(57)【要約】  シーケンシングデータの正規化および定量化のための方法およびキット。【選択図】  図１
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
シーケンシングアッセイのリード値の正規化のための方法であって：
シーケンスされるべき１または複数の未知核酸を含むサンプルを提供するステップ；
公知量の内部定量化標準を前記サンプルに添加するステップ；
シーケンシングのために前記内部定量化標準を含むサンプルを調製するステップ、
ここで、前記の調製するステップは、前記サンプル中の前記未知核酸および前記内部定量化標準へ、シーケンシング特異的アダプター部位およびサンプル特異的識別配列を導入するステップを含む；
シーケンシングをして前記サンプルに関するシーケンシングデータセットを生産するステップ、
ここで、前記シーケンシングデータセットは、前記未知核酸（単数または複数）および前記内部定量化標準から観察されるシーケンシングリードを含む；
前記未知核酸（単数または複数）および前記内部定量化標準に由来する前記シーケンシングデータセット内のシーケンシングリード数をカウントするステップ；および
前記シーケンシングデータセットを正規化するステップ、
ここで前記正規化は、（１）前記サンプルに関する前記内部定量化標準に関する最小数のシーケンシングリードの存在に基づいて、データ合否基準を前記シーケンシングデータセットに適用して、（２）実質的に同一の検出限界（ＬＯＤ）が前記シーケンシングアッセイにおいて全ての未知核酸に適用されることを確実にする、
を含む、
方法。
【請求項２】
請求項１の方法であって、
前記サンプル中のそれぞれの未知核酸は、約１０２〜１０７コピー／ｍｌの濃度を有する、
方法。
【請求項３】
請求項１の方法であって、
前記サンプルに添加される公知量の前記内部定量化標準は、約１０４〜１０６コピー／ｍｌの範囲内である、
方法。
【請求項４】
請求項１の方法であって、
前記シーケンシングデータセットを正規化するステップは、ＮＯＲＭシーケンシングリードを維持し、
ここで、ＮＯＲＭ＝シーケンシングリード数＊（Ｆ／前記内部定量化標準に由来する観察されたシーケンシングリード数）であり、ここで、「Ｆ」は、前記内部定量化標準のシーケンシングリードの固定された最小期待数である、
方法。
【請求項５】
請求項４の方法であって、
ここで未知核酸のリードおよび内部定量化標準のリードは、同一の比ＡＬＰＨＡによってそれぞれ別個に正規化されて、ここで、ＡＬＰＨＡ＝Ｆ／前記内部定量化標準に由来する観察されたシーケンシングリード数である、
方法。
【請求項６】
請求項１の方法であって、
正規化後に前記サンプル中の前記未知核酸のインプット量（ＩＱＴ）を計算するステップをさらに含み、
ここで、前記内部定量化標準のインプット量は公知であるので、前記未知核酸のインプット量（ＩＱＴ）は、ＩＱＴ＝前記未知核酸に起因する未知核酸シーケンシングリードの正規化数＊（内部定量化標準のインプット量／Ｆ）によって計算することができる、
方法。
【請求項７】
請求項１の方法であって、
前記サンプルを調製するステップは、サンプルを溶解させるステップ、溶解物から核酸を回収するステップであって回収された核酸を精製してもよいステップ、および、シーケンスされるべき核酸の領域内にプライマー結合部位およびサンプル特異的識別配列を導入するステップを含む、
方法。
【請求項８】
請求項７の方法であって、
付着させるステップは、
シーケンシングプライマー結合部位およびサンプル特異的識別配列を含むデュアルインデックスのシーケンシングオーバーハングを有する標的特異的プライマーを用いて、前記シーケンスされるべき核酸を増幅反応において増幅させるステップ、または、
前記シーケンスされるべき核酸をフラグメント化して、シーケンシングプライマー結合部位およびサンプル特異的識別配列を含むシーケンシング特異的アダプターを、前記フラグメント化された核酸にライゲーションするステップ
のうちの１つを含む、
方法。
【請求項９】
請求項８の方法であって、
前記シーケンスされるべき核酸を増幅させるステップは、
カスタムのオーバーハングを有する標的特異的プライマーを用いて第１のマルチプレックスＰＣＲ反応を行なうステップ、
第１の核酸精製を行なうステップ、
前記の第１のＰＣＲにおいて導入された前記オーバーハングに対してアニーリングまたはライゲーションするデュアルインデックスのシーケンシングアダプタープライマーを用いて第２のＰＣＲ反応を行なうステップ、
ここで、前記のデュアルインデックスのシーケンシングアダプタープライマーは、標的非依存性であり、シーケンシングプライマー結合部位およびサンプル特異的識別配列を含む、
第２の核酸精製を行なうステップ、
を含む、
方法。
【請求項１０】
請求項１の方法であって、
２以上のサンプルをプールするステップおよびそれらを同時にシーケンシングに供するステップをさらに含み、
ここで、前記２以上のサンプルは、調製後、シーケンシング前にプールされる、
方法。
【請求項１１】
請求項１の方法であって、
前記シーケンシングアッセイは、次世代シーケンシングアッセイである、
方法。
【請求項１２】
請求項１の方法であって、
前記シーケンシングアッセイは、
相対的な定量化を行なうステップ、前記シーケンシングアッセイとは別の反応において定量化を行なうステップ、アッセイまたはテンプレートに特異的な定量化標準を用いるステップ、または、競合テンプレートを定量化標準として用いるステップ
を含まない、
方法。
【請求項１３】
定量的な次世代シーケンシング（ＮＧＳ）アッセイを行なうための方法であって、
シーケンスされるべき１または複数の未知核酸を含むサンプルを提供するステップ；
公知量の内部定量化標準を前記サンプルに添加するステップ；
シーケンシングのために前記内部定量化標準を含むサンプルを調製するステップ；
前記サンプル中の前記未知核酸および前記内部定量化標準をシーケンシングしてシーケンシングデータを生産するステップ；
前記未知核酸（単数または複数）および前記内部定量化標準に由来するシーケンシングデータセット内のシーケンシングリード数をカウントするステップ；および
前記シーケンシングデータセットを正規化するステップおよび前記  中（ｉｎ  ｔｈｅ）の前記未知核酸のインプット量（ＩＱＴ）を、ＩＱＴ＝前記未知核酸に由来する未知核酸シーケンシングリードの正規化数＊（内部定量化標準のインプット量／Ｆ）によって計算するステップ
を含み、
ここで「Ｆ」は、前記内部定量化標準のシーケンシングリードの固定された最小期待数である、
方法。
【請求項１４】
請求項１３の方法であって、
前記サンプル中のそれぞれの未知核酸は、約１０２〜１０７コピー／ｍｌの濃度を有する、
方法。
【請求項１５】
請求項１３の方法であって、
前記サンプルに添加される公知量の前記内部定量化標準は、約１０４〜１０６コピー／ｍｌの範囲内である、
方法。
【請求項１６】
請求項１３の方法であって、
ＮＯＲＭ＝シーケンシングリード数＊（Ｆ／前記内部定量化標準に由来する観察されたシーケンシングリード数）によって前記シーケンシングデータセットを正規化するステップをさらに含む、
方法。
【請求項１７】
請求項１６の方法であって、
前記正規化は、別個に、（１）アッセイにおける各サンプルにデータ合否基準を適用して、（２）実質的に同一の検出限界（ＬＯＤ）がそれぞれのサンプル中の全ての未知核酸に適用されるのを確実にする、
方法。
【請求項１８】
請求項１３の方法であって、
前記サンプル中の、存在するならば複数の未知核酸のインプット量（ＩＱＴｉ、ＩＱＴｊ、ＩＱＴｋ・・・ＩＱＴｎ）を、ＩＱＴｎ＝「ｎｔｈ」未知核酸に起因する未知「ｎ」核酸シーケンシングリードの正規化数＊（内部定量化標準のインプット量／Ｆ）として計算するステップをさらに含む、
方法。
【請求項１９】
請求項１３の方法であって、
２以上のサンプルをプールするステップおよびそれらを同時にシーケンシングに供するステップをさらに含み、
ここで、前記２以上のサンプルは、調製後、シーケンシング前にプールされる、
方法。
【請求項２０】
請求項１９の方法であって、
それぞれのプールされたサンプルは、サンプル特異的識別配列の独特なセットをそれと関連付けていて、それにより、プール内の各サンプル由来のシーケンシングデータを区別および分離することができる、
方法。
【請求項２１】
請求項２０の方法であって、
それぞれのプールされたサンプルは、サンプル特異的識別配列の独自の独特なセットと関連付けられた独自の内部定量化標準を有し、
ここで、定量化は、プール内の各サンプル由来の各核酸に別個に適用される、
方法。
【請求項２２】
請求項１３の方法であって、
シーケンスされるべきアッセイ特異的なポジティブコントロールのセットを提供するステップをさらに含み、
ここで、前記ポジティブコントロールは、前記アッセイにおいてシーケンスされる前記の１または複数の未知核酸のそれぞれに対応するポジティブコントロールを含み、
ここで、前記方法は、前記のアッセイ特異的なポジティブコントロールのシーケンシングリードに基づいて、前記の１または複数の未知核酸のそれぞれに対してアッセイ特異的な補正因子を適用するステップをさらに含む、
方法。
【請求項２３】
次世代シーケンシング（ＮＧＳ）アッセイにおいて未知核酸を正規化および定量化するためのキットであって、
内部定量化標準、
ここで前記内部定量化標準は、シーケンスされるべき未知核酸を含むサンプルに公知量で添加されるように構成された核酸である；および
シーケンシングデータセットを正規化するためおよび前記未知核酸のインプット量を計算するための、前記内部定量化標準の使用に関する説明書、
を含み、
ここで、前記内部定量化標準は、約１０４〜１０６コピー／ｍｌの範囲内で前記サンプルに添加されるように構成され、
ここで、前記内部定量化標準を用いて、シーケンシングデータは、ＮＯＲＭ＝シーケンシングリード数＊（Ｆ／前記内部定量化標準に由来する観察されたシーケンシングリード数）によって正規化されて、ここで「Ｆ」は、前記内部定量化標準のシーケンシングリードの固定された最小期待数であり、
ここで、前記内部定量化標準を用いて、前記未知核酸のインプット量（ＩＱＴ）は、ＩＱＴ＝前記未知核酸に由来する未知核酸シーケンシングリードの正規化数＊（内部定量化標準のインプット量／Ｆ）によって計算される、
キット。
【請求項２４】
請求項２３のキットであって、
２以上の内部定量化標準をさらに含み、
ここで、前記の２以上の内部定量化標準のそれぞれは、未知核酸の定量化のための検量線を作成するために、異なる公知濃度で前記サンプルに添加されるように構成される、
キット。
【請求項２５】
請求項２３のキットであって、
シーケンシングプライマー結合部位およびサンプル特異的識別配列を含む、少なくとも前記内部定量化標準に関するシーケンシング特異的アダプターをさらに含む、
キット。
【請求項２６】
請求項２５のキットであって、
前記内部定量化標準の増幅のためおよび前記シーケンシング特異的アダプターに対するアニーリングまたはライゲーションのために構成されたカスタムのオーバーハングを有する標的特異的プライマーをさらに含む、
キット。
【請求項２７】
コンパレーター試験を行なうための方法であって、
１または複数の標的核酸のマルチプレックスの増幅および検出を含む第１のアッセイを提供するステップ、
ここで前記の第１のアッセイは、ある検出限界（ＬＯＤ）を有する；
前記の第１のアッセイの検出およびＬＯＤを確認するために、前記の第１のアッセイとは異なる第２のアッセイを提供するステップ、
ここで前記の第２のアッセイは、以下を含む：
シーケンシングのために少なくとも１つの内部定量化標準を含むサンプルを調製するステップ；
シーケンシングをして前記サンプルに関するシーケンシングデータセットを生産するステップ、
ここで、前記シーケンシングデータセットは、前記標的核酸（単数または複数）および前記内部定量化標準から観察されるシーケンシングリードを含む；
前記標的核酸（単数または複数）および前記内部定量化標準に由来する前記シーケンシングデータセットにおけるシーケンシングリード数をカウントするステップ；および
前記シーケンシングデータセットを正規化するステップ、
ここで前記正規化は、（１）前記サンプルに関する前記内部定量化標準に関する最小数のシーケンシングリードの存在に基づいて、データ合否基準を前記シーケンシングデータセットに適用して、（２）実質的に同一の検出限界（ＬＯＤ）がシーケンシングアッセイにおいて全ての未知核酸に適用されることを確実にし、ここで、前記の第２のアッセイのＬＯＤは、前記の第１のアッセイのＬＯＤと実質的に同じである、
を含む、
方法。
【請求項２８】
請求項２７の方法であって、
ＮＯＲＭ＝シーケンシングリード数＊（Ｆ／前記内部定量化標準に由来する観察されたシーケンシングリード数）によって、前記の第２のアッセイにおいて前記シーケンシングデータセットを正規化するステップをさらに含む、
方法。
【請求項２９】
請求項２８の方法であって、
前記サンプル中の各標的核酸のインプット量（ＩＱＴ）を、ＩＱＴ＝標的核酸に由来する標的核酸シーケンシングリードの正規化数＊（内部定量化標準のインプット量／Ｆ）によって計算するステップをさらに含み、ここで「Ｆ」は、前記内部定量化標準のシーケンシングリードの固定された最小期待数である、
方法。
【請求項３０】
請求項２７の方法であって、
前記の第２のアッセイは次世代シーケンシングアッセイである、
方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
［関連出願の相互参照］
本出願は、２０１８年４月２０日に出願された米国仮特許出願Ｎｏ．６２／６６０，４６０の利益および優先権を主張し、その全体は参照により本明細書中に援用される。
【背景技術】
【０００２】
ポリヌクレオチドを含む塩基配列を解読する能力が生物学的研究に対して影響を及ぼしてきたということは誇張ではない。過去４０年間の大部分、ジデオキシＤＮＡ「サンガー」シーケンシングが、多くの実験室において標準的なシーケンシング技術として用いられていて、その全盛期はヒトゲノムシーケンスの完了であった。しかしながら、サンガーシーケンシングは単一アンプリコンで行なわれるので、サンガーシーケンシングのスループットは制限され、大スケールのサンガーシーケンシングプロジェクトは高価かつ大変である。
【０００３】
ＤＮＡシーケンシングの方法論は、「次世代」シーケンシング（ＮＧＳ）技術の出現によって変わり、その技術は、何十万〜何百万ものＤＮＡフラグメントを並行して処理し、生産される配列の塩基あたり低コストかつ単一のシーケンシングランにおいてギガベース（Ｇｂ）〜テラベース（Ｔｂ）スケールのスループットをもたらす。２００１年にＳｃｉｅｎｃｅおよびＮａｔｕｒｅが共に堂々公開した最初のヒトゲノムは、配列解析に１５年を要し、３０億ドル近くかかったという事実を顧みると、このことは驚くべきことである。対照的に、現代のＮＧＳシーケンサーは、およそ１０００ドルで１日に４５を超えるヒトゲノムをシーケンスすることができる。結果として、今では、ＮＧＳを用いて全ゲノムの特徴を定義してそれらの間の違いを描写することができ、研究者が遺伝的変異の全範囲をより深く理解して、表現型変異におけるその役割および複雑な体質の病因を定義するのを可能にする。
【０００４】
それにもかかわらず、臨床および診断用途へのＮＧＳの適用は、ラボ内およびラボ間の変動が高いことによって制限され得る。これらの問題は、任意の結果の価値を減少させて、分子診断におけるこれらのシーケンシング方法の使用を妨げている。例えば、ＮＧＳライブラリーの調製およびシーケンシング反応の準備の複雑性および可変性は、サンプル間およびラボ間の変動をもたらし得て、このことは、例えば、サンプル中に検出される病原体または遺伝的変異の普及を決定するのを困難にさせ得る。
【０００５】
別の例では、診断アッセイにおいて標的化される病原体の多くは（例えば、ＦｉｌｍＡｒｒａｙパネル、ＢｉｏＦｉｒｅ，ＳＬＣ，ＵＴ）、環境中に、およびサンプル採取地の共生生物として見られる。例えば、肺炎のような疾患においては、最も頻繁に遭遇する細菌性病原体は、中咽頭管の「常在菌叢」としても存在し得て、中咽頭管はしばしば、サンプル回収部位（唾液および気管吸引液または鼻咽頭スワブ（ＮＰＳ））または気管支肺胞洗浄（ＢＡＬ）のようなより侵襲性の検体回収経路である。常在菌叢による頻繁な汚染またはその共回収は、そのような場合において本質的に不可避である。そのような状況では、ＮＧＳの診断力は、ＮＧＳが、シーケンシングデータにおいて検出の臨床関連性を解釈するための非常に多くの固有のコンテキストを提供することなく、高く濃縮された生物および最小限に濃縮された生物の両方の存在を検出することができる可能性（すなわち、ＮＧＳは、ほとんど無限のダイナミックレンジを有する）に起因して（例えば、ＮＧＳは、検出される病原体が臨床的に関連のある濃度で存在するかどうかについていかなる示度も提供せずに、病原体（すなわち、病原体由来の核酸）の存在および他の検出される核酸または生物に対するその相対存在量（％）を検出し得る）、臨床的に関連のある生物を共生生物または汚染から容易に区別することができないという事実によって制限され得る。
【０００６】
微生物学実験における伝統的なプラクティスでは、臨床的に関連のない共生生物のキャリッジ（ｃａｒｒｉａｇｅ）から細菌の病原体ロード（ｐａｔｈｏｇｅｎｉｃ  ｌｏａｄｓ）を区別するために、半定量的または定量的な培養を行なってきた。異なる診断力価ガイドラインが、異なるタイプの検体に関して存在する。同様の手法がＮＧＳアッセイに対して適用されている。元来、ＮＧＳは、半定量的データを提供するので、サンプル調製誤差またはシーケンシング効率の違いのような混同因子の不存在下では、標的に関するシーケンシングリード数は、標的の多さに関連し得る。いくつかのグループが、この関連性の利点を用いて、ＮＧＳにおいて未知核酸に関する相対的定量化データを得ている。例えば、サンプル中の核酸の相対存在量は、１または複数のサンプルの一連の段階希釈（実例として、１０倍希釈）を行なって、一連の希釈サンプルをシーケンスして、それから、それぞれで見られたリード数をプロットすることによって決定することができる。これらのグループは、一連の希釈サンプルにおけるリード数の間の関係が線形関係を有する場合（例えば、１０倍希釈はシーケンシングリード数が約１０分の１に減少して、約１００倍希釈はシーケンシングリード数が１００分の１に減少するなど）、シーケンシングリード数は、サンプル中に存在する異なる標的を相対的に定量化する（例えば、高濃度および低濃度の標的を相対的に定量化する）ために用いることができると仮定している。例えば、第１のシーケンスした核酸のシーケンシングリードが１０であり、第２のシーケンシングリードが１００である場合、このシナリオでは、第２の核酸は第１の核酸よりも１０倍濃いと結論付けることができる。これを用いて、例えば、遺伝子重複を検出することができ、および／または、ゲノム中の遺伝子のコピー数を決定することができる。それにもかかわらず、この手法は単に相対的なものであり、結果として、参照として用いることのできる公知の絶対的濃度の核酸が存在しないので、第１の核酸または第２の核酸の濃度を決定することができない。結果として、この手法はそれほど正確ではない。例えば、高濃度と低濃度の検出の間の違いが大きい場合（例えば、数桁）、低濃度および／または高濃度における分解能が失われ得て、本当の違いと比べて、高低間に倍数差（ｆｏｌｄ  ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ）の低下をもたらす。この手法はまた、単に相対的なだけであり、サンプル／シーケンシングラン特異的であり、ラボ内およびラボ間の変動を説明するものではないという事実に起因して、それほど具体的なものではない。
【０００７】
定量化するための別の一般的な手法は、ＮＧＳに関して用いられるサンプル中の核酸を別個の反応において定量化することである。例えば、定量的ＰＣＲ（ｑＰＣＲ）は、しばしば検量線手法を用いて、絶対的定量化のために機能することができる。この手法では、公知量の単一の参照テンプレートに対するリアルタイムＰＣＲから得られたクロッシングポイント（Ｃｐ）の値をプロットすることによって作成される検量線は、目的サンプル中の同一の標的遺伝子の量を推定するために用いることのできる回帰直線を提供する。参照テンプレートの段階希釈（実例として、１０倍希釈）は、定量化される必要のある特定の遺伝子標的を含むサンプルと一緒に設定される。様々な別個の反応が行われて、それは通常、各レベルの参照標的に関する反応と、目的サンプルに関するそれぞれの反応である。また、アッセイ特異的なＰＣＲ効率の差は定量化にしばしば影響するので、別個の参照テンプレートを用いた別個の検量線が、異なる遺伝子標的に関して設定され得る。
【０００８】
しかしながら、ＮＧＳの力は、その大規模な並行処理にあり−すなわち、１０ｓ〜１００ｓ〜１０００ｓのサンプル（１０ｓ  ｔｏ  １００ｓ  ｔｏ  １０００ｓ  ｏｆ  ｓａｍｐｌｅｓ）を同時かつ並行して処理することができる。標的を定量化するためにｑＰＣＲを用いることは、このシナリオでは挑戦であり得る。別個の核酸反応物の１００ｓ〜１０００ｓの標的の定量化がｑＰＣＲを用いて実施されているが（例えば、Ｈｉｇｈ−Ｔｈｒｏｕｇｈｐｕｔ  Ｄｒｏｐｌｅｔ  Ｄｉｇｉｔａｌ  ＰＣＲ  Ｓｙｓｔｅｍ  ｆｏｒ  Ａｂｓｏｌｕｔｅ  Ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｏｎ  ｏｆ  ＤＮＡ  Ｃｏｐｙ  Ｎｕｍｂｅｒ，Ｈｉｎｄｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，Ａｎａｌ  Ｃｈｅｍ．２０１１  Ｎｏｖ  １５；８３（２２）：８６０４−８６１０を参照）、この手法は技術的に挑戦であり、特別な設備を必要とする。また、ｑＰＣＲ手法は一般に、シングルプレックスおよびマルチプレックスの反応においてアッセイが同一のＰＣＲ効率を有すると仮定し、またはそれを必要とするが、そういうことはないであろう。さらに、現在までに公表されている検量線に基づく定量化手法は全て、外部の反応および検量線の計算をセットアップすることを要する。
【０００９】
ＮＧＳにおいて核酸を定量するための別の手法は、アッセイ特異的な競合テンプレートを用いる（例えば、ＵＳ２０１５／０２９２００１を参照）。そのような方法は、ネイティブの標的配列のために特に設計したそれぞれの競合内部増幅コントロールに対する、ネイティブの標的配列の比例関係に依拠することによって、サンプル中の核酸コピー数の測定において再現性を与えることを目的としている。ＵＳ２０１５／０２９２００１に記載される競合テンプレートは、ネイティブの目的核酸テンプレートと同一のプライミング部位であるが、ＰＣＲ反応におけるネイティブ標的のカイネティクスに似せてＰＣＲ効率における標的特異的な変動について制御するように設計された（例えば、人工の）プライマー間配列を用いる。しかしながら、結果として、そのような手法はアッセイおよび目的テンプレートに特異的である（すなわち、競合テンプレートは、標的およびサンプルに特異的である）。ＵＳ２０１５／０２９２００１に記載される方法を用いるためには、新しいアッセイおよび／またはシーケンスされるべきテンプレートのそれぞれについて新しい競合内部増幅コントロールを設計する必要があり、そのことは、この手法の一般的適用性を制限する。さらに、標的は一般に、標的＋競合テンプレートのシーケンシング応答から標的のシーケンシング応答のみをデコンヴォルーションするために、競合テンプレートとともにおよび伴わずにシーケンスされる必要がある。このことは、この手法の複雑レベルを上げ、計算に誤差を生じさせる潜在性を有する。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１０】
したがって、ＮＧＳに関する普遍的な内部定量化標準および関係がある定量化方法が、当該分野において必要とされている。患者サンプルからの核酸の精製がＮＧＳのワークフローに組み込まれるので、核酸抽出におけるサンプル由来（ｄｒｉｖｅｎ）の可変性の効果、および、ＰＣＲ（したがって定量化）に対する任意のサンプル由来のインヒビターの効果を、外部検量線によって簡単に概算することはできない。
【課題を解決するための手段】
【００１１】
本開示は、複数の標的種の同時の定量化を提供することができて、シーケンシング成果におけるアッセイ特異的およびマトリックス由来の分散の効果も考慮する、普遍的な内部標準に関する方法、システム、およびキットを提供する。標準は、普遍的な標準であるので、標的、サンプル、またはアッセイに特異的でなく、したがって、本明細書中に記載の標準、方法、およびキットは、任意のシーケンシングアッセイ（例えば、ＮＧＳアッセイ）において用いることができる。本開示はまた、アッセイ特異的な補正のためのプロセスコントロールおよび／または検出限界（ＬＯＤ）コントロール（単数または複数）の使用を教示する。
【００１２】
本開示の一態様では、シーケンシングアッセイのリード値の正規化のための方法が開示される。当該方法は、シーケンスされるべき１または複数の未知核酸を含むサンプルを提供するステップ；公知量の内部定量化標準（ＩＱＳ）をサンプルに添加するステップ；シーケンシングのために内部定量化標準を含むサンプルを調製するステップ；シーケンシングをしてサンプルに関するシーケンシングデータセットを生産するステップ（ここでシーケンシングデータセットは、未知核酸（単数または複数）および内部定量化標準から観察されるシーケンシングリードを含む）；未知核酸（単数または複数）および内部定量化標準に由来するシーケンシングデータセット内のシーケンシングリード数をカウントするステップ；およびシーケンシングデータセットを正規化するステップを含み、ここで正規化は、（１）サンプルに関する内部定量化標準に関する最小数のシーケンシングリードの存在に基づいて、データ合否基準をシーケンシングデータセットに適用し（例えば、シーケンシングリードの正規化数が維持される）および（２）実質的に同一の検出限界（ＬＯＤ）がシーケンシングアッセイにおいて全ての未知核酸に適用されるのを確実にする。一実施態様では、シーケンシングのために内部定量化標準を含むサンプルを調製するステップは、シーケンシングプライマー結合部位およびサンプル特異的識別配列を、サンプル中の未知核酸および内部定量化標準に導入するステップを含んでよい。別の実施態様では、シーケンシングのために内部定量化標準を含むサンプルを調製するステップは、サンプル中の細胞の溶解、溶解物からの核酸の回収、核酸精製、オーバーハングを有する標的特異的プライマーを用いた第１のマルチプレックスＰＣＲ、第２の核酸精製、サンプル特異的シーケンシングアダプタープライマーを用いた第２のマルチプレックスＰＣＲ、第３の核酸精製、および、複数の同様に調製されたサンプルをシーケンシングのためにプールするステップのうちの１つまたは複数を含んでよい。標準は、サンプル調製の最初に添加されるので、標準は全てのステップを通して保有されて（ｃａｒｒｉｅｄ）、体系的な喪失および効率が全てのステップについて説明される（ａｃｃｏｕｎｔｅｄ  ｆｏｒ）。
