(57)【要約】  本発明は、プリンヌクレオチドを生産するコリネバクテリウム属微生物及びそれを用いたプリンヌクレオチドの生産方法に関する。【特許請求の範囲】
【請求項１】
配列番号１のアミノ酸配列からなるタンパク質が不活性化された、プリンヌクレオチドを生産するコリネバクテリウム・スタティオニス。
【請求項２】
前記プリンヌクレオチドは、ＩＭＰ（5'-inosine monophosphate）、ＸＭＰ（5'-xanthosine monophosphate）、ＧＭＰ（5'-guanosine monophosphate）及びＡＭＰ（5'-adenylic acid）から選択される少なくとも１つのプリンヌクレオチドである、請求項１に記載のコリネバクテリウム・スタティオニス。
【請求項３】
前記コリネバクテリウム・スタティオニスは、さらにプリンヌクレオチドの生合成経路が強化されたものである、請求項１に記載のコリネバクテリウム・スタティオニス。
【請求項４】
前記プリンヌクレオチドの生合成経路の強化は、ＰｕｒＦ（amidophosphoribosyltransferase）タンパク質の活性が強化されたものである、請求項３に記載のコリネバクテリウム・スタティオニス。
【請求項５】
請求項１〜４のいずれか一項に記載のコリネバクテリウム・スタティオニスを培地で培養するステップを含む、プリンヌクレオチドの生産方法。
【請求項６】
前記プリンヌクレオチドは、ＩＭＰ（5'-inosine monophosphate）、ＸＭＰ（5'-xanthosine monophosphate）、ＧＭＰ（5'-guanosine monophosphate）及びＡＭＰ（5'-adenylic acid）から選択される少なくとも１つのプリンヌクレオチドである、請求項５に記載のプリンヌクレオチドの生産方法。
【請求項７】
前記培養するステップの後に、前記培養したコリネバクテリウム・スタティオニス又は培地からプリンヌクレオチドを回収するステップをさらに含む、請求項５に記載のプリンヌクレオチドの生産方法。
【請求項８】
配列番号１のアミノ酸配列からなるタンパク質をコリネバクテリウム属微生物において不活性化するステップを含むプリンヌクレオチド生産増加方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、プリンヌクレオチドを生産するコリネバクテリウム属微生物及びそれを用いたプリンヌクレオチドの生産方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
５’−イノシン酸（5'-inosine monophosphate；以下、ＩＭＰ）、５'−キサンチル酸（5'-xanthosine monophosphate；以下、ＸＭＰ）、５'−グアニル酸（5'-guanosine monophosphate；以下、ＧＭＰ）、５'−アデニル酸（5'-adenylic acid；以下、ＡＭＰ）などのプリンヌクレオチドは、核酸生合成代謝系の中間物質である。これらは、体内で生理的に重要な役割を果たし、食品、医薬品などにも広く用いられている。これらのうち、牛肉の旨味を出すＩＭＰと、松茸の旨味を出すＧＭＰは、食品調味添加物として広く用いられており、これら２つの物質とグルタミン酸ナトリウム（ＭＳＧ）を混合すると風味がさらに強化されることから、これら３つの物質を混合した複合・総合調味料も多く用いられている。
【０００３】
一方、前記プリンヌクレオチドを生産する方法としては、（１）酵母細胞から抽出したリボ核酸（ＲＮＡ）を酵素的に分解する方法、（２）それを生産する微生物を培養して培養液中のプリンヌクレオチドを直接回収する発酵製造方法、（３）発酵により生産されたヌクレオシドを化学的にリン酸化する方法、（４）発酵により生産されたヌクレオシドを酵素的にリン酸化する方法などが挙げられる（特許文献１，２，３，非特許文献１）。そのうち、（１）の方法は原料需給及び経済性に問題があり、（２）の方法が経済的にも環境的にも有利なので広く用いられている。なお、プリンヌクレオチドの一つであるＧＭＰの生産においては、細胞膜透過性の問題で収率が低いという欠点があり、微生物発酵により生産されたＸＭＰを酵素的に変換してＧＭＰを生産する方法も活用されている。
【０００４】
しかし、微生物を用いたプリンヌクレオチドの発酵生産中に、微生物は温度、ｐＨ、浸透圧、栄養欠乏、酸化的要因によるストレスを受ける。とりわけ酸化的ストレスは、発酵生産中に生成される避けられない要素である活性酸素（reactive oxygen species; ROS）が主な原因であり、それにより微生物の異常な成長が起こる。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００５】
【特許文献１】韓国登録特許第１０−１０４９０２３号公報
【特許文献２】特許第４３６３０４２号公報
【特許文献３】韓国登録特許第１０−１２１０７０４号公報
【特許文献４】韓国登録特許第１０−０５４２５６８号公報
【特許文献５】韓国登録特許第１０−０５８８５７７号公報
【非特許文献】
【０００６】
【非特許文献１】Agri. Biol. Chem., 36(9),1511-1522
【非特許文献２】Scheit, Nucleotide Analogs, John Wiley, New York(1980); Uhlman及びPeyman, Chemical Reviews, 90:543-584(1990)
【非特許文献３】J. Sambrook et al., Molecular Cloning, A Laboratory Manual, 2nd Edition, Cold Spring Harbor Laboratory press, Cold Spring Harbor, New York, 1989
【非特許文献４】F.M. Ausubel et al., Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons, Inc., New York
【非特許文献５】Sambrook et al., supra, 9.50-9.51, 11.7-11.8
【非特許文献６】Pearson et al (1988)[Proc. Natl. Acad. Sci. USA 85]: 2444
【非特許文献７】Rice et al., 2000, Trends Genet. 16: 276-277
【非特許文献８】Needleman and Wunsch, 1970, J. Mol. Biol. 48: 443-453
【非特許文献９】Devereux, J., et al, Nucleic Acids Research 12: 387 (1984)
【非特許文献１０】Atschul, [S.] [F.,] [ET AL, J MOLEC BIOL 215]: 403 (1990)
【非特許文献１１】Guide to Huge Computers, Martin J. Bishop, [ED.,] Academic Press, San Diego,1994
【非特許文献１２】[CARILLO ETA/.](1988) SIAM J Applied Math 48: 1073
【非特許文献１３】Smith and Waterman, Adv. Appl. Math (1981) 2:482
【非特許文献１４】Schwartz and Dayhoff, eds., Atlas Of Protein Sequence And Structure, National Biomedical Research Foundation, pp. 353-358 (1979)
【非特許文献１５】Gribskov et al(1986) Nucl. Acids Res. 14: 6745
