(57)【要約】      （修正有）【課題】巨大分子の溶解度およびフォーカシングにかかわる改良が、チオール含有還元剤を含有する類似の等電点電気泳動媒質中における同一巨大分子の等電点電気泳動に比較して増強するものを提供する。【解決手段】等電点電気泳動による巨大分子の改良された分離方法に関し、この方法は、チオールを実質的に含有しない還元剤、好ましくは三価リン化合物、さらに好ましくはトリブチルホスフィンを含有する等電点電気泳動媒質中で、巨大分子を電気泳動に付すことを包含する。巨大分子の溶解度およびフォーカシングにかかわる改良が、チオール含有還元剤を含有する類似の等電点電気泳動媒質中における同一巨大分子の等電点電気泳動に比較して増強される。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
等電点電気泳動による巨大分子の分離方法であって、チオールを実質的に含有しない還元剤を含有する等電点電気泳動媒質中で、巨大分子を電気泳動に付すことを包含する方法。
【請求項２】
チオールを実質的に含有しない還元剤が、三価リン化合物である、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
三価リン化合物が、トリス（ペンタフルオロフェニル）ホスフィン、４−（ジメチルアミノ）フェニル−ジフェニル−ホスフィン、トリス（４−フルオロフェニル）ホスフィン、トリ（ｏ−トリル）ホスフィン、ジフェニル（メトキシメチル）ホスフィンオキサイド、トリ（ｍ−トリル）ホスフィン、トリ（ｐ−トリル）ホスフィン、トリエチルホスフィン、トリス（ジエチルアミノ）ホスフィン、トリス（ジメチルアミノ）ホスフィン、トリブチルホスフィン、およびトリス（２−カルボキシエチル）ホスフィンからなる群から選択される、請求項２に記載の方法。
【請求項４】
三価リン化合物が、トリブチルホスフィンである、請求項３に記載の方法。
【請求項５】
チオールを含有しない還元剤の濃度が、０．１〜２００ｍＭである、請求項１〜４のいずれか一項に記載の方法。
【請求項６】
チオールを含有しない還元剤の濃度が、１〜１０ｍＭである、請求項５に記載の方法。
【請求項７】
巨大分子の等電点電気泳動を、チオール含有還元剤が実質的に存在しない条件下に行う、請求項１〜６のいずれか一項に記載の方法。
【請求項８】
チオールを含有しない還元剤が、固定化した形態である、請求項１〜７のいずれか一項に記載の方法。
【請求項９】
二次元ポリアクリルアミドゲル電気泳動（２Ｄ−ＰＡＧＥ）による巨大分子の分離方法であって、
（ａ）チオールを実質的に含有しない還元剤を含有する等電点電気泳動媒質中で巨大分子を電気泳動に付すことによって、第一次元ゲルにおける等電点電気泳動により巨大分子を分離し；
（ｂ）場合により、（ａ）により第一次元ゲルにおいて分離された巨大分子を、チオールを含有しない還元剤およびアルキル化剤を存在させて、全部の遊離チオールが除去され、そしてシステインとの混合付加物が実質的に形成されないように、平衡化し；次いで
（ｃ）ポリアクリルアミドゲル電気泳動によって、巨大分子をさらに分離する；ことを包含する方法。
【請求項１０】
チオールを実質的に含有しない還元剤が、三価リン化合物である、請求項９に記載の方法。
【請求項１１】
三価リン化合物が、トリス（ペンタフルオロフェニル）ホスフィン、４−（ジメチルアミノ）フェニル−ジフェニル−ホスフィン、トリス（４−フルオロフェニル）ホスフィン、トリ（ｏ−トリル）ホスフィン、ジフェニル（メトキシメチル）ホスフィンオキサイド、トリ（ｍ−トリル）ホスフィン、トリ（ｐ−トリル）ホスフィン、トリエチルホスフィン、トリス（ジエチルアミノ）ホスフィン、トリス（ジメチルアミノ）ホスフィン、トリブチルホスフィン、およびトリス（２−カルボキシエチル）ホスフィンからなる群から選択される、請求項１０に記載の方法。
【請求項１２】
三価リン化合物が、トリブチルホスフィンである、請求項１１に記載の方法。
【請求項１３】
チオールを含有しない還元剤の濃度が、０．１〜２００ｍＭである、請求項９〜１２のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１４】
チオールを含有しない還元剤の濃度が、１〜１０ｍＭである、請求項１３に記載の方法。
【請求項１５】
（ａ）における巨大分子の等電点電気泳動を、チオール含有還元剤が実質的に存在しない条件下に行う、請求項９〜１４のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１６】
チオールを含有しない還元剤が、固定化された形態である、請求項９〜１５のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１７】
アルキル化剤が、アクリルアミド、蛍光剤、Ｎ−アクリロイルアミノエトキシエタノール、アクリルアミド−Ｎ，Ｎ−ジエトキシエタノール、Ｎ−アクリロイル−トリス（ヒドロメチル）アミノメタン、アクリルアミド糖類、例えばＮ−アクリロイル（またはメタアクリロイル）−１−アミノ−デオキシ−Ｄ−グリシトールまたは対応するＤ−キシリトール誘導体、およびＮ，Ｎ−ジエチルアクリルアミドからなる群から選択される、請求項９〜１６のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１８】
アルキル化剤が、アクリルアミドである、請求項１７に記載の方法。
【請求項１９】
アクリルアミドの濃度が、０．１〜５％（ｗ／ｖ）である、請求項１８に記載の方法。
【請求項２０】
アクリルアミドの濃度が、２．５％（ｗ／ｖ）である、請求項１９に記載の方法。
【請求項２１】
蛍光剤が、ハロアセチル誘導体、マレイミド化合物およびミセル状スルフヒドリル試薬からなる群から選択される、請求項１７に記載の方法。
【請求項２２】
蛍光剤が、マレイミド蛍光剤である、請求項２１に記載の方法。
【請求項２３】
蛍光剤の濃度が、０．０１〜２０ｍＭである、請求項２１または２２のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２４】
蛍光剤の濃度が、０．２５ｍＭである、請求項２３に記載の方法。
【請求項２５】
（ｂ）における任意の平衡化を、ヨウドアセトアミドが実質的に存在しない条件下に行う、請求項９〜２４のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２６】
