【事件の表示】
　特願２０００−５５６２３８「エカリンと磁性粒子を含む乾式化学試薬を用いてフィブリノーゲンアッセイを行う方法」拒絶査定不服審判事件〔平成１１年１２月２９日国際公開、ＷＯ９９／６７６３０、平成１４年７月２日国内公表、特表２００２−５１９６３５〕について、次のとおり審決する。
【結　論】
　本件審判の請求は、成り立たない。
【理　由】
１　手続の経緯・本願発明
　本願は、平成１１年６月２３日（パリ条約による優先権主張　平成１０年６月２５日、米国）を国際出願日とする出願であって、その請求項１ないし２９に係る発明は、特許請求の範囲の請求項１ないし２９に記載された事項により特定されるとおりのものと認められ、その請求項１に係る発明（以下、「本願発明」という。）は次のとおりのものである。
　
「【請求項１】フィブリノーゲンアッセイを行う方法であって、
  （ｉ）（１）液体サンプルを受容するためのサンプルウェルと、（２）複数の磁性粒子が均一に分散して埋め込まれているエカリンを含む乾燥試薬マトリックスを含む反応チャンバとを有する反応スライドを振動磁場に付し、
  ここで前記サンプルウェルと反応チャンバとは、前記サンプルウェル内に置かれ前記反応チャンバの容量に対応する液体分析物サンプルの分量が前記サンプルウェルから前記反応チャンバへと移送されるような幾何形状を有する移送ゾーンを介して液体連通しており、
  （ｉｉ）フィブリノーゲンアッセイを遂行するための適切な条件下で、全血又は血液由来サンプルを前記サンプルウェルに添加し、これによって前記サンプルを前記反応チャンバに導入し、前記試薬を可溶化させ、且つ、前記粒子を解放して、前記振動磁場に対する相対粒子運動の程度の変化に対応して前記振動磁場によって誘起される振動パターンを描くように運動させ、
  ここで前記振動パターンは開始時間と停止時間を有し、
  （ｉｉｉ）前記反応チャンバを光学的にモニターして、次の（ｉｉｉａ）、（ｉｉｉｂ）、（ｉｉｉｃ）のうちの一以上のパラメータを測定し、
  （ｉｉｉａ）前記フィブリノーゲンアッセイのための前記開始時間と前記停止時間、
  （ｉｉｉｂ）前記粒子振動の最大振幅Ａと前記粒子振動の後続残留ポストピーク最小振幅Ｂ、
  （ｉｉｉｃ）ＡとＢの間の領域における、前記粒子振動曲線の傾き又は前記曲線によって規定される面積、
そして
  （ｉｖ）前記開始時間と前記停止時間、又は少なくともＢ、又は前記傾き、又は前記面積を用いて前記パラメータ（ｉｉｉａ）〜（ｉｉｉｃ）の少なくとも一つを、標準サンプル中の凝固性フィブリノーゲン濃度と関連付けて、前記全血又は血液由来サンプル中の凝固性フィブリノーゲン濃度を測定する
ことを含む方法。」
　
２　引用刊行物の記載事項
　原査定の拒絶の理由に引用された、本願優先日前に頒布された刊行物１（原査定の引用文献２）及び刊行物２（原査定の引用文献１）には、以下の事項がそれぞれ記載されている。
　
（１）刊行物１：特許第２６４９６０８号公報の記載事項
（1a）「【請求項１】
（ｉ）振動する磁場に、（１）液体試料を受けるための試料受けおよび（２）試薬マトリックスに均一に分布した複数の磁性粒子が埋め込まれている乾式試薬マトリックスを含有する反応室を有する反応スライドを委ね、ここで、該試薬は、フィブリノーゲンへ直接作用するか作用を促進し、そしてフィブリノーゲンの重合を誘起するプロテアーゼであり；該試料受けおよび反応室は、該試料受け中に置かれた該反応室の容積に相当する容積の液体分析試料が、該試料受けから該反応室へ同時に転送されるような転送ゾーンを介する流体の通路があり；（ii）全血または血液由来試料を該試料受けに添加し、それにより該試料を同時に反応室に導入し、該試薬を溶解させ、そして該振動する磁場により誘起された振動パターン中で該粒子が自由に動くようにし；（iii）該反応室を光学的に監視して、（iii a）該振動する磁場に対する粒子の動きの度合いの変化に対応する、該フィブリノーゲン分析のための開始時間および停止時間、もしくは（iii b）該粒子振動の最大振幅Ａ、およびそれに続く、該粒子振動の、最大振幅Ａの後に残留する最小振幅Ｂ、または（iii c）該粒子振動曲線の傾きもしくはＡとＢの間の該曲線により定義される領域、の何れかを測定し；そして、（iv）該開始時間および該停止時間、もしくはＡとＢとのうち少なくともＢ、もしくは該傾き、または該領域を使用して、該試料中の凝固し得るフィブリノーゲンの濃度を測定することから成ることを特徴とするフィブリノーゲン分析方法
