(57)【要約】  本開示は、分子のトランスサイトーシスを測定するために有用な方法及び組成物に関する。特に、本開示は、治療用抗体分子並びにヒト及び動物におけるＦｃ融合タンパク質のクリアランス速度を評価するためのｉｎ  ｖｉｔｒｏ受容体依存性トランスサイトーシスアッセイに関する。【選択図】図１
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
分子の薬物動態（ＰＫ）パラメーターを決定するための方法であって、生理的ｐＨの条件下、細胞又は複数の細胞を経由する前記分子又は複数の前記分子のトランスサイトーシスの尺度を決定するステップを含む、方法。
【請求項２】
前記ＰＫパラメーターが、前記分子のｉｎ  ｖｉｖｏクリアランスの尺度である、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記ＰＫパラメーターが、前記分子のｉｎ  ｖｉｖｏ半減期の尺度である、請求項１に記載の方法。
【請求項４】
前記トランスサイトーシスの尺度が、トランスサイトーシスの速度である、請求項１〜３のいずれか一項に記載の方法。
【請求項５】
前記トランスサイトーシスの尺度が、トランスサイトーシスされている分子（１つ又は複数）の量の尺度である、請求項１〜３のいずれか一項に記載の方法。
【請求項６】
前記トランスサイトーシスの尺度が、第１のチャンバー内の溶液から第２のチャンバー内の溶液への分子（１つ又は複数）のトランスサイトーシスを測定することによって決定され、ここで、前記第１及び第２のチャンバーは、細胞単層によって分離され、各チャンバー内の前記溶液は、生理的ｐＨである、請求項１に記載の方法。
【請求項７】
前記細胞又は複数の細胞が、メイディン・ダービー・イヌ腎臓（ＭＤＣＫ）細胞である、請求項１に記載の方法。
【請求項８】
前記細胞が、少なくとも１つの異種遺伝子を含む、請求項１又は７に記載の方法。
【請求項９】
前記少なくとも１つの異種遺伝子が、ＦＣＧＲＴ遺伝子及びＢ２Ｍ遺伝子からなる群より選択される、請求項８に記載の方法。
【請求項１０】
前記細胞が異種細胞表面タンパク質を発現する、請求項２〜９のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１１】
前記異種細胞表面タンパク質が、新生児Ｆｃ受容体（ＦｃＲｎ）を含む、請求項１０に記載の方法。
【請求項１２】
分子のトランスサイトーシスを測定することが、酵素結合免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）、液体シンチレーション計数（ＬＳＣ）、定量的ＰＣＲ又は蛍光リーダーシステムの使用を含む、請求項１〜１１のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１３】
さらに、測定された前記分子の数に基づいて、前記分子のｉｎ  ｖｉｖｏクリアランスを決定するステップを含む、請求項１〜１２のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１４】
前記分子が、ＦｃＲｎと自然に結合する分子である、請求項１〜１３のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１５】
前記分子が、ＦｃＲｎと結合するように操作されている、請求項１〜１３のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１６】
前記分子が、Ｆｃ含有分子である、請求項１〜１５のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１７】
前記Ｆｃ含有分子が、受容体Ｆｃ融合分子である、請求項１６に記載の方法。
【請求項１８】
前記分子が、抗体である、請求項１６のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１９】
前記抗体が、モノクローナル抗体である、請求項１８に記載の方法。
【請求項２０】
前記分子が、アルブミン含有分子である、請求項１〜１９のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２１】
前記生理的ｐＨ値が、約７．４である、請求項１〜２０のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２２】
複数の単一分子又は複数の異なった分子の経細胞輸送を測定するための方法であって、
ａ）前記複数の単一分子又は前記複数の異なった分子を２つのチャンバーのうちの第１に導入するステップであって、ここで、前記第１のチャンバーは、細胞又は複数の細胞によって第２のチャンバーから分離され、前記第１及び第２のチャンバーのそれぞれは生理的ｐＨ値を有する、ステップと、
ｂ）前記第１のチャンバーから前記第２のチャンバーへトランスサイトーシスされた分子の数を測定するステップとを含む、方法。
【請求項２３】
前記第１のチャンバーが、細胞の単層を含む、請求項２２に記載の方法。
【請求項２４】
前記細胞が、メイディン・ダービー・イヌ腎臓（ＭＤＣＫ）細胞である、請求項２２又は２３に記載の方法。
【請求項２５】
前記細胞が、少なくとも１つの異種遺伝子を含む、請求項２２〜２４のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２６】
前記少なくとも１つの異種遺伝子が、ＦＣＧＲＴ遺伝子及びＢ２Ｍ遺伝子からなる群より選択される、請求項２５に記載の方法。
【請求項２７】
前記細胞が異種細胞表面タンパク質を発現する、請求項２２〜２６のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２８】
前記異種細胞表面タンパク質が、新生児Ｆｃ受容体（ＦｃＲｎ）を含む、請求項２７に記載の方法。
【請求項２９】
経細胞輸送された分子の数を測定することが、酵素結合免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）、液体シンチレーション計数（ＬＳＣ）、定量的ＰＣＲ又は蛍光リーダーシステムの使用を含む、請求項２２〜２８のいずれか一項に記載の方法。
【請求項３０】
さらに、測定された前記分子の数に基づいて、前記分子のｉｎ  ｖｉｖｏクリアランスを決定するステップを含む、請求項２２〜２９のいずれか一項に記載の方法。
【請求項３１】
前記分子が、ＦｃＲｎと自然に結合する分子である、請求項２２〜３０のいずれか一項に記載の方法。
【請求項３２】
前記分子が、ＦｃＲｎと結合するように操作されている、請求項２２〜３１のいずれか一項に記載の方法。
【請求項３３】
前記分子が、Ｆｃ含有分子である、請求項２２〜３２のいずれか一項に記載の方法。
【請求項３４】
前記Ｆｃ含有分子が、受容体Ｆｃ融合分子である、請求項３３に記載の方法。
【請求項３５】
前記分子が、抗体である、請求項２２〜３４のいずれか一項に記載の方法。
【請求項３６】
前記抗体が、モノクローナル抗体である、請求項３５に記載の方法。
【請求項３７】
前記分子が、アルブミン含有分子である、請求項２２〜３６のいずれか一項に記載の方法。
【請求項３８】
前記生理的ｐＨ値が、約７．４である、請求項２２〜３７のいずれか一項に記載の方法。
【請求項３９】
分子のｉｎ  ｖｉｖｏクリアランスを決定する方法であって、
ａ）前記分子を２つのチャンバーのうちの第１に導入するステップであって、ここで、前記第１のチャンバーは、細胞又は複数の細胞によって第２のチャンバーから分離され、前記第１及び第２のチャンバーのそれぞれは生理的ｐＨ値を有する、ステップと、
ｂ）前記第１のチャンバーから前記第２のチャンバーへトランスサイトーシスされた分子の数を測定するステップと、
ｃ）測定された前記分子の数に基づいて、前記分子のｉｎ  ｖｉｖｏクリアランスを決定するステップとを含む、方法。
【請求項４０】
前記第１のチャンバーが、細胞の単層を含む、請求項３９に記載の方法。
【請求項４１】
前記細胞が、ＭＤＣＫ細胞である、請求項３９又は４０に記載の方法。
【請求項４２】
前記細胞が、少なくとも１つの異種遺伝子を含む、請求項３９〜４１のいずれか一項に記載の方法。
【請求項４３】
前記少なくとも１つの異種遺伝子が、ＦＣＧＲＴ遺伝子及びＢ２Ｍ遺伝子からなる群より選択される、請求項４２に記載の方法。
【請求項４４】
前記細胞が異種細胞表面タンパク質を発現する、請求項３９〜４３のいずれか一項に記載の方法。
【請求項４５】
前記異種細胞表面タンパク質が、新生児Ｆｃ受容体（ＦｃＲｎ）を含む、請求項４４に記載の方法。
【請求項４６】
経細胞輸送された分子の数を測定することが、酵素結合免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）、液体シンチレーション計数（ＬＳＣ）、定量的ＰＣＲ又は蛍光リーダーシステムの使用を含む、請求項３９〜４５のいずれか一項に記載の方法。
【請求項４７】
前記分子が、ＦｃＲｎと自然に結合する分子である、請求項３９〜４６のいずれか一項に記載の方法。
【請求項４８】
前記分子が、ＦｃＲｎと結合するように操作されている、請求項３９〜４６のいずれか一項に記載の方法。
【請求項４９】
前記分子が、Ｆｃ含有分子である、請求項３９〜４８のいずれか一項に記載の方法。
【請求項５０】
前記Ｆｃ含有分子が、受容体Ｆｃ融合分子である、請求項４９に記載の方法。
【請求項５１】
前記分子が、抗体である、請求項３９〜５０のいずれか一項に記載の方法。
【請求項５２】
前記抗体が、モノクローナル抗体である、請求項５１に記載の方法。
【請求項５３】
前記分子が、アルブミン含有分子である、請求項３９〜５２のいずれか一項に記載の方法。
【請求項５４】
前記生理的ｐＨ値が、約７．４である、請求項３９〜５３のいずれか一項に記載の方法。
【請求項５５】
複数の分子の経細胞輸送を測定するためのアッセイであって、第１のチャンバー及び第２のチャンバーを含み、前記第１及び第２のチャンバーのそれぞれは、生理的ｐＨ値を有し、ここで、前記第１のチャンバーは、複数の分子を受け取り、前記分子を前記第２のチャンバーへ経細胞輸送するように構成され、前記複数の分子の経細胞輸送が測定される、アッセイ。
【請求項５６】
前記第１のチャンバーが、細胞の単層を含む、請求項５５に記載のアッセイ。
【請求項５７】
前記細胞が、ＭＤＣＫ細胞である、請求項５５又は５６に記載のアッセイ。
【請求項５８】
前記細胞が、少なくとも１つの異種遺伝子を含む、請求項５５〜５７のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項５９】
前記少なくとも１つの異種遺伝子が、ＦＣＧＲＴ遺伝子及びＢ２Ｍ遺伝子からなる群より選択される、請求項５８に記載のアッセイ。
【請求項６０】
前記細胞が異種細胞表面タンパク質を発現する、請求項５５〜５９のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項６１】
前記異種細胞表面タンパク質が、新生児Ｆｃ受容体（ＦｃＲｎ）を含む、請求項６０に記載のアッセイ。
【請求項６２】
経細胞輸送された分子の数を測定することが、酵素結合免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）、液体シンチレーション計数（ＬＳＣ）、定量的ＰＣＲ又は蛍光リーダーシステムの使用を含む、請求項５５〜６１のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項６３】
さらに、測定された前記分子の数に基づいて、前記分子のｉｎ  ｖｉｖｏクリアランスを決定するステップを含む、請求項５５〜６２のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項６４】
前記分子が、ＦｃＲｎと自然に結合する分子である、請求項５５〜６３のいずれか一項に記載の方法。
【請求項６５】
前記分子が、ＦｃＲｎと結合するように操作されている、請求項５５〜６２のいずれか一項に記載の方法。
【請求項６６】
前記分子が、Ｆｃ含有分子である、請求項５５〜６５のいずれか一項に記載の方法。
【請求項６７】
前記Ｆｃ含有分子が、受容体Ｆｃ融合分子である、請求項６６に記載の方法。
【請求項６８】
前記分子が、抗体である、請求項５５〜６７のいずれか一項に記載の方法。
【請求項６９】
前記抗体が、モノクローナル抗体である、請求項６８に記載の方法。
【請求項７０】
前記分子が、アルブミン含有分子である、請求項５５〜６９のいずれか一項に記載の方法。
【請求項７１】
前記生理的ｐＨ値が、約７．４である、請求項５５〜７０のいずれか一項に記載の方法。
【請求項７２】
アッセイシステムであって、
ａ）第１のチャンバー及び第２のチャンバーであって、ここで、前記第１及び第２のチャンバーは生理的ｐＨを有する、チャンバーと、
ｂ）細胞が、前記第１のチャンバーに導入された分子の、前記第２のチャンバーへのトランスサイトーシスを介在できるように、前記第１のチャンバー内に位置付けられた前記細胞の単層と、
ｃ）前記第２のチャンバーにおける分子の存在を検出するための検出器とを備える、アッセイシステム。
【請求項７３】
前記細胞が、ＭＤＣＫ細胞である、請求項７２に記載のアッセイシステム。
【請求項７４】
前記細胞が、少なくとも１つの異種遺伝子を含む、請求項７２又は７３に記載のアッセイシステム。
【請求項７５】
前記少なくとも１つの異種遺伝子が、ＦＣＧＲＴ遺伝子及びＢ２Ｍ遺伝子からなる群より選択される、請求項７４に記載のアッセイシステム。
【請求項７６】
前記細胞が異種細胞表面タンパク質を発現する、請求項７２〜７５のいずれか一項に記載のアッセイシステム。
【請求項７７】
前記異種細胞表面タンパク質が、新生児Ｆｃ受容体（ＦｃＲｎ）を含む、請求項７６に記載のアッセイシステム。
【請求項７８】
経細胞輸送された分子の数を測定することが、酵素結合免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）、液体シンチレーション計数（ＬＳＣ）、定量的ＰＣＲ又は蛍光リーダーシステムの使用を含む、請求項７２〜７７のいずれか一項に記載のアッセイシステム。
【発明の詳細な説明】
【関連出願の相互参照】
【０００１】
本出願は、２０１８年８月１７日に出願された米国仮特許出願番号６２／７１９，４０２号に対する優先権を主張するものであり、その内容は参照によりその全体が本明細書に組み込まれている。
【技術分野】
【０００２】
本開示は、分子のトランスサイトーシスを測定するために有用な方法及び組成物に関する。特に、本開示は、ｉｎ  ｖｉｖｏ薬物動態プロファイル、例えば、クリアランス速度、並びに／又は、ＦｃＲｎと相互作用する分子、例えば、治療用抗体、Ｆｃ融合分子及びアルブミンと結合している分子の、半減期を評価するための、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ受容体依存性トランスサイトーシスアッセイに関する。
【背景技術】
【０００３】
治療用モノクローナル抗体（ｍＡｂ）は、様々な疾患の処置におけるそれらの立証された効果及びそれらの望ましい薬理特性により、世界中で主要なクラスの医薬品製品となってきている。ｍＡｂ薬の好都合な薬理特性の１つは、それらの典型的には長い循環半減期である。バイオ治療製品の長期間の半減期は、ケア費用を低減させ、患者のコンプライアンスを改善する、頻度の少ない投薬及び／又はより低用量の薬物、並びにより低い濃度依存性細胞毒性／有害事象を可能にし得る。
【０００４】
動物及びヒトにおけるｍＡｂ薬の薬物動態（ＰＫ）プロファイルを理解することにおいては、著しい進歩がなされてきた。多くのｍＡｂ薬が内因性ＩｇＧに類似する同様のＰＫ挙動を示すのに対し、ヒトにおけるｍＡｂ薬の非特異的クリアランス速度の実質的な不均質性は、一般的に観察される。したがって、望ましいＰＫ特性のための臨床候補の評価及び選択は、薬物開発中の重要な初期ステップである。ｉｎ  ｓｉｌｉｃｏ、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ及びｉｎ  ｖｉｖｏ分析を伴う広範囲の技術が、ヒトにおけるｍＡｂのＰＫ挙動を評価する及び／又は予測するために用いられてきた（Ｄｏｓｔａｌｅｋら、２０１７年、ＭＡｂｓ第９巻（第５号）：第７５６〜７６６頁）。しかしながら、動物からヒトへ及びｉｎ  ｖｉｔｒｏアッセイからｉｎ  ｖｉｖｏ読み出しへのＰＫデータの翻訳は、薬物開発者にとっては分かりにくいままである（Ｖｕｇｍｅｙｓｔｅｒら、２０１２年、Ｗｏｒｌｄ  Ｊ  Ｂｉｏｌ  Ｃｈｅｍ第３巻（第４号）：第７３〜９２頁）。加えて、ヒトＦｃＲｎトランスジェニックマウス（Ａｖｅｒｙ、２０１０年）及び非ヒト霊長類（Ｄｅｎｇら、２０１１年、Ｄｒｕｇ  Ｍｅｔａｂ  Ｄｉｓｐｏｓ第３８巻（第４号）：第６００〜６０５頁）等のいくつかの動物モデルがｍＡｂのヒトＰＫを予想するために首尾よく使用されてきたが、これらの研究は、典型的には、時間がかかり、高価であり、動物の犠牲を伴う。
【０００５】