【００１３】
一実施態様では、サンプル中のそれぞれの未知核酸は、約０〜１０１３コピー／ｍｌの濃度を有してよく、−すなわち、場合によっては、未知核酸は存在しなくてよく（０コピー／ｍｌ）、または、未知核酸の濃度は非常に高くてもよい（例えば、１０１３コピー／ｍｌまで）。典型的なサンプルでは、未知核酸の濃度は、約１０３〜１０９コピー／ｍｌの範囲であってよい。一実施態様では、サンプルに加えられるＩＱＳの公知量とは、約１０４〜１０６コピー／ｍｌの範囲内である（例えば、約５×１０５コピー／ｍｌ）。検出限界（ＬＯＤ）に応じて、または（ＬＯＤ）に影響を与えるために、より多いＩＱＳまたはより少ないＩＱＳがサンプルに加えられてよい。一実施態様では、１つのタイプのＩＱＳがサンプルに加えられてよい。別の実施態様では、２以上の参照点を用いて検量線が定量化のために作成され得るように、２以上のタイプのＩＱＳが、異なるインプット濃度でサンプルに添加されてよい。
【００１４】
一実施態様では、サンプルに添加された内部定量化標準の量と、内部定量化標準に関するシーケンシングリード数との間に、線形関係が好ましくは存在してよい。すなわち、内部定量化標準に起因するシーケンシングリード数は、内部定量化標準のインプット量と等しくなくてよいが、リード数はインプット量に線形で関係すべきである。関係が線形でないならば、それは、添加する内部定量化標準、サンプル調製、またはシーケンシングの１つまたは複数に問題があることの示度として解釈され得る。
【００１５】
一実施態様では、正規化は、シーケンシングリードの正規化数（ＮＯＲＭ）を維持し、ここで、ＮＯＲＭ＝シーケンシングリード数＊（Ｆ／内部定量化標準に由来する観察されたシーケンシングリード数）である。「Ｆ」は、固定された、ＩＱＳシーケンシングリードの最小期待数を定義するユーザー設定の正規化係数である。一実施態様では、Ｆの値は、アッセイ特異的であってよい。「Ｆ」は、シーケンシングアッセイの検出限界（ＬＯＤ）に十分なシーケンシングリード深度を確実にするように設定されたシーケンシングリード数の値である。ＮＯＲＭは、シーケンシングデータのサブセットを表わしてよく、さらなる分析および定量化のために保存されるシーケンシングリードの数である。例えば、内部定量化標準に由来する観察されたシーケンシングリード数が「Ｆ」と同じならば、ＮＯＲＭは、記録されるシーケンシングリード数と等しい。一方で、データセット内の内部定量化標準のシーケンシングリードの数が「Ｆ」よりも大きいならば、ＮＯＲＭは、データを縮小させて（ｄｏｗｎｓｃａｌｅ）、オーバーリード（ｏｖｅｒ  ｒｅａｄ）を説明して（ａｃｃｏｕｎｔ  ｆｏｒ）、同一のＬＯＤが全てのサンプルにわたって適用されるのを確実にする。データセット内の内部定量化標準のシーケンシングリードの数が「Ｆ」未満ならば、そのサンプル由来のデータは却下され得る。一実施態様では、データは、関係ＡＬＰＨＡによって正規化されてよく、ここで未知核酸のリードおよび内部定量化標準のリードは、同一の比ＡＬＰＨＡによってそれぞれ別個に正規化されて、ここで、ＡＬＰＨＡ＝Ｆ／内部定量化標準に由来する観察されたシーケンシングリード数である。
【００１６】
一実施態様では、シーケンシングリード深度は、約１０００の内部定量化標準シーケンシングリード〜約１００，０００の内部定量化標準シーケンシングリードの範囲内、好ましくは約２０００の内部定量化標準シーケンシングリード〜約７５，０００の内部定量化標準シーケンシングリード、より好ましくは約５０００の内部定量化標準シーケンシングリード〜約５０，０００の内部定量化標準シーケンシングリード、または、最も好ましくは少なくとも５０００の内部定量化標準シーケンシングリードである。もし、「Ｆ」よりも少ないシーケンシングリードが内部定量化標準に対して記録されたら、不十分な「Ｆ」リード数と関連するサンプルに関するデータは却下されてよい。
【００１７】
一実施態様では、当該方法は、正規化後にサンプル中の未知核酸のインプット量（ＩＱＴ）を計算するステップを含んでよく、ここで、内部定量化標準のインプット量は公知であるので、未知核酸のインプット量（ＩＱＴ）は、ＩＱＴ＝未知核酸に起因する未知核酸シーケンシングリードの正規化数＊（内部定量化標準のインプット量／Ｆ）によって計算することができる。一実施態様では、当該方法は、ＩＱＴｎ＝「ｎｔｈ」未知核酸に起因する未知「ｎ」核酸シーケンシングリードの正規化数＊（内部定量化標準のインプット量／Ｆ）として、正規化後、サンプル中の、存在するならば複数の未知核酸のインプット量（ＩＱＴｉ、ＩＱＴｊ、ＩＱＴｋ・・・ＩＱＴｎ）を計算することにより、サンプル中の２以上の未知核酸のインプット量を計算するステップを含んでよい。
【００１８】
一実施態様では、２以上のサンプルは、それらをシーケンシングに供する前にプールされてよい。一実施態様では、サンプルは、個々のサンプルがシーケンシングのために調製された後、実際のシーケンシングの前に、プールされてよい。一実施態様では、２〜１０００サンプルが、調製後、シーケンシング前にプールされてよく、好ましくは２〜５００サンプルが、調製後、シーケンシング前にプールされてよく、より好ましくは２〜１００サンプルが、調製後、シーケンシング前にプールされてよく、より好ましくは２〜５０サンプルが、調製後、シーケンシング前にプールされてよく、または最も好ましくは２〜３２サンプルが、調製後、シーケンシング前にプールされてよい。シーケンシングのためにプールされ得るサンプルの数は、一般に、生じるデータ内のサンプル間を区別する能力によってのみ制限される。例えば、プール内のサンプルは、特異的なサンプルに由来するシーケンシングデータを特定するために用いられるサンプル特異的シーケンシングアダプタープライマーによって区別され得る。この例では、区別は、シーケンシングアダプタープライマーの長さおよび多様性によって制限され得る。
【００１９】
一実施態様では、それぞれのプールされたサンプルは、サンプル特異的識別配列の独特なセットをそれと関連付けていて、それにより、プール内の各サンプル由来のシーケンシングデータを区別および分離することができる。一実施態様では、それぞれのプールされたサンプルは、サンプル特異的識別配列の独自の独特なセットと関連付けられた独自の内部定量化標準を有し、ここで、正規化は、プール内の各サンプルに別個に適用される。一実施態様では、正規化は、別個に、（１）データ合否基準をプール内の各サンプルに適用して、（２）実質的に同一の検出限界（ＬＯＤ）がそれぞれのサンプル中の全ての未知核酸に適用されるのを確実にする。
【００２０】
一実施態様では、当該方法は、各サンプルに起因するデータが正規化された後に、それぞれのサンプル中の未知核酸のインプット量（ＩＱＴ）を計算するステップを含んでよい。各サンプルにおける内部定量化標準のインプット量は公知なので、未知核酸のインプット量（ＩＱＴ）を計算することができる。プールされたサンプル中の複数の未知核酸のインプット量（ＩＱＴｉ、ＩＱＴｊ、ＩＱＴｋ・・・ＩＱＴｎ）は、ＩＱＴｎ＝「ｎｔｈ」未知核酸に起因する未知「ｎ」核酸シーケンシングリードの正規化数＊（内部定量化標準のインプット量／Ｆ）として正規化後に計算することができる。
【００２１】
一実施態様では、シーケンシングのためにサンプル（単数または複数）を調製するステップは、溶解物を産生するためのサンプル溶解、溶解物からの核酸の回収（回収された核酸を精製してもよい）、および、シーケンスされるべき核酸の領域にプライマー結合部位およびサンプル特異的識別配列を導入するステップを含んでよい。付着は、シーケンシングプライマー結合部位およびサンプル特異的識別配列を含むデュアルインデックスのシーケンシングオーバーハングを有する標的特異的プライマーを用いて増幅反応においてシーケンスされるべき核酸を増幅させるステップ、または、シーケンスされるべき核酸をフラグメント化して、シーケンシングプライマー結合部位およびサンプル特異的識別配列を含むシーケンシング特異的アダプターを、フラグメント化された核酸にライゲーションするステップ、のうちの１つを含んでよい。
【００２２】
一実施態様では、シーケンスされるべき核酸を増幅させるステップは、カスタムのオーバーハングを有する標的特異的プライマーを用いて第１のマルチプレックスＰＣＲ反応を行なうステップ、第１の核酸精製を行なうステップ、第１のＰＣＲにおいて導入されたカスタムのオーバーハングにアニーリングまたはライゲーションするデュアルインデックスのシーケンシングアダプタープライマーを用いて第２のＰＣＲ反応を行なうステップ、および第２の核酸精製を行なうステップを含んでよい。一実施態様では、デュアルインデックスのシーケンシングアダプタープライマーは、標的非依存性であり、シーケンシングプライマー結合部位およびサンプル特異的識別配列を含む。
【００２３】
一実施態様では、増幅は、シーケンスされるべきサンプル中の核酸の濃度のダイナミックレンジの上限を制限または圧縮する（ｃｏｍｐｒｅｓｓ）ように行なわれてよい。このことは、シーケンシングおよびデータ分析の負荷を減少させ得て、非常に高く濃縮された核酸のみがシーケンシングデータセット内に現れる事例の数を減少させ得る。一実施態様では、増幅は、所望のダイナミックレンジよりも高い濃度で存在する核酸の増幅をプラトーにするように、第１のマルチプレックスＰＣＲ反応におけるサイクル数または標的特異的プライマーの濃度の１つまたは複数を制限することを含んでよく、例としては、圧縮が行われて、核酸のダイナミックレンジを約１０７コピー／ｍｌのプラトー濃度まで圧縮させてよく、一方で、１０７コピー未満／ｍｌで存在する核酸は、指数増幅段階の濃度範囲で存在する。他の実施態様では、増幅は、ダイナミックレンジの他の部分を限定または圧縮するために用いられ得る。例えば、シーケンシングアッセイにおいて高い濃度種のみが興味対象ならば、より高い濃度の核酸（例えば、＞１０５コピー／ｍｌ）のみが観察されるように増幅を制限してよい。
【００２４】
任意の前述の方法の実施態様では、シーケンシングアッセイは次世代シーケンシングアッセイであってよい。
【００２５】
別の態様では、定量的な次世代シーケンシング（ＮＧＳ）アッセイを行なうための方法が開示される。当該方法は、シーケンスされるべき１または複数の未知核酸を含むサンプルを提供するステップ（ここで、未知核酸は約０〜１０１３コピー／ｍｌの濃度を有する）；サンプルに公知量のＩＱＳを添加するステップ（ここで、公知量のＩＱＳは、（アッセイの目的とされるダイナミックレンジに応じて）約１０４〜１０６コピー／ｍｌの範囲内である；シーケンシングのために内部定量化標準を含むサンプルを調製するステップ；サンプル中の未知核酸および内部定量化標準をシーケンシングしてシーケンシングデータを生産するステップ；未知核酸（単数または複数）および内部定量化標準に由来するシーケンシングデータセット内のシーケンシングリード数をカウントするステップ；およびシーケンシングデータセットを正規化するステップおよび  中の未知核酸のインプット量（ＩＱＴ）を、ＩＱＴ＝未知核酸に由来する未知核酸シーケンシングリードの正規化数＊（内部定量化標準のインプット量／Ｆ）によって計算するステップ（ここで、「Ｆ」は、内部定量化標準のシーケンシングリードの固定された最小期待数である）を含む。
【００２６】
一実施態様では、正規化するステップは、シーケンシングリードの正規化数（ＮＯＲＭ）を維持するステップを含んでよく、ここで、ＮＯＲＭ＝シーケンシングリード数＊（Ｆ／内部定量化標準に由来する観察されたシーケンシングリード数）である。正規化は、別個に、（１）アッセイにおける各サンプルにデータ合否基準を適用して、（２）実質的に同一の検出限界（ＬＯＤ）がそれぞれのサンプル中の全ての未知核酸に適用されるのを確実にする。
【００２７】
一実施態様では、未知核酸は、約１０１〜１０１２コピー／ｍｌまたは、好ましくは、約１０１〜１０９コピー／ｍｌの濃度を有してよい。一実施態様では、「Ｆ」はアッセイのＬＯＤに関連する。例えば、約１０５コピー／ｍｌのＩＱＳのインプット濃度に関して「Ｆ」が約１０２〜１０３ならば、サンプル中の未知核酸に関するＬＯＤは約１０３〜１０２コピー／ｍｌである。同一インプット濃度のＩＱＳに関して「Ｆ」が約１０３〜１０４ならば（すなわち、リード深度が増大して、各リードのウエイト（ｗｅｉｇｈｔ）が相応して増大する）、サンプル中の未知核酸に関するＬＯＤは約１０２〜１０１コピー／ｍｌである。所定のインプット濃度のＩＱＳに関して、リード深度を増大または低減させることにより（すなわち、「Ｆ」の程度を増大または低減させることにより）、および、相応して、それぞれの個々のシーケンシングリードに起因するウエイトを増大または低減させることにより、ＬＯＤを強める（ｒａｉｓｅｄ）または弱める（ｌｏｗｅｒｅｄ）ことができる。
【００２８】
一実施態様では、定量的次世代シーケンシング（ＮＧＳ）アッセイを実施するための方法は、サンプル中の、存在するならば複数の未知核酸のインプット量（ＩＱＴｉ、ＩＱＴｊ、ＩＱＴｋ・・・ＩＱＴｎ）を、ＩＱＴｎ＝「ｎｔｈ」未知核酸に起因する未知「ｎ」核酸シーケンシングリードの正規化数＊（内部定量化標準のインプット量／Ｆ）として計算するステップを含んでよい。
【００２９】
一実施態様では、定量的次世代シーケンシング（ＮＧＳ）アッセイを実施するための方法は、２以上のサンプルをプールするステップおよびそれらをシーケンシングに同時に供するステップを含んでよく、ここで、２以上のサンプルは、調製後、シーケンシング前にプールされる。一実施態様では、それぞれのプールされたサンプルは、サンプル特異的識別配列の独特なセットをそれと関連付けていてよく、それにより、プール内の各サンプル由来のシーケンシングデータを区別および分離することができる。一実施態様では、それぞれのプールされたサンプルは、サンプル特異的識別配列の独自の独特なセットと関連付けられた独自の内部定量化標準を有してよく、ここで、定量化は、プール内の各サンプル由来の各核酸に別個に適用される。上記の１つのサンプル中の複数の核酸と同じように、正規化および定量化を、複数のサンプル中の複数の核酸に適用することができる。当該方法は、プールされたサンプル中の複数の未知核酸のインプット量（ＩＱＴｉ、ＩＱＴｊ、ＩＱＴｋ・・・ＩＱＴｎ）を、ＩＱＴｎ＝「ｎｔｈ」未知核酸に起因する未知「ｎ」核酸シーケンシングリードの正規化数＊（内部定量化標準のインプット量／Ｆ）として計算するステップを含む。
【００３０】
一実施態様では、定量的次世代シーケンシング（ＮＧＳ）アッセイを実施するための方法は、シーケンスされるべきアッセイ特異的なポジティブコントロールのセットを提供するステップを含んでよく、ここで、ポジティブコントロールは、アッセイにおいてシーケンスされる１または複数の未知核酸のそれぞれに対応するポジティブコントロールを含む。一実施態様では、定量的次世代シーケンシング（ＮＧＳ）アッセイを実施するための方法は、アッセイ特異的なポジティブコントロールのシーケンスリード数に基づいて、アッセイ特異的な補正因子を１または複数の未知核酸のそれぞれに適用するステップを含んでよい。ＰＣＲ増幅の効率が完全でない場合、または、標的および内部標準の効率が異なる場合、補正因子は、反応にインプットされるポジティブコントロールの量に依存し得る。したがって、一実施態様では、ポジティブコントロールの量は、対応する標的の目的とするダイナミックレンジの中間であるべきである。
【００３１】
さらに別の態様では、次世代シーケンシング（ＮＧＳ）アッセイにおいて未知核酸を正規化および定量化するためのキットが記載される。当該キットは、内部定量化標準（ＩＱＳ）（ここでＩＱＳとは、シーケンスされるべき未知核酸を含むサンプルに公知量で添加されるように構成された核酸である）；ならびに、シーケンシングデータセットを正規化するためおよび未知核酸のインプット量を計算するための、ＩＱＳの使用に関する説明書を含んでよい。一実施態様では、当該キットは、未知核酸の定量化のための検量線を作成するために異なる公知濃度で加えられるＩＱＳのセットを含んでよい。一実施態様では、キットに提供されるＩＱＳは、約１０４〜１０６コピー／ｍｌの範囲内でサンプルに加えられるように構成され得るが；ＩＱＳ（単数または複数）の量は、検出範囲の上限および下限を膨張または圧縮させるために増大または低減され得る。一実施態様では、内部定量化標準を用いて、シーケンシングリードの正規化数（ＮＯＲＭ）を維持するようにシーケンシングデータが正規化されて（ここで、ＮＯＲＭ＝シーケンシングリード数＊（Ｆ／内部定量化標準に由来する観察されたシーケンシングリード数）であり、「Ｆ」は、内部定量化標準のシーケンシングリードの固定された最小期待数である）、そして、内部定量化標準を用いて、ＩＱＴ＝未知核酸に由来する未知核酸シーケンシングリードの正規化数＊（内部定量化標準のインプット量／Ｆ）によって未知核酸のインプット量（ＩＱＴ）が計算される。
【００３２】
一実施態様では、当該キットは、シーケンシングアダプター部位およびサンプル特異的識別配列を含む、少なくとも内部定量化標準に関するシーケンシング特異的アダプターをさらに含む。一実施態様では、当該キットは、内部定量化標準の増幅およびシーケンシング特異的アダプターに対するアニーリングまたはライゲーションのために構成されたカスタムのオーバーハングを有する標的特異的プライマーをさらに含んでよい。
【００３３】
さらに別の態様では、コンパレーター試験を行なうための方法が記載される。コンパレーター試験を実施するための方法は：１または複数の標的核酸のシングルまたはマルチプレックスの増幅および検出を含む第１のアッセイを提供するステップ（第１のアッセイは、ある検出限界（ＬＯＤ）を有する）、および、第１のアッセイの検出およびＬＯＤを確認するために、第１のアッセイとは異なる第２のアッセイを提供するステップを含んでよい。第２のアッセイは、第１のアッセイと少なくとも同一のＬＯＤを有するべきであるが、より低いＬＯＤを有してもよい。１つまたは複数の実施態様では、第２のアッセイは：シーケンシングのために少なくとも１つの内部定量化標準を含むサンプルを調製するステップ；シーケンシングをしてサンプルに関するシーケンシングデータセットを生産するステップ（ここで、シーケンシングデータセットは、標的核酸（単数または複数）および内部定量化標準から観察されるシーケンシングリードを含む）；標的核酸（単数または複数）および内部定量化標準に由来するシーケンシングデータセットにおけるシーケンシングリード数をカウントするステップ；およびシーケンシングデータセットを正規化するステップ（ここで正規化は、（１）サンプルに関する内部定量化標準に関する最小数のシーケンシングリードの存在に基づいて、データ合否基準をシーケンシングデータセットに適用して、（２）実質的に同一の検出限界（ＬＯＤ）がシーケンシングアッセイにおいて全ての未知核酸に適用されることを確実にする）、を含んでよく、ここで、第２のアッセイのＬＯＤは、第１のアッセイのＬＯＤと実質的に同じである。
【００３４】
一実施態様では、第１のアッセイは、定性的分子診断アッセイであってよい。別の実施態様では、第１のアッセイは、半定量的分子診断アッセイであってよい。一実施態様では、第１のアッセイは、１つまたは複数の内部定量化標準をサンプルに添加するステップ、および、定量的２ステップ増幅を実施するステップをさらに含んでよい。一実施態様では、定量的２ステップ増幅は：第１段階のマルチプレックス増幅混合物においてサンプルを増幅させるステップ（ここで増幅混合物は、複数の標的プライマーおよび少なくとも１つの定量化標準プライマーペアを含み、各標的プライマーペアはサンプル中に存在し得る異なる標的を増幅するように構成されて、定量化標準プライマーペアは内部定量化標準核酸を増幅するように構成される）、第１段階の増幅混合物を複数の第２段階の個々の反応に分割するステップ（ここで、複数の第２段階の個々の反応の第１のグループは、サンプル中に存在し得る異なる標的の１つをさらに増幅するように構成された少なくとも１つのプライマーペアをそれぞれ含み、複数の第２段階の個々の反応の第２のグループは、内部定量化標準核酸の１つをさらに増幅するように構成された少なくとも１つのプライマーペアをそれぞれ含む）、および、複数の第２段階の個々の反応を、１つまたは複数の標的アンプリコンおよび複数の定量化標準アンプリコンを産生する増幅条件に供するステップ（それぞれの定量化標準アンプリコンは、関係がある定量化標準クロッシングポイント（Ｃｐ）を有し、ここで、それぞれの標的核酸はあるＣｐを有し、それぞれの内部標準は第１のアッセイにおける公知の濃度および公知の定量化標準Ｃｐを有する）を含んでよい。
【００３５】
一実施態様では、当該方法は：第１のアッセイにおける２以上の定量化標準のクロッシングポイント（Ｃｐ）から検量線を作成するステップ；および、検量線を用いて１または複数の標的核酸のそれぞれを定量化するステップをさらに含んでよい。一実施態様では、標的核酸のそれぞれは、
ｌｏｇ１０（濃度）＝（Ｃｐ−ｂ）／ａ
にフィットされた最小二乗法の回帰直線を用いて作成された検量線を用いて第１のアッセイにおいて定量化されてよく、
ここでＣｐは、各標的に関して測定されたクロッシングポイントであり、ｂ（切片）は、標的のｌｏｇ１０（濃度）がゼロの場合のＣｐ値を表わし、ａは傾きであり、濃度における単一単位（ｓｉｎｇｌｅ  ｕｎｉｔ）の変化によってＣｐが変化する程度を表わす。
【００３６】
一実施態様では、第２のアッセイは、ＮＯＲＭシーケンシングリードを維持するようにシーケンシングデータセットを正規化するステップをさらに含んでよく、ここで、ＮＯＲＭ＝シーケンシングリード数＊（Ｆ／内部定量化標準に由来する観察されたシーケンシングリード数）である。一実施態様では、第２のアッセイにおける核酸は、サンプル中のそれぞれの標的核酸のインプット量（ＩＱＴ）を、ＩＱＴ＝標的核酸に由来する標的核酸シーケンシングリードの正規化数＊（内部定量化標準のインプット量／Ｆ）によって計算することにより定量化され得て、ここで「Ｆ」は、内部定量化標準のシーケンシングリードの固定された最小期待数である。同一の原理が、サンプル中の複数の未知核酸のインプット濃度の計算に当てはまる。サンプル中の、存在するならば複数の標的核酸のインプット量（ＩＱＴｉ、ＩＱＴｊ、ＩＱＴｋ・・・ＩＱＴｎ）は、ＩＱＴｎ＝「ｎｔｈ」未知核酸に起因する未知「ｎ」核酸シーケンシングリードの正規化数＊（内部定量化標準のインプット量／Ｆ）として計算され得る。
【００３７】
一実施態様では、第２のアッセイにおける「Ｆ」は、第２のアッセイの検出限界（ＬＯＤ）に関連してよい。第２のアッセイのＬＯＤは、第１のアッセイのＬＯＤと実質的に同一であるように選択される。一実施態様では、「Ｆ」は、アッセイのＬＯＤに関連する。例えば、約１０５コピー／ｍｌのＩＱＳのインプット濃度に関して「Ｆ」が約１０３ならば、サンプル中の未知核酸に関するＬＯＤは約１０２コピー／ｍｌである。同一のインプット濃度のＩＱＳに関して「Ｆ」が約１０４ならば（すなわち、リード深度が増大して、各リードのウエイトが相応して増大する）、サンプル中の未知核酸に関するＬＯＤは約１０コピー／ｍｌである。所定のインプット濃度のＩＱＳに関して、リード深度を増大または低減させることにより（すなわち、「Ｆ」の程度を増大または低減させることにより）、および、相応して、それぞれの個々のシーケンシングリードに起因するウエイトを増大または低減させることにより、ＬＯＤを強める（ｒａｉｓｅｄ）または弱める（ｌｏｗｅｒｅｄ）ことができる。
【００３８】
一実施態様では、コンパレーター試験を実施するための方法は、２以上のサンプルをプールするステップおよびそれらをシーケンシングに同時に供するステップを含んでよく、ここで、２以上のサンプルは、調製後、シーケンシング前にプールされる。一実施態様では、それぞれのプールされたサンプルは、サンプル特異的識別配列の独特なセットをそれと関連付けていてよく、それにより、プール内の各サンプル由来のシーケンシングデータを区別および分離することができる。一実施態様では、それぞれのプールされたサンプルは、サンプル特異的識別配列の独自の独特なセットと関連付けられた独自の内部定量化標準を有してよい。１つのサンプル中の複数の核酸で上述したように、正規化および定量化は、複数のプールされたサンプル中の複数の核酸に適用され得る。当該方法は、プールされたサンプル中の複数の未知核酸のインプット量（ＩＱＴｉ、ＩＱＴｊ、ＩＱＴｋ・・・ＩＱＴｎ）を、ＩＱＴｎ＝「ｎｔｈ」未知核酸に起因する未知「ｎ」核酸シーケンシングリードの正規化数＊（内部定量化標準のインプット量／Ｆ）として計算するステップを含む。
【００３９】
任意の前述の実施態様において、本明細書中に記載されるシーケンシングアッセイ、方法、およびキットは、相対的定量化を行なうステップを含まない。すなわち、本明細書中に記載されるシーケンシングアッセイ、方法、およびキットは、公知濃度の内部定量化標準を含むので、未知の相対的濃度を決定するためにシーケンシングリードの相対数または検出された核酸の相対存在量に依拠する必要がない。
【００４０】
任意の前述の実施態様において、本明細書中に記載されるシーケンシングアッセイ、方法、およびキットは、シーケンシングアッセイとは別の反応において定量化を行なうステップを含まない。すなわち、本明細書中に記載されるシーケンシングアッセイ、方法、およびキットは、公知濃度の内部定量化標準を含むので、シーケンシング反応における核酸のインプット濃度を決定するために別の別個の反応（例えばｑＰＣＲ）を実施する必要がない。
【００４１】
任意の前述の実施態様において、本明細書中に記載されるシーケンシングアッセイ、方法、およびキットは、アッセイまたはテンプレートに特異的な定量化標準を用いるステップを含まない。すなわち、本明細書中に記載されるシーケンシングアッセイ、方法、およびキットは、特定のアッセイまたは特定の標的のために設計された標準に依拠する代わりに、任意のシーケンシングアッセイ（例えばＮＧＳアッセイ）における複数の標的種の同時の定量化を提供することができる、普遍的な内部標準を含む。
