(57)【要約】【課題】血管内皮細胞への遺伝子導入も可能な遺伝子導入剤を提供する。【解決手段】芳香環に複数の高分子鎖が置換基として導入された高分子化合物と核酸とのポリプレックスに対し、ＲＧＤ配列を有するペプチドを吸着又は複合させてなる遺伝子導入剤。前記芳香環が炭素数５〜８の芳香環の、単環又は縮合環よりなることを特徴とする遺伝子導入剤。前記高分子鎖は、ポリアクリルアミド系高分子ブロック鎖又はポリアクリレート系高分子ブロック鎖であることを特徴とする遺伝子導入剤。【選択図】図１
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
芳香環に複数の高分子鎖が置換基として導入された高分子化合物と核酸とのポリプレックスよりなり、ＲＧＤ配列を有するペプチドを吸着又は複合させてなる遺伝子導入剤。
【請求項２】
請求項１において、前記芳香環が炭素数５〜８の芳香環の、単環又は縮合環よりなることを特徴とする遺伝子導入剤。
【請求項３】
請求項２において、前記芳香環が、ベンゼン環、ナフタレン環、アントラセン環、ビフェニル環、ビフェニレン環、ピリジン環、ピロール環、フラン環又はピレン環であることを特徴とする遺伝子導入剤。
【請求項４】
請求項３において、前記芳香環がベンゼン環であることを特徴とする遺伝子導入剤。
【請求項５】
請求項４において、前記高分子鎖はベンゼン環に対して２〜６個導入されていることを特徴とする遺伝子導入剤。
【請求項６】
請求項５において、前記高分子鎖はベンゼン環に対して４個又は６個導入されていることを特徴とする遺伝子導入剤。
【請求項７】
請求項６において、前記高分子鎖はベンゼン環に対して４個導入されていることを特徴とする遺伝子導入剤。
【請求項８】
請求項１ないし７のいずれか１項において、前記高分子鎖は、ポリアクリルアミド系高分子ブロック鎖又はポリアクリレート系高分子ブロック鎖であることを特徴とする遺伝子導入剤。
【請求項９】
請求項１ないし８のいずれか１項において、前記高分子化合物の分子量が５千〜５０万であることを特徴とする遺伝子導入剤。
【請求項１０】
請求項９において、前記高分子化合物の分子量が５千〜１０万であることを特徴とする遺伝子導入剤。
【請求項１１】
請求項１ないし１０のいずれか１項において、ＲＧＤ配列を有するペプチドの分子量が３００〜５０００であることを特徴とする遺伝子導入剤。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、遺伝子導入剤に係り、特に、血管内皮細胞への遺伝子導入が可能な遺伝子導入剤に関する。
【背景技術】
【０００２】
近年、ヒト疾患の分子遺伝学的要因が明らかになるにつれ、遺伝子治療研究がますます重要視されている。遺伝子治療法は標的とする部位でのＤＮＡの発現を目的としており、いかにＤＮＡを標的部位に到達させるか、いかにＤＮＡを標的部位に効率的に導入し、当該部位で機能的に発現させるかということが重要となる。
【０００３】
従来、細胞へ遺伝子を導入する技術としては次のようなものが知られているが、いずれも以下に述べるような欠点がある。  
（１）ウイルスベクター法
（２）エレクトロポーション法、マイクロインジェクション法等
（３）リポフェクチン法、ポリカチオン法等
【０００４】
（１）ウイルスベクター法
ウイルス全般については、合成工程が複雑で感染の危険性がある；ウイルス内には挿入できないような大きな核酸が導入できない（例えばアデノウイルスでは、導入サイズは９０００ｂ以下である。）；といった欠点がある。  
【０００５】
（２）  細胞膜に一時的に孔を開けるマイクロインジェクション、エレクトロポーション、遺伝子銃、マイクロジェット等による方法は、細胞膜が不可逆的な損傷を受け、溶解してしまうため、生存率も５０％以下と低い。神経細胞など増殖性の低い細胞の場合、生存率が低いことは大きな問題となる。即ち、遺伝子を導入できても、細胞が死滅してしまえば遺伝子導入の意味がない。
