(57)【要約】  本発明は、高分子を用いて細胞培養基材（細胞培養容器）を被覆する技術において、被覆層の厚みに依存せずに、優れた細胞増殖性が得られる手段を提供する。高分子基材の少なくとも一方の面に、４０モル％を超えて１００モル％未満の式（１）で表されるカルボキシアルキル（メタ）アクリレート由来の構成単位（１）および０モル％を超えて６０モル％未満の水酸基を有するエチレン性不飽和単量体由来の構成単位（２）を有する共重合体（前記構成単位（１）および前記構成単位（２）の合計は１００モル％である）を含む被覆層を有する、細胞培養基材が提供される。【選択図】図１
2021533734.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
高分子基材の少なくとも一方の面に、
４０モル％を超えて１００モル％未満の下記式（１）で表されるカルボキシアルキル（メタ）アクリレート由来の構成単位（１）および０モル％を超えて６０モル％未満の水酸基を有するエチレン性不飽和単量体由来の構成単位（２）を有する共重合体（前記構成単位（１）および前記構成単位（２）の合計は１００モル％である）を含む被覆層を有する、細胞培養基材：
【化１】
2021533734.tif 000009
ただし、Ｒ１は、水素原子またはメチル基であり、Ｒ２は、炭素原子数２〜３のアルキレン基である。
【請求項２】
前記共重合体が、６０モル％以上９０モル％以下の前記構成単位（１）および１０モル％以上４０モル％以下の前記構成単位（２）を有する共重合体（前記構成単位（１）および前記構成単位（２）の合計は１００モル％である）である、請求項１に記載の細胞培養基材。
【請求項３】
前記共重合体が、前記構成単位（１）および前記構成単位（２）から構成される、請求項１または２に記載の細胞培養基材。
【請求項４】
前記エチレン性不飽和単量体は、（メタ）アクリロイル基を有する、請求項１〜３のいずれか１項に記載の細胞培養基材。
【請求項５】
前記エチレン性不飽和単量体は、下記式（２）で表されるヒドロキシアルキル（メタ）アクリレートである、請求項１〜４のいずれか１項に記載の細胞培養基材：
【化２】
2021533734.tif 000010
ただし、Ｒ３は、水素原子またはメチル基であり、Ｒ４は、炭素原子数２〜３のアルキレン基である。
【請求項６】
前記高分子基材が多孔質膜である、請求項１〜５のいずれか１項に記載の細胞培養基材。
【請求項７】
請求項１〜６のいずれか１項に記載の細胞培養基材を有する、バイオリアクター。
【請求項８】
請求項７に記載のバイオリアクターを用いて幹細胞を培養する、幹細胞の培養方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、細胞増殖性に優れる細胞培養基材ならびに当該細胞培養基材を用いるバイオリアクターおよび幹細胞の培養方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
近年、再生医療や創薬の開発に際し、細胞培養技術が用いられている。特に幹細胞の使用に注目が集まっており、ドナー細胞から増殖した幹細胞を用いることにより、損傷や欠陥のある組織を修復・置換する技術が盛んに研究されている。ヒトを含め動物の細胞のほとんどは、浮遊状態では生存できず、何かに接着した状態で生存する接着（足場依存）性細胞である。このため、接着（足場依存）性細胞を高密度に培養して、生体組織と類似した培養組織を得るための機能的な培養基材の開発が様々行われている。
【０００３】
細胞培養基材としては、従来、プラスチック（例：ポリスチレン）やガラスの容器が使用されてきたが、これらの細胞容器の表面にプラズマ処理などを施すことが報告されている。当該処理がなされた基材は、細胞との接着性に優れ、細胞の増殖および機能維持を行うことができる。
【０００４】
一方、細胞培養基材（細胞培養容器）の構造は、従来の平面な皿（プレート）構造以外に、バッグ内に培養足場として多孔体を挿入した構造、中空糸（ホローファイバー）構造、スポンジ構造、綿状（ガラスウール）構造、複数のディッシュを積層した構造など、多様化が進んでいる。このように構造が多様化・複雑化した培養容器に対しては、プラズマ照射を行うことが困難もしくは不可能である。
【０００５】
そこで、細胞との接着性（細胞接着性）、および細胞の増殖を促す性質（細胞増殖性）を有する高分子を用いる技術が提案されている。例えば、非特許文献１には、メトキシエチルアクリレートのホモポリマー（ＰＭＥＡ；ポリメトキシエチルアクリレート）で高分子基材を被覆することで、細胞接着性および細胞増殖性が得られることが開示されている。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００６】
【非特許文献１】Colloids and Surfaces B; Biointerfaces 145 (2016) 586-596.
【発明の概要】
【０００７】
非特許文献１に開示されたように、ポリメトキシエチルアクリレート（ＰＭＥＡ）等の高分子は、細胞培養基材に細胞接着性および細胞増殖性を付与することができる。そして、このような高分子は、塗布操作性に優れることから、上記のような複雑化した構造を有する細胞培養基材であっても、細胞接着性および細胞増殖性を付与することができる。
【０００８】
しかしながら、複雑化した構造を有する細胞培養基材（細胞培養容器）は、ＰＭＥＡ等の高分子を一定の厚みで被覆することが難しいことに加え、ＰＭＥＡ等の高分子は、被覆層の厚みが大きくなると、細胞増殖性が低下するという問題がある。
【０００９】
したがって、本発明は、上記事情を鑑みてなされたものであり、高分子を用いて細胞培養基材（細胞培養容器）を被覆する技術において、被覆層の厚みに依存せずに、優れた細胞増殖性が得られる手段を提供することを目的とする。
【００１０】
本発明者らは、上記課題を解決すべく、鋭意研究を行った。その結果、特定の構造を有するカルボキシアルキル（メタ）アクリレートに由来する構成単位および水酸基を有するエチレン性不飽和単量体に由来する構成単位を、特定の組成（モル比）で含む共重合体を用いて細胞培養基材（高分子基材）表面を被覆することによって、上記課題を解決できることを知得した。本発明は、上記知見に基づいて完成した。
【００１１】
すなわち、上記諸目的は、高分子基材の少なくとも一方の面に、
４０モル％を超えて１００モル％未満の下記式（１）で表されるカルボキシアルキル（メタ）アクリレート由来の構成単位（１）および０モル％を超えて６０モル％未満の水酸基を有するエチレン性不飽和単量体由来の構成単位（２）を有する共重合体（前記構成単位（１）および前記構成単位（２）の合計は１００モル％である）を含む被覆層を有する、細胞培養基材によって達成できる：
【００１２】
【化１】
2021533734.tif 000003
【００１３】
ただし、Ｒ１は、水素原子またはメチル基であり、Ｒ２は、炭素原子数２〜３のアルキレン基である。
【図面の簡単な説明】
【００１４】
【図１】図１は、本発明のバイオリアクター（中空糸型バイオリアクター）の一実施形態を示す部分側面図である。
【図２】図２は、図１のバイオリアクターの一部切欠側面図である。
【発明を実施するための形態】
【００１５】
本発明の細胞培養基材は、高分子基材の少なくとも一方の面に、
４０モル％を超えて１００モル％未満の下記式（１）で表されるカルボキシアルキル（メタ）アクリレート由来の構成単位（１）および０モル％を超えて６０モル％未満の水酸基を有するエチレン性不飽和単量体由来の構成単位（２）を有する共重合体（前記構成単位（１）および前記構成単位（２）の合計は１００モル％である）を含む被覆層を有する、細胞培養基材である：
【００１６】
【化２】
2021533734.tif 000004
【００１７】
ただし、Ｒ１は、水素原子またはメチル基であり、Ｒ２は、炭素原子数２〜３のアルキレン基である。
【００１８】
本発明に係る共重合体によれば、高分子を用いて細胞培養基材（細胞培養容器）を被覆する技術において、被覆層の厚みに依存せずに、優れた細胞増殖性が得られる手段を提供できる。
【００１９】
本明細書において、上記式（１）で表されるカルボキシアルキル（メタ）アクリレートを単に「カルボキシアルキル（メタ）アクリレート」と、また、上記式（１）で表されるカルボキシアルキル（メタ）アクリレート由来の構成単位を単に「構成単位（１）」とも称する。また、水酸基を有するエチレン性不飽和単量体を単に「エチレン性不飽和単量体」と、また、水酸基を有するエチレン性不飽和単量体由来の構成単位を単に「構成単位（２）」とも称する。さらに、構成単位（１）および構成単位（２）を有する共重合体を単に「共重合体」または「本発明に係る共重合体」とも称する。
【００２０】
また、本明細書において、「（メタ）アクリレート」とは、アクリレートおよびメタクリレートの双方を包含する。同様にして、「（メタ）アクリル酸」とは、アクリル酸およびメタクリル酸の双方を包含し、「（メタ）アクリロイル」とは、アクリロイルおよびメタクリロイルの双方を包含する。
【００２１】
本発明の細胞培養基材は、上記共重合体を含む被覆層が高分子基材の少なくとも一方の面に形成されてなることを特徴とする。上記共重合体を用いて形成される被覆層（被膜、コーティング）は、膜厚が変化しても優れた細胞増殖性（細胞伸展性）を有する。また、上記共重合体を用いて形成される被膜（被覆層）は、膜厚が変化しても良好な細胞接着性を維持できる。ここで、本発明の構成による上記作用効果の発揮のメカニズムは以下のように推測される。なお、本発明は下記推測に限定されるものではない。
【００２２】
