(57)【要約】本発明は、炎症状態の治療において使用される哺乳動物細胞培養物の上清の効力を判定するための方法に関する。【特許請求の範囲】
【請求項１】
炎症状態の治療において使用される哺乳動物細胞培養物の上清の効力を判定するための方法であって、
ａ）前記上清を含むか、または前記上清からなる培養培地中で真核細胞をインキュベートするステップと、
ｂ）活性化因子タンパク質１（ＡＰ−１）プロモーターおよび／または活性化Ｂ細胞の核因子カッパ軽鎖エンハンサー（ＮＦ−ＫＢ）プロモーターのプロモーター活性を測定するステップ、ならびに任意に、ステップａ）の培養培地中に真核細胞により放出されたリン酸化熱ショックタンパク質２７（ＨＳＰ２７）の量を測定するステップと
を含み、少なくとも１つのプロモーターのプロモーター活性が、前記上清を欠く培養培地中で真核細胞を培養したときに測定されたプロモーター活性と比較して、少なくとも５０％高い場合、および任意に、ステップａ）の培養培地中に放出されたリン酸化ＨＳＰ２７の量が、前記上清を欠く培養培地中で真核細胞を培養したときに培養培地中に放出されたリン酸化ＨＳＰ２７の量と比較して、少なくとも２０％高い場合、哺乳動物細胞培養物の上清が、炎症状態の治療において使用される潜在性を有する、方法。
【請求項２】
性決定領域Ｙボックス２（Ｓｏｘ２）プロモーター、シグナル伝達兼転写活性化因子３（ＳＴＡＴ３）プロモーター、初期増殖応答タンパク質１（ＥＧＲ−１）プロモーターおよび血清応答配列（ＳＲＥ）プロモーターからなる群から選択される少なくとも１つのさらなるプロモーターのプロモーター活性が測定される、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
炎症状態の治療において使用される哺乳動物細胞培養物の上清の効力を判定するための方法であって、
ａ）前記上清を含むか、またはこれからなる培養培地中で真核細胞をインキュベートするステップと、
ｂ）活性化因子タンパク質１（ＡＰ−１）プロモーターおよび／または活性化Ｂ細胞の核因子カッパ軽鎖エンハンサー（ＮＦ−ｘＢ）プロモーターのプロモーター活性を測定するステップ、ならびに任意に、ステップａ）の培養培地中に真核細胞により放出されたリン酸化熱ショックタンパク質２７（ＨＳＰ２７）の量を測定するステップと
を含み、少なくとも１つのプロモーターのプロモーター活性が、炎症状態の治療において使用可能な、哺乳動物細胞の基準上清を含む培養培地中で真核細胞を培養したときに測定されたプロモーター活性と比較して、最大２５％高いか、または低い場合、および任意に、ステップａ）の培養培地中に放出されたリン酸化ＨＳＰ２７の量が、炎症状態の治療において使用可能な、哺乳動物細胞の基準上清を含むステップａ）の培養培地中に放出されたリン酸化ＨＳＰ２７の量と比較して、最大２５％高いか、または低い場合、哺乳動物細胞培養物の上清が、炎症状態の治療において使用される潜在性を有する、方法。
【請求項４】
性決定領域Ｙボックス２（Ｓｏｘ２）プロモーター、シグナル伝達兼転写活性化因子３（ＳＴＡＴ３）プロモーター、初期増殖応答タンパク質１（ＥＧＲ−１）プロモーターおよび血清応答配列（ＳＲＥ）プロモーターからなる群から選択される少なくとも１つのさらなるプロモーターのプロモーター活性が測定される、請求項４に記載の方法。
【請求項５】
哺乳動物細胞培養物の前記上清が、末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）培養物の上清である、請求項１〜４のいずれか１項に記載の方法。
【請求項６】
前記炎症状態が、虚血と関連する状態、好ましくは皮膚状態または内部炎症状態である、請求項１〜５のいずれか１項に記載の方法。
【請求項７】
ステップａ）の前記真核細胞が、腺癌性ヒト肺胞基底上皮細胞、好ましくはＡ５４９細胞、異数体不死化角化細胞（ＨａＣａＴ）、ヒト胎児腎臓細胞（ＨＥＫ細胞）、好ましくはＨＥＫ２９３細胞、および神経芽腫細胞、好ましくはＳＨ−ＳＹ５Ｙ細胞からなる群から選択される、請求項１〜６のいずれか１項に記載の方法。
【請求項８】
ステップａ）の前記真核細胞が、少なくとも２時間、好ましくは少なくとも４時間、より好ましくは少なくとも６時間、より好ましくは少なくとも１２時間、より好ましくは少なくとも１８時間、より好ましくは少なくとも２４時間、細胞培養培地中でインキュベートされる、請求項１〜７のいずれか１項に記載の方法。
【請求項９】
前記培養培地が、少なくとも２０％、好ましくは少なくとも５０％、より好ましくは少なくとも７０％、より好ましくは少なくとも８０％、より好ましくは少なくとも９０％、より好ましくは少なくとも９５％の前記上清を含む、請求項１〜８のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１０】
ステップａ）の前記培養培地が、ダルベッコ改変イーグル培地（ＤＭＥＭ）、ハムＦ１２培地（Ｆ１２）、最小必須培地、またはこれらの培地の１つ以上の組合せである、請求項１〜９のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１１】
ステップａ）の前記培養培地が、２〜２０％、好ましくは５〜１５％のウシ胎仔血清（ＦＢＳ）および／またはＬ−アラニル−Ｌ−グルタミンを含む、請求項１〜１０のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１２】
前記真核細胞が、レポータータンパク質をコードする少なくとも１つの核酸分子に作動可能に連結した、ＡＰ−１プロモーター、ＮＦ−ＫＢプロモーター、Ｓｏｘ２プロモーター、ＳＴＡＴ３プロモーター、ＥＧＲ−１プロモーターおよびＳＲＥプロモーターからなる群から選択されるプロモーターを含む少なくとも１つの発現カセットを含む、請求項１〜１１のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１３】
前記レポータータンパク質が、ルシフェラーゼ、好ましくはホタルルシフェラーゼ、および蛍光タンパク質、好ましくは緑色蛍光タンパク質からなる群から選択される、請求項１２に記載の方法。
【請求項１４】
前記培養培地中に細胞により放出されたタンパク質の量が、免疫学的方法により、好ましくは酵素結合免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）により、光度測定法により、または蛍光法により判定される、請求項１〜１３のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１５】
ステップａ）の前記真核細胞が、腺癌性ヒト肺胞基底上皮細胞、好ましくはＡ５４９細胞、ＨａＣａＴまたはＨＥＫ細胞、好ましくはＨＥＫ２９３細胞であり、リン酸化ＨＳＰ２７の量が判定される、請求項１〜１４のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１６】
前記少なくとも１つのプロモーターのプロモーター活性が、前記上清を欠く培養培地中で真核細胞を培養したときに測定されたプロモーター活性と比較して、少なくとも８０％、好ましくは少なくとも１００％、より好ましくは少なくとも１５０％、より好ましくは少なくとも２００％高い、請求項１〜１５のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１７】
ステップａ）の前記真核細胞が、培養培地中に放出されたリン酸化ＨＳＰ２７の量を測定される場合、腺癌性ヒト肺胞基底上皮細胞、好ましくはＡ５４９細胞、ＨａＣａＴ細胞またはＨＥＫ細胞、好ましくはＨＥＫ２９３細胞である、請求項１〜１６のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１８】
ステップａ）の前記真核細胞が、レポータータンパク質をコードする少なくとも１つの核酸分子に作動可能に連結した、ＡＰ−１プロモーターを含む少なくとも１つの発現カセットを含む、神経芽腫細胞、好ましくはＳＨ−ＳＹＳＹ細胞、またはＨａＣａＴ細胞である、請求項１〜１７のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１９】
ステップａ）の前記真核細胞が、レポータータンパク質をコードする少なくとも１つの核酸分子に作動可能に連結した、ＮＦ−ＫＢまたはＳｏｘ２プロモーターを含む少なくとも１つの発現カセットを含む、腺癌性ヒト肺胞基底上皮細胞、好ましくはＡ５４９細胞である、請求項１〜１８のいずれか１項に記載の方法。
【請求項２０】
ステップａ）の前記真核細胞が、レポータータンパク質をコードする少なくとも１つの核酸分子に作動可能に連結した、ＥＧＲ−１、ＳＲＥ、ＡＰ−１またはＳＴＡＴ３プロモーターを含む少なくとも１つの発現カセットを含む、ＨＥＫ細胞、好ましくはＨＥＫ２９３細胞である、請求項１〜１９のいずれか１項に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【発明の詳細な説明】
【０００１】
［技術分野］
本発明は、炎症状態の治療に使用される組成物の能力の試験において，使用される効力アッセイに関する。
【０００２】
［背景技術］
多くの管轄権における法制では、正確な組成さえも完全にわかっているとは言えない複数の活性化合物を含む医薬製剤について、市販される前に、これらの効力を評価する必要がある。通常、生産された各バッチは、それぞれの効力アッセイを使用して、この効力について評価しなければならない。
【０００３】
効力アッセイを使用して、特定の製品が、疾患または障害の治療に適切な生物学的活性を有することを示すことができる。製品の生物学的機能のすべてを反映させることは、効力アッセイの必要条件ではないが、これは、１つ以上の適切な生物学的機能を示すはずである。医薬品の有効性に重要なパラメータを同定し、これらを（例えば、効力試験により）制御して、一貫した品質の製品を製造可能とすることが強く求められている。効力アッセイの大きな利点は、複合医薬製剤中の少数（例えば、２、３、４または５つ、理想的には１つのみ）の「レポーター」タンパク質または酵素活性を同定および／または定量することにより、前記製剤の治療適合性を判定することができることである。
【０００４】
