(57)【要約】  スクロースイソメラーゼは、栄養補助食品として使用されるか、又は粉末状食品／飲料配合物と混合され得る。ヒトを含む動物がスクロースを消費すると、スクロースイソメラーゼは、食品に存在するスクロースに作用し、且つスクロースを他の糖に転化する。これは、食品の配合を変えることなく、食品のグリセミック指数の低下をもたらす。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
スクロースイソメラーゼを含む栄養補助剤、薬剤又は栄養補助食品組成物。
【請求項２】
ヒトに適している、請求項１に記載の組成物。
【請求項３】
コンパニオン動物に適している、請求項２に記載の組成物。
【請求項４】
配列番号１〜６の配列のいずれか１つに対して少なくとも６０％の同一性、好ましくは９０％、９５％、９８％、９９％、１００％の同一性を有するスクロースイソメラーゼを含む、請求項１に記載の組成物。
【請求項５】
配列番号４に対して少なくとも６０％の同一性、好ましくは９０％、９５％、９８％、９９％、１００％の同一性を有するスクロースイソメラーゼを含む、請求項４に記載の組成物。
【請求項６】
スクロースを摂取するヒトを含む動物における血中グルコースレベルの上昇を低下させる方法であって、請求項１に記載の栄養補助剤、薬剤又は栄養補助食品を、それを必要とするヒトを含む前記動物に投与することを含む方法。
【請求項７】
ヒト又はコンパニオン動物によって消費される食品又は飼料のグリセミック指数を低下させる方法であって、請求項１に記載のスクロースイソメラーゼを含む栄養補助剤、薬剤又は栄養補助食品を前記ヒト又はコンパニオン動物に投与することを含む方法。
【請求項８】
ヒト又はコンパニオン動物において体重を減らすか又は体重減少を維持する方法であって、請求項１に記載のスクロースイソメラーゼを含む栄養補助剤、薬剤又は栄養補助食品を前記ヒト又はコンパニオン動物に投与することを含む方法。
【請求項９】
ａ）血糖レベルの上昇を低下させること；
ｂ）持久的エクササイズを実施する動物の増加した持久力；
ｃ）体重の減少又は減少した体重の維持；
ｄ）摂取食品又は飼料のグリセミック指数を低下させること；及び
ｅ）持続的なエネルギー放出並びに／又はスクロース含有食事後の急速な血糖上昇及びいわゆる食後の「眠気」の予防若しくは最小化
からなる群から選択される、ヒトを含む動物における状態を達成するための、スクロースイソメラーゼを含む栄養補助剤、薬剤又は栄養補助食品の使用。
【請求項１０】
スクロースイソメラーゼを含む乾燥食品又は飲料混合物。
【発明の詳細な説明】
【発明の詳細な説明】
【０００１】
［発明の分野］
本発明は、ヒト及び動物の両方のための栄養補助食品としてのスクロースイソメラーゼの使用に関する。スクロースイソメラーゼは、それが消費された後に食品中のスクロースの量を酵素的に低減し得、したがって食品のグリセミック指数を低下させ得る。スクロースイソメラーゼサプリメントは、血糖を低下させ、消費される食品及び／飲料のグリセミック指数を低下させ、且つ体重を管理するか又は減らすのに特に有益である。
【０００２】
［発明の背景］
高い血中グルコースは、世界的な疾病負担の原因において非常に高い順位に位置し、肥満症及び２型糖尿病を引き起こし、且つそれらをもたらし得る。糖又はデンプンのような急速に吸収される炭水化物を含有する食品及び飲料は、血中グルコースの急速な上昇を引き起こし、次いでインスリン放出のスパイクが起こり、血中グルコースが急速に減少する。かかる炭水化物を欠く食品及び飲料は、インスリン放出の急速なスパイクなしに、血中グルコースのゆっくりとした低い上昇を与える。血中グルコースにおけるこの反応は、食品のグリセミック指数（ＧＩ）として表され、グルコース含有参照又は白パンの摂取に対する反応（１００に設定される）に対して表される。多くの食品に関して、ＧＩが決定されている。ゆっくりと消化、吸収及び代謝される、炭水化物食品をベースとする食事（即ち低ＧＩ食）は、高ＧＩ食よりも優れたインスリン感受性を付与することが分かっている。低ＧＩ食は、高ＧＩ食と比較して、２型糖尿病及び循環器疾患のリスクの低減と関連する。満腹、体重維持及び食事に関連する疾患の予防における高ＧＩ食と比較した低ＧＩの役割が示唆されている。グリセミック負荷（ＧＬ）は、食品中の利用可能な炭水化物のグラム数に食品のＧＩを掛け、次いで１００で割ることによって計算される。
【０００３】
スクロースは、食事中に豊富であり、食事におけるすべての炭水化物の約３５〜４０％を占める。グリセミック負荷を低下させることを望む人々に対する課題は、好まれる多くの甘い食品及び飲料が多量のスクロースを含有することである。例えば、一部のキャンディーバーは、最大で３０グラムのスクロースを含有し（５０重量％）；コーラ１缶（３３０ｃｃ）は、３９グラムのスクロースを含有し；チョコレートミルクは、４５０ｃｃ中に５８グラムのスクロースを含有し；アイスクリームは、２８重量％のスクロースを含有する場合が多い。しかしながら、これらの食品中の糖含有量の低減は、甘味、口あたり及び甘味特性に負の影響を及ぼすことが多い。かかる製品におけるスクロースを低ＧＩの他の糖（例えば、タガトース、アルロース又はパラチノース）、糖アルコール（例えば、ソルビトール、マンニトール又はキシリトール）又は高甘味度甘味料（例えば、アスパルテーム、スクラロース又はステビア）で置き換えると、甘味が少ない最終生成物が生じるか、又は食品若しくは飲料の口触り特性及び／若しくは風味に負の影響を及ぼし、それによって製品の甘味特性が低減される。したがって、かかるスクロース代替物は、食品で頻繁には使用されておらず、その使用は、主に加糖飲料に集中している。
【０００４】
イソマルツロースは、商品名パラチノース（商標）でベネオ社（Ｂｅｎｅｏ）から食品産業に市販されており、糖代替物として食品で使用されている。パラチノース（商標）は、小腸で完全に利用可能であるが、４〜５倍遅く加水分解され、血糖応答が低くなり、且つインスリンレベルが低くなる。スクロースをパラチノース（商標）で置き換えることにより、インスリンピークが低くなり、運動での脂肪燃焼が増加することが示されている。体重維持、その非う蝕性、スポーツにおける持久運動能力の向上、妊娠糖尿病の予防、認知機能の持続及び高齢者の代謝プロファイルの改善のために、べネオ社によってパラチノース（商標）が市販されている（Ｂｅｎｅｏ−ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ，２０１７  ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｂｅｎｅｏ．ｃｏｍ／Ｅｘｐｅｒｔｉｓｅ／ＢＥＮＥＯ−Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ／Ｎｅｗｓ  Ｐａｐｅｒｓ／ＢＥＮＥＯ  ｐａｐｅｒ  ｐａｌａｔｉｎｏｓｅ  ＵＳ  ２Ｑ１７Ｑ８ｖ１  ｗｅｂ  ＵＳ  Ｌｅｔｔｅｒ  １．ｐｄｆ）。
