(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
ａ．  タンパク質、結合型多糖体ワクチンおよびウイルス様粒子から選択され、かつ、５００ＫＤａ以上の分子量を有する目的の生物学的物質を含む試料を提供すること；
ｂ．  接線流濾過モード（ＴＦＦ）で試料を、１５ｎｍ未満の平均繊維直径を有するナイロンナノファイバーを含む電界紡糸ナイロンナノファイバーマットまたは膜組成物と接触させ、それによって透過液および前記目的の生物学的物質を含む保持液を得ること；および
ｃ．  目的の生物学的物質を含有する保持液を収集すること
を含む、試料中の目的の生物学的物質を精製する方法。
【請求項２】
収集工程は、目的の生物学的物質の濃度を増加させることを含む請求項１に記載の方法。
【請求項３】
電界紡糸ナイロンナノファイバーマットまたは膜組成物は、ナイロン−６から作られる請求項１に記載の方法。
【請求項４】
電界紡糸ナイロンナノファイバーマットまたは膜組成物は、ＴＦＦに適したカセットまたはスパイラル型デバイスに組み込まれる請求項１に記載の方法。
【請求項５】
電界紡糸ナイロンナノファイバーマットまたは膜組成物は、ナイロン−６，６から作られる請求項１に記載の方法。
【請求項６】
電界紡糸ナイロンナノファイバーの平均直径は、６ｎｍから１３ｎｍの間である請求項１に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
関連出願への相互参照
本出願は、２０１５年４月１７日に出願された米国仮特許出願第６２／１４８，７９３号（この出願の全内容は参照により本明細書に援用される）の優先権の利益を主張する。
【０００２】
本明細書に開示された実施形態は、接線濾過モードで作動することができるナノファイバー限外濾過組成物およびそれを使用する方法に関する。
【背景技術】
【０００３】
膜濾過は、生物学的物質のベンチ規模およびプロセススケールの精製の両方に広く使用される分離技術である。濾過に使用される膜には、細孔径に応じて精密濾過膜または限外濾過膜として分類される様々な種類がある。精密濾過膜は、一般に、０．１μｍから１０μｍの間の範囲の細孔径を有する一方、限外濾過膜は０．００１から０．１μｍの間の範囲の遥かに小さな細孔径を有する。細孔径の違いのために、これらの膜は異なる目的のために使用される。例えば、精密濾過膜は、微粒子の清澄化、滅菌および除去、または細胞採取のために一般に使用され、限外濾過膜は、分別または分子（例えば、タンパク質、ペプチド、核酸、炭水化物、および他の生物学的物質等）を濃縮するのに一般に使用される。限外濾過膜は、典型的には、孔径ではなく分子量カットオフによって分類される。
【０００４】
精密濾過膜および限外濾過膜と共に一般に使用される２つの主な種類の濾過モードがある。濾過モードの１つは、「デッドエンド」濾過とも呼ばれるノーマルフロー濾過（ＮＦＦ）モードと呼ばれ、これは一般に膜面に垂直な供給流を適用し、流体の１００％を膜に通過させようとする。もう１つの濾過モードは接線流濾過（ＴＦＦ）と呼ばれ、そこでは供給流は膜面に平行であり、一部が膜を通過し（即ち、透過液）、残りは保持され、供給リザーバに戻されて再循環されてもよい（即ち、保持液）。
【０００５】
濾過のＴＦＦモードは、ＴＦＦが濃縮および不純物除去のために使用される場合、特定の種類の生物学的物質、例えば、５００ｋＤａまたは５００ｋＤａより大きいサイズを有するものの精製に好ましい。ほとんどのＴＦＦ用途は、濃縮および緩衝液交換工程等に有用な限外濾過膜を使用する。特定の生物学的物質（例えば、タンパク質、ワクチンおよびウイルス様粒子）の製造のためにＴＦＦモードで使用される限外濾過膜の一例は、ポリエーテルスルホン（ＰＥＳ）から作られた溶液浸漬キャスト限外濾過膜である。
【０００６】
ＴＦＦモードで広く使用されているほとんどの限外濾過膜は、微生物による汚染を防ぐために、湿潤状態で、また防腐剤と共に出荷されることが要求される。しかし、湿潤状態での出荷は、膜の乾燥および凍結を防止するために環境条件を制御する必要があるために困難なだけでなく、膜材料に添加される防腐剤は、最終製品、例えば、治療用タンパク質またはワクチンを含有する試料中に防腐剤が残らないようにするために生物学的物質の精製に使用する前に、しばしば除去されなければならない。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
本明細書に開示された実施形態は、例えば、ウイルス様粒子、タンパク質および結合型多糖体ワクチン（一般に約５００ＫＤａまたは５００ｋＤａを超える分子量を有する生物学的物質）等の生物学的物質の製造における電界紡糸ナノファイバー膜組成物の適用性を実証し、現在使用されている溶液浸漬キャストＰＥＳ膜に対する代替物および該膜に対する改良を提供する。具体的には、溶液浸漬キャストＰＥＳ膜とは対照的に、電界紡糸ナノファイバー膜は乾燥状態で出荷することができ、防腐剤の使用も必要としない。
【０００８】
本明細書に記載された実施形態で使用される電界紡糸ナノファイバー膜は、接線流濾過（ＴＦＦ）モードにおいて溶液浸漬キャストＰＥＳ限外濾過膜と同等またはこれより改良された性能を有する。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
様々な実施形態において、試料中の目的の生物学的物質を精製する方法であって、（ａ）５００ＫＤａ以上の分子量を有する目的の生物学的物質を含む試料を提供する工程；（ｂ）接線濾過モードで試料を、１５ｎｍ未満の平均繊維直径を有するナノファイバーを含む電界紡糸ナノファイバー膜組成物と接触させ、それによって透過液および保持液を得る工程；（ｃ）目的の生物学的物質を含有する保持液を収集し、それによって目的の生物学的物質を精製する工程を含む該方法が提供される。
【００１０】
いくつかの実施形態では、目的の生物学的物質は、治療用タンパク質、結合型多糖体ワクチンおよびウイルス様粒子から選択される。
【００１１】
いくつかの実施形態では、収集工程は、目的の生物学的物質の濃度を増加させることを含む。他の実施形態では、収集工程は透析濾過を含む。
【００１２】
いくつかの実施形態では、電界紡糸ナノファイバー組成物は、溶液キャストポリマー膜と比較して、ＴＦＦモードでより高い透水性を示す。
【００１３】
いくつかの実施形態では、電界紡糸ナノファイバー膜組成物は、溶液キャストポリマー膜と比較して、ＴＦＦモードでより高い流束を示す。
【００１４】
いくつかの実施形態では、電界紡糸ナノファイバー膜組成物は、ナイロン−６から作られる。
【００１５】
いくつかの実施形態では、精製方法は、目的の生物学的物質の少なくとも９０％の収率または９０％超の収率をもたらす。
【００１６】
様々な実施形態では、電界紡糸ナノファイバー膜組成物は、例えば、カセットまたはスパイラル型デバイスのようなＴＦＦに適したデバイスに組み込まれる。
【図面の簡単な説明】
【００１７】
【図１】１００，０００倍の倍率で電界紡糸ナイロン−６ナノファイバー限外濾過膜（「ＮＦ  ＵＦ」と呼ばれる）の走査型電子顕微鏡写真を示す。
【図２】溶液浸漬キャスティングを用いて作製された、１００，０００倍の倍率でのポリエーテルスルホン限外濾過膜（「ＰＥＳ  ＵＦ」と呼ばれる）の走査型電子顕微鏡写真を示す。
【図３】ＮＦ  ＵＦ膜ファイバーの直径を測定するグラフを示す。ＮＦ  ＵＦランダムファイバー半径の測定は、図１のものと同様の走査電子顕微鏡（ＳＥＭ）およびＩｍａｇｅ  Ｐｒｏ  Ｐｌｕｓ  ｖ６．０内のカスタムユークリッド距離マップ（ＥＤＭ）ルーチンを使用して行われる。ｘ軸はナノメートルで表した繊維の半径である。ｙ軸は、ｘ軸上のナノメートルで表した各半径の測定頻度または回数である。
【図４】ＮＦ  ＵＦ膜の６つの異なる試料およびＰＥＳ  ＵＦ膜の４つの異なる試料についての、ＬＭＨ／ｐｓｉで表した平均透水性（ｙ軸）対ｐｓｉで表した平均流量泡立ち点（ｘ軸）を示すグラフである。６つのＮＦ  ＵＦ膜試料は、図のキーに示すように、ＮＦ  ＵＦ  １０００ｋＤａ（Ｒ１−１）；（Ｒ１−２）；（Ｒ２−１）；（Ｒ２−２）；およびＮＦ  ＵＦ  １５００ｋＤａ（Ｒ２−３）；および（Ｅ２−１）である。４つのＰＥＳ  ＵＦ膜試料は、図のキーに示すように、ＰＥＳ  ＵＦ  ８００ｋＤａ；１２００ｋＤａ；１７００ｋＤａ；および４８００ｋＤａである。単位ｋＤａ（キロダルトン）の前の数字は、膜がそのｋＤａ値を上回る分子量を有するデキストランの９０％を保持する、ＵＦ膜のデキストラン篩分けＲ９０カットオフを示す。透水性の単位は、ｙ軸上の膜の１平方メートル当たりの水のリットル×時間×印加圧力の１平方インチ当たりのポンドである（ＬＭＨ／ｐｓｉ）。平均流量泡立ち点の単位は、溶媒２−プロパノールに対する平方インチ当たりのポンド（ｐｓｉ）である。
【図５】図のキーに示すように、デキストランＲ９０値が８００、１２００、１７００および４８００ｋＤａであるＰＥＳ  ＵＦ膜の重複試料およびデキストランＲ９０値が１０００ｋＤａであるＮＦ  ＵＦ膜の４つの試料および１５００ｋＤａにおける３つの試料についてのデキストラン篩分け曲線を示すグラフである。プロットはｌｏｇ１０対ｌｏｇ１０であり、ｘ軸は単位ダルトン（Ｄａ）で表されるデキストランの分子量であり、ｙ軸は、膜保持液側の最初の課題溶液の供給物ゲル浸透クロマトグラフィー（ＧＰＣ）に対して膜試料透過液ゲル浸透クロマトグラムを比較して得られた０．００１から１のデキストラン篩分けｌｏｇ１０スケールである。
【図６】ＮＦ  ＵＦ膜の６つの試料および４つの異なるＰＥＳ  ＵＦ膜試料について、ｌｏｇ１０スケール（ｙ軸）上のキロダルトン（ｋＤａ）で表される平均デキストラン篩分けＲ９０対ｐｓｉ（ｘ軸）で表される平均流量泡立ち点を示すグラフである。６つのＮＦ  ＵＦ膜試料は、図のキーに示すように、ＮＦ  ＵＦ  １０００ｋＤａ（Ｒ１−１）；（Ｒ１−２）；（Ｒ２−１）；（Ｒ２−２）；およびＮＦ  ＵＦ  １５００ｋＤａ（Ｒ２−３）；および（Ｅ２−１）である。４つのＰＥＳ  ＵＦ膜試料は、図のキーに示すように、ＰＥＳ  ＵＦ  ８００ｋＤａ；１２００ｋＤａ；１７００ｋＤａ；および４８００ｋＤａである。単位ｋＤａ（キロダルトン）の前の数字は、図５の膜デキストラン篩分けＲ９０カットオフを示す。
【図７】ＮＦ  ＵＦ膜の６つの試料および４つの異なるＰＥＳ  ＵＦ膜試料について、ＬＭＨ／ｐｓｉ（ｙ軸）で表される平均透水性対ｌｏｇ１０スケール（ｘ軸）上のキロダルトン（ｋＤａ）で表される平均デキストラン篩分けＲ９０を示すグラフである。６つのＮＦ  ＵＦ膜試料は、図のキーに示すように、ＮＦ  ＵＦ  １０００ｋＤａ（Ｒ１−１）；（Ｒ１−２）；（Ｒ２−１）；（Ｒ２−２）；およびＮＦ  ＵＦ  １５００ｋＤａ（Ｒ２−３）；および（Ｅ２−１）である。４つのＰＥＳ  ＵＦ膜試料は、図のキーに示すように、ＰＥＳ  ＵＦ  ８００ｋＤａ；１２００ｋＤａ；１７００ｋＤａ；および４８００ｋＤａである。単位ｋＤａ（キロダルトン）の前の数字は、図５の膜デキストラン篩分けＲ９０カットオフを示す。
【図８】実施例４からのｐＨ７．０、５０ｍＭリン酸緩衝液における供給物Ａ（０．０３８５％ｗ／ｗ）のゲル浸透クロマトグラムである。ｘ軸はｌｏｇ１０スケール上のダルトン（Ｄａ）で表されるデキストランの分子量である。ｙ軸上の面積は、ＧＰＣ分子量標準による積分後のミリボルトで表される屈折率検出器応答から換算される。
