(57)【要約】【課題】従来のものより精子の生存期間が長く、受胎率が改善し得る新規な人工授精用のウシ凍結精液を提供する。【解決手段】人工授精用のウシ凍結精液において、栄養成分として従来使用されているニワトリの卵黄に代えて、ホロホロチョウの卵黄を凍結保存液に添加し、精子を凍結した人工授精用凍結精液は精子の生存期間が長く、受胎率を改善することが出来る。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
人工授精用のウシ凍結精液において、凍結時の保護物質としてホロホロチョウの卵黄を凍結保存液に添加して、凍結させたことを特徴とする人工授精用のウシ凍結精液。
【請求項２】
ウシの精液、ホロホロチョウの卵黄、トリス糖液及び純水を含む組成物を凍結させたことを特徴とする請求項１記載の人工授精用のウシ凍結精液。
【請求項３】
ホロホロチョウの卵黄の含有量が、全凍結液に対し１０〜３０重量％であることを特徴とする請求項１又は請求項２記載の人工授精用のウシ凍結精液。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】  本発明は、人工授精用のウシ凍結精液に関するものである。さらに詳しくは、従来のものより精子の生存期間が長く、受胎率が改善し得る新規な人工授精用のウシ凍結精液に関するものである。
【背景技術】
【０００２】  日本では、ウシの人工授精の普及率は現在ほぼ１００％となっており、畜産業の進展には、なくてはならない技術である。この技術の成功率（受胎率）の高低は、農家の収益に多大な影響を及ぼす。ところが、近年、この受胎率が低下し、重大な問題となっている。【０００３】  人工授精用のウシ凍結精液は、精子の凍結時の保護物質として卵黄が含まれており（下記特許文献１参照）、従来は、ニワトリの卵黄を用いて作成されている。しかし、凍結により時期尚早な受精能獲得様の変化が起きる、さらに、凍結精液を母体内に注入した場合、新鮮精液のそれに比べて精子の生存時間が短縮しており、受精能獲得（キャパシテーション）様の変化が起きた精子を人工授精に用いると受胎率が低下するという報告が見られる（下記非特許文献１〜３参照）。したがって、凍結精液における精子の生存時間を長くすることが出来れば、受胎率も改善し得ると思われる。【０００４】
【特許文献１】  特公表２００４−５０５６２４号公報
【非特許文献１】  Ｂａｉｌｅｙ  ＪＬ，Ｂｉｌｏｄｅａｕ  ＪＦ，Ｃｏｒｍｉｅｒ  Ｎ．Ｓｅｍｅｎ  ｃｒｙｏｐｒｅｓｅｒｖａｔｉｏｎ  ｉｎ  ｄｏｍｅｓｔｉｃ  ａｎｉｍａｌｓ：ａ  ｄａｍａｇｉｎｇ  ａｎｄ  ｃａｐａｃｉｔａｔｉｎｇ  ｐｈｅｎｏｍｅｎｏｎ．Ｊ  Ａｎｄｒｏｌ．２０００  ２１：１−７．
【非特許文献２】  Ｈｏｌｔ  ＷＶ，Ｍｅｄｒａｎｏ  Ａ．Ａｓｓｅｓｓｍｅｎｔ  ｏｆ  ｂｏａｒ  ｓｐｅｒｍ  ｆｕｎｃｔｉｏｎ  ｉｎ  ｒｅｌａｔｉｏｎ  ｔｏ  ｆｒｅｅｚｉｎｇ  ａｎｄ  ｓｔｏｒａｇｅ．Ｊ  Ｒｅｐｒｏｄ  Ｆｅｒｔｉｌ  Ｓｕｐｐｌ．１９９７  ５２：１３−２２．
【非特許文献３】  Ｔｈｕｎｄａｔｈｉｌ  Ｊ，Ｇｉｌ  Ｊ，Ｊａｎｕｓｋａｕｓｋａｓ  Ａ，Ｌａｒｓｓｏｎ  Ｂ，Ｓｏｄｅｒｑｕｉｓｔ  Ｌ，Ｍａｐｌｅｔｏｆｔ  Ｒ，Ｒｏｄｒｉｇｕｅｚ−Ｍａｒｔｉｎｅｚ  Ｈ．Ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ  ｂｅｔｗｅｅｎ  ｔｈｅ  ｐｒｏｐｏｒｔｉｏｎ  ｏｆ  ｃａｐａｃｉｔａｔｅｄ  ｓｐｅｒｍａｔｏｚｏａｐｒｅｓｅｎｔ  ｉｎ  ｆｒｏｚｅｎ−ｔｈａｗｅｄ  ｂｕｌｌ  ｓｅｍｅｎ  ａｎｄ  ｆｅｒｔｉｌｉｔｙ  ｗｉｔｈ  ａｒｔｉｆｉｃｉａｌ  ｉｎｓｅｍｉｎａｔｉｏｎ．Ｉｎｔ  Ｊ  Ａｎｄｒｏｌ．１９９９  ２２：３６６−７３．
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】  したがって、本発明の目的は、人工授精用のウシ凍結精液において、従来のものより凍結保存後の受精能獲得様の変化が精子に起こる可能性が低減され、かつ精子の生存期間が長く、受胎率を改善し得る新規な人工授精用のウシ凍結精液を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００６】  本発明者らは、上記の課題に鑑み、人工授精用のウシ凍結精液において、凍結時の保護物質として従来使用されているニワトリの卵黄に代え、他の卵黄を使用することによって上記の課題を解決できないかという発想で、種々研究を重ねた結果、ホロホロチョウの卵黄を凍結保存液に添加し、精子を凍結すると、精子の生存時間が有意に長くなるという新事実を見出し、本発明に到達した。【０００７】  すなわち、本発明の人工授精用のウシ凍結精液は、凍結精液の調製において、ホロホロチョウの卵黄を凍結保存液に添加し、精子を凍結することを特徴とするものである。