【０００５】
トレハルロース（特許文献において「Ｖｉｔａｌｏｓｅ」とも呼ばれる）に関して、腸管スクラーゼによってもゆっくりと消化されるため、同様な利点が考えられるが、入手可能な臨床データが少ない。血中グルコースレベル及びインスリン反応は、同様であるか、又はイソマルツロースよりもわずかに穏やかでさえある（欧州特許第２４１８９７１Ｂ１号明細書に報告されている）。
【０００６】
小腸内のスクラーゼ／アミラーゼの活性に対するこれらの糖の抑制効果が文献（Ｋａｓｈｉｍｕｒａ＆ａｌ，２００８  Ｊ．Ａｇｒｉｃ．Ｆｏｏｄ  Ｃｈｅｍ．５６：５８９２−５８９８）に示唆されているが、この確固たる証拠は、依然としてない。かかる抑制効果は、スクロース及びデンプンの転化を遅くし、それによってグリセミック負荷がさらに低減され得る。したがって、イソマルツロース及び／又はトレハルロースの消費は、デンプン含有食品と合わせた場合、腸内のスクラーゼ／アミラーゼ活性を抑制することにより、グリセミック負荷の低減に対してさらなる利点を有し得る。
【０００７】
食品及び飲料におけるイソマルツロース又はトレハルロースのいずれかの使用に伴う１つの問題は、これらの糖の甘味がグラム基準当たりのスクロースの甘味よりもかなり少ないことである。したがって、スクロースをこれらのスクロース異性体で置き換えるには、食品又は飲料の組成の劇的な変化が必要であろう。少ない甘味は、例えば、最終製品の風味に影響を及ぼし得る追加の人工甘味料を添加することによって補わなければならない。また、イソマルツロースは、スクロースと比べて比較的高価であり、したがって食品又は飲料製品にそれを添加しない経済的な理由があり得る。
【０００８】
したがって、摂取後に高血糖応答を引き起こさない甘味の甘い食品及び飲料が社会で必要とされている。意識が高い消費者は、スクロース含有食品／飲料を摂取した後の高グリセミック指数及び血糖上昇の予防を望み得る。さらに、胃内での高グリセミック指数炭水化物の低グリセミック指数炭水化物への転化は、１型及び２型糖尿病の人々における血糖コントロールに臨床的に有意な利点を有する。グリセミック指数低下栄養療法は、２型糖尿病の人々の糖化ヘモグロビン（Ａ１Ｃ）を１．０〜２．０％低減し得、糖尿病ケアの他の成分と共に使用された場合、臨床的及び代謝的結果をさらに改善し得る。
【０００９】
［発明の詳細な説明］
本発明者らは、意外にも、栄養補助食品として又は医療用食事の一部若しくは医療用補助食品として酵素、スクロースイソメラーゼを使用すると、酵素と共に消費された場合に甘い食品及び／又は飲料のスクロース含有量が低くなることを見出した。したがって、栄養補助食品として又は乾燥食品若しくは飲料の一部（プレミックス等）として使用されるスクロースイソメラーゼは、消費前に食品又は飲料の組成及び特性に影響を及ぼすことなく、腸管内のかかる食品のグリセミック指数を低下させるであろう。結果として、栄養補助食品としてのスクロースイソメラーゼは、食習慣を変えることなく、２型糖尿病及び心血管疾患のリスクを低下させるために使用され得る。また、グリセミック負荷を低下させることにより、栄養補助食品としてのスクロースイソメラーゼは、体重維持のためのプログラムに適合し得、糖分の多い食事に関連する疾患を予防し得る。栄養補助食品としてのスクロースイソメラーゼは、糖の取り込みを遅らせることにより、スポーツ栄養にも有用であり得る。スクロースイソメラーゼは、食事代替品の炭水化物含有量を乱すことなく、低炭水化物食が推奨又は処方される糖尿病性又は前糖尿病性患者のための即時混合可能な代替品にも含まれ得る。
【００１０】
したがって、本発明の一実施形態は、スクロースを含む食品又は飲料を消費する、ヒトを含む動物におけるインスリンレベルを低減する方法であって、食品若しくは飲料の消費前に又は食品若しくは飲料の消費に応じて、有効量のスクロースイソメラーゼ栄養補助剤、栄養補助食品又は薬剤を動物又はヒトに投与することを含む方法である。本発明の他の実施形態は、ヒトを含む動物によって消費されるスクロースを含む食品又は飲料のグリセミック指数を低下させる方法であって、栄養補助剤、栄養補助食品又は薬剤の形態でスクロースイソメラーゼを動物又はヒトに投与することを含む方法である。本発明の他の実施形態は、食品又は飲料のグリセミック指数を低下させる、栄養補助食品、乾燥及び／又は粉末食品若しくは飲料又は薬剤を製造するためのスクロースイソメラーゼの使用である。本発明の他の実施形態は、食品又は飲料のグリセミック指数を低下させる、栄養補助食品としてのスクロースイソメラーゼである。
【００１１】
新たな研究から、アスリートの持久力の持続に重要であるのは、いわゆる「クイック炭水化物」の消費にあるのではなく、血中グルコースの形態でエネルギーの急増を提供する代わりに、血糖のバランスをとる「スロー炭水化物」にあり得ることが示唆されている。本発明の目的では、「持久的エクササイズ」とは、呼吸及び心拍数を増加させる、ウォーキング、ジョギング、スイミング又はバイク乗りなどのエクササイズを意味する。したがって、本発明の他の実施形態は、持久的エクササイズを実施するアスリートの能力を高めるために、長時間にわたって糖の吸収を遅くするか又は持続する方法であって、持久的エクササイズ中、スクロースを含有する食品又は飲料も消費する、持久的エクササイズを行う人に有効量のスクロースイソメラーゼを投与することを含む方法である。本発明の他の実施形態は、アスリートの持久力の持続を高める方法であって、スクロースを含有する食品又は飲料も消費する、運動競技の持久的活動に参加する人に有効量のスクロースイソメラーゼを投与することを含む方法である。本発明の他の実施形態は、持久的エクササイズを行う人の能力を高めるためのスクロースイソメラーゼの使用である。
