(57)【要約】  本発明は、ブタのＦｃ断片と融合した抗原に関し、多様な抗原にＦｃ断片を結合させることによって、自己免疫賦活効果を有するワクチン組成物およびその製造方法に関する。【選択図】なし
2021502322.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
配列番号４で表されるブタのＦｃ断片と融合した抗原を有効成分として含む、ワクチン組成物。
【請求項２】
前記抗原は、Ｆｃ断片と融合することによって自己免疫賦活（ｓｅｌｆ−ａｄｊｕｖａｎｔｉｎｇ）効果および増加した溶解性を有することを特徴とする、請求項１に記載のワクチン組成物。
【請求項３】
配列番号４で表されるブタのＦｃ断片をコードするポリヌクレオチドおよび抗原をコードするポリヌクレオチドを含む、自己免疫賦活効果を有する組み換え抗原の発現ベクター。
【請求項４】
前記発現ベクターは、プロモーター遺伝子、Ｆｃ断片をコードするポリヌクレオチド、および抗原をコードするポリヌクレオチドが順次に連結されていることを特徴とする、請求項３に記載の発現ベクター。
【請求項５】
前記プロモーターは、カリフラワーモザイクウイルス（ｃａｕｌｉｆｌｏｗｅｒ  ｍｏｓａｉｃ  ｖｉｒｕｓ）由来３５Ｓプロモーター、カリフラワーモザイクウイルス（ｃａｕｌｉｆｌｏｗｅｒ  ｍｏｓａｉｃ  ｖｉｒｕｓ）由来１９Ｓ  ＲＮＡプロモーター、植物のアクチンタンパク質プロモーター、ユビキチンタンパク質プロモーター、ＣＭＶ（Ｃｙｔｏｍｅｇａｌｏｖｉｒｕｓ）プロモーター、ＳＶ４０（Ｓｉｍｉａｎ  ｖｉｒｕｓ  ４０）プロモーター、ＲＳＶ（Ｒｅｓｐｉｒａｔｏｒｙ  ｓｙｎｃｙｔｉａｌ  ｖｉｒｕｓ）プロモーター、ｐＥＭＵプロモーター、ＭＡＳプロモーター、ヒストンプロモーター、ＣｌｐプロモーターおよびＥＦ−１α（Ｅｌｏｎｇａｔｉｏｎ  ｆａｃｔｏｒ−１  ａｌｐｈａ）プロモーターよりなる群から選択されるいずれか一つ以上であることを特徴とする、請求項４に記載の発現ベクター。
【請求項６】
前記発現ベクターは、ＢｉＰ（Ｃｈａｐｅｒｏｎｅ  ｂｉｎｄｉｎｇ  ｐｒｏｔｅｉｎ）をコードするポリヌクレオチドをさらに含むことを特徴とする、請求項３に記載の発現ベクター。
【請求項７】
前記発現ベクターは、ＨＤＥＬ（Ｈｉｓ−Ａｓｐ−Ｇｌｕ−Ｌｅｕ）ペプチドをコードする遺伝子をさらに含むことを特徴とする、請求項３に記載の発現ベクター。
【請求項８】
前記発現ベクターは、Ｍ１７の５′ＵＴＲ（ｕｎｔｒａｎｓｌａｔｉｏｎａｌ  ｒｅｇｉｏｎ）部位遺伝子をさらに含むことを特徴とする、請求項３に記載の発現ベクター。
【請求項９】
前記発現ベクターは、Ｆｃ断片が融合した抗原の発現量を増加させ、溶解性を増加させることを特徴とする、請求項３に記載の発現ベクター。
【請求項１０】
請求項３〜９のいずれか一項に記載の発現ベクターで形質転換された、形質転換体。
【請求項１１】
（ａ）請求項１０に記載の形質転換体を培養する段階と、
（ｂ）前記形質転換体または培養液からＦｃ断片が融合した抗原を分離および精製する段階とを含む、自己免疫賦活効果を有する組み換え抗原の生産方法。
【請求項１２】
配列番号４で表されるブタのＦｃ断片と融合した抗原を有効成分として含む組成物を個体に投与する段階を含む、感染症の予防または治療方法。
【請求項１３】
配列番号４で表されるブタのＦｃ断片と融合した抗原を有効成分として含む組成物の、感染症の予防または治療のための使用。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ブタのＦｃ断片と融合した抗原、およびこれを含むワクチン組成物等に関する。
【背景技術】
【０００２】
感染症の予防のためのワクチンは、病原菌に対して特異的であり、効果的な免疫反応を誘導するものであって、多様な感染症の予防のためにその必要性が次第に増加している傾向にある。最近には、死菌ワクチン、弱毒生菌ワクチン、自家ワクチン等多様な種類のワクチンが開発されているが、生菌または弱毒化した菌から製造されたワクチンは、予防面において非常に効果的であるが、回帰の危険性、自己複製等の問題点によって安定性の問題がたびたび報告されており、死菌を用いたワクチンの場合には、リポ多糖体（ｌｉｐｏｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ）のような毒性物質が含まれているか、生きている菌が存在し得る危険性を有している。したがって、このような限界を克服するために開発されたＤＮＡワクチンもやはり宿主のゲノム上に挿入されて、突然変異を誘発したり、発癌を誘発したりする可能性が提起されている。したがって、最近には、精製された抗原を使用するサブユニットワクチンの開発が活発に行われている。サブユニットワクチンの場合、精製された抗原を使用するので、他のワクチンより安定的であるが、免疫原性が不足するので、このような免疫原性を増進させるために強力な免疫抗原賦活化剤（アジュバント）が要求される。免疫抗原賦活化剤の使用は、使用される抗原の量を顕著に減少させることができるので、伝染病の流行等の状況で迅速なワクチンの生産に決定的な役割をすることができると共に、追加ワクチン接種回数等を減少させることができるので、費用および不便さを顕著に減少させることができる。しかしながら、免疫抗原賦活化剤のうちワクチンに使用可能に許可されたものは、非常に少数である。免疫抗原賦活化剤である「ａｌｕｍ」は、１９３２年にヒトワクチンに使用可能に許可された最初の免疫抗原賦活化剤であるが、現在までも最も多く使用されている免疫抗原賦活化剤である。その後、ＭＦ５９、ＡＳ０３等が開発されて使用許可を受けたが、未だに使用可能に許可を受けた免疫抗原賦活化剤は、非常に少数である（韓国特許登録１０−０５１７１１４号公報）。
【０００３】
したがって、ワクチンの免疫原性を顕著に増加させると同時に、安定した免疫抗原賦活化剤の開発は、ワクチン分野の発達において非常に重要な役割をするものと期待される。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００４】
