(57)【要約】【課題】本発明は、ハナバチを送粉昆虫としてより効率的に利用することによって、低コストかつ低労力であって、実用的な受粉効率が得られる手段を提供すること、特に、通常のハナバチを用いた場合では実用的な受粉効率を得難い植物や、放虫後に実用的な受粉効率が得られるまでの期間が長過ぎて実用的とはいえない植物に対しても、ハナバチを用いた受粉手段を適用可能にすること目的とする。【解決手段】所定の植物の花器の１種類又は２種類以上の花香成分が配合されたハナバチの餌素材を含有する前記植物の受粉促進用餌組成物を用いることを特徴とする。本発明における花香成分が、合成された花香成分であることが特に好ましい。【選択図】図４
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
植物の花器の１種類又は２種類以上の花香成分を含有する植物の受粉促進用餌添加剤。
【請求項２】
植物が、ハナバチが授粉可能な植物群から選ばれる１種又は２種以上の植物である請求項１に記載の植物の受粉促進用餌添加剤。
【請求項３】
植物が、ナス科、バラ科及びウリ科からなる群から選ばれる１又は２以上の科に含まれる植物である請求項１に記載の植物の受粉促進用餌添加剤。
【請求項４】
植物が、ナス、トマト及びイチゴからなる群から選ばれる１種又は２種以上の植物である請求項１に記載の植物の受粉促進用餌添加剤。
【請求項５】
１種類又は２種類以上の花香成分が、ベンズアルデヒド、フェニルアセトアルデヒド、ノナナール、サリチル酸メチル、ドデカン、デカナール、トリデカン、テトラデカン、ドデカナール、ゲラニルアセトン、β−ヨノン、ペンタデカン、ヘキサデカン、ヘプタデカン、リモネン、酢酸ｃｉｓ−３−ヘキセニル、ミルテノールから選ばれる１種類又は２種類以上である請求項１〜４のいずれかに記載の植物の受粉促進用餌添加剤。
【請求項６】
花器が花粉である請求項１〜４のいずれかに記載の植物の受粉促進用餌添加剤。
【請求項７】
花香成分が、合成された花香成分である請求項１〜６のいずれかに記載の植物の受粉促進用餌添加剤。
【請求項８】
ハナバチが、ミツバチ科、ムカシハナバチ科、コハナバチ科、ヒメハナバチ科、ハキリバチ科、ケアシハナバチ科からなる群から選ばれる科に含まれるハナバチである請求項２〜７のいずれかに記載の植物の受粉促進用餌添加剤。
【請求項９】
ミツバチ科に含まれるハナバチが、ミツバチ又はマルハナバチである請求項８に記載の植物の受粉促進用餌添加剤。
【請求項１０】
ミツバチが、セイヨウミツバチ又はトウヨウミツバチである請求項９に記載の植物の受粉促進用餌添加剤。
【請求項１１】
請求項１〜１０のいずれかに記載の植物の受粉促進用餌添加剤が配合されたハナバチの餌素材を摂取したハナバチを用いることを特徴とする植物の受粉促進方法。
【請求項１２】
植物の花器の１種類又は２種類以上の花香成分が配合されたハナバチの餌素材を含有する前記植物の受粉促進用餌組成物。
【請求項１３】
花香成分が、合成された花香成分である請求項１２に記載の植物の受粉促進用餌組成物。
【請求項１４】
ハナバチの餌素材が、糖質、脂質及びタンパク質からなる群から選ばれる１種類又は２種類以上を含有する物質である請求項１２又は１３に記載の植物の受粉促進用餌組成物。
【請求項１５】
ハナバチの餌素材が砂糖である請求項１２又は１３に記載の植物の受粉促進用餌組成物。
【請求項１６】
請求項１２〜１５のいずれかに記載の植物の受粉促進用餌組成物を摂取したハナバチを用いることを特徴とする植物の受粉促進方法。
【請求項１７】
請求項１２〜１５のいずれかに記載の植物の受粉促進用餌組成物を摂取したハナバチを、花器を有する前記植物が存在する空間内に存在させることを特徴とする請求項１６に記載の植物の受粉促進方法。
【請求項１８】
請求項１２〜１５のいずれかに記載の植物の受粉促進用餌組成物を摂取したハナバチを、花器を有する前記植物が存在する空間内に放つことを特徴とする請求項１７に記載の植物の受粉促進方法。
【請求項１９】
花器を有する植物が存在する空間内に存在するハナバチに、請求項１２〜１５のいずれかに記載の前記植物の受粉促進用餌組成物を摂取させることを特徴とする請求項１７に記載の植物の受粉促進方法。
【請求項２０】
花器を有する前記植物が存在する空間内が、花器を有する前記植物が存在する栽培ハウス内であることを特徴とする請求項１７〜１９のいずれかに記載の植物の受粉促進方法。
【請求項２１】
植物の花器の花香成分を分析する工程、分析により存在が確認された花香成分の１種類又は２種類以上を入手する工程、入手した１種類又は２種類以上の花香成分を、ハナバチの餌素材に配合する工程、花香成分を配合したハナバチの餌素材をハナバチに摂取させる工程、及び、該餌素材を摂取したハナバチを、花器を有する前記植物が存在する空間内に存在させる工程を有することを特徴とする植物の受粉促進方法。
【請求項２２】
植物の花器の花香成分を分析する工程、分析により存在が確認された花香成分の１種類又は２種類以上を入手する工程、入手した１種類又は２種類以上の花香成分を、ハナバチの餌素材に配合する工程、ハナバチを、花器を有する前記植物が存在する空間内に存在させる工程、花香成分を配合した前記餌素材を、前記植物が存在する空間内のハナバチに摂取させる工程を有することを特徴とする植物の受粉促進方法。
【請求項２３】
入手した１種類又は２種類以上の花香成分が、合成された花香成分であることを特徴とする請求項２１又は２２に記載の植物の受粉促進方法。  
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、植物の受粉促進用餌組成物や、植物の受粉促進用餌添加剤や、植物の受粉促進方法に関する。より詳細には、送粉昆虫として利用するハナバチに、授粉目標となる植物の花器の花香成分を添加した餌組成物を与え、この植物の花の香りを餌と結びつけてハナバチに学習させることにより、該ハナバチをより早くより安定的より効率的に授粉目標植物の花に誘導して授粉させ、この植物の受粉を促進する方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
ミツバチ、マルハナバチ、マメコバチ等のハナバチは、様々な農作物の果実生産に不可欠な受粉を補助又は遂行する送粉昆虫として利用されている。なかでも、ミツバチは養蜂業が発達していることから広く流通し、施設栽培においてはイチゴ、メロン、スイカ等の授粉に利用され、野外栽培ではリンゴ、ナシ等の果樹類の授粉に利用されている。しかし、ミツバチ等のハナバチは、様々な植物の花を均等に好むのではなく、ハナバチの餌となる花粉や花蜜の量が多く、かつ花粉や花蜜を採取しやすい構造の花を好む一方、花粉や花蜜の量が少なかったり、花粉や花蜜を採取しにくい構造の花にはほとんど興味を示さない。そのため、ハナバチがあまり好まない種類の植物の場合、ハナバチを用いても十分な送粉効率が得られない場合や、不安定な送粉効率しか得られない場合があり、さらには、ハナバチを用いた授粉がほとんど期待できない場合もある。
【０００３】
例えば、イチゴの場合、その花には花蜜が少なく、ミツバチがあまり好まないため、イチゴの栽培温室（栽培ハウス）にミツバチを放虫しても、ミツバチはハウスの外を目指してハウスの天井付近を飛び回り、イチゴの花には速やかに訪花しない。放虫当日に訪花することもあるが、通常、２、３日かかることが多く、長い場合は１週間程度かかることもある。一方、イチゴの花の寿命は３〜４日程度であることから、この間にミツバチが訪花しなければ、授粉はなされず、この花は受精不良による奇形果になってしまう。
【０００４】
また、ナスの場合、その花には花蜜がなく、花粉も少ない上、葯は縦裂せずに先端部が開葯するだけであるので、ミツバチがナスの花から花粉を採集するためには、イチゴの花の場合のように花の上を周回するだけではなく、葯を揺さぶって花粉を葯の内部から落下させる必要があり、ミツバチにとっては餌が少ない上に餌を採取しづらい花型といえる（図１）。そのため、ミツバチがナスの栽培ハウスに放虫されてから、ナスの花を餌資源として認め、訪花して授粉行動を行うまでの日数は、３日間程度を要するが、４日間以上要することも珍しくなく、３週間程度も要する場合さえあった。一方で、ナスの花は開花から３日間ほど経過すると枯れてしまうため、ミツバチが訪花して授粉行動を行うまでの期間が長いほど、より多くの花が受粉せずに枯れてしまう危険性があった。受粉せずに花が枯れるということは、得られるナスの数が少なくなることを意味し、農家の収入への影響は甚大である。
【０００５】
そのため、ミツバチを放虫しても、ミツバチが授粉活動を開始するまでの期間は、農家の人がナス畑を毎日回って、花を目視で探し出し、筆等を用いて授粉させたり、着果促進ホルモン剤を散布するなどの地道で労力を要する作業が必要であった。しかも、ナスの花は、一斉に開花するわけではなく、五月雨式に開花するため、農家の人はナスの開花シーズンになると毎日ナス畑全体を回っては、花を探し出し、一つ一つ手作業で授粉させたり、着果促進ホルモン剤を散布しなければならず、多大な労力負担を強いられていた。なお、ナスの他にミツバチが花粉を採集しづらい花型の花をもつ植物として、トマトが挙げられるが、国内のトマト栽培では上記の理由等からミツバチの利用はなされていない。
【０００６】
また、ミツバチ等のハナバチを野外の果樹類で利用する場合、ミツバチは果樹園の外にまで活動範囲を広げてしまうため、目的とする果樹類の花への送粉効率が低下してしまう。
【０００７】
