(57)【要約】【課題】  効率よく不活性タンパク質から活性タンパク質にタンパク質をリフォールディングすることが求められていた。【解決手段】  タンパク質の製造方法であって、不活性タンパク質をメソ孔中に担持した多孔体を用意する工程と、前記不活性タンパク質を担持した前記多孔体に変性剤を付与する工程と、前記多孔体より変性剤を除去し、前記不活性タンパク質を活性タンパク質に変化させる工程とを備えるタンパク質の製造方法により解決することが可能になった。【選択図】  図１
2008201735.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
タンパク質の製造方法であって、
不活性タンパク質を孔中に担持した多孔体を用意する工程と、
前記不活性タンパク質を担持した前記多孔体に変性剤を付与し、前記不活性タンパク質の立体構造を変化させる工程と、
前記多孔体より変性剤を除去し、前記不活性タンパク質を活性タンパク質に変化させる工程とを備えることを特徴とするタンパク質の製造方法。
【請求項２】
前記孔がメソ孔であることを特徴とする請求項１記載のタンパク質の製造方法。
【請求項３】
前記変性剤は、前記不活性タンパク質内の水素結合又は疎水結合を切断することを特徴とする請求項１記載のタンパク質の製造方法。
【請求項４】
前記活性タンパク質に変化させる工程は、前記多孔体に担持されたタンパク質内で新たな水素結合又は疎水結合を形成する工程であることを特徴とする請求項１記載のタンパク質の製造方法。
【請求項５】
前記不活性タンパク質は、熱履歴によって不活性化したタンパク質であることを特徴とする請求項１記載のタンパク質の製造方法。
【請求項６】
前記多孔体から前記活性タンパク質を取り出す工程を備えることを特徴とする請求項１記載のタンパク質の製造方法。
【請求項７】
前記多孔体のメソ孔の配置は、ハニカム状に配置されていることを特徴とする請求項１記載のタンパク質の製造方法。
【請求項８】
前記変性剤を付与する工程は、さらに還元剤も付与することを特徴とする請求項１記載のタンパク質の製造方法。
【請求項９】
メソ孔を有した前記多孔体のＸ線回折の分析において、回折結果が１ｎｍ以上の構造周期に対応する角度領域に少なくとも１つの回折ピークを有することを特徴とする請求項１記載のタンパク質の製造方法。
【請求項１０】
前記多孔体の孔壁を構成する材料がケイ素を成分として含むことを特徴とする請求項１記載のタンパク質の製造方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、タンパク質の製造方法に関し、タンパク質製剤や新規薬剤の開発、バイオセンサの機能賦活などへの応用が期待される。
【背景技術】
【０００２】
近年、遺伝子工学及びタンパク質工学の進展に伴い、タンパク質の入手方法も次第に変化しており、なかでも目的タンパク質をコードする遺伝子を取り出し、適当な宿主細胞で発現させる方法は、大量の目的タンパク質を得ることを可能にした。このような遺伝子からタンパク質を合成する手法としては、大腸菌、昆虫細胞、動物細胞などで遺伝子を過発現させる方法や、無細胞タンパク質合成法を用いる方法がとられる。
【０００３】
昆虫細胞や哺乳動物細胞によるタンパク質合成では、得られるタンパク質の高次構造が制御され、秩序だった立体構造を取り、可溶性である場合が多い。しかし、これらの方法では、目的タンパク質の収率が極めて低く、目的のタンパク質を得るためには、複雑な分離精製の操作が必要になり、目的タンパク質を得るまでに時間がかかる。さらに、得られる目的タンパク質の量も極めて少なく、コストも高い。
【０００４】
これに対して、大腸菌によるタンパク質合成は、操作が簡単であり、目的タンパク質を得るのにあまり時間を要せず、コストもさほどかからない。このため、現在は目的タンパク質の合成を担う遺伝子コードを組み込ませた大腸菌を用いる方法が、タンパク質合成の主流となっており、その生産プロセスも確立されつつある。ただ、ヒトなどの高等生物のタンパク質を大腸菌の発現系で合成した場合、インクルージョンボディ（封入体）と呼ばれる不溶化したタンパク質の凝集体を菌体内に形成することが数多く報告されている。当然ながら、この不溶性化したタンパク質であるインクルージョンボディは、そのタンパク質に固有の機能・性能を持たず、活性を示さない。このため、人工的なタンパク質生産プロセスでは、インクルージョンボディを解きほぐし、高次構造を整え、秩序だった立体構造を持つ活性タンパク質に変換する操作、すなわちインクルージョンボディのリフォールディングが必要となる。