【図９】実施例４からのｐＨ７．０、５０ｍＭリン酸緩衝液における供給物Ｂ（０．８４４％ｗ／ｗ）のゲル浸透クロマトグラムである。ｘ軸はｌｏｇ１０スケール上のダルトン（Ｄａ）で表されるデキストランの分子量である。ｙ軸上の面積は、ＧＰＣ分子量標準による積分後のミリボルトで表される屈折率検出器応答から換算される。
【図１０】実施例５の供給物Ａに対するＮＦ  ＵＦ膜およびＰＥＳ  ＵＦ膜の重複試料についての、ＬＭＨ（ｙ軸）で表される供給物Ａの平均流束対ｐｓｉ（ｘ軸）で表される膜間圧（ＴＭＰ）を示すグラフである。流束の単位は、ｙ軸上の膜１平方メートル当たりの供給物Ａのリットル×時間（ＬＭＨ）である。膜間圧（ＴＭＰ）は、膜を横切るｘ軸上の圧力の平方インチ当たりのポンド（ｐｓｉ）である。
【図１１】実施例５の供給物Ｂに対するＮＦ  ＵＦ膜およびＰＥＳ  ＵＦ膜の重複試料についての、ＬＭＨ（ｙ軸）で表される供給物Ｂの平均流束対ｐｓｉ（ｘ軸）で表される膜間圧（ＴＭＰ）を示すグラフである。流束の単位は、ｙ軸上の膜１平方メートル当たりの供給物Ｂのリットル×時間（ＬＭＨ）である。膜間圧（ＴＭＰ）は、膜を横切るｘ軸上の圧力の平方インチ当たりのポンド（ｐｓｉ）である。
【図１２】実施例５の供給物Ｃに対するＮＦ  ＵＦ膜およびＰＥＳ  ＵＦ膜の重複試料についての、ＬＭＨ（ｙ軸）で表される供給物Ｃの平均流束対ｐｓｉ（ｘ軸）で表される膜間圧（ＴＭＰ）を示すグラフである。流束の単位は、ｙ軸上の膜１平方メートル当たりの供給物ｃのリットル×時間（ＬＭＨ）である。膜間圧（ＴＭＰ）は、膜を横切るｘ軸上の圧力の平方インチ当たりのポンド（ｐｓｉ）である。
【図１３】各ＴＭＰで実施例５から収集した供給物および透過液の供給物Ａ（０．０３８５％ｗ／ｗ）試料のゲル浸透クロマトグラムを示す。図１３では、ＮＦ  ＵＦの２つの複製物のうちの１つについての供給物Ａ透過およびその供給物のゲル浸透クロマトグラムが示されている。ｘ軸はｌｏｇ１０スケール上のダルトン（Ｄａ）で表されるデキストランの分子量である。ｙ軸上の面積は、ＧＰＣ分子量標準による積分後のミリボルトで表される屈折率検出器応答から換算される。
【図１４】各ＴＭＰで実施例５の供給物および透過液収集の供給物Ａ（０．０３８５％ｗ／ｗ）試料のゲル浸透クロマトグラムを示す。図１４は、ＰＥＳ  ＵＦの２つの複製物のうちの１つについての供給物Ａ透過およびその供給物のゲル浸透クロマトグラムを示す。ｘ軸はｌｏｇ１０スケール上のダルトン（Ｄａ）で表されるデキストランの分子量である。ｙ軸上の面積は、ＧＰＣ分子量標準による積分後のミリボルトで表される屈折率検出器応答から換算される。
【図１５】実施例５の流束対ＴＭＰ（ｐｓｉ）実験による供給物Ａを使用するＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜についてのｙ軸上のＤ７２５０、Ｄ２０００、Ｄ１１０の質量／濃度輸送または平均ＣＰ／ＣＦを示すグラフである。実施例６は、ＧＰＣ分析のためにｘ軸上の各ＴＭＰ（ｐｓｉ）での供給物試料および透過液試料を収集することによって、実施例５のデキストラン質量／濃度輸送を得る方法を詳述する。
【図１６】実施例５の流束対ＴＭＰ（ｐｓｉ）実験による供給物Ｂを使用するＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜についてのｙ軸上のＤ７２５０、Ｄ２０００、Ｄ１１０の質量／濃度輸送または平均ＣＰ／ＣＦを示すグラフである。図１５と同様に、実施例６は、ＧＰＣ分析のためにｘ軸上の各ＴＭＰ（ｐｓｉ）での供給物試料および透過液試料を収集することによって、実施例５のデキストラン質量／濃度輸送を得る方法を詳述する。
【図１７】実施例５および６からの流束対ＴＭＰ（ｐｓｉ）実験による供給物Ａを用いた、ＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜についてのＤ１１０／Ｄ２０００およびＤ１１０／Ｄ７２５０の平均選択率対ＬＭＨで表される平均流束を示すグラフである。実施例７は、Ｄ１１０／Ｄ２０００およびＤ１１０／Ｄ７２５０の平均通過選択率対ｘ軸上の平均流束（ＬＭＨ）を決定するために、ｙ軸上の式［（ＣＰ／ＣＦ）Ｄ１１０／（ＣＰ／ＣＦ）Ｄ２０００またはＤ７２５０］から選択率係数を計算する方法を詳述する。
【図１８】実施例５および６からの流束対ＴＭＰ（ｐｓｉ）実験による供給物Ｂを用いた、ＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜についてのＤ１１０／Ｄ２０００およびＤ１１０／Ｄ７２５０の平均選択率対ＬＭＨで表される平均流束を示すグラフである。実施例７は、Ｄ１１０／Ｄ２０００およびＤ１１０／Ｄ７２５０の平均通過選択率対ｘ軸上の平均流束（ＬＭＨ）を決定するために、ｙ軸上の式［（ＣＰ／ＣＦ）Ｄ１１０／（ＣＰ／ＣＦ）Ｄ２０００またはＤ７２５０］から選択率係数を計算する方法を詳述する。
【図１９】ＮＦ  ＵＦ膜を用いて、３０ＬＭＨおよび６４０ＲＰＭでの供給物Ａの透析濾過中の供給物、保持液および透過液のゲル浸透クロマトグラムを示す。ｘ軸はｌｏｇ１０スケール上のダルトン（Ｄａ）で表されるデキストランの分子量である。ｙ軸上の面積は、ＧＰＣ分子量標準による積分後のミリボルトで表される屈折率検出器応答から換算される。図１９は、供給物を最大ピークとして示し、高さが減少するにつれて増加する各ダイアボリュームにおける実線の保持液を示す。透過液は破線で示され、ダイアボリュームを増加させるとピークの低下がもたらされる。
【図２０】ＰＥＳ  ＵＦ膜を用いて、３０ＬＭＨおよび６４０ＲＰＭでの供給物Ａの透析濾過中の供給物、保持液および透過液のゲル浸透クロマトグラムを示す。ｘ軸はｌｏｇ１０スケール上のダルトン（Ｄａ）で表されるデキストランの分子量である。ｙ軸上の面積は、ＧＰＣ分子量標準による積分後のミリボルトで表される屈折率検出器応答から換算される。図２０は、供給物を最大ピークとして示し、高さが減少するにつれて増加する各ダイアボリュームにおける実線の保持液を示す。透過液は破線で示され、ダイアボリュームを増加させるとピークの低下がもたらされる。
【図２１】実施例８における透析濾過実験からの供給物Ａを使用したＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜についてのｙ軸上のＤ７２５０、Ｄ２０００、Ｄ１１０の平均保持液Ｃ／Ｃｏ対ｘ軸上のダイアボリューム数を示すグラフである。供給物Ａの透析濾過は、６４０ＲＰＭで撹拌しながら３０ＬＭＨの一定流束におけるものである。
【図２２】実施例８における透析濾過実験からの供給物Ａを使用したＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜についてのｙ軸上の平均保持液選択率Ｄ７２５０／Ｄ１１０およびＤ２０００／Ｄ１１０対ｘ軸上のダイアボリューム数を示すグラフである。供給物Ａの透析濾過は、６４０ＲＰＭで撹拌しながら３０ＬＭＨの一定流束におけるものである。平均保持液選択率は、Ｄ７２５０／Ｄ１１０＝（Ｃ／Ｃｏ）Ｄ７２５０／（Ｃ／Ｃｏ）Ｄ１１０およびＤ２０００／Ｄ１１０＝（Ｃ／Ｃｏ）Ｄ２０００／（Ｃ／Ｃｏ）Ｄ１１０として図２１の値からのものである。
【図２３】実施例８の透析濾過実験からの供給物Ａを用いた、ＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜についてのｙ軸上のＤ７２５０、Ｄ２０００、Ｄ１１０の平均保持液Ｃ／Ｃｏ対ｘ軸上のダイアボリューム数を示すグラフである。供給物Ａの透析濾過は、３２０ＲＰＭで撹拌しながら６０ＬＭＨの一定流束におけるものである。
【図２４】実施例８における透析濾過実験からの供給物Ａを使用したＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜についてのｙ軸上のＤ７２５０／Ｄ１１０およびＤ２０００／Ｄ１１０の平均保持液選択率対ｘ軸上のダイアボリューム数を示すグラフである。供給物Ａの透析濾過は、３２０ＲＰＭで撹拌しながら６０ＬＭＨの一定流束におけるものである。平均保持液選択率は、Ｄ７２５０／Ｄ１１０＝（Ｃ／Ｃｏ）Ｄ７２５０／（Ｃ／Ｃｏ）Ｄ１１０およびＤ２０００／Ｄ１１０＝（Ｃ／Ｃｏ）Ｄ２０００／（Ｃ／Ｃｏ）Ｄ１１０として図２３の値からのものである。
【図２５】実施例９における０．５ｐｓｉの一定のＴＭＰおよび６００ＲＰＭでのＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜についての供給物Ａの２、４、８倍の限外濾過濃縮の間の、ｙ軸上のＬＭＨで表される平均流束対ｘ軸上の濃縮係数を示すグラフである。流束単位は、ｙ軸上の膜１平方メートル当たりの供給物Ａのリットル×時間（ＬＭＨ）である。時間経過にわたる透過液の体積は、流束を決定し、濃縮係数の後をたどる。
【図２６】実施例９における０．５ｐｓｉの一定のＴＭＰおよび６００ＲＰＭでのＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜についての供給物Ａの２、４、８倍の限外濾過濃縮の間の、ｙ軸上の平均Ｃ／Ｃｔｈｅｏ対ｘ軸上の濃縮係数を示すグラフである。時間経過にわたる透過液の体積は流束を決定し、濃縮係数の後をたどる。
【図２７】実施例９における０．５ｐｓｉの一定のＴＭＰおよび６００ＲＰＭでのＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜についての供給物Ａの２、４および８倍（左から右へ）の限外濾過濃縮の間の、ｙ軸上の平均Ｃ／Ｃｔｈｅｏ対ｘ軸上のＬＭＨで表される平均供給物流束を示すグラフである。時間経過にわたる透過液の体積は流束を決定し、濃縮係数の後をたどる。実施例４に記載されているように、ＧＰＣ分析のために各濃縮係数で保持液試料を採取して、Ｄ７２５０、Ｄ２０００およびＤ１１０の収率および選択率を決定する。流束単位は、ｙ軸上の膜１平方メートル当たりの供給物Ａのリットル×時間（ＬＭＨ）である。
【図２８】実施例９における５ｐｓｉの一定のＴＭＰおよび６００ＲＰＭでのＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜についての供給物Ｂの２、４および８倍（左から右へ）の限外濾過濃縮の間の、ｙ軸上の平均Ｃ／Ｃｔｈｅｏ対ｘ軸上のＬＭＨで表される平均供給物流束を示すグラフである。時間経過にわたる透過液の体積は流束を決定し、濃縮係数の後をたどる。実施例４に記載されているように、ＧＰＣ分析のために各濃縮係数で保持液試料を採取して、Ｄ７２５０、Ｄ２０００およびＤ１１０の収率および選択率を決定する。流束単位は、ｙ軸上の膜１平方メートル当たりの供給物Ｂのリットル×時間（ＬＭＨ）である。
【図２９】実施例９における７ｐｓｉの一定のＴＭＰおよび６００ＲＰＭでのＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜についての供給物Ｂの２、４および８倍（左から右へ）の限外濾過濃縮の間の、ｙ軸上の平均Ｃ／Ｃｔｈｅｏ対ｘ軸上のＬＭＨで表される平均供給物流束を示すグラフである。時間経過にわたる透過液の体積は流束を決定し、濃縮係数の後をたどる。実施例４に記載されているように、ＧＰＣ分析のために各濃縮係数で保持液試料を採取して、Ｄ７２５０、Ｄ２０００およびＤ１１０の収率および選択率を決定する。流束単位は、ｙ軸上の膜１平方メートル当たりの供給物Ｂのリットル×時間（ＬＭＨ）である。
【図３０】実施例９における５ｐｓｉの一定のＴＭＰおよび３００ＲＰＭでのＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜についての供給物Ｃの２および３倍の限外濾過濃縮の間の、ｙ軸上のＬＭＨで表される平均流束対ｘ軸上の濃縮係数を示すグラフである。流束単位は、ｙ軸上の膜１平方メートル当たりの供給物Ａのリットル×時間（ＬＭＨ）である。時間経過にわたる透過液の体積は流束を決定し、濃縮係数の後をたどる。