本発明の人工授精用のウシ凍結精液は、さらに具体的には、ウシの精液、トリス糖液、純水及びホロホロチョウの卵黄を含む組成物を凍結したものである。この凍結精液では、ホロホロチョウの卵黄の含有量が１０〜３０重量％であることが好適である。
【発明の効果】
【０００８】  本発明にしたがって、ホロホロチョウの卵黄を用いてウシ精子を凍結保存した場合、従来のニワトリの卵黄を用いた場合に比べて精子活力が高く、時期尚早な受精能獲得反応が起きない。したがって、本発明による人工授精用のウシ凍結精液を使用して人工授精を行うと、従来のものに比べて、受胎率が一段と向上し、畜産農家の収益に多大な寄与を及ぼす。
【発明を実施するための最適の形態】
【０００９】＜ホロホロチョウの卵黄について＞
本発明でいうホロホロチョウ（ほろほろ鳥）は、キジ目ホロホロチョウ科の鳥の総称であり、主な種類として以下のようなホロホロチョウが知られているが、本発明ではその種類を問わず、その卵から得られる卵黄が使用可能である。
ムナジロホロホロチョウ（Ａｇｅｌａｓｔｅｓ  ｍｅｌｅａｇｒｉｄｅｓ  Ｂｏｎａｐａｒｔｅ）
クロホロホロチョウ（Ａｇｅｌａｓｔｅｓ  ｎｉｇｅｒ  Ｃａｓｓｉｎ）
カブトホロホロチョウ（Ｎｕｍｉｄａ  ｍｅｌｅａｇｒｉｓ  Ｌ．）
コカンムリホロホロチョウ（Ｇｕｔｔｅｒａ  ｐｌｕｍｉｆｅｒａ  Ｃａｓｓｉｎ）
カンムリホロホロチョウ（Ｇｕｔｔｅｒａ  ｐｕｃｈｅｒａｎｉ  Ｈａｒｔｌａｕｂ）
フサホロホロチョウ（Ａｃｒｙｌｌｉｕｍ  ｖｕｌｔｕｒｉｎｕｍ  Ｇｒａｙ）
これらのホロホロチョウ卵黄は、後述する参考例に示すように、卵黄におけるリン脂質の含有比率が高い。
【００１０】＜本発明による人工授精用凍結精液の組成＞
本発明によるウシの人工授精液は、既に述べたように、従来のニワトリの卵黄に代えてホロホロチョウ卵黄を用いることを最大の特徴とするが、具体的な人工授精液の処方は以下のとおりである。
凍結保存液は、通常、卵黄トリス糖液（トリスヒドロキシメチルアミノメタン：１．３６ｇ、クエン酸：０．７６ｇ、ラクトース：１．５ｇ、フルクトース：０．３６ｇ、ラフィノース：２．７ｇ、ペニシリンＧカリウム：１０＊１０４ＩＵ、ストレプトマイシン：０．１ｇ／超純水：８０ｍｌ）に卵黄２０％ｖ／ｖを添加したものを用いる。
本発明の凍結保存液は、従来の卵黄トリス糖液に用いているニワトリの卵黄をホロホロチョウの卵黄に代えたものである。
【００１１】＜本発明による人工授精用凍結精液の調製方法＞
人工授精用凍結精液の調製は、例えば、次のような方法で行うのが好ましい。
すなわち、まず、ホルスタイン種一頭から人工膣と擬牝台を用い、横取り法にて精液採取を行う。精液採取後、顕微鏡下で精液量、精子活力、精子濃度、生存率等を検査し、生存率が８０％以上、精子活力が７０％以上、及び１ｍｌ中の精子濃度が８億以上の精液を対象に凍結処理を行う。この精液は、凍結保存液を用いて、それぞれ１億匹／ｍｌになるように希釈する。その後、約９０分かけて精液温度を徐々（約０．３℃／ｍｉｎ）に４℃程度まで降下させ、次に、グリセリン１３重量％を添加した等量の凍結保存液を１０分間隔に４回に分けて徐々に加えて、最終精子濃度が５０００万匹／ｍｌとなるように希釈する。希釈後、直ちに０．５ｍｌストローに分注し、このストローを液体窒素表面から離して約１０分間放置する。その後、液体窒素の中に浸し、発泡状態が安定したら液体窒素の入った保管容器に保存する。
【００１２】  本発明では、凍結保存液にホロホロチョウの卵黄を用いる。この保存液は、ホロホロチョウの卵黄を使用して調製した卵黄トリス糖液（トリスヒドロキシメチルアミノメタン：１．３６ｇ、クエン酸：０．７６ｇ、ラクトース：１．５ｇ、フルクトース：０．３６ｇ、ラフィノース：２．７ｇ、ペニシリンＧカリウム：１０＊１０４ＩＵ、ストレプトマイシン：０．１ｇ／超純水：８０ｍｌ）に卵黄２０％ｖ／ｖを添加したもの）を用いて調製するのが好ましい。かかる本発明の凍結保存液の具体的調製方法としては、ホロホロチョウの卵黄を使用して調製した卵黄トリス糖液を用いる以外は、従来のニワトリの卵黄トリス糖液に用いる方法と同様の方法が採用可能である。
【００１３】＜凍結した本発明の人工授精用凍結精液の使用＞
本発明の人工授精用凍結精液を用いて雌のウシに対して人工授精を行うには、まず、凍結精液の封入されたストローを３０〜３７℃の温湯に漬けて融解する。その後、精液注入棒にセットする。直腸を介して補定した雌ウシの子宮頚管深部に移植棒を挿入し、凍結融解精液を注入するのがよい。
【実施例】