【非特許文献１６】Manual of Methods for General Bacteriology by the American Society for Bacteriology, Washington D.C., USA, 1981
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
本発明者らは、微生物の発酵過程中に生じる酸化的ストレスを克服し、プリンヌクレオチドの生産性を向上させるべく鋭意研究を重ねた結果、特定タンパク質を不活性化した微生物においては、微生物の成長が維持されるだけでなく、プリンヌクレオチドの生産性が向上することを確認し、本発明を完成するに至った。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
本発明は、配列番号１のアミノ酸配列からなるタンパク質が不活性化された、プリンヌクレオチドを生産するコリネバクテリウム属微生物を提供することを目的とする。
【０００９】
また、本発明は、前記微生物を用いた、プリンヌクレオチドの生産方法を提供することを目的とする。
【００１０】
さらに、本発明は、本出願のタンパク質をコリネバクテリウム属微生物において不活性化するステップを含む、コリネバクテリウム属におけるプリンヌクレオチド生産増加方法を提供することを目的とする。
【００１１】
さらに、本発明は、プリンヌクレオチドを生産するための前記微生物の用途を提供することを目的とする。
【発明の効果】
【００１２】
本発明のプリンヌクレオチドを生産する微生物は、プリンヌクレオチドを高効率で生産することができる。また、生産したプリンヌクレオチドは、動物飼料又は動物飼料添加剤だけでなく、人間の食品又は食品添加剤、調味料、医薬品など様々な製品に応用することができる。
【発明を実施するための形態】
【００１３】
以下、これらを具体的に説明する。なお、本明細書に開示される各説明及び実施形態はそれぞれ他の説明及び実施形態にも適用される。すなわち、本明細書で開示される様々な要素のあらゆる組み合わせが本発明に含まれる。また、以下の具体的な記述に本発明が限定されるものではない。
【００１４】
前記目的を達成するための本発明の一態様は、配列番号１のアミノ酸配列からなるタンパク質が不活性化された、プリンヌクレオチドを生産するコリネバクテリウム属微生物を提供する。
【００１５】
一具体例として、配列番号１のアミノ酸配列からなるタンパク質が不活性化された、プリンヌクレオチドを生産するコリネバクテリウム・スタティオニスを提供する。
【００１６】
本発明における「プリンヌクレオチド（purine nucleotide）」とは、プリンヌクレオシドを有し、前記ヌクレオシドの糖部分にリン酸がエステル結合した化合物を総称するものである。
【００１７】
具体的には、前記プリンヌクレオチドは、ＩＭＰ（5'-inosine monophosphate）、ＸＭＰ（5'-xanthosine monophosphate）、ＧＭＰ（5'-xanthosine monophosphate）及びＡＭＰ（5'-adenosine monophosphate）から選択される少なくとも１つのプリンヌクレオチドであってもよいが、配列番号１のアミノ酸配列からなるタンパク質が不活性化されることにより生産性が向上するプリンヌクレオチドであればいかなるものでもよい。
【００１８】
本発明における「配列番号１のアミノ酸配列からなるタンパク質」とは、ＷｈｉＢ−ファミリーグループの遺伝子によりコードされるタンパク質を意味し、具体的にはＷｈｉＢ転写調節因子（transcriptional regulator WhiB）であってもよい。前記タンパク質は、酸素及び窒素酸化物感受性クラスター（４Ｆｅ−４Ｓ）を形成する４つの保存されたシステイン残基を含み、放線菌の様々な生物学的特性を示す上で重要な機能を果たすことが知られている。発症（pathogenesis）、抗生剤耐性、細胞生長などの全般的な細胞機能に関与することが現在まで知られているが、これらの詳細な機能と機序に関する研究は十分に行われていない。
【００１９】
本発明の配列番号１のアミノ酸配列を有するタンパク質は、配列番号１のアミノ酸配列を含むタンパク質、配列番号１のアミノ酸配列から必須に構成されるタンパク質、又は配列番号１のアミノ酸配列からなるタンパク質であってもよいが、これらに限定されるものではない。
【００２０】
また、本発明のタンパク質は、配列番号１で表されるアミノ酸配列からなるタンパク質であるが、前記タンパク質と同じ活性を有する配列であればいかなるものでもよく、当業者であれば公知のデータベースであるＮＣＢＩのＧｅｎＢａｎｋなどから配列情報を得ることができる。さらに、本発明の配列番号１のアミノ酸配列を有するタンパク質は、配列番号１及び配列番号１と少なくとも６０％、７０％、８０％、８３％、８４％、８５％、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９７％、９８％又は９９％の相同性又は同一性を有するアミノ酸配列を含むタンパク質であってもよい。さらに、そのような相同性又は同一性を有して前記タンパク質に相当する生物学的活性を示すアミノ酸配列であれば、一部の配列が欠失、改変、置換又は付加されたアミノ酸配列を有するタンパク質も本発明に含まれることは言うまでもない。
【００２１】
それに加えて、公知の遺伝子配列から調製されるプローブ、例えば前記ポリペプチドをコードする塩基配列の全部又は一部に対する相補配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドによりコードされるポリペプチドであって、配列番号１のアミノ酸配列からなるタンパク質と同じ活性を有するポリペプチドであればいかなるものでもよい。
【００２２】
すなわち、本発明において「特定配列番号で表されるアミノ酸配列を含むタンパク質又はポリペプチド」、「特定配列番号で表されるアミノ酸配列からなるタンパク質又はポリペプチド」又は「特定配列番号で表されるアミノ酸配列を有するタンパク質又はポリペプチド」と記載されていても、当該配列番号のアミノ酸配列からなるポリペプチドと同一又は相当する活性を有するものであれば、一部の配列が欠失、改変、置換、保存的置換又は付加されたアミノ酸配列を有するタンパク質であっても本発明に用いられることは言うまでもない。例えば、前記アミノ酸配列のＮ末端及び／又はＣ末端にタンパク質の機能を変更しない配列の付加、自然に発生し得る突然変異、その非表現突然変異（silent mutation）又は保存的置換を有するものが挙げられる。
【００２３】
前記「保存的置換（conservative substitution）」とは、あるアミノ酸が類似した構造的及び／又は化学的性質を有する他のアミノ酸に置換されることを意味する。このようなアミノ酸置換は、一般に残基の極性、電荷、溶解度、疎水性、親水性及び／又は両親媒性（amphipathic nature）における類似性に基づいて発生し得る。例えば、正に荷電した（塩基性）アミノ酸としては、アルギニン、リシン及びヒスチジンが挙げられ、負に荷電した（酸性）アミノ酸としては、グルタミン酸及びアスパラギン酸が挙げられ、芳香族アミノ酸としては、フェニルアラニン、トリプトファン及びチロシンが挙げられ、疎水性アミノ酸としては、アラニン、バリン、イソロイシン、ロイシン、メチオニン、フェニルアラニン、チロシン及びトリプトファンが挙げられる。
【００２４】
本発明における「ポリヌクレオチド」は、ＤＮＡ及びＲＮＡ分子を包括する意味で用いられ、ポリヌクレオチドにおける基本構成単位であるヌクレオチドには、天然ヌクレオチドだけでなく、糖又は塩基部位が変形したアナログも含まれる（非特許文献２参照）。
【００２５】
