽出及び安定化する方法を開示している。浸軟は非常に時間がかかり、１５日間にまで及ぶ。その上、抽出収率は非常に低く、使用されるバイオマスの１％以下である。
【先行技術文献】
【特許文献】
【００２１】
【特許文献１】米国特許第５６４３５８５号明細書
【特許文献２】国際公開第２００５／０６５６９７号
【特許文献３】国際公開第２０１４／０４５１７７号
【発明の概要】
【課題を解決するための手段】
【００２２】
本発明者らは、驚くべきことに、フィコビリタンパク質の水性抽出物にサリチル酸を添加することによって上記技術的課題を解決できることを明らかにした。
【００２３】
したがって、本発明の主要な主題は、フィコビリタンパク質が豊富な安定した沈殿物を得る方法であって、フィコビリタンパク質の水性抽出物にサリチル酸を添加する沈殿工程を少なくとも１つ含み、上記沈殿物のフィコビリタンパク質含量が上記水性抽出物中の初期含量の少なくとも５０％に等しく、上記沈殿物の清澄度が少なくとも７０％に等しい、方法である。
【００２４】
「フィコビリタンパク質」とは、特定の微細藻類又はシアノバクテリアから単離された水溶性光合成色素タンパク質、例えばアロフィコシアニン（ＡＰＣ）、フィコシアニン類（Ｃ−ＰＣ及びＲ−ＰＣ）、フィコエリスリン類（Ｒ−ＰＥ及びＣ−ＰＥ）及びフィコエリスロシアニン（ＰＥＣ）等を意味するものである。
【００２５】
「水性抽出物」とは、水、海水、又は、ＣａＣｌ２、ＮａＣｌ若しくは任意の他のリン酸塩若しくはカリウム塩を含有する任意の水溶液などの水性溶媒を用いてフィコビリタンパク質を抽出及び溶解する工程によって得られるものを意味するものである。
【００２６】
沈殿工程により生じる「沈殿物」とは、すなわち、水性抽出物から沈殿によって濃縮されたフィコビリタンパク質の量を意味するものである。本発明においては、サリチル酸でフィコビリタンパク質を沈殿させる。
【００２７】
「安定」とは、フィコビリタンパク質が分解されない、特に自然光で分解されない沈殿物を意味するものである。安定性は、フィコビリタンパク質の半減期によって測定することができ、該半減期とはフィコビリタンパク質の半分が分解するまでの日数を表す。
【００２８】
本発明の方法によって沈殿したフィコビリタンパク質の半減期は、２０℃未満の温度、特に１０℃〜２０℃の温度、及び、５０μｍｏｌ・ｍ−２・ｓ−１未満の光強度、特に５μｍｏｌ・ｍ−２・ｓ−１〜５０μｍｏｌ・ｍ−２・ｓ−１の光強度において、５０日、６０日、７０日、８０日、９０日、１００日又は１１０日に達し得る。
【００２９】
半減期は、例えば、日数（又は時間）の関数として示したフィコビリタンパク質の濃度によって求められる。そして、フィコビリタンパク質の分解度は次のように表される。（フィコビリタンパク質の初期量−日数（ｄ）でのフィコビリタンパク質の量）×１００／フィコビリタンパク質の初期量）。半減期は、初期濃度の半分（５０％）が分解される日数に相当する。つまり、分解度５０％に等しい。分解度が低く、５０％に達しない場合、実験範囲で得られた１日当たりの分解度から外挿することにより範囲外の半減期を推定することができる。
【００３０】
安定性は、色の維持によって評価することもできる。実際、フィコビリタンパク質が少しでも分解すると、懸濁物又は抽出物の色は変化することとなる。
【００３１】
色は、例えばフィコビリタンパク質の吸収ピークに相当する６２０ｎｍでの抽出物の吸光度を測定することによって評価できる。この波長での吸光度の減少は、フィコビリタンパク質の分解を示す。
【００３２】
微細藻類バイオマスに含有されるフィコビリタンパク質は、培養条件によるが、多くとも２０％〜２５％である。したがって、「上記沈殿物のフィコビリタンパク質含量が上記水性抽出物中の初期含量の少なくとも５０％に等しい」とは、水性抽出物が含有する２０％〜２５％のフィコビリタンパク質のうちの５０％が本発明の方法によって沈殿されることを意味するものである。
【００３３】
本発明の主題であるフィコビリタンパク質は、シアノバクテリア又は微細藻類から抽出できる。
【００３４】
上記微細藻類は、特に、紅藻綱（Ｒｈｏｄｏｐｈｙｃｅａｅ）、クリプト藻綱（Ｃｒｙｐｔｏｐｈｙｃｅａｅ）及びシアノバクテリア、とりわけシアノバクテリア、更により具体的にはアルスロスピラ・プラテンシス（Ａｒｔｈｒｏｓｐｉｒａ  ｐｌａｔｅｎｓｉｓ）及びアファニゾメノン・フロスアクア（Ａｐｈａｎｉｚｏｍｅｎｏｎ  ｆｌｏｓ−ａｑｕａｅ）、特にクラマス藻類（ａｌｇａ  Ｋｌａｍａｔｈ）から選択される。
【００３５】
アルスロスピラ・プラテンシス（スピルリナ）から抽出する場合、Ｍ．Ｒｅｂｅｌｌｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，１９７９の記載による方法に従う。この抽出方法は１０ｇ／ＬのＣａＣｌ２溶液中で２時間行い、その後、１０μｍガーゼで濾過する。海水中で行うこともでき、この場合、微量元素によりフィコビリタンパク質抽出物を富化することができ、市販の塩を使わないため抽出コストを低減することができる。
【００３６】
溶液中の種々のフィコビリタンパク質の量は、Ｂｒｙａｎｔ  ｅｔ  ａｌ．，１９７６によって確立された分光光度法で求められる。
【００３７】
