(57)【要約】  質量分析法によるプロテオーム解析のために生物学的材料の試料を可溶化するための方法がもたらされ、本方法では、試料に特定の体積の有機酸を加え、溶解のために一定時間インキュベートし、続いて中和する。【選択図】図１
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
質量分析法によるプロテオーム解析のために生物学的材料の試料を可溶化するための方法であって、
・反応容器に試料を用意する工程、
・特定量の有機酸を、前記試料に添加する工程、
・調製物をインキュベートする工程、
・前記調製物に中和溶液を添加する工程、
を含む、方法。
【請求項２】
前記生物学的材料の試料が、ヒト由来、動物由来、又は植物由来のもの、特に組織、細胞、体液、血液及び血液生成物、粘膜、並びに排泄物を含む、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
電磁照射による追加的な工程、又は前記試料の調製物を加熱する追加的な工程を含む、請求項１又は２に記載の方法。
【請求項４】
照射としてマイクロ波照射を行うか、又は前記試料を４０℃超に加熱する、請求項３に記載の方法。
【請求項５】
前記有機酸としてカルボン酸を使用する、請求項１から４までのいずれか一項に記載の方法。
【請求項６】
前記有機酸としてハロゲン・カルボン酸を使用する、請求項１から５までのいずれか一項に記載の方法。
【請求項７】
前記有機酸として、トリフルオロ酢酸、及びトリフルオロ酢酸誘導体を使用する、請求項１から６までのいずれか一項に記載の方法。
【請求項８】
以下のさらなる工程：
・アルキル化溶液を添加する工程、
・還元溶液を添加する工程、
・タンパク質の濃度を決定する工程、
・前記試料を水で希釈する工程、
・酵素により、又は化学的にタンパク質を開裂させる工程、
・生じたペプチドを精製する工程、
を含む、請求項１から７までのいずれか一項に記載の方法。
【請求項９】
生物学的材料を溶解させるための、トリフルオロ酢酸の使用。
【請求項１０】
質量分析法における、請求項１から８までのいずれか一項に記載の方法により準備した生物学的材料の試料の使用。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、プロテオーム試験のために生物学的材料を処理するための方法に関し、本方法において当該材料は、有機酸を用いて溶解される。
【０００２】
プロテオームは、細胞又は生体内において特定の時点で、特定の条件下で発現したあらゆるタンパク質の総体である。プロテオームの解析に従事する専門分野では、プロテオーム解析と呼ばれ、現在、その中心的な技術は、液体クロマトグラフィー質量分析法（ＬＣ−ＭＳ）である。生体の表現型にとってタンパク質が有する意義は非常に大きいため、プロテオーム技術はますます、医薬及び生命科学において幅広く用いられており、特に、疾病用バイオマーカーを同定するため、又は今後の治療法を患者に対して個別に適合させるために、用いられる。
【０００３】
その際、様々な試料材料、例えば細胞、組織又は体液には、プロテオーム解析のための調製技術に関して高度の要求が課され、簡単で迅速、堅牢に、また再現可能に試料を用意する方法が求められている。この調製技術は、ボトムアップ式プロテオーム解析の場合、基本的に以下の３つの必須の工程を含む：（ｉ）溶解／抽出、（ｉｉ）分解、及び（ｉｉｉ）ペプチド精製。試料材料の種類、使用技術、及び実験の戦略に応じて、追加的な工程（例えば精製又はラベリング反応）により試料準備を拡充することができる。
【０００４】