【００４２】
任意の前述の実施態様において、本明細書中に記載されるシーケンシングアッセイ、方法、およびキットは、競合テンプレートを定量化標準として用いるステップを含まない。一般に、競合テンプレートは、アッセイまたはテンプレートに特異的な定量化標準の特定のタイプである。しかしながら、新しい競合内部増幅コントロールが、それぞれの新しいアッセイおよび／またはシーケンスされるべきテンプレートのために設計される必要がある。その代わりに、本明細書中に記載されるシーケンシングアッセイ、方法、およびキットは、任意のシーケンシングアッセイ（例えばＮＧＳアッセイ）における複数の標的種の同時の定量化を提供することのできる普遍的な内部標準を含む。
【００４３】
本明細書において記載されるのは：
Ａ１．シーケンシングアッセイのリード値の正規化のための方法であって、以下のステップを含む：
シーケンスされるべき１または複数の未知核酸を含むサンプルを提供するステップ；
公知量の内部定量化標準をサンプルに添加するステップ；
シーケンシングのために内部定量化標準を含むサンプルを調製するステップ（ここで、調製するステップは、サンプル中の未知核酸および内部定量化標準へ、シーケンシング特異的アダプター部位およびサンプル特異的識別配列を導入するステップを含む）；
シーケンシングをしてサンプルに関するシーケンシングデータセットを生産するステップ（ここで、シーケンシングデータセットは、未知核酸（単数または複数）および内部定量化標準から観察されるシーケンシングリードを含む）；
未知核酸（単数または複数）および内部定量化標準に由来するシーケンシングデータセット内のシーケンシングリード数をカウントするステップ；および
シーケンシングデータセットを正規化するステップ（ここで正規化は、（１）サンプルに関する内部定量化標準に関する最小数のシーケンシングリードの存在に基づいて、データ合否基準をシーケンシングデータセットに適用して、（２）実質的に同一の検出限界（ＬＯＤ）がシーケンシングアッセイにおいて全ての未知核酸に適用されることを確実にする）。
【００４４】
Ａ２．条項Ａ１の方法であって、サンプル中のそれぞれの未知核酸は、約０〜１０１３コピー／ｍｌ（例えば、約１０２〜１０９コピー／ｍｌ）の濃度を有する。
【００４５】
Ａ３．条項Ａ１または条項Ａ２の少なくとも１つの方法であって、サンプルに添加される公知量の内部定量化標準は、約１０３〜１０６コピー／ｍｌ（例えば、約１０５〜１０６コピー／ｍｌ）の範囲内である。
【００４６】
Ａ４．条項Ａ１〜Ａ３の１つまたは複数の方法であって、サンプルに添加される内部定量化標準の公知量と、内部定量化標準に関するシーケンシングリード数との間に、線形関係が存在する。
【００４７】
Ａ５．条項Ａ１〜Ａ４のいずれか１つまたは複数の方法であって、シーケンシングデータセットを正規化するステップは、ＮＯＲＭシーケンシングリードを維持し、ここで、ＮＯＲＭ＝シーケンシングリード数＊（Ｆ／内部定量化標準に由来する観察されたシーケンシングリード数）であり、ここで「Ｆ」は、内部定量化標準のシーケンシングリードの固定された最小期待数である。
【００４８】
Ａ６．条項Ａ１〜Ａ５のいずれか１つまたは複数の方法であって、ここで「Ｆ」は、シーケンシングアッセイのＬＯＤに十分なシーケンシングリード深度を確実にするように設定されたシーケンシングリード数の値である。
【００４９】
Ａ７．条項Ａ１からＡ６のいずれか１つまたは複数の方法であって、シーケンシングリード深度は、約１０００の内部定量化標準シーケンシングリード〜約１００，０００の内部定量化標準シーケンシングリードの範囲内、好ましくは約２０００の内部定量化標準シーケンシングリード〜約７５，０００の内部定量化標準シーケンシングリード、より好ましくは約５０００の内部定量化標準シーケンシングリード〜約５０，０００の内部定量化標準シーケンシングリード、または最も好ましくは少なくとも５０００の内部定量化標準シーケンシングリードである。
【００５０】
Ａ８．条項Ａ１〜Ａ７のいずれか１つまたは複数の方法であって、未知核酸のリードおよび内部定量化標準のリードは、同一の比ＡＬＰＨＡによってそれぞれ別個に正規化されて、ここで、ＡＬＰＨＡ＝Ｆ／内部定量化標準に由来する観察されたシーケンシングリード数である。
【００５１】
Ａ９．条項Ａ１〜Ａ８のいずれか１つまたは複数の方法であって、正規化後にサンプル中の未知核酸のインプット量（ＩＱＴ）を計算するステップをさらに含み、ここで、内部定量化標準のインプット量は公知なので、未知核酸のインプット量（ＩＱＴ）は、ＩＱＴ＝未知核酸に起因する未知核酸シーケンシングリードの正規化数＊（内部定量化標準のインプット量／Ｆ）によって計算することができる。
【００５２】
Ａ１０．条項Ａ１〜Ａ９のいずれか１つまたは複数の方法であって、ＩＱＴｎ＝「ｎｔｈ」未知核酸に起因する未知「ｎ」核酸シーケンシングリードの正規化数＊（内部定量化標準のインプット量／Ｆ）として、正規化後、サンプル中の、存在するならば複数の未知核酸のインプット量（ＩＱＴｉ、ＩＱＴｊ、ＩＱＴｋ・・・ＩＱＴｎ）を計算するステップをさらに含む。
【００５３】
Ａ１１．条項Ａ１〜Ａ１０のいずれか１つまたは複数の方法であって、サンプルを調製するステップは、サンプル溶解、溶解物から核酸を回収するステップであって回収された核酸を精製してもよいステップ、および、シーケンスされるべき核酸の領域内にプライマー結合部位およびサンプル特異的識別配列を付着させるステップ  導入するステップを含む。
【００５４】
Ａ１２．条項Ａ１〜Ａ１１のいずれか１つまたは複数の方法であって、付着させるステップは、
シーケンシングプライマー結合部位およびサンプル特異的識別配列を含むデュアルインデックスのシーケンシングオーバーハングを有する標的特異的プライマーを用いて、シーケンスされるべき核酸を増幅反応において増幅させるステップ、または
シーケンスされるべき核酸をフラグメント化して、シーケンシングプライマー結合部位およびサンプル特異的識別配列を含むシーケンシング特異的アダプターを、フラグメント化された核酸にライゲーションするステップ
のうちの１つを含む。
【００５５】
Ａ１３．条項Ａ１〜Ａ１２のいずれか１つまたは複数の方法であって、シーケンスされるべき核酸を増幅させるステップは、
カスタムのオーバーハングを有する標的特異的プライマーを用いて第１のマルチプレックスＰＣＲ反応を行なうステップ、
第１の核酸精製を行なうステップ、
第１のＰＣＲにおいて導入されたオーバーハングに対してアニーリングまたはライゲーションするデュアルインデックスのシーケンシングアダプタープライマーを用いて第２のＰＣＲ反応を行なうステップ（ここで、デュアルインデックスのシーケンシングアダプタープライマーは、標的非依存性であり、シーケンシングプライマー結合部位およびサンプル特異的識別配列を含む）、
第２の核酸精製を行なうステップ、
を含む。
【００５６】
Ａ１４．条項Ａ１〜Ａ１３のいずれか１つまたは複数の方法であって、約１０７コピー／ｍｌよりも高い濃度で存在する核酸の増幅をプラトーにするように、および指数増幅段階において約１０７コピー未満／ｍｌの核酸を保存するように、第１のマルチプレックスＰＣＲ反応におけるサイクル数または標的特異的プライマーの濃度の１または複数を制限するステップをさらに含む。
【００５７】
Ａ１５．条項Ａ１〜Ａ１４のいずれか１つまたは複数の方法であって、２以上のサンプルをプールするステップおよびそれらを同時にシーケンシングに供するステップをさらに含み、ここで、２以上のサンプルは、調製後、シーケンシング前にプールされる。
【００５８】
Ａ１６．条項Ａ１〜Ａ１５のいずれか１つまたは複数の方法であって、２〜１０００サンプルが、調製後、シーケンシング前にプールされて、好ましくは２〜５００サンプルが、調製後、シーケンシング前にプールされて、より好ましくは２〜１００サンプルが、調製後、シーケンシング前にプールされて、より好ましくは２〜５０サンプルが、調製後、シーケンシング前にプールされて、または最も好ましくは、２〜３２サンプルが、調製後、シーケンシング前にプールされる。
【００５９】
Ａ１７．条項Ａ１〜Ａ１６のいずれか１つまたは複数の方法であって、それぞれのプールされたサンプルは、サンプル特異的識別配列の独特なセットをそれと関連付けていて、それにより、プール内の各サンプル由来のシーケンシングデータを区別および分離することができる。
【００６０】
Ａ１８．条項Ａ１〜Ａ１７のいずれか１つまたは複数の方法であって、それぞれのプールされたサンプルは、サンプル特異的識別配列の独自の独特なセットと関連付けられた独自の内部定量化標準を有し、ここで、正規化は、プール内の各サンプルに別個に適用される。
【００６１】
Ａ１９．条項Ａ１〜Ａ１８のいずれか１つまたは複数の方法であって、正規化は、別個に、（１）プール内の各サンプルにデータ合否基準を適用して、（２）実質的に同一の検出限界（ＬＯＤ）がそれぞれのサンプル中の全ての未知核酸に適用されるのを確実にする。
【００６２】
Ａ２０．条項Ａ１〜Ａ１９のいずれか１つまたは複数の方法であって、正規化後に、プールされたサンプル中の複数の未知核酸のインプット量（ＩＱＴｉ、ＩＱＴｊ、ＩＱＴｋ・・・ＩＱＴｎ）を、ＩＱＴｎ＝「ｎｔｈ」未知核酸に起因する未知「ｎ」核酸シーケンシングリードの正規化数＊（内部定量化標準のインプット量／Ｆ）として計算するステップをさらに含む。
【００６３】
Ａ２１．条項Ａ１〜Ａ２０のいずれか１つまたは複数の方法であって、シーケンシングアッセイは、次世代シーケンシングアッセイである。
【００６４】
Ａ２２．条項Ａ１〜Ａ２１のいずれか１つまたは複数の方法であって、シーケンシングアッセイは、相対的定量化を行なうステップを含まない。
【００６５】
Ａ２３．条項Ａ１〜Ａ２２のいずれか１つまたは複数の方法であって、シーケンシングアッセイは、シーケンシングアッセイとは別の反応において定量化を行なうステップを含まない。
【００６６】
Ａ２４．条項Ａ１〜Ａ２３のいずれか１つまたは複数の方法であって、シーケンシングアッセイは、アッセイまたはテンプレートに特異的な定量化標準を用いるステップを含まない。
【００６７】
Ａ２５．条項Ａ１〜Ａ２４のいずれか１つまたは複数の方法であって、シーケンシングアッセイは、競合テンプレートを定量化標準として用いるステップを含まない。
【００６８】
Ｂ１．定量的な次世代シーケンシング（ＮＧＳ）アッセイを行なうための方法であって、以下のステップを含む：
シーケンスされるべき１または複数の未知核酸を含むサンプルを提供するステップ；
公知量の内部定量化標準をサンプルに添加するステップ；
シーケンシングのために内部定量化標準を含むサンプルを調製するステップ；
サンプル中の未知核酸および内部定量化標準をシーケンシングしてシーケンシングデータを生産するステップ；
未知核酸（単数または複数）および内部定量化標準に由来するシーケンシングデータセット内のシーケンシングリード数をカウントするステップ；および
シーケンシングデータセットを正規化するステップおよび  中の未知核酸のインプット量（ＩＱＴ）を、ＩＱＴ＝未知核酸に由来する未知核酸シーケンシングリードの正規化数＊（内部定量化標準のインプット量／Ｆ）によって計算するステップ（ここで「Ｆ」は、内部定量化標準のシーケンシングリードの固定された最小期待数である）。
【００６９】
Ｂ２．条項Ｂ１の方法であって、サンプル中のそれぞれの未知核酸は、約０〜１０１３コピー／ｍｌ（例えば、約１０２〜１０９コピー／ｍｌ）の濃度を有する。
【００７０】
Ｂ３．条項Ｂ１または条項Ｂ２の少なくとも１つの方法であって、サンプルに添加される公知量の内部定量化標準は、約１０４〜１０６コピー／ｍｌの範囲内である（例えば、約１０５〜１０６コピー／ｍｌ）。
【００７１】
Ｂ４．条項Ｂ１〜Ｂ３のいずれか１つまたは複数の方法であって、ＮＯＲＭ＝シーケンシングリード数＊（Ｆ／内部定量化標準に由来する観察されたシーケンシングリード数）によってシーケンシングデータセットを正規化するステップをさらに含む。
【００７２】
Ｂ５．条項Ｂ１〜Ｂ４のいずれか１つまたは複数の方法であって、正規化は、別個に、（１）アッセイにおける各サンプルにデータ合否基準を適用して、（２）実質的に同一の検出限界（ＬＯＤ）が、一緒にプールされた複数のサンプルにわたってそれぞれのサンプル中の全ての未知核酸に適用され、複数のユーザー、日数などにわたって用いられるのを確実にする。
【００７３】
Ｂ６．条項Ｂ１〜Ｂ５のいずれか１つまたは複数の方法であって、未知核酸は、約１０２〜１０１０コピー／ｍｌまたは、好ましくは、約１０２〜１０９コピー／ｍｌの濃度を有する。
【００７４】
Ｂ７．条項Ｂ１〜Ｂ６のいずれか１つまたは複数の方法であって、「Ｆ」は、ＮＧＳアッセイの検出限界（ＬＯＤ）に関連し、ここで「Ｆ」が約１×１０３〜５×１０３ならば、未知核酸に関するＬＯＤは約１０２〜１０３コピー／ｍｌである。
【００７５】
Ｂ８．条項Ｂ１〜Ｂ７のいずれか１つまたは複数の方法であって、「Ｆ」は、ＮＧＳアッセイの検出限界（ＬＯＤ）に関連し、ここで「Ｆ」が約１×１０４〜５×１０４ならば、未知核酸に関するＬＯＤは約１０１〜１０２コピー／ｍｌである。
【００７６】
Ｂ９．条項Ｂ１〜Ｂ８のいずれか１つまたは複数の方法であって、サンプル中の、存在するならば複数の未知核酸のインプット量（ＩＱＴｉ、ＩＱＴｊ、ＩＱＴｋ・・・ＩＱＴｎ）を、ＩＱＴｎ＝「ｎｔｈ」未知核酸に起因する未知「ｎ」核酸シーケンシングリードの正規化数＊（内部定量化標準のインプット量／Ｆ）として計算するステップをさらに含む。
【００７７】
Ｂ１０．条項Ｂ１〜Ｂ９のいずれか１つまたは複数の方法であって、２以上のサンプルをプールするステップおよびそれらを同時にシーケンシングに供するステップをさらに含み、ここで、２以上のサンプルは、調製後、シーケンシング前にプールされる。
【００７８】
Ｂ１１．条項Ｂ１〜Ｂ１０のいずれか１つまたは複数の方法であって、それぞれのプールされたサンプルは、サンプル特異的識別配列の独特なセットをそれと関連付けていて、それにより、プール内の各サンプル由来のシーケンシングデータを区別および分離することができる。
【００７９】
Ｂ１２．条項Ｂ１〜Ｂ１１のいずれか１つまたは複数の方法であって、それぞれのプールされたサンプルは、サンプル特異的識別配列の独自の独特なセットと関連付けられた独自の内部定量化標準を有し、ここで、定量化は、プール内の各サンプル由来の各核酸に別個に適用される。
【００８０】
Ｂ１３．条項Ｂ１〜Ｂ１２のいずれか１つまたは複数の方法であって、プールされたサンプル中の複数の未知核酸のインプット量（ＩＱＴｉ、ＩＱＴｊ、ＩＱＴｋ・・・ＩＱＴｎ）を、ＩＱＴｎ＝「ｎｔｈ」未知核酸に起因する未知「ｎ」核酸シーケンシングリードの正規化数＊（内部定量化標準のインプット量／Ｆ）として計算するステップをさらに含む。
【００８１】
Ｂ１４．条項Ｂ１〜Ｂ１３のいずれか１つまたは複数の方法であって、シーケンスされるべきアッセイ特異的なポジティブコントロールのセットをサンプル中に提供するステップをさらに含み、ここで、ポジティブコントロールは、アッセイにおいてシーケンスされる１または複数の未知核酸のそれぞれに対応するポジティブコントロールを含む。
【００８２】
Ｂ１５．条項Ｂ１〜Ｂ１４のいずれか１つまたは複数の方法であって、アッセイ特異的なポジティブコントロールのシーケンシングに基づいて、１または複数の未知核酸のそれぞれに対してアッセイ特異的な補正因子を適用するステップをさらに含む。
【００８３】
Ｂ１６．条項Ｂ１〜Ｂ１５のいずれか１つまたは複数の方法であって、定量的ＮＧＳアッセイを実施するステップは、相対的定量化を行なうステップを含まない。
【００８４】
Ｂ１７．条項Ｂ１〜Ｂ１６のいずれか１つまたは複数の方法であって、定量的ＮＧＳアッセイを実施するステップは、シーケンシングアッセイとは別の反応において定量化を行なうステップを含まない。
【００８５】
Ｂ１８．条項Ｂ１〜Ｂ１７のいずれか１つまたは複数の方法であって、定量的ＮＧＳアッセイを実施するステップは、アッセイまたはテンプレートに特異的な定量化標準を用いるステップを含まない。
【００８６】
Ｂ１９．条項Ｂ１〜Ｂ１８のいずれか１つまたは複数の方法であって、定量的ＮＧＳアッセイを実施するステップは、競合テンプレートを定量化標準として用いるステップを含まない。
【００８７】
Ｃ１．次世代シーケンシング（ＮＧＳ）アッセイにおいて未知核酸を正規化および定量化するためのキットであって、以下を含むキット：
内部定量化標準（ここで内部定量化標準は、シーケンスされるべき未知核酸を含むサンプルに公知量で添加されるように構成された核酸である）；および
シーケンシングデータセットを正規化するためおよび未知核酸のインプット量を計算するための、内部定量化標準の使用に関する説明書、
ここで、内部定量化標準は、約１０４〜１０６コピー／ｍｌの範囲内でサンプルに添加されるように構成され、
ここで、内部定量化標準を用いて、シーケンシングデータは、ＮＯＲＭ＝シーケンシングリード数＊（Ｆ／内部定量化標準に由来する観察されたシーケンシングリード数）によって正規化されて、ここで「Ｆ」は、内部定量化標準のシーケンシングリードの固定された最小期待数であり、および
ここで、内部定量化標準を用いて、未知核酸のインプット量（ＩＱＴ）は、ＩＱＴ＝未知核酸に由来する未知核酸シーケンシングリードの正規化数＊（内部定量化標準のインプット量／Ｆ）によって計算される。
【００８８】
Ｃ２．条項Ｃ１のキットであって、シーケンシングプライマー結合部位およびサンプル特異的識別配列を含む、少なくとも内部定量化標準に関するシーケンシング特異的アダプターをさらに含む。
【００８９】
Ｃ３．条項Ｃ１または条項Ｃ２の少なくとも１つのキットであって、内部定量化標準の増幅のためおよびシーケンシング特異的アダプターに対するアニーリングまたはライゲーションのために構成されたカスタムのオーバーハングを有する標的特異的プライマーをさらに含む。
【００９０】
Ｃ４．条項Ｃ１〜Ｃ３の少なくとも１つのキットであって、２以上の内部定量化標準をさらに含み、ここで、２以上の内部定量化標準のそれぞれは、未知核酸の定量化のための検量線を作成するために、異なる公知濃度でサンプルに添加されるように構成される。
【００９１】
Ｄ１．コンパレーター試験を行なうための方法であって、以下のステップを含む：
１または複数の標的核酸のマルチプレックスの増幅および検出を含む第１のアッセイを提供するステップ（第１のアッセイは、ある検出限界（ＬＯＤ）を有する）；
第１のアッセイの検出およびＬＯＤを確認するために、第１のアッセイとは異なる第２のアッセイを提供するステップ、
ここで第２のアッセイは、以下を含む：
シーケンシングのために少なくとも１つの内部定量化標準を含むサンプルを調製するステップ；
シーケンシングをしてサンプルに関するシーケンシングデータセットを生産するステップ（ここで、シーケンシングデータセットは、標的核酸（単数または複数）および内部定量化標準から観察されるシーケンシングリードを含む）；
標的核酸（単数または複数）および内部定量化標準に由来するシーケンシングデータセットにおけるシーケンシングリード数をカウントするステップ；および
シーケンシングデータセットを正規化するステップ（ここで正規化は、（１）サンプルに関する内部定量化標準に関する最小数のシーケンシングリードの存在に基づいて、データ合否基準をシーケンシングデータセットに適用して、（２）実質的に同一の検出限界（ＬＯＤ）がシーケンシングアッセイにおいて全ての未知核酸に適用されることを確実にし、ここで、第２のアッセイのＬＯＤは、第１のアッセイのＬＯＤと実質的に同じである）。
【００９２】
Ｄ２．条項Ｄ１の方法であって、第１のアッセイは、サンプルに１つまたは複数の内部定量化標準を添加するステップ、および、サンプルに対して定量的な２ステップの増幅を行なうステップをさらに含み、定量的な２ステップの増幅は、以下のステップを含む：
第１段階のマルチプレックス増幅混合物においてサンプルを増幅させるステップ（ここで増幅混合物は、複数の標的プライマーおよび少なくとも１つの定量化標準プライマーを含み、各標的プライマーはサンプル中に存在し得る異なる標的を増幅するように構成されて、定量化標準プライマーは内部定量化標準核酸を増幅するように構成される）、
第１段階の増幅混合物を複数の第２段階の個々の反応に分割するステップ（複数の第２段階の個々の反応の第１のグループは、サンプル中に存在し得る異なる標的の１つをさらに増幅するように構成された少なくとも１つのプライマーをそれぞれ含み、複数の第２段階の個々の反応の第２のグループは、内部定量化標準核酸の１つをさらに増幅するように構成された少なくとも１つのプライマーをそれぞれ含む）、および
複数の第２段階の個々の反応を、１つまたは複数の標的アンプリコンおよび複数の定量化標準アンプリコンを産生する増幅条件に供するステップ（それぞれの定量化標準アンプリコンは、関係がある定量化標準Ｃｐを有する）、
ここで、それぞれの標的核酸は、あるクロッシングポイント（Ｃｐ）を有し、それぞれの内部標準は第１のアッセイにおける公知の濃度および公知の定量化標準Ｃｐを有する。
【００９３】
Ｄ３．条項Ｄ１または条項Ｄ２の少なくとも１つの方法であって：
定量化標準Ｃｐから検量線を作成するステップ；および
検量線を用いて１または複数の標的核酸のそれぞれを定量化するステップ
をさらに含む。
【００９４】
Ｄ４．条項Ｄ１〜Ｄ３のいずれか１つまたは複数の方法であって、標的核酸のそれぞれは、以下にフィットされた最小二乗法の回帰直線を用いて作成される検量線を用いて定量化される：
ｌｏｇ１０（濃度）＝（Ｃｐ−ｂ）／ａ
ここでＣｐは、各標的に関して測定されたクロッシングポイントであり、
ｂ（切片）は、標的のｌｏｇ１０（濃度）がゼロの場合のＣｐ値を表わし、および
ａは傾きであり、濃度における単一単位の変化によってＣｐが変化する程度を表わす。
【００９５】
Ｄ５．条項Ｄ１〜Ｄ４のいずれか１つまたは複数の方法であって、第２のアッセイにおいて、ＮＯＲＭ＝シーケンシングリード数＊（Ｆ／内部定量化標準に由来する観察されたシーケンシングリード数）によって、シーケンシングデータセットを正規化するステップをさらに含む。
【００９６】
Ｄ６．条項Ｄ１〜Ｄ５のいずれか１つまたは複数の方法であって、ＩＱＴ＝標的核酸に由来する標的核酸シーケンシングリードの正規化数＊（内部定量化標準のインプット量／Ｆ）によって、サンプル中の各標的核酸のインプット量（ＩＱＴ）を計算するステップ、ここで「Ｆ」は、内部定量化標準のシーケンシングリードの固定された最小期待数である。
【００９７】
Ｄ７．条項Ｄ１〜Ｄ６のいずれか１つまたは複数の方法であって、「Ｆ」は第２のアッセイの検出限界（ＬＯＤ）に関連し、ここで第２のアッセイのＬＯＤは、第１のアッセイのＬＯＤと実質的に同一であるように選択される。
【００９８】
Ｄ８．条項Ｄ１〜Ｄ７のいずれか１つまたは複数の方法であって、「Ｆ」が約１×１０３〜５×１０３ならば、第２のアッセイにおける標的核酸（単数または複数）の検出に関するＬＯＤは、約１０２〜１０３コピー／ｍｌである。
【００９９】
Ｄ９．条項Ｄ１〜Ｄのいずれか１つまたは複数の方法であって、「Ｆ」が約１×１０４〜５×１０４ならば、第２のアッセイにおける標的核酸（単数または複数）の検出に関するＬＯＤは、約１０１〜１０２コピー／ｍｌである。
【０１００】
Ｄ１０．条項Ｄ１〜Ｄ９のいずれか１つまたは複数の方法であって、サンプル中の、存在するならば複数の標的核酸のインプット量（ＩＱＴｉ、ＩＱＴｊ、ＩＱＴｋ・・・ＩＱＴｎ）を、ＩＱＴｎ＝「ｎｔｈ」未知核酸に起因する未知「ｎ」核酸シーケンシングリードの正規化数＊（内部定量化標準のインプット量／Ｆ）として計算するステップをさらに含む。
【０１０１】
Ｄ１１．条項Ｄ１〜Ｄ１０のいずれか１つまたは複数の方法であって、第２のアッセイにおいて２以上のサンプルをプールするステップおよびそれらを同時にシーケンシングに供するステップをさらに含み、ここで、２以上のサンプルは、調製後、シーケンシング前にプールされる。
【０１０２】
Ｄ１２．条項Ｄ１〜Ｄ１１のいずれか１つまたは複数の方法であって、それぞれのプールされたサンプルは、サンプル特異的識別配列の独特なセットをそれと関連付けていて、それにより、プール内の各サンプル由来のシーケンシングデータを区別および分離することができる。
【０１０３】
Ｄ１３．条項Ｄ１〜Ｄ１２のいずれか１つまたは複数の方法であって、それぞれのプールされたサンプルは、サンプル特異的識別配列の独自の独特なセットと関連付けられた独自の内部定量化標準を有し、ここで、定量化は、プール内の各サンプル由来の各核酸に別個に適用される。
【０１０４】
Ｄ１４．条項Ｄ１〜Ｄ１３のいずれか１つまたは複数の方法であって、プールされたサンプル中の複数の未知核酸のインプット量（ＩＱＴｉ、ＩＱＴｊ、ＩＱＴｋ・・・ＩＱＴｎ）を、ＩＱＴｎ＝「ｎｔｈ」未知核酸に起因する未知「ｎ」核酸シーケンシングリードの正規化数＊（内部定量化標準のインプット量／Ｆ）として計算するステップをさらに含む。
【０１０５】
Ｄ１５．条項Ｄ１〜Ｄ１４のいずれか１つまたは複数の方法であって、定量化標準核酸および標的核酸は全て、同様の増幅効率およびシーケンシング効率を有する。
【０１０６】
Ｄ１６．条項Ｄ１〜Ｄ１５のいずれか１つまたは複数の方法であって、第２のアッセイは、次世代シーケンシングアッセイである。
【０１０７】
Ｄ１７．条項Ｄ１〜Ｄ１６のいずれか１つの方法であって、第２のアッセイは、相対的定量化を行なうステップを含まない、
【０１０８】
Ｄ１８．条項Ｄ１〜Ｄ１７のいずれか１つの方法であって、第２のアッセイは、シーケンシングアッセイとは別の反応において定量化を行なうステップを含まない、
【０１０９】
Ｄ１９．条項Ｄ１〜Ｄ１８のいずれか１つの方法であって、第２のアッセイは、アッセイまたはテンプレートに特異的な定量化標準を用いるステップを含まない、
【０１１０】
Ｄ２０．条項Ｄ１〜Ｄ１９のいずれか１つの方法であって、第２のアッセイは、競合テンプレートを定量化標準として用いるステップを含まない。
【０１１１】
コンパレーター試験を実施するための方法の任意の前述の実施態様において、第２のアッセイは次世代シーケンシングアッセイであってよい。
【０１１２】
この要約は、簡略化された形態での概念の選択を紹介するために提供され、それらは図面および詳細な説明において以下にさらに詳述される。この要約は、特許請求の範囲に記載された要旨の重要な特徴または本質的な特徴を特定することを意図せず、また、特許請求の範囲に記載された要旨の範囲を決定するのを助けるものとして用いられることも意図しない。
【０１１３】
