(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
バイオマスを前処理し、酵素糖化により糖類を製造する方法であって、
前記前処理を、無機酸；並びに２以上、８以下の炭素を含むモノアルコールの存在下（但し、脂肪族アルコール、水、および二酸化硫黄の溶液を除く。）、常圧（加熱による陽圧を含む）で、１００〜２００℃の温度に加熱して行うと共に、
前記酸と前記モノアルコールの合計に対する前記モノアルコールの容量比率は、１０％以上、４０％未満であることを特徴とする糖類の製造方法。
【請求項２】
請求項１に記載の製造方法を用いて化成品を製造する方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、バイオマスから糖類、更にはエタノールなどの化成品を効率よく製造する方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
生物由来のバイオマスを石油製品に代わる微生物発酵の原料として利用し、有用物質であるエタノール、乳酸などの化成品を生産する方法が開発されている。具体的には、例えばバイオマスを酸などにより前処理した後、セルラーゼなどの糖化酵素によって糖化し、バイオ変換によってエタノールを製造する方法が挙げられる。
【０００３】
例えば特許文献１には、バイオマスをブタノール、イソアミルアルコールなどの水非混和性有機溶媒と、硫酸などの酸と、硫酸銅などの金属塩触媒との混合物と、所定の温度（約１２０℃〜２２０℃）及び圧力（７．５Ｂａｒ〜２０Ｂａｒ）という高温高圧下で接触させた後、得られた反応混合物を加圧下で濾過する方法が開示されている。上記特許文献１の方法によれば、バイオマスをその主成分であるリグニン、セルロース、ヘミセルロースに高純度且つ高収率で分離できること；後の糖化が高収率になるような形態でセルロースが得られるため、糖化に至るのに莫大な酵素負荷または過剰な時間が不要であり、糖化プロセスが経済的に実行可能であると記載されている。
【０００４】
また、特許文献２には、木材などのリグノセルロース物質を直接ポリエチレングリコールなどの多価アルコールに液化・溶解することにより種々の樹脂原料として有用な木材液化溶液を製造する方法が記載されている。上記特許文献２の方法によれば、常圧下にて、１００〜２００℃という比較的低い温度で加熱するだけで、木材の液化収率９０数％と高い収率で液状物が得られると記載されている。
【０００５】
特許文献３は上記特許文献２の方法を更に改良したものであり、加熱反応槽内を減圧状態で加熱して発生する水蒸気および低沸点物を加熱反応槽外に引出して除去する方法が開示されている。上記特許文献３の方法によれば、上記特許文献２の方法における問題点；すなわち、水分を含んだリグノセルロース物質をそのまま加熱すると、水の潜熱のために液化反応に長時間を要したり、そのために収率が低下したり、また液化時に生じる低沸点物の臭気がそのまま液化溶液に残るなどの問題点を解消できることが記載されている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００６】
【特許文献１】特許第５５６３４４７号公報
【特許文献２】特開平４−１０６１２８号公報
【特許文献３】特開平６−１２２７７０号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
酵素糖化工程に用いられる酵素は非常に高いため、酵素の使用量を低減しても（換言すれば、酵素単位を低くしても）、バイオマスを糖化し易いセルロース含有固体画分に効率よく分解でき、エタノールなどの化成品を高い収率で製造する方法が望まれている。
【０００８】
本発明は上記事情に鑑みてなされたものであり、その目的は、非常に少量の酵素でもバイオマスを糖化し易いセルロースに分解でき、高収率でグルコース、更にはエタノールなどの化成品を製造することのできる新規な前処理方法を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
上記課題を解決し得た本発明の製造方法は、バイオマスを前処理し、酵素糖化により糖類を製造する方法であって、上記前処理を、酸およびモノアルコールの存在下、常圧で加熱して行うところに要旨を有する。