一方、ナスとトマトに対するハナバチの訪花性も、ハナバチの種類によってある程度の差がある。例えば、マルハナバチは一般的にミツバチよりも訪花性が高いことが知られている。そのため、マルハナバチはナス、トマトの栽培農家で最も多く用いられている送粉昆虫である。しかし、マルハナバチは１匹当たりの価格が高い上、コロニーの生存期間が短期間（５０日程度）であることから、栽培期間の長さに応じて、再三、購入しなければならず、飼育増殖技術の確立しているミツバチに比べるとコストがかなり割高である。にもかかわらず、少しでも受粉作業を軽減させるため、マルハナバチを利用する農家が多い状況である。また、マルハナバチには、外国産のもの（セイヨウオオマルハナバチ）と国産のもの（クロマルハナバチ等）があるが、送粉効率に優れていることから、外国産のマルハナバチが広く利用されている。しかし、セイヨウオオマルハナバチは、特定外来生物に指定され、その飼育、譲渡、野外への放出等が禁じられたことから、農家はセイヨウオオマルハナバチを温室で利用するにあたり、野外への逃亡を防止するための設備を完備しなければならない。そのため、設備投資ができずにセイヨウオオマルハナバチを使用できなくなる農家も多い。
【０００８】
ミツバチを授粉目標植物の花に誘導する方法として、ヨーロッパ、アメリカ等では、ミツバチが生得的に好むゲラニオールやシトラール等の匂い物質を混ぜた砂糖水や、女王蜂の合成フェロモンを授粉目標植物の畑に散布する方法が行われている。しかしこの方法は、花蜜を有し、かつミツバチが元々好む花を持つリンゴやセイヨウナシ、オウトウ等の植物を目標植物とする場合には効果を発揮するが、花蜜がなく、ミツバチが元々好まない花を持つナス等の植物を目標植物とした場合、上記の砂糖水や合成フェロモンを目標植物に散布すると、ナスの植物体へのミツバチの飛翔数は多くなるものの、ミツバチがナスの花を餌として認識し花粉を採取する効果は認められず、授粉は促進されない。
【０００９】
ミツバチを授粉目標植物の花に誘導する他の方法として、ロシアでは、赤クローバーの花を何個か切り取って砂糖水に浸し、赤クローバーの花の匂いを砂糖水に移し、その砂糖水をミツバチに吸わせて、赤クローバーの花の匂いと餌（砂糖水）とを結びつけてミツバチに学習させることによって、ミツバチを赤クローバーの花に誘導する方法が知られている（非特許文献１）。しかし、切り取った花を砂糖水に浸した場合、その花の花香成分は短期間のうちに変化して別の成分に変化してしまったり、他の香気物質が発生してしまうなど、当初の花香成分とは別の香気成分を含んだ砂糖水となってしまうため、目標植物の花への誘導効果は安定して得られず、本方法は一般的な手法となっていない。また、花は種々の花香成分を含むのが一般的であり、花香成分によっては、複数種の植物の花に共通しているため、切り花を用いる本方法では、目標植物の花のみに誘導されるミツバチを得ることはできない。
【００１０】
なお、ミツバチの花に対する採餌方法について以下に概略を述べる。ミツバチのコロニーは、巣の周囲約１００平方キロメートルの広大な地域を採餌行動圏とし、各地に点在する豊かな花畑を見つけだすことができる。ミツバチは餌として主に花蜜と花粉を収集する。働きバチは花粉や花蜜の豊かな花畑等を発見すると、その花畑の餌を巣箱に持ち帰り、尻振りダンスを行い、花畑の方向と距離を仲間の働きバチに伝達する。さらに、その尻振りダンスをする蜂が後ろ脚につけた花粉団子や吐き戻す蜜は、その花畑の花の匂いに関する情報を仲間の働きバチ達に伝達する。採餌を担当する働きバチは、先ほどのダンスの情報に基づいて花畑への方向と距離に見当をつけて花畑に向かい、先ほどの花粉団子等から得られた花の匂いの情報に基づいて、花畑の位置を絞り込む。そのため、１匹の探索蜂（働きバチ）が発見した餌場は、そのコロニー全体の餌場になり、そこに多くの採餌蜂（働きバチ）が向かう。
【００１１】
一般に、ハナバチとされる膜翅目（ミツバチ科、ムカシハナバチ科、コハナバチ科、ヒメハナバチ科、ハキリバチ科、ケアシハナバチ科等）の送粉昆虫は、過去の訪花経験から、花の特徴や場所の記憶に基づいて、採餌としての訪花を行っている。花の香りは花から送粉昆虫への化学的な情報伝達手段であり、送粉昆虫は匂いを触角で感知する。
【非特許文献１】カール・フォン・フリッシュ著「ミツバチの不思議」、法政大学出版局出版、２００５年７月、ｐ.９８
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【００１２】
本発明は、ハナバチを送粉昆虫としてより効率的に利用することによって、低コストかつ低労力であり、かつ、放虫後により短期間でより実用的な受粉効率が得られる手段を提供すること、特に、通常のハナバチを用いた場合では実用的な受粉効率を得難い植物や、放虫後に実用的な受粉効率が得られるまでの期間が長過ぎて実用的とはいえない植物に対しても、ハナバチを用いた受粉手段を適用可能にすることを課題とする。
【課題を解決するための手段】
【００１３】
本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意検討を行い、所定の植物の花器の１種類又は２種類以上の花香成分が配合されたハナバチの餌素材を含有する前記植物の受粉促進用餌組成物を用いることにより、ハナバチの送粉効率を向上させることを見い出し、本発明を完成するに至った。
【００１４】
すなわち本発明は、（１）植物の花器の１種類又は２種類以上の花香成分を含有する植物の受粉促進用餌添加剤や、（２）植物が、ハナバチが授粉可能な植物群から選ばれる１種又は２種以上の植物である上記（１）に記載の植物の受粉促進用餌添加剤や、（３）植物が、ナス科、バラ科及びウリ科からなる群から選ばれる１又は２以上の科に含まれる植物である上記（１）に記載の植物の受粉促進用餌添加剤や、（４）植物が、ナス、トマト及びイチゴからなる群から選ばれる１種又は２種以上の植物である上記（１）に記載の植物の受粉促進用餌添加剤や、（５）１種類又は２種類以上の花香成分が、ベンズアルデヒド、フェニルアセトアルデヒド、ノナナール、サリチル酸メチル、ドデカン、デカナール、トリデカン、テトラデカン、ドデカナール、ゲラニルアセトン、β−ヨノン、ペンタデカン、ヘキサデカン、ヘプタデカン、リモネン、酢酸cis-3-ヘキセニル、ミルテノールから選ばれる１種類又は２種類以上である上記（１）〜（４）のいずれかに記載の植物の受粉促進用餌添加剤や、（６）花器が花粉である上記（１）〜（４）のいずれかに記載の植物の受粉促進用餌添加剤や、（７）花香成分が、合成された花香成分である上記（１）〜（６）のいずれかに記載の植物の受粉促進用餌添加剤や、（８）ハナバチが、ミツバチ科、ムカシハナバチ科、コハナバチ科、ヒメハナバチ科、ハキリバチ科、ケアシハナバチ科からなる群から選ばれる科に含まれるハナバチである上記（２）〜（７）のいずれかに記載の植物の受粉促進用餌添加剤や、（９）ミツバチ科に含まれるハナバチが、ミツバチ又はマルハナバチである上記（８）に記載の植物の受粉促進用餌添加剤や、（１０）ミツバチが、セイヨウミツバチ又はトウヨウミツバチである上記（９）に記載の植物の受粉促進用餌添加剤や、（１１）上記（１）〜（１０）のいずれかに記載の植物の受粉促進用餌添加剤が配合されたハナバチの餌素材を摂取したハナバチを用いることを特徴とする植物の受粉促進方法に関する。
【００１５】
また本発明は、（１２）植物の花器の１種類又は２種類以上の花香成分が配合されたハナバチの餌素材を含有する前記植物の受粉促進用餌組成物や、（１３）花香成分が、合成された花香成分である上記（１２）に記載の植物の受粉促進用餌組成物や、（１４）ハナバチの餌素材が、糖質、脂質及びタンパク質からなる群から選ばれる１種類又は２種類以上を含有する物質である上記（１２）又は（１３）に記載の植物の受粉促進用餌組成物や、（１５）ハナバチの餌素材が砂糖である上記（１２）又は（１３）に記載の植物の受粉促進用餌組成物や、（１６）上記（１２）〜（１５）のいずれかに記載の植物の受粉促進用餌組成物を摂取したハナバチを用いることを特徴とする植物の受粉促進方法や、（１７）上記（１２）〜（１５）のいずれかに記載の植物の受粉促進用餌組成物を摂取したハナバチを、花器を有する前記植物が存在する空間内に存在させることを特徴とする上記（１６）に記載の植物の受粉促進方法や、（１８）上記（１２）〜（１５）のいずれかに記載の植物の受粉促進用餌組成物を摂取したハナバチを、花器を有する前記植物が存在する空間内に放つことを特徴とする上記（１７）に記載の植物の受粉促進方法や、（１９）花器を有する植物が存在する空間内に存在するハナバチに、上記（１２）〜（１５）のいずれかに記載の前記植物の受粉促進用餌組成物を摂取させることを特徴とする上記（１７）に記載の植物の受粉促進方法や、（２０）花器を有する前記植物が存在する空間内が、花器を有する前記植物が存在する栽培ハウス内であることを特徴とする上記（１７）〜（１９）のいずれかに記載の植物の受粉促進方法に関する。
【００１６】
さらに本発明は、（２１）植物の花器の花香成分を分析する工程、分析により存在が確認された花香成分の１種類又は２種類以上を入手する工程、入手した１種類又は２種類以上の花香成分を、ハナバチの餌素材に配合する工程、花香成分を配合したハナバチの餌素材をハナバチに摂取させる工程、及び、該餌素材を摂取したハナバチを、花器を有する前記植物が存在する空間内に存在させる工程を有することを特徴とする植物の受粉促進方法や、（２２）植物の花器の花香成分を分析する工程、分析により存在が確認された花香成分の１種類又は２種類以上を入手する工程、入手した１種類又は２種類以上の花香成分を、ハナバチの餌素材に配合する工程、ハナバチを、花器を有する前記植物が存在する空間内に存在させる工程、花香成分を配合した前記餌素材を、前記植物が存在する空間内のハナバチに摂取させる工程を有することを特徴とする植物の受粉促進方法や、（２３）入手した１種類又は２種類以上の花香成分が、合成された花香成分であることを特徴とする上記（２１）又は（２２）に記載の植物の受粉促進方法に関する。
