(57)【要約】  本明細書では、抗原的にステルス化されたＨＳＶ粒子、およびそれらの抗原的にステルス化されたＨＳＶ粒子の使用方法が提供される。本発明の一側面において、ウイルス感染を妨げる抗体による認識を低減または排除するように改変された糖タンパク質を含んでなる再標的化された単純ヘルペスウイルス（ＨＳＶ）粒子が提供される。一態様では、その改変された糖タンパク質は、抗原的に改変された糖タンパク質Ｂ（ｇＢ）および／または抗原的に改変された糖タンパク質Ｄ（ｇＤ）である。さらに、癌を有する患者の治療方法であって、所定量の再標的化されたＨＳＶ粒子をその患者に投与することを含んでなる方法が提供される。【図３】
2021526387.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
再標的化された単純ヘルペスウイルス（ＨＳＶ）粒子であって、ゲノム、キャプシド、テグメント、ならびに感受性宿主細胞へのウイルスの付着および／または侵入を障害または遮断することによりウイルス感染を妨げる抗体による認識を低減または排除するように改変された糖タンパク質を含んでなるエンベロープを含んでなる、ウイルス粒子。
【請求項２】
抗原的に改変された糖タンパク質Ｂ（ｇＢ）および／または抗原的に改変された糖タンパク質Ｄ（ｇＤ）タンパク質を含んでなり、１以上の主要なヒト血清ＨＳＶ中和抗体と反応するｇＢおよび／またはｇＤの１以上の主要なエピトープが、主要なヒト血清ＨＳＶ中和抗体によるウイルスの中和が低減または排除されるように主要なヒト血清ＨＳＶ中和抗体へのウイルス粒子の結合を低減または排除するように改変されている、請求項１に記載のウイルス粒子。
【請求項３】
ｇＤの１以上のエピトープが、前記１以上の主要なヒト血清ＨＳＶ中和抗体によるウイルスの中和が低減または排除されるように主要なヒト血清ＨＳＶ中和抗体へのウイルス粒子の結合を低減または排除するように改変されている、請求項２に記載のウイルス粒子。
【請求項４】
ｇＢの１以上のエピトープが、前記１以上の主要なヒト血清ＨＳＶ中和抗体によるウイルスの中和が低減または排除されるように主要なヒト血清ＨＳＶ中和抗体へのウイルス粒子の結合を低減または排除するように改変されている、請求項２に記載のウイルス粒子。
【請求項５】
配列番号１もしくは配列番号２のアミノ酸１０〜２０、５４、７５〜７９、１３２、１４０、２１３、２１６、２２２〜２２４、および２６２〜２７９のうち１以上、または配列番号１もしくは配列番号２のアミノ酸１０〜２０、５４、７５〜７９、１３２、１４０、２１３、２１６、２２２〜２２４、および２６２〜２７９に相当する１以上のアミノ酸が、ウイルス粒子への主要なＨＳＶ血清中和抗体の結合を低減するように、ウイルス粒子の前記ｇＤ糖タンパク質において改変されている、請求項２に記載のウイルス粒子。
【請求項６】
配列番号１もしくは配列番号２のアミノ酸Ｐ５４およびＴ２１３の一方もしくは両方、または配列番号１もしくは配列番号２のアミノ酸Ｐ５４およびＴ２１３に相当する一方もしくは両方のアミノ酸が改変されている（例えば、Ｐ５４Ｑおよび／またはＴ２１３Ｍ）、請求項５に記載のウイルス粒子。
【請求項７】
配列番号３のアミノ酸４７、６２、８５、２０３、３０３、３０４、３０５、３０８、３２８、３３５、４１９、４７３、５９４、もしくは６４０〜６７０または配列番号４のアミノ酸４１２のうち１以上、あるいは配列番号３のアミノ酸４７、６２、８５、２０３、３０３、３０４、３０５、３０８、３２８、３３５、４１９、４７３、５９４、もしくは６４０〜６７０または配列番号４のアミノ酸４１２に相当する１以上のアミノ酸が、ウイルス粒子への主要なＨＳＶ血清中和抗体の結合を低減するように、ウイルス粒子の前記ｇＢ糖タンパク質において改変されている、請求項２に記載のウイルス粒子。
【請求項８】
配列番号１もしくは２のΔ３８突然変異、または配列番号１もしくは２のΔ３８突然変異に相当するｇＤ糖タンパク質における突然変異を有する、請求項２に記載のウイルス粒子。
【請求項９】
標的細胞型の表面成分に結合することができる非天然リガンドを含んでなる、請求項２に記載のウイルス粒子。
【請求項１０】
前記標的細胞型が癌細胞である、請求項９に記載のウイルス粒子。
【請求項１１】
前記標的細胞型の表面成分に結合することができる非天然リガンドが、ウイルス粒子のウイルスエンベロープ糖タンパク質に組み込まれている、請求項９に記載のウイルス粒子。
【請求項１２】
前記リガンドが組み込まれている前記ウイルス粒子のウイルスエンベロープ糖タンパク質が、ｇＤ、ｇＣ、ｇＢおよび／またはｇＨである、請求項１１に記載のウイルス粒子。
【請求項１３】
前記表面成分が、ＥＧＦＲ、ＥＧＦＲｖＩＩＩ、他の発癌性ＥＧＦＲ変異体、ＨＥＲ２、ＣＤ１３３、ＣＸＣＲ４、癌胎児性抗原（ＣＥＡ）、ＣＬＣ−３／アネキシン−２／ＭＭＰ−２、ヒトトランスフェリン受容体、ＥｐＣＡＭ、またはｃ−Ｍｅｔのうち１以上である、請求項９に記載のウイルス粒子。
【請求項１４】
少なくとも１以上のウイルスエンベロープ糖タンパク質のその天然受容体への結合が排除される、請求項２に記載のウイルス粒子。
【請求項１５】
前記ゲノムが、外因性発現カセットを含んでなる、請求項２に記載のウイルス粒子。
【請求項１６】
前記外因性発現カセットが、殺腫瘍活性を増強する薬剤をコードする、請求項１５に記載のウイルス粒子。
【請求項１７】
前記ゲノムが、１以上のマイクロＲＮＡの標的配列を含んでなる、請求項２に記載のウイルス粒子。
【請求項１８】
請求項１〜１７のいずれか一項に記載のウイルス粒子をコードする、組換えＨＳＶゲノム。
【請求項１９】
ウイルスストックであって、少なくとも１０５ｐｆｕ、少なくとも１０６ｐｆｕ、少なくとも１０７ｐｆｕ、少なくとも１０８ｐｆｕ、少なくとも１０９ｐｆｕ、少なくとも１０１０ｐｆｕ、または少なくとも１０１１ｐｆｕの請求項１〜１７のいずれか一項に記載のウイルス粒子を含んでなる、ウイルスストック。
【請求項２０】
投与形態であって、少なくとも１０５ｐｆｕ、少なくとも１０６ｐｆｕ、少なくとも１０７ｐｆｕ、少なくとも１０８ｐｆｕ、少なくとも１０９ｐｆｕ、少なくとも１０１０ｐｆｕ、または少なくとも１０１１ｐｆｕの請求項１〜１７のいずれか一項に記載のウイルス粒子、および薬学上許容される賦形剤を含んでなる、投与形態。
【請求項２１】
単位投与形態として提供される、請求項２０に記載の投与形態。
【請求項２２】
非経口送達用に処方された、請求項２０に記載の投与形態。
【請求項２３】
静脈内送達用に処方された、請求項２２に記載の投与形態。
【請求項２４】
癌を有する患者の治療方法であって、癌患者を治療するのに有効な量の請求項１〜１７のいずれか一項に記載のウイルス粒子をその患者に投与することを含んでなる、方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
連邦政府の補助金に関する記載
本発明は、米国国立衛生研究所(the National Institutes of Health)により授与された助成金番号ＡＩ０１８２８９−３８の下の政府支援を受けてなされた。政府は本発明において一定の権利を有する。
【０００２】
関連出願の相互参照
本願は、２０１８年５月３１日に出願された米国仮特許出願第６２／６７８，７３７号の利益を主張するものであり、その全内容は引用することにより本明細書の一部とされる。
【背景技術】
【０００３】
腫瘍溶解性ウイルス(Oncolytic viruses：ＯＶ）は、ベクターの安全性および有効性を達成することにかなりの努力を払って、多種多様なウイルス種から作出されてきた。多くはヒト臨床試験で試験されており、その成否は様々である。ベクター送達は、オフターゲット細胞感染（標的外細胞感染）を制限することなく、腫瘍内接種に大きく依存してきた。腫瘍内接種の制限は、例えば、腫瘍のサイズまたは位置のために多くの腫瘍に接種できないことであり、さらに、播種性転移細胞および微小転移巣は、個々に識別可能で数が限られている場合を除き、局所的に容易に処置できないことが多い。
【０００４】
本発明者らは、これまでに、上皮細胞増殖因子受容体（ＥＧＦＲ）またはその腫瘍特異的変異体ＥＧＦＲｖＩＩＩなど、感染のために腫瘍関連受容体を独自に必要とする腫瘍溶解性単純ヘルペスウイルス（oncolytic herpes simplex virus：ｏＨＳＶ）ベクターを開発した（例えばUchida, H. et al. Effective treatment of an orthotopic xenograft model of human glioblastoma using an EGFR-retargeted oncolytic herpes simplex virus. Mol Ther 21, 561-569, doi:10.1038/mt.2012.211 (2013)参照）。再標的化されたｏＨＳＶの設計は、Campadelli-Fiume et al. （Retargeting strategies for oncolytic herpes simplex viruses. Viruses 8, 63, doi:10.3390/v8030063 (2016)）にも記載されている。これらの「再標的化された」ｏＨＳＶは、免疫不全のマウスで標的受容体を有する腫瘍にホーミングし得るが、再標的化されたベクターは患者またはＨＳＶ免疫動物腫瘍モデルでまだ試験されておらず、ヒト集団に多く見られる抗ＨＳＶ免疫がｏＨＳＶ腫瘍療法の有効性を制限する可能性がある。
【０００５】
従って、ｏＨＳＶの使用の実質的な障害は、ＨＳＶに対する宿主免疫、特に、抗原、例えばｏＨＳＶ粒子に存在するエピトープまたは抗原決定基、に対する適応免疫応答である。ＨＳＶ免疫動物および患者の血清は、抗体を介した機構によりＨＳＶを効果的に中和する（例えばCairns, T.M., et al. 2015. Patient-specific neutralizing antibody responses to herpes simplex virus are attributed to epitopes on gD, gB, or both and can be type specific. J Virol 89:9213-9231参照）。これらの抗体の主な標的は、細胞へのＨＳＶの侵入に不可欠な２つのウイルスエンベロープ糖タンパク質ｇＤおよびｇＢである。宿主の適応免疫は、交差反応性エピトープを含んでなるビリオンによる初期ＨＳＶ感染から、または同じものもしくは抗原的に交差反応性のあるウイルス粒子による初期ｏＨＳＶ処置から生じ得る。その結果として、患者の他の腫瘍、または転移細胞に到達するために全身注射されたあるいは注射（腫瘍）部位で複製されたビリオンの播種は、既存の免疫または注射後の免疫の発達によって、よくても一過性であると予想される。
【発明の概要】
【０００６】
ＨＳＶ免疫患者において全身性腫瘍ホーミングが可能な組換えＨＳＶベクター（ウイルス粒子）が望ましい。この新規なタイプのｏＨＳＶの開発が成功すると、癌療法における中心問題である転移性癌の全身処置に好適なＯＶ世代が提供される。
【０００７】
発明の要旨
本発明の一側面において、再標的化された単純ヘルペスウイルス（ＨＳＶ）粒子が提供される。このウイルス粒子は、ゲノム、キャプシド、テグメント、ならびに感受性宿主細胞へのウイルスの付着および／または侵入を遮断することによりウイルス感染を妨げる抗体による認識を低減または排除するように改変された糖タンパク質を含んでなるエンベロープを含んでなる。
【０００８】
別の側面において、再標的化された単純ヘルペスウイルス（ＨＳＶ）粒子が提供される。このウイルス粒子は、抗原的に改変された糖タンパク質Ｂ（ｇＢ）および／または抗原的に改変された糖タンパク質Ｄ（ｇＤ）タンパク質を含んでなり、１以上の主要なヒト血清ＨＳＶ中和抗体と反応するｇＢおよび／またはｇＤの１以上の主要なエピトープが、主要なヒト血清ＨＳＶ中和抗体によるウイルスの中和が低減または排除されるように主要なヒト血清ＨＳＶ中和抗体へのウイルス粒子の結合を低減または排除するように改変されている。
【０００９】
別の側面において、組換えＨＳＶゲノムは、ゲノム、キャプシド、テグメント、ならびに感受性宿主細胞へのウイルスの付着および／または侵入を障害または遮断することによりウイルス感染を妨げる抗体による認識を低減または排除するように改変された糖タンパク質を含んでなるエンベロープを含んでなる、再標的化された単純ヘルペスウイルス（ＨＳＶ）粒子をコードする核酸を含んでなる。一態様では、このウイルス粒子は、抗原的に改変された糖タンパク質Ｂ（ｇＢ）および／または抗原的に改変された糖タンパク質Ｄ（ｇＤ）タンパク質を含んでなり、１以上の主要なヒト血清ＨＳＶ中和抗体と反応するｇＢおよび／またはｇＤの１以上の主要なエピトープが、主要なヒト血清ＨＳＶ中和抗体によるウイルスの中和が低減または排除されるように主要なヒト血清ＨＳＶ中和抗体へのウイルス粒子の結合を低減または排除するように改変されている。
【００１０】