【００１０】
本発明の好ましい実施形態において、上記モノアルコールは、２以上、８以下の炭素を含む。
【００１１】
本発明の好ましい実施形態において、上記酸と上記モノアルコールの合計に対する上記モノアルコールの容量比率は、１０％以上、８０％以下である。
【００１２】
本発明の好ましい実施形態において、上記酸と上記モノアルコールの合計に対する上記モノアルコールの容量比率は、１０％以上、４０％未満である。
【００１３】
本発明の好ましい実施形態において、上記加熱温度は１００〜２００℃である。
【００１４】
本発明の好ましい実施形態において、上記酸は無機酸である。
【００１５】
本発明には、上記のいずれかに記載の製造方法を用いて、バイオマス由来の化成品（バイオ化成品）を製造する方法も包含される。
【発明の効果】
【００１６】
本発明によれば、バイオマスを糖化し易いセルロース含有固体画分に効率よく分解できるため、酵素糖化工程における糖化酵素の使用量（負荷量）を低減してもグルコースなどの糖類、更には上記糖類から得られるエタノールなどの有用な化成品を高い収率で製造することができる。
【００１７】
また、本発明によれば、モノアルコール濃度を４０％未満という低水準に低減しても、バイオマスからリグニンを効率よく除去することができ、セルロースに効率よく分解できるため、経済上、非常に有用である。
【図面の簡単な説明】
【００１８】
【図１】図１は、バイオマスにブタノールおよび硫酸を種々の比率で添加して撹拌した後の固体画分の状態を示す写真である。
【図２】図２は、実施例１における、前処理に用いたブタノールと希硫酸の添加割合およびブタノール濃度と、固体画分の重量との関係を示すグラフである。
【図３】図３は、実施例２における、前処理に用いたブタノールと希硫酸の添加割合およびブタノール濃度と、グルコース濃度との関係を示すグラフである。
【図４】図４は、実施例３における、セルラーゼ添加によるエタノール生成量をエタノール発酵時間ごとに比較したグラフである。
【図５】図５は、実施例３における、セルラーゼの酵素単位とエタノール生成量との関係を示すグラフである。
【図６】図６は、実施例４における、前処理に用いたモノアルコールと、固体画分の重量との関係を示すグラフである。
【図７】図７は、実施例５における、前処理に用いたモノアルコールと、グルコース濃度との関係を示すグラフである。
【図８】図８は、実施例６において、種々のモノアルコールを用いて前処理を行ったときのバイオマスの組成分析結果を示すグラフである。
【発明を実施するための形態】
【００１９】
本発明者らは、常圧下で１００〜２００℃という比較的低い加熱温度で前処理しても、バイオマスからのセルロースを効率よく分解でき、その後の酵素糖化工程によってエタノールなどの化成品を高い収率で得ることができる方法を提供するため、検討を行ってきた。その結果、モノアルコールと酸を用いてバイオマスを前処理すれば所期の目的が達成されることを見出した。本発明による前処理方法を用いれば、酵素糖化に寄与するセルロースが高効率で得られるため、高価な酵素の使用量を低減しても（すなわち、酵素単位の低い酵素を用いても）、糖化が効率よく進行してエタノールなどの化成品を高収率で得られるという顕著な効果が得られる。また、モノアルコール濃度を、例えば４０％未満という低水準に低減しても、バイオマスからリグニンを効率よく除去でき、セルロースに効率よく分解できるという経済的効果も得られる。
【００２０】
なお、前述した特許文献２および特許文献３にも、本発明と同様、常圧且つ比較的低い温度で前処理を行う方法が記載されているが、これらは多価アルコールを使用している点で、モノアルコールを使用する本発明とは相違する。また、これらの特許文献では、木材の液化収率が高められる（不溶解残渣率が少ない）ことを実験で確認しているだけであって、エタノール発酵の実験は行っていないため、本発明のように少量の酵素でも高収率でエタノールが得られるかどうか不明である。一方、前述した特許文献１では、高温高圧下で前処理することを前提条件としている点で、やはり本発明と相違する。
【００２１】
以下、本発明の方法を工程順に説明する。
【００２２】