【０００６】
（３）  細胞のエンドサイトーシスを利用するリポフェクチン法、りん酸カルシウム法、Ｎａｋｅｄプラスミド法、ポリカチオン法は、一般的に遺伝子導入効率が低い。スター型ポリマーよりなるベクターがＷＯ２００４／０９２３８８に記載されているが、内皮細胞に効率よく遺伝子導入することについての記載はない。
なお、アルギニン、グリシン、アスパラギン酸配列すなわちＲＧＤ配列を有するペプチドを含んだ、骨／歯成長促進のための歯科用製品が特開２００６−８３１７６に記載されている。
【特許文献１】ＷＯ２００４／０９２３８８
【特許文献２】特開２００６−８３１７６
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
本発明は、上記従来の実状に鑑みてなされたものであって、血管内皮細胞への遺伝子導入も可能な遺伝子導入剤を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
請求項１の遺伝子導入剤は、芳香環に複数の高分子鎖が置換基として導入された高分子化合物と核酸とのポリプレックスよりなり、ＲＧＤ配列を有するペプチドを吸着又は複合させてなるものである。なお、ＲＧＤ配列は、アルギニン、グリシン、アスパラギン酸配列である。
【０００９】
請求項２の遺伝子導入剤は、請求項１において、前記芳香環が炭素数５〜８の芳香環の、単環又は縮合環よりなることを特徴とするものである。
【００１０】
請求項３の遺伝子導入剤は、請求項２において、前記芳香環が、ベンゼン環、ナフタレン環、アントラセン環、ビフェニル環、ビフェニレン環、ピリジン環、ピロール環、フラン環又はピレン環であることを特徴とするものである。
【００１１】
請求項４の遺伝子導入剤は、請求項３において、前記芳香環がベンゼン環であることを特徴とするものである。
【００１２】
請求項５の遺伝子導入剤は、請求項４において、前記高分子鎖はベンゼン環に対して２〜６個導入されていることを特徴とするものである。
【００１３】
請求項６の遺伝子導入剤は、請求項５において、前記高分子鎖はベンゼン環に対して４個又は６個導入されていることを特徴とするものである。
【００１４】
請求項７の遺伝子導入剤は、請求項６において、前記高分子鎖はベンゼン環に対して４個導入されていることを特徴とするものである。
【００１５】
請求項８の遺伝子導入剤は、請求項１ないし７のいずれか１項において、前記高分子鎖は、ポリアクリルアミド系高分子ブロック鎖又はポリアクリレート系高分子ブロック鎖であることを特徴とするものである。
【００１６】
請求項９の遺伝子導入剤は、請求項１ないし８のいずれか１項において、前記高分子化合物の分子量が５千〜５０万であることを特徴とするものである。
【００１７】
請求項１０の遺伝子導入剤は、請求項９において、前記高分子化合物の分子量が５千〜１０万であることを特徴とするものである。
【００１８】
請求項１１の遺伝子導入剤は、請求項１ないし１０のいずれか１項において、ＲＧＤ配列を有するペプチドの分子量が３００〜５０００であることを特徴とするものである。
【発明の効果】
【００１９】
本発明の遺伝子導入剤で用いられる高分子化合物は、芳香環に複数の高分子鎖を導入してなるスター型分岐ポリマーである。
【００２０】
本発明の一態様に係る遺伝子導入剤は、この高分子化合物（スター型分岐ポリマー）と遺伝子を混合してナノ粒子状のポリプレックスを形成させ、次いでポリプレックスナノ粒子の表面にＲＧＤ配列を有するペプチドを吸着させて安定化させたものである。
【００２１】
本発明の別態様に係る遺伝子導入剤は、この高分子化合物（スター型分岐ポリマー）と、遺伝子と、上記ペプチドとを混合してナノ粒子状のポリプレックスを形成させたものである。
【００２２】