さらに別の側面では、ゲノム、キャプシド、テグメント、ならびに感受性宿主細胞へのウイルスの付着および／または侵入を障害または遮断することによりウイルス感染を妨げる抗体による認識を低減または排除するように改変された糖タンパク質を含んでなるエンベロープを含んでなる、少なくとも１０５ｐｆｕ、少なくとも１０６ｐｆｕ、少なくとも１０７ｐｆｕ、少なくとも１０８ｐｆｕ、少なくとも１０９ｐｆｕ、少なくとも１０１０ｐｆｕ、または少なくとも１０１１ｐｆｕの、再標的化された単純ヘルペスウイルス（ＨＳＶ）粒子を含んでなるウイルスストックが提供される。一態様では、これらのウイルス粒子は、抗原的に改変された糖タンパク質Ｂ（ｇＢ）および／または抗原的に改変された糖タンパク質Ｄ（ｇＤ）タンパク質を含んでなり、１以上の主要なヒト血清ＨＳＶ中和抗体と反応するｇＢおよび／またはｇＤの１以上の主要なエピトープが、主要なヒト血清ＨＳＶ中和抗体によるウイルスの中和が低減または排除されるように主要なヒト血清ＨＳＶ中和抗体へのウイルス粒子の結合を低減または排除するように改変されている。
【００１１】
投与形態は、ゲノム、キャプシド、テグメント、ならびに感受性宿主細胞へのウイルスの付着および／または侵入を障害または遮断することによりウイルス感染を妨げる抗体による認識を低減または排除するように改変された糖タンパク質を含んでなるエンベロープを含んでなる、少なくとも１０５ｐｆｕ、少なくとも１０６ｐｆｕ、少なくとも１０７ｐｆｕ、少なくとも１０８ｐｆｕ、少なくとも１０９ｐｆｕ、少なくとも１０１０ｐｆｕ、または少なくとも１０１１ｐｆｕの再標的化された単純ヘルペスウイルス（ＨＳＶ）粒子と、薬学上許容される賦形剤を含んでなる。一態様では、これらのウイルス粒子は、抗原的に改変された糖タンパク質Ｂ（ｇＢ）および／または抗原的に改変された糖タンパク質Ｄ（ｇＤ）タンパク質を含んでなり、１以上の主要なヒト血清ＨＳＶ中和抗体と反応するｇＢおよび／またはｇＤの１以上の主要なエピトープが、主要なヒト血清ＨＳＶ中和抗体によるウイルスの中和が低減または排除されるように主要なヒト血清ＨＳＶ中和抗体へのウイルス粒子の結合を低減または排除するように改変されている。
【００１２】
癌を有する患者の治療方法は、癌患者を治療するのに有効な量の再標的化された単純ヘルペスウイルス（ＨＳＶ）粒子をその患者に投与することを含んでなる。これらの再標的化された単純ヘルペスウイルス（ＨＳＶ）粒子は、ゲノム、キャプシド、テグメント、ならびに感受性宿主細胞へのウイルスの付着および／または侵入を障害または遮断することによりウイルス感染を妨げる抗体による認識を低減または排除するように改変された糖タンパク質を含んでなるエンベロープを含んでなる。一態様では、これらのウイルス粒子は、抗原的に改変された糖タンパク質Ｂ（ｇＢ）および／または抗原的に改変された糖タンパク質Ｄ（ｇＤ）タンパク質を含んでなり、１以上の主要なヒト血清ＨＳＶ中和抗体と反応するｇＢおよび／またはｇＤの１以上の主要なエピトープが、主要なヒト血清ＨＳＶ中和抗体によるウイルスの中和が低減または排除されるように主要なヒト血清ＨＳＶ中和抗体へのウイルス粒子の結合を低減または排除するように改変されている。
【００１３】
以下の付番した項により本発明の様々な側面を説明する。
第１項：ゲノム、キャプシド、テグメント、ならびに感受性宿主細胞へのウイルスの付着および／または侵入を障害または遮断することによりウイルス感染を妨げる抗体による認識を低減または排除するように改変された糖タンパク質を含んでなるエンベロープを含んでなる、再標的化された単純ヘルペスウイルス（ＨＳＶ）粒子。
第２項：抗原的に改変された糖タンパク質Ｂ（ｇＢ）および／または抗原的に改変された糖タンパク質Ｄ（ｇＤ）タンパク質を含んでなり、１以上の主要なヒト血清ＨＳＶ中和抗体と反応するｇＢおよび／またはｇＤの１以上の主要なエピトープが、主要なヒト血清ＨＳＶ中和抗体によるウイルスの中和が低減または排除されるように主要なヒト血清ＨＳＶ中和抗体へのウイルス粒子の結合を低減または排除するように改変されている、第１項に記載のウイルス粒子。
第３項：ｇＤの１以上のエピトープが、前記１以上の主要なヒト血清ＨＳＶ中和抗体によるウイルスの中和が低減または排除されるように主要なヒト血清ＨＳＶ中和抗体へのウイルス粒子の結合を低減または排除するように改変されている、第２項に記載のウイルス粒子。
第４項：ｇＢの１以上のエピトープが、前記１以上の主要なヒト血清ＨＳＶ中和抗体によるウイルスの中和が低減または排除されるように主要なヒト血清ＨＳＶ中和抗体へのウイルス粒子の結合を低減または排除するように改変されている、第２項に記載のウイルス粒子。
第５項：配列番号１もしくは配列番号２のアミノ酸１０〜２０、５４、７５〜７９、１３２、１４０、２１３、２１６、２２２〜２２４、および２６２〜２７９のうち１以上、または配列番号１もしくは配列番号２のアミノ酸１０〜２０、５４、７５〜７９、１３２、１４０、２１３、２１６、２２２〜２２４、および２６２〜２７９に相当する１以上のアミノ酸が、ウイルス粒子への主要なＨＳＶ血清中和抗体の結合を低減するように、ウイルス粒子のｇＤ糖タンパク質において改変されている、第１項〜第３項のいずれか一項に記載のウイルス粒子。
第６項：配列番号１もしくは配列番号２のアミノ酸Ｐ５４およびＴ２１３の一方もしくは両方、または配列番号１もしくは配列番号２のアミノ酸Ｐ５４およびＴ２１３に相当する一方もしくは両方のアミノ酸が改変されている（例えば、Ｐ５４Ｑおよび／またはＴ２１３Ｍ）、第５項に記載のウイルス粒子。
第７項：配列番号３のアミノ酸４７、６２、８５、２０３、３０３、３０４、３０５、３０８、３２８、３３５、４１９、４７３、５９４、もしくは６４０〜６７０または配列番号４のアミノ酸４１２のうち１以上、あるいは配列番号３のアミノ酸４７、６２、８５、２０３、３０３、３０４、３０５、３０８、３２８、３３５、４１９、４７３、５９４、もしくは６４０〜６７０または配列番号４のアミノ酸４１２に相当する１以上のアミノ酸が、ウイルス粒子への主要なＨＳＶ血清中和抗体の結合を低減するように、ウイルス粒子のｇＢ糖タンパク質において改変されている、第２項に記載のウイルス粒子。
第８項：配列番号１もしくは２のΔ３８突然変異、または配列番号１もしくは２のΔ３８突然変異に相当するｇＤ糖タンパク質における突然変異を有する、第１項〜第７項のいずれか一項に記載のウイルス粒子。
第９項：標的細胞型の表面成分に結合することができる非天然リガンドを含んでなる、第１項〜第８項のいずれか一項に記載のウイルス粒子。
第１０項：前記標的細胞型が癌細胞である、第９項に記載のウイルス粒子。
第１１項：前記標的細胞型の表面成分に結合することができる非天然リガンドが、ウイルス粒子のウイルスエンベロープ糖タンパク質に組み込まれている、第９項に記載のウイルス粒子。
第１２項：前記リガンドが組み込まれている前記ウイルス粒子のウイルスエンベロープ糖タンパク質が、ｇＤ、ｇＣ、ｇＢおよび／またはｇＨである、第１１項に記載のウイルス粒子。
第１３項：前記表面成分が、ＥＧＦＲ、ＥＧＦＲｖＩＩＩ、他の発癌性ＥＧＦＲ変異体、ＨＥＲ２、ＣＤ１３３、ＣＸＣＲ４、癌胎児性抗原（ＣＥＡ）、ＣＬＣ−３／アネキシン−２／ＭＭＰ−２、ヒトトランスフェリン受容体、ＥｐＣＡＭ、またはｃ−Ｍｅｔのうち１以上である、第９項に記載のウイルス粒子。
第１４項：少なくとも１以上のウイルスエンベロープ糖タンパク質のその天然受容体への結合が排除される、第１項〜第１３項のいずれか一項に記載のウイルス粒子。
第１５項：前記ゲノムが、外因性発現カセットを含んでなる、第１項〜第１４項のいずれか一項に記載のウイルス粒子。
第１６項：前記外因性発現カセットが、殺腫瘍活性を増強する薬剤をコードする、第１５項に記載のウイルス粒子。
第１７項：前記ゲノムが、１以上のマイクロＲＮＡの標的配列を含んでなる、第１項〜第１６項のいずれか一項に記載のウイルス粒子。
第１８項：第１項〜第１７項のいずれか一項に記載のウイルス粒子をコードする、組換えＨＳＶゲノム。
第１９項：ウイルスストックであって、少なくとも１０５ｐｆｕ、少なくとも１０６ｐｆｕ、少なくとも１０７ｐｆｕ、少なくとも１０８ｐｆｕ、少なくとも１０９ｐｆｕ、少なくとも１０１０ｐｆｕ、または少なくとも１０１１ｐｆｕの第１項〜第１７項のいずれか一項に記載のウイルス粒子を含んでなる、ウイルスストック。
第２０項：投与形態であって、少なくとも１０５ｐｆｕ、少なくとも１０６ｐｆｕ、少なくとも１０７ｐｆｕ、少なくとも１０８ｐｆｕ、少なくとも１０９ｐｆｕ、少なくとも１０１０ｐｆｕ、または少なくとも１０１１ｐｆｕの第１項〜第１７項のいずれか一項に記載のウイルス粒子、および薬学上許容される賦形剤を含んでなる投与形態。
第２１項：単位投与形態として提供される、第２０項に記載の投与形態。
第２２項：非経口送達用に処方された、第２０項に記載の投与形態。
第２３項：静脈内送達用に処方された、第２２項に記載の投与形態。
第２４項：癌を有する患者の治療方法であって、癌患者を治療するのに有効な量の第１項〜第１７項のいずれか一項に記載のウイルス粒子をその患者に投与することを含んでなる、方法。
【図面の簡単な説明】
【００１４】
【図１】図１Ａは、ＨＳＶ  ｇＤ１およびｇＤ２のアラインされた例示的配列（それぞれ、配列番号１および２）を示す。アミノ酸２〜２４は、図２の配列などのｓｃＦｖ配列、または他のターゲティングリガンド配列で置き換えることができる。図１Ｂおよび図１Ｃは、ＨＳＶ  ｇＢ１およびｇＢ２の連続的にアラインされた例示的配列（それぞれ、配列番号３および４）を示す。図１Ｄは、残基１〜２５の間に抗ＥＧＦＲ  ｓｃＦｖ配列を有し、残基Ｙ３８の欠失（Δ３８；アミノ酸配列中「＊」で示される）を有する、改変された（「再標的化された」）ｇＤ１、ｇＤ：ｓｃＥΔ３８の配列（配列番号５）を示す。シグナルペプチド（太字テキスト）は別の行に示されるが、シグナルペプチダーゼによる切断前のタンパク質の残りの部分と連続した配列である。
【図２】図２は、抗ＥＧＦＲ／ＥＧＦＲｖＩＩＩ  ｓｃＦｖの例示的アミノ酸配列（配列番号６）を示す。
【図３】図３は、ｗｔ  ＨＳＶ（ａ）およびＫＮＴｃ組換え体のゲノム構造を概略的に示す。（ｂ）ＫＮＴｃ−ΔｇＤ：ＧＷは、ＵＬ３７とＵＬ３８の間に大腸菌(E.coli)におけるウイルスのゲノム増殖および設計のための細菌人工染色体（ＢＡＣ）配列、ＵＬ３とＵＬ４の間にユビキチンＣプロモーター−ｍＣｈｅｒｒｙ発現カセット（ＵｂＣ−ｍＣｈ）、ｇＢ遺伝子の２つのウイルス侵入促進突然変異（ｇＢ：ＮＴ）、ならびにｇＤプロモーターの制御下で参照ｇＤ遺伝子および改変ｇＤ遺伝子の迅速な配向特異的挿入を可能にするためのｇＤコード配列の代わりのＧＷ組換えカセット（ΔｇＤ：ＧＷ）を含む。挿入された遺伝子には、ｗｔ  ｇＤ１（ｇＤ  ｗｔ）（ｃ）および再標的化されたｇＤ（ｇＤ：ｓｃＥΔ３８）（ｄ）を含み、Ｐ５４Ｑおよび／またはＴ２１３Ｍ突然変異を含まないまたは含む。既知のエピトープ残基ＭＣ５およびＭＣ２３はｇＤ：ｓｃＥΔ３８概略図の上に示され、変異残基は下に示されている。
【図４】図４は、Ｂ７８−ＥＧＦＲｖＩＩＩクローン（Ｂ７８−ｖＩＩＩ）の生成および特性評価を示す。Ｂ７８−Ｈ１マウス黒色腫細胞を、ＥＧＦＲｖＩＩＩを発現する組換えレトロウイルスに感染させた。形質導入された細胞を１０μｇ／ｍｌブラストサイジンに対する耐性について選択し、プールし、抗ＥＧＦＲモノクローナル抗体Ｈ１１および蛍光活性化セルソーター（ＦＡＣＳ）を使用してＥＧＦＲｖＩＩＩ発現レベルによって選別した。ＥＧＦＲｖＩＩＩ陽性ピークの前後からの細胞を、限界希釈により別々にクローニングし、個々のクローンをＥＧＦＲｖＩＩＩ発現についてウエスタンブロット（ＷＢ）により分析した。結果は、選択されたＢ７８−ｖＩＩＩクローンにおけるＥＧＦＲｖＩＩＩ発現を示す。ＥＧＦＲｖＩＩＩを発現するチャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ−Ｋ１）細胞（ＣＨＯ−ＥＧＦＲｖＩＩＩ）を陽性対照として使用した。Ｂ７８Ｈ１細胞は、ＥＧＦＲｖＩＩＩに関して陰性であった（Ｂ７８Ｈ１、右端）。ＥＧＦＲｖＩＩＩ発現プラスミドで一過性にトランスフェクトされたＢ７８Ｈ１細胞は、かろうじて検出できるＥＧＦＲｖＩＩＩ発現を示した。β−アクチンをローディング対照として可視化した。その後の実験研究のために、Ｂ７８−ｖＩＩＩクローン１１Ｂを選択した。
【図５】図５  精製されたｇＤエクトドメイン（ＥＣＤ）へのｍＡｂ結合に対する再標的化およびモノクローナル抗体（ｍＡｂ）耐性（ｍａｒ）突然変異の効果。ｇＤ：ｓｃＥΔ３８およびそのｍａｒ変異株のＥＣＤをコードする配列をバキュロウイルス発現プラスミドｐＶＴＢａｃにクローニングした。これらのプラスミドを、線状化したバキュロウイルスＤＮＡとともにＳｆ９昆虫細胞にトランスフェクトして、組換えバキュロウイルスを作製した。個々の分離株をｇＤ  ＥＣＤ生産についてＷＢにより試験し、最も生産量の多いクローンを大規模タンパク質生産に使用した。可溶性タンパク質を抗ｇＤ（ＤＬ６）カラムで精製した。精製された各ＥＣＤへの２５のｇＤ特異的ｍＡｂの結合を表面プラズモン共鳴イメージング（ＳＰＲｉ）により分析し、再標的化されたｇＤ（Ａ）または再標的化されたｇＤ変異株（Ｂ〜Ｄ）についての各抗ｇＤ  ｍＡｂによる結合データをｗｔ  ｇＤ（１００％）に対するパーセンテージとして示す。横軸の下に各ｍＡｂの名称を示し、同じまたは重複するエピトープに対するｍＡｂをグループ分けし、ｍＡｂ名の下に示されているように、各グループは異なる色で示される（Cairns 2017）。値は、１回だけ測定された（＊）で示されたものを除いて、２〜５回の独立した測定の平均±ＳＥＭである。Ａ．ｇＤ：ｓｃＥΔ３８；Ｂ．ｇＤ：ｓｃＥΔ３８−Ｐ５４Ｑ；Ｃ．ｇＤ：ｓｃＥΔ３８−Ｔ２１３Ｍ；Ｄ.ｇＤ：ｓｃＥΔ３８−Ｐ５４Ｑ／Ｔ２１３Ｍ。