従来、細胞増殖性や細胞接着性を付与する手段としては、フィブロネクチン、ラミニン、コラーゲン等の細胞接着因子を基材に塗布する方法、プラズマ、ガンマ線、電子による処理を基材に施す方法などがある。これらのうち、前者の方法は、細胞接着因子が高価である、天然物質であるため再使用することが通常できない等の問題がある。また、後者の方法は、プラズマ処理は特に優れた細胞増殖性を基材に付与することが可能である。一方、近年、バッグ内に培養足場として多孔体を挿入した構造、中空糸（ホローファイバー）構造、スポンジ構造、綿状（ガラスウール）構造、複数のディッシュを積層した構造が好適な培養足場として使用される。しかし、後者の方法は、このように多様化・複雑化した構造に対しては、適用が困難もしくは不可能であるという問題がある。現在、これらの複雑な構造は、培養足場として優れているという観点から、培養足場として求められており、かような培養足場に対し、優れた細胞増殖性を付与する手段が求められる。
【００２３】
上記事情を鑑みて、本発明者らは、ポリマーが塗布操作性に優れる点に着目して、細胞増殖性に優れるポリマーについて鋭意検討を行った。ポリメトキシエチルアクリレートは、従来、細胞増殖性および細胞接着性を有することが知られている。しかし、ポリメトキシエチルアクリレートは、その被膜の厚みが大きくなるにつれて、細胞を基材上に伸展させる能力（細胞伸展性、細胞増殖性）が低下する（下記表１における比較例２−１と比較例２−２との比較）。また、ポリメトキシエチルアクリレートの被膜は、その被膜の厚みが大きくなるにつれて、細胞接着性が低下する（下記表２における比較例２−１と比較例２−２との比較）。
【００２４】
このため、本発明者らは、様々な単量体に由来する重合体および共重合体について、細胞増殖性および細胞接着性を評価したところ、カルボキシアルキル（メタ）アクリレートと、水酸基を有するエチレン性不飽和単量体との共重合体が、特定組成において、細胞増殖性（細胞伸展性）の膜厚依存性が小さいことを初めて見出した。また、本発明者らは、これらの共重合体が細胞接着性の膜厚依存性が小さいことをも見出した。
【００２５】
この詳細なメカニズムは不明であるものの、被覆層（被膜）の硬さが関係していると推測される。具体的には、細胞増殖性（細胞伸展性）および細胞接着性は、その細胞が接着する培養足場の表面の硬さに依存し、この表面が適度な硬さを有しているときに、細胞増殖性（細胞伸展性）や細胞接着性が向上すると考えられる。すなわち、細胞足場の表面が硬すぎても、軟らかすぎても、細胞増殖性（細胞伸展性）や細胞接着性が低下すると推測される。
【００２６】
ここで、細胞が接着する被覆層（培養足場）の厚みが小さい場合には、その被覆層を形成する成分自体の硬さは、被覆層表面の硬さにそれほど影響を与えない。したがって、このような場合においては、被覆層表面の硬さは、被覆層を形成する成分自体の硬さに依存せず、一定の細胞増殖性を発揮できる（下記表１における実施例１−２〜４−２、比較例１−２〜４−２）。一方、被覆層の厚みが大きい場合には、被覆層（培養足場）の表面の硬さは、被覆層を形成する成分の硬さに大きく依存する。したがって、ポリメトキシエチルアクリレート等の軟らかい成分を用いて厚みの大きい被覆層を形成すると、細胞が接着する被覆層（培養足場）の表面が軟らかすぎる状態となり、細胞増殖性が低下する（下記表１における比較例２−１と比較例２−２との比較）。その結果、被覆層の厚みに依存して、細胞増殖性が変化してしまうと考えられる。
【００２７】
これに対し、本発明に係る共重合体は、適度な硬さを有しているため、被覆層の厚みを大きくした場合であっても、細胞が接着する被覆層（培養足場）の表面が適度に硬い状態を維持できる。よって、厚みが小さい場合と同様に、良好な細胞増殖性（細胞伸展性）を維持することができる。すなわち、本発明に係る共重合体は、適度な硬さを有することから、細胞増殖性（細胞伸展性）の膜厚依存性が小さいと考えられる。また、同様に、被覆層の厚みを大きくした場合であっても、細胞が接着する被覆層（培養足場）の表面が適度に硬い状態を有することから、細胞接着性にも優れる。
【００２８】
加えて、構成単位（１）を形成するカルボキシアルキル（メタ）アクリレートのカルボキシル基（−ＣＯＯＨ）および構成単位（２）を形成する水酸基を有するエチレン性不飽和単量体の水酸基（−ＯＨ）が細胞伸展（増殖）・接着のシグナルの活性化または誘導を介して細胞の伸展（増殖）や接着を促進しているのではないかと推測される。ここで、本発明に係る共重合体は、構成単位（１）および構成単位（２）を特定の組成（モル比）で含むことから、カルボキシル基および水酸基が適度な割合で含まれることとなる。したがって、本発明に係る共重合体により形成される被膜は、細胞の伸展（増殖）や接着を促進する効果が高いと考えられる。よって、この点からも本発明に係る細胞培養基材は、優れた細胞増殖性（細胞伸展性）を有する。また、同様に、本発明に係る共重合体は、細胞接着のシグナルの活性化または誘導に関連する官能基（カルボキシル基および水酸基）が適度なバランスで含まれていることから、良好な細胞接着性もまた有する。なお、例えば、ヒドロキシアルキル（メタ）アクリレートのホモポリマーは細胞接着性を低下させる。この点に鑑みると、カルボキシアルキル（メタ）アクリレートと水酸基を有するエチレン性不飽和単量体との共重合体が、各単量体のホモポリマーに比して、細胞接着性さらには細胞増殖性（細胞伸展性）を向上できるという本発明者らの発見は、非常に驚くべきものである。
【００２９】
以下、本発明の好ましい実施の形態を説明する。なお、本発明は、以下の実施の形態のみには限定されない。
【００３０】
本明細書において、範囲を示す「Ｘ〜Ｙ」は、ＸおよびＹを含み、「Ｘ以上Ｙ以下」を意味する。また、特記しない限り、操作および物性等の測定は室温（２０〜２５℃）／相対湿度４０〜５０％ＲＨの条件で測定する。
【００３１】
＜細胞培養基材＞
本発明の細胞培養基材は、高分子基材の少なくとも一方の面に、上記共重合体を含む被覆層が形成されてなる。本発明に係る共重合体は、膜厚が変化しても良好な細胞増殖性（細胞伸展性）を有する。また、本発明に係る共重合体は、膜厚が変化しても、良好な細胞接着性を維持できる。加えて、被覆層は、共重合体を溶媒に溶解し、この溶液を高分子基材表面に塗布することによって簡便に形成できる。このため、本発明に係る共重合体を使用することにより、細胞培養基材（細胞培養容器）の形状・設計によらず、基材表面に細胞増殖性（さらには細胞接着性）を有する被覆層（細胞増殖層）を形成できる。このとき、本発明に係る共重合体は、上記のように、膜厚が変化しても良好な細胞増殖性（さらには細胞接着性）を示すことから、高分子（共重合体）を一定の厚みで被覆することが難しい複雑化した構造を有する細胞培養基材（細胞培養容器）に対して一定の細胞増殖性（さらには細胞接着性）を付与することができ、有用である。
【００３２】
［共重合体］
本発明に係る共重合体は、４０モル％を超えて１００モル％未満の式（１）で表されるカルボキシアルキル（メタ）アクリレート由来の構成単位（１）および０モル％を超えて６０モル％未満の水酸基を有するエチレン性不飽和単量体由来の構成単位（２）を有する。ここで、構成単位（１）および構成単位（２）の合計は１００モル％である。
【００３３】
共重合体は、構成単位（１）および構成単位（２）、ならびに必要であれば下記に詳述する他のモノマー由来の構成単位を有する。ここで、各構成単位の配置は、特に制限されず、ブロック状（ブロック共重合体）でもよいしランダム状（ランダム共重合体）でもよいし交互状（交互共重合体）でもよい。
【００３４】
カルボキシアルキル（メタ）アクリレート（構成単位（１））は、そのカルボキシル基により、また、水酸基を有するエチレン性不飽和単量体（構成単位（２））は、その水酸基により、それぞれ細胞増殖性（細胞伸展性）を基材に付与すると推測される。本発明に係る共重合体は、特定の組成（モル比）で構成単位（１）および構成単位（２）を含むことから、カルボキシル基および水酸基のバランスが適度に調節され、上記のような細胞を伸展させる効果（細胞増殖性）が向上する。
【００３５】
一方で、構成単位（２）を多く含む（共）重合体は、硬くなりやすいという傾向がある。したがって、構成単位（２）のみからなる重合体により形成される被覆層（被膜）は、その厚みが大きいとき、当該被覆層（被膜）を形成する重合体が硬すぎることにより、細胞増殖性（細胞伸展性）が低下すると考えられる。すなわち、被覆層（被膜）が硬すぎると、細胞が伸展する際に、被覆層（被膜）に対して細胞が部分的に入り込むことが難しくなるために、細胞増殖性（細胞伸展性）が低下すると考えられる。
【００３６】
また、構成単位（１）を多く含む（共）重合体は、軟らかくなりやすいという傾向がある。したがって、構成単位（１）のみからなる重合体により形成される被覆層（被膜）は、その厚みが大きいとき、当該被覆層（被膜）が軟らかすぎることにより、細胞増殖性（細胞伸展性）が低下すると考えられる。すなわち、被覆層（被膜）が軟らかすぎると、細胞が伸展する際に、細胞が被覆層（被膜）に対して安定して保持されにくい（細胞が被覆層（被膜）を足場とすることができない）ため、被覆層（被膜）表面に沿って増殖（伸展）しにくい、または増殖（伸展）できない。その結果、細胞増殖性（細胞伸展性）が低下すると考えられる。
【００３７】
これに対し、構成単位（２）に構成単位（１）を特定の組成（モル比）で組み合わせることにより、適度な硬さを有する共重合体を得ることができる。その結果、構成単位（１）および構成単位（２）を特定の組成（モル比）で含む共重合体を用いた被覆層（被膜）は、その厚みが大きい場合であっても、被覆層（被膜）の表面が適度な硬さを有する状態となる。その結果、細胞増殖性が低下せず、細胞増殖性の膜厚依存性を小さくすることができると考えられる。上記に加えて、共重合体の溶液を高分子基材表面に塗布することによって、様々な形状の基材に対しても被覆層を簡便に形成できる。このため、本発明に係る共重合体によれば、様々な形状・設計の細胞培養基材（細胞培養容器）対して、細胞増殖性（さらには細胞接着性）に優れた被覆層（細胞接着層）を形成できる。
