(57)【要約】【課題】本発明は、体外診断薬として好適な金コロイドであって、発色の強度が大きく、微量の抗原とも反応して充分な発色を示す体外診断用の金コロイドの提供を目的とする。また、本発明は、広範な粒径において、良好な発色を示す体外診断薬用の金コロイドを提供する。【解決手段】本発明は、金コロイドと、前記金コロイドを修飾し抗体を固定するためのリンカーと、を含む体外診断薬用金コロイドであって、前記リンカーは、化１及び／又は化２で示される化合物からなり、置換基Ｒ１、Ｒ２及び／又は炭素数ｎ１、ｎ２が異なる２種以上の化合物からなる体外診断薬用金コロイドに関する。本発明の金コロイドは、体外診断薬として好適であり、発色の強度が大きく、微量の抗原であっても検出でき、広範な粒径において発色性が良好なものである。【選択図】  なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
金コロイドと、前記金コロイドを修飾し抗体を固定するためのリンカーと、を含む体外診断薬用金コロイドであって、
前記リンカーは、化１及び／又は化２で示される化合物からなり、置換基Ｒ１、Ｒ２及び／又は炭素数ｎ１、ｎ２が異なる２種以上の化合物からなる体外診断薬用金コロイド。
【化１】
2008139226.tif 000007
【化２】
2008139226.tif 000008
【請求項２】
リンカーは、化１又は化２で示される化合物のいずれかであって、置換基Ｒ１、Ｒ２及び／又は炭素数ｎ１、ｎ２が異なる２種以上の化合物からなる請求項１に記載の体外診断薬用金コロイド。
【請求項３】
リンカーは、置換基Ｒ１又はＲ２がカルボキシル基である第１の化合物と、置換基Ｒ１又はＲ２がカルボキシル基以外の置換基である第２の化合物とを含む請求項１又は請求項２に記載の体外診断薬用金コロイド。
【請求項４】
第２の化合物の置換基Ｒ１又はＲ２は、ヒドロキシル基である請求項３に記載の体外診断薬用金コロイド。
【請求項５】
第１の化合物の炭素数ｎ１又はｎ２と、第２の化合物の炭素数ｎ１又はｎ２との差が２以上である請求項３又は４に記載の体外診断薬用金コロイド。
【請求項６】
第１の化合物は、炭素数ｎ１又はｎ２が４〜１０の化合物であり、第２の化合物は、炭素数ｎ１又はｎ２が２〜８の化合物である請求項３〜請求項５のいずれかに記載の体外診断薬用金コロイド。
【請求項７】
リンカーは、第１の化合物と第２の化合物とを、モル比で１：１〜０．１：９．９の割合で含むものである請求項３〜請求項６のいずれかに記載の体外診断薬用金コロイド。
【請求項８】
金コロイドの粒径は、１０ｎｍ〜１５０ｎｍである請求項１〜７のいずれかに記載の体外診断薬用金コロイド。
【請求項９】
試料を展開するための移動層と、
前記移動層の一端に設けられ、抗原に対応する抗体が固定された金コロイドと、
前記移動層の他方の端部に含まれる抗原の有無を判定するための部分と、を備えるイムノクロマトグラフィー用診断キットであって、
前記金コロイドは、請求項１〜８のいずれかに記載の金コロイドであるイムノクロマトグラフィー用診断キット。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、体外診断薬として好適な金コロイドに関する。
【背景技術】
【０００２】
イムノクロマト法や生体物質の染色等による体外診断において、金コロイドを用いた診断方法が知られている。金コロイドを用いた場合、表面プラズモン共鳴により赤色の強い発色が観察可能となり、視覚による簡易的な診断が行える。また、金コロイドの発色は、時間経過による退色が少なく、生体物質等を固定した場合にも観察可能であるため、体外診断薬として好適である。
【０００３】
体外診断薬における金コロイドの具体的な使用方法としては、イムノクロマト法等において、金コロイドに抗体を固定した標識粒子を用いる方法が知られている。イムノクロマト法における使用例としては、抗原が存在する場合、前記標識粒子に抗原の結合した複合体を形成させて、移動層上を展開し、対応する抗体の固定された判定部において複合体を捕捉する方法が知られている。従って、この方法では、判定部において発色が見られるかどうかにより、抗原の有無を確認することができる。
【０００４】