【図６】図６Ａ〜６Ｃ  ウイルスフリー融合アッセイおよびｍＡｂによる阻害におけるｇＤ活性。ｇＤ融合活性を測定するために、Ｂ７８Ｈ１細胞（ｇＤ受容体なし）を、示されているように、ｇＢ：ＮＴ、ｇＨ、ｇＬ、ｇＤの種々のバージョンの発現プラスミド、およびスプリットルシフェラーゼＮ末端プラスミドＲＬｕｃ８（１−７）でトランスフェクトすることによりエフェクター細胞集団を作出した。Ｂ７８−ｖＩＩＩ（ＥＧＦＲｖＩＩＩを発現する）標的細胞をスプリットルシフェラーゼＣ末端プラスミドＲＬｕｃ８（８〜１１）でトランスフェクトした。エフェクター細胞集団と標的細胞集団の混合時に、糖タンパク質を介した標的細胞とエフェクター細胞の融合から生じる発光を経時的に測定した。（図６Ａ）６時間でのｇＤ：ｓｃＥΔ３８活性（１００％発光に設定）に対する融合活性の経時的推移。（図６Ｂおよび６Ｃ）抗体阻害は、標的細胞と混合する前に、エフェクター細胞集団を示された濃度のＭＣ５（図６Ｂ）またはＭＣ２３  ｍＡｂ（図６Ｃ）と１時間プレインキュベーションすることによって行った。データは、６時間での抗体がない場合（１００％）と比較して示している。
【図７】図７Ａおよび７Ｂ  ウイルス侵入特異性およびｇＤのビリオンへの取り込み。（図７Ａ）Ｖｅｒｏ細胞のＢＡＣトランスフェクションにより生成された再標的化されたＫＮＴｃウイルスを使用して、Ｖｅｒｏ細胞（ネクチン−１＋／ＥＧＦＲ＋）、Ｂ７８−Ｈ１細胞、Ｂ７８／Ｃ細胞（ネクチン−１＋）、およびＢ７８−ｖＩＩＩ細胞（ＥＧＦＲｖＩＩＩ＋）にＭＯＩ＝１で２０時間感染させた。ウイルスは、それらの再標的化されたｇＤのバージョンに従って上段に示される。侵入は、ｍＣｈｅｒｒｙ蛍光として記録した。（図７Ｂ）精製ビリオンの等しいゲノムコピーのＶＰ１６、ｇＤおよびｇＢ含量を示すウエスタンブロット。ｋＤａ単位のサイズマーカーを、ｇＤブロットの左側に示している。
【図８】図８  ｍＡｂ  ＭＣ５およびＭＣ２３による再標的化されたウイルスの中和。縦のパネル各組（Ａ、ＢまたはＣ、Ｄ）の下に名称を示したウイルスをＶｅｒｏ細胞の感染前にウイルス中和ｍＡｂ  ＭＣ５（Ａ、Ｃ）またはＭＣ２３（Ｂ、Ｄ）とある範囲の希釈率でインキュベートした。感染細胞の単層を高密度培地で覆い、４８時間後にプラークを数えた。ウイルス単独対照ウェル（１００％）と比較したプラーク形成単位（ＰＦＵ）の割合％を示す代表的な結果。（Ａ、Ｂ）再標的化されたウイルスおよび再標的化されたウイルスの単一変異株；（Ｃ、Ｄ）再標的化されたウイルスおよび再標的化されたウイルスの二重変異株。データは３ウェル／条件の平均±ＳＥＭを表す。
【図９】図９  再標的化されたウイルスおよび再標的化されたウイルスの二重ｍａｒ変異株の中和。両方のウイルスをＶｅｒｏ細胞の感染前に種々のｍＡｂとともにある範囲の希釈率でインキュベートした。感染細胞の単層を高密度培地で覆い、４８時間後にプラークを数えた。ウイルス単独対照ウェル（１００％）と比較したＰＦＵの割合％を示す代表的な結果。再標的化されたウイルス（ｇＤ：ｓｃＥΔ３８）および再標的化されたウイルスの二重ｍａｒ変異株（ｇＤ：ｓｃＥΔ３８  Ｐ５４Ｑ／Ｔ２１３Ｍ）のＡ、ｍＡｂ  Ｈ１６２；Ｂ、ｍＡｂ  ＬＰ２；Ｃ、ｍＡｂ  ＤＬ６；およびＤ、ｍＡｂ  ＭＣ１４による中和。ｗｔ  ｇＤを発現するＫＮＴｃを比較のためパネルＣおよびＤに含めている（ｇＤ  ｗｔ）。データは３反復のウェルの平均±ＳＥＭとして示す。
【発明を実施するための形態】
【００１５】
本願で明記された様々な範囲での数値の使用は、特に明示のない限り、記述された範囲内の最小値および最大値の両方の前に「約」という単語が付いているかのごとく近似値として記述される。このようにして、記述された範囲の上下のわずかな変動を使用しても、範囲内の値と実質的に同じ結果を達成することができる。また、特に断りのない限り、これらの範囲の開示は、最小値と最大値の間の全ての値を含む連続範囲として意図されている。本明細書で示される定義について、それらの定義はまた、それらの単語または句の語形、同語源語および文法的変形も指す。
【００１６】
本明細書で使用する場合、「含んでなる(comprising)」、「含む(comprise)」または「含まれる(comprised)」という用語、およびそれらの変形は、品目、組成物、装置、方法、工程、システム、請求項などの要素に関して、オープンエンドであることを意図しており、つまり、品目、組成物、装置、方法、工程、システム、請求項などにはそれらの要素が含まれ、他の要素も含めることができ、それでもなお記載された品目、組成物、装置、方法、工程、システム、請求項などの範囲／定義に含まれ得ることを意味する。本明細書で使用する場合、「１つの(a)」または「１つの(an)」とは、１以上を意味する。本明細書で使用する場合、「別の」とは、少なくとも２番目以降を意味する場合がある。
【００１７】
本明細書で使用する場合、「患者」または「対象」という用語は、限定されるものではないがヒトを含む、動物界のメンバーを指す。
【００１８】
望ましい治療的、薬理学的、医学的、または生理学的な効果を達成するための「有効量」または「有効な量」は、記述された目的を達成する任意の量である。本明細書で提供される教示に基づいて、当業者は、記載された投与形態の要素の有効量を容易に確認し、および安全で効果的な投与形態および製剤を製造することができる。
【００１９】
本明細書に記載のｒＨＳＶなどの治療剤の送達に関連して、送達プロファイルは、所望の治療効果に応じて変化し得る。本開示の性質は、癌細胞への組換えウイルス粒子の送達に関する。従って、治療剤は、好ましくは、静脈内など非経口的に送達され得る。「投与形態」は、投与または消費を目的とした薬物または医薬として使用される一定用量の化学的化合物の物理的形態である。投与形態は、複数回用量を含む製剤から分配される場合でも、単位投与形態に相当する。
【００２０】
ウイルス粒子は、薬学上許容される担体、または賦形剤を含んでなり得る静脈内投与形態または他の非経口投与形態に組み込んでもよい。治療組成物／医薬組成物は、例えば、「Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ：  Ｔｈｅ  Ｓｃｉｅｎｃｅ  ＡＮＤ  Ｐｒａｃｔｉｃｅ  ｏｆ  Ｐｈａｒｍａｃｙ」、第２１版、Ｐａｕｌ  Ｂｅｒｉｎｇｅｒ  ｅｔ  ａｌ．編、Ｌｉｐｐｉｎｃｏｔｔ，  Ｗｉｌｌｉａｍｓ  ＆  Ｗｉｌｋｉｎｓ（ボルチモア、ＭＤ  イーストン、Ｐａ．）（２００５）に記載されているものなどの許容される製薬手順に従って調製される（例えば、非経口処方物および静脈内処方物の例、ならびにそのような処方物の作製方法については、第４１章および第４２章を参照）。送達経路に応じて、投与形態は、製薬分野で広く知られているように、水、生理食塩水（例えば通常の生理食塩水）、またはリン酸緩衝生理食塩水などの追加の担体または賦形剤を含んでなり得る。組成物は、薬学上許容される担体、または賦形剤を含んでなり得る。賦形剤は、医薬の有効成分の担体として使用される不活性物質である。賦形剤は、「不活性」であるが、製剤中の有効成分の送達、安定性またはバイオアベイラビリティの増加を促進および補助し得る。有用な賦形剤の限定されない例としては、製薬／配合分野で利用可能であるような固結防止剤、結合剤、レオロジー調整剤、コーティング剤、崩壊剤、乳化剤、油、緩衝剤、塩、酸、塩基、増量剤、希釈剤、溶媒、香味剤、着色剤、流動促進剤、滑沢剤、防腐剤、抗酸化剤、吸着剤、ビタミン、甘味剤などが挙げられる。
【００２１】
用語「リガンド」とは、その結合相手である特定の標的の結合部分を指す。分子は、コグネイト受容体、タンパク質、小分子、ハプテン、またはアフィボディもしくはパラトープ含有分子などの任意の他の関連分子であり得る。用語「抗体」とは、免疫グロブリン、特異的結合能を維持するその誘導体、および免疫グロブリン結合ドメインと相同または大部分が相同である結合ドメインを有するタンパク質を指す。従って、抗体はそのコグネイト抗原のリガンドとして機能し、それは事実上いずれの分子でもあってもよい。
【００２２】
用語「抗体フラグメント」とは、全長よりも短い抗体の任意の誘導体を指す。例示的態様では、抗体フラグメントは、全長抗体の特異的結合能の少なくとも大部分を保持している。抗体フラグメントの例としては、限定されるものではないが、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆｖ、Ｆｄ、ｄｓＦｖ、ｓｃＦｖ、ダイアボディ、トリアボディ、テトラボディ、ジ−ｓｃＦｖ（一本鎖可変フラグメント二量体）、二重特異性Ｔ細胞エンゲージャー（ＢｉＴＥ）、シングルドメイン抗体（ｓｄＡｂ）、または抗体結合ドメインフラグメントが挙げられる。ターゲティングリガンドに関連して、抗体フラグメントは、一本鎖抗体フラグメントであり得る。あるいは、フラグメントは、例えば、ジスルフィド結合によって相互連結されている複数の鎖を含んでなり得る。フラグメントはまた、場合により、多分子複合体でもあってもよい。機能的抗体フラグメントは、一般には少なくとも約５０アミノ酸を含んでなり、より一般には少なくとも約２００アミノ酸を含んでなるであろう。
【００２３】
リガンドにはまた、リピートタンパク質のモジュラー性を利用するアフィボディおよび設計されたアンキリンリピートタンパク質（ＤＡＲＰｉｎ）などの他の操作された結合試薬も含まれ(Forrer T, Stumpp MT, Binz HK, Pluckthun A: A novel strategy to design binding molecules harnessing the modular nature of repeat proteins, FEBS Lett 2003, 539: 2-6; Gebauer A, Skerra A: Engineered protein scaffolds as next-generation antibody therapeutics, Curr Opin Chem Biol 2009, 13:245-255)、多くの場合一本鎖として、１以上の抗原結合配列またはエピトープ結合配列および少なくとも、組成物の適当な特異性、送達、および安定性を確保するために必要な任意の他のアミノ酸配列を含んでなる（例えば、Nelson, AL, “Antibody Fragments Hope and Hype” (2010) MAbs 2(1):77-83も参照）。 
【００２４】
ウイルスゲノムは、ウイルスキャプシドにパッケージングされ、ウイルス粒子の一部として送達され得る核酸である。ウイルスゲノムは、ウイルスゲノムによりコードされる１以上の遺伝子の発現のためにゲノムのパッケージングおよび標的細胞への送達に必要な任意の配列を含む。本明細書に記載のＨＳＶウイルス粒子またはビリオンに関連して、ゲノムは、標的細胞への送達のためにＨＳＶウイルスキャプシドにパッケージングされる。
【００２５】
かなりの量の研究が、組換え腫瘍溶解性ＨＳＶウイルス（ｏＨＳＶ）に向けられてきた。ｏＨＳＶベクターおよびウイルスの作製方法および使用方法は広く知られている(例えば、それらの技術的開示のために引用することにより本明細書の一部とされる、Goins, WF, et al. Retargeting of Herpes Simplex Virus (HSV) Vectors Curr Opin Virol. 2016 December; 21: 93-101; Grandi, P, et al. Design and application of oncolytic HSV vectors for glioblastoma therapy. Expert Rev Neurother. 2009 April; 9(4): 505-517;およびPeters and Rabkin, Designing herpes viruses as oncolytics, Oncolytics (2015) 2, 15010参照)。同様に、様々なＨＳＶ成分の全体的な構造も十分に研究されている。２０１５年に、ｏＨＳＶ（Ｔ−ＶＥＣ、ＩＭＬＹＧＩＣ（商標）、タリモジーン・ラハーパレプベック）は、黒色腫患者の治療において実証済みの安全性および有効性に基づいてＦＤＡの承認を受けた最初のｏＨＳＶになった。このウイルスの有効性は、抗原提示細胞の動員を強化するために、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭ−ＣＳＦ）でのベクターの武装化に部分的に依存している。しかしながら、上記のように、実装形態は、ＨＳＶ、例えばＨＳＶ糖タンパク質ｇＢおよびｇＤに対する免疫が生じることで部分的に妨げられている。黒色腫腫瘍の処置のためのＴ−ＶＥＣの腫瘍内送達後、抗ＨＳＶ抗体価と治療反応との間に相関関係はなかったが、全ての血清反応陰性患者は３〜４週間以内に血清転換した。ヒト集団の大部分はＨＳＶ血清反応陽性であり、これらの患者では、腫瘍を標的としたＨＳＶを用いて転移性癌の全身処置でも上手くいかない可能性がある。従って、「ステルス化された」ＨＳＶ、例えば既存の免疫から隠されているｏＨＳＶが本明細書に記載される。
【００２６】
