(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
Ｐｈｅ−Ｐｒｏ−Ｇｌｙ−Ｖａｌ−Ｇｌｙの配列を４〜１０回繰り返したアミノ酸配列を有する第１のペプチド、又は、前記第１のペプチドに対して、１つ又は２つのアミノ酸が欠失、置換、又は付加された第２のペプチドからなる経皮吸収素材。
【請求項２】
Ｐｈｅ−Ｐｒｏ−Ｇｌｙ−Ｖａｌ−Ｇｌｙの配列を４〜１０回繰り返したアミノ酸配列を有する第１のペプチド、又は、前記第１のペプチドに対して、１つ又は２つのアミノ酸が欠失、置換、又は付加された第２のペプチドからなる経皮吸収素材を備えることを特徴とする経皮吸収式化粧品。
【請求項３】
Ｐｈｅ−Ｐｒｏ−Ｇｌｙ−Ｖａｌ−Ｇｌｙの配列を４〜１０回繰り返したアミノ酸配列を有する第１のペプチド、又は、前記第１のペプチドに対して、１つ又は２つのアミノ酸が欠失、置換、又は付加された第２のペプチドからなる経皮吸収素材を備えることを特徴とする経皮吸収式薬剤。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、特定のペプチドからなる経皮吸収素材と、それを含有する経皮吸収式化粧品及び経皮吸収式薬剤に関する。
【背景技術】
【０００２】
皮膚から人体に有効成分を浸透させることが可能な素材（以下、「経皮吸収素材」とも言う）は、化粧品において有用であり、薬品においても、経皮薬物送達システムへの利用が期待される。そして、経皮吸収素材が他の物質を包含できれば、化粧品素材や薬品素材を人体に安定的に送り込むことが可能となる。
ところで、動物組織を構成する蛋白質として、エラスチンが知られている。エラスチンは、細胞からトロポエラスチンという蛋白質として分泌された後、ミクロフィブリルの周囲や間隙に自己集合し、分子間が架橋されて不溶性の弾性繊維となる。これは、エラスチンが有する自己集合能、所謂、コアセルベーションによるものであり、エラスチンのアミノ酸配列を基盤としたペプチドは、コアセルベーションを備えるものと考えられる（特許文献１参照）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００３】
【特許文献１】特開２０１２−１２６７１３号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００４】
本願の発明者らは、コアセルベーションが物質の包含性に関連することを期待し、エラスチンのアミノ酸配列を基盤としたペプチドの経皮吸収素材としての利用可能性を検討した。
しかしながら、コアセルベーションにより、実際に物質を包含するか否かは未知数である。更に、エラスチンのアミノ酸配列を基盤としたペプチドは、アミノ酸配列の繰り返し数が小さいと、コアセルベーションを発現しないことが知られており、逆に、アミノ酸配列の繰り返し数が大きいと、高分子となって、皮膚浸透性が低下することが考えられる。
また、エラスチンのアミノ酸配列を基としたペプチドにおいて、物質の包含性と共に、皮膚浸透性を備えるものを調査する試みはなされていなかった。
本発明は、かかる事情に鑑みてなされるもので、エラスチンのアミノ酸配列を基としたペプチドからなり、皮膚浸透性及び物質の包含性を有する経皮吸収素材、並びに、それを備える経皮吸収式化粧品及び経皮吸収式薬剤を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００５】
