(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
生体試料を吸引して保持する本体と、
当該本体の先端部に着脱自在に取り付けられるディスポーサブル部と、
を備える標的細胞捕捉装置であって、
当該ディスポーサブル部は、
先端に生体試料導入部となる開口が設けられ、
当該本体との連結側に着脱自在に取り付けられる標的細胞捕捉フィルターを備え、
当該標的細胞捕捉フィルターは、
（ｉ）元素周期表第１０族元素、第１１族元素及びこれらの組み合わせから選択される元素を含む担持層と、
（ｉｉ）当該担持層上に設けられている自己組織化単分子膜と、
（ｉｉｉ）当該担持層上に直接、又は当該自己組織化単分子膜を介して設けられており、標的細胞と特異的に結合するアプタマー又は抗体と、
を備え、
当該担持層は、当該アプタマー又は抗体と結合しない大きな寸法の細胞も小さな寸法の細胞も共に通過させる粗大孔を有する、標的細胞捕捉装置。
【請求項２】
前記自己組織化単分子膜は、一方の末端基が前記担持層を構成する元素と結合しており、前記担持層に結合していない側の末端基の少なくとも一部は、前記アプタマー又は抗体と結合している、請求項１に記載の標的細胞捕捉装置。
【請求項３】
前記自己組織化単分子膜の担持層に結合していない側の末端基のうち前記アプタマー又は抗体が結合していない末端基の全部又は一部はキャップされている、請求項１又は２に記載の標的細胞捕捉装置。
【請求項４】
前記担持層は、金、白金、銀、パラジウム、銅及びこれらの組み合わせからなる群から選択される元素を含む、請求項１〜３のいずれか１に記載の標的細胞捕捉装置。
【請求項５】
前記自己組織化単分子膜は、一方の末端にチオール基を含み、他方の末端にカルボキシル基、ヒドロキシル基、アミノ基又はＮ−ヒドロキシスクシンイミド基を含む、請求項１〜４のいずれか１に記載の標的細胞捕捉装置。
【請求項６】
前記アプタマー及び／又は前記自己組織化単分子膜は、チオール結合により前記担持層を構成する元素と結合している、請求項１〜５のいずれか１に記載の標的細胞捕捉装置。
【請求項７】
前記アプタマーは、アミド結合により前記自己組織化単分子膜と結合している、請求項１〜６のいずれか１に記載の標的細胞捕捉装置。
【請求項８】
前記自己組織化単分子膜の担持層に結合していない側の末端基のうち前記アプタマー又は抗体が結合していない末端基の全部又は一部は、メトキシ基、カルバモイル基、メチルカルバモイル基、ヒドロキシル基から選択される基でキャップされている、請求項１〜７のいずれか１に記載の標的細胞捕捉装置。
【請求項９】
前記自己組織化単分子膜の担持層に結合していない側の末端基であって、前記アプタマー又は抗体が結合していない末端基は、ヒドロキシル基、カルボキシル基、又はアミノ基である、請求項１〜８のいずれか１に記載の標的細胞捕捉装置。
【請求項１０】
前記標的細胞は血中循環腫瘍細胞（Ｃｉｒｃｕｌａｔｉｎｇ  Ｔｕｍｏｒ  Ｃｅｌｌ：ＣＴＣ）である、請求項１〜８のいずれか１に記載の標的細胞捕捉装置。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、標的細胞を特異的に捕捉する装置（以下「標的細胞捕捉装置」と称す。）に関し、特に腫瘍細胞を特異的に捕捉する装置（以下「腫瘍細胞捕捉装置」と称す。）に関する。
【背景技術】
【０００２】
癌疾患特定に用いられる代表的な手法として腫瘍マーカーを用いる生検が一般的であるが、腫瘍は単クローン性の細胞の集合体ではなく、異なるプロファイルを持った細胞で構成されているため、細胞を採取する場所の違いで判定に異なる結果が生じるなどの問題点が指摘されている。進行癌では、腫瘍細胞が原発腫瘍細胞組織から剥離し、血液やリンパ液の流れに乗り、体内の別の臓器に移動することで癌転移が起こっていると考えられている。血流に乗って体内を循環する腫瘍細胞である血中循環腫瘍細胞（Circulating Tumor Cell：ＣＴＣ）の単位血液量（体積）当たりのＣＴＣの個数が癌病態に対して高い相関を示すことが確認されているが、１ｍＬの血液中にわずか数個〜１０個程度のＣＴＣが含まれているに過ぎず、一方血液細胞は１０億個も存在しているため、ＣＴＣの検出が極めて困難である。これまで提案されているＣＴＣの検出方法は、細胞サイズの差を利用するフィルター（たとえば特許文献１及び２、非特許文献１）や誘電泳動特性の差を利用するマイクロ流体デバイス（たとえば非特許文献２）などで分離した後に捕捉する方法、アビジン修飾プレートにビオチン修飾核酸アプタマーを固定化したプレートリーダーで捕捉する方法などが提案されている。しかし、フィルターは標的細胞以外の血球細胞やタンパク質成分などによる目詰まりを起こしやすく、前処理が必要になり、マイクロ流体デバイスは分離しながら捕捉するまでに長時間を要し、プレートリーダーは検出装置が限定されるなどの問題があり、標的細胞のみを簡便に短時間でかつ効率よく捕捉する手法が望まれている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００３】
【特許文献１】特開2015-30881号公報
【特許文献２】特開2014-83000号公報
【非特許文献】
【０００４】
【非特許文献１】"Development of a New Rapid Isolation Device for Circulating Tumor Cells (CTCs) Using 3D Palladium Filter and Its Application for Genetic Analysis", PLOS ONE, Vol. 9, Issue 2, e88821
【非特許文献２】「誘電泳動を利用した血中希少がん細胞の検出・解析システムの開発」東ソー研究・技術報告  第58巻（2014）
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
本発明は、血液などの生体試料中に含まれる標的細胞を簡便に短時間で且つ効率よく分離捕捉するための装置を提供することを目的とする。特に、従来の微細孔フィルターの目詰まり等の欠点を解消し、微量乃至大量の生体試料を扱うことのできる標的細胞捕捉装置を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
本発明者らは、上記課題を解決するべく鋭意研究した結果、（ｉ）元素周期表第１０族元素、第１１族元素及びこれらの組み合わせから選択される元素を含む担持層と、（ｉｉ）当該担持層上に設けられている自己組織化単分子膜と、（ｉｉｉ）当該担持層上に直接、又は当該自己組織化単分子膜を介して設けられており、標的細胞と特異的に結合するアプタマー又は抗体と、を備える標的細胞捕捉フィルターを用いることで、フィルターの孔径に左右されずに、標的細胞のみを捕捉し得ることを知見し、本発明を完成するに至った。