さらなる特徴および利点が、以下の説明において示され、一部はその説明に基づいて明らかになり、または、本発明の実施によって学習され得る。これらのおよび他の特徴は、以下の説明および添付の特許請求の範囲によってより完全に明らかになり、または、以下に記載される本発明の実施によって学習され得る。
【０１１４】
本発明の上記および他の利点および特徴を得ることのできる様式を説明するために、簡単に上述された本発明のより具体的な説明が、添付の図面において説明されるそれらの具体的な実施態様を参照することによって与えられる。これらの図面は本発明の典型的な実施態様を示しているだけであること、およびしたがって、その範囲を限定するものと考えるべきでないことを理解して、本発明は、以下の付随する図面の使用を介してさらに具体的かつ詳細に記載および説明される。
【図面の簡単な説明】
【０１１５】
【図１】本発明の一実施態様に係る、柔軟なパウチを示す。
【図２】本発明の例示の実施態様に係る、図１のパウチを含んでいる、図１のパウチとともに使用するための機器の分解斜視図を、一緒になって形成する。
【図３】本発明の例示の実施態様に係る、図２のブラダーコンポーネントを含む図２の機器の部分的横断面図を示し、図１のパウチは破線で示される。
【図４】図２の機器の１つの実例的な実施態様において用いられるモーターを示す。
【図５】４つの異なる予期される（ｐｒｏｓｐｅｃｔｉｖｅ）合成の定量化標準の５つの希釈にわたるＣｐを示す。
【図６Ａ】図５と似ているが、定量化標準のうちの３つについてのみデータを示す。
【図６Ｂ】３つの定量化標準の全てからのデータを用いた単一の曲線を示す。
【図７】３つの定量化標準から作成された曲線とともにプロットされたＡ．ｂａｕｍａｎｎｉｉに関する検量線を示す。ｘ軸は反応内に含まれるＡ．ｂａｕｍａｎｎｉｉまたは定量化標準の量であり、ｙ軸はＣｐである。
【図８Ａ】Ａ．ｂａｕｍａｎｎｉｉに特異的な外部検量線および定量化標準からの混成の（ｃｏｍｐｏｓｉｔｅ）検量線（補正なし）を示す。
【図８Ｂ】アッセイ特異的な補正因子を用いた、図８Ａと同一のデータを示す。
【図９】３つのサンプルＡ、Ｂ、およびＣに関する仮定のシーケンシングデータセットを説明する。
【図１０】プールされたサンプルセットに関する生のシーケンシングカウントを示す。
【図１１】図１０のプールされたサンプルセット内のサンプルあたりの内部定量化標準（本明細書中でＱＳＭとも呼ばれる）フラグメントカウントを示す。
【図１２】シーケンシングデータセットをビニング（ｂｉｎｎｉｎｇ）および正規化するための２つの代替方法を説明する。
【図１３】シーケンシングサンプル調製のワークフローの一例を説明する。
【図１４】唾液サンプルの集団中の細菌および／またはウイルスのロード分布を示す。
【図１５】シーケンシング反応のダイナミックレンジを保存するための方法を説明するＰＣＲ増幅曲線を示し、ここで反応は、高コピーの標的がプラトー相に存在し、低コピーの標的が指数増幅段階に存在するように設定および停止される。
【図１６】アッセイによるバッチポジティブコントロール（ＰＣ）定量化を示す。
【発明を実施するための形態】
【０１１６】
例示の実施態様が、付随する図面に関して以下に説明される。多くの異なる形態および実施態様が、本開示の主旨および教示から逸脱せずに可能であり、したがって、本開示は本明細書中に示される例示の実施態様に制限されると解釈されるべきでない。むしろ、これらの例示の実施態様は、本開示が徹底的かつ完全なものとなり、本開示の範囲を当業者に伝えるように提供される。図面において、層および領域のサイズおよび相対的サイズは、明確性のために誇張され得る。同様の参照番号は、説明全体を通じて同様のエレメントを指す。
【０１１７】
別段の定義がされない限り、本明細書中で用いられる全ての用語（技術的用語および科学的用語を含む）は、本開示が関連する分野における通常の知識を有する者によって一般に理解されるのと同じ意味を有する。一般に用いられる辞書において定義される用語のような用語は、本出願および関連分野のコンテキストにおけるそれらの意味と一貫した意味を有すると解釈されるべきであり、本明細書中に明白にそのように定義されていない限り、理想化されたまたは過剰に形式的な意味で解釈されるべきではないことがさらに理解されよう。本明細書中、本発明の説明において用いられる専門用語は、特定の実施態様を説明する目的のみのものであり、本発明を制限することを意図しない。本明細書中に記載されるものと同様または同等の複数の方法および材料を、本開示の実施において用いることができるが、特定の例示的な材料および方法のみが本明細書において記載される。
【０１１８】
本明細書中で言及される全ての刊行物、特許出願、特許および他の参考文献は、それらの全体で参照により援用される。専門用語において矛盾する場合は、本明細書が支配する。
【０１１９】
デバイス、システム、方法などを含む本開示の様々な態様は、１つまたは複数の例示的な実施に関して説明され得る。本明細書において用いられる用語「例示の（ｅｘｅｍｐｌａｒｙ）」および「実例的な（ｉｌｌｕｓｔｒａｔｉｖｅ）」は、「例示（ｅｘａｍｐｌｅ）、例（ｉｎｓｔａｎｃｅ）、または実例（ｉｌｌｕｓｔｒａｔｉｏｎ）としての役割をする」ことを意味し、本明細書中に開示される他の実施よりも好ましいまたは有利であると必ずしも解釈されるべきではない。さらに、本開示または本発明の「実施（ｉｍｐｌｅｍｅｎｔａｔｉｏｎ」または「実施態様」に対する言及は、その実施態様の１つまたは複数に対する特定の言及を含み、逆もまた同様であり、以下の説明よりもむしろ添付の特許請求の範囲によって示される本発明の範囲を制限せずに、実例的な例示を提供することが意図される。
【０１２０】
本明細書および添付の特許請求の範囲において用いられるように、単数形「ａ」、「ａｎ」および「ｔｈｅ」は、内容が明確に別段の指示をしない限り、複数形の参照対象を含むことに注意されたい。したがって、例えば、「１つのタイル（ａ  ｔｉｌｅ）」に対する言及は、１、２、またはそれよりも多くのタイルを含む。同様に、複数の参照対象に対する言及は、内容および／またはコンテキストが明確に別段の指示をしない限り、単一の参照対象および／または複数の参照対象を含むものとして解釈されるべきである。したがって、「タイル（ｔｉｌｅｓ）」に対する言及は、複数のそのようなタイルを必ずしも要さない。その代わりに、結合（ｃｏｎｊｕｇａｔｉｏｎ）とは独立に；１つまたは複数のタイルが本明細書において検討されることが理解されよう。
【０１２１】
本出願の全体を通じて用いられる単語「ｃａｎ」および「ｍａｙ」は、強制的観念（すなわち、欠かせないこと（ｍｕｓｔ）を意味する）よりむしろ、許容的観念で用いられる（すなわち、潜在性を有することを意味する）。さらに、実例として、用語「含む（ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ）」、「有する（ｈａｖｉｎｇ）」、「含む（ｉｎｖｏｌｖｉｎｇ）」、「含む（ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ）」、「特徴付けられる（ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚｅｄ  ｂｙ）」、それらの変形（例えば、「含む（ｉｎｃｌｕｄｅｓ）」、「有する（ｈａｓ）」、「含む（ｉｎｖｏｌｖｅｓ）」、「含む（ｃｏｎｔａｉｎ）」など）、および、本明細書（特許請求の範囲を含む）において用いられる同様の用語は、包括的および／またはオープンエンドであり、単語「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」およびその変形（例えば、「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｅ）」および「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｅｓ）」）と同じ意味を有し、さらなる挙げられていないエレメントまたは方法ステップを排除しない。
【０１２２】
本明細書において用いられる、方向的および／または任意的な（ａｒｂｉｔｒａｒｙ）用語、例えば、「上（ｔｏｐ）」、「底（ｂｏｔｔｏｍ）」、「左（ｌｅｆｔ）」、「右（ｒｉｇｈｔ）」、「上（ｕｐ）」、「下（ｄｏｗｎ）」、「上側（ｕｐｐｅｒ）」、「下側（ｌｏｗｅｒ）」、「内側（ｉｎｎｅｒ）」、「外側（ｏｕｔｅｒ）」、「内部（ｉｎｔｅｒｎａｌ）」、「外部（ｅｘｔｅｒｎａｌ）」、「内部（ｉｎｔｅｒｉｏｒ）」、「外部（ｅｘｔｅｒｉｏｒ）」、「近位（ｐｒｏｘｉｍａｌ）」、「遠位（ｄｉｓｔａｌ）」、「前（ｆｏｒｗａｒｄ）」、「逆（ｒｅｖｅｒｓｅ）」などは、相対的な方向および／または方位を示すためにのみ用いられ得て、本明細書、本発明、および／または特許請求の範囲を含む本開示の範囲を制限することをその他の点で意図し得ない。
【０１２３】
あるエレメントが、別のエレメントに対して（ｔｏ）、またはその上に「（ｏｎ）」、「連結される（ｃｏｕｐｌｅｄ）」、「接続される（ｃｏｎｎｅｃｔｅｄ）」または「応答性である（ｒｅｓｐｏｎｓｉｖｅ）」と言及される場合、それは、他のエレメントに対して、またはその上に、直接的に連結され、接続され、または応答性であってよく、または、介在するエレメントが存在してもよいことが理解される。対照的に、あるエレメントが、別のエレメントに対して、または「その直接的に上に（ｄｉｒｅｃｔｌｙ  ｏｎ）」、「直接的に連結される（ｄｉｒｅｃｔｌｙ  ｃｏｕｐｌｅｄ）」、「直接的に接続される（ｄｉｒｅｃｔｌｙ  ｃｏｎｎｅｃｔｅｄ）」、または、「直接的に応答性である（ｄｉｒｅｃｔｌｙ  ｒｅｓｐｏｎｓｉｖｅ）」と言及される場合、介在するエレメントは存在しない。
【０１２４】
本発明の概念の例示の実施態様は、例示の実施態様の理想化された実施態様の図式的な実例である断面図（および中間構造）に関して本明細書中で説明される。したがって、例えば、製造技術および／または許容誤差の、結果としての実例の形状からの変動が予期される。したがって、本発明の概念の例示の実施態様は、本明細書において実例で説明される領域の特定の形状に制限されると解釈されるべきではないが、例えば製造によって生じる形状の逸脱を含むはずである。したがって、図面において実例として説明される領域は、実際には図式的なものであり、それらの形状は、デバイスの領域の実際の形状を実例として説明することを意図せず、例示の実施態様の範囲を制限することを意図しない。
【０１２５】
用語「第１」、「第２」などは、様々なエレメントを説明するために本明細書において用いられ得るが、これらのエレメントは、これらの用語によって制限されるべきでないことが理解されよう。これらの用語は、一方のエレメントを他方から区別するためにのみ用いられる。したがって、「第１」のエレメントは、本実施態様の教示を逸脱せずに「第２」のエレメントと呼ばれ得る。
【０１２６】
また、本明細書中に記載される様々な実施は、本開示の範囲を逸脱せずに、記載または開示される任意の他の実施と組み合わせて使用され得ることも理解されよう。したがって、本開示の特定の実施に係る、産物、部材、エレメント、デバイス、器具、システム、方法、プロセス、組成物、および／またはキットは、本開示の範囲を逸脱せずに、本明細書中に開示される他の実施（システム、方法、器具、および／または同様のものを含む）において記載される、特性、特徴、コンポーネント、部材、エレメント、ステップ、および／または同様のものを、含んでよく、取り込んでよく、または他の方法で含んでよい。したがって、ある実施に関する特定の特徴に対する言及は、前記実施内の適用のみに制限されると解釈されるべきでない。
【０１２７】
本明細書中で用いられる見出しは、構造化の目的のみのためであり、説明または特許請求の範囲を制限するために用いられることを意味しない。理解を助けるために、可能な場合は、図面に共通の同様のエレメントを指定するために同様の参照番号が用いられている。さらに、可能な場合は、様々な図面において、エレメントの同様の番号付けが用いられている。さらに、特定のエレメントの代替の構造は、エレメント番号に添えられた別個の文字をそれぞれ含んでよい。
【０１２８】
用語「約」は、本明細書において、「およそ（ａｐｐｒｏｘｉｍａｔｅｌｙ）」、「領域内（ｉｎ  ｔｈｅ  ｒｅｇｉｏｎ  ｏｆ）」、「大まかに（ｒｏｕｇｈｌｙ）」、または「付近（ａｒｏｕｎｄ）」を意味するために用いられる。用語「約」が数値範囲とともに用いられる場合、それは、示される数値よりも上および下に境界を拡張することによってその範囲を改変する。一般に、用語「約」は、本明細書において、５％の分散によって規定値の上および下に数値を改変するために用いられる。そのような範囲が表現された場合、別の実施態様は、ある特定の値から、および／または、他方の特定の値までを含む。同様に、値が近似値として表現された場合、先行する「約」の使用によって、特定の値が別の実施態様を形成することが理解されよう。それぞれの範囲のエンドポイントは、他方のエンドポイントに対する関係において、および、他方のエンドポイントとは独立に、重大であることがさらに理解されよう。
【０１２９】
本明細書において用いられる単語「または（ｏｒ）」は、特定のリストの任意の１つのメンバーを意味し、そのリストのメンバーの任意の組み合わせも含む。
【０１３０】
「サンプル」によって、動物；動物由来の組織または臓器；細胞（対象内であって対象から直接得られたもの、または、培地中で維持された細胞もしくは培養細胞株由来の細胞）；細胞溶解物（または溶解画分）または細胞抽出物；細胞、細胞材料、またはウイルス材料に由来する１または複数の分子（例えば、ポリペプチドまたは核酸）を含む溶液；または、非天然起源の核酸（実例としてｃＤＮＡまたは次世代シーケンシングライブラリー）を含む溶液であって、本明細書中に説明されるようにアッセイされるものを意味する。サンプルは、宿主または病原体の細胞、細胞構成要素、または核酸を含んでいてもよく、または含んでいなくてもよい、任意の体液または排泄物（例えば、制限されないが、血液、尿、便、唾液、涙、胆汁、または脳脊髄液）であってもよい。
【０１３１】
本明細書において用いられる語句「核酸」は、ワトソン−クリック塩基対合によって相補核酸にハイブリダイゼーションすることが可能な、ＤＮＡまたはＲＮＡまたはＤＮＡ−ＲＮＡハイブリッド、一本鎖または二本鎖、センスまたはアンチセンスであろうとなかろうと、天然起源または合成のオリゴヌクレオチドまたはポリヌクレオチドを指す。本発明の核酸はまた、ヌクレオチドアナログ（例えば、ＢｒｄＵ）、改変または処理された塩基、および、非ホスホジエステルのヌクレオシド間リンケージ（例えば、ペプチド核酸（ＰＮＡ）またはチオジエステルのリンケージ）を含んでもよい。特に、核酸は、制限されずに、コードまたは非コード領域を含む、ＤＮＡ、ｃＤＮＡ、ｇＤＮＡ、ｓｓＤＮＡ、ｄｓＤＮＡ、ＲＮＡ（ｍｉＲＮＡ、ｍｔＲＮＡ、ｒＲＮＡのような全てのＲＮＡタイプを含む）、またはそれらの任意の組み合わせを含んでよい。
【０１３２】
「プローブ」、「プライマー」または「オリゴヌクレオチド」によって、相補配列を含む第２の核酸分子（「標的」）に塩基対合することができる、既定の配列の一本鎖核酸分子を意味する。生じるハイブリッドの安定性は、生じる塩基対合の長さ、ＧＣ含有量、および程度に依存する。塩基対合の程度は、プローブと標的分子の間の相補性の程度およびハイブリダイゼーション条件のストリンジェンシーの程度のようなパラメーターによって影響を受ける。ハイブリダイゼーションのストリンジェンシーの程度は、温度、塩濃度、および、ホルムアミドのような有機分子の濃度のようなパラメーターによって影響を受け、当業者に公知の方法によって決定される。プローブ、プライマー、およびオリゴヌクレオチドは、当業者によく知られた方法によって、放射能、蛍光、または非放射能のいずれかで検出可能に標識され得る。ｄｓＤＮＡ結合色素を用いてｄｓＤＮＡを検出し得る。「プライマー」は、ポリメラーゼによって伸長されるように特異的に構成されて、一方で、「プローブ」または「オリゴヌクレオチド」は、そのように構成されてよく、またはそのように構成されなくてよいことが理解される。プローブとして、オリゴヌクレオチドは、当技術分野で知られている多くの蛍光ＰＣＲプライマー−およびプローブ−に基づく化学の一部として用いることができ、それには、蛍光クエンチングおよび／または蛍光共鳴エネルギー移動（ＦＲＥＴ）構造の使用を共有するもの、例えば、５’ヌクレアーゼプローブ（ＴａｑＭａｎ（登録商標）プローブ）、デュアルハイブリダイゼーションプローブ（ＨｙｂＰｒｏｂｅｓ（登録商標））、またはＥｃｌｉｐｓｅ（登録商標）プローブまたはモレキュラービーコン、またはＡｍｐｌｉｆｌｕｏｒ（登録商標）アッセイ、例えば、Ｓｃｏｒｐｉｏｎｓ（登録商標）、ＬＵＸ（登録商標）またはＱＺｙｍｅ（登録商標）ＰＣＲプライマー（天然または改変塩基によるものを含む）が含まれる。
【０１３３】
「ｄｓＤＮＡ結合色素」によって、二本鎖ＤＮＡに結合した場合に、一本鎖ＤＮＡに結合した場合または溶液内でフリーの場合とは異なる蛍光を発する（通常、より強く蛍光を発する）色素を意味する。言及はｄｓＤＮＡ結合色素に対してなされるが、米国特許番号７，３８７，８８７（参照により本明細書中に援用される）に記載されるいくつかの非限定の実例的な色素とともに、任意の適切な色素が本明細書において用いられ得ることが理解される。他のシグナル産生物質が、核酸の増幅および融解を検出するために用いられ得る（実例として、当技術分野で知られている酵素、抗体など）。
【０１３４】
「特異的にハイブリダイズする」によって、プローブ、プライマー、またはオリゴヌクレオチドが、高いストリンジェンシー条件下で実質的に相補の核酸（例えば、サンプル核酸）を認識して、物理的に相互作用（すなわち、塩基対合）し、そして、他の核酸とは実質的に塩基対合しないことを意味する。
【０１３５】
「高いストリンジェンシー条件」によって、だいたい融解温度（Ｔｍ）−５℃（すなわち、核酸のＴｍの５度下）を意味する。機能上、高いストリンジェンシー条件は、少なくとも８０％配列同一性を有する核酸配列を同定するために用いられる。
【０１３６】
ＰＣＲが本明細書における実施例において用いられる増幅方法であるが、プライマーを使用する任意の増幅方法が適切であり得ることが理解される。そのような適切な手順は、任意のタイプ（シングルステップ、２ステップ、またはその他）のポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）；鎖置換増幅（ＳＤＡ）；核酸配列に基づく増幅（ｎｕｃｌｅｉｃ  ａｃｉｄ  ｓｅｑｕｅｎｃｅ−ｂａｓｅｄ  ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ）（ＮＡＳＢＡ）；カスケードローリングサークル増幅（ＣＲＣＡ）、ループ介在等温ＤＮＡ増幅（ＬＡＭＰ）；等温キメラプライマー核酸増幅（ＩＣＡＮ）；標的に基づくヘリカーゼ依存性増幅（ＨＤＡ）；転写介在増幅（ＴＭＡ）、次世代シーケンシング（ＮＧＳ）技術などを含む。したがって、用語ＰＣＲが用いられる場合、アミノ酸定量化方法を含む他の代替の増幅方法を含むことが理解されるべきである。不連続のサイクルがない増幅方法に関して、反応時間は、サイクルまたはＣｐにおいて測定がされる場合に用いられてよく、本明細書中に記載される実施態様においてさらなるＰＣＲサイクルが加えられる場合は、さらなる反応時間が加えられてよい。プロトコルは適宜調整される必要があり得ることが理解される。
【０１３７】
本明細書において用いられる用語「クロッシングポイント」（Ｃｐ）（あるいは、サイクル閾値（Ｃｔ）、定量化サイクル（Ｃｑ）、または当該分野において用いられる同義の用語）は、実験的に決定される、所定のＰＣＲ産物（例えば、標的または内部標準（単数または複数））に関するなんらかの閾値よりも上の蛍光シグナルを得るために必要なＰＣＲのサイクル数を指す。それぞれの反応が閾値を超えるサイクルは、ＰＣＲ反応の最初に存在する標的（すなわち、反応テンプレート）の量に依存する。閾値は典型的に、産物の蛍光シグナルがバックグラウンドの蛍光よりも上に検出可能であるポイントに設定されてよいが、他の閾値を用いてもよい。いくぶん任意の（ｓｏｍｅｗｈａｔ  ａｒｂｉｔｒａｒｙ）閾値を設定する代わりとして、一次、二次、またはｎ次の導関数がその最大値を有する反応に関するポイントを計算することによってＣｐが決定され得て、それにより、増幅曲線の曲率が最大であるサイクルが決定される。実例的な導関数の方法は、米国特許番号６，３０３，３０５に教示されたものであり、その全体で参照により本明細書中に援用される。それにもかかわらず、比較されている全ての反応について同一の閾値が用いられる限り、どこにまたはどのように閾値が設定されるのかについては通常、大して問題とならない。他のポイントが、当技術分野で知られているように同様に用いられ得て、任意のそのようなポイントは、本明細書において議論される任意の方法において、Ｃｐ、Ｃｔ、またはＣｑに関して代用され得る。
【０１３８】
「サンプル処理コントロール」によって、病原体もしくはその一部、または核酸、およびサンプルのワークフロー中のその挙動を模倣する能力を保有する、病原体、微生物、細胞（生きていようとなかろうと）、核酸、または任意の粒子（天然または合成）を指す。サンプル処理コントロールはしばしば、サンプルが従うワークフローの一部または全てのステップをコントロールするために、実例として、サンプルが正しく溶解されていること、潜在的に感染する標的病原体の核酸が正しく抽出および精製されていること、および、標的病原体の特定の配列の正しい増幅および検出が行われていることを確実にするために、公知量でデバイス内に含まれる。
【０１３９】
実例として、サンプル処理コントロールとして用いられる微生物（実例としてＳｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ  ｐｏｍｂｅ（Ｓ．ｐｏｍｂｅ））は、検出および定量化されるべき標的微生物をできる限り近く模倣する。サンプル処理コントロール粒子は、検出されるべき病原体の構造（例えば膜（単数または複数）および／またはキャプシドおよび／またはエンベロープ）を再現し得て、病原体の挙動およびその標的核酸をワークフローに沿って模倣するのを可能にさせる。サンプル処理コントロールのゴールは、標的の溶解および核酸抽出の収率がサンプル処理コントロールの収率と同様であること、および、最適な増幅／検出を確実にするために精製された核酸が適切に処理されることを確実にすることである。定性的な結果に関して、病原体は、陽性または陰性として報告され得て、または、ランコントロールが失敗した場合は未確定として報告され得る。いくつかの阻害条件が抽出、精製、またはＰＣＲ増幅／検出の収率を低減させ得るので、ランを検証するためには、サンプル処理コントロールは、いくつかのランコントロールのうちの１つであってよく、それは陽性（おそらく規定された範囲内）であるべきである。サンプル処理コントロールは、この種の阻害を監視するために用いることができ、収率の減少はサンプル処理コントロールと標的病原体の間で似ている。定性的な結果に関して、そのような阻害は、検出されない場合であっても、偽陰性の結果を導き得る。定量的な結果に関して、ワークフローのステップのうちの１つを阻害すると、過少に見積もられた定量化結果を提供し得る。したがって、本発明のいくつかの実例的な実施態様は、少なくとも１つのサンプル処理コントロール（ＳＰＣ）を、少なくとも２つのゴールのために使用する：
１）ワークフローをコントロールおよび検証するため：上述のようにＳＰＣの古典的な役割、および
２）試験サンプル中の標的とされる核酸（単数または複数）の定量化を助けるため：定量化標準としても用いられるＳＰＣの新しい役割。
【０１４０】
実例として、ＳＰＣは、サンプルが供せられる処理の一部または全てに従う。したがって、ＳＰＣは、サンプルを溶解させるステップ前またはステップ中に加えられ得る。サンプル処理コントロールは、標的病原体（単数または複数）のタイプに基づいて選択され得る。例えば、ＰｈｉＸ  １７４のようなバクテリオファージはウイルスに注目したアッセイのために選択され得て、バクテリオファージは標的ウイルスを模倣する良い候補であり、または、Ｓ．ｐｏｍｂｅのような酵母は、幅広い細菌および酵母の定量化アッセイにおける使用のためのものである。
【０１４１】
単一の病原体が検出されるべきであるならば、２つの増幅アッセイ、実例としてＰＣＲアッセイ（標的病原体および定量化標準として用いられるサンプル処理コントロール）が、同一または同様の熱力学的特性に到達するように設計され得て、合成の定量化標準を用いて正確な定量化を可能にする（例えば実施例５）。
【０１４２】
複数の病原体の定量化（すなわち、マルチプレックス増幅）に関して、サンプル処理コントロールの増幅プロトコル（実例としてＰＣＲデザイン）を、それぞれの病原体に関する増幅アッセイ（実例としてＰＣＲアッセイ）のプロトコルとフィットさせて、同一の熱力学的特性を得ることは、実例として配列可変性およびアンプリコン長のため、困難であり得る。結果として、異なる標的病原体のＰＣＲ効率は異なり得る。この目的のために、定量化標準およびインポートされた検量線を用いて得られる定量化を補正する補正因子が各病原体に関して計算され得る。
【０１４３】
合成の定量化標準の代わりに、公知濃度の公知の天然の微生物または他の天然起源の核酸テンプレートに対してキャリブレーションが行われ得る。
【０１４４】
本発明の別の実施態様では、少なくとも２つの異なる（実例として３つまたは４つの異なる）サンプル処理コントロールを用いた任意の増幅システムにおける病原体の信頼できる定量化も、これらのサンプル処理コントロールが、当技術分野で知られているような蛍光、放射能、化学発光、酵素、または同様のもので標識された配列特異的プローブなどの公知の同定技術を介して同定され得る限り、可能である。
【０１４５】
本明細書中の様々な例はヒト標的およびヒト病原体について言及しているが、これらの例は単に実例的なものである。本明細書中に記載される方法、キット、およびデバイスは、ヒト、獣医学、産業、および環境を含む、多種多様のサンプル由来の多種多様の核酸配列を検出およびシーケンスするために用いられ得る。
【０１４６】
