(57)【要約】【課題】タカアシガニの初期成長段階の生残率を向上させるタカアシガニ幼体の飼育方法及びその方法により飼育されたタカアシガニ幼体を提供する。【解決手段】アミノグリコシド系抗生物質とクロラムフェニコール系抗生物質とが存在する飼育水中で、初期成長段階のタカアシガニを飼育することを特徴とするタカアシガニ幼体の飼育方法。前記飼育方法において、飼育水１リットルあたり、前記アミノグリコシド系抗生物質が０．０４〜０．０７ｇの範囲内で、前記クロラムフェニコール系抗生物質が０．０１〜０．０３ｇの範囲内で、それぞれ存在することが望ましい。前記飼育方法により飼育されたタカアシガニ幼体。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
アミノグリコシド系抗生物質とクロラムフェニコール系抗生物質とが存在する飼育水中で、初期成長段階のタカアシガニを飼育することを特徴とするタカアシガニ幼体の飼育方法。    
【請求項２】
飼育水１リットルあたり、前記アミノグリコシド系抗生物質が０．０４〜０．０７ｇの範囲内で、前記クロラムフェニコール系抗生物質が０．０１〜０．０３ｇの範囲内で、それぞれ存在することを特徴とする請求項１に記載のタカアシガニ幼体の飼育方法。    
【請求項３】
前記アミノグリコシド系抗生物質はストレプトマイシンであることを特徴とする請求項１又は２に記載のタカアシガニ幼体の飼育方法。    
【請求項４】
前記初期成長段階は、
ゾエア期、
メガロパ期、
稚ガニ期、
ゾエア期とメガロパ期、
メガロパ期と稚ガニ期、又は
ゾエア期とメガロパ期と稚ガニ期
であることを特徴とする請求項１〜３のいずれかに記載のタカアシガニ幼体の飼育方法。  
【請求項５】
前記飼育水は海洋深層水であることを特徴とする請求項１〜４のいずれかに記載のタカアシガニ幼体の飼育方法。      
【請求項６】
請求項１〜５のいずれかの飼育方法により飼育されたタカアシガニ幼体。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、タカアシガニの初期成長段階の生残率を向上させるタカアシガニ幼体の飼育方法及びその方法により飼育されたタカアシガニ幼体に関するものである。
【背景技術】
【０００２】
タカアシガニは、両脚を伸ばすと３ｍを越す世界最大のカニである。タカアシガニは、日本国内のみならず世界各国の水族館等で飼育・展示が行われ、世界から注目されている人気の高いカニである。タカアシガニの生息分布は日本の太平洋岸で、その生息数はさほど多くはない。タカアシガニの水産利用のみならず展示利用にあたって、あまり知られていないタカアシガニの生態の解明や、天然資源への配慮のためにも、タカアシガニの繁殖技術は不可欠である。
【０００３】
タカアシガニの成長過程として、卵（約０．７ｍｍ）からふ化したゾエア第１期幼生（約１．５ｍｍ）は、ゾエア第２期（約１．６ｍｍ）、メガロパ期（約１．８ｍｍ）を経て稚ガニ１齢期（約２ｍｍ）に脱皮成長し、その後も、稚ガニ２齢期（約３ｍｍ）、３齢期（約４ｍｍ）・・・と脱皮成長することが知られている。
【０００４】
タカアシガニの幼生飼育に関しては多くの事例があり、飼育水にペニシリンやストレプトマイシン等の抗生物質を使用することにより、稚ガニ１齢期までの生残率が高まることが知られている。抗生物質を使用することにより甲殻類の生残率が高まることは、例えばクルマエビにおいても知られている（特開昭５７-７５９２４号公報）。
【０００５】
しかし、ペニシリンやストレプトマイシンを使用した過去のタカアシガニの飼育事例においては、ある成長段階において極端に生残率が低く、大きな問題となっていた。
【０００６】
過去の飼育事例における各発育段階の平均生残率は以下のとおりである。
ふ化したゾエア第１期からゾエア第２期までは６３．８％、ゾエア第２期からメガロパ期は５２．５％、メガロパ期から稚ガニ１齢期は６．８％、稚ガニ１齢期から２齢期は１５．６％、２齢期から３齢期は５２．８％、３齢期から４齢期は６６％、４齢期から５齢期は８０．３％であった。
【０００７】
メガロパ期から稚ガニ１齢期と、稚ガニ１齢期から２齢期までの生残率が極端に低く、メガロパ期から稚ガニ２齢期までの生残率が１％、ゾエア第１期から稚ガニ２齢期まで通した生残率が０．４％であった。
【特許文献１】特開昭５７-７５９２４号公報
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
