(57)【要約】【課題】生体由来の被検試料を用いた臨床分析において、当該試料が非特異的混濁を生じるか否かを判別する方法を提供する。【解決手段】次の工程（１）〜（３）：（１）生体由来の被検試料に、蛋白性の要因により非特異的混濁を生じやすい成分を含む第一試薬を添加し、吸光度変化をモニターする工程、（２）次に蛋白性の要因による非特異的混濁を解消できる成分を含む第二試薬を添加し、吸光度変化をモニターする工程、（３）前記各工程における吸光度変化のパターンから、該被検試料の非特異的混濁性の有無、及び非特異的混濁性である場合には、蛋白性の要因によるものか脂質性の要因によるものかを判別する工程を行うことを特徴とする、生体由来の被検試料の非特異的混濁の判別方法。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
次の工程（１）〜（３）：
（１）生体由来の被検試料に、蛋白性の要因により非特異的混濁を生じやすい成分を含む第一試薬を添加し、吸光度変化をモニターする工程、
（２）次に蛋白性の要因による非特異的混濁を解消できる成分を含む第二試薬を添加し、吸光度変化をモニターする工程、
（３）前記各工程における吸光度変化のパターンから、該被検試料の非特異的混濁性の有無、及び非特異的混濁性である場合には、蛋白性の要因によるものか脂質性の要因によるものかを判別する工程
を行うことを特徴とする、生体由来の被検試料の非特異的混濁の判別方法。
【請求項２】
次の工程（１）〜（４）：
（１）生体由来の被検試料に、蛋白性の要因により非特異的混濁を生じやすい成分を含む第一試薬を添加し、吸光度変化をモニターする工程、
（２）次に蛋白性の要因による非特異的混濁を解消できる成分を含む第二試薬を添加し、吸光度変化をモニターする工程、
（３）次に脂質性の要因による非特異的混濁を解消できる成分を含む第三試薬を添加し、吸光度変化をモニターする工程、
（４）前記各工程における吸光度変化のパターンから、該被検試料の非特異的混濁性の有無、及び非特異的混濁性である場合には、蛋白性の要因によるものか脂質性の要因によるものかを判別する工程
を行うことを特徴とする、生体由来の被検試料の非特異的混濁の判別方法。
【請求項３】
蛋白性の要因により非特異的混濁を生じやすい成分が、精製水、低イオン強度の水溶液、多価アルコール水溶液、多糖類水溶液、及び蛋白変性剤水溶液から選ばれる１種又は２種以上である請求項１又は２記載の方法。
【請求項４】
蛋白性の要因による非特異的混濁を解消できる成分が、１価金属又は２価金属塩の水酸化物、ハロゲン化物又はその塩である請求項１〜３のいずれか１項記載の方法。
【請求項５】
脂質性の要因による非特異的混濁を解消できる成分が、界面活性剤及びリポ蛋白を分解する酵素から選ばれる１種又は２種以上である請求項２〜４のいずれか１項記載の方法。
【請求項６】
前記界面活性剤が、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレングリコール、ポリオキシエチレンアルキルエーテル、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレンアルキルエーテル、ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテル、アルキルベンゼンスルホン酸塩、ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテル硫酸塩、ポリオキシエチレンリン酸エステル及びポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステルから選ばれる１種以上である請求項５記載の方法。
【請求項７】
前記リポ蛋白を分解する酵素が、リポプロテインリパーゼ又はコレステロールエステラーゼである請求項５記載の方法。
【請求項８】
（Ａ）蛋白性の要因により非特異的混濁を生じやすい成分を含む第一試薬、及び（Ｂ）蛋白性の要因による非特異的混濁を解消できる成分を含む第二試薬を含有することを特徴とする生体由来の被検試料の非特異的混濁の判別用試薬。
【請求項９】
（Ａ）蛋白性の要因により非特異的混濁を生じやすい成分を含む第一試薬、（Ｂ）蛋白性の要因による非特異的混濁を解消できる成分を含む第二試薬、及び（Ｃ）脂質性の要因
による非特異的混濁を解消できる成分を含有する第三試薬を含有することを特徴とする生体由来の被検試料の非特異的混濁の判別用試薬。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、生体試料を被検試料とする臨床分析において、非特異的な混濁により測定値が影響を受ける危険性の有無を判別する方法及びその試薬に関する。
【背景技術】
【０００２】
従来、臨床検査の領域における免疫学的測定法において、試薬中にポリエチレングリコール（ＰＥＧ）が含まれている場合、グロブリン濃度の高い検体（血清及び血漿）の測定において非特異反応のため、正確な測定値が得られないことのあることが知られている（非特許文献１）。また、生体試料中の微量成分の分析に於いて、試料中の非特異的な混濁を抑制あるいは低減することにより、測定対象成分を高精度に再現性よく、迅速且つ簡便に測定できる方法として、予め添加したマグネシウムイオンの存在下、生体試料と測定用試薬とを抗原抗体反応に付し、抗原抗体反応に起因して生じる濁度の変化又は散乱光強度の変化に基づいて生体試料中の成分の測定を行う方法が開示されている（特許文献１）。免疫学的測定法以外においても、量的及び質的に異常な蛋白を含む生体試料にイオン強度の低い試薬を添加した場合、蛋白性の非特異的混濁を生じ、測定値に影響を与える場合のあることが知られており、その防止策として、ＮａＣｌ等の塩を試薬に添加する等して、非特異的混濁の発生を抑える対策がとられている（非特許文献２）。
【０００３】
一方、脂質由来の混濁のある生体試料の場合には、試薬中の界面活性剤の作用により混濁の度合いが経時的に変化することから、本来の吸光度変化量が得られず、測定値に影響する場合がある。その改善対策として、脂質性の混濁に影響しない界面活性剤を使用する、あるいは目的の反応を観察する以前に脂質性の混濁を解消可能な界面活性剤により前処理する方法が用いられている（非特許文献３）。
【０００４】
このように従来は、特定の検査試薬において、被検試料が有する混濁の影響や、被検試料と試薬成分による非特異的混濁の発生や混濁の度合いの変化を抑える工夫などが種々検討されていたが、これらの試料由来の混濁を解消する方法が全ての試料において、混濁の影響を完全に回避できているかを確認することは不可能であった。