核酸は一般に生体内においてあまり安定ではなく、ある種の酵素によって分解される。本発明の遺伝子導入剤を用いた核酸含有複合体では、核酸をスター型分岐ポリマーとの凝集体とし、この凝集体に上記ペプチドを複合させるか又はその周囲にペプチドを吸着固定させて酵素から保護するので、少なくとも凝集体内部の核酸を生体内で正常に機能させることができる。
この遺伝子導入剤は、ＲＧＤ配列を有するペプチドが固定されていることにより、血管内皮細胞のインテグリンを介して血管内皮細胞内へも容易に侵入し得る。
【００２３】
なお、他の公知の合成カチオン性ポリマーと遺伝子のポリプレックスまたはカチオン性脂質と遺伝子のポリプレックスとＲＧＤ配列を有するペプチドを混合したものでトランスフェクションを行っても効果は得られない。一般のカチオン性ポリマーベクターと遺伝子のポリプレックスは、ペプチドなどを混合するとポリプレックス同士が凝集して沈殿していまい、遺伝子導入効果が発現されないのが一般的である。
【００２４】
本発明で使用したスター型分岐ポリマーは、その独自の分子構造によるイオン強度・電荷密度がポリプレックスの形成に至適と考えられ、水溶液中で安定して分散するポリプレックスが得られる。ポリプレックスへ包埋された遺伝子は、ペプチドはもちろん酵素の作用に対しても安定である。そのため、ＲＧＤ配列を有するペプチドをポリプレックスへ吸着させてもポリプレックスが安定に分散しているものと考えられる。
【００２５】
本発明の遺伝子導入剤に吸着されたペプチドは、ＲＧＤアミノ酸配列を有するものである。このＲＧＤ配列は、血管内皮細胞のインテグリンに対し指向性を有する。従って、このＲＧＤ配列を有するペプチドを固定した本発明の遺伝子導入剤であれば、血管内皮細胞への遺伝子導入が可能である。
【発明を実施するための最良の形態】
【００２６】
以下に本発明の遺伝子導入剤の実施の形態を詳細に説明する。
【００２７】
［高分子化合物］
まず、本発明の遺伝子導入剤において用いられる高分子化合物について説明する。
【００２８】
この高分子化合物は、芳香環に複数の高分子鎖が置換基として導入された化合物である。
【００２９】
ここで、この高分子鎖の核となる芳香環としては、炭素数５〜８の芳香環、特に炭素数６の芳香環（即ちベンゼン環）の、単環又は２〜６個の縮合環、例えば、ナフタレン環、アントラセン環、ビフェニル環、ビフェニレン環、ピリジン環、ピロール環、フラン環、ピレン環が挙げられ、好ましくはベンゼン環である。
【００３０】
核となる芳香環に導入される高分子鎖の数は、ベンゼン環であれば２〜６個、ナフタレン環の場合２〜８個、アントラセン環、ピレン環の場合２〜１０個であるが、多い程効果的であり、例えばベンゼン環であれば２，３，４又は６個、特に４又は６個、とりわけ６個であることが好ましい。
【００３１】
高分子鎖を導入するための原料となる芳香環化合物としては、例えば芳香環がベンゼン環の場合、次のようなベンゼン誘導体が挙げられる。
【００３２】
即ち、３分岐鎖用としては、２，４，６−トリス（ブロモメチル）メシチレンとナトリウムＮ，Ｎ−ジエチルジチオカルバメートとをエタノール中で付加反応させて得られる２，４，６−トリス（Ｎ，Ｎ−ジエチルジチオカルバミルメチル）メシチレンであり、４分岐鎖としては、１，２，４，５−テトラキス（ブロモメチル）ベンゼンとナトリウムＮ，Ｎ−ジエチルジチオカルバメートとをエタノール中で付加反応させて得られる１，２，４，５−テトラキス（Ｎ，Ｎ−ジエチルジチオカルバミルメチル）ベンゼンであり、６分岐鎖としては、ヘキサキス（ブロモメチル）ベンゼンとナトリウムＮ，Ｎ−ジエチルジチオカルバメートとをエタノール中で付加反応させて得られるヘキサキス（Ｎ，Ｎ−ジエチルジチオカルバミルメチル）ベンゼンである。
【００３３】