【０００５】
この種のリフォールディングは、大腸菌により生産されたタンパク質のみならず、熱履歴等のある種の原因で失活したタンパク質の再生にも応用でき、極めて重要な技術であり、盛んに研究されてきた。しかし、これまでにも種々の方法が提案されてはいるが、それらはリフォールディング率が低いうえに、ある限定されたタンパク質に対して偶発的に好ましい結果が得られたに過ぎなかった。
【０００６】
例えば、不溶化したタンパク質は一度、尿素やグアニジン塩酸塩などのタンパク質変性剤で可溶化させ、徐々にタンパク質変性剤を除くことによってリフォールディングさせることが広く行われてきた。しかし、タンパク質の自発的なフォールディングにまかせたこの方法は条件設定に非常に時間を要し、また、リフォールディングできないタンパク質も多く存在するなど多くの課題を抱えているのが現状である。特に、タンパク質の大量生産が求められる現在の状況には向かない方法であるといえる。
【０００７】
その中で注目を集めている方法として分子シャペロン（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｈａｐｅｒｏｎｅ）を利用したリフォールディング方法がある。分子シャペロンの古くは熱ショックタンパク質として知られていた一連のタンパク質で、タンパク質のリフォールディング、膜透過、会合、分解などに働いているタンパク質として知られ、大腸菌から人に至るまでその遺伝子配列は高度に保存されている。分子シャペロンの多くは、生体が熱ショック、代謝阻害、重金属、ウイルス感染、虚血などに晒された場合に合成され、生体をそれらのストレスショックから守り、恒常性を維持する機能を果たしている。しかし、どのようなメカニズムでリフォールディングが行われているかは未だに解明されていない。また、人工の分子シャペロンとしては、β−シクロデキストリンやシクロアミラーゼが用いられ、このシャペロン溶液に変性したタンパク質を混ぜると、人工シャペロンによる取り込み除去が生じ、この過程でタンパク質が巻き戻るとの報告（非特許文献１）もある。しかし、これらの方法もまた、ＣａｒｂｏｎｉｃａｎｈｙｄｒａｓｅＢなどで成功しているに過ぎず、しかも繰り返し行える方法ではないため、高コストである。
【０００８】
また、特許文献１には、ゼオライトベータに接触させる方法が開示されている。インクルージョンボディをゼオライトベータに接触、吸着させた後に界面活性剤等で剥離することで、分子量１０万以上のタンパク質をリフォールディングすることが可能であり、数種類以上のタンパク質でのリフォールディングが確認されている。しかしながら、吸着剤であるゼオライトベータからの剥離過程で、界面活性剤等の選択により、リフォールディング率が大きく変わるため、種々のタンパク質の性質に応じて条件出しをする必要性がある。また、従来のリフォールディング法と比較しても、より複雑なプロセスを要する。
【特許文献１】特開２００５−０２９５３１号公報
【非特許文献１】Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．，Ｖｏｌ．１１７，（１９９５）２３７３−２３７４．
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００９】
このように、種々のリフォールディングの方法が報告されているが、これらの方法には、上記のような課題があるのが実情である。本発明は、このような背景技術に鑑みてなされたものであり、より簡便で高効率なリフォールディングを可能にしたタンパク質の製造方法を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【００１０】
そこで、本発明は、
タンパク質の製造方法であって、
不活性タンパク質を孔中に担持した多孔体を用意する工程と、
前記不活性タンパク質を担持した前記多孔体に変性剤を付与し、前記不活性タンパク質の立体構造を変化させる工程と、
