(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１遺伝子をノックアウトするかまたはその発現量を低減することにより、イネのウンカ抵抗性能を向上させ、遺伝子ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１のヌクレオチド配列が配列番号１または配列番号２に示すとおりであることを特徴とするイネのウンカ抵抗性能を向上させる方法。
【請求項２】
分子育種法または遺伝子工学の方法により、ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１遺伝子をノックアウトするかまたはその発現量を低減することを特徴とする請求項１に記載の方法。
【請求項３】
遺伝子工学の方法はＲＮＡ干渉と遺伝子編集とを含むことを特徴とする請求項２に記載の方法。
【請求項４】
前記ウンカは、トビイロウンカとセジロウンカを含むことを特徴とする請求項１に記載の方法。
【請求項５】
イネのウンカ抵抗性タンパク質の発現量を抑制または低減することにより、イネのウンカ抵抗性能を向上させ、前記イネのウンカ抵抗性タンパク質のアミノ酸配列が配列番号５または配列番号６に示すとおりであることを特徴とするイネのウンカ抵抗性能を向上させる方法。
【請求項６】
前記ウンカは、トビイロウンカとセジロウンカを含むことを特徴とする請求項５に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】  本発明は、分子生物学及び農業の分野に属し、具体的には、イネのウンカに対する虫害感受性遺伝子ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１及びその使用に関する。
【背景技術】
【０００２】
人類がポストゲノム時代に入るに伴い、機能ゲノミクスへの研究を全面的に展開することは、生命科学研究の最前線の分野となっている。イネの遺伝子組換え技術は比較的容易であり、他のイネ科作物ゲノムと共線性を有することから、モード植物とみなされている。現在、イネゲノムの微細構造遺伝子地図及び物理的地図は完成したが、イネの機能遺伝子についてさらに研究することは、社会及び経済の発展、生物学的研究にとって大きな意味がある。
【０００３】
現在、全世界で半分以上の人はイネを主食としている。食糧安全問題は、全世界の人々が迎えている課題である。２０世紀５０、６０年代の矮化育種及び７０年代のハイブリッド育成の二回の科学技術革命により、イネの生産量を大幅に向上させた。しかし、過去数十年以来、大面積のイネは病虫害を被られ、イネ生産が脅かされている。トビイロウンカ（Ｎｉｌａｐａｒｖａｔａ  ｌｕｇｅｎｓ）は、中国のイネ生産における主な害虫であり、成虫と幼虫は、口針でイネの汁液を吸い上げ、黄葉や枯死を起こし、減産や無収穫をもたらす。中国農業年刊によると、トビイロウンカ虫害は１９６６、１９６９、１９７３、１９７７、１９８３、及び２００３年に全国的に大規模発生し、１９８７、１９９１、２００５、２００６及び２００７年に全国的に特大規模発生したことがあり、危害された面積は総じたイネ面積の５０％以上となり、中国のイネ生産に重大な損失を及ぼした。
【０００４】
現在、トビイロウンカは中国のイネ生産における第一の虫害となっており、中国の食糧安全を大きく脅かしている。長い間、トビイロウンカの防除は主に化学殺虫剤の投与に依存している。トビイロウンカの爆発はほとんど、イネの登熟期であり、この時期のイネが勢いよく成長しているため、殺虫剤をイネの根元に施用するのは非常に操作しにくい。また、数年間にわたって大量の化学殺虫剤を投与してきたため、トビイロウンカの薬剤耐性が倍と向上し、薬剤による防除効果は望ましくない。同時に、化学殺虫剤を用いてトビイロウンカを防除すると、農民の生産コストを増加させるだけでなく、対象としていない生物の毒殺、環境や食糧への汚染などの環境や生態的問題をもたらす。
【０００５】
トビイロウンカ抵抗性遺伝子を利用して虫害抵抗性イネ品種を育成することが、トビイロウンカの総合的防除における最も経済的かつ効果的な方法である。国際稲研究所（ＩＲＲＩ）の研究結果と東南アジアのイネ生産実践により、中等抵抗性レベルのみのイネ品種でも、トビイロウンカ群体を災害をもたらすほどではないように調整することに十分であり、イネの実質的な危害や産量の損失に至らないように済ませることが証明された。したがって、イネのトビイロウンカ抵抗性遺伝子について掘り起こしてイネ育種プロジェクトに適用することは、イネのトビイロウンカを防除する根本的な措置である。
【０００６】
２０世紀６０年代から、トビイロウンカ抵抗性遺伝と育種研究は開始されたが、新規なバイオタイプ（または新規な加害型）の出現に伴い、虫害抵抗性品種は寿命の短縮、抵抗性の無効化というリスクに直面している。例えば、国際稲研究所は１９７３年にＢｐｈ１遺伝子を持つ品種ＩＲ２６を作り出したが、二、三年たった後、加害できるバイオタイプ２が現れ、１９７７〜１９７８年にＢｐｈ２抵抗性遺伝子を持つ品種ＩＲ３６及びＩＲ４２を作り出したが、１９８２年にトビイロウンカの新規な生物型が次々と現れ、やむを得ず１９８３年に新たな抵抗性品種ＩＲ５６及びＩＲ６４を育成した。また、以前では一般に高抵抗性イネ品種の多くは、抵抗性レベルが、既に中抵抗性のレベル、ないし虫害感受性レベルに低下した。