配列番号１のアミノ酸配列を有するタンパク質をコードする遺伝子のポリヌクレオチド配列は、公知のデータベースから得られ、例えばＮＣＢＩのＧｅｎＢａｎｋなどが挙げられるが、これらに限定されるものではない。
【００２６】
前記ポリヌクレオチドは、本発明の配列番号１のアミノ酸配列を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド、又は本発明のタンパク質と６０％、７０％、８０％、８３％、８４％、８５％、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９７％、９８％もしくは９９％の相同性もしくは同一性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチドであってもよい。
【００２７】
具体的には、配列番号１のアミノ酸配列を有するタンパク質は、配列番号２のポリヌクレオチド配列と少なくとも８０％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％又は１００％の相同性又は同一性を有するポリヌクレオチドであってもよい。しかし、配列番号１のアミノ酸配列からなるタンパク質に相当する活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド配列も全て本発明に含まれることは言うまでもない。
【００２８】
また、コドンの縮退（genetic code degeneracy）により同一アミノ酸配列からなるタンパク質又はそれと相同性を有するタンパク質に翻訳されるポリヌクレオチドも本発明に含まれることは言うまでもない。さらに、公知の遺伝子配列から調製されるプローブ、例えば前記塩基配列の全部又は一部に対する相補配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズすることにより、配列番号１のアミノ酸配列からなるタンパク質の活性を有するタンパク質をコードする配列であればいかなるものでもよい。前記「ストリンジェントな条件」とは、ポリヌクレオチド間の特異的ハイブリダイゼーションを可能にする条件を意味する。このような条件は文献（例えば、非特許文献３、４）に具体的に記載されている。例えば、相同性の高い遺伝子同士、４０％以上、具体的には７０％以上、８０％以上、８５％以上、９０％以上、より具体的には９５％以上、さらに具体的には９７％以上、特に具体的には９９％以上の相同性を有する遺伝子同士をハイブリダイズし、それより相同性の低い遺伝子同士をハイブリダイズしない条件、又は通常サザンハイブリダイゼーションの洗浄条件である６０℃、１×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ、具体的には６０℃、０．１×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ、より具体的には６８℃、０．１×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳに相当する塩濃度及び温度において、１回、具体的には２回〜３回洗浄する条件が挙げられる。ハイブリダイゼーションは、たとえハイブリダイゼーションの厳格さに応じて塩基間のミスマッチ（mismatch）が可能であっても、２つの核酸が相補的配列を有することが求められる。「相補的」とは、互いにハイブリダイゼーションが可能なヌクレオチド塩基間の関係を表すために用いられるものである。例えば、ＤＮＡにおいて、アデノシンはチミンに相補的であり、シトシンはグアニンに相補的である。よって、本発明には、実質的に類似した核酸配列だけでなく、全配列に相補的な単離された核酸断片が含まれてもよい。
【００２９】
具体的には、相同性又は同一性を有するポリヌクレオチドは、５５℃のＴｍ値でハイブリダイゼーションステップが行われるハイブリダイゼーション条件と前述した条件を用いて探知することができる。また、前記Ｔｍ値は、６０℃、６３℃又は６５℃であってもよいが、これらに限定されるものではなく、その目的に応じて当業者により適宜調節される。
【００３０】
ポリヌクレオチドをハイブリダイズする適切な厳格さはポリヌクレオチドの長さ及び相補性の程度に依存し、変数は当該技術分野で公知である（非特許文献５参照）。
【００３１】
本発明における「相同性」又は「同一性（identity）」とは、２つの与えられたアミノ酸配列又はヌクレオチド配列が一致する程度を意味し、百分率で表される。相同性及び同一性は、しばしば相互交換的に用いられる。本発明において、与えられたアミノ酸配列又はポリヌクレオチド配列と同一又は類似の活性を有するその相同性配列は「％の相同性」と表される。
【００３２】
保存されている（conserved）ポリヌクレオチド又はポリペプチドの配列相同性又は同一性は標準的な配列アルゴリズムにより決定され、用いられるプログラムにより確立されたデフォルトギャップペナルティが共に用いられてもよい。実質的には、相同性を有するか（homologous）又は同じ（identical）配列は、中程度又は高いストリンジェントな条件（stringent conditions）下において、一般に配列全体又は全長の少なくとも約５０％、６０％、７０％、８０％又は９０％以上ハイブリダイズする。そのハイブリダイゼーションは、ポリヌクレオチドがコドンの代わりに縮退コドンを有するようにするものであってもよい。
【００３３】
任意の２つのポリヌクレオチド又はポリペプチド配列が相同性、類似性又は同一性を有するか否かは、例えば非特許文献６のようなデフォルトパラメーターと「ＦＡＳＴＡ」プログラムなどの公知のコンピュータアルゴリズムを用いて決定することができる。あるいは、ＥＭＢＯＳＳパッケージのニードルマンプログラム（EMBOSS: The European Molecular Biology Open Software Suite, 非特許文献７）（バージョン５．０．０又はそれ以降のバージョン）で行われるように、ニードルマン＝ウンシュ（Needleman-Wunsch）アルゴリズム（非特許文献８）を用いて決定することができる（ＧＣＧプログラムパッケージ（非特許文献９）、ＢＬＡＳＴＰ、ＢＬＡＳＴＮ、ＦＡＳＴＡ（非特許文献１０，１１，１２）を含む）。例えば、国立生物工学情報センターのＢＬＡＳＴ又はＣｌｕｓｔａｌ Ｗを用いて相同性、類似性又は同一性を決定することができる。
【００３４】
ポリヌクレオチド又はポリペプチドの相同性、類似性又は同一性は、例えば非特許文献１３に開示されているように、非特許文献８などのＧＡＰコンピュータプログラムを用いて、配列情報を比較することにより決定することができる。要約すると、ＧＡＰプログラムは、２つの配列のうち短いものにおける記号の総数で、類似する配列記号（すなわち、ヌクレオチド又はアミノ酸）の数を割った値と定義している。ＧＡＰプログラムのためのデフォルトパラメーターは、（１）一進法比較マトリクス（同一性は１、非同一性は０の値を含む）及び非特許文献１４に開示されているように、非特許文献１５の加重比較マトリクス（又はＥＤＮＡＦＵＬＬ（ＮＣＢＩ ＮＵＣ４．４のＥＭＢＯＳＳバージョン）置換マトリクス）と、（２）各ギャップに３．０のペナルティ、及び各ギャップの各記号に追加の０．１０ペナルティ（又はギャップ開放パネルティ１０、ギャップ延長パネルティ０．５）と、（３）末端ギャップに無ペナルティとを含む。よって、本発明における「相同性」又は「同一性」は、配列間の関連性（relevance）を示す。
【００３５】
本発明において、前記プリンヌクレオチドを生産するコリネバクテリウム属微生物は、配列番号１のアミノ酸配列を含むタンパク質が不活性化されたものであってもよい。
【００３６】
