【誤訳訂正書】
【提出日】平成25年5月13日(2013.5.13)
【誤訳訂正１】
【訂正対象書類名】特許請求の範囲
【訂正対象項目名】全文
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【特許請求の範囲】
【請求項１】
細胞中に内在化した複合体の結合因子をコードする核酸分子を回収する方法において：
（ａ）細胞をバクテリオファージ粒子の多様な採取群に接触させるステップであって、前記バクテリオファージ粒子の各々またはほぼ全てが、その表面に結合因子を提示しており、前記結合因子が前記バクテリオファージのファージ外被たんぱく質と融合しない(ポリ)ペプチドとして提示されており、融合しない（ポリ）ペプチドとしての該提示が、前記ファージ外被たんぱく質と前記結合因子との間の非ペプチド結合により特徴付けられ、前記非ペプチド結合がジスルフィド結合であり、前記バクテリオファージ粒子の各々またはほぼ全てが提示された結合因子をコード化する核酸分子を含むステップと；
（ｂ）前記バクテリオファージ粒子に提示された結合因子をそのターゲットへ結合させるステップであって、これによって、少なくとも一の複合体が形成され、当該各複合体が、提示した結合因子とターゲットを伴うバクテリオファージ粒子を含むステップと；
（ｃ）前記複合体の少なくとも一つを細胞中に内在化させる、温度を４℃から３７℃に上昇させる条件の下で前記細胞を培養するステップと；
（ｄ）前記ジスルフィド結合が開裂するような還元条件下で内在化されない結合因子をコードする前記核酸分子を溶融させるステップと；
（ｅ）前記内在化した複合体を含む細胞を溶融させるステップと；
（ｆ）前記内在化した複合体の少なくとも一つから取り出した結合因子をコードする前記核酸分子を前記溶融した細胞から回収するステップと；
を具えることを特徴とする方法。
【請求項２】
請求項１に記載の方法が更に、前記内在化した複合体のターゲット配列を決定するステップを具えることを特徴とする方法。
【請求項３】
請求項１に記載の方法において、前記ジスルフィド結合が、前記ファージ外被たんぱく質中に含まれる第１のシステイン残渣と、前記結合因子中に含まれる第２のシステイン残渣との間で生じることを特徴とする方法。
【請求項４】
請求項１乃至３のいずれか１項に記載の方法において、前記結合因子をコードする核酸分子の溶解した細胞からの前記回収が、ＰＣＲによって行われることを特徴とする方法。
【請求項５】
請求項２に記載の方法において、前記内在化した複合体中のターゲット配列を決定するステップが、質量分析法によって行われることを特徴とする方法。
【誤訳訂正２】
【訂正対象書類名】明細書
【訂正対象項目名】全文
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【発明の詳細な説明】
【発明の名称】内在化
【技術分野】
【０００１】
本明細書には、様々な文献が引用されている。製造者マニュアルを含めて、これらの従来技術文献の開示内容は、全体的に引用により組み込まれている。
【背景技術】
【０００２】
新しいターゲットは、正常な患者と、異常のある患者の比較及び統計的分析によって、特に、これらの患者の組織及び／又は血漿由来の血液を分析することによって、同定している。通常、比較分析は、ＤＮＡ−レベル、ＲＮＡ−レベル、タンパク質−レベル、及び翻訳後のレベル等、様々なレベルで行うことができる。共通に用いられている一つの技術は、識別的遺伝子発現分析に基づくものである。簡単に言えば、異常細胞と正常細胞の双方から抽出したｍＲＮＡを標識化し、次いで遺伝子チップにハイブリダイズさせて、定量化する。定量化信号から得られるような、識別的ｍＲＮＡｓのアップ又はダウンレギュレーションによって、新しいターゲットが明らかになる。従来技術においてよく知られているもう一つのアプローチは、正常な患者と異常のある患者から取り出したＤＮＡ分子のＤＮＡメチル化パターンの同定と比較に基づくものである。
【０００３】
しかしながら、上述のコンテキストにおいて、ＤＮＡ修飾（すなわち、ＤＮＡメチル化パターン）も、識別的遺伝子発現分析（すなわち、細胞中に発現したｍＲＮＡのレベル）のいずれも、対応するＤＮＡあるいは対応するｍＲＮＡによってコードされた特定のたんぱく質が実際に発現しているか否かを必ずしも反映するものではない。従って、識別的発現レベルの同定、すなわち、異常細胞に比較した正常細胞のたんぱく質発現パターンの定量分析及び定性分析は、興味深いものである。
【０００４】
