(57)【要約】  本発明は、固相からの固相結合ポリペプチドの切断方法であって、ポリペプチドが結合した固相を、トリフルオロ酢酸および１，２−エタンジチオールから本質的になる組成物と約２３℃〜約２９℃の範囲内の温度で接触させることを含む、前記方法に関する。【特許請求の範囲】
【請求項１】
固相からの固相結合ポリペプチドの切断方法であって、ポリペプチドが結合した固相を、トリフルオロ酢酸および１，２−エタンジチオールから本質的になる組成物と約２３℃〜約２９℃の範囲内の温度で接触させることを含む、前記方法。
【請求項２】
固相はＲｉｎｋアミド樹脂を含む、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
ポリペプチドはリンカーによりＲｉｎｋアミド樹脂に結合している、請求項１または２に記載の方法。
【請求項４】
組成物は、約９５〜約９９％ｖ／ｖの量のトリフルオロ酢酸および約１〜約５％ｖ／ｖの量の１，２−エタンジチオールを含む、請求項１〜３のいずれか１項に記載の方法。
【請求項５】
組成物は、約９７％ｖ／ｖの量のトリフルオロ酢酸および約３％ｖ／ｖの量の１，２−エタンジチオールから本質的になる、請求項１〜４のいずれか１項に記載の方法。
【請求項６】
組成物は、ポリペプチドが結合した固相と約２５℃〜約２７℃の温度で、好ましくは約２６℃の温度で接触させられる、請求項１〜５のいずれか１項に記載の方法。
【請求項７】
組成物は、ポリペプチドが結合した固相と１〜８時間、好ましくは３〜５時間接触させられる、請求項１〜６のいずれか１項に記載の方法。
【請求項８】
ポリペプチドは、ＧＬＰ−１、そのアナログおよび誘導体、エキセンジン−３、そのアナログおよび誘導体、ならびにエキセンジン−４、そのアナログおよび誘導体から選択される、請求項１〜７のいずれか１項に記載の方法。
【請求項９】
ポリペプチドは、エキセンジン−４、リキシセナチド、アルビグルチド、デュラグルチドおよびセマグルチドから選択される、請求項８に記載の方法。
【請求項１０】
予め決定されたアミノ酸配列を含むポリペプチドの固相合成の方法であって、
（ａ）保護されていないＣ末端カルボキシル基および保護されたＮ末端アミノ基を含むアミノ酸ビルディングブロックのＣ末端をＲｉｎｋアミド樹脂のような固相にカップリングすること、
（ｂ）アミノ酸ビルディングブロックのＮ末端アミノ基を脱保護すること、
（ｃ）保護されていないＣ末端カルボキシル基および保護されたＮ末端アミノ基を含むアミノ酸ビルディングブロックのＣ末端を工程（ｂ）の保護されていないＮ末端アミノにカップリングすること、
（ｄ）場合により工程（ｂ）および（ｃ）を繰り返すこと、ならびに
（ｅ）請求項１〜９のいずれか１項に記載の方法により固相からポリペプチドを切断すること
を含む、前記方法。
【請求項１１】
ポリペプチドは、ＧＬＰ−１、そのアナログおよび誘導体、エキセンジン−３、そのアナログおよび誘導体、ならびにエキセンジン−４、そのアナログおよび誘導体から選択される、請求項１０に記載の方法。
【請求項１２】
ポリペプチドは、エキセンジン−４、リキシセナチド、アルビグルチド、デュラグルチドおよびセマグルチドから選択される、請求項１０または１１に記載の方法。
【請求項１３】
トリフルオロ酢酸および１，２−エタンジチオールから本質的になる組成物であって、９５〜９９％ｖ／ｖの量のトリフルオロ酢酸および１〜５％ｖ／ｖの量の１，２−エタンジチオールを含む、前記組成物。
【請求項１４】
約９７％ｖ／ｖの量のトリフルオロ酢酸および約３％ｖ／ｖの量の１，２−エタンジチオールから本質的になる、請求項１３に記載の組成物。
【請求項１５】
ポリペプチドの固相合成における請求項１３または１４に記載の組成物の使用であって、該組成物が、特に、固相からポリペプチドを切断するために使用される、前記使用。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、固相からの固相結合ポリペプチドの切断方法であって、ポリペプチドが結合した固相を、トリフルオロ酢酸および１，２−エタンジチオールから本質的になる組成物と約２３℃〜２９℃の範囲内の温度で接触させることを含む、前記方法に関する。
【０００２】
本発明はさらに、トリフルオロ酢酸および１，２−エタンジチオールから本質的になる組成物であって、９５〜９９％ｖ／ｖの量のトリフルオロ酢酸および１〜５％ｖ／ｖの量の１，２−エタンジチオールを含む、前記組成物に関する。
【０００３】
本発明はさらに、固相からの、固相に結合したペプチドの切断のための、トリフルオロ酢酸および１，２−エタンジチオールから本質的になる組成物の使用であって、該組成物が、９５〜９９％ｖ／ｖの量のトリフルオロ酢酸および１〜５％ｖ／ｖの量の１，２−エタンジチオールを含む、前記使用に関する。
【背景技術】
【０００４】
固相ペプチド合成の確立された方法は、合成されるアミノ酸鎖の予め決定されたＣ末端アミノ酸の、リンカーを介したポリマー担体へのカップリングを教示する。カップリングのために使用されるアミノ酸は、Ｎ末端が保護されたアミノ基を有するアミノ酸ビルディングブロックであり、前記保護基は一時的に連結されたＦｍｏｃ基である。カップリングの成功後、Ｆｍｏｃ保護基は切断され、次のＦｍｏｃ保護されたアミノ酸ビルディングブロックが、先行するアミノ酸ビルディングブロックの遊離アミノ官能基とカップリングされる。所望のアミノ酸鎖が合成された場合、それは固相から切断される。図１は、記載したアプローチの概要を与える。
【０００５】
参照によって本明細書に組み入れる特許文献１に記載のリキシセナチド（ＡＶＥ００１０またはＺＰ−１０としても公知）の固相合成は、それぞれ同じ様式での個々のＦｍｏｃ保護されたアミノ酸ビルディングブロックのカップリングを含む。
【０００６】
リキシセナチドは、配列ｄｅｓＰｒｏ３６エキセンジン−４（１〜３９）−Ｌｙｓ６−ＮＨ２を有する。この物質は、特許文献１の配列番号９３に開示されている（本出願の配列番号１および図２を参照）。エキセンジンは、血中グルコース濃度を低下させることができるペプチドの群である。エキセンジンは、ＧＬＰ−１（７〜３６）の配列とある特定の類似性を有する（５３％、非特許文献１）。エキセンジン−３およびエキセンジン−４は、エキセンジン受容体との相互作用によりモルモットの膵腺房細胞において細胞ｃＡＭＰ産生の増加を刺激する（非特許文献２）。エキセンジン−４とは対照的に、エキセンジン−３は、膵腺房細胞におけるアミラーゼ放出の増加をもたらす。エキセンジンはＧＬＰ−１アンタゴニストとして作用する。
【０００７】
グルカゴン様ペプチド１（ＧＬＰ−１）は、グルコースまたは脂肪の経口摂取後のインスリン応答を増進する内分泌ホルモンである。ＧＬＰ−１は、概しては、グルカゴン濃度を低下させ、胃内容排出を減速させ、（プロ）インスリン生合成を刺激し、インスリンへの感受性を増加させ、インスリン非依存性グリコーゲン生合成を刺激する（非特許文献３、非特許文献４、非特許文献５）。ヒトＧＬＰ−１は３７のアミノ酸残基を有する（非特許文献６、非特許文献７）。ＧＬＰ−１の活性断片としては、ＧＬＰ−１（７〜３６）およびＧＬＰ−１（７〜３７）が挙げられる。
【０００８】
エキセンジン−３、エキセンジン−４およびエキセンジンアゴニストは胃内容排出および運動性を低減するので、糖尿病の治療および高血糖症の予防のためにそれらを使用できることが示唆された（特許文献２および特許文献３）。
【０００９】
エキセンジンアナログは、天然エキセンジン−４配列のアミノ酸置換および／またはＣ末端切断により特徴付けることができる。そのようなエキセンジンアナログは、特許文献４、特許文献５および特許文献６に記載されている。
【００１０】
固相上、特に樹脂上に合成されたペプチドの切断は複雑な化学反応である。一方で、ペプチドは固相から切断されなければならない。他方で、アミノ酸ビルディングブロックの側鎖に存在する保護基を除去することができる。いまや液相中に存在する保護基および保護基断片は、依然としてペプチドと反応して望ましくない副生成物を形成できるので、いわゆる「スカベンジャー」により不活性化される。
【００１１】
Ｆｍｏｃ保護されたアミノ酸ビルディングブロックを用いて製造されている固相結合ペプチドは、トリフルオロ酢酸（ＴＦＡ）により固相から切断することができる。さらには、ＴＦＡは、アミノ酸ビルディングブロックの側鎖に存在し得る酸不安定性保護基を除去する。
【００１２】
固相結合ペプチドの切断のための先行技術の方法は、側鎖からの保護基の切断後に出現し、かつペプチド中のアミノ酸残基を共有結合的に改変する可能性がある高度に反応性の種を除去するためにＴＦＡおよびいくつかのスカベンジャー、例えば、３、４または５つのスカベンジャーを含有する組成物を用いる。非特許文献８は、２〜４つの異なるスカベンジャーを含むＴＦＡの組成物との「試薬Ｋ」（８２．５％のＴＦＡ、５％のフェノール、５％のＨ２Ｏ、５％のチオアニソール、２．５％の１，２−エタンジチオール）の比較を開示する。「試薬Ｋ」は、それぞれが２０〜５０のアミノ酸残基を含有し、かつＦｍｏｃベースの固相合成方法を用いて製造された１０の異なるペプチドにおいて切断および望ましくない副反応の阻害において最も効果的であることが見出された。試験は室温で行われた。
【００１３】
固相からの切断が不完全であるか、または側鎖の保護基が完全には除去されない場合、切断反応を繰り返すことができる。そのような追加の切断は、本明細書において「第２の切断」または「その後の切断」と称される。
【先行技術文献】
【特許文献】
【００１４】
【特許文献１】ＷＯ０１／０４１５６
【特許文献２】米国特許第５，４２４，２８６号
【特許文献３】ＷＯ９８／０５３５Ａ１
【特許文献４】ＷＯ９９／０７４０４
【特許文献５】ＷＯ９９／２５７２７
【特許文献６】ＷＯ９９／２５７２８
【非特許文献】
【００１５】
【非特許文献１】Ｇｏｋｅ  ｅｔ  ａｌ．、Ｊ．  Ｂｉｏｌ．  Ｃｈｅｍ．  ２６８、１９６５０〜５５頁
【非特許文献２】Ｒａｕｆｍａｎ、１９９６年、Ｒｅｇ．  Ｐｅｐｔｉｄｅｓ  ６１：１〜１８頁
【非特許文献３】Ｈｏｌｓｔ（１９９９年）、Ｃｕｒｒ．  Ｍｅｄ．  Ｃｈｅｍ．  ６：１００５頁
【非特許文献４】Ｎａｕｃｋ  ｅｔ  ａｌ．（１９９７年）、Ｅｘｐ．  Ｃｌｉｎ．  Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌ．  Ｄｉａｂｅｔｅｓ  １０５：１８７頁
【非特許文献５】Ｌｏｐｅｚ−Ｄｅｌｇａｄｏ  ｅｔ  ａｌ．（１９９８年）、Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌｏｇｙ  １３９：２８１１頁
【非特許文献６】Ｈｅｉｎｒｉｃｈ  ｅｔ  ａｌ．、Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌ．  １１５：２１７６頁（１９８４年）
【非特許文献７】Ｕｔｔｅｎｔｈａｌ  ｅｔ  ａｌ．、Ｊ．  Ｃｌｉｎ．  Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌ．  Ｍｅｔａｂｏｌ．（１９８５年）、６１：４７２頁
【非特許文献８】Ｋｉｎｇ  ｅｔ  ａｌ．、Ｉｎｔ．  Ｊ．  Ｐｅｐｔｉｄｅ  Ｐｒｏｔｅｉｎｅ  Ｒｅｓ：３６、１９９０年、２５５〜２６６頁
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１６】
本発明の課題は、ペプチド、特にＧＬＰ−１アゴニストの固相合成におけるペプチド収率の向上である。固相結合アミノ酸鎖へのアミノ酸ビルディングブロックのカップリングが完了した場合、アミノ酸鎖は固相から切断される。ペプチドを含有する固相は切断試薬と接触させられ、ペプチド、特にＧＬＰ−１アゴニストは固相から切断され、場合によりアミノ酸側鎖上に存在する保護基は除去される。
【課題を解決するための手段】
【００１７】
本発明者らは、反応温度および切断試薬の成分はペプチドの収率に有意に影響を及ぼすことを見出した。先行技術の切断方法を考慮して、本発明の切断方法は、
１．室温を上回る反応温度の増加、
２．切断試薬もしくは切断組成物中の成分の数の低減、または／および
３．場合により、「第２の切断」の省略
により特徴付けられる。
【００１８】
本発明者らは、固相からの固相結合ペプチド（特に、ＧＬＰ−１アゴニスト）の切断のための本発明の方法により、ペプチド（生ペプチド）の収率を５％増加させ、コストの低減および製造能力の増加を結果としてもたらすことができることを見出した。さらには、不純物プロファイルは有意に変化しなかった。
【００１９】
（比較用のＫｉｎｇのカクテルにおける５つの成分を考慮して）切断カクテル中の成分の数の低減により、分析的品質管理が向上し、コストが低減され、製造処理の間の取扱いが促進される。
【００２０】
第２の切断工程の省略はコストの低減に繋がり、製造処理の間の取扱いが促進される。ＴＦＡの量が低減され、それにより、ＴＦＡの除去が促進される。
【００２１】
本発明の第１の態様は、固相からの固相結合ポリペプチドの切断方法であって、ポリペプチドが結合した固相を、トリフルオロ酢酸および１，２−エタンジチオールから本質的になる組成物と約２３℃〜約２９℃の範囲内の温度で接触させることを含む、前記方法である。
【００２２】
固相合成の方法は当業者に公知である。好ましい態様では、カップリングサイクルは、合成される配列のＣ末端からＮ末端へと行われる。アミノ酸ビルディングブロックによるＣ末端からＮ末端への固相ペプチド合成において適用される反応条件は当業者に公知である。固相合成のために好適なアミノ酸ビルディングブロックは本明細書に記載されている。特に、アミノ酸ビルディングブロックのＮ末端アミノ基は、Ｆｍｏｃなどの塩基不安定性保護基により保護される。図１は、Ｆｍｏｃ保護されたアミノ酸ビルディングブロックを用いる合成を示す。
【００２３】
参照によって本明細書に組み入れるＷＯ０１／０４１５６Ａ１に記載のリキシセナチド（ＡＶＥ００１０またはＺＰ−１０としても公知）の固相合成は、それぞれ同じ様式での個々のＦｍｏｃ保護されたアミノ酸ビルディングブロックのカップリングを含む。
【００２４】
ペプチドの固相合成のために好適な全ての種類の固相を使用することができる。特に、樹脂を含む固相を使用することができる。樹脂はＲｉｎｋ樹脂（Ｒｉｎｋアミド樹脂）またはＴｅｎｔａｇｅｌ（登録商標）樹脂であり得る。好ましい態様では、固相樹脂はＲｉｎｋ樹脂またはＲｉｎｋアミド樹脂である。
【００２５】
特に、ポリペプチドは、リンカーにより樹脂、特にＲｉｎｋアミド樹脂に結合している。好適なリンカーは当業者に公知である。
【００２６】
本発明において、「約」または「おおよそ」という用語は、±１０％、±５％または±１％の範囲を意味する。
【００２７】
本発明において、「トリフルオロ酢酸および１，２−エタンジチオールから本質的になる」は、追加の化合物が小量で組成物中に存在できることを特に意味する。特に、トリフルオロ酢酸および１，２−エタンジチオールは、一般的な程度の純度において本発明の方法において使用される。そのため、トリフルオロ酢酸および１，２−エタンジチオールから本質的になる本発明の組成物は、トリフルオロ酢酸および１，２−エタンジチオール中に一般的に存在する不純物を含有することができる。本発明の組成物または本発明の方法におけるトリフルオロ酢酸および１，２−エタンジチオールのパーセンテージは、トリフルオロ酢酸または／および１，２−エタンジチオール中に存在してもよい不純物を含めて、合わせて１００％である。
【００２８】