細胞、特に、哺乳動物細胞は、細胞培養培地中で培養される間に、多数の物質を分泌することが知られている。このように入手した条件培養培地を、疾患および障害の治療および／または予防において使用することができる。例えば、国際公開第２０１０／０７０１０５号および国際公開第２０１０／０７９０８６号では、条件培養培地（「上清」）を開示しており、これは、末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）を培養することにより得られ、様々な炎症状態の治療において使用することができる。
【０００５】
［発明の概要］
培養の前または間に、ストレス誘導条件に供したＰＢＭＣを培養することにより入手可能な、無細胞または細胞含有条件培養培地は、とりわけ炎症と関連する、様々な疾患の治療において有効であることが判明した（国際公開第２０１０／０７０１０５号および国際公開第２０１０／０７９０８６号を参照）。このような条件培養培地が、とりわけ、条件培地の生物学的活性に対する影響を有し得る、ＰＢＭＣにより分泌または放出される複数の物質を含むため、前記培地が所望の活性を有するかどうかを示すアッセイを行うことは、重要である。
【０００６】
したがって、本発明の目的は、ＰＢＭＣの培養により入手可能な条件培養培地が、炎症と関連する疾患および障害を治療するための活性を有するかどうかの判定を可能とするアッセイを提供することである。このようなアッセイは、薬学的使用に許容される条件培養培地の種々の製造ロット間での一貫した効力を実証するのに有用である。
【０００７】
本発明者らは、特定のタンパク質の発現および／またはある特定のプロモーターの制御をモニターすることにより、条件培養培地の生物学的活性および治療有効性を測定する効力アッセイを見出した。驚くべきことに、ＰＢＭＣの培養により入手可能であり、炎症と関連する疾患および障害を治療する能力を有する条件培養培地は、真核細胞を前記条件培養培地中でインキュベートする場合、これらの細胞におけるリン酸化熱ショックタンパク質２７（ＨＳＰ２７）の発現を誘導可能であることが判明した。その上、条件培養培地により、活性化因子タンパク質１（ＡＰ−１）プロモーター、活性化Ｂ細胞の核因子カッパ軽鎖エンハンサー（ＮＦ−κＢ）プロモーター、性決定領域Ｙボックス２（Ｓｏｘ２）プロモーター、シグナル伝達兼転写活性化因子３（ＳＴＡＴ３）プロモーター、初期増殖応答タンパク質１（ＥＧＲ−１）プロモーターおよび血清応答配列（ＳＲＥ）プロモーターからなる群から選択される少なくとも１つのプロモーターが、真核細胞において活性化される。したがって、リン酸化ＨＳＰ２７の発現の増加、ならびにＡＰ−１、ＮＦ−κＢ、Ｓｏｘ２、ＳＴＡＴ３、ＥＧＲ−１および／またはＳＲＥプロモーターの活性化は、ＰＢＭＣの培養により入手可能な条件培養培地を、炎症と関連する疾患および障害の治療において使用することができることを示す。
【０００８】
したがって、本発明は、炎症状態の治療において使用される哺乳動物細胞培養物の上清の効力を判定するための方法であって、
ａ）前記上清を含むか、または前記上清からなる培養培地中で真核細胞をインキュベートするステップと、
ｂ）活性化因子タンパク質１（ＡＰ−１）プロモーター、活性化Ｂ細胞の核因子カッパ軽鎖エンハンサー（ＮＦ−κＢ）プロモーター、性決定領域Ｙボックス２（Ｓｏｘ２）プロモーター、シグナル伝達兼転写活性化因子３（ＳＴＡＴ３）プロモーター、初期増殖応答タンパク質１（ＥＧＲ−１）プロモーターおよび血清応答配列（ＳＲＥ）プロモーターからなる群から選択される少なくとも１つのプロモーターのプロモーター活性を測定するステップ、ならびに／またはステップａ）の培養培地中に真核細胞により放出されたリン酸化熱ショックタンパク質２７（ＨＳＰ２７）の量を測定するステップと、
を含み、少なくとも１つのプロモーターのプロモーター活性が、前記上清を欠く培養培地中で真核細胞を培養したときに測定されたプロモーター活性と比較して、少なくとも５０％高い場合、および／またはステップａ）の培養培地中に放出されたリン酸化ＨＳＰ２７の量が、前記上清を欠く培養培地中で真核細胞を培養したときに培養培地中に放出されたリン酸化ＨＳＰ２７の量と比較して、少なくとも２０％高い場合、哺乳動物細胞培養物の上清が、炎症状態の治療において使用される潜在性を有する、方法に関する。
【０００９】
炎症状態の治療において使用される哺乳動物細胞培養物の上清の効力を判定するための方法であって、
ａ）前記上清を含むか、または前記上清からなる培養培地中で真核細胞をインキュベートするステップと、
ｂ）活性化因子タンパク質１（ＡＰ−１）プロモーター、活性化Ｂ細胞の核因子カッパ軽鎖エンハンサー（ＮＦ−κＢ）プロモーター、性決定領域Ｙボックス２（Ｓｏｘ２）プロモーター、シグナル伝達兼転写活性化因子３（ＳＴＡＴ３）プロモーター、初期増殖応答タンパク質１（ＥＧＲ−１）プロモーターおよび血清応答配列（ＳＲＥ）プロモーターからなる群から選択される少なくとも１つのプロモーターのプロモーター活性を測定するステップ、ならびに／またはステップａ）の培養培地中に真核細胞により放出されたリン酸化熱ショックタンパク質２７（ＨＳＰ２７）の量を測定するステップと
を含み、少なくとも１つのプロモーターのプロモーター活性が、炎症状態の治療において使用可能な、哺乳動物細胞の基準上清を含む培養培地中で真核細胞を培養したときに測定されたプロモーター活性と比較して、最大２５％高いか、もしくは低い場合、および／またはステップａ）の培養培地中に放出されたリン酸化ＨＳＰ２７の量が、炎症状態の治療において使用可能な、哺乳動物細胞の基準上清を含む、ステップａ）の培養培地中に放出されたリン酸化ＨＳＰ２７の量と比較して、最大２５％高いか、もしくは低い場合、哺乳動物細胞培養物の上清が、炎症状態の治療において使用される潜在性を有する、方法。
【００１０】
本発明の実施形態では、哺乳動物細胞培養物の上清は、末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）培養物の上清である。
【００１１】
本発明の別の実施形態では、哺乳動物細胞培養物は、Ｔ細胞、Ｂ細胞および／またはＮＫ細胞を含む。
【００１２】
本発明のさらなる実施形態では、哺乳動物細胞培養物中の哺乳動物細胞は、細胞増殖培地、好ましくはＣｅｌｌＧｒｏ培地（ＣｅｌｌＧｅｎｉｘ社、フライブルク、独国）、より好ましくはＣｅｌｌｇｒｏ  ＧＭＰ  ＤＣ培地（「ＣｅｌｌＧｅｎｉｘ  ＧＭＰ  ＤＣ培地」としても知られる；ＣｅｌｌＧｅｎｉｘ社、フライブルク、独国）、ＲＰＭＩ、ＤＭＥＭ、Ｘ−ｖｉｖｏおよびＵｌｔｒａｃｕｌｔｕｒｅからなる群から選択される細胞培養培地中で培養される。
【００１３】
本発明の実施形態では、哺乳動物細胞は、培養の前または間に１つ以上のストレス誘導条件に供される。
【００１４】
本発明の別の実施形態では、ストレス誘導条件は、放射線、特に、電離放射線またはＵＶ放射線、低酸素、オゾン、熱、浸透圧およびｐＨの変化からなる群から選択される。
【００１５】
本発明の実施形態では、哺乳動物細胞は、少なくとも１０Ｇｙ、好ましくは少なくとも２０Ｇｙ、より好ましくは少なくとも４０Ｇｙの線量で電離放射線に供される。
【００１６】
本発明のさらなる実施形態では、哺乳動物細胞は、上清が単離される前に、少なくとも４時間、好ましくは少なくとも６時間、より好ましくは少なくとも１２時間、培養される。
【００１７】
本発明の実施形態では、炎症状態は、虚血と関連する状態、好ましくは皮膚状態または内部炎症状態である。
【００１８】
本発明のさらなる実施形態では、皮膚状態は、創傷、組織虚血、慢性創傷、糖尿病性創傷、皮膚潰瘍、皮膚熱傷、形成外科手術による皮弁および歯科移植後の組織再生からなる群から選択される。
【００１９】
本発明の実施形態では、内部炎症状態は、心筋虚血、肢虚血、組織虚血、虚血再灌流障害、狭心症、冠動脈疾患、末梢血管疾患、末梢動脈疾患、脳卒中、虚血性脳卒中、心筋梗塞、うっ血性心不全、外傷、腸疾患、腸間膜梗塞（ｍｅｓｎｔｅｒｉａｌ  ｉｎｆａｒｃｔｉｏｎ）、肺梗塞、骨折、歯科移植後の組織再生、自己免疫疾患、リウマチ性疾患、同種移植および同種移植片拒絶反応からなる群から選択される。
【００２０】
本発明の別の実施形態では、ステップａ）の真核細胞は、腺癌性ヒト肺胞基底上皮細胞、好ましくはＡ５４９細胞、異数体不死化角化細胞（ＨａＣａＴ）、ヒト胎児腎臓細胞（ＨＥＫ細胞）、好ましくはＨＥＫ２９３細胞、および神経芽腫細胞、好ましくはＳＨ−ＳＹ５Ｙ細胞からなる群から選択される。
【００２１】
本発明のさらなる実施形態では、ステップａ）の真核細胞は、少なくとも２時間、好ましくは少なくとも４時間、より好ましくは少なくとも６時間、より好ましくは少なくとも１２時間、より好ましくは少なくとも１８時間、より好ましくは少なくとも２４時間、細胞培養培地中でインキュベートされる。
【００２２】
本発明の実施形態では、培養培地は、少なくとも２０％、好ましくは少なくとも５０％、より好ましくは少なくとも７０％、より好ましくは少なくとも８０％、より好ましくは少なくとも９０％、より好ましくは少なくとも９５％の前記上清を含む。
【００２３】
本発明の別の実施形態では、ステップａ）の培養培地は、ダルベッコ改変イーグル培地（ＤＭＥＭ）、ハムＦ１２培地（Ｆ１２）、最小必須培地、またはこれらの培地の１つ以上の組合せである。
【００２４】
本発明の実施形態では、ステップａ）の培養培地は、２〜２０％、好ましくは５〜１５％のウシ胎仔血清（ＦＢＳ）および／またはＬ−アラニル−Ｌ−グルタミンを含む。
【００２５】
本発明のさらなる実施形態では、真核細胞は、レポータータンパク質をコードする少なくとも１つの核酸分子に作動可能に連結した、ＡＰ−１プロモーター、ＮＦ−κＢプロモーター、Ｓｏｘ２プロモーター、ＳＴＡＴ３プロモーター、ＥＧＲ−１プロモーターおよびＳＲＥプロモーターからなる群から選択されるプロモーターを含む少なくとも１つの発現カセットを含む。
【００２６】
本発明の実施形態では、レポータータンパク質は、ルシフェラーゼ、好ましくはホタルルシフェラーゼ、および蛍光タンパク質、好ましくは緑色蛍光タンパク質からなる群から選択される。
【００２７】
本発明の別の実施形態では、細胞により培養培地中に放出されたタンパク質の量は、免疫学的方法により、好ましくは酵素結合免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）により、光度測定法により、または蛍光法により判定される。
【００２８】