動物研究及びｉｎ  ｖｉｔｒｏアッセイからｍＡｂのヒトＰＫを予測する際には、多くの複雑さがある。標的介在性の薬物体内動態（ＴＭＤＤ）は、ｍＡｂの用量依存性ＰＫ挙動に影響を及ぼして、非線形分布及び排除をもたらすことが公知である。ＴＭＤＤの非存在下で、ｍＡｂは、標的非依存性の分子特異的な薬物異化作用を反映した線形排除及び非特異的クリアランス速度を示すことが期待される。ｍＡｂの非特異的クリアランスは、新生児Ｆｃ受容体（ＦｃＲｎ）介在性サベージ経路が主要な役割を果たす細網内皮系におけるリソソーム分解によって主に介在される。構造的に、ＦｃＲｎは、主要組織適合性複合体（ＭＨＣ）クラスＩ様分子と相同の膜貫通重鎖（ＦＣＧＲＴ）及び可溶性軽鎖、β２ミクログロブリン（Ｂ２Ｍ）で構成される、ヘテロ二量体である。ＦｃＲｎは、酸性ｐＨ（６．５未満）で内因性ＩｇＧのＦｃドメインと結合するが、中性又は塩基性ｐＨ（７．０超）では最小限のみである。この独自の特性は、ＦｃＲｎがＦｃ含有分子を、細胞への分子の取り込み後に酸性エンドソームにおいて結合することにより分解から保護し、次いで、それらを細胞表面へ輸送して戻し、生理的ｐＨで循環中に放出することを可能にする。対照的に、ＦｃＲｎと結合していない内在化分子は、分解のためにリソソームに向けられる（図６及びＲｏｏｐｅｎｉａｎら、Ｎａｔ  Ｒｅｖ  Ｉｍｍｕｎｏｌ．２００７年９月；第７巻（第９号）：第７１５〜２５頁を参照）。
【０００６】
Ｆｃ含有タンパク質の半減期を延長する際におけるＦｃＲｎの寄与はよく認識されている（Ｗａｒｄ、２０１５年）が、ヒトにおけるｍＡｂ薬についてのＦｃＲｎ結合とＰＫとの間の相関の欠如の報告（Ｓｕｚｕｋｉ、２０１０年；Ｚｈｅｎｇ、２０１１年；Ｈｏｔｚｅｌ、２０１２年）は、ＦｃＲｎに対する結合親和性が、Ｆｃ含有タンパク質の排除率のための唯一の決定要因ではないことを示唆している。細胞内移動におけるＦｃＲｎの機能を考慮すると、Ｆｃ含有分子／ＦｃＲｎ複合体のエンドソーム選別及び移動の動力学は、ＦｃＲｎ介在性サルベージ機序の全体的効率、及びそれ故、分子の非特異的クリアランス速度に影響を及ぼす可能性が高い。加えて、飲作用又はエンドサイトーシスを介する細胞取り込み及びリソソームにおける分解のプロセスは、ｍＡｂ分解の速度及び程度を決定する際にも役割を果たし得る（Ｇｕｒｂａｘａｎｉ、２０１３年）。最後に、電荷／ｐＩ及びグリコシル化パターン等の生化学的特徴は、ｍＡｂ体内動態に影響を及ぼすと報告されている（Ｄａｔｔａ−Ｍａｎｎａｎ、２０１５年；Ｉｇａｗａ、２０１０年；Ｋｈａｗｌｉ、２０１０年）。これらの分子特徴は、ＦｃＲｎとの「真の」相互作用をｉｎ  ｖｉｖｏで変更するように、それら自体がｍＡｂ構造に影響し得るか、又は、内在化のモード／速度並びにリサイクリング及びトランスサイトーシスを含むＦｃＲｎ介在性細胞内移動経路の相対的割合を変更する非特異的細胞表面結合に寄与し得る。
【０００７】
ＩｇＧ  Ｆｃ−ＦｃＲｎ相互作用のモデルを作るために、様々なｉｎ  ｖｉｔｒｏアッセイが開発されてきた。これらのアッセイの多くの本質的制限は、細胞、血漿タンパク質及び細胞外マトリックス（ＥＣＭ）成分、並びに、ｍＡｂのリサイクリング、トランスサイトーシス及びリソソーム分解に関連する細胞内移動パラメーターを伴う、非特異的相互作用の非存在である。好ましくは、ｍＡｂクリアランスの予測のためのｉｎ  ｖｉｔｒｏアッセイは、静電相互作用、Ａｂｓの細胞取り込み、ＦｃＲｎとの相互作用、及び分子の細胞内移動の複合効果を評価することができるであろう。しかしながら、ｍＡｂ体内動態にｉｎ  ｖｉｖｏで影響する複数の要因を考慮すると、ｍＡｂ薬のＰＫ挙動を正確にかつ一貫して予測する単純なｉｎ  ｖｉｔｒｏアッセイを開発することは困難である。
【０００８】
動物モデルの開発も同様に、課題を提示している。ヒトＦｃＲｎトランスジェニックマウス（Ａｖｅｒｙ、２０１０年）及び非ヒト霊長類（Ｄｅｎｇ、２０１１年）等の動物モデルがｍＡｂのヒトＰＫを予想するために首尾よく使用されてきたが、これらの研究は、典型的には、時間がかかり、高価であり、動物の犠牲を伴う。さらに、動物研究からヒトへのＰＫ挙動の翻訳は簡単ではなく、一つには、ＦｃＲｎ結合、ＴＭＤＤ、及び抗薬物免疫応答の誘導における、種差による（Ｌｉｕ、２０１８年）。
【０００９】
故に、治療用分子の評価及び選択を支援するために、短時間で及び合理的な費用で行うことができる、治療用分子のｉｎ  ｖｉｖｏ  ＰＫ特性（例えば、クリアランス又は半減期）を予測するための方法が、依然として必要である。
【発明の概要】
【００１０】
本開示は、目的の分子のトランスサイトーシスを測定するために有用な方法及び組成物に関する。特に、本開示は、ｉｎ  ｖｉｖｏ薬物動態プロファイル、例えば、クリアランス速度、並びに／又は、ＦｃＲｎと相互作用する分子、例えば、治療用抗体、Ｆｃ融合分子及びアルブミンと結合している分子の、半減期を評価するための、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ受容体依存性トランスサイトーシスアッセイに関する。
【００１１】
ある特定の実施形態では、本開示は、目的の分子の薬物動態（ＰＫ）パラメーターを決定するための方法に向けられる。例えば、そのような方法は、生理的ｐＨの条件下、細胞又は複数の細胞を経由する分子又は複数の分子のトランスサイトーシスの尺度を決定するステップを含むことができる。ある特定の実施形態では、ＰＫパラメーターは、分子のｉｎ  ｖｉｖｏクリアランスの尺度である。ある特定の実施形態では、ＰＫパラメーターは、分子のｉｎ  ｖｉｖｏ半減期の尺度である。
【００１２】
ある特定の実施形態では、本明細書で開示される方法に関連して使用されるトランスサイトーシスの尺度は、トランスサイトーシスの速度である。ある特定の実施形態では、トランスサイトーシスの尺度は、トランスサイトーシスされている分子（１つ又は複数）の量の尺度である。
【００１３】
ある特定の実施形態では、トランスサイトーシスの尺度は、第１のチャンバー内の溶液から第２のチャンバー内の溶液への分子（１つ又は複数）のトランスサイトーシスを測定することによって決定され、ここで、第１及び第２のチャンバーは、細胞単層によって分離され、各チャンバー内の溶液は、生理的ｐＨである。ある特定の実施形態では、該細胞又は複数の細胞は、メイディン・ダービー・イヌ腎臓（ＭＤＣＫ）細胞である。ある特定の実施形態では、該細胞は、少なくとも１つの異種遺伝子を含む。ある特定の実施形態では、該少なくとも１つの異種遺伝子は、ＦＣＧＲＴ遺伝子及びＢ２Ｍ遺伝子からなる群より選択される。ある特定の実施形態では、該細胞は、異種細胞表面タンパク質を発現する。ある特定の実施形態では、該異種細胞表面タンパク質は、新生児Ｆｃ受容体（ＦｃＲｎ）を含む。ある特定の実施形態では、分子のトランスサイトーシスを測定することは、酵素結合免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）、液体シンチレーション計数（ＬＳＣ）、定量的ＰＣＲ又は蛍光リーダーシステムの使用を含む。ある特定の実施形態では、本明細書で開示される方法はさらに、測定された分子の数に基づいて、分子のｉｎ  ｖｉｖｏクリアランスを決定するステップを含む。
【００１４】
本開示のある特定の実施形態では、目的の分子は、ＦｃＲｎと自然に結合する分子である。ある特定の実施形態では、該分子は、ＦｃＲｎと結合するように操作されている。ある特定の実施形態では、該分子は、Ｆｃ含有分子である。ある特定の実施形態では、該Ｆｃ含有分子は、受容体Ｆｃ融合分子である。ある特定の実施形態では、該分子は、抗体である。ある特定の実施形態では、該抗体は、モノクローナル抗体である。ある特定の実施形態では、該分子は、アルブミン含有分子である。
【００１５】
ある特定の実施形態では、本開示は、複数の単一分子又は複数の異なった分子の経細胞輸送を測定するための方法であって、ａ）該複数の単一分子又は該複数の異なった分子を２つのチャンバーのうちの第１に導入するステップであって、ここで、第１のチャンバーは、細胞又は複数の細胞によって第２のチャンバーから分離され、該第１及び第２のチャンバーのそれぞれは、生理的ｐＨ値を有する、ステップと、ｂ）該第１のチャンバーから該第２のチャンバーへトランスサイトーシスされた分子の数を測定するステップとを含む、方法に向けられる。ある特定の実施形態では、該第１のチャンバーは、細胞の単層を含む。ある特定の実施形態では、該細胞は、メイディン・ダービー・イヌ腎臓（ＭＤＣＫ）細胞である。ある特定の実施形態では、該細胞は、少なくとも１つの異種遺伝子を含む。ある特定の実施形態では、該少なくとも１つの異種遺伝子は、ＦＣＧＲＴ遺伝子及びＢ２Ｍ遺伝子からなる群より選択される。ある特定の実施形態では、該細胞は、異種細胞表面タンパク質を発現する。ある特定の実施形態では、該異種細胞表面タンパク質は、新生児Ｆｃ受容体（ＦｃＲｎ）を含む。ある特定の実施形態では、経細胞輸送された分子の数を測定することは、酵素結合免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）、液体シンチレーション計数（ＬＳＣ）、定量的ＰＣＲ又は蛍光リーダーシステムの使用を含む。ある特定の実施形態では、本明細書で開示される方法はさらに、測定された分子の数に基づいて、分子のｉｎ  ｖｉｖｏクリアランスを決定するステップを含む。
【００１６】
ある特定の実施形態では、本開示は、分子のｉｎ  ｖｉｖｏクリアランスを決定する方法であって、ａ）分子を、２つのチャンバーのうちの第１に導入するステップであって、ここで、第１のチャンバーは、細胞又は複数の細胞によって第２のチャンバーから分離され、該第１及び第２のチャンバーのそれぞれは、生理的ｐＨ値を有する、ステップと、ｂ）該第１のチャンバーから該第２のチャンバーへトランスサイトーシスされた分子の数を測定するステップと、ｃ）測定された分子の数に基づいて、分子のｉｎ  ｖｉｖｏクリアランスを決定するステップとを含む、方法に向けられる。ある特定の実施形態では、該第１のチャンバーは、細胞の単層を含む。ある特定の実施形態では、該細胞は、ＭＤＣＫ細胞である。ある特定の実施形態では、該細胞は、少なくとも１つの異種遺伝子を含む。ある特定の実施形態では、該少なくとも１つの異種遺伝子は、ＦＣＧＲＴ遺伝子及びＢ２Ｍ遺伝子からなる群より選択される。ある特定の実施形態では、該細胞は、異種細胞表面タンパク質を発現する。ある特定の実施形態では、該異種細胞表面タンパク質は、新生児Ｆｃ受容体（ＦｃＲｎ）を含む。ある特定の実施形態では、経細胞輸送された分子の数を測定することは、酵素結合免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）、液体シンチレーション計数（ＬＳＣ）、定量的ＰＣＲ又は蛍光リーダーシステムの使用を含む。ある特定の実施形態では、該分子は、ＦｃＲｎと自然に結合する分子である。
【００１７】
ある特定の実施形態では、本開示は、複数の分子の経細胞輸送を測定するためのアッセイに向けられる。例えば、限定としてではないが、該アッセイは、第１のチャンバー及び第２のチャンバーを用いることを含むことができ、該第１及び第２のチャンバーのそれぞれは、生理的ｐＨ値を有し、ここで、該第１のチャンバーは、複数の分子を受け取り、該分子を該第２のチャンバーへ経細胞輸送するように構成され、該複数の分子の経細胞輸送が測定される。ある特定の実施形態では、該第１のチャンバーは、細胞の単層を含む。ある特定の実施形態では、該細胞は、ＭＤＣＫ細胞である。ある特定の実施形態では、該細胞は、少なくとも１つの異種遺伝子を含む。ある特定の実施形態では、該少なくとも１つの異種遺伝子は、ＦＣＧＲＴ遺伝子及びＢ２Ｍ遺伝子からなる群より選択される。ある特定の実施形態では、該細胞は、異種細胞表面タンパク質を発現する。ある特定の実施形態では、該異種細胞表面タンパク質は、新生児Ｆｃ受容体（ＦｃＲｎ）を含む。ある特定の実施形態では、経細胞輸送された分子の数を測定することは、酵素結合免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）、液体シンチレーション計数（ＬＳＣ）、定量的ＰＣＲ又は蛍光リーダーシステムの使用を含む。ある特定の実施形態では、該アッセイはさらに、測定された分子の数に基づいて、分子のｉｎ  ｖｉｖｏクリアランスを決定するステップを含む。
【００１８】
ある特定の実施形態では、本開示は、第１のチャンバー及び第２のチャンバーであり、該第１及び第２のチャンバーのそれぞれが、生理的ｐＨを有するチャンバーと、細胞が、該第１のチャンバーに導入された分子の、該第２のチャンバーへのトランスサイトーシスを介在できるように、該第１のチャンバー内に位置付けられた細胞の単層と、該第２のチャンバーにおける分子の存在を検出するための検出器とを備える、アッセイシステムに向けられる。ある特定の実施形態では、該細胞は、ＭＤＣＫ細胞である。ある特定の実施形態では、該細胞は、少なくとも１つの異種遺伝子を含む。ある特定の実施形態では、該少なくとも１つの異種遺伝子は、ＦＣＧＲＴ遺伝子及びＢ２Ｍ遺伝子からなる群より選択される。ある特定の実施形態では、該細胞は、異種細胞表面タンパク質を発現する。ある特定の実施形態では、該異種細胞表面タンパク質は、新生児Ｆｃ受容体（ＦｃＲｎ）を含む。ある特定の実施形態では、経細胞輸送された分子の数を測定することは、酵素結合免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）、液体シンチレーション計数（ＬＳＣ）、定量的ＰＣＲ又は蛍光リーダーシステムの使用を含む。
【図面の簡単な説明】
【００１９】
【図１】図１は、本開示のトランスサイトーシスアッセイのある特定の実施形態の概略図を描写する。
【図２Ａ−２Ｂ】図２Ａ〜図２Ｂは、トランスフェクトされたクローンＭＤＣＫ細胞株３０５−６におけるヒトＦｃＲｎ重鎖及びベータ２−ミクログロブリンの発現を描写する。ＷＴ及び３０５−６細胞ついてのＢ２Ｍ（Ａ）及びＦＣＧＲＴ（Ｂ）の細胞表面発現のフローサイトメトリーヒストグラム。
【００２０】
【図３Ａ−３Ｅ】図３Ａ〜図３Ｅは、ヒトにおけるクリアランス（ｍＫ／Ｋｇ／日での速度）と、トランスサイトーシス値（Ａ；ｎｇ／ｍＬでの濃度）、ｐＨ６．０におけるＦｃＲｎ結合親和性（Ｂ；ＭでのＫｄ）又はＢＶ  ＥＬＩＳＡスコア（Ｃ）のいずれかとの間の関係を描写する散布図を示す。加えて、カニクイザルにおけるｍＡｂのクリアランス速度（ｍＫ／Ｋｇ／日での速度）を、トランスサイトーシス値（Ｄ）又はヒトにおけるクリアランス速度（Ｅ）のいずれかに対してプロットした。データを線形回帰モデルに当てはめ、方程式及びＲ二乗値の両方が提示されている。
【図４Ａ−４Ｃ】図４Ａ〜図４Ｃは、ヒトにおけるクリアランスとＭＤＣＫ細胞（Ａ）又はＭＤＣＫ−ｈＦｃＲｎ細胞（Ｂ）におけるいずれかのトランスサイトーシスとの間の関係、並びに、ＭＤＣＫ−ｈＦｃＲｎ細胞との結合とＭＤＣＫ−ｈＦｃＲｎ細胞におけるトランスサイトーシスとの間の関係（Ｃ）を示す。
【図５Ａ−５Ｃ】図５Ａ〜図５Ｃは、ヒトにおけるクリアランスと、電荷（Ａ）、ｐＩ（Ｂ）、又はｍＡｂのトランスサイトーシス出力（Ｃ）のいずれかとの間の関係を示す。
【図６】図６は、内在化分子の潜在的な運命の概略図を描写する。
【発明を実施するための形態】
【００２１】
現在開示されている主題を実践する際には、分子生物学、微生物学、細胞生物学、生化学及び免疫学における多くの従来の技法が使用される。これらの技法は、例えば、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ：ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ第３版、Ｊ．Ｆ．Ｓａｍｂｒｏｏｋ及びＤ．Ｗ．Ｒｕｓｓｅｌｌ編、Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｐｒｅｓｓ  ２００１年；Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ  Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ  ｆｏｒ  Ｉｍｍｕｎｏｔｈｅｒａｐｙ、Ｍｅｌｖｙｎ  Ｌｉｔｔｌｅ編、Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ  Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ  Ｐｒｅｓｓ  ２００９年；「Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ  Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ」（Ｍ．Ｊ．Ｇａｉｔ編、１９８４年）；「Ａｎｉｍａｌ  Ｃｅｌｌ  Ｃｕｌｔｕｒｅ」（Ｒ．Ｉ．Ｆｒｅｓｈｎｅｙ編、１９８７年）；「Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ」（Ａｃａｄｅｍｉｃ  Ｐｒｅｓｓ，Ｉｎｃ．）；「Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ」（Ｆ．Ｍ．Ａｕｓｕｂｅｌら編、１９８７年、及び定期的更新）；「ＰＣＲ：Ｔｈｅ  Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ  Ｃｈａｉｎ  Ｒｅａｃｔｉｏｎ」（Ｍｕｌｌｉｓら編、１９９４年）；「Ａ  Ｐｒａｃｔｉｃａｌ  Ｇｕｉｄｅ  ｔｏ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ」（Ｐｅｒｂａｌ  Ｂｅｒｎａｒｄ  Ｖ．、１９８８年）；「Ｐｈａｇｅ  Ｄｉｓｐｌａｙ：Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ」（Ｂａｒｂａｓら、２００１年）においてより詳細に記述されている。これらの参考文献、並びに、製造業者の使用説明書を含む、当業者に広く公知でありかつ信頼されている標準プロトコールを含有する他の参考文献の内容は、参照により本開示の一部として本明細書に組み込まれている。