【００１２】
本発明の他の実施形態は、エネルギー放出を持続させ、且つスクロース含有食事後に血中グルコース上昇及びいわゆる食後の「眠気」を最小限にするために、糖の吸収を持続させ、且つ／又は遅くする方法であって、スクロースを含有する食品も消費する健康な又は（前）糖尿病の人に有効量のスクロースイソメラーゼを投与することを含む方法である。これは、人が食事（昼食など）を摂り、摂取した後に数時間にわたり、機敏さを維持することを望み、且つ嗜眠状態の時間を避けることを望む状況において特に有益である。
【００１３】
本発明の他の実施形態は、体重を減らすか又は体重減少を維持することなど、動物を補助する方法であって、有効量のスクロースイソメラーゼを動物又はヒトに投与することを含む方法である。
【００１４】
一実施形態において、スクロースイソメラーゼは、ヒトの栄養法に用いられる。
【００１５】
他の実施形態において、スクロースイソメラーゼを使用して、スクロースを消費し得る動物、好ましくはコンパニオン動物（ペットとして通常飼われる、ネコ、イヌ、ウマ及び家畜ブタ）に利益を与える。コンパニオン動物は、多くの場合、肥満の傾向があり、その悪影響を受ける傾向がある。本発明のスクロースイソメラーゼは、高価且つ不便なインスリン注射に依存することなく、コンパニオン動物における糖尿病、体重増加及び関連する代謝異常を対処する方法を付与する。
【００１６】
スクロースイソメラーゼは、スクロース含有食品又は飲料を摂取する前に少なくとも１日１回摂取することが好ましい。スクロースイソメラーゼは、スクロース含有食品又は飲料を摂取する直前（即ち摂取する１時間未満前、より好ましくは摂取する３０分未満前）に摂取されることが特に好ましい。スクロース含有食品又は飲料を摂取する直前又は摂取中にスクロース含有食品又は飲料が摂取されることが特に好ましい。他の実施形態において、スクロースイソメラーゼは、食事を食べて２時間以内に摂取される。
【図面の簡単な説明】
【００１７】
【図１】実施例１に詳述される、糖を分離するために使用されるＨＰＬＣの測定値である。
【００１８】
スクロースイソメラーゼは、スクロースからのイソマルツロースの工業的製造で使用される。本発明者らの認識では、サプリメントとしてのスクロースイソメラーゼの使用の記述はされておらず、スクロースイソメラーゼは、錠剤又は他の適切な製剤の製造に関与するプロセス及びヒトの消化プロセスの両方に耐えることができ、そのため、胃及び／又は消化管内で依然として活性なままである。スクロースイソメラーゼは、当技術分野で公知であるが、その活性は、実験用緩衝剤のコンテクストで確認されているのみである。
【００１９】
スクロースイソメラーゼは、スクロース（２−Ｏ−α−Ｄ−グルコピラノシル−Ｄ−フルクトース）をより低糖質の糖イソマルツロース（６−Ｏ−α−Ｄ−グルコピラノシル−Ｄ−フルクトース）及び／又はトレハルロース（１−Ｏ−α−Ｄ−グルコピラノシル−Ｄ−フルクトース）（Ｍｕ＆ａｌ（２０１４）Ａｐｐｌ  Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ  ９８：６５６９−６５８２）に転化する。
【００２０】
実施例４〜６に示すように、異なるメカニズムを介しているが、スクロースに対して作用する他の酵素、グリコシルトランスフェラーゼは、ヒト消化器系を模倣した条件にかけられた場合に不活性であることが判明した。したがって、スクロースを基質として使用する酵素は、栄養補助食品として使用するのに適していないことが予想可能である。
【００２１】
本発明のスクロースイソメラーゼは、摂取された糖に対して作用するのに有効な量が利用可能であるように十分に適切に配合及び消化プロセスに耐えるために十分に強いことを条件として、いずれの供給源にも由来し得る。スクロースイソメラーゼの少なくとも５つの当技術分野で認識されるクラスがある（Ｇｏｕｌｔｅｒ  ｅｔ  ａｌ  ２０１２  Ｅｎｚ  ａｎｄ  Ｍｉｃｒｏｂ  Ｔｅｃｈｎｏｌ  ５０：５７−６４を参照されたい）：
グループＩ：セラチア・プリムシカ（Ｓｅｒｒａｔｉａ  ｐｌｙｍｕｔｈｉｃａ）及びプロタミノバクター・ラブラム（Ｐｒｏｔａｍｉｎｏｂａｃｔｅｒ  ｒｕｂｒｕｍ）を含む；
グループＩＩ：エルヴィニア・ラポンティキ（Ｅｒｗｉｎｉａ  ｒｈａｐｏｎｔｉｃｉ）を含む；
グループＩＩＩ；エンテロバクター（Ｅｎｔｅｒｏｂａｃｔｅｒ）属、ラウルテラ・プランティコラ（Ｒｏａｕｌｔｅｌｌａ  ｐｌａｎｔｉｃｏｌａ）及びクレブシエラ・シンガポレンシス（Ｋｌｅｂｓｉｅｌｌａ  ｓｉｎｇａｐｏｒｅｎｓｉｓ）を含む；
グループＩＶ：パントエア・ディスペルサ（Ｐａｎｔｏｅａ  ｄｉｓｐｅｒｓａ）を含む；及び
グループＶ：シュードモナス・メソアシドフィラ（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ  ｍｅｓｏａｃｉｄｏｐｈｉｌａ）及び根粒菌（Ｒｈｉｚｏｂｉｕｍ）属を含む。
【００２２】
好ましいスクロースイソメラーゼの例としては、
ユニプロット：Ｄ０ＶＸ２０として同定される酵素を含むプロタミノバクター・ラブラム（Ｐｒｏｔａｍｉｎｏｂａｃｔｅｒ  ｒｕｂｒｕｍ）、
ユニプロット：Ｑ６ＸＮＫ６として同定される酵素を含むパントエア・ディスペルサ（Ｐａｎｔｏｅａ  ｄｉｓｐｅｒｓａ）、
ユニプロット：Ｑ６ＸＫＸ６として同定される酵素を含むラウルテラ・プランティコラ（Ｒｏａｕｌｔｅｌｌａ  ｐｌａｎｔｉｃｏｌａ）、
ユニプロット：Ｑ２ＰＳ２８として同定される酵素を含むシュードモナス・メソアシドフィラ（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ  ｍｅｓｏａｃｉｄｏｐｈｉｌａ）、
ユニプロット：Ｂ５ＡＢＤ８として同定される酵素を含むエンテロバクター（Ｅｎｔｅｒｏｂａｃｔｅｒ）；及び
ユニプロット：Ｓ５ＹＥＷ８として同定される酵素を含むペクトバクテリウム・カロトボラム（Ｐｅｃｔｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｃａｒｏｔｏｖｏｒｕｍ）
において見出されるイソメラーゼが挙げられる。
【００２３】
存在する場合、そのシグナルペプチドは、メチオニン（Ｍ）で置換され、この結果、配列番号１〜６にそれぞれ示されるタンパク質配列が生じた。
【００２４】