本発明の実施形態では、ステップａ）の真核細胞は、腺癌性ヒト肺胞基底上皮細胞、好ましくはＡ５４９細胞、ＨａＣａＴまたはＨＥＫ細胞、好ましくはＨＥＫ２９３細胞であり、リン酸化ＨＳＰ２７の量を判定する。
【００２９】
本発明のさらなる実施形態では、少なくとも１つのプロモーターのプロモーター活性は、前記上清を欠く培養培地中で真核細胞を培養したときに測定されたプロモーター活性と比較して、少なくとも８０％、好ましくは少なくとも１００％、より好ましくは少なくとも１５０％、より好ましくは少なくとも２００％高い。
【００３０】
本発明の実施形態では、ステップａ）の真核細胞は、培養培地中に放出されたリン酸化ＨＳＰ２７の量を測定する場合、腺癌性ヒト肺胞基底上皮細胞、好ましくはＡ５４９細胞、ＨａＣａＴ細胞またはＨＥＫ細胞、好ましくはＨＥＫ２９３細胞である。
【００３１】
本発明の別の実施形態では、ステップａ）の真核細胞は、レポータータンパク質をコードする少なくとも１つの核酸分子に作動可能に連結した、ＡＰ−１プロモーターを含む少なくとも１つの発現カセットを含む、神経芽腫細胞、好ましくはＳＨ−ＳＹ５Ｙ細胞、またはＨａＣａＴ細胞である。
【００３２】
本発明の実施形態では、ステップａ）の真核細胞は、レポータータンパク質をコードする少なくとも１つの核酸分子に作動可能に連結した、ＮＦ−κＢまたはＳｏｘ２プロモーターを含む少なくとも１つの発現カセットを含む、腺癌性ヒト肺胞基底上皮細胞、好ましくはＡ５４９細胞である。
【００３３】
本発明のさらなる実施形態では、ステップａ）の真核細胞は、レポータータンパク質をコードする少なくとも１つの核酸分子に作動可能に連結した、ＥＧＲ−１、ＳＲＥ、ＡＰ−１またはＳＴＡＴ３プロモーターを含む少なくとも１つの発現カセットを含む、ＨＥＫ細胞、好ましくはＨＥＫ２９３細胞である。
【図面の簡単な説明】
【００３４】
【図１Ａ】増殖アッセイ（実施例１）の結果を示す。グラフは、一晩増殖させたときの細胞数（ＣｅｌｌＴｉｔｅｒＧｌｏシグナル）を示す。図１ＡはＨＵＶＥＣ細胞である。
【図１Ｂ】増殖アッセイ（実施例１）の結果を示す。グラフは、一晩増殖させたときの細胞数（ＣｅｌｌＴｉｔｅｒＧｌｏシグナル）を示す。図１ＢはＮＨＤＦ細胞である。
【図１Ｃ】増殖アッセイ（実施例１）の結果を示す。グラフは、一晩増殖させたときの細胞数（ＣｅｌｌＴｉｔｅｒＧｌｏシグナル）を示す。図１ＣはＡ５４９細胞である。
【図２Ａ】細胞Ｈｓｐ２７  ＥＬＩＳＡアッセイ１（実施例３を参照）の結果を示す。
【図２Ｂ】細胞Ｈｓｐ２７  ＥＬＩＳＡアッセイ１（実施例３を参照）の結果を示す。
【図２Ｃ】細胞Ｈｓｐ２７  ＥＬＩＳＡアッセイ１（実施例３を参照）の結果を示す。
【図３Ａ】細胞Ｈｓｐ２７  ＥＬＩＳＡアッセイ２（実施例３を参照）の結果を示す。
【図３Ｂ】細胞Ｈｓｐ２７  ＥＬＩＳＡアッセイ２（実施例３を参照）の結果を示す。
【図３Ｃ】細胞Ｈｓｐ２７  ＥＬＩＳＡアッセイ２（実施例３を参照）の結果を示す。
【図４Ａ】細胞Ｈｓｐ２７  ＥＬＩＳＡアッセイ３（実施例３を参照）の結果を示す。
【図４Ｂ】細胞Ｈｓｐ２７  ＥＬＩＳＡアッセイ３（実施例３を参照）の結果を示す。
【図５Ａ】実施例３に記載のリン酸化ＨＳＰ２７アッセイを使用した、１００％ＣｅｌｌＧｒｏ培地と比較した、様々な濃度のＡｐｏｓｅｃの相対効力を示す。
【図５Ｂ】実施例３に記載のリン酸化ＨＳＰ２７アッセイを使用した、１００％ＣｅｌｌＧｒｏ培地と比較した、様々な濃度のＡｐｏｓｅｃの相対効力を示す。
【図６Ａ】５および２４時間後にＡｐｏｓｅｃで刺激した真核細胞におけるＡＰ−１レポーターシグナルを示す。
【図６Ｂ】５および２４時間後にＡｐｏｓｅｃで刺激した真核細胞におけるＡＰ−１レポーターシグナルを示す。
【図７】ＡＰ−１  ＲＧＡアッセイの時間および用量依存性を示す。
【図８Ａ】実施例３に記載のリン酸化ＡＰ−１  ＲＧＡアッセイを使用した、１００％ＣｅｌｌＧｒｏ培地と比較した、様々な濃度のＡｐｏｓｅｃの相対効力を示すグラフである。
【図８Ｂ】実施例３に記載のリン酸化ＡＰ−１  ＲＧＡアッセイを使用した、１００％ＣｅｌｌＧｒｏ培地と比較した、様々な濃度のＡｐｏｓｅｃの相対効力を示すグラフである。
【図９】ＡｐｏｓｅｃおよびＣｅｌｌＧｒｏ培地を使用した、ＮＦ−κＢプロモーターの誘導の比較を示す。
【図１０Ａ】実施例５に記載のＮＦ−κＢ  ＲＧＡアッセイを使用した、１００％ＣｅｌｌＧｒｏ培地と比較した、様々な濃度のＡｐｏｓｅｃの相対効力を示す。
【図１０Ｂ】実施例５に記載のＮＦ−κＢ  ＲＧＡアッセイを使用した、１００％ＣｅｌｌＧｒｏ培地と比較した、様々な濃度のＡｐｏｓｅｃの相対効力を示す。
【図１１】実施例７のトランスフェクション有効性試験の結果をまとめた表である。
【図１２Ａ】実施例７．２のシグナル伝達レポーターアレイの結果を示す。
【図１２Ｂ】実施例７．２のシグナル伝達レポーターアレイの結果を示す。
【図１３Ａ】実施例７．３のシグナル伝達レポーターアレイの結果を示す。
【図１３Ｂ】実施例７．３のシグナル伝達レポーターアレイの結果を示す。
【発明を実施するための形態】
【００３５】
本発明は、炎症状態の治療において使用される哺乳動物細胞培養物の上清の効力を判定するための方法に関する。
【００３６】
「効力」は、本明細書において使用する場合、疾患、障害または状態、特に、炎症に関与する疾患、障害または状態の治療または予防において必要とされる組成物（例えば、細胞培養物の上清）の生物学的活性であると定義される。
【００３７】
「効力アッセイ」は、本明細書において使用する場合、組成物の効力を判定するための方法を指す。効力アッセイでは、試料中、すなわち、哺乳動物細胞培養物の上清中の特定の物質または物質の特定の組成物の存在または量を、直接的または間接的に測定する。試料中の特定の物質または物質の特定の組成物の存在または量は、炎症状態の治療において上清が使用可能かどうかを示す。したがって、炎症状態の治療において有効であることがわかっている上清は、基準として使用することができる。このような場合、活性化因子タンパク質１（ＡＰ−１）プロモーター、活性化Ｂ細胞の核因子カッパ軽鎖エンハンサー（ＮＦ−κＢ）プロモーター、性決定領域Ｙボックス２（Ｓｏｘ２）プロモーター、シグナル伝達兼転写活性化因子３（ＳＴＡＴ３）プロモーター、初期増殖応答タンパク質１（ＥＧＲ−１）プロモーターおよび血清応答配列（ＳＲＥ）プロモーターからなる群から選択される少なくとも１つのプロモーターのプロモーター活性、ならびに／または別のバッチの上清の試料を含むステップａ）の培養培地中に真核細胞により放出されたリン酸化熱ショックタンパク質２７（ＨＳＰ２７）の量は、測定され、次いで、上に定義した基準上清により引き起こされる作用と比較される。任意のプロモーター活性またはタンパク質量の差異は、基準上清と比較して、＋／−２５％（すなわち、最大２５％高いか、または低い）、好ましくは＋／−２０％、より好ましくは＋／−１５％、より好ましくは＋／−１０％、より好ましくは＋／−５％の範囲で、このバッチの上清が炎症状態の治療において使用することができることを示す。同じことが、リン酸化ＨＳＰ２７の量についても当てはまる。
【００３８】
したがって、本発明の別の態様では、炎症状態の治療において使用される哺乳動物細胞培養物の上清の効力を判定するための方法であって、
ａ）前記上清を含むか、または前記上清からなる培養培地中で真核細胞をインキュベートするステップと、
ｂ）活性化因子タンパク質１（ＡＰ−１）プロモーター、活性化Ｂ細胞の核因子カッパ軽鎖エンハンサー（ＮＦ−κＢ）プロモーター、性決定領域Ｙボックス２（Ｓｏｘ２）プロモーター、シグナル伝達兼転写活性化因子３（ＳＴＡＴ３）プロモーター、初期増殖応答タンパク質１（ＥＧＲ−１）プロモーターおよび血清応答配列（ＳＲＥ）プロモーターからなる群から選択される少なくとも１つのプロモーターのプロモーター活性を測定するステップ、ならびに／またはステップａ）の培養培地中に真核細胞により放出されたリン酸化熱ショックタンパク質２７（ＨＳＰ２７）の量を測定するステップと
を含み、少なくとも１つのプロモーターのプロモーター活性が、炎症状態の治療において使用可能な、哺乳動物細胞の基準上清を含む培養培地中で真核細胞を培養したときに測定されたプロモーター活性と比較して、最大２５％高いか、もしくは低い場合、および／またはステップａ）の培養培地中に放出されたリン酸化ＨＳＰ２７の量が、炎症状態の治療において使用可能な、哺乳動物細胞の基準上清を含む、ステップａ）の培養培地中に放出されたリン酸化ＨＳＰ２７の量と比較して、最大２５％高いか、もしくは低い場合、哺乳動物細胞培養物の上清が、炎症状態の治療において使用される潜在性を有する、方法に関する。
【００３９】
「炎症状態」は、本明細書において使用する場合、少なくともある程度炎症と関連する、障害、疾患および状態を指す。
【００４０】
上記のように、哺乳動物細胞培養物の上清は、真核細胞における、ある特定のタンパク質のタンパク質発現に影響を与えることができる。それに加えて、これらの上清はまた、真核細胞に存在するプロモーターの活性を制御（活性化または阻害）することができる。両作用を使用して、炎症状態の治療において使用される哺乳動物細胞培養物の上清の効力を判定することができる。
【００４１】
「プロモーター」は、本明細書において使用する場合、機能性ポリペプチドまたはタンパク質をコードする核酸分子の上流に典型的に位置する、ひと続きの核酸を意味することを指す。プロモーターは、宿主細胞において機能性であり、プロモーターの下流に見出される、ひと続きの核酸の転写を制御する。プロモーターは、転写因子結合部位ならびに転写開始領域を含む。
【００４２】
哺乳動物細胞培養物の上清において、真核細胞のリン酸化熱ショックタンパク質２７（ＨＳＰ２７）の発現率が、後者の細胞を前記上清とともにインキュベートした場合、上昇することが判明した。真核細胞がヒト細胞である場合、ヒトＨＳＰ２７（ＵｎｉＰｒｏｔ  Ｐ０４７９２）は、ＨＳＰ２７のアミノ酸残基１５、２６、６５、７８、８２、８３、８６、９８、１７４、１７６および１９９番目から選択される、少なくとも１つの位置においてリン酸化され、これにより、好ましいリン酸化アミノ酸残基は、ＨＳＰ２７の１５および８２番目の位置であり得る。
【００４３】
