(57)【要約】  エタノール分解能及びアセトアルデヒド分解能を有した微生物、それを含む組成物及びキットを提供する。【選択図】図１
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
ラクトバチルスブレビスＬＭＴ１−７３（受託番号ＫＣＴＣ−１３４１２ＢＰ）及びラクトバチルスファーメンタムＬＭＴ２−７５（受託番号ＫＣＴＣ−１３４１３ＢＰ）からなる群から選択されたエタノール分解能及びアセトアルデヒド分解能を有した微生物。
【請求項２】
請求項１の微生物、及び希釈剤または担体を含む組成物。
【請求項３】
試料内から、エタノール及びアセトアルデヒドのうち１以上を除去するのに使用するためのものである、請求項２に記載の組成物。
【請求項４】
前記試料は、胃液、十二指腸液、小腸液または大腸液を含んだ腸内液体または血液である、請求項３に記載の組成物。
【請求項５】
食品であるものである、請求項１に記載の組成物。
【請求項６】
前記食品は、乳製品、アルコール性肝疾患予防用または二日酔い解消用の食品、または食品添加剤である、請求項５に記載の組成物。
【請求項７】
前記乳製品は、発酵乳、バター、チーズまたは粉乳である、請求項６に記載の組成物。
【請求項８】
液体、粉末、顆粒、錠剤またはカプセル形態である、請求項２に記載の組成物。
【請求項９】
請求項１の微生物、及び希釈剤または担体を含む試料内から、エタノール及びアセトアルデヒドのうち１以上を除去するのに使用するためのキット。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
関連出願に係わる交差参照（cross−reference）
本出願は、２０１７年１２月２９日に韓国特許庁に出願され、その開示が、全体として援用により、本明細書に統合される、韓国特許出願番号１０−２０１７−０１８４８１２の優先権を主張する。
【０００２】
技術分野
本発明は、エタノール分解能及びアセトアルデヒド分解能を有した微生物、それを含む組成物及びキットに関する。
【背景技術】
【０００３】
ラクトバチルス（lactobacillus）は、グラム陽性、通性嫌気性（facultative anaerobic）または微好気性（microaerophilic）、桿状、非胞子形成のバクテリア属である。ラクトバチルスは、乳酸菌（ＬＡＢ：lactic acid bacteria）グループの主要部分を占める。
【０００４】
人体に摂取されたアルコールは、胃と小腸上部とにおいて、拡散作用によって容易に吸収される。アルコール代謝は、主に肝臓組織でなされるが. アルコールがアルコールデヒドロゲナーゼ（ＡＤＨ：alcohol dehydrogenase：ＡＤＨ）によってアセトアルデヒドに酸化され、アセトアルデヒドは、アルデヒドデヒドロゲナーゼ（ＡＬＤＨ：aldehyde dehydrogenase：ＡＬＤＨ）によって酢酸に転換される。
【０００５】
アルコール酸化によって生成される代謝産物であるアセトアルデヒドは、反応性が強い毒性物質である。アセトアルデヒドは、肝臓において多様なタンパク質と共有結合し、肝臓の機能及び構造を変更させる。チューブリンとの結合を介して、微小管の重合化を低減させ、タンパク質分泌に損傷をもたらし、肝細胞（hepatocyte）が腫れ上がらせる。アセトアルデヒド付加物（adduct）形成は、一部酵素活性を損傷させる。直接、またはＧＳＨとの結合を介して、アセトアルデヒドは、脂質過酸化（lipid peroxidation）を有利にする。アセトアルデヒドは、特に、アセトアルデヒドの毒性効果に対し、ミトコンドリアを敏感にさせる慢性エタノール消費後、多様なミトコンドリア機能を変更させる。培養された筋線維芽細胞で、アセトアルデヒドは、コラーゲン生産を刺激する。それは、慢性的なアルコール摂取者において、肝臓纎維化の原因になることに報告されている。また、慢性的なアルコール摂取は、脂肪肝、アルコール性肝炎及び肝硬変などを発生させうる。前記アセトアルデヒド・タンパク質付加物は、アセトアルデヒドエピトープに対する抗体の生産を刺激する。該免疫反応は、アルコール誘導された肝損傷の悪化または永続化に寄与する。また、アセトアルデヒドは、二日酔い（hangover）を引き起こす。
【０００６】