前記多孔体より変性剤を除去し、前記不活性タンパク質を活性タンパク質に変化させる工程とを備えるタンパク質の製造方法を提供するものである。
【発明の効果】
【００１１】
本発明により、孔の中でタンパク質のリフォールディングを行うことにより、リフォールディング率の高いタンパク質の製造方法が提供できる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１２】
本発明の概要について図１を用いて説明する。
【００１３】
本発明は、タンパク質の製造方法であり、まず、図１（ａ）に示すように不活性タンパク質１２を孔中に担持した多孔体１１を用意する工程を備える。そして、図１（ｂ）に示すように前記不活性タンパク質１２を担持した前記多孔体１１に変性剤１３を付与する工程を備える。これにより、不活性タンパク質の結合の一部を切断し、不活性タンパク質の立体構造を変化させる。さらに、図１（ｃ）に示すように、前記多孔体より変性剤１３を除去し、前記不活性タンパク質を活性タンパク質に変化させる工程があり、この工程により、新たな結合を形成することにより、活性タンパク質に変化させるものである。
【００１４】
より詳細に本発明を構成するものについて詳細に説明する。
【００１５】
（タンパク質について）
タンパク質に活性タンパク質と不活性タンパク質という文言を用いている。本明細書では、活性タンパク質とは、タンパク質自体が本来ある基質特異性を示すものを言う。例えば、細菌細胞壁のムコペプチドなどに存在するＮ−アセチルムラミン酸（ＭｕｒＮＡｃ）とＮ−アセチルグルコサミン（ＧｌｃＮＡｃ）間のβ−１，４結合間を特異的に加水分解するリゾチームタンパク質がある。また、免疫グロブリンをＦａｂフラグメントとＦｃフラグメントに特異的に分解するパパインタンパク質や、アルコールをアルデヒドに酸化するアルコールデヒドロゲナーゼタンパク質等も挙げられる。
【００１６】
一方、不活性タンパク質では、タンパク質が有する本来の基質特異性を示さないものを言う。例えば、上述のリゾチームタンパク質であれば、化合物のムコペプチド、パパインタンパク質であれば免疫グロブリン、アルコールデヒドロゲナーゼではアルコールに対してそれぞれ基質特異性を示さないものが該当する。また、本明細書における不活性タンパク質には、一般的に大腸菌等の発現系で得られる立体構造が無秩序なタンパク質、いわゆるインクルージョンボディや不溶化タンパク質も含む。また、熱履歴等のある種の原因で不活性化したタンパク質も含む。
【００１７】
（メソ孔と多孔体について）
本発明に用いられる多孔体の細孔はメソ孔を有している。メソ孔とは、ＩＵＰＡＣで定義されており、２ｎｍから５０ｎｍの範囲の孔径を有する細孔を指す。本発明に用いられる多孔体の形状は、図２に示すようなメソ孔２３が短軸方向に配向し、かつマクロ孔２１を有した樹枝状構造体２２を有する多孔体が好適である。この多孔体の方がタンパク質の拡散に優れ、且つ、担持量を多くでき、ハイスルーブットのリフォールディングを行うためにも好ましい。ただし、球状や膜状など他の形状でも同様の効果が得られるものであれば、どのような形態も適用可能である。本明細書では、多孔体のことを多孔質材料と表現する場合がある。また、メソ孔を有する多孔体のことをメソ多孔体やメソポーラス材料と表記することもある。
【００１８】
多孔体の細孔構造を図２に示す。図２に示すように実質的に均一な径のメソ孔を有する。この図２には、２次元ヘキサゴナル構造のものが示されているが、細孔の配置はこれに限定されるものではない。例えば、この他に、キュービック構造のもの、３次元ヘキサゴナル構造のもの等を使用することが可能である。また、細孔径は実質的に均一であって、その配置がランダムなものでも、本発明のタンパク質製造方法に良好に用いることができる。
【００１９】
この多孔体のメソ孔は、界面活性剤分子集合体（ミセル）が形成するものである。ある条件においてはミセルを形成する分子の会合数が等しいために、同じ形の細孔が形成されるものである。ミセルの形状は、球状、チューブ状、層状など種々の形態が知られているが、本発明に関わるメソポーラス材料を形成するミセルの形状は基本的にチューブ状のものである。チューブ間は繋がっていても分離されていても良い。