例示的なＨＳＶ  ｇＢ糖タンパク質およびＨＳＶ  ｇＤ糖タンパク質のアミノ酸配列を図１Ａ〜１Ｃに示している（配列番号１〜４）。結合部位とウイルス中和、受容体結合、ウイルス侵入、および膜融合との関係を含む主要な血清抗体結合部位の機能のより詳細な理解を含む、ＨＳＶ  ｇＤおよびｇＢの詳細なエピトープマップを作成した研究がいくつかある（例えば、Atanasiu D, et al. 2018. Using Antibodies and Mutants to Localize the Presumptive gH/gL Binding Site on Herpes Simplex Virus gD. J Virol 92:e01694-18; Cairns, T.M., et al. 2015. J Virol 89:9213-9231; Bender FC, et al. 2007. Antigenic and mutational analyses of herpes simplex virus glycoprotein B reveal four functional regions. J Virol 81(8):3827-3841;およびCairns TM, et al. 2006. Epitope Mapping of Herpes Simplex Virus Type 2 gH/gL Defines Distinct Antigenic Sites, Including Some Associated with Biological Function. J Virol 80:2596-2608;およびCairns TM, et al. (2017) Global Sensing of the Antigenic Structure of Herpes Simplex Virus gD Using High-Throughput Array-Based SPR Imaging. PLoS Pathog 13(6):e1006430 (Cairns et al. 2017)参照）。
【００２７】
「中和抗体」は、ビリオンに結合し、そのビリオンの感染力を低下させる抗体またはそのフラグメントである。ウイルスを中和する抗体の能力は、例えば、限定するものではないが、例えば、Cairns et al. 2017において、広く知られているようなプラークアッセイによって、効果的に試験することができる。本発明に関連して、「主要な」中和抗体は、集団の大部分、例えば、ＨＳＶ、例えばＨＳＶ−１またはＨＳＶ−２について血清反応陽性であるヒト集団の少なくとも１０％、少なくとも２０％、少なくとも３０％、少なくとも４０％、または少なくとも５０％に存在し、かつ特異的エピトープ、例えば、本明細書に記載のエピトープ、およびCairns et al. 2017においてＭＣ５、ＭＣ２３、ＤＬ１１、ＭＣ１４、１Ｄ３、および１１Ｂ３ＡＧとして、または「赤色コミュニティ」エピトープ、「桃色コミュニティ」エピトープ、もしくは「青色コミュニティ」エピトープとして記載されているエピトープ、またはCairns et al. 2017で示されるように、グループＩａ、Ｉｂ、およびＩＩＩのエピトープ（下表１に再現）について選択的である中和抗体である（Cairns, TM, et al. (2015) Patient-Specific Neutralizing Antibody Responses to Herpes Simplex Virus Are Attributed to Epitopes on gD, gB, or Both and Can Be Type Specific. J. Virology 89(18):9213-9231 (“Cairns et al. 2015”)も参照）。ｇＢの場合、主要なエピトープには、Cairns et al. 2015（Cairns et al. 2014. Mechanism of Neutralization of Herpes Simplex Virus by Antibodies Directed at the Fusion Domain of Glycoprotein B. J. Virol. 88(5):2677-2689; Bender FC, et al. 2007. Antigenic and mutational analyses of herpes simplex virus glycoprotein B reveal four functional regions. J Virol 81(8):3827-3841; Kousoulas, KG, et al., (1988) Antibody-resistant mutations in cross-reactive and type-specific epitopes of herpes simplex virus 1 glycoprotein B map in separate domains Virology 166(2):423-431; Sanchez-Pescador, L, et al. (1993) Antibodies to Epitopes of Herpes Simplex Virus Type 1 Glycoprotein B (gB) in Human Sera: Analysis of Functional gB Epitopes Defined by Inhibition of Murine Monoclonal Antibodies J. Infectious Diseases 168(4):844-853;およびHighlander, SL, et al. (1989) Identification of mar Mutations in Herpes Simplex Virus Type 1 Glycoprotein B Which Alter Antigenic Structure and Function in Virus Penetration J. Virol 63(2):730-738も参照）で示されるように、ＳＳ１４４、Ｃ２２６、およびＳＳ１０が含まれる。中和抗体は、エンベロープ糖タンパク質、例えばｇＤまたはｇＢなどのビリオン中のそれらの標的エピトープに関して分類することができる。主要な中和抗体は、エンベロープ糖タンパク質の対応する「主要なエピトープ」に結合する。
【００２８】
【表１】
2021526387.tif 000003
【００２９】
いくつかのＨＳＶ株のゲノム配列は当業者に知られていることを認識すべきである（例えば、引用することにより本明細書の一部とされる、MacDonald, J. Virol., 86(11): 6371 (2012); McGeoch, J. Gen. Virol., 69: 1531-1574 (1988); GenBank受託番号JQ673480; NCBI 参照配列: NC_001806.1; MacDonald, J. Virol. 86(17): 9540 (2012); GenBank受託番号JX142173）。よって、ＨＳＶ遺伝子および遺伝子座の配列の操作は当業者のレベル内にある。また、これらの公開された配列、および本明細書で提供される配列（配列番号１〜４）は、単なる例示であり、ＨＳＶの他の株または変異体も、本発明のウイルス粒子またはベクターの操作においてソースゲノムとして使用できることにも留意されたい。
【００３０】
ＨＳＶ粒子は、ネクチン−１（ＣＤ１１１／ＨｖｅＣ）、ネクチン−２（ＣＤ１１２／ＨｖｅＢ）、ＨＶＥＭ（ＴＮＦＲＳＦ１４／ＨｖｅＡ）、および３−Ｏ−硫酸化ヘパラン硫酸（３−ＯＳ  ＨＳ）を含むその通常の結合標的へのビリオンの標的化を妨げる、例えば削除するかそうでなければ無効にすることにより再標的化され得る。ネクチン−１は、ＨＳＶ−１およびＨＳＶ２の主要な受容体であり、ネクチン−２は、ＨＳＶ−２およびＨＶＥＭ結合を遮断する突然変異（例えばＱ２７Ｐ）を有する特定のＨＳＶ−１変異株（ＡＮＧ、ＫＯＳ−ｒｉｄ１、ＫＯＳ−ｒｉｄ２）の受容体である。ＨＶＥＭは主にリンパ球で発現される。３−ＯＳ  ＨＳは、ＨＳＶ−１  ｇＤのあまり明確に定義されていない受容体であり、その結合はＨＶＥＭ結合領域内の突然変異によってのみ排除され得る(Yoon et al, DOI: 10.1128/JVI.77.17.9221-9231.2003)。ＨＳＶ−１のｇＤの場合、ＨＳＶ感染の特異的受容体依存を変更する、すなわち、ウイルスを再標的化するために、組換えＨＳＶ分野で広く知られているように、Ｙ３８の欠失、およびｓｃＦｖなどのリターゲティングリガンド配列、またはシングルドメイン（ＶＨＨ）抗体、アフィボディもしくは天然受容体結合相手配列（例えば増殖因子）などの別のリガンドによるＨＶＥＭターゲティング部分の置換（例えば、米国特許第９，５９３，３４７号およびGoins, WF, et al. Curr Opin Virol. 2016 December; 21: 93-101参照）を用いることができる。
【００３１】
本明細書で使用する場合、アミノ酸配列、タンパク質、エピトープ、抗原決定基などの「修飾」には、タンパク質のアミノ酸配列を変える任意の突然変異型が含まれる。複数の態様において、修飾は、タンパク質への１以上の抗体の結合を変更するという点で非保存的である。好適な修飾には、限定されるものではないが、１以上のアミノ酸の欠失、１以上の記述されたアミノ酸の置換（例えば、ミスセンス突然変異）、または１以上のアミノ酸の挿入が含まれる。以下の実施例では特定のアミノ酸置換が挙げられているが（ＨＳＶ−１  ｇＤ（ｇＤ１）の場合、Ｐ５４ＱおよびＴ２１３Ｍ）、同じアミノ酸、すなわち、ｇＤ１のアミノ酸残基Ｐ５４および／またはＴ２１３を、特定の他のアミノ酸で置換することにより、好ましくは、標的細胞に対するビリオンの感染力を実質的に妨げることなく、関連エピトープ、例えば抗体結合を修飾し得る。同様に、ＨＳＶ−１  ｇＤ（ｇＤ１）またはＨＳＶ−２  ｇＤ（ｇＤ２）のエピトープに関連する他のアミノ酸、例えば、配列番号１または２のアミノ酸１０〜２０、７５〜７９、１３２、１４０、２１３、２１６、２２２〜２２４、および２６２〜２７９またはそれらのアミノ酸に相当するアミノ酸、ＨＳＶ−１  ｇＢ（ｇＢ１）またはＨＳＶ−２  ｇＢ（ｇＢ２）に見られる主要なエピトープに関連するアミノ酸、例えば、参照配列番号３、アミノ酸４７（例えば、Ｎ４７Ｔ）、６２（例えば、Ａ６２Ｔ）、８５（例えば、Ｇ８５Ｄ）、２０３（例えば、Ａ２０３Ｔ）、３０３（例えば、Ｙ３０３Ｎ）、３０４（例えば、Ｒ３０４Ｑ）、３０５（例えば、Ｅ３０５Ｋ）、３０８（例えば、Ｈ３０８Ｙ）、３２８（例えば、Ｒ３２８Ｈ）、３３５（例えば、Ｒ３３５Ｑ）、４１９（Ｄ４１９Ｋ）、４７３（例えば、Ｓ４７３Ｎ）、５９４（例えば、Ｇ５９４Ｒ）、６４０〜６７０、あるいは、参照配列番号４、アミノ酸４１２（例えば、Ｅ４１４Ｋ）、またはそれらのアミノ酸に相当するアミノ酸、および中和抗体に相当する、ｇＤ１、ｇＤ２、ｇＢ１、ｇＢ２、もしくはそれらの再標的化バージョンの主要なエピトープの他のアミノ酸は、標的細胞における感染力をなお維持しつつ、中和を低減するという目的と一致する方法でエピトープを効果的に修飾するように変異させることができる。さらに、任意の所与のエピトープにおける任意の修飾の抗体結合への影響、およびそのような修飾が標的細胞における感染力に悪影響を及ぼし得るかどうかを決定することは、例えば、本明細書に記載されているように、プラークアッセイ、ウエスタンブロット法または抗体結合アッセイなどで容易に試験される。
【００３２】
本明細書に記載のウイルス粒子において、元の形態または改変形態で用途を見出すことができるＨＳＶ  ｇＤおよびｇＢの多くのバージョンが当業者に知られている。ｇＤおよびｇＢのそれらのバージョンは、例えば、配列番号１〜４に列挙されるような、野生型（ｗｔ）配列、または天然に存在するもしくは人間が作り出したその変異体を含むその変異体、またはその前駆体を有し得る。さらに、ＨＳＶ  ｇＤ糖タンパク質およびｇＢ糖タンパク質のアミノ酸の付番は、配列情報源に応じて表示方法が異なる場合がある。従って、本明細書で特定のアミノ酸が参照されている場合、それらは配列番号１〜４に関連したアミノ酸を参照している。よって、特に配列番号１〜４の配列と言わない場合、アミノ酸配列の改変は、配列番号１〜４の参照アミノ酸「に相当する」と言われ、これはｇＤ糖タンパク質またはｇＢ糖タンパク質において、配列番号１〜４の配列とは配列または配列番号が異なる可能性のある等価のアミノ酸が改変されていることを意味する。
【００３３】
本発明は、ＨＳＶ血清反応陽性個体の１以上の血清抗体に対する結合部位を提示する１以上のエピトープが、１以上の血清抗体に対して血清反応陽性の患者に投与した場合に、組換えＨＳＶの中和を低減または排除するように改変されている、改変されたｇＢおよび／または改変されたｇＤエンベロープ糖タンパク質を含んでなるｏＨＳＶなどの組換えＨＳＶ（ｒＨＳＶ）を提供する。すなわち、１以上の主要な血清抗体のｇＤまたはｇＢへの抗体結合が低減または排除される。これらの例では、ｍＡｂが主要な血清抗体の代わりとして使用されていることに留意されたい。
【００３４】
「組換え」とは、ウイルスのゲノムが、野生型（ｗｔ）ゲノムには存在しない、挿入、欠失、または置換などのアミノ酸変化をコードするように遺伝的に改変または遺伝的に操作されていることを意味する。従って、タンパク質配列は、配列番号１〜４のうちの１つなどのｗｔ（例えば、参照）配列とは異なる配列を有する場合に「改変された」と見なされる。ｒＨＳＶは、ＨＳＶ−１および／またはＨＳＶ−２ゲノムから誘導または操作されてよく、任意の好適な株のゲノムまたはそれらのゲノムの遺伝的に操作されたバージョンを含む。