【００３８】
本発明に係る共重合体を構成する構成単位（１）は、構成単位（１）および構成単位（２）の合計（１００モル％）に対して、４０モル％を超えて１００モル％未満であり、構成単位（２）は、構成単位（１）および構成単位（２）の合計（１００モル％）に対して、０モル％を超えて６０モル％未満である。ここで、構成単位（１）の組成が４０モル％以下であると、カルボキシアルキル（メタ）アクリレート（構成単位（１））による効果（細胞増殖性促進効果、さらには細胞接着性付与効果）が発揮されない。具体的には、構成単位（１）の組成が４０モル％以下であると、適度な硬さを有する共重合体を得ることができず（過剰な硬さの共重合体となってしまい）、このような共重合体を用いて厚みの大きい被覆層（被膜）と厚みの小さい被覆層（被膜）を形成した場合、一定の細胞増殖性が得られない（下記表１における比較例１−１と比較例１−２との比較）。また、同様に、細胞接着性も低下する。他方、構成単位（１）の組成が１００モル％であると、厚みの大きい被覆層（被膜）を形成した場合に、軟らかくなりすぎてしまい、被覆層（被膜）を形成することによる効果（細胞増殖性付与効果）が発揮されず、未処理の細胞培養基材（細胞培養容器）と同程度の細胞増殖性しか発揮できない（下記表１における比較例４−１、比較例４−２ならびに参考例１の比較）。
【００３９】
細胞増殖性（さらには細胞接着性）のさらなる向上などの観点から、構成単位（１）は、構成単位（１）および構成単位（２）の合計に対して、４５モル％以上９８モル％以下であり、かつ構成単位（２）は、構成単位（１）および構成単位（２）の合計に対して、２モル％以上５５モル％以下であることが好ましい。より好ましくは、構成単位（１）は、構成単位（１）および構成単位（２）の合計に対して、５５モル％以上９５モル％以下であり、かつ構成単位（２）は、構成単位（１）および構成単位（２）の合計に対して、５モル％以上４５モル％以下である。さらに、細胞増殖性に加え、細胞接着性の膜厚依存性もまた低減できる共重合体を得るという観点から、より好ましくは、構成単位（１）は、構成単位（１）および構成単位（２）の合計に対して、６０モル％以上９０モル％以下であり、かつ構成単位（２）は、構成単位（１）および構成単位（２）の合計に対して、１０モル％以上４０モル％以下である。さらにまた、特に細胞増殖性に優れるという観点から、特に好ましくは、構成単位（１）は、構成単位（１）および構成単位（２）の合計に対して、６５モル％以上９０モル％以下であり、かつ構成単位（２）は、構成単位（１）および構成単位（２）の合計に対して、１０モル％以上３５モル％以下である。最も好ましくは、構成単位（１）は、構成単位（１）および構成単位（２）の合計に対して、７５モル％以上８５モル％以下であり、かつ構成単位（２）は、構成単位（１）および構成単位（２）の合計に対して、１５モル％以上２５モル％以下である。
【００４０】
すなわち、本発明の好ましい形態によると、共重合体は、４５モル％以上９８モル％以下の前記構成単位（１）および２モル％以上５５モル％以下の前記構成単位（２）を有する共重合体（前記構成単位（１）および前記構成単位（２）の合計は１００モル％である）である。また、本発明のより好ましい形態によると、共重合体は、５５モル％以上９５モル％以下の前記構成単位（１）および５モル％以上４５モル％以下の前記構成単位（２）を有する共重合体（前記構成単位（１）および前記構成単位（２）の合計は１００モル％である）である。さらに、細胞増殖性に加え、細胞接着性の膜厚依存性もまた低減できる共重合体を得るという観点から、本発明のさらにより好ましい形態によると、共重合体は、６０モル％以上９０モル％以下の前記構成単位（１）および１０モル％以上４０モル％以下の前記構成単位（２）を有する共重合体（前記構成単位（１）および前記構成単位（２）の合計は１００モル％である）である。さらにまた、特に細胞増殖性の膜厚依存性が小さいという観点から、本発明の特に好ましい形態によると、共重合体は、６５モル％以上９０モル％以下の前記構成単位（１）および１０モル％以上３５モル％以下の前記構成単位（２）を有する共重合体（前記構成単位（１）および前記構成単位（２）の合計は１００モル％である）である。さらにまた、本発明の最も好ましい形態によると、共重合体は、７５モル％以上８５モル％以下の前記構成単位（１）および１５モル％以上２５モル％以下の前記構成単位（２）を有する共重合体（前記構成単位（１）および前記構成単位（２）の合計は１００モル％である）である。
【００４１】
本発明に係る共重合体は、構成単位（１）および構成単位（２）を必須に含むが、構成単位（１）および構成単位（２）に加えて、他のモノマーに由来する構成単位をさらに有していてもよい。ここで、他のモノマーは、所望の特性（細胞増殖性および／または細胞接着性）を阻害しないものであれば特に制限されない。具体的には、他のモノマーとしては、アクリルアミド、Ｎ，Ｎ−ジメチルアクリルアミド、Ｎ，Ｎ−ジエチルアクリルアミド、メタクリルアミド、Ｎ，Ｎ−ジメチルメタクリルアミド、Ｎ，Ｎ−ジエチルメタクリルアミド、エチレン、プロピレン、Ｎ−ビニルアセトアミド、Ｎ−イソプロペニルアセトアミド、Ｎ−（メタ）アクリロイルモルホリン等がある。これらの他のモノマーは、１種単独であっても、２種以上を組み合わせて用いられてもよい。共重合体が他のモノマーに由来する構成単位をさらに有する場合の他のモノマーに由来する構成単位の組成は、所望の特性（細胞増殖性、細胞接着性）を阻害しないものであれば特に制限されないが、構成単位（１）および構成単位（２）の合計に対して、０モル％を超えて１０モル％未満であることが好ましく、３〜８モル％程度であることがより好ましい。
【００４２】
細胞増殖性（さらには細胞接着性）を向上させる目的から、共重合体は、他のモノマーに由来する構成単位を含まない、すなわち、本発明に係る共重合体が構成単位（１）および構成単位（２）のみから構成されることが好ましい。すなわち、本発明の好ましい形態によると、共重合体は、前記構成単位（１）および前記構成単位（２）から構成される。
【００４３】
したがって、本発明のより好ましい形態によると、共重合体は、６０モル％以上９０モル％以下の前記構成単位（１）および１０モル％以上４０モル％以下の前記構成単位（２）からなる共重合体（前記構成単位（１）および前記構成単位（２）の合計は１００モル％である）である。かような組成（モル比）であると、細胞増殖性に加え、細胞接着性の膜厚依存性をも低減できる。また、本発明のさらにより好ましい形態によると、共重合体は、６５モル％以上９０モル％以下の前記構成単位（１）および１０モル％以上３５モル％以下の前記構成単位（２）からなる共重合体（前記構成単位（１）および前記構成単位（２）の合計は１００モル％である）である。かような組成（モル比）であると、特に細胞増殖性の膜厚依存性が小さい。さらに、本発明の特に好ましい形態によると、共重合体は、７５モル％以上８５モル％以下の前記構成単位（１）および１５モル％以上２５モル％以下の前記構成単位（２）からなる共重合体（前記構成単位（１）および前記構成単位（２）の合計は１００モル％である）である。
【００４４】
構成単位（１）は、下記式（１）のカルボキシアルキル（メタ）アクリレート由来である。なお、共重合体を構成する構成単位（１）は、１種単独であってもよいし、２種以上の組み合わせであってもよい。すなわち、構成単位（１）は、１種単独の下記式（１）のカルボキシアルキル（メタ）アクリレート由来の構成単位のみから構成されても、あるいは下記式（１）のカルボキシアルキル（メタ）アクリレート由来の２種以上の構成単位から構成されてもよい。なお、後者の場合、各構成単位は、ブロック状に存在しても、ランダム状に存在してもよい。また、構成単位（１）が下記式（１）のカルボキシアルキル（メタ）アクリレート由来の２種以上の構成単位から構成される場合には、上記構成単位（１）の組成は、構成単位（１）および構成単位（２）の合計に対する、カルボキシアルキル（メタ）アクリレート由来の構成単位の合計の割合（モル比（モル％））である。
【００４５】
【化３】
2021533734.tif 000005
【００４６】
上記式（１）中、Ｒ１は、水素原子またはメチル基である。Ｒ２は、炭素原子数２〜３のアルキレン基である。ここで、炭素原子数２〜３のアルキレン基としては、エチレン基（−ＣＨ２ＣＨ２−）、トリメチレン基（−ＣＨ２ＣＨ２ＣＨ２−）、およびプロピレン基（−ＣＨ（ＣＨ３）ＣＨ２−または−ＣＨ２ＣＨ（ＣＨ３）−）がある。これらのうち、細胞増殖性（さらには細胞接着性）のさらなる向上などの観点から、Ｒ２は、エチレン基（−ＣＨ２ＣＨ２−）、トリメチレン基（−ＣＨ２ＣＨ２ＣＨ２−）が好ましく、エチレン基（−ＣＨ２ＣＨ２−）がより好ましい。
【００４７】
すなわち、カルボキシアルキル（メタ）アクリレートとしては、カルボキシエチルアクリレート、カルボキシプロピルアクリレート、カルボキシイソプロピルアクリレート、カルボキシエチルメタクリレート、カルボキシプロピルメタクリレート、カルボキシイソプロピルメタクリレート等がある。これらは、１種単独であっても、２種以上を組み合わせて用いられてもよい。これらのうち、細胞増殖性（さらには細胞接着性）のさらなる向上などの観点から、カルボキシエチル（メタ）アクリレートであることが好ましく、カルボキシエチルアクリレート（ＣＥＡ）であることがより好ましい。