【００１４】  以下、本発明の実施例を詳述する。ただし、本発明はこれらによって限定されるものではない。なお、各実施例において単に「％」とあるのは、特に断らない限り、重量％を意味する。【００１５】    ［実施例１］
本実施例では、新鮮精液と凍結融解後の経時的観察のため、凍結保存液調製に際して、ニワトリの卵黄を用いたものとホロホロチョウの卵黄を用いたものとを比較検討した。
凍結精子の質は、凍結融解後の生存時間を指標に推測している。一方で精液の質を観察するに当たってそのキャパシテーション（受精能獲得反応）遂行能力も重要な要因であるが、近年、凍結処理がキャパシテーションを引き起こすという報告や、精液を低温で処理するだけでもキャパシテーションを起こすという報告があるため、ウシ精液を採取後、それぞれ、ニワトリ、ホロホロチョウの卵黄を用いて作成した１次凍結保存液で希釈し、常温もしくは低温で保存して、精子の生存指数を経時的に観察すると共に、それらのキャパシテーションの度合いを測定した。キャパシテーションの度合いを推測するためにキャパシテーションと相関があるとされているＨｙｐｏ  Ｏｓｍｏｔｉｃ  Ｓｗｅｌｌｉｎｇ  Ｔｅｓｔ（ＨＯＳＴ）を用いた。さらに、両凍結保存液を用いて凍結精液を作成し、融解後の精子に対しても同様の実験を行い、比較・検討した。【００１６】＜実験の材料及び方法＞
１）供試卵黄
ニワトリの卵黄及びホロホロチョウの卵黄は、それぞれ東京農業大学富士農場にて飼養管理されている鳥の新鮮なものを用いた。なお、これらのニワトリ、ホロホロチョウには同じ飼料が与えられている。【００１７】２）凍結保存液（卵黄トリス糖液）
凍結保存液には表１に示す卵黄トリス糖液を用いた。ホロホロチョウ試験区の凍結保存液は、通常卵黄トリス糖液に用いているニワトリの卵黄をホロホロチョウの卵黄に代えて作成した。【００１８】
【表１】
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【００１９】３）精液の採取方法
東京農業大学富士農場にて飼養管理されているホルスタイン種一頭から、人工膣と擬牝台を用い、横取り法にて精液採取を行った。採取後すぐさま精液の入った試験管を３０℃のお湯が入った保温容器（ポリビーカー）に浸し、実験室に持ち帰った。そして顕微鏡的検査（精液量、精子活力、精子濃度、生存率）を行った。精子活力は、加温装置（３８℃）と精液性状板を用い、光学顕微鏡下で観察した。【００２０】４）希釈方法
精液を横取り法で採取後、顕微鏡的検査を行い、採取した精子濃度を求め、精液を２つに分けた後、両１次凍結保存液を用い、それぞれ１億匹／ｍｌになるように希釈した。このとき１次凍結保存液の温度は、精液と同じ３０℃とした。【００２１】５）凍結及び新鮮精液の観察方法
両１次凍結保存液で希釈した精液をさらに２つに分け、一方を３７℃で保存した。他方を４℃に温度を９０分かけて降下させた後、４℃のままで保存した。それらの精液を３、５及び７時間後に精子生存指数を求めＨＯＳＴを行った。
精子生存指数は、精子活力の判定を丹羽らによる＋＋＋、＋＋、＋、＋−、−の五段階評価で行い、判定後は次式によって精子の運動力の段階を精子生存指数で算出した。【００２２】
【数１】
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【００２３】  精子活力は光学顕微鏡下で観察した。観察は採取（４回）ごとに行った。精子活力の判定基準及び生存指数に換算する運動力の段階は以下の表２のとおりである。【００２４】
【表２】
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【００２５】６）ＨＯＳＴ
希釈精液を１０倍の濃度に下記の低張液で希釈し、３８℃で３０〜４０分保存後、トーマ氏血球計算盤上で尾部変形有無をカウントした。カウントは、毎回、精子２５０匹×２回で行い、その平均値をデータとした。観察は採取（４回）ごとに行った。ＨＯＳＴ低張液の組成は以下のとおりである。
ＵＰＷ：１００ｍｌ
Ｆｒｕｃｔｏｓｅ：０．７４ｇ
Ｔｒｉｓｏｄｉｕｍ  Ｃｉｔｒａｔｅ  Ｄｉｈｙｄｒａｔｅ：１．３５ｇ【００２６】７）精子の凍結
ウシ精液は原精液のまま半分に分け、それぞれ、精液とほぼ等温の上記１次凍結保存液（２種の卵黄トリス糖液）を用い、精子が１億匹／ｍｌになるように希釈した。等温の温湯を入れたビーカー中に希釈された精液が入った試験管を漬け、氷を入れて９０分かけて徐々（０．３℃／ｍｉｎ）に４℃まで降下させた。次に、グリセリンの最終濃度を６．５％になるよう、分割法（１０分間隔で４回に分けて希釈）により徐々に加えて希釈し、最終精子濃度が、１ｍｌ中５０００万になるように調整した。希釈後、グリセリン平衡は行わず直ちに０．５ｍｌストローに分注し、０．５ｃｍ程度の空気層を残してストローパウダーで閉封し、４℃の水中に浸け滅菌したパウダーに水を含ませ完全に閉封した。ストローを液体窒素表面から約２ｃｍ離して試験管立ての上に並べ１０分間放置した。その後、液体窒素の中に浸し、発泡状態が安定したら液体窒素の入った保管容器に保存した。【００２７】８）融解方法及び精子の洗浄