識別的遺伝子発現分析の同定方法は、この分野の当業者には良く知られた技術である質量分析を介して次の分析を行う前記たんぱく質の差分二次元ゲル分析に基づいている。更に、ほんの数例ではあるが、この分野の当業者に知られているたんぱく質チップ、ＨＰＬＣ−及びＦＰＬＣ−関連技術の使用に基づく技術など、たんぱく質分画に基づく技術が挙げられる。
【０００５】
ファージ提示法技術は、例えば、正常ドナーから取り出した組織あるいは細胞などのサンプル上の、例えば、結合因子の発現ライブラリィなどの大きなライブラリィを除去して、例えば、異常ドナーから取り出した組織や細胞などのサンプル上のライブラリィの残留個体群を使用する可能性を提供している。除去の分析によって追跡した結合因子、すなわち、（ポリ）ペプチドターゲット、あるいは、正常組織／細胞ではなく異常組織／細胞のカウンターパートに結合している因子は、通常、ターゲット細胞（例えば、異常細胞）上に独自に（あるいは、少なくともより多く）発現しているターゲットに結合すると考えられる。更に、結合因子／（ポリ）ペプチドターゲット複合体は、例えば、この分野の当業者に良く知られている質量分析法や、たんぱく質分析法によって、同定することができる。
【０００６】
特に興味深いのは、ターゲットへの結合時に内在化する結合因子である。当業者は、結合因子が、例えば、このような、好ましくは前述した、その細胞が好ましくは異常ターゲットを発現している異常細胞の殺活をトリガする細胞に対して毒性がある物質あるいは小分子に融合できることを認識している。この分野で知られているように、内在化の対象となるターゲットが例えば異常細胞または癌細胞として同定されると、そのターゲットにより親和性が高い及び／又は前記ターゲットの内在化をトリガする潜在性がより高いさらなる結合因子を決定することが可能である。この改良された結合因子は、例えば、前記ターゲットを発現している異常細胞を治療する薬剤として考えることができる。
【０００７】
各結合因子の結合時に細胞に内在化した潜在的ターゲットを効率よく決定するためには、非内在化複合体から内在化複合体を分離することが望まれる。しかしながら、従来技術では、このような分離が定性的及び定量的に満足した状態で達成されておらず、従って、当業者は、内在化する結合因子とターゲットを決定するのに時間がかかり技術が複雑であるという問題に直面している。
【０００８】
従って、内在化した複合体と非内在化複合体を効率よく分離する方法と手順を更に発展させ、改善することが継続的に求められている。
【図面の簡単な説明】
【０００９】
【図１】図１は、Ｆａｂ結合時のターゲット内在化の効率を示すグラフである。内在化率（％）は、４℃対３７℃での細胞表面の細胞外信号比から計算した。蛍光の回収率は、４℃対３７℃での細胞外及び細胞内染色比によって測定したものであり、内在化プロセス、サポリン処理、及び／又は、染色を行う間にファージ粒子がまったく失われないか、わずかに失われることを示している。ＦａｂＡは、８０％の内在化、ＦａｂＢは２０％のみの内在化、ＦａｂＣは結合がまったくないことを示している。
【図２】図２は、ファージターゲット複合体内在化の効率と、ファージが結合した表面のＤＤＴによる除去を示すグラフである。大部分が内在化する抗原対ジスルフィド結合ＦａｂＡを介して提示しているファージの内在化と、大部分が内在化しない抗原対ジスルフィド結合ＦａｂＢを介して提示しているファージの内在化が示されている。内在化率（％）は、４℃対３７℃での細胞表面の細胞外信号比から計算した。蛍光の回収率は、４℃対３７℃での細胞外及び細胞内染色比によって測定した。
【発明を実施するための形態】
【００１０】
本発明は、一態様において、細胞中で内在化した複合体の結合因子をコード化する核酸分子を回収する方法に関するものであり、（ａ）バクテリオファージ粒子の多様な採取群に細胞を接触させるステップであって、当該バクテリオファージ粒子の各々あるいはほぼ全部がその表面上に結合因子を提示しており、前記結合因子が前記バクテリオファージ粒子のファージ外被たんぱく質と融合しない（ポリ）ペプチドとして提示されており、前記バクテリオファージ粒子の各々あるいはほぼ全てが提示された結合因子をコード化する核酸分子を具える、ステップと：（ｂ）前記バクテリオファージ粒子上に提示された結合因子をそのターゲットへ結合させ、これによって、各々がその提示した結合因子とターゲットを伴うバクテリオファージ粒子を具える少なくとも一の複合体が形成されるステップと；（ｃ）前記複合体の少なくとも一つを前記細胞中に内在化させる条件下で前記細胞を培養するステップと；（ｄ）ほとんどの細胞が溶解しないという条件下で内在化しない結合因子をコードする核酸分子を溶離させるステップと；（ｅ）前記内在化した複合体を含む細胞を溶解させるステップと；（ｆ）前記内在化した複合体の少なくとも一つから取り出した結合因子をコードする核酸分子を溶解した細胞から回収するステップとを具える。
