(57)【要約】      （修正有）【課題】細胞内コレステロールの検出などに有用な、新規な蛍光化合物の提供。【解決手段】下記一般式（I）で表される化合物。2008266192.tif 000010ｎは２〜５の整数、ｍは０〜３の整数を示す。【選択図】図１
2008266192.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
下記一般式（I）で表される化合物。
【化１】
2008266192.tif 000009
ｎは２〜５の整数、ｍは０〜３の整数を示す。
【請求項２】
ｎが２であり、ｍが０である、請求項１に記載の化合物。
【請求項３】
請求項１または２に記載の化合物を細胞に添加し、蛍光を測定することを特徴とする、細胞内コレステロールの検出方法。
【請求項４】
前記化合物をmethyl-β-cyclodextrinとともに溶解して細胞に添加することを特徴とする、請求項３に記載の方法。
【請求項５】
請求項１または２に記載の化合物を含む、コレステロール検出キット。
【請求項６】
さらにmethyl-β-cyclodextrin を含む、請求項５に記載のキット。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は新規蛍光化合物に関する。本発明はまた、当該化合物を用いた細胞内コレステロール検出法および検出キットに関する。
【背景技術】
【０００２】
生体内のコレステロールの分布や動態を解析する上で、蛍光分光法は、高感度な分光法のため有用である。現在では、共焦点レーザー顕微鏡、二光子励起蛍光顕微鏡など測定機器が飛躍的に進歩し、高い時空間分解で分布や動態を解析することができる。しかしながらコレステロールは蛍光を示さないため、これらの技術を用いるためには、コレステロールに蛍光分子を標識させる必要があり、そのような蛍光性コレステロールが開発されている。ここで、重要な要素として、蛍光団を結合させてもコレステロール本来の性質を保持させなければならないことが挙げられる。
以下、これまで開発されている蛍光性コレステロールおよびそれらの問題点を示す。デヒドロエルゴステロール（下記化合物Ａ）はコレステロールに分子構造が類似しているため内因性コレステロールに近い性質を有する。しかしながら，蛍光強度が弱いため精度の高い解析が困難である。Molecular Probes社（米国）において、コレステロールの３位のヒドロキシル基をエステル化して蛍光団を組み込んだ化合物（下記化合物Ｂ）が販売されている。しかしながら、細胞内に存在するコレステロールは３位のヒドロキシル基が遊離して存在しており、細胞内コレステロールの動態解析には不向きである。また、同社はコレステロールの２２位にニトロベンゾフラザンを置換した化合物（下記化合物Ｃ）を市販している。しかしながら、化合物Ｃはミトコンドリアの膜に特異的に集積してしまいコレステロールの性質を保持していないことが報告されている[非特許文献1]。近年、コレステロールの７位にダンシルヒドラゾンを結合させた化合物（下記化合物Ｄ）が開発されている。Ｄは内因性コレステロールの性質に近いことが報告されており、蛍光性コレステロールアナログとして使用されている[非特許文献２]。
【化１】
2008266192.tif 000003
【非特許文献１】S. Mukherjee, X. Zha, I. Tabas, and F. R. Maxfield, Biophys. J., 1998, 75, 1915.
【非特許文献２】V. Wiegand, T. Y. Chang, J. F. Strauss, III, F. Fahrenholz, G. Gimpl, FASEB J.    , 2003, 17, 782.