前記した標識粒子作成のため、金コロイドに抗体を固定する方法としては、溶媒中で金コロイドと抗体とを分散させ、物理吸着により固定する方法が知られているが、この際、金コロイド粒子同士の凝集を生じる場合があった。また、金コロイドに抗体以外のタンパク質が固定されることもあった。
【０００５】
そこで、金コロイド粒子同士の凝集を防ぎ、金コロイドに目的の抗体を選択的に固定するため、金コロイドをリンカーで修飾する方法が知られている。リンカーとは、共有結合等の形式で抗体の固定化を可能とする化合物であり、例えば、特許文献１には、ＳＨ基を有する非架橋デキストランまたはアミノデキストランからなるリンカーが示されている。また、特許文献２には、アルカンチオール、アルカンチオール誘導体、ジチオール化合物及びトリチオール化合物をリンカーとする金コロイドが示されている。このリンカーを用いることにより、抗体の特異的吸着を促進することができると共に、金コロイド同士の凝集も防ぐことができる。
【０００６】
【特許文献１】特表２００３−５３６０７４号公報
【特許文献２】特開平６−１１６６０２号公報
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
上述した体外診断薬は、診断の精度向上や早期発見が望まれるため、明確な発色により目的とする抗原等の有無が確認できること、抗原等が微量の場合にも検出可能であること等が求められる。従って、体外診断薬に用いる金コロイドとしては、発色の強度が大きく、微量の抗原とも反応して充分な発色を示すものが好適である。また、体外診断においては、目的の抗原等の種類により、様々な粒径の金コロイドを必要とする場合があるため、広範な粒径において良好な発色を示す金コロイドは、体外診断薬としての利用性が高い。
【０００８】
以上のように、金コロイドは、上記した特性を満たしている場合に、体外診断薬として、より好適なものとなる。一方、前記した特許文献１や特許文献２に記載の金コロイドによれば、金コロイドの凝集を防ぎ、目的とする抗体を特異的に固定することが可能となるが、体外診断薬として特に好適な金コロイドとするための上記特性を、全て満たしているものではなかった。
【０００９】
そこで、本発明は、体外診断薬として好適な金コロイドであって、発色の強度が大きく、微量の抗原とも反応して充分な発色を示す体外診断用の金コロイドの提供を目的とする。また、本発明は、広範な粒径において、良好な発色を示す体外診断薬用の金コロイドを提供する。
【課題を解決するための手段】
【００１０】
本発明者等は、鋭意検討を行い、上記課題を解決することのできる化合物を含むリンカーを見出し、本発明に想到した。すなわち、本発明は、金コロイドと、前記金コロイドを修飾し抗体を固定するためのリンカーと、を含む体外診断薬用金コロイドであって、前記リンカーは、化１及び／又は化２で示される化合物からなり、置換基Ｒ１、Ｒ２及び／又は炭素数ｎ１、ｎ２の異なる２種以上の化合物からなることを特徴とする体外診断薬用金コロイドに関する。
【化１】
2008139226.tif 000002
【化２】
2008139226.tif 000003
【００１１】
本発明における、化１又は化２で示される化合物は、アルキル基の末端にジスルフィド基又はチオール基を有し、アルキル基の他の端部に置換基Ｒ１又はＲ２を有する。ジスルフィド基とチオール基は、金コロイドを修飾する際に作用する置換基であり、置換基Ｒ１、Ｒ２は、抗体を固定する際に作用する置換基である。
【００１２】
また、本発明の金コロイドは、置換基Ｒ１、Ｒ２及び／又は炭素数ｎ１、ｎ２の異なる２種以上の化合物からなるリンカーを含むことにより、発色の強度が大きく、微量の抗原とも反応して良好な発色を示す体外診断薬とすることができる。このような効果が得られるのは、本発明のリンカーであれば、置換基Ｒ１、Ｒ２及び／又は炭素数ｎ１、ｎ２を選択することにより、金コロイド１粒子当たりに固定される抗体数を調整でき、金コロイド１粒子当たりの発色強度を効率的に利用できるためであると考えられる。
【００１３】