【００２２】
１．定義
別段の定義がない限り、本明細書で使用される全ての技術用語、表記、及び他の科学用語は、本開示が関係する当業者によって一般的に理解される意味を有することを意図する。いくつかの場合において、一般的に理解される意味を有する用語は、明確性及び／又は容易な参照のために本明細書に定義され、本明細書にそのような定義を含めることは、必ずしも、当技術分野において一般的に理解されるものに対する実質的な相違を表すと解釈されるべきではない。
【００２３】
本明細書で使用する場合、用語「を含む（ｃｏｍｐｒｉｓｅ（ｓ）／ｉｎｃｌｕｄｅ（ｓ））」、「を有する（ｈａｖｉｎｇ／ｈａｓ）」、「することができる」、「を含有する」、及びこれらの変形は、更なる作用又は構造物の可能性を排除しない、オープンエンドの移行句、用語、又は単語であることが意図される。単数形「ａ」、「ａｎ」、及び「ｔｈｅ」は、文脈が別途明確に指示しない限り、複数の指示対象を含む。本開示はまた、明示的に記載されているかいないかに関わらず、本明細書にて提示される実施形態又は要素「を含む」、「からなる」、及び「から本質的になる」他の実施形態を想到する。
【００２４】
本明細書で使用する場合、用語「約」又は「およそ」とは、当業者によって決定される特定の値の許容できる誤差範囲を意味し、これは、その値がどのように測定又は決定されるか、すなわち、測定システムの限界に部分的に依存する。例えば、「約」とは、ある特定の実施形態では、当該技術分野での１回の実施当たり３つ又は３つよりも多くの標準偏差以内を意味し得る。あるいは、「約」とは、ある特定の実施形態では、所与の値の最大２０％、最大１０％、最大５％、又は最大１％の範囲を意味し得る。あるいは、特に生物学的システム又はプロセスに関して、この用語は、値の１桁以内、例えば５倍以内、又は２倍以内を意味し得る。
【００２５】
本明細書で使用する場合、用語「培地」及び「細胞培養培地」は、細胞を成長させる又は維持するために使用される栄養源を指す。当業者には理解されるように、該栄養源は、成長及び／若しくは生残のために細胞によって必要とされる成分を含有してよく、又は細胞成長及び／若しくは生残を支援する成分を含有してよい。ビタミン、必須又は非必須アミノ酸（例えば、システイン及びシスチン）、及び微量元素（例えば、銅）は、培地成分の例である。本明細書で提供される任意の培地は、インスリン、植物加水分解物及び動物加水分解物のうちのいずれか１つ又は複数を補充したものであってもよい。
【００２６】
本明細書で使用する場合、語句「薬物動態（ＰＫ）パラメーター」は、クリアランス（ＣＬ）、半減期（ｔ１／２）、曲線下面積（ＡＵＣ）、分布容積（Ｖｄ）及び最大／最小血漿濃度（Ｃｍａｘ／Ｃ分）を含むが、これらに限定されない、当技術分野において公知の様々なＰＫパラメーターのいずれかを指す。
【００２７】
本明細書で使用する場合、用語「クリアランス」は、分子又はポリペプチドが血流から除去される速度を指す。
【００２８】
本明細書で使用する場合、用語「生理的ｐＨ」は、約６．５から約８．０のｐＨを指す。ある特定の実施形態では、生理的ｐＨ値は、約６．５から約８．０の間の任意の値、例えば、約６．６、約６．７、約６．８、約６．９、約７．０、約７．１、約７．２、約７．３、約７．４、約７．５、約７．６，約７．７、約７．８若しくは約７．９、又は約６．５から約８．０の範囲内の任意の範囲である。
【００２９】
細胞を「培養すること」とは、細胞を、細胞の生残及び／又は成長及び／又は増殖に好適な条件下にて、細胞培養培地と接触させることを意味する。
【００３０】
本明細書で使用する場合、「分子」は、一般に、アッセイの対象である分子を指す。例えば、限定としてではないが、該分子は、以下で定義される通りのアルブミン含有分子、ペプチドタグ若しくは他のアミノ酸配列を介してＦｃＲｎと結合するように操作された分子、抗体、抗体断片、又はポリクローナル若しくはモノクローナル抗体等であるが、これらに限定されない、ＦｃＲｎと自然に結合する又はＦｃＲｎと結合するように操作されている任意の分子であり得る。そのようなポリペプチド、タンパク質、抗体、抗体断片又はポリクローナル若しくはモノクローナル抗体は、天然に存在しないアミノ酸、非アミノ酸リンカー又はスペーサーを含むが、これらに限定されない、天然に存在しない態様を含み得、他の組成物、例えば、小分子又は大分子治療薬とのコンジュゲートを含み得る。
【００３１】
本明細書で使用する場合、「ポリペプチド」とは一般に、約１０個を超えるアミノ酸を有するペプチド及びタンパク質を意味する。ポリペプチドは、宿主細胞に相同であることができる、又は好ましくは、外因性であることができる。後者は、利用される宿主細胞、例えば、チャイニーズハムスター卵巣細胞により産生されるヒトタンパク質、又は、哺乳動物細胞により産生される酵母ポリペプチドに対して異種である、すなわ、外部のものである、ということを意味する。ある特定の実施形態では、哺乳動物ポリペプチド（元々、哺乳動物生命体に由来したポリペプチド）が使用され、ある特定の実施形態では、本発明のポリペプチドが培地に直接分泌される。
【００３２】
用語「タンパク質」とは、鎖長が、より高度の三級及び／又は四級構造を産生するのに十分であるアミノ酸の配列を指すことを意味する。これは、「ペプチド」、又は、このような構造を有しない他の低分子量薬剤から、区別するためのものである。典型的には、本明細書のタンパク質は、少なくとも約１５〜２０ｋＤ、ある特定の実施形態では、少なくとも約２０ｋＤの分子量を有する。本明細書の定義に包含されるタンパク質の例としては、全ての哺乳動物タンパク質、特に、治療用及び診断用抗体などの治療用及び診断用タンパク質、並びに、１つ以上の鎖間及び／又は鎖内ジスルフィド結合を含む多鎖ポリペプチドを含む、１つ以上のジスルフィド結合を含有する一般的なタンパク質が挙げられる。
【００３３】
「抗体」という用語は、本明細書で最も広義に使用され、所望の抗原結合活性を示す、多重特異性抗体例えば、二重特異性抗体及び抗体断片を含むが、これらに限定されない、種々の抗体構造を包含する。
【００３４】
本明細書で使用する場合、抗体の「抗体断片」、「抗原結合部」（若しくは単に「抗体部」）、又は、抗体の「抗原結合断片」とは、抗原及び／又はエピトープに結合するインタクトな抗体の一部を含むインタクトな抗体以外の分子を意味する。抗体断片の例としては、Ｆｖ、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆａｂ’−ＳＨ、Ｆ（ａｂ’）２；二重特異性抗体；直鎖抗体；一本鎖抗体分子（例えばｓｃＦｖ）；及び、多重特異性、例えば、二重特異性抗体から形成される抗体断片が挙げられるが、これらに限定されない。
【００３５】
用語「モノクローナル抗体」又は「ｍＡｂ」とは、本明細書で使用する場合、実質的に均一な抗体の集合から得られる抗体を指す。すなわち、集合に含まれる個々の抗体が、同一であり、及び／又は同じエピトープに結合するが、但し、例えば、天然に存在する変異又はモノクローナル抗体製剤の製造中に生じる変異を含む、可能なバリアント抗体は除く。このようなバリアントは、一般的に、少量存在する。典型的には異なる決定基（エピトープ）に対して指向する異なる抗体を含むポリクローナル抗体製剤とは対照的に、モノクローナル抗体製剤のそれぞれのモノクローナル抗体は、１つの抗原上の単一の決定基に対して指向する。したがって、修飾詞「モノクローナル」は、抗体の実質的に均一な集合から得られる抗体の特徴を示し、任意の特定の方法による抗体の産生を必要とするように構築されない。例えば、本願で開示された主題に従って使用されるモノクローナル抗体は、ハイブリドーマ法、組み換えＤＮＡ法、ファージディスプレイ法、及びヒト免疫グロブリン遺伝子座の全て又は一部を含有するトランスジェニック動物を利用する方法を含むが、これらに限定されない様々な技法によって作製することができ、かかる方法及び他の例示のモノクローナル抗体の作製方法は、本明細書に記載されている。
【００３６】
用語「ハイブリドーマ」とは、免疫原の不死化細胞株と、抗体産生細胞との融合により産生される、ハイブリッド細胞株を意味する。この用語は、ヒト細胞とマウス骨髄腫細胞株とを融合した後、トリオーマ細胞株として一般に知られる形質細胞と融合した結果である、ヘテロハイブリッド骨髄腫融合物の後代を包含する。さらに、この用語は、抗体を産生する、あらゆる不死化ハイブリッド細胞株、例えばクアドローマなどを含むことを意味する。例えば、Ｍｉｌｓｔｅｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ，５３７：３０５３（１９８３）を参照のこと。
【００３７】
本明細書で使用する場合、用語「細胞」とは、動物細胞、哺乳動物細胞、培養細胞、宿主細胞、組み換え細胞、及び組み換え宿主細胞を意味する。このような細胞は一般に、適切な栄養素及び／又は成長因子を含有する培地に配置されたときに、増殖及び生残可能な哺乳動物組織から入手される、又はその組織に由来する細胞株である。
【００３８】
本明細書で使用する場合、用語「異種遺伝子」は、チャイニーズハムスター卵巣細胞により産生されるヒトタンパク質をコードしている遺伝子、又は哺乳動物細胞において産生される酵母ポリペプチドをコードしている遺伝子等、利用されている宿主細胞に対して外部のものであるタンパク質をコードしている遺伝子を指す。
【００３９】
２．概要
本開示は、目的の分子のトランスサイトーシスを測定するために有用な方法及び組成物に関する。特に、本開示は、治療用抗体分子のクリアランス速度及び／又は半減期等のＰＫパラメーターを評価するためのｉｎ  ｖｉｔｒｏ受容体依存性トランスサイトーシスアッセイに関する。本明細書で詳細に開示されるように、本開示の方法によって測定される目的の分子（例えば、ｍＡｂ）のトランスサイトーシスは、当該分子のｉｎ  ｖｉｖｏクリアランス等の細胞のＰＫ特性と高度に関連する。故に、目的の分子のトランスサイトーシスを測定するための特許請求されている方法は、該分子のｉｎ  ｖｉｖｏクリアランス及び半減期等の他のＰＫパラメーターを評価するために使用され得る。ある特定の実施形態では、該方法は、複数の同じ目的の分子の、第１のチャンバーから第２のチャンバーへの経細胞輸送を測定するステップを含み、ここで、該第１及び第２のチャンバーのそれぞれは、生理的ｐＨ値（例えば、ｐＨ＝約７．４）を有する。
【００４０】
故に、例えば、一態様では、ヒトＦｃＲｎ及びβ２−ミクログロブリン遺伝子を安定的に発現しているＭＤＣＫ細胞を用いる細胞ベースのアッセイは、本明細書にて、ＦｃＲｎ介在性ＩｇＧサルベージ経路に関連する条件下で、モノクローナル抗体（ｍＡｂ）薬のトランスサイトーシス効率を測定するために提供される。このトランスサイトーシスアッセイは、生理的ｐＨ条件下で行われ、ＩｇＧの細胞との非特異的結合、飲作用を介するその取り込み、ＦｃＲｎとのそのｐＨ依存性相互作用、並びに細胞内移動及び選別プロセスの動力学の複合効果からの成果を評価するように設計される。実施例にてさらに詳細に記述されるように、本発明者らは、２７種の市販されているｍＡｂ薬を含む４９種のｍＡｂを評価し、ヒトにおけるクリアランス速度と本明細書で開示されるもの等のアッセイからの読み出しとの間に注目に値する相関があることを実証した。ＦｃＲｎの発現は、アッセイにおいてｍＡｂのトランスサイトーシスを促進するために必要とされ、観察される相関に直接寄与する。さらに、本明細書で提供されるもの等のアッセイは、前臨床種におけるＦｃ含有分子の電荷又はグリコシル化バリアントのクリアランス速度を正しく順位付けすることができた。実施例にて提供される結果は、リード選択及び最適化、並びに所望の薬物動態特性のためのプロセス開発中における、ｍＡｂベースの薬物候補の評価のための費用効果が高くかつ動物を救うスクリーニングツールとして、本明細書で開示されるアッセイの有用性を裏付けるものである。
【００４１】
３．トランスサイトーシスアッセイ
細胞の片側から他側への巨大分子の小胞輸送を指すトランスサイトーシスは、２つの環境間で、それらの環境の独自の組成を変更することなく、材料を選択的に動かすために、多細胞生物によって使用される戦略である。トランスサイトーシスは、細胞が細胞外物質を細胞膜の陥入に封入して小胞を形成し、次いで、該細胞を越えて該小胞を動かして、逆のプロセスにより反対側の細胞膜を経由して該物質を噴出する、経細胞輸送のための機序である。
【００４２】
典型的なＦｃＲｎ介在性トランスサイトーシスアッセイでは、ＦｃＲｎ発現ＭＤＣＫ細胞を、トランスウェルプレート内のフィルタ膜上で集密度まで成長させ、アッセイの前に、内部チャンバーを酸性アッセイ緩衝液（ｐＨ＜６．０）で及び外部チャンバーを塩基性アッセイ緩衝液（ｐＨ＞７．４）で充填することによってｐＨ勾配を作成する。このアッセイ設計の根拠は、酸性ｐＨ下での細胞表面上のＦｃＲｎとの結合を介する試験分子の細胞取り込み及び塩基性ｐＨ下での試験分子の放出を容易にするために、ＦｃＲｎのｐＨ依存性結合特徴を活用することであり、これらはいずれも、アッセイの堅牢性及び感受性を改善する。しかしながら、本発明者らは、本明細書で記述されている研究に基づき、そのようなアッセイが、ｍＡｂのＰＫ挙動の予測評価のためには本質的な欠陥があることを認識するようになった。トランスフェクトされた細胞は、典型的には細胞表面上に高レベルのＦｃＲｎを発現し、試験抗体は酸性環境で細胞とともにインキュベートされたものであるため、酸性ｐＨでＦｃＲｎに対して高い結合親和性を示す試験抗体は、ＦｃＲｎと容易に結合し、ＦｃＲｎ介在性エンドサイトーシスを介して細胞に入ると判断された。また、本発明者らは、これが、抗体が生理的ｐＨ下で細胞表面ＦｃＲｎと最小限結合するｉｎ  ｖｉｖｏで起こるものと対照的であり、ｍＡｂの細胞取り込みは主として非特異的液相飲作用によって介在されると判断した。結果として、本発明者らは、ｐＨ勾配トランスサイトーシスアッセイの出力が、酸性ｐＨにおける抗体のＦｃＲｎ結合親和性によって重く影響され、したがって、静電相互作用及び細胞内移動パラメーター等のＰＫに影響を及ぼす他の要因の寄与を十分に反映する可能性は低いと判断した。加えて、さらに、人工的なｐＨ条件は、アッセイの持続時間を限定する、細胞に対して本質的に有害なものであり、更なるアッセイアーチファクトを潜在的に作成し得ると判断された。
【００４３】
したがって、実施例にてさらに詳細に記述されるように、本発明者らは、次いで、クリアランス及び／又は半減期等のＰＫパラメーターの尺度を正確に決定するための基礎として、トランスサイトーシスを測定するための異なるアプローチを開発した。故に、例えば、ある特定の実施形態では、本開示は、複数の単一分子又は複数の異なった分子の経細胞輸送を測定するための方法であって、ａ）該複数の単一分子又は複数の異なった分子を第１のチャンバーに導入するステップであって、ここで、第１のチャンバーは、細胞又は複数の細胞によって第２のチャンバーから分離され、該第１及び第２のチャンバーのそれぞれは、生理的ｐＨ値を有する、ステップと、ｂ）該第１のチャンバーから該第２のチャンバーへトランスサイトーシスされた分子の数を測定するステップとを含む、方法を提供する。ある特定の実施形態では、該生理的ｐＨ値は、約６．５から約８．０である。ある特定の実施形態では、該生理的ｐＨ値は、約６．５から約８．０の間の任意の値、例えば、約６．６、約６．７、約６．８、約６．９、約７．０、約７．１、約７．２、約７．３、約７．４、約７．５、約７．６、約７．７、約７．８若しくは約７．９、又は約６．５から約８．０の範囲内の任意の範囲である。ある特定の実施形態では、各チャンバーのｐＨは、両方のチャンバーが生理的ｐＨを有する限り、異なり得る。例えば、限定としてではないが、該第１のチャンバーは、６．５のｐＨを有し得るのに対し、該第２のチャンバーは、８．０のｐＨを有し得る、又は逆も然りである。ある特定の実施形態では、該生理的ｐＨは、約７．４であり得る。
【００４４】