【００２０】
本発明に利用されるメソポーラス材料において、多孔質材料の孔壁２４を形成する材料は、上述の細孔構造を有するものであれば、どのようなものでも適用可能である。例えば、酸化チタン、酸化スズ、酸化ケイ素などがある。その中で、ケイ素を成分を含む材料が好ましく、特にシリカが好ましく用いられる。また，１以上の炭素原子を含有する有機基と，前記有機基と２箇所以上で結合する２以上のケイ素原子と、前記ケイ素原子と結合する１以上の酸素原子から構成される有機シリカハイブリッド材料でも良い。
【００２１】
界面活性剤ミセルを鋳型に用いて作成されるメソポーラス材料のうち、細孔径と細孔の長さのアスペクト比が小さなメソポーラス材料の作成方法が本発明に用いる多孔体として好適である。それは、次の文献に開示されている方法で作製可能である。
Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  ｔｈｅ  Ａｍｅｒｉｃａｎ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｓｏｃｉｅｔｙ詩第１２６巻第７７４０頁
ただし、本発明に利用されるメソポーラス材料は、上述のメソポーラス材料の特徴を満たすものであれば、例示した文献の方法に限定されない。
【００２２】
（多孔体の製造方法について）
以下、本発明に用いられたゾル−ゲル法による短軸配向性メソポーラスシリカの合成方法について説明する。
【００２３】
反応溶液は、界面活性剤と有機分子、そして金属アルコキシド等の目的材料の原料になる物質を含む溶液である。細孔壁を形成する材料に応じて、加水分解反応触媒である酸等を適当量添加する場合もある。
【００２４】
目的材料に応じて、原料としてハロゲン化物、カルコゲン化物、金属アルコキシド等が用いられる。例えば、細孔壁がシリカの場合には、金属アルコキシドであるテトラエトキシシランやテトラメトキシシランが好ましく用いられる。当然、アルコキシド以外のシリカ源でも本発明に適応可能である。
【００２５】
使用する界面活性剤は、ポリエチレンオキシドを親水基として含むブロックコポリマーなどの非イオン性界面活性剤等が用いられる。しかし、使用可能な界面活性剤はこれらに限定されず、目的の構造が得られるものであれば特に限定しない。
【００２６】
アスペクト比の小さな細孔構造の制御は、添加する有機分子およびその添加量によって制御される。例えばｎ−デカンを添加することによって、アスペクト比の小さな細孔構造を有したロッド状メソポーラスシリカが合成される。
【００２７】
使用する酸も塩酸、硝酸のような一般的なものを使用することが可能である。
【００２８】
上記のような反応溶液を水熱条件下で反応させることにより、目的のメソポーラス材料を合成することができる。合成させる際の温度は、８０℃〜１５０℃の温度領域において選択される。反応時間は数時間〜数日程度で、反応温度や反応時間は適宜最適化される。
【００２９】
この様にして合成されたメソポーラス材料は、純水で洗浄した後に空気中で自然乾燥させることで、細孔内に界面活性剤ミセルをテンプレートとして含む無機−有機複合粉末材料が得られる。以上のように作製された無機−有機複合粉末材料からテンプレートの界面活性剤ミセルを除去することで、本発明に利用することができるメソポーラス材料を作製することができる。界面活性剤の除去方法には、種々の方法があるが、細孔構造を破壊せずに界面活性剤を除去できる方法であれば、どのような方法を使用しても良い。
【００３０】
最も一般的に用いられる方法は、酸素を含んだ雰囲気中で焼成する方法である。例えば、合成した材料を空気中で、５００℃において１０時間焼成することによって、メソ孔構造をほとんど破壊することなく、完全に界面活性剤を除去することができる。焼成温度と時間は、細孔壁を形成する材料と使用する界面活性剤により、最適化されるのが好ましい。
【００３１】
（多孔体の検証）
