(57)【要約】  本発明は、造血幹細胞のゲノムに含まれる少なくとも１つのグロビン遺伝子に、治療用タンパク質又は治療用リボ核酸をコードしている少なくとも１つの導入遺伝子を含む、遺伝子的に改変された造血幹細胞に関し、該導入遺伝子は、該グロビン遺伝子の内因性プロモーターの制御下に置かれている。【特許請求の範囲】
【請求項１】
造血幹細胞のゲノムに含まれる少なくとも１つのグロビン遺伝子に、治療用タンパク質又は治療用リボ核酸をコードしている少なくとも１つの導入遺伝子を含む、遺伝子的に改変された造血幹細胞（該導入遺伝子は、前記の少なくとも１つのグロビン遺伝子の内因性プロモーターの制御下に置かれ、治療用タンパク質又は治療用リボ核酸をコードしている少なくとも１つの導入遺伝子は、前記の少なくとも１つのグロビン遺伝子の５’領域、３’非翻訳領域（３’ＵＴＲ）及び／又はイントロンに含まれている）。
【請求項２】
治療用タンパク質又は治療用リボ核酸をコードしている少なくとも１つの導入遺伝子が、前記の少なくとも１つのグロビン遺伝子の５’領域及び／又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に含まれる、請求項１記載の造血幹細胞。
【請求項３】
治療用タンパク質又は治療用リボ核酸をコードしている少なくとも１つの導入遺伝子が、前記の少なくとも１つのグロビン遺伝子の５’非翻訳領域（５’ＵＴＲ）及び／又は近位プロモーター及び／又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に含まれ、好ましくは、前記の少なくとも１つのグロビン遺伝子の５’非翻訳領域（５’ＵＴＲ）又は近位プロモーター又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に含まれる、請求項１又は２記載の造血幹細胞。
【請求項４】
前記造血幹細胞のゲノムに含まれる少なくとも１つのグロビン遺伝子が、εグロビン遺伝子、γＧグロビン遺伝子、γＡグロビン遺伝子、δグロビン遺伝子、βグロビン遺伝子、ζグロビン遺伝子、偽ζグロビン遺伝子、μグロビン遺伝子、偽α１グロビン遺伝子、α１グロビン遺伝子及びα２グロビン遺伝子からなる群より選択され、特に、γＧグロビン遺伝子、γＡグロビン遺伝子、δグロビン遺伝子、βグロビン遺伝子、α１グロビン遺伝子及びα２グロビン遺伝子からなる群より選択され、より特定すると、α１グロビン遺伝子及びα２グロビン遺伝子からなる群より選択される、請求項１〜３のいずれか一項記載の造血幹細胞。
【請求項５】
前記造血幹細胞のゲノムに含まれる少なくとも１つのグロビン遺伝子が、α１グロビン遺伝子及び／又はα２グロビン遺伝子であり、特にα１グロビン遺伝子及びα２グロビン遺伝子であり；治療用タンパク質又は治療用リボ核酸をコードしている少なくとも１つの導入遺伝子が、前記の少なくとも１つのグロビン遺伝子の５'非翻訳領域（ＵＴＲ）に又はイントロンに含まれ、特に５'非翻訳領域（ＵＴＲ）に又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に含まれ；及び／又は、
前記造血幹細胞のゲノムに含まれる少なくとも１つのグロビン遺伝子が、βグロビン遺伝子であり、治療用タンパク質又は治療用リボ核酸をコードしている少なくとも１つの導入遺伝子が、前記の少なくとも１つのグロビン遺伝子の近位プロモーターに又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に含まれる、請求項１〜４のいずれか一項記載の造血幹細胞。
【請求項６】
コードされている治療用タンパク質が、サイトカイン、特にインターフェロン、より特定するとインターフェロン−α、インターフェロン−β、又はインターフェロン−ｐｉ；ホルモン；ケモカイン；抗体（ナノボディーズを含む）；血管新生抑制因子；補充療法用の酵素、例えばアデノシンデアミナーゼ、αグルコシダーゼ、α−ガラクトシダーゼ、α−Ｌ−イズロニダーゼ、及びβ−グルコシダーゼ；インターロイキン；インシュリン；顆粒球コロニー刺激因子；顆粒球単球コロニー刺激因子；ヒト多分化能性顆粒球コロニー刺激因子；マクロファージコロニー刺激因子；血液凝固因子、例えば第ＶＩＩＩ因子、第ＩＸ因子、又は組織プラスミノーゲン活性化因子；膜貫通タンパク質、例えば神経成長因子受容体（ＮＧＦＲ）；ライソゾーム酵素、例えばα−ガラクトシダーゼ（ＧＬＡ）、α−Ｌ−イズロニダーゼ（ＩＤＵＡ）、ライソゾーム酸性リパーゼ（ＬＡＬ）及びガラクトサミン（Ｎ−アセチル）−６−スルファターゼ（ＧＡＬＮＳ）；改変されていない細胞によって分泌され最終的に取り込まれるように工学操作され得る任意のタンパク質、及びその組合せからなる群より選択され、好ましくは、血液凝固因子、より好ましくは第ＶＩＩＩ因子；又はライソゾーム酵素、特にライソゾーム酸性リパーゼ（ＬＡＬ）又はガラクトサミン（Ｎ−アセチル）−６−スルファターゼ（ＧＡＬＮＳ）である、請求項１〜５のいずれか一項記載の造血幹細胞。
【請求項７】
請求項１〜６のいずれか一項記載の遺伝子的に改変された造血幹細胞を起源とする血液細胞。
【請求項８】
請求項１〜６のいずれか一項記載の少なくとも１つの遺伝子的に改変された造血幹細胞及び／又は請求項７記載の少なくとも１つの血液細胞を薬学的に許容される媒体に含む、医薬組成物。
【請求項９】
（ｉ）（ａ）該造血幹細胞に、（１）選択された標的部位に結合する少なくとも１つのガイド核酸、又は（２）選択された標的部位に結合するガイドペプチドを含むエンドヌクレアーゼを与える工程（該標的部位は、該造血幹細胞のゲノムに含まれる内因性グロビンコード遺伝子に位置する）；
（ｂ）少なくとも１つのガイド核酸が工程ａ）で与えられると、該幹細胞にさらに、標的部位特異性を欠いた少なくとも１つのエンドヌクレアーゼを与える工程；及び
（ｃ）該幹細胞にさらに、少なくとも１つの治療用タンパク質又は少なくとも１つの治療用リボ核酸をコードしている導入遺伝子を与える工程
による部位特異的遺伝子工学操作システムを、該幹細胞に与える工程；並びに
（ｉｉ）工程（ｉ）で得られた幹細胞を培養して、該導入遺伝子を、該造血幹細胞のゲノム内の選択された該標的部位に導入する工程
（該標的部位は好ましくは、前記の少なくとも１つのグロビン遺伝子の５'領域に及び／又はイントロンに、特に前記の少なくとも１つのグロビン遺伝子の５'非翻訳領域（５’ＵＴＲ）に及び／又は近位プロモーターに及び／又はイントロンに、好ましくは前記の少なくとも１つのグロビン遺伝子の５'非翻訳領域（５’ＵＴＲ）に及び／又は近位プロモーターに及び／又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に位置し、特に、前記の少なくとも１つのグロビン遺伝子の５'非翻訳領域（５’ＵＴＲ）に又は近位プロモーターに又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に含まれている）
を含む、請求項１〜６のいずれか一項記載の造血幹細胞のエクスビボ又はインビトロでの調製法、特にエクスビボ又はインビトロでの調製法。
【請求項１０】
該方法が、（ｉ）（ａ）該造血幹細胞に、選択された標的部位に結合する少なくとも１つのガイド核酸を与える工程（該標的部位は、該造血幹細胞のゲノムに含まれる内因性グロビンコード遺伝子に位置する）；
（ｂ）該幹細胞に、標的部位特異性を欠いた少なくとも１つのエンドヌクレアーゼをさらに与える工程；及び
（ｃ）該幹細胞に、少なくとも１つの治療用タンパク質又は少なくとも１つの治療用リボ核酸をコードしている導入遺伝子をさらに与える工程
による部位特異的遺伝子工学操作システムを、該幹細胞に与える工程；並びに
（ｉｉ）工程（ｉ）の終了時に得られた幹細胞を培養して、該導入遺伝子を、該造血幹細胞のゲノム内の選択された該標的部位に導入する工程
を含む、請求項９記載の方法。
【請求項１１】
標的部位特異性を欠いた少なくとも１つのエンドヌクレアーゼが、クリスパー（ＣＲＩＳＰＲ）関連ヌクレアーゼ、特にＣＲＩＳＰＲ関連タンパク質９（Ｃａｓ９）である、請求項９又は１０記載の方法。
【請求項１２】
１つ以上のガイド核酸が、前記の少なくとも１つのグロビン遺伝子の５’領域及び／又はイントロン、特に５'非翻訳領域（５'ＵＴＲ）及び／又は近位プロモーター及び／又はイントロン、好ましくは５'非翻訳領域（５'ＵＴＲ）及び／又は近位プロモーター及び／又は第２イントロン（ＩＶＳ２）内の、特に造血幹細胞のゲノムに含まれる少なくとも１つのαグロビン遺伝子の５'非翻訳領域（５'ＵＴＲ）又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に含まれる、標的部位を認識する、ガイドＲＮＡである、請求項９〜１１のいずれか一項記載の方法。
【請求項１３】
医薬品としての使用のための、請求項１〜６のいずれか一項記載の造血幹細胞、請求項７記載の血液細胞、又は請求項８記載の医薬組成物。
【請求項１４】
自己免疫疾患、ウイルス感染症及び腫瘍からなる群より選択された疾患；及び／又は
タンパク質の欠失又は異常な機能していないタンパク質の存在によって、それを必要とする個体において引き起こされる疾患
の処置に使用するための、請求項１〜６のいずれか一項記載の造血幹細胞、請求項７記載の血液細胞、又は請求項８記載の医薬組成物。
【請求項１５】
それを必要とする個体における、免疫寛容を誘導するために使用するための、請求項１〜６のいずれか一項記載の造血幹細胞、請求項７記載の血液細胞、又は請求項８記載の医薬組成物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
発明の分野
本発明は、ゲノム工学による治療処置の分野に関する。
【０００２】
特に、本発明は、遺伝子的に改変された造血幹細胞及び医薬品としてのその使用に関する。
【０００３】
発明の背景
様々な医学の分野における多くの異常、疾患、及び病的容態は、治療用タンパク質の全身注射によって処置することができる。このような治療用タンパク質は実際に、それを必要とする個体における、不十分な又は機能していない内因性タンパク質を補うことができるか、腫瘍若しくはウイルスの表面上の標的タンパク質に結合することができるか、又は毒素などの化学物質に結合することができる。
【０００４】
このような障害は、関心対象のタンパク質の頻回投与によって対処することができる可能性があるが、より最近の方法は、このような疾患の処置のための治療用分子をコードしている核酸の送達を可能とする。治療用タンパク質をコードしている核酸の送達、すなわち遺伝子療法は実際に、治療用タンパク質それ自体の投与を必要とする従来の治療法を上回る有意な利点を提供する可能性を有する。有意な利点の中でも、遺伝子療法は、患者の細胞内における治療用タンパク質の長期かつ調節された発現を可能とする。一定レベルのタンパク質発現（より良好な薬物動態）により、処置のより高い有効性及びより少ない副作用が得られ、投与可能なタンパク質組成物にさもなくば含有されている可能性のある毒性不純物及び感染性不純物を避けられる。
【０００５】
核酸は通常、ベクターを使用して送達され、その中の大半のベクターは改変されて、元来の疾患を引き起こす遺伝子が除去され、該遺伝子が、治療用分子（群）をコードしている核酸によって置換されているウイルスベクターである。
【０００６】
しかしながら、この技術は多くのリスクも呈し、その中には、目的ではない細胞の標的化（ウイルスは１種類の細胞に対して特異的であることは稀であるため）；新規な治療用遺伝子が細胞のＤＮＡにランダムに挿入される場合、挿入突然変異誘発及び遺伝子トランス活性化の可能性；該ウイルスのタンパク質に対する望ましくない免疫応答（これにより、感染細胞の炎症及び破壊が起こり得る）；及び、場合によっては、ウイルスは、一旦個体の生体内に導入されると、疾患を引き起こすその元来の能力をなんとかして回復しようとする、がある。
【０００７】
この技術はさらに、多くの欠点も呈する。例えば、アデノ随伴ウイルス及びアデノウイルスが、関心対象の導入遺伝子の送達に使用される場合、頑強なエピソームでの複製がないことにより、有糸分裂の活発な組織における発現の持続は制限される場合がある。さらに、導入遺伝子の組込みにより、複製によりもたらされる損失は避けられるが、導入遺伝子に融合させた外来性プロモーターの最終的なサイレンシングは防げない。時間と共に、このようなサイレンシングにより、大半のランダムな挿入事象において、導入遺伝子発現は低下する。さらに、導入遺伝子の組込みが、あらゆる標的細胞に起こることは稀であり、これにより、所望の治療効果を達成するのに十分に高い関心対象の導入遺伝子の発現レベルを達成することは困難となり得る。
【０００８】
近年、部位特異的ヌクレアーゼを用いたゲノムＤＮＡ切断を使用して、選択された遺伝子座への挿入に片寄らせる、導入遺伝子の組込みのための新規な戦略が開発されている。１つのアプローチは、導入遺伝子のその同族遺伝子座への組込み、例えば、野生型導入遺伝子の内因性遺伝子座への挿入による、突然変異遺伝子の修復に関わる。あるいは、導入遺伝子は、永久的で安全で非常に高いレベルの導入遺伝子の発現などの、その有益な特性のために特に選択された非同族遺伝子座に挿入されてもよい。例示的には、Sharma et al.（Blood, 2015; 126(15), 1777-1784）は、肝臓へのインビボでのアデノ随伴ウイルスによる送達により、ジンクフィンガーヌクレアーゼアプローチを使用することによる、アルブミン遺伝子内への第ＶＩＩＩ因子導入遺伝子の組込みを成し遂げた。
【０００９】
より安全でより制御された処置を可能とするために、細胞にエクスビボ又はインビトロで、関心対象の治療用ペプチドをコードしている核酸を感染させ得る。その後、これらの細胞を、それを必要とする個体に投与し、遺伝子送達システムの役割を果たすことができる（例えば、特許出願の国際公開公報第１９９９０５６７８５号参照）。
【００１０】
興味深いが、ゲノム編集は依然として、アデノ随伴ウイルスキャプシドに対する抗体の存在、及び肝障害の既往歴（これにより、かなりの割合の患者に対する処置が除外される）（Boutin S. et al., Hum. Gene Ther., 2010; 21(6): 704-712）；インビボにおける合成ヌクレアーゼの長期発現（これにより、有害な目的としないゲノム切断が起こり得、形質導入された肝細胞に対する免疫応答がトリガーされる可能性がある）などの、様々な制約によって抑制されている。
【００１１】
さらに、典型的なゲノム編集アプローチは疾患遺伝子座それ自体を標的化するものであるが、修正された対立遺伝子の数が少ないために、疾患表現型を軽減するには不十分なタンパク質レベルとなる場合がある。このような限界を克服するために、関心対象の治療用分子（群）をコードしている核酸を、高い転写活性が賦与されかつ揺らいでいる内因性遺伝子活性の観点から「安全である」ゲノム遺伝子座に組み込むことができる（Sadelain et al., Nat. Rev. Cancer, 2011 Dec 1;12(1):51-8）。
【００１２】
通常の造血では、健康な個体において１日あたり２．４×１０１１個の赤血球が生じているので、成熟赤血球のグロビン合成能（約７．２ｇ/日）の一部を、赤血球の通常の機能及び恒常性を妨げることなく、分泌タンパク質の産生に向け直すことが提案されている。
【００１３】
多数の赤血球が発現されていること及びグロビンプロモーターの強力な転写能から、少数の赤芽球の修正でさえ（７％未満；A. H. Chang et al., Molecular Therapy. 16, 1745-1752 (2008); M. Sadelain et al., Molecular Therapy. 17, 1994-1999 (2009); A. H. Chang Nat Biotechnol. 24(8):1017-21 (2006)）、治療閾値を上回る強力な第ＩＸ因子導入遺伝子発現レベルが得られ、血友病Ｂにとって臨床利点がもたらされる。さらに、赤血球系に限定された第ＩＸ因子発現はまた、タンパク質によるチャレンジ後でさえも、処置マウスにおいて第ＩＸ因子に対する免疫寛容を誘導することができた。
【００１４】
この考えによると、免疫寛容化はまた、赤血球系によるアデノシンデアミナーゼ、α−Ｌ−イズロニダーゼ及び抗体の発現についても報告されている（C. A. Montiel-Equihua, A. J. Thrasher, Curr. gene Ther. 2012 Feb 1; 12(1):57-65及びD. Wang et al., Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 2009 and 2013; Huang N.J. Nat Commun. 8(1):423. (2017)）。
【００１５】
これらのアプローチは、潜在的な臨床への適用可能性を有しているが、それらは全て、治療用導入遺伝子の送達及び組込みのための、ウイルスベクターの使用を伴うという同じ欠点に直面している：
ｉ）組込み部位における遺伝子不活化及び異常／キメラ転写物の生成を主に伴う、挿入突然変異誘発のリスク（A. Moiani et al., J. Clin. Invest. 122, 1653-1666 (2012)）、並びに強力なエンハンサー／プロモーター配列が存在する場合には隣接遺伝子の転写トランス活性化のリスク（P. W. Hargrove et al., Molecular Therapy, 16, 525-533 (2008)）；及び