【０００７】
本発明の具体的態様は以下を含む。
［１］生体試料を吸引して保持する本体と、
当該本体の先端部に着脱自在に取り付けられるディスポーサブル部と、
を備える標的細胞捕捉装置であって、
当該ディスポーサブル部は、
先端に生体試料導入部となる開口が設けられ、
当該本体との連結側に着脱自在に取り付けられる標的細胞捕捉フィルターを備え、
当該標的細胞捕捉フィルターは、
（ｉ）元素周期表第１０族元素、第１１族元素及びこれらの組み合わせから選択される元素を含む担持層と、
（ｉｉ）当該担持層上に設けられている自己組織化単分子膜と、
（ｉｉｉ）当該担持層上に直接、又は当該自己組織化単分子膜を介して設けられており、標的細胞と特異的に結合するアプタマー又は抗体と、
を備える、標的細胞捕捉装置。
［２］前記自己組織化単分子膜は、一方の末端基が前記担持層を構成する元素と結合しており、前記担持層に結合していない側の末端基の少なくとも一部は、前記アプタマー又は抗体と結合している、［１］に記載の標的細胞捕捉装置。
［３］前記自己組織化単分子膜の担持層に結合していない側の末端基のうち前記アプタマー又は抗体が結合していない末端基の全部又は一部はキャップされている、［１］又は［２］に記載の標的細胞捕捉装置。
［４］前記担持層は、金、白金、銀、パラジウム、銅及びこれらの組み合わせからなる群から選択される元素を含む、［１］〜［３］のいずれか１に記載の標的細胞捕捉装置。
［５］請前記自己組織化単分子膜は、一方の末端にチオール基を含み、他方の末端にカルボキシル基、ヒドロキシル基、アミノ基又はＮ−ヒドロキシスクシンイミド基を含む、［１］〜［４］のいずれか１に記載の標的細胞捕捉装置。
［６］前記アプタマー及び／又は前記自己組織化単分子膜は、チオール結合により前記担持層を構成する元素と結合している、［１］〜［５］のいずれか１に記載の標的細胞捕捉装置。
［７］前記アプタマーは、アミド結合により前記自己組織化単分子膜と結合している、［１］〜［６］のいずれか１に記載の標的細胞捕捉装置。
［８］前記自己組織化単分子膜の担持層に結合していない側の末端基のうち前記アプタマー又は抗体が結合していない末端基の全部又は一部は、メトキシ基、カルバモイル基、メチルカルバモイル基、ヒドロキシル基から選択される基でキャップされている、［１］〜［７］のいずれか１に記載の標的細胞捕捉装置。
［９］前記自己組織化単分子膜の担持層に結合していない側の末端基であって、前記アプタマー又は抗体が結合していない末端基は、ヒドロキシル基、カルボキシル基、又はアミノ基である、［１］〜［８］のいずれか１に記載の標的細胞捕捉装置。
［１０］前記標的細胞は血中循環腫瘍細胞（Ｃｉｒｃｕｌａｔｉｎｇ  Ｔｕｍｏｒ  Ｃｅｌｌ：ＣＴＣ）である、［１］〜［９］のいずれか１に記載の標的細胞捕捉装置。
【発明の効果】
【０００８】
本発明の標的細胞捕捉装置は、標的細胞をアプタマー又は抗体によって特異的に捕捉するため、フィルターの孔径に左右されずに、誤検出を抑制できる。また、フィルターの孔径を大きくすることができるため、従来の細胞径に依存するフィルタリングと異なり、大きな細胞を含む生体試料であってもフィルターの目詰まりが生じにくく、小さな標的細胞であってもアプタマー又は抗体によって特異的に捕捉することができる。また、フィルターの孔径を大きくすると、一度に多量の生体試料を流通させることができ、標的細胞の捕捉に要する時間を短縮することができる。さらに、フィルターの孔径に左右されないため、微量乃至大量の生体試料から標的細胞のみを捕捉することができる。
【０００９】
本発明の標的細胞捕捉装置を用いることで、簡易かつ迅速に標的細胞のみを特異的に捕捉することができる。
【００１０】
本発明の標的細胞捕捉装置に用いる標的細胞捕捉フィルターを簡易に製造することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１１】
【図１】本発明の標的細胞捕捉装置の断面図である。
【図２】本発明の標的細胞捕捉装置の全体斜視図である。
【図３】本発明の標的細胞捕捉装置のディスポーサブル部の全体斜視図である。
【図４】本発明の標的細胞捕捉装置のディスポーサブル部の断面図である。
【図５】本発明の標的細胞捕捉装置のディスポーサブル部の分解図である。
【図６】本発明の標的細胞捕捉装置のディスポーサブル部に挿入する標的細胞捕捉フィルターカセット保持部の分解図である。
【図７】本発明の標的細胞捕捉装置のディスポーサブル部に挿入する標的細胞捕捉フィルターの標的細胞捕捉を示す模式図である。
【図８】本発明の標的細胞捕捉装置のディスポーサブル部に挿入する標的細胞捕捉フィルターの構成例（アプタマーが直接担持層に結合している態様）を示す概略説明図である。
【図９】本発明の標的細胞捕捉装置のディスポーサブル部に挿入する標的細胞捕捉フィルターの別の構成例（アプタマーが自己組織化単分子膜に結合している態様）を示す概略説明図である。
【図１０】本発明の標的細胞捕捉装置のディスポーサブル部に挿入する標的細胞捕捉フィルターの開口パターンの一例（円形）を示す電子顕微鏡写真（以下「ＳＥＭ写真」と称す。）である。
【図１１】本発明の標的細胞捕捉装置のディスポーサブル部に挿入する標的細胞捕捉フィルターの開口パターンの別の一例（菱形）を示すＳＥＭ写真である。
【図１２】本発明の標的細胞捕捉装置のディスポーサブル部に挿入する標的細胞捕捉フィルターのパターンの別の一例（ピラー）を示すＳＥＭ写真である。
【図１３】実施例４において本発明の標的細胞捕捉フィルターで捕捉した標的細胞、正常細胞及び比較例の蛍光観察写真である。
【図１４】実施例５において本発明の標的細胞捕捉フィルターで捕捉した標的細胞及び正常細胞の蛍光観察写真である。
【図１５】実施例６において本発明の標的細胞捕捉フィルターで捕捉した標的細胞及び正常細胞の蛍光観察写真である。
【図１６】実施例７において本発明の標的細胞捕捉フィルターで捕捉した標的細胞及び正常細胞の蛍光観察写真である。
【図１７】実施例８において本発明の標的細胞捕捉フィルターで捕捉した標的細胞及び正常細胞の蛍光観察写真である。
【好ましい実施形態】
【００１２】
添付図面を参照しながら本発明を詳細に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
【００１３】
図１乃至２は本発明の標的細胞捕捉装置全体、図３乃至５はディスポーサブル部、図６は標的細胞捕捉フィルターを示す。
【００１４】
