(57)【要約】  本発明は、カメムシの腸の細菌によるコロニー形成を減少させる方法であって、バニリン又はその類似体を含む組成物を提供するステップ；及びカメムシが孵化するであろう卵に前記組成物を送達するステップを含み、それにより、組成物で処理された卵から孵化されたカメムシの腸内の細菌によるコロニー形成は、非処理の卵から孵化されたカメムシに対して減少される、方法を含む。一部の実施形態では、細菌によるコロニー形成の減少は、カメムシの適応度を減少させ、例えば生殖能力、生存、発育速度、卵の数、孵化される卵の数、成虫出現率、体長、体幅、体重又は角皮厚さを減少させる。本明細書に記載の方法のいくつかの実施形態では、細菌コロニー形成妨害剤は、細菌の代謝の阻害剤である。一部の実施形態では、細菌コロニー形成妨害剤は、ポリヒドロキシアルカノエート（ＰＨＡ）合成阻害剤である。【選択図】図１
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
カメムシの腸の細菌によるコロニー形成を減少させる方法であって、
（ａ）バニリン又はその類似体を含む組成物を提供するステップ；及び
（ｂ）カメムシの卵に前記組成物を送達するステップ
を含み、前記卵から孵化された前記カメムシの前記腸は、非処理の卵から孵化されたカメムシの腸に対して、前記細菌による減少されたコロニー形成を有する、方法。
【請求項２】
前記組成物は、カメムシの卵塊に送達される、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記細菌によるコロニー形成の前記減少は、前記カメムシの適応度を減少させる、請求項１に記載の方法。
【請求項４】
前記カメムシの前記適応度の前記減少は、生殖能力、生存、発育速度、卵の数、孵化される卵の数、成虫出現率、体長、体幅、体重又は角皮厚さの減少である、請求項３に記載の方法。
【請求項５】
前記コロニー形成は、前記腸のｖ４領域内におけるものである、請求項１に記載の方法。
【請求項６】
前記腸の前記ｖ４領域の前記細菌によるコロニー形成は、少なくとも１０％だけ減少される、請求項５に記載の方法。
【請求項７】
前記腸の前記ｖ４領域のサイズは、減少される、請求項５に記載の方法。
【請求項８】
前記カメムシは、ハリオモルファ属（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ）種である、請求項１に記載の方法。
【請求項９】
前記カメムシは、ハリオモルファ・ハリス（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ  ｈａｌｙｓ）である、請求項８に記載の方法。
【請求項１０】
前記細菌は、内部共生細菌である、請求項１に記載の方法。
【請求項１１】
前記内部共生細菌は、パントエア属（Ｐａｎｔｏｅａ）のものである、請求項１０に記載の方法。
【請求項１２】
前記内部共生細菌は、カンディダタス・パントエア・カルベキイ（Ｃａｎｄｉｄａｔｕｓ  Ｐａｎｔｏｅａ  ｃａｒｂｅｋｉｉ）である、請求項１１に記載の方法。
【請求項１３】
前記組成物は、液体、固体、エアゾール、ペースト、ゲル又はガス組成物である、請求項１に記載の方法。
【請求項１４】
前記組成物は、スプレーとして送達される、請求項１に記載の方法。
【請求項１５】
前記組成物は、農業的に許容される担体を含む、請求項１に記載の方法。
【請求項１６】
前記組成物は、湿潤性溶液を含む、請求項１に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
関連出願の相互参照
本出願は、２０１８年７月２５日に提出された米国仮特許出願第６２／７０３，３０４号の利益を主張するものであり、これは、その内容全体が参照により本明細書に組み込まれる。
【０００２】
配列表
本出願は、ＡＳＣＩＩフォーマットで電子ファイルにより提出された配列表を含み、これは、その内容全体が参照により本明細書に組み込まれる。前記ＡＳＣＩＩコピーは、２０１９年７月１７日に作成され、５１２１５−０１２ＷＯ２＿Ｓｅｑｕｅｎｃｅ＿Ｌｉｓｔｉｎｇ＿０７．１７．１９＿ＳＴ２５という名称であり、６０，１２９バイトのサイズである。
【背景技術】
【０００３】
昆虫有害生物を含む植物有害生物は、ヒトの環境に蔓延している。
【発明の概要】
【０００４】
第１の態様では、本発明は、カメムシの腸の細菌によるコロニー形成を減少させる方法であって、（ａ）バニリン又はその類似体を含む組成物を提供するステップ；及び（ｂ）カメムシが孵化するであろう卵に前記組成物を送達するステップを含み、それにより、組成物で処理された卵から孵化されたカメムシの腸内の細菌によるコロニー形成は、非処理の卵から孵化されたカメムシに対して減少される、方法を提供する。
【０００５】
一部の実施形態では、組成物は、カメムシの卵塊に送達される。一部の実施形態では、細菌によるコロニー形成の減少は、カメムシの適応度を減少させ、例えば生殖能力、生存、発育速度、卵の数、孵化される卵の数、成虫出現率、体長、体幅、体重又は角皮厚さを減少させる。
【０００６】
一部の実施形態では、コロニー形成は、腸のｖ４領域内におけるものである。一部の実施形態では、腸のｖ４領域の細菌によるコロニー形成は、少なくとも５％だけ減少される。一部の実施形態では、腸のｖ４領域のサイズは、減少される。
【０００７】
一部の実施形態では、カメムシは、ハリオモルファ属（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ）種（例えば、ハリオモルファ・ハリス（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ  ｈａｌｙｓ））、ネザラ属（Ｎｅｚａｒａ）種、オイバロス属（Ｏｅｂａｌｕｓ）種、キナビア属（Ｃｈｉｎａｖｉａ）種、エウチリンクス属（Ｅｕｔｈｙｒｈｙｎｃｈｕｓ）種、エウスキスツス属（Ｅｕｓｃｈｉｓｔｕｓ）種、アルケオリンクス属（Ａｌｃａｅｏｒｒｈｙｎｃｈｕｓ）種又はポディサス属（Ｐｏｄｉｓｕｓ）種である。
【０００８】
一部の実施形態では、細菌は、内部共生体であり、例えば、内部共生体は、パントエア属（Ｐａｎｔｏｅａ）のものである。一部の実施形態では、内部共生体は、カンディダタス・パントエア・カルベキイ（Ｃａｎｄｉｄａｔｕｓ  Ｐａｎｔｏｅａ  ｃａｒｂｅｋｉｉ）である。
【０００９】
一部の実施形態では、組成物は、液体、固体、エアゾール、ペースト、ゲル又はガス組成物である。一部の実施形態では、組成物は、スプレーとして送達される。一部の実施形態では、組成物は、農業的に許容される担体を含む。一部の実施形態では、組成物は、湿潤性溶液を含む。
【００１０】
本明細書には、農業又は商業の目的で昆虫の適応度を改変する組成物及び方法が開示され、ここで、組成物は、昆虫の腸内の細菌（例えば、内部共生細菌）のコロニー形成を減少させる細菌コロニー形成妨害剤（例えば、薬剤（例えば、リポ多糖（ＬＰＳ）合成阻害剤又はポリヒドロキシアルカノエート（ＰＨＡ）合成阻害剤）を含む。
【００１１】
一態様では、昆虫の適応度を改変する方法が本明細書に提供され、これは、細菌コロニー形成妨害剤を含む組成物の有効量を昆虫に送達するステップを含む。一部の実施形態では、本方法は、細菌コロニー形成妨害剤が送達された昆虫の適応度を減少させることを含む。代わりに、一部の実施形態では、本方法は、細菌コロニー形成妨害剤が送達された昆虫の適応度を増加させることを含む。
【００１２】
別の態様では、昆虫の腸内の細菌コロニー形成を減少させる方法が本明細書に提供され、これは、細菌コロニー形成妨害剤を含む組成物の有効量を昆虫に送達するステップを含む。
【００１３】
本明細書に記載の一部の実施形態では、細菌コロニー形成妨害剤は、細菌の代謝阻害剤である。一部の実施形態では、細菌コロニー形成妨害剤は、ポリヒドロキシアルカノエート（ＰＨＡ）合成阻害剤である。
【００１４】
別の態様では、昆虫の適応度を改変する方法が本明細書に提供され、これは、ＰＨＡ合成阻害剤を含む組成物の有効量を昆虫に送達するステップを含む。一部の実施形態では、本方法は、ＰＨＡ阻害剤が送達された昆虫の適応度を減少させることを含む。一部の実施形態では、本方法は、ＰＨＡ阻害剤が送達された昆虫の適応度を増加させることを含む。一部の実施形態では、ＰＨＡ合成阻害剤は、バニリン又はその類似体である。一部の実施形態では、ＰＨＡ合成阻害剤は、表１中の１つ以上の化合物である。一部の実施形態では、ＰＨＡ合成阻害剤は、レブリン酸又はその類似体である。一部の実施形態では、ＰＨＡ合成阻害剤は、アクリル酸又はその類似体である。一部の実施形態では、ＰＨＡ合成阻害剤は、２−ブロモオクタン酸又はその類似体である。
【００１５】
本明細書に記載の方法の一部の実施形態では、細菌コロニー形成妨害剤は、細胞外皮生合成（例えば、膜又は細菌細胞質を取り囲み、それを保護する他の構造体、例えば細胞壁、内膜及び外膜の生合成）の阻害剤である。本明細書に記載の方法の一部の実施形態では、細菌コロニー形成妨害剤は、リポ多糖（ＬＰＳ）合成阻害剤である。
【００１６】
別の態様では、昆虫の適応度を改変する方法が本明細書に提供され、これは、ＬＰＳ合成阻害剤を昆虫に送達するステップを含む。一部の実施形態では、本方法は、ＬＰＳ合成阻害剤が送達された昆虫の適応度を減少させることを含む。一部の実施形態では、本方法は、ＬＰＳ合成阻害剤が送達された昆虫の適応度を増加させることを含む。
【００１７】
一部の実施形態では、ＬＰＳ合成阻害剤は、細菌におけるコアオリゴ糖合成の阻害剤である。一部の実施形態では、ＬＰＳ合成阻害剤は、細菌におけるコアオリゴ糖合成に関与する酵素を阻害する。一部の実施形態では、酵素は、ＷａａＡ、ＷａａＣ、ＷａａＦ又はＷａａＧのアミノ酸配列を有するポリペプチドと少なくとも４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％、９８％、９９％又は１００％の配列同一性を有する。一部の実施形態では、ＬＰＳ合成阻害剤（例えば、ＬＰＳ合成に関与する酵素の阻害剤）は、糖である。一部の実施形態では、糖は、ＡＤＰ−２−フルオロヘプトース（ＡＦＨ）である。一部の実施形態では、糖は、２−アリール−５−メチル−４−（５−アリール−フラン−２−イル−メチレン）−２，４−ジヒドロ−ピラゾール−３−オン（ＤＨＰＯ）である。一部の実施形態では、糖は、ＡＦＨ及びＤＨＰＯである。一部の実施形態では、糖は、表７中の１つ以上の化合物である。
【００１８】
一部の実施形態では、ＬＰＳ合成阻害剤は、細菌におけるコアオリゴ糖合成に関与する遺伝子の発現を阻害する。一部の実施形態では、この遺伝子は、ｗａａＡ、ｗａａＣ、ｗａａＦ又はｗａａＧのヌクレオチド配列を有するポリヌクレオチドと少なくとも４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％、９８％、９９％又は１００％の配列同一性を有する。
【００１９】
一部の実施形態では、細菌コロニー形成妨害剤は、細菌細胞壁生合成の阻害剤である。一部の実施形態では、細菌細胞壁生合成の阻害剤は、ウンデカプレニルピロリン酸ホスファターゼ（ＵｐｐＰ）、例えばバシトラシンの阻害剤である。
【００２０】
一部の実施形態では、細菌コロニー形成妨害剤は、鞭毛機能の阻害剤、例えばセルロースである。
【００２１】
本明細書に記載の方法の一部の実施形態では、昆虫は、植物病害虫である。一部の実施形態では、植物病害虫は、コウチュウ目（Ｃｏｌｅｏｐｔｅｒａ）、ハエ目（Ｄｉｐｔｅｒａ）、半翅目（Ｈｅｍｉｐｔｅｒａ）、鱗翅目（Ｌｅｐｉｄｏｐｔｅｒａ）、バッタ目（Ｏｒｔｈｏｐｔｅｒａ）、アザミウマ目（Ｔｈｙｓａｎｏｐｔｅｒａ）又はダニ目（Ａｃａｒｉｎａ）のものである。一部の実施形態では、昆虫は、カメムシ、ビーンバグ（ｂｅａｎ  ｂｕｇ）、甲虫、ゾウムシ、ハエ、アブラムシ、コナジラミ、ヨコバイ、カイガラムシ、ガ、チョウ、バッタ、コオロギ、アザミウマ又はダニである。一部の実施形態では、昆虫は、リプトルツス属（Ｒｉｐｔｏｒｔｕｓ）のものである。一部の実施形態では、昆虫は、ハリオモルファ属（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ）のものである。
【００２２】
本明細書に記載の方法の一部の実施形態では、昆虫は、動物病原体及び／又はヒト病原体のベクターである。一部の実施形態では、昆虫は、カ、ユスリカ、シラミ、サシチョウバエ、マダニ、オオサシガメ、ツェツェバエ又はノミである。
【００２３】
本明細書に記載の方法の一部の実施形態では、細菌は、内部共生細菌である。一部の実施形態では、内部共生細菌は、昆虫の腸内に常在する。一部の実施形態では、細菌は、昆虫の腸内の特殊化細胞又は特殊化器官に常在する。一部の実施形態では、特殊化器官は、中腸陰窩又はバクテリオームである。一部の実施形態では、特殊化細胞は、菌細胞である。一部の実施形態では、内部共生細菌は、バークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）のものである。一部の実施形態では、内部共生細菌は、パントエア属（Ｐａｎｔｏｅａ）のものである。
【００２４】
本明細書に記載の方法の一部の実施形態では、本方法は、非処理の昆虫に対して昆虫の適応度を減少させるのに有効である。一部の実施形態では、昆虫の適応度の減少は、非処理の昆虫に対する生殖能力、生存、発育速度、孵化される卵の数、成虫出現率、体長又は体重の（例えば、約２％、５％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、１００％又は１００％超）減少である。
【００２５】
一部の実施形態では、本方法は、非処理の昆虫に対して、昆虫の腸内の細菌コロニー形成を（例えば、約２％、５％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、１００％又は１００％超）減少させるのに有効である。
【００２６】
一部の実施形態では、本方法は、細菌と昆虫の腸との物理的相互作用を阻害するのに有効である。
【００２７】
本明細書に記載の方法の一部の実施形態において、組成物は、昆虫が成長、生息又は繁殖する少なくとも１つの生息場所で昆虫に送達される。
【００２８】
本明細書に記載の方法の一部の実施形態において、組成物は、固体、エアゾール、ペースト、ゲル又はガス組成物である。
【００２９】
本明細書に記載の方法の一部の実施形態において、組成物は、昆虫による摂取のための病害虫が摂食可能な組成物として送達される。
【００３０】
本明細書に記載の方法の一部の実施形態において、組成物は、摂食、注入、注射又は噴霧によって昆虫に送達される。一部の実施形態では、組成物は、昆虫の卵に送達される。
【００３１】
本明細書に記載の方法の一部の実施形態において、組成物は、農業的に許容される担体を含む。
【００３２】
また別の態様では、本明細書に記載の方法のいずれかによる細菌コロニー形成妨害剤を含む組成物と昆虫を接触させるステップを含む方法によって生産される改変昆虫が本明細書に提供される。
【００３３】
さらに別の態様では、細菌コロニー形成妨害剤を同定するスクリーニングアッセイが本明細書に提供され、これは、（ａ）１つ以上の薬剤に標的昆虫を曝露するステップと；（ｂ）（ｉ）標的昆虫の適応度を（例えば、約２％、５％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、１００％又は１００％超）減少させ、且つ（ｉｉ）標的昆虫の腸内の細菌のコロニー形成を（例えば、約２％、５％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、１００％又は１００％超）阻害する薬剤を同定するステップとを含む。
【００３４】
本明細書に記載の方法の一部の実施形態では、適応度の減少は、標的昆虫の生存の減少である。一部の実施形態では、適応度の減少は、標的昆虫の生殖能力、生存、発育速度、孵化される卵の数、成虫出現率、体長又は体重の減少である。
【００３５】
一部の実施形態では、薬剤は、細菌と昆虫の腸との物理的相互作用を阻害する上で有効である。
【００３６】
本明細書に記載のアッセイの一部の実施形態では、細菌は、内部共生細菌である。一部の実施形態では、内部共生細菌は、昆虫の腸内に常在する。一部の実施形態では、細菌は、昆虫の腸内の特殊化細胞又は特殊化器官に常在する。一部の実施形態では、特殊化器官は、中腸陰窩又はバクテリオームである。一部の実施形態では、特殊な細胞は、菌細胞である。一部の実施形態では、内部共生細菌は、バークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）のものである。一部の実施形態では、内部共生細菌は、パントエア属（Ｐａｎｔｏｅａ）のものである。
【００３７】
本明細書に記載のアッセイの一部の実施形態では、細菌コロニー形成妨害剤は、ＰＨＡ合成阻害剤である。
【００３８】
本明細書に記載のアッセイの一部の実施形態では、細菌コロニー形成妨害剤は、ＬＰＳ合成阻害剤である。
【００３９】
本明細書に記載のアッセイの一部の実施形態では、昆虫は、植物病害虫である。一部の実施形態では、植物病害虫は、コウチュウ目（Ｃｏｌｅｏｐｔｅｒａ）、ハエ目（Ｄｉｐｔｅｒａ）、半翅目（Ｈｅｍｉｐｔｅｒａ）、鱗翅目（Ｌｅｐｉｄｏｐｔｅｒａ）、バッタ目（Ｏｒｔｈｏｐｔｅｒａ）、アザミウマ目（Ｔｈｙｓａｎｏｐｔｅｒａ）又はダニ目（Ａｃａｒｉｎａ）のものである。
【００４０】
本明細書に記載のアッセイの一部の実施形態では、昆虫は、動物病原体及び／又はヒト病原体のベクターである。一部の実施形態では、昆虫は、カ、ユスリカ、シラミ、サシチョウバエ、マダニ、オオサシガメ、ツェツェバエ又はノミである。
【００４１】
別の態様では、本明細書に記載のスクリーニングアッセイにより同定された細菌コロニー形成妨害剤を含む組成物と昆虫を接触させるステップを含む方法によって生産される改変昆虫が本明細書に提供される。
【００４２】
また別の態様では、昆虫の適応度を減少させる方法が提供され、これは、本明細書に記載のスクリーニングアッセイにより同定された細菌コロニー形成妨害剤を含む組成物の有効量を昆虫に送達するステップを含む。
【００４３】
さらに別の態様では、細菌コロニー形成妨害剤と担体とを含む組成物が本明細書に提供され、ここで、組成物は、昆虫又はその生息場所への送達のために製剤化される。
【００４４】
本明細書に記載の組成物の一部の実施形態では、細菌コロニー形成妨害剤は、ポリヒドロキシアルカノエート（ＰＨＡ）合成阻害剤である。一部の実施形態では、ＰＨＡ合成阻害剤は、バニリン又はその類似体である。一部の実施形態では、ＰＨＡ合成阻害剤は、表１に挙げる１つ以上の化合物である。一部の実施形態では、ＰＨＡ阻害剤は、レブリン酸又はその類似体である。一部の実施形態では、ＰＨＡ合成阻害剤は、アクリル酸又はその類似体である。一部の実施形態では、ＰＨＡ合成阻害剤は、２−ブロモオクタン酸又はその類似体である。
【００４５】
本明細書に記載の組成物の一部の実施形態では、細菌コロニー形成妨害剤は、細菌細胞外皮生合成の阻害剤である。一部の実施形態では、細菌細胞外皮生合成の阻害剤は、リポ多糖（ＬＰＳ）合成阻害剤である。一部の実施形態では、ＬＰＳ合成阻害剤は、細菌におけるコアオリゴ糖合成の阻害剤である。一部の実施形態では、ＬＰＳ合成阻害剤は、細菌におけるコアオリゴ糖合成に関与する酵素を阻害する。一部の実施形態では、酵素は、ＷａａＡ、ＷａａＣ、ＷａａＦ又はＷａａＧのアミノ酸配列を有するポリペプチドと少なくとも４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％、９８％、９９％又は１００％の配列同一性を有する。一部の実施形態では、ＬＰＳ合成阻害剤（例えば、ＬＰＳ合成に関与する酵素の阻害剤）は、糖である。一部の実施形態では、糖は、ＡＤＰ−２−フルオロヘプトース（ＡＦＨ）である。一部の実施形態では、糖は、２−アリール−５−メチル−４−（５−アリール−フラン−２−イル−メチレン）−２，４−ジヒドロ−ピラゾール−３−オン（ＤＨＰＯ）である。一部の実施形態では、糖は、ＡＦＨ及びＤＨＰＯである。一部の実施形態では、糖は、表７に記載の１つ以上の化合物である。
【００４６】
一部の実施形態では、ＬＰＳ合成阻害剤は、細菌におけるコアオリゴ糖合成に関与する遺伝子の発現を阻害する。一部の実施形態では、この遺伝子は、ｗａａＡ、ｗａａＣ、ｗａａＦ又はｗａａＧのヌクレオチド配列を有するポリヌクレオチドと少なくとも４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％、９８％、９９％又は１００％の配列同一性を有する。
【００４７】
一部の実施形態では、細菌コロニー形成妨害剤は、細菌細胞壁生合成の阻害剤である。一部の実施形態では、細菌細胞壁生合成の阻害剤は、ウンデカプレニルピロリン酸ホスファターゼ（ＵｐｐＰ）、例えばバシトラシンの阻害剤である。
【００４８】
一部の実施形態では、細菌コロニー形成妨害剤は、鞭毛機能、例えばセルロースの阻害剤である。
【００４９】
本明細書に記載の組成物の一部の実施形態では、細菌コロニー形成妨害剤は、組成物の少なくとも０．１％、０．２％、０．４％、０．５％、０．８％、１％、２％、５％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％又は９０％である。一部の実施形態では、担体は、液体、固体、エアゾール、ペースト、ゲル又はガス組成物である。一部の実施形態では、担体は、糖シロップ、トウモロコシシロップ又はハチミツである。一部の実施形態では、担体は、ナノ粒子又は液体膜である。
【００５０】
本明細書に記載の組成物の一部の実施形態では、組成物は、例えば、摂取、注入、注射、噴霧、発煙又は雲霧法による昆虫への送達のために製剤化される。一部の実施形態では、組成物は、例えば、昆虫が成長、生息、繁殖又は摂餌する少なくとも１つの生息場所への送達のために製剤化される。一部の実施形態では、組成物は、昆虫により摂食される植物への送達のために製剤化される。別の実施形態では、細菌コロニー形成妨害剤を含む改変植物又はその部分が本明細書に提供され、この場合、植物又はその部分は、昆虫により摂食される。一部の実施形態では、植物は、例えば、異種遺伝子構築物からの発現により、細菌コロニー形成妨害剤を産生するように遺伝子操作されている。
【００５１】
定義
本明細書で使用される場合、用語「細菌コロニー形成妨害剤」は、昆虫の腸内の細菌のコロニー形成（例えば、腸の表面のコロニー形成若しくはそこでの細胞（例えば、細菌細胞）又は器官（例えば、バクテリオーム若しくは陰窩）のコロニー形成）を妨害又は障害する薬剤を指す。例えば、薬剤は、細菌が昆虫の腸にもはや付着、結合又は繁殖することができないように、細菌の特性（例えば、細菌の代謝若しくは細菌細胞表面）若しくはその成分及び／又は昆虫の腸若しくはその成分を改変し得る。例示的な細胞コロニー形成妨害剤としては、リポ多糖（ＬＰＳ）合成阻害剤、ポリヒドロキシアルカノエート（ＰＨＡ）合成阻害剤、細胞壁生合成の阻害剤及び鞭毛機能の阻害剤が挙げられる。
【００５２】
本明細書で使用される場合、用語「コロニー形成」は、昆虫の寿命にわたって持続する昆虫（例えば、昆虫の腸）内の細菌の集団を樹立するのに十分な量での且つそのような時間にわたる昆虫内の細菌の持続性を指す。細菌は、コロニー形成すると、少なくともさらに１世代、例えば２世代以上（例えば、生活環）を通してさらに垂直伝播され得る。
【００５３】
本明細書で使用される場合、用語「有効量」は、記載される結果、例えば昆虫の適応度の減少；標的昆虫内部の細菌コロニー形成妨害剤の目標レベル（例えば、所定の若しくは閾値レベル）の達成；標的昆虫の腸内部の細菌コロニー形成妨害剤の目標レベル（例えば、所定の若しくは閾値レベル）の達成；標的昆虫の細菌細胞内部の細菌コロニー形成妨害剤の目標レベル（例えば、所定の若しくは閾値レベル）の達成；標的昆虫陰窩内部の細菌コロニー形成妨害剤の目標レベル（例えば、所定の若しくは閾値レベル）の達成；及び／又は標的昆虫の腸内の１種以上の微生物（例えば、内部共生体）のコロニー形成の減少を実施する上で十分な細菌コロニー形成妨害剤又は前記薬剤を含む組成物の量を指す。
【００５４】
本明細書で使用される場合、「昆虫の適応度を減少させる」は、限定はされないが、以下の所望の効果：（１）昆虫の集団の約１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％、９９％、１００％若しくはそれを超える減少；（２）昆虫の繁殖率の約１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％、９９％、１００％若しくはそれを超える減少；（３）昆虫の移動性の約１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％、９９％、１００％若しくはそれを超える減少；（４）昆虫の体重の約１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％、９９％、１００％若しくはそれを超える減少；（５）昆虫の代謝率又は活動の約１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％、９９％、１００％若しくはそれを超える減少；又は（６）昆虫による植物寄生の約１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％、９９％、１００％若しくはそれを超える減少のいずれか１つ以上を含め、細菌コロニー形成妨害剤の投与がもたらす結果としての、昆虫の生理機能の何らかの不都合な変化又は前記昆虫により行われるいずれかの活動の何らかの不都合な変化を指す。昆虫適応度の減少は、細菌コロニー形成妨害剤が投与されていない昆虫と比較して決定することができる。
【００５５】
本明細書で使用される場合、用語「適応度」は、昆虫が生存、成長及び／又は生存子孫を産生する能力を指す。生物の適応度は、限定はされないが、生存、寿命、生殖能力、繁殖率、繁殖期間、産卵数、孵化卵の数、発育速度、成虫出現率、移動性、体の大きさ（例えば、体長、体重若しくは体幅（例えば、カメムシの前胸背板の幅））、角皮（外骨格）厚さ、色素形成又は代謝率を含め、１つ以上のパラメータによって測定され得る。
【００５６】
本明細書で使用される場合、用語「腸」は、昆虫の前腸、中腸又は後腸を含めた昆虫の腸の任意の一部分及び任意の特殊化器官（例えば、陰窩若しくはバクテリオーム）又はその内部の細胞（例えば、菌細胞）を指す。本明細書で使用される場合、用語「ｖ１」、「ｖ２」、「ｖ３」及び「ｖ４」は、成体半翅類昆虫（例えば、カメムシ又はビーンバグ）から切除された中腸の形態学的に異なる領域であり、これらは、それぞれ前方から後方に番号が付けられている。本明細書で使用される場合、ｖ１は、胃様中腸第１領域を指し；ｖ２は、管状中腸第２領域を指し；ｖ３は、長い嚢状中腸第３領域を指し；ｖ４は、中腸第４領域を指し、これは、共生細胞を含み得る管腔を有する多数の陰窩を含む。細菌コロニー形成は、腸の１つ、２つ以上の領域又は全領域で起こり得る。いくつかの例では、細菌コロニー形成は、中腸のｖ４領域で起こる。ｖ１〜ｖ４領域は、ｍ１〜ｍ４と呼ばれる場合もある（Ｄｕｒｏｎ  ａｎｄ  Ｎｏｅｌ，Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ  Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ  Ｒｅｐｏｒｔｓ，８（５）：７１５−７２７）。
【００５７】
本明細書で使用される場合、用語「宿主」は、常在性微生物（例えば、内因性微生物、内部共生微生物（例えば、一次又は二次内部共生体）、片利共生生物及び／又は病原性微生物）を保有する生物（例えば、昆虫）を指す。
【００５８】
本明細書で使用される場合、「昆虫の適応度を増加させる」は、限定はされないが、以下の所望の効果：（１）昆虫の集団の約１％、２％、３％、４％、６％、７％、８％、９％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％、９９％、１００％若しくはそれを超える増加；（２）昆虫の繁殖率の約１％、２％、３％、４％、６％、７％、８％、９％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％、９９％、１００％若しくはそれを超える増加；（３）昆虫の移動性の約１％、２％、３％、４％、６％、７％、８％、９％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％、９９％、１００％若しくはそれを超える増加；（４）昆虫の体重の約１％、２％、３％、４％、６％、７％、８％、９％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％、９９％、１００％若しくはそれを超える増加；（５）昆虫の代謝率又は活動の約１％、２％、３％、４％、６％、７％、８％、９％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％、９９％、１００％若しくはそれを超える増加；（６）昆虫による受粉（例えば、所与の時間量で受粉する植物の数）の約１％、２％、３％、４％、６％、７％、８％、９％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％、９９％、１００％若しくはそれを超える増加；（７）昆虫の副産物（例えば、蜂蜜若しくは絹）の生産の約１％、２％、３％、４％、６％、７％、８％、９％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％、９９％、１００％若しくはそれを超える増加；（８）昆虫の栄養分（例えば、タンパク質、脂肪酸若しくはアミノ酸）の約１％、２％、３％、４％、６％、７％、８％、９％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％、９９％、１００％若しくはそれを超える増加；又は（９）農薬に対する昆虫抵抗性の約１％、２％、３％、４％、６％、７％、８％、９％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％、９９％、１００％若しくはそれを超える増加のいずれか１つ以上を含め、昆虫生理機能、表現型又は昆虫のいずれかの活動の任意の好ましい変化を指す。昆虫の適応度の増加は、対照（例えば、非処理の昆虫）と比較して決定することができる。
【００５９】
用語「昆虫」又は「節足動物（ａｒｔｈｒｏｐｏｄ）」は、任意の発育段階にある、即ち幼虫及び成虫の、節足動物門（Ａｒｔｈｒｏｐｏｄａ）及び昆虫綱（Ｉｎｓｅｃｔａ）又は蛛形綱（Ａｒａｃｈｎｉｄａ）に属するあらゆる生物を含む。本明細書で使用される場合、用語「益虫」は、その存在が農業、園芸若しくは商業用途に利益を付与するか、又はその存在若しくは活動が望ましい昆虫を指す。
【００６０】
本明細書で使用される場合、用語「微生物」は、細菌又は真菌を指す。微生物は、昆虫に常在する微生物（例えば、内因性微生物、内部共生微生物（例えば、一次又は二次内部共生体））又は昆虫に外因性の微生物を指し、コロニー形成妨害剤を生成するものを含む。
【００６１】
本明細書で使用される場合、用語「ペプチド」、「タンパク質」又は「ポリペプチド」は、長さ（例えば、少なくとも２、３、４、５、６、７、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２５、３０、４０、５０、１００若しくはそれを超えるアミノ酸）、翻訳後修飾（例えば、グリコシル化若しくはリン酸化）の存在又は例えばペプチドと共有結合した１つ以上の非アミノアシル基（例えば、糖、脂質など）の存在とは関係なく、天然又は非天然のアミノ酸（Ｄ−又はＬ−アミノ酸）のあらゆる鎖を包含し、例えば天然のタンパク質、合成又は組換えポリペプチド及びペプチド、ハイブリッド分子、ペプトイド又はペプトイド模倣物が挙げられる。
【００６２】
本明細書で使用される場合、２つの配列同士の「同一性（％）」は、Ａｌｔｓｃｈｕｌ  ｅｔ  ａｌ．（Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２１５：４０３−４１０，１９９０）に記載されるＢＬＡＳＴ  ２．０アルゴリズムによって決定される。ＢＬＡＳＴ解析を実施するためのソフトウエアは、国立バイオテクノロジー情報センター（Ｎａｔｉｏｎａｌ  Ｃｅｎｔｅｒ  ｆｏｒ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  Ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ）から一般に入手可能である。
【００６３】
本明細書で使用される場合、用語「病害虫」は、植物若しくは他の生物に対して害をもたらすか、望まれない場所に存在するか、又はそうでなければ例えばヒトの農業方法若しくは農産物に影響を及ぼすことにより、ヒトに対して有害である生物を指す。
【００６４】
本明細書で使用される場合、用語「植物」は、全植物、植物器官、植物組織、種子、植物細胞、種子及びそれらの子孫を指す。植物細胞には、限定なしに、種子、浮遊培養物、胚、分裂組織領域、花、カルス組織、葉、根、シュート、配偶体、胞子体、花粉又は小胞子の細胞が含まれる。植物部位には、限定はされないが、根、茎、シュート、葉、花粉、種子、腫瘍組織及び様々な形態の細胞及び培養物（例えば、単一細胞、プロトプラスト、胚又はカルス組織）を含めた、分化した及び未分化の組織が含まれる。植物組織は、植物のものであるか、又は植物器官、組織若しくは細胞培養物のものであり得る。
【００６５】
本明細書で使用される場合、用語「共生体」又は「昆虫共生体」は、昆虫のコロニー形成時、昆虫に適応度利益を付与する細胞内又は細胞外微生物を指す。「内部共生体」は、昆虫細胞又は器官、例えば菌細胞若しくは陰窩内に生存することができる微生物を指す。
【００６６】
本明細書で使用される場合、用語「非処理の昆虫」又は「非改変昆虫」は、細菌コロニー形成妨害剤と特に接触させていないか、又はそれを送達されていない（例えば、本明細書に記載の方法に従い）（例えば、いかなる時点でも細菌コロニー形成妨害剤と接触させていないか若しくはそれを送達されていないか、又は細菌コロニー形成妨害剤との接触若しくはその送達前のある時点で評価されている）昆虫又はその集団を指す。