ｉｉ）送達ベクターの制約（例えばサイズの限界）及び異なるクロマチン環境への組込み（この結果、予測不可能な発現パターンが生じる）に因り、生理学的に複雑な内因性プロモーターの調節を部分的にしか再現できないという、人工プロモーターの限界（W. Akthar et al., Cell, 154, 914-927 (2013)）。
【００１６】
したがって、処置されるべき疾患を軽減するのに十分に高いレベルでの、関心対象のあらゆる治療用タンパク質又は治療用リボ核酸の高い転写を可能とする、新規で安全な治療プラットフォームを設計する必要がある。
【００１７】
発明の要約
本発明の第一の目的は、造血幹細胞のゲノムに含まれる少なくとも１つのグロビン遺伝子に、治療用タンパク質又は治療用リボ核酸をコードしている少なくとも１つの導入遺伝子を含む、遺伝子的に改変された造血幹細胞に関し、該導入遺伝子は、前記の少なくとも１つのグロビン遺伝子の内因性プロモーターの制御下に置かれている。
【００１８】
特定の実施態様では、治療用タンパク質又は治療用リボ核酸をコードしている少なくとも１つの導入遺伝子は、前記の少なくとも１つのグロビン遺伝子の５’領域に、３’非翻訳領域に及び／又はイントロンに含まれている。より特定すると、治療用タンパク質又は治療用リボ核酸をコードしている少なくとも１つの導入遺伝子は、前記の少なくとも１つのグロビン遺伝子の５’非翻訳領域（５'ＵＴＲ）に及び／又は近位プロモーターに及び／又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に含まれ得、好ましくは前記の少なくとも１つのグロビン遺伝子の５’非翻訳領域（５'ＵＴＲ）に又は近位プロモーターに又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に含まれ得る。
【００１９】
別の特定の実施態様では、前記造血幹細胞のゲノムに含まれる少なくとも１つのグロビン遺伝子は、εグロビン遺伝子、γＧグロビン遺伝子、γＡグロビン遺伝子、δグロビン遺伝子、βグロビン遺伝子、ζグロビン遺伝子、偽ζグロビン遺伝子、μグロビン遺伝子、偽α１グロビン遺伝子、α１グロビン遺伝子及びα２グロビン遺伝子からなる群より選択され、特にγＧグロビン遺伝子、γＡグロビン遺伝子、δグロビン遺伝子、βグロビン遺伝子、α１グロビン遺伝子及びα２グロビン遺伝子からなる群より選択され、より特定すると、α１グロビン遺伝子及びα２グロビン遺伝子からなる群より選択される。
【００２０】
さらなる実施態様では、コードされる治療用タンパク質は、サイトカイン、特にインターフェロン、より特定するとインターフェロン−α、インターフェロン−β、又はインターフェロン−ｐｉ；ホルモン；ケモカイン；抗体（ナノボディーズを含む）；血管新生抑制因子；補充療法用の酵素、例えばアデノシンデアミナーゼ、αグルコシダーゼ、α−ガラクトシダーゼ、α−Ｌ−イズロニダーゼ（異名ＩＤＵＡ）、及びβ−グルコシダーゼ；インターロイキン；インシュリン；顆粒球コロニー刺激因子；顆粒球単球コロニー刺激因子；ヒト多分化能性顆粒球コロニー刺激因子；マクロファージコロニー刺激因子；血液凝固因子、例えば第ＶＩＩＩ因子、第ＩＸ因子、又は組織プラスミノーゲン活性化因子；膜貫通タンパク質、例えば神経成長因子受容体（ＮＧＦＲ）；ライソゾーム酵素、例えばα−ガラクトシダーゼ（ＧＬＡ）、α−Ｌ−イズロニダーゼ（ＩＤＵＡ）、ライソゾーム酸性リパーゼ（ＬＡＬ）及びガラクトサミン（Ｎ−アセチル）−６−スルファターゼ（ＧＡＬＮＳ）；改変されていない細胞によって分泌され最終的に取り込まれるように工学操作され得る任意のタンパク質（例えば、Lawlor MW, Hum Mol Genet. 22(8): 1525-1538. (2013); Puzzo F, Sci Transl Med. 29; 9(418) (2017); Bolhassani A. Peptides. 87:50-63., (2017)）、及びその組合せからなる群より選択され、好ましくは、血液凝固因子、より好ましくは第ＶＩＩＩ因子；又はライソゾーム酵素、特にライソゾーム酸性リパーゼ（ＬＡＬ）又はガラクトサミン（Ｎ−アセチル）−６−スルファターゼ（ＧＡＬＮＳ）である。
【００２１】
本発明の別の目的は、造血幹細胞のゲノムに含まれる少なくとも１つのグロビン遺伝子にフランキングしている遺伝子間領域に、治療用タンパク質又は治療用リボ核酸をコードしている少なくとも１つの導入遺伝子を含んでいる、遺伝子的に改変された造血幹細胞に関し、該導入遺伝子は、前記の少なくとも１つのグロビン遺伝子の内因性プロモーターの制御下に置かれている。
【００２２】
この実施態様によると、少なくとも１つのグロビン遺伝子及びコードされている治療用タンパク質は、上記に定義された通りであってもよい。
【００２３】
別の実施態様では、本明細書に記載の幹細胞は哺乳動物細胞、特にヒト細胞である。
【００２４】
本発明の別の目的は、本明細書に記載のような遺伝子的に改変された造血幹細胞を起源とする血液細胞に関する。
【００２５】
したがって、特定の実施態様では、前記の血液細胞は、巨核球、血小板、赤血球、肥満細胞、骨髄芽球、好塩基球、好中球、好酸球、単球、マクロファージ、ナチュラルキラー細胞、小リンパ球、Ｔリンパ球、Ｂリンパ球、形質細胞、及び全てのそれらの前駆体からなる群より選択される。
【００２６】
本発明のさらなる目的は、本明細書に記載のような少なくとも１つの遺伝子的に改変された造血幹細胞及び／又は本明細書に記載のような少なくとも１つの血液細胞を、薬学的に許容される媒体に含む、医薬組成物である。
【００２７】
本発明の別の目的は、本明細書に記載のような造血幹細胞のインビボ、エクスビボ、又はインビトロでの調製法、特にエクスビボ又はインビトロでの調製法であり、該方法は、
（ｉ）（ａ）該造血幹細胞に、（１）選択された標的部位に結合する少なくとも１つのガイド核酸、又は（２）選択された標的部位に結合するガイドペプチドを含むエンドヌクレアーゼを与える工程（該標的部位は、該造血幹細胞のゲノムに含まれる内因性グロビンコード遺伝子に位置する）；
（ｂ）少なくとも１つのガイド核酸が工程ａ）で与えられると、該幹細胞にさらに、標的部位特異性を欠いた少なくとも１つのエンドヌクレアーゼを与える工程；及び
（ｃ）該幹細胞にさらに、少なくとも１つの治療用タンパク質又は少なくとも１つの治療用リボ核酸をコードしている導入遺伝子を与える工程
による部位特異的遺伝子工学操作システムを、該幹細胞に与える工程；及び
（ｉｉ）工程（ｉ）で得られた幹細胞を培養して、該導入遺伝子を、該造血幹細胞のゲノム内の選択された該標的部位に導入する工程
を含む。
【００２８】
特定の実施態様では、該標的部位は、前記の少なくとも１つのグロビン遺伝子の５'領域に、３'非翻訳領域（３’ＵＴＲ）に、及び／又はイントロンに、好ましくは前記の少なくとも１つのグロビン遺伝子の５'非翻訳領域（５’ＵＴＲ）に及び／又は近位プロモーターに及び／又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に、特に前記の少なくとも１つのグロビン遺伝子の５'非翻訳領域（５’ＵＴＲ）に又は近位プロモーターに又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に位置する。
【００２９】
別の実施態様では、該方法は、（ｉ）（ａ）該幹細胞に、選択された標的部位に結合する少なくとも１つのガイド核酸を与える工程（該標的部位は、該造血幹細胞のゲノムに含まれる内因性グロビンコード遺伝子に位置する）；
（ｂ）該幹細胞にさらに、標的部位特異性を欠いた少なくとも１つのエンドヌクレアーゼを与える工程；及び
（ｃ）該幹細胞にさらに、少なくとも１つの治療用タンパク質又は少なくとも１つの治療用リボ核酸をコードしている導入遺伝子を与える工程
による部位特異的遺伝子工学操作システムを、該幹細胞に与える工程；及び
（ｉｉ）工程（ｉ）で得られた幹細胞を培養して、該導入遺伝子を、該造血幹細胞のゲノム内の選択された該標的部位に導入する工程
を含む。
【００３０】
特定の実施態様では、標的部位特異性を欠いた少なくとも１つのエンドヌクレアーゼは、クリスパー（Ｃｌｕｓｔｅｒｅｄ  ｒｅｇｕｌａｒｌｙ  ｉｎｔｅｒｓｐａｃｅｄ  ｓｈｏｒｔ  ｐａｌｉｎｄｒｏｍｉｃ  ｒｅｐｅａｔｓ）（ＣＲＩＳＰＲ）関連タンパク質（Ｃａｓ）、特にＣＲＩＳＰＲ関連タンパク質９（Ｃａｓ９）である。
【００３１】
特定の実施態様では、１つ以上のガイド核酸は、前記の少なくとも１つのグロビン遺伝子の５'領域、３’非翻訳領域（３’ＵＴＲ）及び／又はイントロン、好ましくは５’非翻訳領域（５’ＵＴＲ）及び／又は近位プロモーター及び／又は第２イントロン（ＩＶＳ２）内の、特に該造血幹細胞のゲノムに含まれる少なくとも１つのαグロビン遺伝子の５’非翻訳領域（５’ＵＴＲ）又は近位プロモーター又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に含まれる、好ましくは該造血幹細胞のゲノムに含まれる少なくとも１つのαグロビン遺伝子の５’非翻訳領域（５’ＵＴＲ）又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に含まれる、標的部位を認識するガイドＲＮＡである。
【００３２】
本発明の別の目的は、医薬品としてのその使用のための、本明細書に記載のような造血幹細胞、又は本明細書に記載のような血液細胞、又は本明細書に記載のような医薬組成物に関する。
【００３３】
本発明はまた、それを必要とする個体における、
−自己免疫疾患、ウイルス感染症及び腫瘍からなる群より選択された疾患；及び／又は
−タンパク質の欠失又は異常な機能していないタンパク質の存在によって引き起こされる疾患
の処置に使用するための、本明細書に記載のような造血幹細胞、本明細書に記載のような血液細胞、又は本明細書に記載のような医薬組成物に関する。
【００３４】
特定の実施態様によると、タンパク質の欠失又は異常な機能していないタンパク質の存在によって引き起こされる疾患は、凝固障害、ライソゾーム蓄積症、ホルモン異常、及びα１アンチトリプシン欠乏症からなる群より選択され得る。
【００３５】
特に、それを必要とする個体は、哺乳動物であり得、より特定するとヒトであってもよい。
【００３６】
本発明の別の目的は、本明細書に記載のような造血幹細胞、本明細書に記載のような血液細胞、又は本明細書に記載のような医薬組成物を非ヒト哺乳動物に投与する工程を含む、トランスジェニック非ヒト哺乳動物を産生する方法に関する。
【００３７】
特定の実施態様では、本発明のトランスジェニック非ヒト哺乳動物は、ヒト導入遺伝子をコードしている。さらに、トランスジェニック動物は、対応する内因性遺伝子座をノックアウトされていてもよく、これにより、ヒトタンパク質を隔離して研究することができるインビボのシステムの開発が可能となる。
【００３８】
本発明によるトランスジェニック非ヒト哺乳動物は、関心対象のヒトタンパク質と相互作用し得るか又は改変させ得る、小型分子、大型生体分子、又はその他の物質を同定するスクリーニング目的のために使用され得る。他の態様では、トランスジェニック非ヒト哺乳動物は、生産目的のために、例えば、関心対象の抗体又は他の生体分子を産生するために使用され得る。
【図面の簡単な説明】
【００３９】
【図１】Ｋ５６２赤白血病細胞株におけるガイドＲＮＡの設計及び検証  ＨＢＡ又はＨＢＡのための様々なガイドＲＮＡを発現しているプラスミドを、ＳｐＣａｓ９を安定に発現しているＫ５６２細胞にトランスフェクトし、それらのＤＮＡ切断活性を、ＴＩＤＥソフトウェア（Tracking of InDels by Decomposition - Brinkman et al. Nucleic Acids Res. 2014. 42(22):e168); www.tide.calculator.nk）を用いて測定した。図１に、さらに定義されているような遺伝子の５'領域（特に、ＨＢＡの５’ＵＴＲ及びＨＢＢの近位プロモーター）、該遺伝子のイントロン１（ＩＶＳ１すなわち介在配列１）又はイントロン２（ＩＶＳ２）のいずれかにおいて独立して試験された各々のガイドＲＮＡに関する活性が、インデル％、すなわち改変された対立遺伝子の比率として示されている。インデル％が１００％に近づけば近づくほど、試験されたガイドＲＮＡはより効率的である。横座標：試験されたガイドＲＮＡによって標的化された領域：５'領域、ＩＶＳ１又はＩＶＳ２；それぞれの棒グラフは、異なるガイドＲＮＡを示す。縦座標：インデル％。
【図２】導入遺伝子のＨＢＡ遺伝子座及びＨＢＢ遺伝子座への標的化組込みは、内因性プロモーターによる該導入遺伝子の調節を可能とする。この図は、導入遺伝子発現のための、ＨＢＡ及びＨＢＢのプロモーターのハイジャックを例示した。ＨＢＡ遺伝子又はＨＢＢ遺伝子の様々なドメイン（５’領域（ＨＢＡの５’ＵＴＲ、又はＨＢＢの近位プロモーター）、ＩＶＳ１又はＩＶＳ２）へのＧＦＰの標的化組込みがなされた、Ｋ５６２のＧＦＰによるＦＡＣＳ分析。Ｋ５６２細胞を、赤血球系統へと分化させた。グリコホリンＡ（ＧＹＰＡ）陽性（点線）又はグリコホリンＡ陰性（塗りつぶされたヒストグラム）のＫ５６２細胞のＧＦＰの発現（横座標）が示されている。対照は、ＧＦＰの組込みが、関係のないゲノム位置（グロビン遺伝子ではない位置）にある細胞である。全てのパネルにおいて、未処置グリコホリンＡ陽性Ｋ５６２細胞が、基準として示されている（白抜きのヒストグラム）。縦座標：細胞数。
【図３】ＨＢＡへのドナーＤＮＡの標的化組込みは、様々な導入遺伝子の安定な発現を可能とする。この図は、ＨＢＡへのドナーＤＮＡの標的化組込みが、様々な導入遺伝子の安定な発現を可能とすることを例示する。左パネル：ピューロマイシンにより選択された細胞を、抗神経成長因子受容体（ＮＧＦＲ）抗体（マウス抗ヒトＣＤ２７１−ＡＰＣ抗体、ミルテニーバイオテク社）で染色し、フローサイトメトリーによって分析した。ゲートは、ＮＧＦＲ陽性細胞を示す。縦座標：前方散乱光（ＦＳＣ）。右パネル：ＨＢＡ遺伝子の５'領域（特に５’ＵＴＲ）にＦ８−ピューロマイシントラップの組み込まれた代表的なクローンのＦ８発現（横座標）（点線を有する染色されたヒストグラム）。Ｋ５６２の対照染色が示されている（白抜きのヒストグラム）。縦座標：細胞数。
【図４】造血幹細胞／前駆細胞への標的の組込み効率に対する、ホモロジーアームの効果。初代造血幹細胞・前駆細胞（ＨＳＰＣ）のＨＢＡ１及び２への、ＧＦＰ−ピューロマイシントラップの標的化組込み。非相同末端結合（ＮＨＥＪ、上のパネル）又は相同組換え修復（ＨＤＲ、下のパネル）のいずれかによる、ＨＢＡ１又は２の５'領域（特にＨＢＡ１又は２の５’ＵＴＲ）への、プロモーターを含まないＧＦＰカセットの挿入により、調節されたＧＦＰの発現がもたらされる。ＧＦＰ陽性細胞及び蛍光強度は、赤血球への分化と共に増加し、α−グロビン発現パターンを再現する。ドナーＤＮＡトラップへのホモロジーアームの付加は、その標的組込み効率を劇的に向上させる。縦座標：自己蛍光チャネル（ＡＦ）。
【図５】Ｋ５６２におけるＨＢＡによる産生に対する、標的上の各ガイドＲＮＡの活性の効果。ＨＢＡの指定された部位におけるゲノム編集後のＫ５６２細胞におけるウシヘモグロビン（ＨｂＦ）発現（横座標）のヒストグラム。改変された対立遺伝子の比率（インデル％）が上に示されている。ウシヘモグロビンが２つのαサブユニットと２つのγサブユニットによって形成されるにつれて、その発現は、これらの細胞中のαグロビンレベルに正比例する。対照ガイドＲＮＡ（ＫＯ）は、ＨＢＡ１及び２の第１エキソンに標的化し、遺伝子をノックアウトしＨｂＦの発現に影響を及ぼす、フレームシフト突然変異を起こす。縦座標：細胞数。中央のパネルにおいて、同じ細胞におけるα−グロビン発現がウェスタンブロットによって分析されている。１レーンあたり３０μgの総タンパク質がローディングされ；チューブリンがローディング対照として使用された。ＨＢＡ遺伝子の特定の部位におけるゲノム編集効率が、レーンの下に、編集された対立遺伝子の比率（インデル）として示されている。下のパネルでは、動員された末梢血造血幹細胞・前駆細胞（ＨＳＰＣ）に、ＨＢＡ内の指定の部位に標的化するガイドＲＮＡを用いてヌクレオフェクトし、赤血球系統へと分化させグロビン発現を活性化させた。改変された対立遺伝子の比率（インデル％）が、上に示されている。試験された各ガイドＲＮＡについての、赤血球への分化終了時におけるＨｂＦの発現（αグロビンの発現を反映する；横座標）。縦座標：前方散乱光（ＦＳＣ）。
【図６】造血幹細胞・前駆細胞（ＨＳＰＣ）由来の赤芽球におけるＨＢＡ及びＨＢＢの合成に対する、編集の効果。この図は、赤芽球におけるＨＢＡ又はＨＢＢの合成に対する、ＨＢＡ又はＨＢＢ遺伝子内の様々な特定の部位に標的化するガイドＲＮＡの効果を例示する。動員された末梢血造血幹細胞・前駆細胞（ＨＳＰＣ）に、ＨＢＡ又はＨＢＢ遺伝子内の様々な特定の部位に標的化するガイドＲＮＡを用いてヌクレオフェクトし、赤血球系統へと分化させ、グロビン発現を活性化させた。造血幹細胞・前駆細胞（ＨＳＰＣ）由来の赤芽球を溶解し、ヘモグロビンサブユニット含量をクロマトグラフィーによって測定した。グラフは、α鎖とβ様鎖との間の比を示す。健康なドナー細胞におけるこの比は１に近く（破線及び切断していない試料）、一方、有意な逸脱は、サラセミア表現型を示す（αサラセミア赤芽球では１未満、βサラセミア赤芽球では１を超える）。対照として、ＨＢＡ１/２及びＨＢＢの第１エキソンをそれぞれ標的化し、鎖の発現を消失させる、ＨＢＡ及びＨＢＢノックアウト（ＫＯ）ガイドＲＮＡを使用して、サラセミア細胞を生成した。横座標では、結果は、左から右へと、以下に対応する：ＨＢＡの５’ＵＴＲに標的化するガイドＲＮＡ（ＨＢＡ５’ＵＴＲ）；ＨＢＡの第２イントロンに標的化するガイドＲＮＡ（ＨＢＡ ＩＶＳ２）；ＨＢＡの第１エキソンに標的化するガイドＲＮＡ（ＨＢＡ ＫＯ）；ＨＢＢの５’ＵＴＲに標的化するガイドＲＮＡ（ＨＢＢ５’ＵＴＲ）；ＨＢＢの第２イントロンに標的化するガイドＲＮＡ（ＨＢＢ ＩＶＳ２）；ＨＢＢの第１エキソンに標的化するガイドＲＮＡ（ＨＢＢ ＫＯ）；対照としての関連性のないアデノ随伴ウイルス組込み部位１（ＡＡＶＳ１）遺伝子座に標的化するガイドＲＮＡ（ＡＡＶＳ１）；ガイドＲＮＡがなくヌクレオフェクションを行なわない対照細胞（ＮＯ ＣＵＴ）。縦座標：α鎖とβ様鎖（β、γ、及びδグロビン）の間の比。この図では、「Ｅｒｙ ｃｕｌｔｕｒｅ」及び「ＣＦＣ」は、液体培養液（赤血球分化培地中で１４日間培養した造血幹細胞・前駆細胞（ＨＳＰＣ））又は赤色培養液（コロニー形成細胞（ＣＦＣ）アッセイのために、半固形Methocult培地（Ｈ４４３５、ステムセルテクノロジーズ社）中で１４日間培養した造血幹細胞・前駆細胞（ＨＳＰＣ））をそれぞれ用いて得られた結果を示す。