巨大分子の電気泳動分離における、チオールを含有しない還元剤の使用。
【請求項２７】
チオールを含有しない還元剤が、三価リン化合物である、請求項２６に記載の使用。
【請求項２８】
三価リン化合物が、トリス（ペンタフルオロフェニル）ホスフィン、４−（ジメチルアミノ）フェニル−ジフェニル−ホスフィン、トリス（４−フルオロフェニル）ホスフィン、トリ（ｏ−トリル）ホスフィン、ジフェニル（メトキシメチル）ホスフィンオキサイド、トリ（ｍ−トリル）ホスフィン、トリ（ｐ−トリル）ホスフィン、トリエチルホスフィン、トリス（ジエチルアミノ）ホスフィン、トリス（ジメチルアミノ）ホスフィン、トリブチルホスフィン、およびトリス（２−カルボキシエチル）ホスフィンからなる群から選択される、請求項２７に記載の使用。
【請求項２９】
三価リン化合物が、トリブチルホスフィンである、請求項２８に記載の使用。
【請求項３０】
チオールを含有しない還元剤が、固定化された形態である、請求項２６〜２９のいずれか一項に記載の使用。
【請求項３１】
請求項１〜８のいずれか一項に記載の方法により分離された巨大分子。
【請求項３２】
請求項９〜２５のいずれか一項に記載の方法により分離された巨大分子。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ゲル電気泳動の分野に関し、特に二次元ポリアクリルアミドゲル電気泳動用の改良された分離方法およびゲルに関する。
【背景技術】
【０００２】
二次元（ｔｗｏ−ｄｉｍｅｎｓｉｏｎａｌ）ポリアクリルアミドゲル電気泳動（２Ｄ−ＰＡＧＥ）は、７０年代初めに、第一次元（ｆｉｒｓｔ  ｄｉｍｅｎｓｉｏｎ）における等電点電気泳動（ＩＥＦ）と第二次元におけるドデシル硫酸ナトリウムポリアクリルアミドゲル電気泳動（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）の組合わせ方法が公開されて以来、広く使用されてきた。２Ｄ−ＰＡＧＥは、高分割性分離を提供するが、慣用の担体両性電解質ＩＥＦ（ＣＡ−ＩＥＦ）を用いては、分離用（ｐｒｅｐａｒａｔｉｖｅ）タンパク質装填の達成は困難である。担体両性電解質が発現したｐＨ勾配はゲルに固定されず、その結果として、この勾配は、崩壊傾向を有する。ＣＡ−ＩＥＦが付随する主要問題は、勾配の流動（ドリフト）および低緩衝力にあり、これは貧弱な再現性および小さいタンパク質収容能力を導く。ＣＡ−ＩＥＦでは、ｐＨ勾配の流動はしばしば、試料中の全部のタンパク質が、位置をフォーカシング（ｆｏｃｕｓｉｎｇ）する定常状態に到達する以前に、当該勾配を崩壊させる。固定化されたｐＨ勾配（ＩＰＧ）を導入することによって、ＣＡ−ＩＥＦが付随する問題は解消され、２Ｄ−ＰＡＧＥを、エドマン（Ｅｄｍａｎ）配列決定、アミノ酸分析およびマススペクトロメトリー（質量分析）などの分析のためのタンパク質の分離精製方法として選択される方法にした［１，２］。
【０００３】
ＩＰＧから第二次元ゲルへのタンパク質の貧弱な移動が報告されており［３］、最近、ＩＰＧを用いた２Ｄ−ＰＡＧＥによってタンパク質を分離した場合、この損失が報告された［４］。これらの損失は、その等電点または等電点付近におけるＩＰＧマトリックスへのタンパク質吸着に反映し、また担体両性電解質を用いるＩＥＦが第一次元用に用いられた場合、これらの損失は見出されなかった［４］。ＩＰＧマトリックスへのタンパク質吸着は多分、アクリルアミド緩衝性基との疎水性相互反応によるものである。最近の報告は、ＩＰＧにおけるタンパク質の縞形成（ｓｔｒｅａｋｉｎｇ）は、疎水性ｐＫ７．０アクリルアミド緩衝剤のレベルに直接に関連することを示した［５］。
【０００４】
タンパク質とアクリルアミド緩衝剤との間の相互反応は、タンパク質をゼロの正味の電荷を有するｐＨにする、すなわちタンパク質を定常状態に到達させるのに要する延長されたフォーカシング期間中に生起することがある。さらに、ＣＡ−ＩＥＦに比較して、ＩＰＧで見出されるタンパク質の不溶性は、ＩＰＧにおける最適のフォーカシングに要求される非常に長い操作期間中のジチオスレイトール（ＤＴＴ）の消失により部分的に引き起こされることがある。ＤＴＴ上のチオール基は、ＩＥＦ期間中にイオン化され、これが電極へのＤＴＴの輸送を生じさせる。ＩＥＦ期間中にＤＴＴ濃度が低下すると、或る種のタンパク質は、その内部鎖ジスルフィド結合の再形成の結果として、ほとんど不溶になる。ＩＰＧにおけるＩＥＦ後、フォーカシングされたタンパク質の溶解度を増加させ、また第二次元ゲルへの移動を促進させるために、ＩＰＧストリップは通常、１または２％ＤＴＴ、６Ｍ尿素、２％ＳＤＳ、２０％グリセロールおよびトリス（Ｔｒｉｓ）緩衝剤（ｐＨ６．８）の溶液中で１０〜１５分間平衡化する［３］。ＳＤＳと組合わされた尿素のカオトロピック作用は、タンパク質とＩＰＧマトリックスとの間の疎水性相互反応を破壊する。ＩＰＧにおいて、再−架橋することができるタンパク質の再−可溶化には、高濃度のＤＴＴが要求される。
【０００５】
正しいＳＤＳ結合を得るためには、タンパク質が、折り畳まれず、また全部のスルフィド結合が破壊されることが必須である。第二の平衡化工程を行い、そしてＤＴＴの代わりに、遊離のチオール基をアルキル化し、これにより過剰のＤＴＴを分離する、２〜４％のヨウドアセトアミドが使用される。ＤＴＴなどの遊離チオールが第二次元ゲル中に存在すると、タンパク質の垂直方向の縞を生じ、銀染色による濃色の背景に関与することから、過剰の遊離チオールは分離することが望ましい。
【０００６】
ＤＴＴの平衡化に加えて、タンパク質の溶解度および第二次元への移動を増加させるための、もう一つの方法は、ＩＰＧでＩＥＦに使用される変性用溶液中にチオ尿素を配合する方法である。ＩＰＧにおいて、尿素、チオ尿素および界面活性剤、例えばＣＨＡＰＳまたはＳＢ３−１０の混合物を使用すると、凝集傾向を有する試料とのタンパク質溶解度の増加が得られることが見出された［４］。しかしながら、高濃度のカオトロピック物質、例えばチオ尿素は、ＳＤＳのタンパク質に対する結合を抑制する。従って、チオ尿素は、平衡化に使用することはできず、またＩＰＧで使用されるチオ尿素の最高濃度は、２Ｍであった。さらに高濃度のチオ尿素が、垂直方向の縞を生じさせるのは、多分、チオ尿素が、平衡化期間中にＩＰＧを完全に拡散させないからである［４］。