本発明の方法によれば、元の水性抽出物中のフィコビリンタンパク質量の少なくとも５０％、好ましくは７５％、より好ましくは８０％を含有するフィコビリタンパク質沈殿物を得ることができる。
【００３８】
本発明の特定の一実施形態において、上記フィコビリタンパク質沈殿物は、元の水性抽出物中のフィコビリンタンパク質量の少なくとも８５％、又は少なくとも９０％、９５％、更には沈殿が完全となるまで（すなわち上記沈殿物は水性抽出物中のフィコビリタンパク質を１００％含有）含有する。
【００３９】
乾燥した又は新鮮なバイオマスからフィコビリタンパク質を抽出することにより、細胞溶解が起こる。
【００４０】
「細胞溶解」とは、任意の手段、特に物理的／機械的手段（超音波処理、凍結／解凍サイクル）又は化学的手段（ＣａＣｌ２、（ＮＨ４）２ＳＯ４の溶液）又は生物学的手段（酵素）による細胞又は細菌の原形質膜の破壊を意味するものである。細胞溶解によって不溶性の膜断片及び複合体が生成され、回収された抽出物中に懸濁状で残留する。このような抽出残渣の除去は清澄化として知られている。
【００４１】
驚くべきことに、本発明者らは、フィコビリタンパク質の水性抽出物にサリチル酸を添加することによって、抽出物中に含まれるフィコビリタンパク質を沈殿させ、且つ、抽出残渣を除去できることを明らかにした。
【００４２】
選択的沈殿によりフィコビリタンパク質を抽出残渣から分離してもよい。サリチル酸濃度を変えることでこれら２つの化合物群の一方又は他方を沈殿させることが実際に可能である。
【００４３】
「清澄度」とは、本発明の方法により得られる全沈殿物中のフィコビリタンパク質の割合を意味するものである。沈殿物が細胞溶解残渣である膜断片を含まない場合、清澄度は１００％である。サリチル酸の添加後、沈殿しなかったフィコビリタンパク質及び断片の量を別々に分光光度法で測定する。この測定値から、沈殿したフィコビリタンパク質及び断片の含量を推定する。また、清澄度は以下のように測定される。１００×フィコビリタンパク質沈殿量／（フィコビリタンパク質沈殿量＋断片沈殿量）。
【００４４】
フィコビリタンパク質含量は、Ｂｒｙａｎｔ  ｅｔ  ａｌ．（１９７６）に記載の数式を適用して６２０ｎｍ及び６５０ｎｍでの光学密度に基づいて推定する。断片含量は、ＯＤ６８０と微細藻類の乾燥バイオマスとを関連付ける確立された相関曲線（Ｃｏｓｔａ  ｅｔ  ａｌ．，２００２）を用いて６８０ｎｍで光学密度を測定することによって評価する。
【００４５】
本発明の方法よれば、フィコビリタンパク質含量が上記水性抽出物中の初期含量の少なくとも５０％に等しく、清澄度が少なくとも８０％、好ましくは９０％又は１００％に等しい沈殿物を得ることができる。
【００４６】
本発明の方法によれば、上記水性抽出物中のフィコビリタンパク質量の５０％〜８０％を含有し、清澄度が少なくとも７０％に等しいフィコビリタンパク質沈殿物を得ることができる。
【００４７】
本発明の特定の一実施形態において、上記フィコビリタンパク質が豊富な沈殿物の清澄度は、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％又は１００％に等しい。換言すれば、膜断片又は複合体の含量は、沈殿物量の０％（この場合、清澄化は完全）〜３０％であり、５％、１０％、１５％又は２５％に等しくすることができる。
【００４８】
本発明の好ましい一実施形態において、本方法によれば、フィコビリタンパク質含量が上記水性抽出物中の初期含量の少なくとも７０％に等しく、膜断片を含まない沈殿物を得ることができる。
【００４９】
「膜断片を含まない」とは、沈殿物の清澄度が１００％であることを意味するものである。
【００５０】
本発明の特定の一態様において、本発明の方法は、フィコビリタンパク質を少なくとも１．５ｇ／Ｌ含有するフィコビリタンパク質の水性抽出物を用いる。
【００５１】
したがって、サリチル酸による沈殿のために使用するフィコビリタンパク質の水性抽出物は、フィコビリタンパク質を１．５ｇ／Ｌ以上含有してもよい。
【００５２】
本発明では、下記数式を確立して、元の抽出物中の任意量の可溶性フィコビリタンパク質に対して使用するサリチル酸の最小量を決定することができる。サリチル酸（ｇ）＝０．００７×フィコビリタンパク質（ｍｇ）／０．５２
【００５３】
本発明の方法で使用するサリチル酸は、実質的に４ｇ／Ｌ以上であって実質的に２０ｇ／Ｌ以下であるサリチル酸濃度となるように、上記フィコビリタンパク質を少なくとも１．５ｇ／Ｌ含有する水性抽出物に添加される。本発明の特定の一実施形態において、サリチル酸の添加量は、４ｇ／Ｌ〜１０ｇ／Ｌ、１０ｇ／Ｌ〜１５ｇ／Ｌ、又は、１５ｇ／Ｌ〜２０ｇ／Ｌである。
【００５４】
本発明の特定の一実施形態において、サリチル酸は、実質的に４ｇ／Ｌ以上であって実質的に１３ｇ／Ｌ以下であるサリチル酸濃度となるように、フィコビリタンパク質の水性抽出物に添加される。この実施形態では、フィコビリタンパク質沈殿物は、フィコビリタンパク質含量が水性抽出物中の初期含量の少なくとも５０％に等しく、清澄度が１００％である。換言すれば、沈殿物には、水性抽出物を得ることができる抽出工程で生じた膜断片又は残渣がもはや存在しない。
【００５５】