図１乃至２に示されているように、本発明の標的細胞捕捉装置１は、生体試料を吸引する本体１０と、本体１０の先端部に着脱自在に取り付けられるディスポーサブル部２０と、を備える。本体１０は、図示した実施態様では、先端のチップ部分を除いて一般的なマイクロピペットと同様の構造であり、生体試料を吸引して保持する生体試料保持部１１と、生体試料の吸引と撹拌及び吐出を実現する２段階の押し込み形式のプッシュボタン１２とを有する。しかし、本発明の標的細胞捕捉装置の本体１０は生体試料を吸引できる構成であれば特に限定されず、また正確な微量の吸引及び吐出を必要としない場合には通常の注射器やチューブでもよい。ディスポーサブル部２０は、図示した実施態様では、ネジ１３で本体１０に着脱自在に取り付けられる形式である。しかし、着脱自在に流体漏洩が生じない状態で取り付けられれば特に限定されず、気密シール付きの嵌合式でもよい。本体１０及びディスポーサブル部２０は、樹脂から射出成形等の公知の方法で作製することができる。樹脂としては、生体試料から標的細胞を捕捉する目的を阻害しない限り、一般的な樹脂を特に限定されずに用いることができる。
【００１５】
図３乃至４に示されているように、ディスポーサブル部２０は、先端に生体試料導入部２１１となる開口が形成されており、本体１０との連結側の開口にフランジ２１２が形成されており、生体試料導入部２１１とフランジ２１２との間に形成された空間２１３及び２１４を有する本体部２１に生体試料を吸引する。図示した形態において、空間２１３は、生体試料導入部２１１に向かって縮径するテーパー形状であり、空間２１３とフランジ２１２との間に形成される空間２１４は寸胴形状である。空間２１３と２１４との境界に標的細胞捕捉フィルター３０が定置される。
【００１６】
図５乃至６に示されているように、標的細胞捕捉フィルター３０は、フィルターカセット２３及びカセット保持部２２を用いてディスポーサブル部２０の空間２１４に挿入され、定置に保持される。
【００１７】
図示した態様において、フィルターカセット２３は、標的細胞捕捉フィルター３０と同径のリング２３１と、リング２３１の半周にわたって立設されている保持用側壁面２３２とを有する。カセット保持部２２は、ディスポーサブル部２０のフランジ２１２に載置されるフランジ２２１と、標的細胞捕捉フィルター３０を載置して、ディスポーサブル部２０の空間２１４に嵌合する円筒の底面外周部２２３と、底面外周部２２３の半円周に沿って立設されている側壁面２２２と、を有する。側壁面２２２には、底面外周部２２３の上にフィルターカセット２３を受け入れて嵌合する寸法及び形状の凹部２２４が形成されている。標的細胞捕捉フィルター３０は、フィルターカセット２３のリング２３１及び保持用側壁面２３２で挟まれた状態でカセット保持部２２の底面外周部２２３の上に載置され、フィルターカセット２３を側壁面２２２に向けてスライドさせて、側壁面２２２の凹部に挿入する。フィルターカセット２３を保持した状態でのカセット保持部２２の底面の径は、ディスポーサブル部２０の空間２１４に嵌合保持される大きさである。図示した態様において、カセット保持部２２のフランジ２２１の開口部内径と、底面外周部２２３の開口部内径とは同じ寸法である。なお、図示した態様では、標的細胞捕捉フィルター３０は１枚であるが、同じ形状あるいは異なる形状の複数枚の標的細胞捕捉フィルターを組み合わせて用いてもよい。
【００１８】
図７は標的細胞捕捉フィルター３０の標的細胞を捕捉した状態を示す模式図である。図示した態様において、標的細胞Ｔは、アプタマー３３に特異的に結合して捕捉され、赤血球Ｒ及び白血球Ｗは担持層３１の開孔を通過する。なお、赤血球及び白血球は説明のために示したものであるがこれらに限定されず、標的細胞以外の細胞など生体試料に含まれている物質である。
【００１９】
次に、図８乃至１２を参照しながら、標的細胞捕捉フィルター３０について説明する。
【００２０】
図８乃至９に示されているように、標的細胞捕捉フィルター３０は、（ｉ）元素周期表第１０族元素、第１１族元素及びこれらの組み合わせから選択される元素を含む担持層３１と、（ｉｉ）担持層３１上に設けられている自己組織化単分子膜３２と、（ｉｉｉ）担持層３１上に直接又は自己組織化単分子膜３２を介して設けられており、標的細胞と特異的に結合するアプタマー又は抗体３３と、を備える。
【００２１】
担持層３１は、元素周期表第１０族元素、第１１族元素及びこれらの組み合わせから選択される元素を含む金属基板、あるいは金属、ガラス、プラスチック又は紙などの支持基板の少なくとも一面に上記元素をメッキ、蒸着、スパッタリングなどの公知の方法を用いて成膜したものでよい。また、ニッケル系合金（たとえばニッケル−コバルト、ニッケル−リンなど）、クロム系合金、スズ系合金などで支持基板をメッキした後に、元素周期表第１０族元素、第１１族元素及びこれらの組み合わせから選択される元素を電鋳により成膜して、担持層３１を形成してもよい。いずれの成膜方法でも、支持基板は特に限定されず、担持層３１の少なくとも表面に、元素周期表第１０族元素、第１１族元素及びこれらの組み合わせから選択される元素を有していればよく、特に金、白金、銀、パラジウム、銅及びこれらの組み合わせからなる群から選択される元素を含むことが好ましい。また、担持層３１は、１０乃至２０μｍの薄膜でも形状を保持して自立できる硬さを有することが好ましい。
【００２２】
図８はアプタマー又は抗体３３が担持層３１に直接、化学的に結合している態様である。図９はアプタマー又は抗体３３が自己組織化単分子膜３２に化学的に結合した状態で担持層３１に設けられている態様である。図示した態様において、アプタマー又は抗体３３、及び／又は、自己組織化単分子膜３２は、チオール結合により担持層３１を構成する元素と結合している。
【００２３】
自己組織化単分子膜３２は、一方の末端にチオール基を含み、他方の末端にカルボキシル基、ヒドロキシ基、アミノ基、又はＮ−ヒドロキシスクシンイミド基を含む。これらの官能基で末端が修飾されているポリエチレングリコール膜又はヒドロキシアルカンチオール膜から形成することができる。ヒドロキシアルカンチオールとしては、例えば、ヒドロキシ−ＥＧ６−ウンデカンチオール、ヒドロキシ−ＥＧ３−ウンデカンチオール、ヒドロキシ−ＥＧ６−ヘキサデカンチオール、ヒドロキシ−ＥＧ３−ヘキサデカンチオール、６−メルカプト−１−ヘキサノール、アミノ−ＥＧ６−ウンデカンチオールヒドロクロライド、アミノ−ＥＧ６−ヘキサデカンチオールヒドロクロライド、カルボキシ−ＥＧ６−ヘキサデカンチオール、カルボキシ−ＥＧ６−ウンデカンチオール、１５−カルボキシ−１ペンタデカンチオール、１０−カルボキシ−１−デカンチオール、７−カルボキシ−１−ヘプタンチオール、５−カルボキシ−１−ペンタンチオール、１６−アミノ−１−ヘキサデカンチオールヒドロクロライド、１１−アミノ−１−ウンデカンチオールヒドロクロライド、８−アミノ−１−オクタンチオールヒドロクロライド、６−アミノ−１−ヘキサンチオールヒドロクロライド、１６−ヒドロキシ−１−ヘキサンデカンチオール、１１−ヒドロキシ−１−ウンデカンチオール、８−ヒドロキシ−１−オクタンチオール、６−ヒドロキシ−１−ヘキサンチオールを好適に挙げることができるが、これらに限定されない。