ここで、配列番号１のアミノ酸配列を含むタンパク質の不活性化は、ＷｈｉＢ−ファミリータンパク質の不活性化、ＷｈｉＢ転写調節因子の不活性化、又は配列番号２のポリヌクレオチド配列を含む遺伝子によりコードされるタンパク質の不活性化と同じ意味で用いられる。
【００３７】
本発明における「配列番号１のアミノ酸配列を含むタンパク質が不活性化された」とは、前記タンパク質が親株又は配列番号１のアミノ酸配列を含むタンパク質が改変されていない菌株に比べて全く発現しないことや、発現してもその活性がないか、減少したことを意味する。また、ＷｈｉＢ−ファミリーグループの遺伝子によりコードされるタンパク質（ＷｈｃＥＤＢＡ）において、親株又は非変型菌株に比べて活性がないか、減少したことを意味する。ここで、前記減少は、前記タンパク質をコードする遺伝子の変異、欠損などによりタンパク質の活性が本来微生物が有するタンパク質の活性より減少した場合や、それをコードする遺伝子の発現阻害又は翻訳（translation）阻害などにより細胞内で全体的なタンパク質の活性の程度が天然の菌株又は改変前の菌株より低下した場合や、それらの組み合わせを含む概念である。
【００３８】
本発明において、前記タンパク質の不活性化がプリンヌクレオチドの生産性に関連することを最初に解明した。
【００３９】
本発明における前記不活性化は、当該技術分野で公知の様々な方法の適用により達成することができる。前記方法の例として、１）前記タンパク質をコードする前記遺伝子の全部又は一部を欠失させる方法、２）前記タンパク質をコードする前記遺伝子の発現が減少するように発現調節配列を改変する方法、３）前記タンパク質の活性が欠失又は低下するようにタンパク質をコードする前記遺伝子配列を改変する方法、４）前記タンパク質をコードする前記遺伝子の転写体に相補的に結合するアンチセンスオリゴヌクレオチド（例えば、アンチセンスＲＮＡ）を導入する方法、５）前記タンパク質をコードする前記遺伝子のシャイン・ダルガノ（Shine-Dalgarno）配列の前にシャイン・ダルガノ配列と相補的な配列を付加することにより２次構造物を形成させてリボソーム（ribosome）の付着を不可能にする方法、６）前記タンパク質をコードする前記遺伝子のポリヌクレオチド配列のＯＲＦ（open reading frame）の３'末端に逆転写するようにプロモーターを付加する方法（Reverse transcription engineering, RTE）などが挙げられ、それらの組み合わせによっても達成することができるが、前記例に特に限定されるものではない。
【００４０】
具体的には、前記タンパク質をコードする前記遺伝子の全部又は一部を欠失させる方法は、微生物内の染色体挿入用ベクターを用いて、染色体内の内在性標的タンパク質をコードするポリヌクレオチドを一部のヌクレオチド配列が欠失したポリヌクレオチド又はマーカー遺伝子に置換することにより行うことができる。このようなポリヌクレオチドの全部又は一部を欠失させる方法の一例として、相同組換えによりポリヌクレオチドを欠失させる方法が挙げられるが、これに限定されるものではない。
【００４１】
また、前記遺伝子の全部又は一部を欠失させる方法は、紫外線などの光又は化学物質を用いて突然変異を誘発し、得られた突然変異体から標的遺伝子が欠失した菌株を選択することにより行うことができる。前記遺伝子欠失方法には、ＤＮＡ組換え技術による方法が含まれる。前記ＤＮＡ組換え技術は、例えば標的遺伝子に相同性を有するヌクレオチド配列が含まれるヌクレオチド配列又はベクターを前記微生物に導入して相同組換え（homologous recombination）を起こすことにより行うことができる。また、前記導入されるヌクレオチド配列又はベクターには、優性選択マーカーが含まれてもよいが、これに限定されるものではない。
【００４２】
また、前記発現調節配列を改変する方法は、当該技術分野で公知の様々な方法の適用により達成することができる。前記方法の例として、前記発現調節配列の活性がさらに低下するように、ポリヌクレオチド配列の欠失、挿入、非保存的もしくは保存的置換、又はそれらの組み合わせにより発現調節配列上の変異を誘導して行うこともでき、より活性が低いポリヌクレオチド配列に置換することにより行うこともできる。前記発現調節配列には、プロモーター、オペレーター配列、リボソーム結合部位をコードする配列、及び転写と翻訳の終結を調節する配列が含まれるが、これらに限定されるものではない。
【００４３】
さらに、前記遺伝子配列を改変する方法は、前記酵素の活性がさらに低下するように、遺伝子配列の欠失、挿入、非保存的もしくは保存的置換、又はそれらの組み合わせにより配列上の変異を誘導して行うこともでき、活性がさらに低下するように改良された遺伝子配列又は活性がなくなるように改良された遺伝子配列に置換することにより行うこともできるが、これらに限定されるものではない。
【００４４】
本発明における「プリンヌクレオチドを生産する微生物」又は「プリンヌクレオチド生産能を有する微生物」とは、自然にプリンヌクレオチド生産能を有する微生物、又はプリンヌクレオチドの生産能のない親株にプリンヌクレオチドの生産能が付与された微生物を意味する。具体的には、配列番号１のアミノ酸配列を含むタンパク質、ＷｈｉＢ−ファミリータンパク質又はＷｈｉＢ転写調節因子が不活性化されてプリンヌクレオチド生産能を有する微生物である。
【００４５】
本発明における「コリネバクテリウム属微生物」には、あらゆるコリネバクテリウム属微生物が含まれる。具体的には、コリネバクテリウム・スタティオニス（Corynebacterium stationis）、コリネバクテリウム・グルタミカム（Corynebacterium glutamicum）、コリネバクテリウム・フォケ（Corynebacterium phocae）、コリネバクテリウム・フラベッセンス（Corynebacterium flavescens）、コリネバクテリウム・ヒュミレデュセンス（Corynebacterium humireducens）、コリネバクテリウム・ハロトレランス（Corynebacterium halotolerans）、コリネバクテリウム・ポルティソリ（Corynebacterium pollutisoli）、コリネバクテリウム・マリヌム（Corynebacterium marinum）、コリネバクテリウム・フレイブルゲンス（Corynebacterium freiburgense）、コリネバクテリウム・システィティディス（Corynebacterium cystitidis）、コリネバクテリウム・デュルム（Corynebacterium durum）、コリネバクテリウム・ピロスム（Corynebacterium pilosum）又はコリネバクテリウムテス・テスツディノリス（Corynebacterium testudinoris）であり、より具体的には、コリネバクテリウム・スタティオニスであるが、これらに限定されるものではない。
【００４６】
一方、コリネバクテリウム属微生物がプリンヌクレオチドを生産することは既に知られているが、その生産能は非常に低く、生産機序に作用する遺伝子や機序原理は解明されていない。よって、本発明のプリンヌクレオチドを生産するコリネバクテリウム属微生物とは、天然の微生物自体、プリンヌクレオチド生産機序に関する遺伝子の活性を強化もしくは不活性化することによりプリンヌクレオチド生産能が向上したコリネバクテリウム属微生物、又は外部遺伝子の活性を導入もしくは強化することによりプリンヌクレオチド生産能が向上したコリネバクテリウム属微生物を意味する。具体的には、前記コリネバクテリウム属微生物は、プリンヌクレオチドの生合成経路が強化されたコリネバクテリウム・スタティオニスであってもよく、前記強化は、生合成経路に関与するタンパク質の活性の強化であってもよい。あるいは、前記コリネバクテリウム属微生物は、プリンヌクレオチド又はその前駆体の分解経路に関与するタンパク質の活性が不活性化されたコリネバクテリウム・スタティオニスであってもよい。