この場合、清澄化は完全であり、膜断片及び複合体は上清に残留する。
【００５６】
より詳細には、清澄化の質（完全又は部分的な清澄化）は、フィコビリタンパク質及び膜断片のそれぞれの含量に依存することが明らかとなった。実際、溶液のフィコビリタンパク質がより濃縮されていて、含まれる断片が少ないほど、清澄化はより良好となる。より具体的には、フィコビリタンパク質含量が１．５ｇ／Ｌを超える、好ましくは１．５ｇ／Ｌ〜１．８ｇ／Ｌの範囲であり、且つ、膜断片含量が０．７ｇ／Ｌ〜０．９ｇ／Ｌの範囲であるフィコビリタンパク質溶液であれば、良好な清澄化となる。このような条件の場合、実質的に４ｇ／Ｌ以上であって実質的に１３ｇ／Ｌ以下であるサリチル酸濃度であれば、清澄化を完全なものにできる。
【００５７】
本発明の別の実施形態において、サリチル酸は、実質的に１３ｇ／Ｌ以上であって実質的に１４ｇ／Ｌ以下であるサリチル酸濃度となるように、フィコビリタンパク質の水性抽出物に添加される。この実施形態では、フィコビリタンパク質沈殿物は、フィコビリタンパク質含量が水性抽出物中の初期含量の少なくとも７０％に等しく、清澄度が少なくとも７０％に等しい。
【００５８】
本発明の特定の一実施形態において、本方法は、サリチル酸による沈殿工程の前に清澄化工程を含んでもよい。
【００５９】
清澄化は、残渣の大部分を除去する単純なデカンテーションにより実施できるが、この条件下では、細胞溶解により生じた不溶性の膜断片及び複合体が多少とも高い割合で、回収された抽出物中に懸濁状で残留する。
【００６０】
完全な清澄化には、より徹底した方法に頼る必要がある。例えば、８０００ｒｐｍを超える遠心分離、１００キロダルトン未満のカットオフ値を有するチューブ若しくは膜による透析若しくはタンジェンシャル限外濾過、又は、抽出物の通液中に断片を保持することが可能な高分子を用いたクロマトグラフィーが挙げられる。このような徹底した清澄化方法を工業規模で適用すると、投資コストが高くなることが多い。
【００６１】
したがって、清澄化は、サリチル酸を添加することによって、又は、２つの相補的な手段、すなわち、最初の工程でデカンテーションを行い、沈殿中に水性抽出物にサリチル酸を添加することによって実施できる。
【００６２】
本発明の特定の一実施形態において、本方法は、サリチル酸を用いたフィコビリタンパク質の選択的沈殿の後に、沈殿物を溶解する工程を含んでもよい。
【００６３】
上記溶解工程は、特に、食品品質の天然ポリオールを用いて実施される。その例としてグリセリン又はグリセロールが挙げられる。グリセリンは優れた天然防腐剤であり、タンパク質を安定化し、細菌及び真菌の増殖を防止する。グリセリンは、フィコビリタンパク質をより良好に保存できるという点で有利である。
【００６４】
本発明においては、グリセロール、又は、多価アルコールであるプロパン−１，２，３−トリオール（又は１，２，３−プロパントリオール）の任意の誘導体若しくは任意の形態を使用することもできる。
【００６５】
本発明においては、１．２リットルのグリセリンであれば、沈殿した及び／又は清澄化したフィコビリタンパク質を２７ｇ溶解できることが判明した。
【００６６】
フィコビリタンパク質／グリセリン溶液は、周囲温度の明条件下では３ヶ月を超える期間、冷暗所では数年間保管することができる。
【００６７】
本発明の方法は、増殖が阻害されたバイオマスにおいてフィコビリタンパク質合成を誘導する工程を行った後に実施することもできる。本発明の方法で得られるバイオマスのフィコビリタンパク質含量は、該バイオマスの乾燥重量の少なくとも２０％に等しい。
【００６８】
本発明の方法で得られるバイオマスのフィコビリタンパク質含量は、特に、該バイオマスの乾燥重量の少なくとも２１％、２２％、２３％、２４％又は２５％に等しい。
【００６９】
本発明の方法で得られるバイオマスのフィコビリタンパク質含量は、特に、該バイオマスの乾燥重量の２０％〜２５％である。
【００７０】
本方法の合成工程は培養槽の外で行われるため、バイオマスの生産性を損なわない。
【００７１】
「バイオマス」とは、特定の時点での培養液中の生きた微細藻類の全質量を意味するものであり、グラム／リットル（ｇ／Ｌ）で表される。
【００７２】
「フィコビリタンパク質」とは、特定の微細藻類又はシアノバクテリアから単離された水溶性光合成色素タンパク質、例えばアロフィコシアニン（ＡＰＣ）、フィコシアニン類（Ｃ−ＰＣ及びＲ−ＰＣ）、フィコエリスリン類（Ｒ−ＰＥ及びＣ−ＰＥ）及びフィコエリスロシアニン（ＰＥＣ）等を意味するものである。
【００７３】
「合成を誘導する」とは、微細藻類バイオマスによるフィコビリタンパク質の産生を任意の手段で促すことを意味するものである。
【００７４】
「誘導培地」とは、最適増殖に必要な塩の濃度と比較して１種以上の塩を過剰に含有する又は欠乏する任意の微細藻類培養培地を意味するものである。本発明において、この培地は窒素を過剰に含有するものであり、Ｚａｒｒｏｕｋ培地にＮａＮＯ３を２．５ｇ／Ｌを超える濃度、好ましくは３〜５ｇ／Ｌの濃度で添加することで得られる。
【００７５】
「増殖の阻害」とは、微細藻類の増殖を停止することを意味するものである。増殖の阻害は可逆的である。実際、増殖を阻害した後、バイオマスの一部を回収して濃度を低下させると、バイオマスは再び増殖できる。したがって、バイオマスを害することはない。