ある特定の実施形態では、本開示は、分子の薬物動態（ＰＫ）パラメーターを決定するための方法であって、生理的ｐＨの条件下、細胞又は複数の細胞を経由する該分子又は複数の該分子のトランスサイトーシスの尺度を決定するステップを含む、方法を提供する。ある特定の実施形態では、ＰＫパラメーターは、分子のｉｎ  ｖｉｖｏクリアランスの尺度であり得る。ある特定の実施形態では、ＰＫパラメーターは、分子のｉｎ  ｖｉｖｏ半減期の尺度であり得る。ある特定の実施形態では、トランスサイトーシスの尺度は、トランスサイトーシスの速度であり得る。ある特定の実施形態では、トランスサイトーシスの尺度は、トランスサイトーシスされている分子（１つ又は複数）の量の尺度であり得る。ある特定の実施形態では、トランスサイトーシスの尺度は、第１のチャンバー内の溶液から第２のチャンバー内の溶液への分子（１つ又は複数）のトランスサイトーシスを測定することによって決定され得、ここで、第１及び第２のチャンバーは、細胞単層によって分離され、各チャンバー内の溶液は、生理的ｐＨである。ある特定の実施形態では、該細胞又は複数の細胞は、メイディン・ダービー・イヌ腎臓（ＭＤＣＫ）細胞であり得る。ある特定の実施形態では、該細胞は、少なくとも１つの異種遺伝子を含む。ある特定の実施形態では、該少なくとも１つの異種遺伝子は、ＦＣＧＲＴ遺伝子及びＢ２Ｍ遺伝子からなる群より選択され得る。ある特定の実施形態では、該細胞は、異種細胞表面タンパク質を発現し得る。ある特定の実施形態では、該異種細胞表面タンパク質は、新生児Ｆｃ受容体（ＦｃＲｎ）を含み得る。ある特定の実施形態では、分子のトランスサイトーシスを測定することは、酵素結合免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）、液体シンチレーション計数（ＬＳＣ）、定量的ＰＣＲ又は蛍光リーダーシステムの使用を含み得る。ある特定の実施形態では、本開示の方法はさらに、測定された分子の数に基づいて、分子のｉｎ  ｖｉｖｏクリアランスを決定するステップを含み得る。ある特定の実施形態では、該分子は、ＦｃＲｎと自然に結合する分子又はＦｃＲｎと結合するように操作されている分子であり得る。ある特定の実施形態では、該分子は、Ｆｃ含有分子であり得る。ある特定の実施形態では、該分子は、抗体であり得る。ある特定の実施形態では、該抗体は、モノクローナル抗体であり得る。ある特定の実施形態では、該分子は、アルブミン含有分子であり得る。ある特定の実施形態では、該生理的ｐＨ値は、約６．５から約８．０である。ある特定の実施形態では、該生理的ｐＨ値は、約６．５から約８．０の間の任意の値、例えば、約６．６、約６．７、約６．８、約６．９、約７．０、約７．１、約７．２、約７．３、約７．４、約７．５、約７．６、約７．７、約７．８若しくは約７．９、又は約６．５から約８．０の範囲内の任意の範囲である。ある特定の実施形態では、各チャンバーのｐＨは、両方のチャンバーが生理的ｐＨを有する限り、異なり得る。例えば、限定としてではないが、該第１のチャンバーは、６．５のｐＨを有し得るのに対し、該第２のチャンバーは、８．０のｐＨを有し得る、又は逆も然りである。ある特定の実施形態では、該生理的ｐＨは、約７．４であり得る。
【００４５】
ある特定の実施形態では、アッセイは、細胞（１つ又は複数）を、内部及び外部チャンバー内の培地を加えた９６ウェルトランスウェルプレート上の細胞成長培地中に播種すること、該培地を該内部チャンバーから除去すること、該内部チャンバーに試験分子を添加すること、組織培養インキュベーター内である時間にわたってインキュベートすること、該外部チャンバーから該培地を収集すること、並びに、トランスサイトーシスされた試験分子を定量化することを含む。ある特定の実施形態では、該細胞は、細胞成長培地中に約１×１０５細胞／ウェルの密度で播種され得る。ある特定の実施形態では、該細胞成長培地は、１０％のＦＢＳ、１００単位のペニシリン／ストレプトマイシン、及び５μｇ／ｍＬのＰプロマイシンを補充した、ＤＭＥＭ高グルコースであり得る。ある特定の実施形態では、該内部チャンバー内の該培地は、１００μＬであり得、該外部チャンバー内の該培地は、２００μＬであり得る。ある特定の実施形態では、該細胞は、平板培養後２日目に使用され得る。ある特定の実施形態では、該試験分子は、約１００μｇ／ｍＬ（０．６７μＭ）の最終濃度まで添加され得、３７℃の組織培養インキュベーター内で２４時間にわたってインキュベートされ得る。ある特定の実施形態では、ルシファーイエロー（ルシファーイエローＣＨ、ジリチウム塩；Ｓｉｇｍａ  Ａｌｄｒｉｃｈ；Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ  ＭＯ）が細胞成長培地中で調製され得、２４時間のアッセイインキュベーションの最後の９０分まで添加され得る。ある特定の実施形態では、アッセイ中におけるルシファーイエローの受動的通過のレベルは、外部チャンバー由来の試料における蛍光シグナルを、内部チャンバーのもので割ることによって算出され得る。ある特定の実施形態では、外部チャンバー内に０．１％より大きい受動的通過のルシファーイエローを示したウェルからのトランスサイトーシス結果は、廃棄され得る。
【００４６】
ある特定の実施形態では、該試験分子は、トランスウェルアッセイの外部チャンバーに添加され得、トランスサイトーシスは、適切なインキュベーション期間後、内部チャンバー内に存在する試験分子の量を測定することによって検出され得る。ある特定の実施形態では、該試験分子は、細胞の頂端膜に曝露されたチャンバーから細胞の側底膜に曝露されたチャンバーへトランスサイトーシスされる。
【００４７】
ある特定の実施形態では、本開示は、１個以上の分子のｉｎ  ｖｉｖｏクリアランスを決定する又は予測するための方法であって、ａ）分子を、２つのチャンバーのうちの第１のチャンバーに導入するステップであって、ここで、第１のチャンバーは、細胞又は複数の細胞によって第２のチャンバーから分離され、該第１及び第２のチャンバーのそれぞれは、生理的ｐＨ値を有する、ステップと、ｂ）該第１のチャンバーから該第２のチャンバーへトランスサイトーシスされた分子の数を測定するステップとを含む、方法を提供する。ある特定の実施形態では、該生理的ｐＨ値は、約６．５から約８．０である。ある特定の実施形態では、該生理的ｐＨ値は、約６．５から約８．０の間の任意の値、例えば、約６．６、約６．７、約６．８、約６．９、約７．０、約７．１、約７．２、約７．３、約７．４、約７．５、約７．６、約７．７、約７．８若しくは約７．９、又は約６．５から約８．０の範囲内の任意の範囲である。ある特定の実施形態では、各チャンバーのｐＨは、両方のチャンバーが生理的ｐＨを有する限り、異なり得る。例えば、限定としてではないが、該第１のチャンバーは、６．５のｐＨを有し得るのに対し、該第２のチャンバーは、８．０のｐＨを有し得る、又は逆も然りである。ある特定の実施形態では、該生理的ｐＨは、約７．４であり得る。
【００４８】
ある特定の実施形態では、本開示は、複数の同じ分子又は複数の異なった分子の経細胞輸送を測定するためのアッセイであって、第１のチャンバー及び第２のチャンバーを含み、該第１及び第２のチャンバーのそれぞれは、生理的ｐＨ値を有し、ここで、該第１のチャンバーは、複数の該分子を受け取り、該分子の該第２のチャンバーへのトランスサイトーシスを可能にするように構成される、アッセイを提供する。ある特定の実施形態では、該生理的ｐＨ値は、約６．５から約８．０である。ある特定の実施形態では、該生理的ｐＨ値は、約６．５から約８．０の間の任意の値、例えば、約６．６、約６．７、約６．８、約６．９、約７．０、約７．１、約７．２、約７．３、約７．４、約７．５、約７．６、約７．７、約７．８若しくは約７．９、又は約６．５から約８．０の範囲内の任意の範囲である。ある特定の実施形態では、各チャンバーのｐＨは、両方のチャンバーが生理的ｐＨを有する限り、異なり得る。例えば、限定としてではないが、該第１のチャンバーは、６．５のｐＨを有し得るのに対し、該第２のチャンバーは、８．０のｐＨを有し得る、又は逆も然りである。ある特定の実施形態では、該生理的ｐＨは、約７．４であり得る。
【００４９】
ある特定の実施形態では、本開示は、１個以上の分子のｉｎ  ｖｉｖｏクリアランスを決定する又は予測するためのアッセイであって、第１のチャンバー及び第２のチャンバーを含み、該第１及び第２のチャンバーのそれぞれは、生理的ｐＨ値を有し、ここで、該第１のチャンバーは、複数の該分子を受け取り、該分子の該第２のチャンバーへのトランスサイトーシスを可能にするように構成される、アッセイを提供する。ある特定の実施形態では、該生理的ｐＨ値は、約７．４である。
【００５０】
ある特定の実施形態では、該第１のチャンバーは、細胞の単層を含み得る。ある特定の実施形態では、該アッセイで用いられる細胞は、以下の第３項で提供される一覧から選択される。ある特定の実施形態では、該アッセイで用いられる細胞は、ＭＤＣＫ細胞である。
【００５１】
ある特定の実施形態では、本開示にて記述される方法で使用される細胞は、少なくとも１つの異種遺伝子を含み得る。ある特定の実施形態では、該少なくとも１つの異種遺伝子は、ＦＣＧＲＴ遺伝子及びＢ２Ｍ遺伝子からなる群より選択され得る。
【００５２】
ある特定の実施形態では、本開示にて記述される方法で使用される細胞は、細胞表面タンパク質を発現し得る。ある特定の実施形態では、該細胞表面タンパク質は、Ｆｃ受容体（ＦｃＲ）を含む。ある特定の実施形態では、該細胞表面タンパク質は、新生児Ｆｃ受容体（ＦｃＲｎ）を含む。
【００５３】
ある特定の実施形態では、該分子は、標識されているか又は非標識であり得る。標識分子の非限定的な例は、３Ｈ−標識、蛍光標識分子、又は放射性同位元素、例えば、Ｉ−１２５及びＰ−３２を含む。
【００５４】
ある特定の実施形態では、本開示の方法は、経細胞輸送された分子の数を測定するステップを含む。ある特定の非限定的な実施形態では、経細胞輸送された分子の数を測定することは、酵素結合免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）、液体シンチレーション計数（ＬＳＣ）、定量的ＰＣＲ、蛍光リーダーシステム、共焦点顕微鏡又は生細胞イメージングシステムによって実施され得る。
【００５５】
ある特定の実施形態では、本開示は、ＦｃＲｎ−介在性ＩｇＧサルベージ経路に類似した条件下、ヒトＦｃＲｎ及びＢ２Ｍを発現しているＭＤＣＫ細胞を経由する、ｍＡｂ、例えばＩｇＧ  ｍＡｂのトランスサイトーシスを測定するためのＦｃＲｎ依存性細胞ベースのアッセイを提供する。ある特定の実施形態では、このアッセイの出力は、生理的条件におけるＦｃ−ＦｃＲｎ相互作用だけではなく、ｍＡｂのｉｎ  ｖｉｖｏ  ＰＫ挙動に属する、非特異的結合、細胞取り込み、選別及び細胞内移動プロセスも伴う。
【００５６】
ある特定の実施形態では、本開示は、本開示にて記述されるアッセイで測定されたトランスサイトーシスを、多様な構造、機能及び薬理特性を持つポリペプチド等の分子の、ヒトにおいて報告されたクリアランス速度と相関させるための方法を提供する。
【００５７】
ある特定の実施形態では、ＦｃＲｎの発現は、アッセイにおけるｍＡｂのトランスサイトーシスを促進するため及びトランスサイトーシスとクリアランスとの間で観察される関連性に寄与するために必要とされ得る。ある特定の実施形態では、本開示にて記述されるアッセイは、前臨床種におけるＦｃ含有分子の電荷又はグリコシル化バリアントのクリアランス速度を正しく順位付けすることができる。ある特定の実施形態では、本開示にて記述されるアッセイは、リード選択及び最適化、並びに所望の薬物動態特性のためのプロセス開発中における、ｍＡｂベースの薬物候補の評価のための、時間効率が良く、費用効果が高くかつ動物を救うツールとして、使用され得る。
【００５８】
ある特定の実施形態では、本開示は、生理的に関連する条件下でｍＡｂ薬のトランスサイトーシス効率を測定する、細胞ベースのアッセイを提供する。ある特定の実施形態では、ヒトＦｃＲｎ及びβ２−ミクログロブリン遺伝子を安定的に発現しているＭＤＣＫ細胞は、本明細書で記述されているアッセイに関連して使用される。
【００５９】
ある特定の実施形態では、本開示は、生理的ｐＨ下、ヒトＦｃＲｎと結合することが公知であるウシアルブミンを供給するウシ胎児血清を補充した正常細胞培養培地中で実施されるアッセイを提供する（Ｃｈａｕｄｈｕｒｙ  Ｃ．ら、２００３年、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．第１９７巻、第３１５〜３２２頁）。
【００６０】
ある特定の実施形態では、本開示は、分子が非特異的飲作用を介して細胞によって取り込まれ、アルブミンの存在下でヒトＦｃＲｎと相互作用し、ＦｃＲｎ介在性作用機序に関連する条件下で該細胞を横断する、アッセイを提供する。
【００６１】
ある特定の実施形態では、本開示は、細胞との非特異的結合、飲作用を介する取り込み、ＦｃＲｎとのｐＨ依存性相互作用、並びに細胞内移動及び選別プロセスの動力学の複合効果を評価するアッセイの能力により、ヒトにおけるｍＡｂのクリアランスを決定する又は予測するためのアッセイを提供する。
【００６２】
ある特定の実施形態では、本開示は、取得されたトランスサイトーシス出力をヒトにおけるｍＡｂのクリアランス速度と相関させるために使用されるアッセイを提供する。ある特定の実施形態では、本開示のアッセイの出力は、外部チャンバーの培地中のトランスサイトーシスされた分子の濃度（ｎｇ／ｍＬ）であり得、該アッセイの報告可能な値は、同じプレート由来の少なくとも２連のウェルの平均濃度であり得る。ある特定の実施形態では、該アッセイの出力は、トランスサイトーシスの速度の尺度、又は、対照の分子と比べた、トランスサイトーシスされた分子の相対的なトランスサイトーシスの尺度であり得る。
【００６３】
ある特定の実施形態では、本開示のアッセイの試験分子の選択は、臨床グレードの材料のアベイラビリティ、並びに、処方情報、ポピュレーションＰＫモデルに基づく報文、又は線形ＰＫデータが生成された社内臨床試験等であるが、これらに限定されない、信頼できる情報源からのヒトクリアランスデータに基づき得る。ある特定の実施形態では、臨床グレードの材料の用法は、試験材料の品質が、ヒトＰＫデータが生成された臨床研究にて使用されたものと一致し得ることを確実にすることができる。
【００６４】
ある特定の実施形態では、本開示にて記述されるアッセイは、候補を順位付けし、動物モデルにて試験される分子の数を低減させることを狙いとして、リード選択及び最適化を支持する薬物候補の非特異的クリアランスにおける潜在的な易罹病性のｉｎ  ｖｉｔｒｏ評価のためのツールとして使用され得る。
【００６５】
ある特定の実施形態では、本開示にて記述されるアッセイは、望ましくない若しくは非定型ＰＫ挙動を示しているｍＡｂの調査、又は、脳曝露強化のための血液脳関門の交差若しくは腫瘍標的化改善のための腫瘍内微小環境における体内動態強化等の特殊な用途に関するトランスサイトーシス特性が改善された、新規ｍＡｂ薬の開発を支持するために使用され得る。
【００６６】
ある特定の実施形態では、本開示にて記述されるアッセイは、臨床研究における最適な用量及び投薬スキームの設計を支持するための、改善された機序ベースのＰＫモデルの開発のために使用され得る。
【００６７】
ある特定の実施形態では、本開示にて記述されるアッセイは、試験分子についてのｉｎ  ｖｉｔｒｏ読み出しとｉｎ  ｖｉｖｏ  Ｋデータとの間の相関を実証するために使用され得る。
【００６８】
ある特定の実施形態では、該試験分子は、抗体であり得る。ある特定の実施形態では、該抗体は、モノクローナル又はポリクローナル抗体であり得る。ある特定の実施形態では、該抗体は、異なる構造組成（キメラ、ヒト化及び完全ヒト）を有してよい。ある特定の実施形態では、該抗体は、様々な重鎖及び軽鎖配列（ＩｇＧ１、ＩｇＧ２及びＩｇＧ４重鎖、カッパ及びラムダ軽鎖）からなってよい。ある特定の実施形態では、該抗体は、異なる種類の標的（膜結合及び可溶性）を認識してよい。ある特定の実施形態では、該抗体は、異なる治療作用機序（アゴニスト性、アンタゴニスト性及び細胞毒性）を発揮してよい。ある特定の実施形態では、該抗体は、異なるルート（例えば、静脈内、筋肉内及び皮下）を介して患者に与えられてよく、与えられるものである。
【００６９】
ある特定の実施形態では、該試験分子は、それらのエフェクター機能を変更し（アテゾリズマブ、デュルバルマブ等であるが、これらに限定されない）、二重特異性半抗体の会合を可能にし（エミシズマブ等であるが、これに限定されない）、又はＩｇＧ４  Ｆａｂアームを安定化させ（ニボルマブ、ペンブロリズマブ等であるが、これらに限定されない）てよい、操作された突然変異を担持し得る。
【００７０】
ある特定の実施形態では、該試験分子は、極度のＦｃＲｎ結合親和性を示すｍＡｂであり得る。ある特定の実施形態では、トランスサイトーシス読み出しとヒトにおけるクリアランスとの間で観察される相関は、典型的なＦｃ領域を担持する広範囲のｍＡｂに当てはまり得る。ある特定の実施形態では、該試験分子は、変更されたＦｃＲｎ結合活性を有するように操作されている抗体であってよい。ある特定の実施形態では、該試験分子は、アルブミン含有分子、又はペプチドタグ若しくは組み換えタンパク質を介してＦｃＲｎと結合するように操作されている任意の分子であってよい。ある特定の実施形態では、該試験分子は、ＦｃＲｎと自然に結合する分子であり得る。ある特定の実施形態では、該試験分子は、ＦｃＲｎと結合するように操作されている分子であり得る。
【００７１】
ある特定の実施形態では、本開示にて記述されるアッセイは、ヒトＦｃＲｎの発現がトランスサイトーシスアッセイにおける効率的なトランスサイトーシスのために必要とされるか否かを指し示すために使用されてよい。
【００７２】
ある特定の実施形態では、本開示のアッセイは、ＦｃＲｎとの相互作用が、トランスサイトーシス読み出しと試験分子のクリアランスとの間で観察される相関に寄与することを検出する及び／又は指し示すために使用されてよい。