【特許文献１】特開平８−２１１０５７号公報
【非特許文献１】生物試料分析  Ｖｏｌ．２０，Ｎｏ３，ｐ２０３−２０９（１９９７）
【非特許文献２】Ｗｈｉｔｌｏｗ  ＫＪ，ｅｔ  ａｌ：Ｃｌｉｎ．Ｂｉｏｃｈｅｍ  １７，２３３（１９８４）
【非特許文献３】日常検査の基礎知識シリーズ１２「酵素的測定法」医学書院  編集：小酒井  望  Ｐ５１（１９８２年）
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
前記のような試料由来の混濁の影響を回避する方法及び試薬において、その改善が不十分な場合は、極端な異常値としては検出されないため、測定値が不正確であるにもかかわらず見過ごされる場合があり、疾患の有無や程度、ならびに治療経過の把握指標等としての臨床検査値として、不正確な値が報告されることは問題であった。
従って、本発明の課題は、生体由来の被検試料を用いた臨床分析において、当該試料が非特異的混濁を生じるか否かを判別する方法を提供しようとするものである。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
そこで本発明者は、前記課題を解決すべく種々検討した結果、（ａ）生体由来の被検試料に、蛋白性の要因により非特異的混濁を生じやすい第一試薬を添加し、吸光度変化をモニターし、（ｂ）続いて蛋白性の要因による非特異的混濁を解消できる成分を含む第二試薬を添加し、吸光度変化をモニターし、（ｃ）前記（ａ）及び（ｂ）の各工程における吸光度変化のパターンを検討すれば、被検試料の非特異的混濁性の有無、及び非特異的混濁性である場合には、蛋白性であるか脂質性であるかを判別できることを見出し、本発明を完成した。
また、前記第一試薬及び第二試薬に続いて、（ｃ）の変わりに（ｄ）として更に脂質性の要因による非特異的混濁を解消する成分を含む第三試薬を添加すれば、脂質性の要因による非特異的混濁が解消することを確認することもできることも見出し、（ｅ）前記（ａ）、（ｂ）、（ｄ）の各工程における吸光度変化のパターンを検討すれば、被検試料の非特異的混濁性の有無、及び非特異的混濁性である場合には、蛋白性であるか脂質性であるかを判別できることも見出した。
【０００７】
すなわち、本発明の第１は、次の工程（１）〜（３）：
（１）生体由来の被検試料に、蛋白性の要因により非特異的混濁を生じやすい第一試薬を添加し、吸光度変化をモニターする工程（前記ａ）、
（２）次に蛋白性の要因による非特異的混濁を解消できる成分を含む第二試薬を添加し、吸光度変化をモニターする工程（前記ｂ）、
（３）前記各工程における吸光度変化のパターンから、該被検試料の非特異的混濁性の有無、及び非特異的混濁性である場合には、蛋白性の要因によるものか脂質性の要因によるものかを判別する工程（前記ｃ）
を行うことを特徴とする、生体由来の被検試料の非特異的混濁の判別方法を提供するものである。
【０００８】
また、本発明の第２は、次の工程（１）〜（４）：
（１）生体由来の被検試料に、蛋白性の要因により非特異的混濁を生じやすい第一試薬を添加し、吸光度変化をモニターする工程（前記ａ）、
（２）次に蛋白性の要因による非特異的混濁を解消できる成分を含む第二試薬を添加し、吸光度変化をモニターする工程（前記ｂ）、
（３）次に脂質性の要因による非特異的混濁を解消できる成分を含む第三試薬を添加し、吸光度変化をモニターする工程（前記ｄ）、
（４）前記各工程における吸光度変化のパターンから、該被検試料の非特異的混濁性の有無、及び非特異的混濁性である場合には、蛋白性の要因によるものか脂質性の要因によるものかを判別する工程（前記ｅ）
を行うことを特徴とする、生体由来の被検試料の非特異的混濁の判別方法を提供するものである。
【０００９】
さらに本発明は、（Ａ）蛋白性の要因により非特異的混濁を生じやすい第一試薬、及び（Ｂ）蛋白性の要因による非特異的混濁を解消できる成分を含む第二試薬を含有することを特徴とする生体由来の被検試料の非特異的混濁の判別用試薬を提供するものである。
さらにまた、本発明は、（Ａ）蛋白性の要因により非特異的混濁を生じやすい第一試薬、（Ｂ）蛋白性の要因による非特異的混濁を解消できる成分を含む第二試薬、及び（Ｃ）脂質性の要因による非特異的混濁を解消できる成分を含有する第三試薬を含有することを特徴とする生体由来の被検試料の非特異的混濁の判別用試薬を提供するものである。
【発明の効果】
【００１０】
本発明の方法及び試薬を用いることにより、生体由来の被検試料自身がもつ非特異的混濁を呈する要因の有無を確認できる。それ故、該被検試料が非特異的混濁を呈する要因を含む場合には、他の検査試薬による該被検試料の測定値が極端な異常値を示さない場合でも、その吸光度変化パターンの妥当性を検証することが可能となり、検査過誤の防止に役立つ。更に、本発明の方法及び試薬により、該非特異的混濁を呈する要因が蛋白性であるか、脂質性であるかを判別できるため、正確な測定値を得るための対策を講ずる上で、有用な情報を提供できる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１１】
本発明方法は、工程（ａ）、工程（ｂ）、工程（ｃ）、及び必要に応じて工程（ｃ）に代えて工程（ｄ）及び工程（ｅ）を行うことにより実施される。以下各工程毎に説明する。
【００１２】
工程（ａ）は、生体由来の被検試料に、蛋白性の要因により非特異的混濁を生じやすい第一試薬を添加し、吸光度変化をモニターする工程である。
ここで、生体由来の被検試料としては、臨床検査に用いられる生体試料がすべて含まれ、具体的には、血漿、血清、尿、唾液、髄液、および腹水等が挙げられるが、血漿、および血清が特に好ましい。また、これらの生体試料を希釈したものも含まれる。
【００１３】
第一試薬としては、蛋白質が析出しやすい水溶液条件とすればよく、精製水や低イオン強度の水溶液、蛋白質の回りの水分子を奪う多価アルコールや多糖類等の水溶液、あるいは蛋白変性剤等の水溶液が挙げられ、これらの１種又は２種以上を組み合せて用いることができる。
【００１４】
多価アルコールとしては、平均分子量２００〜２０，０００のポリエチレングリコール（ＰＥＧともいう）、ポリビニルアルコール、平均分子量４００〜４０００のポリプロピレングリコール、グリセロール等が挙げられる。
これらのうち、平均分子量２００〜２０，０００のポリエチレングリコール、ポリビニルアルコールが好ましい。