【００６７】
本発明の他の特徴及び利点は、以下の詳細な説明及び特許請求の範囲から明らかになるであろう。
【００６８】
図は、本発明の１つ以上の特徴、態様又は実施形態を例示することを目的とし、限定することを意図するものではない。
【図面の簡単な説明】
【００６９】
【図１】エタノール及び漂白剤で処理した（漂白剤処理）卵又はエタノール若しくは漂白剤で処理していない（非漂白剤処理）卵から孵化した２齢、３齢及び４齢幼虫Ｈ．ハリス（Ｈ．ｈａｌｙｓ）からプールしたｑＰＣＲデータに基づく、カンディダタス・パントエア・カルベキイ（Ｃａｎｄｉｄａｔｕｓ  Ｐａｎｔｏｅａ  ｃａｒｂｅｋｉｉ）ｄｎａＫ遺伝子及びハリオモルファ・ハリス（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ  ｈａｌｙｓ）６０遺伝子の発現の比を示す散布図である。バーは、平均及び標準偏差を示す。
【図２Ａ】２齢、３齢、４齢及び５齢幼虫又は孵化から所与の日数後の成虫発育段階にある幼虫の数を示すグラフである。個体は、エタノール処理及び漂白剤処理（ｂｌ）卵（破線）又はエタノール若しくは漂白剤で処理しなかった卵（対照）（実線）から孵化した。エラーバーは、標準偏差を示す。
【図２Ｂ】エタノール処理及び漂白剤処理卵又はエタノール若しくは漂白剤で処理しなかった卵（対照）から孵化したＨ．ハリス（Ｈ．ｈａｌｙｓ）の集団が５０％成虫に達する、孵化後の平均日数を示す箱ひげ図である。ｔ＝ｔ値；ｄｆ＝自由度。
【図３Ａ】エタノール処理及び漂白剤処理卵（共生体なし）又はエタノール若しくは漂白剤で処理しなかった卵（対照）から孵化した同齢のＨ．ハリス（Ｈ．ｈａｌｙｓ）個体から切除した腸を示す写真である。腸のｖ１、ｖ２、ｖ３及びｖ４領域を標識する。
【図３Ｂ】エタノール処理及び漂白剤処理卵（共生体なし；右）又はエタノール若しくは漂白剤で処理しなかった卵（対照；左）から孵化した同齢の雌Ｈ．ハリス（Ｈ．ｈａｌｙｓ）個体同士のサイズ及び色の差を示す写真である。
【図３Ｃ】エタノール処理及び漂白剤処理卵（漂白剤処理）又はエタノール若しくは漂白剤で処理しなかった卵（非漂白剤処理）から孵化した雌及び雄Ｈ．ハリス（Ｈ．ｈａｌｙｓ）個体の前胸背板の平均幅（前胸背板の幅；サイズの代用）を示す散布図である。
【図４】エタノール処理及び漂白剤処理卵（漂白剤処理）又はエタノール若しくは漂白剤で処理しなかった卵（対照）から孵化した雌Ｈ．ハリス（Ｈ．ｈａｌｙｓ）個体により産生された卵塊中の卵の平均数を示す散布図である。
【図５】陰性対照（水）、陽性対照（リファマイシンＳ）又はポリヒドロキシアルカノエート（ＰＨＡ）阻害剤（２−ブロモオクタン酸、アクリル酸、バニリン若しくはレブリン酸）で処理した卵から孵化した後期２齢Ｈ．ハリス（Ｈ．ｈａｌｙｓ）幼虫からのプールしたｑＰＣＲデータに基づく、Ｐ．カルベキイ（Ｐ．ｃａｒｂｅｋｉｉ）ｄｎａＫ遺伝子及びＨ．ハリス（Ｈ．ｈａｌｙｓ）６０遺伝子の発現の比を示す散布図である。星印は、水対照群と比較した統計的有意性ｐ＜０．０５を示し、星印上の数値は、水対照と比較した平均値の差異倍率を示す。
【図６】陰性対照（水）、陽性対照（リファマイシンＳ）又は細胞壁合成阻害剤バシトラシンで処理した卵から孵化した後期２齢Ｈ．ハリス（Ｈ．ｈａｌｙｓ）幼虫からのプールしたｑＰＣＲデータに基づく、Ｐ．カルベキイ（Ｐ．ｃａｒｂｅｋｉｉ）ｄｎａＫ遺伝子及びＨ．ハリス（Ｈ．ｈａｌｙｓ）６０遺伝子の発現の比を示す散布図である。星印は、水対照群と比較した統計的有意性ｐ＜０．０５を示し、星印上の数値は、水対照と比較した平均値の差異（減少）倍率を示す。
【図７】陰性対照（水）、陽性対照（リファマイシンＳ）又は鞭毛機能阻害剤セルロースで処理した卵から孵化した後期２齢Ｈ．ハリス（Ｈ．ｈａｌｙｓ）幼虫からのプールしたｑＰＣＲデータに基づく、Ｐ．カルベキイ（Ｐ．ｃａｒｂｅｋｉｉ）ｄｎａＫ遺伝子及びＨ．ハリス（Ｈ．ｈａｌｙｓ）６０遺伝子の発現の比を示す散布図である。星印は、水対照群と比較した統計的有意性ｐ＜０．０５を示し、星印上の数値は、水対照と比較した平均値の差異（減少）倍率を示す。
【図８】卵、１齢幼虫、２齢幼虫、３齢幼虫、４齢幼虫、５齢幼虫並びに雄及び雌成虫を含むクサギカメムシ（Ｈ．ハリス（Ｈ．ｈａｌｙｓ））の発育段階を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【００７０】
本明細書には、昆虫の腸内の細菌コロニー形成を減少させるか又は予防する上で有用な細菌コロニー形成妨害剤を含む方法及び組成物が提供される。腸内微生物叢の健常性は、昆虫適応度に重要である。複数の昆虫は、細胞内共生体（例えば、内部共生体）を含め、細菌共生体に依存せざるを得ないように進化している。これらの細菌の多くは、昆虫の腸内に常在し、昆虫はそのような細菌を、特殊化された細胞（菌細胞）又は器官（バクテリオーム若しくは陰窩）内に保有する。昆虫腸内又は特殊化器官若しくはその内部の細胞内の細菌のコロニー形成を妨げることにより、本方法及び組成物を使用して、多様な昆虫、例えば農業若しくは商業において病害虫とみなされる昆虫又はそうでなければヒト若しくは動物に有害な昆虫（例えば、疾患の媒介昆虫）の適応度を減少させることができる。
【００７１】
様々な細菌コロニー形成妨害剤が本方法において有用である。本明細書に記載の方法及び組成物は、一部には、様々な薬剤、例えばリポ多糖（ＬＰＳ）合成阻害剤、ポリヒドロキシアルカノエート（ＰＨＡ）合成阻害剤、細胞壁生合成の阻害剤又は鞭毛機能の阻害剤を用いて、昆虫宿主内の共生微生物（例えば、ビーンバグの内部共生体バークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）又はカメムシのカンディダタス・パントエア・カルベキイ（Ｃａｎｄｉｄａｔｕｓ  Ｐａｎｔｏｅａ  ｃａｒｂｅｋｉｉ））のコロニー形成をどのように減少させ、従ってこれらの宿主の適応度を減少させることができるかを示す実施例に基づく。本明細書には、さらに別の細菌コロニー形成妨害剤を同定するためのスクリーニング方法も提供される。
【００７２】
Ｉ．昆虫適応度を改変する方法
本明細書には、細菌コロニー形成妨害剤を含む組成物を昆虫に送達することにより、昆虫の適応度を改変する（例えば、適応度を減少させるか又は適応度を増加させる）方法が提供される。本方法によりターゲティングすることができる昆虫、本方法により付与され得る適応度利益並びに細菌コロニー形成妨害剤を昆虫に送達する方法の例を以下にさらに詳細に記載する。
【００７３】
ｉ．昆虫
本明細書に記載の細菌コロニー形成妨害剤は、多様な昆虫に適用することができる。例えば、昆虫は、農業病害虫であり得る。病害虫には、植物若しくは他の生物に対して害をもたらすか、又はそうでなければヒト、例えばヒトの農業方法若しくは農産物に有害である昆虫が含まれる。
【００７４】
いくつかの例では、昆虫は、以下の目のものである：ダニ目（Ａｃａｒｉ）、クモ目（Ａｒａｎｅａｅ）、シラミ亜目（Ａｎｏｐｌｕｒａ）、コウチュウ目（Ｃｏｌｅｏｐｔｅｒａ）、トビムシ目（Ｃｏｌｌｅｍｂｏｌａ）、ハサミムシ目（Ｄｅｒｍａｐｔｅｒａ）、網翅目（Ｄｉｃｔｙｏｐｔｅｒａ）、コムシ目（Ｄｉｐｌｕｒａ）、ハエ目（Ｄｉｐｔｅｒａ）（例えば、オウトウショウジョウバエ（ｓｐｏｔｔｅｄ−ｗｉｎｇ  Ｄｒｏｓｏｐｈｉｌａ））、シロアリモドキ目（Ｅｍｂｉｏｐｔｅｒａ）、カゲロウ目（Ｅｐｈｅｍｅｒｏｐｔｅｒａ）、ガロアムシ目（Ｇｒｙｌｌｏｂｌａｔｏｄｅａ）、半翅目（Ｈｅｍｉｐｔｅｒａ）（例えば、アブラムシ、オンシツコナジラミ又はカメムシ）、ヨコバイ亜目（Ｈｏｍｏｐｔｅｒａ）、ハチ目（Ｈｙｍｅｎｏｐｔｅｒａ）、シロアリ目（Ｉｓｏｐｔｅｒａ）、チョウ目（Ｌｅｐｉｄｏｐｔｅｒａ）、ハジラミ目（Ｍａｌｌｏｐｈａｇａ）、シリアゲムシ目（Ｍｅｃｏｐｔｅｒａ）、アミメカゲロウ目（Ｎｅｕｒｏｐｔｅｒａ）、トンボ亜目（Ｏｄｏｎａｔａ）、バッタ目（Ｏｒｔｈｏｐｔｅｒａ）、ナナフシ目（Ｐｈａｓｍｉｄａ）、カワゲラ目（Ｐｌｅｃｏｐｔｅｒａ）、カマアシムシ目（Ｐｒｏｔｕｒａ）、チャタテムシ目（Ｐｓｏｃｏｐｔｅｒａ）、ノミ目（Ｓｉｐｈｏｎａｐｔｅｒａ）、シラミ目（Ｓｉｐｈｕｎｃｕｌａｔａ、シミ目（Ｔｈｙｓａｎｕｒａ）、ネジレバネ目（Ｓｔｒｅｐｓｉｐｔｅｒａ）、アザミウマ目（Ｔｈｙｓａｎｏｐｔｅｒａ）、トビケラ目（Ｔｒｉｃｈｏｐｔｅｒａ）又はジュズヒゲムシ目（Ｚｏｒａｐｔｅｒａ）。
【００７５】
いくつかの例では、昆虫は、クモ綱（Ａｒａｃｈｎｉｄａ）のものであり、例えばアカルス属（Ａｃａｒｕｓ  ｓｐｐ．）、アケリア・シェルドニ（Ａｃｅｒｉａ  ｓｈｅｌｄｏｎｉ）、アクロプス属（Ａｃｕｌｏｐｓ  ｓｐｐ．）、アクルス属（Ａｃｕｌｕｓ  ｓｐｐ．）、アンブリオンマ属（Ａｍｂｌｙｏｍｍａ  ｓｐｐ．）、アムフィテトラニクス・ビエネンシス（Ａｍｐｈｉｔｅｔｒａｎｙｃｈｕｓ  ｖｉｅｎｎｅｎｓｉｓ）、アルガス属（Ａｒｇａｓ  ｓｐｐ．）、ボオフィルス属（Ｂｏｏｐｈｉｌｕｓ  ｓｐｐ．）、ブレビパルプス属（Ｂｒｅｖｉｐａｌｐｕｓ  ｓｐｐ．）、ブリオビア・グラミヌム（Ｂｒｙｏｂｉａ  ｇｒａｍｉｎｕｍ）、ブリオビア・プラエチオサ（Ｂｒｙｏｂｉａ  ｐｒａｅｔｉｏｓａ）、セントルロイデス属（Ｃｅｎｔｒｕｒｏｉｄｅｓ  ｓｐｐ．）、コリオプテス属（Ｃｈｏｒｉｏｐｔｅｓ  ｓｐｐ．）、デルマニスス・ガリナエ（Ｄｅｒｍａｎｙｓｓｕｓ  ｇａｌｌｉｎａｅ）、デルマトファゴイデス・プテロニシヌス（Ｄｅｒｍａｔｏｐｈａｇｏｉｄｅｓ  ｐｔｅｒｏｎｙｓｓｉｎｕｓ）、デルマトファゴイデス・ファリナエ（Ｄｅｒｍａｔｏｐｈａｇｏｉｄｅｓ  ｆａｒｉｎａｅ）、デルマセントル属（Ｄｅｒｍａｃｅｎｔｏｒ  ｓｐｐ．）、エオテトラニクス属（Ｅｏｔｅｔｒａｎｙｃｈｕｓ  ｓｐｐ．）、エピトリメルス・ピリ（Ｅｐｉｔｒｉｍｅｒｕｓ  ｐｙｒｉ）、エウテトラニクス属（Ｅｕｔｅｔｒａｎｙｃｈｕｓ  ｓｐｐ．）、エリオフィエス属（Ｅｒｉｏｐｈｙｅｓ  ｓｐｐ．）、グリシファグス・ドメスチクス（Ｇｌｙｃｙｐｈａｇｕｓ  ｄｏｍｅｓｔｉｃｕｓ）、ハロチデウス・デストルクトル（Ｈａｌｏｔｙｄｅｕｓ  ｄｅｓｔｒｕｃｔｏｒ）、ヘミタロソネムス属（Ｈｅｍｉｔａｒｓｏｎｅｍｕｓ  ｓｐｐ．）、ヒアロンマ属（Ｈｙａｌｏｍｍａ  ｓｐｐ．）、イキソデス属（Ｉｘｏｄｅｓ  ｓｐｐ．）、ラトロデクツス属（Ｌａｔｒｏｄｅｃｔｕｓ  ｓｐｐ．）、ロキソスケレス属（Ｌｏｘｏｓｃｅｌｅｓ  ｓｐｐ．）、メタテトラニクス属（Ｍｅｔａｔｅｔｒａｎｙｃｈｕｓ  ｓｐｐ．）、ネウトロムビクラ・アウツムナリス（Ｎｅｕｔｒｏｍｂｉｃｕｌａ  ａｕｔｕｍｎａｌｉｓ）、ヌフェルサ属（Ｎｕｐｈｅｒｓａ  ｓｐｐ．）、オリゴニクス属（Ｏｌｉｇｏｎｙｃｈｕｓ  ｓｐｐ．）、オルニトドルス属（Ｏｒｎｉｔｈｏｄｏｒｕｓ  ｓｐｐ．）、オルニトニスス属（Ｏｒｎｉｔｈｏｎｙｓｓｕｓ  ｓｐｐ．）、パノニクス属（Ｐａｎｏｎｙｃｈｕｓ  ｓｐｐ．）、フィロコプトルタ・オレイボラ（Ｐｈｙｌｌｏｃｏｐｔｒｕｔａ  ｏｌｅｉｖｏｒａ）、ポリファゴタルソネムス・ラツス（Ｐｏｌｙｐｈａｇｏｔａｒｓｏｎｅｍｕｓ  ｌａｔｕｓ）、ソロプテス属（Ｐｓｏｒｏｐｔｅｓ  ｓｐｐ．）、リピセファルス属（Ｒｈｉｐｉｃｅｐｈａｌｕｓ  ｓｐｐ．）、リゾグリフス属（Ｒｈｉｚｏｇｌｙｐｈｕｓ  ｓｐｐ．）、サルコプテス属（Ｓａｒｃｏｐｔｅｓ  ｓｐｐ．）、スコルピオ・マウルス（Ｓｃｏｒｐｉｏ  ｍａｕｒｕｓ）、ステネオタルソネムス属（Ｓｔｅｎｅｏｔａｒｓｏｎｅｍｕｓ  ｓｐｐ．）、ステネオタルソネムス・スピンキ（Ｓｔｅｎｅｏｔａｒｓｏｎｅｍｕｓ  ｓｐｉｎｋｉ）、タルソネムス属（Ｔａｒｓｏｎｅｍｕｓ  ｓｐｐ．）、テトラニクス属（Ｔｅｔｒａｎｙｃｈｕｓ  ｓｐｐ．）、トロムビクラ・アルフレズゲシ（Ｔｒｏｍｂｉｃｕｌａ  ａｌｆｒｅｄｄｕｇｅｓｉ）、バエジョビス属（Ｖａｅｊｏｖｉｓ  ｓｐｐ．）又はバサテス・リコペルシシ（Ｖａｓａｔｅｓ  ｌｙｃｏｐｅｒｓｉｃｉ）である。
【００７６】
いくつかの例では、昆虫は、ムカデ綱（Ｃｈｉｌｏｐｏｄａ）のものであり、例えばゲオフィルス属（Ｇｅｏｐｈｉｌｕｓ  ｓｐｐ．）、スクチゲラ属（Ｓｃｕｔｉｇｅｒａ  ｓｐｐ．）である。
【００７７】
いくつかの例では、昆虫は、トビムシ目（Ｃｏｌｌｅｍｂｏｌａ）のものであり、例えばオニキウルス・アルマツス（Ｏｎｙｃｈｉｕｒｕｓ  ａｒｍａｔｕｓ）である。
【００７８】
いくつかの例では、昆虫は、ヤスデ綱（Ｄｉｐｌｏｐｏｄａ）のものであり、例えばブラニウルス・グツラツス（Ｂｌａｎｉｕｌｕｓ  ｇｕｔｔｕｌａｔｕｓ）である。
【００７９】
いくつかの例では、昆虫は、昆虫綱（Ｉｎｓｅｃｔａ）であり、例えばゴキブリ目（Ｂｌａｔｔｏｄｅａ）、例えばブラッテラ・アサヒナイ（Ｂｌａｔｔｅｌｌａ  ａｓａｈｉｎａｉ）、ブラッテラ・ゲルマニカ（Ｂｌａｔｔｅｌｌａ  ｇｅｒｍａｎｉｃａ）、ブラッタ・オリエンタリス（Ｂｌａｔｔａ  ｏｒｉｅｎｔａｌｉｓ）、レウコファエア・マデラエ（Ｌｅｕｃｏｐｈａｅａ  ｍａｄｅｒａｅ）、パンクロラ属（Ｐａｎｃｈｌｏｒａ  ｓｐｐ．）、パルコブラッタ属（Ｐａｒｃｏｂｌａｔｔａ  ｓｐｐ．）、ペリプラネタ属（Ｐｅｒｉｐｌａｎｅｔａ  ｓｐｐ．）又はスペラ・ロンギパルパ（Ｓｕｐｅｌｌａ  ｌｏｎｇｉｐａｌｐａ）である。
【００８０】
いくつかの例では、昆虫は、コウチュウ目（Ｃｏｌｅｏｐｔｅｒａ）のものであり、例えばアカリンマ・ビタツム（Ａｃａｌｙｍｍａ  ｖｉｔｔａｔｕｍ）、アカントセリデス・オブテクツス（Ａｃａｎｔｈｏｓｃｅｌｉｄｅｓ  ｏｂｔｅｃｔｕｓ）、アドレツス属（Ａｄｏｒｅｔｕｓ  ｓｐｐ．）、アゲラスチカ・アルニ（Ａｇｅｌａｓｔｉｃａ  ａｌｎｉ）、アグリオテス属（Ａｇｒｉｏｔｅｓ  ｓｐｐ．）、アルフィトビウス・ジアペリヌス（Ａｌｐｈｉｔｏｂｉｕｓ  ｄｉａｐｅｒｉｎｕｓ）、アムフィマロン・ソルスチチアリス（Ａｍｐｈｉｍａｌｌｏｎ  ｓｏｌｓｔｉｔｉａｌｉｓ）、アノビウム・プンクタツム（Ａｎｏｂｉｕｍ  ｐｕｎｃｔａｔｕｍ）、アノプロホラ属（Ａｎｏｐｌｏｐｈｏｒａ  ｓｐｐ．）、アントノムス属（Ａｎｔｈｏｎｏｍｕｓ  ｓｐｐ．）、アントレヌス属（Ａｎｔｈｒｅｎｕｓ  ｓｐｐ．）、アピオン属（Ａｐｉｏｎ  ｓｐｐ．）、アポゴニア属（Ａｐｏｇｏｎｉａ  ｓｐｐ．）、アトマリア属（Ａｔｏｍａｒｉａ  ｓｐｐ．）、アタゲヌス属（Ａｔｔａｇｅｎｕｓ  ｓｐｐ．）、ブルキジウス・オブテクツス（Ｂｒｕｃｈｉｄｉｕｓ  ｏｂｔｅｃｔｕｓ）、ブルクス属（Ｂｒｕｃｈｕｓ  ｓｐｐ．）、カッシダ属（Ｃａｓｓｉｄａ  ｓｐｐ．）、セロトマ・トリフルカタ（Ｃｅｒｏｔｏｍａ  ｔｒｉｆｕｒｃａｔａ）、セウトリンクス属（Ｃｅｕｔｏｒｒｈｙｎｃｈｕｓ  ｓｐｐ．）、カエトクネマ属（Ｃｈａｅｔｏｃｎｅｍａ  ｓｐｐ．）、クレオヌス・メンジクス（Ｃｌｅｏｎｕｓ  ｍｅｎｄｉｃｕｓ）、コノデルス属（Ｃｏｎｏｄｅｒｕｓ  ｓｐｐ．）、コスモポリテス属（Ｃｏｓｍｏｐｏｌｉｔｅｓ  ｓｐｐ．）、コステリトラ・ゼアランジカ（Ｃｏｓｔｅｌｙｔｒａ  ｚｅａｌａｎｄｉｃａ）、クテニセラ属（Ｃｔｅｎｉｃｅｒａ  ｓｐｐ．）、クルクリオ属（Ｃｕｒｃｕｌｉｏ  ｓｐｐ．）、クリプトレステス・フェルギネウス（Ｃｒｙｐｔｏｌｅｓｔｅｓ  ｆｅｒｒｕｇｉｎｅｕｓ）、クリプトリンクス・ラパチ（Ｃｒｙｐｔｏｒｈｙｎｃｈｕｓ  ｌａｐａｔｈｉ）、シリンドロコプツルス属（Ｃｙｌｉｎｄｒｏｃｏｐｔｕｒｕｓ  ｓｐｐ．）、デルメステス属（Ｄｅｒｍｅｓｔｅｓ  ｓｐｐ．）、ジアブロチカ属（Ｄｉａｂｒｏｔｉｃａ  ｓｐｐ．）（例えば、トウモロコシの根切り虫）、ジコクロシス属（Ｄｉｃｈｏｃｒｏｃｉｓ  ｓｐｐ．）、ジクラジスパ・アルミゲラ（Ｄｉｃｌａｄｉｓｐａ  ａｒｍｉｇｅｒａ）、ジロボデルス属（Ｄｉｌｏｂｏｄｅｒｕｓ  ｓｐｐ．）、エピラクナ属（Ｅｐｉｌａｃｈｎａ  ｓｐｐ．）、エピトリキス属（Ｅｐｉｔｒｉｘ  ｓｐｐ．）、ファウスチヌス属（Ｆａｕｓｔｉｎｕｓ  ｓｐｐ．）、ギビウム・プシロイデス（Ｇｉｂｂｉｕｍ  ｐｓｙｌｌｏｉｄｅｓ）、グナトセルス・コルヌツス（Ｇｎａｔｈｏｃｅｒｕｓ  ｃｏｒｎｕｔｕｓ）、ヘルラ・ウンダリス（Ｈｅｌｌｕｌａ  ｕｎｄａｌｉｓ）、ヘテロニクス・アラトル（Ｈｅｔｅｒｏｎｙｃｈｕｓ  ａｒａｔｏｒ）、ヘテロニキス属（Ｈｅｔｅｒｏｎｙｘ  ｓｐｐ．）、ヒラモルファ・エレガンス（Ｈｙｌａｍｏｒｐｈａ  ｅｌｅｇａｎｓ）、ヒロトルペス・バジュルス（Ｈｙｌｏｔｒｕｐｅｓ  ｂａｊｕｌｕｓ）、ヒペラ・ポスチカ（Ｈｙｐｅｒａ  ｐｏｓｔｉｃａ）、ヒポメセス・スクアモスス（���ｙｐｏｍｅｃｅｓ  ｓｑｕａｍｏｓｕｓ）、ヒポテネムス属（Ｈｙｐｏｔｈｅｎｅｍｕｓ  ｓｐｐ．）、ラクノステルナ・コンサングイネア（Ｌａｃｈｎｏｓｔｅｒｎａ  ｃｏｎｓａｎｇｕｉｎｅａ）、ラシドデルマ・セリコルネ（Ｌａｓｉｏｄｅｒｍａ  ｓｅｒｒｉｃｏｒｎｅ）、ラテチクス・オリザエ（Ｌａｔｈｅｔｉｃｕｓ  ｏｒｙｚａｅ）、ラトリジウス属（Ｌａｔｈｒｉｄｉｕｓ  ｓｐｐ．）、レマ属（Ｌｅｍａ  ｓｐｐ．）、レプチノタルサ・デセムリネアタ（Ｌｅｐｔｉｎｏｔａｒｓａ  ｄｅｃｅｍｌｉｎｅａｔａ）、レウコプテラ属（Ｌｅｕｃｏｐｔｅｒａ  ｓｐｐ．）、リッソロプトルス・オリゾフィルス（Ｌｉｓｓｏｒｈｏｐｔｒｕｓ  ｏｒｙｚｏｐｈｉｌｕｓ）、リキスス属（Ｌｉｘｕｓ  ｓｐｐ．）、ルペロデス属（Ｌｕｐｅｒｏｄｅｓ  ｓｐｐ．）、リクツス属（Ｌｙｃｔｕｓ  ｓｐｐ．）、メガセリス属（Ｍｅｇａｓｃｅｌｉｓ  ｓｐｐ．）、メラノツス属（Ｍｅｌａｎｏｔｕｓ  ｓｐｐ．）、メリゲテス・アエネウス（Ｍｅｌｉｇｅｔｈｅｓ  ａｅｎｅｕｓ）、メロロンタ属（Ｍｅｌｏｌｏｎｔｈａ  ｓｐｐ．）、ミグドルス属（Ｍｉｇｄｏｌｕｓ  ｓｐｐ．）、モノカムス属（Ｍｏｎｏｃｈａｍｕｓ  ｓｐｐ．）、ナウパクツス・キサントグラフス（Ｎａｕｐａｃｔｕｓ  ｘａｎｔｈｏｇｒａｐｈｕｓ）、ネクロビア属（Ｎｅｃｒｏｂｉａ  ｓｐｐ．）、ニプツス・ホロレウクス（Ｎｉｐｔｕｓ  ｈｏｌｏｌｅｕｃｕｓ）、オリクテス・リノセロス（Ｏｒｙｃｔｅｓ  ｒｈｉｎｏｃｅｒｏｓ）、オリザエフィルス・スリナメンシス（Ｏｒｙｚａｅｐｈｉｌｕｓ  ｓｕｒｉｎａｍｅｎｓｉｓ）、オリザファグス・オリザエ（Ｏｒｙｚａｐｈａｇｕｓ  ｏｒｙｚａｅ）、オチオリンクス属（Ｏｔｉｏｒｒｈｙｎｃｈｕｓ  ｓｐｐ．）、オキシセトニア・ジュクンダ（Ｏｘｙｃｅｔｏｎｉａ  ｊｕｃｕｎｄａ）、ファエドン・コクレアリアエ（Ｐｈａｅｄｏｎ  ｃｏｃｈｌｅａｒｉａｅ）、フィロファガ属（Ｐｈｙｌｌｏｐｈａｇａ  ｓｐｐ．）、フィロファガ・ヘレリ（Ｐｈｙｌｌｏｐｈａｇａ  ｈｅｌｌｅｒｉ）、フィロトレタ属（Ｐｈｙｌｌｏｔｒｅｔａ  ｓｐｐ．）、ポピリア・ジャポニカ（Ｐｏｐｉｌｌｉａ  ｊａｐｏｎｉｃａ）、プレムノトリペス属（Ｐｒｅｍｎｏｔｒｙｐｅｓ  ｓｐｐ．）、プロステファヌス・トルンカツス（Ｐｒｏｓｔｅｐｈａｎｕｓ  ｔｒｕｎｃａｔｕｓ）、プシリオデス属（Ｐｓｙｌｌｉｏｄｅｓ  ｓｐｐ．）、プチヌス属（Ｐｔｉｎｕｓ  ｓｐｐ．）、リゾビウス・ベントラリス（Ｒｈｉｚｏｂｉｕｓ  ｖｅｎｔｒａｌｉｓ）、リゾペルタ・ドミニカ（Ｒｈｉｚｏｐｅｒｔｈａ  ｄｏｍｉｎｉｃａ）、シトフィルス属（Ｓｉｔｏｐｈｉｌｕｓ  ｓｐｐ．）、シトフィルス・オリザエ（Ｓｉｔｏｐｈｉｌｕｓ  ｏｒｙｚａｅ）、スフェノホルス属（Ｓｐｈｅｎｏｐｈｏｒｕｓ  ｓｐｐ．）、ステゴビウム・パニセウム（Ｓｔｅｇｏｂｉｕｍ  ｐａｎｉｃｅｕｍ）、ステルネクス属（Ｓｔｅｒｎｅｃｈｕｓ  ｓｐｐ．）、シムフィレテス属（Ｓｙｍｐｈｙｌｅｔｅｓ  ｓｐｐ．）、タニメクス属（Ｔａｎｙｍｅｃｕｓ  ｓｐｐ．）、テネブリオ・モリトル（Ｔｅｎｅｂｒｉｏ  ｍｏｌｉｔｏｒ）、テネブリオイデス・マウレタニクス（Ｔｅｎｅｂｒｉｏｉｄｅｓ  ｍａｕｒｅｔａｎｉｃｕｓ）、トリボリウム属（Ｔｒｉｂｏｌｉｕｍ  ｓｐｐ．）、トロゴデルマ属（Ｔｒｏｇｏｄｅｒｍａ  ｓｐｐ．）、チキウス属（Ｔｙｃｈｉｕｓ  ｓｐｐ．）、キシロトレクス属（Ｘｙｌｏｔｒｅｃｈｕｓ  ｓｐｐ．）又はザブルス属（Ｚａｂｒｕｓ  ｓｐｐ．）である。
【００８１】
いくつかの例では、昆虫は、ハエ目（Ｄｉｐｔｅｒａ）のものであり、例えばアエデス属種（Ａｅｄｅｓ  ｓｐｐ．）、アグロミザ属（Ａｇｒｏｍｙｚａ  ｓｐｐ．）、アナストレファ属（Ａｎａｓｔｒｅｐｈａ  ｓｐｐ．）、アノフェレス属（Ａｎｏｐｈｅｌｅｓ  ｓｐｐ．）、アスホンジリア属（Ａｓｐｈｏｎｄｙｌｉａ  ｓｐｐ．）、バクトロセラ属（Ｂａｃｔｒｏｃｅｒａ  ｓｐｐ．）、ビビオ・ホルツラヌス（Ｂｉｂｉｏ  ｈｏｒｔｕｌａｎｕｓ）、カリホラ・エリトロセファラ（Ｃａｌｌｉｐｈｏｒａ  ｅｒｙｔｈｒｏｃｅｐｈａｌａ）、カリホラ・ビシナ（Ｃａｌｌｉｐｈｏｒａ  ｖｉｃｉｎａ）、セラチチス・カピタタ（Ｃｅｒａｔｉｔｉｓ  ｃａｐｉｔａｔａ）、キロノムス属（Ｃｈｉｒｏｎｏｍｕｓ  ｓｐｐ．）、クリソミア属（Ｃｈｒｙｓｏｍｙｉａ  ｓｐｐ．）、クリソプス属（Ｃｈｒｙｓｏｐｓ  ｓｐｐ．）、クリソゾナ・プルビアリス（Ｃｈｒｙｓｏｚｏｎａ  ｐｌｕｖｉａｌｉｓ）、コクリオミア属（Ｃｏｃｈｌｉｏｍｙｉａ  ｓｐｐ．）、コンタリニア属（Ｃｏｎｔａｒｉｎｉａ  ｓｐｐ．）、コルジロビア・アントロポファガ（Ｃｏｒｄｙｌｏｂｉａ  ａｎｔｈｒｏｐｏｐｈａｇａ）、クリコトプス・シルベストリス（Ｃｒｉｃｏｔｏｐｕｓ  ｓｙｌｖｅｓｔｒｉｓ）、クレキス属（Ｃｕｌｅｘ  ｓｐｐ．）、クリコイデス属（Ｃｕｌｉｃｏｉｄｅｓ  ｓｐｐ．）、クリセタ属（Ｃｕｌｉｓｅｔａ  ｓｐｐ．）、クテレブラ属（Ｃｕｔｅｒｅｂｒａ  ｓｐｐ．）、ダクス・オレアエ（Ｄａｃｕｓ  ｏｌｅａｅ）、ダシネウラ属（Ｄａｓｙｎｅｕｒａ  ｓｐｐ．）、デリア属（Ｄｅｌｉａ  ｓｐｐ．）、デルマトビア・ホミニス（Ｄｅｒｍａｔｏｂｉａ  ｈｏｍｉｎｉｓ）、ドロソフィラ属（Ｄｒｏｓｏｐｈｉｌａ  ｓｐｐ．）、エキノクネムス属（Ｅｃｈｉｎｏｃｎｅｍｕｓ  ｓｐｐ．）、ファンニア属（Ｆａｎｎｉａ  ｓｐｐ．）、ガステロフィルス属（Ｇａｓｔｅｒｏｐｈｉｌｕｓ  ｓｐｐ．）、グロッシナ属（Ｇｌｏｓｓｉｎａ  ｓｐｐ．）、ハエマトポタ属（Ｈａｅｍａｔｏｐｏｔａ  ｓｐｐ．）、ヒドレリア属（Ｈｙｄｒｅｌｌｉａ  ｓｐｐ．）、ヒドレリア・グリセオラ（Ｈｙｄｒｅｌｌｉａ  ｇｒｉｓｅｏｌａ）、ヒレミア属（Ｈｙｌｅｍｙａ  ｓｐｐ．）、ヒッポボスカ属（Ｈｉｐｐｏｂｏｓｃａ  ｓｐｐ．）、ヒポデルマ属（Ｈｙｐｏｄｅｒｍａ  ｓｐｐ．）、リリオミザ属（Ｌｉｒｉｏｍｙｚａ  ｓｐｐ．）、ルシリア属（Ｌｕｃｉｌｉａ  ｓｐｐ．）、ルトゾミイア属（Ｌｕｔｚｏｍｙｉａ  ｓｐｐ．）、マンソニア属種（Ｍａｎｓｏｎｉａ  ｓｐｐ．）、ムスカ属（Ｍｕｓｃａ  ｓｐｐ．）（例えば、ムスカ・ドメスチカ（Ｍｕｓｃａ  ｄｏｍｅｓｔｉｃａ））、オエストルス属（Ｏｅｓｔｒｕｓ  ｓｐｐ．）、オシネラ・フリト（Ｏｓｃｉｎｅｌｌａ  ｆｒｉｔ）、パラタニタルスス属（Ｐａｒａｔａｎｙｔａｒｓｕｓ  ｓｐｐ．）、パララウテルボルニエラ・スブシンクタ（Ｐａｒａｌａｕｔｅｒｂｏｒｎｉｅｌｌａ  ｓｕｂｃｉｎｃｔａ）、ペゴミイア属（Ｐｅｇｏｍｙｉａ  ｓｐｐ．）、フレボトムス属（Ｐｈｌｅｂｏｔｏｍｕｓ  ｓｐｐ．）、ホルビア属（Ｐｈｏｒｂｉａ  ｓｐｐ．）、ホルミア属（Ｐｈｏｒｍｉａ  ｓｐｐ．）、ピオフィラ・カセイ（Ｐｉｏｐｈｉｌａ  ｃａｓｅｉ）、プロジ���ロシス属（Ｐｒｏｄｉｐｌｏｓｉｓ  ｓｐｐ．）、プシラ・ロサエ（Ｐｓｉｌａ  ｒｏｓａｅ）、ラゴレチス属（Ｒｈａｇｏｌｅｔｉｓ  ｓｐｐ．）、サルコファガ属（Ｓａｒｃｏｐｈａｇａ  ｓｐｐ．）、シムリウム属（Ｓｉｍｕｌｉｕｍ  ｓｐｐ．）、ストモキス属（Ｓｔｏｍｏｘｙｓ  ｓｐｐ．）、タバヌス属（Ｔａｂａｎｕｓ  ｓｐｐ．）、テタノプス属（Ｔｅｔａｎｏｐｓ  ｓｐｐ．）、チプラ属（Ｔｉｐｕｌａ  ｓｐｐ．）である。
【００８２】
いくつかの例では、異翅亜目（Ｈｅｔｅｒｏｐｔｅｒａ）のものであり、例えばホソヘリカメムシ科（Ａｌｙｄｉｄａｅ）、アナサ・トリスチス（Ａｎａｓａ  ｔｒｉｓｔｉｓ）、アンテスチオプシス属（Ａｎｔｅｓｔｉｏｐｓｉｓ  ｓｐｐ．）、ボイセア属（Ｂｏｉｓｅａ  ｓｐｐ．）、ブリスス属（Ｂｌｉｓｓｕｓ  ｓｐｐ．）、カロコリス属（Ｃａｌｏｃｏｒｉｓ  ｓｐｐ．）、カムピロンマ・リビダ（Ｃａｍｐｙｌｏｍｍａ  ｌｉｖｉｄａ）、カベレリウス属（Ｃａｖｅｌｅｒｉｕｓ  ｓｐｐ．）、トコジラミ属（Ｃｉｍｅｘ  ｓｐｐ．）、コラリア属（Ｃｏｌｌａｒｉａ  ｓｐｐ．）、クレオンチアデス・ジルツス（Ｃｒｅｏｎｔｉａｄｅｓ  ｄｉｌｕｔｕｓ）、ダシヌス・ピペリス（Ｄａｓｙｎｕｓ  ｐｉｐｅｒｉｓ）、ジケロプス・フルカツス（Ｄｉｃｈｅｌｏｐｓ  ｆｕｒｃａｔｕｓ）、ジコノコリス・ヘウェッチ（Ｄｉｃｏｎｏｃｏｒｉｓ  ｈｅｗｅｔｔｉ）、ジスデルクス属（Ｄｙｓｄｅｒｃｕｓ  ｓｐｐ．）、エウスキスツス属（Ｅｕｓｃｈｉｓｔｕｓ  ｓｐｐ．）、エウリガステル属（Ｅｕｒｙｇａｓｔｅｒ  ｓｐｐ．）、ヘリオペルチス属（Ｈｅｌｉｏｐｅｌｔｉｓ  ｓｐｐ．）、ホルシアス・ノビレルス（Ｈｏｒｃｉａｓ  ｎｏｂｉｌｅｌｌｕｓ）、レプトコリサ属（Ｌｅｐｔｏｃｏｒｉｓａ  ｓｐｐ．）、レプトコリサ・バリコルニス（Ｌｅｐｔｏｃｏｒｉｓａ  ｖａｒｉｃｏｒｎｉｓ）、レプトグロッスス・フィロプス（Ｌｅｐｔｏｇｌｏｓｓｕｓ  ｐｈｙｌｌｏｐｕｓ）、リグス属（Ｌｙｇｕｓ  ｓｐｐ．）、マクロペス・エキスカバツス（Ｍａｃｒｏｐｅｓ  ｅｘｃａｖａｔｕｓ）、ミリダエ（Ｍｉｒｉｄａｅ）、モナロニオン・アトラツム（Ｍｏｎａｌｏｎｉｏｎ  ａｔｒａｔｕｍ）、ナザラ属（Ｎｅｚａｒａ  ｓｐｐ．）、オエバルス属（Ｏｅｂａｌｕｓ  ｓｐｐ．）、ペンタトミダエ（Ｐｅｎｔａｔｏｍｉｄａｅ）、ピエズマ・クアドラータ（Ｐｉｅｓｍａ  ｑｕａｄｒａｔａ）、ピエゾドラス属（Ｐｉｅｚｏｄｏｒｕｓ  ｓｐｐ．）、サルス属（Ｐｓａｌｌｕｓ  ｓｐｐ．）、シューダシスタ・ぺルセア（Ｐｓｅｕｄａｃｙｓｔａ  ｐｅｒｓｅａ）、ロドニウス属（Ｒｈｏｄｎｉｕｓ  ｓｐｐ．）、サールベルゲラ・シンギュラリス（Ｓａｈｌｂｅｒｇｅｌｌａ  ｓｉｎｇｕｌａｒｉｓ）、スカプトコリス・カスタネア（Ｓｃａｐｔｏｃｏｒｉｓ  ｃａｓｔａｎｅａ）、スコチノフォラ属（Ｓｃｏｔｉｎｏｐｈｏｒａ  ｓｐｐ．）、ステファニティス・ナシ（Ｓｔｅｐｈａｎｉｔｉｓ  ｎａｓｈｉ）、ティブラカ属（Ｔｉｂｒａｃａ  ｓｐｐ．）又はトリアトマ属（Ｔｒｉａｔｏｍａ  ｓｐｐ．）である。
【００８３】
いくつかの例では、昆虫は、ヨコバイ亜目（Ｈｏｍｏｐｔｅｒａ）のものであり、例えばアシジア・アカシアエバイレイアナエ（Ａｃｉｚｚｉａ  ａｃａｃｉａｅｂａｉｌｅｙａｎａｅ）、アシジア・ドドナエアエ（Ａｃｉｚｚｉａ  ｄｏｄｏｎａｅａｅ）、アシジア・ウンカトイデス（Ａｃｉｚｚｉａ  ｕｎｃａｔｏｉｄｅｓ）、アクリダ・ツリタ（Ａｃｒｉｄａ  ｔｕｒｒｉｔａ）、アシルトシポン属（Ａｃｙｒｔｈｏｓｉｐｏｎ  ｓｐｐ．）、アクロゴニア属（Ａｃｒｏｇｏｎｉａ  ｓｐｐ．）、アエネオラミア属（Ａｅｎｅｏｌａｍｉａ  ｓｐｐ．）、アゴノセナ属（Ａｇｏｎｏｓｃｅｎａ  ｓｐｐ．）、アレイロデス・プロレテラ（Ａｌｅｙｒｏｄｅｓ  ｐｒｏｌｅｔｅｌｌａ）、アレウロロブス・バロデンシス（Ａｌｅｕｒｏｌｏｂｕｓ  ｂａｒｏｄｅｎｓｉｓ）、アレウロトリクス・フロコスス（Ａｌｅｕｒｏｔｈｒｉｘｕｓ  ｆｌｏｃｃｏｓｕｓ）、アロカリダラ・マライエンシス（Ａｌｌｏｃａｒｉｄａｒａ  ｍａｌａｙｅｎｓｉｓ）、アムラスカ属（Ａｍｒａｓｃａ  ｓｐｐ．）、アヌラフィス・カルズイ（Ａｎｕｒａｐｈｉｓ  ｃａｒｄｕｉ）、アオニジエラ属（Ａｏｎｉｄｉｅｌｌａ  ｓｐｐ．）、アファノスチグマ・ピニ（Ａｐｈａｎｏｓｔｉｇｍａ  ｐｉｎｉ）、アフィス属（Ａｐｈｉｓ  ｓｐｐ．）（例えば、アピス・ゴシピイ（Ａｐｉｓ  ｇｏｓｓｙｐｉｉ））、アルボリジア・アピカリス（Ａｒｂｏｒｉｄｉａ  ａｐｉｃａｌｉｓ）、アリタイニラ属（Ａｒｙｔａｉｎｉｌｌａ  ｓｐｐ．）、アスピジエラ属（Ａｓｐｉｄｉｅｌｌａ  ｓｐｐ．）、アスピジオツス属（Ａｓｐｉｄｉｏｔｕｓ  ｓｐｐ．）、アタヌス属（Ａｔａｎｕｓ  ｓｐｐ．）、アウラコルツム・ソラニ（Ａｕｌａｃｏｒｔｈｕｍ  ｓｏｌａｎｉ）、ベミシア・タバシ（Ｂｅｍｉｓｉａ  ｔａｂａｃｉ）、ブラストプシラ・オキシデンタリス（Ｂｌａｓｔｏｐｓｙｌｌａ  ｏｃｃｉｄｅｎｔａｌｉｓ）、ボレイオグリカスピス・メラレウカエ（Ｂｏｒｅｉｏｇｌｙｃａｓｐｉｓ  ｍｅｌａｌｅｕｃａｅ）、ブラキカウズス・ヘリクリシ（Ｂｒａｃｈｙｃａｕｄｕｓ  ｈｅｌｉｃｈｒｙｓｉ）、ブラキコルス属（Ｂｒａｃｈｙｃｏｌｕｓ  ｓｐｐ．）、ブレビコリネ・ブラシカエ（Ｂｒｅｖｉｃｏｒｙｎｅ  ｂｒａｓｓｉｃａｅ）、カコプシラ属（Ｃａｃｏｐｓｙｌｌａ  ｓｐｐ．）、カリギポナ・マルギナタ（Ｃａｌｌｉｇｙｐｏｎａ  ｍａｒｇｉｎａｔａ）、カルネオセファラ・フルギダ（Ｃａｒｎｅｏｃｅｐｈａｌａ  ｆｕｌｇｉｄａ）、セラトバクナ・ラニゲラ（Ｃｅｒａｔｏｖａｃｕｎａ  ｌａｎｉｇｅｒａ）、セルコピダエ（Ｃｅｒｃｏｐｉｄａｅ）、セロプラステス属（Ｃｅｒｏｐｌａｓｔｅｓ  ｓｐｐ．）、カエトシホン・フラガエホリイ（Ｃｈａｅｔｏｓｉｐｈｏｎ  ｆｒａｇａｅｆｏｌｉｉ）、キオナスピス・テガレンシス（Ｃｈｉｏｎａｓｐｉｓ  ｔｅｇａｌｅｎｓｉｓ）、クロリタ・オヌキイ（Ｃｈｌｏｒｉｔａ  ｏｎｕｋｉｉ）、コンドラクリス・ロセア（Ｃｈｏｎｄｒａｃｒｉｓ  ｒｏｓｅａ）、クロマフィス・ジュグランジコラ（Ｃｈｒｏｍａｐｈｉｓ  ｊｕｇｌａｎｄｉｃｏｌａ）、クリソムファルス・フィクス（Ｃｈｒｙｓｏｍｐｈａｌｕｓ  ｆｉｃｕｓ）、シカズリナ・ムビラ（Ｃｉｃａｄｕｌｉｎａ  ｍｂｉｌａ）、コッコミチルス・ハリイ（Ｃｏｃｃｏｍｙｔｉｌｕｓ  ｈａｌｌｉ）、コックス属（Ｃｏｃｃｕｓ  ｓｐｐ．）、クリプトミズス・リビス（Ｃｒｙｐｔｏｍｙｚｕｓ  ｒｉｂｉｓ）、クリプトネオサ属（Ｃｒｙｐｔｏｎｅｏｓｓａ  ｓｐｐ．）、クテナリタイナ属（Ｃｔｅｎａｒｙｔａｉｎａ  ｓｐｐ．）、ダルブルス属（Ｄａｌｂｕｌｕｓ  ｓｐｐ．）、ジアレウロデス・キテンデニ（Ｄｉａｌｅｕｒｏｄｅｓ  ｃｉｔｒｉ）、ジアレウロデス・シトリ（Ｄｉａｐｈｏｒｉｎａ  ｃｉｔｒｉ）、ジアスピス属（Ｄｉａｓｐｉｓ  ｓｐｐ．）、ドロシカ属（Ｄｒｏｓｉｃｈａ  ｓｐｐ．）、ジサフィス属（Ｄｙｓａｐｈｉｓ  ｓｐｐ．）、ジスミコックス属（Ｄｙｓｍｉｃｏｃｃｕｓ  ｓｐｐ．）、エムポアスカ属（Ｅｍｐｏａｓｃａ  ｓｐｐ．）、エリオソマ属（Ｅｒｉｏｓｏｍａ  ｓｐｐ．）、エリトロネウラ属（Ｅｒｙｔｈｒｏｎｅｕｒａ  ｓｐｐ．）、エウカリプトリマ属（Ｅｕｃａｌｙｐｔｏｌｙｍａ  ｓｐｐ．）、エウフィルラ属（Ｅｕｐｈｙｌｌｕｒａ  ｓｐｐ．）、エウセリス・ビロバツス（Ｅｕｓｃｅｌｉｓ  ｂｉｌｏｂａｔｕｓ）、フェリシア属（Ｆｅｒｒｉｓｉａ  ｓｐｐ．）、ゲオコックス・コフェアエ（Ｇｅｏｃｏｃｃｕｓ  ｃｏｆｆｅａｅ）、グリカスピス属（Ｇｌｙｃａｓｐｉｓ  ｓｐｐ．）、ヘテロプシラ・クバナ（Ｈｅｔｅｒｏｐｓｙｌｌａ  ｃｕｂａｎａ）、ヘテロプシラ・スピヌロサ（Ｈｅｔｅｒｏｐｓｙｌｌａ  ｓｐｉｎｕｌｏｓａ）、ホマロジスカ・コアグラタ（Ｈｏｍａｌｏｄｉｓｃａ  ｃｏａｇｕｌａｔａ）、ホマロジスカ・ビトリペンニス（Ｈｏｍａｌｏｄｉｓｃａ  ｖｉｔｒｉｐｅｎｎｉｓ）、ヒアロプテルス・アルンジニス（Ｈｙａｌｏｐｔｅｒｕｓ  ａｒｕｎｄｉｎｉｓ）、イセリア属（Ｉｃｅｒｙａ  ｓｐｐ．）、イジオセルス属（Ｉｄｉｏｃｅｒｕｓ  ｓｐｐ．）、イジオスコプス属（Ｉｄｉｏｓｃｏｐｕｓ  ｓｐｐ．）、ラオデルファキス・ストリアテルス（Ｌａｏｄｅｌｐｈａｘ  ｓｔｒｉａｔｅｌｌｕｓ）、レカニウム属（Ｌｅｃａｎｉｕｍ  ｓｐｐ．）、レピドサフェス属（Ｌｅｐｉｄｏｓａｐｈｅｓ  ｓｐｐ．）、リパフィス・エリシミ（Ｌｉｐａｐｈｉｓ  ｅｒｙｓｉｍｉ）、マクロシフム属（Ｍａｃｒｏｓｉｐｈｕｍ  ｓｐｐ．）、マクロステレス・ファシフロンス（Ｍａｃｒｏｓｔｅｌｅｓ  ｆａｃｉｆｒｏｎｓ）、マハナルバ属（Ｍａｈａｎａｒｖａ  ｓｐｐ．）、メラナフィス・サッカリ（Ｍｅｌａｎａｐｈｉｓ  ｓａｃｃｈａｒｉ）、メトカルフィエラ属（Ｍｅｔｃａｌｆｉｅｌｌａ  ｓｐｐ．）、メトポロフィウム・ジロズム（Ｍｅｔｏｐｏｌｏｐｈｉｕｍ  ｄｉｒｈｏｄｕｍ）、モネリア・コスタリス（Ｍｏｎｅｌｌｉａ  ｃｏｓｔａｌｉｓ）、モネリオプシス・ペカニス（Ｍｏｎｅｌｌｉｏｐｓｉｓ  ｐｅｃａｎｉｓ）、ミズス属（Ｍｙｚｕｓ  ｓｐｐ．）、ナソノビア・リビスニグリ（Ｎａｓｏｎｏｖｉａ  ｒｉｂｉｓｎｉｇｒｉ）、ネホテッチキス属（Ｎｅｐｈｏｔｅｔｔｉｘ  ｓｐｐ．）、ネチゴニセラ・スペクトラ（Ｎｅｔｔｉｇｏｎｉｃｌｌａ  ｓｐｅｃｔｒａ）、ニラパルバタ・ルゲンス（Ｎｉｌａｐａｒｖａｔａ  ｌｕｇｅｎｓ）、オンコメトピア属（Ｏｎｃｏｍｅｔｏｐｉａ  ｓｐｐ．）、オルテジア・プラエロンガ（Ｏｒｔｈｅｚｉａ  ｐｒａｅｌｏｎｇａ）、オキシヤ・キネンシス（Ｏｘｙａ  ｃｈｉｎｅｎｓｉｓ）、パキプシラ属（Ｐａｃｈｙｐｓｙｌｌａ  ｓｐｐ．）、パラベミシア・ミリカエ（Ｐａｒａｂｅｍｉｓｉａ  ｍｙｒｉｃａｅ）、パラトリオザ属（Ｐａｒａｔｒｉｏｚａ  ｓｐｐ．）、パルラトリア属（Ｐａｒｌａｔｏｒｉａ  ｓｐｐ．）、ペムフィグス属（Ｐｅｍｐｈｉｇｕｓ  ｓｐｐ．）、ペレグリヌス・マイジス（Ｐｅｒｅｇｒｉｎｕｓ  ｍａｉｄｉｓ）、フェナコックス属（Ｐｈｅｎａｃｏｃｃｕｓ  ｓｐｐ．）、フロエオミズス・パッセリニイ（Ｐｈｌｏｅｏｍｙｚｕｓ  ｐａｓｓｅｒｉｎｉｉ）、ホロドン・フムリ（Ｐｈｏｒｏｄｏｎ  ｈｕｍｕｌｉ）、フィロキセラ属（Ｐｈｙｌｌｏｘｅｒａ  ｓｐｐ．）、ピンナスピス・アスピジストラエ（Ｐｉｎｎａｓｐｉｓ  ａｓｐｉｄｉｓｔｒａｅ）、プラノコックス属（Ｐｌａｎｏｃｏｃｃｕｓ  ｓｐｐ．）、プロソピドプシラ・フラバ（Ｐｒｏｓｏｐｉｄｏｐｓｙｌｌａ  ｆｌａｖａ）、プロトプルビナリア・ピリホルミス（Ｐｒｏｔｏｐｕｌｖｉｎａｒｉａ  ｐｙｒｉｆｏｒｍｉｓ）、プセウダウラカスピス・ペンタゴナ（Ｐｓｅｕｄａｕｌａｃａｓｐｉｓ  ｐｅｎｔａｇｏｎａ）、プセウドコックス属（Ｐｓｅｕｄｏｃｏｃｃｕｓ  ｓｐｐ．）、プシロプシス属（Ｐｓｙｌｌｏｐｓｉｓ  ｓｐｐ．）、プシラ属（Ｐｓｙｌｌａ  ｓｐｐ．）、プテロマルス属（Ｐｔｅｒｏｍａｌｕｓ  ｓｐｐ．）、ピリラ属（Ｐｙｒｉｌｌａ  ｓｐｐ．）、クアドラスピジオツス属（Ｑｕａｄｒａｓｐｉｄｉｏｔｕｓ  ｓｐｐ．）、クエサダ・ギガス（Ｑｕｅｓａｄａ  ｇｉｇａｓ）、ラストロコックス属（Ｒａｓｔｒｏｃｏｃｃｕｓ  ｓｐｐ．）、ロパロシフム属（Ｒｈｏｐａｌｏｓｉｐｈｕｍ  ｓｐｐ．）、サイセチア属（Ｓａｉｓｓｅｔｉａ  ｓｐｐ．）、スカホイデウス・チタヌス（Ｓｃａｐｈｏｉｄｅｕｓ  ｔｉｔａｎｕｓ）、スキザフィス・グラミヌム（Ｓｃｈｉｚａｐｈｉｓ  ｇｒａｍｉｎｕｍ）、セレナスピズス・アルチクラツス（Ｓｅｌｅｎａｓｐｉｄｕｓ  ａｒｔｉｃｕｌａｔｕｓ）、ソガタ属（Ｓｏｇａｔａ  ｓｐｐ．）、ソガテラ・フルシフェラ（Ｓｏｇａｔｅｌｌａ  ｆｕｒｃｉｆｅｒａ）、ソガトデス属（Ｓｏｇａｔｏｄｅｓ  ｓｐｐ．）、スチクトセファラ・フェスチナ（Ｓｔｉｃｔｏｃｅｐｈａｌａ  ｆｅｓｔｉｎａ）、シホニヌス・フィリレアエ（Ｓｉｐｈｏｎｉｎｕｓ  ｐｈｉｌｌｙｒｅａｅ）、テナラファラ・マライエンシス（Ｔｅｎａｌａｐｈａｒａ  ｍａｌａｙｅｎｓｉｓ）、テトラゴノセフェラ属（Ｔｅｔｒａｇｏｎｏｃｅｐｈｅｌａ  ｓｐｐ．）、チノカリス・カリアエホリアエ（Ｔｉｎｏｃａｌｌｉｓ  ｃａｒｙａｅｆｏｌｉａｅ）、トマスピス属（Ｔｏｍａｓｐｉｓ  ｓｐｐ．）、トキソプテラ属（Ｔｏｘｏｐｔｅｒａ  ｓｐｐ．）、トリアレウロデス・バポラリオルム（Ｔｒｉａｌｅｕｒｏｄｅｓ  ｖａｐｏｒａｒｉｏｒｕｍ）、トリオザ属（Ｔｒｉｏｚａ  ｓｐｐ．）、チフロシバ属種（Ｔｙｐｈｌｏｃｙｂａ  ｓｐｐ．）、ウナスピス属（Ｕｎａｓｐｉｓ  ｓｐｐ．）、ビテウス・ビチホリイ（Ｖｉｔｅｕｓ  ｖｉｔｉｆｏｌｉｉ）又はジギナ属（Ｚｙｇｉｎａ  ｓｐｐ．）である。