本発明は、前記のような従来技術上の問題点を解決するためになされたものであって、その目的は、ブタのＦｃ断片と融合した抗原、これを含むワクチン組成物およびその製造方法等を提供することにある。
【０００５】
しかしながら、本発明が達成しようとする技術的課題は、以上で言及した課題に制限されず、言及されていない他の課題は、下記の記載から本発明の属する技術分野における通常の知識を有する者に明確に理解され得る。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
本発明は、配列番号４で表されるブタのＦｃ断片と融合した抗原を有効成分として含むワクチン組成物を提供する。
【０００７】
また、本発明は、配列番号４で表されるブタのＦｃ断片と融合した抗原を有効成分として含む組成物を個体に投与する段階を含む感染症の予防または治療方法を提供する。
【０００８】
また、本発明は、配列番号４で表されるブタのＦｃ断片と融合した抗原を有効成分として含む組成物の感染症の予防または治療のための使用を提供する。
【０００９】
本発明の一具体例において、前記抗原は、Ｆｃ断片と融合することによって、自己免疫賦活反応（ｓｅｌｆ−ａｄｊｕｖａｎｔｉｎｇ）効果および増加した溶解性を有することを特徴とする。前記融合は、Ｆｃ断片のＮ末端および／またはＣ末端に抗原がペプチド結合で連結された形態であってもよいが、Ｆｃ断片と抗原が結合している形態であれば、これに制限されない。
【００１０】
また、本発明は、配列番号４で表されるブタのＦｃ断片をコードするポリヌクレオチドおよび抗原をコードするポリヌクレオチドを含む自己免疫賦活効果を有する組み換え抗原の発現ベクターを提供する。
【００１１】
本発明の一具体例において、前記発現ベクターは、プロモーター遺伝子、Ｆｃ断片をコードするポリヌクレオチド、および抗原をコードするポリヌクレオチドの順に、またはプロモーター遺伝子、抗原をコードするポリヌクレオチド、およびＦｃ断片をコードするポリヌクレオチドの順に順次に連結され得る。
【００１２】
本発明の他の具体例において、前記プロモーターは、カリフラワーモザイクウイルス由来３５Ｓプロモーター、カリフラワーモザイクウイルス由来１９Ｓ  ＲＮＡプロモーター、植物のアクチンタンパク質プロモーター、ユビキチンタンパク質プロモーター、ＣＭＶ（サイトメガロウィルス）プロモーター、ＳＶ４０（Ｓｉｍｉａｎ  ｖｉｒｕｓ  ４０）プロモーター、ＲＳＶ（Ｒｅｓｐｉｒａｔｏｒｙ  ｓｙｎｃｙｔｉａｌ  ｖｉｒｕｓ）プロモーター、ＥＦ−１α（Ｅｌｏｎｇａｔｉｏｎ  ｆａｃｔｏｒ−１  ａｌｐｈａ）プロモーター、ｐＥＭＵプロモーター、ＭＡＳプロモーター、ヒストン  プロモーター、Ｃｌｐプロモーター等であるが、これらに制限されない。
【００１３】
本発明のさらに他の具体例において、前記抗原は、抗体、抗体の断片、構造タンパク質、調節タンパク質、転写因子、毒素タンパク質、ホルモン、ホルモン類似体、サイトカイン、酵素、酵素の断片、酵素阻害剤、輸送タンパク質、受容体、受容体の断片、生体防御誘導物質、貯蔵タンパク質、移動タンパク質（ｍｏｖｅｍｅｎｔ  ｐｒｏｔｅｉｎ）、エックスプロイティブタンパク質（ｅｘｐｌｏｉｔｉｖｅ  ｐｒｏｔｅｉｎ）、レポータータンパク質等であってもよいが、生体で抗原として作用して免疫反応を誘導できる物質であれば、これらに制限されない。
【００１４】
本発明のさらに他の具体例において、前記発現ベクターは、ＢｉＰ（Ｃｈａｐｅｒｏｎｅ  ｂｉｎｄｉｎｇ  ｐｒｏｔｅｉｎ）をコードするポリヌクレオチド、ＨＤＥＬ（Ｈｉｓ−Ａｓｐ−Ｇｌｕ−Ｌｅｕ）ペプチドをコードする遺伝子、Ｍ１７の５′ＵＴＲ（ｕｎｔｒａｎｓｌａｔｉｏｎａｌ  ｒｅｇｉｏｎ）部位遺伝子等をさらに含むことができる。
【００１５】
本発明のさらに他の具体例において、前記発現ベクターは、Ｆｃ断片が融合した目的抗原の発現量を増加させ、溶解性を増加させることを特徴とする。
【００１６】
また、本発明は、前記発現ベクターで形質転換された形質転換体を提供する。
【００１７】
本発明の一具体例において、前記形質転換体は、大腸菌、バシルス、サルモネラ、酵母等のような微生物、昆虫細胞、ヒトを含む動物細胞、マウス、ラット、イヌ、サル、ブタ、ウマ、ウシ等のような動物、アグロバクテリウム・ツメファシエンス、植物等であってもよく、前記植物は、イネ、コムギ、ムギ、トウモロコシ、マメ、ジャガイモ、アズキ、エンバク、およびモロコシを含む食糧作物類；シロイヌナズナ、ハクサイ、ダイコン、トウガラシ、イチゴ、トマト、スイカ、キュウリ、キャベツ、マクワウリ、カボチャ、ネギ、タマネギ、およびニンジンを含む野菜作物類；高麗人参、タバコ、ワタ、ゴマ、サトウキビ、テンサイ、エゴマ、ピーナッツ、およびアブラナを含む特用作物類；およびリンゴの木、ナシの木、ナツメの木、モモ、ブドウ、ミカン、カキ、スモモ、アンズ、およびバナナを含む果樹類；およびバラ、カーネーション、キク、ユリ、およびチューリップを含む草花類等であってもよいが、本発明の発現ベクターで形質転換され得る生命体であれば、これらに制限されない。
【００１８】
また、本発明は、（ａ）前記形質転換体を培養する段階と、（ｂ）前記形質転換体または培養液からＦｃ断片が融合した抗原を分離および精製する段階とを含む自己免疫賦活効果を有する組み換え抗原の生産方法を提供する。前記形質転換体は、好ましくは細胞自体、または細胞を含む培養物であってもよく、前記培養液は、好ましくは細胞を培養した後、細胞を除去した培養液であってもよいが、本発明の組み換え抗原を含んでいる場合、これに制限されない。
【発明の効果】
【００１９】
本発明によるブタのＦｃ断片と融合した抗原は、自己免疫賦活効果を有するので、追加の免疫抗原賦活化剤を使用することなく、抗原自体の免疫原性を増加させることができると共に、抗原の溶解性および安定性を増加させて、抗原の分離および保管が容易である。また、本発明による発現ベクターは、多様な抗原をｐＦｃ断片と融合させることによって、目的抗原の生産量を増加させることができるので、ワクチンの高効率生産を可能にするものと期待される。