【０００７】
トビイロウンカの他に、イネに危害を加えるウンカのよく見られる種類として、セジロウンカ（Ｓｏｇａｔｅｌｌａ  ｆｕｒｃｉｆｅｒａ）と、ヒメトビウンカ（Ｌａｏｄｅｌｐｈａｘ  ｓｔｒｉａｔｅｌｌｕｓ）があり、トビイロウンカは長距離を移動する習性を持ち、現在、中国や数多くのアジア国ではイネにとって最も主要な害虫である。セジロウンカは全国の全ての稲作地帯においていずれも発生している。セジロウンカは直接刺して吸汁する以外、イネウイルス病の主な伝播媒体となっている。従来技術で開発されたいくつかの抵抗性イネ品種は、主にトビイロウンカに対して抵抗性を持っているが、セジロウンカに対する抵抗性が不明であるかまたは抵抗性がなく、これらの抵抗性イネ品種の適用範囲に影響している。
そのため、抗原材料を続いて深く選抜し研究し、新たな抵抗性遺伝子の探し、その関連する遺伝子マッピングとクローニングを行い、広範な地域で適用可能な、高抵抗性遺伝子材料を持つ新たなイネ品種を開発することは、非常に大きな意味がある。
【発明の概要】
【０００８】  本発明は、イネのウンカに対する虫害感受性遺伝子ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１及びその使用を提供することを目的とする。
【０００９】
本発明に用いられる技術的解決手段は以下のとおりである。
【００１０】  イネのウンカに対する虫害感受性遺伝子ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１であって、そのヌクレオチド配列はＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１若しくはＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：２に示すとおりであり、または、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１若しくはＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：２とは少なくとも９０％以上同じである相同配列である。
【００１１】  イネのウンカに対する虫害感受性遺伝子ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１のｃＤＮＡであって、配列はＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：３若しくはＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：４に示すとおりであり、または、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：３若しくはＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：４とは少なくとも９０％以上同じである相同配列である。
【００１２】
イネのウンカ抵抗性調整タンパク質であって、そのアミノ酸配列はＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：５またはＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：６に示すとおりである。
【００１３】
上記イネのウンカ抵抗性調整タンパク質をコードするヌクレオチド配列である。
【００１４】
好ましくは，該ヌクレオチド配列は、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ１〜４、または配列ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１〜４が１つまたは複数のヌクレオチドを置換、欠失または追加されて、同一のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列から選択される。
【００１５】  イネのウンカに対する虫害感受性遺伝子ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１の、ウンカ抵抗性イネの育成における使用であって、前記遺伝子ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１のヌクレオチド配列は、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：２、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１または／およびＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：２とは少なくとも９０％以上同じである相同配列、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：３、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：４、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：３または／およびＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：４とは少なくとも９０％以上同じである相同配列から選択される。