当該ポリエチレングリコールは、より平均分子量１，０００〜２０，０００のもの、さらに平均分子量１，０００〜１０，０００のもの、特に平均分子量４，０００〜８，０００のものが好ましい。
【００１５】
多糖類としては、ヘパリン、デキストラン、デンプン、セルロース及びヒドロキシプロピルセルロース等が挙げられる。
また、蛋白変性剤としては、グルコン酸クロルヘキシジン、塩化ベンザルコニウム等が挙げられる。
【００１６】
第一試薬の添加量は、各成分により異なるが、精製水の場合、検体５μLあたり１５０〜３００μL、特に２００〜２５０μLが好ましい。
低イオン強度の水溶液としては、後述の第二試薬に用いるものと同様の１価金属又は２価金属の水酸化物、ハロゲン化物又は塩を、反応時の濃度として５mmol／Ｌ未満、好ましくは１mmol／Ｌ未満となるように添加するのが好ましい。
多価アルコール水溶液の場合、多価アルコールの反応時の濃度として１．５〜７．５ｗ／ｖ％、特に２．０〜６．０ｗ／ｖ％となるように添加するのが好ましい。
多糖類水溶液の場合、多糖類の反応時の濃度として、０．３〜６．０ｗ/ｖ％、特に０．３〜５．０ｗ/ｖ％程度となるように添加するのが好ましい。
蛋白変性剤水溶液の場合、蛋白変性剤の反応時の濃度として０．１〜１．０ｗ/ｖ％、特に０．２〜０．３ｗ/ｖ％となるように添加するのが好ましい。
【００１７】
第一試薬を添加後、吸光度変化をモニターする。吸光度変化量は、一定時間の吸光度変化量を測定すればよく、一定時間における変化の総量（例えば５分間当りの吸光度変化量）、あるいは一定時間当りの変化量（例えばΔＡｂｓ／min）を測定すればよい。
なお、第一試薬添加後は、インキュベートするのが好ましい。
また工程（ａ）の反応温度は特に限定されないが、２０〜４０℃、特に３７℃が好ましい。
また工程（ａ）の測定波長は特に限定されないが、３４０〜８００ｎｍ、特に５００〜７００ｎｍが好ましい。
【００１８】
工程（ｂ）は、工程（ａ）終了後に、蛋白性の要因による非特異的混濁を解消できる成分を含む第二試薬を添加し、吸光度変化をモニターする工程である。
【００１９】
第二試薬に含まれる、蛋白性の要因による非特異的混濁を解消できる成分としては、第一試薬により析出した蛋白質を再溶解させられるものであればよく、例としては１価金属又は２価金属の水酸化物、ハロゲン化物又は塩が挙げられ、これらの１種又は２種以上を組み合せて用いることができる。
【００２０】
１価金属又は２価金属の水酸化物、ハロゲン化物又は塩における金属としては、アルカリ金属又はアルカリ土類金属が挙げられる。アルカリ金属又はアルカリ土類金属としては、ナトリウム、カリウム、リチウム、マグネシウム及びカルシウムが好ましい。
これらの金属の水酸化物としては、ＮａＯＨ、ＫＯＨ、Ｃａ（ＯＨ）2、Ｍｇ（ＯＨ）2が挙げられる。
これらの金属のハロゲン化物としては、これらの金属の塩化物が好ましく、例えばＮａＣｌ、ＫＣｌ、ＬｉＣｌ、ＭｇＣｌ2、ＣａＣｌ2等が挙げられる。
これらの金属の塩としては、炭酸塩、炭酸水素塩、酢酸塩、硝酸塩等が挙げられ、より具体的には、Ｎａ2ＣＯ3、ＮａＨＣＯ3、ＣＨ3ＣＯＯＮａ、ＮａＮＯ3、Ｋ2ＣＯ3、ＫＨＣＯ3、ＣＨ3ＣＯＯＫ、ＫＮＯ3等が挙げられる。
これらのうち、ＮａＣｌ、ＫＣｌ、ＣａＣｌ2、ＮａＯＨが特に好ましい。
【００２１】
これらの成分の濃度は、用いる金属化合物毎に実験的に求めれば良いが、例えば反応時濃度として２５〜５００mmol／Ｌ、特に３００〜５００mmol／Ｌとなるように添加するのが好ましい。
【００２２】
第二試薬添加後、吸光度変化をモニターする。吸光度変化量の測定は、前記工程（ａ）と同様にすればよい。反応条件、反応温度及び測定波長も工程（ａ）と同様である。
【００２３】
工程（ｃ）は、前記各工程における吸光度変化のパターンから、該被検試料の非特異的混濁性の有無、及び非特異的混濁性である場合には、蛋白性の要因によるものか脂質性の要因によるものかを判別する工程である。
この判別は、第一試薬による工程（ａ）の吸光度変化と第二試薬による工程（ｂ）の吸光度変化とを対比することにより行うことができる。
すなわち、第一試薬による吸光度が上昇（混濁性あり）し、かつ第二試薬による吸光度が変化しないか又は低下した場合には、非特異的混濁が蛋白性の要因であると判定できる。また、第一試薬による吸光度が上昇し、第二試薬による吸光度が上昇した場合には、非特異的混濁が脂質性の要因であると判定できる。また、第一試薬によっても第二試薬によっても吸光度が変化しない場合は、その被検試料は非特異的混濁を生じないと判定できる（表１）。
【００２４】
【表１】
2008157931.tif 000002
【００２５】
次に、工程（ｃ）の代わりに工程（ｄ）として脂質性の要因による非特異的混濁を解消できる成分を含む第三試薬を用いる場合について説明する。当該第三試薬を用いることにより、前記脂質性の要因による非特異的混濁の有無を確認することができる。当該第三試薬は、前工程（ｂ）、すなわち、第二試薬を用いた反応を行った後に、添加する。この工程は、脂質性の要因による非特異的混濁を解消できる成分を含む第三試薬を添加し、吸光度変化をモニターすることにより行われる。
【００２６】
脂質性の要因による非特異的混濁を解消する成分としては、界面活性剤、リポ蛋白を分解する酵素類等が挙げられ、これらの１種又は２種以上を組合せて用いることもできる。このとき、公知の緩衝溶液を用いてｐＨを調整してもよいが、ｐＨ６．５〜８．５に調整するのが好ましい。
【００２７】
ここで界面活性剤としては、非イオン性界面活性剤及び/又はアニオン性界面活性剤が挙げられ、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレングリコール、ポリオキシエチレンアルキルエーテル、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレンアルキルエーテル、ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテル、アルキルベンゼンスルホン酸塩、ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテル硫酸塩、ポリオキシエチレンリン酸エステル及びポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステルから選ばれる１種以上が好ましい。
このうち、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレングリコール、ポリオキシエチレンアルキルエーテル、ポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステルが特に好ましい。