【図面の簡単な説明】
【００２０】
【図１】本発明の一実施例によるｐＣＡＭＢＩＡ１３００ベクターマップを示す図である。
【図２】本発明の一実施例によるｐＦｃ融合ＶＰ１組み換えタンパク質発現のための遺伝子の配列を示す図である。
【図３】本発明の一実施例によるｐＦｃ融合ＶＰ１組み換えタンパク質の発現量をウェスタンブロッティングで確認した結果を示す図である。
【図４】本発明の一実施例によるｐＦｃ融合ＶＰ１組み換えタンパク質の安定性をウェスタンブロッティングで確認した結果を示す図である。
【図５】本発明の一実施例によるｐＦｃ融合ＶＰ１組み換えタンパク質の溶解性をウェスタンブロッティングで確認した結果を示す図である。
【図６】本発明の一実施例によるｐＦｃ融合ＧＰ５組み換え抗原の溶解性をウェスタンブロッティングで確認した結果を示す図である。
【図７】本発明の一実施例によるｐＦｃ融合ＰＣＶ２組み換えタンパク質の溶解性および生産性をウェスタンブロッティングで確認した結果を示す図である。
【図８】本発明の一実施例によるｐＦｃ融合Ｅ２組み換え抗原の生産量を確認した結果を示す図である。
【図９】本発明の一実施例によるｐＦｃ融合Ｅ２組み換え抗原を１回投与し、免疫原性を確認した結果を示す図である。
【図１０】本発明の一実施例によるｐＦｃ融合Ｅ２組み換え抗原を２回投与し、免疫原性を確認した結果を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【００２１】
本発明では、多様な抗原をブタの免疫グロブリンＦｃ断片と結合させる場合、前記断片により抗原の発現量および生産性が増加すると共に、溶解性および安定性が増加することを確認し、前記ブタのＦｃ断片と融合した抗原、前記ブタのＦｃ断片をコードするポリヌクレオチドおよび抗原をコードするポリヌクレオチドを含む発現ベクターおよび前記発現ベクターを用いた組み換え抗原の生産方法を提供することを目的とする。
【００２２】
本明細書において、「Ｆｃ断片」とは、免疫グロブリンがパパインにより消化されたとき、重鎖（ｈｅａｖｙ  ｃｈａｉｎ；Ｈ  ｃｈａｉｎ）部分だけがＳ−Ｓ結合で連結され、抗原結合部位を有しない部分をＦｃ断片と言い、本発明のＦｃ断片は、好ましくはブタのＦｃ断片であり、より好ましくは配列番号４で表されるブタのＦｃ断片であるが、目的抗原と融合したとき、目的抗原の発現量および溶解性を増加させるＦｃ断片であれば、これに制限されない。また、本発明のＦｃ断片は、配列番号４の変異体が本発明の範囲に含まれる。具体的に、前記遺伝子は、配列番号４の塩基配列と９０％以上、より好ましくは９５％以上、最も好ましくは９８％以上の配列相同性を有する塩基配列を含むことができる。ポリヌクレオチドに対する「配列相同性のパーセンテージ」は、最適に配列された配列と比較領域を比較することによって確認され、比較領域でポリヌクレオチド配列の一部は、さらに、配列の最適配列に対する参考配列（追加または削除を含まない）に比べて追加または削除（すなわち、ギャップ）を含むことができる。
【００２３】
本明細書において、「抗原」とは、体内で免疫反応を起こすすべての物質を総称し、好ましくはウイルス、化合物質、細菌、花粉、癌細胞、エビ等またはこれらの一部ペプチドまたはタンパク質であるが、体内で免疫反応を起こすことができる物質であれば、これらに制限されない。
【００２４】
本明細書において、「ワクチン」とは、生体に免疫反応を起こす抗原を含有する生物学的な製剤であって、感染症の予防のためにヒトや動物に注射したり経口投与することによって、生体に免疫をつくらせる免疫原を言う。前記動物は、ヒトまたは非ヒト動物であって、前記非ヒト動物は、ブタ、ウシ、ウマ、イヌ、ヤギ、ヒツジ等を示すが、これらに制限されない。
【００２５】
本明細書において、「目的タンパク質」とは、本発明による遺伝工学的方法で生産しようとするタンパク質を言うものであり、好ましくは商業的用途に用いられている大量で生産される必要がある抗原等であり、より好ましくは抗原、抗体、抗体の断片、構造タンパク質、調節タンパク質、転写因子、毒素タンパク質、ホルモン、ホルモン類似体、サイトカイン、酵素、酵素の断片、酵素阻害剤、輸送タンパク質、受容体、受容体の断片、生体防御誘導物質、貯蔵タンパク質、移動タンパク質（ｍｏｖｅｍｅｎｔ  ｐｒｏｔｅｉｎ）、エックスプロイティブタンパク質（ｅｘｐｌｏｉｔｉｖｅ  ｐｒｏｔｅｉｎ）、レポータータンパク質等であるが、本発明の発現ベクターで製造され得るタンパク質であれば、これらに制限されない。
【００２６】
本明細書において、「発現ベクター」とは、ベクター内に挿入された異種の核酸によりコードされるペプチドまたはタンパク質を発現できるベクターを示すものであり、好ましくはブタのＦｃ断片が融合した目的抗原を発現できるように製造されたベクターを意味する。前記「ベクター」は、試験管内、生体外または生体内で宿主細胞に塩基の導入および／または転移のための任意の媒介物を言い、他のＤＮＡ断片が結合して結合した断片の複製をもたらすことができる複製単位（レプリコン）であってもよく、「複製単位」とは、生体内でＤＮＡ複製の自家ユニットとして機能する、すなわち自らの調節により複製可能な、任意の遺伝的単位（例えば、プラスミド、ファージ、コスミド、染色体、ウイルス等）を言う。本発明の発現ベクターは、好ましくはＲＮＡ重合酵素が結合する転写開始因子であるプロモーター、転写を調節するための任意のオペレーター配列、適合したｍＲＮＡリボソーム結合部位をコードする配列と転写および解読の終結を調節する配列、ターミネータ等を含むことができ、より好ましくはタンパク質の合成量を増加させるためのＭ１７の５′ＵＴＲ部位遺伝子、目的タンパク質を小胞体に移動させるためのＢｉＰ遺伝子、タンパク質が小胞体内で安定的に維持され得るようにタンパク質の分解を最小化するためのＨＤＥＬ遺伝子等をさらに含むことができ、より好ましくは組み換えタンパク質を容易に分離するためのタグ用遺伝子、形質転換体を選別するための抗生剤耐性遺伝子等の選別用マーカー遺伝子等をさらに含むことができる。
【００２７】