ステップｂ）に従って、培養培地中のリン酸化ＨＳＰ２７を判定および／または定量するために、様々な方法を利用することができる。最も好ましい方法は、抗体、またはこのような抗体の抗原結合可変領域を含む、Ｆａｂ断片もしくは他の断片を含む、抗体の抗原結合断片の使用を含む。これらの抗体および断片は、免疫アッセイ、好ましくは酵素結合免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）において使用されて、リン酸化ＨＳＰ２７を判定することができる。
【００４４】
哺乳動物細胞培養物（すなわち、条件培養培地）の上清の、特定のプロモーターの活性に対する影響を、様々な方法を使用して試験することができる。一方法は、それぞれのプロモーターに作動可能に連結した核酸によりコードされる、天然に存在するタンパク質の測定を含む。これは、前記タンパク質に結合する抗体もしくはこの機能性断片を使用して、または転写されて前記タンパク質をコードするｍＲＮＡの量を判定することにより、行うことができる。あるいは、哺乳動物細胞培養物の上清により影響を受けるプロモーターは、当技術分野において既知の組換え方法を使用して、レポータータンパク質をコードする核酸分子に動作可能に連結することができる。また、これらのレポータータンパク質は、免疫アッセイにおいて、抗体またはこの抗原結合断片を使用することにより、定量することができる。あるいは、このようなレポータータンパク質は、酵素活性または蛍光特性を有し得る。レポータータンパク質が酵素活性を有する場合、アッセイを使用して、変換された基質の量を判定し、これにより、プロモーター活性についての結論を導くことができる。
【００４５】
本発明によれば、好ましいプロモーターは、活性化因子タンパク質１（ＡＰ−１）プロモーター、活性化Ｂ細胞の核因子カッパ軽鎖エンハンサー（ＮＦ−κＢ）プロモーター、性決定領域Ｙボックス２（Ｓｏｘ２）プロモーター、シグナル伝達兼転写活性化因子３（ＳＴＡＴ３）プロモーター、初期増殖応答タンパク質１（ＥＧＲ−１）プロモーターおよび血清応答配列（ＳＲＥ）プロモーターである。
【００４６】
ステップａ）の培養培地中に放出されたリン酸化ＨＳＰ２７の量が、前記上清を欠く培養培地中で真核細胞を培養したときに培養培地中に放出されたリン酸化ＨＳＰ２７の量と比較して、少なくとも２０％高い場合、および／または少なくとも１つのプロモーターのプロモーター活性が、前記上清を欠く培養培地中で真核細胞を培養したときに測定されたプロモーター活性と比較して、少なくとも５０％高い場合、哺乳動物細胞培養物の上清が、炎症状態の治療において使用される潜在性を有することが判明した。
【００４７】
上記のように、プロモーターのプロモーター活性は、前記上清を欠く培養培地中で真核細胞を培養したときに測定されたプロモーター活性と比較して、少なくとも５０％、好ましくは少なくとも６０％、より好ましくは少なくとも７０％、より好ましくは少なくとも８０％、より好ましくは少なくとも９０％、より好ましくは少なくとも１００％、より好ましくは少なくとも１５０％、より好ましくは少なくとも２００％高い。「前記上清を欠く」とは、条件培養培地（すなわち、哺乳動物細胞培養物の上清）を欠く培養培地中で真核細胞をインキュベートすることを意味する。
【００４８】
ステップａ）の培養培地中に放出されたリン酸化ＨＳＰ２７の量は、前記上清を欠く培養培地中で真核細胞を培養したときに培養培地中に放出されたリン酸化ＨＳＰ２７の量と比較して、少なくとも２０％、好ましくは少なくとも３０％、より好ましくは少なくとも５０％、より好ましくは少なくとも７０％、より好ましくは少なくとも１００％高い。
【００４９】
本発明の別の態様では、炎症状態を治療可能であることが既に明らかとされている、哺乳動物細胞培養物の基準上清を使用する。このような場合、少なくとも１つのプロモーターのプロモーター活性は、前記基準上清を含む培養培地中で真核細胞を培養したときに測定されたプロモーター活性と比較して、最大２５％高いか、もしくは低く、および／またはステップａ）の培養培地中に放出されたリン酸化ＨＳＰ２７の量が、前記基準上清を含む、ステップａ）の培養培地中に放出されたリン酸化ＨＳＰ２７の量と比較して、最大２５％高いか、もしくは低い。
【００５０】
本発明の方法の第１のステップでは、真核細胞は、哺乳動物細胞培養物の上清を含むか、または上清からなる培養培地中で培養／インキュベートされる。培養条件は、通常、標準培養培地中で真核細胞を培養するのに使用される条件である。典型的には、真核細胞は、３５℃〜３９℃、好ましくは３６℃〜３８℃、特に約３７℃の温度で培養／インキュベートされる。
【００５１】
本発明の好ましい実施形態では、哺乳動物細胞培養物の上清は、末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）培養物の上清である。培養するＰＢＭＣの上清は、炎症状態の治療において使用することができる（例えば、国際公開第２０１０／０７０１０５号および国際公開第２０１０／０７９０８６号参照）。ＰＢＭＣは、本明細書において定義される場合、Ｔ細胞、Ｂ細胞および／またはＮＫ細胞を含むか、またはこれらからなる。
【００５２】
本発明の特に好ましい実施形態によれば、本発明の哺乳動物細胞は、ストレス誘導条件下で培養される。哺乳動物細胞は、培養の間に培養培地中に物質を分泌可能であることが、当技術分野において知られている。この作用は、培養の間または前に、哺乳動物細胞がストレス誘導条件に供される場合、さらにいっそう増強され得る。特に、ストレスに供された哺乳動物細胞は、炎症状態の治療において特に有益な物質を分泌することが判明した。
【００５３】
用語「ストレス誘導条件下」は、本明細書において使用する場合、ストレスに供した細胞をもたらす培養条件を指す。細胞に対するストレスを引き起こす条件は、とりわけ、熱、化学物質、放射線、低酸素、浸透圧等を含む。
【００５４】
ストレス誘導条件は、低酸素、オゾン、熱（例えば、哺乳動物細胞の最適培養温度、すなわち３７℃よりも２℃を超えて、好ましくは５℃を超えて、より好ましくは１０℃を超えて高い）、放射線（例えば、ＵＶ放射線、電離放射線、ガンマ放射線）、化学物質、浸透圧（すなわち、少なくとも、通常、体液中、特に血中に生じる浸透圧条件と比較して上昇する浸透圧条件）またはこれらの組合せを含む。
【００５５】
放射線を使用して、本発明の哺乳動物細胞をストレスに供する場合、細胞は、好ましくは少なくとも１０Ｇｙ、好ましくは少なくとも２０Ｇｙ、より好ましくは少なくとも４０Ｇｙで照射し、このためソースとして、好ましくはＣｓ−１３７セシウムを使用する。
【００５６】
本発明の好ましい実施形態によれば、哺乳動物細胞は、上清が単離される前に、少なくとも４時間、好ましくは少なくとも６時間、より好ましくは少なくとも１２時間培養される。
【００５７】
本発明によれば、好ましくは、ステップａ）の真核細胞は、腺癌性ヒト肺胞基底上皮細胞、好ましくはＡ５４９細胞、異数体不死化角化細胞（ＨａＣａＴ）、ヒト胎児腎臓細胞（ＨＥＫ細胞）、好ましくはＨＥＫ２９３細胞、および神経芽腫細胞、好ましくはＳＨ−ＳＹ５Ｙ細胞からなる群から選択される。特に、これらの真核細胞を使用して、炎症状態の治療において使用される哺乳動物細胞培養物の上清の効力を判定可能であることが判明した。
【００５８】
ステップａ）の真核細胞は、少なくとも２時間、好ましくは少なくとも４時間、より好ましくは少なくとも６時間、より好ましくは少なくとも１２時間、より好ましくは少なくとも１８時間、より好ましくは少なくとも２４時間、細胞培養培地中でインキュベート（すなわち、培養）される。少なくとも２時間の培養時間は、哺乳動物細胞培養物の上清を含むか、または上清からなる培養培地中に物質が存在可能となり、リン酸化ＨＳＰ２７の発現および任意の分泌を増加させ、ならびに／または上記のプロモーターを活性化するのに十分である。
【００５９】
ステップａ）において使用する培養培地は、少なくとも２０％、好ましくは少なくとも５０％、より好ましくは少なくとも７０％、より好ましくは少なくとも８０％、より好ましくは少なくとも９０％、より好ましくは少なくとも９５％の哺乳動物細胞培養物の上清を含むか、または上清からなる。
【００６０】
本発明の好ましい実施形態では、ステップａ）の培養培地は、ダルベッコ改変イーグル培地（ＤＭＥＭ）、ハムＦ１２培地（Ｆ１２）、最小必須培地、またはこれらの培地の１つ以上の組合せである。
【００６１】
本発明の別の実施形態では、ステップａ）の培養培地は、２〜２０％、好ましくは５〜１５％のウシ胎仔血清（ＦＢＳ）および／またはＬ−アラニル−Ｌ−グルタミンを含む。
【００６２】
真核細胞における上記のプロモーターのプロモーター活性を判定するために、細胞は、好ましくは、レポータータンパク質をコードする少なくとも１つの核酸分子に作動可能に連結した、ＡＰ−１プロモーター、ＮＦ−κＢプロモーター、Ｓｏｘ２プロモーター、ＳＴＡＴ３プロモーター、ＥＧＲ−１プロモーターおよびＳＲＥプロモーターからなる群から選択されるプロモーターを含む少なくとも１つの発現カセットを含むように遺伝子修飾される。
【００６３】
「発現カセット」は、本明細書において定義される場合、遺伝子発現に必要な制御配列に作動可能に連結した、遺伝子を含む核酸断片（すなわち、タンパク質またはポリペプチドをコードする核酸分子）を指す。
【００６４】
「作動可能に連結した」は、特定の遺伝情報をコードするヌクレオチド領域が結合し、これにより、ヌクレオチド領域が近接して、この領域の機能性が、保存され、機能性単位の一部として、他の領域と関連して動作し得ることを指す。
【００６５】
真核細胞内に導入される発現カセットは、ベクターの一部として用意することができる。「ベクター」は、真核細胞のような宿主生体内に核酸断片を導入することが可能な媒体であるとみなされる。「発現ベクター」は、核酸断片、および特に、十分な遺伝情報を含む発現カセットを、真核細胞内に導入可能であり、このため、これらの細胞により発現させることが可能な媒体である。
【００６６】
発現カセットによりコードされるレポータータンパク質は、抗体またはこの抗原結合断片により結合可能な、ポリペプチドまたはタンパク質、酵素、あるいは蛍光タンパク質またはポリペプチドであり得る。好ましくは、レポータータンパク質は、ルシフェラーゼ、好ましくはホタルルシフェラーゼ、蛍光タンパク質、好ましくは緑色蛍光タンパク質からなる群から選択される。
【００６７】
「ルシフェラーゼ」は、ルシフェリン、酸素およびＡＴＰの存在下で、生物発光物質を産生可能な酸化酵素である。「蛍光タンパク質」は、蛍光特性を有するタンパク質である。
