(57)【要約】【課題】全血試料（凍結試料又は非凍結新鮮試料）から核酸を精製処理することなく核酸を増幅する際、核酸増幅反応を阻害・抑制する夾雑物を薬剤処理にて簡便に中和し、血液からの核酸増幅反応を容易に行う。【解決手段】全血試料と所定の濃度に調製された前処理試薬とを混合する前処理工程と、前処理工程から得られる混合溶液を核酸増幅反応溶液に希釈混合する希釈混合工程と、希釈混合工程から得られる希釈混合溶液について核酸増幅反応を行う核酸増幅工程と、を含むことを特徴とする核酸増幅方法。【選択図】図５
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
全血試料と所定の濃度に調製された前処理試薬とを混合する前処理工程と、
前記前処理工程から得られる混合溶液を核酸増幅反応溶液に希釈混合する希釈混合工程と、
前記希釈混合工程から得られる希釈混合溶液について核酸増幅反応を行う核酸増幅工程と、
を含むことを特徴とする核酸増幅方法。
【請求項２】
前記前処理試薬は、前記核酸増幅反応の至適濃度を超え、又は、前記核酸増幅反応の反応阻害をもたらす高濃度に調製されていることを特徴とする請求項１に記載の核酸増幅方法。
【請求項３】
前記希釈混合工程においては、前記混合溶液を前記核酸増幅反応の至適濃度まで、又は、前記核酸増幅反応の反応阻害をもたらさない低濃度まで希釈することを特徴とする請求項１に記載の核酸増幅方法。
【請求項４】
前記前処理工程と、前記希釈混合工程との間に、７５℃〜１００℃で熱処理することを特徴とする請求項１乃至３のいずれかに記載の核酸増幅方法。
【請求項５】
前記前処理試薬が、多価カチオン系ＤＮＡ凝集化剤、溶融温度調製効果剤又は界面活性剤の少なくとも１つ以上を含むことを特徴とする請求項１乃至４のいずれかに記載の核酸増幅方法。
【請求項６】
前記多価カチオン系ＤＮＡ凝集化剤は、ポリアミン系のスペルミン、スペルミジン、ジアミノブタン、プトレッシン、カダベリン、エチレンジアミン、ジエチレントリアミン、トリエチレンテトラミン、ペンタエチレンヘキサミン、テトラエチレンペンタミン、テルミン、１．４−ビス（３−アミノプロピル）−ピペラジン、１−（２アミンエチル）−ピペラジン、１−（２アミンエチル）−ピペリジン、１．４．１０．１３−テトラオキサ−７，１６−ディアザサイクロオクタデカン、トリス（２−アミノエチル）アミンのいずれかであることを特徴とする請求項５に記載の核酸増幅方法。
【請求項７】
前記溶融温度調製効果剤は、両性イオン系の中でもアミノ系、ベタイン系、アミンオキシド系であることを特徴とする請求項５に記載の核酸増幅方法。
【請求項８】
前記界面活性剤は、親水性部分がイオン性（カチオン性・アニオン性・双性）のものと非イオン性（ノニオン性）のものを指すが、特に、アルキルグリコシド、ポリエチレングリコール、ポリビニルアルコール、ジメチコンコポリオール、ショ糖脂肪酸エステル、ベミュレン、ポリ（オキシエチレン・オキシプロピレン）メチルポリシロキサン共重合体、ポリオキシエチレンオクチルフェニルエーテル、ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油、ポリオキシエチレンステアリルエーテル、ポリオキシエチレンステアリン酸アミド、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレングリコール、モノステアリン酸エチレングリコール、モノラウリン酸ポリオキシエチレンソルビット、ラウリン酸ジエタノールアミド、ジメチコンコポリオールであることを特徴とする請求項５に記載の核酸増幅方法。
【請求項９】
前記核酸増幅反応溶液は核酸増幅反応に必要な基質、バッファー、ポリメラーゼ及びプライマーからなることを特徴とする請求項１乃至４のいずれかに記載の核酸増幅方法。
【請求項１０】
前記核酸増幅反応は、ＰＣＲ法、ＬＡＭＰ法、ＩＣＡＮ法、ＵＣＡＮ法、ＬＣＲ法、ＬＤＲ法、ＳＭＡＰ法、ＳＭＡＰ２法及びＲＣＡ法のいずれかの方法を用いて行うことを特徴とする請求項１乃至請求項９のいずれかに記載の核酸増幅方法。
【請求項１１】
全血試料と所定の濃度に調製された前処理試薬とを混合する前処理工程と、
前記前処理工程から得られる混合溶液を核酸増幅反応溶液に希釈混合する希釈混合工程と、
を含むことを特徴とする全血試料の前処理方法。
【請求項１２】
前記前処理試薬は、核酸増幅反応の至適濃度を超え、又は、核酸増幅反応の反応阻害をもたらす高濃度に調製されていることを特徴とする請求項１１に記載の全血試料の前処理方法。
【請求項１３】
前記希釈混合工程においては、前記混合溶液を核酸増幅反応の至適濃度まで、又は、核酸増幅反応の反応阻害をもたらさない低濃度まで希釈することを特徴とする請求項１２に記載の全血試料の前処理方法。
【請求項１４】
前記前処理工程と、前記希釈混合工程との間に、７５℃〜１００℃で熱処理することを特徴とする請求項１１乃至１３のいずれかに記載の全血試料の前処理方法。
【請求項１５】
前記前処理試薬が、多価カチオン系ＤＮＡ凝集化剤、溶融温度調製効果剤又は界面活性剤の少なくとも１つ以上を含むことを特徴とする請求項１１乃至１４のいずれかに記載の全血試料の前処理方法。
【請求項１６】
前記多価カチオン系ＤＮＡ凝集化剤は、ポリアミン系のスペルミン、スペルミジン、ジアミノブタン、プトレッシン、カダベリン、エチレンジアミン、ジエチレントリアミン、トリエチレンテトラミン、ペンタエチレンヘキサミン、テトラエチレンペンタミン、テルミン、１．４−ビス（３−アミノプロピル）−ピペラジン、１−（２アミンエチル）−ピペラジン、１−（２アミンエチル）−ピペリジン、１．４．１０．１３−テトラオキサ−７，１６−ディアザサイクロオクタデカン、トリス（２−アミノエチル）アミンのいずれかであることを特徴とする請求項１５に記載の全血試料の前処理方法。