ここで、ポリオキシエチレンアルキルエーテルには、ポリオキシエチレン第一級アルキルエーテル及びポリオキシエチレン第二級アルキルエーテルが含まれる。
これら界面活性剤の市販品の例としては、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレングリコールとしてプルロニックF-108（旭電化社製）、ポリオキシエチレンアルキルエーテルとしてノイゲンET-165（第一工業製薬社製）、ポリオキシエチレン二級アルキルエーテルとしてニッコールBT-7（ＰＯＥ（７）２級アルキルエーテル）及びニッコールBT-9（ＰＯＥ（９）２級アルキルエーテル）（日光ケミカルズ社製）、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレンアルキルエーテルとしてニッコールPBC-31（日光ケミカルズ社製）、ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテルとしてエマルゲンA-60（花王社製）、アルキルベンゼンスルホン酸塩としてネオゲンAS-20（第一工業製薬社製）、ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテル硫酸塩としてハイテノールNE-15（第一工業製薬社製）、ポリオキシエチレンリン酸エステルとしてプライサーフ212C（第一工業製薬社製）、ポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステルとしてレオドールTW-L120（花王社製）等がそれぞれ挙げられるが、これらに限定されるものではない。
【００２８】
リポ蛋白を分解する酵素類等としては、リポプロテインリパーゼ（ＬＰＬともいう）、コレステロールエステラーゼ等が挙げられる。
【００２９】
前記の界面活性剤の添加量は、反応時濃度として０．０１〜１．０ｗ／ｖ％、特に０．０５〜０．５ｗ／ｖ％が好ましい。
また、リポ蛋白を分解する酵素の添加量は、サンプル/試薬比を考慮して適宜設定すればよく、例えばリポプロテインリパーゼについては、公知のオリーブ油を基質としたフェノールフタレイン指示薬法に基づき、反応時濃度（活性）として５〜５００Ｕ／mL、より好ましくは１０〜１００Ｕ／mLである。
尚、リポ蛋白を分解する酵素を使用する場合には、該酵素の活性を考慮して、例えば５０mMリン酸緩衝液等の適当な緩衝液を用いることができる。
【００３０】
第三試薬添加後、吸光度変化をモニターする。吸光度変化量の測定は、前記工程（ａ）と同様にすればよい。反応条件、反応温度及び測定波長も工程（ａ）と同様である。
【００３１】
第三試薬を添加し、吸光度変化をモニターした後、工程（ｅ）では前記工程（ｃ）と同様に、前記各工程（ａ、ｂ、及びｄ）における吸光度変化のパターンから、該被検試料の非特異的混濁の有無、及び非特異的混濁性である場合には蛋白性の要因によるものか脂質の要因によるものかを判別する。この判別は、第一試薬による吸光度変化、第二試薬による吸光度変化及び第三試薬による吸光度変化を対比することにより行うことができる。すなわち、第一試薬による吸光度が上昇（混濁性あり）し、第二試薬による吸光度が変化しないか又は低下し、かつ第三試薬による吸光度が変化しなかった場合には、非特異的混濁が蛋白性の要因であると判定できる。また、第一試薬による吸光度が上昇し、第二試薬による吸光度が上昇し、かつ第三試薬による吸光度が低下した場合には、非特異的混濁が脂質性の要因であると判定できる。また、第一試薬によっても、第二試薬によっても、第三試薬によっても吸光度が変化しない場合は、その被検試料は非特異的混濁を生じないと判定できる（表２）。
【００３２】
【表２】
2008157931.tif 000003
【００３３】
また、上記の各試薬には必要に応じて防腐剤、安定化剤、緩衝剤等の他の成分を添加することができる。例えば、自動分析装置で使用する場合には、各試薬に何らかの電解質を含まないと試薬センサーが試薬液面を感知できない場合があるので、必要に応じて１５ｍＭ程度のＮａＣｌをベースとすることが可能である。
【００３４】
本発明方法を実施するにあたっては、第一試薬、第二試薬、及び必要に応じて第三試薬を組み合せて、生体由来の被検試料の非特異的混濁の判別用試薬として準備しておくのが好ましい。これら２種の試薬又は３種の試薬は、予め組み合せたキットとして用いるのが好ましい。
【００３５】
本発明の方法及び試薬は、汎用の分光光度計（測定波長３４０〜８００ｎｍ）を用いる測定にも適用可能であるが、検体の処理効率や、判定作業の効率を考えると、生体由来の被検試料を試薬を用いて反応させる反応部（反応温度２０〜４０℃）と、当該反応を反応液の吸光度変化で測定する光度計（波長３４０〜８００ｎｍ：単波長又は２波長同時測光）を備えた臨床検査用の自動分析装置に適用することが好ましい。このとき、反応温度は３６〜３８℃及び測定波長５００〜７００ｎｍ（単波長）に調整して測定できるものが好ましい。
また更に、該自動分析装置が有する検体色調（溶血、黄疸）の情報抽出と組合わせて使用することが好ましい。
【００３６】
本発明の方法及び試薬を用いた検体の測定は、当該検体について実施される臨床検査の前、同時、後のいずれでも良いが、自動分析装置に適用する場合には、同時の方が当該検体の検査結果表に本発明試薬での測定結果を併記することが容易であり、非特異混濁が認められた場合に他の検査項目の測定時の吸光度変化パターンを確認するのも容易であるので好ましい。
当該自動分析装置としては、全反応過程追跡測光機能を有するものが好ましい。例としては、（株）日立製作所製の７２５０／７３５０／７４５０シリーズ、７０７０／７１７０／７０８０／７１８０シリーズ、９０００シリーズ、７６００／７７００シリーズ、ＬＡＢＯＳＰＥＣＴ００８／００３、（株）東芝のＴＢＡシリーズ、オリンパス社製のＡＵシリーズ、（株）日本電子製のＢＭシリーズ等が挙げられるが、これらに限定されるものではない。
【００３７】