【００６８】
真核細胞により培養培地中に放出されたタンパク質（例えば、リン酸化ＨＳＰ２７、レポータータンパク質）の量は、免疫学的方法により、好ましくは酵素結合免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）により、光度測定法により、または蛍光法により判定される。
【００６９】
腺癌性ヒト肺胞基底上皮細胞、好ましくはＡ５４９細胞、ＨａＣａＴまたはＨＥＫ細胞、好ましくは、ＨＥＫ２９３細胞は、特に、リン酸化ＨＳＰ２７の量の判定に適することが判明した。
【００７０】
少なくとも１つのプロモーターのプロモーター活性が、前記上清を欠く培養培地中で真核細胞を培養したときに測定されたプロモーター活性と比較して、好ましくは少なくとも８０％、好ましくは少なくとも１００％、より好ましくは少なくとも１５０％、より好ましくは少なくとも２００％高い場合、哺乳動物細胞培養物の上清は、炎症状態の治療において使用することができる。
【００７１】
ステップａ）の真核細胞は、培養培地中に放出されたリン酸化ＨＳＰ２７の量を測定する場合、好ましくは腺癌性ヒト肺胞基底上皮細胞、好ましくはＡ５４９細胞、ＨａＣａＴ細胞またはＨＥＫ細胞、好ましくはＨＥＫ２９３細胞である。
【００７２】
ステップａ）の真核細胞は、好ましくはレポータータンパク質をコードする少なくとも１つの核酸分子に作動可能に連結した、ＡＰ−１プロモーターを含む少なくとも１つの発現カセットを含む、神経芽腫細胞、好ましくはＳＨ−ＳＹ５Ｙ細胞、またはＨａＣａＴ細胞である。
【００７３】
ステップａ）の真核細胞は、好ましくはレポータータンパク質をコードする少なくとも１つの核酸分子に作動可能に連結した、ＮＦ−κＢまたはＳｏｘ２プロモーターを含む少なくとも１つの発現カセットを含む、腺癌性ヒト肺胞基底上皮細胞、好ましくはＡ５４９細胞である。
【００７４】
ステップａ）の真核細胞は、好ましくはレポータータンパク質をコードする少なくとも１つの核酸分子に作動可能に連結した、ＥＧＲ−１、ＳＲＥ、ＡＰ−１またはＳＴＡＴ３プロモーターを含む少なくとも１つの発現カセットを含む、ＨＥＫ細胞、好ましくはＨＥＫ２９３細胞である。
【００７５】
本発明は、以下の実施形態および実施例により、さらに説明するが、これらに制限されない。
【００７６】
［本発明の実施形態］
１．炎症状態の治療において使用される哺乳動物細胞培養物の上清の効力を判定するための方法であって、
ａ）前記上清を含むか、または前記上清からなる培養培地中で真核細胞をインキュベートするステップと、
ｂ）活性化因子タンパク質１（ＡＰ−１）プロモーター、活性化Ｂ細胞の核因子カッパ軽鎖エンハンサー（ＮＦ−κＢ）プロモーター、性決定領域Ｙボックス２（Ｓｏｘ２）プロモーター、シグナル伝達兼転写活性化因子３（ＳＴＡＴ３）プロモーター、初期増殖応答タンパク質１（ＥＧＲ−１）プロモーターおよび血清応答配列（ＳＲＥ）プロモーターからなる群から選択される少なくとも１つのプロモーターのプロモーター活性を測定するステップ、ならびに／またはステップａ）の培養培地中に真核細胞により放出されたリン酸化熱ショックタンパク質２７（ＨＳＰ２７）の量を測定するステップと
を含み、少なくとも１つのプロモーターのプロモーター活性が、前記上清を欠く培養培地中で真核細胞を培養したときに測定されたプロモーター活性と比較して、少なくとも５０％高い場合、および／またはステップａ）の培養培地中に放出されたリン酸化ＨＳＰ２７の量が、前記上清を欠く培養培地中で真核細胞を培養したときに培養培地中に放出されたリン酸化ＨＳＰ２７の量と比較して、少なくとも２０％高い場合、哺乳動物細胞培養物の上清が、炎症状態の治療において使用される潜在性を有する、方法。
【００７７】
２．炎症状態の治療において使用される哺乳動物細胞培養物の上清の効力を判定するための方法であって、
ａ）前記上清を含むか、または前記上清からなる培養培地中で真核細胞をインキュベートするステップと、
ｂ）活性化因子タンパク質１（ＡＰ−１）プロモーター、活性化Ｂ細胞の核因子カッパ軽鎖エンハンサー（ＮＦ−κＢ）プロモーター、性決定領域Ｙボックス２（Ｓｏｘ２）プロモーター、シグナル伝達兼転写活性化因子３（ＳＴＡＴ３）プロモーター、初期増殖応答タンパク質１（ＥＧＲ−１）プロモーターおよび血清応答配列（ＳＲＥ）プロモーターからなる群から選択される少なくとも１つのプロモーターのプロモーター活性を測定するステップ、ならびに／またはステップａ）の培養培地中に真核細胞により放出されたリン酸化熱ショックタンパク質２７（ＨＳＰ２７）の量を測定するステップと
を含み、少なくとも１つのプロモーターのプロモーター活性が、炎症状態の治療において使用可能な、哺乳動物細胞の基準上清を含む培養培地中で真核細胞を培養したときに測定されたプロモーター活性と比較して、最大２５％高いか、もしくは低い場合、および／またはステップａ）の培養培地中に放出されたリン酸化ＨＳＰ２７の量が、炎症状態の治療において使用可能な、哺乳動物細胞の基準上清を含む、ステップａ）の培養培地中に放出されたリン酸化ＨＳＰ２７の量と比較して、最大２５％高いか、もしくは低い場合、哺乳動物細胞培養物の上清が、炎症状態の治療において使用される潜在性を有する、方法。
【００７８】
３．哺乳動物細胞培養物の上清が、末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）培養物の上清である、実施形態１または２に記載の方法。
【００７９】
４．哺乳動物細胞培養物が、Ｔ細胞、Ｂ細胞および／またはＮＫ細胞を含む、実施形態１〜３のいずれか１項に記載の方法。
【００８０】
５．哺乳動物細胞培養物中の哺乳動物細胞が、細胞増殖培地、好ましくはＣｅｌｌＧｒｏ培地、より好ましくはＣｅｌｌｇｒｏ  ＧＭＰ  ＤＣ培地、ＲＰＭＩ、ＤＭＥＭ、Ｘ−ｖｉｖｏおよびＵｌｔｒａｃｕｌｔｕｒｅからなる群から選択される細胞培養培地中で培養される、実施形態１〜４のいずれか１項に記載の方法。
【００８１】
６．哺乳動物細胞が、培養の前または間に、１つ以上のストレス誘導条件に供される、実施形態１〜５のいずれか１項に記載の方法。
【００８２】
７．ストレス誘導条件が、放射線、特に、電離放射線またはＵＶ放射線、低酸素、オゾン、熱、浸透圧およびｐＨの変化からなる群から選択される、実施形態６に記載の方法。
【００８３】
８．哺乳動物細胞が、少なくとも１０Ｇｙ、好ましくは少なくとも２０Ｇｙ、より好ましくは少なくとも４０Ｇｙの線量で電離放射線に供される、実施形態７に記載の方法。
【００８４】
９．哺乳動物細胞が、上清が単離される前に、少なくとも４時間、好ましくは少なくとも６時間、より好ましくは少なくとも１２時間、培養される、実施形態１〜８のいずれか１項に記載の方法。
【００８５】
１０．炎症状態が、虚血と関連する状態、好ましくは皮膚状態または内部炎症状態である、実施形態１〜９のいずれか１項に記載の方法。
【００８６】
１１．ステップａ）の真核細胞が、腺癌性ヒト肺胞基底上皮細胞、好ましくはＡ５４９細胞、異数体不死化角化細胞（ＨａＣａＴ）、ヒト胎児腎臓細胞（ＨＥＫ細胞）、好ましくはＨＥＫ２９３細胞、および神経芽腫細胞、好ましくはＳＨ−ＳＹ５Ｙ細胞からなる群から選択される、実施形態１〜１０のいずれか１項に記載の方法。
【００８７】
１２．ステップａ）の真核細胞が、少なくとも２時間、好ましくは少なくとも４時間、より好ましくは少なくとも６時間、より好ましくは少なくとも１２時間、より好ましくは少なくとも１８時間、より好ましくは少なくとも２４時間、培養培地中でインキュベートされる、実施形態１〜１１のいずれか１項に記載の方法。
【００８８】
１３．培養培地が、少なくとも２０％、好ましくは少なくとも５０％、より好ましくは少なくとも７０％、より好ましくは少なくとも８０％、より好ましくは少なくとも９０％、より好ましくは少なくとも９５％の前記上清を含む、実施形態１〜１２のいずれか１項に記載の方法。
【００８９】
１４．ステップａ）の培養培地が、ダルベッコ改変イーグル培地（ＤＭＥＭ）、ハムＦ１２培地（Ｆ１２）、最小必須培地、またはこれらの培地の１つ以上の組合せである、実施形態１〜１３のいずれか１項に記載の方法。
【００９０】
１５．ステップａ）の培養培地が、２〜２０％、好ましくは５〜１５％のウシ胎仔血清（ＦＢＳ）および／またはＬ−アラニル−Ｌ−グルタミンを含む、実施形態１〜１４のいずれか１項に記載の方法。
【００９１】
１６．真核細胞が、レポータータンパク質をコードする少なくとも１つの核酸分子に作動可能に連結した、ＡＰ−１プロモーター、ＮＦ−κＢプロモーター、Ｓｏｘ２プロモーター、ＳＴＡＴ３プロモーター、ＥＧＲ−１プロモーターおよびＳＲＥプロモーターからなる群から選択されるプロモーターを含む少なくとも１つの発現カセットを含む、実施形態１〜１５のいずれか１項に記載の方法。
【００９２】
１７．レポータータンパク質が、ルシフェラーゼ、好ましくはホタルルシフェラーゼ、および蛍光タンパク質、好ましくは緑色蛍光タンパク質からなる群から選択される、実施形態１６に記載の方法。
【００９３】
１８．培養培地中に細胞により放出されたタンパク質の量が、免疫学的方法により、好ましくは酵素結合免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）により、光度測定法により、または蛍光法により判定される、実施形態１〜１７のいずれか１項に記載の方法。
【００９４】
１９．ステップａ）の真核細胞が、腺癌性ヒト肺胞基底上皮細胞、好ましくはＡ５４９細胞、ＨａＣａＴまたはＨＥＫ細胞、好ましくはＨＥＫ２９３細胞であり、リン酸化ＨＳＰ２７の量が判定される、実施形態１〜１８のいずれか１項に記載の方法。
【００９５】
２０．少なくとも１つのプロモーターのプロモーター活性が、前記上清を欠く培養培地中で真核細胞を培養したときに測定されたプロモーター活性と比較して、少なくとも８０％、好ましくは少なくとも１００％、より好ましくは少なくとも１５０％、より好ましくは少なくとも２００％高い、実施形態１〜１９のいずれか１項に記載の方法。
【００９６】
２１．ステップａ）の真核細胞が、培養培地中に放出されたリン酸化ＨＳＰ２７の量が測定される場合、腺癌性ヒト肺胞基底上皮細胞、好ましくはＡ５４９細胞、ＨａＣａＴ細胞またはＨＥＫ細胞、好ましくはＨＥＫ２９３細胞である、実施形態１〜２０のいずれか１項に記載の方法。