現在の技術は、洗浄剤（例えばラウリル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）、デオキシコール酸（ＳＤＣ））及び／又はカオトロピック物質（例えば尿素、塩酸グアニジン（ＧｎＨＣｌ）によるタンパク質の抽出に基づいており、試料材料を効果的に溶解させるためにしばしば、物理的なエネルギー投入（超音波、圧力、摩擦、粉砕、加熱）により補助される。
【０００５】
特に可溶化が困難な試料（例えばコラーゲン含分が高い組織）の場合にはしばしば、さらなる作業工程又は追加的な試薬の使用が必要になる。しかしながら試薬が存在することにより、後続の調製工程の効率に対して悪影響（分解）が出ることがあり、ボトムアップ式プロテオーム解析の標準プロトコルは、洗浄剤、カオトロピック物質、及び類似作用物質を除去するために多くのさらなる手順を含むことになる。ここで追加的な作業工程は一般的に、再現性及びタンパク質の収率に対して、悪影響をもたらす。しかしながら、プロテオーム解析の潜在的可能性が大きい（例えば、医薬のオーダーメイド化の分野）ことを背景にして、簡単で、直接的で、再現可能で、自動化可能な試料調製の手法が求められている。
【０００６】
このような課題は、請求項１の特徴を有する本発明の方法によって解決される。さらなる有利な実施態形態、及び本発明の構成は、従属請求項、引用請求項、図面、及び実施例から明らかになる。本発明の実施形態は、有利なように相互に組み合わせ可能である。本発明について当業者が容易に可能な変更又は修正を行ったものも、特許請求の範囲の権利範囲に含まれる。
【０００７】
本発明の第１の態様は、質量分析法によるプロテオーム解析のために生物学的材料の試料を可溶化する方法に関し、本方法は、以下の作業工程：
・反応容器に試料を用意する工程、
・特定量の有機酸を、試料に添加する工程、
・調製物をインキュベートする工程、
・調製物に中和溶液を添加する工程、
を含む。
【０００８】
本発明による方法は、従来の方法と比べて必要な作業工程が少ないため、有利である。よって本方法は時間的に、また作業コスト的にも、従来の方法より経済的である。さらに、本発明により可溶化した試料材料は、変動が比較的少なくより大きいシグナル強度が得られる（図３）ため、従来の方法と比べて有利である。さらなる利点は、本方法の再現性が高いことにあり、このことは特に、定量分析との関連で重要である。さらに、塩濃度が高いこの種の溶液においてタンパク質は非常に安定的であるため、輸送、貯蔵、及び試料のアーカイブ化が、極めて容易になる。
【０００９】
さらに本方法は、プロテオーム解析すべきタンパク質を含有するあらゆる種類の生物学的材料の試料に使用可能なため、有利である。生物学的材料の試料は好適には、ヒト由来、動物由来、又は植物由来のもの、特に組織、細胞、体液、血液及び血液生成物、粘膜、並びに排泄物を含む。
【００１０】
生物学的材料は、反応容器内で適切な材料から、適切な大きさで用意する。反応容器は、容積が最大２ｍｌのプラスチック製のもの（例えば、実験分野でしばしば使用されるいわゆるミクロ反応容器）であるのが有利である。
【００１１】
添加する有機酸の量は、当業者の裁量である。既知の量の生物学的材料に対して、理想的には標準化された量の酸を添加する。理想的には、試料対酸の比率を、試料材料が完全に溶解するように調整する。
【００１２】
試料材料を酸とともに、直ちに最大６０分、室温で、タンパク質の品質を損なうことなくインキュベートすることができる。その際、懸濁液が透明になったら（たいていの試料では２〜１０分後）、すぐに溶解を終了させることができる。
【００１３】
分解用タンパク質を用意するために、試料の中和を行う。中和のためには、弱塩基（例えば２ＭのＴＲＩＳ水溶液（トリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン）を使用し、ＴＲＩＳ溶液の体積は、試料体積のおよそ７〜１５倍であるのが望ましい。その際にｐＨ値は、７〜９であることが求められ、理想的には８〜８．５である。