好ましいスクロースイソメラーゼとしては、Ｓｉｓ４、Ｓｉｓ１０、Ｓｉｓ１２、Ｓｉｓ１４及びＳｉｓ１５として実施例において同定されるイソメラーゼが挙げられる。特に好ましいスクロースイソメラーゼは、Ｓｉｓ４である。
【００２５】
本明細書に記載の本発明は、食品及び飲料配合物におけるイソマルツロース、トレハルロース又は他のいずれかの低グリセミックの糖代替物の使用の以前の問題を回避する。栄養成分としてスクロースイソメラーゼを供給することにより、食料又は飲料配合物は、変更される必要がなく、且つイソマルツロース及び／又はトレハルロースのみが胃又は上部腸管内で消化中に形成される。
【００２６】
本発明に関連する好ましいスクロース含有食料／飲料は、甘い食品、例えば、
・デザート  −  アイスクリーム、プリン、カスタード、ヨーグルト、
・製菓  −  スイーツ、チョコレート、
・焼き菓子  −  クッキー、ペストリー、パイ、ドーナツ、朝食用シリアル、
・飲料  −  ソフトドリンク、エネルギードリンク、フルーツジュース、風味付けされたミルク、
・果物及び野菜  −  トウモロコシ、トロピカルフルーツ、デート、バナナ、ビートの根、かぼちゃ、
・塗り物  −  ジャム、マーマレード、チョコレートスプレッド、ピーナツバター、
・コンパニオン動物のための食品：ご褒美又はよく噛む必要のあるおやつの形態の食品
を含む。
【００２７】
［製剤］
本発明による食事性及び医薬組成物は、特に経口投与の従来のいずれかの形態、例えば食事若しくは飼料のための添加剤／サプリメント、食事若しくは飼料プレミックス、強化食品若しくは飼料、錠剤、丸剤、顆粒、糖衣丸、カプセル並びに粉末及びタブレットなどの発泡性製剤などの固体状態又は例えば飲料、ペースト及び油性懸濁液としての液剤、乳剤若しくは懸濁液などの液体状態で体に投与するのに適したいずれかの生薬形態をとり得る。ペーストは、ハード又はソフトシェルカプセルに封入され得、それにより、カプセルは、例えば、魚、ブタ、家禽又はウシゼラチン、植物タンパク質又はリグニンスルホネートのマトリックスを特徴とする。食事性及び医薬組成物は、放出制御又は遅延放出製剤の形態をとり得る。本発明の組成物は、鼻腔への適用など、局所的に投与されない。
【００２８】
本発明による食事性組成物は、保護親水コロイド（ガム、タンパク質、加工デンプン、結合剤、皮膜形成剤、封入剤／材料、壁／シェル材料、マトリックス化合物、コーティング、乳化剤、表面活性剤、可溶化剤（オイル、脂肪、ワックス、レシチン等）、吸着剤、担体、充填剤、共化合物、分散剤、湿潤剤、加工助剤（溶媒）、流動剤、矯味剤、増量剤、ゲル化剤、ゲル形成剤、酸化防止剤及び抗菌剤をさらに含有し得る。
【００２９】
さらに、本発明による組成物は、従来の薬剤添加剤及び補助剤、賦形剤又は希釈剤、限定されないが、水、いずれかの起源に由来するゼラチン、植物性ガム、リグニンスルホネート、タルク、糖、デンプン、アラビアゴム、植物油、ポリアルキレングリコール、着香剤、保存剤、安定剤、乳化剤、緩衝剤、滑沢剤、着色剤、湿潤剤、充填剤等をさらに含有し得る。
【００３０】
［投与量］
栄養補助食品としての酵素の投与量は、摂取スクロース１００ｇ当たり０．１〜５００ｍｇの純粋なスクロースイソメラーゼタンパク質、好ましくは摂取スクロース１００ｇ当たで０．５〜１００ｍｇ、２〜５０ｍｇ、１０〜２５ｍｇのスクロースイソメラーゼタンパク質である。当然のことながら、投与量は、１日当たり又は食事若しくは飲料当たりでどの程度のスクロースが摂取されたかに応じて異なる。例えば、人が、西洋諸国で一般的な量である１日に添加スクロース７５グラムを消費した場合、１日の酵素の好ましい量は、７．５〜２０ｍｇの純粋なスクロースイソメラーゼタンパク質であろう。例えば、人が、１００ｇ／Ｌのスクロースを含有する飲料３００ｍｌを飲んだ場合、酵素の好ましい量は、飲料と合わされる３〜７．５ｍｇの純粋なスクロースイソメラーゼタンパク質となるであろう。
【００３１】
スクロースイソメラーゼを有する一般的な組成物は、二酸化ケイ素、（微結晶）セルロース（例えば、Ａｖｉｃｅｌ  ＰＨ１０２）、ステアリン酸マグネシウム、ステアリン酸、ポリビニルピロリドン（例えば、クロスポビドン）及び／又はマルトデキストリンを含有し得る。３００ｍｇの錠剤１つ当たりで、かかる組成物は、例えば、６０ｍｇの乾燥酵素配合物（例えば、．５〜２０ｍｇの純粋なスクロースイソメラーゼ７＋最大で６０ｍｇのマルトデキストリンを含有する）、１５ｍｇのクロスポビドン、２．５ｍｇのステアリン酸マグネシウム及び２２２．５ｍｇのＡｖｉｃｅｌ  ＰＨ１０２を含有し得る。
【００３２】
さらに、組成物は、乾燥食品、ソフトドリンク粉末又は食事代替粉末であり得る。かかる乾燥組成物は、通常、水分活性（Ａｗ）＜０．５を有する。一般的なスポーツエネルギードリンク粉末は、粉末１００ｇ当たり最大で９０ｇの炭水化物を含有し得、その７５ｇは、糖（主にスクロース及びグルコース）である。さらに、粉末は、一部のクエン酸、着香及び着色以外に１００ｇ当たり２．１５ｇの無機塩（主に塩化カリウム、クエン酸カリウム、クエン酸ナトリウム、塩化ナトリウム及びクエン酸マグネシウム）を含有する。好ましくは、スクロースイソメラーゼは、かかる粉末１００ｇ当たり７．５〜２０ｍｇの純粋な乾燥酵素において添加される。
【００３３】
［酵素］
［相同性］
本開示の目的のために、２つのアミノ酸配列又は２つの核酸配列の配列相同性又は配列同一性のパーセンテージを決定するため、配列は最適な比較のためにアラインされることが本明細書において定義される。２つの配列間のアライメントを最適化するために、比較される２つの配列のいずれかにおいてギャップが導入され得る。かかるアライメントは、比較される配列の完全長にわたって実施することができる。代わりに、アライメントは、より短い長さ、例えば約２０、約５０、約１００以上の核酸／ベース又はアミノ酸にわたって実施され得る。配列同一性は、報告されるアライン領域にわたる２つの配列間の同一マッチのパーセンテージである。
【００３４】