しかし、前述の先行技術によっても、アルコール及びアセトアルデヒドの分解活性を有したラクトバチルス属バクテリアへの要求が存在する。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
一様相は、ラクトバチルスブレビス（Lactobacillus brevis）ＬＭＴ１−７３（受託番号ＫＣＴＣ−１３４１２ＢＰ）及びラクトバチルスファーメンタム（Lactobacillus fermentum）ＬＭＴ２−７５（受託番号ＫＣＴＣ−１３４１３ＢＰ）からなる群から選択されたエタノール分解能及びアセトアルデヒド分解能を有した微生物を提供する。
【０００８】
他の様相は、前記微生物またはその破砕物（lysate）を含む組成物を提供する。
【０００９】
前記微生物、及び希釈剤または担体を含む試料内から、エタノール及びアセトアルデヒドのうち１以上を除去するのに使用するためのキットを提供する。
【課題を解決するための手段】
【００１０】
一様相は、ラクトバチルスブレビス（Lactobacillus brevis）ＬＭＴ１−７３（受託番号ＫＣＴＣ−１３４１２ＢＰ）及びラクトバチルスファーメンタム（Lactobacillus fermentum）ＬＭＴ２−７５（受託番号ＫＣＴＣ−１３４１３ＢＰ）からなる群から選択されたエタノール分解能及びアセトアルデヒド分解能を有した微生物を提供する。
【００１１】
前記微生物は、エタノール耐性、エタノール分解能及び／またはアセトアルデヒド分解能にすぐれるだけではなく、耐酸性、耐胆汁酸性及び腸内定着性にすぐれる。前記微生物は、キムチから分離された。
【００１２】
他の様相は、前記微生物またはその破砕物（lysate）を含む組成物を提供する。
【００１３】
前記組成物は、食品的に許容可能な希釈剤または担体を含んでもよい。前記希釈剤は、水、培地、またはＰＢＳのようなバッファでもある。前記担体は、一般的な賦形剤、崩壊剤、結合剤、滑沢剤、増粘剤または充填剤でもある。前記希釈剤または担体は、ラクトース、デキストロース、スクロース、ソルビトール、マンニトール、キシリトール、エリトリトール、マルチトール、澱粉、アカシアゴム、アルジネート、ゼラチン、リン酸カルシウム、シリケートカルシウム、セルロース、メチルセルロース、微晶質セルロース、ポリビニルピロリドン、水、ヒドロキシメチル安息香酸、ヒドロキシ安息香酸プロピル、タルク、ステアリン酸マグネシウムまたは鉱物油でもある。また、前記組成物は、ステアリン酸マグネシウム、タルクのような潤滑剤を含んでもよい。
【００１４】
前記組成物は、試料内から、エタノール及びアセトアルデヒドのうち１以上を除去するのに使用するためのものでもある。用語「除去」は、試料内から、エタノール及びアセトアルデヒドのうち１以上の濃度を低下させるものであり、完全に除去することを含む。前記試料は、体液でもある。前記試料は、腸内液体または血液でもある。前記腸内液体は、胃液、十二指腸液、小腸液または大腸液でもある。
【００１５】
前記組成物は、経口投与剤形でもある。前記組成物は、顆粒剤、散剤、液剤、錠剤、カプセル剤または乾燥シロップ剤でもある。前記組成物は、例えば、前記微生物を培地中で培養して得られた培養物、またはその乾燥物でもある。
【００１６】
前記組成物は、食品でもある。前記食品は、乳製品、アルコール性肝疾患予防用または二日酔い解消用の食品、または食品添加剤でもある。前記乳製品は、発酵乳、バター、チーズまたは粉乳でもある。前記食品は、健康機能性食品でもある。前記健康機能食品は、アルコール性肝疾患予防用または二日酔い解消用の健康機能食品でもある。前記食品は、また飲料類、菓子類、ダイエットバー、チョコレート、ピザ、ラーメン、その他麺類、ガム類、アイスクリーム類でもある。
【００１７】
前記食品は、食品製造時に一般的に添加される成分を含んでもよく、例えば、タンパク質、炭水化物、脂肪、栄養素、調味剤及び香味剤を含む。
【００１８】
食品製造に使用される炭水化物は、モノサッカライド、例えば、ブドウ糖、果糖など；ジサッカライド、例えば、マルトース、スクロース、オリゴ糖など；及びポリサッカライド、例えば、デキストリン、シクロデキストリンのような一般的な糖、並びにキシリトール、ソルビトール、エリトリトールなどの糖アルコールでもある。また、香味剤として、天然香味剤、並びにサッカリン及びアスパルテームのような合成香味剤を使用することができる。該天然香味剤は、ソーマチン、レバウジオシドＡ及びグリチルリチンのようなステビア抽出物でもある。