【０００７】
チオ尿素の使用またはＤＴＴの平衡化によっては解消されない、現在の２Ｄ−ＰＡＧＥ法が伴うもう一つの問題は、ヨウドアセトアミドとアクリルアミドとの間のアルキル化から生じるシステインの混合付加物の形成にある。平衡化操作中に、どの程度のシステインがヨウドアセトアミドによりアルキル化されるかは、不明である。Ｇｏｒｇ等は［３］、平衡化条件下に、タンパク質をアルキル化させることなく、ヨウドアセトアミドが過剰のチオール還元剤と反応することを報告した。しかしながら、タンパク質変性を回避するために、Ｂｊｅｌｌｑｖｉｓｔ等は［６］、２Ｄゲルからのタンパク質を抗体産生に使用しようとする場合、平衡化工程からヨウドアセトアミドを排除した。ヨウドアセトアミドによる完全タンパク質のアルキル化が平衡化中に生じないことは、システインのアクリルアミド付加物が通常、エドマン配列決定およびアミノ酸分析中に見出されることから明白である（未公開の発見）。アクリルアミドモノマーによるタンパク質のアルキル化は、第二次元ゲルの一夜にわたる重合の後でさえも、このゲルの操作期間中に生じる。
【０００８】
この混合付加物の形成は、分離後（ｐｏｓｔ−ｓｅｐａｌａｔｉｏｎ）分析中に多くの問題を提供する。タンパク質確認用の多くの分離後方策は、完全タンパク質またはタンパク質断片のマススペクトロメトリー（ＭＳ）に基づいており、この場合、どのような付加物が形成されうるかを知ることは有利である。得られるペプチドマップを単純にするためには、酵素による消化に先立ち、還元およびアルキル化によるジスルフィド結合形成をブロックすることが重要である。Ｍｏｒｉｔｚ等は［７］、ＤＴＴおよび４−ビニルピリジンを用いる還元およびアルキル化方法を報告した。この方法は、コマシーブリリアントブルー（Ｃｏｏｍａｓｓｉｅ  Ｂｒｉｌｌｉａｎｔ  Ｂｌｕｅ）染色後に、１Ｄまたは２Ｄゲル全体に対して行われる。還元され、アルキル化されたタンパク質のその場でのトリプシン開裂（ｔｒｙｐｔｉｃ  ｃｌｅａｖａｇｅ）を行い、次いでペプチドを回収し、次いでオンラインエレクトロスプレータンデム（ｅｌｅｃｔｒｏｓｐｒａｙ  ｔａｎｄｅｍ）ＭＳとともに逆相高速液体クロマトグラフイ［ＲＰ−ＨＰＬＣ］により分析する。システイン含有ペプチドは、ＲＰ−ＨＰＬＣ操作中に、２５４ｎｍにおけるそれらの特徴的吸光により、およびエレクトロスプレータンデムＭＳ操作中に、１０６Ｄａのピリジルエチル断片イオンの発現により、同定されている［７］。２Ｄ電気泳動後のシステインの４−ビニルピリジンによるアルキル化は、アクリルアミドモノマーによる完全アルキル化が、第二次元ゲル工程中には生じないことを示す。完全アルキル化が、平衡化工程および第二次元ゲル操作中に生じた場合、２Ｄ後の４−ビニルピリジンによるアルキル化は不可能である。従って、Ｍｏｒｔｉｚ等による方法［７］は、若干のタンパク質、すなわちｃｙｓ−ヨウドアセトアミド、ｃｙｓ−アクリルアミドおよびｃｙｓ−ビニルピリジン中のシステインの３種の付加物の形成をもたらすものと見做される。１種以上のシステインの付加物が形成されたタンパク質は、マススペクトロメトリーを用いる分析が困難である。この理由は、各システインが、それに付加した質量と同一の質量を有するものと見做すことができないことにある。
【０００９】
マススペクトロメトリーに加えて、アミノ酸組成マッピングおよびエドマン（Ｅｄｍａｎ）“Ｔａｇ”配列決定を使用して、迅速にスクリーニングすることができ、また２Ｄ−ＰＡＧＥにより分離されたタンパク質を同定することができる［８］。エドマン配列決定において、非アルキル化システイン残基は回収されず、また配列決定において、この残基は、これらの位置を指定することはできない。これに反して、アクリルアミドアルキル化システインのＰＴＨ誘導体は、配列決定操作中に回収され、同定される。同様に、アミノ酸分析において、システインのアルキルアミド付加物は、他のアミノ酸から分離することができ、次いで定量することができる。これは、アミノ酸組成マッピングの目的に使用することができるアミノ酸の数を１７にまで増加させる。
【００１０】
要約して、２Ｄ−ＰＡＧＥにおけるＩＰＧの使用は、タンパク質の分離精製用の強力な技術であるが、現在の方法には、固有の多くの問題がある。分離されたタンパク質が、第一次元分離でＩＰＧマトリックスに対して吸着傾向を有し、また第二次元ゲルに適当に輸送される結果を得るためには、高濃度のＤＴＴが必要である。さらに、第二次元ゲルへの輸送に先立つタンパク質の可溶化に現在使用されている平衡化方法は、システインの混合付加物の形成を生じさせ、これは分離後分析を複雑にする。
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【００１１】
電気泳動に使用されている現在の方法が付随する少なくとも若干の問題を解消するために、本発明者は、電気泳動によりペプチド、タンパク質および糖タンパク質を包含する巨大分子を分離するための改良された方法を開発した。
【課題を解決するための手段】
【００１２】
第一の態様において、本発明は、等電点電気泳動による巨大分子の分離方法からなり、この方法は、チオールを実質的に含有しない還元剤を含有する等電点電気泳動媒質中で、巨大分子を電気泳動に付すことを包含する。
【００１３】
本発明の第一の態様に従う方法は、巨大分子の分離において、チオール−還元剤を使用する等電点電気泳動の標準技術に優る改良をもたらす。この改良は、チオール−還元剤を含有する類似の等電点電気泳動媒質における同一巨大分子の等電点電気泳動に比較して、巨大分子の溶解度およびフォーカシングを高めるという点にある。
【００１４】
チオールを含有しない還元剤は、標準等電点電気泳動法に比較して、巨大分子の溶解度を増加させ、またフォーカシングを改善する。
【００１５】
好ましくは、このチオールを含有しない還元剤は、三価リン化合物であり、さらに好ましくは、トリブチルホスフィン（ＴＢＰ）である。チオールを含有しない還元剤の濃度は、分離される巨大分子の量および種類に依存して変わる。約０．１〜２００ｍＭ、好ましくは約１〜１０ｍＭの程度の濃度が適当であることが見出されたが、さらに高い濃度またはさらに低い濃度もまた使用することができることは明白である。好ましくは、ゲル等電点電気泳動用の三価リン化合物は、次の性質を有するべきである：水性溶液中で溶解することができる；定常等電点電気泳動ｐＨ値で非帯電である；およびほとんど爆発性でないか、または高度に反応性ではない。しかしながら、帯電した三価リン化合物もまた、等電点電気泳動に使用することができることは明白である。