【００４８】
構成単位（２）は、水酸基を有するエチレン性不飽和単量体由来である。なお、共重合体を構成する構成単位（２）は、１種単独であってもよいし、２種以上の組み合わせであってもよい。すなわち、構成単位（２）は、１種単独の水酸基を有するエチレン性不飽和単量体由来の構成単位のみから構成されても、あるいは水酸基を有するエチレン性不飽和単量体由来の２種以上の構成単位から構成されてもよい。なお、後者の場合、各構成単位は、ブロック状に存在しても、ランダム状に存在してもよい。また、構成単位（２）が水酸基を有するエチレン性不飽和単量体由来の２種以上の構成単位から構成される場合には、上記構成単位（２）の組成は、構成単位（１）および構成単位（２）の合計に対する、水酸基を有するエチレン性不飽和単量体由来の構成単位の合計の割合（モル比（モル％））である。
【００４９】
構成単位（２）を形成する水酸基を有するエチレン性不飽和単量体は、１分子内において、それぞれ１以上の水酸基（−ＯＨ）およびエチレン性不飽和基を有する化合物であれば特に制限されない。ここで、「エチレン性不飽和基」とは、エチレン（ＣＨ２＝ＣＨ２）の水素原子が置換されてなる基をいい、例えば、（メタ）アクリロイル基、ビニル基、アリル基、ビニルエーテル基等が挙げられる。なお、これらの基は、エチレン性不飽和単量体の１分子内に１種のみ含まれていてもよいし、２種以上が含まれていてもよい。
【００５０】
なかでも、エチレン性不飽和基としては、（メタ）アクリロイル基であると好ましい。すなわち、本発明の好ましい形態によると、エチレン性不飽和単量体は、（メタ）アクリロイル基を有する。よって、エチレン性不飽和単量体は、１分子内において、１以上の水酸基および１以上のアクリロイル基またはメタクリロイル基をそれぞれ有する化合物であると好ましい。エチレン性不飽和単量体に含まれる水酸基および（メタ）アクリロイル基の数の上限は特に制限されないが、細胞増殖性（細胞伸展性）および細胞接着性の制御性の観点から、１分子中における水酸基の数は、３以下であると好ましく、２以下であるとより好ましく、１であると特に好ましい。また、上記式（１）で表されるカルボキシアルキル（メタ）アクリレートとの共重合体の調製の容易性、各構成単位の組成（モル比）の制御性、ならびに細胞増殖性（細胞伸展性）および細胞接着性の制御性の観点から、１分子中における（メタ）アクリロイル基の数は３以下であると好ましく、２以下であるとより好ましい。特に、各構成単位の組成（モル比）を制御して、細胞増殖性（さらには細胞接着性）の膜厚依存性をさらに低減するという観点から、１分子中における（メタ）アクリロイル基の数は１であると特に好ましい。
【００５１】
本発明の好ましい形態によると、構成単位（２）は、下記式（２）で表されるヒドロキシアルキル（メタ）アクリレート由来である。すなわち、エチレン性不飽和単量体は、下記式（２）で表されるヒドロキシアルキル（メタ）アクリレートであると好ましい。なお、共重合体を構成する構成単位（２）は、１種単独であってもよいし、２種以上の組み合わせであってもよい。すなわち、構成単位（２）は、１種単独の下記式（２）で表されるヒドロキシアルキル（メタ）アクリレート由来の構成単位のみから構成されても、あるいは下記式（２）で表されるヒドロキシアルキル（メタ）アクリレート由来の２種以上の構成単位から構成されてもよい。なお、後者の場合、各構成単位は、ブロック状に存在しても、ランダム状に存在してもよい。また、構成単位（２）が下記式（２）で表されるヒドロキシアルキル（メタ）アクリレート由来の２種以上の構成単位から構成される場合には、上記構成単位（２）の組成は、構成単位（１）および構成単位（２）の合計に対する、ヒドロキシアルキル（メタ）アクリレート由来の構成単位の合計の割合（モル比（モル％））である。
【００５２】
【化４】
2021533734.tif 000006
【００５３】
上記式（２）中、Ｒ３は、水素原子またはメチル基である。Ｒ４は、炭素原子数２〜３のアルキレン基である。ここで、炭素原子数２〜３のアルキレン基としては、エチレン基（−ＣＨ２ＣＨ２−）、トリメチレン基（−ＣＨ２ＣＨ２ＣＨ２−）、およびプロピレン基（−ＣＨ（ＣＨ３）ＣＨ２−または−ＣＨ２ＣＨ（ＣＨ３）−）がある。これらのうち、細胞増殖性（さらには細胞接着性）のさらなる向上などの観点から、Ｒ４は、エチレン基（−ＣＨ２ＣＨ２−）、トリメチレン基（−ＣＨ２ＣＨ２ＣＨ２−）が好ましく、エチレン基（−ＣＨ２ＣＨ２−）がより好ましい。
【００５４】
すなわち、ヒドロキシアルキル（メタ）アクリレートとしては、ヒドロキシエチルアクリレート、ヒドロキシプロピルアクリレート、ヒドロキシイソプロピルアクリレート、ヒドロキシエチルメタクリレート、ヒドロキシプロピルメタクリレート、ヒドロキシイソプロピルメタクリレート等がある。これらは、１種単独であっても、２種以上を組み合わせて用いられてもよい。これらのうち、細胞増殖性（さらには細胞接着性）のさらなる向上などの観点から、ヒドロキシアルキル（メタ）アクリレートは、ヒドロキシエチル（メタ）アクリレートであることが好ましく、ヒドロキシエチルメタクリレート（ＨＥＭＡ）であることがより好ましい。
【００５５】
上記共重合体の重量平均分子量（Ｍｗ）は、特に制限されないが、好ましくは２０，０００〜１，０００，０００である。上記範囲内であれば、共重合体の溶媒に対する溶解性が向上し、基材への塗布を均一に行いやすくなる。共重合体の重量平均分子量は、塗膜形成性を向上させるという観点から、より好ましくは１００，０００〜５００，０００である。
【００５６】
本明細書において、「重量平均分子量（Ｍｗ）」は、標準物質としてポリスチレンを、移動相としてテトラヒドロフラン（ＴＨＦ）をそれぞれ使用するゲル浸透クロマトグラフィー（Gel Permeation Chromatography、ＧＰＣ）により測定した値を採用するものとする。具体的には、共重合体をテトラヒドロフラン（ＴＨＦ）に１０ｍｇ／ｍｌの濃度となるように溶解し、試料を調製する。このようにして調製された試料について、ＧＰＣシステムＬＣ−２０（（株）島津製作所製）にＧＰＣカラムＬＦ−８０４（昭和電工（株）製）を取り付け、移動相としてＴＨＦを流し、標準物質としてポリスチレンを用いて、共重合体のＧＰＣを測定する。標準ポリスチレンで較正曲線を作製した後、この曲線に基づいて共重合体の重量平均分子量（Ｍｗ）を算出する。
【００５７】
本発明に係る共重合体は、特に制限されず、例えば、塊状重合、懸濁重合、乳化重合、溶液重合、リビングラジカル重合法、マクロ開始剤を用いた重合法、重縮合法等など、従来公知の重合法を適用して作製可能である。具体的には、例えば、本発明に係る共重合体がブロック共重合体である場合には、リビングラジカル重合法またはマクロ開始剤を用いた重合法が好ましく使用される。リビングラジカル重合法としては、特に制限されないが、例えば特開平１１−２６３８１９号公報、特開２００２−１４５９７１号公報、特開２００６−３１６１６９号公報等に記載される方法、ならびに原子移動ラジカル重合（ＡＴＲＰ）法などが、同様にしてあるいは適宜修飾して適用できる。
【００５８】
または、例えば、本発明に係る共重合体がランダム共重合体である場合には、上記式（１）のカルボキシアルキル（メタ）アクリレートと、水酸基を有するエチレン性不飽和単量体（好ましくは、上記式（２）のヒドロキシアルキル（メタ）アクリレート）と、必要であればこれらと共重合し得る単量体（他のモノマー、共重合性単量体；以下同様）の一種または二種以上とを重合溶媒中で重合開始剤と共に撹拌して、単量体溶液を調製し、上記単量体溶液を加熱することにより、共重合させる方法が好ましく使用される。上記方法において、単量体溶液の調製で使用できる重合溶媒は、上記使用される単量体を溶解できるものであれば特に制限されない。例えば、水、メタノール、エタノール、プロパノール、イソプロパノール等のアルコール、ポリエチレングリコール類などの水性溶媒；トルエン、キシレン、テトラリン等の芳香族系溶媒；およびクロロホルム、ジクロロエタン、クロロベンゼン、ジクロロベンゼン、トリクロロベンゼン等のハロゲン系溶媒などが挙げられる。これらのうち、単量体の溶解しやすさなどを考慮すると、エタノールが好ましい。また、単量体溶液中の単量体濃度は、特に制限されないが、単量体溶液中の単量体濃度は、通常１５〜６０重量％であり、より好ましくは２０〜５０重量％であり、特に好ましくは２５〜４５重量％である。なお、上記単量体濃度は、上記式（１）のカルボキシアルキル（メタ）アクリレートと、水酸基を有するエチレン性不飽和単量体（好ましくは、上記式（２）のヒドロキシアルキル（メタ）アクリレート）と、使用する際にはこれらと共重合し得る単量体（他のモノマー、共重合性単量体）との合計濃度を意味する。
【００５９】
重合開始剤は特に制限されず、公知のものを使用すればよい。好ましくは、重合安定性に優れる点で、ラジカル重合開始剤であり、具体的には、過硫酸カリウム（ＫＰＳ）、過硫酸ナトリウム、過硫酸アンモニウム等の過硫酸塩；過酸化水素、ｔ−ブチルパーオキシド、メチルエチルケトンパーオキシド等の過酸化物；アゾビスイソブチロニトリル（ＡＩＢＮ）、２，２’−アゾビス（４−メトキシ−２，４−ジメチルバレロニトリル）、２，２’−アゾビス（２，４−ジメチルバレロニトリル）、２，２’−アゾビス［２−（２−イミダゾリン−２−イル）プロパン］ジヒドロクロリド、２，２’−アゾビス［２−（２−イミダゾリン−２−イル）プロパン］ジスルフェートジハイドレート、２，２’−アゾビス（２−メチルプロピオンアミジン）ジヒドロクロリド、２，２’−アゾビス［Ｎ−（２−カルボキシエチル）−２−メチルプロピオンアミジン）］ハイドレート、３−ヒドロキシ−１，１−ジメチルブチルパーオキシネオデカノエート、α−クミルパーオキシネオデカノエート、１，１，３，３−テトラブチルパーオキシネオデカノエート、ｔ−ブチルパーオキシネオデカノエート、ｔ−ブチルパーオキシネオヘプタノエート、ｔ−ブチルパーオキシピバレート、ｔ−アミルパーオキシネオデカノエート、ｔ−アミルパーオキシピバレート、ジ（２−エチルヘキシル）パーオキシジカーボネート、ジ（セカンダリーブチル）パーオキシジカーボネート、アゾビスシアノ吉草酸等のアゾ化合物が挙げられる。また、例えば、上記ラジカル重合開始剤に、亜硫酸ナトリウム、亜硫酸水素ナトリウム、アスコルビン酸等の還元剤を組み合わせてレドックス系開始剤として用いてもよい。重合開始剤の配合量は、単量体合計量１モルに対して、０．０００５〜０．００５モルが好ましい。このような重合開始剤の配合量であれば、各単量体の共重合が効率よく進行する。