（１）前処理工程
まず、バイオマスを用意する。本発明に用いられるバイオマスの種類は特に限定されず、当該技術分野で通常用いられる生物由来のバイオマスを全て用いることができる。具体的には、例えば特許文献２に記載のバイオマス（木材、藁や籾殻などの植物繊維素、紙、パルプ類のほか、これらの粉砕物など）が挙げられる。
【００２３】
次いで、上記バイオマスを前処理する。本発明では、この前処理を、酸およびモノアルコールの存在下、常圧で加熱して行う点に特徴がある。詳細には、常圧で好ましくは１００〜２００℃の温度で加熱して前処理するに当たり、モノアルコールを選択した点に特徴がある。
【００２４】
上記前処理に用いられる酸は、無機酸、有機酸のいずれも使用可能である。但し、酸解離定数などを考慮すると、無機酸の使用が好ましい。上記無機酸としては、例えば、硫酸、塩酸、リン酸などが挙げられ、好ましくは硫酸である。
【００２５】
また、上記前処理に用いられるモノアルコール（一価アルコール）は、好ましくは２以上、８以下の炭素を含み、より好ましくは４以上、８以下の炭素を含む。炭素数が２未満では、所望とする固体画分の分解効率が得られない。一方、炭素数が８を超えると、モノアルコールが酸によるバイオマスの分解を阻害するようになる。上記モノアルコールとして、例えば、エタノール（炭素数２）、プロパノール（炭素数３）、ブタノール（炭素数４）、ペンタノール（炭素数５）、ヘキサノール（炭素数６）、ヘプタノール（炭素数７）、オクタノール（炭素数８）が挙げられる。
【００２６】
ＯＨ基の位置は特に限定されず、例えばプロパノールの場合、１−プロパノール、２−プロパノール；ブタノールの場合、１−ブタノール、２−ブタノール、３−ブタノールの任意のモノアルコールを用いることができる。また、上記モノアルコールを構成する炭化水素基は、直鎖状、分岐状、脂環状のいずれも有し得る。また、上記モノアルコールを構成する炭化水素基は、飽和結合のみから構成されていても良いし、不飽和結合を有していても良い。
【００２７】
上記モノアルコールは単独で用いても良いし、二種以上を組み合わせても良い。特に好ましく用いられるモノアルコールはブタノールであり、直鎖状のブタノール（ｎ−ブタノール）がより好ましい。
【００２８】
上記酸と上記モノアルコールの合計に対する上記モノアルコールの容量比率（以下、モノアルコール比率と略記する場合がある。）は、１０％以上、８０％以下であることが好ましい。上記比率が１０％を下回ると前処理効率が低下する。一方、上記比率が８０％を超えるとモノアルコールが酸によるバイオマスの分解を阻害するようになる。コスト低減の観点からはモノアルコールの使用量は少ない程良く、上記比率は４０％未満であることがより好ましい。また、上記比率が４０％未満の場合、撹拌による固体画分の分解効率が高められる傾向にある（後記する実験例を参照）。
【００２９】
上記前処理は常圧下で加熱して行う。ここで「常圧下で行う」とは、前述した特許文献１のような積極的な加圧処理を行わないことを意味する。具体的には本発明では、例えば後記する実施例に記載のとおり、内筒容器と外筒容器を備えた二重密閉式反応容器を用い、常圧のまま、内筒容器にバイオマス、モノアルコール、および酸を入れた後、外筒容器の蓋を強固に締めた後、ホットスターラーにセットして加熱しており、加熱による蒸気圧等の陽圧を含む。
【００３０】
加熱温度は１００〜２００℃で行うことが好ましい。加熱温度が１００℃未満になると、酸によるバイオマスの分解の効率が低くなる。一方、加熱温度が２００℃を超えると、バイオマスが過度に分解されるようになる。より好ましくは１７０℃以上、１９０℃以下である。
【００３１】
具体的には、上記前処理は以下の手順で行うことが好ましい。まず、上記酸と上記モノアルコールとを、好ましくは上記の混合比率となるように、バイオマスに添加する。バイオマスに対する上記モノアルコールの質量比率は、おおむね１．３〜５．４倍であることが好ましく、１．３〜４倍であることがより好ましい。上記質量比率が少ないと、前処理効率が低下する。一方、上記質量比率が多いと、モノアルコールが酸によるバイオマスの分解を阻害するようになる。
【００３２】