【００３５】
実際には、組換えＨＳＶは、標的解除することができ、場合により、再標的化することができる。組換えＨＳＶは、ｇＤの天然細胞表面結合部分の除去または破壊により、例えば、ネクチン−１結合部位をＹ３８の除去、または置換により（例えばΔ３８）、およびＨＶＥＭ結合配列を除去または破壊により、および場合により、例えば、ｓｃＦｖ配列などの標的細胞に存在する細胞表面結合相手に結合し、限定されるものではないが、ヒト膠芽腫細胞、および他の癌細胞を標的とするための抗ＥＧＦＲ／ＥＧＦＲｖＩＩＩ  ｓｃＦｖ（例えば、図２参照）をコードするためのリガンドでＨＶＥＭ結合配列を置き換えて、標的解除または再標的化される。場合により、細胞ターゲティングリガンドは、ｇＢまたはｇＨなどのｇＤ以外の別のタンパク質またはエンベロープ糖タンパク質の一部として発現されてもよい（例えば、Petrovic, B, et al. Dual Ligand Insertion in gB and gD of Oncolytic Herpes Simplex Viruses for Retargeting to a Producer Vero Cell Line and to Cancer Cells. J. Virology Feb 2018, 92 (6) e02122-17; Petrovic B, et al. (2017) Insertion of a ligand to HER2 in gB retargets HSV tropism and obviates the need for activation of the other entry glycoproteins. PLoS Pathog 13(4): e1006352;およびGatta V, et al. (2015) The Engineering of a Novel Ligand in gH Confers to HSV an Expanded Tropism Independent of gD Activation by Its Receptors. PLOS Pathogens 11(5): e1004907参照）。よって、「再標的化された」とは、通常のウイルスコグネイト受容体の認識を排除する（「標的解除」と呼ばれる）ように、そして、通常のウイルスコグネイト受容体以外の細胞表面構造の認識によるウイルスの付着および侵入を可能にするリガンドまたは突然変異を備えるようにエンベロープ糖タンパク質が改変されるように、ウイルス、例えば、ＨＳＶウイルスが遺伝的または合成的に変更されていることを意味する。
【００３６】
ウイルスゲノムはまた、ウイルスゲノムのオフターゲット感染および複製を低減または防止するために、１以上のマイクロＲＮＡ標的配列も含んでなり得る。また、本明細書では、記載したｒＨＳＶを含んでなるウイルスストックおよび医薬組成物、ならびに記載したｒＨＳＶ（ｏＨＳＶ)を使用する腫瘍細胞を死滅させる方法も提供される。
【００３７】
上記のように、ＨＳＶ粒子は、細胞（癌細胞など）の表面に存在する分子（タンパク質、脂質、もしくは糖鎖決定基）に特異的な非ＨＳＶリガンドおよび／または正常な細胞でＨＳＶの複製に必要な１以上のＨＳＶ遺伝子などの、１以上のＨＳＶ遺伝子座に挿入された１以上のマイクロＲＮＡ標的配列の１以上のコピーを含んでなり得る。
【００３８】
組換えＨＳＶ（ｒＨＳＶ）の非ＨＳＶリガンドは、ｇＤまたはｇＣなどのＨＳＶ表面に露出した糖タンパク質に組み込まれ、リガンドによる所望の細胞への標的化を容易にする。例えば、リガンドは、ｇＤの残基１〜２５の間、残基２４と２５の間、または残基７〜３９の間に組み込むことができる。膠芽腫または乳癌などの癌細胞を標的とするリガンドには、ＥＧＦＲおよびＥＧＦＲｖＩＩＩ、ＨＥＲ２（ヒト上皮細胞増殖因子受容体２）、ＣＤ１３３、ＣＸＣＲ４（ケモカイン受容体タイプ４、フシン）、癌胎児性抗原（ＣＥＡ）、ＣＬＣ−３／アネキシン−２／ＭＭＰ−２（クロロトキシン受容体）、ヒトトランスフェリン受容体、上皮細胞接着分子（ＥｐＣＡＭ）、またはｃ−Ｍｅｔを標的とするものが含まれ、このリガンドはそのような受容体または細胞表面分子を標的とすることができる、すなわち、このリガンドは、そのような受容体または細胞表面分子に特異的に結合することができる。抗体、ｓｃＦｖ（一本鎖抗体）およびＶＨＨ（シングルドメイン抗体）などのＥＧＦＲ−およびＥＧＦＲｖＩＩＩ−特異的リガンドは、文献に記載されている（Kuan et al, Int. J. Cancer, 88, 962-69 (2000); Wickstrand et al., Cancer Res., 55(14):3140-8 (1995); Omidfar et al., Tumor Biology, 25:296-305 (2004);Uchida et al. Molecular Therapy, 21:561-9 (2013)も参照; Braidwood et al., Gene Ther., 15, 1579-92 (2008)も参照）。
【００３９】
ｒＨＳＶはさらにまたは代わりに、必ずしも癌に関連しているとは限らない他の細胞表面分子または受容体に対するリガンドを組み込むことによって標的化することができる。例えば、リガンドは、天然リガンド（例えば、増殖因子（例えば、ＥＧＦＲを標的とすることができるＥＧＦ、ｔｒｋＡを標的とすることができるＮＧＦ、ＧＦＲα１を標的とすることができるＧＤＮＦなど））、ペプチドまたは非ペプチドホルモン、標的分子に結合するために選択されたペプチド（例えば、ＤＡＲＰｉｎおよびアフィボディ）などに由来する結合ドメインを含むことができる。ｒＨＳＶはまた、非カノニカル受容体を介したウイルス侵入を促進するｇＢおよび／またはｇＨの突然変異型も含むことができる（一般に、ｒＨＳＶゲノム内のこれらの遺伝子の一方もしくは両方にそのような突然変異を有する）。
【００４０】
ｒＨＳＶベクターに含めるための例示的マイクロＲＮＡ標的配列は（例えば、タンデムにあるその複数のコピーとして）、ｍｉＲ−１２４の結合配列であり、これは神経適用に（例えば、ＧＢＭなどの神経系腫瘍の治療にｒＨＳＶを使用する場合に、非癌性ニューロンを保護するために）特定の用途を有する。あるいは、他のタイプの組織を保護するために他のマイクロＲＮＡ標的配列を使用することもでき、所望の組織または細胞種を保護するために好適なマイクロＲＮＡ標的配列を選択することは、当技術分野の通常の技術の範囲内である。例えば、ｍｉＲ−１２２およびｍｉＲ−１９９は正常な肝臓細胞で発現されるが原発性肝臓癌では発現されず、従って、ｍｉＲ−１２２および／またはｍｉＲ−１９９マイクロＲＮＡ標的配列のうち１つまたは組合せは、ｒＨＳＶの態様で肝臓癌の処置のために使用することができる。同様に、ｍｉＲ−１２８および／またはｍｉＲ−１３７マイクロＲＮＡの標的配列は、ｏＨＳＶで、正常な脳の保護のために使用することができる。例示的マイクロＲＮＡ標的配列は、マイクロＲＮＡの逆相補体であり得る。ｒＨＳＶが全身投与される場合には、全身の非標的細胞を保護するために１以上のマイクロＲＮＡ標的配列が使用される。
【００４１】
マイクロＲＮＡ標的配列は、ＨＳＶ遺伝子の３’非翻訳領域（「ＵＴＲ」）に含められ、マイクロＲＮＡの存在下でその遺伝子をサイレンシングし得る。マイクロＲＮＡ標的配列の複数のコピー（例えば、２コピー、３コピー、４コピー、５コピー、６コピー、またはそれ以上）がタンデムに挿入されることが好ましい場合がある。マイクロＲＮＡ標的配列の複数のコピーは、４つ以上のヌクレオチド（より好ましくは８つ以上ヌクレオチド）のスペーサーによって分離されてもよい。マイクロＲＮＡ標的配列の複数のコピーは、同じであっても異なっていてもよく、その結果、２以上のマイクロＲＮＡの標的配列が単一の遺伝子に提供される。
【００４２】
ｒＨＳＶの態様では、ＨＳＶ感染の溶解作用からの非癌性細胞の保護を助けるために、１以上のマイクロＲＮＡ標的配列の複数のコピーが、非癌性細胞での複製に必須のＨＳＶ遺伝子の３'ＵＴＲに挿入され、これは当業者には公知である。実施例では、その部位は、ＨＳＶゲノム内のその正常（または天然）遺伝子座にあるマイクロＲＮＡを標的とした遺伝子の３'ＵＴＲである。一態様では、複数のマイクロＲＮＡ標的配列が、ＩＣＰ４遺伝子の両方の天然コピーを有するベクターにおいて、ＩＣＰ４遺伝子の両方のコピーなどのＩＣＰ４遺伝子の３'ＵＴＲに挿入される。
【００４３】
ｒＨＳＶベクターのゲノムは、加えて、ＯＲＦ発現のための、プロモーター、エンハンサー、および他の好適な調節エレメントとの機能し得る連結によりコード配列、例えば、オープンリーディングフレーム（ＯＲＦ）を含有する１以上の外因性発現カセットを含んでなり得る。コード配列、例えば、ＯＲＦは、タンパク質、例えば、リポータータンパク質（緑色蛍光タンパク質など）、腫瘍溶解性因子もしくは殺腫瘍活性を増強する薬剤（腫瘍壊死因子（「ＴＮＦ」など）もしくはＴＮＦ関連アポトーシス誘導リガンド（「ＴＲＡＩＬ」））などの遺伝子産物、または他の治療上重要な遺伝子産物（例えば、ペプチド、薬物活性化酵素、抗体、治療的もしくは調節ＲＮＡなど）などの遺伝子産物をコードする。
【００４４】
例示的外因性発現カセットは、本発明のＨＳＶが治療に使用される癌または腫瘍に対して患者の免疫応答を誘導するタンパク質またはポリペプチドをコードする。例えば、そのような発現カセットは、サイトカイン（例えば、ＩＬ−１２およびＩＦＮ−β）などの因子をコードする１以上の核酸、細胞傷害性Ｔリンパ球関連タンパク質４（「ＣＴＬＡ−４」)に対する抗体(Hodi et al., N. Engl. J. Med., 363(8): 711-23 (2010))、プログラム細胞死タンパク質１（「ＰＤ１」）のリガンドまたは受容体自体に対する抗体(Topalian et al., N. Engl. J. Med., 366(26): 2443-54 (2012))、または上皮細胞接着分子（「ＥｐＣＡＭ」)(Patriarca et al., Cancer Treatment Rev., 38: 68-75 (2012))を含み得る。ＥｐＣＡＭは、細胞標的およびｒＨＳＶターゲティングリガンドの両方として機能し得る。一態様では、外因性発現カセットは、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（「ＧＭ−ＣＳＦ」）をコードする。カセットはまた、例えば、Chung, HK, et al. (2019). A compact synthetic pathway rewires cancer signaling to therapeutic effector release. Science 364(6439), eaat6982, DOI: 10.1126/science.aat6982に記載されているように「異常なシグナル伝達をエフェクター放出に書き換える(rewiring of aberrent signaling to effector release)」（ＲＡＳＥＲ）のためのタンパク質もコードすることができる。
【００４５】
他の発現カセットは、プロドラッグの活性剤への変換を触媒するタンパク質またはポリペプチドをコードする。例えば、そのような発現カセットは、本発明のベクターに感染させた腫瘍または癌性細胞において局所的に５−フルオロシトシン（「５−ＦＣ」）を５−フルオロウラシル（「５−ＦＵ」）に変換することができるシトシンデアミナーゼなどの酵素をコードすることができ（例えば、Akimoto et al., J. Ophthalmol., 86(5): 581-86 (2002)参照）、それにより５−ＦＵへの全身曝露を最小限にしつつ５−ＦＵがそのような細胞または腫瘍内で局所的に作用することを可能にする。同様に、そのような発現カセットは、ガンシクロビルを活性化することができるチミジンキナーゼ（ｔｋ)（例えば、ＨＳＶ前初期プロモーターもしくは強力な構成的プロモーターに機能し得るように連結される）、またはリボヌクレオチドレダクターゼの活性を遮断または減弱することができるプリンヌクレオシドホスホリラーゼ（ＰＮＰ）をコードすることができる。特定の態様では、本発明のベクターはまた、機能的な天然ＨＳＶ  ｔｋ遺伝子も含むことができる。
【００４６】
本明細書に記載のｒＨＳＶベクター内で、外因性発現カセット内のコード配列は、その多くの例が当技術分野で公知である構成的プロモーターまたは誘導性もしくは組織特異的プロモーターなどの任意の所望の遺伝子調節配列、あるいはマイクロＲＮ標的部位と機能し得る連結が可能である。例えば、一般的に使用される構成的プロモーターは、ヒトサイトメガロウイルス（ｈＣＭＶ）プロモーターであり、他のプロモーター、例えば、ＣＭＶ初期エンハンサー／ニワトリベータアクチン（ＣＡＧ）プロモーター、ＨＳＶ前初期プロモーター（例えばＩＣＰ４プロモーター）などもまた使用することができる。
【００４７】
また、特定の態様では、本発明のベクターのゲノムは、ＩＣＰ４７またはＩＣＰ２２遺伝子のプロモーターとともに、２倍体遺伝子ＩＣＰ０、ＩＣＰ３４．５、ＬＡＴおよびＩＣＰ４のそれぞれ１つのコピーを含んでなる内部反復（接合）領域の欠失を含む。他の態様では、接合部の欠失の代わりに、接合領域内または接合領域に隣接する遺伝子、特にＩＣＰ０、ＩＣＰ３４．５、および／またはＩＣＰ４７の発現は、これらの遺伝子を欠失させるかそうでなければそれらを制限された突然変異誘発に供し、それらの発現または産物の機能を妨げることによりサイレンシングすることができる。