【００１９】
該健康機能食品は、摂取する場合、健康上、特定の効果をもたらすものを意味する。
【００２０】
前記組成物において、前記微生物は、組成物重量に対し、０．０１ないし５０重量％、または０．１ないし２０重量％の範囲でもある。また、前記組成物は、組成物重量基準で、１０５ないし１ｘ１０９ＣＦＵ／ｇ、または１ｘ１０５ないし１ｘ１０８ＣＦＵ／ｇの細胞を含んでもよい。
【００２１】
他の様相は、ラクトバチルスブレビスＬＭＴ１−７３（受託番号ＫＣＴＣ−１３４１２ＢＰ）及びラクトバチルスファーメンタムＬＭＴ２−７５（受託番号ＫＣＴＣ−１３４１３ＢＰ）からなる群から選択されたエタノール分解能及びアセトアルデヒド分解能を有した微生物を個体に投与する段階を含む、個体内から、エタノール及びアセトアルデヒドのうち１以上を除去する方法を提供する。前記方法は、エタノール及び／またはアセトアルデヒドの体内蓄積と関連する疾患を予防または治療するものでもある。前記疾患は、アルコール性肝疾患または二日酔いでもある。前記個体は、哺乳動物でもある。前記哺乳動物は、ヒト、またはヒトを除いた哺乳動物でもある。
【００２２】
さらに他の様相は、前記微生物、及び希釈剤または担体を含む試料内から、エタノール及びアセトアルデヒドのうち１以上を除去するのに使用するためのキットを提供する。前記キットは、前記微生物、及び希釈剤または担体の別に提供されるものでもある。
【００２３】
一様相による微生物、それを含む組成物及びキットは、試料内から、エタノール及びアセトアルデヒドのうち１以上を除去するのにも使用される。
【００２４】
次に、実施例が詳細に参照され、その例が添付図面に示され、同様の参照番号は、全体を通して同様の要素を指す。その点において、本実施例は、異なる形態を有することができ、本明細書に記載される説明に限定されると解釈されるものではない。従って、本実施例は、本明細書の態様について説明するために、図面を参照することにより、以下で単に説明されるのみである。本明細書で使用される場合、「および／または」という用語は、関連するリストされた項目の、１またはそれ以上のあらゆる組み合わせを含む。
【発明の効果】
【００２５】
一様相による微生物、それを含む組成物及びキットは、試料内から、エタノール及びアセトアルデヒドのうち１以上を除去するのにも使用される。
【図面の簡単な説明】
【００２６】
以下のところ、及び／または他の態様は、添付図面と共に、実施例の以下の説明から明らかになり、さらに容易に理解されるであろう：
【図１】選抜された菌株が腸上皮細胞に付着する程度を示した図である。
【発明を実施するための形態】
【００２７】
以下、本発明について、実施例を介して、さらに詳細に説明する。しかし、それら実施例は、本発明について例示的に説明するためのものであり、本発明の範囲は、それら実施例に限定されるものではない。
【００２８】
実施例１：アルコール分解能及びアセトアルデヒド分解能を有した微生物の分離及び同定
本実施例においては、キムチから、アルコール分解能及びアセトアルデヒド分解能にすぐれる微生物を分離して同定した。その結果、該微生物は、血中のアルコール分解能及びアセトアルデヒド分解能にすぐれ、耐酸性、耐胆汁酸性及び腸定着性にすぐれ、腸内における安定性にすぐれる。
【００２９】
１．菌株の分離及び同定
（１）菌株の分離
４℃に保管された,家庭で直接つけたキムチを、無菌状態で２０ｇ取り、０．８５％ ＮａＣｌ溶液１８０ｍｌ内で希釈し、ストマッチャー（stomacher）で５分間均質化させた。均質化されたキムチを、滅菌された０．８５％ ＮａＣｌ溶液９ｍｌが入れられたチューブで段階的に希釈し、キムチ試料を準備した。該キムチ試料を、ＭＲＳ培地（Difco，米国）アガール平板培地に塗抹し、３７℃で２日ないし３日間培養し、現れたコロニーを、形態別及び色別に区別し、さらに純粋分離した。分離されたコロニーを、ｐＨ６．８のＭＲＳ液体培地で、３７℃、２４時間培養しながら、培養液のｐＨが４．５以下に低下するコロニー２３０種を選別した。選別された菌株に対し、アルコール耐性、アルコール分解能及びアセトアルデヒド分解能について試験紙、最終的に、アルコール分解能及びアセトアルデヒド分解能、並びに腸内安定性にすぐれる２個菌株、すなわち、ラクトバチルスブレビス（Lactobacillus brevis）ＬＭＴ１−７３（受託番号ＫＣＴＣ−１３４１２ＢＰ）及びラクトバチルスファーメンタム（Lactobacillus fermentum）ＬＭＴ２−７５（受託番号ＫＣＴＣ−１３４１３ＢＰ）を選抜した。