【００７６】
上記微細藻類バイオマスの増殖を阻害する工程は誘導槽で行い、上記槽内の上記バイオマスの濃度を培養液中での微細藻類の最適増殖を許す濃度よりも３〜１３倍高くして行う。
【００７７】
上記微細藻類、特にシアノバクテリア、より具体的にはアルスロスピラ・プラテンシスのバイオマスの増殖の阻害は誘導槽で行い、上記槽内の上記バイオマスの濃度は、特に、培養液中での微細藻類の最適増殖を許す濃度よりも３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２又は１３倍高い。
【００７８】
増殖の阻害（微細藻類の増殖の阻害）は、例えば、培養密度の関数として示した微細藻類の増殖速度の曲線によって判断される。微細藻類の増殖速度がゼロである場合、阻害が観察される。
【００７９】
なお、「濃度」は「密度」と置き換えることができる。「バイオマス密度」、「バイオマス濃度」は区別せずに使用する。密度は濃度と同様にｇ／Ｌで表す。
【００８０】
培養液中での微細藻類の最適増殖を許す密度／濃度は約０．４ｇ／Ｌであると認められる。
【００８１】
阻害は、濃度が１〜５ｇ／Ｌの範囲のバイオマスを誘導槽に導入して行われるが、本発明においてこの手段に限定されず、バイオマスの増殖を阻害できる任意の手段を用いることができる。阻害時の上記バイオマス濃度は、１ｇ／Ｌ、１．５ｇ／Ｌ、２ｇ／Ｌ、２．５ｇ／Ｌ、３ｇ／Ｌ、３．５ｇ／Ｌ、４ｇ／Ｌ、４．５ｇ／Ｌ又は５ｇ／Ｌに等しくてもよい。
【００８２】
バイオマスの密度／濃度は様々な方法によって測定できる。
【００８３】
・セッキ板：水培地で培養した細胞の密度を迅速に推定できる簡単な装置である。長さ３０ｃｍの目盛り付き定規からなり、ゼロの目盛りの付いた下端に直径５ｃｍの白い円盤を備える。円盤を培地に浸してから該円盤を識別できなくなった深さ（センチメートル）を記録する。
【００８４】
・顕微鏡でのカウント：この方法は時間がかかるが、フィラメント数とフィラメント当たりの巻数を推定できる。目盛り付きピペットを用いて一滴の試料をくぼみスライドに滴下して顕微鏡で観察し、一滴中のフィラメント数を評価する。我々のピペットで滴下した１７滴の体積は１ｍＬとなることが分かっている。培養液の濃度が非常に高い場合は試料を希釈する。ランダムに採取した３０本のフィラメントから平均巻数を計算する。
【００８５】
・６６５ｎｍでの光学密度：この方法では、クロロフィルの吸収波長の一つである６６５ｎｍの吸光度を用いてバイオマスを迅速に推定できる。一般的に、このインビボ吸収はクロロフィル濃度との相関性が高い。平行面を有する２５ｃＬ容キュベットを備えた分光光度計を使用する。未接種の培地でゼロ調整を行う。
【００８６】
誘導槽は、中間培養槽、回収槽等、生きた微細藻類を保管するための任意の閉鎖系であってもよい。
【００８７】
本発明の好ましい一実施形態において、誘導槽内の上記バイオマス濃度は、実質的に１ｇ／Ｌ以上であって実質的に５ｇ／Ｌ以下である。この濃度は、誘導媒体を誘導槽に添加することで得られる。
【００８８】
１ｇ／Ｌ〜５ｇ／Ｌの範囲の濃度は、回収時（すなわち、濃度が約０．４ｇ／Ｌとなる最適増殖時）に増殖中のバイオマスの密度よりも３〜１３倍高い密度に相当する。この濃度では、増殖が阻害されて微細藻類の防御代謝が促進される。
【００８９】
バイオマスの増殖、例えば最適増殖、特に約０．４ｇ／Ｌの濃度での増殖を阻害するには、上記バイオマスを濾過、デカンテーション又は遠心分離などによって１ｇ／Ｌ〜５ｇ／Ｌの濃度にすればよい。
【００９０】
また、誘導槽に入れる前にバイオマスを洗浄してもよい。洗浄によって、培地に由来する過剰の塩を除去できる。これにより、誘導溶液の窒素濃度をより良好に制御できる。
【００９１】
この場合、バイオマスは、生理食塩水又は新たに調製した誘導培地溶液を用いて３回洗浄する。
【００９２】
これらの条件下では、元のバイオマスは上記方法の影響を受けず、フィコシアニン合成の誘導はバイオマスの培養条件に依存しない。
【００９３】
上記手順は、従来のスピルリナ培養農場の生産ラインに容易に組み込むことができる点で有利である。中間培養槽又は回収槽で３時間、４時間又は最大５時間行うことができる。
【００９４】
本発明の特定の一実施形態において、フィコビリタンパク質の合成を誘導する工程は、
１）光合成微細藻類バイオマスを光束に暴露する工程であって、上記光束は、実質的に１０μｍｏｌ・ｍ−２・ｓ−１以上であって実質的に１３μｍｏｌ・ｍ−２・ｓ−１以下である光強度を有する、工程、
２）誘導培地中のＮａＮＯ３濃度が２．５ｇ／Ｌを超えるように窒素源を添加する工程
を含む。
【００９５】
１平方メートル当たり１秒当たりの光子数（μｍｏｌ）で表される光強度は、例えば、光合成に有効な放射量を測定する光度計を用いて求められる。
【００９６】
なお、特に照明が蛍光灯、例えば「植物育成蛍光灯」タイプである場合、１０μｍｏｌ・ｍ−２・ｓ−１は３３０ルクスに相当し、１３μｍｏｌ・ｍ−２・ｓ−１は４２９ルクスに相当する。この場合、１平方メートル当たり１秒当たりの光子数１μｍｏｌは３３ルクスに等しい。
【００９７】