【００９７】
２２．ステップａ）の真核細胞が、レポータータンパク質をコードする少なくとも１つの核酸分子に作動可能に連結した、ＡＰ−１プロモーターを含む少なくとも１つの発現カセットを含む、神経芽腫細胞、好ましくはＳＨ−ＳＹ５Ｙ細胞、またはＨａＣａＴ細胞である、実施形態１〜２１のいずれか１項に記載の方法。
【００９８】
２３．ステップａ）の真核細胞が、レポータータンパク質をコードする少なくとも１つの核酸分子に作動可能に連結した、ＮＦ−κＢまたはＳｏｘ２プロモーターを含む少なくとも１つの発現カセットを含む、腺癌性ヒト肺胞基底上皮細胞、好ましくはＡ５４９細胞である、実施形態１〜２２のいずれか１項に記載の方法。
【００９９】
２４．ステップａ）の真核細胞が、レポータータンパク質をコードする少なくとも１つの核酸分子に作動可能に連結した、ＥＧＲ−１、ＳＲＥ、ＡＰ−１またはＳＴＡＴ３プロモーターを含む少なくとも１つの発現カセットを含む、ＨＥＫ細胞、好ましくはＨＥＫ２９３細胞である、実施形態１〜２３のいずれか１項に記載の方法。
【０１００】
［実施例］
［実施例１：Ａｐｏｓｅｃの生成］
「Ａｐｏｓｅｃ」は、哺乳動物細胞の培養の前または間に、放射線照射、低酸素等のような、ストレス誘導条件を使用して、哺乳動物細胞、特にＰＢＭＣを培養することにより入手可能な哺乳動物細胞培養物の上清である。方法は、上記の国際公開第２０１０／０７９０８６号および国際公開第２０１０／０７０１０５号、特に、Ｌｉｃｈｔｅｎａｕｅｒ  Ｍら（Ｂａｓｉｃ  Ｒｅｓ  Ｃａｒｄｉｏｌ．２０１１；１０６：１２８３−１２９７）において記載されている。
【０１０１】
詳細には、ヒトＰＢＭＣを若年の健常な志願者から入手した。細胞は、Ａｎｋｅｒｓｍｉｔ  ＨＪら（Ｅｕｒ  Ｊ  Ｃｌｉｎ  Ｉｎｖｅｓｔ．２００９；３９：４４５−４５６）に記載のように、Ｆｉｃｏｌｌ−Ｐａｑｕｅ（ＧＥ  Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ  Ｂｉｏ−Ｓｃｉｅｎｃｅｓ  ＡＢ社、スウェーデン）密度勾配遠心分離により分離した。ＰＢＭＣのアポトーシスを、６０Ｇｒａｙ（Ｇｙ）のセシウム１３７照射により誘導した。アポトーシスの誘導を、アネキシンＶ／ヨウ化プロピジウム（ＦＩＴＣ／ＰＩ）共染色（Ｂｅｃｔｏｎ−Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ社、フランクリン・レイクス、ＮＪ州、米国）によりフローサイトメーター上で測定した。照射および非照射細胞を、無血清ＵｌｔｒａＣｕｌｔｕｒｅ培地（Ｌｏｎｚａ社、スイス）またはＣｅｌｌｇｒｏ  ＧＭＰ  ＤＣ培地（ＣｅｌｌＧｅｎｉｘ社、フライブルク、独国）中に再懸濁し、２４時間、様々な細胞密度（１×１０６、２．５×１０６および２５×１０６細胞／ｍｌ、ｎ＝５）で培養した。２４時間後、上清を採取して、以下の実験（下記参照）の検体として使用するか、または次のように凍結乾燥した：上清を、酢酸アンモニウム（濃度５０ｍＭ）に対して４℃で２４時間透析した。入手した液体を滅菌濾過し（Ｗｈａｔｍａｎ  Ｆｉｌｔｅｒ０．２μｍ  ＦＰ３０／０．２  Ｃａ−Ｓ、独国）、凍結させ、一晩凍結乾燥させた（Ｌｙｏｐｈｉｌｉｚａｔｏｒ  Ｃｈｒｉｓｔ  ａｌｐｈａ  １−４、Ｍａｒｔｉｎ  Ｃｈｒｉｓｔ  Ｇｅｆｒｉｅｒｔｒｏｃｋｎｕｎｇｓａｎｌａｇｅｎ  ＧｍｂＨ社、独国）。
【０１０２】
［実施例２：増殖アッセイ］
ＨＵＶＥＣ（ヒト臍帯静脈内皮細胞）、ＮＨＤＦ（正常ヒト皮膚線維芽細胞）およびＡ５４９細胞（腺癌性ヒト肺胞基底上皮細胞）を、３つの異なる細胞密度で、９６ウェルプレート内に播種し、Ａｐｏｓｅｃ（２．５Ｕ／ｍＬ）、ｂＦＧＦ（２０ｎｇ／ｍＬ）およびＴＮＦａ（４ｎｇ／ｍＬ）で処理した。細胞数および処理に加えて、細胞を種々の割合の増殖培地で培養した。ＣＯ２インキュベーター内で一晩インキュベートした後、ＣｅｌｌＴｉｔｅｒ−Ｇｌｏ  Ｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｔ  Ｃｅｌｌ  Ｖｉａｂｉｌｉｔｙ  Ａｓｓａｙ（ＣｅｌｌＴｉｔｅｒＧｌｏ）を使用して、細胞数を判定した。これは、ＡＴＰの存在（代謝的に活性のある細胞の指標である）の定量化に基づいて、培養物中の生細胞数を判定する均一法である（Ｔｅｃｈｎｉｃａｌ  Ｂｕｌｌｅｔｉｎ、ＣｅｌｌＴｉｔｅｒ−Ｇｌｏ  Ｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｔ  Ｃｅｌｌ  Ｖｉａｂｉｌｉｔｙ  Ａｓｓａｙ、Ｐｒｏｍｅｇａ社、ＴＢ２８８、Ｒｅｖｉｓｅｄ  ３／１５頁を参照）。
【０１０３】
一晩インキュベートしたときの明細胞密度による細胞数を観察した。Ａｐｏｓｅｃによる増殖誘導の徴候は認められなかった（図１を参照）。
【０１０４】
［実施例３：リン酸化ＨＳＰ２７の判定］
この実施例では、Ａｐｏｓｅｃが、Ｈｓｐ２７のリン酸化をｉｎ  ｖｉｔｒｏで誘導可能かどうかを検討した。
【０１０５】
一般的に言えば、ヒトＨｓｐ２７、ヒトｐｈｓｏｐｈｏ−Ｓｅｒ１５−Ｈｓｐ２７およびヒトｐｈｓｏｐｈｏ−Ｓｅｒ８２−Ｈｓｐ２７に特異的な種々の抗体は、細胞ＥＬＩＳＡにおいて、種々のヒト細胞株（Ａ５４９、ＨａＣａｔおよびＨＥＫ２９３細胞）を用いて評価された。細胞ＥＬＩＳＡは、次の原理に基づいた：細胞を９６ウェルプレート内に増殖させ、処理／刺激期間の終わりに、細胞を固定して透過処理した。リン酸化は、リン酸化Ｈｓｐ２７（例えば、ｐｈｏｓｐｈｏ−Ｈｓｐ２７（Ｓｅｒ８２））を検出する抗体を、その後、ペルオキシダーゼ共役抗ウサギＩｇＧ抗体（検出抗体）、およびペルオキシダーゼ化学発光基質を連続的に添加することにより定量することができる。
【０１０６】
以下の表では、評価したヒトＨｓｐ２７特異的抗体を列挙する。
【０１０７】
【表１】
2021508257.tif 000002
【０１０８】
３．１  細胞Ｈｓｐ２７  ＥＬＩＳＡアッセイ１
Ａ５４９、ＨＥＫ２９３およびＨａＣａｔ細胞を、スルホラファン（２０μＭ）とタプシガルジン（１μＭ）との組合せで２時間処理して、Ｈｓｐ２７のリン酸化を誘導し、ＭＡＰＫ阻害剤ＳＢ２０３５８０（２０μＭ）で処理した。固定、透過処理およびブロッキングした細胞を、種々の濃度の抗体とともに４℃で一晩インキュベートした。
【０１０９】
処理および抗体濃度依存性シグナルは、同一の抗体濃度でインキュベートされた偽処理細胞に対して表われる（図２を参照）。
【０１１０】
ｐｈｏｓｐｏＳｅｒ８２−Ｈｓｐ２７抗体は、Ａ５４９およびＨａＣａｔ細胞において予想通りのパターンを示す。スルホラファン／タプシガルジンにより共処理すると、ｐｈｏｓｐｏＳｅｒ８２−Ｈｓｐ２７シグナルの予想通りの増加がもたらされ、一方、ＭＡＰＫ阻害剤は、ＭＡＰＫが、Ｈｓｐ２７の上流であるため、シグナルを減少させる。Ａ５４９細胞では、抗体希釈度が高くなる（抗体量が低減する）と、相対誘導率が高くなり、これは、非特異的シグナルが減少するためである可能性が最も高い。
【０１１１】
３．２  細胞Ｈｓｐ２７  ＥＬＩＳＡアッセイ２
Ａ５４９、ＨＥＫ２９３、ＨａＣａｔおよびＳＨＳＹ５Ｙ細胞を、種々の濃度のＡｐｏｓｅｃ、スルホラファンおよびタプシガルジンにより、ＭＡＰＫ阻害剤ＳＢ２０３５８０の非存在または存在下で２時間処理した。固定、透過処理およびブロッキングした細胞を、２つの異なる濃度のｐｈｏｓｐｏＳｅｒ１５−Ｈｓｐ２７（１：３２００および１：６４００）およびｐｈｏｓｐｏＳｅｒ８２−Ｈｓｐ２７（１：８００および１：１６００）抗体とともに４℃で一晩インキュベートした。
【０１１２】
試験した２つの抗体濃度の比較により、両抗体について、希釈度が高くなると、シグナル・ノイズ比が良好となることが明らかとなった。Ａ５４９細胞では、ｐｈｏｓｐｏＳｅｒ１５−Ｈｓｐ２７およびｐｈｏｓｐｏＳｅｒ８２−Ｈｓｐ２７の用量依存的誘導が認められた。Ａ５４９細胞において、ｐｈｏｓｐｏＳｅｒ８２−Ｈｓｐ２７の誘導ではなく、ｐｈｏｓｐｏＳｅｒ１５−Ｈｓｐ２７の誘導が、ＭＡＰＫ阻害剤ＳＢ２０３５８０により妨げられた。試験した他の３つの細胞株（ＨＥＫ２９３、ＨａＣａｔおよびＳＨ−ＳＹ５Ｙ）では、ｐｈｏｓｐｏＳｅｒ１５−Ｈｓｐ２７は、Ａｐｏｓｅｃにより誘導された（図３を参照）。
【０１１３】
３．３  細胞Ｈｓｐ２７  ＥＬＩＳＡアッセイ３
実施例３のこの部分では、Ａｐｏｓｅｃで処理したときの、これまでに観察されたｐｈｏｓｐｏＳｅｒ１５−Ｈｓｐ２７およびｐｈｏｓｐｏＳｅｒ８２−Ｈｓｐ２７の誘導が、Ａｐｏｓｅｃに特異的であるかどうかを検討する。
【０１１４】
Ａ５４９細胞を、種々の濃度のＡｐｏｓｅｃおよびＣｅｌｌＧｒｏにより１時間処理した。使用した凍結乾燥物を、０．９％のＮａＣｌで、またはＨ２Ｏで戻しておき、ＡｐｏｓｅｃおよびＣｅｌｌＧｒｏ中のＮａＣｌ濃縮の作用を評価した。固定、透過処理およびブロッキングした細胞を、１つの濃度のｐｈｏｓｐｏＳｅｒ８２−Ｈｓｐ２７抗体とともに４℃で一晩インキュベートした。Ａｐｏｓｅｃ対ＣｅｌｌＧｒｏおよび０．９％のＮａＣｌまたはＨ２Ｏの比較に加えて、１５、３０または６０分の処理を、ＡｐｏｓｅｃおよびＣｅｌｌＧｒｏ（Ｈ２Ｏで戻す）について評価した。
【０１１５】
Ｈ２Ｏまたは０．９％のＮａＣｌで戻した、ＡｐｏｓｅｃおよびＣｅｌｌＧｒｏによるｐｈｏｓｐｏＳｅｒ８２−Ｈｓｐ２７の誘導の比較によって、Ｈ２Ｏで戻したＣｅｌｌＧｒｏによりｐｈｏｓｐｏＳｅｒ８２−Ｈｓｐ２７が誘導されず、０．９％のＮａＣｌで戻したＣｅｌｌＧｒｏによるｐｈｏｓｐｏＳｅｒ８２−Ｈｓｐ２７の誘導率が、０．９％のＮａＣｌで戻したＡｐｏｓｅｃと比較して、はるかに低いことが示される。動態学により、Ａｐｏｓｅｃにより１５および３０分刺激すると、同等の誘導（５倍）が生じ、一方、１時間刺激すると、誘導は約４倍となることが示される（図４を参照）。
【０１１６】
３．４  細胞Ｈｓｐ２７  ＥＬＩＳＡアッセイ−アッセイ範囲
実施例３のこの部分では、ｐｈｏｓｐｏＳｅｒ８２−Ｈｓｐ２７アッセイにより定量可能なＡｐｏｓｅｃのアッセイ範囲を検討した。
【０１１７】
２５％、５０％および２００％のＡｐｏｓｅｃおよび１００％のＣｅｌｌＧｒｏ試料を使用してＡ５４９細胞を処理し、データは、ＰＬＡにおいて、４ＰＬフル曲線モデルを使用して分析された。
【０１１８】
ＰＬＡ近似曲線を図５に示し、結果として生じる相対効力をグラフの下に記載する。
