(57)【要約】【課題】経口投与により動物の免疫調節機能に効果を与える医薬品または機能性食品として有用な免疫調節剤を提供する。【解決手段】麦類の成熟期前の緑葉の搾汁成分を有効成分として含有する。【選択図】    なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
麦類の成熟期前の緑葉の搾汁成分を有効成分として含有することを特徴とする免疫調節剤。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、免疫調節剤に関し、さらに詳しくは、天然の麦類若葉の搾汁成分を有効成分とする実質的に無毒性で安全性の高い免疫調節剤に関する。
【背景技術】
【０００２】
麦類の成熟期前の緑葉の青汁成分が多種多様な有用天然成分を豊富に含有することに基づいて、この青汁成分をもとの青汁中の状態を保ったまま安定な粉末として取得することが、本発明者らにおいて開示され、麦類若葉粉末の製法が提案されている（特許文献１）。
【０００３】
この特許によれば、麦類の成熟期前の緑葉の機械的破砕物から粗大固形分を分離除去して得られる青汁のｐＨ６〜９に中和処理したものを噴霧乾燥または凍結乾燥することによって、麦類若葉の青汁成分の安定な粉末が得られる。そして嗜好品を包含する食品類、保健薬・化粧品を包含する医薬品類など広い分野で有用であることが記載され、保健医薬の一例として、青汁粉末、防風通聖散料エキス末、デンプン、乳糖、タルク、ステアリン酸マグネシウム、エチルアルコールを用いて錠剤を製造した例が示され、この剤は動脈硬化予防および治療用として服用できることが開示されているが、免疫増強作用を有することは開示されていない。
【０００４】
そこで、本発明者らは上記青汁粉末の生理活性に着目し研究を行っている過程で、麦類の成熟期前の緑葉の搾汁成分を有効成分として含有することを特徴とする「免疫増強剤」を提案した（特許文献２）。
【特許文献１】特公昭４６−３８５４８号公報（特許第６４５３７８号）〔対応米国特許第３７８７５９１号、英国特許第１３５８０５２号等〕
【特許文献２】特許第２６０３３６０号公報
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
しかしながら、上記特許文献２記載の「免疫増強剤」においては、ＢＡＬＢ／ｃＡｃｌ系マウスまたはＪＣ１：ＩＣＲ系マウスの脾臓細胞を用いたｉｎ  ｖｉｔｒｏの実験結果が開示されているに過ぎず、動物個体に経口投与して免疫機能の調節が可能であるかについては何ら言及しておらず、医薬品または機能性食品としての有用性については疑問が持たれるところである。
【０００６】
そこで、本発明は、経口投与により動物の免疫調節機能に効果を与える医薬品または機能性食品として有用な免疫調節剤を提供することを課題とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明者らは、血糖低下作用、抗炎症作用、抗腫瘍作用、抗高コレステロール作用、抗血栓作用および血管保護作用等を有する大麦若葉の搾汁粉末の経口摂取についての生理活性をさらに詳細に検討した結果、この大麦若葉の搾汁粉末の経口摂取によるマウスの腹腔細胞の一酸化窒素（ＮＯ）の産生機能を測定することにより、新たに免疫機能の調節作用を見出し、本発明に至った。
【０００８】