本発明において、「小量で」は、トリフルオロ酢酸または／および１，２−エタンジチオールの不純物などの追加の化合物が、１％ｖ／ｖまで、０．５％ｖ／ｖまで、０．２％ｖ／ｖまで、０．１％ｖ／ｖまで、０．０５％ｖ／ｖまで、または０．０２％ｖ／ｖまでの量で本発明の組成物中または本発明の方法において使用される反応混合物中に存在できることを特に意味する。固体であり得る不純物が存在する場合、パーセンテージはｗ／ｖとして表される。
【００２９】
本発明の方法において、切断組成物は、特に約９５〜約９９％ｖ／ｖの量のトリフルオロ酢酸を含む。
【００３０】
好ましくは、切断組成物は、約９６〜約９８％ｖ／ｖの量、または約９７〜約９９％ｖ／ｖの量のトリフルオロ酢酸を含む。
【００３１】
より特には、組成物は、約９７％ｖ／ｖの量のトリフルオロ酢酸を含む。
【００３２】
本発明の方法において、切断組成物は、特に約１〜約５％ｖ／ｖの量の１，２−エタンジチオールを含む。
【００３３】
好ましくは、切断組成物は、約２〜約４％ｖ／ｖの量、または約１〜約３％ｖ／ｖの量の１，２−エタンジチオールを含む。
【００３４】
より特には、組成物は、約３％ｖ／ｖの量の１，２−エタンジチオールを含む。
【００３５】
本発明の方法において、好ましい切断組成物は、約９６〜約９８％ｖ／ｖの量のトリフルオロ酢酸から本質的になり、かつ、残余は約４〜約２％ｖ／ｖの量の１，２−エタンジチオールである。
【００３６】
本発明の方法において、好ましい切断組成物は、約９７〜約９９％ｖ／ｖの量のトリフルオロ酢酸から本質的になり、かつ、残余は約３〜約１％ｖ／ｖの量の１，２−エタンジチオールである。
【００３７】
本発明の方法において、別の好ましい切断組成物は、約９６．５〜約９７．５％ｖ／ｖの量のトリフルオロ酢酸から本質的になり、かつ、残余は約３．５〜約２．５％ｖ／ｖの量の１，２−エタンジチオールである。
【００３８】
本発明の方法において、別の好ましい組成物は、約９７％ｖ／ｖの量のトリフルオロ酢酸および約３％ｖ／ｖの量の１，２−エタンジチオールから本質的になる。
【００３９】
本明細書に記載の発明の方法において、別の好ましい組成物は、８．２５：０．２５（ｖ：ｖ）の比のトリフルオロ酢酸および１，２−エタンジチオールから本質的になる。
【００４０】
本発明の組成物は液体組成物であり得る。本発明の方法において、組成物は、固相上のペプチド１ｇ当たり約５〜１２ｍｌ、特に、固相上のペプチド１ｇ当たり７〜９ｍｌ、または固相上のペプチド１ｇ当たり約８．５ｍｌの量で使用することができる。「固相上のペプチド」または「樹脂上のペプチド」の重量は、本発明の組成物と接触させる、ペプチドの重量と固相または樹脂の重量との和を意味する。
【００４１】
より特には、固相上のペプチド１ｇ当たり８．２５ｍｌのＴＦＡおよび固相上のペプチド１ｇ当たり約０．２５ｍｌの１，２−エタンジチオールを本発明の方法において使用することができる。
【００４２】
本発明において、室温より高い温度での樹脂からのペプチドの切断は、ペプチド、特にＧＬＰ−１アゴニストの収率の増加を結果としてもたらすことが驚くべきことに見出された。
【００４３】
本発明の方法において、組成物は、ポリペプチドが結合した固相と、特に約２５℃〜約２７℃の温度、または約２６℃〜約２９℃の温度、より特には約２５．５℃〜約２６．５℃の温度、最も特には約２６℃の温度で接触させられる。
【００４４】
好ましくは、固相は、約９７％ｖ／ｖの量のトリフルオロ酢酸および約３％ｖ／ｖの量の１，２−エタンジチオールから本質的になる組成物と約２５℃〜約２７℃の温度で接触させられる。
【００４５】
固相が、約９７％ｖ／ｖの量のトリフルオロ酢酸および約３％ｖ／ｖの量の１，２−エタンジチオールから本質的になる組成物と約２６℃〜約２９℃の温度で接触させられることもまた本発明において好ましい。
【００４６】
より好ましくは、固相は、約９７％ｖ／ｖの量のトリフルオロ酢酸および約３％ｖ／ｖの量の１，２−エタンジチオールから本質的になる組成物と約２５．５℃〜約２６．５℃、好ましくは約２６℃の温度で接触させられる。
【００４７】
本発明の方法において、組成物は、ポリペプチドが結合した固相と１〜８時間、より特には４〜８時間接触させられる。組成物をポリペプチドが結合した固相と約４時間、約５時間、約６時間、約７、または約８時間接触させることが好ましい。
【００４８】
組成物をポリペプチドが結合した固相と３〜５時間、特に４時間接触させることが本発明の方法において最も好ましい。
【００４９】
より好ましくは、固相は、約９７％ｖ／ｖの量のトリフルオロ酢酸および約３％ｖ／ｖの量の１，２−エタンジチオールから本質的になる組成物と約２５．５℃〜約２６．５℃の温度で約４時間、好ましくは、約２６℃で約４時間接触させられる。
【００５０】
本発明のさらに別の態様では、第２の切断もその後の切断も行われない。この態様では、ポリペプチドの固相合成において、本発明の方法による切断は単一の工程において行われる。
【００５１】
本発明によるアミノ酸ビルディングブロックは、ペプチド合成の１つのサイクルにおいて１つまたはそれ以上のアミノ酸により合成されるアミノ酸鎖を伸長させる化合物である。好ましい態様では、本発明によるアミノ酸ビルディングブロックは、１、２、３、または４つのアミノ酸により合成されるアミノ酸鎖を伸長させる。特に好ましい態様では、本発明によるアミノ酸ビルディングブロックは、１または２つのアミノ酸により合成されるアミノ酸鎖を伸長させる。
【００５２】
本発明によるアミノ酸ビルディングブロックは、好ましくは、１つのアミノ酸（モノアミノ酸ビルディングブロック）または２、３、４もしくはより多くのアミノ酸を含むオリゴペプチドを含む。好ましい態様では、本発明によるアミノ酸ビルディングブロックは、１つのアミノ酸、または、例えばＰｒｏ−ＰｒｏもしくはＨｉｓ−Ｇｌｙなどの２つのアミノ酸を含むペプチドを含む。１つより多くのアミノ酸を含むアミノ酸ビルディングブロックのアミノ酸は、好ましくは、ペプチド結合により連結される。２つのアミノ酸を含む特に好ましいアミノ酸ビルディングブロックはＦｍｏｃ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−ＯＨおよびＦｍｏｃ−Ｈｉｓ（Ｔｒｔ）−Ｇｌｙ−ＯＨである。
【００５３】
リキシセナチドおよびエキセンジン−４の合成において位置１および２におけるＨｉｓおよびＧｌｙ用のアミノ酸ビルディングブロックの代わりにＦｍｏｃ−Ｈｉｓ（Ｔｒｔ）−Ｇｌｙ−ＯＨを使用することにより望ましくないＤｅｓＧｌｙ（２）−リキシセナチドの防止が可能となることが見出された。さらに、得られたリキシセナチドは、ラセミ化の結果としてもたらされるＤ−Ｈｉｓの値の増進を示さなかった。
【００５４】
Ｆｍｏｃ−Ｈｉｓ（Ｔｒｔ）−Ｇｌｙ−ＯＨは、例えば、
ｉ）Ｆｍｏｃ−Ｈｉｓ（Ｔｒｔ）−ＯＨおよびＨ−Ｇｌｙ−ＯＢｚｌトシレートを反応させる工程、および
ｉｉ）工程ｉ）において得られた生成物のベンジル基を切断してＦｍｏｃ−Ｈｉｓ（Ｔｒｔ）−Ｇｌｙ−ＯＨを得る工程
を含む方法により形成させることができる。
【００５５】
例示的な反応条件は実施例３に示される。
【００５６】
本発明によるアミノ酸ビルディングブロックは、所望の位置においてのみアミノ酸鎖を選択的に伸長させるために好適な改変を含むことができる。アミノ酸ビルディングブロックの改変は、Ｎ末端、Ｃ末端および／またはアミノ酸の側鎖において行うことができる。
【００５７】
アミノ酸ビルディングブロックのＮ末端アミノ官能基（すなわち、カップリングの成功後にアミノ酸鎖のＮ末端にあるアミノ基）を保護するために、ペプチドの合成、特にポリペプチドの固相合成のために一般的に使用される全ての種類の保護基を使用することができる。それらの種類の好適な一時的な保護基は当業者に公知である。好ましい態様では、アルカリ性環境中で不安定な保護基を使用することができる。好ましい態様では、アミノ酸ビルディングブロックのＮ末端アミノ基はＦｍｏｃ保護基により保護される。
【００５８】
アミノ酸ビルディングブロックのＣ末端カルボキシ基は、好ましくは、保護されないままである。
【００５９】
本発明によるアミノ酸ビルディングブロックは、互いに独立して、Ｄ−アミノ酸およびグリシン、Ｌ−アミノ酸およびグリシンならびに／またはこれらの組合せを含むことができる。好ましい態様では、本発明によるアミノ酸ビルディングブロックのアミノ酸は、互いに独立してＬ−アミノ酸およびグリシンから選択される。好ましい態様では、アミノ酸は、α−アミノ酸から選択することができる。さらなる態様では、アミノ酸は、ポリペプチド中に天然に存在するアミノ酸などの天然に存在するアミノ酸から選択することができる。別の態様では、本発明によるアミノ酸ビルディングブロックは、Ｍｅｔ（Ｏ）（メチオニンスルホキシドもしくはメチオニンスルホン）、Ｔｒｐ（Ｏ２）（Ｎ−ホルミルキヌレニン）および／またはｉｓｏＡｓｐ（β−アスパラギン酸もしくはイソアスパラギン酸）などの人工アミノ酸を含むことができる。いっそうさらなる好ましい態様では、アミノ酸は、特にそれぞれＤ型またはそれぞれＬ型の、Ｓｅｒ、Ｔｈｒ、Ｔｒｐ、Ｌｙｓ、Ａｌａ、Ａｓｎ、Ａｓｐ、Ｖａｌ、Ｍｅｔ、Ｐｈｅ、Ｉｌｅ、Ｐｒｏ、Ａｒｇ、Ｇｌｕ、Ｇｌｎ、Ｌｅｕ、およびＧｌｙから選択される。特に好ましい態様では、本発明によるアミノ酸ビルディングブロックは、特にそれぞれＤ型またはそれぞれＬ型の、Ａｒｇ、Ｇｌｕ、Ｇｌｎ、Ｌｅｕ、およびＧｌｙから選択されるアミノ酸を含む。
【００６０】
特に、アミノ酸は、互いに独立して選択され、例えば、特にそれぞれＤ型またはそれぞれＬ型の、Ｓｅｒ、Ｔｈｒ、Ｔｒｐ、Ｌｙｓ、Ａｌａ、Ａｓｎ、Ａｓｐ、Ｖａｌ、Ｍｅｔ、Ｐｈｅ、Ｉｌｅ、Ｐｒｏ、Ａｒｇ、Ｇｌｕ、Ｇｌｎ、Ｌｅｕ、およびＧｌｙから独立して選択される。
【００６１】
一態様では、本発明によるアミノ酸ビルディングブロックの少なくとも１つの側鎖は、さらなる保護基により保護することができる。さらなる保護基は、好ましくは、Ｎ末端保護基に対して直交性である。前記側鎖のための好適な保護基は当業者に公知である。好適な保護基の例は、例えば、Ｔｒｔ、Ｂｏｃ、Ｂｚｌ、Ｐｄｆ、ｔＢｕおよびＯｔＢｕであり、これらは特定の側鎖の保護のために使用することができる。当業者は、いずれの側鎖がいずれの種類の保護基により保護される必要があるかを認識している。一態様では、実施例１．４に記載されるようなアミノ酸ビルディングブロックを使用することができる。アミノ酸ビルディングブロックが１つより多くの側鎖を含む場合、これらの側鎖の１つまたはそれ以上を、当業者に公知であるような好適な保護基から独立して選択される保護基により保護することができる。
【００６２】
合成されるポリペプチドは、予め決定された配列を有するそれぞれ可能なペプチドであってもよい。好ましい態様では、合成されるポリペプチドはＧＬＰ−１アゴニストである。ポリペプチドはＧＬＰ−１アゴニストであり得、ＧＬＰ−１アゴニストは、ＧＬＰ−１ならびにそのアナログおよび誘導体、エキセンジン−３ならびにそのアナログおよび誘導体、エキセンジン−４ならびにそのアナログおよび誘導体からなる群から選択される。好ましい態様では、ポリペプチドは、エキセンジン−４およびリキシセナチドからなる群から選択される。最も好ましいペプチドはリキシセナチドである。さらなる好ましい態様では、ポリペプチドは、アルビグルチド、デュラグルチドおよびセマグルチドから選択される。
【００６３】
エキセンジン−３、エキセンジン−３のアナログおよび誘導体、エキセンジン−４ならびにエキセンジン−４のアナログおよび誘導体は、ＷＯ０１／０４１５６、ＷＯ９８／３０２３１、米国特許第５，４２４，２８６号、ＥＰ第９９６１００４３．４号およびＷＯ２００４／００５３４２に記載されている。これらの文献を参照によって本明細書に組み入れる。これらの文献に記載のエキセンジン−３、エキセンジン−４ならびにこれらのアナログおよび誘導体は、本発明による方法により合成することができる一方、追加の改変を合成の完了後に行うことができる。
【００６４】
リキシセナチド（配列番号１、図２）、エキセンジン−４（配列番号２、図２）およびエキセンジン−３（配列番号３、図２）は、高い程度の配列同一性を有する。リキシセナチドおよびエキセンジン−４の配列は位置１〜３７において同一である。エキセンジン−４の配列１〜３９は３９の位置のうちの３７（９４％）においてエキセンジン−３と同一である（Ｊ．  Ｂｉｏｌ．  Ｃｈｅｍ．  ２６７、１９９２年、７４０２〜７４０５頁）。配列位置は、本明細書においてリキシセナチドまたはエキセンジン−４の配列に関して与えられる。これらの配列から開始して、当業者は、他の配列中の対応する位置を容易に決定することができる。
【００６５】
エキセンジン−３ならびに／またはエキセンジン−４のアナログおよび誘導体は、特に、改変されたアミノ酸配列を含む。一態様では、アミノ酸配列は、１つまたはそれ以上のアミノ酸（例えば、エキセンジン−４中のｄｅｓＰｒｏ３６、ｄｅｓＰｒｏ３７、ｄｅｓＡｓｐ２８、ｄｅｓＭｅｔ（Ｏ１４）およびエキセンジン−３中の各々の位置）の欠失により改変される。一態様では、１つまたはそれ以上のアミノ酸を置換することができる一方（例えば、エキセンジン−４中のＭｅｔ（Ｏ１４）、Ｔｒｐ（Ｏ２）２５、ｉｓｏＡｓｐ２８、Ａｓｐ２８、Ｐｒｏ３８およびエキセンジン−３中の各々の位置）、天然に存在するまたは人工アミノ酸、例えば、Ｍｅｔ（Ｏ）（メチオニンスルホキシドもしくはメチオニンスルホン）、Ｔｒｐ（Ｏ２）（Ｎ−ホルミルキヌレニン）および／またはｉｓｏＡｓｐ（β−アスパラギン酸もしくはイソアスパラギン酸）などを導入することができる。人工アミノ酸は、合成サイクルにおいて各々のアミノ酸ビルディングブロックを使用することにより配列に容易に導入することができる。
【００６６】
一態様では、ポリペプチドのＣ末端および／またはＮ末端は、例えば、−（Ｌｙｓ）−、−（Ｌｙｓ）２−、−（Ｌｙｓ）３−、−（Ｌｙｓ）４−、−（Ｌｙｓ）５−、−（Ｌｙｓ）６−、および−Ａｓｎ−（Ｇｌｕ）５−などの配列の付加により、改変することができる。好ましい態様では、追加のアミノ酸配列は、例えば、−（Ｌｙｓ）４−、−（Ｌｙｓ）５−、−（Ｌｙｓ）６−および−Ａｓｎ−（Ｇｌｕ）５−である。Ｃ末端カルボキシ基は、好ましくは、酸アミン基（−ＮＨ２）である。場合により、Ｃ末端および／またはＮ末端の改変は、本発明による方法の合成サイクルの完了後に別々の工程において行われる。
【００６７】
本発明による方法の合成サイクルの完了後、合成されたポリペプチドの薬学的に許容される塩を、場合により追加の工程において形成することができる。ポリペプチドの薬学的に許容される塩の形成方法は当業者に公知である。好ましい薬学的に許容される塩は、例えば、酢酸塩である。
【００６８】
さらなる好ましいＧＬＰ−１アゴニストは、
Ｈ−ｄｅｓＰｒｏ３６−エキセンジン−４−Ｌｙｓ６−ＮＨ２、
Ｈ−ｄｅｓ（Ｐｒｏ３６，３７）−エキセンジン−４−Ｌｙｓ４−ＮＨ２、
Ｈ−ｄｅｓ（Ｐｒｏ３６，３７）−エキセンジン−４−Ｌｙｓ５−ＮＨ２、およびこれらの薬学的に許容される塩
からなる群から選択されるエキセンジン−４のアナログである。
【００６９】
さらなる好ましいＧＬＰ−１アゴニストは、
ｄｅｓＰｒｏ３６［Ａｓｐ２８］エキセンジン−４（１〜３９）、
ｄｅｓＰｒｏ３６［ＩｓｏＡｓｐ２８］エキセンジン−４（１〜３９）、
ｄｅｓＰｒｏ３６［Ｍｅｔ（Ｏ）１４，Ａｓｐ２８］エキセンジン−４（１〜３９），
ｄｅｓＰｒｏ３６［Ｍｅｔ（Ｏ）１４，ＩｓｏＡｓｐ２８］エキセンジン−４（１〜３９）、
ｄｅｓＰｒｏ３６［Ｔｒｐ（Ｏ２）２５，Ａｓｐ２８］エキセンジン−２（１〜３９）、
ｄｅｓＰｒｏ３６［Ｔｒｐ（Ｏ２）２５，ＩｓｏＡｓｐ２８］エキセンジン−２（１〜３９）、
ｄｅｓＰｒｏ３６［Ｍｅｔ（Ｏ）１４Ｔｒｐ（Ｏ２）２５，Ａｓｐ２８］エキセンジン−４（１〜３９）、
ｄｅｓＰｒｏ３６［Ｍｅｔ（Ｏ）１４Ｔｒｐ（Ｏ２）２５，ＩｓｏＡｓｐ２８］エキセンジン−４（１〜３９）、およびこれらの薬学的に許容される塩