芳香環に導入された高分子鎖のうちの少なくとも一つ、好ましくはそのすべてがその先端側に活性高分子ブロック鎖を有するものである。この高分子鎖は、ビニル系単量体の単独又は異なるビニル系単量体の共重合体よりなるビニル系高分子ブロック鎖、特に３−Ｎ，Ｎ−ジメチルアミノプロピルアクリルアミドＣＨ２＝ＣＨＣＯＮＨＣ３Ｈ６Ｎ（ＣＨ３）２等の重合体よりなるポリアクリルアミド系高分子ブロック鎖であることが好ましい。
【００３４】
芳香環にこのような高分子鎖を導入してなる高分子化合物、例えば、３−Ｎ，Ｎ−ジメチルアミノプロピルアクリルアミドの重合体よりなる高分子ブロック鎖を導入した高分子化合物を合成するには、まず、３−Ｎ，Ｎ−ジメチルアミノプロピルアクリルアミドと前述の各ベンゼン誘導体とをメタノールなどのアルコール溶液あるいは溶解性を考慮してクロロホルムなどの低極性溶媒の溶液として混合し、光重合反応させることにより、ベンゼン環に対し上記ベンゼン誘導体由来の−ＣＨ２−等を介して３−Ｎ，Ｎ−ジメチルアミノプロピルアクリルアミドの重合体が結合した高分子化合物を製造する。
【００３５】
本発明において、芳香環に複数の高分子鎖が導入されてなる高分子化合物の分子量は５千〜５０万、特に１万〜２０万、とりわけ１万〜１０万程度であることが好ましい。この分子量が過度に大きいと、高分子化合物及び核酸で複合体を形成させた際の複合体のサイズが大きくなったり、溶解性が低くなったり、生体内へ使用する場合に、排泄に不利になることが考えられる。逆に過度に小さいと低分子量有機化合物としての性質が強く発生して細胞毒性、高浸透圧、など生物学的な弊害が出てしまう。
【００３６】
また、１本の高分子鎖を構成する単量体の数は、その単量体の種類や反応性等によっても異なるが、ポリアクリルアミド系高分子ブロック鎖を構成する単量体数は５〜１０００程度であることが好ましい。
【００３７】
［核酸］
核酸は、細胞に導入されることによりその細胞内で機能を発現することができるような形態で用いる。例えばＤＮＡの場合、導入された細胞内で当該ＤＮＡが転写され、それにコードされるポリペプチドの産生を経て機能発現されるように当該ＤＮＡが配置されたプラスミドとして用いる。好ましくは、プロモーター領域、開始コドン、所望の機能を有する蛋白質をコードするＤＮＡ、終止コドンおよびターミネーター領域が連続的に配列されている。
【００３８】
所望により２種以上の核酸をひとつのプラスミドに含めることも可能である。
【００３９】
この核酸としては、デオキシリボ核酸（ＤＮＡ）及びリボ核酸（ＲＮＡ）のようなポリヌクレオチド特にＤＮＡが好適であるが、リボ核タンパク質であってもよい。
【００４０】
核酸の好ましい例としては、単純ヘルペスウイルスチミジンキナーゼ遺伝子（ＨＳＶ１−ＴＫ遺伝子），ｐ５３癌抑制遺伝子及びＢＲＣＡ１癌抑制遺伝子やサイトカイン遺伝子としてＴＮＦ−α遺伝子，ＩＬ−２遺伝子，ＩＬ−４遺伝子，ＨＬＡ−Ｂ７／ＩＬ−２遺伝子，ＨＬＡ−Ｂ７／Ｂ２Ｍ遺伝子，ＩＬ−７遺伝子，ＧＭ−ＣＳＦ遺伝子，ＩＦＮ−γ遺伝子及びＩＬ−１２遺伝子などのサイトカイン遺伝子並びにｇｐ−１００，ＭＡＲＴ−１及びＭＡＧＥ−１などの癌抗原ペプチド遺伝子が癌治療に利用できる。
【００４１】
また、ＶＥＧＦ遺伝子，ＨＧＦ遺伝子及びＦＧＦ遺伝子などのサイトカイン遺伝子並びにｃ−ｍｙｃアンチセンス，ｃ−ｍｙｂアンチセンス，ｃｄｃ２キナーゼアンチセンス，ＰＣＮＡアンチセンス，Ｅ２Ｆデコイやｐ２１（ｓｄｉ−１）遺伝子が血管治療に利用できる。かかる一連の遺伝子は当業者には良く知られたものである。
【００４２】
また、アンチセンスによるリプレッシングの他に、２１〜２３塩基の二本鎖ＲＮＡを使用したＲＮＡ干渉によるｍＲＮＡ破壊などに利用することも可能である。
【００４３】
［ポリプレックスの形成］