誘導培地中のＮａＮＯ３濃度は、特に３〜４ｇ／Ｌ又は３〜５ｇ／Ｌである。
【００９８】
１０〜１３μｍｏｌ・ｍ−２・ｓ−１の範囲の光強度と、ＮａＮＯ３（窒素源）を３〜５ｇ／Ｌ含有する培養溶液とを併用することによって、フィコシアニンを２０％〜２５％含有するバイオマスが得られる。この含量は、本発明の方法を適用せずに行う実験で得られる３％〜１２％の範囲の含量と比較すると非常に高い。
【００９９】
上記光は、単純な４０Ｗ出力の白熱灯又は蛍光灯によって供給できる。
【０１００】
誘導溶液は、Ｚａｒｒｏｕｋ培地で作製するのが好ましいが、スピルリナに適した他の任意の培地を使用できる。いずれにせよ、誘導溶液の窒素濃度は、硝酸ナトリウム（ＮａＮＯ３）を過剰に添加することで変更できる。最終濃度は、ＮａＮＯ３が３〜５ｇ／Ｌの範囲でなければならない。これは、元のＺａｒｒｏｕｋ培地中の濃度（２．５ｇ／ＬのＮａＮＯ３）よりも１．２〜２倍高い濃度である。
【０１０１】
上記培養条件下、誘導工程は３時間、４時間又は最大５時間行われるが、これにより、乾燥バイオマスの２０％〜２５％の含量を安定して得られるフィコビリタンパク質合成を充分に誘導できる。
【０１０２】
フィコビリタンパク質含量がバイオマスの乾燥重量の少なくとも２０％に等しい光合成微細藻類バイオマスを製造するために、本発明の方法は、バイオマスの増殖を阻害する工程、及び、フィコビリタンパク質の合成を誘導する工程を含む。
【０１０３】
有利な一実施形態において、バイオマスのフィコビリタンパク質含量は、該バイオマスの乾燥重量の少なくとも２１％、２２％、２３％、２４％又は２５％に等しい。
【０１０４】
有利な一実施形態において、バイオマスのフィコビリタンパク質含量は、該バイオマスの乾燥重量の２０％〜２５％である。
【０１０５】
特定の一実施形態において、フィコビリタンパク質の合成を誘導する工程の前に、微細藻類バイオマスを回収する工程を行うことできる。培養液が指数増殖期にあるとき、すなわちバイオマス生産性が最大であるとき、バイオマスを通常の培養槽に回収する。回収分をガーゼで濾過（又はデカンテーション又は遠心分離）して新鮮なバイオマスを得る。得られたバイオマスを誘導槽に移す。
【０１０６】
また、本発明の方法は、濃縮バイオマスを回収する最終工程を含んでもよい。
【０１０７】
したがって、本発明の方法は下記工程を含んでもよい。
・ａ）微細藻類バイオマスを回収する工程
・ｂ）上記バイオマスの増殖を阻害する工程
・ｃ）フィコビリタンパク質の合成を誘導する工程
・ｄ）上記フィコビリタンパク質が豊富なバイオマスを回収する工程
【０１０８】
本発明の方法は、シアノバクテリア、紅色植物（Ｒｈｏｄｏｐｈｙｔｅｓ）又はクリプト植物（Ｃｒｙｐｔｏｐｈｙｔｅｓ）から選択される光合成微細藻類を用いる。
【０１０９】
本発明の方法を実施するために使用する光合成微細藻類は、アルスロスピラ・プラテンシス（スピルリナとも呼ばれる）であるのが好ましい。
【０１１０】
上記光合成微細藻類は、特に、紅藻綱、クリプト藻綱及びシアノバクテリア、とりわけシアノバクテリア、更により具体的にはアルスロスピラ・プラテンシス及びアファニゾメノン・フロスアクア、特にクラマス藻類から選択される。
【０１１１】
また、本発明は、上述した方法によって得られる粉末状又は懸濁状のフィコビリタンパク質の安定した沈殿物を保護するものである。実際、本発明による清澄化及び安定化したフィコビリタンパク質は、化粧品分野でも、機能性食品、食品加工又は医薬品においても任意の適用形態（粉末、液体又は半液体）で使用できる。
【０１１２】
本発明の方法によってサリチル酸で沈殿させたフィコビリタンパク質は、デカンテーション工程によって予め清澄化されているか否かに関わらず、４０℃でオーブン乾燥するか又は凍結乾燥することにより安定性を向上させ、保存可能期間を長くすることができる。該フィコビリタンパク質は、あらゆる食品加工、治療、化粧品又は医薬品用途の任意の粉末製品にそのまま配合できる。
【０１１３】
本発明の方法によってグリセリンで溶解及び安定化した沈殿物は、そのまま例えばバイアル中に包装したり、任意の液体若しくは粘性用途中に食品、化粧品若しくは医薬品の添加剤、染料及び活性成分として配合したりすることができる。
【０１１４】
フィコビリタンパク質の粉末又はグリセリン溶液という２つの形態は、更に、関連するタンパク質、最初の抽出に使用したＣａＣｌ２塩の残渣、及び、沈殿に使用したサリチル酸の残渣を含む。これらの成分は全て食品であり、いかなる食品、化粧品又は医薬品用途の製品の使用をも決して害することはない。
【０１１５】
一変形例では、沈殿物を蒸留水で洗浄することによって塩及びサリチル酸含量を低減してから、グリセリンに溶解することができる。このような洗浄は、過剰なサリチル酸が許容されない用途において好ましい。
【０１１６】
また、本発明は、沈殿及び／又は清澄化工程の終了時に得られる新規製品としての上清溶液に関する。この溶液は、フィコビリタンパク質及び断片の非沈殿画分を含む。また、水溶性タンパク質、微量元素及び溶解サリチル酸を豊富に含む。この溶液は、任意の液状食品及び／又は化粧品に使用可能な活性成分を豊富に含む組成物を構成する。
【０１１７】