一酸化窒素（ＮＯ）は活性酸素種の一種であり、大気汚染物質でもあるが、生体内においては、ＮＯ合成酵素反応により産生し、脳、マクロファージ、内皮において産生され、多くの生理活性作用により生体内において重要な物質であることが明らかにされている。ＮＯは内皮由来性弛緩因子として見出された物質であるが、平滑筋を弛緩させ、血圧低下作用を示し、血圧の調整に関り、血小板の凝集抑制作用を有し、さらに抗菌作用等を有している。ＮＯは、高血圧、炎症、糖尿病等との病態にも関与することが知られている。
【０００９】
本発明の免疫調節剤は、麦類の成熟期前の緑葉の搾汁成分を有効成分として含有することを特徴とする。
【発明の効果】
【００１０】
本発明の免疫調節剤は、経口投与により動物の免疫調節機能に効果を与える医薬品または機能性食品として有用なものとなった。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１１】
以下、本発明の免疫調節剤についてさらに詳細に説明する。
【００１２】
本発明の免疫調節剤における有効成分は、麦類の成熟期前の緑葉の搾汁成分であって、例えば、上記特許文献１に記載の製法によって得ることができる。
【００１３】
すなわち、前記搾汁成分としては、麦類の成熟期前の緑葉、好ましくは分げつ開始期から穂揃期までの麦類、例えば大麦、裸麦、エン麦さらにはハト麦の緑葉（茎および葉を総称する）を、好ましくは機械的手段で、不当な熱変性を与えることなしに搾汁し、粗大固形分を除去して得られた青汁を使用することが可能である。好ましくは得られた青汁をさらに遠心分離した後、上清液を採取し、必要に応じてこれを除菌濾過処理して得られる液体成分を、本発明の搾汁成分としてそのまま使用することができる。
【００１４】
なお、上記搾汁に先立って、麦類の成熟期前の緑葉を次亜塩素酸ソーダ等の殺菌剤で殺菌処理してから搾汁処理することもできる。
【００１５】
さらに、上記で得られた青汁をｐＨ５〜９程度に調節し、噴霧乾燥、凍結乾燥等の実質的な熱変性を与えない手段で粉末化した青汁粉末も本発明に適合する。
【００１６】
本発明において有効成分として使用する麦類の成熟期前の緑葉の搾汁成分とは、麦類の成熟期前の緑葉を上記のように搾汁して得られる青汁、およびこの青汁を上記のようにさらに処理して得られる免疫調節作用を有するすべての処理成分をも包含する意味で用いられるものである。
【００１７】
本発明の免疫調節剤は、所望により、各種の添加剤が配合されていてもよく、またその剤型も種々の剤型であってもよい。
【００１８】
このような添加剤としては、噴霧乾燥もしくは凍結乾燥に際して必要な添加物質のほかに、所定の剤型を形成するための調剤用の添加物質を挙げることができる。これらの添加物質としては、例えばアスコルビン酸、ビオチン、パントテン酸カルシウム、カロテン、塩化コリン、ナイアシン、塩酸ピリドキシン、リボフラビン、パントテン酸ナトリウム、チアミン塩酸塩、トコフェロール、ビタミンＡ、ビタミンＢ12、ビタミンＤ等のビタミン類、メタリン酸ナトリウム、リン酸ナトリウム（第１、第２、第３塩）、ピロリン酸ナトリウム、三リン酸ナトリウム等のリン酸ナトリウム、ソルビン酸カルシウム、安息香酸、パラオキシ安息香酸メチル、安息香酸ナトリウム等の保存料、アラビヤガム、トラガント、アルギン酸ナトリウム、メチルセルロース、カルボキシメチルセルロース、アルギン酸カルシウム、ケイ酸カルシウム、マンニット、ソルビトール、乳糖、可溶性澱粉、アミノ酸類、ブドウ糖、果糖、ショ糖、ハチミツ、脂肪酸エステル等を挙げることができる。