からなる群から選択されるエキセンジン−４のアナログである。
【００７０】
さらなる好ましいＧＬＰ−１アゴニストは、Ｃ末端において−Ｌｙｓ６−ＮＨ２ペプチドでさらに改変された、上記のような群から選択されるエキセンジン−４のアナログである。
【００７１】
さらなる好ましいＧＬＰ−１アゴニストは、
Ｈ−（Ｌｙｓ）６−ｄｅｓＰｒｏ３６［Ａｓｐ２８］エキセンジン−４（１〜３９）−Ｌｙｓ６−ＮＨ２、
ｄｅｓＡｓｐ２８Ｐｒｏ３６，Ｐｒｏ３７，Ｐｒｏ３８エキセンジン−４（１〜３９）−ＮＨ２、
Ｈ−（Ｌｙｓ）６−ｄｅｓＰｒｏ３６，Ｐｒｏ３７，Ｐｒｏ３８［Ａｓｐ２８］エキセンジン−４（１〜３９）−ＮＨ２、
Ｈ−Ａｓｎ−（Ｇｌｕ）５ｄｅｓＰｒｏ３６，Ｐｒｏ３７，Ｐｒｏ３８［Ａｓｐ２８］エキセンジン−４（１〜３９）−ＮＨ２、
ｄｅｓＰｒｏ３６，Ｐｒｏ３７，Ｐｒｏ３８［Ａｓｐ２８］エキセンジン−４（１〜３９）−（Ｌｙｓ）６−ＮＨ２、
Ｈ−（Ｌｙｓ）６−ｄｅｓＰｒｏ３６，Ｐｒｏ３７，Ｐｒｏ３８［Ａｓｐ２８］エキセンジン−４（１〜３９）−（Ｌｙｓ）６−ＮＨ２、
Ｈ−Ａｓｎ−（Ｇｌｕ）５−ｄｅｓＰｒｏ３６，Ｐｒｏ３７，Ｐｒｏ３８［Ａｓｐ２８］エキセンジン−４（１〜３９）−（Ｌｙｓ）６−ＮＨ２、
Ｈ−（Ｌｙｓ）６−ｄｅｓＰｒｏ３６［Ｔｒｐ（Ｏ２）２５，Ａｓｐ２８］エキセンジン−４（１〜３９）−Ｌｙｓ６−ＮＨ２、
Ｈ−ｄｅｓＡｓｐ２８  Ｐｒｏ３６，Ｐｒｏ３７，Ｐｒｏ３８［Ｔｒｐ（Ｏ２）２５］エキセンジン−４（１〜３９）−ＮＨ２、
Ｈ−（Ｌｙｓ）６−ｄｅｓＰｒｏ３６，Ｐｒｏ３７，Ｐｒｏ３８［Ｔｒｐ（Ｏ２）２５，Ａｓｐ２８］エキセンジン−４（１〜３９）−ＮＨ２、
Ｈ−Ａｓｎ−（Ｇｌｕ）５−ｄｅｓＰｒｏ３６，Ｐｒｏ３７，Ｐｒｏ３８［Ｔｒｐ（Ｏ２）２５，Ａｓｐ２８］エキセンジン−４（１〜３９）−ＮＨ２、
ｄｅｓＰｒｏ３６，Ｐｒｏ３７，Ｐｒｏ３８［Ｔｒｐ（Ｏ２）２５，Ａｓｐ２８］エキセンジン−４（１〜３９）−（Ｌｙｓ）６−ＮＨ２、
Ｈ−（Ｌｙｓ）６−ｄｅｓＰｒｏ３６，Ｐｒｏ３７，Ｐｒｏ３８［Ｔｒｐ（Ｏ２）２５，Ａｓｐ２８］エキセンジン−４（１〜３９）−（Ｌｙｓ）６−ＮＨ２、
Ｈ−Ａｓｎ−（Ｇｌｕ）５−ｄｅｓＰｒｏ３６，Ｐｒｏ３７，Ｐｒｏ３８［Ｔｒｐ（Ｏ２）２５，Ａｓｐ２８］エキセンジン−４（１〜３９）−（Ｌｙｓ）６−ＮＨ２、
Ｈ−（Ｌｙｓ）６−ｄｅｓＰｒｏ３６［Ｍｅｔ（Ｏ）１４，Ａｓｐ２８］エキセンジン−４（１〜３９）−Ｌｙｓ６−ＮＨ２、
ｄｅｓＭｅｔ（Ｏ）１４  Ａｓｐ２８  Ｐｒｏ３６，Ｐｒｏ３７，Ｐｒｏ３８エキセンジン−４（１〜３９）−ＮＨ２、
Ｈ−（Ｌｙｓ）６−ｄｅｓＰｒｏ３６，Ｐｒｏ３７，Ｐｒｏ３８［Ｍｅｔ（Ｏ）１４，Ａｓｐ２８］エキセンジン−４（１〜３９）−ＮＨ２、
Ｈ−Ａｓｎ−（Ｇｌｕ）５−ｄｅｓＰｒｏ３６，Ｐｒｏ３７，Ｐｒｏ３８［Ｍｅｔ（Ｏ）１４，Ａｓｐ２８］エキセンジン−４（１〜３９）−ＮＨ２、
ｄｅｓＰｒｏ３６，Ｐｒｏ３７，Ｐｒｏ３８［Ｍｅｔ（Ｏ）１４，Ａｓｐ２８］エキセンジン−４（１〜３９）−（Ｌｙｓ）６−ＮＨ２、
Ｈ−（Ｌｙｓ）６−ｄｅｓＰｒｏ３６，Ｐｒｏ３７，Ｐｒｏ３８［Ｍｅｔ（Ｏ）１４，Ａｓｐ２８］エキセンジン−４（１〜３９）−Ｌｙｓ６−ＮＨ２、
Ｈ−Ａｓｎ−（Ｇｌｕ）５−ｄｅｓＰｒｏ３６，Ｐｒｏ３７，Ｐｒｏ３８［Ｍｅｔ（Ｏ）１４，Ａｓｐ２８］エキセンジン−４（１〜３９）−（Ｌｙｓ）６−ＮＨ２、
Ｈ−（Ｌｙｓ）６−ｄｅｓＰｒｏ３６［Ｍｅｔ（Ｏ）１４、Ｔｒｐ（Ｏ２）２５，Ａｓｐ２８］エキセンジン−４（１〜３９）−Ｌｙｓ６−ＮＨ２、
ｄｅｓＡｓｐ２８Ｐｒｏ３６，Ｐｒｏ３７，Ｐｒｏ３８［Ｍｅｔ（Ｏ）１４、Ｔｒｐ（Ｏ２）２５］エキセンジン−４（１〜３９）−ＮＨ２、
Ｈ−（Ｌｙｓ）６−ｄｅｓＰｒｏ３６，Ｐｒｏ３７，Ｐｒｏ３８［Ｍｅｔ（Ｏ）１４、Ｔｒｐ（Ｏ２）２５，Ａｓｐ２８］エキセンジン−４（１〜３９）−ＮＨ２、
Ｈ−Ａｓｎ−（Ｇｌｕ）５−ｄｅｓＰｒｏ３６，Ｐｒｏ３７，Ｐｒｏ３８［Ｍｅｔ（Ｏ）１４，Ａｓｐ２８］エキセンジン−４（１〜３９）−ＮＨ２、
ｄｅｓＰｒｏ３６，Ｐｒｏ３７，Ｐｒｏ３８［Ｍｅｔ（Ｏ）１４、Ｔｒｐ（Ｏ２）２５，Ａｓｐ２８］エキセンジン−４（１〜３９）−（Ｌｙｓ）６−ＮＨ２、
Ｈ−（Ｌｙｓ）６−ｄｅｓＰｒｏ３６，Ｐｒｏ３７，Ｐｒｏ３８［Ｍｅｔ（Ｏ）１４，Ｔｒｐ（Ｏ２）２５，Ａｓｐ２８］エキセンジン−４（１〜３９）−（Ｌｙｓ）６−ＮＨ２、
Ｈ−Ａｓｎ−（Ｇｌｕ）５−ｄｅｓＰｒｏ３６，Ｐｒｏ３７，Ｐｒｏ３８［Ｍｅｔ（Ｏ）１４，Ｔｒｐ（Ｏ２）２５，Ａｓｐ２８］エキセンジン−４（１〜３９）−（Ｌｙｓ）６−ＮＨ２、およびこれらの薬学的に許容される塩
からなる群から選択されるエキセンジン−４のアナログである。
【００７２】
さらなる態様では、好ましいＧＬＰ−１アゴニストは、ＧＬＰ−１（特に、ＧＬＰ−１（７〜３６）アミド、配列番号４）、Ａｒｇ３４，Ｌｙｓ２６（Ｎε（γ−グルタミル（Ｎαヘキサデカノイル）））ＧＬＰ−１（７〜３７）（リラグルチド）、アルビグルチド、デュラグルチド、セマグルチドおよびこれらの薬学的に許容される塩からなる群から選択される。特に、好ましいＧＬＰ−１アゴニストは、アルビグルチド、デュラグルチド、セマグルチドおよびこれらの薬学的に許容される塩からなる群から選択される。
【００７３】
さらなる好ましいＧＬＰ−１アゴニストは、リキシセナチド（配列番号１）の他に、その薬学的に許容される塩である。
【００７４】
本発明の好ましい態様は、固相からの固相結合ポリペプチドの切断方法であって、ポリペプチドが結合した固相を、トリフルオロ酢酸および１，２−エタンジチオールから本質的になる組成物と約２３℃〜約２９℃の範囲内の温度で接触させることを含み、ポリペプチドはリキシセナチドである、前記方法に関する。
【００７５】
本発明の別の好ましい態様は、固相からの固相結合ポリペプチドの切断方法であって、ポリペプチドが結合した固相を、トリフルオロ酢酸および１，２−エタンジチオールから本質的になる組成物と約２３℃〜約２９℃の範囲内の温度で接触させることを含み、固相はＲｉｎｋアミド樹脂であり、かつ、ポリペプチドはリキシセナチドである、前記方法に関する。
【００７６】
本発明の別の好ましい態様は、固相からの固相結合ポリペプチドの切断方法であって、ポリペプチドが結合した固相を、トリフルオロ酢酸および１，２−エタンジチオールから本質的になる組成物と約２６℃〜約２９℃の温度で接触させることを含む、前記方法に関する。
【００７７】
本発明の別の好ましい態様は、固相からの固相結合ポリペプチドの切断方法であって、ポリペプチドが結合した固相を、トリフルオロ酢酸および１，２−エタンジチオールから本質的になる組成物と約２６℃〜約２９℃の範囲内の温度で接触させることを含み、ポリペプチドはリキシセナチドである、前記方法に関する。
【００７８】
本発明の別の好ましい態様は、固相からの固相結合ポリペプチドの切断方法であって、ポリペプチドが結合した固相を、トリフルオロ酢酸および１，２−エタンジチオールから本質的になる組成物と約２６℃〜約２９℃の範囲内の温度で接触させることを含み、固相はＲｉｎｋアミド樹脂であり、かつ、ポリペプチドはリキシセナチドである、前記方法に関する。
【００７９】
本発明の別の好ましい態様は、固相からの固相結合ポリペプチドの切断方法であって、ポリペプチドが結合した固相を、トリフルオロ酢酸および１，２−エタンジチオールから本質的になる組成物と２６℃の温度で接触させることを含む、前記方法に関する。
【００８０】
本発明の別の好ましい態様は、固相からの固相結合ポリペプチドの切断方法であって、ポリペプチドが結合した固相を、トリフルオロ酢酸および１，２−エタンジチオールから本質的になる組成物と２６℃の温度で接触させることを含み、ポリペプチドはリキシセナチドである、前記方法に関する。
【００８１】
本発明の別の好ましい態様は、固相からの固相結合ポリペプチドの切断方法であって、ポリペプチドが結合した固相を、トリフルオロ酢酸および１，２−エタンジチオールから本質的になる組成物と２６℃の温度で接触させることを含み、固相はＲｉｎｋアミド樹脂であり、かつ、ポリペプチドはリキシセナチドである、前記方法に関する。
【００８２】
本発明のさらに別の好ましい態様は、固相からの固相結合ポリペプチドの切断方法であって、ポリペプチドが結合した固相を、９７％の量のトリフルオロ酢酸および３％の量の１，２−エタンジチオールから本質的になる組成物と約２３℃〜約２９℃の範囲内の温度で接触させることを含む、前記方法に関する。
【００８３】
本発明のさらに別の好ましい態様は、固相からの固相結合ポリペプチドの切断方法であって、ポリペプチドが結合した固相を、９７％の量のトリフルオロ酢酸および３％の量の１，２−エタンジチオールから本質的になる組成物と約２３℃〜約２９℃の範囲内の温度で接触させることを含み、ポリペプチドはリキシセナチドである、前記方法に関する。
【００８４】
本発明のさらに別の好ましい態様は、固相からの固相結合ポリペプチドの切断方法であって、ポリペプチドが結合した固相を、９７％の量のトリフルオロ酢酸および３％の量の１，２−エタンジチオールから本質的になる組成物と約２３℃〜約２９℃の範囲内の温度で接触させることを含み、固相はＲｉｎｋアミド樹脂であり、かつ、ポリペプチドはリキシセナチドである、前記方法に関する。
【００８５】
本発明のさらに別の好ましい態様は、固相からの固相結合ポリペプチドの切断方法であって、ポリペプチドが結合した固相を、９７％の量のトリフルオロ酢酸および３％の量の１，２−エタンジチオールから本質的になる組成物と約２６℃〜約２９℃の範囲内の温度で接触させることを含む、前記方法に関する。
【００８６】
本発明のさらに別の好ましい態様は、固相からの固相結合ポリペプチドの切断方法であって、ポリペプチドが結合した固相を、９７％の量のトリフルオロ酢酸および３％の量の１，２−エタンジチオールから本質的になる組成物と約２６℃〜約２９℃の範囲内の温度で接触させることを含み、ポリペプチドはリキシセナチドである、前記方法に関する。
【００８７】
本発明のさらに別の好ましい態様は、固相からの固相結合ポリペプチドの切断方法であって、ポリペプチドが結合した固相を、９７％の量のトリフルオロ酢酸および３％の量の１，２−エタンジチオールから本質的になる組成物と約２６℃〜約２９℃の範囲内の温度で接触させることを含み、固相はＲｉｎｋアミド樹脂であり、かつ、ポリペプチドはリキシセナチドである、前記方法に関する。
【００８８】
本発明のさらに別の好ましい態様は、固相からの固相結合ポリペプチドの切断方法であって、ポリペプチドが結合した固相を、９７％の量のトリフルオロ酢酸および３％の量の１，２−エタンジチオールから本質的になる組成物と２６℃の温度で接触させることを含む、前記方法に関する。
【００８９】
本発明のさらに別の好ましい態様は、固相からの固相結合ポリペプチドの切断方法であって、ポリペプチドが結合した固相を、９７％の量のトリフルオロ酢酸および３％の量の１，２−エタンジチオールから本質的になる組成物と２６℃の温度で接触させることを含み、ポリペプチドはリキシセナチドである、前記方法に関する。
【００９０】
本発明のさらに別の好ましい態様は、固相からの固相結合ポリペプチドの切断方法であって、ポリペプチドが結合した固相を、９７％の量のトリフルオロ酢酸および３％の量の１，２−エタンジチオールから本質的になる組成物と２６℃の温度で接触させることを含み、固相はＲｉｎｋアミド樹脂であり、かつ、ポリペプチドはリキシセナチドである、前記方法に関する。
【００９１】
本発明のさらに別の態様は、予め決定されたアミノ酸配列を含むポリペプチドの固相合成の方法であって、
（ａ）保護されていないＣ末端カルボキシル基および保護されたＮ末端アミノ基を含むアミノ酸ビルディングブロックのＣ末端をＲｉｎｋアミド樹脂のような固相にカップリングすること、
（ｂ）アミノ酸ビルディングブロックのＮ末端アミノ基を脱保護すること、
（ｃ）保護されていないＣ末端カルボキシル基および保護されたＮ末端アミノ基を含むアミノ酸ビルディングブロックのＣ末端を工程（ｂ）の保護されていないＮ末端アミノにカップリングすること、
（ｄ）場合により工程（ｂ）および（ｃ）を繰り返すこと、ならびに
（ｅ）本明細書に記載されるような発明の方法により固相からポリペプチドを切断すること
を含む、前記方法である。
【００９２】
本発明の固相合成の方法において好適なアミノ酸ビルディングブロックは本明細書に記載されている。
【００９３】
本発明の固相合成の方法において、第２のまたはその後の切断工程は省略することができる。ポリペプチドの固相合成において、切断工程（ｅ）は、好ましくは、１回行われる。
【００９４】
工程（ａ）または／および（ｃ）におけるカップリング、ならびに工程（ｂ）による脱保護のための好適な条件は当業者に公知である。
【００９５】
合成されるペプチドは、本明細書に記載されるようなペプチドであり得る。固相合成の方法において、ポリペプチドは、本明細書に記載されるような、ＧＬＰ−１、そのアナログおよび誘導体、エキセンジン−３、そのアナログおよび誘導体、ならびにエキセンジン−４、そのアナログおよび誘導体から選択することができる。特に、ポリペプチドは、エキセンジン−４およびリキシセナチドから選択される。好ましいポリペプチドはリキシセナチドである。ポリペプチドはまた、アルビグルチド、デュラグルチドおよびセマグルチドから選択することができる。
【００９６】
一態様では、合成されるポリペプチドは、好ましくは、リキシセナチドまたはエキセンジン−４であり、アミノ酸ビルディングブロックＡｒｇ（２０）、Ｇｌｕ（１７）、Ｇｌｎ（１３）、Ｌｅｕ（１０）または／およびＧｌｙ（４）のカップリング後、キャップ付加工程を工程（ｃ）と工程（ｄ）との間に行うことができる。本発明によれば、「キャップ付加」は、これらの分子において鎖伸長を終了させるための、アミノ酸ビルディングブロックがカップリングされていない遊離の保護されていないＮ末端アミノ基のアセチル化である。そのようなキャップ付加された分子は、精製の間に生成物から除去することができる。キャップ付加は図１に記載されている。
【００９７】
特に、本発明による「キャップ付加」は、工程（ｃ）において得られた生成物を、キャップ付加化合物を含むキャップ付加試薬またはキャップ付加組成物と接触させ、キャップ付加化合物が、工程（ｃ）においてビルディングブロックがカップリングされなかったアミノ酸鎖の保護されていないＮ末端アミノ基に結合することを意味する。
【００９８】
一態様では、キャップ付加組成物は、０．５〜５％ｖ／ｖの濃度の無水酢酸を含む。好ましい態様では、無水酢酸の濃度は、１〜３％ｖ／ｖ、より好ましくは２％ｖ／ｖである。
【００９９】
一態様では、キャップ付加組成物はジイソプロピルエチルアミンを含み、ジイソプロピルエチルアミンの濃度は０．２〜２％ｖ／ｖであり得、好ましくは０．５〜２％ｖ／ｖである。ジイソプロピルエチルアミンの好ましい濃度は１％ｖ／ｖである。
【０１００】
一態様では、キャップ付加組成物はジイソプロピルエチルアミンおよび無水酢酸を含み、ジイソプロピルエチルアミンの濃度は０．２〜２％ｖ／ｖであり得、好ましくは０．５〜２％ｖ／ｖであり、かつ、無水酢酸の濃度は０．５〜５％ｖ／ｖであり得、好ましくは１〜３％ｖ／ｖである。
【０１０１】
キャップ付加組成物は２％ｖ／ｖの無水酢酸および１％ｖ／ｖのジイソプロピルエチルアミンを含むことが好ましい。
【０１０２】
キャップ付加は、５〜１５分間、特に約１０分間行うことができる。
【０１０３】
好ましいキャップ付加は、２％ｖ／ｖの無水酢酸および１％ｖ／ｖのジイソプロピルエチルアミンを含むキャップ付加試薬またはキャップ付加組成物を用いて約１０分間行われる。
【０１０４】
本発明によるキャップ付加反応は、室温で行うことができる。本発明による室温は、おおよそ１５〜２５℃の温度、おおよそ２０〜２３℃の範囲内の温度、おおよそ１９〜２１℃の範囲内の温度またはおおよそ２０℃の温度に関する。