【００２４】
自己組織化単分子膜３２にアプタマー又は抗体３３が結合している態様では、自己組織化単分子膜３２の末端のカルボキシル基又はヒドロキシル基を活性化するために官能基で修飾した後に、当該官能基をアプタマー又は抗体３３で置換してもよい。非限定的に自己組織化単分子膜３２の末端基を修飾する官能基は、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド基、又はマレイミド基であることが好ましい。
【００２５】
自己組織化単分子膜３２の末端がＮ−ヒドロキシスクシンイミド基の場合、アミノ化アプタマー又は抗体３３のアミノ基と反応させて、これらを自己組織化単分子膜３２に結合させることができる。自己組織化単分子膜３２の末端がアミノ基の場合、例えば化学合成したＮ−ヒドロキシスクシンイミド化アプタマー、又は、カルボキシル末端をＮ−ヒドロキシスクシンイミド化した抗体を、自己組織化単分子膜３２に結合させることができる。
【００２６】
自己組織化単分子膜３２の末端がアミノ基の場合、これをさらにマレイミド化して、自己組織化単分子膜３２の末端を修飾する官能基をマレイミド基としてもよい。具体的には、非限定的に、片方の端にＮ−ヒドロキシスクシンイミド基を有し、もう一方の端にマレイミド基を有する二価性試薬、例えば、Ｎ−（６−マレイミドカプロイルオキシ）スクシンイミド（ＥＭＣＳ）（例えば、株式会社  同仁化学研究所より入手可能）を、末端にアミノ基を有する自己組織化単分子膜と反応させると、自己組織化単分子膜３２の末端を修飾する官能基がマレイミド基となる。この場合、化学合成したチオール化アプタマー、又は、チオール基を有する抗体（システイン残基を有する抗体）を、自己組織化単分子膜３２に結合させることができる。
【００２７】
アプタマー又は抗体３３で置換されなかった官能基が残存することもある。核酸アプタマーが結合しなかった官能基、たとえばＮ−ヒドロキシスクシンイミド基は水中で分解し、自己組織化単分子膜３２の末端としてはヒドロキシル基又はカルボキシル基が残る。自己組織化単分子膜３２の末端基がマレイミド基で修飾されている場合には、核酸アプタマーが結合しなかったマレイミド基は自己組織化単分子膜３２の末端基として残る。残ったマレイミド基は、一方の末端にＳＨ基を有し、他方の末端がメトキシ基（−ＯＣＨ３）、カルバモイル基（−ＣＯＮＨ２）、メチルカルバモイル基（−ＣＯＮＨＣＨ３）及びヒドロキシル基（−ＯＨ）を有するキャッピング剤でキャッピングすることが必要となる。
【００２８】
自己組織化単分子膜３２の末端基のうちアプタマー又は抗体３３が結合していない末端基がＮ−ヒドロキシスクシンイミド基である場合、その全部又は一部は、一方の末端にＮＨ２基を有し、他方の末端がメトキシ基（−ＯＣＨ３）、カルバモイル基（−ＣＯＮＨ２）、メチルカルバモイル基（−ＣＯＮＨＣＨ３）及びヒドロキシル基（−ＯＨ）から選択される基を有するキャッピング剤でキャップされていることがより好ましい。
【００２９】
自己組織化単分子膜３２の末端基のうちアプタマー又は抗体３３が結合していない末端基がアミノ基である場合、その全部又は一部は、一方の末端にＮ−ヒドロキシスクシンイミド基を有し、他方の末端がメトキシ基（−ＯＣＨ３）、カルバモイル基（−ＣＯＮＨ２）、メチルカルバモイル基（−ＣＯＮＨＣＨ３）及びヒドロキシル基（−ＯＨ）から選択される基を有するキャッピング剤でキャップされていることがより好ましい。
【００３０】
上記のように、アプタマー又は抗体３３が結合していない末端基をキャップすることで、標的細胞以外の細胞との非特異的結合を抑制することができ、より確実に標的細胞のみを捕捉することができる。
【００３１】
アプタマー３３は、特定の分子と特異的に結合する分子やペプチドである。通常ランダム配列の巨大ライブラリ中から選び出してくるが、自然界にも存在し、リボスイッチとして知られており、基礎から薬剤探索などの応用まで幅広く研究されている。リボザイムと複合体化したアプタマーも存在しており、ターゲット分子存在下で自己切断するものが知られている。アプタマーは、核酸（ＤＮＡ・ＲＮＡ）アプタマー、ペプチドアプタマーの２種に大別される。核酸アプタマーは化学合成が可能であるため、コストを大幅に下げることができ、核酸を用いることでＤＮＡ折り紙やナノワイヤー等のように「静的な構造」のみならず、ＤＮＡウォーカーや、リボスイッチ、アプタザイムのような「動的な構造」を自在にプログラミングすることが可能となる（ダイナミックプログラミング）ので好ましい。このプログラムを利用して、腫瘍細胞捕捉のシグナルを増幅することも可能である。当業者は、標的細胞の種類に応じて細胞の細胞表面物質に特異的に結合する核酸アプタマーを適宜選択することができる。たとえば、上皮細胞接着分子（ＥｐＣＡＭ：Ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ  Ｃｅｌｌ  Ａｄｈｅｓｉｏｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌｅ）に対する核酸アプタマーを好適に挙げることができる。上皮細胞接着分子は、特に血中循環腫瘍細胞（ＣＴＣ）の細胞表面物質であることが知られており、これに対する核酸アプタマーを利用可能である（例えば、Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ  Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，  ２０１３，８５，ｐ．４１４１−４１４９を参照されたい）。したがって、本発明の標的細胞捕捉装置は、標的細胞として血中循環腫瘍細胞（Ｃｉｒｃｕｌａｔｉｎｇ  Ｔｕｍｏｒ  Ｃｅｌｌ：ＣＴＣ）を特異的に捕捉することができる。
【００３２】
抗体３３としては、特に限定されるわけではないが、標的細胞がＣＴＣである場合には、上皮細胞接着分子（ＥｐＣＡＭ：Ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ  Ｃｅｌｌ  Ａｄｈｅｓｉｏｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌｅ）に対する抗体を好適に挙げることができる。たとえば、ａｂｃａｍ製カタログＮｏ．ａｂ３２３９２で入手可能なウサギ抗ヒトＥｐＣＡＭモノクローナルＩｇＧ抗体などを挙げることができる。また、標的細胞がＣＴＣでない場合も、標的細胞表層に発現しているタンパク質を介して、特異的に捕捉することができる。たとえば急性骨髄性白血病を発症している白血球を捕捉する場合、ａｂｃａｍ製カタログＮｏ．ａｂ９７４２６を用いればよい。