【図７】ＨＢＡへの第ＶＩＩＩ因子（ＦＶＩＩＩ）又は第ＩＸ因子（ＦＩＸ）コード配列の標的化組込みは、これらの導入遺伝子の安定な発現を可能とする。この図は、Ｋ５６２細胞のＨＢＡへのＦＶＩＩＩ又はＦＩＸのコード配列の標的化組込みが、内因性α−グロビンプロモーターの転写制御を活用することによる、機能的タンパク質の安定な発現及び分泌を可能とすることを示す。グラフは、様々なＫ５６２細胞クローンの上清中に分泌されたＦＶＩＩＩ及びＦＩＸの活性を示す。未処置細胞の上清は、対照（ＣＴＲＬ）として使用された。縦座標：１０６個の細胞あたり２４時間あたりのタンパク質（ng/ml）として測定された活性レベル。横座標：左から右へと：第ＶＩＩＩ因子で得られた結果（ＦＶＩＩＩ）、対照で得られた結果（ＣＴＲＬ）、及び第ＩＸ因子で得られた結果（ＦＩＸ）。
【００４０】
発明の詳細な説明
本発明者らは、赤血球系統へと分化した場合、該グロビン遺伝子の内因性プロモーターの制御下に置かれた、造血幹細胞のゲノム内に含まれる少なくとも１つのグロビン遺伝子に、特にそのグロビン遺伝子の１つに含まれる少なくとも１つの導入遺伝子によってコードされる、１つ以上の治療用タンパク質（群）又は１つ以上の治療用リボ核酸（群）を産生することができる、遺伝子的に改変された造血幹細胞を作製した。本明細書に示されているように、該治療用タンパク質（群）は、高いレベルで発現され、これにより、治療レベルの治療用タンパク質又は治療用リボ核酸を得ることが可能となる。
【００４１】
本明細書に記載のような遺伝子的に改変された造血幹細胞は有利には、関心対象の治療用タンパク質又は治療用リボ核酸の制御された高い発現を提供する。
【００４２】
本発明によって提供され、本実施例に例示される別の重要な利点は、ヘモグロビン又は一本のグロビン鎖において、全体的なグロビン発現レベルに影響を及ぼさないことである。
【００４３】
安全なグロビン遺伝子座への導入遺伝子の標的化組込みによって、本明細書に記載のようにエクスビボ又はインビトロで作製された造血幹細胞の使用は有利には、セミランダムな組込みベクターの使用に伴う挿入突然変異誘発及び発癌遺伝子トランス活性化のリスク、並びに遺伝子トランス活性化のリスクを最小限にする。なぜなら、外来性プロモーター／エンハンサー配列は全く、導入遺伝子の発現に必要とされず、ゲノムに挿入されないからである。
【００４４】
さらに、本明細書に記載のような造血幹細胞（ＨＳＣ）の、それを必要とする個体への投与は、該個体におけるこれらの幹細胞の機能を回復させることによって又はこれらの幹細胞に追加の機能を与えることによって、本文書に考察される関心対象の疾患の長期治療を可能とするだろう。
【００４５】
この方法は、それを必要とする個体にとって非常に有利である。なぜなら、本明細書で考えられる疾患の現行の処置の大半は、治療用タンパク質の頻回注射からなり、これは、過酷で、費用が高く、長期にわたり治癒せず、高い比率の処置患者において抗タンパク質中和抗体が発生するからである。
【００４６】
例えば、それを必要とする個体における、タンパク質の欠失によって又は異常で機能しないタンパク質の存在によって引き起こされる疾患を考える場合、現行の処置の大半は、欠失しているタンパク質又は機能しないタンパク質の頻回注射からなる（「タンパク質補充療法」；例えば、血友病Ａでは第ＶＩＩＩ因子（ＦＶＩＩＩ）を週３回注射）。同様に、ライソゾーム蓄積症の患者は、通常は大用量の静脈内投与による、不適切に機能している酵素を補うための頻回注射を必要とする。このような処置は、単なる対症療法であり治癒するものではなく、したがって、患者は残りの人生においてこれらのタンパク質の反復投与を受けなければならず、注射されたタンパク質に対する中和抗体を発生する可能性もある。これらのタンパク質は、短い血清中半減期を有することが多いため患者はタンパク質の頻回注入に耐えなければならない。
【００４７】
本明細書に記載のような造血幹細胞の投与に基づいた処置は、逆に、限られた数の反復投与、又は１回の治癒的処置でさえあり、以下の２つの主な利点を伴う：それは、患者及び患者の家族の生活の質を有意に向上させ、殆どの場合一生続くこれらの疾患の処置に関連した経済的費用及び国民保健制度の負担を低減させるだろう（例えば、組換え型ＦＶＩＩＩを用いての患者の一生涯の処置により、２５００万〜５０００万米ドルの費用がかかる）。
【００４８】
さらに、本明細書に記載のような造血幹細胞を起源とする成熟血液細胞の、それを必要とする個体への投与は、本明細書に記載のような導入遺伝子によってコードされるタンパク質に対する免疫寛容を誘導すること可能性がある。
【００４９】
本文書の実施例にも例示されているように、本発明者らは、ヘモグロビン又は一本のグロビン鎖に関する全体的なグロビン発現レベルに影響を及ぼすことなく、導入遺伝子の高度かつ赤血球に特異的な発現を与える組込み部位を同定した。
【００５０】
遺伝子的に改変された造血幹細胞
上記に示されているように、本発明は第一に、造血幹細胞のゲノムに含まれる少なくとも１つのグロビン遺伝子に、治療用タンパク質又は治療用リボ核酸をコードしている少なくとも１つの導入遺伝子を含んでいる、遺伝子的に改変された造血幹細胞に関し、該導入遺伝子は、前記の少なくとも１つのグロビン遺伝子の内因性プロモーターの制御下に置かれている。
【００５１】
造血幹細胞（ＨＳＣ）は、自己再生することができ、許容条件下で造血系の全ての細胞型を生じるその能力によって特徴付けられる、多能性幹細胞である。造血幹細胞は全能性細胞ではない、すなわち、それらは完全な生物になることはできない。
【００５２】
特定の実施態様では、本発明による造血幹細胞は、胚性幹細胞に由来し、特にヒト胚性幹細胞に由来し、したがって、胚性造血幹細胞である。
【００５３】
胚性幹細胞（ＥＳＣｓ）は、胚の未分化な内部細胞塊に由来し、自己再生することのできる、幹細胞である。許容条件下で、これらの多能性幹細胞は、成体の体内の２２０を超える細胞型の中のいずれか１つに分化することができる。胚性幹細胞は全能性細胞ではない、すなわち、それらは完全な生物になることはできない。胚性幹細胞は、例えば、Young Chung et al.（Cell Stem Cell 2, 2008 February 7;2(2):113-7）に示される方法に従って得ることができる。
【００５４】
別の特定の実施態様では、本発明による造血幹細胞は、人工多能性幹細胞、より特定するとヒト人工多能性幹細胞（ｈｉＰＳＣ）である。したがって、特定の実施態様によると、本明細書に記載のような造血幹細胞は、造血系人工多能性幹細胞である。
【００５５】
人工多能性幹細胞は、胚性幹細胞と類似した多能性幹細胞様の状態を示す、遺伝子の初期化された成体細胞である。それらは、ヒトの体内に存在することは知られていないが、胚性幹細胞と類似した品質を示す、人工的に作製された幹細胞である。このような細胞の作製は、Ying WANG et al.（https://doi.org/10.1101/050021）並びにLapillonne H. et al.（Haematologica. 2010; 95(10)）及びJ. DIAS et al.（Stem Cells Dev. 2011; 20(9): 1639-1647）に議論されているように、当技術分野において周知である。
【００５６】
「自己再生」は、分裂し、親細胞と同一な（例えば自己再生）特徴を有する少なくとも１つの娘細胞を生じる細胞の能力を指す。第二娘細胞は、特定の分化経路へと拘束され得る。例えば、自己再生する造血幹細胞は、分裂し、１つの娘幹細胞と、骨髄系経路又はリンパ系経路への分化に拘束された別の娘細胞を形成することができる。自己再生は、造血系の補充のための未分化幹細胞の連続的発生源を提供する。
【００５７】
造血幹細胞を同定するのに有用なマーカー表現型は、当技術分野において一般的に公知であるものであるだろう。ヒト造血幹細胞の細胞マーカー表現型としては好ましくは、ＣＤ３４+ ＣＤ３８low/- Ｃｄ４９ｆ+ ＣＤ５９+ ＣＤ９０+ ＣＤ４５ＲＡ- Ｔｈｙ１+ Ｃ−ｋｉｔ+ ｌｉｎ-（Notta F, Science. 333(6039):218-21 (2011)）の任意の組合せが挙げられる。マウス造血幹細胞の細胞マーカー表現型は、例示的には、ＣＤ３４low/- Ｓｃａ−１+ Ｃ−ｋｉｔ+ 及びｌｉｎ- ＣＤ１５０+ ＣＤ４８- ＣＤ９０．１．Ｔｈｙ１+/low Ｆｌｋ２／ｆｌｔ３-及びＣＤ１１７ +（例えば、Frascoli et al.（J. Vis. Exp. 2012 Jul 8; (65). Pii:3736を参照）の任意の組合せであってもよい。
【００５８】
本明細書に記載のような幹細胞は、好ましくは精製されている。同じことが、本明細書に定義されているような血液細胞にも当てはまる。
【００５９】
造血幹細胞を精製するための多くの方法が、例えば欧州特許第１６８７４１１号に例示されているように、当技術分野において公知である。
【００６０】
本明細書において使用する「精製された造血幹細胞」又は「精製された血液細胞」は、列挙された細胞が、精製された試料中の細胞の少なくとも５０％；より好ましくは、精製された試料中の細胞の少なくとも５１％、５２％、５３％、５４％、５５％、５６％、５７％、５８％、５９％、６０％、６１％、６２％、６３％、６４％、６５％、６６％、６７％、６８％、６９％、７０％、７１％、７２％、７３％、７４％、７５％、７６％、７７％、７８％、７９％、８０％、８１％、８２％、８３％、８４％、８５％、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％又はそれ以上を占めることを意味する。
【００６１】
細胞の選択及び／又は精製は、実質的に純粋な細胞集団を得るための陽性選択法及び陰性選択法の両方を含み得る。
【００６２】
１つの態様では、フローサイトメトリーとも称される、蛍光活性化細胞選別（ＦＡＣＳ）を使用して、様々な細胞集団を選別し分析することができる。造血幹細胞又は前駆細胞集団に特異的な細胞マーカーを有する細胞に、細胞マーカーに結合する抗体又は典型的には抗体混合物を用いてタグ化する。様々なマーカーに指向される各抗体を、検出可能な分子、特に、他の抗体に結合した他の蛍光色素と区別することができる蛍光色素にコンジュゲートさせる。流れている染色された細胞を、蛍光色素を励起する光源に通過させ、細胞からの発光スペクトルは、特定の標識された抗体の存在を検出する。様々な蛍光色素の同時検出によって、様々な細胞マーカーのセットを示す細胞を同定し、集団中の他の細胞から単離する。例えばであって限定するものではないが、側方散乱光（ＳＳＣ）、前方散乱光（ＦＳＣ）、及び生体色素染色（例えば、ヨウ化プロピジウムを用いた）をはじめとする、他のＦＡＣＳパラメーターは、サイズ及び生存率に基づいた細胞の選択を可能とする。造血幹細胞及び前駆細胞のＦＡＣＳによる選別及び分析は、とりわけ、Akashi, K. et al., Nature 404(6774):193-197（2000)）に記載されている。
【００６３】
別の態様では、免疫磁気標識を使用して、様々な細胞集団を選別することができる。この方法は、抗体又はレクチンを介して細胞に磁性小粒子を付着させることに基づく。混合細胞集団が磁場に置かれると、ビーズに付着した細胞は、磁石によって誘引され、したがって、標識されていない細胞から分離され得る。
【００６４】
特定の実施態様では、本明細書に記載のような改変された造血幹細胞は、哺乳動物細胞、特にヒト細胞である。
【００６５】
特定の実施態様では、初回の造血幹細胞及び／又は血液細胞の集団は、自己であってもよい。
【００６６】
「自己」は、同じ患者又は個体に由来すること又は起源とすることを指す。「自己移植」は、被験者自身の細胞又は臓器を収集し、再注入又は移植することを指す。自己細胞の排他的又は補助的使用は、宿主に戻す細胞の投与による多くの有害な作用、特に移植片対宿主反応を排除又は低減させることができる。
【００６７】
この場合、造血幹細胞は、該個体から回収され、本明細書に記載のような方法に従ってエクスビボ又はインビトロで遺伝子的に改変され、同じ個体に投与される。
【００６８】
特定の実施態様では、造血幹細胞及び／又は血液細胞の初回集団は、同種ドナーに由来し得るか、又は複数の同種ドナーに由来し得る。ドナーは、互いに関連していても関連していなくてもよく、移植の状況では、レシピエント（すなわち個体）に関連していても関連していなくてもよい。
【００６９】
本明細書に記載のように改変される予定の幹細胞は、場合に応じて、治療を必要とする個体に対して外来性であってもよい。
【００７０】
外来起源の本明細書に記載のような改変された幹細胞の投与の状況では、該幹細胞は、同系、同種、異種、又はその混合物であってもよい。
【００７１】
「同系」は、特に抗原又は免疫反応に関して、遺伝子的に同一である同じ種に由来すること、同じ種を起源とすること、又は同じ種のメンバーであることを指す。これらは、主要組織適合遺伝子複合体の型の一致した同一な双子を含む。したがって、「同系移植」は、ドナーから、ドナーと遺伝子的に同一なレシピエントへの、細胞又は臓器の移植を指す。
【００７２】
「同種」は、同じ種に由来すること、同じ種を起源とすること、又は同じ種のメンバーであることを指し、ここでのメンバーは、遺伝子的に関連しているか、又は遺伝子的に関連していないが遺伝子的に類似している。「同種移植」は、レシピエントがドナーと同じ種である、ドナーからレシピエントへの細胞又は臓器の移植を指す。
【００７３】
「異種」は、異なる種、例えばヒトとげっ歯類、ヒトとブタ、ヒトとチンパンジーなどに由来すること、起源とすること、又はそのメンバーであることを指す。「異種移植」は、レシピエントがドナーとは異なる種である、ドナーからレシピエントへの細胞又は臓器の移植を指す。
【００７４】
内因性造血幹細胞を使用する本発明の他の実施態様は、個体の１つの解剖学的ニッチェから全身循環への、又は別の特定の解剖学的ニッチェへの、該幹細胞の動員を含む。このような動員は当技術分野において周知であり、例えば、骨髄などの区画からの幹細胞の外出を刺激することのできる因子の投与によって引き起こされ得る。
【００７５】
適用可能である場合、幹細胞及び前駆細胞は、被験者へのサイトカイン又は薬物の事前投与によって、骨髄から末梢血中へと動員され得る（例えば、Domingues et al. (Int. J. Hematol. 2017 feb; 105(2): 141-152)参照）。動員を誘発することのできるサイトカイン及びケモカインとしては、例えばであって限定するものではないが、顆粒球コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭ−ＣＳＦ）、エリスロポエチン（Kiessinger, A. et al., Exp. Hematol. 23:609-612 (1995)）、幹細胞因子（ＳＣＦ）、ＡＭＤ３１００（ＡｎｏｒＭｅｄ社、バンクーバー、カナダ）、インターロイキン−８（ＩＬ−８）、及びこれらの因子の変異体（例えばペグフィルグラスチム、ダルボポエチン）が挙げられる。
【００７６】
本明細書に記載のような方法によって調製される細胞は、薬学的に許容される担体に再懸濁されてもよく、直接使用されてもよく、又は、ＦＡＣＳによる選別、磁気アフィニティによる分離、及びイムノアフィニティカラムなどの当業者に利用可能な様々な細胞精製技術による処理にかけられてもよい。
【００７７】
本明細書においてすでに明記されているように、本明細書に記載のような造血幹細胞及び血液細胞は、そのグロビン遺伝子の少なくとも１つにおいて、特にその内因性グロビン遺伝子の少なくとも１つにおいて遺伝子的に改変されている。
【００７８】
グロビン遺伝子は、造血幹細胞及び血液細胞のゲノム内にクラスターで構成され、これらのクラスターは、α様及びβ様ヒトグロビン遺伝子クラスターと呼ばれている。
【００７９】
α様ヒトグロビン遺伝子クラスターは、ゼータ（ζ）、偽ゼータ（Ψζ）、ミュー（μ）、偽アルファ−１（Ψα１）、偽アルファ−２（Ψα２）、アルファ２（α２）、アルファ１（α１）、及びシータ（θ）グロビン遺伝子を含み、第１６番染色体に位置する。
【００８０】
β様ヒトグロビン遺伝子クラスターは、イプシロン（ε）、ガンマ−Ｇ（Ｇγ）、ガンマ−Ａ（Ａγ）、デルタ（δ）、及びベータ（β）グロビン遺伝子を含み、第１１番染色体に位置する。
【００８１】
したがって、本明細書に記載のような細胞のゲノムに含まれ、少なくとも１つの導入遺伝子を含んでいる、少なくとも１つのグロビン遺伝子は、α様ヒトグロビン遺伝子クラスターに及び／又はβ様ヒトグロビン遺伝子クラスターに、特にα様ヒトグロビン遺伝子クラスターに、又はβ様ヒトグロビン遺伝子クラスターにあり得る。