【００６０】
上記重合開始剤は、上記式（１）のカルボキシアルキル（メタ）アクリレートおよび水酸基を有するエチレン性不飽和単量体（好ましくは、上記式（２）のヒドロキシアルキル（メタ）アクリレート）、ならびに使用する際にはこれらと共重合し得る単量体（他のモノマー、共重合性単量体）と、重合溶媒とそのまま混合されてもよいが、予め他の溶媒に溶解した溶液の形態で単量体および重合溶媒と混合されてもよい。後者の場合、他の溶媒としては、重合開始剤を溶解できるものであれば特に制限されないが、上記重合溶媒と同様の溶媒が例示できる。また、他の溶媒は、上記重合溶媒と同じであってもまたは異なってもよいが、重合の制御のしやすさなどを考慮すると、上記重合溶媒と同じ溶媒であることが好ましい。また、この場合の他の溶媒における重合開始剤の濃度は、特に制限されないが、混合のしやすさなどを考慮すると、重合開始剤の添加量が、他の溶媒１００重量部に対して、好ましくは０．１〜１０重量部、より好ましくは０．５〜５重量部である。
【００６１】
また、重合開始剤を溶液の形態で使用する場合には、単量体（カルボキシアルキル（メタ）アクリレート、水酸基を有するエチレン性不飽和単量体および任意で用いられる共重合性単量体）を重合溶媒に溶解した溶液を、重合開始剤溶液の添加前に予め脱気処理を行ってもよい。脱気処理は、例えば、窒素ガスやアルゴンガス等の不活性ガスにて、上記溶液を０．５〜５時間程度バブリングすればよい。脱気処理の際は、上記溶液を３０℃〜８０℃程度、好ましくは下記の重合工程における重合温度に調温してもよい。
【００６２】
次に、上記単量体溶液を加熱することにより、各単量体を共重合する。ここで、共重合方法は、例えば、ラジカル重合、アニオン重合、カチオン重合などの公知の重合方法が採用でき、好ましくは製造が容易なラジカル重合を使用する。
【００６３】
重合条件は、上記式（１）のカルボキシアルキル（メタ）アクリレートおよび水酸基を有するエチレン性不飽和単量体（好ましくは、上記式（２）のヒドロキシアルキル（メタ）アクリレート）、ならびに使用する際にはこれらと共重合し得る単量体（他のモノマー、共重合性単量体））が共重合できる条件であれば特に制限されない。具体的には、共重合温度は、好ましくは３０〜８０℃であり、より好ましくは４０℃〜５５℃である。また、共重合時間は、好ましくは１〜２４時間であり、好ましくは５〜１２時間である。上記したような条件であれば、各単量体の共重合が効率よく進行する。また、重合工程におけるゲル化を有効に抑制・防止すると共に、高い製造効率を達成できる。
【００６４】
また、必要に応じて、連鎖移動剤、重合速度調整剤、界面活性剤、およびその他の添加剤を、重合の際に適宜使用してもよい。
【００６５】
重合反応を行う雰囲気は特に制限されるものではなく、大気雰囲気下、窒素ガスやアルゴンガス等の不活性ガス雰囲気等で行うこともできる。また、重合反応中は、反応液を攪拌してもよい。
【００６６】
重合後の重合体は、再沈澱法（析出法）、透析法、限外濾過法、抽出法など一般的な精製法により精製することができる。
【００６７】
精製後の重合体は、凍結乾燥、減圧乾燥、噴霧乾燥、または加熱乾燥等、任意の方法によって乾燥することもできるが、重合体の物性に与える影響が小さいという観点から、凍結乾燥または減圧乾燥が好ましい。
【００６８】
［高分子基材］
本発明では、高分子基材の少なくとも一方の面に、上記共重合体を含む被覆層が形成される。ここで、被覆層は、高分子基材の細胞が接触する（例えば、細胞を含む液を流す、細胞を培養する）側の面に少なくとも形成される。また、被覆層は高分子基材表面全体に形成される必要はない。被覆層は、細胞が接触する（例えば、細胞を含む液を流す、細胞を培養する）高分子基材表面部分（一部）に形成されればよいが、細胞増殖性（さらには細胞接着性）のさらなる向上効果の観点から、被覆層が、細胞が接触する（例えば、細胞を含む液を流す、細胞を培養する）側の高分子基材表面全体に形成されることが好ましい。
【００６９】
ここで、高分子基材の構造は、限定されず、平面構造に加えて、多孔体を挿入した構造、中空糸構造、多孔質膜構造、スポンジ構造、綿状（ガラスウール）構造など様々な構造（形状）に設計することが可能である。後述するように、本発明の細胞培養基材はバイオリアクター、特に中空糸型バイオリアクターに好適に使用できる。このため、高分子基材は中空糸を有することが好ましく、複数の中空糸から構成される多孔質膜であることがより好ましい。すなわち、本発明の好ましい形態によると、高分子基材は多孔質膜である。高分子基材が多孔質膜である際の多孔質膜を構成する中空糸の内径（直径）は、特に制限されないが、好ましくは５０〜１，０００μｍ、より好ましくは１００〜５００μｍ、特に好ましくは１５０〜３５０μｍ程度である。多孔質膜を構成する中空糸の外径（直径）は、特に制限されないが、好ましくは１００〜１，２００μｍ、より好ましくは１５０〜７００μｍ、特に好ましくは２００〜５００μｍ程度である。高分子基材が多孔質膜である際の多孔質膜を構成する中空糸の長さは、特に制限されないが、好ましくは５０〜９００ｍｍ、より好ましくは１００〜７００ｍｍ、特に好ましくは１５０〜５００ｍｍ程度である。高分子基材が多孔質膜である際の多孔質膜を構成する中空糸の数は、特に制限されないが、例えば、約１，０００〜１００，０００本、より好ましくは３，０００〜５０，０００本、特に好ましくは５，０００〜２５，０００本程度である。一実施形態においては、高分子基材は、平均長約２９５ｍｍ、平均内径２１５μｍ、平均外径３１５μｍの中空糸約９０００本から構成される。ここで、被覆層は、中空糸膜の内面または外面に形成されてもよいが、内面（内腔）表面に形成されることが好ましい。
【００７０】
中空糸および多孔質膜の製造方法は、特に制限されず、公知の製造方法が同様にしてあるいは適宜修飾して適用できる。例えば、中空糸は、延伸法または固液相分離法により壁に微細孔が形成されてなることが好ましい。
【００７１】
高分子基材を構成する材料もまた特に限定されない。具体的には、ポリプロピレン、ポリエチレン等のポリオレフィン樹脂、ポリスチレン、ポリスルホン、ポリアクリロニトリル、ポリテロラフルオロエチレン、セルロースアセテート等の疎水性高分子材料などが挙げられる。また、高分子基材は、ポリアミドとポリアリールエーテルスルホンとポリビニルピロリドンの混合物（ＰＡ／ＰＡＥＳ／ＰＶＰ）等の半透過性の生体適合性ポリマー材料から作製されてもよい。このような半透過性膜によって、栄養、廃棄物、溶存ガスは膜を通じて中空糸の毛細管外側（ＥＣ空間）と中空糸の毛細管内側（ＩＣ空間）との間で移動可能となる。中空糸膜の分子移動特性は、代謝廃棄生成物が膜を通じて中空糸内腔側に拡散して取り出されるようにすると同時に、細胞成長に必要とされる高価な試薬（成長因子、サイトカイン等）の中空糸からの損失を最小限にするように選択してもよい。高分子基材がＰＡ／ＰＡＥＳ／ＰＶＰから形成される中空糸である場合には、中空糸の外側層は一定の表面粗さを有する開孔構造を有していてもよい。細孔の開口（直径）は、特に制限されないが、約０．５〜約３μｍの範囲であり、中空糸の外側表面の細孔数は１平方ミリメートル（１ｍｍ２）当たり約１０，０００から約１５０，０００の範囲であってもよい。ここで、中空糸の外側層の厚みは、特に制限されないが、例えば、約１〜約１０μｍの範囲である。中空糸は、外側に次の層（第２層）を有していてもよく、この際、次の層（第２層）は、約１〜約１５μｍの厚さのスポンジ構造を有することが好ましい。このような構造を有する第２層は、前記外側層の支持体として機能できる。また、本形態において、中空糸は、上記第２層の外側にさらに次の層（第３層）を有していてもよく、この際、さらなる次の層（第３層）は、指状構造を有することが好ましい。このような構造を有する第３層であれば、機械的安定性が得られる。また、分子の膜移動抵抗が低くなるような高い空隙容量を提供できる。本形態において、使用中は、指状空隙は流体で満たされ、該流体によって、拡散および対流における抵抗は、空隙容量が小さいスポンジ充填(sponge-filled)構造を有するマトリックスの場合よりも、低くなる。この第３層は、好ましくは約２０〜約６０μｍの厚さを有する。
【００７２】