【００４７】
ここで、前記プリンヌクレオチド生合成経路に関与するタンパク質の例としては、プリンヌクレオチドがＩＭＰであれば、アミドホスホリボシルトランスフェラーゼ（amidophosphoribosyltransferase; PurF）、ホスホリボシルアミン−グリシンリガーゼ（phosphoribosylamine-glycine ligase; PurD）、ホスホリボシルグリシンアミドホルミルトランスフェラーゼ（phosphoribosylglycinamide formyltransferase; PurN）、ホスホリボシルホルミルグリシンアミジンシンターゼ（phosphoribosylformylglycinamidine synthase; PurL）、ＡＩＲシンテターゼ（AIR synthetase；ＦＧＡＭシクラーゼ）、ホスホリボシルアミノイミダゾールカルボキシラーゼ（phosphoribosylaminoimidazole carboxylase）、ホスホリボシルアミノイミダゾールスクシノカルボキサミドシンターゼ（phosphoribosylaminoimidazolesuccinocarboxamide synthase）、アデニロコハク酸リアーゼ（adenylosuccinate lyase; ADSL）、ホスホリボシルアミノイミダゾールカルボキサミドホルミルトランスフェラーゼ（phosphoribosylaminoimidazolecarboxamide formyltransferase）及びイノシン一リン酸シンターゼ（inosine monophosphate synthase）からなる群から選択される少なくとも１つのタンパク質が挙げられる。
【００４８】
また、プリンヌクレオチドがＸＭＰであれば、前記活性が強化されたタンパク質の例としては、前記群にさらにＩＭＰデヒドロゲナーゼ（IMP dehydrogenase）が含まれる群から選択される少なくとも１つのタンパク質が挙げられる。
【００４９】
さらに、プリンヌクレオチドがＧＭＰであれば、前記活性が強化されたタンパク質の例としては、前記群にさらにＩＭＰデヒドロゲナーゼ（IMP dehydrogenase）及び／又はＧＭＰシンターゼ（GMP synthase）が含まれる群から選択される少なくとも１つのタンパク質が挙げられる。
【００５０】
さらに、プリンヌクレオチドがＡＭＰであれば、前記活性が強化されたタンパク質の例としては、前記群にさらにアデニロコハク酸シンターゼ（adenylosuccinate synthase; purA）が含まれる群から選択される少なくとも１つのタンパク質が挙げられる。
【００５１】
最も具体的には、プリンヌクレオチド生合成経路に関与するタンパク質はアミドホスホリボシルトランスフェラーゼ（PurF）であるが、これに限定されるものではない。
【００５２】
本発明の他の態様は、本発明による前記微生物を培地で培養するステップを含む、プリンヌクレオチドの生産方法を提供する。
【００５３】
前記生産方法は、プリンヌクレオチドを回収するステップをさらに含んでもよい。
【００５４】
前記微生物及びプリンヌクレオチドについては前述した通りである。
【００５５】
本発明における「培養」とは、微生物を人工的に適宜調節した環境条件で生育させることを意味する。本発明におけるコリネバクテリウム属微生物を培養する方法としては、当該技術分野で公知の方法を用いることができる。具体的には、前記培養は、バッチプロセス又は流加もしくは反復流加プロセス（fed batch or repeated fed batch process）で連続して培養することができるが、これらに限定されるものではない。
【００５６】
前記微生物を培養するステップは、特にこれらに限定されるものではないが、公知の回分培養法、連続培養法、流加培養法などにより行われてもよい。本願の微生物の培養に用いられる培地及びその他の培養条件は、通常の微生物の培養に用いられる培地であれば特に限定されるものではなく、いかなるものでも用いることができ、具体的には好適な炭素源、窒素源、リン源、無機化合物、アミノ酸及び／又はビタミンなどを含有する通常の培地内において、好気性条件下で温度、ｐＨなどを調節して本発明の微生物を培養することができる。コリネバクテリウム菌株の培養培地は公知である（例えば、非特許文献１６）。培地に用いることのできる糖源としては、グルコース、スクロース、ラクトース、フルクトース、マルトース、デンプン、セルロースなどの糖及び炭水化物、大豆油、ヒマワリ油、ヒマシ油、ココナッツ油などの油脂、パルミチン酸、ステアリン酸、リノール酸などの脂肪酸、グリセリン、エタノールなどのアルコール、酢酸などの有機酸が挙げられる。これらの物質は、単独で用いることもでき、混合物として用いることもできるが、これらに限定されるものではない。
【００５７】
用いることのできる窒素源としては、ペプトン、酵母抽出物、肉汁、麦芽抽出物、トウモロコシ浸漬液、黄粉及び尿素、又は無機化合物、例えば硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、リン酸アンモニウム、炭酸アンモニウム及び硝酸アンモニウムが挙げられる。窒素源も、単独で用いることもでき、混合物として用いることもできるが、これらに限定されるものではない。
【００５８】
用いることのできるリン源としては、リン酸二水素カリウム、リン酸水素二カリウム、又はそれらに相当するナトリウム含有塩が挙げられる。また、培養培地は、成長に必要な硫酸マグネシウム、硫酸鉄などの金属塩を含有してもよい。最後に、前記物質以外に、アミノ酸、ビタミンなどの必須成長物質が用いられてもよい。また、培養培地に好適な前駆体が用いられてもよい。前述した原料は、培養過程において培養物に好適な方法でバッチ毎に又は連続して添加されてもよい。
【００５９】
前記微生物の培養中に水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、アンモニアなどの基礎化合物、又はリン酸、硫酸などの酸性化合物を好適な方法で用いて培養物のｐＨを調整することができる。また、脂肪酸ポリグリコールエステルなどの消泡剤を用いて気泡生成を抑制してもよい。好気状態を維持するために、培養物中に酸素又は酸素含有気体（例えば、空気）を注入してもよい。培養物の温度は、通常は２０℃〜４５℃、具体的には２５℃〜４０℃である。培養時間は、所望のＬ−アミノ酸の生成量が得られるまで続けてもよく、具体的には１０〜１６０時間である。
【００６０】
前記培養により生産されたプリンヌクレオチドは、培地中に分泌されるか、細胞内に残留する。
【００６１】
本発明の生産方法は、前記培養ステップの後に、前記微生物又は培地からプリンヌクレオチドを回収するステップをさらに含んでもよい。
【００６２】
前記プリンヌクレオチドの回収は、当該技術分野で公知の通常の方法により行うことができる。その回収方法としては、遠心分離、濾過、イオン交換クロマトグラフィー、結晶化などの方法が用いられてもよい。例えば、培養物を低速で遠心分離することによりバイオマスを除去して得られた上清をイオン交換クロマトグラフィーにより分離することができるが、これに限定されるものではなく、当該技術分野で公知の好適な方法により培養された微生物又は培地から目的とするプリンヌクレオチドを回収することができる。
【００６３】
前記回収ステップは、分離工程及び／又は精製工程をさらに含んでもよい。
【００６４】
本発明のさらに他の態様は、本出願の配列番号１のアミノ酸配列を含むタンパク質が不活性化されたコリネバクテリウム属微生物のプリンヌクレオチド生産増加のための用途を提供する。
【００６５】