【発明の効果】
【００１７】
本発明によれば、特に、ハナバチが受粉目標である植物の花をより早期かつより確実に餌として認識する可能性を向上させることができ、受粉目標の植物の多くの花の受粉可能期間が経過してしまう前にハナバチを授粉目標植物の花に誘導して、ハナバチに授粉を開始させることができる。本発明の受粉促進方法を用いることによって、ハナバチを送粉昆虫としてより効率的に利用することができ、その結果、受精不良果の発生率を低減させたり、農家の人々の手作業による人工授粉や着果促進ホルモン剤の散布作業が軽減又は不要になるなど、より低労力であって、かつ、放虫後により短期間でより実用的な受粉効率が得られる受粉手段を提供することができる。特に、本発明により、通常のハナバチを用いた場合では実用的な受粉効率を得難い植物や、放虫後に実用的な受粉効率が得られるまでの期間が長過ぎて実用的とはいえない植物に対しても、ハナバチを用いた受粉手段を適用することが可能となる。その結果、栽培農家が負担するコスト及び労力を著しく軽減することができる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１８】
本発明の植物の受粉促進用餌添加剤は、所定の植物の花器の１種類又は２種類以上の花香成分を含有することを特徴とする。所定の植物の花器の１種類又は２種類以上の花香成分を含有する本発明の植物の受粉促進用餌添加剤を、ハナバチの餌素材に添加し、該餌素材をハナバチに摂取させることにより、目標植物の花に対するハナバチの送粉効率を向上させることができる。
【００１９】
本明細書における「所定の植物の花器の花香成分」とは、所定の植物の花器の花香成分のほか、該花香成分の誘導体であって該花香成分と同様の効果を発揮する化合物も含まれるが、花器又はその一部自体は除かれる。花器の花香成分とは、花粉、雌しべ、花弁等の花器に由来する香気成分である限り特に制限されないが、ハナバチの餌である花粉に由来する香気成分であることが好ましい。各種の植物の属・種名及び科名、並びに、その植物の花器の具体的な花香成分を表１に例示する。
【００２０】
【表１】
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【００２１】
表１において、ナス（Solanum melongena）、トマト（Lycopersicon esculentum）以外の花香成分については、Knudsenら（Phytochemistry, Vol.33, No. 2, pp.253-280(1993)）に記載された花香成分のリストを参照した。一方、ナス（Solanum melongena）、トマト（Lycopersicon esculentum）の花香成分については、本発明者らが後述の実施例で分析した結果を示した。また、表１の各成分について、その成分を花香成分として含む植物の属の数を、Knudsenらに記載された１７４の植物の属について調べた。その結果を表２に示す。また、表１中に記載された植物のうち、その成分を含む植物を示す記号を表２に示す。
【００２２】
【表２】
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【００２３】
Ａ：ヒマワリ  Ｂ：ニセアカシア  Ｃ：アカクローバー  Ｄ：ユリノキ  Ｅ：イチゴ  Ｆ：コウシンバラ  Ｇ：Rosa setate×rugosa  Ｈ：ダイダイ  Ｉ：シトロン Ｊ：タバコ  Ｋ：ナス  Ｌ：トマト
表１に記載された植物以外の植物の受粉を促進する場合であっても、例えば、後述の実施例に記載されたのと同様の方法によってその植物の花器の花香成分を分析することにより、その植物の受粉促進に用いる花香成分を同定することができる。
【００２４】
前述したように、本発明に用いる花香成分としては、所定の植物の花器の１種類又は２種類以上の花香成分を例示することができる。温室内で栽培された植物を受粉対象とする場合のように所定の植物以外の花が無い状況下では、例えば所定の植物の花器に特徴的な花香成分でなくとも、その所定の植物の花器の主要な花香成分を使用しさえすれば、ハナバチにその花の匂いを餌として速やかに認識させ、その花への授粉効率を高めることができるが、特に露地栽培された植物を受粉の対象とする場合は、ハナバチが他の植物の花ではなく、所定の対象植物の花を授粉する率を向上させる観点から、所定の植物の花器に特徴的な１種類又は２種類以上の花香成分を含むことが好ましく、所定の植物の花器に特異的な１種類又は２種類以上の花香成分を含むことがより好ましく、所定の植物の花器に特徴的な１種類又は２種類以上の花香成分と、所定の植物の花器の主要な１種類又は２種類以上の花香成分とを併用することがさらに好ましく、所定の植物の花器に特徴的であってかつ主要な１種類又は２種類以上の花香成分であることがさらにより好ましく、所定の植物の花器に特異的な１種類又は２種類以上の花香成分と、所定の植物の花器の主要な１種類又は２種類以上の花香成分とを併用することがよりさらに好ましく、所定の植物の花器に特異的であってかつ主要な１種類又は２種類以上の花香成分であることがさらにより好ましい。ここで、所定の植物の花器に特徴的な花香成分とは、上記のKnudsenらの花香成分のリストにおいて、その花香成分を含む花器を持つ植物の属の数が、２５以下、好ましくは１５以下、より好ましくは１０以下、さらに好ましくは５以下である花香成分をいう。
【００２５】
また、所定の植物の花器に特異的な花香成分とは、上記Knudsenらの花香成分のリストにおいて、その花香成分を含む花器を持つ植物が他にないことをいう。さらに、所定の植物の花器の主要な花香成分とは、その花器の花香成分全量に対して、５重量％以上、好ましくは１０重量％以上、より好ましくは２０重量％以上、さらに好ましくは３０重量％以上、さらにより好ましくは４０重量％以上含まれる花香成分をいう。
【００２６】
表１及び表２に記載された花香成分のうち、その花香成分を有する他の植物が少ない点で好ましい花香成分としては、例えば、ナス（Solanum melongena）の場合は、ゲラニルアセトン（Geranylacetone）、ドデカナール（Dodecanal）、ドデカン（Dodecane）、ヘプタデカン（Heptadecane）、ヘキサデカン（Hexadecane）等を例示することができ、ヒマワリ（Helianthus annuus）の場合は、1-ヘプテニルベンゼン(1-Heptenylbenzene)、2,3,4-トリメチルヘキサン(2,3,4-Trimethylhexane)、メチルシクロペンタン（Methylcyclopentane）等を例示することができ、ニセアカシア（Robinia pseudoacacia）の場合は、(z)-3-安息香酸ヘキセニル（(z)-3-Hexenyl benzoate）、1-ニトロ-2-フェニルエタン（1-Nitro-2-phenylethane）、ヘキサヒドロファルネシルアセトン（Hexahydrofarnesylacetone）を例示することができ、アカクローバー（Trifolium pratense）の場合は、(Z)-and (E)-けい皮酸メチル （ (Z)-and (E)-Methyl cinnamate）、1-フェニルエタノール（1-Phenylethanol）、ブタン-2,3-ジオール（Butan-2,3-diol）等を例示することができ、ユリノキ（Liriodendron tulipifera）の場合は、β-Elemeneを例示することができ、イチゴ（Fragaria×ananassa）の場合は、酢酸cis-3-ヘキセニル（(Z)-3-Hexenyl acetate）、4-メトキシベンズアルデヒド（4-Methoxybenzaldehyde）、ゲルマクレン D （Germacrene D）を例示することができ、コウシンバラ（Rosa chinensis）の場合は、1-エチル-4-エチルベンゼン（1-Ethenyl-4-ethylbenzene）、2,3-ジメチル-2-ブテン （2,3-Dimethyl-2-butene）、 しょうのう（Camphor）等を例示することができ、Rosa setate×rugosaの場合は、(E)-2-メチルシクロペンタノールアセタート（(E)-2-Methylcyclopentanol acetate）、2,5-ジメチルトリデカン（2,5-Dimethyltridecane）、アロマデンドレン（Aromadendrene）等を例示することができ、ダイダイ（Citrus aurantium）の場合は、2-Methylbutyraldoximeを例示することができ、シトロン（Citrus medica）の場合は、ε-テルピネン（ε-Terpinene）を例示することができ、タバコ（Nicotiana tabacum）の場合は、(Z)-and (E)-β-ファルネセン（(Z)-and (E)-β-Farnesene）、ベンジル3-メチルブタン酸（Benzyl 3-methylbutanoate）、ベンジルペンタン酸（Benzyl pentanoate）等を例示することができ、トマト（Lycopersicon esculentum）の場合は、ゲラニルアセトン（Geranylacetone） 、ペンタデカン（Pentadecane）、オクタデカン（Octadecane）等を例示することができる。これらに代表される、所定の植物の花器に特徴的な花香成分をハナバチに学習させることにより、そのハナバチにその植物の花をより早く餌として認識させることができ、本来はそのハナバチがあまり好まない花であっても、その花により早く誘導することができる。また、屋外において、同じ花香成分を含む数種の植物の花がある場合は、それらの数種の植物のうち、目標とする植物の花のみが有する花香成分をハナバチに学習させることにより、そのハナバチを目標とする植物の花に誘導することが可能となる。