【００７３】
ある特定の実施形態では、本開示のアッセイは、試験分子の、受容体との結合分析のために使用されてよい。ある特定の実施形態では、該受容体は、ＦｃＲｎ受容体であり得る。ある特定の実施形態では、該試験分子は、ｍＡｂであり得る。
【００７４】
ある特定の実施形態では、本発明のアッセイは、内在化、選別及び細胞内移動の動力学、並びに試験分子の回収プロセスの全体的効率へのエキソサイトーシス等であるが、これらに限定されない、複数の要因の寄与を評価するために使用され得る。
【００７５】
ある特定の実施形態では、本開示のアッセイは、ｍＡｂのＰＫの決定又は予測のためのＦｃＲｎ介在性サルベージ経路に関与する複数のパラメーターを同定する及び／又は検出するために使用され得る。
【００７６】
ある特定の実施形態では、本開示のアッセイは、分子のｉｎ  ｖｉｔｒｏトランスサイトーシスとｉｎ  ｖｉｖｏクリアランスとの相関を検出するために使用され得る。ある特定の実施形態では、本開示のアッセイは、ＢＶ  ＥＬＩＳＡ又はＦｖ電荷／ｐＩと比較して、分子のｉｎ  ｖｉｔｒｏトランスサイトーシスとｉｎ  ｖｉｖｏクリアランスとの相関を検出するために使用され得る。
【００７７】
ある特定の実施形態では、本開示のアッセイは、ｉｎ  ｖｉｖｏでのｍＡｂの分布及び異化作用におけるグリコシル化の役割を評価する及び／又は調査するために使用され得る。ある特定の実施形態では、該分子は、グリコフォームバリアントであり得る。
【００７８】
ある特定の実施形態では、本開示のアッセイは、細胞内移動パラメーターにおける該分子へのシアル酸の添加の役割を評価するために使用され得る。ある特定の実施形態では、本開示のアッセイは、ｉｎ  ｖｉｖｏでの該分子の高マンノース及び高度にシアル化されたグリコフォームバリアントのクリアランスにおける更なる機序の関与の分析のために使用され得る。
【００７９】
ある特定の実施形態では、本開示のアッセイは、ＦｃＲｎ介在性トランスサイトーシスの、それらのＰＫに属するＡｂｓの排除機序としての研究のためのツールとして使用され得る。
【００８０】
ある特定の実施形態では、本開示のアッセイは、ＦｃＲｎ複合ＩｇＧの分布を支配する分子機序の研究及び解明のためのツールとして使用され得る。
【００８１】
ある特定の実施形態では、本開示のアッセイは、ヒトにおいて典型的なＦｃＲｎ結合親和性を持つｍＡｂの標的非依存性の非特異的クリアランス機序を反映する出力を提供するために使用され得る。
【００８２】
ある特定の実施形態では、本開示のアッセイは、Ｆｃ含有分子の多様な群の分析に使用され得、ＰＫに影響を及ぼすことが公知である要因に応答し得る。
【００８３】
ある特定の実施形態では、本実施形態のアッセイは、トランスサイトーシスアッセイに関与する要因を解析して、これらの要因がｉｎ  ｖｉｖｏクリアランスとどのように相関するかを理解するため及びこの相関の定量的性質を定義するために使用され得る。
【００８４】
ある特定の実施形態では、本開示のアッセイは、種々の細胞型／組織コンパートメントにおける、リサイクリング、トランスサイトーシス及び分解経路の間での飲作用されたｍＡｂの分布、並びに、ＩｇＧのクリアランスに関与する細胞内でのそのような分布を支配する分子機序の、調査のために使用され得る。
【００８５】
ある特定の実施形態では、本開示は、トランスサイトーシスアッセイシステムに向けられる。例えば、限定としてではないが、そのようなシステムは、第１のチャンバー及び第２のチャンバーであり、該第１及び第２のチャンバーのそれぞれが、生理的ｐＨを有するチャンバーと、細胞が、該第１のチャンバーに導入された分子の、該第２のチャンバーへのトランスサイトーシスを介在できるように、該第１のチャンバー内に位置付けられた細胞の単層と、該第２のチャンバーにおける分子の存在を検出するための検出器とを備え得る。ある特定の実施形態では、本明細書で開示されるアッセイシステムは、ＭＤＣＫ細胞の単層を用いる。ある特定の実施形態では、本明細書で開示されるアッセイシステムは、少なくとも１つの異種遺伝子を含む細胞を用いる。ある特定の実施形態では、本明細書で開示されるアッセイシステムは、ＦＣＧＲＴ遺伝子及びＢ２Ｍ遺伝子からなる群より選択される少なくとも１つの異種遺伝子を含む細胞を用いる。ある特定の実施形態では、本明細書で開示されるアッセイシステムは、異種細胞表面タンパク質を発現する細胞を用いる。ある特定の実施形態では、本明細書で開示されるアッセイシステムは、異種細胞表面タンパク質を発現する細胞を用い、ここで、該異種細胞表面タンパク質は、新生児Ｆｃ受容体（ＦｃＲｎ）を含む。ある特定の実施形態では、本明細書で開示されるアッセイシステムは、酵素結合免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）、液体シンチレーション計数（ＬＳＣ）、定量的ＰＣＲ又は蛍光リーダーシステムの使用を介して、経細胞輸送された分子の数を測定することができる。
【００８６】
４．細胞
本開示のアッセイにおいて使用するのに好適な細胞は、本明細書で記述されるような原核又は真核細胞を含む。
【００８７】
ある特定の実施形態では、脊椎動物細胞を使用することもできる。有用な哺乳動物細胞株の非限定的な例は、ＳＶ４０（ＣＯＳ−７）によって形質転換されたサル腎臓ＣＶ１株；ヒト胎児性腎株（例えば、Ｇｒａｈａｍら、「Ｊ．Ｇｅｎ  Ｖｉｒｏｌ．」、第３６巻第５９頁（１９７７年）に記載される２９３又は２９３細胞）；ベビーハムスター腎細胞（ＢＨＫ）；マウスセルトリ細胞（例えば、Ｍａｔｈｅｒ、「Ｂｉｏｌ．Ｒｅｐｒｏｄ．」、第２３巻第２４３〜２５１頁（１９８０年）に記載されるＴＭ４細胞；サル腎細胞（ＣＶ１）；アフリカミドリザル腎細胞（ＶＥＲＯ−７６）；ヒト子宮頸癌細胞（ＨＥＬＡ）；イヌ腎細胞（ＭＤＣＫ）；バッファローラット肝細胞（ＢＲＬ  ３Ａ）；ヒト肺細胞（Ｗ１３８）；ヒト肝細胞（Ｈｅｐ  Ｇ２）；マウス乳癌（ＭＭＴ  ０６０５６２）；ＴＲＩ細胞、例えば、Ｍａｔｈｅｒら、「Ａｎｎａｌｓ  Ｎ．Ｙ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．」、第３８３巻第４４〜６８頁（１９８２年）に記載されるもの；ＭＲＣ５細胞；及びＦＳ４細胞である。有用な哺乳動物細胞株の更なる非限定的な例としては、ＤＨＦＲ−ＣＨＯ細胞（Ｕｒｌａｕｂら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ第７７巻：第４２１６頁（１９８０年））を含むチャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞が挙げられる。ある特定の実施形態では、本開示の方法は、ハイブリドーマ細胞を使用することができる。例えば、限定としてではないが、ハイブリッド細胞株は、ヒト及びマウスを含む任意の種のものであり得る。ある特定の実施形態では、本開示の方法は、初代及び確立された内皮及び／又は上皮細胞を使用することができる。例えば、限定としてではないが、該内皮及び／又は上皮細胞は、ｃａｃｏ−２、Ｔ−８４、ＨＭＥＣ−１、ＭＨＥＣ  ２．６、ＨＵＶＥＣ、及び人工多能性幹細胞（ｉＰＳＣ）由来細胞であり得る（Ｌｉｄｉｎｇｔｏｎ，Ｅ．Ａ．、Ｄ．Ｌ．Ｍｏｙｅｓら（１９９９年）．「Ａ  ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ  ｏｆ  ｐｒｉｍａｒｙ  ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ  ｃｅｌｌｓ  ａｎｄ  ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ  ｃｅｌｌ  ｌｉｎｅｓ  ｆｏｒ  ｓｔｕｄｉｅｓ  ｏｆ  ｉｍｍｕｎｅ  ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎｓ．」Ｔｒａｎｓｐｌ  Ｉｍｍｕｎｏｌ第７巻（第４号）：第２３９〜２４６頁；Ｙａｍａｕｒａ，Ｙ．、Ｂ．Ｄ．Ｃｈａｐｒｏｎら（２０１６年）「Ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ  Ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ  ｏｆ  Ｈｕｍａｎ  Ｃｏｌｏｎｉｃ  Ｃａｒｃｉｎｏｍａ  Ｃｅｌｌ  Ｌｉｎｅｓ  ａｎｄ  Ｐｒｉｍａｒｙ  Ｓｍａｌｌ  Ｉｎｔｅｓｔｉｎａｌ  Ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ  Ｃｅｌｌｓ  ｆｏｒ  Ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎｓ  ｏｆ  Ｉｎｔｅｓｔｉｎａｌ  Ｄｒｕｇ  Ｐｅｒｍｅａｂｉｌｉｔｙ  ａｎｄ  Ｆｉｒｓｔ−Ｐａｓｓ  Ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ．」Ｄｒｕｇ  Ｍｅｔａｂ  Ｄｉｓｐｏｓ第４４巻（第３号）：第３２９〜３３５頁）。
【００８８】
ある特定の実施形態では、開示される方法で使用するための細胞は、分子、例えば受容体をコードする核酸を含み得る。ある特定の実施形態では、核酸は、１つ以上のベクター、例えば発現ベクター中に存在し得る。ベクターの１種は「プラスミド」であり、これは、更なるＤＮＡセグメントがライゲートされ得る環状二本鎖ＤＮＡループを指す。別の種類のベクターは、ウイルスベクターであり、更なるＤＮＡセグメントがウイルスゲノムにライゲートされ得る。ある特定のベクターは、それらが導入される細胞内で自己複製することができる（例えば、細菌複製起点を有する細菌ベクター及びエピソーム哺乳類ベクター）。他のベクター（例えば、非エピソーム哺乳動物ベクター）は、細胞への導入時に細胞のゲノムに組み込まれ、それにより、宿主ゲノムとともに複製される。さらに、ある特定のベクター、発現ベクターは、それらが作動可能に連結する遺伝子の発現を誘導することができる。一般に、組み換えＤＮＡ技法において利用される発現ベクターは、プラスミド（ベクター）の形態である場合が多い。本開示で使用するための発現ベクターの更なる非限定例としては、等価な機能的役割を果たすウイルスベクター（例えば、複製欠損レトロウイルス、アデノウイルス、及びアデノ随伴ウイルス）が挙げられる。
【００８９】
ある特定の実施形態では、分子、例えば受容体をコードする核酸は、細胞に導入され得る。ある特定の実施形態では、核酸の細胞への導入は、トランスフェクション、電気穿孔法、マイクロインジェクション、核酸配列含有ウイルス又はバクテリオファージベクターでの感染、細胞融合、染色体介在遺伝子導入、マイクロセル介在遺伝子導入、スフェロプラスト融合などにより実施することができる。ある特定の実施形態では、細胞は、真核、例えばＭＤＣＫ細胞である。
【００９０】
５．トランスウェルアッセイ
本開示の方法において用いるために好適なトランスウェルアッセイは、ボイデンチャンバーアッセイ、細胞移動アッセイ、細胞侵入アッセイ、マイクロ流体移動デバイス、ｉｎ  ｖｉｔｒｏスクラッチアッセイ、細胞外マトリックス（ＥＣＭ）タンパク質アッセイを含むが、これらに限定されない。本開示の方法は、「汎用的な」トランスウェルプラットフォームを含む多種多様なアッセイプラットフォーム（例えば、１２ウェル、２４ウェル又は９６ウェルマルチウェルアレイ）を利用して行うことができる。アッセイプラットフォームの非限定的な例としては、ＭＩＬＬＩＣＥＬＬ（登録商標）細胞培養インサート及びインサートプレート、並びにＣＯＲＮＩＮＧ（登録商標）ＴＲＡＮＳＷＥＬＬ（登録商標）ポリカーボネート膜細胞培養インサートが挙げられる。
【００９１】
本開示の実施形態
本開示の非限定的な実施形態としては、以下が挙げられる。
【００９２】
１．分子の薬物動態（ＰＫ）パラメーターを決定するための方法であって、生理的ｐＨの条件下、細胞又は複数の細胞を経由する該分子又は複数の該分子のトランスサイトーシスの尺度を決定するステップを含む、方法。
【００９３】
２．該ＰＫパラメーターが、該分子のｉｎ  ｖｉｖｏクリアランスの尺度である、実施形態１に記載の方法。
【００９４】
３．該ＰＫパラメーターが、該分子のｉｎ  ｖｉｖｏ半減期の尺度である、実施形態１に記載の方法。
【００９５】
４．該トランスサイトーシスの尺度が、トランスサイトーシスの速度である、実施形態１〜３のいずれか一つに記載の方法。
【００９６】
５．該トランスサイトーシスの尺度が、トランスサイトーシスされている分子（１つ又は複数）の量の尺度である、実施形態１〜３のいずれか一つに記載の方法。
【００９７】
６．該トランスサイトーシスの尺度が、第１のチャンバー内の溶液から第２のチャンバー内の溶液への分子（１つ又は複数）のトランスサイトーシスを測定することによって決定され、ここで、該第１及び第２のチャンバーは、細胞単層によって分離され、各チャンバー内の該溶液は、生理的ｐＨである、実施形態１に記載の方法。
【００９８】
７．該細胞又は複数の細胞が、メイディン・ダービー・イヌ腎臓（ＭＤＣＫ）細胞である、実施形態１に記載の方法。
【００９９】
８．該細胞が、少なくとも１つの異種遺伝子を含む、実施形態１又は７に記載の方法。
【０１００】
９．該少なくとも１つの異種遺伝子が、ＦＣＧＲＴ遺伝子及びＢ２Ｍ遺伝子からなる群より選択される、実施形態８に記載の方法。
【０１０１】
１０．該細胞が、異種細胞表面タンパク質を発現する、実施形態２〜９のいずれか一つに記載の方法。
【０１０２】
１１．該異種細胞表面タンパク質が、新生児Ｆｃ受容体（ＦｃＲｎ）を含む、実施形態１０に記載の方法。
【０１０３】
１２．分子のトランスサイトーシスを測定することが、酵素結合免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）、液体シンチレーション計数（ＬＳＣ）、定量的ＰＣＲ又は蛍光リーダーシステムの使用を含む、実施形態１〜１１のいずれか一つに記載の方法。
【０１０４】
１３．さらに、測定された該分子の数に基づいて、該分子のｉｎ  ｖｉｖｏクリアランスを決定するステップを含む、実施形態１〜１２のいずれか一つに記載の方法。
【０１０５】
１４．該分子が、ＦｃＲｎと自然に結合する分子である、実施形態１〜１３のいずれか一つに記載の方法。
【０１０６】
１５．該分子が、ＦｃＲｎと結合するように操作されている、実施形態１〜１３のいずれか一つに記載の方法。
【０１０７】
１６．該分子が、Ｆｃ含有分子である、実施形態１〜１５のいずれか一つに記載の方法。
【０１０８】
１７．該Ｆｃ含有分子が、受容体Ｆｃ融合分子である、実施形態１６に記載の実施形態。
【０１０９】
１８．該分子が、抗体である、実施形態１６のいずれか一つに記載の方法。
【０１１０】
１９．該抗体が、モノクローナル抗体である、実施形態１８に記載の方法。
【０１１１】
２０．該分子が、アルブミン含有分子である、実施形態１〜１９のいずれか一つに記載の方法。
【０１１２】
２１．生理的ｐＨ値が、約７．４である、実施形態１〜２０のいずれか一つに記載の方法。
【０１１３】
２２．複数の単一分子又は複数の異なった分子の経細胞輸送を測定するための方法であって、
ａ）該複数の単一分子又は該複数の異なった分子を２つのチャンバーのうちの第１に導入するステップであって、ここで、該第１のチャンバーは、細胞又は複数の細胞によって第２のチャンバーから分離され、該第１及び第２のチャンバーのそれぞれは生理的ｐＨ値を有する、ステップと、
ｂ）該第１のチャンバーから該第２のチャンバーへトランスサイトーシスされた分子の数を測定するステップとを含む、方法。
【０１１４】
２３．該第１のチャンバーが、細胞の単層を含む、実施形態２２に記載の方法。
【０１１５】
２４．該細胞が、メイディン・ダービー・イヌ腎臓（ＭＤＣＫ）細胞である、実施形態２２又は２３に記載の方法。
【０１１６】
２５．該細胞が、少なくとも１つの異種遺伝子を含む、実施形態２２〜２４のいずれか一つに記載の方法。
【０１１７】
２６．該少なくとも１つの異種遺伝子が、ＦＣＧＲＴ遺伝子及びＢ２Ｍ遺伝子からなる群より選択される、実施形態２５に記載の方法。
【０１１８】
２７．該細胞が異種細胞表面タンパク質を発現する、実施形態２２〜２６のいずれか一つに記載の方法。
【０１１９】
２８．該異種細胞表面タンパク質が、新生児Ｆｃ受容体（ＦｃＲｎ）を含む、実施形態２７に記載の方法。
【０１２０】
２９．経細胞輸送された分子の数を測定することが、酵素結合免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）、液体シンチレーション計数（ＬＳＣ）、定量的ＰＣＲ又は蛍光リーダーシステムの使用を含む、実施形態２２〜２８のいずれか一つに記載の方法。
【０１２１】
３０．さらに、測定された該分子の数に基づいて、該分子のｉｎ  ｖｉｖｏクリアランスを決定するステップを含む、実施形態２２〜２９のいずれか一つに記載の方法。
【０１２２】
３１．該分子が、ＦｃＲｎと自然に結合する分子である、実施形態２２〜３０のいずれか一つに記載の方法。
【０１２３】
３２．該分子が、ＦｃＲｎと結合するように操作されている、実施形態２２〜３１のいずれか一つに記載の方法。
【０１２４】