本明細書において開示される様々な実施態様は、実例として単一の密閉系において、様々な生物学的物質（実例として抗原および核酸配列）の存在に関してサンプルを分析するための、自己完結型（ｓｅｌｆ−ｃｏｎｔａｉｎｅｄ）核酸分析パウチを使用する。パウチおよびパウチと一緒に使用するための機器を備えるそのようなシステムは、米国特許番号８，３９４，６０８；および８，８９５，２９５；および米国特許出願番号２０１４−０２８３９４５にさらに詳細に開示されていて、参照により本明細書中に援用される。しかしながら、そのような機器およびパウチは単に実例的なものであり、本明細書中で議論される核酸調製および増幅反応は、当技術分野で知られている様々な核酸精製および増幅システムを用いて、９６ウェルプレート、他の構造のプレート、アレイ、カルーセルなどを含む当技術分野で知られている任意の様々な開放系または密閉系のサンプル容器内で行われ得ることが理解される。用語「サンプルウェル」、「増幅ウェル」、「増幅コンテナー」、または同様のものが本明細書において用いられるが、これらの用語は、ウェル、チューブ、および、これらの増幅システムにおいて用いられる様々な他の反応コンテナーを包含することを意味する。そのような増幅システムは、１つの増幅コンテナーにおける単一のマルチプレックスステップを含んでよく、複数の個々の反応ウェルにおける複数の２段階の個々の反応または低次のマルチプレックス反応を含んでもよい。一実施態様では、パウチは、複数の病原体に関するアッセイのために用いられる。パウチは、実例として密閉系において、サンプルウェルとして用いられる１つまたは複数のブリスターを備えてよい。実例として、様々なステップが使い捨てであってもよいパウチ内で行われ得て、それには、核酸調製、一次大容量マルチプレックスＰＣＲ、一次増幅産物の希釈、および二次ＰＣＲが含まれ、さらには（ｃｕｌｍｉｎａｔｉｎｇ  ｗｉｔｈ）、オプショナルのリアルタイム検出または融解曲線分析などの増幅後分析が含まれる。さらに、様々なステップが本発明のパウチ内で行われ得るが、１つまたは複数のステップが特定の使用のために省略され得て、パウチの構造がそれに従って変更され得ることが理解される。
【０１４７】
図１は、様々な実施態様において用いられ得る、または、様々な実施態様のために再構成され得る、実例的なパウチ５１０を示す。パウチ５１０は、米国特許番号８，８９５，２９５の図１５と同様であり、同様のアイテムは同じ番号が付けられている。フィットメント５９０は、入口チャネル５１５ａ〜５１５ｌを備え、それらは試薬リザーバーまたは廃棄物リザーバーとしての働きもある。実例として、試薬はフィットメント５９０内で凍結乾燥されてよく、そして使用前に再水和される。ブリスター５２２、５４４、５４６、５４８、５６４、および５６６は、それぞれのチャネル５１４、５３８、５４３、５５２、５５３、５６２、および５６５を有していて、米国特許番号８，８９５，２９５の図１５の同じ番号のブリスターと同様である。図１の第２段階の反応ゾーン５８０は、米国特許出願番号８，８９５，２９５のものと同様だが、高密度アレイ５８１の第２段階のウェル５８２は、いくぶん異なるパターンで配列されている。図１の高密度アレイ５８１のより円形のパターンは、角のウェルを取り除き、第２段階のウェル５８２のより均一な充填をもたらし得る。示されるように、高密度アレイ５８１は、１０２個の第２段階のウェル５８２を備える。パウチ５１０は、ＦｉｌｍＡｒｒａｙ（登録商標）機器（ＢｉｏＦｉｒｅ  Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ，ＬＬＣ，Ｓａｌｔ  Ｌａｋｅ  Ｃｉｔｙ，ＵＴ）における使用に適切である。しかしながら、パウチの実施態様は単に実例的であることが理解される。
【０１４８】
他のコンテナーが用いられ得るが、実例として、パウチ５１０は、押し出し加工、プラズマ沈着、およびラミネート加工を含む当技術分野で知られている任意の処理によって作製され得る、２層の柔軟なプラスチックフィルムまたは他の柔軟な材料、例えばポリエステル、ポリエチレンテレフタレート（ＰＥＴ）、ポリカーボネート、ポリプロピレン、ポリメチルメタクリレート、およびそれらの混合物で形成される。アルミニウムラミネート加工をしたプラスチックまたは金属箔を用いてもよい。一緒に密封されてブリスターおよびチャネルを形成することのできる他のバリア材料が当技術分野で知られている。プラスチックフィルムが用いられる場合、層同士は、実例としてヒートシーリングによって接着され得る。実例として、材料は低い核酸結合能を有する。
【０１４９】
蛍光モニタリングを用いた実施態様に関しては、吸光度が適切に低くて操作波長において自己蛍光であるプラスチックフィルムが好ましい。そのような材料は、異なるプラスチック、異なる可塑剤、および混成比、ならびに異なる厚さのフィルムを試験することによって特定することができる。アルミニウムまたは他の箔積層を有するプラスチックに関し、蛍光検出デバイスによってリードされるパウチの部分は、箔が無いままでよい。例えば、パウチ５１０の第２段階の反応ゾーン５８０の第２段階のウェル５８２内で蛍光が監視されるならば、ウェル５８２の一方または両方の層は、箔が無いままである。ＰＣＲの例では、約０．００４８インチ（０．１２１９ｍｍ）の厚さのポリエステルからなるフィルム積層体（Ｍｙｌａｒ，ＤｕＰｏｎｔ，Ｗｉｌｍｉｎｇｔｏｎ  ＤＥ）および０．００１〜０．００３インチ（０．０２５〜０．０７６ｍｍ）の厚さのポリプロピレンフィルムがうまくいく。実例として、パウチ５１０は、入射光のおよそ８０％〜９０％を伝導することが可能な透明材料から作られる。
【０１５０】
実例的な実施態様では、材料は、ブリスターおよびチャネルに対する圧力（実例として空気圧）の適用によってブリスターの間を移動する。したがって、圧力を用いる実施態様では、パウチ材料は、実例として、圧力が所望の効果を有するように十分に柔軟である。用語「柔軟」は、パウチの材料の物理的特性を説明するために本明細書において用いられる。用語「柔軟」は、本明細書において用いられる圧力レベルによって、ひび割れ、破損、クレーズ、または同様のものを生じさせずに容易に変形可能であるものとして本明細書において定義される。例えば、薄いプラスチックシート、例えば、サラン（登録商標）ラップおよびジプロック（登録商標）バッグ、ならびに、アルミニウム箔のような薄い金属箔が柔軟である。しかしながら、空気圧を用いる実施態様であっても、ブリスターおよびチャネルの特定の領域のみが柔軟である必要がある。さらに、ブリスターおよびチャネルが容易に変形可能である限り、ブリスターおよびチャネルの片側のみが柔軟である必要がある。パウチ５１０の他方の領域は、剛性材料で作られてよく、または剛性材料で補強されてよい。
【０１５１】
実例として、プラスチックフィルムがパウチ５１０に用いられる。金属（実例としてアルミニウム、または他の適切な材料）のシートは、圧延（ｍｉｌｌ）または他の方法で切断されて、盛り上がった表面のパターンを有するダイス（ｄｉｅ）を作製し得る。実例として１９５℃の運転温度で制御された空気圧プレス（実例としてＡ−５３０２−ＰＤＳ、Ｊａｎｅｓｖｉｌｌｅ  Ｔｏｏｌ  Ｉｎｃ．，Ｍｉｌｔｏｎ  ＷＩ）内にフィットされる場合は、空気圧プレスは印刷機のように作用して、ダイスがフィルムに接触するところのみプラスチックフィルムのシーリング表面を溶かす。様々な成分、例えばＰＣＲプライマー（実例としてフィルム上にスポットされて乾燥される）、抗原結合基質、磁気ビーズ、およびケイ酸ジルコニウムビーズは、パウチ５１０が形成されるときに様々なブリスター内部に密封され得る。サンプル処理のための試薬は、一緒にまたは別個に、シーリングの前にフィルム上にスポットされ得る。一実施態様では、ヌクレオチドトリ−ホスフェート（ＮＴＰ）は、ポリメラーゼおよびプライマーとは別にフィルム上にスポットされて、反応が水性サンプルによって水和されるまでポリメラーゼの活性を本質的に排除する。水性サンプルが水和の前に加熱されている場合は、本来のホットスタートＰＣＲのための状況を作り出していて、高価な化学的ホットスタート成分の必要性を減少または排除する。
【０１５２】
パウチ５１０は、米国特許番号８，８９５，２９５に記載されるのと同様の様式で用いられ得る。１つの実例的な実施態様では、試験されるべきサンプル（１００μｌ）および溶解バッファー（２００μｌ）を含む３００μｌの混合物が、入口チャネル５１５ａ付近のフィットメント５９０内の注入口（図示せず）に注入されて、サンプル混合物が入口チャネル５１５ａ内に引き込まれる。入口チャネル５１５ｌに隣接するフィットメント５９０の第２の注入口（図示せず）に水も注入されて、フィットメント５９０内に提供されるチャネル（図示せず）を介して分配されて、それにより、入口チャネル５１５ｂ〜５１５ｌにおいて乾燥形態でそれぞれ事前に提供された１１種までの異なる試薬が水和される。これらの試薬は、実例として、凍結乾燥されたＰＣＲ試薬、ＤＮＡ抽出試薬、洗浄溶液、免疫測定試薬、または他の化学物質を含んでよい。実例として、試薬は、核酸抽出、第１段階マルチプレックスＰＣＲ、マルチプレックス反応の希釈、および第２段階ＰＣＲ試薬の調製、ならびにコントロール反応のためのものである。図１に示される実施態様では、注入される必要があるものは、一方の注入口におけるサンプル溶液および他方の注入口における水だけである。注入後、２つの注入口は密封されてよい。パウチ５１０およびフィットメント５９０の様々な構成に関するさらなる情報に関しては、既に参照により援用されている米国特許番号８，８９５，２９５を参照。
【０１５３】
注入後、サンプルは注入チャネル５１５ａからチャネル５１４を介して溶解ブリスター５２２へ移動する。溶解ブリスター５２２は、ビーズまたは粒子５３４、例えばセラミックビーズが供給されていて、ＦｉｌｍＡｒｒａｙ（登録商標）機器内に供給された回転羽根またはパドルを用いた嵌入によるボルテックスのために構成されている。ケイ酸ジルコニウム（ＺＳ）ビーズ５３４のような溶解粒子の存在下でサンプルをシェイクまたはボルテックスすることによるビーズミリングが、溶解物を形成する効果的な方法である。本明細書において用いられる用語、例えば「溶解する（ｌｙｓｅ）」、「溶解する（ｌｙｓｉｎｇ）」および「溶解物（ｌｙｓａｔｅ）」は、細胞を破裂させることに制限されないが、そのような用語は、ウイルスのような非細胞粒子の破壊を含むことが理解される。
【０１５４】
図４は、ビーズビーティングモーター８１９を示し、それは、図２に示される機器８００の支持部材８０２の第１の面８１１上に取り付けることのできる刃８２１を備える。刃は、スロット８０４を通って伸長してパウチ５１０に接触してよい。しかしながら、モーター８１９は機器８００の他の構造上に取り付けてよいことが理解される。１つの実例的な実施態様では、モーター８１９は、支持部材８０２上に取り付けられたＭａｂｕｃｈｉ  ＲＣ−２８０ＳＡ−２８６５  ＤＣ  Ｍｏｔｏｒ（千葉、日本）である。１つの実例的な実施態様では、モーターは、５，０００〜２５，０００ｒｐｍ、より実例的には１０，０００〜２０，０００ｒｐｍ、さらにより実例的にはおよそ１５，０００〜１８，０００ｒｐｍで回転する。Ｍａｂｕｃｈｉモーターに関しては、７．２Ｖで溶解に十分なｒｐｍが提供されることが見いだされている。しかしながら、実際の速度は、刃８２１がパウチ５１０に衝突している場合は、いくぶん遅くてよいことが理解される。用いられるモーターおよびパドルに応じて、他の電圧および速度が溶解のために用いられ得る。任意選択で、制御された少量の空気が溶解ブリスター５２２に隣接するブラダー８２２内に提供されてよい。一部の実施態様では、１または複数の少量の空気で隣接ブラダーを部分的に充填することは、溶解処理中に溶解ブリスターを配置および支持するのを助けることが見いだされている。あるいは、他の構造、実例として剛性または準拠したガスケットまたは溶解ブリスター５２２の周囲の他の維持構造を用いて、溶解中にパウチ５１０を拘束することができる。モーター８１９は単に実例的なものであり、サンプルのミリング、シェイクまたはボルテックスのために他のデバイスを用いてよいことも理解される。
【０１５５】
細胞が適切に溶解した時点で、サンプルを、チャネル５３８、ブリスター５４４、およびチャネル５４３を通して、ブリスター５４６へ移動させて、そこでサンプルはシリカコート磁気ビーズ５３３のような核酸結合物質と混合される。混合物は、適切な時間、実例として約１０秒〜１０分インキュベートされる。ブリスター５４６に隣接する機器内に置かれた格納式マグネットは、溶液から磁気ビーズ５３３を捕捉して、ブリスター５４６の内部表面に対してペレットを形成する。液体はそれから、ブリスター５４６の外に移動して、ブリスター５４４を通ってブリスター５２２内に戻り、それはここでは廃棄物レセプタクルとして用いられる。注入チャネル５１５ｃ〜５１５ｅのうちの１つまたは複数からの１または複数の洗浄バッファーが、ブリスター５４４およびチャネル５４３を介してブリスター５４６に提供される。任意選択で、マグネットが格納されて、ブリスター５４４および５４６からチャネル５４３を介して前後にビーズを動かすことによって、磁気ビーズ５３３が洗浄される。磁気ビーズ５３３が洗浄された時点で、マグネットの活性化によって磁気ビーズ５３３がブリスター５４６内に再捕捉されて、洗浄溶液はブリスター５２２内に移動する。この処理は、溶解バッファーおよびサンプルデブリを核酸結合磁気ビーズ５３３から洗浄するために必要に応じて繰り返してよい。
【０１５６】
洗浄後、注入チャネル５１５ｆ内に保管された溶出バッファーがブリスター５４８に移動して、マグネットが格納される。溶液は、ブリスター５４６と５４８の間を、チャネル５５２を介してサイクルされて、ブリスター５４６内の磁気ビーズ５３３のペレットを分散させて、捕捉された核酸がビーズから解離して溶液内に入るのを可能にする。マグネットがもう一度活性化されてブリスター５４６内の磁気ビーズ５３３をキャプチャーして、溶出した核酸溶液はブリスター５４８へ移動する。
【０１５７】
注入チャネル５１５ｇからの第１段階ＰＣＲマスターミックスが、ブリスター５４８内の核酸サンプルと混合される。任意選択で、混合物は、チャネル５５３を介して５４８と５６４の間で混合物を押しやることによって混合される。数サイクルの混合後、溶液はブリスター５６４内に含まれていて、そこに、第１段階ＰＣＲプライマーのペレットが提供されて（各標的に関して少なくとも１セットのプライマー）、第１段階マルチプレックスＰＣＲが行われる。ＲＮＡ標的が存在するならば、第１段階マルチプレックスＰＣＲの前またはそれと同時に逆転写（ＲＴ）ステップが行われてよい。ＦｉｌｍＡｒｒａｙ（登録商標）機器における第１段階マルチプレックスＰＣＲの温度サイクルは、実例として１５〜３０サイクル行われるが、特定の適用の要件に応じて他のレベルの増幅が好ましくあり得る。第１段階ＰＣＲマスターミックスは、当技術分野で知られている任意の様々なマスターミックスであってよい。１つの実例的な例では、第１段階ＰＣＲマスターミックスは、１サイクルあたり２０秒またはそれ未満のＰＣＲプロトコルでの使用に関してＵＳ２０１５／０１１８７１５（参照により本明細書中に援用される）に開示される任意の化学物質であってよい。
【０１５８】
第１段階ＰＣＲが所望のサイクル数進められた後に、実例として、大部分のサンプルをブリスター５４８に戻して、少量のみをブリスター５６４内に残して、そして注入チャネル５１５ｉから第２段階ＰＣＲマスターミックスを添加することによって、サンプルが希釈され得る。あるいは、５１５ｉからの希釈バッファーがブリスター５６６に移動して、それから、ブリスター５６４と５６６の間で流体を前後に移動させることによってブリスター５６４内の増幅されたサンプルと混合されてよい。必要に応じて、希釈は、注入チャネル５１５ｊおよび５１５ｋからの希釈バッファーを用いて数回繰り返されてよく、または、注入チャネル５１５ｋは、シーケンシングまたは他のＰＣＲ後分析のために取っておいてよく、それから、第２段階ＰＣＲマスターミックスが、注入チャネル５１５ｈから、希釈された増幅サンプルの一部または全部に添加される。希釈のレベルは、希釈ステップの数を変更することにより、または、希釈バッファーもしくは増幅のための成分（実例として、ポリメラーゼ、ｄＮＴＰ、および、他の成分が特に非ＰＣＲ増幅方法には適切であり得るが適切なバッファー）を含む第２段階ＰＣＲマスターミックスと混合する前に捨てられるサンプルのパーセンテージを変更することにより、調節され得ることが理解される。必要に応じて、サンプルおよび第２段階ＰＣＲマスターミックスのこの混合物は、第２段階増幅のための第２段階のウェル５８２に移動する前に、ブリスター５６４内で事前に加熱されてよい。そのような事前の加熱は、第２段階ＰＣＲ混合物におけるホットスタート成分（抗体、化学物質、またはその他）の必要をなくすことができる。
【０１５９】
実例的な第２段階ＰＣＲマスターミックスは、プライマーペアがない不完全なものであり、１０２個の第２段階のウェル５８２のそれぞれに、特定のＰＣＲプライマーペア（または時には、複数ペアのプライマー）が事前にローディングされている。必要に応じて、第２段階ＰＣＲマスターミックスは、他の反応成分が不足していてよく、これらの成分は、同様に第２段階のウェル５８２に事前にローディングされてよい。各プライマーペアは、第１段階ＰＣＲプライマーペアと同様または同一であってよく、または、第１段階プライマーペア内でネスト化したものであってよい。ブリスター５６４から第２段階のウェル５８２へのサンプルの移動は、ＰＣＲ反応混合物を完成させる。高密度アレイ５８１が満たされた時点で、個々の第２段階の反応は、当技術分野で知られている任意の数の手段によって、それぞれの第２段階ブリスター内に密封される。相互汚染を伴わずに高密度アレイ５８１を充填およびシールする実例的な方法は、既に参照により援用される米国特許番号８，８９５，２９５において議論されている。実例として、高密度アレイ５８１のウェル５８２における様々な反応は、温度サイクリングのための他の手段が当技術分野で知られているが実例として１つまたは複数のペルチェ素子を用いて、同時に温度サイクルされる。
【０１６０】
特定の実施態様では、第２段階ＰＣＲマスターミックスは、増幅を示すシグナルを産生させるためにｄｓＤＮＡ結合色素ＬＣＧｒｅｅｎ（登録商標）Ｐｌｕｓ（ＢｉｏＦｉｒｅ  Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ，ＬＬＣ）を含む。しかしながら、この色素は単に実例的であり、他のｄｓＤＮＡ結合色素および当技術分野で知られている蛍光、放射能、化学発光、酵素、または同様のもので標識されたプローブを含む他のシグナルが用いられ得ることが理解される。あるいは、アレイ５８１のウェル５８２は、シグナル不在で提供されてよく、結果はその後の処理を通して報告される。
【０１６１】
パウチ５１０内の材料を移動させるために空気圧が用いられる場合、一実施態様では、「ブラダー」が用いられ得る。ブラダーアセンブリ８１０（その一部は図２および図３に示される）は、複数の膨脹式のブラダー８２２、８４４、８４６、８４８、８６４、および８６６（それぞれ、実例として圧縮気体源によって個々に膨張可能であってよい）を収納しているブラダープレート８２４を備える。ブラダーアセンブリ８１０は、圧縮気体に供され得て、そして複数回用いられ得るので、ブラダーアセンブリ８１０は、パウチよりも頑丈または分厚い材料から作られ得る。あるいは、ブラダー８２２、８４４、８４６、８４８、８６４、および８６６は、ガスケット、シール、バルブ、およびピストンと一緒に固定された一連のプレートから形成されてよい。他の配置は本発明の範囲内である。
【０１６２】
二次ＰＣＲ反応の成功は、マルチプレックスの第１段階の反応によって生産されるテンプレートに依存する。典型的に、ＰＣＲは高純度のＤＮＡを用いて行われる。フェノール抽出または市販のＤＮＡ抽出キットのような方法は、高純度のＤＮＡを提供する。パウチ５１０を通して処理されたサンプルは、より低い純度の調製を補うために調整（ａｃｃｏｍｍｏｄａｔｉｏｎ）がなされる必要があり得る。ＰＣＲは、潜在的な障害である生物学的サンプルの成分によって阻害され得る。実例として、ホットスタートＰＣＲ、より高い濃度のｔａｑポリメラーゼ酵素、ＭｇＣｌ２濃度の調節、プライマー濃度の調節、および、アジュバント（例えばＤＭＳＯ、ＴＭＳＯ、またはグリセロール）の添加が、より低い核酸純度を補うために用いられてもよい。純度の問題は、第１段階の増幅およびシングルステージのＰＣＲでより重要である可能性があるが、同様の調節が第２段階増幅において同様に提供され得ることが理解される。
【０１６３】
パウチ５１０が機器８００内に置かれると、ブラダーアセンブリ８１０は、パウチ５１０の一方の面に対して押されるので、特定のブラダーが膨張すると、圧力によって液体がパウチ５１０内の対応するブリスターの外に押し出される。パウチ５１０の多くのブリスターに対応するブラダーに加えて、ブラダーアセンブリ８１０は、さらなる空気圧アクチュエーター、例えば、パウチ５１０の様々なチャネルに対応するブラダーまたは空気圧によって駆動されるピストンを有してよい。図２および図３は、実例的な複数のピストンまたはパウチ５１０のチャネル５３８、５４３、５５３、および５６５に対応するハードシール８３８、８４３、８５２、８５３、および８６５、ならびに、フィットメント５９０へのバックフローを最小にするシール８７１、８７２、８７３、８７４を示す。アクティブ化されると、ハードシール８３８、８４３、８５２、８５３、および８６５は、ピンチバルブを形成して、対応するチャネルをピンチオフして閉じる。パウチ５１０の特定のブリスター内に液体を閉じ込めるためには、ハードシールは、ブリスターにつながるチャネルおよびブリスターからつながるチャネルに対してアクティブにされて、その結果、アクチュエーターがピンチバルブとして作用してチャネルをつまんで閉じる。実例として、異なるブリスター内の２つの容量の液体を混合するためには、接続チャネルをシールしているピンチバルブアクチュエーターがアクティブ化されて、ブリスター上の空気圧ブラダーが交互に加圧されて、ブリスターを接続しているチャネルを通して液体を前後に押しやり、その中で液体を混合する。ピンチバルブアクチュエーターは、様々な形状およびサイズであってよく、１つよりも多いチャネルを同時にピンチオフするように構成されてよい。空気圧アクチュエーターが本明細書において議論されるが、リニアステッパモーター、モーターによって駆動されるカム、空気圧、水圧または電磁気の力によって駆動される剛性パドル、ローラー、ロッカーアーム、および場合によっては、コックトスプリング（ｃｏｃｋｅｄ  ｓｐｒｉｎｇ）のような、様々な電気機械的アクチュエーターを含む、パウチに圧力を提供する他の方法が検討されることが理解される。さらに、チャネルの軸に対して垂直に圧力をかけるのに加えて、チャネルを可逆的または不可逆的に閉じる様々な方法が存在する。これらには、チャネルを横切ってバッグをねじること、ヒートシーリング、アクチュエーターの回転（ｒｏｌｌｉｎｇ）、ならびに、バタフライバルブおよびボールバルブのようなチャネル内に密封される様々な物理的バルブが含まれる。さらに、小さなペルチェ素子または他の温度制御因子がチャネルに隣接して置かれてよく、流体を凍らせるのに十分な温度に設定されてよく、効果的にシールが形成されてよい。また、図１の設計は、ブリスターおよびチャネルのそれぞれの上に配置されたアクチュエーターエレメントを特徴とする自動化機器に適応されるが、アクチュエーターは静止したままであってよく、パウチ５１０を一次元または二次元で移行させ得て、それにより、サンプル破壊、核酸捕捉、第１および第２段階のＰＣＲ、ならびに、イムノアッセイおよびイムノＰＣＲのようなパウチ���１０の他の適用を含む処理ステーションのうちのいくつかのために、少数のアクチュエーターが用いられ得ることも検討される。チャネルおよびブリスターに対して作用するローラーは、パウチ５１０がステーション間で移行される構造において特に有用であることを証明することができる。したがって、ここに開示される実施態様においては空気圧アクチュエーターが用いられるが、用語「空気圧アクチュエーター」が本明細書において用いられる場合、他のアクチュエーターおよび圧力を提供する他の方法が、パウチおよび機器の構造に応じて用いられ得ることが理解される。
【０１６４】
他の従来技術の機器は、密封された柔軟なコンテナー内でのＰＣＲを教示する。例えば、米国特許番号６，６４５，７５８、６，７８０，６１７、および９，５８６，２０８（参照により本明細書中に援用される）を参照。しかしながら、特に、試験されるサンプルがバイオハザードを含み得る場合、密封されたＰＣＲ容器内に細胞溶解物を含むことは、使いやすさおよび安全性を改善することができる。本明細書において実例として説明される実施態様では、細胞溶解、および全ての他のステップからの廃棄物は、密封されたパウチ内に残る。しかしながら、パウチ内容物は、さらなる試験のために取り除かれてよいことが理解される。
【０１６５】
図２は、パウチ５１０とともに用いられ得る実例的な機器８００を示す。機器８００は、ケーシングの壁を形成し得て、またはケーシング内に取り付けられ得る、支持部材８０２を備える。機器８００は第２の支持部材（図示せず）を備えてもよく、それは、支持部材８０２に対して動くことができてもよくて、パウチ５１０の挿入および引き込みを可能にする。実例として、パウチ５１０が機器８００の中に挿入された時点で、蓋がパウチ５１０を覆ってよい。別の実施態様では、両方の支持部材は固定されてよく、パウチ５１０は他の機械的手段または空気圧によって所定の位置に維持される。
【０１６６】
実例的な例では、ヒーター８８６および８８８が支持部材８０２上に取り付けられる。しかしながら、この配置は単に実例的なものであり、他の配置があり得ることが理解される。ブラダー８２２、８４４、８４６、８４８、８６４、８６６を有するブラダープレート８１０、ハードシール８３８、８４３、８５２、８５３、シール８７１、８７２、８７３、８７４は、ブラダーアセンブリ８０８を形成し、実例として、パウチ５１０に向かって動かされ得る可動の支持構造に取り付けられてよく、それにより、空気圧アクチュエーターがパウチ５１０と接触して配置される。パウチ５１０が機器８００の中に挿入されて、可動の支持部材が支持部材８０２に向かって動くと、パウチ５１０の様々なブリスターは、ブラダーアセンブリ８１０の様々なブラダーおよびアセンブリ８０８の様々なシールに隣接する位置になり、それにより、空気圧アクチュエーターのアクティブ化が、パウチ５１０のブリスターの１つまたは複数から液体を押し出し得て、または、パウチ５１０の１つまたは複数のチャネルとともにピンチバルブを形成し得る。パウチ５１０のブリスターおよびチャネルと、アセンブリ８０８のブラダーおよびシールとの間の関係は、図３により詳細に説明される。
【０１６７】