本発明の上記工程（１）〜（３）を用いた判別方法を、上記臨床検査用の自動分析装置において実行させる場合、より具体的には、後記実施例の如く日立７１７０形自動分析装置を用いる場合には、工程（ａ）、工程（ｂ）及び工程（ｃ）における、生体由来の被検試料と試薬との反応によって時系列に得られる吸光度データにおいて、第１４測光ポイントの測定値ａ（Ａｂｓ×１００００）及び第１６−３４測光ポイント間の測定値の変化値ｂ（Ａｂｓ×１００００）を算出し、表１に示した判定方法により判定することができる。例えば、後記の実施例１の試薬条件においては、それぞれの判定するための設定値を４００とし、表５に示した判定方法に従って、測定値ａ  ４００以上かつ変化値ｂ  ４００未満は蛋白性混濁、測定値ａ  ４００以上かつ変化値ｂ  ４００以上は脂質性混濁、測定値ａ  −４００以上４００未満かつ変化値ｂ  −４００以上４００未満は非混濁性と被検試料を判定することができる。このとき、第一試薬添加は、第１測光ポイント前、第二試薬添加は、第１６測光ポイントと第１７測光ポイントの間である。ここで、測光ポイントとは、測定時間を意味し、１７〜１９秒／１測光ポイントである。
尚、上記の判定するための設定値や測光ポイントは、用いる試薬の組合わせや自動分析装置により適宜設定すればよい。
【００３８】
また、本発明の上記工程（１）〜（４）を用いた判別方法を、上記臨床検査用の日立７１７０形自動分析装置において実行させる場合、後記実施例より、工程（ａ）、工程（ｂ）、工程（ｄ）及び工程（ｅ）における、生体由来の被検試料と試薬との反応によって時系列に得られる吸光度データにおいて、（第５測光ポイントの吸光度データ）、（（第１６測光ポイントの吸光度データ−第５測光ポイントの吸光度データ）×197/261）、及び（（第３測光４ポイントの吸光度データ−第１６測光ポイントの吸光度データ）×261/325）を設定し、それぞれの値を表計算ソフトにより算出し、表２に示した判定方法に従って検体試料の混濁性の有無・混濁の要因等を判定することができる。また、上記と同様の数値を設定し、第一試薬添加後までの吸光度変化パターンにより混濁性を確認し、次いで混濁性が認められた検体について第三試薬添加後の吸光度変化を確認して、表２に示した判定方法に従って判定することもできる。
このとき、第一試薬添加は、第１測光ポイント前、第二試薬添加は、第５測光ポイントと第６測光ポイントの間、第三試薬添加は、第１６測光ポイントと第１７測光ポイントの間である。なお、測光ポイントの定義は上記のとおりであり、測光ポイント等は、用いる自動分析装置により適宜設定すればよい。
【実施例】
【００３９】
以下、実施例を挙げて本発明を更に詳細に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
【００４０】
（実施例１、比較例１〜３）２試薬系試薬の場合
下記の試薬処方及び自動分析装置での分析条件を用いて、高グロブリン血清５例、脂肪由来の混濁のある血清（高中性脂肪血清、以下高ＴＧ血清）３例、及び健常者血清５例を測定し、測定過程の吸光度変化パターンを確認した。また、比較例１〜３の場合についても同様に吸光度変化パターンを確認した。
【００４１】
試薬処方
実施例１
第一試薬：ポリエチレングリコール６，０００  ５％（反応時濃度４．９％）
第二試薬：塩化ナトリウム  １，６００mmol／Ｌ（反応時濃度３９４mmol／Ｌ）
尚、反応時濃度とは、第一試薬の場合は検体と第一試薬が混和した際の濃度であり、第二試薬の場合は検体、第一試薬及び第二試薬が混和した際の濃度である（以下の比較例及び実施例においても、特に記載のない限り同様である）。また、第一試薬及び第二試薬は、１５mMの塩化ナトリウム水溶液に上記の成分を溶解して用いた（以下の比較例及び実施例においても、特に記載のない限り同様である）。従って、１５mM塩化ナトリウムをベースとしており、下記の塩化ナトリウム０mmol／Ｌには、ベースである１５mM塩化ナトリウムが含まれている。
【００４２】
比較例１
第一試薬：ポリエチレングリコール６，０００  ５％（反応時濃度４．９％）
第二試薬：塩化ナトリウム  ０mmol／Ｌ（反応時濃度０mmol／Ｌ）
【００４３】
比較例２
第一試薬：ポリエチレングリコール６，０００  ０％（反応時濃度０％）
第二試薬：塩化ナトリウム  １，６００mmol／Ｌ（反応時濃度３９４mmol／Ｌ）
【００４４】
比較例３
第一試薬：ポリエチレングリコール６，０００  ０％（反応時濃度０％）
第二試薬：塩化ナトリウム  ０mmol／Ｌ（反応時濃度０mmol／Ｌ）
【００４５】
日立７１７０形自動分析装置での分析条件
測定法：３ポイント
測光ポイント：前半項目；１４−０
後半項目；１６−３４
１測光ポイント：１７〜１９秒
検体量：５μＬ
第一試薬：２４０μＬ
第二試薬：８０μＬ
測定波長：６００nm（単波長）
Ｋファクター：１０，０００
反応温度：３７℃
【００４６】
対象検体：
健常者血清  ５検体（ＩｇＧ：１０２７〜１４８７mg／dL、ＩｇＭ：１３９〜２１５mg／dL、ＴＧ：４９〜１２６mg／dL）
高グロブリン血清  ５検体
高グロブリン検体１  ＩｇＧ濃度  ６，７４１mg／dL
高グロブリン検体２  ＩｇＧ濃度  ４，３０１mg／dL
高グロブリン検体３  ＩｇＧ濃度  ５，４８７mg／dL
高グロブリン検体４  ＩｇＭ濃度  １，４２３mg／dL
高グロブリン検体５  ＩｇＭ濃度  １，４３３mg／dL
【００４７】
高ＴＧ血清
高ＴＧ検体１  ＴＧ濃度  １，３０９mg／dL
高ＴＧ検体２  ＴＧ濃度      ８８０mg／dL
高ＴＧ検体３  ＴＧ濃度      ５７１mg／dL
【００４８】
（結果）
図１〜図１２に各処方における各検体の測定過程の吸光度変化を示した。
実施例１の場合、健常者血清では５検体とも第一試薬及び第二試薬を添加しても吸光度は殆ど変化を示さなかった（図１）が、高グロブリン血清ではいずれも第一試薬の添加で急激に吸光度が上昇し、第二試薬の添加で吸光度が急激に低下した（図２）。また、高ＴＧ血清はいずれも第一試薬の添加では吸光度は変化せず、第二試薬を添加すると徐々に上昇した（図３）。このように高グロブリン血清及び高ＴＧ血清がそれぞれに健常者血清の吸光度変化パターンと明確な差異を示し、表１に示した判定方法に基づく検体の混濁性の判定が可能であることが明らかである。これに対し、比較例１〜３では検体の種類毎に明確な吸光度変化の傾向が認められなかった（図４〜図１２）。実施例１及び比較例１〜３につき、表１の判定方法に基づく判定結果を表３に示した。
【００４９】
【表３】
2008157931.tif 000004
【００５０】
（実施例２〜３、比較例４）三試薬系試薬の場合
実施例１の場合と同じ検体を下記の試薬処方を及び自動分析装置での分析条件を用いて測定し、測定過程の吸光度変化パターンを確認した。また、比較例４の場合についても同様に吸光度変化パターンを確認した。
【００５１】
試薬処方
実施例２
第一試薬：ポリエチレングリコール６，０００  ５％（反応時濃度４．９％）