また、本発明は、フィコビリンタンパク質が豊富な粉末状又は懸濁状の安定した沈殿物であって、本発明の方法によって得られ得る膜断片を全く含まない沈殿物も包含する。
【０１１８】
最後に、本発明は、上記フィコビリタンパク質が豊富な安定した沈殿物又はフィコビリタンパク質が豊富な安定した複数の沈殿物の混合物を含む化粧用又は機能性食品組成物を保護するものであり、該組成物は、粉末、錠剤若しくはゲルカプセル形態の組成物であってもよいし、液状又は粘性（クリーム、ゲル、ペースト等）組成物であってもよい。
【０１１９】
本発明の化粧用組成物は強力なシワ防止特性を有し、深いシワ、肌の弛み及び肌のくすみに対処することができる。
【０１２０】
本発明の化粧用組成物は、抗酸化化合物が豊富であり、フリーラジカルに対して作用し、細胞の酸素化を促す。継続的な使用により、顔の輪郭が変わり、深いシワが減り、肌の色がより均一になる。また、本発明の化粧用組成物は、目袋及び目のクマを軽減することができ、乾燥を防いでより快適にできる。
【０１２１】
また、本発明の化粧用組成物は、シミ消し効果を有し、細胞の解毒を促し、太陽及び汚染の影響を防ぎ、過剰メラニンを特徴とするシミに対処する能力を高める。
【０１２２】
シミの濃さに応じて、１日当たり２〜４回投与する必要がある。薄く広がったシミは数週間で消えるが、輪郭がはっきりした濃いシミは完全に消えるまでに６〜１２ヶ月かかることもある。また、本発明の化粧用又は皮膚科学的組成物は、重度のニキビの発症による痕跡に対しても推奨される。また、しなやかで柔らかい肌となるよう保湿効果を示す。
【０１２３】
また、本発明は、活性物質として上述したフィコビリタンパク質が豊富な安定した沈殿物又はフィコビリタンパク質が豊富な安定した複数の沈殿物の混合物と、薬学的に許容される担体とを含む皮膚科学的組成物に関する。
【０１２４】
また、本発明は、上述したフィコビリタンパク質が豊富な安定した沈殿物又はフィコビリタンパク質が豊富な安定した複数の沈殿物の混合物の抗酸化剤としての使用に関する。
【図面の簡単な説明】
【０１２５】
【図１】温度（Ｔｅｍｐ、℃）及び光強度（Ｌｕｍ、光子数μｍｏｌ／ｍ２／ｓ）の変化の関数として示した溶解したフィコビリタンパク質の等半減期曲線を示す。
【図２】サリチル酸濃度（ｇ／Ｌ）の関数として示したフィコビリタンパク質（ｐｈｙ）及び断片（ｆｒａｇ）の沈殿度の変化を示す。
【図３】断片濃度（ｇ／Ｌ）及びフィコビリタンパク質の初期濃度の関数として示した沈殿物の清澄度の変化を示す。サリチル酸含量は１３ｇ／Ｌである。
【発明を実施するための形態】
【実施例】
【０１２６】
実施例１：サリチル酸による沈殿
本発明の方法は以下の２つの必須工程に分けられる。
１）市販グレードのサリチル酸粉末をフィコビリタンパク質抽出物に添加する。溶液（サリチル酸＋抽出物）を１５分間撹拌する。この工程によって、溶液を均質化し、溶液中のフィコビリタンパク質分子と酸との接触を促進することができる。
【０１２７】
溶液を分液漏斗に入れる。長くとも１時間後には９０％を超える実質的に全てのフィコビリタンパク質が沈殿する。１時間後に実質的に全てのフィコビリタンパク質を沈殿させるために必要なサリチル酸の量は、元の抽出物中のフィコビリタンパク質の量に依存する。本発明では、下記数式を確立して、元の抽出物中の任意量の可溶性フィコビリタンパク質に対して使用するサリチル酸の最小量を決定することができる。
サリチル酸（ｇ）＝０．００７×フィコビリタンパク質（ｍｇ）／０．５２
【０１２８】
より純度の高いフィコビリタンパク質を必要とする用途においては、本発明では、サリチル酸を用いた選択的沈殿を行うと、フィコビリタンパク質抽出物を清澄化できることが示されている。清澄化は、デカンテーション可能な残渣を抽出物から除去できるデカンテーション工程の後に行う。したがって、デカンテーション後の懸濁物に残存する微細な膜粒子からフィコビリタンパク質を分離することを目的とする。
【０１２９】
デカンテーションにより清澄化されていてもよい沈殿したフィコビリタンパク質は、ガーゼ若しくは濾紙を用いた粗濾過により回収するか、又は、単に分液漏斗の上部から上清を注いで回収する。
【０１３０】
２）デカンテーションにより清澄化されていてもよい沈殿したフィコビリタンパク質をグリセリンに溶解する。本発明では、グリセリンが１．２Ｌであれば、沈殿したフィコビリタンパク質２７ｇを溶解するのに充分であると判断する。溶解収率は９５％〜９９％である。なお、グリセリンに溶解しなかった画分は無水アルコールで回収できる。
【０１３１】
実施例２：本発明の方法に従ってサリチル酸で沈殿させ、グリセリンに再溶解したフィコビリタンパク質の半減期を温度及び光強度の関数として調べる。
【０１３２】
「半減期」（Ｙ）とは、フィコビリタンパク質の半分が分解するまでの日数を示す。
【０１３３】
調べる温度範囲は２０℃〜６０℃、調べる光強度範囲は光子数５０〜１５０μｍｏｌ／ｍ２／ｓである。
【０１３４】
実験を１１回行った。そのうち８回は、両要因に対応する３水準の組み合わせで表される。残りの３回は中心点で表され、実験誤差を評価できる。
【０１３５】
下記数学的モデルを提案する。
Ｌｏｇ１０Ｙ＝４−０．０８Ｔｅｍｐ−０．０１３×Ｌｕｍ＋０．０００５×Ｔｅｍｐ２＋０．０００２×ｔｅｍｐ×Ｌｕｍ