【００２７】
なお、改めてイチゴの花香成分を確認したところ、後述の実施例１１に記載されているように、ミルテノール （Myrtenol）がイチゴの花香成分の主要成分として同定された。また、ミルテノールはKnudsenらの花香成分のリストにおいて、その花香成分を含む花器を持つ植物の属の数が２であることから、イチゴの特徴的な花香成分のひとつであり、好ましい花香成分といえる。そのため、イチゴの花へハナバチを誘導するうえで、ミルテノールはハナバチに学習させる花香成分のひとつとして、有効な成分と考えられる。
【００２８】
本発明における花香成分としては、受粉促進の対象となる植物の花器から抽出した花香成分であってもよいが、より簡便に高濃度の成分を入手できることから、合成された花香成分であることが好ましい。花香成分の花器からの抽出は、公知の手法を組み合わせることにより適宜なし得る。また、花香成分の合成についても、適当な原料化合物を用いて適当な化学反応を行うことにより適宜なし得る。
【００２９】
本発明の受粉促進用餌添加剤中の花香成分の含有量は、本発明におけるハナバチの誘導効果が得られる限り特に制限されず、例えば、受粉促進用餌添加剤全量に対して、花香成分の合計が、１×１０−６重量％以上、好ましくは１×１０−４重量％以上、より好ましくは１×１０−２重量％以上、さらに好ましくは１重量％以上とすることができる。また、本発明の受粉促進用餌添加剤中の花香成分の含有量は、受粉促進用餌添加剤を用いて受粉促進用餌組成物を作製する際に、授粉促進用餌組成物中の花香成分の濃度を調整し易く、かつ、餌素材の濃度が極端には変化しないような含有量とすることができる。例えば、受粉促進用餌組成物を作製する際に添加する受粉促進用餌添加剤が、受粉促進用餌組成物全量に対して１重量％以下で済むように、受粉促進用餌添加剤中の花香成分の含有量を設定することが好ましい。例えば、受粉促進用餌組成物中の花香成分の含有量を１．０×１０−７重量％〜１．０×１０−３重量％と設定した場合は、受粉促進用餌添加剤中の花香成分含有量は、１．０×１０−５重量％〜０．１重量％以下とすることができる。より具体的には、砂糖水５００ｇ（餌素材である砂糖を水に溶解したもの）に、２．０×１０−４重量％の花香成分を含む受粉促進用餌組成物を作製する場合、例えば、受粉促進用餌添加剤全量に対して０．１重量％の花香成分を含む受粉促進用餌添加剤を作製し、該受粉促進用餌添加剤１ｇに砂糖水を加えて５００ｇに増量することで、目的とする花香成分を２．０×１０−４重量％含む受粉促進用餌組成物５００ｇを作製することができる。
【００３０】
本発明における所定の植物としては、ハナバチが授粉可能な植物群から選ばれる１種又は２種以上の植物である限り特に制限されないが、ナス科、バラ科及びウリ科からなる群から選ばれる１又は２以上の科に含まれる植物であることが好ましく、ナス科ナス属、ナス科トマト属、バラ科イチゴ属、ウリ科スイカ属及びウリ科キュウリ属からなる群から選ばれる１又は２以上の属に含まれる植物であることがより好ましく、ナス、トマト、イチゴ、スイカ及びメロンからなる群から選ばれる１種又は２種以上の植物であることがさらに好ましく、ナス、トマト及びイチゴからなる群から選ばれる１種又は２種以上の植物であることがさらにより好ましい。
【００３１】
なお、本発明における所定の植物としては、送粉効率が向上するように特に処理されていない通常のハナバチを用いても、ある程度実用的な送粉効率が得られる植物であってもよいが、通常のハナバチを用いた場合では実用的な受粉効率を得難い植物や、放虫後に実用的な受粉効率が得られるまでの期間が長過ぎて実用的とはいえない植物を受粉対象とすることが、本発明の利益をより多く享受できる点で一般的に好ましい。
【００３２】
ここで、上記のハナバチとは、花の匂いを感知できる膜翅目の送粉昆虫であり、ミツバチ科、ムカシハナバチ科、コハナバチ科、ヒメハナバチ科、ハキリバチ科、ケアシハナバチ科からなる群から選ばれる１つ又は２つ以上の科に含まれるハナバチを例示することができ、量販されていることや、または、伝統的に飼養されていること等から、容易に入手することができる点で、ミツバチ科に含まれるハナバチを好ましく例示することができ、中でもセイヨウミツバチ、トウヨウミツバチ（亜種：ニホンミツバチ）等のミツバチや、セイヨウオオマルハナバチ、クロマルハナバチ等のマルハナバチをより好ましく例示することができ、中でもより低コストであるセイヨウミツバチと国内在来種のトウヨウミツバチ（亜種：ニホンミツバチ）がさらにより好ましい。ミツバチがマルハナバチよりも低コストであるのは、セイヨウミツバチは、コロニーの生存期間が５０日程度のマルハナバチに対して、セイヨウミツバチはコロニーの飼育増殖技術が確立していること、及び、コロニーあたりの市価もマルハナバチに対して５〜８割程度と安価であることによる。トウヨウミツバチ（亜種：ニホンミツバチ）はハチミツの生産力がセイヨウミツバチよりも劣ることから、養蜂業としての飼養はわずかであるが、国内在来種で野生しており、現在も各地で伝統的に飼養されている。なお、本発明の効果をより多く享受する観点からは、給餌した受粉促進用餌組成物をより多く摂取するハナバチ（餌の要求量が高いハナバチ）を用いることが好ましい。餌の要求量が高いハナバチとしては、その巣に蓄えている餌（蜜等）が必要量に満たないハナバチを例示することができる。
【００３３】
なお、通常のミツバチでは実用的な受粉効率が得難いナスやトマトでは、高コストのマルハナバチを用いることで一定の受粉効率が得られる。ナスやトマトのように、通常のミツバチでは実用的な受粉効率が得難く、高コストのマルハナバチを用いなければならない植物に対して、マルハナバチの代わりに、安価なミツバチを実用的に用いることが本発明により可能になる。このような植物に用いる場合、本発明の利益を特に享受することができる。
【００３４】
本発明の植物の受粉促進用餌添加剤は、所定の植物の花器の１種類又は２種類以上の花香成分のみからなってもよいし、本発明におけるハナバチの誘導効果を損なわない限り、他に任意の成分を含んでいてもよい。任意成分としては例えば、個体担体、液体担体、安定剤、酸化防止剤等を例示することができる。本発明の植物の受粉促進用餌添加剤の剤型は、特に制限されず、液剤であってもよいし固形剤であってもよいが、ハナバチの餌素材に混合したり溶解させたりし易いことから液剤であることが好ましい。
【００３５】
本発明の植物の受粉促進用餌添加剤の製造方法は特に制限されず、例えば所定の植物の花器の１種類又は２種類以上の花香成分を前述の花器から抽出したり、該１種類又は２種類以上の花香成分を合成するなどして入手し、入手した花香成分に必要に応じて他の任意成分を配合するなどして、本発明の植物の受粉促進用餌添加剤を製造することができる。
【００３６】
本発明の植物の受粉促進用餌添加剤は、例えば、受粉の対象となる所定の植物の授粉に用いるハナバチの餌素材に添加し、該受粉促進用餌添加剤を添加した餌素材をそのハナバチに摂取させ、摂取したそのハナバチを、花器を有する前述の所定の植物が存在する空間内に存在させるなどして用いることができる。
【００３７】
ここで、ハナバチの餌素材としては、本発明の植物の受粉促進用餌添加剤が有するハナバチの誘導効果を損なわず、かつ、ハナバチが摂食する限り特に制限されないが、例えば、糖質、脂質及びタンパク質からなる群から選ばれる１種類又は２種類以上を含有する物質を例示することができ、中でも砂糖（スクロースを主体とする）、フルクトース、マルトース、グルコース等の糖類や、ダイズ粉を主体としたハナバチ飼育用の代用花粉等を好ましく例示することができる。糖類を用いる場合は、水を添加して水溶液の状態で用いることが好ましい。
【００３８】
本発明の植物の受粉促進用餌組成物は、所定の植物の花器の１種類又は２種類以上の花香成分が配合されたハナバチの餌素材を含有することを特徴とする。「所定の植物の花器の１種類又は２種類以上の花香成分」及び「ハナバチの餌素材」については前述のとおりである。本発明の植物の受粉促進用組成物中における前述の花香成分の含有量は、本発明におけるハナバチの誘導効果が得られる限り特に制限されないが、例えば、受粉促進用餌組成物全量に対して、前述の花香成分の合計を、１．０×１０−８重量％以上、好ましくは１．０×１０−５重量％以上、より好ましくは０．０１重量％以上、１重量％以下とすることができ、また、本発明の植物の受粉促進用組成物中における前述のハナバチの餌素材の含有量は、本発明におけるハナバチの誘導効果が得られ、かつ、ハナバチが摂食する限り特に制限されないが、例えば、受粉促進用餌組成物全量に対して、前述の餌素材の合計を３０重量％〜７０重量％（乾燥重量）、好ましくは４０重量％〜６０重量％（乾燥重量）とすることができる。例えば、餌組成物として砂糖を用いる場合、４０重量％〜６０重量％の濃度の砂糖水を用い、そこに微量（前述の砂糖水全量に対して例えば１．０×１０−８重量％〜１重量％）の花香成分を添加する場合を好ましく例示することができる。