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００３】
本発明は、細胞内コレステロールの検出などに有用な、新規な蛍光化合物を提供することを課題とする。
【課題を解決するための手段】
【０００４】
本発明者は上記課題を解決すべく鋭意検討を行った。その結果、下記一般式（Ｉ）で表される蛍光化合物（以下、本発明の化合物とも呼ぶ）を合成することに成功し、さらに、当該化合物が細胞内でコレステロールと同様の挙動を示すことを見出して本発明を完成するに至った。
【０００５】
すなわち、本発明は以下の通りである。
（１）下記一般式（I）で表される化合物。
【化２】
2008266192.tif 000004
ｎは２〜５の整数、ｍは０〜３の整数を示す。
（２）ｎが２であり、ｍが０である、（１）の化合物。
（３）（１）または（２）の化合物を細胞に添加し、蛍光を測定することを特徴とする、細胞内コレステロールの検出方法。
（４）前記化合物をmethyl-β-cyclodextrinとともに溶解して細胞に添加することを特徴とする、（３）の方法。
（５）（１）または（２）の化合物を含む、コレステロール検出キット。
（６）さらにmethyl-β-cyclodextrin を含む、（５）のキット。
【発明の効果】
【０００６】
本発明の蛍光化合物は、細胞内に取り込まれ、コレステロールと同様の挙動を示すため、細胞内コレステロールの検出に好適に使用することができる。例えば、細胞内のコレステロール含有小胞の同定など、細胞内コレステロール分布の測定などに使用することができる。同化合物は細胞に添加してもアポトーシスなどの悪影響を起こしにくいという利点も有している。
【発明を実施するための最良の形態】
【０００７】
以下に本発明を詳しく説明する。
本発明の化合物は、以下の一般式（I）で表される。
【化３】
2008266192.tif 000005
ここで、ｎは２〜５の整数、ｍは０〜３の整数を示す。
この中では、ｎが２であり、ｍが０である、下記の化合物が特に好ましい。
【化４】
2008266192.tif 000006
【０００８】
この化合物は下記の合成方法によって合成することができる。なお、ｎが２であり、ｍが０である化合物以外の化合物も原料を代えることによって同様にして合成することがで
きる。
【化５】
2008266192.tif 000007
【０００９】
本発明の化合物は、蛍光を発する。したがって、蛍光標識剤や蛍光プローブとして使用することができる。
特に、本発明の化合物は、細胞内に取り込まれ、コレステロールと同様の挙動を示すため、細胞内コレステロールの検出に好適に使用することができる。
【００１０】
具体的には、本発明の化合物を細胞に添加し、蛍光顕微鏡などで蛍光を測定することによって、細胞内コレステロールの分布などを検出することができる。
検出対象の細胞の種類は特に制限されないが、コレステロールを蓄積する培養細胞が好ましい。
細胞に化合物を添加する場合、本発明の化合物を単独で添加してもよいし、同化合物の溶解を助ける働きをする他の化合物とともに添加してもよい。
本発明の化合物を単独で添加する場合、例えば、同化合物をDMSOなどに溶解させることができる。また、本発明の化合物を水に溶解しやすくするため、methyl-β-cyclodextrinとともに水溶液にしてもよい。
本発明の化合物は培養細胞の培地中に加えることができるが、その濃度は細胞の種類によっても異なるが、好ましくは、０．５μＭ〜５０μＭである。
蛍光顕微鏡などの蛍光測定装置を使用することによって本発明の化合物による蛍光を検出することができる。
なお、本発明の化合物を認識する抗体を用いて検出することも可能である。そのような抗体としては、本発明の化合物に含まれるダンシル基に対する抗体が挙げられる。
【００１１】
本発明はまた、本発明の化合物を含むコレステロール検出キットに関する。該キットは、本発明の化合物を溶解するための溶媒や、methyl-β-cyclodextrinなどの、本発明の化合物の溶解を助ける働きをする物質をさらに含むものであってもよい。また、本発明の化合物に対する抗体を含むものであってもよい。
【実施例】
【００１２】