【００１１】
「細胞」の用語は、真核細胞または原核細胞を意味する。本発明に関連して好ましいのは、哺乳類細胞である。哺乳類細胞には、正常細胞と異常細胞が含まれる。
【００１２】
本発明のコンテキストにおいて、「多様な採取群」の用語は、組成、性質、及び／又は、配列が少なくとも部分的に異なる少なくとも二つの粒子または分子の採取群を意味する。
【００１３】
本発明に関連して用いられている「バクテリオファージ粒子の多様な採取群」の用語は、複数のバクテリオファージ粒子を意味する。このような複数のファージの各因子またはほぼ全ての因子は、識別可能な結合因子を提示する。バクテリオファージ粒子の多様な採取群の生成方法は、当業者に良く知られている。
【００１４】
本発明に関連して用いられている「バクテリオファージ」の用語は、最も広い意味で解釈されるべきである。従って、本発明のコンテキストにおいて、「バクテリオファージ」の用語は、ファージを複製するのに必要な核酸を含むたんぱく質外被を有するパッケージを形成する細菌ウィルスに関連する。この核酸は、ＤＮＡ又はＲＮＡ、二重鎖または短鎖、線状または環状であってもよい。ラムダファージまたは線状ファージ（Ｍ１３、ｆｄ、あるいはｆ１）などのバクテリオファージが、この分野の当業者に良く知られている。
【００１５】
本発明のコンテキストで好ましいものは、例えば、Ｍ１３バクテリオファージなどの線状ファージである。より好ましいのは、線状バクテリオファージＶＣＳＭ１３である。本発明のコンテキストでは、「バクテリアファージ粒子」の用語は、本発明にかかる粒子、すなわち、（ポリ）ペプチド／たんぱく質を提示する粒子を意味する。
【００１６】
上述したコンテキストにおいて、バクテリオファージ粒子の多様な採取群の各々あるいはほぼ全ての因子が、結合因子を提示しており、各結合因子がその配列の少なくとも一のアミノ酸位置が異なることが好ましい。
【００１７】
本発明による「結合因子」の用語は、特定のカウンターパート又はターゲットに結合できる（ポリ）ペプチドを意味し、これによって、複合体を形成する。この用語は、本発明に関連して、とりわけ当業者に知られている骨格を具えると解される。本発明に関連する「骨格」は、共通の骨組みと少なくとも一の可変領域を有する（ポリ）ペプチドの採取群を意味する。当業者に知られている骨格には、例えば、フィブロネクチンベースの骨格や、アンキリン反復たんぱく質ベースの骨格がある。ここで使用されている「（ポリ）ペプチド」の用語は、ペプチド群並びにポリペプチド群を含む分子群を意味する。このペプチド群は、最大３０のアミノ酸を持つ分子でなり、ポリペプチド群またはたんぱく質は、３０のアミノ酸より多い分子である。本発明に関連する「（ポリ）ペプチド」の用語は、抗体または抗体断片あるいはこれらの誘導体も含むと解される。この抗体は、当業者に知られている免疫グロブリンを具えると解される。「免疫グロブリン」（Ｉｇ）は、ＩｇＧ、ＩｇＭ、ＩｇＥ、ＩｇＡ、またはＩｇＤクラス（又はそれらのサブクラス）に属するたんぱく質であり、従来知られているすべての抗体とその機能性断片を含む。ここでいう抗体／免疫グロブリンの「機能性断片」は、抗体−結合領域を有する抗体／免疫グロブリンの断片（すなわち、ＩｇＧの可変領域）として定義される。「抗体断片又はその誘導体」の用語は、短鎖抗体、あるいはその断片、合成抗体、Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ２）’、ＦｖまたはｓｃＦｖ断片などの抗体断片、単一領域抗体（ｓｉｎｇｌｅ  ｄｏｍａｉｎ  ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ）その他、あるいはこれらの化学的に修飾された誘導体を意味する。本発明によって使用されるべき抗体、あるいはその対応する免疫グロブリン鎖は、例えば、アミノ酸欠失、挿入、置換、追加、及び／又は、再構築及び／又は、この分野で知られているその他の修飾（例えば、グリコシル化やリン酸化などの翻訳後の化学的な修飾）を単独であるいは組み合わせて用いて、この分野で公知の従来技術を使用してそのモチーフ外で更に修飾することができる。このような修飾を免疫グロブリン鎖のアミノ酸配列下部のＤＮＡ配列に導入する方法は、この分野の当業者には良く知られている。Ｓａｍｂｒｏｏｋ  ｅｔ  ａｌ．；Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ；Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｐｒｅｓｓ，２ｎｄ  ｅｄｉｔｉｏｎ  １９８９  ａｎｄ  ３ｒｄ  ｅｄｉｔｉｏｎ  ２００１参照。