【００８２】
本文書では、「細胞」という用語がこれ以上の指摘がなされることなく記述される場合、それは、本明細書に記載のような造血幹細胞及び血液細胞の両方に適用される。
【００８３】
１つの実施態様によると、本明細書に記載のような少なくとも１つのグロビン遺伝子は、εグロビン遺伝子、γＧグロビン遺伝子、γＡグロビン遺伝子、δグロビン遺伝子、βグロビン遺伝子、ζグロビン遺伝子、偽ζグロビン遺伝子、μグロビン遺伝子、偽α−１グロビン遺伝子、α１グロビン遺伝子、及びα２グロビン遺伝子からなる群より選択される。
【００８４】
特定の実施態様では、本明細書に記載のような少なくとも１つのグロビン遺伝子は、γＧグロビン遺伝子、γＡグロビン遺伝子、δグロビン遺伝子、βグロビン遺伝子、α１グロビン遺伝子、及びα２グロビン遺伝子からなる群より選択され、より特定するとβグロビン遺伝子、α１グロビン遺伝子、及びα２グロビン遺伝子からなる群より選択される。
【００８５】
好ましい実施態様では、本明細書に記載のような少なくとも１つのグロビン遺伝子は、α１グロビン遺伝子及びα２グロビン遺伝子からなる群より選択される。
【００８６】
各グロビン遺伝子のコード領域は、介在配列（ＩＶＳ）すなわちイントロンと呼ばれるノンコーディングＤＮＡ配列によって２つの位置において中断されている。
【００８７】
したがって、グロビン遺伝子は、その５’末端からその３'末端へと、
−近位プロモーター領域；
−５'非翻訳領域（５'ＵＴＲ）；
−少なくとも２つのエキソン、特に３つのエキソン；
−少なくとも１つのイントロン、特に２つのイントロン；及び／又は
−３’非翻訳領域（３’ＵＴＲ）
から構成される。
【００８８】
したがって、本明細書に記載のような細胞において、本明細書に記載のような細胞の少なくとも１つのグロビン遺伝子に含まれる関心対象の少なくとも１つの導入遺伝子は、該グロビン遺伝子の５'領域に、エキソンに、イントロンに、及び／又は３’ＵＴＲに、特に、該グロビン遺伝子の近位プロモーター領域に、５’ＵＴＲに、エキソンに、及び／又はイントロンに含まれ得る。
【００８９】
好ましくは、本明細書に記載のような細胞の少なくとも１つのグロビン遺伝子に含まれる関心対象の少なくとも１つの導入遺伝子は、該グロビン遺伝子の５'領域に及び／又はイントロンに、特に該グロビン遺伝子の５’ＵＴＲに及び／又は近位プロモーターに及び／又はイントロンに、より特定すると該グロビン遺伝子の５’ＵＴＲに又は近位プロモーターに又はイントロン含まれる。
【００９０】
特定の実施態様では、本明細書に記載のような細胞の少なくとも１つのグロビン遺伝子に含まれる関心対象の少なくとも１つの導入遺伝子は、少なくとも１つの該グロビン遺伝子の５'領域に及び／又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に含まれる。
【００９１】
本発明による５'領域は、考えられるグロビン遺伝子の翻訳開始コドンの上流の領域である。それは、遺伝子の５’ＵＴＲ配列及び近位プロモーターを含む。
【００９２】
特に、本発明によるグロビン遺伝子の５'領域は、考えられるグロビン遺伝子の該翻訳開始コドンのすぐ上流の５００ヌクレオチド配列、好ましくは考えられるグロビン遺伝子の該翻訳開始コドンのすぐ上流の４００ヌクレオチド配列、より好ましくは３００ヌクレオチド配列、より特定すると２５０ヌクレオチド配列に相当する。
【００９３】
特定の実施態様では、本発明によるグロビン遺伝子の５'領域は、考えられるグロビン遺伝子の近位プロモーターに相当する。
【００９４】
別の実施態様では、本発明によるグロビン遺伝子の５'領域は、考えられるグロビン遺伝子の５’ＵＴＲ（５’非翻訳領域）に相当する。
【００９５】
以下の全ての位置は、ＵＣＳＣゲノムブラウザー上の２０１３年１２月のヒトＧＲＣｈ３８/ｈｇ３８アセンブリに基づく。
【００９６】
特に、ＨＢＡ１（ヘモグロビンサブユニットα１）ヒト遺伝子を考える場合、５'領域は好ましくは、この遺伝子の５’ＵＴＲに相当する。この５’ＵＴＲは、第１６番染色体：１７６，６５１−１７６，７１６；６６ヌクレオチド；基準配列：ＮＭ＿０００５５８．４の位置に相当する。
【００９７】
特に、ＨＢＡ２（ヘモグロビンサブユニットα２）ヒト遺伝子を考える場合、５'領域は好ましくは、この遺伝子の５’ＵＴＲに相当する。この５’ＵＴＲは、第１６番染色体：１７２，８４７−１７２，９１２；６６ヌクレオチド；基準配列：ＮＭ＿０００５１７．４の位置に相当する。
【００９８】
ＨＢＢ（ヘモグロビンサブユニットβ）ヒト遺伝子を考える場合、５'領域は好ましくは、この遺伝子の近位プロモーターに相当する。この近位プロモーターは、ＵＣＳＣゲノムブラウザー上の２０１３年１２月のヒトＧＲＣｈ３８/ｈｇ３８アセンブリで第１１番染色体：５，２２７，０７２−５，２２７，３２１の位置に相当する。
【００９９】
より特定すると、本明細書に記載のような細胞の少なくとも１つのグロビン遺伝子に含まれる関心対象の少なくとも１つの導入遺伝子は、該グロビン遺伝子の５'領域に、第１イントロン（ＩＶＳ１）に、及び／又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に、好ましくは該グロビン遺伝子の５'ＵＴＲに及び／又は近位プロモーターに及び／又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に、より好ましくは該グロビン遺伝子の５'ＵＴＲに及び／又は近位プロモーターに又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に含まれ得る。
【０１００】
ＨＢＡ１（ヘモグロビンサブユニットα１）ヒト遺伝子を考える場合、第１イントロン（ＩＶＳ１）は、この遺伝子の第１エキソンから第２エキソンまでの間に含まれる１１７ヌクレオチドに相当し得る。この領域は、第１６番染色体：１７６，８１２−１７６，９２８；１１７ヌクレオチド；基準配列：ＮＭ＿０００５５８．４の位置に相当する。
【０１０１】
ＨＢＡ２（ヘモグロビンサブユニットα２）ヒト遺伝子を考える場合、第１イントロン（ＩＶＳ１）は、この遺伝子の第１エキソンから第２エキソンまでの間に含まれる１１７ヌクレオチドに相当し得る。この領域は、第１６番染色体：１７３，００８−１７３，００８−１７３，１２４；１１７ヌクレオチド；基準配列：ＮＭ＿０００５１７．４の位置に相当する。
【０１０２】
ＨＢＢ（ヘモグロビンサブユニットβ）ヒト遺伝子を考える場合、第１イントロン（ＩＶＳ１）は、この遺伝子の第１エキソンから第２エキソンまでの間に含まれる１３０ヌクレオチドに相当し得る。この領域は、第１１番染色体：５，２２６−８００，５，２２６，９２９；１３０ヌクレオチド；基準配列：ＮＭ＿０００５１８．４の位置に相当する。
【０１０３】
ＨＢＡ１（ヘモグロビンサブユニットα１）ヒト遺伝子を考える場合、第２イントロン（ＩＶＳ２）は、この遺伝子の第２エキソンから第３エキソンまでの間に含まれる１４９ヌクレオチドに相当し得る。この領域は、第１６番染色体：１７７，１３４−１７７，２８２；１４９ヌクレオチド；基準配列：ＮＭ＿０００５５８．４の位置に相当する。
【０１０４】
ＨＢＡ２（ヘモグロビンサブユニットα２）ヒト遺伝子を考える場合、第２イントロン（ＩＶＳ２）は、この遺伝子の第２エキソンから第３エキソンまでの間に含まれる１４２ヌクレオチドに相当し得る。この領域は、第１６番染色体：１７３，３３０−１７３，４７１；１４２ヌクレオチド；基準配列：ＮＭ＿０００５１７．４の位置に相当する。
【０１０５】
ＨＢＢ（ヘモグロビンサブユニットβ）ヒト遺伝子を考える場合、第２イントロン（ＩＶＳ２）は、この遺伝子の第２エキソンから第３エキソンまでの間に含まれる８５０ヌクレオチドに相当し得る。この領域は、第１１番染色体：５，２２５−７２７−５，２２６，５７６；８５０ヌクレオチド；基準配列：ＮＭ＿０００５１８．４の位置に相当する。
【０１０６】
本発明者らは実際に意外にも、添付された実施例に例示されているように、ゲノム編集がグロビン遺伝子の選択された位置において行なわれる場合に、本文書でさらに定義されている非常に良好なインデル比率、並びに、高い導入遺伝子（ＧＦＰ）発現が得られることを決定した。
【０１０７】
したがって、特定の実施態様では、本明細書に記載のような細胞は、そのゲノムに含まれるそのグロビン遺伝子の少なくとも１つに、少なくとも１つの該グロビン遺伝子の内因性プロモーターの制御下にある、少なくとも１つの治療用タンパク質又は少なくとも１つの治療用リボ核酸をコードしている少なくとも１つの導入遺伝子を含み、少なくとも１つのグロビン遺伝子は、γＧグロビン遺伝子、γＡグロビン遺伝子、δグロビン遺伝子、βグロビン遺伝子、α１グロビン遺伝子及びα２グロビン遺伝子からなる群より選択され、より特定するとβグロビン遺伝子、α１グロビン遺伝子及びα２グロビン遺伝子からなる群より選択され、好ましくはα１グロビン遺伝子及びα２グロビン遺伝子からなる群より選択され；少なくとも１つの導入遺伝子は、該グロビン遺伝子の５‘領域に、第１イントロン（ＩＶＳ１）に、及び／又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に、特に該グロビン遺伝子の５’ＵＴＲに及び／又は近位プロモーターに及び／又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に、好ましくは該グロビン遺伝子の５'ＵＴＲに又は近位プロモーターに又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に含まれる。
【０１０８】
特定の実施態様では、本明細書に記載のような細胞は、そのゲノムに含まれるそのＨＢＡグロビン遺伝子の少なくとも１つに、少なくとも１つの該グロビン遺伝子の内因性プロモーターの制御下にある、少なくとも１つの治療用タンパク質又は少なくとも１つの治療用リボ核酸をコードしている少なくとも１つの導入遺伝子を含み、少なくとも１つの導入遺伝子は、該グロビン遺伝子の５‘領域に、第１イントロン（ＩＶＳ１）に、及び／又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に、特に該グロビン遺伝子の５’ＵＴＲに及び／又は近位プロモーターに及び／又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に、好ましくは該グロビン遺伝子の５'ＵＴＲに又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に含まれている。
【０１０９】
特定の実施態様では、本明細書に記載のような細胞は、そのゲノムに含まれるそのＨＢＢグロビン遺伝子の少なくとも１つに、少なくとも１つの該グロビン遺伝子の内因性プロモーターの制御下にある、少なくとも１つの治療用タンパク質又は少なくとも１つの治療用リボ核酸をコードしている少なくとも１つの導入遺伝子を含み、少なくとも１つの導入遺伝子は、該グロビン遺伝子の５‘領域に、第１イントロン（ＩＶＳ１）に、及び／又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に、特に該グロビン遺伝子の５’ＵＴＲに及び／又は近位プロモーターに及び／又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に、好ましくは該グロビン遺伝子の近位プロモーターに又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に含まれる。
【０１１０】
特定の実施態様によると、本発明による細胞は、
−該造血幹細胞のゲノムに含まれる少なくとも１つのグロビン遺伝子が、α１グロビン遺伝子及び／又はα２グロビン遺伝子であり、治療用タンパク質又は治療用リボ核酸をコードしている少なくとも１つの導入遺伝子が、少なくとも１つの該グロビン遺伝子の５'非翻訳領域（５’ＵＴＲ）に又はイントロンに、特に５'非翻訳領域（５’ＵＴＲ）に又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に含まれ；
−該造血幹細胞のゲノムに含まれる少なくとも１つのグロビン遺伝子が、βグロビン遺伝子であり、治療用タンパク質又は治療用リボ核酸をコードしている少なくとも１つの導入遺伝子が、少なくとも１つの該グロビン遺伝子の近位プロモーターに又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に含まれているようなものである。
【０１１１】
本発明はまた、本明細書に記載のような遺伝子的に改変された幹細胞を起源とする、好ましくは精製された、血液細胞又は赤血球系細胞に関する。
【０１１２】
改変された幹細胞は、特に、造血幹細胞及び胚性幹細胞からなる群より選択され、好ましくは、造血幹細胞である。好ましい実施態様では、本明細書に記載のような血液細胞は、造血系に由来する細胞である。
【０１１３】
造血幹細胞は、２種類の前駆細胞、すなわち骨髄系前駆細胞又はリンパ系前駆細胞へと分化することができる。骨髄系前駆細胞は、巨核球、血小板、赤血球、肥満細胞、骨髄芽球、好塩基球、好中球、好酸球、単球、及びマクロファージへと分化するであろうが、リンパ系前駆細胞は、ナチュラルキラー細胞（ＮＫ）、小リンパ球、Ｔリンパ球、Ｂリンパ球、及び形質細胞へと分化することができる。
【０１１４】
したがって、本明細書に記載のような「血液細胞」は、リンパ系前駆細胞、骨髄系前駆細胞、巨核球、血小板、赤血球、肥満細胞、骨髄芽球、好塩基球、好中球、好酸球、単球、マクロファージ、ナチュラルキラー細胞、小リンパ球、Ｔリンパ球、Ｂリンパ球、及び形質細胞からなる群より選択され得る。
【０１１５】
造血幹細胞及びリンパ系前駆細胞及び骨髄系前駆細胞は導入遺伝子を発現しないであろうが、それらは、そうすることのできる細胞へと分化することができるので依然として有用である。
【０１１６】
好ましい実施態様では、本明細書に記載のような血液細胞は、巨核球、血小板、赤血球、肥満細胞、骨髄芽球、好塩基球、好中球、好酸球、単球、マクロファージ、ナチュラルキラー細胞、小リンパ球、Ｔリンパ球、Ｂリンパ球、及び形質細胞からなる群より選択される。
【０１１７】
導入遺伝子
本明細書に記載のような細胞に含まれる導入遺伝子は、少なくとも１つのタンパク質及び／又は少なくとも１つのリボ核酸をコードし、特に少なくとも１つの治療用タンパク質及び／又は少なくとも１つの治療用リボ核酸をコードし、特に少なくとも１つの治療用タンパク質又は少なくとも１つの治療用リボ核酸をコードしている。
【０１１８】
本明細書に記載のような細胞内の関心対象の導入遺伝子は、該導入遺伝子を含むグロビン遺伝子の内因性プロモーターの制御下にある。
【０１１９】
１つの実施態様では、本明細書に記載のような細胞は、そのグロビン遺伝子の１つに、たった１つの導入遺伝子を含むことができ、該導入遺伝子は、本明細書に記載のようなたった１つの治療用タンパク質又はたった１つの治療用リボ核酸をコードしている。
【０１２０】
別の実施態様では、本明細書に記載のような細胞は、そのグロビン遺伝子の１つに、たった１つの導入遺伝子を含むことができ、該導入遺伝子は、本明細書に記載のような１個を超える治療用タンパク質又は１個を超える治療用リボ核酸、特に２個、３個、４個、５個、又は６個の治療用タンパク質又は治療用リボ核酸、好ましくは２個の治療用タンパク質又は治療用リボ核酸をコードしている。
【０１２１】
本明細書に記載のような導入遺伝子によってコードされる治療用タンパク質又は治療用リボ核酸が１つを超えて存在する場合、該治療用タンパク質又は治療用リボ核酸は、同一であっても又は互いに異なっていてもよい。
【０１２２】
さらに、本明細書に記載のような細胞に１つを超える導入遺伝子が存在する場合、該導入遺伝子は、独立して、同じグロビン遺伝子にあっても異なるグロビン遺伝子にあってもよく、同じグロビン遺伝子にある場合には、該グロビン遺伝子の同じ部分にあっても異なる部分にあってもよい。
【０１２３】
別の実施態様では、本明細書に記載のような細胞は、そのグロビン遺伝子の少なくとも１つに、１つを超える導入遺伝子、特に２個、３個、４個、５個、又は６個の導入遺伝子を含むことができる。
【０１２４】
この実施態様によると、異なる導入遺伝子は独立して、導入遺伝子毎に、同じ又は異なる治療用タンパク質（群）又は治療用リボ核酸をコードしていてもよい。
【０１２５】
また、この実施態様によると、異なる導入遺伝子は、独立して、本明細書に記載のような１つ、又は１つを超える治療用タンパク質（群）又は治療用リボ核酸をコードしていてもよい。
【０１２６】
特に、全ての導入遺伝子は、たった１つの治療用タンパク質又はたった１つの治療用リボ核酸をコードしていてもよい。あるいは、少なくとも１つの、特に全ての導入遺伝子が、１つを超える、特に２個、３個、４個、５個又は６個、より好ましくは２個の治療用タンパク質又は治療用リボ核酸をコードしていてもよい。
【０１２７】
さらに、異なる導入遺伝子によってコードされる治療用タンパク質又は治療用リボ核酸は、独立して、同一であっても異なっていてもよい。
【０１２８】
さらにこの実施態様によると、本明細書に記載のような細胞内の導入遺伝子は、独立して、同じグロビン遺伝子にあっても又は異なるグロビン遺伝子にあってもよく、同じグロビン遺伝子にある場合には、該ブロビン遺伝子の同じ部分にあっても異なる部分にあってもよい。
【０１２９】
特定の実施態様では、本明細書に記載のような治療用タンパク質は、それを産生する細胞によって天然に分泌され得るか、又は分泌するように工学操作されている。
【０１３０】