または、高分子基材は、約６５重量％から約９５重量％の少なくとも一種の疎水性ポリマーと、約５重量％から約３５重量％の少なくとも一種の親水性ポリマーと、を有してもよい。この際、疎水性ポリマーと親水性ポリマーとの合計量は、１００重量％である。ここで、疎水性ポリマーとしては、特に制限されないが、例えば、ポリアミド（ＰＡ）、ポリアラミド（ＰＡＡ）、ポリアリールエーテルスルホン（ＰＡＥＳ）、ポリエーテルスルホン（ＰＥＳ）、ポリスルホン（ＰＳＵ）、ポリアリールスルホン（ＰＡＳＵ）、ポリカーボネート（ＰＣ）、ポリエーテル、ポリウレタン（ＰＵＲ）、ポリエーテルイミドおよびポリエーテルスルホン；ならびにポリアリールエーテルスルホンとポリアミドとの混合物などがある。これらの疎水性ポリマーは、１種単独であっても、２種以上の混合物の形態であってもよい。また、親水性ポリマーとしては、特に制限されないが、例えば、ポリビニルピロリドン（ＰＶＰ）、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、ポリグリコールモノエステル(polyglycolmonoester)、水溶性セルロース誘導体、ポリソルベート、ポリエチレン−ポリプロピレンオキサイド共重合体などがある。これらの親水性ポリマーは、１種単独であっても、２種以上の混合物の形態であってもよい。
【００７３】
高分子基材表面に本発明に係る共重合体を含む被覆層を形成する方法は特に制限されない。例えば、高分子基材の表面が平面な皿（プレート）構造を有する場合には、本発明に係る共重合体を溶解させた共重合体含有溶液を所定の面に塗布（例えば、ウェルに添加）した後、乾燥する方法が使用できる。また、例えば、高分子基材が中空糸または多孔質膜である場合には、本発明に係る共重合体を溶解させた共重合体含有溶液を中空糸の細胞接触部に接触させた（例えば、中空糸内表面（内腔）または外表面に流通させた）後、乾燥する方法が使用できる。なお、高分子基材が複数の中空糸からなる多孔質膜である場合には、共重合体含有溶液による被覆は、１本の中空糸に対して行った後中空糸を束ねても、または複数の中空糸を束ねて多孔質膜を作製した後に行ってもよい。
【００７４】
ここで、本発明に係る共重合体を溶解させる溶媒は、本発明に係る共重合体を溶解できるものであれば特に制限されない。共重合体の溶解性などの観点から、例えば、水、メタノール、エタノール、プロパノール、イソプロパノール等のアルコール、ポリエチレングリコール類などの水性溶媒；アセトン等のケトン系溶媒；テトラヒドロフラン等のフラン系溶媒などが挙げられる。上記溶媒は、１種単独で使用されてもあるいは２種以上の混合物の形態で使用されてもよい。これらのうち、本発明に係る共重合体のさらなる溶解性の向上を考慮すると、メタノールであることが好ましい。また、共重合体含有溶液中の共重合体の濃度は、特に制限されない。基材への塗布しやすさ、コートむらの低減効果などを考慮すると、好ましくは０．０００１〜５重量％、より好ましくは０．００１〜２重量％である。
【００７５】
また、共重合体の被覆方法は、特に制限されないが、充填、ディップコーティング（浸漬法）、噴霧、スピンコーティング、滴下、ドクターブレード、刷毛塗り、ロールコーター、エアーナイフコート、カーテンコート、ワイヤーバーコート、グラビアコート、混合溶液含浸スポンジコート等、従来公知の方法を適用することができる。
【００７６】
また、共重合体の塗膜の形成条件は、特に制限されない。例えば、共重合体含有溶液と高分子基材との接触時間（例えば、共重合体含有溶液の中空糸内腔または外表面に流通させる時間）は、塗膜（ゆえに被覆層）の形成しやすさ、コートむらの低減効果などを考慮すると、１〜５分が好ましく、１〜３分がより好ましい。また、共重合体含有溶液と高分子基材との接触温度（例えば、共重合体含有溶液の中空糸内腔または外表面に流通させる温度）は、塗膜（ゆえに被覆層）の形成しやすさ、コートむらの低減効果などを考慮すると、５〜４０℃が好ましく、１５〜３０℃がより好ましい。
【００７７】
共重合体含有溶液の高分子基材表面への塗布量は、特に制限されないが、乾燥後の被覆層の厚みが０．００５〜２０μｍ程度となるような量であることが好ましい。なお、１回の接触（塗布）にて上記厚みが得られない場合には、所望の厚みが得られるまで、接触（塗布）工程（または塗布工程および下記乾燥工程）を繰り返してもよい。
【００７８】
本発明に係る共重合体によれば、厚みの大きい被覆層であっても、細胞増殖性（さらには細胞接着性）が低下することが抑制される。したがって、複雑化した構造を有する細胞培養基材（細胞培養容器）のように、一定の厚みの被覆層を形成することが難しい場合であっても、被覆層の厚みに依存せずに良好な細胞増殖性（さらには細胞接着性）を付与できる。したがって、本発明の一形態として、被覆層の厚みが、５〜２０μｍであってもよい。さらに、本発明の一形態として、被覆層の厚みが、１０〜１５μｍであってもよい。本発明によれば、このように被覆層の厚い形態であっても、良好な細胞増殖性（さらには細胞接着性）が得られる。また、このように被覆層を比較的厚くした場合には、被覆層（被膜）の欠陥が生じにくく、また、被覆層（被膜）中で共重合体が互いに重なり合うことができるため、密度の高い被覆層（被膜）が形成できる。従って、細胞培養基材（細胞培養容器）の表面において被覆層（被膜）が安定して保持されることから、耐久性が向上する。
【００７９】
次に、高分子基材と共重合体含有溶液との接触後に、塗膜を乾燥させることによって、本発明に係る共重合体による被覆層（被膜）が高分子基材表面に形成される。ここで、乾燥条件は、本発明に係る共重合体による被覆層（被膜）形成できる条件であれば特に制限されない。具体的には、乾燥温度は、５〜５０℃が好ましく、１５〜４０℃がより好ましい。上記乾燥工程は、単一の条件で行われても、または異なる条件で段階的に行ってもよい。また、乾燥時間は、６０〜４８０分が好ましく、１２０〜３６０分がより好ましい。また、高分子基材が多孔質膜（中空糸膜）である場合には、５〜４０℃、より好ましくは１５〜３０℃のガスを中空糸の共重合体含有溶液塗布面に連続してまたは段階的に流通させることによって、塗膜を乾燥させてもよい。ここで、ガスの種類は、塗膜（被覆層）に何ら影響を及ぼさず、塗膜を乾燥できるものであれば特に制限されない。具体的には、空気、および窒素ガス、アルゴンガス等の不活性ガスなどが挙げられる。また、ガスの流通量は、塗膜を十分乾燥できる量であれば特に制限されないが、ガスの流通量が好ましく５〜１５０Ｌ／分であり、より好ましく３０〜１００Ｌ／分となるような量である。
【００８０】
このような方法によれば、本発明に係る共重合体を高分子基材に効率よく形成できる。なお、増殖または接着させる細胞のタイプに応じて、高分子基材を、フィブロネクチン、ラミニン、コラーゲン等の細胞接着因子によってさらに処理してもよい。このような処理により、細胞の基材表面への接着や細胞の成長をさらに促進できる。なお、高分子基材が複数の中空糸からなる多孔質膜である場合には、細胞接着因子による処理は、１本の中空糸に対して行った後中空糸を束ねても、または複数の中空糸を束ねて多孔質膜を作製した後に行ってもよい。また、細胞接着因子による処理は、本発明に係る共重合体を含む被覆層を形成した後であっても、または本発明に係る共重合体を含む被覆層を形成する前であっても、または本発明に係る共重合体を含む被覆層を形成するのと同時であってもよい。
【００８１】
＜バイオリアクター＞
本発明の細胞培養基材は、膜厚が変化しても（特に、膜厚が厚い場合であっても）、優れた細胞増殖性に優れる。また、本発明の細胞培養基材は、膜厚が変化しても（特に、膜厚が大きい場合であっても）、良好な細胞接着性を有する。このため、本発明の細胞培養基材は、バイオリアクターに好適に使用できる。すなわち、本発明は、本発明の細胞培養基材を有するバイオリアクターを提供する。ここで、バイオリアクターは、平面型バイオリアクターであっても中空糸型バイオリアクターであってもよいが、中空糸型バイオリアクターが特に好ましい。このため、以下では、好ましい実施形態として、中空糸型バイオリアクターについて説明するが、本発明のバイオリアクターは平面型バイオリアクターであってもよく、この場合でも下記実施の形態を適宜変更することによって適用できる。また、図面の寸法比率は、説明の都合上誇張されており、実際の比率とは異なる場合がある。
【００８２】
本発明の細胞培養基材が好適に使用できるバイオリアクターは、特に制限されないが、本発明の細胞培養基材およびバイオリアクターを、例えば、特表２０１０−５２３１１８号公報（特許第５５２４８２４号）（ＷＯ  ２００８／１２４２２９  Ａ２）、特表２０１３−５２４８５４号公報（特許第６０３９５４７号）（ＷＯ  ２０１１／１４０２３１  Ａ１）、特表２０１３−５０７１４３号公報（特許第５８１９８３５号）（ＷＯ  ２０１１／０４５６４４  Ａ１）、特開２０１３−１７６３７７号公報（ＷＯ  ２００８／１０９６７４）、特表２０１５−５２６０９３号公報（ＷＯ  ２０１４／０３１６６６  Ａ１）、特表２０１６−５３７００１号公報（ＷＯ  ２０１５／０７３９１８  Ａ１）、および特表２０１７−５０９３４４号公報（ＷＯ  ２０１５／１４８７０４  Ａ１）などに記載される細胞培養／増殖システム；さらにはテルモＢＣＴ株式会社製のQuantum細胞増殖システムに適用することができる。従来、細胞培養では、インキュベーター、安全キャビネット、クリーンルーム等の設備が別々に必要であるが、上記したような培養システムはこれらの機能を全て備えているため、設備を非常に簡略化できる。また、上記したようなシステムを用いて細胞培養中の温度やガスを制御することで、機能的にクローズドなシステムを確保でき、細胞培養をクローズドな環境でかつ自動的に行うことができる。
【００８３】
以下に、本発明のバイオリアクターの一実施形態を図面を参照しながら説明するが、本発明は下記形態に限定されない。
【００８４】