タカアシガニを飼育する上で、その初期成長段階、特にメガロパ期幼生から稚ガニ２齢期までの低い生残率を向上させることが大きな課題である。
【０００９】
本発明は、上記課題を解決するために、タカアシガニの初期成長段階の生残率を向上させる飼育方法を提供することを目的とする。  
【課題を解決するための手段】
【００１０】
上記課題を解決するために、本発明は、下記の如きタカアシガニ幼体の飼育方法及びその方法により飼育されたタカアシガニ幼体を提供する。
【００１１】
（１）アミノグリコシド系抗生物質とクロラムフェニコール系抗生物質とが存在する飼育水中で、初期成長段階のタカアシガニを飼育することを特徴とするタカアシガニ幼体の飼育方法（請求項１）。
【００１２】
（２）前記飼育方法において、飼育水１リットルあたり、前記アミノグリコシド系抗生物質が０．０４〜０．０７ｇの範囲内で、前記クロラムフェニコール系抗生物質が０．０１〜０．０３ｇの範囲内で、それぞれ存在することが望ましい（請求項２）。
【００１３】
（３）前記アミノグリコシド系抗生物質はストレプトマイシンである（請求項３）。
【００１４】
（４）前記初期成長段階は、下記（ａ）〜（ｆ）のいずれかである（請求項４）。
（ａ）ゾエア期
（ｂ）メガロパ期
（ｃ）稚ガニ期
（ｄ）ゾエア期とメガロパ期
（ｅ）メガロパ期と稚ガニ期
（ｆ）ゾエア期とメガロパ期と稚ガニ期
【００１５】
（５）前記飼育水は海洋深層水である（請求項５）。
【００１６】
（６）前記（１）から（５）のいずれかの飼育方法により飼育されたタカアシガニ幼体（請求項６）。
【００１７】
本発明において、「海洋深層水」とは、海洋の水深１００ｍ以深から汲み上げた海水をいう。なお、「表層海水」とは、海洋の水深１００ｍ未満から汲み上げた海水をいう。
【発明の効果】
【００１８】
本発明は、下記の如き優れた効果を発揮する。
【００１９】
（イ）本発明により、タカアシガニの初期成長段階の生残率を向上させることが可能となり、本発明の飼育方法をタカアシガニの繁殖技術として利用することができる。
【００２０】
（ロ）本発明は、タカアシガニ幼体を効率よく飼育することを可能ならしめ、その生態解明、展示、増養殖、種の保存に貢献する実用性に優れた効果を有するものである。
【００２１】
（ハ）更に、本発明は、飼育されたタカアシガニを国内外の研究機関や水族館等へ提供することも可能ならしめるものであり、その実用的効果は大きい。      
【発明を実施するための最良の形態】
【００２２】
本発明によるタカアシガニ幼体の飼育方法においては、アミノグリコシド系抗生物質とクロラムフェニコール系抗生物質とが存在する飼育水中で、初期成長段階のタカアシガニを飼育する。
【００２３】
タカアシガニ（Ｍacrocheira Ｋaeｍpferi）は、世界最大のカニであって、世界から注目されている人気の高いカニである。
【００２４】
幼体とは、ふ化後から稚ガニまでの初期成長段階のことである。
【００２５】
アミノグリコシド系抗生物質とは、カナマイシン、ストレプトマイシン、ネオマイシン、ゲンタマイシン、フラジオマイシン、トブラマイシン、アミカシン、アルベカシン、アストロマイシン、イセパマイシン、ベカナマイシン、ジベカシン、ミクロノマイシン、ネチルマイシン、バロモマイシン、リボスタマイシン、シソマイシン等のことである。
【００２６】
クロラムフェニコール系抗生物質とは、クロラムフェニコール等のことである。
【００２７】
飼育水１リットルあたり、アミノグリコシド系抗生物質が０．０４〜０．０７ｇの範囲内で、クロラムフェニコール系抗生物質が０．０１〜０．０３ｇの範囲内で、それぞれ存在することが好ましい。けだし、抗生物質の割合が当該範囲を下回るときには当該抗生物質はその効能を発揮せず、抗生物質の割合が当該範囲を上回るときには当該抗生物質はタカアシガニ幼体の生残に悪影響をおよぼすからである。    
【００２８】
アミノグリコシド系抗生物質はストレプトマイシンであることが好ましい。けだし、ストレプトマイシンを使用することにより、タカアシガニ幼体の生残が良好になるからである。
【００２９】
対象となるタカアシガニの成長段階は、初期成長段階の一部もしくはすべての成長段階、すなわち、下記（ａ）〜（ｆ）のいずれかである。
（ａ）ゾエア期
（ｂ）メガロパ期
（ｃ）稚ガニ期
（ｄ）ゾエア期とメガロパ期
（ｅ）メガロパ期と稚ガニ期
（ｆ）ゾエア期とメガロパ期と稚ガニ期
【００３０】