【０１０５】
キャップ付加工程において使用される溶媒は、好ましくは、アセトニトリル、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）、メタノール、塩化メチレン、Ｎ，Ｎ−ジメチルアセトアミド（ＤＭＡ）、Ｎ，Ｎ−ジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）、Ｎ−メチルピロリドン、またはこれらの混合物などの極性非水性溶媒である。好ましい態様では、キャップ付加工程において使用される溶媒はＤＭＦである。
【０１０６】
本発明のさらに別の態様は、トリフルオロ酢酸および１，２−エタンジチオールから本質的になる組成物であって、９５〜９９％ｖ／ｖの量のトリフルオロ酢酸および１〜５％ｖ／ｖの量の１，２−エタンジチオールを含む、前記組成物である。
【０１０７】
より特には、本発明の組成物は、約９７％ｖ／ｖの量のトリフルオロ酢酸および約３％ｖ／ｖの量の１，２−エタンジチオールから本質的になる。
【０１０８】
別の好ましい組成物は、８．２５：０．２５（ｖ：ｖ）の比のトリフルオロ酢酸および１，２−エタンジチオールから本質的になる。
【０１０９】
組成物のさらなる構成は、本発明の方法との関連で上記される。特に、本発明の組成物は、本明細書に記載されるように固相からポリペプチドを切断するために、本明細書に記載されるようにポリペプチドの固相合成において使用することができる。
【０１１０】
略語
Ａｃ（Ｎ１〜Ｎ２）：位置Ｎ１〜Ｎ２のポリペプチドのＮ末端がアセチル化された断片。
Ｈ（Ｎ１〜Ｎ２）または（Ｎ１〜Ｎ２）：遊離のＮ末端アミノ官能基を含む位置Ｎ１〜Ｎ２のポリペプチドの断片。
Ｆｍｏｃ（Ｎ１〜Ｎ２）：保護基がＦｍｏｃである、保護されたＮ末端アミノ官能基を含む位置Ｎ１〜Ｎ２のポリペプチドの断片。
（Ｎ−１）不純物：ある特定の位置においてビルディングブロックを欠いている、ペプチド合成の間の意図しないペプチドの出現に関する。意図する合成ポリペプチドが長さＮを有する場合、不純物はＮ−１の長さを有する。（Ｎ−１）不純物の出現はキャップ付加により防止される。
Ｆｍｏｃ  フルオレニルメトキシカルボニル
Ｂｏｃ  ｔｅｒｔ−ブトキシカルボニル
Ｂｚｌ  ベンジル
Ｐｂｆ  ２，２，５，７，８−ペンタメチルジヒドロベンゾフラン−５−スルホニル
ｔＢｕ  ｔｅｒｔ−ブチル
ＯｔＢｕ  Ｏ−ｔｅｒｔ−ブチル
Ｔｒｔ  トリチル
ＤＩＰＥ  ジイソプロピルエーテル
【０１１１】
本発明は、以下の図面および実施例によりさらに特徴付けられる。
【図面の簡単な説明】
【０１１２】
【図１】ペプチドの固相合成。
【図２】リキシセナチド（配列番号１）、エキセンジン−４（配列番号２）、エキセンジン−３（配列番号３）およびＧＬＰ−１（ＧＬＰ−１（７〜３６）アミド、配列番号４）の配列。
【図３】リキシセナチドの合成の間のアセチル化された誤った配列の出現。Ｆｍｏｃ−Ａｒｇ（２０）−ＯＨのカップリングおよびその後のキャップ付加／Ｆｍｏｃの切断。位置２１（Ｌｅｕ）を合成から省略したことに留意すべきである。（１）Ｆｍｏｃ−（２２〜４４）＋Ａｒｇ、（２）（２２〜４４）＋Ａｒｇ、（３）Ａｃ（２２〜４４）＋Ａｒｇ、（４）Ｆｍｏｃ−（２２〜４４）＋Ａｒｇ＋Ｖａｌ。データは、アセチル化された断片がキャップ付加工程の間に既に形成されているが、誤った位置がアセチル化されている［Ａｃ（２２〜２４）＋ＡｒｇがＡｒｇのキャップ付加の間に既に出現している］ことを示す。
【図４】リキシセナチドの合成の間のアセチル化された誤った配列の出現。Ｆｍｏｃ−Ｇｌｎ（１３）−ＯＨのカップリングおよびその後のキャップ付加／Ｆｍｏｃの切断。（１）Ａｃ（１４〜４４）、（２）Ｆｍｏｃ（１３〜４４）、（３）Ａｃ（１３〜４４）、（４）（１３〜４４）、（５）（１４〜４４）。データは、アセチル化された断片がキャップ付加工程の間に既に形成されているが、誤った位置がアセチル化されている（Ａｃ（１３〜４４））ことを示す。
【図５】リキシセナチドの合成の間のアセチル化された誤った配列の出現。Ｆｍｏｃ−Ｌｙｓ（１２）−ＯＨのカップリングおよびその後のキャップ付加／Ｆｍｏｃの切断。（１）Ａｃ（１３〜４４）、（２）Ｆｍｏｃ（１２〜４４）、（３）Ａｃ（１２〜４４）、（４）（１２〜４４）。データは、アセチル化された断片がキャップ付加工程の間に既に形成されているが、誤った位置がアセチル化されている（Ａｃ（１２〜４４））ことを示す。
【図６】ＨＰＬＣクロマトグラフィーによるＤＭＦ中の１０％の無水酢酸および５％ｖ／ｖのＤＩＰＥＡを用いた２０分間のキャップ付加（Ａ）と比較した本発明によるキャップ付加の方法（Ｂ）を使用したリキシセナチドの合成の比較。（Ｃ）（Ａ）および（Ｂ）のＨＰＬＣクロマトグラムのオーバーラップ。
【図７】リキシセナチド（未加工生成物）のＨＰＬＣ。赤：望ましくないアセチル化された副生成物。
【図８】キャップ付加カクテルおよび温度に依存したＡｃ（３６〜４４）の形成。
【図９】キャップ付加カクテルおよび温度に依存したＡｃ（２３〜４４）の形成。
【図１０】キャップ付加カクテルおよび温度に依存したＡｃ（２１〜４４）の形成。
【図１１】キャップ付加カクテルおよび温度に依存したＡｃ（１９〜４４）の形成。
【図１２】キャップ付加カクテルおよび温度に依存したＡｃ（１８〜４４）の形成。
【図１３】キャップ付加カクテルおよび温度に依存したＡｃ（１５〜４４）の形成。
【図１４】キャップ付加カクテルおよび温度に依存したＡｃ（１２〜４４）の形成。
【図１５】キャップ付加カクテルおよび温度に依存したＡｃ（８〜４４）の形成。
【図１６】キャップ付加カクテルおよび温度に依存したＡｃ（６〜４４）の形成。
【図１７】１５℃、室温（ＲＴ）および３０℃でのリキシセナチド合成における９つの異なる位置でのキャップ付加におけるＡｃ（Ｘ〜４４）含有量の比較。
【図１８】１５℃、室温（ＲＴ）および３０℃でのリキシセナチド合成における９つの異なる位置でのキャップ付加におけるＡｃ［（Ｘ−１）〜４４］含有量の比較。
【図１９】異なるキャップ付加条件下でのリキシセナチド合成における９つの異なる位置での異なる条件下でのキャップ付加、またはキャップ付加なしでのＡｃ（Ｘ〜４４）含有量の比較。
【図２０】異なるキャップ付加条件下でのリキシセナチド合成における９つの異なる位置での異なる条件下でのキャップ付加、またはキャップ付加なしでのＡｃ［（Ｘ−１）〜４４］含有量の比較。
【発明を実施するための形態】
【実施例１】
【０１１３】
リキシセナチドの合成
活性物質リキシセナチドは、４４アミノ酸から構成されるポリペプチドアミドであり、酢酸塩は対イオンとして機能する。
【０１１４】
１文字表記において、リキシセナチドのアミノ酸配列は以下の通りである：
Ｈ−Ｇ−Ｅ−Ｇ−Ｔ−Ｆ−Ｔ−Ｓ−Ｄ−Ｌ−Ｓ−Ｋ−Ｑ−Ｍ−Ｅ−Ｅ−Ｅ−Ａ−Ｖ−Ｒ−Ｌ−Ｆ−ｌ−Ｅ−Ｗ−Ｌ−Ｋ−Ｎ−Ｇ−Ｇ−Ｐ−Ｓ−Ｓ−Ｇ−Ａ−Ｐ−Ｐ−Ｓ−Ｋ−Ｋ−Ｋ−Ｋ−Ｋ−Ｋ−ＮＨ２
【０１１５】
Ｃ末端、Ｌｙｓ−４４から開始する直鎖固相合成によりペプチド鎖を構築した。
【０１１６】
合成の方法はＦｍｏｃ固相ペプチド合成であり、ペプチドアミドを得るためにＲｉｎｋアミド樹脂を使用した。反応はＤＭＦ中で室温で実行した。反応の間に、主にＤＭＦを用いて、洗浄を繰り返し実行し、中間洗浄工程の１つはイソプロパノールを用いて実行した。
【０１１７】
ポリマー支持体上のリキシセナチドの合成は、以下の工程に分けることができる：
・Ｒｉｎｋ樹脂への第１のＦｍｏｃ−アミノ酸（Ｆｍｏｃ−Ｌｙｓ（Ｂｏｃ）−ＯＨ）のカップリング
・未反応アミノ基のキャップ付加
・一時的な保護基Ｆｍｏｃの切断
・さらなるＦｍｏｃ−アミノ酸またはＦｍｏｃ−ジペプチドのカップリング
・未反応アミノ基のキャップ付加
・最終のＦｍｏｃの切断
・樹脂からのリキシセナチドの切断および側鎖保護基の同時の除去
【０１１８】
合成サイクルを図１に示す。
【０１１９】
１．１  Ｒｉｎｋ樹脂への第１のＦｍｏｃ−アミノ酸（Ｆｍｏｃ−Ｌｙｓ（Ｂｏｃ）−ＯＨ）のカップリング
合成を開始する前に、Ｒｉｎｋアミド樹脂をＤＭＦ中で膨潤させた。膨潤は、２〜１５時間実行した。その後に、ＤＭＦ中の２５％のピペリジンを使用して一時的な保護基ＦｍｏｃをＲｉｎｋアミド樹脂から切断した。この切断は、５分および２０分の切断時間で２回行った。Ｆｍｏｃの切断後、ＤＭＦを用いて繰り返しでおよびイソプロパノールを用いて１回、樹脂を洗浄した。
【０１２０】
樹脂をロードするために、第１のＦｍｏｃ−アミノ酸、Ｆｍｏｃ−Ｌｙｓ（Ｂｏｃ）−ＯＨのカップリングを過剰量の２．４当量において実行した。ＨＯＢｔ水和物、ＨＢＴＵおよびＤＩＰＥＡはカップリング試薬として働いた。カップリング時間は６０〜１２０分であった。
【０１２１】
Ｒｉｎｋ樹脂をＦｍｏｃ−Ｌｙｓ（Ｂｏｃ）−ＯＨと完全にロードするために、カップリング試薬ＨＯＢｔ水和物およびＤＩＣを用いてさらなるローディングを実行した。カップリング時間は６〜１８時間であった。工程１．１を実行しながら混合物を撹拌した。キャップ付加をその後に実行した。
【０１２２】
１．２  未反応アミノ基のキャップ付加
樹脂の不完全なローディングの帰結は、まだ未反応のアミノ基が樹脂上に見出されることである。無水酢酸／ＤＩＰＥＡ／ＤＭＦ（１０：５：８５）の混合物を加えることにより、これらを不活性化し、それゆえさらなるカップリングのために利用不可能とした。撹拌しながらキャップ付加混合物を樹脂上に２０分間残留させた。残留する遊離アミノ基をアシル化した。その後に、ＤＭＦを用いて繰り返しでおよびイソプロパノールを用いて１回、樹脂を洗浄した。
【０１２３】
リキシセナチド合成の少なくとも５つの位置における本発明によるキャップ付加方法は実施例４および５に記載される。
【０１２４】
１．３．一時的な保護基Ｆｍｏｃの切断
ＤＭＦ中の２５％のピペリジンを使用して一時的な保護基Ｆｍｏｃを切断した。この切断は、５分および２０分の切断時間で２回行った。Ｆｍｏｃの切断後、ＤＭＦを用いて繰り返しでおよびイソプロパノールを用いて１回、樹脂を洗浄した。
【０１２５】
１．４  さらなるＦｍｏｃ−アミノ酸またはＦｍｏｃ−ジペプチドのカップリング
次のＦｍｏｃ−アミノ酸を樹脂上の脱保護されたアミノ基にカップリングした。カップリングは、異なる当量においてＤＭＦ中で実行した。カップリング時間は２時間〜１８時間であった。ＨＯＢｔ／ＤＩＣ、そしてまたＨＢＴＵ／ＤＩＰＥＡをカップリング試薬として使用した。
【０１２６】
以下の誘導体をＦｍｏｃ−アミノ酸として使用した：
・Ｆｍｏｃ−Ｌｙｓ（Ｂｏｃ）−ＯＨ
・Ｆｍｏｃ−Ｓｅｒ（ｔＢｕ）−ＯＨ
・Ｆｍｏｃ−Ｐｒｏ−ＯＨ
・Ｆｍｏｃ−Ａｌａ−ＯＨ×Ｈ２Ｏ
・Ｆｍｏｃ−Ｇｌｙ−ＯＨ
・Ｆｍｏｃ−Ａｓｎ（Ｔｒｔ）−ＯＨ
・Ｆｍｏｃ−Ｌｅｕ−ＯＨ
・Ｆｍｏｃ−Ｔｒｐ（Ｂｏｃ）−ＯＨ
・Ｆｍｏｃ−Ｇｌｕ（ＯｔＢｕ）−ＯＨ×Ｈ２Ｏ
・Ｆｍｏｃ−Ｉｌｅ−ＯＨ
・Ｆｍｏｃ−Ｐｈｅ−ＯＨ
・Ｆｍｏｃ−Ａｒｇ（Ｐｂｆ）−ＯＨ
・Ｆｍｏｃ−Ｖａｌ−ＯＨ
・Ｆｍｏｃ−Ｍｅｔ−ＯＨ
・Ｆｍｏｃ−Ｇｌｎ（Ｔｒｔ）−ＯＨ
・Ｆｍｏｃ−Ａｓｐ（ＯｔＢｕ）−ＯＨ
・Ｆｍｏｃ−Ｔｈｒ（ｔＢｕ）−ＯＨ
・Ｆｍｏｃ−Ｈｉｓ（Ｔｒｔ）−ＯＨ
【０１２７】
代替的に、Ｆｍｏｃ−ジペプチドを使用することも可能であった（本発明による方法）：
・Ｆｍｏｃ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−ＯＨ（ＣＡＳ  １２９２２３−２２−９）
・Ｆｍｏｃ−Ａｌａ−Ｐｒｏ−ＯＨ（ＣＡＳ  １８６０２３−４４−９）
・Ｆｍｏｃ−Ｓｅｒ（ｔＢｕ）−Ｇｌｙ−ＯＨ（ＣＡＳ  １１３２４７−８０−６）
・Ｆｍｏｃ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−ＯＨ（ＣＡＳ  ２１２６５１−４８−４）
・Ｆｍｏｃ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−ＯＨ（ＣＡＳ  ３５６６５−３８−４）
・Ｆｍｏｃ−Ａｓｎ（Ｔｒｔ）−Ｇｌｙ−ＯＨ（Ｂａｃｈｅｍ  Ｂ−３６３０より）
・Ｆｍｏｃ−Ｇｌｕ（ＯｔＢｕ）−Ｇｌｙ−ＯＨ（ＣＡＳ  ８６６０４４−６３−５）
・Ｆｍｏｃ−Ｈｉｓ（Ｔｒｔ）−Ｇｌｙ−ＯＨ
【０１２８】
カップリングがカイザー試験にしたがって不完全であると見出された場合（Ｅ．  Ｋａｉｓｅｒ  ｅｔ  ａｌ、Ａｎａｌ．  Ｂｉｏｃｈｅｍ．  ３４、１９７０年、５９５頁）、さらなるカップリングが可能であった。この目的のために、ＨＢＴＵ／ＤＩＰＥＡ／ＨＯＢｔ水和物と共に、Ｆｍｏｃ−アミノ酸を再びカップリングさせた。
【０１２９】
１．５  未反応アミノ基のキャップ付加
要点１．２の記載を参照。
【０１３０】
１．６  最終のＦｍｏｃの切断
最終のＦｍｏｃの切断を要点１．３に記載したように実行した。ジイソプロピルエーテルを用いて樹脂を最後に再び洗浄し、減圧下で乾燥させた。
【０１３１】
１．７  樹脂からのリキシセナチドの切断および側鎖保護基の同時の除去
実施例６に記載したようにＲｉｎｋ樹脂からのリキシセナチドの切断を実行した。
【０１３２】
１．８  ジペプチドの本発明の使用を用いたリキシセナチドの合成
ＨＢＴＵ／ＤＩＰＥＡ／ＨＯＢｔ水和物を用いて樹脂への第１のＦｍｏｃ−Ｌｙｓ（Ｂｏｃ）−ＯＨのカップリングを実行した。Ｒｉｎｋアミド樹脂の遊離アミンへの第１のアミノ酸Ｆｍｏｃ−Ｌｙｓ（Ｂｏｃ）−ＯＨのカップリング後、以下の処理工程を際限なしの繰り返しのサイクルで実行した（工程１．３〜１．６も参照）：
・Ｆｍｏｃの切断
・カップリング
・必要な場合、さらなるカップリング
・キャップ付加
・最終のアミノ酸単位のカップリング後、Ｎ末端Ｆｍｏｃ基を切断する。
【０１３３】
ＤＩＣ／ＨＯＢｔを用いて標準的なＦｍｏｃ保護されたアミノ酸をカップリングし、過剰量のアミノ酸およびカップリング試薬は２〜４当量であった。
【０１３４】
位置Ｐｒｏ（３６）およびＰｒｏ（３７）において、２つのＦｍｏｃ−Ｐｒｏ−ＯＨアミノ酸誘導体の代わりにＨＢＴＵ／ＤＩＰＥＡを用いてジペプチドＦｍｏｃ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−ＯＨをカップリングした。
【０１３５】
位置Ｐｒｏ（３１）において、ＨＢＴＵ／ＤＩＰＥＡ／ＨＯＢｔ水和物を用いてカップリングを実行した。
【０１３６】
位置Ｈｉｓ（１）およびＧｌｙ（２）において、アミノ酸誘導体Ｆｍｏｃ−Ｈｉｓ（Ｂｏｃ）−ＯＨおよびＦｍｏｃ−Ｇｌｙ−ＯＨの代わりにジペプチドＦｍｏｃ−Ｈｉｓ（Ｔｒｔ）−Ｇｌｙ−ＯＨをカップリングした。
【０１３７】
カップリング後に、実施例４および５に記載されるように、Ａｃ２Ｏ／ＤＩＰＥＡを用いて各場合においてキャップ付加を実行した。
【０１３８】
ＤＭＦ中の２５％のピペリジンを用いてＦｍｏｃの切断を行い、各場合において連続的に最初に５分の反応時間、次に２０〜４０分の反応時間とした。
【０１３９】
カップリングの完了はカイザー試験により確認した。
【０１４０】
最後のカップリングおよびＦｍｏｃ基の最後の切断後、最初にＤＭＦを用いて繰り返しで、次にイソプロパノールを用いておよび最後にジイソプロピルエーテルを用いて樹脂を洗浄し、その後に減圧下３５℃で乾燥させた。
【０１４１】
１，２−エタンジチオールなどのスカベンジャーを用いて樹脂からの生ペプチドの切断をトリフルオロ酢酸中で実行した。
【０１４２】
固相としてＣ１８  ＲＰシリカゲルを用いて２工程ＨＰＬＣ処理において生ペプチドを精製した。第１の精製工程において、０．１％のＴＦＡと共にアセトニトリル／水を含む緩衝系を使用し；第２の工程において、ＡｃＯＨと共にアセトニトリル／水を含む緩衝系を使用した。プールした溶液の濃縮後、純粋なペプチドをフリーズドライにより得た。