【００３９】
本発明の植物の受粉促進用餌組成物は、所定の植物の花器の１種類又は２種類以上の花香成分とハナバチの餌素材のみからなってもよいし、本発明におけるハナバチの誘導効果を損なわない限り、他に任意の成分を含んでいてもよい。任意成分としては例えば、個体担体、液体担体、安定剤、酸化防止剤等を例示することができる。本発明の植物の受粉促進用餌組成物の剤型は、特に制限されず、液剤であってもよいし固形剤であってもよい。
【００４０】
本発明の植物の受粉促進用餌組成物の製造方法は特に制限されず、例えば所定の植物の花器の１種類又は２種類以上の花香成分を前述の花器から抽出したり、該１種類又は２種類以上の花香成分を合成するなどして入手し、入手した花香成分にハナバチの餌素材に配合し、さらに他の任意成分を必要に応じて配合するなどして、本発明の植物の受粉促進用餌組成物を製造することができる。
【００４１】
本発明の植物の受粉促進方法は、本発明の植物の受粉促進用餌添加剤が配合されたハナバチの餌素材、又は、本発明の植物の受粉促進用餌組成物（以下、本明細書において「受粉促進用餌組成物等」ともいう）を摂取したハナバチを用いる限り特に制限されないが、例えば、受粉促進用餌組成物等を摂取したハナバチを、花器を有する植物（受粉促進用餌組成物に含まれる花香成分を含む花器を有する植物）が存在する空間内に放つことや、花器を有する所定の植物が存在する空間内に存在するハナバチに、受粉促進用餌組成物等を摂取させること等によって、受粉促進用餌組成物等を摂取したハナバチを、花器を有する植物が存在する空間内に存在させることが好ましく、所定の植物の花器の花香成分を分析する工程、分析により存在が確認された花香成分の１種類又は２種類以上を入手する工程、入手した１種類又は２種類以上の花香成分を、ハナバチの餌素材に配合する工程、花香成分を配合したハナバチの餌素材をハナバチに摂取させる工程、及び、該餌素材を摂取したハナバチを、花器を有する前記植物が存在する空間内に存在させる工程を有することや、所定の植物の花器の花香成分を分析する工程、分析により存在が確認された花香成分の１種類又は２種類以上を入手する工程、入手した１種類又は２種類以上の花香成分を、ハナバチの餌素材に配合する工程、ハナバチを、花器を有する前記植物が存在する空間内に存在させる工程、花香成分を配合した前記餌素材を、前記植物が存在する空間内のハナバチに摂取させる工程を有することがさらに好ましい。受粉促進用餌組成物等を摂取したハナバチを用いることにより、摂取していないハナバチを用いる場合に比べて、対象とする花器への訪花活動を開始するまでに費やす日数を短縮することができ、より効率的な授粉が可能となる。
【００４２】
前述の「花器を有する植物が存在する空間内」としては、花器を有する植物が存在する空間内であれば特に制限されず、ハウス栽培の場合のようにハウスの空間内であってもよいし、露地栽培の場合のように開放系の空間内であってもよいが、本発明の利益をより多く享受できる点で、ハウスの空間内であることが好ましい。
【００４３】
上記の、所定の植物の花器の花香成分を分析する方法としては、花器の花香成分を分析し得る限り特に制限されないが、例えば、花粉等の花器を試料として、固相マイクロ抽出法（ＳＰＭＥ法）とガスクロマトグラフィー／質量分析装置を組み合わせた分析方法により、花香成分を分析する方法を好ましく例示することができる。また、上記の、分析により存在が確認された花香成分の１種類又は２種類以上を入手する方法は、本発明の植物の受粉促進用餌添加剤の製造方法において述べたとおりである。さらに、上記の、花香成分を配合したハナバチの餌素材をハナバチに摂取させる方法としては、花香成分を配合したハナバチの餌素材をハナバチが摂取する限り特に制限されないが、砂糖などの餌素材を液体に溶解して溶液としたものを用いる場合であれば、ハナバチの巣箱内の給餌器を使って与えるのが一般的であるが、前述の溶液を小皿に流し込んで、ハナバチの巣箱の外に設置して、ハナバチに摂取させてもよい。また、餌素材がダイズ粉であれば、ダイズ粉をペースト状に練り込み、巣箱の内部に投与して、摂取させることが好ましい。また、上記の、受粉促進用餌組成物等を摂取したハナバチを、花器を有する前記植物が存在する空間内に存在させる方法については特に制限されない。なお、本発明の効果をより確実に享受するためには、受粉促進用餌組成物を給餌した後、ハナバチがその受粉促進用餌組成物を十分摂取しているかを確認することが好ましい。
【００４４】
本発明の植物の受粉促進方法に用いるハナバチの数は、受粉対象となる植物の種類やその植物が存在する空間の広さ等により左右されるため、特に制限されず、受粉対象となる植物の花の受粉可能期間や、受粉促進用餌組成物等を摂取したハナバチのその花への誘導効率等を考慮して、用いるハナバチの数を適当に選択することができる。受粉促進用餌組成物等を摂取したハナバチは、受粉促進用餌組成物等を摂取していないハナバチに比べて、受粉対象となる植物の花に対するハナバチの誘導効率が優れているため、受粉促進用餌組成物等を摂取していないハナバチでは実用的な受粉効率を得難い植物や、放虫後に実用的な受粉効率が得られるまでの期間が長過ぎて実用的とはいえない植物と特定のハナバチの組み合わせであっても、本発明の受粉促進用餌組成物等を用いることによって、実用的な受粉効率を得ることが可能となったり、実用的な受粉効率が得られるまでの期間が短縮したり、本発明の受粉促進用餌組成物等を用いない場合に比べてより少ない匹数のハナバチで同等以上の受粉効率を得ることが可能となる。
【００４５】
なお、本発明の効果を特に奏し得る、花香成分と植物の具体的な組み合わせとして、ナスに対するゲラニルアセトン、トマトに対するペンタデカン、イチゴに対するミルテノール等を例示することができる。
【００４６】
以下、実施例により本発明をより具体的に説明するが、本発明の技術的範囲はこれらの例示に限定されるものではない。
【実施例１】
【００４７】
［ナスの花香成分の分析］
ナス（品種「式部」）を用意し、このナスの花香成分を固相マイクロ抽出法（Solid phase microextraction：SPME法）とＧＣ／ＭＳ分析（gas chromatography−mass spectrometry）を組み合わせた方法で解析した。具体的には以下のような方法で行った。
【００４８】
１３．５ｍｌの容量のスクリュー管に、ナスの花器を１つ入れ、スクリュー管の開口部をアルミホイルで覆った。覆ったアルミホイルからスクリュー管内に、スペルコ社の固相マイクロ抽出器「ＳＰＭＥファイバー」（固定相は膜厚１００μｍのポリジメチルシロキサン（ＰＤＭＳ））を挿し込んだ。スクリュー管内の花器から効率良く香気成分（揮発成分）を採取するために、ＳＰＭＥファイバーを差し込んだスクリュー管を、７０℃に保ったウォーターバスに浸漬させて３０分間温めた。これにより、ナスの花器から発せられる花香成分をＳＰＭＥファイバーに吸着させた。ＳＰＭＥファイバーに吸着した花香成分を分析するために、ＳＰＭＥファイバーをＧＣ／ＭＳ（ＧＣ−５０５０Ａ：株式会社 島津製作所製）の注入口に挿入して化学物質を加熱脱着させた。ＧＣのカラムオーブン内の初期温度は５０℃とし、ＳＰＭＥファイバーを挿入後、直ちに５℃／ｍｉｎ→２５０℃の昇温条件で、ＳＰＭＥファイバーに吸着させた花香成分を分析（分析時間４０分）した。
【００４９】
このようにして行った、ナス（「式部」）の花香成分の分析結果をまとめたものを表３に示す。なお、花香成分の同定は、標準品のリテンションタイム、マススペクトルと比較して行った。
【００５０】
つづいて、１３．５ｍｌ容量のスクリュー管に、ナスの花粉のみを入れ、同様に花粉の香気成分を分析した。
【００５１】
【表３】
2008212148.tif 000011
【００５２】
表３に示されているように、ナスの花香成分を解析した結果、１８種類の花香成分が、標準品との比較分析により同定された（表３及び図２）。花香成分のうち、サリチル酸メチル（Methyl salicylate）、α−ベルガモテン（α-bergamotene）、ゲラニルアセトン（Geranylacetone）などが主要成分として同定された（表３）。また、花粉から発散される揮発成分については、３種類の主要な揮発成分が検出され（図３）、標準品との比較分析の結果、３種類のうちの１種類はゲラニルアセトンと同定された。
【実施例２】
【００５３】
［１４種類のナス花香成分を用いた、ミツバチの訪花促進試験］