第二試薬：塩化ナトリウム  １，６００mmol／Ｌ（反応時濃度３９２mmol／Ｌ）
第三試薬：レオドールＴＷ-Ｌ１２０  ０．５％（反応時濃度０．１％）
リン酸緩衝液  ５０mmol／Ｌ（pH７．４）
【００５２】
実施例３
第一試薬：ポリエチレングリコール６，０００  ５％（反応時濃度４．９％）
第二試薬：塩化ナトリウム  １，６００mmol／Ｌ（反応時濃度３９２mmol／Ｌ）
第三試薬：リポプロテインリパーゼ  ２００Ｕ／mL（旭化成社製、反応時濃度３９Ｕ／mL、メーカー表示活性値をそのまま用いた。）
リン酸緩衝液  ５０mmol／Ｌ（pH７．４）
【００５３】
比較例４
第一試薬：ポリエチレングリコール６，０００  ５％（反応時濃度４．９％）
第二試薬：塩化ナトリウム  １，６００mmol／Ｌ（反応時濃度３９２mmol／Ｌ）
第三試薬：レオドールＴＷ-Ｌ１２０  ０％（反応時濃度０％）
リン酸緩衝液  ５０mmol／Ｌ（pH７．４）
【００５４】
日立７１７０形自動分析装置の分析条件
測定法：３ポイント
測光ポイント：前半項目；５−０
後半項目；１６−３４
１測光ポイント：１７〜１９秒
検体量：５μＬ
第一試薬：１９２μＬ
第二試薬：６４μＬ
第三試薬：６４μＬ
測定波長：６００nm（単波長）
Ｋファクター：１０，０００
反応温度：３７℃
【００５５】
尚、本機種で三試薬系を検討する場合、例えば、１）反応過程の吸光度データをホストコンピューターに転送して、表計算ソフトにより（第５ポイントの吸光度）、（第１６ポイントの吸光度−第５ポイントの吸光度×197/261）、及び（第３４ポイント−第１６ポイントの吸光度×261/325）をそれぞれ算出し、表２に示した判定方法に従って判定する方法、２）上記の設定により第一試薬添加後までの吸光度変化パターンにより混濁性を確認し、混濁性が認められた検体について第三試薬添加後の吸光度変化を確認して、表２に示した判定方法に従って判定する方法、等が可能である。
【００５６】
（結果）
図１３〜１５に実施例２、及び図１６〜１８に実施例３における各検体の測定過程の吸光度変化を示し、図１９〜２１に比較例４における各検体の測定過程の吸光度変化を示した。
実施例２及び３の場合、健常者血清では第一試薬、第二試薬及び第三試薬を添加しても吸光度は殆ど変化を示さなかった（図１３及び図１６）が、高グロブリン血清での吸光度変化は、第一試薬の添加で急激に上昇し、第二試薬の添加で急激に低下し、第三試薬の添加では変化を示さなかった（図１４及び図１７）。一方、高ＴＧ血清での吸光度変化は、第一試薬の添加では変化せず、第二試薬を添加すると徐々に上昇し、第三試薬の添加で急激に低下した（図１５及び図１８）。このように高グロブリン血清及び高ＴＧ血清がそれぞれに健常者血清の吸光度変化パターンと明確な差異を示し、脂質性の要因による非特異的混濁を解消する成分を含む第三試薬を用いて、脂質性の要因による非特異的混濁を解消できたことから、表２に示した判定方法に基づく検体の混濁性の判定が可能であることが判る。これに対し、比較例４の高ＴＧ血清では第三試薬添加後も非特異的混濁が解消されなかった（図２１）。実施例２，３及び比較例４につき、表２の判定方法に基づく判定結果を表４に示した。
【００５７】
【表４】
2008157931.tif 000005
【００５８】
（実施例４）
実施例１の試薬処方及び次の日立７１７０形自動分析装置の分析条件で、高グロブリン検体４３例、高ＴＧ検体１３例、一般検体２８８例を測定し、被検試料中に混濁要因があるかないかの判定を行うための基準値を以下に求めた。
【００５９】
検体
一般検体２８８例（ＩｇＧ：２，１８８mg／dL以下、ＩｇＭ：２６５mg／dL以下、ＴＧ：５４８mg／dL以下）を用いた。
高グロブリン検体４３例（ＩｇＧ：３，６２９〜７，１７２mg／dL，ＩｇＭ：２，５８０〜８，０００mg／dL）
高ＴＧ検体２９例（ＴＧ：５７１〜５，９１６mg／dL）
【００６０】
得られた測定結果をもとに、測光ポイント14の吸光度を横軸にとり、測光ポイント１６−３４の吸光度変化を縦軸にとって散布図を作成した（図２２）。また、その低値部分の拡大図を図２３に示した。この結果をもとに、被検試料の混濁要因の判定基準を表５の如く設定し、図２３中に基準を示した。即ち、ポイント１４における吸光度（Ａｂｓ×１００００）値４００を破線［Ａ］で示し、ポイント１６−３４間の吸光度変化（Ａｂｓ×１００００）値４００を点線［Ｂ］で示した。
【００６１】
【表５】
2008157931.tif 000006
【００６２】
（実施例５）
実施例４と同じ試薬及び分析条件を用いて、表５に示した基準値にもとづいて判定を行った。
その結果、表６に示した如く、全３６０例での一致率は９６.７％であった。
【００６３】
【表６】
2008157931.tif 000007
【００６４】
（実施例６）
他の検査試薬での測定において非特異反応を呈し、その原因が特定されていた９例に関し、実施例５と同じく判定を行った結果、表７に示した如く、原因との一致率が１００％であり、本発明の方法及び試薬を用いた被検試料自身が持つ混濁要因の有無確認の有効性が確認された。
【００６５】
【表７】
2008157931.tif 000008
【００６６】
（実施例７〜１０）２試薬系試薬の場合
実施例１の第一試薬の成分、ポリエチレングリコール６，０００  ５％に代えて、ポリエチレングリコール４，０００  ５％（反応時濃度４．９％）（実施例７）、ポリエチレングリコール８，０００  ５％（反応時濃度４．９％）（実施例８）、ヒドロキシプロピルセルロース  ５％（反応時濃度４．９％）（実施例９）、及びポリビニルアルコール２％（反応時濃度１．９６％）（実施例１０）をそれぞれ用いた場合について実施例１と同様にして検討した。
【００６７】
対象検体：
健常者血清  １検体（ＩｇＧ：１０４４mg／dL、ＩｇＭ：７７mg／dL、ＴＧ：５７mg／dL）
高グロブリン血清  ２検体
高グロブリン検体１  ＩｇＧ濃度  ８０５１mg／dL
高グロブリン検体２  ＩｇＭ濃度  １１９２mg／dL
高ＴＧ血清  １検体
高ＴＧ検体１  ＴＧ濃度  １７０７mg／dL
【００６８】
（結果）
図２４にポリエチレングリコール４，０００、図２５にポリエチレングリコール８，０００、図２６にヒドロキシプロピルセルロース、及び図２７にポリビニルアルコールを用いた場合の各検体の測定過程の吸光度変化を示した。