【００３０】
（２）In vitroアルコール耐性の確認
（２．１）アルコールに対する耐性検査
分離された２３０種菌株を、異なる濃度のエタノールを含む培地で培養し、アルコールに対する耐性を確認した。
【００３１】
具体的には、ＭＲＳ液体培地に、エタノールが５％、１０％、１５％及び２０％になるように添加し、最終１０ｍｌを、メンブレンフィルタ（membrane filter）で除菌し、培地として使用した。ＭＲＳ液体培地に、活性化された２３０種菌株それぞれを、１０７ＣＦＵ／ｍｌの量で添加し、３７℃で静置培養を行った。菌株の成長程度は、ＯＤ６００ｎｍで吸光度を測定して確認した。測定は、培養前、及び培養後４時間目に測定した。表１は、選抜された２個菌株のエタノール耐性を示す。
【表１】
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表１で、＋、＋＋及び＋＋＋は、それぞれエタノールと、それと同量のＤ．Ｗとを添加して培養した対照群と比較したとき、８０％以上、９０％以上及び１００％の細胞が成長したことを示す。
【００３２】
表１に示されているように、ラクトバチルスファーメンタムＬＭＴ２−７５及びラクトバチルスブレビスＬＭＴ１−７３は、２０％アルコールを含むＭＲＳ液体培地でも高い成長を示した。
【００３３】
（２．２）アルコール耐性比較
（２．１）において、アルコール耐性が高いと確認された２個菌株のアルコール耐性を、同一種の他菌株と、アルコール耐性を比較した。比較菌株として、タイプ菌株（type strain）であるラクトバチルスブレビスＫＣＴＣ３４９８Ｔ及びラクトバチルスファーメンタムＫＣＴＣ３１１２Ｔを使用したが、それらは、ＫＣＴＣから商業的に購入することができる。
【００３４】
アルコール耐性実験は、下記表２に示されているような比較菌株を使用したことを除いては、（２．１）に記載されたところと同一に行った。表２は、菌株の肝アルコール耐性実験結果を示したものである。
【表２】
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表２において、＋、＋＋及び＋＋＋は、表１に示されている通りであり、−は、細胞が成長しないことを示す。表２に示されているように、選抜された２個菌株は、同種の比較菌株に比べ、アルコール耐性にすぐれる。
【００３５】
（３）In vitroでのアルコール分解能及びアセトアルデヒド分解能の確認
（３．１）エタノール分解能の確認
分離された２個菌株ＬＭＴ１−７３，ＬＭＴ２−７５を、ＭＲＳ液体培地で３７℃で１８時間培養し、細胞濃度が１０９ＣＦＵ／３ｍｌレベルである培養物を得て、該培養物３ｍｌが含まれた１５ｍｌ試験チューブを準備した。前記チューブに、最終濃度１０（ｖ／ｖ）％になるようにエタノールを添加した後、空気が入らないように、チューブ蓋を閉じ、３７℃で４時間静置させた。
【００３６】
次に、培養物を、３，０００ｒｐｍで遠心分離して細胞を除去し、上澄み液を取り、上澄み液中でのアルコール濃度を測定した。具体的には、前記上澄み液１００μｌ及び６ｍＭ ＮＡＤ＋を、１．０Ｍ Tris／ＨＣｌ（ｐＨ８．８）バッファ内で混合し、最終３ｍｌになるようにした後、常温で５分間静置させた。ＯＤ３４０ｎｍで吸光度を測定した（Ａ１）、及びアルコールデヒドロゲナーゼ（ＡＤＨ：alcohol dehydrogenase）（Sigma社）を添加した後、３４０ｎｍで吸光度を測定した（Ａ２）、エタノールの最終濃度は、次の式によって得た（ethanol detection kit, Cat. No. 10176 290 035, r-biopharm/Roche）。 その結果を表３に示した。
吸光度の差値、△Ａ＝（Ａ２−Ａ１）試料−（Ａ２−Ａ１）ブランク
エタノールの最終濃度（ｇ／Ｌ）＝（０．７２５６／６．３）＊△Ａ
エタノール消費（％）＝（試料中エタノール残存量／対照群中エタノール残存量）＊１００
【表３】