以上のように調製した２種の凍結精液を、それぞれ、３８℃のお湯に２０秒間浸して融解した。融解した精子を６０％と３０％のパーコール重層液上に浮遊させ、遠心処理（６００ｇ×１０ｍｉｎ）後、上澄み液を除去し、体外受精培地（表３の基礎培地を体外受精や発生など目的に合わせて表４のように修正したもの）２ｍｌで希釈した。【００２８】
【表３】
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【００２９】
【表４】
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１＊  受精後５時間（１細胞）から４８時間（８−１６細胞）まで培養する培地
２＊  受精後４８時間（８−１６細胞）から受精後７日（胚盤胞期胚）まで培養する培地
ＮＥＡＡ：  Ｎｏｎｅｓｓｅｎｔｉａｌ  ａｍｉｎｏ  ａｃｉｄｓ  ｂａｓａｌ  Ｅａｇｌｅ′ｓ  ｍｅｄｉｕｍ
ＥＡＡ：  Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ  ａｍｉｎｏ  ａｃｉｄｓ  Ｅａｇｌｅ′ｓ  ｍｉｎｉｍａｌ  ｅｓｓｅｎｔｉａｌ  ｍｅｄｉｕｍ（ＭＥＭ）
ＢＳＡ：  ウシ血清アルブミン【００３０】９）凍結融解後の観察
精子生存指数及びＨＯＳＴを、融解後を０時間とし、０時間、３時間、５時間及び７時間後に、前述の方法で観察・測定した。【００３１】＜結果及び考察＞
採取直後の精液の精子生存指数は、７２．３±２．５であり、ＨＯＳＴは、９８．２％と、ともに高い数値を示し、時間の経過に伴い、これらの値は低下した。１次凍結保存液で希釈したのちに新鮮精液のまま、高温（３８℃）と低温（４℃）で保存した場合、精子の生存指数は、表５に示すとおり、高温区での低下が顕著であった。【００３２】
【表５】
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【００３３】  一方でＨＯＳＴの値は、表６に示すとおり、低温区において著しく低下した。そして７時間経過時では、高温区、低温区の両区においてホロホロチョウの卵黄区（高温区：６１．５％、低温区４１．４％）、の方の値がニワトリの卵黄区（高温区４１．９％：、低温区：３２．８％）に比べて有意に高かった。【００３４】
【表６】
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【００３５】  さらに、表７に示すとおり、凍結融解後の精子生存指数は、融解５時間後にてホロホロチョウの卵黄区（１７．５±２．３）の方がニワトリの卵黄区（１０．２±２．０）に比べて有意に高かった。また、表８に示すとおり、ＨＯＳＴでは、ホロホロチョウの卵黄区の方がニワトリの卵黄区に比べて０時間、３時間及び５時間とも有意に高い値を示した。【００３６】
【表７】
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【００３７】
【表８】
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【００３８】  細胞や組織の保存は、一般的に細胞内のＡＴＰを高レベルに保つため、低温が望ましいとされている。本実施例においても新鮮精液の状態で低温保存した場合の活力は、高温にくらべて高水準で推移した。しかしＨＯＳＴにおいては逆の結果が得られた。これは低温保存によって、膜にキャパシテーション様の変化が起きたためと考えられる。【００３９】  次に、ニワトリ、ホロホロチョウ卵黄両区を比べた場合、７時間経過後のＨＯＳＴにおいて、ホロホロチョウ卵黄区が有意に高い値になった。さらに凍結融解後の精液からも同様の効果が観られた。このことはホロホロチョウ卵黄区の凍結保存液に含まれる何らかの成分が低温時もしくは凍結時において膜の正常性を維持したためと考えられる。【００４０】    ［実施例２］
本実施例では、凍結精液の受精能獲得の度合いについて実験を行った。
実施例１の実験においてホロホロチョウ卵黄が凍結によるキャパシテーション誘起を抑制している可能性が示された。キャパシテーションは、透明帯への結合試験（ＺＰ  Ｂｉｎｄｉｎｇ  Ａｓｓａｙ）、クロロテトラサイクリン（ＣＴＣ）染色、及び、卵管上皮への接着試験及び精子タンパクのチロシンのリン酸化の度合いによって推測することができるとされている。
本実施例では、これらの手法を用いて、両卵黄を用いて凍結保存された精子のキャパシテーションの度合いを比較・検討した。【００４１】＜実験の材料及び方法＞