尚、本発明の化１、化２で示される化合物は、置換基Ｒ１、Ｒ２が、カルボキシル基、ヒドロキシル基、アルデヒド基、アミノ基のいずれかであり、炭素数ｎ１、ｎ２が２〜１０の範囲内のものである。上記した置換基は、それぞれ抗体と結合する反応性が異なるものであり、これら反応性の異なる置換基を含む化合物を２種以上用いることで、金コロイドに結合する抗体数を調整できると考えられるからである。また、炭素数ｎ１、ｎ２が２〜１０で異なる２種以上の化合物を用いることも、同様に、金コロイドと抗体との反応性の違いを利用するためのものである。
【００１４】
また、本発明のリンカーは、化１、化２で示される化合物を両方含むものとすることができる。化１で示される化合物と、化２で示される化合物とは、アルキル基の一端にジスルフィド基を有するか、チオール基を有するかという相違点を有しているが、ジスルフィド基は、還元によって容易にチオール基となり、チオール基は、酸化によってジスルフィド基となる関係にある。従って、化１で示される化合物と、化２で示される化合物とは、相溶性が高いため、混合して用いることができるものと考えられる。
【００１５】
上記したように、化１で示される化合物と化２で示される化合物とは、混合して用いることもできるが、本発明で適用するリンカーは、化１又は化２で示される化合物のいずれかのみからなることが好ましい。ジスルフィド基と、チオール基とは、抗体との反応性に違いがあると考えられるからである。すなわち、化１で示される化合物と、化２で示される化合物とを混合して用いると、置換基Ｒ１、Ｒ２及び／又は炭素数ｎ１、ｎ２の異なる２種以上の化合物を含むことにより抗体との反応性を調整した場合であっても、さらにジスルフィド基とチオール基との反応性の相違の影響が加わることから、目標とする反応性に調整しにくくなると考えられるからである。
【００１６】
化１又は化２で示される化合物のいずれかのみからなる場合、リンカーは、置換基Ｒ１又はＲ２がカルボキシル基である第１の化合物と、置換基Ｒ１又はＲ２がカルボキシル基以外の置換基である第２の化合物とを含むことが好ましい。抗体との反応性が異なる置換基を含む化合物を用いることにより、金コロイド１粒子当たりに固定される抗体の数を調整できると考えられるからである。また、上記した第２の化合物の置換基Ｒ１又はＲ２は、ヒドロキシル基であることが好ましい。カルボキシル基は、タンパク質中のアミノ基との結合性が高い置換基の１つとして知られており、ヒドロキシル基は、タンパク質中のアミノ基ともカルボキシル基とも、あまり反応しない置換基として知られている。このため、抗体との反応性が高いカルボキシル基と、反応性の低いヒドロキシル基を含むリンカーを用いれば、金コロイドに固定される抗体の数を、より正確に調整できると考えられる。
【００１７】
また、カルボキシル基を有する第１の化合物と、カルボキシル基以外の置換基を有する第２の化合物とをリンカーとする場合、第１の化合物の炭素数と第２の化合物の炭素数との差は、２以上であることが好ましい。炭素数の差によっても、抗体との反応性に相違が生じることから、置換基の種類による抗体との反応性調整効果と併用することで、金コロイドに固定される抗体の数を、より正確に調整できる。さらに、第１の化合物は、炭素数ｎ１又はｎ２が４〜１０の化合物であり、第２の化合物は、炭素数ｎ１又はｎ２が２〜８の化合物であることが好ましい。金コロイドを体外診断薬として用いた場合に、発色強度の大きなものとすることができ、微量の抗原とも反応して発色を示すものとできるからである。
【００１８】
更に、カルボキシル基を有する第１の化合物と、カルボキシル基以外の置換基を有する第２の化合物とをリンカーとする場合、両化合物の混合比率は、モル比で１：１〜０．１：９．９とするのが好ましく、１：１〜１：９がさらに好ましい。１：１〜０．１：９．９の割合であれば、体外診断薬として良好な発色を示す金コロイドとなり、１：１〜１：９であれば、より発色強度の大きいものとすることができるからである。特に、金コロイドの粒径が大きい場合には、第２の化合物の割合を多くすることで、抗体との反応性を低くして、金コロイド１粒子当たりに固定される抗体数が過剰とならないように調整することが好ましいと考えられる。金コロイドの粒径が大きいと、金コロイド１粒子当たりに固定される抗体数が多くなりやすく、固定される抗体数が多いと、体外診断薬として用いる場合、診断に必要な量よりも過剰の抗原が必要になると考えられるからである。