【００１９】
本発明の免疫調節剤は、経口または非経口投与することができ、それぞれの投与経路に適した任意の剤型に製剤化することができ、例えば散剤、顆粒、ペレットもしくは錠剤、コーティング剤、カプセル剤、液剤、シロップ剤等の経口投与に適した剤型にすることができる。
【００２０】
本発明の免疫調節剤の経口投与量は、対象とする抗原の種類、患者の症状の軽量、性別、年齢、体重、医師の判断などに応じて広い範囲で考えることができるが、一応の目安として一般に、１０ｍｇ〜３０００ｍｇ／ｋｇ体重／日、好ましくは５０ｍｇ〜１０００ｍｇ／ｋｇ体重／日の範囲内を例示することができる。前記投与量は１日１回または数回に分けて投与することができる。経口投与する場合には、本発明の免疫調節剤は、以下に述べるとおり、実質的に無毒性で且つ副作用を伴わないので、前記範囲を越えて大量投与することもできる。
【００２１】
本発明の免疫調節剤の有効成分である麦類の成熟期前の緑葉の搾汁成分、例えば大麦若葉を搾汁して得られた青汁粉末の急性毒性ＬＤ50値は、１２，０００ｍｇ／ｋｇ（経口、マウス）と実質的に無毒性であり、１，０００ｍｇ／ｋｇ連続投与（経口、マウス）の亜急性毒性試験の結果からも、毒性および副作用は実質的に認められない。したがって、本発明の前記緑葉の搾汁成分は、実用性のある免疫調節作用を有することと、実質的に無毒性で大量投与が可能であることの両者を兼備した特異な免疫調節剤となることが判明した。
【００２２】
以下、実施例により本発明をさらに具体的に説明する。
【００２３】
実施例１（免疫調節剤の調製）
成熟期前の大麦若葉（茎および葉を総称する）の搾汁液１０００ｍｌを噴霧乾燥して３０ｇの大麦若葉搾汁液粉末を調製した。
【００２４】
実施例２（Ｃ３Ｈ／ＨｅＳｌｃ系マウスの腹腔細胞の一酸化窒素産生能）
Ｃ３Ｈ／ＨｅＳｌｃ系マウス（３ケ月齢）に、蒸留水０．５ｍｌまたは実施例１で調製した大麦若葉搾汁液粉末３ｍｇを懸濁した蒸留水０．５ｍｌを、雄性マウスには１ケ月間または雌性マウスには２ケ月間に亘り毎日、ゾンデ針を用いて経口投与した。各マウスから個体ごとに腹腔細胞を得て、５％ＦＣＳを含むＲＰＭＩ−１６４０培養液により常在性腹腔細胞を回収し、遠心による洗浄後、比較的大きく細胞質に富んだ細胞を数えて細胞懸濁液を調製し、９６−ウエルプレートの各ウエルに２×１０5 ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌ分注した。ＣＯ2 インキュベーター内で２時間、３７℃で培養後、各ウエルを３７℃のＭＥＭ培養液で３回洗浄し、残った付着性細胞を腹腔マクロファージとした。各ウエルの付着性腹腔細胞を、５％ＦＣＳを含むＲＰＭＩ−１６４０培地にマクロファージ活性化物質としてＬＰＳとＩＮＦ−γを下記量添加した培養液により、５％ＣＯ2 インキュベーター内で４８時間培養した。
【００２５】
１）無添加
２）ＬＰＳ  １０ｎｇ／ｍｌ
３）ＩＮＦ−γ  ０．７５ｎｇ／ｍｌ
４）ＩＮＦ−γ  １．５ｎｇ／ｍｌ
５）ＬＰＳ  １０ｎｇ／ｍｌ＋ＩＮＦ−γ  ０．７５ｎｇ／ｍｌ
【００２６】