３３．該分子が、Ｆｃ含有分子である、実施形態２２〜３２のいずれか一つに記載の方法。
【０１２５】
３４．該Ｆｃ含有分子が、受容体Ｆｃ融合分子である、実施形態３３に記載の方法。
【０１２６】
３５．該分子が、抗体である、請求項２２〜３４のいずれか一つに記載の方法。
【０１２７】
３６．該抗体が、モノクローナル抗体である、請求項３５に記載の方法。
【０１２８】
３７．該分子が、アルブミン含有分子である、実施形態２２〜３６のいずれか一つに記載の方法。
【０１２９】
３８．該生理的ｐＨ値が、約７．４である、実施形態２２〜３７のいずれか一つに記載の方法。
【０１３０】
３９．分子のｉｎ  ｖｉｖｏクリアランスを決定する方法であって、
ａ）該分子を２つのチャンバーのうちの第１に導入するステップであって、ここで、該第１のチャンバーは、細胞又は複数の細胞によって第２のチャンバーから分離され、該第１及び第２のチャンバーのそれぞれは生理的ｐＨ値を有する、ステップと、
ｂ）該第１のチャンバーから該第２のチャンバーへトランスサイトーシスされた分子の数を測定するステップと、
ｃ）測定された該分子の数に基づいて、該分子のｉｎ  ｖｉｖｏクリアランスを決定するステップとを含む、方法。
【０１３１】
４０．該第１のチャンバーが、細胞の単層を含む、実施形態３９に記載の方法。
【０１３２】
４１．該細胞が、ＭＤＣＫ細胞である、実施形態３９又は４０に記載の方法。
【０１３３】
４２．該細胞が、少なくとも１つの異種遺伝子を含む、実施形態３９から４１のいずれか一つに記載の方法。
【０１３４】
４３．該少なくとも１つの異種遺伝子が、ＦＣＧＲＴ遺伝子及びＢ２Ｍ遺伝子からなる群より選択される、実施形態４２に記載の方法。
【０１３５】
４４．該細胞が異種細胞表面タンパク質を発現する、実施形態３９〜４３のいずれか一つに記載の方法。
【０１３６】
４５．該異種細胞表面タンパク質が、新生児Ｆｃ受容体（ＦｃＲｎ）を含む、実施形態４４に記載の方法。
【０１３７】
４６．経細胞輸送された分子の数を測定することが、酵素結合免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）、液体シンチレーション計数（ＬＳＣ）、定量的ＰＣＲ又は蛍光リーダーシステムの使用を含む、実施形態３９〜４５のいずれか一つに記載の方法。
【０１３８】
４７．該分子が、ＦｃＲｎと自然に結合する分子である、実施形態３９〜４６のいずれか一つに記載の方法。
【０１３９】
４８．該分子が、ＦｃＲｎと結合するように操作されている、実施形態３９〜４６のいずれか一つに記載の方法。
【０１４０】
４９．該分子が、Ｆｃ含有分子である、実施形態３９〜４８のいずれか一つに記載の方法。
【０１４１】
５０．該Ｆｃ含有分子が、受容体Ｆｃ融合分子である、実施形態４９に記載の実施形態。
【０１４２】
５１．該分子が、抗体である、請求項３９〜５０のいずれか一つに記載の方法。
【０１４３】
５２．該抗体が、モノクローナル抗体である、請求項５１に記載の方法。
【０１４４】
５３．該分子が、アルブミン含有分子である、実施形態３９〜５２のいずれか一つに記載の方法。
【０１４５】
５４．該生理的ｐＨ値が、約７．４である、実施形態３９〜５３のいずれか一つに記載の方法。
【０１４６】
５５．複数の分子の経細胞輸送を測定するためのアッセイであって、第１のチャンバー及び第２のチャンバーを含み、該第１及び第２のチャンバーのそれぞれは、生理的ｐＨ値を有し、ここで、該第１のチャンバーは、複数の分子を受け取り、該分子を該第２のチャンバーへ経細胞輸送するように構成され、該複数の分子の経細胞輸送が測定される、アッセイ。
【０１４７】
５６．該第１のチャンバーが、細胞の単層を含む、実施形態５５に記載のアッセイ。
【０１４８】
５７．該細胞が、ＭＤＣＫ細胞である、実施形態５５又は５６に記載のアッセイ。
【０１４９】
５８．該細胞が、少なくとも１つの異種遺伝子を含む、実施形態５５〜５７のいずれか一つに記載のアッセイ。
【０１５０】
５９．該少なくとも１つの異種遺伝子が、ＦＣＧＲＴ遺伝子及びＢ２Ｍ遺伝子からなる群より選択される、実施形態５８に記載のアッセイ。
【０１５１】
６０．該細胞が異種細胞表面タンパク質を発現する、実施形態５５〜５９のいずれか一つに記載のアッセイ。
【０１５２】
６１．該異種細胞表面タンパク質が、新生児Ｆｃ受容体（ＦｃＲｎ）を含む、実施形態６０に記載のアッセイ。
【０１５３】
６２．経細胞輸送された分子の数を測定することが、酵素結合免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）、液体シンチレーション計数（ＬＳＣ）、定量的ＰＣＲ又は蛍光リーダーシステムの使用を含む、実施形態５５〜６１のいずれか一つに記載のアッセイ。
【０１５４】
６３．さらに、測定された該分子の数に基づいて、該分子のｉｎ  ｖｉｖｏクリアランスを決定するステップを含む、実施形態５５〜６２のいずれか一つに記載のアッセイ。
【０１５５】
６４．該分子が、ＦｃＲｎと自然に結合する分子である、実施形態５５〜６３のいずれか一つに記載の方法。
【０１５６】
６５．該分子が、ＦｃＲｎと結合するように操作されている、実施形態５５〜６２のいずれか一つに記載の方法。
【０１５７】
６６．該分子が、Ｆｃ含有分子である、実施形態５５〜６５のいずれか一つに記載の方法。
【０１５８】
６７．該Ｆｃ含有分子が、受容体Ｆｃ融合分子である、実施形態６６に記載の方法。
【０１５９】
６８．該分子が、抗体である、請求項５５〜６７のいずれか一つに記載の方法。
【０１６０】
６９．該抗体が、モノクローナル抗体である、実施形態６８に記載の方法。
【０１６１】
７０．該分子が、アルブミン含有分子である、実施形態５５〜６９のいずれか一つに記載の方法。
【０１６２】
７１．該生理的ｐＨ値が、約７．４である、実施形態５５〜７０のいずれか一つに記載の方法。
【０１６３】
７２．アッセイシステムであって、
ａ）第１のチャンバー及び第２のチャンバーであって、ここで、該第１及び第２のチャンバーは生理的ｐＨを有する、チャンバーと、
ｂ）細胞が、該第１のチャンバーに導入された分子の、該第２のチャンバーへのトランスサイトーシスを介在できるように、該第１のチャンバー内に位置付けられた該細胞の単層と、
ｃ）該第２のチャンバーにおける分子の存在を検出するための検出器とを備える、アッセイシステム。
【０１６４】
７３．該細胞が、ＭＤＣＫ細胞である、実施形態７２に記載のアッセイシステム。
【０１６５】
７４．該細胞が、少なくとも１つの異種遺伝子を含む、実施形態７２又は７３に記載のアッセイシステム。
【０１６６】
７５．該少なくとも１つの異種遺伝子が、ＦＣＧＲＴ遺伝子及びＢ２Ｍ遺伝子からなる群より選択される、実施形態７４に記載のアッセイシステム。
【０１６７】
７６．該細胞が異種細胞表面タンパク質を発現する、実施形態７２〜７５のいずれか一つに記載のアッセイシステム。
【０１６８】
７７．該異種細胞表面タンパク質が、新生児Ｆｃ受容体（ＦｃＲｎ）を含む、実施形態７６に記載のアッセイシステム。
【０１６９】
７８．経細胞輸送された分子の数を測定することが、酵素結合免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）、液体シンチレーション計数（ＬＳＣ）、定量的ＰＣＲ又は蛍光リーダーシステムの使用を含む、実施形態７２〜７７のいずれか一つに記載のアッセイシステム。
【実施例】
【０１７０】
以下の実施例は、本願で開示されている主題の単なる例示であり、いかなる意味においても制限とみなすべきではない。
【０１７１】
（方法）
試験分子
試験分子は、ヒトクリアランスデータを持つ５３種のｍＡｂ、５種のＦｃ融合タンパク質及び更なる９種のｍＡｂ（４種の電荷バリアント、３種のグリコシル化バリアント及び５種のＦｃＲｎ結合バリアント）を含んでいた。３０種のｍＡｂは、市販されている治療用抗体であり、そのうちの１９種（オファツムマブ、ベドリズマブ、アダリムマブ、ナタリズマブ、ニボルマブ、ペンブロリズマブ、アベルマブ、セツキシマブ、パリビズマブ、インフリキシマブ、オララツマブ、パニツムマブ、レスリズマブ、バシリキシマブ、イキセキズマブ、ズルバルマブ、エボロクマブ、アリロクマブ、ゴリムマブ）は、製造業者から購入した。残りは全てＧｅｎｅｎｔｅｃｈ（Ｓｏｕｔｈ  Ｓａｎ  Ｆｒａｎｃｉｓｃｏ、ＣＡ）にて操作されたチャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞中で産生した。
【０１７２】
ヒトＦｃＲｎ及びベータ２−クログルブリンを発現しているＭＤＣＫ細胞の生成及び特徴付け
安定細胞株は、以前に記述されたもの（Ｃｌａｙｐｏｏｌ、２００２年）と同様の方法で開発された。メイディン・ダービー・イヌ腎臓ＩＩ（ＭＤＣＫ  ＩＩ）細胞（Ｅｕｒｏｐｅａｎ  Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ  ｏｆ  Ａｕｔｈｅｎｔｉｃａｔｅｄ  Ｃｅｌｌ  Ｃｕｌｔｕｒｅｓ（ＥＣＡＣＣ）、Ｓａｌｉｓｂｕｒｙ、ＵＫ）を、１０％のウシ胎児血清（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ、Ｍｏｕｎｔａｉｎ  Ｖｉｅｗ、ＣＡ）、１００単位／ｍＬのペニシリン、１００μｇ／ｍＬのストレプトマイシン及び０．２９２ｍｇ／ｍＬのＬ−グルタミン（Ｔｈｅｒｍｏ  Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、Ｗａｌｔｈａｍ、ＭＡ）を含有するダルベッコ変法最小必須培地（ＤＭＥＭ）中、３７℃、５％のＣＯ２の加湿インキュベーター内で成長させた。細胞に、改変されたｐＲＫプラスミド（Ｅａｔｏｎ  ＤＬら、１９８６年、Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ、第２５巻（第２６号）、第８３４３〜８３４７頁）を、エレクトロポレーション（ＬｏｎｚａヌクレオファクターキットＬ）によってトランスフェクトし、これは、Ｐ２Ａ配列（Ｋｉｍ，ＪＨら、２０１１年、ＰＬｏＳ  Ｏｎｅ第６巻（第４号）：第ｅ１８５５６頁）によって分離された、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）プロモーターの制御下にある、ヒトＦｃＲｎ（ＦＣＧＲＴ（ＵｎｉＰｒｏｔＫＢ−Ｐ５５８９９、ＦＣＧＲＴＮ＿ＨＵＭＡＮ）及びβ２ｍ（ＵｎｉＰｒｏｔＫＢ−Ｐ６１７６９、Ｂ２ＭＧ＿ＨＵＭＡＮ））のためのｃＤＮＡを含有するものであった。３日後、細胞を５μｇ／ｍＬのプロマイシンで選択し、２週間にわたって膨張させた。
【０１７３】
次いで、細胞を、抗ＦＣＧＲＴ抗体（ＡＤＭ３１、Ａｌｄｅｖｒｏｎ、Ｆａｒｇｏ、ＮＤ）及び二次抗マウスＰＥ−コンジュゲート抗体（Ａ１０５４３、Ｔｈｅｒｍｏ  Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、Ｗａｌｔｈａｍ、ＭＡ）を使用する蛍光活性化細胞選別（ＦＡＣＳ）によって、クローン性及びＦＣＧＲＴ発現のために選別した。全てのクローンを、一定の選択剤（５μｇ／ｍＬのプロマイシン）で維持した。最終クローンは、後述される方法を使用し、ＦＩＴＣ抗ヒトβ２ｍ  ＦＩＴＣコンジュゲート抗体（２Ｍ２、ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ、Ｓａｎ  Ｄｉｅｇｏ、ＣＡ）を使用するフローサイトメトリーによって評価されたＦＣＧＲＴ及びβ２ｍの両方の細胞表面発現に基づいて選択した。
【０１７４】
ＭＤＣＫ−ＩＩ細胞を集密まで成長させ、非酵素的細胞解離試薬（Ｓｉｇｍａ）を使用して剥離させた。１０６細胞／ｍｌを、最初に、ＰＢＳ−０．０５Ｍ  ＥＤＴＡ  ２％  ＢＳＡ中、抗ＦＣＧＲＴ抗体（１：１００希釈）により、氷上で１時間にわたって染色した。洗浄した後、細胞を、抗マウスＰＥコンジュゲート二次抗体（１：２００希釈）及び抗β２Ｍ  ＦＩＴＣコンジュゲート抗体（１：５０希釈）とともに、暗所にて、氷上で１時間にわたってインキュベートした。試料を洗浄し、ＢＤ  ＦＡＣＳＣａｎｔｏ  ＩＩ（ＢＤ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ、Ｓａｎ  Ｊｏｓｅ、ＣＡ）でのフローサイトメトリー分析のためにＰＢＳ−０．０５Ｍ  ＥＤＴＡ  ２％  ＢＳＡに再懸濁した。
【０１７５】
トランスサイトーシスアッセイ
細胞を、９６ウェルトランスウェルプレート（Ｃｏｒｎｉｎｇ  Ｃｏｓｔａｒ、Ａｃｔｏｎ、ＭＡ、ＵＳＡ）上、１０％のＦＢＳ、１００単位のペニシリン／ストレプトマイシン及び５μｇ／ｍＬのプロマイシンを補充した細胞成長培地ＤＭＥＭ高グルコース中、１×１０５細胞／ウェルの密度で、内部及び外部チャンバー内にそれぞれ１００及び２００μＬの培地とともに播種した。細胞は、平板培養後２日目に実験に使用した。内部チャンバー内の培地を除去し、試験分子を、１００μｇ／ｍＬ（０．６７μＭ）の最終濃度まで添加し、３７℃の組織培養インキュベーター内で２４時間にわたってインキュベートした。細胞成長培地中で調製したルシファーイエロー（ルシファーイエローＣＨ、ジリチウム塩；Ｓｉｇｍａ  Ａｌｄｒｉｃｈ；Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ  ＭＯ）を、２４時間のアッセイインキュベーションの最後の９０分まで添加した。外部チャンバーからの培地を収集し、トランスサイトーシスされた分子の量を定量化した（図１）。アッセイ中におけるルシファーイエローの受動的通過のレベルは、外部チャンバー由来の試料における蛍光シグナルを、内部チャンバーのもので割ることによって算出した。外部チャンバー内に０．１％より大きい受動的通過のルシファーイエローを示したウェルからのトランスサイトーシス結果を廃棄した。
【０１７６】
アッセイの出力は、外部チャンバーの培地中のトランスサイトーシスされた分子の濃度（ｎｇ／ｍＬ）であり、該アッセイの報告可能な値は、同じプレート由来の２連のウェルの平均濃度である。ある特定の実施形態では、該アッセイの出力は、トランスサイトーシスの速度の尺度、又は、トランスサイトーシスされた分子の相対的なトランスサイトーシスの尺度であり得る。
【０１７７】
トランスサイトーシスの定量化
９６ウェルマイクロタイタープレートを、炭酸ナトリウム（ｐＨ９．６）中１μｇ／ｍＬの、１００μＬのヤギ抗ヒトＩｇＧ−Ｆ（ａｂ）’（Ｊａｃｋｓｏｎ  ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ｗｅｓｔ  Ｇｒｏｖｅ、ＰＡ）で、２〜８℃にて終夜コーティングした。ＰＢＳ／０．０５％のポリソルベート−２０で洗浄した後、プレートを、２００μＬのブロッキング緩衝液（ＰＢＳ／０．５％、ＢＳＡ／０．１％、カゼイン／０．０５％、Ｐ２０／０．０５％、プロクリン３００）とともに、穏やかにかき混ぜながら室温で２時間にわたってインキュベートした。洗浄した後、アッセイ希釈剤（ＰＢＳ／０．５％、ＢＳＡ／０．０５％、Ｐ２０／０．０５％、プロクリン３００）中、１００μＬの連続希釈されたアッセイ標準、対照又は試料をプレートに添加した（図１）。室温で穏やかにかき混ぜながらもう１時間にわたってインキュベートした後、プレートを再度洗浄し、その後、ＨＲＰにコンジュゲートされた１００μＬのヤギ抗ヒトＩｇＧ−Ｆｃ（Ｊａｃｋｓｏｎ  ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ｗｅｓｔ  Ｇｒｏｖｅ、ＰＡ）とともに、アッセイ希釈剤中１：１００００希釈でインキュベートした。プレートを穏やかにかき混ぜながら１時間にわたってインキュベートし、洗浄後、１００μＬの混合したばかりの３，３’，５，５’−テトラメチルベンジジン（ＴＭＢ）溶液（Ｋｉｒｋｅｇａａｒｄ＆Ｐｅｒｒｙ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）を添加した。かき混ぜずに１５分間にわたって発色させ、１００μＬの１Ｍ  Ｈ３ＰＯ４の添加によって反応を停止させた。６５０ｎｍの参照を用い、４５０ｎｍの波長における吸光度を、スペクトラマックスＩ３プレートリーダー（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｄｅｖｉｃｅｓ  Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ、ＣＡ）で読み取り、製造業者によって提供されたソフトマックスプロソフトウェアを使用してデータを処理した。試料中の試験抗体の濃度を、同じプレートに関する標準曲線の４パラメーターフィットから内挿した。
【０１７８】
Ｆｃ融合タンパク質については、タンパク質に特異的な抗体結合によって試験分子を捕捉し、上述した手順の後にＨＲＰにコンジュゲートされた抗ヒトＩｇＧ−Ｆ（ａｂ）’によって検出した。
【０１７９】
ＢＶ  ＥＬＩＳＡ