【００１９】
尚、本発明の金コロイドは、粒径が１０ｎｍ〜１５０ｎｍであることが好ましく、４０〜１００ｎｍであることがさらに好ましい。粒径が１０ｎｍ〜１５０ｎｍの金コロイドは、体外診断薬としての利用が可能であり、粒径４０〜１００ｎｍであれば、充分な発光強度を示すものとすることができるからである。
【００２０】
以上で説明した本発明の金コロイドは、イムノクロマトグラフ法に用いることができる。具体的には、イムノクロマトグラフ法では、試料を展開するための移動層と、前記移動層の一端に設けられ、抗原に対応する抗体が固定された金コロイドと、前記移動層の他方の端部に含まれる抗原の有無を判定するための部分と、を備えるイムノクロマトグラフィー用診断キットが用いられるが、この金コロイドとして本発明の体外診断薬用金コロイドを用いることができる。
【発明の効果】
【００２１】
以上で説明したように、本発明の金コロイドは、体外診断薬として好適な金コロイドとなる。また、発色の強度が大きく、微量の抗原であっても検出可能であり、広範な粒径において発色性が良好なものとなる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００２２】
以下、本発明における最良の実施形態について説明する。
【００２３】
金コロイドを形成させて、リンカーを修飾した後、抗体を固定して体外診断薬用の金コロイド（以下、抗体固定金コロイドという。）を作成した。そして、イムノクロマトグラフィーに用いるテストストリップを作成した後、抗体固定金コロイドと、抗原とを用いて、イムノクロマトグラフィーを行い、金コロイドによる発色の強度を測定した。
【００２４】
[金コロイドの形成]
以下の方法により、平均粒径４０ｎｍの金コロイドを形成させた。塩化金酸四水和物０．１７ｇと、クエン酸三ナトリウム二水和物０．４９ｇとを、それぞれ超純水２５ｍｌと１００ｍｌに溶解させて、塩化金酸溶液とクエン酸溶液を調製した。次に、５００ｍｌの三口フラスコ内に、塩化金酸溶液６ｍｌと純水２００ｍｌとを投入して、３０分間加熱還流させた。液温が安定した後、クエン酸溶液５０ｍｌを混合して、１５分間加熱還流した。その後、加熱を停止して室温で放冷し、核コロイドを形成させた。この核コロイド２６ｍｌを、５００ｍｌの三口フラスコに入れ、液温が３０℃になるまで恒温層内で撹拌した。液温が安定したら、塩化金酸四水和物０．０７６ｇを溶解させた塩化金酸溶液２５２ｍｌと、Ｌ−アスコルビン酸ナトリウム０．０９２ｇを溶解させたＬ−アスコルビン酸溶液２５６ｍｌとを同時に滴下して、１時間撹拌しながら反応させて、平均粒径４０ｎｍの金コロイドを形成させた。
【００２５】
また、平均粒径８０ｎｍの金コロイドは、上記により得られた平均粒径４０ｎｍの金コロイドを用いて形成させた。平均粒径４０ｎｍの金コロイド３３．３ｍｌを５００ｍｌの三口フラスコに入れ、液温が３０℃になるまで恒温層内で撹拌した。液温が安定したら、塩化金酸四水和物０．０３９ｇを溶解させた塩化金酸溶液１１８ｍｌと、Ｌ−アスコルビン酸ナトリウム０．０４３ｇを溶解させたＬ−アスコルビン酸溶液１２０ｍｌとを同時に滴下して、１時間撹拌しながら反応させた。
【００２６】
１００ｎｍの金コロイドは、平均粒径４０ｎｍの金コロイド３３．４ｍｌに対し、塩化金酸四水和物０．０７９ｇを溶解させた塩化金酸溶液２４７ｍｌと、Ｌ−アスコルビン酸ナトリウム０．０９２ｇを溶解させたＬ−アスコルビン酸溶液２５１ｍｌとを滴下したこと以外は、平均粒径８０ｎｍの金コロイドと同様の方法によって形成させた。
【００２７】
[リンカーの修飾]
上記方法により形成した粒径が４０、８０、１００ｎｍの金コロイドに、炭素数ｎ１、ｎ２や、置換基Ｒ１、Ｒ２の異なる第１の化合物及び第２の化合物を含むリンカーを修飾させた。第１実施形態〜第４実施形態のそれぞれについて、金コロイドの粒径、リンカーとして用いた第１の化合物及び第２の化合物の種類、第１の化合物と第２の化合物とを含む割合のモル比を、表１に示す。
【００２８】