添加後、撹拌する。本発明者らの下記実験結果によれば、前処理時に撹拌を行うと、バイオマス由来のセルロースを含む固体画分の分解効率が向上し、特にモノアルコール比率が４０％未満の場合に顕著に見られることが示唆された。
【００３３】
図１は、後記する実施例１と同様にして前処理を行い、得られた固体画分を乾燥させた塊状物を手でほぐしたときの様子を示す写真である。詳細は以下のとおりである。
・図１の上段（Ｎｏ．１）：ブタノールを３０ｍＬ、硫酸を５０ｍＬ添加して前処理を行った。このときのブタノール比率は３７．５％（＝［３０／（３０＋５０）］×１００）である。
・図１の中段（Ｎｏ．２）：ブタノールを４０ｍＬ、硫酸を４０ｍＬ添加して前処理を行った。このときのブタノール比率は５０％（＝［４０／（４０＋４０）］×１００）である。
・図１の下段（Ｎｏ．３）：ブタノールを５０ｍＬ、硫酸を３０ｍＬ添加して前処理を行った。このときのブタノール比率は６２．５％（＝［５０／（５０＋３０）］×１００）である。
【００３４】
図１の各右図に、上記塊状物から得られた植物の節などの植物切片（詳細には、植物組織の構造を維持した約５ｍｍ程度の植物切片）を示す。前処理後に上記植物切片が観察されるということは、前処理によるバイオマスの分解が阻害されて、セルロース含有固体画分の分解効率が低いことを示唆している。
【００３５】
図１の各右図を対比すると明らかなように、ブタノール比率が５０％（Ｎｏ．２、図１の中段）、６２．５％（Ｎｏ．３、図１の下段）と高い場合には植物切片が観察されたのに対し、ブタノール比率が３７．５％（Ｎｏ．１、図１の上段）と低くなると、このような植物切片は観察されなかった。よって、前処理後の植物切片を調べた上記実験結果より、モノアルコール比率が４０％未満になると、固体画分の分解効率が向上することが十分示唆される。
【００３６】
更に図には示していないが、上記Ｎｏ．１では撹拌後、前処理に用いた硫酸とブタノールとバイオマスが完全に混合されて均質になるのに対し、上記Ｎｏ．２、３では、完全に混合されないため、ブタノールと硫酸が２相に分離している様子が観察された。
【００３７】
これらの実験結果より、前処理によるバイオマスの分解効率は、モノアルコール比率が４０％未満の場合に顕著に発揮されることが十分示唆された。
【００３８】
前処理における撹拌条件として、撹拌速度は、おおむね１００〜２００ｒｐｍの範囲内で行うことが好ましい。撹拌機の種類は上記撹拌速度が得られるものであれば特に限定されず、例えば、マグネチックスターラーなどが挙げられる。撹拌時間は、使用するバイオマスの種類や添加量などによっても相違するが、おおむね、４５〜６０分の範囲内であることが好ましい。
【００３９】
撹拌後、前処理後のバイオマスを、セルロース含有固体画分と、セルロース以外の成分を含む液体画分とに分離する。例えばリグノセルロース系バイオマスは、リグニンとセルロースとヘミセルロースを主成分として含むが、上述した前処理により、セルロース（固体画分）とヘミセルロース（水層）とリグニン（有機層）に分離される。
【００４０】
各成分に分離する方法は特に限定されず、例えば遠心分離機、吸引ろ過などによって分離することができる。遠心分離の条件は、使用するバイオマスの量、前処理に用いたモノアルコールおよび酸の種類およびその量などによっても相違するが、おおむね、２１，８８０×ｇ、１５分の条件で行うことが推奨される。
【００４１】
（２）糖化酵素による糖化工程
次に、上記のようにして得られた固体画分に糖化酵素を加えて糖化させる。本発明に用いられる糖化酵素は、当該技術分野で通常用いられるものであれば特に限定されず、例えば、セルラーゼなどが挙げられる。
【００４２】
具体的には、上記糖化酵素による糖化反応が進行し易くなるようにするため、糖化酵素を加える前に上記固体画分に緩衝液を加えて、ｐＨを約４．０〜５．０の範囲に調整することが好ましい。ｐＨの調整に用いられる上記緩衝液としては、例えば、クエン酸緩衝液などが挙げられる。また、固体画分および緩衝液の合計に対する固体画分の濃度は、粘性などを考慮すると、おおむね、１００〜２００ｇ／Ｌの範囲に制御することが好ましい。
【００４３】
酵素による糖化反応は、当該反応が適切に進行するように、例えば、４０〜５０℃の温度で、４８〜７２時間行うことが好ましい。
【００４４】
