(57)【要約】Ｃ３の消費またはＣ３ａの産生をインビボおよびインビトロで検出することにより、補体Ｃ３転換酵素のプロテアーゼ活性を測定するためのスループットの高い方法が本明細書で提供される。【特許請求の範囲】
【請求項１】
生体試料中のＣ３ａを検出する方法であって、
（ａ）前記生体試料をヒトＣ３ａに結合する第一の抗体および第二の抗体とともにインキュベートすることであって、前記第一の抗体はネオエピトープに結合するが、前記第二の抗体はネオエピトープに結合せず、かつ前記抗体がＦＲＥＴペアであることと、
（ｂ）前記ＦＲＥＴ信号を検出するために蛍光共鳴エネルギー移動（ＦＲＥＴ）を実施し、これによって前記生体試料中のＣ３ａを検出することと、を含む、方法。
【請求項２】
生体試料中のＣ３を検出する方法であって、
（ａ）前記生体試料をヒトＣ３に結合する第一の抗体および第二の抗体とともにインキュベートすることであって、前記第一の抗体はＣ３ａ上のエピトープにも結合し、かつ前記第二の抗体はＣ３ｂ上のエピトープにも結合し、かつ前記抗体がＦＲＥＴペアであることと、
（ｂ）前記ＦＲＥＴ信号を検出するために蛍光共鳴エネルギー移動（ＦＲＥＴ）を実施し、これによって前記生体試料中のＣ３を検出することと、を含む、方法。
【請求項３】
前記第一の抗体および第二の抗体のうちの少なくとも１つが、配列番号７のアミノ酸配列を含む重鎖可変領域および配列番号８のアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域を有する抗体によって認識されるエピトープに結合する、請求項１または２に記載の方法。
【請求項４】
前記第一の抗体および第二の抗体のうちの少なくとも１つが、それぞれ配列番号１、２、および３で表される前記重鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２、およびＣＤＲ３アミノ酸配列を含み、かつそれぞれ配列番号４、５、および６で表される前記軽鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２、およびＣＤＲ３アミノ酸配列を含む、請求項１または２に記載の方法。
【請求項５】
前記第一の抗体および第二の抗体のうちの少なくとも１つが、配列番号７で表される前記重鎖可変領域アミノ酸配列および配列番号８で表される前記軽鎖可変領域アミノ酸配列を含む、請求項１または２に記載の方法。
【請求項６】
時間経過にわたってステップ（ａ）およびステップ（ｂ）を繰り返すことをさらに含む、請求項１〜５のいずれか一項に記載の方法。
【請求項７】
（ｃ）前記ＦＲＥＴ信号を基準曲線と比較することによって、前記生体試料中のＣ３ａまたはＣ３の量を定量化することをさらに含む、請求項１〜５のいずれか一項に記載の方法。
【請求項８】
時間経過にわたって、ステップ（ａ）、ステップ（ｂ）、およびステップ（ｃ）を繰り返すことをさらに含む、請求項７に記載の方法。
【請求項９】
前記第一の抗体および第二の抗体のうちの一方が供与体発蛍光団で標識され、前記第一の抗体および第二の抗体のうちのもう一方が受容体発蛍光団で標識される、請求項１〜８のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１０】
前記供与体発蛍光団がテルビウムクリプテート色素である、請求項９に記載の方法。
【請求項１１】
前記受容体発蛍光団がｄ２色素である、請求項９に記載の方法。
【請求項１２】
前記供与体発蛍光団が３００〜６００ｎｍで励起される、請求項９に記載の方法。
【請求項１３】
前記供与体発蛍光団からの前記信号が４００〜７００ｎｍで測定される、請求項９に記載の方法。
【請求項１４】
前記受容体発蛍光団からの前記信号が４００〜７００ｎｍで測定される、請求項９に記載の方法。
【請求項１５】
前記抗体が、相互の１０〜１００Å以内で結合する、請求項１〜１４のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１６】
前記抗体が、相互の５０〜９０Å以内で結合する、請求項１〜１５のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１７】
前記ＦＲＥＴが時間分解蛍光エネルギー移動（ＴＲ−ＦＲＥＴ）である、請求項１〜１６のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１８】
前記ステップ（ａ）の前に、前記生体試料が転換酵素で処理される、請求項１〜１７のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１９】
ステップ（ａ）の前に、前記生体試料がコブラ毒因子、因子Ｂ、および因子Ｄで処理される、請求項１〜１８のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２０】
前記生体試料が、ヒト血清、血漿、細胞上清、細胞溶解物、または尿である、請求項１〜１９のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２１】
前記生体試料がヒト患者からのものである、請求項１〜２０のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２２】
前記生体試料が補体関連疾患を患うヒト患者からのものである、請求項１〜２１のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２３】
前記生体試料が、ループス腎炎、デンスデポジット病、Ｃ３糸球体腎炎、ＩｇＡ腎症、膜性腎症、ＣＯＰＤ、または喘息を患うヒト患者からのものである、請求項１〜２２のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２４】
生体試料中のＣ３ａを検出する方法であって、
（ａ）前記生体試料をヒトＣ３ａに結合する第一の抗体および第二の抗体とともにインキュベートすることであって、前記第一の抗体はネオエピトープに結合するが、前記第二の抗体はネオエピトープに結合せず、かつ前記抗体がＦＲＥＴペアであることと、
（ｂ）前記ＦＲＥＴ信号を検出するために蛍光共鳴エネルギー移動（ＦＲＥＴ）を実施し、これによって前記生体試料中のＣ３ａを検出することと、
（ｃ）前記ＦＲＥＴ信号を基準曲線と比較することによって、前記生体試料中のＣ３ａの量を定量化することと、
（ｄ）時間経過にわたってステップ（ａ）、（ｂ）、および（ｃ）を繰り返すことと、を含む、方法。
【請求項２５】
生体試料中のＣ３を検出する方法であって、
（ａ）前記生体試料をヒトＣ３に結合する第一の抗体および第二の抗体とともにインキュベートすることであって、前記第一の抗体がＣ３ａ上のエピトープに結合し、かつ前記第二の抗体がＣ３ｂ上のエピトープに結合し、かつ前記抗体がＦＲＥＴペアであることと、