以下に実施例を示し、本発明をさらに具体的に説明する。もっとも、本発明は下記実施例に限定されるものではない。なお、以下の実施例では、上記一般式（Ｉ）においてｍ＝０、ｎ＝２の化合物をDCho24と呼ぶ。
【００１３】
実施例１：DCho24の合成
1-ダンシルスルホンアミド-2-アミノエタン（1）
ダンシルクロリド（312 mg, 1.16 mol）を無水ジクロロメタン（8 ml）に溶解させ，エチレンジアミン（0.4 ml, 6 mmol）を加え，室温で1時間攪拌した。反応液にジクロロメタン（100 ml）加え，水で2回洗浄した。有機層をNa2SO4で乾燥させエバポレーターで減圧乾固させた（収量：320 mg, 収率：94 %）。
【００１４】
3β-ヒドロキシ-Δ5-コレン酸（0.201 mg, 0.54 mmol），N-ヒドロキシコハク酸イミド（130 mg, 0.65 mmol）を無水テトラヒドロフラン（15 ml）に溶解させ，氷浴で0℃に冷やす。この溶液にジシクロヘキシルカルボジイミド（130 mg, 0.63 mmol）加え，0℃で1時間，室温で24時間攪拌した。この溶液に1-ダンシルスルホンアミド-2-アミノエタン（1）（157 mg, 0.66 mmol）を加え，室温で24時間攪拌した。反応液をろ過し，N,N'-ジシクロヘキシル尿素を取り除き，ろ液にジクロロメタン（100 ml）を加え，水で2回洗浄した。有機層をNa2SO4で乾燥させエバポレーターで減圧乾固させ，カラムクロマトグラフィー（充填剤：シリカゲル，展開溶媒：クロロホルム：酢酸エチル（7：3））を用いて単離した（収量：180 mg，収率：51 %）。
1H HNR (300 MHz, CDCl3, TMS, RT)：δ8.56-7.18 (6H, m, Ar-H of naphthalene), 5.78
(1H, s, -C(=O)-NH-), 5.30 (1H, m, -C=H-CH2-), 3.53 (1H, m, -CH2-C(OH)H-CH2-), 3.30-3.01 (4H, m, -NH-CH2-CH2-NH-), 2.89 (6H, s, -N(CH3)2), 2.23-0.68 (34H, m, cholesterol moiety)
【００１５】
【化６】
2008266192.tif 000008
【００１６】
実施例２：DCho24の吸収・蛍光スペクトル
図１にDCho6（前出の化合物Ｄ），DCho24のエタノール中における吸収および蛍光スペクトルを示す。これらの化合物は，ダンシル基を有しているため，340nm付近に吸収極大波長を示す。蛍光極大波長は，DCho6では527nm，DCho24では526nmであり，いずれも緑色蛍光が観測される。蛍光量子収率（Φf）は，DCho6では0.52，DCho24では0.59である。DCho24は，DCho6よりも蛍光量子収率が大きいため，蛍光顕微鏡下での観測に有利である。
【００１７】
実施例３：培養細胞での蛍光測定
マウス膵β細胞由来MIN6細胞に75μM（溶媒DMSO）でdansyl-cholesterol probe (DCho6, DCho24)を添加して、5分、30分、1時間、2時間培養し、蛍光顕微鏡で各プローブの自家蛍光を観察した。その結果、図２に示されるように、DCho24は細胞内に取り込まれ、公知のコレステロールプローブであるDCho6よりも強い蛍光を示すことがわかった。
【００１８】
次に、マウスマクロファージ細胞由来RAW264.7細胞において、75μM（溶媒DMSO）でdansyl-cholesterol probe (DCho6, DCho24)を添加して5分、30分、1時間、2時間培養し、蛍光顕微鏡で各プローブの自家蛍光を観察した。その結果、図３に示されるように、RAW264.7細胞においてもDCho24は細胞内に取り込まれ、公知のコレステロールプローブであるDCho6よりも強い蛍光を示すことがわかった。
【００１９】
次に、マウスマクロファージ細胞由来RAW264.7細胞に5 μMのmethyl-β-cyclodextrin（MβCD）とdansyl-cholesterol probe (DCho24)の複合体（溶媒PBS）を添加して5分間培養し、同様に10分間添加培養したナイルレッド（細胞内脂質滴マーカー：SIGMA）との局在を顕微鏡で比較した。