本発明のさらに他の態様は、本発明の配列番号１を含むタンパク質をコリネバクテリウム属微生物において不活性化するステップを含むプリンヌクレオチド生産増加方法を提供する。
【００６６】
前記「プリンヌクレオチド」、「配列番号１のアミノ酸配列を含むタンパク質」、「不活性化」及び「コリネバクテリウム属微生物」については前述した通りである。
【実施例】
【００６７】
以下、実施例を挙げて本発明をより詳細に説明する。しかし、これらの実施例は本発明を例示的に説明するためのものであり、本発明がこれらの実施例に限定されるものではない。
【実施例１】
【００６８】
ＷｈｉＢ−ファミリータンパク質の不活性化を目的とする組換えベクターの作製
プリンヌクレオチド生産能を向上させるための不活性化対象タンパク質としてＷｈｉＢ−ファミリータンパク質を選定した。
【００６９】
実施例１−１：コリネバクテリウム・スタティオニスＷｈｉＢ−ファミリータンパク質の選定
野生型コリネバクテリウム・スタティオニス（Corynebacterium stationis, ATCC 6872）のゲノムから探索し、そのうち有効であると判断される１種の遺伝子を選択し、米国国立衛生研究所の遺伝子バンク（NIH Genbank）に報告されている塩基配列に基づいてＴｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎａｌ ｒｅｇｕｌａｔｏｒ ＷｈｉＢであることを確認した。
【００７０】
実施例１−２：ＷｈｉＢ−ファミリータンパク質不活性化のためのコード遺伝子断片の準備
コリネバクテリウム・スタティオニスの野生型であるＡＴＣＣ ６８７２菌株の染色体遺伝子をＧ−ｓｐｉｎトータルＤＮＡ抽出キット（Intron社, Cat. No 17045）により抽出した。その後、前記染色体遺伝子を鋳型とし、ポリメラーゼ連鎖反応（Polymerase chain reaction; PCR）を行った。
【００７１】
その後、ＷｈｉＢ−ファミリータンパク質を不活性化するために、前記タンパク質をコードする遺伝子を欠失させて内在性活性を完全に除去するか、又は前記遺伝子を弱化させてコードするタンパク質の発現量を最小限に抑えた。
【００７２】
具体的には、実施例１−２−１で作製するベクターを用いて前記遺伝子の内在性活性を除去し、実施例１−２−２で作製するベクターを用いて前記菌株の内在性開始コドンであるＡＴＧをＧＴＧ又はＴＴＧに置換した。前記ＧＴＧ又はＴＴＧコドンは、ＡＴＧコドンよりタンパク質発現効率が低いことが知られている。
【００７３】
実施例１−２−１：ＷｈｉＢ−ファミリータンパク質をコードする遺伝子を欠失させるためのベクターの製作
ＷｈｉＢ−ファミリータンパク質をコードする遺伝子の欠失を目的とするベクターを作製するために、ＡＴＣＣ ６８７２菌株を鋳型とし、配列番号３と配列番号４のプライマー対及び配列番号５と配列番号６のプライマー対を用いて遺伝子断片（ｄｅｌｅｔｉｏｎ−Ａ，ｄｅｌｅｔｉｏｎ−Ｂ）をそれぞれ得た。ここで、ＰＣＲ条件は、９４℃で５分間の変性後、９４℃で３０秒間の変性、５５℃で３０秒間のアニーリング、７２℃で１２０秒間の重合を２５サイクル行い、その後７２℃で７分間の重合反応を行うものとした。
【００７４】
その結果、ｄｅｌｅｔｉｏｎ−Ａにおいては１０２６ｂｐ、ｄｅｌｅｔｉｏｎ−Ｂにおいては１０４４ｂｐのサイズを有するポリヌクレオチドが得られた。前述した２つの断片を鋳型とし、配列番号３及び配列番号６を用いてＯｖｅｒｌａｐｐｉｎｇ ＰＣＲを行うことにより、２０５０ｂｐのＰＣＲ産物（以下、「欠失断片」という）が得られた。
【００７５】
前述したように得られた欠失断片を制限酵素ＸｂａＩ（New England Biolabs, Beverly, MA）で処理し、その後同じ制限酵素で処理したｐＤＺベクターとＴ４リガーゼ（New England Biolabs, Beverly, MA）を用いてライゲーションした。前述したように作製した遺伝子を大腸菌ＤＨ５αに形質転換し、その後それをカナマイシン含有ＬＢ培地から選択し、ＤＮＡ−ｓｐｉｎプラスミドＤＮＡ全体キット（iNtRON社）を用いてＤＮＡを得た。
【００７６】
前述したように作製したＷｈｉＢ−ファミリータンパク質をコードする遺伝子の欠失を目的とするベクターを「ｐＤＺ−ｄｅｌｅｔｉｏｎ」と命名した。
【００７７】
実施例１−２−２：ＷｈｉＢ−ファミリータンパク質をコードする遺伝子を弱めさせるためのベクターの製作
ＷｈｉＢ−ファミリータンパク質をコードする遺伝子の弱化を目的とするベクターを作製するために、ＡＴＣＣ ６８７２菌株の開始コドンであるＡＴＧをＴＴＧ又はＧＴＧに改変した。
【００７８】
まず、開始コドンがＴＴＧに改変された菌株を作製するために、ＡＴＣＣ ６８７２菌株を鋳型とし、配列番号７と配列番号８のプライマー対及び配列番号９と配列番号１０のプライマー対を用いて、ＴＴＧ又はＧＴＧに改変された遺伝子断片（ａ１ｔ−Ａ及びａ１ｔ−Ｂ）をそれぞれ得た。その結果、ａ１ｔ−Ａにおいては９７４ｂｐ、ａ１ｔ−Ｂにおいては９８２ｂｐのサイズを有するポリヌクレオチドが得られた。前述した２つの断片を鋳型とし、配列番号７及び配列番号１０を用いてＯｖｅｒｌａｐｐｉｎｇ ＰＣＲを行うことにより、１９５５ｂｐのＰＣＲ産物（以下、「ａ１ｔ断片」という）が得られた。
【００７９】
また、開始コドンがＧＴＧに改変された菌株を作製するために、ＡＴＣＣ ６８７２菌株を鋳型とし、配列番号７と配列番号１１のプライマー対及び配列番号１２と配列番号１０のプライマー対を用いて遺伝子断片（ａ１ｇ−Ａ及びａ１ｇ−Ｂ）をそれぞれ得た。その結果、ａ１ｇ−Ａにおいては９７４ｂｐ、ａ１ｇ−Ｂにおいては９８２ｂｐのサイズを有するポリヌクレオチドが得られた。前述した２つの断片を鋳型とし、配列番号７及び配列番号１０を用いてＯｖｅｒｌａｐｐｉｎｇ ＰＣＲを行うことにより、１９５５ｂｐのＰＣＲ産物（以下、「ａ１ｇ断片」という）が得られた。
【００８０】
なお、各ＰＣＲ条件は全て同一であり、９４℃で５分間の変性後、９４℃で３０秒間の変性、５５℃で３０秒間のアニーリング、７２℃で１２０秒間の重合を２５回サイクル行い、その後７２℃で７分間の重合反応を行うものとした。
【００８１】
前述したように得られた遺伝子断片を制限酵素ＸｂａＩ（New England Biolabs, Beverly, MA）で処理し、その後同じ制限酵素で処理したｐＤＺベクターとＴ４リガーゼ（New England Biolabs, Beverly, MA）を用いてライゲーションした。前述したように作製した遺伝子を大腸菌ＤＨ５αに形質転換し、その後それをカナマイシン含有ＬＢ培地から選択し、ＤＮＡ−ｓｐｉｎプラスミドＤＮＡ全体キット（iNtRON社）を用いてＤＮＡを得た。
【００８２】
前述したように作製したＷｈｉＢ−ファミリータンパク質をコードする遺伝子の弱化を目的とするベクターをそれぞれ「ｐＤＺ−ａ１ｔ」、「ｐＤＺ−ａ１ｇ」と命名した。
【００８３】
なお、ベクターの作製のために用いたプライマーの配列を表１に示す。
【００８４】
【表１】
2021511062.tif 000002
【実施例２】
【００８５】
プリンヌクレオチドを生産する野生型菌株を用いた、ＷｈｉＢ−ファミリータンパク質が不活性化された菌株の作製及びそのプリンヌクレオチド生産能の評価
実施例２−１：プリンヌクレオチドのうちＸＭＰを生産する野生型由来の菌株を用いた、ＷｈｉＢ−ファミリータンパク質が不活性化された菌株の作製
コリネバクテリウム・スタティオニスＫＣＣＭ−１０５３０菌株（特許文献４）に実施例１で作製した２種のベクター（ｐＤＺ−ａ１ｔ及びｐＤＺ−ａ１ｇ）をエレクトロポレーションによりそれぞれ独立して形質転換し、その後カナマイシン２５ｍｇ／Ｌを含有する選択培地で生長したコロニーを１次選択した。
【００８６】