【００８４】
いくつかの例では、昆虫は、ハチ目（Ｈｙｍｅｎｏｐｔｅｒａ）、例えばアクロミルメキス属（Ａｃｒｏｍｙｒｍｅｘ  ｓｐｐ．）、アタリア属（Ａｔｈａｌｉａ  ｓｐｐ．）、アッタ属（Ａｔｔａ  ｓｐｐ．）、ジプリオン属（Ｄｉｐｒｉｏｎ  ｓｐｐ．）、ホプロカムパ属（Ｈｏｐｌｏｃａｍｐａ  ｓｐｐ．）、ラシウス属（Ｌａｓｉｕｓ  ｓｐｐ．）、モノモリウム・ファラオニス（Ｍｏｎｏｍｏｒｉｕｍ  ｐｈａｒａｏｎｉｓ）、シレキス属（Ｓｉｒｅｘ  ｓｐｐ．）、ソレノプシス・インビクタ（Ｓｏｌｅｎｏｐｓｉｓ  ｉｎｖｉｃｔａ）、タピノマ属（Ｔａｐｉｎｏｍａ  ｓｐｐ．）、ウロセルス属（Ｕｒｏｃｅｒｕｓ  ｓｐｐ．）、ベスパ属（Ｖｅｓｐａ  ｓｐｐ．）、キセリス属（Ｘｅｒｉｓ  ｓｐｐ．）のものである。
【００８５】
いくつかの例では、昆虫は、ワラジムシ目（Ｉｓｏｐｏｄａ）のものであり、例えばアルマジリジウム・ブルガレ（Ａｒｍａｄｉｌｌｉｄｉｕｍ  ｖｕｌｇａｒｅ）、オニスクス・アセルス（Ｏｎｉｓｃｕｓ  ａｓｅｌｌｕｓ）又はポルセリオ・スカベル（Ｐｏｒｃｅｌｌｉｏ  ｓｃａｂｅｒ）である。
【００８６】
いくつかの例では、昆虫は、シロアリ目（Ｉｓｏｐｔｅｒａ）のものであり、例えばコプトテルメス属（Ｃｏｐｔｏｔｅｒｍｅｓ  ｓｐｐ．）、コルニテルメス・クムランス（Ｃｏｒｎｉｔｅｒｍｅｓ  ｃｕｍｕｌａｎｓ）、クリプトテルメス属（Ｃｒｙｐｔｏｔｅｒｍｅｓ  ｓｐｐ．）、インシシテルメス属（Ｉｎｃｉｓｉｔｅｒｍｅｓ  ｓｐｐ．）、ミクロテルメス・オベシ（Ｍｉｃｒｏｔｅｒｍｅｓ  ｏｂｅｓｉ）、オドントテルメス属（Ｏｄｏｎｔｏｔｅｒｍｅｓ  ｓｐｐ．）、レチクリテルメス属（Ｒｅｔｉｃｕｌｉｔｅｒｍｅｓ  ｓｐｐ．）である。
【００８７】
いくつかの例では、昆虫は、チョウ目（Ｌｅｐｉｄｏｐｔｅｒａ）のものであり、例えばアクロイア・グリセラ（Ａｃｈｒｏｉａ  ｇｒｉｓｅｌｌａ）、アクロニクタ・マジョル（Ａｃｒｏｎｉｃｔａ  ｍａｊｏｒ）、アドキソフィエス属（Ａｄｏｘｏｐｈｙｅｓ  ｓｐｐ．）、アエジア・レウコメラス（Ａｅｄｉａ  ｌｅｕｃｏｍｅｌａｓ）、アグロチス属（Ａｇｒｏｔｉｓ  ｓｐｐ．）、アラバマ属（Ａｌａｂａｍａ  ｓｐｐ．）、アミエロイス・トランシテラ（Ａｍｙｅｌｏｉｓ  ｔｒａｎｓｉｔｅｌｌａ）、アナルシア属（Ａｎａｒｓｉａ  ｓｐｐ．）、アンチカルシア属（Ａｎｔｉｃａｒｓｉａ  ｓｐｐ．）、アルギロプロセ属（Ａｒｇｙｒｏｐｌｏｃｅ  ｓｐｐ．）、バラトラ・ブラシカエ（Ｂａｒａｔｈｒａ  ｂｒａｓｓｉｃａｅ）、ボルボ・シンナラ（Ｂｏｒｂｏ  ｃｉｎｎａｒａ）、ブックラトリキス・ツルベリエラ（Ｂｕｃｃｕｌａｔｒｉｘ  ｔｈｕｒｂｅｒｉｅｌｌａ）、ブパルス・ピニアリウス（Ｂｕｐａｌｕｓ  ｐｉｎｉａｒｉｕｓ）、ブッセオラ属（Ｂｕｓｓｅｏｌａ  ｓｐｐ．）、カコエシア属（Ｃａｃｏｅｃｉａ  ｓｐｐ．）、カロプチリア・テイボラ（Ｃａｌｏｐｔｉｌｉａ  ｔｈｅｉｖｏｒａ）、カプア・レチクラナ（Ｃａｐｕａ  ｒｅｔｉｃｕｌａｎａ）、カルポカプサ・ポモネラ（Ｃａｒｐｏｃａｐｓａ  ｐｏｍｏｎｅｌｌａ）、カルポシナ・ニポネンシス（Ｃａｒｐｏｓｉｎａ  ｎｉｐｏｎｅｎｓｉｓ）、ケイマトビア・ブルマタ（Ｃｈｅｉｍａｔｏｂｉａ  ｂｒｕｍａｔａ）、キロ属（Ｃｈｉｌｏ  ｓｐｐ．）、コリストネウラ属（Ｃｈｏｒｉｓｔｏｎｅｕｒａ  ｓｐｐ．）、クリシア・アムビグエラ（Ｃｌｙｓｉａ  ａｍｂｉｇｕｅｌｌａ）、クナファロセルス属（Ｃｎａｐｈａｌｏｃｅｒｕｓ  ｓｐｐ．）、クナファロクロシス・メジナリス（Ｃｎａｐｈａｌｏｃｒｏｃｉｓ  ｍｅｄｉｎａｌｉｓ）、クネファシア属（Ｃｎｅｐｈａｓｉａ  ｓｐｐ．）、コノポモルファ属（Ｃｏｎｏｐｏｍｏｒｐｈａ  ｓｐｐ．）、コノトラケルス属（Ｃｏｎｏｔｒａｃｈｅｌｕｓ  ｓｐｐ．）、コピタルシア属（Ｃｏｐｉｔａｒｓｉａ  ｓｐｐ．）、シジア属（Ｃｙｄｉａ  ｓｐｐ．）、ダラカ・ノクツイデス（Ｄａｌａｃａ  ｎｏｃｔｕｉｄｅｓ）、ジアファニア属（Ｄｉａｐｈａｎｉａ  ｓｐｐ．）、ジアトラエア・サッカラリス（Ｄｉａｔｒａｅａ  ｓａｃｃｈａｒａｌｉｓ）、エアリアス属（Ｅａｒｉａｓ  ｓｐｐ．）、エクジトロファ・アウランチウム（Ｅｃｄｙｔｏｌｏｐｈａ  ａｕｒａｎｔｉｕｍ）、エラスモパルプス・リグノセルス（Ｅｌａｓｍｏｐａｌｐｕｓ  ｌｉｇｎｏｓｅｌｌｕｓ）、エルダナ・サッカリナ（Ｅｌｄａｎａ  ｓａｃｃｈａｒｉｎａ）、エフェスチア属（Ｅｐｈｅｓｔｉａ  ｓｐｐ．）、エピノチア属（Ｅｐｉｎｏｔｉａ  ｓｐｐ．）、エピフィアス・ポストビッタナ（Ｅｐｉｐｈｙａｓ  ｐｏｓｔｖｉｔｔａｎａ）、エチエラ属（Ｅｔｉｅｌｌａ  ｓｐｐ．）、エウリア属（Ｅｕｌｉａ  ｓｐｐ．）、エウポエシリア・アムビグエラ（Ｅｕｐｏｅｃｉｌｉａ  ａｍｂｉｇｕｅｌｌａ）、エウプロクチス属（Ｅｕｐｒｏｃｔｉｓ  ｓｐｐ．）、エウキソア属（Ｅｕｘｏａ  ｓｐｐ．）、フェルチア属（Ｆｅｌｔｉａ  ｓｐｐ．）、ガレリア・メロネラ（Ｇａｌｌｅｒｉａ  ｍｅｌｌｏｎｅｌｌａ）、グラシラリア属（Ｇｒａｃｉｌｌａｒｉａ  ｓｐｐ．）、グラホリタ属（Ｇｒａｐｈｏｌｉｔｈａ  ｓｐｐ．）、ヘジレプタ属（Ｈｅｄｙｌｅｐｔａ  ｓｐｐ．）、ヘリコベルパ属（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ  ｓｐｐ．）、ヘリオチス属（Ｈｅｌｉｏｔｈｉｓ  ｓｐｐ．）、ホフマンノフィラ・プセウドスプレテラ（Ｈｏｆｍａｎｎｏｐｈｉｌａ  ｐｓｅｕｄｏｓｐｒｅｔｅｌｌａ）、ホモエオソマ属（Ｈｏｍｏｅｏｓｏｍａ  ｓｐｐ．）、ホモナ属（Ｈｏｍｏｎａ  ｓｐｐ．）、ヒポノメウタ・パデラ（Ｈｙｐｏｎｏｍｅｕｔａ  ｐａｄｅｌｌａ）、カキボリア・フラボファシアタ（Ｋａｋｉｖｏｒｉａ  ｆｌａｖｏｆａｓｃｉａｔａ）、ラフィグマ属（Ｌａｐｈｙｇｍａ  ｓｐｐ．）、ラスペイレシア・モレスタ（Ｌａｓｐｅｙｒｅｓｉａ  ｍｏｌｅｓｔａ）、レウシノデス・オルボナリス（Ｌｅｕｃｉｎｏｄｅｓ  ｏｒｂｏｎａｌｉｓ）、レウコプテラ属（Ｌｅｕｃｏｐｔｅｒａ  ｓｐｐ．）、リトコレチス属（Ｌｉｔｈｏｃｏｌｌｅｔｉｓ  ｓｐｐ．）、リトファネ・アンテンナタ（Ｌｉｔｈｏｐｈａｎｅ  ａｎｔｅｎｎａｔａ）、ロベシア属（Ｌｏｂｅｓｉａ  ｓｐｐ．）、ロキサグロチス・アルビコスタ（Ｌｏｘａｇｒｏｔｉｓ  ａｌｂｉｃｏｓｔａ）、リマントリア属（Ｌｙｍａｎｔｒｉａ  ｓｐｐ．）、リオネチア属（Ｌｙｏｎｅｔｉａ  ｓｐｐ．）、マラコソマ・ネウストリア（Ｍａｌａｃｏｓｏｍａ  ｎｅｕｓｔｒｉａ）、マルカ・テスツラリス（Ｍａｒｕｃａ  ｔｅｓｔｕｌａｌｉｓ）、マムストラ・ブラシカエ（Ｍａｍｓｔｒａ  ｂｒａｓｓｉｃａｅ）、メラニチス・レダ（Ｍｅｌａｎｉｔｉｓ  ｌｅｄａ）、モシス属（Ｍｏｃｉｓ  ｓｐｐ．）、モノピス・オブビエラ（Ｍｏｎｏｐｉｓ  ｏｂｖｉｅｌｌａ）、ミチムナ・セパラタ（Ｍｙｔｈｉｍｎａ  ｓｅｐａｒａｔａ）、ネマポゴン・クロアセルス（Ｎｅｍａｐｏｇｏｎ  ｃｌｏａｃｅｌｌｕｓ）、ニムフラ属（Ｎｙｍｐｈｕｌａ  ｓｐｐ．）、オイケチクス属（Ｏｉｋｅｔｉｃｕｓ  ｓｐｐ．）、オリア属（Ｏｒｉａ  ｓｐｐ．）、オルタガ属（Ｏｒｔｈａｇａ  ｓｐｐ．）、オストリニア属（Ｏｓｔｒｉｎｉａ  ｓｐｐ．）、オウレマ・オリザエ（Ｏｕｌｅｍａ  ｏｒｙｚａｅ）、パノリス・フランメア（Ｐａｎｏｌｉｓ  ｆｌａｍｍｅａ）、パルナラ属種（Ｐａｒｎａｒａ  ｓｐｐ．）、ペクチノホラ属（Ｐｅｃｔｉｎｏｐｈｏｒａ  ｓｐｐ．）、ペリレウコプテラ属（Ｐｅｒｉｌｅｕｃｏｐｔｅｒａ  ｓｐｐ．）、フトリマエア属（Ｐｈｔｈｏｒｉｍａｅａ  ｓｐｐ．）、フィロクニスチス・シトレラ（Ｐｈｙｌｌｏｃｎｉｓｔｉｓ  ｃｉｔｒｅｌｌａ）、フィロノリクテル属（Ｐｈｙｌｌｏｎｏｒｙｃｔｅｒ  ｓｐｐ．）、ピエリス属（Ｐｉｅｒｉｓ  ｓｐｐ．）、プラチノタ・スツルタナ（Ｐｌａｔｙｎｏｔａ  ｓｔｕｌｔａｎａ）、プロジア・インテルプンクテラ（Ｐｌｏｄｉａ  ｉｎｔｅｒｐｕｎｃｔｅｌｌａ）、プルシア属（Ｐｌｕｓｉａ  ｓｐｐ．）、プルテラ・キシロステラ（Ｐｌｕｔｅｌｌａ  ｘｙｌｏｓｔｅｌｌａ）、プライス属（Ｐｒａｙｓ  ｓｐｐ．）、プロデニア属（Ｐｒｏｄｅｎｉａ  ｓｐｐ．）、プロトパルセ属（Ｐｒｏｔｏｐａｒｃｅ  ｓｐｐ．）、プセウダレチア属（Ｐｓｅｕｄａｌｅｔｉａ  ｓｐｐ．）、プセウダレチア・ウニプン��タ（Ｐｓｅｕｄａｌｅｔｉａ  ｕｎｉｐｕｎｃｔａ）、プセウドプルシア・インクルデンス（Ｐｓｅｕｄｏｐｌｕｓｉａ  ｉｎｃｌｕｄｅｎｓ）、ピラウスタ・ヌビラリス（Ｐｙｒａｕｓｔａ  ｎｕｂｉｌａｌｉｓ）、ラキプルシア・ヌ（Ｒａｃｈｉｐｌｕｓｉａ  ｎｕ）、スコエノビウス属（Ｓｃｈｏｅｎｏｂｉｕｓ  ｓｐｐ．）、シルポファガ属（Ｓｃｉｒｐｏｐｈａｇａ  ｓｐｐ．）、シルポファガ・インノタタ（Ｓｃｉｒｐｏｐｈａｇａ  ｉｎｎｏｔａｔａ）、スコチア・セゲツム（Ｓｃｏｔｉａ  ｓｅｇｅｔｕｍ）、セサミア属（Ｓｅｓａｍｉａ  ｓｐｐ．）、セサミア・インフェレンス（Ｓｅｓａｍｉａ  ｉｎｆｅｒｅｎｓ）、スパルガノチス属（Ｓｐａｒｇａｎｏｔｈｉｓ  ｓｐｐ．）、スポドプテラ属（Ｓｐｏｄｏｐｔｅｒａ  ｓｐｐ．）、スポドプテラ・プラエフィカ（Ｓｐｏｄｏｐｔｅｒａ  ｐｒａｅｆｉｃａ）、スタトモポダ属（Ｓｔａｔｈｍｏｐｏｄａ  ｓｐｐ．）、ストモプテリキス・スブセシベラ（Ｓｔｏｍｏｐｔｅｒｙｘ  ｓｕｂｓｅｃｉｖｅｌｌａ）、シナンテドン属（Ｓｙｎａｎｔｈｅｄｏｎ  ｓｐｐ．）、テシア・ソラニボラ（Ｔｅｃｉａ  ｓｏｌａｎｉｖｏｒａ）、テルメシア・ゲンマタリス（Ｔｈｅｒｍｅｓｉａ  ｇｅｍｍａｔａｌｉｓ）、チネア・クロアセラ（Ｔｉｎｅａ  ｃｌｏａｃｅｌｌａ）、チネア・ペリオネラ（Ｔｉｎｅａ  ｐｅｌｌｉｏｎｅｌｌａ）、チネオラ・ビッセリエラ（Ｔｉｎｅｏｌａ  ｂｉｓｓｅｌｌｉｅｌｌａ）、トルトリキス属（Ｔｏｒｔｒｉｘ  ｓｐｐ．）、トリコファガ・タペトゼラ（Ｔｒｉｃｈｏｐｈａｇａ  ｔａｐｅｔｚｅｌｌａ）、トリコプルシア属（Ｔｒｉｃｈｏｐｌｕｓｉａ  ｓｐｐ．）、トリポリザ・インセルツラス（Ｔｒｙｐｏｒｙｚａ  ｉｎｃｅｒｔｕｌａｓ）、ツタ・アブソルタ（Ｔｕｔａ  ａｂｓｏｌｕｔａ）又はビラコラ属（Ｖｉｒａｃｈｏｌａ  ｓｐｐ．）である。
【００８８】
いくつかの例では、昆虫は、バッタ目（Ｏｒｔｈｏｐｔｅｒａ）又は跳躍目（Ｓａｌｔａｔｏｒｉａ）のものであり、例えばアケタ・ドメスチクス（Ａｃｈｅｔａ  ｄｏｍｅｓｔｉｃｕｓ）、ジクロプルス属（Ｄｉｃｈｒｏｐｌｕｓ  ｓｐｐ．）、グリロタルパ属（Ｇｒｙｌｌｏｔａｌｐａ  ｓｐｐ．）、ヒエログリフス属（Ｈｉｅｒｏｇｌｙｐｈｕｓ  ｓｐｐ．）、ロクスタ属（Ｌｏｃｕｓｔａ  ｓｐｐ．）、メラノプルス属（Ｍｅｌａｎｏｐｌｕｓ  ｓｐｐ．）又はスキストセルカ・グレガリア（Ｓｃｈｉｓｔｏｃｅｒｃａ  ｇｒｅｇａｒｉａ）である。
【００８９】
いくつかの例では、昆虫は、シラミ目（Ｐｈｔｈｉｒａｐｔｅｒａ）のものであり、例えばダマリニア属種（Ｄａｍａｌｉｎｉａ  ｓｐｐ．）、ハエマトピヌス属（Ｈａｅｍａｔｏｐｉｎｕｓ  ｓｐｐ．）、リノグナツス属（Ｌｉｎｏｇｎａｔｈｕｓ  ｓｐｐ．）、ペジクルス属（Ｐｅｄｉｃｕｌｕｓ  ｓｐｐ．）、プチルス・プビス（Ｐｔｉｒｕｓ  ｐｕｂｉｓ）又はトリコデクテス属（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｃｔｅｓ  ｓｐｐ．）である。
【００９０】
いくつかの例では、昆虫は、チャタテムシ目（Ｐｓｏｃｏｐｔｅｒａ）のものであり、例えばレピナツス属（Ｌｅｐｉｎａｔｕｓ  ｓｐｐ．）又はリポセリス属（Ｌｉｐｏｓｃｅｌｉｓ  ｓｐｐ．）である。
【００９１】
いくつかの例では、昆虫は、ノミ目（Ｓｉｐｈｏｎａｐｔｅｒａ）のものであり、例えばセラトフィルス属（Ｃｅｒａｔｏｐｈｙｌｌｕｓ  ｓｐｐ．）、クテノセファリデス属（Ｃｔｅｎｏｃｅｐｈａｌｉｄｅｓ  ｓｐｐ．）、プレキス・イリタンス（Ｐｕｌｅｘ  ｉｒｒｉｔａｎｓ）、ツンガ・ペネトランス（Ｔｕｎｇａ  ｐｅｎｅｔｒａｎｓ）又はキセノプシラ・ケオプシス（Ｘｅｎｏｐｓｙｌｌａ  ｃｈｅｏｐｓｉｓ）である。
【００９２】
いくつかの例では、昆虫は、アザミウマ目（Ｔｈｙｓａｎｏｐｔｅｒａ）のものであり、例えばアナホトリプス・オブスクルス（Ａｎａｐｈｏｔｈｒｉｐｓ  ｏｂｓｃｕｒｕｓ）、バリオトリプス・ビホルミス（Ｂａｌｉｏｔｈｒｉｐｓ  ｂｉｆｏｒｍｉｓ）、ドレパノトリプス・レウテリ（Ｄｒｅｐａｎｏｔｈｒｉｐｓ  ｒｅｕｔｅｒｉ）、エンネオトリプス・フラベンス（Ｅｎｎｅｏｔｈｒｉｐｓ  ｆｌａｖｅｎｓ）、フランクリニエラ属（Ｆｒａｎｋｌｉｎｉｅｌｌａ  ｓｐｐ．）、ヘリオトリプス属（Ｈｅｌｉｏｔｈｒｉｐｓ  ｓｐｐ．）、ヘルシノトリプス・フェモラリス（Ｈｅｒｃｉｎｏｔｈｒｉｐｓ  ｆｅｍｏｒａｌｉｓ）、リピホロトリプス・クルエンタツス（Ｒｈｉｐｉｐｈｏｒｏｔｈｒｉｐｓ  ｃｒｕｅｎｔａｔｕｓ）、シルトトリプス属（Ｓｃｉｒｔｏｔｈｒｉｐｓ  ｓｐｐ．）、タエニノトリプス・カルダモミ（Ｔａｅｎｉｏｔｈｒｉｐｓ  ｃａｒｄａｍｏｍｉ）又はトリプス属（Ｔｈｒｉｐｓ  ｓｐｐ．）である。
【００９３】
いくつかの例では、昆虫は、シミ目（Ｚｙｇｅｎｔｏｍａ）（＝シミ目（Ｔｈｙｓａｎｕｒａ））のものであり、例えばクテノレピスマ属（Ｃｔｅｎｏｌｅｐｉｓｍａ  ｓｐｐ．）、レピスマ・サッカリナ（Ｌｅｐｉｓｍａ  ｓａｃｃｈａｒｉｎａ）、レスピモデス・インクイリヌス（Ｌｅｐｉｓｍｏｄｅｓ  ｉｎｑｕｉｌｉｎｕｓ）又はテルモビア・ドメスチカ（Ｔｈｅｒｍｏｂｉａ  ｄｏｍｅｓｔｉｃａ）である。
【００９４】
いくつかの例では、昆虫は、コムカデ綱（Ｓｙｍｐｈｙｌａ）のものであり、例えばスクチゲレラ属（Ｓｃｕｔｉｇｅｒｅｌｌａ  ｓｐｐ．）である。
【００９５】
いくつかの例では、昆虫は、ダニであり、限定はされないが、シクラメンホコリダニ（Ｐｈｙｔｏｎｅｍｕｓ  ｐａｌｌｉｄｕｓ）、チャノホコリダニ（Ｐｏｌｙｐｈａｇｏｔａｒｓｏｎｅｍｕｓ  ｌａｔｕｓ）、スジブトホコリダニ（Ｔａｒｓｏｎｅｍｕｓ  ｂｉｌｏｂａｔｕｓ）等のホコリダニ（Ｔａｒｓｏｎｅｍｉｄ  ｍｉｔｅ）；ハクサイダニ（Ｐｅｎｔｈａｌｅｕｓ  ｅｒｙｔｈｒｏｃｅｐｈａｌｕｓ）、ムギダニ（Ｐｅｎｔｈａｌｅｕｓ  ｍａｊｏｒ）等のユーポジドダニ（Ｅｕｐｏｄｉｄ  ｍｉｔｅ）；イネハダニ（Ｏｌｉｇｏｎｙｃｈｕｓ  ｓｈｉｎｋａｊｉｉ）、ミカンハダニ（Ｐａｎｏｎｙｃｈｕｓ  ｃｉｔｒｉ）、クワオオハダニ（Ｐａｎｏｎｙｃｈｕｓ  ｍｏｒｉ）、リンゴハダニ（Ｐａｎｏｎｙｃｈｕｓ  ｕｌｍｉ）、カンザワハダニ（Ｔｅｔｒａｎｙｃｈｕｓ  ｋａｎｚａｗａｉ）、ナミハダニ（Ｔｅｔｒａｎｙｃｈｕｓ  ｕｒｔｉｃａｅ）等のハダニ（Ｓｐｉｄｅｒ  ｍｉｔｅ）；チャノナガサビダニ（Ａｃａｐｈｙｌｌａ  ｔｈｅａｖａｇｒａｎｓ）、チューリップサビダニ（Ａｃｅｒｉａ  ｔｕｌｉｐａｅ）、トマトサビダニ（Ａｃｕｌｏｐｓ  ｌｙｃｏｐｅｒｓｉｃｉ）、ミカンサビダニ（Ａｃｕｌｏｐｓ  ｐｅｌｅｋａｓｓｉ）、リンゴサビダニ（Ａｃｕｌｕｓ  ｓｃｈｌｅｃｈｔｅｎｄａｌｉ）、ニセナシサビダニ（Ｅｒｉｏｐｈｙｅｓ  ｃｈｉｂａｅｎｓｉｓ）、シトラスラストマイト（Ｐｈｙｌｌｏｃｏｐｔｒｕｔａ  ｏｌｅｉｖｏｒａ）等のフシダニ（Ｅｒｉｏｐｈｙｉｄ  ｍｉｔｅ）；ロビンネダニ（Ｒｈｉｚｏｇｌｙｐｈｕｓ  ｒｏｂｉｎｉ）、ケナガコナダニ（Ｔｙｒｏｐｈａｇｕｓ  ｐｕｔｒｅｓｃｅｎｔｉａｅ）、ホウレンソウケナガコナダニ（Ｔｙｒｏｐｈａｇｕｓ  ｓｉｍｉｌｉｓ）等のコナダニ（Ａｃａｒｉｄ  ｍｉｔｅ）；ミツバチヘギイタダニ（Ｖａｒｒｏａ  ｊａｃｏｂｓｏｎｉ）、ミツバチヘギイタダニ（Ｖａｒｒｏａ  ｄｅｓｔｒｕｃｔｏｒ）等の蜂幼虫ダニ（Ｂｅｅ  ｂｒｏｏｄ  ｍｉｔｅ）；オウシマダニ（Ｂｏｏｐｈｉｌｕｓ  ｍｉｃｒｏｐｌｕｓ）、クリイロコイタマダニ（Ｒｈｉｐｉｃｅｐｈａｌｕｓ  ｓａｎｇｕｉｎｅｕｓ）、フタトゲチマダニ（Ｈａｅｍａｐｈｙｓａｌｉｓ  ｌｏｎｇｉｃｏｒｎｉｓ）、カタダニ（Ｈａｅｍｏｐｈｙｓａｌｉｓ  ｆｌａｖａ）、ツリガネチマダニ（Ｈａｅｍｏｐｈｙｓａｌｉｓ  ｃａｍｐａｎｕｌａｔａ）、ヤマトマダニ（Ｉｘｏｄｅｓ  ｏｖａｔｕｓ）、シュルツェマダニ（Ｉｘｏｄｅｓ  ｐｅｒｓｕｌｃａｔｕｓ）、キララマダニ属（Ａｍｂｌｙｏｍｍａ  ｓｐｐ．）、カクマダニ属（Ｄｅｒｍａｃｅｎｔｏｒ  ｓｐｐ．）等のマダニ（Ｉｘｏｄｉｄｅｓ）；イヌツメダニ（Ｃｈｅｙｌｅｔｉｅｌｌａ  ｙａｓｇｕｒｉ）、ネコツメダニ（Ｃｈｅｙｌｅｔｉｅｌｌａ  ｂｌａｋｅｉ）等のツメダニ科（Ｃｈｅｙｌｅｔｉｄａｅ）；イヌニキビダニ（Ｄｅｍｏｄｅｘ  ｃａｎｉｓ）、ネコニキビダニ（Ｄｅｍｏｄｅｘ  ｃａｔｉ）等のニキビダニ科（Ｄｅｍｏｄｉｃｉｄａｅ）；ヒツジキュウセンダニ（Ｐｓｏｒｏｐｔｅｓ  ｏｖｉｓ）等のキュウセンダニ科（Ｐｓｏｒｏｐｔｉｄａｅ）；ヒゼンダニ（Ｓａｒｃｏｐｔｅｓ  ｓｃａｂｉｅｉ）、ネコヒゼンダニ（Ｎｏｔｏｅｄｒｅｓ  ｃａｔｉ）、クネミドコプテス属（Ｋｎｅｍｉｄ���ｃｏｐｔｅｓ  ｓｐｐ．）等のスカルコプチダエ科（Ｓｃａｒｃｏｐｔｉｄａｅ）を含む。
【００９６】
特定の例では、昆虫は、ビーンバグ（例えば、リプトルツス属（Ｒｉｐｔｏｒｔｕｓ）種、例えばホソヘリカメムシ（Ｒｉｐｔｏｒｔｕｓ  ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ））である。いくつかの例では、昆虫は、カメムシ、例えばカメムシ科（Ｐｅｎｔａｔｏｍｉｄａｅ）のメンバー、例えばハリオモルファ属（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ）種（例えば、ハリオモルファ・ハリス（スタール）（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ  ｈａｌｙｓ）（Ｓｔａｌ））、ネザラ属（Ｎｅｚａｒａ）種（例えば、ミナミアオカメムシ（Ｎｅｚａｒａ  ｖｉｒｉｄｕｌａ））、オイバロス属（Ｏｅｂａｌｕｓ）種（例えば、イネカメムシ（Ｏｅｂａｌｕｓ  ｐｕｇｎａｘ））、キナビア属（Ｃｈｉｎａｖｉａ）種（例えば、キナビア・ヒラリス（Ｃｈｉｎａｖｉａ  ｈｉｌａｒｉｓ）、エウチリンクス属（Ｅｕｔｈｙｒｈｙｎｃｈｕｓ）種（例えば、エウチリンクス・フロリダヌス（Ｅｕｔｈｙｒｈｙｎｃｈｕｓ  ｆｌｏｒｉｄａｎｕｓ）、エウスキスツス属（Ｅｕｓｃｈｉｓｔｕｓ）種（例えば、エウスキスツス・セルブス（Ｅｕｓｃｈｉｓｔｕｓ  ｓｅｒｖｕｓ））、アルケオリンクス属（Ａｌｃａｅｏｒｒｈｙｎｃｈｕｓ）種（例えば、アルケオリンクス・グランディス（Ａｌｃａｅｏｒｒｈｙｎｃｈｕｓ  ｇｒａｎｄｉｓ））又はポディサス属（Ｐｏｄｉｓｕｓ）種である。特定の例では、カメムシは、クサギカメムシ（ｂｒｏｗｎ  ｍａｒｍｏｒａｔｅｄ  ｓｔｉｎｋ  ｂｕｇ）（ハリオモルファ・ハリス（スタール）（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ  ｈａｌｙｓ）（Ｓｔａｌ））である。
【００９７】
本明細書に記載の方法及び組成物は、動物に疾患を引き起こし得る病原体のベクターとみなされる任意の昆虫宿主に使用することもできる。
【００９８】
例えば、昆虫宿主は、以下に挙げるものを含み得るが、これらに限定されない：カ、ハチ、スズメバチ、小昆虫、シラミ、ツェツェバエ、ノミ及びアリなどのカメムシ目（Ｈｅｍｉｐｔｅｒａ）及び一部のハチ目（Ｈｙｍｅｎｏｐｔｅｒａ）及びハエ目（Ｄｉｐｔｅｒａ）並びにマダニ及びダニなどのクモ綱（Ａｒａｃｈｎｉｄａ）のメンバーに見出される、突き刺して吸う口器を有するもの；ダニ（Ａｃａｒｉｎａ）目、綱若しくは科（マダニ及びダニ）、例えばヒメダニ科（Ａｒｇａｓｉｄａｅ）、サシダニ科（Ｄｅｒｍａｎｙｓｓｉｄａｅ）、マダニ科（Ｉｘｏｄｉｄａｅ）、マメヒョウダニ科（Ｐｓｏｒｏｐｔｉｄａｅ）又はヒゼンダニ科（Ｓａｒｃｏｐｔｉｄａｅ）の代表的なもの並びにアンブリオンマ属（Ａｍｂｌｙｏｍｍａ  ｓｐｐ．）、アノセントン属（Ａｎｏｃｅｎｔｏｎ  ｓｐｐ．）、アルガス属（Ａｒｇａｓ  ｓｐｐ．）、ボオフィルス属（Ｂｏｏｐｈｉｌｕｓ  ｓｐｐ．）、ツメダニ属（Ｃｈｅｙｌｅｔｉｅｌｌａ  ｓｐｐ．）、コリオプテス属（Ｃｈｏｒｉｏｐｔｅｓ  ｓｐｐ．）、ニキビダニ属（Ｄｅｍｏｄｅｘ  ｓｐｐ．）、デルマセントル属（Ｄｅｒｍａｃｅｎｔｏｒ  ｓｐｐ．）、デンマニスス属（Ｄｅｎｍａｎｙｓｓｕｓ  ｓｐｐ．）、チマダニ属（Ｈａｅｍｏｐｈｙｓａｌｉｓ  ｓｐｐ．）、ヒアロンマ属（Ｈｙａｌｏｍｍａ  ｓｐｐ．）、イキソデス属（Ｉｘｏｄｅｓ  ｓｐｐ．）、リンキサカルス属（Ｌｙｎｘａｃａｒｕｓ  ｓｐｐ．）、トゲダニ亜目（Ｍｅｓｏｓｔｉｇｍａｔａ  ｓｐｐ．）、ノドエドネス属（Ｎｏｔｏｅｄｎｅｓ  ｓｐｐ．）、オルニトドロス属（Ｏｒｎｉｔｈｏｄｏｒｏｓ  ｓｐｐ．）、オルニトニスス属（Ｏｒｎｉｔｈｏｎｙｓｓｕｓ  ｓｐｐ．）、オトビウス属（Ｏｔｏｂｉｕｓ  ｓｐｐ．）、オトデクテス属（ｏｔｏｄｅｃｔｅｓ  ｓｐｐ．）、ニューモニスス属（Ｐｎｅｕｍｏｎｙｓｓｕｓ  ｓｐｐ．）、ソロプテス属（Ｐｓｏｒｏｐｔｅｓ  ｓｐｐ．）、リピセファルス属（Ｒｈｉｐｉｃｅｐｈａｌｕｓ  ｓｐｐ．）、サンコプテス属（Ｓａｎｃｏｐｔｅｓ  ｓｐｐ．）又はトロムビクラ属（Ｔｒｏｍｂｉｃｕｌａ  ｓｐｐ．）の代表的な種；シラミ亜目（Ａｎｏｐｌｕｒａ）（吸い、刺すシラミ）、例えばボビコーラ属（Ｂｏｖｉｃｏｌａ  ｓｐｐ．）、ケモノジラミ属（Ｈａｅｍａｔｏｐｉｎｕｓ  ｓｐｐ．）、ケモノホソジラミ属（Ｌｉｎｏｇｎａｔｈｕｓ  ｓｐｐ．）、ニワトリハジラミ属（Ｍｅｎｏｐｏｎ  ｓｐｐ．）、ペディキュルス属（Ｐｅｄｉｃｕｌｕｓ  ｓｐｐ．）、ペムフィグス属（Ｐｅｍｐｈｉｇｕｓ  ｓｐｐ．）、ネアブラムシ属（Ｐｈｙｌｌｏｘｅｒａ  ｓｐｐ．）又はソレノポテス属（Ｓｏｌｅｎｏｐｏｔｅｓ  ｓｐｐ．）の代表的な種；ハエ目（Ｄｉｐｔｅｒａ）（ハエ）、例えばアエデス属（Ａｅｄｅｓ  ｓｐｐ．）、アノフェレス属（Ａｎｏｐｈｅｌｅｓ  ｓｐｐ．）、カリホラ属（Ｃａｌｌｉｐｈｏｒａ  ｓｐｐ．）、クリソミア属（Ｃｈｒｙｓｏｍｙｉａ  ｓｐｐ．）、クリソプス属（Ｃｈｒｙｓｏｐｓ  ｓｐｐ．）、コクリオミア属（Ｃｏｃｈｌｉｏｍｙｉａ  ｓｐｐ．）、Ｃｗ／ｅｘ属（Ｃｗ／ｅｘ  ｓｐｐ．）、クリコイデス属（Ｃｕｌｉｃｏｉｄｅｓ  ｓｐｐ．）、クテレブラ属（Ｃｕｔｅｒｅｂｒａ  ｓｐｐ．）、デルマトビア��（Ｄｅｒｍａｔｏｂｉａ  ｓｐｐ．）、ガステロフィルス属（Ｇａｓｔｒｏｐｈｉｌｕｓ  ｓｐｐ．）、グロッシナ属（Ｇｌｏｓｓｉｎａ  ｓｐｐ．）、ハエマトビア属（Ｈａｅｍａｔｏｂｉａ  ｓｐｐ．）、ハエマトポタ属（Ｈａｅｍａｔｏｐｏｔａ  ｓｐｐ．）、ヒッポボスカ属（Ｈｉｐｐｏｂｏｓｃａ  ｓｐｐ．）、ヒポデルマ属（Ｈｙｐｏｄｅｒｍａ  ｓｐｐ．）、ルシリア属（Ｌｕｃｉｌｉａ  ｓｐｐ．）、リペロシア属（Ｌｙｐｅｒｏｓｉａ  ｓｐｐ．）、メロファガス属（Ｍｅｌｏｐｈａｇｕｓ  ｓｐｐ．）、オエストルス属（Ｏｅｓｔｒｕｓ  ｓｐｐ．）、ファエニシア属（Ｐｈａｅｎｉｃｉａ  ｓｐｐ．）、フレボトムス属（Ｐｈｌｅｂｏｔｏｍｕｓ  ｓｐｐ．）、ホルミア属（Ｐｈｏｒｍｉａ  ｓｐｐ．）、サルコファガ属（Ｓａｒｃｏｐｈａｇａ  ｓｐｐ．）、シムリウム属（Ｓｉｍｕｌｉｕｍ  ｓｐｐ．）、ストモキス属（Ｓｔｏｍｏｘｙｓ  ｓｐｐ．）、タバヌス属（Ｔａｂａｎｕｓ  ｓｐｐ．）、タニア属（Ｔａｎｎｉａ  ｓｐｐ．）又はＺｚｐｕ／α属（Ｚｚｐｕ／ａｌｐｈａ  ｓｐｐ．）の代表的な種；ハジラミ目（Ｍａｌｌｏｐｈａｇａ）（刺すシラミ）、例えばダマリア属（Ｄａｍａｌｉｎａ  ｓｐｐ．）、フェリコラ属（Ｆｅｌｉｃｏｌａ  ｓｐｐ．）、ヘテロドクス属（Ｈｅｔｅｒｏｄｏｘｕｓ  ｓｐｐ．）若しくはトリコデクテス属（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｃｔｅｓ  ｓｐｐ．）の代表的な種；又はノミ目（Ｓｉｐｈｏｎａｐｔｅｒａ）（翅のない昆虫）、例えばセラトフィルス属（Ｃｅｒａｔｏｐｈｙｌｌｕｓ  ｓｐｐ．）、ネズミノミ属（Ｘｅｎｏｐｓｙｌｌａ  ｓｐｐ．）の代表的な種；トコジラミ科（Ｃｉｍｉｃｉｄａｅ）（真性昆虫）、例えばシメクス種（Ｃｉｍｅｘ  ｓｐｐ．）、トリトミナエ種（Ｔｒｉｔｏｍｉｎａｅ  ｓｐｐ．）、ロディニウス種（Ｒｈｏｄｉｎｉｕｓ  ｓｐｐ．）又はトリアトマ種（Ｔｒｉａｔｏｍａ  ｓｐｐ．）の代表的な種。
【００９９】
いくつかの例では、昆虫は、ハエ目（Ｄｉｐｔｅｒａ）由来の吸血昆虫（例えば、長角亜目（Ｎｅｍａｔｏｃｅｒａ）、例えばカ科（Ｃｏｌｉｃｉｄａｅ））である。いくつかの例では、昆虫は、カ科（Ｃｕｌｉｃｉｎａｅ）、コレトリナ科（Ｃｏｒｅｔｈｒｉｎａｅ）、ヌカカ科（Ｃｅｒａｔｏｐｏｇｏｎｉｄａｅ）又はブユ科（Ｓｉｍｕｌｉｉｄａｅ）のものである。いくつかの例では、昆虫は、イエカ属（Ｃｕｌｅｘ  ｓｐｐ．）、テオバルジア属（Ｔｈｅｏｂａｌｄｉａ  ｓｐｐ．）、ヤブカ属（Ａｅｄｅｓ  ｓｐｐ．）、ハマダラカ属（Ａｎｏｐｈｅｌｅｓ  ｓｐｐ．）、ヤブカ属（Ａｅｄｅｓ  ｓｐｐ．）、ホルシポニイア属（Ｆｏｒｃｉｐｏｎｉｙｉａ  ｓｐｐ．）、ヌカカ属（Ｃｕｌｉｃｏｉｄｅｓ  ｓｐｐ．）又はヘレア属（Ｈｅｌｅａ  ｓｐｐ．）のものである。特定の例では、昆虫は、カである。特定の例では、昆虫は、マダニである。特定の例では、昆虫は、ダニである。特定の例では、昆虫は、刺すシラミである。
【０１００】
代わりに、昆虫は、植物の花粉ベクター、病害虫の天敵又はヒト若しくは動物にとって有用な物質の産生者などの益虫であり得る。益虫という用語は、ヒト、動物、生態系及び／又は環境に対して利益（例えば、経済的及び／又は生態学的）を付与する昆虫を指す。例えば、このような昆虫は、商業生産物の生産に関与する昆虫であり得、そうしたものとして、限定はされないが、食品（例えば、ミツバチ、例えばアピス・メリフェラ（Ａｐｉｓ  ｍｅｌｌｉｆｅｒａ）からの蜂蜜）、材料（ボンビックス・モリ（Ｂｏｍｂｙｘ  ｍｏｒｉ）からの絹など）及び／又は物質（例えば、ラッキフェル・ラッカ（Ｌａｃｃｉｆｅｒ  ｌａｃｃａ）からのラック若しくはコチニールカイガラムシ（Ｄａｃｔｙｌｏｐｉｕｓ  ｃｏｃｃｕｓ）及びタマバチ科（Ｃｙｎｉｐｉｄａｅ）からの色素）を生産するために飼育される昆虫が挙げられる。いくつかの例では、昆虫を採集するか、又は昆虫の１つ以上の部分を採取して、ヒト又は動物の消費（例えば、摂取）のための任意の製品をはじめとする消費可能な製品の製造に使用するために加工することができる。加えて、昆虫は、農業用途に使用される昆虫を含み得、こうしたものとして、作物の授粉、種子の拡散又は病害虫防除に役立つ昆虫が挙げられる。さらに、いくつかの例では、昆虫は、廃棄物処理及び／又は有機リサイクルに有用な昆虫（例えば、ミミズ、シロアリ若しくはハエ目（Ｄｉｐｔｅｒａ）幼虫）であり得る。昆虫は、天然の（即ち改変されていない）微生物叢を有するものであり得る。代わりに、昆虫は、細菌コロニー形成妨害剤の送達前又は送達中、プロバイオティック組成物を受けたものであり得る。
【０１０１】
いくつかの例では、昆虫は、消費可能な製品として全形で（例えば、全形の非処理昆虫として）採集及び流通され得る。いくつかの例では、採集された全形の昆虫を処理（例えば、粉砕）して、消費可能な製品として流通させる。代わりに、消費可能な製品の製造に使用するために、昆虫の１つ以上の部分（例えば、１つ以上の部分若しくは１つ以上の物質）を昆虫から抽出する場合もある。いくつかの例では、昆虫は、ガ、チョウ、ハエ、コオロギ、バッタ、イナゴ、クモ又は甲虫であり得る。いくつかの例では、昆虫の種は、それらの天然の栄養プロフィール又は栄養分に基づいて選択する。栄養素の例として、ビタミン、炭水化物、アミノ酸、ポリペプチド又は脂肪酸が挙げられる。
【０１０２】
いくつかの例では、昆虫は、有用な産物（例えば、蜂蜜、絹、蜜ろう又はシェラック）を生産する。いくつかの例では、昆虫はハチである。例示的なハチの属としては、限定はされないが、ミツバチ属（Ａｐｉｓ）、マルハナバチ属（Ｂｏｍｂｕｓ）、ハリナシバチ属（Ｔｒｉｇｏｎａ）及びツツハナバチ属（Ｏｓｍｉａ）が挙げられる。いくつかの例では、ハチは、ミツバチ（例えば、ミツバチ属（Ａｐｉｓ）に属する昆虫）である。いくつかの例では、ミツバチは、アピス・メリフェラ（Ａｐｉｓ  ｍｅｌｌｉｆｅｒａ）（ヨーロッパ又はセイヨウミツバチ）、アピス・ケラナ（Ａｐｉｓ  ｃｅｒａｎａ）（アジア、トウヨウ又はヒマラヤミツバチ）、アピス・ドルサタ（Ａｐｉｓ  ｄｏｒｓａｔａ）（「オオ（ｇｉａｎｔ）」ミツバチ）、アピス・フロレア（Ａｐｉｓ  ｆｌｏｒｅａ）（「ヒメ（ｒｅｄ  ｄｗａｒｆ）」ミツバチ）、アピス・アンドレニフォルミス（Ａｐｉｓ  ａｎｄｒｅｎｉｆｏｒｍｉｓ）（「クロコ（ｂｌａｃｋ  ｄｗａｒｆ）」ミツバチ）又はアピス・ニグロシンクタ（Ａｐｉｓ  ｎｉｇｒｏｃｉｎｃｔａ）の種である。いくつかの例では、昆虫は、カイコである。カイコは、カイコガ科（Ｂｏｍｂｙｃｉｄａｅ）又はヤママユガ科（Ｓａｔｕｒｎｉｉｄａｅ）の種であり得る。いくつかの例では、カイコは、ボンビックス・モリ（Ｂｏｍｂｙｘ  ｍｏｒｉ）である。いくつかの例では、昆虫は、ラック虫である。ラック虫は、ラックカイガラムシ科（Ｋｅｒｒｉｉｄａｅ）の種であり得る。いくつかの例では、ラック虫は、ケリア・ラッカ（Ｋｅｒｒｉａ  ｌａｃｃａ）である。
【０１０３】
いくつかの例では、昆虫は、植物の授粉に役立つ（例えば、ハチ、甲虫、スズメバチ、ハエ、チョウ又はガ）。いくつかの例において、植物の授粉に役立つ昆虫は甲虫である。いくつかの例では、甲虫は、タマムシ科（Ｂｕｐｒｅｓｔｉｄａｅ）、ジョウカイボン科（Ｃａｎｔｈａｒｉｄａｅ）、カミキリムシ科（Ｃｅｒａｍｂｙｃｉｄａｅ）、ハムシ科（Ｃｈｒｙｓｏｍｅｌｉｄａｅ）、カッコウムシ科（Ｃｌｅｒｉｄａｅ）、テントウムシ科（Ｃｏｃｃｉｎｅｌｌｉｄａｅ）、コメツキムシ科（Ｅｌａｔｅｒｉｄａｅ）、ナガクチキムシ科（Ｍｅｌａｎｄｒｙｉｄａｅ）、ツチハンミョウ科（Ｍｅｌｏｉｄａｅ）、ジョウカイモドキ科（Ｍｅｌｙｒｉｄａｅ）、ハナノミ科（Ｍｏｒｄｅｌｌｉｄａｅ）、ケシキスイムシ科（Ｎｉｔｉｄｕｌｉｄａｅ）、カミキリモドキ科（Ｏｅｄｅｍｅｒｉｄａｅ）、コガネムシ科（Ｓｃａｒａｂａｅｉｄａｅ）又はハネカクシ科（Ｓｔａｐｈｙｌｌｉｎｉｄａｅ）の種である。いくつかの例では、植物の授粉に役立つ昆虫は、チョウ又はガ（例えば、鱗翅目（Ｌｅｐｉｄｏｐｔｅｒａ））である。いくつかの例では、チョウ又はガは、シャクガ科（Ｇｅｏｍｅｔｒｉｄａｅ）、セセリチョウ科（Ｈｅｓｐｅｒｉｉｄａｅ）、シジミチョウ科（Ｌｙｃａｅｎｉｄａｅ）、ヤガ科（Ｎｏｃｔｕｉｄａｅ）、タテハチョウ科（Ｎｙｍｐｈａｌｉｄａｅ）、アゲハチョウ科（Ｐａｐｉｌｉｏｎｉｄａｅ）、シロチョウ科（Ｐｉｅｒｉｄａｅ）又はスズメガ科（Ｓｐｈｉｎｇｉｄａｅ）の種である。いくつかの例では、植物の授粉に役立つ昆虫は、ハエ（例えば、双翅目（Ｄｉｐｔｅｒａ））である。いくつかの例では、ハエは、ハナバエ科（Ａｎｔｈｏｍｙｉｉｄａｅ）、ケバエ科（Ｂｉｂｉｏｎｉｄａｅ）、ツリアブ科（Ｂｏｍｂｙｌｉｉｄａｅ）、クロバエ科（Ｃａｌｌｉｐｈｏｒｉｄａｅ）、タマバエ科（Ｃｅｃｉｄｏｍｉｉｄａｅ）、ヌカカ科（Ｃｅｒｔｏｐｏｇｏｎｉｄａｅ）、ユスリカ科（Ｃｈｒｉｏｎｏｍｉｄａｅ）、メバエ科（Ｃｏｎｏｐｉｄａｅ）、カ科（Ｃｕｌｉｃｉｄａｅ）、アシナガバエ科（Ｄｏｌｉｃｈｏｐｏｄｉｄａｅ）、オドリバエ科（Ｅｍｐｉｄｉｄａｅ）、ミギワバエ科（Ｅｐｈｙｄｒｉｄａｅ）、ヤリバエ科（Ｌｏｎｃｈｏｐｔｅｒｉｄａｅ）、イエバエ科（Ｍｕｓｃｉｄａｅ）、キノコバエ科（Ｍｙｃｅｔｏｐｈｉｌｉｄａｅ）、ノミバエ科（Ｐｈｏｒｉｄａｅ）、ブユ科（Ｓｉｍｕｌｉｉｄａｅ）、ミズアブ科（Ｓｔｒａｔｉｏｍｙｉｄａｅ）又はハナアブ科（Ｓｙｒｐｈｉｄａｅ）である。いくつかの例では、受粉に役立つ昆虫は、アリ（例えば、アリ科（Ｆｏｒｍｉｃｉｄａｅ））、ハバチ（例えば、ハバチ科（Ｔｅｎｔｈｒｅｄｉｎｉｄａｅ））又はスズメバチ（例えば、アナバチ科（Ｓｐｈｅｃｉｄａｅ）若しくはスズメバチ科（Ｖｅｓｐｉｄａｅ））である。いくつかの例では、植物の授粉に役立つ昆虫は、ハチである。いくつかの例では、ハチは、ヒメハナバチ科（Ａｎｄｒｅｎｉｄａｅ）、ミツバチ科（Ａｐｉｄａｅ）、ムカシハナバチ科（Ｃｏｌｌｅｔｉｄａｅ）、コハナバチ科（Ｈａｌｉｃｔｉｄａｅ）又はハキリバチ科（Ｍｅｇａｃｈｉｌｉｄａｅ）である。
【０１０４】