【００１８】
ここに記載した抗体分子の断片又は誘導体は、上述の抗体分子の部分である（ポリ）ペプチド、及び／又は、化学／生化学又は分子生物学的方法によって修飾された（ポリ）ペプチドを規定する。同じことが骨格にも適用される。相当の方法がこの分野で知られており、とりわけ研究所マニュアルに記載されている。（Ｓａｍｂｒｏｏｋ  ｅｔ  ａｌ．，ｌｏｃ  ｃｉｔ．；Ｇｅｒｈａｒｄｔ  ｅｔ  ａｌ．；Ｍｅｔｈｏｄ  ｆｏｒ  Ｇｅｎｅｒａｌ  ａｎｄ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂａｃｔｅｒｉｏｌｏｇｙ，ＡＭＳ  Ｐｒｅｓｓ，１９９４；Ｌｅｆｋｏｖｉｔｓ；Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ  Ｍｅｔｈｏｄｓ  Ｍａｎｕａｌ：Ｔｈｅ  Ｃｏｍｐｒｅｈｅｎｓｉｖｅ  Ｓｏｕｒｃｅｂｏｏｋ  ｏｆ  Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ；Ａｃａｄｅｍｉｃ  Ｐｒｅｓｓ，１９９７；Ｇｏｌｅｍｉｓ；Ｐｒｏｔｅｉｎ−Ｐｒｏｔｅｉｎ  Ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎｓ：Ａ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ  Ｍａｎｕａｌ；Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｒａｔｏｒｙ  Ｐｒｅｓｓ，２００２参照。）
【００１９】
本発明のコンテキストにおける「融合しない（ポリ）ペプチドとして提示される」の用語は、当業者に知られている従来の融合技術を介して提示されない（ポリ）ペプチドを意味する。従来の提示は、例えば、融合たんぱく質が２つの遺伝子の融合からの発現生成物となる遺伝子融合によって達成することができる。当業者は、このような従来技術の融合たんぱく質は、ハイブリッド遺伝子の発現によって作られるハイブリッドまたはキメラたんぱく質と呼ばれており、遺伝子工学によってできるものであり、好ましくは二つの遺伝子配列が組み合わされていることを認識している。
【００２０】
本発明に関連する「ファージ外被たんぱく質」の用語は、当業者に良く知られているファージから取り出したファージ外被たんぱく質のみならず、これから取り出した断片も含むと考えられる。この断片は、バクテリオファージ粒子のたんぱく質外被に組み込むことができる。
【００２１】
本発明に関連して使用されている「ターゲット」の用語は、（ｉ）結合因子を結合できる細胞上に発現した（ポリ）ペプチド、又は、（ｉｉ）細胞内に内在化することができる分子を意味し、これは結合因子を結合することができる。好ましいのは、細胞表面レセプタであり、より好ましいのは、レセプタチロシンキナーゼである。このターゲットは、当業者に知られていない、同定されていない、あるいは、自体が知られているが内在化能力のコンテキストでは知られていないターゲットを含む。少なくとも一の潜在的なターゲットを発現する細胞も、本発明に関連して、「ターゲット細胞」と呼ばれる。
【００２２】
「少なくとも一の複合体を細胞内に内在化させる」の用語は、細胞内に複合体の内在化をトリガする当業者によく知られた技術を意味する。好ましいのは、例えば、温度を４℃から３７℃に上げるなどの、温度シフトによる技術である。
【００２３】
本発明に関連して使用されている「ほとんどの細胞が溶解していない状態で内在化しない結合因子をコード化する核酸分子の溶解」の用語における  「ほとんどの細胞が溶解していない」の用語は、約５０％より少なく、好ましくは約４０％より少なく、より好ましくは約３０％より少なく、より好ましくは約２０％より少なく、より好ましくは１０％より少なく、より好ましくは約５％より少なく、さらにより好ましくは約１％より少ない細胞が溶解しており、最も好ましくは細胞がまったく溶解していない、と解するべきである。
【００２４】
本発明に関連して使用されている「内在化した複合体を含む細胞の溶解」の用語は、当業者に知られている細胞を溶解させるあらゆる技術を含む。哺乳類の細胞については、トリエチルアミンの存在による溶解が好ましい。