このような方法で合成したメソポーラス粉末試料について、窒素ガス吸脱着測定を行い、細孔径に関する知見を得ることができる。本発明におけるメソポーラス材料の細孔径は、実質的に均一な径であることを特徴とする。ここでいう均一径の細孔とは、窒素ガス吸着測定の結果から、Ｂｅｒｒｅｔ−Ｊｏｙｎｅｒ−Ｈａｌｅｎｄａ（ＢＪＨ）法により評価される細孔径分布において、求められた細孔径分布が、単一の極大値を有する。さらに細孔径分布において、全メソ孔中の６０％以上のメソ孔が、１０ｎｍの幅を持つ範囲内に含まれることを示す。尚、細孔径は、後に説明する界面活性剤を適宜選択することで変化させることができる。
【００３２】
細孔の周期構造はＸ線回折（ＸＲＤ）測定によって知見を得ることが可能である。本発明におけるメソポーラス材料は、ＸＲＤ測定の分析において、回折結果が１ｎｍ以上の構造周期に対応する角度領域に少なくとも１つの回折ピークを有することを特徴とする。
【００３３】
（多孔体を用いたリフォールディング）
続いて、前記多孔体を用いたリフォールディングプロセスによる、不活性タンパク質の活性化方法について説明する。
【００３４】
このメソ多孔体を利用したリフォールディングプロセスを図１に模式的に示した。この図において、１１はメソ多孔体であり、１２は失活したタンパク質等のインクルージョンボディである。１３は変性剤である。
【００３５】
本発明では、リフォールディングの対象となるタンパク質としては、インクルージョンボディ、あるいは熱履歴等、ある種の原因で失活したタンパク質などの不活性タンパク質が用いられる。本発明では、これらのタンパク質をメソ多孔体のメソ孔内で処理して、タンパク質の立体構造をリフォールディングすることにより、タンパク質を活性化させる。
【００３６】
活性化タンパク質に変化させる工程は、通常、タンパク質のインクルージョンボディを、変性剤含有の溶液に先ず分散溶解し、メソ多孔体を混合させることで細孔内へタンパク質を吸着させる。その後、濃度勾配により変性剤を除去する方法や、メソ多孔体の細孔内においてタンパク質を熱履歴等により失活させ、その後変性剤を添加、次いで変性剤を除去させる工程で行われる。もちろん、予め不活性タンパク質を担持した多孔体を変性剤含有の溶液に分散させてもよい。
【００３７】
メソ多孔体に吸着前のタンパク質の分散溶媒としては、一般には、それが大腸菌等の発現系で生産されることがある。また、タンパク質は、通常、水溶液中で使われることが多く、失活した場合でも水溶液中にあることが多いことから水が用いられるが、必ずしもこれに限定されるものではない。
【００３８】
本発明におけるタンパク質のアンフォールディング（解きほぐし）は、インクルージョンボディなど、絡んだタンパク質鎖長を解きほぐし易くし、また、巻き戻り易くするための変性剤とを入れて行われる。さらに、タンパク質鎖長中に不本意に生成したジスルフィド結合を切断するために、ある種の還元剤を用いることもある。本発明では一般に用いられる界面活性剤等のリフォールディング因子は添加しない。
【００３９】
変性剤は、広義ではタンパク質の立体構造を変化させるものであればよい。ここでは、さらに、変性剤と還元剤に分けて説明する。
【００４０】
変性剤は、尿素、塩酸グアニジンなどが挙げられる。本発明で用いられる変性剤は、タンパク質内の水素結合や疎水結合を切断することができるものが好ましいと考察される。還元剤は、メルカプトエタノール、グルタチオン、ジチオスレイトールなどが挙げられる。還元剤は、タンパク質内のジスルフィド結合を切断することができるものが好ましいと考察される。
【００４１】
アンフォールディングされたタンパク質は、変性剤の除去によってリフォールディングすることができる。変性剤の除去方法は、希釈法や透析法など、変性剤を除去できる方法であれば特に限定されないが、濃度勾配による希釈法がより好ましい。また、細孔内に分散しているアンフォールディングしたタンパク質は、急激な濃度勾配による凝集を防ぐことが可能であるため、このような希釈に行う時間を数時間に短縮することが可能である。
【００４２】
また、リフォールディングしたタンパク質は、物理吸着よって細孔内にトラップされており、中でも静電吸着によるところが大きいため、緩衝溶液のｐＨを変えたり、イオン交換したりすることにより細孔外に脱着させることが可能である。このようにメソ孔内に担持することにより、希釈時間の短縮とタンパク質の立体構造の正確な再構築が可能になる。
【００４３】