【００４８】
ｒＨＳＶベクターは、ＨＳＶウイルス学分野の当業者に知られている標準的な方法によって作製することができる。しかしながら、ＨＳＶゲノムの操作および本発明のベクターの製造を容易にするために、本発明はまた、本発明のベクターゲノムを表す核酸も提供する。一側面において、この核酸は細菌系におけるＨＳＶの操作を容易にするｒＨＳＶベクターをコードする細菌人工染色体（「ＢＡＣ」）である。
【００４９】
本明細書に記載のｒＨＳＶは、イン・ビボまたはイン・ビトロ（ｉｎ  ｖｉｔｒｏ）に関係なく癌性細胞を標的とし、死滅させるために使用することができる。１つの適用で、ｒＨＳＶベクターは、例えば、ヒト患者においておよび／またはヒト腫瘍／細胞に対して（様々な哺乳動物種における異種移植片であり得る）治療上使用される。しかしながら、この方法はまた、動物、例えば、伴侶動物（例えば、ネコおよびイヌ）、または農業上重要な動物（例えば、ウシ、ヒツジ、ウマなど）、もしくは動物学上重要な動物にも使用され得る。本発明のベクターを処置に使用することができる例示的な腫瘍／癌性細胞としては、多形性膠芽腫（例えば、ＥＦＧＲ／ｖＩＩＩを標的とする）などの中枢神経系の癌、乳癌（例えば、ＨＥＲ２を標的とする）、頭頸部の扁平上皮細胞癌（ＨＮＳＣＣ、例えば、ＥＦＧＲ／ｖＩＩＩを標的とする）、前立腺癌（例えば、ＥＦＧＲ／ｖＩＩＩを標的とする）、および肺癌（ＮＳＣＬＣ)（例えば、ＥＦＧＲ／ｖＩＩＩを標的とする)が挙げられる。
【００５０】
一般に、ｒＨＳＶベクターは、細胞が好適な数のウイルス粒子に直面することを確実にするのに十分な量のウイルスを細胞集団に送達することができる場合に最も有用である。従って、本発明は、ｒＨＳＶベクターを含んでなる株、例えば、均質な株を提供する。ＨＳＶ株の調製および分析は、当技術分野で周知である。例えば、ウイルスストックは、ｒＨＳＶベクターで形質導入された細胞を含有するローラーボトルまたは多層セルスタックで製造することができる。ウイルスストックは、次に、ＮＹＣＯＤＥＮＺ（登録商標）勾配などの連続密度勾配媒体で精製し、アリコートに分け、必要になるまで保存することができる。ウイルスストックは、ウイルスの遺伝子型ならびにそれらを調製するために使用されるプロトコールおよび細胞株に大きく依存して、力価がかなり変動する。そのような株は、少なくとも約１０５プラーク形成単位（ｐｆｕ）、例えば、少なくとも約１０６ｐｆｕ、少なくとも約１０７ｐｆｕ、少なくとも約１０８ｐｆｕ、少なくとも約１０９ｐｆｕ、少なくとも約１０１０ｐｆｕ、または少なくとも約１０１１ｐｆｕのウイルス力価を有することが好ましい場合がある。
【００５１】
加えて、本発明は、本発明のｏＨＳＶベクターおよび担体、好ましくは、生理学上許容されるまたは薬学上許容される担体を含んでなる組成物を提供する。組成物の担体は、ベクターに好適な任意の担体であり得る。担体は一般に液体であるが、固体であってもよく、または液体成分と固体成分の組合せであってもよい。担体は、望ましくは、薬学上許容される（例えば、生理学上または薬理学上許容される）担体（例えば、賦形剤または希釈剤）である。薬学上許容される担体は周知であり、容易に入手可能である。担体の選択は、少なくとも部分的には、組成物を投与するために使用される特定のベクターおよび特定の方法により決定されるであろう。組成物はさらに、特に組成物および／またはその最終用途の安定性を高めるために、他の任意の好適な成分を含んでなり得る。よって、本発明の組成物の多種多様な好適な処方物が存在する。以下の処方物および方法は単なる例示であり、何ら限定するものではない。
【００５２】
非経口投与に好適な処方物には、抗酸化剤、緩衝剤、静菌剤、および処方物を意図されたレシピエントの血液と等張にする溶質を含むことができる水性および非水性の等張性無菌注射溶液、ならびに沈殿防止剤、可溶化剤、増粘剤、安定剤、および防腐剤を含むことができる水性および非水性の無菌懸濁液が含まれる。処方物は、アンプルおよびバイアルなどの単回投与または複数回投与用密封容器で提供することができ、使用直前に注射用の無菌液体賦形剤、例えば、水を添加するだけでよいフリーズドライ（凍結乾燥）状態で保存することができる。即時調合注射溶液および懸濁液は、前記の種類の無菌粉末、顆粒、および錠剤から調製することができる。
【００５３】
加えて、組成物は、追加の治療剤もしくは生物活性剤を含んでなってもよいし、または追加の治療剤もしくは生物活性剤をｒＨＳＶと併用投与してもよい。例えば、特定の適応症の処置に有用な治療因子が存在し得るかまたは併用投与され得る。イブプロフェンまたはステロイドなどの炎症を制御する因子は、ベクターのイン・ビボ（ｉｎ  ｖｉｖｏ）投与に関連する腫脹および炎症ならびに生理学的苦痛を軽減するために、組成物の一部としてもよいし、または併用投与することもできる。免疫系抑制剤は、ベクター自体に対する免疫応答または障害に関連する免疫応答を軽減するために、本配合方法で投与することができる。あるいは、免疫増強剤は、疾患、特に本発明のベクターが使用される癌または腫瘍に対する身体の自然防御を上方制御するために、組成物に含めるかまたは併用投与することができる。抗生物質、例えば、殺菌薬および／または殺真菌薬は、遺伝子導入手順および他の障害に関連する感染のリスクを低減するために、組成物に含めるかまたは併用投与することができる。
【００５４】
図３に示されるように、再標的化されたｒＨＳＶを調製した。ＨＳＶ−１ゲノムは、２つのユニーク領域（ユニークロング(unique long)［ＵＬ］、１０８ｋｂ、およびユニークショート(unique short)［ＵＳ］、１３ｋｂ）からなり、それぞれに大きな逆方向反復が隣接している。ｇＤプロモーターの制御下、変更されたｇＤ遺伝子の迅速な配向特異的挿入を可能にするためにｇＤコード配列の代わり組換えカセット（ＧＷ）が挿入された（ΔｇＤ：ＧＷ）。この骨格は、細菌での変異型ウイルスゲノムの生成および好適な哺乳動物細胞株のトランスフェクションによる感染性ウイルスの生産を可能にする細菌人工染色体（ＢＡＣ）配列を含む。この構築物はさらに、再標的化されたウイルス侵入を観察するためのユビキチンＣプロモーター（ＵｂＣｐ）駆動ｍＣｈｅｒｒｙリポーター遺伝子およびウイルス侵入促進変異ｇＢ遺伝子（ｇＢ：ＮＴまたはｇＢ：Ｎ／Ｔ；Uchida et al, A Double Mutation in Glycoprotein gB Compensates for Ineffective gD-Dependent Initiation of Herpes Simplex Virus Type 1 Infection. J Virol 2010: 12200-12209. DOI: 10.1128/JVI.01633-10; Uchida et al, Effective treatment of an orthotopic xenograft model of human glioblastoma using an EGFR-retargeted oncolytic herpes simplex virus. Mol Ther 21, 561-569, doi:10.1038/mt.2012.211 (2013)）を含む。ｇＤ  ｗｔは、シグナルペプチド（残基−２５〜−１）、ＨＶＥＭ結合部位、ネクチン−１結合部位（Ｙ３８を含む）、膜貫通領域（ＴＭ）、および細胞質テール領域（ＣＴ）を含むＫＯＳ株由来の野生型ｇＤ配列を含む。ｇＤ：ｓｃＥΔ３８のオープンリーディングフレームは、残基Ｙ３８を欠失させてネクチン−１結合部位を破壊し、ＨＶＥＭ結合部位の残基２〜２４を、ｒＨＳＶを効果的に再標的化する抗ＥＧＦＲ／ＥＧＦＲｖＩＩＩ  ｓｃＦｖ配列に置き換える（図７Ａおよび７Ｂ）。
【実施例】
【００５５】
ヒト集団のおよそ７０％はＨＳＶ血清反応陽性である。従って、本発明者らは、ＨＳＶ中和抗ｇＤ抗体によって認識されるエピトープの突然変異誘発によって再標的化されたｇＤのエピトープ構造を変えることで、モノクローナル、場合によってはポリクローナルの抗ｇＤ抗体による再標的化されたｇＤおよび再標的化されたウイルス認識が低下して、ウイルス中和（ＶＮ）血清に対するウイルス耐性が高まるかどうかを調べた。本発明者らは、ヒトＨＳＶ免疫血清の抗体特異性を模倣するモノクローナル抗体（ｍＡｂ）のパネルの、野生型ｇＤおよび再標的化されたｇＤの精製されたエクトドメインへの結合を比較し、再標的化されたｇＤに２つの顕著な野生型ｇＤエピトープが保持されていることを明らかにした。各エピトープの重要な残基を別々におよび一緒に置換することで以下の観察結果が得られた：両置換により（ｉ）それぞれのエピトープへのｍＡｂによる再標的化ｇＤ認識が遮断され、組合せでは、ｍＡｂ結合の全体的な減少が起こり；（ｉｉ）ウイルスフリー細胞間融合アッセイでは、各エピトープと反応するＶＮ  ｍＡｂによる融合阻害から保護され；（ｉｉｉ）これらのＶＮ  ｍＡｂに対する再標的化ＨＳＶ−１の耐性が高まった。さらなる共有エピトープを排除するための突然変異誘発により、中和抗体に対する再標的化ウイルスの感受性がさらに低下することが期待される。
【００５６】
材料および方法：
プラスミド
ウイルスゲノム修飾のためのｐＥＮＴＲベースのプラスミド：完全なｇＤ  ｗｔおよびｇＤ：ｓｃＥΔ３８コード配列（例えば、配列番号１をコードする）をプラスミドｐＥＮＴＲ１Ａのゲートウェイ（ＧＷ）適合のａｔｔＬ部位間にクローニングした。Ｐ５４Ｑ置換は、内部ＢｓｔＢＩ部位を導入することにより作成し、ＢｓｔＢＩ部位およびＢｓｐＥＩ部位に隣接するＣＣＧからＣＡＧへのコドン５４の変更を指定する合成ＤＮＡ断片（ＧｅｎＳｃｒｉｐｔ）を挿入した。同様に、Ｔ２１３Ｍ置換は、ＡＣＧからＡＴＧへのコドンＴ２１３Ｍの変更を指定する合成ＤＮＡ断片（ＧｅｎＳｃｒｉｐｔ）をＫａｓＩ部位およびＦｓｐＩ部位を用いて置き換えることにより導入した。
【００５７】
ｇＤエクトドメイン発現および精製のためのｐＶＴ―Ｂａｃベースのプラスミド：ｗｔ  ｇＤ、再標的化ｇＤおよび再標的化変異型ｇＤの成熟エクトドメインのコード配列（残基１〜３０６）を、ＳｍａＩ部位（下線）を導入したプライマーｐＶＴ  Ｂａｃ  ｇＤ：ｓｃＥＧＦＲ  Δ３８  ５’、ＣＣＡＧＣＣＣＧＧＧＣＡＡＡＧＡＣＡＴＴＣＴＡＡＴＧＡＣＣＣＡＡＴＣＴＣ（配列番号７）；およびＮｏｔＩ部位（下線）を導入したｐＶＴ  Ｂａｃ  ｇＤ：ｓｃＥＧＦＲ  Δ３８  ３’  ＧＧＴＡＴＧＣＧＧＣＣＧＣＴＴＡＡＴＧＧＴＡＡＧＧＣＧＴＣＧＣＧＧＣＧＴＣＣＴ（配列番号８）を用いてＰＣＲ増幅により単離した。それぞれのｐＥＮＴＲ組換え体を鋳型として使用し、ＰＣＲ産物をバキュロウイルス発現プラスミドｐＶＴ−Ｂａｃにクローニングし、可溶性タンパク質を作製した。
【００５８】
哺乳動物細胞におけるｇＤ発現のためのｐｃＤＮＡ３．１ベースのプラスミド：ｗｔ  ｇＤおよび再標的化ｇＤのコード配列を、それぞれのｐＥＮＴＲベースのプラスミドとのＬＲクロナーゼＩＩ（ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ、ウォルサム、ＭＡ）を介した組換えにより、ＣＭＶプロモーターとウシ成長ホルモン（ｂＧＨ）ポリアデニル化領域との間にゲートウェイ（ＧＷ）組換えカセットを含む改変ｐｃＤＮＡ  ３．１プラスミド（ｐｃＤＮＡ−ＧＷ；Reinhart et al., An HSV-based library screen identifies PP1α as  a negative TRPV1 regulator with analgesic activity in models of pain, Mol Ther 2016, 3:16040, doi:10.1038/mtm.2016.40）にクローニングした。
【００５９】
他のプラスミド：ｇＢ：ＮＴ発現プラスミドｐＣＡｇＢ：ＮＴは、Uchida, H., et al., Novel mutations in gB and gH circumvent the requirement for known gD Receptors in herpes simplex virus 1 entry and cell-to-cell spread. J Virol, 2013. 87(3):p. 1430-42に記載のとおりであった。ｇＨおよびｇＬ発現プラスミドｐＰＥＰ１００およびｐＰＥＰ１０１は、それぞれＰａｔｒｉｃｉａ  Ｓｐｅａｒ（Ｎｏｒｔｈｗｅｓｔｅｒｎ  Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ）から提供を受けたものであった。Ｊｏｈｎ  Ｏｈｌｆｅｓｔ（Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ  ｏｆ  Ｍｉｎｎｅｓｏｔａ）によって利用可能となったＰＴ３．５／ＣＭＶ−ＥＧＦＲｖＩＩＩは、Ａｄｄｇｅｎｅから購入した（プラスミド番号２０２８０）。ｐＣＸ４−ｂｓｒ−ＤＥＳＴ、ｐＣＬ−ｇａｇ−ｐｏｌおよびｐＨＣＭＶ−ＶＳＶＧは、梅澤明弘氏（ＮＲＩＣＨＤ、東京都、日本）からの寄贈物であった。ｐＣＸ４−ｂｓｒ−ＥＧＦＲｖＩＩＩは、プライマーＳａｌ１ＥＧＦＲｖＩＩＩＦ（ｇａｃｔａｇｔｃｇａｃＡＡＴＴＣＧＴＴＧＧＣＣＧＣＡＴＧＣＧＡ、配列番号９）およびＸｈｏ１ＥＧＦＲｖＩＩＩR（ｃａｃｔａｃｔｃｇａｇＴＣＡＴＧＣＴＣＣＡＡＴＡＡＡＴＴＣＡＣＴＧＣＴＴＴＧ、配列番号１０)を用いて、プラスミドＰＴ３．５／ＣＭＶ−ＥＧＦＲｖＩＩＩからＥＧＦＲｖＩＩＩコード配列のＰＣＲ増幅により構築した(Weisner, SM, et al. De novo induction of genetically engineered brain tumors in mice using plasmid DNA. Cancer Res. 2009 Jan 15;69(2):431-9. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-08-1800)。ＰＣＲ断片は、ＳａｌＩ−ＸｈｏＩ酵素消化とｐＥＮＴＲ１ａのＳａｌＩ部位とＸｈｏＩ部位の間へのクローニングによりｐＥＮＴＲ１ａ（ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ）に導入した。ＥＧＦＲｖＩＩＩコード配列は、ＬＲクロナーゼＩＩを介した組換えによりｐＥＮＴＲ１ａからｐＣＸ４−ｂｓｒ−ＤＥＳＴへと導入した。新規構築物は全て、ＤＮＡシーケンシングによって確認した。