【請求項２】該試薬が、プロテアーゼの活性化およびそれに続く凝固カスケードを介してフィブリノーゲン重合を開始させることが可能なトロンボプラスチンであり、そしてＡとＢとのうち少なくともＢ、または該曲線により定義される領域が、試料中の凝固可能なフィブリノーゲンの濃度を測定するために使用される請求の範囲第１項記載のフィブリノーゲン分析方法。
【請求項３】該
プロテアーゼが、ヒトトロンビン、ウシトロンビン、レプチラーゼ、カッパー・ヘッド毒酵素、またはマラヤ・ピット・クサリヘビ毒酵素
（1b）「次に、全血または血液由来試料が、この試薬に加えられ、同時に溶解するようにし、それにより、粒子を振動する磁場により誘起される振動パターン中を自由に動くようにする。米国特許出願第07/192,672号に詳細に議論したように、磁場の影響下では、自由磁気粒子は円柱状構造またはスタックを形成し、それは、振動磁場の影響下で、それらの円柱状構造またはスタックの配向の変化により明滅減少を生ずる。
  粒子の振動は、粒子に入射光を投射反射（散乱）光を検出することにより、光学的に監視される。試料を乾式試薬マトリックスに添加する前では、乾式試薬マトリックス中に捉えられた磁性粒子は振動され得ない。乾式試薬マトリックスに試料を添加して磁性粒子が自由になった後には、
第３図のＡとして示したように、粒子に基づく円柱状構造またはスタックの最大数は、大きな度合いで振動させることにより速やかに観測することができ
第３図のＢとして示したように、最大振動振幅Ａ（ピーク）に続いて残留する、粒子振動の最小振幅を生ずる
  本分析において、該振動磁場に対する粒子の動きの度合いを観察して、分析に用いる開始時間および停止時間を測定するか、あるいは、凝固時間以外の動的曲線の少なくとも１つの特徴を使用して、試料中のフィブリノーゲン濃度を測定する。
  記載された血液凝固監視システムにおいて、高フィブリノーゲンレベルは、より濃密なフィブリン凝塊を生じ、それは粒子振動を大きな度合いで減縮し、最大振動振幅Ａで示されるピークシグナルの後に低い最小振動シグナルを生ずる。凝固曲線は複雑である。１で開始し、最初の粒子振動は明らかに示される。磁気粒子振動の大きさは明らかである。光学的に監視した磁気粒子振動の大きさは１の分析の開始から増加し、そして波の包絡線の上部および下部の２および２′の頂点にそれぞれ達する。
  頂点における振動シグナル振幅はＡで示し、そし
て第４図には２および２′の間のシグナルの相違として示した。Ａが発生する時間tAが凝固時間である。波形包絡線の頂点に沿って追跡すると、振幅はtAの後に減少する
  ３点m1、m2、およびm3を示す。点m1およびm3は任意に選択されたが、固定された時間である。点m2は変曲点として選択される。
m1、m2またはm3でとられる曲線の傾きはフィブリノーゲンの尺度として利用することができる
傾きは、最も高いフィブリノーゲンレベルで最も急峻（最も負）であり、そしてフィブリノーゲンが減ると急峻ではなくなる
  m3の後、振動シグナルの振幅は時間の経過と共に減少を続け、最後には漸近値Ｂに近づく。
フィブリノーゲン濃度は、A/Bおよび（Ａ−Ｂ）/Aに比例する
  
フィブリノーゲン濃度の他の、より正確な尺度は、動的曲線の積算部分により得られる領域である
  βとして表示される他の領域も利用される。βは、辺Ａ及び対応する辺tB′から成る長方形から、αで表示される領域を差し引いた領域に等しい。βは第４図において、上部のβ１および下部のβ２の二つの部分から成るものとして示される。振幅Ｂ′を通り、点２および２′のＡ線に垂直な平行な線４および４′と交差する線は、βの右の境界を定義する。βはフィブリノーゲン濃度に直接比例し、かつ非常に正確である。