開花期のナス（「式部」）が栽培されているフッ素樹脂展張鉄骨ハウス（１００ｍ２）を２棟用意し、これら２棟のハウスの全ての開口部を防虫ネット（目合い２ｍｍ）で遮蔽した。用意した２棟のハウスのうち、１棟のハウスを学習処理区用とし、別の１棟のハウスを対照区用とした。一方、ナスの花香成分であるベンズアルデヒド（Benzaldehyde）、フェニルアセトアルデヒド（Phenylacetaldehyde）、ノナナール（Nonanal）、サリチル酸メチル（Methylsalicylate）、ドデカン（Dodecane）、デカナール（Decanal）、トリデカン（Tridecane）、テトラデカン（Tetradecane）、ドデカナール（Dodecanal）、ゲラニルアセトン（Geranylacetone）、β−ヨノン（Beta-Ionone）、ペンタデカン（Pentadecane）、ヘキサデカン（Hexadecane）、及び、ヘプタデカン（Heptadecane）の１４種類の合成品をもとに受粉促進用餌添加剤１（花香成分濃度；ベンズアルデヒド：０．１２μｌ／ｌ、１．２×１０−５重量％；フェニルアセトアルデヒド：０．０９μｌ／ｌ、９．１×１０−６重量％；ノナナール：０．２４μｌ／ｌ、１．９×１０−５重量％；サリチル酸メチル：０．２９μｌ／ｌ、３．５×１０−５重量％；ドデカン：０．１２μｌ／ｌ、８．８×１０−６重量％；デカナール：０．１２μｌ／ｌ、９．７×１０−６重量％；トリデカン：０．１２μｌ／ｌ、８．９×１０−６重量％；テトラデカン：０．１２μｌ／ｌ、９．０×１０−６重量％；ドデカナール：０．０９μｌ／ｌ、７．４×１０−６重量％；ゲラニルアセトン：０．２９μｌ／ｌ、２．６×１０−５重量％；β−ヨノン：０．１２μｌ／ｌ、１．１×１０−５重量％；ペンタデカン：０．１２μｌ／ｌ、９．０×１０−６重量％；ヘキサデカン：０．０９μｌ／ｌ、６．８×１０−６重量％；ヘプタデカン：０．０９μｌ／ｌ、６．８×１０−６重量％）を作製した。受粉促進用餌添加剤１をミツバチの餌である砂糖水（６０重量％の砂糖を含む砂糖水）（以下、「砂糖水（６０％）」等と表す）に、１００倍希釈となるように添加して、受粉促進用餌組成物１（花香成分濃度；ベンズアルデヒド：１．１８ｎｌ／ｌ、９．６×１０−８重量％；フェニルアセトアルデヒド：０．８８ｎｌ／ｌ、７．１×１０−８重量％；ノナナール：２．３５ｎｌ／ｌ、１．５×１０−７重量％；サリチル酸メチル：２．９４ｎｌ／ｌ、２．７×１０−７重量％；ドデカン：１．１８ｎｌ／ｌ、６．９×１０−８重量％；デカナール：１．１８ｎｌ／ｌ、７．６×１０−８重量％；トリデカン：１．１８ｎｌ／ｌ、６．９×１０−８重量％；テトラデカン：１．１８ｎｌ／ｌ、７．０×１０−８重量％；ドデカナール：０．８８ｎｌ／ｌ、５．７×１０−８重量％；ゲラニルアセトン：２．９４ｎｌ／ｌ、２．０×１０−７重量％；β−ヨノン：１．１８ｎｌ／ｌ、８．７×１０−８重量％；ペンタデカン：１．１８ｎｌ／ｌ、７．０×１０−８重量％；ヘキサデカン：０．８８ｎｌ／ｌ、５．３×１０−８重量％；ヘプタデカン：０．８８ｎｌ／ｌ、５．３×１０−８重量％）を得た。
【００５４】
学習処理区においては、ハウスへセイヨウミツバチ（以下ミツバチと略す）を放虫する前日（２００５年１１月９日）に、約８，０００匹のミツバチを内部に収容した巣箱をハウス内に設置し、巣箱内の給餌器に上記受粉促進用餌組成物１を２００ｍｌ給餌した（図４）。対照区においては、受粉促進用餌組成物１に代えて、単なる砂糖水（６０％）を２００ｍｌ給餌したこと以外は、学習処理区と同様とした。２００５年１１月１０日８時に両区の巣箱を開放してミツバチを放虫し、ミツバチのナスの花への訪花までの日数を調査した。ミツバチの観察は、毎日８時、１２時及び１５時に定期的に行った。複数のミツバチのナスの花への訪花、及び、花粉団子の作製が観察された日時をミツバチの訪花開始日時とし、「（訪花開始日時−放虫日時）／２４時間」を「放虫日時から訪花までの日数」とした。学習処理区及び対照区における「放虫日時から訪花までの日数」の調査結果を表４に示す。
【００５５】
【表４】
2008212148.tif 000012
【００５６】
表４の結果から分かるように、学習処理区のミツバチは放虫日時からわずか０．２日で訪花を開始したのに対し、対照区では訪花までに放虫日時から７日以上を要した。このことから、ナスの花香成分を用いることにより、それを用いない場合に比べて、ミツバチの訪花までの期間を著しく短縮することが可能であることが示された。なお、給餌した受粉促進用餌組成物および単なる砂糖水は、給餌翌日には全て摂取されていた。
【実施例３】
【００５７】
［１種類のナス花香成分（花粉香気成分）を用いた、ミツバチの訪花促進試験］
開花期のナス（「式部」）が栽培されているポリフィルム展張ハウス（３００ｍ２）を５棟、及び、開花期のナス（「式部」）が栽培されているポリフィルム展張ハウス（６００ｍ２）を１棟用意した。ハウスの開口部は全て防虫ネット（目合い２×４ｍｍ）で遮蔽した。用意した６棟のハウスのうち、３００ｍ２のハウス３棟を学習処理区用とし、３００ｍ２のハウスを２棟と６００ｍ２のハウス１棟とを対照区用とした。一方、ナスの花粉の主要な香気成分の１種類であるゲラニルアセトンの合成品をもとに、受粉促進用餌添加剤２（花香成分濃度；ゲラニルアセトン：２００μl／ｌ、１．７×１０−２重量％）を作製した。受粉促進用餌添加剤２をミツバチの餌である砂糖水（５０％）に、１００倍希釈となるように添加して、受粉促進用餌組成物２（花香成分濃度；ゲラニルアセトン：２μl／ｌ、１．４×１０−４重量％）を得た。
【００５８】
学習処理区においては、ハウスへミツバチを放虫する前日（２００６年４月６日）に、約６，０００匹のミツバチを内部に収容した巣箱を各ハウス内に設置し、翌日（２００６年４月７日）の７時に両区の巣箱を開放してミツバチを放虫した。放虫後の同日１０時に、学習処理区の巣箱内の給餌器に受粉促進用餌組成物２を２００ｍｌ給餌した。対照区においては、受粉促進用餌組成物２に代えて、単なる砂糖水（５０％）を２００ｍｌ給餌したこと以外は、学習処理区と同様とした。両区における「放虫日時から訪花までの日数」の調査は、実施例２と同様に行った。学習処理区及び対照区における「放虫日時から訪花までの日数」の調査結果を表５に示す。
【００５９】
【表５】
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【００６０】
表５の結果から分かるように、学習処理区のミツバチは対照区のミツバチに対して、ナスの花へ訪花するまでの期間が有意に短く、放虫当日から翌日にかけてナスの花へ訪花を開始した。なお、対照区のミツバチは放虫当日には、その多くがハウスの天井に向かって飛翔し続けたが、学習処理区のミツバチは放虫後しばらくするとナスの花の周りを飛翔するところが観察された。なお、給餌した受粉促進用餌組成物および単なる砂糖水は、給餌翌日には全て摂取されていた。
【実施例４】
【００６１】
［ナス花粉香気成分を用いた、ミツバチの訪花促進試験］
開花期のナス（「式部」）が栽培されているガラスハウス（１５０ｍ２）の中央を、目合い３．６ｍｍの防虫ネットで２区画に分けた。２区画のうち、１区画を学習処理区用とし、別の１区画を対照区用とした。ハウスへミツバチを放虫する前日に、約８，０００匹のミツバチを内部に収容した巣箱を各区画内に設置し、学習処理区においては、実施例３に記載された受粉促進用餌組成物２を巣箱内の給餌器に３００ｍｌ給餌した。対照区においては、受粉促進用餌組成物２に代えて、単なる砂糖水（５０％）を３００ｍｌ給餌したこと以外は、学習処理区と同様とした。給餌の翌日の８時に両区の巣箱を開放してミツバチを放虫し、ミツバチのナスの花への訪花までの日数を調査した。両区における「放虫日時から訪花までの日数」の調査は、実施例２と同様に行った。この放虫及び調査は、それぞれ４回繰り返した。放虫日はそれぞれ２００６年３月２５日、４月５日、４月１０日、４月１８日とした。処理区画は放虫日ごとに交互に変え、ミツバチの群は実験日ごとにそれぞれ更新した。学習処理区及び対照区における「放虫日時から訪花までの日数」の調査結果を表６に示す。
【００６２】
【表６】
2008212148.tif 000014
【００６３】
表６の結果から分かるように、学習処理区のミツバチは、４群全てで放虫翌日には訪花を開始しており、訪花までの期間が対照区に比べて短かかった。また、学習処理区では、対照区に比べ、訪花までの日数の分散が有意に小さくなり、安定して訪花を開始した。なお、給餌した受粉促進用餌組成物および単なる砂糖水は、給餌翌日には全て摂取されていた。
【実施例５】
【００６４】
［開放された開口部を有するハウスにおけるナス花粉香気成分を用いた、ミツバチの訪花促進試験］
開花期のナス（「式部」）が栽培されているガラスハウス（１５０ｍ２）の天窓、側窓、戸口を開放し、防虫ネット等の遮蔽をせずにミツバチが自由にハウス外に飛び出せる状態のハウスとした。約８，０００匹のミツバチを内部に収容した巣箱を２つ用意し、１つを学習処理区用、もう１つを対照区用とした。上述の開放したガラスハウス内に、両区のミツバチの巣箱を放虫前日に６ｍ程度離して設置した。学習処理区においては、実施例３に記載された受粉促進用餌組成物２を放虫前日の１８時に巣箱内の給餌器に３００ｍｌ給餌した。対照区においては、受粉促進用餌組成物２に代えて、単なる砂糖水（５０％）を３００ｍｌ給餌したこと以外は、学習処理区と同様とした。給餌の翌日の８時に両区の巣箱を開放してミツバチを放虫し、ミツバチがナスの花粉の採集を開始することが確認された日と、その日における花粉の採集量を調べた。この調査は、各処理区の巣箱に花粉採集器を９時〜１２時及び１３時〜１６時にそれぞれ設置し、花粉の有無を調べることにより行った。この放虫及び調査は、３回繰り返した。放虫日は２００６年６月１日、６月６日、６月２８日とした。ミツバチの群は実験日ごとにそれぞれ更新した。学習処理区及び対照区における、ミツバチがナスの花粉の採集を開始したことが確認された日（花粉採集確認日）と、その日における花粉の採集量（花粉採集量（ｇ））の調査結果を表７に示す。
【００６５】
【表７】
2008212148.tif 000015
【００６６】