前記目的に沿う第１の発明に係る経皮吸収素材は、Ｐｈｅ−Ｐｒｏ−Ｇｌｙ−Ｖａｌ−Ｇｌｙの配列を４〜１０回繰り返したアミノ酸配列を有する第１のペプチド、又は、前記第１のペプチドに対して、１つ又は２つのアミノ酸が欠失、置換、又は付加された第２のペプチドからなるものである。
第１、第２のペプチドは、皮膚浸透性と物質の包含性とを有することが実験によって確認された。
【０００６】
前記目的に沿う第２の発明に係る経皮吸収式化粧品は、Ｐｈｅ−Ｐｒｏ−Ｇｌｙ−Ｖａｌ−Ｇｌｙの配列を４〜１０回繰り返したアミノ酸配列を有する第１のペプチド、又は、前記第１のペプチドに対して、１つ又は２つのアミノ酸が欠失、置換、又は付加された第２のペプチドからなる経皮吸収素材を備える。
【０００７】
前記目的に沿う第３の発明に係る経皮吸収式薬剤は、Ｐｈｅ−Ｐｒｏ−Ｇｌｙ−Ｖａｌ−Ｇｌｙの配列を４〜１０回繰り返したアミノ酸配列を有する第１のペプチド、又は、前記第１のペプチドに対して、１つ又は２つのアミノ酸が欠失、置換、又は付加された第２のペプチドからなる経皮吸収素材を備える。
【発明の効果】
【０００８】
第１の発明に係る経皮吸収素材は、第１、第２のペプチドが、皮膚浸透性と物質の包含性とを有することから、物質を皮膚から体内に浸透させるものとして、有効である。
また、このことから、第１の発明に係る経皮吸収素材を備える第２の発明に係る経皮吸収式化粧品、及び、同じく、第１の発明に係る経皮吸収素材を備える第３の発明に係る経皮吸収式薬剤は、有効成分を皮膚を介して体内に浸透させることが可能である。
【図面の簡単な説明】
【０００９】
【図１】本発明の一実施の形態に係る経皮吸収素材の皮膚保湿性試験の実験結果を示すグラフである。
【図２】同経皮吸収素材の皮膚浸透性試験の実験結果を示すグラフである。
【図３】同経皮吸収素材の色素放出性試験の実験結果を示すグラフである。
【図４】同経皮吸収素材の色素放出性試験の実験結果を示すグラフである。
【図５】同経皮吸収素材の色素放出性試験の実験結果を示すグラフである。
【図６】同経皮吸収素材の色素放出性試験の実験結果を示すグラフである。
【図７】同経皮吸収素材の色素放出性試験の実験結果を示すグラフである。
【発明を実施するための形態】
【００１０】
続いて、添付した図面を参照しつつ、本発明を具体化した実施の形態につき説明し、本発明の理解に供する。
本発明の一実施の形態に係る経皮吸収素材は、配列番号１の配列、即ち、Ｐｈｅ−Ｐｒｏ−Ｇｌｙ−Ｖａｌ−Ｇｌｙ（以下、「ＦＰＧＶＧ」として表現することもある）の配列を４〜１０回繰り返したアミノ酸配列を有する第１のペプチドからなる経皮吸収素材、もしくは、第１のペプチドに対して、少なくとも１つのアミノ酸が欠失、置換、又は付加された第２のペプチドからなる経皮吸収素材である。
【００１１】
ここで、「Ｐｈｅ」、「Ｐｒｏ」、「Ｇｌｙ」及び「Ｖａｌ」はそれぞれ、フェニルアラニン、プロリン、グリシン及びバリンであり、アミノ酸の欠失とは、アミノ酸が存在しないことを意味する。
また、第１のペプチドのＣ末端は、カルボシル基（−ＣＯＯＨ）、カルボキシレート（−ＣＯＯ−）、アミド（−ＣＯＮＨ２）、及び、エステル（−ＣＯＯＲ）のいずれかであってもよい。ここで、Ｃ末端がエステルである場合のＲとしては、メチル、エチル、ｎ−プロピル等のＣ１−６アルキル基や、シクロペンチル、シクロヘキシル等のＣ３−８シクロアルキル基や、フェニル等のＣ６−１２アリール基等が挙げられる。
そして、第１のペプチドのＮ末端は、例えば、アセチル基、ホルミル基等の保護基で保護されていてもよい。
【００１２】