【００１６】  前記イネのウンカに対する虫害感受性遺伝子ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１は、インディカイネ（Ｏｒｙｚａ  ｓａｔｉｖａ  Ｉｎｄｉｃａ）ゲノムの第４染色体２，５０７，７７５〜２，５１０，３１６という位置にマッピングされ、全長は２５４２ｂｐである。
【００１７】
好ましくは、前記ウンカは、トビイロウンカとセジロウンカを含む。
【００１８】
イネのウンカ抵抗性能を向上させる方法であって、上記ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１遺伝子をノックアウトするかまたはその発現量を低減することにより、イネのウンカ抵抗性能を向上させる。
【００１９】  前記ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１遺伝子は、イネのウンカに対する虫害感受性遺伝子であり、そのヌクレオチド配列がＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１、またはＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：２に示すとおりであり、インディカイネ（Ｏｒｙｚａ  ｓａｔｉｖａ  Ｉｎｄｉｃａ）ゲノムの第４染色体２，５０７，７７５〜２，５１０，３１６という位置にマッピングされ、全長は２５４２ｂｐである。
【００２０】
好ましくは、分子育種法または遺伝子工学の方法により、ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１遺伝子をノックアウトするかまたはその発現量を低減する。
【００２１】
好ましくは、遺伝子工学の方法はＲＮＡ干渉と遺伝子編集とを含む。
【００２２】
好ましくは、前記ウンカは、トビイロウンカとセジロウンカを含む。
【００２３】
本発明の有益な効果は以下のとおりである。
【００２４】  本発明の出願人は、トビイロウンカに対して安定した抵抗性を持つイネ品種ＢＧ１２２２と、虫害感受性イネ品種ＴＮ１とを研究することにより、イネのウンカに対する虫害感受性遺伝子を見つけ、かつシークエンシングを行い、ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１と命名した。虫害抵抗性品種は虫害感受性品種とを比較すると、ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１の遺伝子発現量に有意な差が存在する。虫害抵抗性品種ＢＧ１２２２において、ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１の発現量が、虫害感受性イネ品種ＴＮ１での発現量よりも数百倍以上低い。トビイロウンカの吸食の有無にかかわらず、ＢＧ１２２２におけるＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１の発現量は、いずれもＴＮ１での発現量よりも大幅に低い。以前発見したウンカ抵抗性遺伝子は、発現または高い発現があれば虫害抵抗性を持つようになるが、本発明におけるイネのウンカに対する虫害感受性遺伝子ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１は、ＢＧ１２２２において極低発現でありまたは発現しない（遺伝子ノックアウト）場合に優れた虫害抵抗性を持つ。
【００２５】
交雑Ｆ２後代の検証により、ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１の発現量がイネの虫害抵抗性とは負の相関（発現量が低いほど虫害抵抗性が高い）関係であることが示されている。後代における虫害抵抗性が高いほど、その抵抗性スコア値（Ｇｒａｄｅ）が小さく、対応するＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１の発現量が低い。