（ｂ）前記ＦＲＥＴ信号を検出するために蛍光共鳴エネルギー移動（ＦＲＥＴ）を実施し、これによって前記生体試料中のＣ３を検出することと、
（ｃ）前記ＦＲＥＴ信号を基準曲線と比較することによって、前記生体試料中のＣ３の量を定量化することと、
（ｄ）時間経過にわたってステップ（ａ）、（ｂ）、および（ｃ）を繰り返すことと、を含む、方法。
【請求項２６】
前記第一の抗体および第二の抗体のうちの少なくとも１つが、配列番号７のアミノ酸配列を含む重鎖可変領域および配列番号８のアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域を有する抗体によって認識されるエピトープに結合する、請求項２４または２５に記載の方法。
【請求項２７】
前記第一の抗体および第二の抗体のうちの少なくとも１つが、それぞれ配列番号１、２、および３で表される前記重鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２、およびＣＤＲ３アミノ酸配列を含み、かつそれぞれ配列番号４、５、および６で表される前記軽鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２、およびＣＤＲ３アミノ酸配列を含む、請求項２４または２５に記載の方法。
【請求項２８】
前記第一の抗体および第二の抗体のうちの少なくとも１つが、配列番号７で表される前記重鎖可変領域アミノ酸配列および配列番号８で表される前記軽鎖可変領域アミノ酸配列を含む、請求項２４または２５に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
（関連出願の相互参照）
本出願は、２０１８年３月２６日に出願された米国仮特許出願第６２／６４８，１２２号の優先権の利益を主張するものであり、その内容は参照によりその全体が本明細書に組み込まれる。
【０００２】
（配列表）
本出願は配列表を含有し、この配列表はＡＳＣＩＩフォーマットで電子的に提出されたものであり、かつその全体が参照により本明細書に組み込まれる。このＡＳＣＩＩコピーは２０１９年３月１１日に作成され、ＡＸＪ−２４３ＰＣ＿ＳＬ．ｔｘｔという名称であり、サイズは１０，１１５バイトである。
【背景技術】
【０００３】
補体系の代替経路は、免疫学的、炎症、凝固、および神経変性のプロセスにおいて役割を果たす。これは、加齢黄斑変性症、敗血症、癌、発作性夜間ヘモグロビン尿症（「ＰＮＨ」）、および非典型溶血性尿毒症症候群（「ａＨＵＳ」）などのいくつかのヒト疾患に関与する。補体依存性薬物、治療用Ｃ５抗体（Ｓｏｌｉｒｉｓ（登録商標））は、ＰＮＨおよびａＨＵＳに対する最初の承認された治療である。
【０００４】
代替経路は、それぞれＣ３およびＣ５転換酵素による補体成分Ｃ３の切断産物Ｃ３ａおよびＣ３ｂへの切断、ならびにＣ５の切断産物Ｃ５ａおよびＣ５ｂへの切断に至る一連の酵素段階に依存する。代替経路の調節因子は、中でも、Ｃ３およびＣ５転換酵素の形成および活性を防止または促進することができる。
【０００５】
インビトロおよびインビボでのその調節および活性を含むＣ３転換酵素を研究する方法は、しばしばウェスタンブロッティング技術または市販のＥＬＩＳＡを使用する基質（Ｃ３）または産物（Ｃ３ａ、Ｃ３ｂ）の検出を必要とする。しかしながら、これらの方法はスループットが低く、時間と労力を要し、かつしばしば信頼性が低い。
【０００６】
したがって、補体系を研究し、かつ補体調節因子を特定する改善された方法に対するニーズがある。これは次に、新しい薬物の開発を助け、かつ患者集団を階層化するためのバイオマーカーの発見だけでなく、補体媒介性疾患の進行または改善の測定を促進する可能性がある。
【発明の概要】
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本明細書に開示される方法は、インビボおよびインビトロでのＣ３の消費またはＣ３ａの産生によって示されるような、補体Ｃ３転換酵素のプロテアーゼ活性を測定するためのスループットの高い、信頼性の高い手段を提供することにより上述の問題を解決する。
【０００８】
一態様では、方法は、（ａ）生体試料をヒトＣ３ａに結合する第一の抗体および第二の抗体とともにインキュベートすることであって、第一の抗体はネオエピトープと結合するが、第二の抗体は結合せず、かつ抗体がＦＲＥＴペアであることと、（ｂ）ＦＲＥＴ信号を検出するために蛍光共鳴エネルギー移動（ＦＲＥＴ）を実施し、これによって生体試料中のＣ３ａを検出することと、によって生体試料中のＣ３ａを検出することを含む。一実施形態では、方法は、時間経過にわたってステップ（ａ）および（ｂ）を繰り返すことをさらに含む。別の実施形態では、方法は、（ｃ）ＦＲＥＴ信号を基準曲線と比較することによって生体試料中のＣ３ａの量を定量化することをさらに含む。さらに別の実施形態では、方法は、時間経過にわたってステップ（ａ）、（ｂ）、および（ｃ）を繰り返すことをさらに含む。
【０００９】
別の態様では、方法は、（ａ）生体試料をヒトＣ３に結合する第一の抗体および第二の抗体とともにインキュベートすることであって、第一の抗体がＣ３ａ上のエピトープと結合し、かつ第二の抗体がＣ３ｂ上のエピトープと結合し、かつ抗体がＦＲＥＴペアであることと、（ｂ）ＦＲＥＴ信号を検出するために蛍光共鳴エネルギー移動（ＦＲＥＴ）を実施し、これによって生体試料中のＣ３を検出することと、によって生体試料中のＣ３を検出することを含む。一実施形態では、方法は、時間経過にわたってステップ（ａ）および（ｂ）を繰り返すことをさらに含む。別の実施形態では、方法は、（ｃ）ＦＲＥＴ信号を基準曲線と比較することによって生体試料中のＣ３の量を定量化することをさらに含む。さらに別の実施形態では、方法は、時間経過にわたってステップ（ａ）、（ｂ）、および（ｃ）を繰り返すことをさらに含む。
【００１０】
別の実施形態では、第一の抗体および第二の抗体のうちの少なくとも１つは、配列番号７のアミノ酸配列を含む重鎖可変領域および配列番号８のアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域を有する抗体によって認識されるエピトープに結合する。
【００１１】
別の実施形態では、第一の抗体および第二の抗体のうちの少なくとも１つは、それぞれ配列番号１、２、および３で表される重鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２、およびＣＤＲ３アミノ酸配列を含み、かつそれぞれ配列番号４、５、および６で表される軽鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２、およびＣＤＲ３アミノ酸配列を含む。
【００１２】