第１のペプチドは、検証の結果、物質の包含性、及び、皮膚浸透性を有し、更に、包含した物質を放出する放出性を有することが確認された。従って、第１のペプチドは、有効成分を、皮膚から人体に浸透させて体内で放出することができる経皮吸収素材として採用可能である。
一方、ＦＰＧＶＧの繰り返し回数（重合度）が３以下のペプチドは、物質の包含性が不安定となることが確認された。そして、ＦＰＧＶＧの繰り返し回数が１１以上のペプチドは、水溶性が低下して、皮膚から人体への浸透の安定性が確保できなくなることが検証によって確認された。
【００１３】
また、第１のペプチドに対しわずかな差異のある、具体的には、第１のペプチドに対して、１つ、もしくは、数個（好ましくは１〜８個、より好ましくは１〜４個）のアミノ酸が欠失、置換、又は付加された第２のペプチドについても、物質の包含性、放出性、及び、皮膚浸透性があることが確認されている。従って、第２のペプチドも、第１のペプチドと同様に、有効成分を、皮膚から人体に浸透させて体内で放出可能な経皮吸収素材として採用することができる。
更に、第１、第２のペプチドに、皮膚を保湿する性質（皮膚保湿性）も存在することが確認された。
【００１４】
第１、第２のペプチドは、皮膚浸透性と、物質の包含性及び放出性を備えていることから、第１のペプチドからなる経皮吸収素材、又は、第２のペプチドからなる経皮吸収素材を含有する（即ち、備える）化粧品及び薬剤は、有効成分を皮膚から体内に安定的に送りこむことができる。よって、第１のペプチドからなる経皮吸収素材、又は、第２のペプチドからなる経皮吸収素材は、本発明の他の実施の形態に係る経皮吸収式化粧品及び経皮吸収式薬剤に含有して用いられるのが有効である。
ここで、経皮吸収式化粧品とは、皮膚から化粧品の有効成分（例えば、美白成分）を浸透させるタイプの化粧品を意味し、経皮吸収式薬剤とは、皮膚から体内に薬品の有効成分（例えば、鎮痛成分）を送り込むタイプの薬剤を意味する。
【実施例】
【００１５】
次に、本発明の作用効果を確認するために行った実験について説明する。
化学合成したＨ−（ＦＰＧＶＧ）５−ＮＨ２、即ち、ＦＰＧＶＧの配列が５回繰り返されたペプチドを対象に、皮膚保湿性、皮膚浸透性、及び、色素の包含放出性を試験した結果を以下に示す。なお、Ｈ−（ＦＰＧＶＧ）５−ＮＨ２を、以下、「実施例のペプチド」とも言う。
皮膚保湿性試験及び皮膚浸透性試験では、株式会社ジャパン・ティッシュ・エンジニアリングのＬａｂＣｙｔｅ（登録商標）  ＥＰＩ−ＭＯＤＥＬ  １２のヒト３次元培養皮膚（以下、単に「培養皮膚」とも言う）を用いた。
【００１６】
≪皮膚保湿性試験≫
皮膚保湿性試験においては、まず、実施例のペプチドを基に、溶媒に蒸留水（以下、「Ｄ．Ｗ．」として記す）を用いて、０．１ｗ／ｗ％溶液（１００ｇの溶液に対して実施例のペプチドが０．１ｇ含有された溶液、以下、単に「０．１％溶液」とも言う）、及び、１．０ｗ／ｗ％溶液（１００ｇの溶液に対して実施例のペプチドが１．０ｇ含有された溶液、以下、単位、「１．０％溶液」とも言う）を調整した。
【００１７】
次に、０．１％溶液、及び、１．０％溶液それぞれについて、２００μＬの溶液を表面に適用（供給）した培養皮膚を、恒温振盪器によって、３２℃で保温して３０分間、振盪させ、その後、培養皮膚上の溶液を紙製のウエスでふき取り、３２℃の環境下で１時間、乾燥した。上述した培養皮膚の表面に溶液を適用してから１時間の乾燥を終えるまでのサイクルを、３回、繰り返した（合計、３サイクル行った）後、乾燥処理を終えた培養皮膚の重量（以下、「湿重量」とも言う）を測定し、次に、乾燥器によって、培養皮膚を２４時間、乾燥させ、培養皮膚の重量（以下、「乾燥重量」とも言う）を計測した。