高分子化合物（スター型分岐ポリマー）と核酸とを複合させてポリプレックスを形成するには、この高分子化合物の濃度１〜１０００μｇ／ｍＬ程度の分散液に対し、常温にて核酸を添加し、混合すればよい。核酸に対して高分子化合物を過剰量添加し、高分子化合物を核酸に対し飽和状態に核酸含有複合体として複合化させるのが好ましい。
【００４４】
［ペプチド］
本発明の遺伝子導入剤に吸着されているペプチドについて説明する。  
本発明の遺伝子導入剤に吸着されているペプチドは、ＲＧＤ配列を有する。このＲＧＤ配列はインテグリン指向性を有しており、このペプチドはインテグリンを介して細胞に結合する性質がある。このＲＧＤ配列を有するペプチドの分子量は３００〜５０００程度が好ましく、直鎖状でも環状でも構わない。具体的には『Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｓｐ』、『Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｓｐ−Ｓｅｒ』、『Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｓｐ−Ｓｅｒ-Ｐｒｏ-Ａｌａ−Ｓｅｒ−Ｓｅｒ−Ｌｙｓ−Ｐｒｏ』、『Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｓｐ−Ｓｅｒ』、『Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｓｐ−Ｔｈｒ−Ｐｒｏ』などが挙げられる。
【００４５】
［ペプチドの吸着又は複合化による遺伝子導入剤の形成］
ペプチドをポリプレックスに吸着させるには、スター型カチオン性ポリマーと核酸とを水溶液中で混合することで形成させたポリプレックスと、ＲＧＤ配列を有するペプチドの水溶液を混合する。これにより、ポリプレックスへペプチドが疎水結合的に及び又は静電的に吸着する。このペプチドを吸着したポリプレックス微粒子は水溶液中で安定して分散する。
【００４６】
ペプチドをポリプレックスに複合させるには、スター型カチオン性ポリマーと、核酸と、ＲＧＤ配列を有するペプチドとを水溶液中で混合する。これにより、ポリプレックスへペプチドが疎水結合的に複合する。このペプチドを複合したポリプレックス微粒子も水溶液中で安定して分散する。
【００４７】
ポリプレックスにペプチドを吸着又は複合させてなる遺伝子導入剤の粒径は５０〜４００ｎｍ程度が好適である。これよりも小さいと、ポリプレックス内部の核酸にまで酵素の作用が及ぶおそれ、あるいは腎臓にて濾過排出されるおそれがある。また、これよりも大きいと、細胞に導入されにくくなるおそれがある。
【００４８】
［生体への投与］
上述のような高分子化合物（スター型分岐ポリマー）と核酸とのポリプレックスに前述の特定のペプチドが固定されてなる本発明の遺伝子導入剤は、生体内へ投与される。
【００４９】
本発明において、核酸を導入する対象として望ましい「細胞」は血管やリンパ管の内皮細胞とくに血管内皮細胞であるが、ＥＳ細胞にも適用可能であると推察される。
【００５０】
本発明の遺伝子導入剤は任意の方法で生体に投与することができる。
【００５１】
体内へ挿入するデバイスとしては、経皮的に患部付近の組織へ刺入するものや、血管カテーテル、ステントグラフトのように血管内へ留置するものなどがあるが、この限りではない。
【００５２】
当該投与方法としては静脈内又は動脈内への注入が特に好ましいが、筋肉内、脂肪組織内、皮下、皮内、リンパ管内、リンパ節内、体腔（心膜腔、胸腔、腹腔、脳脊髄腔等）内、骨髄内への投与の他に病変組織内に直接投与することも可能である。
【００５３】
この核酸含有複合体を有効成分とする医薬は、更に必要に応じて製剤上許容し得る担体（浸透圧調整剤，安定化剤、保存剤、可溶化剤、ｐＨ調整剤、増粘剤等）と混合することが可能である。これら担体は公知のものが使用できる。
【００５４】