いくつかの例では、昆虫は、病害虫防除に役立つ。例えば、病害虫防除に役立つ昆虫は、コマユバチ科（Ｂｒａｃｏｎｉｄａｅ）（例えば、捕食寄生性スズメバチ）、オサムシ科（Ｃａｒａｂｉｄａｅ）（例えば、オサムシ）、クサカゲロウ科（Ｃｈｒｙｓｏｐｉｄａｅ）（例えば、ミドリクサカゲロウ）、テントウムシ科（Ｃｏｃｃｉｎｅｌｌｉｄａｅ）（例えば、テントウムシ）、ヒメカゲロウ科（Ｈｅｍｅｒｏｂｉｉｄａｅ）（例えば、ヒメカゲロウ）、ヒメバチ科（Ｉｃｈｎｅｕｍｏｎｉｄａｅ）（例えば、ヒメバチ）、ホタル科（Ｌａｍｐｙｒｉｄａｅ）（例えば、ホタル）、カマキリ科（Ｍａｎｔｉｄａｅ）（例えば、カマキリ）、ウスバカゲロウ科（Ｍｙｒｍｅｌｅｏｎｔｉｄａｅ）（例えば、ウスバカゲロウ（ａｎｔｉｌｉｏｎ））、トンボ目（Ｏｄｏｎａｔａ）（例えば、トンボ及びイトトンボ）又はハナアブ科（Ｓｙｒｐｈｉｄａｅ）（例えば、ハナアブ）に属する種であり得る。他の例では、病害虫防除に役立つ昆虫は、病害虫（例えば農業病害虫）と考えられる昆虫と競合する昆虫である。例えば、チチュウカイミバエのケラティティス・カピタタ（Ｃｅｒａｔｉｔｉｓ  ｃａｐｉｔａｔａ）は、世界中でよく見られる果実及び野菜の病害虫である。Ｃ．カピタタ（Ｃ．ｃａｐｔｉｔａｔａ）を防除する１つの方法は、不妊化した雄の昆虫を環境中に放すことにより、野生の雄と競合して雌と交尾させることである。このような例では、昆虫は、典型的に病害虫とみなされる種に属する不妊化した雄であり得る。
【０１０５】
いくつかの例では、昆虫は、廃棄物又は有機材料の分解に役立つ。いくつかの例において、廃棄物又は有機材料の分解に役立つ昆虫は、甲虫目（Ｃｏｌｅｏｐｔｅｒａ）又は双翅目（Ｄｉｐｔｅｒａ）に属する。いくつかの例では、双翅目（Ｄｉｐｔｅｒａ）に属する宿主は、クロバエ科（Ｃａｌｌｉｐｈｏｒｉｄａｅ）、セダカショウジョウバエ科（Ｃｕｒｔｏｎｏｔｉｄａｅ）、ショウジョウバエ科（Ｄｒｏｓｏｐｈｉｌｉｄａｅ）、ヒメイエバエ科（Ｆａｎｎｉｉｄａｅ）、トゲハネバエ科（Ｈｅｌｅｏｍｙｚｉｄａｅ）、クロコバエ科（Ｍｉｌｉｃｈｉｉｄａｅ）、イエバエ科（Ｍｕｓｃｉｄａｅ）、ノミバエ科（Ｐｈｏｒｉｄａｅ）、チョウバエ科（Ｐｓｙｃｈｏｄｉｄａｅ）、ニセケバエ科（Ｓｃａｔｏｐｓｉｄａｅ）、ツヤホソバエ科（Ｓｅｐｓｉｄａｅ）、ハヤトビバエ科（Ｓｐｈａｅｒｏｃｅｒｉｄａｅ）、ミズアブ科（Ｓｔｒａｔｉｏｍｙｉｄａｅ）、ハナアブ科（Ｓｙｒｐｈｉｄａｅ）、ミバエ科（Ｔｅｐｈｒｉｔｉｄａｅ）又はハネフリバエ科（Ｕｌｉｄｉｉｄａｅ）である。いくつかの例では、甲虫目（Ｃｏｌｅｏｐｔｅｒａ）に属する昆虫は、オサムシ科（Ｃａｒａｂｉｄａｅ）、ガムシ科（Ｈｙｄｒｏｐｈｉｌｉｄａｅ）、ヒメハナムシ科（Ｐｈａｌａｃａｒｉｄａｅ）、ムクゲキノコムシ科（Ｐｔｉｌｉｉｄａｅ）又はハネカクシ科（Ｓｔａｐｈｙｌｉｎｉｄａｅ）である。
【０１０６】
特定の例では、ミツバチの適応度を高めるために、本明細書に記載の細菌コロニー形成妨害剤を使用し得る。
【０１０７】
ｉｉ．昆虫適応度の減少
細菌コロニー形成妨害剤が、昆虫に有益な細菌のコロニー形成を妨害する複数の例では、本方法は、昆虫の適応度を減少させる上で有効である。例えば、本明細書に記載される細菌コロニー形成妨害剤は、（ａ）標的昆虫内部（例えば、腸又はその内部の細胞（例えば、菌細胞）若しくは器官（例えば、バクテリオーム若しくは陰窩）内部）の目標レベル（例えば、所定の又は閾値レベル）を達成し；且つ（ｂ）標的昆虫の適応度を減少させる上で十分な量及び時間で昆虫と接触させることができる。昆虫適応度の減少は、細菌コロニー形成妨害剤の投与の結果として昆虫の生理機能の劣化又は減少（例えば、生存により測定される）として現れ得る。昆虫の適応度は、限定はされないが、繁殖率、寿命、繁殖力、体重、代謝率若しくは活動又は生存を含む１つ以上のパラメータにより、細菌コロニー形成妨害剤を投与されていない昆虫との比較で測定され得る。
【０１０８】
例えば、本明細書に提供される方法又は組成物は、昆虫の健康全般を減少させるか又は昆虫の全生存を減少させるのに有効であり得る。いくつかの例では、昆虫の生存の減少は、参照レベル（例えば、細菌コロニー形成妨害剤の投与を受けない昆虫で見られるレベル）と比べて約２％、５％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、１００％又は１００％超大きい。いくつかの例では、本方法及び組成物は、細菌コロニー形成妨害剤を投与されていない昆虫と比較して昆虫の繁殖（例えば、繁殖率）を減少させるのに有効である。いくつかの例では、本方法及び組成物は、移動性、体重、寿命、生殖能力又は代謝率などの他の生理学的パラメータを参照レベル（例えば、細菌コロニー形成妨害剤の投与を受けない昆虫で見られるレベル）と比べて約２％、５％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、１００％又は１００％超減少させるのに有効である。
【０１０９】
いくつかの例では、昆虫適応度の減少は、細菌コロニー形成妨害剤が投与されていない昆虫に対する、昆虫内の１つ以上の栄養素（例えば、ビタミン、炭水化物、アミノ酸又はポリペプチド）の産生の減少として現れ得る。いくつかの例では、本明細書に提供される方法又は組成物は、昆虫における栄養素（例えば、ビタミン、炭水化物、アミノ酸又はポリペプチド）の生産量を参照レベル（例えば、細菌コロニー形成妨害剤の投与を受けない昆虫で見られるレベル）と比べて約２％、５％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、１００％又は１００％超減少させるのに有効であり得る。いくつかの例では、本明細書に提供される方法又は組成物は、細菌コロニー形成妨害剤が投与されていない昆虫に対して、昆虫における１つ以上の微生物（例えば、内部共生体）による栄養素の生産を減少させることにより、昆虫の栄養素を減少させることができる。
【０１１０】
いくつかの例では、昆虫適応度の減少は、細菌コロニー形成妨害剤が投与されていない昆虫に対する、農薬用薬剤に対する昆虫の感度の上昇及び／又は農薬用薬剤に対する昆虫の抵抗性の減少として現れ得る。いくつかの例では、本明細書に提供される方法又は組成物は、農薬用薬剤に対する昆虫の感度を参照レベル（例えば、細菌コロニー形成妨害剤の投与を受けない昆虫で見られるレベル）と比べて約２％、５％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、１００％又は１００％超上昇させるのに有効であり得る。農薬用薬剤は、殺虫性薬剤を含めた、当技術分野において公知の任意の農薬用薬剤であり得る。いくつかの例では、本明細書に提供される方法又は組成物は、農薬用薬剤を代謝するか、又は利用可能な基質に分解する昆虫の能力を減少させることにより、農薬用薬剤に対する昆虫の感受性を高めることができる。
【０１１１】
いくつかの例では、昆虫適応度の減少は、細菌コロニー形成妨害剤が投与されていない昆虫に対する、アレロケミカル薬剤に対する昆虫の感度の上昇及び／又はアレロケミカル薬剤に対する昆虫の抵抗性の減少として現れ得る。いくつかの例では、本明細書に提供される方法又は組成物は、アレロケミカル薬剤に対する昆虫の抵抗性を参照レベル（例えば、細菌コロニー形成妨害剤の投与を受けない昆虫で見られるレベル）と比べて約２％、５％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、１００％又は１００％超減少させるのに有効であり得る。いくつかの例では、アレロケミカル薬剤は、カフェイン、ダイズシスタチンＮ、モノテルペン類、ジテルペン酸又はフェノール化合物である。いくつかの例では、本明細書に提供される方法又は組成物は、細菌コロニー形成妨害剤を投与されていない昆虫に対して、昆虫のアレロケミカル薬剤を利用可能な基質に代謝又は分解する能力を減少させることにより、アレロケミカル薬剤に対する昆虫の感度を増加させることができる。
【０１１２】
いくつかの例では、本明細書に提供される方法又は組成物は、細菌コロニー形成妨害剤が投与されていない昆虫に対して、寄生虫又は病原体（例えば、真菌性、細菌性又はウイルス性病原体又は寄生虫）に対する昆虫の抵抗性を減少させるのに有効であり得る。いくつかの例では、本明細書に提供される方法又は組成物は、病原体又は寄生虫（例えば、真菌性、細菌性又はウイルス性病原体；又は寄生ダニ）に対する昆虫の抵抗性を参照レベル（例えば、細菌コロニー形成妨害剤の投与を受けない昆虫で見られるレベル）と比べて約２％、５％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、１００％又は１００％超減少させるのに有効であり得る。
【０１１３】
いくつかの例では、本明細書に提供される方法又は組成物は、細菌コロニー形成妨害剤が投与されていない昆虫に対する、ある種の環境因子に対する耐性（例えば、高温又は低温耐性）の減少、ある種の生息場所で生き延びる能力の減少又はある種の食餌を持続させる能力の減少など、他の適応上の不利点として現れ得る。いくつかの例では、本明細書に提供される方法又は組成物は、本明細書に記載される任意の複数の方法で昆虫適応度を減少させるのに有効であり得る。さらに、細菌コロニー形成妨害剤は、任意の数の昆虫綱、目、科、属又は種（例えば、１つの昆虫種、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１５、２０、３０、４０、５０、６０、７０、８０、９０、１００、１５０、２００、２００、２５０、５００又はそれを超える昆虫種）における昆虫適応度を減少させることができる。いくつかの例では、細菌コロニー形成妨害剤は、単一の昆虫綱、目、科、属又は種に作用する。昆虫適応度は、当技術分野における任意の標準方法を用いて判定され得る。いくつかの例では、昆虫適応度は、個々の昆虫を評価することにより判定され得る。代わりに、昆虫適応度は、昆虫集団を評価することにより判定され得る。
【０１１４】
ｉｉｉ．昆虫適応度の増加
細菌コロニー形成妨害剤が、昆虫に有害な細菌（例えば、病原菌）のコロニー形成を妨害する複数の例において、本方法は、多様な適応度利益を昆虫に付与する上で有効である。例えば、昆虫適応度の増加は、細菌コロニー形成妨害剤の投与の結果として、昆虫の生理機能の改善（例えば、健康若しくは生存の改善又は栄養プロフィールの増加）として現れ得る。昆虫の適応度は、限定はされないが、細菌コロニー形成妨害剤が投与されていない昆虫に対する繁殖率、寿命、移動性、繁殖力、体重、栄養プロフィール、代謝率若しくは活動又は生存を含む１つ以上のパラメータによって測定することができる。いくつかの例では、細菌コロニー形成妨害剤は、昆虫の適応度を一過性に増加させ得る。代わりに、細菌コロニー形成妨害剤は、昆虫の適応度を昆虫の寿命期間にわたって増加させ得る。
【０１１５】
例えば、本明細書に提供される方法及び組成物は、細菌コロニー形成妨害剤が投与されていない昆虫に対して、昆虫の健康全般を改善するか、又は昆虫の全生存を改善するのに有効であり得る。いくつかの例では、昆虫の生存の改善は、参照レベル（例えば、細菌コロニー形成妨害剤を受けていない昆虫に見られるレベル）と比べて約２％、５％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、１００％又は１００％超高い。
【０１１６】
いくつかの例では、本明細書に提供される方法及び組成物は、細菌コロニー形成妨害剤が投与されていない昆虫に対して、昆虫の繁殖（例えば、繁殖率）を増加させるのに有効である。いくつかの例では、本方法及び組成物は、移動性、体重、寿命、生殖能力又は代謝率などの他の生理的パラメータを参照レベル（例えば、細菌コロニー形成妨害剤を受けていない昆虫に見られるレベル）と比べて約２％、５％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、１００％又は１００％超増加させるのに有効である。
【０１１７】
いくつかの例では、昆虫適応度の増加は、細菌コロニー形成妨害剤が投与されていない昆虫に対する、前記昆虫により生産される産物の生産の増加として現れ得る。いくつかの例では、本明細書に提供される方法又は組成物は、本明細書に記載の通り、昆虫により生産される産物（例えば、蜂蜜、蜜蝋、蜂パン、プロポリス、絹又はラック）の生産を参照レベル（例えば、細菌コロニー形成妨害剤を受けていない昆虫に見られるレベル）と比べて約２％、５％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、１００％又は１００％超増加させるのに有効であり得る。
【０１１８】
例えば、本明細書に提供される方法及び組成物は、細菌コロニー形成妨害剤が投与されていない昆虫に対して、昆虫の栄養プロフィールを改善するか、又は全般的栄養分（例えば、ビタミン、炭水化物、アミノ酸、ポリペプチド若しくは脂肪酸）を改善するのに有効であり得る。いくつかの例では、昆虫の栄養プロフィール又は栄養分の改善は、参照レベル（例えば、細菌コロニー形成妨害剤を受けていない昆虫に見られるレベル）と比べて約２％、５％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、１００％又は１００％超高い。
【０１１９】
いくつかの例では、昆虫適応度の増加は、細菌コロニー形成妨害剤が投与されていない昆虫に対する、昆虫により実施される所望の活動（例えば、授粉、病害虫の捕食、種子拡散又は廃棄物若しくは有機材料の分解）の頻度又は有効性の増加として現れ得る。いくつかの例では、本明細書に提供される方法又は組成物は、昆虫により実施される所望の活動（例えば、授粉、病害虫の捕食、種子の伝播又は廃棄物若しくは有機材料の分解）の頻度又は有効性を参照レベル（例えば、細菌コロニー形成妨害剤を受けていない昆虫に見られるレベル）と比べて約２％、５％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、１００％又は１００％超増加させるのに有効であり得る。
【０１２０】
いくつかの例では、昆虫適応度の増加は、細菌コロニー形成妨害剤が投与されていない昆虫に対する、昆虫における１種以上の栄養素（例えば、ビタミン、炭水化物、アミノ酸又はポリペプチド）の生産の増加として現れ得る。いくつかの例では、本明細書に提供される方法又は組成物は、昆虫における栄養素（例えば、ビタミン、炭水化物、アミノ酸又はポリペプチド）の生産を参照レベル（例えば、細菌コロニー形成妨害剤を受けていない昆虫に見られるレベル）と比べて約２％、５％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、１００％又は１００％超増加させるのに有効であり得る。いくつかの例では、本明細書に提供される方法又は組成物は、昆虫中の１種以上の微生物（例えば、内部共生体）による栄養素の生産を増加させることにより、昆虫における栄養素を増加させることができる。
【０１２１】
いくつかの例では、昆虫適応度の増加は、細菌コロニー形成妨害剤が投与されていない昆虫に対する、農薬用薬剤に対する昆虫の感受性の減少及び／又は農薬用薬剤に対する昆虫の抵抗性の増加として現れ得る。いくつかの例では、本明細書に提供される方法又は組成物は、農薬用薬剤に対する昆虫の感受性を参照レベル（例えば、細菌コロニー形成妨害剤を受けていない昆虫に見られるレベル）と比べて約２％、５％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、１００％又は１００％超減少させるのに有効であり得る。いくつかの例では、農薬用薬剤に対する昆虫の感受性は、農業用薬剤を分解する細菌コロニー形成妨害剤（例えば、農薬分解菌、例えばネオニコチノイド分解菌又は有機リン系農薬分解菌）を投与することによって改変される。農薬用薬剤は、殺虫剤を含め、当技術分野で公知の任意の農薬用薬剤であり得る。いくつかの例では、農薬用薬剤は、ネオニコチノイド（例えば、イミダクロプリド）又は有機リン系農薬（例えば、ホスホロチオエート、例えばフェニトロチオン）である。いくつかの例では、本明細書に提供される方法又は組成物は、農薬用薬剤を代謝するか、又は利用可能な基質に分解する昆虫の能力を高めることにより、農薬用薬剤に対する昆虫の感受性を減少させることができる。
【０１２２】
いくつかの例では、昆虫適応度の増加は、細菌コロニー形成妨害剤が投与されていない昆虫に対する、アレロケミカル薬剤に対する昆虫の感受性の減少及び／又はアレロケミカル薬剤に対する昆虫の抵抗性の増加として現れ得る。いくつかの例では、本明細書に提供される方法又は組成物は、アレロケミカル薬剤に対する昆虫の感受性を参照レベル（例えば、細菌コロニー形成妨害剤を受けていない昆虫に見られるレベル）と比べて約２％、５％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、１００％又は１００％超減少させるのに有効であり得る。いくつかの例では、アレロケミカル薬剤は、カフェイン、ダイズシスタチンＮ、モノテルペン、ジテルペン酸又はフェノール化合物である。一部の例では、本明細書に提供される方法又は組成物は、アレロケミカル薬剤を代謝するか、又は利用可能な基質に分解する昆虫の能力を高めることにより、アレロケミカル薬剤に対する昆虫の感受性を減少させることができる。
【０１２３】
いくつかの例では、本明細書に提供される方法又は組成物は、細菌コロニー形成妨害剤が投与されていない昆虫に対して、寄生虫又は病原体（例えば、真菌性、細菌性又はウイルス性病原体；又は寄生ダニ（例えば、ミツバチにおけるミツバチヘギイタダニ（Ｖａｒｒｏａ  ｄｅｓｔｒｕｃｔｏｒ）））に対する昆虫の抵抗性を増加させるのに有効であり得る。いくつかの例では、本明細書に提供される方法又は組成物は、病原体又は寄生虫（例えば、真菌性、細菌性若しくはウイルス性病原体；又は寄生ダニ（例えば、ミツバチにおけるミツバチヘギイタダニ（Ｖａｒｒｏａ  ｄｅｓｔｒｕｃｔｏｒ）））に対する昆虫の抵抗性を参照レベル（例えば、細菌コロニー形成妨害剤の投与を受けない昆虫で見られるレベル）と比べて約２％、５％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、１００％又は１００％超増加させるのに有効であり得る。
【０１２４】
いくつかの例では、本明細書に提供される方法又は組成物は、細菌コロニー形成妨害剤が投与されていない昆虫に対する、ある種の環境因子に対する耐性（例えば、高温又は低温耐性）の向上、ある種の生息場所で生き延びる能力の向上又はある種の食餌を持続させる能力の向上（例えば、ダイズ対トウモロコシを代謝する能力の向上）など、他の適応上の利点として現れ得る。いくつかの例では、本明細書に提供される方法又は組成物は、本明細書に記載される任意の複数の方法で昆虫適応度を増加させるのに有効であり得る。さらに、細菌コロニー形成妨害剤は、任意の数の昆虫綱、目、科、属又は種（例えば、１つの昆虫種、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１５、２０、３０、４０、５０、６０、７０、８０、９０、１００、１５０、２００、２００、２５０、５００又はそれを超える昆虫種）の昆虫適応度を増加させることができる。いくつかの例では、細菌コロニー形成妨害剤は、単一の昆虫綱、目、科、属又は種に作用する。
【０１２５】
本明細書に記載のいくつかの例では、本方法は、非処理の昆虫に対して昆虫の適応度を増加させるのに有効である。いくつかの例では、適応度の増加は、非処理の昆虫に対する昆虫の生存、寿命、生殖能力、繁殖率、繁殖期間、産卵数、孵化卵の数、発育速度、成虫出現率、移動性、体の大きさ（例えば、体長、体重若しくは体幅（例えば、カメムシの前胸背板の幅））、角皮（外骨格）厚さ、色素形成又は代謝率の増加である。いくつかの例では、適応度の増加は、非処理の昆虫に対する昆虫のビテロジェニンタンパク質の増加である。いくつかの例では、適応度の増加は、非処理の昆虫に対する昆虫のビテロジェニン遺伝子発現の増加である。
【０１２６】
昆虫適応度は、当技術分野における任意の標準方法を用いて判定され得る。いくつかの例では、昆虫適応度は、個々の昆虫を評価することにより判定され得る。代わりに、昆虫適応度は、昆虫集団を評価することにより判定され得る。例えば、昆虫適応度の増加は、他の昆虫に対する競合成功の増加として現れる場合もあり、それによって昆虫集団のサイズの増加が起こる。
【０１２７】
ｉｖ．農業における昆虫
本明細書に提供される細菌コロニー形成妨害剤は、植物に有害な農業害虫（例えば、カメムシ又はビーンバグ）などの昆虫の適応度を減少させるか、又は益虫（例えば、授粉昆虫、例えばミツバチ）の適応度を増加させることにより、前記昆虫から典型的に害を受ける植物の成長を促進するのに有効であり得る。細菌コロニー形成妨害剤は、本明細書に記載される任意の製剤及び送達方法を用いて、昆虫適応度の減少に有効な量で且つ有効な期間にわたって植物に送達することにより、植物に利益をもたらし、例えば作物の成長を増加させ、作物収量を増加させ、害虫寄生を減少させ、且つ／又は植物に対する損傷を減少させることができる。これは、植物への細菌コロニー形成妨害剤の直接適用を含む場合もあれば、含まない場合もある。例えば、一次昆虫生息場所が植物成長の領域と異なる場合、細菌コロニー形成妨害剤は、一次昆虫生息場所、目的の植物又はその両方の組み合わせのいずれかに適用され得る。
【０１２８】
いくつかの例では、植物は、穀草類、穀類、マメ科植物、果実若しくは野菜作物等の農業食用作物又は非食用作物、例えば草、顕花植物、綿花、干し草、大麻であり得る。本明細書に記載する組成物は、穀草類、穀類、マメ科植物、果実、野菜若しくは他の作物の収穫前又は収穫後の任意の時間に作物に送達することができる。作物収量は、多くの場合に作物植物に用いられる測定量であり、通常、１ヘクタール当たりのメートルトン（又は１ヘクタール当たりのキログラム）で測定される。作物収量は、植物からの実際の種子産生とも称することができる。いくつかの例では、細菌コロニー形成妨害剤は、参照レベル（例えば、細菌コロニー形成妨害剤が投与されていない作物）と比較した作物収量の約２％、５％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、１００％又はそれを超える増加（例えば、１ヘクタール当たりの穀草類、穀類、マメ科植物、果実若しくは野菜のメートルトンの増加及び／又は種子産生の増加）に有効であり得る。
【０１２９】
いくつかの例では、植物（例えば、作物）は、害虫寄生（例えば、昆虫による）の発生の危険性を有し得るか、又は害虫寄生が既に発生している可能性がある。本明細書に記載する方法及び組成物を使用して、植物に寄生する昆虫の適応度を減少させることにより、そのような作物における害虫寄生を減少させるか又は防止することができる。いくつかの例では、細菌コロニー形成妨害剤は、参照レベル（例えば、細菌コロニー形成妨害剤が投与されていない作物）と比較して約２％、５％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、１００％又はそれを超えて作物寄生を減少させる（例えば、寄生された植物の数を減少させる、害虫の集団の大きさを減少させる、植物に対する損傷を減少させる）のに有効であり得る。他の例では、細菌コロニー形成妨害剤は、参照レベル（例えば、細菌コロニー形成妨害剤が投与されていない作物）と比較して作物寄生の可能性を約２％、５％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、１００％又はそれを超えて防止又は減少させるのに有効であり得る。
【０１３０】
任意の好適な植物組織が、本明細書に記載する組成物及び方法から利益を得ることができ、そうしたものとして、限定はされないが、体細胞胚、花粉、葉、茎、カルス、走根、マイクロチューバー及び苗条が挙げられる。本明細書に記載する方法は、アカシア、アルファルファ、リンゴ、アンズ、アーティチョーク、トネリコ、アスパラガス、アボカド、バナナ、オオムギ、マメ、テンサイ、カバノキ、ブナ、ブラックベリー、ブルーベリー、ブロッコリー、芽キャベツ、キャベツ、キャノーラ、カンタループ、ニンジン、キャッサバ、カリフラワー、ヒマラヤスギ、穀草類、セロリ、クリ、サクランボ、ハクサイ、柑橘類、クレメンタイン、クローバ、コーヒー、トウモロコシ、綿花、針葉樹、ササゲ、キュウリ、イトスギ、ナス、ニレ、エンダイブ、ユーカリ属、ソラマメ、ウイキョウ、イチジク、モミ、果実及び堅果樹、ゼラニウム、ブドウ、グレープフルーツ、落花生、ホオズキ、ドクニンジン、大麻、ヒッコリー、ケール、キウイフルーツ、コールラビ、カラマツ、レタス、ニラ、レモン、ライム、ハリエンジュ、マツ、ホウライシダ、トウモロコシ（ｍａｉｚｅ）、マンゴー、カエデ、メロン、アワ、キノコ、カラシナ、ナッツ、オーク、カラスムギ、オクラ、タマネギ、オレンジ、観賞植物又は花又は木、パパイヤ、ヤシ、パセリ、パースニップ、エンドウマメ、モモ、ピーナッツ、セイヨウナシ、ピート、コショウ、カキ、キマメ、マツ、パイナップル、オオバコ、プラム、ザクロ、ジャガイモ、カボチャ、ラディッキオ、ダイコン、ナタネ、キイチゴ、米、ライムギ、モロコシ、サルヤナギ、大豆、ホウレンソウ、エゾマツ、カボチャ、イチゴ、テンサイ、サトウキビ、ヒマワリ、サツマイモ、トウモロコシ（ｓｗｅｅｔ  ｃｏｒｎ）、タンジェリン、茶、タバコ、トマト、木、ライコムギ、芝草、カブ、つる植物、クルミ、オランダガラシ、スイカ、小麦、ヤム、イチイ及びズッキーニ等の被子植物又は裸子植物の処理を含み得る。
【０１３１】
ｖ．疾病ベクターとしての昆虫
本明細書に記載される細菌コロニー形成妨害剤は、動物病原体を担持する宿主昆虫の適応度を減少させることにより、ベクター媒介性疾病の拡散を減少させるのに有効であり得る。細菌コロニー形成妨害剤は、本明細書に記載される製剤及び送達方法のいずれかを用いて、例えばベクター間の垂直若しくは水平伝播を減少させ、且つ／又は動物への疾病の伝播を減少させるのに有効な量及び持続期間で昆虫に送達することができる。例えば、本明細書に記載される細菌コロニー形成妨害剤は、ベクター媒介性病原体の垂直若しくは水平伝播を、細菌コロニー形成妨害剤が投与されていない宿主生物と比較して約２％、５％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、１００％又はそれを超えて減少させ得る。別の例として、本明細書に記載の細菌コロニー形成妨害剤は、昆虫ベクターのベクター能力を、細菌コロニー形成妨害剤が投与されていない宿主生物と比較して約２％、５％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、１００％又はそれを超えて減少させ得る。
【０１３２】
本明細書に提供される方法及び組成物により制御され得る疾病の非限定的な例としては、トガウイルス科（Ｔｏｇａｖｉｒｉｄａｅ）ウイルスに起因する疾病（例えば、チクングニア熱、ロスリバー熱、マヤロ熱、オニョンニョン熱、シンドビス熱、東部ウマ脳脊髄炎、西部ウマ脳脊髄炎、ベネズエラウマ脳脊髄炎若しくはバーマフォレスト（Ｂａｒｍａｈ  ｆｏｒｅｓｔ）；フラビウイルス科（Ｆｌａｖｉｖｉｒｄａｅ）ウイルスに起因する疾病（例えば、デング熱、黄熱、キャサヌル森林病、オムスク出血熱、日本脳炎、マレー渓谷脳炎、ロシオ（Ｒｏｃｉｏ）、セントルイス脳炎、ウエストナイル脳炎若しくはダニ媒介性脳炎）；ブニヤウイルス科（Ｂｕｎｙａｖｉｒｉｄａｅ）ウイルスに起因する疾病（例えば、サシチョウバエ（Ｓａｎｄｌｙ）熱、リットバレー熱、ラクロス脳炎、カリフォルニア脳炎、クリミア・コンゴ出血熱若しくは口嚢熱）；ラブドウイルス科（Ｒｈａｂｄｏｖｉｒｉｄａｅ）ウイルスに起因する疾病（例えば、水胞性口炎）；オルビウイルス科（Ｏｒｂｉｖｉｒｉｄａｅ）ウイルスに起因する疾病（例えば、ブルータング（Ｂｌｕｅｔｏｎｇｕｅ））；細菌に起因する疾病（例えば、疫病、野兎病、Ｑ熱、ロッキー山紅斑熱、ネズミチフス、ボタン熱、クイーンズランドマダニチフス、シベリアマダニチフス、ツツガムシ病、回帰熱若しくはライム病）；又は原虫に起因する疾病（例えば、マラリア、アフリカトリパノソーマ症、ナガナ病、シャーガス病、リーシュマニア症、ピロプラズマ病、バンクロフト・フィラリア症若しくはブルギア・フィラリア症）が挙げられる。
【０１３３】
ｖｉ．適用方法
昆虫又は昆虫が孵化する卵若しくは卵塊への組成物の送達又は投与を可能にする任意の好適な方法において、細菌コロニー形成妨害剤を含む組成物に、本明細書に記載の昆虫を曝露することができる。細菌コロニー形成妨害剤は、単独又は他の活性若しくは不活性物質との併用のいずれでも送達され得、例えば有効濃度の細菌コロニー形成妨害剤を送達するように製剤化された濃縮液、ゲル、溶液、懸濁液、スプレー、粉末、ペレット、ブリケット、ブリックなどの形態で噴霧、注射（例えば、マイクロインジェクション）、植物媒介、注ぎ込み、浸漬により適用することができる。本明細書に記載される組成物の適用量及び場所は、一般に、昆虫の生息場所、細菌コロニー形成妨害剤により昆虫をターゲティングすることができる生活環段階、適用を実施すべき部位並びに細菌コロニー形成妨害剤の物理的及び機能的特性によって決定される。
【０１３４】
いくつかの例では、組成物は、例えば、背負式散布、空中散布、作物散布／散粉等により、植物、例えば作物の上に直接噴霧される。細菌コロニー形成妨害剤が植物に送達される例では、細菌コロニー形成妨害剤を受け取る植物は、任意の植物成長段階であり得る。例えば、製剤化された細菌コロニー形成妨害剤は、植物成長初期に種子コーティング又は経根処理として又は作物サイクル後期に植物全体の処理として施用することができる。いくつかの例では、細菌コロニー形成妨害剤は、局所薬剤として植物に施用され得る。いくつかの例では、昆虫が孵化するであろう卵又は卵塊に組成物を噴霧又は施用する。
【０１３５】
さらに、細菌コロニー形成妨害剤は、植物の組織を通して吸収され、分布する浸透性薬剤として（例えば、植物が成長する土壌中又は植物の水やりに使用される水中に）施用され得る。いくつかの例では、植物又は飼料生物は、細菌コロニー形成妨害剤を発現するように遺伝的に形質転換され得る。例えば、いくつかの例では、細菌コロニー形成妨害剤を改変植物に送達して、昆虫に摂取させる。代わりに、細菌コロニー形成妨害剤を弱毒化細菌又は改変細菌に送達して、昆虫に摂取させることもできる。
【０１３６】
また、遅延放出又は継続的放出も、細菌コロニー形成妨害剤又は１つ以上の細菌コロニー形成妨害剤を含む組成物をゼラチンなどの溶解性又は生体内分解性コーティング層でコーティングすることにより、このコーティングが使用環境内で溶解若しくは分解した後、細菌コロニー形成妨害剤が利用可能になることで達成できるか、又は薬剤を溶解性若しくは分解性マトリックス中に分散させることにより達成できる。このような継続的放出及び／又は分注手段装置が有利に用いられることにより、本明細書に記載される細菌コロニー形成妨害剤の１つ以上の有効濃度が常に維持され得る。
【０１３７】
いくつかの例では、細菌コロニー形成妨害剤は、野外散布の場合、１ヘクタール当たりの薬剤の量（ｇ／ｈａ若しくはｋｇ／ｈａ）又は１ヘクタール当たりの活性成分の量（ｋｇ  ａ．ｉ．／ｈａ若しくはｇ  ａ．ｉ．／ｈａ）の量として推奨され得る。本発明の細菌コロニー形成妨害剤は、１ヘクタール当たり様々な量、例えば約０．０００１、０．００１、０．００５、０．０１、０．１、１、２、１０、１００、１，０００、２，０００、５，０００（又は約０．０００１〜５，０００の任意の範囲）ｋｇ／ｈａで適用することができる。例えば、約０．０００１〜約０．０１、約０．０１〜約１０、約１０〜約１，０００、約１，０００〜約５，０００ｋｇ／ｈａである。
【０１３８】
細菌コロニー形成妨害剤を昆虫又は昆虫により産生される卵若しくは卵塊に送達するいくつかの例では、昆虫、卵又は卵塊を、細菌コロニー形成妨害剤を含有する溶液に単純に「浸漬」するか又はそれを「噴霧」することができる。他の例では、細菌コロニー形成妨害剤を経口摂取により昆虫に投与し得るが、角皮を介した浸透又は昆虫の呼吸器系の浸透を可能にする手段により投与し得る。例えば、細菌コロニー形成妨害剤を送達しやすくし、且つ／又は昆虫によるその取り込みを増加させるために、細菌コロニー形成妨害剤を昆虫の飼料成分（例えば、食物）と結合させることができる。経口導入方法としては、例えば、細菌コロニー形成妨害剤を昆虫の飼料と直接混合し、昆虫の生息場所又は畑に細菌コロニー形成妨害剤を噴霧し、且つ飼料として使用する種を、細菌コロニー形成妨害剤を発現するように操作した後、影響を及ぼそうとする昆虫に給餌する操作アプローチがある。いくつかの例では、例えば、細菌コロニー形成妨害剤を昆虫の食餌に配合するか又はその上に施用することができる。例えば、昆虫が生息する作物畑に細菌コロニー形成妨害剤を噴霧することができる。
【０１３９】
細菌コロニー形成妨害剤は、昆虫が成長、生活、繁殖、摂餌又は寄生する媒体に配合することもできる。例えば、細菌コロニー形成妨害剤は、飼料容器、餌場、保護用ラッピング材又は巣箱に配合することができる。いくつかの適用の場合、細菌コロニー形成妨害剤は、粉末形態での適用又はトラップ若しくは餌場への適用のための固体支持体に結合され得る。一例として、組成物が特定の昆虫のためのトラップにおいて又はベイトとして使用される適用の場合にも組成物を固体支持体に結合するか又は時限放出材料に封入し得る。
【０１４０】
ＩＩ．細菌コロニー形成妨害剤
様々な細菌コロニー形成妨害剤を本方法に従って使用することができる。細菌コロニー形成妨害剤は、その化学組成又はその生理学的機能のいずれかにより識別することができる。例えば、薬剤は、細菌が昆虫の腸にもはや付着、結合又は繁殖することができないように、細菌の特性（例えば、細菌の代謝若しくは細菌細胞表面）及び／又は昆虫の腸の特性を改変し得る。例示的な細胞コロニー形成妨害剤及びそうした薬剤をスクリーニングする方法について、以下に詳細に説明する。昆虫のコロニー形成（例えば、昆虫のバクテリオーム、混合物の腸又は昆虫の腸のｖ４領域のコロニー形成）は、１％〜１００％減少させ得るが、例えば少なくとも１％、少なくとも２％、少なくとも３％、少なくとも４％、少なくとも５％、少なくとも６％、少なくとも７％、少なくとも８％、少なくとも９％、少なくとも１０％、少なくとも１５％、少なくとも２０％、少なくとも２５％、少なくとも３０％、少なくとも３５％、少なくとも４０％、少なくとも４５％、少なくとも５０％、少なくとも５５％、少なくとも６０％、少なくとも６５％、少なくとも７０％、少なくとも７５％、少なくとも８０％、少なくとも８５％、少なくとも９０％、少なくとも９５％減少又は少なくとも１００％減少し得る。