反応後、遠心分離機にかけて分離した上清を回収すると、バイオマス由来の糖類が得られる。本発明の方法によれば、例えばグルコース、キシロース、アラビノースなどの糖類が得られる。
【００４５】
（３）エタノール発酵
上記のようにして得られた糖類をエタノール発酵すると、エタノールが得られる。エタノール発酵の方法は特に限定されず、通常用いられる方法を採用することができる。例えばエタノール発酵に用いられる微生物は、糖類を代謝してエタノール発酵を行うことができるものであれば特に限定されず、出芽酵母などの酵母、大腸菌などが挙げられる。
【００４６】
後記する実施例で実証したように、本発明によれば、酵素単位が低くても、エタノールを収率良く製造することができる。例えば前述した特許文献１の実施例では６０ＦＰＵ／ｇの酵素負荷で糖化しているのに対し、本発明によれば、１〜５ＦＰＵ／ｇの酵素負荷でエタノールを効率よく製造することができる。
【００４７】
なお、以下の実施例ではエタノールを製造したが、本発明の方法によって得られる化成品はエタノールに限定されない。本発明の方法を用いれば、糖類を原料とする、エタノール以外の種々の化成品（例えば乳酸）を高収率で得られることが大いに期待される。
【実施例】
【００４８】
以下、実施例を挙げて本発明をより具体的に説明するが、本発明は下記実施例によって制限されず、前・後記の趣旨に適合し得る範囲で変更を加えて実施することも可能であり、それらはいずれも本発明の技術的範囲に包含される。
【００４９】
実施例１
本実施例ではモノアルコールとしてブタノールを用いて前処理を行ったときにおける固体画分の重量を測定した。前処理による固体画分の重量は、前処理によるバイオマスの分解効率を表している。すなわち、固体画分の重量が少ない程、バイオマスが効率的に分解されていることを示唆している。
【００５０】
まず、バイオマスとしてソルガム（モロコシとも呼ばれ、イネ科穀物の一種）１００ｇを用意し、２ｍｍのフィルターを設置したブレンダ―（ＷＢ−１、東京硝子器機株式会社）を用いて粉末状態になるまで１０分間粉砕した。
【００５１】
上記のようにして得られたバイオマス粉末６ｇ、１−ブタノールおよび１％希硫酸を、三愛科学株式会社製の高圧用反応分解容器ＨＵＴ−１００に加え、三愛科学株式会社製のホットスターラー式反応分解装置ＲＤＶ−ＴＭＳ  ＨＨＥ−１９Ｇ−Ｕにセットして、常圧のまま、加熱しながら撹拌した。詳細には上記高圧用反応分解容器は、ＰＴＦＥ製内筒容器（ＨＵＴ−１００）と加圧ステンレス製外筒（ＨＵＳ−１００）の二重密閉構造を有しており、ＰＴＦＥ製内筒容器にバイオマス粉末などを入れた後、このＰＴＦＥ製内筒容器をステンレス製外筒に入れて、当該ステンレス製外筒の蓋を強固に締めてから、上記のホットスターラー式反応分解装置にセットして加熱した。本実施例では、ブタノールと希硫酸の合計量が８０ｍＬとなるようにブタノールおよび希硫酸の添加量を変化させた。撹拌は、２００ｒｐｍの撹拌速度で、１８０℃で４５分行った。撹拌後、２１，８８０×ｇ、１５分の条件で遠心分離して、固体画分と液体画分とに分離した。
【００５２】
このようにして得られた固体画分に水を加えてｐＨ７．０になるまで洗浄した後、室温で２日間乾燥した。乾燥後の固体画分重量を、ＸＳ１０５ＤＵ  ｅｌｅｃｔｒｏｎｉｃ  ｂａｌａｎｃｅ（Ｍｅｔｔｌｅｒ  Ｔｏｌｅｄｏ，  Ｇｒｅｉｆｅｎｓｅｅ，スイス）を用いて測定した。上記の実験を３回行い、その平均値と標準偏差を算出した。
【００５３】
これらの結果を図２に示す。図２の縦軸は固体画分の重量（ｇ）を、横軸は前処理に用いたブタノールと希硫酸の添加割合およびブタノール濃度（ブタノールと希硫酸の合計に対するブタノールの比率）を示す。
【００５４】
図２に示すように希硫酸にブタノールを添加すると、ブタノールを添加しない場合に比べて固体画分の重量が減少する傾向が見られた。詳細には、本実施例の前処理条件によれば、ブタノール濃度が１２．５％以上になると、ブタノール添加なしの場合に比べて、固体画分の重量は有意に減少したが、ブタノール濃度が６２．５％になると、固体画分の重量は、やや増加する傾向が見られた。
【００５５】
実施例２