【請求項１７】
前記溶融温度調製効果剤は、両性イオン系の中でもアミノ系、ベタイン系、アミンオキシド系であることを特徴とする請求項１５に記載の全血試料の前処理方法。
【請求項１８】
前記界面活性剤は、親水性部分がイオン性（カチオン性・アニオン性・双性）のものと非イオン性（ノニオン性）のものを指すが、特に、アルキルグリコシド、ポリエチレングリコール、ポリビニルアルコール、ジメチコンコポリオール、ショ糖脂肪酸エステル、ベミュレン、ポリ（オキシエチレン・オキシプロピレン）メチルポリシロキサン共重合体、ポリオキシエチレンオクチルフェニルエーテル、ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油、ポリオキシエチレンステアリルエーテル、ポリオキシエチレンステアリン酸アミド、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレングリコール、モノステアリン酸エチレングリコール、モノラウリン酸ポリオキシエチレンソルビット、ラウリン酸ジエタノールアミド、ジメチコンコポリオールであることを特徴とする請求項１５に記載の全血試料の前処理方法。
【請求項１９】
前記核酸増幅反応溶液は核酸増幅反応に必要な基質、バッファー、ポリメラーゼ及びプライマーからなることを特徴とする請求項１１乃至１４のいずれかに記載の全血試料の前処理方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、核酸増幅方法及び全血試料の前処理方法に関する。特に、全血試料（凍結試料又は非凍結新鮮試料）から核酸を精製処理することなく核酸を増幅する方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
ＰＣＲ法は、核酸の変性工程、プライマーのアニーリング工程及びＤＮＡポリメラーゼによるプライマーの伸長反応工程を含む一連の操作を繰り返すことにより、特定の核酸配列を増幅する方法である。これらの工程を含む操作を多数回繰り返すことにより、特定配列のコピー数を著しく増大させることができる。ＰＣＲ法により、従来非常に困難であった生物試料中の極微量な核酸の検出が可能となって、遺伝子解析が飛躍的に容易になった。またＰＣＲ法は、感染症や遺伝子疾患などのＤＮＡ又はＲＮＡレベルでの診断に利用されている。
【０００３】
しかし、通常の生物試料中にはタンパク質、脂質及び糖質などの夾雑物質が大量に含まれており、これらが核酸の増幅や検出を妨げる恐れがある。従って、生物試料中の核酸を増幅するに当たっては、予め生物試料中のこれらの夾雑物質を除去する操作、又は生物試料から核酸を抽出し、精製する操作が必要となる。
【０００４】
核酸の抽出方法としては、フェノールや水酸化ナトリウムを用いる方法が知られているが、これらの物質は取り扱いに注意を要し、また廃棄方法が煩雑である。さらに、これらの方法は、操作に技術的な熟練を要し、試料中の核酸の回収量が一定しない場合も多く、再現性よく実施するのは困難な方法である。
【０００５】
また、核酸包含体から核酸を抽出する方法として、酵素、界面活性剤及びカオトロピック剤等により包含体を解離させ、その後フェノールやクロロホルム等を用いて抽出及び精製する方法が従来から使用されている。最近では核酸の抽出過程において、イオン交換樹脂、ガラスフィルター、ガラスビーズ、あるいはタンパク凝集作用を有する試薬等が使用されている。
【０００６】
さらに、全血からの核酸増幅方法として血液を塩化カリウムや塩化ナトリウム、またはトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン及び塩化アンモニウムからなる群より１種の試薬と血液を混合した後、加熱にて物質を変性したのち遠心分離によって上澄みの一部を増幅反応へ移行する方法なども見出されている。しかし、遠心分離工程が含まれるため簡便性かつ迅速性に欠けていた。
【０００７】
全血試料から核酸の精製処理を行わずに核酸増幅反応を行った場合、血中に存在する夾雑物の影響により、しばしば増幅反応は阻害されてしまう。そこで、核酸の精製処理が必要とされるが、この処理工程は煩雑であるほか、多大な処理時間を要す。
【０００８】
この解決策として、血液を処理することなくダイレクトに用いる核酸増幅法などが開発されている。しかし、この手法を自動化装置に搭載することを考えた場合たとえば、分岐流路を有するＤＮＡチップ（Ｌａｂ  ｏｎ  ｃｈｉｐ）などに応用する場合、全血の粘性が高過ぎる故に、流路内での送液分岐などが困難となる。そのため、吸引・滴下の分注システムを用いた大掛かりな機構を選択せざるを得ず、核酸解析の自動化装置開発が制限されるなどの課題があった。
【０００９】
そこで、血液を予め何らかの溶液で希釈処理し、流路内での送液を容易化し、且つその希釈処理時に血中の夾雑物を中和できるといった上記２つの課題を解決できる溶液処理システムが望まれる。なお、夾雑物とは核酸増幅反応時に悪影響を及ぼすものをいう。
【特許文献１】特開平８−９９９７
【特許文献２】特開平９−１８７２７７
【特許文献３】特開平９−２３８６８７
【特許文献４】特開平１０−８０２７９
【特許文献５】特開平１１−１１３５７３
【特許文献６】特開２００１−３５２９８２
【特許文献７】特開２００６−１８７２２１
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【００１０】
本発明は、上記問題点を解決し、血中の核酸を精製処理することなく、核酸増幅反応を阻害・抑制する夾雑物を薬剤処理にて簡便に中和し、血液からの核酸増幅反応を容易に行うことができるようにすることを課題とする。
【課題を解決するための手段】
【００１１】