２つの配列間の配列の比較及び配列同一性のパーセンテージの決定は、数学的アルゴリズムを用いて達成することができる。いくつかの異なるコンピュータープログラムが２つの配列のアライン及び２つの配列間の同一性の決定に利用可能であるという事実は、当業者であれば認識するであろう（Ｋｒｕｓｋａｌ，Ｊ．Ｂ．（１９８３）Ａｎ  ｏｖｅｒｖｉｅｗ  ｏｆ  ｓｅｑｕｅｎｃｅ  ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ  Ｉｎ  Ｄ．Ｓａｎｋｏｆｆ  ａｎｄ  Ｊ．Ｂ．Ｋｒｕｓｋａｌ，（ｅｄ．），Ｔｉｍｅ  ｗａｒｐｓ，ｓｔｒｉｎｇ  ｅｄｉｔｓ  ａｎｄ  ｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ：ｔｈｅ  ｔｈｅｏｒｙ  ａｎｄ  ｐｒａｃｔｉｃｅ  ｏｆ  ｓｅｑｕｅｎｃｅ  ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ，ｐｐ．１−４４  Ａｄｄｉｓｏｎ  Ｗｅｓｌｅｙ）。２つのアミノ酸配列間又は２つのヌクレオチド配列間の配列同一性％は、２つの配列のアライメントのためのニードルマン−ブンシュアルゴリズムを用いて決定され得る（Ｎｅｅｄｌｅｍａｎ，Ｓ．Ｂ．ａｎｄ  Ｗｕｎｓｃｈ，Ｃ．Ｄ．（１９７０）Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．４８，４４３−４５３）。アミノ酸配列とヌクレオチド配列のいずれもアルゴリズムによってアラインすることができる。ニードルマン−ブンシュアルゴリズムは、コンピュータープログラムＮＥＥＤＬＥで実行されている。本開示の目的のために、ＥＭＢＯＳＳパッケージからのＮＥＥＤＬＥプログラムが使用された（ｖｅｒｓｉｏｎ  ２．８．０以上，ＥＭＢＯＳＳ：Ｔｈｅ  Ｅｕｒｏｐｅａｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ  Ｏｐｅｎ  Ｓｏｆｔｗａｒｅ  Ｓｕｉｔｅ（２０００）Ｒｉｃｅ，Ｐ．ＬｏｎｇｄｅｎＪ．ａｎｄ  Ｂｌｅａｓｂｙ．Ａ．Ｔｒｅｎｄｓ  ｉｎ  Ｇｅｎｅｔｉｃｓ１６，（６）ｐｐ２７６−２７７，ｈｔｔｐ：／／ｅｍｂｏｓｓ．ｂｉｏｉｎｆｏｒｍａｔｉｃｓ．ｎｌ／）。タンパク質配列には、ＥＢＬＯＳＵＭ６２が置換行列に使用される。ヌクレオチド配列に関して、ＥＤＮＡＦＵＬＬが使用される。使用される任意のパラメーターは、ギャップオープンペナルティ１０及びギャップ伸長ペナルティ０．５である。これらの異なるすべてのパラメーターがわずかに異なる結果を生じるが、２つの配列の同一性総パーセンテージは、異なるアルゴリズムを使用した場合に有意に変化しないことが当業者に理解されるであろう。
【００３５】
上述のＮＥＥＤＬＥプログラムによるアライメント後、問い合わせ配列と開示の配列との配列同一性のパーセンテージが以下の通りに計算される。アライメントにおける相当する位置の数は、アライメントにおけるギャップの総数を引いた後にアライメントの全長で割られる、両方の配列における同一アミノ酸又は同一ヌクレオチドを示す。本明細書で定義される同一性は、ＮＯＢＲＩＥＦオプションを使用してＮＥＥＤＬＥから得られ、且つ「最長同一性」としてプログラムのアウトプットでレベルされる。
【００３６】
本開示の核酸及びタンパク質配列は、公共データベースに対して検索を行うために、例えば他のファミリーメンバー又は関連配列を同定するために、「問い合わせ配列」としてさらに使用することができる。かかる検索は、Ａｌｔｓｃｈｕｌ，ｅｔ  ａｌ．（１９９０）Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２１５：４０３−１０．のＢＬＡＳＴＮ及びＢＬＡＳＴＸプログラム（ｖｅｒｓｉｏｎ  ２．０）を使用して行うことができる。ＢＬＡＳＴヌクレオチド検索をＢＬＡＳＴＮプログラム（スコア＝１００、ワード長＝１２）で実施し、開示の核酸分子と相同なクレオチド配列を得ることができる。ＢＬＡＳＴタンパク質検索をＢＬＡＳＴＸプログラム（スコア＝５０、ワード長＝３）で実施し、開示のタンパク質分子と相同なアミノ酸配列を得ることができる。比較のためのギャップ入りアライメントを得るために、Ａｌｔｓｃｈｕｌ  ｅｔ  ａｌ．，（１９９７）Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．２５（１７）：３３８９−３４０２に記載のようにギャップ入りＢＬＡＳＴが利用され得る。ＢＬＡＳＴ及びギャップＢＬＡＳＴプログラムを用いた場合、それぞれのプログラム（例えば、ＢＬＡＳＴＸ及びＢＬＡＳＴＮ）のデフォルトパラメーターが使用され得る。ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／のＮａｔｉｏｎａｌ  Ｃｅｎｔｅｒ  ｆｏｒ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  Ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎのホームページを参照されたい。
【００３７】
本明細書で使用される「バリアント」、「誘導体」、「変異体」又は「相同体」という用語は、区別なく使用することができる。それらは、ポリペプチド又は核酸のいずれかを意味し得る。バリアントは、参照配列に対して１つ又は複数の位置において置換、挿入、欠失、切り詰め、塩基転換及び／又は逆位を含む。バリアントは、例えば、部位飽和変異生成、スキャニング変異生成、挿入突然変異、ランダム変異生成、部位特異的突然変異誘発及び定方向進化並びに種々の他の組換えアプローチによって作製することができる。バリアントポリペプチドは、少数のアミノ酸残基によって参照ポリペプチドと異なり得、参照配列との一次アミノ酸配列の相同性／同一性のそのレベルによって定義され得る。好ましくは、バリアントポリペプチドは、参照ポリペプチドと少なくとも７０％、少なくとも７５％、少なくとも８０％、少なくとも８５％、少なくとも９０％、少なくとも９１％、少なくとも９２％、少なくとも９３％、少なくとも９４％、少なくとも９５％、少なくとも９６％、少なくとも９７％、少なくとも９８％又は少なくとも９９％のアミノ酸配列同一性を有する。同一性パーセントを決定する方法は、当技術分野で公知であり、本明細書に記述されている。一般に、バリアントは、参照ポリペプチドの固有の性質を保持するが、一部の特定の態様では変化した特性を有する。例えば、バリアントは、修飾された最適ｐＨ値、修飾された基質結合能力、酵素的分解又は他の分解に対する修飾された耐性、向上した活性又は減少した活性、修飾された温度安定性又は酸化安定性を有し得るが、その固有の機能性を保持する。バリアントは、参照ポリペプチドの特徴を変える化学修飾を有するポリペプチドをさらに含む。