  βおよびαは組み合わせて使用してもよく、すなわち、フィブリノーゲンレベルを示すために、比または差が採用される。さらに、αおよび／またはβは、たとえば、面積計算のために水平の尺度としてtBを常に使用することにより、時間とは独立に計算することができる（第４図参照）。」（６頁右欄２２行〜７頁左欄４８行、第３，４図）
（1c）「凝塊形成速度論的アプローチ：本実施態様に使用される
試薬は
ヘビ毒、たとえば、レプチラーゼ
（1d）「試料が反応空間へ洗い流され、そして工程中で希釈されるやいなや、乾式化学が開始して溶解され、そして凝固反応が開始する。達成される希釈の範囲は、１マイクロリットルの試料について、１に対し25（容積で）で、３マイクロリットルの試料については３に対し25（容積で）である。この範囲を超えると、
凝固試薬の濃度および適当な希釈要素を選択することにより、凝固時間（tA）に対するフィブリノーゲン濃度の対数−対数紙へのプロットが実質的に直線である良好な標準曲線が得られる
（1e）「
レプチラーゼは一般に、動的凝固に基づくフィブリノーゲンの分析には、トロンビンよりも好ましい。その理由は、それが、通常抗凝集薬として使用されるヘバリンに影響されないからである
（1f）「トロンビンまたは適当なヘビ毒（たとえば、レプチラーゼ、カッパーヘッド毒またはマラヤピットクサリヘビ毒）の何れも利用できる。この実施態様は、トロンビン時間、
レプチラーゼ時間
断のために標準曲線を使用した場合のフィブリノーゲン値と同様の結果を与える
（1g）第１、２図には、反応スライドを示す図が、また第３、４図には、凝固曲線とフィブリノーゲンを測定するためのパラメータとして用いることのできる動力学凝固波形のさらなる特徴を示す図が示されている。第５図には，レプチラーゼを含む乾式試薬による凝固曲線から得られたデータが図示されている。（１２頁〜１３頁【第１図】〜【第５図】）
　
（２）刊行物２：特開平６−１９９６７３号公報の記載事項
（2a）「【０００８】
多様なヘビの種類の毒は、酵素原のプロトロンビンを酵素トロンビンおよび／またはその触媒活性前駆体のメイゾトロンビン（meizothrombin）に変える酵素を含んでいる
活性生成物はフィブリノーゲンをフィブリンに変え、それにより血漿の凝固が生じる
・・・
【００１０】リン脂質に不感受性のプロトロンビン活性剤は、ビペリダエ科（family Viperdiae）に所属するヘビ毒、特にエヒス（Echis）、トリメレスルス（Trimeresurus）およびボスロプス（Bothrops）の類に所属するヘビ毒から、R. K. Scopes, Protein Purification, Springer-Verlag, New York, Heidelberg, Berlin, 2ndedition, (1987)に記載されたような通常のタンパク質分離技術を用いて単離することができる。ボスロプス  アトロックス（Bothrops atrox）のヘビ毒からプロトロンビン活性剤を単離するための特別な方法は、Hofmann H. and Bon C., Biochemistry 26,772 (1987)に記載されており、
エヒス  カリナトゥス（Echis carinatus）のヘビ毒からエカリン（Ecarin）を製造するための方法は、Morita T. and Iwanaga S., J. Biochem. 83, 559 (1978) により提供されている。エカリンは Pentapharm Ltd., Basel, CH から市販されている
　
３　対比・判断
　刊行物１の上記記載事項（上記(1a)(1b)）から、刊行物１には、
「（ｉ）振動する磁場に、（１）液体試料を受けるための試料受けおよび（２）試薬マトリックスに均一に分布した複数の磁性粒子が埋め込まれている乾式試薬マトリックスを含有する反応室を有する反応スライドを委ね、ここで、該試薬は、フィブリノーゲンへ直接作用するか作用を促進し、そしてフィブリノーゲンの重合を誘起するプロテアーゼであり；