本実施例では、上記実施例１によって得られた各固体画分を酵素糖化させたときのグルコース濃度を測定した。固体画分から得られるグルコース濃度が高い程、固体画分が効率的に分解されていることを示唆している。
【００５６】
具体的には上記実施例１で得られた各固体画分を用い、最終濃度が１０ｇ／Ｌになるように、上記固体画分を０．３Ｍクエン酸緩衝液（ｐＨ４．８）に添加した。次に、糖化酵素としてセルラーゼ（Ｃｅｌｌｉｃ  ＣＴｅｃ２，Ｎｏｖｏｚｙｍｅ，Ｂａｇｓｖａｅｒｄ，デンマーク）を、バイオマス１ｇ当たり酵素力価が６．６ＦＰＵとなるように添加して酵素糖化反応を行った。その際、微生物のコンタミネーションを抑制するため、テトラサイクリン（最終濃度４０μｇ／ｍＬ）およびシクロヘキシミド（最終濃度３０μｇ／ｍＬ）を添加した。上記酵素糖化反応は、ＰＰＳ−２０００  ＣｈｅｍｉＳｔａｔｉｏｎ（東京理化器機株式会社）を用いて、１２０ｒｐｍ、５０℃、７２時間の条件で行った。反応後、氷中に入れて急速に冷却させ、酵素糖化反応を終了させた。次いで、２１，８８０×ｇ、１０分間遠心分離を行った後、得られた上清を回収して、グルコース濃度を測定した。
【００５７】
グルコース濃度は以下のようにして測定した。まず、上記のようにして得られた上清１．５μＬと、内部標準物質である０．１％（ｗ／ｗ）リビトール溶液１．５μＬとを混合した後、減圧濃縮器（７８１００１０；Ｌａｂｃｏｎｃｏ，Ｋａｎｓａｓ  Ｃｉｔｙ，ＭＯ，米国）を用いて、室温で２時間乾燥させた。乾燥後のサンプルに２０ｍｇ／ｍＬのメトキシアミン塩酸塩のピリジン溶液を１００μＬ添加して混合した後、３０℃で９０分間静置した。静置後のサンプルに５０μＬのＮ−メチルｌ−Ｎ−トリメチルシリルトリフルオロアセトアミドを５０μＬ添加し、３７℃で３０分間静置した。静置後のサンプルのうち１０μＬを採取し、ガスクロマトグラフ質量分析計（ＧＣ−ＭＳ−２０１０ｐｌｕｓシステム、島津製作所）に注入して、下記条件でグルコース濃度（ｇ／Ｌ）を測定した。
・カラム：Ａｇｉｌｅｎｔ  ＣＰ−Ｓｉｌ  ８ＣＢ−ＭＳ（３０ｍ×０．２５ｍｍ）
・キャリアーガス：ヘリウム
・注入温度：２３０℃
・オーブンの温度：０〜２分までは８０℃とし、２分以降は、１分当たり１５℃ずつ３３０℃まで上昇させた。
【００５８】
これらの結果を図３に示す。図３の縦軸はグルコース濃度（ｇ／Ｌ）を、横軸は前処理に用いたブタノールと希硫酸の添加割合およびブタノール濃度（ブタノールと希硫酸の合計に対するブタノールの比率）を示す。
【００５９】
図３に示すように希硫酸にブタノールを添加すると、ブタノールを添加しない場合に比べてグルコース濃度が著しく増加した。詳細には、本実施例の前処理条件によれば、ブタノール濃度が６．２５％以上になると、ブタノール添加なしの場合に比べて、グルコース濃度が有意に増加し、ブタノール濃度が３７．５％で最大のグルコース濃度（約８ｇ／Ｌ）が得られた。
【００６０】
実施例３
本実施例では、上記実施例１によって得られた固体画分（ブタノール濃度２５％を使用したもの）を用い、酵素糖化、およびエタノール発酵を行ったときのエタノール生成量を測定した。
【００６１】
具体的には、５０ｍＬポリプロピレンチューブおよびサーモブロックローテーターＳＮ−０６ＢＮを用いて、上記実施例１で得られた各固体画分を、その最終濃度が１００ｇ／Ｌになるように５０ｍＭクエン酸緩衝液（ｐＨ５．０）に添加した。次に、糖化酵素として前記実施例２で用いたセルラーゼを、バイオマス１ｇ当たり酵素力価が１ＦＰＵ、３ＦＰＵ、５ＦＰＵとなるように添加して酵素糖化反応を行い、固体画分を液化した。上記酵素糖化反応は、３５ｒｐｍ、５０℃、２時間の条件で行った。
【００６２】
次に、以下の手順でエタノール発酵を行った。エタノール発酵には、β−グルコシダーゼ（ＢＧＬ）、エンドグルカナーゼ（ＥＧ）、およびセロビオハイドロラーゼ（ＣＢＨ）を発現するＳａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ  ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ（出芽酵母の一種）を使用した。
【００６３】