１％のバキュロウイルス粒子懸濁液をコーティング緩衝液（０．０５炭酸ナトリウムｐＨ９．６）中で調製し、３８４ウェルプレート（Ｎｕｎｃイムノプレートマキシソープサーフェス、カタログ番号４６４７１８）中、１ウェル当たり２５μＬを添加し、４℃で終夜インキュベートした。ウェルを、５０μＬのアッセイ緩衝液（５％のＢＳＡ及び１０ＰＰＭのプロクリンを含有するＰＢＳ）で、穏やかに振とうしながら室温で１時間にわたってブロックした。ウェルを１００μｌの洗浄緩衝液（ＰＢＳ）で３回洗浄した後、アッセイ緩衝液中で調製した２５μＬの試料を２連でロードし、穏やかに振とうしながら室温で１時間にわたってインキュベートした。プレートを１００μｌの洗浄緩衝液で６回洗浄し、アッセイ緩衝液中１０ｎｇ／ｍＬの西洋ワサビペルオキシダーゼ（Ｊａｃｋｓｏｎ  ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ）に特異的にコンジュゲートされた２５μｌの抗ヤギヒトＦｃＲｎ断片を各ウェルに添加し、穏やかに振とうしながら室温で１時間にわたってインキュベートした。ウェルを１００μｌの洗浄緩衝液で６回洗浄し、１ウェル当たり２５μＬのＴＭＢ（Ｍｏｓｓ，Ｉｎｃ．、カタログ番号ＴＭＢＥ−１０００）基質を、穏やかに振とうしながら室温で１５分間にわたって添加し、１ウェル当たり２５μＬの１Ｍリン酸を添加して反応を停止させ、プレートリーダーを使用して４５０ｎｍにおける吸光度を測定した。
【０１８０】
ｍＡｂ−ＦｃＲｎ相互作用のＢＬＩベースの評価
オクテットＲＥＤ（ＰＡＬＬ／ＦｏｒｔｅＢｉｏ）を、３０℃で９６ウェルソリッド黒プレート（Ｇｒｅｉｎｅｒ  Ｂｉｏ−Ｏｎｅ、６５５９００）中における全てのＦｃＲｎ結合ｉｎ  ｖｉｔｒｏアッセイに使用した。初めに、ＦｃＲｎを、ニッケル−ニトリロ三酢酸コーティングされたバイオセンサー（ＦｏｒｔｅＢｉｏ、１８−００２９）に、最適化された濃度で１８０秒間にわたって固定した。ベースラインステップの後、ＦｃＲｎが固定されたバイオセンサーを、ＨＣｌでｐＨ６．０に調整したＰＢＳ中のｍＡｂ試料に３０秒間にわたって曝露した場合のｍＡｂ−ＦｃＲｎ結合速度を決定した。分析の前に、全ての抗体を、ＰＢＳ  ｐＨ６．０中に透析し、ＰＢＳ  ｐＨ６．０中１００ｍｇ／ｍＬに希釈し、２００ｍＬ体積で使用した。各アッセイは、特異的ｍＡｂについて５連で実施した。データ分析は、ソフトウェアバージョン７．０（ＰＡＬＬ、ＦｏｒｔｅＢｉｏ）を使用して実施した。
【０１８１】
イメージングキャピラリー等電点電気泳動によるｐＩ決定
イメージングキャピラリー等電点電気泳動（ｉｃＩＥＦ）は、ｉＣＥ２８０アナライザー（ＰｒｏｔｅｉｎＳｉｍｐｌｅ、Ｔｏｒｏｎｔｏ、ＯＮ）で、以前に記述されたように（Ｌｉら、２０１４年）実施した。陽極液及び陰極液は、それぞれ０．１％のメチルセルロースを用いて調製された、それぞれ８０ｍＭのリン酸及び１００ｍＭのＮａＯＨであった。ｍＡｂ試料を、カルボキシペプチダーゼを含有する水中で調製し、３７℃で２０分間にわたってインキュベートして、Ｃ末端リジン残基を除去した。３．１％（ｖ／ｖ）のファルマライト（ＧＥ  Ｌｉｆｅ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ）、２．５Ｍの尿素、０．１％（ｖ／ｖ）のメチルセルロース、並びにｐＩ５．５及び９．７７マーカー（Ｐｒｏｔｅｉｎ  Ｓｉｍｐｌｅ）で構成された両性電解質混合物を、処置した抗体と合わせて、０．２５ｍｇ／ｍＬの最終濃度とした。電気泳動図を、光吸収検出器で２８０ｎｍにて撮像した。
【０１８２】
フローサイトメトリーによる細胞結合アッセイ
細胞を、ＦＡＣＳ緩衝液（ＰＢＳ／１％のＢＳＡ／２ｍＭのＥＤＴＡ／０．１％のアジ化ナトリウム）中１００μｇ／ｍＬの試験分子で染色し、氷上で１時間にわたってインキュベートした。ＦＡＣＳ緩衝液で洗浄した後、細胞をＰＥコンジュゲートマウス抗ヒトＩｇＧ  Ｆｃ二次抗体（Ｓｏｕｔｈｅｒｎ  Ｂｉｏｔｅｃｈ、Ｂｉｒｍｉｎｇｈａｍ、ＡＬ）で、氷上で１時間にわたって染色した。細胞を洗浄し、固定緩衝液（ＢＤ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ、Ｓａｎ  Ｊｏｓｅ、ＣＡ）で固定した。ＦＡＣＳカントＩＩフローサイトメーター（ＢＤ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ、Ｓａｎ  Ｊｏｓｅ、ＣＡ）を使用して、染色した細胞の蛍光強度を測定し、フロージョーソフトウェア（Ｔｒｅｅ  Ｓｔａｒ、Ａｓｈｌａｎｄ、ＯＲ）を使用してデータを分析した。
【０１８３】
Ｘ−Ｆｃシアリル化バリアントを用いるマウスＰＫ研究
単回静脈内ボーラス用量のＸ−Ｆｃバリアント（１、５、８、１２又は１５）を、ＣＤ１マウスに１ｍｇ／ｋｇ用量で投与した。投薬後最大２１日までの種々の時点にて、血清試料（ｎ＝４／時点）を収集し、薬物濃度について分析した。検証済みＥＬＩＳＡアッセイを使用して、血清中の薬物濃度を測定した。個々の動物からの血清濃度−時間データを使用して、フェニックスウィンノンリン、バージョン６．４．０．７６８（ウィンノンリン６．４、Ｐｈａｒｓｉｇｈｔ  Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ、Ｍｏｕｎｔａｉｎ  Ｖｉｅｗ、ＣＡ）における非コンパートメントスパース分析を使用し、薬物動態パラメーターを推定した。
【０１８４】
マウス血清中の総抗体濃度を、Ｇｙｒｏｓ技術プラットフォーム（Ｇｙｒｏｓ  ＵＳ  Ｉｎｃ．、Ｗａｒｒｅｎ、ＮＪ）を使用するＥＬＩＳＡ及び汎用的なＰＫアッセイにより測定した。このアッセイは、ビオチン化ヒツジ抗ヒトＩｇＧ抗体を捕捉として、及びアレクサフルオル＿６４７コンジュゲートヒツジ抗ヒトＩｇＧを検出として使用する。このアッセイのための最小希釈は、１：１０であった。アッセイは、マウス血清について０．０３〜３０μｇ／ｍＬの標準曲線範囲を有していた。
【０１８５】
実施例１：中性ｐＨ  ＦｃＲｎ介在性トランスサイトーシスアッセイの開発及び特徴付け
ＭＤＣＫ細胞株に、ヒトＢ２Ｍ（Ｂ２Ｍ）及びＦｃＲｎ重鎖（ＦＣＧＲＴ）遺伝子の両方をトランスフェクトした。両方の遺伝子を発現している安定な細胞を、ＦＡＣＳ選別によって単離し、細胞表面に高レベルのＦＣＧＲＴ及びＢ２Ｍを発現しているクローン細胞株（ＭＤＣＫ−ｈＦｃＲｎ、３０５−６）（図２）を、ＦｃＲｎ依存性トランスサイトーシスアッセイの更なる開発のために選択した。潜在的なアッセイバイアス／アーチファクトを最小化し、生理的条件をより良好に模倣するために、アッセイにて試験した分子は標識を含まないものであり、アッセイは、生理的ｐＨ下、成長培地中で行った。
【０１８６】
本発明のアッセイでは、細胞をトランスウェルのフィルタ膜上で集密度まで成長させ、試験分子を内部チャンバー内の成長培地に添加し、インキュベーション後、細胞を経由して輸送され、外部チャンバー内の培地中に放出された分子を、ＥＬＩＳＡによって定量化した。アッセイは、播種密度、トランスウェルプレートフォーマット、ローディング濃度、アッセイ培地及びアッセイ持続期間について大幅に最適化した。アッセイ培地は、ＩｇＧの存在下で、ヒトＦｃＲｎと結合し、三分子複合体を形成することが示されているウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）を含有する（Ｃｈａｕｄｈｕｒｙ  Ｃ．ら、２００３年、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．第１９７巻、第３１５〜３２２頁）ため、このアッセイにおけるヒトＦｃＲｎは、試験抗体及びＢＳＡの両方を同時に係合させることが期待される。ＢＳＡの代わりに可変量のヒト血清アルブミンを含有する代替的なアッセイ培地は、ＢＳＡを含有する培地と比較して、トランスサイトーシス読み出しにおける差異をほとんど示さなかった。操作上の考慮事項により、アッセイは、ＦＢＳ／ＢＳＡを含有する正常成長培地中で行った。
【０１８７】
フィルタ成長ＭＤＣＫ−ｈＦｃＲｎ細胞の機能的完全性を、経上皮電気抵抗の測定によってモニターした（ＴＥＥＲ；Ｓｒｉｎｉｖａｓａｎ  Ｂ．ら、２０１５年、Ｊ  Ｌａｂ  Ａｕｔｏｍ第２０巻（第２号）：第１０７〜１２６頁）。アッセイ前の単層のＴＥＥＲは、典型的には、偏向ＭＤＣＫ  ＩＩ細胞にとって特徴的な範囲の、２５０〜３００Ω＊ｃｍ２であった（Ｔｅｓａｒ  ＤＢら、２００６年、Ｔｒａｆｆｉｃ第７巻（第９号）：第１１２７〜１１４２頁）。加えて、アッセイ中の単層の関門完全性（漏出性）を、方法にて記述されるように、内部チャンバー内の試験分子とともに、ルシファーイエローを混ぜることによってモニターした。
【０１８８】
実施例２：ｉｎ  ｖｉｔｒｏトランスサイトーシス効率の、ヒトにおけるｍＡｂのｉｎ  ｖｉｖｏクリアランスとの相関
ｉｎ  ｖｉｖｏでのｍＡｂのＰＫ挙動の決定又は予測のためのこのアッセイの潜在的な有用性を評価するために、３０種の市販されている治療用抗体及び２３種の臨床候補を含む５３種のｍＡｂを、該アッセイにて試験した。ｍＡｂのトランスサイトーシス出力を、ヒトにおけるそれらの報告されているクリアランス速度との潜在的な相関について分析した。これらの分子は、臨床グレードの材料のアベイラビリティ及びヒトクリアランスデータに基づいて選択した。トランスサイトーシスアッセイに加えて、分子の一部を、２つの他のｉｎ  ｖｉｔｒｏアッセイでも試験した。ＢＶ  ＥＬＩＳＡ及びバイオレイヤー干渉法（ＢＬＩ）ベースのヒトＦｃＲｎ結合アッセイ。ＢＶ  ＥＬＩＳＡは、バキュロウイルス粒子との非特異的な結合を、ｍＡｂの一般的な非特異的結合特性の兆候として測定するものであり、カニクイザルにおいて速いクリアランスのリスク増大を有する抗体を同定することができると報告されている（Ｈｏｅｔｚｅｌら、２０１２年、（２０１２）、ＭＡｂｓ第４巻（第６号）：第７５３〜７６０頁）。ＢＬＩベースのＦｃＲｎ結合アッセイは、ｐＨ６．０におけるＦｃＲｎ会合速度及びｐＨ７．４における解離速度を組み合わせて生成するために使用されてきたものであり、これは、ヒトにおける５種のｍＡｂ及びヒトＦｃＲｎのトランスジェニックマウスの半減期との強い相関を示した（Ｓｏｕｄｅｒｓ  ＣＡら、２０１５年、ＭＡｂｓ第７巻（第５号）：第９１２〜９２１頁）。
【０１８９】
この研究の結果は、表１に提示され、この表は、ヒト及びカニクイザル（ｃｙｎｏ）の両方における試験分子のクリアランス速度も含む。試験パネルの平均トランスサイトーシス出力は、５．４ｎｇ／ｍＬであり、４．５の中央値及び２．６〜１４．９の範囲を持ち、これは、内部チャンバー内にロードされた材料（１００μｇ／ｍＬ）の約０．００５％の平均を反映している。ｐＨ６．０におけるＦｃＲｎ結合親和性（Ｋｄ、単位μＭ）及びＢＶ  ＥＬＩＳＡスコアのそれぞれの平均及び中央値／範囲は、次の通りである：それぞれ、０．６３、０．５４／０．２５〜１．８、及び０．２５、０．０６／０．０．０３８〜３．９１６。市販されているｍＡｂ薬のヒトクリアランス速度は、該薬物の処方情報又は報文から取得し、臨床病期ｍＡｂのクリアランス速度は、Ｇｅｎｅｎｔｅｃｈによって行われた臨床研究又は報文から生成した。ｃｙｎｏクリアランス速度は、Ｇｅｎｅｎｔｅｃｈによって行われたｃｙｎｏ研究から生成した。ヒトにおけるクリアランス速度の平均及び中央値／範囲は、ｃｙｎｏでは、５．０、４．１／１．４〜１４．１ｍＬ／Ｋｇ／日、及び６．８、４．９／３．０〜１５．８ｍＬ／Ｋｇ／日である。全てのパラメーターの値は、少なくとも５倍の範囲に広がり、この研究において試験したｍＡｂパネルの実質的な多様性を指し示しているように思われる。
【０１９０】
図３Ａに示すように、トランスサイトーシス出力とクリアランス値との間には明らかな関連傾向が観察され、当てはめられた線形回帰Ｒ二乗値は０．８であった。ヒトにおいてより速いクリアランス速度が報告された抗体は、概して、このアッセイにおいてより高いトランスサイトーシス出力を示した。注目すべきことに、観察された相関は、重及び軽鎖サブクラスに基づく亜群試験分子、標的性質（可溶性又は膜結合）、作用機序（アゴニスト性、アンタゴニスト性又は毒性）又は投与ルートによって影響を受けなかった。他方で、クリアランス速度は、ＢＬＩ又はＢＶ  ＥＬＩＳＡを介して、ｐＨ６．０にてＦｃＲｎ結合との明らかな相関を示さなかった（図３Ｂ、Ｃ）。
【０１９１】
Ｃｙｎｏ  ＰＫは、概して、ｍＡｂのヒトＰＫを決定する又は予測するための最も翻訳可能なモデルを提供する。トランスサイトーシス出力とｃｙｎｏクリアランスとの間の相関は、ＰＫのための決定又は予測ツールとして、このアッセイの有用性に更なる確認を提供し得る。Ｃｙｎｏクリアランスデータを、パネル内の２５種のｍＡｂについて取得し、ヒトクリアランス速度又はトランスサイトーシス効率値のいずれかとの、それらの相関を分析した。図Ｄに示すように、トランスサイトーシス効率とｃｙｎｏクリアランスとの間に関連傾向が観察され、Ｒ二乗値によって判断される相関の程度は、ｃｙｎｏ及びヒトクリアランスの間のものと同様であるように思われる（図３Ｄ）。しかしながら、０．６前後では、Ｒ二乗値は少数の「外れ値」により比較的低かった。ｃｙｎｏクリアランス対トランスサイトーシスプロット（図３Ｄ）における最も明白な外れ値のうちの２つは、ａＮＲＰ１及びペルツズマブであり、前者は、ヒトクリアランスとのその不一致で公知であり（図３Ｅ）、後者は、おそらく、イヌ上皮成長因子受容体−２との交差反応性により、ＭＤＣＫ細胞と結合する（Ｆａｚｅｋａｓ、２０１６年）。これらの２つの分子の除去は、線形回帰当てはめのＲ二乗値を、図２Ｅでは約０．７５及び図３Ｅでは０．７６に増大させた。
【表１】
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ＮＤ＝実施せず、ＮＡ＝計測不能、ＲＯＡ＝投与ルート、Ｍ＝膜結合、Ｓ＝可溶性、ＳＣ＝皮下注射、ＩＶ＝静脈内注射、ＩＭ＝筋肉内注射。
【０１９２】
トランスサイトーシス出力とクリアランスとの間で観察された相関におけるＦｃＲｎ相互作用への依存度を実証するために、１２種のｍＡｂ（ヒトクリアランスデータを加えたパネルから１０種）を、アッセイにおいて観察されたそれらの様々なトランスサイトーシス出力に基づいて無作為に選択し、親ＭＤＣＫ細胞を使用する同様のトランスサイトーシスアッセイにて試験した。得られたトランスサイトーシス値を、それらのクリアランス速度との相関の傾向について分析し（図４Ａ）、ＭＤＣＫ−ｈＦｃＲｎ細胞を使用したものと比較した（図４Ｂ）。表３及び図４Ａに示すように、ＭＤＣＫ細胞におけるトランスサイトーシス値は、概して、ＦｃＲｎトランスフェクト細胞を使用するアッセイからのものの１０％未満であり、ヒトにおけるクリアランス速度との明らかな相関を示さなかった。他方で、ｍＡｂの同じセットを持つＭＤＣＫ−ｈＦｃＲｎ細胞におけるトランスサイトーシスは、クリアランスとの強い相関を示す（図４Ｂ）。この研究の結果は、ＦｃＲｎと試験抗体との間の相互作用が、本発明のアッセイにおいてトランスサイトーシスを促進することに関与するだけではなく、ヒトにおけるクリアランスとのそれらの観察された相関にも直接寄与することを裏付けるものである。
【０１９３】
実施例３：ｍＡｂのトランスサイトーシスに対する細胞結合の影響
非限定的な非標的結合は、ｍＡｂ薬のＰＫに影響を及ぼすことが公知である（Ｂｏｓｗｅｌｌら、２０１０年、Ｂｉｏｃｏｎｊｕｇ．Ｃｈｅｍ．第２１巻、第２１５３〜２１６３頁）。本発明のアッセイにおける試験分子のトランスサイトーシスは、ＭＤＣＫ−ｈＦｃＲｎ細胞による結合及び内在化を伴うものであった。試験分子は、生理的ｐＨにおける非特異的相互作用又は表面結合ＦｃＲｎとの特異的結合を介して細胞と結合してよく、これらのいずれも、トランスサイトーシス出力に影響を及ぼし得る。トランスサイトーシスに対する細胞結合の影響を評価するために、選択的ｍＡｂを、トランスフェクトＭＤＣＫ−ｈＦｃＲｎ及び非トランスフェクトＭＤＣＫ細胞の両方とともにインキュベートし、結合抗体を、フローサイトメトリーにより、蛍光コンジュゲートマウス抗ヒトＩｇＧ−Ｆｃを用いて検出した。細胞との結合の程度を幾何平均蛍光強度によって示し、結果を表２に提示する。若干の例外はあるものの、いずれかの細胞株との細胞結合におけるｍＡｂ間の差異は、ほとんどは小さく、これは、生理的ｐＨにおけるＦｃＲｎとの最小限の結合により、ほとんどの場合のＦｃＲｎ発現が、ＡｂのＭＤＣＫ細胞との結合挙動を劇的に変化させなかったことを指し示しているように思われた。細胞結合とトランスサイトーシス出力との間に明らかな相関は観察されなかった（図４Ｃ）。
【０１９４】
興味深いことに、抗ＨＥＲ２抗体、トラスツズマブ及びペルツズマブはいずれも、トランスフェクトヒトＦｃＲｎを加えて及び加えずに、ＭＤＣＫ細胞との結合向上を示した（表２）。ヒトＨＥＲ２がそのイヌ対応物と高い相同性を共有すること、並びにトラスツズマブ及びペルツズマブはいずれもイヌにおける乳癌の処置に使用され得ることが報告されている（Ｆａｚｅｋａｓ、２０１６年）。したがって、これらの２つの分子による細胞との観察された結合は、ＭＤＣＫ細胞で発現されたイヌ上皮成長因子受容体−２との交差反応性によって説明することができる。加えて、抗ｇＤは、非トランスフェクトＭＤＣＫ細胞だけではなくＭＤＣＫ−ｈＦｃＲｎとの結合増大を示し、生理的ｐＨにおけるＭＤＣＫ−ＦｃＲｎ細胞上のヒトＦｃＲｎとのその特異的結合を示唆していた。さらに、ＭＤＣＫ−ＦｃＲｎ細胞との結合向上は、ＭＤＣＫ−ＦｃＲｎ細胞におけるトランスサイトーシス増大に翻訳しなかった。観察された結合は、複合体の内在化に直接つながらなかった、あるいは、内在化抗ｇＤは、優先的にリサイクルされて内部チャンバーに戻ったか、又は分解のためにリソソームに向けられ、したがって、トランスサイトーシス経路を介して輸送されなかったと考えられる。最後に、試験した１２種のｍＡｂの中でより高いトランスサイトーシス及びより速いクリアランスを示すｍＡｂのうちの２つ（バキシリキシマブ及びｍＡｂ１２）は、両方の細胞株との結合向上も示した。これは、両方の分子が、ＭＤＣＫ細胞膜との非特異的相互作用を発揮し得、このことが、アッセイにおけるトランスサイトーシス増大につながり、ヒトにおけるそれらの報告された速いクリアランスにおいて潜在的に役割を果たしたことを示唆している。