前記タグ用遺伝子は、本発明のタグタンパク質であるＦｃ断片以外にさらに容易な分離のために含まれるものであって、代表的にＡｖｉタグ、カルモジュリンタグ、ポリグルタミン酸タグ、Ｅタグ、ＦＬＡＧタグ、ＨＡタグ、Ｈｉｓタグ、Ｍｙｃタグ、Ｓタグ、ＳＢＰタグ、ＩｇＧ−Ｆｃタグ、ＣＴＢタグ、Ｓｏｆｔａｇ  １タグ、Ｓｏｆｔａｇ  ３タグ、Ｓｔｒｅｐタグ、ＴＣタグ、Ｖ５タグ、ＶＳＶタグ、Ｘｐｒｅｓｓタグ等が含まれ得、前記選別用マーカー遺伝子には、代表的にグリホサート（ｇｌｙｐｈｏｓａｔｅ）またはホスフィノスリシン（ｐｈｏｓｐｈｉｎｏｔｈｒｉｃｉｎ）のような除草剤抵抗性遺伝子、カナマイシン、Ｇ４１８、ブレオマイシン、ハイグロマイシン、クロラムフェニコールのような抗生剤耐性遺伝子、ａａｄＡ遺伝子等が含まれ得、前記プロモーターには、代表的にｐＥＭＵプロモーター、ＭＡＳプロモーター、ヒストンプロモーター、Ｃｌｐプロモーター、カリフラワーモザイクウイルス由来３５Ｓプロモーター、カリフラワーモザイクウイルス由来１９Ｓ  ＲＮＡプロモーター、植物のアクチンタンパク質プロモーター、ユビキチンタンパク質プロモーター、ＣＭＶ（サイトメガロウィルス）プロモーター、ＳＶ４０（Ｓｉｍｉａｎ  ｖｉｒｕｓ  ４０）プロモーター、ＲＳＶ（Ｒｅｓｐｉｒａｔｏｒｙ  ｓｙｎｃｙｔｉａｌ  ｖｉｒｕｓ）プロモーター、ＥＦ−１α（Ｅｌｏｎｇａｔｉｏｎ  ｆａｃｔｏｒ−１  ａｌｐｈａ）プロモーター等が含まれ得、前記ターミネータは、代表的にノパリンシンターゼ（ＮＯＳ）、イネアミラーゼＲＡｍｙ１  Ａターミネータ、パセオリンターミネータ、アグロバクテリウム・ツメファシエンスのオクトパイン（Ｏｃｔｏｐｉｎｅ）遺伝子のターミネータ、大腸菌のｒｒｎＢ１／Ｂ２ターミネータ等であるが、前記例は、例示に過ぎず、これらに制限されない。
【００２８】
本明細書において、「融合抗原」とは、ブタのＦｃ断片と目的抗原が融合した組み換え抗原を意味するものであり、好ましくは前記Ｆｃ断片と融合することによって溶解性が増加し、同時に免疫原性が増加した組み換え抗原を意味するが、本発明のブタのＦｃ断片と結合した組み換え抗原であれば、これに制限されない。
【００２９】
本明細書において、「形質転換」とは、注入されたＤＮＡにより生物の遺伝的な性質が変わることを総称し、「形質転換体」とは、分子遺伝学的方法で外部の遺伝子を注入して製造された生命体であって、好ましくは本発明の発現ベクターにより形質転換された生命体であり、前記生命体は、微生物、真核細胞、昆虫、動物、植物等生命がある生物であれば、制限がなく、好ましくは大腸菌、サルモネラ、バシルス、酵母、動物細胞、マウス、ラット、イヌ、サル、ブタ、ウマ、ウシ、アグロバクテリウム・ツメファシエンス、植物等であるが、これらに制限されない。前記形質転換体は、形質転換、トランスフェクション、アグロバクテリウム媒介形質転換方法、パーティクルガン衝撃法（ｐａｒｔｉｃｌｅ  ｇｕｎ  ｂｏｍｂａｒｄｍｅｎｔ）、超音波処理法（ソニケーション）、電気穿孔法（エレクトロポレーション）およびＰＥＧ（Ｐｏｌｙｅｔｈｙｌｅｎ  ｇｌｙｃｏｌ）−媒介形質転換方法等の方法で製造され得るが、本発明のベクターを注入できる方法であれば、制限がない。
【００３０】
本明細書において、「溶解性」とは、目的タンパク質またはペプチドが人体に投与するのに適した溶媒に溶解することができる程度を意味する。具体的には、特定の温度で所定の溶媒に対して溶質が飽和した程度を示すものであってよい。溶解性は、溶質の飽和濃度を決定することによって測定することができ、例えば溶媒に溶質を過量に添加し、これを撹拌し、濾過した後、濃度をＵＶ分光器またはＨＰＬＣ等を使用して測定することができるが、これに制限されるものではなく、高い溶解性は、組み換えタンパク質の分離精製に有利であり、組み換えタンパク質の凝集が抑制されて、組み換えタンパク質の生理活性または薬理的な活性を維持するのに長所を有する。
【００３１】
本明細書において、「予防」とは、本発明によるワクチン組成物の投与により感染症、癌等の疾患を抑制させたり発病を遅延させるすべての行為を意味する。
【００３２】
本明細書において、「治療」とは、本発明によるワクチン組成物の投与により感染症、癌等の症状が好転したり有利に変更されるすべての行為を意味する。
【００３３】
本明細書において、「個体」とは、本発明のワクチン組成物が投与され得る対象を言い、その対象には、制限がない。
【００３４】
本発明の「ワクチン組成物」は、それぞれ通常の方法によって散剤、顆粒剤、錠剤、カプセル剤、懸濁液、エマルジョン、シロップ、エアロゾル等の経口型剤形および滅菌注射溶液の形態で剤形化して使用することができる。製剤化する場合には、普通使用される充填剤、増量剤、結合剤、湿潤剤、崩解剤、界面活性剤等の希釈剤または賦形剤を使用して調製することができる。経口投与のための固形製剤には、錠剤、丸剤、散剤、顆粒剤、カプセル剤等が含まれ、このような固形製剤は、前記レシチン類似乳化剤に少なくとも一つ以上の賦形剤、例えば、デンプン、炭酸カルシウム、スクロースまたはラクトース、ゼラチン等を混ぜて調製することができる。また、単純な賦形剤以外に、マグネシウムステアレート、タルクのような潤滑剤も使用することができる。経口投与のための液状製剤としては、懸濁剤、内用液剤、乳剤、シロップ剤等を使用することができ、頻繁に使用される単純希釈剤である水、リキッドパラフィン以外に様々な賦形剤、例えば湿潤剤、甘味剤、芳香剤、保存剤等が含まれ得る。非経口投与のための製剤には、滅菌された水溶液、非水溶性製剤、懸濁剤、乳剤、凍結乾燥製剤が含まれる。非水溶性製剤、懸濁剤としては、プロピレングリコール、ポリエチレングリコール、オリーブオイルのような植物性油、エチルオレートのような注射可能なエステル等を使用することができる。また、さらに既存に知られている「免疫抗原賦活化剤（ａｄｊｕｖａｎｔ）」をさらに含むことができる。前記補強剤は、当該技術分野に知られているものであれば、いずれのものでも制限なしに使用することができるが、例えばフロイント（Ｆｒｅｕｎｄ）の完全補助剤または不完全補助剤をさらに含んで、その免疫性を増加させることができる。