【０１４１】
細菌によってコロニー形成され得る昆虫の細胞、器官、領域又は組織（例えば、バクテリオーム又は腸のｖ４領域）のサイズ（例えば、面積又は重量）は、細菌コロニー形成妨害剤の処理の結果として減少し、例えば１％〜１００％減少し得るが、例えば少なくとも１％、少なくとも２％、少なくとも３％、少なくとも４％、少なくとも５％、少なくとも６％、少なくとも７％、少なくとも８％、少なくとも９％、少なくとも１０％、少なくとも１５％、少なくとも２０％、少なくとも２５％、少なくとも３０％、少なくとも３５％、少なくとも４０％、少なくとも４５％、少なくとも５０％、少なくとも５５％、少なくとも６０％、少なくとも６５％、少なくとも７０％、少なくとも７５％、少なくとも８０％、少なくとも８５％、少なくとも９０％、少なくとも９５％減少又は少なくとも１００％減少し得る。いくつかの例では、細菌によってコロニー形成され得る昆虫の細胞、器官、領域又は組織（例えば、バクテリオーム又は腸のｖ４領域）のサイズは、コロニー形成の尺度として使用され；例えば、細胞、器官、領域又は組織のサイズが小さいほど、コロニー形成の減少の増加を示し得る。
【０１４２】
ｉ．細菌コロニー形成妨害剤のクラス
いくつかの例では、細菌コロニー形成妨害剤は、細菌の代謝を変化させる（阻害する）。昆虫の腸内に常在する細菌は、昆虫又はその内部の細胞若しくは器官内で成長するために、特定の栄養素の産生に依存する。例えば、ポリヒドロキシアルカノエート（ＰＨＡ）は、合成されて、炭素及びエネルギー源の保存化合物として使用される線状ポリエステルである。一般に、細菌が栄養欠乏状態などのストレスの多い環境に直面するとき、ＰＨＡ顆粒の生合成が促進される。実施例１に記載するように、ＰＨＡの合成は、昆虫腸の細菌コロニー形成（例えば、バークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）によるホソヘリカメムシ（Ｒｉｐｔｏｒｔｕｓ  ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ）の腸のコロニー形成など）を妨害するためにターゲティングすることができる例示的な細菌の代謝経路の１つである。
【０１４３】
従って、いくつかの例では、細菌コロニー形成妨害剤は、ＰＨＡ合成阻害剤である。ＰＨＡ顆粒は、主として、ｐｈａＡ（ケトチオラーゼ）、ｐｈａＢ（アセチル−ＣｏＡレダクターゼ）及びｐｈａＣ（ＰＨＡシンターゼ）の産物など、３つの異なる酵素によるアセチルコエンザイムＡ（アセチル−ＣｏＡ）から合成される。ＰＨＡ顆粒の表面は、多様なタンパク質、例えばＰｈａＰ（ＰＨＡ顆粒の表面タンパク質；ファジン）、ＰｈａＲ（ＰｈａＰの負の調節因子）及びＰｈａＺ（ＰＨＡデポリメラーゼ）によって周りを囲まれている。いくつかの例では、細菌コロニー形成妨害剤は、ＰＨＡ生合成に関与する遺伝子、例えばｐｈａＡ、ｐｈａＢ、ｐｈａＣ、ｐｈａＰ、ｐｈａＲ又はｐｈａＺ遺伝子発現の阻害剤である。他の例では、細菌コロニー形成妨害剤は、ＰｈａＡ、ＰｈａＢ、ＰｈａＣ、ＰｈａＰ、ＰｈａＲ又はＰｈａＺなど、ＰＨＡ生合成に関与するタンパク質に結合する。特定の例では、ＰＨＡ合成阻害剤は、バニリン又はその類似体である（表１；表２）。他の例では、ＰＨＡ合成阻害剤は、レブリン酸若しくはその類似体、例えば表４に掲載される類似体；アクリル酸若しくはその類似体、例えば表５に掲載される類似体；又は２−ブロモオクタン酸（２ＢＡ）若しくはその類似体、例えば表６に掲載される類似体である。また別の例では、ＰＨＡ生合成阻害剤は、フルフラール、２，３−ブタンジエン、３−（３，４−ジクロロフェニル）−１，１−ジメチル尿素（ＤＣＭＵ）又は４−ペンテン酸である。
【０１４４】
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【０１４５】
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【０１４６】
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【０１４７】
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【０１４８】
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【０１４９】
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【０１５０】
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【０１６０】
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【０１７４】
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【０１７５】
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【０１７７】
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【０１７８】
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【０１７９】
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【０１８０】
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【０１８１】
一部の例では、細菌コロニー形成妨害剤は、例えば、細菌細胞外皮の生合成（例えば、膜又は細菌細胞質を取り囲み、且つそれを保護する他の構造体、例えば細胞壁、内膜及び外膜の生合成）をターゲティングすることにより、細菌細胞の表面の特性を改変する。細胞外皮は、細菌細胞の最も外側の層を表し、一般に、細胞の保護、環境との連絡、細胞の細胞形状、安定性及び剛性の維持に機能を果たすと共に、細菌の適切な代謝、成長、分裂及びコロニー形成を可能にする。従って、いくつかの例では、細菌コロニー形成妨害剤は、リポ多糖（ＬＰＳ）、ペプチドグリカン、リポテイコ酸、テイコ酸、莢膜多糖及びリポアラビノマンナンなどの炭水化物含有高分子の生合成をはじめとする、細胞外皮の健常性に重要な分子の生合成に必要な遺伝子又はタンパク質をターゲティングする。
【０１８２】
例えば、ＬＰＳは、外膜の外葉の主成分を表し、３つのドメイン：脂質Ａ、コアオリゴ糖（ＯＳ）及びＯ−特異的多糖（又はＯ抗原）から構成される。実施例２及び３に記載されるように、ＬＰＳ生合成（例えば、コアオリゴ糖合成、例えばＬ−ヘプトース合成）は、昆虫の腸の細菌コロニー形成を妨害する（例えば、ホソヘリカメムシ（Ｒｉｐｔｏｒｔｕｓ  ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ）の腸内の内部共生体バークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）のコロニー形成を妨害する（実施例２）又はハリオモルファ・ハリス（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ  ｈａｌｙｓ）の腸内の内部共生体カンディダタス・パントエア・カルベキイ（Ｃａｎｄｉｄａｔｕｓ  Ｐａｎｔｏｅａ  ｃａｒｂｅｋｉｉ）のコロニー形成を妨害する（実施例３））ために、ターゲティングすることができる細胞外皮合成経路の一例である。
【０１８３】
従って、いくつかの例では、細菌コロニー形成妨害剤は、ＬＰＳ合成阻害剤である。いくつかの例では、ＬＰＳ合成阻害剤は、細菌内のコアオリゴ糖合成の阻害剤である。例えば、ＬＰＳ合成阻害剤は、ＷａａＡ、ＷａａＣ、ＷａａＦ若しくはＷａａＧ又は特定の酵素など、細菌内のコアオリゴ糖合成に関与する酵素を阻害し得る。いくつかの例では、ＬＰＳ合成阻害剤は、ＷａａＡ、ＷａａＣ、ＷａａＦ又はＷａａＧのアミノ酸配列を有するポリペプチドと少なくとも４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％、９８％、９９％又は１００％の配列同一性を有する酵素を阻害する。いくつかの例では、ＬＰＳ合成阻害剤は、ｗａａＡ、ｗａａＣ、ｗａａＦ又はｗａａＧなど、細菌内のコアオリゴ糖合成に関与する遺伝子の発現を阻害する。いくつかの例では、ＬＰＳ合成阻害剤は、ｗａａＡ、ｗａａＣ、ｗａａＦ又はｗａａＧのヌクレオチド配列を有するポリヌクレオチドと少なくとも４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％、９８％、９９％又は１００％の配列同一性を有する遺伝子の発現を阻害する。例示的なＬＰＳ合成阻害剤を表３に掲載する。
【０１８４】
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【０１８５】
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【０１８６】
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【０１８７】
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【０１８８】
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【０１８９】
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【０１９０】
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【０１９１】
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【０１９２】
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【０１９３】
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【０１９４】
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【０１９５】
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【０１９９】
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【０２００】
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【０２０１】
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【０２０２】
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【０２０３】
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【０２０４】
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【０２０６】
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【０２１０】
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【０２２４】
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【０２２９】
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【０２３０】
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【０２３１】
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【０２３４】
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【０２４０】
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【０２４１】
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【０２４３】
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【０２４４】
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【０２４５】
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【０２４６】
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【０２４７】
特定の例では、ＬＰＳ合成阻害剤（例えば、コアオリゴ糖合成阻害剤、例えばＬ−ヘプトース合成阻害剤）は、糖である。例えば、この糖は、ＡＤＰ−２−フルオロヘプトース（ＡＦＨ）であり得る。代わりに、糖は、２−アリール−５−メチル−４−（５−アリール−フラン−２−イル−メチレン）−２，４−ジヒドロ−ピラゾール−３−オン（ＤＨＰＯ）であり得る。いくつかの例では、糖は、ＡＦＨ及びＤＨＰＯである。いくつかの例では、糖は、ＡＤＰ−β−Ｌ−グリセロ−Ｄ−マンノ−ヘプトピラノースの構造類似体である。例えば、糖は、表７に挙げる１つ以上の化合物であり得る。いくつかの例では、糖は、ＡＤＰ−２−デオキシ−２−フルオロ−ヘプトースである。いくつかの例では、ＬＰＳ阻害剤は、細菌のｌ，ｄ−ヘプトシドのマンノピラノースコア構造を呈示する周辺糖の１２コピーを担持するフラーレンヘキサ付加物である。
【０２４８】
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【０２４９】
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【０２５０】
別の例では、ウンデカプレニル−ピロリン酸（ＵＰＰ）は、細菌ペプチドグリカン合成中に細胞膜を介してペプチドグリカン前駆体を輸送するのに必要な５５−炭素ポリイソプレノイド脂質である。ウンデカプレニルピロリン酸ホスファターゼ（Ｕｐｐ−Ｐａｓｅ、例えばＵｐｐＰ又はｂｃｒＣ）は、ＵＰＰの合成及び再循環に必要である。従って、いくつかの例では、細菌コロニー形成妨害剤は、Ｕｐｐ−Ｐａｓｅの阻害剤、例えばＵｐｐＰ阻害剤である。いくつかの例では、ＵｐｐＰ阻害剤は、バシトラシン、トリプロペプチンＣ（ＴＰＰＣ）、親油性ヒドロキシアルキルフェノール酸又は一連の安息香酸及びフェニルホスホン酸である。
【０２５１】
いくつかの例では、細菌コロニー形成妨害剤は、例えば、鞭毛の機能（例えば、回転）をターゲティングすることにより、細菌細胞の運動性を改変する。従って、いくつかの例では、細菌コロニー形成妨害剤は、鞭毛機能阻害剤である。いくつかの例では、鞭毛機能阻害剤は、セルロースである。
【０２５２】
細菌コロニー形成妨害剤は、単剤を含有する組成物に使用され得るか、又は異なる細菌コロニー形成妨害剤の混合物を含有する組成物に使用され得る。細菌コロニー形成妨害剤を含有する組成物は、任意の数又は種類の細菌コロニー形成妨害剤、例えば１種の細菌コロニー形成妨害剤、２、３、４、５、１０、１５、２０種又はそれを超える細菌コロニー形成妨害剤の少なくともいずれか概ね１つを含み得る。
【０２５３】
細菌コロニー形成妨害剤は、本明細書に記載の使用のいずれかのための組成物に配合することができる。組成物中の各細菌コロニー形成妨害剤の好適な濃度は、細菌コロニー形成妨害剤の効力、安定性、細菌コロニー形成妨害剤の数、製剤及び組成物の適用方法などの要因に応じて変動する。細菌コロニー形成妨害剤を含む例示的な製剤及び組成物は、「製剤及び組成物」と題するセクションに記載する。
【０２５４】
ｉｉ．細菌コロニー形成妨害剤を同定するためのスクリーニング方法
本明細書には、昆虫内の細菌のコロニー形成を阻害し、それによって昆虫の適応度を減少させるのに有効な細菌コロニー形成妨害剤を同定するためのスクリーニングアッセイが含まれる。スクリーニングアッセイは、（ａ）１種以上の薬剤に標的昆虫を暴露するステップと；（ｂ）（ｉ）標的昆虫の適応度を減少させ、且つ（ｉｉ）標的昆虫の腸内の細菌コロニー形成を阻害する薬剤を同定するステップとにより、細菌コロニー形成妨害剤を同定することを含む。
【０２５５】
宿主適応度は、候補薬剤が投与されていない昆虫と比較して、限定はされないが、繁殖率、寿命、移動性、生殖能力、体重、代謝率若しくは活動又は生存の測定値を含め、本明細書に記載の任意のパラメータによって測定され得る。適応度の減少は、所定の閾値又は参照レベルと比較することができる。例えば、適応度（例えば、全生存）の減少は、参照レベル（例えば、非処理の昆虫）と比べて約２％、５％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、１００％又は１００％超の減少であり得る。
【０２５６】
細菌コロニー形成の阻害は、インビトロ又はインビボアッセイを含め、当技術分野で公知のいくつかの方法により測定することができる。薬剤の結果としての昆虫における細菌コロニー形成への変化は、限定はされないが、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）、定量的ＰＣＲ、リアルタイムＰＣＲ、フローサイトメトリー、マイクロアレイ、蛍光顕微鏡法、透過型電子顕微鏡法、蛍光インサイチュハイブリダイゼーション（例えば、ＦＩＳＨ）及びＤＮＡシーケンシングをはじめとする方法によって決定され得る。コロニー形成の減少は、所定の閾値又は参照レベルと比較することができる。例えば、コロニー形成の減少は、参照レベル（例えば、非処理の細菌）と比べて約２％、５％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、１００％又は１００％超の減少であり得る。
【０２５７】
ＩＩＩ．標的細菌
本明細書に記載の細菌コロニー形成妨害剤によりターゲティングされる細菌には、限定はされないが、本明細書に記載される任意の細菌を含め、宿主の腸又はその内部の細胞若しくは器官に常在する任意の細菌が含まれ得る。宿主に常在する細菌としては、例えば、共生（例えば、宿主に有益な栄養素若しくは酵素を提供する内部共生微生物）病原菌又は片利共生微生物を挙げることができる。内部共生微生物は、一次内部共生又は二次内部共生体であり得る。共生細菌は、宿主の絶対共生体又は任意共生体のいずれであり得る。
【０２５８】
宿主に常在する微生物は、垂直伝播、水平伝播又は複数の伝播起源を含め、任意の伝播様式によって獲得され得る。昆虫共生体の伝播様式としては、環境決定、糞食性、母細胞若しくは卵表面の塗抹、社会的獲得、莢膜伝播又はゼリー様分泌を介した感染が挙げられる。腸共生体のようないくつかの共生体は、各世代の環境から水平に獲得される。例えば、ビーンバグ、ホソヘリカメムシ（Ｒｉｐｔｏｒｔｕｓ  ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ）（カメムシ目（Ｈｅｍｉｐｔｅｒａ）：ホソヘリカメムシ科（Ａｌｙｄｉｄａｅ））は、バークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）の特異的な腸共生体を保有し、これは、２齢幼虫により環境から経口的に獲得される。ビーンバグは、後方中腸第４領域（Ｍ４）内に特殊化された共生器官（陰窩）を有し、そこに共生体を保有する。
【０２５９】
本明細書に提供される方法及び組成物によってターゲティングされ得る例示的な細菌としては、限定はされないが、ゼノラブダス属種（Ｘｅｎｏｒｈａｂｄｕｓ  ｓｐｐ）、フォトラブダス属種（Ｐｈｏｔｏｒｈａｂｄｕｓ  ｓｐｐ）、カンディダトゥス属種（Ｃａｎｄｉｄａｔｕｓ  ｓｐｐ）、パントエア属種（Ｐａｎｔｏｅａ  ｓｐｐ）、ブフネラ属種（Ｂｕｃｈｎｅｒａ  ｓｐｐ）、ブラッタバクテリウム属種（Ｂｌａｔｔａｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｓｐｐ）、バウマニア属種（Ｂａｕｍａｎｉａ  ｓｐｐ）、ウィグルスウォーチア属種（Ｗｉｇｇｌｅｓｗｏｒｔｈｉａ  ｓｐｐ）、ボルバキア属種（Ｗｏｌｂａｃｈｉａ  ｓｐｐ）、リケッチア属種（Ｒｉｃｋｅｔｔｓｉａ  ｓｐｐ）、オリエンティア属種（Ｏｒｉｅｎｔｉａ  ｓｐｐ）、ソーダリス属種（Ｓｏｄａｌｉｓ  ｓｐｐ）、バークホルデリア属種（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ  ｓｐｐ）、カプリアビダス属種（Ｃｕｐｒｉａｖｉｄｕｓ  ｓｐｐ）、フランキア属種（Ｆｒａｎｋｉａ  ｓｐｐ）、シノリゾビウム属種（Ｓｎｉｒｈｉｚｏｂｉｕｍ  ｓｐｐ）、ストレプトコッカス属種（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ  ｓｐｐ）、ウォリネラ属種（Ｗｏｌｉｎｅｌｌａ  ｓｐｐ）、キシレラ属種（Ｘｙｌｅｌｌａ  ｓｐｐ）（例えば、キシレラ・ファスティディオーサ（Ｘｙｌｅｌｌａ  ｆａｓｔｉｄｉｏｓａ））、エルウィニア属種（Ｅｒｗｉｎｉａ  ｓｐｐ）、アグロバクテリウム属種（Ａｇｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｓｐｐ）、バチルス属種（Ｂａｃｉｌｌｕｓ  ｓｐｐ）、コメンサリバクター属種（Ｃｏｍｍｅｎｓａｌｉｂａｃｔｅｒ  ｓｐｐ．）（例えば、コメンサリバクター・インテスティニ（Ｃｏｍｍｅｎｓａｌｉｂａｃｔｅｒ  ｉｎｔｅｓｔｉｎｅ））、パエニバチルス属種（Ｐａｅｎｉｂａｃｉｌｌｕｓ  ｓｐｐ）、ストレプトミセス属種（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ  ｓｐｐ）、ミクロコッカス属種（Ｍｉｃｒｏｃｏｃｃｕｓ  ｓｐｐ）、コリネバクテリウム属種（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｓｐｐ）、アセトバクター属種（Ａｃｅｔｏｂａｃｔｅｒ  ｓｐｐ）（例えば、アセトバクター・ポモルム（Ａｃｅｔｏｂａｃｔｅｒ  ｐｏｍｏｒｕｍ））、シアノバクテリア属種（Ｃｙａｎｏｂａｃｔｅｒｉａ  ｓｐｐ）、サルモネラ属種（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ  ｓｐｐ）、ロドコッカス属種（Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ  ｓｐｐ）、シュードモナス属種（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ  ｓｐｐ）、ラクトバチルス属種（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｓｐｐ）（例えば、ラクトバチルス・プラタルム（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｐｌａｎｔａｒｕｍ））、リソバクター属種（Ｌｙｓｏｂａｃｔｅｒ  ｓｐｐ．）、ヘルバスピリラム属種（Ｈｅｒｂａｓｐｉｒｉｌｌｕｍ  ｓｐｐ．）、エンテロコッカス属種（Ｅｎｔｅｒｏｃｏｃｃｕｓ  ｓｐｐ）、グルコノバクター属種（Ｇｌｕｃｏｎｏｂａｃｔｅｒ  ｓｐｐ．）（例えば、グルコノバクター・モルビフェル（Ｇｌｕｃｏｎｏｂａｃｔｅｒ  ｍｏｒｂｉｆｅｒ））、アルカリゲネス属種（Ａｌｃａｌｉｇｅｎｅｓ  ｓｐｐ）、ハミルトネラ属種（Ｈａｍｉｌｔｏｎｅｌｌａ  ｓｐｐ．）、クレブシエラ属種（Ｋｌｅｂｓｉｅｌｌａ  ｓｐｐ）、パエニバチルス属種（Ｐａｅｎｉｂａｃｉｌｌｕｓ  ｓｐｐ）、セラチア属種（Ｓ���ｒｒａｔｉａ  ｓｐｐ．）、アルスロバクター属種（Ａｒｔｈｒｏｂａｃｔｅｒ  ｓｐｐ）、アゾトバクター属種（Ａｚｏｔｏｂａｃｔｅｒ  ｓｐｐ．）、コリネバクテリウム属種（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｓｐｐ）、ブレビバクテリウム属種（Ｂｒｅｖｉｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｓｐｐ）、レジエラ属種（Ｒｅｇｉｅｌｌａ  ｓｐｐ．）（例えば、レジエラ・インセクチコラ（Ｒｅｇｉｅｌｌａｎ  ｉｎｓｅｃｔｉｃｏｌａ））、サーマス属種（Ｔｈｅｒｍｕｓ  ｓｐｐ）、シュードモナス属種（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ  ｓｐｐ）、クロストリジウム属種（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ  ｓｐｐ）、モルティエラ属種（Ｍｏｒｔｉｅｒｅｌｌａ  ｓｐｐ．）（例えば、モルティエレラ・エロンガタ（Ｍｏｒｔｉｅｒｅｌｌａ  ｅｌｏｎｇａｔａ））又はエシェリキア属種（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ  ｓｐｐ）が挙げられる。
【０２６０】
本明細書に提供される方法及び組成物によりターゲティングされ得る細菌の非限定的な例を表８に示す。いくつかの例では、細菌コロニー形成妨害剤によりターゲティングされる細菌の１６Ｓ  ｒＲＮＡ配列は、表８に挙げる配列と少なくとも５０％、６０％、７０％、８０％、８５％、９０％、９５％、９７％、９９％、９９．９％又は１００％の同一性を有する。
【０２６１】
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【０２６２】
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【０２６３】
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【０２６４】
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【０２６５】
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【０２６６】
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【０２６７】
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【０２６８】
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【０２６９】
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【０２７０】
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【０２７１】
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【０２７２】
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【０２７３】
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【０２８３】
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【０２８４】
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【０２８５】
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【０２８６】
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【０２８７】
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【０２８８】
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【０２８９】
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【０２９０】
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【０２９１】
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【０２９２】
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【０２９３】
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【０２９４】
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【０２９５】
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【０２９６】
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【０２９７】
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【０２９８】
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【０２９９】
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【０３００】
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【０３０１】
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【０３０２】
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【０３０３】
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【０３０４】
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【０３０５】
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【０３０６】
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【０３０７】
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【０３０８】
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【０３０９】
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【０３１０】
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【０３１１】
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【０３１２】
ＩＶ．製剤及び組成物
本明細書に記載の組成物は、純粋な形態（例えば、組成物は、細菌コロニー形成妨害剤のみを含有する）又は組成物の適用若しくは送達を促進する１種以上の別の薬剤（例えば、賦形剤、送達ビヒクル、担体、希釈剤、安定剤など）との併用のいずれかで製剤化することができる。好適な賦形剤及び希釈剤の例として、限定はされないが、ラクトース、デキストロース、スクロース、ソルビトール、マンニトール、デンプン、アカシアゴム、リン酸カルシウム、アルギン酸塩、トラガカント、ゼラチン、ケイ酸カルシウム、微結晶性セルロース、ポリビニルピロリドン、セルロース、水、生理食塩水、シロップ、メチルセルロース、ヒドロキシ安息香酸メチル及びプロピル、タルク、ステアリン酸マグネシウム及び鉱油が挙げられる。組成物は、湿潤溶液（例えば、非イオン湿潤溶液）、例えばＳｉｌＷｅｔ（登録商標）を含み得る。
【０３１３】
適用、取扱い、輸送、保存を容易にすると共に、最大活性を可能にするために、細菌コロニー形成妨害剤は、他の物質と一緒に製剤化することができる。細菌コロニー形成妨害剤は、例えば、ベイト、濃縮エマルジョン、粉剤、乳化可能な濃縮物、燻蒸剤、ゲル、顆粒、マイクロカプセル化、種子処理物、懸濁液濃縮物、サスポエマルジョン製剤（ｓｕｓｐｏｅｍｕｌｓｉｏｎ）、錠剤、水溶性液体、顆粒水和剤若しくはドライフロアブル、水和剤及び微量溶液に製剤化することができる。
【０３１４】
細菌コロニー形成妨害剤は、水性懸濁液として又はこのような薬剤の濃縮製剤から調製されるエマルジョンとして適用することができる。こうした水溶性、水懸濁性又は乳化可能な製剤は、固体（通常、水和剤として知られる）、又は水和性顆粒剤、又は通常乳化可能な濃縮物として知られる液体又は水性懸濁液のいずれかである。圧縮して水和性顆粒剤を形成することができる水和剤は、細菌コロニー形成妨害剤、担体及び界面活性剤の均質混合物を含む。担体は、通常、アタパルガイト粘土、モンモリロナイト粘土、珪藻土又は精製ケイ酸塩から選択される。約０．５％〜約１０％の水和剤を含む効果的な界面活性剤は、スルホン化リグニン、濃縮ナフタレンスルホン酸塩、ナフタレンスルホン酸塩、アルキルベンゼンスルホン酸塩、アルキル硫酸塩及びアルキルフェノールのエチレンオキシド付加物などの非イオン性界面活性剤から見出される。
【０３１５】
乳化可能な濃縮物は、水混和性溶媒又は水混和性有機溶媒と乳化剤との混合物のいずれかである担体に溶解させた液体１リットル当たり約５０〜約５００グラムといった好適な濃度の細菌コロニー形成妨害剤を含有することができる。有用な有機溶媒としては、芳香族化合物、特にキシレン及び石油画分、具体的には石油の高沸点ナフタレン及びオレフィン部分、例えば重質芳香族ナフサが挙げられる。他の有機溶媒を使用し得、例えばロジン誘導体を含むテルペン溶媒、シクロヘキサノンなどの脂肪族ケトン並びに２−エトキシエタノールなどの複合アルコールなどがある。乳化可能な濃縮物の好適な乳化剤は、一般的なアニオン及び非イオン性界面活性剤から選択される。