１）ＺＰ  Ｂｉｎｄｉｎｇ  Ａｓｓａｙ
パスツールを用い、２１時間成熟培養終了卵子から顆粒層細胞と内部の卵細胞を取り除いた透明帯を作成した。次に凍結融解後の生存精子頭部をＨｏｅｃｈｓｔ  ３３３４２で５分間遮光・染色し、その後５分間透明帯と共培養した。その後、透明帯を３回洗浄後、スライドガラス上に塗沫し、退色防止剤ＤＡＢＣＯを滴下、カバーガラスで封入し、遮光・保存後、蛍光顕微鏡で接着精子数を観察した。ＺＰは１回の実験に対して１０個用いて２回ずつ行った。【００４２】２）ＣＴＣ染色
精子をＰＢＳ（＋）に浮遊させ、Ｈｏｅｃｈｓｔ  ３３３２５８にて死亡精子を染色した後、０．５μＭ  ＣＴＣ含有ＴｒｉｓＨＣｌ（ｐＨ８）にて染色し、１２．５％グルタルアルデヒドで固定した。その後、蛍光顕微鏡で蛍光頭部を観察し、頭部全体が染色されたものを正常精子、頭部下部が染色されたものをキャパシテーション、頭部中部が染色されたものをアクロゾームリアクションの３パターンに分けてカウントした。実験は１回に２５０匹の精子を２回数えた。【００４３】３）ウエスタンブロット
凍結融解後の精子を遠心処理し、精子濃度が１０００万／ｍｌになるように調整した。このとき精子の生存率は、ニワトリ卵黄区は、１回目６０％、２回目５８％であり、ホロホロチョウ卵黄区は１回目５９％、２回目６２％であった。精子１０００万を再度Ｎａ３ＶＯ４（０．２ｍＭ）含有ＰＢＳ（−）中で洗浄した（５０００ｒｐｍ，３ｍｉｎ）。得られた精子のペレットを抽出バッファー（トリス１２５ｍＭ、ＳＤＳ１２．５％、メルカプトエタノール１０％、グリセリン２０％及びＢＲＢ０．０２％）により１００℃で５分可溶化した。その後、氷冷して沈殿物を取り除き、電気泳動を行った（１０％アクリルアミドゲル）。得られたゲルはＰＶＤＦ膜セミドライ方式でブロットした（２ｍＡ×ｃｍ２．６０ｍｉｎ）。メンブレンは５％ＦＣＳ、０．１％Ｔｗｅｅｎ添加ＰＢＳでブロッキングし、１：１０００に希釈した抗リン酸化チロシン抗体（４Ｇ１０：ＵＰＳＴＡＴＥ、ＨＲＰ標識）に１時間抗体反応した。その後メンブレンは、ＤＡＢとＨ２Ｏ２を用いて発色処理を行い、得られたバンドをデジタル画像に取り込んだ。画像はＮＩＨイメージを用いて比較した。【００４４】４）卵管上皮の結合試験
新しい排卵痕が認められる卵巣と同側の卵管を食肉センターから採取し、卵管内に排卵卵子が存在することを確認して実験に供した。回収した卵管上皮と凍結精子は２００万／ｍｌの濃度でＨｅｐａｒｉｎ添加ＢＳＡ−ＳＯＦ中で希釈し等量混和後、遠心分離し（５００ｇ×４５秒）、上澄みを非接着精子分画、沈殿を接着精子分画とした。それぞれの分画中の精子数を測定した。実験は４回行った。【００４５】＜結果及び考察＞
ＺＰ  Ｂｉｎｄｉｎｇ  Ａｓｓａｙでは、ニワトリ卵黄区の接着精子数（２３１．２±９．７）がホロホロチョウ卵黄区の接着精子数（１６２．３±９．２）に比べ有意に多かった（表９参照）。また、ＣＴＣ染色では、先体反応を誘起している精子数に差はみられなかった。しかし、キャパシテーション様の変化を誘起している精子は、ニワトリ卵黄区で４６．８％、ホロホロチョウ卵黄区で３０．４％となり、ニワトリ卵黄区で多かった（表１０参照）。また、ウエスタンブロットではチロシンのリン酸化を示すバンドがニワトリ卵黄区において濃い結果となった。卵管上皮との結合性はニワトリ卵黄区において高い結果となった（表１１参照）。
これらの結果からホロホロチョウ卵黄区の方が格段に優れていることがわかる。【００４６】
【表９】
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【００４７】
【表１０】
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【００４８】
【表１１】
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【００４９】  以上のごとく、ニワトリ、ホロホロチョウ両卵黄でそれぞれ凍結保存された精子を用いて凍結融解後の精子のキャパシテーションの度合いを比較・検討した結果、透明帯結合試験においてもＣＴＣ染色、チロシンのリン酸化においても、ニワトリ卵黄を用いた場合に比べてホロホロチョウの卵黄がキャパシテーション誘起を抑制していることが示された。【００５０】    ［実施例３］
本実施例では、体外受精率への影響を調べた。
前述のＨＯＳＴにより、ホロホロチョウの卵黄を用いて精液を凍結保存した場合には、膜の損傷率が低いことが判明した。
ところで、キャパシテーションを誘起した精液は、受精を早く完結すること、顆粒層細胞の存在は、精子にキャパシテーションを誘起させ、受精を助けること等が既に報告されている。さらに受精時間の長短は、受精率に影響を与えるという報告もある。