【００３５】
本発明のワクチン組成物は、それぞれ、通常の方法によって散剤、顆粒剤、錠剤、カプセル剤、懸濁液、エマルジョン、シロップ、エアロゾル等の経口型剤形、外用剤、坐剤または滅菌注射溶液の形態で剤形化して使用することができる。
【００３６】
本発明によるワクチン組成物の投与経路は、これらに限定されるものではないが、口腔、静脈内、筋肉内、動脈内、骨髄内、硬膜内、心臓内、経皮、皮下、腹腔内、鼻腔内、腸管、局所、舌下または直腸が含まれる。経口または非経口投与が好ましい。本願に使用される用語「非経口」は、皮下、皮内、静脈内、筋肉内、関節内、滑液嚢内、胸骨内、硬膜内、病巣内および頭蓋骨内注射または注入技術を含む。また、本発明のワクチン組成物は、直腸投与のための坐剤の形態で投与され得る。
【００３７】
本発明によるワクチン組成物の投与量は、個体の年齢、体重、性別、身体状態等を考慮して選択される。特別な副作用なしに個体に免疫保護反応を誘導するのに必要な量は、免疫原として使用された組み換えタンパク質および賦形剤の任意存在によって多様である。一般的にそれぞれの用量は、本発明の組み換えタンパク質の滅菌溶液ｍｌ当たり０．１〜１，０００μｇのタンパク質、好ましくは０．１〜１００μｇを含有する。ワクチン組成物の場合には、必要に応じて初期用量に引き続いて任意に繰り返された抗原刺激を行うことができる。
【００３８】
本明細書において、「免疫抗原賦活化剤（ａｄｊｕｖａｎｔ）」とは、一般的に抗原に対する体液および／または細胞免疫反応を増加させる任意の物質を示し、「自己免疫賦活反応（ｓｅｌｆ−ａｄｊｕｖａｎｔｉｎｇ）」とは、既存の抗原と比較して組み換え抗原自体が抗原に対する体液および／または細胞免疫反応を増加させる反応を意味し、好ましくは抗原にブタのＦｃ断片を結合させることによって、抗原の免疫原性が増加したことを意味する。
【００３９】
以下、本発明の理解を助けるために好ましい実施例を提示する。しかしながら、下記の実施例は、本発明をより容易に理解するために提供されるものに過ぎず、下記実施例によって本発明の内容が限定されるわけではない。
【実施例】
【００４０】
［実施例１：ｐＦｃ融合ＶＰ１組み換えタンパク質発現ベクターの製造］
目的タンパク質の発現量を増加させると同時に、溶解性を改善して、分離精製効率を高めた組み換えタンパク質を製造するための発現ベクターを製造するために、ブタの免疫グロブリンＦｃ断片（ｐｏｒｃｉｎｅ  Ｆｃ  ｆｒａｇｍｅｎｔ；ｐＦｃ）のｐＦｃ１（配列番号１）、ｐＦｃ２（配列番号３）、またはｐＦｃ３（配列番号５）を用いて発現ベクターを製作した。より詳しくは、図１および図２に示されたように、ｐＣＡＭＢＩＡ１３００ベクターのＣａＭＶ３５Ｓプロモーター遺伝子とＮＯＳターミネータ（ｔｅｒｍｉｎａｔｏｒ）との間にＭ１７の５′ＵＴＲ（ｕｎｔｒａｎｓｌａｔｉｏｎａｌ  ｒｅｇｉｏｎ）部位遺伝子（配列番号７）、ＢｉＰ（ｃｈａｐｅｒｏｎｅ  ｂｉｎｄｉｎｇ  ｐｒｏｔｅｉｎ）タンパク質をコードするポリヌクレオチド（配列番号８）、口蹄疫ウイルス（Ｆｏｏｔ−ａｎｄ−ｍｏｕｔｈ  ｄｉｓｅａｓｅ  ｖｉｒｕｓ；ＦＭＤＶ）のＶＰ１遺伝子（配列番号９）；ｐＦｃ断片をコードするポリヌクレオチド；およびＨＤＥＬ（Ｈｉｓ−Ａｓｐ−Ｇｌｕ−Ｌｅｕ）タンパク質をコードするポリヌクレオチドを順にクローニングして発現ベクターを製作した。ｐＦｃ断片は、それぞれ、ｐＦｃ１、ｐＦｃ２、またはｐＦｃ３を挿入して、互いに異なる発現ベクターを製造した。
【００４１】
［実施例２：ｐＦｃ融合ＶＰ１組み換えタンパク質発現実験］
（２．１：ｐＦｃ融合ＶＰ１組み換えタンパク質の発現量の確認実験）
実施例１と同じ方法で製造されたｐＦｃ融合ＶＰ１組み換えタンパク質発現ベクターのタンパク質の発現量を確認するために、前記ベクターをシロイヌナズナの葉から分離した原形質体（プロトプラスト）にＰＥＧ−媒介形質転換法で導入して形質転換体を製造した後に、培養された原形質体を収集および溶解して、これから発現する組み換えタンパク質であるＢｉＰ：ＦＭＤＶ−ＶＰ１：ｐＦｃ発現様相をｐＦｃを認識するａｎｔｉ−ｐｉｇ  ｓｅｃｏｎｄａｒｙ  ａｎｔｉｂｏｄｙ（１：５，０００，Ａｂｃａｍ）を用いてウェスタンブロッティングで確認した。より詳しくは、細胞溶解液３０μＬをＳＤＳ試料バッファーと混合した後に加熱した。そして、１０％ＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルに電気泳動して、サイズ別にタンパク質を分離し、分離したタンパク質をＰＶＤＦ膜に移動させた後に、５％スキムミルクを用いてブロッキング段階を経た後に、抗体とタンパク質を結合させ、ＥＣＬ溶液を製造社で提供する方法によって処理して、ｐＦｃ融合組み換えタンパク質を確認した。その結果は、図３に示した。
【００４２】
図３に示されたように、多様なｐＦｃ断片のうちｐＦｃ２断片を結合させた組み換えタンパク質の発現量が最も高いことを確認した。前記結果を通じて、同じ免疫グロブリン断片であるとしても、同じ効果を示さないことが確認できた。
【００４３】
［２．２：ｐＦｃ融合ＶＰ１組み換えタンパク質の安定性の確認実験］
実施例１と同じ方法で製造されたｐＦｃ融合組み換えタンパク質発現ベクターのタンパク質安定性を確認するために、組み換えタンパク質を抽出したとき試料（０）と４℃で１時間の間保管した後の試料（１）をそれぞれ実施例２．１と同じ方法でウェスタンブロッティングを実施して確認した。その結果は、図４に示した。
【００４４】
図４に示されたように、ｐＦｃ２断片が結合した組み換えタンパク質の発現量が最も高く、安定性も高いことを確認した。
【００４５】
［２．３：ｐＦｃ２融合ＶＰ１組み換えタンパク質の溶解性の確認実験］