第１実施形態は、粒径８０ｎｍの金コロイドに、化１の化合物（ジスルフィド基を有する）のみを含むリンカーを修飾させたものと、化２の化合物（チオール基を有する）のみを含むリンカーを修飾させたものとした。第２実施形態は、炭素数ｎ１が３、５、７、１０である第１の化合物を含むリンカーを修飾させたものとした。第３実施形態では、金コロイドの粒径が４０ｎｍ、８０ｎｍ、１００ｎｍである場合において、第１の化合物と第２の化合物とのモル比を１０：０、５：５、１：９としたリンカーを修飾させた。第４実施形態は、第１の化合物のみを含むリンカーを金コロイドに修飾させたものであり、炭素数ｎ１が１０である第１の化合物と、炭素数ｎ１が３、５、７、１０である第１の化合物とを、モル比で１：９の割合で含むリンカーを用いた。
【００２９】
【表１】
2008139226.tif 000004
【００３０】
具体的なリンカーの修飾方法について、第３実施形態におけるモル比５：５の金コロイドを例として説明する。上記方法により得られた金コロイド１００ｍｌに、リンカーである第１の化合物のメタノール溶液５ｍｌ（濃度１０μＭ）と、第２の化合物のメタノール溶液５ｍｌ（濃度１０μＭ）とを添加し、室温で２４時間反応させた。その後、１０ｍＭ  ホウ酸緩衝液（ｐＨ  ８．１）１Ｌにより５時間の透析を３回行い未反応の溶液を取り除いて、リンカーを修飾した金コロイドを得た。その他の実施形態についても、それぞれ上記と同様の方法によりリンカーの修飾を行った。
【００３１】
[抗体の固定]
上記方法により、粒径及びリンカーが異なるそれぞれの金コロイドについて、抗体を固定させた。抗体には、妊娠の成立を診断するために用いる絨毛性性腺刺激ホルモン抗体を用いた。リンカーを修飾した金コロイド９００μｌに、０．０４ｍＭ  １−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）カルボキシルイミド塩酸塩１００ｍｌを加えて１０分間反応させて、１００μｇ／ｍｌ絨毛性性腺刺激ホルモン抗体（抗ヒトモノクローナル抗体  ｃｌｏｎｅ５００８、Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａ社製）１００μｌを加え、３時間室温で反応させた。尚、カルボキシルイミド塩酸塩と、絨毛性性腺刺激ホルモン抗体には、緩衝液として１０ｍＭ  ホウ酸緩衝液（ｐＨ８．１）を使用した。
【００３２】
その後、１％  ポリエチレングリコール２００００（５０ｍＭ  リン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．５）を使用した。）を５０μｌと、１０％  ウシ血清アルブミン（以下、ＢＳＡという。：５０ｍＭ  リン酸カリウム緩衝液（ｐＨ９．０）を使用した。）１００μｌを加え、さらに１０分間反応させた。その後、４℃において、１５分間遠心分離を行い、上澄みの９割程度を除去して、沈降した抗体固定金コロイドを採取した。採取した沈殿は、超音波分散させた後、保存液（１．０％  ＢＳＡ、０．０５％  ポリエチレングリコール２００００、０．１％  ＮａＮ３、１５０ｍＭ  ＮａＣｌ、２０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８．２））９００μｌを加えた。この遠心分離による洗浄を、３回繰り返し行った。尚、遠心分離は、金コロイドの粒径が４０ｎｍの場合３０００×ｇ、８０ｎｍ及び１００ｎｍの場合１５００×ｇの条件で行った。洗浄後の抗体固定金コロイドは、分光光度計で吸光度を測定し、波長５２０〜６００ｎｍの間における吸光度の最大値が６となるよう、保存液を用いて調整を行った。
【００３３】
比較として、リンカーを修飾していない金コロイドについて、抗体固定金コロイドを作成した。平均粒径４０ｎｍ、８０ｎｍ、１００ｎｍの金コロイドを用いて、５０ｍＭ  ＫＨ２ＰＯ４（ｐＨ７．５）１００μｌと、１００μｇ／ｍｌ絨毛性性腺刺激ホルモン抗体（５ｍＭ  ＫＨ２ＰＯ４（ｐＨ７．５））１００μｌとを添加して１０分間反応させた以外は、上記と同様の方法により、抗体固定金コロイドを作成した。
【００３４】
[テストストリップの作成]