【表２】
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【０１９５】
まとめると、この研究からの結果は、特異的又は非特異的相互作用を介する細胞との結合がトランスサイトーシスに影響を及ぼし得るのに対し、このアッセイからの出力は、結合のみによって決定されず、細胞取り込み／内在化、エンドソームにおけるＦｃＲｎとの相互作用、及び細胞における選別／移動等の他の寄与因子が、総合的な成果に関与していたことを示唆している。ＭＦＩ：幾何平均蛍光強度
【０１９６】
実施例４：ｍＡｂのトランスサイトーシスに対する電荷の影響
電荷は、ｍＡｂが、表面結合上の負に荷電された成分とどのように相互作用するかの主要な決定要因の１つである。電荷の変化は、ｍＡｂのＰＫ挙動を変化させることが示されている：より高いｐＩ又はより正のＦｖ電荷を担持するｍＡｂは、それらのより低いｐＩの／あまり正に荷電されていない対応物よりも速く一掃されることが示された（Ｉｇａｗａ，Ｔ．ら、２０１０年、Ｐｒｏｔｅｉｎ  Ｅｎｇ  Ｄｅｓ  Ｓｅｌ第２３巻（第５号）：第３８５〜３９２頁；Ｂｏｓｗｅｌｌら、Ｃｈｅｍ．第２１巻、第２１５３〜２１６３頁（２０１０年）．１０；Ｂｕｍｂａｃａ  Ｙ．ら、２０１５年、Ｊ  Ｂｉｏｌ  Ｃｈｅｍ第２９０巻（第５０号）：第２９７３２〜２９７４１頁）。より高い正電荷は、おそらくは負に荷電された細胞外マトリックスとのより大きい静電相互作用により、非特異的結合の増大を経由してより速い非特異的クリアランスにつながるのに対し、より低い正電荷は、非特異的結合の減少及びより遅い非特異的クリアランスにつながるであろうというのが仮説である。
【０１９７】
ｍＡｂのトランスサイトーシスに対する電荷の効果を理解するために、いくつかの前臨床種におけるＰＫ挙動について以前に評価したＦｖ電荷バリアントが設計されたｍＡｂの２つのセット（Ｂｕｍｂａｃａ  Ｙ．ら、２０１５年、Ｊ  Ｂｉｏｌ  Ｃｈｅｍ第２９０巻（第５０号）：第２９７３２〜２９７４１頁）を、本発明者らのアッセイにて試験した。これらの電荷バリアントは、抗リンホトキシンα（抗ＬＴα）及びｈｕｍＡｂ４Ｄ５−８（抗ＨＥＲ２）に基づくものであり、各親抗体について一方がより正に荷電されたＦｖを有し（抗ＬＴα＋３及び抗ＨＥＲ２＋３）、他方があまり正に荷電されていないＦｖを有していた（抗ＬＴα−４及び抗ＨＥＲ２−４）。報告された研究では、より正のＦｖ電荷を持つ両方のバリアントはより速い非特異的クリアランスを示したのに対し、あまり正に荷電されていないものは、親分子と比較して同様の又は低いクリアランスを示した（Ｂｕｍｂａｃａ  Ｙ．ら、２０１５年、Ｊ  Ｂｉｏｌ  Ｃｈｅｍ第２９０巻（第５０号）：第２９７３２〜２９７４１頁）。Ｆｃ電荷とクリアランスとの間の相関は、カニクイザル、マウス及びラットを含む試験した全ての前臨床種において観察され、種依存の欠如は、正に荷電されたｍＡｂと負に荷電された細胞成分との間の非特異的静電相互作用の仮説を裏付けるものである。表３に示すように、電荷バリアントの両方のセットのトランスサイトーシス値の順序は、Ｆｖ電荷の程度及びカニクイザルにおいて観察されたクリアランス速度と同じ傾向に追随する。親分子と比較して、両方のより正に荷電されたバリアント（抗ＬＴα＋３及び抗ＨＥＲ２＋３）はより高いトランスサイトーシス出力を示したのに対し、２つのあまり荷電されていない分子は、より低いトランスサイトーシス出力を示した。トランスサイトーシス出力は、電荷バリアントの両方のセットのクリアランス速度の観察された順位付けを正しく反映しているように思われた。この研究の結果は、ｍＡｂの電荷における変化が、それらのＰＫに対してするのと同じように、本発明者らのアッセイにおけるトランスサイトーシス読み出しに影響を及ぼすこと、及び本発明者らのアッセイが、クリアランスに対する電荷の影響を反映できることを指し示している。
【表３】
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【０１９８】
ヒトにおけるｍＡｂのクリアランスに対する静電相互作用の一般的な影響をよりよく理解するために、１９種のｍＡｂ（試験した５０種のｍＡｂのうち）の組み合わせたＦｖ（ｖＬ＋ｖＨ）電荷を算出し、それらのクリアランスとの相関を分析した。加えて、これらの分子のｐＩをｉｃＩＥＦで測定し、同様の分析を実施した。図５Ａ及び５Ｂに示すように、ヒトにおけるクリアランス速度とｐＩ又は組み合わせたＦｖ電荷値のいずれかとの間で関連傾向が観察されたが、相関の強さは、比較的低いＲ二乗値（０．２５未満）から明らかなように、弱いと思われた。他方で、クリアランスとトランスサイトーシスとの間の相関は、ｍＡｂのこのサブセットでは強いままである（０．８より大きいＲ二乗値；図５Ｃ）。電荷における実質的な変更はｍＡｂのトランスサイトーシス挙動を変調することが期待されるが、このアッセイの出力は、電荷に加えて、複数の要因によって寄与される複合効果により決定されるように思われる。
【０１９９】
実施例５：Ｆｃ含有分子のトランスサイトーシスに対するグリコシル化の影響
ｍＡｂ又はＦｃ融合タンパク質のグリコシル化パターンは、それらのＰＫ及びＰＤ挙動に有意に影響を及ぼすことができる（Ｈｉｇｅｌ  Ｆ．ら、２０１６年、Ｅｕｒ  Ｊ  Ｐｈａｒｍ  Ｂｉｏｐｈａｒｍ第１００巻：第９４〜１００頁）。９９％超の高マンノースＮ−グリカン（Ｍａｎ５又はＭａｎ８／９）を担持するｍＡｂは、典型的なグリコシル化パターンを持つ対照と比較して前臨床種においてより速いクリアランスを示すこと（Ｙｕ  Ｍら、２０１２年、ＭＡｂｓ第４巻（第４号）：第４７５〜４８７頁）、及び融合パートナーにおいて広範なシアリル化を持つＦｃ融合タンパク質は、それらのあまりシアリル化されていない対応物と比較して低減されたクリアランスを示すこと（Ｓｔｅｆａｎｉｃｈ  ＥＧら、２００８年Ｊ  Ｐｈａｒｍａｃｏｌ  Ｅｘｐ  Ｔｈｅｒ第３２７巻（第２号）：第３０８〜３１５頁）が示されている。高マンノースグリカンを担持するｍＡｂは、免疫細胞において最も顕著に発現されるマンノース受容体によって結合及び一掃され（Ｌｅｅ  ＳＪら、２００２年、Ｓｃｉｅｎｃｅ第２９５巻第１８９８〜１９０１頁）、一方、末端ガラクトースが露出した（シアリル化のない）Ｆｃ融合タンパク質は、肝臓において発現されるアシアロ糖タンパク質受容体によって結合及び一掃される（Ｓｔｏｃｋｅｒｔ  ＲＪ、１９９５年、Ｐｈｙｓｉｏｌ．Ｒｅｖ．第７５巻：第５９１〜６０９頁）という仮説が立てられる。
【０２００】
ｍＡｂ及びＦｃ融合タンパク質のトランスサイトーシスに対するグリコシル化の効果を調査するために、グリコシル化パターンに変動がある分子の２つのセットを試験した。オクレリズマブ（２Ｈ７）グリコフォームのバリアントは、一方のｉｎ  ｖｉｔｒｏ脱グリコシル化（２Ｈ７−ＤＧ）によるＦｃ  Ｎ結合グリカンがないもの、及び他方の９９％超のマンノース５グリカン（２Ｈ７−Ｍａｎ５）を担持するものを含む。バリアントの他方のセットは、ヒト糖タンパク質Ｘ及びヒトＩｇＧ１  ＦｃからなるＸ−Ｆｃ、融合タンパク質に基づき、Ｘ−Ｆｃの５種のバリアントは、Ｘ−Ｆｃ１モル当たり１、５、８、１２及び１５モルのシアル酸（それぞれ、Ｘ−Ｆｃ１、Ｘ−Ｆｃ５、Ｘ−Ｆｃ８、Ｘ−Ｆｃ１２及びＸ−Ｆｃ１５）を表す異なるレベルのシアリル化を担持する。２Ｈ７及び２Ｈ７−Ｍａｎ５のクリアランス速度は、以前に公開された研究（Ｙｕ  Ｍら、２０１２年、ＭＡｂｓ第４巻（第４号）：第４７５〜４８７頁）から取得し、Ｘ−Ｆｃシアリル化バリアントのクリアランス速度は、社内マウス研究から生成した。２Ｈ７−ＤＧについて利用可能なクリアランスデータはなかったが、Ｆｃ  Ｎ−グリカンの除去は、それらの半減期における識別できる変化を誘発しないことが報告された（Ｔａｏ  ＭＨ及びＭｏｒｒｉｓｏｎ  ＳＬ、１９８９年、Ｊ  Ｉｍｍｕｎｏｌ第１４３巻（第８号）：第２５９５〜２６０１頁）。加えて、Ｎ２９７Ｇ突然変異によりＦｃ  Ｎ−グリカンを担持しないアテゾリズマブは、ヒトにおいて正常ＰＫプロファイルを示す（処方情報及び表１）表４に示すように、２Ｈ７と比較して、２Ｈ７−ＤＧは同様のトランスサイトーシスを示したのに対し、２Ｈ７−Ｍａｎ５はトランスサイトーシスにおける２倍の増大を示し、前者は同様のクリアランスを予測し、後者はより速いクリアランスを予測し、これらのいずれも、ｉｎ  ｖｉｖｏでのクリアランス速度についてのそれらの期待される／観察される順位付けと一致する。同様に、５種のＸ−Ｆｃバリアントは、シアリル化増大の結果としての露出した末端ガラクトースの量減少と一致する順序でトランスサイトーシスのレベル減少を示し、これらのシアリル化バリアントのクリアランス速度について予測される順位付けは、マウス研究から観察されたクリアランスデータと一致する。
【０２０１】
細胞とのＦｃＲｎ結合及び／又は非特異的相互作用に対するグリコシル化の潜在的な影響を調査するために、グリコシル化バリアントの両方のセットを、ＭＤＣＫ−ｈＦｃＲｎ細胞に対するＦｃＲｎ結合親和性及び相対結合について試験した。２Ｈ７と比較して、脱ギコシル化分子（２Ｈ７−ＤＧ）は、ＦｃＲｎ及び細胞との結合において識別できる差異を示さなかった。他方で、マンノース−５グリコフォーム（２Ｈ７−Ｍａｎ５）は、ｐＨ６．０にて、ＭＤＣＫ細胞との結合におけるわずかな増大及びＦｃＲｎとの結合における適度な増大を示したが、ＭＤＣＫ細胞におけるトランスサイトーシスの増大及びＭＤＣＫ−ＦｃＲｎ細胞との結合における更なる増大を示さなかった。２Ｈ７  ｍａｎ−５グリコフォームと同様に、Ｘ−Ｆｃシアリル化バリアントは、ＭＤＣＫ−ｈＦｃＲｎ細胞におけるトランスサイトーシスと細胞との結合又はＭＤＣＫ細胞におけるトランスサイトーシスのいずれかとの間に明らかな相関を示さなかった。しかしながら、ＦｃＲｎ結合の増大及びトランスサイトーシスの増大を示した２Ｈ７−Ｍａｎ５とは対照的に、Ｘ−Ｆｃシアリル化バリアントは、ＭＤＣＫ−ＦｃＲｎ細胞におけるトランスサイトーシス出力と逆相関するＦｃＲｎ結合における増大の傾向を示した。これは、グリコシル化が、グリカン種に応じて異なってＦｃＲｎ結合及びトランスサイトーシスに影響を及ぼし得ることを示唆している。注目すべきことに、２Ｈ７−Ｍａｎ５及びＸ−Ｆｃ−ＳＡ１によるＭＤＣＫ細胞との結合における注目に値する増大の欠如は、トランスサイトーシスの増大が、これらのＩｇＧグリコフォームの異化作用に関与することが公知であるマンノース受容体又はアシアロ糖タンパク質受容体等の特異的受容体との結合によるものであったことを示唆しているが、本発明者らは、ＭＤＣＫ細胞におけるそのような受容体の存在又は非存在を確認するための直接的な証拠を有さない。
【表４】
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【０２０２】
実施例６：ｍＡｂのトランスサイトーシスに対する極度のＦｃＲｎ結合の影響
遺伝子工学を介するＦｃＲｎに対する結合親和性の修飾は、治療用抗体及びＦｃ融合タンパク質の半減期に影響を及ぼすことが示されている（Ｗａｒｄ  ＥＳら、２０１５年、Ｍｏｌ  Ｉｍｍｕｎｏｌ第６７巻（第２部Ａ）：第１３１〜１４１頁）。故に、操作された突然変異を担持するｍＡｂのトランスサイトーシス挙動を、実質的に変更されたＦｃＲｎ結合親和性について調査することは興味深い。分子の２つのセットを、親のＭＤＣＫ及びＭＤＣＫ−ｈＦｃＲｎ細胞の両方におけるトランスサイトーシスについて試験した。第１のセットは、抗ＶＥＧＦ（ヒト化ＩｇＧ１  ｍＡｂ）、及びＦｃＲｎ結合を１０倍近く増大させるＴ３０７Ｑ／Ｎ４３４Ａ突然変異を担持する抗ＶＥＧＦ−ＱＡを含む（Ｙｅｕｎｇ  ＹＡら、２０１０年、Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ第７０巻（第８号）：第３２６９〜３２７７頁）。第２のセットは、ヒト化単純ヘルペスウイルス糖タンパク質Ｄ特異的ＩｇＧ１抗体、抗ｇＤ（ＷＴ）、及びそのＦｃＲｎ結合バリアントのうちの２つ、そのＦｃＲｎ結合活性を検出不能なレベルまで低下させるＨ３１０Ａ／Ｈ４３５Ｑ突然変異を担持する抗ｇＤ−ＨＡＨＱ（Ｋｅｎａｎｏｖａ  Ｖ．ら、２００５年、Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ第６５巻（第２号）：第６２２〜６３１頁）、並びにそのＦｃＲｎ結合を１０倍を超えて増大させるＭ２５２Ｙ／Ｓ２５４Ｔ／Ｔ２５６Ｅ突然変異を担持する抗ｇＤ−ＹＴＥ（Ｄａｌｌ’Ａｃｑｕａ、２００６年）を含む。表５に示すように、抗ｇＤ−ＨＡＨＱを持つＭＤＣＫ−ｈＦｃＲｎ細胞において明確に観察された５つ全ての分子の明らかなトランスサイトーシスは、最も低いトランスサイトーシス値を示し、これはそのＦｃＲｎとの結合不能による可能性が高い。しかしながら、トランスサイトーシス出力の増大がクリアランス速度の増大と相関するｍＡｂパネルからの結果（速いクリアランス）とは対照的に、ｉｎ  ｖｉｖｏで遅いクリアランスを示す抗ＶＥＧＦ−ＱＡ及び抗ｇＤ−ＹＴＥはいずれも、それらの野生型対応物と比較して増大したトランスサイトーシスを示した。極度のＦｃＲｎ結合親和性を持つ分子は、リサイクリング及びトランスサイトーシス経路を支配する選別機序に対するそれらの差次的応答により、このアッセイにおいて異なって挙動するかもしれないと考えられる。
【０２０３】
興味深いことに、分子のほとんどは、ＭＤＣＫ細胞において、０．３ｎｇ／ｍＬでＥＬＩＳＡの検出限界未満か又はかろうじて上回るかのいずれかである低レベルのトランスサイトーシスを示したが、抗ｇＤ−ＹＴＥは、１ｎｇ／ｍＬを超える注目に値するトランスサイトーシスレベルを示し、これはおそらくＦｃＲｎとは無関係である。２つの細胞株間で観察されたトランスサイトーシス出力における実質的な差異は、ＭＤＣＫ−ｈＦｃＲｎ細胞において観察されたトランスサイトーシスが、ＦｃＲｎによって最初に駆動されること、及び該アッセイが、ＦｃＲｎと相互作用することができるＩｇＧのインタクトなＦｃドメインを含有する分子に特異的であることを裏付けるものである。注目すべきことに、抗ＶＥＧＦ−ＱＡ及び抗ｇＤ−ＹＴＥはいずれも、ＦｃＲｎ結合活性において、それらの野生型対応物と比較して８〜１０倍の増大を示すが、トランスサイトーシスの増大はやや控えめであり、抗ＶＥＧＦ−ＱＡについては２倍未満、及び抗ｇＤ−ＹＴＥについては２倍をわずかに超えるものであった。
【表５】
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【０２０４】
本明細書で引用される全ての公報、特許及び他の参考文献は、参照によりその全体が本開示に組み込まれている。
【図１】
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【図２Ａ】
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【図２Ｂ】
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【図３Ａ】
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【図３Ｂ】
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【図３Ｃ】
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【図３Ｄ】
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【図３Ｅ】
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【図４Ａ】
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【図４Ｂ】
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【図４Ｃ】
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【図５Ａ】
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【図５Ｂ】
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【図５Ｃ】
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【図６】
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【国際調査報告】
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