【図３１】実施例９における５ｐｓｉの一定のＴＭＰおよび３００ＲＰＭでのＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜についての供給物Ｃの２および３倍（左から右へ）の限外濾過濃縮の間の、ｙ軸上の平均Ｃ／Ｃｔｈｅｏ対ｘ軸上のＬＭＨで表される平均供給物流束を示すグラフである。時間経過にわたる透過液の体積は流束を決定し、濃縮係数の後をたどる。実施例４に記載されているように、ＧＰＣ分析のために各濃縮係数で保持液試料を採取して、Ｄ７２５０、Ｄ２０００およびＤ１１０の収率および選択率を決定する。流束単位は、ｙ軸上の膜１平方メートル当たりの供給物Ｃのリットル×時間（ＬＭＨ）である。
【図３２】実施例９における７ｐｓｉの一定のＴＭＰおよび３００ＲＰＭでのＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜についての供給物Ｃの２および３倍（左から右へ）の限外濾過濃縮の間の、ｙ軸上の平均Ｃ／Ｃｔｈｅｏ対ｘ軸上のＬＭＨで表される平均供給物流束を示すグラフである。時間経過にわたる透過液の体積は流束を決定し、濃縮係数の後をたどる。実施例４に記載されているように、ＧＰＣ分析のために各濃縮係数で保持液試料を採取して、Ｄ７２５０、Ｄ２０００およびＤ１１０の収率および選択率を決定する。流束単位は、ｙ軸上の膜１平方メートル当たりの供給物Ｃのリットル×時間（ＬＭＨ）である。
【図３３】目的の生物学的物質の精製に有用な、ＮＦ  ＵＦ膜を使用するＴＦＦシステムまたはユニット操作の概略図である。
【発明を実施するための形態】
【００１８】
本明細書に記載された実施形態は、ＰＣＴ公開番号ＷＯ２０１４０９３３４５号に以前に記載されているように、例えば、治療用タンパク質、ウイルス様粒子、および結合型多糖体ワクチンのような目的の生物学的物質の精製のためにＴＦＦモードでの電界紡糸ナノファイバー膜組成物を使用する。本明細書に記載の方法で使用される電界紡糸ナノファイバー膜組成物は、生物学的物質の精製に典型的に使用される溶液浸漬キャスト限外濾過膜に対して、例外的に高い均一性を有し、透磁率の増加およびより高い処理流束を示す。
【００１９】
ほとんどの従来のポリマー限外濾過膜は、溶液相反転法によって製造される。この方法は、２つ以上の成分の均質なポリマー溶液を、硬質膜構造を形成する固体のポリマー富化相と膜孔を形成する液体のポリマー不足相とを有する二相系に変換することを含む。（例えば、Ｍｅｍｂｒａｎｅｓ  ａｎｄ  Ｍｅｍｂｒａｎｅ  Ｐｒｏｃｅｓｓｅｓ、１９８６  Ｓｐｒｉｎｇｅｒ  ＵＳ、Ｄｒｉｏｌｉ、Ｅｎｒｉｃｏ；  Ｎａｋａｇａｋｉ、Ｍａｓａｙｕｋｉ、Ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ  ｏｆ  Ｍｉｃｒｏｐｏｒｏｕｓ  Ｍｅｍｂｒａｎｅｓ  ｂｙ  Ｐｈａｓｅ  Ｉｎｖｅｒｓｉｏｎ  Ｐｒｏｃｅｓｓｅｓ、Ｓｔｒａｔｈｍａｎｎ、Ｈ．、ｐ１１５−１３５参照）。これは、様々なポリマーおよび混合物を用いて達成することができるが、所望の特性を有する膜を生成するのに必要な影響を受けやすい動力学および熱力学的条件のためにしばしば困難である。ポリマーの分子量、濃度、温度、混和性、溶媒および非溶媒の性質ならびに組成、湿度および基質をはじめとする、膜の形成に影響を及ぼすことができる複数の変数が存在し、しばしば複雑な処理および環境制御を必要とする。
【００２０】
しかし、電界紡糸ナノファイバー限外濾過膜（例えば、本明細書に記載のＮＦ  ＵＦ）は、ナイロン−６のようなポリマーを用いるはるかに単純な製造方法を用いて作製することができる。ナノファイバーは、高電圧源を用いてポリマー溶液から簡単に引き出される。電界紡糸は、様々なパラメータに依存し、通常は制御するのがはるかに困難である（伝統的な膜のような）相反転の複雑さおよび敏感な性質に依存しない。
【００２１】
本明細書に記載された実施形態は、特定の治療用タンパク質、ウイルス様粒子および結合型多糖体ワクチンおよび他の同様のサイズの生物学的物質等の、少なくとも５００ＫＤａの分子量を有する生物学的物質の精製のためにＴＦＦモードで使用された場合、少なくとも部分的には、電界紡糸ナノファイバー膜組成物が、ポリエーテルスルホン（ＰＥＳ）のようなポリマーから製造された溶液浸漬キャスト限外濾過膜と同様にまたはそれより良好に機能するとの驚くべきかつ予測し得ない知見に基づく。いくつかの実施形態では、本明細書に記載の実施形態で使用される電界紡糸ナノファイバー組成物は、少なくとも９０％の生成物収率、または９０％を超える生成物収率、または少なくとも９５％の生成物収率、または９５％を超える生成物収率をもたらす。
【００２２】
ＮＦ  ＵＦ膜は、ＴＦＦモードで使用される従来の膜（例えば、ポリエーテルスルホン限外濾過膜）よりもＴＦＦモードで使用される場合に、より高い処理流束およびより大きな物質移行に変わるより高い水透過性を示す。これはまた、同じ供給量を処理するために必要とされる処理時間がより速く、膜面積がより小さくなり、ひいてはより低コストになる。本明細書の実施例により示されるように、ＰＥＳ  ＵＦ膜に対してＮＦ  ＵＦ膜の場合、約３０％の改善が観察される。
【００２３】
電界紡糸ナノファイバー膜またはマット組成物は、組成物の「細孔」径が電界紡糸ナノファイバーの繊維直径に線形に比例する高多孔性ポリマー材料であるが、膜またはマットの多孔性は繊維直径とは比較的無関係であり、通常は８５から９０％の狭い範囲にある。
【００２４】
電界紡糸ナノファイバーマットまたは膜形成のランダムな性質は、このような組成物が液体流の任意の臨界濾過には一般に不適切であるという一般的な前提を導いた。比較的大きな粒子（バクテリア等）を通常の濾過を用いて溶液から除去するための電界紡糸された組成物の適用は、近年文献に現れ始めている（例えば、国際ＰＣＴ公報ＷＯ２０１０／１０７５０３；Ｗａｎｇら、「Ｅｌｅｃｔｒｏｓｐｕｎ  ｎａｎｏｆｉｂｒｏｕｓ  ｍｅｍｂｒａｎｅｓ  ｆｏｒ  ｈｉｇｈ  ｆｌｕｘ  ｍｉｃｒｏｆｉｌｔｒａｔｉｏｎ」、Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｍｅｍｂｒａｎｅ  Ｓｃｉｅｎｃｅ、３９２−３９３（２０１２）１６７−１７４））。しかし、本明細書に記載されているように、目的の生物学的物質の精製のためにＴＦＦモードでの電界紡糸ナノファイバーマット／膜の使用を記載する公表された報告はない。
【００２５】
本明細書で開示される実施形態がより容易に理解され得るように、特定の用語が最初に定義される。さらなる定義は、詳細な説明の全体を通して説明される。
【００２６】
Ｉ．定義
「接線流濾過」または「ＴＦＦ」という語句は、生物学的物質、例えば、タンパク質およびワクチンを清澄化、濃縮および精製するのに有用な濾過のモードを指す。濾過の接線流濾過（ＴＦＦ）モードでは、流体は膜の表面に沿って接線方向に供給される。加えられた圧力は、試料の一部を、膜を通って濾液側に押し込む働きをする（透過液と呼ばれる）。膜孔を通過するには大きすぎる生物学的物質および微粒子は、上流側に保持される（保持液と呼ばれる）。しかし、通常の濾過モードとは対照的に、保持された物質は膜の表面に蓄積しない。代わりに、それらは流体の接線流によって膜の面に沿って一掃される。ＴＦＦはまた、「クロスフロー濾過」と呼ばれてもよい。
【００２７】
「膜間圧」または「ＴＭＰ」という語句は、供給物から膜の濾液側への平均印加圧力を指す。ＴＭＰは以下のように計算される。即ち、ＴＭＰ［バール］＝［（ＰＦ＋ＰＲ）／２］−Ｐｆここで、［バール］は１０００００パスカルに正確に等しい圧力のメートル法であり、パスカルは１平方メートル当たりの１ニュートンと定義される。ＰＦは供給物の印加圧力であり、ＰＲは保持液の圧力であり、Ｐｒは濾液の圧力である。
【００２８】
「限外濾過」または「ＵＦ」という用語は、制御された細孔、半透過性膜を用いて溶解した分子を濃縮または分別する膜濾過技術を指す。細孔よりもはるかに大きい分子は、供給溶液中に保持され、膜を通過する液体の体積に正比例して濃縮される。膜の細孔径に近いサイズを有する分子はより少ない程度で濃縮され、分子の一部は膜を通過して透過液中にある。試料中の自由透過性分子（塩）の濃度は本質的に変化しないままである。限外濾過に適した膜（限外濾過またはＵＦ膜と呼ばれる）は、使用される膜の分子量カットオフ（ＭＷＣＯ）によって定義される。限外濾過はクロスフローまたはデッドエンドモードで適用できる。
【００２９】
「透析濾過」という用語は、タンパク質、ペプチド、核酸および他の生体分子を含む溶液から塩または溶媒の濃度を完全に除去、置換または低下させるために限外濾過膜を使用する技術を指す。この処理は、分子サイズに基づいて溶液および懸濁液の成分を分離するために透過性（多孔性）膜フィルターを選択的に利用する。限外濾過膜は、膜の細孔よりも大きい分子を保持するが、１００％透過性である塩、溶媒および水等のより小さい分子は膜を自由に通過する。透析濾過の間、緩衝液はリサイクルタンクに導入され、一方、濾液は単位操作から除去される。生成物が保持液中にある処理では、透析濾過は、生成物プールから成分を濾液に洗い流し、それによって緩衝液を交換し、望ましくない種の濃度を低下させる。生成物が濾液中にある場合、透析濾過はそれを膜を通して洗い流して回収容器に入れる。
【００３０】
「ダイアボリューム」という用語は、透析濾過工程の間に実施された洗浄の程度の尺度を指す。これは、保持液体積と比較して単位操作に導入された透析濾過緩衝液の体積に基づく。一定体積の透析濾過が行われているとき、保持液体積が一定に保たれ、透析濾過緩衝液は濾液が離れるのと同じ速度で流入する場合、ダイアボリュームは以下のように計算される。即ち、ＤＶ＝透析濾過中に操作に導入される総緩衝液体積／保持液体積。
【００３１】
「濃縮係数」という用語は、生成物が供給流中に濃縮された量を指す。
【００３２】
「濃度」という用語は、溶液中もしくは特定の空間容積に含まれる所定の物質の相対量または溶液の単位体積当たりの溶質量を指す。本明細書中で使用される場合、濃度は、溶液体積当たりの目的の生物学的分子または物質の数によって測定される。
【００３３】
「ポリマー」という用語は、多数の反復サブユニットから構成された大きな分子または高分子を指す。ポリマーは、ポリスチレンなどの身近な合成プラスチックから、生物学的構造および機能にとって基本的なＤＮＡおよびタンパク質等の天然の生体高分子までさまざまである。天然および合成の両方のポリマーは、一般にモノマーとして知られている多くの小さい分子の重合によって生成される。本明細書に記載の実施形態で使用されるナノファイバー組成物の形成に使用するのに適したポリマーには、熱可塑性ポリマーおよび熱硬化性ポリマーが含まれる。下記のようなナノファイバー組成物の製造に使用することができる追加の例示的ポリマー。
【００３４】
本明細書で使用される「ナイロン」という用語は、ナイロン−６、ナイロン−６，６、ナイロン６，６−６，１０、およびそれらのコポリマー、誘導体化合物、ブレンドおよび組み合わせを指す。
【００３５】
「ナノファイバー」という用語は、数十ナノメートルから数百ナノメートルまで変化するが、一般には１マイクロメートル未満の直径を有する繊維を指す。
【００３６】