【００２６】  遺伝子編集技術によりＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１遺伝子をノックアウト（ｋｎｏｃｋｏｕｔ）して、ＴＮ１においてＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１遺伝子が全然発現しないようにすることにより、虫害感受性イネ品種ＴＮ１にはイネ品種ＢＧ１２２２と同様の虫害抵抗性が得られる。トビイロウンカとセジロウンカに対して、高い抵抗性レベルを示す。なお、ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１遺伝子がノックアウトされる前に、虫害感受性イネ品種ＴＮ１の虫害抵抗性レベルが９であるが、ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１遺伝子がノックアウトされた後、その抵抗性レベルが０〜１（高抵抗性レベル）まで顕著に向上した。出願人は、従来の抵抗性品種について検定を行ったところ、それらの虫害抵抗性が深刻に喪失したことを発見した。現在、Ｍｕｄｇｏ（Ｂｐｈ１を持つ）の平均抵抗性レベルは５．４であり、ＡＳＤ７（Ｂｐｈ２を持つ）の平均抵抗性レベルは８．８９であり、Ｒａｔｈｕ  Ｈｅｅｎａｔｉ（Ｂｐｈ３を持つ）の平均抵抗性レベルは４．６１であり、Ｂａｂａｗｅｅ（Ｂｐｈ４を持つ）の平均抵抗性レベルは８．１４であり、虫害抵抗性品種ＢＧ１２２２の平均抵抗性レベルは１．０７である。比較から分かるように、本発明に開示するイネのウンカに対する虫害感受性遺伝子ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１は、イネの育種及びイネのウンカ抵抗性を向上させる使用において大きな意味がある。
【００２７】  本発明のイネのウンカに対する虫害感受性遺伝子ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１はイネの育種に使用することができる。分子育種法または遺伝子工学の方法で、このタンパク質コード遺伝子をノックアウトするかまたはその発現量を低減することにより、虫害感受性株に高い虫害抵抗性能を備えさせ、高いウンカ抵抗性（トビイロウンカ及びセジロウンカ抵抗性）植物を育成することができる。したがって、本発明に係る遺伝子及びそのコードしたタンパク質は、植物の遺伝的改良に使用することができる。
【００２８】  本発明のイネのウンカに対する虫害感受性遺伝子ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１は、トビイロウンカとセジロウンカに対して同様に効果的であるが、ヒメトビウンカに対する虫害抵抗性については研究している。トビイロウンカが長距離を移動する習性を持つため、現在、中国や数多くのアジア国ではイネにとって最も主要な害虫であるが、北緯２５度より北の稲作地帯で越冬できない。セジロウンカは全国の全ての稲作地帯に出現している（中国の南の海南島から、北の黒竜江省までの各稲作地帯、東南アジア各国にいずれも分布している）。したがって、本技術を用いて育種したイネはイネ栽培地域の各地に広範に普及させることができ、非常に高い経済的価値と優れた生態的効果を有する。
【図面の簡単な説明】
【００２９】
【図１】図１はトビイロウンカに吸汁された後のイネ品種ＢＧ１２２２及びＴＮ１におけるＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１の発現量の時間にそった変化である。
【図２】図２は交雑Ｆ２後代におけるＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１の発現量とイネの虫害抵抗性スコア値との関係である。
【発明を実施するための形態】
【００３０】
トビイロウンカはイネ生産を害する主な害虫であり、近年、トビイロウンカのバイオタイプの変異、薬剤耐性の発生等の原因により、トビイロウンカ災害が日増しに深刻になっている。生産実践により、抵抗性品種を利用することが最も経済的、安全的かつ有効な施策と証明された。「標準セルトレイによる検定法」に準拠して、ＢＧ１２２２に対して、数年間にわたって幼苗期虫害抵抗性レベル検出を行ったところ、トビイロウンカに対して安定した高抵抗性を持つことから、育種において高い利用価値を有することを見出した。しかしながら、ＢＧ１２２２はトビイロウンカに対してどのような重要な遺伝子が虫害抵抗性表現に関連するかについて、全世界では今まで関連する文献がまだない。ＴＮ１は、虫害抵抗性遺伝子をいずれ含まない虫害感受性イネ品種と国際的に認められている。
【００３１】
トビイロウンカの他に、イネに危害を加えるウンカのよく見られる種類として、セジロウンカと、ヒメトビウンカがあり、中国の南方は主にトビイロウンカ及びセジロウンカによる危害である。セジロウンカは直接刺して吸汁する以外、イネウイルス病の主な伝播媒体となっている。ＢＧ１２２２はセジロウンカに対しても一定の抵抗性を持ち、ＢＧ１２２２のセジロウンカに対する抵抗性についても、発明者が幼苗期抵抗性レベル検出により確認したが、文献には報告していない。