実施例１と同じ方法で製造されたｐＦｃ２融合組み換えタンパク質発現ベクターのタンパク質溶解性を確認するために、前記ベクターで形質転換されたアグロバクテリウム・ツメファシエンス（Ａｇｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｔｕｍｅｆａｃｉｅｎｓ）をタバコ植物（Ｎｉｃｏｔｉａｎａ  ｂｅｎｔｈａｍｉａｎａ）の葉に接種する一過性発現（ｔｒａｎｓｉｅｎｔ  ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ）方式でｐＦｃ２融合組み換えタンパク質（ＢｉＰ：ＦＭＤＶ−ＶＰ１：ｐＦｃ２）を発現させた後に、植物の葉からタンパク質を抽出して遠心分離した後に、溶液に含まれている可溶性（ｓｏｌｕｂｌｅ）形態（Ｓ）のタンパク質とペレット（ｐｅｌｌｅｔ；Ｐ）部分にあるタンパク質を用いて実施例２．１と同じ方法でウェスタンブロッティングを実施した。対照群としては、既存に知られているセルロース結合モジュール（ｃｅｌｌｕｌｏｓｅ  ｂｉｎｄｉｎｇ  ｍｏｄｕｌｅ；ＣＢＭ３）をコードするポリヌクレオチド（配列番号１３）をｐＦｃ断片の代わりに融合させた組み換えタンパク質を用いた。その結果は、図５に示した。
【００４６】
図５に示されたように、ｐＦｃ２融合組み換えタンパク質は、ペレット部分では観察されないのに対し、溶液内に含まれていることを確認した。しかしながら、セルロース結合ドメインを融合させた組み換えタンパク質の場合には、ペレット部分で組み換えタンパク質が相当数観察された。前記結果を通じて、ｐＦｃ２融合組み換えタンパク質は、目的タンパク質とｐＦｃ２断片の結合による構造的変形を通じて溶解性が増加したことを確認することができ、これにより、ｐＦｃ２融合組み換えタンパク質は、分離精製に有利であり、組み換えタンパク質の凝集が抑制されて、組み換えタンパク質の生理活性または薬理的な活性を維持するのに効果的であることを確認することができた。
【００４７】
［実施例３：ｐＦｃ２融合ＧＰ５組み換え抗原溶解性の確認実験］
ｐＦｃ２断片を豚繁殖・呼吸障害症候群（Ｐｏｒｃｉｎｅ  Ｒｅｐｒｏｄｕｃｔｉｖｅ  ａｎｄ  Ｒｅｓｐｉｒａｔｏｒｙ  Ｓｙｎｄｒｏｍｅ；ＰＲＲＳ）のＧＰ５抗原タンパク質と融合させるために、ブタＧＰ５抗原タンパク質をコードするポリヌクレオチド（配列番号１１）を実施例１の発現ベクター内に含まれている口蹄疫ウイルスのＶＰ１遺伝子の代わりに挿入して、ＧＰ５：ｐＦｃ２組み換え抗原を発現する発現ベクターを製造した。そして、前記ベクターで形質転換されたアグロバクテリウム・ツメファシエンスをタバコ植物（Ｎｉｃｏｔｉａｎａ  ｂｅｎｔｈａｍｉａｎａ）の葉に接種する一過性発現方式でｐＦｃ２融合ＧＰ５組み換え抗原（ＧＰ５：ｐＦｃ２）を発現させた後に、植物の葉からタンパク質を抽出して遠心分離した後に、溶液に含まれている可溶性形態（Ｓ）のタンパク質とペレット（Ｐ）部分にあるタンパク質を用いて実施例２．１と同じ方法でウェスタンブロッティングを実施した。対照群としては、ｐＦｃ断片の代わりにＣＢＭ３（配列番号１４）が融合したＧＰ５組み換え抗原を用い、ＣＢＭ３融合ＧＰ５組み換え抗原の場合には、ウェスタンブロッティングのためにＨＡ抗体を用いて実験を進めた。その結果は、図６に示した。
【００４８】
図６に示されたように、ｐＦｃ２融合ＧＰ５組み換え抗原は、ペレット部分では若干のタンパク質が観察されるのに対し、ほとんどが溶液内に含まれていることを確認した。しかしながら、ＣＢＭ３を融合させたＧＰ５組み換え抗原の場合には、ペレット部分で組み換えタンパク質が相当数観察された。前記結果を通じて、ｐＦｃ２融合組み換えタンパク質は、タンパク質の種類に関係なく、溶解性が増加することが確認できた。
【００４９】
前記結果を通じて、ブタの免疫グロブリンＦｃ断片、特に、配列番号４で表されるアミノ酸配列を含むｐＦｃ２断片を目的タンパク質に融合させることによって、目的タンパク質の発現量を増加させると同時に、溶解性を増加させて、目的タンパク質を安定的に容易に分離および保管できることが確認できた。
【００５０】
［実施例４：ｐＦｃ２融合ＰＣＶ２組み換えタンパク質の生産性および溶解性の確認実験］
ｐＦｃ２断片をブタサーコウイルス２型（Ｐｏｒｃｉｎｅ  ｃｉｒｃｏｖｉｒｕｓ  Ｔｙｐｅ  ２；ＰＣＶ２）タンパク質と融合させるために、ブタサーコウイルス２型タンパク質をコードするポリヌクレオチド（配列番号１５）を実施例１の発現ベクター内に含まれている口蹄疫ウイルスのＶＰ１遺伝子の代わりに挿入して、ＰＣＶ２：ｐＦｃ２組み換えタンパク質を発現する発現ベクターを製造した。そして、前記ベクターで形質転換されたアグロバクテリウム・ツメファシエンスをタバコ植物（Ｎｉｃｏｔｉａｎａ  ｂｅｎｔｈａｍｉａｎａ）の葉に接種する一過性発現方式でｐＦｃ２融合ＰＣＶ２組み換えタンパク質を発現させた後に、植物の葉からタンパク質を抽出して遠心分離した後に、溶液に含まれている可溶性形態（Ｓ）のタンパク質とペレット（Ｐ）部分にあるタンパク質を用いて実施例２．１と同じ方法でウェスタンブロッティングを実施した。対照群としては、ｐＦｃ断片の代わりにＨｉｓタグが融合したＰＣＶ２組み換えタンパク質を用い、Ｈｉｓタグ融合ＰＣＶ２組み換えタンパク質の場合には、ウェスタンブロッティングのために抗Ｈｉｓ抗体を用いて実験を進めた。その結果は、図７に示した。
【００５１】
図７に示されたように、ｐＦｃ２融合ＰＣＶ２組み換えタンパク質の場合には、ほとんどが溶液内に含まれていると共に、Ｈｉｓタグが融合したＰＣＶ２組み換えタンパク質と比較して生産量が顕著に増加したことを確認した。
【００５２】
［実施例５：ｐＦｃ２融合Ｅ２組み換えタンパク質発現実験］
（５．１：ｐＦｃ２融合抗原タンパク質の分離）