表７の結果から分かるように、学習処理区のミツバチは、開口部を開放したナス栽培ハウスにおいて、ナスの花から花粉を採集することが認められた。なお、対照区においても、学習処理区と同時期に花粉の採集が確認されているが、これは、学習処理区のミツバチがナスの花を餌として認識し、ナサノフ腺から分泌するフェロモン物質をナスの花につけて、対照区のミツバチ等の他のミツバチに対してナスの花が餌であることを示すサインを送ったことによるものと考えられた。６月１日および６月６日に放虫した群において、対照区に比べ採集花粉量が多い傾向が認められたのも、学習処理区のミツバチは対照区よりも早く、ナスの花の花粉を餌として早く認識し、採餌行動を始めたことによるものと考えられる。これらの結果から、ミツバチが自由に飛び回れる環境においても、本発明の受粉促進方法は誘導効果を発揮することが示された。このことから、本発明の受粉促進方法は、例えば野外等においても誘導効果を発揮するであろうと考えられる。なお、給餌した受粉促進用餌組成物および単なる砂糖水は、給餌翌日には全て摂取されていた。
【実施例６】
【００６７】
［ミツバチの訪花促進効果の確認］
上記実施例で得られたミツバチの訪花促進効果が、その花の花香成分を含む餌を摂取し、ミツバチがその花香成分と餌とを結びつけて認識したことによるものであることを確認するために、以下の実験を行った。
【００６８】
何の植物も栽培されていないガラスハウス（１５０ｍ２）を２棟用意し、ガラスハウスの開口部を目合い２ｍｍの防虫ネットで遮蔽した。用意した２棟のハウスのうち、１棟を学習処理区用とし、別の１棟を対照区用とした。学習処理区においては、ハウスへミツバチを放虫する前日の１８時に、約８，０００匹のミツバチを内部に収容した巣箱をハウス内に設置し、実施例３に記載された受粉促進用餌組成物２を巣箱内の給餌器に３００ｍｌ給餌した。対照区においては、受粉促進用餌組成物２に代えて、単なる砂糖水（５０％）を３００ｍｌ給餌したこと以外は、学習処理区と同様とした。翌日、９時に各ハウス内に、単なる砂糖水（５０％）、ゲラニルアセトンの濃度を２μl／lとした砂糖水（５０％）、リナロール（Linalool）の濃度を２μl／lとした砂糖水（５０％）を、それぞれ１００ｍｌずつ別々のシャーレ（直径９ｃｍ）に入れて、これらのシャーレを、ミツバチの巣箱から２ｍ離れた位置であって、かつ、各シャーレ間が２ｍずつ離れるように設置した後、各ハウス内にミツバチを放虫した。放虫したミツバチの学習行動の調査は、放虫日の１０時から１７時までの１時間ごとに５分間ずつ、各種シャーレで各種の砂糖水を摂取しているミツバチの個体数（摂取個体数）を計測することにより行った。これらの実験及び調査をそれぞれ３回繰り返して行った。各実験の放虫日は２００６年６月２６日、６月２９日、７月４日とした。ミツバチの群は各実験日ごとに更新した。その結果を表８に示す。
【００６９】
【表８】
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【００７０】
リナロールは多くの花に含まれる花香成分であり、また、ミツバチが生得的に好む香気成分として知られている。そのため、表８の結果でも、対照区では、リナロールを添加した砂糖水を摂取する個体数が最も多かった。それに対して、学習処理区では、ゲラニルアセトンを添加した砂糖水の摂取個体数が多い傾向にあった。以上の結果から、学習処理区のミツバチは、ナスの花粉香気成分のひとつであるゲラニルアセトンと餌とを結びつけて認識したと考えられた。また、学習処理区のミツバチは、ミツバチが生得的に好むリナロール等の他の花の花香成分が存在しても、学習した花香成分に誘導されることが示されたことから、本発明の方法によるミツバチの誘導効果の高さがうかがえる。なお、給餌した受粉促進用餌組成物および単なる砂糖水は、給餌翌日には全て摂取されていた。
【実施例７】
【００７１】
［ナスの花に訪花しているミツバチが誘導される香気の比較］
ナスの花にゲラニルアセトンが含まれているならば、ナスの花に訪花しているミツバチは本発明の方法によってゲラニルアセトンと餌とを結び付ける学習をしなくても、すでにゲラニルアセトンの香気を認識しているはずである。また、従来技術に記載したロシアの事例のように、生花を浸漬させた砂糖水を用いた学習方法が安定した手法であるとすれば、ナスの花に訪花しているミツバチは、ナスの花粉を浸漬させた砂糖水におけるナスの花粉の香気成分も認識するはずである。そこで、ナスの花に訪花活動を行っているミツバチ群が、どのような香気成分を含有した餌に誘導されるかを、以下のように、ゲラニルアセトンを添加した砂糖水、ナスの花粉を浸漬させた砂糖水、単なる砂糖水を用いた実験により比較した。
【００７２】
開花期のナス（「式部」）が栽培されているフッ素樹脂展張鉄骨ハウス（１００ｍ２）を２棟用意した。ハウスの開口部は全て防虫ネット（目合い２ｍｍ）で遮蔽した。約８０００匹のミツバチを内部に収容した巣箱を３つ用意し、２００６年８月１０日にこれら３つの巣箱を１棟のハウス内に設置し、巣箱内のミツバチを放虫した。その後、これら３つの巣箱のミツバチは、ナスの花に訪花し、花粉を採集していた。ハウス内に設置した３つの巣箱のうち１つの巣箱を８月２４日の日没後にそのハウスから取り出した。取り出したその巣箱をもう１棟のハウス内に移動させ、そのハウス内に設置して放虫した。８月２５日（実験日）の９時に、移動先のハウス内に、ゲラニルアセトンの濃度を２μl／lとした砂糖水（５０％）、ナスの花粉を浸漬させた砂糖水（５０％）、単なる砂糖水（５０％）をそれぞれ１００ｍｌずつ別々のシャーレ（直径９ｃｍ）に入れた。ナスの花粉を浸漬させた砂糖水は、実験前日にナスの葯を１２個（花２つ分）採集し、その葯を裂いて、１００ｍｌの砂糖水（５０％）に一晩浸漬させ、花粉を砂糖水に溢流させた後、葯残渣を除去することによって作製した。前述の３種類のシャーレを、ミツバチの巣箱から１０ｍ離れた位置であって、かつ、各シャーレ間が２ｍずつ離れるように設置した。ミツバチの行動の調査は、実験日の１０時から１７時までの１時間ごとに５分間ずつ、各種シャーレで各種の砂糖水を摂取しているミツバチの個体数（摂取個体数）を計測することにより行った。同様の実験をさらに、８月３０日（実験日）と９月１日（実験日）に２回行った。これらの各実験では、２００６年８月１０日に設置した上述の３つの巣箱を順に１箱ずつ用いた。なお、３回の実験のいずれにおいても、実験に用いたミツバチは、実験日に移動させた先のハウスでもナスの花に訪花していることを確認した。上記実験の結果を表９に示す。
【００７３】
【表９】
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【００７４】
表９中の砂糖水への処理間の分散分析は、砂糖水への処理および調査日を要因とする二元配置の分散分析（繰り返しなし）により行った。表９の結果から分かるように、砂糖水への処理が同種である場合は、調査日間での比較では有意な差は認められなかったが、砂糖水への処理間での比較では、５％水準で有意差が認められた。すなわち、ゲラニルアセトンの濃度を２μl／lとした砂糖水（５０％）を用いた場合は、ナスの花粉を浸漬させた砂糖水（５０％）を用いた場合や単なる砂糖水（５０％）を用いた場合よりも、摂取個体数が多かった。このことから、ナスの花への訪花を経験しているミツバチは、ナスの花粉を採集するにあたり、ナスの花粉の香気成分のひとつであるゲラニルアセトンを学習していたと考えられた。また、ナスの葯を浸漬させた砂糖水に対する摂取個体数が少なかったことは、砂糖水に浸漬させた葯の香気成分が時間の経過と共に別の成分に変化してしまったり、他の香気成分が発生してしまうなどして、本来のナスの花粉の香気ではなくなっていたためと考えられた。
【実施例８】
【００７５】
［ナスの切り花における花香成分の経時的変化］
前述の実施例７の結果のとおり、ナスの葯を浸漬させた砂糖水に対する摂取個体数が少なかったことは、砂糖水に浸漬させた葯の香気成分が時間の経過と共に別の成分に変化してしまったり、他の香気成分が発生してしまうなどして、本来のナスの花粉の香気ではなくなっていたためと考えられた。そこで、ナスの切り花の花香成分が実際にどのような経時的変化を生じるか調べるために、以下の実験を行った。
【００７６】
２００６年７月１０日に播種したナス苗（「式部」）の花の根元を切り花用ハサミで２００６年９月２５日に切断して切り花を得た。切断当日、１日後、２日後にこの切り花の花香成分を、上記実施例１に記載の固相マイクロ抽出法とＧＣ／ＭＳ分析を組み合わせた方法で解析した。表１０に、ガスクロマトグラフィーにより得られた結果を経時的にまとめたものを示す。
【００７７】
【表１０】
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【００７８】
表１０の結果から分かるように、切断当日の切り花では、ゲラニルアセトン（Geranylacetone）が主要成分として存在していたが、切断１日後や２日後の切り花ではわずかとなっていた。また、検出された成分の種類にも変化が見られ、切断当日の切り花からは検出されなかったエレモール（Elemol）や、トランス−ネロリドール（trans-nerolidol）が
、切断２日後の切り花では主要成分となっていた。以上の結果から、切り花は花香成分が極めて変化し易く、切り花を浸漬させた砂糖水等を利用した方法では、本発明の方法のようなミツバチに対する優れた誘導効果が得られないことが明らかとなった。
【実施例９】
【００７９】
［トマトの花香成分の分析］
トマト（品種「麗容」）を用意し、このトマトの花香成分を前述のナスと同じ方法で解析した。花器全体の香気成分および花粉の香気成分のうち、同定された成分のみを表１１および１２に示す。
【００８０】
【表１１】
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【００８１】
【表１２】
2008212148.tif 000020
【００８２】