【００２５】
上記の及びその他の用語で概略を述べたとおり、本発明は、当業者が信頼性をもって効率よく内在化した複合体と非内在化複合体を区別できる方法を提供することによって、上述の技術的課題を解決している。融合たんぱく質に基づく提示技術を用いた場合、内在化複合体と非内在化複合体の分離は、通常、親和性の高い結合因子をなくすためにも、ｐＨ−又は塩勾配を用いるなどにより、適宜の緩衝剤を用いて、強い溶解ステップを適用することによって達成することができる。予測できない細胞溶解事象の結果、内在化複合体と非内在化複合体の混合が生じ、さらなる分析が複雑なものになるか、あるいは、妨げられることさえある。本発明は、例えば、緩やかな溶解条件と結合因子とターゲット間の特定の親和性の独立性といった、非溶融提示システムの利点を複合体の内在化の分野に取り入れることによって、上述の事態を克服している。
【００２６】
好ましい実施態様では、本発明の方法は更に、内在化した複合体のターゲット配列を決定するステップを具える。当業者は、内在化した複合体のターゲット配列を決定する方法を認識している。好ましくは、（ポリ）ペプチドターゲットのアミノ酸配列を決定する技術を意図している。以下の実施態様もを参照されたい。
【００２７】
本発明の方法の更なる好ましい実施態様では、融合しない（ポリ）ペプチドとしての前記提示は、ファージ外被たんぱく質と結合因子との間の非ペプチド結合によって特徴付けられる。
【００２８】
本発明の方法のより好ましい実施態様では、この非ペプチド結合はジスルフィド結合である。
【００２９】
本発明の最も好ましい実施態様では、このジスルフィド結合が前記ファージ外被たんぱく質中に含まれる第１のシステイン残渣と前記結合因子中に含まれる第２のシステイン残渣の間で発生する。
【００３０】
本発明の方法のもう一つの最も好ましい実施態様では、前記内在化していない結合因子をコード化している核酸分子の溶解が、前記ジスルフィド結合が開裂した還元条件下で行われる。
【００３１】
この実施態様及び前の実施態様は、ジスルフィド結合がアタッチメントに関与している状態を意味する。上述のシステムの詳細は、国際特許出願ＷＯ０１／０５９５０に開示されており、この内容は、本明細書に明確に組み込まれる。
【００３２】
本発明の方法の好ましい実施態様では、結合因子をコードしている前記核酸分子の溶解細胞からの回収が、ＰＣＲによって行われる。本実施態様のコンテキストでは、例えば、対象となる結合因子を増幅することができるＰＣＲプライマを用いることができる。ポリメラーゼ鎖反応（ＰＣＲ）による核酸分子の増幅用の特定のプライマに基づく技術は、当業者には良く知られている。
【００３３】
本発明の方法の更なる実施態様では、内在化した複合体中のターゲット配列を決定するステップが質量分析法で行われる。
【００３４】
当業者は、溶解細胞核酸分子からの回収及び複合体中の（ポリ）ペプチドの配列を決定する技術に関して認識している。
【００３５】
本発明は、また、本発明の方法によって得られるターゲット及び／又は結合因子に関する。
【００３６】
最後に、本発明は、毒性物質を細胞中に送達する方法に関し、この方法は、（ａ）請求項１の回収した核酸分子によってコードした（ポリ）ペプチドを得るステップと、（ｂ）この毒性物質を請求項１の回収した核酸分子によってコードした前記（ポリ）ペプチドと結合させるステップと、（ｃ）ステップ（ｂ）から得た毒性物質を細胞に投与するステップとを具え、前記毒性物質の細胞中への内在化をトリガする。
【００３７】
上述したとおり、また、換言すると、本発明は、結合因子及び／又は細胞中に内在化する可能性を有するターゲットを同定するのに用いることができる。好ましくは、上記に説明したとおり、前記結合因子及び／又はターゲットは、例えば、癌細胞などの異常細胞の殺活に適用することができる。しかし、当業者に知られており、結合因子と細胞内に内在化させることができるターゲットの同定に基づくアプリケーションは、本発明の範囲に含まれると解される。
【００３８】
以下の実施例により本発明を説明するが、これは、限定を意味するものではない。
【実施例】
【００３９】
実施例１
本発明の方法を使用して、内在化ターゲットを同定する実験手順である。
【００４０】
ターゲット及びコントロール細胞の準備
１．ターゲット細胞（トランスフェクトまたは抗原陽性）と、コントロール細胞（偽トランスフェクトまたは抗原陰性）３ｘを５％ＦＣＳ１／ＰＢＳ２で、又は、細胞が固定される場合はＰＢＳで洗浄する（２．２．３参照）。