【００３８】
核酸に関して、その用語は、参照核酸及び指定の程度の相同性／同一性を有するか、又はストリンジェントな条件下において参照核酸若しくはその補体とハイブリダイズする、バリアントポリペプチドをコードする核酸を意味する。好ましくは、バリアント核酸は、参照核酸と少なくとも７０％、少なくとも７５％、少なくとも８０％、少なくとも８５％、少なくとも９０％、少なくとも９１％、少なくとも９２％、少なくとも９３％、少なくとも９４％、少なくとも９５％、少なくとも９６％、少なくとも９７％、少なくとも９８％又は少なくとも９９％の核酸配列同一性を有する。同一性パーセントを決定する方法は、当技術分野で公知であり、本明細書に記述されている。
【００３９】
本発明は、以下の実施例によってさらに説明される。
【００４０】
［実施例］
［実施例１］
スクロースイソメラーゼとしてアノテートされた６つのタンパク質がユニプロットデータベースから選択された。配列は、プロタミノバクター・ラブラム（Ｐｒｏｔａｍｉｎｏｂａｃｔｅｒ  ｒｕｂｒｕｍ）（ユニプロット：Ｄ０ＶＸ２０）、パントエア・ディスペルサ（Ｐａｎｔｏｅａ  ｄｉｓｐｅｒｓａ）（ユニプロット：Ｑ６ＸＮＫ６）、ラウルテラ・プランティコラ（Ｒｏａｕｌｔｅｌｌａ  ｐｌａｎｔｉｃｏｌａ）（ユニプロット：Ｑ６ＸＫＸ６）、シュードモナス・メソアシドフィラ（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ  ｍｅｓｏａｃｉｄｏｐｈｉｌａ）（ユニプロット：Ｑ２ＰＳ２８）、エンテロバクター（ユニプロット：Ｂ５ＡＢＤ８）及びペクトバクテリウム・カロトボラム（Ｐｅｃｔｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｃａｒｏｔｏｖｏｒｕｍ）（ユニプロット：Ｓ５ＹＥＷ８）に由来する。推定シグナルペプチドは、グラム陰性のためのＳｉｇｎａｌＰ４．１予測ソフトウェアによって予測された（Ｐｅｔｅｒｓｅｎ，Ｎａｔｕｒｅ  Ｍｅｔｈｏｄｓ，８：７８５−７８６，２０１１）。存在する場合、これらのシグナルペプチドは、メチオニン（Ｍ）で置き換えられ、この結果、配列番号１〜６に示すタンパク質配列が得られた。
【００４１】
国際公開第２０１７０５０６５２（Ａ１）号パンフレットに記載のように、大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）においてタンパク質配列（配列番号１〜６）を発現させた。推定スクロースイソメラーゼをコードする合成ＤＮＡ配列は、ＤＮＡ２．０のアルゴリズム（ＧｅｎｅＧＰＳ（登録商標）技術）に従って大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）での発現に対してコドン最適化された。クローニングの目的のために、Ｎｄｅｌ部位を含有するＤＮＡ配列を５’末端に導入し、終止コドン及びＡｓｃｌを含有するＤＮＡ配列を３’末端に導入した。５’Ｎｄｅｌ及び３’Ａｓｃｌ制限部位を介して、推定スクロースイソメラーゼをコードする合成ＤＡＮを、アラビノース誘導性プロモーターＰＢＡＤと、制御因子ａｒａＣ（Ｇｕｚｍａｎ（１９９５）Ｊ．Ｂａｃｔ．１７７：４１２１−４１３０）と、カナマイシン耐性遺伝子Ｋｍ（Ｒ）と、ｐＢＲ３２２由来の複製開始点ｏｒｉ３２７（Ｗａｔｓｏｎ（１９８８）Ｇｅｎｅ．７０：３９９−４０３）とを含有するアラビノース誘導性大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）発現ベクターにクローニングした。ａｍｐＣ及びａｒａＢにおけるさらなる欠失を有する大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）宿主ＲＶ３０８（ｌａｃｌｑ−、ｓｕ−、ΔｌａｃＸ７４、ｇａｌ  ＩＳＩＩ：：ＯＰ３０８，ｓｔｒＡ，ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｅｂｉ．ａｃ．ｕｋ／ｅｎａ／ｄａｔａ／ｖｉｅｗ／ＥＲＰ００５８７９）を、化学的コンピテントセル（Ｚ−コンピテントセル，Ｍｉｘ  ａｎｄ  Ｇｏ！大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）形質転換キット（Ｚｙｍｏ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ，Ｉｒｖｉｎｅ  ＣＡ，ＵＳＡ）で作製）を使用して形質転換した。配列番号１〜６由来のいくつかのクローンを配列検証し、ネオマイシン（Ｏ／Ｎ）１００μｇ／ｍｌを含有する２×ＰＹ中で培養した。前培養物（１／１００体積）を使用して、ＭａｇｉｃＭｅｄｉａＴＭ大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）発現培地（Ｔｈｅｒｍｏ  Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ  Ｉｎｃ）及び１００μｇ／ｍｌネオマイシン中の発酵を接種し（２４穴ＭＴＰ、体積３ｍｌ、通気性シール、ＲＰＭ５５０、相対湿度８０％）、３０℃で４時間増殖させた後、培養物を０．０２％アラビノース（最終濃度）で誘導し、インキュベーションを３０℃で４８時間続けた。高速遠心によって細胞ペレットを単離し、さらに使用するまで凍結した。凍結細胞ペレットを再懸濁し、１．２ｍｌ溶解バッファー（トリスＨＣｌ  ５０ｍＭ、ＤＮａｓｅｌ  ０．１ｍｇ／ｍｌ、リゾチーム２ｍｇ／ｍｌ、ＭｇＳＯ４２５μＭ）と共に３７℃で１時間インキュベートすることにより、無細胞抽出物（ＣＦＥ）を作製した。遠心分離によって壊死組織片を除去し、さらなる特徴付けまでＣＦＥを−２０℃で保管した。
【００４２】
［グルカンスクラーゼ］
この研究で使用されるグルカンスクラーゼは、製品供給業者から入手した（ロイコノストック・メセンテロイデス（Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ  ｍｅｓｅｎｔｅｒｏｉｄｅｓ）グルカンスクラーゼに関して、シグマ・アルドリッチ社（Ｓｉｇｍａ  Ａｌｄｒｉｃｈ）；ストレプトコッカス・ミュータンス（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ  ｍｕｔａｎｓ）グルカンスクラーゼに関して、ＮＺＹＴｅｃｈ社）。