そのため本実施例の実験では、両凍結保存液を用いて、凍結保存した凍結精液の間にキャパシテーションの差があるかどうかさらに確認することとした。顆粒層細胞存在下で卵子と精子の長時間（５時間）共培養するキャパシテーションを誘起しやすい受精条件下、もしくは顆粒層細胞を剥離した卵子と精子の短時間（２時間）共培養という誘起しにくい受精条件下で体外受精を行い、受精率について比較・検討した。また、体外発生能力及び人工授精による受胎率についても比較・検討した。【００５１】＜実験の材料及び方法＞
１）卵巣採取・体外成熟培養（ＩＶＭ）
（株）神奈川県食肉センター由来屠畜ウシ卵巣を、ペニシリンＧカリウム（１０ＩＵ）とストレプトマイシン（０．１ｇ／ｌ）を含む２０℃のリン酸緩衝液（ＰＢＳ−）の入った魔法瓶に入れて保存し、本発明者の研究室に持ち帰った。
卵丘細胞卵子複合体（ＣＯＣｓ）は、１８ゲージの針を付けた１０ｍｌのシリンジで吸引・採取した。採取した卵巣は、実体顕微鏡下で細胞質が均一かつ卵丘細胞が少なくとも全体に付着しているものを選別し、ＩＶＭ培地である１０％ＦＣＳ添加ＳＯＦ（上記表３，表４参照）で３回洗浄し、パラフィンオイルでカバーしたＩＶＭ培地ドロップ中で２１時間成熟培養した。なお、ＩＶＭ培養は３８．５℃、５％ＣＯ２、９５％ａｉｒの気相条件下で行った。【００５２】２）受精条件・体外受精（ＩＶＦ）及び発生培養
受精をしやすい条件として、顆粒層細胞が付着したままの卵子を精子と長時間（６時間）共培養する条件を設定した。また、受精をしにくい条件としては、卵子を裸化処理して、精子と短時間（２ｈ）共培養した条件を設定した。なお、卵子の裸化処理は、０．２％のヒアルローニダーゼを含むＩＶＦ培地中で６分間振動させ行った。体外受精及び発生方法は、Ｉｗａｔａ  Ｈ，Ｈａｓｈｉｍｏｔｏ  Ｓ，Ｏｈｏｔａ  Ｍ．Ｋｉｍｕｒａ  Ｋ，Ｓｈｉｂａｎｏ  Ｋ，Ｍｉｙａｋｅ  Ｍ．Ｅｆｆｅｃｔｓ  ｏｆ  ｆｏｌｌｉｃｌｅｓｉｚｅ  ａｎｄ  ｅｌｅｃｔｒｏｌｙｔｅｓ  ａｎｄ  ｇｌｕｃｏｓｅ  ｉｎ  ｍａｔｕｒａｔｉｏｎ  ｍｅｄｉｕｍ  ｏｎ  ｎｕｃｌｅａｒ  ｍａｔｕｒａｔｉｏｎ  ａｎｄ  ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｌ  ｃｏｍｐｅｔｅｎｃｅ  ｏｆ  ｂｏｖｉｎｅ  ｏｏｃｙｔｅｓ．Ｒｅｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ  ２００４；１２７：１５９−６４に記載の方法に従った。【００５３】３）受精率の測定方法
受精率の測定方法は、受精１８時間後に卵子を裸化処理し、カルノア液に浸したものを倒立顕微鏡下で観察した。前核の無いものを未受精卵、２つのものを受精卵、３つ以上のものを多精子受精卵とした。なお、カルノア液は酢酸とエタノールを１：３の割合で混合して作成した。【００５４】４）人工授精
人工授精は岐阜県畜産試験場に受精を依頼した。精液は黒毛和種の２頭を用いて前述の方法により鶏及びホロホロチョウの卵黄を用いて凍結精液を作成した。合計７４件の人工授精を黒毛和種の繁殖牛を対象に行い、妊娠鑑定は直腸検査による触診で行った。
５）有意差検定
体外受精における受精率及び体外発生率は、アークサイン変換した後、ニワトリ、ホロホロチョウ間でｔ検定を行った。さらに人工授精による受胎率は、χ２検定を行った。【００５５】＜結果及び考察＞
体外受精率については、受精能の誘起されていない精子では受精できない条件（顆粒層細胞がなく受精時間が短い）においてホロホロチョウの卵黄区（１５％）の方がニワトリの卵黄区（４７％）に比べて有意に低かった（表１２参照）。【００５６】
【表１２】
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Ａ：ニワトリとホロホロチョウの卵黄は、それぞれＴＥＹＥ（トリス糖液）へ２０％ｖ／ｖ添加した。
Ｂ：卵子卵丘細胞複合体（ＣＯＣｓ）又は裸化卵子を体外受精に用いた。
Ｃ：媒精は２時間又は５時間で行った。
Ｄ：受精率は未受精、正常受精及び多精子受精に分けて観察した。【００５７】  体外発生率においては、受精後６日目にてホロホロチョウの卵黄区（約２３％）の方がニワトリの卵黄区（１７％）に比べて高い傾向がある、有意な差は認められなかった。受精後７及び８日目に発生する胚の数にも有意な差はみられなかった（表１３参照）。
一方、両精液を用いて人工授精を行ったところ、受胎率は、ＡおよびＢいずれの種雄牛においてもホロホロチョウの卵黄区のほうが高く、合計値では、ホロホロチョウ卵黄区において５５．６％、ニワトリ卵黄区においては４４．７％の受胎率を得た（表１４参照）。【００５８】
【表１３】