本明細書で使用される「ナノファイバー組成物」という用語は、マットまたは膜の形態の複数のナノファイバーの集合体を指し、マットまたは膜の厚さは、マットまたは膜の単一繊維の直径よりも少なくとも約１０倍大きい。ナノファイバーは、マットまたは膜内にランダムに配置することができ、または１つ以上の軸に沿って整列させることができる。
【００３７】
本明細書で使用する「電界紡糸」という用語は、ポリマー溶液または溶融物から、そのような溶液に電位を印加することによってナノファイバーを製造する静電紡糸方法を指す。静電紡糸方法を実施するのに適した装置をはじめとする、濾過媒体用の電界紡糸ナノファイバーマットまたは膜を作製するための静電紡糸方法は、国際公開番号ＷＯ２００５／０２４１０１号、ＷＯ２００６／１３１０８１号およびＷＯ２００８／１０６９０３号に詳細に記載されており、これらの各々は、参照により本明細書に援用される。いくつかの実施形態では、ナノファイバー組成物は単一のナノファイバーから製造され、単一のナノファイバーは、工程を通して紡糸ドラムとコレクターとの間に配置された移動収集装置の単一パスによって作られる。ナノファイバーの繊維ウェブは、同じ移動収集装置の上で同時に動く１つ以上の紡糸ドラムによって形成することができる。
【００３８】
いくつかの実施形態では、ナイロン溶液からナノファイバーを堆積させることによって、繊維状マット／膜が作製される。ナノファイバーマット／膜は、乾燥基準で、即ち、残留溶媒が蒸発または除去された後に測定して、約５ｇ／ｍ２から約１５ｇ／ｍ２の坪量を有する。
【００３９】
「電界紡糸ナノファイバー組成物」または「電界紡糸ナノファイバー膜組成物」という語句は、電界紡糸方法を使用してポリマーから作製された多孔質ナノファイバーマットまたは膜を指す。電界紡糸ナノファイバー組成物は、一般に、約８０％から約９５％の範囲の多孔率、約１μｍから約５００μｍまたは約５０μｍから約２００μｍの範囲の厚み、および約３００ＬＭＨ／ｐｓｉを超える液体透過性を有する。本明細書に記載のいくつかの実施形態では、１５ｎｍ未満の平均直径を有する電界紡糸ナノファイバーが製造される。いくつかの実施形態では、電界紡糸ナノファイバーの平均直径は、６ｎｍから１３ｎｍの間である。
【００４０】
いくつかの実施形態では、電界紡糸ナノファイバー組成物は、適切なＴＦＦ装置または、例えば、Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ  Ｐｅｌｌｉｃｏｎ（Ｒ）３カセット等のカセット、スパイラル型装置もしくは中空ファイバー装置等のモジュールに組み込まれる。ＮＦ  ＵＦ膜は、スパイラル型またはフラットカセット等の装置に組み込むことが容易であり、より大きな生成物回収率、より高い濃縮係数を示し、動作に必要な装置およびエネルギーが少なくてすみ、製造の設置面積がより小さく、ポンピング能力が少なくてすみ、気−液界面が少なく、汚染リスクが低く、製品品質がより良好であることができる。
【００４１】
一般に、ＴＦＦモードでのナノファイバー組成物の使用により、より高い生成物回収率（９０％を超える収率または９５％を超える収率）、より高い濃縮係数がもたらされ、動作に必要な装置使用およびエネルギーが少なくてすみ、ポンピング能力が少なくてすみ、製造の設置面積がより小さく、気−液界面が少なく、汚染リスクが潜在的に低く、製品品質がより良好である。
【００４２】
スクリーンは、しばしば、スパイラル型および平らな板またはカセットモジュール内の供給物および／または濾液チャネルに挿入され、チャネル内で乱流を増加させ、濃度分極を減少させる。しかし、これは中空糸モジュールによる選択肢ではない。中空糸モジュールでは、供給流が管の内腔（内側）に供給され、濾液が膜を通過してシェル側に移動し、そこで除去される。非常に開いた供給流路のために、中程度のクロスフロー速度でも低いせん断が生じる。このことは高せん断に敏感な生成物には有用であり得るが、一般に、競合する流束を達成するためには、非常に高いポンプ能力が要求されることにより、モジュールの効率が低下する。
【００４３】
「流束」および「流速」という用語は、本明細書中で交換可能に使用され、ある体積の流体が、本明細書に記載の電界紡糸ナノファイバー組成物を通過する速度を指す。
【００４４】
本明細書において交換可能に使用される「濾液」または「透過液」という用語は、フィルターまたは膜、例えば、本明細書で使用される電界紡糸ナノファイバー組成物を横断する溶液、ならびにフィルターまたは膜を既に横断した溶液を指す。
【００４５】
本明細書で使用される「保持液」という用語は、保持され、フィルターまたは膜、例えば本明細書で使用される電界紡糸ナノファイバー組成物を横断しない成分または溶液の部分、およびフィルターまたは膜を横断しなかった成分または溶液の部分を指す。撹拌セルが使用される場合、攪拌セル内のフィルターまたは膜の上流側に残る溶質を有する液体は、保持液と呼ばれる。ＴＦＦカセットまたはスパイラル型装置の場合、カセットまたはスパイラル型装置の供給物／保持液チャネルを通って流れ、該装置から供給タンクに戻る液体は、保持液と呼ばれる。
【００４６】
本明細書で使用される「撹拌セル」という用語は、ガス圧が攪拌セルに直接印加される場合に、攪拌しながら接線流濾過をシミュレートまたは作成して膜の保持液側にクロスフローを生成する装置を指す。膜の分子量（ＭＷ）カットオフを超える溶質は細胞内に保持され、水およびカットオフ未満の溶質は通過して濾液になり、セルの外に出る。
【００４７】
本明細書で使用される「有効細孔径」という用語は、視覚的ではなく機能的な方法で評価された多孔質材料の構造特性を記載する。溶液キャスト膜およびナノファイバーマット／膜等の劇的に異なる構造を有する多孔質材料を比較する目的で、顕微鏡法等の視覚的方法は、通常、これらの材料が同じ用途において同様に機能することが予測されるかどうかを予測するには不適切である。しかし、泡立ち点測定、液体−液体ポロメトリー、圧入ポロシメトリー、高分子および／または所与のサイズの粒子の篩分け等の機能的方法により、当業者が異なる材料の特性を比較することが可能になる。従って、機能性試験においてそれらがどのように機能するかに応じて、「より小さい」、「より大きい」または「同様の」有効細孔径を有すると記載され得る、異なる材料間の比較が可能である。
【００４８】
本明細書で使用される「デキストラン」という用語は、様々な長さの鎖（３から１０，０００キロダルトン）から構成される複雑な分枝グルカン（多数のグルコース分子でできた多糖類）を指す。
【００４９】
「多糖類」（単数または複数）という用語は、グリコシド結合により一緒に結合した単糖単位の長い鎖から構成されたポリマー炭水化物分子であり、加水分解すると構成成分である単糖またはオリゴ糖を与える。多糖類は、直鎖から高度に分枝した構造までさまざまである。例には、デンプンおよびグリコーゲン等の貯蔵多糖類、ならびにセルロースおよびキチン等の構造的多糖類が含まれる。
【００５０】
多糖類は、多くの場合かなり異質であり、反復単位のわずかな修飾を含む。構造に依存して、これらの高分子は、それらの単糖構築ブロックとは異なる特性を有することができる。それらは、非晶質であっても、水に不溶性であってもよい。多糖類中の全ての単糖類が同じ種類である場合、多糖類はホモ多糖類またはホモグリカンと呼ばれるが、複数の種類の単糖類が存在する場合、それらはヘテロ多糖類またはヘテログリカンと呼ばれる。
【００５１】
本明細書で使用される「結合型多糖体ワクチン」という用語は、担体タンパク質（好ましくは同じ微生物由来）に抗原（例えば、多糖類または多糖類に基づく生物）を共有結合させることによって作製され、それにより付着した抗原に対する担体の免疫学的特性を与えるワクチンを指す。非結合型多糖体抗原は、ペプチドにのみ結合することができるＭＨＣ複合体に負荷することができず、そのため提示Ｂ細胞の活性化のためにＴ細胞に提示されない。結合型多糖体ワクチンの場合、多糖体標的抗原に結合した担体ペプチドは、ＭＨＣ分子上に提示することができる。担体ペプチドを認識するＴ細胞は、Ｂ細胞を活性化し、Ｂ細胞は、最初に結合した多糖体抗原に対する抗体を産生するようになる。効果的な免疫原の作成のためのこの技術は、浸潤性細菌疾患の予防のために細菌多糖類に適用されることが最も多い。この分野で知られている結合型多糖体ワクチンの例はＨａｅｍｏｐｈｉｌｕｓ  ｉｎｆｌｕｅｎｚａｅ  Ｂ（Ｈｉｂ；細菌性髄膜炎および肺炎）[Ｍｅｒｃｋ、Ｓａｎｏｆｉ、ＧＳＫ]、Ｎｅｉｓｓｅｒａ  ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｅｓ（細菌性髄膜炎）、［Ｗｙｅｔｈ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌｓ、Ｉｎｃ．、Ｐｆｉｚｅｒ  Ｉｎｃ．の子会社］が挙げられるが、これには限定されず、Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ  ｐｎｅｕｍｏｎｉａ（細菌性肺炎）には、１３価肺炎球菌結合型ワクチン（ＰＣＶ１３［Ｐｒｅｖｎａｒ  １３、Ｗｙｅｔｈ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌｓ、Ｐｆｉｚｅｒ  Ｉｎｃ．の子会社］）が含まれる。黄色ブドウ球菌および緑膿菌に対するバイオ結合型ワクチンも開発中である。
【００５２】
「ウイルス様粒子」という用語は、ウイルスに似ているが、ウイルス性遺伝物質を含まないため非感染性である生物学的物質を指す。エンベロープまたはカプシドのようなウイルス構造タンパク質の発現は、ウイルス様粒子（ＶＬＰ）の自己組織化をもたらし得る。Ｂ型肝炎ウイルスに由来し、小さいＨＢＶ由来の表面抗原（ＨＢｓＡｇ）から構成されるＶＬＰは、４０年以上前に患者の血清から特徴付けられた。より最近では、ＶＬＰは、パルボウイルス科（例えば、アデノ随伴ウイルス）、レトロウイルス科（例えば、ＨＩＶ）およびフラビウイルス科（例えば、Ｃ型肝炎ウイルス）をはじめとする多種多様なウイルス科の成分から産生されている。ＶＬＰは、哺乳動物細胞株、昆虫細胞株、酵母および植物細胞をはじめとする様々な細胞培養系で産生することができる。
【００５３】
本明細書で使用される「目的の生物学的物質」という語句は、本明細書に記載の実施形態を使用して精製され得るタンパク質、ウイルス様粒子およびワクチン、特に結合型多糖体ワクチンを指す。目的のこのような生物学的物質は、典型的には、約５００，０００ダルトンまたは５００００ダルトンを超える分子量を有する。
【００５４】
ＩＩ．  例示的なナノファイバーポリマー材料
本明細書に記載の方法で使用されるナノファイバー組成物を製造するために使用することができるポリマーには、熱可塑性ポリマーおよび熱硬化性ポリマーが含まれる。適切なポリマーの非限定的例としては、ナイロン、ポリイミド、脂肪族ポリアミド、芳香族ポリアミド、ポリスルホン、セルロース、酢酸セルロース、ポリエーテルスルホン、ポリウレタン、ポリ（尿素ウレタン）、ポリベンズイミダゾール、ポリエーテルイミド、ポリアクリロニトリル、ポリ（エチレンテレフタレート）、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリアニリン、ポリ（エチレンオキシド）、ポリ（エチレンナフタレート）、ポリ（ブチレンテレフタレート）、スチレンブタジエンゴム、ポリスチレン、ポリ（塩化ビニル）、ポリ（ビニルアルコール）、ポリ（酢酸ビニル）、ポリ（フッ化ビニリデン）、ポリ（ビニルブチレン）、それらのコポリマー、誘導体化合物、ブレンドおよび組み合わせが挙げられる。適切なポリアミド縮合ポリマーとしては、ナイロン−６；ナイロン−４，６；ナイロン−６，６；ナイロン６，６−６，１０；それらのコポリマー、および他の線状の一般的に脂肪族のナイロン組成物等が挙げられる。