【００１８】
そして、以下の式１によって、培養皮膚内の含水率を求めた。
含水率（％）＝｛（湿重量−乾燥重量）／湿重量｝×１００  ・・・（式１）
また、０．１％溶液、及び、１．０％溶液と比較するため、実施例のペプチドを含有しないＤ．Ｗ．についても、０．１％溶液、及び、１．０％溶液の培養皮膚に対するのと同様の処理を行い、培養皮膚内の含水率を計測した。
【００１９】
培養皮膚内の含水率は、図１に示すように、Ｄ．Ｗ．、０．１％溶液、及び、１．０％溶液を適用したそれぞれの場合において、６４．８±４．９％、６９．９±５．６％、及び、７４．６±４．０％となった。
乾燥処理を含め、いかなる処理も行っていない培養皮膚の含水率は、７６．３±１．８％であったため、１．０％溶液を適用した培養皮膚は、いかなる処理も行っていない培養皮膚と同レベルの含水率まで回復したことが判明した。従って、実施例のペプチド溶液は、培養皮膚の含水率を維持、又は、増加させる皮膚保湿性があることが明らかになった。
【００２０】
≪皮膚浸透性試験≫
皮膚浸透性試験では、まず、培養カップ内に入れられた培養皮膚上に、２００μＬの実施例のペプチド溶液（１．０％溶液）を載せ、３２℃に設定された恒温振盪器内に培養皮膚を収容した。
次に、恒温振盪器に収容してから５分後に、ウエスで培養皮膚上の実施例のペプチド溶液を取り除き、そのウエスを、１．５ｍＬサンプルチューブに入れた。ウエスで実施例のペプチド溶液が拭き取られた培養皮膚は、０．１％ＴＦＡ＋５％ＣＨ３ＣＮ溶液と０．１％ＴＦＡ＋９５％ＣＨ３ＣＮ溶液を１：１の割合で混合した混合溶液（以下、「抽出溶液」とも言う）０．５ｍＬで洗浄され、表面がよく拭かれた後に、１．５ｍＬサンプルチューブに入れられた。なお、「ＴＦＡ」は、トリフルオロ酢酸を示す。
【００２１】
そして、ウエスが入れられたサンプルチューブと、培養皮膚が入れられたサンプルチューブとにそれぞれ、抽出溶液を１．５ｍＬ入れ、３２℃に保った環境下で、２４時間、振盪を行った。
次に、ウエスが入れられたサンプルチューブ、及び、培養皮膚が入れられたサンプルチューブをそれぞれ、１万５千ｒｐｍで、１５分間、遠心した後、各サンプルチューブ内の上清に含まれる実施例のペプチドの定量を、ＨＰＬＣ（高速液体クロマトグラフィー）によって行った。
【００２２】
ウエスから抽出された実施例のペプチドは、培養皮膚内に浸透しなかったものであり、培養皮膚から抽出された実施例のペプチドは、培養皮膚内に浸透したものであると言えるため、培養皮膚から抽出された実施例のペプチドの量を、培養皮膚内に浸透した実施例のペプチドの量として扱うことができる。
なお、ウエスから抽出された実施例のペプチドの量と、培養皮膚から抽出された実施例のペプチドの量とを合算した量が、最初に、培養皮膚上に与えられた実施例のペプチドの量と等しくなることを確認している。
また、実施例のペプチド溶液を載せた後、培養皮膚を３２℃に設定された恒温振盪器内に収容する時間を、１５分間、３０分間、６０分間にそれぞれ延長した場合についても、上述した手順を行うことによって、培養皮膚内に浸透した実施例のペプチドの量を導出した。
【００２３】
これらの実験で得た結果を基に、培養皮膚内に浸透する実施例のペプチドの量の時間経過による推移を求めた。その推移を図２に示す。
実施例のペプチド溶液を培養皮膚に５分間、適用することによって、図２に示すように、１枚の培養皮膚に浸透した実施例のペプチドの量は、２．１μｇになることが確認された。そして、実施例のペプチド溶液を培養皮膚に適用した時間を１５分、３０分及び６０分にしたそれぞれの場合では、１枚の培養皮膚に浸透した実施例のペプチドの量は、約１５μｇとなり、１５分以上の時間の経過による大きな変化はみられなかった。