それぞれの空気圧アクチュエーターは、バルブ８９９を介して圧縮空気源８９５に接続される。いくつかのホース８７８だけが図２に示されるが、それぞれの空気圧フィッティングがホース８７８を介して圧縮気体源８９５に接続されることが理解される。圧縮気体源８９５はコンプレッサであってもよく、あるいは、圧縮気体源８９５は、圧縮ガスシリンダ、例えば炭酸ガスシリンダであってよい。圧縮ガスシリンダは、持ち運びが所望である場合に特に有用である。他の圧縮気体源は、本発明の範囲内である。
【０１６８】
アセンブリ８０８は、実例として可動の支持部材上に取り付けられるが、他の構造があり得ることが理解される。
【０１６９】
機器８１０のいくつかの他のコンポーネントも圧縮気体源８９５に接続される。支持部材８０２の第２の面８１４に取り付けられるマグネット８５０は、実例としてホース８７８を介した圧縮気体源８９５からのガスを使用して展開および格納されるが、マグネット８５０を動かす他の方法が当技術分野で知られている。マグネット８５０は、支持部材８０２内の凹所８５１に存在する。凹所８５１は支持部材８０２を通る通路であってよく、したがって、マグネット８５０はパウチ５１０のブリスター５４６に接触することができることが理解される。しかしながら、支持部材８０２の材料に応じて、マグネット８５０が展開された場合にはマグネット８５０はブリスター５４６において十分な磁場を提供するのに十分近く、そしてマグネット８５０が格納された場合にはマグネット８５０はブリスター５４６内に存在するいかなる磁気ビーズ５３３にも著しく影響しない限り、凹所８５１は、支持部材８０２を貫通して伸長している必要はないことが理解される。マグネット８５０の格納に対して言及がなされるが、電磁石を用いてよく、電磁石は、電磁石を通る電気の流れを制御することによって活性化および不活性化され得ることが理解される。したがって、本明細書はマグネットの引き込みまたは格納について議論するが、これらの用語は、磁場を取り除く他の方法を組み込むのに十分広いことが理解される。空気圧の接続は、空気圧ホースまたは空気圧空気マニホールドであってよく、したがって、必要とされるホースまたはバルブの数が低減されることが理解される。
【０１７０】
空気圧ピストンアレイ８６９の様々な空気圧ピストン８６８も、ホース８７８を介して圧縮気体源８９５に接続される。空気圧ピストン８６８を圧縮気体源８９５に接続している２本のホース８７８だけが示されているが、空気圧ピストン８６８のそれぞれが圧縮気体源８９５に接続されることが理解される。１２個の空気圧ピストン８６８が示されている。
【０１７１】
加熱／冷却デバイスのセット（実例としてペルチェヒーター）は、支持体８０２の第２の面８１４に取り付けられる。第１段階のヒーター８８６は、第１段階ＰＣＲのためにブリスター５６４の内容物を加熱および冷却するように配置される。第２段階ヒーター８８８は、第２段階ＰＣＲのためにパウチ５１０の第２段階ブリスター５８２の内容物を加熱および冷却するように配置される。しかしながら、これらのヒーターは他の加熱目的に用いることもできること、および、特定の適用のために他のヒーターが適宜用いられてよいことが理解される。他の構造があり得る。
【０１７２】
蛍光検出が所望の場合、光学アレイ８９０が提供されてよい。図２に示されるように、光学アレイ８９０は、光源８９８（実例としてフィルターのついたＬＥＤ光源、フィルターの付いた白色光、またはレーザー照明）、およびカメラ８９６を備える。カメラ８９６は、実例として複数の光検出器を有し、それぞれがパウチ５１０内の第２段階のウェル５８２に対応している。あるいは、カメラ８９６は、第２段階のウェル５８２の全てを含む画像を撮影し得て、その画像が第２段階のウェル５８２のそれぞれに対応する別個のフィールドに分割され得る。構造に応じて、光学アレイ８９０は静止していてよく、または、光学アレイ８９０は、１つまたは複数のモーターに取り付けられたムーバー上に置かれて、個々の第２段階のウェル５８２のそれぞれからシグナルを得るように動かされ得る。他の配置があり得ることが理解される。
【０１７３】
示されるように、コンピューター８９４は、圧縮空気源８９５のバルブ８９９を制御し、したがって、機器８００の全ての空気圧を制御する。コンピューター８９４はまた、ヒーター８８６および８８８、ならびに光学アレイ８９０も制御する。これらのコンポーネントのそれぞれは、電気的に、実例としてケーブル８９１を介して接続されるが、他の物理的接続またはワイヤレス接続が本発明の範囲内である。コンピューター８９４は機器８００内に収納されてよく、または機器８００の外部であってよいことが理解される。さらに、コンピューター８９４は、コンポーネントの一部または全部を制御するビルトイン回路基板を備えてよく、増幅曲線、融解曲線、Ｃｐ、Ｃｔ、検量線、および他の関連するデータを計算し得て、そしてまた、光学アレイからのデータを受信および表示するためのデスクトップまたはラップトップＰＣのような外部コンピューターを備えてもよい。インターフェース、実例として、温度、サイクル時間などの情報および変数を入力するためのキーを備えるキーボードインターフェースが提供され得る。実例として、ディスプレイ８９２も提供される。ディスプレイ８９２は、例えば、ＬＥＤ、ＬＣＤ、または他のそのようなディスプレイであってよい。
【実施例】
【０１７４】
［実施例１−高密度ＰＣＲ］
一例では、一般的な呼吸器ウイルスに関する標準的な市販の免疫蛍光アッセイは、７つのウイルス：アデノウイルス、ＰＩＶ１、ＰＩＶ２、ＰＩＶ３、ＲＳＶ、インフルエンザＡ、およびインフルエンザＢを検出できることが知られている。より完全なパネルは、実例として、コロナウイルス、ヒトメタニューモウイルス、ライノウイルス、および非ＨＲＶエンテロウイルスを含む他のウイルスに関するアッセイを含む。アデノウイルスまたはＨＲＶのような高度に可変のウイルスについては、ウイルスの系統の全てのブランチを標的化するために複数のプライマー（実例として、それぞれ４つのアウタープライマーと４つのインナープライマーのセット）を使用することが望ましい。コロナウイルスのような他のウイルスについては、季節ごとに変化しない４つの別系統（２２９Ｅ、ＮＬ６３、ＯＣ４３、ＨＫＵ１）が存在するが、それらは十分に分岐しているので別個のプライマーセットが必要である。ＦｉｌｍＡｒｒａｙ（登録商標）Ｒｅｓｐｉｒａｔｏｒｙ  Ｐａｎｅｌ（ＢｉｏＦｉｒｅ  Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ，ＬＬＣ  ｏｆ  Ｓａｌｔ  Ｌａｋｅ  Ｃｉｔｙ，ＵＴ）は、アデノウイルス、コロナウイルスＨＫＵ１、コロナウイルスＮＬ６３、コロナウイルス２２９Ｅ、コロナウイルスＯＣ４３、ヒトメタニューモウイルス、ヒトライノウイルス／エンテロウイルス、インフルエンザＡ、インフルエンザＡ／Ｈ１、インフルエンザＡ／Ｈ３、インフルエンザＡ／Ｈ１−２００９、インフルエンザＢ、パラインフルエンザウイルス１、パラインフルエンザウイルス２、パラインフルエンザウイルス３、パラインフルエンザウイルス４、および呼吸器合胞体ウイルスを含む。これらのウイルスに加えて、ＦｉｌｍＡｒｒａｙ（登録商標）Ｒｅｓｐｉｒａｔｏｒｙ  Ｐａｎｅｌは、３つの細菌：百日咳菌（Ｂｏｒｄｅｔｅｌｌａ  ｐｅｒｔｕｓｓｉｓ）、肺炎クラミジア（Ｃｈｌａｍｙｄｏｐｈｉｌａ  ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）、および肺炎マイコプラズマ（Ｍｙｃｏｐｌａｓｍａ  ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）を含む。高密度アレイ５８１は、そのようなパネルを単一のパウチ５１０内に収容することが可能である。それぞれが少なくとも２０の病原体に関してアッセイする他のパネルがＦｉｌｍＡｒｒａｙ（登録商標）に利用可能である。
【０１７５】
実例的な第２段階ＰＣＲのマスターミックスは、増幅を示すシグナルを産生するためにｄｓＤＮＡ結合色素ＬＣＧｒｅｅｎ（登録商標）Ｐｌｕｓを含む。しかしながら、この色素は単に実例的であり、他のｄｓＤＮＡ結合色素、および、当技術分野で知られている蛍光、放射能、化学発光、酵素、または同様のもので標識されたプローブを含む他のシグナルが用いられ得ることが理解される。
【０１７６】
実例的なＦｉｌｍＡｒｒａｙ機器は、ＰＣＲ後の融解に基づいてそれぞれの第２段階の反応に関してポジティブまたはネガティブのコール（ｃａｌｌ）を作成するようにプログラムされている。融解曲線は、コールがポジティブになるためには、事前に規定された温度範囲内に融解ピーク（一次導関数の最大値または負の一次導関数の最大値）を生じなければならない。それぞれの第２段階の反応をコールするこの方法は単に実例的であり、リアルタイム増幅のデータを用いて、または当技術分野で知られている他の手段によって、コールを作成することができることが理解される。
【０１７７】
［実施例２−マルチプレックスＰＣＲのための定量化標準の設計］
単一のマルチプレックスＰＣＲが１つの反応チャンバー内で行われるＦｉｌｍＡｒｒａｙのようなシステムでは、個々のレベルを簡単に区別することができないので、単一の参照テンプレートの１０倍希釈を用いて検量線を作成するのは不便である。例えば、単一の参照テンプレートが単一の第１段階反応チャンバーに１０コピー、１００コピーおよび１０００コピーの濃度で添加される場合、そのチャンバー内の参照テンプレートの最終濃度は１１１０コピーとなり、なんらかの他のラベルが存在せず、個々の希釈を区別することができない。さらに、２ステップのマルチプレックスＰＣＲシステムでは、シングルプレックスの標準テンプレートの増幅反応はサンプルが受ける上流の操作の全てを正確に反映し得ず、または同様の効率で増幅され得ず、したがって、プロセス全体を反映し得ないので、ネスト化された第２段階ＰＣＲでのみ作成される検量線は、定量化に関して限定された値であり得る。
【０１７８】
この実例的な実施例では、異なる核酸テンプレート（実例として配列および／または長さが異なる）、実例として合成の定量化標準が、異なるレベルの希釈系列を表わすために用いられる。１つの実例的な実施態様では、全ての合成の定量化標準に関するアッセイは、同様の増幅効率を有し、マルチプレックスの設定で、それぞれの所定の希釈点において同一または同様のＣｐ値を生じさせる。実例として、全ての標的アッセイは、同一のパフォーマンス特性（効率を含む）に関して最適化されるが、効率におけるアッセイ特異的な変動について調節するために補正が適用され得る。
【０１７９】
１つの実例的な例では、定量化標準に関する外側アンプリコンおよび内側アンプリコンのサイズは、定量的標的アッセイに関するアンプリコンのサイズの代表（ｒｅｐｒｅｓｅｎｔａｔｉｖｅ）であってよい。また、配列またはＧＣ含有量は、プライミング領域間で同一または同様であってよい。実例として、配列は、少なくとも１つの内側プライミング領域を除き（内側アッセイ間の交差反応性を避けるのに十分に異なるべきである）、同一であってよい。内側プライマー結合領域のみ配列が異なるならば、同一のＰＣＲ１プライマーを用いて全ての定量化標準を増幅させてよく、したがって、ＰＣＲ１アッセイのパフォーマンスにおける潜在的な差異を最小限にする。さらに、標識が用いられるならば配列は同一であってよく、標識が用いられないならば、配列におけるわずかな違いさえ検出に関して提供され得る（実例として第２段階シングルプレックス反応において）。しかしながら、これらのパラメーターは単に実例的なものであり、増幅効率を検出および制御するための他の手段があり得ることが理解される。マルチプレックス反応において存在する定量化標準は、Ｍｇ２＋、プライマー濃度、Ｔｍ、およびサイクル条件のような反応パラメーターにマッチするように設計されるべきであることが理解される。また、マルチプレックスＰＣＲ反応における合成テンプレートの非特異的な増幅を最小限にすることが望ましいことも理解される。
【０１８０】
図５は、４つの予期される（ｐｒｏｓｐｅｃｔｉｖｅ）内部定量化標準の濃度に対するＣｐを示す。この実例的な実施態様では、内部定量化標準は合成配列を有する。この実例的な実施例では、第２段階の内側の反応に関して、４つの定量化標準は、全てが１つの共通のプライマーを共有し、それぞれが１つの独特な特異的プライマーを有する。それらはまた、第１段階ＰＣＲに関する外側プライマーの両方を共有するように設計された。したがって、定量化標準を検出するために用いられる第２段階のウェルのそれぞれに、共通のプライマーおよびその定量化標準に関するプライマーがスポットされていて、それにより、１つの定量化標準のみがそのようなウェルのそれぞれにおいて増幅するはずである。しかしながら、これは単に実例的な実施例であり、他の構造があり得ることが理解される。Ｓｙｎ２、Ｓｙｎ３、およびＳｙｎ４はそれぞれ同様の増幅効率を有していて、さらなる試験に選択された。Ｓｙｎ１の挙動は異なり、さらなる試験からは省略した。したがって、一実施態様では、同様の増幅効率を有する複数の定量化標準を有することが望ましい。
【０１８１】
この実例的な実施例では、ｄｓＤＮＡ結合色素ＬＣＧｒｅｅｎ  Ｐｌｕｓを用いて増幅を検出した。しかしながら、これは単に実例的なものであり、他のｄｓＤＮＡ結合色素、プローブ、シグナル、または増幅を検出する他の方法が本発明の範囲内である。
【０１８２】
同様の増幅効率を有する定量化標準を設計する様々な方法が存在することが理解される。一実施態様では、定量化標準は、内側プライマーの間は同一配列であり、内側プライマーの結合配列のみが異なっている。別の実施態様では、定量化標準は全て、実質的に同一の長さおよび実質的に同一のＧＣ含有量である。さらに別の実施態様では、配列は、長さが異なるが、ＧＣ含有量も異なっていて釣り合っている（ｃｏｍｐｅｎｓａｔｅ）。同様の増幅効率を有する核酸を設計する他の方法が当技術分野で知られている。
【０１８３】
一実施態様では、実例として定量化標準が２ステップのネスト化マルチプレックスＰＣＲ反応において用いられる場合、定量化標準は全て、第１段階ＰＣＲ反応における同一の外側プライマーを用いてよく、二次構造の形状に起因する違いを避けるためにプライマーを囲んでいる同一の領域も潜在的に共有する。定量化標準は、個々の第２段階ＰＣＲ反応において異なる内側プライマーを用いることによって区別され得て、それぞれのキャリブレーターは、独特な内側プライマーペアを有していて、または上記のように、１つの内側プライマーを共有して１つの独特な内側プライマーを有している。そのような実施態様は、定量化標準のそれぞれが、その第１段階プライマーに同一のカイネティクスで結合して、第１段階マルチプレックスＰＣＲ反応の複雑性が最小化され得るという点で有利である。
【０１８４】
２ステップＰＣＲに対して言及されるが、同一の原理をシングルステップのマルチプレックスＰＣＲにおいて用いることができる。この場合、定量化標準は、異なるフォワードまたはリバースプライマーを有してよく、または、同一のフォワードおよびリバースプライマー（実例として、それぞれ、特異的な蛍光プローブまたは他の同定可能な標識、例えば、化学発光、生物発光、放射蛍光、電気発光、電気化学発光、機械的発光、結晶発光、熱発光、音ルミネセンス、リン光および他の形態の光ルミネセンス、酵素、放射能などを有するもの）が、本明細書において検討される。適用は、任意のシステムにおいて利用可能な検出チャネルまたは当技術分野で知られている標識を区別するための他の方法の数によってのみ制限される。いくつかの標識は、増幅後の処理が必要であってよい。さらに、標識された定量化標準が２ステップＰＣＲにおいて用いられ得て、ここで、同一または異なるプライマー配列を用いてよく、第２段階ＰＣＲにおいて検出するために標識が用いられることが理解される。そのような実施態様では、標識された定量化標準は、第２段階ＰＣＲにおいて多様であってもよく、標識によって区別される。
【０１８５】
合成の定量化標準が本実施例において用いられるが、定量化標準に用いられる配列は天然に生じたものであってよいことが理解される。例えば、酵母がＳＰＣとして用いられるならば、定量化標準配列の１つまたは複数に酵母配列を用いてよい。分裂酵母Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ  ｐｏｍｂｅについては、Ｔｆ２−型のレトロ転移因子／トランスポゾンが１３コピーで存在するが、リボソームＲＮＡ遺伝子は４７回繰り返される。別の例では、異なるコピー数で存在する遺伝子配列が用いられ得る。実例として、真菌病原体は、核ゲノムあたり５０〜２００コピーのリボソームＲＮＡ遺伝子を有する。これらの病原体は、ゲノムあたり５〜２０コピーで変化するトランスポゾンも有する。細菌病原体は、ゲノムあたり１〜１５コピーを有するが、大部分は５コピーより多く有している。他の天然起源または合成のテンプレート（例えば、ウイルスに関してバクテリオファージ、ならびに、膜および／またはキャプシドおよび／またはエンベロープ構造を模倣することのできる合成の粒子）を用いてよい。さらに、３つの定量化標準が本明細書中の実施例の多くにおいて用いられるが、線形の検量線を規定するためには２つの定量化標準のみが必要であり、広範囲の標的濃度が予想される実施態様または非線形の検量線が予想される実施態様では、より多くの定量化標準が所望で有り得ることが理解される。実例として、定量化標準の数は、系のダイナミックレンジおよびアッセイの要件に基づいて選択され得る。
【０１８６】
あるいは、実施例５に示されるように、それぞれの実験ランにおいて１つの定量化標準のみを使用することも可能であり（実施例５において議論されるサンプル処理コントロール（ＳＰＣ）を参照）、および、実例として、この分析に関してソフトウェア内に含まれ得る少なくとも３つの定量化標準（実施例５においてＱＳという名称）を用いて、定量化標準の範囲で以前に作成された定量化のためのインポートされた検量線に依拠することができる。
【０１８７】
［実施例３−多重のキャリブレーション］
図６Ａは図５と似ているが、３つの選択されたキャリブレーター配列からのデータのみ示す。図６Ａは、３つの実例的な定量化標準に関して、直線性およびほぼ同一の増幅効率を証明している。図６Ｂは、合計５つの希釈にわたって３つの定量化標準のそれぞれの３つのポイントの組み合わせから作成された混成の検量線を示す。
【０１８８】
実例的なキャリブレーションプロットが作成されたので、それぞれの標的アッセイについてアッセイ特異的な参照テンプレートを用いた検量線が作成され得る。図７は、Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒ  ｂａｕｍａｎｎｉｉに関する十分に定量化された合成の参照テンプレートを用いて外部で作成された検量線を、定量化標準を用いて作成された混成の内部検量線と比較する。ここでは、３つの「Ｓｙｎ」テンプレートが、反応チューブに加えられる前に予め混合されて；１回の反応あたり、Ｓｙｎ４は１０３コピーで添加されて、Ｓｙｎ２は１０４コピーで添加されて、Ｓｙｎ３は１０５コピーで添加された。これらのテンプレートからのＣｐ値を用いて、各反応について混成の内部検量線を作成した。外部検量線は、合成の参照テンプレートＡ．ｂａｕｍａｎｎｉｉ参照テンプレートを用いて作成されて、「Ｓｙｎ」テンプレートと同じ濃度で試験された。混成の内部検量線とＡ．ｂａｕｍａｎｎｉｉ検量線は非常に似ている。同様の傾きは効率が同様であることを示す。内部検量線を用いて、Ａ．ｂａｕｍａｎｎｉｉサンプルの未知の最初の濃度を予測することができると期待される。しかしながら、ｙ切片が２つの曲線間でシフトしているので、Ａ．ｂａｕｍａｎｎｉｉの定量化は、この内部検量線を用いる場合は補正因子によって恩恵を受け得る。
【０１８９】
したがって、標的生物の濃度は、混成の内部検量線を用いて計算され得る。内部標準はそれぞれ異なる公知濃度であり、標的生物と同じ工程で増幅されることに注意されたい。当該方法は、実例としてサイクル閾値（Ｃｔ）の値（あるいはＣｐ値または他の同様の方法）を用い、それは、実験的に決定される、標的および内部標準に関する、バックグラウンドの蛍光よりも高い蛍光シグナルを得るために必要とされるＰＣＲのサイクル数である。実例として米国特許番号６，３０３，３０５（その全体で参照により本明細書中に援用される）において教示されるように、例えば一次、二次、またはｎ次導関数を用いて、他のポイントが同様に用いられ得る。他のポイントが、当技術分野で知られているように同様に用いられ得て、任意のそのようなポイントは、本明細書中で議論される任意の方法において、ＣｐまたはＣｔに代用され得る。実例として、２ステップのマルチプレックスシステムでは、Ｃｐ値はネスト化された第２段階の反応において決定される。しかしながら、他の実施態様では、Ｃｐは、増幅システムに適切であるように決定され得ることが理解される。例えば、Ｃｐは、単一のマルチプレックス反応またはその後の第２段階の反応においてオリゴヌクレオチドプローブを用いることによって決定され得て、オリゴヌクレオチドプローブのそれぞれは定量化標準配列に特異的であり、区別可能な蛍光シグナルを有する。
【０１９０】
単一の内部標準が用いられる実例的な実施例では、標的生物の濃度は、標的生物のＣｐ（Ｃｐｔ）、内部標準の濃度およびＣｐ（濃度ｓ、Ｃｐｓ）、ならびに標的生物の効率（効率ｔ）を用いて、以下の式に従って計算され得る。
濃度ｔ＝濃度ｓ＊効率ｔ（Ｃｐｓ−Ｃｐｔ）                              ［等式１］、
ここで、下付きのｓおよびｔは、それぞれ内部定量化標準および標的生物を表わし、
効率ｔ＝１＋パーセントとしての効率／１００                    ［等式２］
である。
【０１９１】
例えば、各ＰＣＲサイクルで１００％増幅を有する標的に関する可変の効率＝２である。効率が事前に定義されていてダイナミックレンジにわたって一定であると仮定されることに注意されたい。上述のように、内部キャリブレーターの効率は、全て同様（実例として、互いに１％内、２％内、５％内、または１０％内）であるべきである。同様に、標的の効率は、キャリブレーターの効率と、それぞれ同様（実例として、キャリブレーターの２％内、５％内、１０％内または１２％内）であるべきである。正確な定量化のためには、より狭い範囲内（実例として、１％内、２％内、または５％内）の効率が望ましいことが理解される。しかしながら、半定量的または「ビニング（ｂｉｎｎｉｎｇ）」の結果（以下を参照）のためには、効率におけるより大きな変動が許容され得る。
【０１９２】
２以上の定量化標準が用いられる場合、図６Ａ〜６Ｂに説明されるように、実例として、内部定量化標準に関する（Ｃｐ，ｌｏｇ１０（濃度））データにフィットさせた最小二乗法の回帰直線を用いて、標準定量化曲線が作成され得る。実例として、回帰フィットは以下の式である：
ｌｏｇ１０（濃度）＝（Ｃｐ−ｂ）／ａ      ［等式３］、
ここで、ｂは切片であり、ｌｏｇ１０（濃度）＝０の場合のＣｐの値を表わし、ａは傾きであり、テンプレート濃度における単一単位の変化によってＣｐが変化する程度を表わす（効率の関数）。未知の標的に関する計算されたＣｐ値が与えられると、この式は、標的濃度をＬｏｇ１０単位で与える。他のアルゴリズムまたは等式が、定量化の正確性および精度を改善するために必要に応じて適用され得る。これらには、抽出および／または増幅における、プラットフォーム特異的、マトリックス特異的、またはアッセイ特異的な偏りに関して必要とされる調整が含まれてよい。これらはまた、任意のマルチステップの増幅工程の別個のステップにおけるアッセイ効率の違いを説明することのできるアルゴリズムを含んでもよい。一部の実施態様では、定量化検量線は非線形であってよく、または特定のダイナミックレンジ内でのみ線形であってよい。実例として、濃度依存性の可変の傾きがある場合は、Ｓ字型の用量応答曲線を用いてよい。他の非線形曲線は本発明の範囲内である。
【０１９３】
上述の方法は、標的に関する観察されたＣｐ値および内部定量化標準を用いて作成された検量線に関する回帰等式に基づいて、未知濃度を有する標的生物に関して用いることができる。理想的には、この手法を用いて定量化される全ての標的は、内部定量化標準アッセイと同等または同様のＰＣＲ効率を有するアッセイを有するべきである。しかしながら、標的アッセイ標準曲線の傾きまたは切片には、少しの変動があってよい。標的アッセイは内部標準とは異なる増幅特性を有し得ることを考慮すれば、未知標的の計算される濃度の精度を改善すべく、体系的なアッセイ特異的な偏りに関して調節するために、アッセイ特異的な補正因子を用いることができる。実例として、線形の定量化曲線が用いられる場合、ａは、異なるアッセイ特異的な効率を示す補正因子によって補正され得て（傾きを変更する）、または、ｂは、特定の標的に関する最適なＰＣＲ条件が存在しないことに起因して補正され得る（標的のＣｐを遅らせる）。適切な場合は両方の補正を用いてよい。別の例では、実例として、ネスト化ＰＣＲが用いられる場合は、ＰＣＲ２において観察されるｂの違いは、ＰＣＲ１効率の変動に起因した、ＰＣＲ１アッセイの全成果の結果であってよい。この場合、補正因子は、Ｃｐ値の関数として計算されてよく、または、所望の定量化精度に応じた定数であってよい。
【０１９４】
例えば、一組の制御された実験が、公知の標的生物濃度を用いて行われてよい。単一の濃度で複数のレプリケートが使われる場合は、アッセイ特異的な補正因子が、公知濃度および計算された濃度の平均差としてＬｏｇ１０単位で計算され得る。実例として、標的生物の補正されたｌｏｇ濃度を得るために、アッセイ特異的な補正因子を標的生物のｌｏｇ濃度（内部定量化標準の方法によって上記で計算される）に加えてよい。マルチプレックスアッセイにおけるそれぞれの標的配列は、実例として、独自の補正を有する（または、混成の検量線と非常に似ている場合は、補正は全くいらない）。
【０１９５】
アッセイ特異的検量線によって計算された標的生物の定量化を、混成の内部検量線によって計算されたものと比較するための実験を設定した。この実験では、１０倍段階希釈の公知量のＡ．ｂａｕｍａｎｎｉｉゲノム核酸を、ベンチトップ反応において内部定量化標準を用いて多重化した。外部のアッセイ特異的検量線も、図７に関して上述のとおり設定した。図８Ａは、Ａ．ｂａｕｍａｎｎｉｉに特異的な外部検量線および定量化標準からの混成の検量線を用いた結果を示す。混成の検量線を補正せずに用いる場合、標的生物（Ａ．ｂａｕｍａｎｎｉｉ）の明白な体系的な過定量化（約０．５ｌｏｇコピー単位）が存在するが、０．５ｌｏｇコピー単位の補正が適用される場合、補正されたアッセイ特異的検量線は、サンプルにおけるＡ．ｂａｕｍａｎｎｉｉ力価のかなり正確な概算を与える。図８Ｂは、定量化におけるこの体系的な偏りが、上述のように作成された平均アッセイ特異的補正因子を、内部検量線方法によって計算された量に適用することによって、どのように補正され得るのか示す。同様の補正が、マルチプレックス反応において各アッセイに関してなされてよい。