図１は、本発明のバイオリアクター（中空糸型バイオリアクター）の一実施形態を示す部分側面図である。また、図２は、図１のバイオリアクターの一部切欠側面図である。図１および図２において、バイオリアクター１は、本発明の細胞培養基材２が細胞培養チャンバー３内に収納されてなる。細胞培養チャンバー３は、４つの開口部すなわち４つのポート（入口ポート４、出口ポート６、入口ポート８、出口ポート１０）を有する。ここで、細胞を含む培地が、入口ポート４を介して、細胞培養チャンバー３内の細胞培養基材２の中空糸の毛細管内側（ＩＣ）空間に流されて、出口ポート６から排出される。これにより、細胞が効率よく中空糸内腔表面に接着（付着）・培養する。一方、培地やガス（酸素、二酸化炭素等）は、入口ポート８を介して、細胞培養チャンバー３内の細胞培養基材２の中空糸の毛細管外側（ＥＣ）と接触するように流され、出口ポート１０から排出される。これにより、細胞培養チャンバー３内で培地成分等の小分子が中空糸内に流入するまたは不要成分が中空糸内から排出され、中空糸表面に接着した細胞が培養される。また、所定時間培養した後は、トリプシンを含む液（例えば、ＰＢＳ）を、入口ポート４を介して細胞培養チャンバー３内の細胞培養基材２の中空糸の毛細管内側（ＩＣ）空間に導入し、所定時間（例えば、５〜１０分程度）保持する。次に、培地やＰＢＳ等の等張液を、入口ポート４を介して細胞培養チャンバー３内の細胞培養基材２の中空糸の毛細管内側（ＩＣ）空間に流して細胞にせん断力を付加することによって、細胞を中空糸内壁から剥離し、バイオリアクターから細胞を、出口ポート６を介して回収する。なお、上記形態では、細胞が中空糸の毛細管内側（ＩＣ）に接着したが、本発明は上記形態に限定されず、細胞を含む培地を入口ポート８から出口ポート１０に流して、細胞を効率よく中空糸外表面に接着（付着）させ、培地を入口ポート４から出口ポート６に中空糸内腔に流して、細胞を培養させてもよい。また、入口ポート４から出口ポート６への流体の流れは、入口ポート８から出口ポート１０への流体の流れに対して、並流方向または逆流方向のいずれであってもよい。
【００８５】
［バイオリアクターの用途］
上述したように、本発明のバイオリアクターは、細胞増殖性（さらには細胞接着性）に優れる細胞培養基材を備えている。ここで、本発明のバイオリアクターで培養できる細胞は、接着（足場依存）性細胞、非接着性細胞、またはこれらの任意の組み合わせのいずれであってもよいが、優れた細胞接着性（さらには細胞増殖性）もまた有することから、本発明のバイオリアクターは、接着（足場依存）性細胞の培養に特に好適に使用できる。ここで、接着（足場依存）性細胞としては、間葉系幹細胞（ＭＳＣ）等の幹細胞、線維芽細胞などの、動物の細胞などがある。上述したように、幹細胞が再生医療や創薬の開発にあたって注目が集めている。このため、本発明のバイオリアクターは、幹細胞の培養に好適に使用できる。すなわち、本発明は、本発明のバイオリアクターを用いて幹細胞を培養する、幹細胞の培養方法を提供する。ここで、幹細胞の培養方法は、特に制限されず、通常の培養方法が同様にしてあるいは適宜修飾して適用できる。
【実施例】
【００８６】
本発明の効果を、以下の実施例および比較例を用いて説明する。ただし、本発明の技術的範囲が以下の実施例のみに制限されるわけではない。なお、下記実施例において、特記しない限り、操作は室温（２５℃）で行われた。また、特記しない限り、「％」および「部」は、それぞれ、「重量％」および「重量部」を意味する。
【００８７】
製造例１：共重合体（１）の合成
２０ｍｌ容量のガラス製耐圧試験管に、カルボキシエチルアクリレート（ＣＥＡ）１．０５ｇ（０．００７３ｍｏｌ）、ヒドロキシエチルメタクリレート（ＨＥＭＡ）０．９５ｇ（０．００７３ｍｏｌ）、およびエタノール３ｇを加えた後、窒素ガスを１０秒間バブリングして、モノマー溶液（１）を調製した。このモノマー溶液（１）に、重合開始剤として、２，２’−アゾビス（４−メトキシ−２，４−ジメチルバレロニトリル）(2,2'-Azobis(4-methoxy-2,4-dimethylvaleronitrile))０．００４ｇ（０．０１３ｍｍｏｌ）を加えた後、４５℃に設定したヒートブロックで６時間加熱して、重合反応を行い、重合液（１）を得た。この重合液（１）をｎ−ヘキサン５０ｍｌに加え、析出したポリマー成分を回収、減圧乾燥し、カルボキシエチルアクリレートとヒドロキシエチルメタクリレートとの共重合体（ＣＥＡ：ＨＥＭＡ＝５０：５０（モル比））（共重合体（１））を得た。
【００８８】
製造例２：共重合体（２）の合成
２０ｍｌ容量のガラス製耐圧試験管に、カルボキシエチルアクリレート（ＣＥＡ）１．２４ｇ（０．００８６ｍｏｌ）、ヒドロキシエチルメタクリレート（ＨＥＭＡ）０．７６ｇ（０．００５８ｍｏｌ）、およびエタノール３ｇを加えた後、窒素ガスを１０秒間バブリングして、モノマー溶液（２）を調製した。このモノマー溶液（２）に、重合開始剤として、２，２’−アゾビス（４−メトキシ−２，４−ジメチルバレロニトリル）(2,2'-Azobis(4-methoxy-2,4-dimethylvaleronitrile))０．００４ｇ（０．０１３ｍｍｏｌ）を加えた後、４５℃に設定したヒートブロックで６時間加熱して、重合反応を行い、重合液（２）を得た。この重合液（２）をｎ−ヘキサン５０ｍｌに加え、析出したポリマー成分を回収、減圧乾燥し、カルボキシエチルアクリレートとヒドロキシエチルメタクリレートとの共重合体（ＣＥＡ：ＨＥＭＡ＝６０：４０（モル比））（共重合体（２））を得た。
【００８９】
製造例３：共重合体（３）の合成
２０ｍｌ容量のガラス製耐圧試験管に、カルボキシエチルアクリレート（ＣＥＡ）１．６３ｇ（０．０１１３ｍｏｌ）、ヒドロキシエチルメタクリレート（ＨＥＭＡ）０．３７ｇ（０．００２８ｍｏｌ）、およびエタノール３ｇを加えた後、窒素ガスを１０秒間バブリングして、モノマー溶液（３）を調製した。このモノマー溶液（３）に、重合開始剤として、２，２’−アゾビス（４−メトキシ−２，４−ジメチルバレロニトリル）(2,2'-Azobis(4-methoxy-2,4-dimethylvaleronitrile))０．００４ｇ（０．０１３ｍｍｏｌ）を加えた後、４５℃に設定したヒートブロックで６時間加熱して、重合反応を行い、重合液（３）を得た。この重合液（３）をｎ−ヘキサン５０ｍｌに加え、析出したポリマー成分を回収、減圧乾燥し、カルボキシエチルアクリレートとヒドロキシエチルメタクリレートとの共重合体（ＣＥＡ：ＨＥＭＡ＝８０：２０（モル比））（共重合体（３））を得た。
【００９０】
製造例４：共重合体（４）の合成
２０ｍｌ容量のガラス製耐圧試験管に、カルボキシエチルアクリレート（ＣＥＡ）１．８０ｇ（０．０１２５ｍｏｌ）、ヒドロキシエチルメタクリレート（ＨＥＭＡ）０．２０ｇ（０．００１５ｍｏｌ）、およびエタノール３ｇを加えた後、窒素ガスを１０秒間バブリングして、モノマー溶液（４）を調製した。このモノマー溶液（４）に、重合開始剤として、２，２’−アゾビス（４−メトキシ−２，４−ジメチルバレロニトリル）(2,2'-Azobis(4-methoxy-2,4-dimethylvaleronitrile))０．００４ｇ（０．０１３ｍｍｏｌ）を加えた後、４５℃に設定したヒートブロックで６時間加熱して、重合反応を行い、重合液（４）を得た。この重合液（４）をｎ−ヘキサン５０ｍｌに加え、析出したポリマー成分を回収、減圧乾燥し、カルボキシエチルアクリレートとヒドロキシエチルメタクリレートとの共重合体（ＣＥＡ：ＨＥＭＡ＝９０：１０（モル比））（共重合体（４））を得た。
【００９１】
製造例５：共重合体（５）の合成
２０ｍｌ容量のガラス製耐圧試験管に、カルボキシエチルアクリレート（ＣＥＡ）０．８５ｇ（０．００５９ｍｏｌ）、ヒドロキシエチルメタクリレート（ＨＥＭＡ）１．１５ｇ（０．００８８ｍｏｌ）、およびエタノール３ｇを加えた後、窒素ガスを１０秒間バブリングして、モノマー溶液（５）を調製した。このモノマー溶液（５）に、重合開始剤として、２，２’−アゾビス（４−メトキシ−２，４−ジメチルバレロニトリル）(2,2'-Azobis(4-methoxy-2,4-dimethylvaleronitrile))０．００４ｇ（０．０１３ｍｍｏｌ）を加えた後、４５℃に設定したヒートブロックで６時間加熱して、重合反応を行い、重合液（５）を得た。この重合液（５）をｎ−ヘキサン５０ｍｌに加え、析出したポリマー成分を回収、減圧乾燥し、カルボキシエチルアクリレートとヒドロキシエチルメタクリレートとの共重合体（ＣＥＡ：ＨＥＭＡ＝４０：６０（モル比））（共重合体（５））を得た。
【００９２】
製造例６：ＭＥＡ重合体（６）の合成
２０ｍｌ容量のガラス製耐圧試験管に、メトキシエチルアクリレート（ＭＥＡ）２．０ｇ（０．０１５４ｍｏｌ）、およびメタノール３ｇを加えた後、窒素ガスを１０秒間バブリングして、モノマー溶液（６）を調製した。このモノマー溶液（６）に、重合開始剤として、２，２’−アゾビス（４−メトキシ−２，４−ジメチルバレロニトリル）(2,2'-Azobis(4-methoxy-2,4-dimethylvaleronitrile))０．００４ｇ（０．０１３ｍｍｏｌ）を加えた後、４５℃に設定したヒートブロックで６時間加熱して、重合反応を行い、重合液（６）を得た。この重合液（６）をエタノール５０ｍｌに加え、析出したポリマー成分を回収、減圧乾燥し、メトキシエチルアクリレートのホモポリマー（ＭＥＡ重合体（６））を得た。
【００９３】
製造例７：ＨＥＭＡ重合体（７）の合成
２０ｍｌ容量のガラス製耐圧試験管に、ヒドロキシエチルメタクリレート（ＨＥＭＡ）２．０ｇ（０．０１５４ｍｏｌ）、およびメタノール３ｇを加えた後、窒素ガスを１０秒間バブリングして、モノマー溶液（７）を調製した。このモノマー溶液（７）に、重合開始剤として、２，２’−アゾビス（４−メトキシ−２，４−ジメチルバレロニトリル）(2,2'-Azobis(4-methoxy-2,4-dimethylvaleronitrile))０．００４ｇ（０．０１３ｍｍｏｌ）を加えた後、４５℃に設定したヒートブロックで６時間加熱して、重合反応を行い、重合液（７）を得た。この重合液（７）をｎ−ヘキサン５０ｍｌに加え、析出したポリマー成分を回収、減圧乾燥し、ヒドロキシエチルメタクリレートのホモポリマー（ＨＥＭＡ重合体（７））を得た。