該試料受けおよび反応室は、該試料受け中に置かれた該反応室の容積に相当する容積の液体分析試料が、該試料受けから該反応室へ同時に転送されるような転送ゾーンを介する流体の通路があり；
（ii）全血または血液由来試料を該試料受けに添加し、それにより該試料を同時に反応室に導入し、該試薬を溶解させ、そして該振動する磁場により誘起された振動パターン中で該粒子が自由に動くようにし；
（iii）該反応室を光学的に監視して、（iii a）該振動する磁場に対する粒子の動きの度合いの変化に対応する、該フィブリノーゲン分析のための開始時間および停止時間、もしくは（iii b）該粒子振動の最大振幅Ａ、およびそれに続く、該粒子振動の、最大振幅Ａの後に残留する最小振幅Ｂ、または（iii c）該粒子振動曲線の傾きもしくはＡとＢの間の該曲線により定義される積算部分により得られる領域、の何れかを測定し；そして、
（iv）該開始時間および該停止時間、もしくはＡとＢとのうち少なくともＢ、もしくは該傾き、または該領域を使用して、該試料中の凝固し得るフィブリノーゲンの濃度を測定することから成るフィブリノーゲン分析方法」の発明（以下、「刊行物１発明」という。）が記載されていると認められる。
　
　そこで、本願発明と刊行物１発明とを比較する。
（ア）刊行物１発明の「振動する磁場」、「液体試料」、「試料受け」、「反応室」、「フィブリノーゲン分析方法」は、本願発明の「振動磁場」、「液体サンプル」、「サンプルウエル」、「反応チャンバ」、「フィブリノーゲンアッセイを行う方法」にそれぞれ相当する。
（イ）本願発明の「エカリン」は、本願明細書（【００２８】）の記載からタンパク質プロトロンビンアクチベータである。プロトロンビンアクチベータとは、プロトロンビンを活性化してトロンビンとするプロテアーゼの一種であり、フィブリノーゲンの重合を誘起するものといえる。そうすると、刊行物１発明の「試薬」である「フィブリノーゲンへ直接作用するか作用を促進し、そしてフィブリノーゲンの重合を誘起するプロテアーゼ」と、本願発明の「エカリン」とは、フィブリノーゲンの重合を誘起するプロテアーゼである点で共通している。
（ウ）刊行物１発明の「試薬マトリックスに均一に分布した複数の磁性粒子が埋め込まれている乾式試薬マトリックス」であり「該試薬は、フィブリノーゲンへ直接作用するか作用を促進し、そしてフィブリノーゲンの重合を誘起するプロテアーゼ」であるものと、本願発明の「複数の磁性粒子が均一に分散して埋め込まれているエカリンを含む乾燥試薬マトリックス」とは、複数の磁性粒子が均一に分散して埋め込まれている、フィブリノーゲンの重合を誘起するプロテアーゼを含む乾燥試薬マトリックスである点で共通している。
（エ）刊行物１発明の「該試料受けから該反応室へ同時に転送されるような転送ゾーンを介する流体の通路があり」と、本願発明の「ここで前記サンプルウェルと反応チャンバとは、前記サンプルウェル内に置かれ前記反応チャンバの容量に対応する液体分析物サンプルの分量が前記サンプルウェルから前記反応チャンバへと移送されるような幾何形状を有する移送ゾーンを介して液体連通しており」は、刊行物１の第１図に示された反応スライドと本願明細書の図１の反応スライドが、同じ構造を示していることから、相当関係にあることは明らかである。
（オ）刊行物１発明の「（ii）全血または血液由来試料を該試料受けに添加し、それにより該試料を同時に反応室に導入し、該試薬を溶解させ、そして該振動する磁場により誘起された振動パターン中で該粒子が自由に動くようにし」は、フィブリノーゲンアッセイのために行う操作であるから、これを遂行するために適切な条件下で行われることは当然のことである。また、試薬を溶解させることにより、試薬に含まれる粒子が解放され、振動磁場の開始と停止に対応した振動パターンに開始時間と停止時間があることは明らかであるから、本願発明の「（ｉｉ）フィブリノーゲンアッセイを遂行するための適切な条件下で、全血又は血液由来サンプルを前記サンプルウェルに添加し、これによって前記サンプルを前記反応チャンバに導入し、前記試薬を可溶化させ、且つ、前記粒子を解放して、前記振動磁場に対する相対粒子運動の程度の変化に対応して前記振動磁場によって誘起される振動パターンを描くように運動させ、ここで前記振動パターンは開始時間と停止時間を有し」に相当する。