飼育水は、好ましくは、海洋深層水である。けだし、飼育水として海洋深層水を使用することにより、タカアシガニ幼体の生存が良好になるからである。
【００３１】
本発明の飼育方法により飼育されたタカアシガニ幼体は、生態解明、展示、増養殖、種の保存等として利用可能である。
【００３２】
以下、本発明の実施例について説明するが、本発明はこれらの各実施に限定されるものではない。
【実施例１】
【００３３】
メガロパ期から稚ガニ２齢期までの飼育    
【００３４】
＜材料と方法＞      
抱卵親からふ化したゾエア第１期幼生を飼育することにより得たメガロパ期幼生を実験に供試した。
【００３５】
下記の合計８実験区を設定した。
・飼育水１リットルあたりペニシリンＧカリウム（Ｃ１６Ｈ１７ＫＮ２Ｏ４Ｓ）を０．１ｇ添加したＰ区。
・飼育水１リットルあたりストレプトマイシン硫酸塩（Ｃ２１Ｈ３９Ｎ７Ｏ１２・１．５Ｈ２ＳＯ４）を０．０５ｇ添加したＳ区。
・飼育水１リットルあたりクロラムフェニコール（Ｃ１１Ｈ１２Ｃｌ２Ｎ２Ｏ５）を０．０２５ｇ添加したＣ区。
・上記３種の抗生物質のうち２種を添加したＰＳ区と、ＰＣ区と、ＳＣ区。
・上記３種の抗生物質をすべて添加したＰＳＣ区。
・上記３種の抗生物質のいずれをも添加していないＮ区。
【００３６】
１実験区につき２リットルフィンガーボール１容器に１７〜２３個体ずつメガロパ期幼生を収容した。
【００３７】
飼育水は、ウォーターバスにより水温を平均１５．３℃に調節し、緩やかに通気した。
【００３８】
飼育水の交換は、１日おきに幼生を事前に用意した飼育容器に移し替えることにより行った。
【００３９】
餌料としてアルテミアノープリウスを５個体／ｍｌになるように投与し、更に冷凍サクラエビの細片を併用した。
【００４０】
メガロパ期から稚ガニ２齢期まで飼育した。
【００４１】
＜結果＞  
Ｓ区とＳＣ区ともに実験開始４６〜５６日後に稚ガニ２齢期に成長した。それらの生残率は、Ｓ区で４．５％、ＳＣ区で３４．８％であった。これら以外の区は稚ガニ２齢期まで成長しなかった。ＳＣ区において、メガロパ期から稚ガニ２齢期までの生残率が極端に高かった（χ２検定, Ｐ＜０．０１）。従来の飼育方法ではその生残率は１％であるので、大幅な生残率の向上が認められた。
【実施例２】
【００４２】
ゾエア第１期から稚ガニ２齢期までの飼育
【００４３】
＜材料と方法＞    
抱卵親からふ化した２４０個体のゾエア第１期幼生を実験に供試した。
【００４４】
下記の４実験区を設定した。
・ＳＣ区の飼育水として水深６８７ｍから取水した海洋深層水を用いてなるＳＣ区の海洋深層水区。
・ＳＣ区の飼育水として水深２４ｍから取水した表層水を用いてなるＳＣ区の表層水区。
・Ｎ区の飼育水として水深６８７ｍから取水した海洋深層水を用いてなるＮ区の海洋深層水区。
・Ｎ区の飼育水として水深２４ｍから取水した表層水を用いてなるＮ区の表層水区。
【００４５】
なお、ＳＣ区は、上記実施例１におけるＳＣ区と同様に、飼育水１リットルあたりストレプトマイシン硫酸塩を０．０５ｇとクロラムフェニコールを０．０２５ｇとを添加したものであり、Ｎ区は、上記実施例１におけるＮ区と同様に、抗生物質を全く添加していないものである。
【００４６】
１実験区３個の１リットル容ビーカーを使用し、１ビーカーに２０個体ずつ幼生を収容し、各実験区とも各々６０個体飼育した。
【００４７】
飼育水は、ウォーターバスにより水温をゾエア期間では平均１６．９℃、メガロパ期間では平均１４．５℃に調節し、緩やかに通気した。
【００４８】
飼育水の交換は、１日おきに幼生を事前に用意した飼育容器に移し替えることにより行った。
【００４９】
餌料としてアルテミアノープリウスを５個体／ｍｌになるように投与し、メガロパ期以降にはさらに冷凍サクラエビの細片を併用した。
【００５０】
ゾエア第１期から稚ガニ２齢期まで飼育した。
【００５１】
＜結果＞      
ＳＣ区の表層水区、海洋深層水区ともに実験開始７４〜９４日後に稚ガニ２齢期に成長した。それらの生残率は、表層水区で１５％、海洋深層水区で２０％であった。Ｎ区では、表層水区の生残率は０％で、海洋深層水区のみ８１日後に稚ガニ２齢期に成長し、その生残率は１．７％であった。ＳＣ区において、ゾエア第１期から稚ガニ２齢期までの生残率が極端に高かった（χ２検定, Ｐ＜０．０１）。従来の飼育方法ではその生残率は０．４％であるから、大幅な生残率の向上が認められた。更に、表層水区に比較して海洋深層水区において生存率が高かった。