よって、実施例のペプチド溶液を皮膚に一定時間（例えば、１５分間）以上、適用することにより、実施例のペプチドが皮膚に安定的に浸透することが確認された。
【００２４】
≪色素の包含放出性試験≫
色素の包含放出性試験においては、まず、実施例のペプチド及び色素それぞれが所定量含有されたペプチド溶液を作製した。そして、作製したペプチド溶液を４℃の環境下で２４時間、静置、又は、振盪させた後、４０℃で２４時間、静置、又は、振盪することによって、ペプチド溶液中の実施例のペプチドに色素を包含させ、次に、ペプチド溶液を４０℃の環境下で、３分間、１万ｒｐｍで遠心分離し、上清を回収した。
【００２５】
回収した上清に対し、所定波長の吸光度を測定し、測定結果を基に、実施例のペプチドに包含された色素量を求めた。
そして、上清が回収されたペプチド溶液の残渣に、１ｍｌの水を加え、４０℃で２４時間、静置、又は、振盪した後、再び、上清を回収し、回収した上清に対し、所定波長の吸光度を測定し、測定結果を基に、実施例のペプチドから放出された色素量を求めた。実施例のペプチドから放出された色素量を求める手順を、３週間、毎日繰り返し、放出される色素量の累積を調査した。
【００２６】
以上の色素の包含放出性試験を、以下の表１に示す各条件で行った結果を、表２及び図３〜図７に示す。表２は、各条件において、実施例のペプチドに含有された色素量を示したものである。そして、図３〜図７は、実施例のペプチドから放出された色素量の累積を、各条件で比較した結果を示すグラフである。具体的には、図３が、条件（ｉ）と条件（ｉｉｉ）の色素混入方法の比較、図４が、条件（ｉ）と条件（ｉｖ）の包含させた色素量の比較、図５が、条件（ｖ）と条件（ｖｉ）の静置・振盪の比較、図６が、条件（ｉ）と条件（ｉｉ）の静置・振盪の比較、図７が、条件（ｉ）と条件（ｖ）のペプチド濃度の比較をそれぞれ示している。
【００２７】
【表１】
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【００２８】
【表２】
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【００２９】
表２に示す結果より、実施例のペプチドは、条件（ｉ）〜条件（ｖｉ）のいずれにおいても、９４％以上の高包含率で色素を包含することが確認された。
そして、図３〜図７に示す結果より、実施例のペプチドは、最短でも、１週間、色素を継続的に放出することが確認できた。
また、実施例のペプチドと、その他の蛋白質との比較を行うため、比較例であるウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）を担体として、上述した手順と同様の手順により、色素の包含放出性の試験を行ったところ、ウシ血清アルブミンは、色素を包含しないことが確認された。従って、色素の包含放出性は、蛋白質に共通して備わっているものでないことが明らかである。
【００３０】
以上、本発明の実施の形態を説明したが、本発明は、上記した形態に限定されるものでなく、要旨を逸脱しない条件の変更等は全て本発明の適用範囲である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【配列表】
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