（カ）刊行物１発明の「（iii）該反応室を光学的に監視して」は、本願発明の「 （ｉｉｉ）前記反応チャンバを光学的にモニターして」に相当する。
（キ）刊行物１発明の「（iii a）該振動する磁場に対する粒子の動きの度合いの変化に対応する、該フィブリノーゲン分析のための開始時間および停止時間」は、本願発明の「（ｉｉｉａ）前記フィブリノーゲンアッセイのための前記開始時間と前記停止時間」相当する。
（ク）刊行物１発明の「（iii b）該粒子振動の最大振幅Ａ、およびそれに続く、該粒子振動の、最大振幅Ａの後に残留する最小振幅Ｂ」、「（iii c）該粒子振動曲線の傾きもしくはＡとＢの間の該曲線により定義される積算部分により得られる領域」と、本願発明の「（ｉｉｉｂ）前記粒子振動の最大振幅Ａと前記粒子振動の後続残留ポストピーク最小振幅Ｂ」、「（ｉｉｉｃ）ＡとＢの間の領域における、前記粒子振動曲線の傾き又は前記曲線によって規定される面積」は、刊行物１の第３図及び第４図と本願明細書の図３及び図４に示される振動曲線が同じであることから、相当関係にあるといえる。
（ケ）刊行物１発明の「（iv）該開始時間および該停止時間、もしくはＡとＢとのうち少なくともＢ、もしくは該傾き、または該領域を使用して、該試料中の凝固し得るフィブリノーゲンの濃度を測定する」は、「該開始時間および該停止時間」、「ＡとＢとのうち少なくともＢ」、「該傾き、または該領域」がそれぞれ（iii a）、（iii b）、（iii c）に対応するものである。そして、刊行物１発明は、「フィブリノーゲンの濃度を測定することから成るフィブリノーゲン分析方法」であり、濃度測定に標準曲線が必要であることは技術常識であるし、刊行物１（上記(1d)(1f)）には、フィブリノーゲン濃度の標準曲線を得ることが記載されている。そうすると、刊行物１の上記構成は、本願発明の「（ｉｖ）前記開始時間と前記停止時間、又は少なくともＢ、又は前記傾き、又は前記面積を用いて前記パラメータ（ｉｉｉａ）〜（ｉｉｉｃ）の少なくとも一つを、標準サンプル中の凝固性フィブリノーゲン濃度と関連付けて、前記全血又は血液由来サンプル中の凝固性フィブリノーゲン濃度を測定する」に相当する。
　
　したがって、両者の間には、以下の一致点及び相違点がある。
（一致点）
　フィブリノーゲンアッセイを行う方法であって、
  （ｉ）（１）液体サンプルを受容するためのサンプルウェルと、（２）複数の磁性粒子が均一に分散して埋め込まれているフィブリノーゲンへの作用を促進してフィブリノーゲンの重合を誘起するプロテアーゼを含む乾燥試薬マトリックスを含む反応チャンバとを有する反応スライドを振動磁場に付し、
  ここで前記サンプルウェルと反応チャンバとは、前記サンプルウェル内に置かれ前記反応チャンバの容量に対応する液体分析物サンプルの分量が前記サンプルウェルから前記反応チャンバへと移送されるような幾何形状を有する移送ゾーンを介して液体連通しており、
  （ｉｉ）フィブリノーゲンアッセイを遂行するための適切な条件下で、全血又は血液由来サンプルを前記サンプルウェルに添加し、これによって前記サンプルを前記反応チャンバに導入し、前記試薬を可溶化させ、且つ、前記粒子を解放して、前記振動磁場に対する相対粒子運動の程度の変化に対応して前記振動磁場によって誘起される振動パターンを描くように運動させ、
  ここで前記振動パターンは開始時間と停止時間を有し、
  （ｉｉｉ）前記反応チャンバを光学的にモニターして、次の（ｉｉｉａ）、（ｉｉｉｂ）、（ｉｉｉｃ）のうちの一以上のパラメータを測定し、
  （ｉｉｉａ）前記フィブリノーゲンアッセイのための前記開始時間と前記停止時間、
  （ｉｉｉｂ）前記粒子振動の最大振幅Ａと前記粒子振動の後続残留ポストピーク最小振幅Ｂ、
  （ｉｉｉｃ）ＡとＢの間の領域における、前記粒子振動曲線の傾き又は前記曲線によって規定される面積、
そして