（１ＦＣＳ；ウシ胎児血清；０．１μｍ滅菌フィルタした、マイクロプラズマ試験をした。ＰＡＮ  ＢｉｏｔｅｃｈＧｍｂＨ、Ａｉｄｅｎｂａｃｈ、＃３３０２−Ｐ９７６１０（又は、そのほかのサプライヤから入手したマイクロプラズマテストを行ったＦＣＳ)
（２ＰＢＳ  Ｄｕｌｂｅｃｃｏ‘ｓ：ｗ／ｏカルシウム及びマグネシウム、及びｗ／ｏ重炭酸ナトリウム、Ｇｉｂｃｏ  ＢＲＬ  Ｌｉｆｅ  Ｔｅｃｈｏｎｏｌｏｇｉｅｓ、＃１４１９０−０９４）
Ｃａ２＋を全ての緩衝液に加えなくてはならない場合は、ＴＢＳ又はＨＢＳを使用すべきである（セクション１．３参照；カルシウム−リン酸としてリン酸の存在下では、カルシウムが沈殿する）。
２．ターゲット細胞を計数し、各選択について、２ｍｌの微小遠心管内で５％ＦＣＳ／ＰＢＳ１ｍｌ中５ｘ１０６乃至１ｘ１０７に調整する。
３．次に続くステップを氷上４℃の適宜の温度で２時間維持し、４℃のオーバーヘッドローテータでブロッキングする。
４．結合させたライブラリファージのファージ滴定濃度を１ｍｌ５％ＦＣＳ／ＰＢＳ（＋補液）中１−２ｘ１０１３ファージに調整する。４℃で２時間インキュベートして、オーバーヘッドローテータ上でファージをブロックする。
【００４１】
ターゲット細胞の選択
５．ブロックしたターゲット細胞を２０００ｒｐｍで２分間遠心分離して、予めファージを吸収させた溶液０．５−１ｍｌに再懸濁させる。
６．ロッカ上で、４℃で２時間インキュベートする。
７．細胞を２０００ｒｐｍで２分間スピンにかける。
８．浮遊物をピペットで注意深く取り出して、廃棄する。
９．第１洗浄：ピペットを用いて１ｍｌ  ５％ＦＣＳ／ＰＢＳ（＋補液）中に細胞ペレットを注意深く再懸濁させる。
１０．４℃で５分間インキュベートさせる。
１１．細胞を２０００ｒｐｍで２分間スピンにかける。
１２．浮遊物をピペットで注意深く取り出して、廃棄する。
１３．第２洗浄：ピペットを用いて１ｍｌ  ５％ＦＣＳ／ＰＢＳ（＋補液）中に細胞ペレットを注意深く再懸濁させる。
１４．生細胞は４℃で、あるいはロッカ上の固定細胞は２０℃で、５分間インキュベートする。
１５．細胞を２０００ｒｐｍで２分間スピンにかける。
１６．浮遊物をピペットで注意深く取り出して、廃棄する。
１７．第３洗浄：ピペットを用いて１ｍｌ  ５％ＦＣＳ／ＰＢＳ（＋補液）中に細胞ペレットを注意深く再懸濁させる。５％ＦＣＳ／ＰＢＳ３でブロックした細胞を新しい無菌の２ｍｌ管に移す。
（３このステップは、選択した管に特に結合しないファージが再び強化することを防ぐ）
１８．生細胞は４℃で、あるいはロッカ上の固定細胞は２０℃で、５分間インキュベートする。
１９．細胞を２０００ｒｐｍで２分間スピンにかける。
２０．浮遊物をピペットで注意深く取り出して、廃棄する。
【００４２】
ファージの内在化
２１．ピペットを用いて１ｍｌ、５％ＦＣＳ／ＰＢＳ（＋補液）中に細胞ペレットを注意深く再懸濁させる。
２２．温度を３７℃に上げて、３０分間インキュベートする。
【００４３】
被内在化ファージの除去
２３．１０ｍＭ  Ｔｒｉｓ／ＨＣｌ  ｐＨ８．０中の３００μｌ２０ｍＭ  ＤＴＴ（このＤＴＴは常に−２０℃で保存しなければならない。溶液の多発凍結及び融解を防ぐ。）細胞に加え、ＲＴ（ＨｕＣＡＬ  ＧＯＬＤ（登録商標）ライブラリィに推奨されるＤＴＴの溶解に代えて、従来の溶解法も使用できる（例えば、Ｋｒｅｂｓ  ｅｔ  ａｌ．，２００１を参照））で１０分間インキュベートさせ、２０００ｒｐｍで２分間スピンに掛けて、浮遊物を廃棄する。
２４．第４洗浄：ピペットを用いて１ｍｌ  ５％ＦＣＳ／ＰＢＳ（＋補液）中に細胞ペレットを注意深く再懸濁させる。
２５．４℃で、５分間インキュベートする。
２６．細胞を２０００ｒｐｍで２分間スピンにかける。
２７．浮遊物をピペットで注意深く取り出して、廃棄する。
２８．第５洗浄：ピペットを用いて１ｍｌ  ５％ＦＣＳ／ＰＢＳ（＋補液）中に細胞ペレットを注意深く再懸濁させる。
２９．生細胞は４℃で、あるいはロッカ上の固定細胞はで２０℃で、５分間インキュベートする。
３０．細胞を２０００ｒｐｍで２分間スピンにかける。
３１．浮遊物をピペットで注意深く取り出して、廃棄する。
【００４４】
内在化したファージの回収
３２．５００μｌ  １００ｍＭトリエチルアミン（１０ｍｌ  ＰＢＳ中の１４０μｌ  ＴＥＡ）を加えて、ＲＴで１０分間インキュベートさせる（セルは即刻溶融する傾向にある）。４００μｌ  １ＭＴｒｉｓ  ｐＨ７．０を加えて、中和する。中和後に、ｐＨ指示スティックを用いてｐＨをチェックする。
３３．溶出液を用いて、ＴＧ１を感染させる（ＤＷＣＰ）。