【００１６】
好ましくは、ゲル電気泳動の場合、三価リン化合物は、次の性質を有するべきである：水性溶液中で溶解することができる；定常等電点電気泳動ｐＨ値で帯電する；およびほとんど爆発性でないか、または高度に反応性ではない。しかしながら、非帯電三価リン化合物もまた、ゲル電気泳動に使用することができることは明白である。
【００１７】
本発明に適する三価リン化合物の別の例には、トリス（ペンタフルオロフェニル）ホスフィン、４−（ジメチルアミノ）フェニル−ジフェニル−ホスフィン、トリス（４−フルオロフェニル）ホスフィン、トリ（ｏ−トリル）ホスフィン、ジフェニル（メトキシメチル）ホスフィンオキサイド、トリ（ｍ−トリル）ホスフィン、トリ（ｐ−トリル）ホスフィン、トリエチルホスフィン、トリス（ジエチルアミノ）ホスフィン、トリス（ジメチルアミノ）ホスフィン、およびトリス（２−カルボキシエチル）ホスフィンが包含される。しかしながら、別種の三価リン化合物もまた、本発明に適することができることは明白である。
【００１８】
本発明の第一の態様の好適具体例の一つでは、標準的等電点電気泳動技術に現在使用されているジチオスレイトール（ＤＴＴ）などのチオール含有還元剤が実質的に存在しない条件下に、焦点化を行う。好適態様では、現在使用されている標準方法に、ＤＴＴの代わりに、低濃度のＴＢＰを使用する。すなわち、１００ｍＭ  ＤＴＴの代わりに、約１〜１０ｍＭ、好ましくは約２ｍＭのＴＢＰを使用する。しかしながら、或る種の分離またはフォーカシング条件下においては、ＩＥＦ操作期間中、チオールを含有しない還元剤とチオール含有還元剤との両方を使用することが望ましい。
【００１９】
この本発明の第一の態様は、巨大分子の還元が要求される場合、いずれのＩＥＦにも適している。特に、この方法は、ＩＥＦが２Ｄ−ＰＡＧＥ分離におけるＰＡＧＥまたはＳＤＳ−ＰＡＧＥの第二次元に先立つ、第一次元として使用される場合に特に適している。
【００２０】
チオール−還元剤は、溶液として使用することができ、あるいはまた電気泳動媒質または壁に、あるいは分離される巨大分子と接触しているか、または組合わされている電気泳動分離を行う装置の表面に、結合または固定化させることができる。
【００２１】
第二の態様において、本発明は、二次元ポリアクリルアミドゲル電気泳動（２Ｄ−ＰＡＧＥ）による巨大分子の改良された分離方法からなり、この方法は、
（ａ）本発明の第一の態様による第一次元ゲルにおいて、等電点電気泳動により巨大分子を分離し；
（ｂ）場合により、（ａ）により分離された巨大分子を含有する第一次元ゲルを、チオールを含有しない還元剤およびアルキル化剤の存在下に、全部の遊離チオールが除去され、そしてシステインとの混合付加物が実質的に形成されないように、平衡化し；次いで
（ｃ）ポリアクリルアミドゲル電気泳動によって、巨大分子をさらに分離する；ことを包含する。
【００２２】
第一次元分離に引き続くアルキル化［任意工程（ｂ）］の主要利点の一つは、第一次元における帯電によって、巨大分子が分離され、従って、アルキル化剤が第一次元分離に影響しない点にある。好ましくは、このアルキル化剤は、アクリルアミドまたは蛍光剤である。蛍光剤は、ハロアセチル誘導体、マレイミド化合物、ミセル状スルフヒドリル試薬、またはその混合物から選択することができる。特に好適な蛍光剤の一つは、マレイミド蛍光剤である。
【００２３】
このアルキル化剤の濃度は、（ｂ）で処理される巨大分子の量および種類に依存して変わる。約０．１〜５％の程度、好ましくは約２．５％（ｗ／ｖ）のアクリルアミド濃度が適当であることが見出されているが、さらに高い、またはさらに低い濃度を使用することもできることは明白である。約０．０１〜２０ｍＭ程度、好ましくは約０．２５ｍＭの蛍光剤濃度が適当であることが見出されているが、さらに高い、またはさらに低い濃度を使用することもできることは明白である。アルキル化剤として蛍光剤を使用することによる更なる利点は、第二次元で分離するのに先立ち、巨大分子が標識付けされる点にある。これは、分離後の追加の染色を要することなく、分離された巨大分子を目で見えるようにする。
【００２４】
任意の平衡化工程（ｂ）に適する別種のアルキル化剤の例には、ゲル中のアクリルアミドの代用品として使用されるモノマーが包含され、これらの例には、ビニルピリジン、Ｎ−アクリロイルアミノエトキシエタノール、アクリルアミド−Ｎ，Ｎ−ジエトキシエタノール、Ｎ−アクリロイル−トリス（ヒドロメチル）アミノメタン、アクリルアミド糖類、例えばＮ−アクリロイル（またはメタアクリロイル）−１−アミノ−デオキシ−Ｄ−グリシトールまたは対応するＤ−キシリトール誘導体、およびＮ，Ｎ−ジエチルアクリルアミドが包含される。しかしながら、別種のアルキル化剤もまた、本発明に適することができることは明白である。
【００２５】
任意の平衡化工程（ｂ）に適する蛍光剤の別の例には、ハロアセチル誘導体、マレイミド化合物およびミセル状スルフヒドリル試薬が包含され、これらは供給源、例えばＭｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｐｒｏｂｅｓ，Ｉｎｃ．から容易に入手することができる。しかしながら、別種の蛍光剤もまた、本発明に適することができることは明白である。
【００２６】
必要に応じて、標準２Ｄ−ＰＡＧＥ法で現在使用されているヨウドアセトアミドが実質的に存在しない条件下に、平衡化を行うことがまた好ましい。
【００２７】
分離は、現在使用されている電流および計画を用いて、いずれか適当な電気泳動装置で行う。
【００２８】
第三の態様において、本発明は、巨大分子の電気泳動分離におけるチオールを含有しない還元剤の使用からなる。
【００２９】
本発明が、巨大分子の還元が望ましい全ての分離法に適することは明白である。これらの方法には、これらに制限されないものとして、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ、等電点電気泳動法、毛管ゾーン電気泳動法、分離用電気泳動法などが包含される。チオール−還元剤は、溶液として使用することができ、あるいはまた電気泳動媒質または壁に、あるいは分離される巨大分子と接触しているか、または組合わされている電気泳動分離を行う装置の表面に、結合または固定化させることができる。