【００５５】
ＩＩＩ．  繊維状マット／膜を形成するための例示的な方法
様々な実施形態では、本明細書に記載される様々な実施形態において使用されるナノファイバー組成物は、当分野で以前から知られている電界紡糸法を使用して作製される。
【００５６】
いくつかの実施形態では、繊維状マット／膜は、ナイロン溶液からナノファイバーを堆積させることによって作製される。ナノファイバーマット／膜は、乾燥基準で測定して（即ち、残留溶媒が蒸発したか、さもなければ除去された後に）約０．１ｇ／ｍ２から約１０ｇ／ｍ２の間の坪量を有する。
【００５７】
他の実施形態では、ナイロンは、限定されないが、蟻酸、硫酸、酢酸、２，２，２−トリフルオロエタノール、２，２，２，３，３，３−ヘキサフルオロプロパノール、および水をはじめとする溶媒の混合物に溶解される。
【００５８】
いくつかの実施形態では、ナイロン溶液は、乾燥ナイロンポリマーを１つの群の溶媒に溶解することによって、即ち、原液を最初に調製し、次いで溶液を電界紡糸のために準備するために他の溶媒を加えることによって調製される。
【００５９】
いくつかの実施形態では、ナイロンポリマー（即ち、出発溶液）は、部分的に加水分解されたナイロンポリマー（即ち、終了溶液）の平均分子量が出発ナイロンポリマーの平均分子量よりも小さくなるように、溶液調製の過程で部分的に加水分解される。
【００６０】
本発明のさらなる実施形態では、ナイロン溶液の導電率は、所与の溶媒中の適切なイオン性化合物を用いて調整される。そのような適切なイオン性化合物の例としては、有機塩および無機塩、酸および塩基が挙げられるが、これらに限定されない。ナイロン溶液の導電率を調整するために使用される好ましい化合物の例は、ギ酸アンモニウムである。
【００６１】
本発明の別の実施形態では、周囲湿度が約１２℃を超える露点に保たれるように、電気紡糸チャンバ内の環境が制御される。
【００６２】
本発明の一実施形態では、様々な多孔質の単一または多層の基材または支持体が、収集し、電界紡糸ナノファイバーマット媒体と組み合わせるための移動または固定収集ベルト上に配置され、複合濾過装置を形成する。
【００６３】
ＩＶ．  ＴＦＦ濾過モードで膜を使用する方法
本明細書中に記載される様々な実施形態では、電界紡糸ナノファイバー組成物は、約５００ＫＤａまたは５００ｋＤａを超える分子量を有する目的の生物学的物質（例えば、タンパク質、結合型多糖体ワクチンまたはウイルス様粒子）を精製するためにＴＦＦモードで使用される。
【００６４】
ＴＦＦモードでの操作の場合、２つの膜表面の間のチャネルを通る供給流の流れを生成するために、一般にポンプが使用される。膜の表面上の流体の各通過の間、印加加された圧力は、流体の一部を、膜を通って濾液流に押し込む。その結果チャネルの中心のバルク条件から膜表面のより濃縮された壁面条件への供給原料濃度の勾配が得られる。また、徐々により多くの流体が濾液側に流れるので、流入口から流出口（濃縮液）への供給チャネルの長さに沿って濃度勾配がある。
【００６５】
いくつかの実施形態では、電界紡糸されたナイロン−６ナノファイバー限外濾過膜（ＮＦ  ＵＦ）は、ＰＥＳ  ＵＦ膜と同様のいくつかの形式の接線流濾過モジュールに組み込むことができる。接線流濾過に使用される最も一般的な形式は、平板カセット（例えば、Ｐｅｌｌｉｃｏｎ（Ｒ）３）またはスパイラル型装置である。ＮＦ  ＵＦは、膜スクリーン、保持液スクリーンおよび透過液スクリーン、ならびに保持液ポートおよび透過液ポートを有する外側ポリマーフィルムを含む層状構造におけるフラットシート接線流濾過パケットに作製され、次いでオーバーモールドまたは射出成形して保持液ポートおよび透過液ポートを有するフラットカセット装置にすることができる。あるいは、ＮＦ  ＵＦは、保持液スクリーンおよび透過液スクリーンを有するスパイラル状に巻かれ、縁部で封止されて、保持液および透過液流路を提供し、密閉流路を有する円筒状ホルダー内に置かれて保持液ポートおよび透過液ポートを分離する。ポリマースクリーンは、スパイラル型および平板モジュール内の保持液チャネルおよび／または透過液チャネルに挿入され、チャネル内で乱流を増加させ、濃度分極を減少させる。乱流によって促進されるチャネルはより低いクロスフロー流速でより高い物質移行係数を有し、そのことはより高い流束がより少ないポンプ要件で達成されることを意味する。従って、乱流によって促進される保持液チャネルは、開放流路よりも効率的である。平板モジュール内でつり下げられたスクリーンを使用すると、開放流路および乱流によって促進される流路の両方の利点の幾分かが得られる。
【００６６】
ＮＦ  ＵＦ膜を用いた接線流濾過は、より小さい不純物を透過させ、濃度を２０ｍｇ／ｍＬのワクチン生成物まで増加させるために体積を減少させることにより、結合型多糖体ワクチンのような目的の生物学的物質をより高純度のレベルに濃縮し、精製することができる。また、ＮＦ  ＵＦ膜は、さらなる精製工程または最終処方のために、生物学的物質およびダイアフィルターを保持することができ、または小さな塩またはｐＨ緩衝塩の緩衝液交換を行うことができる。以下の実施例に記載の実験は、本明細書で使用されるモデルデキストランと同じ方法で、結合型多糖体ワクチンまたは目的の生体分子を精製、濃縮、または緩衝液交換するために使用することができる。
【００６７】
実施形態は、限定するものとして解釈されるべきではない以下の実施例によってさらに説明される。本出願を通して引用される全ての参考文献、特許および公開された特許出願ならびに図面の内容は、参照により本明細書に援用される。
【実施例】
【００６８】
［実施例１：ナノファイバーマット／膜の調製］
電界紡糸ナイロン−６ナノファイバー複合パルボウイルス保持マットを、ＰＣＴ公開特許出願番号ＷＯ２０１４０９３３４５（参照により本明細書に組み込まれる）に記載されたように製造し、ＮＦ  ＵＦ（即ち、ナノファイバーＵＦ膜）と称す。二層複合ベースおよび活性保持層ナノファイバーマットを溶液から平滑なＨｉｒｏｓｅ不織基材（廣瀬製紙、日本国高知県土佐市、部品番号＃ＨＯＰ−６０ＨＣＦ）上に電界紡糸させるために、商標Ｕｌｔｒａｍｉｄ  Ｂ２４（ＢＡＳＦ  Ｃｏｒｐ．、米国ニュージャージ州フローラム・パーク）のナイロン−６を使用する。ベース層は、酢酸：ギ酸混合物（２：１）中の１０．３％ｗ／ｗのナイロン−６から電界紡糸され、平均繊維直径７０ｎｍで約２５から３０ミクロンの厚さである。１０ｎｍの平均繊維直径を有する活性保持層はギ酸：水：２，２，２−トリフルオロエタノール（ＴＦＥ）：ギ酸アンモニウム混合物（２０．５：２０．５：１０．３：４０：０．７）中の８．０％ｗ／ｗのナイロン−６の溶液から電界紡糸され、厚さは数ミクロンと推定される。電界紡糸ナノファイバーＵＦ膜を、６０Ｈｚ、１４０ｍｍの距離、１０°から１６°の露点の間の制御された湿度、６０ｋＶの電圧、２ｃｍ／分のライン速度で３つの回転電極を用いてＥｌｍａｒｃｏ（チェコ共和国リベレツ）からのパイロット規模の電界紡糸装置で製造する。
【００６９】
［実施例２：ポリエーテルスルホン限外濾過膜の調製］
ポリエーテルスルホン限外濾過膜（ＰＥＳ  ＵＦ）を、カスタムメンブレンキャスティング装置（ＥＭＤ  Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ、米国ニューハンプシャー州ジェフリー）を使用してポリオレフィン不織基材上に溶液浸漬キャスティングを用いて特注する。
【００７０】
一般に、溶液浸漬法は、２つ以上の成分の均質なポリマー溶液を、硬質膜構造を形成する固体のポリマー富化相と、膜孔を形成する液体のポリマー不足相とを有する２相系に変換することを含む（例えば、Ｍｅｍｂｒａｎｅｓ  ａｎｄ  Ｍｅｍｂｒａｎｅ  Ｐｒｏｃｅｓｓｅｓ、１９８６  Ｓｐｒｉｎｇｅｒ  ＵＳ、Ｄｒｉｏｌｉ、Ｅｎｒｉｃｏ；Ｎａｋａｇａｋｉ、Ｍａｓａｙｕｋｉ。Ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ  ｏｆ  Ｍｉｃｒｏｐｏｒｏｕｓ  Ｍｅｍｂｒａｎｅｓ  ｂｙ  Ｐｈａｓｅ  Ｉｎｖｅｒｓｉｏｎ  Ｐｒｏｃｅｓｓｅｓ、Ｓｔｒａｔｈｍａｎｎ、Ｈ．、ｐ１１５−１３５を参照）。
【００７１】
［実施例３：膜特性の検討］
２つの膜、ＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦの特性を、以下に記載される様々な技術を用いて検討する。
【００７２】
１．  ＳＥＭ画像および繊維直径
電界紡糸されたナイロン−６ナノファイバー限外濾過膜（ＮＦ  ＵＦ）およびポリエーテルスルホン限外濾過膜（ＰＥＳ  ＵＦ）の代表的な走査型電子顕微鏡写真（ＳＥＭ画像）をそれぞれ図１および２に示す。図１では、試料をディスクから切断し、両面導電性炭素テープでアルミニウムＳＥＭスタブ上に載せる。次いで、それらをＣｒｅｓｓｉｎｇｔｏｎ  ２０８ＨＲ高分解能スパッターコーターを用いて５ｎｍのイリジウムでコーティングする。試料を、５ｋＶでＦＥＩ  Ｑｕａｎｔａ  ２００Ｆ電界放出走査型電子顕微鏡（ＦＥＳＥＭ）で画像化する。この画像は、ナイロン−６ナノファイバーが、５００ナノメートルのスケールバーに対して約１０ナノメートルの程度の直径を有するポリマー繊維のランダムに重ねられた不織マットであることを示す。電界紡糸されたナイロンＮＦ  ＵＦの多孔性は、重なり合う繊維間の空間に起因する。
【００７３】
図２は、溶液相反転法を使用して作製されたポリエーテルスルホン限外濾過膜（ＰＥＳ  ＵＦ）の多孔性を示す。試料を膜ディスクから切断し、次いで、両面導電性炭素テープでアルミニウムＳＥＭスタブ上に載せる。次いで、それらをＣｒｅｓｓｉｎｇｔｏｎ  ２０８ＨＲ高分解能スパッターコーターを用いて５ｎｍのイリジウムでコーティングする。試料画像を、５ｋＶでＦＥＩ  Ｑｕａｎｔａ  ２００Ｆ電界放出走査電子顕微鏡（ＦＥＳＥＭ）で撮影する。
【００７４】
図２のＰＥＳ  ＵＦと電界紡糸されたナイロン−６  ＮＦ  ＵＦの図１とを比較すると、それらが３次元構造または形態に関してどのように劇的に異なるかが示される。
【００７５】
図３に示すように、繊維半径を、Ｉｍａｇｅ  Ｐｒｏ  Ｐｌｕｓ  ｖ６．０内のカスタム開発ユークリッド距離マップ（ＥＤＭ）ルーチンを利用して測定する。各ナノファイバー層の試料の平均繊維直径を計算し、ＳＥＭ用の試料調製中に適用された５ｎｍの金属コーティングを差し引くことによって、最終直径を決定する。電界紡糸ナイロン−６ナノファイバー限外濾過膜（ＮＦ  ＵＦ）の平均繊維直径は平均半径の２倍であり、次にＳＥＭ用の試料調製物の金属コーティングの５ナノメートルを差し引く。
【００７６】
２．平均泡立ち点および透水性
この実験は、ＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜について測定された平均泡立ち点および透水性の測定を記載する。本明細書に示され、図４に示されるように、ＮＦ  ＵＦ膜試料は、ベンチマークのために予め選別されたＰＥＳ  ＵＦ膜の４つの異なる試料と同様のまたはより高い平均フロー泡立ち点でより高い透水性を示す。
【００７７】