【０１１９】
アッセイにより、２５％〜２００％のＡｐｏｓｅｃ相対効力を定量することが可能となる。ＣｅｌｌＧｒｏの相対効力は、２０％の範囲内である。このＣｅｌｌＧｒｏ活性は、０．９％のＮａＣｌで凍結乾燥物を戻すことにより引き起こされた非特異的作用を反映する。
【０１２０】
［実施例４：ＡＰ−１レポーター遺伝子アッセイ］
この実施例では、Ａｐｏｓｅｃにより、ＡＰ−１プロモーターがｉｎ  ｖｉｔｒｏで誘導されるかどうかの課題に取り組む。
【０１２１】
ＡＰ−１レポーター遺伝子アッセイ（ＲＧＡ）細胞（Ｂｒａｓｉｅｒ  ＡＲらＭｅｔｈｏｄｓ  Ｅｎｚｙｍｏｌ．１９９２；２１６：３８６―９７）を、ＡＰ−１（活性化因子タンパク質１）転写因子応答性レポーター遺伝子（ホタルルシフェラーゼ）を発現するレンチウイルス粒子（ＱＩＡＧＥＮ注文番号ＣＬＳ−０１１Ｌ）を使用して生成した（ＱＩＡＧＥＮ社、Ｃｉｇｎａｌ  Ｌｅｎｔｉ  Ｒｅｐｏｒｔｅｒ  Ｈａｎｄｂｏｏｋ  Ｆｏｒ  ｌｅｎｔｉｖｉｒａｌ−ｂａｓｅｄ  ｃｅｌｌ  ｓｉｇｎａｌｉｎｇ  ａｃｔｉｖｉｔｙ  ａｓｓａｙｓ、文書番号１０７３７６２；０８／２０１２）。ＡＰ−１  ＲＧＡ細胞を、種々の量のＡｐｏｓｅｃで刺激する。ＡｐｏｓｅｃがＡＰ−１プロモーターを刺激すると、ホタルルシフェラーゼが発現する。ＡＰＯＳＥＣによる刺激期間の終わりに、細胞を溶解し、グロータイプのルシフェラーゼ試薬を使用してルシフェラーゼ活性を判定する。
【０１２２】
４．１  ＡＰ−１  ＲＧＡアッセイ１
実施例４のこの部分では、Ａｐｏｓｅｃが、種々の細胞株においてＡＰ−１プロモーターを刺激することが可能かどうかを検討する。
【０１２３】
ＡＰ−１プロモーターレポーターコンストラクトにより安定的に形質転換される、３つの異なる細胞株を、種々の希釈度のＡｐｏｓｅｃで５または２４時間刺激した。
【０１２４】
ＡＰ−１レポーターシグナルを、細胞株特異的基底シグナル（誘導倍率）に対して表す。２５時間で、ＨａＣａｔ、ＪｕｒｋａｔおよびＳＨ−ＳＹ５Ｙ細胞において、ＡＰ−１が用量依存的に刺激されたことを認めることができる。５時間では、ＳＨ−ＳＹ５Ｙ細胞においてのみ、顕著なＡＰ−１誘導を認めることができる（図６を参照）。
【０１２５】
４．２  ＡＰ−１  ＲＧＡアッセイ２
実施例４のこの部分では、Ａｐｏｓｅｃによる、一晩または例えば４時間の刺激期間を、効力アッセイにおいて使うことが可能かどうか、および使用し得るＡｐｏｓｅｃの用量範囲を検討する。
【０１２６】
ＳＨ−ＳＹ５Ｙ  ＡＰ−１  ＲＧＡ細胞を、広範な用量範囲のＡｐｏｓｅｃで、一晩または４時間処理した。１：２〜１：４７．５の範囲にわたる１２種の異なる希釈度の用量範囲について、４時間および一晩の刺激により試験した。
【０１２７】
ＡＰ−１レポーターシグナル（生データ＝発光数）を、Ｘ対数軸により図７に示す。４時間の刺激では、最も高いＡｐｏｓｅｃ濃度については、プラトー様の状態を、中等のＡｐｏｓｅｃ濃度については、ほぼ線形のパターンを有する、好ましい用量応答パターンを示す。ＣｅｌｌＧｒｏ依存的誘導は、両時点において認めることができない。
【０１２８】
４．３  ＡＰ−１  ＲＧＡアッセイ３
実施例４のこの部分では、ＡＰ−１  ＲＧＡアッセイにより定量可能なＡｐｏｓｅｃのアッセイ範囲を検討した。
【０１２９】
２５％、５０％および２００％のＡｐｏｓｅｃおよび１００％のＣｅｌｌＧｒｏ試料を使用してＡＰ−１  ＳＨ−ＳＹ５Ｙ細胞を４時間処理し、データは、ＰＬＡにおいて、４ＰＬフル曲線モデルを使用して分析された。
【０１３０】
ＰＬＡ近似曲線を図８に示し、結果として生じる相対効力をグラフの下に記載する。
【０１３１】
アッセイにより、２５％〜２００％のＡｐｏｓｅｃ相対効力を定量することが可能となる。ＣｅｌｌＧｒｏの相対効力は、２０％の範囲内である。このＣｅｌｌＧｒｏ活性は、０．９％のＮａＣｌで凍結乾燥物を戻すことにより引き起こされた非特異的作用を反映する（図８を参照）。
【０１３２】
［実施例５：ＮＦ−ＫＢレポーター遺伝子アッセイ］
この実施例では、Ａｐｏｓｅｃが、ＮＦ−ＫＢ（すなわち、ＮＦ−κＢ；活性化Ｂ細胞の核因子「カッパ軽鎖エンハンサー」）プロモーターをｉｎ  ｖｉｔｒｏで実際に誘導するかどうかを評価する。
【０１３３】
レンチウイルス粒子（ＱＩＡＧＥＮ注文番号ＣＬＳ−０１３Ｌ）を使用して、上記のＡＰ−１  ＲＧＡ細胞ように、ＮＦ−ＫＢ  ＲＧＡ細胞を生成した。ＮＦ−ＫＢ  ＲＧＡ細胞を、種々の量のＡｐｏｓｅｃで刺激する。ＡｐｏｓｅｃによりＮＦ−ＫＢプロモーターが刺激されると、ＮＦ−ＫＢ（活性化Ｂ細胞の核因子「カッパ軽鎖エンハンサー」）依存性プロモーターによる転写制御下で、ホタルルシフェラーゼをコードする安定的に組み込まれた発現カセットから、ホタルルシフェラーゼが発現する。ＡＰＯＳＥＣによる刺激期間の終わりに、細胞を溶解し、グロータイプのルシフェラーゼ試薬を使用してルシフェラーゼ活性を判定する。
【０１３４】
５．１  ＮＦ−ＫＢ  ＲＧＡアッセイ１
実施例５のこの部分では、Ａ５４９ＮＦ−κＢ  ＲＧＡ細胞が、Ａｐｏｓｅｃ刺激に対して用量依存的応答を示すかどうかを評価する。
【０１３５】
Ａ５４９ＮＦ−κＢ  ＲＧＡ細胞を、種々の希釈度のＡｐｏｓｅｃおよびＣｅｌｌＧｒｏ（ともにＮａＣｌで戻す）で４時間刺激した後、ＮＦ−κＢ  ＲＧＡシグナルを読み出した。
【０１３６】
ＮＦ−ＫＢレポーターシグナルを、細胞クローン特異的基底シグナル（誘導倍率）に対して表す。４時間刺激すると、ＮＦ−ＫＢが用量依存的に刺激されたことを認めることができ、一方、ＣｅｌｌＧｒｏ依存的誘導は、認められない（図９を参照）。
【０１３７】
５．２  ＮＦ−ＫＢ  ＲＧＡアッセイ２
実施例５のこの部分では、Ａｐｏｓｅｃのアッセイ範囲をＮＦ−ＫＢ  ＲＧＡアッセイにより判定する。
【０１３８】
２５％、５０％および２００％のＡｐｏｓｅｃおよび１００％のＣｅｌｌＧｒｏ試料を使用してＮＦ−ＫＢ  Ａ５４９細胞を４時間処理し、データは、ＰＬＡにおいて、４ＰＬフル曲線モードを使用して分析された。
【０１３９】
ＰＬＡ近似曲線を以下に示し、結果として生じる相対効力を図１０）に記載する。
【０１４０】
［実施例６：ＡＰＯＳＥＣ  ＮＦκＢレポーター遺伝子アッセイ］
Ａ５４９細胞（腺癌性ヒト肺胞基底上皮細胞株）において、ＮＦ−κＢプロモーターを活性化するその能力により、ＡＰＯＳＥＣ効力を判定できる。詳細には、ＮＦ−κＢ  ＲＧＡ  Ａ５４９細胞を所定量のＡＰＯＳＥＣにより刺激すると、ＮＦ−κＢ（核因子「カッパ軽鎖エンハンサー」）依存性プロモーターによる転写制御下で、ホタルルシフェラーゼをコードする安定的に組み込まれた発現カセットから、ホタルルシフェラーゼが発現する。
【０１４１】
ＤＭＥＭ／Ｆ１２＋Ｇｌｕｔａｍａｘ＋１０％ＦＢＳ＋ピューロマイシン中で細胞を培養した。１ウェルあたり２０，０００細胞を、アッセイプレートの各ウェルの刺激培地（ＯｐｔｉＭＥＭ＋Ｇｌｕｔａｍａｘ＋５％ＦＢＳ）５０μＬ中に播種した。アッセイプレートを、３７℃の加湿したＣＯ２インキュベーター内で一晩インキュベートした。様々な濃度の実用標準ＡＰＯＳＥＣ（Ｒ）および試験試料（Ａ、Ｂ、ＣおよびＤ）を、希釈プレート内のアッセイ培地中に調製した。詳細には、試料を、刺激培地で１２．５Ｕ／ｍＬに予め希釈し、例えば、試料５００μＬ（２５Ｕ／ｍＬ）を刺激培地５００μＬに添加した。ＡＰＯＳＥＣ  ５０μＬを希釈プレートからアッセイプレート内へ移した後、最終測定濃度は、６．２５（＃１）、４．１７（＃２）、２．７８（＃３）および１．８５（＃４）Ｕ／ｍＬであった。ＡＰＯＳＥＣで４時間刺激したら、細胞を溶解し、グロータイプのルシフェラーゼ試薬を使用してルシフェラーゼ活性を判定する。
【０１４２】
ＡＰＯＳＥＣ試験試料の機能活性を、同一のアッセイにおいて分析したレファレンス物質として使用した、ＡＰＯＳＥＣの規定のバッチと比較することにより判定した。試験試料を、ＡＰＯＳＥＣの生成に使用したＰＢＭＣ数に基づいて正規化した。次いで、ＰＬＡソフトウェアを使用して、相対効力を算出した。
【０１４３】
［実施例７：シグナル伝達レポーターアレイ］
この実施例では、Ａｐｏｓｅｃが、ある特定のシグナル経路を実際に特異的に誘導するかどうかを評価した。
【０１４４】
「Ｃｉｇｎａｌ  ４５−Ｐａｔｈｗａｙ  Ｒｅｐｏｒｔｅｒ  Ａｒｒａｙ」（Ｑｉａｇｅｎ注文番号ＣＣＡ−９０１Ｌ）を使用して、Ａｐｏｓｅｃで刺激すると特異的に誘導される、シグナル経路を同定した。選択された細胞株を一過性にトランスフェクトすると、このレポーター経路により、４５種の異なるレポーター遺伝子コンストラクトの並行分析が可能となる。
【０１４５】
７．１  トランスフェクション有効性試験１＆２
Ａ５４９、ＨＥＫ２９３およびＨａＣａｔ細胞に対して、レポーターアレイに存在するルシフェラーゼベクターと同等の、対照ルシフェラーゼベクター（Ｃｉｇｎａｌ  Ｐｏｓｉｔｉｖｅ  Ｃｏｎｔｒｏｌ（ｌｕｃ）、ＱＩＡＧＥＮ注文番号３３６８８１）を使用し、２つの異なるトランスフェクション試薬（Ａｔｔｒａｃｔｅｎｅ（ＱＩＡＧＥＮ注文番号３０１００５）およびＦｕｇｅｎｅ  ＨＤ（ＰＲＯＭＥＧＡ注文番号Ｅ２３１１））と併用して、トランスフェクトした。異なるＤＮＡ対トランスフェクション試薬の比率を、１細胞株あたりの２つの異なる細胞数（２０，０００および８０，０００細胞／ウェル）について評価した。
【０１４６】
トランスフェクションの有効性および安定性は、Ｆｕｇｅｎｅ  ＨＤについて良好な結果を示し、これは、Ａｔｔｒａｃｔｅｎｅと比較して、わずかに高かった（Ｆｕｇｅｎｅの発光数が全体的に見て高かった）。ＨａＣａｔ細胞の発光数は、ＨＥＫ２９３およびＡ５４９細胞と比較して低かった。ＨａＣａｔ細胞は、トランスフェクトが困難であることが知られている（図１１を参照）。
【０１４７】
第２のトランスフェクション有効性試験を、ＨＥＫ２９３およびＡ５４９細胞についてのみ実行した。Ｆｕｇｅｎｅ  ＨＤおよびＡｔｔｒａｃｔｅｎｅ試薬を再び使用した。トランスフェクション有効性（ホタルおよびウミシイタケルシフェラーゼ数）に加えて、細胞の生存率を、ＣｅｌｌＴｉｔｅｒＧｌｏを使用して分析して、トランスフェクションによる、細胞生存率に対する負の作用を除外した。トランスフェクション有効性に関する初期の結果は再現することができ、細胞生存率に対する明らかな作用は認めることができなかった。これらの結果に基づいて、「Ｆｕｇｅｎｅ対ＤＮＡ」率３．３７５のＦｕｇｅｎｅ  ＨＤを選択して、次のレポーターアレイ実験において使用した。