【００３０】
好適なチオールを含有しない還元剤は、三価リン化合物であり、さらに好ましくはトリブチルホスフィン（ＴＢＰ）である。本発明に適する三価リン化合物の別の例には、トリス（ペンタフルオロフェニル）ホスフィン、４−（ジメチルアミノ）フェニル−ジフェニル−ホスフィン、トリス（４−フルオロフェニル）ホスフィン、トリ（ｏ−トリル）ホスフィン、ジフェニル（メトキシメチル）ホスフィンオキサイド、トリ（ｍ−トリル）ホスフィン、トリ（ｐ−トリル）ホスフィン、トリエチルホスフィン、トリス（ジエチルアミノ）ホスフィン、トリス（ジメチルアミノ）ホスフィン、およびトリス（２−カルボキシエチル）ホスフィンが包含される。しかしながら、別種の三価リン化合物もまた、本発明に適することができることは明白である。
【００３１】
第四の態様において、本発明は、本発明による第一または第二の態様により分離される１種または２種以上の巨大分子からなる。
【００３２】
本発明は、タンパク質、ペプチドおよび糖タンパク質を包含する全ての巨大分子、特にバイオ分子の分離に適している。
【００３３】
本明細書全体をとおして、別段の意味が要求されていないかぎり、「包含する」あるいはその変形の「包含する」（単数形）または「包含」の用語は、記載されている要素または全体、あるいは要素または全体のグループを包含するものであるが、いずれか別種の要素または全体、あるいは要素または全体のグループを包含するものではないものと理解されるべきである。
【００３４】
本発明をさらに明白に理解するために、下記の例および図面を引用して、好適態様を説明する。
【発明を実施するための最良の形態】
【００３５】
本発明の実施方法
本発明の効果を証明するために、ＤＴＴの代わりに、ＴＢＰを使用すると、ＩＥＦ操作中のタンパク質の溶解度が増加された。平衡化操作を簡単にするために、現在使用されている慣用の二工程平衡化の代わりに、ＴＢＰおよびアクリルアミドを用いる任意の一工程方法を使用した。種々の理由で、還元剤として、ＤＴＴを取り換えた。ＤＴＴなどのチオール含有還元剤によるジスルフィド結合の切断は、大量の遊離チオールを用いる平衡置換法（ｅｑｕｉｌｉｂｒｉｕｍ  ｄｉｓｐｌａｃｅｍｅｎｔ  ｐｒｏｃｅｓｓ）により達成される。ジスルフィド結合の切断に好ましい平衡の移動には、高濃度の遊離チオールが必要であることから、アルキル化において、大量のアルキル化剤がチオール還元剤と反応する。すなわち、このことは、モル過剰のアルキル化剤を得ることを困難にすることがある。チオール還元剤に比較して、ホスフィン族の還元剤は、平衡置換よりもむしろ、化学量論的な還元を生じさせる［９］。ホスフィン還元剤の機能の主要利点は、ホスフィン化合物がチオールを含有していないことから、これらがアルキル化されることができない点にあり、これは、単純な還元およびアルキル化操作方法を導く。
【００３６】
材料および方法
材料
トリブチルホスフィン（９７％ｖ／ｖ）は、Ｆｌｕｋａから入手し、ピペリジンジアクリルアミド（ＰＤＡ）、アクリルアミド、尿素、トリス（Ｔｒｉｓ）、グリシン、過硫酸アンモニウム、ＴＥＭＥＤ、３−［（３−クロルアミドプロピル）ジメチル］アンモニオ］−１−プロパンスルホネート（ＣＨＡＰＳ）、ジチオスレイトール（ＤＴＴ）およびポリ−ビニリデンジフルオライド膜（ＰＶＤＦ）は、Ｂｉｏ−Ｒａｄ（Ｈｅｒｅｃｕｌｅｓ，ＣＡ）から入手した。「オンジナ」（Ｏｎｄｉｎａ）メディカルグレード（医療品質）パラフィン油は、Ｓｈｅｌｌから入手した。エンドヌクレアーゼは、Ｓｉｇｍａから入手した。その他全部の化学物質は、ＢＤＨから入手した分析グレード（ＡｎａｌａＲ  ｇｒａｄｅ）のものであった。イモビリン  ドライストリップ（Ｉｍｍｏｂｉｌｉｎｅ  ＤｒｙＳｔｒｉｐｓ）およびファーマライト（Ｐｈａｒｍａｌｙｔｅ），ｐＨ３〜１０両性電解質は、Ｐｈａｒｍａｃｉａ（Ｕｐｐｓａｌａ，Ｓｗｅｄｅｎ）から入手した。
【００３７】
トリブチルホスファイトストック溶液
ＴＢＰは、無水イソプロパノール中の２００ｍＭストック溶液として調製した。ＴＢＰ濃縮液および２００ｍＭストック溶液を、各使用後、窒素により浄化し、４℃で保存した。この処理は、ヒュームカップボード内で行わなければならず、またその他の適当な安全上の予防手段、例えば手袋および実験衣を着るべきである。濃縮されたＴＢＰは、乾燥有機材料、例えば紙と接触すると、無毒性の煙を発生する。漏出は、湿った布で拭き取らなければならない。
【００３８】
等電点電気泳動試料溶液
ＩＥＦ用の試料を溶解するために、２種の溶液を使用した。溶液Ａは、８Ｍ尿素、４％ＣＨＡＰＳ、１００ｍＭ  ＤＴＴ、０．５％ｐＨ３〜１０両性電解質および４０ｍＭトリス（ｐＨ約９．５、調整されていない）であった。マウス前足の場合、１０ｍＭ  ＤＴＴを含有する追加の修正溶液Ａを使用した。溶液Ｂは、８Ｍ尿素、４％ＣＨＡＰＳ、２ｍＭ  ＴＢＰ、０．５％ｐＨ３〜１０両性電解質および４０ｍＭトリス（ｐＨ約９．５、調整されていない）であった。
【００３９】
羊毛タンパク質抽出
ロムネイ種（Ｒｏｍｎｅｙ）羊からの羊毛を準備し、Ｈｅｒｂｅｒｔ等の方法［１０］に従い抽出した。抽出後に、上清を脱イオン水（５回交換）で透析し、次いで凍結乾燥させた。この抽出されたタンパク質は、アルキル化されなかった。ＩＥＦ用の準備のために、この凍結乾燥させた乾燥した羊毛タンパク質１ｍｇを、溶液Ａ中に溶解し、およびまた１ｍｇを溶液Ｂに溶解した。
チャイニーズハムスター卵巣細胞タンパク質の可溶化
ＣＨＯ  Ｋ１細胞（１×１０６細胞）を、１ｍｌの溶液Ａ中に溶解し、およびまた１×１０６細胞を、１ｍｌの溶液Ｂ中に溶解した。ＤＮＡは、最終溶液にエンドヌクレアーゼ（１５０単位／ｍｌ）を添加することにより分離した。この溶液を、室温まで１時間放置し、次いでＩＰＧ再水和を開始した。
【００４０】
胎児マウス前足の可溶化
８対の前足（交尾後１３．５日目）を、２ｍｌの溶液Ａ中に溶解し、およびまた８対を、２ｍｌの溶液Ｂ中に溶解した。ＤＮＡは、最終溶液にエンドヌクレアーゼ（１５０単位／ｍｌ）を添加することにより分離した。この溶液を、室温まで１時間放置し、次いでＩＰＧ再水和を開始した。
【００４１】
等電点電気泳動