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Ａ：ニワトリとホロホロチョウの卵黄は、それぞれＴＥＹＥ（トリス糖液）へ２０％ｖ／ｖ添加。
Ｂ：受精後６、７及び８日目の胚盤胞期胚を観察。【００５９】
【表１４】
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卵黄：ニワトリとホロホロチョウの卵黄は、それぞれＴＥＹＥ（トリス糖液）へ２０％ｖ／ｖ添加。
受胎率：妊娠鑑定は６０日のノンリターンにて行った。【００６０】    ［実施例４］
本実施例では、ホロホロチョウの卵黄を用いた凍結精子で作成した胚の性別について検討した。
従来、媒精時間が短いと胚の性比はオスに若干偏るとの報告や、Ｘ精子の方がＹ精子より早くキャパシテーションを誘起し、侵入も早いということが知られている。これに加えて、ニワトリ卵黄を用いて作成した凍結精液を用いると、受精時間の短縮に伴い胚の性比がオスに偏るという報告もある。そのため本実施例の実験では、凍結によって誘起されるキャパシテーションを抑制できるホロホロチョウの卵黄を用いて凍結精液を作成した。そして、ニワトリ、ホロホロチョウの両凍結精液を用い、５時間又は１８時間、卵子卵丘細胞複合体と凍結精子を共培養して作成した授精後４８時間の５から８細胞期胚について、性比率を比較・検討した。【００６１】＜実験の材料及び方法＞
１）ＤＮＡ抽出及びＤＮＡ複製
媒精から４８時間後の８細胞期胚の透明帯を酸性タイロードを用いて除去し、抽出液を用いてＤＮＡ抽出を行った。抽出後、Ｙ−染色体特異的プライマーとウシ特異的プライマーを用いてＰＣＲを行った。なお、温度設定は、９２℃・２０秒、５２℃・２０秒及び７１℃・４０秒を３６サイクル行った。（性判別に用いたプライマーセットについてはＩｗａｔａ  Ｈ．Ｋｉｍｕｒａ  Ｋ，Ｈａｓｈｉｍｏｔｏ  Ｓ，Ｏｏｔａ  Ｍ，Ｔｏｍｉｎａｇａ  Ｔ  ａｎｄ  Ｍｉｎａｍｉ  Ｎ．Ｇｌｕｃｏｓｅ−６−ｐｈｏｓｐｈａｔｅ  ｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅ  ａｃｔｉｖｉｔｙ  ｏｆ  ＩＶＭ／ＩＶＦ／ＩＶＣ  ｂｏｖｉｎｅ  ｅｍｂｒｙｏｓ  ｉｓ  ｒｅｌａｔｅｄ  ｔｏ  ｔｈｅ  ｓｅｘ  ａｎｄ  ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｌ  ｃｏｍｐｅｔｅｎｃｅ  ｕｎｄｅｒ  ｓｕｂｏｐｔｉｍａｌ  ｇａｓ  ｃｏｎｄｉｔｉｏｎ  Ｊ  Ｒｅｐｒｏｄ  Ｄｅｖ．２００３  ４８  ４４７−４５３参照）
２）ＰＣＲ産物の判定
反応終了後に増幅された２％アガロースゲルを用いてＤＮＡを２０分間電気泳動した。その後、エチジウム・ブロマイド溶液に３０分間浸漬・飽和させ、ＵＶイルミネーターを用いてＤＮＡを発色させ、雌雄の判別を行った。
３）検定
検定は理論値（５０：５０）とχ２検定を用いて比較した。【００６２】＜結果及び考察＞
理論値（５０：５０）と比較すると、媒精時間が１８時間の場合では、両凍結精液で作成した胚の性比に有意な差は見られなかった。一方、５時間媒精と共培養時間が短い場合では、ニワトリ卵黄区では、胚の性比は有意に高い値（６９．８％）を示したが、ホロホロチョウ卵黄区では６０．０％と理論値と比べ有意な差は生じなかった（表１５参照）。【００６３】
【表１５】
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【００６４】  ホロホロチョウ又はニワトリの卵黄を用いて凍結した精液を用いて作成した胚の性比がオスに偏るかどうかを検討した結果、媒精時間が１８時間と長い場合では、理論値（５０：５０）と両凍結精液で作成した胚の性比との間に差は見られなかった。しかし、５時間媒精と精子と卵子との共培養時間が短い場合では、ニワトリ卵黄区を用いて作成した精子で、有意にオスの胚が増えたのに対し、ホロホロチョウ卵黄区では性比に有意な差は生じなかった。このことからホロホロチョウの卵黄を用いて凍結した精子は、凍結によって誘起されるキャパシテーションが抑制されたと考えられる。【００６５】＜実施例１〜４の総括＞
上述の各実施例の結果を総括すると、凍結融解後の精子活力及びＨＯＳＴ値は、ニワトリ区に比べホロホロチョウ区の方が高かった。ＣＴＣ染色での受精能獲得様の精子及び透明帯への接着精子数はともにニワトリ区において多かった。また、卵子卵丘細胞複合体の状態で、５時間媒精した場合、両区の受精率の間には差が認められなかったが、裸化卵子と短時間媒精（２時間）する条件では受精率はホロホロチョウ区において低かった。