【００３２】  本発明の出願人は、トビイロウンカ及びセジロウンカに対して安定した抵抗性を持つイネ品種ＢＧ１２２２と、虫害感受性イネ品種ＴＮ１とを研究すること、イネのウンカに対する虫害感受性遺伝子を見つけ、ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１と命名した。虫害抵抗性品種は虫害感受性品種とを比較すると、ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１の遺伝子発現量に有意な差が存在する。虫害抵抗性品種ＢＧ１２２２において、ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１の発現量が、虫害感受性イネ品種ＴＮ１での発現量よりも数百倍以上低い。トビイロウンカの吸汁の有無にかかわらず、ＢＧ１２２２におけるＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１の発現量は、いずれもＴＮ１での発現量よりも大幅に低い。交雑Ｆ２後代の検証により、ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１の発現量がイネの虫害抵抗性とは負の相関（発現量が低いほど虫害抵抗性が高い）関係であることが示されている。後代における虫害抵抗性が高いほど、その抵抗性スコア値（Ｇｒａｄｅ）が小さく、対応するＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１の発現量が低い。遺伝子編集技術によりＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１遺伝子をノックアウトすることにより、虫害感受性イネ品種ＴＮ１にはイネ品種ＢＧ１２２２と同様の虫害抵抗性が得られる。
【００３３】
以下、具体的な実施例を参照しながら本発明をさらに説明するが、これに限定されるものではない。
【００３４】
実施例１  虫害抵抗性品種と虫害感受性品種とを比較すると、ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１の遺伝子発現量に有意な差が存在する
【００３５】
一、イネのＴｏｔａｌ  ＲＮＡの抽出
１）イネ試料の粉砕：極低温で凍結したイネサンプルを秤量した後、液体窒素で予備冷却した乳鉢に速やかに移し、乳棒で組織を粉砕し、その間に液体窒素を添加し続けて、粉末状に粉砕したら停止する。乳鉢に試料ホモジネート量に合わせた適量のＲＮＡｉｓｏ  Ｐｌｕｓを添加することができる。新鮮な組織試料の場合、直ちにＲＮＡｉｓｏ  Ｐｌｕｓを添加し、十分にホモジネートする。液体ホモジネートを遠心管に移し、室温（１５〜３０℃）で５分間静置する。１２０００ｇ  ４℃で５分間遠心する。上澄液を注意深く吸い取って、新しい遠心管に移す。
【００３６】
２）Ｔｏｔａｌ  ＲＮＡの抽出：上記ホモジネート溶解液にクロロホルム（ＲＮＡｉｓｏ  Ｐｌｕｓの１／５体積量）を添加し、遠心管の蓋を密に閉め、溶液が乳化して乳白色になるまで混合する。室温で５分間静置する。１２，０００ｇ  ４℃で１５分間遠心する。遠心機から遠心管を慎重に取り出し、この時、ホモジネートが３層に分けられている。すなわち、無色の上澄液（ＲＮＡを含む）、中間の白色タンパク質層（大部分はＤＮＡ）及び色付きの下層有機相である。上澄液を吸い取って別の遠心管に移す（白色の中間層を吸い出してはいけない）。上澄液にＲＮＡｉｓｏ  Ｐｌｕｓ体積の０．５〜１倍のイソプロパノールを添加し、遠心管を上下反転させて十分に均一に混合させた後、室温で１０分間静置する。１２０００ｇ  ４℃で１０分間遠心する。一般に、遠心した後、試験管の底部にＲＮＡ沈殿が生じる。
【００３７】
３）ＲＮＡ沈殿の洗浄：少量のイソプロピルアルコールを残してもよいが、沈殿に触れないように、注意深く上澄液を取り捨てる。ＲＮＡｉｓｏ  Ｐｌｕｓと同量の７５  ％エタノールを添加し、軽く上下反転させ遠沈管の管壁を洗浄し、７，５００ｇ  ４℃で５分間遠心した後、沈殿に触れないように、注意深く上澄液を取り捨てる。
【００３８】
４）ＲＮＡの溶解：遠心管蓋を開け、沈殿を室温で数分間乾燥させる。沈殿乾燥後、適量のＲＮａｓｅ−ｆｒｅｅ水を添加して沈殿を溶解させる。
【００３９】
二、ゲノム除去
ＲＮａｓｅ−ｆｒｅｅのＤＮａｓｅ  Ｉを用いて、以下のように反応液を調製する。
【表１】
0006770654.tif 000002
３７℃で３０ｍｉｎ消化し、６５℃で１０  ｍｉｎ不活化する。
次に以下のステップにしたがって操作する。
１）等体積のフェノールを添加し、上下反転させ均一に混合させた後、１０，０００ｒｐｍで５ｍｉｎ遠心し、上澄液を取り捨て、
２）等体積のクロロホルムを添加し、上下反転させ均一に混合させた後、１０，０００ｒｐｍで１０ｍｉｎ遠心し、上澄液を取り捨て、
３）等体積のイソプロパノールを添加し、緩和に十分に均一に混合させ、−２０℃で１５  ｍｉｎ静置し、
４）４℃で１０，０００ｇ １０ｍｉｎ遠心し、ＲＮＡ沈殿を採取し、上澄液を取り捨て、
５）７５％のエタノールで２回洗浄し、クリーンベンチで風乾し、
６）１０μｌのＤＥＰＣ処理水を添加して沈殿を溶解させる。
【００４０】
三、純度検出及び電気泳動測定
純度測定：２μｌのＲＮＡ試料を６０倍希釈し、微量分光光度計でＯＤ値を測定し、ＯＤ２６０／ＯＤ２８０の比が１．８を超えていれば、調製したＲＮＡが純粋であり、タンパク質汚染がないことを示す。
【００４１】
四、逆転写
以下の成分に応じてＲＴ反応液を調製する（反応液の調製は氷上で行ってください）。