また、この核酸含有複合体を有効成分とする医薬は、含まれる核酸の種類が異なる２種以上の核酸含有複合体を含めたものも包含される。このような複数の治療目的を併せ持つ医薬は、多様化する遺伝子治療の分野で特に有用である。
【００５５】
投与量としては、動物、特にヒトに投与される用量は目的の核酸、投与方法および治療される特定部位等、種々の要因によって変化する。しかしながら、その投与量は治療的応答をもたらすに十分であるべきである。
【００５６】
この核酸含有複合体は、好ましくは遺伝子治療に適用される。適用可能な疾患としては、当該複合体に含められる核酸の種類によって異なるが、末梢動脈疾患、冠動脈疾患、動脈拡張術後再狭窄等の病変を生じる循環器領域での疾患等が挙げられる。
【実施例】
【００５７】
以下に実施例１，２及び比較例１を挙げて本発明をより具体的に説明する。
【００５８】
＜ペプチド＞
この実施例１，２及び比較例１ではペプチドとして市販の試薬（シグマ社、Ａ８０５２、Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｓｐ）を使用した。
【００５９】
＜遺伝子導入剤＞
また、スター型分岐ポリマー（高分子ブロック鎖導入高分子化合物）よりなる遺伝子導入剤としては、次の［１］〜［２］のようにして合成したものを用いた。
【００６０】
［１］１，２，４，５−テトラキス（Ｎ，Ｎ−ジエチルジチオカルバミルメチル）ベンゼンの合成
下記反応式に従って、１，２，４，５−テトラキス（Ｎ−Ｎジエチルジチオカルバミルメチル）ベンゼンを次のようにして合成した。
【００６１】
１，２，４，５−テトラキス（ブロモメチルベンゼン）１．０ｇとＮ，Ｎ−ジエチルジチオカルバミル酸ナトリウム４．０ｇをエタノール１００ｍＬ中へ加え、遮光下で室温で４日間攪拌した。沈殿物を濾過し、減圧乾燥後、クロロホルム２００ｍＬへ溶解し、１５０ｍＬの水を加えて抽出分離し、臭化ナトリウムを除去した。この操作を３回繰り返した後、クロロホルム層を硫酸マグネシウムで２４時間乾燥させて、濾過後、ｎ−ヘキサンを加え、再結晶を行って精製し、白色の１，２，４，５−テトラサキス（Ｎ，Ｎ−ジエチルジチオカルバミルメチル）ベンゼンの針状結晶を得た（収率９０％）。
【００６２】
【化１】
2008195682.tif 000003
【００６３】
１Ｈ  ＮＭＲ（ｉｎ  ＣＤＣｌ３）の測定結果はδ  １．２６−１．３１ｐｐｍ（ｔ，  ２４Ｈ，  ＣＨ２ＣＨ３），δ  ３．６９−３．７７ｐｐｍ（ｑ，  ８Ｈ，Ｎ（ＣＨ２ＣＨ３）２），δ  ３．９９−４．０７ｐｐｍ（ｑ，  ８Ｈ，Ｎ（ＣＨ２ＣＨ３）２），δ４．５７ｐｐｍ（ｓ，８Ｈ，Ａｒ−ＣＨ２），δ７．４９ｐｐｍ（ｓ，２Ｈ，Ａｒ−Ｈ）となった。
【００６４】
［２］４分岐型ｐＤＭＡＰＡＡｍホモポリマーよりなる遺伝子導入剤の合成
【００６５】
下記反応式に従い、次のようにして、１，２，４，５−テトラキス［Ｎ，Ｎ−ジエチルジチオカルバミル−ポリ（３−Ｎ，Ｎ−ジメチルアミノプロピルアクリルアミド）−メチル］ベンゼン（以下、ｐＤＭＡＰＡＡｍと記載することがある。）よりなるカチオン性ホモポリマーの合成を行った。
【００６６】
即ち、上記ｉ)により合成した１，２，４，５−テトラサキス（Ｎ，Ｎ−ジエチルジチオカルバミルメチル）ベンゼン４５．６ｍｇを２０ｍＬのクロロホルムへ溶解し、減圧蒸留により精製された３−Ｎ，Ｎ−ジメチルアミノプロピルアクリルアミド（３−Ｎ，Ｎ−ＤＭＡＰＡＡｍ）１９．０ｇを加えて混合し、全量をクロロホルムで５０ｍＬに調整した。石英セル中で激しく攪拌しながら高純度窒素ガスで５分間パージした後に、２００Ｗ高圧水銀灯で紫外光を３５分間照射した。照射強度は照度計（ＵＶＲ−１，ＴＯＰＣＯＮ，Ｔｏｋｙｏ，Ｊａｐａｎ）を使用して１ｍＷ／ｃｍ２（２５０ｎｍ）に調整した。重合溶液をエバポレーターで濃縮し、ジエチルエーテルで重合物を再沈殿させて精製し、少量の水へ溶解し、０．２μｍフィルターで濾過してから凍結乾燥させて４分岐型スター型ホモポリマー１，２，４，５−テトラキス［Ｎ，Ｎ−ジエチルジチオカルバミル−ポリ（３−Ｎ，Ｎ−ジメチルアミノプロピルアクリルアミド）−メチル］ベンゼン（ｐＤＭＡＰＡＡｍ）よりなるカチオン性ホモポリマーを得た（重合率４０％）。分子量はＧＰＣにより３７００と測定された。