【０１３６】
上記モデルの有効性は９４％、相関係数Ｒ２＝９８％、予測可能性（Ｑ）は９５％である。
【０１３７】
温度及び光条件に応じたフィコビリタンパク質の半減期（日数）の変化を等半減期曲線（ｉｓｏ  ｈａｌｆ-ｌｉｆｅ  ｃｕｒｖｅ）で示す（図１）。
【０１３８】
サリチル酸で沈殿させ、グリセリンに再溶解したフィコビリタンパク質の半減期は、温度が２０℃未満、光強度が光子数５０μｍｏｌ／ｍ２／ｓ未満の場合、１１０日を超え得る。
【０１３９】
試験範囲外の予測によって、保管条件が４℃の完全な暗所である場合、安定化したフィコビリタンパク質の半減期は１１年と推定される。
【０１４０】
同じ温度（２０℃）及び光度（光子数５０μｍｏｌ／ｍ２／ｓ）条件による安定性試験によれば、未処理の水性抽出物の場合、すなわちサリチル酸及び／又はグリセリンの添加に基づく本発明の方法を実施していない場合、全てのフィコビリタンパク質が１２時間後に分解する。フィコビリタンパク質粉末の場合、サリチル酸で沈殿及び安定化させたがグリセリンには再溶解しなかったものは、２ヶ月を超えるインキュベーション後でも分解率は１０％以下である。
【０１４１】
グリセリンに溶解したが本発明の方法に従ってサリチル酸で沈殿させなかった水性抽出物の場合、１ヶ月インキュベーション後の分解率は５０％である。
【０１４２】
サリチル酸で沈殿させ、グリセリンに溶解した水性抽出物は、より良好な安定性を示す。
【０１４３】
実施例３
サリチル酸を用いた選択的沈殿により抽出したフィコビリタンパク質の清澄化を試みる。抽出は、乾燥又は新鮮なスピルリナバイオマスから行うことができる。
【０１４４】
１３ｇの乾燥スピルリナ（又は１３０ｇの新鮮なスピルリナ）を用い、０．２Ｌの滅菌海水に懸濁し、充分に均質化する。
【０１４５】
混合物全体を−４℃で一晩凍結する。これを０．４Ｌの滅菌海水で解凍し、低温条件で２時間撹拌する。２回目の凍結解凍後に低温条件で２時間攪拌しながら０．４Ｌの滅菌海水で解凍する。
【０１４６】
得られた懸濁液をデカンテーション容器に移し、低温条件で一晩放置して、デカンテーション可能なバイオマスから抽出物の水相を分離する。
【０１４７】
フィコビリタンパク質の抽出収率は、スピルリナの乾燥重量の１２〜１５％であると推定される。
【０１４８】
フィコビリタンパク質含量は、Ｂｒｙａｎｔ  ｅｔ  ａｌ．（１９７６）に記載の数式を適用して６２０ｎｍ及び６５０ｎｍでの光学密度に基づいて推定する。断片含量は、ＯＤ６８０とスピルリナ乾燥バイオマスとを関連付ける確立された相関曲線を用いて６８０ｎｍで光学密度を測定することによって評価する。
【０１４９】
このように評価された抽出物のフィコビリタンパク質濃度は、海水１リットル当たり１．５ｇである。
【０１５０】
評価された断片及び膜成分の含量は１．９ｇ／Ｌである。
【０１５１】
連続撹拌しながら１〜２ｇのサリチル酸粉末を断続的に添加する。
【０１５２】
添加毎に溶液を２時間放置し、該放置後、フィコビリタンパク質が沈殿する。次いで、溶液中のフィコビリタンパク質及び断片の量を評価して沈殿度を求める。
【０１５３】
沈殿度の結果を図２に示す。
【０１５４】
サリチル酸濃度が１２〜１３ｇ／Ｌ未満の場合、１００％清澄化した沈殿物が得られることが分かる。
【０１５５】
このようにして得られる沈殿し且つ完全に清澄化したフィコビリタンパク質の最大収率は、１３ｇ／Ｌのサリチル酸の添加の場合、７０％である。
【０１５６】
膜断片及び複合体は全て上清に残留し、高濃度のサリチル酸でしか沈殿しない。
【０１５７】
実施例４：沈殿したフィコビリタンパク質の清澄度の変化
抽出物（様々な希釈及び遠心分離条件により得られたもの）中のフィコビリタンパク質及び断片の様々な初期濃度、並びに、サリチル酸の様々な濃度において、沈殿したフィコビリタンパク質の清澄度の変化を調べる。
【０１５８】
交互作用のある３水準の完全実施要因計画を用いて実験計画法に従って試験を行う。要因は、抽出物中のフィコビリタンパク質の初期濃度（０．３〜１．５２ｇ／Ｌの範囲）、断片濃度（０．７〜１．９ｇ／Ｌの範囲）及びサリチル酸濃度（１０〜２０ｇ／Ｌの範囲）である。
【０１５９】
上記モデルによる実験マトリックスは、上記３要因に対応する３水準（最小、最大及び中央）の組み合わせで表される１５回の実験から構成される。同じ組み合わせを３回繰り返すことによって、実験誤差を評価できる。
【０１６０】
サリチル酸の添加後、沈殿していないフィコビリタンパク質及び断片の量を分光光度法を用いて実験毎に別々に測定する。測定値から、沈殿したフィコビリタンパク質及び断片の含量を推定する。清澄度を計算する。
【０１６１】
「清澄度」は、清澄度＝１００×（フィコビリタンパク質沈殿量）／（フィコビリタンパク質沈殿量＋断片沈殿量）によって定義される。
【０１６２】
上記モデルによって、図３に示す等清澄度曲線（ｉｓｏ−ｃｌａｒｉｔｙ  ｃｕｒｖｅｓ）をプロットできる。
【０１６３】
フィコビリタンパク質濃度が１．５ｇ／Ｌを超え、断片含量が０．９ｇ／Ｌ未満である場合にのみ、完全な清澄度（１００％）にできることが分かる。このような条件で完全に清澄化するために必要なサリチル酸含量は１３ｇ／Ｌ未満である。
【０１６４】
実施例５：シワ防止クリーム