平均流量泡立ち点を、ＡＳＴＭ  Ｅ１２９４−８９「Ｓｔａｎｄａｒｄ  Ｔｅｓｔ  Ｍｅｔｈｏｄ  ｆｏｒ  Ｐｏｒｅ  Ｓｉｚｅ  Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓ  ｏｆ  Ｍｅｍｂｒａｎｅ  Ｆｉｌｔｅｒｓ  Ｕｓｉｎｇ  Ａｕｔｏｍａｔｅｄ  Ｌｉｑｕｉｄ  Ｐｏｒｏｓｉｍｅｔｅｒ」に従って測定する。特注の毛細管流ポロシメータを使用するＡＳＴＭ  Ｆ３１６による自動泡立ち点法は、原理上はＰｏｒｏｕｓ  Ｍａｔｅｒｉａｌｓ、Ｉｎｃ．（米国ニューヨーク州イサカ）の市販の装置に類似している。ポリオレフィン不織基材を有する、直径２５ｍｍにダイカットされたナノファイバーＵＦ（ＮＦ  ＵＦ）膜試料を、（３Ｍ、米国ミネソタ州セントポール）から市販されているペルフルオロヘキサンＦｌｕｏｒｉｎｅｒｔ（商標）ＦＣ−７２（１０ダイン／ｃｍ）で湿らせた。各試料をホルダーに入れ、空気の差圧を加え、流体を試料から除去する。湿った流れが乾燥流れの半分（湿潤溶媒のない流れ）に等しい差圧を使用し、供給されたソフトウェアを用いて平均流量細孔径を計算する。
【００７８】
ポリエーテルスルホンＵＦ（ＰＥＳ  ＵＦ）膜の平均流量泡立ち点を、２−プロパノールを用いて測定する。図４に示すように、ＮＦ  ＵＦ膜平均流量泡立ち点を、ＰＥＳ  ＵＦ試料との比較のために２−プロパノールの表面張力（２１．４ダイン／ｃｍ）に調整する。図４は、１０００ｋＤａのデキストラン篩わけＲ９０カットオフを有する電界紡糸ナイロン−６  ＮＦ  ＵＦの４つの試料が、１２００ｋＤａのデキストラン篩分けＲ９０カットオフを有するＰＥＳ  ＵＦ膜よりも大きな透水性およびより高い平均流量泡立ち点を有することを示す。
【００７９】
１３．４ｃｍ２のフィルター面積および３ｐｓｉで０．５ｍＬのホールドアップ体積を有する５０ｍＬ攪拌セル（Ｍｏｄｅｌ  ８０５０、ＥＭＤ  Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ、マサチューセッツ州ビレリカ）中の直径４４．５ｍｍの膜ディスクを用いて、ＬＭＨ／ｐｓｉで表される透水性を測定する。ポリオレフィン不織基材を有するダイカットしたＮＦ  ＵＦ膜を、第２のポリオレフィン不織基材上に乾燥状態で置き、撹拌セルに固定する。ＰＥＳ  ＵＦ膜をエタノールで湿らせ、水に交換し、第２のポリオレフィン不織布ディスク上の攪拌セルに固定する。試料を水で濡らし、５ｐｓｉで２×５０ｍＬの水を用いてフラッシュして全ての空気を除去する。
【００８０】
３．  デキストランＲ９０カットオフ
この実験では、図５に示すように、デキストラン排除測定値を使用して、ＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜のデキストランＲ９０カットオフを決定する。ＮＦ  ＵＦ試料は、１０００および１５００ｋＤａのデキストランＲ９０カットオフを含んでいた。４つの異なるＰＥＳ  ＵＦ膜試料は、８００、１２００、１７００および４８００ｋＤａのデキストランＲ９０カットオフを有する。図５に示すように、この４つのＰＥＳ  ＵＦ膜は、高分子の限外濾過のための業界では一般的であり、ＮＦ  ＵＦ膜試料のものと同様のデキストラン保持曲線を示す。図５は、１０００ｋＤａのデキストラン篩分けＲ９０カットオフを有する電界紡糸されたナイロン−６  ＮＦ  ＵＦ膜の４つの試料が、１２００ｋＤａのデキストラン篩分けＲ９０カットオフを有するＰＥＳ  ＵＦ膜の重複試料に対して、ｘ軸およびｙ軸の両方でおよび傾きに関して同様のデキストラン篩分け曲線を有することを示す。
【００８１】
ＮＦ  ＵＦ膜は、図６に示されるように、デキストランＲ９０および平均流量泡立ち点においてＰＥＳ  ＵＦ膜に類似しており、図７に示すように、同様のデキストランＲ９０でより高い透水性を示す。
【００８２】
図６は、１０００ｋＤａのデキストラン篩分けＲ９０カットオフを有する電界紡糸ナイロン−６ＮＦ  ＵＦ膜試料の４つの試料が、１２００ｋＤａのデキストラン篩分けＲ９０カットオッフを有するＰＥＳ  ＵＦ膜試料より低いデキストラン篩分けＲ９０カットオフおよびより高い平均流量泡立ち点を有することを示す。電界紡糸ナイロン−６ナノファイバー限外濾過膜（ＮＦ  ＵＦ）は、より高い泡立ち点をおよびより低いデキストラン篩分けＲ９０カットオフを提供する、より小さい平均細孔径を有する。
【００８３】
図７は、１０００ｋＤａのデキストラン篩分けＲ９０カットオフを有する電界紡糸ナイロン−６  ＮＦ  ＵＦ膜試料の４つの試料が、１２００ｋＤａというより高いデキストラン篩分けＲ９０カットオフを有するＰＥＳ  ＵＦ膜試料より大きな透水性およびより低いデキストラン篩分けＲ９０を有することを示す。
【００８４】
ＮＦ  ＵＦ膜およびＰＥＳ  ＵＦ膜のデキストラン分子量篩分け測定を、カスタムデキストラン保持試験を用いて行う。全ての膜試料を攪拌セル内で調製し、実施例３−２に記載のように予めフラッシュする。供給物試料および透過液試料の分析的サイズ排除クロマトグラフィーを用いてＭＷ排除および篩分け曲線を生成し、そこから各膜についてデキストランＲ９０カットオフを決定する。
【００８５】
ｐＨ７．０の５０ｍＭリン酸塩緩衝液中の０．７５％ｗ／ｗデキストランの混合デキストラン供給物を用いてＮＦ  ＵＦ膜またはＰＥＳ  ＵＦ膜にチャレンジする。デキストランはＰｈａｒｍａｃｏｓｍｏｓ  Ａ／Ｓ（Ｒｏｅｒｖａｎｇｓｖｅｊ  ３０、ＤＫ−４３００、デンマークホルベック）から購入する。使用したデキストランの平均分子量（Ｍｗ）は以下の通りである：１，０００Ｄａ（デキストランＴ１、５５１０  ０００１  ４０００）；３，５００Ｄａ（デキストランＴ３．５、５５１０  ０００３  ４００７）；１０，０００Ｄａ（デキストランＴ１０、５５１０  ００１０  ４００７）；４０，０００Ｄａ（デキストランＴ４０、５５１０  ００４０  ４００７）；７０，０００Ｄａ（デキストランＴ７０、５５１０  ００７０  ４００７）；５００，０００Ｄａ（デキストランＴ５００、５５１０  ０５００  ４００６）；および２，０００，０００Ｄａ（デキストランＴ２０００、５５１０  ２０００  ４００７）。
【００８６】
混合されたデキストラン供給物４０ｍＬを撹拌セルに注ぐ。標準的なマグネチックスターラーバーをセルに入れ、マグネチックスターラープレート上で３２０ＲＰＭで攪拌するように設定する。蠕動ポンプに取り付けられたＰＶＣチューブ１／１６”ＩＤ（フィッシャー科学カタログ番号１４−１９０−１１８）を０．２２ｍＬ／分の一定流量で液体を吸引するために透過液側に接続する。１０ＬＭＨの一定の流束の下で、最初の２から３ｍｌを捨て、約１時間再循環させて平衡にし、ゲル浸透クロマトグラフィー（ＧＰＣ）を用いるさらなる分析のために透過液試料を収集する。
【００８７】
デキストランの分析的サイズ排除クロマトグラフィーを、Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ  Ｓｈｏｄｅｘ  ＯＨ  ｐａｋ１３μｍＳＢ−８０６Ｍ  ＨＱゲル濾過カラム（品番：ＳＢ−８０６ＭＨＱ、カラムサイズ：３００×８ｍｍ、Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ  Ｉｎｃ.、カナダ・トーランス）を使用して、Ｗａｔｅｒｓ  ２６９５分離モジュールおよびＷａｔｅｒｓ  ２４１４屈折率検出器を用いて実施する。アイソクラチック移動相は、ｐＨ７．０の５０ｍＭのリン酸カリウムと、１０ｍｇ／Ｌアジ化ナトリウムから構成される。カラムを３５℃の温度で２０分間１．０ｍＬ／分の流速で運転する。
【００８８】
保持時間から分子量を較正するために使用される分子量デキストラン標準は、Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ（ミズーリ州セントルイス）、グルコース、ＭＷ＝１８０Ｄａ（＃１５８９６８）、マルトヘプタオース、ＭＷ＝１，１５３Ｄａ（＃２８４０１７）およびＡｍｅｒｉｃａｎ  Ｐｏｌｙｍｅｒ  Ｓｔａｎｄａｒｄｓ（オハイオ州メンター）デキストラン：Ｍｐ＝２，８００Ｄａ（ＤＸＴ３Ｋ）、Ｍｐ＝６，３００Ｄａ（ＤＸＴ７Ｋ）、Ｍｐ＝２０，５００Ｄａ（ＤＸＴ２５Ｋ）、Ｍｐ＝４３，０００Ｄａ（ＤＸＴ４７Ｋ）、Ｍｐ＝８５，０００Ｄａ（ＤＸＴ９７Ｋ）、Ｍｐ＝２４５，０００Ｄａ（ＤＸＴ３２５Ｋ）、Ｍｐ＝３５０，０００Ｄａ（ＤＸＴ５５０Ｋ）、Ｍｐ＝１，４６５，０００Ｄａ（ＤＸＴ２１００Ｋ）、Ｍｐ＝６，３００，０００Ｄａ（ＤＸＴ５９００Ｋ）およびＭｐ＝９，１１０，０００Ｄａ（ＤＸＴ８０３５Ｋ）（Ｍｐは平均ピーク分子量）から購入する。
【００８９】
［実施例４：カスタム供給物を使用したＴＦＦ（ＵＦ／ＤＦ）膜の適用比較］
以下の表１に要約されるカスタムデキストラン供給物を用いるＴＦＦ（ＵＦ／ＤＦ）モードでの膜比較のために、Ｒ９０＝１０００ｋＤａを有するナノファイバーＵＦおよびＲ９０＝１２００ｋＤａを有するＰＥＳ  ＵＦ膜を選択する。上記の膜は、ＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦと称され、図４から７に実証される物理的特性を有する。
【００９０】
電界紡糸ＮＦ  ＵＦ膜は、接線流濾過（ＴＥＦ）モードにおいて、溶液浸漬キャストＰＥＳ  ＵＦ膜と同等または改善された性能を有する。デキストラン濃度および低分子量除去ための限外濾過モードおよび透析濾過モードは、表１に要約されるように、ナノファイバー膜が収率、選択率および濾過流束に関して限外濾過膜と同様に機能することを示した。
【００９１】
【表１】
0006786519.tif 000002
【００９２】
輸送および選択率、透析濾過ならびに限外濾過のために、膜をＴＦＦモードで二重に並べて検査する。表１および残りの実施例は実験比較を要約する。流束対ＴＭＰ実験での保持液および透過液のサンプリングによって、輸送および選択率を、流束対ＴＭＰ、物質移行対ＴＭＰおよび選択率対流束により、測定する。
【００９３】
結合型多糖体ワクチン産業で使用される濃縮工程および分離工程をシミュレートするために、ＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ  ＴＦＦ（ＵＦ／ＤＦ）膜評価用に３つのカスタムデキストラン供給物を調製する。
【００９４】
使用したデキストランはＰｈａｒｍａｃｏｓｍｏｓ  Ａ／Ｓ（Ｒｏｅｒｖａｎｇｓｖｅｊ  ３０、ＤＫ−４３００、Ｈｏｌｂａｅｋ、デンマーク）から市販されており、１，９５０，０００および１１２，０００Ｄａの平均分子量（Ｍｗ）を有する１１０，０００Ｄａデキストラン（Ｔ１１０、５５１０  ０１１０  ９００６）および２，０００，０００Ｄデキストラン（Ｔ２０００、５５１０  ２０００  ９００７）である。３桁を包含する３つの供給物Ａ、Ｂ、およびＣは以下のようであり、即ち、表２に示すｐＨ７．０の５０ｍＭリン酸塩緩衝液中の０．０３８５；０．８４４；および８．４４％ｗ／ｗの総デキストラン質量％である。表２は、各Ｐｈａｒｍａｃｏｓｍｏｓのストック番号、質量比、および２０℃での粘度を詳述する。
【００９５】
【表２】
0006786519.tif 000003
【００９６】
図８に示すように、０．０３８５％ｗ／ｗのデキストランを用いる供給物Ａのゲル浸透クロマトグラム、および図９に示すように、０．８４４％および８．４４％ｗ／ｗのデキストランを用いる供給物ＢおよびＣのゲル浸透クロマトグラム（供給物Ｃは１０×供給物Ｂであるか、または緩衝液で１：１０に希釈した場合、図９に示すクロマトグラムをもたらす）に見られるように、３つの供給物は、１０，０００から１０，０００，０００Ｄａの３桁の範囲の非常に多分散性の分子量分布を有する。
【００９７】
以下の比較限外濾過および透析濾過の例のために、３つの分子量７，２５０，０００Ｄａ（Ｄ７２５０）、２，０００，０００Ｄａ（Ｄ２０００）および１１０，０００Ｄａ（Ｄ１１０）を選択する。