本発明者は、核酸増幅反応時に負の相互作用（阻害影響）を引き起こす原因となっている血中のタンパク質、脂質及び糖質などを抑制・緩和することができる試薬をできる限り高濃度でそれら原因物質と反応させることにより、その後の核酸増幅反応への阻害影響を抑制・緩和できることを見出した。
【００１２】
多価カチオン系ＤＮＡ凝集化剤、溶融温度調製効果剤及び界面活性剤の少なくとも１つ以上を高濃度で含む前処理試薬と全血試料とを混合および熱処理することで、核酸増幅反応を阻害する血中夾雑物の負の影響を抑制し、全血からでも核酸精製処理を施すことなく、容易に核酸増幅反応を行うことができるというものである。またさらに、上記前処理試薬のうち、溶融温度調製効果剤及び界面活性剤は、物質表面への吸着を抑制する効果もあることから、ＤＮＡチップなどの流路送液系での扱いも容易となる。
【００１３】
本発明の請求項１に係る発明は、全血試料と所定の濃度に調製された前処理試薬とを混合する前処理工程と、前処理工程から得られる混合溶液を核酸増幅反応溶液に希釈混合する希釈混合工程と、希釈混合工程から得られる希釈混合溶液について核酸増幅反応を行う核酸増幅工程と、を含むことを特徴とする核酸増幅方法としたものである。
【００１４】
本発明の請求項２に係る発明の前処理試薬は、核酸増幅反応の至適濃度を超え、又は、核酸増幅反応の反応阻害をもたらす高濃度に調製されていることを特徴とする請求項１に記載の核酸増幅方法としたものである。
【００１５】
本発明の請求項３に係る発明の希釈混合工程においては、混合溶液を核酸増幅反応の至適濃度まで、又は、核酸増幅反応の反応阻害をもたらさない低濃度まで希釈することを特徴とする請求項１に記載の核酸増幅方法としたものである。
【００１６】
本発明の請求項４に係る発明は、前処理工程と、希釈混合工程との間に、７５℃〜１００℃で熱処理することを特徴とする請求項１乃至３のいずれかに記載の核酸増幅方法としたものである。
【００１７】
本発明の請求項５に係る発明は、前処理試薬が、多価カチオン系ＤＮＡ凝集化剤、溶融温度調製効果剤又は界面活性剤の少なくとも１つ以上を含むことを特徴とする請求項１乃至４のいずれかに記載の核酸増幅方法としたものである。
【００１８】
本発明の請求項６に係る発明の多価カチオン系ＤＮＡ凝集化剤は、ポリアミン系のスペルミン、スペルミジン、ジアミノブタン、プトレッシン、カダベリン、エチレンジアミン、ジエチレントリアミン、トリエチレンテトラミン、ペンタエチレンヘキサミン、テトラエチレンペンタミン、テルミン、１．４−ビス（３−アミノプロピル）−ピペラジン、１−（２アミンエチル）−ピペラジン、１−（２アミンエチル）−ピペリジン、１．４．１０．１３−テトラオキサ−７，１６−ディアザサイクロオクタデカン、トリス（２−アミノエチル）アミンのいずれかであることを特徴とする請求項５に記載の核酸増幅方法としたものである。
【００１９】
本発明の請求項７に係る発明の溶融温度調製効果剤は、両性イオン系の中でもアミノ系、ベタイン系、アミンオキシド系であることを特徴とする請求項５に記載の核酸増幅方法としたものである。
【００２０】
本発明の請求項８に係る発明の界面活性剤は、親水性部分がイオン性（カチオン性・アニオン性・双性）のものと非イオン性（ノニオン性）のものを指すが、特に、アルキルグリコシド、ポリエチレングリコール、ポリビニルアルコール、ジメチコンコポリオール、ショ糖脂肪酸エステル、ベミュレン、ポリ（オキシエチレン・オキシプロピレン）メチルポリシロキサン共重合体、ポリオキシエチレンオクチルフェニルエーテル、ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油、ポリオキシエチレンステアリルエーテル、ポリオキシエチレンステアリン酸アミド、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレングリコール、モノステアリン酸エチレングリコール、モノラウリン酸ポリオキシエチレンソルビット、ラウリン酸ジエタノールアミド、ジメチコンコポリオールであることを特徴とする請求項５に記載の核酸増幅方法としたものである。
【００２１】
本発明の請求項９に係る発明の核酸増幅反応溶液は核酸増幅反応に必要な基質、バッファー、ポリメラーゼ及びプライマーからなることを特徴とする請求項１乃至４のいずれかに記載の核酸増幅方法としたものである。
【００２２】
本発明の請求項１０に係る発明の核酸増幅反応は、ＰＣＲ法、ＬＡＭＰ法、ＩＣＡＮ法、ＵＣＡＮ法、ＬＣＲ法、ＬＤＲ法、ＳＭＡＰ法、ＳＭＡＰ２法及びＲＣＡ法のいずれかの方法を用いて行うことを特徴とする請求項１乃至請求項９のいずれかに記載の核酸増幅方法としたものである。
【００２３】
本発明の請求項１１に係る発明は、全血試料と所定の濃度に調製された前処理試薬とを混合する前処理工程と、前処理工程から得られる混合溶液を核酸増幅反応溶液に希釈混合する希釈混合工程と、を含むことを特徴とする全血試料の前処理方法としたものである。
【００２４】
本発明の請求項１２に係る発明の前処理試薬は、核酸増幅反応の至適濃度を超え、又は、核酸増幅反応の反応阻害をもたらす高濃度に調製されていることを特徴とする請求項１１に記載の全血試料の前処理方法としたものである。
【００２５】
本発明の請求項１３に係る発明の希釈混合工程においては、混合溶液を核酸増幅反応の至適濃度まで、又は、核酸増幅反応の反応阻害をもたらさない低濃度まで希釈することを特徴とする請求項１２に記載の全血試料の前処理方法としたものである。
【００２６】
本発明の請求項１４に係る発明は、前処理工程と、希釈混合工程との間に、７５℃〜１００℃で熱処理することを特徴とする請求項１１乃至１３のいずれかに記載の全血試料の前処理方法としたものである。
【００２７】
本発明の請求項１５に係る発明は、前処理試薬が、多価カチオン系ＤＮＡ凝集化剤、溶融温度調製効果剤又は界面活性剤の少なくとも１つ以上を含むことを特徴とする請求項１１乃至１４のいずれかに記載の全血試料の前処理方法としたものである。