【００３３】
図１０乃至１２は、標的細胞捕捉フィルター３０の担持層３１のパターン例を示すＳＥＭ写真である。図１０は金基板に円形微細孔を形成した担持層３１であり、図１１は金基板に菱形の粗大孔を形成した担持層３１である。円形微細孔を有する担持層３１は、大きな寸法の細胞のみ捕捉し、小さな寸法の細胞（たとえば、約７μｍ径の赤血球や約１５μｍ径の白血球）は通過させ、大きな標的細胞のみを捕捉する篩の機能も有する。菱形粗大孔を有する担持層３１は、アプタマー又は抗体３３と特異的に結合する細胞のみを捕捉し、アプタマー又は抗体３３と結合しない大きな寸法の細胞も小さな寸法の細胞も共に通過させる。図１２は、金基板上に複数のピラーを立設した担持層３１である。金基板及びピラーの全表面にアプタマー又は抗体３３を直接又は間接的に結合させることで、基板面積当たりの標的細胞との接触を増やし、より多量の標的細胞を捕捉することが可能となる。
【００３４】
次に、本発明の標的細胞捕捉装置に組み込む標的細胞捕捉フィルター３０の製造方法を説明する。
【００３５】
担持層３１は、元素周期表第１０族元素、第１１族元素及びこれらの組み合わせから選択される元素を含む金属基板を所定厚み（約５〜約５０μｍ、好ましくは約１０〜約２０μｍ）に加工したものをそのまま用いてもよいし、あるいは金属、ガラス、プラスチック又は紙などの支持基板の少なくとも一面に上記元素をメッキ、蒸着、スパッタリングなどの公知の方法を用いて成膜したものを用いてもよい。担持層３１に図１０乃至１２に示すような開孔又はピラーを設ける場合には、公知のフォトリソグラフィー技術や電鋳技術などを用いて形成することができる。
【００３６】
次いで、担持層３１の上に、アプタマー又は抗体３３を直接化学結合させ、自己組織化単分子膜３２を成膜させるか、もしくは担持層３１の上に自己組織化単分子膜３２を化学結合させ、自己組織化単分子膜３２にアプタマー又は抗体３３を化学結合させる。
【００３７】
担持層３１とアプタマー又は抗体３３とを直接結合させるか、もしくは自己組織化単分子膜３２を化学結合させるには、担持層３１を構成する金属元素とのチオール結合が好適であり、アプタマー又は抗体、もしくは自己組織化単分子膜の一方の末端にチオール基を導入しておくことが望ましい。
【００３８】
自己組織化単分子膜３２とアプタマー又は抗体３３とはアミド結合させることが好適である。アミド結合を導入するには、自己組織化単分子膜３２の末端基を活性化させておくことが好適であり、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド基、カルボキシル基、マレイミド基及びアミノ基からなる群から選択される官能基を導入することが好ましい。これらの官能基を導入するには、担持層３１上に形成されている自己組織化単分子膜を脂肪族アミン化合物、脂肪族チオール、脂肪族アルコールもしくは脂肪族カルボン酸と接触させることが好ましい。次いでこの官能基とアプタマー又は抗体３３とを置換することで、自己組織化単分子膜３２にアプタマー又は抗体３３を結合させることができる。
【００３９】
アプタマー又は抗体３３が結合していない自己組織化単分子膜３２の末端基は、メトキシ基（−ＯＣＨ３）、カルバモイル基（−ＣＯＮＨ２）、メチルカルバモイル基（−ＣＯＮＨＣＨ３）基またはヒドロキシル基（−ＯＨ）などでキャッピングすることが好ましく、自己組織化単分子膜３２及びアプタマー又は抗体３３が形成されている担持層３１をこれらの基を含む脂肪族アミンなどと接触させることが好ましい。
【００４０】
具体的に、非限定的例として、担持層３１として銅基板上に金メッキを施し、自己組織化単分子膜３２としてヒドロキシアルカンチオール膜を成膜し、アプタマー３３として末端アミノ化アプタマーを結合させた標的細胞捕捉フィルターの製造を説明する。
（１）自己組織化単分子膜の末端がヒドロキシル基である標的細胞捕捉フィルターの製造（図９（１））
銅基板の一面にＮｉメッキを施した後、金メッキを施して、担持層３１を調製する。次いで、担持層３１を自己組織化単分子膜の溶液（ヒドロキシ−ＥＧ６−ウンデカンチオールのエタノール溶液）中に浸漬し、担持層３１上に自己組織化単分子膜３２を形成させる。次いで、自己組織化単分子膜３２が形成されている担持層３１に、炭酸Ｎ，Ｎ’−ジスクシンイミジル（ＤＳＣ）を滴下し、自己組織化単分子膜３２の末端に官能基（Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド基）を導入して、末端基を活性化させる。次いで、末端アミノ化アプタマー溶液を滴下して、自己組織化単分子膜３２の末端の官能基と反応させ、アミド結合にてアプタマーを結合させて、標的細胞捕捉フィルター３０を作製する。この際、アプタマーと結合しなかった末端の官能基は水中で分解されてヒドロキシル基として残る。
（２）自己組織化単分子膜の末端がカルボキシル基である標的細胞捕捉フィルターの製造
銅基板の一面にＮｉメッキを施した後、金メッキを施して、担持層３１を調製する。次いで、担持層３１を自己組織化単分子膜の溶液（カルボキシ−ＥＧ６−ウンデカンチオールのエタノール溶液）中に浸漬し、担持層３１上に自己組織化単分子膜３２を形成させる。次いで、自己組織化単分子膜３２が形成されている担持層３１に、炭酸Ｎ，Ｎ’−ジスクシンイミジル（ＤＳＣ）を滴下し、自己組織化単分子膜３２の末端に官能基（Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド基）を導入して、末端基を活性化させる。次いで、末端アミノ化アプタマー溶液を滴下して、自己組織化単分子膜３２の末端の官能基と反応させ、アミド基結合にてアプタマーを結合させて、標的細胞捕捉フィルター３０を作製する。この際、アプタマーと結合しなかった末端の官能基は水中で分解されてカルボキシル基として残る。
（３）自己組織化単分子膜の末端がアミノ基である標的細胞捕捉フィルターの製造
銅基板の一面にＮｉメッキを施した後、金メッキを施して、担持層３１を調製する。次いで、担持層３１を自己組織化単分子膜の溶液（アミノ−ＥＧ６−ウンデカンチオールのエタノール溶液）中に浸漬し、自己組織化単分子膜３２を形成させる。次いで、末端Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド化アプタマー溶液を滴下して、自己組織化単分子膜３２の末端のアミノ基とアプタマーのＮ−ヒドロキシスクシンイミド基を反応させ、アプタマーをアミド結合によって連結させて、標的細胞捕捉フィルター３０を作製する。この際、アプタマーと結合しなかった末端の官能基はそのままアミノ基として残る。