さらに別の実施形態では、第一の抗体および第二の抗体のうちの少なくとも１つは、配列番号７で表される重鎖可変領域アミノ酸配列および配列番号８で表される軽鎖可変領域アミノ酸配列を含む。
【００１３】
一実施形態では、第一の抗体および第二の抗体のうちの一方は供与体発蛍光団で標識され、かつ第一の抗体および第二の抗体のうちのもう一方は受容体発蛍光団で標識される。特定の実施形態では、供与体発蛍光団はテルビウムクリプテート色素である。別の特定の実施形態では、受容体発蛍光団はｄ２色素である。
【００１４】
一実施形態では、供与体発蛍光団は３００〜６００ｎｍで励起される。別の実施形態では、供与体発蛍光団からの信号は４００〜７００ｎｍで測定される。別の実施形態では、受容体発蛍光団からの信号は４００〜７００ｎｍで測定される。一実施形態では、抗体は相互の１０〜１００Å以内で結合する。別の実施形態では、抗体は相互の５０〜９０Å以内で結合する。
【００１５】
特定の実施形態では、ＦＲＥＴは時間分解蛍光エネルギー移動（ＴＲ−ＦＲＥＴ）である。
【００１６】
別の実施形態では、方法はステップ（ａ）の前に生体試料を転換酵素で処理することをさらに含む。別の実施形態では、方法はステップ（ａ）の前に生体試料をコブラ毒因子、因子Ｂ、および因子Ｄで処理することをさらに含む。
【００１７】
別の実施形態では、生体試料は、ヒト血清、血漿、細胞上清、細胞溶解物、または尿である。別の実施形態では、生体試料は、補体関連疾患を患うヒト患者からのものである。さらに別の実施形態では、生体試料は、ループス腎炎、デンスデポジット病、Ｃ３糸球体腎炎、ＩｇＡ腎症、膜性腎症、ＣＯＰＤ、または喘息を患うヒト患者からのものである。
【図面の簡単な説明】
【００１８】
【図１Ａ】図１Ａおよび図１Ｂは、ＦＲＥＴを使用してそれぞれＣ３ａおよびＣ３を検出する方法の概略図である。
【図１Ｂ】同上。
【図２Ａ】図２Ａおよび図２Ｂは、それぞれＣ３ａおよびＣ３を検出するためのＦＲＥＴアッセイに対する抗体ペアの選択を示す。
【図２Ｂ】同上。
【図３】図３は、蛍光共鳴エネルギー移動（ＦＲＥＴ）を使用する、無傷のＣ３およびＣ３ｂを含む試料中の精製されたＣ３ａの検出を示す。
【図４】図４Ａおよび図４Ｂは、Ｃ３ａ蓄積を検出するための、ＦＲＥＴを使用した時間経過にわたるＣ３切断を示すグラフである。
【図５】図５は、ヒトの尿の滴定における様々な量のＣ３ａの検出を示す。
【図６】図６Ａは、ヒト血清中のＣ３の時間依存的切断を示すゲルである。図６Ｂは、時間経過にわたるヒト血清中のＣ３ａのＦＲＥＴ検出を示す。
【図７】図７は、Ｃ３ａのＦＲＥＴ信号の基準曲線に対する比較によるヒト血清中のＣ３の定量を示す。
【発明を実施するための形態】
【００１９】
Ｉ．定義
本記述がより容易に理解されうるように、最初にある特定の用語を定義する。発明を実施するための形態を通して、追加的な定義が表される。別途定義されていない限り、本明細書で使用されるすべての技術用語および科学用語は、当業者によって一般的に理解される意味と同一の意味を有し、また従来の免疫学、タンパク質化学、生化学、組み換えＤＮＡ技法、および薬理学の方法が採用される。
【００２０】
本明細書で使用される場合、「抗体」という用語は、少なくとも１つの抗体由来抗原結合部位（例えば、ＶＨ／ＶＬ領域もしくはＦｖ、またはＣＤＲ）を含み、かつ全抗体および任意の抗原結合断片（すなわち、「抗原結合部分」）またはその単鎖を含むポリペプチドを指す。抗体は、公知の抗体型を含む。例えば、抗体は、ヒト抗体、ヒト化抗体、二特異性抗体、またはキメラ抗体とすることができる。「抗体」全体は、ジスルフィド結合によって相互結合した少なくとも２つの重鎖（Ｈ）と、２つの軽鎖（Ｌ）を含む糖タンパク質を指し、各重鎖は、重鎖可変領域（本明細書ではＶＨと略される）と重鎖定常領域から成り、各軽鎖は、軽鎖可変領域（本明細書ではＶＬと略される）と軽鎖定常領域から成る。ＶＨおよびＶＬ領域は、相補性決定領域（ＣＤＲ）と称される超可変性の領域と、フレームワーク領域（ＦＲ）と称されるより保存された組み込まれた領域へとさらに細分することができる。各ＶＨおよびＶＬは、以下の順序、ＦＲ１、ＣＤＲ１、ＦＲ２、ＣＤＲ２、ＦＲ３、ＣＤＲ３、ＦＲ４でアミノ末端からカルボキシ末端まで配設された３つのＣＤＲおよび４つのＦＲから構成される。重鎖および軽鎖の可変領域は、抗原と相互作用する結合ドメインを含有する。抗体の定常領域は、免疫系の様々な細胞（例えば、エフェクター細胞）および伝統的補体系の第一の成分（Ｃｌｑ）を含む、宿主組織または因子への免疫グロブリンの結合を媒介する場合がある。
【００２１】
ＣＤＲの正確な境界は、異なる方法に従い異なる形で定義することができる。一部の実施形態では、軽鎖可変ドメインまたは重鎖可変ドメイン内のＣＤＲまたはフレームワーク領域の位置は、Ｋａｂａｔ  ｅｔ  ａｌ．［（１９９１）“Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ  ｏｆ  Ｐｒｏｔｅｉｎｓ  ｏｆ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ  Ｉｎｔｅｒｅｓｔ．”ＮＩＨ  Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎ  Ｎｏ．９１−３２４２，Ｕ．Ｓ．Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ  ｏｆ  Ｈｅａｌｔｈ  ａｎｄ  Ｈｕｍａｎ  Ｓｅｒｖｉｃｅｓ，Ｂｅｔｈｅｓｄａ，ＭＤ］によって規定されるとおりとすることができる。そのような場合には、ＣＤＲは、「Ｋａｂａｔ  ＣＤＲ」（例えば、「Ｋａｂａｔ  ＬＣＤＲ２」または「Ｋａｂａｔ  ＨＣＤＲ１」）と称することがある。他の実施形態では、軽鎖可変領域または重鎖可変領域のＣＤＲの位置は、Ｃｈｏｔｈｉａ  ｅｔ  ａｌ．（１９８９）Ｎａｔｕｒｅ  ３４２：８７７−８８３によって規定されているとおりとすることができる。したがって、これらの領域は、「Ｃｈｏｔｈｉａ  ＣＤＲ」（例えば、「Ｃｈｏｔｈｉａ  ＬＣＤＲ２」または「Ｃｈｏｔｈｉａ  ＨＣＤＲ３」）と称することがある。他の実施形態では、軽鎖可変領域および重鎖可変領域のＣＤＲの位置は、ＫａｂａｔとＣｈｏｔｈｉａ（Ｋａｂａｔ−Ｃｈｏｔｈｉａ）を組み合わせた定義によって規定されるとおりとすることができる。そのような実施形態では、これらの領域を「Ｋａｂａｔ−ＣｈｏｔｈｉａコンビＣＤＲ」と称することがある。Ｔｈｏｍａｓ  ｅｔ  ａｌ．［（１９９６）Ｍｏｌ  Ｉｍｍｕｎｏｌ  ３３（１７／１８）：１３８９−１４０１］は、ＫａｂａｔおよびＣｈｏｔｈｉａの定義に準拠するＣＤＲ境界の特定を例示する。他の実施形態では、軽鎖可変ドメインまたは重鎖可変ドメイン内のＣＤＲまたはフレームワーク領域の位置は、国際ＩｍＭｕｎｏＧｅｎｅＴｉｃｓ（ＩＭＧＴ）データベース標準によって規定されるとおりである。Ｍａｒｉｅ−Ｐａｕｌｅ  Ｌｅｆｒａｎｃ  ｅｔ  ａｌ．［（２００３）Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｌ  ＆  Ｃｏｍｐａｒａｔｉｖｅ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ  ２７（１）：５５−７７］は、ＩＭＧＴ基準に準拠する特定およびＣＤＲ境界を例示する。したがって、これらの領域は、「ＩＭＧＴ  ＣＤＲ」（例えば、「ＩＭＧＴ−ＬＣＤＲ２」または「ＩＭＧＴ−ＨＣＤＲ３」）と称することがある。