【０１４３】
０．３ｍｍｏｌ／ｇのローディングを伴うＲｉｎｋアミド樹脂３５００ｇ（すなわち、１．０５ｍｏｌバッチ）の使用は樹脂上のペプチド９９７０ｇを与えた。生ペプチド４６３６ｇをそこから得た。
【０１４４】
精製後、純粋なペプチド５７６ｇをそこから得た。ＭＳ：４８５５．５（モノアイソトピックモル質量）；測定値４８５５．６。アミノ酸シークエンシング：正しい配列が見出された。アッセイ：８９．０％（そのまま）。
【０１４５】
１．９  ジペプチドを使用しないリキシセナチドの合成
Ｃ末端、Ｌｙｓ−４４から開始して、直鎖固相合成によりペプチド鎖を構築した。
【０１４６】
ＤＩＣ／ＨＯＢｔを用いて標準的なＦｍｏｃ保護されたアミノ酸をカップリングし、過剰量のアミノ酸およびカップリング試薬は２〜４当量であった。
【０１４７】
位置Ｐｒｏ（３７）、Ｐｒｏ（３６）、Ｐｒｏ（３１）において、ＨＢＴＵ／ＤＩＰＥＡ／ＨＯＢｔ水和物を用いてカップリングを実行した。
【０１４８】
各カップリングに続いてＡｃ２Ｏ／ＤＩＰＥＡを用いてキャップ付加を行った。ＤＭＦ中の２５％のピペリジンを用いてＦｍｏｃの切断を行い、各場合において連続的に最初に５分の反応時間、次に２０分の反応時間とした。
【０１４９】
カップリングの完了はカイザー試験により確認した。最後のカップリングおよびＦｍｏｃ基の最後の切断後、最初にＤＭＦを用いて繰り返しで、次にイソプロパノールを用いておよび最後にジイソプロピルエーテルを用いて樹脂を洗浄し、その後に減圧下３５℃で乾燥させた。
【０１５０】
１，２−エタンジチオール、チオアニソール、フェノールおよび水などのスカベンジャーを用いて樹脂からの生ペプチドの切断をトリフルオロ酢酸中で実行した。
【０１５１】
固相としてＣ１８  ＲＰシリカゲルを用いて２工程ＨＰＬＣ処理において生ペプチドを精製した。プールした溶液の濃縮後、純粋なペプチドをフリーズドライにより得た。表１は、ジペプチドを使用した合成とジペプチドなしの合成との間のラセミ化Ｄ−Ｈｉｓ−リキシセナチドの含有量および純粋なペプチド中の何らかの不純物の含有量を比較する。
【０１５２】
【表１】
2021521156.tif 000002
【０１５３】
データは、ジペプチドＦｍｏｃ−Ｈｉｓ（Ｔｒｔ）−ＧＩｙ−ＯＨの使用は、ラセミ化から生じるＤ−Ｈｉｓの上昇した値を含有しないリキシセナチドを与えることを示す。さらに、Ｆｍｏｃ−Ｈｉｓ（Ｔｒｔ）−ＧＩｙ−ＯＨを使用した場合、ｄｅｓＧｌｙ（２）−リキシセナチドはもはや見出されない。さらには、鎖位置Ｐｒｏ（３６）およびＰｒｏ（３７）の付近のＮ−１およびＮ＋１ペプチド（例えば、ｄｅｓＰｒｏ（３６）−リキシセナチドまたはｄｉＰｒｏ（３６）リキシセナチド）は出現しなかった。
【実施例２】
【０１５４】
（本発明による）エキセンジン−４の合成、精製および特徴付け
活性物質エキセンジン−４は３９アミノ酸から構成されるポリペプチドアミドであり、酢酸塩は対イオンとして機能する。
【０１５５】
１文字表記において、アミノ酸配列は以下の通りである：
Ｈ−Ｇ−Ｅ−Ｇ−Ｔ−Ｆ−Ｔ−Ｓ−Ｄ−Ｌ−Ｓ−Ｋ−Ｑ−Ｍ−Ｅ−Ｅ−Ｅ−Ａ−Ｖ−Ｒ−Ｌ−Ｆ−Ｉ−Ｅ−Ｗ−Ｌ−Ｋ−Ｎ−Ｇ−Ｇ−Ｐ−Ｓ−Ｓ−Ｇ−Ａ−Ｐ−Ｐ−Ｐ−Ｓ−ＮＨ２
ＭＷ  ４１８６．６６ｇ／ｍｏｌ；ＭＷ（モノアイソトピック）＝４１８４．０３ｇ／ｍｏｌ。
【０１５６】
上記の配列にしたがって、リキシセナチドの合成において詳細に記載したようにエキセンジン−４の合成を実行した。位置１および２において、Ｆｍｏｃ−Ｈｉｓ（Ｔｒｔ）−Ｇｌｙ−ＯＨを用いて１サイクルでカップリングを実行した。位置３７および３８において、Ｆｍｏｃ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−ＯＨを用いて１サイクルでカップリングを実行した。他の位置において、Ｆｍｏｃ−アミノ酸（モノアミノ酸単位）を用いてカップリングを実行した。
【０１５７】
０．４２ｍｍｏｌ／ｇのローディングを伴うＲｉｎｋアミド樹脂２６．６６６ｇ（すなわち、１１．２ｍｍｏｌバッチ）の使用は樹脂上のペプチド７４ｇを与えた。これから、樹脂上のペプチド６５ｇを切断し、生ペプチド２８ｇを得た。精製のために、これから、生ペプチド２１．３ｇを使用し、純粋なペプチド４．０１ｇを得た。ＭＳ：４１８４．０３（モノアイソトピックモル質量）：測定値４１８５．１［Ｍ＋Ｈ］。純度９８．２５  ＦＩ％。
【０１５８】
ジペプチドの使用は、リキシセナチドについて得られた結果を裏付けた。ジペプチドＦｍｏｃ−Ｈｉｓ（Ｔｒｔ）−ＧＩｙ−ＯＨの使用は、ラセミ化から生じるＤ−Ｈｉｓの上昇した値を含有しないエキセンジン−４を与える。さらに、Ｆｍｏｃ−Ｈｉｓ（Ｔｒｔ）−ＧＩｙ−ＯＨを使用した場合、ｄｅｓＧｌｙ（２）−エキセンジン−４はもはや見出されない。さらには、鎖位置Ｐｒｏ（３６）およびＰｒｏ（３７）の付近のＮ−１およびＮ＋１ペプチド（例えば、ｄｅｓＰｒｏ（３６）−エキセンジン−４またはｄｉＰｒｏ（３６）エキセンジン−４）は出現しなかった。
【実施例３】
【０１５９】
Ｆｍｏｃ−Ｈｉｓ（Ｔｒｔ）−Ｇｌｙ−ＯＨの合成
３．１  Ｆｍｏｃ−Ｈｉｓ（Ｔｒｔ）−Ｇｌｙ−ＯＢｚｌ
【化１】
2021521156.tif 000003
【０１６０】
酢酸エチル４００ｍｌ中のＨ−Ｇｌｙ−ＯＢｚｌトシレート３２．７ｇおよびＨＢＴＵ  ２９．３７ｇと共にＦｍｏｃ−Ｈｉｓ（Ｔｒｔ）−ＯＨ  ４０ｇを溶解した。その後、Ｎ−エチルモルホリン３３．３２ｍｌを加えた。反応混合物を３０℃で４時間撹拌した。その後、各回に８％の重炭酸ナトリウム溶液２５６ｇを用いて抽出を３回実行し、次に水２５０ｍｌを用いて洗浄を１回実行した。結果として得られた酢酸エチル溶液の半分を蒸発させ、次の工程においてさらに処理した。
【０１６１】
３．２  Ｆｍｏｃ−Ｈｉｓ（Ｔｒｔ）−Ｇｌｙ−ＯＨ
【化２】
2021521156.tif 000004
【０１６２】
５：２：２（ｗ／ｗ／ｗ）のＴＨＦ／酢酸エチル／ＭｅＯＨ混合物が形成されるようにＴＨＦおよびメタノールを酢酸エチル相に加えた。その後に、炭素触媒（５％）上のパラジウム１０ｇを加え、この混合物を３０℃および１．１ｂａｒの水素圧力において２．５時間水素化した。その後、触媒を濾過し、結果として得られた溶液を沈殿物の形成が始まるまで蒸発させた。その後の撹拌を１時間実行し、溶液を室温で４日間静置した。生成物を濾過した後、２−ブタノン中８０℃で４時間撹拌することにより抽出した。収率：Ｆｍｏｃ−Ｈｉｓ（Ｔｒｔ）−Ｇｌｙ−ＯＨ  ３２．９ｇ（７５％）。
【実施例４】
【０１６３】
リキシセナチドの合成の間のアセチル化された誤った配列
４．１  リキシセナチドの合成の間のアセチル化された誤った配列の含有量の決定
ある程度のアセチル化された誤った配列を粗リキシセナチド生成物のＨＰＬＣプロファイル中に見ることができる。これらは、通常、キャップ付加されている樹脂上の未反応アミノ基から生じる。キャップ付加により達成されるのは、（Ｎ−１）不純物が出現し得ないということであり、（Ｎ−１）不純物は所望の生成物からわずかにのみ異なり、それゆえ精製による除去が困難である。
【０１６４】
完了および選択された位置におけるカップリング速度論をエドマン分解によりモニターした。樹脂試料をリキシセナチドの合成から取り、Ｆｍｏｃ基をそれから切断した。この樹脂試料を次にエドマン分解に供し、このようにして（Ｎ−１）アミノ酸に対するカップリングされたアミノ酸の比を決定することができ、それからカップリング収率を直接的に推定することができた。エドマン分解の結果（表２）は高いカップリング値を示す。これらの値は非常に高いため、アセチル化された誤った配列の量を説明し得ない（表２中のＨＰＬＣデータ）。これは、これらの副生成物を形成する代替的な様式があるに違いないことを意味する。この状況の解明は以下のセクションに記載される。
【０１６５】
【表２】
2021521156.tif 000005
【０１６６】
４．２  アセチル化された誤った配列の形成
アセチル化された誤った配列が形成される合成サイクル中の時点を調べるために、樹脂試料をカップリングサイクルにわたり採取し、ペプチドを切断し、ＬＣ−ＭＳを使用して調べた。これらの調査は、Ｆｍｏｃ−Ａｒｇ（２０）−ＯＨのカップリングおよびＦｍｏｃ−Ｇｌｎ（１３）−ＯＨのカップリングの位置において実行した。
【０１６７】
リキシセナチド部分配列Ｈ（２２〜２４）の固相結合ペプチドへのＦｍｏｃ−Ａｒｇ（２０）−ＯＨのカップリングにおいて、１時間、２時間、４時間、８時間および２４時間のカップリング時点の後、ならびにキャップ付加、その後のＦｍｏｃの切断およびバリン（１９）のカップリングの後にも試料を採取した。図３に見ることができるように、誤った配列Ａｃ（２２〜４４）＋Ａｒｇはキャップ付加工程の間に初めて出現した（３．１％）。したがって、キャップ付加の間に、小部分のＦｍｏｃ基は切断（損失）され、直ちにアシル化される。呼称Ａｃ（２２〜２４）＋Ａｒｇを説明するために、位置２１（Ｌｅｕ）は合成から省略したことを留意すべきである。
【０１６８】
リキシセナチド合成の間のＦｍｏｃ−Ｇｌｎ（１３）−ＯＨのカップリングについて同じ実験を実行した（図４）。この場合、誤った配列Ａｃ（１３〜４４）は、グルタミン（１３）のカップリングおよびキャップ付加の後のＦｍｏｃの切断の間に初めて観察された（４．６％）。Ｆｍｏｃ−Ｌｙｓ（１２）−ＯＨのカップリング後の合成の残りの経過中に、キャップ付加の間にＡｃ（１２〜４４）もまた形成された（４．１％）ことを見ることができる（図５を参照）。
【０１６９】
実験は、使用される混合物のキャップ付加能力が、潜在的な（Ｎ−１）不純物がもはやキャップ付加されないような顕著な程度まで低減されることなく、Ｎ個目のアミノ酸（カップリングされる最後のもの）のアセチル化された誤った配列の望ましくない形成が防止されるキャップ付加条件をサーチすることが必要であることを示す。
【０１７０】
４．３  キャップ付加条件におけるバリエーション
Ｆｍｏｃ−Ａｒｇ（２０）−ＯＨ、Ｆｍｏｃ−Ｌｅｕ（１０）−ＯＨ、Ｆｍｏｃ−Ｇｌｙ（４）−ＯＨおよびＦｍｏｃ−Ｔｈｒ（５）−ＯＨのカップリングを調べた。様々なキャップ付加条件を互いに比較した。
【０１７１】
キャップ付加条件をリキシセナチドの実験室合成において変化させた。望ましくないＡｃ（Ｎ〜４４）および所望のＡｃ（［Ｎ−１］〜４４）の含有量に特に注目した。試験した条件は以下の通りである：
・２０分間のＤＭＦ中の１０％の無水酢酸／５％のＤＩＰＥＡ
・１０分間のＤＭＦ中の１０％の無水酢酸／５％のＤＩＰＥＡ
・２０分間のＤＭＦ中の２％の無水酢酸／１％のＤＩＰＥＡ
・１０分間のＤＭＦ中の２％の無水酢酸／１％のＤＩＰＥＡ。
【０１７２】
調査は、位置Ａｒｇ（２０）、Ｌｅｕ（１０）、Ｔｈｒ（５）およびＧｌｙ（４）において実行した。結果を表３〜６にまとめている。
【０１７３】
データをまた、リキシセナチドのＧＭＰ合成の結果（表３〜６における「ＧＭＰキャップ付加」）と比較した。キャップ付加条件は、ＤＭＦ中の１０％の無水酢酸／５％のＤＩＰＥＡの条件に対応した。ＧＭＰバッチにおけるキャップ付加混合物との樹脂の接触時間はさらに７〜８分長く、したがって２７〜２８分であった。これは、キャップ付加混合物を排出するためにより長い時間を要したことから生じた。
【０１７４】
４．３．１  位置Ａｒｇ（２０）におけるカップリング
Ｆｍｏｃ−Ａｒｇ（Ｐｂｆ）−ＯＨをＬｅｕ（２１）にカップリングした。カップリングが起こらなかった鎖（生成物Ｈ（２１〜４４））において、生成物Ａｃ（２１〜４４）をその後のキャップ付加により形成した。生成物Ａｃ（２０〜４４）およびＨ（２０〜４４）の両方は、キャップ付加の間にＦｍｏｃ基が望ましくなく切断される場合（Ｈ（２０〜４４）の形成）およびアセチル化が起こる場合（Ａｃ（２０〜４４）の形成）に形成される。
【０１７５】
望ましくない生成物Ｈ（２０〜４４）およびＡｃ（２０〜４４）の形成の程度はキャップ付加時間ならびに無水酢酸およびＤＩＰＥＡの量の両方に依存することを表３において明確に見ることができる（Ａｃ（２０〜４４）％の列を参照）。最も高いパーセンテージ値はＧＭＰキャップ付加において見ることができる。Ａｃ（２０〜４４）の最も低い含有量は、「１０分間のＤＭＦ中の２％の無水酢酸／１％のＤＩＰＥＡ」の条件下で見出される。
【０１７６】
様々なキャップ付加混合物（およびそれゆえ元々の意図した使用）のキャップ付加能力はおおよそ同じであり（列Ａｃ（２１〜４４）を参照）、すなわち、全てのキャップ付加混合物はＨ（２１〜４４）を変換する。「１０分間のＤＭＦ中の２％の無水酢酸／１％のＤＩＰＥＡ」の混合物はまた、（Ｎ−１）不純物を回避するという所望の目的を達成する。
【０１７７】
【表３】
2021521156.tif 000006
【０１７８】
４．３．２  位置Ｌｅｕ（１０）、Ｇｌｙ（４）およびＴｈｒ（５）におけるカップリング
Ｌｅｕ（１０）についての結果を表４に与え、これは、位置Ａｒｇ（２０）について得られた結果を裏付ける。生成物Ｈ（１１〜４４）の遊離アミノ基のキャップ付加の間に形成される望ましくない生成物Ａｃ（１０〜４４）およびＨ（１０〜４４）の含有量は、「１０分間の２％の無水酢酸、１％のＤＩＰＥＡ」の条件下で最も低い。キャップ付加能力は異なるキャップ付加混合物において同等である。
【０１７９】
【表４】
2021521156.tif 000007
【０１８０】
Ｇｌｙ（４）のカップリングについても、望ましくない生成物Ａｃ（４〜４４）の含有量はキャップ付加混合物および反応時間に依存している。キャップ付加能力は異なる混合物において同じである（表５）。
【０１８１】
【表５】
2021521156.tif 000008
【０１８２】
位置Ａｒｇ（２０）、Ｌｅｕ（１０）およびＧｌｙ（４）に加えて、位置Ｔｈｒ（５）もまた調べた。３つの以前の位置とは対照的に、望ましくない生成物Ａｃ（Ｎ〜４４）（位置５におけるＡｃ（５〜４４））の含有量は様々なキャップ付加条件下でおおよそ同じである。しかしながら、異なる混合物のキャップ付加能力もまたここでは同等である（表６）。
【０１８３】
【表６】
2021521156.tif 000009
【０１８４】
４．３．３  要約
位置Ａｒｇ（２０）、Ｌｅｕ（１０）およびＧｌｙ（４）において、穏やかなキャップ付加混合物（１０分間のＤＭＦ中の２％の無水酢酸／１％のＤＩＰＥＡ）は、アシル化による（Ｎ−１）不純物を回避するという所望の効果を維持するために充分である。しかしながら、これらの３つの場合において、Ａｃ（２０〜４４）、Ａｃ（１０〜４４）およびＡｃ（４〜４４）の各々の形成は、キャップ付加時間、そしてまたキャップ付加混合物に依存している。これは位置Ｔｈｒ（５）には当てはまらない。
【実施例５】
【０１８５】
リキシセナチドの合成
本実施例は、リキシセナチド（配列番号１を参照）の合成に関する。合成の開始時に、固相結合リンカーはＦｍｏｃ保護基を有する。カップリングサイクルにおいてＣ末端（位置４４）から開始してＮ末端へと個々のアミノ酸単位をカップリングさせた。カップリングサイクルは、
・Ｆｍｏｃの切断
・Ｆｍｏｃ保護されたアミノ酸単位のカップリングおよび
・キャップ付加
の工程からなる。
【０１８６】
位置Ａｒｇ（２０）、Ｇｌｕ（１７）、Ｇｌｎ（１３）、Ｌｅｕ（１０）およびＧｌｙ（４）において、本発明によるキャップ付加方法（１０分間のＤＭＦ中の２％の無水酢酸／１％のＤＩＰＥＡ）を使用した。これらの位置について、カップリングサイクルについての指示は以下に記載される。他の位置において、２０分間のＤＭＦ中の１０％の無水酢酸／５％のＤＩＰＥＡを用いてキャップ付加を実行した。このキャップ付加は、例として、位置Ｔｈｒ（５）において記載される。本発明によるキャップ付加方法は、より穏やかな条件を含む。
【０１８７】
バッチサイズはＲｉｎｋ樹脂１０５０ｍｍｏｌであった。