【００６０】
ウイルス  細菌人工染色体（ＢＡＣ）のＧＷ適合ｇＤヌル（gD-null）ウイルス骨格ＫＮＴｃ−ΔｇＤ：ＧＷ（図３）は、本質的にはMiyagawa et al.に記載のとおりに、ｇＤコード配列を、近位の５’および３’ｇＤ非翻訳配列を標的とするプライマーを用いて増幅させたＧＷカセットＧＷ−Ｚｅｏで、Ｒｅｄを介して置換することにより、ＫＮＴｃ  ＢＡＣ(Miyagawa, Y., et al., Herpes simplex viral-vector design for efficient transduction of nonneuronal cells without cytotoxicity. Proc Natl Acad Sci U S A, 2015. 112(13): p. E1632-41)から誘導した。次に、Ｗｔ  ｇＤ遺伝子および再標的化ｇＤ遺伝子を、異なるｐＥＮＴＲベースｇＤプラスミドを用いたＧＷカセットのＬＲクロナーゼＩＩを介した組換えにより導入した。感染性ウイルスを、Ｖｅｒｏ細胞のトランスフェクションにより作製し、Ｖｅｒｏ細胞での標準的なプラークアッセイによって生物学的力価を決定した。全ての組換えウイルスは、ｇＤカセットのＤＮＡシーケンシングによって確認した。
【００６１】
細胞  ネズミ黒色腫Ｂ７８Ｈ１、Ｂ７８−Ｃ１０（ネクチン−１形質導入Ｂ７８Ｈ１；Miller, C.G., et al., Development of a Syngenic Murine B16 Cell Line-Derived Melanoma Susceptible to Destruction by Neuroattenuated HSV-1, MolTher 2001, 3:160-168, doi:10.1006/mthe.2000.0240）およびＢ７８／Ｃ細胞（ネクチン−１形質導入Ｂ７８Ｈ１)(Uchida, H., et al., Generation of herpesvirus entry mediator (HVEM)-restricted herpes simplex virus type 1 mutant viruses: resistance of HVEM-expressing cells and identification of mutations that rescue nectin-1 recognition. J Virol, 2009. 83(7): p. 2951-61)は、５％ウシ胎仔血清（ＦＢＳ；Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を添加したダルベッコの改変イーグル培地（ＤＭＥＭ；Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、カールズバッド、ＣＡ）で培養した。アフリカミドリザル腎臓Ｖｅｒｏ細胞（ＡＴＣＣ  ＣＣＬ−８１）は、５％ＦＢＳを添加したＤＭＥＭで培養した。Ｂ７８−ｖＩＩＩ細胞は、２９３Ｔ細胞（ＡＴＣＣ  ＣＲＬ−３２１６）とプラスミドｐＣＸ４−ｂｓｒ−ＥＧＦＲｖＩＩＩ、ｐＣＬ−ｇａｇ−ｐｏｌおよびｐＨＣＭＶ−ＶＳＶＧとの同時トランスフェクションにより作製したＥＧＦＲｖＩＩＩ発現組換えレトロウイルスにＢ７８Ｈ１細胞を感染させることにより樹立した。感染したＢ７８Ｈ１培養物をブラストサイジンに対する耐性について選択し、耐性プールを、抗ＥＧＦＲ  ｍＡｂ  Ｈ１１（ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ）を用いたウエスタンブロットおよびフローサイトメトリー分析によりＥＧＦＲｖＩＩＩＩ発現について試験した。バリデーションの後、ピッツバーグ大学マクゴーワン研究所のセルソーティング施設(the Cell Sorting Facility of the University of Pittsburgh McGowan Institute)で、発現レベルに基づいて細胞を選別し、限界希釈によって高発現画分からＢ７８−ｖＩＩＩと称されるクローンを単離した。種々のＢ７８−ｖＩＩＩクローンによるＥＧＦＲｖＩＩＩ発現を図４に示す。今回の研究では１つのクローン（１１Ｂ）を使用した。
【００６２】
ｇＤエクトドメイン作製およびｍＡｂ結合（ＳＰＲｉ）アッセイ  使用した全ての可溶性タンパク質はバキュロウイルスに感染した昆虫（Ｓｆ９）細胞で作製した。ＨＳＶ−１  ｇＤ（３０６ｔ）の全ての変異体は、Sisk WP, Bradley JD, Leipold RJ, et al. (High-level expression and purification of secreted forms of herpes simplex virus type 1 glycoprotein gD synthesized by baculovirus-infected insect cells. J Virol. 1994;68(2):766-775)に記載されているように、ＤＬ６免疫吸着カラムを使用して精製した。ｇＤ−ｍＡｂ結合の分析は、Cairns TM, Ditto NT, Lou H, et al. (Global sensing of the antigenic structure of herpes simplex virus gD using high-throughput array-based SPR imaging. PLoS Pathog. 2017;13(6):e1006430)に記載されているように、Ｗａｓａｔｃｈ  Ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｃｓ  ＣＦＭ／ＳＰＲｉシステムにおいて可溶性タンパク質を使用して行った。ＣＦＭ  ２を使用して、ＣＤＭ２００Ｍセンサーチップ（Ｘａｎｔｅｃ  ＧｍｂＨ）上にアミン結合ｍＡｂの４８スポットマイクロアレイを作出した。プリンターチップをＳＰＲイメージャー（ＩＢＩＳ  ＭＸ９６）に設置した後、チップをエタノールアミンで遮断し、システムをＰＢＳ−０．０１％Ｔｗｅｅｎ  ２０のランニングバッファーでプライミングした。ｍＡｂ結合は、プリントされたｍＡｂアレイに１００ｎＭの可溶性ｇＤを流すことにより評価し、再生には１ＭグリシンｐＨ２．０を使用した。
【００６３】
融合アッセイ  融合アッセイは、Atanasiu D et al., (Dual split protein-based fusion assay reveals that mutations to herpes simplex virus (HSV) glycoprotein gB alter the kinetics of cell-cell fusion induced by HSV entry glycoproteins. J Virol. 2013;87(21):11332-11345)およびSaw et al., (Using a split luciferase assay (SLA) to measure the kinetics of cell-cell fusion mediated by herpes simplex virus glycoproteins. Methods. 2015;90:68-75.)に記載されている。簡単に述べれば、５×１０４のＢ７８Ｈ１細胞（エフェクター細胞）を白色の細胞培養処理した９６ウェルプレートに播種した。４×１０５のＢ７８−ｖＩＩＩ細胞（標的細胞）を６ウェルプレートに播種した。翌日トランスフェクションを行った。３７５ｎｇのｇＢ：ＮＴ、各１２５ｎｇの示されたｇＤ構築物、ｗｔ  ｇＨ、ｗｔ  ｇＬ、およびＲｌｕｃ８（１−７）を含有するマスターミックスを３ウェルのエフェクター細胞に分割した。標的細胞を１μｇのＲｌｕｃ８（８−１１）プラスミド／ウェルでトランスフェクトした。トランスフェクションの４８時間後、エフェクター細胞を、融合培地（フェノールレッド不含ＤＭＥＭ、５０ｍＭ  ＨＥＰＥＳおよび５％ＦＢＳ)で希釈したＥｎｄｕＲｅｎ基質（Ｐｒｏｍｅｇａ）とともに３７℃で１時間プレインキュベートした。標的細胞をバーゼンで剥離し、融合培地に再懸濁し、エフェクター細胞に移した。融合は、標的細胞の添加によって引き起こした。陰性対照（ｇＢ：ＮＴ、ｇＨ、ｇＬでトランスフェクトされたエフェクター細胞、ｇＤではトランスフェクトされていない）も含めた。ルシフェラーゼ産生は、ＢｉｏＴｅｋプレートリーダーを使用して１時間ごとに測定し、６時間にわたってモニタリングした。
【００６４】
融合の遮断  トランスフェクトされたエフェクター細胞を、ＥｎｄｕＲｅｎ基質および最終容量８０μｌとして２０μｇ／ｍｌ  ｍＡｂで開始する示されたｇＤ  ｍＡｂの連続２倍希釈液の両方とともにプレインキュベートした。
【００６５】
侵入アッセイ  細胞をＭＯＩ＝１で一晩感染させ、Ｎｉｋｏｎ  Ｄｉａｐｈｏｔ蛍光顕微鏡（Ｎｉｋｏｎ、メルビル、ＮＹ）でｍＣｈｅｒｒｙ発現について画像化した。
【００６６】
リアルタイムＰＣＲ  ウイルスＤＮＡをＢｌｏｏｄ  ＡＮＤ  Ｔｉｓｓｕｅ  ＤＮＡ  Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎキット（Ｑｉａｇｅｎ、フェンロ、オランダ）を用いて単離した。次に、ＨＳＶ−１  ＵＬ５プラスミドＤＮＡ鋳型を用いて標準曲線を作成することによりゲノムコピー（ｇｃ）力価を決定した。ＵＬ５  ＤＮＡ配列を、プライマーＵＬ５Ｆ（ＡＣＧＡＧＣＧＴＧＧＴＧＣＧＧＴＣＡＴＧＧ)（配列番号１１）およびＵＬ５Ｒ（ＧＣＧＧＧＴＴＡＡＴＡＧＡＣＡＡＴＧＡＣＣＡＣＧ）（配列番号１２）を用いたＰＣＲにより増幅し、Ｚｅｒｏ  Ｂｌｕｎｔ  ＴＯＰＯ  ＰＣＲクローニングキット（ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ）を使用してｐＣＲ−Ｂｌｕｎｔ  ＩＩ−ＴＯＰＯベクターにクローニングした。特注のＦＡＭ−ＭＧＢ  Ｔａｑｍａｎプライマープローブセット（ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ）が、ＵＬ５遺伝子に対して設計した（ＵＬ５  ｑＰＣＲ  Ｆプライマー  ＡＴＧＣＣＧＴＡＧＴＣＧＧＣＧＴＴＴＡＴ（配列番号１３)；ＵＬ５  ｑＰＣＲ  Ｒプライマー  ＣＧＡＧＴＴＴＧＴＣＧＡＧＴＣＣＡＴＴＧＡＣ（配列番号１４)；ＵＬ５  ＦＡＭ  ＭＧＢプローブ  ＡＴＧＧＣＣＡＧＣＴＣＣＧＴＡＧ（配列番号１５))。９８〜１００％の効率で増幅された１０倍希釈系のＵＬ５プラスミド（３×１０２ｇｃのＨＳＶゲノムに相当する３×１０６ｇｃを表す）を作製することにより、各実験の標準曲線を作成した。反応条件：総ＰＣＲ量２０μｌ中、２μｌ  ＤＮＡ、１μｌの２０×ＵＬ５  ＦＡＭ−ＭＧＢ  Ｔａｑｍａｎプライマープローブセット、１０μｌ  ＴａｑＭａｎ  Ｆａｓｔ  Ａｄｖａｎｃｅｄ  Ｕｎｉｖｅｒｓａｌ  ＰＣＲ  Ｍａｓｔｅｒ  Ｍｉｘ（２×）。増幅条件：最初のサイクルでは５０℃で２分および９５℃で２０秒、続いて、９５℃で１秒および６０℃で２０秒を４０サイクル。サンプル、標準曲線、および陰性対照は、ＳｔｅｐＯｎｅ  Ｐｌｕｓ  リアルタイムＰＣＲシステム（Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）を使用し、ＭｉｃｒｏＡｍｐ  Ｏｐｔｉｃａｌ  ９６ウェル反応プレートにて３反復で一緒に実行した。
【００６７】
ウエスタンブロット  ｇｃベースの等量の精製ウイルスストックを１×Ｌａｅｍｍｌｉバッファー（Ｂｉｏ−Ｒａｄ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、ハーキュリーズ、ＣＡ）中で煮沸することにより変性させ、プレキャスト４〜１５％ＳＤＳ−ＰＡＧＥゲル（Ｂｉｏ−Ｒａｄ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ）上で電気泳動した。タンパク質をＰＶＤＦ膜に転写し（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ、ビルリカ、ＭＡ）、膜の水平切断切片を抗ＶＰ１６（Ｓａｎｔａ  Ｃｒｕｚ、ダラス、ＴＸ）、抗ｇＤ（ＤＬ６、Ｓａｎｔａ  Ｃｒｕｚ、ダラス、ＴＸ）または抗ｇＢ（Ｖｉｒｕｓｙｓ  Ｃｏｒｐ．、タネイタウン、ＭＤ）と反応させた後、ＨＲＰ結合ウサギ抗マウスＩｇＧ（Ａｂｃａｍ、ケンブリッジ、ＵＫ）とともにインキュベートとした。膜はＥＣＬ  Ｐｌｕｓ（ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ）で現像した。