【００６７】
【化２】
2008195682.tif 000004
【００６８】
１Ｈ−ＮＭＲ  （ｉｎ  Ｄ２Ｏ）の測定結果は，δ１．５−１．８ｐｐｍ（ｂｒ，  ２Ｈ，  −ＣＨ２ＣＨ２ＣＨ２−），δ２．１−２．２ｐｐｍ（ｂｒ，  ６Ｈ，  Ｎ−ＣＨ３），  δ２．２−２．４ｐｐｍ（ｂｒ，  ２Ｈ，  ＣＨ２−Ｎ），  δ３．０−３．４ｐｐｍ（ｂｒ，  ２Ｈ，  ＮＨ−ＣＨ２），  δ７．４−７．８ｐｐｍ（ｂｒ，  １Ｈ，  −ＮＨ−）となった。
【００６９】
＜遺伝子導入実験に用いた細胞及びＤＮＡ＞
細胞にはマウス血管内皮細胞を使用し、ＤＮＡにはｐＧＬ３コントロールベクターを使用した。
【００７０】
＜実施例１＞
遺伝子導入剤の溶液を以下のようにして調製した。ＲＧＤペプチド凍結乾燥品を、１単位を１０ｍｇとして４〜１６単位／１００μＬのダルベッコＰＢＳ溶液を調製した。これら各単位濃度のＲＧＤペプチド溶液１０μＬと１．０μｇ／μＬ濃度の４分岐型ｐＤＭＡＰＡＡｍホモポリマー生理食塩水溶液９０μＬをタッピングして混合して１０分間放置した。ここに濃度０．０３３μｇ／μＬのＤＮＡのＴＥバッファー溶液６０μＬを混合し、１５０μＬのＯＰＴＩ−ＭＥＭを混合して３０分間インキュベートし、遺伝子導入剤溶液とした。
２４穴培養プレートへマウス血管内皮細胞を６×１０４個播種し、培養２４時間後にトランスフェクションを行った。
トランスフェクションは培養細胞から培地を除去し、ＰＢＳで２回洗浄後に遺伝子導入剤溶液を２００μＬずつ加えて３時間インキュベートし、ＰＢＳで洗浄後に完全培地を加えて４８時間培養して行った。
トランスフェクションの４８時間後にルシフェラーゼアッセにより遺伝子導入活性の評価を行った（プロメガ社、アッセイキット試薬)。補正はタンパク濃度で行い、タンパク定量はＢｉｏＲａｄ社のＢｒａｄｆｏｒｄ試薬で行った。
【００７１】
＜実施例２＞
ＤＮＡ、ＲＧＤペプチド、４分岐型ｐＤＭＡＰＡＡＭホモポリマーの３成分を同時に混合した以外は実施例１と同様の手順でトランスフェクションを行った。
【００７２】
その結果、第１図及び第２図の通り、実施例１及び２のいずれにおいても血管内皮細胞へ効率の良い遺伝子導入が可能であることが確認された。
【００７３】
＜比較例１＞
トランスフェクション前の培養細胞にＲＧＤペプチドを混合した培地を加え、１時間の培養後にＰＢＳで洗浄した。ｐＤＭＡＰＡＡＭホモポリマーとＤＮＡのＯＰＴＩ−ＭＥＭ溶液を３０分間インキュベートし、ＰＢＳで洗浄したＥＣ細胞へ加えた。
ホタルルシフェラーゼ活性の定量は実施例と同様に行ったが、培養細胞へ直接ＲＧＤペプチドを作用させた後にポリプレックスを添加しても、第３図の通り、ＲＧＤ未添加の系と差は認められなかった。
以上より、ｐＤＭＡＰＡＡＭホモポリマーとＤＮＡとのイオン複合体の粒子へＲＧＤペプチドを吸着又は複合体として粒子に取り込ませたものを遺伝子導入剤として使用することにより、血管内皮細胞への効率の良い遺伝子導入が可能であることが確認された。
【図面の簡単な説明】
【００７４】
【図１】実施例１におけるルシフェラーゼ活性の測定結果を示すグラフである。
【図２】実施例２におけるルシフェラーゼ活性の測定結果を示すグラフである。
【図３】比較例１におけるルシフェラーゼ活性の測定結果を示すグラフである。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【配列表】
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