【００９４】
製造例８：ＣＥＡ重合体（８）の合成
２０ｍｌ容量のガラス製耐圧試験管に、カルボキシエチルアクリレート（ＣＥＡ）２．０ｇ（０．０１３９ｍｏｌ）、およびエタノール３ｇを加えた後、窒素ガスを１０秒間バブリングして、モノマー溶液（８）を調製した。このモノマー溶液（８）に、重合開始剤として、２，２’−アゾビス（４−メトキシ−２，４−ジメチルバレロニトリル）(2,2'-Azobis(4-methoxy-2,4-dimethylvaleronitrile))０．００４ｇ（０．０１３ｍｍｏｌ）を加えた後、４５℃に設定したヒートブロックで６時間加熱して、重合反応を行い、重合液（８）を得た。この重合液（８）をｎ−ヘキサン５０ｍｌに加え、析出したポリマー成分を回収、減圧乾燥し、カルボキシエチルアクリレートのホモポリマー（ＣＥＡ重合体（８））を得た。
【００９５】
実施例１−１：細胞培養皿へのコーティング
上記製造例１で得られた共重合体（１）をメタノールに１．０重量％濃度となるように溶解して、コーティング液（１−１）を作製した。このコーティング液（１−１）５０μＬを、市販の９６穴組織培養用ポリスチレンディッシュ（プラズマ処理無し、ＦＡＬＣＯＮ社製、商品名：Non-Tissue Culture Treated Plate, 96Well, Flat Bottom with Low Evaporation Lid）の各ウェルに添加し、２０℃で３６０分間乾燥し、ウェル表面にポリマー被膜（乾燥時の厚み：１３μｍ）を作製して、細胞培養皿（１−１）を得た。
【００９６】
実施例１−２：細胞培養皿へのコーティング
上記製造例１で得られた共重合体（１）をメタノールに０．００５重量％濃度となるように溶解して、コーティング液（１−２）を作製した。このコーティング液（１−２）２５μＬを、市販の９６穴組織培養用ポリスチレンディッシュ（プラズマ処理無し、ＦＡＬＣＯＮ社製、商品名：Non-Tissue Culture Treated Plate, 96Well, Flat Bottom with Low Evaporation Lid）の各ウェルに添加し、２０℃で３６０分間乾燥し、ウェル表面にポリマー被膜（乾燥時の厚み：０．０３０μｍ）を作製して、細胞培養皿（１−２）を得た。
【００９７】
実施例２−１〜４−１：細胞培養皿へのコーティング
実施例１−１において、共重合体（１）の代わりに、共重合体（２）〜（４）をそれぞれ使用する以外は、実施例１−１と同様の方法に従って、ウェル表面にポリマー被膜を作製して、細胞培養皿（２−１）〜（４−１）を得た。
【００９８】
実施例２−２〜４−２：細胞培養皿へのコーティング
実施例１−２において、共重合体（１）の代わりに、共重合体（２）〜（４）をそれぞれ使用する以外は、実施例１−２と同様の方法に従って、ウェル表面にポリマー被膜を作製して、細胞培養皿（２−２）〜（４−２）を得た。
【００９９】
比較例１−１〜４−１：細胞培養皿へのコーティング
実施例１−１において、共重合体（１）の代わりに、共重合体（５）、ＭＥＡ重合体（６）、ＨＥＭＡ重合体（７）およびＣＥＡ重合体（８）をそれぞれ使用する以外は、実施例１−１と同様の方法に従って、ウェル表面にポリマー被膜を作製して、比較細胞培養皿（１−１）〜（４−１）を得た。
【０１００】
比較例１−２〜４−２：細胞培養皿へのコーティング
実施例１−２において、共重合体（１）の代わりに、共重合体（５）、ＭＥＡ重合体（６）、ＨＥＭＡ重合体（７）およびＣＥＡ重合体（８）をそれぞれ使用する以外は、実施例１−２と同様の方法に従って、ウェル表面にポリマー被膜を作製して、比較細胞培養皿（１−２）〜（４−２）を得た。
【０１０１】
参考例１：
市販の９６穴組織培養用ポリスチレンディッシュ（プラズマ処理およびポリマー被膜無し、ＦＡＬＣＯＮ社製、商品名：Non-Tissue Culture Treated Plate, 96Well, Flat Bottom with Low Evaporation Lid）を未処理の細胞培養皿として準備した。
【０１０２】
［評価１：細胞培養および増殖活性の測定］
上記実施例１−１〜４−１、１−２〜４−２および比較例１−１〜４−１、１−２〜４−２で得られた細胞培養皿（１−１）〜（４−１）、（１−２）〜（４−２）および比較細胞培養皿（１−１）〜（４−１）、（１−２）〜（４−２）ならびに参考例１としての未処理の細胞培養皿を用いて、下記に従って、細胞を培養し、細胞増殖活性（細胞増殖性）を評価した。なお、細胞は、ヒト脂肪組織由来間葉系幹細胞（ロンザ、ウォーカーズビル、メリーランド州、アメリカ合衆国）を使用した。ドナーは２２歳男性で、ＣＤ１３、ＣＤ２９、ＣＤ４４、ＣＤ７３、ＣＤ９０、ＣＤ１０５、ＣＤ１６６≧９０％、ＣＤ１４、ＣＤ３１、ＣＤ４５≦５％であった。
【０１０３】
各細胞培養皿の各ウェルに、上記ヒト脂肪組織由来間葉系幹細胞を１×１０３細胞／ウェルとなるように播種した後、３７℃にて、加湿、５％  ＣＯ２存在下で、インキュベーターで、Mesenchymal Stem Cell Growth Medium 2（プロモセル、ベッドフォード、マサチューセッツ州、アメリカ合衆国）で３日培養した。培養終了後、培養液を、10％WST-1（Premix WST-1 Cell Proliferation Assay System、タカラバイオ株式会社、滋賀、日本）を含むMesenchymal Stem Cell Growth Medium 2に交換した後、加湿、常圧下（３７℃、５％ＣＯ２）で約６時間インキュベートした。この培養液の吸光度（４５０ｎｍ、対照６００ｎｍ）を、マイクロプレートリーダーで測定して、細胞増殖活性とした。結果を下記表１に示す。
【０１０４】
［評価２：細胞培養および接着活性の測定］
上記実施例１−１〜４−１、１−２〜４−２および比較例１−１〜４−１、１−２〜４−２で得られた細胞培養皿（１−１）〜（４−１）、（１−２）〜（４−２）および比較細胞培養皿（１−１）〜（４−１）、（１−２）〜（４−２）ならびに参考例１としての未処理の細胞培養皿を用いて、下記に従って、細胞を培養し、細胞接着活性（細胞接着性）を評価した。なお、細胞は、ヒト脂肪組織由来間葉系幹細胞（ロンザ、ウォーカーズビル、メリーランド州、アメリカ合衆国）を使用した。ドナーは２２歳男性で、ＣＤ１３、ＣＤ２９、ＣＤ４４、ＣＤ７３、ＣＤ９０、ＣＤ１０５、ＣＤ１６６≧９０％、ＣＤ１４、ＣＤ３１、ＣＤ４５≦５％であった。
【０１０５】
各細胞培養皿の各ウェルに、上記ヒト脂肪組織由来間葉系幹細胞を２×１０３細胞／ウェルとなるように播種した後、３７℃にて、加湿、５％  ＣＯ２存在下で、インキュベーターで、Mesenchymal Stem Cell Growth Medium 2（プロモセル、ベッドフォード、マサチューセッツ州、アメリカ合衆国）で１日培養した。培養終了後、培養液を、10％WST-1（Premix WST-1 Cell Proliferation Assay System、タカラバイオ株式会社、滋賀、日本）を含むMesenchymal Stem Cell Growth Medium 2に交換した後、加湿、常圧下（３７℃、５％ＣＯ２）で約４時間インキュベートした。この培養液の吸光度（４５０ｎｍ、対照６００ｎｍ）を、マイクロプレートリーダーで測定して、細胞接着活性とした。結果を下記表２に示す。
【０１０６】
【表１】
2021533734.tif 000007
【０１０７】
【表２】
2021533734.tif 000008
【０１０８】
上記表２に示した吸光度（Ａｂｓ４５０）による細胞増殖性評価の結果から、製造例１〜４の共重合体（１）〜（４）を用いてポリマー被膜を形成した細胞培養皿は、膜厚が厚くても優れた細胞増殖性を示した。よって、以上より製造例１〜４の共重合体（１）〜（４）は、細胞増殖性の膜厚依存性が小さいと言える。また、これらのなかでも、共重合体（３）および（４）は、膜厚が大きい際の吸光度の値（Ａｂｓ４５０）が大きく、これは、培養により得られた細胞数が最も多いことを示唆している。加えて、上記表２の結果から、製造例１〜４の共重合体（１）〜（４）を用いてポリマー被膜を形成した細胞培養皿は、膜厚が厚くても良好な細胞接着性を示した。すなわち、製造例１〜４の共重合体（１）〜（４）は、細胞接着性の膜厚依存性もまた小さいと言える。
【０１０９】
一方、本発明に係る組成から外れるＣＥＡ−ＨＥＭＡ共重合体、ＭＥＡ重合体（６）、ＨＥＭＡ重合体（７）およびＣＥＡ重合体（８）を用いてそれぞれポリマー被膜を形成した細胞培養皿は、膜厚が薄いときには吸光度（Ａｂｓ４５０）がそれぞれ高く、良好な細胞増殖性を示すが、膜厚が厚くなると吸光度（Ａｂｓ４５０）がそれぞれ低下し、細胞増殖性が低下することが示された。特筆すべきことに、比較例１−１において用いた共重合体（５）は、実施例１−１において用いた共重合体（１）と比較して、構成単位（１）および（２）の組成（モル比）において大きな差はないにもかかわらず、上記表１に示される吸光度（Ａｂｓ４５０）は大きく低下している（細胞増殖活性に大きな差が見られる）。これは、被覆層（被膜）の厚みが厚くなったことにより、共重合体の硬さによる影響が顕著に表れたためであると考察される。
【符号の説明】
【０１１０】
１…バイオリアクター、
２…細胞培養基材、
３…細胞培養チャンバー、
４，８…入口ポート、
６，１０…出口ポート。
【図１】
2021533734.tif 000011
【図２】
2021533734.tif 000012
【国際調査報告】
2021533734.tif 000013
2021533734.tif 000014