【０１８８】
５．１  位置２０におけるＦｍｏｃ−Ａｒｇ（Ｐｂｆ）−ＯＨのカップリング
５．１．１  Ｆｍｏｃの切断
ＤＭＦ  ７ｌ、続いてＤＭＦ  １６．６ｌ中のピペリジン７．９ｌの混合物を反応器に加えた。この混合物を５分間撹拌し、次に吸引を用いて濾過した。この処理を繰り返し、撹拌を３０分間実行し；次に吸引を用いる濾過を再び実行した。Ｆｍｏｃの切断後、以下の順序で樹脂を７回洗浄した：ＤＭＦ（３１．１ｌ）、ＤＭＦ（３１．１ｌ）、イソプロパノール（３１．１ｌ）、ＤＭＦ（３１．１ｌ）、ＤＭＦ（８ｌ）、ＤＭＦ（３１．１ｌ）、ＤＭＦ（３１．１ｌ）。ここで反応器を各回に各々の洗浄溶媒で満たし、次に撹拌を３分間実行し、吸引を用いる濾過を再び実行した。
【０１８９】
５．１．２  Ｆｍｏｃ−Ａｒｇ（Ｐｂｆ）−ＯＨのカップリング
ＤＭＦ  ２１ｌを反応器に加えた。その後、ＦｍｏｃＡｒｇ（Ｐｂｆ）−ＯＨ  ２．１２５ｋｇを秤量して入れ、ＤＭＦ  ５．３ｌを加えた。完全な溶解後、この溶液を全て、続いてＤＭＦ  ２．２ｌ中のヒドロキシベンゾトリアゾール水和物（ＨＯＢｔ水和物）５０２ｇの溶液を反応器に注いだ。最後に、Ｎ，Ｎ−ジイソプロピルカルボジイミド（ＤＩＣ）４１３ｇを反応器に加えた。カップリング時間は６〜１８時間であった。カップリング後、溶媒を吸引により樹脂から濾過し、キャップ付加を直ちに続けた。
【０１９０】
５．１．３  キャップ付加（本発明による）
反応器をＤＭＦ  ２６．３ｌで満たした。同時に、ＤＭＦ  １．２ｌ、無水酢酸０．５３ｌおよびジイソプロピルエチルアミン（ＤＩＰＥＡ）０．２６ｌを２ｌ  Ｓｃｈｏｔｔボトル中で混合し、反応器中の樹脂に加えた。反応器を１０分間撹拌し、次に吸引を用いる濾過を実行した。キャップ付加後、以下の順序で樹脂を５回洗浄した：ＤＭＦ（２４ｌ）、イソプロパノール（３１．１ｌ）、ＤＭＦ（８ｌ）、ＤＭＦ（３１．５ｌ）、ＤＭＦ（３１．５ｌ）。ここで反応器を各回に各々の洗浄溶媒で満たし、次に撹拌を３分間実行し、吸引を用いる濾過を再び実行した。
【０１９１】
５．２．位置１７におけるＦｍｏｃ−Ｇｌｕ（ＯｔＢｕ）−ＯＨ水和物のカップリング
５．２．１  Ｆｍｏｃの切断
ＤＭＦ  ７ｌ、続いてＤＭＦ  １６．６ｌ中のピペリジン７．９ｌの混合物を反応器に加えた。この混合物を５分間撹拌し、次に吸引を用いて濾過した。この処理を繰り返し、撹拌を３０分間実行し；次に吸引を用いる濾過を再び実行した。Ｆｍｏｃの切断後、以下の順序で樹脂を７回洗浄した：ＤＭＦ（３１．１ｌ）、ＤＭＦ（３１．１ｌ）、イソプロパノール（３１．１ｌ）、ＤＭＦ（３１．１ｌ）、ＤＭＦ（８ｌ）、ＤＭＦ（３１．１ｌ）、ＤＭＦ（３１．１ｌ）。ここで反応器を各回に各々の洗浄溶媒で満たし、次に撹拌を３分間実行し、吸引を用いる濾過を再び実行した。
【０１９２】
５．２．２  Ｆｍｏｃ−Ｇｌｕ（ＯｔＢｕ）−ＯＨ水和物のカップリング
ＤＭＦ  ２１ｌを反応器に加えた。その後、ＦｍｏｃＧｌｕ（ＯｔＢｕ）−ＯＨ水和物１．４５３ｋｇを秤量して入れ、ＤＭＦ  ５．３ｌを加えた。完全な溶解後、この溶液を全て、続いてＤＭＦ  ２．２ｌ中のヒドロキシベンゾトリアゾール水和物（ＨＯＢｔ水和物）５０２ｇの溶液を反応器に注いだ。最後に、Ｎ，Ｎ−ジイソプロピルカルボジイミド（ＤＩＣ）４１３ｇを反応器に加えた。カップリング時間は６〜１８時間であった。カップリング後、溶媒を吸引により樹脂から濾過し、キャップ付加を直ちに続けた。
【０１９３】
５．２．３  キャップ付加（本発明による）
反応器をＤＭＦ  ２６．３ｌで満たした。同時に、ＤＭＦ  １．２ｌ、無水酢酸０．５３ｌおよびジイソプロピルエチルアミン（ＤＩＰＥＡ）０．２６ｌを２ｌ  Ｓｃｈｏｔｔボトル中で混合し、反応器中の樹脂に加えた。反応器を１０分間撹拌し、次に吸引を用いる濾過を実行した。キャップ付加後、以下の順序で樹脂を５回洗浄した：ＤＭＦ（２４ｌ）、イソプロパノール（３１．１ｌ）、ＤＭＦ（８ｌ）、ＤＭＦ（３１．５ｌ）、ＤＭＦ（３１．５ｌ）。ここで反応器を各回に各々の洗浄溶媒で満たし、次に撹拌を３分間実行し、吸引を用いる濾過を再び実行した。
【０１９４】
５．３  位置１３におけるＦｍｏｃ−Ｇｌｎ（Ｔｒｔ）−ＯＨのカップリング
５．３．１  Ｆｍｏｃの切断
ＤＭＦ  ７ｌ、続いてＤＭＦ  １６．６ｌ中のピペリジン７．９ｌの混合物を反応器に加えた。この混合物を５分間撹拌し、次に吸引を用いて濾過した。この処理を繰り返し、撹拌を３５分間実行し；次に吸引を用いる濾過を再び実行した。Ｆｍｏｃの切断後、以下の順序で樹脂を７回洗浄した：ＤＭＦ（３１．１ｌ）、ＤＭＦ（３１．１ｌ）、イソプロパノール（３１．１ｌ）、ＤＭＦ（３１．１ｌ）、ＤＭＦ（８ｌ）、ＤＭＦ（３１．１ｌ）、ＤＭＦ（３１．１ｌ）。ここで反応器を各回に各々の洗浄溶媒で満たし、次に撹拌を３分間実行し、吸引を用いる濾過を再び実行した。
【０１９５】
５．３．２  Ｆｍｏｃ−Ｇｌｎ（Ｔｒｔ）−ＯＨのカップリング
ＤＭＦ  ２１ｌを反応器に加えた。その後、ＦｍｏｃＧｌｎ（Ｔｒｔ）−ＯＨ  ２．００１ｋｇを秤量して入れ、ＤＭＦ  ５．３ｌを加えた。完全な溶解後、この溶液を全て、続いてＤＭＦ  ２．２ｌ中のヒドロキシベンゾトリアゾール水和物（ＨＯＢｔ水和物）５０２ｇの溶液を反応器に注いだ。最後に、Ｎ，Ｎ−ジイソプロピルカルボジイミド（ＤＩＣ）４１３ｇを反応器に加えた。カップリング時間は６〜１８時間であった。カップリング後、溶媒を吸引により樹脂から濾過し、キャップ付加を直ちに続けた。
【０１９６】
５．３．３  キャップ付加（本発明による）
反応器をＤＭＦ  ２６．３ｌで満たした。同時に、ＤＭＦ  １．２ｌ、無水酢酸０．５３ｌおよびジイソプロピルエチルアミン（ＤＩＰＥＡ）０．２６ｌを２ｌ  Ｓｃｈｏｔｔボトル中で混合し、反応器中の樹脂に加えた。反応器を１０分間撹拌し、次に吸引を用いる濾過を実行した。キャップ付加後、以下の順序で樹脂を５回洗浄した：ＤＭＦ（２４ｌ）、イソプロパノール（３１．１ｌ）、ＤＭＦ（８ｌ）、ＤＭＦ（３１．５ｌ）、ＤＭＦ（３１．５ｌ）。ここで反応器を各回に各々の洗浄溶媒で満たし、次に撹拌を３分間実行し、吸引を用いる濾過を再び実行した。
【０１９７】
５．４  位置１０におけるＦｍｏｃ−Ｌｅｕ−ＯＨのカップリング
５．４．１  Ｆｍｏｃの切断
ＤＭＦ  ７ｌ、続いてＤＭＦ  １６．６ｌ中のピペリジン７．９ｌの混合物を反応器に加えた。この混合物を５分間撹拌し、次に吸引を用いて濾過した。この処理を繰り返し、撹拌を３５分間実行し；次に吸引を用いる濾過を再び実行した。Ｆｍｏｃの切断後、以下の順序で樹脂を７回洗浄した：ＤＭＦ（３１．１ｌ）、ＤＭＦ（３１．１ｌ）、イソプロパノール（３１．１ｌ）、ＤＭＦ（３１．１ｌ）、ＤＭＦ（８ｌ）、ＤＭＦ（３１．１ｌ）、ＤＭＦ（３１．１ｌ）。ここで反応器を各回に各々の洗浄溶媒で満たし、次に撹拌を３分間実行し、吸引を用いる濾過を再び実行した。
【０１９８】
５．４．２  Ｆｍｏｃ−Ｌｅｕ−ＯＨのカップリング
ＤＭＦ  ２１ｌを反応器に加えた。その後、Ｆｍｏｃ−Ｌｅｕ−ＯＨ  １．１５８ｋｇを秤量して入れ、ＤＭＦ  ５．３ｌを加えた。完全な溶解後、この溶液を全て、続いてＤＭＦ  ２．２ｌ中のヒドロキシベンゾトリアゾール水和物（ＨＯＢｔ水和物）５０２ｇの溶液を反応器に注いだ。最後に、Ｎ，Ｎ−ジイソプロピルカルボジイミド（ＤＩＣ）４１３ｇを反応器に加えた。カップリング時間は６〜１８時間であった。カップリング後、溶媒を吸引により樹脂から濾過し、キャップ付加を直ちに続けた。
【０１９９】
５．４．３  キャップ付加（本発明による）
反応器をＤＭＦ  ２６．３ｌで満たした。同時に、ＤＭＦ  １．２ｌ、無水酢酸０．５３ｌおよびジイソプロピルエチルアミン（ＤＩＰＥＡ）０．２６ｌを２ｌ  Ｓｃｈｏｔｔボトル中で混合し、反応器中の樹脂に加えた。反応器を１０分間撹拌し、次に吸引を用いる濾過を実行した。キャップ付加後、以下の順序で樹脂を５回洗浄した：ＤＭＦ（２４ｌ）、イソプロパノール（３１．１ｌ）、ＤＭＦ（８ｌ）、ＤＭＦ（３１．５ｌ）、ＤＭＦ（３１．５ｌ）。ここで反応器を各回に各々の洗浄溶媒で満たし、次に撹拌を３分間実行し、吸引を用いる濾過を再び実行した。
【０２００】
５．５  位置４におけるＦｍｏｃ−Ｇｌｙ−ＯＨのカップリング
５．５．１  Ｆｍｏｃの切断
ＤＭＦ  ７ｌ、続いてＤＭＦ  １６．６ｌ中のピペリジン７．９ｌの混合物を反応器に加えた。この混合物を５分間撹拌し、次に吸引を用いて濾過した。この処理を繰り返し、撹拌を３５分間実行し；次に吸引を用いる濾過を再び実行した。Ｆｍｏｃの切断後、以下の順序で樹脂を７回洗浄した：ＤＭＦ（３１．１ｌ）、ＤＭＦ（３１．１ｌ）、イソプロパノール（３１．１ｌ）、ＤＭＦ（３１．１ｌ）、ＤＭＦ（８ｌ）、ＤＭＦ（３１．１ｌ）、ＤＭＦ（３１．１ｌ）。ここで反応器を各回に各々の洗浄溶媒で満たし、次に撹拌を３分間実行し、吸引を用いる濾過を再び実行した。
【０２０１】
５．５．２  Ｆｍｏｃ−Ｇｌｙ−ＯＨのカップリング
ＤＭＦ  ２１ｌを反応器に加えた。その後、Ｆｍｏｃ−Ｇｌｙ−ＯＨ  １．２１７ｋｇを秤量して入れ、ＤＭＦ  ５．３ｌを加えた。完全な溶解後、この溶液を全て、続いてＤＭＦ  ２．２ｌ中のヒドロキシベンゾトリアゾール水和物（ＨＯＢｔ水和物）６２７ｇの溶液を反応器に注いだ。最後に、Ｎ，Ｎ−ジイソプロピルカルボジイミド（ＤＩＣ）５１７ｇを反応器に加えた。カップリング時間は６〜１８時間であった。カップリング後、溶媒を吸引により樹脂から濾過し、キャップ付加を直ちに続けた。
【０２０２】
５．５．３  キャップ付加（本発明による）
反応器をＤＭＦ  ２６．３ｌで満たした。同時に、ＤＭＦ  １．２ｌ、無水酢酸０．５３ｌおよびジイソプロピルエチルアミン（ＤＩＰＥＡ）０．２６ｌを２ｌ  Ｓｃｈｏｔｔボトル中で混合し、反応器中の樹脂に加えた。反応器を１０分間撹拌し、次に吸引を用いる濾過を実行した。キャップ付加後、以下の順序で樹脂を５回洗浄した：ＤＭＦ（２４ｌ）、イソプロパノール（３１．１ｌ）、ＤＭＦ（８ｌ）、ＤＭＦ（３１．５ｌ）、ＤＭＦ（３１．５ｌ）。ここで反応器を各回に各々の洗浄溶媒で満たし、次に撹拌を３分間実行し、吸引を用いる濾過を再び実行した。
【０２０３】
５．６  位置５におけるＦｍｏｃ−Ｔｈｒ（ｔＢｕ）−ＯＨのカップリング
５．６．１  Ｆｍｏｃの切断
ＤＭＦ  ７ｌ、続いてＤＭＦ  １６．６ｌ中のピペリジン７．９ｌの混合物を反応器に加えた。この混合物を５分間撹拌し、次に吸引を用いて濾過した。この処理を繰り返し、撹拌を３５分間実行し；次に吸引を用いる濾過を再び実行した。Ｆｍｏｃの切断後、以下の順序で樹脂を７回洗浄した：ＤＭＦ（３１．１ｌ）、ＤＭＦ（３１．１ｌ）、イソプロパノール（３１．１ｌ）、ＤＭＦ（３１．１ｌ）、ＤＭＦ（８ｌ）、ＤＭＦ（３１．１ｌ）、ＤＭＦ（３１．１ｌ）。ここで反応器を各回に各々の洗浄溶媒で満たし、次に撹拌を３分間実行し、吸引を用いる濾過を再び実行した。
【０２０４】
５．６．２  Ｆｍｏｃ−Ｔｈｒ（ｔＢｕ）−ＯＨのカップリング
ＤＭＦ  ２１ｌを反応器に加えた。その後、ＦｍｏｃＴｈｒ（ｔＢｕ）−ＯＨ  １．６２８ｋｇを秤量して入れ、ＤＭＦ  ５．３ｌを加えた。完全な溶解後、この溶液を全て、続いてＤＭＦ  ２．２ｌ中のヒドロキシベンゾトリアゾール水和物（ＨＯＢｔ水和物）６２７ｇの溶液を反応器に注いだ。最後に、Ｎ，Ｎ−ジイソプロピルカルボジイミド（ＤＩＣ）５１７ｇを反応器に加えた。カップリング時間は６〜１８時間であった。カップリング後、溶媒を吸引により樹脂から濾過し、キャップ付加を直ちに続けた。
【０２０５】
５．６．３  キャップ付加
反応器をＤＭＦ  １０．５ｌで満たした。同時に、ＤＭＦ  １５．８ｌ、無水酢酸３．２ｌおよびジイソプロピルエチルアミン（ＤＩＰＥＡ）１．６ｌを混合容器中で混合し、反応器中の樹脂に加えた。反応器を２０分間攪拌し、次に吸引を用いる濾過を実行した。キャップ付加後、以下の順序で樹脂を５回洗浄した：ＤＭＦ（２４ｌ）、イソプロパノール（３１．１ｌ）、ＤＭＦ（８ｌ）、ＤＭＦ（３１．５ｌ）、ＤＭＦ（３１．５ｌ）。ここで反応器を各回に各々の洗浄溶媒で満たし、次に撹拌を３分間実行し、吸引を用いる濾過を再び実行した。
【０２０６】
５．７  結果
位置Ａｒｇ（２０）、Ｇｌｕ（１７）、Ｇｌｎ（１３）、Ｌｅｕ（１０）およびＧｌｙ（４）における発明によるキャップ付加方法、ならびに５．６．３に記載されるような他のカップリングにおけるキャップ付加を用いたリキシセナチド合成の粗生成物のＨＰＬＣクロマトグラムを図６に示す。不純物アセチル（２０〜４４）、アセチル（１７〜４４）、アセチル（１３〜４４）、アセチル（１０〜４４）およびアセチル（４〜４４）／アセチル（６〜４４）を有するピークを指し示す。
【０２０７】
５．８  比較
５．６．３に記載されるような全てのカップリングのキャップ付加工程を実行したところ、望ましくない誤った配列Ａｃ（２０〜４４）、Ａｃ（１７〜４４）、Ａｃ（１３〜４４）、Ａｃ（１０〜４４）およびＡｃ（４〜４４）／Ａｃ（６〜４４）の形成の増加に繋がった。この試験からの粗リキシセナチドのＨＰＬＣクロマトグラムを図６Ａに示す。
【０２０８】
図６Ｂは、位置Ａｒｇ（２０）、Ｇｌｕ（１７）、Ｇｌｎ（１３）、Ｌｅｕ（１０）およびＧｌｙ（４）において本発明によるキャップ付加方法を用いて合成された粗リキシセナチドのＨＰＬＣクロマトグラムを示す。
【０２０９】
図６Ｃは、図６ＡおよびＢからのＨＰＬＣクロマトグラムの重ね合わせを示す。バッチ操作での本発明によるキャップ付加方法を使用したリキシセナチドの合成は、誤った配列Ａｃ（２０〜４４）、Ａｃ（１７〜４４）、Ａｃ（１３〜４４）、Ａｃ（１０〜４４）およびＡｃ（４〜４４）／Ａｃ（６〜４４）の明白な低減に繋がったことが明らかである。
【０２１０】
より穏やかなキャップ付加混合物（１０分間のＤＭＦ中の２％の無水酢酸／１％のＤＩＰＥＡ）を使用することにより、リキシセナチドの粗生成物中のＡｃ（２０〜４４）、Ａｃ（１７〜４４）、Ａｃ（１３〜４４）、Ａｃ（１０〜４４）およびＡｃ（４〜４４）というアセチル化された誤った配列のレベルを低減することまたはそれらを粗生成物から除去することが可能であった。本発明によるキャップ付加により製造されたリキシセナチド粗生成物は、特にかなり低減された量で、アセチル化された副生成物Ａｃ（１７〜４４）、Ａｃ（１３〜４４）およびＡｃ（１０〜４４）を含むので、リキシセナチドの精製が単純化された。結果として、リキシセナチドの第１の分取クロマトグラフィーの実行後の画分のプールは、仕様基準を満たすより多くの画分を与え、そのため廃棄される必要はなかった。これは、収率の向上に繋がった。
【実施例６】
【０２１１】
リキシセナチドの合成における９つの特定の位置におけるキャップ付加
実施例５において議論したように、位置Ａｒｇ（２０）、Ｇｌｕ（１７）、Ｇｌｎ（１３）、Ｌｅｕ（１０）または／およびＧｌｙ（４）でのリキシセナチドの合成における「穏やか」なキャップ付加条件の使用は、望ましくない副生成物のプロファイルを向上させることができた。
【０２１２】
この実施例は、アセチル化されたおよびアセチル化されていない副生成物の形成に対するキャップ付加条件の影響を記載する。温度（１５℃、室温［２０℃〜２３℃］、３０℃）、キャップ付加期間およびキャップ付加組成物の成分のバリエーションを行った：
・キャップ付加なし
・穏やかなキャップ付加条件：２％の無水酢酸および１％のＤＩＰＥＡ（ジイソプロピルエチルアミン）を用いる１０分のキャップ付加
・「通常」のキャップ付加条件：１０％の無水酢酸および５％のＤＩＰＥＡを用いる２０分のキャップ付加
・１０％の無水酢酸および５％のＤＩＰＥＡを用いる４０分のキャップ付加
【０２１３】
本発明のキャップ付加条件は、「穏やかな条件」である。これらの条件を実施例５において使用した。これらの条件は有利であることが見出された。
【０２１４】