（４）自己組織化単分子膜の末端をマレイミド基で修飾してアプタマーを結合させた標的細胞捕捉フィルターの製造
銅基板の一面にＮｉメッキを施した後、金メッキを施して、担持層３１を調製する。次いで、担持層３１を自己組織化単分子膜の溶液（アミノ−ＥＧ６−ウンデカンチオールのエタノール溶液）中に浸漬し、担持層３１上に自己組織化単分子膜３２を形成させる。次いで、自己組織化単分子膜３２が形成されている担持層３１に、マレイミド基及びＮ−ヒドロキシスクシンイミド基を両末端に有する二価性試薬溶液（ＥＭＣＳ（Ｎ−（６−マレイミドカプロイルオキシ）スクシンイミド：化１）のアセトニトリル溶液）を滴下し、自己組織化単分子膜３２の末端に官能基（マレイミド基）を導入する。次いで、末端チオール化アプタマー溶液を滴下して、自己組織化単分子膜３２の末端の官能基とアプタマーチオール基を反応させることで、アプタマーを結合させ、標的細胞捕捉フィルター３０を作製する。この際、アプタマーと結合しなかった末端のマレイミド基はキャッピング剤（片方にチオール基、もう片方にメトキシ基（−ＯＣＨ３）、カルバモイル基（−ＣＯＮＨ２）、メチルカルバモイル基（−ＣＯＮＨＣＨ３）基、又はヒドロキシル基（−ＯＨ）などを含む化合物）でキャッピングする。
【００４１】
【化１】
0006781877.tif 000002
【００４２】
（５）自己組織化単分子膜の末端を官能基でキャップした標的細胞捕捉フィルターの製造（図９（２））
自己組織化単分子膜３２の末端に官能基を導入した後、末端アミノ化アプタマーとキャッピング剤（メトキシ基（−ＯＣＨ３）、カルバモイル基（−ＣＯＮＨ２）、メチルカルバモイル基（−ＣＯＮＨＣＨ３）基、又はヒドロキシル基（−ＯＨ）などを含む）を添加する以外は、上記（１）〜（３）と同様にして、自己組織化単分子膜の末端官能基をキャップした標的細胞捕捉フィルターを作製する。
（６）担持層３１に核酸アプタマー３３を直接結合させた標的細胞捕捉フィルターの製造（図８）
銅基板の一面にＮｉメッキを施した後、金メッキを施して担持層３１を調製する。次に、末端チオール化アプタマー溶液を担持層３１表面に添加し、担持層３１にアプタマー３３を直接、チオール結合させる。次いで、アプタマー３３が結合している担持層３１を自己組織化単分子膜の溶液（ヒドロキシ−ＥＧ６−ウンデカンチオールのエタノール）中に浸漬し、自己組織化単分子膜３２を形成させて、標的細胞捕捉フィルター３０を作製する。この場合、自己組織化単分子膜の担持層に結合していない側の末端は、ヒドロキシル基若しくは上記キャッピング剤でキャップされた官能基でよい。
【００４３】
次に、本発明の標的細胞捕捉装置の使用方法を説明する。
【００４４】
標的細胞捕捉フィルター３０をカセット保持部２２の底面外周部２２３の上に載置し、標的細胞捕捉フィルター３０の上にフィルターカセット２３のリング２３１を載置する。この状態で、標的細胞捕捉フィルター３０及びフィルターカセット２３をカセット保持部２２の側壁面２２２の凹部に挿入する。次いで、カセット保持部２２をディスポーサブル部２０の空間２１４にはめ込み、カセット保持部２２のフランジ２２１をディスポーサブル部２０のフランジ２１２に載置して固定する。組み立てたディスポーサブル部２０を本体１０にネジ１３で取り付ける。
【００４５】
生体試料にディスポーサブル部２０を浸漬し、プッシュボタン１２を１段目の押し込み部まで押し込み、生体試料をディスポーサブル部２０の空間２１３及び２１４に吸引する。この状態で、プッシュボタン１２を１段目の押し込み部まで押し込む操作を複数回繰り返す。こうして、生体試料が標的細胞捕捉フィルター３０と複数回接触し、標的細胞が捕捉される。所定量の生体試料の吸引が完了したら、プッシュボタン１２を２段目の押し込み部まで押し込み、生体試料を排出する。
【００４６】
本体１０からディスポーサブル部２０を取り外し、カセット保持部２２を取り出し、フィルターカセット２３を外して、標的細胞捕捉フィルター３０を直接蛍光観察に供するか、あるいは検出用試薬に投入し、検出用試薬内での検出シグナル応答を観察することができる。検出用試薬は、標的細胞に応じて適宜選択することができる。また、捕捉された標的細胞が微量である場合には、トリガーが結合した核酸アプタマー（以下「トリガー−核酸アプタマー複合体」と称す。）を含む検出用試薬を用いて、蛍光シグナルを増幅させてもよい。トリガー−核酸アプタマー複合体に用いる核酸アプタマーは、標的細胞捕捉フィルターに用いられているアプタマーと同種でも異種でもよい。トリガー−核酸アプタマー複合体が標的細胞と結合すると、トリガー核酸が放出され、蛍光色素で修飾されているＤＮＡプローブが発光し、蛍光シグナルが増幅される。
【００４７】
本発明の標的細胞捕捉装置は、生体試料から標的細胞を特異的に捕捉することができる。生体試料としては、例えば体液又は組織単離液から選択され得る、標的細胞を含む可能性のある液体試料を好適に挙げることができる。「体液」とは、一般に、血液（血液全体又は血漿）、リンパ液、組織液（組織間液、細胞間液、間質液）、体腔液（関節液、脳脊髄液、漿膜腔液、眼房水等）等を意味する。さらに、消化液（唾液、胃液、胆汁、膵液、腸液等）、汗、涙等も含まれる。好ましくは、血液（血液全体又は血漿）である。「組織単離液」とは、生体組織を公知の方法で単離・分散し、液体状にしたものを意味する。組織の種類は特に限定されず、胃、腸、皮膚、肺、乳房、前立腺、精巣、卵巣、子宮、骨髄等、任意の生体組織を適宜対象として使用しうる。生体組織の単離・分散のための試薬は、例えば、トリプシン、パパイン、エラスターゼ、ヒアルロニターゼ、コラゲナーゼ又はこれらの混合物などの酵素を含む試薬を、生体組織や細胞の種類に応じて適宜使用し得る。例えば、トリプシン、コラゲナーゼなどの複数の酵素を含むCell Isolation Optimizing System（フナコシ株式会社製）など市販の試薬を用いてもよい。
【００４８】
標的細胞としては、腫瘍細胞、その他の一般的な培養細胞、分化多能性細胞などを含み得る。好ましくは、腫瘍細胞である。腫瘍の種類は特に限定されず、脳悪性腫瘍、胃癌、肺癌、乳癌、咽頭癌、食道癌、大腸癌、肝癌、子宮癌、精巣癌、卵巣癌、膀胱癌、前立腺癌、基底細胞癌、悪性リンパ腫、白血病、神経膠腫等を含む。腫瘍細胞は、原発性腫瘍細胞、転移性腫瘍細胞、血中循環腫瘍細胞等を含む。好ましくは、血中循環腫瘍細胞（Ｃｉｒｃｕｌａｔｉｎｇ  Ｔｕｍｏｒ  Ｃｅｌｌ：ＣＴＣ）である。
【００４９】
本発明の標的細胞捕捉装置により捕捉した標的細胞が検出できないほど極微量である場合には、適宜のシグナル（蛍光など）増幅方法や核酸複製増幅方法などを用いることで、微量標的細胞の検出にも適用できる。たとえば、血液から血中循環腫瘍細胞（ＣＴＣ）を標的細胞として捕捉した標的細胞捕捉フィルターをトリガー−核酸アプタマー複合体、核酸複合体及び燃料核酸を含む検出溶液に浸漬し、核酸アプタマー複合体から放出されるトリガー核酸によってＣＴＣの蛍光を増幅させて蛍光を検出し、癌細胞の有無を判断することができる。