【００２８】
本発明の請求項１６に係る発明の多価カチオン系ＤＮＡ凝集化剤は、ポリアミン系のスペルミン、スペルミジン、ジアミノブタン、プトレッシン、カダベリン、エチレンジアミン、ジエチレントリアミン、トリエチレンテトラミン、ペンタエチレンヘキサミン、テトラエチレンペンタミン、テルミン、１．４−ビス（３−アミノプロピル）−ピペラジン、１−（２アミンエチル）−ピペラジン、１−（２アミンエチル）−ピペリジン、１．４．１０．１３−テトラオキサ−７，１６−ディアザサイクロオクタデカン、トリス（２−アミノエチル）アミンのいずれかであることを特徴とする請求項１５に記載の全血試料の前処理方法としたものである。
【００２９】
本発明の請求項１７に係る発明の溶融温度調製効果剤は、両性イオン系の中でもアミノ系、ベタイン系、アミンオキシド系であることを特徴とする請求項１５に記載の全血試料の前処理方法としたものである。
【００３０】
本発明の請求項１８に係る発明の界面活性剤は、親水性部分がイオン性（カチオン性・アニオン性・双性）のものと非イオン性（ノニオン性）のものを指すが、特に、アルキルグリコシド、ポリエチレングリコール、ポリビニルアルコール、ジメチコンコポリオール、ショ糖脂肪酸エステル、ベミュレン、ポリ（オキシエチレン・オキシプロピレン）メチルポリシロキサン共重合体、ポリオキシエチレンオクチルフェニルエーテル、ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油、ポリオキシエチレンステアリルエーテル、ポリオキシエチレンステアリン酸アミド、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレングリコール、モノステアリン酸エチレングリコール、モノラウリン酸ポリオキシエチレンソルビット、ラウリン酸ジエタノールアミド、ジメチコンコポリオールであることを特徴とする請求項１５に記載の全血試料の前処理方法としたものである。
【００３１】
本発明の請求項１９に係る発明は、核酸増幅反応溶液は核酸増幅反応に必要な基質、バッファー、ポリメラーゼ及びプライマーからなることを特徴とする請求項１１乃至１４のいずれかに記載の全血試料の前処理方法としたものである。
【発明の効果】
【００３２】
本発明は、血中の核酸を精製処理することなく、核酸増幅反応を阻害・抑制する夾雑物を薬剤処理にて簡便に中和し、血液からの核酸増幅反応を容易に行うことができる。また、使用薬剤の特性から、物質表面への吸着抑制効果が期待され、本発明の全血試料の前処理方法は、ＤＮＡチップなどの流路送液系への搭載もできる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００３３】
以下に本発明を詳細に説明する。
【００３４】
本発明の全血試料の前処理方法は、全血試料（凍結試料あるいは非凍結新鮮試料）から核酸を精製処理することなく、核酸を増幅できる。その手順は以下のとおりである。
【００３５】
はじめに、全血試料と高濃度（核酸増幅反応時の至適濃度を越える、もしくは核酸増幅反応時に反応阻害の影響を受ける濃度）に調製された前処理試薬とを混合する（工程Ｉ、高濃度前処理工程）。
【００３６】
次いで、前記高濃度前処理工程から得られる混合溶液を核酸増幅反応溶液に希釈混合（核酸増幅反応時の至適濃度、もしくは核酸増幅反応時に反応阻害の影響を受けない濃度にまで希釈）する（工程ＩＩ、希釈混合工程）。
【００３７】
工程Iにおける血液と前処理試薬との混合比率は、1：５〜1：１００が有効であり、特に１：１０〜1：２０が好ましい。
【００３８】
工程ＩＩにおける前処理混合溶液と核酸増幅溶液との混合比率は、1：５〜1：１００が有効であり、特に１：１０〜1：２０が好ましい。
【００３９】
さらに、工程Ｉと工程ＩＩとの間に、高濃度前処理混合溶液を熱処理する工程（工程ＩＩＩ）を含むことが望ましい。この熱処理は、新鮮全血（非凍結試料）において特に高い効果を発揮する。熱処理温度は、７５℃〜１００℃で３分間〜１２０分間が有効であり、特に、８０℃〜９５℃にて３０分間が好ましい。
【００４０】
工程Ｉの前処理試薬が、多価カチオン系ＤＮＡ凝集化剤、溶融温度調製効果剤、界面活性剤の少なくとも１つ以上を含むことが望ましい。特に、最も高い効果を引き出すためには、上記３種の薬剤を全て含んだ組成になっていることが望ましい。
【００４１】
多価カチオン系ＤＮＡ凝集化剤は、ポリアミン系のスペルミン、スペルミジン、ジアミノブタン、プトレッシン、カダベリン、エチレンジアミン、ジエチレントリアミン、トリエチレンテトラミン、ペンタエチレンヘキサミン、テトラエチレンペンタミン、テルミン、１．４−ビス（３−アミノプロピル）―ピペラジン、１−（２アミンエチル）―ピペラジン、１−（２アミンエチル）―ピペリジン、１．４．１０．１３−テトラオキサ−７，１６−ディアザサイクロオクタデカン、トリス（２−アミノエチル）アミンであることが望ましい。
【００４２】
例えば、工程Ｉの高濃度前処理時にスペルミンを用いるのであれば、その含有量は１ｍＭ〜５ｍＭ程度が望ましい（核酸増幅反応時の最終濃度では、０．１ｍＭ〜０．５ｍＭとなる）。また、スペルミジンを用いるのであれば、その含有量は０．１ｍＭ程度が望ましい（核酸増幅反応時の最終濃度では、０．０１ｍＭとなる）。
【００４３】
溶融温度調製効果剤は、両性イオン系の中でもアミノ系、ベタイン系、アミンオキシド系であることが望ましい。
【００４４】
例えば、工程Ｉの高濃度前処理時にベタインを用いるのであれば、その含有量は３．８Ｍ〜１０Ｍ程度が望ましい（核酸増幅反応時の最終濃度では、３８０ｍＭ〜１Ｍとなる）。
【００４５】