【０１９６】
多くの実施態様において、絶対的な定量化は必要でなく、半定量的な結果で十分であり得る。結果は、絶対濃度として報告されてよく（システムエラーを含むまたは含まない（実例として９５％予測区間））、または、複数の範囲のうちの１つにビニングされてよい（実例として、「高」、「中」、または「低」濃度を報告し、それぞれ、１桁または複数桁をカバーしている）。特定のアッセイで適切なようにビンの数を変更してよく、任意の数のビンを用いてよいことが理解される。また、半定量的結果に関するビニングの範囲（桁または他の尺度）は、特定の例に適切なように調節され得る。
【０１９７】
［実施例４−シーケンシングデータを正規化および定量化するための方法］
実施例１〜３に記載されるアッセイ方法およびシステムに加えてまたは代わりに、次世代シーケンシング（ＮＧＳ）方法。ＮＧＳは、例えば、サンプル中の潜在的に病原性の生物の検出、同定および定量化のために用いられ得る。別の例では、ＮＧＳは、実施例１〜３に記載されるアッセイ方法およびシステムのうちの１つのような別のアッセイのパフォーマンスを確認するためのいわゆる「コンパレーター」として用いられ得る。特定の例では、ＮＧＳは、ＰＣＲを含み、その後に次世代シーケンシングが続けられる。
【０１９８】
現代のシーケンシング機器（例えば、ＮＧＳ機器）は、計算的に分析がやっかいであり得る大量のデータを産生し得る。さらに、シーケンシング工程（例えば、サンプルのタイプ、サンプルの調製、増幅、およびシーケンシング）および得られたデータは、実験間、ラボ間などでデータを分析および／または比較するのを困難にさせ得る複数の混乱させる因子を含み得る。例えば、サンプルは、ヒューマンエラー（すなわち、偶発誤差）および系統誤差に起因して、シーケンシングのために均一に調製され得ない。別の例では、サンプルは、複数の生物由来の核酸または複数の長さ範囲が様々な濃度で存在することに起因して、均一にシーケンスされ得ない。例えば、唾液は、特に豊富なサンプルタイプであり、サンプル１ｍｌあたり約０〜１０１３生物の範囲の生物ロードを有し得て、１ｍｌあたり約１０３〜１０９生物がかなり典型的である。排泄物または血液培養培地のような他の臨床サンプルは、同様の生物ロードを有し得る。同様に、臨床サンプルは、大量の宿主ＤＮＡ（例えば、ヒトＤＮＡ）を含み得る。さらに、複数のサンプル由来のシーケンシングライブラリーは、シーケンシングの前に一緒にプールされ得て、それにより、複数のサンプルが同時に分析されるのでシーケンシングに必要な時間を短縮させるが、単一のシーケンシングランにおいて集められるデータ量が劇的に増え得る。さらに、サンプルプール内の個々のサンプルは、上述の因子に起因して、均一に調製され得ない。個々のプールされたサンプル由来のデータは典型的に、個々のアライメントおよび分析のためにデータセット内で分離される。
【０１９９】
これらおよび他の同様の問題を対処するために、サンプル調製に先立って（例えば、核酸の抽出および増幅に先立って）、シーケンシング前に、公知量の参照ＤＮＡ配列（本明細書において定量化標準材料（ＱＳＭ）または内部定量化標準と呼ばれる）を、シーケンシングが意図されるサンプルに加えることができることが見いだされた；その結果、内部定量化標準は、全てのサンプル処理およびシーケンシングステップを通して保有される。サンプル処理の最初に内部定量化標準が加えられるので、シーケンスされた標準に関するシーケンシングリード数（すなわち、シーケンスされた標準の分子数）は、制限されないが、サンプル調製、増幅、核酸回収、精製、およびシーケンシングのようなステップを通して、サンプルが受け得る操作および体系的損失の全てを正確に反映する。同様に、内部定量化標準は、抽出、ライブラリーの調製およびプールの前に各サンプルに対して別個に添加されるので、各サンプルに添加された標準は、各サンプルが供せられる処理ステップの全てを正確に反映することができる。一実施態様では、サンプルプール内の各サンプルに別個に添加される内部定量化標準は同一である。一実施態様では、プール内のそれぞれの増幅配列は、各サンプル由来の核酸が、サンプルごとにトラック、分離、および正規化されるのを可能にする独自のサンプル特異的な識別配列（例えば、ＤＮＡバーコード）を有する。
【０２００】
内部定量化標準（すなわち、参照ＤＮＡ配列）は、シーケンスされ得るサンプル中の他の核酸から区別可能である限り、本質的に任意の天然または合成の核酸配列であってよい。例えば、内部定量化標準は、天然起源または改変されたプラスミド、天然起源または合成の線状ＤＮＡフラグメント、または同様のものであってよい。サンプル調製、ＤＮＡ増幅、精製、およびシーケンシングの効率は全て、ＤＮＡのサイズによって影響を受けるので、内部定量化標準は、サンプル中の未知配列と近いサイズ範囲内であるべきである。例えば、シーケンスされるＤＮＡのフラグメントが２００〜５００塩基対の範囲内のサイズを有するならば、内部定量化標準もまた、２００〜５００塩基対の範囲内のサイズを有するべきである。さらに、内部定量化標準の組成（例えば、相対的Ｇ−Ｃ含有量）もまた、シーケンスされるＤＮＡの組成と相対的に同様であるべきである。
【０２０１】
一実施態様では、公知量の内部定量化標準が、シーケンスされるサンプルに添加されてよい。複数のサンプルがシーケンスされるならば、内部定量化標準は、それぞれのサンプルに別個に添加されてよい。一実施態様では、公知量の内部定量化標準は、アッセイに基づいて決定される。例えば、アッセイに十分な内部定量化標準の量は、制限されないが、アッセイの所望の分解能、核酸抽出効率、シーケンスされる核酸の濃度範囲、検出される遺伝子突然変異の普及度、または、所望のシーケンシングリード深度のような因子に依存し得る。一実施態様では、公知量の内部定量化標準は、アッセイの線形範囲内の量、すなわち、例えば、検出限界（ＬＯＤ）よりも上かつアッセイに期待される最大濃度の下で添加されてよい。例えば、本明細書において議論される特定の例では、シーケンシングアッセイにおいてシーケンスおよび区別され得るＤＮＡコピー／ｍｌの線形範囲は、約１０２〜約１０７〜１０８コピー／ｍｌであり、この場合、内部定量化標準は、約１０４〜１０６コピー／ｍｌの量で添加されてよい。以下により詳細に説明されるように、添加される内部定量化標準の量およびシーケンシングリード深度は、アッセイのＬＯＤと関連している。
【０２０２】
サンプル中の核酸をシーケンスするために、ＲＮＡまたはＤＮＡがサンプル組織／細胞から抽出されてフラグメント化される。ＲＮＡは、逆転写によってｃＤＮＡに変換される。シーケンシングのために内部定量化標準を含むサンプルを調製するステップは、ＤＮＡフラグメントの作製を含み、ＤＮＡフラグメントは、シーケンシングプラットフォームと相互作用するように設計された特異的な配列および特定のサンプルに由来するシーケンシングデータを特定するために用いられ得るサンプル特異的識別配列（例えば、ＤＮＡ「バーコード」）を含むシーケンシングアダプターにアニーリングまたはライゲーションすることによって、「ライブラリー」に転換される。２以上のサンプルが並行してプールおよびシーケンスされる場合は、各サンプルは、各サンプルに由来するデータを区別するために用いることのできる独自のサンプル特異的識別配列または「バーコード」を有する。この手順は主に、Ｉｌｌｕｍｉｎａシーケンシング技術と適合する。しかしながら、本明細書中で議論されるほとんどすべての原理が、最小限の改変によって、Ｌｉｆｅ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ、Ｒｏｃｈｅ、Ｐａｃｉｆｉｃ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ、およびその他によって開発されたＮＧＳプラットフォームに適用され得ることに注意すべきである。
【０２０３】
次のステップは、ＤＮＡのシーケンシングを含む。シーケンシングの正確な方法は、シーケンシングプラットフォームに依存するが、全ての現代の大規模に並行したシーケンシング技術は多少似ていて、同様のデータを産生する。
【０２０４】
シーケンシング後に、内部定量化標準に由来するリードが各サンプルにおいてカウントされて、各サンプルのＮＧＳデータセットが正規化され得る。最初のチェックとして、サンプルに加えられた内部定量化標準の量と内部定量化標準に関して観察されたシーケンシングリード数との間に線形関係が存在すべきである。さらに、内部定量化標準シーケンシングリードの最小数（「Ｆ」）が記録されるべきである。正規化は、（１）サンプルに関する内部定量化標準に関する最小数のシーケンシングリードの存在に基づいて、データ合否基準をシーケンシングデータセットに適用し、（２）実質的に同一の検出限界（ＬＯＤ）がシーケンシングアッセイにおいて全ての未知核酸に適用されることを確実にする。サンプルがプールされる場合は、正規化は、全てのサンプルが十分な深度まで読まれることを確実にして、全てのサンプルが同一数のＱＳＭリードペアを維持することを確実にして、そして、実質的に同一の検出限界（ＬＯＤ）がシーケンシングアッセイにおいて全てのサンプル中の全ての未知核酸に適用されることを確実にする。
【０２０５】
線形関係が存在し、「Ｆ」内部定量化標準／ＱＳＭリードが記録されると仮定すると、シーケンシングデータは、シーケンシングリードの正規化数を維持するように等式４に従って処理され得る：
ＮＯＲＭ＝シーケンシングリード数＊（Ｆ／内部定量化標準に由来する観察されたシーケンシングリード数）          ［等式４］
「Ｆ」は、固定された、アッセイに特異的な内部定量化標準シーケンシングリードのユーザー設定の最小期待数である。例えば、「Ｆ」は、シーケンシングアッセイの検出限界（ＬＯＤ）において、またはその付近で、核酸を検出するのに十分なシーケンシングリード深度を確実にするように設定されるシーケンシングリード数の値である。
【０２０６】
ＮＯＲＭはシーケンシングデータのサブセットを表わしてよく、シーケンシングリード数であり、さらなる分析および定量化のために保存される。等式４から分かるように、内部定量化標準に由来するシーケンシングリードの観察される数が「Ｆ」と同じならば、丸括弧内の量は「１」となって、その結果、ＮＯＲＭは、記録されたシーケンシングリード数と等しくなる。一方で、データセットにおける内部定量化標準のシーケンシングリード数が「Ｆ」よりも大きいならば、丸括弧内の量は＜１になり、ＮＯＲＭ等式は、データを縮小させて（ｄｏｗｎｓｃａｌｅ）、オーバーリード（ｏｖｅｒ  ｒｅａｄ）を説明して（ａｃｃｏｕｎｔ  ｆｏｒ）、同一のＬＯＤが全てのサンプルにわたって適用されることを確実にする。データセット内の内部定量化標準のシーケンシングリード数が「Ｆ」未満ならば、そのサンプル由来のデータは却下され得て、そのサンプルは、「Ｆ」内部定量化標準リードが記録されるまでさらなるシーケンシングに供されてよい。
【０２０７】
維持すべきＱＳＭリードの数「Ｆ」は、アッセイ進行中に選択されるパラメーターであり、リード深度およびアッセイの検出限界（ＬＯＤ）に関連する。この効果は以下の表１に説明される。
2021521885.tif 000003
【０２０８】
例えば、内部定量化標準がサンプルに５×１０５コピー／ｍｌの濃度で加えられるならば、ＬＯＤ以上の全ての未知核酸が十分にシーケンスおよび検出されるのを確実にするために、異なる数のＱＳＭリードが記録される必要がある。これは、シーケンシングのリード深度と呼ばれる。例えば、内部定量化標準／ＱＳＭがサンプルに５×１０５コピー／ｍｌで添加されて、「Ｆ」が５００ならば、未知核酸の検出のためのアッセイに関するＬＯＤは、１０３コピー／ｍｌ以上であり（典型的に、１０３〜１０４コピー／ｍｌの範囲内）；「Ｆ」が５０００ならば、アッセイのＬＯＤは１０２コピー／ｍｌ以上であり（典型的に、１０２〜１０３コピー／ｍｌの範囲内）；または、「Ｆ」が５０，０００ならば、アッセイのＬＯＤは１０コピー／ｍｌ以上である（典型的に、１０〜１０２コピー／ｍｌの範囲内）。したがって、アッセイのＬＯＤは、アッセイのリード深度を増加（すなわち、「Ｆ」を増加）させることにより、低くすることができることが分かる。しかしながら、「Ｆ」を勝手気ままに高く設定することは、シーケンシング負荷も増加するので意味がない。例えば、アッセイのＬＯＤが１０コピー／ｍｌ以上であり（「Ｆ」＝５０，０００）、最も優勢の（ｐｒｅｖａｌｅｎｔ）種が１０９コピー／ｍｌで存在するならば（それは珍しいことではない）、１０９コピー／ｍｌで入れられた最も優勢の標的は、１０１〜１０２コピー／ｍｌの範囲で存在する標的のほんの１〜１０（例えば、４）リードを達成するために、１億回シーケンスされる。このことは実用的ではないだろう。
【０２０９】
本明細書中に記載される実施例において、「Ｆ」は典型的に５０００ＱＳＭリードに設定される。なぜならば、これが、１０３〜１０７コピー／ｍｌの範囲内またはそれよりも多く存在する核酸の検出を再現性良く確実にするのに十分であるからである。よりストリンジェントなアッセイまたはよりストリンジェントでないアッセイについては、「Ｆ」は異なって設定されてよい。したがって、一実施態様では、シーケンシングリード深度（すなわち、「Ｆ」）は、１００〜１０００ＱＳＭリードという低さ、または約１０００内部定量化標準シーケンシングリード〜約１００，０００内部定量化標準シーケンシングリードの範囲内、好ましくは約２０００内部定量化標準シーケンシングリード〜約７５，０００内部定量化標準シーケンシングリード、より好ましくは約５０００内部定量化標準シーケンシングリード〜約５０，０００内部定量化標準シーケンシングリード、または最も好ましくは少なくとも５０００内部定量化標準シーケンシングリードであってよい。
【０２１０】
内部標準の力および「Ｆ」の値は、図９を参照してさらに説明される。図９は、３つのサンプル（Ａ、Ｂ、およびＣ）に関するシーケンシングデータセットの仮想事例を説明する。各サンプルは、１０ＱＳＭコピーがスパイクされて（ｓｐｉｋｅｄ  ｗｉｔｈ）、各サンプルは未知量の核酸ＸおよびＹを含んでいた。各サンプルにおいて、２０，０００シーケンシングリードを集めた。サンプルＡにおいては、サンプルはＸまたはＹを明白に含まず、全ての２０，０００リードはＱＳＭに起因するものであった。サンプルＢにおける２０，０００リードのうち、１８１８２リードがＱＳＭに起因し、１８１８リードがＸに起因し、Ｙに起因するリードは存在しなかった。サンプルＣは、異なる事例を説明する。サンプルＣにおける２０，０００リードのうち、２０リードがＱＳＭに起因し、２リードがＸに起因し、１９９７８リードがＹに起因するものであった。最初のリード属性から、サンプルＣは、非常に高濃度のＹおよび相対的に低いＸを有することが分かる。それにもかかわらず、サンプルＣは、５０００よりも少ないＱＳＭリードを有し、したがって、サンプルは、少なくとも５０００ＱＳＭリードが記録されるまで、さらなるシーケンシングに供されなければならない。しかしながら、サンプルＣの事例では、そのことは、最小のＱＳＭカバレッジを達成するためにＹは５００万回近くシーケンスされることを意味する。このことは、産業上の標準（各サンプルについて最小の合計リード値（例えば、２０，０００リードまたは２００，０００リードまたは２００万リード）を設定し得て、この合計が達成される場合は全ての検出可能な核酸がシーケンスされると仮定する）と比較すると煩わしく思えるかもしれないが、本明細書中に記載される方法は、同一のリード深度が全ての３つのサンプルＡ、Ｂ、およびＣにわたって達成されることを確実にし、シーケンシングが、それぞれのサンプル中の稀な核酸を検出する等しい機会を有することを確実にする。サンプルＣの事例では、２００万の合計リードが記録された場合でさえ、サンプルはまだ「アンダーリード（ｕｎｄｅｒ  ｒｅａｄ）」であり、それは十分な数であるはずのように思えるが、この場合、２００万リードではまだ不十分な数のＱＳＭリードをもたらし、サンプルはアッセイのＬＯＤに関してアンダーリードである。しかしながら、未知量の核酸を有する実際の臨床検体をシーケンシングする場合は、内部定量化標準を用いずに、どのポイントにおいて十分なリード深度が達成されるかを知ることは不可能であり得る。すなわち、サンプル中の未知核酸（例えば、サンプルＣ中のＸおよびＹ）は、ＱＳＭリードが十分になるまでＬＯＤで検出される等しい機会が与えられない。また、２００万または２００，０００リードでさえ、ＸおよびＹを検出することが可能であるはずだが、ＱＳＭが存在しなければＸおよびＹを定量化することは不可能であり得て、サンプル中の全ての稀な核酸を検出するのに十分なリード深度がいつ達成されるかを決定することは不可能であり得る。サンプルＡおよびＢでは、５０００を超えるリードがＱＳＭに起因するものであったので、「Ｆ」の要件は満たされ、サンプルＡおよびＢは合格する（ｐａｓｓ）。したがっ��、前述の仮想事例から、本明細書中で議論した内部定量化標準が頼もしいツールであることが分かる。
【０２１１】
さらに図９を参照し、「Ｆ」は、固定された、アッセイ−設定の（ａｓｓａｙ−ｓｅｔ）内部定量化標準シーケンシングリードの最小期待数であり、ＮＯＲＭ［等式４］は、さらなる分析および定量化のために保存されるシーケンシングリードのサブセットを生じさせ得る。内部定量化標準に由来する観察されたシーケンシングリード数と「Ｆ」が同一ならば、ＮＯＲＭは、記録されたシーケンシングリード数と等しい。対照的に、サンプルが「オーバーリード（ｏｖｅｒ  ｒｅａｄ）」ならば（例えば図９のサンプルＡおよびＢ）、ＮＯＲＭは、データを縮小させて（ｄｏｗｎｓｃａｌｅ）、オーバーリード（ｏｖｅｒ  ｒｅａｄｉｎｇ）を説明して（ａｃｃｏｕｎｔ  ｆｏｒ）、同一のＬＯＤが全てのサンプルにわたって適用されるのを確実にする。例えば、サンプルＡでは、ＱＳＭに起因する２０，０００リードが存在したが；このサンプルはＱＳＭに関して「オーバーリード」であり、ＮＯＲＭ＝２０，０００＊（５０００／２０，０００）＝５０００である。すなわち、サンプルＡにおけるデータのたった４分の１がさらなる分析のために保存される。同様に、サンプルＢでは、ＮＯＲＭ＝２０，０００＊（５０００／１８１８２）＝５５００である。サンプルＣは、ＱＳＭに関して「アンダーリード」なので、正規化またはさらなる分析がされず、その代わりに、さらなるシーケンシングに供される。
【０２１２】
ここで図１０および図１１を参照し、臨床サンプルのセットに関する生のリード数およびＱＳＭリードが説明される。図１０および図１１において説明されるサンプルは、ＱＳＭがスパイクされた後にシーケンシングのためにプールされたサンプルであり；シーケンシングライブラリー調製物およびシーケンシングデータコレクションを用いて分析が進められる。図１０および図１１は、シーケンシングのためにプールされた３２サンプルを説明する。各サンプルは独自のＱＳＭがスパイクされていて、それぞれのサンプルは、サンプル調製中にサンプル中の全ての未知核酸および各サンプルのＱＳＭとアニーリング、ライゲーションまたは他の方法で関連する独自の独特なトラッキング配列（例えばＤＮＡバーコード）を有する。これらの独特なトラッキング配列は、それぞれの異なるサンプル中の全ての核酸と関連し、サンプル調製およびシーケンシングの全てのステップを通して保有されて、そして、この独特なトラッキング配列は、それぞれのサンプル中の核酸に由来するデータが、プールされたシーケンシングデータセットからデータ分析のために分離されるのを可能にする。図１０および図１１において説明される例では３２サンプルが一緒にプールおよびシーケンスされるが、より多いサンプルまたはより少ないサンプルが実際にはプールされ得る。例えば、１回のシーケンシングランに関して１０００以上のサンプルがプールされ得て、十分な識別力のあるバーコードおよび十分なリード深度が全てのサンプルに関して存在すると仮定される。一実施態様では、２〜１０００サンプルがサンプル調製後およびシーケンシング前にプールされ得て、好ましくは２〜５００サンプルがサンプル調製後およびシーケンシング前にプールされ得て、より好ましくは２〜１００サンプルがサンプル調製後およびシーケンシング前にプールされ得て、より好ましくは２〜５０サンプルがサンプル調製後およびシーケンシング前にプールされ得て、または最も好ましくは２〜３２サンプルがサンプル調製後およびシーケンシング前にプールされ得る。
【０２１３】
図１０および図１１では、３２サンプルが同時にプールおよびシーケンシングされた。各サンプルに添加されたＱＳＭおよび各サンプルと関連する独特なトラッキング配列は、それぞれの個々のサンプルに由来する配列が分離されて別個に分析されるのを可能にする。図１０において、各サンプルと関連する広範囲のシーケンシングリードに注目することは興味深い。例えば、サンプル１５は、データセットにおける全てのシーケンシングリードのうちの１／３以上を占めるが、いくつかのサンプル（例えば、サンプル１３）は、サンプル１５の１０分の１未満のリードを有する。図１１はＱＳＭリードを示す。３つのサンプル、１２、２７、および２９は、５０００よりも少ないＱＳＭリードを有し、最初のＱＳＭチェックに失敗した。サンプル２３は、合格するのにかろうじて十分なＱＳＭリードを有したが、サンプル６、９、１０、および１４などは、ＱＳＭに関して実質的にオーバーリードであった。興味深いことに、サンプル１５はかなり高い生リード数を有したが、そのＱＳＭリードレベルはそれほど高くなかった。それにもかかわらず、本明細書中に記載される正規化のため、合格する全てのサンプルは等しいウエイトが与えられる。すなわち、ほんの約５０００ＱＳＭリードを有するサンプル２３などは、正規化処理においてそれほどトリミングされないが、サンプル６、９、１０、および１４などに由来するデータについてはトリミングされ得る。なぜならば、これらのサンプルにおいてＱＳＭリードが豊富であることは、これらのサンプル由来のデータが、データセットにおいてかなり大きな比率を占めていることを示すからである。したがって、ここに記載される正規化処理によって、全てのサンプルに等しいウエイトが与えられて同一のＬＯＤが全てのサンプルに適用されることが確実になることが分かる。
【０２１４】
一実施態様では、未知核酸リードと内部定量化標準リードは、等式５に従って同一の比ＡＬＰＨＡによってそれぞれ別個に正規化され得る：
ＡＬＰＨＡ＝Ｆ／内部定量化標準に由来する観察されたシーケンシングリード数
［等式５］
【０２１５】
これは図１２において絵的に説明される。サンプルに関するデータは、ＱＳＭリードおよび非ＱＳＭリードを含む。これらが一緒に正規化される場合は（および一緒にダウンリードされる場合は）、正規化データセット内のＱＳＭリードの最終的な数は厳密には「Ｆ」（例えば、５０００）になり得ず−その代わり、例えば、ビニングされたデータセット内に約４９７０〜５０３０ＱＳＭリードが存在し得る。これは、ＮＯＲＭデータセットを作成するために用いられたサンプリング工程が無作為化され、無作為のサンプリングイベントに関する根底にある確率モデルは、ＮＯＲＭデータセットを作製するときに乱数シードがデータセット全体から正確に「Ｆ」ＱＳＭリードを引くことはないだろうと予測するためである。あるいは、ＱＳＭおよび非ＱＳＭデータは、分離およびビニングされ得て、そしてＡＬＰＨＡを用いて正規化され得て、それにより、正確に、ＱＳＭビン内の「Ｆ」ＱＳＭリード（例えば、５０００）および非ＱＳＭビン内の適切なリード数を生じさせる。具体的には、擬似乱数によって層別化されたサブサンプリングを用いて、各サンプルのデータセットにおけるＱＳＭに由来する適切なリード数を維持し得る。この正規化は、シーケンシング深度およびＬＯＤがサンプルにわたって均一であることを確実にして、その後の分析ステップの計算的負荷を減少させる。ＱＳＭのアライメントおよび正規化を行なうために、ＱＳＭリードは、当技術分野で知られている十分に確立された手順に従ってアライメントにより非ＱＳＭリードから分離される。これにより、リードペアは、ＱＳＭに由来するセットおよびＱＳＭに由来しないセットに分離される。ＱＳＭリードペアのカウントを用いて、各サンプルに関するサブサンプリングのフラクション（ｓｕｂｓａｍｐｌｉｎｇ  ｆｒａｃｔｉｏｎ）が計算され、サブサンプリングのフラクションは等式５によって与えられる。サブサンプリングのフラクションおよび非ＱＳＭリードペアのカウントを用いて、各サンプルに関するサブサンプルに対する非ＱＳＭリードペアの数が計算される。擬似乱数リードサブサンプリングは、既定の数の非ＱＳＭリードペアをシードに従って無作為に選択する。シードは、サブサンプリング全体が無作為であることを確実にし、それはまた再現可能である。
【０２１６】
一実施態様では、サンプルに添加された公知量の内部定量化標準は、等式６による正規化後にサンプル中の未知核酸（単数または複数）のインプット量（ＩＱＴ）を計算するために用いることができる。
ＩＱＴ＝未知核酸に起因する未知核酸シーケンシングリードの正規化数＊（内部定量化標準のインプット量／Ｆ）      ［等式６］
【０２１７】
例えば、図９のサンプルＢを再度参照して、等式６を用いて、未知核酸ＸのＩＱＴを以下のように計算することができる：正規化後、Ｘに起因する５００リードが存在し、「Ｆ」は、５０００で設定され、したがってＩＱＴ＝５００＊（１０／５０００）＝１であった。多くのサンプルは、１よりも多い未知核酸を有する。したがって、サンプル中の複数の未知核酸のインプット量（ＩＱＴｉ、ＩＱＴｊ、ＩＱＴｋ・・・ＩＱＴｎ）は、正規化後に等式７によって計算され得る。
ＩＱＴｎ＝「ｎｔｈ」未知核酸に起因する未知「ｎ」核酸シーケンシングリードの正規化数＊（内部定量化標準のインプット量／Ｆ）      ［等式７］
【０２１８】
それぞれの異なる未知核酸に起因するリードの正規化数をカウントした後（例えば、アライメント、擬似アライメント、またはアセンブリ方法による）、これらの正規化されたリード数を用いて、それぞれの未知核酸のインプット濃度を決定することができる。
【０２１９】