【００２２】
抗体は以下のアイソタイプ：ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４、ＩｇＭ、ＩｇＡ１、ＩｇＡ２、ＩｇＡｓｅｃ、ＩｇＤ、およびＩｇＥのいずれかとすることもできる。抗体は、天然の抗体であってもよく、またはタンパク質改変技法（例えば、変異、欠失、置換、および／または非抗体部分との複合体化など）によって改変された抗体であってもよい。例えば、抗体は、抗体の特性（例えば、機能的特性）を変化させる１つ以上のバリアントアミノ酸（天然型抗体を比較して）を含んでもよい。例えば、半減期、エフェクター機能、および／または患者内の抗体への免疫反応に影響を与える、多くのそのような改変が当分野で公知である。抗体という用語は、少なくとも１つの抗体由来の抗原結合部位を含む、人工の、または改変されたポリペプチド構築体も含む。
【００２３】
本明細書で使用される場合、「ヒト抗体」という用語は、フレームワーク領域およびＣＤＲ領域の両方が、例えば、Ｋａｂａｔらによって記述されるヒト生殖系列イムノグロブリン配列に由来する可変領域を有する抗体を含むことが意図されている。（Ｋａｂａｔ，ｅｔ  ａｌ．（１９９１）Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ  ｏｆ  ｐｒｏｔｅｉｎｓ  ｏｆ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ  Ｉｎｔｅｒｅｓｔ，Ｆｉｆｔｈ  Ｅｄｉｔｉｏｎ，Ｕ．Ｓ．Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ  ｏｆ  Ｈｅａｌｔｈ  ａｎｄ  Ｈｕｍａｎ  Ｓｅｒｖｉｃｅｓ，ＮＩＨ  Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎ  Ｎｏ．９１−３２４２を参照のこと）。
【００２４】
本明細書で使用される場合、抗体の「抗原結合部分」（または単に「抗体部分」）という用語は、抗原（例えば、ＣＤ２００）に特異的に結合する能力を保持する抗体の１つ以上の断片、例えば、Ｆａｂ、Ｆａｂ’２、ＳｃＦｖ、ＳＭＩＰ、ＡＦＦＩＢＯＤＹ抗体模倣体（Ａｆｆｉｂｏｄｙ  ＡＢ、スウェーデン、ＡＫＴＩＥＢＯＬＡＧ）、ナノボディ、またはドメイン抗体を指す。抗体の抗原結合機能は、全長抗体の断片によって実施できることが示されている。抗体の「抗原結合部分」という用語内に包含される結合断片の例には、（ｉ）ＶＬ、ＶＨ、ＣＬ、およびＣＨ１ドメインからなる一価断片であるＦａｂ断片、（ｉｉ）ヒンジ領域におけるジスルフィド架橋によって連結された２つのＦａｂ断片を含む二価断片であるＦ（ａｂ’）２断片、（ｉｉｉ）ＶＨおよびＣＨ１ドメインからなるＦｄ断片、と（ｉｖ）抗体の単一アームのＶＬおよびＶＨドメインからなるＦｖ断片と、（ｖ）ＶＨドメインからなるｄＡｂ断片（Ｗａｒｄ  ｅｔ  ａｌ．（１９８９）Ｎａｔｕｒｅ  ３４１：５４４−５４６）と、（ｖｉ）単離された相補性決定領域（ＣＤＲ）と、が含まれる。さらに、Ｆｖ断片、ＶＬ、およびＶＨの２つのドメインは別個の遺伝子によってコードされるが、ＶＬ領域とＶＨ領域とのペアが一価分子を形成する単一のタンパク質鎖として作製されることを可能にする合成リンカーによる組み換え方法を使用して、これらを結合することができる（単鎖Ｆｖ（ｓｃＦｖ）として知られる、例えば、Ｂｉｒｄ  ｅｔ  ａｌ．（１９８８）Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２４２：４２３−４２６、およびＨｕｓｔｏｎ  ｅｔ  ａｌ．（１９８８）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ  ８５：５８７９−５８８３を参照のこと）。抗体の「抗原結合部分」という用語内には、そのような単鎖抗体も包含されることが意図される。ダイアボディなどの単鎖抗体の他の形態も包含される。ダイアボディは、ＶＨドメインとＶＬドメインがその中で単一のポリペプチド鎖上で発現される、二価の二特異性抗体であるが、同一の鎖上の２つのドメイン間でペアリングできるには短すぎるリンカーを使用し、これによってこのドメインを強制的に別の鎖上の相補的ドメインとペアリングさせ、そして２つの抗原結合部位を作り出す（例えば、Ｈｏｌｌｉｇｅｒ，Ｐ．，ｅｔ  ａｌ．（１９９３）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ  ９０：６４４４−６４４８、Ｐｏｌｊａｋ，Ｒ．Ｊ．，ｅｔ  ａｌ．（１９９４）Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ  ２：１１２１−１１２３を参照のこと）。一実施形態では、組成物は、米国特許第６，０９０，３８２号および同第６，２５８，５６２号（各々が参照により本明細書に組み込まれる）に記述される抗原結合部分を含有する。
【００２５】
「モノクローナル抗体」という用語は、実質的に均質な抗体の集団から得られる抗体を指し、すなわち、集団を含む個々の抗体は、少量で存在する場合のある天然の突然変異を除いて同一である。モノクローナル抗体は極めて特異的であり、単一の抗原部位に対して向けられる。モノクローナル抗体は、他の免疫グロブリンによって本質的に汚染されていないハイブリドーマ培養によって合成されうるという点で有利である。「モノクローナル」という修飾語は、抗体の実質的に均質な集団の中にあるという抗体の特徴を示し、任意の特定の方法による抗体の産生を必要とすると解釈されるべきではない。本明細書に開示される処方に準拠して使用されるモノクローナル抗体は、最初に記述されたＫｏｈｌｅｒ，ｅｔ  ａｌ．（１９７５）Ｎａｔｕｒｅ  ２５６：４９５、または当分野で公知の他の方法によるハイブリドーマ方法によって作製されてもよい。「ポリクローナル抗体」は、１つ以上の他の非同一抗体の間で、またはその存在下で産生された抗体である。一般的に、ポリクローナル抗体は、非同一抗体を産生したいくつかの他のＢ−リンパ球の存在下でＢリンパ球から産生される。通常、ポリクローナル抗体は、免疫化した動物から直接的に得られる。