界面活性剤は、親水性部分がイオン性（カチオン性・アニオン性・双性）のものと非イオン性（ノニオン性）のものを指すが、特に、アルキルグリコシド、ポリエチレングリコール、ポリビニルアルコール、ジメチコンコポリオール、ショ糖脂肪酸エステル、ベミュレン、ポリ（オキシエチレン・オキシプロピレン）メチルポリシロキサン共重合体、ポリオキシエチレンオクチルフェニルエーテル、ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油、ポリオキシエチレンステアリルエーテル、ポリオキシエチレンステアリン酸アミド、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレングリコール、モノステアリン酸エチレングリコール、モノラウリン酸ポリオキシエチレンソルビット、ラウリン酸ジエタノールアミド、ジメチコンコポリオールであることが望ましい。
【００４６】
例えば、工程Ｉの高濃度前処理時にＴｗｅｅｎ２０を用いるのであれば、その含有量は１％〜２０％程度が望ましい（核酸増幅反応時の最終濃度では、０．１％〜２％となる）。
【００４７】
工程ＩＩの核酸増幅反応溶液が、核酸増幅反応に必要な基質、バッファー、ポリメラーゼ及びプライマーから構成されることが望ましい。
【００４８】
上記工程Ｉ、ＩＩに引き続く核酸増幅方法は、特に限定はしないがＰＣＲ法、ＬＡＭＰ法、ＩＣＡＮ法、ＵＣＡＮ法、ＬＣＲ法、ＬＤＲ法、ＳＭＡＰ法、ＳＭＡＰ２法及びＲＣＡ法であることが望ましい。
【実施例１】
【００４９】
＜前処理試薬成分の各種至適濃度条件の検討＞
精製ゲノムＤＮＡを鋳型として、各種前処理試薬（ベタイン、スペルミン、Ｔｗｅｅｎ２０）それぞれの存在下におけるＰＣＲ反応への至適濃度条件あるいは反応阻害濃度条件について検討した。
【００５０】
＜核酸増幅反応組成＞
各種前処理試薬                              濃度勾配
オリゴヌクレオチド：Ｆ                      １ｐｍｏｌ／μＬ
オリゴヌクレオチド：Ｒ                      １ｐｍｏｌ／μＬ
１０×ＰＣＲ  Ｂｕｆｆｅｒ                  １Ｘｂｕｆｆｅｒ
ｄＮＴＰ  Ｍｉｘｔｕｒｅ                    ０．２５ｍＭ（ｅａｃｈ）
Ｎａｔｉｖｅ−Ｔａｑ  ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ  ０．１ｕｎｉｔ／μＬ
精製ヒトゲノム                              ３ｎｇ／μＬ
【００５１】
なお、上記オリゴヌクレオチドはヒトβ−３ＡＲ遺伝子領域内の１９０ｂｐを増幅産物として得ることができる。配列は以下の通りである。
【００５２】
オリゴヌクレオチドＦ：５’→３’：ＣＣＡＡＴＡＣＣＧＣＣＡＡＣＡＣＣＡＧＴ
オリゴヌクレオチドＲ：５’→３’：ＡＧＧＡＧＴＣＣＣＡＴＣＡＣＣＡＧＧＴ
【００５３】
＜核酸増幅温度条件＞
（１）９５℃、３分
（２）９５℃、３０秒
（３）６５℃、３０秒
（４）７２℃、２０秒
（５）（２）〜（４）を３０サイクル
【００５４】
＜ＰＣＲ核酸増幅断片解析＞
アクリルアミドゲル電気泳動法にて、核酸増幅バンドを解析した。
【００５５】
図１に、上記解析の結果を示す。ベタインの含有至適濃度は、３８０ｍＭ〜１．０Ｍであることがわかる。なお、図１において、レーン１〜１２のベタインの終濃度はそれぞれ順に、４．２Ｍ、３．０Ｍ、２．０Ｍ、１．５Ｍ、１．０Ｍ、５００ｍＭ、３８０ｍＭ、２００ｍＭ、１００ｍＭ、５０ｍＭ、１０ｍＭ、０ｍＭである。
【００５６】
図２に、上記解析の結果を示す。スペルミンの含有至適濃度は、０．０５ｍＭ〜０．１ｍＭであることがわかる。なお、図２において、レーン１〜１２のスペルミンの終濃度はそれぞれ順に、１０ｍＭ、５ｍＭ、２ｍＭ、１ｍＭ、０．５ｍＭ、０．２ｍＭ、０．１ｍＭ、０．０５ｍＭ、０．０１ｍＭ、０．００５ｍＭ、０．００１ｍＭ、０ｍＭである。
【００５７】
図３に、上記解析の結果を示す。Ｔｗｅｅｎ２０の含有至適濃度は、０．１％〜３％であることがわかる。なお、図３において、レーン１〜１２のＴｗｅｅｎ２０の終濃度はそれぞれ順に、１０％、９％、７％、５％、３％、２％、１％、０．５％、０．２５％、０．１％、０％である。
【実施例２】
【００５８】
以下の反応は、工程Ｉ（全血試料を前処理試薬と混合する工程）と工程ＩＩ（工程Ｉの混合溶液を核酸増幅反応溶液に希釈混合し核酸増幅反応を行う工程）の２段階からなる。
【００５９】
＜工程Ｉ＞
前処理試薬２種（低濃度Ａ、高濃度Ｂ）を調製し、それぞれに各種試料（凍結保存全血、精製ゲノムＤＮＡ、滅菌水）を１／２０ｖｏｌｕｍｅになるように加えて攪拌混合した（本溶液は以下、前処理混合溶液と呼ぶ）。
【００６０】
前処理試薬Ａ及びＢの組成は以下の通りである。
Ａ：ベタイン            ０．４Ｍ
スペルミン          ０．１ｍＭ
Ｔｗｅｅｎ２０      １％
Ｂ：ベタイン            ４．０Ｍ
スペルミン          １．０ｍＭ
Ｔｗｅｅｎ２０      １０％
【００６１】
前処理混合溶液１：前処理試薬Ａに全血を攪拌混合
前処理混合溶液２：前処理試薬Ａに精製ゲノムＤＮＡを攪拌混合
前処理混合溶液３：前処理試薬Ａに滅菌水を攪拌混合
前処理混合溶液４：前処理試薬Ｂに全血を攪拌混合
前処理混合溶液５：前処理試薬Ｂに精製ゲノムＤＮＡを攪拌混合
前処理混合溶液６：前処理試薬Ｂに滅菌水を攪拌混合
【００６２】
＜工程ＩＩ＞
前処理試薬Ａを用いた場合
オリゴヌクレオチド：Ｆ                          １ｐｍｏｌ／μＬ
オリゴヌクレオチド：Ｒ                          １ｐｍｏｌ／μＬ
１０×ＰＣＲ  Ｂｕｆｆｅｒ                      １Ｘｂｕｆｆｅｒ