例えば、治療用タンパク質は、少なくとも１つのシグナルペプチド（群）をその配列に付加することによって工学操作され得る。シグナルペプチドは、細胞によって認識され、産生されたタンパク質の細胞膜への移動及びその分泌を可能とする、ペプチドのＮ末端に存在する短い配列である。
【０１３１】
別の実施態様によると、本文書による治療用タンパク質は、他の細胞によるその取り込み、又は血液脳関門のその横断、又は血漿中若しくは内皮細胞上の他のタンパク質へのその結合を促進する短い配列を付加することによって工学操作され得る。
【０１３２】
本明細書に記載のような導入遺伝子は、あらゆる種類の治療用タンパク質又は治療用リボ核酸をコードし得る。
【０１３３】
例えば、本明細書に記載のような細胞のグロビン遺伝子に含まれる導入遺伝子によってコードされる治療用タンパク質は、サイトカイン、特にインターフェロン；ホルモン；ケモカイン；抗体（ナノボディーズを含む）；血管新生抑制因子；又は、補充療法用のタンパク質、例えば酵素、特にαグルコシダーゼ、α−ガラクトシダーゼ、及び第ＶＩＩＩ因子からなる群より選択され得る。
【０１３４】
特定の実施態様では、導入遺伝子は、それが挿入される遺伝子とは異なる。
【０１３５】
特定の実施態様によると、本明細書に記載のような細胞のグロビン遺伝子に含まれる導入遺伝子によってコードされる治療用タンパク質は、増殖因子、増殖調節因子、免疫化又はワクチン接種に有用な抗体、抗原、及びそれらの誘導体からなる群より選択され得る。このような治療用タンパク質は特に、インターロイキン；インシュリン；顆粒球コロニー刺激因子；顆粒球単球コロニー刺激因子；ヒト多分化能性顆粒球コロニー刺激因子；マクロファージコロニー刺激因子；インターフェロン、例えばインターフェロン−α、インターフェロン−β、又はインターフェロン−ｐｉ；血液凝固因子、例えば第ＶＩＩＩ因子、第ＩＸ因子、又は組織プラスミノーゲン活性化因子；又はその組合せからなる群より選択され得る。それは好ましくは、血液凝固因子から選択され、より特定すると第ＶＩＩＩ因子である。
【０１３６】
したがって、特定の実施態様では、本明細書に記載のような細胞のグロビン遺伝子に含まれる導入遺伝子によってコードされる治療用タンパク質は、サイトカイン、特にインターフェロン（インターフェロン−α、−β、又は−γ）；ホルモン；ケモカイン；抗体（ナノボディーズを含む）；血管新生抑制因子；補充療法用の酵素、例えばアデノシンデアミナーゼ、αグルコシダーゼ、α−ガラクトシダーゼ、α−Ｌ−イズロニダーゼ（ＩＤＵＡ）、及びβ−グルコシダーゼ；インターロイキン；インシュリン；顆粒球コロニー刺激因子；顆粒球単球コロニー刺激因子；ヒト多分化能性顆粒球コロニー刺激因子；マクロファージコロニー刺激因子；血液凝固因子、例えば第ＶＩＩＩ因子、第ＩＸ因子、又は組織プラスミノーゲン活性化因子；膜貫通タンパク質、例えば神経成長因子受容体（ＮＧＦＲ）；ライソゾーム酵素、例えばα−ガラクトシダーゼ（ＧＬＡ）、α−Ｌ−イズロニダーゼ（ＩＤＵＡ）、ライソゾーム酸性リパーゼ（ＬＡＬ）及びガラクトサミン（Ｎ−アセチル）−６−スルファターゼ（ＧＡＬＮＳ）；疾患に罹患している細胞によって分泌され最終的に取り込まれるように工学操作され得る任意のタンパク質（Lawlor MW, Hum Mol Genet. 22(8): 1525-1538. (2013); Puzzo F, Sci Transl Med. 29;9(418) (2017); Bolhassani A. Peptides. 87:50-63., (2017))）、及びその組合せからなる群より選択され得る。
【０１３７】
本明細書に記載のような細胞のグロビン遺伝子に含まれる導入遺伝子によってコードされる治療用タンパク質は特に、血液凝固因子、特に第ＶＩＩＩ因子；又はライソゾーム酵素、例えばライソゾーム酸性リパーゼ（ＬＡＬ）又はガラクトサミン（Ｎ−アセチル）−６−スルファターゼ（ＧＡＬＮＳ）である。
【０１３８】
本明細書に記載のような細胞のグロビン遺伝子に含まれる導入遺伝子によってコードされる治療用タンパク質は、より特定すると、血液凝固因子、特に第ＶＩＩＩ因子である。
【０１３９】
例えば、本明細書に記載のような細胞のグロビン遺伝子に含まれる導入遺伝子によってコードされる治療用リボ核酸は、ｍｉＲＮＡ、ｓｈＲＮＡ、ｓｉＲＮＡ、ｎｃＲＮＡ、及びｓｎＲＮＡからなる群より選択され得る。
【０１４０】
タンパク質をコードしている導入遺伝子は、野生型形又はコドン最適化形であり得、後者は、関心対象の最適化されていないタンパク質が非常に長い場合には、より特に関心が持たれる。このような最適化された配列は有利には、より高い導入遺伝子の発現及びタンパク質の産生を可能とし得る。例示的には、ヒトＦＶＩＩＩの最適化された導入遺伝子をコードしている導入遺伝子が、本文書の実施例において使用されている。
【０１４１】
コードされているタンパク質は、野生型形又はコドン最適化形の上記タンパク質のいずれかであり得、後者は、関心対象の最適化されていないタンパク質が非常に長い場合には、より特に関心が持たれる。このような最適化されたタンパク質は有利には、該タンパク質の半減期及び安定性の向上を可能にし得る。例示的には、ヒトＦＶＩＩＩの最適化されたタンパク質をコードしている導入遺伝子が、本文書の実施例において使用されている。
【０１４２】
本明細書に記載のような導入遺伝子によってコードされる治療用タンパク質はまた、免疫寛容を誘導することのできるタンパク質でもあってもよい。赤血球系の発現は実際に、制御性Ｔ細胞の形成を誘導することによって、反応性Ｔ細胞の除去を誘導することができ、これは、ＩＩ型糖尿病などの自己免疫疾患を処置するために（Pishesha et al. Proc. Natl. Acad. Sci .U.S.A. 2017 Apr. 25; 114(17):E3583）、又はポンペ病のための酸性αグルコシダーゼ（ＧＡＡ）及びアスパラギナーゼなどの治療用タンパク質に対する免疫反応を回避するために（Lorentz et al. (Sci. Adv. 2015 Jul 17;1(6):e1500112); Cremel et al. (Int. J. Pharm. 2015 Aug 1 ; 49(1-2) :69-77）、治療的に使用することのできるアプローチである。
【０１４３】
特定の実施態様では、本明細書に記載のような導入遺伝子は、１５ｋｂより小さい、より特定すると１０ｋｂより小さい、好ましくは８ｋｂより小さいサイズを有する。
【０１４４】
本明細書に記載のような造血幹細胞の調製法
本明細書に記載のような改変された造血幹細胞の調製法は、インビボ、エクスビボ、又はインビトロであり、好ましくはエクスビボ又はインビトロである。
【０１４５】
本発明は特に、本明細書に記載のような造血幹細胞のエクスビボ又はインビトロでの調製法に関し、該方法は、
（ｉ）（ａ）該幹細胞に、（１）選択された標的部位に結合する少なくとも１つのガイド核酸、又は（２）選択された標的部位に結合するガイドペプチドを含むエンドヌクレアーゼを与える工程（該標的部位は、該造血幹細胞のゲノムに含まれるグロビンコード遺伝子に位置する）；
（ｂ）少なくとも１つのガイド核酸が工程ａ）で与えられると、該幹細胞にさらに、標的部位特異性を欠いた少なくとも１つのエンドヌクレアーゼを与える工程；及び
（ｃ）該幹細胞にさらに、少なくとも１つの治療用タンパク質又は少なくとも１つの治療用リボ核酸をコードしている導入遺伝子を与える工程
による部位特異的遺伝子工学操作システムを、該幹細胞に与える工程；及び
（ｉｉ）工程（ｉ）で得られた幹細胞を培養して、該導入遺伝子を、該造血幹細胞のゲノム内の選択された該標的部位に導入する工程
を含む。
【０１４６】
本明細書に記載のような標的部位は、上記に定義されているようなグロビン遺伝子のドメイン内に存在し得、該ドメインは、該グロビン遺伝子の５'領域、エキソンドメイン、イントロンドメイン、及び３’ＵＴＲドメインからなる群より選択され、特に該グロビン遺伝子の５'領域、エキソンドメイン、及びイントロンドメインからなる群より選択され、より特定すると該グロビン遺伝子の５'ＵＴＲ、近位プロモーター、及びイントロンドメインからなる群より選択される。
【０１４７】
好ましい実施態様では、該標的部位は、前記の少なくとも１つのグロビン遺伝子の５'領域に及び／又はイントロンに、好ましくは前記の少なくとも１つのグロビン遺伝子の５’非翻訳領域（５’ＵＴＲ）に及び／又は近位プロモーターに及び／又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に位置し、特に前記の少なくとも１つのグロビン遺伝子の５’非翻訳領域に（５’ＵＴＲ）に又は近位プロモーターに又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に含まれる。
【０１４８】
特定の実施態様では、本明細書に記載のような方法の工程（ｉ）（ａ）は、該幹細胞に、選択された標的部位に結合するガイドペプチドを含むエンドヌクレアーゼを与えると定義される。
【０１４９】
別の実施態様では、本明細書に記載のような方法の工程（ｉ）（ａ）は、該幹細胞に、選択された標的部位に結合する少なくとも１つのガイド核酸（すなわちｇＲＮＡ）を与えると定義される。
【０１５０】
ｇＲＮＡは、ワトソンクリック塩基対形成を介してＤＮＡ標的に結合する、８０ヌクレオチドの定常領域と短い２０ヌクレオチドの標的特異的配列（ｇＲＮＡ配列の５’にある）とを含む、標的特異的な短い一本鎖のＲＮＡ配列である。
【０１５１】
特定の実施態様では、本明細書に記載のような方法の工程（ｉ）（ａ）は、該幹細胞に、同じグロビン遺伝子ドメイン内の２つの異なる標的部位に結合する２つのガイド核酸（すなわちｇＲＮＡ）を与えると定義される。
【０１５２】
上記に定義されているように、本明細書に記載のような方法の工程（ｉ）（ｂ）は、本明細書に記載のような該方法の工程（ｉ）（ａ）が、該幹細胞に、選択された標的部位に結合する少なくとも１つのガイド核酸（すなわちｇＲＮＡ）を与えると定義されている場合にのみ存在する。
【０１５３】
本明細書に記載のようなエンドヌクレアーゼは、標的部位特異性を欠失していると定義され、すなわち、該エンドヌクレアーゼは単独では、本明細書に記載の造血幹細胞のゲノム内の特定の標的部位を認識することができない。
【０１５４】
ＤＮＡを特定の標的部位において特異的に切断するために、このようなエンドヌクレアーゼは、選択された標的部位に結合するガイド核酸又はガイドペプチドと会合する必要がある。ガイドペプチドと会合した場合の、ガイドペプチドを含むエンドヌクレアーゼは本明細書に記述されている。
【０１５５】
ガイドペプチド又はガイド核酸（ｇＲＮＡ）によって標的部位に誘導される場合、本明細書に記載のようなエンドヌクレアーゼは、該標的部位に一本鎖切断又は二本鎖切断を導入することができる。
【０１５６】
特に、選択された標的部位に結合する単一のガイド核酸分子（ｇＲＮＡ）又は選択された標的部位に結合するガイドペプチドを含むエンドヌクレアーゼが、本明細書に記載のような方法の工程（ｉ）（ａ）に与えられている場合、ガイドペプチドを含むエンドヌクレアーゼのエンドヌクレアーゼ部分又は本明細書に定義されているような方法の工程（ｉ）（ｂ）のエンドヌクレアーゼは、標的部位において二本鎖切断を導入することができる。
【０１５７】
別の実施態様では、グロビン遺伝子のドメイン内の２つの異なる標的部位を認識することのできる２つのガイド核酸分子（ｇＲＮＡ）が工程（ｉ）（ａ）に与えられている場合、標的部位特異性の欠けた１つ又は２つのエンドヌクレアーゼ（群）が、本明細書に記載のような方法の工程（ｉ）（ｂ）において与えられ得、１つ又は２つのエンドヌクレアーゼ（群）は２つの異なる標的部位において一本鎖切断を導入することができる。
【０１５８】
本明細書に記載のような方法の工程（ｉ）（ａ）、（ｉ）（ｂ）及び（ｉ）（ｃ）は独立して、同時に又は互いに別々に実現され得る。好ましい実施態様では、選択された標的部位に結合する少なくとも１つのガイド核酸、又は工程（ｉ）（ａ）の選択された標的部位に結合するガイドペプチドを含むエンドヌクレアーゼ、工程（ｉ）（ｂ）の標的部位特異性の欠けた少なくとも１つのエンドヌクレアーゼ、及び工程（ｉ）（ｃ）の導入遺伝子は、該幹細胞に同時に与えられる。
【０１５９】
細胞内にタンパク質及び核酸分子をインビトロで、エクスビボで、又はインビボで導入する方法は、当技術分野において周知である。核酸（通常ベクター内に存在する）又はタンパク質を細胞内に導入するための伝統的な方法としては、マイクロインジェクション、電気穿孔法、及び超音波遺伝子導入法が挙げられる。マグネトフェクション、オプトインジェクション、オプトポレーション、光トランスフェクション及びレーザーフェクションなどの物理的、機械的、及び生化学的アプローチに基づいた他の技術も記述され得る（Stewart MP et al., Nature, 2016参照）。
【０１６０】
特定の実施態様では、工程（ｉ）（ｂ）の標的部位特異性の欠けたエンドヌクレアーゼは、ＲＮＡ誘導型エンドヌクレアーゼである。特に、このＲＮＡ誘導型エンドヌクレアーゼは、ｇＲＮＡにより指令されることにより、標的部位において一本鎖又は二本鎖の切断を導入することができる。
【０１６１】
本明細書に記載のようなＲＮＡ誘導型エンドヌクレアーゼは特に、クリスパー（Ｃｌｕｓｔｅｒｅｄ  ｒｅｇｕｌａｒｌｙ  ｉｎｔｅｒｓｐａｃｅｄ  ｓｈｏｒｔ  ｐａｌｉｎｄｒｏｍｉｃ  ｒｅｐｅａｔｓ）（ＣＲＩＳＰＲ）関連タンパク質（Ｃａｓ）、特にＣＲＩＳＰＲ関連タンパク質９（Ｃａｓ９）、又はラクノスピラ属（Lachnospiraceae）、アシダミノコッカス属（Acidaminococcus）、プレボテラ属（Prevotella）、及びフランシセラ１属（Francisella1）のＣＲＩＳＰＲ関連エンドヌクレアーゼ（Ｃｐｆ１）であってもよい。
【０１６２】
ゲノム編集のためのＣＲＩＳＰＲ−Ｃａｓシステムは、標的化のためにタンパク質−ＤＮＡの相互作用を使用する他のシステムではなく、工学操作されたＲＮＡと標的ＤＮＡ部位との間の単純な塩基対形成の法則を使用した特定のシステムである。
【０１６３】
ＣＲＩＳＰＲ−Ｃａｓ ＲＮＡ誘導型ヌクレアーゼは、侵入プラスミド及びウイルスに対して防御するために細菌において進化した適応免疫系に由来する。
【０１６４】
第一の実施態様によると、それは、侵入する短い核酸配列がＣＲＩＳＰＲ遺伝子座に取り込まれる機序からなる。それらは、その後、転写及びプロセシングされてＣＲＩＳＰＲ ＲＮＡ（ｃｒＲＮＡ）となり、これはトランス活性化ｃｒＲＮＡ（ｔｒａｃｒＲＮＡ）と一緒に、ＣＲＩＳＰＲ関連（Ｃａｓ）タンパク質と複合体を形成し、核酸間のワトソンクリック塩基対形成を通した、ＣａｓヌクレアーゼによるＤＮＡ切断特異性を指示する。ｃｒＲＮＡは、「プロトスペーサー」配列として知られる可変配列を有する。プロトスペーサーのコードされているｃｒＲＮＡ部分は、Ｃａｓ９に、相補的標的ＤＮＡ配列が「プロトスペーサー隣接モチーフ」（ＰＡＭ）として知られる短い配列に隣接している場合、該相補的標的ＤＮＡ配列を切断するように指示する。ＣＲＩＳＰＲ遺伝子座に取り込まれたプロトスペーサー配列は切断されない。なぜなら、それらはＰＡＭ配列の隣に存在していないからである（Mali et al. (Nat. Methods, 2013 Oct;10(10):957-63)；及びWright et al. (2016 Jan. 14;164(1-2):29-44 Cell参照）。
【０１６５】
この第一の実施態様によると、本明細書に記載のようなガイドＲＮＡ（ｇＲＮＡ）は、単一のＲＮＡ（よってこれはｓｇＲＮＡと呼ばれる）に相当するか、又はｃｒＲＮＡとｔｒａｃｒＲＮＡとの融合物に相当するかのいずれかである。本文書に使用されるガイドＲＮＡすなわちｇＲＮＡという用語は、特定の形態が具体的に示されていない場合、これらの２つの形態を示す。
【０１６６】
この実施態様に記載の及びｃｒＲＮＡとｔｒａｃｒＲＮＡとの融合物に相当するｇＲＮＡにおける、ヌクレオチド１〜３２は天然ｃｒＲＮＡであり、一方、ヌクレオチド３７〜１００は天然ｔｒａｃｒＲＮＡであり、ヌクレオチド３３〜３６は、２つのｇＲＮＡ片の間のＧＡＡＡリンカーに相当する（Jinek et al. (2012) Science 337:816-821及びCong et al. (2013) Science; 339(6121): 819-823参照）。
【０１６７】
このようなｇＲＮＡは有利には、ＣＲＩＳＰＲ−Ｃａｓ９システムにおいて使用される。
【０１６８】
ｇＲＮＡは人工であり、天然には存在しない。
【０１６９】
本明細書に記載のような好ましいｇＲＮＡは、配列番号１、配列番号３、配列番号５、配列番号７、配列番号９、配列番号１１、配列番号１３、配列番号１５、配列番号１７、配列番号１９、配列番号２１、配列番号２３、配列番号２５、配列番号２７、配列番号２９、配列番号３１、配列番号３３、配列番号３５、配列番号３７、配列番号３９、配列番号４１、配列番号４３、配列番号４５、配列番号４７、配列番号４９、配列番号５１、配列番号５３、配列番号５５、配列番号５７、配列番号５９、配列番号６１、及び配列番号６３からなる群より選択された核酸配列を含むｇＲＮＡの中から選択され得る。
【０１７０】
本明細書に記載のような特に好ましいｇＲＮＡは、配列番号３、配列番号５、配列番号７、配列番号１１、配列番号１３、配列番号１５、配列番号１７、配列番号２７、配列番号２９、配列番号３１、配列番号３３、配列番号３５、配列番号３７、配列番号３９、配列番号４１、配列番号４３、配列番号４５、配列番号４７、配列番号４９、配列番号５１、配列番号５３、配列番号５５、配列番号５７、配列番号５９、配列番号６１、及び配列番号６３からなる群より選択された核酸配列を含む、より好ましくは配列番号１１、配列番号３１及び配列番号３７からなる群より選択された核酸配列を含むｇＲＮＡの中から選択され得る。