【００９８】
図８のクロマトグラムは、供給物Ａが１０，０００から１０，０００，０００ダルトンの３桁を包含する非常に多分散性の分子量分布を有することを示す。表３における７，２５０，０００Ｄａ（Ｄ７２５０）、２，０００，０００Ｄａ（Ｄ２０００）、および１１０，０００Ｄａ（Ｄ１１０）の３つの分子量のパーセンテージは、各ＭＷのピーク面積／総面積から得られる。
【００９９】
図９のクロマトグラムは、供給物Ｂが１０，０００から１０，０００，０００ダルトンの３桁を包含する非常に多分散性の分子量分布を有することを示す。表３における７，２５０，０００Ｄａ（Ｄ７２５０）、２，０００，０００Ｄａ（Ｄ２０００）、および１１０，０００Ｄａ（Ｄ１１０）の３つの分子量のパーセンテージは、各ＭＷのピーク面積／総面積から得られる。表２および表３の供給物Ｃは、１０×供給物Ｂであるか、または緩衝液で１：１０に希釈した場合、図９と同一である。
【０１００】
表３は、３つの供給物の各々において７，２５０，０００Ｄａ（Ｄ７２５０）、２，０００，０００Ｄａ（Ｄ２０００）、および１１０，０００Ｄａ（Ｄ１１０）のＭＷを有するデキストランの実際のピーク高さパーセンテージを要約したものである。表３に要約するように、供給物中の７２５０，０００Ｄａ（Ｄ７２５０）、２，０００，０００Ｄａ（Ｄ２０００）、および１１０，０００Ｄａ（Ｄ１１０）のピーク高さのパーセンテージおよび０．０３８５、０．８４４および８．４４％の総デキストラン質量パーセントに基づいて、Ｄ７２５０、Ｄ２０００ 、およびＤ１１０の実際のパーセンテージを計算する。
【０１０１】
【表３】
0006786519.tif 000004
【０１０２】
続く実験では、濃度、収率および選択率を、全て、図８および図９によって示されるように、各ＭＷでの実際のピーク高さ対供給物クロマトグラムに基づいて、およびＤ７２５０、Ｄ２０００およびＤ１１０の検査下で３つの選択された分子量についての表３のパーセンテージに基づいて計算する。
【０１０３】
ＧＰＣ屈折率検出器のスケール上にとどまるために必要に応じて試料を希釈し、希釈に必要な場合調整する。実施例９に詳述するように、限外濾過濃縮実験における各ＭＷの濃度を計算するために、Ｄ７２５０、Ｄ２０００およびＤ１１０の濃度式を作成するために、供給物ＡおよびＢを希釈したものを使用する。
【０１０４】
［実施例５．供給物流束対ＴＭＰの測定］
表２および３に示すカスタムデキストラン供給物Ａ、Ｂ、およびＣを使用して、平均流束対膜間圧（ＴＭＰ）曲線を生成する。供給物Ａ、ＢおよびＣのそれぞれについて図１０、１１および１２は、ＮＦ  ＵＦ膜が、同様のデキストランＲ９０カットオフを有するＰＥＳ  ＵＦ膜よりもＴＭＰに対して高い平均デキストラン供給物流束を有することを実証している。図１０、１１、１２に示すように、供給物Ａ、Ｂ、およびＣについての平均流束はＬＭＨで表される３桁を包含し、図１２に示すように、ＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜の両方の場合高濃度供給物Ｃについては物質移行分極がある。
【０１０５】
図１０、１１および１２に示すように、ＮＦ  ＵＦ膜は、ＴＭＰに対してより高い平均デキストラン供給物流束および図７に示すように、より高い水流束の両方を有していた。
【０１０６】
実験は、実施例３に記載したように撹拌セル内で行う。供給物を３２０ＲＰＭで撹拌し、ハウス空気を用いて加圧する。ＧＰＣ分析のために、供給物および透過液試料を各圧力で収集する。
【０１０７】
図１０は、１０００ｋＤａのデキストラン篩分けＲ９０カットオフを有する電界紡糸ナイロン−６  ＮＦ  ＵＦ膜が、１２００ｋＤａのより高いデキストラン篩分けＲ９０カットオフを有するＰＥＳ  ＵＦ膜と比較して、同じＴＭＰでより大きい供給物Ａ流束を有することを示す。
【０１０８】
図１１は、１０００ｋＤａのデキストラン篩分けＲ９０カットオフを有する電界紡糸ナイロン−６  ＮＦ  ＵＦ膜が、１２００ｋＤａのより高いデキストラン篩分けＲ９０カットオフを有するＰＥＳ  ＵＦ膜よりもＴＭＰに対して大きい供給物Ｂ流束を有することを示す。
【０１０９】
図１２は、１０００ｋＤａのデキストラン篩分けＲ９０カットオフを有する電界紡糸ナイロン−６  ＮＦ  ＵＦ膜が、１２００ｋＤａのより高いデキストラン篩分けＲ９０カットオフを有するＰＥＳ  ＵＦ膜よりもＴＭＰに対して大きい供給物Ｃ流束を有することを示す。
【０１１０】
［実施例６．物質移行対ＴＭＰの測定］
デキストラン質量／濃度輸送を、ＧＰＣ分析のために各圧力で実施例５の供給物および透過液試料を収集することによって測定する。図１３および１４は、ＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜試料の２つの試料のうちの１つについて、供給物Ａのゲル浸透クロマトグラムを示す。Ｄ７２５０、Ｄ２０００およびＤ１１０の輸送を比ＣＰ／ＣＦによって決定し、ここで、ＣＰおよびＣＦは、各圧力における供給物および透過液中の濃度である。
【０１１１】
図１３および１４は、いかにして供給物Ａの濃度が、流束対ＴＭＰ実験を通してわずかに上昇するかを示す。
【０１１２】
図１３において、クロマトグラムのオーバーレイは、いかにして、透過液中の供給物Ａの濃度が最初はより高く、次いで流束対ＴＭＰ実験を通して再び増加する前にわずかに減少するかを示し、このことは表面濃度分極平衡を形成できる前に、膜がより多くのＤ７２５０、Ｄ２０００およびＤ１１０を最初に通すかを示す。
【０１１３】
図１４において、クロマトグラムのオーバーレイは、いかにして、透過液中の供給物Ａの濃度が最初はより高く、次いで流束対ＴＭＰ実験を通して再び増加する前にわずかに減少するかを示し、このことは表面濃度分極平衡を形成できる前に、膜がより多くのＤ７２５０、Ｄ２０００およびＤ１１０を最初に通すかを示す。
【０１１４】
図１５の場合、Ｄ７２５０、Ｄ２０００およびＤ１１０の輸送は、比ＣＰ／ＣＦであり、ＣＰおよびＣＦは、各ＴＭＰ（ｐｓｉ）における供給物および透過液中の濃度である。図１５は、ＰＥＳ  ＵＦ膜に対して電界紡糸ナイロン−６  ＮＦ  ＵＦについて、供給物Ａ中のデキストランの平均質量／濃度輸送がＴＭＰに対しより大きいことを示す。
【０１１５】
図１６の場合、Ｄ７２５０、Ｄ２０００およびＤ１１０の輸送は、比ＣＰ／ＣＦであり、ＣＰおよびＣＦは、各ＴＭＰ（ｐｓｉ）における供給物および透過液中の濃度である。図１６は、ＰＥＳ  ＵＦ膜よりも電界紡糸ナイロン−６  ＮＦ  ＵＦについて、供給物Ｂ中のデキストランの平均質量／濃度輸送がＴＭＰに対しより大きいことを示す。
【０１１６】
要約すると、観察されるように、（図１３に示すように）ＮＦ  ＵＦ膜のデキストランＤ７２５０、Ｄ２０００、およびＤ１１０の物質移行または濃度通過は、（図１４に示すように）ＰＥＳ  ＵＦ膜よりも高い。平均ＣＰ／ＣＦを供給物Ａについて計算し、（図１５に示されるように）ＴＭＰに対してプロットする。表面濃度分極平衡を形成できる前に、（図１３、１４および１５に示すように）ＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜の両方がより多くのＤ７２５０、Ｄ２０００、およびＤ１１０を最初に通す。供給物Ｂ中のデキストランの平均質量／濃度輸送は、（図１６に示すように）ＰＥＳ  ＵＦ膜と比べてＮＦ  ＵＦ膜に対する方が大きい。
【０１１７】
［実施例７．選択率対流束の測定］
Ｄ７２５０、Ｄ２０００およびＤ１１０についての実施例６の物質移行関係ＣＰ／ＣＦを用いて、上記の流束対ＴＭＰのデータから選択率係数対流束を作成する。流束に対してＤ１１０／Ｄ２０００およびＤ１１０／Ｄ７２５０の平均通過選択率を決定するために、式［（ＣＰ／ＣＦ）Ｄ１１０／（ＣＰ／ＣＦ）Ｄ２０００またはＤ７２５０]を用いて選択率係数を決定する。
【０１１８】
供給物ＡおよびＢを用いたＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜についての平均選択率係数対流束をそれぞれ図１７および１８に示す。観察されたように、ＰＥＳ  ＵＦ膜は、ＴＭＰ／Ｆｌｕｘの増加に伴ってＮＦ  ＵＦ膜よりも高い選択率係数を有するが、供給物ＡおよびＢを用いるとＮＦ  ＵＦ膜およびＰＥＳ  ＵＦ膜の両方で、同様の流束において平均選択率は１に近づく（それぞれ図１７および図１８に示される）。両方の膜は、低い一定流束において最良の選択率を有する。５０ｍＬ攪拌セル中の０．５ｍＬのホールドアップ体積により、ＴＭＰおよび流束に対する実際のデータのいくらかの希釈化およびシフトが引き起こされる。
【０１１９】
図１７は、電界紡糸ナイロン−６  ＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜が、平均流束（ＬＭＨ）に対して、供給物Ａを用いるＤ１１０／Ｄ２０００およびＤ１１０／Ｄ７２５０の同様の選択率を有し、両者が１より大きく、同様の流束で１に近づくことを示す。
【０１２０】
図１８は、電界紡糸ナイロン−６  ＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜が、平均流束（ＬＭＨ）に対して、供給物Ｂを用いるＤ１１０／Ｄ２０００およびＤ１１０／Ｄ７２５０の同様の選択率を有し、両者が１より大きく、同様の流束で１に近づくことを示す。
【０１２１】
［実施例８．一定流束における透析濾過の測定］
ＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜を供給物Ａを用いて比較するために、２つの定容透析濾過実験を２回行う。上記のようにして、膜試料を含む攪拌セルを調製する。３０または６０ＬＭＨ（０．６８または１．３６ｍＬ／分）に相当する適合する流速を有する蠕動ポンプを使用して、透過液から引き出し、保持液に緩衝液を供給する。ＧＰＣによる分析のために、保持液および透過液試料を各４０ｍＬのダイアボリュームで採取する。３０ＬＭＨの実験を６４０ＲＰＭで、６０ＬＭＨの実験を３２０ＲＰＭで撹拌する。
【０１２２】
図１９および図２０は、３０ＬＭＨおよび６４０ＲＰＭ実験の実行からのＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜試料の複製品の１つについて、１から６までの各ダイアボリュームにおける保持液および透過液試料のゲル浸透クロマトグラムを示す。図２１および図２２に示すように、ＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜の両方は、より高いＭＷのデキストラン（Ｄ７２５０、Ｄ２０００）を選択的に保持し、より低いＭＷのデキストラン（Ｄ１１０）を透過させることにおいて同様に機能する。
【０１２３】
図１９のクロマトグラムのオーバーレイは、いかにして供給物Ａの濃度が最初により高く、次いでダイアボリュームの増加に伴い、保持液のＭＷ分布がより高いＭＷに向かって左にシフトする一方、透過液がより低いＭＷに向かって右にシフトするかを示す。
【０１２４】
図２０のクロマトグラムのオーバーレイは、いかにして供給物Ａの濃度が最初により高く、次いでダイアボリュームの増加に伴い、保持液のＭＷ分布がより高いＭＷに向かって左にシフトする一方、透過液がより低いＭＷに向かって右にシフトするかを示す。
【０１２５】