分析用および分離用ゲルのために、各１８ｃｍのイモビリン  ドライストリップ（ｐＨ４〜７または３．５〜１０非線型）を、１９ｃｍの長さに切断した２ｍｌプラスティック勾配付きピペット中のタンパク質溶液５００μＬで再水和した。各１１ｃｍ（ｐＨ４〜７）ＩＰＧを、１２ｃｍの長さに切断した２ｍｌプラスティック製勾配付きピペット中のタンパク質溶液２５０μＬで再水和した。再水和は、室温で２４時間、進行させた。ドライストリップ  キットとともに、ファーマシア  マルチホール（Ｐｈａｒｍａｃｉａ  Ｍｕｌｔｉｐｈｏｒ）ＩＩを用いて、ＩＥＦを行った；動力は、コンソート（Ｃｏｎｓｏｒｔ）５０００Ｖ電力源を用いて供給し、そしてファーマシア  マルチテンプ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ  Ｍｕｌｔｉｔｅｍｐ）ＩＩＩを用いて、２０℃で冷却水を供給した。１１ｃｍおよび１８ｃｍＩＰＧを用いるＩＥＦに使用した操作条件は、３００Ｖで２時間、１０００Ｖで１時間、２５００Ｖで１時間および５０００Ｖの最終相で、最大８０，０００Ｖｈまでであった。各試料にかかわる実際の総合Ｖｈは、各図の説明文に示されている。ＩＥＦの後、これらのストリップは、第二次元用に必要とされるまで、−８０℃で保存した。
【００４２】
ジチオスレイトールを用いるＩＰＧの平衡化
ＤＴＴを含有する溶液Ａを使用してフォーカシングされているＩＰＧを、慣用の方法を用いて平衡化した。ＩＰＧは、６Ｍ尿素、２０％グリセロール、２％ＳＤＳおよび２％ＤＴＴ、０．３７５Ｍトリス（ｐＨ８．８）中で、１０分間平衡化し、次いでＤＴＴの代わりに、２．５％ヨウドアセトアミドを使用して、全部の遊離のＤＴＴをアルキル化する以外は、同一溶液中でさらに１０分間平衡化した。この平衡化用溶液のｐＨは、８．８であった。これは、Ｇｏｒｇ等の方法［１］における場合のように、第二次元ゲルがｐＨ６．８においてゲルへの粘着性を有していないためである。
【００４３】
トリブチルホスフィンを用いるＩＰＧの平衡化
ＴＢＰを含有する溶液Ｂを使用してフォーカシングされているＩＰＧを、６Ｍ尿素、２０％グリセロール、２％ＳＤＳおよび５ｍＭ  ＴＢＰ、０．３７５Ｍトリス（ｐＨ８．８）中で、２０分間平衡化した。
【００４４】
第二次元ＳＤＳ−ＰＡＧＥ
第二次元ゲルは、Ｂｉｏ−Ｒａｄ（Ｈｅｒｃｕｌｅｓ，ＣＡ）からのプロテアン（Ｐｒｏｔｅａｎ）ＩＩｘｉを用いて行った。ゲルは、１．５ｍｍ厚さ、８〜１８％Ｔ孔勾配を有し、また２．５％ＣでＰＤＡにより架橋されている。ゲルおよびアノード緩衝液は、０．３７５Ｍトリス／ＨＣｌ（ｐＨ８．８）であった。カソード緩衝液は、トリスを用いてｐＨ８．３に調整された１９２ｍＭグリシン、０．１％（ｗ／ｖ）ＳＤＳおよび０．００１％（ｗ／ｖ）ブロモフェノールブルー（Ｂｒｏｍｏｐｈｅｎｏｌ  Ｂｌｕｅ）であった。平衡化されたＩＰＧストリップを、カソード緩衝液中の溶解１％（ｗ／ｖ）アガロースを用いて、ＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルの表面上に埋め込んだ。ゲルは、ブロモフェノールブルー前面がゲルを横切るまで、４ｍＡ／ゲルの一定電流で２時間、次いで１８ｍＡ／ゲルで一夜にわたり行った。
【００４５】
完成された分析用２−Ｄゲルを、アンモニア性銀染色により染色した。分離用２−Ｄゲルは、３０％（ｖ／ｖ）メタノール、５％（ｖ／ｖ）酢酸中の０．２％（ｗ／ｖ）コマシーブリリアントブルーＲ２５０中で一夜かけて染色した。脱色は、３０％（ｖ／ｖ）メタノール中で行った。
【００４６】
結果および評価
【００４７】
羊毛タンパク質の分離
ＩＥＦ中のタンパク質の溶解度を増加させるＴＢＰの能力を評価するために、羊毛タンパク質を用いて、標準ＤＴＴ法を、ＴＢＰ法と比較した。羊毛は２種のタンパク質、すなわち中間フィラメント状タンパク質（ＩＦＰ）および中間フィラメント会合タンパク質（Ｉｎｔｅｒｍｅｄｉａｔｅ  Ｆｉｌａｍｅｎｔ  Ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ  Ｐｒｏｔｅｉｎｓ）（ＩＦＡＰ）から構成されている。ＩＦＰには、２種の付属グループ、すなわちタイプＩおよびタイプＩＩが存在し、分子生物学試験およびタンパク質化学試験は、各付属グループが、４種の構造的に相同のタンパク質を含有することを示す。ＩＥＰは、相当する試験の対象であり、グリコシル化およびホスホリル化により、翻訳後修飾されることが知られている。Ｈｅｒｂｅｒｔ等は［１０］、ＩＥＦにＤＴＴを用いて、羊毛ＩＦＰの予備分離を行ったが、ＩＦＰの分割は貧弱であり、また各ＩＦＰイソフォームを分離することはできなかった。ＩＥＦにおいて、ＤＴＴの代わりに、ＴＢＰを使用することによって、分離が改善され、ＩＦＰを各スポットに分割することができる。図１は、同一条件下に分離された羊毛タンパク質１５０μｇの銀染色された２−Ｄゲルを示しており、ただし図１ａでは、１００ｍＭ  ＤＴＴを含有する溶液Ａを使用する第一次元で分離されており、そして図１ｂでは、２ｍＭ  ＴＢＰを含有する溶液Ｂを使用する第一次元で分離されている。図１ａにおいて、ＩＰＧ平衡化工程は、最初に２％ＤＴＴを使用し、二回目に２．５％ヨウドアセトアミドを使用する二工程法であり、そして図１ｂにおいて、ＩＰＧ平衡化工程は、５ｍＭ  ＴＢＰを使用する一工程法であった。ＩＥＦにＤＴＴを使用し、そして平衡化した図１ａの場合、ＩＦＰの分割は貧弱であり、特にタイプＩ  ＩＦＰグループの分割は貧弱であった。ＩＥＦにＤＴＴを使用し、そして平衡化した場合、ＩＦＰの分割は、５０００Ｖで５００，０００Ｖｈまで延長されたフォーカシング期間の後でさえも、ＩＥＰの分割は改善されない。ＩＥＦにＴＢＰを使用し、そして平衡化した場合、フォーカシングが改良され、またＩＦＰは、スポットの少なくとも４つの条線に良好に分割される（図１ｂ）。このタンパク質は、３０，０００Ｖｈで９時間のＩＥＦ操作期間の後に、定常状態に達した。これは、従来羊毛タンパク質に使用されていたほぼ１００時間に優る格別の改善である。
【００４８】