同一の原理はプールサンプルにも当てはまる。それぞれのプールされたサンプルは、独自のＱＳＭおよびサンプル特異的識別配列の独自の独特なセットを有するので、プール内の各サンプル由来のシーケンシングデータを区別および分離することができる。したがって、正規化は、プール内の各サンプルに由来するシーケンシングデータに別個に適用することができる。したがって、サンプルプール内の各サンプルは、独自の（１）データ合否基準を有し、（２）実質的に同一の検出限界（ＬＯＤ）がそれぞれのサンプル中の全ての未知核酸に適用される。これは重要なことである。なぜならば、図１０および図１１で説明したように、一部のサンプルは非常に濃縮され得て、一部はほんのＬＯＤまたはその付近の核酸を有し得て、そして、一部のサンプルはＱＳＭに関してオーバーリードまたはアンダーリードであり得るが、一部のサンプルはＱＳＭに関して合格基準またはその付近でリードされ得る。例えば、サンプル６、９、１０、および１４に関して説明したように、一部のサンプルに関するＱＳＭは、プールされたデータセットにおいて大きな比率を占めている場合があり、一方で、他の１５、１７、２６、および３２などは合格基準またはその付近のＱＳＭ値を有する。ＱＳＭを別個に評価すること、および、各サンプルに正規化を適用することは、以下の理由から有力である（１）各サンプルが十分なリード深度を有することを確実にする（データセット全体を不合格にする必要なく一部の個々のサンプルを不合格にすることができる）、（２）非常に濃縮されたサンプルが低濃度サンプルを追いやる（ｓｗａｍｐ  ｏｕｔ）ことがないのを確実にする（３）同一のＬＯＤが全てのサンプルに適用されるのを確実にする、（４）客観的にかなりの量のデータが、各サンプルから、正規化および定量化のために評価されるのを確実にする。したがって、プール内の複数のサンプル中の複数の核酸のインプット量を計算するために等式７を用いることができる。
【０２２０】
一部の実施態様では、シーケンシングのためにサンプルを調製するステップは、特定の手順を含んでよい。一実施態様では、シーケンシングのためにサンプルを調製するステップは、サンプル溶解、溶解物からの核酸回収（回収された核酸を精製してもよい）、および、シーケンスされる核酸の領域へのシーケンシングアダプター部位およびサンプル特異的識別配列の導入を含んでよい。一実施態様では、シーケンシングアダプター部位は、シーケンシングのためのプラットフォーム（例えば、フローセル）に核酸を付着させるための領域およびシーケンシングプライマー結合部位を含んでよい。サンプル調製ワークフローの例が図１３に説明される。一部の実施態様では、内部定量化標準／ＱＳＭは、例えば溶解プロトコルによってＱＳＭが損傷またはフラグメント化され得る可能性に応じて、溶解の前または後に添加されてよい。例えば、サンプル溶解がビーズビーティングまたは超音波処理を含む場合は、ＱＳＭは、溶解後であるが核酸の回収および精製前に添加されてよい。化学的溶解または穏やかな機械的溶解を用いる場合は、ＱＳＭは溶解前に添加されてよい。
【０２２１】
実例的な例では、内部定量化標準を用いて、サンプル調製およびシーケンシング中の損失を計算に入れることにより、元のサンプル中の未知核酸の真のインプット濃度を概算することができると考えられる。すなわち、内部定量化標準は分析の全てのステップを通して保有される。したがって、任意の損失が体系的であり、シーケンスされた濃度は、損失をサンプル抽出、シーケンシングなどに起因させることにより真のインプット濃度を逆算するために用いられ得て、工程全体を通して各サンプルについて同様である。
【０２２２】
一実施態様では、シーケンシングアダプター部位およびサンプル特異的識別配列を導入するステップは：（１）サンプル特異的識別配列およびシーケンシングプライマー結合部位を含む標的特異的プライマーを用いて増幅反応においてシーケンスされるべき核酸を増幅させるステップ、または（２）シーケンスされるべき核酸をフラグメント化して、シーケンシングプライマー結合部位およびサンプル特異的識別配列を含むシーケンシング特異的アダプターを、フラグメント化された核酸にライゲーションするステップのうちの１つを含んでよい。
【０２２３】
一実施態様では、シーケンスされるべき核酸を増幅させるステップは：カスタムのオーバーハングを有する標的特異的プライマーを用いて第１のマルチプレックスＰＣＲ反応を行なうステップ、第１の核酸精製を行なうステップ、第１のＰＣＲにおいて導入されたカスタムのオーバーハングにアニーリングまたはライゲーションするシーケンシングアダプタープライマーを用いて第２のＰＣＲ反応を行なうステップ、および、第２の核酸精製を行なうステップを含んでよい。一実施態様では、シーケンシングアダプタープライマーは標的非依存性であり、シーケンシングプライマーアダプター部位およびサンプル特異的識別配列を含む。
【０２２４】
図１４に説明されるように、典型的なサンプル中の合計の生物ロードは、広く−約０〜１０１３生物／ｍｌ（典型的に約１０２〜１０７）変化し得る。このことは、シーケンシング反応にインプットされる非常に広範な核酸コピー／ｍｌをもたらし得る。一実施態様では、増幅反応を用いて反応の上側範囲を抑えることができるので、シーケンシングに供されるサンプルは、より狭い相対的ダイナミックレンジ内の核酸数（例として約１０２〜１０７）を効果的に有する。一実施態様では、本明細書において記載される方法は、約１０７コピー／ｍｌよりも高い濃度で存在する核酸の増幅をプラトーにするように、および、指数増幅段階において約１０７コピー／ｍｌ未満の核酸を保存するように、第１のマルチプレックスＰＣＲ反応において、サイクル数または標的特異的プライマーの濃度の１つまたは複数を制限するステップを含んでよい。これは図１５に説明される。例えば、シーケンシングアッセイの上側ＬＯＤは、各核酸の約１０２〜１０７コピーの範囲において線形であり得る。約１０７核酸コピー／ｍｌよりも上では、アッセイの線形範囲外のそのように濃縮された核酸を過剰シーケンスする必要を避けることが望ましく、そのような核酸は、＞１０７核酸コピー／ｍｌとして報告されるインプット濃度を有するものとして報告され得て、一方で、約１０２〜１０７の核酸は全てアッセイの線形範囲内に保存されて、対応する正規化されたシーケンシングリードの数によってそれらの真のインプット量で報告される。一部の実施態様では、増幅サイクル数を制限することによってダイナミック濃度レンジの下限を抑えることが望ましく有り得る。一実施態様では、アッセイのＬＯＤは、下側の報告レンジを指定し得て、ＬＯＤよりも下の核酸は「検出されず」として報告され得る。
【０２２５】
一実施態様では、サンプルにおける核酸のインプット量は、その代わりに、半定量的に、または「ビニングされた（ｂｉｎｎｅｄ）」範囲で報告され得る。多くの実施態様において、絶対的な定量化は必要ではなく、半定量的な結果で十分であり得る。さらに、ビニングされた範囲を報告することはより単純であり得て、報告がデータ内の標的特異的な誤差を説明するのを可能にし得る。結果は絶対的な濃度として報告され得て（システムエラー（実例として９５％予測区間）とともにまたは伴わずに）、または、複数の範囲のうちの１つへとビニングされ得て、実例として「高」、「中」または「低」濃度を報告し、それぞれ１桁または複数桁をカバーしている。
【０２２６】
同様に、サンプル中の核酸のインプット量は数値的なビンで報告され得る。例を以下の表２に示す。
2021521885.tif 000004
【０２２７】
それぞれのビンは１ｌｏｇに及ぶ値を包含し；ビンは、ビンラベル（ｂｉｎ  ｌａｂｅｌ）の両側（ｅｉｔｈｅｒ  ｓｉｄｅ）に０．５ｌｏｇを含めた範囲として定義される（すなわち１０＾５ビンは、１０＾４．５〜１０＾５．５の量を含むなど）。ビン範囲の両側の余分の０．５ｌｏｇは、ビンの境界付近に見られる測定可変性を説明するためのものである（ｔｏ  ａｃｃｏｕｎｔ  ｆｏｒ）。表２において説明される例外は、１０＾３．５よりも低い任意の値が「検出されず」と報告され得る最も低いビンと、１０＾６．５以上の任意の値が＞１０＾７と報告され得る最も高いビンである。しかしながら、これらの下側および上側の報告値は単に実例的なものであり、異なる下側および上側の報告値の範囲が、制限されないが、所定のアッセイのＬＯＤおよびダイナミックレンジのような因子に応じて用いられ得ることが理解される。２つの標準偏差、すなわちビン境界から０．５ｌｏｇは、ビン境界に集まらないデータポイントの９５％を捕捉する理論範囲である。ビンの数は特定のアッセイに適切なように変化してよく、任意の数のビンを用いてよいことが理解される。また、半定量的な結果のためのビニングの範囲（桁または他の尺度）も、特定の例に適切なように調節され得る。
【０２２８】
［実施例５：コンパレーター試験を行なうための方法］
診断試験の提供者（例えばＢｉｏＦｉｒｅ  Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ）が新たな市販診断試験を開発する場合、その試験の提供者は、提供者が主張する結果をその新たな市販試験がもたらすことの確認を提供するためのコンパレーター研究を行なうことをＦＤＡからしばしば要求される。典型的に、コンパレーターアッセイは、新規のアッセイの結果をチェックするために、標準治療（ＳＯＣ）培養方法のような独自かつ十分に認められた至適基準技術を使用する。しかしながら、現在のＳＯＣ培養方法は、臨床サンプル中の細菌標的の高度に正確または一貫した検出および定量化を提供し得ない。これは、培養に対する分子アッセイのしばしば高められた感度、培養は生きている生物を検出することができるだけであるという事実、および、複雑な、生物の多い検体タイプから独特のコロニー形態をワークアップする（ｗｏｒｋｉｎｇ  ｕｐ）チャレンジを含む、多くの因子のためである。
【０２２９】
ＰＣＲおよび蛍光検出を用いてサンプル中の生物の存在を検出する、本明細書中に記載されるＦｉｌｍＡｒｒａｙシステムのような分子アッセイに関しては、サンガーシーケンシングは、ＳＯＣ培養方法に対する認められた代替のコンパレーターである。しかしながら、分子アッセイがより複雑になってくると、伝統的なサンガーシーケンシングによるシーケンシング負荷はより大きくなってくる。同様に、市販試験によって定量化が主張される場合、コンパレーターシーケンシングアッセイは、定量的または半定量的な結果を提供する必要もあり得る。
【０２３０】
当該分野において以前に用いられていた従来のＰＣＲおよび双方向性のシーケンシングコンパレーター方法に対するハイスループットの代替が本明細書中に記載される。好ましくは、コンパレーター試験において用いられるシーケンシング方法は、次世代シーケンシング（ＮＧＳ）または同様の大規模に並行したシーケンシング技術である。半定量的な生物ロードの報告を必要とする診断パネル上の標的（例えば、細菌、ウイルス、菌類など）、または、一部の細菌と関連する抗生物質耐性マーカーに関して、臨床試験中にコンパレーターとして使用するための定量的または半定量的な分子参照方法が、好ましい実施態様として開発された。本明細書中に記載される新規の分子参照方法は、ＮＧＳの本質的にデジタルであって大規模に並行した性質を活用する。本明細書中で議論される特定の実施態様においてはＩｌｌｕｍｉｎａ  ＮＧＳを用いたが、本明細書中に記載される原理は、最小限の改変によって他のシーケンシングプラットフォームに適用され得る。
【０２３１】
一実施態様では、コンパレーター試験を実施するための方法が記載される。コンパレーター試験を実施するための方法は、１または複数の標的核酸のマルチプレックスの増幅および検出を含む第１のアッセイを提供するステップ（ここで第１のアッセイは、ある検出限界（ＬＯＤ）を有している）、および、第１のアッセイの検出およびＬＯＤを確認するための、第１のアッセイとは異なる第２のアッセイを提供するステップを含んでよい。第２のアッセイは：シーケンシングのために少なくとも１つの内部定量化標準を含むサンプルを調製するステップ、シーケンシングをしてサンプルに関するシーケンシングデータセットを生産するステップ（ここで、シーケンシングデータセットは、標的核酸（単数または複数）および内部定量化標準から観察されるシーケンシングリードを含む）、標的核酸（単数または複数）および内部定量化標準に由来するシーケンシングデータセットにおけるシーケンシングリード数をカウントするステップ、および、シーケンシングデータセットを正規化するステップ（ここで正規化は、（１）サンプルに関する内部定量化標準に関する最小数のシーケンシングリードの存在に基づいて、データ合否基準をシーケンシングデータセットに適用して、（２）実質的に同一の検出限界（ＬＯＤ）がシーケンシングアッセイにおいて全ての未知核酸に適用されることを確実にする）を含んでよい。第２のアッセイのＬＯＤは、第１のアッセイのＬＯＤと好ましくは実質的に同一である。
【０２３２】
第２のアッセイの結果を第１のアッセイの結果と比較してよい。好ましくは、第１のアッセイにおいて検出される生物および生物の量は、第２のアッセイによって報告される検出および量と合致するはずである。
【０２３３】
一実施態様では、第１のアッセイは、１つまたは複数の内部定量化標準をサンプルに加えるステップ、およびサンプルに対して定量的な２ステップの増幅を行なうステップを含んでよい。一実施態様では、第１のアッセイにおける定量的な２ステップの増幅は：第１段階のマルチプレックス増幅混合物においてサンプルを増幅させるステップ（ここで、増幅混合物は複数の標的プライマーおよび少なくとも１つの定量化標準プライマーを含み、各標的プライマーはサンプル中に存在し得る異なる標的を増幅するように構成されて、定量化標準プライマーは内部定量化標準核酸を増幅するように構成される）、第１段階の増幅混合物を複数の第２段階の個々の反応に分割するステップ（ここで、複数の第２段階の個々の反応の第１のグループは、サンプル中に存在し得る異なる標的の１つをさらに増幅するように構成された少なくとも１つのプライマーをそれぞれ含み、複数の第２段階の個々の反応の第２のグループは、内部定量化標準核酸の１つをさらに増幅するように構成された少なくとも１つのプライマーをそれぞれ含む）、および、複数の第２段階の個々の反応を、１つまたは複数の標的アンプリコンおよび複数の定量化標準アンプリコンを産生する増幅条件に供するステップ（ここで、それぞれの定量化標準アンプリコンは、関係がある定量化標準Ｃｐを有する）を含む。それぞれの標的核酸は、あるクロッシングポイント（Ｃｐ）を有し、それぞれの内部標準は第１のアッセイにおける公知の濃度および公知の定量化標準Ｃｐを有する。
【０２３４】
一実施態様では、第１のアッセイにおける未知核酸のインプット濃度を、定量化標準の公知のインプット濃度との比較によって決定することが可能であり得る。一実施態様では、当該方法は、定量化標準Ｃｐから検量線を作成するステップ、および、検量線を用いて１または複数の標的核酸のそれぞれを定量化するステップをさらに含んでよい。一実施態様では、標的核酸のそれぞれは、等式３にフィットされた最小二乗法の回帰直線を用いて作成される検量線を用いて定量化される。
Ｌｏｇ１０（濃度）＝（Ｃｐ−ｂ）／ａ          ［等式３］
【０２３５】
等式３において、Ｃｐは各標的に関して測定されたクロッシングポイントであり、ｂ（切片）は、標的のｌｏｇ１０（濃度）がゼロの場合のＣｐ値を表わし、そして、ａは傾きであり、濃度における単一単位の変化によってＣｐが変化する程度を表わす。
【０２３６】
第２のアッセイを再度参照し、第２のアッセイからのデータは正規化され得て、未知核酸のインプット量は上記の実施例４で述べたように決定され得る。重要なことに、ＱＳＭリードの事前に決定された期待数に基づくリード深度の閾値チェックポイントは、標的特異的な分析に先行する。不十分なリード深度を有するサンプルは、さらなるシーケンシングのためにフラグが立てられる（ｆｌａｇｇｅｄ  ｆｏｒ）が、十分なリード深度を有するサンプルは正規化される。このことは、リードの定量的な値（ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｖｅ  ｖａｌｕｅ）が全てのサンプルにわたって同一であること、および、標的検出が標的ロード全体から独立していることを確実にする。
【０２３７】
ＱＳＭリードの事前に決定された期待数（すなわち、「Ｆ」）は、異なる検出限界に関して第１のアッセイと同等であるように選択され得る。例えば、ＱＳＭがサンプル中に５×１０５コピー／ｍｌでスパイクされて、「Ｆ」が５×１０３ならば、第２のアッセイにおける標的核酸（単数または複数）の検出に関するＬＯＤは、約１０２〜１０３コピー／ｍｌの範囲内である。同様に、「Ｆ」が５×１０４ならば、第２のアッセイにおける標的核酸（単数または複数）の検出に関するＬＯＤは、約１０１〜１０２コピー／ｍｌの範囲内である。一般に、「Ｆ」の大きさが大きければ大きいほどほど、シーケンシングアッセイに関するＬＯＤは小さくなる。このようになるのは、実施例４において詳細に説明したように、「Ｆ」の大きさが大きければ大きいほど、アッセイのシーケンシング深度が大きくなるためである。ＱＳＭのスパイクレベル（例えば、５×１０５コピー／ｍｌ）、「Ｆ」（例えば、「Ｆ」＝５０００）、リードカウント、および、それぞれの報告レベルにおける代表的な正規化後リードカウントに関する半定量的なビニングされた標的報告の間の関係は、表３に説明される。
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【０２３８】
同様に、上述したように、複数のサンプルがシーケンシングアッセイのためにプールされ得る。プールは、必要ではないが、大規模に並行したＤＮＡシーケンシングである場合には、その本当の力を示す。例えば、プールして、並行してシーケンスする能力は、コンパレーター試験を行なうのに必要な時間と人員を大いに減少させる。サンプルは、実施例４において上述したように、プールされ得て、正規化され得て、定量化され得る。
【０２３９】
［実施例６：アッセイ特異的な補正因子］
理想的には、次世代シーケンシング（ＮＧＳ）は、デジタルＰＣＲのような任意の他の定量的分子方法と全く同じ標的定量化を報告するはずである。しかしながら、本当のところは、サンプリングおよび測定における可変性がそれぞれの参照方法に存在し得て、そのような無作為性が、この完全な一致シナリオの達成をしばしば妨げる。１つのあり得る解決策は、適切な誤差範囲とともにデータを報告すること、または、データをビニングすることである。しかしながら、誤差がアッセイ特異的であり、全てのサンプルタイプにわたって均一／体系的でない場合は、誤差範囲またはビニングはデータ内の誤差の全てを説明し得ない。
【０２４０】
一方で、アッセイ特異的な補正因子を用いて、核酸増幅効率の違い、核酸精製効率の違い、シーケンシングライブラリー調製の違い、および、シーケンシング効率の違いのような反復的かつ体系的な因子をさらに説明することが可能である。そのような違いは所定のサンプル、分析物、および／またはアッセイに関して反復的かつ体系的なので、違いを測定して用いて、標的定量化を補正するためのアッセイ特異的な補正因子をもたらすことができる。本明細書中に記載されるＮＧＳ方法は、アッセイ特異的な補正因子を用いて、多くの（例えば５０を超える）実験的測定にわたって観察される複数の標的に関する標的定量化のパフォーマンスにおける体系的な違いを取り除き得る。
【０２４１】
本実施例に記載されるアッセイ特異的な補正因子は、５０を超えるバッチポジティブコントロールにおいてアッセイ特異的なポジティブコントロール（ＰＣ）配列を分析することによって得られた。ＰＣ配列は試験サンプルに添加され得て、または、それぞれのランに別個のサンプルとして含められ得る。増幅の前に、バッチポジティブコントロールは、ＰＣ配列の混合物（例えば、改変されたｇＢｌｏｃｋ）を公知濃度で（例えば、１反応あたり５０コピーの各ＰＣ  ｇＢｌｏｃｋ）、ならびに定量化標準材料（例えば、１反応あたり５００コピーのＱＳＭ）がスパイクされ得る。ＰＣＲ増幅の効率が完全でない場合、または、標的と内部標準の効率が異なる場合、補正因子は、反応にインプットされたポジティブコントロールの量に依存し得る。したがって、一実施態様では、ポジティブコントロールの量は、対応する標的の目的とするダイナミックレンジの真ん中であるべきである。一実施態様では、サンプル特異的シーケンシングアダプタープライマーが、試験アッセイと同一の様式で、増幅されたＰＣ配列にアニールすることができるように、ＰＣ配列は、試験アッセイにおいて用いられるオーバーハングを有する同一の標的特異的プライマーを用いて増幅されるように設計され得る。当然、ポジティブコントロールは、保存されたプライマー結合部位領域の間に独自の独特な同定配列領域を有するように設計される。このようにして、ポジティブコントロールに由来するシーケンシングデータを同定および別個に分析することができる。ＰＣ配列は、アッセイ特異的な標的を含んでよく、各アッセイが同じパフォーマンス（例えば、１０４．７コピー／ｍＬ）を有する場合、同等のレベルで定量化されることが期待される。
【０２４２】
しかしながら、図１６は、アッセイの２つの集団が観察されたことを示す。この実施例の目的に関して、アッセイの２つの集団を、グッド・パフォーマー（ｇｏｏｄ  ｐｅｒｆｏｒｍｅｒ）およびバッド・パフォーマー（ｂａｄ  ｐｅｒｆｏｒｍｅｒｓ）と呼ぶ。グッド・パフォーマーと呼ばれるアッセイは、グラフの左に見られ（Ａ〜Ｍ）、バッド・パフォーマーと呼ばれるアッセイはグラフの右に見られる（Ｏ〜Ｘ）。サンプルＮは中間のパフォーマーである。グッド・パフォーマーの平均ｌｏｇ１０定量化は一貫して、期待される定量化に近いが、バッド・パフォーマーの平均ｌｏｇ１０定量化はそうではない。すなわち、「グッド・パフォーマー」は試験アッセイにおいて一貫して、その期待されるパフォーマンス付近で定量化されると推測することができるが、「バッド・パフォーマー」は試験アッセイにおいて一貫して、その期待されるパフォーマンスよりも著しく悪い値で定量化されると推測することができる。より具体的には、グッド・パフォーマーは、期待される定量化の０．５ｌｏｇ１０以内の平均ｌｏｇ１０定量化を有するアッセイとして定義されるが、バッド・パフォーマーは、期待される定量化よりも０．５ｌｏｇ１０以上低い平均ｌｏｇ１０定量化を有するアッセイとして定義される。グッド・パフォーマーの平均ｌｏｇ１０定量化は、期待される定量化よりも０．２３ｌｏｇ１０低いが、バッド・パフォーマーの平均ｌｏｇ１０定量化は、期待される定量化よりも１．０ｌｏｇ１０低い。中間パフォーマンスの１つのアッセイが観察された（Ｎに示される）。
【０２４３】
この実施例に記載されるアッセイ特異的な補正因子は、それぞれのアッセイの平均ｌｏｇ１０定量化とグッド・パフォーマーの平均ｌｏｇ１０定量化（１０４．４７コピー／ｍＬ）の間の違いであると定義されて、１．０ｌｏｇ１０までの補正因子を可能にした。この実施例では、アッセイ特異的な補正因子は、アッセイの特定のセットに関して得られた。しかしながら当業者は、この実施例に記載される原理は、ほんの最小限のアッセイ特異的な改変によって他のアッセイに適応および適用され得ることを理解するであろう。
【０２４４】
［実施例７：次世代シーケンシング（ＮＧＳ）アッセイにおいて未知核酸を正規化および定量化するためのキット］
一実施態様では、次世代シーケンシング（ＮＧＳ）アッセイにおいて未知核酸を正規化および定量化するためのキットが開示される。当該キットは、内部定量化標準（ここで内部定量化標準は、シーケンスされるべき未知核酸を含むサンプルに公知量で添加されるように構成された核酸である）、および、シーケンシングデータセットを正規化および定量化するためならびに未知核酸（単数または複数）のインプット量を計算するために内部定量化標準を使用するための説明書を含んでよい。一実施態様では、当該キットは、未知核酸の定量化のための検量線を作成するために異なる公知濃度で添加される内部定量化標準のセットを含んでよい。一実施態様では、内部定量化標準は、約１０４〜１０６コピー／ｍｌの範囲内でサンプルに添加されるように構成されてよい。一実施態様では、内部定量化標準を用いて、シーケンシングデータは、等式５によって正規化され得る。
ＮＯＲＭ＝シーケンシングリード数＊（Ｆ／内部定量化標準に由来する観察されたシーケンシングリード数）      ［等式５］
ここで、「Ｆ」は、内部定量化標準のシーケンシングリードの固定された最小期待数である。一実施態様では、内部定量化標準を用いて、未知核酸のインプット量（ＩＱＴ）は等式６によって計算され得る：
ＩＱＴ＝未知核酸に起因する未知核酸シーケンシングリードの正規化数＊（内部定量化標準のインプット量／Ｆ）      ［等式６］
【０２４５】
一実施態様では、当該キットは、シーケンシングプライマー結合部位およびサンプル特異的識別配列を含む、少なくとも内部定量化標準に関するシーケンシング特異的アダプターをさらに含んでよい。一実施態様では、当該キットは、内部定量化標準の増幅のためならびにシーケンシング特異的アダプターに対するアニーリングまたはライゲーションのために構成されたカスタムのオーバーハングを有する標的特異的プライマーをさらに含んでよい。
【０２４６】
本発明は、その主旨または本質的な特徴を逸脱せずに他の特定の形態で具現化され得る。記載される実施態様は、全ての点において単なる実例的なものであって非限定的なものとして理解されるべきである。したがって、本発明の範囲は、前述の説明よりむしろ添付の特許請求の範囲によって示される。特定の実施態様および詳細が本発明を説明する目的で本明細書および添付の発明開示に含まれているが、本明細書中に開示される方法および器具における様々な変更が、添付の特許請求の範囲において定義される本発明の範囲を逸脱せずになされ得ることが当業者に明らかである。特許請求の範囲の等価性の意味および範囲内に入る全ての変更は、その範囲内に包含されるべきである。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６Ａ】
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【図６Ｂ】
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【図７】
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【図８Ａ】
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【図８Ｂ】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【国際調査報告】
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