【００２６】
「生体試料」という用語は、ヒト患者から採取された任意の試料を指す。本明細書に記載の方法で使用するための好適な生体試料としては、全血（またはその一部）、血清、血漿、細胞上清、細胞溶解物、または尿が挙げられる。生体試料を、必要に応じて、対象の特定の分析物（例えば、タンパク質）を含有する画分へとさらに分画することができる。例えば、全血試料を血清へと、または特定のタイプのタンパク質を含有する画分へと分画することができる。
【００２７】
本発明の方法を使用して試験される生体試料は、対象から収集された新鮮な試料もしくは凍結試料、または既知の診断、処置、および／もしくは転帰の履歴を有する保存試料を含んでもよい。生体試料を対象から取得することができ、対象は、例えば、補体媒介性障害（例えば、ループス腎炎、デンスデポジット病、Ｃ３糸球体腎炎、ＩｇＡ腎症、膜性腎症、ＣＯＰＤ、または喘息）を有することが疑われる、または発症のリスクがある。生体試料を取得するための任意の好適な方法を採用することができる。
【００２８】
「エピトープ」という用語は当分野で公知であり、また抗体によって認識される抗原の特定の部分を指す。「ネオエピトープ」という用語は、改変された転写、翻訳、転写後修飾、翻訳後修飾、タンパク質分解処理、または凝集に起因して形成される新しいエピトープを指す。したがって、Ｃ３ａに関連して本明細書で使用される場合、「ネオエピトープ」は、Ｃ３転換酵素によるＣ３のタンパク質分解処理によって形成される新しいエピトープを指す。
【００２９】
本明細書で使用される場合、「蛍光共鳴エネルギー移動」という用語は、「フェルスター共鳴エネルギー移動」または「ＦＲＥＴ」としても公知であり、２つの蛍光分子の間で生じるエネルギー移動機構を指す。
【００３０】
本明細書で使用される場合、「発蛍光団」という用語は、特定の波長の光への曝露によって励起された時に異なる波長で光を放射する化合物を指す。本明細書で使用される場合、「発蛍光団」という用語は、染料、蛍光タンパク質、および量子ドットを含むＦＲＥＴに使用することができる当分野で公知の任意の分子を指す。
【００３１】
本明細書で使用される場合、「励起可能な距離」という用語は、供与体分子と受容体分子との間でＦＲＥＴを生じことができる距離を指し、典型的にはこれらが相互の約１０〜１００Å以内にある時である。
【００３２】
本明細書で使用される場合、「ＦＲＥＴペア」は、励起可能な距離内で結合し、かつ重なった供与体放射および受容体吸収スペクトル、ならびに好適な双極子配向を有する発蛍光団で標識される、２つの抗体を指す。
【００３３】
本明細書で使用される場合、「標識」または「標識された」という用語は、抗体上に検出可能な部分（例えば、発蛍光団）を組み込むことを指す。標識は直接的（すなわち、一次標識）であっても、または間接的（すなわち、二次標識）であってもよく、また検出可能な信号を使用して視覚化および／または測定もしくは別の方法で特定することができる。
【００３４】
本開示の他の特徴および利点は、以下の記述、実施例、および請求項から明らかとなろう。
【００３５】
ＩＩ．Ｃ３およびＣ３ａに対する抗体
発蛍光団標識抗体は、Ｃ３およびＣ３ａのＦＲＥＴ検出のために必要とされる。抗体およびその抗原結合断片は、確立されたハイブリドーマおよび組み換え手順に従って生成されてもよい。抗体（例えば、抗Ｃ３、抗Ｃ３ａ、または抗Ｃ３ｂ抗体）またはその抗原結合断片を産生するための好適な方法は、以前に開示されたような確立されたハイブリドーマおよび組み換え手順に従って得られる場合がある（例えば、米国特許第７，４２７，６６５号、同第７，４３５，４１２号、および同第７，４０８，０４１号を参照のこと）。例えば、本明細書に開示される抗体の産生のためのプロセスは、宿主（例えば、大腸菌または哺乳類細胞）を培養することを含み、これはハイブリッドベクターで形質転換されている。ベクターは、抗体タンパク質をコードする第二のＤＮＡ配列に適切な読み取りフレームで連結されたシグナルペプチドをコードする第一のＤＮＡ配列に操作可能に連結されたプロモーターを含有する、１つ以上の発現カセットを含む。次いで、抗体タンパク質を収集し、単離した。随意に、発現カセットは、各々が個別に適切な読み取りフレームでシグナルペプチドに操作可能に連結される抗体タンパク質をコードする、ポリシストロニック（例えば、バイシストロニック）ＤＮＡ配列に操作可能に連結されたプロモーターを含んでもよい。
【００３６】
ハイブリドーマ細胞または哺乳類宿主細胞のインビトロでの増殖は、慣習的な標準培地（例えば、ダルベッコ改変イーグル培地（ＤＭＥＭ）またはＲＰＭＩ  １６４０培地など）を含む好適な培地で実施され、随意に哺乳類血清（例えば、ウシ胎児血清）、または微量元素および成長持続サプリメント（例えば、正常なマウス腹膜滲出細胞、脾臓細胞、骨髄マクロファージ、２−アミノエタノール、インスリン、トランスフェリン、低密度リポタンパク質、オレイン酸、またはこれに類するものなどの支持細胞）によって補充された。細菌細胞または酵母細胞である宿主細胞の増殖も同様に、当分野で公知の好適な培地で実施される。例えば、細菌については、好適な培地としては、ＬＥ、ＮＺＣＹＭ、ＮＺＹＭ、ＮＺＭ、Ｔｅｒｒｉｆｉｃ  Ｂｒｏｔｈ、ＳＯＢ、ＳＯＣ、２ｘＹＴ、またはＭ９最小培地が挙げられる。酵母については、好適な培地としては、培地ＹＰＤ、ＹＥＰＤ、最小培地、または完全最小ドロップアウト培地が挙げられる。
【００３７】
インビトロ産生は、比較的純粋な抗体調製物を提供し、また大量の所望の抗体を得るためのスケールアップを可能にする。細菌細胞、酵母、植物、または哺乳類細胞培養の技法は当分野で公知であり、均質な懸濁培養（例えば、エアリフトリアクターまたは連続攪拌リアクターにおける）、および固定化細胞培養またはエントラップ細胞培養（例えば、中空繊維、マイクロカプセル、アガロースマイクロビーズ上、またはセラミックカートリッジにおける）が挙げられる。
【００３８】
哺乳類細胞をインビボで増殖することによって、大量の所望の抗体を得ることができる。この目的のために、所望の抗体を産生する細胞が、組織適合性哺乳類の中へと注入され、抗体産生腫瘍の増殖が生じる。随意に、動物は、注入の前に炭化水素、特にプリスタン（テトラメチルペンタデカン）などの鉱油でプライミングされる。１〜３週間後、抗体はこれらの哺乳類の体液から単離される。例えば、Ｂａｌｂ／ｃマウスからの抗体を産生する脾臓細胞を用いた好適な骨髄腫細胞の融合によって得られたハイブリドーマ細胞、または所望の抗体を産生するハイブリドーマ細胞株Ｓｐ２／０に由来するトランスフェクトした細胞は、随意にプリスティン（ｐｒｉｓｔｉｎｅ）で前処理されたＢａｌｂ／ｃマウスの中へと腹腔内に注入される。１週間から２週間後、動物から腹水が取られる。