まず、上記酵母を、５ｍＬの合成デキストロース（ＳＤ）培地［６．７ｇ／Ｌのアミノ酸無添加酵母窒素ベース（Ｄｉｆｃｏ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｄｅｔｒｏｉｔ，ＭＩ，米国）、および２０ｇ／Ｌのグルコースを含有］上で、３０℃、１５０ｒｐｍ、１２時間、好気的に前培養した。その後、５００ｍＬの酵母／ペプトン／デキストロース（ＹＰＤ）培地（１０ｇ／Ｌの酵素抽出物、２０ｇ／Ｌのポリペプトン、２０ｇ／Ｌのグルコース）へ植菌し、３０℃、１５０ｒｐｍの条件で培養した。培養後の酵母を、４℃で１０分間、３０００×ｇで遠心分離した後、得られた沈殿を回収し、蒸留水で２回洗浄した。このようにして得られた酵母（５０ｇウェット細胞／Ｌ）に酵母抽出物（最終濃度が１０ｇ／Ｌ），ペプトン（最終濃度が２０ｇ／Ｌ）を添加して、エタノール発酵を開始した。エタノール発酵は、サーモブロックローテーターＳＮ−０６ＢＮを用いて、３５ｒｐｍ、３５℃で２４〜７２時間行った。
【００６４】
比較のため、ブタノールを添加しないで前処理して得られた固体画分を用い、上記と同様にしてエタノール生成量を測定した。
【００６５】
これらの結果を図４、図５に示す。
【００６６】
これらのうち図４は、５ＦＰＵのセルラーゼを用い、３５℃での培養時間（２４時間、４８時間、７２時間）を変えてエタノール発酵させたときのエタノール濃度（ｇ／Ｌ）を示すグラフである。
【００６７】
図４に示すように、希硫酸にブタノールを添加した場合、ブタノールを添加しない場合に比べてエタノール濃度が著しく増加した。この傾向は、エタノール発酵の時間が２４時間から、４８時間、更には７２時間と長くなるにつれて顕著に見られ、７２時間におけるエタノール濃度は約５０％と、実用上、有用なレベルであった。
【００６８】
図５は、１ＦＰＵ、３ＦＰＵ、５ＦＰＵの各セルラーゼを用い、３５℃で７２時間エタノール発酵させたときのエタノール濃度（ｇ／Ｌ）を示すグラフである。
【００６９】
図５に示すように、本実施例の前処理方法を用いれば、酵素の力価が５ＦＰＵより低く、３ＦＰＵであっても約２５ｇ／Ｌ程度のエタノールが得られ、更には１ＦＰＵであっても約１５ｇ／Ｌ程度のエタノールが得られた。すなわち、本発明の前処理方法を用いれば、酵素力価が上記のように低い場合であっても、所定のエタノール量が得られることが分かった。よって、本発明の方法は、糖化酵素の使用量（負荷量）を低減できる点で、非常に経済的である。
【００７０】
実施例４
本実施例では、上記実施例１〜３で用いたブタノール以外のモノアルコールを用いて前処理を行ったときにおける固体画分の重量を比較検討した。
【００７１】
具体的には、モノアルコールとして、図７に示すようにエタノール、１−プロパノール、２−プロパノール、１−ブタノール、１−ペンタノール、１−ヘキサノールを用いて、上記実施例１と同様にして固体画分の重量を測定した。本実施例４におけるモノアルコールの濃度は全て、１２．５％とした。
【００７２】
これらの結果を図６に示す。図６の縦軸は固体画分の重量（ｇ）を、横軸は前処理に用いた各種モノアルコールを示す。
【００７３】
図６に示すように、モノアルコールの炭素数が多くなる程、固体画分の重量が減少する傾向が見られた。詳細には、本実施例の前処理条件によれば、炭素数４（ブタノール）以上のモノアルコールを用いたとき、モノアルコールを添加しない場合に比べて、固体画分の重量は有意に減少し、炭素数が５のモノアルコールを用いた場合に、固体画分の重量が最も少なくなった。
【００７４】
実施例５
本実施例では、上記実施例４によって得られた各固体画分を酵素糖化させたときのグルコース濃度を、前述した実施例２と同様にして測定した。
【００７５】
これらの結果を図７に示す。図７の縦軸はグルコース濃度（ｇ／Ｌ）を、横軸は前処理に用いたモノアルコールの種類を示す。
【００７６】
図７に示すように希硫酸に種々のモノアルコールを添加すると、モノアルコールを添加しない場合に比べて酵素糖化後に得られるグルコース濃度が著しく増加した。本実施例の前処理条件によれば、特に炭素数４以上のモノアルコールを用いた場合に、グルコースの著しい増加が見られることが分かった。
【００７７】
実施例６