その後、前記菌株の内在性遺伝子と前記ベクターに含まれるポリヌクレオチド間の相同性を用いた２次交差過程を経て、ＷｈｉＢ−ファミリータンパク質をコードする遺伝子が欠失するか、又は開始コドンが弱化した形態（ＡＴＧ→ＴＴＧ又はＡＴＧ→ＧＴＧ）に改変された菌株を得た。
【００８７】
なお、ＷｈｉＢ−ファミリータンパク質をコードする遺伝子が欠失した菌株は、配列番号１３及び配列番号６のプライマーを用いて選択した。前記プライマーでＰＣＲを行ったところ、野生型菌株においては１６８０ｂｐのサイズの断片が検出されたが、遺伝子が欠失した菌株においては１４１４ｂｐのサイズの断片が検出された。
【００８８】
また、ＷｈｉＢ−ファミリータンパク質をコードする遺伝子が弱化した菌株は、ｍｉｓｍａｔｃｈ ＰＣＲにより選択した。配列番号１４及び配列番号６を用いてＡＴＧ→ＴＴＧ変異を選択し、配列番号１５及び配列番号６を用いてＡＴＧ→ＧＴＧ変異を選択した。配列番号１４と配列番号１５は、それぞれ３’末端に野生型菌株の塩基配列であるＡに代えてそれぞれＴ又はＧを含んでおり、変異がある場合のみＰＣＲ断片が検出されるようにした。ｍｉｓｍａｔｃｈ ＰＣＲにより１次確認した菌株は、遺伝子配列分析により最終確認した。
【００８９】
最終的に、前述したように得られたＷｈｉＢ−ファミリータンパク質をコードする遺伝子が欠失した菌株を「ＣＮ０２−１５４５」と命名し、開始コドンがＴＴＧ形態に置換されて前記遺伝子が弱化した菌株を「ＣＪＸ−１５４６」と命名し、開始コドンがＧＴＧ形態に置換されて前記遺伝子が弱化した菌株を「ＣＪＸ−１５４７」と命名した。
【００９０】
なお、菌株の作製のために用いたプライマーの配列を表２に示す。
【００９１】
【表２】
2021511062.tif 000003
【００９２】
一方、前記ＣＮ０２−１５４５菌株は、ブダペスト条約上の寄託機関である韓国微生物保存センター（ＫＣＣＭ）に２０１７年１１月７日付けで寄託番号ＫＣＣＭ１２１５２Ｐとして国際寄託した。
【００９３】
実施例２−２：ＷｈｉＢ−ファミリータンパク質が不活性化された菌株のＸＭＰ生産能の評価
プリンヌクレオチドのうちＸＭＰを生産するコリネバクテリウム・スタティオニスＫＣＣＭ−１０５３０、並びに実施例２−１で作製したＣＮ０２−１５４５、ＣＪＸ−１５４６及びＣＪＸ−１５４７菌株のＸＭＰ生産能を測定するために、次の培養方法を用いた。
【００９４】
下記種培地５ｍｌを直径１８ｍｍの試験管に分注し、常法に従って加圧殺菌し、その後使用菌株を接種し、１８０ｒｐｍ、３０℃で１８時間振盪培養して種培養液として用いた。発酵培地のうち本培地と別途殺菌培地をそれぞれ常法に従って加圧殺菌し、予め加圧殺菌しておいた容量５００ｍｌの振盪用三角フラスコに２９ｍｌ、１０ｍｌずつ分注し、種培養液１ｍｌを植菌して７２時間培養した。回転数２００ｒｐｍ、温度３０℃に調節した。
【００９５】
用いた培地の組成は次の通りであり、培養完了後にＨＰＬＣを用いた方法によりＸＭＰの生産量を測定した。その結果を表３に示す。ＸＭＰ蓄積濃度は「５'−キサンチル酸ナトリウム・７Ｈ2Ｏ」で表した。
ＸＭＰフラスコ種培地
グルコース３０ｇ／Ｌ，ペプトン１５ｇ／Ｌ，酵母エキス１５ｇ／Ｌ，塩化ナトリウム２．５ｇ／Ｌ，ウレア３ｇ／Ｌ，アデニン１５０ｍｇ／Ｌ，グアニン１５０ｍｇ／Ｌ，ｐＨ７．２
ＸＭＰフラスコ生産培地（本培地）
グルコース６０ｇ／Ｌ，硫酸マグネシウム１０ｇ／Ｌ，塩化カルシウム１０ｍｇ／Ｌ，硫酸鉄２０ｍｇ／Ｌ，硫酸マンガン１０ｍｇ／Ｌ，硫酸亜鉛１０ｍｇ／Ｌ，硫酸銅１ｍｇ／Ｌ，ビオチン１００ｕｇ／Ｌ，チアミン５ｍｇ／Ｌ，アデニン３０ｍｇ／Ｌ，グアニン３０ｍｇ／Ｌ，ｐＨ７．２
ＸＭＰフラスコ生産培地（別途殺菌培地）
リン酸二水素カリウム１０ｇ／Ｌ，リン酸水素二カリウム１０ｇ／Ｌ，ウレア７ｇ／Ｌ，硫酸アンモニウム５ｇ／Ｌ
【００９６】
【表３】
2021511062.tif 000004
【００９７】
表３において、生産性は、培養後４８時間の時点での単位時間当たりのＸＭＰ生産量を示す。
【００９８】
表３に示すように、親株ＫＣＣＭ１０５３０菌株はフラスコ培養終了後に１１．８ｇ／ＬのＸＭＰを生産し、ＸＭＰ生産量を親株ＫＣＣＭ１０５３０と比較すると、ＣＮ０２−１５４５は１．３ｇ／Ｌ増加し、ＣＪＸ−１５４６は０．５ｇ／Ｌ増加し、ＣＪＸ−１５４７は０．７ｇ／Ｌ増加することが確認された。これは、ＸＭＰ生産量が親株に比べてそれぞれ１１％、４％、６％向上したものである。
【００９９】
また、親株ＫＣＣＭ１０５３０菌株は０．１４８ｇ／Ｌ／ｈｒの生産性を示すのに対して、ＣＮ０２−１５４５は０．１９１ｇ／Ｌ／ｈｒ、ＣＪＸ−１５４６は０．１８８ｇ／Ｌ／ｈｒ、ＣＪＸ−１５４７は０．１９８ｇ／Ｌ／ｈｒの生産性を示すことが確認された。これは、ＸＭＰ生産性が親株に比べてそれぞれ２９％、２７％、３４％向上したものである。
【０１００】
これらの結果は、本発明のＷｈｉＢ−ファミリータンパク質を不活性化するとプリンヌクレオチドの生産が増加することを示唆するものである。
【実施例３】
【０１０１】
プリン生合成経路遺伝子が強化されたプリンヌクレオチドを生産する変異菌株を用いた、ＷｈｉＢ−ファミリータンパク質が不活性化された菌株の作製及びそのプリンヌクレオチド生産能の評価
実施例３−１：プリンヌクレオチドのうちＸＭＰを生産する変異菌株を用いた、ＷｈｉＢ−ファミリータンパク質が不活性化された菌株の作製
プリン生合成経路遺伝子が強化されたＸＭＰ生産菌株を用いて、ＷｈｉＢ−ファミリータンパク質をコードする遺伝子が不活性化された菌株を作製した。具体的には、プリン生合成経路遺伝子が強化されたＸＭＰ生産菌株は、ＫＣＣＭ−１０５３０にＰｕｒＦが強化された菌株であり、ｐｕｒＦ遺伝子の開始コドンＧＴＧがＡＴＧに変更された菌株である。前記プリン生合成経路遺伝子であるｐｕｒＦが強化されたＫＣＣＭ−１０５３０菌株をＣＪＸ−１５４４［ＫＣＣＭ−１０５３０＿ｐｕｒＦ（ｇ１ａ）］と命名した。前記ＣＪＸ−１５４４［ＫＣＣＭ−１０５３０＿ｐｕｒＦ（ｇ１ａ）］菌株に実施例１で作製した組換えベクターｐＤＺ−ｄｅｌｅｔｉｏｎベクターをエレクトロポレーションにより形質転換し、その後カナマイシン２５ｍｇ／Ｌを含有する選択培地で生長したコロニーを１次選択した。
【０１０２】
その後、前記菌株の内在性遺伝子と前記ベクターに含まれるポリヌクレオチドの相同性を用いた２次交差過程を経て、ＷｈｉＢ−ファミリータンパク質をコードする遺伝子が欠失した菌株を得た。なお、ＷｈｉＢ−ファミリータンパク質をコードする遺伝子が欠失した菌株は、実施例２と同様に、配列番号１３及び配列番号６を用いて確認した。
【０１０３】
最終的に、前述したように得られたＷｈｉＢ−ファミリータンパク質をコードする遺伝子が欠失した菌株を「ＣＪＸ−１５５３」と命名した。
【０１０４】
実施例３−２：ＷｈｉＢ−ファミリータンパク質をコードする遺伝子が不活性化された菌株のプリンヌクレオチド（ＸＭＰ）生産能の評価
プリン生合成経路遺伝子であるｐｕｒＦが強化されたＣＪＸ−１５４４、及び実施例３−１で作製したＣＪＸ−１５５３菌株のＸＭＰ生産能を測定するために、実施例２−２の培養方法を用いた。培養完了後にＨＰＬＣを用いた方法によりＸＭＰの生産量を測定した。その結果を表４に示す。
【０１０５】
【表４】
2021511062.tif 000005
【０１０６】
表４において、生産性は、培養後４８時間の時点での単位時間当たりのＸＭＰ生産量を示す。
【０１０７】
表４に示すように、プリン生合成経路因子であるｐｕｒＦが強化された親株ＣＪＸ−１５４４に比べて、ＣＪＸ−１５５３菌株はＸＭＰ生産量が１．５ｇ／Ｌ増加することが確認された。これは、ＸＭＰ生産量が親株ＣＪＸ−１５４４に比べて１０．７％向上したものである。
【０１０８】
また、親株ＣＪＸ−１５４４菌株は０．１８３ｇ／Ｌ／ｈｒの生産性を示すのに対して、ＣＪＸ−１５５３は０．２１２ｇ／Ｌ／ｈｒの生産性を示すことが確認された。これは、ＸＭＰ生産性が親株ＣＪＸ−１５４４に比べて１６％向上したものである。