【０１７１】
本明細書に記載のような好ましいｇＲＮＡは、配列番号２、配列番号４、配列番号６、配列番号８、配列番号１０、配列番号１２、配列番号１４、配列番号１６、配列番号１８、配列番号２０、配列番号２２、配列番号２４、配列番号２６、配列番号２８、配列番号３０、配列番号３２、配列番号３４、配列番号３６、配列番号３８、配列番号４０、配列番号４２、配列番号４４、配列番号４６、配列番号４８、配列番号５０、配列番号５２、配列番号５４、配列番号５６、配列番号５８、配列番号６０、配列番号６２、及び配列番号６４からなる群より選択された核酸配列からなるｇＲＮＡの中から選択され得る。
【０１７２】
本明細書に記載のような特に好ましいｇＲＮＡは、配列番号４、配列番号６、配列番号８、配列番号１２、配列番号１４、配列番号１６、配列番号１８、配列番号２８、配列番号３０、配列番号３２、配列番号３４、配列番号３６、配列番号３８、配列番号４０、配列番号４２、配列番号４４、配列番号４６、配列番号４８、配列番号５０、配列番号５２、配列番号５４、配列番号５６、配列番号５８、配列番号６０、配列番号６２、及び配列番号６４からなる群より選択された核酸配列からなる、より好ましくは配列番号１２、配列番号３２及び配列番号３８からなる群より選択された核酸配列を含む、ｇＲＮＡの中から選択され得る。
【０１７３】
異なるＰＡＭを有する、異なるＣａｓ又はＣａｓ９ヌクレアーゼと共に使用され得る、他のｇＲＮＡは、本発明による方法において設計され使用され得る。
【０１７４】
前記の２０ヌクレオチドの核酸配列は、ｇＲＮＡ配列の５’末端における最初の２０ヌクレオチドに相当し、今回の第一の実施態様では、ＰＡＭ配列、好ましくはＰＡＭ配列ＮＧＧの直前にあり、すなわち、配列番号１〜８の配列は、ｇＲＮＡ配列のヌクレオチド１〜２０を示し、ＰＡＭシグナルはヌクレオチド２１〜２３である。
【０１７５】
ＰＡＭ配列におけるＮは、アデニン（Ａ）、シトシン（Ｃ）、チミン（Ｔ）、又はグアニン（Ｇ）であってもよい。
【０１７６】
実施例に例示されているように、ＨＢＡ１／２遺伝子及びＨＢＢ遺伝子の５’領域（５’ＵＴＲ又は近位プロモーター）又はイントロン（ＩＶＳ１又はＩＶＳ２）のいずれかに標的化する多くの設計されたｇＲＮＡの中で、本発明者らは、Ｃａｓ９により誘導される二本鎖切断（ＤＳＢ）によりポジティブな二本鎖ＤＮＡの組込み事象が起こらない場合に、ノックアウト対立遺伝子が生じる可能性を最小限にするための特定のｇＲＮＡを選択した。
【０１７７】
別の実施態様によると、機序は、トランス活性化型ｃｒＲＮＡ（ｔｒａｃｒＲＮＡ）が全く使用されない以外は、上記の第一の実施態様の機序に類似している。実際に、この実施態様では、ＣＲＩＳＰＲ ＲＮＡ（ｃｒＲＮＡ）はＣＲＩＳＰＲ関連（Ｃａｓ）タンパク質と複合体を形成し、核酸間のワトソンクリック塩基対形成を通した、ＣａｓヌクレアーゼによるＤＮＡ切断特異性を指示する。この実施態様によると、Ｃａｓタンパク質は有利にはＣｐｆ１である。実際に、Ｃｐｆ１とＣａｓ９との間の重要な相違は、例えば、Ｃｐｆ１が、ｔｒａｃｒＲＮＡを必要としない単一ＲＮＡ誘導型ヌクレアーゼであることである。
【０１７８】
Ｃｐｆ１酵素は、フランシセラ・ノビシダ（Francisella novicida）菌から単離されている。Ｃｐｆ１タンパク質は、Ｃａｓ９のそれぞれのヌクレアーゼドメインと遠縁であると予測されるＲｕｖＣ様エンドヌクレアーゼドメインを含有している。しかしながら、Ｃｐｆ１は、Ｃａｓ９のＲｕｖＣ様ドメイン内に存在する第二のエンドヌクレアーゼドメインであるＨＮＨを欠失しているという点でＣａｓ９とは異なる。Ｃｐｆ１は、ガイドの５’側にあるＴリッチＰＡＭであるＴＴＴＮを認識し、この点が、ガイドの３’側にあるＮＧＧ ＰＡＭを使用するＣａｓ９とは異なる。
【０１７９】
ＰＡＭ配列のＴＴＴＮにおける、Ｎは、アデニン（Ａ）、シトシン（Ｃ）、チミン（Ｔ）、又はグアニン（Ｇ）であってもよい。
【０１８０】
本実施態様によると、本明細書に記載のようなガイドＲＮＡ（ｇＲＮＡ）は単独のｃｒＲＮＡに相当し、ｔｒａｃｒＲＮＡと融合している必要はない。このようなｇＲＮＡは有利には、ＣＲＩＳＰＲ−Ｃｐｆ１システムに使用される。
【０１８１】
特定の実施態様によると、本明細書で定義されている方法の工程（ｉ）（ａ）の選択された標的部位に結合するガイドペプチドを含むエンドヌクレアーゼは、転写活性化因子様エフェクターヌクレアーゼ（ＴＡＬＥＮ）又はジンクフィンガーヌクレアーゼである。
【０１８２】
ＴＡＬＥＮ技術は、特異的なＤＮＡ結合ドメインに融合させた、非特異的なＤＮＡ切断ドメイン（ヌクレアーゼ）を含む。特異的なＤＮＡ結合ドメインは、宿主植物細胞内の遺伝子の転写を変化させるためにキサントモナス属（Xanthomonas）の細菌によって分泌されるタンパク質である、転写活性化因子様エフェクター（ＴＡＬＥ）に由来する高度に保存されている反復配列から構成されている。ＤＮＡ切断ドメイン又は切断ハーフドメインは、例えば、様々な制限エンドヌクレアーゼ及び／又はＦｏｋＩのホーミングエンドヌクレアーゼ（例えば、ＦｏｋＩ ＩＩＳ型の制限エンドヌクレアーゼ）から得ることができる（Wright et al. (Biochem. J. 2014 Aug. 15;462(1):15-24)参照）。
【０１８３】
ジンクフィンガーヌクレアーゼ（ＺＦＮ）技術は、ＤＮＡ切断ドメイン（ヌクレアーゼ）へのジンクフィンガーＤＮＡ結合ドメインの融合によって作製された、人工制限酵素の使用からなる。ジンクフィンガードメインは、所望のＤＮＡ配列に特異的に標的化し、これにより、会合したヌクレアーゼが、複雑なゲノム内にある特有の配列を標的化することが可能となる。
【０１８４】
ジンクフィンガーＤＮＡ結合ドメインは、２フィンガーモジュールの一本の鎖を含み、各々が、特有のヘキサマー（６ｂｐ）ＤＮＡ配列を認識する。２フィンガーモジュールは互いに縫合して、ジンクフィンガータンパク質を形成する。ＴＡＬＥＮ技術と同様に、ＤＮＡ切断ドメインは、ＦｏｋＩのヌクレアーゼドメインを含む（Carroll D, Genetics, 2011 Aug; 188(4): 773-782; Urnov F.D.  Nat Rev Genet. (9):636-46, (2010)）。
【０１８５】
本明細書に記載のような方法の工程（ｉ）（ｃ）の導入遺伝子に関して、該導入遺伝子は好ましくは、プロモーターの制御下にはなく、及び／又は、提供される導入遺伝子は、幹細胞のゲノム内に挿入されないであろうプロモーターの制御下にある。
【０１８６】
実際に、以前に示されているように、本明細書に記載のような及び以前に定義されているような方法から得ることのできる、遺伝子的に改変された造血幹細胞は、グロビン遺伝子に含まれる少なくとも１つの導入遺伝子が、該導入遺伝子が挿入される該グロビン遺伝子の内因性プロモーターの制御下にあるようなものである。
【０１８７】
本明細書に記載のような幹細胞のグロビン遺伝子の内因性プロモーターの使用は有利には、上記のような細胞内における導入遺伝子の高度かつ組織特異的な転写を可能とする。
【０１８８】
本明細書に記載のような方法の工程（ｉｉ）において、工程（ｉ）で得られた幹細胞を培養して、該導入遺伝子を、該造血幹細胞のゲノム内の選択された該標的部位に導入する。
【０１８９】
特定の実施態様では、本明細書に記載のような造血幹細胞のエクスビボ又はインビトロでの調製法は、
（ｉ）（ａ）該幹細胞に、選択された標的部位に結合する少なくとも１つのガイド核酸を与える工程（該標的部位は、該造血幹細胞のゲノムに含まれるグロビンコード遺伝子に位置する）；
（ｂ）該幹細胞に、標的部位特異性を欠いた少なくとも１つのエンドヌクレアーゼをさらに与える工程；及び
（ｃ）該幹細胞に、少なくとも１つの治療用タンパク質又は少なくとも１つの治療用リボ核酸をコードしている導入遺伝子をさらに与える工程
による部位特異的遺伝子工学操作システムを、該幹細胞に与える工程；及び
（ｉｉ）工程（ｉ）で得られた幹細胞を培養して、該導入遺伝子を、該造血幹細胞のゲノム内の選択された該標的部位に導入する工程
を含む。
【０１９０】
以前に記載されているように、少なくとも１つのグロビン遺伝子は好ましくは、εグロビン遺伝子、γＧグロビン遺伝子、γＡグロビン遺伝子、δグロビン遺伝子、βグロビン遺伝子、ζグロビン遺伝子、偽ζグロビン遺伝子、μグロビン遺伝子、偽α１グロビン遺伝子、α１グロビン遺伝子及びα２グロビン遺伝子からなる群より選択され、特にγＧグロビン遺伝子、γＡグロビン遺伝子、δグロビン遺伝子、βグロビン遺伝子、α１グロビン遺伝子及びα２グロビン遺伝子からなる群より選択され、より特定すると、α１グロビン遺伝子及びα２グロビン遺伝子からなる群より選択される。
【０１９１】
特定の実施態様では、本発明は、請求項１〜５のいずれか一項記載の造血幹細胞のインビボ、エクスビボ、又はインビトロでの調製法、特にエクスビボ又はインビトロでの調製法に関し、該方法は、
（ｉ）（ａ）該幹細胞に、選択された標的部位に結合する少なくとも１つのガイド核酸を与える工程（該標的部位は、該造血幹細胞のゲノムに含まれる内因性グロビンコード遺伝子の５’領域及び／又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に位置する）；
（ｂ）該幹細胞に、少なくとも１つのクリスパー（Ｃｌｕｓｔｅｒｅｄ  ｒｅｇｕｌａｒｌｙ  ｉｎｔｅｒｓｐａｃｅｄ  ｓｈｏｒｔ  ｐａｌｉｎｄｒｏｍｉｃ  ｒｅｐｅａｔｓ）（ＣＲＩＳＰＲ）関連ヌクレアーゼ、特にＣＲＩＳＰＲ関連タンパク質９（Ｃａｓ９）をさらに与える工程；及び
（ｃ）該幹細胞に、少なくとも１つの治療用タンパク質又は少なくとも１つの治療用リボ核酸をコードしている導入遺伝子をさらに与える工程
による部位特異的遺伝子工学操作システムを、該幹細胞に与える工程；及び
（ｉｉ）工程（ｉ）の終了時に得られた幹細胞を培養して、該導入遺伝子を、該造血幹細胞のゲノム内の選択された該標的部位に導入する工程
を含む。
【０１９２】
特定の実施態様では、本発明は、請求項１〜５のいずれか一項記載の造血幹細胞のインビボ、エクスビボ、又はインビトロでの調製法、特にエクスビボ又はインビトロでの調製法に関し、該方法は、
（ｉ）（ａ）該幹細胞に、選択された標的部位に結合する少なくとも１つのガイド核酸を与える工程（該標的部位は、該造血幹細胞のゲノムに含まれる内因性グロビンコード遺伝子の５’領域及び／又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に位置する）；
（ｂ）該幹細胞に、少なくとも１つのクリスパー（Ｃｌｕｓｔｅｒｅｄ  ｒｅｇｕｌａｒｌｙ  ｉｎｔｅｒｓｐａｃｅｄ  ｓｈｏｒｔ  ｐａｌｉｎｄｒｏｍｉｃ  ｒｅｐｅａｔｓ）（ＣＲＩＳＰＲ）関連ヌクレアーゼ、特にＣＲＩＳＰＲ関連タンパク質９（Ｃａｓ９）をさらに与える工程；及び
（ｃ）該幹細胞に、少なくとも１つの治療用タンパク質又は少なくとも１つの治療用リボ核酸をコードしている導入遺伝子をさらに与える工程
による部位特異的遺伝子工学操作システムを、該幹細胞に与える工程；及び
（ｉｉ）工程（ｉ）の終了時に得られた幹細胞を培養して、該導入遺伝子を、該造血幹細胞のゲノム内の選択された該標的部位に導入する工程
を含み、
選択された標的部位に結合する前記の少なくとも１つのガイド核酸は、配列番号２、配列番号４、配列番号６、配列番号８、配列番号１０、配列番号１２、配列番号１４、配列番号１６、配列番号１８、配列番号２０、配列番号２２、配列番号２４、配列番号２６、配列番号２８、配列番号３０、配列番号３２、配列番号３４、配列番号３６、配列番号３８、配列番号４０、配列番号４２、配列番号４４、配列番号４６、配列番号４８、配列番号５０、配列番号５２、配列番号５４、配列番号５６、配列番号５８、配列番号６０、配列番号６２、及び配列番号６４からなる群より選択された核酸配列からなる、好ましくは配列番号１２、配列番号３２及び配列番号３８からなる群より選択された核酸配列を含む、ｇＲＮＡからなる群より選択される。
【０１９３】
医薬組成物
本明細書の何処か他の箇所ですでに記載されているように、本発明はまた、本明細書に記載のような少なくとも１つの遺伝子的に改変された造血幹細胞、及び／又は本明細書に記載のような少なくとも１つの血液細胞（又は赤血球系細胞）を薬学的に許容される媒体中に含む、医薬組成物に関する。
【０１９４】
本明細書に記載のような薬学的に許容される媒体は特に、哺乳動物個体への投与に適している。
【０１９５】
「薬学的に許容される媒体」は、医薬組成物を製剤化する際の当業者には公知の標準的な薬学的に許容される媒体のいずれか、例えば、食塩水、リン酸緩衝化食塩水（ＰＢＳ）、水性エタノール、又はグルコース、マンニトール、デキストラン、プロピレングリコールの溶液、油（例えば植物油、動物油、合成油など）、微結晶セルロース、カルボキシメチルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、ステアリン酸マグネシウム、リン酸カルシウム、ゼラチン、又はポリソルベート８０などを含む。
【０１９６】
本明細書に記載のような医薬組成物はさらに、１つ以上の緩衝液（例えば中性の緩衝化食塩水又はリン酸緩衝化食塩水）；糖質（例えばグルコース、マンノース、ショ糖、又はデキストラン）；マンニトール：タンパク質；ポリペプチド又はアミノ酸、例えばグリシン；抗酸化剤（例えばアスコルビン酸、メタ重亜硫酸ナトリウム、ブチル化ヒドロキシトルエン、ブチル化ヒドロキシアニソールなど）；静菌剤；キレート剤、例えばＥＤＴＡ又はグルタチオン；製剤を、レシピエントの血液に対して等張、低張、又は弱高張とする溶質；懸濁化剤；増粘剤及び／又は保存剤を含むことが多いだろう。
【０１９７】
勿論、担体の種類は典型的には、投与様式に応じて変更されるだろう。
【０１９８】
１つの実施態様では、本明細書に記載のような細胞は、それを必要とする個体における処置される予定の障害／疾患に伴う容態を処置するのに効果的である治療用化合物と組み合わせて組成物中に使用され得る。例えば、本明細書に記載のような細胞は、日和見感染又は個体においてすでに進行している感染を防御するための抗細菌化合物、抗真菌化合物、又は抗ウイルス化合物と共に投与され得る。例示的には、血小板を、本明細書に記載のような組成物で本明細書に記載のような細胞と一緒に、血小板数を安全なレベルにまで回復するための一時的な措置として投与することができる。
【０１９９】
１つの実施態様では、本明細書に記載のような細胞は、上記に定義されているような、しかし本明細書に記載のように改変されていない他の造血幹細胞又は血液細胞と組み合わせて、本明細書に記載のような組成物中に使用され得る。
【０２００】
１つの実施態様では、本明細書に記載のような細胞は、投与された細胞の治療効果を増強する他の薬剤及び化合物と組み合わせて、本明細書に記載のような組成物中に使用され得る。
【０２０１】
別の実施態様では、本明細書に記載のような細胞は、本明細書に記載のような造血幹細胞又は前駆細胞の分化を増大させる治療用化合物と共に、本明細書に記載のような組成物で投与され得る。これらの治療用化合物は、内因性である造血幹細胞及び／又は前駆細胞、並びに／あるいは、治療の一部として個体に投与される造血幹細胞及び／又は前駆細胞の分化及び動員を誘導する効果を有する。
【０２０２】
医薬品としての使用のための遺伝子的に改変された細胞
本発明の別の目的は、医薬品としてのその使用のための、本明細書に記載のような造血幹細胞、又は本明細書に記載のような血液細胞、又は本明細書に記載のような医薬組成物である。
【０２０３】
本明細書に記載のような細胞は、任意の適切な経路、例えば静脈内、心内、髄腔内、筋肉内、関節内、又は骨髄内への注射によって、治療利点をもたらすに十分な量で被験者に投与される。
【０２０４】
治療効果を達成するのに必要とされる細胞の量は、具体的な目的のために従来の手順に従って経験的に決定されるだろう。
【０２０５】
一般的には、治療目的のための細胞の投与のために、細胞は薬理学的に有効な用量で投与される。
【０２０６】
「薬理学的有効量」又は「薬理学的に有効な用量」によって、所望の生理学的効果を生じるに十分な量、又は、特に、障害若しくは疾患の１つ以上の症状若しくは徴候を低減若しくは排除することを含む、障害若しくは疾患の容態の処置のために、所望の結果を達成することのできる量を意味する。
【０２０７】
例示的には、好中球減少症を患う患者への細胞の投与は、基礎容態が根絶又は寛解されている場合だけでなく、患者が、疾患に伴う症状の重症度又は期間の減少を報告している場合でさえも、治療利点を提供する。治療利点はまた、改善が実現するかどうかに関係なく、基礎疾患又は基礎障害の進行の停止又は緩徐化も含む。
【０２０８】
細胞は、当技術分野において周知である方法によって投与される。１つの実施態様では、投与は静脈内注入による。別の方法では、投与は骨髄内注射による。
【０２０９】
注入される細胞数は、性別、年齢、体重、疾患又は障害の種類、障害のステージ、細胞集団中の所望の細胞の比率（例えば細胞集団の純度）、及び治療利点を生じるのに必要とされる細胞数などの要因が考慮されるだろう。
【０２１０】
一般的には、注入される細胞数は、１×１０４から５×１０６個の細胞/kg（体重）、特に１×１０５から１０×１０６個の細胞/kg、好ましくは５×１０５個の細胞から約５×１０６個の細胞/kgであってもよい。
【０２１１】