【００６８】
ウイルス中和  組換えウイルス（５０〜７５ＰＦＵ／ウェル）を、ウイルス中和ｍＡｂ  ＭＣ５およびＭＣ２３とともにある範囲の希釈率でインキュベートした後にＶｅｒｏ細胞に感染させた。感染細胞の単層を高密度培地で覆い、４８時間後にＮｉｋｏｎ  Ｄｉａｐｈｏｔ蛍光顕微鏡でプラークを数えた。
【００６９】
結果
再標的化はｇＤの抗原構造の変化を誘導する
本発明者らは、精製ｇＤエクトドメインのＳＰＲｉ分析を使用して、ｗｔ  ｇＤおよび再標的化ｇＤのエピトープランドスケープを比較した。黄色グループのｍＡｂのいずれについても再標的化ｇＤへの結合は見られなかった（図５（Ａ））。これらのｍＡｂ（表１のグループＶＩＩ）は、ｗｔ  ｇＤのＨＶＥＭ結合Ｎ末端セグメントを認識するが、再標的化ｇＤではそれは本発明者らの抗ＥＧＦＲ／ＥＧＦＲｖＩＩＩ  ｓｃＦｖで大部分が置き換えられているため（表１）、このことは予想されていた。加えて、本発明者らは、緑色コミュニティのｍＡｂおよび黄褐色ｍＡｂ（褐色グループのＶＮメンバー）への結合の減少を見出し、赤色および青色グループのｍＡｂでもいくらかの減少があった。興味深いことに、褐色グループの全ての非ＶＮ  ｍＡｂは結合の増加を示した（様々な色のグループまたは「コミュニティ」について説明しているCairns et al. 2017および上記を参照）。これらの観察結果は、再標的化修飾がｇＤのコンフォメーションに広く影響することを示した。
【００７０】
ｍａｒ突然変異はさらに再標的化ｇＤの抗原構造を変化させ、特定の中和ｍＡｂの結合を減少させる
中和ｍＡｂの結合を排除するために、本発明者らは、再標的化ｇＤに置換変異Ｐ５４ＱおよびＴ２１３Ｍを作出した。ＳＰＲｉ結果に基づいて、Ｐ５４Ｑ（図５（Ｂ））は、ＭＣ５と、親の再標的化ｇＤへの結合の増加を示した別の青色ｍＡｂであるＨ１６２の結合を完全に無効にした（図５（Ａ））。この突然変異はまた、他の２つの青色ｍＡｂだけでなく緑色、褐色および黄褐色ｍＡｂの結合も減少させたが、あまり劇的なものではなかった（図５（Ｂ））。Ｔ２１３Ｍは、より特異的な効果があると思われ、特にｍＡｂの赤色グループであるＭＣ２３の結合は軽度から重度に損なわれたが、他のｍＡｂの結合には大きな変化はなかった（図５（Ｃ））。再標的化ｇＤの２つの突然変異が組み合わさると（Ｐ５４Ｑ／Ｔ２１３Ｍ）、Ｐ５４Ｑのみの結合プロファイルによく似ているが赤色ｍＡｂの結合が制限された相加作用が示唆された（図５（Ｄ））。まとめると、これらの結果は、合理的な置換変異の集積が、再標的化ｇＤの抗原組成を広く減少させることを示した。
【００７１】
ｍａｒ突然変異は再標的化ｇＤのウイルスフリー細胞間融合活性を低下させる
本発明者らは、哺乳動物構築物を使用して、糖タンパク質ｇＢ：ＮＴおよびｇＨ／ｇＬとともに、ＨＳＶ侵入受容体欠損マウス黒色腫Ｂ７８Ｈ１細胞の表面で全長親再標的化ｇＤおよび変異型再標的化ｇＤを発現させた。これらの細胞を安定にＥＧＦＲｖＩＩＩ形質導入されたＢ７８Ｈ１細胞（Ｂ７８−ｖＩＩＩ）とともにインキュベートした後、スプリットルシフェラーゼアッセイにより、１時間間隔で６時間にわたって細胞間融合活性を測定した。全ての再標的化構築物はトランスフェクト細胞とＥＧＦＲｖＩＩＩ発現細胞の間の融合を引き起こしたが、Ｐ５４ＱおよびＴ２１３Ｍ突然変異体は親のｇＤ：ｓｃＥΔ３８と比較して活性の５０％低下を示した（図６Ａ）。Ｐ５４Ｑ／Ｔ２１３Ｍ二重突然変異はさらに融合が損なわれ（約１５％活性）、これらの突然変異が細胞表面での再標的化ｇＤの提示を損なうかまたは改変ｇＤが融合カスケードを開始する能力を直接妨害したことを示した。
【００７２】
ｍａｒ突然変異は、細胞融合を阻害する部位特異的ｍＡｂの能力を遮断する
再標的化ｇＤによって開始された融合がｍＡｂ  ＭＣ５およびＭＣ２３感受性であるかどうかを決定するために、本発明者らは、４つの糖タンパク質構築物でトランスフェクトしたＢ７８Ｈ１細胞を、Ｂ７８−ｖＩＩＩ細胞の添加前に１時間、漸増濃度のいずれかのｍＡｂとともにインキュベートした。本発明者らは、親の再標的化ｇＤ構築物でトランスフェクトした細胞の融合活性が、ＭＣ５およびＭＣ２３の両方によって用量依存的に阻害されることを見出した（図６Ｂおよび６Ｃ）。しかしながら、Ｐ５４ＱおよびＴ２１３Ｍ突然変異は、それぞれＭＣ５およびＭＣ２３の阻害効果を低減または完全に遮断し、組み合わせた突然変異により、両方のｍＡｂに対する融合感受性が排除された（図６Ｂおよび６Ｃ）。
【００７３】
ウイルスの構築、増殖、および侵入特異性
ＭＣ２３およびＭＣ５は、それぞれｇＨ／ｇＬへの受容体（ネクチン−１）結合または受容体結合ｇＤシグナル伝達のいずれかを遮断することにより、融合経路の異なる段階で作用する思われるｗｔ  ＨＳＶ−１に対する中和抗体である。細胞融合効率への悪影響によって示唆されるように、２つのｍａｒ突然変異が再標的化ウイルス感染を減少させたかどうかを判断するために、本発明者らは、ＭＣ２３およびＭＣ５などの抗体からウイルスを保護しながら、上記のように、親の再標的化ｇＤまたはその単一もしくは二重変異誘導体を発現する組換えウイルスを作出した（図３）。ウイルスは、本発明者らの抗ＥＧＦＲ  ｓｃＦｖにより認識されるネクチン−１およびサルＥＧＦＲの両方を自然に発現するＶｅｒｏ細胞上で増殖させた。ＰＦＵ／μｌの生物学的力価はＶｅｒｏ細胞での標準的なプラークアッセイによって決定し、ゲノムコピー（ｇｃ）／μｌの物理的力価は、ＤＮＡヘリカーゼ−プライマーゼサブユニットをコードするＨＳＶ−１初期遺伝子ＵＬ５についてのリアルタイム定量的ＰＣＲ（ｑＰＣＲ）によって確定した。ウイルスストック間のｇｃ／ｐｆｕ比の比較によって、非改変再標的化ウイルスによる感染性ウイルスの産生がそのｍａｒ変異型対応物によるものよりも効率的であることが示唆された（表２）。
【００７４】
【表２】
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【００７５】
本発明者らはまた、Ｖｅｒｏ細胞を対照として使用して、ｇＤ受容体を発現しない細胞（Ｂ７８Ｈ１）、ヒトネクチン−１を発現する細胞（Ｂ７８／Ｃ）、またはＥＧＦＲｖＩＩＩを発現する細胞（Ｂ７８−ｖＩＩＩ）の感染による４つのウイルスの侵入特異性も試験した。感染後２４時間でのこれらのウイルスの共通ゲノム骨格からのｍＣｈｅｒｒｙ発現の画像は、全てがＢ７８−ｖＩＩＩ細胞およびＶｅｒｏ細胞に侵入することができたが、Ｂ７８Ｈ１細胞またはＢ７８／Ｃ細胞に侵入できたウイルスはないことを示し、侵入は霊長類ＥＧＦＲの細胞発現になお厳密に依存していたことが確認される（図７Ａ）。
【００７６】
Ｐ５４ＱおよびＰ５４Ｑ／Ｔ２１３Ｍ突然変異体は、ＭＯＩ＝１での侵入効率が親の再標的化ｇＤおよびＴ２１３Ｍ突然変異体と比較して低いと思われ（図７Ａ）、これは、この特定の実験に使用された種々のウイルスストック間の粒子（ｇｃ)／ＰＦＵ比の違いに関連している可能性がある（表２)。
【００７７】
再標的化ウイルス変異株間でのｇＤのウイルス粒子への取り込みの比較
本発明者らは、一次抗体としてＤＬ６を使用して、等しいｇｃのウエスタンブロット分析により精製ビリオンへのｇＤの取り込みを評価した。粒子含量の全体的な違いを制御するために、本発明者らはまた、ｇＢおよびテグメントタンパク質ＶＰ１６に対する抗体でのブロットも調べた。図７Ｂに示されている結果に例示されているように、再標的化によってｇＤ取り込みとｍａｒ突然変異が減少し、特に組み合わせた場合に、この効果が高まった。ｇＢレベルは、非標的ウイルス（ｇＤ  ｗｔ）を含む種々のウイルス間で劇的な違いはなく、ｇＤおよびｇＢ取り込みが互に独立していることを示す。これらの結果は、再標的化およびｍａｒ突然変異の両方が成熟ビリオンにおけるｇＤの存在量を制限することができ、改変タンパク質の細胞内プロセシング障害の結果、安定性が低下する、またはその両方である可能性が最も高いことを示した。
【００７８】
ｍａｒ突然変異はｍＡｂによるウイルス中和に対する耐性を高める
本発明者らは、再標的化ウイルスは、ｍＡｂ  ＭＣ５およびＭＣ２３による不活化に感受性であることを確認し、ｍａｒ突然変異がこれらのｍＡｂに対する保護を提供するかどうかを決定するために追加の中和アッセイを行った。Ｖｅｒｏ細胞の感染前に、ウイルスをＭＣ５またはＭＣ２３の連続希釈により９０分間インキュベートし、プラークを４８時間数えた。図８のパネルＡおよびＢは、各ｍａｒ突然変異により、再標的化ウイルスの耐性を、初期結合および融合阻害結果と一致するように増加させたことを示す。具体的には、Ｐ５４Ｑ突然変異体はｍＡｂ  ＭＣ５に対する耐性を示し、同様に、Ｔ２１３Ｍ突然変異体はＭＣ２３に耐性であった。さらに、Ｐ５４Ｑ／Ｔ２１３Ｍ二重突然変異体は両方のｍＡｂに対して耐性であった（図８（Ｃ、Ｄ））。
【００７９】
本発明者らは、他の２つのｍＡｂ、すなわち、ＭＣ５と同じグループのＨ１６２（青色）、およびＭＣ２３と同じグループのＬＰ２（赤色）により、ＶＮに対する二重突然変異再標的化ウイルスの耐性を調べることによって、これらの結果を拡大した。再標的化ｇＤへの結合が二重突然変異によって無効にされたＨ１６２（図５（Ｄ））は、再標的化ウイルスを中和したが、二重突然変異体は完全に保護された（図９（Ａ））。同様に、それらの突然変異はＬＰ２に対する耐性を増強させたが、より低いｍＡｂ希釈率である程度の感受性が残っていることは明らかであり（図９（Ｂ））、ＬＰ２の二重突然変異再標的化ｇＤへの残留結合が低いことと一致している（図５（Ｄ））。従って、ウイルス中和に対する突然変異の効果は青色および赤色ｍＡｂグループの単一の代表に限定されなかった。
【００８０】
ＳＰＲｉの結果は、ｗｔ  ｇＤと比較して、褐色グループの全てまたはほぼ全てのｍＡｂの再標的化ｇＤおよび二重突然変異再標的化ｇＤへの結合の増加を明らかに示した（図５（Ａ、Ｄ））ため、本発明者らは、これらの異なるバージョンｇＤを含有する褐色ｍＡｂのうち２つをウイルスの中和について試験した。これらの結果（図９（Ｃ、Ｄ））は、両方のｍＡｂが再標的化ウイルスの両方について中和しているのに対し、ｗｔ  ｇＤを発現する非再標的化ウイルスはいずれのｍＡｂに対しても実質的に感受性が低いことを示した。本発明者らは、これらのｍＡｂが、再標的化修飾によって引き起されるエピトープの利用可能性の増加によって中和活性を獲得し、Ｐ５４Ｑ/Ｔ２１３Ｍ二重突然変異はこの効果を低減または逆転させるためにこの領域の保護されたｗｔコンフォメーションを復元しないことを示唆する。
【００８１】
ヒト免疫血清は、一般に、褐色グループ（例えばＭＣ１４）のｍＡｂのｗｔ  ｇＤへの結合を遮断しない(Cairns et al, 2015)ことに注意すべきであり、ＨＳＶ免疫個体が再標的化ｇＤの褐色エピトープに対する抗体を含まないことを示唆している。
【００８２】
本発明を、特定の例示的な態様、分散可能な組成物、およびそれらの使用を参照して説明してきた。しかしながら、当業者には、本発明の趣旨および範囲から逸脱することなく、例示的な態様のいずれかの様々な置換、変更、または組合せを行い得ることが認識されるであろう。従って、本発明は、例示的な態様の説明によって限定されるのではなく、原出願の添付の特許請求の範囲によって限定される。
【図１Ａ】
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【図１Ｂ】
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【図１Ｃ】
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【図１Ｄ】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６Ａ】
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【図６Ｂ】
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【図６Ｃ】
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【図７Ａ】
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【図７Ｂ】
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【図８】
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【図９】
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【配列表】
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【国際調査報告】
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