【実施例】
【００５０】
以下、実施例により本発明を更に具体的に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
【００５１】
標的細胞として血中循環腫瘍細胞を捕捉する場合を例にして、本発明の標的細胞捕捉装置の製作及び標的細胞の捕捉を説明する。
【００５２】
［実施例１］
−自己組織化単分子膜の末端がヒドロキシル基である標的細胞捕捉フィルターの製造
担持層３１として、銅基板の一面にＮｉメッキを施した後、金メッキを施した基板を準備した。この基板をピラニア溶液と１０分間接触させて表面を洗浄し、さらに、超純水及びエタノールで洗浄した後、窒素を吹きかけて乾燥させた。次いで、この基板を１ｍＭヒドロキシ−ＥＧ６−ウンデカンチオールのエタノール溶液中に浸漬し、飽和蒸気圧下、１２時間室温で反応させて自己組織化単分子膜３２を形成させた。次いで、この基板をエタノールで洗浄し、窒素を吹きかけて乾燥させた後、１０ｍＭ  Ｎ，Ｎ’−ジシクロヘキシルカルボジイミド溶液を滴下し、飽和蒸気圧下で５時間静置し、自己組織化単分子膜３２の末端にＮ−ヒドロキシスクシンイミド基を導入した。次いで、乾燥アセトニトリルで洗浄し、窒素を吹きかけて乾燥させた後、ＰＢＳ（リン酸緩衝食塩水）中にて調製した１０μＭ末端アミノ化アプタマー溶液（３’末端側にトリエチレングリコールスペーサーを介し、ヘキサメチレンアミンを導入した構造のアプタマー）を滴下して、飽和蒸気圧下で３時間静置し、自己組織化単分子膜３２の末端のＮ−ヒドロキシスクシンイミド基とアプタマーのアミノ基を反応させ、アミド結合にてアプタマーを結合させた。最後にＰＢＳで洗浄し、窒素を吹きかけて乾燥させ、標的細胞捕捉フィルター３０を作製した。
【００５３】
［実施例２］
−自己組織化単分子膜の末端を官能基でキャップした標的細胞捕捉フィルターの製造
ヒドロキシ−ＥＧ６−ウンデカンチオールの自己組織化単分子膜３２の末端にＮ−ヒドロキシスクシンイミド基を導入した後、１０μＭ末端アミノ化アプタマー（３’末端側にトリエチレングリコールスペーサーを介し、ヘキサメチレンアミンを導入した構造のアプタマー）と０．１μＭメトキシエチルアミンの混合溶液（ＰＢＳ中にて調製）を添加し、３７℃で３時間静置し、ＰＢＳで洗浄後、窒素を吹きかけて乾燥させ、次に２ｍｇ／ｍＬメトキシエチルアミン溶液（ＰＢＳ中にて調製）を基板上に添加し、３７℃で３時間静置した以外は、実施例１と同様にして、自己組織化単分子膜の末端を官能基でキャップした標的細胞捕捉フィルターを作製した。
【００５４】
［実施例３］
−担持層３１に核酸アプタマー３３を直接結合させた標的細胞捕捉フィルターの製造
担持層３１として、銅基板の一面にＮｉメッキを施した後、金メッキを施した基板を準備した。この基板をピラニア溶液と１０分間接触させて表面を洗浄し、さらに、超純水及びエタノールで洗浄した後、窒素を吹きかけて乾燥させた。次いで、ＰＢＳ溶液中にて調製した１０μＭ末端チオール化アプタマー溶液（３’末端側にヘキサエチレングリコールスペーサーを介し、トリメチレンチオールを導入した構造のアプタマー）を基板表面に添加し、飽和蒸気圧下で２４時間反応させて、担持層３１にアプタマー３３を直接、チオール結合させた。次いで、アプタマー３３が結合している担持層３１を１ｍＭヒドロキシ−ＥＧ６−ウンデカンチオールのエタノール溶液中に浸漬し、飽和蒸気圧下、２時間室温で反応させて自己組織化単分子膜３２を形成させた。次いで、エタノールで洗浄し、窒素を吹きかけて乾燥させて、標的細胞捕捉フィルター３０を作製した。
【００５５】
［実施例４］
−標的細胞としての腫瘍細胞の捕捉
多くの固形癌種の細胞膜上に高発現しているＥｐＣＡＭに対するアプタマー（配列番号1）を用い、癌細胞の特異的な捕捉を試みた。
【００５６】
ＭＤＡ−ＭＢ−４５３（ヒト乳癌細胞）（独立行政法人理化学研究所バイオリソースセンターより入手）及びＫＡＴＯIII（ヒト胃癌由来細胞）（独立行政法人理化学研究所バイオリソースセンターより入手）を標的細胞として、細胞膜をＤｉＯ（緑色標識染色体）で染色し、ＨＥＫ２９３Ｔ（ヒト胎児腎由来細胞）（独立行政法人理化学研究所バイオリソースセンターより入手）を対照となる正常細胞として、細胞膜をＤｉＤ（赤色標識染色体）で染色し、細胞の核をＤＡＰＩ（４’、６−ジアミジノ−２−フェニルインドール、青色標識染色体）で染色した後、それぞれの懸濁液（２×１０５細胞／ｍＬ）中に、細胞膜上の疎水性が高い部位への非特異的な吸着を抑えるため、マスキング剤としてｔＲＮＡ（１ｍｇ／ｍＬ）を加え、撹拌後、３７℃で３０分インキュベートし、３種類のサンプル生体試料を調製した。
【００５７】
次いで、実施例２で作製した標的細胞捕捉フィルターに３種類の生体試料を滴下し、ＰＢＳで洗浄した後、蛍光を観察した。結果を図１３に示す。比較例として、標的細胞捕捉フィルターの代わりに、アプタマーを修飾していない金メッキ銅基板からなるフィルターを用いた以外は同様に行った。
【００５８】
図１３左側からＭＤＡ−ＭＢ−４５３（ヒト乳癌細胞）及びＫＡＴＯIII（ヒト胃癌由来細胞）の赤色の蛍光は観察されたが、正常細胞であるＨＥＫ２９３Ｔ（ヒト胎児腎由来細胞）の赤色の蛍光は観察されなかったことから、本発明の標的細胞捕捉装置を用いることで、標的細胞のみを特異的に捕捉できたことが確認できた。また、比較例（図１３右側）では、赤色の蛍光が観察できず、標的細胞を捕捉できなかったことが確認できた。
【００５９】
［実施例５］
実施例１で製造した標的細胞捕捉フィルターを用いた以外は実施例４と同様にして、標的細胞を捕捉し、蛍光観察を行った。結果を図１４に示す。
【００６０】
図１４（ａ）は正常細胞であるＨＥＫ２９３Ｔ（ヒト胎児腎由来細胞）をＤｉＤの蛍光で観察した画像であり、図１４（ｂ）はＨＥＫ２９３ＴをＤＡＰＩの蛍光で観察した画像であり、図１４（ｃ）は（ａ）と（ｂ）をマージした画像である。図１４（ａ）〜（ｃ）より、正常細胞はほとんど捕捉されていないことが確認できる。図１４（ｄ）は捕捉されたＭＤＡ−ＭＢ−４５３（ヒト乳癌細胞）の細胞膜をＤｉＯの蛍光で観察した画像であり、図１４（ｅ）は捕捉されたＭＤＡ−ＭＢ−４５３の細胞核をＤＡＰＩの蛍光で観察した画像であり、図１４（ｆ）は（ｄ）と（ｅ）をマージした画像である。図１４（ｄ）〜（ｆ）より、標的細胞であるＭＤＡ−ＭＢ−４５３（ヒト乳癌細胞）の蛍光が確認できた。図１４（ｃ）と（ｆ）を対比することによって標的細胞のみを特異的に捕捉できたといえる。
【００６１】
［実施例６］