【００４３】
この研究で使用されるすべての酵素を表１に示す。
【００４４】
【表１】
2021534738.tif 000002
【００４５】
［配列番号１〜６：］
［配列番号１］
【化１】
2021534738.tif 000003
［配列番号２］
【化２】
2021534738.tif 000004
［配列番号３］
【化３】
2021534738.tif 000005
［配列番号４］
【化４】
2021534738.tif 000006
［配列番号５］
【化５】
2021534738.tif 000007
［配列番号６］
【化６】
2021534738.tif 000008
【００４６】
［酵素定量化］
ＳＤＳ−ＰＡＧＥに続いてクマシー染色を用いて、試料に存在する酵素を可視化した。個々の酵素を定量化するために、正確な分子量のバンドに焦点を合わせた。バンドの染色強度は、ＩｍａｇｅＱｕａｎｔソフトウェアによって定量化された。選択されたバンドのタンパク質染色強度を、同じゲル上に流れるウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）の既知量と比較し、元の酵素ストック溶液に戻って計算した。
【００４７】
［糖の同定及び定量化］
ＣａｒｂｏＰａｃ  ＰＡ２０カラムを備えたＤｉｏｎｅｘ  ＨＰＬＣ（ＨＰＡＥＣ  ＢｉｏＬＣ  ｓｙｓｔｅｍ，Ｄｉｏｎｅｘ５０００）を使用して、酵素と共にスクロース含有溶液をインキュベートした後の糖プロファイルを分析した。インキュベート後、試料を希釈し、濾過し、表２に記載のプログラムを使用して糖成分を分離した。
【００４８】
【表２】
2021534738.tif 000009
【００４９】
メルクミリポア社（Ｍｅｒｃｋ  Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）から入手したスクロース、グルコース、フルクトース、イソマルツロース、リュクロース、トレハルロース及びイソマルトース（２〜７５ｍｇ／ｍｌの範囲）の純粋な溶液をスパイクすることにより、ＨＰＬＣのピークを割り当て、定量化した。この技術を用いた様々な糖の分離の例を図１に示す。糖濃度について検出された積分ピーク面積及びピーク面積に対する濃度の直線適合のプロットから、それぞれの糖に対するレスポンスファクターを計算した。それぞれの試料に存在する糖の絶対量の計算にレスポンスファクターを使用した。試料中で測定されたそれぞれの糖の絶対量を、試料中で検出されたすべての糖の総量で割り、１００を掛けることによって相対糖濃度（％）を計算した。
【００５０】
［グリセミック指数の計算］
これらの実験におけるグリセミック指数（ＧＩ）を計算し、様々な糖のＧＩを仮定した；スクロース：６５；フルクトース：１５；グルコース：１００；イソマルツロース：３２；トレハルロース：３２。Ｗｏｌｅｖｅｒ（Ｅｕｒｏｐｅａｎ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｃｌｉｎｉｃａｌ  Ｎｕｔｒｉｔｉｏｎ（２０１３）６７，１２２９−１２３３）は、カナダの規定に準拠して、ＧＩ＞７０が高いとみなされ、ＧＩ＜５５が低いと述べている。製品におけるそれぞれの糖の含有率％を１００で割り、そのＧＩ値を掛けた。すべての数を累計して、様々な処理製品のＧＩを計算した。
【００５１】
［実施例２］
［異なるｐＨでのスクロースイソメラーゼの活性］
異なるｐＨでのスクロースに対する異なるスクロースイソメラーゼの活性を試験するために、本発明者らは、１０％希釈（０．０７〜０．２１ｍｇタンパク質／ｍｌ）において、異なる酵素と共に２０％スクロース／２５０ｍＭリン酸ナトリウム緩衝液をインキュベートした。溶液のｐＨを４．５及び６．０のいずれかに設定し、インキュベーションを３７℃で６時間行い、その後、９９℃で５分間加熱することによって反応を停止させた。Ｄｉｏｎｅｘ  ＨＰＬＣ法を用いて、異なる糖へのスクロースの転化を定量化した。それぞれの酵素の２〜４通りの異なる試料を使用した実験から得られた、インキュベーション後の試料で検出されたすべての糖の総量に対する平均パーセンテージとして、以下の表３に結果を示す。
【００５２】
【表３】
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【００５３】
表３から、試験されたすべての酵素がｐＨ６．０及びｐＨ４．５においてほぼ完全にスクロースを転化できることが明らかになっている。生成物の形成は、酵素にいくらか依存するが、すべてのスクロースイソメラーゼ酵素を用いて、最も顕著な生成物は、イソマルツロース及びトレハルロースであり、大部分の条件下において糖全体の６０〜１００％の量となる。
【００５４】
［実施例３］
［異なるｐＨでのグルカンスクラーゼの活性］
異なるｐＨでのスクロースに対する異なるグルカンスクラーゼの活性を試験するために、本発明者らは、１０％希釈において、異なる酵素と共に２０％スクロース／２５０ｍＭリン酸ナトリウム緩衝液をインキュベートした。溶液のｐＨを４．５及び６．０のいずれかに設定し、インキュベーションを３７℃で６時間行い、その後、９９℃で５分間加熱することによって反応を停止させた。Ｄｉｏｎｅｘ  ＨＰＬＣ法を用いて、糖の組成を定量化した。それぞれの酵素を使用した実験から得られた、転化後の糖全体に対するパーセンテージとして、以下の表４に結果を示す。グルカンは、異なる形態で存在し得るため、これらの実験で使用されるＨＰＬＣ法を用いて定量化することは難しい。したがって、酵素が添加されないブランクのフルクトース及びグルコース含有量に対して補正した後、グルカンの総形成は、フルクトース及びグルコースの増加の違いから計算された。したがって、示される数値は、単に形成されたグルカンの総量の大まかな推定量である。
【００５５】
【表４】
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【００５６】
表４から、グルカンスクラーゼの一部（７０Ｂ及び７０Ｃ）は、ｐＨ６．０及びｐＨ４．５の両方でほぼすべてのスクロースを転化することができるが、他は、ごくわずかな活性のみを示すことが明らかとなった。生成物の形成は、いくらか酵素に依存し、これらの条件下において、グルカンの収率は、最大でおよそ３０〜４０％である。これらの酵素によって形成される他の糖は、主にリュクロースであり、一部は、イソマルツロースである。