以下、実施例を用いて、本発明をさらに詳細に説明するが、本発明は実施例の内容に限定されるものではない。
【実施例１】
【００４４】
本実施例は、枝分かれしたロッド状のシリカが３次元的に網目状に配列した、マクロ孔を有する多孔質材料において、実質的に均一なチューブ状メソ孔がロッドの短軸方向に対して並行に形成されたメソポーラスシリカを作製する。そして、リゾチームを任意の量で吸着させた後、熱失活させ、変性剤の吸脱着のみでリフォールディングさせた例である。
２．４０ｇの非イオン界面活性剤であるトリブロックコポリマー
（ＥＯ２０ＰＯ７０ＥＯ２０；ＨＯ（ＣＨ２ＣＨ２Ｏ）２０（ＣＨ２ＣＨ（ＣＨ３）Ｏ）７０（ＣＨ２ＣＨ２Ｏ）２０Ｈ）
を７６．５ｍＬの純水に溶解し、さらに７．５ｍＬの３６ｗｔ％濃塩酸を添加し、室温で３０分撹拌した。溶解後、水溶液を１８℃から３０℃の恒温槽にて冷却し、２時間放置した。続いてｎーｄｅｃａｎｅを１３．９ｇ添加し、１日撹拌した。さらに、この混合溶液に加水分解触媒としてＮＨ４Ｆを０．０２７ｇ、および５．１０ｇのテトラエトキシシラン（ＴＥＯＳ）を添加したものを前駆溶液とした。最終的な前駆溶液の組成（モル比）は、ＴＥＯＳ：ＨＣｌ：ＥＯ２０：ＰＯ７０：ＥＯ２０：ＮＨ４Ｆ：ｎーｄｅｃａｎｅ：Ｈ２Ｏ＝０．２５：０．９：０．００４：０．００７：１：４２．９となるようにした。
【００４５】
この前駆体溶液を上記温度において、１日撹拌し、その後耐圧容器に移し変えて１００℃で２４時間反応させた。得られた白色沈殿物は純水で十分に洗浄し、真空乾燥させた。
【００４６】
得られた粉末試料を、空気中５００℃で焼成し、細孔内から界面活性剤を分解・除去した。界面活性剤等の有機物の除去は、赤外吸収スペクトルによって確認された。
【００４７】
合成されたメソポーラスシリカ粉末をＸ線回折法により評価した結果、図３のように面間隔１１．７ｎｍのヘキサゴナル構造の（１００）面に帰属される回折ピークを始め、（１１０）、（２００）、（２１０）面に帰属される回折ピークを確認した。この結果は、このメソポーラスシリカの細孔構造が、高い規則性を持ったヘキサゴナル配列を有していることを示している。
【００４８】
７７Ｋにおける窒素吸脱着等温線測定を行った結果、吸着等温線形状はＩＵＰＡＣ分類におけるＩＶ型となった。Ｂ．Ｅ．Ｔ．法によって算出された比表面積は７００ｍ２／ｇとなり、細孔容量は１．８８ｍＬ／ｇとなった。また、この吸着等温線の結果から、ＢＪＨ法により細孔径を算出すると、本実施例で合成したメソポーラスシリカの細孔径分布は、１４．１ｎｍに単一のピークを有する狭い分布となり、細孔の９０％以内が１０ｎｍの分布内に収まった。
【００４９】
次に、走査型電子顕微鏡（ＳＥＭ）を用いて観察を行ったところ、図４のように無数の枝分かれしたロッド状の構造体および、これらの構造体が３次元的に網目状に配列した構造を形成していた。この枝分かれしたロッド状構造体の間隙には、３００〜５００ｎｍのマクロ孔が形成されていた。またロッド状構造体の直径は、２００〜３００ｎｍであった。さらに高倍率でＳＥＭ観察を行ったところ、図５のように樹枝状構造体の短軸方向に直径１４ｎｍのチューブ状メソ孔が配向していた。また、その断面図では図６のように、比較的均一なチューブ状のメソ孔がハニカム状にパッキングした細孔構造を形成していた。
【００５０】
次に、このメソポーラスシリカのメソ孔内に、モデルタンパク質としてリゾチームを吸着させた。リゾチームはその構造内に、ジスルフィド結合を２ヶ所持っており、リフォールドしにくい酵素として知られている。
【００５１】
ｐＨ＝７．４の１０ｍＭリン酸緩衝液を用いてリゾチームを０．２ｍｇ／ｍＬに調製し、この１ｍＬ中に上記方法で合成したメソポーラスシリカを２．０ｍｇ加えた。この混合溶液は４℃、２４時間の条件下でシェーカーを用いて撹拌し、該リゾチームをメソポーラスシリカ細孔内に吸着させた。撹拌終了後、４℃、１０分、２００００ｇで遠心分離を行い、リゾチーム固定化シリカを得た。吸着前後の上澄み溶液における２８０ｎｍの吸収極大を利用し、メソポーラスシリカへのリゾチームの吸着量を算出した。吸着等温線はＬａｎｇｍｕｉｒ型の単層吸着挙動を示し、約１００ｍｇ／ｇの吸着が確認された。メソポーラスシリカの外表面ではなく、細孔の中にリゾチームが導入されていることは、リゾチームのメソポーラスシリカへの吸着前後における、窒素吸着測定装置による細孔内への窒素分子の吸着挙動の変化で確認した。