ｄＮＴＰ  Ｍｉｘｔｕｒｅ                        ０．２５ｍＭ（ｅａｃｈ）
Ｎａｔｉｖｅ−Ｔａｑ  ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ      ０．１ｕｎｉｔ／μＬ
前処理混合溶液（１〜３のいずれか）              １／１０ｖｏｌｕｍｅ
ベタイン                                        ０．３６Ｍ
スペルミン                                      ０．０９ｍＭ
Ｔｗｅｅｎ２０                                  ０．９％
【００６３】
前処理試薬Ｂを用いた場合
オリゴヌクレオチド：Ｆ                      １ｐｍｏｌ／μＬ
オリゴヌクレオチド：Ｒ                      １ｐｍｏｌ／μＬ
１０×ＰＣＲ  Ｂｕｆｆｅｒ                  １Ｘｂｕｆｆｅｒ
ｄＮＴＰ  Ｍｉｘｔｕｒｅ                    ０．２５ｍＭ（ｅａｃｈ）
Ｎａｔｉｖｅ−Ｔａｑ  ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ  ０．１ｕｎｉｔ／μＬ
前処理混合溶液（４〜６のいずれか）          １／１０ｖｏｌｕｍｅ
【００６４】
なお、工程ＩＩのＰＣＲ溶液では、前処理試薬ＡおよびＢのどちらを用いた場合であっても、ベタイン、スペルミン、Ｔｗｅｅｎ２０の終濃度はそれぞれ等しくなるよう調製した。また、上記オリゴヌクレオチドはヒトβ−３ＡＲ遺伝子領域内の１９０ｂｐを増幅産物として得ることができる。配列は以下の通りである。
【００６５】
オリゴヌクレオチドＦ：５’→３’：ＣＣＡＡＴＡＣＣＧＣＣＡＡＣＡＣＣＡＧＴ
オリゴヌクレオチドＲ：５’→３’：ＡＧＧＡＧＴＣＣＣＡＴＣＡＣＣＡＧＧＴ
【００６６】
＜核酸増幅温度条件＞
（１）９５℃、３分
（２）９５℃、３０秒
（３）６５℃、３０秒
（４）７２℃、２０秒
（５）（２）〜（４）を３０サイクル
【００６７】
＜ＰＣＲ核酸増幅断片解析＞
アクリルアミドゲル電気泳動法にて、核酸増幅バンドを解析した。
【００６８】
上記解析結果、とりわけ、レーン１と４の比較から、高濃度の前処理試薬によって処理されたレーン４の方がより高い増幅効率を示すことが理解される。前処理試薬を構成する各成分濃度がＰＣＲの至適濃度（レーン１）よりも１０倍ほど濃い濃度（レーン４）の時に、より核酸増幅量は増加されたことから、高濃度試薬にて試料を予め処理（前処理）することが、未精製血液からの核酸増幅率を増加させたものと解釈することができる。なお、レーン２及び５はポジティブコントロール、３及び６はネガティブコントロールである。
【００６９】
図４のレーン１〜６はそれぞれ前処理混合溶液１〜６のＰＣＲ産物に相当する。
【実施例３】
【００７０】
以下の反応は、工程Ｉ（全血試料を前処理試薬と混合する工程）と工程ＩＩ（工程Ｉの混合溶液を熱処理する工程）と工程ＩＩＩ（工程ＩＩの熱処理混合溶液を核酸増幅反応溶液に希釈混合し核酸増幅反応を行う工程）の３段階からなる。
【００７１】
＜工程Ｉ＞
前処理試薬を調製し、新鮮全血試料（非凍結試料）を１／２０ｖｏｌｕｍｅになるように加えて攪拌混合した（本溶液は以下、前処理混合溶液と呼ぶ）。
前処理試薬の組成は以下の通りである。
【００７２】
ベタイン              ４．０Ｍ
スペルミン            １．０ｍＭ
Ｔｗｅｅｎ２０        １０％
【００７３】
＜工程ＩＩ＞
上記前処理混合溶液を以下の温度領域で熱処理を施した。
前処理混合溶液１：６０℃、３０分
前処理混合溶液２：６５℃、３０分
前処理混合溶液３：７０℃、３０分
前処理混合溶液４：７５℃、３０分
前処理混合溶液５：８０℃、３０分
前処理混合溶液６：８５℃、３０分
前処理混合溶液７：９０℃、３０分
前処理混合溶液８：９５℃、３０分
前処理混合溶液９：１００℃、３０分
【００７４】
＜工程ＩＩＩ＞
オリゴヌクレオチド：Ｆ                      １ｐｍｏｌ／μＬ
オリゴヌクレオチド：Ｒ                      １ｐｍｏｌ／μＬ
１０×ＰＣＲ  Ｂｕｆｆｅｒ                  １Ｘｂｕｆｆｅｒ
ｄＮＴＰ  Ｍｉｘｔｕｒｅ                    ０．２５ｍＭ（ｅａｃｈ）
Ｎａｔｉｖｅ−Ｔａｑ  ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ  ０．１ｕｎｉｔ／μＬ
各種前処理混合溶液                          １／１０ｖｏｌｕｍｅ
【００７５】
なお、上記オリゴヌクレオチドはヒトβ−３ＡＲ遺伝子領域内の１９０ｂｐを増幅産物として得ることができる。配列は以下の通りである。
【００７６】
オリゴヌクレオチドＦ：５’ →３’：ＣＣＡＡＴＡＣＣＧＣＣＡＡＣＡＣＣＡＧＴ
オリゴヌクレオチドＲ：５’ →３’：ＡＧＧＡＧＴＣＣＣＡＴＣＡＣＣＡＧＧＴ
【００７７】
＜核酸増幅温度条件＞
（１）９５℃、３分
（２）９５℃、３０秒
（３）６５℃、３０秒
（４）７２℃、２０秒
（５）（２）〜（４）を３０サイクル
【００７８】
＜ＰＣＲ核酸増幅断片解析＞
アクリルアミドゲル電気泳動法にて、核酸増幅バンドを解析した。
【００７９】
上記解析の結果、１〜３の例では増幅が認められず、４〜９の例では増幅が認められた。特に、レーン６（８５℃）の熱処理が最も高い核酸増幅を示した。
【００８０】
図５のレーン１〜９は前処理混合溶液をそれぞれ６０℃、６５℃、７０℃、７５℃、８０℃、８５℃、９０℃、９５℃、１００℃で熱処理した後のＰＣＲ産物に相当する。
【実施例４】
【００８１】