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表３に示されているように、選抜された２個菌株は、約９８％のエタノールを直接分解した。それは、それら菌株が、腸内または体内のアルコールを分解するのに使用されうるということを示す。それは、前記菌株が二日酔いを解消したり、アルコールから、肝臓のような器官を保護したりすることができるということを示す。
【００３７】
（３．２）アセトアルデヒド分解能の確認
分離された２個菌株ＬＭＴ１−７３，ＬＭＴ２−７５を、ＭＲＳ液体培地において、３７℃で１８時間培養し、細胞濃度が１０９ＣＦＵ／２．７ｍｌレベルである培養物を得て、該培養物２．７ｍｌが含まれた１５ｍｌ試験チューブを準備した。前記チューブに、最終濃度０．０１Ｍになるように、アセトアルデヒドを添加した後、空気が入らないようにチューブ蓋を閉じ、３７℃で４時間静置させた。
反応が完了した後、培養物を、０．２μｍメンブレンフィルタで濾過し、細胞が除去された濾液（filtrate）試料に対し、アセトアルデヒド検出キット（acetaldehyde detection kit, r-biopharm/Roche）を製造社の指針に従って使用し、試料内残存アセトアルデヒドの量を測定した。アセトアルデヒドの最終濃度は、次の式によって得た（acetaldehyde detection kit, Cat. No. 10 668 613 035, r-biopharm/Roche）。その結果を表４に示した。
吸光度の差値、△Ａ ＝（Ａ２−Ａ１）試料−（Ａ２−Ａ１）ブランク
アセトアルデヒドの最終濃度（ｇ／Ｌ）＝（０．７１５８／６．３）＊△Ａ
アセトアルデヒド消費（％）＝（試料中アセトアルデヒド残存量／対照群中アセトアルデヒド残存量）＊１００
【表４】
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表４に示されているように、選抜された２個菌株は、それぞれ９８．２％及び９５．０％のアセトアルデヒドを消費した。それは、それら菌株が、アルコール酸化によって生成された二日酔いの主要原因と知られたアセトアルデヒドの濃度を低下させることにより、アルコール摂取後、身体に起こる有害な症状を低減させることができるということを示す。
【００３８】
（４）In vivoでのアルコール分解能及びアセトアルデヒド分解能の確認
ラットに、アルコールと共に、選抜された菌株を経口投与し、血中のアルコール濃度及びアセトアルデヒド濃度に及ぼす影響を確認した。ラットは、５ないし６週齢（重さ１４０ｇないし１６０ｇ）の雄性ＳＤ（Sprague Dawley）系ラット（（株）オリエントバイオ、城南、大韓民国）を使用した。
【００３９】
前記ラットを、固形飼料と水道水とを自由摂取させ、１週間予備飼育した後、正常群、対照群及び実験群に区分した（群当たり３匹）。正常群は、ラットにＰＢＳを投与したものであり、対照群は、４０％ ＥｔＯＨを投与したものであり、実験群１及び実験群２は、それぞれ（ラクトバチルスブレビスＬＭＴ１−７３１ｘ１０８ＣＦＵ／ラット／日＋４０％ ＥｔＯＨ）及び（ラクトバチルスファーメンタムＬＭＴ２−７５１ｘ１０８ＣＦＵ／ラット／日＋４０％ ＥｔＯＨ）を投与したものである。
予備飼育後、１８時間絶食させた後、実験群は、ラット当たり１ｘ１０８ＣＦＵ／日の細菌を、緩衝溶液（ＰＢＳ：phosphate buffered saline、biosesang）に混濁させ、１回投与した。
３０分後、前記対照群及び実験群に、４０（ｖ／ｖ）％濃度のエタノール１．５ｍｌを経口投与し、５時間後、心臓採血で、１．５ｍｌの血液を採取した。採取した血液は、常温で、１３，０００ｒｐｍで１０分間遠心分離を行い、血漿を分離した。血漿に対し、エタノール測定キット（Roche、米国）を利用し、エタノールの濃度を測定した。その結果を表５に示した。
【表５】
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表５に示されているように、２つの実験群において、対照群と比べ、血漿においてアルコール検出量が低いということを確認した。
【００４０】
また、血漿に対し、エタノール分解産物であるアセトアルデヒド測定キット（Roche、米国）を利用し、アセトアルデヒドの濃度を測定した。その結果を表６に示した。
【表６】