【００５２】
次に、このリゾチーム固定化メソポーラスシリカに熱処理を加え、リフォールディング測定を行った。
【００５３】
上記で調製したリゾチーム固定化メソポーラスシリカを洗浄し、１０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ＝７．０）を１ｍＬ加え、９０℃で２時間加熱した。次に、６Ｍグアニジン塩酸塩溶液と２０ｍＭβメルカプトエタノールの混合溶液を２ｍＬ添加し、１２時間撹拌した。その後、１時間から６時間で適宜純水による洗浄を繰り返し、リフォールディングプロセスを行った。リフォールディングしているかどうかは、リゾチームの活性を測定することで評価した。リフォールディングプロセスの最終結果物以外にも、固定化した直後のリゾチーム活性、熱処理後のリゾチーム活性もコントロールとして測定した。以下にリゾチームの活性測定方法を示す。
【００５４】
リゾチームを固定化したメソポーラスシリカを洗浄した。そして、５０ｍＭ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ＝５．０）で調製した１．５ｍｇ／ｍＬのｐ−Ｎｉｔｒｏｐｈｅｎｙｌ−ｐｅｎｔａ−Ｎ−ａｃｅｔｙｌ−β―ｃｈｉｔｏｐｅｎｔａｏｓｉｄｅ（ＰＮＰ−ＧｌｕｃＮＡｃ）を２３０μＬの溶液を用意した。また、１０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ＝７．０）で調製した０．０１２ｍｇ／ｍＬのＮ−ａｃｅｔｙｌｇｌｕｃｏｓａｍｉｎｉｄａｓｅ  ｆｒｏｍ  Ｊａｃｋ  ｂｅａｎｓ（ＮＡＨａｓｅ）を１００μＬの溶液を用意した。それらを５０ｍＭ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ＝５．０）の混合溶液にして加え、３７℃で１時間撹拌した。活性化したリゾチーム存在下ではｐ−ニトロフェノールが生成するため、４０５ｎｍの吸光度を測定することによりリゾチーム活性を評価した。図７は、熱処理前のリゾチーム活性を１００％とした相対活性を示している。また、熱処理後のリゾチーム活性はほぼ０％を示した。この結果から、変性剤の除去のみで２０％以上のリゾチームがリフォールディングされたことが確認された。
【００５５】
また、メソ多孔体から脱着させたリゾチームの活性を測定した。変性剤を除去し、リフォールディングされたリゾチーム試料に、５０ｍＭから１００ｍＭのリン酸緩衝液を加え、１２時間撹拌し、リゾチームを細孔内から脱着させた。撹拌終了後、４℃、１０分、２００００ｇで遠心分離を行い、メソポーラスシリカを沈殿させ、リゾチームを含む上澄み液を採取し、上記方法によりリゾチーム活性を測定した。リゾチームの活性は１０％程度に低下したが、活性化したリゾチームは、メソ多孔体から脱着していることが確認された。
【００５６】
（比較例１）
本比較例は、実施例１で示したリフォールディングプロセスを、均一細孔を有していない単分散球状シリカを用いた場合と、細孔径が２．９ｎｍのキュービック状メソポーラスシリカを用いた場合のリフォールディング効果を測定した例である。単分散球状シリカの合成方法は特開平０５−１３９７１７に、キュービックメソポーラスシリカの合成方法は、Ｎａｔｕｒｅ誌第３５９号７１０頁に記載されている。
【００５７】
合成した単分散球状シリカはＳＥＭ観察より平均直径が約５０ｎｍ、キュービックメソポーラスシリカは窒素吸着等温線測定より、９００ｍ２／ｇの比表面積と２．９ｎｍの細孔径を有していた。
【００５８】
これら２種類の試料を用いて、実施例１と同様のリゾチームのリフォールディング実験実験を行った。ｐＨ＝７．４の１０ｍＭリン酸緩衝液を用いてリゾチームを０．２ｍｇ／ｍＬに調製し、この１ｍＬ中に上記方法で合成したメソポーラスシリカをそれぞれ２．０ｍｇ加えた。この混合溶液は４℃、２４時間の条件下でシェーカーを用いて撹拌し、該リゾチームをメソポーラスシリカに吸着させた。撹拌終了後、４℃、１０分、２００００ｇで遠心分離を行い、リゾチーム固定化シリカを得た。吸着前後の上澄み溶液における２８０ｎｍの吸収極大を利用し、メソポーラスシリカへのリゾチームの吸着量を算出した。それぞれ約１０ｍｇ／ｇの吸着が確認された。リゾチームのメソポーラスシリカへの吸着前後における、窒素吸着測定装置による窒素分子の吸着挙動の変化では、吸着したリゾチームはほとんど細孔内に導入されておらず、外表面へ吸着していることが確認された。これは、リゾチームの大きさが３ｎｍ程度に対し、細孔が充分に大きくなかったためであると推察できる。