【００３９】
医薬品グレードへの治療用抗体の精製のための技法は、当分野で周知である。例えば、培養上清中または腹水中のイムノグロブリンは、例えば、硫酸アンモニウムを用いた析出、ポリエチレングリコールなどの吸湿性材料に対する透析、選択的膜を通した濾過、またはこれに類するものによって、濃縮されてもよい。必要な場合、および／または所望の場合、抗体は、慣習的なクロマトグラフィー方法、例えば、ゲル濾過、イオン交換クロマトグラフィー、ＤＥＡＥセルロース上でのクロマトグラフィー、および／または（免疫）親和性クロマトグラフィー、例えば、本開示によるＣＬＬ細胞株に由来する１つ以上の表面ポリペプチドを用いた親和性クロマトグラフィー、またはタンパク質−ＡまたはＧによって精製される。
【００４０】
抗体を生成するためのその他の技法については、例えば、Ｋｏｈｌｅｒ  ａｎｄ  Ｍｉｌｓｔｅｉｎ，（１９７５）Ｎａｔｕｒｅ  ２５６：４９５−４９７、米国特許第４，３７６，１１０号、Ｈａｒｌｏｗ  ａｎｄ  Ｌａｎｅ，Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ，（１９８８）Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒに記載されており、その開示は全て参照により本明細書に組み込まれる。組み換え抗体分子の調製のための技法は、上記の参考文献に記載されており、また例えば、国際特許公開公報第９７／０８３２０号、米国特許第５，４２７，９０８号、同第５，５０８，７１７号、Ｓｍｉｔｈ（１９８５）Ｓｃｉｅｎｃｅ，Ｖｏｌ．２２５：１３１５−１３１７、Ｐａｒｍｌｅｙ  ａｎｄ  Ｓｍｉｔｈ（１９８８）Ｇｅｎｅ  ７３：３０５−３１８、Ｄｅ  Ｌａ  Ｃｒｕｚ  ｅｔ  ａｌ．（１９８８）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２６３：４３１８−４３２２、米国特許第５，４０３，４８４号、同第５，２２３，４０９号、国際特許公開公報第８８／０６６３０号、同第９２／１５６７９号、米国特許第５，７８０，２７９号、同第５，５７１，６９８、同第６，０４０，１３６号、Ｄａｖｉｓ  ｅｔ  ａｌ．（１９９９）Ｃａｎｃｅｒ  Ｍｅｔａｓｔａｓｉｓ  Ｒｅｖ．，１８（４）：４２１−５、Ｔａｙｌｏｒ，ｅｔ  ａｌ．（１９９２）Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  ２０：６２８７−６２９５；Ｔｏｍｉｚｕｋａ  ｅｔ  ａｌ．（２０００）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ．Ａｃａｄｅｍｙ  ｏｆ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ  ＵＳＡ  ９７（２）：７２２−７２７にも記載されている（各々の内容は参照により本明細書に組み込まれる）。
【００４１】
本発明での使用に好適な抗Ｃ３、Ｃ３ａ、およびＣ３ｂ抗体（またはそれらに由来するＶＨ／ＶＬドメイン）は、上述の方法または当分野で公知の他の方法を使用して生成することができる。別の方法として、当分野が認識した、または市販されている抗体を使用することができる。一実施形態では、第一の抗体および第二の抗体のうちの少なくとも１つは、それぞれ配列番号１、２、および３で表される重鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２、およびＣＤＲ３アミノ酸配列を含み、かつそれぞれ配列番号４、５、および６で表される軽鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２、およびＣＤＲ３アミノ酸配列を含む。別の実施形態では、第一の抗体および第二の抗体のうちの少なくとも１つは、配列番号７で表される重鎖可変領域アミノ酸配列および配列番号８で表される軽鎖可変領域アミノ酸配列を含む。さらに別の実施形態では、第一の抗体および第二の抗体のうちの少なくとも１つは、配列番号９で表される重鎖アミノ酸配列および配列番号１０で表される軽鎖アミノ酸配列を含む。別の実施形態では、第一の抗体および第二の抗体のうちの少なくとも１つは、配列番号７のアミノ酸配列を含む重鎖可変領域および配列番号８のアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域を有する抗体によって認識されるエピトープに結合する。Ｃ３、Ｃ３ａ、またはＣ３ｂへの結合に対する、これらの抗体のいずれかと競合する抗体もまた使用することができる。
【００４２】
抗体は、公知の技法および試薬を使用して（例えば、発蛍光団で）標識付けすることができる。例えば、抗体標識付けキットは、ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ（米国マサチューセッツ州Ｗａｌｔｈａｍ）、Ｃｉｓｂｉｏ（米国マサチューセッツ州Ｂｅｄｆｏｒｄ）、ＰｅｒｋｉｎＥｌｍｅｒ，Ｉｎｃ．（米国マサチューセッツ州Ｗａｌｔｈａｍ）、およびＡｂｃａｍ（英国Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ）から入手可能である。一般的に、標識付けは、標識（例えば、発蛍光団）を抗体へと共有結合することを含む。ＦＲＥＴに対する発蛍光団標識の選択は、以下でさらに考察する。
【００４３】
ＩＩＩ．蛍光共鳴エネルギー移動（ＦＲＥＴ）
Ｃ３およびＣ３ａに結合した標識付けした抗体を検出するために、蛍光共鳴エネルギー移動（ＦＲＥＴ）が使用される。ＦＲＥＴは、ＦＲＥＴペアの間で生じるエネルギーの移動に基づく。ＦＲＥＴペアとは、重なった供与体放射および受容体吸収スペクトルと、好適な双極子配向とを有する励起可能な距離内に位置する蛍光供与体分子および蛍光受容体分子である。供与体はその特異的な蛍光励起波長で励起され、蛍光エネルギーを受容体分子に伝達する。次いで、供与体は基底状態に戻る。
【００４４】
あらゆるＦＲＥＴの変化は、本明細書に記載の方法で使用することができる。例えば、時間分解ＦＲＥＴ（ＴＲ−ＦＲＥＴ）を使用することができる。ＴＲ−ＦＲＥＴは一般的に、長寿命供与体種（例えば、テルビウムキレート、サマリウム、ユーロピウム、テルビウム、およびジスプロシウム）および好適な受容体種（例えば、フルオレセイン、アロフィコシアニン、およびｄ２色素）を採用し、ＴＲ−ＦＲＥＴ値は、供与体によって生成されるＦＲＥＴ特異的な信号に対する受容体によって生成されるＦＲＥＴ特異的な信号の比として決定される。一実施形態では、ＦＲＥＴは時間分解蛍光エネルギー移動（ＴＲ−ＦＲＥＴ）である。
【００４５】