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表６に示されているように、２つの実験群において、対照群と比べ、血漿において、アセトアルデヒドが低く検出された。従って、菌株が、実験動物モデルにおいて、アルコール及びアセトアルデヒドの濃度を低下させることにより、アルコール摂取後、身体において起こる有害な症状を低減させることができるということを示す。
【００４１】
（５）選抜された菌株に対する遺伝的分析
（５．１）１６Ｓ ｒＤＮＡ分析
配列番号３と配列番号４とのプライマーセットと、前記分離された２個菌株ＬＭＴ１−７３及びＬＭＴ２−７５のゲノムとをテンプレートにしてＰＣＲを行い、１６Ｓ ｒＤＮＡ増幅産物を得た。前記増幅産物のヌクレオチド配列を、シーケンシングを介して確認した。その結果、ＬＭＴ１−７３及びＬＭＴ２−７５の１６Ｓ ｒＤＮＡは、それぞれ配列番号１及び２のヌクレオチド配列を有する。
【００４２】
また、前記１６Ｓ ｒＤＮＡのヌクレオチド配列をＮＣＢＩ blast（http://www.ncbi.nlm.nih.gov/）を使用して解釈した。その結果、ＬＭＴ１−７３及びＬＭＴ２−７５の１６Ｓ ｒＤＮＡは、それぞれラクトバチルスブレビス種及びラクトバチルスファーメンタム種と、配列同一性が、それぞれ９９．９％及び１００．０％であった。また、系統樹分析結果、ＬＭＴ１−７３は、ラクトバチルスブレビス種と同じであり、ＬＭＴ２−７５は、ラクトバチルスファーメンタム種と同じであった。その結果、ＬＭＴ１−７３菌株及びＬＭＴ２−７５菌株は、新たなラクトバチルスブレビス種及びラクトバチルスファーメンタム種に属する新たな菌株と確認された。該２菌株は、それぞれラクトバチルスブレビスＬＭＴ１−７３及びラクトバチルスファーメンタムＬＭＴ２−７５と命名し、それを韓国生命工学研究院所在の韓国細胞株銀行（ＫＣＴＣ：Korean Collection for Type Cultures）に、２０１７年１２月５日付けで、寄託番号ＫＣＴＣ１３４１２ＢＰ及びＫＣＴＣ１３４１３ＢＰで寄託した。
【００４３】
（５．２）アルコール分解及びアセトアルデヒド分解に係わる酵素遺伝子の確認
ＬＭＴ１−７３及びＬＭＴ２−７５を、ＭＲＳ液体培地で３７℃で１８時間培養し、菌体を回収した。菌体から、ゲノムＤＮＡキット（genomic ＤＮＡ kit）を利用し、ゲノムＤＮＡを得た。表７に示されたプライマーセットをプライマーとして使用し、前記ゲノムＤＮＡをテンプレートにしたＰＣＲを行い、ＡＤＨ、ＡＬＤＨ及び二機能的アセトアルデヒド−ＣｏＡ／アルコールデヒドロゲナーゼ（bifunctional acetaldehyde−ＣｏＡ／ＡＤＨＥ：alcohol dehydrogenase）遺伝子の存在を確認した。
その結果、ＬＭＴ１−７３及びＬＭＴ２−７５に対し、ＡＤＨ、ＡＬＤＨ及びＡＤＨＥの遺伝子増幅産物を得た。それら産物に対してシーケンシングを行い、得られた配列を、ＮＣＢＩ blastを使用し、他の配列と比較した結果、ＬＭＴ１−７３のＡＤＨ，ＡＬＤＨ及びＡＤＨＥ遺伝子は、それぞれＷＰ＿０１１６６８７３６、ＷＰ＿０１１６６８３０６及びＷＰ＿０２４８５５２７６と一致し、ＬＭＴ２−７５のＡＤＨ，ＡＬＤＨ及びＡＤＨＥ遺伝子は、それぞれＮＺ＿ＣＰ０１９０３０、ＣＰ００２０３３．１及びＮＣ＿０１０６１０．１と一致した。
【表７】
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【００４４】
（６）選抜された菌株に対する形態学的及び生理的特性の調査
（６．１）形態学的特性分析
選抜された２種ＬＭＴ１−７３とＬＭＴ２−７５とを、ＭＲＳアガール平板培地に塗抹し、３７℃で培養して形成されるコロニーの形態を観察した。表８は、ＬＭＴ１−７３とＬＭＴ２−７５との形態的特性を示す。
【表８】
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【００４５】
（６．２）選抜された菌株の糖発酵特性
糖発酵特性は、ＡＰＩ ５０ ＣＨＬキット（Biomerieux、フランス）を利用し、供給社の実験指針に従って調査した。表９は、ＬＭＴ１−７３とＬＭＴ２−７５との糖発酵特性を示す。
【表９】
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【００４６】
（７）選抜された菌株の腸内安定性
（７．１）耐酸性の調査