以下の反応は、工程Ｉ（全血試料を前処理試薬と混合する工程）と工程ＩＩ（工程Ｉの混合溶液を熱処理する工程）と工程ＩＩＩ（工程ＩＩの熱処理混合溶液を核酸増幅反応溶液に希釈混合し核酸増幅反応を行う工程）の３段階からなる。
【００８２】
＜工程Ｉ＞
前処理試薬２種（低濃度Ａ、高濃度Ｂ）を調製し、それぞれに各種試料（新鮮非凍結全血、精製ゲノムＤＮＡ、滅菌水）を１／２０ｖｏｌｕｍｅになるように加えて攪拌混合した（本溶液は以下、前処理混合溶液と呼ぶ）。
【００８３】
前処理試薬ＡおよびＢの組成は以下の通り、
Ａ：ベタイン            ０．４Ｍ
スペルミン          ０．１ｍＭ
Ｔｗｅｅｎ２０      １％
Ｂ：ベタイン            ４．０Ｍ
スペルミン          １．０ｍＭ
Ｔｗｅｅｎ２０      １０％
【００８４】
前処理混合溶液１：前処理試薬Ａに全血を攪拌混合
前処理混合溶液２：前処理試薬Ａに精製ゲノムＤＮＡを攪拌混合
前処理混合溶液３：前処理試薬Ａに滅菌水を攪拌混合
前処理混合溶液４：前処理試薬Ｂに全血を攪拌混合
前処理混合溶液５：前処理試薬Ｂに精製ゲノムＤＮＡを攪拌混合
前処理混合溶液６：前処理試薬Ｂに滅菌水を攪拌混合
【００８５】
＜工程ＩＩ＞
上記前処理混合溶液を９５℃、３０分熱処理を施した。
【００８６】
＜工程ＩＩＩ＞
前処理試薬Ａを用いた場合
オリゴヌクレオチド：Ｆ                      １ｐｍｏｌ／μＬ
オリゴヌクレオチド：Ｒ                      １ｐｍｏｌ／μＬ
１０×ＰＣＲ  Ｂｕｆｆｅｒ                  １Ｘｂｕｆｆｅｒ
ｄＮＴＰ  Ｍｉｘｔｕｒｅ                    ０．２５ｍＭ（ｅａｃｈ）
Ｎａｔｉｖｅ−Ｔａｑ  ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ  ０．１ｕｎｉｔ／μＬ
前処理混合溶液（１〜３のいずれか）          １／１０ｖｏｌｕｍｅ
ベタイン                                    ０．３６Ｍ
スペルミン                                  ０．０９ｍＭ
Ｔｗｅｅｎ２０                              ０．９％
【００８７】
前処理試薬Ｂを用いた場合
オリゴヌクレオチド：Ｆ                      １ｐｍｏｌ／μＬ
オリゴヌクレオチド：Ｒ                      １ｐｍｏｌ／μＬ
１０×ＰＣＲ  Ｂｕｆｆｅｒ                  １Ｘｂｕｆｆｅｒ
ｄＮＴＰ  Ｍｉｘｔｕｒｅ                    ０．２５ｍＭ（ｅａｃｈ）
Ｎａｔｉｖｅ−Ｔａｑ  ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ  ０．１ｕｎｉｔ／μＬ
前処理混合溶液（４〜６のいずれか）          １／１０ｖｏｌｕｍｅ
【００８８】
なお、工程ＩＩのＰＣＲ溶液では、前処理試薬Ａ及びＢのどちらを用いた場合であっても、ベタイン、スペルミン及びＴｗｅｅｎ２０の終濃度はそれぞれ等しくなるよう調製した。また、上記オリゴヌクレオチドはヒトβ−３ＡＲ遺伝子領域内の１９０ｂｐを増幅産物として得ることができる。配列は以下の通りである。
【００８９】
オリゴヌクレオチドＦ：５’→３’：ＣＣＡＡＴＡＣＣＧＣＣＡＡＣＡＣＣＡＧＴ
オリゴヌクレオチドＲ：５’→３’：ＡＧＧＡＧＴＣＣＣＡＴＣＡＣＣＡＧＧＴ
【００９０】
＜核酸増幅温度条件＞
（１）９５℃、３分
（２）９５℃、３０秒
（３）６５℃、３０秒
（４）７２℃、２０秒
（５）（２）〜（４）を３０サイクル
【００９１】
＜ＰＣＲ核酸増幅断片解析＞
アクリルアミドゲル電気泳動法にて、核酸増幅バンドを解析した。
【００９２】
上記解析の結果、とりわけレーン１と４の比較から、高濃度の前処理試薬によって処理されたレーン４の方がより高い増幅効率を示すことがわかる。前処理試薬を構成する各成分濃度がＰＣＲの至適濃度（レーン１）よりも１０倍ほど濃い濃度（レーン４）の時に、より核酸増幅量は増加されたことから、高濃度試薬にて試料を予め処理（前処理）することが、未精製血液からの核酸増幅率を増加させたものと解釈することができる。なお、レーン２及び５はポジティブコントロール、３及び６はネガティブコントロールである。
【００９３】
図６のレーン１〜６はそれぞれ前処理混合溶液１〜６のＰＣＲ産物に相当する。
【実施例５】
【００９４】
以下の反応は、工程Ｉ（試料として、全血もしくは精製ゲノムＤＮＡもしくは滅菌水を前処理試薬あるいは滅菌水と混合する工程）と工程ＩＩ（工程Ｉの混合溶液を熱処理する工程）と工程ＩＩＩ（工程ＩＩの熱処理混合溶液もしくは未処理全血を核酸増幅反応溶液に希釈混合し核酸増幅反応を行う工程）の３段階からなる。
【００９５】
【表１】
2008278774.tif 000003
【００９６】
なお、工程ＩＩのＰＣＲ溶液では、前処理試薬ＡおよびＢのどちらを用いた場合であっても、ベタイン、スペルミン、Ｔｗｅｅｎ２０の終濃度はそれぞれ等しくなるよう調製した。また、上記オリゴヌクレオチドはヒトβ−３ＡＲ遺伝子領域内の１９０ｂｐを増幅産物として得ることができる。配列は以下の通りである。
【００９７】
オリゴヌクレオチドＦ：５’→３’：ＣＣＡＡＴＡＣＣＧＣＣＡＡＣＡＣＣＡＧＴ
オリゴヌクレオチドＲ：５’→３’：ＡＧＧＡＧＴＣＣＣＡＴＣＡＣＣＡＧＧＴ
【００９８】
＜核酸増幅温度条件＞
（１）９５℃、３分
（２）９５℃、３０秒
（３）６５℃、３０秒
（４）７２℃、２０秒
（５）（２）〜（４）を３０サイクル
【００９９】
＜ＰＣＲ核酸増幅断片解析＞
アクリルアミドゲル電気泳動法にて、核酸増幅バンドを解析した。
【０１００】