結果を図４に示す。細胞内コレステロールはエステル化され脂質滴に貯えられるため、ナイルレッドで染色されるが、DCho24も同様の局在を示した。
【００２０】
次に、マウスマクロファージ細胞由来RAW264.7細胞に5 μMのmethyl-β-cyclodextrinとdansyl-cholesterol probe (DCho24)の複合体（溶媒PBS）を添加して5分間培養し、同様に10分間添加培養したナイルレッドとの局在を、コレステロールエステル合成阻害剤（ACAT阻害剤：SIGMA58-035）存在下（＋）、非存在下（−）で比較した。結果を図５に示す。ACAT阻害剤はコレステロールの3位のアシルCoAから脂肪酸を転移し、コレステロールエステル合成を触媒する細胞内小胞体酵素阻害剤で、この阻害剤存在下ではコレステロールはエステル化されず、脂質滴に局在できないが、DCho24も同様の挙動を示した。
【００２１】
実施例４：細胞毒性試験
チャイニーズハムスター卵巣由来CHO細胞に10 μg/mlで種々の蛍光プローブ（DCho6, DCho24, dehydroergosterol (DHE), 22-NBD-cholesterol (NBD-chol), 7-ketocholesterol）を添加して培養し、24時間後に蛍光プローブ非存在下（control）との細胞毒性（アポトーシス）を比較した。具体的には、添加２４時間後に、Hoechst 33342 (HO342)とPI試薬（プロピジウムアイオダイド）でアポトーシスが起こっている細胞数をカウントとした。HO342 はUV励起可能な核酸染色色素で青色蛍光を示し、アポトーシス細胞の凝縮された核では特に明るい蛍光を発する。一方、PI は原形質膜が損傷している細胞にのみ取り込まれる。このふたつの核酸染色剤を同時に使用した時の染色パターンから、健康な細胞群、アポトーシス細胞群、死細胞群を蛍光顕微鏡法で区別し、カウントした。
なお、DHE, NBD-cholは既存のコレステロール類似蛍光試薬である。7-ketocholesterolはアポトーシスのコントロールとして加えた。
結果を図６に示した。グラフのバーが大きいほど細胞毒性が高いことを示す。
その結果、DCho24は既存の蛍光プローブよりも細胞毒性が少ないことがわかった。
【図面の簡単な説明】
【００２２】
【図１】DCho6およびDCho24のエタノール中における吸収（上）・蛍光（下）スペクトル。
【図２】MIN6細胞の、DCho6（上段）, DCho24（下段）による染色結果を示す図（写真）。左から、5分、30分、1時間、2時間。
【図３】RAW264.7細胞の、DCho6（上段）, DCho24（下段）による染色結果を示す図（写真）。左から、5分、30分、1時間、2時間。
【図４】RAW264.7細胞における、DCho24染色像とナイルレッド染色像を示す図（写真）。左から、ｍβCD-DCho24添加5分後、Nile Red 添加10分後、Merged、contrast phase。ｍβCD−DCho24はDCho24をmethyl-β-cyclodextrinとともに溶解した溶液を細胞に添加したことを示す。Mergedは両染色像を重ね合わせた像、contrast phaseは光学像を示す。
【図５】RAW264.7細胞における、ACAT阻害剤存在下（下段）と非存在下（上段）での、DCho24染色像とナイルレッド染色像を示す図（写真）。左から、ｍβCD-DCho24添加5分後、Nile Red 添加10分後、Merged、contrast phase。ｍβCD−DCho24はDCho24をmethyl-β-cyclodextrinとともに溶解した溶液を細胞に添加したことを示す。Mergedは両染色像を重ね合わせた像、contrast phaseは光学像を示す。
【図６】DCho24およびその他の蛍光化合物の細胞毒性を示す図。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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