両精液を用いて人工授精を行った結果では、ホロホロチョウ区では５５．６％、ニワトリ区においては４４．７％の受胎率となり、ホロホロチョウの卵黄を用いたものの方が受胎率が高くなることが確認された。また、ＰＣＲ法を用いた胚の性判別では、ニワトリにおいて理論値５０：５０に比較して有意にオスに偏ったが、ホロホロチョウでは、ほぼ５０：５０となり、オスに偏るという問題はみられなかった。【００６６】    ［参考例］
実施例１〜４の実験から、ホロホロチョウの卵黄を用いて凍結保存した精子には、従来のニワトリの卵黄を用いたものに比べ、凍結によって誘起されるキャパシテーションが抑制されていることが確認された。凍結時に添加された脂質は、精子頭部の膜を保護する働きがあるとされているので、ここで、ホロホロチョウの卵黄組成とニワトリの卵黄組成との相違を見るため、薄層クロマトグラフィーを用いて脂質分析を行った。【００６７】＜実験の材料及び方法＞
１）標準物質
ＴＬＣ  ＭＩＸ  ４０（フナコシ株式会社）
（Ｃｈｏｌｅｓｔｅｒｏｌ  ２０ｍｇ、Ｃｈｏｌｅｓｔｅｒｙｌ  ｏｌｅａｔｅ  ２０ｍｇ、Ｏｌｅｉｃ  ａｃｉｄ  ２０ｍｇ、Ｔｒｉｏｌｅｉｎ  ２０ｍｇ、Ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｃｈｏｌｉｎｅ  ２０ｍｇ）
Ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄｓ  ｋｉｔ（フナコシ株式会社）
（Ｌ−３−ｌｙｓｏｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｃｈｏｌｉｎｅ  ４ｍｇ、Ｌ−３−ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｅｔｈａｎｏｌａｍｉｎｅ  ６ｍｇ、Ｓｐｈｉｎｇｏｍｙｅｌｉｎｅ  ２ｍｇ）【００６８】２）脂質抽出
卵から卵黄だけを取り出し、濾紙を用い卵黄の周りに付着している卵白を除去した後、重量を測った。次にメタノール（３３．３ｍｌ）とクロロホルム（４０ｍｌ）を用い卵黄をよく撹拌し、メスフラスコに移した後、メスフラスコの立ち上がりの直下（首部分）までクロロホルムを加えた。それをウォーターバスにて３７〜４０℃で３０分間加温抽出を行い、その後、流水中に浸けて２０℃まで冷却し、クロロホルムで標線までメスアップした。次に、メスフラスコから濾紙で濾過しながらメスシリンダーに移し、濾液容量を測定した。その後、分液漏斗へ移し、そこに濾液の２０％の蒸留水を加え、栓をして３回転倒混和し、４℃で一晩静置した。一晩静置後、２層に分離した下層の全量をナス型フラスコに移した。そして真空エバポレーターを用いて４０℃で濃縮を行い、エタノールを追加して濃縮する操作を３回繰り返し水分除去した。完全に濃縮・乾固させた後、クロロホルム（２ｍｌ）で再溶解し、窒素ガスを封入して冷凍庫に保存した。【００６９】３）高性能薄層クロマトグラフィー（ＨＰＴＬＣ）
薄層板を使用前日にクロロホルム：メタノール：蒸留水：酢酸を６５：２５：４：１で混合した第１展開溶媒に浸けて不純物を除去後に風乾し、１１５℃で１時間処理した。脂質の点着は、テンプレートを用い、薄層版の下端から１ｃｍの場所に１ｃｍ間隔で直径約２ｍｍの点状にスポットし、第１展開溶媒を入れた展開層内で薄層版を１時間ハンギングした後、第１展開溶媒で原点から４ｃｍまで展開した後風乾し、これを２回繰り返した。次に、ヘキサン：ジエチルエーテル：酢酸を８０：２０：１．５で混合した第２展開溶媒で原点から７．５ｃｍまで展開した後に風燥した。脂質分画の発色は、１０％硫酸銅を含む８％リン酸溶液に薄層版を浸した後、１８０℃で５分間加熱し行った。各脂質分画の定量は、フライングスポットスキャナーＣＳ−９０００（島津製作所製）を用いて定量を行った。【００７０】＜結果及び考察＞
薄層クロマトグラフィーを用いて卵黄の脂質分析を行い、両卵黄区間の脂質組成を比較すると、ホロホロチョウ卵黄区のリン脂質組成（２１．３％）がニワトリ卵黄区のリン脂質組成（１８．１％）より多い結果となった。特にホスファチジルコリンとホスファチジルエタノールアミンの含有比率に差が認められた。その他の脂質組成では、ニワトリ卵黄区においてホロホロチョウ卵黄区よりコレステロールエステルとトリグリセリドが多い傾向が認められた（表１６参照）。【００７１】
【表１６】
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【００７２】  以上のとおり、ホロホロチョウ卵黄の脂質組成では、ニワトリ卵黄の脂質組成に比べリン脂質比率が多いことが判明した。このことから、凍結保護物質としてリン脂質が関与している可能性が大きいと考えられる。
【産業上の利用可能性】
【００７３】  本発明による人工授精用のウシ凍結精液を使用して人工授精を行うと、従来に比べてより受胎率が向上するため、畜産分野においてきわめて有用である。