イムノクロマトグラフィーによる診断のための、テストストリップを作成した。移動層であるメンブレン上に、抗原の有無を判定するためのテストラインと、金コロイドが、メンブレン上で正常に発色しているかどうかの目安となるコントロールラインとを作成した。テストラインには、抗原と複合体を形成した抗体固定金コロイドのみを捕捉する抗体を塗布し、コントロールラインには、抗原を含まない抗体固定金コロイドを捕捉する抗体を塗布した。
【００３５】
テストラインは、抗体として抗ｈαＳ抗体を用いた溶液（表２）を調整し、この溶液０．７５μｌを、定量分注装置（Ｂｉｏｊｅｔ  Ｑｕａｎｔｉ  ３０００、ＢｉｏＤｏｔ社製）により、５０ｍｍ／秒、２０．８３ｎＬ／ｄｏｔ、０．２８ｍｍピッチの条件で、メンブレンに塗布して作成した。尚、メンブレンとしては、ニトロセルロース製で、幅２５ｍｍ、長さ３０ｃｍのものを使用した。
【００３６】
【表２】
2008139226.tif 000005
【００３７】
コントロールラインは、抗体として抗マウス抗体を用いた溶液（表３）を調整し、テストラインと同様の塗布条件で、メンブレン上に作成した。
【００３８】
【表３】
2008139226.tif 000006
【００３９】
テストライン及びコントロールラインを形成したメンブレンは、インキュベータで、４２℃において１時間乾燥させた後、室温でさらに２時間乾燥させた。その後、抗体固定金コロイドのニトロセルロース膜への吸着を防ぐブロッキング溶液である０．５％カセイン（５０ｍＭ  ホウ酸緩衝液（ｐＨ８．５））に、まずテストライン側を浸漬し、その後に全体を浸漬して、室温で３０分静置した。その後、ブロッキング溶液からメンブレンを取り出し、余分な試薬を除いた後、洗浄液である０．０１％  ドデシル硫酸ナトリウム（５ｍＭ  リン酸緩衝液（ｐＨ７．５））に、前記と同様に浸漬し、３０分静置した。洗浄液からメンブレンを取り出し、２４時間静置した後、吸収パッドを貼り付けて、４ｍｍ幅に切断した。
【００４０】
[イムノクロマトグラフィー]
マイクロプレートに、抗原であるリコンピナントｈＣＧ（１％ＢＳＡ、５０ｍＭ  リン酸緩衝液（ｐＨ７．４））を４０μｌと、抗体固定金コロイド４μｌとを投入して混合した後、テストストリップを差し込み展開させた。
【００４１】
[発色強度の測定]
イムノクロマトグラフィーを行った後、メンブレン上のテストラインにおいて、金コロイドの発色強度を測定した。測定には、反応ライン自動読み取り機器（Ｑｕａｄ  Ｓｃａｎ：Ｂｉｏ  Ｄｏｔ社製）を用いた。第１実施形態〜第４実施形態のリンカーを修飾した金コロイドの発色強度について、リンカーを修飾しなかった金コロイドの発色強度に対する比率を算出した結果を図１〜４のグラフに示す。
【００４２】
図１より、第１の化合物と第２の化合物とを、モル比で１：９の割合で含むリンカーを用いた金コロイドによれば、化１のみを用いた場合であっても、化２のみを用いた場合であっても、リンカーを修飾しなかった金コロイドに対する発色強度の比率が１００％以上となり、充分な発色を示す金コロイドとなることが分かった。また、図２より、第１の化合物の炭素数ｎ１が５、７、１０である場合には、ｎ１が３の場合に比べて発色強度の高いものとなることが分かった。
【００４３】
図３より、粒径４０、８０、１００ｎｍのいずれの金コロイドを用いたにも、リンカーを修飾しなかった金コロイドに対する発色強度の比率が１００％以上となり、良好な発色が示される金コロイドとなることが分かった。また、第１の化合物と第２の化合物との割合のモル比は、粒径４０ｎｍの場合は５：５（すなわち１：１）、粒径８０ｎｍ及び１００ｎｍの場合には１：９であると、金コロイドの発色強度がより高いものとなることが分かった。
【００４４】
そして、図４より、第１の化合物のみを用いた場合の金コロイドは、リンカーを修飾しなかった金コロイドに対する発色強度の比率が１００％程度であり、発色強度が高くなりにくいことが分かった。
【図面の簡単な説明】
【００４５】
【図１】第１実施形態の発色強度のグラフ。
【図２】第２実施形態の発色強度のグラフ。
【図３】第３実施形態の発色強度のグラフ。
【図４】第４実施形態の発色強度のグラフ。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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