３４．標準的な手順によって、クローンを発現しているＦａｂを同定し、発現させる。
【００４５】
実施例２
抗原Ａ、Ｂ及びＣを試験して細胞の罹患率を調べ、ＦａｂＡ、Ｂ、Ｃを試験して内在化特性を調べた。
【００４６】
材料及び方法
試験に用いたＦａｂ：
Ｆａｂ＿Ｃ＿ＦＨ（リゾチーム結合剤、陰性コントロール）
Ｆａｂ＿Ｂ＿ＦＳ（ＩＣＡＭ結合剤、非内在化コントロール）
Ｆａｂ＿Ａ＿ＦＨ（抗原Ａ、内在化）
Ｆａｂｓは１μｇ／ｍｌで試験を行った。
【００４７】
細胞：
ＮＣＩ  Ｈ２２６：肺がん細胞
１ｘ１０Ｅ５  細胞／測定
【００４８】
その他の材料：
１０％サポリン：１ｇサポリンを１０ｍｌ  ＰＢＳに溶解させ、０．５％サポリン／ＰＢＳとし、４℃で保存した。
４％ＰＦＡ：原液１６％をＰＢＳ中で１：４に希釈した。原液：１６％ｗ/ｖのＡｌｐｈａ  Ａｅｓａｒ，ＬｏｔＥ１０Ｓ０１５
ＦＡＣＳ緩衝液（ＦＢ）：ＰＢＳ／３％ＦＣＳ、４℃で保存
ヤギ抗ヒトＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）−ＰＥ、Ｊａｃｋｓｏｎ  Ｄｉａｎｏｖａ、１０９−１１６−０８８、ＦＡＣＳ緩衝液（ＰＢＳ／３％ＦＣＳ）中で１：２００で希釈した。
【００４９】
手順：
１．１００μｌのＦａｂ（１μｇ／ｍｌ）を、ＦＡＣＳ緩衝液で２．５＊１０６ＮＣＩ  Ｈ２２６細胞のペレットに加えて、氷上で一時間インキュベートした。２００μｌ  ＦＡＣＳ緩衝液を用いて細胞を２回洗浄し、遠心分離（２０００ｒｐｍ）に掛けて、２００μｌの媒体中に再懸濁させた。
２．１００μｌを９６ウエルプレートに移して、４℃で１時間、更に、氷上で１０分間インキュベートした。
３．２００μｌ  ＦＡＣＳ緩衝液で細胞を２回洗浄した；２００ｒｐｍ
４．２００μｌ  ＦＡＣＳ緩衝液に再懸濁させて、２回、１００μｌに分けて、１２００ｒｐｍで２分間遠心分離を行った。
【００５０】
非内在化条件（４℃）
細胞外染色：
５．細胞を１００μｌのヤギ抗ヒトＩｇＧ−ＰＥと共に再懸濁させ、４℃で１時間インキュベートして、２００μｌ  ＦＡＣＳ緩衝液で２回洗浄した；２００ｒｐｍ
６．１００μｌＦＡＣＳ緩衝液に再懸濁させた
７．次いで、ＦＡＣＳをＢＤ  ＦＡＣＳＡＲＲＡＹ  ＦＳＣ５０上で測定した；ＳＳＣ；２８０；黄色４２０
【００５１】
細胞内染色：
８．ステップ（４）の細胞を１００μｌ  ４％ＰＦＡに、４℃で、３０分再懸濁させた。
９．２００μｌ  ＦＡＣＳ緩衝液で細胞を２回洗浄した；２０００ｒｐｍ
１０．０．５％のサポリンに、ＲＴで１０分間細胞を再懸濁させた。
１１．１００μｌ抗ヒトＩｇＧ−ＰＥを加え、ＲＴで１時間インキュベートした。
１２．０．５％のサポリンを用いて、２００ｒｐｍで細胞を２回洗浄した。
１３．１００μｌのＦＡＣＳ緩衝液に再懸濁させた。
１４．ＢＤ  ＦＡＣＳＡＲＲＡＹ  ＦＳＣ５０で、ＦＡＣＳを測定した；ＳＳＣ；２８０；黄色４２０
【００５２】
内在化条件（３７℃）
細胞外染色
１５．ステップ（４）の細胞を１００μｌのヤギ抗ヒトＩｇＧ−ＰＥを用いて再懸濁させ、３７℃で１時間インキュベートし、２００μｌ  ＦＡＣＳ緩衝液で２回洗浄した；２００ｒｐｍ
１６．１００μｌ  ＦＡＣＳ緩衝液に再懸濁させた。
１７．ＢＤ  ＦＡＣＳＡＲＲＡＹ  ＦＳＣ５０で、ＦＡＣＳを測定した；ＳＳＣ；２８０；黄色４２０
【００５３】
細胞内染色：
１８．ステップ（４）の細胞を１００μｌ  ４％ＰＦＡに、４℃、３０分再懸濁させた。
１９．２００μｌ  ＦＡＣＳ緩衝液で細胞を２回洗浄した；２０００ｒｐｍ
２０．０．５％のサポリンに細胞を再懸濁させた、ＲＴ１０分
２１．１００μｌ抗ヒトＩｇＧ−ＰＥを加え、ＲＴで１時間インキュベートした。
２２．０．５％のサポリンを用いて、細胞を２回洗浄した；２００ｒｐｍ
２３．１００μｌのＦＡＣＳ緩衝液に再懸濁させた。
２４．ＢＤ  ＦＡＣＳＡＲＲＡＹ  ＦＳＣ５０で、ＦＡＣＳを測定した；ＳＳＣ；２８０；黄色４２０
【００５４】
結果
図１に示すように、ＦａｂターゲットＢ複合体は２０％内在化したのみであったのに対して、ＦａｂターゲットＡは、８０％内在化した。内在化手順、細胞の透過化、及び染色は、全体のファージ数に影響を及ぼさなかった。
【００５５】
実施例３
細胞外結合ファージのＤＴＴ開裂によるファージ内在化の充実
【００５６】
材料及び方法
試験に用いたファージ：
ＦａｂＡ、Ｂ、Ｃをコードした遺伝子（実施例１を参照）をＣｙｓ−Ｄｉｓｐｌａｙベクタ中でサブクローン化し、ｐＭＯＲＰＨ２３とＶＣＳＭ１３由来のファージを、標準的手順に従って生成した。
ファージ＿Ｆａｂ＿Ｃ（リゾチーム結合剤、陰性コントロール）