表１１に示されているとおり、トマトの花香成分を解析した結果、１２種類の揮発成分が、標準品との比較分析により同定され、ペンタデカン（Pentadecane）が主要成分として同定された。表１２に示されているとおり、トマトの花粉香気成分を解析した結果、９種類の揮発成分が、標準品との比較分析により同定され、ゲラニルアセトン（Geranylacetone）、ペンタデカン（Pentadecane）が主要成分として同定された。
【実施例１０】
【００８３】
［３種類のトマト花香成分を用いた、ミツバチの訪花促進試験］
開花期のトマト（「麗容」）が栽培されているガラス温室（１５０ｍ２）を３棟用意し、これら３棟の温室の内部を防虫ネット（目合い３．６ｍｍ）でそれぞれ温室中央部を境界に２区画に仕切って計６区画を用意した。この区画は天井部と周囲を防虫ネットで囲んでいるため、ミツバチは区画の外に出ることができない。用意した６区画の内、２区画を花香成分の合成品による学習処理区用とし、２区画をトマトの切り花による学習処理区用、２区画を対照区用とした。一方、トマトの花香成分であるリモネン（Limonene）、ペンタデカン、ゲラニルアセトンの合成品をもとに受粉促進用餌添加剤３（花香成分濃度；リモネン：２μｌ／ｌ、１．７×１０−４重量％；ペンタデカン：１０ｍｌ／ｌ、０．７７重量％；ゲラニルアセトン：１０μｌ／ｌ、８．７×１０−４重量％）を作製した。受粉促進用餌添加剤３をミツバチの餌である砂糖水（５０％）に、１０００倍希釈となるように添加して、受粉促進用餌組成物３（花香成分濃度；リモネン：０．００２μｌ／ｌ、１．４×１０−７重量％；ペンタデカン：１０μｌ／ｌ、６．３×１０−４重量％；ゲラニルアセトン：０．０１μｌ／ｌ、７．１×１０−７重量％）を得た。
【００８４】
ミツバチを放虫する前日に、約８，０００匹のミツバチを内部に収容した巣箱を各区画内に設置した。花香成分の合成品による学習処理区では受粉促進用餌組成物３を巣箱内の給餌器に１０００ｍｌを給餌した。トマトの切り花による学習処理区では、トマトの切り花の２０花を砂糖水（５０％）１０００ｍｌに８時間浸し、その後、切り花を取り除き、この砂糖水を巣箱内の給餌器に１０００ｍｌ給餌した。対照区においては、単なる砂糖水（５０％）を１０００ｍｌ給餌した。給餌の翌日の８時に両区の巣箱を開放してミツバチを放虫し、ミツバチのトマトの花への訪花までの日数を調査した。訪花までの日数＝訪花確認日−放虫日  とした。訪花の確認は、実施例２と同様に観察によって行うとともに、花粉採集器を取り付けて、ミツバチの花粉の採集を確認した。この放虫及び調査は、２回繰り返した。放虫日はそれぞれ２００６年１１月６日、１１月１７日とした。処理区画は放虫日ごとにずらし、ミツバチの群は実験日ごとにそれぞれ更新した。訪花までの日数の調査結果を表１３に示す。
【００８５】
【表１３】
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【００８６】
表１３の結果から分かるように、花香成分の合成品による学習処理区のミツバチは、６日かかった群が一群のみ有ったが、他の群は２、３日後に訪花を開始し、他の処理に比べて、訪花までの日数が短い傾向であった。切り花による学習処理区と対照区は、それぞれ１群ずつ放虫後１０日以上をついやした事例も得られた。切り花による学習処理区は、対照区と比較して訪花促進効果はみられなかった。これらのことから、トマトの花においても、花香成分の合成品による学習処理による訪花促進効果が認められた。また、切り花を砂糖水に浸して花香を学習させる方法は安定した誘導方法ではないことが示唆され、花香成分の合成品によるハナバチの学習は安定した効果を得ることができることが示された。なお、１１月６日の実験に供試したミツバチ群（特に、表１３の１１月６日の下段のミツバチ群）は巣箱内の貯蜜量が全体的に多かったため、給餌した砂糖水に対する摂取が悪く、給餌の翌日になっても、未だ９割程度以上の砂糖水が残っていた。中でも、「花香成分の合成品による学習処理区において、訪花までに６日かかった群」では給餌した砂糖水（受粉促進用餌組成物３）の摂取がとりわけ悪く、ほとんど砂糖水は摂取されておらず、学習の効果が発現しづらかったと考えられる。給餌した受粉促進用餌組成物をミツバチが摂取しなければ、本発明の効果は得られないため、効果を効率的に得るためには餌の要求量が高いミツバチ群を使用することが好ましく、また、受粉促進用餌組成物の給餌後、ミツバチが摂取しているか否かの確認も必要である。一方、１１月７日の実験に供試したミツバチ群では給餌した砂糖水は、給餌翌日にはいずれも半分以上が摂取されていた。
【実施例１１】
【００８７】
［イチゴの花香成分の分析］
イチゴ（品種「やよいひめ」、群馬県育成品種）を用意し、このイチゴの花香成分を前述のナスと同じ方法で解析した。花器全体の香気成分および花床部のみの香気成分のうち、同定された成分および類似度検索により検出された成分を表１４（花香成分）および表１５（花床部香気成分）に示す。
【００８８】
【表１４】
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【００８９】
【表１５】
2008212148.tif 000023
【００９０】
表１４に示されているとおり、イチゴの花香成分を解析した結果、酢酸cis-3-ヘキセニル（(Z)-3-Hexenyl acetate）やGermacrene D等、Knudsenらの花香成分のリストに記載の成分（表１）と共通する成分が検出されたが、主要成分としてはミルテノール（Myrtenol）が同定された。なお、前述のナス、トマトと同様にイチゴの花粉のみの香気成分を解析したところ、ミルテノールの発散はわずかであり、一方、花床部のみの香気成分を解析した結果、同成分（ミルテノール）が主要成分として強く発散されていた（表１５）。
【実施例１２】
【００９１】
［２種類のイチゴ花香成分を用いた、ミツバチの訪花促進試験］
開花期のイチゴ（「やよいひめ」）が栽培されているビニルハウス（５０ｍ２）を２棟用意した。これら２棟のハウスの全ての開口部を防虫ネット（目合い２ｍｍ）で遮蔽した。用意した２棟のハウスのうち、１棟のハウスを学習処理区用とし、別の１棟のハウスを対照区用とした。一方、イチゴの花香成分であるミルテノールおよび酢酸cis-3-ヘキセニルの合成品をもとに受粉促進用餌添加剤４（花香成分濃度；ミルテノール：１００μｌ／ｌ、９．８×１０−３重量％；  酢酸cis-3-ヘキセニル：０．２μｌ／ｌ、１．８×１０−５重量％）を作製した。なお、酢酸cis-3-ヘキセニルについては、上記実施例１１の花香成分分析実験において同定作業までは行っていないが、Knudsenらの花香成分のリストと共通する成分であったことから、混合した。受粉促進用餌添加剤４をミツバチの餌である砂糖水（５０％）に、１００倍希釈となるように添加して、受粉促進用餌組成物４（花香成分濃度；ミルテノール：１μｌ／ｌ、８．０×１０−５重量％；  酢酸cis-3-ヘキセニル：０．００２μｌ／ｌ、１．５×１０−７重量％）を得た。
【００９２】
ミツバチを放虫する前日に、約８，０００匹のミツバチを内部に収容した巣箱を各区画内に設置した。花香成分の合成品による学習処理区では受粉促進用餌組成物４を巣箱内の給餌器に５００ｍｌを給餌した。対照区においては、単なる砂糖水（５０％）を５００ｍｌ給餌した。給餌の翌日の８時に両区の巣箱を開放してミツバチを放虫し、ミツバチのイチゴの花への訪花までの日数を調査した。訪花までの日数は、「訪花までの日数＝訪花確認日−放虫日」の式により算出した。訪花の確認は、実施例２と同様に観察によって行うとともに、花粉採集器を取り付けて、ミツバチの花粉の採集を確認した。この放虫及び調査は、４回繰り返した。放虫日はそれぞれ２００７年２月１６日、２月２２日、３月７日、４月２４日とした。処理区（ハウス）は放虫日ごとに交換し、ミツバチの群は実験日ごとにそれぞれ更新した。訪花までの日数の調査結果を表１６に示す。
【００９３】
【表１６】
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【００９４】
表１６の結果から分かるように、学習処理区のミツバチは、４群全てで放虫の当日もしくは翌日に訪花を開始しており、訪花までの期間が対照区に比べて短かった。また、学習処理区では、対照区に比べ、訪花までの日数の分散が有意に小さくなり、ばらつきが少なく安定して訪花を開始した。これらのことから、イチゴの花においても、花香成分の合成品による学習処理によって、訪花促進効果が認められた。なお、給餌した受粉促進用餌組成物および単なる砂糖水は、給餌翌日にはほとんど摂取されていた。
【図面の簡単な説明】
【００９５】
【図１】ミツバチのナス花への採餌行動を示す図である。ミツバチは前脚と口器を使ってナスの葯の先端を上下に動かしながら花粉を落下させ、落下した花粉を腹面側の体毛で受け止めるという一連の行動を繰り返し、花粉団子を作製する。この花粉団子を作製する過程でミツバチの体毛に保持された花粉が柱頭に付着し、授粉が行われる。
【図２】ナス（「式部」）の花の花香成分のクロマトグラムを示す図である。
【図３】ナス（「式部」）の花粉の香気成分のクロマトグラムを示す図である。
【図４】受粉目標植物の花の花香成分を利用したハナバチの受粉促進方法のフローチャートを示す図である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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