以上の解析結果から、前処理試薬を用いたレーン１及び８に核酸増幅は認められたが、前処理試薬を滅菌水に置き換えたレーン４及び１１においては、核酸増幅が認められなかった。このことから、本前処理試薬を構成する薬剤がこれら核酸増幅に寄与していることが確認できた。また、全血試料を前処理せずダイレクトに核酸増幅反応溶液に添加したレーン７及び１４では、核酸増幅が認められなかったことからも、本前処理工程が全血の核酸増幅において如何に有効であるかが示された。なお、レーン２，５，９，１２は精製ゲノムＤＮＡを試料とするポジティブコントロール、レーン３，６，１０，１３は試料未存在下におけるネガティブコントロールである。
【０１０１】
図７のレーン１〜14は各種実験レーン１〜１４のＰＣＲ産物に相当する。
【実施例６】
【０１０２】
以下の反応は、工程Ｉ（全血試料を前処理試薬と混合する工程）と工程ＩＩ（工程Ｉの混合溶液を熱処理する工程）と工程ＩＩＩ（工程ＩＩの熱処理混合溶液を核酸増幅反応溶液に希釈混合し核酸増幅反応を行う工程）の３段階からなる。
【０１０３】
＜工程Ｉ＞
前処理試薬を調製し、新鮮全血試料（非凍結試料）６サンプルをそれぞれ１／２０ｖｏｌｕｍｅになるように加えて攪拌混合した（本溶液は以下、前処理混合溶液と呼ぶ）。
前処理試薬の組成は以下の通りである。
【０１０４】
ベタイン            ４．０Ｍ
スペルミン          １．０ｍＭ
Ｔｗｅｅｎ２０      １０％
【０１０５】
＜工程ＩＩ＞
上記前処理混合溶液を９５℃、３０分熱処理を施した。
【０１０６】
＜工程ＩＩＩ＞
オリゴヌクレオチド：Ｆ                      １ｐｍｏｌ／μＬ
オリゴヌクレオチド：Ｒ                      １ｐｍｏｌ／μＬ
１０×ＰＣＲ  Ｂｕｆｆｅｒ                  １Ｘｂｕｆｆｅｒ
ｄＮＴＰ  Ｍｉｘｔｕｒｅ                    ０．２５ｍＭ（ｅａｃｈ）
Ｎａｔｉｖｅ−Ｔａｑ  ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ  ０．１ｕｎｉｔ／μＬ
各種前処理混合溶液                          １／１０ｖｏｌｕｍｅ
【０１０７】
なお、上記オリゴヌクレオチドはヒトβ−３ＡＲ遺伝子領域内の１９０ｂｐを増幅産物として得ることができる。配列は以下の通りである。
【０１０８】
オリゴヌクレオチドＦ：５’→３’：ＣＣＡＡＴＡＣＣＧＣＣＡＡＣＡＣＣＡＧＴ
オリゴヌクレオチドＲ：５’→３’：ＡＧＧＡＧＴＣＣＣＡＴＣＡＣＣＡＧＧＴ
【０１０９】
＜核酸増幅温度条件＞
（１）９５℃、３分
（２）９５℃、３０秒
（３）６５℃、３０秒
（４）７２℃、２０秒
（５）（２）〜（４）を３０サイクルまたは４０サイクル
【０１１０】
＜ＰＣＲ核酸増幅断片解析＞
アクリルアミドゲル電気泳動法にて、核酸増幅バンドを解析した。
【０１１１】
以上の解析結果より、擬陽性増幅を起こしやすい増幅サイクル数の多いレーン７〜１２（４０サイクル）では、未精製全血試料からのＰＣＲ法であるにもかかわらず、擬陽性は殆ど検出されないことがわかる。これらのことから、前処理工程は、全血試料から増幅サイクル数の多い核酸増幅であっても擬陽性を抑えた特異性の高い増幅を行えることが確認できた。
【０１１２】
図８のレーン１〜６は異なる６種の全血より３０サイクルにてＰＣＲ増幅、レーン７〜１２は異なる６種の全血より４０サイクルにてＰＣＲ増幅したものである。
【産業上の利用可能性】
【０１１３】
本反応系を自動化装置へ応用する場合、４℃から１０５℃付近まで対応可能な温調システムの組み込みが不可欠である。利用用途としては、スニップス検査はもちろんベットサイドでの診断法（ＰＯＣＴ）への活用が期待できる。また、第１、２、３次救急救命センターにおける診断、手術室（ＩＣＵ、ＣＣＵ）での活用や感染症検査への活用も期待できる。本発明は、全血１μＬと極少量の採血でよいため将来的には在宅検査機器、または老人介護福祉施設での健康診断への応用も望める。さらに、本発明の特徴は全血１μＬが前処理試薬との混合により、粘性が低下することから、マイクロフルイドの送液サンプルとしての活用が容易となり、同時に全量が増すことから、複数の検査にサンプルを活用することも可能となる。本反応系はＤＮＡ検査で用いられている各種核酸増幅系のサンプルとして用いることができるため、検出機器を問わずその汎用性は広い。
【図面の簡単な説明】
【０１１４】
【図１】各種濃度のベタイン含有時におけるＰＣＲ増幅挙動である。
【図２】各種濃度のスペルミン含有時におけるＰＣＲ増幅挙動である。
【図３】各種濃度のＴｗｅｅｎ２０含有時におけるＰＣＲ増幅挙動である。
【図４】凍結保存全血の高濃度前処理によるＰＣＲ増幅挙動である。
【図５】新鮮全血（非凍結試料）を試料とした前処理混合溶液の熱処理後のＰＣＲ増幅挙動である。
【図６】新鮮全血（非凍結試料）のを試料とした前処理混合溶液の熱処理後のＰＣＲ増幅挙動である。
【図７】全血（凍結及び非凍結）の各種異なる実験工程におけるＰＣＲ増幅挙動である。
【図８】前処理済６種サンプルの異なるサイクル数でのＰＣＲ増幅挙動である。
【図１】
2008278774.tif 000004
【図２】
2008278774.tif 000005
【図３】
2008278774.tif 000006
【図４】
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【図５】
2008278774.tif 000008
【図６】
2008278774.tif 000009
【図７】
2008278774.tif 000010
【図８】
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