【００５９】
次に、このリゾチーム固定化メソポーラスシリカに熱処理を加え、リフォールディングの効果を確認した。上記で調製したリゾチーム固定化メソポーラスシリカを洗浄し、１０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ＝７．０）を１ｍＬ加え、９０℃で２時間加熱した。次に、６Ｍグアニジン塩酸塩溶液と２０ｍＭβメルカプトエタノールの混合溶液を２ｍＬ添加し、１２時間撹拌した。その後、１時間から６時間で適宜純水による洗浄を繰り返し、リフォールディングプロセスを行った。リフォールディングしているかどうかは、リゾチームの活性を測定することで評価した。リフォールディングプロセスの最終結果物以外にも、固定化した直後のリゾチーム活性、熱処理後のリゾチーム活性もコントロールとして測定した。以下にリゾチームの活性測定方法を示す。
【００６０】
リゾチームを固定化したメソポーラスシリカを洗浄した。５０ｍＭ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ＝５．０）で調製した１．５ｍｇ／ｍＬのｐ−Ｎｉｔｒｏｐｈｅｎｙｌ−ｐｅｎｔａ−Ｎ−ａｃｅｔｙｌ−β―ｃｈｉｔｏｐｅｎｔａｏｓｉｄｅ（ＰＮＰ−ＧｌｕｃＮＡｃ）を２３０μＬの溶液を用意した。また、１０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ＝７．０）で調製した０．０１２ｍｇ／ｍＬのＮ−ａｃｅｔｙｌｇｌｕｃｏｓａｍｉｎｉｄａｓｅ  ｆｒｏｍ  Ｊａｃｋ  ｂｅａｎｓ（ＮＡＨａｓｅ）を１００μＬの溶液を用意した。そして混合してできた５０ｍＭ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ＝５．０）を加え、３７℃で１時間撹拌した。活性化したリゾチーム存在下ではｐ−ニトロフェノールが生成するため、４０５ｎｍの吸光度を測定することによりリゾチーム活性を評価した。しかし、本比較例に用いた試料は両方とも４０５ｎｍ付近に吸光を示さず、熱処理試料同様、全く活性を示さなかったことから、細孔内以外の吸着では、変性剤の単純除去のみではリフォールディングしないことが分かった。
【００６１】
以上のように、従来開示されていたリフォールディング技術と近似する比較例と本実施例とを比べれば明らかなように、従来よりも高効率なリフォールディング技術を提供できることがわかった。
【産業上の利用可能性】
【００６２】
タンパク質製剤や新規薬剤、バイオセンサの機能賦活などの産業に利用が可能である。
【図面の簡単な説明】
【００６３】
【図１】本発明の一実施形態の例を示したタンパク質の製造方法の模式図である。
【図２】実施例で利用した短軸配向性メソポーラス材料を説明するための模式図である。
【図３】実施例で利用した短軸配向性メソポーラス材料のＸ線回折の結果である。
【図４】実施例で利用した短軸配向性メソポーラス材料の走査型電子顕微鏡のイメージである。
【図５】実施例で利用した短軸配向性メソポーラス材料の走査型電子顕微鏡の高倍率イメージである。
【図６】図４で示された短軸配向性メソポーラス材料の断面における走査型電子顕微鏡の高倍率イメージである。
【図７】熱処理後のリゾチーム活性と、実施例の製造方法を実施後のリゾチーム活性の比較図。
【符号の説明】
【００６４】
１１  多孔体
１２  失活したタンパク質等の封入体
１３  変性剤
１４  活性化したタンパク質等
２１  マクロ孔
２２  メソ孔を有した樹枝状構造体
２３  メソ孔
２４  孔壁
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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