【表２】
0006770654.tif 000003
＊は反応系が需要に応じて対応的に増幅できることを示し、１０μｌの反応系は最大５００ｎｇのＴｏｔａｌ  ＲＮＡを使用することができる。
上記１０μｌの反応溶液をＴａＫａＲａ−ＴＰ６００  ＰＣＲ機器において、３７℃で１５ｍｉｎ、８５℃で５ｓｅｃ反応させ、４℃で保温した後、−２０℃で保存して使用に備える。
【００４２】
五、定量
以下のプライマーを用いて、ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１の遺伝子発現量について分析を行い、その塩基配列は以下の通りである。
ＲＥ−ｆ：ＴＣＣＡＧＡＧＣＡＧＧＡＡＡＣＡＡＧＧＡＣ（ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：７）、
ＲＥ−ｒ：ＧＣＣＴＡＣＧＣＣＡＧＣＡＣＡＴＧＡＡＡ（ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：８）。
１）反応系：
【表３】
0006770654.tif 000004
２）Ｒｅａｌ  Ｔｉｍｅ反応を行う：
ＣＦＸ９６Ｒｅａｌ−Ｔｉｍｅ（Ｂｉｏ−Ｒａｄ）ＰＣＲ機器で、９５℃で３０ｓｅｃ、９５℃で５ｓｅｃ、６０℃で３０ｓｅｃ反応させ、４０サイクル繰り返す。融解曲線解析：温度は６０℃〜９５℃である。
【００４３】
結果は図１に示す。
図１は、トビイロウンカに吸汁された後のイネ品種ＢＧ１２２２及びＴＮ１におけるＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１の発現量の時間にそった変化である。
【００４４】
図１に示す結果のように、虫害抵抗性品種と虫害感受性品種とを比較すると、ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１の遺伝子発現量に有意な差が存在する。虫害抵抗性品種ＢＧ１２２２において、ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１の発現量が、虫害感受性イネ品種ＴＮ１での発現量よりも数百倍、ないし数千倍以上低い。トビイロウンカの吸汁の有無（異なる時間吸汁された）にかかわらず、ＢＧ１２２２におけるＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１の発現量は、いずれもＴＮ１での発現量よりも大幅に低い。
【００４５】
実施例２  ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１の遺伝子のクローニング及びポリペプチドの解析
虫害抵抗性品種ＢＧ１２２２と虫害感受性品種ＴＮ１のＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１遺伝子に対して、それぞれクローニング、シークエンシング及び解析を行った。
【００４６】
そのうち、虫害抵抗性品種ＢＧ１２２２におけるＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１遺伝子のヌクレオチド配列は、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１に示すとおりであり（エクソン及びイントロンを含む）、虫害感受性品種ＴＮ１におけるＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１遺伝子のヌクレオチド配列は、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：２に示すとおりであり（エクソンとイントロンを含む）、両者は、数箇所でヌクレオチドの区別がある。
【００４７】
そのうち、虫害抵抗性品種ＢＧ１２２２におけるＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１遺伝子のｃＤＮＡ配列は、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：３に示すとおりであり、虫害感受性品種ＴＮ１におけるＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１遺伝子のｃＤＮＡ配列は、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：４に示すとおりである。
【００４８】
そのうち、虫害抵抗性品種ＢＧ１２２２におけるＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１遺伝子のコードタンパク質は、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：５に示すとおりであり、虫害感受性品種ＴＮ１におけるＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１遺伝子のコードタンパク質は、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：６に示すとおりであり、両者は、合計１６箇所でアミノ酸の区別がある。