本明細書に記載のような医薬組成物は、以前に記載されているように、それを必要とする個体への本明細書に記載のような細胞の投与のために使用され得る。
【０２１２】
細胞の投与は、単回投与又は連続投与を通し得る。連続投与が含まれる場合、異なる細胞数及び／又は異なる細胞集団が各投与のために使用されてもよい。
【０２１３】
例示的には、初回投与は、即座の治療利点並びにより長期間の効果をもたらす、本明細書に記載のような細胞又は細胞集団（赤血球及び／又は骨髄系共通前駆細胞（ＣＭＰ）及び／又は造血幹細胞（ＨＳＣ）＋顆粒球／マクロファージ前駆細胞（ＧＭＰ）＋好中球）であってもよいが、２回目の投与は、長期間の効果を与え初回投与の治療効果を延ばす本明細書に記載のような細胞（例えばＣＭＰ及び／又はＨＳＣ）を含む。
【０２１４】
本明細書に記載のような幹細胞、血液細胞又は医薬組成物は、それを必要とする個体における、
−自己免疫疾患、ウイルス感染症及び腫瘍からなる群より選択された疾患；及び／又は
−タンパク質の欠失又は異常な機能していないタンパク質の存在によって引き起こされる疾患
の処置に使用され得る。
【０２１５】
したがって、本発明のさらなる目的は、それを必要とする個体における、
−自己免疫疾患、ウイルス感染症及び腫瘍からなる群より選択された疾患；及び／又は
−タンパク質の欠失又は異常な機能していないタンパク質の存在によって引き起こされる疾患
の処置に使用するための、本明細書に記載のような遺伝子的に改変された造血幹細胞、又は本明細書に記載のような血液細胞、又は本明細書に記載のような医薬組成物である。
【０２１６】
また、それを必要とする個体への、本明細書に記載のような造血幹細胞、本発明の血液細胞、及び／又は本明細書に記載のような医薬組成物の投与を含む、
それを必要とする個体における、
−自己免疫疾患、ウイルス感染症及び腫瘍からなる群より選択された疾患；及び／又は
−タンパク質の欠失又は異常な機能していないタンパク質の存在によって引き起こされる疾患
の処置法も記述され得る。
【０２１７】
本発明はまた、それを必要とする個体における、
−自己免疫疾患、ウイルス感染症及び腫瘍からなる群より選択された疾患；及び／又は
−タンパク質の欠失又は異常な機能していないタンパク質の存在によって引き起こされる疾患
の処置用の医薬品の製造のための、本明細書に記載のような造血幹細胞、本発明の血液細胞、及び／又は本明細書に記載のような医薬組成物の使用に関する。
【０２１８】
特定の実施態様では、本明細書に記載のような幹細胞、血液細胞、又は医薬組成物は、それを必要とする個体における、分泌タンパク質の欠失によって又は異常な機能していないタンパク質の存在によって引き起こされる疾患の処置に使用され得る。
【０２１９】
このような疾患は、例えば、凝固障害、ライソゾーム蓄積症、ホルモン異常、及びα１アンチトリプシン欠乏症からなる群より選択され得る。
【０２２０】
ライソゾーム蓄積症は、例えば、ゴーシェ病（グルコセレブロシダーゼ欠損症−遺伝子名：ＧＢＡ）、ファブリー病（αガラクトシダーゼ欠損症−ＧＬＡ）、ハンター病（イズロン酸−２−スルファターゼ欠損症−ＩＤＳ）、ハーラー病（α−Ｌ−イズロニダーゼ欠損症−ＩＤＵＡ）、及びニーマン・ピック病（スフィンゴミエリンホスホジエステラーゼ１欠損症−ＳＭＰＤ１）から選択され得る。
【０２２１】
別の実施態様では、本明細書に記載のような幹細胞、血液細胞、又は医薬組成物は、自己免疫疾患、ウイルス感染症及び腫瘍からなる群より選択された疾患の処置に使用され得る。
【０２２２】
実際に、本発明の１つの実施態様によると、本発明の治療用タンパク質は、細菌毒のような標的タンパク質、又は疾患を直接引き起こすタンパク質（例えば黄斑変性症における血管内皮増殖因子）の中和のために、並びに、その残存及び複製が宿主を危険にさらす細胞（例えば癌細胞、並びに、自己免疫疾患における特定の免疫細胞）の高度に選択的な死滅のために使用され得る、治療用抗体であってもよい。
【０２２３】
本発明はさらに、それを必要とする個体に免疫寛容を誘導するために使用するための、本明細書に記載のような遺伝子的に改変された造血幹細胞、又は本明細書に記載のような血液細胞、又は本明細書に記載のような医薬組成物に関する。
【０２２４】
本発明は、本明細書の実施例によってさらに例示されるが、いずれにしてもそれらに限定されない。
【０２２５】
実施例
実施例１：Ｋ５６２赤白血病細胞株におけるｇＲＮＡの設計及び検証
以前に示されているように、本発明者らは、ＨＢＡ１/２遺伝子又はＨＢＢ遺伝子の５’領域（５’ＵＴＲ又は近位プロモーター）又はイントロンの１つ（ＩＶＳ１又はＩＶＳ２）に標的化するいくつかのｇＲＮＡを設計した。
【０２２６】
ｇＲＮＡ候補をコードするプラスミドを、ＳｐＣａｓ９を恒常的に発現している安定なＫ５６２細胞クローン（Ｋ５６２−Ｃａｓ９）にヌクレオフェクトした。
【０２２７】
本実施例に使用されるｇＲＮＡ候補は、以下の配列を有するものである：
【０２２８】
ＨＢＡでは、左から右に：配列番号４、６、８、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、２８、３０、３２、３４、３６及び３８；ＨＢＢでは、左から右に：配列番号４０、４２、４４、４６、４８、５０、５２、５４、５６、５８、６０、６２及び６４。
【０２２９】
より特定すると、Ｋ５６２（ＡＴＣＣ（登録商標）ＣＣＬ−２４３）を、２mMのグルタミンを含有し、１０％ウシ胎児血清（ＦＢＳ、バイオウィッタカー社、ロンザ社）、ＨＥＰＥＳ（１０mM、ライフテクノロジーズ社）、ピルビン酸ナトリウム（１mM、ライフテクノロジーズ社）、並びにペニシリン及びストレプトマイシン（各々１００U/ml、ライフテクノロジーズ社）の補充された、ＲＰＭＩ１６４０培地（ギブコ社）中で維持した。Ｋ５６２−Ｃａｓ９の安定なクローンを、ｓｐＣａｓ９とブラストサイジン耐性カセットとを発現しているレンチウイルスベクター（アドジーン社、５２９６２番）での感染により作製し、選択し、サブクローニングした。
【０２３０】
２．５×１０５個のＫ５６２−Ｃａｓ９細胞に、ＳＦ細胞株４Ｄ−Ｎｕｃｌｅｏｆｅｃｔｏｒキットと共にＮｕｃｌｅｏｆｅｃｔｏｒ Ａｍａｘａ４Ｄ（ロンザ社）を使用して、２０μLの容量中の２００ngのｇＲＮＡ含有ベクター（アドジーン社、５３１８８番）を用いてトランスフェクトした。
【０２３１】
ヌクレオフェクションから４８時間後、細胞をペレット化し、ＤＮＡを、MagNA Pure 96 DNA and Viral NA Small Volume Kit（ロシュ社）を使用して抽出した。５０ngのゲノムＤＮＡを、KAPA2G Fast ReadyMix（カパ・バイオシステム社）を使用して、各ｇＲＮＡの切断部位にスパンする領域を増幅した。サンガーシークエンス後、挿入及び欠失（インデル）の比率を、ソフトウェアＴＩＤＥ（Tracking of InDels by Decomposition - Brinkman et al. Nucleic Acids Res. 2014. 42(22):e168)）によって計算した。
【０２３２】
インデルは、ヌクレアーゼ活性によって生じる、非相同末端結合（ＮＨＥＪ）によるＤＮＡ末端のＤＮＡ修復によって引き起こされる、ゲノム内の塩基の挿入又は欠失である。それは、Brinkman et al.（Brinkman et al. Nucleic Acids Res. 2014. 42(22):e168)）においてよく定義されている。したがって、インデルの結果が１００％に近づけば近づくほど、試験されたｇＲＮＡはより効率的である。
【０２３３】
ＨＢＡの標的遺伝子座の５’領域、特に５’ＵＴＲ、ＩＶＳ１及びＩＶＳ２について最高の成績を示すｇＲＮＡ（それぞれ、５’領域については配列番号１２の配列を有するｇＲＮＡ、ＩＶＳ１については配列番号３２の配列を有するｇＲＮＡ、及びＩＶＳ２については配列番号３８の配列を有するｇＲＮＡ）を、導入遺伝子を含有しているドナーＤＮＡ（ｄＤＮＡ）の組込み及び発現についてさらに試験した。ドナーＤＮＡとして、成功裡に標的化されると内因性α/βグロビンプロモーターの制御下にあると予想される、プロモーターを含まないＧＦＰと、ドナーＤＮＡ含有細胞を強化するためのピューロマイシン発現カセットとをコードしている、インテグラ―ゼ欠損レンチウイルスベクター（ＩＤＬＶ）を作製した。
【０２３４】
ドナーＤＮＡの組込みを試験するために、Ｋ５６２−Ｃａｓ９細胞をまず、インテグラーゼ欠損レンチウイルスベクター（ＩＤＬＶ）を用いて形質導入し、２４時間後、選択されたｇＲＮＡコードプラスミドを用いてトランスフェクトした。ピューロマイシンによる選択後、高い比率のＧＦＰ陽性細胞が、試験された全てのｇＲＮＡ及びｄＤＮＡについて観察されたが（データは示されていない）、一方、ランダムなカセットの組込み時にはＧＦＰの有意な発現は全く検出されなかった（示されていない）。
【０２３５】
本発明者らはその後、Ｋ５６２の赤血球系への分化を誘導して、ＨＢＡ及びＨＢＢの転写をアップレギュレートし、ＧＦＰ発現の同時増加を観察し、これにより、レポーターが実際に、内因性グロビンプロモーターの転写調節下にあったことが確認された（データは示されていない）。最後に、ｇＲＮＡ／ｄＤＮＡの全ての組合せについての正しい組込みが、１つのＧＦＰ陽性細胞クローンに関するＰＣＲ及びサンガーシークエンスによって検証された（データは示されていない）。
【０２３６】
要約すると、本発明者らは、いくつかの効果的なｇＲＮＡを同定し、ｄＤＮＡカセットを設計することにより、内因性赤血球系α−グロビン及びβ−グロビンプロモーターの制御下で、正確かつ機能的な導入遺伝子の標的化組込みを成し遂げた。
【０２３７】
実施例２：ＨＢＡ及びＨＢＢの遺伝子座への導入遺伝子の標的化組込みにより、内因性プロモーターによる該導入遺伝子の調節が可能となる
本発明者らは、グロビン遺伝子座に挿入された導入遺伝子が、対応するグロビン遺伝子の内因性プロモーターの制御下にあることを確認した。
【０２３８】
したがって、それらのＨＢＡ遺伝子又はＨＢＢ遺伝子の様々なドメインにＧＦＰ遺伝子を挿入するためにトランスフェクトされたＫ５６２細胞は、本明細書で後に示されているプロトコールに基づいたヘミンを用いての誘導時に、赤血球系への分化を受けた。該分化により、ＨＢＡ又はＨＢＢの転写物がアップレギュレートされ、分化していない細胞（グリコホリン陰性）と分化した細胞（グリコホリン陽性）のＧＦＰ発現をモニタリングし、比較した。
【０２３９】
５×１０５個のＫ５６２−Ｃａｓ９細胞を、プロモーターを含まないＧＦＰと恒常的に発現されているピューロマイシン耐性遺伝子とを含有しているインテグラーゼ欠損レンチウイルスベクターを用いて形質導入した。
【０２４０】
トラップを、ＨＢＡ又はＨＢＢの５’領域（ＨＢＡについては５'ＵＴＲ、ＨＢＢについては近位プロモーター）又はイントロンに組み込まれると発現されるように設計した。形質導入の翌日、細胞を洗浄し、２．５×１０５個の形質導入された細胞を、ＳＦ細胞株４Ｄ−Ｎｕｃｌｅｏｆｅｃｔｏｒキットと共にＮｕｃｌｅｏｆｅｃｔｏｒ Ａｍａｘａ４Ｄ（ロンザ社）を使用して、２００ngのｇＲＮＡ含有ベクターを用いてトランスフェクトした。
【０２４１】
２週間後、細胞を、ピューロマイシン（５μg/ml）で選択することにより、インテグラーゼ欠損レンチウイルスベクターの組込みについて強化し、ＧＦＰ陽性細胞を、ＭｏＦｌｏｃｅｌｌ選別機（ベックマンコールター社）を使用して選別した。ｇＲＮＡ／インテグラーゼ欠損レンチウイルスベクターの各組合せについてのＧＦＰ陽性細胞を、培地にヘミンを添加することによって（５０μM）、４日間かけて分化させた。Ｋ５６２の分化は均質ではないので、分化状態を決定するために、細胞を抗グリコホリンＡ（ＧＰＡ又はＧＹＰＡ）抗体（ＰＥＣｙ７マウス抗ヒトＣＤ２３５ａ抗体、クローンＧＡ−Ｒ２、ＢＤバイオサイエンス社）で染色し、ＧＦＰ発現をフローサイトメトリーによって分析した。
【０２４２】
得られた結果（図２参照）は、標的化された細胞の赤血球系への誘導時においてＧＦＰの発現の増加を示すが、対照細胞（ＡＡＶＳ１遺伝子座（ｇＲＮＡ ＡＡＶＳ１）に又はランダム（ｇＲＮＡ Ｌｕｃ）に組み込まれたインテグラーゼ欠損レンチウイルスベクター）においては示さない。
【０２４３】
これらの結果は、レポーター導入遺伝子が実際に、内因性グロビンプロモーターの転写調節下にあるという事実を例証する。
【０２４４】
実施例３：ＨＢＡへのドナーＤＮＡの標的化組込みにより、様々な導入遺伝子の安定な発現が可能となる
本発明者らは、様々な導入遺伝子を、本発明による対応するグロビン遺伝子の内因性プロモーターの制御下にある、グロビン遺伝子座内に成功裡に挿入することができることを確認した。
【０２４５】
５×１０５個のＫ５６２−Ｃａｓ９細胞に、プロモーターを含まない切断短縮された神経成長因子受容体（ＤＮＧＦＲ）又はコドン最適化された第ＶＩＩＩ因子（Ｆ８）及び恒常的に発現されているピューロマイシン耐性遺伝子を含有している、インテグラーゼ欠損レンチウイルスベクター（ＩＤＬＶ）を用いて形質導入した。トラップを、標的組込み時に発現されるように設計した。形質導入の翌日、細胞を洗浄し、２．５×１０５個の形質導入された細胞に、ＳＦ細胞株４Ｄ−Ｎｕｃｌｅｏｆｅｃｔｏｒキットと共にＮｕｃｌｅｏｆｅｃｔｏｒ Ａｍａｘａ４Ｄ（ロンザ社）を使用して、２００ngのＨＢＡ ５’ＵＴＲ ｇＲＮＡ含有ベクターを用いてトランスフェクトした。
【０２４６】
２週間後、細胞を、ピューロマイシン（５μg/ml）で選択することにより、インテグラーゼ欠損レンチウイルスベクターの組込みについて強化した。
【０２４７】
得られた結果を図３に示す。
【０２４８】
左パネル：ピューロマイシンで選択された細胞を、抗ＮＧＦＲ抗体（マウス抗ヒトＣＤ２７１（アロフィコシアニン）抗体、ミルテニーバイオテック社）で染色し、フローサイトメトリーによって分析した。
【０２４９】
右パネル：ＨＢＡにＦ８−ピューロマイシントラップを組み込んだ、ピューロマイシンにより選択された細胞の代表的なクローン。
【０２５０】
細胞を、Ｃｙｔｏｆｉｘ／Ｃｙｔｏｐｅｒｍ（商標）（ＢＤバイオサイエンス社）を使用して固定及び透過性処理し、Ｆ８の発現をフローサイトメトリーによってモニタリングした（マウス抗ヒトＦＶＩＩＩ ＧＭＡ−８０１５、Green Mountain社及びヤギ抗マウスＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）抗体、アレキサフルオル４８８、インビトロジェン社）。
【０２５１】
本発明者らは、本発明による方法が、関心対象の細胞のグロビン遺伝子における、様々な導入遺伝子の安定な発現の誘導を可能とすることを実証した。
【０２５２】
実施例４：造血幹細胞／前駆細胞（ＨＳＰＣ）への標的組込み効率に対するホモロジーアームの効果
ドナーＤＮＡトラップに対するホモロジーアームの付加の効果を観察した。
【０２５３】
動員された末梢血造血幹細胞・前駆細胞（ＨＳＰＣ）を解凍し、刺激前培地中で４８時間培養した（ＳｔｅｍＳｐａｎ、ステムセルテクノロジーズ社；３００ng/mlの組換えヒト幹細胞因子、３００ng/mlのＦｌｔ３−Ｌ、１００ng/mlの組換えヒトトロンボポエチン、及び２０ng/mLのＩＬ−３、CellGenix社）。
【０２５４】
ｇＲＮＡ ５’ＵＴＲのための特異的なｃｒＲＮＡ及び足場のｔｒａｃｒＲＮＡ（Integrated DNA Technologies社）を、製造業者の説明書に従ってアニーリングさせ、リボヌクレオタンパク質複合体を、３０pmolのｓｐＣａｓ９を用いて形成した（１：１．５の比）。１つの条件あたり２×１０５個の細胞に、P3 Primary Cell 4D-Nucleofectorキット（ロンザ社）を使用してリボヌクレオタンパク質複合体を用いてヌクレオフェクトし、５’ＵＴＲｇＲＮＡ標的部位のためのホモロジーアーム（導入遺伝子のそれぞれの側に２５０ｂｐ）を含む又は含まないＧＦＰ−ピューロマイシンベクタートラップを用いて形質導入した。
【０２５５】
トラップは、インテグラーゼ欠損レンチウイルスベクター（ホモロジーアームなし、感染効率は１００、上のパネル）又はＡＡＶ６ベクター（ホモロジーアーム、感染効率は１５０００、下のパネル）として提供された。形質導入後、細胞を洗浄し、ステムレゲニン１（０．７５μM、ステムセルテクノロジーズ社）及びＺ−ＶＡＤ全カスパーゼ阻害剤（１２０μM、InvivoGen社）の存在下でさらに４８時間かけて刺激前培地中に放置し、赤血球系分化培地（ＳｔｅｍＳｐａｎ、ステムセルテクノロジーズ社；２０ng/mlの幹細胞因子、１μ/mLのエリスロポエチン、５ng/mlのＩＬ３、２μMのデキサメタゾン、及び１μMのβ−エストラジオール）中で１４日間培養した。
【０２５６】
ＧＦＰの発現を、赤血球系の分化に沿ってフローサイトメトリーによってモニタリングした。
【０２５７】
得られた結果を図４に示す。
【０２５８】
標的の組込み効率は、アデノ随伴ウイルスによって送達されるドナーＤＮＡトラップへのホモロジーアームの付加と共に劇的に増加することを認めることができる。
【０２５９】
実施例５：Ｋ５６２におけるＨＢＡによる産生に対する、各ｇＲＮＡの標的上の活性の効果
Ｃａｓ９／ｇＲＮＡにより誘導されるＤＮＡ二本鎖切断が、ドナーＤＮＡの組込みがない場合、ＨＢＡの発現に影響を及ぼし得るかどうかを評価するために、本発明者らは、Ｃａｓ９−Ｋ５６２にｇＲＮＡ候補をトランスフェクトし、本発明者らは、ウェスタンブロットによりＨＢＡの発現を、又はＦＡＣＳによりＨｂＦ（ウシヘモグロビン、２本のＨＢＡ鎖と２本のＨＢＧ鎖から構成される）の発現をモニタリングした。
【０２６０】