【００１４】
本方法は好適には、中和の直前に電磁照射する追加的な工程を含む。この工程は、可溶化するのが困難な試料、例えばコラーゲン含分が高い試料にとって、特に有利である。＞４０℃の温度で熱処理することによっても、同等の効果が示される。
【００１５】
試料にマイクロ波を照射することが、特に好ましい。この際には、試料を５〜３０秒間、特に１０秒間、８００Ｗのマイクロ波出力にかける。内部で試料がインキュベートされている反応容器を、追加的なカバー、例えばプラスチック製のさらなる容器で取り囲むことが、有利である。マイクロ波処理は、あらゆる種類の生物学的材料、特に溶解が困難な材料に対しては、効果的な溶解のために有利であることが判明している。
【００１６】
本方法では、有機酸としてカルボン酸を使用するのが好ましい。本方法では、ハロゲン・カルボン酸を使用するのが、さらに好ましい。本方法では、有機酸としてトリフルオロ酢酸（ＴＦＡ）、及びトリフルオロ酢酸誘導体を使用するのが特に好ましい。ＴＦＡは、組織及び細胞の溶解において特に効果的であることが判明している。ここでＴＦＡの使用はまた、ＴＦＡの作用によってタンパク質の分析に悪影響を与えることがないため、有利である。
【００１７】
さらに、本方法は好適には、以下のさらなる工程：
・アルキル化溶液を添加する工程、
・還元溶液を添加する工程、
・タンパク質の濃度を決定する工程、
・試料を水で希釈する工程、
・酵素により、又は化学的にタンパク質を開裂させる工程、
・生じたペプチドを精製する工程、
を含む。
【００１８】
本発明の第二の態様は、生物学的材料を溶解させるための、トリフルオロ酢酸の使用に関する。ここでＴＦＡは、上記あらゆる生物学的材料に適している。
【００１９】
本発明の第三の態様は、本発明による方法で準備した生物学的材料の試料の、質量分析法における使用に関する。
【００２０】
上記使用による利点は、本発明による方法の利点に対応する。
【００２１】
本発明について、図面を用いて詳細に説明する。
【図面の簡単な説明】
【００２２】
【図１】本発明による方法の一実施形態のフロー図を示す。
【図２】試料の溶解について比較する形で示す。
【図３】上記方法によるヒト細胞のプロテオーム解析の結果を、参照法によるもの（３つ作製）と比較して示す。
【００２３】
図１の説明に従った本発明による方法の実施形態では、第一の工程Ｓ１で生物学的材料の試料を用意する。生物学的材料は、組織試料（例えば血液試料）、又は細胞の懸濁液若しくはペレット、並びに組織構造であり得る。
【００２４】
第二の工程Ｓ２−１では、純粋なトリフルオロ酢酸を生物学的材料に対して過剰で添加し、理想的には１：１から１：１０（試料対ＴＦＡ）の体積比で添加する。この調製物を例えばボルテックス装置で混合し、室温で１〜１０分、インキュベートする。この際に試料材料が溶解する。時間の経過に伴い、溶解の推移は視覚的に分かるようになる。溶液が透明になれば、試料材料が溶解しきったということである（図２）。所与の量の酸で抽出するにはタンパク質濃度が高すぎる場合、体積を測定した酸をさらに添加する（例えば１００μｌ）。溶解が困難な材料の可溶化を補助する、任意選択的な工程Ｓ２−２では、材料を１０秒間、８００Ｗの出力でマイクロ波装置にてインキュベートする。
【００２５】
試料に対する酸の作用を説明するために、図２には異なる種類の試料が記載されている（それぞれ溶解前と溶解後について）。左から右に説明すると、ＨｅＬａ細胞（ヒト）、２つの皮膚試料（ニワトリ）、そして肝臓試料（ニワトリ）の懸濁液である。それぞれ、出発材料、ＴＦＡによる溶解後の試料、及び／又は中和後の試料が示されている。ＨｅＬａ細胞及び肝臓組織は、酸の添加のみで完全に溶解している一方で、ＴＦＡの添加後、及び／又は中和後、皮膚試料には、溶けていない組織構成成分（左から二番目の試料、矢印が付されたもの）が見て取れる。このような組織構成成分は、試料をマイクロ波照射にかければ、溶かすことができる（「皮膚*」の試料、左から三番目の試料参照）。