ＦＲＥＴペアは、標識された一次抗体または標識された二次抗体を含んでもよい。一実施形態では、第一の抗体および第二の抗体のうちの一方は供与体発蛍光団で標識され、かつ第一の抗体および第二の抗体のうちのもう一方は受容体発蛍光団で標識される。ＦＲＥＴ現象の研究に使用可能な供与体受容体ペアは当分野で公知である（例えば、Ｌａｋｏｗｉｃｚ，Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ  ｏｆ  ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ  ｓｐｅｃｔｒｏｓｃｏｐｙ，２ｎｄ  ｅｄｉｔｉｏｎ，（１９９９）Ｓｐｒｉｎｇｅｒを参照のこと）。好適な供与体発蛍光団は、テルビウムクリプテート色素を含む。好適な受容体発蛍光団はｄ２色素を含む。一実施形態では、供与体発蛍光団は３００〜６００ｎｍで励起される。別の実施形態では、供与体発蛍光団からの信号は４００〜７００ｎｍで測定される。別の実施形態では、受容体発蛍光団からの信号は４００〜７００ｎｍで測定される。一実施形態では、抗体は相互の１０〜１００Å以内で結合する。別の実施形態では、抗体は相互の５０〜９０Å以内で結合する。
【００４６】
生体試料からのＦＲＥＴ信号を、既知の濃度のタンパク質からのＦＲＥＴ信号を使用して生成された基準曲線と比較することによって、生体試料（例えば、Ｃ３）中のタンパク質を検出または定量化するために、ＦＲＥＴ信号を使用することができる。時間経過にわたるＦＲＥＴ信号の変化は、経時的なヒト患者内のＣ３またはＣ３ａの量の変化を監視するために使用することができる。
【００４７】
実施例
以下の実施例は、単に例示的なものであり、何ら本開示の範囲を制限するものとして解釈されるべきではないが、これは、数多くの変化形及び等価物が、本開示を読むことにより当業者に明らかになるからである。
【００４８】
実施例１：ＦＲＥＴを使用したＣ３およびＣ３ｂを含む試料中のＣ３ａの検出
それぞれ図１Ａおよび図１Ｂに概略的に示されるように、試料中のＦＲＥＴ信号の利得または損失を測定することによって、Ｃ３ａまたはＣ３を検出するだけでなく、Ｃ３の消費を測定するためにも、ＦＲＥＴアッセイを使用することができる。しかしながら、Ｃ３、Ｃ３ａ、およびＣ３ｂタンパク質の過渡集団の間で区別することができる抗体を選択されなければならない。抗体ペアが生成され、かつ市販され、励起可能な距離内のエピトープに結合するペアを見つけるために試験されたが、相互に相互作用しなかった。図２Ａは、Ｃ３ａ検出およびＦＲＥＴ信号アッセイの利得について試験された抗体ペアを示す。ペアはまた、図２Ｂに示すように、Ｃ３検出およびＦＲＥＴ信号損失アッセイについても特定される。
【００４９】
抗体は、Ｃｉｓｂｉｏからのｄ２標識付けキットおよびテルビウムクリプテート標識キット（Ｃａｔ．＃６２Ｄ２ＤＰＥＡおよび６２ＴＢＳＰＥＡ）を使用して標識された。Ｃ３ａネオエピトープ（ＨＭ２０７４）に特異的であった抗体は、Ｈｙｃｕｌｔから購入された（Ｃａｔ．＃ＨＭ２０７４−ＩＡ−アルブミンを含まない）。もう一方のＣ３ａ抗体（ＹＨＰ１３３）を標準的な手順に従って合成および精製した。Ｃ３ａ検出抗体は、Ｃｉｓｂｉｏのプロトコルに従って標識された。簡潔に述べると、抗体はＺｅｂａスピン脱塩カラム（Ｐｉｅｒｃｅ  Ｔｈｅｒｍｏ  Ｃａｔ．＃２８３８２）を使用して緩衝液交換された。ＨＭ２０７４抗体は、５０ｍＭのリン酸緩衝液（ｐＨ８．０）へと緩衝液交換され、テルビウムクリプテート色素で標識された。ＹＨＰ１３３抗体は、５０ｍＭの炭酸緩衝液（ｐＨ９．０）へと緩衝液交換され、ｄ２色素で標識された。抗体濃度を決定し、Ｃｉｓｂｉｏのプロトコルに従って適切に調節し、適切な染料とともにＣｉｓｂｉｏバイアルに添加した。バイアルをボルテックスし、かつインキュベートした。インキュベーション中に、提供されたＣｉｓｂｉｏカラムを１０ｍｌの提供された溶出緩衝液で平衡化した。インキュベーションの後、抗体をそれぞれのカラムに添加し、非標識染料分子から分離した。標識された染料を含有する区分は、プロトコルに従って収集された。Ｎａｎｏ  １０００液滴方法を使用して抗体濃度を決定し、抗体当たりの染料分子の比率を決定した。Ｔｗｅｅｎ−２０およびウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）を、各々０．１％の最終濃度で加えた。抗体を等分し、−２０℃で保存した。
【００５０】
次いで、標識された抗体を使用して、無傷のＣ３断片およびＣ３ｂ断片も含有する試料中のＣ３ａを検出した。図３は、Ｃ３試薬の滴定に対するＦＲＥＴ検出を示す。検出アッセイについては、補体Ｃ３ならびに断片Ｃ３ａおよびＣ３ｂをＣｏｍｐｌｅｍｅｎｔ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓから購入した（それぞれｃａｔ＃Ａ１１３ｃ、Ａ１１８、およびＡ１１４）。これらを等分し、−８０℃で保存した。各補体タンパク質は、個別に、またはアッセイ緩衝液（１０ｍＭのＨＥＰＥＳ  ｐＨ７．４、０．１％ＢＳＡ）中の混合物として、６６．６ｎＭの連続希釈された最終濃度で滴定された。検出抗体をアッセイ緩衝液中で組み合わせて、アッセイ中で各５０ｎＭの最終濃度でＣ３ａ検出混合物を作製した。次いで、１５μｌの適切なＣ３試薬を、白色の３８４ウェルＯｐｔｉｐｌａｔｅ（Ｐｅｒｋｉｎ  Ｅｌｍｅｒ  Ｃａｔ．＃６００−７２９０）の適切なウェルに加えた。次いで各ウェルに、１５μｌの抗体検出混合物を添加した。プレートを４０００ＲＰＭで２０秒間遠心分離し、Ｃｉｓｂｉｏ  ｈｔｒｆカートリッジを使用してＰａｒａｄｉｇｍ  Ｓｐｅｃｔｒａｍａｘ測定器上で読み取った（３４０ｎｍで励起し、６１５ｎｍおよび６６５ｎｍで放射する）。プレートを定期的に読み取り、６６５信号を６１５信号で割り、１００００を掛けることによって信号を計算した。
【００５１】
図３に示すように、Ｃ３ａは、Ｃ３ａ単独で含有する試料中、または無傷のＣ３およびＣ３ｂ断片との組み合わせで含有する試料中で、同様のレベルで検出された。ＦＲＥＴアッセイはＣ３またはＣ３ｂを検出せず、したがって、混合試料中のＣ３、Ｃ３ａ、およびＣ３ｂを確実に区別するために使用することができる。
【００５２】
実施例２：リアルタイムＣ３ａ産生のＦＲＥＴ検出
ＦＲＥＴアッセイに対する主な利点は、タンパク質検出の他の方法とは異なり、Ｃ３の消費およびＣ３ａの産生を追跡するために経時的に使用できることである。リアルタイムＣ３ａ産生を、図４Ａおよび図４Ｂに示す。
【００５３】
Ｃ３ａ産生を追跡するために、図４Ａに示すとおり、コブラ毒因子（ＣＶＦ）、因子Ｂ（ｆＢ）、および因子Ｄ（ｆＤ）からなる転換酵素混合物をアッセイ緩衝液中での反応においてそれぞれ５００ｎＭ、５００ｎＭ、および５０ｎＭの最終濃度に達するように作成した。ＣＶＦ、ｆＢおよびｆＤは、Ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓから購入した（それぞれＣａｔ．＃Ａ１５０、Ａ１３５、およびＡ１３６）。ｆＢがＣＶＦに結合した後、これはｆＤによって切断され、これにより次いでＣ３を切断し、Ｃ３ａを産生することができる。