各ウエルの培養上清中に含まれる亜硝酸イオン濃度を測定して、一酸化窒素産生反応を定量した。９６−ウエルプレートを用いて各培養上清と亜硝酸ナトリウム水溶液をＰＢＳでそれぞれ段階希釈し、各ウエルの液量を１００μｌとした。Ｇｒｉｅｓｓ試薬を各ウエルに１００μｌ添加して数分後、各ウエルの５４０ｎｍの吸光度を測定し、段階希釈した亜硝酸ナトリウムの吸光度から検量線を求めて、各培養上清中に含まれる亜硝酸イオンの濃度を決定した。結果を図１に示す。なお、Ｇｒｉｅｓｓ試薬の調製は、２．５％リン酸水溶液を溶媒とし、サルファニルアミド０．２６ｇとナフチルエチレンジアミン二塩酸塩２０６ｍｇを常温で溶解させ、それぞれ１％サルファニルアミド、０．１％ナフチルエチレンジアミン二塩酸塩に調製した。
【００２７】
図１に示したように、大麦若葉搾汁液粉末を経口投与したＣ３Ｈ／ＨｅＳｌｃ系マウスは、腹腔細胞の一酸化窒素産生能が有意に亢進していた。
【００２８】
実施例３（Ｃ３Ｈ／ＨｅＳｌｃ系マウスの腹腔細胞の一酸化窒素産生能）
Ｃ３Ｈ／ＨｅＳｌｃ系マウス（６ケ月齢）に、蒸留水０．５ｍｌまたは実施例１で調製した大麦若葉搾汁液粉末５ｍｇ、２５ｍｇを各懸濁した蒸留水０．５ｍｌを、１ケ月間に亘り隔日、ゾンデ針を用いて経口投与した。各マウスから個体ごとに腹腔細胞を得て、５％ＦＣＳを含むＲＰＭＩ−１６４０培養液により常在性腹腔細胞を回収し、遠心による洗浄後、比較的大きく細胞質に富んだ細胞を数えて細胞懸濁液を調製し、９６−ウエルプレートの各ウエルに２×１０5 ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌ分注した。ＣＯ2 インキュベーター内で２時間、３７℃で培養後、各ウエルを３７℃のＭＥＭ培養液で３回洗浄し、残った付着性細胞を腹腔マクロファージとした。各ウエルの付着性腹腔細胞を、５％ＦＣＳを含むＲＰＭＩ−１６４０培地にマクロファージ活性化物質としてＬＰＳとＩＮＦ−γを下記量添加した培養液により、５％ＣＯ2 インキュベーター内で４８時間培養した。
【００２９】
１）無添加
２）ＬＰＳ  １０ｎｇ／ｍｌ
３）ＩＮＦ−γ  ０．７５ｎｇ／ｍｌ
４）ＩＮＦ−γ  １．５ｎｇ／ｍｌ
５）ＬＰＳ  １０ｎｇ／ｍｌ＋ＩＮＦ−γ  ０．７５ｎｇ／ｍｌ
【００３０】
各ウエルの培養上清中に含まれる亜硝酸イオン濃度を測定して、一酸化窒素産生反応を定量した。９６−ウエルプレートを用いて各培養上清と亜硝酸ナトリウム水溶液をＰＢＳでそれぞれ段階希釈し、各ウエルの液量を１００μｌとした。Ｇｒｉｅｓｓ試薬を各ウエルに１００μｌ添加して数分後、各ウエルの５４０ｎｍの吸光度を測定し、段階希釈した亜硝酸ナトリウムの吸光度から検量線を求めて、各培養上清中に含まれる亜硝酸イオンの濃度を決定した。結果を図２に示す。なお、Ｇｒｉｅｓｓ試薬の調製は、２．５％リン酸水溶液を溶媒とし、サルファニルアミド０．２６ｇとナフチルエチレンジアミン二塩酸塩２０６ｍｇを常温で溶解させ、それぞれ１％サルファニルアミド、０．１％ナフチルエチレンジアミン二塩酸塩に調製した。
【００３１】
図２に示したように、大麦若葉搾汁液粉末を経口投与したＣ３Ｈ／ＨｅＳｌｃ系マウスは、腹腔細胞の一酸化窒素産生能が有意に亢進していた。
【図面の簡単な説明】
【００３２】
【図１】実施例２におけるＣ３Ｈ／ＨｅＳｌｃ系マウスの腹腔細胞の一酸化窒素産生能を示すグラフである。
【図２】実施例３におけるＣ３Ｈ／ＨｅＳｌｃ系マウスの腹腔細胞の一酸化窒素産生能を示すグラフである。
【図１】
2008031054.tif 000002
【図２】
2008031054.tif 000003