実施例３で製造した標的細胞捕捉フィルターを用いた以外は実施例４と同様にして、標的細胞を捕捉し、蛍光観察を行った。結果を図１５に示す。
【００６２】
図１５（ａ）は正常細胞であるＨＥＫ２９３Ｔ（ヒト胎児腎由来細胞）をＤｉＤの蛍光で観察した画像であり、図１５（ｂ）はＨＥＫ２９３ＴをＤＡＰＩの蛍光で観察した画像であり、図１５（ｃ）は（ａ）と（ｂ）をマージした画像である。図１５（ａ）〜（ｃ）より、赤色の蛍光は非常に少なく、正常細胞はあまり捕捉されていないことが確認できる。図１５（ｄ）はＭＤＡ−ＭＢ−４５３（ヒト乳癌細胞）の細胞膜をＤｉＯ蛍光で観察した画像であり、図１５（ｅ）はＭＤＡ−ＭＢ−４５３の細胞核をＤＡＰＩの蛍光で観察した画像であり、図１５（ｆ）は（ｄ）と（ｅ）をマージした画像である。図１５（ｄ）〜（ｆ）より、標的細胞であるＭＤＡ−ＭＢ−４５３（ヒト乳癌細胞）の蛍光が多数確認できた。図１５（ｃ）と（ｆ）を対比することによって標的細胞のみを特異的に捕捉できたといえる。
【００６３】
［実施例７］
担持層３１として、銅基板の一面にＮｉメッキを施した後、金メッキを施した基板を準備した。この基板をピラニア溶液と１０分間接触させて表面を洗浄し、さらに、超純水及びエタノールで洗浄した後、窒素を吹きかけて乾燥させた。次いで、この基板を１ｍＭ６−メルカプト−１−ヘキサノールのエタノール溶液中に浸漬し、飽和蒸気圧下、１２時間室温で反応させて自己組織化単分子膜３２を形成させた。次いで、この基板をエタノールで洗浄し、窒素を吹きかけて乾燥させた後、１０ｍＭ  Ｎ，Ｎ’−ジシクロヘキシルカルボジイミド溶液を滴下し、飽和蒸気圧下で５時間静置し、自己組織化単分子膜３２の末端にＮ−ヒドロキシスクシンイミド基を導入した。次いで、乾燥アセトニトリルで洗浄し、窒素を吹きかけて乾燥させた後、ＰＢＳ（リン酸緩衝食塩水）中にて調製した１０μＭ末端アミノ化アプタマー溶液（３’末端側にトリエチレングリコールスペーサーを介し、ヘキサメチレンアミンを導入した構造のアプタマー）を滴下して、飽和蒸気圧下で３時間静置し、自己組織化単分子膜３２の末端のＮ−ヒドロキシスクシンイミド基とアプタマーのアミノ基を反応させ、アミド結合にてアプタマーを結合させた。最後にＰＢＳで洗浄し、窒素を吹きかけて乾燥させ、標的細胞捕捉フィルター３０を作製した。
【００６４】
自己組織化単分子膜として６−メルカプト−１−ヘキサノールを用いて上記の標的細胞捕捉フィルターを用いた以外は、実施例４と同様にして、標的細胞を捕捉し、蛍光観察を行った。結果を図１６に示す。
【００６５】
図１６（ａ）は正常細胞であるＨＥＫ２９３Ｔ（ヒト胎児腎由来細胞）をＤｉＤの蛍光で観察した画像であり、図１６（ｂ）はＨＥＫ２９３ＴをＤＡＰＩの蛍光で観察した画像であり，図１６（ｃ）は（ａ）と（ｂ）をマージした画像である。図１６（ａ）〜（ｃ）より、正常細胞はあまり捕捉されていないことが確認できる。図１６（ｄ）はＭＤＡ−ＭＢ−４５３（ヒト乳癌細胞）の細胞膜をＤｉＯ蛍光で観察した画像であり、図１６（ｅ）はＭＤＡ−ＭＢ−４５３の細胞核をＤＡＰＩの蛍光で観察した画像であり、図１６（ｆ）は（ｄ）と（ｅ）をマージした画像である。図１６（ｄ）〜（ｆ）より、標的細胞であるＭＤＡ−ＭＢ−４５３（ヒト乳癌細胞）の多数の蛍光が明瞭に確認できた。図１６（ｃ）と（ｆ）を対比することによって標的細胞のみを特異的に捕捉できたといえる。
【００６６】
［実施例８］
担持層３１として、銅基板の一面にＮｉメッキを施した後、金メッキを施した基板を準備した。この基板をピラニア溶液と１０分間接触させて表面を洗浄し、さらに、超純水及びエタノールで洗浄した後、窒素を吹きかけて乾燥させた。次いで、ＰＢＳ溶液中にて調製した１０μＭ末端チオール化アプタマー溶液（３’末端側にヘキサエチレングリコールスペーサーを介し、トリメチレンチオールを導入した構造のアプタマー）を基板表面に添加し、飽和蒸気圧下で２４時間反応させて、担持層３１にアプタマー３３を直接、チオール結合させた。次いで、アプタマー３３が結合している担持層３１を１ｍＭ６−メルカプト−１−ヘキサノールのエタノール溶液中に浸漬し、飽和蒸気圧下、２時間室温で反応させて自己組織化単分子膜３２を形成させた。次いで、エタノールで洗浄し、窒素を吹きかけて乾燥させて、標的細胞捕捉フィルター３０を作製した。
【００６７】
自己組織化単分子膜として６−メルカプト−１−ヘキサノールを用いて上記の標的細胞捕捉フィルターを用いた以外は、実施例４と同様にして、標的細胞を捕捉し、蛍光観察を行った。結果を図１７に示す。
【００６８】
図１７（ａ）は正常細胞であるＨＥＫ２９３Ｔ（ヒト胎児腎由来細胞）をＤｉＤの蛍光で観察した画像であり、図１７（ｂ）はＨＥＫ２９３ＴをＤＡＰＩの蛍光で観察した画像であり、図１７（ｃ）は（ａ）と（ｂ）をマージした画像である。図１７（ａ）〜（ｃ）より、正常細胞はあまり捕捉されていないことが確認できる。図１７（ｄ）はＭＤＡ−ＭＢ−４５３（ヒト乳癌細胞）の細胞膜をＤｉＯ蛍光で観察した画像であり、図１７（ｅ）はＭＤＡ−ＭＢ−４５３の細胞核をＤＡＰＩの蛍光で観察した画像であり、図１７（ｆ）は（ｄ）と（ｅ）をマージした画像である。図１７（ｄ）〜（ｆ）より、標的細胞であるＭＤＡ−ＭＢ−４５３（ヒト乳癌細胞）の多数の蛍光が明瞭に確認できた。図１７（ｃ）と（ｆ）を対比することによって、標的細胞のみを特異的に捕捉できたといえる。
【００６９】
なお、本実施例で使用した核酸アプタマー等の配列は以下のとおりである。
【００７０】
核酸アプタマー：
ＳＹＬ３Ｃ：５’−CACTACAGAGGTTGCGTCTGTCCCACGTTGTCATGGGGGGTTGGCCTG−３’  （配列番号１）
【産業上の利用可能性】
【００７１】
本発明の標的細胞捕捉装置は、迅速に標的細胞のみを特異的に捕捉することができ、標的細胞を捕捉した後、標的細胞捕捉フィルターを取り外して直接蛍光を観察するか、もしくは検出液に浸漬して標的細胞を検出できるため、例えばがん患者への外科手術中に病巣摘出の奏功を判断するための検査にも利用することが可能である。超高齢社会の進展による医療費の高騰という課題に対してもがんの早期発見による利点は大きく、社会のニーズに対して時適を得ており、将来性も高い。
【符号の説明】
【００７２】
１０：本体
２０：ディスポーサブル部
３０：標的細胞捕捉フィルター
３１：担持層
３２：自己組織化単分子膜
３３：アプタマー又は抗体
【図１】
0006781877.tif 000003
【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【図１７】
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【配列表】
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