この実施例において選択された９つの位置において、アセチル化された配列が（Ｎ−１）位置のキャップ付加において得られた（図７）。追加的に、アミノ酸ビルディングブロックにおけるＦｍｏｃ基の望ましくない除去がキャップ付加工程の間に起こることがある。保護されていないアミノ基は、キャップ付加試薬またはキャップ付加組成物によりアセチル化されることがある。これに関して、向上したキャップ付加条件はＦｍｏｃ基の望ましくない切断を回避し得る。
【０２１５】
６．１  ジペプチドビルディングブロックＰｒｏ−Ｐｒｏのカップリング後（３６〜４４）の位置３６／３５におけるキャップ付加
ペプチドＦｍｏｃ−（３６〜４４）−ＡＶＥ００１０を固相合成により製造した。樹脂を４つの部分に分割して乾燥させた。室温（２０℃〜２３℃）で上記の４つのキャップ付加手順の１つを各部分に行った。試料を乾燥させ、ペプチドを樹脂から切断した。この手順を繰り返し、キャップ付加を１５℃または３０℃で行った。
【０２１６】
計１２のペプチド試料を得た。ＬＣＭＳを用いて１２のペプチド試料を分析した。分子量をＴＩＣ（総イオン電流）から決定した。以下の化合物の分子量を決定した：
【０２１７】
【表７】
2021521156.tif 000010
【０２１８】
【表８】
2021521156.tif 000011
【０２１９】
結果を図８に記載する。化合物（３６〜４４）、（３８〜４４）およびＡｃ（３８〜４４）は見出されなかったか、または小量で見出された。望ましくない生成物Ａｃ（３６〜４４）の量は、ほとんどの場合、キャップ付加カクテルの強度およびキャップ付加期間と共に増加する。この生成物の量は温度と共に増加する。
【０２２０】
６．２  ビルディングＩｌｅのカップリング後（２３〜４４）の位置２３におけるキャップ付加
Ｆｍｏｃ（２３〜４４）の合成をセクション６．１に記載したように行った。１５℃／３０℃および室温での実験を異なるバッチで行った。
【０２２１】
【表９】
2021521156.tif 000012
【０２２２】
結果を図９に記載する。ＲＴおよび３０℃でのキャップ付加試薬に依存して、望ましくない化合物Ａｃ（２３〜４４）の含有量は増加する。２０℃での「通常」のキャップ付加は０．２６％のＡｃ（２３〜４４）を結果としてもたらす。キャップ付加の延長（２０分の代わりに４０分）はＡｃ（２３〜４４）含有量に負の影響力を有する。
【０２２３】
所望の生成物Ａｃ（２４〜４４）の形成はキャップ付加組成物から独立している。
【０２２４】
６．３  ビルディングブロックＬｅｕのカップリング後（２１〜４４）の位置２１におけるキャップ付加
Ｆｍｏｃ（２１〜４４）の合成をセクション６．１に記載したように行った。１５℃／３０℃および室温での実験を異なるバッチで行った。
【０２２５】
【表１０】
2021521156.tif 000013
【０２２６】
結果を図１０に記載する。望ましくない化合物Ａｃ（２１〜４４）の含有量は、１５℃、ＲＴおよび３０℃において「４０分、１０％のＡｃ２Ｏ、５％のＤＩＰＥＡ」で最大である。化合物Ａｃ（２１〜４４）の含有量は温度と共に増加する。
【０２２７】
所望の化合物Ａｃ（２２〜４４）の形成はキャップ付加組成物から独立している。キャップ付加なしでさえ、この化合物が形成される。
【０２２８】
６．４  ビルディングブロックＶａｌのカップリング後（１９〜４４）の位置１９におけるキャップ付加
Ｆｍｏｃ（１９〜４４）の合成をセクション６．１に記載したように行った。１５℃／３０℃および室温での実験を異なるバッチで行った。
【０２２９】
【表１１】
2021521156.tif 000014
【０２３０】
結果を図１１に記載する。化合物Ａｃ（１９〜４４）の含有量は、１５℃、ＲＴおよび３０℃において「４０分、１０％のＡｃ２Ｏ、５％のＤＩＰＥＡ」で最大である。化合物Ａｃ（１９〜４４）の含有量は温度と共に増加する。
【０２３１】
所望の化合物Ａｃ（２０〜４４）の形成はキャップ付加組成物の強度と共に増加する。望ましくない化合物（２０〜４４）の含有量はキャップ付加組成物の強度の増加と共に減少する。
【０２３２】
６．５  ビルディングブロックＡｌａのカップリング後（１８〜４４）の位置１８におけるキャップ付加
Ｆｍｏｃ（１８〜４４）の合成をセクション６．１に記載したように行った。１５℃／３０℃および室温での実験を異なるバッチで行った。
【０２３３】
【表１２】
2021521156.tif 000015
【０２３４】
結果を図１２に記載する。望ましくない化合物Ａｃ（１８〜４４）の含有量は、１５℃および３０℃において「４０分、１０％のＡｃ２Ｏ、５％のＤＩＰＥＡ」で最大である。化合物Ａｃ（１８〜４４）の含有量は１５℃から３０℃への温度の増加と共に増加する。
【０２３５】
所望の化合物Ａｃ（１９〜４４）の形成はキャップ付加組成物の強度と共に１５℃および３０℃において増加する。
【０２３６】
６．６  ビルディングブロックＧｌｕのカップリング後（１５〜４４）の位置１５におけるキャップ付加
Ｆｍｏｃ（１５〜４４）の合成をセクション６．１に記載したように行った。１５℃／３０℃および室温での実験を異なるバッチで行った。
【０２３７】
【表１３】
2021521156.tif 000016
【０２３８】
結果を図１３に記載する。望ましくない化合物Ａｃ（１５〜４４）の含有量は、１５℃、ＲＴおよび３０℃において「４０分、１０％のＡｃ２Ｏ、５％のＤＩＰＥＡ」で最大である。化合物Ａｃ（１５〜４４）の含有量は温度と共に増加する。
【０２３９】
所望の化合物Ａｃ（１６〜４４）の形成はキャップ付加組成物から独立している。キャップ付加なしでさえ、この化合物が形成される。
【０２４０】
６．７  ビルディングブロックＬｙｓのカップリング後（１２〜４４）の位置１２におけるキャップ付加
Ｆｍｏｃ（１２〜４４）の合成をセクション６．１に記載したように行った。１５℃／３０℃および室温での実験を異なるバッチで行った。
【０２４１】
【表１４】
2021521156.tif 000017
【０２４２】
結果を図１４に記載する。望ましくない化合物Ａｃ（１２〜４４）の含有量は、１５℃、ＲＴおよび３０℃において「４０分、１０％のＡｃ２Ｏ、５％のＤＩＰＥＡ」で最大である。化合物Ａｃ（１２〜４４）の含有量は温度と共に増加する。
【０２４３】
所望の化合物Ａｃ（１３〜４４）の形成はキャップ付加組成物から独立している。キャップ付加なしでさえ、この化合物が形成される。
【０２４４】
６．８  ビルディングブロックＳｅｒのカップリング後（８〜４４）の位置８におけるキャップ付加
Ｆｍｏｃ（８〜４４）の合成をセクション６．１に記載したように行った。１５℃、ＲＴおよび３０℃での実験を同じバッチで行った。
【０２４５】
【表１５】
2021521156.tif 000018
【０２４６】
結果を図１５に記載する。望ましくない化合物Ａｃ（８〜４４）の含有量は、１５℃、ＲＴおよび３０℃において「４０分、１０％のＡｃ２Ｏ、５％のＤＩＰＥＡ」で最大である。化合物Ａｃ（８〜４４）の含有量は温度と共に増加する。
【０２４７】
６．９  ビルディングブロックＰｈｅのカップリング後（６〜４４）の位置６におけるキャップ付加
Ｆｍｏｃ（６〜４４）の合成をセクション６．１に記載したように行った。１５℃、ＲＴおよび３０℃での実験を同じバッチで行った。
【０２４８】
【表１６】
2021521156.tif 000019
【０２４９】
結果を図１６に記載する。望ましくない化合物Ａｃ（６〜４４）の含有量は、１５℃、ＲＴおよび３０℃において「４０分、１０％のＡｃ２Ｏ、５％のＤＩＰＥＡ」で最大である。化合物Ａｃ（６〜４４）の含有量は温度と共に増加する。
【０２５０】
所望の化合物Ａｃ（７〜４４）の形成はキャップ付加組成物から独立している。キャップ付加なしでさえ、この化合物が形成される。
【０２５１】
温度は、所望の化合物Ａｃ（７〜４４）の形成に対してわずかな影響のみを有する。望ましくない化合物Ａｃ（７〜４４）の含有量はキャップ付加組成物の強度の増加と共に減少する。
【０２５２】
６．１０  要約
Ａｃ（Ｘ〜４４）化合物の望ましくない形成は、キャップ付加期間、キャップ付加組成物およびキャップ付加温度に強く依存する。キャップ付加期間の増加、キャップ付加温度の増加、ならびにキャップ付加組成物中の無水酢酸およびＤＩＰＥＡの含有量の増加と共に、望ましくないＡｃ（Ｘ〜４４）化合物の含有量は増加する。
【０２５３】
６．１１  温度に依存する、「通常」の条件下でのキャップ付加
図１７および１８は、この実施例に記載されるような、「通常」の条件「２０分、１０％のＡｃ２Ｏ、５％のＤＩＰＥＡ」の下でのリキシセナチドの合成における９つの位置での異なる温度でのキャップ付加において得られたデータを要約する。
【０２５４】
図１７は、反応温度に依存した、Ａｃ（Ｘ〜４４）のＧＭＰキャップ付加の比較を示す。１５℃および３０℃について与えた値は、「室温」値（灰色区画）からの正および負の偏差である。
【０２５５】
望ましくない生成物Ａｃ（Ｘ〜４４）の形成は、９つの位置のうちの５つにおいて≦０．５％、３つの位置において０．５％〜１％、１つの位置のみにおいて＞１％である。大きい増加が３０℃において観察され、１５℃においてＡｃ（Ｘ〜４４）の形成はわずかに減少する。
【０２５６】
これは、１５℃〜室温（２０〜２３℃であり得る）で異なる位置においてＧＭＰキャップ付加「２０分、１０％のＡｃ２Ｏ、５％のＤＩＰＥＡ」を行うことができることを意味する。
【０２５７】
図１８は、反応温度に依存した、Ａｃ［（Ｘ−１）〜４４］のＧＭＰキャップ付加の比較を示す。１５℃および３０℃について与えた値は、「室温」値（灰色区画）からの正および負の偏差である。
【０２５８】
ＲＴでのＡｃ［（Ｘ−１）〜４４］化合物の所望の形成に関して、１５℃での偏差は＋０．２３〜−０．２５％である。３０℃での偏差は＋０．２９〜−０．３３％である。所望のキャップ付加生成物Ａｃ［（Ｘ−１）〜４４］の形成は、そのため、Ａｃ（Ｘ〜４４）の望ましくない形成よりも温度に依存しない。
【０２５９】
１５℃および３０℃において、室温でのキャップ付加を考慮して所望の化合物Ａｃ［（Ｘ−１）〜４４］の含有量の負の偏差が観察される。これは、「通常」の条件を用いるキャップ付加は室温で行うべきであることを意味する。
【０２６０】
６．１２  室温での異なるキャップ付加組成物を用いたキャップ付加
図１９および２０は、この実施例に記載されるような、リキシセナチドの合成における９つの位置での室温での異なるキャップ付加組成物を用いたキャップ付加において得られたデータを要約する。
【０２６１】
図１９は、室温でのキャップ付加組成物に依存したＡｃ（Ｘ〜４４）含有量の比較を示す。「キャップ付加なし」、「穏やか」および「４０分」の条件について与えた値は、「通常のキャップ付加」の値（灰色区画）からの正および負の偏差である。
【０２６２】
「２０分、１０％のＡｃ２Ｏ、５％のＤＩＰＥＡ」および「４０分、１０％のＡｃ２Ｏ、５％のＤＩＰＥＡ」の下での望ましくない生成物Ａｃ（Ｘ〜４４）の形成は最大である。「通常」の条件（４０分、１０％のＡｃ２Ｏ、５％のＤＩＰＥＡ）下のＡｃ（Ｘ〜４４）の形成は０．２％〜１．１２％である。強い減少が穏やかなキャップ付加条件において観察される。
【０２６３】
図２０は、室温でのキャップ付加組成物に依存したＡｃ［（Ｘ−１）〜４４］含有量の比較を示す。「キャップ付加なし」、「穏やか」および「４０分」について与えた値は、「通常のキャップ付加」の値（灰色区画）からの正および負の偏差である。
【０２６４】
「キャップ付加なし」、「穏やか」および「４０分」の条件における所望の生成物Ａｃ［（Ｘ−１）〜４４］の形成は、「通常」の条件を考慮して−０．１４％〜＋０．１６％である。
【０２６５】
特に、本発明の「穏やか」な条件（１０分、２％のＡｃ２Ｏ、１％のＤＩＰＥＡ）下で、リキシセナチドの合成において充分なキャップ付加を達成することができる。
【０２６６】
要約すると、穏やかなキャップ付加条件、特に、溶媒中の２％のＡｃ２Ｏおよび１％のＤＩＰＥＡを用いた１０分間のキャップ付加は、本明細書に記載されるように、リキシセナチドの固相合成において有利である。
【０２６７】
ある特定のアミノ酸位置においてカップリング後のキャップ付加を省略した場合、小量で存在する不完全なアミノ酸配列を含む望ましくない副生成物は、精製処理の間に除去することが困難であり得る。
【実施例７】
【０２６８】
固相からのリキシセナチドの切断
この実施例は、固相からのリキシセナチドの本発明による切断に関する。ペプチドリキシセナチドが結合した固相（Ｒｉｎｋ樹脂）を用意した。アミノ酸単位の段階的なカップリングにより樹脂上でペプチドを合成した。
【０２６９】
比較用試験として、先行技術（Ｋｉｎｇ  ｅｔ  ａｌ．、Ｉｎｔ．  Ｊ．  Ｐｅｐｔｉｄｅ  Ｐｒｏｔｅｉｎ  Ｒｅｓ．  １９９０年、３６：２５５〜２６６頁）による切断を実行した。
【０２７０】
本発明による切断方法は、以下の変更により先行技術の方法から区別される：
・２０℃〜２６℃の反応温度
・使用される切断混合物に対する樹脂の比の増加と組み合わせた、５つの成分から２つの成分への切断混合物中の成分の数の低減。
【０２７１】
【表１７】
2021521156.tif 000020
【０２７２】
本発明による切断を使用することにより、先行技術による切断と比較して、粗リキシセナチドの収率をおおよそ５％増加させることが可能であり（２０％から２５％へ）、不純物プロファイルはわずかにのみ変化した。
【０２７３】
この実施例の方法は、パイロットプラントおよび製造スケールへのスケールアップのために好適である。
【０２７４】
表１８は、比較用の方法（表１７を参照）において得られた結果を要約する。リキシセナチド−樹脂（１〜４４）の３つの異なるバッチ２Ｅ００２、２Ｂ００８および２Ｂ００６を使用した。平均および標準偏差を各バッチについて別々に算出した。異なる切断条件間の比較は、リキシセナチド−樹脂（１〜４４）の同じバッチを使用した試験において為されるべきである。異なるバッチにおいて、固相合成が収率に影響力を有する可能性がある。指し示されなければ、リキシセナチド−樹脂（１〜４４）１０ｇを出発材料として使用した。
【０２７５】
【表１８】
2021521156.tif 000021
【０２７６】
７．１  ２０℃〜３５℃の切断温度に依存した切断収率
リキシセナチド−樹脂（１〜４４）からの切断を標準条件（比較用の方法、表１７を参照）下で４時間行った。
【０２７７】
【表１９】
2021521156.tif 000022
【０２７８】
結果：標準条件下での切断後のリキシセナチドの収率は、約２６℃の最適条件までの温度の増加と共に増加する。驚くべきことに、２３℃から２６℃への温度の増加は収率の有意な増加を結果としてもたらす。
【０２７９】
７．２  切断期間に依存した切断収率
リキシセナチド−樹脂（１〜４４）からの切断を２０℃での標準条件（比較用の方法、表１７を参照）下で行った。
【０２８０】
【表２０】
2021521156.tif 000023
【０２８１】
結果：リキシセナチドの収率は切断期間の増加と共に増加する。最大収率は約８時間の切断後に到達される。
【０２８２】
７．３  １２時間の切断期間での温度に依存した切断収率
リキシセナチド−樹脂（１〜４４）からの切断を標準条件（比較用の方法、表１７を参照）下で４時間行った。
【０２８３】
【表２１】
2021521156.tif 000024
【０２８４】
結果：反応温度を増加させた場合に収率は１２時間の切断期間において増加する。実施例７．１において４時間の切断について記載されるように、最大収率は２６℃において得られる。試験７０５８６−０４４（４時間、２６℃、実施例７）および７０５８６−０４５（１２時間、２６℃）は類似した収率を結果としてもたらす（１４．８％対１４．０％）。
【０２８５】