いずれの場合も、健常者血清では第一試薬及び第二試薬を添加しても吸光度は殆ど変化を示さなかったが、高グロブリン血清ではいずれも第一試薬の添加で急激に吸光度が上昇し、第二試薬の添加で吸光度が急激に低下した。また、高ＴＧ血清はいずれも第一試薬の添加では吸光度は変化せず、第二試薬を添加すると徐々に上昇した。このように高グロブリン血清及び高ＴＧ血清がそれぞれに健常者血清の吸光度変化パターンと明確な差異を示し、表１に示した判定方法に基づく検体の混濁性の判定が可能であることが明らかである。表１の判定方法に基づく判定結果を表８に示した。
【００６９】
【表８】
2008157931.tif 000009
【００７０】
（実施例１１〜１３）２試薬系試薬の場合
実施例１での第二試薬の成分、塩化ナトリウム  １，６００mmol／Ｌ（反応時濃度３９４mmol／Ｌ）に代えて、塩化カリウム  １，６００mmol／Ｌ（反応時濃度３９４mmol／Ｌ）（実施例１１）、塩化カルシウム  １６００mmol／Ｌ（反応時濃度３９４mmol／Ｌ）（実施例１２）、及び水酸化ナトリウム  １，６００mmol／Ｌ（反応時濃度３９４mmol／Ｌ）（実施例１３）をそれぞれ用いた場合について検討した。
尚、対象検体は、実施例７と同じものを用いた。
【００７１】
（結果）
図２８に塩化カリウム、図２９に塩化カルシウム、図３０に水酸化ナトリウムを用いた場合の各検体の測定過程の吸光度変化を示した。
いずれの場合も、健常者血清では第一試薬及び第二試薬を添加しても吸光度は殆ど変化を示さなかったが、高グロブリン血清ではいずれも第一試薬の添加で急激に吸光度が上昇し、第二試薬の添加で吸光度が急激に低下した。また、高ＴＧ血清はいずれも第一試薬の添加では吸光度は変化せず、第二試薬を添加すると徐々に上昇した。このように高グロブリン血清及び高ＴＧ血清がそれぞれに健常者血清の吸光度変化パターンと明確な差異を示し、表１に示した判定方法に基づく検体の混濁性の判定が可能であることが明らかである。表１の判定方法に基づく判定結果を表９に示した。
【００７２】
【表９】
2008157931.tif 000010
【００７３】
（実施例１４〜１５）三試薬系試薬の場合
実施例２の第三試薬の成分、レオドールＴＷ-Ｌ１２０  ０．５％に代えて、ニッコールＢＴ−９  ０．５％（反応時濃度０．１％）（実施例１４）、及びプルロニックＦ−１０８  ０．５％（反応時濃度０．１％）（実施例１５）をそれぞれ用いた場合について検討した。尚、対象検体は、実施例７と同じものを用いた。
【００７４】
（結果）
図３１に実施例１４、及び図３２に実施例１５における各検体の測定過程の吸光度変化を示した。
いずれの場合も、健常者血清では第一試薬、第二試薬及び第三試薬を添加しても吸光度は殆ど変化を示さなかったが、高グロブリン血清での吸光度変化は、第一試薬の添加で急激に上昇し、第二試薬の添加で急激に低下し、第三試薬の添加では変化を示さなかった。一方、高ＴＧ血清での吸光度変化は、第一試薬の添加では変化せず、第二試薬を添加すると徐々に上昇し、第三試薬の添加で急激に低下した。このように高グロブリン血清及び高ＴＧ血清がそれぞれに健常者血清の吸光度変化パターンと明確な差異を示し、脂質性の要因による非特異的混濁を解消する成分を含む第三試薬を用いて、脂質性の要因による非特異的混濁を解消できたことから、表２に示した判定方法に基づく検体の混濁性の判定が可能であることが判る。表２の判定方法に基づく判定結果を表１０に示した。
【００７５】
【表１０】
2008157931.tif 000011
【産業上の利用可能性】
【００７６】
（１）被検試料自身がもつ非特異的混濁を呈する要因の有無を確認できる。
（２）該要因が蛋白性であるか、脂質性であるかを判別できる。
（３）臨床検査自動分析装置に本試薬を適応し、データ処理のプログラムを組むことにより、短時間に迅速且つ簡便に上記の確認・判別が実行できる。
（４）試料由来の非特的混濁の要因による検査過誤の防止に役立ち、臨床試験成績の正確性の確保、ひいては被験者が適切な治療等を受ける上で有用である。
【図面の簡単な説明】
【００７７】
【図１】実施例１（第一試薬：ＰＥＧ６，０００；第二試薬：塩化ナトリウム）の処方における一般検体の測定過程における吸光度変化を示す。一般１〜一般５は健常者血清である。
【図２】実施例１の処方における高グロブリン検体の測定過程における吸光度変化を示す。グロブリン１〜グロブリン５は高グロブリン血清である。
【図３】実施例１の処方における高ＴＧ検体の測定過程における吸光度変化を示す。ＴＧ１〜ＴＧ３は高ＴＧ血清である。
【図４】比較例１の処方における一般検体の測定過程における吸光度変化を示す。一般１〜一般５は健常者血清である。
【図５】比較例１の処方における高グロブリン検体の測定過程における吸光度変化を示す。グロブリン１〜グロブリン５は高グロブリン血清である。
【図６】比較例１の処方における高ＴＧ検体の測定過程における吸光度変化を示す。ＴＧ１〜ＴＧ３は高ＴＧ血清である。
【図７】比較例２の処方における一般検体の測定過程における吸光度変化を示す。一般１〜一般５は健常者血清である。
【図８】比較例２の処方における高グロブリン検体の測定過程における吸光度変化を示す。グロブリン１〜グロブリン５は高グロブリン血清である。
【図９】比較例２の処方における高ＴＧ検体の測定過程における吸光度変化を示す。ＴＧ１〜ＴＧ３は高ＴＧ血清である。
【図１０】比較例３の処方における一般検体の測定過程における吸光度変化を示す。一般１〜一般５は健常者血清である。
【図１１】比較例３の処方における高グロブリン検体の測定過程における吸光度変化を示す。グロブリン１〜グロブリン５は高グロブリン血清である。
【図１２】比較例３の処方における高ＴＧ検体の測定過程における吸光度変化を示す。ＴＧ１〜ＴＧ３は高ＴＧ血清である。
【図１３】実施例２（第一試薬：ＰＥＧ６，０００；第二試薬：塩化ナトリウム；第三試薬：レオドールＴＷ-Ｌ１２０）の処方における一般検体の測定過程における吸光度変化を示す。一般１〜一般５は健常者血清である。
【図１４】実施例２の処方における高グロブリン検体の測定過程における吸光度変化を示す。グロブリン１〜グロブリン５は高グロブリン血清である。
【図１５】実施例２の処方における高ＴＧ検体の測定過程における吸光度変化を示す。ＴＧ１〜ＴＧ３は高ＴＧ血清である。
【図１６】実施例３（第一試薬：ＰＥＧ６，０００；第二試薬：塩化ナトリウム；第三試薬：ＬＰＬ）の処方における一般検体の測定過程における吸光度変化を示す。一般１〜一般５は健常者血清である。
【図１７】実施例３の処方における高グロブリン検体の測定過程における吸光度変化を示す。グロブリン１〜グロブリン５は高グロブリン血清である。