【００４９】
実施例３  虫害抵抗性品種と虫害感受性品種との交雑Ｆ２世代
ＢＧ１２２２とＴＮ１との交雑によりＦ２後代集団を作製し、ここで、Ｆ２後代集団のサンプルｎ＝５１２とした。その中から抵抗性スコア値が異なる６０個の個体を選択して測定し、異なる抵抗性レベル及び表現型のＦ２後代個体に対して、それぞれそのＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１の発現量を測定し、ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１の発現量とイネの虫害抵抗性表現型との相関性を決定した。
【００５０】
結果は図２に示す。
図２は、交雑Ｆ２後代におけるＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１の発現量とイネの虫害抵抗性スコア値との関係である。
【００５１】
図２に示す結果のように、交雑Ｆ２後代におけるＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１の発現量は、イネの虫害抵抗性とは負の相関（発現量が低いほど虫害抵抗性が高い）関係である。後代における虫害抵抗性が高いほど、その抵抗性スコア値（Ｇｒａｄｅ）が小さく、対応するＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１の発現量が低い。
【００５２】
実施例４  遺伝子ノックアウト試験
遺伝子編集技術を利用して、遺伝子ノックアウト試験（ｋｎｏｃｋｏｕｔ）でＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１遺伝子をノックアウトすることにより、虫害感受性イネ品種ＴＮ１にはイネ品種ＢＧ１２２２と同様の虫害抵抗性が得られる。
【００５３】
一、イネ遺伝子ノックアウトのベクターの構築
ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１遺伝子ｃＤＮＡ配列から、その先端の配列を標的配列として選択し、ｇＲＮＡ（ｇｕｉｄｅ  ＲＮＡ）配列を設計し合成する（配列は以下のとおりであるが、標的配列と対応するｇＲＮＡ配列はこの配列に限定されない）。ｇＲＮＡ配列断片を、ハイグロマイシン抵抗性マーカーを含むｐＢＷＡ（Ｖ）Ｈベクター（武漢伯遠公司）に組み込む。このＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ９ゲノムでベクターシステムを編集し、標的配列のうちの１つの塩基を変異させる（１つの塩基を、標的配列から削除するかまたは標的配列に添加する）。ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１遺伝子ｃＤＮＡ配列にフレームシフト変異を発生させて、その発現する産物が元のアミノ酸産物ではなくなるようにし、ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１遺伝子をノックアウトするという目的を達成する。
【００５４】
ｇＲＮＡ配列：５′−ＣＡＴＣＴＣＴＣＡＧＴＧＣＡＣＧＧＣＴ−３′（ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：９）、
標的配列：５′−ＡＣＡＴＣＴＣＴＣＡＧＴＧＣＡＣＧＧＣＴＧＧＧ−３′（ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１０）。
【００５５】
二、遺伝形質転換によりイネの遺伝子ノックアウト株を取得する。
１）虫害感受性イネＴＮ１の成熟胚を材料としてカルスを誘導する：培養したアグロバクテリウム（ＥＨＡ１０５）菌液を遠心管に入れ、遠心して上澄液を取り捨て、アグロバクテリウム懸濁液に調製し、一定の大きさに成長したカルスを選出し、アグロバクテリウム懸濁液に入れて感染させ、カルスを共存培地に置く。
【００５６】
２）選抜：カルスを取り出し、乾燥したカルスを選抜培地に移して一回目の選抜を行い、抵抗性カルスが成長している初期カルスを新たな培地に移し、２回目の選抜を行う。
【００５７】
３）耐性カルスの誘導分化及び発根：抵抗性カルスを選抜し、分化培地を入れたシャーレに移し、開口をフィルムで封じて、恒温培養室に入れて苗の分化して苗になるのを待つ。株が１ｃｍ程度に成長した時に、発根培地に移して健苗に育成する。
【００５８】
４）ハイグロマイシン（Ｈｙｇ）抵抗性遺伝子のＰＣＲ検出：ハイグロマイシン抵抗性遺伝子特異的プライマーを用いて、従来のＰＣＲ法により、イネの株に当該遺伝子を含有するか否かを増幅して検出する。含有すれば、形質転換陽性株である。
【００５９】
耐性遺伝子特異的プライマー：
Ｈｙｇ−ｆ：５′−ＡＣＧＧＴＧＴＣＧＴＣＣＡＴＣＡＣＡＧＴＴＴＧＣＣ−３′（ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１１）、