【００２６】
溶液が透明になった後、溶解した材料の調製物を第三の工程Ｓ３で、２ＭのＴＲＩＳ水溶液により中和する。この際、試料体積を中和するために、およそ８〜１５倍の体積の２ＭのＴＲＩＳ溶液を添加する。つまり、１００μｌの溶解調製物については、１０００μｌの２ＭのＴＲＩＳ溶液を添加する。
【００２７】
いずれの場合でも、工程Ｓ３では溶液のＰＨ値を制御する。その際、ｐＨ値は７〜９、理想的には８〜８．５にするのが望ましい。目的のｐＨ値を達成するため、場合によっては、２ＭのＴＲＩＳ、又は希釈したトリフルオロ酢酸溶液を追加することにより、最適なｐＨ値が達成されるまで、事後的に制御する。
【００２８】
中和後、この溶液に第四の工程Ｓ４で、還元溶液及びアルキル化溶液を加える。そのために、新たに作成した１００ｍＭのＴＣＥＰ（トリス（２−カルボキシエチル）ホスフィン）水溶液、及び４００ｍＭのＣＡＡ（クロロアセトアミド）水溶液を使用し、そのうち試料体積の１０％を、試料に添加する。これらの試料を少なくとも３〜１０分間、９５℃でサーモミキサーにてインキュベートする。この工程の後、試料を凍結させることができ、比較的長期間にわたり、−２０℃以下の温度で貯蔵することができる。この工程Ｓ４は、システインを含有しないペプチドを分析する場合、省略することもできる。代替的な還元試薬及びアルキル化試薬、例えばＤＴＴ（ジチオトレイトール）又はＩＡＡ（ヨードアセトアミド）を使用することもでき、その際にインキュベート条件は、相応して適合されている。
【００２９】
第五の工程Ｓ５では、試料のタンパク質を酵素により、又は化学的にペプチドへと開裂させることによって、本方法を進行させる。酵素による分解のためには、そのために当業者に知られたやり方で試料のタンパク質濃度を決定し、続いてトリプシン又はその他の適切な酵素を既定の質量比で、トリプシンの場合には５００：１から５：１（タンパク質：トリプシン）の範囲で、試料に加える。試料は、溶解物のバッファ濃度に依存する使用酵素の活性に応じて、水で希釈してもよい。続いて分解調製物を酵素にとって最適な温度（トリプシンについては３７℃）で、適切な時間（トリプシンについては１〜２４時間）、インキュベートする。
【００３０】
第六の工程Ｓ６ではペプチドを、例えばＣ１８材料の固相抽出によって精製する。
【００３１】
続いて、精製したペプチドを、液体クロマトグラフィー質量分析法（ＬＣ−ＭＳ）により、又は同等の方法、例えばキャピラリー電気泳動質量分析法により、分析することができる。図３には、ヒト細胞についてのプロテオーム試験による結果と、代替的な試料調製法による結果との比較が示されている。このために、ペプチドについてのシグナル強度に対する変動係数（ＣＶ）と、生成したタンパク質についてのシグナル強度に対する変動係数（ＣＶ）が、スキャッタプロットで示されている。点の集合体は、ヒートマップで重ねたものである。定量化されたペプチド及びタンパク質の数、並びにＣＶの平均値も記載されている。ダイアグラムの左側には、本発明による方法により図１に従って可溶化した結果が記載されており、右側のダイアグラムには、従来の方法により可溶化した試料についての結果が示されている。本発明による方法によって、従来技術による方法の場合よりも、より多くのペプチドと、ペプチドから誘導されたより多くのタンパク質が、比較的低いシグナル変動で得られることが分かる。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【国際調査報告】
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