選抜された菌株が、腸内において、プロバイオティックスとしての効能を発揮するためには、摂取後、低いｐＨ上を通過しなければならない。
【００４７】
選抜された２つの菌株を、滅菌されたＭＲＳ液体培地に接種した後、３７℃で１６時間培養した。次に、ＨＣｌでｐＨ２．５に調整し、滅菌したＭＲＳ液体培地に、前記選抜された菌株を１％量で接種し、３７℃で２時間培養した。菌株接種直後と２時間培養後との試料を回収し、ＭＲＳ液体培地で希釈し、ＭＲＳ平板培地に塗抹した後、３７℃で２４時間培養した後、平板培地ののコロニー数を計数し、細胞数を測定した。対照群として、ｐＨが調整されていないＭＲＳ（ｐＨ６．８）液体培地で同一に進め、細胞数を計数した。比較菌株として、タイプ菌株であるラクトバチルスブレビスＫＣＴＣ３４９８Ｔ及びラクトバチルスファーメンタムＫＣＴＣ３１１２Ｔを使用したが、それらは、ＫＣＴＣから商業的に購入することができる。表１０は、耐酸性測定結果を示したものである。
【表１０】
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表１０に示されているように、選抜された菌株は、ｐＨ２．５において、酸性に対する耐性が、比較菌株に比べてすぐれている。具体的には、選抜されたＬＭＴ１−７３及びＬＭＴ２−７５は、１３．４％及び４１．２％が生存した一方、比較菌株であるラクトバチルスブレビスＫＣＴＣ３４９８Ｔ及びラクトバチルスファーメンタムＫＣＴＣ３１１２Ｔは、それぞれ１０．６％及び０．２％だけが生存した。そのような選抜された菌株の特徴は、前述の生理的ｐＨと近いｐＨ３より低いｐＨにおいて、適正細胞数を維持したために、胃酸分泌による低いｐＨにおいても、安定して細菌数が維持され、摂取時、腸内到達率が非常に高いということを示す。
【００４８】
（７．２）耐胆汁酸性の調査
選抜された２つの菌株を、胆汁酸を含む培地内で培養し、胆汁酸が２つの菌株の成長に及ぼす影響を確認した。
【００４９】
具体的には、選抜された菌株を、滅菌されたＭＲＳ液体培地に接種した後、３７℃で２４時間培養し、腸管内胆汁酸塩濃度が０．１％前後であることを勘案し、、０．３％の胆汁酸塩（bile salts）（Sigma、米国）が含有されたＭＲＳ液体培地に、前記菌株を１％量で接種し、３７℃で２時間それぞれ培養した。菌株接種直後と２時間培養後との試料を回収し、ＭＲＳ液体培地で希釈し、ＭＲＳ平板培地に塗抹した後、３７℃で２４時間培養した後、平板培地上のコロニー数を計数し、菌株細胞数を測定した。対照群として、０．３％の胆汁塩酸が含有されていないＭＲＳ液体培地において、同一に培養を進め、菌株細胞数を計数した。比較菌株として、タイプ菌株であるラクトバチルスブレビスＫＣＴＣ３４９８Ｔ及びラクトバチルスファーメンタムＫＣＴＣ３１１２Ｔを使用したが、それらは、ＫＣＴＣから商業的に購入することができる。表１１は、耐胆汁酸塩を測定した結果である。
【表１１】
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表１１に示されているように、選抜された菌株は、腸内実際濃度と類似した０．１％よりさらに高い０．３％においても、適正細胞数を維持した。具体的には、選抜された菌株ＬＭＴ１−７３，ＬＭＴ２−７５は、それぞれ１２．９％及び１．５％生存した一方、比較菌株であるラクトバチルスブレビスＫＣＴＣ３４９８Ｔ及びラクトバチルスファーメンタムＫＣＴＣ３１１２Ｔは、それぞれ１１．７％及び１．０％生存した。従って、これは、選抜されたＬＭＴ１−７３とＬＭＴ２−７５は、人体や動物の腸内においても、十分に生存することができ、腸内到達率が非常に高いということを示す。
【００５０】
（７．３）腸内定着性の調査
選抜された菌株を、腸上皮細胞であるＣａｃｏ−２と共同培養し、前記上皮細胞に結合された選抜された菌株の細胞を計数し、選抜された菌株が腸に付着する程度を測定した。Ｃａｃｏ−２細胞は、ヒト上皮直腸アデノ癌腫細胞（human epithelial colorectal adenocarcinoma cell）であり、韓国細胞株銀行（ＫＣＬＢ３００３７．１）から購入した。
【００５１】