ｐＦｃ２断片を抗原タンパク質に融合して使用可能であるかを確認するために、ブタコレラ抗原であるＥ２タンパク質をコードするポリヌクレオチド（配列番号１７）を実施例１の発現ベクター内に含まれている口蹄疫ウイルスのＶＰ１遺伝子の代わりに挿入して、ＢｉＰ：Ｅ２：ｐＦｃ２組み換えタンパク質を発現する発現ベクターを製造した。そして、製造された発現ベクターをアグロバクテリウム−媒介形質転換方法でシロイヌナズナに形質転換させ、カナマイシンに対する耐性を有するシロイヌナズナを選別し、世代促進を通じてｐＦｃ２が融合したＥ２組み換えタンパク質の発現が安定したホモ種子を最終確保して、形質転換植物体を製造した。そして、タンパク質の抽出に普遍的に使用されるタンパク質抽出バッファーを用いて最終確保された形質転換植物体８ｇからタンパク質を分離し、ｐｒｏｔｅｉｎ  Ａ−ｓｅｐｈａｒｏｓｅ  ｃｏｌｕｍｎを装着したＡＫＴＡ  ｐｒｉｍｅ（ＧＥ  Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）を用いてｐＦｃ融合Ｅ２組み換えタンパク質を分離した。そして、対照群としては、ｐＦｃ断片の代わりに、セルロース結合ドメイン（配列番号１９）を融合させたＢｉＰ：Ｅ２：ＣＢＤ組み換えタンパク質を使用した。ＣＢＤが融合したＥ２組み換えタンパク質は、アモルファスセルロース（ａｍｏｒｐｈｏｕｓ  ｃｅｌｌｕｌｏｓｅ；ＡＭＣ）を使用して形質転換植物体５ｇから分離した。そして、分離した組み換えタンパク質は、リン酸緩衝溶液（ｐｈｏｓｐｈａｔｅ  ｂｕｆｆｅｒｅｄ  ｓａｌｉｎｅ；ＰＢＳ）を用いて透析後に遠心フィルターチューブを使用して濃縮した。そして、分離した組み換えタンパク質の量を定量するために、ＳＤＳ−ＰＡＧＥを実施した後に、クマシブルーで染色した。この際、ウシ血清アルブミンを用いた標準曲線を用いて組み換えタンパク質を定量した。その結果は、図８に示した。
【００５３】
図８に示されたように、セルロース結合ドメインが融合したＥ２組み換え抗原の場合には、植物体１ｇ当たり約３０μｇが生産されるのに対し、ｐＦｃ２断片が融合したＥ２組み換え抗原の場合には、植物体１ｇ当たり３０２μｇが生産されることを確認した。前記結果を通じて、ｐＦｃ２断片を用いて目的抗原の発現量を１０倍以上増加させることができることを確認した。
【００５４】
（５．２：ｐＦｃ２融合Ｅ２組み換え抗原の免疫原性およびウイルス中和能の確認実験）
ｐＦｃ２融合Ｅ２組み換え抗原が生体内で抗体を誘導して免疫原性およびウイルス中和能を有するかを確認するために、６週齢の雄性Ｃ５７ＢＬ／６Ｊマウスを用いて実験を進めた。より詳しくは、実験群マウスにｐＦｃ２融合Ｅ２組み換え抗原１μｇを１回（６週齢）、または２回（６週齢および８週齢）投与し、陰性対照群のマウスには、リン酸塩緩衝溶液を投与した。そして、陽性対照群としては、セルロース結合ドメインが融合したＥ２組み換え抗原を実験群と同じ量で同じ時期に投与した。それぞれの抗原投与時には、同量のフロイント免疫抗原賦活化剤（Ｆｒｅｕｎｄ’ｓ  ａｄｊｕｖａｎｔ）を混合して投与し、１回投与群には、完全アジュバントを、２回投与群には、１次には完全アジュバントを、２次には不完全アジュバントを投与した。そして、実験を始める時点と抗原を投与してから１週間後から毎週採血してブタコレラウイルスに対する臨床診断用抗体キット（ＣＳＦＶ−ａｂ  ＥＬＩＳＡ  Ｋｉｔ、メディアンダイアグノスティク製）を用いて投与抗原に対する特異抗体の生成の有無および抗体の持続性を確認した。２回投与群は、２次投与をすべて完了した時点から１週間後に採血を始めた。それぞれの群ごとに５匹のマウスを用いて実験を進め、その結果は、表１、図９および図１０に示した。表１のＳ／Ｐ値は、０．１４以上の値である場合には、陽性と判定し、０．１４未満の値である場合には、陰性と判定した。
【００５５】
【表１】
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【００５６】
図９に示されたように、抗原を１回投与したとき、ｐＦｃ２融合Ｅ２組み換え抗原の場合には、投与後１週間が経過した時点から高い反応性を示し、反応性が８週以上維持されることを確認した。他方で、セルロース結合ドメインが融合したＥ２組み換え抗原の場合には、陽性値を示すが、その反応性がｐＦｃ２融合Ｅ２組み換え抗原と比較して低いことを確認した。
【００５７】
図１０および表１に示されたように、抗原を２回投与したときは、セルロース結合ドメインが融合したＥ２組み換え抗原の場合にも、反応性が１回投与時と比較して増加したが、ｐＦｃ２融合Ｅ２組み換え抗原と比較したときには、依然として反応性が低いことを確認した。
【００５８】
また、同じマウスの血清試料は、農林畜産検疫本部に依頼してウイルス中和能を確認した。その結果は、表２に示した。
【００５９】
【表２】
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【００６０】
表２に示されたように、セルロース結合ドメインが融合したＥ２組み換え抗原の場合には、抗原の１回投与時、一部のマウスでは陰性値を示すが、ｐＦｃ２融合Ｅ２組み換え抗原の場合には、１回投与時や２回投与時にいずれも高い役価のウイルス中和能を示すことを確認した。
【００６１】
（５．３：ｐＦｃ２融合Ｅ２組み換え抗原のウイルス中和能の確認実験）
ｐＦｃ２融合Ｅ２組み換え抗原が子ブタ（ｐｉｇｌｅｔ）においても同一に高い役価のウイルス中和能を示すかを確認するために、ブタコレラ抗体陰性のブタ４頭を選別して、ｐＦｃ２融合Ｅ２組み換え抗原を２回投与し、２週間隔で獲得された血清を農林畜産検疫本部に依頼して、ウイルス中和能を確認した。その結果は、表３に示した。
【００６２】
【表３】
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【００６３】
表３に示されたように、実施例３．２のマウスを用いて進めた実験と同一に、すべての子ブタにおいて陽性値を示すことを確認した。
【００６４】
前記結果を通じて、本発明のｐＦｃ２断片を多様なワクチン用ペプチドまたはタンパク質と融合させることによって、目的抗原の生産量を顕著に増加させることができると共に、溶解性および安定性を増加させて、目的抗原の凝集が抑制されて、組み換え抗原の生理活性または薬理的な活性を維持するのに効果的であることを確認することができた。また、抗原をｐＦｃ２断片と融合させて組み換え抗原を製造することによって、ｐＦｃ２断片が自己免疫賦活反応（ｓｅｌｆ−ａｄｊｕｖａｎｔｉｎｇ）効果を示して、自己−免疫抗原賦活化剤（ｓｅｌｆ−ａｄｊｕｖａｎｔ）効果を示して、目的抗原の免疫原性を顕著に増加させることができると共に、生産性および安定性を増加させることができることを確認することができた。