  （ｉｖ）前記開始時間と前記停止時間、又は少なくともＢ、又は前記傾き、又は前記面積を用いて前記パラメータ（ｉｉｉａ）〜（ｉｉｉｃ）の少なくとも一つを、標準サンプル中の凝固性フィブリノーゲン濃度と関連付けて、前記全血又は血液由来サンプル中の凝固性フィブリノーゲン濃度を測定することを含む方法である点。
　
（相違点）
　フィブリノーゲンの重合を誘起するプロテアーゼが、本願発明では、エカリンであるのに対し、刊行物１発明では、フィブリノーゲンへ直接作用するか作用を促進し、そしてフィブリノーゲンの重合を誘起するプロテアーゼである点。
　
　そこで、上記相違点について検討する。
　刊行物２（上記(2a)）には、血液サンプルの凝固に関連したアッセイにおいて、多様なヘビ毒がプロトロンビンをトロンビンおよび／またはその触媒活性前駆体のメイゾトロンビンに変える酵素を含んでおり、フィブリノーゲンをフィブリンに変え血漿の凝固が生じること、ヘビ毒から製造されたプロトロンビン活性剤であるエカリンが市販されていることが記載されている。さらに、特表平７−５０３３７３号公報（第４頁左下欄９行〜最終行）、特表平７−５０３７１９号公報（第３頁左下欄最終行〜右下欄１３行、第４頁右下欄１９行〜第５頁左上欄２行）、特開平６−３０７９３号公報（【０００５】【０００６】）にも、記載されるように、プロトロンビンをメイゾトロンビンに分解する化合物としてエカリンが知られていること、エカリンはプロトロンビンのペプチド結合を分断することからプロテアーゼの一種であること、メイゾトロンビンはヘパリンと反応しないものであることは、本願優先日前に周知の事項であるといえる。そして、ヘパリンがトロンビンに作用して血液凝固を阻害することは技術常識であるから、エカリンを用いれば、血液サンプル中にヘパリンが含まれていても凝固反応に影響しないことは当然のこととして理解できる。
　そして、刊行物１(上記(1a)(1c)(1e)）には、フィブリノーゲンへ直接作用するか作用を促進しフィブリノーゲンの重合を誘起するプロテアーゼとして、ヒトトロンビン、ウシトロンビン、レプチラーゼ、カッパー・ヘッド毒酵素、またはマラヤ・ピット・クサリヘビ毒酵素が記載され、この中でレプチラーゼが、通常抗凝集薬として使用されるヘパリンに影響されないから、動的凝固に基づくフィブリノーゲンの分析には好ましいことが記載されおり、ヘパリンの存在が分析に影響する要因として認識されていたといえる。
　そうすると、刊行物１発明において、プロテアーゼとして、レプチラーゼと同様にヘパリンにより影響されないことが知られているエカリンを選択して用いることは、当業者が容易になし得たものといえる。
　そして、本願発明の効果について検討すると、ヘパリンの存在により影響されないという効果は、刊行物２及び上記周知技術から予測し得たものとえる。また、血液サンプルのヘマトクリットにより影響されないという効果については、血液凝固時間の試験において、サンプル中の赤血球が粘度に影響し、測定結果に影響を与えることは、例えば、特開平９−１７１０２１号公報（【０００９】）、特開平６−３２４０４８号公報（【００６４】の(7)）にも記載されるように、本願優先日前に周知の事項であり、赤血球の量は、ヘマトクリット値として測定されるものであることは技術常識であるから、磁性粒子を用いて振動を測定するというサンプル自体の粘度の影響を受けやすいことが明らかである刊行物１発明において、エカリンを採用した際に、粘度に影響する要因であるサンプルのヘマトクリットを認識して測定結果を確認することは、当業者が当然に行うことといえ、効果を確認することに格別の困難性があるとはいえず、奏される効果は予測し得る範囲のものといえる。
　
４　むすび
　以上のとおり、本願発明は、刊行物１、刊行物２に記載された発明、及び周知技術に基づいて当業者が容易に発明をすることができたものであるから、特許法第２９条第２項の規定により特許を受けることができない。
　したがって、その他の請求項に係る発明についての判断を示すまでもなく、本願は拒絶すべきものである。
　よって、結論のとおり審決する。