【図１８】実施例３の処方における高ＴＧ検体の測定過程における吸光度変化を示す。ＴＧ１〜ＴＧ３は高ＴＧ血清である。
【図１９】比較例４の処方における一般検体の測定過程における吸光度変化を示す。一般１〜一般５は健常者血清である。
【図２０】比較例４の処方における高グロブリン検体の測定過程における吸光度変化を示す。グロブリン１〜グロブリン５は高グロブリン血清である。
【図２１】比較例４の処方における高ＴＧ検体の測定過程における吸光度変化を示す。ＴＧ１〜ＴＧ３は高ＴＧ血清である。
【図２２】測光ポイント１４の吸光度と測光ポイント１６と３４間の吸光度変化データに基づく散布図である。
【図２３】図２２の低値部分を拡大した図である。
【図２４】実施例７（第一試薬：ＰＥＧ４，０００；第二試薬：塩化ナトリウム）の処方における一般検体、高グロブリン検体及び高ＴＧ検体の測定過程における吸光度変化を示す。正常１は健常者血清、グロブリン１〜グロブリン２は高グロブリン血清、ＴＧ１は高ＴＧ血清である。
【図２５】実施例８（第一試薬：ＰＥＧ８，０００；第二試薬：塩化ナトリウム）の処方における一般検体、高グロブリン検体及び高ＴＧ検体の測定過程における吸光度変化を示す。正常１は健常者血清、グロブリン１〜グロブリン２は高グロブリン血清、ＴＧ１は高ＴＧ血清である。
【図２６】実施例９（第一試薬：ヒドロキシプロピルセルロース；第二試薬：塩化ナトリウム）の処方における一般検体、高グロブリン検体及び高ＴＧ検体の測定過程における吸光度変化を示す。正常１は健常者血清、グロブリン１〜グロブリン２は高グロブリン血清、ＴＧ１は高ＴＧ血清である。
【図２７】実施例１０（第一試薬：ポリビニルアルコール；第二試薬：塩化ナトリウム）の処方における一般検体、高グロブリン検体及び高ＴＧ検体の測定過程における吸光度変化を示す。正常１は健常者血清、グロブリン１〜グロブリン２は高グロブリン血清、ＴＧ１は高ＴＧ血清である。
【図２８】実施例１１（第一試薬：ＰＥＧ６，０００；第二試薬：塩化カリウム）の処方における一般検体、高グロブリン検体及び高ＴＧ検体の測定過程における吸光度変化を示す。正常１は健常者血清、グロブリン１〜グロブリン２は高グロブリン血清、ＴＧ１は高ＴＧ血清である。
【図２９】実施例１２（第一試薬：ＰＥＧ６，０００；第二試薬：塩化カルシウム）の処方における一般検体、高グロブリン検体及び高ＴＧ検体の測定過程における吸光度変化を示す。正常１は健常者血清、グロブリン１〜グロブリン２は高グロブリン血清、ＴＧ１は高ＴＧ血清である。
【図３０】実施例１３（第一試薬：ＰＥＧ６，０００；第二試薬成分：水酸化ナトリウム）の処方における一般検体、高グロブリン検体及び高ＴＧ検体の測定過程における吸光度変化を示す。正常１は健常者血清、グロブリン１〜グロブリン２は高グロブリン血清、ＴＧ１は高ＴＧ血清である。
【図３１】実施例１４（第一試薬：ＰＥＧ６，０００；第二試薬：塩化ナトリウム；第三試薬：ニッコールＢＴ−９）の処方における一般検体、高グロブリン検体及び高ＴＧ検体の測定過程における吸光度変化を示す。正常１は健常者血清、グロブリン１〜グロブリン２は高グロブリン血清、ＴＧ１は高ＴＧ血清である。
【図３２】実施例１５（第一試薬：ＰＥＧ６，０００；第二試薬：塩化ナトリウム；第三試薬：プルロニックＦ−１０８）の処方における一般検体、高グロブリン検体及び高ＴＧ検体の測定過程における吸光度変化を示す。正常１は健常者血清、グロブリン１〜グロブリン２は高グロブリン血清、ＴＧ１は高ＴＧ血清である。
【図１】
2008157931.tif 000012
【図２】
2008157931.tif 000013
【図３】
2008157931.tif 000014
【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
2008157931.tif 000018
【図８】
2008157931.tif 000019
【図９】
2008157931.tif 000020
【図１０】
2008157931.tif 000021
【図１１】
2008157931.tif 000022
【図１２】
2008157931.tif 000023
【図１３】
2008157931.tif 000024
【図１４】
2008157931.tif 000025
【図１５】
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【図１６】
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【図１７】
2008157931.tif 000028
【図１８】
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【図１９】
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【図２０】
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【図２１】
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【図２２】
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【図２３】
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【図２４】
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【図２５】
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【図２６】
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【図２７】
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【図２８】
2008157931.tif 000039
【図２９】
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【図３０】
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【図３１】
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【図３２】
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