図２は、図１と同一の羊毛タンパク質抽出物１ｍｇのコマシーブリリアントブルーＲ２５０染色した分離用ゲルである。この画像のＩＥＦを示す部分を切り取った。タイプＩ  ＩＦＰは、それぞれが少なくとも３種のイソホームを含有する４本の条線に分割される。タイプＩＩ  ＩＥＰの４種の遺伝子生成物は、タイプＩ  ＩＥＰの場合に比較して、明瞭には分割されない。しかしながら、タイプＩＩ  ＩＥＰは、スポットの２本の主要な条線に分割され、これらのスポットの数本のかすかに染色された条線を、タイプＩＩ  ＩＥＰに密接しているゲル上に見ることができるが、これらの条線は、走査画像上には明確に現れない。本発明による分離技術を使用すると、タイプＩ  ＩＥＰおよびタイプＩＩ  ＩＥＰ遺伝子生成物およびそれらの翻訳後修飾物のそれぞれの相対量を定量することができる。各遺伝子生成物およびそれらの翻訳後修飾物の分離および定量能力は、強度および色などのファイバー物性の決定におけるＩＦＰの役割の評価にとって重要である。
【００４９】
チャイニーズハムスター卵巣細胞分離
図３は、同一条件下に分離された１×１０６ＣＨＯ  Ｋ１細胞の銀染色された２−Ｄゲルを示しており、ただし図３ａでは、１００ｍＭ  ＤＴＴを含有する溶液Ａを使用する第一次元で分離されており、そして図３ｂでは、２ｍＭ  ＴＢＰを含有する溶液Ｂを使用する第一次元で分離されている。図３ａにおいて、ＩＰＧ平衡化工程は、最初に２％ＤＴＴを使用し、二回目に２．５％ヨウドアセトアミドを使用する二工程法であり、そして図３ｂにおいて、ＩＰＧ平衡化工程は、５ｍＭ  ＴＢＰを使用する一工程法であった。図３ａに見出される水平方向の縞は、不完全なフォーカシングの結果を表わしている。これは、ＩＥＦ操作中に、若干のタンパク質が不溶性になることを示している。図３ｂでは、水平方向の縞は消失しており、これは、ＩＥＦ操作中に、タンパク質がＴＢＰの使用によりさらに溶解性になり、また凝集傾向が低くなることを示している。この増加された溶解度は、ＩＥＦ操作中、タンパク質が還元条件に維持され、内部鎖または外部鎖ジスルフィド結合が再形成されない結果であると言うことができる。スポットの或るグループ（図３ａおよび３ｂ上の矢印）は、図３ｂにおける相違する明白な塊の複数の条線に分割される。これに対して、図３ａでは、これらはフォーカシングが貧弱であるか、または一本の条線に分割されるのみである。ＣＨＯ細胞などの培養系では、増殖条件が、糖タンパク質中のオリゴ糖のマクロ異原性（ｍａｃｒｏｈｅｔｒｏｇｅｎｅｉｔｙ）およびミクロ異原性（ｍｉｃｒｏｈｅｔｒｏｇｅｎｅｉｔｙ）に影響することができる。研究を続けることによって、図３ｂに見出される複数の条線が、同一タンパク質の相違してグリコシル化された形態の結果であることができること、および或る種の糖形態が、ＤＴＴを用いるＩＥＦ操作中に、ほんの少しだけ可溶化され、正常に分割されないことが示唆された。
【００５０】
胎児マウス前足
多くの発表されているＩＥＦ操作方法では、ＩＰＧ再水和溶液に低濃度、例えば１０ｍＭ〜２０ｍＭのＤＴＴが使用されている。本発明者は、ＩＥＦ試料溶液に１００ｍＭのＤＴＴを用いて、ＣＨＯ細胞で得られた多くの縞が存在するパターンが、ＩＰＧにおける高濃度の帯電したＤＴＴから生じる電気浸透（ｅｌｅｃｔｒｏｅｎｄｏｓｍｏｓｉｓ）によるものでありうるものと考えた。セルラインに比較してさらに複雑である哺乳動物の組織を用いて、この研究を拡大することを決定した。交尾後１３．５日目の胎児マウスの前足を、モデルとして使用した。図４は、同一条件下に分離された２対の前足の銀染色した２−Ｄゲルを示しており、ただし図４ａでは、１０ｍＭ  ＤＴＴを含有する溶液Ａを使用する第一次元で分離されており、図４ｂでは、１００ｍＭ  ＤＴＴを含有する溶液Ａを使用する第一次元で分離されており、そして図４ｃでは、２ｍＭ  ＴＢＰを含有する溶液Ｂを使用する第一次元で分離されている。図４ａおよび４ｂにおいて、ＩＰＧ平衡化工程は、最初に２％ＤＴＴを使用し、二回目に２．５％ヨウドアセトアミドを使用する二工程法であり、そして図４ｃでは、ＩＰＧ平衡化工程は、５ｍＭ  ＴＢＰを使用する一工程法であった。ＴＢＰを使用して達成された分離は、１０ｍＭおよび１００ｍＭのＤＴＴを使用して達成された両方の分離に比較して、優れている。図４ｃは、最小の水平方向および垂直方向の縞を有し、分割されたスポットの数は、図４ａおよび４ｂよりも多い。フォーカシングは、ＤＴＴ濃度が１０ｍＭのみである図４ａにおいては、明らかに悪い。このことは、ＤＴＴ濃度が各試料について最適化されるべきパラメーターであることを示唆している。従来、水平方向の縞形成による問題を招くことなく、６５ｍＭのジチオエリスリトール  （ＤＴＥ）がイースト菌および肝臓試料の微量予備分離用のＩＥＦ再水和溶液に使用されていた。典型的還元およびアルキル化実験は、タンパク質ジスルフィドの完全還元を行うためには、ほぼ５０ｍＭ濃度のチオール還元剤、例えばＤＴＴが必要であるものと述べられている。ＤＴＴなどのチオール還元剤が平衡置換により作用されると、ＩＥＦ操作中における遊離チオールの生成に対して、全体的に平衡化を推し進めるために、１０ｍＭほどの低い濃度で充分であるものとは、ほとんど見做されない。
【００５１】
結論的所見
チオール還元剤ＤＴＴの代わりに、トリブチルホスフィンを用いることによる、２Ｄ−ＰＡＧＥにおける改良された分離が証明された。ＴＢＰの主要利点は、ＩＥＦ操作中に帯電せず、従って移動しない点にある。このことは、試料タンパク質が、全ＩＥＦ操作期間にわたり還元条件下に維持され、これによりタンパク質の溶解度が増加され、また最終２Ｄ−ＰＡＧＥゲル上に多くのタンパク質スポットをもたらすことを意味する。大部分の場合、ＩＥＦ操作期間中にＴＥＰを使用すると、水平方向の縞形成の格別の減少が生じる。
【００５２】
ＣＨＯ  Ｋ１細胞およびマウス前足の両方で、ＴＢＰを用いて得られた改良された分割は、哺乳動物細胞および組織の２Ｄマップの作成にＴＢＰを使用すると有利であることを示唆している。ＣＨＯ  Ｋ１細胞の２Ｄゲルに見出されるように（図３ａおよび３ｂ）、増加された溶解度および相違するタンパク質の糖形態の分割能力は、哺乳動物細胞および組織の複雑性を明確にするために必須である。
【００５３】
ＴＢＰの追加の利点は、ＩＰＧ平衡化を単一工程で行うことができることにあり、これは、非帯電ＴＢＰが移動せず、また第二次元において、アートファクチュアル  ポイント縞形成（ａｒｔｅｆａｃｔｕａｌ  ｐｏｉｎｔ  ｓｔｒｅａｋｉｎｇ）を生じさせることによるものである。さらにまた、平衡化に、アルキル化剤、例えばアクリルアミドまたは蛍光マレイミド誘導体を組み入れることができ、これにより第二次元ゲルへの輸送に先立ち、分離されたタンパク質上のシステイン残基をアルキル化することができる。
【００５４】