【実施例４】
【０１０９】
プリンヌクレオチドを生産する野生型菌株を用いた、ＷｈｉＢ−ファミリータンパク質が不活性化された菌株の作製及びそのプリンヌクレオチド生産能の評価
実施例４−１：プリンヌクレオチドのうちＩＭＰを生産する野生型由来の菌株を用いた、ＷｈｉＢ−ファミリータンパク質が不活性化された菌株の作製
コリネバクテリウム・スタティオニスＫＣＣＭ−１０６１０（特許文献５）に実施例１で作製した２種のベクター（ｐＤＺ−ａ１ｔ及びｐＤＺ−ａ１ｇ）をエレクトロポレーションによりそれぞれ独立して形質転換し、その後カナマイシン２５ｍｇ／Ｌを含有する選択培地で生長したコロニーを１次選択した。
【０１１０】
その後、前記菌株の内在性遺伝子と前記ベクターに含まれるポリヌクレオチド間の相同性を用いた２次交差過程を経て、ＷｈｉＢ−ファミリータンパク質をコードする遺伝子の開始コドンが弱化した形態（ＡＴＧ→ＴＴＧ又はＡＴＧ→ＧＴＧ）に改変された菌株を得た。
【０１１１】
ＷｈｉＢ−ファミリータンパク質をコードする遺伝子が弱化した菌株は、ｍｉｓｍａｔｃｈ ＰＣＲにより選択した。配列番号１４及び配列番号６を用いてＡＴＧ→ＴＴＧ変異を選択し、配列番号１５及び配列番号６を用いてＡＴＧ→ＧＴＧ変異を選択した。配列番号１４と配列番号１５は、それぞれ３’末端に野生型菌株の塩基配列でありＡに代えてそれぞれＴ又はＧを含んでおり、変異がある場合のみＰＣＲ断片が検出されるようにした。ｍｉｓｍａｔｃｈ ＰＣＲにより１次確認した菌株は、遺伝子配列分析により最終確認した。
【０１１２】
最終的に、前述したように得られたＷｈｉＢ−ファミリータンパク質をコードする遺伝子の開始コドンがＴＴＧ形態に置換されて前記遺伝子が弱化した菌株を「ＣＪＩ−２０７８」と命名し、開始コドンがＧＴＧ形態に置換されて前記遺伝子が弱化した菌株を「ＣＪＩ−２０７７」と命名した。
【０１１３】
実施例４−２：ＷｈｉＢ−ファミリータンパク質が不活性化された菌株のプリンヌクレオチド（ＩＭＰ）生産能の評価
プリンヌクレオチドのうちＩＭＰを生産する菌株であるコリネバクテリウム・スタティオニスＫＣＣＭ−１０６１０、並びに実施例４−１で作製したＣＪＩ−２０７８及びＣＪＩ−２０７７菌株のＩＭＰ生産能を測定するために、次の培養方法を用いた。
【０１１４】
加圧殺菌した試験管（直径１８ｍｍ）に種培地５ｍｌを接種し、３０℃の温度で２４時間振盪培養して種培養液として用いた。生産培地２９ｍｌを２５０ｍｌ振盪用三角フラスコに分注し、１２１℃の温度で１５分間加圧殺菌し、その後種培養液２ｍｌを接種して４〜５日間培養した。培養条件は、回転数１７０ｒｐｍ、温度３０℃、ｐＨ７．５に調節した。
【０１１５】
用いた培地の組成は次の通りであり、培養完了後にＨＰＬＣを用いた方法によりＩＭＰの生産量を測定した。その結果を表５に示す。
ＩＭＰ種培地
グルコース１０ｇ／Ｌ，ペプトン１０ｇ／Ｌ，肉汁１０ｇ／Ｌ，酵母エキス１０ｇ／Ｌ，塩化ナトリウム２．５ｇ／Ｌ，アデニン１００ｍｇ／Ｌ，グアニン１００ｍｇ／Ｌ，ｐＨ７．２
ＩＭＰフラスコ生産培地
グルタミン酸ナトリウム１ｇ／Ｌ，塩化アンモニウム１０ｇ／Ｌ，硫酸マグネシウム１２ｇ／Ｌ，塩化カルシウム０．１ｇ／Ｌ，硫酸鉄２０ｍｇ／Ｌ，硫酸マンガン２０ｍｇ／Ｌ，硫酸亜鉛２０ｍｇ／Ｌ，硫酸銅５ｍｇ／Ｌ，Ｌ−システイン２３ｍｇ／Ｌ，アラニン２４ｍｇ／Ｌ，ニコチン酸８ｍｇ／Ｌ，ビオチン４５μｇ／Ｌ，チアミン塩酸塩５ｍｇ／Ｌ，アデニン３０ｍｇ／Ｌ，リン酸（８５％）１９ｇ／Ｌ，グルコース２６ｇ／Ｌ，フルクトース１４ｇ／Ｌ添加
【０１１６】
【表５】
2021511062.tif 000006
【０１１７】
表５に示すように、ＩＭＰ生産量を親株ＫＣＣＭ−１０６１０と比較すると、ＣＪＩ−２０７８菌株は０．５ｇ／Ｌ増加し、ＣＪＩ−２０７７は０．２ｇ／Ｌ増加することが確認された。これは、ＩＭＰ生産量が親株に比べてそれぞれ４．５％、１．８％向上したものである。
【実施例５】
【０１１８】
プリン生合成経路遺伝子が強化されたプリンヌクレオチドを生産する変異菌株を用いた、ＷｈｉＢ−ファミリータンパク質が不活性化された菌株の作製及びそのプリンヌクレオチド生産能の評価
実施例５−１：プリンヌクレオチドのうちＩＭＰを生産する変異菌株を用いた、ＷｈｉＢ−ファミリータンパク質が不活性化された菌株の作製
プリン生合成経路遺伝子が強化されたＩＭＰ生産菌株を用いて、ＷｈｉＢ−ファミリータンパク質が不活性化された菌株を作製した。具体的には、プリン生合成経路遺伝子が強化されたＩＭＰ生産菌株は、ＫＣＣＭ−１０６１０にプリン生合成経路遺伝子であるｐｕｒＦが強化された菌株であり、ｐｕｒＦ遺伝子の開始コドンＧＴＧがＡＴＧに変更された菌株である。前記プリン生合成経路遺伝子であるｐｕｒＦが強化されたＫＣＣＭ−１０６１０菌株をＣＪＩ−１９６４［ＫＣＣＭ−１０６１０＿ｐｕｒＦ（ｇ１ａ）］と命名した。前記ＣＪＩ−１９６４［ＫＣＣＭ−１０６１０＿ｐｕｒＦ（ｇ１ａ）］菌株に実施例１で作製した２種のベクター（ｐＤＺ−ａ１ｔ及びｐＤＺ−ａ１ｇ）をエレクトロポレーションにより形質転換し、実施例４−１と同様に、ＷｈｉＢ−ファミリータンパク質をコードする遺伝子の開始コドンが弱化した形態（ＡＴＧ→ＴＴＧ又はＡＴＧ→ＧＴＧ）に改変された菌株を得た。
【０１１９】
最終的に、前述したように得られたＷｈｉＢ−ファミリータンパク質をコードする遺伝子の開始コドンがＴＴＧ形態に置換されて前記遺伝子が弱化した菌株を「ＣＪＩ−２０８１」と命名し、開始コドンがＧＴＧ形態に置換されて前記遺伝子が弱化した菌株を「ＣＪＩ−２０８０」と命名した。
【０１２０】
実施例５−２：ＷｈｉＢ−ファミリータンパク質が不活性化された菌株のプリンヌクレオチド（ＩＭＰ）生産能の評価
プリン生合成経路遺伝子が強化されたＣＪＩ−１９６４菌株、並びに実施例５−１で作製したＣＪＩ−２０８１及びＣＪＩ−２０８０菌株のＩＭＰ生産能を測定するために、実施例４−２の培養方法を用いた。培養完了後にＨＰＬＣを用いた方法によりＩＭＰの生産量を測定した。その結果を表６に示す。
【０１２１】
【表６】
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【０１２２】
表６に示すように、ＩＭＰ生産量を親株ＣＪＩ−１９６４と比較すると、ＣＪＩ−２０８１菌株は０．９ｇ／Ｌ増加し、ＣＪＩ−２０８０は０．７ｇ／Ｌ増加することが確認された。これは、ＩＭＰ生産量が親株ＣＪＩ−１９６４に比べてそれぞれ７．８％、６．１％向上したものである。
【０１２３】
すなわち、ＷｈｉＢ−ファミリータンパク質転写調節因子を不活性化すると、親株又は非変型微生物に比べてプリンヌクレオチドを高収率で生産できることが確認された。また、これらの結果は、ＷｈｉＢ−ファミリータンパク質を不活性化すると、親株又は非変型微生物に比べてプリンヌクレオチドを高収率で生産できることを示唆するものである。
【０１２４】
以上の説明から、本発明の属する技術分野の当業者であれば、本発明がその技術的思想や必須の特徴を変更することなく、他の具体的な形態で実施できることを理解するであろう。なお、前記実施例はあくまで例示的なものであり、限定的なものでないことを理解すべきである。本発明には、明細書ではなく請求の範囲の意味及び範囲とその等価概念から導かれるあらゆる変更や変形された形態が含まれるものと解釈すべきである。
【０１２５】
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【配列表】
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【国際調査報告】
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