まず、２．５×１０５個のＫ５６２−Ｃａｓ９細胞に、ＳＦ細胞株４Ｄ−Ｎｕｃｌｅｏｆｅｃｔｏｒキットと共にＮｕｃｌｅｏｆｅｃｔｏｒ Ａｍａｘａ４Ｄ（ロンザ社）を使用して、２００ngのｇＲＮＡ含有ベクターを用いてトランスフェクトした。ゲノム編集効率は、ＰＣＲ産物に対するＴＩＤＥ分析によって測定された。
【０２６１】
ヌクレオフェクションから１週間後、細胞を、Ｃｙｔｏｆｉｘ／Ｃｙｔｏｐｅｒｍ（商標）（ＢＤバイオサイエンス社）を使用して固定及び透過性処理し、ＨｂＦの発現をフローサイトメトリーによってモニタリングした（アロフィコシアニン・マウス抗ヒトウシヘモグロビン抗体、クローン２Ｄ１２、ＢＤバイオサイエンス社）。
【０２６２】
得られた結果を図５の上の部分に示す。
【０２６３】
ＨＢＡ遺伝子の特定の部位におけるゲノム編集効率を、編集された対立遺伝子（インデル）の比率として各ヒストグラムの上に示す。
【０２６４】
さらに、１００万個のヌクレオフェクトされた細胞を、Ｃｏｍｐｌｅｔｅ（商標）プロテアーゼ阻害剤カクテル（ロシュ社）の補充された、ＲＩＰＡ緩衝液（５０mMのトリス−ＨＣｌ、ｐＨ７．４、１５０mMのＮａＣｌ、１％トリトンｘ−１００、１％デオキシコール酸ナトリウム、０．１％ＳＤＳ）に溶解した。
【０２６５】
細胞溶解液を、ビシンコニン酸タンパク質アッセイ（サーモフィッシャー社）によって定量した。試料を、１×還元剤及びサンプルローディング色素（インビトロジェン社）の存在下で、９０℃で５分間かけて変性させた。３０μgの全タンパク質を、１×モルホリノエタンスルホン酸（インビトロジェン社）中、Ｂｏｌｔビス・トリス４〜１２％プラスゲル（インビトロジェン社）を使用して２００Ｖで泳動させ；タンパク質を、ＩＢｌｏｔ２システム（インビトロジェン社）によってニトロセルロース膜に転写した。オデッセイトリス緩衝食塩水の遮断緩衝液（ライカー社）を用いて２時間かけて遮断した後、膜を、αグロビン（ヤギ抗ヘモグロビンα抗体Ｄ−１６、サンタクルーズ社）及びβ−チューブリン（ウサギポリクローナル抗体、ライカ―社）に対する一次抗体と共にインキュベートし、トリス緩衝食塩水−０．１％Ｔｗｅｅｎ２０で洗浄した。部位特異的な二次抗体を１：１００００で使用した（ロバ抗ヤギＩＲＤｙｅ８００及びマウス抗ウサギＩＲＤｙｅ６８０、ライカー社）。データは、オデッセイ近赤外蛍光イメージングシステムを用いて取得し、Ｉｍａｇｅ Ｓｔｕｄｉｏ Ｌｉｔｅを用いて分析した。
【０２６６】
得られた結果を図５の中央部に示す。
【０２６７】
ＨＢＡ遺伝子の特定の部位におけるゲノム編集効率を、編集された対立遺伝子（インデル）の比率としてレーンの下に示す。
【０２６８】
本発明者らは、高いレベルのｇＲＮＡにより誘導されたゲノム二本鎖切断（インデル比率）を得たが、ＨＢＢ又はＨｂＦの発現に対する作用は全く観察されず、このことは、Ｃａｓ９により誘導された二本鎖切断は、α−グロビン鎖の内因性発現に影響を及ぼさない／減少させないことを示す。
【０２６９】
この実施例では、使用されるｇＲＮＡは以下である：
−５’ＵＴＲについては、配列番号１２の配列を有するｇＲＮＡ；
−ＫＯについては、配列番号１４の配列を有するｇＲＮＡ；
−ＩＶＳ１については、配列番号３２の配列を有するｇＲＮＡ；
−ＩＶＳ２については、配列番号３８の配列を有するｇＲＮＡ。
ＵＴは、（トランスフェクトされていない）対照細胞である。
【０２７０】
さらに、動員された末梢血造血幹細胞・前駆細胞（ＨＳＰＣ）を解凍し、刺激前培地中で４８時間培養した（ＳｔｅｍＳｐａｎ、ステムセルテクノロジーズ社；３００ng/mlの組換えヒト幹細胞因子、３００ng/mlのＦｌｔ３−Ｌ、１００ng/mlの組換えヒトトロンボポエチン、及び２０ng/mLのＩＬ−３、CellGenix社）。特異的なｃｒＲＮＡ及び足場のｔｒａｃｒＲＮＡ（Integrated DNA Technologies社）を、製造業者の説明書に従ってアニーリングさせ、リボヌクレオタンパク質複合体を、３０pmolのｓｐＣａｓ９を用いて形成した（１：１．５の比）。１つの条件あたり２×１０５個の細胞に、P3 Primary Cell 4D-Nucleofectorキット（ロンザ社）を使用してリボヌクレオタンパク質複合体を用いてヌクレオフェクトし、赤血球系分化培地（ＳｔｅｍＳｐａｎ、ステムセルテクノロジーズ社；２０ng/mlの幹細胞因子、１μ/mLのエリスロポエチン、５ng/mlのＩＬ３、２μMのデキサメタゾン、及び１μMのβ−エストラジオール）中で１４日間培養した。細胞を、Ｃｙｔｏｆｉｘ／Ｃｙｔｏｐｅｒｍ（商標）（ＢＤバイオサイエンス社）を使用して固定及び透過性処理し、ＨｂＦの発現をフローサイトメトリーによってモニタリングした（アロフィコシアニン・マウス抗ヒトウシヘモグロビン抗体、クローン２Ｄ１２）。
【０２７１】
得られた結果を図５の下の部分に示す。
【０２７２】
ＨＢＡ遺伝子の特定の部位におけるゲノム編集効率を、編集された対立遺伝子（インデル）の比率としてグラフの上に示す。
【０２７３】
ここでも、本発明者らは、高いレベルのｇＲＮＡにより誘導されたゲノム二本鎖切断（インデル比率）を得たが、ＨＢＢ又はＨｂＦの発現に対する作用は全く検出されず、このことは、本発明者らのＨＢＡ ｇＲＮＡ候補によって誘導された二本鎖切断が、ヒト造血幹細胞・前駆細胞（ＨＳＰＣ）由来の赤血球系細胞におけるα−グロビン鎖の内因性発現に影響を及ぼさない／減少させないことを示す。
【０２７４】
実施例６：本発明の標的化組込み部位は、造血幹細胞・前駆細胞（ＨＳＰＣ）由来の赤芽球におけるＨＢＡ又はＨＢＢの合成に重度の影響を及ぼさない
動員された末梢血造血幹細胞・前駆細胞（ＨＳＰＣ）を、ＨＢＡ遺伝子又はＨＢＢ遺伝子内の様々な特定の部位（５’ＵＴＲ、第２イントロン（ＩＶＳ２）、又は第１エキソン（ＫＯ））に標的化するｇＲＮＡを用いてヌクレオフェクトし、赤血球系統へと分化させることにより、グロビンの発現を活性化した。
【０２７５】
ＨＢＢ内の第１エキソンに標的化するために使用されるｇＲＮＡ（ＨＢＢ ＫＯ）は、部分配列CTTGCCCCACAGGGCAGTAA（配列番号６５）及び完全配列CTTGCCCCACAGGGCAGTAACGG（配列番号６６）を有する。
【０２７６】
ＡＡＶＳ１遺伝子を標的化するために使用されるｇＲＮＡ（ＡＡＶＳ１）は、部分配列gtcccctccaccccacagtg（配列番号６７）及び完全配列gtcccctccaccccacagtgGGG（配列番号６８）を有する。
【０２７７】
ＨＢＡ１／２内の第１エキソンに標的化するために使用されるｇＲＮＡ（ＨＢＡ ＫＯ）は、部分配列GTCGGCAGGAGACAGCACCA（配列番号１３）及び完全配列GTCGGCAGGAGACAGCACCATGG（配列番号１４）を有する、ＨＢＡ１６．１と命名されたものである。
【０２７８】
特に、動員された末梢血造血幹細胞・前駆細胞（ＨＳＰＣ）を解凍し、刺激前培地中で４８時間培養した（ＳｔｅｍＳｐａｎ、ステムセルテクノロジーズ社；３００ng/mlの組換えヒト幹細胞因子、３００ng/mlのＦｌｔ３−Ｌ、１００ng/mlの組換えヒトトロンボポエチン、及び２０ng/mLのＩＬ−３、CellGenix社）。特異的なｃｒＲＮＡ及び足場のｔｒａｃｒＲＮＡ（Integrated DNA Technologies社）を、製造業者の説明書に従ってアニーリングさせ、リボヌクレオタンパク質複合体を、３０pmolのｓｐＣａｓ９を用いて形成した（１：１．５の比）。
【０２７９】
１つの条件あたり２×１０５個の細胞に、P3 Primary Cell 4D-Nucleofectorキット（ロンザ社）を使用してＣａｓ９リボヌクレオタンパク質（ＲＮＰ）複合体を用いてヌクレオフェクトし、赤血球系分化培地（ＳｔｅｍＳｐａｎ、ステムセルテクノロジーズ社；２０ng/mlの幹細胞因子、１μ/mLのエリスロポエチン、５ng/mlのＩＬ３、２μMのデキサメタゾン、及び１μMのβ−エストラジオール）中で１４日間、又は半固形Ｍｅｔｈｏｃｕｌｔ培地（Ｈ４４３５、ステムセルテクノロジーズ社）中で１４日間、コロニー形成細胞（ＣＦＣ）アッセイのために培養した。
【０２８０】
その後、分化した造血幹細胞・前駆細胞（ＨＳＰＣ）に由来する赤芽球を水に溶解し、ヘモグロビンサブユニット含量をクロマトグラフィーによって測定した。
【０２８１】
高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）分析を、ＮｅｘｅｒａＸ２ ＳＩＬ−３０ＡＣクロマトグラフ（島津製作所、京都、日本）を使用して実施し、液クロ解析ソフトウェアを用いて分析した。
【０２８２】
グロビン鎖を、２５０×４．６mm、３．６μmのエアリスワイドポアカラム（フェノメネクス社）を使用して分離した。試料を、２２０nmでの吸光度をモニタリングしながら、溶液Ａ（水／アセトニトリル／トリフルオロ酢酸、９５：５：０．１）及び溶液Ｂ（水／アセトニトリル／トリフルオロ酢酸、５：９５：０．１）の勾配混合物を用いて溶出した。
【０２８３】
得られた結果を図６に示す。
【０２８４】
リボヌクレオタンパク質のヌクレオフェクションを使用して、本発明者らは、本発明において考えられているＨＢＡ及びＨＢＢの特定の領域の編集が、液体培養液及び赤色コロニーの両方におけるヘモグロビンサブユニットのＨＰＬＣによる定量によって評価したところ、造血幹細胞・前駆細胞（ＨＳＰＣ）に由来する赤芽球におけるＨＢＡ又はＨＢＢの合成を有意に変化させないことを実証した。その代わりに、これらの遺伝子のコード配列を標的化した場合（ＨＢＡ ＫＯ対照及びＨＢＢ ＫＯ対照）、大きな変化が観察された。
【０２８５】
実施例７：ＨＢＡへのドナーＤＮＡの標的化組込みは、ＦＶＩＩＩ又はＦＩＸ導入遺伝子の安定な発現を可能とする
様々な導入遺伝子をＨＢＡ遺伝子に組み込み、内因性α−グロビンプロモーターの転写制御を活用した機能的な凝固因子が分泌された。
【０２８６】
実験的には、Ｋ５６２−Ｃａｓ９細胞に、プロモーターを含まない第ＩＸ因子又はコドンの最適化された第ＶＩＩＩ因子（Ｆ８）の導入遺伝子を含有しているインテグラーゼ欠損レンチウイルスベクターを用いて形質導入した。これらのインテグラーゼ欠損レンチウイルスベクターは、標的の組込み時に発現されるように設計された。
【０２８７】
２４時間後、細胞に、ｇＲＮＡ発現プラスミドを用いてトランスフェクトし、ＨＢＡ遺伝子座の５’ＵＴＲに二本鎖切断を起こした。ＦＶＩＩＩ又はＦＩＸカセットが単一対立遺伝子の標的上に組み込まれた単一細胞クローンを選択し、活性化部分トロンボプラスチン時間（ａＰＴＴ）アッセイによって、細胞上清中に分泌されたＦＶＩＩＩ及びＦＩＸの活性を測定した。
【０２８８】
類似の測定が、対照（ＣＴＲＬ）である、形質導入されていない細胞の上清を用いて行なわれた。
【０２８９】
得られた結果を図７に示す。
【０２９０】
本発明は、関心対象の細胞のグロビン遺伝子に標的化組込みされると、様々な導入遺伝子（今回の場合、ＦＶＩＩＩ及びＦＩＸ）の安定な発現を可能とする。
【０２９１】
【表１】
2021510302.tif 000002
【図１】
2021510302.tif 000003
【図２】
2021510302.tif 000004
【図３】
2021510302.tif 000005
【図４】
2021510302.tif 000006
【図５】
2021510302.tif 000007
【図６】
2021510302.tif 000008
【図７】
2021510302.tif 000009
【配列表】
2021510302000001.app
【手続補正書】
【提出日】令和2年9月4日(2020.9.4)
【手続補正１】
【補正対象書類名】特許請求の範囲
【補正対象項目名】全文
【補正方法】変更
【補正の内容】
【特許請求の範囲】
【請求項１】
造血幹細胞のゲノムに含まれる少なくとも１つのグロビン遺伝子に、治療用タンパク質又は治療用リボ核酸をコードしている少なくとも１つの導入遺伝子を含む、遺伝子的に改変された造血幹細胞（該導入遺伝子は、前記の少なくとも１つのグロビン遺伝子の内因性プロモーターの制御下に置かれ、治療用タンパク質又は治療用リボ核酸をコードしている少なくとも１つの導入遺伝子は、前記の少なくとも１つのグロビン遺伝子の５’領域、３’非翻訳領域（３’ＵＴＲ）及び／又はイントロンに含まれている）。
【請求項２】
治療用タンパク質又は治療用リボ核酸をコードしている少なくとも１つの導入遺伝子が、前記の少なくとも１つのグロビン遺伝子の５’領域及び／又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に含まれる、請求項１記載の造血幹細胞。
【請求項３】
治療用タンパク質又は治療用リボ核酸をコードしている少なくとも１つの導入遺伝子が、前記の少なくとも１つのグロビン遺伝子の５’非翻訳領域（５’ＵＴＲ）及び／又は近位プロモーター及び／又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に含まれる、請求項１記載の造血幹細胞。
【請求項４】
前記造血幹細胞のゲノムに含まれる少なくとも１つのグロビン遺伝子が、εグロビン遺伝子、γＧグロビン遺伝子、γＡグロビン遺伝子、δグロビン遺伝子、βグロビン遺伝子、ζグロビン遺伝子、偽ζグロビン遺伝子、μグロビン遺伝子、偽α１グロビン遺伝子、α１グロビン遺伝子及びα２グロビン遺伝子からなる群より選択される、請求項１記載の造血幹細胞。
【請求項５】
前記造血幹細胞のゲノムに含まれる少なくとも１つのグロビン遺伝子が、α１グロビン遺伝子及び／又はα２グロビン遺伝子であり；治療用タンパク質又は治療用リボ核酸をコードしている少なくとも１つの導入遺伝子が、前記の少なくとも１つのグロビン遺伝子の５'非翻訳領域（ＵＴＲ）に又はイントロンに含まれ；及び／又は、
前記造血幹細胞のゲノムに含まれる少なくとも１つのグロビン遺伝子が、βグロビン遺伝子であり、治療用タンパク質又は治療用リボ核酸をコードしている少なくとも１つの導入遺伝子が、前記の少なくとも１つのグロビン遺伝子の近位プロモーターに又は第２イントロン（ＩＶＳ２）に含まれる、請求項１記載の造血幹細胞。
【請求項６】
コードされている治療用タンパク質が、サイトカイン；ホルモン；ケモカイン；抗体（ナノボディーズを含む）；血管新生抑制因子；補充療法用の酵素；インターロイキン；インシュリン；顆粒球コロニー刺激因子；顆粒球単球コロニー刺激因子；ヒト多分化能性顆粒球コロニー刺激因子；マクロファージコロニー刺激因子；血液凝固因子；膜貫通タンパク質；ライソゾーム酵素；改変されていない細胞によって分泌され最終的に取り込まれるように工学操作され得る任意のタンパク質、及びその組合せからなる群より選択される、請求項１記載の造血幹細胞。
【請求項７】
請求項１記載の遺伝子的に改変された造血幹細胞を起源とする血液細胞。
【請求項８】
請求項１記載の少なくとも１つの遺伝子的に改変された造血幹細胞及び／又は請求項７記載の少なくとも１つの血液細胞を薬学的に許容される媒体に含む、医薬組成物。
【請求項９】
（ｉ）（ａ）該造血幹細胞に、（１）選択された標的部位に結合する少なくとも１つのガイド核酸、又は（２）選択された標的部位に結合するガイドペプチドを含むエンドヌクレアーゼを与える工程（該標的部位は、該造血幹細胞のゲノムに含まれる内因性グロビンコード遺伝子に位置する）；
（ｂ）少なくとも１つのガイド核酸が工程ａ）で与えられると、該幹細胞にさらに、標的部位特異性を欠いた少なくとも１つのエンドヌクレアーゼを与える工程；及び
（ｃ）該幹細胞にさらに、少なくとも１つの治療用タンパク質又は少なくとも１つの治療用リボ核酸をコードしている導入遺伝子を与える工程
による部位特異的遺伝子工学操作システムを、該幹細胞に与える工程；並びに
（ｉｉ）工程（ｉ）で得られた幹細胞を培養して、該導入遺伝子を、該造血幹細胞のゲノム内の選択された該標的部位に導入する工程
を含む、請求項１記載の造血幹細胞のエクスビボ又はインビトロでの調製法。
【請求項１０】
該方法が、（ｉ）（ａ）該造血幹細胞に、選択された標的部位に結合する少なくとも１つのガイド核酸を与える工程（該標的部位は、該造血幹細胞のゲノムに含まれる内因性グロビンコード遺伝子に位置する）；
（ｂ）該幹細胞に、標的部位特異性を欠いた少なくとも１つのエンドヌクレアーゼをさらに与える工程；及び
（ｃ）該幹細胞に、少なくとも１つの治療用タンパク質又は少なくとも１つの治療用リボ核酸をコードしている導入遺伝子をさらに与える工程
による部位特異的遺伝子工学操作システムを、該幹細胞に与える工程；並びに
（ｉｉ）工程（ｉ）の終了時に得られた幹細胞を培養して、該導入遺伝子を、該造血幹細胞のゲノム内の選択された該標的部位に導入する工程
を含む、請求項９記載の方法。
【請求項１１】
標的部位特異性を欠いた少なくとも１つのエンドヌクレアーゼが、クリスパー（ＣＲＩＳＰＲ）関連ヌクレアーゼである、請求項９記載の方法。
【請求項１２】
１つ以上のガイド核酸が、前記の少なくとも１つのグロビン遺伝子の５’領域及び／又はイントロン内に含まれる、標的部位を認識する、ガイドＲＮＡである、請求項９記載の方法。
【請求項１３】
自己免疫疾患、ウイルス感染症及び腫瘍からなる群より選択された疾患；及び／又は
タンパク質の欠失又は異常な機能していないタンパク質の存在によって、それを必要とする個体において引き起こされる疾患
を処置するための方法であって、それを必要とする個体に請求項１記載の造血幹細胞、請求項７記載の血液細胞、又は請求項８記載の医薬組成物を投与することを含む方法。
【請求項１４】
それを必要とする個体に免疫寛容を誘導するための方法であって、それを必要とする個体に、請求項１記載の造血幹細胞、請求項７記載の血液細胞、又は請求項８記載の医薬組成物を投与することを含む方法。
【国際調査報告】
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