７．４  ２０℃までの切断温度に依存した切断収率
リキシセナチド−樹脂（１〜４４）からの切断を標準条件（比較用の方法、表１７を参照）下で４時間行った。
【０２８６】
【表２２】
2021521156.tif 000025
【０２８７】
結果：２０℃より低い温度での切断は、予期されたように、２０℃での４時間の切断（標準条件、比較用の方法、表１７）により得られた収率に達するためにより長い切断期間を必要とする。
【０２８８】
７．５  改変された切断カクテル
標準的な方法は、５つの成分：フェノール、チオアニソール、１，２−エタンジチオール、水およびＴＦＡを含有する切断カクテルを使用する。実施例の対象は、チオアニソール、フェノールおよび水の１〜３つを省略した簡略された切断カクテルである。リキシセナチド−樹脂（１〜４４）からのリキシセナチド切断の収率を決定した。「改変なし」のカクテルは、表１７「比較用の方法」において記載される。
【０２８９】
【表２３】
2021521156.tif 000026
【０２９０】
結果：１つまたはそれ以上の成分の省略は、試験７１００２−０１０（チオアニソールの省略）を除いて、収率の増加を結果としてもたらす。
【０２９１】
簡略化された切断混合物（切断カクテル）はいくつかの利点を有する：
（ａ）分析および品質管理の簡略化、
（ｂ）コストの低減、
（ｃ）製造方法の取扱いの促進。
【０２９２】
７．６  切断カクテル中のＴＦＡおよび１，２−エタンジチオールの含有量
試験７１００２−０４２から開始して、切断収率に対するＴＦＡ：１，２−エタンジチオール比の影響を調べた：
【０２９３】
【表２４】
2021521156.tif 000027
【０２９４】
結果：１，２−エタンジチオール含有量の増加は、リキシセナチド収率の有意な減少を結果としてもたらす。８．２５：０．２５のＴＦＡ：１，２−エタンジチオール比は、最大収率を有する比であることが見出された（バッチ２Ｅ００２）。この発見は、バッチ２Ｂ００８を使用する実験により確認された。
【０２９５】
７．７  切断カクテルの体積
切断カクテルの体積（およびそのため濃縮）の影響を調べた。
【０２９６】
【表２５】
2021521156.tif 000028
【０２９７】
結果：３０％までの低減は切断収率に影響を有しない。より大きい体積低減は収率の低減に繋がる。
【０２９８】
７．８  切断前の共溶媒（トルオールまたはＣＨ２Ｃｌ２）を用いた「樹脂上のペプチド」の膨潤
この実験の根拠は、樹脂からのリキシセナチドの切断は、５〜８℃までの温度の増加を結果としてもたらすことがあり、それが望ましくない副生成物の形成に繋がることがあり、安定性およびそのため切断収率に負の影響力を潜在的に有するという発見である。有機溶媒中の「樹脂上のペプチド」の膨潤は、発熱を低減する可能性があり、そのため収率を増加させる可能性がある。
【０２９９】
【表２６】
2021521156.tif 000029
【０３００】
結果：有機共溶媒を用いた膨潤は切断収率を増加させない。
【０３０１】
７．９  共溶媒の存在下での濃縮
ＴＦＡより高い沸点を有し、リキシセナチドが不溶性である共溶媒の存在は、樹脂からの切断後の収率を増加させる可能性があり、その理由は、濾液からのＴＦＡの蒸留の間に、共溶媒の存在がリキシセナチドの沈殿に繋がる可能性があり、したがって、Ｋｉｎｇのカクテル中での切断の間にリキシセナチドの分解を防止し得るからである。
【０３０２】
【表２７】
2021521156.tif 000030
【０３０３】
結果：樹脂からのリキシセナチドの切断後の濾液の蒸留におけるトルオールの存在は収率のわずかな増加に繋がる。
【０３０４】
７．１０  本発明の最適化された切断手順
この実施例において得られた上記の結果に基づいて、以下のような最適化された切断条件を選択し、試験した：
（ａ）２６℃の反応温度、
（ｂ）ＴＦＡおよび１，２−エタンジチオールからなる切断カクテル。カクテルは、約９７％のＴＦＡおよび約３％の１，２−エタンジチオールを含有した。「樹脂上のペプチド」１ｇ当たり８．２５ｍｌの量のＴＦＡおよび「樹脂上のペプチド」１ｇ当たり０．２５ｍｌの量の１，２−エタンジチオールを使用した。
【０３０５】
標準的な比較用カクテルと比較してこのカクテルの切断収率をバッチ２Ｅ００２および２Ｂ００８において試験した。
【０３０６】
【表２８】
2021521156.tif 000031
【０３０７】
結果：両方のバッチにおいて、収率は約５％増加し、本発明の方法による固相からのペプチド切断の有意な向上を指し示した。
【０３０８】
７．１１  第２（その後）の切断
切断後、比較用カクテル（Ｋｉｎｇのカクテル）または本発明の切断カクテルを使用して、第２（その後）の切断を行った（表１７を参照）。
【０３０９】
第１の切断を行い、濾液を得た。ＴＦＡをＴＦＡ湿潤樹脂に加えた。１時間の撹拌後、樹脂を濾過した。濾液を合わせ、濃縮した。
【０３１０】
リキシセナチド収率に対する第２の、その後の切断の効果を調べた。
【０３１１】
【表２９】
2021521156.tif 000032
【０３１２】
結果：その後の切断は、約０．７％のみの収率の増加を結果としてもたらす。この増加は、出発材料（ＴＦＡ）のためのコストの顕著な増加、およびペプチド製造物からＴＦＡを除去するための追加の努力と関連付けられる。第１および第２の切断工程の濾液の組合せにより、ＴＦＡの量は顕著に増加することを考慮しなければならない。
【０３１３】
収率の小さい増加を考慮して、第２の切断の省略はコストの低減に繋がり、製造処理の間の取扱いが促進されることが結論される。ＴＦＡの量が低減され、それにより、ＴＦＡの除去が促進される。
【０３１４】
７．１２  分析
２つのバッチ、７１００１−０１６（比較用バッチ、標準的な方法によるＫｉｎｇのカクテルを用いた切断）、および７１００１−０１３（本発明によるリキシセナチドの切断）を製造した。
【０３１５】
【表３０】
2021521156.tif 000033
【０３１６】
結果：バッチはほぼ同一の純度を示した。本発明にしたがって製造されたバッチの含有量はわずかに減少した。本発明のバッチにおいて、出力重量は増加し、収率の増加を結果としてもたらす。
【０３１７】
７．１３  要約
本発明の切断方法は以下の利点を有する：
（ａ）コストの低減および製造能力の増加を結果としてもたらす、リキシセナチド収率の約５％の増加、
（ｂ）２つの成分のみが切断カクテル中に存在するため（比較用のＫｉｎｇのカクテルにおける５つの成分を考慮して）、分析的品質管理が向上し、コストが低減される、
（ｃ）第２の切断の省略はコストの低減に繋がり、製造処理の間の取扱いが促進される。ＴＦＡの量が低減され、それにより、ＴＦＡの除去が促進される。
【０３１８】
以下の態様もまた本発明の対象である：
１．固相からの固相結合ポリペプチドの切断方法であって、ポリペプチドが結合した固相を、トリフルオロ酢酸および１，２−エタンジチオールから本質的になる組成物と約２３℃〜約２９℃の範囲内の温度で接触させることを含む、前記方法。
２．固相はＲｉｎｋアミド樹脂を含む、項目１の方法。
３．ポリペプチドはリンカーによりＲｉｎｋアミド樹脂に結合している、項目１または２の方法。
４．組成物は約９５〜約９９％ｖ／ｖの量のトリフルオロ酢酸を含む、項目１〜３のいずれか１つの方法。
５．組成物は約１〜約５％ｖ／ｖの量の１，２−エタンジチオールを含む、項目１〜４のいずれか１つの方法。
６．組成物は、約９７％ｖ／ｖの量のトリフルオロ酢酸および約３％ｖ／ｖの量の１，２−エタンジチオールから本質的になる、項目１〜５のいずれか１つの方法。
７．組成物は、ポリペプチドが結合した固相と約２５℃〜約２７℃の温度で、または約２６℃〜約２９℃の温度で接触させられる、項目１〜６のいずれか１つの方法。
８．組成物は、ポリペプチドが結合した固相と約２６℃の温度で接触させられる、項目１〜７のいずれか１つの方法。
９．組成物は、ポリペプチドが結合した固相と１〜８時間接触させられる、項目１〜８のいずれか１つの方法。
１０．組成物は、ポリペプチドが結合した固相と４〜８時間接触させられる、項目１〜９のいずれか１つの方法。
１１．組成物は、ポリペプチドが結合した固相と３〜５時間接触させられる、項目１〜９のいずれか１つの方法。
１２．組成物は、ポリペプチドが結合した固相と約４時間接触させられる、項目１〜１１のいずれか１つの方法。
１３．ポリペプチドは、ＧＬＰ−１、そのアナログおよび誘導体、エキセンジン−３、そのアナログおよび誘導体、ならびにエキセンジン−４、そのアナログおよび誘導体から選択される、項目１〜１２のいずれか１つの方法。
１４．ポリペプチドは、エキセンジン−４およびリキシセナチドから選択される、項目１３の方法。
１５．ポリペプチドは、アルビグルチド、デュラグルチドおよびセマグルチドから選択される、項目１３の方法。
１６．ポリペプチドはリキシセナチドである、項目１３または１４の方法。
１７．予め決定されたアミノ酸配列を含むポリペプチドの固相合成の方法であって、
（ａ）保護されていないＣ末端カルボキシル基および保護されたＮ末端アミノ基を含むアミノ酸ビルディングブロックのＣ末端をＲｉｎｋアミド樹脂のような固相にカップリングすること、
（ｂ）アミノ酸ビルディングブロックのＮ末端アミノ基を脱保護すること、
（ｃ）保護されていないＣ末端カルボキシル基および保護されたＮ末端アミノ基を含むアミノ酸ビルディングブロックのＣ末端を工程（ｂ）の保護されていないＮ末端アミノにカップリングすること、
（ｄ）場合により工程（ｂ）および（ｃ）を繰り返すこと、ならびに
（ｅ）項目１〜１６のいずれか１つの方法により固相からポリペプチドを切断すること
を含む、前記方法。
１８．ポリペプチドは、ＧＬＰ−１、そのアナログおよび誘導体、エキセンジン−３、そのアナログおよび誘導体、ならびにエキセンジン−４、そのアナログおよび誘導体から選択される、項目１７の方法。
１９．ポリペプチドは、エキセンジン−４およびリキシセナチドから選択される、項目１７または１８の方法。
２０．ポリペプチドは、アルビグルチド、デュラグルチドおよびセマグルチドから選択される、項目１７または１８の方法。
２１．ポリペプチドはリキシセナチドである、項目１７〜１９のいずれか１つの方法。
２２．トリフルオロ酢酸および１，２−エタンジチオールから本質的になる組成物であって、９５〜９９％ｖ／ｖの量のトリフルオロ酢酸および１〜５％ｖ／ｖの量の１，２−エタンジチオールを含む、前記組成物。
２３．約９７％ｖ／ｖの量のトリフルオロ酢酸および約３％ｖ／ｖの量の１，２−エタンジチオールから本質的になる、項目２２の組成物。
２４．ポリペプチドの固相合成における項目２２または２３の組成物の使用。
２５．組成物は、固相からポリペプチドを切断するために使用される、項目２４の使用。
２６．ポリペプチドは、ＧＬＰ−１、そのアナログおよび誘導体、エキセンジン−３、そのアナログおよび誘導体、ならびにエキセンジン−４、そのアナログおよび誘導体から選択される、項目２４または２５の使用。
２７．ポリペプチドは、エキセンジン−４、リキシセナチド、アルビグルチド、デュラグルチドおよびセマグルチドから選択される、項目２４〜２６のいずれか１つの使用。
２８．ポリペプチドはリキシセナチドである、項目２４〜２７のいずれか１つの使用。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【図１７】
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【図１８】
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【図１９】
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【図２０】
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【配列表】
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【手続補正書】
【提出日】令和2年2月7日(2020.2.7)
【手続補正１】
【補正対象書類名】特許請求の範囲
【補正対象項目名】全文
【補正方法】変更
【補正の内容】
【特許請求の範囲】
【請求項１】
固相からの固相結合ポリペプチドの切断方法であって、該方法は、ポリペプチドが結合した固相を、トリフルオロ酢酸および１，２−エタンジチオールから本質的になる組成物と２３℃〜２９℃の範囲内の温度で接触させることを含み、組成物はポリペプチドが結合した固相と３〜５時間接触させられる、前記方法。
【請求項２】
固相はＲｉｎｋアミド樹脂を含む、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
ポリペプチドはリンカーによりＲｉｎｋアミド樹脂に結合している、請求項１または２に記載の方法。
【請求項４】
組成物は、９５〜９９％ｖ／ｖの量のトリフルオロ酢酸および１〜５％ｖ／ｖの量の１，２−エタンジチオールを含む、請求項１〜３のいずれか１項に記載の方法。
【請求項５】
組成物は、９７％ｖ／ｖの量のトリフルオロ酢酸および３％ｖ／ｖの量の１，２−エタンジチオールから本質的になる、請求項１〜４のいずれか１項に記載の方法。
【請求項６】
組成物は、ポリペプチドが結合した固相と２５℃〜２７℃の温度で、好ましくは２６℃の温度で接触させられる、請求項１〜５のいずれか１項に記載の方法。
【請求項７】
ポリペプチドは、ＧＬＰ−１、そのアナログおよび誘導体、エキセンジン−３、そのアナログおよび誘導体、ならびにエキセンジン−４、そのアナログおよび誘導体から選択される、請求項１〜６のいずれか１項に記載の方法。
【請求項８】
ポリペプチドは、エキセンジン−４、リキシセナチド、アルビグルチド、デュラグルチドおよびセマグルチドから選択される、請求項７に記載の方法。
【請求項９】
予め決定されたアミノ酸配列を含むポリペプチドの固相合成の方法であって、該方法は、
（ａ）保護されていないＣ末端カルボキシル基および保護されたＮ末端アミノ基を含むアミノ酸ビルディングブロックのＣ末端をＲｉｎｋアミド樹脂のような固相に連結すること、
（ｂ）アミノ酸ビルディングブロックのＮ末端アミノ基を脱保護すること、
（ｃ）保護されていないＣ末端カルボキシル基および保護されたＮ末端アミノ基を含むアミノ酸ビルディングブロックのＣ末端を工程（ｂ）の保護されていないＮ末端アミノに連結すること、
（ｄ）場合により工程（ｂ）および（ｃ）を繰り返すこと、ならびに
（ｅ）請求項１〜８のいずれか１項に記載の方法により固相からポリペプチドを切断すること
を含む、前記方法。
【請求項１０】
ポリペプチドは、ＧＬＰ−１、そのアナログおよび誘導体、エキセンジン−３、そのアナログおよび誘導体、ならびにエキセンジン−４、そのアナログおよび誘導体から選択される、請求項９に記載の方法。
【請求項１１】
ポリペプチドは、エキセンジン−４、リキシセナチド、アルビグルチド、デュラグルチドおよびセマグルチドから選択される、請求項９または１０に記載の方法。
【請求項１２】
トリフルオロ酢酸および１，２−エタンジチオールから本質的になる組成物であって、該組成物が、９７〜９９％ｖ／ｖの量のトリフルオロ酢酸および１〜３％ｖ／ｖの量の１，２−エタンジチオールを含む、前記組成物。
【請求項１３】
９７％ｖ／ｖの量のトリフルオロ酢酸および３％ｖ／ｖの量の１，２−エタンジチオールから本質的になる、請求項１２に記載の組成物。
【請求項１４】
ポリペプチドの固相合成における請求項１２または１３に記載の組成物の使用であって、組成物が、特に、固相からポリペプチドを切断するために使用される、前記使用。
【国際調査報告】
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