Ｈｙｇ−ｒ：５′−ＴＴＣＣＧＧＡＡＧＴＧＣＴＴＧＡＣＡＴＴＧＧＧＡ−３′（ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１２）。
【００６０】
５）陽性株の遺伝子ノックアウトの測定：標的の近傍に検出プライマーを設計してＰＣＲを行い、その後にシークエンシングし、遺伝子ノックアウト状況（成功裏にノックアウトしたホモ接合苗が得られたか否か）を測定する。虫害感受性イネＴＮ１のＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１遺伝子を成功裏にノックアウトしたホモ接合苗を取得する。
【００６１】
三、イネ遺伝子ノックアウト苗の虫害抵抗性検定
虫害感受性イネＴＮ１のＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１遺伝子をノックアウトしたホモ接合苗に対して、幼苗期虫害抵抗性を検定する。
【００６２】
検定した結果、虫害感受性品種ＴＮ１の苗死亡率は１００％であり、ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１遺伝子をノックアウトしたホモ接合苗の死亡率は０％であり、そしてその抵抗性レベルは０〜１（高抵抗性レベル）となった。
【００６３】
遺伝子ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１の発現量がイネの虫害抵抗性とは負の相関（発現量が低いほど抗虫性が高い）関係であり、遺伝子ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１がイネのウンカ抵抗性に関連する重要な遺伝子であることが検証された。
【００６４】
実施例５  ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１と従来のトビイロウンカ抵抗性遺伝子との効果の比較
本発明は、虫害感受性イネ品種ＴＮ１（抵抗性レベル９）のＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１遺伝子をノックアウトした後、その抵抗性レベルが０〜１（高抵抗性レベル）まで顕著に向上し、虫害抵抗性品種ＢＧ１２２２の抵抗性（抵抗性レバルが１．０７）と相当するか、またはそれよりもましになった。
【００６５】
出願人は、従来の抵抗性品種について検定を行ったところ、それらの虫害抵抗性が深刻に喪失したことを発見した。現在、Ｍｕｄｇｏ（Ｂｐｈ１を持つ）の平均抵抗性レベルは５．４であり、ＡＳＤ７（Ｂｐｈ２を持つ）の平均抵抗性レベルは８．８９であり、Ｒａｔｈｕ  Ｈｅｅｎａｔｉ（Ｂｐｈ３を持つ）の平均抵抗性レベルは４．６１であり、Ｂａｂａｗｅｅ（Ｂｐｈ４を持つ）の平均抵抗性レベルは８．１４であり、虫害抵抗性品種ＢＧ１２２２の平均抵抗性レベルは１．０７である。
【００６６】
比較して分かるように、本発明のイネのウンカ抵抗性遺伝子ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１は、イネの育種に使用する将来性がある。分子育種法または遺伝子工学の方法で、このタンパク質コード遺伝子をノックアウトするかまたはその発現量を低減することにより、虫害感受性株に高い虫害抵抗性能を備えさせ、高いウンカ抵抗性（トビイロウンカ及びセジロウンカ抵抗性）イネを育成することができる。
【００６７】
実施例６  ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１のセジロウンカ抵抗性の効果
本発明は、虫害感受性イネ品種ＴＮ１（抵抗性レベル９）のＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１遺伝子をノックアウトした後、幼苗期検定の方法により、そのセジロウンカに対する抵抗性レベルを検定する。
【００６８】
その結果、虫害感受性品種ＴＮ１の苗死亡率は１００％であり、ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１遺伝子をノックアウトしたホモ接合苗の死亡率は０％であり、そしてその抵抗性レベルは０〜１（高抵抗性レベル）となった。
【００６９】  したがって、本発明のイネのウンカに対する虫害感受性遺伝子ＢＧＩＯＳＧＡ０１５６５１をセジロウンカ抵抗性品種の育種に使用すれば、優れた効果を有する。
【００７０】
上記した実施例は本発明の好ましい実施形態であるが、本発明の実施形態は上記した実施例に限定されるものではなく、本発明の趣旨を逸脱しない範囲内でなされた変更、修飾、置換、組み合わせ、簡略化は、いずれも等価物であり、本発明の保護される範囲に含まれる。
【図１】
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【図２】
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【配列表】
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