【００６５】
前述した本発明の説明は、例示のためのものであり、本発明の属する技術分野における通常の知識を有する者は、本発明の技術的思想や必須の特徴を変更することなく、他の具体的な形態に容易に変形可能であることを理解することができる。したがって、以上で記述した実施例は、すべての面において例示的なものであり、限定的でないものと理解すべきである。
【産業上の利用可能性】
【００６６】
本発明は、ブタのＦｃ断片と融合した抗原に関し、より詳しくは、多様な抗原にＦｃ断片を結合させることによって、自己免疫賦活効果を有するワクチン組成物およびその製造方法に関する。本発明のＦｃ断片が融合した抗原は、自己免疫賦活効果を有することによって、ワクチン組成物の予防および／または治療効果を顕著に増加させることができるので、多様なワクチン組成物に適用されて、幅広く使用可能なものと期待される。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【配列表】
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【手続補正書】
【提出日】平成31年4月18日(2019.4.18)
【手続補正１】
【補正対象書類名】特許請求の範囲
【補正対象項目名】全文
【補正方法】変更
【補正の内容】
【特許請求の範囲】
【請求項１】
配列番号４で表されるブタのＦｃ断片と融合した抗原を有効成分として含む、ワクチン組成物。
【請求項２】
前記抗原は、Ｆｃ断片と融合することによって自己免疫賦活（ｓｅｌｆ−ａｄｊｕｖａｎｔｉｎｇ）効果および増加した溶解性を有することを特徴とする、請求項１に記載のワクチン組成物。
【請求項３】
配列番号４で表されるブタのＦｃ断片をコードするポリヌクレオチドおよび抗原をコードするポリヌクレオチドを含む、自己免疫賦活効果を有する組み換え抗原の発現ベクター。
【請求項４】
前記発現ベクターは、プロモーター遺伝子、Ｆｃ断片をコードするポリヌクレオチド、および抗原をコードするポリヌクレオチドが順次に連結されていることを特徴とする、請求項３に記載の発現ベクター。
【請求項５】
前記プロモーターは、カリフラワーモザイクウイルス（ｃａｕｌｉｆｌｏｗｅｒ  ｍｏｓａｉｃ  ｖｉｒｕｓ）由来３５Ｓプロモーター、カリフラワーモザイクウイルス（ｃａｕｌｉｆｌｏｗｅｒ  ｍｏｓａｉｃ  ｖｉｒｕｓ）由来１９Ｓ  ＲＮＡプロモーター、植物のアクチンタンパク質プロモーター、ユビキチンタンパク質プロモーター、ＣＭＶ（Ｃｙｔｏｍｅｇａｌｏｖｉｒｕｓ）プロモーター、ＳＶ４０（Ｓｉｍｉａｎ  ｖｉｒｕｓ  ４０）プロモーター、ＲＳＶ（Ｒｅｓｐｉｒａｔｏｒｙ  ｓｙｎｃｙｔｉａｌ  ｖｉｒｕｓ）プロモーター、ｐＥＭＵプロモーター、ＭＡＳプロモーター、ヒストンプロモーター、ＣｌｐプロモーターおよびＥＦ−１α（Ｅｌｏｎｇａｔｉｏｎ  ｆａｃｔｏｒ−１  ａｌｐｈａ）プロモーターよりなる群から選択されるいずれか一つ以上であることを特徴とする、請求項４に記載の発現ベクター。
【請求項６】
前記発現ベクターは、ＢｉＰ（Ｃｈａｐｅｒｏｎｅ  ｂｉｎｄｉｎｇ  ｐｒｏｔｅｉｎ）をコードするポリヌクレオチドをさらに含むことを特徴とする、請求項３〜５のいずれか一項に記載の発現ベクター。
【請求項７】
前記発現ベクターは、ＨＤＥＬ（Ｈｉｓ−Ａｓｐ−Ｇｌｕ−Ｌｅｕ）ペプチドをコードする遺伝子をさらに含むことを特徴とする、請求項３〜６のいずれか一項に記載の発現ベクター。
【請求項８】
前記発現ベクターは、Ｍ１７の５′ＵＴＲ（ｕｎｔｒａｎｓｌａｔｉｏｎａｌ  ｒｅｇｉｏｎ）部位遺伝子をさらに含むことを特徴とする、請求項３〜７のいずれか一項に記載の発現ベクター。
【請求項９】
前記発現ベクターは、Ｆｃ断片が融合した抗原の発現量を増加させ、溶解性を増加させることを特徴とする、請求項３〜８のいずれか一項に記載の発現ベクター。
【請求項１０】
請求項３〜９のいずれか一項に記載の発現ベクターで形質転換された、形質転換体。
【請求項１１】
（ａ）請求項１０に記載の形質転換体を培養する段階と、
（ｂ）前記形質転換体または培養液からＦｃ断片が融合した抗原を分離および精製する段階とを含む、自己免疫賦活効果を有する組み換え抗原の生産方法。
【請求項１２】
配列番号４で表されるブタのＦｃ断片と融合した抗原を有効成分として含む組成物を個体に投与する段階を含む、感染症の予防または治療方法（但し、ヒトを除く）。
【請求項１３】
配列番号４で表されるブタのＦｃ断片と融合した抗原を有効成分として含む組成物の、感染症の予防または治療のための使用。
【手続補正２】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００２２
【補正方法】変更
【補正の内容】
【００２２】
本明細書において、「Ｆｃ断片」とは、免疫グロブリンがパパインにより消化されたとき、重鎖（ｈｅａｖｙ  ｃｈａｉｎ；Ｈ  ｃｈａｉｎ）部分だけがＳ−Ｓ結合で連結され、抗原結合部位を有しない部分をＦｃ断片と言い、本発明のＦｃ断片は、好ましくはブタのＦｃ断片であり、より好ましくは配列番号４で表されるブタのＦｃ断片であるが、目的抗原と融合したとき、目的抗原の発現量および溶解性を増加させるＦｃ断片であれば、これに制限されない。また、本発明のＦｃ断片は、配列番号４の変異体が本発明の範囲に含まれる。具体的に、前記遺伝子は、配列番号３の塩基配列と９０％以上、より好ましくは９５％以上、最も好ましくは９８％以上の配列相同性を有する塩基配列を含むことができる。ポリヌクレオチドに対する「配列相同性のパーセンテージ」は、最適に配列された配列と比較領域を比較することによって確認され、比較領域でポリヌクレオチド配列の一部は、さらに、配列の最適配列に対する参考配列（追加または削除を含まない）に比べて追加または削除（すなわち、ギャップ）を含むことができる。
【国際調査報告】
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