３０ＬＭＨおよび６４０ＲＰＭ（図２１に示される）ならびに６０ＬＭＨおよび３２０ＲＰＭ（図２３に示される）での透析濾過について、平均保持液Ｃ／Ｃｏ対供給物Ａのダイアボリュームを計算する。両方の透析濾過条件下で、ＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜は、Ｄ７２５０、Ｄ２０００およびＤ１１０について、同様の平均保持液収率対ダイアボリュームを有する（図２１および２３に示す）。
【０１２６】
図２１は、ＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜が、Ｄ７２５０、Ｄ２０００およびＤ１１０について、ダイアボリュームに対して同様の平均保持液収率を有することを示す。
【０１２７】
図２２は、ＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜が、ダイアボリュームに対してＤ７２５０、Ｄ２０００およびＤ１１０についての同様の平均保持液選択率を有することを示す。
【０１２８】
図２３は、ＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜が、Ｄ７２５０、Ｄ２０００およびＤ１１０について、ダイアボリュームに対して同様の平均保持液収率を有することを示す。両方の膜は、図２１で観察されたよりも、より高い流束およびより低い攪拌で、同様のより低い保持率を有する。
【０１２９】
図２１および２３のＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜の平均保持液選択率を、Ｄ７２５０／Ｄ１１０＝（Ｃ／Ｃｏ）Ｄ７２５０／（Ｃ／Ｃｏ）Ｄ１１０およびＤ２０００／Ｄ１１０＝（Ｃ／Ｃｏ）Ｄ２０００／（Ｃ／Ｃｏ）Ｄ１１０を使用して計算し、（図２２および図２４に示すように）ダイアボリュームに対してプロットする。
【０１３０】
図２４は、ＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜が、Ｄ７２５０／Ｄ１１０およびＤ２０００／Ｄ１１０に対して同様の平均保持液選択率対ダイアボリュームを有することを示す。両方の膜は、図２２で観察されたよりも、より高い流束およびより低い攪拌で、同様のより低い平均保持液選択率を有する。
【０１３１】
平均Ｄ７２５０／Ｄ１１０およびＤ２０００／Ｄ１１０は、６４０ＲＰＭでの３０ＬＭＨおよび３２０ＲＰＭでの６０ＬＭＨの両方で、ＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜の両方について非常に類似している。両方の膜は、より高い流束およびより低い攪拌において、（図２３に示されるように）同様の低い保持率および（図２４に示されるように）選択率を有する。
【０１３２】
［実施例９．一定のＴＭＰでの限外濾過］
一定のＴＭＰならびに供給物Ａ、ＢおよびＣ（表１に要約する）を使用する撹拌の異なる条件においてＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜を比較するために、５つの限外濾過濃縮実験を２回実施する。（図２５、２６、２７に示すように）１つの条件の下での供給物Ａ、（図２８および２９に示すように）２つの条件の下での供給物Ｂ、ならびに（図３０、３１、３２に示すように）２つの条件の下での供給物Ｃ。
【０１３３】
５つのＵＦ濃縮の実行は全て、ＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜が同様の平均収率および選択率を提供する一方で、ＮＦ  ＵＦ膜は全ての供給物および条件についてＵＦ濃縮係数より一貫してより高い平均流束を有することを示す。
【０１３４】
実施例３−２に記載されているように、各条件について膜試料を有する撹拌セルを二重に調製する。流束を決定し、濃縮係数の後をたどるために、経時的な透過液の体積を測定する。上記のように、ＧＰＣ分析のために各濃縮係数で保持液試料を採取して、Ｄ７２５０、Ｄ２０００およびＤ１１０の収率および選択率を決定する。
【０１３５】
０．０３８５および０．８４４％ｗ／ｗの総デキストラン質量パーセント（表２に記載）を有する供給物ＡおよびＢを、最初の５０ｍＬの体積から２、４および８倍に濃縮する。供給物Ａを、一定のＴＭＰ＝０．５ｐｓｉおよび６００ＲＰＭで濃縮する（図２５、２６、２７に示す）。図２５は、ＮＦ  ＵＦ膜が、ＰＥＳ  ＵＦ膜と比較してより高い初期平均供給物流束を有し、２、４および８倍濃縮の実行全体にわたってそれを維持することを示す。図２６は、２、４、８倍の限外濾過濃縮の実行中のＣ／Ｃｔｈｅｏ対濃縮係数としてＤ７２５０、Ｄ２０００およびＤ１１０に対する同様の平均収率および選択率を示す。図２７は、ＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜が同様の平均収率および選択率を有する２、４、８倍（左から右）の限外濾過濃縮の間の平均Ｃ／Ｃｔｈｅｏ対平均流束を示す一方、２、４および８倍の濃縮の実行の間にＮＦ  ＵＦ膜は一貫してより高い平均流束を有することを示す。
【０１３６】
供給物Ｂを（図２８に示すように）５ｐｓｉおよび６００ＲＰＭ、ならびに（図２９に示すように）７ｐｓｉおよび６００ＲＰＭで濃縮する。より低い圧力（図２８対２９を参照）であるが、（図２９に示すように）７ｐｓｉで予想されるようにわずかに高い平均流束でＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＮＦ膜の両方でより良好な収率および選択率が観察される。
【０１３７】
８．４４％ｗ／ｗの総デキストラン質量パーセント（表２に記載）を有する供給物Ｃを、４０ｍＬの初期体積から２倍および３倍に濃縮する。供給物Ｃを（図３０および３１に示すように）５ｐｓｉおよび３００ＲＰＭならびに（図３２に示すように）７ｐｓｉおよび３００ＲＰＭで濃縮する。供給物Ｃの場合、２倍濃縮後、圧力を１２ｐｓｉに上昇させ、ＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜については全ての場合において流束および収率が低下することが観察される。図３０は、５ｐｓｉでＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜の両方について流束の減少を示す。収率および選択率は、ＮＦ  ＵＦおよびＰＥＳ  ＵＦ膜について同様であるが、ＮＦ  ＵＦ膜は、（図３１および３２に示すように）２および３倍濃縮の実行中に一貫してより高い平均流束を有する。
【０１３８】
［実施例１０：ＮＦ  ＵＦ膜を用いた生物学的物質の精製のためにＴＦＦシステム］
代表的な例では、５００ＫＤａより大きい分子量を有する目的の生物学的物質を精製するために、ＮＦ  ＵＦ膜をＴＦＦモードで使用する。そのような生物学的物質の例には、結合型多糖体ワクチン、他の種類のワクチン、ウイルス様粒子、およびＭＷ＞５００，０００ダルトンを有するタンパク質が含まれるが、これらに限定されない。
【０１３９】
ＮＦ  ＵＦ膜を使用して目的の生物学的物質を精製するために使用されるＴＦＦシステムの概略図を図３３に示す。目的の生物学的物質は、供給物保持タンクまたは容器中に存在する。使用される典型的な装置は、追加の緩衝液タンクまたは容器、供給物ポンプ、供給物バルブ、供給物圧力計、ホルダー付きの平板カセットまたは付属品付きのスパイラル型装置等のＮＦ  ＵＦ膜を含むＴＦＦモジュール、保持液圧力計、圧力を制御するための保持液バルブ、および透過液容器である。供給物が限外濾過によって濃縮されている場合、保持液を供給タンクに戻し、透析濾過が行われている場合、別の容器が保持液を集め、透析濾過緩衝液容器が供給物ポンプに配管される。
【０１４０】
本明細書は、本明細書中に引用した参考文献の教示に照らして最も完全に理解され、それらは参照により本明細書に援用される。本明細書の実施形態は、実施形態の例示を提供するものであり、範囲を限定するものとして解釈されるべきではない。当業者（熟練者）は、多くの他の実施形態が本開示に包含されることを容易に認識する。全ての刊行物および参考資料は、その全体が参照により援用される。参照により援用される資料が本明細書と矛盾するか、または食い違う範囲で、本明細書はそのような資料に優先する。本明細書における全ての参考文献の引用は、そのような参考文献が従来技術であることを認めるものではない。
【０１４１】
他に示されない限り、本明細書（特許請求の範囲を含む）で使用される成分の量、細胞培養、処理条件等を表す全ての数字は、全ての場合において「約」という用語によって修飾されると理解されるべきである。別段の支持がない限り、数値パラメータは近似値であり、本明細書に開示された実施形態によって得られることが求められる所望の特性に応じて変化し得る。特に断りのない限り、一連の要素に先行する「少なくとも」という用語は、一連の要素の全てを指すと理解されるべきである。当業者であれば、日常的な実験のみを用いて、本明細書に記載の特定の実施形態に対する多くの均等物を認識するか、または確認することができるであろう。そのような均等物は、添付の特許請求の範囲によって包含されることが意図される。
【０１４２】
当業者には明らかであるように、その精神および範囲から逸脱することなく、本明細書に開示された実施形態の多くの修正および変化を行うことができる。本明細書に記載の特定の実施形態は、単なる例示として提供され、決して限定的であることを意味しない。本明細書および実施例は、例示のみとして考慮され、本開示の真の範囲および精神は、以下の特許請求の範囲によって示されることが意図される。
【図１】
0006786519.tif 000005
【図２】
0006786519.tif 000006
【図３】
0006786519.tif 000007
【図４】
0006786519.tif 000008
【図５】
0006786519.tif 000009
【図６】
0006786519.tif 000010
【図７】
0006786519.tif 000011
【図８】
0006786519.tif 000012
【図９】
0006786519.tif 000013
【図１０】
0006786519.tif 000014
【図１１】
0006786519.tif 000015
【図１２】
0006786519.tif 000016
【図１３】
0006786519.tif 000017
【図１４】
0006786519.tif 000018
【図１５】
0006786519.tif 000019
【図１６】
0006786519.tif 000020
【図１７】
0006786519.tif 000021
【図１８】
0006786519.tif 000022
【図１９】
0006786519.tif 000023
【図２０】
0006786519.tif 000024
【図２１】
0006786519.tif 000025
【図２２】
0006786519.tif 000026
【図２３】
0006786519.tif 000027
【図２４】
0006786519.tif 000028
【図２５】
0006786519.tif 000029
【図２６】
0006786519.tif 000030
【図２７】
0006786519.tif 000031
【図２８】
0006786519.tif 000032
【図２９】
0006786519.tif 000033
【図３０】
0006786519.tif 000034
【図３１】
0006786519.tif 000035
【図３２】
0006786519.tif 000036
【図３３】
0006786519.tif 000037