下記組成を有するシワ防止クリームが得られる。
水：５９％
甘扁桃油：１８％
グリセリンに溶解したフィコビリタンパク質が豊富な安定した沈殿物：７％
パーム油：５％、ヒマシ油：３％
藻類抽出物：３％（β−カロチン）
蜜蝋：２％
キサンタンガム：１．７％
香料：１％
エチルパラベン：０．１％、メチルパラベン：０．１％、ベンジルパラベン：０．１％
【０１６５】
実施例６：シミ消しクリーム
下記組成を有するシミ消しクリームが得られる。
シミ消しクリーム：
水：５９％
甘扁桃油：１９．５％
グリセリンに溶解したフィコビリタンパク質が豊富な安定した沈殿物：７％
パーム油：５％、ヒマシ油：３％
藻類抽出物：１．５％（β−カロチン）
蜜蝋：２％
キサンタンガム：１．７％
香料：１％
エチルパラベン：０．１％、メチルパラベン：０．１％、ベンジルパラベン：０．１％
【０１６６】
引例
Ａｒａｄ  ａｎｄ  Ａｉ．，１９９７．Ｃｏｌｏｒｉｎｇ  ｍａｔｅｒｉａｌ．ＵＳ  ｐａｔｅｎｔ  ＵＳ／５，６４３，５８５
Ｂｒｙａｎｔ  Ｄ．Ａ．，Ｇｌａｚｅｒ，Ａ．Ｎ．ａｎｄ  Ｅｉｓｅｒｌｉｎｇ  Ｆ．Ａ．，１９７６．Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓａｔｉｏｎ  ａｎｄ  Ｓｔｒｕｃｔｕｒａｌ  ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ  ｏｆ  ｔｈｅ  ｍａｊｏｒ  ｂｉｌｉｐｒｏｔｅｉｎｓ  ｏｆ  Ａｎａｂａｅｎａ  ｓｐ．Ａｒｃｈ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ，１１０，６１−７５．
Ｃｏｓｔａ  ＪＡＶ，Ｃｏｌｌａ  ＬＭ，Ｄｕａｒｔｅ  Ｆｉｌｈｏ  ＰＦ，Ｋａｂｋｅ  Ｋ，Ｗｅｂｅｒ  Ａ．，２００２．Ｍｏｄｅｌｌｉｎｇ  ｏｆ  Ｓｐｉｒｕｌｉｎａ  ｐｌａｔｅｎｓｉｓ  ｇｒｏｗｔｈ  ｉｎ  ｆｒｅｓｈｗａｔｅｒ  ｕｓｉｎｇ  ｒｅｓｐｏｎｓｅ  ｓｕｒｆａｃｅ  ｍｅｔｈｏｄｏｌｏｇｙ．Ｗｏｒｌｄ  Ｊ  Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ  １８：６０３−６０７
Ｍｉｎａｒｄ．Ｆ．，２００５．Ｍｅｔｈｏｄ  ｆｏｒ  ｔｈｅ  ｐｈｏｔｏｓｔａｂｉｌｉｓａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｐｈｙｃｏｂｉｌｉｐｒｏｔｅｉｎｓ  ｉｎ  ａｎ  ａｑｕｅｏｕｓ  ｅｘｔｒａｃｔ，ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎｓ  ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ  ｓｔａｂｉｌｉｓｅｄ  ｐｈｙｃｏｂｉｌｉｐｒｏｔｅｉｎｓ  ａｎｄ  ｕｓｅ  ｏｆ  ｓｔａｂｉｌｉｓｅｄ  ｐｈｙｃｏｂｉｌｉｐｒｏｔｅｉｎｓ．Ｐａｔｅｎｔ  Ｎｏ．ＷＯ２００５０６５６９７Ａ１．
Ｒｅｂｅｌｌｅｒ  Ｍ．Ｙｏｕｔ  Ｐ  ａｎｄ  Ｌｏｎｃｈａｍｐ  Ｄ．，１９７９．Ｐｒｏｃｅｄｅ  ｄ’ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ  ｓｅｌｅｃｔｉｖｅ  ｄｅｓ  ｃｏｌｏｒａｎｔｓ  ｃｏｎｔｅｎｕｓ  ｄａｎｓ  ｌｅｓ  ａｌｇｕｅｓ  ｃｙａｎｏｐｈｙｃｅｅｓ［Ｐｒｏｃｅｓｓ  ｆｏｒ  ｓｅｌｅｃｔｉｖｅ  ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ  ｏｆ  ｄｙｅｓ  ｃｏｎｔａｉｎｅｄ  ｉｎ  ｃｙａｎｏｐｈｙｃｅａｅ  ａｌｇａｅ］．（Ｐａｔｅｎｔ  ｆｉｌｅｄ  ｂｙ  ｔｈｅ  Ｉｎｓｔｉｔｕｔ  ｆｒａｎｃａｉｓ  ｄｕ  ｐｅｔｒｏｌｅ  ｅｎｔｅｒｅｄ  ｕｎｄｅｒ  ｃｌａｓｓｉｆｉｃａｔｉｏｎ  Ｃ０９Ｂ６１／００）．
Ｆｒｅｄｅｒｉｃ  Ｐｏｔｔｅｃｈｅｒ，２０１４．Ｐｒｏｃｅｄｅ  ｄ’ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ  ｅｔ  ｄｅ  ｓｔａｂｉｌｉｓａｔｉｏｎ  ｄｅｐｈｙｃｏｃｙａｎｉｎｅ  ｅｔ  ｓｅｓ  ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ［Ｐｒｏｃｅｓｓ  ｆｏｒ  ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ  ａｎｄ  ｓｔａｂｉｌｉｚａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｐｈｙｃｏｃｙａｎｉｎ  ａｎｄ  ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ  ｔｈｅｒｅｏｆ］．ＷＯ２０１４０４５１７７Ａ１．Ｐａｔｅｎｔ  ｆｉｌｅｄ  ｂｙ  Ｅｃｏｓｙｓｔｅｍ．
【図１】
0006667527.tif 000002
【図２】
0006667527.tif 000003
【図３】
0006667527.tif 000004