【０１４８】
７．２  シグナル伝達レポーターアレイ−アッセイ１
実施例７のこの部分では、Ａｐｏｓｅｃで一晩刺激すると、Ａ５４９およびＨＥＫ２９３細胞において、シグナル経路（レポーター遺伝子コンストラクト）が特異的に活性化されるかどうかを検討した。
【０１４９】
上記の「Ｃｉｇｎａｌ  ４５−Ｐａｔｈｗａｙ  Ｒｅｐｏｒｔｅｒ  Ａｒｒａｙ」を、２０，０００細胞／ウェルのＨＥＫ２９３およびＡ５４９細胞において、Ｆｕｇｅｎｅ  ＨＤとともに使用して、一晩刺激した。細胞をＡｐｏｓｅｃ（１：４希釈または６．２５Ｕ／ｍＬ）で刺激した。ＣｅｌｌＧｒｏ（１：４希釈または６．２５Ｕ／ｍＬ）を対照刺激として使用した。使用したＡｐｏｓｅｃおよびＣｅｌｌＧｒｏは、ともに０．９％のＮａＣｌで戻した。
【０１５０】
レポーター遺伝子活性は、ＣｅｌｌＧｒｏ対照に対して正規化され、発光数は、トランスフェクション有効性（ホタル／ウミシイタケ数）について正規化された。有意に上方制御されたレポーター遺伝子／経路も存在すれば（例えば、Ｓｔａｔ３、Ｓｏｘ２、ＮＦ−κＢ、ＸＲＥ）、有意に下方制御されたレポーター遺伝子／経路も存在した（例えば、ＲＡＲＥ、ＥＲＥ、ＭＥＦ２）（図１２を参照）。
【０１５１】
７．３  シグナル伝達レポーターアレイ−アッセイ２
実施例７のこの部分では、Ａｐｏｓｅｃで４時間刺激すると、Ａ５４９およびＨＥＫ２９３細胞において、シグナル経路（レポーター遺伝子コンストラクト）が特異的に活性化されるかどうかを検討した。
【０１５２】
細胞を一晩刺激した上記のアッセイ（７．２を参照）を、Ａｐｏｓｅｃで４時間刺激して繰り返した。
【０１５３】
レポーター遺伝子活性は、ＣｅｌｌＧｒｏ対照に対して正規化され、発光数は、トランスフェクション有効性（ホタル／ウミシイタケ数）について正規化された。有意に上方制御されたレポーター遺伝子／経路も存在すれば、有意に下方制御されたレポーター遺伝子／経路も存在した。
【０１５４】
標準偏差がかなり小さく、ほとんどの遺伝子が上方または下方制御されないため、上記のレポーター遺伝子アレイアッセイの結果は、安定であると考えられる。その上、上方または下方制御されたレポーター遺伝子／経路の一部は、２つ以上のアッセイにおいて、例えば、ＮＦ−κＢ、ＡＰ−１、ＳＴＡＴ３およびＳｏｘ−２で見出された。
【０１５５】
［実施例８：ブタ熱傷モデル］
ＰＢＭＣ培養物のセクレトームが、治療有効性を既に試験している実施例１によるＡＰＯＳＥＣ標準調製物と同等の治療作用を示すかどうかを評価するために、４つの異なるＰＢＭＣ上清調製物を、実施例１のプロトコールに従って調製した。前記４つの上清（Ａ、Ｂ、ＣおよびＤ）を得るのに使用したＰＢＭＣは、４つの異なる個人から単離した。治療モデルとして、ブタ熱傷モデルを使用しており、これは、Ｈａｃｋｅｒ  Ｓら（Ｓｃｉ  Ｒｅｐ  ６（２０１６）：２５１６８）に広範に記載されている。
【０１５６】
第１のステップでは、上述のＡＰＯＳＥＣ標準調製物ならびに４つの上清Ａ、Ｂ、ＣおよびＤを用いて、実施例３．３、４．２および５．１に記載する実験を繰り返した。６０分インキュベートした後、ｐｈｏｓｐｈｏＳｅｒ１５−Ｈｓｐ２７の量を測定し、４時間後、ＡＰ−１およびＮＦ−κＢレポーター活性のシグナルを判定した。上清ＡおよびＤは、ｐｈｏｓｐｈｏＳｅｒ１５−Ｈｓｐ２７レベルならびにＡＰ−１およびＮＦ−κＢ活性に関して、５％未満であったＡＰＯＳＥＣと比較して、差異を示したことが判明した。上清ＢおよびＣは、それぞれ約３５％および５０％であり、ｐｈｏｓｐｈｏＳｅｒ１５−Ｈｓｐ２７レベルならびにＡＰ−１およびＮＦ−κＢ活性に関して、ＡＰＯＳＥＣと比較して、低かった。
【０１５７】
４つすべての上清Ａ、Ｂ、ＣおよびＤならびにＡＰＯＳＥＣをヒドロゲルと混合して、創傷に適用可能な組成物を形成した。これらの調製物を入手する方法は、Ｈａｃｋｅｒ  Ｓらに記載されている。ブタ皮膚上の創傷はまた、Ｈａｃｋｅｒ  Ｓらの記載のように調製した。Ｈａｃｋｅｒ  Ｓらとは対照的に、本実施例では、ＡＰＯＳＥＣおよび４つの上清で処置した創傷の平均上皮厚のみを評価した。ＡＰＯＳＥＣならびに上清ＡおよびＤが、同等の平均上皮厚（１２５．１±２３．８μｍ）を示したことが判明した。これとは対照的に、上清ＢおよびＣを含む調製物を適用すると、それぞれ９７．６±２３．８μｍおよび９２．６±１８．６μｍの上皮厚が生じ、これは、ＣｅｌｌＧｒｏ培地のみを含む調製物（８８．３±１４．２μｍ）と比較して、わずかに高かった。
【図１Ａ】
2021508257.tif 000003
【図１Ｂ】
2021508257.tif 000004
【図１Ｃ】
2021508257.tif 000005
【図２Ａ】
2021508257.tif 000006
【図２Ｂ】
2021508257.tif 000007
【図２Ｃ】
2021508257.tif 000008
【図３Ａ】
2021508257.tif 000009
【図３Ｂ】
2021508257.tif 000010
【図３Ｃ】
2021508257.tif 000011
【図４Ａ】
2021508257.tif 000012
【図４Ｂ】
2021508257.tif 000013
【図５Ａ】
2021508257.tif 000014
【図５Ｂ】
2021508257.tif 000015
【図６Ａ】
2021508257.tif 000016
【図６Ｂ】
2021508257.tif 000017
【図７】
2021508257.tif 000018
【図８Ａ】
2021508257.tif 000019
【図８Ｂ】
2021508257.tif 000020
【図９】
2021508257.tif 000021
【図１０Ａ】
2021508257.tif 000022
【図１０Ｂ】
2021508257.tif 000023
【図１１】
2021508257.tif 000024
【図１２Ａ】
2021508257.tif 000025
【図１２Ｂ】
2021508257.tif 000026
【図１３Ａ】
2021508257.tif 000027
【図１３Ｂ】
2021508257.tif 000028
【手続補正書】
【提出日】令和1年10月16日(2019.10.16)
【手続補正１】
【補正対象書類名】特許請求の範囲
【補正対象項目名】全文
【補正方法】変更
【補正の内容】
【特許請求の範囲】
【請求項１】
炎症状態の治療において使用される哺乳動物細胞培養物の上清の効力を判定するための方法であって、
ａ）前記上清を含むか、または前記上清からなる培養培地中でＳＨ−ＳＹ５Ｙ細胞をインキュベートするステップと、
ｂ）活性化因子タンパク質１（ＡＰ−１）プロモーターのプロモーター活性を測定するステップと
を含み、少なくとも１つのプロモーターのプロモーター活性が、前記上清を欠く培養培地中で真核細胞を培養したときに測定されたプロモーター活性と比較して、少なくとも５０％高い場合、哺乳動物細胞培養物の上清が、炎症状態の治療において使用される潜在性を有する、方法。
【請求項２】
炎症状態の治療において使用される哺乳動物細胞培養物の上清の効力を判定するための方法であって、
ａ）前記上清を含むか、またはこれからなる培養培地中でＳＨ−ＳＹ５Ｙ細胞をインキュベートするステップと、
ｂ）活性化因子タンパク質１（ＡＰ−１）プロモーターのプロモーター活性を測定するステップと
を含み、少なくとも１つのプロモーターのプロモーター活性が、炎症状態の治療において使用可能な、哺乳動物細胞の基準上清を含む培養培地中で真核細胞を培養したときに測定されたプロモーター活性と比較して、最大１０％高いか、または低い場合、哺乳動物細胞培養物の上清が、炎症状態の治療において使用される潜在性を有する、方法。
【請求項３】
哺乳動物細胞培養物の前記上清が、末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）培養物の上清である、請求項１または２に記載の方法。
【請求項４】
前記炎症状態が、虚血と関連する状態、好ましくは皮膚状態または内部炎症状態である、請求項１〜３のいずれか１項に記載の方法。
【請求項５】
ステップａ）の前記真核細胞が、少なくとも２時間、好ましくは少なくとも４時間、より好ましくは少なくとも６時間、より好ましくは少なくとも１２時間、より好ましくは少なくとも１８時間、より好ましくは少なくとも２４時間、細胞培養培地中でインキュベートされる、請求項１〜４のいずれか１項に記載の方法。
【請求項６】
前記培養培地が、少なくとも２０％、好ましくは少なくとも５０％、より好ましくは少なくとも７０％、より好ましくは少なくとも８０％、より好ましくは少なくとも９０％、より好ましくは少なくとも９５％の前記上清を含む、請求項１〜５のいずれか１項に記載の方法。
【請求項７】
ステップａ）の前記培養培地が、ダルベッコ改変イーグル培地（ＤＭＥＭ）、ハムＦ１２培地（Ｆ１２）、最小必須培地、またはこれらの培地の１つ以上の組合せである、請求項１〜６のいずれか１項に記載の方法。
【請求項８】
ステップａ）の前記培養培地が、２〜２０％、好ましくは５〜１５％のウシ胎仔血清（ＦＢＳ）および／またはＬ−アラニル−Ｌ−グルタミンを含む、請求項１〜７のいずれか１項に記載の方法。
【請求項９】
前記真核細胞が、レポータータンパク質をコードする少なくとも１つの核酸分子に作動可能に連結した、ＡＰ−１プロモーターを含む少なくとも１つの発現カセットを含む、請求項１〜８のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１０】
前記レポータータンパク質が、ルシフェラーゼ、好ましくはホタルルシフェラーゼ、および蛍光タンパク質、好ましくは緑色蛍光タンパク質からなる群から選択される、請求項９に記載の方法。
【請求項１１】
前記少なくとも１つのプロモーターのプロモーター活性が、前記上清を欠く培養培地中で真核細胞を培養したときに測定されたプロモーター活性と比較して、少なくとも８０％、好ましくは少なくとも１００％、より好ましくは少なくとも１５０％、より好ましくは少なくとも２００％高い、請求項１〜１０のいずれか１項に記載の方法。
【国際調査報告】
2021508257.tif 000029
2021508257.tif 000030
2021508257.tif 000031