最も広く説明されている、本発明の精神または範囲から逸脱することなく、多くの変更および（または）修正をなすことができることは、当業者にとって明白である。従って、上記具体例は、全ての観点で、本発明を説明するものであり、制限するものではない。
略語
ＩＥＦ            等電点電気泳動
ＳＤＳ−ＰＡＧＥ  ドデシル硫酸ナトリウムポリアクリルアミドゲル電気泳動
２Ｄ−ＰＡＧＥ    二次元ポリアクリルアミドゲル電気泳動
ＣＡ−ＩＥＦ      担体両性電解質等電点電気泳動
ＩＰＧ            固定化したｐＨ勾配
ＭＳ              マススペクトロメトリー
ＲＰ−ＨＰＬＣ    逆相高速液体クロマトグラフイ
ＳＤＳ            ドデシル硫酸ナトリウム
ＴＢＰ            トリブチルホスフィン
ＤＴＴ            ジチオスレイトール
ＩＡＡ            ヨウドアセトアミド
５ＩＡＦ          ５−ヨウドアセトアミド蛍光剤
ＣＨＡＰＳ        ３−［（３−クロルアミドプロピル）ジメチルアンモニオ］
−１−プロパンスルホネート
【００５５】
参考文献
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【図面の簡単な説明】
【００５６】
【図１】図１は、羊毛タンパク質の銀染色された２−Ｄゲルを示している。図１ａは、溶液Ａ：８Ｍ尿素、４％ＣＨＡＰＳ、１００ｍＭ  ＤＴＴ、０．５％ｐＨ３〜１０両性電解質および４０ｍＭトリス（ｐＨ約９．５）を用いて分離した。図１ｂは、溶液Ｂ：８Ｍ尿素、４％ＣＨＡＰＳ、２ｍＭ  ＴＢＰ、０．５％ｐＨ３〜１０両性電解質および４０ｍＭトリス（ｐＨ約９．５）を用いて分離した。総合３００００ＶｈのＩＥＦの後に、図１ａにおけるＩＰＧは、６Ｍ尿素、２０％グリセロール、２％ＳＤＳおよび２％ＤＴＴ、０．３７５Ｍトリス（ｐＨ８．８）中で、１０分間平衡化し、次いでＤＴＴの代わりに２．５％ヨウドアセトアミドを使用して、全部の遊離のＤＴＴをアルキル化する以外は、同一溶液中でさらに１０分間平衡化した。図１ｂのＩＰＧは、６Ｍ尿素、２０％グリセロール、２％ＳＤＳおよび５ｍＭＴＢＰ、０．３７５Ｍトリス（ｐＨ８．８）中で、２０分間平衡化した。中間フィラメント状タンパク質（Ｉｎｔｅｒｍｅｄｉａｔｅ  Ｆｉｌａｍｅｎｔ  Ｐｒｏｔｅｉｎｓ）、特にタイプＩ中間フィラメント状タンパク質は、図１ａにおいて、ほとんど分割されない。これに対して、図１ｂは、中間フィラメント状タンパク質の改良された分離を示しており、特にタイプＩ中間フィラメント状タンパク質がスポットの少なくとも４つの主要条線（ｓｔｒｉｎｇｓ）に良好に分割された（矢印）。
【図２】図２は、溶液Ｂ：８Ｍ尿素、４％ＣＨＡＰＳ、２ｍＭ  ＴＢＰ、０．５％ｐＨ３〜１０両性電解質および４０ｍＭトリス（ｐＨ約９．５）を用いる総合３００００ＶｈのＩＥＦにより分離され、６Ｍ尿素、２０％グリセロール、２％ＳＤＳおよび５ｍＭ  ＴＢＰ、０．３７５Ｍトリス（ｐＨ８．８）中で、２０分間平衡化された、図１と同一の羊毛タンパク質抽出物のコマシーブリリアントブルーＲ２５０染色した２−Ｄゲルを示している。タイプＩ中間フィラメント状タンパク質がスポットの少なくとも４つの主要条線（矢印）に分離されており、これは４種のタイプＩ中間フィラメント状タンパク質遺伝子を表わす。タイプＩＩ中間フィラメントタンパク質はスポットの２つの主要条線（矢印）に分離されている。
【図３】図３は、１×１０６チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞タンパク質の銀染色した２−Ｄゲルを示している。図３ａは、溶液Ａ：８Ｍ尿素、４％ＣＨＡＰＳ、１００ｍＭ  ＤＴＴ、０．５％ｐＨ３〜１０両性電解質および４０ｍＭトリス（ｐＨ約９．５）を用いて分離した。図３ｂは、溶液Ｂ：８Ｍ尿素、４％ＣＨＡＰＳ、２ｍＭ  ＴＢＰ、０．５％ｐＨ３〜１０両性電解質および４０ｍＭトリス（ｐＨ約９．５）を用いて分離した。総合８００００ＶｈのＩＥＦ後に、図３ａのＩＰＧは、６Ｍ尿素、２０％グリセロール、２％ＳＤＳおよび２％ＤＴＴ、０．３７５Ｍトリス（ｐＨ８．８）中で、１０分間平衡化し、次いでＤＴＴの代わりに、２．５％ヨウドアセトアミドを使用して、全部の遊離のＤＴＴをアルキル化する以外は、同一溶液中でさらに１０分間平衡化した。図３ｂのＩＰＧは、６Ｍ尿素、２０％グリセロール、２％ＳＤＳおよび５ｍＭ  ＴＢＰ、０．３７５Ｍトリス（ｐＨ８．８）中で、２０分間平衡化した。図３ａには、明確な水平方向の縞が存在し、これはＩＥＦ中のジスルフィド結合の再形成の結果である。図３ｂでは、水平方向の縞が消失しており、タンパク質のスポットは、図３ａに比較して、さらに明白に目で見ることができる。ＩＥＦにおいてＴＢＰを使用して分離された場合、矢印で示されているスポットは、相違する明白な質量の多数の条線に分割されている。
【図４】図４は、２対の胎児マウス前足タンパク質の銀染色した２−Ｄゲルを示している。図４ａは、修正溶液Ａ：８Ｍ尿素、４％ＣＨＡＰＳ、１０ｍＭ  ＤＴＴ、０．５％ｐＨ３〜１０両性電解質および４０ｍＭトリス（ｐＨ約９．５）を用いて分離し、図４ｂは、溶液Ａ：８Ｍ尿素、４％ＣＨＡＰＳ、１００ｍＭ  ＤＴＴ、０．５％ｐＨ３〜１０両性電解質および４０ｍＭトリス（ｐＨ約９．５）を用いて分離した。図４ｃは、溶液Ｂ：８Ｍ尿素、４％ＣＨＡＰＳ、２ｍＭ  ＴＢＰ、０．５％ｐＨ３〜１０両性電解質および４０ｍＭトリス（ｐＨ約９．５）を用いて分離した。総合６００００ＶｈのＩＥＦ後に、図４ａおよび４ｂのＩＰＧは、６Ｍ尿素、２０％グリセロール、２％ＳＤＳおよび２％ＤＴＴ、０．３７５Ｍトリス（ｐＨ８．８）中で、１０分間平衡化し、次いでＤＴＴの代わりに、２．５％ヨウドアセトアミドを使用して、全部の遊離のＤＴＴをアルキル化する以外は、同一溶液中でさらに１０分間平衡化した。図４ｃのＩＰＧは、６Ｍ尿素、２０％グリセロール、２％ＳＤＳおよび５ｍＭ  ＴＢＰ、０．３７５Ｍトリス（ｐＨ８．８）中で、２０分間平衡化した。図４ａにおいて、フォーカシングは、１００ｍＭ  ＤＴＴまたはＴＢＰを用いた場合に比較して、貧弱である。ＴＢＰを用いる図４ｃは、図４ａおよび４ｂに比較して、スポット数の格別の増加を示している。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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