具体的には、細胞培養培地を利用し、Ｃａｃｏ−２細胞を、７ｘ１０４細胞／１００μｌになるようにし、培養９６ウェルプレートのウェルに添加し、５％ ＣＯ２、３７℃条件で培養し、細胞単一層を形成させた。使用された培養プレートと培地は、９６ウェル細胞培養プレート（Corning、米国）及び１０％ウシ胎児血清（ＦＢＳ：fetal bovine serum）（Gibco、米国）が含まれたＤＭＥＭ（Dulbecco’s modified Eagle’s medium）（Gibco、米国）培地であった。
【００５２】
次に、ＭＲＳ液体培地で培養されたＬＭＴ１−７３とＬＭＴ２−７５とを、リン酸緩衝塩水（ＰＢＳ）で洗浄した後、抗生物質が添加されていないＤＭＥＭ培地に懸濁し、前述のＣａｃｏ−２細胞単一層に、菌株量が１ｘ１０７ＣＦＵになるように添加し、５％ ＣＯ２、３７℃条件で２時間培養した。Ｃａｃｏ−２細胞に付着することができない細胞を除去するために、ＰＢＳで５回洗浄し、１００μｌの０．１％トリトンｘ−１００で、付着した細胞を引き離した後、それをＭＲＳ固体培地に塗抹した後、３７℃で２４時間培養した後、平板培地上のコロニー数を計数し、選抜された菌株の腸内定着性を調査した。
【００５３】
図１は、選抜された菌株が、腸上皮細胞に付着する程度を示した図面である。図１に示されているように、選抜されたＬＭＴ１−７３及びＬＭＴ２−７５は、それぞれ７３．７％及び７２．９％が付着した一方、比較菌株であるラクトバチルスブレビスＫＣＴＣ３４９８Ｔ及びラクトバチルスファーメンタムＫＣＴＣ３１１２Ｔは、それぞれ６８．０％及び５８．３％が付着した。
【００５４】
従って、選抜された菌株ラクトバチルスブレビスＬＭＴ１−７３，ラクトバチルスファーメンタムＬＭＴ２−７５は、比較菌株より、腸上皮細胞であるＣａｃｏ−２細胞への定着力にすぐれていた。
【００５５】
本明細書で説明される実施形態は、説明の目的にのみ考慮されるものであり、限定の目的で考慮されるものではないと理解されなければならない。各実施形態内の特徴または態様の説明は、一般的に、他の実施形態の同様な特徴または態様にも利用可能であると見なされなければならない。
【００５６】
図面を参照し、１またはそれ以上の実施形態について説明したが、以下の特許請求の範囲によって定義されるような、本開示の趣旨および範囲から逸脱することなく、形態および詳細において、さまざまな変更を加えることができるということは、当業者には理解されるであろう。
【００５７】
特許出願のための微生物寄託の国際的承認に係わるブダペスト条約
国際的様式
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様式ＢＰ／４
【００５８】
特許出願のための微生物寄託の国際的承認に係わるブダペスト条約
国際的様式
下記国際寄託機関によって
規則７．１に基づいて発行された受託証原本
「Ｔｏ．（株）メディトックス
（株）メディトックス
京畿道水原市霊通区セントラルタウン路 １１４
１６５０６ 大韓民国」
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様式ＢＰ／４
【図１】
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【配列表】
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【手続補正書】
【提出日】令和2年8月25日(2020.8.25)
【手続補正１】
【補正対象書類名】特許請求の範囲
【補正対象項目名】全文
【補正方法】変更
【補正の内容】
【特許請求の範囲】
【請求項１】
ラクトバチルスブレビスＬＭＴ１−７３（受託番号ＫＣＴＣ−１３４１２ＢＰ）及びラクトバチルスファーメンタムＬＭＴ２−７５（受託番号ＫＣＴＣ−１３４１３ＢＰ）からなる群から選択されたエタノール分解能及びアセトアルデヒド分解能を有した微生物。
【請求項２】
請求項１の前記微生物のうち１以上、及び希釈剤または担体を含む，エタノール及びアセトアルデヒドのうち１以上を除去するのに使用するための組成物。
【請求項３】
食品であるものである、請求項２に記載の組成物。
【請求項４】
前記食品は、乳製品、アルコール性肝疾患予防用または二日酔い解消用の食品、または食品添加剤である、請求項３に記載の組成物。
【請求項５】
液体、粉末、顆粒、錠剤またはカプセル形態である、請求項２〜４のいずれか１項に記載の組成物。
【国際調査報告】
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