ファージ＿Ｆａｂ＿Ｂ（ＩＣＡＭ結合剤、非内在化コントロール）
ファージ＿Ｆａｂ＿Ａ（抗原Ａ、内在化）
１ｘ１０Ｅ１０ファージを各々使用した。
【００５７】
ストリッピング：
１０ｎＭ  Ｔｒｉｓ／ＨＣｌ  ｐＨ８．０中２０ｍＭ  ＤＴＴ、Ｒｏｃｈ  Ｃａｔ＃１５８３７８６
【００５８】
抗体：
抗Ｍ１３ｍａｂ：Ａｍｅｒｓｈａｍ  Ｂｉｏｓｃｅｉｅｎｃｅｓ，２７−９４２０−０１，１ｍｇ／ｍｌ，をＦＡＣＳ緩衝液ＦＢ（ＰＢＳ／３％ＦＣＳ）１μｇ／ｍｌで希釈した。
ヤギ抗マウスＩｇＧ  Ｆｃガンマフラグメント特異的ＰＥ，Ｊａｃｋｓｏｎ  Ｄｉａｎｏｖａ，１１５−１１６−０７１，Ｒ１４を，ＦＡＣＳ緩衝液（ＰＢＳ／３％ＦＣＳ）で１：２００に希釈した。
【００５９】
細胞：
ＮＣＩ  Ｈ２２６：  肺がん細胞
１ｘ１０Ｅ５  細胞／測定
【００６０】
その他の材料：
１０％サポリン：１ｇサポリンを１０ｍｌ  ＰＢＳに溶解させ、０．５％  サポリン／ＰＢＳとした。
４％ＰＦＡ：原液１６％をＰＢＳ中で１：４に希釈した。原液：１６％ｗ/ｖのＡｌｐｈａ  Ａｅｓａｒ，Ｌｏｔ  Ｅ１０Ｓ０１５
ＦＡＣＳ緩衝液（ＦＢ）：ＰＢＳ／３％ＦＣＳ
ヤギ抗マウスＩｇＧ  Ｆｃガンマフラグメント特異的−ＰＥ，Ｊａｃｋｓｏｎ  Ｄａｉｎｏｖａ，１１５−１１６−０７１，Ｒ１４を，ＦＡＣＳ緩衝液（ＰＢＳ／３％ＦＣＳ）中に１：２００で希釈した。
【００６１】
手順：
１．１ｘ１０Ｅ１０ファージを、ＦＡＣＳ緩衝液中の５＊１０４ＮＣＩ  Ｈ２２６細胞ペレットに加え、４℃で一時間インキュベートした。細胞を４００μｌ  ＦＡＣＳ緩衝液で２回洗浄し、遠心分離して（２０００ｒｐｍ）、６００μｌの媒体に再懸濁させた。
【００６２】
非内在化条件（４℃）
２．２ｘ１００μｌを９６ウエルプレートに移して、４℃で１時間、更に氷上で５分間インキュベートした。
３．細胞を２００μｌのＦＡＣＳ緩衝液で２回洗浄した；２００ｒｐｍ
４．２００μｌのＦＡＣＳ緩衝液中に再懸濁させ、２０００ｒｐｍで２分間遠心分離した。
５．一のコントロールアリコート１００μｌ中に再懸濁させ、第２のアリコートを５０μｌ  ＤＤＴ中に再懸濁させた。
６．細胞を氷上で５分間保存し、２００μｌＦＡＣＳ緩衝液を用いて、１２００ｒｐｍで２回洗浄した。
７．５０μｌの抗−Ｍ１３抗体（５μｇ／ｍｌ  ＦＡＣＳ緩衝液）に細胞を再懸濁させた。
８．細胞を４℃で、４５分間インキュベートした。
９．細胞を２００μｌ  ＦＡＣＳ緩衝液で２回洗浄した。
１０．細胞を１００μｌのヤギ抗マウスＩｇＧ  Ｆｃガンマフラグメント特異的−ＰＥに再懸濁させた（１：１００）。
１１．細胞を２００μｌ  ＦＡＣＳ緩衝液で２回洗浄した。
１２．ＦＡＣＳをＢＤ  ＦＡＣＳＡＲＲＡＹ  ＦＳＣ１０上で測定した；ＳＳＣ３３５；黄色３３０
【００６３】
内在化条件（３７℃）
１３．２ｘ１００μｌを９６ウエルプレートに移して、３７℃で１時間、更に氷上で５分間インキュベートした。
１４．細胞を２００μｌ  ＦＡＣＳ緩衝液で２回洗浄した；２００ｒｐｍ
１５．２００μｌ  ＦＡＣＳ緩衝液に再懸濁させ、２０００ｒｐｍで２分間遠心分離した。
１６．一のコントロールアリコート  １００μｌ中に再懸濁させ、第２のアリコートを５０μｌ  ＤＤＴ中に再懸濁させた。
１７．細胞を氷上で５分間保存し、２００μｌ  ＦＡＣＳ緩衝液、１２００ｒｐｍで２回洗浄した。
１８．５０μｌ抗−Ｍ１３抗体（５μｇ／ｍｌ  ＦＡＣＳ緩衝液）に細胞を再懸濁させた。
１９．細胞を４℃で４５分間インキュベートした。
２０．２００μｌ  ＦＡＣＳ緩衝液で細胞を２回洗浄した。
２１．１００μｌ  ヤギ抗マウスＩｇＧ  Ｆｃガンマフラグメント特異的−ＰＥ（１：１００）に細胞を再懸濁させた。
２２．２００μｌ  ＦＡＣＳ緩衝液で細胞を２回洗浄した。
２３．ＦＡＣＳを、ＢＤ  ＦＡＣＳＡＲＲＡＹ  ＦＳＣ１０上で測定した；ＳＳＣ３３５；黄色３３０
【００６４】
結果：
実験条件（４℃又は３７℃で、ＤＴＴを用いて／用いることなく）の下で、細胞は無傷であった。予想通り、ＦａｂＣに関連するファージの細胞結合は検出できなかった。
図２に示すように、約６５％のファージＡと、２０％のファージＢが、温度が４℃から３７℃に上がると内在化した。
【００６５】
細胞の表面のファージは、４℃で、２０ｍＭ  ＤＴＴを用いた５分間のトリートメントで、細胞の完全性に影響することなく、効果的に剥がすことができる。
【００６６】
内在化時にＤＴＴを加えることで、表面結合ファージが剥がれた一方、内在化したファージは無傷のまま残り、内在化ターゲットへのファージの結合が促進された。