【００５７】
［実施例４］
［コーラ中のスクロースイソメラーゼの活性］
スクロースイソメラーゼ及びグルカンスクラーゼの活性をコーラ（コカ・コーラ（Ｃｏｃａ−Ｃｏｌａ）（登録商標）；地元のスーパーマーケットで入手）中で試験した。この実験では、酵素を再びこのマトリックス中で１０％希釈において添加し、３７℃で１３０分間インキュベートし、その後、９０℃で５分間加熱することによって反応を停止させた。約１００ｇ／Ｌの糖総量がコーラ中で測定される。コーラは、非常に酸性（ｐＨ２．６）であるため、スクロースの一部は、特に加熱工程中にグルコース及びフルクトースに転化され、測定されるスクロースの総量は、おそらく低く、コーラ中に存在するフルクトース及びグルコースの量は、高い。再びＤｉｏｎｅｘ  ＨＰＬＣ法を用いて、様々な糖へのスクロースの転化を定量化した。インキュベーション後に試料中で検出されるすべての糖の総量に対する平均パーセンテージとして、結果を以下に示す。以下の表５に示すように、糖全体の４０〜５０％は、Ｓｉｓ１４及びＳｉｓ１５スクロースイソメラーゼを用いて低グリセミック糖のイソマルツロース及びトレハルロースに転化され、グリセミック指数が低くなる。実施例２の緩衝剤実験で既に見られたように、Ｓｉｓ１４は、イソマルツロースに対して優先を有すると思われるが、Ｓｉｓ１５は、トレハルロース形成に対する優先を有する。Ｓｉｓ２は、コーラにおいて全く活性を示さなかったが、Ｓｉｓ１０、Ｓｉｓ１２及びＳｉｓ４は、８〜１５％の転化率を示した。
【００５８】
【表５】
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【００５９】
［実施例５］
［模擬胃の条件でのチョコレートミルクにおけるスクロースイソメラーゼの活性］
スクロースイソメラーゼ及びグルカンスクラーゼの活性をチョコレートミルクにおいて試験した。脱脂チョコレートミルク（Ｆｒｉｅｓｌａｎｄ  Ｃａｍｐｉｎａ）は、中性ｐＨ（ｐＨ６．４）を有し、約１００ｇ／Ｌのスクロースを含有する。この実験において、３７℃に設定された水浴中で２０ｒｐｍにおいて攪拌下でチョコレートミルク１００ｍｌをインキュベートし、ＨＣｌの添加によってｐＨを徐々に下げた。ブタの胃粘膜粉末からのペプシン＞２５０ｕ／ｍｇ固形分（シグマ社（Ｓｉｇｍａ）；Ｐ７０００）を最終濃度０．０２ｍｇ／ｍｌで添加し、スクロースイソメラーゼを実験の開始時に０．１％（ｖ／ｖ）で添加した。０．５時間インキュベートした後、ＨＣｌを添加することにより、ｐＨを４．０で設定し、１時間後にｐＨ３．０に設定し、１．５時間後にｐＨ２．０に設定した。インキュベーションして５〜１０分後（ｔ＝０）、１時間後（ｔ＝１）及び２時間後（ｔ＝２）に試料１ｍｌを採取し、加熱によって（９９℃で５分間）酵素活性を即座に不活性化した。上述のＨＰＬＣ法を用いて、試料を分析し、異なる糖を定量化し、試料中で検出されたすべての糖の総量に対するパーセンテージで表し、以下の表６に示す。再び、コーラの実験でも確認されるように、試料は、低ｐＨで加熱することにより、グルコース及びフルクトースへのスクロースの（化学的）転化を示した（特にｔ＝２試料において優勢）。
【００６０】
【表６】
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【００６１】
表６から、特にＳｉｓ４が、模擬胃条件下においてチョコレートミルク中のスクロース全体の最大で７５％をイソマルツロース及びトレハルロースのような低グリセミック糖に転化できることが明らかとなった。Ｓｉｓ１０は、スクロースの約４０％を特にイソマルツロースに転化することができるが、Ｓｉｓ１５は、主にトレハルロースを全体の約３０％生成し、Ｓｉｓ１２は、両方のスクロース異性体を全体の約２０％生成する。Ｓｉｓ２及びＳｉｓ１４は、この実験で効果を示さなかった。胃消化を模倣する条件において酵素投与量がかなり低い場合でも、これらの酵素の大部分は、チョコレートミルクなどの通常の食品のグリセミック指数を低下させることができる。
【００６２】
グルカンスクラーゼのいずれも、この実験でチョコレートミルクにおける有意な活性を示さなかった。
【００６３】
［実施例６］
［模擬胃条件でのアイスクリームにおけるスクロースイソメラーゼの活性］
スクロースイソメラーゼ及びグルカンスクラーゼの活性をアイスクリームで試験した。アイスクリーム（Ａｌｂｅｒｔ  Ｈｅｉｊｎ  Ｒｏｏｍｉｊｓ  ｖａｎｉｌｌａ）は、中性ｐＨ（ｐＨ６．５）を有し、約２３０ｇ／ｋｇのスクロースを含有した。酵素投与量、ペプシン添加、ｐＨ設定、サンプリング時間及び量及びＨＰＬＣでの糖分析を含む、実施例４に記載のように正確に実験を行った。再び、異なる糖を定量化し、試料中で検出された糖の総量に対するパーセンテージで表した。糖分析の結果を以下の表７に示す。
【００６４】
【表７】
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【００６５】
表７から、Ｓｉｓ４が、模擬胃条件下においてアイスクリーム中のスクロース全体の最大で２５〜３５％をイソマルツロース及びトレハルロースのような低グリセミック糖に転化できることが明らかとなった。Ｓｉｓ１０は、スクロースの約１５％を特にイソマルツロースに転化することができ、Ｓｉｓ１２及びＳｉｓ１５も一部のスクロース異性体を生成する。再び、Ｓｉｓ２及びＳｉｓ１４は、これらの条件下において活性を示さなかった。胃消化を模倣する条件において酵素投与量がかなり低い場合でも、これらの酵素の大部分は、アイスクリームなどの通常の食品のグリセミック指数を低下させることができる。
【００６６】
グルカンスクラーゼのいずれも、この実験でアイスクリームにおける有意な活性を示さなかった。
【図１】
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【配列表】
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【国際調査報告】
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