【０３１６】
水性懸濁液は、約５重量％〜約５０重量％の濃度で水性担体中に分散させた非水溶性細菌コロニー形成妨害剤の懸濁液を含有する。懸濁液は、活性薬剤を微粉砕した後、水と界面活性剤とを含む担体中にそれを激しく混合することによって調製される。さらに、水性担体の密度及び粘度を高めるために無機塩及び合成又は天然ゴムなどの成分を添加し得る。
【０３１７】
細菌コロニー形成妨害剤は、土壌への適用に特に有用な顆粒状組成物としても適用され得る。顆粒状組成物は、例えば、粘土又は類似物質を含む担体中に分散させた、約０．５重量％〜約１０重量％の細菌コロニー形成妨害剤を含有することができる。こうした組成物は、通常、好適な溶媒に製剤を溶解させた後、約０．５〜約３ｍｍの範囲の好適な粒径に事前形成した顆粒状担体中にそれを添加することによって調製される。こうした組成物は、担体と化合物のドウ又はペーストを製造し、粉砕した後、乾燥して、所望の顆粒状粒径を取得することによっても製剤化され得る。
【０３１８】
本組成物を含有する粉剤は、カオリン粘土、粉砕火山岩などの好適な粉状農業用担体と一緒に粉末状に細菌コロニー形成妨害剤を均質混合することによって調製される。粉剤は、好適には、約１％〜約１０％のパケットを含有することができる。これらは、ダストブロワー機を用い、種子粉衣又は葉面散布として適用することができる。
【０３１９】
同様に、農芸化学で広く使用されているスプレーオイルなど、適切な有機溶媒、通常、石油中の溶液の形態で本製剤を適用するのが実用的である。
【０３２０】
また、細菌コロニー形成妨害剤は、エアゾール組成物の形態で適用することもできる。そうした組成物では、圧力発生プロペラント混合物である担体中にパケットを溶解又は分散させる。エアゾール組成物を容器内にパッケージし、その容器から噴霧弁を介して混合物を投与する。
【０３２１】
別の実施形態は、水中油型エマルジョンであり、この場合、エマルジョンは、各々が層状液晶コーティングを施されて、水相中に分散される油球を含み、各油球は、農業的に有効な少なくとも１つの化合物を含み、且つ（１）少なくとも１つの非イオン性親油性界面活性剤、（２）少なくとも１つの非イオン性親水性界面活性剤、及び（３）少なくとも１つのイオン性界面活性剤を含む単層又はオリゴラメラ層で個別にコーティングされており、これらの油球は、８００ナノメートル未満の平均粒径を有する。実施形態のさらなる情報は、２００７年２月１日に公開された米国特許出願公開第２００７００２７０３４号明細書に開示されている。使用しやすくするために、この実施形態は、「ＯＩＷＥ」と称される。
【０３２２】
加えて、一般に、上に開示される分子を製剤に使用する場合、こうした組成物は、他の成分を含有することもできる。これらの成分として、限定はされないが、（これは、非網羅的且つ非相互排他的リストである）湿潤剤、展着剤、粘着剤、浸透剤、緩衝剤、金属イオン封鎖剤、ドリフト低減剤、適合剤、消泡剤、洗浄剤及び乳化剤が挙げられる。いくつかの成分を直ちに説明する。
【０３２３】
湿潤剤は、液体に添加される場合、液体と、それが塗布される表面との間の界面張力を減少させることにより、液体の拡散又は浸透力を高める物質である。湿潤剤は、農薬製剤において下記の２つの主要な機能のために使用される：処理及び製造工程中、水中の粉末の湿潤速度を高めて、可溶性液体の濃縮物又は懸濁液濃縮物を製造すること；並びにスプレータンク内での水と製剤との混合中、水和剤の湿潤時間を短縮すると共に、水和性顆粒剤への水の浸透を向上させること。水和剤、懸濁液濃縮物及び水和性顆粒剤の例として、ラウリル硫酸ナトリウム；ジオクチルスルホコハク酸ナトリウム；アルキルフェノールエトキシレート；及び脂肪族アルコールエトキシレートがある。
【０３２４】
分散剤は、粒子の表面に吸着し、粒子の分散状態を保持すると共に、粒子が再凝集することを防ぐ上で役立つ物質である。分散剤は、製造工程中の分散及び懸濁を促進するため且つスプレータンク内で水中に粒子が再分散することを確実にするために農薬製剤に添加される。これらは、水和剤、懸濁液濃縮物及び水和性顆粒剤に広く使用されている。分散剤として使用される界面活性剤は、粒子表面に強力に吸着して、粒子の再凝集に対して荷電又は立体障害を付与する能力を有する。最も一般的に用いられる界面活性剤は、アニオン性、非イオン性又はこれら２種の混合物である。水和剤の場合、最も一般的な分散剤は、リグノスルホン酸ナトリウムである。懸濁液濃縮物の場合、高分子電解質、例えばナフタレンスルホン酸ナトリウム−ホルムアルデヒド縮合物などを用いて、非常に優れた吸着及び安定化が達成される。トリスチリルフェノールエトキシレートリン酸エステルも使用される。アルキルアリールエチレンオキシド縮合物及びＥＯ−ＰＯブロックコポリマーなどの非イオン系は、ときに、懸濁液濃縮物のための分散剤としてのアニオン系と組み合わせる。近年、新しいタイプの超高分子量ポリマー界面活性剤が分散剤として開発されている。これらは、非常に長い疎水性「骨格」と、「コーム」界面活性剤の「歯」を形成する多数のエチレンオキシド鎖を有する。これらの高分子量ポリマーは、疎水性骨格が粒子表面に多くの結合点を有するため、非常に優れた長期安定性を懸濁液濃縮物に付与することができる。農薬製剤に用いられる分散剤の例として、リグノスルホン酸ナトリウム；ナフタレンスルホン酸ナトリウム−ホルムアルデヒド縮合物；トリスチリルフェノールエトキシレートリン酸エステル；脂肪族アルコールエトキシレート；アルコールエトキシレート；ＥＯ−ＰＯ（エチレンオキシド−プロピレンオキシド）ブロックコポリマー；並びにグラフトコポリマーがある。
【０３２５】
乳化剤は、１液相の液滴の別の液相での懸濁を安定化する物質である。乳化剤がなければ、２つの液体は、２つの非混和性液相に分離するであろう。最も一般的に使用されている乳化剤ブレンドは、アルキルフェノール又は１２以上のエチレンオキシド単位を有する脂肪族アルコールと、ドデシルベンゼンスルホン酸の油溶性カルシウム塩とを含有する。８〜１８の親水性−親油性バランス（「ＨＬＢ」）の範囲は、通常、良好な安定エマルジョンを提供する。エマルジョン安定性は、ときに、少量のＥＯ−ＰＯブロックコポリマー界面活性剤の添加によって改善することができる。
【０３２６】
可溶化剤は、臨界ミセル濃度を超える濃度で水中にミセルを形成する界面活性剤である。その後、ミセルは、ミセルの疎水性部分内部の非水溶性材料を溶解するか又は可溶化させることができる。可溶化に通常用いられる界面活性剤の種類は、非イオン系、ソルビタンモノオレエート、ソルビタンモノオレエートエトキシレート及びオレイン酸メチルエステルである。
【０３２７】
界面活性剤は、ときに、標的に対する細菌コロニー形成妨害剤の生物学的性能を向上させるために、単独で又はスプレータンクミックスへのアジュバントとしての鉱油若しくは植物油などの他の添加剤と一緒に使用される。生物学的エンハンスメントのために使用される界面活性剤の種類は、一般に、細菌コロニー形成妨害剤の性質及び作用様式に応じて異なる。しかし、それらは、多くの場合、例えばアルキルエトキシレート；線状脂肪族アルコールエトキシレート；脂肪族アミンエトキシレートなど、非イオン系である。
【０３２８】
農業製剤の担体又は希釈剤は、必要な力価の製剤を付与するために細菌コロニー形成妨害剤に添加される物質である。担体は、通常、高い吸収力を備える物質であるのに対し、希釈剤は、吸収力の低い物質である。担体及び希釈剤は、粉剤の製剤、水和剤、顆粒剤及び水和性顆粒剤に使用される。
【０３２９】
有機溶媒は、主として、乳化可能な濃縮物、水中油型エマルジョン、サスポエマルジョン製剤及び微量製剤、また程度は低いが、顆粒製剤に使用される。ときに溶媒の混合物が用いられる。第１の主要溶媒群は、ケロセン又は精製パラフィンなどの脂肪族パラフィンオイルである。第２の主要群（及び最も一般的）は、キシレン並びにＣ９及びＣ１０芳香族溶媒の高分子量画分などの芳香族溶媒を含む。塩素化炭化水素は、製剤を水に乳化させる場合、細菌コロニー形成妨害剤の結晶化を防ぐための共溶媒として有用である。溶解力を高めるために、アルコールが共溶媒として用いられる場合がある。他の溶媒として、植物油、種子油並びに植物油及び種子油のエステルを挙げることができる。
【０３３０】
増粘剤又はゲル化剤は、液体のレオロジー又は流動性を調整すると共に、分散粒子若しくは液滴の分離及び沈殿を防ぐために、主として懸濁液濃縮物、エマルジョン及びサスポエマルジョン製剤に使用される。増粘剤、ゲル化剤及び沈殿防止剤は、一般に、２つのカテゴリー、即ち非水溶性粒子及び水溶性ポリマーに分類される。粘土及びシリカを用いて懸濁液濃縮物製剤を生成することが可能である。これらのタイプの物質の例として、限定はされないが、モンモリロナイト粘土、ベントナイト、ケイ酸アルミニウムマグネシウム及びアタパルガイトが挙げられる。増粘−ゲル化剤として水溶性多糖が長年使用されている。最も一般的に用いられる多糖の種類は、種子及び海藻の天然エキスであるか又はセルロースの合成誘導体である。これらの種類の物質の例として、限定はされないが、グアーガム；ローカストビーンガム；カラギーナン；アルギン酸塩；メチルセルロース；ナトリウムカルボキシメチルセルロース（ＳＣＭＣ）；ヒドロキシエチルセルロース（ＨＥＣ）が挙げられる。他の種類の沈殿防止剤は、加工デンプン、ポリアクリレート、ポリビニルアルコール及びポリエチレンオキシドを基材とするものである。別の優れた沈殿防止剤は、キサンタンガムである。
【０３３１】
微生物は、製剤化した物質の腐敗を引き起こし得る。従って、防腐剤を用いて、それらの作用を排除するか又は減少させる。こうした薬剤の例として、限定はされないが、プロピオン酸及びそのナトリウム塩；ソルビン酸及びそのナトリウム若しくはカリウム塩；安息香酸及びそのナトリウム塩；ｐ−ヒドロキシ安息香酸ナトリウム塩；ｐ−ヒドロキシ安息香酸メチル；及び１，２−ベンズイソチアゾリン−３−オン（ＢＩＴ）が挙げられる。
【０３３２】
界面活性剤が存在すると、多くの場合、製造中及びスプレータンクからの適用中の混合工程において、水を基材とする製剤の泡立ちを引き起こす。泡立ちの傾向を減少させるために、多くの場合、消泡剤が製造段階中又は瓶詰めの前のいずれかに添加される。一般に、２種類の消泡剤、即ちシリコーン及び非シリコーンがある。シリコーンは、通常、ジメチルポリビニルシロキサンの水性エマルジョンであり、非シリコーン剤は、オクタノール及びノナノール又はシリカなど、非水溶性油である。いずれの場合にも、消泡剤の機能は、界面活性剤を空気−水界面から移動させることである。
【０３３３】
「グリーン」剤（例えば、アジュバント、界面活性剤、溶媒）は、作物保護製剤の環境フットプリント全体を減少させることができる。グリーン剤は、生分解性であり、概して天然及び／又は持続可能な供給源、例えば植物及び動物起源に由来する。具体的な例として、植物油、種子油及びそれらのエステル、さらにアルコキシル化アルキルポリグルコシドがある。
【０３３４】
いくつかの例では、細菌コロニー形成妨害剤は、フリーズドライ又は凍結乾燥することができる。米国特許第４，３１１，７１２号明細書を参照されたい。細菌コロニー形成妨害剤は、後に水又は別の液体と接触させて再構成することができる。他の成分を凍結乾燥又は再構成した薬剤に添加し得、例えば他の農業用薬剤、農業的に許容される担体又は本明細書に記載の製剤に従う他の物質がある。
【０３３５】
本組成物の他の任意選択の特徴は、ＵＶ及び／又は酸性条件から細菌コロニー形成妨害剤を保護する担体又は送達ビヒクルを含む。いくつかの例では、送達ビヒクルは、ｐＨ緩衝剤を含む。いくつかの例では、本組成物は、約４．５〜約９．０の範囲のｐＨを有するように製剤化され、例えば５．０〜約８．０、約６．５〜約７．５又は約６．５〜約７．０の概ねいずれか１つのｐＨ範囲を含む。
【０３３６】
いくつかの例では、本組成物は、ベイトを含む。ベイトは、固体、ペースト、ペレット又は粉末状形態など、任意の好適な形態であり得る。ベイトは、昆虫によって運び去られ、前記昆虫の集団（例えば、コロニー又は巣箱）に持ち帰られることもある。ベイトは、続いて、コロニーの他のメンバーの飼料供給源としての役割を果たすことができ、従って多数の昆虫、潜在的に昆虫のコロニー全体に有効量の細菌コロニー形成妨害剤を付与し得る。
【０３３７】
ベイトは、好適な「ハウジング」又は「トラップ」に提供することができる。こうしたハウジング及びトラップは、市販されており、本明細書に記載される組成物を含むように既存のトラップを適合させることができる。ハウジング又はトラップは、例えば、箱形であり得るか、又は予め形成された状態で提供され得るか、又は例えば折り畳み可能なボール紙で形成され得る。ハウジング又はトラップに好適な材料としては、プラスチック及びボール紙、特に段ボール紙が挙げられる。トラップの内表面は、トラップ内に入った後の昆虫の移動を制限するために、粘着性物質で裏打ちすることができる。ハウジング又はトラップは、ベイトをその内部に入れて適所に保つことができる好適な凹みを含むことができる。昆虫が侵入後にトラップから容易に出ることができない点で、トラップは、ハウジングから区別される一方、ハウジングは、「餌場」として役割を果たし、そこで昆虫が摂餌し、捕食者を恐れることなく安心できる好ましい環境を昆虫に提供する。
【０３３８】
いくつかの例では、本組成物は、誘引剤（例えば、化学誘引剤）を含む。誘引剤は、組成物の近傍に成虫又は幼若昆虫（例えば、幼虫）を誘引し得る。誘引剤としては、動物、特に昆虫によって分泌される、同じ種の他の動物の行動又は発育に影響を及ぼす化学物質であるフェロモン類が挙げられる。他の誘引剤としては、糖及びタンパク質加水分解物のシロップ、酵母及び腐りかけの肉が挙げられる。誘引剤は、活性成分と組み合わせて、茎葉又は処理エリア内にある他の項目に噴霧することもできる。
【０３３９】
昆虫の行動、例えば昆虫の餌探し、産卵若しくは交配場所又は交配相手に影響を及ぼす様々な誘引剤が公知である。本明細書に記載される方法及び組成物において有用な誘引剤としては、例えば、オイゲノール、プロピオン酸フェネチル、ジメチルイソブチルシクロプロパンカルボン酸エチル、ベンゾジオキサンカルボン酸プロピル、ｃｉｓ−７，８−エポキシ−２−メチルオクタデカン、ｔｒａｎｓ−８，ｔｒａｎｓ−０−ドデカジエノール、ｃｉｓ−９−テトラデセナール（加えてｃｉｓ−１１−ヘキサデセナール）、ｔｒａｎｓ−１１−テトラデセナール、ｃｉｓ−１１−ヘキサデセナール、（Ｚ）−１１，１２−ヘキサデカジエナール、酢酸ｃｉｓ−７−ドデセニル、酢酸ｃｉｓ−８−ドデセニル、酢酸ｃｉｓ−９−ドデセニル、酢酸ｃｉｓ−９−テトラデセニル、酢酸ｃｉｓ−１１−テトラデセニル、酢酸ｔｒａｎｓ−１１−テトラデセニル（加えてｃｉｓ−１１）、酢酸ｃｉｓ−９，ｔｒａｎｓ−１１−テトラデカジエニル（加えてｃｉｓ−９，ｔｒａｎｓ−１２）、酢酸ｃｉｓ−９，ｔｒａｎｓ−１２−テトラデカジエニル、酢酸ｃｉｓ−７，ｃｉｓ−１１−ヘキサデカジエニル（加えてｃｉｓ−７，ｔｒａｎｓ−１１）、酢酸ｃｉｓ−３，ｃｉｓ−１３−オクタデカジエニル、酢酸ｔｒａｎｓ−３，ｃｉｓ−１３−オクタデカジエニル、アネトール及びサリチル酸イソアミルが挙げられる。加えて、様々な波長又は色の光を含め、化学誘引剤以外の手段も昆虫の誘引に使用され得る。
【０３４０】
細菌コロニー形成妨害剤は、昆虫が成長、生活、繁殖、摂餌又は寄生する媒体に配合することもできる。例えば、細菌コロニー形成妨害剤は、飼料容器、餌場、保護用ラッピング材又は巣箱に配合することができる。いくつかの用途の場合、細菌コロニー形成妨害剤は、粉末形態での適用又はトラップ若しくは餌場への適用のための固体支持体に結合され得る。例として、組成物が特定の昆虫のためのトラップにおいて又はベイトとして使用される用途の場合、組成物を固体支持体に結合するか又は時限放出材料に封入し得る。いくつかの例では、細菌コロニー形成妨害剤は、霧、煙又は昆虫の生息場所への適用に好適な他の処理物に製剤化される。
【０３４１】
製剤及びこれらの製剤から調製される使用形態において、細菌コロニー形成妨害剤は、農薬用薬剤（例えば、殺虫剤、殺蠕虫剤、滅菌剤、殺ダニ剤、殺線虫剤、軟体動物駆除剤又は殺真菌剤）、誘引剤、植物成長調整物、花粉、スクロース、肥料、植物成長調節剤、薬害軽減剤、セミオケミカル又は除草剤など、他の農業用薬剤との混合物であり得るか、又はそうではなければそれらと一緒に適用され得る。
【０３４２】
農業用薬剤に関するさらなる情報については、“Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  ａｎｄ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  ｏｆ  Ａｇｒｏｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｆｏｒｍｕｌａｔｉｏｎｓ”  ｅｄｉｔｅｄ  ｂｙ  Ｄ．Ａ．Ｋｎｏｗｌｅｓ，ｃｏｐｙｒｉｇｈｔ  １９９８  ｂｙ  Ｋｌｕｗｅｒ  Ａｃａｄｅｍｉｃ  Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓを参照されたい。また、“Ｉｎｓｅｃｔｉｃｉｄｅｓ  ｉｎ  Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ  ａｎｄ  Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔ−Ｒｅｔｒｏｓｐｅｃｔｓ  ａｎｄ  Ｐｒｏｓｐｅｃｔｓ”ｂｙ  Ａ．Ｓ．Ｐｅｒｒｙ，Ｉ．Ｙａｍａｍｏｔｏ，Ｉ．Ｉｓｈａａｙａ，ａｎｄ  Ｒ．Ｐｅｒｒｙ，ｃｏｐｙｒｉｇｈｔ  １９９８  ｂｙ  Ｓｐｒｉｎｇｅｒ−Ｖｅｒｌａｇも参照されたい。
【実施例】
【０３４３】
以下は、本発明の方法の例である。上記に提供される概要を考慮して、様々な他の実施形態を実施し得ることが理解される。
【０３４４】
実施例１：共生体細胞壁特性を改変することによる昆虫内の腸共生体のコロニー形成の妨害
本実施例は、ポリヒドロキシアルカノエート（ＰＨＡ）合成阻害剤の投与によって昆虫の適応度を減少させる目的での、半翅類昆虫、ビーンバグ（ホソヘリカメムシ（Ｒｉｐｔｏｒｔｕｓ  ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ））の腸共生体バークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）のコロニー形成の妨害を実証する。ビーンバグ（ホソヘリカメムシ（Ｒ．ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ）（カメムシ目（Ｈｅｍｉｐｔｅｒａ）：カメムシ亜目（Ｈｅｔｅｒｏｐｔｅｒａ）：ヘリカメムシ上科（Ｃｏｒｅｏｉｄｅａ））は、ダイズ及びササゲなどのマメ科作物の有名な病害虫である。
【０３４５】
実験計画：
昆虫飼育及びバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）感染
ホソヘリカメムシ（Ｒ．ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ）ビーンバグは、１６ｈ明期及び８ｈ暗期の長日条件下、２８℃の昆虫インキュベータ内で飼育する。手短には、ダイズ種子及び０．０５％アスコルビン酸含有蒸留水（ＤＷＡ）が供給される清潔なプラスチック容器内で幼虫を飼育する。プラスチック容器は、毎日掃除し、ダイズ種子及びＤＷＡは２日毎に新しいものに取り替える。昆虫が成体として現れたら、より大きいプラスチック容器に移し、ダイズ種子及びＤＷＡを供給する。加えて、産卵のためにコットンパッドをプラスチック容器の壁に付着させる。卵は、毎日回収し、孵化のための新しいケージに移す。新生幼虫が２齢幼虫に脱皮したら、バークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）のコロニー形成のために、１０７細胞／ｍｌの培養バークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）を含有するＤＷＡを小さいペトリ皿内に供給する。使用されるバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）共生体は、リファンピシン耐性（Ｒｆｒ）自然突然変異株ＲＰＥ７５である。
【０３４６】
ＰＨＡ合成阻害剤バニリンと一緒に培養したバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）の投与
ＰＨＡ合成阻害剤、バニリンは、Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ（Ｃａｔ  ｎｏ．Ｖ１１０４−２Ｇ）から購入する。ＹＧ培地中で調製されるバニリンの希釈標準濃度は、１ｇ／ｍｌである。共生体株を３０℃において旋回シェーカ（１５０ｒｐｍ）上のＹＧ培地（５０ｕｇ／ｍｌのリファンピシンを含有）中で対数初期まで増殖させる。陽性対照のために、バークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）をＹＧ培地単独で培養する。適切な抗生物質を含有するＹＧ寒天プレート上に培地を平板培養することにより、コロニー形成単位（ＣＦＵ）値を評価する。培地を遠心分離することにより、共生細胞を採取し、ＤＷＡに懸濁させ、ＤＷＡ中１０４ＣＦＵ／ｍＬに調節する。
【０３４７】
１齢幼虫が２齢幼虫に脱皮した直後、ＤＷＡを飼育容器から取り出して、幼虫が一晩水を飲まずに維持されるようにする。次に、１０４ＣＦＵ／ｍＬの共生細胞を含有するＤＷＡを２４ｈ飼育容器に供給し、これを２齢幼虫が直接利用して、ＰＨＡシンターゼ阻害剤と一緒に培養されたバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）共生体又はＹＧ培地単独で培養した陽性対照バークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）を獲得することができる。続いて、共生体含有ＤＷＡを共生体非含有ＤＷＡに取り換えて、幼虫を成体期まで飼育する。
【０３４８】
ホソヘリカメムシ（Ｒ．ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ）へのＰＨＡ合成阻害剤バニリンの直接供給
バニリン希釈標準溶液（１ｇ／ｍｌ）は、蒸留水に導入したストック溶液から調製した。バニリン希釈標準溶液を給餌チューブ中に投与し、ビーンバグ給餌のためのプラスチック飼育容器中に導入する。１齢幼虫が２齢幼虫に脱皮した直後、ＤＷＡを飼育容器から取り出して、幼虫が一晩水を飲まずに維持されるようにする。翌日、１０４ＣＦＵ／ｍＬの共生細胞と一緒にバニリン溶液を２４ｈ飼育容器に供給し、これを２齢幼虫が直接利用して、ＰＨＡシンターゼ阻害剤バニリン及びバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）共生体を獲得することができる。陽性対照は、１０４ＣＦＵ／ｍＬの共生細胞のみを供給される幼虫である。続いて、共生体含有ＤＷＡをＤＷＡに取り換えて、幼虫を成体期まで飼育する。
【０３４９】
ｑＰＣＲによるホソヘリカメムシ（Ｒ．ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ）中腸内にコロニー形成したバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）の定量
定量的ＰＣＲ（ｑＣＰＲ）は、（Ｋｉｋｕｃｈｉ  ｅｔ  ａｌ．２０１１；Ｋｉｋｕｃｈｉ  ａｎｄ  Ｆｕｋａｔｓｕ，２０１４）に記載されている通り、バークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）共生体のｄｎａＡ遺伝子の０．１５ｋｂ領域をターゲティングするプライマーＢＳｄｎａＡ−Ｆ及びＢＳｄｎａＡ−Ｒと共に、ｉＴａｑ  ＳＹＢＲ  ｇｒｅｅｎ（Ｂｉｏｒａｄ）及びＡｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ  ＱｕａｎｔＳｔｕｄｉｏ  ７  Ｆｌｅｘ  ＱＰＣＲ  ｓｙｓｔｅｍ（Ｔｈｅｒｍｏ  Ｆｉｓｈｅｒ）を使用して実施する。Ｂｌｏｏｄ＆Ｃｅｌｌ  Ｃｕｌｔｕｒｅ  ＤＮＡ  Ｍｉｎｉ  Ｋｉｔ（Ｑｉａｇｅｎ，Ｃａｔ  ｎｕｍｂｅｒ  １３３２３）を用いて、全ＤＮＡをＭ４及びＭ４Ｂ部分から抽出し、抽出したＤＮＡを２００μＬの水に溶出させる。ＰＣＲ混合物の各々は、１０μＬの体積を含む。ｑＰＣＲは、１．６℃／ｓのｑＰＣＲ増幅ランプ並びに下記の条件：１）９５℃で１０分、２）９５℃で１５秒、３）６０℃で３０秒、４）ステップ２〜３の反復４０×、５）９５℃で１５秒、６）６０℃で１分、７）０．１５℃／ｓへのランプ変更、８）９５℃で１秒を用いて実施する。ｄｎａＡ遺伝子の標準曲線は、プライマーＢＳｄｎａＡ−Ｆ及びＢＳｄｎａＡ−Ｒで増幅した標的ＰＣＲ断片の標準サンプルを用いて作成する。解析ソフトウエア（Ｔｈｅｒｍｏ  Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ，ＱｕａｎｔＳｔｕｄｉｏ  Ｄｅｓｉｇｎ  ａｎｄ  Ａｎａｌｙｓｉｓ）を用いて、ｑＰＣＲデータを解析する。
【０３５０】
ホソヘリカメムシ（Ｒ．ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ）適応度の測定
２齢幼虫へのＰＨＡシンターゼ阻害剤バニリンと一緒に培養したバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）の投与後又はバニリンの直接供給後の生存率並びに両方の陽性対照を孵化後２５日まで、死んだ昆虫の計数により毎日評価する。成虫出現率は、後期５齢幼虫から新しく脱皮した成虫を計数することにより評価する。体長及び体重を測定するために、成虫（脱皮後３日）をアセトン中に５分浸けることにより犠牲にして、７０℃のオーブンで３０分間完全に乾燥させる。ダイズ種子の重量を排除するため、犠牲にする前の２４ｈにダイズ種子を昆虫に供給しない。
【０３５１】
ＹＧ培地単独で培養したバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）を給餌し、且つバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）のみの直接供給を受けたホソヘリカメムシ（Ｒ．ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ）の陽性対照と比較して、ホソヘリカメムシ（Ｒ．ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ）子孫の中腸内のバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）の力価は、ホソヘリカメムシ（Ｒ．ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ）に対する、バニリンと一緒に培養したバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）の投与又はバニリンの直接供給のいずれによっても減少すると予想される。
【０３５２】
実施例２：糖類似体の投与による昆虫内の共生体コロニー形成の妨害
本実施例は、糖類似体、ＡＤＰ−２−フルオロヘプトース（ＡＦＨ）及び２−アリール−５−メチル−４−（５−アリール−フラン−２−イル−メチレン）−２，４−ジヒドロピラゾール−３−オン（ＤＨＰＯ）の投与により、昆虫の適応度を減少させるために、半翅類のモデル、ビーンバグ、即ちホソヘリカメムシ（Ｒｉｐｔｏｒｔｕｓ  ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ）内のバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）のコロニー形成の妨害を実証する。
【０３５３】
実験計画：
昆虫飼育及びバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）感染
ホソヘリカメムシ（Ｒ．ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ）ビーンバグは、１６ｈ明期及び８ｈ暗期の長日条件下、２８℃の昆虫インキュベータ内で飼育する。手短には、ダイズ種子及び０．０５％アスコルビン酸含有蒸留水（ＤＷＡ）が供給される清潔なプラスチック容器内で幼虫を飼育する。プラスチック容器は、毎日掃除し、ダイズ種子及びＤＷＡは２日毎に新しいものに取り替える。昆虫が成体として現れたら、より大きいプラスチック容器に移し、ダイズ種子及びＤＷＡを供給する。加えて、産卵のためにコットンパッドをプラスチック容器の壁に付着させる。卵は、毎日回収し、孵化のための新しいケージに移す。新生幼虫が２齢幼虫に脱皮したら、バークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）のコロニー形成のために、１０７細胞／ｍｌの培養バークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）を含有するＤＷＡを小さいペトリ皿内に供給する。バークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）共生体は、リファンピシン耐性（Ｒｆｒ）自然突然変異株ＲＰＥ７５である。
【０３５４】
糖類似体と一緒に培養したバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）の投与
Ｌ−ヘプトース合成を阻害する２つの糖類似体、ＡＤＰ−２−フルオロヘプトース（ＡＦＨ）（Ｄｏｈｉ  ｅｔ  ａｌ．，２００８，Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  １４，９５３０−９５３９）及び２−アリール−５−メチル−４−（５−アリール−フラン−２−イル−メチレン）−２，４−ジヒドロピラゾール−３−オン（ＤＨＰＯ）（Ｍｏｒｅａｕ  ｅｔ  ａｌ．，２００８．Ｂｉｏｏｒｇ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．Ｌｅｔｔ．１８，４０２２−４０２６）は、ＣＲＯにより合成される。ＹＧ培地中で調製されるＡＨＦ及びＤＨＰＯの希釈標準濃度は、１ｇ／ｍｌである。共生体株を３０℃において旋回シェーカ（１５０ｒｐｍ）上のＹＧ培地（５０ｕｇ／ｍｌのリファンピシンを含有）中で対数初期まで増殖させる。バークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）の陽性対照は、ＹＧ培地単独で培養する。適切な抗生物質を含有するＹＧ寒天プレート上に培地を平板培養することにより、コロニー形成単位（ＣＦＵ）値を評価する。培地を遠心分離することにより、共生細胞を採取し、ＤＷＡに懸濁させ、ＤＷＡ中１０４ＣＦＵ／ｍＬに調節する。
【０３５５】
１齢幼虫が２齢幼虫に脱皮した直後、ＤＷＡを飼育容器から取り出して、幼虫が一晩水を飲まずに維持されるようにする。次に、１０４ＣＦＵ／ｍＬの共生細胞を含有するＤＷＡを２４ｈ飼育容器に供給し、２齢幼虫は、これを直ちに利用して、ＡＨＦ若しくはＤＨＰＯと一緒に培養されたバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）又はＹＧ培地単独で培養した陽性対照バークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）共生体を獲得することができる。次に、共生体含有ＤＷＡを共生体非含有ＤＷＡに取り換えて、幼虫を成体期まで飼育する。
【０３５６】
ホソヘリカメムシ（Ｒ．ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ）への糖類似体の直接供給
Ｌ−ヘプトース合成を阻害する２つの糖類似体、ＡＦＨ及びＤＨＰＯ（Ｍｏｒｅａｕ  ｅｔ  ａｌ．，２００８．Ｂｉｏｏｒｇ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．Ｌｅｔｔ．１８，４０２２−４０２６）は、ＣＲＯにより合成される。ＡＦＨ及びＤＨＰＯの希釈標準溶液（１ｇ／ｍｌ）は、蒸留水に導入したストック溶液から調製した。２つの糖類似体希釈標準溶液を給餌チューブ中に投与し、ビーンバグ給餌のためのプラスチック飼育容器中に導入する。１齢幼虫が２齢幼虫に脱皮した直後、ＤＷＡを飼育容器から取り出して、幼虫が一晩水を飲まずに維持されるようにする。翌日、１０４ＣＦＵ／ｍＬの共生細胞と一緒にバニリン溶液を２４ｈ飼育容器に供給し、２齢幼虫がこれを直接利用して、ＡＦＨ及びＤＨＰＯ並びにバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）共生体を獲得することができる。陽性対照は、１０４ＣＦＵ／ｍＬの共生細胞のみを供給される幼虫である。次に、共生体含有ＤＷＡをＤＷＡに取り換えて、幼虫を成体期まで飼育する。
【０３５７】
ｑＰＣＲによる、ホソヘリカメムシ（Ｒ．ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ）中腸内にコロニー形成したバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）の定量