前述した実施例で用いたバイオマス（ソルガム）は、セルロース、ヘミセルロース、リグニン（酸不溶性リグニンと酸可溶性リグニン）を主成分として含む。本実施例では、エタノール、１−プロパノール、２−プロパノール、１−ブタノール、１−ペンタノールの各種モノアルコール（濃度は全て１２．５％）を用い、実施例１と同様にして前処理を行ったバイオマス（ソルガム）の成分を、国立再生可能エネルギー研究所（Ｎａｔｉｏｎａｌ  Ｒｅｎｅｗａｂｌｅ  Ｅｎｅｒｇｙ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ、ＮＲＥＬ）に記載の下記手順に基づいて各成分に分画して組成分析を行い、比較検討した。これらの測定は３回行い、その平均値と標準偏差を調べた。
【００７８】
詳細には、セルロースおよびヘミセルロースの各多糖類の含有量は、硫酸を用いた二段階加水分解の後に得られた単糖（セルロースに対応する単糖がグルコースであり、ヘミセルロースに対応する単糖がキシロースである）の含有量に基づいて算出した。まず、３００ｍｇのバイオマスに対して３ｍＬの７２％硫酸を添加し、３０℃で２時間反応させた。反応後、超純水を添加して硫酸濃度が４％になるよう希釈した後、１２１℃で１時間反応させた。その後、全液量が１００ｍＬになるよう超純水でメスアップした。加水分解後、得られた上清を１ｍＬサンプリングし、水酸化カルシウムを用いてｐＨ５．０に中和した後、グルコースおよびキシロースの各濃度を、前述した実施例２で用いたガスクロマトグラフ質量分析計（ＧＣ−ＭＳ）を用いて測定した。次に、下記式に基づいて、セルロースおよびヘミセルロースの各濃度を算出した。
・セルロース（％）
＝グルコース濃度（ｇ／Ｌ）×０．１÷３００×（１８０−１８）÷１８０×１００
・ヘミセルロース（％）
＝キシロース濃度（ｇ／Ｌ）×０．１÷３００×（１５０−１８）÷１５０×１００
【００７９】
また、酸可溶性リグニンの含有量（％）は、加水分解後、得られた上清の吸光度（２４０ｎｍ）を測定することにより算出した。
【００８０】
一方、酸不溶性リグニンの含有量は、水分解後の沈殿物を用いて測定した。具体的には、上記沈殿物を岩城硝子製のガラスろ過器（るつぼ型）上に入れ、吸引濾過により固液分離した。得られた沈殿物を水で洗浄し、８０℃で１日間乾燥させた。乾燥後の沈殿物の重量を、ＸＳ１０５ＤＵ  ｅｌｅｃｔｒｏｎｉｃ  ｂａｌａｎｃｅ（Ｍｅｔｔｌｅｒ  Ｔｏｌｅｄｏ，Ｇｒｅｉｆｅｎｓｅｅ，スイス）を用いて測定した。次に、三商製のマッフル炉を用いて、上記沈殿物を５７５℃で２４時間、燃焼した。燃焼後の沈殿物の重量を、ＸＳ１０５ＤＵ  ｅｌｅｃｔｒｏｎｉｃ  ｂａｌａｎｃｅを用いて測定した。燃焼前後の沈殿物の重量の変化量（差）を算出し、この差分を酸不溶リグニンの含有量（％）とした。
【００８１】
比較のため、モノアルコールを添加せずに硫酸のみ用いて、上記実施例１と同様にして前処理した後、上記と同様にして各成分の含有量を測定した。また、参考のため、本実施例に用いたバイオマス（ソルガム）の各成分の含有量も、上記と同様にして測定した。
【００８２】
これらの結果を図８に示す。図８には、バイオマス中に含まれる、酸可溶性リグニン、酸不溶性リグニン、ヘミセルロース、セルロースの各含有量（％）を示す。
【００８３】
図８に示すように、本実施例の前処理条件（モノアルコール濃度１２．５％）によれば、炭素数４（ブタノール）以上のモノアルコールを用いたとき、モノアルコールを添加しない硫酸のみの場合に比べて、特に酸不溶性リグニンの含有量が有意に減少し、セルロースの含有量が有意に増加することが分かる。一般にバイオマスからリグニンを除去するためには、例えば４０％以上もの多量のアルコールが必要であると考えられていたが、本発明の方法を用いれば、１２．５％のモノアルコール濃度であってもリグニンを効率よく分解することができる点で、経済上非常に有用である。
【図１】
0006665998.tif 000002
【図２】
0006665998.tif 000003
【図３】
0006665998.tif 000004
【図４】
0006665998.tif 000005
【図５】
0006665998.tif 000006
【図６】
0006665998.tif 000007
【図７】
0006665998.tif 000008
【図８】
0006665998.tif 000009