【００５４】
ＨＭ２０７４およびＹＨＰ１３３抗体からなるＣ３ａ検出抗体混合物を、反応においてそれぞれ５０ｎＭの最終濃度に達するようにアッセイ緩衝液中で作製した。補体Ｃ３基質をアッセイ緩衝液中で滴定し、反応において連続希釈された１００ｎＭの最終濃度を達成した。次に、１０μｌのアッセイ緩衝液を、白色の３８４ウェルＯｐｔｉｐｌａｔｅの各ウェルに加えた。その後、各ウェルに対して１０μｌの転換酵素混合物、１０μｌの塩化マグネシウムを最終濃度３０ｍＭで、および１０μｌの抗体検出混合物を添加した。最後に、１０μｌの滴定されたＣ３基質を添加し、反応を開始させた。プレートを４０００ＲＰＭで２０秒間遠心分離し、３４０ｎｍ励起および６１５／６６５ｎｍの放射で、Ｓｐｅｃｔｒａｍａｘ  Ｆｌｅｘｓｔａｔｉｏｎ  ３測定器上で１０分ごとに読み取った。６６５信号を６１５信号で割り、１００００を掛けることによって信号を計算した。
【００５５】
図４Ａのデータは、ＦＲＥＴ信号の増加によって検出されるように、時間の増加に伴いＣ３ａが増加することを示す。形成されたＣ３ａの信号は、添加されたＣ３の量で滴定された。さらに、図４Ｂに示すように、形成されたＣ３ａの信号は、１２５／１２５／１２．５ｎＭのＣＶＦ／ｆＢ／ｆＤ混合物とともに添加された転換酵素の量に依存し、５００／５００／５０ｎＭと同様のＣ３ａ信号を提供する。これは、Ｃ３切断によるＣ３ａおよびＣ３ｂ産生の結果として生じた。したがって、アッセイは、Ｃ３ａの産生をリアルタイムで正確に測定することができた。
【００５６】
実施例３：ＦＲＥＴを使用したヒト血清および尿中のＣ３ａの検出
ＦＲＥＴアッセイは、血清または尿などのヒト生体試料中のＣ３ａレベルを検出する方法を提供する。これは、例えば、診断目的のために、患者の経時的な状態もしくは治療に対する応答を追跡するため、または臨床試験で患者集団を階層化するために使用することができる。
【００５７】
尿試料中のＣ３ａ検出の範囲を決定するために、Ｃ３ａを含む尿とＣ３ａを含まない尿とを滴定しながら、ＦＲＥＴ信号を測定した（図５）。ヒトの尿を滴定し（総体積の０．５２％〜８３．３％）、５０μｌ＋／−滴定されたＣ３ａ（０．１２５〜２０Ｎｍ）を白色の３８４ウェルＯｐｔｉｐｌａｔｅに添加した。各ウェルに、それぞれ０．５ｎＭおよび７．５ｎＭの供与体抗体および受容体抗体を含む１０μｌの抗体混合物を添加した。プレートを４０００ＲＰＭで２０秒間遠心分離し、Ｃｉｓｂｉｏ  ｈｔｒｆカートリッジを使用してＰａｒａｄｉｇｍ  Ｓｐｅｃｔｒａｍａｘ測定器上で読み取った（３４０ｎｍで励起し、６１５ｎｍおよび６６５ｎｍで放射する）。プレートを定期的に読み取り、６６５信号を６１５信号で割り、１００００を掛けることによって信号を計算した。図５のグラフは、様々なＣ３ａの濃度において強力なＦＲＥＴ信号を示す。
【００５８】
ヒト血清中の検出については、それぞれ図６Ａおよび図６Ｂに示すように、免疫固定電気泳動およびＦＲＥＴアッセイを使用して時間経過にわたってＣ３ａ産生が追跡された。内因性のＣ３を切断し、Ｃ３ｂおよびＣ３ａを形成するために、コブラ毒因子（ＣＶＦ-Ｃａｔ．＃Ａ１５０）を３７℃にて正常なヒト血清（ＮＨＳ  Ｃａｔ．＃ＨＭＳＲＭ−Ｃｏｍｐ−Ｂｉｏｒｅｃｌａｍａｔｉｏｎ  ＬＬＣ．）に添加した。次いで、２０μｌの試料を適切な時点で除去し、２０μｌのＧＶＢＳ、（ゼラチンベローナル緩衝生理食塩水）１０ｍＭのＭｇＣｌ２、１０ｍＭのＥＤＴＡ中で反応を停止し、氷上に置いた。サンプルを、０．８５％の生理食塩水で１２倍にさらに希釈し、３μｌを免疫固定電気泳動（ＩＦＥ−Ｈｅｌｅｎａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ）中で実施した。ゲルを、Ｃ３に対してポリクローナル抗体でブロットし（Ｃ３およびＣ３ｂを検出する−ＭＰ  ｂｉｏ）、アシッドブルーで染色した（図６Ａ）。標準的なＣ３（Ｃａｔ．＃Ａ１１３ｃ）およびＣ３ｂ（Ｃａｔ．＃Ａ１１４）をＣｏｍｐｌｅｍｅｎｔ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓから購入し、対照としてゲルに含んだ。
【００５９】
上記の実験で生成された試料を希釈し、滴定し、３０μｌを３８４ウェルの白色のＯｐｔｉｐｌａｔｅに添加した。別の方法として、Ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔ  ＴｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓからのＣ３ａ（Ｃａｔ．＃Ａ１１８）を、基準曲線のために別個のウェルで滴定した。次に、３０μｌのＣ３ａ検出抗体（ＨＭ２０７４およびＹＨＰ１３３）を、それぞれ０．５ｎＭおよび０．６４ｎＭで添加した。プレートを４０００ＲＰＭで２０秒間遠心分離し、Ｃｉｓｂｉｏ  ｈｔｒｆカートリッジを使用してＰａｒａｄｉｇｍ  Ｓｐｅｃｔｒａｍａｘ測定器上で読み取った（３４０ｎｍで励起し、６１５ｎｍおよび６６５ｎｍで放射する）。プレートを定期的に読み取り、６６５信号を６１５信号で割り、１００００を掛けることによって信号を計算した（図６Ｂ）。次いで、ＦＲＥＴ信号を使用して、図７に示すように試料中のＣ３ａの量を計算した。
【００６０】
図６ＡのゲルはＣ３の時間依存的消費を示し、Ｃ３のバンドの強度が減少するのに伴い、Ｃ３ｂのバンドの強度は経時的に増加する。図６ＢにおけるＣ３ａ産生に対するＦＲＥＴデータは、低スループットのゲルデータと一致する。データの両方のセットは、Ｃ３消費が経時的に増加し、Ｃ３ａおよびＣ３ｂを産生することを示す。これは、高スループットアッセイに対するＣ３ａ産生を正確かつ効率的に測定するために、ＦＲＥＴアッセイを使用できることを実証した。
【００６１】
配列表
【表１】
2021517639.tif 000002
【図１Ａ】
2021517639.tif 000003
【図１Ｂ】
2021517639.tif 000004
【図２Ａ】
2021517639.tif 000005
【図２Ｂ】
2021517639.tif 000006
【図３】
2021517639.tif 000007
【図４】
2021517639.tif 000008
【図５】
2021517639.tif 000009
【図６】
2021517639.tif 000010
【図７】
2021517639.tif 000011
【配列表】
2021517639000001.app
【国際調査報告】
2021517639.tif 000012
2021517639.tif 000013