定量的ＰＣＲ（ｑＣＰＲ）は、（Ｋｉｋｕｃｈｉ  ｅｔ  ａｌ．２０１１；Ｋｉｋｕｃｈｉ  ａｎｄ  Ｆｕｋａｔｓｕ，２０１４）に記載されている通り、バークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）共生体のｄｎａＡ遺伝子の０．１５ｋｂ領域をターゲティングするプライマーＢＳｄｎａＡ−Ｆ及びＢＳｄｎａＡ−Ｒと共に、ｉＴａｑ  ＳＹＢＲ  ｇｒｅｅｎ（Ｂｉｏｒａｄ）及びＡｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ  ＱｕａｎｔＳｔｕｄｉｏ  ７  Ｆｌｅｘ  ＱＰＣＲ  ｓｙｓｔｅｍ（Ｔｈｅｒｍｏ  Ｆｉｓｈｅｒ）を使用して実施する。Ｂｌｏｏｄ＆Ｃｅｌｌ  Ｃｕｌｔｕｒｅ  ＤＮＡ  Ｍｉｎｉ  Ｋｉｔ（Ｑｉａｇｅｎ，Ｃａｔ  ｎｕｍｂｅｒ  １３３２３）を用いて、全ＤＮＡをＭ４及びＭ４Ｂ部分から抽出し、抽出したＤＮＡを２００μＬの水に溶出させる。ＰＣＲ混合物の各々は、１０μＬの体積を含む。ｑＰＣＲは、１．６℃／ｓのｑＰＣＲ増幅ランプ並びに下記の条件：１）９５℃で１０分、２）９５℃で１５秒、３）６０℃で３０秒、４）ステップ２〜３の反復４０×、５）９５℃で１５秒、６）６０℃で１分、７）０．１５℃／ｓへのランプ変更、８）９５℃で１秒を用いて実施する。ｄｎａＡ遺伝子の標準曲線は、プライマーＢＳｄｎａＡ−Ｆ及びＢＳｄｎａＡ−Ｒで増幅した標的ＰＣＲ断片の標準サンプルを用いて作成する。解析（Ｔｈｅｒｍｏ  Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ，ＱｕａｎｔＳｔｕｄｉｏ  Ｄｅｓｉｇｎ  ａｎｄ  Ａｎａｌｙｓｉｓ）ソフトウエアを用いて、ｑＰＣＲデータを解析する。
【０３５８】
ホソヘリカメムシ（Ｒ．ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ）適応度の測定
２齢幼虫へのＡＦＨ若しくはＤＨＰＯと一緒に培養したバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）の投与後又はＡＦＨ若しくはＤＨＰＯの直接供給後の生存率並びに両方の陽性対照を孵化後２５日まで、死んだ昆虫の計数により毎日評価する。成虫出現率は、後期５齢幼虫から新しく脱皮した成虫を計数することにより評価する。体長及び体重を測定するために、成虫（脱皮後３日）をアセトン中に５分浸けることにより犠牲にして、７０℃のオーブンで３０分間完全に乾燥させる。最後に、全ての適応度パラメータを記録する。ダイズ種子の重量を排除するため、犠牲にする前の２４ｈにダイズ種子を昆虫に供給しない。
【０３５９】
ＹＧ培地単独で培養したバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）を供給し、且つバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）のみの直接供給を受けたホソヘリカメムシ（Ｒ．ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ）の陽性対照と比較して、ホソヘリカメムシ（Ｒ．ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ）子孫の中腸内のバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）の力価は、ホソヘリカメムシ（Ｒ．ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ）に対する、２つの糖類似体、即ちＡＦＨ若しくはＤＨＰＯと一緒に培養したバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）の投与又はＡＦＨ若しくはＤＨＰＯの直接供給のいずれによっても減少すると予想される。
【０３６０】
実施例３：糖類似体を用いたカメムシ内の共生体コロニー形成の妨害
本実施例は、糖類似体の投与により、昆虫の適応度を減少させるために、半翅類のクサギカメムシ、ハリオモルファ・ハリス（スタール）（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ  ｈａｌｙｓ（Ｓｔａｌ））内の腸共生体カンディダタス・パントエア・カルベキイ（Ｃａｎｄｉｄａｔｕｓ  Ｐａｎｔｏｅａ  ｃａｒｂｅｋｉｉ）の妨害を記載する。
【０３６１】
実験設計：
カンディダタス・パントエア・カルベキイ（Ｃａｎｄｉｄａｔｕｓ  Ｐａｎｔｏｅａ  ｃａｒｂｅｋｉｉ）のコアオリゴ糖の合成に必要な遺伝子の同定
Ｇｅｎｂａｎｋにおいてカンディダタス・パントエア・カルベキイ（Ｃａｎｄｉｄａｔｕｓ  Ｐａｎｔｏｅａ  ｃａｒｂｅｋｉｉ）ゲノム（ＡＢ０１２５５４．１）を検索することにより、コアオリゴ糖を合成するための４つの遺伝子を同定した（表９）。これら４つの遺伝子の同定は、Ｐ．カルベキイ（Ｐ．ｃａｒｂｅｋｉｉ）がその細胞表面上にコアオリゴ糖を合成することを示唆するものである。加えて、これら４つの遺伝子は、ビーンバグ、ホソヘリカメムシ（Ｒｉｐｔｏｒｔｕｓ  ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ）からの腸共生体バークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）のコアオリゴ糖経路における遺伝子と高い類似性を共有する。
【０３６２】
2021530555.tif 000156
【０３６３】
ハリオモルファ・ハリス（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ  ｈａｌｙｓ）飼育株の飼育及び維持
ハリオモルファ・ハリス（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ  ｈａｌｙｓ）非休眠飼育株は、元々、Ｐｈｉｌｌｉｐ  Ａｌａｍｐｉ  Ｂｅｎｅｆｉｃｉａｌ  Ｉｎｓｅｃｔ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，Ｎｅｗ  Ｊｅｒｓｅｙ  Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ  ｏｆ  Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅから得られたものであり、実験室内の飼育ケージ（２４×２４メッシュを備える２９９ｃｍ正方形）中に維持される。これらは、グロースチャンバー（２８℃、６０〜７０％相対湿度及び１６：８［Ｌ：Ｄ］ｈの光周期）内に保持し、サヤインゲン及び卵を基材とする人工餌を含む餌が供給される。Ｈ．ハリス（Ｈ．ｈａｌｙｓ）産卵及び休憩のためにそれぞれサヤインゲン及びマサキ（Ｅｕｏｎｙｍｕｓ  ｊａｐｏｎｉｃｕｓ）をケージ内に備える。
【０３６４】
ハリオモルファ・ハリス（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ  ｈａｌｙｓ）の卵塊への噴霧による糖類似体の投与
希釈標準濃度ＡＨＦ及びＤＨＰＯは、水中１００μｇ／ｍｌである。ピーク産卵期間中１日でコロニーから葉ディスク上の計３０の卵塊を採取する。２つの糖類似体、即ちＡＨＦ及びＤＨＰＯ処理並びに水を噴霧する陰性対照があり、１０の卵塊を含む各々がペトリ皿内に配置される。１０の卵塊を、深型ペトリ皿（１５ｍｍ×１００ｍｍ）の各々に表を上にして載せる。Ｍａｓｔｅｒ  Ａｉｒｂｒｕｓｈ  Ｂｒａｎｄ  Ｃｏｍｐｒｅｓｓｏｒ  Ｍｏｄｅｌ  Ｃ−１６−Ｂ  Ｂｌａｃｋ  Ｍｉｎｉ  Ａｉｒｂｒｕｓｈ  Ａｉｒ  Ｃｏｍｐｒｅｓｓｏｒを用いて、ＡＨＦ、ＤＨＰＯ又は水（陰性対照）を卵塊（１つのペトリ皿当たり１ＭＬ）に適用する。コンプレッサーは、処理前、処理後及び処理中にエタノールで洗浄する。１／４インチチューブを用いて、コンプレッサーから液体を供給する。処理毎に新しいチューブを使用する。
【０３６５】
ハリオモルファ・ハリス（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ  ｈａｌｙｓ）適応度及び繁殖力の測定
噴霧された卵塊を、上の飼育株の飼育セクションと同じ条件下で飼育する。孵化した卵の数を各卵塊について記録し、１反復実験当たりの全卵塊について平均する。各容器内で新しく孵化した幼虫を飼育して、二齢幼虫への生存数を決定する。各齢の幼虫の生存率を、孵化後２５日まで、死んだ昆虫の計数により毎日評価する。成虫出現率は、後期５齢幼虫から新しく脱皮した成虫を計数することにより評価する。体長及び体重を測定するために、成虫（脱皮後３日）をアセトン中に５分浸けることにより犠牲にして、７０℃のオーブンで３０分間完全に乾燥させる。最後に、全ての適応度パラメータを記録する。餌の重量を排除するため、犠牲にする前の２４ｈにサヤインゲンを昆虫に供給しない。
【０３６６】
ｑＰＣＲによるカンディダタス・パントエア・カルベキイ（Ｃａｎｄｉｄａｔｕｓ  Ｐａｎｔｏｅａ  ｃａｒｂｅｋｉｉ）の定量
Ｂｌｏｏｄ＆Ｃｅｌｌ  Ｃｕｌｔｕｒｅ  ＤＮＡ  Ｍｉｎｉ  Ｋｉｔ（Ｑｉａｇｅｎ，Ｃａｔ  ｎｕｍｂｅｒ  １３３２３）を用いて、全ＤＮＡを中腸のＭ４及びＭ４Ｂ部分から抽出し、抽出したＤＮＡを２００μＬの水に溶出させる。定量的ＰＣＲ（ｑＣＰＲ）は、プライマー（フォワード：ＧＣＡＴＡＴＡＡＡＧＡＴＴＴＴＡＣＴＣＴＴＴＡＧＧＴＧＧＣ（配列番号５）及びリバース：ＣＴＣＧＡＡＡＧＣＡＣＣＡＡＴＣＣＡＴＴＴＣＴ（配列番号６））（Ｂａｎｓａｌ  ｅｔ  Ａｌ．２０１４）と共に、ｉＴａｑ  ＳＹＢＲ  ｇｒｅｅｎ（Ｂｉｏｒａｄ）及びＡｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ  ＱｕａｎｔＳｔｕｄｉｏ  ７  Ｆｌｅｘ  ＱＰＣＲ  ｓｙｓｔｅｍ（Ｔｈｅｒｍｏ  Ｆｉｓｈｅｒ）を使用して実施する。カメムシミトコンドリアＤＮＡの２つの対照プライマーを使用する（フォワード：ＣＧＡＡＴＣＣＣＡＴＴＧＴＴＴＧＴＧＴＧ（配列番号７）及びリバース：ＡＧＧＧＴＣＴＣＣＴＣＣＴＣＣＴＧＡＴＧ（配列番号８）（Ｂａｎｓａｌ  ｅｔ  Ａｌ．２０１４）。ＰＣＲ混合物の各々は、１０μＬの体積を含有する。ｑＰＣＲは、１．６℃／ｓのｑＰＣＲ増幅ランプ並びに下記の条件：１）９５℃で１０分、２）９５℃で１５秒、３）６０℃で３０秒、４）ステップ２〜３の反復４０×、５）９５℃で１５秒、６）６０℃で１分、７）０．１５℃／ｓへのランプ変更、８）９５℃で１秒を用いて実施する。解析（Ｔｈｅｒｍｏ  Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ，ＱｕａｎｔＳｔｕｄｉｏ  Ｄｅｓｉｇｎ  ａｎｄ  Ａｎａｌｙｓｉｓ）ソフトウエアを用いて、ｑＰＣＲデータを解析する。
【０３６７】
水のみを噴霧した卵から孵化した陰性対照子孫と比較して、Ｈ．ハリス（Ｈ．ｈａｌｙｓ）子孫の中腸内のＰ．カルベキイ（Ｐ．ｃａｒｂｅｋｉｉ）の力価は、２つの糖類似体、即ちＡＦＨ及びＤＨＰＯを卵塊に噴霧することによって減少すると予想される。
【０３６８】
水のみを噴霧した卵から孵化した陰性対照子孫と比較して、Ｈ．ハリス（Ｈ．ｈａｌｙｓ）子孫の適応度及び生殖能力は、２つの糖類似体、即ちＡＦＨ及びＤＨＰＯを卵塊に噴霧することによって減少することが予想される。
【０３６９】
総合すると、これらの実施例に記載されるデータは、複数の送達方法を用いてコロニー形成妨害剤で処理することにより、複数の半翅類を殺傷し、且つそれらの発育、生殖能力、寿命及び／又は内生細胞集団を減少させる、例えば適応度を減少させる能力を証明すると予想される。
【０３７０】
以下では、それぞれの半翅類昆虫宿主、クサギカメムシ（ハリオモルファ・ハリス（スタール）（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ  ｈａｌｙｓ（Ｓｔａｌ）））及びビーンバグ（ホソヘリカメムシ（Ｒｉｐｔｏｒｔｕｓ  ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ））における細菌共生体カンディダタス・パントエア・カルベキイ（Ｃａｎｄｉｄａｔｕｓ  Ｐａｎｔｏｅａ  ｃａｒｂｅｋｉｉ）（以後、「Ｐ．カルベキイ（Ｐ．ｃａｒｂｅｋｉｉ）」と呼ぶ）及びバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）の減少が各々の昆虫の適応度を減少させることを実証する実施例が提供される。
【０３７１】
実施例４．昆虫内の腸共生体の除去が宿主の適応度を減少させる
本実施例は、半翅類昆虫宿主、クサギカメムシ（ハリオモルファ・ハリス（スタール）（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ  ｈａｌｙｓ（Ｓｔａｌ）））における細菌共生体カンディダタス・パントエア・カルベキイ（Ｃａｎｄｉｄａｔｕｓ  Ｐａｎｔｏｅａ  ｃａｒｂｅｋｉｉ）（以後、「Ｐ．カルベキイ（Ｐ．ｃａｒｂｅｋｉｉ）」と呼ぶ）のコロニー形成の妨害が宿主の適応度を減少させることを実証する。Ｈ．ハリス（Ｈ．ｈａｌｙｓ）の発育段階を図８に示す。
【０３７２】
実験計画：
ハリオモルファ・ハリス（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ  ｈａｌｙｓ）飼育株の飼育及び維持
ハリオモルファ・ハリス（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ  ｈａｌｙｓ）非休眠飼育株は、Ｐｈｉｌｌｉｐ  Ａｌａｍｐｉ  Ｂｅｎｅｆｉｃｉａｌ  Ｉｎｓｅｃｔ  Ｒｅａｒｉｎｇ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ（ＢＩＲＬ），Ｓｔａｔｅ  ｏｆ  Ｎｅｗ  Ｊｅｒｓｅｙ  Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ  ｏｆ  Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅから取得した。ＢＩＲＬからの受け取り後、飼育株をＴｈｅｒｍｏ  Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ  ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ  ｉｎｃｕｂａｔｏｒｓ（２４℃、周囲湿度及び１６：８［Ｌ：Ｄ］の光周期）内に維持した。成虫ケージには、新鮮なサヤインゲンと、ピーナッツ、ヒマワリ種子及びソバの種子混合物とを供給し；サヤインゲンは、１日おきに交換し、種子混合物は、毎週交換した。コロニーケージから卵クラッチを毎日回収し、５ｍＬ水チューブ（綿を詰めた）のみを含む孵化容器内に配置した（全ての卵クラッチを１つの容器に入れる）。孵化したら、スプリットピー、アーモンド、ソバ、ヒマワリ種子、小麦胚芽、アスコルビン酸及びウェッソン（Ｗｅｓｓｏｎ）塩を含む餌ペレット（自由給餌）を幼虫に供給した。
【０３７３】
共生体を除去するための卵の処理
４〜５日齢のＨ．ハリス（Ｈ．ｈａｌｙｓ）卵クラッチを絶対（約９５％）エタノール中に５分浸し、続いて８％次亜塩素酸ナトリウム（強力漂白剤）中に４５秒浸し、最後に精製水で穏やかにすすいだ後、ペーパータオル上に載せて乾燥させた。対照の卵は、未処理のままとした。処理の効果を確認するために、２齢、３齢及び４齢の処理幼虫及び対照幼虫のサブセットからＤＮＡを抽出し、以下に記載するように、ｑＰＣＲを用いてＰ．カルベキイ（Ｐ．ｃａｒｂｅｋｉｉ）共生体についてスクリーニングした。Ｐ．カルベキイ（Ｐ．ｃａｒｂｅｋｉｉ）存在量は、処理群で減少した（図１）。
【０３７４】
ＲＴ−ｑＰＣＲによるＰ．カルベキイ（Ｐ．ｃａｒｂｅｋｉｉ）力価の定量
全ＲＮＡ単離及び精製キット（いずれもＴｈｅｒｍｏ  Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ製）を用いて、幼虫から全ＲＮＡを抽出し、抽出したＲＮＡを１００μＬの水に溶出させた。定量的逆転写ＰＣＲ（ＲＴ−ｑＣＰＲ）は、Ｐ．カルベキイ（Ｐ．ｃａｒｂｅｋｉｉ）ＤＮＡＫ遺伝子をターゲティングするプライマー（フォワードプライマー配列：ＴＧＣＡＧＡＡＡＴＴＴＧＴＧＧＣＧＧＴＧ（配列番号１）；リバースプライマー配列：ＣＧＴＴＧＣＣＴＣＡＧＡＡＡＡＣＧＧＴＧ（配列番号２））と共に、ＲＴ−ｑＰＣＲキット（Ｔｈｅｒｍｏ  Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を使用して実施した。細菌の量を正規化するために、カメムシ６０Ｓ  ｒＲＮＡ遺伝子のためのプライマー（フォワードプライマー配列：ＡＡＣＡＧＧＣＡＡＧＣＴＧＣＴＡＴＣＴＣ（配列番号３）及びリバースプライマー配列：ＣＴＧＴＣＣＣＴＴＧＧＴＧＧＴＴＣＴＴＴ（配列番号４））を使用した。ＰＣＲ混合物は、それぞれ１０μＬの体積であった。ＲＴ−ｑＰＣＲは、１．６℃／ｓのＰＣＲ増幅ランプ並びに下記の条件：１）４８℃で３０分；２）９５℃で１０分；３）９５℃で１５秒；４）５５℃で３０秒；５）ステップ３〜４の反復４０×；６）９５℃で１５秒；７）５５℃で１分；８）０．１５℃／ｓへのランプ変更；９）９５℃で１秒を用いて実施した。解析ソフトウエア（Ｔｈｅｒｍｏ  Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を用いて、ＲＴ−ｑＰＣＲデータを解析した。
【０３７５】
反復及びデータ収集のセットアップ
卵処理後、卵を孵化させ、２齢まで（この期間幼虫は飲水のみを必要とする）発育させた。各反復実験のために、各処理から１０匹の２齢幼虫を、ペーパータオル、水チューブ及びサヤインゲンを含むプラスチック容器内に配置し；水チューブは、毎週、サヤインゲンは、１日おきに交換した。反復総数は、対照処理が２８、漂白剤／エタノール処理が２３であった。生存体の数及び各虫齢の虫の数を各反復実験について毎日記録した。共生体除去により、対照と比べて、連続した発育虫齢間の平均時間量が増加し（図２Ａ）、成体期までの平均時間が６日増加した（図２Ｂ）。
【０３７６】
幼虫が成体に達したら、各処理群からの成虫を大きいコロニーケージ中にそれぞれプールし、そこで成虫（雄及び雌）の数、卵塊の数並びに１卵塊当たりの卵の数を毎日計数した。
【０３７７】
各卵塊中の卵の平均数は、対照と比べて、エタノール処理及び漂白剤処理した卵から飼育した雌の場合、有意に低かった（図４）。表１０は、対照及び漂白剤処理群からの雌の繁殖力の比較を示す。漂白剤及びエタノール処理卵（漂白剤処理）から飼育した雌は、対照よりも４２％少ない卵塊及び４８．１％少ない卵総数を産生した。
【０３７８】
2021530555.tif 000157
【０３７９】
漂白剤／エタノール処理群又は対照群からの同齢のＨ．ハリス（Ｈ．ｈａｌｙｓ）個体から腸を切除した。漂白剤／エタノール処理群において、腸の健康状態は、劣っていることが観察され、共生体を含む腸のｖ４領域は、変性していた（図３Ａ）。
【０３８０】
漂白剤／エタノール処理群又は対照群からの同齢のＨ．ハリス（Ｈ．ｈａｌｙｓ）個体間で昆虫のサイズ及び色が異なることが観察された（図３Ｂ）。
【０３８１】
比較のために、前胸背板の幅（カメムシの標準的な適応度尺度）を全ての雄及び雌について測定した。前胸背板の幅は、漂白剤処理卵から孵化された雄及び雌個体で有意に減少した（図３Ｃ）。
【０３８２】
実施例５：共生体のポリヒドロキシアルカノエート（ＰＨＡ）合成能力を改変することによる昆虫内腸共生体コロニー形成の妨害
本実施例は、ポリヒドロキシアルカノエート（ＰＨＡ）合成阻害剤の投与による、クサギカメムシ（ハリオモルファ・ハリス（スタール）（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ  ｈａｌｙｓ（Ｓｔａｌ）））内の腸共生体Ｐ．カルベキイ（Ｐ．ｃａｒｂｅｋｉｉ）のコロニー形成の妨害を実証する。
【０３８３】
実験計画：
使用したポリヒドロキシアルカノエート（ＰＨＡ）合成阻害剤は、バニリン、レブリン酸、アクリル酸（ＡＡ）及び２−ブロモオクタン酸（２ＢＡ）であった。
【０３８４】
ハリオモルファ・ハリス（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ  ｈａｌｙｓ）飼育株の飼育及び維持
ハリオモルファ・ハリス（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ  ｈａｌｙｓ）非休眠飼育株は、実施例４に記載のように飼育した。卵クラッチをコロニーケージから毎日回収して、３０ｍＬの水チューブ（綿で詰めた）と、新鮮なサヤインゲンと、ピーナッの種子混合物とを含む孵化容器（各容器に最大５つの卵クラッチ）内に配置した。
【０３８５】
卵塊処理によるＰＨＡ合成阻害剤の投与
ＰＨＡ合成阻害剤（バニリン、レブリン酸、アクリル酸（ＡＡ）及び２−ブロモオクタン酸（２ＢＡ））の希釈標準濃度を水中最大１００μｇ／ｍｌまで調製した。ＰＨＡ阻害剤の溶液に非イオン性湿潤溶液を０．０２５％の最終濃度まで添加して、卵に対する薬剤の湿潤性及び拡散を増加させた。陰性対照として、０．０２５％非イオン性湿潤溶液に薬剤を添加せず、陽性対照として、１００μｇ／ｍｌの抗生物質リファマイシンＳを使用した。ピーク産卵期間中１日でコロニーから葉ディスク上の卵塊を回収した。次に、底にペーパータオルを敷いた容器内に各卵塊を配置し、綿を詰めた水チューブを孵化幼生の給水源として付与した。１００μｌの薬剤をピペットで卵の上に掛け、それらを完全に濡らした。これにより、細菌が宿主にコロニー形成できる前に薬剤を細菌と直接相互作用させた。１齢孵化幼生が２齢幼虫段階に脱皮したら、５００ｍｇの餌ペレットの形態で給餌した（上の「ハリオモルファ・ハリス（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ  ｈａｌｙｓ）飼育株の飼育及び維持」のセクションを参照されたい）。実施例４に記載したように、共生体レベルについてアッセイするために、後期２齢幼虫を回収し、凍結して、ＤＮＡを抽出した。
【０３８６】
結果
Ｐ．カルベキイ（Ｐ．ｃａｒｂｅｋｉｉ）のレベルは、陰性（水）対照に比べて、陽性対照（リファマイシンＳ）で有意に低かった。使用した４つのＰＨＡ阻害剤（バニリン、レブリン酸、アクリル酸（ＡＡ）及び２−ブロモオクタン酸（２ＢＡ））は、水対照と比べて、１宿主当たりの共生体レベルの減少をもたらした（図５）。
【０３８７】
Ｐ．カルベキイ（Ｐ．ｃａｒｂｅｋｉｉ）によるコロニー形成が減少したＨ．ハリス（Ｈ．ｈａｌｙｓ）の適応度の減少を示す実施例４からの結果によれば、共生体のレベルが低いほど、ＰＨＡ阻害剤処理昆虫の適応度の減少を招き得る。ＰＨＡシンターゼ阻害剤は、本発明に有用なものとして採用される。
【０３８８】
実施例６．共生体の細胞壁成分を改変することによる昆虫内の腸共生体コロニー形成の妨害
本実施例は、ＵｐｐＰ阻害剤、即ちバシトラシンの投与による、クサギカメムシ（ハリオモルファ・ハリス（スタール）（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ  ｈａｌｙｓ（Ｓｔａｌ）））内の腸共生体Ｐ．カルベキイ（Ｐ．ｃａｒｂｅｋｉｉ）のコロニー形成の妨害を実証する。
【０３８９】
実験計画：
ハリオモルファ・ハリス（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ  ｈａｌｙｓ）飼育株の飼育及び維持
ハリオモルファ・ハリス（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ  ｈａｌｙｓ）非休眠飼育株は、実施例４に記載のように飼育した。卵クラッチをコロニーケージから毎日回収して、３０ｍＬの水チューブ（綿で詰めた）と、新鮮なサヤインゲンと、ピーナッの種子混合物とを含む孵化容器（各容器に最大５つの卵クラッチ）内に配置した。
【０３９０】
卵塊処理によるＵｐｐＰ阻害剤の投与
バシトラシンの希釈標準濃度を水中最大１００μｇ／ｍｌまで調製し、Ｓｉｌｗｅｔ（登録商標）Ｌ−７７を０．０２５％の最終濃度まで添加して、卵に対する薬剤の湿潤性及び拡散を増加させた。陰性対照として、湿潤溶液に薬剤を添加せず、陽性対照として、１００μｇ／ｍｌの抗生物質リファマイシンＳを使用した。ピーク産卵期間中１日でコロニーから葉ディスク上の卵塊を回収した。次に、底にペーパータオルを敷いた容器内に各卵塊を配置し、綿を詰めた水チューブを孵化幼生の給水源として付与した。１００μｌの薬剤をピペットで卵の上に掛け、それらを完全に濡らした。これにより、細菌が宿主にコロニー形成できる前に薬剤を細菌と直接相互作用させた。１齢孵化幼生が２齢幼虫段階に脱皮したら、前述した人工餌を５００ｍｇペレットの形態で給餌した。３齢段階に脱皮するまで、同じ餌を２齢幼虫に供給した。実施例４に記載したように、共生体レベルについてアッセイするために、３齢幼虫を回収し、凍結して、ＤＮＡを抽出した。
【０３９１】
結果
Ｐ．カルベキイ（Ｐ．ｃａｒｂｅｋｉｉ）のレベルは、陰性対照に比べて、陽性対照（リファマイシンＳ）及びバシトラシン処理群で有意に低かった（図６）。Ｐ．カルベキイ（Ｐ．ｃａｒｂｅｋｉｉ）によるコロニー形成が減少したＨ．ハリス（Ｈ．ｈａｌｙｓ）の適応度の減少を示す実施例４からの結果によれば、共生体のレベルが低いほど、ＵｐｐＰ阻害剤処理昆虫の適応度の減少を招き得る。ＵｐｐＰ阻害剤は、本発明に有用なものとして採用される。
【０３９２】
実施例７．共生体の鞭毛機構を干渉することによる昆虫内の腸共生体コロニー形成の妨害
本実施例は、鞭毛機能阻害剤、即ちセルロースの投与による、半翅類昆虫宿主、クサギカメムシ（ハリオモルファ・ハリス（スタール）（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ  ｈａｌｙｓ（Ｓｔａｌ）））内の腸共生体Ｐ．カルベキイ（Ｐ．ｃａｒｂｅｋｉｉ）のコロニー形成の妨害を実証する。
【０３９３】
実験計画：
ハリオモルファ・ハリス（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ  ｈａｌｙｓ）飼育株の飼育及び維持
ハリオモルファ・ハリス（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ  ｈａｌｙｓ）非休眠飼育株は、実施例４に記載のように飼育した。卵クラッチをコロニーケージから毎日回収して、３０ｍＬの水チューブ（綿で詰めた）と、新鮮なサヤインゲンと、ピーナッの種子混合物とを含む孵化容器（各容器に最大５つの卵クラッチ）内に配置した。
【０３９４】
卵塊処理による鞭毛機能阻害剤の投与
セルロースの希釈標準濃度を水中最大１００μｇ／ｍｌまで調製した。セルロースの溶液に非イオン性湿潤溶液を０．０２５％の最終濃度まで添加して、卵に対する薬剤の湿潤性及び拡散を増加させた。陰性対照として、湿潤溶液に薬剤を添加せず、陽性対照として、１００μｇ／ｍｌの抗生物質リファマイシンＳを使用した。ピーク産卵期間中１日でコロニーから葉ディスク上の卵塊を回収した。次に、底にペーパータオルを敷いた容器内に各卵塊を配置し、綿を詰めた水チューブを孵化幼生の給水源として付与した。１００μｌの薬剤をピペットで卵の上に掛け、それらを完全に濡らした。これにより、細菌が宿主にコロニー形成できる前に薬剤を細菌と直接相互作用させた。１齢孵化幼生が２齢幼虫段階に脱皮したら、前述した人工餌を５００ｍｇペレットの形態で給餌した。３齢段階に脱皮するまで、同じ餌を２齢幼虫に供給した。実施例４に記載したように、共生体レベルについてアッセイするために、３齢幼虫を回収し、凍結して、ＤＮＡを抽出した。
【０３９５】
結果
Ｐ．カルベキイ（Ｐ．ｃａｒｂｅｋｉｉ）のレベルは、陰性対照に比べて、陽性対照（リファマイシンＳ）及びセルロース処理群で有意に低かった（図７）。使用した細菌鞭毛機能阻害剤は、１宿主当たりの共生体レベルの減少をもたらした。Ｐ．カルベキイ（Ｐ．ｃａｒｂｅｋｉｉ）によるコロニー形成が減少したＨ．ハリス（Ｈ．ｈａｌｙｓ）の適応度の減少を示す実施例４からの結果に基づいて、共生体のレベルが低いほど、細胞鞭毛機能阻害剤処理昆虫の適応度の減少を招き得る。鞭毛機能阻害剤は、本発明に有用なものとして採用される。
【０３９６】
実施例８：糖類似体を用いたカメムシ内の共生体コロニー形成の妨害
本実施例は、糖類似体の投与による、半翅類のクサギカメムシ、ハリオモルファ・ハリス（スタール）（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ  ｈａｌｙｓ（Ｓｔａｌ））内の腸共生体Ｐ．カルベキイ（Ｐ．ｃａｒｂｅｋｉｉ）の妨害を記載する。本実施例は、糖類似体が半翅類の昆虫を殺傷すると共に、それらの発育、生殖能力、寿命及び内生細胞集団を減少させる、例えば適応度を減少させる能力を評価するために提供される。
【０３９７】
実験設計：
Ｐ．カルベキイ（Ｐ．ｃａｒｂｅｋｉｉ）のコアオリゴ糖の合成に必要な遺伝子の同定
ＧｅｎｂａｎｋにおいてＰ．カルベキイ（Ｐ．ｃａｒｂｅｋｉｉ）ゲノム（ＡＢ０１２５５４．１）を検索することにより、コアオリゴ糖を合成するための４つの遺伝子を同定した（表１１）。これら４つの遺伝子の同定は、Ｐ．カルベキイ（Ｐ．ｃａｒｂｅｋｉｉ）がその細胞表面上にコアオリゴ糖を合成できることを示唆するものである。これらのデータは、糖類似体の投与を通してコアオリゴ糖合成プロセスを阻害することによるハリオモルファ・ハリス（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ  ｈａｌｙｓ）内のＰ．カルベキイ（Ｐ．ｃａｒｂｅｋｉｉ）コロニー形成の妨害の根拠を付与する。
【０３９８】
2021530555.tif 000158
【０３９９】
ハリオモルファ・ハリス（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ  ｈａｌｙｓ）飼育株の飼育及び維持
ハリオモルファ・ハリス（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ  ｈａｌｙｓ）非休眠飼育株は、実施例４に記載のように取得される。ＢＩＲＬから受け取り後、昆虫を前述のようなグロースチャンバー内に保持し、ペレット餌を供給する。Ｈ．ハリス（Ｈ．ｈａｌｙｓ）産卵及び休憩のためにそれぞれサヤインゲン及びマサキ（Ｅｕｏｎｙｍｕｓ  ｊａｐｏｎｉｃｕｓ）をケージ内に備える。
【０４００】
ハリオモルファ・ハリス（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ  ｈａｌｙｓ）の卵塊への噴霧による糖類似体の投与
ＷａａＣ（ヘプトシルトランスフェラーゼ）の機能を阻害する２つの糖類似体、ＡＤＰ−２−フルオロヘプトース（ＡＦＨ）（Ｄｏｈｉ  ｅｔ  ａｌ．，Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  １４（３１）：９５３０−９５３９，２００８）及び２−アリール−５−メチル−４−（５−アリール−フラン−２−イル−メチレン）−２，４−ジヒドロ−ピラゾール−３−オン（ＤＨＰＯ）（Ｍｏｒｅａｕ  ｅｔ  ａｌ．，Ｂｉｏｏｒｇ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．Ｌｅｔｔ．１８（１４）：４０２２−４０２６，２００８）は、Ｃｏｎｔｒａｃｔ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｏｒｇａｎｉｚａｔｉｏｎ（ＣＲＯ）により合成される。
【０４０１】
ＡＦＨ及びＤＨＰＯの希釈標準濃度は、水中１００μｇ／ｍｌである。ピーク産卵期間中１日でコロニーから葉ディスク上の計３０の卵塊を採取する。１０の卵塊を、深型ペトリ皿（１５ｍｍ×１００ｍｍ）の各ウェルに表を上にして載せる。Ｍａｓｔｅｒ  Ａｉｒｂｒｕｓｈ  Ｂｒａｎｄ  Ｃｏｍｐｒｅｓｓｏｒ  Ｍｏｄｅｌ  Ｃ−１６−Ｂ  Ｂｌａｃｋ  Ｍｉｎｉ  Ａｉｒｂｒｕｓｈ  Ａｉｒ  Ｃｏｍｐｒｅｓｓｏｒを用いて、ＡＦＨ、ＤＨＰＯ又は水（陰性対照）を卵塊（１つのペトリ皿当たり１ｍＬ）に適用する。コンプレッサーは、処理前、処理後及び処理中にエタノールで洗浄する。１／４インチチューブを用いて、コンプレッサーから液体を供給する。処理毎に新しいチューブを使用する。
【０４０２】
ハリオモルファ・ハリス（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ  ｈａｌｙｓ）適応度及び繁殖力の測定
噴霧された卵塊を、前述した条件下で飼育する。孵化した卵の数を各卵塊について記録し、１反復実験当たりの全卵塊について平均する。各容器内で新しく孵化した幼虫を飼育して、二齢幼虫への生存数を決定する。各齢の幼虫の生存率を、孵化後２５日まで、死んだ昆虫の計数により毎日評価する。成虫出現率は、後期５齢幼虫から新しく脱皮した成虫を計数することにより評価する。体長及び体重を測定するために、成虫（脱皮後３日）をアセトン中に５分浸けることにより犠牲にして、７０℃のオーブンで３０分間完全に乾燥させる。最後に、全ての適応度パラメータを記録する。餌の重量を排除するため、犠牲にする前の２４ｈにサヤインゲンを昆虫に供給しない。
【０４０３】
ＲＴ−ｑＰＣＲによるＰ．カルベキイ（Ｐ．ｃａｒｂｅｋｉｉ）の定量
ＲＮＡ単離及び精製キット（いずれもＴｈｅｒｍｏ  Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ製）を用いて、幼虫から全ＲＮＡを抽出し、抽出したＲＮＡを１００μＬの水中に溶出させた。定量的逆転写ＰＣＲ（ＲＴ−ｑＣＰＲ）は、Ｐ．カルベキイ（Ｐ．ｃａｒｂｅｋｉｉ）ＤＮＡＫ遺伝子をターゲティングするプライマー（フォワードプライマー配列：ＴＧＣＡＧＡＡＡＴＴＴＧＴＧＧＣＧＧＴＧ（配列番号１）；リバースプライマー配列：ＣＧＴＴＧＣＣＴＣＡＧＡＡＡＡＣＧＧＴＧ（配列番号２））と共に、ＲＴ−ｑＰＣＲキット（Ｔｈｅｒｍｏ  Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を使用して実施した。細菌の量を正規化するために、カメムシ６０Ｓ  ｒＲＮＡ遺伝子のためのプライマー（フォワードプライマー配列：ＡＡＣＡＧＧＣＡＡＧＣＴＧＣＴＡＴＣＴＣ（配列番号３）及びリバースプライマー配列：ＣＴＧＴＣＣＣＴＴＧＧＴＧＧＴＴＣＴＴＴ（配列番号４））を使用した。ＰＣＲ混合物の各々は、１０μＬの体積を含有する。ＲＴ−ｑＰＣＲは、１．６℃／ｓのＰＣＲ増幅ランプ並びに下記の条件：１）４８℃で３０分；２）９５℃で１０分；３）９５℃で１５秒；４）５５℃で３０秒；５）ステップ３〜４の反復４０×；６）９５℃で１５秒；７）５５℃で１分；８）０．１５℃／ｓへのランプ変更；９）９５℃で１秒を用いて実施する。解析ソフトウエア（Ｔｈｅｒｍｏ  Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を用いて、ＲＴ−ｑＰＣＲデータを解析する。
【０４０４】
適切な対照を考慮して、Ｈ．ハリス（Ｈ．ｈａｌｙｓ）子孫の適応度又は繁殖力又はその両方を減少させる糖類似体は、本発明で有用なものとして採用される。
【０４０５】
実施例９．共生体の細胞壁特性を改変することによる、ビーンバグ、ホソヘリカメムシ（Ｒｉｐｔｏｒｔｕｓ  ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ）内の腸共生体コロニー形成の妨害
本実施例は、ポリヒドロキシアルカノエート（ＰＨＡ）合成阻害剤バニリン又はバニリン類似体の投与により、半翅類昆虫、ビーンバグ（ホソヘリカメムシ（Ｒｉｐｔｏｒｔｕｓ  ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ））の腸共生体バークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）のコロニー形成の妨害を実証する。本実施例は、この妨害が昆虫の適応度減少を引き起こす能力を評価するために提供される。
【０４０６】
ビーンバグ（ホソヘリカメムシ（Ｒ．ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ）（カメムシ目（Ｈｅｍｉｐｔｅｒａ）：カメムシ亜目（Ｈｅｔｅｒｏｐｔｅｒａ）：ヘリカメムシ上科（Ｃｏｒｅｏｉｄｅａ））は、ダイズ及びササゲなどのマメ科作物の有名な病害虫である。ホソヘリカメムシ（Ｒ．ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ）は、バークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）の特異的な腸共生体を保有するが、これは、二齢幼虫により環境から経口的に獲得される。ビーンバグは、共生体を保有するために、中腸後部第４領域（Ｍ４）内に特殊化共生体器官（陰窩）を有する。
【０４０７】
実験計画：
昆虫飼育及びバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）感染
ホソヘリカメムシ（Ｒ．ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ）ビーンバグは、１６ｈ明期及び８ｈ暗期の長日条件下、２８℃の昆虫インキュベータ内で飼育する。手短には、ダイズ種子及び０．０５％アスコルビン酸含有蒸留水（ＤＷＡ）が供給される清潔なプラスチック容器内で幼虫を飼育する。プラスチック容器は、毎日掃除し、ダイズ種子及びＤＷＡは２日毎に新しいものに取り替える。昆虫が成体として現れたら、より大きいプラスチック容器に移し、ダイズ種子及びＤＷＡを供給する。加えて、産卵のためにコットンパッドをプラスチック容器の壁に付着させる。卵は、毎日回収し、孵化のための新しいケージに移す。新生幼虫が２齢幼虫に脱皮したら、ビーンバグのバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）によるコロニー形成のために、１０７細胞／ｍｌの培養バークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）を含有するＤＷＡを小さいペトリ皿内に供給する。使用されるバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）共生体は、リファンピシン耐性（Ｒｆｒ）自然突然変異株ＲＰＥ７５（Ｄｒ．Ｔａｋｅｍａ  Ｆｕｋａｔｓｕ，Ｎａｔｉｏｎａｌ  Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ  ｏｆ  Ａｄｖａｎｃｅｄ  Ｉｎｄｕｓｔｒｉａｌ  Ｓｃｉｅｎｃｅ  ａｎｄ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（ＡＩＳＴ），Ｔｓｕｋｕｂａ  Ｃｅｎｔｅｒ，Ｔｓｕｋｕｂａ，Ｊａｐａｎにより提供）である。
【０４０８】
ＰＨＡ合成阻害剤バニリンと一緒に培養したバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）の投与
ＰＨＡ合成阻害剤、バニリンは、Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ（Ｃａｔ  ｎｏ．Ｖ１１０４−２Ｇ）から購入する。バニリンの希釈標準濃度は、ＹＧ培地中１ｇ／ｍｌで調製される（０．５％酵母エキス、０．４％グルコース及び０．１％ＮａＣｌ）。共生体株を３０℃において旋回シェーカ（１５０ｒｐｍ）上のＹＧ培地（５０ｕｇ／ｍｌのリファンピシンを含有）中で対数初期まで増殖させる。陽性対照のために、バークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）をＹＧ培地単独で培養する。適切な抗生物質を含有するＹＧ寒天プレート上に培地を平板培養することにより、コロニー形成単位（ＣＦＵ）値を評価する。培地を遠心分離することにより、共生細胞を採取し、ＤＷＡに懸濁させ、ＤＷＡ中１０４ＣＦＵ／ｍＬに調節する。
【０４０９】
１齢幼虫が２齢幼虫に脱皮した直後、ＤＷＡを飼育容器から取り出して、幼虫が一晩水を飲まずに維持されるようにする。次に、１０４ＣＦＵ／ｍＬの共生細胞を含有するＤＷＡを２４ｈ飼育容器に供給し、これを２齢幼虫が利用して、ＰＨＡシンターゼ阻害剤と一緒に培養されたバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）又はＹＧ培地単独で培養した陽性対照バークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）共生体を獲得することができる。続いて、共生体含有ＤＷＡを共生体非含有ＤＷＡに取り換えて、幼虫を成体期まで飼育する。
【０４１０】
ホソヘリカメムシ（Ｒ．ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ）へのＰＨＡ合成阻害剤バニリンの直接供給
１齢幼虫が２齢幼虫に脱皮した直後、ＤＷＡを飼育容器から取り出して、幼虫が一晩水を飲まずに維持されるようにする。翌日、１０４ＣＦＵ／ｍＬの共生細胞と一緒にバニリン溶液を２４ｈ飼育容器に供給し、これを２齢幼虫が利用して、ＰＨＡシンターゼ阻害剤バニリン及びバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）共生体を獲得することができる。陽性対照は、１０４ＣＦＵ／ｍＬの共生細胞のみを供給される幼虫である。続いて、共生体含有ＤＷＡをＤＷＡに取り換えて、幼虫を成体期まで飼育する。
【０４１１】
ｑＰＣＲによる、ホソヘリカメムシ（Ｒ．ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ）中腸内にコロニー形成したバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）の定量
定量的ＰＣＲ（ｑＰＣＲ）は、（Ｋｉｋｕｃｈｉ  ｅｔ  ａｌ．Ａｐｐｌｉｅｄ  ａｎｄ  Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ  Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，７７：４０７５−４０８１，２０１１；Ｋｉｋｕｃｈｉ  ａｎｄ  Ｆｕｋａｔｓｕ，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｅｃｏｌｏｇｙ，２３：１４４５−１４５６，２０１４）に記載されている通り、バークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）共生体のｄｎａＡ遺伝子の０．１５ｋｂ領域をターゲティングするプライマーＢＳｄｎａＡ−Ｆ及びＢＳｄｎａＡ−Ｒと共に、ｑＰＣＲキット（Ｔｈｅｒｍｏ  Ｆｉｓｈｅｒ）を使用して実施する。Ｂｌｏｏｄ＆Ｃｅｌｌ  Ｃｕｌｔｕｒｅ  ＤＮＡ  Ｍｉｎｉ  Ｋｉｔ（Ｑｉａｇｅｎ，Ｃａｔ  ｎｕｍｂｅｒ  １３３２３）を用いて、全ＤＮＡをＭ４及びＭ４Ｂ部分から抽出し、抽出したＤＮＡを２００μＬの水中に溶出させる。ＰＣＲ混合物の各々は、１０μＬの体積を含む。ｑＰＣＲは、１．６℃／ｓのｑＰＣＲ増幅ランプ並びに下記の条件：１）９５℃で１０分、２）９５℃で１５秒、３）６０℃で３０秒、４）ステップ２〜３の反復４０×、５）９５℃で１５秒、６）６０℃で１分、７）０．１５℃／ｓへのランプ変更、８）９５℃で１秒を用いて実施する。ｄｎａＡ遺伝子の標準曲線は、プライマーＢＳｄｎａＡ−Ｆ及びＢＳｄｎａＡ−Ｒで増幅した標的ＰＣＲ断片の標準サンプルを用いて作成する。解析ソフトウエア（Ｔｈｅｒｍｏ  Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を用いて、ｑＰＣＲデータを解析する。
【０４１２】
ホソヘリカメムシ（Ｒ．ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ）適応度の測定
２齢幼虫へのＰＨＡシンターゼ阻害剤バニリンと一緒に培養したバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）の投与後又はバニリンの直接供給後並びに両陽性対照の生存率を孵化後２５日まで、死んだ昆虫の計数により毎日評価する。成虫出現率は、後期５齢幼虫から新しく脱皮した成虫を計数することにより評価する。体長及び体重を測定するために、成虫（脱皮後３日）をアセトン中に５分浸けることにより犠牲にして、７０℃のオーブンで３０分間完全に乾燥させる。ダイズ種子の重量を排除するため、犠牲にする前の２４ｈにダイズ種子を昆虫に供給しない。
【０４１３】
適切な対照を考慮して、ホソヘリカメムシ（Ｒ．ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ）子孫におけるバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）の力価を減少させるバニリン又はその類似体は、本発明に有用なものとして採用される。
【０４１４】
実施例１０：糖類似体の投与によるビーンバグ内の共生体コロニー形成の妨害
本実施例は、糖類似体、ＡＤＰ−２−フルオロヘプトース（ＡＦＨ）及び２−アリール−５−メチル−４−（５−アリール−フラン−２−イル−メチレン）−２，４−ジヒドロピラゾール−３−オン（ＤＨＰＯ）の投与による、半翅類のモデル、ビーンバグ（ホソヘリカメムシ（Ｒｉｐｔｏｒｔｕｓ  ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ））内のバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）のコロニー形成の妨害を実証する。本実施例は、この妨害が昆虫の適応度減少を引き起こす能力を評価するために提供される。
【０４１５】
実験計画：
昆虫飼育及びバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）感染
ホソヘリカメムシ（Ｒ．ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ）は、実施例６に記載のように飼育する。
【０４１６】
糖類似体と一緒に培養したバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）の投与
ＷａａＣ（ヘプトシルトランスフェラーゼ）の機能を阻害する２つの糖類似体、ＡＤＰ−２−フルオロヘプトース（ＡＦＨ）（Ｄｏｈｉ  ｅｔ  ａｌ．，Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  １４（３１）：９５３０−９５３９，２００８）及び２−アリール−５−メチル−４−（５−アリール−フラン−２−イル−メチレン）−２，４−ジヒドロ−ピラゾール−３−オン（ＤＨＰＯ）（Ｍｏｒｅａｕ  ｅｔ  ａｌ．，Ｂｉｏｏｒｇ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．Ｌｅｔｔ．１８（１４）：４０２２−４０２６，２００８）は、Ｃｏｎｔｒａｃｔ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｏｒｇａｎｉｚａｔｉｏｎ（ＣＲＯ）により合成される。
【０４１７】
ＹＧ培地中で調製されるＡＦＨ及びＤＨＰＯの希釈標準濃度は、１ｇ／ｍｌである。共生体株を３０℃において旋回シェーカ（１５０ｒｐｍ）上のＹＧ培地（５０ｕｇ／ｍｌのリファンピシンを含有）中で対数初期まで増殖させる。バークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）の陽性対照は、ＹＧ培地単独で培養する。適切な抗生物質を含有するＹＧ寒天プレート上に培地を平板培養することにより、コロニー形成単位（ＣＦＵ）値を評価する。培地を遠心分離することにより、共生細胞を採取し、ＤＷＡに懸濁させ、ＤＷＡ中１０４ＣＦＵ／ｍＬに調節する。
【０４１８】
１齢幼虫が２齢幼虫に脱皮した直後、ＤＷＡを飼育容器から取り出して、幼虫が一晩水を飲まずに維持されるようにする。次に、１０４ＣＦＵ／ｍＬの共生細胞を含有するＤＷＡを２４ｈ飼育容器に供給し、これを２齢幼虫が利用して、ＡＦＨ若しくはＤＨＰＯと一緒に培養されたバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）又はＹＧ培地単独で培養した陽性対照バークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）を獲得することができる。次に、共生体含有ＤＷＡを共生体非含有ＤＷＡに取り換えて、幼虫を成体期まで飼育する。
【０４１９】
ホソヘリカメムシ（Ｒ．ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ）への糖類似体の直接供給
ＡＦＨ及びＤＨＰＯは、ＣＲＯにより合成される。ＡＦＨ及びＤＨＰＯの希釈標準溶液（１ｇ／ｍｌ）は、蒸留水に導入したストック溶液から調製した。２つの糖類似体の希釈標準溶液を給餌チューブ中に投与し、ビーンバグ給餌のためのプラスチック飼育容器中に供給する。１齢幼虫が２齢幼虫に脱皮した直後、ＤＷＡを飼育容器から取り出して、幼虫が一晩水を飲まずに維持されるようにする。翌日、１０４ＣＦＵ／ｍＬの共生細胞と一緒にＡＦＨ及びＤＨＰＯ溶液を２４ｈ飼育容器に供給し、これを２齢幼虫が利用して、ＡＦＨ又はＤＨＰＯ及びバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）共生体を獲得させることができる。陽性対照は、１０４ＣＦＵ／ｍＬの共生細胞のみを供給される幼虫である。続いて、共生体含有ＤＷＡをＤＷＡに取り換えて、幼虫を成体期まで飼育する。
【０４２０】
ｑＰＣＲによる、ホソヘリカメムシ（Ｒ．ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ）中腸内にコロニー形成したバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）の定量
定量的ＰＣＲ（ｑＣＰＲ）は、実施例６に記載のように実施する。
【０４２１】
ホソヘリカメムシ（Ｒ．ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ）適応度の測定
２齢幼虫へのＡＦＨ若しくはＤＨＰＯと一緒に培養したバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）の投与後又はＡＦＨ若しくはＤＨＰＯの直接供給後並びに両陽性対照の生存率を孵化後２５日まで、死んだ昆虫の計数により毎日評価する。成虫出現率は、後期５齢幼虫から新しく脱皮した成虫を計数することにより評価する。体長及び体重を測定するために、成虫（脱皮後３日）をアセトン中に５分浸けることにより犠牲にして、７０℃のオーブンで３０分間完全に乾燥させる。最後に、全ての適応度パラメータを記録する。ダイズ種子の重量を排除するため、犠牲にする前の２４ｈにダイズ種子を昆虫に供給しない。
【０４２２】
適切な対照を考慮して、ホソヘリカメムシ（Ｒ．ｐｅｄｅｓｔｒｉｓ）子孫におけるバークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）の力価を減少させる糖類似体は、本発明に有用なものとして採用される。
【０４２３】
他の実施形態
本発明のいくつかの形態は、以下の番号付けされたパラグラフに含まれる。
１．昆虫の適応度を減少させる方法であって、細菌コロニー形成妨害剤を含む組成物の有効量を昆虫に送達するステップを含む方法。
２．昆虫の腸内の細菌コロニー形成を阻害する方法であって、細菌コロニー形成妨害剤を含む組成物の有効量を昆虫に送達するステップを含む方法。
３．非処理昆虫に対して昆虫の適応度を増加させるのに有効である、パラグラフ２に記載の方法。
４．細菌コロニー形成妨害剤は、ポリヒドロキシアルカノエート（ＰＨＡ）合成阻害剤である、パラグラフ１〜３のいずれか１つに記載の方法。
５．昆虫の適応度を減少させる方法であって、ＰＨＡ合成阻害剤を含む組成物の有効量を昆虫に送達するステップを含む方法。
６．ＰＨＡ合成阻害剤は、バニリンである、パラグラフ４又は５に記載の方法。
７．ＰＨＡ合成阻害剤は、表１中の１つ以上の化合物である、パラグラフ４又は５に記載の方法。
８．ＰＨＡ合成阻害剤は、レブリン酸である、パラグラフ４又は５に記載の方法。
９．ＰＨＡ合成阻害剤は、アクリル酸である、パラグラフ４又は５に記載の方法。
１０．ＰＨＡ合成阻害剤は、２−ブロモオクタン酸である、パラグラフ４又は５に記載の方法。
１１．細菌コロニー形成妨害剤は、細菌細胞外皮生合成の阻害剤である、パラグラフ１〜３のいずれか１つに記載の方法。
１２．細菌細胞外皮生合成の阻害剤は、リポ多糖（ＬＰＳ）合成阻害剤である、パラグラフ１１に記載の方法。
１３．昆虫の適応度を減少させる方法であって、ＬＰＳ合成阻害剤を含む組成物の有効量を昆虫に送達するステップを含む方法。
１４．ＬＰＳ合成阻害剤は、細菌内のコアオリゴ糖合成の阻害剤である、パラグラフ１２又は１３に記載の方法。
１５．ＬＰＳ合成阻害剤は、細菌内のコアオリゴ糖合成に関与する酵素を阻害する、パラグラフ１４に記載の方法。
１６．酵素は、ＷａａＡ、ＷａａＣ、ＷａａＦ又はＷａａＧのアミノ酸配列を有するポリペプチドと少なくとも４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％、９８％、９９％又は１００％の配列同一性を有する、パラグラフ１５に記載の方法。
１７．ＬＰＳ合成阻害剤は、糖である、パラグラフ１２〜１６のいずれか１つに記載の方法。
１８．糖は、ＡＤＰ−２−フルオロヘプトース（ＡＦＨ）である、パラグラフ１７に記載の方法。
１９．糖は、２−アリール−５−メチル−４−（５−アリール−フラン−２−イル−メチレン）−２，４−ジヒドロ−ピラゾール−３−オン（ＤＨＰＯ）である、パラグラフ１７に記載の方法。
２０．糖は、ＡＦＨ及びＤＨＰＯである、パラグラフ１７に記載の方法。
２１．糖は、表７中の１つ以上の化合物である、パラグラフ１７に記載の方法。
２２．ＬＰＳ合成阻害剤は、細菌内のコアオリゴ糖合成に関与する遺伝子の発現を阻害する、パラグラフ１４に記載の方法。
２３．遺伝子は、ＷａａＡ、ＷａａＣ、ＷａａＦ又はＷａａＧのヌクレオチド配列を有するポリペプチドと少なくとも４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％、９８％、９９％又は１００％の配列同一性を有する、パラグラフ２２に記載の方法。
２４．細菌コロニー形成妨害剤は、細菌細胞壁生合成の阻害剤である、パラグラフ１〜３のいずれか１つに記載の方法。
２５．細菌細胞壁生合成の阻害剤は、ウンデカプレニルピロリン酸ホスファターゼ（ＵｐｐＰ）の阻害剤である、パラグラフ２４に記載の方法。
２６．ＵｐｐＰの阻害剤は、バシトラシンである、パラグラフ２５に記載の方法。
２７．細菌コロニー形成妨害剤は、鞭毛機能の阻害剤である、パラグラフ１〜３のいずれか１つに記載の方法。
２８．鞭毛機能の阻害剤は、セルロースである、パラグラフ２７に記載の方法。
２９．昆虫は、植物病害虫である、パラグラフ１〜２８のいずれか１つに記載の方法。
３０．植物病害虫は、コウチュウ目（Ｃｏｌｅｏｐｔｅｒａ）、ハエ目（Ｄｉｐｔｅｒａ）、半翅目（Ｈｅｍｉｐｔｅｒａ）、鱗翅目（Ｌｅｐｉｄｏｐｔｅｒａ）、バッタ目（Ｏｒｔｈｏｐｔｅｒａ）、アザミウマ目（Ｔｈｙｓａｎｏｐｔｅｒａ）又はダニ目（Ａｃａｒｉｎａ）のものである、パラグラフ２９に記載の方法。
３１．昆虫は、カメムシ、ビーンバグ（ｂｅａｎ  ｂｕｇ）、甲虫、ゾウムシ、ハエ、アブラムシ、コナジラミ、ヨコバイ、カイガラムシ、ガ、チョウ、バッタ、コオロギ、アザミウマ又はダニである、パラグラフ３０に記載の方法。
３２．昆虫は、リプトルツス属（Ｒｉｐｔｏｒｔｕｓ）のものである、パラグラフ３１に記載の方法。
３３．昆虫は、ハリオモルファ属（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ）のものである、パラグラフ３２に記載の方法。
３４．昆虫は、動物病原体及び／又はヒト病原体のベクターである、パラグラフ１〜３３のいずれか１つに記載の方法。
３５．昆虫は、カ、ユスリカ、シラミ、サシチョウバエ、マダニ、オオサシガメ、ツェツェバエ又はノミであるパラグラフ３４に記載の方法。
３６．細菌は、内部共生細菌である、パラグラフ１〜３５のいずれか１つに記載の方法。
３７．内部共生細菌は、昆虫の腸内に常在する、パラグラフ３６に記載の方法。
３８．細菌は、昆虫の腸内の特殊化細胞又は特殊化器官に常在する、パラグラフ３７に記載の方法。
３９．特殊化器官は、中腸陰窩又はバクテリオームである、パラグラフ３８に記載の方法。
４０．特殊化細胞は、菌細胞である、パラグラフ３８に記載の方法。
４１．内生共生細菌は、バークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）のものである、パラグラフ３６〜４０のいずれか１つに記載の方法。
４２．内生共生細菌は、パントエア属（Ｐａｎｔｏｅａ）のものである、パラグラフ３６〜４０のいずれか１つに記載の方法。
４３．非処理の昆虫に対して昆虫の適応度を減少させるのに有効である、パラグラフ１、２及び４〜４１のいずれか１つに記載の方法。
４４．昆虫の適応度の減少は、生殖能力、生存、発育速度、孵化される卵の数、成虫出現率、体長又は体重の減少である、パラグラフ４３に記載の方法。
４５．非処理の昆虫に対して、昆虫の腸内の細菌コロニー形成を減少させるのに有効である、パラグラフ１〜４４のいずれか１つに記載の方法。
４６．組成物は、昆虫が成長、生息又は繁殖する少なくとも１つの生息場所で昆虫に送達される、パラグラフ１〜４５のいずれか１つに記載の方法。
４７．組成物は、液体、固体、エアゾール、ペースト、ゲル又はガス組成物である、パラグラフ１〜４６のいずれか１つに記載の方法。
４８．組成物は、昆虫による摂取のための、昆虫が摂食可能な組成物として送達される、パラグラフ１〜４７のいずれか１つに記載の方法。
４９．組成物は、昆虫の卵に送達される、パラグラフ１〜４８のいずれか１つに記載の方法。
５０．組成物は、摂食、注入、注射又は噴霧によって昆虫に送達される、パラグラフ１〜４９のいずれか１つに記載の方法。
５１．組成物は、農業的に許容される担体を含む、パラグラフ１〜５０のいずれか１つに記載の方法。
５２．パラグラフ１〜５１のいずれか１つに記載の方法に従い、細菌コロニー形成妨害剤を含む組成物と昆虫を接触させるステップを含む方法によって生産される改変昆虫。
５３．細菌コロニー形成妨害剤を同定するスクリーニングアッセイであって、
（ａ）１つ以上の薬剤に標的昆虫を曝露するステップ；及び
（ｂ）（ｉ）標的昆虫の適応度を減少させ、且つ
（ｉｉ）標的昆虫の腸内の細菌のコロニー形成を阻害する薬剤を同定するステップ
を含むスクリーニングアッセイ。
５４．適応度の減少は、標的昆虫の生存の減少である、パラグラフ５３に記載のアッセイ。
５５．適応度の減少は、生殖能力、生存、発育速度、孵化される卵の数、成虫出現率、体長又は体重の減少である、パラグラフ５３に記載のアッセイ。
５６．細菌は、内部共生細菌である、パラグラフ５３〜５５のいずれか１つに記載のアッセイ。
５７．内部共生細菌は、昆虫の腸内に常在する、パラグラフ５６に記載のアッセイ。
５８．細菌は、昆虫の腸内の特殊化細胞又は特殊化器官に常在する、パラグラフ５７に記載のアッセイ。
５９．特殊化器官は、中腸陰窩又はバクテリオームである、パラグラフ５８に記載のアッセイ。
６０．特殊化細胞は、菌細胞である、パラグラフ５８に記載のアッセイ。
６１．細菌は、バークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）のものである、パラグラフ５３〜５８のいずれか１つに記載のアッセイ。
６２．細菌は、パントエア属（Ｐａｎｔｏｅａ）のものである、パラグラフ５３〜６０のいずれか１つに記載のアッセイ。
６３．昆虫は、植物病害虫である、パラグラフ５３〜６２のいずれか１つに記載のアッセイ。
６４．植物病害虫は、コウチュウ目（Ｃｏｌｅｏｐｔｅｒａ）、ハエ目（Ｄｉｐｔｅｒａ）、半翅目（Ｈｅｍｉｐｔｅｒａ）、鱗翅目（Ｌｅｐｉｄｏｐｔｅｒａ）、バッタ目（Ｏｒｔｈｏｐｔｅｒａ）、アザミウマ目（Ｔｈｙｓａｎｏｐｔｅｒａ）又はダニ目（Ａｃａｒｉｎａ）のものである、パラグラフ６３に記載のアッセイ。
６５．昆虫は、動物病原体及び／又はヒト病原体のベクターである、パラグラフ５３〜６２のいずれか１つに記載のアッセイ。
６６．昆虫は、カ、ユスリカ、シラミ、サシチョウバエ、マダニ、オオサシガメ、ツェツェバエ又はノミであるパラグラフ６５に記載のアッセイ。
６７．パラグラフ５３〜６６のいずれか１つに記載のスクリーニングアッセイにより同定された細菌コロニー形成妨害剤を含む組成物と昆虫を接触させるステップを含む方法によって生産される改変昆虫。
６８．昆虫の適応度を減少させる方法であって、パラグラフ５３〜６６のいずれか１つに記載のスクリーニングアッセイにより同定された細菌コロニー形成妨害剤を含む組成物の有効量を昆虫に送達するステップを含む方法。
６９．細菌コロニー形成妨害剤と担体を含む組成物であって、昆虫又はその生息場所への送達のために製剤化される組成物。
７０．細菌コロニー形成妨害剤は、ポリヒドロキシアルカノエート（ＰＨＡ）合成阻害である、パラグラフ６９に記載の組成物。
７１．ＰＨＡ合成阻害剤は、バニリンである、パラグラフ７０に記載の組成物。
７２．ＰＨＡ合成阻害剤は、表１中の１つ以上の化合物である、パラグラフ７０に記載の組成物。
７３．ＰＨＡ合成阻害剤は、レブリン酸である、パラグラフ７０に記載の組成物。
７４．ＰＨＡ合成阻害剤は、アクリル酸である、パラグラフ７０に記載の組成物。
７５．ＰＨＡ合成阻害剤は、２−ブロモオクタン酸である、パラグラフ７０に記載の組成物。
７６．細菌コロニー形成妨害剤は、細菌細胞外皮生合成の阻害剤である、パラグラフ６９に記載の組成物。
７７．細菌細胞外皮生合成の阻害剤は、リポ多糖（ＬＰＳ）合成阻害剤である、パラグラフ７６に記載の組成物。
７８．ＬＰＳ合成阻害剤は、細菌のコアオリゴ糖合成の阻害剤である、パラグラフ７７に記載の組成物。
７９．ＬＰＳ合成阻害剤は、細菌のコアオリゴ糖合成に関与する酵素を阻害する、パラグラフ７７又は７８に記載の組成物。
８０．酵素は、ＷａａＡ、ＷａａＣ、ＷａａＦ又はＷａａＧのアミノ酸配列を有するポリペプチドと少なくとも４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％、９８％、９９％又は１００％の配列同一性を有する、パラグラフ７９に記載の組成物。
８１．ＬＰＳ合成阻害剤は、糖である、パラグラフ７８〜８０のいずれか１つに記載の組成物。
８２．糖は、ＡＤＰ−２−フルオロヘプトース（ＡＦＨ）である、パラグラフ８１に記載の組成物。
８３．糖は、２−アリール−５−メチル−４−（５−アリール−フラン−２−イル−メチレン）−２，４−ジヒドロ−ピラゾール−３−オン（ＤＨＰＯ）である、パラグラフ８１に記載の組成物。
８４．糖は、ＡＦＨ又はＤＨＰＯである、パラグラフ８１に記載の組成物。
８５．糖は、表７中の１つ以上の化合物である、パラグラフ８１に記載の組成物。
８６．ＬＰＳ合成阻害剤は、細菌のコアオリゴ糖合成に関与する遺伝子の発現を阻害する、パラグラフ７７又は７８に記載の組成物。
８７．遺伝子は、ＷａａＡ、ＷａａＣ、ＷａａＦ又はＷａａＧのヌクレオチド配列を有するポリヌクレオチドと少なくとも４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％、９８％、９９％又は１００％の配列同一性を有する、パラグラフ８６に記載の組成物。
８８．細菌コロニー形成妨害剤は、細胞壁生合成の阻害剤である、パラグラフ６９に記載の組成物。
８９．細胞壁生合成の阻害剤は、ＵｐｐＰの阻害剤である、パラグラフ８８に記載の組成物。
９０．ＵｐｐＰの阻害剤は、バシトラシンである、パラグラフ８９に記載の組成物。
９１．細菌コロニー形成妨害剤は、鞭毛機能の阻害剤である、パラグラフ６９に記載の組成物。
９２．鞭毛機能阻害剤は、セルロースである、パラグラフ９１に記載の組成物。
９３．細菌コロニー形成妨害剤は、組成物の少なくとも０．１％、０．２％、０．４％、０．５％、０．８％、１％、２％、５％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％又は９０％である、パラグラフ６９〜９２のいずれか１つに記載の組成物。
９４．担体は、液体、固体、エアゾール、ペースト、ゲル又はガス組成物である、パラグラフ６９〜９３のいずれか１つに記載の組成物。
９５．担体は、糖シロップ、トウモロコシシロップ又はハチミツである、パラグラフ６９〜９３のいずれか１つに記載の組成物。
９６．担体は、ナノ粒子又は液体膜である、パラグラフ６９〜９３のいずれか１つに記載の組成物。
９７．摂取、注入、注射、噴霧、発煙又は雲霧法による昆虫への送達のために製剤化される、パラグラフ６９〜９６のいずれか１つに記載の組成物。
９８．昆虫が成長、生息、繁殖又は摂食する少なくとも１つの生息場所への送達のために製剤化される、パラグラフ６９〜９７のいずれか１つに記載の組成物。
９９．昆虫により摂食される植物への送達のために製剤化される、パラグラフ６９〜９８のいずれか１つに記載の組成物。
１００．カメムシの腸の細菌によるコロニー形成を減少させる方法であって、
（ａ）バニリン又はその類似体を含む組成物を提供するステップ；及び
（ｂ）カメムシの卵に前記組成物を送達するステップ
を含み、卵から孵化されたカメムシの腸は、非処理の卵から孵化されたカメムシの腸に対して、細菌による減少されたコロニー形成を有する、方法。
１０１．組成物は、カメムシの卵塊に送達される、パラグラフ１００に記載の方法。
１０２．細菌によるコロニー形成の減少は、カメムシの適応度を減少させる、パラグラフ１００に記載の方法。
１０３．カメムシの適応度の減少は、生殖能力、生存、発育速度、卵の数、孵化される卵の数、成虫出現率、体長、体幅、体重又は角皮厚さの減少である、パラグラフ１０２に記載の方法。
１０４．コロニー形成は、腸のｖ４領域内におけるものである、パラグラフ１００に記載の方法。
１０５．腸のｖ４領域の細菌によるコロニー形成は、少なくとも１０％だけ減少される、パラグラフ１０４に記載の方法。
１０６．腸のｖ４領域のサイズは、減少される、パラグラフ１０４に記載の方法。
１０７．カメムシは、ハリオモルファ属（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ）種である、パラグラフ１００に記載の方法。
１０８．カメムシは、ハリオモルファ・ハリス（Ｈａｌｙｏｍｏｒｐｈａ  ｈａｌｙｓ）である、パラグラフ１０７に記載の方法。
１０９．細菌は、内部共生細菌である、パラグラフ１００に記載の方法。
１１０．内部共生細菌は、パントエア属（Ｐａｎｔｏｅａ）のものである、パラグラフ１０９に記載の方法。
１１１．内部共生細菌は、カンディダタス・パントエア・カルベキイ（Ｃａｎｄｉｄａｔｕｓ  Ｐａｎｔｏｅａ  ｃａｒｂｅｋｉｉ）である、パラグラフ１１０に記載の方法。
１１２．組成物は、液体、固体、エアゾール、ペースト、ゲル又はガス組成物である、パラグラフ１００に記載の方法。
１１３．組成物は、スプレーとして送達される、パラグラフ１００に記載の方法。
１１４．組成物は、農業的に許容される担体を含む、パラグラフ１００に記載の方法。
１１５．組成物は、湿潤性溶液を含む、パラグラフ１００に記載の方法。
【０４２４】
前述の本発明は、理解を明確にするために説明及び例として幾らか詳細に記載されているが、そうした記載及び例が本発明の範囲を限定するものと解釈するべきではない。本明細書に引用される全ての特許及び科学文献の開示は、全体として参照により明示的に援用される。
【図１】
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【図２Ａ】
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【図２Ｂ】
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【図３Ａ】
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【図３Ｂ】
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【図３Ｃ】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【配列表】
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【国際調査報告】
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2021530555.tif 000171